Tesis Doctoral

Evaluación de identificaciones taxonómicas mediante código de barras del ADN en un grupo tropical megadiverso

Labarque, Facundo Martín 2012-04-11

Este documento forma parte de la colección de tesis doctorales y de maestría de la Biblioteca Central Dr. Luis Federico Leloir, disponible en digital.bl.fcen.uba.ar. Su utilización debe ser acompañada por la cita bibliográfica con reconocimiento de la fuente.

This document is part of the doctoral theses collection of the Central Library Dr. Luis Federico Leloir, available in digital.bl.fcen.uba.ar. It should be used accompanied by the corresponding citation acknowledging the source.

Cita tipo APA: Labarque, Facundo Martín. (2012-04-11). Evaluación de identificaciones taxonómicas mediante código de barras del ADN en un grupo tropical megadiverso. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires.

Cita tipo Chicago: Labarque, Facundo Martín. "Evaluación de identificaciones taxonómicas mediante código de barras del ADN en un grupo tropical megadiverso". Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Buenos Aires. 2012-04-11.

Dirección: Biblioteca Central Dr. Luis F. Leloir, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Buenos Aires. Contacto: [email protected] Intendente Güiraldes 2160 - C1428EGA - Tel. (++54 +11) 4789-9293

UNIVERSIDAD DE BUENOS AIRES

Facultad de Ciencias Exactas y Naturales Departamento de Biodiversidad y Biología Experimental

Evaluación de identificaciones taxonómicas mediante código de barras del ADN en un grupo tropical megadiverso

Tesis presentada para optar al título de Doctor de la Universidad de Buenos Aires en el área Ciencias Biológicas

Facundo Martín Labarque

Director de Tesis: Martín Javier Ramírez Director Asistente: Miguel Ángel Arnedo Consejero de Estudios: Daniel Roccatagliata

Lugar de trabajo: Museo Argentino de Ciencias Naturales “Bernardino Rivadavia” (CONICET), División de Aracnología.

Buenos Aires, 6 de Febrero del 2012

i

Evaluación de identificaciones taxonómicas mediante código de barras del ADN en un grupo tropical megadiverso

Resumen

El objetivo principal del proyecto fue evaluar las ventajas y limitaciones de los códigos de barras del ADN y de los métodos de la taxonomía clásica al estudiar la diversidad de arañas en los bosques montanos de Panamá. Se procesaron 29961 especímenes de arañas de 49 familias, de los cuales el 60% son juveniles, se secuenciaron 3553 fragmentos de cox1 y se generaron las bases de datos morfológica y molecular respectivas. Se identificaron los especímenes mediante tres estrategias concatenadas. Primero una identificación rápida utilizando caracteres somáticos externos, seguida por una identificación de grupos moleculares obtenidos con el modelo Generalizado Mixto de Yule y Coalescencia, finalizando con una identificación integrativa fruto de la comparación recíproca de las anteriores y del aporte de la disección de los órganos sexuales que son críticos a la hora de delimitar especies en artrópodos. Se identificaron 548 especies de manera integrativa, se estimó la diversidad alfa y beta según cada estrategia con los individuos adultos y, por primera vez, con los estadios inmaduros identificados molecularmente; se realizó una revisión taxonómica integrada de la familia Theridiosomatidae con el aporte de dos géneros nuevos y 27 especies nuevas y se asociaron los sacos de huevos con sus adultos mediante los códigos de barra, y se evaluaron las metodologías de colecta. Los códigos de barra sirvieron para estimar la diversidad, asociar diferentes estadios entre sí como machos y hembras y juveniles con sus adultos, revelar haplotipos endémicos, y sugirieron especies crípticas y nuevas especies putativas a partir de los estadios inmaduros no encontrados entre los adultos.

Palabras clave: Diversidad, Sistemática, Arañas, Theridiosomatidae, Panamá

ii

Use of DNA barcoding techniques for rapid inventorying in a tropical megadiverse group

Abstract

The main goal of the project was to evaluate the advantages and limitations of DNA barcoding and traditional to study the diversity in the montane forests of Panama. We have sorted 29961 specimens of 49 families, 60% of which were immature, and we have sequenced 3553 cox1 fragments, to generate morphological and molecular data bases. Specimens were identified using three linked approaches. First, a fast identification approach using external somatic characters, followed by a General Mixed Yule‐Coalescent molecular cluster identification, ending with the reciprocal illumination of both previous approaches plus a close examination of sexual organs, known as critic characters to delimit species, called integrative identification. We have identified 548 integrative species, we have estimated alpha and beta diversity with adults using each identification approach and, for the first time, we also have used immature specimens. We have done a taxonomic integrative revision of the family Theridiosomatidae describing two new genera and 27 new species plus spider egg‐sacs association with their species using DNA barcodes, and we have evaluated collecting methods. DNA barcodes can be used to estimate diversity, to associate different life and gender stages such as immature to mature and male to female specimens, and to reveal endemic haplotypes. DNA barcodes also suggest cryptic species, and putative new species from immature specimens not found among adults.

Key words: Biodiversity, Systematics, , Theridiosomatidae, Panama

iii

ADVERTENCIA Esta Tesis no es válida como publicación, conforme al Capítulo 3 del CÓDIGO INTERNACIONAL DE NOMENCLATURA ZOOLÓGICA. Por lo tanto, los nombres nuevos y cambios taxonómicos propuestos aquí no tienen validez para fines nomenclatoriales o de orden de prioridad.

WARNING This Thesis is not valid as publication, as described in the chapter 3 of the INTERNATIONAL CODE OF ZOOLOGICAL NOMENCLATURE. Therefore, taxonomic changes and new names proposed here are not valid for nomenclatural or priority purposes.

ÍNDICE

Resumen en castellano ...... i

Resumen en inglés (Abstract) ...... ii

Agradecimientos ...... 1

Dedicatoria ...... 7

Un sueño zen ...... 8

Objetivos Generales ...... 9

Introducción General ...... 11

La unidad básica ...... 11

Antes de que se vayan ...... 12

Una mano para la taxonomía ...... 13

Un nuevo vecino ...... 15

Identificación de especímenes en BOLD ...... 16

Enemigo íntimo ...... 17

Diversidad ...... 19

Amigos de ocho patas ...... 21

Identificación de especímenes ...... 22

Materiales y Métodos ...... 25 Cuerpo de la Tesis ...... 25 Abreviaturas utilizadas ...... 25 Sitios de estudio ...... 27 Métodos de muestreo semi‐cuantitativos ...... 27 Identificación de especímenes ...... 28 Códigos únicos de los especímenes ...... 29 Estimadores de diversidad ...... 32 Laboratorio taxonómico – Imágenes ...... 35 Obtención del código de barras del ADN ...... 36 Análisis de las secuencias de ADN ...... 38 Capítulo 1: Rápido, rápido, rápido… Una aproximación integrativa a la estimación rápida de la diversidad de arañas Theridiosomatidas de los bosques montanos de la cordillera panameña ...... 42

Taxonomía ...... 42 Material examinado ...... 42 Análisis de secuencias de ADN ...... 43 Resultados moleculares ...... 46 Identificación integrativa ...... 46

• Órganos sexuales masculino y femenino …………………………………………….47 • Órganos sexuales femeninos y coloración general del cuerpo ……………48 • Coloración general del cuerpo ……………………………………….…………………..49 • Forma del cuerpo ……………………………………………………….…….……………………51 • ¿Potenciales especies crípticas? …….………………………….…….……………………51 Diversidad ...... 51

• Diversidad alfa ……………………………..……….……………………………………………..52 • Diversidad beta ….………………….…………………………………………………………..54 Capítulo 2: Hasta las últimas consecuencias… Revisión taxonómica integrativa de las arañas de la familia Theridiosomatidae de los bosques montanos de Panamá ...... 55

Filogenia ...... 55 Diagnosis moleculares ...... 56 Taxonomía ...... 57 Theridiosomatidae Simon, 1881 ...... 57 Chthonos Coddington, 1986 ...... 58

• Chthonos dobo n. sp. …...…………………………………………………………………… 58 • Chthonos kwati n. sp. …...………………………………………………………………….. 62 • Chthonos kaibe n. sp. ...…………………………………………………………………….. 64 Epeirotypus O. Pickard‐Cambridge, 1894 ...... 71

• Epeirotypus kwakwa n. sp. .………………………………………………………………. 71 • Epeirotypus kote n. sp. .….…………………………………………………………………. 73 • Epeirotypus kra n. sp. …….…………………………………………………………………. 76 • Epeirotypus tain n. sp. …..………………………………………………………………….. 80 • Epeirotypus jane n. sp. …..…………………………………………………………………. 82 • Epeirotypus drune n. sp. …..………………………………………………………………. 84 • Epeirotypus bule n. sp. .…………………………………………………………………….. 87 Naatlo Coddington, 1986 ...... 91

• Naatlo fauna Coddington, 1986 ………………………………………………………… 91 • Naatlo chi n. sp. …..……………………………………………………………………………. 92 Ogulnius O. Pickard‐Cambridge, 1882 ...... 99

• Ogulnius zbodro n. sp. …..………………………………………………………………….. 99 • Ogulnius gertschi Archer 1953 ...…………………………………………………….. 102 Theridiosoma O. Pickard‐Cambridge, 1879 ...... 106

• Theridiosoma goodnightorum Archer 1953 ...…………………………………. 106 Tantra n. gen...... 111

• Tantra ngabe n. sp. ………..……………………………………………………………….. 114 • Tantra bugle n. sp. ……….....……………………………………………………………… 117 • Tantra kuna n. sp. . …………………………………………………………………………. 121 • Tantra embera n. sp. ………………………………………………………………………. 124 • Tantra wounaan n. sp. .……………………………………………………………………. 128 • Tantra naso n. sp. …..………………………………………………………………………. 132 • Tantra bribri n. sp. ….………………………………………………………………………. 135 • Tantra sichid n. sp. ….……………………………………………………………………… 137 Baalzebub Coddington, 1986 ...... 142

• Baalzebub albonotatus (Petrunkevitch, 1930) ...... …………………………… 142 • Baalzebub sukia n. sp. ……………………………………………………………………… 142 • Baalzebub jaibana n. sp. ..………………………………………………………………… 147 • Baalzebub nele n. sp. ……....……………………………………………………………… 150 • Baalzebub innatuledi n. sp. .……………………………………………………………… 152 • Baalzebub absoguedi n. sp. .……………………………………………………………… 156 • Baalzebub antomia n. sp. …….…………………………………………………………… 158 Epilineutes Coddington, 1986 ...... 160

• Epilineutes globosus Coddington, 1986 …………………………………………… 160 Wendilgarda Keyserling, 1886 ...... 163

• Wendilgarda clara Keyserling, 1886 …..…………………………………………… 165 Jogo n. gen...... 167

• Jogo una n. sp. ………………………………………………………………………………… 170 Capítulo 3: ¿De quién son estos huevos? Asignación específica (identificación) de arañas Theridiosomatidas mediante técnicas de código de barras de ADN ...... 173

Taxonomía ...... 155 Todo preparado ...... 174 Material examinado ...... 174 Análisis de secuencias de ADN ...... 174 Identificación por GMYC clusters...... 175 Parasitoides ...... 180 Capítulo 4: Apto para menores. Caracterización de la contribución de los individuos inmaduros a las estimas de diversidad en familias de arañas con diferentes estrategias ecológicas ...... 184

Estimadores de diversidad y código de barras del ADN ...... 184 Los olvidados ...... 184 Gremios ...... 185

• Corinnidae …….………………………………………………………………………………… 185 • Oonopidae ………………………………………………………………………………………. 185 • ……………………………………………………………………………………… 186 • Uloboridae ………………………………………………………………………………………. 186 Material examinado ...... 187 Análisis de secuencias de ADN ...... 187 Estimadores de diversidad ...... 198 Capítulo 5: Evidencia total. Evaluación de identificaciones taxonómicas, estimadores de alfa y beta diversidad, utilizando técnicas clásicas y moleculares ...... 203

Clasificación de las muestras ...... 203 Análisis de secuencias de ADN...... 204 Identificación integrativa ...... 208 Eficiencia de los métodos de muestreo ...... 209 Estimadores de diversidad ...... 213 Conclusiones ...... 218

Delimitación de especies ……………………………………………………………………………218 Potenciales especies ……………………………………………………………………………………219 Estimadores de diversidad ……………………………………………………………………………220 Los juveniles valen ……………………………………………………………………………………..223

Otro sueño zen ...... 225

Referencias ...... 227

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 1 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Agradecimientos

AGRADECIMIENTOS

FINANCIAMIENTO

Este trabajo se realizó gracias al financiamiento de la Fundación BBVA del proyecto: Panamanian Arthropods Barcoding Iniciative (PANCODING). Dicho subsidio cubrió los gastos de los dos viajes de colecta a Panamá, los dos viajes y estadías en Barcelona (España) para realizar estudios moleculares, la secuenciación de los fragmentos de ADN en los laboratorios españoles, los dos técnicos encargados de procesar gran parte del material aracnológico y genético. El Biodiversity Institute of Ontario (BIO) y el Canadian Center for DNA Barcoding (CCDB) financiaron el viaje y la estadía en Ontario (Canadá), el entrenamiento en el laboratorio molecular y los productos de ADN. El doctorado fue financiado por una beca doctoral CONICET (Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas).

INSTITUCIONAL

Se agradece a la Comisión de Doctorado, al Consejo Directivo y a las autoridades de la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales (FCEyN) de la Universidad de Buenos Aires (UBA); al Director del Museo Argentino de Ciencias Naturales “Bernardino Rivadavia” (MACN), del Institut Mediterrani d’Estudis Avançats (IMEDEA, España) y del BIO; y a las autoridades del CONICET, de la Universitat de Barcelona (UB, España) y de la University of Guelph (UoG, Canadá); así como al personal administrativo de cada Institución; por el desempeño de sus funciones, por proporcionar un respaldo Institucional a nivel Nacional e Internacional al proyecto PANCODING, por la aprobación de convenios entre las Instituciones.

Se agradece al personal del Smithsonian Tropical Research Institution (STRI, Panamá) que aportó soporte logístico y los permisos de colecta para realizar el inventariado biológico de PANCONDING en los Parques Nacionales de Panamá. Se agradece a los guarda‐parques y al personal de los Parques Nacionales panameños por su asistencia. Se le agradece especialmente a Carlos Espinoza y Alberto González por el Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 2 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Agradecimientos soporte logístico en la Reserva Forestal Fortuna. A la Licenciada Amarilis Mendoza, directora de la Autoridad Nacional del Ambiente ANAM de La Chorrera (Panamá), quién facilitó el trabajo de campo en el Parque Nacional Altos de Campana.

EQUIPO DE TRABAJO

Les quiero agradecer principalmente a todos los integrantes del proyecto PANCODING. A mis directores de Tesis, Martín Ramírez y Miquel Arnedo, y al Director del proyecto, Joan Pons, por confiar en mí y ofrecerme la oportunidad de trabajar en este proyecto. A Gustavo Hormiga, Dimitar Dimitrov, Ligia Benavides, Luis Piacentini y mis directores por su colaboración en las colectas de campo y en el manejo táctico de las campañas en Panamá, así como el entrenamiento, la paciencia, la convivencia y los gratos momentos a la hora de sentarse a la mesa, durante los viajes en camioneta, al salir a colectar y al identificar especímenes de arañas. Le quiero agradecer también a Joan Pons y a José Antonio Jurado Herrera por realizar más de 4000 extracciones y de 2000 secuencias de ADN de los tejidos de arañas de Panamá en el Institut Mediterrani d’Estudis Avançats (IMEDEA, España). Especialmente le quiero agradecer a mi mano derecha Luis Piancentini, quién durante los primeros tres años de este proyecto participó incansable y activamente junto a mí en las colectas de especímenes, separación de las muestras, determinación de especies, toma de fotografías, separación de tejidos, para nombrar algunas. Sin su apasionada colaboración este trabajo no hubiese llegado a su fin.

También le quiero agradecer a los que fueron una vez pasantes o aún lo son de la FCEyN, y a los visitantes y colegas del exterior que colaboraron en la separación de muestras, toma de fotografías y tejidos, documentación de bases de datos y determinación de especies: Sol Balbuena, Jagoba Malumbres‐Olarte (Nueva Zelanda), Junxia Zhang (Canadá), Mariana Barone, Juan Manuel Andia Navarro y Alejandro

Valdez Mondragón (México).

Al grupo de aracnología de la UB por el entrenamiento en las técnicas moleculares, por las salidas de campo, por el cariño y la contención durante los cuatro Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 3 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Agradecimientos meses de estadía en España, por la oportunidad de ampliar mis conocimientos académicos y culturales: Nuria Macías Hernández, Leticia Bidegaray, Juan Carlos Rivera, Gema Blasco Melia.

También le quiero agradecer al grupo de investigadores del BIO por la hospitalidad, el alojamiento, el entrenamiento en los laboratorios moleculares robotizados y el intercambio académico: Paul Hebert, Alex Borisenko, Natalia Ivanova, Alex Smith, Rick Turner, Gergin Blagoev y Nadya Nikolova. Les quiero agradecer especialmente a Gergin y a Nadya por su cariño, por enseñarme la ciudad de Guelph y sus alrededores, por la rica comida búlgara y por hacerme sentir como en mi casa. A Vadim Tryptamin y a Verónica Chillo por compartir sus días conmigo y generar un fuerte lazo de amistad.

MUY PERSONAL

¿Cómo se pueden resumir cinco años de una vida en tan solo unas páginas? La verdad parece bastante difícil, pero voy a intentarlo. Tantos cambios, eventos, experiencias y movilizaciones internas. Esto parece una catarsis, quizás lo sea, pero mis dedos no dejan de escribir intensamente.

Pienso en la cantidad de gente que conocí durante este período, a los amigos que encontré por el camino, a los desencuentros con otros, a las relaciones íntimas que proyectaron en mi nuevas virtudes y sombras que había olvidado que llevaba.

Y ahora me pongo a escribir, dejando fluir al ser interior que hay en mí, que llevamos todos, las lágrimas correr por mis mejillas. Si… el fin ha llegado, la conclusión de una de las etapas de mi vida, una vida que no quiero cambiar, que no quiero dejar y que, sin embargo, sé que debe pasar y que debo aceptar. Uno se vuelve vulnerable, ansioso, misterioso, asustado y valiente. Consagrado, animado, divertido, tímido y sexual. Nos transformamos constantemente, no hay permanencia y conservación, evolucionamos... cambiamos. Preparado para saltar a otro nivel de energía, un salto cuántico, a otra dimensión. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 4 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Agradecimientos

Pero las lágrimas no solo caen por mis cambios internos, sino también por las personas que vieron, sintieron y vivieron esos cambios junto a mí. Mi familia, fundamentalmente, esa célula que concentra en gran parte la estabilidad emocional y racional de cada uno. Mi familia a la que amo y a la que acepto, aunque muchas veces lo segundo sea más que difícil, aún más que escribir una Tesis. Aceptar es la clave. Especialmente, le quiero agradecer a mi papá y a mi mamá, sí, como un nene chiquito que habla de mamá y papá, así me dirijo a ellos con una treintena encima. A ellos, por hacer lo que pueden para darme sus ejemplos en cualquier ámbito, sean positivos o negativos bajo mi punto de vista, pero que al fin y al cabo, sale de sus corazones. Y como no agradecer a mis tres queridos hermanos, de los cuales, la pequeña‐adulta es la última de los cuatro. ¿Qué no habremos compartido? Sino la calidad de vivir el uno con el otro. De reír y sufrir las idas y vueltas, los Tsunamis, vulcanismos y la Gracia del paraíso. La amistad ligada a la sangre, esa que no se elige, sino que toca. A mis pequeños amigos, que muchas veces, como esta vida paradójica, son los que me enseñan sobre el pasado y el futuro… y también del presente. A todos ellos, mi casa, mi corazón, les agradezco su compañía, su estar, su ser.

Y la convivencia se extiende más allá de la familia, cuando uno sale afuera, a buscar, a conocer que hay a nuestro alrededor. Escapando de la desolación, buscando una respuesta o cobijo, queriendo experimentar y crecer como persona. Convivir con otras personas, amigas, amigos, compañeros, desconocidos. Todos aportan, uno aporta, al ser de la convivencia. Así uno aprende que existen otras cosas, otras maneras de ver las cosas. A las personas, que no solo han abierto las puertas de su casa, sino de su cariño, a ellos y ellas, les agradezco su aporte a esta obra.

Anam Cara. Anam es la palabra gaélica que significa “alma” y Cara es “amigo”, de manera que Anam Cara significa “alma gemela, amigo espiritual e íntimo”, una persona a quien puedes revelar las intimidades más ocultas de tu vida, enmarcado por la creencia Celta espiritual de que hay almas en constante conexión y unión. Fragmento extraído de: Anam Cara ‐ El Libro de La Sabiduría Celta, John O´Donohue, Primera Edición, 1997. ¿Quién, pues, puede llenar semejante lugar? ¿Llegar tan adentro de una persona? ¿Contados con los dedos de las manos y de los pies? En cinco Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 5 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Agradecimientos años, ¿Cuántos Anam Cara me crucé? ¿Cuántos me han iluminado el camino en tantos sentidos y trayectorias? ¿Me han revelado sus secretos y les he intimado los míos? ¿Han desatado un torbellino de emociones y han fortalecido mis ideas? A ellos les agradezco. Rado, Julix, Kike, Mauros, Mafi, Enanex, Koinor, Cris, Lucho, Hogost, Andrés, Viru, Rose, Li, Sol, El Tío Maxi, Peter.

Como no agradecerles a mis directores. No sería lo que soy a nivel académico, profesional y humano, sin su influencia. Con mayor o menor grado de la misma, de las exigencias, de las no exigencias, del dejar fluir, no puedo dejar de valorar la gran oportunidad que me han dado Martín y Miquel para estar aquí hoy, escribiendo esta Tesis, defendiendo no un ataque, sino un diálogo, sobre cómo se comporta la vida a nuestro alrededor. Y como siempre, uno toma y se nutre de las personas, de la convivencia, buenas y malas costumbres, y elige, se casa con unas, deja a las otras. Espero haber absorbido más de la cuenta, en todas las perspectivas posibles, sus enseñanzas, directas o indirectas, soy un buen observador, y que ellos se sientan orgullosos por el espécimen que liberan. Against all odds. No me alcanzarían ocho patas para abrazarlos y agradecerles infinitamente su aporte.

Y que puedo decir de mi amigo, compañero y hermano de escritorio. Aquel que física y tácitamente está siempre para ayudarme, con un consejo, con una gracia, con una charla, con su presencia. Luis y las arañas son uno en mi vida cotidiana, no hay división, no hay borde. Gracias Amigo!

A las chicas con las cuales he compartido la piel, la mirada infinita y profunda, la fundición de los cuerpos, los mundos, los viajes, la calidez de un beso, las caricias que alivian, un camino en común. A todas ellas, a los corazones rotos, a los recuperados, a los invulnerables, al sufrimiento mutuo, a la victoria, a la desilusión, a que te rompan el corazón o rompérselo a otro, todo vuelve, es una de las formas de aprender, experimentar. A las diosas, a las arpías, a ellas, únicas.

A la vida interior, ese castillo interno, fortificado, protegido, inaccesible, hasta hoy, hasta hace unos años. A el Yôga, al SwáSthya Yôga, términos sánscritos que Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 6 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Agradecimientos significan “autosuficiencia” y “unión”. A esta práctica, que me abre puertas interiores, me permite acceder a mundos interiores, a la unión.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 7 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Agradecimientos

DEDICATORIA

A mis Anam Cara. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 8 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Agradecimientos

UN SUEÑO ZEN

Recuerdo una casa antigua de estilo japonés, con sus puertas corredizas de papel y toda ella construida en madera. Estoy sentado en uno de los cojines que rodean la mesa baja ubicada en el centro de la sala. Desde allí, observo pacientemente la danza de un macho de Maratus volans que se encuentra sobre la mesa. Sus movimientos frenéticos y colores vivos me cautivan. Lo tomo entre mis dedos, se perfila hacia mí y me observa profundamente. El tiempo parece no transcurrir. Juntos salimos a un gran jardín florido, con un lago artificial que serpentea entre las rocas y los árboles surcado por puentes colorados que comunican pequeños islotes. En un montículo de flores muy colorido e iluminado, libero a mi amigo. Los colores a nuestro alrededor son vivos y brillantes, es un lugar mágico. De repente, el macho de Maratus volans desaparece ante mis ojos, se esfuma entre la vegetación. Me desespero y enloquezco. Me zambullo en la naturaleza, nado a través de la tierra y entre las plantas. Mi búsqueda es en vano, no logro encontrarlo, se ha ido para siempre. Llueve… llueve torrencialmente. Todo se torna gris y opaco… sin vida. Estoy mojado, lleno de lodo y frustrado. Entro a la casa para guarecerme. Allí, en el living, me encuentro con dos artistas que me preguntan el paradero de la araña. Les cuento lo sucedido en el jardín. Dirigiéndose a la cocina me responden: “No te preocupes, tenía que pasar”. 10 de junio del 2010 Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 9 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Objetivos Generales

OBJETIVOS GENERALES

• Realizar muestreos semi‐cuantitativos dentro de una hectárea delimitada en cuatro localidades de bosques pluviales montano y pre‐montano de Panamá, para estimar los patrones de diversidad de las arañas.

• Identificar los especímenes de arañas según tres criterios. Identificación rápida: se utilizan caracteres morfológicos de fácil reconocimiento para cualquier persona no entrenada en taxonomía. Identificación por GMYC clusters: se utilizan los grupos encontrados como resultado de los análisis filogenéticos de los códigos de barra del ADN. Identificación integrativa: se contrastan las identificaciones anteriores y, en el caso de controversias, se observan los caracteres internos de los órganos sexuales para tomar la decisión definitiva.

• Construir la base de datos de los códigos de barra del ADN de las arañas de los bosques montanos y pre‐montanos de Panamá para generar un sistema rápido y eficiente de identificación, utilizando como unidades taxonómicas a las especies definidas según el criterio integrativo.

• Estimar la diversidad alfa y beta de las arañas en las cuatro localidades seleccionadas utilizando curvas de acumulación de especies y métodos no‐ paramétricos, para cada uno de los criterios de identificación de especímenes.

• Utilizar a la familia Theridiosomatidae como modelo a menor escala, para estudiar rápidamente las irregularidades entre los criterios de identificación y observar cómo afectan a los estimadores de diversidad, para realizar una revisión taxonómica rápida con descripciones de géneros y especies nuevas basados en el criterio integrativo, y para testear el sistema de identificación por GMYC clusters en individuos inmaduros. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 10 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Objetivos Generales

• Secuenciar todos los individuos (adultos y juveniles) de cuatro familias de arañas para medir el impacto en las estimas de diversidad alfa y beta al incluir especímenes inmaduros identificados con los GMYC clusters.

• Estudiar las ventajas, desventajas y potencialidades del código de barras del ADN como complemento a la taxonomía tradicional para la caracterización rápida de la diversidad de arañas.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 11 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General

INTRODUCCIÓN GENERAL

La unidad básica

Las especies son las protagonistas de la diversidad biológica y las unidades taxonómicas fundamentales de muchas áreas de la biología, entre ellas, la biología de la conservación (Rubinoff, 2006). El concepto especie, del latín species que significa forma o apariencia, fue acuñado por John Ray en 1686 basado en la observación de que los descendientes se parecen a sus padres (Wilkins, 2011). Muchos de los sistemáticos y biólogos evolutivos consideran que las especies son entidades reales de la naturaleza (Wheeler y Meier, 2000), aunque algunos las consideran hipótesis y no hechos (ver Thiele y Yeates 2002; Barrett y Hebert, 2005; Prendini, 2005). A nivel teórico existen al menos veintidós definiciones (concepciones) de especie diferentes (Wheeler y Meier, 2000; Wilkins, 2011), muchas de ellas contradictorias entre sí (Rubinoff, 2006). La mayoría de las especies descriptas por los científicos (Bickford et al., 2007) recaen en la definición taxonómica (todo lo que un taxónomo llama una especie) o morfológica (especies definidas por su forma, o fenotipos) de especie; las poblaciones reproductivamente aisladas de otras que intercambian su material genético se engloban en la definición biológica de especie (ver Mayr, 1963), quizás la más popular del momento (Bickford et al., 2007); las entidades biológicas monofiléticas diagnosticables por autapomorfías en la definición filogenética de especie (Wheeler y Platnick, 2000); los clusters de especímenes identificados utilizando diferentes líneas de evidencia (morfológica, genética, ecológica, fisiológica) en la definición “polifacética” (ver Mallet, 1995; Wilkins, 2011); los grupos de organismos que heredan caracteres entre sí, que comparten su pool genético, en la definición genética. Estos ejemplos, como cada uno de las definiciones de especie, tienen su propia perspectiva y ninguna es aceptada universalmente (Waugh, 2007). Un producto de las contradicciones entre definiciones es el término especie críptica. Bickford et al. (2007) la definen como dos o más especies diferentes que han sido clasificadas (y escondidas) erróneamente con el mismo nombre. En general, las especies crípticas no difieren morfológicamente entre sí, pero lo hacen en otros niveles como el molecular y Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 12 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General el comportamental (estrategias reproductivas, alimentación). Está por fuera del alcance de este trabajo debatir los méritos relativos de cada definición de especie, y son nombradas aquí para alertar al lector sobre la diversidad de las mismas y sobre las diferentes hipótesis que ellas proponen.

Antes de que se vayan

El término biodiversidad fue acuñado por Wilson en 1988 como una contracción de diversidad biológica, que representa a la diversidad de la vida en todos sus niveles incluyendo la diversidad de genes, especies y ecosistemas (Stork, 1993). El número de especies catalogadas desde la introducción del sistema binomial de Linnaeus (1753, 1758) hasta el día de hoy se ha estimado entre 1,4 y 1,8 millones (Stork, 1988, 1993; May, 1990; Erwin, 1991; Heywood, 1995; Watson et al., 1995; Waugh, 2007; Mora et al., 2011). Desafortunadamente, estos valores están subestimados ya que solo consideran a las especies nominales delimitadas por diferencias morfológicas y excluyen a las especies crípticas (Bickford et al., 2007). Utilizando diferentes estrategias (May, 1990; Erwin, 1991; Waugh, 2007) se ha estimado que el número total de eucariotas del planeta ronda entre unos cinco y 100 millones de especies. Sin embargo, utilizando una base empírica y teórica más robusta, estudios recientes lo reducen a unos 8,7 millones de especies (Mora et al., 2011). Claramente, la mayor parte de la biodiversidad no está documentada (Meyer y Paulay, 2005; Mora et al., 2011), por ejemplo, entre el 51‐78% de las especies de arañas estimadas no están descritas (Coddington et al., 2004). A pesar del esfuerzo de los taxónomos durante el Año Internacional de la Biodiversidad (2010) donde se han descripto entre 15‐20 mil especies nuevas (Zhang, 2011), se ha estimado que catalogar más de las 6 millones de especies restantes llevaría unos 1.200 años y requeriría de 303 mil taxónomos (Wilson, 2005; Waugh, 2007; Mora et al., 2011). El término impedimento taxonómico surge entonces para referirse a la lentitud de los métodos tradicionales para determinar y describir especies y a la alta especialización requerida por los taxónomos para catalogar la biodiversidad del planeta (Rodman y Cody, 2003; Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 13 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General

Convention on Biological Diversity1). Un ejemplo se observa en los inventarios biológicos, especialmente si se trata de artrópodos de ambientes tropicales, donde la magnitud de las muestras en niveles de riqueza y abundancia es grande, y el tiempo de la determinación de las especies es considerable (Coddington et al., 1991). Paralelamente, se ha estimado el índice de extinción de especies como el número de extinciones actuales (E) sobre el tiempo de vida estimado para todas las especies calculado en 106 años (MSY) (Pimm et al., 1995). En la actualidad el índice de extinción de especies ronda entre unos 20 y 200 E/MSY, y se ha sugerido que alcanzará valores entre 1000 y 10000 E/MSY (Pimm et al., 1995). El posible incremento en uno o dos órdenes de magnitud del índice de extinción sugiere que entre un cuarto y la mitad de las especies del planeta, así como los ecosistemas donde ellas se encuentran, podrían desaparecer en menos de un siglo (Heywood, 1995; Watson et al., 1995). Los puntos terrestres de mayor biodiversidad (UNESCO2), son un claro ejemplo de estos ecosistemas en alto riesgo (Myers et al., 2000), ya que contienen un gran número de especies que en su mayoría aún no han sido descriptas. Ante el panorama de la pérdida de especies por la destrucción de los hábitats naturales más el problema del impedimento taxonómico, se ha recomendado desarrollar nuevas tecnologías para catalogar la biodiversidad (Blaxter, 2004; Wilson, 2004‐2005; Wheeler, 2007; Zhang, 2008; la Salle, 2009). Se ha propuesto como una alternativa a las técnicas moleculares de extracción, amplificación y secuenciación del ADN, para así obtener marcadores genéticos diagnósticos (por ejemplo, ADN ribosomal (ADNr), ADN mitocrondrial (ADNmt)) con los cuales identificar y diferenciar especies. En los últimos 30 años, estas técnicas han transformado la capacidad de los científicos para definir y describir la diversidad biológica (Vogler y Monaghan, 2007; Bickford et al., 2007; Pires y Marinoni, 2010).

Una mano para la taxonomía

1 http://www.cbd.int 2 http://www.biodiversityhotspots.org/xp/Hotspots Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 14 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General

La taxonomía es una ciencia independiente que explora, describe, analiza y clasifica las especies del planeta (Nelson y Platnick, 1981; Carvalho et al., 2007), estudiando sus distribuciones geográficas, relaciones filogenéticas, caracteres complejos y clasificaciones (Hennig, 1966; Nelson y Platnick, 1981). Usualmente los taxónomos filtran numerosas observaciones de distintas líneas de conocimiento para tomar la decisión de que un grupo de especímenes o taxa forman un nuevo taxón (Prendini, 2005). Los avances teóricos en esta disciplina han aportado poder predictivo a las clasificaciones, y han puesto a prueba hipótesis de especies y caracteres (Hennig, 1966; Nelson y Platnick, 1981; Schuh, 2000; Wheeler y Meier, 2000). El conocimiento básico generado por la taxonomía es un complemento necesario para la biología (Wheeler, 2005), es fundamental para la construcción del árbol de la vida3, las bases de datos de biodiversidad (Wilson, 2004), y los sistemas de identificación (Wheeler, 2005).

A la hora de clasificar cualquier tipo de organismos, los taxónomos atraviesan tres fases que se superponen entre sí llamadas taxonomía alfa, beta y gama (ver Mayr, 1969). La taxonomía alfa se centra en la detección y descripción de especies nuevas. La taxonomía beta es el estudio de las relaciones de los taxa, para así ordenarlos en un sistema de clasificación natural. La taxonomía gama es el estudio de varios aspectos biológicos de los taxa para explicar variaciones intra‐ e interespecíficas, tasas evolutivas y cuestiones biogeográficas. Para detectar y describir especies nuevas los taxónomos utilizan catálogos y revisiones taxonómicas, revisan el material tipo y los especímenes de las especies descriptas que se encuentran en las colecciones biológicas alrededor del mundo, realizan esquemas interpretativos de los órganos internos y de las estructuras externas, generan claves dicotómicas basadas en dichos caracteres, estudian patrones de comportamiento y de distribución geográfica. Esta aproximación, más conocida como taxonomía tradicional, presenta una serie de problemas que obstaculizan y ralentizan la labor del taxónomo como ser la falta de acceso a la literatura especializada, los grupos taxonómicos aún no revisados, las revisiones antiguas confusas e imprecisas y la falta de experiencia en ciertos grupos.

3 http://tolweb.org/tree/ Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 15 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General

Un nuevo vecino

El término código de barras del ADN (DNA barcode) fue acuñado por Hebert y colaboradores (2003a), quienes sugirieron que se debía generar un inventario de secuencias de ADN de todos los animales, con el fin de utilizarlo para gestionar la diversidad biológica e identificar cualquier taxón. Según estos autores, como las secuencias de ADN son únicas para cada especie podrían utilizarse como código de barras genéticos. La variación de nucleótidos posibles en el ADN es de cuatro bases nitrogenadas (A, T, C, G) en cada una de las cadenas, lo que significa que existen 4n códigos posibles para cualquier secuencia de ADN de n nucleótidos de largo, con los cuales se podría identificar cada taxón. En teoría, una base de datos conformada por secuencias de hasta 15 nucleótidos podría identificar más de mil millones de especies (415). Una analogía concreta de la función de dicha secuencia es el código de barras de los productos de un supermercado, que permiten una rápida distinción entre cada uno de ellos (Hebert et al., 2003a). En mayo del 2004 se reunió por primera vez el Consortium for the Barcode of Life4 (CBOL), el cual propuso como marcador genético para animales al fragmento 5' de la subunidad I del gen de la citocromo C oxidasa del ADN mitocondrial (cox1), que posee unos 648 pares de bases. El cox1 ha sido seleccionado por las siguientes ventajas: al ser un gen mitocondrial codificador de proteínas las inserciones o deleciones son raras, las cuales provocarían un corrimiento en el marco de lectura complicando la homología entre los nucleótidos; existen cebadores (primers) universales muy robustos para cox1 que permitirían secuenciar a la mayoría de los animales; el cox1 posee una elevada tasa de sustitución nucleotídica que le proporciona una buena señal filogenética a nivel intra‐ e inter‐específico (Hebert et al., 2003b). Como el genoma mitocondrial se transmite como una única unidad no recombinante, las distintas variantes de las secuencias de ADNmt se las llama haplotipos, en lugar de alelos. Bajo este punto de vista, el ADNmt se heredaría como si fuese un único locus haploide (Neigel, 1997). En el 2007, Ratnasingham y Hebert formalizan el sistema de identificación y delimitación de especies mediante

4 http://www.barcoding.si.edu/DNABarCoding.htm Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 16 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General código de barras como The Barcode of Life Data System (BOLD5), una plataforma bioinformática preparada para manejar todas las etapas de este proceso, desde la colecta de los especímenes hasta la validación de una secuencia de ADN contra la base de datos molecular (ver en el siguiente párrafo). Además, BOLD funciona como repositorio de los datos de los especímenes (taxonómicos, moleculares, geográficos); gestiona, lleva el control de calidad y realiza análisis del código de barras; y es un vehículo de comunicación entre científicos (Ratnasingham y Hebert, 2007).

Identificación de especímenes en BOLD

BOLD utiliza a Kimura 2‐parámetros (K2P) como modelo de evolución molecular para calcular los valores de divergencia genética entre los códigos de barra. Este modelo tiene en cuenta que la tasa de sustitución en las transiciones (purina por purina o pirimidina por pirimidina) es mayor que en las transversiones (purina por pirimidina o pirimidina por purina), asumiendo que las frecuencias de los cuatro nucleótidos es la misma y que las tasas de sustitución no varían entre los sitios (ver Kimura, 1980). Para generar los fenogramas de las distancias genéticas entre las secuencias, BOLD utiliza el método fenético de neighbor‐joining (NJ) (Saitou y Nei, 1987) con los valores calculados con K2P. NJ produce un único árbol, que puede ser óptimo o sub‐óptimo, bajo el principio de evolución mínima (Saitou y Nei, 1987). BOLD utiliza a K2P porque es un modelo evolutivo relativamente sencillo y el algoritmo de NJ porque es computacionalmente rápido, que le permiten analizar bases de datos muy grandes.

Luego de la publicación de Herbert y colaboradores (2003a) quienes registraron un umbral de divergencia interespecífico mayor al 2% para el 98% de las especies de varios phyla, se realizaron numerosas investigaciones para testear y corroborar estos resultados. El 98% de las especies de mariposas de Costa Rica (Hajibabaei et al., 2006), el 90% de las aves de Norte América (Hebert et al., 2004b), el 81% de las hormigas de Madagascar (Smith et al., 2005), el 94% en promedio en los peces marinos de Australia (Ward et al., 2005) tienen divergencias nucleotídicas interespecíficas mayores al 2%.

5 http://www.barcodinglife.org Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 17 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General

Estos resultados muestran que el umbral propuesto por Herbert et al. (2003a) no es universal. Se han registrado casos donde la divergencia intra‐ e interespecífica de algunas especies se superponen entre sí (Hajibabaei et al., 2006), y donde los valores de divergencia interespecíficas fueron menores al 1% (phylum Cnidaria: Herbert et al. 2003a). Un único umbral de divergencia genética interespecífica del 2% sobreestimará el número de especies en aquellas con altos porcentajes de divergencia interespecífico y subestimará, es decir no identificará, las especies con bajos porcentajes de divergencia entre especies.

La metodología del sistema consiste en secuenciar el cox1 de especies conocidas para generar la base de datos de BOLD, y utilizarlas para contrastar secuencias de especies incógnitas. BOLD utiliza distintos umbrales de divergencia nucleotídica para identificar los especímenes. Los códigos de barra calificados como válidos en BOLD, los que son utilizados durante las búsquedas, cuentan con un mínimo de tres especímenes secuenciados por especie con una divergencia intraespecífica máxima del 2%.El sistema de identificación de BOLD devuelve una determinación de especie si la secuencia incógnita diverge en menos de un 1% con las que se encuentran en la base. Cuando no hay una identificación de espécimen positiva BOLD asigna la secuencia incógnita a un género, donde las secuencias de las especies que lo componen no difieran en más del 3% con la primera (Ratnasingham y Hebert, 2007).

Enemigo íntimo

En sus inicios, los objetivos principales del sistema de identificación de especies por códigos de barras del ADN fueron asignar especímenes incógnitas a una especie determinada y promover el descubrimiento de nuevas especies (Hebert et al., 2003a). Con este sistema se pretendía solucionar los límites inherentes de la taxonomía basada en caracteres morfológicos como: los errores de identificación debidos a la plasticidad fenotípica de los caracteres utilizados para reconocer especies, la incapacidad de reconocer especies crípticas, la falta de claves taxonómicas para identificar los individuos inmaduros de la mayoría de las especies, la experiencia y especialización requerida por los investigadores para resolver problemas taxonómicos (Hebert et al., Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 18 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General

2003a). Dichas limitaciones se suman al aspecto más citado del impedimento taxonómico, la lentitud con la cual se describen las nuevas especies (Carvalho et al., 2007).

En respuesta a los trabajos iniciales de Hebert y colaboradores (2003a‐b, 2004a‐b), los umbrales universales de divergencia nucleotídica del código de barras del ADN propuestos para delimitar especies fueron fuertemente criticados. La discontinuidad significativa entre la variación intra‐ e interespecífica sugerida por los autores anteriores, fue llamada irónicamente “intervalo” del código de barras (barcode “gap”) por Meyer y Paulay (2005) al observar en esos trabajos un submuestreo a nivel intra‐ (1‐2 individuos por especie) e interespecífico (un área restringida). Se ha registrado que la variación intraespecífica no será siempre constante ya que entre las poblaciones la divergencia entre las secuencias aumenta al disminuir la latitud (Moritz y Cicero, 2004), que la superposición entre la divergencia intra‐ e interespecífica aumenta al incluir un mayor número de taxa cercanamente emparentados (Meyer y Paulay, 2005), y que la variación a nivel de ADN podría no ser suficiente para discriminar entre especies separadas muy recientemente o separadas mediante especiación ecológica (Moritz y Cicero, 2004; Meyer y Paulay, 2005). Así también se criticaron las limitaciones del ADNmt para inferir límites entre especies: retención de polimorfismos ancestrales (incomplete lineage sorting), sesgo masculino del flujo génico, selección sobre algún nucleótido, introgresión seguida por hibridización, y paralogía como resultado de la transferencia de una copia al núcleo (Moritz y Cicero, 2004). Además, no existe un gen universal que funcione como código de barras del ADN, que esté conservado en todos los dominios de la vida y que exhiba suficiente divergencia genética para discriminar entre todas especies (Cnidaria: Hebert et al., 2003a; Stoeckle, 2003; Stoeckle et al., 2003). Claramente, los datos moleculares no son la panacea a la hora de delimitar especies (Prendini, 2005; Bickford et al., 2007).

Así como no se utiliza un único criterio morfológico para definir e identificar especies, tampoco se debería utilizar una única secuencia para este propósito (Mallet y Willmontt, 2003). Sin embargo, al combinar los datos morfológicos y moleculares se Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 19 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General generan nuevas hipótesis sobre la taxonomía de un grupo determinado (DeSalle, 2006). Nuevas especies putativas fueron reveladas mediante secuencias de ADN y posteriormente confirmadas con datos morfológicos o ecológicos en casos como especies crípticas (Bickford et al., 2007) y estadios larvales (Hebert et al., 2004a). Esto sugiere que los datos moleculares podrían ser incorporados en los estudios de taxonomía alfa (Bickford et al., 2007). Aunque considerado como una versión (Prendini, 2005) del paradigma de la taxonomía molecular (DNA taxonomy, Tautz et al., 2003; Blaxter, 2003, 2004; Blaxter y Floyd, 2003; Pons et al., 2006), el código de barras del ADN puede ser interpretado desde una perspectiva diferente (DeSalle, 2007; Köhler, 2007). Mientras que la taxonomía molecular postula que las secuencias de ADN sean utilizadas como único criterio de las decisiones taxonómicas sin necesidad de otros datos, especialmente los morfológicos (Tautz et al., 2003; Blaxter et al.; 2005; Vogler y Monaghan, 2007), el código de barras del ADN pretende utilizar dichas secuencias para identificar especies (Wheeler 2003, 2004; Scoble 2004; Wheeler et al. 2004; DeSalle, 2006, 2007; Köhler, 2007). Según DeSalle (2006) el descubrimiento de nuevas especies pertenece al domino de la taxonomía, mientras que el código de barras del ADN debería pertenecer al dominio de la identificación de especies. Su propuesta radica en que la identificación de especies comienza al designar individuos a especies conocidas, en base al trabajo previo de taxónomos y biólogos que estudian la especiación. Por lo tanto, la identificación de especies mediante secuencias de ADN usaría las delimitaciones propuestas por la taxonomía tradicional. Así, una vez armada la base de datos molecular y morfológica, se establecería un medio para identificar organismos incógnitas.

Diversidad

Whittaker (1972) describió tres términos de medición de la biodiversidad para diferentes escalas espaciales: diversidad alfa, beta y gama. La diversidad alfa (local) hace referencia a la diversidad dentro de un área particular, usualmente expresada por el número de especies o riqueza. La diversidad beta (hábitat) compara la diversidad de especies entre dos localidades, usualmente se expresa como la suma del número de Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 20 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General especies únicas de cada área. En esta Tesis se utilizará el concepto de complementariedad (disimilitud, recambio o distancia) entre localidades (ver abajo). La diversidad gama (región) es la medida de la diversidad global de todas las localidades, o sea, la suma sin repetición de todas las especies de las localidades muestreadas. Como la diversidad beta y gama dependen de la medición de la diversidad alfa, para estimar la diversidad a gran escala es fundamental estimar con anterioridad la riqueza local (Coddington et al., 1996). Una de las herramientas para estimar la diversidad alfa es la curva de acumulación de especies o curva de colectores, que es un gráfico del número acumulado de especies descubiertas dentro de un área definida en función de la medida de esfuerzo realizado para encontrarlas (Colwell y Coddington, 1994). Ese esfuerzo puede representarse como el número acumulado de muestras, de cuadrados de un área, de horas de observación, entre otras. El concepto de complementariedad puede utilizarse para medir la diversidad beta, es decir, las diferencias en la composición de especies a varias escalas ambientales, especialmente entre hábitats a lo largo de un gradiente ambiental (Colwell y Coddington, 1994). Dicho concepto permite utilizar a los valores de riqueza local y diferencias bióticas como componentes positivos de la biodiversidad, ya que sus opuestos lógicos, similaridad o superposición, están relacionados negativamente con ella (Colwell y Coddington, 1994). El seguimiento y evaluación de los programas de conservación recae fundamentalmente en estos estimadores, que surgen a partir de los valores de riqueza de los inventarios biológicos o listas de especies (Oliver y Beatti, 1995). A la hora de generar dichos inventarios se suele lidiar con una gran riqueza, donde la mayoría de las especies que la conforman son desconocidas. Para sortear este aspecto del impedimento taxonómico y acelerar el procesamiento de los inventarios, se han propuesto diferentes sustitutos para las especies a la hora de estimar la riqueza local y entre localidades. Oliver y Beatti (1995) sugirieron separar los taxa por diferencias morfológicas que resultaran obvias para cualquier persona con poca experiencia taxonómica, acuñando el término morfo‐especie. Los artrópodos en particular poseen características morfológicas que facilitan esta aproximación (Oliver y Beatti, 1995). Smith et al. (2005, 2009) sugirieron utilizar los códigos de barras del ADN en los inventarios de taxa hiperdiversos, ya que proporcionan una forma rápida y Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 21 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General estandarizada de medir la diversidad, y un método que permite aprovechar el poder predictivo de entidades desconocidas como larvas y juveniles al estimar la misma.

Los inventarios de artrópodos de zonas tropicales resultan ser los más prometedores para evaluar las ventajas y desventajas en las estimas de diversidad utilizando estas estrategias. Las zonas tropicales albergan muchos de los puntos calientes de mayor biodiversidad del planeta, poseen los mayores valores de riqueza y abundancia con respecto a otras zonas biogeográficas, especialmente con un elevado número de especies endémicas (Myers et al., 2000). El término endemismo fue acuñado por Candolle en 1820: se dice que un taxón es endémico a un área si vive solo allí y en ningún otro lugar (Parenti y Ebach, 2009). Grandes valores de riqueza y abundancia permiten minimizar los errores al estimar la diversidad. Por ejemplo, los valores promedio en más de 70 estudios en diversos artrópodos fueron de 464 especies y 9372 individuos utilizando diferentes medidas de esfuerzo de muestreo por unidad de área en localidades puntuales (Coddington et al., 2009). La mayoría de las especies de estos inventarios aún no han sido descriptas o no son identificables con la bibliografía actual, lo que promueve el uso de las morfo‐especies. La proporción de juveniles en las muestras varía entre un 60‐70% (Scharff et al., 2003), los cuales en la mayoría de los casos son descartados de los inventarios porque no se logran identificar, perdiendo así la oportunidad de reconocer parte de la diversidad.

Amigos de ocho patas

Más allá del hecho de ser aracnólogo, las arañas (orden Araneae) son un buen grupo de estudio para evaluar las ventajas y desventajas de las técnicas tradicionales y moleculares para delimitar especies, estimar la diversidad y testear el sistema de identificación rápida por las siguientes razones. En primer lugar, los arácnidos (clase Arachnida) son el segundo grupo más numeroso del reino , incluyendo alrededor de 93.000 especies descriptas (Coddington et al., 2004). El orden Araneae ocupa el séptimo lugar en el ranking de diversidad luego de los cinco órdenes más grandes de insectos (Coleoptera, Hymenoptera, Lepidoptera, Diptera, Hemiptera) y del orden Acari (Arachnida) (Coddington y Levi, 1991). Hasta el momento, el orden Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 22 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General

Araneae cuenta con 42473 especies descriptas, agrupadas en 3849 géneros y 110 familias (Platnick, 2012). Además, existe una gran diversidad en cuanto a morfología, estrategias reproductivas, de alimentación y comportamiento (Coddington y Levi, 1991). En segundo lugar, las arañas presentan una distribución mundial (excepto en las regiones polares) y alrededor de un tercio de los géneros conocidos (≈1273) se encuentran en las regiones neotropicales (Coddington, 1990; Coddington y Levi, 1991). Se han realizado numerosos estudios de estimas de diversidad de este grupo en diversas regiones biogeográficas (Coddington et al., 1991, 1996, 2009; Colwell y Coddington, 1994; Rubio et al., 2008; Scharff et al., 2003; Sørensen et al., 2002), especialmente en los trópicos que alcanzan valores que se aproximan a las 700 especies por hectárea. En tercer lugar, se ha utilizado la secuencia del gen cox1 de las arañas para realizar numerosos estudios filogenéticos y filogeográficos (Hedin, 2001; Paquin y Hedin, 2004; Ayoub et al., 2005; Garb y Gillespie, 2006; Johannesen et al., 2007; Stockman y Bond, 2008; Binford et al., 2008; Wang et al., 2008), así como de código de barras del ADN (Barrett y Hebert, 2005; Greenstone et al., 2005; Robinson et al., 2009). En estos trabajos se han reportado los valores medios de divergencia nucleotídica intra‐ e interespecífica que varían entre 0 ‐ 18% y entre 1,7 ‐ 29%, respectivamente, y especies que presentan valores de divergencia intra‐ e interespecífica que se superponen entre sí. Por ejemplo, de 237 morfo‐especies de arañas de Canadá representadas por más de un individuo, el 40% presentó el solapamiento mencionado (Barrett y Hebert, 2005; Robinson et al. 2009).

Identificación de especímenes

El término taxonomía integrativa fue propuesto por Dayrat (2005) para definir a la ciencia que se encarga de delimitar las unidades de la diversidad biológica según perspectivas múltiples y complementarias como la filogeografía, la morfología comparada, la genética poblacional, la ecología, el desarrollo, el comportamiento, entre otras. En este trabajo se planteó una estrategia mixta para enfrentar y procesar las muestras obtenidas del inventario de biodiversidad. El protocolo propuesto consiste de tres fases: tradicional, molecular e integrativa. En una primera instancia se Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 23 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General separaron los especímenes según una estrategia tradicional a morfo‐especie (Oliver y Beatti, 1995). Para identificar los especímenes se utilizaron únicamente caracteres externos que no necesitan de técnicas complejas para observarlos como el tamaño, coloración y forma general del cuerpo, así como rasgos superficiales de los órganos sexuales. A esta identificación se la llamó identificación rápida (IR).

Seguidamente se aplicó una estrategia molecular, consistente en la obtención de códigos de barras de ADN para una sub‐muestra de las morfo‐especies definidas por el método anterior. Los diferentes clusters moleculares se identificaron utilizando el modelo Generalizado Mixto de Yule y Coalescencia (GMYC; Pons et al., 2006), un algoritmo de máxima verosimilitud que se aplica a un único árbol filogenético ultramétrico. Este modelo de probabilidad combina el crecimiento estocástico de un linaje (modelo de Yule) con la teoría de la coalescencia para determinar el punto de transición entre el nivel de especies (especiación y extinción) y el nivel de población (coalescencia) en los procesos evolutivos (Pons et al., 2006). El modelo mide la probabilidad de tiempo de espera entre cada evento de ramificación exitoso del árbol ultramétrico, asumiendo una tasa de especiación constante sin extinción y coalescencia neutral dentro de cada especie (Pons et al., 2006), que se interpreta como límite entre las especies. Nos referimos a este paso como identificación por código de barras (IB).

Finalmente, una vez procesadas las muestras con ambas estrategias, se verificaron y compararon recíprocamente sus resultados. En el caso de existir contradicciones entre ambas se procedió a una tercera identificación de los especímenes. Esta estrategia iterativa (Pires y Marinoni, 2010), donde se combinan criterios morfológicos y moleculares, la llamamos identificación integrativa (II). Los caracteres principales que se utilizan para discriminar los especímenes a nivel específico en las arañas son los órganos sexuales externos (Foelix, 2011; Coddington y Levi, 1991). Las técnicas de clarificado ayudan a revelar las estructuras internas de los mismos, que varían en su tamaño y forma. En los machos adultos se encuentran en el segundo par de apéndices, los palpos. Estos se modifican en un bulbo, que actúa como reservorio espermático. En las arañas haploginas el bulbo se encuentra (por lo general) Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 24 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Introducción General fusionado a un émbolo, especializado para transferir el esperma, y en las enteleginas se asocia a un sistema más complejo de estructuras esclerotizadas móviles, escleritos (tegulum, subtegulum, émbolo), estructuras membranosas que se expanden durante la cópula, hematodocas, y proyecciones cuticulares o esclerotizadas, apófisis (Foelix, 2011). En las hembras adultas, los órganos sexuales se encuentran en el opistosoma, entre los pulmones anteriores, delante del surco epigástrico. El orificio genital, gonoporo, puede abrir directamente al exterior o puede estar asociado a una placa esclerotizada, epigino (Foelix, 2011). En el caso de las arañas haploginas, el gonoporo conduce a los receptáculos seminales, espermatecas, que están conectados directamente al sitio donde se produce la fertilización, útero externo, formando así un sistema donde el ducto de copulación es al mismo tiempo el ducto de fertilización. En las enteleginas, el epigino incluye los ductos de copulación y las espermatecas, de las cuales salen los ductos de fertilización que conectan con el útero externo (Foelix, 2011).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 25 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

MATERIALES Y MÉTODOS

Cuerpo de la Tesis

Los resultados de la Tesis están divididos en cinco Capítulos. En los tres primeros se utilizó como grupo de estudio a la familia Theridiosomatidae, para evaluar las tres estrategias de identificación de especímenes y estimar su diversidad con cada una de ellas (Capítulo 1), para realizar una revisión integrativa combinando los datos morfológicos y moleculares, y describir géneros y especies nuevas (Capítulo 2), para testear el sistema de identificación rápido mediante los códigos de barras del ADN una vez constituida la base de datos molecular he identificar los sacos de huevos con sus respectivas especies (Capítulo 3). En los Capítulos siguientes, se evaluaron las ventajas y desventajas del uso de los códigos de barra en las estimaciones de diversidad. Se secuenciaron los códigos de barra de todos los especímenes de las familias Corinnidae, Linyphiidae, Uloboridae y Oonopidae (incluyendo adultos y juveniles) para evaluar la influencia de los individuos juveniles en las estimas de diversidad (Capítulo 4). Por último, se compararon los métodos de identificación, las estimas de diversidad y la metodología de muestreo con la evidencia total de los datos (Capítulo 5). El texto está acompañado de figuras, gráficos, tablas y anexos. Las figuras (Fig.) están compuestas por fotografías digitales de los especímenes, mientras que los gráficos (Gráf.) corresponden a los gráficos de barras, a las curvas de acumulación de especies y a las barras de heterogeneidad del ADN. Las tablas se encuentras insertadas en el texto, mientras que los anexos se encuentran en un apartado que acompaña al cuerpo de la tesis. La misma se divide en diferentes secciones y capítulos, los cuales poseen cada uno sus propias figuras, gráficos, tablas y anexos. Por ejemplo, la Tabla_M 1 corresponde a la tabla 1 de la sección Materiales y Métodos, el Anexo_1 2 corresponde al anexo 2 del Capítulo 1, las Figuras_3 4‐8 corresponden a las figuras 4‐8 del Capítulo 3, etc.

Abreviaturas utilizadas

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 26 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

A Apodema de la placa epiginal, M Macho vista dorsal. MA Apófisis media ALE Ojos laterales anteriores ML Máxima verosimilitud AME Ojos medios anteriores NJ Neighbor‐joining AT Tubérculo anterior LD Looking Down Be Beating LL Alas laterales de la vulva BIO Biodiversity Institute of Ontario LT Tubérculo lateral (Canadá) LU Looking Up C Conductor P Paracymbium Cr Cryptic pH Perforación por Hymenoptera CA Apófisis del conductor PILA Parque Internacional La Amistad CD Ductos de copulación PLE Ojos laterales posteriores COPE Parque Nacional General de PME Ojos medios posteriores División Omar Torrijos Herrera PNAC Parque Nacional Altos de E Émbolo Campana EA Apófisis embólica PnT Parche no esclerotizado de la ED División embólica tibia EP Placa epiginal PT Tubérculo posterior F Hembra RFF Reserva Forestal Fortuna FD Ductos de fertilización S Espermateca GMYC Modelo Generalizado Mixto de SC Escapo Yule y Coalescencia SG Hendidura submarginal hS Hilo de suspensión ST Subtegulum IB Identificación por código de Su Sutura barras del ADN T Tegulum II Identificación integrativa TP Bolsillo del tegulum IMEDEA Institut Mediterrani TS Dentículos del tegulum d’Estudis Avançats (España) UB Universitat de Barcelona IR Identificación rápida (España) K2P Kimura 2‐parámetros

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 27 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

Sitio de estudio

La República de Panamá como sitio de estudio para realizar inventarios biológicos tiene varias ventajas. Se encuentra en una zona tropical que incluye a dos de los 34 puntos calientes de máxima diversidad del planeta: la región Mesoamericana y Tumbés‐Chocó‐Magdalena. Cuenta con un gran número de espacios naturales protegidos y de ecosistemas naturales inalterados. Constituye el puente de unión entre las faunas neárticas y neotropicales y posee una compleja historia geológica que ha jugado un papel clave en la formación y distribución de su biodiversidad. Posee dos Instituciones dedicadas a la investigación, administración, promoción y protección de las áreas naturales: la Autoridad Nacional del Ambiente6 (ANAM) y el Smithsonian 7 Tropical Research Institution (STRI). Se seleccionaron cuatro localidades situadas sobre la Cordillera Central Panameña correspondientes a bosque pluvial montano y premontano, comprendidas entre la frontera con Costa Rica y el Istmo de Panamá. Los muestreos se realizaron durante los meses de Junio y Julio de dos años consecutivos en las siguientes reservas naturales: en el 2007 en la Reserva Forestal Fortuna (RFF) y en el Parque Nacional Altos de Campana (PNAC); y en el 2008 en el Parque Internacional La Amistad (PILA) y en el Parque Nacional General de División Omar Torrijos Herrera (COPE) (Fig_M. 1). Dichas localidades representan un gradiente de elevación (rango 760‐2299 m.s.n.m.) y de distancia al límite oriental de la región Mesoamericana (representado por el PNAC). En total las localidades se distribuyeron a lo largo de una distancia de 298 km, con una distancia máxima y mínima entre localidades de 180 km (entre RFF y COPE) y 45 km (entre PILA y RFF), respectivamente. En el Anexo_M 1 se detalla la información de los puntos de colecta, el carácter de los muestreos, los periodos en que esta se llevó a cabo y los investigadores involucrados en las colectas.

Métodos de muestreo semi‐cuantitativos

6 http://www.anam.gob.pa/ 7 http://www.stri.si.edu/ Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 28 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

En cada localidad se realizó un protocolo de muestreo que pretende convertir en semi‐cuantitativos una serie de métodos de colecta que han demostrado ser eficientes en el inventariado de arácnidos (Coddington et al., 1991; Sørensen et al., 2002; Scharff et al., 2003). Para ello, se realizaron muestreos de carácter intensivo en un área de una hectárea lo más homogénea posible, limitada físicamente por una cuerda. Las muestras fueron colectadas en etanol (EtOH) al 100% para conservar el ADN de los individuos. Se realizaron muestreos complementarios fuera de las parcelas con el fin de registrar especies que no hayan sido capturadas dentro de las mismas (ver “Muestreo, No cuantitativo”, Anexo_M 1). Las muestras se tomaron en base a una unidad de esfuerzo estandarizada, correspondiente a una hora de recolección por parte de un colector con una técnica determinada. El tiempo de colecta se midió con un cronómetro. Los métodos de muestreo utilizados fueron cuatro: Beating (Be), se golpea y sacude la vegetación utilizando una vara, al mismo tiempo que se sostiene un paraguas entomológico por debajo para atrapar las arañas que caen de ella; Looking Up (LU), búsqueda realizada en la vegetación a partir de la rodilla hasta la altura que cada colector alcance por arriba de su cabeza; Looking Down (LD), búsqueda realizada en el suelo y en la vegetación baja que se encuentre por debajo de la altura de la rodilla; Cryptic (Cr), búsqueda debajo de troncos y rocas, dentro de agujeros y troncos podridos, en tamizados de hojarasca, entre otros. La mayoría de los métodos se aplicaron a lo largo del día, con la excepción de Be que se realizó de día por ser impracticable durante la noche (Scharff et al., 2003). El equipo de colecta, en cada una de las expediciones, estuvo conformado por cinco investigadores. En cada localidad se colectaron cinco muestras diarias por colector, durante cinco días consecutivos, dos durante el día y tres en la noche. Se colectaron todos los individuos posibles incluyendo adultos y juveniles.

Identificación de especímenes

Los especímenes del inventario de biodiversidad de PANCODING se identificaron según tres estrategias. Con el fin de disminuir el tiempo de determinación de las especies el cual es considerable en muestras de gran magnitud (Coddington et Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 29 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos al., 1991), los especímenes de las muestras colectadas se separaron e identificaron de forma rápida (IR) a especie/morfo‐especie (Oliver y Beatti, 1995) dependiendo la dificultad del taxón. En la IR se utilizaron caracteres morfológicos externos de fácil acceso como el tamaño, la coloración y la forma del cuerpo, así como de los palpos y epiginos (órganos sexuales) de manera superficial. Una vez generada la base de datos de especies/morfo‐especies de IR, se continuó con la toma de tejidos de los especímenes para obtener los códigos de barras del ADN y así construir la base de datos molecular. Se realizaron análisis filogenéticos de máxima verosimilitud (ML) de los códigos de barra con el modelo GMYC (Pons et al., 2006) para obtener las identificaciones moleculares (IB) (ver Análisis de las secuencias de ADN). Por último, una vez constituidas las bases de datos morfológica y molecular, se verificaron y compararon recíprocamente sus resultados, para obtener una identificación integrativa (II). En los casos de haber contradicciones entre la IR y la IB de los especímenes, se clarificaron sus órganos sexuales con el afán de encontrar o no diferencias que soporten una u otra hipótesis. Si hubiese diferencias en los órganos sexuales entre los especímenes se respetó la IB, sino hubiese diferencias entonces se conservó la IR.

Códigos únicos de los especímenes

Se utilizaron distintos términos para separar los especímenes desde el momento de su colecta hasta su debido depósito en una colección. Una muestra semi‐ cuantitativa representa todos los especímenes de arañas colectados por una persona durante una hora, utilizando uno de los métodos de muestreo mencionados anteriormente. Cada muestra posee un código de 7 caracteres que la diferencia de las demás, por ejemplo SFD2D9R, donde cada posición representan el proyecto (S), la localidad (F), el método de colecta (D), el número de muestra (2), el horario de colecta (D), la fecha (9) y el colector (R) (Anexo_M 2). Los códigos específicos de las muestras no cuantitativas se encuentran en el Anexo_M 3. Un lote representa una subdivisión de una muestra, donde se agrupan en un único tubo los especímenes que pertenecen a una misma especie/morfo‐especie identificados de forma rápida (IR) o integrativa Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 30 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

(II). Los lotes poseen el código de la muestra de la cual provienen seguido por una serie de tres caracteres numéricos, que le proporcionan singularidad, por ejemplo SFD2D9R001. Los lotes contienen o bien especímenes adultos o bien juveniles, sin mezclarse en un mismo tubo. Así mismo, cada tubo (lote) posee una etiqueta con las referencias completas de colecta (Anexo_M 1). Las morfo‐especies fueron nombradas según el siguiente formato: taxón, familia, subfamilia o género; especie, abreviada como “sp.”; número de identificación, para diferenciarlas de las demás morfo‐ especies; autor de la identificación, para evitar solapamientos en las bases de datos públicas con las identificaciones de otros autores, en este caso, el autor es Facundo Martín Labarque (FML). Un ejemplo de morfo‐especie sería Elaver sp.1 FML. Los individuos de una morfo‐especie que provienen de una misma muestra se encuentran en un mismo lote. Un morfo‐tipo es un individuo modelo que representa a una morfo‐ especie. Cada morfo‐tipo se encuentra en su propio lote. En sentido muy amplio, estos últimos dos términos son similares a los conceptos de especie y de tipo, respectivamente, pero sin una descripción formal. Los especímenes de referencia (vouchers), de los cuales se ha tomado una muestra de tejido para secuenciar su ADN y se han sacado fotografías para documentar su morfología, se encuentran en lotes individuales. Los morfo‐tipos son un claro ejemplo de ellos. Los especímenes utilizados para realizar los análisis del ADN serán depositados como referencia en el Museo Nacional de Ciencias Naturales de Madrid8. En cumplimiento de los tratados internacionales de protección de la biodiversidad y de la legislación panameña, parte del material recolectado, y el material tipo de cualquier especie nueva que se describa como consecuencia del proyecto, se depositarán en el Museo de Invertebrados G.B. Fairchild de la Universidad de Panamá o en el Instituto Conmemorativo Gorgas de Estudios en Salud9. El resto de los especímenes se distribuirán en las siguientes instituciones: The George Washington University10, en el Museo de Ciencias Naturales de Barcelona y en el Museo Argentino de Ciencias Naturales “Bernardino Rivadavia”11.

8 http://www.mncn.csic.es 9 http://www.gorgas.gob.pa 10 http://www.gwu.edu 11 http://macn.secyt.gov.ar Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 31 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 32 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

Estimadores de diversidad

Los análisis estadísticos y los gráficos respectivos se efectuaron con el programa STATISTICA versión 7 (StatSoft, Inc., 2004). Se realizaron análisis de varianza (ANOVA) para medir los efectos de los parámetros utilizados en las colectas en los resultados obtenidos. Se utilizó el test post‐hoc de Tukey (HSD) para determinar qué tratamientos fueron responsables de las diferencias significativas entre los factores.

La medición de la diversidad alfa se efectuó en términos de la riqueza de especies. Para cada una de las localidades se estimó la riqueza utilizando curvas de acumulación de especies y estimadores no paramétricos: Chao 1, Chao 2, Jackknife 1, Jackknife 2, ACE, ICE. Los estimadores fueron calculados con el programa EstimateS versión 6 (Colwell, 2004). La curva de acumulación de especies es un gráfico del número acumulado de especies halladas dentro de un área definida en función de una medida de esfuerzo realizado para capturarlas (Colwell y Coddington, 1994). Las curvas de acumulación de especies varían según el orden en que las muestras son añadidas al total, por lo tanto, para homogeneizarlas se asignan las muestras de forma aleatoria (Colwell y Coddington, 1994). Sin embargo, en términos prácticos, las curvas de acumulación de especies predicen el aumento de la riqueza esperada dado un incremento en el esfuerzo de muestreo o en las áreas muestreadas, en lugar de predecir la riqueza total de un área determinada (Colwell y Coddington, 1994).

Los métodos no paramétricos involucran la estimación de las especies no observadas, es decir, las especies que probablemente están presentes en una muestra homogénea y más grande, pero que no se encuentran en los datos de la muestra colectada. Estos estimadores se basan en el número de especies raras observadas dentro de las muestras (Colwell y Coddington, 1994). La probabilidad de encontrar especies raras en los inventarios de diversidad es alta, incluso al utilizar los métodos de muestreo más exhaustivos, evaluados en función del tiempo invertido en las colectas (Colwell y Coddington, 1994). Para estimar la riqueza se requiere datos de abundancia, número total de individuos en un área particular, o de incidencia, datos de presencia‐ ausencia de las especies que ocurren en una muestra (Chao et al., 2005; Colwell et al., 2005). Las especies raras se clasifican en singletons y doubletons, especies con una Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 33 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos abundancia total de 1 o 2 en las muestras, respectivamente, y en únicas y duplicadas, frecuencia de ocurrencia de especies de 1 o 2 en un conjunto de muestras, respectivamente, en el contexto de muestras de incidencia repetida (Chao et al., 2005; Colwell et al., 2005). Los estimadores basados en abundancia no toman en cuenta la heterogeneidad de los datos, entendida como la distribución agregada de las especies a escala espacial y temporal, y tienden a sobreestimar la riqueza esperada (Colwell et al., 2005). Los estimadores basados en muestras dependen solamente de patrones de incidencia (promedios) y pueden utilizarse para conjuntos de datos con cualquier grado de heterogeneidad, sin verse afectas las curvas de estimación promedio (Colwell et al., 2005).

El estimador Chao 1 se define como Sobs + (a2 / 2b), donde Sobs son las especies observadas, a el número de singletons y b el de doubletons. De forma similar, el estimador Chao 2 se define como Sobs + (L2 / 2M), donde L es el número especies únicas y M el de duplicadas. El estimador Chao 1 evalúa la distribución de especímenes entre especies, mientras que el estimador Chao 2 la distribución de especies entre muestras (Colwell y Coddington, 1994). Las muestras tropicales suelen tener una mayor proporción de especies raras que las muestras de zonas templadas, por ello el estimador Chao 1 resultaría mejor para estimar la riqueza tropical (Colwell y Coddington, 1994). El Jacknife es una técnica que se utiliza para reducir el sesgo de las estimaciones, que evalúa las diferencias entre las expectativas de un estimador y el verdadero valor del parámetro que se calcula (Colwell y Coddington, 1994). El estimador Jacknife 1 se define como Sobs + L ((n ‐ 1) / n), donde n es el número de muestras. De forma similar, el estimador Jacknife 2 se define como Sobs + {[(L (2n – 3)) / n] – [(M (n – 2)2) / (n (n – 1))]}. Los estimadores de Chao 2 y Jacknife 2 son buenos al estimar la riqueza de un pequeño número de muestras que incluyan pocos individuos (Colwell y Coddington, 1994). En términos prácticos, los límites superiores de los estimadores Jacknife son del doble y de los estimadores Chao son de la mitad del cuadrado de las especies observadas (Colwell y Coddington, 1994). ACE e ICE son estimadores de cobertura basados en la abundancia o en la incidencia (ausencia‐ presencia) de especies, respectivamente, que utilizan información adicional para estimar la riqueza. ACE usa aquellas especies con diez o menos individuos en la Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 34 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos muestra, e ICE utiliza aquellas especies que ocurren en diez o menos unidades de muestreo (Chao et al., 2005).

Las curvas de acumulación de especies y de los estimadores no paramétricos se grafican de la siguiente manera. La curva media representa las especies observadas, las curvas por arriba de ésta representan los valores estimados de riqueza según cada estimador y las curvas por debajo de la primera a los valores de las especies raras. En inventarios completos, la curva de especies observadas debería alcanzar la asíntota y la de los singletons debería acercarse a cero. En inventarios incompletos pero suficientes como para estimar de forma precisa la riqueza, las curvas de los estimadores deberían alcanzar la asíntota. Si todas las curvas siguen creciendo a ritmo constante implica que el inventario es incompleto (Colwell y Coddington, 1994; Coddington et al., 2009).

Se utilizaron los conceptos de complementariedad y similitud para calcular la diversidad beta. La complementariedad en la ecología estadística se la conoce como índice de distancias de Marczewski‐Steinhaus (M‐S) definido como (a + b – 2j)/(a + b – j), donde j es la suma total de especies encontradas en ambas localidades, a es el número de especies en la localidad A, y b es el número de especies en la localidad B. M‐S es la aproximación más simple y estadísticamente válida para la comparación de dos biotas (Colwell y Coddington, 1994). Este índice varía entre 0‐1, donde un valor de cero representa que ambas localidades comparten todas sus especies y un valor de uno significa que ambas localidades son completamente diferentes en cuanto a la composición de especies. Se utilizaron distintos índices de similitud basados en abundancias. El índice de Bray‐Curtis está definido como 2w / (a + b), donde a es el número de especímenes de la localidad A, b el número de especímenes de la localidad B y w es la suma de los valores de abundancia mínimos para cada especies que están presentes en ambas localidades (Coddinton et al., 1996), es decir, si una especie tiene 10 individuos en la localidad A y 30 en la B, se utiliza el valor de 10 en la sumatoria total para obtener w. Chao y colaboradores (2005) modificaron los índices clásicos de Sørensen y Jaccard basados en la incidencia para que tomen en cuenta la abundancia relativa de las especies, un prerrequisito para el desarrollo de estimadores del índice para datos de muestreos que toman en cuenta las especies raras no observadas. Los Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 35 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos nuevos índices son más apropiados para evaluar la similitud entre muestras de diferentes tamaños, situaciones de sub‐muestreo y muestras con numerosas especies raras (Chao et al., 2005). Al igual que la complementariedad los índices de similitud varían de 0‐1, sin embargo un valor de uno se obtiene cuando una localidad se compara consigo misma y un valor de cero representa una localidad completamente diferente (Chao et al., 2005). La intensidad de muestreo se calculó como la proporción de especímenes sobre especies (Coddington et al., 1996). La virtud de esta medida es que puede calcularse para cualquier tipo de inventario (Scharff et al., 2003). En los inventarios de artrópodos tropicales se requiere de una intensidad de muestreo mayor a 340 para obtener estimadores no paramétricos de riqueza convincentes (Coddington et al., 2009). Se midió la completitud del inventario o eficiencia del esfuerzo de captura en cada partición del mismo, como la relación de la riqueza observada sobre el estimador Chao 1 de dicha partición (Sørensen et al., 2002). Los índices, estimadores y medidas también fueron utilizados para evaluar los diferentes métodos de muestreo en cada localidad.

Laboratorio taxonómico ‐ Imágenes

Se utilizó el equipamiento óptico de la División de Aracnología del MACN para procesar los especímenes colectados. El equipamiento cuenta con los microscopios estereoscópicos de luz incidente Leica M205 A, Leica M165 C y Nikon SMZ1500 y sus respectivas cámaras digitales Leica DFC295, Leica DFC290 y Nikon DXM1200 que se utilizan para adquirir las microfotografías de alta resolución, con un microscopio de luz transmitida Olympus BH‐2 y equipos de computación para el manejo y almacenamiento de las imágenes digitales. Los especímenes fueron manipulados con pinzas entomológicas de distintas puntas. Las muestras de arañas fueron trasvasadas a tubos (lotes) con EtOH 100% y se conservaron en un freezer a ‐20 °C. Se limpió el material cuidadosamente con pinceles, para revelar las estructuras diagnósticas. La técnica de clarificado de los órganos sexuales, que se utilizan para discriminar los especímenes a nivel específico, se realizó de la siguiente manera. Se disecaron los Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 36 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos mismos con micro‐bisturíes y pinzas de punta fina. Para digerir los tejidos blandos de los órganos sexuales femeninos de los especímenes de gran tamaño, se utilizó hidróxido de potasio (KOH) disuelto en agua destilada (dH20) ayudado por calor. Para observar las estructuras internas de los órganos sexuales de ambos sexos, se montaron los mismos en porta objetos escavados con ácido láctico o aceite de clavo. Se utilizaron imágenes digitales estándar para documentar los morfo‐tipos12 . Se tomaron las imágenes siguiendo el formato de trabajos previos en inventarios de biodiversidad realizados en la División de Aracnología del MACN13: habito general del cuerpo de ambos sexos en vista dorsal, ventral y lateral (derecho), epigino de las hembras en vista ventral, palpo izquierdo de los machos en vista prolateral, ventral y retrolateral. Las imágenes se montaron mediante los programas computacionales Helicon Focus14 versiones 3.10.3 o 4.01 y Leica Application Suite15 (LAS) versión 3.7 [Build: 681]. Las medidas se tomaron con un microscopio estereoscópico de luz incidente utilizando un ocular milimetrado y están dadas en milímetros. Las imágenes están asociadas a un código de preparado que los relaciona con el autor del mismo, por ejemplo Prep. FML‐00789 (ver Anexo_M 4). Dichos códigos se encuentran cargados en la base de datos de la División de Aracnología del MACN.

Obtención del código de barras del ADN

Los tejidos de los especímenes relativamente grandes se obtuvieron de una o dos patas y, de los individuos pequeños del área torácica del prosoma con todas las patas. En el segundo caso, se conservaron como referencia el opistosoma y el área cefálica del prosoma con los ojos, quelíceros y palpos. Los especímenes juveniles y sacos de huevos fueron fragmentados completamente para obtener una homogenización del material. Los protocolos para obtener el ADN de las muestras variaron según las Instituciones donde fueron procesados: Universitat de Barcelona (UB, España), Institut Mediterrani d’Estudis Avançats (IMEDEA, España), Biodiversity Institute of Ontario (BIO, Canadá). En primera instancia, los tejidos se colocaron en

12 http://research.amnh.org/atol/files/ 13 http://aracnologia.macn.gov.ar/ThaiPlot/index.htm 14 http://helicon.com.ua/heliconfocus/ 15http://www.leica‐microsystem.com Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 37 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

EtOH 100% dentro de criotubos esterilizados individuales (UB), debidamente etiquetados con el código de lote y el nombre de la morfo‐especie; o dentro de placas de 96 pocillos (IMEDEA‐BIO). En dichas placas se realizaron todos los pasos para la obtención del ADN, utilizando como control negativo el último pocillo de cada placa.

Las extracciones se realizaron manualmente utilizando el protocolo para artrópodos del kit comercial Qiagen DNeasy Tissue (UB); o mediante unidades robotizadas como la ABI PRISMT 6700 Automated Nucleic Acid Workstation (Applied Biosystems) con el kit WizardR SV 96 Genomic DNA Purification System de PROMEGA (IMEDEA); o con un protocolo estándar de Glass‐Fiber (Ivanova et al., 2006) (BIO). Una vez añadida la Proteinasa K (20mg/L) y luego de una centrifugación, se incubaron las muestras a 50°C durante toda la noche. Para evaluar la concentración y pureza aproximada del ADN obtenido se utilizó la espectofotometría y para verificar su calidad se utilizó electroforesis en geles de agarosa/TBE (1.8%) (UB). El ADN una vez purificado fue eluido en 100 μl de agua bidestilada estéril (ddH2O). Si el material de partida era pequeño (< 1 mg) se añadió 1 μg de tRNAs de levadura antes de la fijación de los ácidos nucleicos a la columna, para así incrementar la recuperación del ADN genómico (IMEDEA). La reacción en cadena de la polimerasa (PCR) se realizó en un volumen final de 25 μl con unas concentraciones de PCR buffer 1x, MgCl2 2 mM, dNTPs 0.2 mM, primer F 0.1 μM, primer R 0.1 μM, Taq 0.1 U/μl, ADN genómico 2 ng/μl (variable) y el resto ddH20 (UB‐IMEDEA); o con las concentraciones estándar utilizadas en el Canadian Center of DNA barcoding (Ivanova y Grainger, 2007) (BIO). El cox1 se amplificó utilizando los primers listados en la Tabla_M 1. Los termo‐cicladores se utilizaron para ejecutar los ciclos listados en la Tabla_M 2. Los resultados de las PCRs se analizaron en geles de agarosa al 1.2 %. Los productos de PCR positivos a secuenciar, unos 20 μl, se mezclaron con 75 μl guanidina 7 M y se purificaron en placas de filtración de Millipore (Multiscreen HTS 96 FB MSFBN6B50), se lavaron dos veces con 200 μl de EtOH 80% y se eluyeron en 50 μl de ddH2O. La reacción de secuenciación de los productos de PCR purificados se realizó mediante dye terminators (Sanger et al., 1977) y el kit comercial ABI PRISM BigDye Terminator Cycle Sequencing Ready Reaction con AmpliTaq DNA Polymerase FS (UB‐IMEDEA). Los productos de ADN se secuenciaron en la cadena directa (forward) (IMEDEA) o en ambas direcciones (UB‐ Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 38 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

BIO) en un secuenciador automático ABI PRISM 3100 (UB‐IMEDEA) o en un ABI3730XL (BIO) Genetic Analyser de Applied Biosystems. Los errores y ambigüedades de las secuencias fueron editados manualmente con los programas Pregap y Gap4 del paquete informático Staden Package versión 1.4.016, el programa Bioedit versión 7.0.5.2 (Hall, 1999), DnaSP versión 5.10.1 (Librado y Rozas, 2009) y el CodonCode Aligner versión 3.5 (CodonCode Corporation). Se comprobó manualmente la autenticidad de las sustituciones no sinónimas y la ausencia de codones de parada. Una vez anotadas, las secuencias se exportaron en formato fasta y se alinearon con el programa MUSCLE versión 3.5 (Edgar, 2004) y MAFFT17 versión 6 con los parámetros por defecto. El alineamiento de las secuencias fue sencillo ya que no presentaron inserciones o deleciones (indels o gaps).

Análisis de las secuencias de ADN

Las matrices de secuencias de cox1 analizadas se colapsaron a haplotipos, cuando fue posible, con los programas Collapse versión 1.2 (Posada, 2004) y TCS versión 1.21 (Clement et al., 2000). Se enraizaron los análisis filogenéticos utilizando secuencias de grupos externos en cada caso (ver especificaciones en cada Capítulo). Los árboles fenético de neighbor‐joining (NJ) (Saitou y Nei, 1987) utilizando como modelo de evolución molecular a Kimura 2‐parámetros (K2P), se reconstruyeron con el programa MEGA 4.0.2 (Tamura et al., 2007). Los árboles filogenéticos basados en el criterio de máxima verosimilitud (ML) se reconstruyeron con el programa RAxML versión 7.2 (Stamatakis et al., 2008). Por defecto, el RAxML utiliza un árbol de parsimonia como árbol inicial de los análisis de ML. Se realizaron 100 búsquedas independientes a partir de diferentes árboles de parsimonia bajo el modelo de GTR+G+I (GTRGAMMAI). Comandos: RAxML‐7.0.3‐WIN ‐f d ‐# 100 ‐m GTRGAMMAI ‐s inputfile.phy ‐n outputfile1. Luego el RAxML compara los resultados de cada uno eligiendo aquel de mejor probabilidad (likelihood). Este programa es computacionalmente rápido y permite analizar matrices grandes, utilizando y el

16 http://staden.sourceforge.net/ 17 http://mafft.cbrc.jp/ Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 39 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos modelo evolutivo de Tiempo General Reversible (GTR) con sus variaciones. El modelo asume una matriz simétrica con seis frecuencias para cada uno de los seis tipos de sustituciones entre los cuatro nucleótidos, permitiendo 25 categorías de posiciones nucleotídicas. El método gama discreto (G) presupone que las tasas de sustitución en los diferentes sitios de las secuencias se distribuyen según una distribución gama, y el método invariante (I) que la heterogeneidad de las tasa de sustitución entre los sitios no cambia. Se estimaron los soportes de los clados en los mejores árboles de ML en RAxML mediante 1000 réplicas de re‐muestreo de los datos (bootstrap). Comandos: RAxML‐7.0.3‐WIN ‐f d ‐#1000 ‐b 12345 ‐m GTRGAMMAI ‐s inputfile.phy ‐n outputfile2. Los diferentes clusters moleculares se identificaron utilizando el modelo Generalizado Mixto de Yule y Coalescencia (Pons et al., 2006), un algoritmo de máxima verosimilitud que se aplica a un único árbol filogenético ultramétrico. El punto de máxima verosimilitud (likelihood) de este modelo mixto estima el cambio entre el nivel de especie y el nivel poblacional, que se interpreta como el límite entre especies. El modelo GMYC se ajusta a un árbol ultramétrico para representan el tiempo evolutivo expresado en divergencia genética, ya que los terminales del árbol se encuentran equidistantes de la raíz. Los árboles de ML se transformaron en ultramétricos mediante el programa PATHd8 (Britton et al., 2007), con el cual se definió el largo relativo de las ramas fijando la raíz en el valor 1.0. Antes de realizar los análisis de GMYC clusters se removieron las secuencias de los grupos externos (ver especificaciones en cada Capítulo) con el programa TreeGraph versión 2.0.47‐206 beta (Stöver y Müller, 2010) y los terminales con largos de rama cercanos a cero (largo < 0.0001) con la ayuda del módulo APE en lenguaje R18. Comandos: mytree remove.terminal.zeros <‐ function (mytree) {num.tip<‐length(mytree$tip.label) while (sum((mytree$edge[,2] <= num.tip) & (mytree$edge.length==0)) > 0) {terminal.zeros <‐ which ((mytree$edge [,2] <= num.tip) & (mytree$edge.length==0)) mytree <‐ drop.tip (mytree, mytree$edge [terminal.zeros [!duplicated (mytree$edge [terminal.zeros,1])],2]) num.tip <‐ length (mytree$tip.label)} return (mytree) } mytree <‐ remove.terminal.zeros (mytree).

18 http://www.r‐project.org/ Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 40 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

30

ADN

del luego

(2004a) (2004a) (1994) (1994) mitocondrial (1994)

oxidasa

al. al. al. al.

al. C ADN (1983) (1983)

et et et et

et

del

segundos 5, minutos

minuto 1 minuto minuto

citocromo

Referencias Folmer oxidasa la

C

tura Tiempo Ciclos de

51°C 40

/

gen

del citocromo

3' I 3' Hebert

3' Simon ‐ la ‐ 3' Folmer ‐

3' Hebert ‐ ‐ de

gen

subunidad

3' Messing del

‐ I la 3' Messing

‐ de

5'

segundos 94°C 1 segundos 40 40°C segundos 72°C 1 minutos 72°C 10

minutos 1 94°C 1

subunidad Primers

la extremo

los

de

5' de

fragmento

el extremo

CAGGAAACAGCTATGAC TGTAAAACGACGGCCAGT TAAACTTCTGGATGTCCAAAAAATCA ATTCAACCAATCATAAAGATATTGG GGTCAACAAATCATAAAGATATTGG CCCGGTAAAATTAAAATATAAACTTC TAAACTTCAGGGTGACCAAAAAATCA ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ ‐ 5' Secuencia 35 42°C 45

a

fragmento amplificar

el

para 2198 5'

‐ 1490 Primers

‐ realizada.

(PCR) los

HCO Nancy 5'

fue

LCO segundos 94°C 30 segundos 25 segundos 68°C 60 minutos 68°C 10 amplificar UB IMEDEA BIO

/ /

/ minutos 1 94°C 3 de

27) 5' 21) 5' ‐ para ‐ donde

(

(

2198 2191

1490 ‐ ‐ ‐ polimerasa J N N

‐ ‐ ‐ la

M13R M13F LepR1 5' C1 Nombres de utilizados

45°C 45

Institución ‐

la 42

cadena Primers

según en de

BIO C1 ‐ (cox1),

final 72°C 10

Reacción Conjunto

2. 1.

Institución IMEDEA ). ‐ cox1 ( mitocondrial BIO LepF1 5' UB UB C1 PCR Temperatura Tiempo Ciclos Temperatura Tiempo Ciclos Tempera Predesnaturalización 94°C 2 Tabla_M Tabla_M Protocolo Desnaturalización 95°C 30 Annealing Polimerización 72°C 45 Extensión Mantenimiento 4°C Infinito 1 4°C Infinito 1 4°C Infinito 1 Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 41 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Materiales y Métodos

Los diferentes clusters moleculares se identificaron usando cada árbol filogenético ultramétrico con el método GMYC (Pons et al., 2006), implementado en el paquete SPLITS versión 1.019 para el programa R. Mediante un test de relaciones de verosimilitud (log‐likelihood ratio test) se evalúa si los datos se ajustan significativamente mejor al modelo mixto que a un modelo nulo que supone un proceso de coalescencia único para todo el árbol. El modelo clásico de GMYC calcula un único umbral de transición a través de todo el árbol (Pons et al., 2006). Comandos R: tree <‐ read.tree (file = "inputfile.nex"); test1 <‐ gmyc (tree, method = "single", interval = c (0, 10)); summary (test1). Otra extensión del modelo permite múltiples umbrales de transición para cada linaje. Se utiliza el valor del único umbral como punto de partida y en el cual se optimiza un nodo hacia la base del árbol y un nodo hacia los terminales mediante un proceso de iteración (Monaghan et al., 2009). Comandos R: test2 <‐ gmyc (tree, method = "multiple", interval = c (0, 10)). Mediante un test de relaciones de verosimilitud se evalúa si los datos ajustan significativamente mejor al modelo múltiple que al modelo simple. Comandos R: compare (test1, test2). El valor de los umbrales es negativo ya que determina el punto de transición entre el nivel de especies y el nivel de población que se dio en el pasado, empezando desde las especies actuales (terminales del árbol ultramétrico) consideradas como cero. Como en nuestros análisis se definió el largo relativo de las ramas del árbol ultramétrico fijando su raíz en el valor 1.0, las unidades de los umbrales son totalmente arbitrarias.

Los árboles fueron editados con los programas FigTree versión 1.2.3 (Rambaut, 2006‐2009) y TreeGraph versión 2.0.47‐206 beta (Stöver y Müller, 2010).

19 https://r‐forge.r‐project.org/R/?group_id=333 Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 42 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae

CAPÍTULO 1: RÁPIDO, RÁPIDO, RÁPIDO… UNA APROXIMACIÓN INTEGRATIVA A LA ESTIMACIÓN RÁPIDA DE LA DIVERSIDAD DE ARAÑAS THERIDIOSOMATIDAS DE LOS BOSQUES MONTANOS DE LA CORDILLERA PANAMEÑA.

Taxonomía

La familia Theridiosomatidae forma parte de Symphytognathoidea, un grupo monofilético, el cual reúne a la mayor parte de las arañas orbiculares diminutas (Griswold et al., 1998; Shütt, 2003; Lopardo et al., 2010). Theridiosomatidae es un grupo muy diverso que cuenta con 16 géneros y 89 especies, la mayoría de ellas distribuidas en las zonas tropicales (Platnick, 2012). Esta familia ha sido revisada mundialmente a nivel genérico por Coddington (1986), con aportes recientes para América del Sur (Rodrigues y Ott, 2005a, b; Rodrigues y Lise, 2008; Wienskoski, 2010) y Asia (Miller et al., 2009; Ono y Shinkai, 2009; Shinkai, 2009). La delimitación de especies en Theridiosomatidae es compleja ya que en esta familia los órganos genitales de ambos sexos, normalmente utilizados para diagnosticar especies, e mantienen uniformes dentro de un mismo género, aunque algunas especies pueden distinguirse por el patrón de coloración del opistosoma (Coddington, 1986). La similitud en los órganos sexuales hace de la familia Theridiosomatidae una buena candidata para evaluar las ventajas y desventajas del código de barras del ADN para delimitar especies y estimar la diversidad.

Material examinado

Durante el inventariado de diversidad PANCODING se colectaron 3438 especímenes de la familia Theridiosomatidae que se encuentran distribuidos en diez géneros, de los cuales dos son potencialmente nuevos (Anexo_1 1). Se distinguieron 33 especies/morfo‐especies y se obtuvieron los códigos de barra de 29 de ellas, que se utilizaron para estimar la diversidad alfa y beta (Anexo_1 2). Se tomaron 116 imágenes del hábito dorsal de los especímenes procesados con el Protocolo BIO, las cuales están disponibles en la página web de BOLD1 utilizando la herramienta de buscar y

1 http://www.boldsystems.org Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 43 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae escribiendo la clave “Theridiosomatidae”. Aclaraciones: 1) las morfo‐especies identificadas en éste Capítulo serán descritas en Capítulo 2, 2) los especímenes de Jogo n. gen. fueron colectados en EtOH al 80% con las muestras no cuantitativas, por lo tanto, no fueron utilizados en los análisis filogenéticos ni en las estimaciones de diversidad.

Análisis de secuencias de ADN

Se realizó la extracción de ADN de 270 tejidos correspondientes a 245 especímenes (Anexo_1 1). Las secuencias de mejor calidad fueron utilizadas para los análisis filogenéticos: 148 fueron obtenidas mediante el Protocolo UB y 97 con el Protocolo BIO (Anexo_1 2). Las secuencias de cox1 se colapsaron a haplotipos, obteniendo un número final de 95. Se agregaron a la matriz tres secuencias adicionales de especies de Theridiosomatidae: Theridiosoma gemmosum, Epeirotypus chavarria y Coddingtonia euryopoides (HM030436, HM030431 y GU456915, respectivamente) y una de Mysmenidae: Maymena ambita (GU456876), todas ellas disponibles en GenBank. Esta última secuencia se utilizó para enraizar los análisis filogenéticos siguiendo los resultados de Lopardo et al. (2011), que sugieren que Mysmenidae es el grupo hermano de Theridiosmatidae. Los árboles de máxima verosimilitud (ML) se obtuvieron con RAxML mediante 100 búsquedas independientes a partir de diferentes árboles de parsimonia bajo el modelo de GTR+G+I. Se obtuvieron 44 GMYC clusters utilizando un umbral de tiempo único (‐0.010904) y 47 clusters utilizando múltiples umbrales (‐0.010904; ‐0.002921). No se encontraron diferencias significativas entre dichos análisis (P > 0.47). El mejor filograma de ML obtenido de los haplotipos de cox1 de Theridiosomatidae, con sus valores de soporte (bootstrap) y los GMYC clusters recuperados según un umbral de tiempo único se muestran en la Gráfico_1 1. Para obtener los valores de divergencia genética entre las secuencias se utilizó el método de Neighbour‐Joining (NJ) con el modelo evolutivo Kimura 2‐parámetros (K2P). Los valores de divergencia intraespecífica, es decir, entre los haplotipos de un mismo GMYC cluster, y de divergencia interespecífica, entre diferentes clusters, se muestran en el Gráfico_1 2. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 44 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae

GRÁFICO_1 1. Mejor filograma de Máxima Verosimilitud (ML) obtenido de 100 réplicas con RAxML. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters; los colores de las secuencias a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los círculos blancos en los nodos a los soportes de bootstrap, basados en 1000 matrices re‐muestreadas. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 45 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae

GRÁFICO_1 2. Fenograma de Neighbour‐Joining utilizando a K2P como modelo evolutivo. Los colores de las secuencias corresponden a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los números en las ramas a la divergencia nucleotídica expresada en porcentaje, en blanco la inter‐específica, en naranja próximo a los nodos y entre paréntesis la intra‐específica. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 46 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae

Resultados moleculares

La mayoría de los géneros de Theridiosomatidae, salvo Epeirotypus y Theridiosoma, resultaron monofiléticos en los análisis de ML (Gráf_1. 1). Los géneros Chthonos, Naatlo, Ogulnius y Baalzebub están muy bien soportados con valores de bootstrap mayores a 75. Sin embargo, Wendilgarda, Epilineutes y Tantra n. gen. están poco soportados con valores de bootstrap menores a 50. Dentro de cada género los soportes de los nodos resultaron muy variables, con valores mínimos entre 20‐41 para Epeirotypus o altos entre 84‐99 para Chthonos. El fenograma de NJ recuperó los mismos clusters que los análisis de ML (Gráf_1. 2), aunque las relaciones entre ellos fueron distintas. La monofilia de los géneros recuperada por los análisis de ML también se conservó en el fenograma de NJ, con la excepción de Baalzebub (Gráf_1. 2). Estos resultados brindan nuevas hipótesis filogenéticas, por ejemplo el grupo monofilético de Tantra n. gen., que sugieren la revisión minuciosa de los caracteres morfológicos diagnósticos de las especies de Theridiosomatidae.

Identificación integrativa Una vez obtenidas las identificaciones rápidas (IR) y mediante el modelo GMYC (IB) se procedió a la observación minuciosa de los especímenes que presentaron conflictos entre ambas. La identificación integrativa (II) resultante consistió en el estudio en detalle de la morfología de los órganos sexuales, la coloración y forma del cuerpo de ambos sexos, para establecer similitudes y diferencias entre los especímenes en conflicto. Se discriminaron nuevos taxones en los casos donde los especímenes diferenciados mediante IB presentaron diferencias morfológicas no observadas durante la IR. En los casos donde no se encontraron diferencias en la morfología de los especímenes, a pesar de diferenciarse molecularmente, se conservaron los taxa obtenidos mediante IR. Las diferencias de coloración a nivel específico se encontraron en el prosoma, porción anterior del cuerpo, como áreas con diferente pigmentación, o en el opistosoma, porción posterior, como puntos o líneas transversales plateadas formadas por células epiteliales con cristales de guanina (Foelix, 2011), líneas longitudinales laterales y esquemas dorsales de varias formas y colores. Las diferencias en la forma se observaron en el número de tubérculos del Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 47 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae opistosoma. El número de especies/morfo‐especies por género determinado por cada método se representan en el Gráfico_1 3. Los resultados se dividen en cuatro patrones principales que se describen a continuación.

GRÁFICO_1 3. Número de especies por género de la familia Theridiosomatidae colectadas en Panamá mediante métodos semi‐cuantitativos, determinadas según diferentes métodos. (IR, Identificación rápida; IB, Identificación por GMYC clusters; II, Identificación integrativa; Baa, Baalzebub; Cht, Chthonos; Epe, Epeirotypus; Epi, Epilineutes; Naa, Naatlo; Ogu, Ogulnius; Tan, Tantra n. gen.; The, Theridiosoma; Wen, Wendilgarda).

Órganos sexuales masculino y femenino. En la familia Theridiosomatidae las diferencias en los órganos sexuales de ambos sexos son diagnósticas para cada género (Figs_1. 1‐18; Coddington, 1986). Sin embargo, dentro de cada género suele suceder que las especies tengan órganos sexuales muy similares, lo que dificulta su identificación (Coddington, 1986). Las especies de los géneros Chthonos y Epeirotypus, y algunas especie de Theridiosoma, Naatlo y Baalzebub, comparten dicha característica y se distinguen fundamentalmente por la coloración del cuerpo (Coddington, 1986). Se discriminaron tres especies descriptas y cuatro morfo‐especies utilizando morfología de genitalia (ver "xx" en Tabla_1 1). Dos de ellas pertenecen a los géneros monotípicos Epilineutes y Jogo n. gen., tres a los géneros Ogulnius y Wendilgarda que poseen un gran número de especies y las dos restantes a los géneros Naatlo y Baalzebub que en algunas ocasiones también se distinguen por los órganos sexuales.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 48 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae

FIGURAS_1 1‐9. Palpo izquierdo de los géneros de Thediosomatidae, vista ventral. 1 Chthonos sp.1 FML (♂, SFB1DAL021). 2 Epeirotypus sp.1 FML (♂, SFD1D8R010). 3 Naatlo fauna (♂, SFB1DAR028). 4 Ogulnius sp.1 FML (♂, SCC1DER017). 5 Tantra n. gen. sp.4 FML (♂, SFU2NAD032). 6 Baalzebub sp.0 FML (♂, SAU1NCH032). 7 Epilineutes globosus (♂, SFU1N8A034). 8 Wendilgarda clara (♂, SFD2NBL020). 9 Jogo n. gen. sp.1 FML (♂, SFNQK8L067). (C = conductor; CA = apófisis del conductor; E = embolo; EA = apófisis embólica; ED = división embolica; MA = apófisis media; T = tegulum; TP = bolsillo del tegulum; TS = dentículos del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 1‐3, 0,2 mm; 4‐9, 0,1 mm.

Órganos sexuales femeninos y coloración general del cuerpo. Al realizar la II de Baalzebub y Epeirotypus (ver "xi" Tabla_1 1), los especímenes de once de los clusters identificados mediante el modelo GMYC presentaron conspicuas diferencias en los órganos sexuales femeninos al ser aclarados, diferencias no observadas mediante IR. Al re‐examinar los especímenes también se encontraron claras diferencias en el patrón de coloración del opistosoma en vista dorsal. Sin embargo, los machos de estos géneros no presentan diferencias a nivel específico en sus órganos sexuales (Coddington, 1986), aunque mantienen el patrón de coloración de las hembras de su especie. En el caso de Epeirotypus es la primera vez que se utilizan los órganos sexuales de las hembras para distinguir entre especies (ver Capítulo 2), ya que Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 49 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae

Coddington (1986) las consideró similares y no diagnósticas a nivel específico en las especies que estudió.

FIGURAS_1 10‐18. Vulva de los géneros de Theridiosomatidae, vista ventral. 10 Chthonos sp.2 FML (♀, SFU1NAD034). 11 Epeirotypus sp.1 FML (♀, SFD1NBL015). 12 Naatlo sp.1 FML (♀, SCC2NFH008). 13 Ogulnius gertschi (♀, SAD1NHB024). 14 Tantra n. gen. sp.13 FML (♀, SANQB8L020). 15 Baalzebub sp.0 FML (♀, SAC1DFB011). 16 Epilineutes globosus (♀, SFD1D8D007). 17 Wendilgarda clara (♀, SFD1NBL018). 18 Jogo n. gen. sp.1 FML (♀, SFNQK8L035). (A = apodema de la placa epiginal; CD = ductos de copulación; EP = placa epiginal; LL = alas laterales de la vulva; LP = proyecciones laterales; S = espermatecas; SC = escapo). Escalas: 10‐11, 0,2 mm; 12‐ 18, 0,1 mm.

Coloración general del cuerpo. A diferencia de los órganos sexuales, la forma y coloración del cuerpo suelen ser útiles para diagnosticar los géneros y las especies de Theridiosomatidae (Figs_1. 19‐27; Coddington, 1986). Tres especies y diez morfo‐ especies que fueron discriminadas por IB, también presentaron conspicuas diferencias en los patrones de coloración del cuerpo (ver "xxx" en Tabla_1 1). Como los órganos sexuales de estas especies/morfo‐especies son similares entre sí, se utilizaron dichas diferencias para realizar la II. Se distinguieron Baalzebub albonotatus, Baalzebub sp.0 Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 50 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae

FML y Chthonos sp.2 FML. Estas dos morfo‐especies tienen los órganos sexuales similares a especies ya descriptas, pero se distinguen por la coloración. Las especies/morfo‐especies restantes pertenecen a los géneros: Naatlo, Theridiosoma y Tantra n. gen. . En el árbol filogenético se observa que el clusters de Theridiosoma goodnightorum es el grupo hermano del clado formado por Epilineutes globosus y el cluster de Tantra n. gen. (Gráf_1. 1). Las especies de Tantra n. gen. se identificaron inicialmente de forma rápida como especies de Theridiosoma (Gráf_1. 2). Al realizar la identificación integrativa se observaron conspicuas diferencias en los órganos sexuales entre ambos géneros. Sin embargo, entre algunas de las especies de Tantra n. gen. no se encontraron diferencias en los órganos sexuales.

FIGURA_1 19‐27. Hábito de las hembras de los géneros de Theridiosomatidae, vista dorsal. 19 Chthonos sp.1 FML (SFU2NAA035). 20 Epeirotypus sp.7 FML (SAC1DHH012). 21 Naatlo fauna (SFC1DBR019). 22 Ogulnius gertschi (SAD1NHB024). 23 Tantra n. gen. sp.3 FML (SFU2NAD033). 24 Baalzebub sp.0 FML (SAC1DGH006). 25 Epilineutes globosus (SFD1D8D007). 26 Wendilgarda clara (SFD1NBL018). 27 Jogo n. gen. spp. (SFNQK8L035). Escalas: 20, 1 mm; 19, 21, 23‐27, 0,5 mm; 22, 0,2 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 51 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae

Forma del cuerpo. Se delimitaron seis clusters de Chthonos mediante IB (Gráf_1. 1). Las especies de este género no se diferencian en sus órganos sexuales, y se ha sugerido que la forma, número y distribución de los tubérculos del opistosoma son útiles para distinguirlas (Coddington, 1986). De las tres morfo‐especies (Gráf_1. 2), dos se delimitaron utilizando la forma del cuerpo mediante la II, ya que no se encontraron diferencias morfológicas para discriminar las restantes especies sugeridas por IB (ver sección siguiente).

¿Potenciales especies crípticas?

Una especie y cuatro morfo‐especies presentaron más de un cluster de GMYC (Tabla_1. 1), cada uno asociado a una localidad diferente (Gráf_1. 1). Los especímenes de estos clusters no presentan diferencias a nivel morfológico en ninguno de los aspectos evaluados: órganos sexuales, coloración o tamaño del cuerpo. Estos especímenes pertenecen a los géneros Theridiosoma, Chthonos, Baalzebub y Naatlo, cuyas especies se determinan fundamentalmente por la coloración y forma del opistosoma (Coddington, 1986). Al utilizar la II se optó por una visión conservadora, las potenciales especies crípticas obtenidas por la IB no se consideraron como especies separadas sino que se mantuvieron dentro de las especies/morfo‐especies que presentan alguna diferencia morfológica. Se consideró prudente optar por esta visión, ya que para testear las hipótesis de especies crípticas sería conveniente utilizar más líneas de evidencia, como otros marcadores genéticos, muestras de más localidades y estudios ecológicos (Hedin, 1997, 2001; Bond y Sierwald, 2002; Bond, 2004; Hendrixson y Bond, 2005).

Diversidad

Las diferencias e interacciones en los valores observados y estimados de la diversidad alfa y beta según los diferentes métodos de identificación se detallan a continuación.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 52 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae

Tabla_1 1. Caracteres morfológicos y moleculares utilizados para determinar las especies de Theridiosomatidae del inventario de biodiversidad PANCODING. Las especies se distinguieron de sus coespecíficos por: x, la forma del cuerpo; xx, los órganos sexuales; xxx,lacoloracióndelcuerpo;xi,los órganos sexuales de las hembras y la coloración. No, especies/morfo‐especies que no se les conoce uno de los sexos. ÓRGANOS SEXUALES CUERPO (ambos sexos) GMYC Especies Macho Hembra Forma Coloración clusters Baalzebub albonotatus No xxx 1 Baalzebub sp.0 FML xxx 1 Baalzebub sp.1 FML xi xi 1 Baalzebub sp.4 FML No xi xi ‐ Baalzebub sp.5 FML xx No ‐ Baalzebub sp.10 FML No xi xi 2 Baalzebub sp.11 FML xi xi 1 Chthonos sp.1 FML x 3 Chthonos sp.2 FML xxx 1 Chthonos sp.3 FML x 2 Epeirotypus sp.1 FML xi xi 1 Epeirotypus sp.2 FML xi xi 1 Epeirotypus sp.3 FML xi xi 1 Epeirotypus sp.4 FML No xi xi 1 Epeirotypus sp.6 FML No xi xi 1 Epeirotypus sp.7 FML No xi xi 1 Epeirotypus sp.10 FML No xi xi 1 Epilineutes globosus xx xx 1 Naatlo fauna xxx 1 Naatlo sp.1 FML xx 3 Ogulnius gertschi xx xx 1 Ogulnius sp.1 FML xx xx 1 Theridiosoma goodnightorum xxx 4 Tantra n. gen. sp.3 FML xxx 1 Tantra n. gen. sp.4 FML xxx 1 Tantra n. gen. sp.5 FML xxx 1 Tantra n. gen. sp.6 FML xxx 1 Tantra n. gen. sp.7 FML xxx 1 Tantra n. gen. sp.10 FML xxx 1 Tantra n. gen. sp.11 FML xxx 1 Tantra n. gen. sp.13 FML No xxx ‐ Jogo n. gen. sp.1 FML xx xx ‐ Wendilgarda clara xx xx 1

Diversidad alfa. Se detectaron 29 especies de Theridiosomatidae mediante la II (Graf_1. 1‐3). Se utilizó una ANOVA de un factor para testear el efecto del número de especies en cada método de identificación de especies. Los datos fueron Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 53 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae transformados mediante logaritmo antes de realizar los análisis para mantener la normalidad en su distribución. Los resultados muestran que la riqueza por localidad no varía significativamente ante distintos métodos de identificación (F = 0.43, P > 0,65). El mayor número de especies, para todos los métodos, se observa en la localidad de RFF, seguida por PILA, PNAC y COPE (Gráfs_1. 4‐5). Sin embargo, aunque el número de especies no varía significativamente entre los métodos de identificación en cada localidad, los especímenes que constituyen las especies no son necesariamente los mismos (Anexo_1 1). En 24 de las especies (83%) la correspondencia entre los métodos de identificación fue de uno a uno, es decir, las especies identificadas con la IR también se identificaron con la IB y posteriormente fueron corroboradas con la II.

GRÁFICOS_1 4‐7. 3‐5 Riqueza observada y estimada de cada localidad y complementariedad entre ellas. 6‐7 Diversidad beta y endemismo según el método de identificación. (IR, Identificación rápida; IB, Identificación por código de barras del ADN; II, Identificación integrativa; + > 20% y – < 10% aplican a la complementariedad). [Eje primario: Número de especies; Eje secundario: Estimadores; 6, eje X representa el número de localidades].

Las cinco especies restantes (17%) se lograron diferenciar con la IB, revelando la presencia de haplotipos endémicos en las localidades (por ejemplo, Tantra n. gen. sp.3 Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 54 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae

FML y Tantra n. gen. sp.11 FML). Estas especies también fueron corroboradas con la II, mostrando diferencias a nivel morfológico no observadas durante la IR. Los casos donde la riqueza obtenida con la IR y la IB superan a la II, corresponden a tres especies mal identificadas que han sido sinonimizadas con las especies que poseen su mismo código de barras y órganos sexuales, y a nueve potenciales especies crípticas, respectivamente (Gráf_1. 3). Diversidad beta. A diferencia de la diversidad alfa, los resultados de la diversidad beta en cada uno de los métodos de identificación fueron distintos, especialmente entre la IB y los otros dos (Gráf_1. 4‐6). Para calcular la diversidad beta se utilizó el estimador de complementariedad, donde un valor de 1 representa localidades totalmente diferentes a nivel de composición de especies. El eje izquierdo de las ordenadas (eje Y primario) en los Gráficos_1 4‐7 representa el número de especies y el eje derecho en los Gráficos_1 4‐5 (eje Y secundario) representa el valor de complementariedad; mientras que el eje de las abscisas (eje X) representa los pares de localidades comparadas entre sí en los Gráficos_1 4‐6 y la cantidad de localidades en el Gráfico_1 5, es decir, el valor 1 corresponde a las especies que se encuentran en una sola localidad, el valor 2 a las que se encuentran en dos localidades, etc. En el caso de la IR los valores de complementariedad entre los pares de localidades se encuentran alrededor del 0.9, es decir, que las localidades solo comparten alrededor de un 10% de su biota (Gráf_1. 4). Sin embargo, los pares de localidades de PILA‐PNAC y COPE‐PNAC tienen un valor menor al 0.8, indicando que las mismas comparten más del 20% de las especies (ver "+", Gráf_1. 4). Los valores de complementariedad se ven modificados al utilizar la II donde solamente las localidades de COPE‐PNAC comparten más del 30% de sus especies (ver "+", Gráf_1. 5) y donde los pares que incluyen a PILA no alcanzan el 10% e inclusive llegan a no compartir ninguna especie (ver "–", Gráf_1. 5). Estas diferencias se deben fundamentalmente a que la IB reveló la presencia de haplotipos endémicos para todas las especies en todas las localidades, con la excepción de dos especies que comparten sus haplotipos entre las localidades de COPE‐PNAC (Gráf_1. 6). El Gráfico_1 7 Se obtuvieron 24 especies endémicas para Theridiosomatidae al realizar la II, luego de comparar los 36 haplotipos endémicos obtenidos por la IB y las 17 especies endémicas con la IR (Gráf_1. 7). Los 12 haplotipos Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 55 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 1. Diversidad de Theirdiosomatidae extra de IB, con respecto a las obtenidas por II, se deben a las potenciales especies crípticas que no se consideraron como entidades independientes a pesar de tener sus propios haplotipos (Gráfs_1. 1‐2, 6).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 55 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

CAPÍTULO 2: HASTA LAS ÚLTIMAS CONSECUENCIAS… REVISIÓN TAXONÓMICA INTEGRATIVA DE LAS ARAÑAS DE LA FAMILIA THERIDIOSOMATIDAE DE LOS BOSQUES MONTANOS DE PANAMÁ.

Filogenia

El análisis cladístico basados en caracteres morfológicos y comportamentales de la familia Theridiosomatidae sugirieron cuatro subfamilias: Platoninae, Epeirotypinae, Ogulninae y Theridiosomatinae (Gráf_2. 1; Coddington, 1986). Estos resultados muestran una clara tricotomía en la base del árbol que no ha sido resuelta hasta el momento (Gráf_2. 1). Los resultados obtenidos en el Capítulo 1 (Gráf_2. 2) sugieren una posible resolución de la tricotomía. Hay que recordar que estos resultados fueron obtenidos mediante los datos provistos solamente por las secuencias de ADN del gen de cox1, los cuales no son suficientes para establecer una filogenia robusta, especialmente, en rangos taxonómicos altos como el nivel genérico. Se observa un clado formado por Platoninae, Ogulninae y Epeirotypinae y otro por Theridiosomatinae (Gráf_2. 2). Está hipótesis es incongruente con la relación entre Ogulninae‐Theridiosomatinae sugerida por Coddington (1986) (Gráf_2. 2). Una de las posibilidades para resolver la triconomía está dada por los surcos transversales del epigino de las especies de Ogulninae, Platoninae y Epeirotypinae (Coddington, 1986: págs. 21‐22), aunque Coddington solo planteó esta posibilidad para relacionar a las últimas dos subfamilias como grupos hermanos. Para obtener una resolución más robusta de la filogenia sería ideal realizar análisis cladísticos más inclusivos donde se combinanen datos morfológicos, comportamentales y moleculares (no solo con cox1 sino con más de un marcador). Dichos análisis exceden los objetivos de esta Tesis y los resultados de los análisis aquí presentados se suguieren como hipótesis alternativas a las existentes (Coddington, 1986). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 56 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

GRÁFICO_2 1‐2. Cladogramas esquemáticos de la familia Theridiosomatidae. 1 Basado en caracteres morfológicos (Coddington, 1986). 2 Basado en secuencias de cox1 (Capítulo 1). Los círculos de colores marcan las subfamilias: Rojo, Theridiosomatinae; Violeta, Platoninae; Verde, Ogulninae; Azul, Epeirotypinae.

Diagnosis moleculares

Los resultados de los análisis filogenéticos de ML con el modelo GMYC del Capítulo 1 (ver, Fig_1. 1) brindan identificaciones de especies basadas en genealogías del ADN. Esta aproximación tiene la capacidad de delimitar poblaciones y especies a una escala más fina, encontrando haplotipos endémicos y potenciales especies crípticas, lo que sugiere que definir especies basado solo en caracteres morfológicos podría generar hipótesis erróneas (Hedin, 1997; Bond y Sierwald, 2002; Bond, 2004). Los datos filogenéticos indican que las arañas de la familia Theridiosomatidae de una misma población comparten una combinación de caracteres única, que evidencian su divergencia con respecto a otras poblaciones. Basados en estos análisis más los patrones morfológicos descritos en el Capítulo 1 se delimitaron 29 especies de manera integrativa. Claramente, los datos moleculares son un complemento importante para los estudios morfológicos, geográficos y evolutivos, y las diagnosis moleculares pueden utilizarse como un medio de identificación rápido de especies una vez definido el límite de las mismas (Bond, 2004). Sin embargo, la interpretación cladística del uso del código de barras del ADN es muy sensible al número de especímenes analizados (Fisher y Smith, 2008), con lo cual los resultados obtenidos podrían variar con el aporte de nuevos datos. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 57 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Se presentan los pares de bases diagnósticas (o combinaciones de pares de bases) para cada una de las especies de Theridiosomatidae colectadas en el inventario. Se utilizaron como caracteres diagnósticos las sinapomorfias obtenidas en el análisis filogenéticos de máxima verosimilitud (ML) del Capítulo 1, a partir de la misma matriz de datos 1 de 95 haplotipos de Theridiosomatidae más las cuatro secuencias adicionales de GenBank (Theridiosomatidae: HM030436, HM030431, GU456915; Mysmenidae: GU456876). Las sinapomorfias obtenidas se detallan en la sección "Diagnosis por código de barras" dento de las descripciones de cada especie y en los filogramas asociados a los mismas (Gráf_2. 4, 6, 8, 10, 13, 15, 17). Las fuentes en negrita simbolizan nucleótidos no homoplásicos, en itálica nucleótidos de la primera o segunda posición de un codón y las fuentes sin editar a nucleótidos homoplásicos. Para representar la variación dentro de las secuencias de cox1 de cada especie (Gráf_2. 3, 5, 7, 9,11‐12, 14, 16, 18) se utilizó el programa Fingerprint20 (Lou y Golding, 2007). El mismo grafica la heterogeneidad de un sitio específico dentro de la región del código de barras del ADN como el porcentaje de cada par de bases que lo componen representado por una línea vertical de colores(A = rojo; C = azul; T = naranja; G = verde).

Taxonomía

Theridiosomatidae Simon, 1881

Diagnosis. Las arañas de la familia Theridiosomatidae se caracterizan por tener un tamaño pequeño o diminuto, con patas cortas a medianas y, especialmente, con el bulbo del palpo del macho muy desarrollado (Figs_2. 35, 81, 121, 141, 207, 251, 277) (Miller et al., 2009). Las sinapomorfias de la familia propuestas por Coddington (1986) son: un par de hoyuelos en el margen anterior del esternón cercanos a la base del labio (Figs_2. 33, 85, 105, 129, 161, 255), espermatecas unidas (Figs_2. 10, 40, 96, 106, 126, 147, 218, 262) y una tricobotria dorsal alargada en la tibia IV. Con la excepción del género asiático Coddingtonia el cual presenta sus espermatecas separadas (ver Miller et al., 2009, Fig_2. 11 F).

20 http://evol.mcmaster.ca/fingerprint Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 58 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Chthonos Coddington, 1986

Diagnosis. Chthnos se distingue de los demás género de la familia por las hileras de espinas (macrosetas) en los laterales de las tibias, metatarsos y tarsos de las patas I‐II (Figs_2. 1, 7), las patas I‐II ligeramente curvadas en vista anterior, el esternón abultado (Figs_2. 2, 8), el epigino con plieges transversales bien desarrollados, y la forma del palpo del macho (Figs_2. 4‐6): cymbium alargado distalmente, paracymbium en forma de T, tegulum de tamaño moderado, conductor cubriendo el émbolo, émbolo sin apófisis, apófisis media en forma de placa con un pliegue que se dobla hacia atrás en vista ventral (Coddington, 1986).

Chthonos dobo n. sp. Figuras_2 1‐10 Material tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFB1DAL021, códigos de preparados FML‐00691 y LNP‐00271, ADN barcode chts1123. Paratipos: 2♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SFU1N7D015 y SFU2NAA035, códigos de preparados FML‐00755 y LNP‐00269, ADN barcode chts1241 y chts1059, respectivamente; ♂ y ♀, Provincia de Chiriquí, Parque Interernacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col., códigos de vouchers SAB1DEL024 y SAD1NGL021, ADN barcode SPIPA410‐10 y SPIPA411‐10, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 10♂ y 7♀, mismos datos que el holotipo; 15♂ y 18♀, Provincia de Chiriquí, Parque Interernacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐ 17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 59 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa tierra. Hace referencia a uno de los hábitats de esta especie. Diagnosis. Chthonos dobo n. sp. se asemeja a Chthonos peruana (ver Keyserling, 1886; lámina XI, Figs. 144, 144a‐c) por la fusión parcial de los tubérculos laterales del opistosoma pero se distingue por la altura de los mismos, que solo superan levemente el dorso del opistosoma (Figs_2. 1‐2, 7‐8), mientras que en C. peruana lo superan por la mitad de la altura del opistosoma. Descripción. Macho (Holotipo: SFB1DAL021): Largo total 1.42. Prosoma: largo 0.76, ancho 0.61, alto 0.61. Esternón: largo 0.4, ancho 0.42. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.11, PME 0.08, AME‐PME 0.10. Opistosoma: largo 1.14, ancho 1.14, alto 0.93. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma rojo (Fig_2. 1). Esternón anaranjado (Fig_2. 2). Dorso del opistosoma con un escutelo rojo, resto amarillento con placas pequeñas esclerotizadas rojas (Figs_2. 1‐2). Hilanderas en un anillo esclerotizado rojo (Figs_2. 2‐3). Fémures y tibias cobrizos, metatasos claros en la base y cobrizos distalmente, patelas y tarsos claros (Figs_2. 1‐3). Palpo como en la descripción del género (Figs_2. 4‐6). Hembra (Paratipo: SFU2NAA035). Largo total 1.73. Prosoma: largo 0.82, ancho 0.65, alto 0.66. Esternón: largo 0.41, ancho 0.43. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.10, PME 0.08, AME‐PME 0.11. Opistosoma: largo 1.48, ancho 1.64, alto 1.18. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma rojo, oscuro en los laterales, con una línea central oscura (Fig_2. 7). Esternón pálido (Fig_2. 9). Opistosoma amarillento con placas esclerotizadas rojas y puntos oscuros distribuidos simétricamente (Figs_2. 7‐8). Hilanderas en un anillo esclerotizado rojo (Figs_2. 8‐9). Patas palidas (Figs_2. 7‐9). Epigino como en la descripción del género, espermatecas unidas y circulares (Fig_2. 10). Distribución. Panamá, en las localidades de PILAy RFF.

Cox1. Los especímenes de esta especie se distribuyeron en tres GMYC clusters, dos para RFF y uno para PILA. Los GMYC clusters de RFF presentan una divergencia nucleotídica que varía entre 9.8‐10.2%. A la vez, cada uno de ellos divergió del GMYC cluster de PILA entre un 8.7‐9.3% y 3.3‐3.8% respectivamente (ver Capítulo 1: Gráf_1. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 60 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 3. Dentro de cada uno de los cluster la divergencia varió entre 0.1‐1.1%. La divergencia nucleotídica con respecto a las otras especies de Chthonos analizadas varió entre 14.5‐20%.

FIGURAS_2 1‐6. Chthonos dobo n. sp. (♂, SFB1DAL021). 1‐3 Hábito general (1 dorsal, 2 lateral, 3 ventral). 4‐6 Palpo izquierdo (4 retrolateral, 5 ventral, 6 prolateral). (C = conductor; E = émbolo; LT = tubérculos laterales; MA = apófisis media; P = paracymbium; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 1‐3, 6, 0.5 mm; 3‐4, 0.2 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 61 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 7‐10. Chthonos dobo n. sp. (♀, 7‐9 SFU2NAA035; 10 SFU1N7D015). 7‐10 Hábito general de la (7 dorsal, 8 lateral, 9 ventral). 10 Epigino, dorsal. (LT = tubérculos laterales; S = espermatecas). Escalas: 7‐9, 0,5 mm; 10, 0,2 mm.

Diagnosis por código de barras. G 39, G 81, T 87, C 205, T 207, A 222, T 288, A 324, A 351, T 368, A 390, G 399, G 468, G 469, C 472, G 474, G 573, T 591, T 615, G 648, A 675 (Gráf_2. 4).

Discusión. Los tres GMYC clusters de Chthonos dobo n. sp. difieren en un alto porcentaje de divergencia genética, con valores que van desde 3.3‐3.8% en el clado formado por los clusters de PILA y RFF, a 9.8‐10.2% con respecto al otro cluster de RFF. Las relaciones filogenéticas entre los tres GMYC clusters están muy bien soportados con valores de bootstrap superiores a 85 (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1). La divergencia interespecífica de muchos taxa (Hebert et al., 2003a, 2004a; Smith et al., 2005; Hajibabaei et al., 2006; Ward et al., 2005), así como en arañas (Hedin, 2001; Paquin y Hedin, 2004; Ayoub et al., 2005; Garb y Gillespie, 2006; Johannesen et al., 2007; Stockman y Bond, 2008; Binford et al., 2008; Wang et al., 2008) suele encontrarse Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 62 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae alrededor del 2% y, en muchos casos, no son mayores al 1%. Sin embargo, también se han reportado en estos trabajos divergencias inter‐específicas que superan los valores reportados para Chthonos dobo n. sp., por ejemplo un 17% para las especies de Hypochilus (Hedin, 2001) y un 12% para las especies de Pimoidae (Wang et al., 2008). Además, los especímenes revisados no difieren en los órganos sexuales ni en la forma y la coloración del cuerpo, especialmente del opistosoma, considerado diagnóstico para las especies de Chthonos (Coddington, 1986). Por lo tanto, se consideró prematuro nombrar a cada población como un nuevo taxón.

Chthonos kwati n. sp. Figuras_2 11‐20 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFD1NCR006, códigos de preparados FML‐00706‐ 707, ADN barcode SPIPA408‐10. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SFU1NAD034, código de preparado LNP‐00279, ADN barcode chts2061.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa seis (Kwätí). Hace referencia al número de tubérculos del opistosoma de la especie. Diagnosis. Chthonos kwati n. sp. se asemeja a Chthonos tuberosa (ver Keyserling, 1886; lámina XX, Figs. 303, 303a) por poseer seis tubérculos en el dorso del opistosoma (uno anterior y uno posterior en la línea media, y dos pares laterales) pero se distingue por el dibujo sobre el escutelo rojo del opistosoma con dos líneas claras que rodean los tubérculos laterales y se dirigen al tubérculo posterior y, con dos círculos pequeños entre ellas y dos por fuera (Figs_2. 11, 17) y la coloración bandeada y alternada de las patas (Figs_2. 12, 18) que comienza oscuro en la base del fémur y culmina cobrizo en el tarso. Descripción. Macho (Holotipo: SFD1NCR006): Largo total 1.64. Prosoma: largo 0.81, ancho 0.65, alto 0.64. Esternón: largo 0.4, ancho 0.49. Diámetro y separación de Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 63 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae los ojos: AME 0.10, PME 0.09, AME‐PME 0.10. Opistosoma: largo 1.4, ancho 1.14, alto 1.06. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma rojo (Fig_2. 11). Esternón rojo (Fig_2. 12). Dorso del opistosoma con un escutelo rojo con un dibujo de dos líneas claras que rodean los tubérculos laterales y se dirigen al tubérculo posterior y, con dos círculos pequeños entre ellas y dos por fuera, resto amarillento con placas pequeñas esclerotizadas rojas (Figs_2. 11‐12). Hilanderas en un anillo esclerotizado rojo (Figs_2. 12‐13). Coloración de las patas como en la diagnosis (Figs_2. 11‐13). Palpo como en la descripción del género (Figs_2. 14‐16). Hembra (Paratipo: SFU1NAD034). Largo total 1.98. Prosoma: largo 0.89, ancho 0.69, alto 0.71. Esternón: largo 0.41, ancho 0.48. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.10, PME 0.09, AME‐PME 0.11. Opistosoma: largo 1.59, ancho 1.55, alto 1.35. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma pardo (Fig_2. 17). Esternón amarillento (Fig_2. 19). Opistosoma pardo con placas esclerotizadas rojas y el dibujo pálido extendiéndose lateralmente (Figs_2. 17‐18). Hilanderas en un anillo esclerotizado pardo (Figs_2. 18‐19). Coloración de las patas como en el macho (Figs_2. 17‐19). Epigino como en la descripción del género, espermatecas unidas y circulares (Fig_2. 20). Distribución. Panamá, en RFF, localidad tipo.

Cox1. El cluster molecular presenta una divergencia intraespecífica que varía entre un 0.05‐0.2% mientras que la interespecífica varía entre un 18‐20% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. T 42, G 102, T 130, C 156, C 237, C 258, G 280, C 289, A 304, A 336, A 360, A 363, C 366, G 375, G 376, G 429, G 465, G 480, A 495, C 535, C 573, C 603, A 613, T 627, A 630, G 642 (Gráf_2. 4). Nota: Ver la sección “Discusión” de Chthonos kaibe n. sp. para conocer la ubicación del espécimen con código de ADN SPIPA406‐10 (círculo rojo en Gráf_2. 4).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 64 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 11‐16. Chthonos kwati n. sp. (♂, SFD1NCR006). 11‐13 Hábito general (11 dorsal, 12 lateral, 13 ventral). 14‐16 Palpo izquierdo (14 retrolateral, 15 ventral, 16 prolateral). (AT = tubérculo anterior; C = conductor; E = émbolo; LT = tubérculos laterales; MA = apófisis media; P = paracymbium; PT = tubérculo posterior; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 11‐13, 0,5 mm; 14‐16, 0,2 mm.

Chthonos kaibe n. sp. Figuras_2 21‐30 Material tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Panamá, Parque Nacional Altos de Campana, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°41’00.4” N; 79°55’47.4” O, Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 65 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

895 m, 14‐19.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SCU2NDD007, códigos de preparados FML‐00693 y LNP‐0028, ADN barcode chts3117. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SCU1NFH016, código de preparado LNP‐00289, ADN barcode chts3109; 2♂, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SCU2NDA009 y SCB1DED007, ADN barcodes chts3g12 y chts3e12, respectivamente; ♂, Provincia de Coclé, Parque Nacional General de División Omar Torrijos Herrera, El Cope, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°40’5.1” N; 80°35’33.3” O, 760 m, 4‐9.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher STU1N7H024, ADN barcode SPIPA406‐10.

FIGURAS_2 17‐20. Chthonos kwati n. sp. (♀, SFU1NAD034). 17‐19 Hábito general (17 dorsal, 18 lateral, 19 ventral). 20 Epigino, dorsal. (AT = tubérculo anterior; LT = tubérculos laterales; PT = tubérculo posterior; S = espermatecas). Escalas: 17‐19, 5 0,5 mm; 20, 0,2 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 66 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa solo. Hace referencia a los tubérculos laterales del opistosoma que se encuentran separados en esta la especie. Diagnosis. Chthonos kaibe n. sp. se asemeja a Chthonos dobo n. sp. por tener dos pares de tubérculos laterales en el dorso del opistosoma y a Chthonos kwati n. sp. por el dibujo sobre el escutelo rojo del opistosoma con dos líneas claras que rodean los tubérculos laterales y se dirigen al tubérculo posterior y, con dos círculos pequeños entre ellas y dos por fuera y el patrón bandeado de las patas. Se distingue del primero por tener los tubérculos separados en lugar de estar fusionados y del segundo por tener cuatro tubérculos en lugar de seis (Figs_2. 21‐22, 27‐28). Descripción. Macho (Holotpo: SCU2NDD007): Largo total 1.5. Prosoma: largo 0.80, ancho 0.62, alto 0.61. Esternón: largo 0.37, ancho 0.44. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.10, PME 0.08, AME‐PME 0.10. Opistosoma: largo 1.24, ancho 1.14, alto 0.95. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma rojo (Fig_2. 21). Esternón rojo (Fig_2. 22). Dorso del opistosoma con un escutelo rojo con un dibujo con dos líneas claras que rodean los tubérculos laterales y se dirigen al tubérculo posterior y, con dos círculos pequeños entre ellas y dos por fuera, resto amarillento con placas pequeñas esclerotizadas rojas (Figs_2. 21‐22). Hilanderas en un anillo esclerotizado rojo (Figs_2. 22‐23). Patas con coloración bandeada y alternada que comienza oscuro en la base del fémur y culmina cobrizo en el tarso (Figs_2. 21‐23). Palpo como en la descripción del género (Figs_2. 24‐26). Hembra (Paratipo: SCU1NFH016). Largo total 1.65. Prosoma: largo 0.87, ancho 0.67, alto 0.67. Esternón: largo 0.41, ancho 0.46. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.08, AME‐PME 0.10. Opistosoma: largo 1.26, ancho 1.42, alto 1.04. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma pardo (Fig_2. 27). Esternón amarillento (Fig_2. 29). Opistosoma pardo con placas esclerotizadas rojas y el dibujo simétrico pálido extendiéndose lateralmente (Figs_2. 27‐28). Hilanderas en un anillo esclerotizado pardo (Figs_2. 28‐29). Coloración de las patas como en el macho (Figs_2. 27‐29). Epigino como en la descripción del género, espermatecas unidas y circulares (Fig_2. 30). Distribución. Panamá, en COPE y PNAC. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 67 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 21‐26. Chthonos kaibe n. sp. (♂, SCU2NDD007). 21‐23 Hábito general (21 dorsal, 22 lateral, 23 ventral). 24‐26 Palpo izquierdo (24 retrolateral, 25 ventral, 26 prolateral). (C = conductor; E = émbolo; LT = tubérculos laterales; MA = apófisis media; P = paracymbium; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 21‐23, 0,5 mm; 24‐26, 0,2 mm.

Cox1. Los especímenes de esta especie se distribuyeron en dos GMYC clusters, uno para COPE y otro para PNAC. La divergencia nucleotídica entre estos clusters varía entre 7.9‐8% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Esta divergencia es mayor que la encontrada entre el cluster de COPE y el que incluye a la especie Chthonos kwati n. sp., que varía Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 68 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae entre un 4.6‐4.8% (ver Discusión). La divergencia de los dos GMYC clusters de Chthonos kaibe n. sp. con Chthonos dobo n. sp. varía entre 14.3‐18.6%. Diagnosis por código de barras. G 162, G 195, C 281, G 330, C 342, T 468, G 481, G 531, G 558, T 561, G 576, A 624 (Gráf_2. 4).

FIGURAS_2 27‐30. Chthonos kaibe n. sp. (♀, SCU1NFH016). 27‐29 Hábito general (27 dorsal, 28 lateral, 29 ventral). 30 Epigino, dorsal. (LT = tubérculos laterales; S = espermatecas). Escalas: 27, 29, 1 mm; 28, 0,5 mm; 30, 0,2 mm.

Discusión. El espécimen con código de ADN SPIPA406‐10 (círculo rojo en Gráf_2. 4; ver Capítulo 1: Gráf_1. 1‐2) surge como grupo hermano de la especie: C. kwati n. sp. Este especímen posee una divergencia nucleotídica de 7.9‐8% con sus coespecíficos y de 4.6‐4.8% con la población de la otra especie. Además, el especímen SPIPA406‐10 y la especie C. kwati n. sp. comparten siete sinapomorfías moleculares sin homoplasia (Gráf_2. 4) y un soporte de boostrap de 92 (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1). Por otro lado, el especímen SPIPA406‐10 posee cuatro tubérculos en el opistosoma que se encuentran separados entre sí, características somáticas que distingue a las especies Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 69 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae de Chthonos kaibe n. sp. Las especies de C. kwati n. sp., en cambio, tienen seis tubérculos en el opistosoma. Además, los especímenes de Chthonos kaibe n. sp. están distribuidos en COPE (SPIPA406‐10) y PNAC, las dos localidades muestreadas de menor elevación con respecto al nivel del mar y más cercanas al Ítsmo de Panamá. Los resultados del Capítulo 1 (Gráf_1. 5‐6) y de los próximos Capítulos muestran que este par de localidades comparte varios haplotipos, mientras que los demás pares no lo hacen. Por lo tanto, la diversidad beta resulta mayor para COPE‐PNAC que para el resto de pares de localidades. Teniendo en cuenta lo anterior se consideró prudente optar por las evidencias morfológicas y geográficas para delimitar a Chthonos kaibe n. sp. Las evidencias moleculares podrían estar señalando la presencia de una especie críptica putativa (SPIPA406‐10: C 15, A 78, C 129, A 180, C 368, A 432, C 447, G 477, A 540, G 543, A 564, C 618) o, por qué no, una contaminación cruzada. En todos los casosfuturas evidencias podrían ayudar a resolver este dilema.

GRÁFICO_2 3. Chthonos spp. Heterogeneidad de los códigos de barra del cox1. Chthonos dobo n. sp. (n = 19), Chthonos kwati n. sp. (n = 2), Chthonos kaibe n. sp. (n = 5).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 70 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 71 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Epeirotypus O. Pickard‐Cambridge, 1894

Diagnosis. Los machos de Epeirotypus se distinguen de los demás machos de Theridiosomatidae por la morfología del palpo: tegulum muy desarrollado, bulboso (Figs_2. 34‐35); conductor reducido que cubre parcialmente la punta del émbolo; y émbolo robusto con una punta fina. Las hembras se distinguen por tener un apodema en el centro de la placa epiginal y un atrio elevado esclerotizado con una hendidura transversal a lo largo del surco posterior del epigino (Coddington, 1986). Dentro del atrio se abren dos alas laterales en cuya bifurcación se encuentra una vulva muy esclerotizada en vista dorsal (ductos de copulación, espermatecas y ductos de fertilización). La vulva se encuentra unida al apodema de la placa epiginal en la cara ventral del epigino mediante anclajes esclerotizadas (ver “A”, Fig_2. 40).

Epeirotypus kwakwa n. sp. Figuras_2 31‐40 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFD1D8R010, códigos de preparados FML‐00687 y LNP‐00270, ADN barcodes epes1120. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SFD1NBL015, códigos de preparados FML‐00697 y LNP‐00267, ADN barcode epes1058; ♂ y 3♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SFU2NCH029, SFC1N8H018 y SFC1NCD018, ADN barcodes SPIPA403‐10, SPIPA404‐10 y SPIPA400‐10, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 5♂ y 16♀, mismos datos que el holotipo.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa ocho (Kwä, kwä). Hace referencia al dibujo que se forma en el dorso del opistosoma. Diagnosis. Las hembras de Epeirotypus kwakwa n. sp. se distinguen por la forma de la vulva y su unión al apodema de la placa epiginal que asemeja a un Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 72 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae triángulo en vista dorsal con uno de sus vértices apuntando posteriormente, y por las alas laterales de la vulva relativamente grandes con respecto a las estructuras esclerotizadas (Fig_2. 40). Descripción. Macho (Holotipo: SFD1D8R010): Largo total 1.53. Prosoma: largo 1.19, ancho 0.76, alto 0.78. Esternón: largo 0.43, ancho 0.37. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.08, PME 0.09, AME‐PME 0.10. Opistosoma: largo 1.25, ancho 0.85, alto 0.94; sin tubérculos. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma claro, oliva en los laterales que forman una cresta aguzada (Fig_2. 31‐32). Dorso del área ocular clara (Fig_2. 31). Esternón amarillo rodeado por una franga oliva (Fig_2. 33). Dorso del opistosoma blanco con un dibujo oliva en forma de “8” (Fig_2. 31), con una franja oliva lateral con dos crestas que se extienden hacia el dibujo central sin tocarlo (Fig_2. 32), blanco ventralmente con el área de los pulmones y el epiandrio hasta las hilanderas oliva (Fig_2. 33). Hilanderas oliva (Fig_2. 33). Fémures y patelas amarillos, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 31‐33). Palpo como en la descripción del género (Figs_2. 34‐ 36). Hembra (Paratipo: SFD1NBL015). Largo total 2,59. Prosoma: largo 1.01, ancho 0.72, alto 0.59. Esternón: largo 0.46, ancho 0.39. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.08, PME 0.10, AME‐PME 0.09. Opistosoma: largo 1.74, ancho 1.55, alto 1.37. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 37‐ 39). Esternón amarillo rodeado por una franga oliva que se agranda hacia la zona de los hoyuelos (Fig_2. 39). Fémures y patelas pálidos, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 37‐39). Vulva y anclajesal apodema de la placa epiginal formando un triángulo en vista dorsal (Fig_2. 40). Distribución. Panamá, en RFF, localidad tipo.

Cox1. La divergencia intraespecífica es varía entre 0.09‐0.3%, mientras que divergencia con las otras especies de Epeirotypus, es decir la interespecífica, varía entre 12.1‐15% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad de las secuencias de ADN se muestra en el Gráfico_2. 5. Diagnosis por código de barras. A 3, A 45, A 48, G 78, A 87, A 199, G 207, A 261, A 231, C 262, A 273, T 277, G 279, A 321, G 327, A 354, T 363, C 384, C 400, T 402, C 470, G 471, A 482, A 501, A 529, G 549, A 552, G 582, G 648 (Gráf_2. 6). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 73 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 31‐36. Epeirotypus kwakwa n. sp. (♂, SFD1D8R010). 31‐33 Hábito general (31 dorsal, 32 lateral, 33 ventral). 34‐36 Palpo izquierdo (34 retrolateral, 35 ventral, 36 prolateral). (C = conductor; E = émbolo; MA = apófisis media; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 31‐33, 0,5 mm; 34‐36, 0,2 mm.

Epeirotypus kote n. sp. Figuras_2 41‐50 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 74 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col., código de voucher SAU1NGA024, códigos de preparados FML‐00686/909, ADN barcode epes2205. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SAD1NFP007, códigos de preparados FML‐00696/847, ADN barcode epes2176; ♂ y ♀, mismos datos que el holotipo, código de vouchers SAU1NGH021 y SAU1NHA026, ADN barcodes epes2204 y epes2206, respectivamente.

FIGURAS_2 37‐40. Epeirotypus kwakwa n. sp. (♀, SFD1NBL015). 37‐39 Hábito general (37 dorsal, 38 lateral, 39 ventral). 40 Epigino, dorsal. (A = apodema placa epiginal; CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S = espermatecas). Escalas: 37‐39, 1 mm; 40, 0,2 mm.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa gordo (Köte). Hace referencia al alto relativo del prosoma. Diagnosis. Las hembras de Epeirotypus kote n. sp. se distinguen por la forma de la vulva y su unión al apodema de la placa epiginal que asemeja aun trapecio en vista dorsal, ya que los anclajes se encuentran desplazados lateralmente (Fig_2. 50). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 75 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Descripción. Macho (Holotipo: SAU1NGA024): Largo total 1.97. Prosoma: largo 1.16, ancho 0.94, alto 0.71. Esternón: largo 0.52, ancho 0.43. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.08, AME‐PME 0.11. Opistosoma: largo 1.31, ancho 1.11, alto 0.83; con tubérculos laterales posteriores. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma claro, oliva en los laterales que delimitan líneas no paralelas que se aguzan hacia el pedicelo (Fig_2. 41‐42). Dorso del área ocular clara (Fig_2. 41). Esternón amarillo (Fig_2. 43). Dorso del opistosoma blanco con un dibujo en forma de “8” y puntos simétricos olivas (Fig_2. 41), con una franja oliva lateral con dos crestas dorsales que se unen al “8” (Fig_2. 42), blanco ventralmente con el área de los pulmones y el epiandrio hasta las hilanderas amarillo (Fig_2. 43). Hilanderas amarillas, con la zona posterior al tubérculo anal oliva (Fig_2. 43). Fémures y patelas amarillos, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 31‐33). Palpo como en la descripción del género (Figs_2. 44‐46). Hembra (Paratipo: SAD1NFP007). Largo total 2.8. Prosoma: largo 1.28, ancho 0.99, alto 0.77. Esternón: largo 0.63, ancho 0.5. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.11, PME 0.10, AME‐PME 0.13. Opistosoma: largo 1.85, ancho 1.91, alto 0.98. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 47‐49). Vulva y anclajes alapodema de la placa epiginal formando un trapecio en vista dorsal (Fig_2. 50). Distribución. Panamá, en PILA, localidad tipo.

Cox1. La divergencia intraespecífica detectada es de 0.15%, mientra que la divergencia interespecífica varía entre un 8.9‐13.5% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. G 12, A 48, A 87, C 114, G 126, A 199, C 201, T 240, C 246, C 291, G 330, A 354, G 357, T 372, A 432, , C 474, G 486, C 516, A 529, G 537, G 561, C 609 (Gráf_2. 6).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 76 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 41‐46. Epeirotypus kote n. sp. (♂, SAU1NGA024). 41‐43 Hábito general (41 dorsal, 42 lateral, 43 ventral). 44‐46 Palpo izquierdo (44 retrolateral, 45 ventral, 46 prolateral) (C = conductor; E = émbolo; MA = apófisis media; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 41‐43, 0,5 mm; 44‐46, 0,2 mm.

Epeirotypus kra n. sp. Figuras_2 51‐60 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 77 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

M. Ramírez col., código de voucher SFU1N8L020, códigos de preparados FML‐00688 y LNP‐00255, ADN barcode epes3111. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SFU2NBD029, códigos de preparados FML‐00695 y LNP‐00277, ADN barcode epes2063; 2♂ y 2♀, mismos datos que el holotipo, código de vouchers SFB1DAH019, SFU1NAA009, SFU1N7H026 y SFU1NBH019, ADN barcodes epes2183, epes2053, SPIPA391‐10 y SPIPA390‐10, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 2♂ y 9♀, mismos datos que el holotipo; 3♂ y 5♀, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 21‐24.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col.

FIGURAS_2 47‐50. Epeirotypus kote n. sp. (♀, SAD1NFP007). 47‐49 Hábito general (47 dorsal, 48 lateral, 49 ventral). 50 Epigino, dorsal. (A = apodema placa epiginal; CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S = espermatecas). Escalas: 47‐49, 0,5 mm; 50, 0,2 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 78 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa flaco (Krä), que refiere al alto relativo del prosoma. Diagnosis. Las hembras de Epeirotypus kra n. sp. se asemejan a Epeirotypus kote n. sp. en la coloración general del cuerpo, pero se diferencian en las líneas paralelas que se forman en el dorso del prosoma (Fig_2. 57) y en el desplazamiento posterior de los anclajes al apodema de la placa epiginal que aguzan la conformación de la vulva en vista dorsal (Fig_2. 60). Descripción. Macho (Holotipo: SFU1N8L020): Largo total 2.21. Prosoma: largo 1.25, ancho 0.98, alto 0.71. Esternón: largo 0.53, ancho 0.45. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.11, PME 0.08, AME‐PME 0.14. Opistosoma: largo 1.38, ancho 1.36, alto 1.11; con tubérculos laterales posteriores. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma claro, oliva en los laterales que delimitan líneas paralelas que se constriñen hacia el pedicelo (Fig_2. 51‐52). Dorso del área ocular clara (Fig_2. 51). Esternón amarillo (Fig_2. 53). Dorso del opistosoma blanco con un dibujo en forma de “8” y puntos simétricos olivas (Fig_2. 51), con una franja oliva lateral con dos crestas dorsales que se unen al dibujo (Fig_2. 52), blanco ventralmente con el área de los pulmones y el epiandrio hasta las hilanderas amarillo (Fig_2. 53). Hilanderas amarillas, con la zona posterior al tubérculo anal oliva (Fig_2. 53). Fémures y patelas amarillos, resto de las patas anaranjadas con machas oliva (Figs_2. 51‐53). Palpo como en la descripción del género (Figs_2. 54‐56). Hembra (SFU2NBD029). Largo total 2.95. Prosoma: largo 1.42, ancho 1.06, alto 0.72. Esternón: largo 0.64, ancho 0.51. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.11, PME 0.10, AME‐ PME 0.12. Opistosoma: largo 1.82, ancho 1.80, alto 1.62. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 57‐59). Opistosoma ventral amarillo con el área de los pulmones y el epigino hasta las hilanderas oliva (Fig_2. 59). Anclajes al apodema de la placa epiginal desplazados posteriormente, cambiando la conformación general de la vista dorsal de la vulva (Fig_2. 40). Distribución. Panamá, en RFF.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 79 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 51‐56. Epeirotypus kra n. sp. (♂, SFU1N8L020). 51‐53 Hábito general (51 dorsal, 52 lateral, 53 ventral). 54‐56 Palpo izquierdo (54 retrolateral, 55 ventral, 56 prolateral). (C = conductor; E = émbolo; MA = apófisis media; P = paracymbium; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 51‐53, 1 mm; 54‐56, 0,2 mm.

Cox1. La divergencia nucleotídica interespecífica varía entre el 11.4‐15.3% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. G 6, T 22, T 23, G 36, G 51, A 76, G 96, G 120, G 159, G 162, G 169, G 174, A 216, G 237, A 243, G 252, G 256, G 309, G 322, G 336, G 375, G 402, A 420, A 435, C 483, C 513, G 519, G 534, G 567, C 580, T 582, G 648 (Gráf_2. 6). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 80 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Discusión. Epeirotypus kra n. sp. se asemeja a Epeirotypus kote n. sp. en la coloración del cuerpo (Figs_2. 41‐43, 47‐49, 51‐53, 57‐59). Sin embargo, las diferencias en la morfología de la vulva (Figs_2. 50, 60), una divergencia genética del 12% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2) y la alta frecuencia de endemismos haplotipicos encontrados en PILA y RFF (ver Capítulo 1: Gráf_1. 5‐6) son las evidencias que justifican la distinción de estas especies.

FIGURAS_2 57‐60. Epeirotypus kra n. sp. (♀, SFU2NBD029). 57‐59 Hábito general (57 dorsal, 58 lateral, 59 ventral). 60 Epigino, dorsal. (A = apodema de la placa epiginal; CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S = espermatecas). Escalas: 57‐59, 1 mm; 60, 0,2 mm.

Epeirotypus tain n. sp. Figuras_2 61‐64 Material Tipo: Holotipo: ♀ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 81 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

M. Ramírez col., código de voucher SFU2NBH025, códigos de preparados FML‐00897 y LNP‐00281, ADN barcode epes4070.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa rojo. Hace referencia a la coloración general del cuerpo. Diagnosis. Las hembras de Epeirotypus tain n. sp. se asemejan a Epeirotypus kote n. sp. en la forma trapezoidal de la vulva, pero se distingue por los ductos de copulación relativamente largos (Fig_2. 64) y por la coloración general del cuerpo rojo oscuro (Figs_2. 61‐63). Descripción. Hembra (Holotipo: SFU2NBH025): Largo total 2.66. Prosoma: largo 1.2, ancho 0.92, alto 0.72. Esternón: largo 0.54, ancho 0.47. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.12, PME 0.12, AME‐PME 0.13. Opistosoma: largo 1.81, ancho 2.09, alto 1.74; con tubérculos laterales posteriores. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oscuro, claro en la fóvea (Fig_2. 61‐62). Dorso del área ocular oscura (Fig_2. 61). Esternón anaranjado bordeado lateralmente por una línea roja oscura (Fig_2. 63). Dorso del opistosoma pardo rojizo, con una línea transversal central y dos pares de círculos anteriores y posteriores a dicha línea blancos con machas circulares negras (Fig_2. 61‐62), pardo ventralmente, rojizo hacia los tubérculos, con puntos blancos en toda el área (Fig_2. 63). Hilanderas amarillas (Fig_2. 63). Patas anaranjadas, oscuras en las puntas de los artejos (Figs_2. 61‐63). Vulva con forma de trapecio, ductos de copulación relativamente largos y paralelos al surco posterior en sus puntas (Fig_2. 64). Macho. Desconocido. Distribución. Panamá, en RFF, localidad tipo.

Cox1. La divergencia interespecífica varía entre 12.3‐14.7%. Diagnosis por código de barras. A 10, G 33, G 72, T 120, G 165, A 201, A 219, C 240, A 270, G 315, G 330, C 372, G 457, T 468, A 507, G 519, A 531, A 555, T 591, A 621 (Gráf_2. 6)..

Discusión. Epeirotypus tain n. sp. se asemeja a Epeirotypus kote n. sp. en la genitalia (Figs_2. 50, 64). Sin embargo, la diferencia en la coloración del cuerpo Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 82 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

(Figs_2. 47‐49, 61‐63), pertenecer a dos clados diferentes que están bien soportados (bootstrap = 85) en el mejor árbol de ML (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1), una divergencia genética del 13% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2) y la alta frecuencia de endemismos haplotipicos de PILA y RFF (ver Capítulo 1: Gráf_1. 5‐6), que justifican la distinción de esta especies.

FIGURAS_2 61‐64. Epeirotypus tain n. sp. (♀, SFU2NBH025). 61‐63 Hábito general (61 dorsal, 62 lateral, 63 ventral). 64 Epigino, dorsal. (A = apodema de la placa epiginal; CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S = espermatecas). Escalas: 61‐63, 1 mm; 64, 0,2 mm.

Epeirotypus jane n. sp. Figuras_2 65‐68 Material Tipo: Holotipo: ♀ de Panamá, Provincia de Coclé, Parque Nacional General de División Omar Torrijos Herrera, El Cope, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°40’5.1” N, 80°35’33.3” O, 760 m, 4‐9.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 83 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher STC1D5H013, códigos de preparados FML‐00831/910, ADN barcode SPIPA395‐10.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa diferente. Hace referencia a las diferencias que se encuentran a nivel molecular. Diagnosis. Las hembras de Epeirotypus jane n. sp. se asemejan a Epeirotypus kote n. sp. y a Epeirotypus kra n. sp. en la coloración general del cuerpo, a Epeirotypus kote n. sp. en la forma trapezoidal de la vulva en vista dorsal, pero se distingue por los ductos de copulación relativamente cortos (Fig_2. 68) y por el área ocular oscura y la zona clara dorsal del prosoma del ancho de la fóvea (Figs_2. 65‐66). Descripción. Hembra (Holotipo: STC1D5H013): Largo total 2.82. Prosoma: largo 1.3, ancho 1.02, alto 0.75. Esternón: largo 0.59, ancho 0.54. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.12, PME 0.10, AME‐PME 0.12. Opistosoma: largo 1.94, ancho 1.66, alto 1.71; con tubérculos laterales posteriores. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma claro del ancho de la fóvea, oliva oscuro en los laterales que delimitan líneas paralelas (Fig_2. 65). Dorso del área ocular oscura (Fig_2. 65). Esternón amarillo (Fig_2. 53). Dorso del opistosoma blanco con un dibujo en forma de “8” y puntos olivas (Fig_2. 65), con una franja oliva lateral con dos crestas dorsales que se unen al dibujo (Fig_2. 66), ventralmente blanco (Fig_2. 67). Hilanderas amarillas, con la zona posterior al tubérculo anal oliva (Fig_2. 67). Patas anaranjadas, oscuras en las puntas de los artejos (Figs_2. 65‐66). Vulva con forma de trapecio, ductos de copulación relativamente cortos (Fig_2. 68). Macho. Desconocido. Distribución. Panamá, en COPE, localidad tipo.

Cox1. La divergencia genética a nivel intraespecífico varía entre 12.9‐15.1%. Diagnosis por código de barras. T 54, C 58, C 67, A 78, T 131, A 168, A 172, G 228, T 240, C 270, G 279, G 288, T 372, G 375, G 381, A 420, A 432, C 470, A 482, A 483, A 529, C 535, T 537, T 564, G 582, T 615, A 627, A 630 (Gráf_2. 6).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 84 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 65‐68. Epeirotypus jane n. sp. (♀, STC1D5H013). 65‐67 Hábito general (65 dorsal, 66 lateral, 67 ventral). 68 Epigino, dorsal. (A = apodema de la placa epiginal; CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S = espermatecas). Escalas: 65, 1 mm; 66‐67, 0,5 mm; 68, 0,2 mm.

Discusión. Epeirotypus jane n. sp. se asemeja a Epeirotypus kote n. sp. y a Epeirotypus kra n. sp. en la coloración del cuerpo (Figs_2. 47‐49, 57‐59, 65‐67). Sin embargo, las diferencias sutiles en la morfología de la vulva (Figs_2. 50, 60, 68), la poca definición en las relaciones filogenéticas, especialmente Epeirotypus jane n. sp. que se encuentra fuera del clado de Epeirotypus (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1), una divergencia genética del 13.8% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2) y la distancia geográfica y la diferencia de altura existente entre las localidades de COPE contra PILA y RFF, son las evidencias que justifican la distinción de estas especies.

Epeirotypus drune n. sp. Figuras_2 69‐72 Material Tipo: Holotipo: ♀ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 85 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col., código de voucher SAC1DHH012, códigos de preparados FML‐00699 y LNP‐00545, ADN barcode epes7100. Paratipos: 3♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SAU1NCL035, SAU1NCR048 y SAU1NCL062, ADN barcodes epes7240, epes7237 y SPIPA385‐10, respectivamente.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa negro. Hace referencia a la coloración general del cuerpo. Diagnosis. Las hembras de Epeirotypus drune n. sp. se distinguen por la forma de la vulva que se asemeja a un círculo, dado por los ductos de copulación relativamente cortos y los anclajes al apodema de la placa epiginal anchos y desplazados posteriormente (Fig_2. 72). Descripción. Hembra (Holotipo: SAC1DHH012): Largo total 3.24. Prosoma: largo 1.43, ancho 1.12, alto 0.82. Esternón: largo 0.7, ancho 0.55. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.14, PME 0.14, AME‐PME 0.15. Opistosoma: largo 2.28, ancho 2.47, alto 2.1; con tubérculos laterales posteriores. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oscuro con una línea media clara (Fig_2. 69). Dorso del área ocular oscura (Fig_2. 69). Esternón amarillo bordeado lateralmente por una línea oscura (Fig_2. 71). Dorso del opistosoma blanco con un dibujo en forma de “8” y puntos oscuros relativamente grandes (Fig_2. 69‐70), con una franja oscura lateral con dos crestas dorsales que se unen al al dibujo dorsal (Fig_2. 70), ventralmente blanco con el área de los pulmones y el epigino hasta las hilanderas oscuro (Fig_2. 71). Hilanderas oscuras (Fig_2. 53). Patas anaranjadas, oscuras en las puntas de los artejos (Figs_2. 69‐ 71). Vulva de forma circular, con sus ductos de copulación relativamente cortos y sus anclajes al apodema de la placa epiginal anchos y desplazados posteriormente (Fig_2. 72). Vulva con alas lateralesrelativamente grandes (Fig_2. 72). Macho. Desconocido. Distribución. Panamá, en PILA, localidad tipo.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 86 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 69‐72. Epeirotypus drune n. sp. (♀, SAC1DHH012). 69‐71 Hábito general (69 dorsal, 70 lateral, 71 ventral). 72 Epigino, dorsal. (A = apodema de la placa epiginal; CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S = espermatecas). Escalas: 69‐71, 1 mm; 71, 0,2 mm.

Cox1. La divergencia interespecífica es del 4‐13.7% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. G 6, G 24, C 105, G 162, G 195, C 216, C 219, C 231, T 240, C 306, C 327, A 372, A 513, G 561, C 567 (Gráf_2. 6).

Discusión. Epeirotypus drune n. sp. y Epeirotypus bule n. sp. surgieron como grupos hermanos en los análisis de ML, pero con un soporte bajo (bootstrap = 36). Ambas especies tienen conspicuas diferencias en la genitalia femenina y la coloración del cuerpo (Figs_2. 69‐72, 73‐76). La divergencia nucleotídica que los separa es del 7.1% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Ambas están distribuidas en PILA, donde existe una alta frecuencia de endemismos haplotipicos (ver Capítulo 1: Gráf_1. 5‐6). Estas evidencias justifican la distinción de estas especies.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 87 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Epeirotypus bule n. sp. Figuras_2 73‐76 Material Tipo: Holotipo: ♀ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col., código de voucher SAU2NCL028, código de preparado FML‐00944, ADN barcode epes7239. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SAU2NCL033, códigos de preparados FML‐00968, ADN barcode epes7238; 2♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SAU1NCR002 y SAC1DHH007, ADN barcodes SPIPA387‐10 y SPIPA389‐10, respectivamente.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa cabeza. Hace referencia a la coloración dorsal del opistosoma que recuerda una cara. Diagnosis. Las hembras de Epeirotypus bule n. sp. se asemejan a las de Epeirotypus jane n. sp. por la forma de la vulva pero se diferencian en los ductos de copulación relativamente más cortos y los anclajes al apodema de la placa epiginal desplazados posteriormente (Fig_2. 76). Epeirotypus bule n. sp. se distingue de las demás especies del género en el patrón de coloración del opistosoma en vista dorsal, con dos pares de círculos claros y una línea clara semicircular que parte de los círculos centrales sobre un fondo oscuro (Fig_2. 73). Descripción. Hembra (Holotipo: SAU2NCL028): Largo total 2.99. Prosoma: largo 1.38, ancho 0.99, alto 0.9. Esternón: largo 0.62, ancho 0.55. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.13, PME 0.16, AME‐PME 0.13. Opistosoma: largo 2.09, ancho 1.97, alto 1.84; con tubérculos laterales posteriores. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oscuro con una mancha clara sobre la fóvea (Fig_2. 73). Dorso del área ocular oscura (Fig_2. 73). Esternón oscuro (Fig_2. 75). Dorso del opistosoma oscuro con dos pares de círculos claros, los medios unidos por una línea clara semicircular que se extiende anteriormente (Fig_2. 73), ventralmente claro con el área de los pulmones y el epigino hasta las hilanderas oscuro (Fig_2. 75). Hilanderas oscuras Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 88 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

(Fig_2. 75). Patas anaranjadas, oscuras en las puntas de los artejos (Figs_2. 69‐71). Vulva trapezoidal con ductos de copulación cortos y anclajes al apodema de la placa epiginal desplazados posteriormente (Fig_2. 72). Macho. Desconocido. Distribución. Panamá, en PILA, localidad tipo.

Cox1. La divergencia nucleotídica intraespecífica varía entre 0.04‐0.11% y la interespecífica varía entre 7.1‐13.8% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. A 180, A 199, C 237, A 243, G 285, C 315, A 334, A 363, A 432, C 450, T 496, A 529, C 531, C 538 (Gráf_2. 6).

Discusión. Ver Epeirotypus drune n. sp.

FIGURAS_2 73‐76. Epeirotypus bule n. sp. (♀, 73‐75 SAU2NCL028, 75 SAU2NCL033). 73‐75 Hábito general (73 dorsal, 74 lateral, 75 ventral). 76 Epigino, dorsal. (A = apodema de la placa epiginal; CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S = espermatecas). Escalas: 73‐75, 0,5 mm; 76, 0,2 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 89 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

GRÁFICO_2 5. Epeirotypus spp. Heterogeneidad de los códigos de barra del cox1. Epeirotypus kwakwa n. sp. (n = 10), Epeirotypus kote n. sp. (n = 4), Epeirotypus kra n. sp. (n = 13), Epeirotypus tain n. sp. (n = 1), Epeirotypus jane n. sp. (n = 1), Epeirotypus drune n. sp. (n = 4), Epeirotypus bule n. sp. (n = 4). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 90 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 91 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Naatlo Coddington, 1986

Diagnosis. Las hembras de Naatlo se distingue por la presencia de una tapa epiginal, que se encuentra unida al epigino por la parte anterior, que cubre la bursa copulatoria, y los machos por el conductor reducido y la punta del émbolo más compleja que en Epeirotypus (Coddington, 1986).

Naatlo fauna Coddington, 1986 Figuras_2 77‐86 Material examinado: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFB1DAR028, códigos de preparados FML‐00720 y LNP‐00258, ADN barcode naafa056. ♀, mismos datos que el anterior, código de voucher SFC1DBR019, códigos de preparados FML‐00725 y LNP‐00263, ADN barcode naafa118; 18♂ y 24♀, mismos datos que los anteriores; 6♀, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 21‐24.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col. Descripción. Ver Coddington, 1986. Distribución. Desde Costa Rica hasta Brasil.

Cox1. La divergencia nucleotídica intraespecífica varía entre 0.04‐0.48% y la interespecífica varía entre 14.2‐15.1% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 7. Diagnosis por código de barras. A 3, T 46, G 75, C 105, G 138, T 180, A 222, A 283, G 292, G 303, GG 309‐310, T 321, G 330, C 345, G 348, A 352, A 360, T 372, G 375, A 399, A 414, A 495, G 507, A 529, G 552, A 555, G 561, G 576, C 588, C 606, A 627, A 636, A 675 (Gráf_2. 8).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 92 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 77‐82. Naatlo fauna (Coddington) (♂, SFB1DAR028). 77‐79 Hábito general (77 dorsal, 78 lateral, 79 ventral). 80‐82 Palpo izquierdo (80 retrolateral, 81 ventral, 82 prolateral) (C = conductor; E = émbolo; MA = apófisis media; P = paracymbium; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 77‐79, 0,5 mm; 80‐82, 0,2 mm.

Naatlo chi n. sp. Figuras_2 87‐96 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Panamá, Parque Nacional Altos de Campana, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°41’00.4” N, 79°55’47.4” O, 895 m, 14‐ 19.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 93 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae de voucher SCU1NDH021, códigos de preparados FML‐00721 y LNP‐00282, ADN barcode naas1115. Paratipos: 2♀, mismos datos que el holotipo, código de vouchers SCC2NFH008 y SCD1NFD017, códigos de preparados FML‐00929 y FML‐00724, ADN barcodes SPIPA369‐10 y naas1185, respectivamente; ♀, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFB1D9H035, códigos de preparados FML‐00723 y LNP‐00275, ADN barcode naas1112; ♂, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, muestra no cuantitativa, inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 21‐24.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col., código de voucher SFNQL8P043, códigos de preparados FML‐00969‐970.

FIGURAS_2 83‐86. Naatlo fauna (Coddington) (♀, SFC1DBR019). 83‐85 Hábito general (83, dorsal, 84 lateral, 85 ventral). 86 Epigino, dorsal. (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S= espermatecas). Escalas: 83‐85, 0,5 mm; 86, 0,2 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 94 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Otro material examinado. PANAMÁ. 16♂ y 505♀, mismos datos que el holotipo; 23♂ y 156♀, Provincia de Coclé, Parque Nacional General de División Omar Torrijos Herrera, El Cope, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°40’5.1” N, 80°35’33.3” O, 760 m, 4‐9.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col.; 27♀, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col.; ♂ y 31♀, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, muestra no cuantitativa, inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 21‐24.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col., ♀, misma localidad que los anteriores, Sendero Zamudio, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, N 8°43’58.3” W 82°17’04.8”, 1360 m, 20.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa pequeño o niño (Chí). Hace referencia al menor tamaño relativo del palpo del macho con respecto a las demás especies del género. Diagnosis. Naatlo chi n. sp. se asemeja a Naatlo splendida (ver Coddington, 1986: Fig_2. 86) por la línea lateral plateada que rodea el opistosoma (Figs_2. 88, 94), pero se distingue por el palpo del macho relativamente pequeño con un tegulum no abultado y una apófisis media dentada bien desarrollada (Figs_2. 90‐92). Descripción. Macho (Holotipo: SCU1NDH021): Largo total 1.26. Prosoma: largo 0.65, ancho 0.54, alto 0.42. Esternón: largo 0.35, ancho 0.31. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.07, PME 0.07, AME‐PME 0.07. Opistosoma: largo 0.79, ancho 0.68, alto 0.62. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oliva atenuándose hacia los laterales (Figs_2. 87‐88). Dorso del área ocular oliva (Fig_2. 87). Esternón oliva en los bordes atenuándose hacia el centro (Fig_2. 89). Dorso del opistosoma pardo claro, liso (Fig_2. 87), con una franja plateada lateral que lo rodea (Fig_2. 88), oliva ventralmente atenuándose hacia las hilanderas (Fig_2. 89). Hilanderas pálidas, con la zona posterior al tubérculo anal oliva (Fig_2. 89). Fémures blancos, amarillos distalmente; patelas Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 95 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae amarillas, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 87‐89). Palpo reducido con un tegulum no abultado y una apófisis media dentada bien desarrollada (Figs_2. 90‐92).

FIGURAS_2 87‐92. Naatlo chi n. sp. (♂, SCU1NDH021). 87‐89 Hábito general (87 dorsal, 88 lateral, 89 ventral). 90‐ 92 Palpo izquierdo (90 retrolateral, 91 ventral, 92 prolateral) (C = conductor; E = émbolo; MA = apófisis media; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 87‐89, 0,5 mm; 90‐92, 0,2 mm.

Hembra (Paratipo: SCC2NFH008). Largo total 1.77. Prosoma: largo 0.85, ancho 0.65, alto 0.49. Esternón: largo 0.41, ancho 0.38. Diámetro y separación de los ojos: AME Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 96 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

0.07, PME 0.10, AME‐PME 0.07. Opistosoma: largo 1.25, ancho 1.05, alto 0.97. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 93‐ 95). Dorso del prosoma oliva (Fig_2. 93). Fémures blancos, olivas distalmente; patelas a metatarsos olivas, tarsos anaranjadas (Figs_2. 93‐95). Conformación de la vulva similar a las otras especies del género, con dos espermatecas unidas en la línea media y ductos de copulación que se abren en las alas laterales de la vulva (Fig_2. 96). Distribución. Panamá, en RFF y COPE.

FIGURAS_2 93‐96. Naatlo chi n. sp. (♀, SCC2NFH008). 93‐95 Hábito general (93, dorsal, 94 lateral, 95 ventral). 96 Epigino, dorsal. (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S= espermatecas). Escalas: 93‐95, 0,5 mm; 96, 0,2 mm.

Cox1. Los especímenes de esta especie se distribuyeron en tres GMYC clusters, dos para RFF y uno para COPE‐PNAC. Los GMYC clusters de RFF presentan una divergencia nucleotídica que varía entre 2.4‐2.8%. El cluster de COPE‐PNAC poseen una divergencia intraespecífica que varía entre 0.06‐0.24%. A su vez, dicho GMYC cluster diverge de los clusters de RFF entre un 8‐8.9% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2).La Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 97 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae divergencia nucleotídica interespecífica, es decir, con Naatlo fauna varía entre 14.2‐ 15.4%. La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 7. Diagnosis por código de barras. C 9, G 30, G 195, C 262, T 367, C 368, T 378, G 408, T 468, G 471, G 486, A 492, A 528 (Gráf_2. 8).

Discusión. Los tres GMYC clusters de Naatlo chi n. sp. difieren en un alto porcentaje de divergencia genética, con valores que van desde 2.4‐2.8% en el clado formado por los clusters RFF, a 8‐8.9% con respecto al cluster de COPE‐PNAC. Las relaciones filogenéticas entre los tres GMYC clusters están muy bien soportados en los análisis de ML con valores de bootstrap de 100 (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1). Sin embargo, como en el caso de Chthonos dobo n. sp. y el de otras especies de arañas (Hedin, 2001; Paquin y Hedin, 2004; Ayoub et al., 2005; Garb y Gillespie, 2006; Johannesen et al., 2007; Stockman y Bond, 2008; Binford et al., 2008; Wang et al., 2008), la divergencia intraespecífica alcanza y, a veces, supera los valores encontrados para Naatlo chi n. sp. Además, los especímenes revisados no difieren en los órganos sexuales ni en la forma y la coloración del cuerpo. Por ello, se consideró prematuro nombrar a cada población como un nuevo taxón.

GRÁFICO_2 7. Naatlo spp. Heterogeneidad de los códigos de barra del cox1. Naatlo fauna (Coddington) (n = 10), Naatlo chi n. sp. (n = 25). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 98 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 99 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Ogulnius O. Pickard‐Cambridge, 1882

Diagnosis. Ogulnius se distingue de los demás géneros según las porporciones del cuerpo: de pequeño tamaño (Fig_2. 97), el opistosoma sobrepasa el prosoma llegando a ocultar el área ocular en vista dorsal (Fig_2. 113). El esternón truncado por detrás (Fig_2. 99). En la división embólica del palpo del macho la apófisis mesal está bifurcada y su brazo lateral se prolonga alrededor del palpo disminuyendo su tamaño gradualmente (Fig_2. 100). El epigino posee una hendidura transversal y la bóveda que forma es baja (Fig_2. 115) (Coddington, 1986). La observación de Coddington (1986) sobre que Ogulnius tiene las patas IV más largas que las patas I, al menos en las hembras, fue contrastada por Miller et al. (2009), quienes encontraron especies con las patas I‐II más largas que las patas IV. Tibias de las patas I con una zona menos esclerotizada en vista retrolateral (Figs_2. 98, 104, 108, 114; Martín Ramírez, comunicación personal).

Ogulnius zbodro n. sp. Figuras_2 97‐106 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Panamá, Parque Nacional Altos de Campana, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°41’00.4” N; 79°55’47.4” O, 895 m, 14‐19.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SCC1DER017, códigos de preparados FML‐00714 y LNP‐00285, ADN barcode ogus1119. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de SCD1DFR015 voucher, códigos de preparados FML‐00733 y LNP‐00286, ADN barcode ogus1110; ♂ y 4♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SCD1NGR012, SCD1DFR031, SCD1DHR010, SCD1DFH007 y SCD1DFR014, ADN barcodes SPIPA362‐10, SPIPA120‐10, SPIPA361‐10, oguoc195 y SPIPA119‐10, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 3♀, mismos datos que el holotipo.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Naso Tjerdi, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa Dios Sol (zbo dro). Hace referencia al recorrido circular del brazo lateral de la apófisis mesal del émbolo. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 100 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Diagnosis. Los machos de Ogulnius zbodro n. sp. se distinguen por el brazo lateral de la apófisis mesal que se prolonga desde la división embólica y retorna a ese lugar recorriendo un círculo completo (Fig_2. 100) y por apófisis media roma en vista retrolateral (Fig_2. 102). Las hembras por hendidura transversal interrumpida en la línea media (Fig_2. 105) y las alas laterales de la vulva enrolladas cuatro veces (Fig_2. 106). Descripción. Macho (Holotipo: SCC1DER017): Largo total 0.79. Prosoma: largo 0.49, ancho 0.41, alto 0.41. Esternón: largo 0.22, ancho 0.26. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.06, PME 0.04, AME‐PME 0.07. Opistosoma: largo 0.63, ancho 0.57, alto 0.44; sobrepasando el prosoma. Fórmula de las patas: 4123. Dorso del prosoma anaranjado, con machas rojizas en el centro y los laterales (Figs_2. 97‐98). Dorso del área ocular anaranjada (Fig_2. 97). Esternón rojizo con bordes oscuros (Fig_2. 99). Dorso del opistosoma anaranjado claro, liso, oscureciéndose ventralmente (Figs_2. 97‐ 99). Hilanderas rojizas (Fig_2. 89). Patas anaranjadas; tibia I con una zona menos esclerotizada en vista retrolateral (Figs_2. 97‐99). Palpo con el brazo lateral de la apófisis mesal prolongándose desde la división embólica y recorriendo un círculo completo (Fig_2. 100) y el extremo apical de la apófisis media romo en vista retrolateral (Fig_2. 102). Hembra (Paratipo: SCD1DFR015). Largo total 0.95. Prosoma: largo 0.51, ancho 0.42, alto 0.42; área cefálica elevada. Esternón: largo 0.24, ancho 0.28. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.06, PME 0.04, AME‐PME 0.06. Opistosoma: largo 0.76, ancho 0.67, alto 0.57. Fórmula de las patas: 4123. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 103‐105). Dorso del prosoma oliva (Fig_2. 93). Fémures blancos, olivas distalmente; patelas a metatarsos olivas, tarsos anaranjadas (Figs_2. 93‐95). Epigino con la hendidura transversal interrumpida en la línea media (Fig_2. 105) y las alas laterales de la vulva enrolladas cuatro veces (Fig_2. 106). Distribución. Panamá, en PNAC, localidad tipo.

Cox1. La divergencia genética interespecífica varía entre 19.9‐20.8% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. A 3, G 13, A 33, A45, A 48, G 69, C 84, A 135, G 159, G 189, G 198, A 222, A 228, G 252, GC 261‐262, A 273, G 279, G Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 101 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

292, GC 310‐311, C 355, G 375, CT 456‐457, G 459, G 498, G 501, A 573, C 577, G 582, A 585, C 612, G 618, A 624, A 630, G 648, G 654, C 672 (Gráf_2. 10).

FIGURAS_2 97‐102. Ogulnius zbodro n. sp. (♂, SCC1DER017). 97‐99 Hábito general (97 dorsal, 98 lateral, 99 ventral). 100‐102 Palpo izquierdo (100 retrolateral, 101 ventral, 102 prolateral) la flecha indica la punta del EA (C = conductor; E = émbolo; ED = división embólica; EA = apófisis embólica; MA = apófisis media; PnT = Parche no esclerotizado de la tibia; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 97‐99, 0,25 mm; 100‐102, 0,2 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 102 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 103‐106. Ogulnius zbodro n. sp. (♀, SCD1DFR015). 103‐105 Hábito general (103 dorsal, 104 lateral, 105 ventral). 106 Epigino, dorsal. (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; PnT = Parche no esclerotizado de la tibia; S = espermatecas; SG = hendidura submarginal). Escalas: 103‐105, 0,25 mm; 106, 0,1 mm.

Ogulnius gertschi Archer 1953 Figuras_2 107‐116 Material examinado: ♂ y ♀ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col., códigos de vouchers SAU1NDB035 y SAD1NHB024, códigos de preparados FML‐00715, LNP‐00543 y FML‐00739, LNP‐ 00544, ADN barcodes ogus2102 y ogus2101, respectivamente; 72♂ y 147♀, mismos datos que los otros espécimenes; 2♂ y 10♀, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Sendero Retoño, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°53’37.8” N; 82°36’54.3” O, 2240 m, 10‐11.VI.2008, F. Labarque, M. Ramirez col.; 2♂, Provincia de Chiriquí, Parque Interernacional La Amistad, Sendero Panamá, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°53’37.8” N; 82°36’54.3” Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 103 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

O, 2240 m, 17‐18.VI.2008, F. Labarque, L. Piacentini col.; ♀ de Chiriquí Provincia, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 21‐24.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col.; ♀, Provincia de Coclé, Parque Nacional G.D. Omar Torrijos Herrera, El Cope, 1 hectárea, inventario PANCODING, muestras no cuantitativas. 8°40’5.1” N; 80°35’33.3” O, 760 m, 4‐9.VI.2008, F. Labarque, M. Ramírez col.; 2♂ Provincia de Coclé, Parque Nacional G.D. Omar Torrijos Herrera, El Cope, Sendero Las Ranas, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING. 8°40’5.3” N; 80°35’33.6” O, 790 m, 3.VI.2008, F. Labarque col.

Diagnosis. Los machos de Ogulnius gertschi se distinguen por el brazo lateral de la apófisis mesal que se prolonga desde la división embólica, vuelve a ese punto y la sobrepasa por un cuarto de vuelta (Fig_2. 110) y por apófisis media en forma de gancho en vista retrolateral (Fig_2. 112) y por el área cefálica elevada (Fig_2. 108). Las hembras por la placa epiginal con forma triangular (Fig_2. 115) y las alas laterales enrolladas varias veces (Fig_2. 116). Descripción. Macho (SAU1NDB035): Largo total 0.87. Prosoma: largo 0.57, ancho 0.46, alto 0.46; área cefálica elevada. Esternón: largo 0.24, ancho 0.28. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.06, PME 0.06, AME‐PME 0.06. Opistosoma: largo 0.66, ancho 0.58, alto 0.42; sobrepasando el prosoma. Fórmula de las patas: 4123. Dorso del prosoma anaranjado (Figs_2. 107‐108). Dorso del área ocular anaranjada (Fig_2. 107‐108). Esternón anaranjado (Fig_2. 109). Dorso del opistosoma claro con círculos anaranjados distribuidos simétricamente (Figs_2. 107‐109). Hilanderas anaranjadas (Fig_2. 109). Patas anaranjadas; tibia I con una zona menos esclerotizada en vista retrolateral (Figs_2. 107‐109). Palpo con el brazo lateral de la apófisis mesal prolongándose desde la división embólica y recorriendo un círculo y cuarto de vuelta (Fig_2. 110) y con el extremo apical de la apófisis media en forma de gancho en vista retrolateral (Fig_2. 112). Redescripción de la hembra (SAD1NHB024). Largo total 1.14. Prosoma: largo 0.6, ancho 0.44, alto 0.45; área cefálica elevada. Esternón: largo 0.26, ancho 0.29. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.06, PME 0.06, AME‐PME 0.07. Opistosoma: largo 0.95, ancho 0.92, alto 0.81. Fórmula de las Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 104 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae patas: 4123. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 103‐105). Epigino con la placa epiginal en forma triangular (Fig_2. 115) y las alas laterales enrolladas varias veces (Fig_2. 116). Distribución. Panamá, en PILA.

FIGURAS_2 107‐112. Ogulnius gertschi Archer (♂, SAU1NDB035). 107‐112 Hábito general (107 dorsal, 108 lateral, 109 ventral). 110‐112 Palpo izquierdo (110 retrolateral, 111 ventral, 112 prolateral) flecha indica la punta de la EA (C = conductor; E = émbolo; ED = división embólica; EA = apófisis embólica; MA = apófisis media; PnT = Parche no esclerotizado de la tibia; T = tegulum). Escalas: 107‐112, 0,2 mm. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 105 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Cox1. La variación genética intraespecífica varía entre 0.1‐1.3% y la interespecífica entre 19.9‐20.8% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 9. Diagnosis por código de barras. G 24, G 27, G 36, G 60, G 66, G 96, GC 108‐109, A 120, A 126, G 165, C 196, C 201, C 204, G 210, C 234, G 240, G 255, C 286, T 288, T 301, G 348, C 369, G 402, G 408, A 423, C 426, G 429, C 435, C 444, G 474, G 477, C 482, G 495, C 517, G 528, A 531, G 537, G 540, CC 546‐547, A 555, G 558, T 561, G 576, G 583, C 588, G 591 (Gráf_2. 10).

FIGURAS_2 113‐116. Ogulnius gertschi Archer (♀, SAD1NHB024). 113‐115 Hábito general (113 dorsal, 114 lateral, 115 ventral). 116 Epigino, dorsal. (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; PnT = Parche no esclerotizado de la tibia; S= espermatecas). Escalas: 114, 0,5 mm; 113, 115‐116, 0,2 mm. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 106 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

GRÁFICO_2 9. Ogulnius spp. Heterogeneidad de los códigos de barra del cox1. Ogulnius zbodro n. sp. (n = 9), Ogulnis gertschi Archer (n = 17).

Theridiosoma O. Pickard‐Cambridge, 1879

Diagnosis. Theridiosoma se distingue de los demás géneros por la forma de la división embólica con un émbolo corto y tubular, y la apófisis embólica fragmentada en varias partes. La división embólica usualmente está cubierta por el conductor (Fig_2. 121). La apófisis media es una placa rectangular que se atenua distalmente (Figs_2. 121‐122) (Coddington, 1986).

Theridiosoma goodnightorum Archer 1953 Figuras_2 117‐126 Material examinado: ♂ y ♀ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., códigos de vouchers SFD1DAR028 y SFD1D9L004, códigos de preparados FML‐00719, LNP‐00262 y FML‐00726, LNP‐00268, ADN barcodes thech069 y thech121, respectivamente. 16♂ y 37♀, mismos datos que los anteriores; 13♂ y 16♀, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col.; 2♀, Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 107 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Provincia de Coclé, Parque Nacional General de División Omar Torrijos Herrera, El Cope, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°40’5.1” N; 80°35’33.3” O, 760 m, 4‐ 9.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col.; ♂ y ♀, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 21‐ 24.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col.

Diagnosis. Los machos de Theridiosoma goodnightorum se distinguen por la proyección de dos apófisis embólicas por fuera de la cobertura del conductor (Figs_2. 120‐122), y las hembras por los ductos de copulación que recorren el perímetro de las alas laterales de la vulva y se enrollan debajo de las espermatecas en dirección antero‐ posterior en vista dorsal (Fig_2. 126). Redescripción del macho (SFD1DAR028): Largo total 1.41. Prosoma: largo 0.92, ancho 0.67, alto 0.63. Esternón: largo 0.36, ancho 0.36. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.08, AME‐PME 0.09. Opistosoma: largo 1.03, ancho 0.85, alto 0.73. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma amarillento, pardo en los laterales que delimitan líneas paralelas (Figs_2. 117‐118). Dorso del área ocular amarillenta (Fig_2. 107‐108). Esternón anaranjado con bordes oscuros (Fig_2. 119). Dorso del opistosoma claro con puntos pardos distribuidos a ambos lados de una franja plateada transversal central, posteriores de mayor tamaño (Figs_2. 117‐118), pardo ventralmente con puntos claros (Fig_2. 119). Hilanderas anteriores oscuras, medias y posteriores claras (Fig_2. 119). Fémures y patelas amarillos, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 117‐119). Palpo con el brazo lateral de la apófisis mesal prolongándose desde la división embólica y recorriendo un círculo y cuarto de vuelta (Fig_2. 110) y con la apófisis media en forma de gancho en vista retrolateral (Fig_2. 112). Palpo con dos de sus apófisis embólicas proyectándose por fuera de la cobertura del conductor (Figs_2. 120‐122). Apófisis media como una placa rectangular que se atenua distalmente (Figs_2. 121‐122).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 108 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 109 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 117‐122. Theridiosoma goodnightorum Archer (♂, SFD1DAR028). 117‐119 Hábito general (117 dorsal, 118 lateral, 119 ventral). 120‐122 Palpo izquierdo (120 retrolateral, 121 ventral, 122 prolateral) (C = conductor; EA = apófisis embólica; ED = división embólica; MA = apófisis media; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 117‐119, 0,5 mm; 120‐122, 0,2 mm.

Redescripción de la hembra (SFD1D9L004). Largo total 1.81. Prosoma: largo 0.85, ancho 0.7, alto 0.67. Esternón: largo 0.38, ancho 0.38. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.09, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 1.29, ancho 1.20, alto 1.1. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma amarillento, pardo en los laterales Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 110 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae que delimitan líneas no paralelas (Figs_2. 123). Dorso del área ocular amarillenta (Fig_2. 123). Esternón amarillento con bordes oscuros que se extienden al área de los hoyuelos, debajo del labio (Fig_2. 125). Opistosoma oscuro, dorsalmente con una franja plateada transversal central (Figs_2. 123‐125). Hilanderas anteriores oscuras, medias y posteriores claras (Fig_2. 125). Fémures y patelas amarillos, fémures oliva distalmente, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 123‐125). Vulva con alas laterales simples, sin invaginaciones internas (Fig_2. 126) y ductos de copulación que recorren la periferia de las mismas para enrollanse por debajo de las espermatecas en dirección antero‐posterior en vista dorsal (Fig_2. 126). Distribución. Desde México hasta Panamá.

FIGURAS_2 123‐126. Theridiosoma goodnightorum Archer (♀, SFD1D9L004). 123‐125 Hábito general (123 dorsal, 124 lateral, 125 ventral). 126 Epigino, dorsal. (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S= espermatecas). Escalas: 123‐125, 0,5 mm; 126, 0,2 mm.

Cox1. Los especímenes de esta especie se distribuyeron en cinco GMYC clusters, tres para RFF, uno para PILA y uno para COPE. La divergencia nucleotídica Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 111 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae entre todos estos clusters varía entre 3‐4.2%. La divergencia entre las secuencias del clusters de RFF que incluye a thech121 es de 0.1% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 11. Diagnosis por código de barras. A 30, T 78, A 111, A 174, G 183, T 198, A 204, G 210, G 243, C 283, A 327, A 333, A 390, A 399, A 457, G 489, A 507, C 538, G 558, G 573, G 579 (Gráf_2. 10).

Discusión. Los cinco GMYC clusters de Theridiosoma goodnightorum difieren entre un 3‐4.2% de divergencia genética. Las relaciones filogenéticas entre los dos GMYC clusters están muy bien soportados con valores de bootstrap de 80 y 100 (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1). Sin embargo, como en el caso de Chthonos dobo n. sp. y Naatlo chi n. sp. los valores de divergencia intraespecífica pueden superar el 2%. Además, los especímenes revisados no difieren en los órganos sexuales ni en la forma y la coloración del cuerpo. Por ello, se consideró prematuro nombrar a cada población como un nuevo taxón.

GRÁFICO_2 11. Heterogeneidad de los códigos de barra del cox1. Theridiosoma goodnightorum Archer (n = 17).

Tantra n. gen. Especie tipo. Tantra bugle n. sp.

Constitución. Se transfieren 4 especie de Theridiosoma a Tantra n. gen. y se describen ocho especies nuevas en este trabajo: Tantra argenteolunulatum (Simon), n. comb. – Antillas Menores, . Theridiosoma argenteolunulatum Simon, 1897 Tantra davisi (Archer), n. comb. – México Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 112 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Theridiosoma davisi Archer, 1953 Tantra nechodomae (Petrunkevitch), n. comb. – Jamaica, Puerto Rico Theridiosoma nechodomae Petrunkevitch, 1930 Tantra savannum (Chamberlin y Ivie), n. comb. – USA Theridiosoma savannum Chamberlin & Ivie, 1944

Etimología. El nombre genérico es un término sánscrito que, entre otras acepciones, significa red, tela o trama de tejido. El género de la palabra es masculino. Diagnosis. Los machos de Tantra n. gen. se asemejan a los de Theridiosoma por el conductor bulboso y protruido que cubre el émbolo y sus apófisis, con su línea media elevada, en vista ventral, por donde circula una de las apófisis embólicas, pero se distingue por la presencia de una apófisis prolateral en el conductor que se prolonga posteriormente (Fig_2. 131‐132). También se asemeja a Theridiosoma por la zona del tegulum denticulada y curva que se encuentra por debajo de la porción distal del conductor, pero se distingue por la formación de un bolsillo retrolateral debido al plegamiento del tegulum sobre sí mismo (Figs_2. 130‐131). Apófisis media como una placa rectangular que se atenúa distalmente con una hendidura a lo largo de su eje mayor (Fig_2. 132). Las hembras de Tantra n. gen. se distinguen de los demás géneros por la conformación de los órganos sexuales. Epigino con un par de proyecciones laterales que se acercan en la línea media (Figs_2. 147‐148). Vulva con varias invaginaciones o pliegues enlas alas laterales que dan origen a las proyecciones del epigino, ductos de copulación por debajo de las espermatecas enrollados en dirección dorso‐ventral (Figs_2. 147‐148). Descripción. Largo total entre 1.03‐2.33. Prosoma totalmente pálido u oscuro, o con el área cefálica oscura y pálida en los laterales. Área ocular pálida u oscura. Ojos relativamente iguales, AME sepadados por menos de ½ de sus diámetros, PME yuxtapuestos o separados por menos de ½ de sus diámetros. Esternón liso y plano, pálido u oscuro o pálido en el centro y oscuro en los laterales. Patas cortas o largas, fémures y patelas pálidas u olivas o anaranjadas, resto de las patas anaranjadas, todos los tarsos moteados con oliva oscuro; metatarsos más cortos que las tibias (salvo pata III); fórmula: 1243. Tibias III‐IV con tricobotrias en tres o cuatro hileras, más largas que Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 113 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae el diámetro de las tibias, diagnóstico de la familia Theridiosomatidae. Opistosoma ovalado, pálido u oscuro o de variados colores, con o sin machas plateadas que forman líneas transversales, longitudinales o dibujos aleatorios. Hilanderas pálidas, oscuras o mixtas. Epigino con un par de proyecciones laterales esclerotizadas que se acercan en la línea media. Vulva con varias invaginaciones o pliegues en las alas laterales que dan origen a las proyecciones esclerotizadas del epigino, ductos de copulación por debajo de las espermatecas enrollados en dirección dorso‐ventral. Palpo con un conductor bulboso y protruido que cubre el émbolo y sus apófisis, con su línea media elevada, en vista ventral, por donde circula una de las apófisis embólicas, con una apófisis prolateral que se prolonga posteriormente. La zona denticulada del tegulum curva con un bolsillo retrolateral debido al plegamiento del tegulum sobre si mismo. Apófisis media como una placa rectangular que se atenua distalmente con una hendidura a lo largo de su eje mayor. Discusión. La revisión de la familia Theridiosomatidae (Coddington, 1986) está enfocada en resolver las relaciones entre los géneros y en la descripción de especies nuevas. En cuanto a la descripción de géneros nuevos la revisión es más conservadora. Sin embargo, Coddington (1986: pág. 2) encontró dos grupos de especies monofiléticos dentro de Theridiosoma, uno formado por T. gemmosum, T. epeiroides y, posiblemente, T. goodnightorum y el otro por T. benoiti (transferida a Andasta por Saaristo en 1996), T. nechodamae, T. davidi y T. savanum. La filogenia molecular y los árboles de distancia obtenidos en el Capítulo 1 recuperaron tres grupos monofiléticos (Gráf_1. 1‐2), aunque todos ellos con un bajo soporte de bootstrap. Estos grupos están formados por el cluster de T. gemmosum, el de T. goodnightorum y el compuesto por las especies de Tantra n. gen., similares a los resultados sugeridos por Coddigton (1986). Las hembras de T. nechodamae, T. davidi, T. savanum y T. argenteolunulatum se caracterizan por tener un epigino con proyecciones laterales esclerotizadas que se aproximan en la línea media (Coodington, 1986: pág. 63). Este es uno de los caracteres diagnósticos propuestos para Tantra n. gen. que lo diferencian de Theridiosoma, cuyas hembras no tienen proyecciones en el epigino. Por lo tanto, grupo monofilético sugerido por Coddington (1986) compuesto por T. nechodamae, T. davidi y T. savanum se lo eleva a rango de género con el nombre de Tantra n. gen. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 114 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Distribución. Panamá, Jamaica, Puerto Rico, México y USA.

Tantra ngabe n. sp. Figuras_2 127‐136 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFD1DAR027, códigos de preparados FML‐00708 y LNP‐00259, ADN barcode thes3114. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SFU2NAD033, códigos de preparados FML‐00744 y LNP‐00256, ADN barcode thes3067; ♂ y 2♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SFC1DBD015, SFC1DCR013 y SFD1DAA017, ADN barcodes SPIPA346‐10, SPIPA348‐10 y SPIPA349‐10, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 4♂ y 21♀, mismos datos que el holotipo.

Etimología. El nombre específico está dedicado a uno de los pueblos originarios de Panamá, el pueblo Ngäbe. En su lengua Ngä: es equivalente a personas, gente, nacer; y Be: es ver, sentir, existir. Diagnosis. Los machos de Tantra ngabe n. sp. se distinguen por la apófisis del conductor relativamente larga que alcanza el extremo aguzado de la apófisis media (Figs_2. 131‐132) y por el bolsillo del tegulum semicircular en vista ventral (Fig_2. 131). Descripción. Macho (Holotipo: SFD1DAR027): Largo total 1.34. Prosoma: largo 0.78, ancho 0.59, alto 0.6. Esternón: largo 0.33, ancho 0.34. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.08, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 0.96, ancho 0.83, alto 0.7. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma pálido, borde del área cefálica salpicado con oliva (Figs_2. 127‐128). Dorso del área ocular palida (Fig_2. 127‐128). Esternón amarillento con bordes olivas que se disfuminan hacia el centro (Fig_2. 129). Dorso del opistosoma pálido con dos manchas olivas posteriores en forma de “L” (Figs_2. 127), con dos franjas olivas laterales que delimitan un área pálida (Fig_2. 128), pálido ventralmente con el área de los pulmones y oliva desde el epiandrio hasta las hilanderas (Fig_2. 129). Hilanderas laterales oliva, hilanderas medias pálidas (Fig_2. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 115 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

129). Fémures y patelas pálidos salpicados con oliva, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 127‐129). Palpo con el ápice del conductor simple (Fig_2. 131) y su apófisis relativamente larga que alcanza el extremo aguzado de la apófisis media (Figs_2. 131‐ 132). Bolsillo del tegulum semicircular en vista ventral (Fig_2. 131).

FIGURAS_2 127‐132. Tantra ngabe n. sp. (♂, SFD1DAR027). 127‐129 Hábito general (127 dorsal, 128 lateral, 129 ventral). 130‐133 Palpo izquierdo (130 retrolateral, 131 ventral, 132 prolateral) (C = conductor; CA = apófisis del conductor; EA = apófisis embólica; ED = división embólica; MA = apófisis media; T = tegulum; TS = dentículos del tegulum; TP = bolsillo del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 127‐129, 0,5 mm; 130‐133, 0,2 mm. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 116 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Hembra (Paratipo: SFU2NAD033). Largo total 1.86. Prosoma: largo 0.77, ancho 0.65, alto 0.6. Esternón: largo 0.36, ancho 0.36. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.08, PME 0.07, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 1.41, ancho 1.4, alto 1.29. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 133‐ 135). Epigino y vulva como en la descripción del género. Distribución. Panamá, RFF, localidad tipo.

FIGURAS_2 133‐136. Tantra ngabe n. sp. (♀, SFU2NAD033) 133‐135 Hábito general (133 dorsal, 134 lateral, 135 ventral). 136 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; LP = proyecciones laterales; S = espermatecas). Escalas: 133‐135, 0,5 mm; 136, 0,1 mm.

Cox1. La divergencia intraespecífica varía entre 0.07‐0.08%, mientras que la diferencia genética interespecífica varía entre 7.5‐15.3% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 12. Diagnosis por código de barras. A 48, T 69, G 72, A 87, A 183, G 210, G 213, A 231, G 243, G 264, C 270, A 282, A 342, A 354, G 519, T 591, G 627 (Gráf_2. 13). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 117 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Discusión. Tantra ngabe n. sp. y Tantra bribri n. sp. surgen como grupos hermanos en los análisis de ML con un soporte de bootstrap de 98 (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1). Los órganos sexuales de ambas especies son difíciles de diferenciar (Figs_2. 130‐132, 136, 192‐194, 198). Sin embargo, se diferencian en la coloración general del cuerpo (Figs_2. 127‐129, 133‐135, 189‐191, 195‐197), poseen una divergencia genética del 7.5% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2) y se encontraron RFF y COPE, localidades con una alta frecuencia de endemismos haplotipicos (ver Capítulo 1: Gráf_1. 5‐6). Estas evidencias son similares a las encontradas entre Tantra bugle n. sp. y Tantra wounaan n. sp., aunque las diferencias en la morfología de estas últimas es más conspicua. Todas estas evidencias justifican la distinciónde Tantra ngabe n. sp. y Tantra bribri n. sp.

Tantra bugle n. sp. Figuras_2 137‐148 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFU2NAD032, códigos de preparados FML‐00690 y LNP‐00260, ADN barcode thes4113. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SFU2NBH034, códigos de preparados FML‐00694/746 y LNP‐00276, ADN barcode thes4065; 2♂ y ♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SFD1NAL019, SFD1NCH021 y SFU1D9A009, ADN barcodes SPIPA343‐10, SPIPA342‐10 y SPIPA344‐10, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 44♂ y 43♀, mismos datos que el holotipo. 2♂ y 3♀, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 21‐24.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col.

Etimología. El nombre específico está dedicado a uno de los pueblos originarios de Panamá, el pueblo Buglé. En su lengua Bu: es gente, vivir, estar presente; y Gle: Tierra, recursos.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 118 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Diagnosis. Los machos de Tantra bugle n. sp. se distinguen por el conductor con su porción distal bífida (Fig_2. 141), la apófisis del conductor relativamente corta, alejada del extremo aguzado de la apófisis media (Figs_2. 141‐142) y el bolsillo del tegulum de paredes más esclerotizadas formando un arco comprimido en vista ventral (Fig_2. 141). Punta de la apófisis media doblándose prolateralmente (Fig_2. 141). Las hembras se distinguen por la coloración en vista dorsal: prosoma oliva y amarillento en los laterales, y opistosoma oliva con una franja anterior transversal plateada (Figs_2. 143). Descripción. Macho (Holotipo: SFU2NAD032): Largo total 1.43. Prosoma: largo 0.84, ancho 0.68, alto 0.59. Esternón: largo 0.38, ancho 0.38. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.07, AME‐PME 0.09. Opistosoma: largo 0.98, ancho 0.78, alto 0.66. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma amarillento, más oscuro en el área cefálica (Figs_2. 137‐138). Dorso del área ocular amarillento (Fig_2. 137‐138). Esternón amarillento (Fig_2. 139). Opistosoma pardo claro, liso (Figs_2. 137‐138), pálido ventralmente con el área de los pulmones y el epiandrio hasta las hilanderas oliva (Fig_2. 139). Hilanderas laterales oliva, hilanderas medias pálidas (Fig_2. 139). Fémures y patelas pálidos, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 137‐139). Palpo con la porción distal del conductor bífida (Fig_2. 141). Apófisis del conductor relativamente corta, alejado del extremo aguzado de la apófisis media (Figs_2. 141‐142). Bolsillo del tegulum de paredes más esclerotizadas formando un arco comprimido en vista ventral (Fig_2. 141). Punta de la apófisis media doblándose prolateralmente (Fig_2. 141). Hembra (Paratipo: SFU2NAD033). Largo total 1.95. Prosoma: largo 0.97, ancho 0.81, alto 0.71. Esternón: largo 0.43, ancho 0.44. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.08, AME‐PME 0.10. Opistosoma: largo 1.65, ancho 1.4, alto 1.09. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oliva, amarillento hacia los laterales (Figs_2. 143‐144). Dorso del área ocular oliva (Fig_2. 143‐144). Esternón oliva (Fig_2. 145). Dorso del opistosoma oliva con una franja anterior transversal plateada que lo rodea parcialmente (Figs_2. 143‐144), oliva ventralmente delimitado por una franja pálida (Fig_2. 145). Hilanderas laterales oliva, hilanderas medias pálidas (Fig_2. 145). Fémures y patelas pálidos, tibias y metatarsos amarillentos, tarsos anaranjados (Figs_2. 143‐ 145). Órganos sexuales como en la descripción del género. Epigino con un par de Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 119 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae proyecciones laterales que se acercan en la línea media (Figs_2. 147‐148). Vulva con varias invaginaciones o pliegues enlas alas laterales que dan origen a las proyecciones del epigino,, los ductos de copulación por debajo de las espermatecas enrollados en dirección dorso‐ventral (Figs_2. 147‐148).

FIGURAS_2 137‐142. Tantra bugle n. sp. (♂, SFU2NAD032). 137‐139 Hábito general (137 dorsal, 138 lateral, 139 ventral). 140‐142 Palpo izquierdo (140 retrolateral, 141 ventral, 142 prolateral) (C = conductor; CA = apófisis del conductor; EA = apófisis embólica; ED = división embólica; MA = apófisis media; T = tegulum; TS = dentículos del tegulum; TP = bolsillo del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 137‐139, 0,5 mm; 140‐142, 0,2 mm. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 120 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 143‐148. Tantra bugle n. sp. (♀, SFU2NAD033). 143‐145 Hábito general (143 dorsal, 144 lateral, 145 ventral). 146‐148 Epigino (146, 148 dorsal, 147 ventral) (CD = ductos de copulación; FD = ductos de fertilización; LL = alas laterales de la vulva; LP = proyecciones laterales; S = espermatecas). Escalas: 143‐145, 1 mm; 146, 0,2 mm; 147‐ 148, 0,05 mm.

Distribución. Panamá, RFF, localidad tipo.

Cox1. La divergencia intraespecífica detectada es de0.2%, y la interespecífica varía entre7.5‐16.5% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. C 4, C Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 121 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

117, G 165, A 172, G 210, T 354, G 402, G 519, G 543, A 567, C 570, G 582, T 591, G 603, G 648 (Gráf_2. 13).

Discusión. Tantra bugle n. sp. y Tantra wounaan n. sp. surgen como grupos hermanos en los análisis de ML con un soporte de bootstrap de 95 (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1), ambas se diferencian en los órganos sexuales (Figs_2. 140‐142, 146, 172‐ 174, 178) y en la coloración general del cuerpo (Figs_2. 137‐139, 143‐145, 169‐171, 175‐177), poseen una divergencia genética del 7.5% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2) y se encontraron RFF y PILA, localidades con una la alta frecuencia de endemismos haplotipicos (ver Capítulo 1: Gráf_1. 5‐6), evidencias que justifican la distinción de estas especies.

Tantra kuna n. sp. Figuras_2 149‐158 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFC2DCD016, códigos de preparados FML‐00711 y LNP‐00257, ADN barcode thes5122. Paratipos: 3♀, mismos datos que el holotipo, código de vouchers SFC1DBD011, SFD1NBH019 y SFD1NBH034, códigos de preparados FML‐00742 y LNP‐00265, FML‐00894, FML‐00965, y ADN barcodes thes5066, SPIPA339‐10 y SPIPA122‐10, respectivamente; ♂, mismos datos que el holotipo, código de voucher SFD1NAH037, ADN barcode SPIPA121‐10. Otro material examinado. PANAMÁ. 2♂ y 3♀, mismos datos que el holotipo.

Etimología. El nombre específico está dedicado a uno de los pueblos originarios de Panamá, el pueblo Kuna. En su lengua se autodenominan dule o tule que significa persona. Diagnosis. Los machos de Tantra kuna n. sp. se distinguen por la apófisis del conductor larga que cruza por encimadel extremo aguzado de la apófisis media, aproximándose al subtegulum en vista ventral (Figs_2. 153‐154) y por el bolsillo del Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 122 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae tegulum amplio y de paredes altas que forman un arco incompleto en su punto medio (Fig_2. 153). Ambos sexos se distinguen de las otras especies por el dibujo plateado sobre el opistosoma oscuro en vista dorsal: una franja longitudinal en la línea media unida a dos machas circulares anteriores (Figs_2. 149, 155). Descripción. Macho (Holotipo: SFC2DCD016): Largo total 1.03. Prosoma: largo 0.65, ancho 0.48, alto 0.5. Esternón: largo 0.32, ancho 0.35. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.07, AME‐PME 0.07. Opistosoma: largo 0.71, ancho 0.59, alto 0.48. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma pálido, oliva en el área ocular (Figs_2. 149‐150). Esternón amarillento (Fig_2. 151). Opistosoma oliva oscuro, con una franja longitudinal media unida a dos machas anteriores, todas ellas plateadas (Figs_2. 149), que lo divide antero‐posteriormente en vista lateral (Fig_2. 150), oliva ventralmente (Fig_2. 151). Hilanderas laterales oliva, hilanderas medias pálidas (Fig_2. 151). Fémures y patelas pálidos, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 149‐151). Palpo con el ápice del conductor simple (Fig_2. 153) y su apófisis larga que cruza sobre el extremo aguzado de la apófisis media, aproximándose al subtegulum en vista ventral (Figs_2. 153‐154). Bolsillo del tegulum amplio y de paredes altas que forman un arco incompleto en su punto medio (Fig_2. 153). Hembra (Paratipo: SFD1NBH034). Largo total 1.62. Prosoma: largo 0.71, ancho 0.59, alto 0.55. Esternón: largo 0.33, ancho 0.35. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.07, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 1.23, ancho 1.14, alto 0.92. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo similar al macho (Figs_2. 155‐157). Dorso del prosoma oliva, pálido hacia los laterales (Figs_2. 155‐156). Esternón pálido (Fig_2. 157). Fémures y patelas pálidos, resto de las patas anaranjados (Figs_2. 155‐157). Órganos sexuales como en la descripción del género (Fig_2. 158). Distribución. Panamá, RFF, localidad tipo.

Cox1. La divergencia genética interespecífica, es decir entre las otras especies del género, varía entre 11.5‐17.3% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. T 23, G 33, T 45, G 75, T 82, G 84, A 120, C 144, G 207, G 210, C 219, G 228, G 243, G 252, G 264, A 283, G 327, G 330, G 336, A 357, A 390, C 453, G 465, G 471, A Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 123 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

492, G 501, GT 516‐517, G 534, G 552, T 564, G 621, T 630, G 642, A 660, A 669 (Gráf_2. 13).

FIGURAS_2 149‐154. Tantra kuna n. sp. (♂, SFC2DCD016). 149‐151 Hábito general (149 dorsal, 150 lateral, 151 ventral). 152‐154 Palpo izquierdo (152 retrolateral, 153 ventral, 154 prolateral) (C = conductor; CA = apófisis del conductor; EA = apófisis embólica; ED = división embólica; MA = apófisis media; T = tegulum; TS = dentículos del tegulum; TP = bolsillo del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 149‐151, 0,5 mm; 152‐154, 0,2 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 124 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Discusión. Tantra kuna n. sp. y Tantra embera n. sp. surgen como grupos hermanos en los análisis de ML con un soporte de bootstrap bajo de 48, y Tantra naso n. sp. surge como grupo hermano de los anteriores con un mejor soporte de 74 (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1). Todas ellas son difíciles de diferenciar utilizando sus órganos sexuales (Figs_2. 152‐154, 158, 162‐164, 168, 182‐184, 188). Sin embargo, se distinguen en la coloración general del cuerpo (Figs_2. 149‐151, 155‐157, 159‐161, 165‐167, 179‐181, 185‐187). Además, Tantra kuna n. sp. diverge en un 13.5% de Tantra embera n. sp. y un 11.6% de Tantra naso n. sp., y estás dos últimas en un 9.4% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). También se encontraron en PILA, RFF y COPE‐PNAC, las primeras dos con una alta frecuencia de endemismos haplotipicos (ver Capítulo 1: Gráf_1. 5‐6). Estas evidencias justifican la distinción de estas especies.

FIGURAS_2 155‐158. Tantra kuna n. sp. (♀, 155‐156 SFD1NBH034, 157 SFC1DBD011, 158 SFD1NBH019). 155‐157 Hábito general (155 dorsal, 156 lateral, 157 ventral). 158 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; LP = proyecciones laterales; S = espermatecas). Escalas: 155‐157, 0,5 mm; 158, 0,2 mm.

Tantra embera n. sp. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 125 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Figuras_2 159‐168 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Panamá, Parque Nacional Altos de Campana, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°41’00.4” N; 79°55’47.4” O, 895 m, 14‐19.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SCU2NDA017, códigos de preparados FML‐00712 y LNP‐00290, ADN barcode thes6106. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SCU2NHH021, códigos de preparados FML‐00727 y LNP‐00288 y ADN barcode thes6107; ♂ y 2♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SCC2NGR018, SCD2NFA020 y SCD1DEL018, ADN barcodes thes6233, SPIPA335‐10 y SPIPA336‐10, respectivamente; 2♂ y 2♀, Provincia de Coclé, Parque Nacional General de División Omar Torrijos Herrera, El Cope, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°40’5.1” N; 80°35’33.3” O, 760 m, 4‐9.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., códigos de vouchers STB1D5L027, STD1D6B017, STU1N4R024 y STU2N8R022, ADN barcodes SPIPA333‐10, SPIPA332‐10, SPIPA334‐10 y thes6236, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 14♂ y 15♀, mismos datos que el holotipo; 13♂ y 20♀, Provincia de Coclé, Parque Nacional General de División Omar Torrijos Herrera, El Cope, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°40’5.1” N; 80°35’33.3” O, 760 m, 4‐9.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col.

Etimología. El nombre específico está dedicado a uno de los pueblos originarios de Panamá, el pueblo Emberá. En su lengua Embe: hombre; y Ra: arriba. Diagnosis. Los machos de Tantra embera n. sp. se asemejan a los de Tantra kuna n. sp. por la apófisis del conductor larga que cruza sobre el extremo aguzado de la apófisis media, alcanzando el subtegulum en vista ventral (Figs_2. 163‐164) y por el bolsillo del tegulum amplio y de paredes altas que forman un arco incompleto en su punto medio (Fig_2. 163), pero se distinguen por la coloración dorsal del opistosoma con una franja longitudinal plateada en la línea media, que divide una zona posterior oliva claro y una anterior más oscura (Figs_2. 159)

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 126 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 159‐164. Tantra embera n. sp. (♂, SCU2NDA017). 159‐161 Hábito general (159 dorsal, 160 lateral, 161 ventral). 162‐164 Palpo izquierdo (162 retrolateral, 163 ventral, 164 prolateral) (C = conductor; CA = apófisis del conductor; EA = apófisis embólica; ED = división embólica; MA = apófisis media; T = tegulum; TS = dentículos del tegulum; TP = bolsillo del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 159‐161, 0,5 mm; 162‐164, 0,2 mm.

Descripción. Macho (Holotipo: SCU2NDA017): Largo total 1.18. Prosoma: largo 0.67, ancho 0.54, alto 0.56. Esternón: largo 0.31, ancho 0.33. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.08, PME 0.06, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 0.8, ancho 0.72, alto 0.55. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma pálido, oliva en el área cefálica Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 127 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

(Figs_2. 159‐160). Esternón amarillento, con bordes olivas que se extienden hacia los hoyuelos (Fig_2. 161). Dorso del opistosoma con una franja media longitudinal plateada, que divide una zona posterior oliva claro y una anterior oscura (Figs_2. 159‐ 160), oliva ventralmente (Fig_2. 161). Hilanderas anteriores oliva, posteriores pálidas (Fig_2. 161). Fémures y patelas pálidos, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 159‐ 161). Palpo con el ápice del conductor simple (Fig_2. 163) y su apófisis larga que transpasa al extremo aguzado de la apófisis media, llegando casi al subtegulum en vista ventral (Figs_2. 153‐154). Bolsillo del tegulum amplio de paredes altas que forman un arco incompleto en su punto medio (Fig_2. 153).

FIGURAS_2 165‐168. Tantra embera n. sp. (♀, SCU2NHH021). 165‐167 Hábito general (165 dorsal, 166 lateral, 167 ventral). 168 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; LP = proyecciones laterales; S = espermatecas). Escalas: 165‐167, 0,5 mm; 168, 0,2 mm.

Hembra (Paratipo: SCU2NHH021). Largo total 1.59. Prosoma: largo 0.8, ancho 0.65, alto 0.52. Esternón: largo 0.37, ancho 0.37. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.08, PME 0.08, AME‐PME 0.10. Opistosoma: largo 1.26, ancho 1.17, alto 0.97. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 128 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo similar al macho (Figs_2. 165‐167). Dorso del prosoma oliva, pálido hacia los laterales (Figs_2. 165‐166). Órganos sexuales como en la descripción del género (Fig_2. 168). Distribución. Panamá, PNAC, localidad tipo.

Cox1. La variación nucleotídica intraespecífica varía entre 0.02‐0.17%, mientras que la divergencia a nivel interespecífico varía entre 9.4‐17.2% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 12. Diagnosis por código de barras. G 36, T 54, C 63, G 108, A 111, C 117, C 205, C 270, A 315 G 342, G 360, T 372, C 375, A 381, C 400, G 402, G 537, G 540, G 567, G 627, G 675 (Gráf_2. 13).

Discusión. Ver Tantra kuna n. sp.

Tantra wounaan n. sp. Figuras_2 169‐178 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col., código de voucher SAD1DGH013, códigos de preparados FML‐00710 y LNP‐00547, ADN barcode thes7099. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SAD1NFP008, códigos de preparados FML‐ 00743 y LNP‐00546 y ADN barcode thes7105; 2♂ y 2♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SAU1NFB026, SAD1DHP001, SAC1DHA012 y SAB1DHP002, ADN barcodes SPIPA330‐10, SPIPA327‐10, SPIPA328‐10 y SPIPA329‐10, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 106♂ y 221♀, mismos datos que el holotipo; 2♂ y 4♀, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Sendero Retoño, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°53’37.8” N; 82°36’54.3” O, 2240 m, 10‐11.VI.2008, F. Labarque, M. Ramirez col.; ♀, Provincia de Chiriquí, Parque Interernacional La Amistad, Sendero Panamá, muestras no cuantitativas, inventario Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 129 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

PANCODING, 8°53’37.8” N; 82°36’54.3” O, 2240 m, 17‐18.VI.2008, F. Labarque, L. Piacentini col.

Etimología. El nombre específico está dedicado a uno de los pueblos originarios de Panamá, el pueblo Wounaan. Diagnosis. Los machos de Tantra wounaan n. sp. se asemejan a los de Tantra bugle n. sp. por el conductor con su porción distal bífida (Fig_2. 173), por el bolsillo del tegulum de paredes más esclerotizadas formando un arco comprimido en vista ventral (Fig_2. 173) y por la punta de la apófisis media doblándose prolateralmente (Fig_2. 173), pero se distingue por apófisis del conductor larga que cruza por encima del extremo aguzado de la apófisis media (Figs_2. 173‐174). Las hembras se distinguen de las demás especies del género por la coloración dorsal del opistosoma claro con puntos plateados distribuidos aleatoriamente y un dibujo oliva compuesto por líneas laterales zigzageantes y pequeñas manchas entre ambas (Figs_2. 175). Descripción. Macho (Holotipo: SAD1DGH013): Largo total 1.5. Prosoma: largo 0.9, ancho 0.7, alto 0.69. Esternón: largo 0.4, ancho 0.41. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.08, PME 0.06, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 0.99, ancho 0.79, alto 0.71. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma amarillento, oliva en la fóvea (Figs_2. 169‐170). Esternón amarillento, con bordes olivas que se extienden hacia los hoyuelos (Fig_2. 171). Dorso del opistosoma rojizo claro con líneas simétricas laterales oliva (Figs_2. 169‐170), oliva ventralmente (Fig_2. 171). Hilanderas laterales oliva, hileranderas medias pálidas (Fig_2. 171). Fémures y patelas amarillentos, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 169‐171). Palpo con el conductor bífido distalmente (Fig_2. 173), con una apófisis larga que transpasa al extremo aguzado de la apófisis media (Figs_2. 173‐174). Bolsillo del tegulum de paredes gruesas formando un arco comprimido en vista ventral (Fig_2. 173). Punta de la apófisis media doblándose prolateralmente (Fig_2. 173). Hembra (Paratipo: SAD1NFP008). Largo total 2.27. Prosoma: largo 0.93, ancho 0.76, alto 0.75. Esternón: largo 0.43, ancho 0.42. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.08, PME 0.07, AME‐PME 0.11. Opistosoma: largo 1.95, ancho 1.68, alto 1.51. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma pálido, oliva en el área cefálica (Figs_2. 175‐177). Esternón olivas, pálido en la línea media (Fig_2. 177). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 130 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 169‐174. Tantra wounaan n. sp. (♂, SAD1DGH013). 169‐171 Hábito general (169 dorsal, 170 lateral, 171 ventral). 172‐174 Palpo izquierdo (172 retrolateral, 173 ventral, 174 prolateral) (C = conductor; CA = apófisis del conductor; EA = apófisis embólica; ED = división embólica; MA = apófisis media; T = tegulum; TS = dentículos del tegulum; TP = bolsillo del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 169‐171, 0,5 mm; 172‐174, 0,2 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 131 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 175‐178. Tantra wounaan n. sp. (♀, SAD1NFP008). 175‐177 Hábito general (175 dorsal, 176 lateral, 177 ventral). 178 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; LP = proyecciones laterales; S = espermatecas). Escalas: 175‐177, 0,5 mm; 178, 0,2 mm.

Dorso del opistosoma claro con puntos plateados distribuidos aleatoriamente y líneas simétricas laterales y manchas centrales oliva (Figs_2. 175‐177), oliva ventralmente (Fig_2. 177). Hilanderas laterales oliva, hilanderas medias pálidas (Fig_2. 177). Fémures y patelas pálidos, resto de las patas amarillentas con oliva (Figs_2. 175‐177). Órganos sexuales como en la descripción del género (Fig_2. 178).

Distribución. Panamá, PILA, localidad tipo.

Cox1. La divergencia genética dentro de la especie varía entre 0.01‐0.2%, mientras que la divergencia con respecto a las demás especies varía entre 7.2‐16.3% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 12. Diagnosis por código de barras. G 12, A Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 132 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

24, A 78, G 81, A 87, G 159, A 180, G 243, C 270, A 297, G 309, A 315, A 321, T 363, G 375, T 414, G 471, G 483, G 489, C 615 (Gráf_2. 13).

Discusión. Ver Tantra bugle n. sp.

Tantra naso n. sp. Figuras_2 179‐188 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col., código de voucher SAD1NGP019, códigos de preparados FML00941/2, ADN barcode SPIPA322‐10. Paratipos: 2♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SAB1DER005 y SAD1NGB029, códigos de preparados FML‐00939, FML‐00728 y ADN barcodes SPIPA326‐10, thes6229, respectivamente; ♂, mismos datos que el holotipo, código de voucher SAD1DHP002, código de preparado FML‐00729, ADN barcode thes6226; 2♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SAC1DGB022 y SAU2NFA018, ADN barcodes SPIPA325‐10 y SPIPA323‐10, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 8♂ y 38♀, mismos datos que el holotipo.

Etimología. El nombre específico está dedicado a uno de los pueblos originarios de Panamá, el pueblo Naso. En su lengua Na: es equivalente a la vida, al agua; y So: es creer, existir. Diagnosis. Los machos de Tantra naso n. sp. se asemejan a los de Tantra kuna n. sp. y de Tantra embera n. sp. por la apófisis del conductor larga cruza el extremo aguzado de la apófisis media, alcanzando al subtegulum en vista ventral (Figs_2. 183‐ 184) y por el bolsillo del tegulum amplio y de paredes altas que forman un arco incompleto en su punto medio (Fig_2. 183), pero se distinguen por el dibujo plateado en vista dorsal sobre el opistosoma oscuro: una franja longitudinal en la línea media y dos manchas anteriores (Figs_2. 179).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 133 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 179‐184. Tantra naso n. sp. (♂, 179‐181 SAD1NGP019, 182‐184 SAD1DHP002). 179‐181 Hábito general (179 dorsal, 180 lateral, 181 ventral). 182‐184 Palpo izquierdo (182 retrolateral, 183 ventral, 184 prolateral) (C = conductor; CA = apófisis del conductor; EA = apófisis embólica; ED = división embólica; MA = apófisis media; T = tegulum; TS = dentículos del tegulum; TP = bolsillo del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 179‐184, 0,2 mm.

Descripción. Macho (Holotipo SAD1NGP019): Largo total 1.22. Prosoma: largo 0.71, ancho 0.61, alto 0.56. Esternón: largo 0.35, ancho 0.35. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.07, AME‐PME 0.10. Opistosoma: largo 0.83, ancho 0.72, alto 0.56. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oliva, pálido en los laterales Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 134 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

(Figs_2. 179‐180). Dorso del área ocular oliva (Fig_2. 179‐180). Esternón amarillento, con bordes olivas que se extienden hacia los hoyuelos (Fig_2. 181). Dorso del opistosoma oliva oscuro con una franja media longitudinal y dos manchas anterirores plateadas (Figs_2. 179‐180), oliva ventralmente (Fig_2. 181). Hilanderas anteriores oliva, posteriores pálidas (Fig_2. 181). Fémures y patelas pálidos y olivas distalmente, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 179‐181). Palpo con el ápice del conductor simple (Fig_2. 183) y su apófisis larga que transpasa al extremo aguzado de la apófisis media, llegando casi al subtegulum en vista ventral (Figs_2. 183‐184). Bolsillo del tegulum amplio de paredes altas que forman un arco incompleto en su punto medio (Fig_2. 183).

FIGURAS_2 185‐188. Tantra naso n. sp. (♀, SAB1DER005) 185‐187 Hábito general (185 dorsal, 186 lateral, 187 ventral). 188 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; LP = proyecciones laterales; S = espermatecas). Escalas: 185‐187, 0,5 mm; 188, 0,2 mm.

Hembra (Paratipo: SAB1DER005). Largo total 1.79. Prosoma: largo 0.73, ancho 0.66, alto 0.6. Esternón: largo 0.37, ancho 0.38. Diámetro y separación de los ojos: AME Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 135 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

0.08, PME 0.07, AME‐PME 0.10. Opistosoma: largo 1.47, ancho 1.42, alto 1.15. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo similar al macho (Figs_2. 185‐187). Esternón oliva, amarillento en la línea media (Fig_2. 187). Órganos sexuales como en la descripción del género (Fig_2. 178). Distribución. Panamá, PILA, localidad tipo.

Cox1. La divergencia nucleotídica intraespecífica es de 0.03‐0.1% y la interespecífica varía entre 9.1‐15.3% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. G 69, T 144, G 183, A 189, A 231, G 267, A 270, G 288, C 355, C 444, G 459, C 561, A 564, A 573, C 615, A 675 (Gráf_2. 13).

Discusión. Ver Tantra kuna n. sp.

Tantra bribri n. sp. Figuras_2 189‐198 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Coclé, Parque Nacional General de División Omar Torrijos Herrera, El Cope, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°40’5.1” N, 80°35’33.3” O, 760 m, 4‐9.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher STC2D6R014, códigos de preparados FML‐00962/3, ADN barcode SPIPA318‐10. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher STD1D6H023, códigos de preparados FML‐00745/882/964, ADN barcode SPIPA317‐10; 2♂ y 2♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers STD1D7B026, STD1N7B028, STU1N5L020 y STU1N7A019, ADN barcodes thes3250, thes3214, SPIPA319‐10 y SPIPA320‐10, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 2♂ y 14♀, mismos datos que el holotipo.

Etimología. El nombre específico está dedicado a uno de los pueblos originarios de Panamá, el pueblo Bri Bri. En su lengua dri‐dri significa literalmente duro‐duro, pero puede interpretarse como valiente. Diagnosis. Los machos de Tantra bribri n. sp. se asemejan a los de Tantra ngabe n. sp. por la apófisis del conductor relativamente larga que alcanza el extremo Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 136 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae aguzado de la apófisis media (Figs_2. 193‐194) y por el bolsillo del tegulum semicircular en vista ventral (Fig_2. 193), pero se distinguen por tener seis manchas olivas en el dorso del opistosoma (Figs_2. 189) en lugar de dos manchas. Descripción. Macho (Holotipo: STC2D6R014): Largo total 1.34. Prosoma: largo 0.71, ancho 0.56, alto 0.53. Esternón: largo 0.33, ancho 0.34. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.06, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 1.01, ancho 0.88, alto 0.76. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma pálido, borde del área cefálica salpicado con oliva (Figs_2. 189‐190). Dorso del área ocular palida (Fig_2. 189‐190). Esternón amarillento (Fig_2. 191). Dorso del opistosoma pálido con seis manchas olivas (Figs_2. 189), con dos franjas olivas laterales que delimitan un área pálida (Fig_2. 190), pálido ventralmente con el área de los pulmones y el epiandrio hasta las hilanderas oliva (Fig_2. 191). Hilanderas laterales oliva, hilanderas medias pálidas (Fig_2. 191). Fémures y patelas pálidos, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 189‐ 191). Palpo con el ápice del conductor simple (Fig_2. 193) y su apófisis relativamente larga que alcanza el extremo aguzado de la apófisis media (Figs_2. 193‐194). Bolsillo del tegulum semicircular en vista ventral (Fig_2. 193). Hembra (Paratipo: STD1D6H023). Largo total 1.43. Prosoma: largo 0.69, ancho 0.56, alto 0.51. Esternón: largo 0.33, ancho 0.34. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.07, PME 0.07, AME‐ PME 0.07. Opistosoma: largo 1.01, ancho 0.92, alto 0.72. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 195‐197). Epigino y vulva como en la descripción del género. Distribución. Panamá, COPE, localidad tipo.

Cox1. La divergencia genética interespecífica varía entre 7.8‐16.3% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. A 126, G 129, G 144, C 265, G 288, A 315, G 330, A 357, G 468, G 486, G 489, A 492, G 507, A 516, G 525, A 555, A 564, G 582, G 654 (Gráf_2. 13).

Discusión. Ver Tantra ngabe n. sp.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 137 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 189‐194. Tantra bribri n. sp. (♂, STC2D6R014). 189‐191 Hábito general (189 dorsal, 190 lateral, 191 ventral). 192‐194 Palpo izquierdo (192 retrolateral, 193 ventral, 194 prolateral) (C = conductor; CA = apófisis del conductor; EA = apófisis embólica; ED = división embólica; MA = apófisis media; T = tegulum; TS = dentículos del tegulum; TP = bolsillo del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 189, 0,5 mm; 190‐194, 0,2 mm.

Tantra sichid n. sp. Figuras_2 199‐202 Material Tipo: Holotipo: ♀ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Sendero Retoño, muestras no cuantitativas, inventario Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 138 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

PANCODING, 8°53’37.8” N; 82°36’54.3” O, 2240 m, 10‐11.VI.2008, F. Labarque, M. Ramirez col., código de voucher SANQB8L020, códigos de preparados FML‐00960/61, sin muestras de ADN.

FIGURAS_2 195‐198. Tantra bribri n. sp. (♀, STD1D6H023). 195‐197 Hábito general (195 dorsal, 196 lateral, 197 ventral). 198 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; LP = proyecciones laterales; S = espermatecas). Escalas: 195‐198, 0,2 mm.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Kuna, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa negro. Hace referencia a la coloración oscura del cuerpo. Diagnosis. Las hembras de Tantra sichid n. sp. se distinguen por su gran tamaño y por la coloración oscura del cuerpo con dos conspicuas manchas plateadas a los costados de las hilanderas en vista ventral (Fig_2. 199‐201). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 139 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 199‐202. Tantra sichid n. sp. (♀, SANQB8L020). 199‐201 Hábito general (199 dorsal, 200 lateral, 201 ventral). 202 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; LP = proyecciones laterales; S = espermatecas). Escalas: 199‐201, 0,5 mm; 202 0,2 mm.

Descripción. Hembra (Holotipo: SANQB8L020): Largo total 2.33. Prosoma: largo 0.98, ancho 0.69, alto 0.71. Esternón: largo 0.37, ancho 0.41. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.07, PME 0.07, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 1.62, ancho 1.58, alto 1.44. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oliva oscuro, borde claro (Figs_2. 199‐200). Dorso del área ocular oscura (Fig_2. 199‐200). Esternón oliva, oscuro en los bordes (Fig_2. 201). Dorso del opistosoma anterior oliva, posterior claro con líneas olivas (Figs_2. 199‐200), oliva ventralmente con dos manchas plateadas a los costados de las hilanderas (Fig_2. 200‐201). Hilanderas laterales oliva, hilanderas medias pálidas (Fig_2. 201). Fémures y patelas olivas, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 199‐201). Órganos sexuales como en la descripción del género (Fig_2. 202). Macho. Desconocido. Distribución. Panamá, PILA, localidad tipo. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 140 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

GRÁFICO_2 12. Tantra spp. Heterogeneidad de los códigos de barra del cox1. Tantra ngabe n. sp. (n = 11), Tantra bugle n. sp. (n = 10), Tantra kuna n. sp. (n = 10), Tantra embera n. sp. (n = 22), Tantra wounaan n. sp. (n = 14), Tantra naso n. sp. (n = 12), Tantra bribri n. sp. (n = 11). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 141 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 142 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Baalzebub Coddington, 1986

Diagnosis. Los machos de Baalzebub se distinguen por el tegulum desarrollado y bulboso (Fig_2. 207); el brazo del tegulum que sostiene la apófisis media en ángulo ascendente hacia el conductor (Fig_2. 213) (Coddington, 1986); la apófisis media con dos puntas, una anterior y una posterior, separadas por una depresión escalonada aserrada en el borde (Fig_2. 213). Las hembras se distinguen por la placa epiginal en forma de triángulo (Fig_2. 218) con un hoyuelo central; y espermatecas unidas en las puntas (Fig_2. 218) (Coddington, 1986).

Baalzebub albonotatus (Petrunkevitch, 1930) Figuras_2 203‐208 Material examinado: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Sendero Zamudio, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°43’58.3” N; 82°17’04.8” O, 1360 m, 20.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col., código de voucher SFNQK8L001, códigos de preparados FML‐00835/36, ADN barcode SPIPA232‐10. Descripción. Ver Petrunkevitch (1930) y Coddington (1986). Distribución. Puerto Rico y Panamá.

Cox1. La divergencia genética entre especies varía entre 13.2‐16.2% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). Diagnosis por código de barras. G 30, A 42, G 90, C 126, T 183, A 219, T 273, G 285, G 288, C 402, A 420, T 477, C 513, A 531, C 547, C 556, T 558, G 579, A 627 (Gráf_2. 15).

Baalzebub sukia n. sp.

Figuras_2 209‐218 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col., código de voucher SAU1NCH032, códigos de Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 143 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae preparados FML‐00839/99, ADN barcode SPIPA425‐10. Paratipos: 2♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SAC1DGH006 y SAC1DFB011, códigos de preparados FML‐00900 y FML‐00736 y sin muestras de ADN y ADN barcode baaba254, respectivamente; 2♂, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SAU1NGH020 y SAD1NHL020, ADN barcode SPIPA424‐10 y SPIPA421‐10, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 3♀, mismos datos que el holotipo.

Etimología. El nombre específico refiere al nombre que recibe el chamán, aquella persona que se comunica con los espíritus, de los pueblos Naso, Ngäbe y Buglé. Diagnosis. Las hembras de Baalzebub sukia n. sp. se asemejan a las de Baalzebub baubo (ver Coddington, 1986: Figs. 183‐184) en la línea paralela al surco epigástrico que forman las caras anteriores de las espermatecas subtriangulares unidas en vista dorsal, en la placa epiginal triángular con un vértice aguzado que se extiende posteriormente y con el lado que descansa sobre el surco epigástrico del ancho del recorrido de los ductos de copulación (Fig_2. 218); pero se distinguen por la distribución y el número de las manchas claras sobre el opistosoma oscuro: una anterior central seguida por tres transversales, las laterales plateadas, en vista dorsal (Fig_2. 215), un par cercanas a las hilanderas (Fig_2. 216‐217) y cuatro chebrones posteriores (Figs_2. 217). Descripción. Macho (Holotipo: SAU1NCH032): Largo total 1.53. Prosoma: largo 0.86, ancho 0.72, alto 0.72. Esternón: largo 0.4, ancho 0.43. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.07, PME 0.07, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 1.2, ancho 0.99, alto 0.89. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oscuro (Figs_2. 209‐210). Dorso del área ocular oscura (Fig_2. 209‐210). Esternón oscuro, anaranjado entre los hoyuelos (Fig_2. 211). Opistosoma oscuro con una distribución de machas claras particular: una anterior central y tres transversales, las laterales plateadas (Fig_2. 215), un par cercanas a las hilanderas (Fig_2. 216‐217) y cuatro chebrones posteriores (Figs_2. 217). Hilanderas laterales oscuras, medias pálidas (Fig_2. 211). Fémures y Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 144 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae patelas oscuros, resto de las patas anaranjadas con manchas olivas en los ápices de los tarsos (Figs_2. 209‐211). Palpo como en la descripción del género (Fig_2. 212‐214).

FIGURAS_2 203‐208. Baalzebub albonotatus (Petrunkevitch) (♂, SFNQK8L001). 203‐208 Hábito general (203 dorsal, 204 lateral, 205 ventral). 206‐208 Palpo izquierdo (206 retrolateral, 207 ventral, 208 prolateral) (C = conductor; E = émbolo; MA = apófisis media; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 203‐208 0,2 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 145 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 209‐214. Baalzebub sukia n. sp. (♂, SAU1NCH032). 209‐211 Hábito general (209 dorsal, 210 lateral, 211 ventral). 212‐214 Palpo izquierdo del ♂ (212 retrolateral, 213 ventral, 214 prolateral) (C = conductor; E = émbolo; MA = apófisis media; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 209‐211, 0,5 mm; 212‐214, 0,2 mm.

Hembra (Paratipo: SAC1DGH006). Largo total 1.98. Prosoma: largo 0.77, ancho 0.64, alto 0.54. Esternón: largo 0.35, ancho 0.37. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.07, PME 0.07, AME‐PME 0.06. Opistosoma: largo 1.49, ancho 1.29, alto 1.39. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 215‐ 217). Fémures, patelas y tibias oscuros, resto de las patas anaranjadas con manchas Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 146 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae olivas en los ápices de los tarsos (Figs_2. 215‐217). Epigino con la placa epiginal triángular con un vértice aguzado que se extiende posteriormente y con el lado que descansa sobre el surco epigástrico del ancho del recorrido de los ductos de copulación (Fig_2. 218), y espermatecas subtriangulares unidas en ángulo recto formando una línea paralela al surco epigástrico en vista dorsal (Fig_2. 218). Distribución. Panamá, PILA, localidad tipo.

FIGURAS_2 215‐218. Baalzebub sukia n. sp. (♀, 215‐217 SAC1DGH006, 218 SAC1DFB011). 215‐217 Hábito general (215 dorsal, 216 lateral, 217 ventral). 218 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; EP = placa epiginal; S = espermatecas). Escalas: 215‐217, 0,5 mm; 218, 0,2 mm.

Cox1. La divergencia genética dentro de la especie varía entre 0.03‐0.4%, mientras que la divergencia nucleotídica entre las especies varía entre 15.8‐19.9% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 14. Diagnosis por código de barras. G 6, T 48, C 73, A 84, G 99, T 111, C 183, C 186, A 199, C 234, C 255, C 262, G 267, G 282, C 294, T 297, A 315, G 324, G 348, C 369, G 381, T 402, C 406, T 411, C 426, G 429, C 462, G 465, Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 147 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

GC 471‐472, C 477, G 480, G 519, C 555, T 561, C 570, G 576, C 603, G 618, C 645, G 648 (Gráf_2. 15).

Baalzebub jaibana n. sp. Figuras_2 219‐228 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Panamá, Parque Nacional Altos de Campana, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°41’00.4” N; 79°55’47.4” O, 895 m, 14‐19.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SCU1NEH011, códigos de preparados FML‐00716 y LNP‐00287, ADN barcode baas1108. Paratipos: 2♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SCD2NGL022 y SCU1NHR026, códigos de preparados FML‐00737 y LNP‐00284 y sin muestras de ADN y ADN barcode baas1116, respectivamente; ♂, mismos datos que el holotipo, código de voucher SCD2NGL023, ADN barcode SPIPA417‐10. Otro material examinado. PANAMÁ. 4♀, mismos datos que el holotipo.

Etimología. El nombre específico refiere al nombre que recibe el chamán del pueblo Emberá. Diagnosis. Las hembras de Baalzebub jaibana n. sp. se distinguen por la unión angular juxtapuesta de las puntas de las espermatecas ovales (Fig_2. 228), por la placa epiginal relativamente pequeña con el lado que descansa sobre el surco epigástrico más ancho que el recorrido de los ductos de copulación (Fig_2. 228). Descripción. Macho (Holotipo: SCU1NEH011): Largo total 1.26. Prosoma: largo 0.62, ancho 0.5, alto 0.48. Esternón: largo 0.28, ancho 0.29. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.06, PME 0.05, AME‐PME 0.07. Opistosoma: largo 0.84, ancho 0.81, alto 0.74. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma pálido salpicado con oliva en los laterales (Figs_2. 219‐220). Dorso del área ocular pálida (Fig_2. 219‐220). Esternón amarillo, oliva en los laterales de los hoyuelos (Fig_2. 221). Dorso del opistosoma oscuro con una mancha central anterior clara y una posterior plateada, ambas conectadas en la línea media (Figs_2. 219), ventralmente claro (221). Hilanderas pálidas (Fig_2. 211). Fémures y patelas pálidos, moteados con oliva, resto de las patas amarillas (Figs_2. 219‐221). Palpo como en la descripción del género (Fig_2. 222‐224). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 148 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 219‐224. Baalzebub jaibana n. sp. (♂, SCU1NEH011). 219‐221 Hábito general (219 dorsal, 220 lateral, 221 ventral). 222‐224 Palpo izquierdo (222 retrolateral, 223 ventral, 224 prolateral) (C = conductor; E = émbolo; MA = apófisis media; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 219‐221, 0,5 mm; 222‐224, 0,2 mm.

Hembra (Paratipo: SCD2NGL022). Largo total 1.12. Prosoma: largo 0.53, ancho 0.5, alto 0.42. Esternón: largo 0.28, ancho 0.30. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.07, PME 0.05, AME‐PME 0.05. Opistosoma: largo 0.9, ancho 0.78, alto 0.68. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 225‐227). Esternón amarillo (Fig_2. 227). Opistosoma oscuro ventralmente, con puntos claros Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 149 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

(226‐227). Epigino con la placa epiginal relativamente pequeña con el lado que descansa sobre el surco epigástrico del más ancho que el recorrido de los ductos de copulación (Fig_2. 228), vulva con espermatecas ovales juxtapuestas formando una angulo agudo entre las mismas (Fig_2. 228). Distribución. Panamá, PNAC, localidad tipo.

FIGURAS_2 225‐228. Baalzebub jaibana n. sp. (♀, 225‐227 SCD2NGL022, 228 SCU1NHR026). 225‐227 Hábito general (225 dorsal, 226 lateral, 227 ventral). 228 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; EP = placa epiginal; S = espermatecas). Escalas: 225‐227, 0,5 mm; 228, 0,2 mm.

Cox1. La divergencia genética dentro de la especie varía entre 0.1‐0.2%, mientras que la divergencia nucleotídica entre las especies varía entre 15.2‐19.9% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 14. Diagnosis por código de barras. A 3, C 42, G 48, C 63, G 72, T 111, A 129, A 144, G 195, C 219, T 240, AC 276‐277, C 283, C 286, T 288, C 291, C 297, A 300, G 309, G 330, G 336, T 411, T 417, A 435, G 480, G 510, C 538, Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 150 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

T 540, A 552, G 576, G 582, C 585, C 588, A 603, C 606, C 609, A 624, A 636, C 657 (Gráf_2. 15).

Baalzebub nele n. sp. Figuras_2 229‐232 Material Tipo: Holotipo: ♀ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFD1D8R013, códigos de preparados FML‐00735 y LNP‐00261, ADN barcode baaba060. Paratipos: 2♀, Provincia de Panamá, Parque Nacional Altos de Campana, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°41’00.4” N; 79°55’47.4” O, 895 m, 14‐19.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., códigos de vouchers SCD1DEL017 y SCD1DFR013, ADN barcode baaba255 y baaba252 respectivamente.

Etimología. El nombre específico refiere al nombre que recibe la persona especialista en el mundo espiritual del pueblo Kuna. Nele es aquel que tiene visiones, sueños y revelaciones que le ayudan a diagnosticar la enfermedad de un paciente. Sus prácticas incluyen ingestiones medicinales hechas de vegetales, sahumerios, cantos curativos y procedimientos psicológicos. Diagnosis. Las hembras de Baalzebub nele n. sp. se asemejan a B. baubo y B. sukia n. sp. en la placa epiginal del ancho del recorrido de los ductos de copulación, pero se distingue por el vértice posterior alargado y romo (Fig_2. 232), por el ángulo agudo que forman las espermatecas subtriangulares en vista dorsal (Fig_2. 232) y por la distribución y el número de manchas plateadas sobre el opistosoma oscuro: dos laterales grandes y dos centrales pequeñas en la parte anterior, dos laterales grandes en la línea media y una línea curva posterior (Fig_2. 229‐230). Descripción. Hembra (Holotipo: SFD1D8R013): Largo total 2.16. Prosoma: largo 0.89, ancho 0.87, alto 0.61. Esternón: largo 0.47, ancho 0.5. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.12, PME 0.09, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 1.32, ancho 1.39, alto 1.04. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oscuro (Figs_2. 229‐230). Dorso Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 151 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae del área ocular oscura (Fig_2. 229‐230). Esternón oliva, oscuro en los laterales (Fig_2. 231). Opistosoma oscuro con manchas plateadas: dos laterales grandes y dos centrales pequeñas en la parte anterior, dos laterales grandes en la línea media y una línea curva posterior (Fig_2. 229‐230). Hilanderas anteriores oscuras con un par de manchas plateadas a los laterales, posteriores pálidas (Fig_2. 231). Fémures y patelas olivas oscuros, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 229‐231). Epigino con la placa epiginal del ancho del recorrido de los ductos de copulación y la punta alargada y roma (Fig_2. 232), vulva con la unión angular de las puntas de las espermatecas subtriangulares (Fig_2. 232). Macho. Desconocido. Distribución. Panamá, RFF y PNAC.

FIGURAS_2 229‐232. Baalzebub nele n. sp. (♀, SFD1D8R013). 229‐231 Hábito general (229 dorsal, 230 lateral, 231 ventral). 232 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; EP = placa epiginal; S = espermatecas). Escalas: 229‐231, 0,5 mm; 232, 0,05 mm.

Cox1. Los especímenes de esta especie se distribuyeron en tres GMYC clusters, dos para PNAC y uno para RFF. Los GMYC clusters presentan una divergencia de 6.6% y Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 152 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae cada uno de ellos diverge del cluster de RFF entre 7.7‐8.1% respectivamente. La divergencia nucleotídica entre las especies varía entre 13.2‐18.9% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 14.. Diagnosis por código de barras. T 39, A 142, A 306, A 334, A 345, A 360, A 675 (Gráf_2. 15).

Discusión. Los tres GMYC clusters de Baalzebub nele n. sp. difieren en un alto porcentaje de divergencia genética con valores que varían entre 6.6‐8.1%. Sin embargo, como en el caso de Chthonos dobo n. sp., Naatlo chi n. sp., Theridiosoma goodnightorum y el de otras especies de arañas (Hedin, 2001; Paquin y Hedin, 2004; Ayoub et al., 2005; Garb y Gillespie, 2006; Johannesen et al., 2007; Stockman y Bond, 2008; Binford et al., 2008; Wang et al., 2008), la divergencia intraespecífica superan los valores encontrados para Baalzebub nele n. sp. Además, el nodo de donde surgen los tres GMYC clusters están muy bien soportado con un valor de bootstrap de 92 (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1) y los especímenes revisados no difieren en los órganos sexuales ni en la forma y la coloración del cuerpo. Por ello, se consideró prematuro nombrar a cada población como un nuevo taxón.

Baalzebub innatuledi n. sp. Figuras_2 233‐242 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Parque Internacional La Amistad, Cerro Picacho, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°53’25.8” N; 82°37’7.6” O, 2299 m, 12‐17.VI.2008, M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez col., código de voucher SAD1NGA015, códigos de preparados FML‐00718 y LNP‐00541, ADN barcode baaba104. Paratipos: ♀, mismos datos que el holotipo, códigos de vouchers SAC1NDA004 y SAD1NFL017, códigos de preparados FML‐00738 y FML‐00898 y ADN barcode baaba257 y sin muestras de ADN, respectivamente. Otro material examinado. PANAMÁ. 3♂ y 2♀, mismos datos que el holotipo.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 153 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Etimología. El nombre específico refiere al nombre que recibe la persona que se especializa en el estudio de las plantas y rocas, en el pueblo Kuna. Diagnosis. Las hembras de Baalzebub innatuledi n. sp. se asemejan a las de B. baubo y Baalzebub sukia n. sp. por la placa epiginal del ancho del recorrido de los ductos de copulación (Fig_2. 242), las espermatecas subtriangulares unidas en ángulo recto formando una línea paralela al surco epigástrico en vista dorsal (Fig_2. 242), pero se distinguen por la punta roma del vértice posterior de la placa epiginal (Fig_2. 242). Ambos sexos se distinguen de las demás especies por la distribución y el número de manchas del opistosoma (Figs_2. 233‐235, 239‐241): 6 manchas plateadas dorsales, el par anterior de mayor tamañoy los círculos medios más cercanos entre sí. Descripción. Macho (Holotipo: SAD1NGA015): Largo total 1.25. Prosoma: largo 0.68, ancho 0.61, alto 0.55. Esternón: largo 0.33, ancho 0.35. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.09, PME 0.07, AME‐PME 0.07. Opistosoma: largo 0.9, ancho 0.81, alto 0.67. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oscuro (Figs_2. 233‐234). Dorso del área ocular oscura (Fig_2. 233‐234). Esternón oliva, oscuro en los laterales (Fig_2. 235). Opistosoma oscuro con tres pares plateados dorsales, el anterior de mayor tamaño, los círculos medios más cercanos entre sí, y dos pares claros ventrales (Figs_2. 233‐235). Hilanderas anteriores oscuras, posteriores pálidas (Fig_2. 235). Fémures y patelas olivas, resto de las patas anaranjadas, todos los tarsos moteados con oliva oscuro (Figs_2. 233‐235). Palpo como en la descripción del género (Fig_2. 237‐238). Hembra (Paratipo: SAC1NDA004). Largo total 1.33. Prosoma: largo 0.6, ancho 0.53, alto 0.49. Esternón: largo 0.31, ancho 0.32. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.08, PME 0.07, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 0.89, ancho 0.8, alto 0.77. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 239‐241). Esternón oliva, bordes laterales oscuros y anchos (Fig_2. 241). Epigino con la placa epiginal del ancho del recorrido de los ductos de copulación y la punta roma (Fig_2. 242), espermatecas subtriangulares unidas en las puntas conformando una línea recta anteriormente paralela al surco epigástrico (Fig_2. 242). Distribución. Panamá, PILA, localidad tipo.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 154 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 233‐238. Baalzebub innaculedi n. sp. (♂, SAD1NGA015). 233‐235 Hábito general (233 dorsal, 234 lateral, 235 ventral). 236‐238 Palpo izquierdo (236 retrolateral, 237 ventral, 238 prolateral) (C = conductor; E = émbolo; MA = apófisis media; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 233‐235, 0,5 mm; 236‐238, 0,2 mm.

Cox1. La divergencia genética dentro de la especie varía entre 0.07‐0.4%, mientras que la divergencia nucleotídica con las otras especies varía entre 14.9‐18.6% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 14. Diagnosis por código de barras. A 3, T 39, C 58, C 69, G 72, T 87, C 114, G 121, A 138, A 142, C 162, A 201, G 213, T 216, G 261, C Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 155 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

283, C 291, G 303, G 309, C 318, C 444, C 453, C 456, T 468, G 482, A 493, CT 531‐532, AC 534‐535, T 537, G 543, C 580, T 582, C 597, T 615 (Gráf_2. 15)..

Discusión. Baalzebub innaculedi n. sp. y Baalzebub sukia n. sp. surgen como grupos hermanos en los análisis de ML con un soporte de bootstrap bajo de 49 (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1). Ambas son difíciles de diferenciar utilizando sus órganos sexuales (Figs_2. 212‐214, 218, 236‐238, 242). Sin embargo, se distinguen en la coloración dorsal del opistosoma (Figs_2. 209, 215, 235, 239) y el tamaño del cuerpo, su divergencia genética es del 16.5% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2), habitan en PILA localidad con una alta frecuencia de endemismos haplotipicos (ver Capítulo 1: Gráf_1. 5‐6). Estas evidencias justifican el acto nomenclatorial de los dos taxones.

FIGURAS_2 239‐242. Baalzebub innaculedi n. sp. (♀, SAC1NDA004) 239‐241 Hábito general (239 dorsal, 240 lateral, 241 ventral). 242 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; EP = placa epiginal; S = espermatecas). Escalas: 239, 241, 0,5 mm; 240, 0,2 mm; 242, 0,1 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 156 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

GRÁFICO_2 14. Baalzebub spp. Heterogeneidad de los códigos de barra del cox1. Baalzebub albonotatus (Petrunkevitch) (n = 1), Baalzebub sukia n. sp. (n = 5), Baalzebub jaibana n. sp. (n = 8), Baalzebub nele n. sp. (n = 2), Baalzebub innatuledi n. sp. (n = 6).

Baalzebub absoguedi n. sp. Figuras_2 243‐246 Material Tipo: Holotipo: ♀ de Panamá, Provincia de Coclé, Parque Nacional. G.D. Omar Torrijos Herrera, El Cope, Sendero Las Ranas, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING. 8°40’5.3” N; 80°35’33.6” O, 790 m, 3.VI.2008, F. Labarque col., código de voucher STNQ38L016, códigos de preparados FML‐00972‐973, sin muestras de ADN. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 157 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Etimología. El nombre específico refiere al nombre que recibe la persona que se especializa en los cantos que alejan a los espíritus responsables de las enfermedades, en el pueblo Kuna. Los conocimientos que estos especialistas poseen requieren de varios años de estudios con uno o más maestros.

FIGURAS_2 243‐246. Baalzebub absoguedi n. sp. (♀, STNQ38L016) 243‐246 Hábito general (243 dorsal, 244 lateral, 245 ventral). 246 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; EP = placa epiginal; S = espermatecas). Escalas: 243‐ 246, 0,2 mm.

Diagnosis. La hembra de Baalzebub absoguedi n. sp. se asemejan a las de Baalzebub nele n. sp. por las espermatecas subtriangulares formando un ángulo agudo en su unión (Fig_2. 246), pero se distingue por la placa epiginal con una punta roma constreñida y de base más ancha que el recorrido de los ductos de copulación (Fig_2. 246). Descripción. Hembra (Holotipo: STNQ38L016): Largo total 1.4. Prosoma: largo 0.7, ancho 0.6, alto 0.56. Esternón: largo 0.35, ancho 0.34. Diámetro y separación de Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 158 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae los ojos: AME 0.08, PME 0.07, AME‐PME 0.07. Opistosoma: largo 1.09, ancho 0.9, alto 0.85. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma oscuro (Figs_2. 243‐244). Dorso del área ocular oscuro (Fig_2. 243‐244). Esternón amarillento, oliva en los laterales (Fig_2. 245). Dorso del opistosoma oscuro con dos pares de manchas plateados, el anterior de mayor tamaño, las manchas posteriores más próximas entre sí (Fig_2. 243‐ 244), en vista ventral oscuro en la parte anterior, claro en la posterior (Figs_2. 245). Hilanderas anteriores oscuras con un par de manchas plateadas a sus lados, posteriores pálidas (Fig_2. 245). Fémures y patelas amarillentas, resto de las patas anaranjadas, todos los tarsos moteados con oliva (Figs_2. 243‐245). Placa epiginal con una punta roma constreñida que se extendiende posterioremente y con la base más ancha que el recorrido de los ductos de copulación (Fig_2. 246). Vulva con las espermatecas subtriangulares unidas en un ángulo agudo (Fig_2. 246). Macho. Desconocido. Distribución. Panamá, COPE, localidad tipo.

Baalzebub antomia n. sp. Figuras_2 247‐252 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Coclé, Parque Nacional G.D. Omar Torrijos Herrera, El Cope, Sendero Las Ranas, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING. 8°40’5.3” N; 80°35’33.6” O, 790 m, 3.VI.2008, F. Labarque col., código de voucher STNQ38L013, códigos de preparados FML‐00974‐975, sin muestras de ADN.

Etimología. El nombre específico refiere a la Madre del agua, ser mitológico del pueblo Emberá que vive bajo el agua y causa escalofríos y miedo en las personas. Diagnosis. El macho de Baalzebub antomia n. sp. se distingue por el tegulum abultado con crestas aserradas consecutivas en su cara prolateral (Figs_2. 250‐251). Descripción. Macho (Holotipo: STNQ38L013): Largo total 1.06. Prosoma: largo 0.55, ancho 0.5, alto 0.5. Esternón: largo 0.27, ancho 0.3. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.07, PME 0.06, AME‐PME 0.06. Opistosoma: largo 0.79, ancho 0.63, alto 0.61. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma pálido (Figs_2. 247‐248). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 159 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 247‐252. Baalzebub antomia n. sp. (♂, STNQ38L013). 247‐249 Hábito general (247 dorsal, 248 lateral, 249 ventral). 250‐252 Palpo izquierdo (250 retrolateral, 251 ventral, 252 prolateral) [Flechas negras a crestas aserradas] (C = conductor; E = émbolo; MA = apófisis media; T = tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 247‐249, 0,2 mm; 250‐252, 0,1 mm.

Dorso del área ocular pálido (Fig_2. 247‐248). Esternón oliva claro (Fig_2. 249). Dorso del opistosoma oliva claro, liso (Fig_2. 247‐248), ventralmente oliva con puntos claros (Figs_2. 249). Hilanderas laterales oliva, medias pálidas (Fig_2. 249). Fémures y patelas Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 160 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae pálidos, resto de las patas anaranjadas (Figs_2. 247‐249). Palpo con el tegulum abultado lateralmente con crestas aserradas consecutivas (Figs_2. 250‐251), resto como en la descripción del género (Figs_2. 250‐252). Hembra. Desconocida. Distribución. Panamá, COPE, localidad tipo.

Epilineutes Coddington, 1986

Diagnosis. Los machos de Epilineutes poseen una espina en la apófisis media que se proyecta dorsalmente (Fig_2. 257), una la apófisis embólica media alargada y un conductor curvado abruptamente (Figs_2. 256, 258) (Coddington, 1986). Las hembras se distinguen por una depresión en el borde del epigino y por un escapo pequeño romo o aguzado (Fig_2. 262).

Epilineutes globosus Coddington, 1986 Figuras_2 253‐262 Material examinado: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFU1N8A034, códigos de preparados FML‐00689 y LNP‐00272, ADN barcode epigl064. ♀, mismos datos que el especímen anterior, código de voucher SFD1D8D007, códigos de preparados FML‐00741 y LNP‐00278 y ADN barcode epigl055. 22♂ y 17♀, mismos datos que el especímen anterior; 2♂ y ♀, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 21‐ 24.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col. Descripción. Ver Coddington, 1986. Distribución. Desde México hasta Brasil.

Cox1. La divergencia genética dentro de la especie varía entre 0.06‐0.15% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 16. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 161 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 162 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Diagnosis por código de barras. G 23, G 36, T 39, T 42, A 55, G 72, A 87, C 172, T 174, G 228, A 231, G 279, A 283, T 315, G 330, A 334, C 336, T 363, T 368, C 375, T 386, A 450, G 465, TAGA 471 474, C 499, C 517, T 519, A 529, C 532, A 555, A 564, T 591, C 640, T 642, G 648 (Gráf_2. 17).

FIGURAS_2 253‐258. Epilineutes globosus Coddington (♂, SFU1N8A034). 253‐255 Hábito general (253 dorsal, 254 lateral, 255 ventral). 256‐258 Palpo izquierdo (256 retrolateral, 257 ventral, 258 prolateral). (C = conductor; MA = apófisis media; T = tegulum; TS = dentículos del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 253‐255, 0,5 mm; 256‐258, 0,2 mm. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 163 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 259‐262. Epilineutes globosus Coddington (♀, SFD1D8D007). 259‐261 Hábito general (259 dorsal, 260 lateral, 261 ventral). 262 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; S = espermatecas; SC = escapo). Escalas: 259‐ 261, 0,5 mm; 262, 0,2 mm.

GRÁFICO_2 16. Heterogeneidad de los códigos de barra del cox1. Epilineutes globosus Coddington (n = 10).

Wendilgarda Keyserling, 1886

Diagnosis. Wendilgada se reconoce por el color anaranjado‐amarillento del prosoma y del opistosoma (Figs_2. 263‐265, 269‐271). Los machos se distinguen por la apófisis embólica media que se proyecta desde del conductor y descanza sobre la cara prolateral del mismo (Fig_2. 267‐268). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 164 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 165 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Las hembras por los ductos de copulación enrollados de manera compleja en la unión con las espermatecas (Coddington, 1986).

Wendilgarda clara Keyserling, 1886 Figuras_2 263‐272 Material examinado: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, 1 hectárea inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 7‐12.VI.2007, M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez col., código de voucher SFD2NBL020, códigos de preparados FML‐00717 y LNP‐00274, ADN barcode wens1057; ♀, mismos datos que el especímen anterior, código de voucher SFD1NBL018, códigos de preparados FML‐00734 y LNP‐00264 y ADN barcode wens1068; 3♂, mismos datos que el espécimen anterior; ♂, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Quebrada Honda, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°45’00.3” N; 82°14’20.7” O, 1135 m, 21‐24.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col. Descripción. Ver Coddington, 1986. Distribución. Antillas Menores y desde Guatemala hasta Brasil.

Cox1. La divergencia genética dentro de la especie varía entre 0.1‐0.2% (ver Capítulo 1: Gráf_1. 2). La heterogeneidad presente entre las secuencias de ADN de esta especie se muestra en el Gráfico_2. 18.

GRÁFICO_2 18. Heterogeneidad de los códigos de barra del cox1. Wendilgarda clara Keyserling (n = 6).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 166 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 263‐268. Wendilgarda clara Keyserling (♂, SFD2NBL020). 263‐265 Hábito general (263 dorsal, 264 lateral, 265 ventral). 266‐268 Palpo izquierdo (266 retrolateral, 267 ventral, 268 prolateral) (C = conductor; EA = apófisis embólica; MA = apófisis media; T = tegulum; TS = dentículos del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 263‐ 265, 0,5 mm; 266‐268, 0,2 mm.

Diagnosis por código de barras. C 42, T 46, G 72, C 105, T 108, A 144, C 162, A 172, G 183, G 198, C 201, G 213, G 279, C 283, G 288, A 306, C 315, G 324, G 336, A 352, A 360, G 375, T 411, G 429, GGTA471‐474, G 492, G 519, C 538, G 552, A 555, G Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 167 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

558, G 561, A 573, C 580, T 582, T 591, A 624, A 630, A 636, C 652, T 654, T 669 (Gráf_2. 17).

FIGURAS_2 269‐272. Wendilgarda clara Keyserling (♀, SFD1NBL018). 269‐271 Hábito general (269 dorsal, 270 lateral, 271 ventral). 272 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; S = espermatecas, SC = escapo). Escalas: 269‐ 271, 0,5 mm; 272, 0,2 mm.

Jogo n. gen. Especie tipo. Jogo una n. sp.

Etimología. El nombre genérico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa araña. El género de la palabra es femenino. Diagnosis. Los machos de Jogo n. gen. se asemejan a los de Wendilgarda y Epilineutes por los dentículos del tegulum agrupados en un parche elevado que se encuentra por debajo de la porción distal del conductor (Figs_2. 276‐277), y a los Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 168 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae machos de Wendilgarda por la apófisis embólica media que se proyecta desde el conductor y que descansa sobre la cara prolateral del mismo (Figs_2. 273‐275) y por la apófisis media rectangular con dentículos en la cara ventral (Figs_2. 277‐278). Los machos de Jogo n. gen. se distinguen de los machos de los otros géneros de Theridiosomatidae por las proyección dorsal de la apófisis media en vista prolateral (Figs_2. 278). Las hembras de Jogo n. gen. se asemejan a las hembras de Epilineutes y Wendilgarda por el escapo del epigino (Fig_2. 282). Las hembras de Jogo n. gen. se distinguen de las hembras de los otros géneros de Theridiosomatidae por el recorrido de los ductos de copulación, paralelos al surco epigástrico, que comienza en el borde anterior de las alas laterales de la vulva y culmina en las espermatecas (Fig_2. 282). Descripción. Largo total entre 1.12‐1.72. Prosoma pálido con el área ocular oscura en vista dorsal. Ojos relativamente iguales, AME y PME juxtapuestos. Esternón liso y plano, oscuro en los laterales. Patas cortas o largas, fémures y patelas olivas, resto de las patas anaranjadas, todos los tarsos moteados con oliva oscuro; metatarsos más cortos que las tibias; fórmula: 1243. Tibias III‐IV con tricobotrias en tres o cuatro hileras, más largas que el diámetro de las tibias, diagnóstico de la familia Theridiosomatidae. Opistosoma ovalado y oscuro, con tres pares de machas plateadas dos en la línea media y uno en los laterales, con una línea plateada transversal posterior en vista dorsal. Lateralmente con una línea plateada longitudinal y oscuro en vista ventral. Hilanderas pálidas. Epigino con escapo. Recorrido de los ductos de copulación, paralelos al surco epigástrico, que comienza en el borde anterior de las alas laterales de la vulva y culmina en las espermatecas. Palpo con la apófisis media grande, plana y rectangular, con una proyección dorsal y una ventral, con la cara ventral con dentículos. Dentículos del tegulum en un parche elevado. Apófisis embólica media se proyecta desde el conductor y descansa sobre la cara prolateral del mismo. Discusión. El género Jogo n. gen. tiene los caracteres que definen a la subfamilia Theridiosomatinae (Coddington, 1986): tegulum con una zona denticulada que se encuentra por debajo de la porción distal del conductor (Figs_2. 193, 256, 266, 277), una serie de setas cortas sobre la unión del cymbium con la lámina del cymbium (no ilustrado), apófisis media alargada (Figs_2. 174, 213, 257, 267, 277), ductos de Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 169 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae copulación que se incertan a las espermatecas en su cara anterior (Fig_2. 148, 246, 262, 272, 282). Otros caracteres que definen a la subfamilia como el recorrido del ducto y del reservorio espermático del tegulum, y la forma de los sacos de huevos no se observaron. Los dos primeros porque la técnica para observarlos es irreversible y solo se cuenta con el material tipo; el tercero por falta de material. Dentro de Theridiosomatinae, Jogo n. gen. posee algunos de los caracteres que definen el clado de Baalzebub, Wendilgarda y Epilineutes: la división embólica dividida en pequeños elementos y la apófisis media con la cara apical deprimida (Figs_2. 251‐252, 257‐258, 267‐268, 277‐278). Sin embargo, Jogo n. gen. posee un atrio donde se aloja la vulva (Fig_2. 282), en lugar de tener una vulva con pliegues laterales (Figs_2. 246, 262, 272), otro de los caracteres que soportan el clado mencionado (Coddington, 1986). Wendilgarda y Epilineutes son considerados grupos hermanos por los siguientes caracteres (Coddington, 1986), que también comparten con Jogo n. gen.: el escapo del epigino (Figs_2. 262, 272, 282), la apófisis media rectangular y los dentículos en su cara ventral (Figs_2. 257, 267, 277). Los machos de Jogo n. gen. y de Wendilgarda proyectan la apófisis embólica media desde el conductor, la cual descansa sobre la cara prolateral del mismo (Figs_2. 273, 275). Sin embargo, Jogo n. gen. se distingue de Wendilgarda por tener los PME juxtapuestos como Theridiosoma, Baalzebub y Epilineutes (Figs_2. 189, 247, 253, 273), en lugar de estar separados por más del largo de su diámetro (Fig_2. 263); y por la coloración oscura del opistosoma con parches plateados y de las patas que se oscurecen distalmente (Fig_2. 273), en lugar de tener el cuerpo de un color anaranjado uniforme (Fig_2. 263). Estas evidencias sugieren que Jogo n. gen. está más relacionado con Wendilgarda que con los otros géneros de Theridiosomatidae, dada la cantidad de los caracteres que comparten. A su vez, los caracteres que distinguen a Jogo n. gen. de Wendilgarda como la forma de la genitalia femenina, la disposición de los PME y la coloración general del cuerpo, también están presentes en Theridiosoma, Baalzebub y Epilineutes. Por lo tanto, Jogo n. gen. podría ser el grupo hermano de Wendilgarda y, este clado, estar relacionado con Epilineutes. La hipótesis sugerida dentro de Theridiosomatinae basada en los análisis morfológicos de Coddington (1986) es la siguiente (Theridiosoma (Baalzebub (Epilineutes (Wendilgarda Jogo n. gen.)))). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 170 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

Distribución. Jogo n. gen. se conoce solo por la especie tipo colectada en Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna.

Jogo una n. sp. Figuras_2 273‐282 Material Tipo: Holotipo: ♂ de Panamá, Provincia de Chiriquí, Reserva Forestal Fortuna, Sendero Zamudio, muestras no cuantitativas, inventario PANCODING, 8°43’58.3” N; 82°17’04.8” O, 1360 m, 20.VI.2008, L. Piacentini, F. Labarque col., código de voucher SFNQK8L067, códigos de preparados FML‐00956/7, sin muestras de ADN. Paratipo: ♀, mismos datos que el holotipo, código de voucher SFNQK8L035, códigos de preparados FML‐00954/5, sin muestras de ADN.

Etimología. El nombre específico es una palabra de la lengua Ngäbe, uno de los pueblos originarios de Panamá, que significa completo o madurar (Üna). Hace referencia a que los especímenes de esta especie fueron encontrados antes de finalizar la revisión taxonómica de la familia Theridiosomatidae. Diagnosis. Los machos de Jogo una n. sp. se distinguen por la apófisis media rectangular con la cara ventral con dentículos conspicuos, y una proyección dorsal y otra ventral (Figs_2. 277‐278). Las hembras se distinguen por los ductos de copulación que recorren las alas laterales de la vulva de manera paralela al surco epigástrico (Fig_2. 282). Descripción. Macho (Holotipo: SFNQK8L067): Largo total 1.12. Prosoma: largo 0.62, ancho 0.51, alto 0.49. Esternón: largo 0.28, ancho 0.33. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.07, PME 0.06, AME‐PME 0.07. Opistosoma: largo 0.76, ancho 0.64, alto 0.48. Fórmula de las patas: 1243. Dorso del prosoma pálido (Figs_2. 273‐274). Dorso del área ocular oscura (Fig_2. 273‐274). Esternón pálido, oscuro en los laterales (Fig_2. 275). Dorso del opistosoma oscuro con tres pares de machas plateadas, dos en la línea media y uno en los laterales, con una línea plateada transversal posterior (Fig_2. 272), lateralmente con una línea plateada longitudinal (Fig_2. 274), oscuro en vista ventral (Fig_2. 275).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 171 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae

FIGURAS_2 273‐278. Jogo una n. sp. (♂, SFNQK8L067). 273‐275 Hábito general (273 dorsal, 274 lateral, 275 ventral). 276‐278 Palpo izquierdo (276 retrolateral, 277 ventral, 278 prolateral) (C = conductor; EA = apófisis embólica; MA = apófisis media; P = paracymbium; T = tegulum; TS = dentículos del tegulum; ST = subtegulum). Escalas: 273‐275, 0,2 mm; 276‐278, 0,1 mm.

Hilanderas pálidas (Fig_2. 275). Fémures y patelas olivas, resto de las patas anaranjadas, todos los tarsos moteados con oliva oscuro (Figs_2. 273‐275). Palpo con la apófisis media grande, plana y rectangular, con una proyección dorsal y otra ventral, y dentículos conspicuos en la cara ventral (Figs_2. 277‐278). Dentículos del tegulum Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 172 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 2. Revisión de Theirdiosomatidae elvados en un parche (Figs_2. 276‐277). La apófisis embólica media descansa sobre la cara prolateral del conductor (Figs_2. 273‐275).

FIGURAS_2 279‐282. Jogo una n. sp. (♀, SFNQK8L035). 279‐281 Hábito general (279 dorsal, 280 lateral, 281 ventral). 282 Epigino, dorsal (CD = ductos de copulación; LL = alas laterales de la vulva; S = espermatecas, SC = escapo). Escalas: 279‐281, 0,5 mm; 282, 0,1 mm.

Hembra (Paratipo: SFNQK8L035). Largo total 1.72. Prosoma: largo 0.73, ancho 0.64, alto 0.6. Esternón: largo 0.38, ancho 0.4. Diámetro y separación de los ojos: AME 0.07, PME 0.07, AME‐PME 0.08. Opistosoma: largo 1.31, ancho 1.17, alto 0.96. Fórmula de las patas: 1243. Coloración general del cuerpo como el macho (Figs_2. 279‐281). Epigino con escapo (Fig_2. 282). Ductos de copulación recorriendo las alas laterales de la vulva paralelos al surco epigástrico (Fig_2. 282).

Distribución. Panamá, RFF, localidad tipo.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 173 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae

CAPÍTULO 3: ¿DE QUIÉN SON ESTOS HUEVOS? ASIGNACIÓN ESPECÍFICA (IDENTIFICACIÓN) DE ARAÑAS THERIDIOSOMATIDAS MEDIANTE TÉCNICAS DE CÓDIGO DE BARRAS DE ADN.

Taxonomía

El grupo monofilético de las Symphytognathoidea (Theridiosomatidae (Mysmenidae (Synaphridae (Anapidae + Symphytognathidae)))) está soportado, entre otros caracteres morfológicos y comportamentales, por los sacos de huevos que se encuentran suspendidos por dos hilos de seda durante su construcción (Griswold et al., 1998; Griswold y Yan, 2003; Lopardo et al., 2010). Este comportamiento se ha observado en las especies de los géneros basales de Theridiosomatidae: Epeirotypus, Naatlo, Plato y Ogulnius (ver abajo), y de algunos géneros de Anapidae (Anapis y Anapisona), Mysmenidae (Mysmena y Maymena), y Symphytognathidae (Patu). Además, estas especies también retienen sus sacos de huevos cerca o sobre el centro de sus telas (Griswold et al., 1998; Griswold y Yan, 2003). Las arañas de la familia Theridiosomatidae construyen diversos sacos de huevos que, generalmente, son característicos de cada género. Las arañas de Epeirotypus, Naatlo y Ogulnius, construyen varios tipos de sacos de huevos suspendidos por dos hilos de seda. Mientras que los de Epeirotypus y Naatlo tiene forma de pera y carecen de una sutura (ver Theridiosoma), los de Ogulnius pueden ser también pentagonales o hexagonales. Hasta el momento se desconoce la forma de los sacos de huevos Chthonos, aunque Eberhard y Coddington sugirieron que los mismos deberían ser cúbicos (Coddington, 1986). Los sacos de huevos de Plato, grupo hermano de Chthonos, son cúbicos y están suspendidos por un hilo de seda desde uno de sus vértices. En el lado opuesto de este vértice los sacos cúbicos tienen un remanente de seda que sugiere que durante su construcción se encuentran suspendidos desde ambos lados. Eberhard y Coddington encontraron sacos de huevos cúbicos aislados, que no estaban asociados a telas ni a arañas, y más pequeños que los de Plato en lugares donde habitan especies de Chthonos (Coddington, 1986), y esta es la base de la identificación tentativa de las ootecas de Chthonos. Las arañas de Wendilgarda construyen sacos estriados y acartonados, con una punta proximal y otra distal, y están Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 174 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae suspendidos solo por un hilo de seda. En los géneros Epilineutes, Baalzebub y Theridiosoma las arañas construyen sacos de huevos esféricos o con forma de pera, con una textura acartonada o correosa, alejados de la tela, con una sutura en el extremo proximal unida al único hilo de suspensión (Coddington, 1986). Hasta el momento se han registrado los sacos de huevos de las siguientes especies: Plato troglodita, Plato brunet, Epeirotypus brevipes, Epeirotypus chavarria, Naatlo splendida, Naatlo fauna, Ogulnius gloriae, Theridiosoma gemmosum, Baalzebub albinotatus, Epilineutes globosus, Wendilgarda mexicana y Wendilgarda clara (Coddington, 1986).

Todo preparado

Una vez calibrado el sistema que involucra los especímenes determinados a través de la taxonomía clásica y sus respectivos códigos de barras del ADN, se espera que el mismo permita identificaciones rápidas de especímenes o de parte de ellos (p.ej., huevos, formas juveniles, pequeños fragmentos de un animal). Para testear esta hipótesis se utilizaron la base de datos molecular obtenida en el Capítulo 1 y las descripciones taxonómicas del Capítulo 2 de las especies de Theridiosomatidae, para vincular los diferentes tipos de sacos de huevos u ootecas a su especie particular.

Material examinado

Al material examinado en los Capítulos 1 y 2 (3438 especímenes distribuidos en 33 especies/morfo‐especies), se le agregaron 110 sacos de huevos presumiblemente pertenecientes a cinco géneros distintos (Anexo_3 1). Las ootecas fueron identificadas a diferentes géneros siguiendo el trabajo taxonómico de Coddington (1986). Se obtuvieron 37 secuencias de ADN de 41 sacos de huevos utilizando el Protocolo UB (Anexo_3 1).

Análisis de secuencias de ADN Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 175 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae

Se realizó la extracción de ADN de huevos de 41 ootecas (Anexo_3 1). Las secuencias de mejor calidad fueron utilizadas para los análisis filogenéticos: 37 fueron obtenidas mediante el Protocolo UB (Anexo_3 2). Las secuencias de cox1 anteriores más las utilizadas en el Capítulo 1 (245 secuencias) se colapsaron a haplotipos, obteniendo un número final de 107. También se agregaron a la matriz las cuatro secuencias adicionales de GenBank de Theridiosomatidae (HM030436, HM030431, GU456915) y Mysmenidae (GU456876) utilizadas en los análisis del Capítulo 1. Siete de las secuencias obtenidas de los sacos de huevos resultaron altamente divergentes (32‐54%) y se separaron para realizar otros análisis (ver Parasitoides). Se realizaron los mismos análisis de máxima verosimilud (ML) con RAxML que en el Capítulo 1. Se obtuvieron 48 GMYC clusters utilizando un umbral de tiempo único (‐0.01149) y 50 clusters utilizando múltiples umbrales (‐0.01149; ‐0.003351). No se encontraron diferencias significativas entre dichos análisis (P > 0.66). El mejor filograma de ML obtenido de los haplotipos de cox1 de Theridiosomatidae, con sus valores de soporte (bootstrap) y los GMYC clusters recuperados según un umbral de tiempo único se muestran en la Gráfico_3 1.

Identificación por GMYC clusters

Se identificaron los sacos de huevos de 14 especies distribuidos en seis géneros: dos de especies ya conocidas, ocho de especies nuevas descriptas en el Capítulo 2 y cuatro de potenciales especies nuevas no presentes entre las muestras de adultos (Gráfs_3. 1; Anexo_3 1). Los mismos se describen a continuación. Los sacos de huevos cúbicos se vincularon con la especie Chthonos dobo (Fig_3. 1). Tanto los especímenes como sus ootecas se encontraron en las localidades de PILA y RFF. Los sacos cúbicos de Chthonos dobo tienen en uno de sus vértices un hilo de suspensión, en el vértice opuesto una marca de seda que indicaría que durante su construcción estuvieron suspendidos por más de un hilo, y dos huevos en su interior (Fig_3. 2‐3). Se encontraron ootecas con uno de sus vértices abierto (Fig_3. 3), presumiblemente por donde saldrían los juveniles. Otra evidencia que asocia las ootecas cúbicas con el género Chthonos, además de los datos moleculares, son los estadios juveniles avanzados encontrados en ellas. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 176 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae

GRÁFICO_3 1. Mejor filograma de Máxima Verosimilitud obtenido de 100 réplicas con RAxML. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters compuestos solo por ootecas; el color anaranjado a las secuencias de las ootecas; los círculos blancos en los nodos a los soportes de bootstrap, basados en 1000 matrices re‐muestreadas. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 177 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae

Estos juveniles poseen una de las características diagnósticas de Chthonos: los dos primeros pares de patas con hileras laterales de macrosetas (Fig_3. 5). Es la primera vez que se confirma la suposición de Coddington (1986) de que Chthonos construye sacos de huevos cúbicos como su grupo hermano, el género Plato.

FIGURAS_3 1‐6. Ootecas y juveniles. 1‐4. Chthonos dobo (1 SAEC004; 2‐4 SAEC006) 5‐6. Ogulnius gertschi Archer (SAER002). 1‐2, 5 Vista general. 3‐4, 6 Detalle. [3, Flecha indica apertura de la ooteca; 4, Las flechas indican hileras de macrosetas] (hS = hilo de suspensión). Escalas: 1‐2, 5, 1 mm; 3, 6, 0.5 mm; 4, 0.25 mm.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 178 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae

Las ootecas determinadas para el género Ogulnius de PILA se asociaron con Ogulnius gertschi, especie encontrada en dicha localidad; y el de RFF formó su propio cluster, al que se llamó Ogulnius sp. A (ver ogu01150 en Gráf_3. 1). La divergencia genética entre ambas especies varía entre 10.2‐10.5%, mientras que la divergencia de ambas con Ogulnius zbodro varía entre 19.9‐20.8% y 16.9%, respectivamente. La divergencia genética intraespecífica de Ogulnius gertschi varía entre 0.1‐0.7%. Los sacos de huevos de estas especies son hexagonales con las aristas del eje longitudinal extendidas, de las cuales salen los hilos de seda que lo sostienen a la vegetación (Fig_3. 5‐6). Es la primera vez que se describen las ootecas de Ogulnius gertschi. La identificación mediante el modelo GMYC discriminó ocho clusters de sacos de huevos pertenecientes a Tantra, todos ellos similares entre sí en su morfología. Las ootecas se vincularon con las especies de T. bribri, T. bugle, T. embera, T. naso, T. ngabe y T. wounaan. Tanto los sacos de huevos como los adultos de las especies respectivas se encontraron en las mismas localidades. Los dos clusters formados solo por ootecas fueron denominados Tantra sp. A y Tantra sp. B (ver the01151 y the03153 respectivamente, Gráf_3. 1). La divergencia nucleotídica interespecífica de Tantra sp. A con Tantra embera varía entre 9.4‐9.9%, y la de Tantra sp. B con Tantra kuna es del 11.5%. Los sacos de huevo de Tantra no tienen diferencias morfológicas con los de Theridiosoma (Coddington, 1986: fig. 158). Las ootecas de Tantra (Figs_3. 7‐8) son esféricas y correosas, con una sutura definida en el extremo proximal unida por un solo hilo de suspensión. Sin embargo, la ooteca de Tantra ngabe (Figs_3. 9) es única entre las demás: de textura lisa, de color blanco y con una sutura poco definida. El GMYC cluster formado por el saco de huevos the05155 resultó grupo hermano de Epilineutes globosus con un soporte de bootstrap de 60 (Gráf_3. 1) y una divergencia interespecífica del 13.8%. Basados en estas evidencias, se nombró al cluster como Epilineutes sp. A. La ooteca es esférica, acartonada y con una sutura en el extremo proximal donde se une al hilo de suspensión (Fig_3. 10) y difiere de los sacos de huevos de Epilineutes globosus que son turgentes (Coddington, 1986: fig. 193). El saco de huevos del género Wendilgarda se vinculó a la especie W. clara, todos colectados en RFF (Anexo_3 1). Los sacos de huevos tienen dos extensiones que Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 179 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae se aguzan en dirección longitudinal con una de ellas unida al hilo de suspensión (Fig_3. 11) y son hexagonales en vista apical (Fig_3. 12).

FIGURAS_3 7‐12. Ootecas. 7 Tantra wounaan (SAES004). 8 Tantra embera (SCES001). 9 Tantra ngabe (SFES004). 10 Epilineutes sp. A (SFES005). 11‐12 Wendilgarda clara (SFEF001). 7, 9‐11 Vista general. 8, 12 Vista apical. (hS = hilo de suspensión; Su = sutura). Escalas: 11, 2 mm; 7‐10, 12, 1 mm.

La ooteca epeX1149 (Gráf_3. 1) se vincularon con Baalzebub sukia con una divergencia intraespecífica que varía entre 0.3‐0.8%. El saco de huevos es similar a los Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 180 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae encontrados para Baalzebub (Coddington, 1986: fig. 166), tiene forma de pera, es acartonado y está suspendido por un hilo de seda separado del resto del saco por una sutura (Fig_3. 13).

Parasitoides

Uno de los depredadores más conocidos de las arañas son las avispas parasitarias que pueden ser ectoparásitos (se alimentan de los fluidos del cuerpo de forma externa) o endoparásitos (se alimentan de los huevos o de los estadios juveniles dentro de los huevos) (Foelix, 2011). Las larvas de los endoparásitos que consumen los huevos de las arañas son clasificadas como parasitoides. Para parasitar un saco de huevos, las avispas insertan su ovopositor a través de la pared del saco y ponen sus huevos, los que se desarrollan en larvas y se alimentan de los primeros (Cobb y Cobb, 2004). Durante el muestreo de los sacos de huevos, se observaron 17 ejemplares con unas perforaciones particulares, presumiblemente de avispas parasitoides. Las ootecas de Tantra fueron perforadas al lado de la sutura o en la línea media (Figs_3. 14‐16) y los de Ogulnius en uno de los extremos unidos a uno de los hilos de suspensión (Figs_3. 17‐18). Se obtuvieron siete secuencias de ADN de 11 sacos de huevos procesados, las cuales resultaron altamente divergentes (32‐54%) con respecto a las demás secuencias de Theridiosomatidae analizadas. Se realizaron búsquedas en las bases de datos de genes disponibles en la red para identificar los organismos de los cuales provienen dichas secuencias. Los resultados de BOLD y BLAST1 fueron congruentes entre sí (Tabla_3. 1). En ambos buscadores las secuencias obtenidas de los sacos de huevos perforados de Tantra resultaron ser similares en un 80‐83% con secuencias de especies de Scelionidae (Hymenoptera). Del mismo modo, las secuencias de los sacos de Ogulnius resultaron ser similares en un 87% con secuencias de especies Ichneumonidae (Hymenoptera). Precisamente, las familias Scelionidae e Ichneumonidae se especializan en parasitar ootecas de arañas (Austin, 1984; Owen et al., 1981).

1 Basic Local Alignment Search Tool, http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 181 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae

FIGURAS_3 13‐18. Ootecas. 13 Baalzebub sukia (SAEB001). 14‐16 Tantra (14 SAES048; 15‐16 SAES049), parasitado por Scelionidae (avispas). 17‐18 Ogulnius (SAER004), parasitado por Ichneumonidae (avispas). 13‐15, 17 Vista general. 16, 18 Detalle. (hS = hilo de suspensión; pH = perforación por Hymenoptera; Su = sutura). Escalas: 15, 17, 1 mm; 14, 16, 0.5 mm; 13, 18, 0.25 mm.

Las determinaciones de los parasitoides no fueron precisas ya que las bases de datos aún se encuentran incompletas. Sin embargo, estos resultados nos brindan datos sobre la historia natural de Theridiosomatidae y sus parasitoides, sugieren un punto de partida para estudiar las relaciones co‐evolutivas entre ellos y promueven la Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 182 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae secuenciación de los códigos de barra de ambos taxa para generar una base de datos lo más completa posible.

Tabla_3 1. Porcentaje de similitud nucleotídica entre las secuencias obtenidas de los huevos de Ogulnius Tantra , y la base de datos de secuencias de ADN de BOLD y BLAST. Ambas secuencias de Theridiosomatidae son similares en, al menos, un 80% con individuos de Hymenoptera, especialmente de las familias Ichneumonidae y Scelionidae. Género Código Base de Orden Familia Género Porcentaje Araña Secuencia Datos Similitud Ogulnius ogu04126 BOLD Hymenoptera Ichneumonidae Encrateola 87.24 Acrolyta 87.16 BLAST Ichneumonidae Encrateola 88 Acrolyta 87 Tantra the48132 BOLD Hymenoptera Scelionidae Gryon 85.71 Idris 85.71 Baeus 82.98 BLAST Scelionidae Telenomus 82

Filogenia

La filogenia de máxima verosimilitud del Capítulo 1 (Gráf_1. 1) es similar, pero no idéntica, a la de este Capítulo (Gráf_3. 1). El cluster de Epeirotypus jane surge como grupo hermano del clado Naatlo‐Epeirotypus (Gráf_3. 1) resolviendo la tricotomía obtenida en el Capítulo 1 (Gráf_1. 1). Epilineutes surge como grupo hermano de Theridiosoma goodnigthorum con un bajo soporte, y ambos como grupo hermano de Tantra con un soporte medio (Gráf_3. 1), mientras que la relación de estos grupos en el Capítulo 1 era la siguiente: (Theridiosoma goodnigthorum (Epilineutes globosus (Tantra))). Los valores de boostrap también difieren entre ambas filogenias. En el Gráfico_3. 1 estos valores aumentan en los nodos cercanos a los terminales y disminuyen en los que están alejados de ellos, al compararlos con el Gráfico_1 1. Por ejemplo, los nodos internos del clado de Baalzebub aumentan, el clado formado por Ogulninae, Platoninae y Epeirotypinae disminuye a la mitad de su valor de soporte y, en especial, el soporte de boostrap del nodo de Tantra aumenta al doble (Gráf_1. 1; Gráf_3. 1). Como se sugirió en el Capítulo 2, para obtener una resolución más robusta de la filogenia sería ideal realizar un análisis cladístico más inclusivo. Estos resultados reflejan la fragilidad de utilizar solamente el gen cox1 para resolver una filogenia, ya Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 183 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 3. Ootecas de Theridiosomatidae que el soporte de los rangos taxonómicos altos disminuye. Sin embargo, al aumentar el número de los especímenes secuenciados aumenta el soporte de los nodos de las especies y la resolución de la tipología del mejor árbol. Los resultados de este Capítulo aportan evidencias comportamentales a la relación sugerida en el Capítulo 2 entre Ogulninae, Platoninae y Epeirotypinae (Gráf_2. 2) para resolver la tricotomía de Theridiosomatidae (Gráf_2. 1). Además de que las hembras de estas tres subfamilias poseen surcos transversales en el epigino (Coddington, 1986), sus ootecas no tienen sutura y son sostenidas con dos hilos de seda durante su construcción. Por otro lado, los sacos de huevos de Theridiosomatinae tienen una sutura en el extremo proximal unida solamente a un hilo de suspensión (Figs_3 7‐13). Esta hipótesis alternativa sugiere que la forma de construcción de ootecas de las especies de Theridiosomatinae surgió del ancestro común de todas las especies de Theridiosomatidae, en lugar del ancestro común entre Ogulninae y Theridiosomatinae propuesto por Coddington (1986).

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 184 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

CAPÍTULO 4: APTO PARA MENORES. CARACTERIZACIÓN DE LA CONTRIBUCIÓN DE LOS INDIVIDUOS INMADUROS A LAS ESTIMAS DE DIVERSIDAD EN FAMILIAS DE ARAÑAS CON DIFERENTES ESTRATEGIAS ECOLÓGICAS.

Estimadores de diversidad y código de barras del ADN

Smith y colaboradores (2009) fueron los primeros en realizar análisis de diversidad filogenética (PD; Crozier, 1997) en la porción del cox1 utilizado como código de barras del ADN, como una manera de sustituir los métodos estándar para determinar la eficiencia de muestreo dentro y entre los sitios colectados. El modelo PD surgió en un marco de biología de la conservación con la intención de maximizar el número de especies a ser preservadas dentro de una filogenia dada, el cual utiliza la suma del largo de ramas para discriminar entre especies (Crozier, 1997). Smith y colaboradores (2009) utilizaron el número de especies de hormigas y avispas (Hymenoptera) de una localidad de Ontario (Canadá) determinadas mediante taxonomía tradicional y según el modelo PD, para generar curvas de acumulación de especies y de código de barras del ADN, respectivamente. Smith y colaboradores sugirieron que las curvas de acumulación de los códigos de barra del ADN podrían utilizarse como un método para incluir taxones desconocidos y especies de pequeño tamaño en los inventarios de biodiversidad de gran escala. En otras palabras, la riqueza de las biotas grandes, diversas y poco estudiadas se podría conocer rápidamente utilizando los códigos de barras del ADN.

Los olvidados

Se abordará el estudio de la diversidad de un grupo de organismos en varias localidades incluyendo todos los estadios. Cabe destacar que las formas juveniles o inmaduras de la mayor parte de artrópodos son difíciles, si no imposibles, de determinar (Hebert et al., 2003a) y que estas constituyen más de la mitad de los especímenes colectados en la mayor parte de los grandes inventarios de diversidad tropical (Scharff et al., 2003). La utilización de técnicas basadas en ADN para la Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 185 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles identificación permite la asignación de juveniles a sus formas adultas correspondientes (Greenstone et al., 2005; Pegg et al., 2006; Randrianiaina et al., 2007; Caterino y Tishechkin, 2006; Ahrens et al., 2007; Shenoy et al., 2007) y, dado el caso, reconocerlos como posibles especies no representadas entre los adultos. Para determinar el impacto de las formas juveniles en las estimas de biodiversidad se analizaron todos los individuos de cuatro familias de arañas (Corinnidae, Uloboridae, Oonopidae y Linyphiidae) utilizando los códigos de barra del ADN y la identificación por GMYC clusters. Estas familias fueron seleccionadas teniendo en cuenta el número de individuos colectados y las diferencias en sus estrategias ecológicas.

Gremios

Los organismos relacionados filogenéticamente con un grado significativo de superposición de nicho ecológico y que comparten los mismos recursos (por ejemplo, la presa), pueden ser agrupados en un gremio ecológico (Dias et al., 2010).

Corinnidae. Según Dias y colaboradores (2010) las arañas de esta familia pueden dividirse en dos grupos. El gremio de cazadores aéreos está compuesto por arañas arbóreas de las subfamilias Castianeirinae, Corinninae y Trachelinae colectadas generalmente por la noche y con el método Beating (Be). El gremio de cazadores errantes está compuesto por arañas que viven en el suelo, característico de las subfamilias Corinninae (otras especies) y Phrurolothinae. Estas especies son de pequeño tamaño, se mueven por el terreno para encontrar sus presas ya que no usan tela para capturarlas, y suelen encontrarse también por la noche. Las especies de los géneros Castianeira, Myrmecotypus y Phrurolithus se mimetizan con hormigas y tienen hábitos diurnos, a diferencia de la mayoría de las especies de Corinnidae que son nocturnas (Ubick y Richman, 2005). Las relaciones filogenéticas entre las subfamilias de Corinnidae no está bien definida y la inclusión de Thachelinae es aún debatible (Jocqué y Dippenaar‐Schoeman, 2007).

Oonopidae. Las especies de esta familia pertenecen al gremio de cazadores nocturnos terrestres (Dias et al., 2010). La mayoría de las especies viven especialmente en la hojarasca, son de pequeño tamaño y tienen hábitos crípticos que Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 186 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles dificultan su captura (Ubick, 2005; Grismado et al., 2011). Sin embargo, las especies del género Orchestina tienen hábitos arborícolas con el fémur de la pata IV ensanchado que les permite saltar entre la vegetación (Ubick, 2005). Dada estas características la familia Oonopidae ha sido descuidada y poco estudiada (Ubick, 2005). Sin embargo, en los últimos años el proyecto PBI de las Oonopidae1 ha contribuido con estudios taxonómicos (por ejemplo, Platnick y Dupérré, 2009a‐b‐c; Baehr et al., 2010), de comportamiento reproductivo (por ejemplo, Burger 2009, 2010; Burger et al., 2010) y ecológicos (Fannes et al., 2008), que han aumentado nuestro conocimiento de esta familia.

Linyphiidae. Las especies de esta familia se pueden agrupar en el gremio de constructoras de tela laminada diurnas (Dias et al., 2010). Es una familia muy grande, poco conocida y difícil de estudiar taxonómicamente (Draney y Buckle, 2005). En general, la mayoría las especies de Linyphiidae son diurnas y suelen colectarse con el método Be y de forma manual. La arquitectura de la tela de esta familia consiste en una lámina horizontal y convexa, similar a una sábana, con hilos verticales que forman una malla densa de seda por arriba de la misma, que sirven para capturar a las presas (Hormiga, 2002). La plataforma principal puede variar de forma, generalmente es más larga que ancha, con el extremo cercano al sustrato más estrecho, en forma de embudo, que termina en un refugio (Hormiga, 2002). Algunos de los hilos de seda de la plataforma contienen gotas pegajosas, aunque no juegan un papel importante a la hora de capturar presas (Hormiga, 2002; Foelix, 2011).

Uloboridae. Las arañas de esta familia se agrupan en el gremio de constructoras de telas orbiculares (Dias et al., 2010). Las arañas de este gremio combinan hilos pegajosos y no pegajosos para generar una trampa aérea que intercepta y retiene a las presas (Opell, 1996). En el caso de Uloboridae, en lugar de utilizar hilos con gotas pegajosas, utilizan un hilo seco, llamado hilo cribelado, compuesto por miles de fibras finas y rizadas que surgen de las fúsulas del cribelo (Opell, 1996). La mayoría de los géneros de esta familia, por ejemplo Philoponella, construyen telas orbiculares horizontales; sin embargo, hay algunos de ellos que

1 Planet Biodiversity Inventory (PBI): www.research.amnh.org/oonopidae Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 187 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles reducen su tela. Las Hyptiotes construyen una tela triangular y vertical constituida por cuatro radios, entre los cuales se extiende la red de captura, y las Myagrammopes utilizan solamente dos hilos de seda (Opell, 1996, 2005). Las arañas que tejen telas orbiculares esperan en el centro de la red hasta que interceptan una presa. Las que tejen telas reducidas manipulan activamente la tela para capturar a las presas (Opell, 1996).

Material examinado

El número de especímenes de cada familia identificados mediante una identificación integrativa y el número de secuencias obtenidas de los mismos, se encuentran en la Tabla_4 1. Las diferencias entre los valores totales se explican a continuación: se secuenciaron 10 individuos adultos como máximo por cada localidad en las especies muy abundantes como Grammonota teresta, Dubiaranea sp.1 FML, Dubiaranea sp.11 FML, Meioneta sp.1 FML, Pocobletus sp.10 FML (Linyphiidae) y Philoponella sp.11 FML (Uloboridae) (400 especímenes no secuenciados), con excepción de Meioneta cincta (Linyphiidae) que fue secuenciada en su totalidad; los tejidos de 948 especímenes presentaron algún problema durante el proceso de extracción, amplificación o secuenciación del ADN. Los datos de los individuos secuenciados se encuentran en el Anexo_5 4. Al igual que en la familia Theridiosmatidae (Capítulo 1), se tomaron 134 imágenes del hábito dorsal de los especímenes procesados con el Protocolo BIO, las cuales están disponibles en BOLD2 . Mediante el buscador de la página web, se puede acceder a ellas escribiendo el nombre de alguna de las cuatro familias estudiadas.

Análisis de secuencias de ADN

Cada una de las familias fue analizada individualmente, utilizando el siguiente esquema de trabajo. Las secuencias de cox1 de cada matriz se colapsaron a haplotipos obteniendo un número final de 158 para Corinnidae, 95 para Oonopidae, 318 para

2 http://www.boldsystems.org Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 188 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

Linyphiidae y 104 para Uloboridae. Se agregaron a las matrices cuatro secuencias de especies de Mygalomorphae (SPIPA111‐10: Cyriocosmus sp.3 FML (Theraphosidae), SPIPO148‐10: Linothele sp.1 FML (Dipluridae), SPIPO145‐10: Hebestatis sp.1 FML (Ctenizidae), SPIPO146‐10: Bolostromus sp.1 FML (Cyrtaucheniidae)) del proyecto PANCODING. Las mismas se utilizaron para enraizar los análisis filogenéticos.

Tabla_4 1. Número de individuos identificados mediante una estrategia integrativa y número de individuos con secuencias de ADN, respectivamente, discriminados por estadio y categoría taxonómica. Familia Individuos Adultos Juveniles Géneros Especies

Corinnidae 931 257 674 11 38 Oonopidae 291 190 101 8 20 Linyphiidae 1386 820 566 13 31 Uloboridae 395 157 238 2 6 integrativa Identificación Total 3003 1424 1579 34 95

Corinnidae 472 188 284 de Oonopidae 147 101 46 Linyphiidae 789 428 361 ADN Uloboridae 247 60 187 Secuencias Total 1655 777 878

Los árboles de máxima verosimilitud (ML) de cada familia se obtuvieron con RAxML aplicando el modelo de GMYC como en los capítulos anteriores. Los análisis de ML de los haplotipos de cox1 se muestran en los Gráficos_4 1‐9. El número de GMYC clusters, los intervalos de confianza y los umbrales de tiempo para cada familia se encuentran en la Tabla_4 2. El umbral de tiempo simple y los umbrales múltiples en la familia Linyphiidae son marginalmente significativos (P > 0.04) y los números de GMYC clusters obtenidos son de 45 y de 79, respectivamente. Dado que en esta familia hay un incremento muy grande de especies al aplicar intervalos múltiples, posiblemente por el gran número de secuencias que se utilizaron en los análisis (Tabla 4_1) o por los 141 haplotipos de Meioneta cincta (Gráf_4. 7), que los 45 GMYC clusters obtenidos por el umbral simple son mayores que el número de especies identificadas con II (Tabla_4 1) y que el nivel de significancia no es elevado y, por lo tanto, la evidencia que soporta esta diferencia es poco robusta, se optó por utilizar los resultados del umbral simple. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 189 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

GRÁFICO_4 1. Mejor filograma de Máxima Verosimilitud de Corinnidae obtenido de 100 réplicas con RAxML. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters; los colores de las secuencias a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los círculos blancos en los nodos a los clados con un soporte de bootstrap >70%, basados en un re‐muestreo de 500 matrices; los círculos rojos a los clusters representados solo por juveniles.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 190 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

GRÁFICO_4 2. Continuación Gráfico_4 1. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters; los colores de las secuencias a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los círculos blancos en los nodos a los clados con un soporte de bootstrap >70%, basados en un re‐muestreo de 500 matrices; los círculos rojos a los clusters representados solo por juveniles.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 191 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

GRÁFICO_4 3. Continuación Gráfico_4 1. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters; los colores de las secuencias a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los círculos blancos en los nodos a los clados con un soporte de bootstrap >70%, basados en un re‐muestreo de 500 matrices; los círculos rojos a los clusters representados solo por juveniles.

Tabla_4 2. Número de GMYC clusters , intervalos de confianza, valores de umbrales y pruebas de significacia entre ambos obtenidos para los análisis de ML de cada familia. Corinnidae Oonopidae Linyphiidae Uloboridae Total GMYC clusters 60 (58‐61) 17 (17‐24) 45 (35‐50) 11 (11‐11) 133 Umbral simple ‐0.011475 ‐0.174281 ‐0.067831 ‐0.009761 GMYC clusters 71 (70‐71) 24 (18‐25) 79 (75‐79) 14 (11‐14) Umbrales múltiples ‐0.001467 ‐0.538189 ‐0.042802 ‐0.009761 ‐0.005082 ‐0.302066 ‐0.024621 ‐0.006891 ‐0.008553 ‐0.284118 ‐0.012791 ‐0.005433 ‐0.027654 ‐0.011815 ‐0.005168 ‐0.023399 ‐0.006154 ‐0.008507 ‐0.004395 ‐0.004519 ‐0.004395 ‐0.003456 ‐0.003296 ‐0.001701 ‐0.002472 Simple‐Multiples Chi‐cuadrado 10.05 7.59 37.34 2.86 Grados de libertad 6 24 24 9 Significancia P > 0.12 P > 0.99 P > 0.04* P > 0.97 Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 192 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

GRÁFICO_4 4. Mejor filograma de Máxima Verosimilitud de Oonopidae obtenido de 100 réplicas con RAxML. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters; los colores de las secuencias a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los círculos blancos en los nodos a los clados con un soporte de bootstrap > 70%, basados en un re‐ muestreo de 500 matrices; los círculos rojos a los clusters representados solo por juveniles. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 193 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

GRÁFICO_4 5. Mejor filograma de Máxima Verosimilitud de Linyphiidae obtenido de 100 réplicas con RAxML. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters; los colores de las secuencias a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los círculos blancos en los nodos a los clados con un soporte de bootstrap > 70%, basados en un re‐muestreo de 500 matrices; los círculos rojos a los clusters representados solo por juveniles. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 194 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

GRÁFICO_4 6. Continuación Gráfico_4 5. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters; los colores de las secuencias a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los círculos blancos en los nodos a los clados con un soporte de bootstrap > 70%, basados en un re‐muestreo de 500 matrices; los círculos rojos a los clusters representados solo por juveniles. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 195 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

GRÁFICO_4 7. Continuación Gráfico_4 5. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters; los colores de las secuencias a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los círculos blancos en los nodos a los clados con un soporte de bootstrap > 70%, basados en un re‐muestreo de 500 matrices; los círculos rojos a los clusters representados solo por juveniles. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 196 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

GRÁFICO_4 8. Continuación Gráfico_4 5. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters; los colores de las secuencias a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los círculos blancos en los nodos a los clados con un soporte de bootstrap > 70%, basados en un re‐muestreo de 500 matrices; los círculos rojos a los clusters representados solo por juveniles. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 197 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

GRÁFICO_4 9. Mejor filograma de Máxima Verosimilitud de Uloboridae obtenido de 100 réplicas con RAxML. Los clados englobados corresponden a GMYC clusters; los colores de las secuencias a las localidades: azul PILA, violeta RFF, rojo COPE y verde PNAC; los círculos blancos en los nodos a los clados con un soporte de bootstrap >60%, basados en un re‐muestreo de 500 matrices; los círculos rojos a los clusters representados solo por juveniles.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 198 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

Se testeó la monofilia de los grupos taxonómicos más inclusivos (subfamilia y géneros) en los resultados de los análisis de máxima verosimilitud del gen cox1 (Tabla_4. 3). Se recuperó la monofilia de las subfamilias representadas por un género con la excepción de Uloborinae y Castianeirinae, que resultaron para y polifiléticas, respectivamente, a causa de GMYC clusters de juveniles que no se encuentran entre los adultos. Ambos casos podrían deberse a un error de identificación. Sin embargo, no se recuperó la monofilia de ninguna subfamilia con más de un género. De los 29 géneros secuenciados, nueve están representados por una especie. Se recuperaron 12 géneros monofiléticos con más de una especie (41%) (Tabla_4. 3). Al igual que en el caso de las subfamilias, tres de los géneros no monofiléticos se deben a GMYC clusters de juveniles que no se encuentran entre los adultos, con la posibilidad de que haya habido error en su determinación. Es importante notar que a medida que nos acercamos al nivel de especie, la resolución de la filogenia con cox1 aumenta. Sin embargo, en rangos taxonómicos altos las filogenias no son robustas.

Estimadores de diversidad Diversidad alfa. Para testear el efecto de los individuos juveniles en las estimas de diversidad alfa, se realizaron curvas de acumulación de especies con sus respectivos estimadores no paramétricos con el programa EstimateS (Corwell, 2004). Se compararon dos grupos de datos, las identificaciones obtenidas con el modelo GMYC (IB) de las cuatro familias y las identificaciones rápidas (IR) que no contemplan a los juveniles. Las curvas de acumulación de especies observadas y los valores estimados de Chao 1 para las diferentes estrategias se muestran en el Gráfico_4 10. Se observa que las curvas de IB son más altas y prolongadas que las curvas de IR, lo que representan una mayor riqueza y abundancia, respectivamente. Dado que los intervalos de confianza de las curvas de acumulación de especies observadas para IB e IR dejan de superponerse alrededor de los 170 especímenes, alejándose progresivamente una de la otra conforme aumenta la abundancia, se consideraron significativamente diferentes. Estos resultados difieren de las curvas de acumulación de especies de avispas parasitoides basadas en taxonomía tradicional y en códigos de barra, donde no se encontraron diferencias significativas entre ellas (Smith et al., Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 199 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

2009). Los porcentajes calculados de las especies raras identificadas mediante el método GMYC para las cuatro familias son de un 34% de singletons y un 12% de doubletons en un total de 133 GMYC clusters, es decir, 46 clusters están representados por una secuencia (especie) y 16 clusters por dos. Estos porcentajes son similares en las muestras identificadas por IR (que no incluye a los juveniles), con un 37% de singletons y un 15% de doubletons.

Tabla_4 3. Monofilia de las Subfamilias y Géneros de Corinnidae, Linyphiinae, Oonopidae y Uloboridae como resultado de los análisis de máxima verosimilitud de las secuencias de cox1 [Poli, polifilia;Para, parafilia;*, polifilia o parafilia dada por GMYC clusters formados solo por individuos juveniles]. Familia subfamilia Monofilia género Monofilia Especies (II) Corinnidae Castianeirinae Poli* Castianeira Poli* 4 Myrmecotypus Sí 1 Trachelinae Si Trachelas Sí 13 Corinninae Poli Corinna Sí 6 Parachemmis Para 4 Tupirina Sí 1 Stethorrhagus Sí 3 Creugas Poli 6 Septentrina Sí 1 Phrurolithinae Si Phrurolithus Sí 1 Linyphiidae Para Erigoninae sp. Poli 4 Poli 2 Grammonota Sí 4 Walckenaeria Sí 8 Para 4 Asemostera Sí 1 Fissiscapus Sí 1 Primerigonina Sí 2 Linyphiinae Si Pocobletus Sí 2 Micronetinae Si Meioneta Sí 3 Dubiaraneinae Si Dubiaranea Sí 8 Oonopidae Oonopinae Para Triaeris Sí 2 Dysderina Poli* 9 Marsupopaea Sí 1 Oonopoides Sí 1 Stenoonops Sí 1 Orchestininae Si Orchestina Sí 6 Uloboridae Uloborinae Para* Philoponella Para* 6 Hyptiotimae Si Miagrammopes Sí 4 Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 200 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

La intensidad de muestreo calculada para IB, en este caso sería la proporción del número secuencias sobre el número de GMYC clusters, fue de 7. En el caso de método IR la intensidad de muestreo fue de 5,5. Todos estos resultados aún muestran los signos de un inventario incompleto: las curvas de especies observadas se encuentran por debajo de las cuervas de los estimadores, los porcentajes de las especies raras son elevados, ninguna de ellas llega a una asíntota (Colwell y Coddington, 1994) y la intensidad de muestreo más de diez veces menor al valor recomendado (Coddington et al., 2009); por el contrario, las curvas muestran una clara tendencia a seguir creciendo.

GRÁFICO_4 10. Curvas de acumulación de especies realizadas con datos moleculares y morfológicos. Las curvas representan las especies observadas con un intervalo de confianza del 95% y las especies estimadas de los valores medios del estimador Chao 1. (IB, identificación por código de barras del ADN; IR, identificación rápida) [Eje x: Número de especies; Eje y: Número de individuos].

Los valores totales del número de especies observadas y estimadas varían en un 35% entre ambas estrategias de identificación, IB con 133 y 199 especies respectivamente, e IR con 90 y 131. Como se discutió en el Capítulo 1 (sección Diversidad alfa) hay varios fenómenos que explican las diferencias entre las estrategias de identificación, como potenciales especies crípticas, endemismos haplotípicos, Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 201 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles errores de determinación y nuevas especies putativas representadas solo por juveniles. En Corinnidae y Linyphiidae, las familias más ricas y abundantes en este estudio, la IB encontró un 50% y un 30% más de especies, respectivamente, con respecto a la identificación integrativa (II; Tabla_4. 1). En Uloboridae y Oonopidae también existen diferencias entre las estrategias de identificación (Tabla_4 1‐2). Sin embargo, al contemplar las potenciales nuevas especies representadas solo por juveniles de estas familias, las diferencias mencionadas se vuelven mínimas. En total se encontraron 26 GMYC clusters representados solo por juveniles (ver círculos rojos en Gráfs_4. 1‐9), de los cuales 16 representarían potenciales especies nuevas según la II.

Diversidad beta. Para estimar la diversidad beta de ambas aproximaciones (IR e IB) se utilizaron los estimadores de Chao 1 y los índices de complementariedad y similitud (Gráfs_4. 11‐12). Al comparar el número de especies compartidas observadas y esperadas entre las localidades según IR e IB, se observa que el número de especies compartidas de IB es mucho menor que las compartidas en IR (Gráf_4. 12). Aún más, se observan valores nulos para PILA‐PNAC, las localidades extremas en el gradiente latitudinal y altitudinal de la colecta.

GRÁFICO_4 11‐12. Riqueza observada y estimada de cada localidad y complementariedad entre ellas. 11 Identificación rápida (IR). 12 Identificación por el método GMYC. [Eje primario: Número de especies; Eje secundario: Estimadores; A, PILA; C, PNAC; F, RFF; T, COPE].

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 202 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 4. Estimas de Diversidad con Juveniles

Las diferencias observadas entre IR e IB se deben a los haplotipos endémicos revelados mediante los datos moleculares. Los valores de complementariedad y similitud, especialmente estos últimos, también varían entre ambas estrategias (Gráfs_4. 11‐12). En el caso de IR, la mayoría de los pares de localidades tienen valores de complementariedad entre 0.9‐0.93, con la excepción de COPE‐PNAC que tienen un valor de 0.75 indicando que la biota de dichas localidades comparte un 25% de las especies. En cambio, en IB todos los valores superan al 0.92, llegando al valor de 1 para las localidades de PILA‐PNAC.

Los valores de los índices de similitud basados en la abundancia de Bray‐Curtis, Chao‐Jaccard y Chao‐Sørensen muestran diferencias más conspicuas entre los métodos de IR e IB (Gráfs_4. 11‐12). En este caso, valores cercanos a cero indican que no hay superposición de especies entre las localidades. Los pares de localidades con valores no superiores al 10% de similitud de especies en IR, resultaron con valores de cero en IB. Mientras que casos como los de PILA‐COPE y COPE‐PNAC tuvieron valores de similitud de hasta 0.35 y 0.55 en IR, respectivamente, y descendieron a 0.1 y 0.2 en IB. Estos resultados complementan nuevamente los anteriores: Las localidades de COPE‐PNAC son las más similares, seguidas por RFF‐COPE, mientras que las de PILA‐ PNAC no comparten ninguna especie.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 203 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total

CAPÍTULO 5: EVIDENCIA TOTAL. EVALUACIÓN DE IDENTIFICACIONES TAXONÓMICAS, ESTIMADORES DE ALFA Y BETA DIVERSIDAD, UTILIZANDO TÉCNICAS CLÁSICAS Y MOLECULARES.

Clasificación de las muestras

Se recolectaron 500 muestras en el transcurso de proyecto PANCODING, 250 por cada campaña anual y 125 por cada localidad. Los resultados que se muestran en las figuras, tablas y anexos corresponden a la identificación integrativa (II) de los especímenes, resultantes de la verificación y comparación recíproca entre la identificación rápida (IR) y la identificación por el método GMYC (IB), también incluyendo los casos donde hubo contradicciones entre las mismas. La cantidad de lotes, individuos, riqueza y abundancia por muestra, respectivamente, se detallan en el Anexo_5 1. La cantidad de individuos por muestra varió entre 6–302 (desvío estándar = 35.27) y el número de especies entre 2–30 (6.2). El número total de especímenes por familia colectados en las campañas 2007–2008 se detalla en el Anexo_5 2. El 68.17% de las arañas colectadas corresponde a las familias Tetragnathidae (15.25%), , Theridiosomatidae, Araneidae, Salticidae, , Pholcidae; el 69.82% de los individuos adultos corresponden a Theridiosomatidae (17.71%), Theridiidae, Tetragnatidae, Pholcidae, Linyphiidae, Symphytognathidae, Mysmenidae; y el porcentaje de adultos dentro de cada familia se encuentra sesgado hacia las arañas pequeñas con Anapidae (87%), Symphytognathidae, Oonopidae, Linyphiidae, Theridiosomatidae, Ochyroceratidae (todas las listas en orden decreciente). Las especies identificadas mediante la identificación integrativa se detallan en el Anexo_5 3. El 66.42% de las especies determinadas corresponden a Theridiidae (19.53%), Salticidae, Linyphiidae, Corinnidae, Araneidae, Anyphaenidae, Theridiosomatidae y Tetragnatidae. El número de familias, géneros, especies, machos, hembras, adultos totales y juveniles de cada localidad, asociados a sus respectivos porcentajes con respecto a los valores totales, se encuentran en la Tabla_5 1. Se observa un patrón similar en la distribución de los individuos según su sexo y estadio para cada localidad, el cual muestra que los individuos juveniles superan el 60% del muestreo. Estos Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 204 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total porcentajes son similares a los valores reportados en otros estudios de diversidad de artrópodos en las regiones Neotropical y Paleártica (Coddington et al., 2009).

Tabla_5 1. Número total de especímenes del inventario de biodiversidad semi‐cuantitativo PANCODING, discriminados por localidad. Localidad FamiliasGéneros Especies Total Nº % Nº % Nº % Especímenes PILA 27 55 67 41 138 25 9363 RFF 29 59 101 62 187 34 7909 COPE 39 80 104 64 194 35 5640 PNAC 30 61 98 60 160 29 7049 Total 49 162 548 29961 Machos Hembras Total Adultos Juveniles Nº % Nº % Nº % Nº % PILA 1096 12 1816 19 2912 31 6451 69 RFF 1088 14 2022 26 3110 39 4799 61 COPE 650 12 1146 20 1796 32 3844 68 PNAC 932 13 1885 27 2817 40 4232 60 Total 3766 13 6869 23 10635 35 19326 64

Análisis de secuencias de ADN

La cantidad de secuencias de ADN obtenidas, de reacciones en cadena de la polimerasa (PCR) y reacciones de secuenciación utilizadas en los distintos laboratorios moleculares se detallan en la Tabla_5 2. Los especímenes de arañas procesados incluyen a cinco individuos por especie/morfo‐especie por localidad (en lo posible) incluyendo a los individuos de las muestras no‐cuantitativas, a los adultos y juveniles de las familias Corinnidae, Linyphiidae, Uloboridae y Oonopidae (ver Capítulo 4), y a los sacos de huevos de la familia Theridiosomatidae (ver Capítulo 3). Los códigos de secuencias, de lote y la identificación taxonómica se detallan en el Anexo_5 4. Se obtuvieron en total 3553 secuencias de ADN (sin contar los 282 individuos repetidos, Tabla_5 2), las cuales mostraron una composición nucleotídica rica en A+T como es esperado para un gen mitocondrial (A 24.8%, C 12.9%, G 19.3%, T 43%). La calidad del tejido colectado y procesado con EtOH 100% (Tabla_5 2) se refleja en el alto porcentaje de las secuencias de ADN obtenidas a partir de las extracciones (74%) y en la longitud promedio de las mismas (> 630 p.b.). La eficiencia de ambas reacciones Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 205 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total moleculares difirió entre los laboratorios alcanzando un valor óptimo de 97.2% en BIO y un valor mínimo de 56% en IMEDEA (Tabla_5 2). Dicho porcentaje puede deberse a la puesta a punto de las PCRs.

Tabla_5 2. Cantidad de secuencias de ADN obtenidas, de reacciones en cadena de la polimerasa (PCR) y reacciones de secuenciación utilizadas en los distintos laboratorios moleculares. Eficiencia y calidad de los laboratorios. El valorentre paréntesis representa la cantidad de especímenes que fueron secuenciaron en ambos laboratorios. ADN IMEDEA BIO Total Extracciones 3263 1896 5159 Secuencias 2427 1408 3835 (282) PCRs 4335 1449 Reacciones Secuenciación 3360 1449 Long. promedio secuencias (p.b.) 630 650 Eficiencia Extracciones/Secuencias 74.4 74.3 Secuencias/PCR 56.0 97.2 Secuencias/Reac. Sec. 72.2 97.2

Se realizaron los mismos análisis que en los capítulos anteriores para obtener el mejor árbol de máxima verosimilitud (ML) con RAxML utilizando el modelo GMYC. Se agregaron a la matriz tres secuencias adicionales disponibles en GenBank para enraizar los análisis filogenéticos, una de una araña basal (AY309258, Heptathela hangzhouensis (Liphistiidae)) y las otras dos de otros ordenes de arácnidos (AY731174, Mastigoproctus giganteus (Theliphonida: Thelyphonidae); NC010775, Phrynus sp.1 (Amblypygi: Phrynidae)). Se utilizó un umbral de tiempo único para calcular los GMYC clusters, dado que los resultados de los Capítulos anteriores no mostraron diferencias significativas (salvo la familia Linyphiidae con un valor de P > 0.4) entre los modelos con uno o varios umbrales. Se identificaron 614 entidades por la IB, con un intervalo de confianza entre 602‐651 y su umbral de tiempo de ‐0.039668, de los cuales, 47 están representadas solamente por especímenes colectados de manera no cuantitativa, que no están contemplados en los análisis de diversidad. Los resultados totales de la filogenia de ML se presentan en forma de círculo donde se puede observar la cantidad relativa de secuencias por familia (Gráf_5. 1) y en forma regular donde se pueden ver los grupos monofiléticos (Gráf_5. 2). Los terminales están Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 206 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total colapsados a nivel de familia. En el Anexo_5. 5 se detallan estos Gráficos con las especies y las relaciones entre ellas.

GRÁFICO_5 1. Evidencia Total. Mejor filograma de Máxima Verosimilitud obtenido de 100 réplicas con RAxML. Los clados corresponden a la cantidad relativa de secuencias de cox1 por familia.

Se recuperó la monofilia de 31 familias, de las cuales 21 están representadas por una o dos especies con uno o dos especímenes respectivamente (Gráf_5 2). Cabe destacar la monofilia de las familias Pholcidae (21 especies), Oonopidae (20), Uloboridae (8), Clubionidae (7), Prodidomidae (6) y Anapidae (5). Las familias con más especies determinadas resultaron polifiléticas (Theridiidae, Salticidae, Linyphiidae, Corinnidae, Araneidae y Tetragnatidae) o parafiléticas (Anyphaenidae, Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 207 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total

Theridiosomatidae). Claramente, las filogenias basadas solo en el cox1 no reflejan las relaciones de los grupos más inclusivos, como ya se observó en el Capítulo 4 con las subfamilias de Corinnidae, Linyphiidae, Uloboridae y Oonopidae.

GRÁFICO_5 2. Evidencia Total. Mejor filograma de Máxima Verosimilitud obtenido de 100 réplicas con RAxML. Los clados se encuentran colapsados a nivel de familias. Los números entre paréntesis corresponden a los grupos que se ilustran en detalle en el Anexo_5 5.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 208 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total

Identificación integrativa

De los 567 GMYC clusters obtenidos de los muestreos semi‐cuantitativos, el 4.1% (24 especies) corresponde a individuos machos y hembras considerados especies diferentes mediante IR y vinculados posteriormente con IB, y el 5.8% (33) corresponde a putativas nuevas especies representadas solamente por juveniles. Los valores de divergencia intraespecífica en la mayoría de los casos (94.7%) fueron menores al 2%, y en un porcentaje mucho menor (3.9%) se encontraron entre un 3‐5% de divergencia. Se registraron porcentajes muy altos de divergencia genética intraespecífica para 20 especies (Tabla_5 3). Estos valores sugieren putativas especies crípticas dentro de cada una de estas especies, particularmente para los casos que se aproximan o superan el 20% de divergencia (Mysmenopsis sp.2 FML, Cyrtognatha leviorum, Chrysometa alajuela y Patu digua). Se observa que las especies con altos valores de divergencia están distribuidas en varias familias de arañas enteleginas y que los porcentajes más altos están sesgados a las Araneoidea. Estos resultados son similares a los reportados para las especies de Hypochilus, con un 17% de divergencia intraespecífica (Hedin, 2001) y de Pimoidae con un 12% (Wang et al., 2008). Al realizar las identificaciones integrativas (II) de todas estas especies (Tabla_5_3) no se encontraron diferencias en los órganos sexuales internos, ni en la coloración del cuerpo ni en su tamaño. Las descripciones de las nuevas especies de Theridiosomatidae (Capítulo 2) ilustran esta problemática. En todos los casos, se ha tomado la decisión de no nombrar a estas posibles especies crípticas, hasta tener otras fuentes de evidencia que soporten esas hipótesis. Revisiones taxonómicas de todas las familias estudiadas, como en el caso de Theridiosomatidae, integrando evidencias morfológicas con moleculares podrían solucionar este problema. También se registraron tres pares de especies (Trachelas sp.14 FML‐Trachelas trifidus (Corinnidae); Asemostera daedalus‐Asemostera sp.10 FML (Linyphiidae) y Ameridion signum‐Ameridion progum (Theridiidae)) con porcentajes de divergencia menores al 2%, pero con claras diferencias morfológicas entre ellas. Estos valores son similares a los encontrados en algunas especies de cnidarios, con divergencias interespecíficas menores al 1% (Herbert et al. 2003a). En estos casos, también se conservaron las seis especies identificadas mediante II. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 209 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total

Tabla_5 3. Porcentajes de divergencia intraespecificos mayores al 5% de las especies del inventario de PANCODING, distribuidas según sus familias. Familia Especies Div. Intraespecífica Anyphaenidae Patrera sp.1 FML 0‐5.4% Anyphaenidae Anyphaeninae sp.1 FML 0‐7.6% Araneidae Achaearanea maricaoensis 0‐12.4% Corinnidae Trachelas prominens 0‐9.5% Mysmenidae Mysmenopsis sp.2 FML 0‐21.3% Mysmenidae Mysmenopsis sp.4 FML 0.2‐5.3% Salticidae Myrmarachne parallela 0‐12.5% Salticidae Euophrys sp.3 FML 0‐10% Salticidae Cotinusa sp.2 FML 0‐14.8% Sparassidae Anaptomecus longiventris 2.2‐5.9% Symphytognathidae Patu digua 0‐19.2% Tetragnathidae Cyrtognatha leviorum 0.‐21.1% Tetragnathidae Chrysometa alajuela 0‐24.4% Theridiidae Dipoena sp.10 FML 0‐11.6% Theridiidae Theridion albulum 0‐11.1% Theridiidae Chrysso sp.1 FML 0‐11.4% Theridiidae Dipoena insulana 0‐16.2% Theridiosomatidae Cthonos dobo n. sp. 3.3‐10.2% Theridiosomatidae Naatlo chi n. sp. 2.4‐8.9% Zodariidae Tenedos sp.1 FML 0.5‐13.3%

Eficiencia de los métodos de muestreo

El número y tipo de muestreos estuvo condicionado por la disponibilidad de especímenes y las condiciones climáticas en cada localidad. El esfuerzo de muestreo, la cantidad de muestras colectadas por método o por momento del día, resultó estar desbalanceado dentro y entre localidades (Tabla_5 4). La intensidad de muestreo (especímenes/especies) total para cada localidad varió entre 21‐9, siendo PILA la de mayor valor y COPE la de menor. La intensidad de muestreo menor se obtuvo para los métodos Cryptic‐Beating (Cr‐Be) en las localidades de PILA‐RFF y COPE‐PNAC, respectivamente, mientras que los valores mayores se dieron en el método de Looking Up (LU) en tres de las localidades (Tabla_5 4). Los valores de intensidad de muestreo obtenidos son bajos, ya que Coddington y colaboradores (2009) consideran a 30 como mínimo valor para que los estimadores de riqueza alcancen una asíntota en las curvas de acumulación de especies (ver abajo). Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 210 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total

9 3 5 2 2 6

1 muestras diferencia de

11 0 9 11 la ‐ 50 75 50 75 2 40 60 66 75 21 23 21 27 23 19 32 26 14 36

41 43 1 128 163 193 217 es total 1065 1751 1061 2050

no Nocturno no Nocturno método número 9 281 491

37 10 ‐ del del

Up Diur Up Diur

97 57 RFF ‐ PNAC porcentaje desviación

el la

Down L. Down L. es

de

26 091 esfuerzo porcentaje

de

El

86 54 ‐ 22 10 9 ‐ 194 102 120 220 porcentaje localidad.

El por

88 1 85691 1 ‐ ‐ (66). 5

176 métodos

11 discriminados 2 los

todos

91 691 para

PANCODING,

va l or

Up Diurno Nocturno Beating Cryptic L. Up Diurno Nocturno Beating Cryptic L.

dicho 117 49 41

PILA COPE cuantitativo 2 ‐ ‐ de semi Down L. Down L.

media

la 59

y biodiversidad

método de 48 20555

1 ‐ cada

de

Beating Cryptic L. Beating Cryptic L. inventario del

inventario

o 36656751 o 861 e e del r r

particular. t t 1 93 109 133 109 136 1 136 128 133 139 170 244 144 89 113 108 186 146 va l ores a 42332242222 a 32222242433

s s inventario 68 69 45 67 73 65 44 76 75 56 r inventario 54 66 71 71 71 65 61 70 61 73 65 82 r

t t e e método 2 3 método de

s

s u

u e e m m u u Chao Chao

método únicas 15 18 10 25 23 45 19 6 6 11 únicas 9 18 4 12 18 25 12 9 4 25

M M Suma

/ / s s completitud un pletitud dor erzo 18 37 20 26 40 60 18 30 18 34 a 7 a a

4. letons 30 44 36 33 32 32 42 29 32 30 ancia 240 523 552 481 673 1123 440 630 652 1094 ancia/Muestra 13 11 20 16 13 15 19 17 23 30 ancia 473 449 798 1192 859 2053 427 469 795 1420 ras 19 49 27 30 50 75 23 38 28 36 ancia/Muestra 22 10 32 37 17 27 19 13 35 33 ras 22 46 25 32 50 75 22 37 23 43 viación idad idad

tons 19 33 21 24 32 37 36 23 29 z z z za 63 75 59 73 99 114 86 78 90 123 la e e en

e

u u u Singletons 50 42 35 41 35 36 43 35 41 29 39 26 Esfu Des Com Sing Completitud Esfuerzo 15 39 22 24 40 60 18 30 22 29 40 60 Desviación q q q

i i i Especie Singletons% 37 36 33 41 42 57 38 22 28 23 47 31 Estimador Intens Tabla_5 % % Muest Abund R Estima % Abund R Especie Single % Muest Abund R Abund Rique Intens entre % % (125) % Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 211 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total

Cada método de muestreo por localidad aporta especies únicas que no se colectaron con otros métodos, siendo Cr‐Looking Down (LD) los de menor aporte y Be‐LU los de mayor (Tabla_5 4). La media de la completitud del inventario para todos métodos de todas las localidades fue de 66%, y los métodos separados oscilan entre un ‐22% y 10% sobre dicho valor (Tabla_5 4), lo que significa que aún es necesario realizar un mayor esfuerzo de colecta para alcanzar los valores de especies estimadas. Para las localidades de PILA‐RFF (de mayor altura) los porcentajes bajos de completitud en sus métodos no se corresponden con el porcentaje del esfuerzo de los mismos.

En cambio, para las localidades de COPE‐PNAC (de menor altura) los desvíos negativos con respecto a la completitud sí se corresponden con un menor esfuerzo de muestreo. Se realizaron distintas transformaciones de los datos para compararlos entre sí. Se relativizaron el número de especies (modelo 1 y 3) y el número total de individuos (modelo 2 y 4) de cada muestra por el número de muestras de cada método de cada localidad o por el número de muestras de cada momento del día, respectivamente. Se utilizaron ANOVAs para testear el efecto de la localidad (L), el método de colecta (M), el momento del día (T) y las interacciones entre el primero y los segundos en el número de especies (modelo 1 y 3) y de especímenes (modelo 2 y 4) por muestra (Tabla_5 5). No se realizaron ANOVAs para las interacciones M*T y L*M*T* ya que las mismas presentan celdas vacías. Se utilizó el test de Tukey (HSD) para evaluar las diferencias entre las localidades y los métodos (Gráfs_5. 3‐4). Los datos fueron transformados mediante logaritmo antes de realizar los análisis para mantener la normalidad en su distribución. La interacción L*M resultó significativa afectando a la riqueza (F = 2.95, P < 0.0000) y la abundancia (F = 5.29, P < 0.0000) por muestra, respectivamente (Tabla_5 5). RFF resultó ser la localidad de mayor riqueza de especies (P < 0.0000) mientras que COPE la de menor abundancia (P < 0.0002). Los valores de riqueza entre los métodos por localidad resultaron ser heterogéneos

(Gráf_5. 3). Los métodos de mayor riqueza para RFF y PNAC fueron Be y LD (P > 0.0000), para PILA Be y LU (P > 0.0000) y para COPE no hubo diferencias significativas entre los métodos más ricos. La abundancia de los métodos Be, LD y LU no difirieron entre sí en cada localidad, salvo en RFF donde el método LD resultó ser más abundante que los demás (P > 0.0000) (Gráf_5. 4). El método Cr resultó ser el de menor número Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 212 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total de especímenes (P > 0.0000) y de especies (P > 0.0000) (Fig._5 9‐10). La interacción L*T resultó no significativa para los modelos 3 (P > 0.1) y 4 (P > 0.2). Sin embargo, la riqueza y la abundancia resultaron significativamente mayores (P > 0.0000) durante las colectas diurnas (Gráfs_5. 5‐6).

Tabla_5 5. ANOVA del efecto de la localidad, el método, el momento del día y las interacciones de la primera con los segundos en la riqueza (modelo 1 y 3) y la abundancia (modelo 2 y 4) según diferentes criterios (gL = grados de libertad, MS = cuadrado medio). gL. MS Valor de F p Modelo 1. Variable dependiente: Log Riqueza/Muestra*Método Localidad 3 5.36 19.13 0.0000* Método 3 83.14 296.90 0.0000* Localidad*Método 9 2.95 10.53 0.0000* Modelo 2. Variable dependiente: Log Abundancia/Muestra*Método Localidad 3 9.60 21.90 0.0000* Método 3 109.11 248.85 0.0000* Localidad*Método 9 5.29 12.06 0.0000* Modelo 3. Variable dependiente: Log Riqueza/Muestra*Momento del día Localidad 3 7.04 15.88 0.0000* Momento del día 1 5.68 12.80 0.0000* Localidad*Momento del día 3 0.86 1.94 0.1217 Modelo 4. Variable dependiente: Log Abundancia/Muestra*Momento del día Localidad 3 13.07 16.62 0.0000* Momento del día 1 6.44 8.19 0.0044*

Localidad*Momento del día 3 1.01 1.28 0.2794 Se realizaron análisis comparativos entre diferentes pares de métodos de muestreo por localidad para obtener la composición de especies utilizando los siguientes estimadores: complementariedad, Bray Curtis, Chao‐Jaccard y Chao‐Sørensen (Gráfs_5. 7‐10). Estos estimadores varían entre 0‐1. Para el primer caso con un valor de 1 la composición de especies es totalmente diferente, mientras que para los otros tres la composición es la misma; para un valor de 0 se invierten dichos resultados. El par de métodos más similar para las localidades de RFF‐COPE‐PNAC fue Cr‐LD y para PILA fue Be‐LU (0.49‐0.59/0.41‐0.53/0.85‐0.97/0.92‐0.98), lo que significa que comparten al menos el 50% de las especies. Los pares de métodos que compartieron entre un 40‐ Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 213 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total

50% de las especies para RFF‐COPE‐PNAC fueron Be‐LU y LU‐LD y para PILA fue LU‐LD (0.57‐0.67/0.34‐0.4/0.71‐0.94/0.83‐0.97). Para cada una de las localidades los pares de métodos de colecta más disímiles fueron Be‐Cr y Cr‐LU (0.76‐0.81/0.09‐0.23/0.28‐ 0.63/0.43‐0.78), compartiendo menos del 20% de las especies. Se observa que en los pares de métodos similares, mayores al 30% de similitud, los estimadores Chao‐Jaccard y Chao‐Sørensen poseen valores cercanos a 1 (Gráfs_5. 6‐9).

GRÁFICOS_5 3‐6. Efecto de los métodos de muestreo en las localidades y efecto del momento del día según el número de especies y de individuos por muestra, respectivamente. Los números sobre los desvíos estándar indican los grupos que difieren significativamente entre sí (test de Tukey) por localidad o por momento del día, respectivamente.

Estimadores de diversidad

Los estimadores de riqueza para cada una de las localidades se detallan en la Tabla_5 6. Los porcentajes de singletons y doubletons calculados para las localidades varían entre 26–33% y 7–14% respectivamente, lo que significa que de las 548 especies Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 214 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total identificadas alrededor de 160 están representadas por un solo ejemplar y 59 solo por dos. Aproximadamente el 68% de las especies no están descriptas o no pueden identificarse con la literatura existente. Los resultados muestran un patrón decreciente en la completitud del inventario de cada localidad a medida que aumenta la altura de las mismas (Tabla_5 6). Un valor de 80% se registró para PNAC, la localidad más baja, es decir las especies colectadas se acercan al valor esperado, y para PILA, el otro extremo del gradiente, un valor de 66%. Los resultados de las curvas de acumulación de especies para cada localidad muestran los signos típicos de un inventario incompleto (Gráfs_5. 11‐14): las curvas de especies observadas se encuentran sustancialmente por debajo de las curvas de los estimadores, las curvas de los singletons y doubletons siguen creciendo y las primeras se encuentran por arriba de las segundas, en todos los casos ninguna de las curvas llega a la asíntota (Colwell y Coddington, 1994; Coddington et al., 2009).

GRÁFICOS_5 7‐10. Especies compartidas observadas y estimadas, y estimadores de composición de especies entre los métodos de muestreo según la localidad. (B: Beating; C: Cryptic; LD: Looking Down; LU: Looking Up; ++ > 50%; 50% < + > 40%; – < 20%). [Eje primario: Número de especies; Eje secundario: Estimadores]. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 215 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total

Tabla_5 6. Estimadores de la riqueza de especies identificadas de manera integrativa para cada una de las localidadades. PILA RFF COPE PNAC Muestras 125 125 125 125 Especímenes 2912 3110 1796 2817 Especies observadas 138 187 194 160 Singletons 43 50 63 42 Doubletos 13 13 27 20 Únicos 45 51 68 47 Duplicados 13 13 25 20 ACE 190.79 237.4 263.95 196.2 ICE 194.18 234.55 271.9 200.47 Chao 1 208.12 283.15 266.5 200 Chao 2 214.88 287.04 285.48 210.06 Jack 1 181.64 237.59 260.46 205.62 Jack 2 213.23 275.09 302.97 232.35 Bootstrap 155.86 208.59 222.23 179.8 % Singletons 31 27 33 26 % Doubletons 9 7 14 13 % Completitud del inventario 66667380 Intensidad de muestreo 21 17 9 18

Los índices de complementariedad y similitud de especies entre localidades se pueden observar en los Gráfs_5. 15‐16. En ellos se comparan los resultados totales de las determinaciones por IR y por II, ya que los individuos determinados por IB son una sub‐muestra de los determinados por II. Los resultados muestran diferencias en la diversidad alfa y beta para estas aproximaciones. Las especies identificadas de manera integrativa (548) superan a las identificadas de forma rápida (516). Como en los capítulos anteriores (1 y 4), los haplotipos endémicos revelados por IB y reconfirmados con II causan un descenso considerable de los valores de diversidad beta. Nuevamente, los valores extremos de complementariedad y similitud de especies entre localidades se dan entre PILA‐PNAC con valores nulos y COPE‐PNAC con valores entre 20‐55% dependiendo el modelo estadístico utilizado. La distribución geográfica de las localidades (Fig_M. 1) muestra que el par COPE‐PNAC, los cuales comparten más especies están a 73 km de distancia y a 760 y 895 metros sobre el nivel del mar (m.s.n.m.), respectivamente, una diferencia de 135 m de altura. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 216 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total

GRÁFICOS_5 11‐14. Curvas de la riqueza observada, de las especies raras y de los estimadores de riqueza para las localidades del inventario de PANCODING, contra el esfuerzo de muestreo.

GRÁFICO_5 15‐16. Riqueza observada y estimada de cada localidad y complementariedad entre ellas. 15 Identificación rápida (IR). 16 Identificación por código de barras del ADN. (A, PILA; C, PNAC; F, RFF; T, COPE) [Eje primario: Número de especies; Eje secundario: Estimadores]. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 217 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Capítulo 5. Evidencia Total

Las que le siguen en orden decreciente son COPE‐RFF, que se encuentran a 180 km y difieren en 375 metros de altura (RFF: 1135 m.s.n.m.). El par de localidades PILA‐RFF tienen un comportamiento diferente ya que a pesar de encontrarse a 45 km de distancia una de la otra, ser contiguas en nuestro gradiente y diferenciarse en 1135 m de altura (PILA: 2270 m.s.n.m.), son uno de los pares que menos especies comparten; siendo el par RFF‐PNAC más similar en composición de especies, que no son contiguas, están distanciadas unos 253 km y difieren en 240 m de altura. El efecto en la diferencia de altura parece afectar la composición y distribución de las especies.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 218 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Conclusiones

CONCLUSIONES

Delimitación de especies

Las estrategias definidas y utilizadas en este proyecto para delimitar especies fueron esenciales para generar un marco de trabajo a la hora de procesar las muestras de arañas colectadas en el campo. Las identificaciones rápidas (IR) de los especímenes a morfo‐especies (Oliver y Beatti, 1995), en los cuales no se realizó el aclarado de los órganos sexuales, constituyeron la base de datos morfológica del Proyecto PANCODING. La separación de las muestras a morfo‐especies constituyó la etapa más laboriosa del proyecto, alrededor de cinco meses para conocer la cantidad de individuos por familia y 13 meses para identificarlos a especies (29961 especímenes, 516 especies, 500 muestras). En un estudio realizado por Coddington y colaboradores (1991) en una colecta de arañas de Bolivia, les llevó ocho días conocer la cantidad de adultos por cada familia (ellos no colectaron individuos juveniles) y en siete meses aún no habían identificado los especímenes a especies (3018 individuos, 191 muestras).

Una vez identificados los especímenes, se generó la base de datos molecular del gen cox1. Se obtuvieron 3553 secuencias de ADN (Tabla_5 2). El proceso completo para obtener estas secuencias en ambos laboratorios (IMEDEA y BIO), desde la toma de tejidos hasta la edición manual llevó alrededor de 6 meses aproximadamente. Para obtener las identificaciones moleculares (IB) se realizaron análisis filogenéticos de máxima verosimilitud (ML) con el el Modelo General de Yules y Coalescencia (GMYC; Pons et al., 2006). Se identificaron en total 614 GMYC clusters. Los resultados de las IR y las IB difirieron entre sí entre un 15‐35% en el número de especies (Gráfs_1. 3‐7; Gráfs_4. 10‐12; Gráfs_5. 14‐15) a lo largo de esta Tesis. La diferencia en el número de especies de estas identificaciones y las relaciones de los taxones obtenidas mediante los análisis filogenéticos de ML, nos plantearon nuevas hipótesis sobre la taxonomía de los grupos estudiados. Al verificar y comparar recíprocamente estas evidencias obtuvimos las identificaciones integrativas (II).

Nuevos grupos monofiléticos (por ejemplo: Gráf_1. 1 Baalzebub sukia y B. innatuledi; Gráf_4. 1 Trachelas sp.4 FML, Trachelas sp.14 FML y T. trifidus; Gráf_4. 5 Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 219 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Conclusiones

Pocobletus sp.1 FML y Pocobletus sp.10 FML) que sugirieron una revisión minuciosa de los caracteres morfológicos diagnósticos de las especies que los componían. Especialmente en la familia Theridiosomatidae, estás hipótesis llevaron a las descripciones de dos nuevos géneros y 27 especies nuevas (ver Capítulo 2). Hipótesis de putativas especies crípticas (por ejemplo, Gráf_1. 1 Chthonos dobo, Naatlo chi, Theridiosoma goodnightorum; Gráf_4. 2 Trachelas prominens), donde una misma especie posee más de un GMYC cluster con valores de divergencia nucleotídica intraespecífica que varían entre 2.4‐10.2% (valores extremos reportados para Theridiosomatidae). Sugirieron resoluciones filogenéticas en rangos taxonómicos altos como el nivel genérico, como en el caso del clado de Platoninae, Ogulninae y Epeirotypinae, y el otro de Theridiosomatinae (Gráf_2. 2). Se lograron identificar a nivel específico distintos estadios del desarrollo como ootecas (Capítulo 3) y especímenes juveniles (Capítulo 4). Se detectaron e identificaron de forma aproximada las larvas de parasitoides de ootecas de la familia Theridiosomatidae (Capítulo 3). Se vincularon machos y hembras de la misma especie que no estaban pareados (por ejemplo, Gráf_4. 1 Trachelas trifidus, Gráf_4. 3 Parachemmis sp1. FML, Gráf_4. 4 Dysderina dura, Gráf_4. 6 Primerigonina australis). Se encontraron haplotipos endémicos para la mayoría de las especies con el método de IB (Capítulo 1, 4 y 5).

Potenciales Especies Crípticas

Se encontraron 24 potenciales especies crípticas utilizando la II (Anexo_5 5), lo que equivale a un 4% de la riqueza muestreada en las localidades de Panamá. Como se explicó en el Capítulo 1, en esta Tesis se optó por una visión conservadora y no se nombraron a estas especies como taxones independientes. En el Capítulo 2 se exploraron diversas fuentes de evidencia para justificar la distinción de especies nuevas. En el caso de Theridiosmatidae, familia utilizada como modelo en esta Tesis, se identificaron 3 casos de especies clusters que podrían conformar especies crípticas: Chthonos dobo, Naatlo chi y Theridiosoma goodnightorum. Cada una de estas especies tiene más de un GMYC cluster, con porcentajes de divergencia nucleotídica intraespecífica que varía entre 2.4‐10.2%. Así mismo, las relaciones filogenéticas entre Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 220 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Conclusiones los GMYC clusters de estas especies están muy bien soportados con valores de bootstrap superiores a 80 (ver Capítulo 1: Gráf_1. 1). La divergencia interespecífica de muchos taxa (Hebert et al., 2003a, 2004a; Smith et al., 2005; Hajibabaei et al., 2006; Ward et al., 2005), así como en arañas (Hedin, 2001; Paquin y Hedin, 2004; Ayoub et al., 2005; Garb y Gillespie, 2006; Johannesen et al., 2007; Stockman y Bond, 2008; Binford et al., 2008; Wang et al., 2008) suele encontrarse alrededor del 2% y, en muchos casos, no son mayores al 1%. A pesar que estas evidencias favorecerían la distinción de las putativas especies crípticas, también se han reportado en estos trabajos valores de divergencia intraespecíficas que superan a los valores reportados. Ejemplos extremos en arañas con porcentajes de divergencia del 12% o 17% en las especies de Pimoidae (Wang et al., 2008) e Hypochilus (Hedin, 2001), respectivamente, o en algunos Cnidaria con divergencias interespecíficas menores al 1% (Herbert et al. 2003a). Por otra parte, no se encontraron diferencias morfológicas en los especímenes revisados, especialmente, en los caracteres diagnósticos propios de cada grupo. Mediante la II se observaron los órganos sexuales aclarados de todas las putativas especies crípticas. Aunque no se realizó un estudio profundo como en el caso de las especies de Theridiosomatidae, teniendo en cuenta las evidencias encontradas para esta familia, se consideró prematuro distinguir las especies crípticas en ausencia de otras evidencias, como filogenias con más marcadores genéticos, muestras de otras localidades y estudios ecológicos (Hedin, 1997, 2001; Bond y Sierwald, 2002; Bond, 2004; Hendrixson y Bond, 2005).

Estimadores de diversidad

Curvas de acumulación de especies. Los resultados de las curvas de acumulación de especies para cada localidad muestran los signos típicos de un inventario incompleto (Gráfs._5 16‐19): las curvas de especies observadas se encuentran sustancialmente por debajo de las curvas de los estimadores, las curvas de los singletons y doubletons siguen creciendo y en todos los casos ninguna de las curvas llega a la asíntota (Colwell y Coddington, 1994). Las curvas de acumulación de especies moleculares para Corinnidae, Linyphiidae, Oonopidae y Uloboridae (IB; Gráfico_4. 10) y Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 221 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Conclusiones las realizadas por Smith y colaboradores (2009) para las avispas parasitoides también muestran los signos de un inventario incompleto. Aun así, al agregar individuos juveniles identificados mediante secuencias de ADN, lo que incrementa la riqueza y la abundancia de las muestras, las curvas siguen reflejando el mismo patrón (Gráfico_4. 10). Recientemente, Coddington y colaboradores (2009) presentaron resultados que indican que para obtener estimadores no paramétricos convincentes de riqueza en los inventarios de artrópodos tropicales se requiere de una intensidad de muestreo mayor a 340 (Coddington et al., 2009). La intensidad de muestreo calculada para cada una de las localidades, para todas en su conjunto (Tabla_5. 5) y para los estudios moleculares varió entre 7‐21, más de diez veces menor al valor recomendado. Los porcentajes promedio de las especies raras identificadas con el método integrativo para todas las localidades son de un 29% de singletons y un 11% de doubletons, lo que significa de un total de 548 especies/morfo‐especies, 160 están representadas por un único individuo y 59 por dos. En el Capítulo 4 también se calcularon los porcentajes de las especies raras, pero esta vez considerando solo los especímenes identificados mediante el modelo GMYC (IB) e incluyendo a estadios inmaduros. Hay que recordar que esta es la primera vez que se utilizan individuos juveniles en las curvas de acumulación de especies (Gráf_4. 10). Los porcentajes calculados son similares a los anteriores, de un 34% de singletons y un 12% de doubletons en un total de 133 GMYC clusters. Utilizando ambos métodos de identificación estos resultados son comparables al porcentaje promedio de singletons en más de 70 inventarios de diversos artrópodos tropicales, que fue del 32% en promedio (Coddington et al., 2009). Dadas las evidencias de las curvas de acumulación de especies con cada uno de los métodos de identificación, no se puede pasar por alto la recomendación de Coddington y colaboradores (2009) de realizar en primera instancia muestreos muy intensivos en los inventarios de diversidad de artrópodos tropicales para aumentar la intensidad de muestreo y así disminuir la frecuencia de especies raras para obtener estimadores de riqueza creíbles.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 222 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Conclusiones

Diversidad alfa. En el Capítulo 1 de diversidad de la familia Theridiosomatidae, en el Capítulo 4 de curvas de acumulación de especies incluyendo a individuos juveniles, y en el Capítulo 5 de evidencia total, se analizaron las implicancias que tienen cada uno de los métodos de identificación a la hora de reflejar la diversidad alfa. En cada uno de estos capítulos, observamos que la riqueza de las localidades decrece conforme al método utilizado: IB‐II‐IR. La diferencia en el número de especies entre los métodos de identificación no resultó significativa (Capítulo 1 y 5). Sin embargo, al incluir los especímenes juveniles en los análisis de estimas de diversidad, las riquezas obtenidas con IR e IB respectivamente resultaron significativamente diferentes (Gráf_4. 10). Estos resultados difieren de los encontrados por Smith y colaboradores (2005, 2009) que no encontraron diferencias significativas entre las identificaciones moleculares y tradicionales. Los fenómenos que engloban las similitudes y diferencias entre los métodos de identificación recopilados en cada uno de los capítulos son: 1) especies que se corresponden uno a uno con cada método; 2) especies crípticas que son idénticas morfológicamente pero difieren en su código de barras; 3) especies endémicas reveladas por el código de barras y confirmadas por morfología; 4) especies sinonimizadas en el caso de machos y hembras mal pareados o de errores de determinación; 5) nuevas especies putativas representadas solo por juveniles (ver arriba). Estos fenómenos revelan las ventajas y desventajas de los métodos de IR e IB. Por un lado, la ventaja del método de IR es generar una una base taxonómica aproximada de hipótesis de especies biológicas en un tiempo relativamente breve, pero la desventaja es la subestimación de la riqueza dada por la falta de acceso a los haplotipos endémicos, a caracteres diagnósticos de la morfología genital interna, y a la imposibilidad de distinguir especies representadas por juveniles. Por otro lado, la gran ventaja del método IB es la resolución de los problemas anteriores, pero la desventaja radica en la sobreestimación de la diversidad alfa dada por las haplotipos endémicos. Cada método presenta soluciones a las desventajas del otro y su uso conjunto brinda un espectro más amplio en la estimación de la diversidad alfa. Este efecto se refleja en los resultados del método II.

De todas maneras, los estimadores de diversidad alfa para cada localidad cambian en valores absolutos dependiendo del método de identificación, pero no Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 223 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Conclusiones cambian en sus valores relativos con respecto a las localidades. Las desventajas de cada método afectan de la misma manera a la riqueza obtenida para cada localidad. Por lo tanto, el método de IB puede utilizarse para obtener estimadores de la riqueza de especies sin generar una base de datos morfológica previa, con el costo de perder la información de las especies a las que hace referencia. Sin embargo, al generar una base de referencia de especies determinadas con sus códigos de barra, el aporte más importante de esta Tesis, esta información puede volver a utilizarse en los próximos inventarios que se realicen en la región. Se ha generado una base de referencia de 548 especies determinadas de una manera integrativa asociada a 3553 secuencias de ADN. De esa manera, se obtendrán muchas determinaciones taxonómicas de las secuencias que aporten estos inventarios.

Diversidad beta y endemismo. En contraste con la diversidad alfa, observamos que la diversidad beta se comporta de forma inversa. La diversidad beta decrece, hasta hacerse nula en algunos casos, según el método utilizado: IR‐II‐IB. Por lo tanto, al utilizar el método de IR se obtiene una riqueza baja con una alta superposición de especies entre localidades y, al utilizarse el método de IB se obtiene un mayor número de especies, la mayoría de ellas endémicas. Los valores de complementariedad y de similitud obtenidos por el método por II son mayores al 90% o menores al 20% respectivamente, para todos los pares de localidades, con excepción del par COPE‐ PNAC que comparten un 30% de sus especies. El descubrimiento de haplotipos endémicos surgió en ambos estudios de beta diversidad realizados con el método IB. Según estos resultados, los endemismos haplotípicos serían la regla, más que la excepción, en las especies de arañas de los bosques montanos de Panamá.

Los juveniles valen

La proporción promedio de especímenes juveniles en nuestras muestras fue del 64%, similar a los valores reportados en otros estudios de diversidad de artrópodos en las regiones Neotropical y Paleártica (Scharff et al., 2003; Coddington et al., 2009). Los Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 224 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Conclusiones individuos juveniles en la mayoría de los casos son descartados de los inventarios porque no se logran identificar, perdiendo así la oportunidad de reconocer parte de la diversidad. .El método de IR propuesto en esta Tesis no considera la información de los juveniles ya que carecen de los caracteres diagnósticos específicos. Sin embargo, el método de IB sí los puede considerar. Nuevas especies putativas surgen de los especímenes inmaduros secuenciados, los cuales forman sus propios clusters moleculares en los análisis filogenéticos (Gráf_3. 1; Gráfs_4. 1‐9). En total, 10% de las especies delimitadas por IB corresponden a juveniles o sacos de huevos cuyos adultos no fueron colectados en el campo. Nuevamente se vislumbra otra de las desventajas del método IR que es saldada por el método IB, que al considerar la información de los juveniles incrementa la riqueza de especies en cada localidad. Por otro lado, la inclusión de individuos juveniles no solo agrega especies observadas no encontradas entre los adultos, sino que aumenta la abundancia de las especies determinadas inicialmente. Una vez generada la base de referencia de las especies determinadas con sus respectivos códigos de barra, es posible identificar estadios inmaduros (como ootecas y juveniles) a especie y detectar nuevas especies putativas no encontradas entre los adultos (Capítulo 3 y 4). Sin embargo, sin una base de referencia es muy difícil, casi imposible, determinar las formas juveniles de las arañas ya que carecen de los caracteres diagnósticos específicos.

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 225 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Conclusiones

OTRO SUEÑO ZEN

Estoy viajando en una bicicleta doble con un maestro Zen, él la está manejando. Estamos conduciendo sobre una ruta de tierra rodeada solamente por campo. No es una zona muy fértil, parece de transición… da la sensación que están a punto de ser sembrados. En nuestro recorrido damos con una Estancia que posee corrales, máquinas de campo antiguas, la vivienda de los dueños.

Atravesamos los caminos internos de la Estancia y, en una de las vueltas, nos topamos con el establo del lugar. Muchos caballos pasean al lado del cerco... me cautivan. Desciendo de la bicicleta y me acerco a ellos. La tropa de caballos se aleja del cerco pero solamente uno de ellos permanece a mi lado. De repente, algo insólito sucede. El caballo negro que se encuentra a mi lado se para sobre sus patas traseras y se le erizan las crines, a la vez que proyecta una iluminación blanca‐amarillenta que crece paulatinamente desde el centro de su cuerpo. Esta iluminación penetra en mi alma, siento que pertenezco a ella. Luego de este breve lapsus de tiempo infinito, el caballo se une a su tropa. Rápidamente, salto el cerco y voy en su búsqueda. Somos uno, no puedo dejarlo ir. Cuando logro abrazarme a él, sus dueños me toman por la espalda y me sacan del establo. Ellos no quieren que esté allí, me dejan nuevamente en el camino, con la bicicleta y el maestro Zen.

Antes de subirnos en la bicicleta, le pregunto al maestro Zen si puedo manejarla. Me mira profundamente y me aprueba en silencio. Seguimos por el camino de tierra, viajando largas distancias, durante varios días y noches, hasta llegar a la Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Los estudiantes de allí son gigantes y sus rostros me resultan familiares. Veo caras de personas que conocí desde el colegio primario hasta el ambiente universitario.

El maestro Zen se pone muy enfermo, comienza su camino a la inmortalidad. Lo esperan cerca de la costa para bendecirlo y despedirlo. Pero tengo un problema, no tengo suficiente tiempo para llevarlo allí en bicicleta. En los cielos, en las alturas, surcando el aire fresco, observo una gran sombra que desciende. Es él, yo, el caballo Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 226 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Conclusiones negro, transformado en dragón. La criatura tiene la misma esencia con la cual sintonicé en el establo. Volamos con él, llevamos al maestro a su destino. ¡Vuelo!

9 de diciembre del 2010

Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 227 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

REFERENCIAS

Ahrens, D., M. T. Monaghan y A. P. Vogler. 2007. DNA‐based taxonomy for associating adults and larvae in multi‐species assemblages of chafers (Coleoptera: Scarabaeidae). Molecular Phylogenetics and Evolution, 44: 436–449.

Austin, A. D. 1984. The fecundity, development and host relationships of Ceratobaeus spp. (Hymenoptera: Scelionidae), parasites of spider eggs. Ecological Entomology 9: 125‐138.

Ayoub, N. A., S.E. Riechert y R. L. Small. 2005. Speciation history of the North American funnel web spiders, Agelenopsis (Araneae: Agelenidae): Phylogenetic inferences at the population–species interface. Molecular Phylogenetics and Evolution, 36: 42‐ 57.

Baehr, B.C., M.S. Harvey, y H.M. Smith. 2010. The goblin spiders of the new endemic Australian Cavisternum (Araneae: Oonopidae). American Museum Novitates, 3684: 1–40.

Barrett, R. D. H. y Hebert, P. D. N. 2005. Identifying spiders through DNA barcodes. Canadian Journal of Zoology, 83 (3): 481–491. doi: 10.1139/Z05‐024.

Bickford, D., D. J. Lohman, N. S. Sodhi, P. K. L. Ng, R. Meier, K. Winker, K. K. Ingram y I. Das. 2007. Cryptic species as a window on diversity and conservation. TRENDS in Ecology and Evolution, 22 (3): 148‐155. doi: 10.1016/j.tree.2006.11.004.

Binford, G. J., M. S. Callahan, M. R. Bodner, M. R. Rynerson, P. B. Núñez, C. E. Ellison y R. P. Duncan. 2008. Phylogenetic relationships of Loxosceles and Sicarius spiders are consistent with Western Gondwanan vicariance. Molecular Phylogenetics and Evolution, 49: 538‐553. doi: 10.1016/j.ympev.2008.08.003.

Blaxter, M. 2003. Counting angels with DNA. Nature (Lond.), 421: 122‐124.

Blaxter, M. 2004. The promise of a DNA taxonomy. Philosophical Transactions ‐ Royal Society of London, Series B, Biological Sciences, 669–680. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 228 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Blaxter, M., y R. Floyd. 2003. Molecular taxonomics for biodiversity surveys: already a reality. TRENDS in Ecology and Evolution, 18 (6): 268‐269.

Blaxter, M., J. Mann, T. Chapman, F. Thomas, C. Whitton, R. Floyd, y E. Abebe. 2005. Defining operational taxonomic units using DNA barcode data. Philosophical Transactions ‐ Royal Society of London, Series B, 1‐9. doi: 10.1098/rstb.2005.1725

Bond, J. E. 2004. Systematics of Californian euctenizine spider genus Apomastus (Araneae: Mygalomorphae: Cyrtaucheniidae): the relationship between molecular and morphological taxonomy. Invertebrate Systematics, 18: 361‐376.

Bond, J. E., P. Sierwald. 2002. Cryptic speciation in the Anadenobolus excisus millipede species complex on the island of Jamaica. Evolution, 56 (6): 1123–1135.

Britton, T., C. L. Anderson, D. Jacquet, S. Lundqvist y K. Bremer. 2007. Estimating divergence times in large phylogenetic trees. Systematic Biology, 56: 741–752. http://www2.math.su.se/PATHd8/

Burger, M. 2009. Female genitalia of goblin spiders (Arachnida: Araneae: Oonopidae): a morphological study with functional implications. Invertebrate Biology, 128 (4): 340–358.

Burger, M. 2010. Complex female genitalia indicate sperm dumping in armored goblin spiders (Arachnida, Araneae, Oonopidae) Zoology, 113: 19–32.

Burger, M., M. Izquierdo, y P. Carrera. 2010. Female genital morphology and mating behavior of Orchestina (Arachnida: Araneae: Oonopidae). Zoology, 113: 100–109.

Carvalho, M. R., F. A. Bockmann, D. S. Amorim, C. R. F. Brandão, M. Vivo, J. L. Figueiredo, H. A. Britski, M. C. C. Pinna, N. A. Menezes y F. P. L. Marques. 2007. Taxonomic impediment or impediment to taxonomy? A commentary on systematics and the cybertaxonomic‐automation paradigm. Evolutionary Biology, 34 (3): 140–143. doi: 10.1007/s11692‐007‐9011‐6.

Caterino, M. S. y A. K. Tishechkin. 2006. DNA identification and morphological description of the first confirmed larvae of Hetaeriinae (Coleoptera: Histeridae). Systematic Entomology, 31: 405–418. doi: 10.1111/j.1365‐3113.2006.00338.x Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 229 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Chao, A., R. L. Chazdon, R. K. Colwell y T. Shen. 2005. Un nuevo método estadístico para la evaluación de la similitud en la composición de especies con datos de incidencia y abundancia. Capítulo 7, en Sobre Diversidad Biológica: El significado de las diversidades alfa, beta y gamma. (Eds. G. Halffter, J. Soberón, P. Koleff y A. Melic). m3m: Monografías Tercer Milenio, 4, Sociedad Entomológica Aragonesa, Zaragoza, España.

Clement, M., D. Posada y K. A. Crandall. 2000. TCS: a computer program to estimate gene genealogies. Molecular Ecology, 9: 1657–1659.

Cobb, L. M., y V. A. Cobb. 2004. Occurrence of parasitoid wasps, Baeus sp. and Gelis sp., in the egg sacs of the wolf spiders, Pardosa moesta and Pardosa sternalis (Araneae, Lycosidae) in southeastern Idaho. Canadian Field‐Naturalist, 118 (1): 122‐123.

Coddington, J. A. 1986. The genera of the spider family Theridiosomatidae. Smithsonian Contribution to Zoology, 422: 1–96.

Coddington, J. A. 1990. Review of Advances in 1981‐1987: A supplement to Brignoli's A catalog of the Araneae described between 1940 and 1981. by N. L. Platnick 1989. (Edited by P. Merrett). Manchester University Press. The Journal of Arachnology, 18 (2): 245‐248.

Coddington, J. A. y H. W. Levi. 1991. Systematics and Evolution of Spiders (Araneae) Annual Review of Ecology and Systematics, 22: 565‐592.

Coddington, J. A., C. E. Griswold, D. S. Dávila, E. Peñaranda, y S. F. Larcher. 1991. Designing and testing sampling protocols to estimate biodiversity in tropical ecosystems. Pp. 44–60 in The Unity of Evolutionary Biology: Proceedings of the Fourth International Congress of Systematics and Evolutionary Biology (E. C. Dudley, ed.) Discorides Press, Portland, Oregon, USA.

Coddington, J. A., L. H. Young y F. A. Coyle. 1996. Estimating spider species richness in a southern appalachian cove hardwood forest. The Journal of Arachnology, 24: 111– 128. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 230 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Coddington, J. A., G. Giribet, M. S. Harvey, L. Prendini y D. E. Walter. 2004. Arachnida. Pp. 296–318 in Cracraft, J., y M. J. Donoghue (eds.). Assembling the Tree of Life. New York, NY: Oxford University Press.

Coddington, J. A., I. Agnarsson, J. A. Miller, M. Kunter y G. Hormiga. 2009. Undersampling bias: the null hypothesis for singleton species in tropical surveys. Journal of Animal Ecology, 78 (3): 573–584.

Colwell, R. K. y J. A. Coddington. 1994. Estimating terrestrial biodiversity through extrapolation. Philosophical Transactions of the Royal Society of London B Biological Sciences, 345: 101–118.

Colwell, R. K. 2004. EstimateS: Statistical Estimation of Species Richness and Shared Species from Samples (Software and User's Guide), version 7.5. http://viceroy.eeb.uconn.edu/estimates.

Colwell, R. K., C. X. Mao y J. Chang. 2005. Interpolando, extrapolando y comparando las curvas de acumulación de especies basadas en su incidencia. Capítulo 6, en Sobre Diversidad Biológica: El significado de las diversidades alfa, beta y gamma. (Eds. G. Halffter, J. Soberón, P. Koleff y A. Melic). m3m: Monografías Tercer Milenio, 4, Sociedad Entomológica Aragonesa, Zaragoza, España.

Dayrat, B. 2005. Towards integrative taxonomy. Biological Journal of Linnean Society, 85: 407–415.

DeSalle, R. 2006. Species discovery versus species identification in DNA barcoding efforts: Response to Rubinoff. Conservation Biology, 20 (5): 1545–1547.

DeSalle, R. 2007. Phenetic and DNA taxonomy; a comment on Waugh. BioEssays, 29: 1289–1290.

Diasa, S. C., L. S. Carvalhob, A. B. Bonaldo y A. D. Brescovit. 2010. Refining the establishment of guilds in Neotropical spiders (Arachnida: Araneae). Journal of Natural History, 44 (3‐4): 219–239.

Draney, M. L. y D. J. Buckle. 2005. Linyphiidae. p. 124 in D. Ubick, P. Paquin, P.E. Cushing y V. Roth (eds.) Spiders of North America: an identification manual. American Arachnological Society. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 231 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Edgar, R. C. 2004. MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput. Nucleic Acids Research, 32: 1792–1797.

Erwin, T. L. 1991. How many species are there? Revisited. Consevation Biology, 5 (3): 330‐333.

Fannes, W., D. De Bakker, K. Loosveldt, y R. Jocqué. 2008. Estimating the diversity of arboreal oonopid spider assemblages (Araneae, Oonopidae) at Afrotropical sites. Journal of arachnology, 36: 322–330.

Fisher, B. L., y M. A. Smith. 2008. A revision of Malagasy Species of Anochetus Mayr and Odontomachus Latreille (Hymenoptera: Formicidae). Plos One, 3 (5): e1787.

Foelix, R. F. 2011. Biology of spiders. Third Edition. Oxford University Press.

Folmer, O., M. Black, W. Hoeh, R. Lutz y R. Vrijenhoek. 1994. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Molecular Marine Biology and Biotechnology, 3: 294– 299.

Garb, J. E. y R. G. Gillespie. 2006. Island hopping across the central Pacific: mitochondrial DNA detects sequential colonization of the Austral Islands by crab spiders (Araneae: Thomisidae). Journal of Biogeography, 33: 201–220.

Greenstone, M. H., D. L. Rowley, U. Heimbach, J. G. Lundgren, R. A. Pfannenstiel y S. A. Rehner. 2005. Barcoding generalist predators by polymerase chain reaction: carabids and spiders. Molecular Ecology, 14: 3247–3266.

Grismado, C. J., C. Deeleman y B. Baehr. 2011. The Goblin Spider Genus Aprusia Simon, 1893 (Araneae: Oonopidae). American Museum Novitates, 3706: 1–21.

Griswold, C. E., J. A. Coddington, G. Hormiga, N. Scharff. 1998. Phylogeny of the orb‐ web building spiders (Araneae, Orbiculariae: Deinopoidea, Araneoidea). Zoological Journal of the Linnean Society, 123: 1–99.

Griswold, C. E., H.‐M. Yan. 2003. On the egg‐guarding behavior of a Chinese symphytognathid spider of the genus Patu Marples, 1951 (Araneae, Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 232 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Araneoidea, Symphytognathidae). Proceedings of the California Academy of Science 54, 356–360.

Hajibabaei, M., D. H. Janzen, J. M. Burns, W. Hallwachs, y P. D. N. Hebert. 2006. From the Cover: DNA barcodes distinguish species of tropical Lepidoptera 10.1073/pnas.0510466103. PNAS, 103: 968–971.

Hall, T. A. 1999. BioEdit: a user‐friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symposium Serie 41: 95– 98.

Hebert, P. D. N., S. Ratnasingham, y J. R. deWaard. 2003a. Barcoding animal life: cytochrome c oxidase subunit 1 divergences among closely related species. Proceedings of the Royal Society of London, Series B, Biological Sciences 270, Supplement 1: S96–9.

Hebert, P. D. N., A. Cywinska, S. L. Ball y J. R. deWaard. 2003b. Biological identification through DNA barcodes. Proceedings of the Royal Society of London, Series B, Biological Sciences, 270: 313–321.

Hebert, P. D. N., E. H. Penton, J. M. Burns, D. H. Janzen, y W. Hallwachs. 2004b. Ten species in one: DNA barcoding reveals cryptic species in the neotropical skipper butterfly Astraptes fulgerator. PNAS, 101 (41): 14812–14817. www.pnas.org/cgi/doi/10.1073/pnas.0406166101.

Hebert, P. D. N., M. Y. Stoegckle, T. S. Zemlak, y C. M. Francis. 2004b. Identification of Birds through DNA Barcodes. Plos Biology, 2: 1657–1663.

Hedin, M. C. 1997. Molecular Phylogenetics at the Population/Species Interface in Cave Spiders of the Southern Appalachians (Araneae: Nesticidae: Nesticus). Molecular Phylogenetics and Evolution, 14 (3): 309–324.

Hedin, M. C. 2001. Molecular insights into species phylogeny, biogeography, and morphological stasis in the ancient spider genus Hypochilus (Araneae, Hypochilidae). Molecular Phylogenetics and Evolution, 18 (2): 238–251.

Hennig, W. 1966. Phylogenetic Systematics. University of Illinois Press, Urbana, IL. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 233 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Hendrixson B. E., J. E. Bond. 2005. Testing species boundaries in the Antrodiaetus unicolor complex (Araneae: Mygalomorphae: Antrodiaetidae): “Paraphyly” and cryptic diversity. Molecular Phylogenetics and Evolution, 36: 405–416.

Heywood, V. H. (ed). 1995. The Global Biodiversity Assessment. United Nations Environment Programme. Cambridge University Press, Cambridge. Pp . xi + 1140.

Hormiga, G. 2002. Orsonwelles, a new genus of giant linyphiid spiders (Araneae) from the Hawaiian Islands. Invertebrate Systematics, 16: 369–448.

Ivanova, N. V., J. deWaard, P. D. N. Hebert. 2006. An inexpensive, automation‐friendly protocol for recovering high‐quality ADN. Molecular Ecology Notes, 6: 998–1002.

Ivanova, N. V. y C. M. Grainger. 2007. CCDB Protocols, COI Amplification. http://www.dnabarcoding.ca/CCDB_DOCS/CCDB_Amplification.pdf (último accesso: 27.VI.2011).

Johannesen J., Y. Lubin, D. R. Smith, T. Bilde y J. M. Sneider. 2007. The age and evolution of sociality in Stegodyphus spiders: a molecular phylogenetic perspective. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences, 274: 231‐237. doi: 10.1098/rspb.2006.3699.

Keyserling, G. E. 1886. Die Spinnen Amerika, Theriididae, Hälfte II. Harvard University Press.

Khmelik, V. V., D. Kozub y A. Glazunov. 2006. Helicon Focus versiones 3.10.3. y 4.01 http://helicon.com.ua/heliconfocus/

Kimura, M. 1980. A simple method for estimating evolutionary rates of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. Journal of Molecular Evolution, 16: 111‐120.

Köhler, F. 2007. From DNA taxonomy to barcoding — how a vague idea evolved into a biosystematic tool. Mitt. Mus. Nat.kd. Berl., Zool. Reihe 83, Supplement, 44–51. doi: 10.1002/mmnz.200600025. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 234 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Librado, P. y J. Rozas. 2009. DnaSP v5: A software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics, 25: 1451‐1452. doi: 10.1093/bioinformatics/btp187.

Linnaeus, C. 1753. Species Plantarum Laur. Salvius.

Linnaeus, C. 1758. Systema Naturae, Editio decima Laur. Salvius.

Lopardo, L., G. Giribet y G. Hormiga. 2010. Morphology to the rescue: molecular data y the signal of morphological characters in combined phylogenetic analyses—a case study de mysmenid spiders (Araneae, Mysmenidae), with comments on the evolution of web architecture. Cladistics, 27: 278–330.

Lou, M. y G. B. Golding. 2007. Fingerprint: visual depiction of variation in multiple sequence alignments. Molecular Ecology Notes, doi: 10.1111/j.1471‐ 8286.2007.01904.x.

Mallet, J. 1995. "The species definition for the modern synthesis", TRENDS in Ecology and Evolution 10 (7): 294‐299.

Mallet, J., y K. Willmott. 2003. Taxonomy: renaissance or Tower of Babel? TRENDS in Ecology and Evolution, 18 (2): 57‐59.

May, R. M. 1990. How Many Species? Philosophical Transactions: Biological Sciences, 330 (1257): 293‐304.

Mayr, E. 1963. Animal Species and Evolution, Harvard University Press.

Mayr, E. 1969. Principles of systematic zoology. New York, McGraw‐Hill.

Messing, J. 1983. New M13 vectors for cloning. Methods in Enzymology, 101, 20–78.

Meyer, C. P. y G. Paulay. 2005. DNA Barcoding: Error Rates Based on Comprehensive Sampling. Plos Biology, 3: 2229–2237.

Miller, J. A., C. E. Griswold y C. M. Yin. 2009. The symphytognathoid spiders of the Gaoligongshan, Yunnan, China (Araneae, Araneoidea): Systematics y diversity of micro‐orbweavers. ZooKeys, 11: 9–195. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 235 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Monaghan, M. T., R. Wild, M. Elliot, T. Fujisawa, M. Balke, D. J. G. Inward, D. C. Lees, R. Ranaivosolo, P. Eggleton, T. G. Barraclough, A. P. Vogler. 2009. Accelerated species inventory on Madagascar using coalescent‐based models of species delineation. Systematic Biology, 58: 298–311.

Mora, C., D.P. Tittensor, S. Adl, A. G. B. Simpson y B. Worm. 2011. How many species are there on Earth and in the Ocean? PLoS Biolology, 9 (8): e1001127. doi: 10.1371/journal.pbio.1001127.

Moritz, C. y C. Cicero. 2004. DNA Barcoding: Promise and Pitfalls. PLoS Biology, 2:e354.

Myers, N., R. A. Mittermeier, C. G. Mittermeier, G. A. B. da Fonseca, J. Kent. 2000. Biodiversity hotspots for conservation priorities. Nature (Lond.), 403: 853–858.

Neigel, J. E. 1997. A comparison of alternative strategies for estimating gene flow from genetic markers. Annual Review of Ecology and Systematics, 28: 105–28.

Nelson, G., y N. I. Platnick. 1981. Systematics and Biogeography: Cladistics and Vicariance. Columbia University Press, New York.

Oliver, I. y A. J. Beattie. 1996. Invertebrate Morphospecies as Surrogates for Species: A Case Study. Conservation Biology, 10 (1): 99‐109.

Ono, H. y E. Shinkai. Theridiosomatidae, Symphytognathidae. In Ono, H. (ed.), The Spiders of Japan with keys to the families y genera y illustrations of the species. Tokai University Press, Kanagawa, pp. 394–398.

Opell, B. D. 1996. Functional Similarities of Spider Webs with Dense Architectures. American Naturalis, 148 (4): 630–648.

Opell, B. D. 2005. Uloboridae. p. 250 in D. Ubick, P. Paquin, P.E. Cushing y V. Roth (eds.) Spiders of North America: an identification manual. American Arachnological Society.

Owen, J., H. Townes y M. Townes. 1981. Species diversity of Ichneurnonidae and Serphidae (Hymenoptera) in an English suburban garden. Biological Journal of the Linnean Society, 16: 315‐336. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 236 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Parenti, L. R. y M. C. Ebach. 2009. Comparative biogeography discovering and classifying biogeographical patterns of a dynamic Earth. University of California Press, Berkeley Los Angeles London, pp. 313.

Paquin, P. y M. Hedin. 2004. The power and perils of ‘molecular taxonomy’: a case study of eyeless and endangered Cicurina (Araneae: Dictynidae) from Texas caves. Molecular Ecology, 13: 3239‐3255.

Pimm, S. L., G. J. Russell, J. L. Gittleman y T. M. Brooks. 1995. The future of biodiversity. Science, New Series, 269 (5222): 347‐350.

Pires, A. C., y L. Marinoni. 2010. DNA barcoding and traditional taxonomy unified through Integrative Taxonomy: a view that challenges the debate questioning both methodologies. Biota Neotropica, 10 (2): 339‐346.

Platnick, N.I. 2012. The world spider catalog, version 12.5. American Museum of Natural History, NY. http://research.amnh.org/entomology/spiders/catalog/ (último acceso: 9.I.2012).

Platnick, N.I., y N. Dupérré. 2009a. The goblin spider genera Opopaea and Epectris (Araneae, Oonopidae) in the New World. American Museum Novitates, 3649: 1– 43.

Platnick, N.I., y N. Dupérré. 2009b. The American goblin spiders of the new genus Escaphiella (Araneae, Oonopidae). Bulletin of the American Museum of Natural History, 328: 1–151.

Platnick, N.I., y N. Dupérré. 2009c. The goblin spider genus Heteroonops (Araneae, Oonopidae), with notes on Oonops. American Museum Novitates, 3672: 1–72.

Pons, J., T.G. Barraclough, J. Gomez‐Zurita, A. Cardoso, D. P. Duran, S. Hazell, S. Kamoun, O. D. Sumlin y A. P. Vogler. 2006. Sequence‐Based Species Delimitation for the ADN Taxonomy of Undescribed Insects. Systematic Biology, 55: 595–609.

Posada, D. 2004. Collapse: Describing haplotypes from sequence alignments. Version 1.2. Vigo, Spain: University of Vigo. http://darwin.uvigo.es/software/collapse.html Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 237 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Prendini, L. 2005. Comment on “Identifying spiders through DNA barcodes”. Canadian Journal of Zoology, 83 (3): 498–504. doi: 10.1139/Z05‐025.

Rambaut, A. 2006‐2009. Tree Figure Drawing Tool Version 1.2.3. Institute of Evolutionary Biology, University of Edinburgh. http://tree.bio.ed.ac.uk/

Randrianiaina, R. D., F. Glaw, M. Thomas, J. Glos, N. Raminosoa y M. Vences. 2007. Descriptions of the tadpoles of two species of Gephyromantis, with a discussion of the phylogenetic origin of direct development in mantellid frogs. Zootaxa, 1401: 53–61.

Ratnasingham, S., y P. D. N. Hebert. 2007. BOLD: the Barcode of Life Data System (www.barcodinglife.org). Molecular Ecology Notes, 7: 355–364.

Robinson, E. A., G. A. Blagoev, P. D. N. Hebert y S. J. Adamowicz. 2009. Prospects for using DNA barcoding to identify spiders in species‐rich genera. ZooKeys, 16: 27‐46. doi: 10.3897/zookeys.16.239

Rodrigues, E. N. L. y R. Ott. 2005a. Nova espécie de Theridiosoma (Araneae, Theridiosomatidae) do sul do Brasil. Iheringia, Série Zoologia, Porto Alegre, 95 (1): 79–81.

Rodrigues, E. N. L. y R. Ott. 2005b. Aranhas da família Theridiosomatidae: espécie nova e novas ocorrências no Brasil. Iheringia, Série Zoologia, Porto Alegre, 95 (4): 441‐ 443.

Rodrigues, E. N. L. y A. A. Lise. 2008. Description of two new species of Naatlo (Araneae: Theridiosomatidae) de . Revista brasileira de Zoologia, 25: 299– 308.

Rodman, J. E., y J. H. Cody. 2003. The taxonomy impediment overcome: NSF´s Partnerships for Enhancing Expertise in Taxonomy (PEET) as a model. Systematic Biology, 52 (3): 428–435.

Rubinoff, D. 2006. Utility of mitochondrialDNA barcodes in species conservation. Conservation Biology, 20 (4): 1026–1033. doi: 10.1111/j.1523–1739.2006. 00372.x. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 238 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Rubio, G. D., J. A. Corronca y M. P. Damborsky. 2008. Do spider diversity and assemblages change in different contiguous habitats? A case study in the protected habitats of the humid Chaco Ecoregion, Northeast Environmental Entomology, 37 (2): 419‐430.

Saitou, N., y M. Nei. 1987. The neighbor‐joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees. Molecular Biology Evolution. 4 (4): 406‐425.

Sanger, F., S. Nicklen y A. R. Coulson. 1977. PNAS, 74: 5463–5467.

Scharff, N., J. Coddington, C. E. Griswold, G. Hormiga y P. De Place Bjorn. 2003. When to quit? Estimating spider species richness in a northern european deciduous forest. Journal of Arachnology, 31: 246–273.

Schuh, R. T. 2000. Biological Systematics. Cornell University Press, New York.

Schütt, K. 2003. Phylogeny of Symphytognathidae s.l. (Araneae, Araneoidea). Zoologica Scripta, 32: 129–151.

Scoble, M. J. 2004. Unitary or unified taxonomy? Philosophical Transactions ‐ Royal Society of London, Series B, Biological Sciences, 359: 699–710.

Shenoy, B. D., R. Jeewon y K. D. Hyde. 2007. Impact of DNA sequence‐data on the taxonomy of anamorphic fungi. Fungal Diversity, 26: 1‐54.

Shinkai, E. Two new species of the genera Wendilgarda y Patu de Japan (Araneae: Theridiosomatidae y Symphytognathidae). In Ono, H. (ed.), The Spiders of Japan with keys to the families y genera y illustrations of the species. Tokai University Press, Kanagawa, pp. 75–77.

Shultz, J. W. 2007. A phylogenetic analysis of the orders based on morphological characters. Zoological Journal of the Linnean Society, 150, 221–265.

Simon, C., F. Frati, A. Bechenbach y B. Crespi. 1994. Evolution, weighting, and phylogenetic utility of mitochondrial gene sequence and compilation of conserved polymerase chain reaction primers. Annals Entomological Society Americana, 87: 651‐701. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 239 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Smith, M. A., B. L. Fisher, y P. D. N. Hebert. 2005. DNA barcoding for effective biodiversity assessment of a hyperdiverse arthropod group: the ants of Madagascar. Philosophical Transactions ‐ Royal Society of London, Series B, Biological Sciences, 1825–1834.

Smith, M. A., J. Fernandez‐Triana, R. Roughley y P. D. N. Hebert. 2009. DNA barcode accumulation curves for understudied taxa and areas. Molecular Ecology Resources, 9 (Suppl. 1): 208–216. doi: 10.1111/j.1755‐0998.2009.02646.x

Sørensen, L. L., J. Coddington y N. Scharff. 2002. Inventoring and estimating subcanopy spider diversity using semiquantitative sampling methods in an Afromontane forest. Environmental Entomology, 31: 319–330.

Stamatakis, A., P. Hoover y J. Rougemont. 2008. A rapid bootstrap algorithm for the RAxML web‐servers. Systems Biology 75 (5): 758‐771. http://phylobench.vital‐ it.ch/raxml‐bb/

StatSoft, Inc. 2004. STATISTICA (data analysis software system), version 7. www.statsoft.com.

Stockman, A. K. y J. E. Bond. 2007. Delimiting cohesion species: extreme population structuring and the role of ecological interchangeability. Molecular Ecology, 16: 3374‐3392. doi: 10.1111/j.1365‐294X.2007.03389.x.

Stoeckle, M. 2003. Taxonomy, DNA, and the bar code of life. Bioscience, 53: 2–3.

Stoeckle, M., D. Janzen, W. Hallwachs, J. Hanken, y J. Baker. 2003. Taxonomy, DNA, and the barcode of life. Draft conference report. Barcode Conference 2003. The Rockefeller University, New York. http://phe.rockefeller.edu/BarcodeConference/docs/B2summary.doc (último acceso: 17.II.2006)

Stork, N. E. 1988. Insect diversity: facts, fiction and speculation. Biological Journal of the Linnean Society, 35: 321‐337.

Stork, N. E. 1993. How many species are there? Biodiversity and Conservation, 2: 215‐ 232. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 240 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Stöver, B. C. y K. F. Müller. 2010. TreeGraph 2: Combining and visualizing evidence from different phylogenetic analyses. BMC Bioinformatics, 11: 7.

Tamura K., J. Dudley, M. Nei y S. Kumar. 2007. MEGA4: Molecular Evolutionary Genetics Analysis (MEGA) software version 4.0. Molecular Biology and Evolution, 24: 1596‐1599.

Tautz, D., P. Arctander, A. Minelli, R. H. Thomas y A. P. Vogler. 2003. A plea for DNA taxonomy. TRENDS in Ecology and Evolution, 18 (2): 70‐74.

Thiele, K., y Yeates, D. 2002. Tension arises from duality at the heart of taxonomy. Nature (Lond.), 419: 337.

Ubick, D. 2005. Oonopidae. p. 185 in D. Ubick, P. Paquin, P.E. Cushing y V. Roth (eds.) Spiders of North America: an identification manual. American Arachnological Society.

Ubick, D. y D. B. Richman. 2005. Corinnidae. p. 79 in D. Ubick, P. Paquin, P.E. Cushing y V. Roth (eds.) Spiders of North America: an identification manual. American Arachnological Society.

Vogler A. P., y M. T. Monaghan. 2007. Recent advances in DNA taxonomy. Journal of Zoological Systematics and Evolutionary Research, 45: 1–10.

Wang, Q., S. Li, R. Wang y P. Paquin. 2008. Phylogeographic analysis of Pimoidae (Arachnida: Araneae) inferred from mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I and nuclear 28S rRNA gene regions. Journal of Zoological Systematics and Evolutionary Research. doi: 10.1111/j.1439‐0469.2007.00441.x.

Ward, R. D., T. S. Zemlak, B. H. Innes, P. R. Last y P. D. N. Hebert. 2005. DNA barcoding Australia's fish species. Philosophical Transactions ‐ Royal Society of London, Series B, Biological Sciences, 1847–1858.

Watson, R. T., B. Dias, R. Gámez, V. H. Heywood, T. Janetos, W.V. Reid y G. Ruark. 1995. Global Biodiversity Assessment. Summary for Policy‐Makers. Published for the United Nations Environment Programme by Cambridge University Press, Cambridge. pp. vii + 46. Evaluación de Identificaciones Taxonómicas Mediante Código 241 de Barras del ADN en un Grupo Tropical Megadiverso Referencias

Waugh, J. 2007. DNA barcoding in animal species: progress, potential and pitfalls. BioEssays, 29: 188–197.

Wheeler, Q. D. 2003. Transforming taxonomy. The Systematist, 22: 3–5. Disponible en http://www.systass.org/newsletter/newsletter1203.pdf

Wheeler, Q. D. 2004. Taxonomic triage and the poverty of phylogeny. Philosophical Transactions ‐ Royal Society of London, Series B 359, 571–583. doi: 10.1098/rstb.2003.1452.

Wheeler, Q. D. 2005. Losing the plot: DNA ‘‘barcodes’’ and taxonomy. Cladistics, 21: 405–407.

Wheeler, Q. D., y R. Meier. 2000. Species concepts and phylogenetic theory: A debate. Columbia University Press, New York.

Wheeler, Q. D., y N. I. Platnick. 2000. "The phylogenetic species concept (sensu Wheeler y Platnick)", en Q. D. Wheeler y R. Meier (eds.), Species concepts and phylogenetic theory: A debate. Columbia University Press, New York: 55–69.

Wheeler, Q. D., P.H. Raven y E.O. Wilson. 2004. Taxonomy: impediment or expedient? Science (Wash., D.C.), 303: 285.

Whittaker, R.H. 1972. Evolution and measurement of species diversity. Taxon, 21, 213‐ 251.

Wienskoski, E. 2010. The genus Naatlo (Araneae: Theridiosomatidae): distribution and taxonomic history. Revista Brasileira de Biociências, Porto Alegre, 8 (2): 131‐138.

Wilkins, J. S. 2011. Philosophically speaking, how many species concepts are there? Zootaxa, 2765: 58–60.

Wilson, E. O. 2004. Taxonomy as a fundamental discipline. Philosophical Transactions ‐ Royal Society of London, Series B 359, 739.

Zhang, Z. 2011. Describing unexplored biodiversity: Zootaxa in the International Year of Biodiversity. Zootaxa, 2768: 1–4.

Anexo_M 1. Registro de las localidades de Panamá, tipos de muestreo, referencias geográficas y colectores del inventariado PANCODING (2007‐2008). Provincia Localidad Acrónimo Sector Muestreo Latitud Chiriquí P. Internacional La Amistad PILA Cerro Picacho Inventario PANCODING: 1 hectárea 8°53’25.8” N Sendero Panamá No cuantitaitvo 8°53’37.8” N Sendero Retoño No cuantitaitvo 8°53’37.8” N Chiriquí Reserva Foretal Fortuna RFF Quebrada Honda Inventario PANCODING: 1 hectárea 8°45’00.3” N Quebrada Honda No cuantitaitvo 8°45’00.3” N Arroyo Scuta No cuantitaitvo 8°43’58.4” N Sendero Zamudio No cuantitaitvo 8°43’58.3” N Sendero Km 63 No cuantitaitvo 8°46’45.8” N Sendero Division No cuantitaitvo 8°47’07.0” N Coclé P.N. G.D. Omar Torrijos Herrera COPE El Cope Inventario PANCODING: 1 hectárea 8°40’5.1” N El Cope No cuantitaitvo 8°40’5.1” N Sendero Las Ranas No cuantitaitvo 8°40’5.3” N Corredor Los Helechos No cuantitaitvo 8°40’5.3” N Panamá P.N. Altos de Campana PNAC Sendero Podocarpus Inventario PANCODING: 1 hectárea 8°41’00.4” N Sendero Podocarpus No cuantitaitvo 8°41’00.4” N Anexo_M 1. Continuación. Acrónimo Longitud Altitud Fecha Colectores PILA 82°37’7.6” O 2299 m 12‐17.VI.2008 M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, L. Piacentini, M. Ramírez 82°36’54.3”O 2240 m 17‐18.VI.2008 F. Labarque, L. Piacentini 82°36’54.3” O 2240 m 10‐11.VI.2008 F. Labarque, M. Ramírez RFF 82°14’20.7” O 1135 m 7‐12.VI.2007 M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez 82°14’20.7” O 1135 m 21‐24.VI.2008 F. Labarque, L. Piacentini 82°14’32.7” O 1197 m 19‐20.VI.2008 F. Labarque, L. Piacentini 82°17’04.8” O 1360 m 20.VI.2008 F. Labarque, L. Piacentini 82°12’01.6” O 992 m 22.VI.2008 F. Labarque, L. Piacentini 82°12’51.5” O 1171 m 23.VI.2008 F. Labarque, L. Piacentini COPE 80°35’33.3” O 760 m 4‐9.VI.2008 M. Arnedo, L. Benavides, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez 80°35’33.3” O 760 m 4‐9.VI.2008 F. Labarque, M. Ramírez 80°35’33.6” O 790 m 3.VI.2008 F. Labarque 80°35’33.6” O 790 m 4.VI.2008 F. Labarque PNAC 79°55’47.4” O 895 m 14‐19.VI.2007 M. Arnedo, D. Dimitrov, G. Hormiga, F. Labarque, M. Ramírez 79°55’47.4” O 895 m 14‐19.VI.2007 F. Labarque, M. Ramírez Anexo_M 2. Referencias de los códigos únicos de lote para los especímenes colectados durante las Campañas 2007 y 2008 con métodos semi‐cuantitivos. Proyecto Localidad Método de ColectaHorario Muestra Fecha Colector Número de Lote Pancoding Spider S P. Internacional La Amistad A Beating B Diurna D Primera 1 07‐jun‐07 7 Miquel Arnedo A 3 dígitos ### Reserva Foretal Fortuna F Cryptic C Nocturna N Segunda 2 08‐jun‐07 8 Dimitar Dimitrov D P.N. Omar Torrijos Herrera T Looking down D 09‐jun‐07 9 Gustavo Hormiga H P.N. Altos de Campana C Looking up U 10‐jun‐07 A Facundo Labarque L 11‐jun‐07 B Martín Ramírez R 12‐jun‐07 C Ligia Benavides B 14‐jun‐07 D Luis Piacentini P 15‐jun‐07 E 16‐jun‐07 F 17‐jun‐07 G 18‐jun‐07 H 19‐jun‐07 I 04‐jun‐08 4 05‐jun‐08 5 06‐jun‐08 6 07‐jun‐08 7 08‐jun‐08 8 09‐jun‐08 9 12‐jun‐08 C 13‐jun‐08 D 14‐jun‐08 E 15‐jun‐08 F 16‐jun‐08 G 17‐jun‐08 H Anexo_M 3. Referencias de los códigos únicos de lote para los especímenes colectados durante las Campañas 2007 y 2008 con métodos no cuantitivos. Proyecto Localidad Método de Colecta Fecha Año Colector Número de Lote Pancoding Spider S P. Internacional La Amistad A Muestra No Cuantitativa NQ 03‐jun 3 2007 7 Facundo Labarque L 3 dígitos ### Reserva Foretal Fortuna F 04‐jun 4 2008 8 Luis Piacentini P P.N. Omar Torrijos Herrera T 05‐jun 5 Martín Ramírez R P.N. Altos de Campana C 06‐jun 6 07‐jun 7 08‐jun 8 09‐jun 9 10‐jun A 11‐jun B 12‐jun C 13‐jun D 14‐jun E 15‐jun F 16‐jun G 17‐jun H 18‐jun I 19‐jun J 20‐jun K 21‐jun L 22‐jun M 23‐jun N 24‐jun O 25‐jun P Anexo_M 4. Preparados realizados en los especímenes del inventario de biodiversidad semi‐cuantitativo PANCODING. Autores por orden alfabético: JMA, Andia Navarro, Juan Manuel; MLB, Barone, Mariana; FML, Labarque, Facundo Martín; LNP, Piacentini, Luis Norberto. [F, hembra; M, macho] N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio FML00453 SFD1NBH009 Trachelas prominens F FML00597 SFC1DCR025 Anapis sp.1 FML F FML00454 SFB1D9R019 Trachelas bispinosus F FML00598 SFC1DCR025 Anapis sp.1 FML F FML00455 SFB1DAL005 Trachelas bispinosus M FML00599 SFC1DCR025 Anapis sp.1 FML F FML00456 SFB1DAL005 Trachelas bispinosus M FML00600 SFC1DCR025 Anapis sp.1 FML F FML00457 SFC1NBR014 Megalostrata raptrix F FML00601 SFC1DCR025 Anapis sp.1 FML F FML00458 SFD1NBH008 Stethorrhagus sp.1 FML F FML00602 SFC1DCR025 Anapis sp.1 FML F FML00459 SFC1NAR007 Stethorrhagus sp.1 FML M FML00603 SFC1DCR025 Anapis sp.1 FML F FML00460 SFC1NAR007 Stethorrhagus sp.1 FML M FML00604 SFD1NBR020 Anapis sp.1 FML M FML00461 SFC1NAR002 Castianeira sp.1 FML M FML00605 SCU2NDH005 Anaptomecus sp.2 FML M FML00462 SFC1NAR002 Castianeira sp.1 FML M FML00606 SFB1D9A018 Parachemmis sp.3 FML F FML00463 SFU2N7D001 Corinna sp.1 FML F FML00607 SCD1NEH006 Corinna sp.1 FML M FML00464 SFB1D8H024 Stethorrhagus sp.2 FML F FML00608 SCD1NEH006 Corinna sp.1 FML M FML00465 SFB1D8L003 Parachemmis sp.1 FML M FML00609 STC1N5B014 Creugas sp.2 FML M FML00466 SFB1D8L003 Parachemmis sp.1 FML M FML00610 STC1N5B014 Creugas sp.2 FML M FML00467 SFU1N7R014 Corinna duke M FML00611 STB1D9A023 Tupirinna trilineata M FML00468 SFC1N7D008 Trachelas truncatulus M FML00612 STB1D9A023 Tupirinna trilineata M FML00469 SFC1N7D008 Trachelas truncatulus M FML00613 STU1N5H003 Creugas sp.3 FML M FML00470 SFC1N8A012 Castianeira sp.2 FML M FML00614 STU1N5H003 Creugas sp.3 FML M FML00471 SFC1N8A012 Castianeira sp.2 FML M FML00615 STB1D9R021 Castianeira sp.4 FML F FML00472 SFC2DCD005 Castianeira sp.2 FML F FML00616 STD1N5L011 Stethorrhagus sp.5 FML M FML00473 SFU1N8H016 Anapisona simoni F FML00617 STD1N5L011 Stethorrhagus sp.5 FML M FML00474 SFD1NAA002 Anapisona simoni M FML00618 STD1N6R010 Stethorrhagus sp.5 FML F FML00475 SFD1NAA002 Anapisona simoni M FML00619 STC1D9B006 Stethorrhagus sp.6 FML M FML00476 SFD1D8H023 Anapis monteverde F FML00620 STC1D9B006 Stethorrhagus sp.6 FML M FML00477 SFU1NAR028 Anapis monteverde M FML00621 STC1D5A009 Stethorrhagus sp.6 FML F FML00478 SFU1NAR028 Anapis monteverde M FML00622 SAC1DFH001 Stethorrhagus sp.7 FML F FML00479 SFU1NAR028 Anapis monteverde M FML00623 STC1D8R008 Stethorrhagus sp.8 FML F FML00480 SFC1NBR016 Pseudanapis gertschi F FML00624 SCD1NGA012 Stethorrhagus sp.4 FML M FML00481 SFD1NCH016 Anapis sp.1 FML F FML00625 SCD1NGA012 Stethorrhagus sp.4 FML M FML00482 SFD1DAR010 Anapis sp.1 FML M FML00626 SAC1NDL003 Trachelas sp.4 FML M FML00483 SFD1DAR010 Anapis sp.1 FML M FML00627 SAC1NDL003 Trachelas sp.4 FML M FML00484 SFD1DAR023 Anapis heredia F FML00628 SAC2NDR005 Trachelas trifidus F FML00485 SFD1NBR023 Anapis heredia M FML00629 SAC2NDR020 Trachelas sp.5 FML M FML00486 SFD1NBR023 Anapis heredia M FML00630 SAC2NDR020 Trachelas sp.5 FML M FML00487 SFD1NBR023 Anapis heredia M FML00631 SAU1NCB012 Trachelas sp.3 FML F FML00488 SFD1DAR023 Anapis heredia F FML00632 SAD1NHH015 Trachelas sp.3 FML M FML00489 SFD1D8H023 Anapis monteverde F FML00633 SAD1NHH015 Trachelas sp.3 FML M FML00490 SFD1NCH016 Anapis sp.1 FML F FML00634 SCD1DFR003 Philoponella sp.9 FML M FML00491 SFU1N8H016 Anapisona simoni F FML00635 SCD1DFH021 Philoponella sp.10 FML F FML00492 SFB1DCL030 Fluda sp.1 FML M FML00636 SCD1DFH021 Philoponella sp.10 FML F FML00493 SFB1DCL030 Fluda sp.1 FML M FML00637 SCU1NDR002 Miagrammopes aspinatus M FML00494 SFD1DAL002 Corythalia sp.1 FML M FML00638 SAB1DDH005 Miagrammopes sp.2 FML F FML00495 SFD1DAL002 Corythalia sp.1 FML M FML00639 SAB1DDH005 Miagrammopes sp.2 FML F FML00496 SFC1NBR002 Corythalia sp.2 FML M FML00640 SAU1NCL003 Miagrammopes sp.2 FML M FML00497 SFC1NBR002 Corythalia sp.2 FML M FML00641 SAU1NCL003 Miagrammopes sp.2 FML M FML00498 SFB1D9H018 Cotinusa sp.1 FML M FML00642 SAC1NHL016 Dysderina sp.5 FML M FML00499 SFB1D9H018 Cotinusa sp.1 FML M FML00643 SCC1NFR029 Dysderina sp.4 FML M FML00500 SFB1DBR010 Cylistella sp.1 FML M FML00644 SCC1DIL010 Dysderina dura M FML00501 SFB1DBR010 Cylistella sp.1 FML M FML00645 SAC1NDH017 Dysderina sp.6 FML M FML00502 SFD1NCH026 Cylistella sp.1 FML F FML00646 SAC1NHL016 Dysderina sp.5 FML M FML00503 SFB1D8A022 Corythalia sp.5 FML F FML00647 SAC2NDH006 Dysderina sp.5 FML F FML00504 SFB1D9R044 Euophryinae sp.4 FML F FML00648 SFC2DBL006 cf Oonopoides sp.1 FML F FML00564 SFD1NBR008 Symphytognatha goodnightorum M FML00649 SAC2NDH006 Dysderina sp.5 FML F FML00565 SFD1NBR008 Symphytognatha goodnightorum M FML00650 SCB1DFD013 Dysderina sp.3 FML F FML00566 SFD1DAL008 Symphytognatha goodnightorum F FML00651 SAC1NDH017 Dysderina sp.6 FML M FML00567 SFD1DAL008 Symphytognatha goodnightorum F FML00652 STC1N4A016 Scaphiella simla M FML00568 SFC1DAH006 Patu digua F FML00653 STB1D8A020 Oonops donaldi M FML00569 SFC1DAH006 Patu digua F FML00654 STC1N7R001 Dysderina sp.4 FML F FML00570 SFU1N8L039 Patu digua M FML00655 STB1D8A020 Oonops donaldi M FML00571 SFU1N8L039 Patu digua M FML00657 SCU1NFR014 Orchestina sp.2 FML M FML00585 SCC1DIL010 Dysderina dura M FML00658 STC1D6A005 cf Marsupopaea sp.1 FML M FML00586 SCB1DFD013 Dysderina sp.3 FML F FML00659 STB1D8A021 Oonpos donaldi F FML00587 SCC1DGA011 Triaeris sp.1 FML F FML00660 SAC1DEH011 cf Stenoonops sp.1 FML M FML00588 SCC1DFH011 Trachelas stenaspis F FML00661 SCC1DFH011 Trachelas stenaspis F FML00589 SCB1DFR024 Oonops cf delegenus F FML00662 SAB1DFB026 Orchestina sp.3 FML F FML00590 SCC1NFR029 Dysderina sp.4 FML M FML00663 SAB1DFH020 Oonopidae sp.1 FML F FML00591 SCU1NEL016 cf Orchestina sp.1 FML M FML00664 SCC1DGA011 Triaeris sp.1 FML F FML00592 SCU1NFR014 Orchestina sp.2 FML M FML00665 SAC1DDA013 cf Stenoonops sp.1 FML F FML00593 SFU2NBD019 Anaptomecus longiventris M FML00666 SAC1NFH009 Walckenaeria sp.1 FML M FML00594 Anaptomecus longiventris F FML00667 SAC1NFH009 Walckenaeria sp.1 FML M FML00595 SFU2NBD019 Anaptomecus longiventris M FML00668 STU1N7R012 Dubiaranea sp.4 FML F FML00596 Anaptomecus longiventris F FML00669 SAC1DFH014 Erigoninae sp.8 FML F Anexo_M 4. Continuación. Anexo_M 4. Continuación. N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio FML00670 SAER001 E FML00747 SCD1DFR013 Baalzebub baubo F FML00671 SAER004 E FML00749 SFU1N8L031 Theridiosoma chiripa F FML00672 SAES001 E FML00753 SAU2NCL033 Epeirotypus sp.7 FML F FML00673 SAES002 E FML00754 SFD1DAL018 Epeirotypus sp.5 FML F FML00674 SAES009 E FML00755 SFU2NAA035 Chthonos sp.1 FML F FML00675 SAEC001 E FML00756 SFU1NCR036 Naatlo sp.1 FML F FML00676 SAEC002 E FML00764 SAD1NCB002 Sassacus sp.1 F FML00677 SAEC002 J FML00765 SFD1NAL027 longipes F FML00678 SAEB001 E FML00766 SAC1DGL007 Theridion cf ravum F FML00679 SFC1NAR014 Erigoninae sp.9 FML M FML00767 SAU1NDB023 Theridion cf ravum F FML00680 SFC1NAR014 Erigoninae sp.9 FML M FML00768 SAU1NFP017 Theridion cf ravum M FML00681 SFES004 E FML00769 SAU1NDH029 Theridion cf ravum M FML00682 SFES005 E FML00770 SAU1NFA012 Theridion cf ravum M FML00683 SFEF001 E FML00771 SAU1NFA012 Theridion cf ravum M FML00684 SCES004 E FML00772 SFU1N8L026 Exalbidion sp.10 F FML00685 SFU1NAA009 Epeirotypus sp.2 FML M FML00773 SFU1NAL027 Tekellina archboldi M FML00686 SAU1NGA024 Epeirotypus sp.2 FML M FML00774 SFU1NAL027 Tekellina archboldi M FML00687 SFD1D8R010 Epeirotypus sp.1 FML M FML00775 SFU2NBA030 Tekellina archboldi F FML00688 SFU1N8L020 Epeirotypus sp.3 FML M FML00776 SAU1NFL007 Theridion cf botanicum M FML00689 SFU1N8A034 Epilineutes globosus M FML00777 SAU1NFL007 Theridion cf botanicum M FML00690 SFU2NAD032 Trachelassp sp.4 FML M FML00778 STB1D6L021 Theridion cf uncatum M FML00691 SFB1DAL021 Castianeira sp.1 FML M FML00779 SAC1NGB010 Euophrys sp.2 F FML00692 SAU1NGA027 Castianeira sp.1 FML M FML00780 STD1N6L006 Ixchela sp.1 FML M FML00693 SCU2NDD007 Castianeira sp.3 FML M FML00781 STD1N6L006 Ixchela sp.1 FML M FML00694 SFU2NBH034 Trachelassp sp.4 FML F FML00782 SCU1NHR002 Ixchela sp.1 FML F FML00695 SFU2NBD029 Epeirotypus sp.2 FML F FML00783 STD1N4H002 Paratropis sp.1 FML M FML00696 SAD1NFP007 Epeirotypus sp.2 FML F FML00784 STD1N4H002 Paratropis sp.1 FML M FML00697 SFD1NBL015 Epeirotypus sp.1 FML F FML00785 SCC1DIL005 Paratropis sp.2 FML F FML00698 SFU2NBH023 Epeirotypus sp.3 FML F FML00786 SCD1NED003 Paratropis sp.2 FML F FML00699 SAC1DHH012 Epeirotypus sp.7 FML F FML00787 SCC1NFH017 Paratropis sp.2 FML F FML00706 SFD1NCR006 Castianeira sp.2 FML M FML00788 SCD1NED003 Paratropis sp.2 FML F FML00707 SFD1NCR006 Castianeira sp.2 FML M FML00789 SFU1N7A003 Cupiennius valentinei F FML00708 SFD1DAR027 Theridiosoma sp.3 FML M FML00790 SCU2NDH001 Cupiennius sp.11 FML F FML00709 STD1D7B026 Theridiosoma sp.3 FML M FML00791 STD1N5L002 Paratropis sp.3 FML M FML00710 SAD1DGH013 Theridiosoma sp.7 FML M FML00792 STD1N5L002 Paratropis sp.3 FML M FML00711 SFC2DCD016 Theridiosoma sp.5 FML M FML00793 STC1D8R027 Paratropis sp.3 FML F FML00712 SCU2NDA017 Theridiosoma sp.6 FML M FML00794 STC1N5R001 Paratropis sp.3 FML M FML00713 STD1N7L011 Theridiosoma sp.6 FML M FML00795 STB1D5R028 Paratropis sp.3 FML M FML00714 SCC1DER017 Ogulnius sp.1 FML M FML00796 STC1N6B003 Paratropis sp.3 FML M FML00715 SAU1NDB035 Ogulnius sp.2 FML M FML00797 STC1D5R002 Paratropis sp.3 FML F FML00716 SCU1NEH011 Baalzebub sp.1 FML M FML00798 STC1N6R009 Bolostromus sp.1 FML F FML00717 SFD2NBL020 Wendilgarda sp.1 FML M FML00799 STC1N4A001 Hebestatis sp.1 FML F FML00718 SAD1NGA015 Baalzebub baubo M FML00800 SAC1DDR006 cf Cyriocosmus sp.2 FML F FML00719 SFD1DAR028 Theridiosoma chiripa M FML00801 SAC1NFA012 cf Cyriocosmus sp.2 FML F FML00720 SFB1DAR028 Naatlo fauna M FML00802 STC1N7R013 cf Cyriocosmus sp.1 FML F FML00721 SCU1NDH021 Naatlo sp.1 FML M FML00803 STD1N6A023 cf Cyriocosmus sp.1 FML F FML00722 STB1D9R019 Naatlo sp.1 FML M FML00804 SAC1NHB018 cf Cyriocosmus sp.3 FML F FML00723 SFB1D9H035 Naatlo sp.1 FML F FML00805 SAC1NHL014 cf Cyriocosmus sp.3 FML F FML00724 SCD1NFD017 Naatlo sp.1 FML F FML00806 STC1N6L001 Cyriocosmus elegans F FML00725 SFC1DBR019 Naatlo fauna F FML00807 STD1N4H003 Cyriocosmus elegans F FML00726 SFD1D9L004 Theridiosoma chiripa F FML00808 SCC1DGD007 cf Cyriocosmus sp.4 FML F FML00727 SCU2NHH021 Theridiosoma sp.6 FML F FML00809 SCC1NHD001 cf Cyriocosmus sp.4 FML F FML00728 SAD1NGB029 Theridiosoma sp.6 FML F FML00810 SCD1NED001 cf Cyriocosmus sp.4 FML F FML00729 SAD1DHP002 Theridiosoma sp.6 FML M FML00811 SCU1NGH026 Sericopelma sp.1 FML F FML00730 SFU1N7D015 Castianeira sp.1 FML F FML00812 SAU1NFP010 Chrysometa cf eugeni F FML00731 SAB1DEA003 Castianeira sp.1 FML F FML00813 SAD1NCB021 Chrysometa cf eugeni F FML00732 SCU1NHR026 Baalzebub sp.1 FML F FML00814 SAD1NCB021 Chrysometa cf eugeni F FML00733 SCD1DFR015 Ogulnius sp.1 FML F FML00815 SAB1DEA021 Chrysometa cf eugeni M FML00734 SFD1NBL018 Wendilgarda sp.1 FML F FML00816 SAU1NDH022 Chrysometa cf eugeni M FML00735 SFD1D8R013 Baalzebub baubo F FML00817 SAB1DFB021 Chrysometa cf eugeni F FML00736 SAC1DFB011 Baalzebub baubo F FML00818 SAD1NCH030 Chrysometa sp.5 FML F FML00737 SCD2NGL022 Baalzebub baubo F FML00819 SAU1NHA027 Chrysometa sp.5 FML M FML00738 SAC1NDA004 Baalzebub baubo F FML00820 SAU1NHA027 Chrysometa sp.5 FML M FML00739 SAD1NHB024 Ogulnius sp.2 FML F FML00821 SAD1NGH010 Chrysometa sp.5 FML F FML00740 SCU1NFH016 Castianeira sp.3 FML F FML00822 SAD1NGL004 Chrysometa sp.5 FML F FML00741 SFD1D8D007 Epilineutes globosus F FML00823 SAD1NCH016 Chrysometa sp.5 FML F FML00742 SFC1DBD011 Theridiosoma sp.5 FML F FML00824 SCU1NGH024 Tetragnathidae sp.1 FML F FML00743 SAD1NFP008 Theridiosoma sp.7 FML F FML00825 STD1N7B012 Azilia sp.3 FML F FML00744 SFU2NAD033 Theridiosoma sp.3 FML F FML00826 SFU1N7H018 Tetragnatha sp.1 FML F FML00745 STU1N6H023 Theridiosoma sp.3 FML F FML00827 SFU1NBH003 Tetragnatha sp.1 FML M FML00746 SFU2NBH034 Theridiosoma sp.4 FML F FML00828 SFU1NBH003 Tetragnatha sp.1 FML M Anexo_M 4. Continuación. Anexo_M 4. Continuación. N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio FML00829 SFU1NAD015 Tetragnathidae sp.3 FML M FML00900 SAC1DGH006 Baalzebub baubo F FML00830 SFU1NAD015 Tetragnathidae sp.3 FML M FML00901 SAU1NHB013 Chthonos sp.1 FML F FML00831 STC1D5H013 Epeirotypus sp.2 FML F FML00902 SFU1N7L018 Chthonos sp.1 FML M FML00832 SAU1NCR002 Epeirotypus sp.7 FML F FML00903 SAD1NGL021 Chthonos sp.1 FML F FML00833 SFNQP8L012 Theridiosoma sp.8 FML F FML00904 SAB1DEL024 Chthonos sp.1 FML M FML00834 SFNQP8L012 Theridiosoma sp.8 FML F FML00905 SAU1NHP003 Chthonos sp.1 FML M FML00835 SFNQK8L001 Theridiosoma sp.9 FML M FML00906 STU1N7H024 Chthonos sp.3 FML M FML00836 SFNQK8L001 Theridiosoma sp.9 FML M FML00907 SCB1DED007 Chthonos sp.3 FML M FML00837 SAC1DER002 Baalzebub baubo F FML00908 SCU2NDA009 Chthonos sp.3 FML M FML00838 SAU1NGH020 Baalzebub baubo M FML00909 SAU1NGA024 Epeirotypus sp.2 FML M FML00839 SAU1NCH032 Baalzebub baubo M FML00910 STC1D5H013 Epeirotypus sp.2 FML F FML00840 SAC2NDB010 Baalzebub baubo F FML00911 SFU1NAR037 Epilineutes globosus F FML00841 SAD1NCA003 Baalzebub baubo M FML00912 SFU1NBD031 Epilineutes globosus M FML00842 SCD1DHR006 Baalzebub sp.1 FML F FML00913 SFU1NAH031 Epilineutes globosus M FML00843 SCD2NGL023 Baalzebub sp.1 FML M FML00914 SFU1NBA005 Epilineutes globosus M FML00844 SCD1DFR022 Baalzebub sp.1 FML F FML00915 SFD1NBA013 Epilineutes globosus F FML00845 SCU1DHL016 Baalzebub sp.1 FML F FML00916 SFB2D9R026 Naatlo fauna M FML00846 SCD1DFR025 Baalzebub sp.1 FML F FML00917 SFU1N8A036 Naatlo fauna F FML00847 SAD1NFP007 Epeirotypus sp.2 FML F FML00918 SFU1N8R028 Naatlo fauna F FML00848 SAU1NGH021 Epeirotypus sp.2 FML M FML00919 SFD1NBR033 Naatlo fauna F FML00849 SAU1NHA026 Epeirotypus sp.2 FML F FML00920 SFU1NCD031 Naatlo fauna M FML00850 SFU2NCH029 Epeirotypus sp.1 FML M FML00921 SFU1NBR036 Naatlo sp.10 FML F FML00851 SFD1NCD016 Epeirotypus sp.1 FML F FML00922 SFB1D8L018 Naatlo sp.10 FML F FML00852 SFC1NCD018 Epeirotypus sp.1 FML F FML00923 SFU2NCH028 Naatlo sp.10 FML F FML00853 SFU1N7H029 Epeirotypus sp.1 FML F FML00924 SFU1N7R038 Naatlo sp.10 FML F FML00854 SFC1N8H018 Epeirotypus sp.1 FML F FML00925 SFU2NBH044 Naatlo sp.10 FML F FML00855 SCD1DEL017 Baalzebub sp.10 FML F FML00926 SFU1NCR045 Naatlo sp.10 FML F FML00856 SCD1DFR013 Baalzebub sp.10 FML F FML00927 SFU1NBR036 Naatlo sp.10 FML F FML00857 SCD1DFR031 Ogulnius sp.1 FML F FML00928 STB1D9A009 Naatlo sp.1 FML M FML00858 SCD1DFD013 Ogulnius sp.1 FML F FML00929 SCC2NFH008 Naatlo sp.1 FML F FML00859 SCD1DHR010 Ogulnius sp.1 FML F FML00930 SCC1NHD013 Naatlo sp.1 FML F FML00860 SCD1DFR014 Ogulnius sp.1 FML F FML00931 SCC1NER014 Naatlo sp.1 FML F FML00861 SCD1NGR012 Ogulnius sp.1 FML M FML00932 SCD1DEL018 Theridiosoma sp.6 FML F FML00862 SAD1NHL020 Baalzebub baubo M FML00933 STB1D5L027 Theridiosoma sp.6 FML M FML00863 SAC1DHH007 Epeirotypus sp.7 FML F FML00934 STU1N4R024 Theridiosoma sp.6 FML F FML00864 SAU1NCL035 Epeirotypus sp.7 FML F FML00935 SCD2NFA020 Theridiosoma sp.6 FML F FML00865 SAU1NCR002 Epeirotypus sp.7 FML F FML00936 STD1D6B017 Theridiosoma sp.6 FML M FML00866 SAU1NCR048 Epeirotypus sp.7 FML F FML00937 SAD1NCR003 Theridiosoma sp.10 FML F FML00867 SFU2NCH031 Epeirotypus sp.3 FML F FML00938 SAC1DGB022 Theridiosoma sp.10 FML F FML00868 SFU2NBA026 Epeirotypus sp.3 FML F FML00939 SAB1DER005 Theridiosoma sp.10 FML F FML00869 SFU1NCA029 Epeirotypus sp.3 FML F FML00940 SAU2NFA018 Theridiosoma sp.10 FML F FML00870 SFU1NBH019 Epeirotypus sp.3 FML F FML00941 SAD1NGP019 Theridiosoma sp.10 FML F FML00871 SFU1N7H026 Epeirotypus sp.3 FML F FML00942 SAD1NGP019 Theridiosoma sp.10 FML F FML00872 SFD1NAL019 Theridiosoma sp.4 FML M FML00943 STC1D5H013 Epeirotypus sp.6 FML F FML00873 SFU2NAA010 Theridiosoma sp.4 FML M FML00944 SAU2NCL028 Epeirotypus sp.10 FML F FML00874 SFU1NCR034 Theridiosoma sp.4 FML F FML00945 SAU2NCL033 Epeirotypus sp.10 FML F FML00875 SFD1NCH021 Theridiosoma sp.4 FML M FML00946 SAB1DHP002 Theridiosoma sp.7 FML F FML00876 SFU1D9A009 Theridiosoma sp.4 FML F FML00947 SAD1DHP001 Theridiosoma sp.7 FML M FML00877 SFD1NCD023 Theridiosoma chiripa F FML00948 SAU1NFB026 Theridiosoma sp.7 FML M FML00878 SAC1NHL015 Theridiosoma chiripa F FML00949 SAC1DFA008 Theridiosoma sp.7 FML M FML00879 SAD1NCA001 Theridiosoma chiripa M FML00950 SAC1DHA012 Theridiosoma sp.7 FML F FML00880 SFD1NAH025 Theridiosoma chiripa F FML00951 SAU1NCL062 Epeirotypus sp.7 FML F FML00881 SAD1NCA004 Theridiosoma chiripa F FML00952 SCB1DIA010 Naatlo sp.1 FML F FML00882 STD1D6H023 Theridiosoma sp.11 FML F FML00953 SFU1N8H023 Naatlo sp.10 FML F FML00883 STU1N7A019 Theridiosoma sp.11 FML F FML00954 SFNQK8L035 Baalzebub sp.2 FML F FML00884 STU1N5L020 Theridiosoma sp.11 FML F FML00955 SFNQK8L035 Baalzebub sp.2 FML F FML00885 STC2D6R014 Theridiosoma sp.11 FML M FML00956 SFNQK8L067 Baalzebub sp.2 FML M FML00886 STU1N7L028 Theridiosoma sp.11 FML F FML00957 SFNQK8L067 Baalzebub sp.2 FML M FML00887 SFC1DBD015 Theridiosoma sp.3 FML M FML00958 SFNQM8L045 Ogulnius sp.3 FML F FML00888 SFD1NAD013 Theridiosoma sp.3 FML F FML00959 SFNQM8L045 Ogulnius sp.3 FML F FML00889 SFD1NCA011 Theridiosoma sp.3 FML F FML00960 SANQB8L020 Theridiosoma sp.13 FML F FML00890 SFC1DCR013 Theridiosoma sp.3 FML F FML00961 SANQB8L020 Theridiosoma sp.13 FML F FML00891 SFB1DBA017 Theridiosoma sp.3 FML M FML00962 STC2D6R014 Theridiosoma sp.11 FML M FML00892 SFD1NAH022 Theridiosoma sp.5 FML F FML00963 STC2D6R014 Theridiosoma sp.11 FML M FML00893 SFD1NAH037 Theridiosoma sp.5 FML M FML00964 STD1D6H023 Theridiosoma sp.11 FML F FML00894 SFD1NBH019 Theridiosoma sp.5 FML F FML00965 SFD1NBH034 Theridiosoma sp.5 FML F FML00895 SFD1D8H025 Theridiosoma sp.5 FML M FML00966 SAB1DHP002 Theridiosoma sp.7 FML F FML00896 SFD1NBH034 Theridiosoma sp.5 FML F FML00967 SAC1DHH012 Epeirotypus sp.7 FML F FML00897 SFU2NBH025 Epeirotypus sp.4 FML F FML00968 SAU2NCL033 Epeirotypus sp.10 FML F FML00898 SAD1NFL017 Baalzebub sp.11 FML F FML00969 SFNQL8P043 Naatlo sp.10 FML M FML00899 SAU1NCH032 Baalzebub baubo M FML00970 SFNQL8P043 Naatlo sp.10 FML M Anexo_M 4. Continuación. Anexo_M 4. Continuación. N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio FML00971 SAC1NDA004 Baalzebub sp.11 FML F LNP00157 SFB1D9R043 Euophryinae sp.4 FML M FML00972 STNQ38L016 Baalzebub sp.4 FML F LNP00158 SFB1D9R043 Euophryinae sp.4 FML M FML00973 STNQ38L016 Baalzebub sp.4 FML F LNP00159 SFB1DCR023 Metaphidippus facetus M FML00974 STNQ38L013 Baalzebub sp.5 FML M LNP00160 SFB1DCR023 Metaphidippus facetus M FML00975 STNQ38L013 Baalzebub sp.5 FML M LNP00161 SFB1DCL029 Metaphidippus facetus F FML00976 STNQ48R058 Ogulnius sp.4 FML M LNP00162 SFU1NCR016 Myrmarachne parallela M FML00977 STNQ48R058 Ogulnius sp.4 FML M LNP00163 SFU1NCR016 Myrmarachne parallela M JMA00001 STU2N8L003 Macrophyes sp.10 FML M LNP00164 SFU1NAR024 Myrmarachne parallela F JMA00002 STU2N8L003 Macrophyes sp.10 FML M LNP00165 SFU2N8H019 Lyssomanes sp.1 FML F JMA00003 SFU1N7R028 Parawixia sp.1 FML F LNP00166 SFB1DAR004 Lyssomanes sp.1 FML M JMA00004 SAU1NDH015 Elaver sp.11 FML M LNP00167 SFB1DAR004 Lyssomanes sp.1 FML M JMA00005 SAU1NDH015 Elaver sp.11 FML M LNP00168 SFC2N8L005 Fluda sp.1 FML F JMA00006 STU1N7L021 Elaver sp.12 FML FML F LNP00169 SFD1D9L020 Euophryinae sp.1 FML M JMA00007 SAU1NGH009 Elaver sp.3 FML F LNP00170 SFD1D9L020 Euophryinae sp.1 FML M JMA00008 STB1D9R002 Trachelas sp.10 FML F LNP00171 SFD1NCL009 Euophryinae sp.6 FML F JMA00009 STD1N4H024 Trachelas sp.11 FML M LNP00172 SFD1NCA004 Euophryinae sp.6 FML M JMA00010 STD1N4H024 Trachelas sp.11 FML M LNP00173 SFD1NCA004 Euophryinae sp.6 FML M JMA00011 SCB1DER008 Trachelas sp.12 FML F LNP00174 SFB1D8R033 Euophryinae sp.5 FML F JMA00012 SAC1NHB003 Trachelas sp.14 M LNP00175 SFC1N8D010 Euophryinae sp.5 FML M JMA00013 SAC1NHB003 Trachelas sp.14 M LNP00176 SFC1N8D010 Euophryinae sp.5 FML M JMA00014 SAC1NHB003 Trachelas sp.14 F LNP00177 SFD1NAA004 Euophryinae sp.5 FML F JMA00015 STC1N5R007 Corinna sp.10 FML F LNP00178 SFC1NCL005 Euophryinae sp.5 FML M JMA00016 SAC1DGP006 Neoantistea sp.2 FML F LNP00179 SFC1NCL005 Euophryinae sp.5 FML M JMA00017 SAB1DEA011 Neoantistea sp.3 FML F LNP00180 SFC1DAH010 Corythalia sp.4 FML F JMA00018 STC2D8H012 Neoantistea sp.4 FML F LNP00181 SFC1DAH010 Corythalia sp.4 FML M JMA00019 STC1D8A006 Neoantistea sp.4 FML M LNP00182 SFC1DBR005 Corythalia sp.4 FML M JMA00020 STC1D8A006 Neoantistea sp.4 FML M LNP00183 SFB1D8R031 Corythalia sp.6 FML M JMA00021 SCB1DIR024 cf Amaloxenops sp.1 FML F LNP00184 SFB1D8R031 Corythalia sp.6 FML M JMA00022 SCC1NGR008 cf Amaloxenops sp.1 FML M LNP00187 SFD1NAL028 Ctenus sp.1 FML F JMA00023 SCC1NGR008 cf Amaloxenops sp.1 FML M LNP00188 SFC1N8L001 Ctenus sp.2 FML M JMA00024 SCU1NFD001 Neotama forcipata F LNP00189 SFC1N8L001 Ctenus sp.2 FML M JMA00025 SAB1DER013 Cobanus sp.11 FML M LNP00190 SFD1NBL005 Ctenus sp.1 FML M JMA00026 SAB1DEL019 Cobanus sp.11 FML M LNP00191 SFD1NBL005 Ctenus sp.1 FML M JMA00027 SAB1DEH012 Cobanus sp.11 FML M LNP00192 SFU2N7L029 Cupiennius valentinei F JMA00028 STB1D5B002 Cobanus seclusus M LNP00193 SFU1N8D003 Cupiennius coccineus M JMA00029 SCB1DFD010 Chapoda sp.1 FML F LNP00194 SFU1N8D003 Cupiennius coccineus M JMA00030 SAB1DDB021 Cobanus sp.13 FML F LNP00195 SFU1N7A010 Philoponella sp.1 FML F JMA00031 STB1D5L006 Cobanus seclusus F LNP00196 SFU1N7A010 Philoponella sp.1 FML F JMA00032 SAU1NGB017 Chrysometa eugeni M LNP00197 SFB2D9R017 Philoponella sp.3 FML F JMA00033 SAD1NHB025 Cobanus sp.13 FML F LNP00198 SFB2D9R017 Philoponella sp.3 FML F JMA00034 SAD1NHH007 Chrysometa eugeni M LNP00199 SFU1N7D009 Philoponella sp.2 FML M JMA00035 SFC1N7A001 Corythalia sp.8 FML M LNP00200 SFU1N7D009 Philoponella sp.2 FML M JMA00036 SCB1DGA023 Chapoda sp.1 FML F LNP00201 SFU2NCH020 Philoponella sp.5 FML F JMA00037 SCB1DEA006 Chapoda sp.1 FML M LNP00202 SFD1NBR012 Philoponella republicana F JMA00038 STD1N6A019 Azilia guatemalensis F LNP00203 SFD1NBR012 Philoponella republicana F JMA00039 SAB1DER002 M LNP00204 SFD1NBL006 Philoponella republicana F JMA00040 SFB1DBD010 F LNP00205 SFD1NBL006 Philoponella republicana F JMA00041 SFB1DCR011 F LNP00206 SFD1NAL005 Philoponella sp.4 FML M JMA00042 SAU2NCH029 Cobanus sp.13 FML F LNP00207 SFD1NAL005 Philoponella sp.4 FML M JMA00043 STB1D5R001 Cobanus seclusus M LNP00208 SFU1NAH012 Miagrammopes sp.1 FML F JMA00044 SFD1NAA017 Azilia guatemalensis F LNP00209 SFU1NAH012 Miagrammopes sp.1 FML F JMA00045 SAB1DDL001 F LNP00210 SFC2DCA006 Dysderina sp.1 FML M JMA00046 STU1N5L024 Cobanus seclusus F LNP00211 SFC2DCA006 Dysderina sp.1 FML M JMA00047 STD1D7H001 Corythalia sp.13 FML M LNP00212 SFU2NBA015 Orchestina sp.1 FML M JMA00048 SFU2NBD013 Azilia guatemalensis M LNP00213 SFU2NBA015 Orchestina sp.1 FML M JMA00049 SFD1NCA020 Azilia guatemalensis F LNP00214 SFC1N8D005 cf Oonopoides sp.1 FML M JMA00050 STC1N5H015 Achaearanea maricaoensis M LNP00215 SFC1N8D005 cf Oonopoides sp.1 FML M JMA00051 SAD1DGL016 Baalzebub baubo F LNP00216 SFC2DBL006 cf Oonopoides sp.1 FML F JMA00052 STD1N4B018 Azilia guatemalensis F LNP00217 SFC2DBL006 cf Oonopoides sp.1 FML F JMA00053 SCC2NGR030 Anopsicus panama F LNP00218 SFU2N8D016 Orchestina sp.1 FML F JMA00054 SFU1N8R001 Deinopis longipes M LNP00219 SFU2N8D016 Orchestina sp.1 FML F JMA00055 SFU1N8R001 Deinopis longipes M LNP00220 SFD1NAH002 Dysderina sp.2 FML F JMA00056 SFU1N8R001 Deinopis longipes F LNP00221 SFD1NAH002 Dysderina sp.2 FML F LNP00149 SFC1DBL004 Creugas sp.1 FML F LNP00222 SFC1NAL004 Dysderina sp.2 FML M LNP00150 SFC1NAL008 Creugas sp.1 FML M LNP00223 SFC1NAL004 Dysderina sp.2 FML M LNP00151 SFC1NAL008 Creugas sp.1 FML M LNP00224 SFC1DAH003 Dysderina sp.1 FML F LNP00152 SFD1NBA002 Septentrinna sp.1 FML M LNP00225 SFC1DAH003 Dysderina sp.1 FML F LNP00153 SFB1D9H016 Euophryinae sp.3 FML M LNP00226 SFC1N7R002 Ishania sp.1 FML F LNP00154 SFB1D9H016 Euophryinae sp.3 FML M LNP00227 SFU1NCR004 Melpomene sp.1 FML F LNP00155 SFB2DAA015 Corythalia sp.3 FML M LNP00228 SFC1DBR026 Phrurolithus sp.1 FML F LNP00156 SFB2DAA015 Corythalia sp.3 FML M LNP00229 SFC1N7R007 Phrurolithus sp.1 FML M Anexo_M 4. Continuación. Anexo_M 4. Continuación. N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio LNP00230 SFC1N7R007 Phrurolithus sp.1 FML M LNP00317 SCB1DGL036 Katissa simplicipalpis F LNP00232 SFC1NCA012 Lygromma volcan M LNP00318 SFU1N7H008 Anyphaeninae sp.4 FML M LNP00233 SFC1NCA013 Lygromma sp.1 FML M LNP00319 SFU1N7H008 Anyphaeninae sp.4 FML M LNP00234 SFC1NCA013 Lygromma sp.1 FML M LNP00320 SFB1D9H014 Anyphaeninae sp.3 FML F LNP00235 SFC1NCA014 Lygromma sp.1 FML F LNP00321 SCB1DGA008 Otoniela cfquadrivitata M LNP00236 SFU2NBD019 Anaptomecus longiventris M LNP00322 SCB1DGA008 Otoniela cfquadrivitata M LNP00237 SFU2NBD019 Anaptomecus longiventris M LNP00323 SCC1DGD002 Isigonia reducta M LNP00238 SFC1DBA016 Lygromma chamberlini M LNP00324 SCC1DGD002 Isigonia reducta M LNP00239 SFC1DBA016 Lygromma chamberlini M LNP00325 SFC2DCH008 Anyphaeninae sp.1 FML F LNP00240 SFC1DBR010 Lygromma sp.2 FML F LNP00326 SAC1DHP001 Anyphaeninae sp.6 FML M LNP00241 SCU1NDR002 Miagrammopes aspinatus M LNP00327 SAU1NDB001 Anyphaeninae sp.5 FML M LNP00242 SCD1DFR003 Philoponella sp.9 FML M LNP00328 SAB1DFB001 Iguarima sp.1 FML M LNP00243 SCD1DFH021 Philoponella sp.10 FML F LNP00329 SCB1DER009 Katissa simplicipalpis M LNP00245 SCC1NGA015 Meioneta cincta F LNP00330 SCB1DER009 Katissa simplicipalpis M LNP00246 SCB1DFR030 Meioneta cincta M LNP00331 SFU1NAH016 Anyphaeninae sp.3 FML M LNP00247 SCB1DFR030 Meioneta cincta M LNP00332 SFU1NAH016 Anyphaeninae sp.3 FML M LNP00248 SFC2NAR017 Mermessus rapidulus F LNP00333 SCC1NGD009 Isigonia reducta F LNP00249 SFC1DCL003 Mermessus rapidulus M LNP00334 SCC2NGR003 Anyphaeninae sp.11 FML F LNP00250 SFC1DCL003 Mermessus rapidulus M LNP00335 SCC1DID002 Anyphaeninae sp.12 FML F LNP00251 SFU1N8R021 Erigoninae sp.1 FML F LNP00338 SFB1D8A013 Anyphaeninae sp.2 FML M LNP00252 SFD1NBR063 Erigoninae sp.1 FML M LNP00339 SFB1D8A013 Anyphaeninae sp.2 FML M LNP00253 SFD1NBR063 Erigoninae sp.1 FML M LNP00340 SFB1DBA010 Anyphaeninae sp.1 FML M LNP00254 SFD1NAH005 Linyphia sp.1 FML F LNP00341 SFB1DBA010 Anyphaeninae sp.1 FML M LNP00255 SFU1N8L020 Epeirotypus sp3 FML M LNP00342 SFB1D9R016 Patrera sp.1 FML M LNP00256 SFU2NAD033 Theridiosoma sp.3 FML F LNP00343 SFB1D9R016 Patrera sp.1 FML M LNP00257 SFC2DCD016 Theridiosoma sp.5 FML M LNP00344 SFB1DAH013 Patrera sp.1 FML F LNP00258 SFB1DAR028 Naatlo fauna M LNP00345 SFU2NBH016 Macrophyes elongata F LNP00259 SFD1DAR027 Theridiosoma sp.3 FML M LNP00346 SCC1NEL005 Stethorrhagus sp.2 FML M LNP00260 SFU2NAD032 Theridiosoma_sp4 M LNP00347 SCC1NEL005 Stethorrhagus sp.2 FML M LNP00261 SFD1D8R013 Baalzebubbaubo F LNP00348 SCB1DEH007 Trachelas barroana F LNP00262 SFD1DAR028 Theridiosomachiripa M LNP00349 SCB1DER005 Parachemmis fuscus M LNP00263 SFC1DBR019 Naatlo fauna F LNP00350 SCB1DER005 Parachemmis fuscus M LNP00264 SFD1NBL018 Wendilgarda sp.1 FML F LNP00351 SCD2NED005 Stethorrhagus sp.3 FML F LNP00265 SFC1DBD011 Theridiosoma sp.5 FML F LNP00352 SCU1NHH005 Corinna sp.2 FML F LNP00266 SFU2NBH023 Epeirotypus sp.3 FML F LNP00353 SCC1DHA001 Trachelas sp.1 FML F LNP00267 SFD1NBL015 Epeirotypus sp.1 FML F LNP00354 SCU1NGH005 Parachemmis sp.2 FML F LNP00268 SFD1D9L004 Theridiosomachiripa F LNP00355 SCB1DGL007 Myrmecotypus fulginosus F LNP00269 SFU1N7D015 Chthonos sp.1 FML F LNP00356 SCC1NFH003 Trachelas sp.2 FML M LNP00270 SFD1D8R010 Epeirotypus sp.1 FML M LNP00357 SCC1NFH003 Trachelas sp.2 FML M LNP00271 SFB1DAL021 Chthonos sp.1 FML M LNP00358 SCB1DIH002 Castianeira sp.3 FML M LNP00272 SFU1N8A034 Epeirotypusglobosus M LNP00359 SCB1DIH002 Castianeira sp.3 FML M LNP00273 SFU1NAA009 Epeirotypus sp.2 FML M LNP00360 SFC1N8R005 Neoantistea sp.1 FML M LNP00274 SFD2NBL020 Wendilgarda sp.1 FML M LNP00361 SFC1N8R005 Neoantistea sp.1 FML M LNP00275 SFB1D9H035 Naatlo sp.1 FML F LNP00362 SFD1D8H002 Neoantistea sp.1 FML F LNP00276 SFU2NBH034 Theridiosoma sp.4 FML F LNP00363 SFC1DAH014 Meioneta sp.1 FML M LNP00277 SFU2NBD029 Epeirotypus sp.2 FML F LNP00364 SFC1DAH014 Meioneta sp.1 FML M LNP00278 SFD1D8D007 Epilineutes globosus F LNP00365 SFC1N7H002 Walckenaeria aenea M LNP00279 SFU1NAD034 Chthonos sp.2 FML F LNP00366 SFC1N7H002 Walckenaeria aenea M LNP00280 SFD1DAL018 Epeirotypus sp.5 FML F LNP00367 SFB1DAD018 Erigoninae sp.4 FML F LNP00281 SFU2NBH025 Epeirotypus sp.4 FML F LNP00368 SCU1NDD016 Walckenaeria intoleranda M LNP00282 SCU1NDH021 Naatlo sp.1 FML M LNP00369 SCU1NDD016 Walckenaeria intoleranda M LNP00283 SCU2NDD007 Chthonos sp.3 FML M LNP00370 SFU2N7A019 Walckenaeria aenea F LNP00284 SCU1NHR026 Baalzebub sp.1 FML F LNP00371 SCB1DID013 Asemostera daedalus F LNP00285 SCC1DER017 Ogulnius sp.1 FML M LNP00372 SCB1DFR028 Mermessus sp.1 FML F LNP00286 SCD1DFR015 Ogulnius sp.1 FML F LNP00373 SFC1DBD012 Meioneta sp.1 FML F LNP00287 SCU1NEH011 Baalzebub sp.1 FML M LNP00374 SCB2DGR023 Meioneta sp.2 FML M LNP00288 SCU2NHH021 Theridiosoma sp.6 FML F LNP00375 SCB2DGR023 Meioneta sp.2 FML M LNP00289 SCU1NFH016 Chthonos sp.3 FML F LNP00376 SCC1NGR007 Linyphiinae sp.1 FML F LNP00290 SCU2NDA017 Theridiosoma sp.6 FML M LNP00377 SFB1D8H017 Erigoninae sp.2 FML M LNP00305 SAB1DDH001 Anyphaeninae sp.5 FML F LNP00378 SFB1D8H017 Erigoninae sp.2 FML M LNP00306 SAU1NDB001 Anyphaeninae sp.5 FML M LNP00379 SCB1DHH013 Erigoninae sp.3 FML F LNP00307 SAB1DEH001 Anyphaeninae sp.8 FML F LNP00380 SFB1D8R028 Primerigonina australis M LNP00308 SAC1NFB001 Anyphaeninae sp.6 FML F LNP00381 SFB1D8R028 Primerigonina australis M LNP00309 SAC1NDA001 Anyphaeninae sp.10 FML F LNP00382 SCB1DIR020 Grammonota sp.1 FML M LNP00310 SAC1DHP001 Anyphaeninae sp.6 FML M LNP00383 SCB1DIR020 Grammonota sp.1 FML M LNP00311 SAB1DER001 Anyphaeninae sp.9 FML F LNP00384 SFC2NAR028 Erigoninae sp.5 FML F LNP00312 SAU2NCL002 Iguarima sp.1 FML F LNP00385 SFU1NAA021 Linyphia sp.1 FML M LNP00313 SAB1DFB001 Iguarima sp.1 FML M LNP00386 SFU1NAA021 Linyphia sp.1 FML M LNP00314 SAC1DGB001 Anyphaeninae sp.7 FML F LNP00387 SFU1D9D006 Mimetus banksi F LNP00315 SCU2NDR028 Sillus dubius M LNP00388 SFU1NBD004 Mimetus banksi M LNP00316 SCB1DFD006 Sillus dubius F LNP00389 SFU1NBD004 Mimetus banksi M Anexo_M 4. Continuación. Anexo_M 4. Continuación. N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio LNP00390 SFU1N8L004 Mimetus sp.1 FML F LNP00470 STC1N4A016 Scaphiella simla M LNP00392 SFU2NBH002 Mimetus rusticus M LNP00471 STC1N7R001 Dysderina sp4 F LNP00393 SFU2NBH002 Mimetus rusticus M LNP00472 SAC1DEH011 cf Stenoonops sp.1 FML M LNP00394 SFB1D9L029 Elaver sp.1 FML M LNP00473 SAB1DFB026 Orchestina sp.3 FML F LNP00395 SFB1D9L029 Elaver sp.1 FML M LNP00474 STC1D6A005 cf Marsupipaea sp.1 FML M LNP00396 SFU1NBH008 Elaver sp.2 FML F LNP00475 SAB1DFH020 Oonopidae sp.1 FML F LNP00397 SCB1DGR001 Anaptomecus sp.2 FML M LNP00476 SAC1DDA013 cf Stenoonops sp.1 FML F LNP00398 SCB1DGR001 Anaptomecus sp.2 FML M LNP00477 SAB1DHA021 Grammonota teresta F LNP00401 SFD1NBH015 Elaver lutescens F LNP00478 SAD1NGA013 Grammonota teresta M LNP00402 SCB1DFD004 Mimetus rusticus F LNP00479 SAD1NGA013 Grammonota teresta M LNP00403 SCU1NHD005 Mimetus sp.2 FML F LNP00480 SAC1DDL011 cf Fassiscapus sp.1 FML M LNP00404 SCU1NEL002 Mimetus sp.2 FML M LNP00481 SAC1DDL011 cf Fassiscapus sp.1 FML M LNP00405 SCU1NEL002 Mimetus sp.2 FML M LNP00482 STB1D9L017 Erigone sp.1 FML M LNP00408 SFU2NBH009 Modisimus guatuso M LNP00483 STB1D9L017 Erigone sp.1 FML M LNP00409 SFU2NBH009 Modisimus guatuso M LNP00484 SAD1NHA017 Erigone sp.1 FML F LNP00410 SCB1DFR003 Cobanus mandibularis M LNP00485 SAB1DDA005 Asemostera janetae F LNP00411 SCB1DFR003 Cobanus mandibularis M LNP00486 SAB1DDA006 Grammonota cf secata M LNP00412 SCU1NFR008 Sidusa recondita F LNP00487 SAB1DDA006 Grammonota cf secata M LNP00413 SCB1DIA008 Zuniga magna F LNP00488 SAB2DEB025 Grammonota cf secata F LNP00414 SCDIDHA008 Zuniga magna M LNP00489 SCB1DFR017 Asemostera daedalus M LNP00415 SCDIDHA008 Zuniga magna M LNP00490 SCB1DFR017 Asemostera daedalus M LNP00416 SCC1NGD006 Cobanus sp.5 FML F LNP00491 SAD1DGA005 Erigoninae sp.6 FML F LNP00417 SCD1DFA003 Cobanus sp.5 FML M LNP00492 STU2N8B014 Pocobletus sp.1 FML M LNP00418 SCD1DFA003 Cobanus sp.5 FML M LNP00493 STU2N8B014 Pocobletus sp.1 FML M LNP00419 SCB1DGH003 Cobanus sp.8 FML M LNP00494 STU1D5B010 Pocobletus sp.1 FML F LNP00420 SCB1DGH003 Cobanus sp.8 FML M LNP00495 STC1D8A010 Walckenaeria intoleranda F LNP00421 SCU1NHR006 cf Sassacus sp.1 FML M LNP00496 SAC1NHB007 Erigoninae sp.7 FML F LNP00422 SCU1NHR006 cf Sassacus sp.1 FML M LNP00497 SAC1NFA008 Walckenaeria crocea M LNP00423 SCB1DGR026 cf Sassacus sp.1 FML F LNP00498 SAC1NFA008 Walckenaeria crocea M LNP00424 SCB2DGR005 Cobanus obscurus F LNP00499 SAU1NFA004 Dubiaranea sp.5 FML M LNP00425 SCU1NGA002 Myrmarachne sp.1 FML M LNP00500 SAU1NFA004 Dubiaranea sp.5 FML M LNP00426 SCU1NGA002 Myrmarachne sp.1 FML M LNP00501 SAU1NDA016 Dubiaranea sp.2 FML F LNP00427 SCB1DED004 Corythalia biscincta M LNP00502 SAB1DDA018 Dubiaranea sp.2 FML M LNP00428 SCB1DED004 Corythalia biscincta M LNP00503 SAB1DDA018 Dubiaranea sp.2 FML M LNP00429 SCB1DER004 Corythalia biscincta F LNP00504 SAC1NDB010 Dubiaranea sp.3 FML F LNP00430 SCC1NFR019 Corythalia sp.9 FML M LNP00505 SAB1DEA007 Dubiaranea sp.3 FML M LNP00431 SCC1NFR019 Corythalia sp.9 FML M LNP00506 SAB1DEA007 Dubiaranea sp.3 FML M LNP00432 SCC1NHR025 Cobanus sp.1 FML F LNP00509 SCB1DGH011 Laseola donaldi F LNP00433 SCB1DID004 Corythalia sp.9 FML F LNP00510 SCU1NGA013 Thymoites sp.1 FML M LNP00434 SCB1DIH017 Corythalia sp.11 FML M LNP00511 SCC1NHL023 Thymoites sp.3 FML F LNP00435 SCB1DIH017 Corythalia sp.11 FML M LNP00512 SCU1NGH016 Thymoites sp.1 FML F LNP00436 SCD1NEA007 Corythalia sp.12 FML F LNP00513 SFU2N8H024 Ameridion signum M LNP00437 SCC1DIR019 Corythalia sp.10 FML M LNP00514 SFU2N8H024 Ameridion signum M LNP00438 SCC1DIR019 Corythalia sp.10 FML M LNP00515 SFC1N8L006 Ameridion paidiscum F LNP00439 SCB1DIH016 Cobanus seclusus F LNP00517 SFB1D8R026 Ameridion signum F LNP00440 SCD1NED005 Cobanus sp.7 FML M LNP00518 SFU2N8H038 Ameridion latrophi M LNP00441 SCD1NED005 Cobanus sp.7 FML M LNP00519 SFU2N8H038 Ameridion latrophi M LNP00442 SCB1DEH012 Cobanus sp.9 FML F LNP00520 SFU1NBR049 Ameridion musawas M LNP00443 SCC1DFA006 Europhrys sp.1 FML F LNP00521 SFU1NBR049 Ameridion musawas M LNP00444 SCC1DFH008 Europhrys sp.1 FML M LNP00522 SFU2NBH007 Parawixia rimosa M LNP00445 SCC1DFH008 Europhrys sp.1 FML M LNP00523 SFU2NBH007 Parawixia rimosa M LNP00446 SCB1DGA021 Acragas sp.1 FML F LNP00524 SFD1NAH008 Mangora volcan M LNP00447 SCB1DGL021 Cylistella sp.2 FML F LNP00525 SFD1NAH008 Mangora volcan M LNP00448 SCB1DIH013 Cylistella sp.2 FML M LNP00526 SFD2NBL012 Pronous peje F LNP00449 SCB1DIH013 Cylistella sp.2 FML M LNP00528 SCU1NEA010 Ameridion progum F LNP00450 SCB1DIA012 Onocolus pentagonus M LNP00529 SCU1NDR017 Dipoena sp.5 FML M LNP00451 SCB1DIA012 Onocolus pentagonus M LNP00530 SCU1NDR017 Dipoena sp.5 FML M LNP00452 SCB1DIH003 Stephanopinae sp.2 FML F LNP00531 SCD1NDR009 Dipoena rubella F LNP00453 SCB1DID005 Stephanopinae sp.2 FML M LNP00532 SFD1NAL007 Parawixia rimosa F LNP00454 SCB1DID005 Stephanopinae sp.2 FML M LNP00533 SCD2NED006 Mangora melanocephala M LNP00455 SFD1D9R006 Tmarus sp.1 FML F LNP00534 SCD2NED006 Mangora melanocephala M LNP00456 SFB1DAR018 Tmarus sp.2 FML M LNP00535 SCB1DGL005 Mangora melanocephala F LNP00457 SFB1DAR018 Tmarus sp.2 FML M LNP00541 SAD1NGA015 Baalzebub baubo M LNP00458 SFB1D9D014 Stephanopinae sp.1 FML M LNP00542 SAC1DDB013 Ogulnius cf octectus F LNP00459 SFB1D9D014 Stephanopinae sp.1 FML M LNP00543 SAU1NDB035 Ogulnius sp.2 FML M LNP00460 SCU1NHL006 Tmarus sp.2 FML F LNP00544 SAD1NHB024 Ogulnius sp.2 FML F LNP00461 SCU1DHH003 Strophius sp.1 FML F LNP00545 SAC1DHH012 Epeirotypus sp.7 FML F LNP00462 SFU1N8R003 Modisimus guatuso F LNP00546 SAD1NFP008 Theridiosoma sp.7 FML F LNP00463 SFC1N7L007 Anopsicus chiriqui F LNP00547 SAD1DGH013 Theridiosoma sp.7 FML M LNP00464 SFC1DCH003 Anopsicus chiriqui M MLB00001 STC1N5H001 Melpomene sp.1 FML M LNP00465 SFC1DCH003 Anopsicus chiriqui M MLB00002 STC1N5H001 Melpomene sp.1 FML M Anexo_M 4. Continuación. Anexo_M 4. Continuación. N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio N° Preparado Id. Lote Identificación rápida Estadio MLB00003 SAC1DFH003 Melpomene sp.2 FML F MLB00004 SAC1NHH011 Melpomene sp.2 FML M MLB00005 SAC1NHH011 Melpomene sp.2 FML M MLB00006 SAC1NDR005 Retiro sp.1 FML F MLB00007 SAU1NDR030 Retiro sp.2 FML F MLB00008 STB1D8R016 Anyphaeninae sp.13 FML F MLB00009 SAB1DFA017 Anyphaeninae sp.14 FML M MLB00010 SAB1DFA017 Anyphaeninae sp.14 FML M MLB00011 STU1N6A008 Anyphaeninae sp.14 FML F MLB00012 SAC1NHB001 Anyphaeninae sp.15 FML F MLB00013 STU1N8L004 Anyphaeninae sp.16 FML F MLB00014 STC1N8H008 Anyphaeninae sp.17 FML F MLB00015 STB1D8B012 Anyphaeninae sp.18 FML F MLB00016 STD1N7B001 Wulfila maculata F MLB00017 STU1N4R016 Wulfila maculata M MLB00018 STU1N4R016 Wulfila maculata M MLB00019 STB1D8H008 Wulfila pulverulentus M MLB00020 STB1D8H008 Wulfila pulverulentus M MLB00021 STU1N4R027 Wulfila pulverulentus F MLB00022 SFB1D9D004 Alpaida tuonabo M MLB00023 SFB1D9D004 Alpaida tuonabo M MLB00024 SCB1DHA005 Alpaida tuonabo F MLB00025 SFD1NAL008 Bertrana sp.1 FML F MLB00026 SFU2N7L011 Bertrana sp.1 FML M MLB00027 SFU2N7L011 Bertrana sp.1 FML M MLB00028 SFU1NBA032 Araneus sp.1 FML M MLB00029 SFU1NBA032 Araneus sp.1 FML M MLB00030 SFU2NAH010 Araneus sp.1 FML F MLB00031 SCD1NDL008 caroli M MLB00032 SCD1NDL008 Cyclosa caroli M MLB00033 SFU1NAH015 Cyclosa caroli F MLB00034 SFU2N8A010 Eustala sp.1 FML F MLB00035 SCU1NDA019 Hypognatha elaborata F MLB00036 SFB1DAR008 Hypognatha elaborata M MLB00037 SFB1DAR008 Hypognatha elaborata M MLB00038 SFU1NCH011 Micrathena lucasi F MLB00039 SFD1D9L018 Micrathena molesta M MLB00040 SFD1D9L018 Micrathena molesta M MLB00041 SFU2NAH002 Micrathena molesta F MLB00042 SCU1NHA014 Parawixia nesophila M MLB00043 SCU1NHA014 Parawixia nesophila M MLB00044 SCU1NHD001 Parawixia rigida F MLB00045 SAC1NDH018 Nops cf largus M MLB00046 SAC1NDH018 Nops cf largus M MLB00047 SAC1NDR013 Elaver sp.10 FML F MLB00048 SAU1NDL016 Elaver sp.3 FML M MLB00049 SAU1NDL016 Elaver sp.3 FML M MLB00050 STB1D6L014 Elaver sp.4 FML F MLB00051 STB1D8R021 Elaver sp.4 FML M MLB00052 STB1D8R021 Elaver sp.4 FML M MLB00053 SAB1DFH007 Elaver sp.5 FML F MLB00054 SAC1NFH001 Elaver sp.5 FML M MLB00055 SAC1NFH001 Elaver sp.5 FML M MLB00056 SAD2NCB018 Elaver sp.7 FML M MLB00057 SAD2NCB018 Elaver sp.7 FML M MLB00058 SAB1DEH020 Dictyna sp.1 FML F MLB00059 SAB1DHL003 Dictyna sp.1 FML M MLB00060 SAB1DHL003 Dictyna sp.1 FML M MLB00061 SCU1NFD004 Micrathena duodecimspinosa M MLB00062 SCU1NFD004 Micrathena duodecimspinosa M MLB00063 SCU2NHR008 Micrathena duodecimspinosa F MLB00064 SCU2NEA005 Parawixia sp.1 FML M MLB00065 SCU2NEA005 Parawixia sp.1 FML M MLB00066 SFD1NCD022 Pseudanapis gertschi M MLB00067 SFD1NCD022 Pseudanapis gertschi M MLB00068 STD1N6H004 Katissa sp.10 FML M MLB00069 STD1N6H004 Katissa sp.10 FML M MLB00070 STB1D6H021 Katissa sp.10 FML F Anexo_1 1. Códigos únicos de idenficación del proyecto PANCODING (Id. Lote), códigos de secuencias en BOLD ‐SPIPA###‐##‐ y UB (Cód. Secuencias) e información taxonómica de los especímenes utilizados en el análisis filogenético. [F, hembra; M, macho] Id. Lote Cód. Secuencia Subfamilia Id. Rápida Id. Integrativa Sexo Localidad SAC1DER002 SPIPA422‐10 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.11 FML F PILA SAC1DFB011 baaba254 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.0 FML F PILA SAC1NDA004 baaba257 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.11 FML F PILA SAC2NDB010 SPIPA423‐10 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.11 FML F PILA SAD1NGA015 baaba104 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.11 FML M PILA SAD1NGB023 baaba258 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.11 FML M PILA SAD1NHL025 baaba256 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.11 FML M PILA SAU1NCH032 SPIPA425‐10 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.0 FML M PILA SAU1NGH020 SPIPA424‐10 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.0 FML M PILA SCD1DEL017 baaba255 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.10 FML F PNAC SCD1DFR014 SPIPA119‐10 Ogulniinae Ogulnius sp.1 FML Ogulnius sp.1 FML F PNAC SCD2NGL023 SPIPA417‐10 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.1 FML M PNAC SFD1D8R013 baaba060 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.10 FML F RFF SCD1DFR025 SPIPA418‐10 Theridiosomatinae Baalzebub sp.1 FML Baalzebub sp.1 FML F PNAC SCD1DFR031 SPIPA120‐10 Ogulniinae Ogulnius sp.1 FML Ogulnius sp.1 FML F PNAC SCD1DHR010 SPIPA361‐10 Ogulniinae Ogulnius sp.1 FML Ogulnius sp.1 FML F PNAC SCU1DHL016 baas1c12 Theridiosomatinae Baalzebub sp.1 FML Baalzebub sp.1 FML F PNAC SCU1DHL016 SPIPA419‐10 Theridiosomatinae Baalzebub sp.1 FML Baalzebub sp.1 FML F PNAC SCU1NEH011 baas1108 Theridiosomatinae Baalzebub sp.1 FML Baalzebub sp.1 FML M PNAC SCU1NHR026 baas1116 Theridiosomatinae Baalzebub sp.1 FML Baalzebub sp.1 FML F PNAC SAB1DEA003 chts1248 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML F PILA SAB1DEL024 SPIPA410‐10 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML M PILA SAD1NGB019 chts1247 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML M PILA SAD1NGL021 SPIPA411‐10 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML F PILA SAD1NHH012 chts1245 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML F PILA SAU1NFB025 chts1243 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML F PILA SAU1NGA027 chts1246 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML M PILA SAU1NHB013 SPIPA412‐10 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML F PILA SAU1NHP003 SPIPA413‐10 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML M PILA SFB1DAL021 chts1123 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML M RFF SFU1N7D015 chts1059 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML F RFF SFU1N7L018 SPIPA409‐10 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML M RFF SFU1NBD019 chts1242 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML M RFF SFU2NAA035 chts1241 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML F RFF SFU2NAD028 chts1244 Platoninae Chthonos sp.1 FML Chthonos sp.1 FML F RFF SCU2NDA009 chts3g12 Platoninae Chthonos sp.2 FML Chthonos sp.3 FML M PNAC SFD1NCR006 SPIPA408‐10 Platoninae Chthonos sp.2 FML Chthonos sp.2 FML M RFF SFU1NAD034 chts2061 Platoninae Chthonos sp.2 FML Chthonos sp.2 FML F RFF SCB1DED007 chts3e12 Platoninae Chthonos sp.3 FML Chthonos sp.3 FML M PNAC SCU1NFH016 chts3109 Platoninae Chthonos sp.3 FML Chthonos sp.3 FML F PNAC SCU2NDD007 chts3117 Platoninae Chthonos sp.3 FML Chthonos sp.3 FML M PNAC STU1N7H024 SPIPA406‐10 Platoninae Chthonos sp.3 FML Chthonos sp.3 FML M COPE SFC1N8H018 SPIPA404‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.1 FML Epeirotypus sp.1 FML F RFF SFC1NAR016 epes1168 Epeirotypinae Epeirotypus sp.1 FML Epeirotypus sp.1 FML F RFF SFC1NCD018 SPIPA400‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.1 FML Epeirotypus sp.1 FML F RFF SFD1D8R010 epes1120 Epeirotypinae Epeirotypus sp.1 FML Epeirotypus sp.1 FML M RFF SFD1DAR018 epes1166 Epeirotypinae Epeirotypus sp.1 FML Epeirotypus sp.1 FML F RFF SFD1NBL015 epes1058 Epeirotypinae Epeirotypus sp.1 FML Epeirotypus sp.1 FML F RFF SFD1NCD016 SPIPA402‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.1 FML Epeirotypus sp.1 FML F RFF SFU1N7H029 SPIPA401‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.1 FML Epeirotypus sp.1 FML F RFF SFU1NCD030 epes1167 Epeirotypinae Epeirotypus sp.1 FML Epeirotypus sp.1 FML F RFF SFU2NCH029 SPIPA403‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.1 FML Epeirotypus sp.1 FML M RFF SAD1NFP007 epes2176 Epeirotypinae Epeirotypus sp.2 FML Epeirotypus sp.2 FML F PILA SAU1NGA024 epes2205 Epeirotypinae Epeirotypus sp.2 FML Epeirotypus sp.2 FML M PILA SAU1NGH021 epes2204 Epeirotypinae Epeirotypus sp.2 FML Epeirotypus sp.2 FML M PILA SAU1NHA026 epes2206 Epeirotypinae Epeirotypus sp.2 FML Epeirotypus sp.2 FML F PILA SFB1DAH019 epes2183 Epeirotypinae Epeirotypus sp.2 FML Epeirotypus sp.3 FML M RFF SFD1DAA016 epes2184 Epeirotypinae Epeirotypus sp.2 FML Epeirotypus sp.3 FML F RFF SFU1N8A024 epes2203 Epeirotypinae Epeirotypus sp.2 FML Epeirotypus sp.3 FML F RFF SFU1NAA009 epes2053 Epeirotypinae Epeirotypus sp.2 FML Epeirotypus sp.3 FML M RFF SFU2NBD029 epes2063 Epeirotypinae Epeirotypus sp.2 FML Epeirotypus sp.3 FML F RFF SFU1N7H026 SPIPA391‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.3 FML Epeirotypus sp.3 FML F RFF SFU1N8L020 epes3111 Epeirotypinae Epeirotypus sp.3 FML Epeirotypus sp.3 FML M RFF SFU1NBH019 SPIPA390‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.3 FML Epeirotypus sp.3 FML F RFF SFU1NCA029 epes3208 Epeirotypinae Epeirotypus sp.3 FML Epeirotypus sp.3 FML F RFF SFU2NBA026 epes3209 Epeirotypinae Epeirotypus sp.3 FML Epeirotypus sp.3 FML F RFF Anexo_1 1. Continuación. Id. Lote Cód. Secuencia Subfamilia Id. Rápida Id. Integrativa Sexo Localidad SFU2NCH031 epes3207 Epeirotypinae Epeirotypus sp.3 FML Epeirotypus sp.3 FML F RFF SFU2NBH025 epes4070 Epeirotypinae Epeirotypus sp.4 FML Epeirotypus sp.4 FML F RFF SFD1DAL018 epes5062 Epeirotypinae Epeirotypus sp.5 FML Epeirotypus sp.3 FML F RFF STC1D5H013 SPIPA395‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.6 FML Epeirotypus sp.6 FML F COPE SAC1DHH007 SPIPA389‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.7 FML Epeirotypus sp.10 FML F PILA SAC1DHH012 epes7100 Epeirotypinae Epeirotypus sp.7 FML Epeirotypus sp.7 FML F PILA SAD1NHL020 SPIPA421‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.7 FML Baalzebub sp.0 FML M PILA SAU1NCL035 epes7240 Epeirotypinae Epeirotypus sp.7 FML Epeirotypus sp.7 FML F PILA SAU1NCR002 SPIPA387‐10 Epeirotypinae Epeirotypus sp.7 FML Epeirotypus sp.10 FML F PILA SAU1NCR048 epes7237 Epeirotypinae Epeirotypus sp.7 FML Epeirotypus sp.7 FML F PILA SAU2NCL028 epes7239 Epeirotypinae Epeirotypus sp.7 FML Epeirotypus sp.10 FML F PILA SAU2NCL033 epes7238 Epeirotypinae Epeirotypus sp.7 FML Epeirotypus sp.10 FML F PILA SFB1D9H034 epigl202 Theridiosomatinae Epilineutes globosus Epilineutes globosus F RFF SFB1DAL022 epigl201 Theridiosomatinae Epilineutes globosus Epilineutes globosus M RFF SFD1D8D007 epigl055 Theridiosomatinae Epilineutes globosus Epilineutes globosus F RFF SFD1DAL017 epigl165 Theridiosomatinae Epilineutes globosus Epilineutes globosus F RFF SFD1NBA013 SPIPA381‐10 Theridiosomatinae Epilineutes globosus Epilineutes globosus F RFF SFU1N8A034 epigl064 Theridiosomatinae Epilineutes globosus Epilineutes globosus M RFF SFU1NAH031 SPIPA379‐10 Theridiosomatinae Epilineutes globosus Epilineutes globosus M RFF SFU1NAR037 SPIPA378‐10 Theridiosomatinae Epilineutes globosus Epilineutes globosus F RFF SFU1NBA005 SPIPA380‐10 Theridiosomatinae Epilineutes globosus Epilineutes globosus M RFF SFU1NBD031 SPIPA382‐10 Theridiosomatinae Epilineutes globosus Epilineutes globosus M RFF SFB1D9R032 naafa191 Epeirotypinae Naatlo fauna Naatlo fauna F RFF SFB1DAR028 naafa056 Epeirotypinae Naatlo fauna Naatlo fauna M RFF SFB2D9R026 SPIPA373‐10 Epeirotypinae Naatlo fauna Naatlo fauna M RFF SFC1DBR019 naafa118 Epeirotypinae Naatlo fauna Naatlo fauna F RFF SFD1NBR033 SPIPA374‐10 Epeirotypinae Naatlo fauna Naatlo fauna F RFF SFU1N8A036 SPIPA376‐10 Epeirotypinae Naatlo fauna Naatlo fauna F RFF SFU1N8R028 SPIPA375‐10 Epeirotypinae Naatlo fauna Naatlo fauna F RFF SFU1NBR037 naafa189 Epeirotypinae Naatlo fauna Naatlo fauna M RFF SFU1NCD031 SPIPA377‐10 Epeirotypinae Naatlo fauna Naatlo fauna M RFF SFU1NCL016 naafa190 Epeirotypinae Naatlo fauna Naatlo fauna F RFF SCB1DFR042 naas1187 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML M PNAC SCB1DGD011 naas1192 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F PNAC SCB1DIA010 SPIPA371‐10 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F PNAC SCC1NER014 SPIPA370‐10 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F PNAC SCC1NHD013 SPIPA372‐10 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F PNAC SCC2NFH008 SPIPA369‐10 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F PNAC SCD1NGR012 SPIPA362‐10 Ogulniinae Ogulnius sp.1 FML Ogulnius sp.1 FML M PNAC SCU1NDH021 naas1115 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML M PNAC SCU1NGH027 naas1272 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML M PNAC SFB1D8L018 SPIPA364‐10 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F RFF SFB1D9H035 naas1112 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F RFF SFC1DAH012 naas1271 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F RFF SFU1N7R038 naas1273 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F RFF SFU1N8H023 SPIPA366‐10 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F RFF SFU1NBR036 SPIPA363‐10 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F RFF SFU1NCR036 naas1269 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F RFF SFU1NCR045 SPIPA367‐10 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F RFF SFU2NBH044 naas1268 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F RFF SFU2NCH028 SPIPA365‐10 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F RFF STB1D9A009 SPIPA368‐10 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML M COPE STB1D9R019 naas1270 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML M COPE STC1D5A014 naas1188 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML M COPE STD1N7B029 naas1186 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F COPE STD1N7H025 naas1266 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F COPE STD1N7R022 naas1267 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F COPE SAC1DDB013 oguoc103 Ogulniinae Ogulnius cf obtectus Ogulnius gertschi F PILA SAU1NCB026 oguoc196 Ogulniinae Ogulnius cf obtectus Ogulnius gertschi F PILA SAU2NCL030 oguoc198 Ogulniinae Ogulnius cf obtectus Ogulnius gertschi F PILA SAU2NCL034 oguoc194 Ogulniinae Ogulnius cf obtectus Ogulnius gertschi F PILA SCD1DFH007 oguoc195 Ogulniinae Ogulnius cf obtectus Ogulnius sp.1 FML F PNAC SCD1NFD017 naas1185 Epeirotypinae Naatlo sp.1 FML Naatlo sp.1 FML F PNAC SCC1DER017 ogus1119 Ogulniinae Ogulnius sp.1 FML Ogulnius sp.1 FML M PNAC SCD1DFD013 SPIPA360‐10 Ogulniinae Ogulnius sp.1 FML Ogulnius sp.1 FML F PNAC SCD1DFR015 ogus1110 Ogulniinae Ogulnius sp.1 FML Ogulnius sp.1 FML F PNAC SCD1DFR022 baas1h11 Platoninae Baalzebub sp.1 FML Baalzebub sp.1 FML F PNAC Anexo_1 1. Continuación. Id. Lote Cód. Secuencia Subfamilia Id. Rápida Id. Integrativa Sexo Localidad SCD1DHR006 SPIPA416‐10 Platoninae Baalzebub sp.1 FML Baalzebub sp.1 FML F PNAC SCD1NER013 oguoc193 Ogulniinae Ogulnius sp.1 FML Ogulnius sp.1 FML F PNAC SCD2NFA020 SPIPA335‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML F PNAC SAB1DDA002 SPIPA356‐10 Ogulniinae Ogulnius sp.2 FML Ogulnius gertschi F PILA SAB1DHL021 ogus2197 Ogulniinae Ogulnius sp.2 FML Ogulnius gertschi M PILA SAC1DEH003 ogus2199 Ogulniinae Ogulnius sp.2 FML Ogulnius gertschi M PILA SAD1NGL022 ogus2200 Ogulniinae Ogulnius sp.2 FML Ogulnius gertschi M PILA SAD1NHB024 ogus2101 Ogulniinae Ogulnius sp.2 FML Ogulnius gertschi F PILA SAU1NCL037 SPIPA359‐10 Ogulniinae Ogulnius sp.2 FML Ogulnius gertschi M PILA SAU1NDB035 ogus2102 Ogulniinae Ogulnius sp.2 FML Ogulnius gertschi M PILA SAU1NDL029 SPIPA355‐10 Ogulniinae Ogulnius sp.2 FML Ogulnius gertschi M PILA SAU1NDR024 SPIPA357‐10 Ogulniinae Ogulnius sp.2 FML Ogulnius gertschi F PILA SAU2NCA003 SPIPA358‐10 Ogulniinae Ogulnius sp.2 FML Ogulnius gertschi F PILA SAC1DDH014 thech175 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F PILA SAC1NGL018 thech180 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F PILA SAC1NHL015 SPIPA351‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F PILA SAD1NCA001 SPIPA352‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum M PILA SAD1NCA004 SPIPA353‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F PILA SAD1NCR031 thech170 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum M PILA SAD1NGL024 thech174 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum M PILA SAD1NHL021 thech169 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum M PILA SFC2NAR015 thech178 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F RFF SFD1D9L004 thech121 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F RFF SFD1DAR028 thech069 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum M RFF SFD1NAH025 SPIPA354‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F RFF SFD1NCD023 SPIPA350‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F RFF SFD1NCL025 thech182 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum M RFF SFU1N8L031 thech173 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F RFF STD1N6R021 thech171 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F COPE STD1N6R027 thech172 Theridiosomatinae Theridiosoma chiripa Theridiosoma goodnightorum F COPE SFB1DBA017 SPIPA347‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.3 FML M RFF SFC1DBD015 SPIPA346‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.3 FML M RFF SFC1DBH007 thes3212 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.3 FML M RFF SFC1DCR013 SPIPA348‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.3 FML F RFF SFD1DAA017 SPIPA349‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.3 FML F RFF SFD1DAR027 thes3114 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.3 FML M RFF SFD1NAD013 thes3249 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.3 FML F RFF SFD1NCA011 SPIPA345‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.3 FML F RFF SFU1NCR044 thes3210 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.3 FML F RFF SFU2NAD033 thes3067 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.3 FML F RFF STC1D8H011 thes3251 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.11 FML F COPE STC2D6R014 SPIPA318‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.11 FML M COPE STD1D6H023 SPIPA317‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.11 FML F COPE STD1D7B026 thes3250 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.11 FML M COPE STD1N7B028 thes3214 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.11 FML M COPE STD1N7R021 thes3213 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.11 FML F COPE STU1N5L020 SPIPA319‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.11 FML F COPE STU1N6H023 thes3211 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.11 FML F COPE STU1N7A019 SPIPA320‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.11 FML F COPE STU1N7L028 SPIPA321‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.3 FML Tantra sp.11 FML F COPE SFB1DAR031 thes4181 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.4 FML Tantra sp.4 FML M RFF SFD1NAL019 SPIPA343‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.4 FML Tantra sp.4 FML M RFF SFD1NCH021 SPIPA342‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.4 FML Tantra sp.4 FML M RFF SFU1D9A009 SPIPA344‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.4 FML Tantra sp.4 FML F RFF SFU1NBA029 thes4259 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.4 FML Tantra sp.4 FML F RFF SFU1NCR034 thes4177 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.4 FML Tantra sp.4 FML F RFF SFU2NAA010 SPIPA340‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.4 FML Tantra sp.4 FML M RFF SFU2NAD032 thes4113 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.4 FML Tantra sp.4 FML M RFF SFU2NBH034 thes4065 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.4 FML Tantra sp.4 FML F RFF SFC1DBD011 thes5066 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.5 FML Tantra sp.5 FML F RFF SFC2DCD016 thes5122 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.5 FML Tantra sp.5 FML M RFF SFD1D8H025 SPIPA337‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.5 FML Tantra sp.5 FML M RFF SFD1DAL020 thes5262 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.5 FML Tantra sp.5 FML F RFF SFD1NAH022 SPIPA338‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.5 FML Tantra sp.5 FML F RFF SFD1NAH037 SPIPA121‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.5 FML Tantra sp.5 FML M RFF SFD1NBH019 SPIPA339‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.5 FML Tantra sp.5 FML F RFF SFD1NBH034 SPIPA122‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.5 FML Tantra sp.5 FML F RFF Anexo_1 1. Continuación. Id. Lote Cód. Secuencia Subfamilia Id. Rápida Id. Integrativa Sexo Localidad SFU2NAA014 thes5261 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.5 FML Tantra sp.5 FML M RFF SFU2NAH042 thes5260 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.5 FML Tantra sp.5 FML F RFF SAB1DDL017 thes6228 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.10 FML F PILA SAB1DER005 SPIPA326‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.10 FML F PILA SAC1DGB022 SPIPA325‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.10 FML F PILA SAD1DHP002 thes6226 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.10 FML M PILA SAD1NCR003 SPIPA324‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.10 FML F PILA SAD1NGB029 thes6225 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.10 FML F PILA SAD1NGP019 SPIPA322‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.10 FML M PILA SAU1NDB029 thes6229 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.10 FML F PILA SAU1NDH032 thes6179 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.10 FML M PILA SAU2NFA018 SPIPA323‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.10 FML F PILA SCC1NHA009 thes6231 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML F PNAC SCC2NGR018 thes6233 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML M PNAC SCD1DEL018 SPIPA336‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML F PNAC SCD1DFL016 thes6230 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML F PNAC SCD2NGL022 baaba253 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.1 FML F PNAC SCU2NDA017 thes6106 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML M PNAC SCU2NHH021 thes6107 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML F PNAC STB1D5L027 SPIPA333‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML M COPE STD1D6B017 SPIPA332‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML M COPE STD1N4R020 thes6235 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML M COPE STD1N6R022 thes6234 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML F COPE STD1N7L011 thes6227 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML M COPE STD1N7R030 thes6232 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML F COPE STU1N4R024 SPIPA334‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML F COPE STU2N8R022 thes6236 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.6 FML Tantra sp.6 FML F COPE SAB1DHP002 SPIPA329‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.7 FML Tantra sp.7 FML F PILA SAC1DFH010 thes7263 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.7 FML Tantra sp.7 FML F PILA SAC1DHA012 SPIPA328‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.7 FML Tantra sp.7 FML F PILA SAD1DGH013 thes7099 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.7 FML Tantra sp.7 FML M PILA SAD1DHL009 thes7264 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.7 FML Tantra sp.7 FML M PILA SAD1DHP001 SPIPA327‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.7 FML Tantra sp.7 FML M PILA SAD1NFP008 thes7105 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.7 FML Tantra sp.7 FML F PILA SAU1NCL062 SPIPA385‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.7 FML Epeirotypus sp.7 FML F PILA SAU1NFB026 SPIPA330‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.7 FML Tantra sp.7 FML M PILA SAU1NHH023 thes7265 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.7 FML Tantra sp.7 FML F PILA SFNQP8L012 SPIPA222‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.8 FML Tantra sp.4 FML F RFF SFNQK8L001 SPIPA232‐10 Theridiosomatinae Theridiosoma sp.9 FML Baalzebub albonotatus M RFF SFD1NBL018 wens1068 Theridiosomatinae Wendilgarda clara Wendilgarda clara F RFF SFD1NBL030 wenclf11 Theridiosomatinae Wendilgarda clara Wendilgarda clara M RFF SFD1NBL036 wenclg11 Theridiosomatinae Wendilgarda clara Wendilgarda clara M RFF SFD2NBL020 wens1057 Theridiosomatinae Wendilgarda clara Wendilgarda clara M RFF SFU1N7H040 wencle11 Theridiosomatinae Wendilgarda clara Wendilgarda clara M RFF SCD1DFR013 baaba252 Theridiosomatinae Baalzebub baubo Baalzebub sp.10 FML F PNAC SFU2NBH023 epes3054 Epeirotypinae Epeirotypus sp.3 FML Epeirotypus sp.3 FML F RFF Anexo_1 2. Número de especímenes de Theridiosomatidae colectados durante las campañas PANCODING. Los protocolos muestran el número de especímenes utilizados en la extracción de ADN. [F, hembra; M, macho; SQ, secuencia ].

Identificación Integrativa Protocolo UB Protocolo BIO Localidad PILA RFF COPE PNAC PILA RFF COPE PNAC PILA RFF COPE PNAC Sexo MFMFMFMFMFMFMFMFMFMFMFMF Baalzebub albonotatus 1 1 Baalzebub sp.0 FML 3 5 1 3 Baalzebub sp.1 FML 26 12 14 Baalzebub sp.4 FML 1 No SQ No SQ Baalzebub sp.5 FML 1 No SQ No SQ Baalzebub sp.10 FML 1212 Baalzebub sp.11 FML 44 31 12 Chthonos sp.1 FML 1619118 2323 221 Chthonos sp.2 FML 1 1 1 1 Chthonos sp.3 FML 1 3 1 3 1 1 Epeirotypus sp.1 FML 7 20 1 4 1 4 Epeirotypus sp.2 FML 22 22 Epeirotypus sp.3 FML 9 16 3 8 2 Epeirotypus sp.4 FML 1 1 Epeirotypus sp.6 FML 2 1 Epeirotypus sp.7 FML 4 3 1 Epeirotypus sp.10 FML 4 2 2 Epilineutes globosus 27 20 2 3 3 2 Naatlo fauna 19 31 2 3 2 3 Naatlo sp.1 FML 2602315717507 52332 51 4 Ogulnius gertschi 77158 131 27 23 Ogulnius sp.1 FML 27 13 14 Theridiosoma goodnightorum 13161738 2 3223 2 12 2 Tantra n. gen. sp.3 FML 7 24 2 3 2 3 Tantra n. gen. sp.4 FML 49 48 2 3 3 2 Tantra n. gen. sp.5 FML 46 23 23 Tantra n. gen. sp.6 FML 15221618 2323 21 2 Tantra n. gen. sp.7 FML 111 229 2 3 2 3 Tantra n. gen. sp.10 FML 9 42 2 3 1 4 Tantra n. gen. sp.11 FML 5 17 2 3 1 4 Tantra n. gen. sp.13 FML 1 No SQ No SQ Jogo n. gen. sp.1 FML 1 1 No SQ No SQ Wendilgarda clara 51 41 Huevos 95 8 4 4 20 8 4 3 Juveniles 563 409 188 180 Adultos totales (1987) 235 484 160 277 48 202 40 541 Muestras de ADN (282) 164722506151016121916265 6 214 Especímenes totales (3438) 235 1142 160 694 48 394 40 725 Anexo_3 1. Códigos únicos de idenficación, códigos de secuencias e información taxonómica de los sacos de huevos utilizados en el análisis filogenético.

Id. Lote Cód. Secuencia Subfamilia Id. Rápida Id. Código de Barras Cantidad Localidad SAER001 Ogulniinae Ogulnius 1 PILA SAER002 ogu02124 Ogulniinae Ogulnius Ogulnius gertschi 1 PILA SAER003 ogu03125 Ogulniinae Ogulnius Ogulnius gertschi 1 PILA SAER004 ogu04126 Ogulniinae Ogulnius Ichneumonidae (Avispas) 1 PILA SAER005 ogu05127 Ogulniinae Ogulnius Ogulnius gertschi 1 PILA SAER006 ogu06128 Ogulniinae Ogulnius Ogulnius gertschi 1 PILA SAER007 Ogulniinae Ogulnius 1 PILA SAER008 Ogulniinae Ogulnius 1 PILA SAER009 Ogulniinae Ogulnius 1 PILA SAER010 Ogulniinae Ogulnius 1 PILA SAES001 Theridiosomatinae Theridiosoma 1 PILA SAES002 Theridiosomatinae Theridiosoma 1 PILA SAES003 the03129 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra wounaan n. sp. 1 PILA SAES004 the04130 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra wounaan n. sp. 1 PILA SAES005 the05131 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra wounaan n. sp. 1 PILA SAES006 the06132 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra wounaan n. sp. 1 PILA SAES007 the07133 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra naso n. sp. 1 PILA SAES008 Theridiosomatinae Theridiosoma 50 PILA SAES048 the48134 Theridiosomatinae Theridiosoma Scelionidae (Avispas) 1 PILA SAES049 the49135 Theridiosomatinae Theridiosoma Scelionidae (Avispas) 1 PILA SAES050 the50136 Theridiosomatinae Theridiosoma Scelionidae (Avispas) 1 PILA SAES051 the51137 Theridiosomatinae Theridiosoma Scelionidae (Avispas) 1 PILA SAES052 the52138 Theridiosomatinae Theridiosoma 1 PILA SAES053 Theridiosomatinae Theridiosoma 1 PILA SAES054 Theridiosomatinae Theridiosoma 1 PILA SAES055 Theridiosomatinae Theridiosoma 1 PILA SAES056 Theridiosomatinae Theridiosoma 2 PILA SAES057 the57139 Theridiosomatinae Theridiosoma Scelionidae (Avispas) 1 PILA SAES058 the58140 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra naso n. sp. 1 PILA SAES059 the59141 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra wounaan n. sp. 1 PILA SAES060 the60142 Theridiosomatinae Theridiosoma Scelionidae (Avispas) 1 PILA SAES061 the61143 Theridiosomatinae Theridiosoma 1 PILA SAES062 Theridiosomatinae Theridiosoma 1 PILA SAEC001 Platoninae ¿Chthonos? 1 PILA SAEC002 Platoninae ¿Chthonos? 1 PILA SAEC003 cht03144 Platoninae ¿Chthonos? 1 PILA SAEC004 cht04145 Platoninae ¿Chthonos? Chthonos dobo n. sp. 1 PILA SAEC005 the05146 Platoninae ¿Chthonos? 1 PILA SAEC006 cht06147 Platoninae ¿Chthonos? Chthonos dobo n. sp. 1 PILA SAEC007 cht07148 Platoninae ¿Chthonos? Chthonos dobo n. sp. 1 PILA SAEC008 Platoninae ¿Chthonos? 1 PILA SAEC009 Platoninae ¿Chthonos? 1 PILA SAEC010 Platoninae ¿Chthonos? 1 PILA SAEB001 epeX1149 Theridiosomatinae ¿Baalzebub? Baalzebub sukia n. sp. 1 PILA SFER001 ogu01150 Ogulniinae Ogulnius Ogulnius sp.A (no adultos) 1 RFF SFES001 the01151 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra sp. A (no adultos) 1 RFF SFES002 the02152 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra bugle n. sp. 1 RFF SFES003 the03153 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra sp. B (no adultos) 1 RFF SFES004 the04154 Epeirotypinae Epeirotypus Tantra ngabe n. sp. 1 RFF SFES005 the05155 Theridiosomatinae ¿Epilineutes? Epilineutes sp. A (no adultos) 1 RFF SFEC001 cht01156 Platoninae ¿Chthonos? Chthonos dobo n. sp. 1 RFF SFEF001 wen01157 Theridiosomatinae Wendilgarda Wendilgarda clara 1 RFF STES001 the01158 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra bribri n. sp. 1 COPE STES002 the02159 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra embera n. sp. 1 COPE STES003 the03160 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra embera n. sp. 1 COPE STES004 the04161 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra embera n. sp. 1 COPE SCES001 the01162 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra embera n. sp. 1 PNAC SCES002 the02163 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra embera n. sp. 1 PNAC SCES003 the03164 Theridiosomatinae Theridiosoma Tantra embera n. sp. 1 PNAC SCES004 Theridiosomatinae Theridiosoma 1 PNAC Anexo_5 1. Cantidad de lotes, individuos, riqueza y abundancia del inventario de biodiversidad semi‐cuantitativo PANCODING, discriminados por Muestras Lotes Ind. Totales Riqueza Ab. Adultos Muestras Lotes Ind. Totales Riqueza Ab. Adultos SAB1DDA 26 55 12 15 SAC1NGP 16 30 7 10 SAB1DDB 21 55 14 14 SAC1NHA 9 13 4 4 SAB1DDH 22 53 12 17 SAC1NHB 21 32 9 12 SAB1DDL 18 55 10 17 SAC1NHH 17 40 9 12 SAB1DDR 23 54 11 16 SAC1NHL 16 47 9 14 SAB1DEA 24 76 14 25 SAC1NHP 23 77 10 41 SAB1DEB 31 109 13 25 SAC2NDA 19 31 11 14 SAB1DEH 24 75 15 23 SAC2NDB 13 24 3 3 SAB1DEL 34 92 16 28 SAC2NDH 17 27 8 9 SAB1DER 68 147 28 53 SAC2NDL 11 17 6 7 SAB1DFA 31 71 15 23 SAC2NDR 23 47 10 17 SAB1DFB 30 102 17 22 SAD1DGA 17 38 9 21 SAB1DFH 50 143 19 35 SAD1DGB 20 101 5 55 SAB1DGA 28 91 11 17 SAD1DGH 14 49 5 34 SAB1DGL 43 119 11 24 SAD1DGL 15 62 6 21 SAB1DGP 21 63 7 12 SAD1DGP 15 47 4 33 SAB1DHA 26 106 11 20 SAD1DHL 11 61 3 34 SAB1DHB 23 75 10 15 SAD1DHP 9 19 3 8 SAB1DHH 21 76 10 15 SAD1NCA 17 52 8 20 SAB1DHL 25 122 10 19 SAD1NCB 33 152 18 76 SAB1DHP 22 57 8 10 SAD1NCH 32 76 17 28 SAB2DEB 39 87 20 28 SAD1NCL 25 85 12 31 SAC1DDA 14 19 7 7 SAD1NCR 32 109 18 49 SAC1DDB 14 23 3 4 SAD1NFL 21 78 9 22 SAC1DDH 16 35 8 22 SAD1NFP 10 21 4 4 SAC1DDL 16 47 5 7 SAD1NGA 22 43 11 23 SAC1DDR 18 45 6 17 SAD1NGB 31 123 18 44 SAC1DEA 14 17 3 3 SAD1NGH 29 100 9 39 SAC1DEH 14 25 6 11 SAD1NGL 28 89 15 42 SAC1DEL 15 26 4 5 SAD1NGP 19 46 9 17 SAC1DER 14 36 4 17 SAD1NHA 26 67 11 21 SAC1DFA 11 13 5 5 SAD1NHB 31 93 12 20 SAC1DFB 13 18 5 7 SAD1NHH 27 107 20 42 SAC1DFH 17 24 9 14 SAD1NHL 31 134 16 54 SAC1DGB 24 68 9 16 SAD1NHP 20 45 8 13 SAC1DGH 11 16 5 5 SAD2NCB 26 105 16 47 SAC1DGL 10 19 4 5 SAU1NCA 30 126 18 36 SAC1DGP 13 17 4 5 SAU1NCB 26 153 15 38 SAC1DHA 15 21 5 6 SAU1NCH 39 170 19 62 SAC1DHB 21 44 8 9 SAU1NCL 76 191 20 67 SAC1DHH 12 31 4 6 SAU1NCR 54 125 19 51 SAC1DHL 16 44 5 5 SAU1NDA 34 107 16 26 SAC1DHP 8 15 2 4 SAU1NDB 39 141 23 44 SAC1NDA 14 29 8 10 SAU1NDH 34 165 20 48 SAC1NDB 12 21 3 3 SAU1NDL 36 133 22 39 SAC1NDH 24 48 12 23 SAU1NDR 36 137 20 39 SAC1NDL 15 23 5 8 SAU1NFA 27 129 14 24 SAC1NDR 13 18 5 8 SAU1NFB 32 167 15 35 SAC1NFA 15 25 6 6 SAU1NFH 20 90 11 28 SAC1NFB 13 22 4 4 SAU1NFL 36 302 19 66 SAC1NFH 12 44 8 9 SAU1NFP 20 98 13 28 SAC1NFL 15 33 5 6 SAU1NGA 30 111 16 30 SAC1NFP 6 19 4 9 SAU1NGB 24 101 12 25 SAC1NGA 9 25 3 5 SAU1NGH 24 90 15 36 SAC1NGB 27 80 11 23 SAU1NGL 26 100 14 35 SAC1NGH 11 31 3 3 SAU1NGP 19 65 9 24 SAC1NGL 20 36 8 9 SAU1NHA 31 100 18 35 Anexo_5 1. Muestras Lotes Ind. Totales Riqueza Ab. Adultos Muestras Lotes Ind. Totales Riqueza Ab. Adultos SAU1NHB 26 101 14 30 SCC1NFR 38 57 16 20 SAU1NHH 31 110 15 29 SCC1NGA 22 45 8 11 SAU1NHL 28 154 15 44 SCC1NGD 17 23 7 8 SAU1NHP 27 95 16 33 SCC1NGH 22 40 4 10 SAU2NCA 26 86 15 21 SCC1NGL 15 29 4 6 SAU2NCH 30 126 16 29 SCC1NGR 35 60 7 22 SAU2NCL 43 222 17 66 SCC1NHA 22 45 7 14 SAU2NCR 32 138 16 46 SCC1NHD 16 25 8 10 SAU2NFA 18 61 12 19 SCC1NHH 37 50 9 20 SAU2NFB 30 148 11 35 SCC1NHL 33 69 10 15 SAU2NFH 22 94 11 24 SCC1NHR 38 58 14 22 SCB1DEA 26 53 11 17 SCC2NFH 32 42 6 21 SCB1DED 8 31 5 5 SCC2NFL 15 22 4 5 SCB1DEH 19 54 11 23 SCC2NFR 42 60 8 20 SCB1DEL 26 52 13 16 SCC2NGR 36 92 10 52 SCB1DER 29 79 11 27 SCD1DEL 25 79 11 28 SCB1DFD 15 29 7 11 SCD1DFA 22 60 10 19 SCB1DFL 30 60 12 18 SCD1DFD 18 51 7 12 SCB1DFR 50 130 21 34 SCD1DFH 39 79 9 42 SCB1DGA 31 80 19 35 SCD1DFL 23 106 9 41 SCB1DGD 17 52 7 9 SCD1DFR 32 89 16 35 SCB1DGH 15 58 8 9 SCD1DHR 16 44 9 23 SCB1DGL 37 98 22 34 SCD1NDA 17 50 9 23 SCB1DGR 34 101 17 31 SCD1NDD 17 33 8 19 SCB1DHA 23 54 13 18 SCD1NDH 18 46 6 21 SCB1DHD 18 44 8 13 SCD1NDL 20 78 10 16 SCB1DHH 20 35 10 13 SCD1NDR 26 79 9 32 SCB1DIA 16 18 10 11 SCD1NEA 19 44 9 22 SCB1DID 14 37 8 9 SCD1NED 20 30 10 14 SCB1DIH 18 32 11 13 SCD1NEH 31 41 8 18 SCB1DIL 19 48 8 14 SCD1NEL 18 55 8 18 SCB1DIR 36 63 17 28 SCD1NER 31 74 14 31 SCB2DGL 29 91 15 24 SCD1NFA 21 54 9 19 SCB2DGR 30 103 13 28 SCD1NFD 26 58 12 22 SCC1DEA 23 41 4 18 SCD1NFL 25 52 13 24 SCC1DED 10 33 4 14 SCD1NGA 22 43 12 21 SCC1DEH 21 49 5 13 SCD1NGD 21 53 9 11 SCC1DER 21 52 10 20 SCD1NGH 32 55 10 21 SCC1DFA 23 38 13 22 SCD1NGL 26 60 14 29 SCC1DFH 32 58 8 23 SCD1NGR 33 87 15 34 SCC1DGA 28 40 11 17 SCD2NED 22 40 10 15 SCC1DGD 18 36 8 14 SCD2NFA 26 48 11 20 SCC1DGH 28 41 6 22 SCD2NGL 26 52 10 22 SCC1DHA 29 40 6 10 SCU1DHH 17 42 9 23 SCC1DHD 10 12 3 3 SCU1DHL 17 109 7 28 SCC1DHL 29 57 4 16 SCU1DHR 19 132 6 90 SCC1DIA 19 28 4 11 SCU1NDA 27 61 14 43 SCC1DID 14 21 4 7 SCU1NDD 20 50 12 29 SCC1DIH 33 65 11 30 SCU1NDH 22 51 12 31 SCC1DIL 51 85 10 25 SCU1NDL 27 82 14 34 SCC1DIR 38 51 8 19 SCU1NDR 35 86 16 41 SCC1NDL 11 15 4 8 SCU1NEA 22 56 14 41 SCC1NEL 17 31 7 14 SCU1NED 23 75 8 27 SCC1NER 25 65 10 16 SCU1NEH 22 52 12 27 SCC1NFD 22 38 8 14 SCU1NEL 24 90 13 33 SCC1NFH 34 44 11 22 SCU1NER 26 101 11 65 SCC1NFL 24 53 9 16 SCU1NFA 11 61 4 24 Anexo_5 1. Muestras Lotes Ind. Totales Riqueza Ab. Adultos Muestras Lotes Ind. Totales Riqueza Ab. Adultos SCU1NFD 17 43 6 27 SFC1N7D 12 21 5 7 SCU1NFH 22 42 12 17 SFC1N7H 24 41 11 13 SCU1NFR 23 57 12 23 SFC1N7L 13 13 6 7 SCU1NGA 18 54 10 31 SFC1N7R 28 36 7 12 SCU1NGD 27 57 15 29 SFC1N8A 19 36 12 14 SCU1NGH 30 45 19 31 SFC1N8D 19 24 9 11 SCU1NHA 30 87 13 31 SFC1N8H 26 28 11 14 SCU1NHD 22 52 12 20 SFC1N8L 11 11 5 5 SCU1NHH 20 48 11 20 SFC1N8R 26 37 12 19 SCU1NHL 31 101 16 41 SFC1NAL 17 17 8 10 SCU1NHR 32 96 14 42 SFC1NAR 29 36 12 15 SCU2NDA 18 39 10 17 SFC1NBD 24 40 6 8 SCU2NDD 20 51 8 20 SFC1NBR 29 40 13 17 SCU2NDH 24 48 11 19 SFC1NCA 17 28 4 7 SCU2NDR 29 65 16 31 SFC1NCD 27 32 9 12 SCU2NEA 19 51 9 26 SFC1NCL 25 41 11 12 SCU2NEH 20 58 12 26 SFC1NCR 28 33 12 14 SCU2NHA 16 52 7 19 SFC2DBL 14 19 6 7 SCU2NHD 16 43 9 15 SFC2DCA 11 12 4 5 SCU2NHH 22 51 11 25 SFC2DCD 21 40 11 24 SCU2NHL 19 53 9 15 SFC2DCH 21 37 8 15 SCU2NHR 21 56 12 33 SFC2N8L 10 16 5 6 SFB1D8A 25 28 12 13 SFC2N8R 26 34 10 15 SFB1D8D 19 26 6 7 SFC2NAR 42 61 17 22 SFB1D8H 34 39 17 21 SFD1D8A 22 32 13 23 SFB1D8L 30 41 12 16 SFD1D8D 19 35 9 24 SFB1D8R 38 55 17 20 SFD1D8H 29 51 16 30 SFB1D9A 29 47 13 18 SFD1D8L 19 67 10 38 SFB1D9D 33 50 15 19 SFD1D8R 23 70 8 43 SFB1D9H 51 80 25 37 SFD1D9L 28 70 14 36 SFB1D9L 34 59 12 17 SFD1DAA 29 69 14 42 SFB1D9R 59 88 21 32 SFD1DAL 26 73 14 56 SFB1DAD 29 58 10 12 SFD1DAR 37 95 16 56 SFB1DAH 35 57 13 20 SFD1NAA 30 50 13 18 SFB1DAL 36 51 10 14 SFD1NAD 23 38 11 19 SFB1DAR 41 76 20 28 SFD1NAH 35 78 15 24 SFB1DBA 35 49 11 14 SFD1NAL 34 47 15 18 SFB1DBD 29 40 12 14 SFD1NBA 41 83 22 42 SFB1DBH 40 58 14 20 SFD1NBH 35 67 17 25 SFB1DBR 41 67 16 22 SFD1NBL 36 80 19 40 SFB1DCL 36 75 11 16 SFD1NBR 70 132 30 60 SFB1DCR 50 100 21 34 SFD1NCA 39 78 22 34 SFB2D9R 47 66 17 22 SFD1NCD 25 56 16 23 SFB2DAA 22 45 6 11 SFD1NCH 42 69 18 30 SFC1DAD 18 31 9 18 SFD1NCL 30 43 17 26 SFC1DAH 22 29 9 12 SFD1NCR 49 110 22 44 SFC1DBA 18 33 7 11 SFD2NBL 37 110 17 44 SFC1DBD 22 40 11 22 SFU1D9A 23 49 10 28 SFC1DBH 28 31 9 15 SFU1D9D 20 33 8 15 SFC1DBL 17 26 4 8 SFU1D9H 24 62 8 22 SFC1DBR 37 48 14 22 SFU1N7A 40 67 20 32 SFC1DCA 10 18 4 6 SFU1N7D 34 53 18 23 SFC1DCD 20 30 8 16 SFU1N7H 45 81 27 41 SFC1DCH 15 21 7 10 SFU1N7L 41 81 21 38 SFC1DCL 19 29 5 13 SFU1N7R 60 146 22 45 SFC1DCR 28 41 14 17 SFU1N8A 43 77 16 25 SFC1N7A 12 13 7 8 SFU1N8D 32 79 13 35 Anexo_5 1. Muestras Lotes Ind. Totales Riqueza Ab. Adultos Muestras Lotes Ind. Totales Riqueza Ab. Adultos SFU1N8H 35 77 14 20 STC1D6B 18 28 3 3 SFU1N8L 48 167 19 53 STC1D6L 16 25 7 7 SFU1N8R 41 136 18 49 STC1D6R 22 37 7 18 SFU1NAA 46 111 18 24 STC1D8A 16 28 6 13 SFU1NAD 51 97 20 37 STC1D8B 15 27 4 5 SFU1NAH 42 103 15 26 STC1D8H 24 66 9 26 SFU1NAL 46 120 16 41 STC1D8L 25 27 5 8 SFU1NAR 53 120 27 44 STC1D8R 31 53 10 21 SFU1NBA 35 69 15 21 STC1D9A 6 6 2 2 SFU1NBD 46 91 18 23 STC1D9B 10 10 3 3 SFU1NBH 48 118 19 45 STC1D9H 9 9 4 5 SFU1NBL 38 79 11 12 STC1D9L 16 20 6 8 SFU1NBR 54 130 21 41 STC1D9R 12 12 6 7 SFU1NCA 44 103 15 23 STC1N4A 20 21 9 9 SFU1NCD 36 93 21 37 STC1N4B 23 55 7 10 SFU1NCH 36 83 17 24 STC1N4H 25 38 10 13 SFU1NCL 42 111 13 27 STC1N4L 22 32 4 8 SFU1NCR 53 113 23 41 STC1N4R 21 25 9 10 SFU2N7A 43 74 17 26 STC1N5A 14 18 5 10 SFU2N7D 37 75 16 38 STC1N5B 19 28 8 10 SFU2N7H 43 68 22 34 STC1N5H 17 36 8 10 SFU2N7L 36 60 14 16 STC1N5L 27 36 10 11 SFU2N7R 39 66 14 21 STC1N5R 17 20 6 6 SFU2N8A 30 56 15 30 STC1N6A 14 25 4 6 SFU2N8D 33 64 19 42 STC1N6B 22 32 4 5 SFU2N8H 38 91 13 24 STC1N6H 27 37 10 13 SFU2NAA 43 108 20 44 STC1N6L 13 24 4 4 SFU2NAD 44 90 18 45 STC1N6R 18 30 9 15 SFU2NAH 52 167 20 74 STC1N7A 17 22 7 9 SFU2NBA 42 72 21 34 STC1N7B 18 26 6 7 SFU2NBD 48 87 24 33 STC1N7H 28 41 9 12 SFU2NBH 51 105 21 39 STC1N7L 24 33 2 4 SFU2NCH 51 96 22 28 STC1N7R 21 32 7 9 STB1D5A 19 45 9 13 STC1N8A 27 41 8 8 STB1D5B 23 62 7 11 STC1N8B 21 36 6 7 STB1D5H 29 60 11 13 STC1N8H 30 51 12 18 STB1D5L 21 31 11 11 STC1N8L 26 42 10 16 STB1D5R 22 62 7 7 STC1N8R 30 47 14 21 STB1D6A 21 51 7 11 STC2D6R 31 46 10 16 STB1D6H 23 44 12 17 STC2D8A 20 25 3 8 STB1D6L 25 76 10 13 STC2D8B 19 35 8 13 STB1D7A 21 37 10 12 STC2D8H 18 52 7 19 STB1D8A 24 56 9 14 STC2D8L 22 27 8 9 STB1D8B 25 73 9 11 STC2D8R 18 27 7 10 STB1D8H 12 27 5 5 STD1D6B 17 25 8 11 STB1D8L 23 52 8 9 STD1D6H 36 71 18 33 STB1D8R 37 68 13 16 STD1D7B 25 40 14 17 STB1D9A 27 46 13 14 STD1D7H 18 46 9 23 STB1D9B 25 53 8 9 STD1D7L 27 76 12 34 STB1D9H 23 50 10 14 STD1D7R 28 61 14 32 STB1D9L 26 46 6 14 STD1N4A 22 64 12 17 STB1D9R 36 72 17 26 STD1N4B 23 99 12 19 STC1D5A 16 27 8 12 STD1N4H 24 56 16 27 STC1D5H 20 46 7 22 STD1N4L 23 62 12 17 STC1D5L 24 48 6 11 STD1N4R 24 48 14 17 STC1D5R 32 57 11 19 STD1N5A 18 28 11 11 STC1D6A 12 16 6 7 STD1N5B 22 51 12 20 Anexo_5 1. Muestras Lotes Ind. Totales Riqueza Ab. Adultos STD1N5H 16 32 7 13 STD1N5L 18 28 12 18 STD1N5R 17 30 11 15 STD1N6A 24 40 12 12 STD1N6B 24 69 10 16 STD1N6H 30 63 15 21 STD1N6L 21 39 9 16 STD1N6R 28 41 19 28 STD1N7A 24 46 13 16 STD1N7B 35 91 20 28 STD1N7H 28 58 16 23 STD1N7L 30 79 13 26 STD1N7R 35 75 17 29 STD2N4L 22 43 11 13 STU1D5B 13 27 7 11 STU1N4A 18 43 7 9 STU1N4B 21 63 10 11 STU1N4H 26 60 15 24 STU1N4R 27 72 13 22 STU1N5A 22 52 14 16 STU1N5B 20 54 10 14 STU1N5H 24 49 13 19 STU1N5L 26 58 16 21 STU1N5R 19 33 11 13 STU1N6A 20 39 6 6 STU1N6B 16 54 6 9 STU1N6H 29 54 18 26 STU1N6L 22 56 9 13 STU1N6R 29 47 12 17 STU1N7A 20 41 9 11 STU1N7B 27 74 14 18 STU1N7H 25 48 15 21 STU1N7L 26 68 16 27 STU1N7R 25 42 12 16 STU1N8A 24 49 9 14 STU1N8B 22 64 9 13 STU1N8H 26 51 9 15 STU1N8L 30 82 18 35 STU1N8R 35 73 12 21 STU2N8A 17 45 5 6 STU2N8B 22 76 10 15 STU2N8H 24 38 11 13 STU2N8L 23 50 11 13 STU2N8R 22 24 10 12 Total 500 7192 16289 5314 Anexo_5 2. Número total de especímenes del inventario de biodiversidad semi‐cuantitativo PANCODING, discriminados por Familia, estadio y sexo. Porcentajes de los especímenes totales, de los adultos totales y de los adultos por familia, respectivamente. Familia Nº machos Nº hembras Nº juveniles Total % Total % Adultos % Ad. Fam. Agelenidae 9 36 312 357 1,19 0,42 13 Amaurobiidae 2 18 20 0,07 0,02 10 Anapidae 78 201 42 321 1,07 2,62 87 Anyphaenidae 160 183 1889 2232 7,45 3,23 15 Araneidae 266 294 2028 2588 8,64 5,27 22 Barychelidae 6 6 0,02 0,00 0 Caponiidae 1 1 2 0,01 0,01 50 Clubionidae 26 23 354 403 1,35 0,46 12 Corinnidae 113 144 674 931 3,11 2,42 28 Ctenidae 61 33 1015 1109 3,70 0,88 8 Ctenizidae 1 1 2 0,01 0,01 50 Cyrtaucheniidae 1 2 3 0,01 0,01 33 Deinopidae 2 1 192 195 0,65 0,03 2 Dictynidae 2 2 4 0,01 0,04 100 Dipluridae 3 41 152 196 0,65 0,41 22 Drymusidae 7 36 51 94 0,31 0,40 46 Gnaphosidae 10 10 0,03 0,00 0 Hahniidae 55 115 177 347 1,16 1,60 49 Hersiliidae 1 1 4 6 0,02 0,02 33 Linyphiidae 256 564 566 1386 4,63 7,71 59 Lycosidae 1 1 0,00 0,00 0 Mimetidae 18 26 53 97 0,32 0,41 45 Miturgidae 2 1 8 11 0,04 0,03 27 Mysmenidae 191 530 674 1395 4,66 6,78 52 Nemesiidae 1 1 0,00 0,00 0 Nesticidae 4 4 5 13 0,04 0,08 62 Ochyroceratidae 39 120 126 285 0,95 1,50 56 Oonopidae 81 109 101 291 0,97 1,79 65 Oxyopidae 1 1 2 0,01 0,01 50 Palpimanidae 1 1 0,00 0,01 100 Paratropididae 5 6 18 29 0,10 0,10 38 Pholcidae 279 544 1283 2106 7,03 7,74 39 Pisauridae 1 1 9 11 0,04 0,02 18 Prodidomidae 13 9 28 50 0,17 0,21 44 Salticidae 316 272 1835 2423 8,09 5,53 24 Scytodidae 4 17 52 73 0,24 0,20 29 Segestriidae 1 2 3 0,01 0,01 33 Selenopidae 1 16 17 0,06 0,01 6 Senoculidae 6 11 37 54 0,18 0,16 31 Sparassidae 10 7 149 166 0,55 0,16 10 Symphytognathidae 188 542 217 947 3,16 6,86 77 Tengellidae 1 1 1 3 0,01 0,02 67 Tetragnathidae 377 636 3556 4569 15,25 9,53 22 Theraphosidae 12 22 34 0,11 0,11 35 Theridiidae 639 796 1849 3284 10,96 13,49 44 Theridiosomatidae 456 1427 1340 3223 10,76 17,71 58 Thomisidae 29 17 188 234 0,78 0,43 20 Uloboridae 60 97 238 395 1,32 1,48 40 Zodariidae 3 6 22 31 0,10 0,08 29 Total 49 3766 6869 19326 29961 Anexo_5 3. Lista de especies y morfo‐especies determinadas mediante una aproximación mixta de taxonomía clásica y caracteres moleculares. Los especímenes pertenecen al inventario de biodiversidad semi‐cuantitativo PANCODING. II, identificación integrativa; "(#)" número de géneros por familia o especies por género según el caso.

Familia Género Especies / Morfo‐especies (II) Nº machos Nº hembras Total Agelenidae (1) Melpomene (2) Melpomene sp.1 FML 73239 Melpomene sp.2 FML 246 Amaurobiidae (1) Retiro (2) Retiro sp.1 FML 11 Retiro sp.2 FML 11 Anapidae (3) Anapis (3) Anapis heredia 12 16 28 Anapis monteverde 50 153 203 Anapis sp.1 FML 51015 Anapisona (1) Anapisona simoni 10 21 31 Pseudanapis (1) Pseudanapis gertschi 1 1 2 Anyphaenidae (8) Anyphaeninae sp.1 FML 6915 Anyphaeninae sp.2 FML 11 Anyphaeninae sp.3 FML 11 12 23 Anyphaeninae sp.4 FML 11 Anyphaeninae sp.5 FML 16 7 23 Anyphaeninae sp.6 FML 13738 Anyphaeninae sp.7 FML 12 12 Anyphaeninae sp.8 FML 11 Anyphaeninae sp.9 FML 11 Anyphaeninae sp.10 FML 22 Anyphaeninae sp.11 FML 22 Anyphaeninae sp.12 FML 11 Anyphaeninae sp.13 FML 11 Anyphaeninae sp.14 FML 11 Anyphaeninae sp.15 FML 11 Anyphaeninae sp.16 FML 11 Anyphaeninae sp.17 FML 11 Anyphaeninae sp.18 FML 11 Anyphaeninae sp.19 FML 11 Iguarima (1) Iguarima sp.1 FML 12 21 33 Isigonia (1) Isigonia reducta 9 3 12 Katissa (2) Katissa simplicipalpis 10 5 15 Katissa sp.10 FML 112 Macrophyes (2) Macrophyes elongata 4 4 Macrophyes sp.10 FML 22 Otoniella (1) Otoniella cf quadrivittata 11 Patrera (2) Patrera sp.1 FML 50 20 70 Patrera sp.10 FML 5712 Sillus (1) Sillus dubius 30 26 56 Wulfila (2) Wulfila maculata 1 2 3 Wulfila pulverulentus 246 Araneidae (13) Alpaida (2) Alpaida sp.1 FML 22 Alpaida tuonabo 2 4 6 Araneus (4) Araneus nuboso 13 3 16 Araneus sp.1 FML 12 16 28 Araneus sp.2 FML 33 Araneus sp.3 FML 11 Bertrana (2) Bertrana sp.1 FML 134 Bertrana sp.2 FML 3710 Cyclosa (2) Cyclosa caroli 2 6 8 Cyclosa sp.10 FML 33 Eriophora (1) Eriophora sp.1 FML 11 Eustala (3) Eustala sp.1 FML 55 Eustala sp.10 FML 279 Eustala sp.11 FML 112 Hypognatha (1) Hypognatha elaborata 3 2 5 Mangora (4) Mangora melanocephala 16 21 37 Mangora sp.1 FML 235 Mangora sp.10 FML 22 Mangora volcan 61 55 116 Micrathena (5) Micrathena crassa 88 74 162 Tabla 2. Continuación. Micrathena donaldi 1 1 Micrathena duodecimspinosa 4 6 10 Micrathena lucasi 9 9 Micrathena molesta 24 13 37 Ocrepeira (1) Ocrepeira rufa 1 1 Parawixia (5) Parawixia nesophila 2 1 3 Parawixia rigida 1 1 2 Parawixia rimosa 7 3 10 Parawixia sp.1 FML 314 Parawixia sp.10 FML 11 Pronous (2) Pronous peje 9 27 36 Pronous wixoides 4 15 19 Wittica (1) Witica cayana 2 2 Caponnidae (1) Nops (1) Nops cf largus 1 1 Clubionidae (1) Elaver (1) Elaver lutescens 4 4 Elaver sp.1 FML 459 Elaver sp.3 FML 224 Elaver sp.4 FML 10 5 15 Elaver sp.5 FML 7613 Elaver sp.11 FML 33 Elaver sp.12 FML 11 Corinnidae (11) Castianeira (4) Castianeira sp.1 FML 33 Castianeira sp.2 FML 213 Castianeira sp.3 FML 33 Castianeira sp.4 FML 11 Corinna (4) Corinna sp.1 FML 437 Corinna sp.2 FML 11 Corinna sp.3 FML 11 Corinna sp.10 FML 11 Creugas (3) Creugas sp.1 FML 10 10 20 Creugas sp.2 FML 33 Creugas sp.3 FML 11 Megalostrata (1) Megalostrata raptor 1 1 Myrmecotypus (1) Myrmecotypus fuliginosus 11 Parachemmis (4) Parachemmis fuscus 4 4 Parachemmis sp.1 FML 213 Parachemmis sp.2 FML 178 Parachemmis sp.10 FML 8816 Phrurolithus (1) Phrurolithus sp.1 FML 5813 Septentrinna (1) Septentrinna sp.1 FML 11 Stethorrhagus (6) Stethorrhagus sp.1 FML 6511 Stethorrhagus sp.2 FML 44 Stethorrhagus sp.3 FML 21113 Stethorrhagus sp.6 FML 9918 Stethorrhagus sp.7 FML 11 Stethorrhagus sp.8 FML 11 Trachelas (12) Trachelas barroanus 2 2 Trachelas bispinosus 13 16 29 Trachelas prominens 4 8 12 Trachelas sp.1 FML 12 9 21 Trachelas sp.3 FML 11 17 28 Trachelas sp.4 FML 11 Trachelas sp.10 FML 11 Trachelas sp.11 FML 112 Trachelas sp.13 FML 11 Trachelas sp.15 FML 22 Trachelas sp.16 FML 11 Trachelas trifidus 3 14 17 Tupirinna (1) Tupirinna trilineata 1 1 Ctenidae (3) Caloctenus (1) cf Caloctenus sp.1 FML 11 Ctenus (8) Ctenus sinuatipes 347 Ctenus sp.2 FML 18 18 Ctenus sp.3 FML 415 Tabla 2. Continuación. Ctenus sp.4 FML 123 Ctenus sp.5 FML 22 Ctenus sp.6 FML 516 Ctenus sp.10 FML 11 Ctenus sp.11 FML 279 Cupiennius (4) Cupiennius sp.4 FML 11 Cupiennius sp.5 FML 13 8 21 Cupiennius sp.10 FML 11 Cupiennius valentinei 13 6 19 Ctenizidae (1) Hebestatis (1) Hebestatis sp.1 FML 11 Cyrtaucheniidae (1) Bolostromus (1) Bolostromus sp.1 FML 11 Deinopidae (1) Deinopis (1) Deinopis longipes 213 Dictynidae (2) Dictyna (1) Dictyna sp.1 FML 213 Phantyna (1) Phantyna cf rita 11 Dipluridae (2) Linothele (1) Linothele sp.1 FML 44 Masteria (4) Masteria downeyi 1 29 30 Masteria sp.1 FML 134 Masteria sp.10 FML 11 Masteria spinosa 1 4 5 Drymusidae (1) Drymusa (1) Drymusa sp.1 FML 73643 Hahniidae (2) Amaloxenops (1) cf Amaloxenops sp.1 FML 52126 Neoantistea (5) Neoantistea sp.1 FML 31720 Neoantistea sp.2 FML 32 48 80 Neoantistea sp.3 FML 33 Neoantistea sp.4 FML 15 22 37 Neoantistea sp.10 FML 44 Hersiliidae (1) Neotama (1) Neotama forcipata 1 1 2 Linyphiidae (11) Asemostera (3) Asemostera daedalus 224 Asemostera janetae 1 1 Asemostera sp.10 FML 33 Fissicapus (1) cf Fissicapus sp.1 FML 11 Dubiaranea (9) Dubiaranea sp.1 FML 12 25 37 Dubiaranea sp.2 FML 628 Dubiaranea sp.3 FML 41216 Dubiaranea sp.4 FML 22 Dubiaranea sp.6 FML 11 Dubiaranea sp.10 FML 11 Dubiaranea sp.11 FML 22 26 48 Dubiaranea sp.12 FML 99 Dubiaranea sp.13 FML 11 Erigone (2) Erigone cf antegona 145 Erigone sp.10 FML 11011 Erigoninae sp.1 FML 10 19 29 Erigoninae sp.5 FML 7714 Erigoninae sp.8 FML 11 Erigoninae sp.9 FML 11 Erigoninae sp.10 FML 112 Grammonota (4) Grammonota cf secata 5510 Grammonota sp.1 FML 22 Grammonota sp.2 FML 246 Grammonota teresta 23 33 56 Meioneta (3) Meioneta cincta 71 225 296 Meioneta sp.1 FML 39 88 127 Meioneta sp.2 FML 112 Mermessus (4) Mermessus rapidulus 31215 Mermessus sp.1 FML 22 Mermessus sp.10 FML 11 Mermessus sp.11 FML 11 Paraletes (1) Paraletes pogo 2 2 Pocobletus (2) Pocobletus sp.1 FML 4913 Pocobletus sp.10 FML 73845 Primerigonina (2) Primerigonina australis 448 Primerigonina sp.2 FML 11 Tabla 2. Continuación. Walckenaeria (8) Walckenaeria aenea 5 2 7 Walckenaeria crocea 1 1 Walckenaeria intoleranda 6 7 13 Walckenaeria sp.1 FML 11 Walckenaeria sp.10 FML 7310 Walckenaeria sp.11 FML 22 Walckenaeria sp.12 FML 11 Walckenaeria sp.13 FML 33 Mimetidae (11) Mimetus (1) Mimetus banksi 7 12 19 Mimetus rusticus 437 Mimetus sp.1 FML 44 Mimetus sp.2 FML 4711 Mimetus sp.3 FML 11 Mimetus sp.10 FML 22 Miturgidae (2) Ericaella (1) Ericaella sp.1 FML 11 Eutichurus (1) Eutichurus sp.1 FML 22 Mysmenidae (2) Mysmena (10) Mysmena sp.1 FML 55 70 125 Mysmena sp.2 FML 91 316 407 Mysmena sp.3 FML 10 14 24 Mysmena sp.4 FML 2911 Mysmena sp.5 FML 42024 Mysmena sp.6 FML 77 Mysmena sp.7 FML 4812 Mysmena sp.8 FML 13233 Mysmena sp.9 FML 31821 Mysmena sp.10 FML 11 Mysmenopsis (5) Mysmenopsis gamboa 7 9 16 Mysmenopsis sp.1 FML 11 Mysmenopsis sp.2 FML 42529 Mysmenopsis sp.3 FML 145 Mysmenopsis sp.4 FML 55 Nesticidae (2) Eidmannella (1) Eidmannella pallida 3 4 7 Nesticella (1) Nesticella murici 1 1 Ochyroceratidae (1) Ochyroceratinae sp.1 FML 134 Ochyroceratinae sp.2 FML 11 Ochyroceratinae sp.3 FML 2911 Ochyroceratinae sp.4 FML 11 Ochyroceratinae sp.5 FML 20 38 58 Ochyroceratinae sp.6 FML 7916 Ochyroceratinae sp.7 FML 11 Theotima (5) Theotima sp.1 FML 11 Theotima sp.2 FML 52 52 Theotima sp.3 FML 7512 Theotima sp.4 FML 11 Theotima sp.5 FML 11 Oonopidae (8) Marsupopaea (1) cf Marsupopaea sp.1 FML 11 Oonopoides (1) cf Oonopoides sp.1 FML 156 Stenoonops (1) cf Stenoonops sp.1 FML 167 Dysderina (8) Dysderina dura 11 14 25 Dysderina sp.1 FML 235 Dysderina sp.2 FML 6713 Dysderina sp.3 FML 022 Dysderina sp.4 FML 325 Dysderina sp.5 FML 12 13 25 Dysderina sp.7 FML 44 Dysderina sp.10 FML 112 Oonopinae sp.1 FML 22 Oonops (1) Oonops donaldi 15 12 27 Orchestina (5) Orchestina sp.1 FML 31619 Orchestina sp.2 FML 22 15 37 Orchestina sp.3 FML 22 Orchestina sp.4 FML 33 Orchestina sp.10 FML 22 Tabla 2. Continuación. Scaphiella (1) Scaphiella simla 1 1 Triaeris (1) Triaeris stenaspis 22 Oxyopidae (1) Hamataliwa (1) Hamataliwa flebilis 1 1 Palpimanidae (1) Otiothops (1) Otiothops macleayi 1 1 Paratropididae (1) Paratropis (3) Paratropis sp.1 FML 11 Paratropis sp.2 FML 44 Paratropis sp.3 FML 426 Pholcidae (4) Anopsicus (7) Anopsicus cf concinnus 20 30 50 Anopsicus cf panama 5914 Anopsicus chiriqui 3 7 10 Anopsicus sp.1 FML 22 Anopsicus sp.2 FML 314 Anopsicus sp.3 FML 31013 Anopsicus sp.4 FML 11 Metagonia (1) Metagonia sp.1 FML 51318 Modisimus (12) Modisimus coco 37 93 130 Modisimus guatuso 3 10 13 Modisimus pittier 14 43 57 Modisimus pulchellus 13 21 34 Modisimus sp.1 FML 4711 Modisimus sp.2 FML 145 245 390 Modisimus sp.3 FML 12 17 29 Modisimus sp.4 FML 145 Modisimus sp.5 FML 11 Modisimus sp.10 FML 167 Modisimus sp.11 FML 91423 Modisimus sp.12 FML 11 Priscula (1) Priscula sp.1 FML 1910 Pisauridae (1) Architis (1) Architis tenuis 11 Thaumasia (1) Thaumasia argenteonotata 1 1 Prodidomidae (1) Lygromma (6) Lygromma chamberlini 1 1 Lygromma dybasi 1 1 2 Lygromma sp.1 FML 549 Lygromma sp.3 FML 22 Lygromma sp.10 FML 22 Lygromma volcan 4 2 6 Salticidae (14) Acragas (1) Acragas sp.1 FML 22 Chapoda (2) Chapoda sp.1 FML 5813 Chapoda sp.10 FML 33 Cobanus (12) Cobanus incurvus 5 6 11 Cobanus obscurus 15 21 36 Cobanus seclusus 11 10 21 Cobanus sp.4 FML 459 Cobanus sp.5 FML 10 19 29 Cobanus sp.8 FML 213 Cobanus sp.9 FML 123 Cobanus sp.11 FML 40 40 Cobanus sp.13 FML 23 23 Cobanus sp.14 FML 426 Cobanus sp.15 FML 11 Cobanus unicolor 19 25 44 Corythalia (10) Corythalia bicincta 1 2 3 Corythalia sp.1 FML 235 Corythalia sp.4 FML 7310 Corythalia sp.7 FML 11 Corythalia sp.8 FML 14 19 33 Corythalia sp.9 FML 112 Corythalia sp.10 FML 224 Corythalia sp.13 FML 22 Corythalia sp.20 FML 11 Corythalia sulphurea 38 26 64 Cotinusa (4) Cotinusa sp.1 FML 11 Cotinusa sp.2 FML 15 9 24 Tabla 2. Continuación. Cotinusa sp.3 FML 213 Cotinusa sp.10 FML 11 Cylistella (2) Cylistella scarabaeoides 6 3 9 Cylistella sp.2 FML 15 1 16 Euophrys (4) Euophrys sp.1 FML 213 Euophrys sp.2 FML 7310 Euophrys sp.3 FML 448 Euophrys sp.10 FML 11 Fluda (3) Fluda princeps 24 17 41 Fluda sp.1 FML 516 Fluda sp.2 FML 178 Lyssomanes (3) Lyssomanes convexus 2 2 Lyssomanes eatoni 4 7 11 Lyssomanes sp.1 FML 112 Metaphidippus (1) Metaphidippus facetus 325 Myrmarachne (2) Myrmarachne parallela 7 3 10 Myrmarachne sp.2 FML 11 Salticidae sp.2 FML 11 Salticidae sp.3 FML 11 Salticidae sp.4 FML 11 Salticidae sp.5 FML 13 9 22 Salticidae sp.6 FML 11 Salticidae sp.7 FML 11 Salticidae sp.8 FML 213 Salticidae sp.9 FML 11 Salticidae sp.20 FML 5510 Sassacus (2) Sassacus sp.1 FML 134 Sassacus sp.2 FML 11 Sidusa (1) Sidusa recondita 1 3 4 Zuniga (1) Zuniga magna 6 1 7 Scytodidae (1) Scytodes (4) Scytodes cf intricata 189 Scytodes championi 2 1 3 Scytodes longipes 4 4 Scytodes uligocetes 1 4 5 Segestriidae (1) Ariadna (1) Ariadna isthmica 1 1 Selenopidae (1) Selenops (1) Selenops sp.1 FML 11 Senoculidae (1) (1) Senoculus bucolicus 6 11 17 Sparassidae (2) Anaptomecus (2) Anaptomecus longiventris 213 Anaptomecus temii 2 2 Heteropodinae sp.1 FML 11 Heteropodinae sp.2 FML 11 Heteropodinae sp.3 FML 11 Uaiuara (1) Uaiuara barroana 6 3 9 Symphytognathidae (3) Globignatha (1) Globignatha sp.1 FML 11 Patu (3) Patu digua 118 335 453 Patu sp.1 FML 44 157 201 Patu sp.3 FML 24 43 67 Symphytognatha (2) Symphytognatha goodnightorum 1 3 4 Symphytognatha sp.1 FML 134 Tengellidae (1) Tengella (1) Tengella cf radiata 1 1 2 Tetragnathidae (6) Azilia (3) Azilia guatemalensis 91423 Azilia sp.1 FML 11516 Azilia sp.3 FML 11 Chrysometa (10) Chrysometa alajuela 8 21 29 Chrysometa cf eugeni 13 19 32 Chrysometa cf heredia 10 19 29 Chrysometa craigae 41 27 68 Chrysometa poas 9 47 56 Chrysometa sp.1 FML 92736 Chrysometa sp.2 FML 32932 Chrysometa sp.5 FML 11 Chrysometa sp.6 FML 11 28 39 Chrysometa sp.7 FML 22224 Tabla 2. Continuación. Cyrtognatha (3) Cyrtognatha leviorum 111 83 194 Cyrtognatha pachygnathoides 14 18 32 Cyrtognatha sp.1 FML 11 Glenognatha (2) Glenognatha sp.1 FML 58 100 158 Glenognatha sp.2 FML 14 17 31 Leucauge (4) Leucauge argyra 1 1 Leucauge sp.1 FML 54 121 175 Leucauge sp.10 FML 31114 Leucauge venusta 3 14 17 Tetragnatha (1) Tetragnatha sp.1 FML 112 Tetragnathidae sp.1 FML 11 Tetragnathidae sp.3 FML 11 Theraphosidae (2) Cyriocosmus (5) cf Cyriocosmus sp.1 FML 22 cf Cyriocosmus sp.2 FML 22 cf Cyriocosmus sp.3 FML 22 cf Cyriocosmus sp.4 FML 33 Cyriocosmus elegans 2 2 Sericopelma (1) Sericopelma sp.1 FML 11 Theridiidae (24) Achaearanea (5) Achaearanea florendida 4 10 14 Achaearanea maricaoensis 22 14 36 Achaearanea niveovittata 1 1 Achaearanea taeniata 6 8 14 Achaearanea sp.20 FML 11 Ameridion (5) Ameridion lathropi 8 16 24 Ameridion musawas 18 2 20 Ameridion paidiscum 1 1 Ameridion progum 8 1 9 Ameridion signum 5 5 Anelosimus (1) Anelosimus baeza 1 1 Ariamnes (1) Ariamnes attenuatus 11 Chrysso (3) cf Chrysso sp.1 FML 17 17 cf Chrysso sp.3 FML 11 Rhomphaea (1) cf Rhomphaea sp.1 FML 11213 Chrosiothes (4) Chrosiothes proximus 13 73 86 Chrosiothes sp.1 FML 26 20 46 Chrosiothes sp.2 FML 11 Chrosiothes sp.10 FML 33 44 77 Chrysso sp.2 FML 11 Coleosoma (1) Coleosoma sp.1 FML 22 Dipoena (21) Dipoena banksi 8 7 15 Dipoena cf obscura 11 Dipoena cf tropica 22 Dipoena cordiformis 2 2 Dipoena insulana 15 51 66 Dipoena lana 15 2 17 Dipoena mertoni 5 9 14 Dipoena pacifica 48 35 83 Dipoena petrunkevitchi 37 22 59 Dipoena sp.1 FML 27 6 33 Dipoena sp.2 FML 10 1 11 Dipoena sp.3 FML 167 Dipoena sp.5 FML 66 Dipoena sp.6 FML 11 Dipoena sp.8 FML 11 Dipoena sp.9 FML 20 14 34 Dipoena sp.10 FML 55 Dipoena sp.11 FML 11 Dipoena sp.12 FML 11 3 14 Dipoena sp.20 FML 22 Dipoena sp.21 FML 33 Emertonella (1) Emertonella taczanowskii 1 1 Episinus (3) Episinus cognatus 5 22 27 Episinus panamensis 336 Tabla 2. Continuación. Episinus sp.10 FML 11 Exalbidion (3) Exalbidion dotanum 1 1 Exalbidion sexmaculatum 4 2 6 Exalbidion sp.10 FML 246 Faiditus (7) Faiditus atopus 13 10 23 Faiditus bryantae 7 8 15 Faiditus caudatus 257 Faiditus cf americanus 11 Faiditus sp.1 FML 11 Faiditus sp.10 FML 16 14 30 Faiditus sp.11 FML 6410 Lasaeola (1) Lasaeola donaldi 4 6 10 Neospintharus (2) Neospintharus cf parvus 22 Neospintharus sp.10 FML 33 Phoroncidia (1) Phoroncidia flavolimbata 3 3 6 Physcosoma (1) Phycosoma altum 1 3 4 (4) Spintharus flavidus 189 Spintharus sp.1 FML 6915 Spintharus sp.2 FML 20 14 34 Spintharus sp.10 FML 112 Stemmops (3) Stemmops questus 11 7 18 Stemmops servus 3 3 Stemmops sp.1 FML 325 Styposis (6) Styposis chickeringi 14 4 18 Styposis clausis 13 7 20 Styposis flavescens 8 9 17 Styposis sp.1 FML 15 5 20 Styposis sp.2 FML 8917 Styposis sp.3 FML 66 Tekellina (1) Tekellina archboldi 3 1 4 Theridion (21) Theridion centrum 3 2 5 Theridion cf albulum 10 56 66 Theridion cf costaricaense 14 18 32 Theridion cf ravum 336 Theridion cf uncatum 22 Theridion chiriqui 1 1 Theridion micheneri 3 5 8 Theridion sp.1 FML 44 Theridion sp.2 FML 213 Theridion sp.4 FML 22 Theridion sp.6 FML 11 6 17 Theridion sp.7 FML 81220 Theridion sp.8 FML 55 Theridion sp.9 FML 314 Theridion sp.11 FML 11 Theridion sp.12 FML 279 Theridion sp.13 FML 11 Theridion sp.20 FML 11 Theridion sp.22 FML 44 Theridion stannardi 1 2 3 Theridion trepidum 1 1 2 Thymoites (8) Thymoites cf maderae 235 Thymoites sp.1 FML 41822 Thymoites sp.2 FML 3811 Thymoites sp.4 FML 22 Thymoites sp.5 FML 18 71 89 Thymoites sp.6 FML 123 Thymoites sp.20 FML 44 Thymoites sp.21 FML 22 Wamba (3) Wamba crispulus 1 1 Wamba panamensis 2 2 Wamba sp.1 FML 22 Theridiosomatidae (8) Baalzebub (4) Baalzebub albonotatus 1 1 Tabla 2. Continuación. Baalzebub sukia n. sp. 358 Baalzebub jaibana n. sp. 268 Baalzebub nele n. sp. 33 Baalzebub innatudeli n. sp. 448 Chthonos (3) Chthonos dobon. sp. 27 23 50 Chthonos kwati n. sp. 112 Chthonos kaiben. sp. 415 Epeirotypus (7) Epeirotypus kwakwa n. sp. 72027 Epeirotypus kote n. sp. 224 Epeirotypus kra n. sp. 41317 Epeirotypus tain n. sp. 11 Epeirotypus jane n. sp. 22 Epeirotypus drune n. sp. 44 Epeirotypus bule n. sp. 44 Epilineutes (1) Epilineutes globosus 25 19 44 Naatlo (2) Naatlo fauna 19 25 44 Naatlo chi n. sp. 39 686 725 Ogulnius (2) Ogulnius zbodro n. sp. 279 Ogulnius gertschi 73 148 221 Theridiosoma (1) Theridiosoma goodnightorum 29 55 84 Tantra (7) Tantra ngabe n. sp. 62228 Tantra bugle n. sp. 47 45 92 Tantra kuna n. sp. 4610 Tantra embera n. sp. 31 40 71 Tantra wounaan n. sp. 109 224 333 Tantra naso n. sp. 94251 Tantra bribri n. sp. 51722 Wendilgarda (1) Wendilgarda clara 4 1 5 Thomisidae (4) Misumenops (2) Misumenops sp.1 FML 336 Misumenops sp.2 FML 11 Onoculus (1) Onocolus pentagonus 6 1 7 Stephanopinae sp.1 FML 22 Stephanopinae sp.2 FML 11 3 14 Strophius (1) Strophius sp.1 FML 11 Tmarus (2) Tmarus sp.1 FML 123 Tmarus sp.2 FML 6612 Uloboridae (2) Miagrammopes (3) Miagrammopes aspinatus 10 10 Miagrammopes sp.1 FML 11 Miagrammopes sp.2 FML 279 Philoponella (5) Philoponella republicana 2 7 9 Philoponella sp.1 FML 6814 Philoponella sp.11 FML 34 61 95 Philoponella sp.20 FML 4711 Philoponella sp.21 FML 268 Zodariidae (2) Ishania (1) Ishania sp.1 FML 11 Tenedos (2) Tenedos cufodontii 2 3 5 Tenedos sp.1 FML 123 Total 162 548 3767 6868 10635 Anexo_5 4. Códigos de extracción de los tejidos procesados en IMEDEA y BOLD, discriminados por número de lote, Familia e identificación integrativa (II). Cód. ADN Id. Lote Familia Identification integrada (II) Laboratorio Cód. ADN Id. Lote Familia Identification integrada (II) Laboratorio PA2482 SAB1DDA018 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML IMEDEA SPIPA001‐10 SFD1D9L020 Salticidae Corythalia sp.7 FML BOLD PA2321 SAB1DDA019 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA002‐10 SFC1DBR005 Salticidae Creugas sp.1 FML BOLD PA1415 SAB1DDA500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA003‐10 SFC1DAH010 Salticidae Corythalia sp.4 FML BOLD PA1594 SAB1DDB007 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA004‐10 SFB1D8R033 Salticidae Cobanus unicolor BOLD PA2881 SAB1DDB017 Thomisidae Misumenops sp.1 FML IMEDEA SPIPA005‐10 SFC1N8D010 Salticidae Cobanus unicolor BOLD PA2453 SAB1DDH005 Uloboridae Miagrammopes sp.2 FML IMEDEA SPIPA006‐10 SFB1D9R043 Salticidae Cobanus incurvus BOLD PA1637 SAB1DDH007 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA007‐10 SFC2N8L005 Salticidae Fluda princeps BOLD PA2867 SAB1DDL002 Hahniidae Neoantistea sp.3 FML IMEDEA SPIPA008‐10 SFB1DCL030 Salticidae Fluda princeps BOLD PA1592 SAB1DDL003 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA009‐10 SFD1NCA004 Salticidae Cobanus sp.4 FML BOLD PA1454 SAB1DDR005 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA010‐10 SFD1NCL009 Salticidae Cobanus sp.4 FML BOLD PA2214 SAB1DDR013 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA011‐10 SFU2N8H019 Salticidae Lyssomanes sp.1 FML BOLD PA2130 SAB1DDR019 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA012‐10 SFB1DAR004 Salticidae Lyssomanes sp.1 FML BOLD PA1455 SAB1DDR500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA013‐10 SFB1D8A022 Salticidae Salticidae sp.20 FML BOLD PA1251 SAB1DEA008 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA014‐10 SFU1NAR024 Salticidae Anapis monteverde BOLD PA2611 SAB1DEA011 Hahniidae Neoantistea sp.3 FML IMEDEA SPIPA015‐10 SFU1NCR016 Salticidae Myrmarachne parallela BOLD PA1955 SAB1DEA013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA016‐10 SFB1DCR023 Salticidae Metaphidippus facetus BOLD PA2303 SAB1DEA015 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA017‐10 SFB1DCL029 Salticidae Metaphidippus facetus BOLD PA1956 SAB1DEA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA018‐10 SFB1D9H016 Salticidae Cobanus unicolor BOLD PA2727 SAB1DEB002 Anyphaenidae Iguarima sp.1 FML IMEDEA SPIPA019‐10 SFD1DAL002 Salticidae Corythalia sp.1 FML BOLD PA1405 SAB1DEB007 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA020‐10 SFB1DBR010 Salticidae Cylistella scarabaeoides BOLD PA1738 SAB1DEB013 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA021‐10 SFD1NCH026 Salticidae Cylistella scarabaeoides BOLD PA2396 SAB1DEB015 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA022‐10 SFB1D9H018 Salticidae Cotinusa sp.1 FML BOLD PA2236 SAB1DEB017 Linyphiidae Primerigonina australis IMEDEA SPIPA023‐10 SFC1NBR002 Salticidae Euophrys sp.10 FML BOLD PA2322 SAB1DEB020 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA024‐10 SFB1D8R031 Salticidae Salticidae sp.4 FML BOLD PA2394 SAB1DEB024 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA025‐10 SFB1D9R044 Salticidae Cobanus incurvus BOLD PA1406 SAB1DEB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA026‐10 SFB2DAA015 Salticidae Salticidae sp.20 FML BOLD PA2105 SAB1DEB501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA027‐10 SFD1NAA004 Salticidae Corythalia sp.8 FML BOLD PA2106 SAB1DEB502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA028‐10 SFC1NCL005 Salticidae Corythalia sp.8 FML BOLD PA1923 SAB1DEH008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA029‐10 SFB1DAL005 Corinnidae Trachelas bispinosus BOLD PA1509 SAB1DEH009 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA030‐10 SFB1D9R019 Corinnidae Trachelas bispinosus BOLD PA1589 SAB1DEH016 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA031‐10 SFC1NAR007 Corinnidae Stethorrhagus sp.1 FML BOLD PA2360 SAB1DEH022 Linyphiidae Erigone sp.10 FML IMEDEA SPIPA032‐10 SFD1NBH008 Corinnidae Stethorrhagus sp.1 FML BOLD PA2395 SAB1DEL005 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA033‐10 SFD1NBH009 Corinnidae Trachelas prominens BOLD PA1588 SAB1DEL009 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA034‐10 SFC1NAL008 Corinnidae Creugas sp.1 FML BOLD PA1472 SAB1DEL020 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA035‐10 SFC1DBL004 Corinnidae Dysderina sp.7 FML BOLD PA2207 SAB1DEL026 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA036‐10 SFB1D8H024 Corinnidae Stethorrhagus sp.2 FML BOLD PA2208 SAB1DEL027 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA037‐10 SFC1NBR014 Corinnidae Megalostrata raptor BOLD PA1473 SAB1DEL500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA038‐10 SFD1NBA002 Corinnidae Septentrinna sp.1 FML BOLD PA1968 SAB1DEL503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA039‐10 SFB1D8L003 Corinnidae Parachemmis sp.1 FML BOLD PA1969 SAB1DEL504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA040‐10 SFU1N7R014 Corinnidae Corinna sp.3 FML BOLD PA1970 SAB1DEL505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA041‐10 SFU2N7D001 Corinnidae Corinna sp.1 FML BOLD PA1409 SAB1DER011 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA042‐10 SFC1NAR002 Corinnidae Castianeira sp.1 FML BOLD PA1776 SAB1DER017 Uloboridae MIagrammopes sp.2 FML IMEDEA SPIPA043‐10 SFC1N8A012 Corinnidae Castianeira sp.2 FML BOLD PA1657 SAB1DER021 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA044‐10 SFC2DCD005 Corinnidae Castianeira sp.2 FML BOLD PA2050 SAB1DER028 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA045‐10 SFC1N7D008 Corinnidae Trachelas prominens BOLD PA2883 SAB1DER030 Thomisidae Misumenops sp.1 FML IMEDEA SPIPA046‐10 SFC1N8L001 Ctenidae Ctenus sp.2 FML BOLD PA2157 SAB1DER039 Linyphiidae Grammonota cf secata IMEDEA SPIPA047‐10 SFD1NAL028 Ctenidae Ctenus sinuatipes BOLD PA2306 SAB1DER040 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA048‐10 SFD1NBL005 Ctenidae Ctenus sinuatipes BOLD PA2154 SAB1DER046 Linyphiidae Grammonota cf secata IMEDEA SPIPA049‐10 SFU2N7L029 Ctenidae Cupiennius valentinei BOLD PA2153 SAB1DER047 Linyphiidae Grammonota cf secata IMEDEA SPIPA050‐10 SFU1N8D003 Ctenidae Cupiennius valentinei BOLD PA2155 SAB1DER048 Linyphiidae Grammonota cf secata IMEDEA SPIPA051‐10 SFD1NAA002 Anapidae Anapisona simoni BOLD PA2134 SAB1DER049 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA052‐10 SFU1N8H016 Anapidae Anapisona simoni BOLD PA2140 SAB1DER051 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA053‐10 SFD1NCH016 Anapidae Anapis sp.1 FML BOLD PA2135 SAB1DER052 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA054‐10 SFD1DAR010 Anapidae Anapis sp.1 FML BOLD PA2143 SAB1DER053 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA055‐10 SFD1NBR023 Anapidae Anapis heredia BOLD PA1410 SAB1DER500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA056‐10 SFD1DAR023 Anapidae Anapis heredia BOLD PA2051 SAB1DER500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA057‐10 SFC1NBR016 Anapidae Pseudanapis gertschi BOLD PA1411 SAB1DER501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA058‐10 SFU1NAR028 Anapidae Epilineutes globosus BOLD PA2052 SAB1DER501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA059‐10 SFD1D8H023 Anapidae Anapis monteverde BOLD PA1412 SAB1DER502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA060‐10 SFU1NCR004 Agelenidae Melpomene sp.1 FML BOLD PA2053 SAB1DER502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA061‐10 SFC1N7R007 Corinnidae Phrurolithus sp.1 FML BOLD PA1413 SAB1DER503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA062‐10 SFC1DBR026 Corinnidae Anapis monteverde BOLD PA2054 SAB1DER503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA063‐10 SFD1NAH002 Oonopidae Dysderina sp.2 FML BOLD PA2055 SAB1DER504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA064‐10 SFC1NAL004 Oonopidae Dysderina sp.2 FML BOLD PA1985 SAB1DFA003 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA065‐10 SFC1N8D005 Oonopidae cf Oonopoides sp.1 FML BOLD PA2189 SAB1DFA006 Linyphiidae Dubiaranea sp.13 FML IMEDEA SPIPA066‐10 SFC2DBL006 Oonopidae cf Oonopoides sp.1 FML BOLD PA1781 SAB1DFA018 Uloboridae MIagrammopes sp.2 FML IMEDEA SPIPA067‐10 SFU2N8D016 Oonopidae Orchestina sp.1 FML BOLD PA1986 SAB1DFA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA068‐10 SFU2NBA015 Oonopidae Orchestina sp.1 FML BOLD PA1987 SAB1DFA501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA069‐10 SFC1DAH003 Oonopidae Dysderina sp.1 FML BOLD PA1988 SAB1DFA502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA070‐10 SFC2DCA006 Oonopidae Dysderina sp.1 FML BOLD PA1989 SAB1DFA503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA071‐10 SFU1N7A010 Uloboridae Philoponella sp.1 FML BOLD PA1990 SAB1DFA504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA072‐10 SFU1N7D009 Uloboridae Philoponella sp.1 FML BOLD PA1647 SAB1DFB009 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA073‐10 SFB2D9R017 Uloboridae Philoponella sp.1 FML BOLD PA1584 SAB1DFB015 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA074‐10 SFD1NAL005 Uloboridae Philoponella republicana BOLD PA2860 SAB1DFB016 Hahniidae Neoantistea sp.10 FML IMEDEA SPIPA075‐10 SFU2NCH020 Uloboridae Philoponella sp.1 FML BOLD PA2194 SAB1DFB020 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML IMEDEA SPIPA076‐10 SFD1NBR012 Uloboridae Philoponella republicana BOLD PA2144 SAB1DFB024 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA077‐10 SFD1NBL006 Uloboridae Philoponella republicana BOLD PA2358 SAB1DFB027 Linyphiidae Erigone sp.10 FML IMEDEA SPIPA078‐10 SFU1NAH012 Uloboridae Cyclosa sp.10 FML BOLD PA1598 SAB1DFB028 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA079‐10 SFC1N7R002 Zodariidae Ishania sp.1 FML BOLD PA2195 SAB1DFB029 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML IMEDEA SPIPA080‐10 SFD1NAL027 Scytodidae Scytodes longipes BOLD PA2103 SAB1DFB500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA081‐10 SFU2NBD019 Sparassidae Anaptomecus longiventris BOLD PA2733 SAB1DFH006 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.5 FML IMEDEA SPIPA082‐10 SFC1NCA012 Prodidomidae Lygromma volcan BOLD PA2569 SAB1DFH007 Clubionidae Elaver sp.5 FML IMEDEA SPIPA083‐10 SFC1NCA013 Prodidomidae Lygromma sp.1 FML BOLD PA1641 SAB1DFH008 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA084‐10 SFC1NCA014 Prodidomidae Lygromma sp.1 FML BOLD PA1312 SAB1DFH016 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA085‐10 SFC1DBR010 Prodidomidae Lygromma volcan BOLD PA1755 SAB1DFH018 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA086‐10 SCU1NHH005 Corinnidae Corinna sp.2 FML BOLD PA2362 SAB1DFH024 Linyphiidae Erigone sp.10 FML IMEDEA SPIPA087‐10 SCD1NEH006 Corinnidae Corinna sp.1 FML BOLD PA2152 SAB1DFH028 Linyphiidae Grammonota cf secata IMEDEA SPIPA088‐10 SCB1DEH007 Corinnidae Trachelas barroanus BOLD PA2201 SAB1DFH032 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA089‐10 SCU1NGH005 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML BOLD PA2196 SAB1DFH033 Linyphiidae Dubiaranea sp.5 FML IMEDEA SPIPA090‐10 SCC1DHA001 Corinnidae Trachelas sp.1 FML BOLD PA2202 SAB1DFH034 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA091‐10 SFB1D9A018 Corinnidae Parachemmis sp.1 FML BOLD PA2203 SAB1DFH035 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA092‐10 SCC1NEL005 Corinnidae Stethorrhagus sp.3 FML BOLD PA2204 SAB1DFH036 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA093‐10 SCD2NED005 Corinnidae Stethorrhagus sp.3 FML BOLD PA2355 SAB1DFH037 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA094‐10 SCC1NFH003 Corinnidae Trachelas sp.1 FML BOLD PA1313 SAB1DFH500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA095‐10 SCD1NGA012 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML BOLD PA1642 SAB1DFH501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA096‐10 SCC1NFH017 Paratropididae Paratropis sp.2 FML BOLD PA1643 SAB1DFH502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA097‐10 SCC1NHD002 Paratropididae Paratropis sp.2 FML BOLD PA1644 SAB1DFH503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA098‐10 SCD1NED003 Paratropididae Paratropis sp.2 FML BOLD PA2123 SAB1DFH504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA099‐10 STC1D5R002 Paratropididae Paratropis sp.3 FML BOLD PA2124 SAB1DFH505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA100‐10 STC1D5R028 Paratropididae Paratropis sp.3 FML BOLD PA2125 SAB1DFH506 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA101‐10 STC1D8R027 Paratropididae Paratropis sp.3 FML BOLD PA2126 SAB1DFH507 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA102‐10 STC1N6B003 Paratropididae Paratropis sp.3 FML BOLD PA2127 SAB1DFH508 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA103‐10 STD1N5L002 Paratropididae Paratropis sp.3 FML BOLD PA2128 SAB1DFH509 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA104‐10 SAC1NGB010 Salticidae Euophrys sp.2 FML BOLD PA1593 SAB1DGA001 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA105‐10 SAD1NCB002 Salticidae Sassacus sp.2 FML BOLD PA1915 SAB1DGA003 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA106‐10 STC1N7R013 Theraphosidae cf Cyriocosmus sp.1 FML BOLD PA2390 SAB1DGA004 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA107‐10 STD1N6A023 Theraphosidae Cyriocosmus sp.1 FML BOLD PA2324 SAB1DGA007 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA108‐10 SAC1DDR006 Theraphosidae cf Cyriocosmus sp.2 FML BOLD PA1751 SAB1DGA010 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA109‐10 SAC1NFA012 Theraphosidae cf Cyriocosmus sp.2 FML BOLD PA1468 SAB1DGA022 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA110‐10 SAC1NHB018 Theraphosidae cf Cyriocosmus sp.3 FML BOLD PA2087 SAB1DGA023 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA111‐10 SAC1NHL014 Theraphosidae cf Cyriocosmus sp.3 FML BOLD PA1916 SAB1DGA501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA112‐10 SCC1DGD007 Theraphosidae cf Cyriocosmus sp.4 FML BOLD PA1917 SAB1DGA502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA113‐10 SCC1NHD001 Theraphosidae cf Cyriocosmus sp.4 FML BOLD PA1918 SAB1DGA503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA114‐10 SCD1NED001 Theraphosidae cf Cyriocosmus sp.1 FML BOLD PA1992 SAB1DGL006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA115‐10 STC1N6L001 Theraphosidae Cyriocosmus elegans BOLD PA2199 SAB1DGL015 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA116‐10 STD1N4H003 Theraphosidae Cyriocosmus elegans BOLD PA1653 SAB1DGL016 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA117‐10 SCU1NGH026 Theraphosidae Sericopelma sp.1 FML BOLD PA2198 SAB1DGL026 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA118‐10 SAD1NCA003 Theridiosomatidae Baalzebub sp.11 FML BOLD PA2200 SAB1DGL027 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA119‐10 SCD1DFR014 Theridiosomatidae Ogulnius sp.1 FML BOLD PA1993 SAB1DGL500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA120‐10 SCD1DFR031 Theridiosomatidae Ogulnius sp.1 FML BOLD PA1994 SAB1DGL501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA121‐10 SFD1NAH037 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.5 FML BOLD PA1995 SAB1DGL502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA122‐10 SFD1NBH034 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.5 FML BOLD PA1434 SAB1DGP014 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA123‐10 SFB1D8H009 Thomisidae Stephanopinae sp.1 FML BOLD PA1914 SAB1DGP017 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA124‐10 SCB1DEA003 Thomisidae Tmarus sp.2 FML BOLD PA1939 SAB1DHA006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA125‐10 SCU2NHR009 Uloboridae Miagrammopes aspinatus BOLD PA1342 SAB1DHA008 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA126‐10 SFU2NAA007 Theridiidae cf Chrysso sp.1 FML BOLD PA2623 SAB1DHA013 Thomisidae Misumenops sp.1 FML IMEDEA SPIPA127‐10 SFD1NBR017 Theridiidae Dipoena sp.2 FML BOLD PA2515 SAB1DHA021 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA128‐10 SFU1N8L026 Theridiidae Exalbidion sp.10 FML BOLD PA2156 SAB1DHA022 Linyphiidae Grammonota cf secata IMEDEA SPIPA129‐10 SAB1DEB012 Theridiidae Faiditus sp.10 FML BOLD PA1940 SAB1DHA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA130‐10 SAB1DEL018 Theridiidae Faiditus sp.10 FML BOLD PA1941 SAB1DHA501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA131‐10 STU2N8H006 Theridiidae Faiditus sp.11 FML BOLD PA1942 SAB1DHA502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA132‐10 STU2N8L008 Theridiidae Faiditus sp.11 FML BOLD PA2101 SAB1DHB010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA133‐10 STD1D7R007 Theridiidae Faiditus atopus BOLD PA2102 SAB1DHB010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA134‐10 STD1N7L028 Theridiidae Faiditus atopus BOLD PA1305 SAB1DHB012 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA135‐10 STD1N7L029 Theridiidae Faiditus atopus BOLD PA2209 SAB1DHB021 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA136‐10 STU1N5A013 Theridiidae Spintharus sp.1 FML BOLD PA2235 SAB1DHB023 Linyphiidae Primerigonina australis IMEDEA SPIPA137‐10 STU1N5H002 Theridiidae Spintharus sp.1 FML BOLD PA1217 SAB1DHH002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA138‐10 SFU1NAR009 Theridiidae Senoculus bucolicus BOLD PA1748 SAB1DHH012 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA139‐10 SCU1NDA013 Theridiidae Styposis chickeringi BOLD PA2193 SAB1DHH016 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML IMEDEA SPIPA140‐10 SCU1NDH006 Theridiidae Styposis chickeringi BOLD PA2361 SAB1DHH019 Linyphiidae Erigone sp.10 FML IMEDEA SPIPA141‐10 SCU1NDH022 Theridiidae Styposis chickeringi BOLD PA1218 SAB1DHH500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA142‐10 STB1D6L015 Theridiidae Styposis clausis BOLD PA1219 SAB1DHH501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA143‐10 SCB1DIR014 Theridiidae Styposis clausis BOLD PA1359 SAB1DHL011 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA144‐10 SCB1DIR030 Theridiidae Styposis clausis BOLD PA2070 SAB1DHL014 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA145‐10 SCC1DFH010 Theridiidae Styposis sp.2 FML BOLD PA1360 SAB1DHL500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA146‐10 SCC1DGA016 Theridiidae Styposis sp.2 FML BOLD PA1361 SAB1DHL501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA147‐10 SCC1DGA025 Theridiidae Styposis sp.2 FML BOLD PA2071 SAB1DHL502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA148‐10 SCD1NGL025 Theridiidae Styposis sp.2 FML BOLD PA2088 SAB1DHP006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA149‐10 SAB1DEB016 Theridiidae Styposis sp.3 FML BOLD PA1470 SAB1DHP008 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA150‐10 SAB1DEB025 Theridiidae Styposis sp.3 FML BOLD PA1752 SAB1DHP010 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA151‐10 SAB1DEB026 Theridiidae Styposis sp.3 FML BOLD PA1931 SAB1DHP014 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA152‐10 SAB1DEB027 Theridiidae Styposis sp.3 FML BOLD PA1932 SAB1DHP500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA153‐10 SAB1DEB028 Theridiidae Styposis sp.3 FML BOLD PA1933 SAB1DHP501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA154‐10 SFU1NAL027 Theridiidae Alpaida tuonabo BOLD PA1934 SAB1DHP502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA155‐10 SFU2NBA030 Theridiidae Tekellina archboldi BOLD PA1935 SAB1DHP503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA156‐10 STB1D8H010 Theridiidae Theridion centrum BOLD PA2216 SAB1NDB016 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA157‐10 STU1N8A011 Theridiidae Theridion cf albulum BOLD PA1401 SAB1NGB002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA158‐10 STU1N8L010 Theridiidae Theridion cf albulum BOLD PA1402 SAB1NGB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA159‐10 SFB1DCR017 Theridiidae Theridion cf albulum BOLD PA1440 SAB2DEB004 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA160‐10 SFB2DAA010 Theridiidae Theridion cf albulum BOLD PA2882 SAB2DEB011 Thomisidae Misumenops sp.1 FML IMEDEA SPIPA161‐10 SAU1NFL007 Theridiidae Theridion trepidum BOLD PA1583 SAB2DEB014 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA162‐10 SAU1NDH025 Theridiidae Theridion cf costaricaense BOLD PA2356 SAB2DEB031 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA163‐10 SAU1NDR018 Theridiidae Theridion cf costaricaense BOLD PA1441 SAB2DEB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA164‐10 SAU1NFA016 Theridiidae Theridion cf costaricaense BOLD PA1442 SAB2DEB501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA165‐10 SAU1NFL011 Theridiidae Theridion cf costaricaense BOLD PA1443 SAB2DEB502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA166‐10 SAU1NFL025 Theridiidae Theridion cf costaricaense BOLD PA2120 SAB2DEB503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA167‐10 SAC1DGL007 Theridiidae Theridion cf ravum BOLD PA2121 SAB2DEB504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA168‐10 SAU1NDB023 Theridiidae Theridion cf ravum BOLD PA2122 SAB2DEB505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA169‐10 SAU1NDH029 Theridiidae Theridion cf ravum BOLD PA2188 SAC1DDA009 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA170‐10 SAU1NFA012 Theridiidae Theridion cf ravum BOLD PA1233 SAC1DDB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA171‐10 SAU1NFP017 Theridiidae Theridion cf ravum BOLD PA1925 SAC1DDL010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA172‐10 STB1D6L021 Theridiidae Theridion cf uncatum BOLD PA1928 SAC1DDL010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA173‐10 STU1N5B015 Theridiidae Theridion cf uncatum BOLD PA1231 SAC1DDL500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA174‐10 STC1D5H014 Theridiidae Theridion micheneri BOLD PA1926 SAC1DDL501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA175‐10 STC1D5R009 Theridiidae Theridion micheneri BOLD PA1929 SAC1DDL501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA176‐10 STD1D7R016 Theridiidae Theridion micheneri BOLD PA1927 SAC1DDL502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA177‐10 STD1N7H015 Theridiidae Theridion micheneri BOLD PA1930 SAC1DDL502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA178‐10 SAB1DFA022 Theridiidae Theridion sp.8 FML BOLD PA1399 SAC1DDR500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA179‐10 STB1D5H026 Theridiidae Wamba sp.1 FML BOLD PA2172 SAC1DEA009 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA180‐10 STC1N7H015 Theridiidae Wamba sp.1 FML BOLD PA1948 SAC1DEA010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA181‐10 SANQH8P001 Lycosidae Pardosa prolifera BOLD PA1281 SAC1DEA500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA182‐10 SANQH8P003 Lycosidae Pardosa prolifera BOLD PA1949 SAC1DEA501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA183‐10 SANQI8L001 Lycosidae Lycosinae sp.4 FML BOLD PA2099A SAC1DEH007 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA184‐10 SFNQL8P001 Lycosidae Schizocosa cf tristani BOLD PA2170 SAC1DEH009 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA185‐10 SFNQL8P007 Lycosidae Schizocosa cf tristani BOLD PA2099B SAC1DEH500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA186‐10 SFNQL8P008 Lycosidae Schizocosa cf tristani BOLD PA2100 SAC1DEH501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA187‐10 SFNQL8P009 Lycosidae Schizocosa cf tristani BOLD PA1851 SAC1DEL004 Oonopidae Dysderina sp.5 FML IMEDEA SPIPA188‐10 SFNQL8P010 Lycosidae Schizocosa cf tristani BOLD PA1630 SAC1DEL008 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA189‐10 SFNQJ8P002 Trechaleidae Enna sp.1 FML BOLD PA1499 SAC1DEL009 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA190‐10 SFNQJ8P011 Trechaleidae Enna sp.1 FML BOLD PA1824 SAC1DEL011 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA191‐10 SFNQJ8P003 Lycosidae Trochosa sp.2 FML BOLD PA1852 SAC1DEL014 Oonopidae Dysderina sp.5 FML IMEDEA SPIPA192‐10 SFNQJ8P012 Lycosidae Trochosa sp.1 FML BOLD PA1900 SAC1DER009 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA193‐10 SFNQJ8P013 Lycosidae Trochosa sp.1 FML BOLD PA1505 SAC1DER501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA194‐10 SFNQJ8P014 Lycosidae Trochosa sp.2 FML BOLD PA1294 SAC1DFB003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA195‐10 SFNQJ8P015 Lycosidae Trochosa sp.2 FML BOLD PA2224 SAC1DFB012 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA196‐10 SFNQL8P003 Lycosidae Allocosa sp.1 FML BOLD PA1842 SAC1DFH002 Oonopidae Dysderina sp.5 FML IMEDEA SPIPA197‐10 SFNQJ8P017 Lycosidae Lycosinae sp.2 FML BOLD PA3161 SAC1DFH003 Agelenidae Melpomene sp.2 FML IMEDEA SPIPA198‐10 SFNQJ8P018 Lycosidae Lycosinae sp.2 FML BOLD PA1609 SAC1DFH004 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA199‐10 SFNQJ8P006 Salticidae Cobanus sp.20 FML BOLD PA2351 SAC1DFH008 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPA200‐10 SFNQJ8P007 Oecobiidae Oecobius concinnus BOLD PA2517 SAC1DFH014 Linyphiidae Erigoninae sp.8 FML IMEDEA SPIPA201‐10 SFNQJ8P009 Lycosidae Lycosinae sp.3 FML BOLD PA2349 SAC1DFH015 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPA202‐10 SFNQM8P001 Thomisidae Stephanopinae sp.3 FML BOLD PA2350 SAC1DFH016 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPA203‐10 SFNQM8P002 Corinnidae Septentrinna sp.1 FML BOLD PA3108 SAC1DGB009 Nesticidae Eidmannella pallida IMEDEA SPIPA204‐10 SFNQM8P004 Uloboridae Miagrammopes sp.3 FML BOLD PA2104 SAC1DGB016 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA205‐10 SFNQM8P006 Corinnidae Castianeira sp.5 FML FML BOLD PA1782 SAC1DGB019 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA206‐10 SFNQN8L001 Prodidomidae Lygromma volcan BOLD PA1325 SAC1DGB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA207‐10 SFNQN8L062 Oonopidae Dysderina sp.2 FML BOLD PA1610 SAC1DGH005 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA208‐10 STC1D6L013 Nemesiidae Nemesidae sp.1 FML BOLD PA1407 SAC1DGP004 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA209‐10 STB1D6H010 Ctenizidae BOLD PA2609 SAC1DGP006 Hahniidae Neoantistea sp.2 FML IMEDEA SPIPA210‐10 SCC1NGR006 Barychelidae BOLD PA2863 SAC1DGP013 Hahniidae Neoantistea sp.2 FML IMEDEA SPIPA211‐10 SFNQL8L053 Araneidae Eriophora fuliginea BOLD PA1370 SAC1DHA004 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA212‐10 SFNQL8L054 Nesticidae Eidmannella sp.1 FML BOLD PA1850 SAC1DHA007 Oonopidae Dysderina sp.5 FML IMEDEA SPIPA213‐10 SFNQL8L055 Tetragnathidae Leucauge sp.2 FML BOLD PA2096 SAC1DHA013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA214‐10 SFNQL8L056 Araneidae Araneidae sp.1 FML BOLD PA1371 SAC1DHA500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA215‐10 SFNQL8L058 Oonopidae Dysderina sp.7 FML BOLD PA1372 SAC1DHA501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA216‐10 SFNQL8L059 Anyphaenidae Elaver sp.13 FML BOLD PA1520 SAC1DHB001 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA217‐10 SFNQL8L060 Theridiidae Styposis sp.4 FML BOLD PA1627 SAC1DHB013 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA218‐10 SFNQL8L061 Anyphaenidae Macrophyes elongata BOLD PA1521 SAC1DHB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA219‐10 SFNQL8L063 Anyphaenidae Macrophyes elongata BOLD PA1522 SAC1DHB501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA220‐10 SFNQP8L009 Corinnidae Megalostrata raptrix BOLD PA1523 SAC1DHB502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA221‐10 SFNQP8L011 Oonopidae Dysderina sp.8 FML BOLD PA1633 SAC1DHH002 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA222‐10 SFNQP8L012 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.4 FML BOLD PA1741 SAC1DHL002 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA223‐10 SFNQN8P001 Hersiliidae Hersilidae sp.1 FML BOLD PA1386 SAC1DHL004 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA224‐10 SFNQN8P003 Hersiliidae Hersilidae sp.1 FML BOLD PA2719 SAC1NDA002 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.7 FML IMEDEA SPIPA225‐10 SFNQN8P004 Ctenidae cf. Caloctenus sp.1 FML BOLD PA1608 SAC1NDA009 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA226‐10 SFNQM8P007 Miturgidae Miturguidae sp.1 FML BOLD PA1848 SAC1NDA010 Oonopidae Dysderina sp.5 FML IMEDEA SPIPA227‐10 SFNQK8P002 Lycosidae Lycosinae sp.3 FML BOLD PA1506 SAC1NDB003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA228‐10 SFNQM8P012 Corinnidae Castianeira sp.5 FML FML BOLD PA2179 SAC1NDB009 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA229‐10 SFNQM8P015 Salticidae Cobanus sp.21 FML BOLD PA1507 SAC1NDB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA230‐10 SFNQM8P013 Araneidae Micrathena sp.1 FML BOLD PA1611 SAC1NDH014 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA231‐10 SANQI8L002 Araneidae Cyclosa sp.1 FML BOLD PA2448 SAC1NDL003 Corinnidae Trachelas sp.4 FML IMEDEA SPIPA232‐10 SFNQK8L001 Theridiosomatidae Baalzebub albonotatus BOLD PA1433 SAC1NDL501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA233‐10 SANQD8R002 Miturgidae Strotarchus sp.1 FML BOLD PA1799 SAC1NDL502 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA234‐10 SANQI8P003 Salticidae Sassacus sp.10 FML BOLD PA2765 SAC1NDR001 Clubionidae Elaver sp.3 FML IMEDEA SPIPA235‐10 SFNQM8P014 Uloboridae Miagrammopes sp.3 FML BOLD PA3189 SAC1NDR005 Amaurobiidae Retiro sp.1 FML IMEDEA SPIPA236‐10 SFNQM8P008 Tetragnathidae Leucauge sp.2 FML BOLD PA2565 SAC1NDR013 Clubionidae Elaver sp.3 FML IMEDEA SPIPA237‐10 SFNQM8P009 Salticidae Corythalia sp.1 FML BOLD PA1849 SAC1NFA003 Oonopidae Dysderina sp.5 FML IMEDEA SPIPA238‐10 SFNQM8P010 Salticidae Corythalia sp.1 FML BOLD PA1599 SAC1NFA006 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA239‐10 SFNQM8P011 Araneidae Parawixia sp.2 FML BOLD PA2490 SAC1NFA008 Linyphiidae Walckenaeria crocea IMEDEA SPIPA240‐10 SANQI8P001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.9 FML BOLD PA2717 SAC1NFA011 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.7 FML IMEDEA SPIPA241‐10 SANQI8P004 Salticidae Sassacus sp.10 FML BOLD PA1501 SAC1NFB006 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA242‐10 SANQI8L003 Araneidae Cyclosa sp.1 FML BOLD PA1924 SAC1NFB007 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA243‐10 SANQH8P004 Theridiidae Theridion sp.14 FML BOLD PA1502 SAC1NFB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA244‐10 SFNQM8L043 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.20 FML BOLD PA2570 SAC1NFH001 Clubionidae Elaver sp.5 FML IMEDEA SPIPA245‐10 SFNQM8L038 Uloboridae Miagrammopes sp.3 FML BOLD PA2519 SAC1NFH009 Linyphiidae Walckenaeria sp.1 FML IMEDEA SPIPA246‐10 SANQH8P005 Araneidae Araneus sp.4 FML BOLD PA2169 SAC1NFL010 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA247‐10 SFNQM8L037 Sparassidae Sparassidae sp.1 FML BOLD PA1908 SAC1NFL013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA248‐10 SFNQM8L031 Corinnidae Corinna sp.11 FML BOLD PA1785 SAC1NFL500 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA249‐10 SFNQM8L025 Salticidae Metaphidipus facetus BOLD PA1830 SAC1NFP006 Oonopidae Dysderina sp.6 FML IMEDEA SPIPA250‐10 SFNQM8L051 Salticidae Metaphidipus facetus BOLD PA1892 SAC1NGA005 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA251‐10 SFNQM8P016 Ctenidae Cupiennius sp.6 FML BOLD PA1615 SAC1NGB008 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA252‐10 SFNQN8P020 Linyphiidae Mermessus sp.1 FML BOLD PA2064 SAC1NGB018 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA253‐10 SFNQN8L004 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.8 FML BOLD PA1631 SAC1NGB021 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA254‐10 SFNQN8L003 Anyphaenidae Patrera sp.1 FML BOLD PA2866 SAC1NGB022 Hahniidae Neoantistea sp.3 FML IMEDEA SPIPA255‐10 SFNQN8P019 Zodariidae Ishania sp.1 FML BOLD PA1384 SAC1NGB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA256‐10 SFNQN8P018 Zodariidae Ishania sp.1 FML BOLD PA1385 SAC1NGB501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA257‐10 SFNQJ8P023 Linyphiidae Mermessus sp.1 FML BOLD PA2065 SAC1NGB502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA258‐10 SFNQJ8P022 Araneidae Larinia sp.2 FML BOLD PA2718 SAC1NGH006 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.7 FML IMEDEA SPIPA259‐10 SFNQN8P017 Zodariidae Ishania sp.1 FML BOLD PA3062 SAC1NGL001 Prodidomidae Lygromma sp.3 FML IMEDEA SPIPA260‐10 SFNQJ8P021 Araneidae Larinia sp.1 FML BOLD PA1803 SAC1NGL007 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA261‐10 SFNQJ8P020 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.22 FML BOLD PA2178 SAC1NGL008 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA262‐10 SFNQJ8P019 Araneidae Larinia sp.1 FML BOLD PA1245 SAC1NGL010 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA263‐10 SFNQK8L037 Anyphaenidae Patrera sp.1 FML BOLD PA1984 SAC1NGL012 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA264‐10 SFNQO8P001 Araneidae Micrathena donaldi BOLD PA1863 SAC1NGL013 Oonopidae cf_Stenoonops sp.1 FML IMEDEA SPIPA265‐10 SFNQK8P003 Ctenidae Ctenus sp.8 FML BOLD PA1856 SAC1NGL017 Oonopidae Dysderina sp.5 FML IMEDEA SPIPA266‐10 SFNQN8P015 Anyphaenidae Patrera sp.1 FML BOLD PA3149 SAC1NGL019 Prodidomidae Lygromma dybasi IMEDEA SPIPA267‐10 SFNQN8P016 Uloboridae Miagrammopes sp.1 FML BOLD PA1835 SAC1NGP007 Oonopidae Dysderina sp.6 FML IMEDEA SPIPA268‐10 SFNQN8P013 Oonopidae Dysderina sp.7 FML BOLD PA1783 SAC1NGP008 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA269‐10 SFNQN8P014 Oonopidae Dysderina sp.7 FML BOLD PA2777 SAC1NGP009 Clubionidae Elaver sp.5 FML IMEDEA SPIPA270‐10 SFNQK8L020 Araneidae Larinia sp.1 FML BOLD PA1947 SAC1NGP011 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA271‐10 SFNQK8L019 Araneidae Larinia sp.1 FML BOLD PA1400 SAC1NGP012 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA272‐10 SFNQK8L015 Theridiidae Theridion sp.21 FML BOLD PA1626 SAC1NGP013 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA SPIPA273‐10 SFNQK8L018 Tetragnathidae Glenognatha sp.4 FML BOLD PA2730 SAC1NHA005 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.6 FML IMEDEA SPIPA274‐10 SFNQK8L014 Theridiidae Exalbidion sp.2 FML BOLD PA1220 SAC1NHB002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA275‐10 SFNQM8L026 Salticidae Sassacus sp.11 FML BOLD PA1612 SAC1NHB003 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA276‐10 SFNQM8L027 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.23 FML BOLD PA2067 SAC1NHB012 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA277‐10 SFNQM8L033 Thomisidae Stephanopinae sp.3 FML BOLD PA1820 SAC1NHB015 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA278‐10 SFNQM8L029 Thomisidae Tmarus sp.2 FML BOLD PA1221 SAC1NHB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA279‐10 SFNQM8L028 Zodariidae Ishania sp.1 FML BOLD PA1222 SAC1NHB501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA280‐10 SFNQM8L030 Ctenidae Cupiennius sp.6 FML BOLD PA3162 SAC1NHH011 Agelenidae Melpomene sp.2 FML IMEDEA SPIPA281‐10 SFNQM8L052 Ctenidae Cupiennius sp.6 FML BOLD PA2183 SAC1NHH012 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA282‐10 SFNQM8L053 Corinnidae Stethorrhagus sp.1 FML BOLD PA2185 SAC1NHL003 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA283‐10 SFNQM8L032 Corinnidae Stethorrhagus sp.1 FML BOLD PA1595 SAC1NHL011 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA284‐10 SFNQN8P011 Theridiidae Ariamnes attenuatus BOLD PA1340 SAC1NHP011 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA285‐10 SFNQJ8L003 Theridiidae Thymoites sp.5 FML BOLD PA1607 SAC1NHP014 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA286‐10 SCC1DGD006 Zodariidae Tenedos cufodontii BOLD PA2776 SAC1NHP015 Clubionidae Elaver sp.5 FML IMEDEA SPIPA287‐10 SCC1NHR006 Zodariidae Tenedos cufodontii BOLD PA2171 SAC1NHP017 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA288‐10 SCC1NFR007 Zodariidae Tenedos cufodontii BOLD PA1341 SAC1NHP500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA289‐10 SAU1NCL051 Uloboridae Philoponella sp.11 FML BOLD PA2731 SAC2NDA001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.6 FML IMEDEA SPIPA290‐10 SAU2NCR028 Uloboridae Philoponella sp.11 FML BOLD PA2720 SAC2NDA002 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.7 FML IMEDEA SPIPA291‐10 SAD1NCL023 Uloboridae Philoponella sp.11 FML BOLD PA1585 SAC2NDA009 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA292‐10 SFD1NCL008 Uloboridae Philoponella sp.1 FML BOLD PA1857 SAC2NDA014 Oonopidae Dysderina sp.5 FML IMEDEA SPIPA293‐10 SFD1NBL031 Uloboridae Philoponella sp.1 FML BOLD PA1945 SAC2NDA017 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA294‐10 SFD1NBR005 Uloboridae Philoponella republicana BOLD PA1614 SAC2NDA019 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA295‐10 SFD1NBR061 Uloboridae Philoponella republicana BOLD PA1436 SAC2NDB500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA296‐10 SFD1NBR062 Uloboridae Philoponella republicana BOLD PA2610 SAC2NDH003 Hahniidae Neoantistea sp.2 FML IMEDEA SPIPA297‐10 SFD1NBR057 Uloboridae Philoponella republicana BOLD PA2864 SAC2NDH017 Hahniidae Neoantistea sp.2 FML IMEDEA SPIPA298‐10 SAU1NDA015 Uloboridae Miagrammopes sp.2 FML BOLD PA2732 SAC2NDR001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.6 FML IMEDEA SPIPA299‐10 SAB1DFA018 Uloboridae Miagrammopes sp.2 FML BOLD PA2440 SAC2NDR005 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA300‐10 SAB1DER017 Uloboridae Miagrammopes sp.2 FML BOLD PA2299 SAC2NDR010 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPA301‐10 SCU1NGD026 Uloboridae Miagrammopes aspinatus BOLD PA2177 SAC2NDR011 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA302‐10 SCU1NFA011 Uloboridae Miagrammopes aspinatus BOLD PA1821 SAC2NDR016 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA303‐10 SCD1NGR005 Uloboridae Miagrammopes aspinatus BOLD PA2449 SAC2NDR020 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA SPIPA304‐10 SCB1DFL029 Thomisidae Tmarus sp.2 FML BOLD PA1591 SAC2NDR021 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA305‐10 SCB1DEL007 Thomisidae Tmarus sp.2 FML BOLD PA1326 SAC2NDR500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA306‐10 SCU1NDD002 Thomisidae Tmarus sp.2 FML BOLD PA2227 SAD11NCB029 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA307‐10 SFB1DBA001 Thomisidae Tmarus sp.1 FML BOLD PA3079 SAD1DGA008 Agelenidae Melpomene sp.2 FML IMEDEA SPIPA308‐10 STB1D6L016 Thomisidae Stephanopinae sp.2 FML BOLD PA2114 SAD1DGB004 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA309‐10 STB1D8H009 Thomisidae Stephanopinae sp.2 FML BOLD PA2115 SAD1DGB500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA310‐10 SCB2DGL006 Thomisidae Stephanopinae sp.2 FML BOLD PA2116 SAD1DGB501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA311‐10 STB1D6H013 Thomisidae Onocolus pentagonus BOLD PA2117 SAD1DGB502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA312‐10 STB1D5A010 Thomisidae Onocolus pentagonus BOLD PA2118 SAD1DGB503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA313‐10 STB1D9R020 Thomisidae Onocolus pentagonus BOLD PA2119 SAD1DGB504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA314‐10 SAB1DER029 Thomisidae Misumenops sp.1 FML BOLD PA1964 SAD1DGH008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA315‐10 SAB1DDB017 Thomisidae Misumenops sp.1 FML BOLD PA1716 SAD1DGP006 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA316‐10 SAB1DER030 Thomisidae Misumenops sp.1 FML BOLD PA1740 SAD1DGP007 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA317‐10 STD1D6H023 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.11 FML BOLD PA1771 SAD1DGP009 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA318‐10 STC2D6R014 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.11 FML BOLD PA1717 SAD1DGP500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA319‐10 STU1N5L020 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.11 FML BOLD PA1718 SAD1DGP501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA320‐10 STU1N7A019 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.11 FML BOLD PA1719 SAD1DGP502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA321‐10 STU1N7L028 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.11 FML BOLD PA1720 SAD1DGP503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA322‐10 SAD1NGP019 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.10 FML BOLD PA1721 SAD1DGP504 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA323‐10 SAU2NFA018 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.10 FML BOLD PA1735 SAD1DHL002 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA324‐10 SAD1NCR003 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.10 FML BOLD PA1671 SAD1DHP005 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA325‐10 SAC1DGB022 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.10 FML BOLD PA2068 SAD1DHP006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA326‐10 SAB1DER005 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.10 FML BOLD PA1672 SAD1DHP500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA327‐10 SAD1DHP001 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.7 FML BOLD PA2069 SAD1DHP501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA328‐10 SAC1DHA012 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.7 FML BOLD PA1946 SAD1NCA008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA329‐10 SAB1DHP002 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.7 FML BOLD PA1753 SAD1NCB006 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA330‐10 SAU1NFB026 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.7 FML BOLD PA1901 SAD1NCB015 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA331‐10 SAC1DFA008 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.7 FML BOLD PA2228 SAD1NCB028 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA332‐10 STD1D6B017 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.6 FML BOLD PA1902 SAD1NCB500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA333‐10 STB1D5L027 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.6 FML BOLD PA1903 SAD1NCB501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA334‐10 STU1N4R024 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.6 FML BOLD PA1904 SAD1NCB502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA335‐10 SCD2NFA020 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.6 FML BOLD PA1905 SAD1NCB503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA336‐10 SCD1DEL018 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.6 FML BOLD PA1906 SAD1NCB504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA337‐10 SFD1D8H025 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.5 FML BOLD PA1620 SAD1NCH004 Corinnidae Trachelas sp.13 FML IMEDEA SPIPA338‐10 SFD1NAH022 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.5 FML BOLD PA2212 SAD1NCH008 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA339‐10 SFD1NBH019 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.5 FML BOLD PA1650 SAD1NCH010 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA340‐10 SFU2NAA010 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.4 FML BOLD PA2318 SAD1NCH023 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA341‐10 SFU1NCR034 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.4 FML BOLD PA2388 SAD1NCH025 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA342‐10 SFD1NCH021 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.4 FML BOLD PA2226 SAD1NCH027 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA343‐10 SFD1NAL019 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.4 FML BOLD PA2215 SAD1NCH028 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA344‐10 SFU1D9A009 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.4 FML BOLD PA2348 SAD1NCH029 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPA345‐10 SFD1NCA011 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.3 FML BOLD PA1651 SAD1NCH500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA346‐10 SFC1DBD015 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.3 FML BOLD PA1652 SAD1NCH501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA347‐10 SFB1DBA017 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.3 FML BOLD PA1750 SAD1NCL008 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA348‐10 SFC1DCR013 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.3 FML BOLD PA2734 SAD1NCR001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.5 FML IMEDEA SPIPA349‐10 SFD1DAA017 Theridiosomatidae Theridiosoma sp.3 FML BOLD PA1613 SAD1NCR012 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA350‐10 SFD1NCD023 Theridiosomatidae Theridiosoma chiripa BOLD PA2230 SAD1NCR020 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA351‐10 SAC1NHL015 Theridiosomatidae Theridiosoma chiripa BOLD PA2107 SAD1NCR024 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA352‐10 SAD1NCA001 Theridiosomatidae Theridiosoma chiripa BOLD PA1691 SAD1NCR025 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA353‐10 SAD1NCA004 Theridiosomatidae Theridiosoma chiripa BOLD PA2108 SAD1NCR500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA354‐10 SFD1NAH025 Theridiosomatidae Theridiosoma chiripa BOLD PA2336 SAD1NFL012 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPA355‐10 SAU1NDL029 Theridiosomatidae Ogulnius sp.2 FML BOLD PA1831 SAD1NGA001 Oonopidae Dysderina sp.6 FML IMEDEA SPIPA356‐10 SAB1DDA002 Theridiosomatidae Ogulnius sp.2 FML BOLD PA1957 SAD1NGA011 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA357‐10 SAU1NDR024 Theridiosomatidae Ogulnius sp.2 FML BOLD PA2233 SAD1NGA012 Linyphiidae Walckenaeria aenea IMEDEA SPIPA358‐10 SAU2NCA003 Theridiosomatidae Ogulnius sp.2 FML BOLD PA1832 SAD1NGA020 Oonopidae Dysderina sp.6 FML IMEDEA SPIPA359‐10 SAU1NCL037 Theridiosomatidae Ogulnius sp.2 FML BOLD PA1958 SAD1NGA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA360‐10 SCD1DFD013 Theridiosomatidae Ogulnius sp.1 FML BOLD PA2220 SAD1NGB006 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA361‐10 SCD1DHR010 Theridiosomatidae Ogulnius sp.1 FML BOLD PA1586 SAD1NGB008 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA362‐10 SCD1NGR012 Theridiosomatidae Ogulnius sp.1 FML BOLD PA1951 SAD1NGB022 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA363‐10 SFU1NBR036 Theridiosomatidae Naatlo sp.10 FML BOLD PA2219 SAD1NGB028 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA364‐10 SFB1D8L018 Theridiosomatidae Naatlo sp.10 FML BOLD PA2004 SAD1NGH009 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA365‐10 SFU2NCH028 Theridiosomatidae Naatlo sp.10 FML BOLD PA2218 SAD1NGH014 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA366‐10 SFU1N8H023 Theridiosomatidae Naatlo sp.10 FML BOLD PA1950 SAD1NGH021 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA367‐10 SFU1NCR045 Theridiosomatidae Naatlo sp.10 FML BOLD PA2007 SAD1NGH502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA368‐10 STB1D9A009 Theridiosomatidae Naatlo sp.1 FML BOLD PA2008 SAD1NGH503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA369‐10 SCC2NFH008 Theridiosomatidae Naatlo sp.1 FML BOLD PA1587 SAD1NGL006 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA370‐10 SCC1NER014 Theridiosomatidae Naatlo sp.1 FML BOLD PA1911 SAD1NGL013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA371‐10 SCB1DIA010 Theridiosomatidae Naatlo sp.1 FML BOLD PA2234 SAD1NGP012 Linyphiidae Walckenaeria aenea IMEDEA SPIPA372‐10 SCC1NHD013 Theridiosomatidae Naatlo sp.1 FML BOLD PA3078 SAD1NHA001 Agelenidae Melpomene sp.2 FML IMEDEA SPIPA373‐10 SFB2D9R026 Theridiosomatidae Naatlo fauna BOLD PA2222 SAD1NHA006 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA374‐10 SFD1NBR033 Theridiosomatidae Naatlo fauna BOLD PA1833 SAD1NHA008 Oonopidae Dysderina sp.6 FML IMEDEA SPIPA375‐10 SFU1N8R028 Theridiosomatidae Naatlo fauna BOLD PA2082 SAD1NHA016 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA376‐10 SFU1N8A036 Theridiosomatidae Naatlo fauna BOLD PA2223 SAD1NHA022 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA377‐10 SFU1NCD031 Theridiosomatidae Naatlo fauna BOLD PA2083 SAD1NHA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA378‐10 SFU1NAR037 Theridiosomatidae cf Chrysso sp.1 FML BOLD PA2084 SAD1NHA501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA379‐10 SFU1NAH031 Theridiosomatidae Leucauge sp.1 FML BOLD PA1974 SAD1NHB006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA380‐10 SFU1NBA005 Theridiosomatidae Epilineutes globosus BOLD PA2225 SAD1NHB013 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA381‐10 SFD1NBA013 Theridiosomatidae Epilineutes globosus BOLD PA1597 SAD1NHB016 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA382‐10 SFU1NBD031 Theridiosomatidae Epilineutes globosus BOLD PA1976 SAD1NHB501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA383‐10 SAU2NCL028 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.10 FML BOLD PA1977 SAD1NHB502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA384‐10 SAU2NCL033 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.10 FML BOLD PA1978 SAD1NHB503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA385‐10 SAU1NCL062 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.7 FML BOLD PA1979 SAD1NHB504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA386‐10 SAU1NCR048 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.7 FML BOLD PA2442 SAD1NHH015 Corinnidae Trachelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA387‐10 SAU1NCR002 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.10 FML BOLD PA1756 SAD1NHH021 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA388‐10 SAU1NCL035 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.7 FML BOLD PA1618 SAD1NHP011 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA389‐10 SAC1DHH007 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.10 FML BOLD PA1621 SAD1NHP018 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA SPIPA390‐10 SFU1NBH019 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.3 FML BOLD PA1619 SAD1NHP019 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA391‐10 SFU1N7H026 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.3 FML BOLD PA2865 SAD2NCB008 Hahniidae Neoantistea sp.2 FML IMEDEA SPIPA392‐10 SFU1NCA029 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.3 FML BOLD PA2168 SAD2NCB011 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPA393‐10 SFU2NBA026 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.3 FML BOLD PA2221 SAD2NCB017 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA394‐10 SFU2NCH031 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.3 FML BOLD PA2564 SAD2NCB018 Clubionidae Elaver sp.5 FML IMEDEA SPIPA395‐10 STC1D5H013 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.6 FML BOLD PA1663 SAU1NCA009 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA396‐10 SAU1NGA024 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.2 FML BOLD PA2192 SAU1NCA019 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML IMEDEA SPIPA397‐10 SAU1NGH021 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.2 FML BOLD PA1745 SAU1NCA022 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA398‐10 SAU1NHA026 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.2 FML BOLD PA1664 SAU1NCA500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA399‐10 SAD1NFP007 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.2 FML BOLD PA1778 SAU1NCB010 Uloboridae MIagrammopes sp.2 FML IMEDEA SPIPA400‐10 SFC1NCD018 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.1 FML BOLD PA2441 SAU1NCB012 Corinnidae Trachelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA401‐10 SFU1N7H029 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.1 FML BOLD PA2728 SAU1NCH002 Anyphaenidae Iguarima sp.1 FML IMEDEA SPIPA402‐10 SFD1NCD016 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.1 FML BOLD PA1645 SAU1NCH015 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA403‐10 SFU2NCH029 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.1 FML BOLD PA1646 SAU1NCH500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA404‐10 SFC1N8H018 Theridiosomatidae Epeirotypus sp.1 FML BOLD PA2013 SAU1NCH501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA405‐10 SCU2NDA009 Theridiosomatidae Chthonos sp.3 FML BOLD PA1697 SAU1NCL015 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA406‐10 STU1N7H024 Theridiosomatidae Chthonos sp.3 FML BOLD PA2089 SAU1NCL017 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA407‐10 SCB1DED007 Theridiosomatidae Chthonos sp.3 FML BOLD PA1780 SAU1NCL060 Uloboridae MIagrammopes sp.2 FML IMEDEA SPIPA408‐10 SFD1NCR006 Theridiosomatidae Chthonos sp.2 FML BOLD PA1698 SAU1NCL500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA409‐10 SFU1N7L018 Theridiosomatidae Chthonos sp.1 FML BOLD PA1699 SAU1NCL501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA410‐10 SAB1DEL024 Theridiosomatidae Chthonos sp.1 FML BOLD PA1700 SAU1NCL502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA411‐10 SAD1NGL021 Theridiosomatidae Chthonos sp.1 FML BOLD PA1701 SAU1NCL503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA412‐10 SAU1NHB013 Theridiosomatidae Chthonos sp.1 FML BOLD PA1702 SAU1NCL504 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA413‐10 SAU1NHP003 Theridiosomatidae Chthonos sp.1 FML BOLD PA2090 SAU1NCL508 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA414‐10 SCD1DEL017 Theridiosomatidae Baalzebub sp.10 FML BOLD PA2091 SAU1NCL509 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA415‐10 SCD1DFR013 Theridiosomatidae Baalzebub sp.10 FML BOLD PA2092 SAU1NCL510 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA416‐10 SCD1DHR006 Theridiosomatidae Baalzebub sp.1 FML BOLD PA2093 SAU1NCL511 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA417‐10 SCD2NGL023 Theridiosomatidae Baalzebub sp.1 FML BOLD PA1683 SAU1NCR007 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA418‐10 SCD1DFR025 Theridiosomatidae Baalzebub sp.1 FML BOLD PA1684 SAU1NCR500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA419‐10 SCU1DHL016 Theridiosomatidae Baalzebub sp.1 FML BOLD PA1685 SAU1NCR501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA420‐10 SCD1DFR022 Theridiosomatidae Baalzebub sp.1 FML BOLD PA1686 SAU1NCR502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA421‐10 SAD1NHL020 Theridiosomatidae Baalzebub sp.0 BOLD PA1687 SAU1NCR503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA422‐10 SAC1DER002 Theridiosomatidae Baalzebub sp.11 FML BOLD PA1692 SAU1NDA009 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA423‐10 SAC2NDB010 Theridiosomatidae Baalzebub sp.11 FML BOLD PA1952 SAU1NDA013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA424‐10 SAU1NGH020 Theridiosomatidae Baalzebub sp.0 BOLD PA1779 SAU1NDA015 Uloboridae MIagrammopes sp.2 FML IMEDEA SPIPA425‐10 SAU1NCH032 Theridiosomatidae Baalzebub sp.0 BOLD PA2483 SAU1NDA016 Linyphiidae Dubiaranea sp.10 FML IMEDEA SPIPA426‐10 SAU1NDH021 Tetragnathidae Leucauge venusta BOLD PA1693 SAU1NDA500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA427‐10 SAU1NCH029 Tetragnathidae Leucauge venusta BOLD PA1694 SAU1NDA501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA428‐10 SAU2NCR006 Tetragnathidae Leucauge venusta BOLD PA1695 SAU1NDA502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA429‐10 SAU1NGL015 Tetragnathidae Leucauge venusta BOLD PA1696 SAU1NDA503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA430‐10 SAD1NGA008 Tetragnathidae Leucauge venusta BOLD PA1953 SAU1NDA504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA431‐10 SCD2NED008 Tetragnathidae Leucauge sp.10 FML BOLD PA1954 SAU1NDA505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA432‐10 SFU1NAL013 Tetragnathidae Tekellina archboldi BOLD PA2066 SAU1NDB006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA433‐10 SFU2N8A001 Tetragnathidae Leucauge sp.1 FML BOLD PA1638 SAU1NDB007 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA434‐10 SFD1D8D003 Tetragnathidae Leucauge sp.1 FML BOLD PA1605 SAU1NDB011 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA435‐10 SFU2NCH015 Tetragnathidae Leucauge sp.1 FML BOLD PA1775 SAU1NDB018 Uloboridae MIagrammopes sp.2 FML IMEDEA SPIPA436‐10 STU1N6H018 Tetragnathidae Leucauge argyra BOLD PA2133 SAU1NDB026 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA437‐10 SFU1NCA020 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML BOLD PA1606 SAU1NDB034 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA438‐10 SFB1D8D016 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML BOLD PA1639 SAU1NDB500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA439‐10 SFB1D9D009 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML BOLD PA1640 SAU1NDB501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA440‐10 SFU2N7H001 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML BOLD PA1898 SAU1NDH010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA441‐10 SFB1DAR021 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML BOLD PA1649 SAU1NDH013 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA442‐10 SCC1DFA015 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML BOLD PA2567 SAU1NDH015 Clubionidae Elaver sp.11 FML IMEDEA SPIPA443‐10 SCC1DIR013 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML BOLD PA2136 SAU1NDH027 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA444‐10 SCU1NEA012 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML BOLD PA1899 SAU1NDH500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA445‐10 SCC1NHD008 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML BOLD PA1673 SAU1NDL004 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA446‐10 SCC1NGD010 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML BOLD PA1746 SAU1NDL015 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA447‐10 SAB1DER054 Tetragnathidae Cyrtognatha pachygnathoides BOLD PA2566 SAU1NDL016 Clubionidae Elaver sp.3 FML IMEDEA SPIPA448‐10 SCU1NDD007 Tetragnathidae Cyrtognatha pachygnathoides BOLD PA1836 SAU1NDL018 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA SPIPA449‐10 SCU2NHA003 Tetragnathidae Cyrtognatha pachygnathoides BOLD PA2363 SAU1NDL022 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA450‐10 SCU2NDR008 Tetragnathidae Cyrtognatha pachygnathoides BOLD PA1674 SAU1NDL500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA451‐10 SAU1NCR021 Tetragnathidae Cyrtognatha pachygnathoides BOLD PA1681 SAU1NDR011 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA452‐10 SAD1NHP013 Tetragnathidae Cyrtognatha leviorum BOLD PA2624 SAU1NDR012 Thomisidae Misumenops sp.1 FML IMEDEA SPIPA453‐10 SAB1DDB015 Tetragnathidae Cyrtognatha leviorum BOLD PA2191 SAU1NDR013 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML IMEDEA SPIPA454‐10 SAU1NHB020 Tetragnathidae Cyrtognatha leviorum BOLD PA1682 SAU1NDR500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA455‐10 SAU1NDL033 Tetragnathidae Cyrtognatha leviorum BOLD PA2484 SAU1NFA004 Linyphiidae Dubiaranea sp.5 FML IMEDEA SPIPA456‐10 SAD1NCH014 Tetragnathidae Cyrtognatha leviorum BOLD PA2056 SAU1NFA022 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA457‐10 STU2N8A009 Tetragnathidae Chrysometa sp.7 FML BOLD PA2057 SAU1NFA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA458‐10 STU1N4A013 Tetragnathidae Chrysometa sp.7 FML BOLD PA1909 SAU1NFB008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA459‐10 STD1N7L006 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML BOLD PA1288 SAU1NFB009 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA460‐10 STD1N4R013 Tetragnathidae Chrysometa sp.7 FML BOLD PA1602 SAU1NFB015 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA461‐10 STU1N8L028 Tetragnathidae Chrysometa sp.7 FML BOLD PA2393 SAU1NFB023 Linyphiidae Walckenaeria aenea IMEDEA SPIPA462‐10 SAU1NHL009 Tetragnathidae Chrysometa sp.6 FML BOLD PA1604 SAU1NFB028 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA463‐10 SAB1DFB022 Tetragnathidae Chrysometa sp.6 FML BOLD PA1603 SAU1NFB029 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA464‐10 SAB1DER032 Tetragnathidae Chrysometa sp.6 FML BOLD PA1632 SAU1NFB030 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA465‐10 SAU1NDA023 Tetragnathidae Chrysometa sp.6 FML BOLD PA1910 SAU1NFB500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA466‐10 SAU1NCA018 Tetragnathidae Chrysometa sp.6 FML BOLD PA1654 SAU1NFH004 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA467‐10 SAD1NCH030 Tetragnathidae Chrysometa cf eugeni BOLD PA2766 SAU1NFH015 Clubionidae Elaver sp.11 FML IMEDEA SPIPA468‐10 SAU1NHA027 Tetragnathidae Chrysometa sp.5 FML BOLD PA1590 SAU1NFL009 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA469‐10 SAD1NGH010 Tetragnathidae Chrysometa cf eugeni BOLD PA1920 SAU1NFL012 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA470‐10 SAD1NGL004 Tetragnathidae Chrysometa cf eugeni BOLD PA2205 SAU1NFL024 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA471‐10 SAD1NCH016 Tetragnathidae Chrysometa cf eugeni BOLD PA1921 SAU1NFL500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA472‐10 SFU1N8A002 Tetragnathidae Chrysometa sp.2 FML BOLD PA1922 SAU1NFL501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA473‐10 SFU2NBH019 Tetragnathidae Chrysometa sp.2 FML BOLD PA2078 SAU1NGA009 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA474‐10 SFU1NBL032 Tetragnathidae Chrysometa sp.2 FML BOLD PA1864 SAU1NGA026 Oonopidae Orchestina sp.3 FML IMEDEA SPIPA475‐10 SFD1NAA028 Tetragnathidae Chrysometa sp.2 FML BOLD PA2079 SAU1NGA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA476‐10 SFD1NCA039 Tetragnathidae Chrysometa sp.2 FML BOLD PA1893 SAU1NGB008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA477‐10 STU1N7R018 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML BOLD PA2190 SAU1NGB015 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML IMEDEA SPIPA478‐10 STU1N6R020 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML BOLD PA2384 SAU1NGH006 Linyphiidae Grammonota cf secata IMEDEA SPIPA479‐10 STB1D5A013 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML BOLD PA1453 SAU1NGH008 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA480‐10 STD1N6R015 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML BOLD PA2568 SAU1NGH009 Clubionidae Elaver sp.3 FML IMEDEA SPIPA481‐10 STD1N7H004 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML BOLD PA2903 SAU1NGH015 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.5 FML IMEDEA SPIPA482‐10 SAU1NCR017 Tetragnathidae Chrysometa poas BOLD PA2320 SAU1NGH022 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA483‐10 SAU1NFB017 Tetragnathidae Chrysometa poas BOLD PA1690 SAU1NGL017 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA484‐10 SAD1NHP016 Tetragnathidae Chrysometa poas BOLD PA1600 SAU1NHA005 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA485‐10 SAD1NHH027 Tetragnathidae Chrysometa poas BOLD PA3106 SAU1NHA007 Nesticidae Eidmannella pallida IMEDEA SPIPA486‐10 SAD1NHA011 Tetragnathidae Chrysometa poas BOLD PA1749 SAU1NHA013 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA487‐10 SAD2NCB020 Tetragnathidae Chrysometa craigae BOLD PA1943 SAU1NHA020 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA488‐10 SAB2DEB010 Tetragnathidae Chrysometa craigae BOLD PA1944 SAU1NHA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA489‐10 SAU2NCA024 Tetragnathidae Chrysometa craigae BOLD PA2715 SAU1NHB001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.5 FML IMEDEA SPIPA490‐10 SAU1NHH009 Tetragnathidae Chrysometa craigae BOLD PA2111 SAU1NHH006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA491‐10 SAU1NFB021 Tetragnathidae Chrysometa craigae BOLD PA1369 SAU1NHH007 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA492‐10 SAU1NGL016 Tetragnathidae Chrysometa poas BOLD PA1777 SAU1NHH011 Uloboridae MIagrammopes sp.2 FML IMEDEA SPIPA493‐10 SAD1NCB014 Tetragnathidae Chrysometa sp.6 FML BOLD PA2197 SAU1NHH015 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA494‐10 SAB1DDR016 Tetragnathidae Chrysometa sp.6 FML BOLD PA2112 SAU1NHH500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA495‐10 SAU1NDR022 Tetragnathidae Chrysometa sp.6 FML BOLD PA2113 SAU1NHH501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA496‐10 SAB1DFA024 Tetragnathidae Chrysometa poas BOLD PA1754 SAU1NHL019 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA497‐10 SCB1DID008 Tetragnathidae Chrysometa cf heredia BOLD PA2097 SAU1NHL021 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA498‐10 SCD1NFL004 Tetragnathidae Chrysometa cf heredia BOLD PA2716 SAU1NHP002 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.10 FML IMEDEA SPIPA499‐10 SCU2NHR004 Tetragnathidae Chrysometa cf heredia BOLD PA2210 SAU1NHP014 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA500‐10 SCU1NGH006 Tetragnathidae Chrysometa cf heredia BOLD PA2232 SAU1NHP022 Linyphiidae Walckenaeria aenea IMEDEA SPIPA501‐10 SCD2NFA009 Tetragnathidae Chrysometa cf heredia BOLD PA1666 SAU1NHP025 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA502‐10 SAU1NFP010 Tetragnathidae Chrysometa craigae BOLD PA2211 SAU1NHP028 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML IMEDEA SPIPA503‐10 SAD1NCB021 Tetragnathidae Chrysometa eugeni BOLD PA1742 SAU2NCA012 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA504‐10 SAB1DEA021 Tetragnathidae Chrysometa cf eugeni BOLD PA2354 SAU2NCA027 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA505‐10 SAU1NDH022 Tetragnathidae Chrysometa cf eugeni BOLD PA2729 SAU2NCH001 Anyphaenidae Iguarima sp.1 FML IMEDEA SPIPA506‐10 SAB1DFB021 Tetragnathidae Chrysometa craigae BOLD PA1743 SAU2NCH015 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA507‐10 SFU1NBH011 Tetragnathidae Chrysometa alajuela BOLD PA2307 SAU2NCH024 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA508‐10 SFB1D8R018 Tetragnathidae Chrysometa alajuela BOLD PA1894 SAU2NCH026 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA509‐10 SFU2NCH005 Tetragnathidae Chrysometa alajuela BOLD PA1895 SAU2NCH500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA510‐10 SFU1N8L017 Tetragnathidae Chrysometa alajuela BOLD PA1896 SAU2NCH501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA511‐10 SFU1N8D008 Tetragnathidae Chrysometa alajuela BOLD PA1897 SAU2NCH502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA512‐10 STD1N7B012 Tetragnathidae Azilia sp.3 FML BOLD PA1727 SAU2NCL007 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA513‐10 SAD1DGL001 Tetragnathidae Azilia sp.1 FML BOLD PA1601 SAU2NCL009 Corinnidae Tracelas sp.3 FML IMEDEA SPIPA514‐10 SAC1NDH015 Tetragnathidae Azilia sp.1 FML BOLD PA1228 SAU2NCL021 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA515‐10 SAD1NCR019 Tetragnathidae Azilia sp.1 FML BOLD PA2014 SAU2NCL024 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA516‐10 SAD1NFL009 Tetragnathidae Azilia sp.1 FML BOLD PA1729 SAU2NCL501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA517‐10 SAC2NDH015 Tetragnathidae Azilia sp.1 FML BOLD PA1730 SAU2NCL502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA518‐10 SFU1NAR005 Tetragnathidae Spintharus sp.1 FML BOLD PA1731 SAU2NCL503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA519‐10 STC1N8H016 Tetragnathidae Azilia guatemalensis BOLD PA1732 SAU2NCL504 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA520‐10 STD1D7B005 Tetragnathidae Azilia guatemalensis BOLD PA2229 SAU2NCR012 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML IMEDEA SPIPA521‐10 SFD1NAA016 Tetragnathidae Azilia guatemalensis BOLD PA2353 SAU2NCR014 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA522‐10 SFU2NAD003 Tetragnathidae Azilia guatemalensis BOLD PA1739 SAU2NCR015 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPA523‐10 SFU1NCH029 Theridiidae Wamba panamensis BOLD PA1962 SAU2NCR021 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA524‐10 SFU1NBR028 Theridiidae Wamba crispulus BOLD PA1471 SAU2NCR500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA525‐10 SAC1NFH006 Theridiidae Thymoites sp.21 FML BOLD PA1963 SAU2NCR500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA526‐10 SAD1DGP008 Theridiidae Thymoites sp.6 FML BOLD PA2767 SAU2NFA013 Clubionidae Elaver sp.3 FML IMEDEA SPIPA527‐10 SAC1NHA008 Theridiidae Thymoites sp.6 FML BOLD PA1314 SAU2NFB004 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA528‐10 SAC1NGB017 Theridiidae Thymoites sp.6 FML BOLD PA2323 SAU2NFB010 Linyphiidae Grammonota teresta IMEDEA SPIPA529‐10 SAC1NHB009 Theridiidae Thymoites sp.21 FML BOLD PA1634 SAU2NFB017 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA530‐10 SFB1D9R007 Theridiidae Thymoites sp.5 FML BOLD PA2139 SAU2NFB018 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPA531‐10 SFU2N8A009 Theridiidae Thymoites sp.5 FML BOLD PA1960 SAU2NFB021 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA532‐10 SFD1D8A013 Theridiidae Thymoites sp.5 FML BOLD PA1635 SAU2NFB500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA533‐10 SFB1DBD008 Theridiidae Thymoites sp.5 FML BOLD PA1636 SAU2NFB501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPA534‐10 SFC1N7L002 Theridiidae Thymoites sp.5 FML BOLD PA1961 SAU2NFB502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA535‐10 SCC1DER013 Theridiidae Thymoites sp.4 FML BOLD PA2010 SAU2NFH020 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA536‐10 SCC1DIH029 Theridiidae Thymoites sp.2 FML BOLD PA2011 SAU2NFH500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA537‐10 SCC2NFR029 Theridiidae Thymoites sp.2 FML BOLD PA2887 SCB1DEA002 Thomisidae Stephanopinae sp.2 FML IMEDEA SPIPA538‐10 SCC2NFR031 Theridiidae Thymoites sp.2 FML BOLD PA2680 SCB1DEA011 Araneidae Mangora melanocephala IMEDEA SPIPA539‐10 SCC2NFR011 Theridiidae Thymoites sp.2 FML BOLD PA586 SCB1DEA021 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA540‐10 SCC2NFR030 Theridiidae Thymoites sp.2 FML BOLD PA094 SCB1DEA500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA541‐10 SCB1DGL022 Theridiidae Thymoites sp.1 FML BOLD PA2589 SCB1DED004 Salticidae Corythalia bicincta IMEDEA SPIPA542‐10 STU1N5B016 Theridiidae Thymoites sp.1 FML BOLD PA2746 SCB1DED007 Theridiosomatidae Chthonos sp.3 FML IMEDEA SPIPA543‐10 STD1N5L013 Theridiidae Thymoites sp.1 FML BOLD PA2827 SCB1DEH004 Salticidae cf Sassacus sp.1 FML IMEDEA SPIPA544‐10 SCB1DGA029 Theridiidae Thymoites sp.1 FML BOLD PA1145 SCB1DEH007 Corinnidae Trachelas barroanus IMEDEA SPIPA545‐10 SCB1DGA030 Theridiidae Thymoites sp.1 FML BOLD PA3262 SCB1DEH008 Pisauridae Thaumasia argenteonotata IMEDEA SPIPA546‐10 SCC1DIL022 Theridiidae Thymoites cf maderae BOLD PA2794 SCB1DEH010 Salticidae Myrmarachne parallela IMEDEA SPIPA547‐10 SCC1NHH024 Theridiidae Thymoites cf maderae BOLD PA2809 SCB1DEH011 Salticidae Fluda princeps IMEDEA SPIPA548‐10 STU1N7L025 Theridiidae Thymoites sp.20 FML BOLD PA2807 SCB1DEH012 Salticidae Cobanus incurvus IMEDEA SPIPA549‐10 STC1D9L012 Theridiidae Thymoites sp.20 FML BOLD PA2850 SCB1DEH013 Salticidae Chapoda sp.1 FML IMEDEA SPIPA550‐10 STD1N6A003 Theridiidae Thymoites sp.20 FML BOLD PA804 SCB1DEL006 Corinnidae Stethorrhagus sp.2 FML IMEDEA SPIPA551‐10 SAU1NDB024 Theridiidae Theridion stannardi BOLD PA2857 SCB1DEL008 Salticidae Zuniga magna IMEDEA SPIPA552‐10 STB1D5R013 Theridiidae Theridion sp.12 FML BOLD PA2972 SCB1DEL013 Theridiidae Styposis clausis IMEDEA SPIPA553‐10 SAB1DGP013 Theridiidae Theridion stannardi BOLD PA849 SCB1DEL019 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPA554‐10 SAU2NCA023 Theridiidae Theridion stannardi BOLD PA2596 SCB1DEL020 Salticidae Cotinusa sp.2 FML IMEDEA SPIPA555‐10 STB1D9R012 Theridiidae Theridion sp.12 FML BOLD PA2600 SCB1DER001 Salticidae Lyssomanes eatoni IMEDEA SPIPA556‐10 STU1N7H020 Theridiidae Theridion sp.12 FML BOLD PA2590 SCB1DER004 Salticidae Corythalia bicincta IMEDEA SPIPA557‐10 STB1D9B018 Theridiidae Theridion sp.12 FML BOLD PA1152 SCB1DER005 Corinnidae Parachemmis fuscus IMEDEA SPIPA558‐10 STU2N8L014 Theridiidae Theridion sp.12 FML BOLD PA1164 SCB1DER008 Corinnidae Trachelas sp.11 FML IMEDEA SPIPA559‐10 STU1N5L025 Theridiidae Wamba panamensis BOLD PA2914 SCB1DFD003 Scytodidae Scytodes championi IMEDEA SPIPA560‐10 SAB2DEB016 Theridiidae Theridion sp.13 FML BOLD PA2617 SCB1DFD004 Mimetidae Mimetus rusticus IMEDEA SPIPA561‐10 SAU2NCA022 Theridiidae Theridion sp.11 FML BOLD PA2648 SCB1DFD015 Scytodidae Scytodes championi IMEDEA SPIPA562‐10 SAB1DEH019 Theridiidae Theridion sp.9 FML BOLD PA2694 SCB1DFL004 Araneidae Micrathena duodecimspinosa IMEDEA SPIPA563‐10 SAU1NCH027 Theridiidae Theridion sp.9 FML BOLD PA2894 SCB1DFL006 Thomisidae Tmarus sp.2 FML IMEDEA SPIPA564‐10 SAB1DFH027 Theridiidae Theridion sp.22 FML BOLD PA3220 SCB1DFL015 Theridiidae Dipoena cordiformis IMEDEA SPIPA565‐10 SAB1DDB018 Theridiidae Theridion sp.9 FML BOLD PA902 SCB1DFL021 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPA566‐10 SAU1NDH026 Theridiidae Theridion sp.9 FML BOLD PA2580 SCB1DFR003 Salticidae Cobanus mandibularis IMEDEA SPIPA567‐10 SAU1NDA024 Theridiidae Theridion sp.7 FML BOLD PA1198 SCB1DFR012 Corinnidae Castianeira sp.3 FML IMEDEA SPIPA568‐10 SAU1NFL018 Theridiidae Theridion sp.7 FML BOLD PA2938 SCB1DFR018 Theridiidae Styposis flavescens IMEDEA SPIPA569‐10 SAU2NCA020 Theridiidae Theridion sp.8 FML BOLD PA2974 SCB1DFR019 Theridiidae Styposis clausis IMEDEA SPIPA570‐10 SAB1DGL025 Theridiidae Theridion sp.8 FML BOLD PA911 SCB1DFR023 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPA571‐10 SCB1DER005 Corinnidae Parachemmis fuscus BOLD PA2977 SCB1DFR029 Theridiidae Archaearanea taeniata IMEDEA SPIPA572‐10 SCB1DIH002 Corinnidae Castianeira sp.3 FML BOLD PA2511 SCB1DFR030 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA573‐10 SCB1DGL007 Corinnidae Myrmecotypus fuliginosus BOLD PA1199 SCB1DFR041 Corinnidae Castianeira sp.3 FML IMEDEA SPIPA574‐10 STC1N5B014 Corinnidae Creugas sp.2 FML BOLD PA817 SCB1DGA014 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPA575‐10 STU1N5H003 Corinnidae Creugas sp.3 FML BOLD PA785 SCB1DGA020 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA576‐10 STB1D9R021 Corinnidae Castianeira sp.4 FML BOLD PA2576 SCB1DGA021 Salticidae Acragas sp.1 FML IMEDEA SPIPA577‐10 STD1N5L011 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML BOLD PA2826 SCB1DGA022 Salticidae cf Sassacus sp.1 FML IMEDEA SPIPA578‐10 STD1N6R010 Corinnidae Stethorrhagus sp.5 FML BOLD PA2856 SCB1DGA024 Salticidae Sidusa recondita IMEDEA SPIPA579‐10 SAC2NDR005 Corinnidae Trachelas trifidus BOLD PA2753 SCB1DGA026 Anyphaenidae Katissa simplicipalpis IMEDEA SPIPA580‐10 SAU1NCB012 Corinnidae Trachelas sp.3 FML BOLD PA344 SCB1DGA500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA581‐10 SAD1NHH015 Corinnidae Trachelas sp.3 FML BOLD PA3092 SCB1DGD001 Sparassidae Anaptomecus longiventris IMEDEA SPIPA582‐10 STB1D9A023 Corinnidae Tupirinna trilineata BOLD PA2841 SCB1DGD006 Salticidae Cobanus sp.8 FML IMEDEA SPIPA583‐10 STC1D8R008 Corinnidae Stethorrhagus sp.8 FML BOLD PA152 SCB1DGD007 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA584‐10 SAC1DFH001 Corinnidae Stethorrhagus sp.7 FML BOLD PA2846 SCB1DGD008 Salticidae Cotinusa sp.2 FML IMEDEA SPIPA585‐10 STC1D9B006 Corinnidae Stethorrhagus sp.6 FML BOLD PA904 SCB1DGD012 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPA586‐10 STC1D5A009 Corinnidae Stethorrhagus sp.6 FML BOLD PA2679 SCB1DGH001 Araneidae Parawixia sp.1 FML IMEDEA SPIPA587‐10 SAC1NDL003 Corinnidae Trachelas sp.4 FML BOLD PA2587 SCB1DGH003 Salticidae Cobanus sp.8 FML IMEDEA SPIPA588‐10 SAC2NDR020 Corinnidae Trachelas sp.1 FML BOLD PA876 SCB1DGH009 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPA589‐10 SCU1NDR002 Uloboridae Miagrammopes aspinatus BOLD PA2531 SCB1DGH011 Theridiidae Lasaeola donaldi IMEDEA SPIPA590‐10 SCD1DFR003 Uloboridae Philoponella sp.21 FML BOLD PA2158 SCB1DGH013 Linyphiidae Grammonota cf secata IMEDEA SPIPA591‐10 SCD1DFH021 Uloboridae Philoponella sp.21 FML BOLD PA3216 SCB1DGH014 Theridiidae Diponena sp.4 FML IMEDEA SPIPA592‐10 SAB1DDH005 Uloboridae Miagrammopes sp.2 FML BOLD PA1153 SCB1DGL007 Corinnidae Myrmecotypus fulgirosus IMEDEA SPIPA593‐10 SAU1NCL003 Uloboridae Miagrammopes sp.2 FML BOLD PA915 SCB1DGL008 Uloboridae Miagrammopes aspinatus IMEDEA SPIPA594‐10 SAC1NDH017 Oonopidae Dysderina sp.5 FML BOLD PA2843 SCB1DGL009 Salticidae Corythalia bicincta IMEDEA SPIPA595‐10 SAC2NDH006 Oonopidae Dysderina sp.5 FML BOLD PA850 SCB1DGL013 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPA596‐10 SAC1NHL016 Oonopidae Dysderina sp.5 FML BOLD PA905 SCB1DGL014 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPA597‐10 SCC1NFR029 Oonopidae Dysderina sp.4 FML BOLD PA2603 SCB1DGL027 Salticidae Myrmarachne sp.2 FML IMEDEA SPIPA598‐10 STC1N7R001 Oonopidae Dysderina sp.4 FML BOLD PA2588 SCB1DGR025 Salticidae Cobanus sp.9 FML IMEDEA SPIPA599‐10 STC1N4A016 Oonopidae Scaphiella simla BOLD PA2595 SCB1DGR027 Salticidae Cotinusa sp.2 FML IMEDEA SPIPA600‐10 SAC1DEH011 Oonopidae Stenoonops sp.1 FML BOLD PA899 SCB1DGR030 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPA601‐10 SAC1DDA013 Oonopidae Stenoonops sp.1 FML BOLD PA793 SCB1DGR503 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA602‐10 STC1D6A005 Oonopidae cf Marsupopaea sp.1 FML BOLD PA3259 SCB1DHA001 Oxyopidae Hamataliwa flebilis IMEDEA SPIPA603‐10 SAB1DFB026 Oonopidae Orchestina sp.3 FML BOLD PA2561 SCB1DHA005 Araneidae Alpaida sp.1 FML IMEDEA SPIPA604‐10 SAB1DFH020 Oonopidae BOLD PA803 SCB1DHA007 Corinnidae Stethorrhagus sp.2 FML IMEDEA SPIPA605‐10 SCC1DGA011 Oonopidae Triaeris stenaspis BOLD PA2605 SCB1DHA008 Salticidae Zuniga magna IMEDEA SPIPA606‐10 SCC1DFH011 Oonopidae Triaeris stenaspis BOLD PA2787 SCB1DHD001 Ctenidae Cupiennius sp.10 FML IMEDEA SPIPA607‐10 SCC1DIL010 Oonopidae Dysderina dura BOLD PA3190 SCB1DHD003 Sparassidae Heteropodinae sp.1 FML IMEDEA SPIPA608‐10 SCU1NFR014 Oonopidae Orchestina sp.2 FML BOLD PA2832 SCB1DHD008 Salticidae Cobanus seclusus IMEDEA SPIPA609‐10 SCU1NEL016 Oonopidae Orchestina sp.4 FML BOLD PA2830 SCB1DHH004 Salticidae Cobanus obscurus IMEDEA SPIPA610‐10 SCB1DFR024 Oonopidae Oonops donaldi BOLD PA2810 SCB1DHH005 Salticidae Fluda princeps IMEDEA SPIPA611‐10 STB1D8A020 Oonopidae Oonops donaldi BOLD PA2400 SCB1DHH012 Linyphiidae Asemostera daedalus IMEDEA SPIPA612‐10 STB1D8A021 Oonopidae Oonops donaldi BOLD PA2789 SCB1DIA001 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML IMEDEA SPIPA613‐10 SAB1DDA005 Linyphiidae Asemostera janetae BOLD PA2737 SCB1DIA004 Anyphaenidae Sillus dubius IMEDEA SPIPA614‐10 STU1D5B010 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML BOLD PA2606 SCB1DIA008 Salticidae Zuniga magna IMEDEA SPIPA615‐10 STU2N8B014 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML BOLD PA2629 SCB1DIA012 Thomisidae Onocolus pentagonus IMEDEA SPIPA616‐10 SFB1D8H017 Linyphiidae Paraletes pogo BOLD PA2593 SCB1DID004 Salticidae Corythalia sp.11 FML IMEDEA SPIPA617‐10 SCB1DFR017 Linyphiidae Asemostera daedalus BOLD PA2627 SCB1DID005 Thomisidae Stephanopinae sp.2 FML IMEDEA SPIPA618‐10 SAB1DDA006 Linyphiidae Grammonota cf secata BOLD PA2848 SCB1DID009 Salticidae Chapoda sp.1 FML IMEDEA SPIPA619‐10 SAB2DEB025 Linyphiidae Grammonota cf secata BOLD PA3033 SCB1DID010 Theridiidae Dipoena sp.4 FML IMEDEA SPIPA620‐10 SAC1NHB007 Linyphiidae Mermessus sp.11 FML BOLD PA2638 SCB1DIH003 Thomisidae Stephanopinae sp.2 FML IMEDEA SPIPA621‐10 SAB1DDA018 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML BOLD PA907 SCB1DIH012 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPA622‐10 SAU1NDA016 Linyphiidae Dubiaranea sp.10 FML BOLD PA2582 SCB1DIH016 Salticidae Cobanus seclusus IMEDEA SPIPA623‐10 SAU1NFA004 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML BOLD PA2592 SCB1DIH017 Salticidae Corythalia sp.11 FML IMEDEA SPIPA624‐10 SAC1DDL011 Linyphiidae cf Fissicapus sp.1 FML BOLD PA2796 SCB1DIH018 Salticidae Myrmarachne parallela IMEDEA SPIPA625‐10 SAC1NDB010 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML BOLD PA2855 SCB1DIL005 Salticidae Myrmarachne sp.1 FML IMEDEA SPIPA626‐10 SAB1DEA007 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML BOLD PA2858 SCB1DIL016 Salticidae Zuniga magna IMEDEA SPIPA627‐10 SAD1DGA005 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML BOLD PA2893 SCB1DIL017 Thomisidae Tmarus sp.2 FML IMEDEA SPIPA628‐10 SAD1NGA013 Linyphiidae Grammonota teresta BOLD PA2759 SCB1DIR005 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.11 FML IMEDEA SPIPA629‐10 SAC1NFA008 Linyphiidae Walckenaeria crocea BOLD PA2853 SCB1DIR006 Salticidae Lyssomanes eatoni IMEDEA SPIPA630‐10 SCB1DFR028 Linyphiidae Mermessus sp.1 FML BOLD PA2509 SCB1DIR020 Linyphiidae Grammonota sp.1 FML IMEDEA SPIPA631‐10 STB1D9L017 Linyphiidae Erigone cf antegona BOLD PA3058 SCB1DIR023 Theridiidae Thymoites sp.2 FML IMEDEA SPIPA632‐10 SAD1NHA017 Linyphiidae Erigone sp.10 FML BOLD PA3095 SCB1DIR024 Hahniidae Cf Amaloxenops sp.1 FML IMEDEA SPIPA633‐10 SFD1NAH005 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML BOLD PA823 SCB1DIR025 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPA634‐10 SFB1DAD018 Linyphiidae Primerigonina australis BOLD PA988 SCB1DIR029 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA635‐10 SCC1NGR007 Linyphiidae Dubiaranea sp.6 FML BOLD PA847 SCB2DGL013 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPA636‐10 SFC2NAR017 Linyphiidae Mermessus rapidulus BOLD PA3142 SCB2DGL018 Theridiidae Faiditus atopus IMEDEA SPIPA637‐10 SCC1NGA015 Linyphiidae Meioneta cincta BOLD PA870 SCB2DGL021 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPA638‐10 SCB1DHH013 Linyphiidae Erigone antegona BOLD PA3041 SCB2DGL022 Theridiidae Dipoena petrunkevitchi IMEDEA SPIPA639‐10 SFC1DBD012 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML BOLD PA118 SCB2DGL500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA640‐10 SFC1N7H002 Linyphiidae Walckenaeria aenea BOLD PA2601 SCB2DGR002 Salticidae Lyssomanes eatoni IMEDEA SPIPA641‐10 SFB1D8R028 Linyphiidae Primerigonina australis BOLD PA2647 SCB2DGR013 Scytodidae Scytodes championi IMEDEA SPIPA642‐10 SFC1DAH014 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML BOLD PA2670 SCB2DGR015 Tetragnathidae Opas sp.1 FML IMEDEA SPIPA643‐10 SFC1DCL003 Linyphiidae Phrurolithus sp.1 FML BOLD PA2506 SCB2DGR023 Linyphiidae Meioneta sp.2 FML IMEDEA SPIPA644‐10 SFC2NAR028 Linyphiidae BOLD PA960 SCB2DGR028 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA645‐10 SCB2DGR023 Linyphiidae Meioneta sp.2 FML BOLD PA471 SCB2DGR500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA646‐10 SCU1NDD016 Linyphiidae Walckenaeria sp.11 FML BOLD PA161 SCC1DEA003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA647‐10 SCB1DID013 Linyphiidae Asemostera daedalus BOLD PA833 SCC1DEA009 Oonopidae Dysderina dura IMEDEA SPIPA648‐10 SCB1DIR020 Linyphiidae Grammonota sp.1 FML BOLD PA522 SCC1DEA010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA649‐10 SFD2NBR063 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML BOLD PA1035 SCC1DEA016 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA650‐10 SCB1DFR030 Linyphiidae Meioneta cincta BOLD PA162 SCC1DEA500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA651‐10 SFU1N8R021 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML BOLD PA2822 SCC1DEH004 Salticidae Corythalia sulphurea IMEDEA SPIPA652‐10 SFU2N7A019 Linyphiidae Walckenaeria aenea BOLD PA2831 SCC1DEH016 Salticidae Cobanus obscurus IMEDEA SPIPA653‐10 STC1D8A010 Linyphiidae Walckenaeria sp.10 FML BOLD PA1053 SCC1DEH019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA654‐10 SAB1DHA021 Linyphiidae Grammonota teresta BOLD PA443 SCC1DEH500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA655‐10 SFU1NAA021 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML BOLD PA444 SCC1DEH501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA656‐10 SAC1DFH014 Linyphiidae Erigoninae sp.8 FML BOLD PA2823 SCC1DER008 Salticidae Corythalia sulphurea IMEDEA SPIPA657‐10 STU1N7R012 Linyphiidae Dubiaranea sp.4 FML BOLD PA3007 SCC1DER013 Theridiidae Thymoites sp.4 FML IMEDEA SPIPA658‐10 SAC1NFH009 Linyphiidae Walckenaeria sp.1 FML BOLD PA2545 SCC1DER014 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML IMEDEA SPIPA659‐10 SFU1NBR049 Theridiidae Ameridion musawas BOLD PA493 SCC1DER019 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA660‐10 SFU2N8H038 Theridiidae Ameridion lathropi BOLD PA2839 SCC1DER021 Salticidae Cobanus sp.7 FML IMEDEA SPIPA661‐10 SFC1N8L006 Theridiidae Ameridion musawas BOLD PA805 SCC1DFA004 Corinnidae Stethorrhagus sp.2 FML IMEDEA SPIPA662‐10 SFB1D8R026 Theridiidae Ameridion lathropi BOLD PA2597 SCC1DFA006 Salticidae Euophrys sp.1 FML IMEDEA SPIPA663‐10 SFU2N8H024 Theridiidae Ameridion signum BOLD PA841 SCC1DFA014 Oonopidae Dysderina dura IMEDEA SPIPA664‐10 SCU1NEA010 Theridiidae Ameridion progum BOLD PA551 SCC1DFA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA665‐10 SCU1NDR017 Theridiidae Dipoena sp.5 FML BOLD PA2639 SCC1DFH008 Salticidae Euophrys sp.1 FML IMEDEA SPIPA666‐10 SCD1NDR009 Theridiidae Dipoena petrunkevitchi BOLD PA1216 SCC1DFH012 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA667‐10 SCC1NHL023 Theridiidae Thymoites cf maderae BOLD PA1213 SCC1DFH013 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA668‐10 SCU1NGA013 Theridiidae Thymoites sp.1 FML BOLD PA458 SCC1DFH014 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA669‐10 SCU1NGH016 Theridiidae Thymoites sp.1 FML BOLD PA1214 SCC1DFH023 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA670‐10 SCB1DGH011 Theridiidae Lasaeola donaldi BOLD PA716 SCC1DFH024 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA671‐10 SCD2NED006 Araneidae Mangora melanocephala BOLD PA718 SCC1DFH026 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA672‐10 SCB1DGL005 Araneidae Mangora melanocephala BOLD PA719 SCC1DFH027 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA673‐10 SFD1NAH008 Araneidae Mangora volcan BOLD PA721 SCC1DFH029 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA674‐10 SFD1NAL007 Araneidae Parawixia rimosa BOLD PA722 SCC1DFH030 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA675‐10 SFU2NBH007 Araneidae Parawixia rimosa BOLD PA723 SCC1DFH031 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA676‐10 SFD2NBL012 Araneidae Pronous peje BOLD PA459 SCC1DFH500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA677‐10 SFU1NBH008 Clubionidae Elaver sp.1 FML BOLD PA102 SCC1DGA004 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA678‐10 SFB1D9L029 Clubionidae Elaver sp.1 FML BOLD PA837 SCC1DGA010 Oonopidae Dysderina dura IMEDEA SPIPA679‐10 SFD1NBH015 Clubionidae Elaver lutescens BOLD PA973 SCC1DGA012 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA680‐10 SFC1NAR014 Linyphiidae BOLD PA531 SCC1DGA017 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA681‐10 SCB1DHH003 Tetragnathidae Leucauge sp.10 FML BOLD PA3024 SCC1DGA019 Theridiidae Styposis sp.2 FML IMEDEA SPIPA682‐10 SCC1DID005 Tetragnathidae Leucauge sp.10 FML BOLD PA848 SCC1DGA023 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPA683‐10 SFD2NBL034 Tetragnathidae Chrysometa sp.2 FML BOLD PA974 SCC1DGA024 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA684‐10 SCC1DER014 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML BOLD PA533 SCC1DGA501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA685‐10 SCC1NFR017 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML BOLD PA2897 SCC1DGD006 Zodariidae Tenedos cufodontii IMEDEA SPIPA686‐10 SFB1DCR018 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML BOLD PA475 SCC1DGD015 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA687‐10 SFU2N7D015 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML BOLD PA476 SCC1DGD500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA688‐10 SCU1NGH023 Tetragnathidae Cyrtognatha pachygnathoides BOLD PA3066 SCC1DGH004 Pholcidae Anopsicus cf panama IMEDEA SPIPA689‐10 SCU1NER007 Tetragnathidae Cyrtognatha pachygnathoides BOLD PA460 SCC1DGH006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA690‐10 SFU1NCH017 Tetragnathidae Chrysometa alajuela BOLD PA1062 SCC1DGH014 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA691‐10 SFB2D9R011 Tetragnathidae Chrysometa alajuela BOLD PA1063 SCC1DGH015 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA692‐10 SFU1NAD045 Tetragnathidae Azilia guatemalensis BOLD PA1065 SCC1DGH017 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA693‐10 SFU1NAD001 Tetragnathidae Azilia guatemalensis BOLD PA1067 SCC1DGH019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA694‐10 SFU1N7H018 Tetragnathidae Tetragnatha sp.1 FML BOLD PA1069 SCC1DGH021 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA695‐10 SFU1NBH003 Tetragnathidae Tetragnatha sp.1 FML BOLD PA1070 SCC1DGH022 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA696‐10 SCU2NDA015 Tetragnathidae Cyrtognatha sp.1 FML BOLD PA461 SCC1DGH501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA697‐10 SCU1NGH024 Tetragnathidae Tetragnathidae sp.1 FML BOLD PA462 SCC1DGH502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA698‐10 SFU1NAD015 Tetragnathidae BOLD PA463 SCC1DGH503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA699‐10 STD1N7B001 Anyphaenidae Wulfila maculata BOLD PA464 SCC1DGH504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA700‐10 STU1N4R016 Anyphaenidae Wulfila maculata BOLD PA465 SCC1DGH505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA701‐10 STB1D8H008 Anyphaenidae Wulfila pulverulentus BOLD PA1147 SCC1DHA001 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA SPIPA702‐10 STU1N4R027 Anyphaenidae Wulfila pulverulentus BOLD PA171 SCC1DHA003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA703‐10 STB1D8B012 Anyphaenidae BOLD PA1083 SCC1DHA009 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA704‐10 STC1N8H008 Anyphaenidae BOLD PA2987 SCC1DHA014 Theridiidae Tymoites bogus IMEDEA SPIPA705‐10 STU1N8L004 Anyphaenidae BOLD PA1086 SCC1DHA019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA706‐10 STU1N6A008 Anyphaenidae BOLD PA1087 SCC1DHA020 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA707‐10 SAC1NHB001 Anyphaenidae BOLD PA172 SCC1DHA500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA708‐10 STB1D8R016 Anyphaenidae BOLD PA2847 SCC1DHD007 Salticidae Cotinusa sp.2 FML IMEDEA SPIPA709‐10 SFD1NBR010 Araneidae Pronous peje BOLD PA208 SCC1DHD500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA710‐10 SCB1DHA005 Araneidae Alpaida tuonabo BOLD PA761 SCC1DHL007 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA711‐10 SFB1D9D004 Araneidae Alpaida tuonabo BOLD PA104 SCC1DHL500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA712‐10 STU2N8L003 Anyphaenidae Macrophyes sp.10 FML BOLD PA607 SCC1DHL501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA713‐10 SAD2NCB018 Clubionidae Elaver sp.5 FML BOLD PA608 SCC1DHL502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA714‐10 SAC1NDR013 Clubionidae Elaver lutescens BOLD PA609 SCC1DHL503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA715‐10 SAU1NDL016 Clubionidae Elaver sp.10 FML BOLD PA610 SCC1DHL504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA716‐10 SAU1NDH015 Clubionidae Elaver sp.11 FML BOLD PA611 SCC1DHL505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA717‐10 SAU1NGH009 Clubionidae Elaver sp.3 FML BOLD PA762 SCC1DHL512 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA718‐10 SAB1DFH007 Clubionidae Elaver sp.5 FML BOLD PA1196 SCC1DIA001 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA SPIPA719‐10 SAC1NFH001 Clubionidae Elaver sp.5 FML BOLD PA786 SCC1DIA004 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA720‐10 STB1D6L014 Clubionidae Elaver sp.4 FML BOLD PA068 SCC1DIA005 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA721‐10 STB1D8R021 Clubionidae Elaver sp.4 FML BOLD PA999 SCC1DIA007 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA722‐10 SCD1NFD001 Ctenidae Ctenus sp.3 FML BOLD PA1158 SCC1DIA011 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA SPIPA723‐10 SCD1DEL001 Ctenidae Ctenus sp.3 FML BOLD PA1000 SCC1DIA012 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA724‐10 SFB1D8H025 Salticidae BOLD PA1001 SCC1DIA013 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA725‐10 SCB1DGA021 Salticidae Acragas sp.1 FML BOLD PA1002 SCC1DIA014 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA726‐10 SCB1NGR026 Salticidae Sassacus sp.1 FML BOLD PA1003 SCC1DIA015 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA727‐10 SCU1NHR006 Salticidae Sassacus sp.1 FML BOLD PA589 SCC1DIA501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA728‐10 SFC1NCD004 Salticidae Corythalia sp.1 FML BOLD PA590 SCC1DIA502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA729‐10 SCB1DFR003 Salticidae Cobanus seclusus BOLD PA591 SCC1DIA503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA730‐10 SCB2DGR005 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA154 SCC1DID003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA731‐10 SCB1DIH016 Salticidae Cobanus seclusus BOLD PA2543 SCC1DID005 Tetragnathidae Leucauge sp.1 FML IMEDEA SPIPA732‐10 SCC1NHR025 Salticidae Cobanus sp.9 FML BOLD PA724 SCC1DIH007 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA733‐10 SCC1NGD006 Salticidae Cobanus sp.5 FML BOLD PA483 SCC1DIH008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA734‐10 SCD1DFA003 Salticidae Cobanus sp.5 FML BOLD PA3110 SCC1DIH016 Ochyrocerathidae Theotima sp.2 FML IMEDEA SPIPA735‐10 SCD1NED005 Salticidae Cobanus sp.5 FML BOLD PA726 SCC1DIH020 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA736‐10 SCB1DGH003 Salticidae Cobanus sp.8 FML BOLD PA727 SCC1DIH021 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA737‐10 SCB1DGR025 Salticidae Cobanus sp.9 FML BOLD PA728 SCC1DIH022 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA738‐10 SCB1DED004 Salticidae Corythalia bicincta BOLD PA729 SCC1DIH023 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA739‐10 SCB1DER004 Salticidae Corythalia bicincta BOLD PA730 SCC1DIH024 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA740‐10 SCC1DIR019 Salticidae Corythalia sp.10 FML BOLD PA731 SCC1DIH025 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA741‐10 SCB1DIH017 Salticidae Sidusa recondita BOLD PA484 SCC1DIH500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA742‐10 SCB1DID004 Salticidae Sidusa recondita BOLD PA485 SCC1DIH501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA743‐10 SCC1NFR019 Salticidae Euophrys sp.1 FML BOLD PA486 SCC1DIH502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA744‐10 SCB1DGR027 Salticidae Cotinusa sp.2 FML BOLD PA487 SCC1DIH503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA745‐10 SCB1DEL020 Salticidae Cotinusa sp.2 FML BOLD PA084 SCC1DIL004 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA746‐10 SCC1DFA006 Salticidae Euophrys sp.1 FML BOLD PA989 SCC1DIL009 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA747‐10 SCU2NDR012 Salticidae Chapoda sp.1 FML BOLD PA568 SCC1DIL011 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA748‐10 SCU1NGD003 Salticidae Chapoda sp.1 FML BOLD PA3065 SCC1DIL018 Pholcidae Anopsicus cf panama IMEDEA SPIPA749‐10 SCB1DER001 Salticidae Lyssomanes eatoni BOLD PA3128 SCC1DIL020 Theridiidae Thymoites cf maderae IMEDEA SPIPA750‐10 SCB2DGR002 Salticidae Lyssomanes eatoni BOLD PA990 SCC1DIL024 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA751‐10 SCU1NGA002 Salticidae Myrmarachne parallela BOLD PA991 SCC1DIL025 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA752‐10 SCB1DGL027 Salticidae Myrmarachne sp.2 FML BOLD PA992 SCC1DIL026 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA753‐10 SCU1NFR008 Salticidae Sidusa recondita BOLD PA993 SCC1DIL027 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA754‐10 SCB1DHA008 Salticidae Zuniga magna BOLD PA994 SCC1DIL028 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA755‐10 SCB1DIA008 Salticidae Zuniga magna BOLD PA996 SCC1DIL030 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA756‐10 SFC1N8R005 Hahniidae Neoantistea sp.1 FML BOLD PA997 SCC1DIL031 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA757‐10 SFD1D8H002 Hahniidae Neoantistea sp.1 FML BOLD PA085 SCC1DIL500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA758‐10 SAC1DGP006 Hahniidae Neoantistea sp.2 FML BOLD PA087 SCC1DIL502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA759‐10 SAC2NDH003 Hahniidae Neoantistea sp.2 FML BOLD PA569 SCC1DIL503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA760‐10 SAB1DEA011 Hahniidae Neoantistea sp.3 FML BOLD PA571 SCC1DIL505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA761‐10 STC1D8A006 Hahniidae Neoantistea sp.4 FML BOLD PA572 SCC1DIL506 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA762‐10 STC2D8H012 Hahniidae Neoantistea sp.4 FML BOLD PA776 SCC1DIL515 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA763‐10 SCU1NEL002 Mimetidae Mimetus sp.2 FML BOLD PA733 SCC1DIR006 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA764‐10 SCU1NHD005 Mimetidae Mimetus sp.2 FML BOLD PA477 SCC1DIR009 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA765‐10 SFU2NBH002 Mimetidae Mimetus sp.10 FML BOLD PA2591 SCC1DIR019 Salticidae Corythalia sp.10 FML IMEDEA SPIPA766‐10 SCB1DFD004 Mimetidae Mimetus rusticus BOLD PA734 SCC1DIR021 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA767‐10 SFU1N8L004 Mimetidae Mimetus sp.1 FML BOLD PA735 SCC1DIR022 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA768‐10 SFU1NBD004 Mimetidae Mimetus banksi BOLD PA737 SCC1DIR024 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA769‐10 SFU1D9D006 Mimetidae Mimetus banksi BOLD PA738 SCC1DIR025 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA770‐10 SCU1NFD001 Hersiliidae Neotama forcipata BOLD PA478 SCC1DIR500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA771‐10 SCU1NFD017 Hersiliidae Neotama forcipata BOLD PA479 SCC1DIR501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA772‐10 SAB1DHA013 Thomisidae Misumenops sp.1 FML BOLD PA480 SCC1DIR502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA773‐10 SAU1NDR012 Thomisidae Misumenops sp.1 FML BOLD PA481 SCC1DIR503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA774‐10 STU2N8B011 Thomisidae Misumenops sp.2 FML BOLD PA482 SCC1DIR504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA775‐10 SFB1D9R006 Thomisidae Tmarus sp.1 FML BOLD PA518 SCC1NDL007 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA776‐10 SCB1DID005 Thomisidae Stephanopinae sp.2 FML BOLD PA519 SCC1NDL500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA777‐10 SFB1D9D014 Thomisidae Stephanopinae sp.1 FML BOLD PA520 SCC1NDL501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA778‐10 SCB1DIA012 Thomisidae Onocolus pentagonus BOLD PA1149 SCC1NEL005 Corinnidae Stethorrhagus sp.3 FML IMEDEA SPIPA779‐10 STB1D9R009 Thomisidae Onocolus pentagonus BOLD PA1025 SCC1NEL010 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA780‐10 SCU1NHL006 Thomisidae Tmarus sp.2 FML BOLD PA1026 SCC1NEL016 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA781‐10 SFB1DAR018 Thomisidae Tmarus sp.1 FML BOLD PA1027 SCC1NEL017 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA782‐10 STC1D5A001 Zodariidae Tenedos sp.1 FML BOLD PA958 SCC1NER007 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA783‐10 STC1D8L016 Zodariidae Tenedos sp.1 FML BOLD PA496 SCC1NER009 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA784‐10 SCC1NGL005 Zodariidae Tenedos cufodontii BOLD PA2983 SCC1NER010 Theridiidae Theridion sp.3 FML IMEDEA SPIPA785‐10 SCC2NGR004 Zodariidae Tenedos cufodontii BOLD PA3055 SCC1NER012 Theridiidae Dipoena sp.5 FML IMEDEA SPIPA786‐10 SFC1DBA016 Prodidomidae Lygromma chamberlini BOLD PA497 SCC1NER500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA787‐10 SCB1DIH003 Thomisidae Stephanopinae sp.2 FML BOLD PA498 SCC1NER501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA788‐10 SCC1DFH008 Salticidae Euophrys sp.1 FML BOLD PA2834 SCC1NFD003 Salticidae Cobanus sp.5 FML IMEDEA SPIPA789‐10 SCU1DHH003 Thomisidae Strophius sp.1 FML BOLD PA060 SCC1NFD004 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA790‐10 SCD1NEA007 Salticidae Corythalia sp.10 FML BOLD PA813 SCC1NFD006 Corinnidae Stethorrhagus sp.3 FML IMEDEA SPIPA791‐10 SFC2NAR009 Tetragnathidae Chrysometa sp.2 FML BOLD PA466 SCC1NFD013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA792‐10 SFU1NAR016 Senoculidae Myrmarachne parallela BOLD PA964 SCC1NFD014 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA793‐10 SFU2NBD040 Senoculidae Senoculus bucolicus BOLD PA965 SCC1NFD019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA794‐10 SCD1NEL003 Scytodidae Scytodes intricata BOLD PA467 SCC1NFD500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA795‐10 SCD1NFL008 Scytodidae Scytodes intricata BOLD PA468 SCC1NFD501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA796‐10 SCB2DGR013 Scytodidae Scytodes championi BOLD PA469 SCC1NFD502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA797‐10 SCB1DFD015 Scytodidae Scytodes championi BOLD PA145 SCC1NFH001 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA798‐10 STU2N8R019 Tengellidae Tengella cf radiata BOLD PA1151 SCC1NFH003 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA SPIPA799‐10 STU2N8R020 Tengellidae Tengella cf radiata BOLD PA3002 SCC1NFH011 Theridiidae Styposis sp.2 FML IMEDEA SPIPA800‐10 SFC1DCH003 Pholcidae Anopsicus chiriqui BOLD PA1112 SCC1NFH013 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA801‐10 SFU1NBD014 Pholcidae Modisimus sp.1 FML BOLD PA1113 SCC1NFH018 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA802‐10 SFU1NCR015 Pholcidae Modisimus sp.1 FML BOLD PA1114 SCC1NFH019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA803‐10 SFC1NCR002 Pholcidae Anopsicus sp.1 FML BOLD PA1115 SCC1NFH020 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA804‐10 SFU2NBH009 Pholcidae Modisimus guatuso BOLD PA1120 SCC1NFH025 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA805‐10 SFU1N8R003 Pholcidae Modisimus guatuso BOLD PA419 SCC1NFH501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA806‐10 SAB1DFA017 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.14 FML BOLD PA420 SCC1NFH502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA807‐10 SCC1NHR012 Theridiidae Dipoena lana BOLD PA421 SCC1NFH503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA808‐10 SCU2NHH016 Theridiidae Dipoena petrunkevitchi BOLD PA423 SCC1NFH505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA809‐10 SCC1NGA017 Theridiidae Dipoena lana BOLD PA1200 SCC1NFL001 Corinnidae Parachemmis fuscus IMEDEA SPIPA810‐10 SCC1DIL020 Theridiidae Thymoites cf maderae BOLD PA1197 SCC1NFL002 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA SPIPA811‐10 SFC1N7D009 Theridiidae Stemmops questus BOLD PA3116 SCC1NFL016 Ochyrocerathidae Ochyroceratinae sp.3 FML IMEDEA SPIPA812‐10 SCC1NFR011 Theridiidae Stemmops sp.1 FML BOLD PA544 SCC1NFL020 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA813‐10 SFU2NBH024 Theridiidae Styposis sp.1 FML BOLD PA116 SCC1NFL023 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA814‐10 SFB1D8R025 Theridiidae Styposis flavescens BOLD PA2896 SCC1NFR007 Zodariidae Tenedos cufodontii IMEDEA SPIPA815‐10 SCC2NFH009 Theridiidae Styposis sp.2 FML BOLD PA3130 SCC1NFR011 Theridiidae Stennops sp.1 FML IMEDEA SPIPA816‐10 SFB1DBR027 Theridiidae Styposis flavescens BOLD PA413 SCC1NFR016 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA817‐10 SCU1NHL018 Theridiidae Styposis clausis BOLD PA2546 SCC1NFR017 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML IMEDEA SPIPA818‐10 SCU1NHR021 Theridiidae Styposis clausis BOLD PA2594 SCC1NFR019 Salticidae Corythalia sp.9 FML IMEDEA SPIPA819‐10 SCU2NDR016 Theridiidae Styposis chickeringi BOLD PA3214 SCC1NFR025 Theridiidae Coleosoma sp.1 FML IMEDEA SPIPA820‐10 SCU1NHD014 Theridiidae Styposis chickeringi BOLD PA846 SCC1NFR030 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPA821‐10 SFU2N8A014 Theridiidae Styposis sp.1 FML BOLD PA190 SCC1NFR500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA822‐10 SFD1DAA006 Theridiidae Faiditus americanus BOLD PA415 SCC1NFR505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA823‐10 SFU1NBR014 Theridiidae Faiditus bryantae BOLD PA770 SCC1NGA013 Oonopidae Dysderina dura IMEDEA SPIPA824‐10 SCB2DGL018 Theridiidae Faiditus atopus BOLD PA3111 SCC1NGA014 Ochyrocerathidae Theotima sp.2 FML IMEDEA SPIPA825‐10 SCU1NDA016 Theridiidae Faiditus atopus BOLD PA2498 SCC1NGA015 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA826‐10 SFU2NBA025 Theridiidae Faiditus caudatus BOLD PA3127 SCC1NGA017 Theridiidae Dipoena lana IMEDEA SPIPA827‐10 SFU1NCL012 Theridiidae Faiditus bryantae BOLD PA506 SCC1NGA018 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA828‐10 SCC1NHR017 Prodidomidae Lygromma sp.10 FML BOLD PA844 SCC1NGA020 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPA829‐10 SAC1DHL003 Prodidomidae Lygromma sp.3 FML BOLD PA507 SCC1NGA501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA830‐10 SAC1DGL003 Prodidomidae Lygromma dybasi BOLD PA2584 SCC1NGD006 Salticidae Cobanus sp.5 FML IMEDEA SPIPA831‐10 SAC1NGL019 Prodidomidae Lygromma dybasi BOLD PA432 SCC1NGH002 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA832‐10 STD1N7A003 Pisauridae Architis tenuis BOLD PA187 SCC1NGH009 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA833‐10 SCC1NHA023 Pholcidae Anopsicus cf panama BOLD PA188 SCC1NGH500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA834‐10 SCC1NHA022 Pholcidae Anopsicus cf panama BOLD PA434 SCC1NGH502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA835‐10 SCU1NHA017 Pholcidae Metagonia sp.1 FML BOLD PA435 SCC1NGH503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA836‐10 STC1N5H005 Segestriidae Ariadna isthmica BOLD PA2635 SCC1NGL005 Zodariidae Tenedos cufodontii IMEDEA SPIPA837‐10 STB1D9A024 Palpimanidae Otiothops macleayi BOLD PA545 SCC1NGL013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA838‐10 SAC1NDH018 Caponiidae Nops cf largus BOLD PA2989 SCC1NGL014 Theridiidae Stemmops sp.1 FML IMEDEA SPIPA839‐10 SFC1N7L007 Pholcidae Anopsicus chiriqui BOLD PA782 SCC1NGL015 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA841‐10 SCU1DHR001 Pholcidae Modisimus pulchellus BOLD PA547 SCC1NGL501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA842‐10 STD1N5R008 Agelenidae Melpomene sp.1 FML BOLD PA2496 SCC1NGR007 Linyphiidae Dubiaranea sp.6 FML IMEDEA SPIPA843‐10 SAC1DFH003 Agelenidae Melpomene sp.2 FML BOLD PA447 SCC1NGR016 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA844‐10 SAC1NHH011 Agelenidae Melpomene sp.2 FML BOLD PA1215 SCC1NGR020 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA845‐10 SCU1NHD001 Araneidae Parawixia nesophila BOLD PA1045 SCC1NGR025 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA846‐10 SCD1NDL008 Araneidae Cyclosa caroli BOLD PA1046 SCC1NGR026 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA847‐10 SFU2N8A010 Araneidae Eustala sp.1 FML BOLD PA1047 SCC1NGR027 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA848‐10 SCU1NEL004 Araneidae Parawixia nesophila BOLD PA1048 SCC1NGR028 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA849‐10 SFU1NCH011 Araneidae Micrathena lucasi BOLD PA1049 SCC1NGR029 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA850‐10 SFD1D9L018 Araneidae Micrathena molesta BOLD PA448 SCC1NGR502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA851‐10 SCU1NFD004 Araneidae Micrathena duodecimspinosa BOLD PA449 SCC1NGR503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA852‐10 SFU1NAH015 Araneidae Anyphaeninae sp.3 FML BOLD PA450 SCC1NGR504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA853‐10 SCU2NHR008 Araneidae Micrathena duodecimspinosa BOLD PA451 SCC1NGR505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA854‐10 SFU2NAH010 Araneidae Araneus sp.1 FML BOLD PA2988 SCC1NHA007 Theridiidae Tymoites bogus IMEDEA SPIPA855‐10 SFU2N7L011 Araneidae Bertrana sp.1 FML BOLD PA554 SCC1NHA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA856‐10 SFD1NAL008 Araneidae Bertrana sp.1 FML BOLD PA1160 SCC1NHD003 Corinnidae Stethorrhagus sp.3 FML IMEDEA SPIPA857‐10 SFU2NAH002 Araneidae Micrathena molesta BOLD PA091 SCC1NHD006 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA858‐10 SFD1D8D002 Araneidae Mangora volcan BOLD PA1161 SCC1NHD015 Corinnidae Stethorrhagus sp.3 FML IMEDEA SPIPA859‐10 SFU1NBA032 Araneidae Araneus sp.1 FML BOLD PA405 SCC1NHH011 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA860‐10 SFU2NCH009 Araneidae Hypognatha elaborata BOLD PA3112 SCC1NHH013 Ochyrocerathidae Theotima sp.2 FML IMEDEA SPIPA861‐10 SCC1NGR008 Hahniidae cf Amaloxenops sp.1 FML BOLD PA1005 SCC1NHH019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA862‐10 SCC1NGR030 Hahniidae cf Amaloxenops sp.1 FML BOLD PA1006 SCC1NHH020 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA863‐10 SFU1N8R001 Deinopidae Deinopis longipes BOLD PA1007 SCC1NHH021 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA864‐10 SFU1NCD019 Deinopidae Deinopis longipes BOLD PA1008 SCC1NHH022 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA865‐10 STC1N5L017 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML BOLD PA1009 SCC1NHH023 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA866‐10 STC1D8L017 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML BOLD PA3030 SCC1NHH024 Theridiidae Thymoites cf maderae IMEDEA SPIPA867‐10 STU1N6L013 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML BOLD PA062 SCC1NHH500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA868‐10 STB1D6L022 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML BOLD PA064 SCC1NHH502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA869‐10 STD1N7H014 Selenopidae Selenops sp.1 FML BOLD PA406 SCC1NHH510 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA870‐10 SAU1NDR030 Amaurobiidae Retiro sp.2 FML BOLD PA407 SCC1NHH511 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA871‐10 SAC1NDR005 Amaurobiidae Retiro sp.1 FML BOLD PA838 SCC1NHL010 Oonopidae Dysderina dura IMEDEA SPIPA872‐10 SCB1DHD003 Sparassidae Heteropodinae sp.1 FML BOLD PA525 SCC1NHL012 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA873‐10 SCU2NEH005 Sparassidae Uaiuara barroana BOLD PA3233 SCC1NHL015 Theridiidae Thymoites sp.2 FML IMEDEA SPIPA874‐10 SCB1DFL001 Sparassidae Uaiuara barroana BOLD PA839 SCC1NHL021 Oonopidae Dysderina dura IMEDEA SPIPA875‐10 STU1N7B001 Sparassidae Anaptomecus longiventris BOLD PA840 SCC1NHL022 Oonopidae Dysderina dura IMEDEA SPIPA876‐10 SFD1NBR039 Theridiidae Faiditus caudatus BOLD PA2528 SCC1NHL023 Theridiidae Thymoites sp.3 FML IMEDEA SPIPA877‐10 SFB1D9H031 Theridiidae Theridion sp.2 FML BOLD PA143 SCC1NHL500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA878‐10 SFU2NAA018 Theridiidae Theridion sp.4 FML BOLD PA526 SCC1NHL502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA879‐10 SCD1NFL017 Theridiidae Theridion micheneri BOLD PA527 SCC1NHL503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA880‐10 SFU1NBR050 Theridiidae Theridion trepidum BOLD PA528 SCC1NHL504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA881‐10 SFU2N8D004 Theridiidae Theridion sp.1 FML BOLD PA529 SCC1NHL505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA882‐10 SCU1NGD017 Theridiidae Theridion centrum BOLD PA530 SCC1NHL506 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA883‐10 SCD1DFA013 Theridiidae Theridion micheneri BOLD PA149 SCC1NHR005 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA884‐10 SCU2NDD011 Theridiidae Ameridion progum BOLD PA2898 SCC1NHR006 Zodariidae Tenedos cufodontii IMEDEA SPIPA885‐10 SFU2N7H029 Theridiidae Theridion chiriqui BOLD PA2844 SCC1NHR008 Salticidae Corythalia sp.10 FML IMEDEA SPIPA886‐10 SFU2N7R012 Theridiidae cf Chrysso sp.1 FML BOLD PA3125 SCC1NHR012 Theridiidae Dipoena lana IMEDEA SPIPA887‐10 SCC1DIL033 Theridiidae Thymoites cf maderae BOLD PA966 SCC1NHR014 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA888‐10 SCD1NGD017 Theridiidae Stemmops sp.1 FML BOLD PA2664 SCC1NHR016 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML IMEDEA SPIPA889‐10 SCB1DGL026 Theridiidae Episinus panamensis BOLD PA3146 SCC1NHR017 Prodidomidae Lygromma sp.3 FML IMEDEA SPIPA890‐10 SCU2NHR013 Theridiidae Lasaeola donaldi BOLD PA3237 SCC1NHR022 Theridiidae Thimoites bogus IMEDEA SPIPA891‐10 SCC1NFD012 Theridiidae Chrosiothes sp.10 FML BOLD PA2583 SCC1NHR025 Salticidae Cobanus sp.10 FML IMEDEA SPIPA892‐10 SFB1D8H005 Theridiidae Episinus sp.10 FML BOLD PA967 SCC1NHR028 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA893‐10 SFU1N8L025 Theridiidae Exalbidion dotanum BOLD PA968 SCC1NHR029 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA894‐10 SCU2NEA012 Theridiidae Episinus panamensis BOLD PA429 SCC1NHR504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA895‐10 SFU1N7A027 Theridiidae Chrysso sp.2 FML BOLD PA431 SCC1NHR506 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA896‐10 SCC1NFR025 Theridiidae Coleosoma sp.1 FML BOLD PA1010 SCC2NFH001 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA897‐10 SCU1NEH010 Theridiidae Dipoena pacifica BOLD PA3133 SCC2NFH009 Theridiidae Styposis sp.2 FML IMEDEA SPIPA898‐10 SCB1DGH014 Theridiidae Dipoena petrunkevitchi BOLD PA1011 SCC2NFH016 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA899‐10 SFU1NAD027 Theridiidae Miagrammopes sp.1 FML BOLD PA1013 SCC2NFH018 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA900‐10 SFU1N7L022 Theridiidae Dipoena sp.10 FML BOLD PA1022 SCC2NFH027 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA901‐10 SFB1D8R029 Theridiidae Dipoena cf obscura BOLD PA1023 SCC2NFH028 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA902‐10 SCB1DFL015 Theridiidae Dipoena cordiformis BOLD PA1024 SCC2NFH029 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA903‐10 SFU2NCH018 Theridiidae Dipoena sp.9 FML BOLD PA2430 SCC2NFL502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA904‐10 SFD1NBR006 Theridiidae Dipoena sp.12 FML BOLD PA2431 SCC2NFL503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA905‐10 SFU2NBA032 Theridiidae Dipoena sp.9 FML BOLD PA2432 SCC2NFL504 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA906‐10 SFU1N8A041 Theridiidae Dipoena sp.9 FML BOLD PA797 SCC2NFR010 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA907‐10 SCU1NEA007 Theridiidae Dipoena sp.6 FML BOLD PA452 SCC2NFR012 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA908‐10 SFU1NBD027 Theridiidae Dipoena mertoni BOLD PA2837 SCC2NFR021 Salticidae Cobanus sp.7 FML IMEDEA SPIPA909‐10 SFD1NCR019 Theridiidae Dipoena sp.2 FML BOLD PA2418 SCC2NFR028 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA910‐10 SFU2N7D002 Theridiidae Theridion cf albulum BOLD PA158 SCC2NFR502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA911‐10 SFU1NBR013 Theridiidae cf Rhomphaea sp.1 FML BOLD PA159 SCC2NFR503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA912‐10 SFU1N7A034 Theridiidae Dipoena sp.1 FML BOLD PA453 SCC2NFR506 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA913‐10 SFB1D8L022 Theridiidae Exalbidion sexmaculatum BOLD PA455 SCC2NFR508 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA914‐10 SFU1N7L001 Theridiidae Theridion cf albulum BOLD PA456 SCC2NFR509 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA915‐10 SCC1NHL015 Theridiidae Thymoites sp.2 FML BOLD PA457 SCC2NFR510 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA916‐10 SFU2NAA028 Theridiidae Thymoites sp.5 FML BOLD PA107 SCC2NGR001 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA917‐10 SCC1NFR015 Theridiidae Thymoites sp.4 FML BOLD PA2636 SCC2NGR004 Zodariidae Tenedos cufodontii IMEDEA SPIPA918‐10 SFU2NAH048 Theridiidae Thymoites sp.5 FML BOLD PA819 SCC2NGR009 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPA919‐10 SCC1NHR022 Theridiidae Thymoites sp.2 FML BOLD PA799 SCC2NGR011 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA920‐10 SFB1DCR006 Theridiidae Ariamnes attenuatus BOLD PA410 SCC2NGR013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA921‐10 SFU1D9D001 Theridiidae Anelosimus baeza BOLD PA836 SCC2NGR021 Oonopidae Dysderina dura IMEDEA SPIPA922‐10 SFU2N7A031 Theridiidae Neospintharus sp.10 FML BOLD PA820 SCC2NGR023 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPA923‐10 SFU1NBR009 Theridiidae cf Rhomphaea sp.1 FML BOLD PA821 SCC2NGR024 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPA924‐10 SFU1NBH025 Theridiidae Emertonella taczanowskii BOLD PA108 SCC2NGR500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPA925‐10 SFB1D9H010 Theridiidae Spintharus sp.1 FML BOLD PA412 SCC2NGR504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA926‐10 SFB1DBA012 Theridiidae Chrosiothes proximus BOLD PA800 SCC2NGR505 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA927‐10 SFU1NBD009 Theridiidae Spintharus sp.10 FML BOLD PA801 SCC2NGR506 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPA928‐10 SCU2NHL016 Theridiidae Dipoena sp.20 FML BOLD PA564 SCCDDA502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA929‐10 SFU1NBL025 Theridiidae Dipoena insulana BOLD PA566 SCCDDA504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA930‐10 SFU1N7L024 Theridiidae Achaearanea maricaoensis BOLD PA567 SCCDDA505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA931‐10 SFD1NCA031 Theridiidae Achaearanea maricaoensis BOLD PA3088 SCD1DEL003 Salticidae Cotinusa sp.2 FML IMEDEA SPIPA932‐10 SCU1NED007 Theridiidae Achaearanea taeniata BOLD PA1106 SCD1DEL009 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA933‐10 SCU1NEH006 Theridiidae Achaearanea taeniata BOLD PA1107 SCD1DEL020 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA934‐10 SCB1DIR019 Theridiidae Achaearanea niveovittata BOLD PA1109 SCD1DEL022 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA935‐10 SFU1N7R021 Theridiidae Achaearanea florendida BOLD PA1110 SCD1DEL023 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA936‐10 SFC1NCR018 Theridiidae Stemmops questus BOLD PA950 SCD1DF026 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA937‐10 SFC1DCR012 Linyphiidae Erigoninae sp.5 FML BOLD PA951 SCD1DF027 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA938‐10 SFC1DCL001 Nesticidae Eidmannella pallida BOLD PA952 SCD1DF028 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA939‐10 SFU1N7L023 Nesticidae Eidmannella pallida BOLD PA953 SCD1DF029 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA940‐10 STC1N8R023 Nesticidae Nesticella murici BOLD PA954 SCD1DF030 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA941‐10 SCB1DHA001 Oxyopidae Hamataliwa flebilis BOLD PA956 SCD1DF032 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA942‐10 SFU2N7L027 Miturgidae Ericaella sp.1 FML BOLD PA957 SCD1DF033 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPA943‐10 STD1N4B014 Miturgidae Eutichurus sp.1 FML BOLD PA2585 SCD1DFA003 Salticidae Cobanus sp.5 FML IMEDEA SPIPA944‐10 SCB1DEH008 Pisauridae Thaumasia argenteonotata BOLD PA2838 SCD1DFA005 Salticidae Cobanus sp.7 FML IMEDEA SPIPA945‐10 SCU1NDA019 Araneidae Hypognatha elaborata BOLD PA2845 SCD1DFA007 Salticidae Corythalia sp.1 FML2 FML IMEDEA SPIPA946‐10 STD1N6R006 Agelenidae Melpomene sp.1 FML BOLD PA515 SCD1DFA014 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA947‐10 STD1N6A014 Agelenidae Melpomene sp.1 FML BOLD PA516 SCD1DFA500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPA948‐10 STC1N8L014 Agelenidae Melpomene sp.1 FML BOLD PA2842 SCD1DFD006 Salticidae Cobanus unicolor IMEDEA SPIPA949‐10 SAD1NHA023 Agelenidae Melpomene sp.2 FML BOLD PA2836 SCD1DFD007 Salticidae Cobanus sp.5 FML IMEDEA SPIPA950‐10 SAD1NHA001 Agelenidae Melpomene sp.2 FML BOLD PA2406 SCD1DFD018 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO002‐10 SFD1NBR013 Anapidae Anapis heredia BOLD PA934 SCD1DFH004 Uloboridae Philoponella sp.9 FML IMEDEA SPIPO003‐10 SFD1DAA011 Anapidae Anapis heredia BOLD PA949 SCD1DFH008 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO004‐10 SFC1N7L010 Anapidae Anapis heredia BOLD PA488 SCD1DFH010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO005‐10 SFU1NBD021 Anapidae Anapis monteverde BOLD PA2426 SCD1DFH011 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO006‐10 SFC1DBR021 Anapidae Meioneta sp.1 FML BOLD PA626 SCD1DFH012 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO007‐10 SFD1DAR008 Anapidae Anapis monteverde BOLD PA489 SCD1DFH500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO008‐10 SFC1DAD012 Anapidae Anapis sp.1 FML BOLD PA490 SCD1DFH501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO009‐10 SFD1DAR009 Anapidae Anapis sp.1 FML BOLD PA491 SCD1DFH502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO010‐10 STC1D6L014 Anapidae Anapis sp.1 FML BOLD PA492 SCD1DFH503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO011‐10 SFD1NBA004 Anapidae Anapisona simoni BOLD PA552 SCD1DFL008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO012‐10 SFD1NCL020 Anapidae Anapisona simoni BOLD PA1767 SCD1DFL010 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPO013‐10 SFC1N7R014 Anapidae Anapisona simoni BOLD PA1209 SCD1DFL018 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO014‐10 SFD1NCD022 Anapidae Pseudanapis gertschi BOLD PA1211 SCD1DFL020 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO015‐10 SFC1N8D012 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.1 FML BOLD PA1212 SCD1DFL021 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO016‐10 SFC2N8R008 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.1 FML BOLD PA2695 SCD1DFR002 Araneidae Micrathena duodecimspinosa IMEDEA SPIPO017‐10 STC2D8L016 Anyphaenidae BOLD PA2451 SCD1DFR003 Uloboridae Philoponella sp. 11 IMEDEA SPIPO018‐10 SFB1DAR003 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.3 FML BOLD PA2976 SCD1DFR005 Theridiidae Archaearanea taeniata IMEDEA SPIPO019‐10 SFU2NBA016 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.3 FML BOLD PA3073 SCD1DFR009 Pholcidae Modisimus dominical IMEDEA SPIPO020‐10 SFB1D9A010 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.3 FML BOLD PA2741 SCD1DFR022 Theridiosomatidae Baalzebub sp.1 FML IMEDEA SPIPO021‐10 SAU1NDL001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.5 FML BOLD PA759 SCD1DFR023 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO022‐10 SAB1DDR001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.5 FML BOLD PA2742 SCD1DFR025 Theridiosomatidae Baalzebub sp.1 FML IMEDEA SPIPO023‐10 SAU1NHH021 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.5 FML BOLD PA2745 SCD1DHR006 Theridiosomatidae Chthonos sp.3 FML IMEDEA SPIPO024‐10 SAC1NGH011 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.6 FML BOLD PA2871 SCD1NDA005 Mimetidae Mimetus sp.2 FML IMEDEA SPIPO025‐10 SAC1NHB019 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.6 FML BOLD PA909 SCD1NDA014 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO026‐10 SAD1NGA005 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.6 FML BOLD PA3015 SCD1NDD007 Theridiidae Dipoena mertoni IMEDEA SPIPO027‐10 SAC1NFB002 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.7 FML BOLD PA069 SCD1NDH003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO028‐10 SAC2NDH001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.7 FML BOLD PA440 SCD1NDH008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO029‐10 SAC1DDL001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.7 FML BOLD PA070 SCD1NDH500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO030‐10 SAB1DFH009 Anyphaenidae Iguarima sp.1 FML BOLD PA2872 SCD1NDL007 Mimetidae Mimetus sp.2 FML IMEDEA SPIPO031‐10 SAD1NCR002 Anyphaenidae Iguarima sp.1 FML BOLD PA3164 SCD1NDL008 Araneidae Cyclosa carolli IMEDEA SPIPO032‐10 SAU1NHB005 Anyphaenidae Iguarima sp.1 FML BOLD PA627 SCD1NDL017 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO033‐10 STC1N4R006 Anyphaenidae Isigonia reducta BOLD PA3075 SCD1NDR003 Pholcidae Modisimus dominical IMEDEA SPIPO034‐10 SCD2NFA004 Anyphaenidae Isigonia reducta BOLD PA1071 SCD1NDR006 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO035‐10 STD1N4R015 Anyphaenidae Isigonia reducta BOLD PA2527 SCD1NDR009 Theridiidae Dipoena petrunkevitchi IMEDEA SPIPO036‐10 SCU1NDH001 Anyphaenidae Katissa simplicipalpis BOLD PA986 SCD1NDR018 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO037‐10 SCB1DHH008 Anyphaenidae Katissa simplicipalpis BOLD PA1072 SCD1NDR019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO038‐10 SCB1DEA023 Anyphaenidae Katissa simplicipalpis BOLD PA1073 SCD1NDR020 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO039‐10 SCD1NDL004 Anyphaenidae Patrera sp.1 FML BOLD PA987 SCD1NDR025 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO040‐10 SCC2NFR008 Anyphaenidae Patrera sp.1 FML BOLD PA115 SCD1NDR500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO041‐10 SFU1NBA009 Anyphaenidae Patrera sp.10 FML BOLD PA1157 SCD1NEA005 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA SPIPO042‐10 STB1D9B001 Anyphaenidae Sillus dubius BOLD PA2641 SCD1NEA007 Salticidae Corythlia sp.1 FML2 FML IMEDEA SPIPO043‐10 SCB2DGL026 Anyphaenidae Sillus dubius BOLD PA612 SCD1NEA012 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO044‐10 STB1D5R009 Anyphaenidae Sillus dubius BOLD PA2586 SCD1NED005 Salticidae Cobanus sp.7 FML IMEDEA SPIPO045‐10 STU1N5H018 Anyphaenidae Wulfila pulverulentus BOLD PA2425 SCD1NED007 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO046‐10 STD1N7A013 Anyphaenidae Wulfila pulverulentus BOLD PA2835 SCD1NED008 Salticidae Cobanus sp.5 FML IMEDEA SPIPO047‐10 STB1D5B017 Anyphaenidae Wulfila pulverulentus BOLD PA969 SCD1NED011 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO048‐10 SFU1NCD016 Anyphaenidae Macrophyes elongata BOLD PA2990 SCD1NED012 Theridiidae Stemmops sp.1 FML IMEDEA SPIPO049‐10 SFU1N8H001 Anyphaenidae Macrophyes elongata BOLD PA970 SCD1NED019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO050‐10 SFU2N7L015 Anyphaenidae Macrophyes elongata BOLD PA228 SCD1NEH001 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO051‐10 STU1N6H012 Anyphaenidae Macrophyes sp.10 FML BOLD PA494 SCD1NEH011 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO052‐10 SFU2N8D003 Clubionidae Elaver sp.1 FML BOLD PA978 SCD1NEH018 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO053‐10 SFU2NBA006 Clubionidae Elaver sp.1 FML BOLD PA979 SCD1NEH019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO054‐10 SFD1NCL005 Clubionidae Elaver sp.1 FML BOLD PA981 SCD1NEH021 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO055‐10 SAU2NFA013 Clubionidae Elaver sp.3 FML BOLD PA982 SCD1NEH022 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO056‐10 STU1N6B015 Clubionidae Elaver sp.4 FML BOLD PA983 SCD1NEH023 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO057‐10 STB1D9A015 Clubionidae Elaver sp.4 FML BOLD PA984 SCD1NEH024 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO058‐10 STU1N7B020 Clubionidae Elaver sp.4 FML BOLD PA985 SCD1NEH025 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO059‐10 SAC1NHL002 Clubionidae Elaver sp.5 FML BOLD PA229 SCD1NEH500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO060‐10 SAU1NCL032 Clubionidae Elaver sp.5 FML BOLD PA231 SCD1NEH502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO061‐10 SAC1DER003 Clubionidae Elaver sp.5 FML BOLD PA232 SCD1NEH503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO062‐10 SAC1NDR001 Clubionidae Elaver lutescens BOLD PA495 SCD1NEH505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO063‐10 SAU1NFH015 Clubionidae Elaver sp.11 FML BOLD PA2645 SCD1NEL003 Scytodidae Scytodes cf uligocetes IMEDEA SPIPO064‐10 SFB1DBR006 Corinnidae Castianeira sp.1 FML BOLD PA2676 SCD1NEL004 Tetragnathidae Azilia guatemalensis IMEDEA SPIPO065‐10 SFD1NCD011 Corinnidae Castianeira sp.1 FML BOLD PA2892 SCD1NEL009 Thomisidae Tmarus sp.2 FML IMEDEA SPIPO066‐10 SFD1D8H009 Corinnidae Castianeira sp.2 FML BOLD PA625 SCD1NEL017 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO067‐10 SCB1DFR012 Corinnidae Castianeira sp.3 FML BOLD PA2905 SCD1NEL018 Tetragnathidae Azilia guatemalensis IMEDEA SPIPO068‐10 SCB1DFR041 Corinnidae Castianeira sp.3 FML BOLD PA2674 SCD1NER007 Tetragnathidae Chrysometa alajuela IMEDEA SPIPO069‐10 SCU1NGA001 Corinnidae Corinna sp.1 FML BOLD PA2975 SCD1NER010 Theridiidae Archaearanea taeniata IMEDEA SPIPO070‐10 SCB1DFR008 Corinnidae Corinna sp.1 FML BOLD PA2963 SCD1NER018 Theridiidae Dipoena sp.6 FML IMEDEA SPIPO071‐10 STU1N8R005 Corinnidae Corinna sp.1 FML BOLD PA1089 SCD1NER028 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO072‐10 SFD1NAA001 Corinnidae Creugas sp.1 FML BOLD PA1091 SCD1NER030 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO073‐10 STD1N5R007 Corinnidae Creugas sp.1 FML BOLD PA1092 SCD1NER031 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO074‐10 SCD1NEH007 Corinnidae Creugas sp.1 FML BOLD PA1093 SCD1NER032 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO075‐10 STC1N6R012 Corinnidae Creugas sp.2 FML BOLD PA2573 SCD1NFD001 Ctenidae Ctenus sp.3 FML IMEDEA SPIPO076‐10 STD1N5R010 Corinnidae Creugas sp.2 FML BOLD PA2840 SCD1NFD009 Salticidae Cobanus sp.7 FML IMEDEA SPIPO077‐10 SCU1NDD005 Corinnidae Parachemmis fuscus BOLD PA1100 SCD1NFD010 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO078‐10 SCU1NGA006 Corinnidae Parachemmis fuscus BOLD PA3034 SCD1NFD014 Theridiidae Dipoena sp.4 FML IMEDEA SPIPO079‐10 SCC1NFL001 Corinnidae Parachemmis fuscus BOLD PA1102 SCD1NFD023 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO080‐10 SFB1D8A019 Corinnidae Parachemmis sp.1 FML BOLD PA1103 SCD1NFD024 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO081‐10 STD1N4B016 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML BOLD PA802 SCD1NFL009 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA SPIPO082‐10 STD1N7H016 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML BOLD PA908 SCD1NFL015 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO083‐10 SCU2NHH001 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML BOLD PA3114 SCD1NFL019 Ochyrocerathidae Ochyroceratinae sp.3 FML IMEDEA SPIPO084‐10 SFC2DBL009 Corinnidae Phrurolithus sp.1 FML BOLD PA556 SCD1NFL022 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO085‐10 SFC1N7L013 Corinnidae Phrurolithus sp.1 FML BOLD PA2781 SCD1NGA001 Ctenidae Ctenus sp.3 FML IMEDEA SPIPO086‐10 SFC1N8A016 Corinnidae Phrurolithus sp.1 FML BOLD PA080 SCD1NGA002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO087‐10 SFC1DBR006 Corinnidae Stethorrhagus sp.1 FML BOLD PA424 SCD1NGA018 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO088‐10 SFD1NCH032 Corinnidae Stethorrhagus sp.1 FML BOLD PA2991 SCD1NGD012 Theridiidae Theridion sp.5 FML IMEDEA SPIPO089‐10 SFC1NBR006 Corinnidae Stethorrhagus sp.1 FML BOLD PA975 SCD1NGD016 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO090‐10 STB1D9L002 Corinnidae Stethorrhagus sp.2 FML BOLD PA976 SCD1NGD020 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO091‐10 SCB1DEL006 Corinnidae Stethorrhagus sp.2 FML BOLD PA2424 SCD1NGH019 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPO092‐10 SCB1DHA007 Corinnidae Stethorrhagus sp.2 FML BOLD PA164 SCD1NGH500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO093‐10 SCC1NGD004 Corinnidae Stethorrhagus sp.3 FML BOLD PA396 SCD1NGH502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO094‐10 SCC1NHD015 Corinnidae Stethorrhagus sp.3 FML BOLD PA617 SCD1NGL016 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO095‐10 SCC1DFA004 Corinnidae Stethorrhagus sp.3 FML BOLD PA3115 SCD1NGR013 Ochyrocerathidae Ochyroceratinae sp.3 FML IMEDEA SPIPO096‐10 SFB1DBA010 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.1 FML BOLD PA3028 SCD1NGR020 Theridiidae Stemmops sp.1 FML IMEDEA SPIPO097‐10 SFC2DCH008 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.1 FML BOLD PA961 SCD1NGR022 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO098‐10 SAC1NDA001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.10 FML BOLD PA3023 SCD1NGR024 Theridiidae Tymoites sp.1 FML IMEDEA SPIPO099‐10 SAU1NHP002 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.10 FML BOLD PA445 SCD1NGR025 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO100‐10 SCB1DIR005 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.11 FML BOLD PA962 SCD1NGR031 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO101‐10 SCC2NGR003 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.11 FML BOLD PA963 SCD1NGR032 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO102‐10 SCC1DID002 Anyphaenidae BOLD PA446 SCD1NGR500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO103‐10 SFB1D8A013 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.2 FML BOLD PA180 SCD2NED003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO104‐10 SFB1D9H014 Anyphaenidae BOLD PA1150 SCD2NED005 Corinnidae Stethorrhagus sp.3 FML IMEDEA SPIPO105‐10 SFU1NAH016 Anyphaenidae Chrosiothes proximus BOLD PA1094 SCD2NED009 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO106‐10 SFU1N7H008 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.4 FML BOLD PA2663 SCD2NED011 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML IMEDEA SPIPO107‐10 SAC1DHP001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.6 FML BOLD PA209 SCD2NFA002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO108‐10 SAC1NFB001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.6 FML BOLD PA2761 SCD2NFA006 Anyphaenidae Patrera sp.1 FML IMEDEA SPIPO109‐10 SAC1DGB001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.7 FML BOLD PA2783 SCD2NFA010 Ctenidae Ctenus sp.10 FML IMEDEA SPIPO110‐10 SAC2NDR002 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.7 FML BOLD PA210 SCD2NFA500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO111‐10 SAB1DEH001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.8 FML BOLD PA211 SCD2NFA501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO112‐10 SAB1DER001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.9 FML BOLD PA2782 SCD2NGL001 Ctenidae Ctenus sp.3 FML IMEDEA SPIPO113‐10 SAB1DFB001 Anyphaenidae Iguarima sp.1 FML BOLD PA067 SCD2NGL006 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO114‐10 SAU2NCL002 Anyphaenidae Iguarima sp.1 FML BOLD PA472 SCD2NGL017 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO115‐10 SCC1DGD002 Anyphaenidae Isigonia reducta BOLD PA2743 SCD2NGL023 Theridiosomatidae Baalzebub sp.1 FML IMEDEA SPIPO116‐10 SCC1NGD009 Anyphaenidae Isigonia reducta BOLD PA473 SCD2NGL500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO117‐10 SCB1DER009 Anyphaenidae Katissa simplicipalpis BOLD PA474 SCD2NGL501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO118‐10 SCB1DGL036 Anyphaenidae Katissa simplicipalpis BOLD PA2640 SCU1DHH003 Thomisidae Strophius sp.1 FML IMEDEA SPIPO119‐10 STB1D6H021 Anyphaenidae Katissa sp.10 FML BOLD PA3021 SCU1DHH010 Theridiidae Tymoites sp.1 FML IMEDEA SPIPO120‐10 STD1N6H004 Anyphaenidae Katissa sp.10 FML BOLD PA2982 SCU1DHL002 Theridiidae Theridion sp.3 FML IMEDEA SPIPO121‐10 SFU2NBH016 Anyphaenidae Macrophyes elongata BOLD PA3159 SCU1DHR001 Pholcidae Modisimus dominical IMEDEA SPIPO122‐10 SCB1DGA008 Anyphaenidae Otoniella cf quadrivittata BOLD PA2658 SCU1DHR005 Tetragnathidae Leucauge sp.1 FML IMEDEA SPIPO123‐10 SFB1D9R016 Anyphaenidae Patrera sp.10 FML BOLD PA2999 SCU1NDA012 Theridiidae Episinus panamensis IMEDEA SPIPO124‐10 SFB1DAH013 Anyphaenidae Patrera sp.10 FML BOLD PA3143 SCU1NDA016 Theridiidae Faiditus atopus IMEDEA SPIPO125‐10 SCB1DFD006 Anyphaenidae Sillus dubius BOLD PA879 SCU1NDA018 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPO126‐10 SCU2NDR028 Anyphaenidae Sillus dubius BOLD PA3263 SCU1NDA019 Araneidae Hypognatha elaborata IMEDEA SPIPO127‐10 STU1N8R016 Anyphaenidae Wulfila maculata BOLD PA1201 SCU1NDD005 Corinnidae Parachemmis fuscus IMEDEA SPIPO128‐10 SFU1NBR006 Araneidae Micrathena lucasi BOLD PA2507 SCU1NDD016 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA SPIPO129‐10 SCU2NEA005 Araneidae Parawixia sp.1 FML BOLD PA877 SCU1NDD017 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPO130‐10 STU1N7L021 Clubionidae Elaver sp.12 FML BOLD PA3158 SCU1NDH002 Pholcidae Modisimus dominical IMEDEA SPIPO131‐10 STC1N5R007 Corinnidae Corinna sp.10 FML BOLD PA2967 SCU1NDH009 Theridiidae Ameridion musawas IMEDEA SPIPO132‐10 SCD1NEA004 Corinnidae Creugas sp.1 FML BOLD PA3052 SCU1NDH013 Theridiidae Dipoena sp.3 FML IMEDEA SPIPO133‐10 STD2N4L003 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML BOLD PA2876 SCU1NDL008 Mimetidae Mimetus rusticus IMEDEA SPIPO134‐10 SAD1NCH004 Corinnidae Trachelas sp.13 FML BOLD PA3013 SCU1NDL018 Theridiidae Styposis chickeringi IMEDEA SPIPO135‐10 STB1D9R002 Corinnidae Trachelas sp.10 FML BOLD PA3014 SCU1NDL026 Theridiidae Styposis chickeringi IMEDEA SPIPO136‐10 STD1N4H024 Corinnidae Trachelas sp.11 FML BOLD PA2874 SCU1NDR001 Mimetidae Mimetus rusticus IMEDEA SPIPO137‐10 SCB1DER008 Corinnidae Trachelas sp.11 FML BOLD PA2859 SCU1NDR005 Salticidae Zuniga magna IMEDEA SPIPO138‐10 SAC1NHB003 Corinnidae Trachelas trifidus BOLD PA2690 SCU1NDR009 Araneidae Micrathena lucasi IMEDEA SPIPO139‐10 STC1N4B016 Corinnidae Trachelas trifidus BOLD PA871 SCU1NDR013 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPO140‐10 SAD1NHP018 Corinnidae Trachelas trifidus BOLD PA3046 SCU1NDR015 Theridiidae Laseola donaldi IMEDEA SPIPO141‐10 STU1N7R020 Ctenidae cf Caloctenus sp.1 FML BOLD PA2526 SCU1NDR017 Theridiidae Dipoena sp.5 FML IMEDEA SPIPO142‐10 SCD2NFA010 Ctenidae Ctenus sp.10 FML BOLD PA3016 SCU1NDR019 Theridiidae Dipoena mertoni IMEDEA SPIPO143‐10 SCB1DHD001 Ctenidae Cupiennius sp.10 FML BOLD PA3012 SCU1NDR025 Theridiidae Styposis chickeringi IMEDEA SPIPO144‐10 SCB1DIA001 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML BOLD PA887 SCU1NDR029 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO145‐10 STC1N4A001 Ctenizidae Hebestatis sp.1 FML BOLD PA872 SCU1NDR033 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPO146‐10 STC1N6R009 Cyrtaucheniidae Bolostromus sp.1 FML BOLD PA873 SCU1NDR034 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPO147‐10 SCC1DHD001 Dipluridae Linothele sp.1 FML BOLD PA874 SCU1NDR035 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPO148‐10 SCC1NER001 Dipluridae Linothele sp.1 FML BOLD PA2852 SCU1NEA002 Salticidae Lyssomanes eatoni IMEDEA SPIPO149‐10 SCC1NER023 Dipluridae Linothele sp.1 FML BOLD PA2525 SCU1NEA010 Theridiidae Ameridion progum IMEDEA SPIPO150‐10 STD1N4A002 Dipluridae Linothele sp.1 FML BOLD PA2681 SCU1NEA013 Araneidae Mangora melanocephala IMEDEA SPIPO151‐10 SAC1NGB009 Dipluridae Masteria downeyi BOLD PA3054 SCU1NEH012 Theridiidae Coleosoma sp.1 FML IMEDEA SPIPO152‐10 SAC1NGB023 Dipluridae Masteria downeyi BOLD PA2954 SCU1NEH016 Theridiidae Dipoena insulana IMEDEA SPIPO153‐10 SAC1DHL012 Dipluridae Masteria sp.10 FML BOLD PA2790 SCU1NEL001 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML IMEDEA SPIPO154‐10 SAC1NFP004 Dipluridae Masteria downeyi BOLD PA2614 SCU1NEL002 Mimetidae Mimetus sp.2 FML IMEDEA SPIPO155‐10 STC1N8L002 Dipluridae Masteria downeyi BOLD PA3166 SCU1NEL004 Araneidae Parawixia nesophila IMEDEA SPIPO156‐10 SCC1DIH006 Dipluridae Masteria sp.1 FML BOLD PA3056 SCU1NEL009 Theridiidae Dipoena sp.5 FML IMEDEA SPIPO157‐10 SCC1DIL008 Dipluridae Masteria sp.1 FML BOLD PA2981 SCU1NEL015 Theridiidae Theridion sp.3 FML IMEDEA SPIPO158‐10 SCC1NER020 Dipluridae Masteria sp.1 FML BOLD PA2550 SCU1NER007 Tetragnathidae Opas sp.1 FML IMEDEA SPIPO159‐10 SCC2NFR018 Dipluridae Masteria sp.1 FML BOLD PA1769 SCU1NFA004 Uloboridae Miagrammopes aspinatus IMEDEA SPIPO160‐10 STC1D8R016 Dipluridae Masteria spinosa BOLD PA829 SCU1NFA009 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPO161‐10 STC1N7R019 Dipluridae Masteria spinosa BOLD PA1768 SCU1NFA011 Uloboridae Miagrammopes aspinatus IMEDEA SPIPO162‐10 STC1N8B004 Dipluridae Masteria spinosa BOLD PA2621 SCU1NFD001 Hersiliidae Neotama forcipata IMEDEA SPIPO163‐10 STC2D6R023 Dipluridae Masteria spinosa BOLD PA2760 SCU1NFD003 Anyphaenidae Patrera sp.1 FML IMEDEA SPIPO164‐10 STC2D8R014 Dipluridae Masteria spinosa BOLD PA3169 SCU1NFD004 Araneidae Micrathena duodecimspinosa IMEDEA SPIPO165‐10 SAC1NDH009 Hahniidae Neoantistea sp.2 FML BOLD PA2622 SCU1NFD017 Hersiliidae Neotama forcipata IMEDEA SPIPO166‐10 SAC2NDR010 Linyphiidae Mermessus sp.10 FML BOLD PA2973 SCU1NFH010 Theridiidae Styposis clausis IMEDEA SPIPO167‐10 SFD1D8A018 Mysmenidae Mysmena sp.9 FML BOLD PA2997 SCU1NFH012 Theridiidae Episinus panamensis IMEDEA SPIPO168‐10 SFD1D8A021 Mysmenidae Mysmena sp.9 FML BOLD PA3057 SCU1NFH014 Theridiidae Dipoena sp.5 FML IMEDEA SPIPO169‐10 SAD1NHP021 Mysmenidae Mysmenopsis sp.3 FML BOLD PA3048 SCU1NFH015 Theridiidae Laseola donaldi IMEDEA SPIPO170‐10 SFD1D9L019 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.1 FML BOLD PA634 SCU1NFR006 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO171‐10 SCC1NGL008 Ochyroceratidae Theotima sp.2 FML BOLD PA2849 SCU1NFR007 Salticidae Chapoda sp.1 FML IMEDEA SPIPO172‐10 SCC1DIL017 Ochyroceratidae Theotima sp.2 FML BOLD PA2604 SCU1NFR008 Salticidae Sidusa recondita IMEDEA SPIPO173‐10 SCC1DIL035 Ochyroceratidae Theotima sp.2 FML BOLD PA3047 SCU1NFR019 Theridiidae Laseola donaldi IMEDEA SPIPO174‐10 SCC2NGR026 Ochyroceratidae Theotima sp.2 FML BOLD PA2602 SCU1NGA002 Salticidae Myrmarachne sp.1 FML IMEDEA SPIPO175‐10 SCC2NGR025 Ochyroceratidae Theotima sp.2 FML BOLD PA1202 SCU1NGA006 Corinnidae Parachemmis fuscus IMEDEA SPIPO176‐10 STB1D6L023 Oonopidae Dysderina sp.3 FML BOLD PA2529 SCU1NGA013 Theridiidae Thymoites sp.1 FML IMEDEA SPIPO177‐10 SAC1DEL004 Oonopidae Dysderina sp.10 FML BOLD PA619 SCU1NGA015 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO178‐10 STD1N4H002 Paratropididae Paratropis sp.1 FML BOLD PA2825 SCU1NGD005 Salticidae Acragas sp.1 FML IMEDEA SPIPO179‐10 SCC1DIL005 Paratropididae Paratropis sp.2 FML BOLD PA828 SCU1NGD014 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPO180‐10 STD1N7R033 Theridiidae Theridion micheneri BOLD PA2907 SCU1NGH002 Araneidae Parawixia sp.1 FML IMEDEA SPIPO181‐10 SAB1DEB022 Theridiidae Theridion sp.6 FML BOLD PA1146 SCU1NGH005 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML IMEDEA SPIPO182‐10 SAU1NDL023 Theridiidae Theridion sp.6 FML BOLD PA2960 SCU1NGH014 Theridiidae Dipoena pacifica IMEDEA SPIPO183‐10 SAU1NDR019 Theridiidae Theridion sp.6 FML BOLD PA2530 SCU1NGH016 Theridiidae Thymoites sp.1 FML IMEDEA SPIPO184‐10 SAU1NFL019 Theridiidae Theridion sp.6 FML BOLD PA2549 SCU1NGH023 Tetragnathidae Opas sp.1 FML IMEDEA SPIPO185‐10 SAU1NGA023 Theridiidae Theridion sp.6 FML BOLD PA2558 SCU1NGH024 Tetragnathidae Tetragnathidae sp.1 FML IMEDEA SPIPO186‐10 SAB1DDH004 Theridiidae Theridion sp.7 FML BOLD PA2851 SCU1NHA007 Salticidae Lyssomanes eatoni IMEDEA SPIPO187‐10 SAB1DEH018 Theridiidae Theridion sp.7 FML BOLD PA2854 SCU1NHA010 Salticidae Myrmarachne sp.1 FML IMEDEA SPIPO188‐10 SAB1DFA013 Theridiidae Theridion sp.7 FML BOLD PA2678 SCU1NHA014 Araneidae Parawixia nesophila IMEDEA SPIPO189‐10 SAB1DFB025 Theridiidae Theridion sp.7 FML BOLD PA3153 SCU1NHA017 Pholcidae Metagonia sp.1 FML IMEDEA SPIPO190‐10 SAB1DGA014 Theridiidae Theridion sp.22 FML BOLD PA3022 SCU1NHA024 Theridiidae Tymoites sp.1 FML IMEDEA SPIPO191‐10 STC1N6H013 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML BOLD PA3067 SCU1NHA029 Pholcidae Metagonia sp.1 FML IMEDEA SPIPO192‐10 STD1N7A010 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML BOLD PA3163 SCU1NHD001 Araneidae Parawixia rigida IMEDEA SPIPO193‐10 STD1N7R007 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML BOLD PA2615 SCU1NHD005 Mimetidae Mimetus sp.2 FML IMEDEA SPIPO194‐10 STC1N8L022 Corinnidae Stethorrhagus sp.6 FML BOLD PA2704 SCU1NHD006 Araneidae Cyclosa caroli IMEDEA SPIPO195‐10 STC1N4L014 Corinnidae Stethorrhagus sp.6 FML BOLD PA3138 SCU1NHD014 Theridiidae Styposis chickeringi IMEDEA SPIPO196‐10 STC1D6A003 Corinnidae Stethorrhagus sp.6 FML BOLD PA2878 SCU1NHH002 Mimetidae Mimetus banksi IMEDEA SPIPO197‐10 STU2N8B001 Corinnidae Trachelas barroanus BOLD PA2691 SCU1NHH003 Araneidae Micrathena lucasi IMEDEA SPIPO198‐10 STC1N5R012 Corinnidae Trachelas sp.15 FML BOLD PA1143 SCU1NHH005 Corinnidae Corinna sp.2 FML IMEDEA SPIPO199‐10 SFB1DBR015 Corinnidae Trachelas sp.16 FML BOLD PA631 SCU1NHL004 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO200‐10 SFU2NBA001 Corinnidae Trachelas bispinosus BOLD PA2631 SCU1NHL006 Thomisidae Tmarus sp.2 FML IMEDEA SPIPO201‐10 SFU1N8H008 Corinnidae Trachelas bispinosus BOLD PA2833 SCU1NHL010 Salticidae Cobanus seclusus IMEDEA SPIPO202‐10 SFC1NBR005 Corinnidae Trachelas prominens BOLD PA2906 SCU1NHL015 Tetragnathidae Leucauge sp.1 FML IMEDEA SPIPO203‐10 SFC1N7H008 Corinnidae Trachelas prominens BOLD PA3135 SCU1NHL018 Theridiidae Styposis clausis IMEDEA SPIPO204‐10 SFC1N8D017 Corinnidae Trachelas prominens BOLD PA3036 SCU1NHL021 Theridiidae Dipoena sp.4 FML IMEDEA SPIPO205‐10 SCD1NFA004 Corinnidae Trachelas sp.1 FML BOLD PA2951 SCU1NHL022 Theridiidae Faiditus atopus IMEDEA SPIPO206‐10 STD1N4H023 Corinnidae Trachelas sp.15 FML BOLD PA883 SCU1NHL027 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO207‐10 SCD1NFL009 Corinnidae Trachelas sp.1 FML BOLD PA3035 SCU1NHL029 Theridiidae Dipoena sp.4 FML IMEDEA SPIPO208‐10 SAC1NHL011 Corinnidae Trachelas sp.3 FML BOLD PA632 SCU1NHL500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO209‐10 SAU1NFB028 Corinnidae Trachelas sp.3 FML BOLD PA2873 SCU1NHR003 Mimetidae Mimetus sp.2 FML IMEDEA SPIPO210‐10 SAU1NFL009 Corinnidae Trachelas sp.3 FML BOLD PA2578 SCU1NHR006 Salticidae cf Sassacus sp.1 FML IMEDEA SPIPO211‐10 SAC1NDH014 Corinnidae Trachelas trifidus BOLD PA2671 SCU1NHR007 Tetragnathidae Opas sp.1 FML IMEDEA SPIPO212‐10 SAC1NGB021 Corinnidae Trachelas trifidus BOLD PA3136 SCU1NHR021 Theridiidae Styposis clausis IMEDEA SPIPO213‐10 SAC1NGP013 Corinnidae Trachelas trifidus BOLD PA2792 SCU2NDA001 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML IMEDEA SPIPO214‐10 STD1N5R016 Ctenidae Ctenus sp.11 FML BOLD PA2748 SCU2NDA009 Theridiosomatidae Chthonos sp.2 FML IMEDEA SPIPO215‐10 STC1N6L002 Ctenidae Ctenus sp.11 FML BOLD PA2956 SCU2NDH014 Theridiidae Dipoena insulana IMEDEA SPIPO216‐10 STD1N7A001 Ctenidae Ctenus sp.11 FML BOLD PA3040 SCU2NDH015 Theridiidae Dipoena petrunkevitchi IMEDEA SPIPO217‐10 SFC1DCR005 Ctenidae Anopsicus sp.4 FML BOLD PA3017 SCU2NDH017 Theridiidae Dipoena mertoni IMEDEA SPIPO218‐10 SFD1NAH004 Ctenidae Ctenus sp.2 FML BOLD PA2673 SCU2NDR002 Tetragnathidae Chrysometa alajuela IMEDEA SPIPO219‐10 SFD1NCR010 Ctenidae Ctenus sp.2 FML BOLD PA2696 SCU2NDR003 Araneidae Micrathena duodecimspinosa IMEDEA SPIPO220‐10 SFD1NCL004 Ctenidae Ctenus sp.2 FML BOLD PA3068 SCU2NDR006 Senoculidae Senoculus bucolicus IMEDEA SPIPO221‐10 SCD2NGL001 Ctenidae Ctenus sp.3 FML BOLD PA2598 SCU2NDR012 Salticidae Chapoda sp.1 FML IMEDEA SPIPO222‐10 SCD1NGA001 Ctenidae Ctenus sp.3 FML BOLD PA3137 SCU2NDR016 Theridiidae Styposis chickeringi IMEDEA SPIPO223‐10 SCD1NDD001 Ctenidae Ctenus sp.3 FML BOLD PA2998 SCU2NDR017 Theridiidae Episinus panamensis IMEDEA SPIPO224‐10 SAD1NCH003 Ctenidae Ctenus sp.4 FML BOLD PA906 SCU2NDR019 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO225‐10 SAC1DDL013 Ctenidae Ctenus sp.4 FML BOLD PA2665 SCU2NDR021 Tetragnathidae Glenognatha sp.1 FML IMEDEA SPIPO226‐10 SAC1DHL006 Ctenidae Ctenus sp.4 FML BOLD PA3069 SCU2NDR029 Senoculidae Senoculus bucolicus IMEDEA SPIPO227‐10 SAC1NDL002 Ctenidae Ctenus sp.5 FML BOLD PA2682 SCU2NEA007 Araneidae Mangora melanocephala IMEDEA SPIPO228‐10 SAC1NDH004 Ctenidae Ctenus sp.5 FML BOLD PA2962 SCU2NEH007 Theridiidae Dipoena pacifica IMEDEA SPIPO229‐10 STU1N8B001 Ctenidae Ctenus sp.6 FML BOLD PA842 SCU2NEH011 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPO230‐10 STC1N6H015 Ctenidae Ctenus sp.6 FML BOLD PA2995 SCU2NEH017 Theridiidae Chroasiothes proximus IMEDEA SPIPO231‐10 STC1N7R003 Ctenidae Ctenus sp.6 FML BOLD PA3039 SCU2NHA012 Theridiidae Dipoena petrunkevitchi IMEDEA SPIPO232‐10 STD1N6H018 Ctenidae Ctenus sp.6 FML BOLD PA2706 SCU2NHD002 Araneidae Cyclosa caroli IMEDEA SPIPO233‐10 STD1N4R016 Ctenidae Ctenus sp.6 FML BOLD PA3051 SCU2NHD008 Theridiidae Dipoena sp.3 FML IMEDEA SPIPO234‐10 SFD1NAL026 Ctenidae Cupiennius valentinei BOLD PA1156 SCU2NHH001 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML IMEDEA SPIPO235‐10 SCU2NEH001 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML BOLD PA3074 SCU2NHH006 Pholcidae Modisimus dominical IMEDEA SPIPO236‐10 SFU1N8H013 Ctenidae Cupiennius valentinei BOLD PA3126 SCU2NHH016 Theridiidae Diponena petrunkevichi IMEDEA SPIPO237‐10 SFU1NCH012 Ctenidae Cupiennius valentinei BOLD PA880 SCU2NHH019 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA SPIPO238‐10 SFU1NCR017 Ctenidae Cupiennius valentinei BOLD PA910 SCU2NHH020 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO239‐10 SAU1NHA001 Ctenidae Cupiennius sp.4 FML BOLD PA3246 SCU2NHL016 Theridiidae Dipoena sp.6 FML IMEDEA SPIPO240‐10 STD1N7A002 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML BOLD PA3171 SCU2NHR008 Araneidae Micrathena duodecimspinosa IMEDEA SPIPO241‐10 STU1N8L001 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML BOLD PA3208 SCU2NHR013 Theridiidae Laseola donaldi IMEDEA SPIPO242‐10 STU2N8R010 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML BOLD PA2381 SFB1D8A006 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO243‐10 SCB1DIA002 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML BOLD PA925 SFB1D8A009 Uloboridae Philoponella sp.2 FML IMEDEA SPIPO244‐10 STD1D7B001 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML BOLD PA1189 SFB1D8A019 Corinnidae Parachemmis sp.1 FML IMEDEA SPIPO245‐10 SCU2NDH001 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML BOLD PA2811 SFB1D8A021 Salticidae Metaphidippus facetus IMEDEA SPIPO246‐10 SCU1NGH001 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML BOLD PA013 SFB1D8A022 Salticidae Ex‐Corythalia sp.5 FML IMEDEA SPIPO247‐10 STU1N7H010 Ctenidae Cupiennius sp.5 FML BOLD PA2812 SFB1D8A025 Salticidae Metaphidippus facetus IMEDEA SPIPO248‐10 SFU1N7A003 Ctenidae Cupiennius valentinei BOLD PA2692 SFB1D8D003 Araneidae Micrathena lucasi IMEDEA SPIPO249‐10 SFU1N7H014 Ctenidae Cupiennius valentinei BOLD PA2939 SFB1D8D007 Theridiidae Styposis flavescens IMEDEA SPIPO251‐10 SAD1NCL015 Dictynidae Dictyna sp.1 FML BOLD PA1168 SFB1D8H004 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO252‐10 SAB1DEH020 Dictynidae Dictyna sp.1 FML BOLD PA3210 SFB1D8H005 Theridiidae Episinus cognatus IMEDEA SPIPO253‐10 SAB1DHL003 Dictynidae Dictyna sp.1 FML BOLD PA2888 SFB1D8H009 Thomisidae Stephanopinae sp.1 FML IMEDEA SPIPO254‐10 SCC2NFH002 Dictynidae Phantyna cf rita BOLD PA256 SFB1D8H023 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO255‐10 SCD1NER020 Hahniidae cf Amaloxenops sp.1 FML BOLD PA2575 SFB1D8H025 Salticidae Salticidae sp.3 FML IMEDEA SPIPO256‐10 SCB1DEL012 Hahniidae cf Amaloxenops sp.1 FML BOLD PA2416 SFB1D8H029 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO257‐10 SCC1NHA015 Hahniidae cf Amaloxenops sp.1 FML BOLD PA942 SFB1D8H030 Linyphiidae Walckenaeria aenea IMEDEA SPIPO258‐10 SAU1NFA014 Hahniidae Neoantistea sp.10 FML BOLD PA375 SFB1D8H500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO259‐10 SFC1NCD011 Hahniidae Neoantistea sp.1 FML BOLD PA310 SFB1D8L002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO260‐10 SFD1D8A011 Hahniidae Neoantistea sp.1 FML BOLD PA2380 SFB1D8L005 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO261‐10 SAC1DEA001 Hahniidae Neoantistea sp.2 FML BOLD PA2721 SFB1D8L014 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.3 FML IMEDEA SPIPO262‐10 SAC1NGL015 Hahniidae Neoantistea sp.2 FML BOLD PA3231 SFB1D8L022 Theridiidae Exalbidion sexmaculatum IMEDEA SPIPO263‐10 SAC1NGB022 Hahniidae Neoantistea sp.3 FML BOLD PA234 SFB1D8L026 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO264‐10 SAB1DDL002 Hahniidae Neoantistea sp.3 FML BOLD PA2722 SFB1D8R006 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.3 FML IMEDEA SPIPO265‐10 STC1N8B010 Hahniidae Neoantistea sp.4 FML BOLD PA2813 SFB1D8R013 Salticidae Metaphidippus facetus IMEDEA SPIPO266‐10 STC1D8R012 Hahniidae Neoantistea sp.4 FML BOLD PA2373 SFB1D8R016 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO267‐10 STC2D8A009 Hahniidae Neoantistea sp.4 FML BOLD PA2523 SFB1D8R026 Theridiidae Ameridion signum IMEDEA SPIPO268‐10 STC1D8R021 Drymusidae Drymusa sp.1 FML BOLD PA2502 SFB1D8R028 Linyphiidae Primerigonina australis IMEDEA SPIPO269‐10 STC1D8R022 Drymusidae Drymusa sp.1 FML BOLD PA3219 SFB1D8R029 Theridiidae Dipoena cf obscura IMEDEA SPIPO270‐10 STC1N5L013 Drymusidae Drymusa sp.1 FML BOLD PA3032 SFB1D8R030 Theridiidae Achaearanea florendida IMEDEA SPIPO271‐10 STC1N5A003 Drymusidae Drymusa sp.1 FML BOLD PA004 SFB1D8R033 Salticidae Cobanus sp.3 FML IMEDEA SPIPO272‐10 STC1N6L006 Drymusidae Drymusa sp.1 FML BOLD PA1181 SFB1D9A001 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO273‐10 SCB1DGA019 Linyphiidae Asemostera daedalus BOLD PA240 SFB1D9A002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO274‐10 STB1D8B016 Linyphiidae Asemostera daedalus BOLD PA705 SFB1D9A008 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO275‐10 STB1D8H011 Linyphiidae Asemostera sp.10 FML BOLD PA1148 SFB1D9A018 Corinnidae Parachemmis sp.3 FML IMEDEA SPIPO276‐10 SAD1NGB007 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML BOLD PA2928 SFB1D9A021 Theridiidae Dipoena banksi IMEDEA SPIPO277‐10 SAB1DDB013 Linyphiidae Dubiaranea sp.1 FML BOLD PA1180 SFB1D9A023 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO278‐10 SFU1NCA012 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML BOLD PA3097 SFB1D9A024 Theridiidae Thymoites sp.5 FML IMEDEA SPIPO279‐10 SAB1DFA006 Linyphiidae Dubiaranea sp.13 FML BOLD PA2562 SFB1D9D004 Araneidae Alpaida tuonabo IMEDEA SPIPO280‐10 SAU1NGB015 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML BOLD PA2628 SFB1D9D014 Thomisidae Stephanopinae sp.1 FML IMEDEA SPIPO281‐10 SAB1DFB029 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML BOLD PA2723 SFB1D9D015 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.3 FML IMEDEA SPIPO282‐10 SAB1DFH031 Linyphiidae Dubiaranea sp.2 FML BOLD PA3037 SFB1D9D019 Theridiidae Thymoites sp.5 FML IMEDEA SPIPO283‐10 SAD1NGH022 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML BOLD PA2797 SFB1D9D025 Salticidae Salticidae sp.2 FML IMEDEA SPIPO284‐10 SAD1NGB006 Linyphiidae Dubiaranea sp.3 FML BOLD PA2422 SFB1D9D032 Linyphiidae Primerigonina australis IMEDEA SPIPO285‐10 STB1D9R010 Linyphiidae Dubiaranea sp.4 FML BOLD PA2423 SFB1D9D033 Linyphiidae Primerigonina australis IMEDEA SPIPO286‐10 SAB1DEL015 Linyphiidae Erigone sp.10 FML BOLD PA341 SFB1D9H012 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO287‐10 SAB1DDA024 Linyphiidae Erigone sp.10 FML BOLD PA3010 SFB1D9H013 Theridiidae Theridion sp.1 FML IMEDEA SPIPO288‐10 SAB1DER036 Linyphiidae Erigone sp.10 FML BOLD PA2801 SFB1D9H015 Salticidae Salticidae sp.3 FML IMEDEA SPIPO289‐10 STC1D5R027 Linyphiidae Erigone cf antegona BOLD PA018 SFB1D9H016 Salticidae Cobanus sp.1 FML IMEDEA SPIPO290‐10 STB1D6L020 Linyphiidae Erigone cf antegona BOLD PA658 SFB1D9H023 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO291‐10 SFD1NCA033 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML BOLD PA2961 SFB1D9H025 Theridiidae Dipoena pacifica IMEDEA SPIPO292‐10 STC1N8H021 Linyphiidae Erigoninae sp.10 FML BOLD PA895 SFB1D9H029 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO293‐10 SAD1NCH011 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML BOLD PA3195 SFB1D9H031 Theridiidae Theridion sp.2 FML IMEDEA SPIPO294‐10 SAB1DHB023 Linyphiidae Primerigonina australis BOLD PA896 SFB1D9H045 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO295‐10 SFB1D8H030 Linyphiidae Primerigonina australis BOLD PA3019 SFB1D9H050 Theridiidae Acaearaeea maricaoensis IMEDEA SPIPO296‐10 SFU1NCA016 Linyphiidae Primerigonina sp.2 FML BOLD PA2799 SFB1D9L014 Salticidae Salticidae sp.2 FML IMEDEA SPIPO297‐10 SAB1DEB017 Linyphiidae Primerigonina australis BOLD PA2357 SFB1D9L024 Linyphiidae Mermessus sp.1 FML IMEDEA SPIPO298‐10 SFC2NAR039 Linyphiidae BOLD PA2539 SFB1D9L029 Clubionidae Elaver sp.1 FML IMEDEA SPIPO299‐10 SFC1NBR017 Linyphiidae Erigoninae sp.5 FML BOLD PA2626 SFB1D9R006 Thomisidae Tmarus sp.1 FML IMEDEA SPIPO300‐10 SFD1NBH022 Linyphiidae Erigoninae sp.5 FML BOLD PA2925 SFB1D9R010 Theridiidae Exalbidion sexmaculatum IMEDEA SPIPO301‐10 SCB1DGH013 Linyphiidae Grammonota sp.1 FML BOLD PA030 SFB1D9R019 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO302‐10 SAB1DER039 Linyphiidae Grammonota cf secata BOLD PA2805 SFB1D9R021 Salticidae Cobanus incurvus IMEDEA SPIPO303‐10 SAB1DER048 Linyphiidae Grammonota cf secata BOLD PA575 SFB1D9R022 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO304‐10 SAU1NHA030 Linyphiidae Grammonota teresta BOLD PA2778 SFB1D9R027 Ctenidae Cupiennius valentinei IMEDEA SPIPO305‐10 SAB1DGP011 Linyphiidae Grammonota teresta BOLD PA236 SFB1D9R040 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO306‐10 STU2N8H020 Linyphiidae Grammonota sp.2 FML BOLD PA006 SFB1D9R043 Salticidae Cobanus sp.2 FML IMEDEA SPIPO307‐10 SCC1NFR022 Linyphiidae Meioneta cincta BOLD PA025 SFB1D9R044 Salticidae Cobanus sp.2 FML IMEDEA SPIPO308‐10 SCC1NDL005 Linyphiidae Meioneta cincta BOLD PA237 SFB1D9R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO309‐10 STD1D7H017 Linyphiidae Meioneta cincta BOLD PA238 SFB1D9R501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO310‐10 SCC1DIA012 Linyphiidae Meioneta cincta BOLD PA576 SFB1D9R502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO311‐10 SCC1NHL017 Linyphiidae Meioneta cincta BOLD PA577 SFB1D9R503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO312‐10 SFC2DCA009 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML BOLD PA2684 SFB1DAD004 Araneidae Parawixia rimosa IMEDEA SPIPO313‐10 STC1N6H022 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML BOLD PA2937 SFB1DAD005 Theridiidae Spintharus flavidus IMEDEA SPIPO314‐10 STC1N4H021 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML BOLD PA2374 SFB1DAD006 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO315‐10 SFC1DBR017 Linyphiidae Lygromma volcan BOLD PA2495 SFB1DAD018 Linyphiidae Primerigonina australis IMEDEA SPIPO316‐10 STC1N7R017 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML BOLD PA3029 SFB1DAD025 Theridiidae Ameridion paidiscum IMEDEA SPIPO317‐10 SFB1DCR037 Linyphiidae Mermessus rapidulus BOLD PA881 SFB1DAH022 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO318‐10 SFD1DAR031 Linyphiidae Mermessus rapidulus BOLD PA2376 SFB1DAL002 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO319‐10 SFC1NAL001 Linyphiidae Mermessus rapidulus BOLD PA029 SFB1DAL005 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO320‐10 SAU1NFP018 Linyphiidae Paraletes pogo BOLD PA304 SFB1DAL032 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO321‐10 STC1D9R004 Linyphiidae Primerigonina australis BOLD PA2814 SFB1DAR006 Salticidae Cobanus unicolor IMEDEA SPIPO322‐10 STU1N7B005 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML BOLD PA2689 SFB1DAR013 Araneidae Micrathena molesta IMEDEA SPIPO323‐10 STU1N7R011 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML BOLD PA1185 SFB1DAR015 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO324‐10 STU1N8R013 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML BOLD PA2632 SFB1DAR018 Thomisidae Tmarus sp.2 FML IMEDEA SPIPO325‐10 SAU2NCA027 Linyphiidae Pocobletus sp.10 FML BOLD PA2986 SFB1DAR033 Theridiidae Phycosoma altum IMEDEA SPIPO326‐10 SAU1NDH027 Linyphiidae Pocobletus sp.10 FML BOLD PA2292 SFB1DAR034 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO327‐10 SAB1DER049 Linyphiidae Pocobletus sp.10 FML BOLD PA514 SFB1DAR035 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO328‐10 SAB1DGL027 Linyphiidae Pocobletus sp.10 FML BOLD PA2884 SFB1DBA001 Thomisidae Tmarus sp.1 FML IMEDEA SPIPO329‐10 SAB1DER052 Linyphiidae Pocobletus sp.10 FML BOLD PA1167 SFB1DBA005 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO330‐10 SAD1NGA012 Linyphiidae Walckenaeria sp.12 FML BOLD PA2368 SFB1DBA008 Linyphiidae Dubiaranea sp.12 FML IMEDEA SPIPO331‐10 SFD1NAA011 Linyphiidae Walckenaeria aenea BOLD PA2994 SFB1DBA011 Theridiidae Chroasiothes proximus IMEDEA SPIPO332‐10 SAU1NHP022 Linyphiidae Walckenaeria sp.13 FML BOLD PA2816 SFB1DBA014 Salticidae Cobanus sp.4 FML IMEDEA SPIPO333‐10 STD1N4R019 Linyphiidae Walckenaeria sp.10 FML BOLD PA254 SFB1DBA024 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO334‐10 SAC1DGP009 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda BOLD PA2365 SFB1DBD001 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO335‐10 SCD1NGH019 Linyphiidae Walckenaeria sp.11 FML BOLD PA1186 SFB1DBD007 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO336‐10 STU1N8H015 Mimetidae Mimetus rusticus BOLD PA2941 SFB1DBD011 Theridiidae Styposis sp.1 FML IMEDEA SPIPO337‐10 STB1D5R003 Mimetidae Mimetus rusticus BOLD PA928 SFB1DBD018 Uloboridae Philoponella p.5 IMEDEA SPIPO338‐10 STU1N7L019 Mimetidae Mimetus rusticus BOLD PA342 SFB1DBD023 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO339‐10 STU1N7B021 Mimetidae Mimetus sp.2 FML BOLD PA2803 SFB1DBD026 Salticidae Salticidae sp.3 FML IMEDEA SPIPO340‐10 SCD2NFA005 Mimetidae Mimetus sp.2 FML BOLD PA1178 SFB1DBH003 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO341‐10 SCU1NEH005 Mimetidae Mimetus sp.2 FML BOLD PA2808 SFB1DBH014 Salticidae Fluda princeps IMEDEA SPIPO342‐10 SFU1NAR052 Mimetidae Mimetus sp.1 FML BOLD PA363 SFB1DBH503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO343‐10 SFB1D9L005 Mimetidae Mimetus sp.1 FML BOLD PA364 SFB1DBH504 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO344‐10 SFU1NAR019 Mimetidae Mimetus sp.1 FML BOLD PA020 SFB1DBR010 Salticidae Cylistella sp. 1 IMEDEA SPIPO345‐10 STU1N7R019 Mimetidae Mimetus banksi BOLD PA1163 SFB1DBR039 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO346‐10 SCU1NHL005 Mimetidae Mimetus banksi BOLD PA1172 SFB1DCL001 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO347‐10 SFU1NBL003 Mimetidae Mimetus banksi BOLD PA2366 SFB1DCL004 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO348‐10 SFU1NCA036 Mimetidae Mimetus sp.3 FML BOLD PA327 SFB1DCL501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO349‐10 STU1N8L007 Miturgidae Eutichurus sp.1 FML BOLD PA3238 SFB1DCR006 Theridiidae Ariamnes attenuatus IMEDEA SPIPO350‐10 STD1N5R015 Mysmenidae Mysmena sp.5 FML BOLD PA2547 SFB1DCR018 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML IMEDEA SPIPO351‐10 SCU1NDR027 Mysmenidae Mysmena sp.1 FML BOLD PA016 SFB1DCR023 Salticidae Metaphidippus facetus IMEDEA SPIPO352‐10 SCU1NHR017 Mysmenidae Mysmena sp.1 FML BOLD PA2942 SFB1DCR027 Theridiidae Styposis sp.1 FML IMEDEA SPIPO353‐10 SCU2NDH009 Mysmenidae Mysmena sp.1 FML BOLD PA2927 SFB1DCR029 Theridiidae Exalbidion sexmaculatum IMEDEA SPIPO354‐10 SCD1NDR015 Mysmenidae Mysmena sp.1 FML BOLD PA2978 SFB1DCR035 Theridiidae Ameridion signum IMEDEA SPIPO355‐10 SFB1D8L017 Mysmenidae Mysmena sp.2 FML BOLD PA2666 SFB1DCR048 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML IMEDEA SPIPO356‐10 SFB1DAR026 Mysmenidae Mysmena sp.2 FML BOLD PA1173 SFB2D9R001 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO357‐10 SFC1NBR022 Mysmenidae Mysmena sp.2 FML BOLD PA2552 SFB2D9R011 Tetragnathidae Chrysometa alajuela IMEDEA SPIPO358‐10 SFC2NAR020 Mysmenidae Mysmena sp.2 FML BOLD PA2379 SFB2D9R012 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO359‐10 SFU1NCR029 Mysmenidae Mysmena sp.2 FML BOLD PA1132 SFB2D9R017 Uloboridae Philoponella sp.3 FML IMEDEA SPIPO360‐10 SCC1DFA019 Mysmenidae Mysmena sp.3 FML BOLD PA2800 SFB2D9R020 Salticidae Salticidae sp.2 FML IMEDEA SPIPO361‐10 SCC1NER015 Mysmenidae Mysmena sp.3 FML BOLD PA605 SFB2D9R036 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO362‐10 STD1N7L026 Mysmenidae Mysmena sp.3 FML BOLD PA1174 SFB2D9R039 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO363‐10 SCU1NDD018 Mysmenidae Mysmena sp.10 FML BOLD PA318 SFB2D9R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO364‐10 SCD1DHR012 Mysmenidae Mysmena sp.3 FML BOLD PA319 SFB2D9R501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO365‐10 SCD1DHR013 Mysmenidae Mysmena sp.4 FML BOLD PA320 SFB2D9R502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO366‐10 STD1D7B024 Mysmenidae Mysmena sp.4 FML BOLD PA704 SFB2DAA011 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO367‐10 STU1N8H023 Mysmenidae Mysmena sp.4 FML BOLD PA026 SFB2DAA015 Salticidae Ex‐Corythalia sp.3 FML IMEDEA SPIPO368‐10 STD1D7L026 Mysmenidae Mysmena sp.4 FML BOLD PA853 SFC1DAD005 Oonopidae Dysderina sp.1 FML IMEDEA SPIPO369‐10 STD1N7A024 Mysmenidae Mysmena sp.4 FML BOLD PA003 SFC1DAH010 Salticidae Corythalia sp.4 FML IMEDEA SPIPO370‐10 STD1N4L023 Mysmenidae Mysmena sp.5 FML BOLD PA2503 SFC1DAH014 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO371‐10 STC1N4H020 Mysmenidae Mysmena sp.5 FML BOLD PA2401 SFC1DAH015 Linyphiidae Erigoninae sp.5 FML IMEDEA SPIPO372‐10 STC1D8R018 Mysmenidae Mysmena sp.5 FML BOLD PA251 SFC1DAH018 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO373‐10 SFC1DCR027 Mysmenidae Mysmena sp.8 FML BOLD PA774 SFC1DAH022 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO374‐10 SFC2DCD019 Mysmenidae Mysmena sp.8 FML BOLD PA2288 SFC1DBA001 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO375‐10 SFC1N8H014 Mysmenidae Mysmena sp.8 FML BOLD PA2917 SFC1DBA009 Pholcidae Anopsicus chiriqui IMEDEA SPIPO376‐10 SFD1DAR013 Mysmenidae Mysmena sp.8 FML BOLD PA2912 SFC1DBA010 Ctenidae Ctenus sp.2 FML IMEDEA SPIPO377‐10 SFC1NAR017 Mysmenidae Mysmena sp.8 FML BOLD PA3060 SFC1DBA017 Prodidomidae Lygromma volcan IMEDEA SPIPO378‐10 SFD1DAA025 Mysmenidae Mysmena sp.9 FML BOLD PA3120 SFC1DBD007 Symphytognathidae Patu digua IMEDEA SPIPO379‐10 SFD1D8R006 Mysmenidae Mysmena sp.9 FML BOLD PA2500 SFC1DBD012 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO380‐10 SFC1DCL005 Mysmenidae Mermessus rapidulus BOLD PA502 SFC1DBD020 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO381‐10 STB1D8R010 Araneidae Alpaida sp.1 FML BOLD PA862 SFC1DBH001 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO382‐10 SFU2NAH009 Araneidae Alpaida tuonabo BOLD PA2686 SFC1DBH001 Araneidae Pronous peje IMEDEA SPIPO383‐10 SFU1NAL047 Araneidae Azilia guatemalensis BOLD PA715 SFC1DBH005 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO384‐10 SAU1NDB021 Araneidae Araneus nuboso BOLD PA2291 SFC1DBH008 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO385‐10 SAB2DEB019 Araneidae Araneus nuboso BOLD PA2281 SFC1DBH009 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO386‐10 SAU1NCB016 Araneidae Araneus nuboso BOLD PA580 SFC1DBH014 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO387‐10 SAU1NCH021 Araneidae Araneus nuboso BOLD PA815 SFC1DBH015 Oonopidae Cf Oonopoides sp.1 FML IMEDEA SPIPO388‐10 SAU1NFA008 Araneidae Araneus nuboso BOLD PA863 SFC1DBH016 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO389‐10 SFB1DBR007 Araneidae Araneus sp.1 FML BOLD PA2282 SFC1DBH018 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO390‐10 SFU2N7R002 Araneidae Araneus sp.1 FML BOLD PA2283 SFC1DBH019 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO391‐10 SFU1N8H011 Araneidae Araneus sp.1 FML BOLD PA2284 SFC1DBH020 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO392‐10 SAD1NGB012 Araneidae Araneus sp.2 FML BOLD PA2285 SFC1DBH021 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO393‐10 SAU1NCA027 Araneidae Araneus sp.2 FML BOLD PA581 SFC1DBH500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO394‐10 SAU1NFP014 Araneidae Araneus sp.2 FML BOLD PA582 SFC1DBH501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO395‐10 STU1N5L013 Araneidae Araneus sp.3 FML BOLD PA583 SFC1DBH502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO396‐10 SFU1NBA028 Araneidae Bertrana sp.1 FML BOLD PA584 SFC1DBH503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO397‐10 SFU2NAD026 Araneidae Bertrana sp.1 FML BOLD PA336 SFC1DBL008 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO398‐10 SAU1NFA002 Araneidae Bertrana sp.2 FML BOLD PA858 SFC1DBL009 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO399‐10 SAU1NCR014 Araneidae Bertrana sp.2 FML BOLD PA2911 SFC1DBL010 Ctenidae Ctenus sp.2 FML IMEDEA SPIPO400‐10 SAU1NFB022 Araneidae Bertrana sp.2 FML BOLD PA537 SFC1DBL013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO401‐10 SAU1NCA026 Araneidae Bertrana sp.2 FML BOLD PA538 SFC1DBL500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO402‐10 SAU1NDA021 Araneidae Bertrana sp.2 FML BOLD PA539 SFC1DBL501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO403‐10 STU1N8B016 Araneidae Cyclosa caroli BOLD PA540 SFC1DBL502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO404‐10 SCB1DIH006 Araneidae Cyclosa caroli BOLD PA002 SFC1DBR005 Salticidae Corythalia sp.4 FML IMEDEA SPIPO405‐10 SCU1NER008 Araneidae Cyclosa caroli BOLD PA1142 SFC1DBR010 Prodidomidae Lygromma sp.2 FML IMEDEA SPIPO406‐10 STU1N8A001 Araneidae Eriophora sp.1 FML BOLD PA777 SFC1DBR013 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO407‐10 STD1N5B011 Araneidae Eustala sp.10 FML BOLD PA3098 SFC1DBR014 Nesticidae Eidmannella sp.2 FML IMEDEA SPIPO408‐10 SAC2NDL006 Araneidae Eustala sp.11 FML BOLD PA2434 SFC1DBR023 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO409‐10 STU1N8A010 Araneidae Eustala sp.10 FML BOLD PA2899 SFC1DBR028 Prodidomidae Lygroma sp.2 FML IMEDEA SPIPO410‐10 SAC1NDR003 Araneidae Eustala sp.11 FML BOLD PA614 SFC1DBR029 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO412‐10 STU1N5H006 Araneidae Hypognatha elaborata BOLD PA377 SFC1DBR500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO413‐10 STU2N8L002 Araneidae Hypognatha elaborata BOLD PA616 SFC1DBR507 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO414‐10 SCB1DGR013 Araneidae Mangora melanocephala BOLD PA758 SFC1DBR508 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO415‐10 STU1N4B012 Araneidae Mangora melanocephala BOLD PA365 SFC1DCA002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO416‐10 SCC1NHR024 Araneidae Mangora melanocephala BOLD PA3103 SFC1DCA007 Linyphiidae Erigoninae sp.5 FML IMEDEA SPIPO417‐10 STU1N7A011 Araneidae Mangora sp.1 FML BOLD PA857 SFC1DCA009 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO418‐10 STU2N8H004 Araneidae Mangora sp.1 FML BOLD PA2824 SFC1DCD003 Salticidae Corythalia sulphurea IMEDEA SPIPO419‐10 STB1D9B022 Araneidae Mangora sp.1 FML BOLD PA2275 SFC1DCD010 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO420‐10 STB1D8B017 Araneidae Mangora sp.1 FML BOLD PA2417 SFC1DCD014 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO421‐10 STB1D7A021 Araneidae Mangora sp.1 FML BOLD PA510 SFC1DCD015 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO422‐10 SFD1NBR009 Araneidae Mangora volcan BOLD PA2276 SFC1DCD016 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO423‐10 SFD1NBL011 Araneidae Mangora volcan BOLD PA2277 SFC1DCD017 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO424‐10 SFB1DBR004 Araneidae Mangora volcan BOLD PA2278 SFC1DCD018 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO425‐10 SAU1NFH011 Araneidae Micrathena crassa BOLD PA2651 SFC1DCH003 Pholcidae Anopsicus chiriqui IMEDEA SPIPO426‐10 SAD1DHL001 Araneidae Micrathena crassa BOLD PA2327 SFC1DCH005 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPO427‐10 SAB2DEB017 Araneidae Micrathena crassa BOLD PA1205 SFC1DCH006 Corinnidae Trachelas prominens IMEDEA SPIPO428‐10 SAB1DDB005 Araneidae Micrathena crassa BOLD PA2286 SFC1DCH008 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO429‐10 SAB1DDR012 Araneidae Micrathena crassa BOLD PA273 SFC1DCH011 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO430‐10 STU1N7L009 Araneidae Micrathena donaldi BOLD PA513 SFC1DCH013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO431‐10 STU1N6A002 Araneidae Micrathena duodecimspinosa BOLD PA2287 SFC1DCH014 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO432‐10 STU2N8A015 Araneidae Micrathena duodecimspinosa BOLD PA766 SFC1DCL 507 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO433‐10 SCU1NDL007 Araneidae Micrathena duodecimspinosa BOLD PA767 SFC1DCL 508 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO434‐10 SFU2NCH004 Araneidae Micrathena lucasi BOLD PA768 SFC1DCL 509 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO435‐10 SCU2NHL005 Araneidae Micrathena lucasi BOLD PA769 SFC1DCL 510 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO436‐10 SCB1DIL004 Araneidae Micrathena lucasi BOLD PA2504 SFC1DCL003 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO437‐10 SFU1N8L005 Araneidae Micrathena molesta BOLD PA597 SFC1DCL008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO438‐10 SFB1DBR001 Araneidae Micrathena molesta BOLD PA598 SFC1DCL500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO439‐10 SFU2N8H007 Araneidae Micrathena molesta BOLD PA854 SFC1N7A005 Oonopidae Dysderina sp.1 FML IMEDEA SPIPO440‐10 SAD1NHH008 Araneidae Ocrepeira rufa BOLD PA3129 SFC1N7D009 Theridiidae Stennops questus IMEDEA SPIPO441‐10 SCU1NEL004a Araneidae Parawixia nesophila BOLD PA2501 SFC1N7H002 Linyphiidae Walckenaeria aenea IMEDEA SPIPO442‐10 STU1N4H001 Araneidae Parawixia rigida BOLD PA3099 SFC1N7H004 Nesticidae Eidmannella sp.2 FML IMEDEA SPIPO443‐10 STD1N7L001 Araneidae Parawixia rigida BOLD PA2948 SFC1N7H006 Theridiidae Dipoena sp.2 FML IMEDEA SPIPO444‐10 SFD1NCA035 Araneidae Parawixia rimosa BOLD PA1193 SFC1N7H008 Corinnidae Trachelas truncatulus IMEDEA SPIPO445‐10 SFU1NBH045 Araneidae Parawixia rimosa BOLD PA2918 SFC1N7H012 Pholcidae Anopsicus chiriqui IMEDEA SPIPO446‐10 SFU1NAA038 Araneidae Parawixia rimosa BOLD PA3157 SFC1N7L007 Pholcidae Anopsicus chiriqui IMEDEA SPIPO447‐10 SCU1NGH029 Araneidae Parawixia sp.1 FML BOLD PA358 SFC1N7L012 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO448‐10 SFU1N7R028 Araneidae Parawixia sp.10 FML BOLD PA1137 SFC1N7R002 Zodaridae Ishania sp.1 FML IMEDEA SPIPO449‐10 SCB1DGH001 Araneidae Parawixia sp.1 FML BOLD PA2397 SFC1N7R006 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO450‐10 SCU1NGH002 Araneidae Parawixia sp.1 FML BOLD PA1124 SFC1N7R007 Corinnidae Phrurolithus sp.1 FML IMEDEA SPIPO451‐10 STD1N6R019 Araneidae Witica cayana BOLD PA1165 SFC1N7R009 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO452‐10 STU1N6H005 Araneidae Witica cayana BOLD PA517 SFC1N7R022 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO453‐10 SFU1NCD012 Araneidae Pronous peje BOLD PA350 SFC1N7R504 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO454‐10 SFC1NAR001 Araneidae Pronous peje BOLD PA2931 SFC1N8A001 Theridiidae Theridion cf albulum IMEDEA SPIPO455‐10 SFD1D8A016 Araneidae Pronous peje BOLD PA1191 SFC1N8A014 Corinnidae Trachelas truncatulus IMEDEA SPIPO456‐10 STD1N6H011 Araneidae Pronous wixoides BOLD PA2821 SFC1N8A017 Salticidae Corythalia sp.8 FML IMEDEA SPIPO457‐10 STC1D9H001 Araneidae Pronous wixoides BOLD PA1206 SFC1N8D006 Corinnidae Trachelas prominens IMEDEA SPIPO458‐10 STB1D6A001 Araneidae Pronous wixoides BOLD PA005 SFC1N8D010 Salticidae Cobanus sp.3 FML IMEDEA SPIPO459‐10 STD1N6R005 Araneidae Pronous wixoides BOLD PA173 SFC1N8D015 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO460‐10 STC1D5L005 Araneidae Pronous wixoides BOLD PA1207 SFC1N8D017 Corinnidae Trachelas prominens IMEDEA SPIPO461‐10 SAU1NFL026 Linyphiidae Erigone sp.10 FML BOLD PA174 SFC1N8D501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO462‐10 SFC1DCR009 Mysmenidae Ctenus sp.2 FML BOLD PA859 SFC1N8H002 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO463‐10 SFD1NCR018 Mysmenidae Mysmena sp.6 FML BOLD PA754 SFC1N8H005 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO464‐10 SFD1NCD025 Mysmenidae Mysmena sp.8 FML BOLD PA2345 SFC1N8H016 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPO465‐10 SFD1NCD014 Mysmenidae Mysmena sp.6 FML BOLD PA2340 SFC1N8H021 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPO466‐10 SFU1D9A023 Mysmenidae Mysmena sp.8 FML BOLD PA1177 SFC1N8H022 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO467‐10 SAU1NHH026 Mysmenidae Mysmena sp.7 FML BOLD PA2346 SFC1N8H026 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPO468‐10 SAC1NDH022 Mysmenidae Mysmena sp.7 FML BOLD PA046 SFC1N8L001 Ctenidae Ctenus sp.2 FML IMEDEA SPIPO469‐10 SAC1NDH023 Mysmenidae Mysmena sp.7 FML BOLD PA2522 SFC1N8L006 Theridiidae Ameridion paidiscum IMEDEA SPIPO470‐10 SAD1NFL020 Mysmenidae Mysmena sp.7 FML BOLD PA2302 SFC1N8L007 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO471‐10 SAC1DDR015 Mysmenidae Mysmena sp.7 FML BOLD PA1204 SFC1N8R001 Corinnidae Trachelas prominens IMEDEA SPIPO472‐10 SCU1NHR014 Mysmenidae Mysmenopsis gamboa BOLD PA2607 SFC1N8R005 Hahniidae Neoantistea sp.1 FML IMEDEA SPIPO473‐10 SCD1DFR030 Mysmenidae Mysmenopsis gamboa BOLD PA2290 SFC1N8R019 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO474‐10 SCD1DFR029 Mysmenidae Mysmenopsis gamboa BOLD PA2419 SFC1NAL001 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO475‐10 SCD1DFR020 Mysmenidae Mysmenopsis gamboa BOLD PA756 SFC1NAL005 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO476‐10 STD1D6H030 Mysmenidae Mysmenopsis gamboa BOLD PA034 SFC1NAL008 Corinnidae Creugas sp.1 FML IMEDEA SPIPO477‐10 SCD1NGA017 Mysmenidae Mysmenopsis sp.1 FML BOLD PA381 SFC1NAL012 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO478‐10 SFU1N7H032 Mysmenidae Mysmenopsis sp.2 FML BOLD PA2420 SFC1NAL015 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO479‐10 SFD2NBL025 Mysmenidae Mysmenopsis sp.4 FML BOLD PA2421 SFC1NAL016 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO480‐10 SFU1N8H026 Mysmenidae Mysmenopsis sp.2 FML BOLD PA866 SFC1NAR003 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO481‐10 SFD1NBR029 Mysmenidae Mysmenopsis sp.2 FML BOLD PA2909 SFC1NAR006 Ctenidae Ctenus sp.2 FML IMEDEA SPIPO482‐10 SFD1NCH023 Mysmenidae Mysmenopsis sp.2 FML BOLD PA2819 SFC1NAR011 Salticidae Corythalia sp.8 FML IMEDEA SPIPO483‐10 SAD1NCH022 Mysmenidae Mysmenopsis sp.3 FML BOLD PA867 SFC1NAR025 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO484‐10 SAB1DGA011 Mysmenidae Mysmenopsis sp.3 FML BOLD PA755 SFC1NAR027 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO485‐10 SAD1DGL015 Mysmenidae Mysmenopsis sp.3 FML BOLD PA932 SFC1NBD002 Uloboridae Philoponella sp.7 FML IMEDEA SPIPO486‐10 SAD1NHP007 Mysmenidae Mysmenopsis sp.3 FML BOLD PA944 SFC1NBD021 Linyphiidae Primerigonina australis IMEDEA SPIPO487‐10 SFC1DAH016 Mysmenidae Mysmenopsis sp.4 FML BOLD PA023 SFC1NBR002 Salticidae Ex‐Corythalia sp.2 FML IMEDEA SPIPO488‐10 STC1D6L006 Mysmenidae Mysmenopsis sp.4 FML BOLD PA2774 SFC1NBR007 Clubionidae Elaver sp.1 FML IMEDEA SPIPO489‐10 SFC1N7R023 Mysmenidae Mysmenopsis sp.4 FML BOLD PA2683 SFC1NBR011 Araneidae Pronous peje IMEDEA SPIPO490‐10 SFC1N7R017 Mysmenidae Mysmenopsis sp.4 FML BOLD PA2862 SFC1NBR012 Hahniidae Neoantistea sp.1 FML IMEDEA SPIPO491‐10 SFC1NCA008 Nesticidae Eidmannella pallida BOLD PA037 SFC1NBR014 Corinnidae Megalostrata raptrix IMEDEA SPIPO492‐10 SFC1N8L005 Nesticidae Eidmannella pallida BOLD PA3102 SFC1NBR017 Linyphiidae Erigoninae sp.5 FML IMEDEA SPIPO493‐10 SFC2N8R007 Nesticidae Eidmannella pallida BOLD PA763 SFC1NBR019 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO494‐10 SFD1D9L026 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.1 FML BOLD PA2768 SFC1NBR026 Clubionidae Elaver sp.1 FML IMEDEA SPIPO495‐10 SFC2N8R017 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.1 FML BOLD PA2579 SFC1NCD004 Salticidae Corythalia sp.1 FML IMEDEA SPIPO496‐10 SFC2N8R025 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.1 FML BOLD PA512 SFC1NCD010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO497‐10 SCC2NFL005 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.3 FML BOLD PA3104 SFC1NCD021 Linyphiidae Erigoninae sp.5 FML IMEDEA SPIPO498‐10 SCC2NFR014 Ochyroceratidae BOLD PA2828 SFC1NCD022 Salticidae Corythalia sp.1 FML IMEDEA SPIPO499‐10 SCC1NDL008 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.3 FML BOLD PA2829 SFC1NCD023 Salticidae Corythalia sp.1 FML IMEDEA SPIPO500‐10 SCC1NDL009 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.3 FML BOLD PA131 SFC1NCD500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO501‐10 SCC1NDL004 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.3 FML BOLD PA170 SFC1NCD503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO502‐10 SCC1DFA013 Ochyroceratidae BOLD PA028 SFC1NCL005 Salticidae Corythalia sp.8 FML IMEDEA SPIPO503‐10 SAC1NDH019 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.6 FML BOLD PA1203 SFC1NCL006 Corinnidae Trachelas prominens IMEDEA SPIPO504‐10 SAB1DHB019 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.6 FML BOLD PA2919 SFC1NCL008 Pholcidae Anopsicus chiriqui IMEDEA SPIPO505‐10 SAC2NDR013 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.6 FML BOLD PA2297 SFC1NCL013 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO506‐10 SAC1DDL003 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.6 FML BOLD PA499 SFC1NCL023 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO507‐10 SAD1NCL006 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.6 FML BOLD PA2654 SFC1NCR002 Pholcidae Anopsicus sp.1 FML IMEDEA SPIPO508‐10 STC2D8L017 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.7 FML BOLD PA3061 SFC1NCR008 Prodidomidae Lygromma volcan IMEDEA SPIPO509‐10 STD1D7H005 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.5 FML BOLD PA1195 SFC1NCR013 Corinnidae Trachelas prominens IMEDEA SPIPO510‐10 STC1N6R010 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.5 FML BOLD PA959 SFC1NER021 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO511‐10 STC1D6R005 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.5 FML BOLD PA3059 SFC2DBL003 Prodidomidae Lygromma volcan IMEDEA SPIPO512‐10 STC1D8R024 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.5 FML BOLD PA592 SFC2DBL005 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO513‐10 STC1N4R012 Ochyroceratidae Ochyroceratinae sp.5 FML BOLD PA789 SFC2DBL008 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO514‐10 STC1N8R024 Ochyroceratidae Theotima sp.3 FML BOLD PA2726 SFC2DBL010 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.1 FML IMEDEA SPIPO515‐10 STC1D9B008 Ochyroceratidae Theotima sp.3 FML BOLD PA593 SFC2DBL500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO516‐10 STC1N6R017 Ochyroceratidae Theotima sp.3 FML BOLD PA2298 SFC2DCA004 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO517‐10 STC1D9R010 Ochyroceratidae Theotima sp.3 FML BOLD PA3042 SFC2DCA008 Theridiidae Stemmops questus IMEDEA SPIPO518‐10 SFC1NAL003 Oonopidae Dysderina sp.1 FML BOLD PA509 SFC2DCD018 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO519‐10 STC2D6R016 Ochyroceratidae Theotima sp.3 FML BOLD PA1194 SFC2DCH001 Corinnidae Trachelas prominens IMEDEA SPIPO520‐10 SFD1NCL002 Oonopidae Dysderina sp.1 FML BOLD PA560 SFC2DCH502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO521‐10 SFC2DCA006a Oonopidae Dysderina sp.1 FML BOLD PA561 SFC2DCH503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO522‐10 SFC1DCA008 Oonopidae Dysderina sp.2 FML BOLD PA2802 SFC2N8L001 Salticidae Salticidae sp.3 FML IMEDEA SPIPO523‐10 SFD1NBH029 Oonopidae Dysderina sp.7 FML BOLD PA2949 SFC2N8R013 Theridiidae Dipoena sp.2 FML IMEDEA SPIPO524‐10 SFC1NAR026 Oonopidae Dysderina sp.2 FML BOLD PA3107 SFC2N8R024 Nesticidae Eidmannella pallida IMEDEA SPIPO525‐10 STB1D5L020 Oonopidae Dysderina sp.3 FML BOLD PA772 SFC2N8R502 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO526‐10 SCC1DEA009 Oonopidae Dysderina dura BOLD PA860 SFC2NAR003 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO527‐10 SCB1DFD013 Oonopidae Dysderina dura BOLD PA1169 SFC2NAR007 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO528‐10 SCB1DGL013 Oonopidae Dysderina dura BOLD PA2642 SFC2NAR009 Tetragnathidae Chrysimeta poas IMEDEA SPIPO529‐10 SCC1NFR030 Oonopidae Dysderina dura BOLD PA3004 SFC2NAR013 Theridiidae Faiditus bryantae IMEDEA SPIPO530‐10 STC1N4R010 Oonopidae Dysderina sp.4 FML BOLD PA2497 SFC2NAR017 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO531‐10 STC1N7A002 Oonopidae Dysderina sp.4 FML BOLD PA753 SFC2NAR019 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO532‐10 STD1N5L004 Oonopidae Dysderina sp.4 FML BOLD PA595 SFC2NAR023 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO533‐10 SAC1NGL002 Oonopidae Dysderina sp.5 FML BOLD PA360 SFC2NAR026 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO534‐10 SAC1NFP006 Oonopidae Dysderina sp.5 FML BOLD PA764 SFC2NAR036 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO535‐10 SAC1NGP007 Oonopidae Dysderina sp.5 FML BOLD PA861 SFC2NAR038 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO536‐10 SAC1DEL014 Oonopidae Dysderina sp.10 FML BOLD PA948 SFC2NAR040 Linyphiidae Erigoninae sp.5 FML IMEDEA SPIPO537‐10 STB1D8R030 Oonopidae Oonops donaldi BOLD PA3176 SFD1D8D002 Araneidae Mangora volcan IMEDEA SPIPO538‐10 STB1D7A009 Oonopidae Oonops donaldi BOLD PA2608 SFD1D8H002 Hahniidae Neoantistea sp.1 FML IMEDEA SPIPO539‐10 STU1N6R008 Oonopidae Oonops donaldi BOLD PA2820 SFD1D8H004 Salticidae Corythalia sp.8 FML IMEDEA SPIPO540‐10 SFB1DAH027 Oonopidae Orchestina sp.10 FML BOLD PA2293 SFD1D8H007 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO541‐10 SAC1NHA007 Pholcidae Anopsicus cf concinnus BOLD PA2659 SFD1D8L006 Tetragnathidae Leucauge sp.1 FML IMEDEA SPIPO542‐10 SAC1DDA007 Pholcidae Anopsicus cf concinnus BOLD PA2377 SFD1D8L007 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO543‐10 SAC1NFL012 Pholcidae Anopsicus cf concinnus BOLD PA2344 SFD1D9L005 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPO544‐10 SAC1DFA002 Pholcidae Anopsicus cf concinnus BOLD PA3168 SFD1D9L018 Araneidae Micrathena molesta IMEDEA SPIPO545‐10 SAC1DGB024 Pholcidae Anopsicus cf concinnus BOLD PA3117 SFD1D9L019 Ochyrocerathidae Ochyroceratinae sp.1 FML IMEDEA SPIPO546‐10 SCC1DID007 Pholcidae Anopsicus panama BOLD PA001 SFD1D9L020 Salticidae Corythalia sp.7 FML IMEDEA SPIPO547‐10 SCD1DFA021 Pholcidae Anopsicus panama BOLD PA3118 SFD1D9L026 Ochyrocerathidae Ochyroceratinae sp.1 FML IMEDEA SPIPO548‐10 SCC2NGR032 Pholcidae Anopsicus cf panama BOLD PA696 SFD1DAA010 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO549‐10 STD1N6L006 Pholcidae Priscula sp.1 FML BOLD PA019 SFD1DAL002 Salticidae Corythalia sp.1 FML IMEDEA SPIPO550‐10 SCU1NHR002 Pholcidae Ixchela sp.1 FML BOLD PA740 SFD1DAL005 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO551‐10 STC2D8L008 Pholcidae Priscula sp.1 FML BOLD PA741 SFD1DAL500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO552‐10 STD1D7L011 Pholcidae Priscula sp.1 FML BOLD PA2294 SFD1DAR019 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO553‐10 STU1N4R019 Pholcidae Priscula sp.1 FML BOLD PA2274 SFD1DAR020 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO554‐10 SCC1NFR005 Pholcidae Metagonia sp.1 FML BOLD PA536 SFD1DAR029 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO555‐10 SCU1NHH016 Pholcidae Metagonia sp.1 FML BOLD PA2295 SFD1DAR031 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO556‐10 STU1N4B003 Pholcidae Metagonia sp.1 FML BOLD PA2296 SFD1DAR032 Linyphiidae Mermessus rapidulus IMEDEA SPIPO557‐10 STU2N8L007 Pholcidae Metagonia sp.1 FML BOLD PA2785 SFD1NAA005 Ctenidae Ctenus sinuatipes IMEDEA SPIPO558‐10 STU1N6H011 Pholcidae Metagonia sp.1 FML BOLD PA903 SFD1NAH001 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO559‐10 SAD1NHH018 Pholcidae Modisimus coco BOLD PA1125 SFD1NAH002 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO560‐10 SAB1DDB010 Pholcidae Modisimus coco BOLD PA2494 SFD1NAH005 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO561‐10 SAU2NFA011 Pholcidae Modisimus coco BOLD PA2534 SFD1NAH008 Araneidae Mangora volcan IMEDEA SPIPO562‐10 SAU1NCL020 Pholcidae Modisimus coco BOLD PA296 SFD1NAH012 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO563‐10 STD1N4A019 Pholcidae Modisimus sp.10 FML BOLD PA2817 SFD1NAH018 Salticidae Cobanus sp.4 FML IMEDEA SPIPO564‐10 SAC1NHH015 Pholcidae Modisimus guatuso BOLD PA309 SFD1NAH028 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO565‐10 SAC1NHP021 Pholcidae Modisimus guatuso BOLD PA2535 SFD1NAL007 Araneidae Parawixia rimosa IMEDEA SPIPO566‐10 SFD1NCD005 Pholcidae Modisimus guatuso BOLD PA3174 SFD1NAL008 Araneidae Bertana sp.1 FML IMEDEA SPIPO567‐10 SCU1NDH002 Pholcidae Modisimus pulchellus BOLD PA2950 SFD1NAL017 Theridiidae Dipoena sp.2 FML IMEDEA SPIPO568‐10 SCU1DHL015 Pholcidae Modisimus pulchellus BOLD PA367 SFD1NAL023 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO569‐10 SCD1NGL004 Pholcidae Modisimus pulchellus BOLD PA2910 SFD1NAL024 Ctenidae Ctenus sp.2 FML IMEDEA SPIPO570‐10 SFU1N8L015 Pholcidae Modisimus sp.1 FML BOLD PA047 SFD1NAL028 Ctenidae Ctenus sinuatipes IMEDEA SPIPO571‐10 STB1D9H012 Pholcidae Modisimus sp.3 FML BOLD PA038 SFD1NBA002 Corinnidae Septentrinna sp.1 FML IMEDEA SPIPO572‐10 STC1N4L012 Pholcidae Modisimus sp.3 FML BOLD PA2784 SFD1NBA008 Ctenidae Ctenus sinuatipes IMEDEA SPIPO573‐10 STD1D6H016 Pholcidae Modisimus sp.3 FML BOLD PA2934 SFD1NBA031 Theridiidae Dipoena sp.1 FML IMEDEA SPIPO574‐10 SCC1DIR029 Pholcidae Anopsicus sp.2 FML BOLD PA864 SFD1NBH004 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO575‐10 SCC1DIR028 Pholcidae Anopsicus sp.2 FML BOLD PA713 SFD1NBH005 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO576‐10 SCC1DIR008 Pholcidae Anopsicus sp.2 FML BOLD PA2540 SFD1NBH015 Clubionidae Elaver lutescens IMEDEA SPIPO577‐10 SCC1DIR030 Pholcidae Anopsicus sp.2 FML BOLD PA3105 SFD1NBH022 Linyphiidae Erigoninae sp.5 FML IMEDEA SPIPO578‐10 SFB1D8L006 Pholcidae Anopsicus chiriqui BOLD PA245 SFD1NBH027 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO579‐10 SFB1D8L031 Pholcidae Anopsicus chiriqui BOLD PA865 SFD1NBH029 Oonopidae Dysderina sp.2 FML IMEDEA SPIPO580‐10 SFC1DCR001 Pholcidae Mysmena sp.9 FML BOLD PA3045 SFD1NBH032 Theridiidae Stemmops questus IMEDEA SPIPO581‐10 STC1N6R005 Pholcidae Anopsicus sp.3 FML BOLD PA2915 SFD1NBL002 Scytodidae Scytodes longipes IMEDEA SPIPO582‐10 STC1D9L009 Pholcidae Anopsicus sp.3 FML BOLD PA048 SFD1NBL005 Ctenidae Ctenus sinuatipes IMEDEA SPIPO583‐10 STC1D5L013 Pholcidae Anopsicus sp.3 FML BOLD PA1135 SFD1NBL006 Uloboridae Philoponella sp.7 FML IMEDEA SPIPO584‐10 STC1N8B015 Pholcidae Anopsicus sp.3 FML BOLD PA3119 SFD1NBL014 Symphytognathidae Patu digua IMEDEA SPIPO585‐10 STC1N6H016 Pholcidae Anopsicus sp.3 FML BOLD PA2739 SFD1NBL030 Theridiosomatidae Wendilgarda sp.1 FML IMEDEA SPIPO586‐10 STC1D8R005 Pholcidae Modisimus sp.4 FML BOLD PA3096 SFD1NBL035 Scytodidae Scytodes longipes IMEDEA SPIPO587‐10 STD1N5A007 Pholcidae Modisimus sp.4 FML BOLD PA2740 SFD1NBL036 Theridiosomatidae Baalzebub sp.1 FML IMEDEA SPIPO588‐10 STD1N7L025 Pholcidae Modisimus sp.4 FML BOLD PA312 SFD1NBR001 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO589‐10 STD1N5H006 Pholcidae Modisimus sp.4 FML BOLD PA2560 SFD1NBR010 Araneidae Pronous peje IMEDEA SPIPO590‐10 STD1N7L018 Pholcidae Modisimus sp.4 FML BOLD PA2980 SFD1NBR032 Theridiidae Ameridion signum IMEDEA SPIPO591‐10 STC1D5A016 Pholcidae Modisimus sp.3 FML BOLD PA2818 SFD1NBR038 Salticidae Cobanus sp.4 FML IMEDEA SPIPO592‐10 STC1D5A007 Pholcidae Modisimus sp.3 FML BOLD PA3194 SFD1NBR039 Theridiidae Faiditus caudatus IMEDEA SPIPO593‐10 SFU2NBA042 Pholcidae Modisimus sp.1 FML BOLD PA2370 SFD1NBR040 Linyphiidae Dubiaranea sp.12 FML IMEDEA SPIPO594‐10 SFU2NBA018 Pholcidae Modisimus sp.1 FML BOLD PA2289 SFD1NBR041 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA SPIPO595‐10 STB1D6H019 Pholcidae Modisimus pittier BOLD PA650 SFD1NBR056 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO596‐10 STD1N6A020 Pholcidae Modisimus pittier BOLD PA651 SFD1NBR500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO597‐10 STC2D8L009 Pholcidae Modisimus pittier BOLD PA2798 SFD1NCA025 Salticidae Salticidae sp.2 FML IMEDEA SPIPO598‐10 STC1N7L012 Pholcidae Modisimus pittier BOLD PA2929 SFD1NCA040 Theridiidae Dipoena banksi IMEDEA SPIPO599‐10 STD1D6B006 Pholcidae Modisimus pittier BOLD PA941 SFD1NCD010 Linyphiidae Walckenaeria aenea IMEDEA SPIPO600‐10 SCD1DFR010 Pholcidae Modisimus sp.2 FML BOLD PA2685 SFD1NCH004 Araneidae Pronous peje IMEDEA SPIPO601‐10 STU1N8L025 Pholcidae Modisimus sp.2 FML BOLD PA021 SFD1NCH026 Salticidae Cylistella sp. 1 IMEDEA SPIPO602‐10 STC2D8H010 Pholcidae Modisimus sp.11 FML BOLD PA3031 SFD1NCH028 Theridiidae Achaearanea florendida IMEDEA SPIPO603‐10 SCU1NGD011 Pholcidae Modisimus sp.2 FML BOLD PA2971 SFD1NCH030 Theridiidae Dipoena lana IMEDEA SPIPO604‐10 SCB2DGL023 Pholcidae Modisimus sp.2 FML BOLD PA2775 SFD1NCL005 Clubionidae Elaver sp.1 FML IMEDEA SPIPO605‐10 SFC2DBL003 Prodidomidae Lygromma volcan BOLD PA2661 SFD1NCL006 Tetragnathidae Chrysometa poas IMEDEA SPIPO606‐10 SFC1DBR010a Prodidomidae Corythalia sp.4 FML BOLD PA010 SFD1NCL009 Salticidae Cobanus sp.4 FML IMEDEA SPIPO607‐10 SFC1DAD001 Prodidomidae Lygromma sp.1 FML BOLD PA3043 SFD1NCL013 Theridiidae Stemmops questus IMEDEA SPIPO608‐10 SFC1NCL009 Prodidomidae Lygromma sp.1 FML BOLD PA640 SFD1NCL026 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO609‐10 SFC1NCA010 Prodidomidae Lygromma sp.1 FML BOLD PA642 SFD1NCL501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO610‐10 SCD2NED013 Prodidomidae Lygromma sp.10 FML BOLD PA370 SFD1NCR005 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO611‐10 SCU1NGD005 Salticidae Acragas sp.1 FML BOLD PA2749 SFD1NCR006 Theridiosomatidae Chthonos sp.2 FML IMEDEA SPIPO612‐10 SCB1DEH004 Salticidae Sassacus sp.1 FML BOLD PA3227 SFD1NCR019 Theridiidae Dipoena sp.2 FML IMEDEA SPIPO613‐10 SCB1DGA022 Salticidae Sassacus sp.1 FML BOLD PA3044 SFD1NCR020 Theridiidae Stemmops questus IMEDEA SPIPO614‐10 SCU2NHD007 Salticidae Chapoda sp.1 FML BOLD PA698 SFD1NCR028 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO615‐10 SCU1NHA012 Salticidae Chapoda sp.1 FML BOLD PA2916 SFD1NCR039 Scytodidae Scytodes longipes IMEDEA SPIPO616‐10 SCU1NGA008 Salticidae Chapoda sp.1 FML BOLD PA2786 SFD2NBL006 Ctenidae Ctenus sinuatipes IMEDEA SPIPO617‐10 SAB1DFH002 Salticidae Cotinusa sp.10 FML BOLD PA2537 SFD2NBL012 Araneidae Pronous peje IMEDEA SPIPO618‐10 SFB1D8R032 Salticidae Cobanus incurvus BOLD PA2662 SFD2NBL033 Tetragnathidae Chrysometa poas IMEDEA SPIPO619‐10 SFC1NCD008 Salticidae Cobanus incurvus BOLD PA2544 SFD2NBL034 Tetragnathidae Chrysometa poas IMEDEA SPIPO620‐10 SFU1NAA004 Salticidae Cobanus incurvus BOLD PA674 SFD2NBL501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO621‐10 STB1D9R003 Salticidae Cobanus seclusus BOLD PA2510 SFD2NBR063 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPO622‐10 STU1N5A012 Salticidae Cobanus seclusus BOLD PA3239 SFU1D9D001 Theridiidae Anelosimus baeza IMEDEA SPIPO623‐10 STU1N5H019 Salticidae Cobanus seclusus BOLD PA2697 SFU1D9D002 Araneidae Mangora volcan IMEDEA SPIPO624‐10 SFD1NCA003 Salticidae Cobanus unicolor BOLD PA2620 SFU1D9D006 Mimetidae Mimetus banksi IMEDEA SPIPO625‐10 SFU1NBH001 Salticidae Cobanus unicolor BOLD PA585 SFU1D9D018 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO626‐10 SFU1NAD002 Salticidae Cobanus unicolor BOLD PA2675 SFU1D9H002 Tetragnathidae Azilia guatemalensis IMEDEA SPIPO627‐10 SCB1DGA016 Salticidae Cotinusa sp.2 FML BOLD PA2979 SFU1D9H012 Theridiidae Ameridion signum IMEDEA SPIPO628‐10 STB1D6L018 Salticidae Cotinusa sp.3 FML BOLD PA603 SFU1N7A016 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO629‐10 STB1D9H008 Salticidae Cotinusa sp.2 FML BOLD PA3213 SFU1N7A027 Theridiidae Chryso sp.2 FML IMEDEA SPIPO630‐10 STB1D5H012 Salticidae Cotinusa sp.3 FML BOLD PA3009 SFU1N7A029 Theridiidae Theridion sp.1 FML IMEDEA SPIPO631‐10 STB1D9A011 Salticidae Cotinusa sp.3 FML BOLD PA503 SFU1N7D006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO632‐10 SFB1DBD024 Salticidae Cobanus sp.4 FML BOLD PA1131 SFU1N7D009 Uloboridae Philoponella sp.2 FML IMEDEA SPIPO633‐10 SFB1DCR019 Salticidae Cobanus sp.4 FML BOLD PA2955 SFU1N7D022 Theridiidae Dipoena insulana IMEDEA SPIPO634‐10 SFB1DBH016 Salticidae Cobanus sp.4 FML BOLD PA688 SFU1N7D029 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO635‐10 SCD1DFH020 Salticidae Cobanus sp.5 FML BOLD PA689 SFU1N7D500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO636‐10 SCC1DIH001 Salticidae Cobanus sp.5 FML BOLD PA2707 SFU1N7H011 Araneidae Araneus sp.1 FML IMEDEA SPIPO637‐10 SCB1DIR016 Salticidae Cobanus sp.5 FML BOLD PA2555 SFU1N7H018 Tetragnathidae Cyrtognatha sp.1 FML IMEDEA SPIPO638‐10 STD1N5B020 Salticidae Corythalia sp.9 FML BOLD PA2705 SFU1N7H019 Araneidae Cyclosa sp.10 FML IMEDEA SPIPO639‐10 SCB1DGD006 Salticidae Cobanus sp.8 FML BOLD PA3001 SFU1N7H024 Theridiidae Neospintharus cf parvus IMEDEA SPIPO640‐10 SAB1DHA017 Salticidae Cobanus sp.11 FML BOLD PA3020 SFU1N7H030 Theridiidae Acaearaeea maricaoensis IMEDEA SPIPO641‐10 SAU1NCA029 Salticidae Cobanus sp.14 FML BOLD PA892 SFU1N7H038 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO642‐10 SAB1DDB016 Salticidae Cobanus sp.14 FML BOLD PA2738 SFU1N7H040 Theridiosomatidae Wendilgarda sp.1 FML IMEDEA SPIPO643‐10 SAB1DHB014 Salticidae Cobanus sp.14 FML BOLD PA3232 SFU1N7L001 Theridiidae Theridion cf albulum IMEDEA SPIPO644‐10 SAU1NFP013 Salticidae Cobanus sp.14 FML BOLD PA2815 SFU1N7L010 Salticidae Cobanus unicolor IMEDEA SPIPO645‐10 SAU1NGB014 Salticidae Cobanus sp.14 FML BOLD PA2922 SFU1N7L015 Pholcidae Modisimus sp.1 FML IMEDEA SPIPO646‐10 SAB1DER018 Salticidae Cobanus sp.14 FML BOLD PA3218 SFU1N7L022 Theridiidae Dipoena pacifica IMEDEA SPIPO647‐10 SAB1DER056 Salticidae Cobanus sp.15 FML BOLD PA2791 SFU1N7R001 Ctenidae Cupiennius valentinei IMEDEA SPIPO648‐10 STD1D7R001 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA2378 SFU1N7R011 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO649‐10 STD1D6H020 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA2700 SFU1N7R012 Araneidae Eustala sp.1 FML IMEDEA SPIPO650‐10 STU1N7L020 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA3253 SFU1N7R021 Theridiidae Achaearanea florwndida IMEDEA SPIPO651‐10 STB1D8R014 Salticidae Cobanus sp.9 FML BOLD PA3011 SFU1N7R026 Theridiidae Theridion sp.1 FML IMEDEA SPIPO652‐10 STU1N5L023 Salticidae Chapoda sp.10 FML BOLD PA897 SFU1N7R030 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO653‐10 STU1N5L026 Salticidae Chapoda sp.10 FML BOLD PA747 SFU1N7R032 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO654‐10 SAB1DER023 Salticidae Corythalia sp.20 FML BOLD PA511 SFU1N7R039 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO655‐10 SAU1NCA023 Salticidae Salticidae sp.9 FML BOLD PA351 SFU1N7R041 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO656‐10 SAB1DDR017 Salticidae Lyssomanes convexus BOLD PA2699 SFU1N7R047 Araneidae Mangora sp.10 FML IMEDEA SPIPO657‐10 SAU2NCH008 Salticidae Lyssomanes convexus BOLD PA898 SFU1N7R050 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO658‐10 SCU1NDA001 Salticidae Lyssomanes eatoni BOLD PA748 SFU1N7R500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO659‐10 SCB1DGA009 Salticidae Lyssomanes eatoni BOLD PA750 SFU1N7R502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO660‐10 SCU1NHL007 Salticidae Lyssomanes eatoni BOLD PA714 SFU1N8A006 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO661‐10 SCU1NHL030 Salticidae Lyssomanes eatoni BOLD PA890 SFU1N8A013 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO662‐10 STD1D7B006 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA2947 SFU1N8A014 Theridiidae cf Romphaea sp.1 FML IMEDEA SPIPO663‐10 STB1D7A020 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA2969 SFU1N8A025 Theridiidae Ameridion musawas IMEDEA SPIPO664‐10 STU1N4A015 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA2968 SFU1N8A026 Theridiidae Ameridion musawas IMEDEA SPIPO665‐10 STU1N7H018 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA523 SFU1N8A029 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO666‐10 STD1D6B010 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA3224 SFU1N8A041 Theridiidae Dipoena sp.2 FML IMEDEA SPIPO667‐10 SCB1DHA009 Salticidae Cobanus sp.5 FML BOLD PA638 SFU1N8A500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO668‐10 SCC1NGH012 Salticidae Cobanus sp.5 FML BOLD PA2701 SFU1N8D011 Araneidae Eustala sp.1 FML IMEDEA SPIPO669‐10 SCC1NFH027 Salticidae Cobanus sp.5 FML BOLD PA695 SFU1N8D023 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO670‐10 SCC1NFH026 Salticidae Cobanus sp.5 FML BOLD PA2764 SFU1N8H001 Anyphaenidae Macrophyes elongata IMEDEA SPIPO671‐10 SCC1NFH007 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA3121 SFU1N8H021 Symphytognathidae Patu digua IMEDEA SPIPO672‐10 SAU1NCA020 Salticidae Cobanus sp.11 FML BOLD PA671 SFU1N8H031 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO673‐10 SAU1NFB011 Salticidae Cobanus sp.13 FML BOLD PA2806 SFU1N8H033 Salticidae Cobanus incurvus IMEDEA SPIPO674‐10 STC1N7B008 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA2364 SFU1N8L008 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO675‐10 SAU1NHP018 Salticidae Cobanus sp.11 FML BOLD PA1182 SFU1N8L011 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO676‐10 SAU1NGP010 Salticidae Cobanus sp.13 FML BOLD PA678 SFU1N8L028 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO677‐10 STB1D5B020 Salticidae Cylistella adjacens BOLD PA2985 SFU1N8L030 Theridiidae Phycosoma altum IMEDEA SPIPO678‐10 STB1D5H013 Salticidae Cylistella scarabaeoides BOLD PA2512 SFU1N8R021 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPO679‐10 SFB1D9H024 Salticidae Cylistella scarabaeoides BOLD PA3003 SFU1N8R025 Theridiidae Theridion sp.2 FML IMEDEA SPIPO680‐10 STB1D9R036 Salticidae Cylistella adjacens BOLD PA657 SFU1NAA013 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO681‐10 STB1D9R032 Salticidae Cylistella adjacens BOLD PA922 SFU1NAA014 Uloboridae Philoponella sp.2 FML IMEDEA SPIPO682‐10 SCB1DIH013 Salticidae Cylistella sp.2 FML BOLD PA2964 SFU1NAA018 Theridiidae cf Chrysso sp.1 FML IMEDEA SPIPO683‐10 SCB1DGL021 Salticidae Cylistella sp.2 FML BOLD PA2516 SFU1NAA021 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO684‐10 SCB1DFR016 Salticidae Cylistella sp.2 FML BOLD PA891 SFU1NAA022 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO685‐10 SCC1DGA013 Salticidae Cylistella sp.2 FML BOLD PA653 SFU1NAA500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO686‐10 SCB1DFL019 Salticidae Cylistella sp.2 FML BOLD PA654 SFU1NAA501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO687‐10 SCB1DGL009 Salticidae Corythalia bicincta BOLD PA656 SFU1NAA503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO688‐10 SFC1NCD023 Salticidae Corythalia sp.1 FML BOLD PA2559 SFU1NAD015 Tetragnathidae Tetragnathidae sp.3 FML IMEDEA SPIPO689‐10 SFC1NCD022 Salticidae Corythalia sp.1 FML BOLD PA2943 SFU1NAD025 Theridiidae Styposis sp.1 FML IMEDEA SPIPO690‐10 SFC1NCD004a Salticidae Corythalia sp.1 FML BOLD PA3217 SFU1NAD027 Theridiidae Deipoena mertoni IMEDEA SPIPO691‐10 SFC1N8D011 Salticidae Corythalia sp.4 FML BOLD PA2553 SFU1NAD045 Tetragnathidae Azilia guatemalensis IMEDEA SPIPO692‐10 SFB1DAH017 Salticidae Corythalia sp.4 FML BOLD PA684 SFU1NAD501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO693‐10 SFB1DBA031 Salticidae Corythalia sp.4 FML BOLD PA685 SFU1NAD502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO694‐10 STC1D5R004 Salticidae Corythalia sp.9 FML BOLD PA687 SFU1NAD504 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO695‐10 SCC1NHR008 Salticidae Corythalia sp.10 FML BOLD PA235 SFU1NAH002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO696‐10 SCD1DFA007 Salticidae Corythalia sp.10 FML BOLD PA2946 SFU1NAH008 Theridiidae cf Romphaea sp.1 FML IMEDEA SPIPO697‐10 STD1D7H001 Salticidae Corythalia sp.13 FML BOLD PA1136 SFU1NAH012 Uloboridae Miagrammopes sp.1 FML IMEDEA SPIPO698‐10 STD1D6H011 Salticidae Corythalia sp.13 FML BOLD PA3170 SFU1NAH015 Araneidae Cyclosa sp.10 FML IMEDEA SPIPO699‐10 SCB1DEL005 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA2769 SFU1NAL004 Clubionidae Elaver sp.1 FML IMEDEA SPIPO700‐10 SCB1DFL010 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA2752 SFU1NAL005 Araneidae Alpaida tuonabo IMEDEA SPIPO701‐10 SCD1DFD007 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA2667 SFU1NAL011 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML IMEDEA SPIPO702‐10 SCB1DHH004 Salticidae Cobanus obscurus BOLD PA2372 SFU1NAL012 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO703‐10 SFB1DCL015 Salticidae Cylistella scarabaeoides BOLD PA3018 SFU1NAL017 Theridiidae Acaearaeea maricaoensis IMEDEA SPIPO704‐10 SFB1D9H044 Salticidae Cylistella scarabaeoides BOLD PA2921 SFU1NAL018 Pholcidae Modisimus sp.1 FML IMEDEA SPIPO705‐10 SCC1DIA002 Salticidae Corythalia sulphurea BOLD PA578 SFU1NAL036 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO706‐10 STC1N4A014 Salticidae Corythalia sulphurea BOLD PA2751 SFU1NAL047 Araneidae Alpaida tuonabo IMEDEA SPIPO707‐10 SCD1NER006 Salticidae Corythalia sulphurea BOLD PA664 SFU1NAR010 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO708‐10 STC1D9A004 Salticidae Corythalia sulphurea BOLD PA2382 SFU1NAR014 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO709‐10 SCD1NGA013 Salticidae Corythalia sulphurea BOLD PA2643 SFU1NAR016 Senoculidae Senoculus bucolicus IMEDEA SPIPO710‐10 SAB1DHA012 Salticidae Salticidae sp.5 FML BOLD PA1176 SFU1NAR017 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO711‐10 SAC1DHA005 Salticidae Salticidae sp.2 FML BOLD PA2944 SFU1NAR020 Theridiidae cf Romphaea sp.1 FML IMEDEA SPIPO712‐10 SAB1DFA019 Salticidae Salticidae sp.5 FML BOLD PA2660 SFU1NAR023 Tetragnathidae Chrysometa poas IMEDEA SPIPO713‐10 SAC1NGA003 Salticidae Euophrys sp.2 FML BOLD PA014 SFU1NAR024 Salticidae Myrmarachne parallela IMEDEA SPIPO714‐10 SAC1NHH001 Salticidae Euophrys sp.2 FML BOLD PA3027 SFU1NAR031 Theridiidae Ameridion musawas IMEDEA SPIPO715‐10 SAC1DDH005 Salticidae Euophrys sp.2 FML BOLD PA2935 SFU1NAR051 Theridiidae Dipoena sp.1 FML IMEDEA SPIPO716‐10 SAC1DDA008 Salticidae Euophrys sp.2 FML BOLD PA2795 SFU1NBA002 Salticidae Myrmarachne parallela IMEDEA SPIPO717‐10 SAC1NHP007 Salticidae Euophrys sp.2 FML BOLD PA643 SFU1NBA010 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO718‐10 STC1N4A013 Salticidae Fluda sp.2 FML BOLD PA882 SFU1NBA012 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO719‐10 STC1N6H014 Salticidae Fluda sp.2 FML BOLD PA2913 SFU1NBA015 Agelenidae Melpomene sp.1 FML FML IMEDEA SPIPO720‐10 STD1N4L022 Salticidae Fluda sp.2 FML BOLD PA2669 SFU1NBA021 Tetragnathidae Opas sp.1 FML IMEDEA SPIPO721‐10 STC2D6R008 Salticidae Fluda sp.2 FML BOLD PA3124 SFU1NBA028 Araneidae Bertana sp.1 FML IMEDEA SPIPO722‐10 STC1N7B010 Salticidae Fluda sp.2 FML BOLD PA3177 SFU1NBA032 Araneidae Araneus sp.1 FML IMEDEA SPIPO723‐10 STC1N8L020 Salticidae Euophrys sp.3 FML BOLD PA644 SFU1NBA500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO724‐10 STB1D9H010 Salticidae Euophrys sp.3 FML BOLD PA2619 SFU1NBD004 Mimetidae Mimetus banksi IMEDEA SPIPO725‐10 STC1N8R016 Salticidae Euophrys sp.3 FML BOLD PA2652 SFU1NBD014 Pholcidae Modisimus sp.1 FML IMEDEA SPIPO726‐10 STC1N8R021 Salticidae Euophrys sp.3 FML BOLD PA2677 SFU1NBD015 Araneidae Parawixia rimosa IMEDEA SPIPO727‐10 STC1N8L023 Salticidae Euophrys sp.3 FML BOLD PA692 SFU1NBD501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO728‐10 SFB1D9H017 Salticidae Fluda princeps BOLD PA2556 SFU1NBH003 Tetragnathidae Cyrtognatha sp.1 FML IMEDEA SPIPO729‐10 SCU1NHL009 Salticidae Fluda princeps BOLD PA675 SFU1NBH004 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO730‐10 STB1D5L017 Salticidae Fluda princeps BOLD PA2688 SFU1NBH007 Araneidae Micrathena molesta IMEDEA SPIPO731‐10 SFB1D8A025 Salticidae Metaphidippus facetus BOLD PA2538 SFU1NBH008 Clubionidae Elaver sp.1 FML IMEDEA SPIPO732‐10 SFB1D8R013 Salticidae Metaphidippus facetus BOLD PA257 SFU1NBH009 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO733‐10 SFB1D8A021 Salticidae Metaphidippus facetus BOLD PA2908 SFU1NBH012 Araneidae Parawixia rimosa IMEDEA SPIPO734‐10 STB1D6A014 Salticidae Myrmarachne parallela BOLD PA3008 SFU1NBH030 Theridiidae Thymoites sp.4 FML IMEDEA SPIPO735‐10 STU1N8B008 Salticidae Myrmarachne parallela BOLD PA676 SFU1NBH500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO736‐10 SCU1NHA010 Salticidae Myrmarachne parallela BOLD PA677 SFU1NBH501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO737‐10 SCB1DGA024 Salticidae Sidusa recondita BOLD PA2668 SFU1NBL013 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML IMEDEA SPIPO738‐10 SFC1N8H006 Salticidae Corythalia sp.8 FML BOLD PA2672 SFU1NBL015 Tetragnathidae Chrysometa alajuela IMEDEA SPIPO739‐10 SFD1NCA005 Salticidae Corythalia sp.8 FML BOLD PA2708 SFU1NBL017 Araneidae Araneus sp.1 FML IMEDEA SPIPO740‐10 SFD1NAD003 Salticidae Corythalia sp.8 FML BOLD PA2371 SFU1NBR004 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO741‐10 SAB1DEB006 Salticidae Salticidae sp.5 FML BOLD PA3005 SFU1NBR008 Theridiidae Faiditus bryantae IMEDEA SPIPO742‐10 SAD1DGA009 Salticidae Salticidae sp.5 FML BOLD PA3241 SFU1NBR009 Theridiidae Argyronidae sp.1 FML IMEDEA SPIPO743‐10 SAB1DEA006 Salticidae Salticidae sp.5 FML BOLD PA2932 SFU1NBR012 Theridiidae Theridion cf albulum IMEDEA SPIPO744‐10 STB1D8A015 Salticidae Salticidae sp.6 FML BOLD PA3229 SFU1NBR013 Theridiidae cf Romphaea sp.1 FML IMEDEA SPIPO745‐10 STB1D8L017 Salticidae BOLD PA3141 SFU1NBR014 Theridiidae Faiditus bryantae IMEDEA SPIPO746‐10 STB1D8L001 Salticidae Salticidae sp.8 FML BOLD PA659 SFU1NBR020 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO747‐10 STB1D9H024 Salticidae Salticidae sp.8 FML BOLD PA2520 SFU1NBR049 Theridiidae Ameridion musawas IMEDEA SPIPO748‐10 STB1D9H002 Salticidae Salticidae sp.8 FML BOLD PA660 SFU1NBR500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO749‐10 SCB1DEL008 Salticidae Zuniga magna BOLD PA712 SFU1NCA009 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO750‐10 SCB1DHD005 Salticidae Zuniga magna BOLD PA2411 SFU1NCA010 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO751‐10 SCB1DFD003 Scytodidae Scytodes championi BOLD PA2408 SFU1NCA500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO752‐10 STD1N4L013 Scytodidae Scytodes intricata BOLD PA2409 SFU1NCA501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO753‐10 STD1N5A005 Scytodidae Scytodes intricata BOLD PA2410 SFU1NCA502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO754‐10 STD2N4L015 Scytodidae Scytodes intricata BOLD PA2412 SFU1NCA503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO755‐10 SCB1DHD017 Salticidae Zuniga magna BOLD PA2413 SFU1NCA504 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO756‐10 SFD1NCR039 Scytodidae Scytodes longipes BOLD PA661 SFU1NCD007 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO757‐10 SFD1NBL002 Scytodidae Scytodes longipes BOLD PA1162 SFU1NCD017 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO758‐10 SFD1NBL035 Scytodidae Scytodes longipes BOLD PA3182 SFU1NCD019 Deinopidae Deinopis longipes IMEDEA SPIPO759‐10 SAC1DHL007 Scytodidae Scytodes uligocetes BOLD PA894 SFU1NCD020 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO760‐10 SAU1NGL002 Scytodidae Scytodes uligocetes BOLD PA2936 SFU1NCD021 Theridiidae Dipoena sp.1 FML IMEDEA SPIPO761‐10 SAD1NHH010 Scytodidae Scytodes uligocetes BOLD PA3038 SFU1NCD025 Theridiidae Thymoites sp.5 FML IMEDEA SPIPO762‐10 SAU1NCH017 Scytodidae Scytodes uligocetes BOLD PA662 SFU1NCD500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO763‐10 SAU1NCH038 Scytodidae Scytodes uligocetes BOLD PA2945 SFU1NCH002 Theridiidae cf Romphaea sp.1 FML IMEDEA SPIPO764‐10 STU1N4R007 Senoculidae Senoculus bucolicus BOLD PA3167 SFU1NCH011 Araneidae Micrathena lucasi IMEDEA SPIPO765‐10 SFB1D9D005 Senoculidae Senoculus bucolicus BOLD PA2702 SFU1NCH013 Araneidae Eustala sp.1 FML IMEDEA SPIPO766‐10 SCB1DGH002 Senoculidae Senoculus bucolicus BOLD PA697 SFU1NCH022 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO767‐10 SCB1DGD001 Sparassidae Anaptomecus longiventris BOLD PA2709 SFU1NCL010 Araneidae Araneus sp.1 FML IMEDEA SPIPO768‐10 SCB1DGR001 Sparassidae Anaptomecus temii BOLD PA3145 SFU1NCL012 Theridiidae Faiditus bryantae IMEDEA SPIPO769‐10 SCU2NDH005 Sparassidae Anaptomecus temii BOLD PA2926 SFU1NCL023 Theridiidae Exalbidion sexmaculatum IMEDEA SPIPO770‐10 STD1N7B018 Sparassidae Heteropodinae sp.3 FML BOLD PA743 SFU1NCL500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO771‐10 STU1N7L001 Sparassidae BOLD PA744 SFU1NCL501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO772‐10 SCU1NER005 Sparassidae Uaiuara barroana BOLD PA2653 SFU1NCR015 Pholcidae Modisimus sp.1 FML IMEDEA SPIPO773‐10 SCU1NDL027 Sparassidae Uaiuara barroana BOLD PA708 SFU1NCR031 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO774‐10 SCU1NDL009 Sparassidae Uaiuara barroana BOLD PA1179 SFU2N7A001 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO775‐10 SAU1NCL030 Symphytognathidae Globignatha sp.1 FML BOLD PA645 SFU2N7A012 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO776‐10 STC1N4R018 Symphytognathidae Patu sp.3 FML BOLD PA2513 SFU2N7A019 Linyphiidae Walckenaeria aenea IMEDEA SPIPO777‐10 SFU1N8L039 Symphytognathidae Patu digua BOLD PA3081 SFU2N7A021 Deinopidae Deinopis longipes IMEDEA SPIPO778‐10 SFC1DAH006 Symphytognathidae Patu digua BOLD PA3240 SFU2N7A031 Theridiidae Neospintharus cf parvus IMEDEA SPIPO779‐10 SAC1DDA011 Symphytognathidae Patu digua BOLD PA646 SFU2N7A501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO780‐10 SFD2NBL016 Symphytognathidae Patu digua BOLD PA647 SFU2N7A502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO781‐10 STD1N7R028 Symphytognathidae Patu sp.1 FML BOLD PA648 SFU2N7A503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO782‐10 SCB1DHH017 Symphytognathidae Patu sp.1 FML BOLD PA649 SFU2N7A504 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO783‐10 SCU1NHH010 Symphytognathidae Patu sp.1 FML BOLD PA3228 SFU2N7D002 Theridiidae Theridion cf albulum IMEDEA SPIPO784‐10 STD1D7R028 Symphytognathidae Patu sp.3 FML BOLD PA3006 SFU2N7D004 Theridiidae Faiditus bryantae IMEDEA SPIPO785‐10 STC1N7H023 Symphytognathidae Patu sp.3 FML BOLD PA921 SFU2N7D005 Uloboridae Philoponella sp.2 FML IMEDEA SPIPO786‐10 STC1D6A013 Symphytognathidae Patu sp.3 FML BOLD PA2966 SFU2N7D007 Theridiidae cf Chrysso sp.1 FML IMEDEA SPIPO787‐10 SFD1DAL008 Symphytognathidae Symphytognatha goodnightorum BOLD PA2548 SFU2N7D015 Tetragnathidae Glenognatha sp.2 FML IMEDEA SPIPO788‐10 SFD1NBR008 Symphytognathidae Symphytognatha goodnightorum BOLD PA679 SFU2N7D031 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO789‐10 SFU1N7L019 Symphytognathidae Symphytognatha goodnightorum BOLD PA680 SFU2N7D500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO790‐10 STD1N6R025 Symphytognathidae Symphytognatha sp.1 FML BOLD PA681 SFU2N7D501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO791‐10 STB1D6A020 Symphytognathidae Symphytognatha sp.1 FML BOLD PA2804 SFU2N7H008 Salticidae Cobanus incurvus IMEDEA SPIPO792‐10 STU1N6H028 Symphytognathidae Symphytognatha sp.1 FML BOLD PA2959 SFU2N7H027 Theridiidae Ameridion lathropi IMEDEA SPIPO793‐10 STD1N6B024 Symphytognathidae Symphytognatha sp.1 FML BOLD PA2687 SFU2N7L001 Araneidae Micrathena molesta IMEDEA SPIPO794‐10 STD1N4L017 Theridiidae Achaearanea taeniata BOLD PA919 SFU2N7L008 Uloboridae Philoponella sp.3 FML IMEDEA SPIPO795‐10 SCU1NHA013 Theridiidae Achaearanea taeniata BOLD PA2367 SFU2N7L009 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO796‐10 STD1N7B024 Theridiidae Achaearanea taeniata BOLD PA3173 SFU2N7L011 Araneidae Bertana sp.1 FML IMEDEA SPIPO797‐10 STU1N5B018 Theridiidae Achaearanea florendida BOLD PA2762 SFU2N7L015 Anyphaenidae Macrophyes elongata IMEDEA SPIPO798‐10 SFB1DAD003 Theridiidae Achaearanea florendida BOLD PA3260 SFU2N7L027 Miturgidae Ericaella sp.1 FML IMEDEA SPIPO799‐10 STU1N5L017 Theridiidae Achaearanea florendida BOLD PA665 SFU2N7L031 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO800‐10 STU1N7L022 Theridiidae Achaearanea florendida BOLD PA666 SFU2N7L500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO801‐10 SFU1N7A030 Theridiidae Achaearanea sp.20 FML BOLD PA667 SFU2N7L501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO802‐10 STU1N8A020 Theridiidae Achaearanea maricaoensis BOLD PA505 SFU2N7R022 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO803‐10 STD1N7A008 Theridiidae Achaearanea maricaoensis BOLD PA1183 SFU2N8A006 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO804‐10 SCD1NGL018 Theridiidae Ameridion progum BOLD PA3165 SFU2N8A010 Araneidae Eustala sp.1 FML IMEDEA SPIPO805‐10 STU1N5A022 Theridiidae Theridion centrum BOLD PA2958 SFU2N8A013 Theridiidae Ameridion lathropi IMEDEA SPIPO806‐10 STB1D8L020 Theridiidae Theridion centrum BOLD PA3139 SFU2N8A014 Theridiidae Styposis sp.1 FML IMEDEA SPIPO807‐10 STU1N5L015 Theridiidae Theridion centrum BOLD PA1184 SFU2N8A026 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO808‐10 SFU1N7A032 Theridiidae Ameridion lathropi BOLD PA2793 SFU2N8D001 Ctenidae Cupiennius valentinei IMEDEA SPIPO809‐10 SFB1DAD026 Theridiidae Ameridion lathropi BOLD PA2773 SFU2N8D003 Clubionidae Elaver sp.1 FML IMEDEA SPIPO810‐10 SFB1D9R024 Theridiidae Ameridion lathropi BOLD PA2875 SFU2N8D010 Mimetidae Mimetus rusticus IMEDEA SPIPO811‐10 STU1N8L011 Theridiidae Ameridion paidiscum BOLD PA2375 SFU2N8D012 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO812‐10 SFU1N8R026 Theridiidae Ameridion musawas BOLD PA2965 SFU2N8D014 Theridiidae cf Chrysso sp.1 FML IMEDEA SPIPO813‐10 SFU2NAH019 Theridiidae Ameridion musawas BOLD PA1127 SFU2N8D016 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO814‐10 STU1N8H017 Theridiidae Ameridion musawas BOLD PA889 SFU2N8D029 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO815‐10 SCU1NGH030 Theridiidae Ameridion progum BOLD PA918 SFU2N8H003 Uloboridae Philoponella sp.3 FML IMEDEA SPIPO816‐10 SCU1NGH013 Theridiidae Ameridion progum BOLD PA2524 SFU2N8H024 Theridiidae Ameridion signum IMEDEA SPIPO817‐10 STB1D5H024 Symphytognathidae Patu sp.3 FML BOLD PA663 SFU2N8H034 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO818‐10 STB1D5H027 Symphytognathidae Patu sp.3 FML BOLD PA2521 SFU2N8H038 Theridiidae Ameridion lathropi IMEDEA SPIPO819‐10 STC1D5H020 Symphytognathidae Patu sp.1 FML BOLD PA927 SFU2NAA003 Uloboridae Philoponella sp.1 FML IMEDEA SPIPO820‐10 STC1D5H019 Symphytognathidae Patu sp.1 FML BOLD PA2414 SFU2NAA004 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO821‐10 STD1N6L016 Theridiidae Ameridion signum BOLD PA1187 SFU2NAA019 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO822‐10 STU1N4B017 Theridiidae Ameridion signum BOLD PA1188 SFU2NAA026 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO823‐10 STD1N6R017 Theridiidae Ameridion signum BOLD PA2415 SFU2NAA500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO824‐10 STU1N7H019 Theridiidae Ameridion signum BOLD PA3123 SFU2NAD026 Araneidae Bertana sp.1 FML IMEDEA SPIPO825‐10 SCD1NFL023 Theridiidae cf Chrysso sp.3 FML BOLD PA886 SFU2NAD027 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO826‐10 STU1N6H024 Theridiidae Dipoena sp.8 FML BOLD PA3175 SFU2NAH002 Araneidae Micrathena molesta IMEDEA SPIPO827‐10 STC1N5B018 Theridiidae Dipoena cf tropica BOLD PA2386 SFU2NAH008 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPO828‐10 STC2D8L014 Theridiidae Dipoena cf tropica BOLD PA2750 SFU2NAH009 Araneidae Alpaida tuonabo IMEDEA SPIPO829‐10 SCB1DFL028 Theridiidae Dipoena cordiformis BOLD PA3172 SFU2NAH010 Araneidae Araneus sp.1 FML IMEDEA SPIPO830‐10 SCU2NHD005 Theridiidae Lasaeola donaldi BOLD PA2703 SFU2NAH016 Araneidae Eustala sp.1 FML IMEDEA SPIPO831‐10 SCB1DGL032 Theridiidae Lasaeola donaldi BOLD PA668 SFU2NAH018 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO832‐10 SCB1DGD016 Theridiidae Lasaeola donaldi BOLD PA3050 SFU2NAH021 Theridiidae Dipoena sp.3 FML IMEDEA SPIPO833‐10 SFU1N8D002 Theridiidae cf Rhomphaea sp.1 FML BOLD PA3236 SFU2NAH048 Theridiidae Thymoites sp.5 FML IMEDEA SPIPO834‐10 SFD1NCR011 Theridiidae cf Rhomphaea sp.1 FML BOLD PA2389 SFU2NAH049 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA SPIPO835‐10 SFU1NBL011 Theridiidae cf Rhomphaea sp.1 FML BOLD PA669 SFU2NAH500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO836‐10 SFD1NCA018 Theridiidae cf Chrysso sp.1 FML BOLD PA670 SFU2NAH501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO837‐10 SFU1NAD019 Theridiidae Dipoena mertoni BOLD PA1170 SFU2NBA001 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO838‐10 SFU1NCA011 Theridiidae cf Chrysso sp.1 FML BOLD PA751 SFU2NBA008 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO839‐10 SFC1NCR004 Theridiidae Chrosiothes proximus BOLD PA504 SFU2NBA011 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO840‐10 SFD1NBA037 Theridiidae Chrosiothes proximus BOLD PA2369 SFU2NBA012 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO841‐10 SFU1NAH017 Theridiidae Exalbidion sp.10 FML BOLD PA500 SFU2NBA014 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO842‐10 SFD1NBL008 Theridiidae Chrosiothes proximus BOLD PA1171 SFU2NBA023 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO843‐10 SFU1NAD018 Theridiidae Neospintharus sp.10 FML BOLD PA3144 SFU2NBA025 Theridiidae Faiditus caudatus IMEDEA SPIPO844‐10 STU2N8R011 Theridiidae Neospintharus cf parvus BOLD PA3223 SFU2NBA032 Theridiidae Dipoena banksi IMEDEA SPIPO845‐10 STU1N6L018 Theridiidae Neospintharus cf parvus BOLD PA2788 SFU2NBD002 Ctenidae Cupiennius valentinei IMEDEA SPIPO846‐10 SAB1DFH026 Theridiidae Chrosiothes sp.1 FML BOLD PA148 SFU2NBD007 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO847‐10 SAD1NFL013 Theridiidae Chrosiothes sp.1 FML BOLD PA2920 SFU2NBD010 Pholcidae Modisimus sp.1 FML IMEDEA SPIPO848‐10 SAC2NDH013 Theridiidae Chrosiothes sp.1 FML BOLD PA1138 SFU2NBD019 Sparassidae Anaptomecus sp.1 FML IMEDEA SPIPO849‐10 SAC1NHH009 Theridiidae Chrosiothes sp.1 FML BOLD PA893 SFU2NBD030 Oonopidae Orchestina sp.1 FML IMEDEA SPIPO850‐10 SAD2NCB007 Theridiidae Chrosiothes sp.1 FML BOLD PA2644 SFU2NBD040 Senoculidae Senoculus bucolicus IMEDEA SPIPO851‐10 SCD1NFA009 Theridiidae Chrosiothes sp.10 FML BOLD PA2383 SFU2NBD044 Linyphiidae Dubiaranea sp.11 FML IMEDEA SPIPO852‐10 SCB1DGR012 Theridiidae Chrosiothes sp.10 FML BOLD PA2698 SFU2NBD045 Araneidae Mangora volcan IMEDEA SPIPO853‐10 SCC1NFR024 Theridiidae Chrosiothes sp.10 FML BOLD PA2616 SFU2NBH002 Mimetidae Mimetus rusticus IMEDEA SPIPO854‐10 STB1D5H022 Theridiidae Chrosiothes sp.10 FML BOLD PA2536 SFU2NBH007 Araneidae Parawixia rimosa IMEDEA SPIPO855‐10 SAU1NCL005 Theridiidae Phoroncidia flavolimbata BOLD PA636 SFU2NBH017 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO856‐10 SAU2NCL023 Theridiidae Phoroncidia flavolimbata BOLD PA2404 SFU2NBH021 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO857‐10 SAU1NFB013 Theridiidae Phoroncidia flavolimbata BOLD PA3131 SFU2NBH024 Theridiidae Styposis sp.1 FML IMEDEA SPIPO858‐10 STB1D6H005 Theridiidae Chrosiothes sp.2 FML BOLD PA535 SFU2NBH030 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO859‐10 STD1N5B018 Theridiidae Dipoena banksi BOLD PA2970 SFU2NBH031 Theridiidae Dipoena lana IMEDEA SPIPO860‐10 STB1D8B020 Theridiidae Dipoena banksi BOLD PA2405 SFU2NBH500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO861‐10 STB1D9R030 Theridiidae Dipoena banksi BOLD PA2693 SFU2NCH004 Araneidae Micrathena lucasi IMEDEA SPIPO862‐10 STU1N5A016 Theridiidae Dipoena banksi BOLD PA3178 SFU2NCH009 Araneidae Hypognatha elaborata IMEDEA SPIPO863‐10 STD1N4B007 Theridiidae Dipoena banksi BOLD PA2771 SFU2NCH011 Clubionidae Elaver sp.1 FML IMEDEA SPIPO864‐10 SCU1NEA008 Theridiidae Dipoena mertoni BOLD PA1166 SFU2NCH012 Corinnidae Trachelas bispinosus IMEDEA SPIPO865‐10 STU1N6L019 Theridiidae Dipoena mertoni BOLD PA3221 SFU2NCH018 Theridiidae Dipoena banksi IMEDEA SPIPO866‐10 STU1N4H006 Theridiidae Dipoena mertoni BOLD PA1133 SFU2NCH020 Uloboridae Philoponella sp.5 FML IMEDEA SPIPO867‐10 SFD2NBL014 Theridiidae Dipoena sp.2 FML BOLD PA710 SFU2NCH042 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO868‐10 SFD1NBR068 Theridiidae Dipoena sp.2 FML BOLD PA711 SFU2NCH500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO869‐10 SFD2NBL036 Theridiidae Dipoena sp.2 FML BOLD PA2016 STB1D5A016 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO870‐10 STU1N7B028 Theridiidae Dipoena lana BOLD PA2312 STB1D5A019 Linyphiidae Grammonota sp.2 FML IMEDEA SPIPO871‐10 SFD1NCA027 Theridiidae Dipoena sp.21 FML BOLD PA1430 STB1D5B009 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO872‐10 SCD1NDD008 Theridiidae Dipoena lana BOLD PA2305 STB1D5B016 Linyphiidae Grammonota sp.2 FML IMEDEA SPIPO873‐10 STU1N8H020 Theridiidae Dipoena pacifica BOLD PA2713 STB1D5B017 Anyphaenidae Wulfila pulverulentus IMEDEA SPIPO874‐10 STU1N8L023 Theridiidae Dipoena pacifica BOLD PA1285 STB1D5H011 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO875‐10 STB1D9B003 Theridiidae Dipoena pacifica BOLD PA1792 STB1D5H018 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO876‐10 STB1D6A008 Theridiidae Dipoena pacifica BOLD PA2138 STB1D5H019 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA SPIPO877‐10 STU2N8B020 Theridiidae Dipoena pacifica BOLD PA1286 STB1D5H500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO878‐10 SFU2N7R030 Theridiidae Exalbidion sexmaculatum BOLD PA1287 STB1D5H501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO879‐10 SFU1N7D025 Theridiidae Exalbidion sexmaculatum BOLD PA1773 STB1D5L016 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO880‐10 SFU1N7L025 Theridiidae Exalbidion sexmaculatum BOLD PA1860 STB1D5L020 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPO881‐10 SFC1NBR015 Theridiidae Dipoena sp.2 FML BOLD PA1774 STB1D5L500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA SPIPO882‐10 SFU1NCD035 Theridiidae Dipoena sp.1 FML BOLD PA1419 STB1D5R023 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO883‐10 SFU2N7H023 Theridiidae Dipoena sp.1 FML BOLD PA1420 STB1D5R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO884‐10 SFB1D9H027 Theridiidae Dipoena sp.1 FML BOLD PA2904 STB1D6A011 Clubionidae Elaver sp.4 FML IMEDEA SPIPO885‐10 SFB1DAH012 Theridiidae Dipoena sp.3 FML BOLD PA2779 STB1D6H018 Clubionidae Elaver sp.4 FML IMEDEA SPIPO886‐10 SCU2NHD008 Theridiidae Dipoena sp.3 FML BOLD PA2755 STB1D6H021 Anyphaenidae Katissa sp.10 FML IMEDEA SPIPO887‐10 SFU2NAH021 Theridiidae Dipoena sp.3 FML BOLD PA1416 STB1D6L007 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO888‐10 STU1N7A022 Theridiidae Dipoena sp.3 FML BOLD PA2030 STB1D6L008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO889‐10 STU1N6L020 Theridiidae Dipoena sp.3 FML BOLD PA2571 STB1D6L014 Clubionidae Elaver sp.4 FML IMEDEA SPIPO890‐10 STU1N5H004 Theridiidae Dipoena sp.3 FML BOLD PA2163 STB1D6L020 Linyphiidae Spanioplanus sp.1 FML IMEDEA SPIPO891‐10 SCC1NER012 Theridiidae Dipoena sp.5 FML BOLD PA3186 STB1D6L022 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML IMEDEA SPIPO892‐10 STD1N6B021 Theridiidae Dipoena sp.5 FML BOLD PA1859 STB1D6L023 Oonopidae Dysderina sp.3 FML IMEDEA SPIPO893‐10 SCD2NGL018 Theridiidae Dipoena sp.5 FML BOLD PA2031 STB1D6L501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO894‐10 SCU2NDD010 Theridiidae Dipoena pacifica BOLD PA1301 STB1D7A008 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO895‐10 SFU1NBD028 Theridiidae Dipoena sp.10 FML BOLD PA2889 STB1D7A019 Thomisidae Onocolus pentagonus IMEDEA SPIPO896‐10 SCU1NFR021 Theridiidae Dipoena pacifica BOLD PA2712 STB1D8B010 Anyphaenidae Wulfila pulverulentus IMEDEA SPIPO897‐10 SFU1N7H021 Theridiidae Dipoena sp.9 FML BOLD PA2147 STB1D8H011 Linyphiidae Asemostera sp.10 FML IMEDEA SPIPO898‐10 SFD1NBH020 Theridiidae Dipoena sp.9 FML BOLD PA1344 STB1D8H012 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO899‐10 SFU1NBD026 Theridiidae Dipoena sp.9 FML BOLD PA2885 STB1D8L004 Thomisidae Stephanopinae sp.2 FML IMEDEA SPIPO900‐10 SFU1NAH024 Theridiidae Epilineutes globosus BOLD PA1490 STB1D8L016 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO901‐10 SFU2NBD032 Theridiidae Exalbidion sp.10 FML BOLD PA2059 STB1D8L018 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO902‐10 SFU1N7D033 Theridiidae Exalbidion sp.10 FML BOLD PA1491 STB1D8L500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO903‐10 STB1D8B022 Theridiidae Exalbidion sp.10 FML BOLD PA2060 STB1D8L501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO904‐10 STC1N6A012 Theridiidae Dipoena sp.11 FML BOLD PA2061 STB1D8L502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO905‐10 STU1N6B016 Theridiidae Dipoena insulana BOLD PA2870 STB1D8R013 Hahniidae Neoantistea sp.4 FML IMEDEA SPIPO906‐10 SFD1NBH033 Theridiidae Dipoena sp.12 FML BOLD PA3070 STB1D8R019 Senoculidae Senoculus bucolicus IMEDEA SPIPO907‐10 STU1N5H024 Theridiidae Spintharus sp.1 FML BOLD PA2572 STB1D8R021 Clubionidae Elaver sp.4 FML IMEDEA SPIPO908‐10 STB1D8A012 Theridiidae Spintharus sp.1 FML BOLD PA1457 STB1D8R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO909‐10 STU1N6L017 Theridiidae Spintharus flavidus BOLD PA1459 STB1D8R502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO910‐10 SCU1NEH004 Theridiidae Spintharus flavidus BOLD PA1460 STB1D8R503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO911‐10 SCC1NGA002 Theridiidae Spintharus flavidus BOLD PA1461 STB1D8R504 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO912‐10 STU1N5R007 Theridiidae Dipoena petrunkevitchi BOLD PA1485 STB1D9A002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO913‐10 SCU1NHD017 Theridiidae Dipoena petrunkevitchi BOLD PA2886 STB1D9A017 Thomisidae Stephanopinae sp.2 FML IMEDEA SPIPO914‐10 STU1N6H027 Theridiidae Dipoena petrunkevitchi BOLD PA2443 STB1D9A023 Corinnidae Tupirinna trilineata IMEDEA SPIPO915‐10 STB1D5R007 Theridiidae Episinus cognatus BOLD PA3155 STB1D9A024 Palpimanidae Otiothops macleayi IMEDEA SPIPO916‐10 STU1N5A011 Theridiidae Episinus cognatus BOLD PA1302 STB1D9B016 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO917‐10 STU2N8R008 Theridiidae Episinus cognatus BOLD PA1303 STB1D9B500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO918‐10 STD1N5H015 Theridiidae Episinus cognatus BOLD PA1304 STB1D9B501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO919‐10 SCU1NDA014 Theridiidae Episinus panamensis BOLD PA1973 STB1D9H013 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO920‐10 SCU2NDR017 Theridiidae Episinus panamensis BOLD PA1763 STB1D9H017 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA SPIPO921‐10 SCU1NFH012 Theridiidae Episinus panamensis BOLD PA1535 STB1D9L002 Corinnidae Stethorrhagus sp.2 FML IMEDEA SPIPO922‐10 SCU1NDA012 Theridiidae Episinus panamensis BOLD PA1422 STB1D9L008 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO923‐10 STD1N7H021 Theridiidae Stemmops servus BOLD PA2492 STB1D9L017 Linyphiidae Erigone cf antegona IMEDEA SPIPO924‐10 STU1N7H021 Theridiidae Stemmops servus BOLD PA1805 STB1D9L019 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO925‐10 STD1N7R036 Theridiidae Stemmops servus BOLD PA1806 STB1D9L500 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO926‐10 SFD1NBA030 Theridiidae Stemmops questus BOLD PA1807 STB1D9L501 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO927‐10 SFC1DCR014 Theridiidae Stemmops questus BOLD PA1580 STB1D9R002 Corinnidae Trachelas sp.10 FML IMEDEA SPIPO928‐10 SFC1N8R021 Theridiidae Stemmops questus BOLD PA2630 STB1D9R009 Thomisidae Onocolus pentagonus IMEDEA SPIPO929‐10 SFC2DCH009 Theridiidae Styposis sp.1 FML BOLD PA2159 STB1D9R010 Linyphiidae Dubiaranea sp.4 FML IMEDEA SPIPO930‐10 SFU1N7A014 Theridiidae Styposis sp.1 FML BOLD PA1328 STB1D9R014 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO931‐10 SFU2NAA023 Theridiidae Styposis sp.1 FML BOLD PA2891 STB1D9R020 Thomisidae Onocolus pentagonus IMEDEA SPIPO932‐10 SFU2NAH027 Theridiidae Phycosoma altum BOLD PA2890 STB1D9R034 Thomisidae Onocolus pentagonus IMEDEA SPIPO933‐10 SFU2N7D034 Theridiidae Phycosoma altum BOLD PA2633 STC1D5A001 Zodariidae Tenedos sp.1 FML IMEDEA SPIPO934‐10 STB1D5L021 Theridiidae Styposis flavescens BOLD PA1362 STC1D5A006 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO935‐10 STB1D9A020 Theridiidae Styposis flavescens BOLD PA2895 STC1D5A015 Zodariidae Tenedos sp.1 FML IMEDEA SPIPO936‐10 SFB2D9R029 Theridiidae Styposis flavescens BOLD PA2074 STC1D5L012 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO937‐10 SAU1NFA020 Theridiidae Spintharus sp.2 FML BOLD PA2385 STC1D5L016 Linyphiidae Erigone cf antegona IMEDEA SPIPO938‐10 SAU1NDL021 Theridiidae Spintharus sp.2 FML BOLD PA2075 STC1D5L501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO939‐10 SAD1NCR016 Theridiidae Spintharus sp.2 FML BOLD PA2076 STC1D5L502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO940‐10 SAU1NGP011 Theridiidae Spintharus sp.10 FML BOLD PA2077 STC1D5L503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA SPIPO941‐10 SAB1DFB017 Theridiidae Spintharus sp.2 FML BOLD PA1444 STC1D5R008 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO942‐10 SAU1NFA011 Theridiidae Phoroncidia flavolimbata BOLD PA2242 STC1D5R011 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA SPIPO943‐10 SAU1NGP007 Theridiidae Phoroncidia flavolimbata BOLD PA2162 STC1D5R027 Linyphiidae Spanioplanus sp.1 FML IMEDEA SPIPO944‐10 SAU1NCH023 Theridiidae Phoroncidia flavolimbata BOLD PA1445 STC1D5R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO945‐10 STD1N7L009 Theridiidae Faiditus atopus BOLD PA1446 STC1D5R501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO946‐10 SCU1NEA011 Theridiidae Faiditus atopus BOLD PA1447 STC1D5R502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO947‐10 SCU1NDR006 Theridiidae Faiditus atopus BOLD PA1448 STC1D5R503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO948‐10 STD1N7R032 Theridiidae Faiditus caudatus BOLD PA1826 STC1D6A012 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA SPIPO949‐10 STC1D5A013 Theridiidae Faiditus caudatus BOLD PA1264 STC1D6B003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA SPIPO950‐10 STD1N6H023 Theridiidae Faiditus caudatus BOLD PA1265 STC1D6B500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1366 STC1D8H004 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1267 STC1D6B502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1617 STC1D8H006 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA PA1268 STC1D6B503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2334 STC1D8H009 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA PA1790 STC1D6L004 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA PA2045 STC1D8H010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2868 STC1D6L008 Hahniidae Neoantistea sp.4 FML IMEDEA PA2255 STC1D8H018 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1791 STC1D6L500 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA PA2046 STC1D8H501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1237 STC1D6R001 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2048 STC1D8H503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1544 STC1D6R003 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA2049 STC1D8H504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1238 STC1D6R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1510 STC1D8L006 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1239 STC1D6R501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2634 STC1D8L016 Zodariidae Tenedos sp.1 FML IMEDEA PA1240 STC1D6R502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA3184 STC1D8L017 Tetragnathidae Glenognatha sp.3 FML IMEDEA PA1241 STC1D6R503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1511 STC1D8L500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1242 STC1D6R504 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1514 STC1D8L503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2724 STC1D8A001 Anyphaenidae Anyphaeninae sp.1 FML IMEDEA PA1891 STC1D8R0028 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2080 STC1D8A009 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2444 STC1D8R008 Corinnidae Stethorrhagus sp.8 FML IMEDEA PA2514 STC1D8A010 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA PA1912 STC1D8R011 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1519 STC1D8A501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2186 STC1D8R015 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA PA2081 STC1D8A502 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1316 STC1D8R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1582 STC1D8B013 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA PA1317 STC1D8R501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2029 STC1D8B014 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1318 STC1D8R502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2003 STC1N4L507 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1913 STC1D8R503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1844 STC1N4R010 Oonopidae Dysderina sp.4 FML IMEDEA PA1797 STC1D9B001 Oonopidae Oonopidae indet. IMEDEA PA1244 STC1N4R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2037 STC1D9B007 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1496 STC1N5A005 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1309 STC1D9B500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2256 STC1N5A008 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1310 STC1D9B501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1980 STC1N5A010 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1524 STC1D9L002 Corinnidae Creugas sp.1 FML IMEDEA PA2257 STC1N5A012 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1261 STC1D9L006 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1497 STC1N5A500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2038 STC1D9L007 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2435 STC1N5B014 Corinnidae Creugas sp.2 FML IMEDEA PA1262 STC1D9L500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2187 STC1N5B016 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA PA1263 STC1D9L501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1528 STC1N5H004 Corinnidae Creugas sp.1 FML IMEDEA PA2040 STC1D9L503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1545 STC1N5L001 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA2262 STC1D9R001 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1334 STC1N5L002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2160 STC1D9R004 Linyphiidae Primerigonina australis IMEDEA PA2167 STC1N5L007 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA PA1982 STC1D9R007 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1335 STC1N5L500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2263 STC1D9R011 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1336 STC1N5L501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1481 STC1N4A003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1337 STC1N5L502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2861 STC1N4A008 Hahniidae Neoantistea sp.1 FML IMEDEA PA1223 STC1N5R003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2757 STC1N4A010 Anyphaenidae Isigonia reducta IMEDEA PA1534 STC1N5R007 Corinnidae Corinna sp.10 FML IMEDEA PA1484 STC1N4A502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2180 STC1N5R011 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA PA2058 STC1N4B015 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1579 STC1N5R012 Corinnidae Trachelas sp.15 FML IMEDEA PA1628 STC1N4B016 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA PA1224 STC1N5R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2238 STC1N4B019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA1226 STC1N5R502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1629 STC1N4H003 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA PA2085 STC1N6A007 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2758 STC1N4H005 Anyphaenidae Isigonia reducta IMEDEA PA1252 STC1N6A010 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2021 STC1N4H011 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1622 STC1N6A011 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA PA2184 STC1N4H018 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA PA1253 STC1N6A500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1479 STC1N4H501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2086 STC1N6A501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1480 STC1N4H502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2252 STC1N6B008 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA2022 STC1N4H503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2253 STC1N6B014 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA1998 STC1N4L005 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1425 STC1N6B500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1347 STC1N4L502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1427 STC1N6B502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1999 STC1N4L503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1428 STC1N6B503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2000 STC1N4L504 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1429 STC1N6B504 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2001 STC1N4L505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1571 STC1N6H004 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML IMEDEA PA2002 STC1N4L506 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1546 STC1N6H013 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA2150 STU1N7B012 Linyphiidae Asemostera sp.10 FML IMEDEA PA2110 STC1N6H019 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA3071 STU1N7B022 Senoculidae Senoculus bucolicus IMEDEA PA2335 STC1N6H021 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA PA2780 STU1N7H015 Clubionidae Elaver sp.4 FML IMEDEA PA1378 STC1N6H500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2747 STU1N7H024 Theridiosomatidae Chthonos sp.3 FML IMEDEA PA1379 STC1N6H501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2352 STU1N7L012 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA1381 STC1N6H503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2772 STU1N7L021 Clubionidae Elaver sp.12 FML IMEDEA PA1382 STC1N6H504 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1725 STU1N7R008 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1259 STC1N6L005 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1938 STU1N7R009 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2175 STC1N6L009 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA PA2142 STU1N7R011 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA1227 STC1N6R003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2518 STU1N7R012 Linyphiidae Dubiaranea sp.4 FML IMEDEA PA1531 STC1N6R012 Corinnidae Creugas sp.2 FML IMEDEA PA1846 STU1N7R022 Oonopidae Orchestina sp.2 FML IMEDEA PA1463 STC1N7A001 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1515 STU1N8A013 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2173 STC1N7A005 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA PA1758 STU1N8A017 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA PA2033 STC1N7A006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1516 STU1N8A500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1467 STC1N7A503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1659 STU1N8H002 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA3084 STC1N7B013 Tetragnathidae Glenognatha sp.3 FML IMEDEA PA2132 STU1N8H008 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA1374 STC1N7B500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1965 STU1N8H018 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1578 STC1N7H005 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA PA1660 STU1N8H500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2264 STC1N7H013 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1966 STU1N8H501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1971 STC1N7H016 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA3086 STU1N8L003 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML IMEDEA PA1596 STC1N7H024 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA PA3109 STU1N8L007 Miturgidae Eutichurus sp.1 FML IMEDEA PA2265 STC1N7H025 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1533 STU1N8R005 Corinnidae Corinna sp.1 FML IMEDEA PA1493 STC1N7H500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1709 STU1N8R011 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1495 STC1N7H502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2129 STU1N8R013 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA1972 STC1N7H503 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2043 STU1N8R021 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1387 STC1N7L001 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1710 STU1N8R500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1391 STC1N7L503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1711 STU1N8R501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2245 STC1N7R004 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA1712 STU1N8R502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1234 STC1N7R010 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1713 STU1N8R503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1235 STC1N7R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1714 STU1N8R504 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1236 STC1N7R501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2044 STU1N8R510 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1548 STC1N8A013 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA1669 STU2N8A016 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1577 STC1N8A014 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA PA1581 STU2N8B001 Corinnidae Trachelas barroanus IMEDEA PA2062 STC1N8A016 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2034 STU2N8B008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2251 STC1N8A019 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA2736 STU2N8B010 Anyphaenidae Sillus dubius IMEDEA PA1352 STC1N8A503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2625 STU2N8B011 Thomisidae Misumenops sp.2 FML IMEDEA PA2063 STC1N8A505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2476 STU2N8B014 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA1295 STC1N8B003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2035 STU2N8B500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2239 STC1N8B013 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA2036 STU2N8B501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1296 STC1N8B500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2246 STU2N8H013 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA1297 STC1N8B501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1665 STU2N8H015 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1298 STC1N8B502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2563 STU2N8L003 Anyphaenidae Macrophyes sp.10 FML IMEDEA PA1299 STC1N8B503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2023 STU2N8L017 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1300 STC1N8B504 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2024 STU2N8L500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1270 STC1N8H012 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2387 STU2N8R007 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1551 STC1N8H014 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA1766 STU2N8R012 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA PA1552 STC1N8H023 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA2145 STU2N8R016 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA2248 STC1N8H024 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA1772 STU2N8R021 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA PA2249 STC1N8H025 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA1283 STC2D8A500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2250 STC1N8H026 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA1284 STC2D8A501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1272 STC1N8H501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2019 STC2D8B006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA3082 STC1N8L010 Tetragnathidae Glenognatha sp.3 FML IMEDEA PA1726 STC2D8B014 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1547 STC1N8L012 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA2020 STC2D8B501 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1396 STC1N8L502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2094 STC2D8H004 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1656 STC1N8R002 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2613 STC2D8H012 Hahniidae Neoantistea sp.4 FML IMEDEA PA1246 STC1N8R009 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1363 STC2D8H015 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2237 STC1N8R020 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA2329 STC2D8H016 Linyphiidae Erigoninae sp.1 FML IMEDEA PA1247 STC1N8R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2095 STC2D8H500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1936 STC2D6R002 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1289 STC2D8L002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1254 STC2D6R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1290 STC2D8L500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1256 STC2D6R502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1291 STC2D8L501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1257 STC2D6R503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1292 STC2D8L502 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1258 STC2D6R504 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1293 STC2D8L503 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1937 STC2D6R505 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1449 STC2D8R003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1282 STC2D8A001 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2181 STC2D8R012 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA PA2267 STC2D8A002 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1450 STC2D8R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2025 STC2D8A011 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1451 STC2D8R501 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2268 STC2D8A013 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1715 STD1D6B008 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2269 STC2D8A014 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA2247 STD1D6B015 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA2270 STC2D8A015 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1675 STD1D6H003 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2271 STC2D8A016 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA2243 STD1D6H014 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA2272 STC2D8A017 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1676 STD1D6H500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1404 STD1N4R500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1677 STD1D6H501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1625 STD1N5A004 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA PA1678 STD1D6H502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1529 STD1N5H012 Corinnidae Creugas sp.1 FML IMEDEA PA1679 STD1D6H503 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1532 STD1N5L001 Corinnidae Corinna sp.1 FML IMEDEA PA2332 STD1D7B012 Linyphiidae Erigoninae sp.10 FML IMEDEA PA1575 STD1N5L003 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA PA2266 STD1D7B018 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1843 STD1N5L004 Oonopidae Dysderina sp.4 FML IMEDEA PA1661 STD1D7B022 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2438 STD1N5L011 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA2260 STD1D7H008 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA2258 STD1N5L018 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA2244 STD1D7H017 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA1527 STD1N5R007 Corinnidae Creugas sp.1 FML IMEDEA PA2261 STD1D7H018 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1530 STD1N5R010 Corinnidae Creugas sp.2 FML IMEDEA PA1983 STD1D7L017 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1576 STD1N6A018 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA PA1648 STD1D7L018 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1306 STD1N6B007 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1736 STD1D7R006 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1689 STD1N6B017 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2756 STD1N4A010 Anyphaenidae Isigonia reducta IMEDEA PA1667 STD1N6H001 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1503 STD1N4A014 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2754 STD1N6H004 Anyphaenidae Katissa sp.10 FML IMEDEA PA3261 STD1N4B014 Miturgidae Eutichurus sp.1 FML IMEDEA PA1331 STD1N6H006 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1570 STD1N4B016 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML IMEDEA PA1668 STD1N6H502 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1624 STD1N4H006 Corinnidae Trachelas sp.1 FML IMEDEA PA1526 STD1N6L001 Corinnidae Creugas sp.1 FML IMEDEA PA1760 STD1N4H009 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA PA1688 STD1N6L008 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1616 STD1N4H024 Corinnidae Trachelas trifidus IMEDEA PA3150 STD1N7A003 Pisauridae Architis tenuis IMEDEA PA1569 STD1N4L001 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML IMEDEA PA1542 STD1N7A010 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA1764 STD1N4L011 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA PA2714 STD1N7A013 Anyphaenidae Wulfila pulverulentus IMEDEA PA3087 STD1N4L015 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML IMEDEA PA1708 STD1N7A015 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1368 STD1N4L018 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA2032 STD1N7A023 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2176 STD1N4R019 Linyphiidae Walckenaeria intoleranda IMEDEA PA1543 STD1N7A025 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA2131 STU1N6A003 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA1475 STD1N7B002 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1703 STU1N6A011 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1733 STD1N7B015 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2073 STU1N6A012 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2735 STD1N7B021 Anyphaenidae Sillus dubius IMEDEA PA1704 STU1N6A500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2240 STD1N7B030 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA2763 STU1N6H012 Anyphaenidae Macrophyes sp.10 FML IMEDEA PA1476 STD1N7B500 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1757 STU1N6H015 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA PA2241 STD1N7H011 Linyphiidae Meioneta cincta IMEDEA PA1723 STU1N6L003 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA3187 STD1N7H014 Selenopidae Selenops sp.1 FML IMEDEA PA2042 STU1N6L006 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1573 STD1N7H016 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML IMEDEA PA3185 STU1N6L013 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML IMEDEA PA2254 STD1N7L010 Linyphiidae Meioneta sp.1 FML IMEDEA PA1724 STU1N6L500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2027 STD1N7L014 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1525 STU1N6R002 Corinnidae Creugas sp.1 FML IMEDEA PA2028 STD1N7L500 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1705 STU1N6R009 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1550 STD1N7R001 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA2391 STU1N6R018 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA1541 STD1N7R007 Corinnidae Parachemmis sp.10 FML IMEDEA PA2392 STU1N6R027 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA1959 STD1N7R025 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1706 STU1N6R500 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1572 STD2N4L003 Corinnidae Parachemmis sp.2 FML IMEDEA PA1707 STU1N6R501 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA1307 STD2N4L005 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1662 STU1N7A006 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA3085 STU1D5B001 Tetragnathidae Chrysometa sp.1 FML IMEDEA PA2017 STU1N7B003 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1991 STU1D5B005 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2141 STU1N7B005 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA2475 STU1D5B010 Linyphiidae Pocobletus sp.1 FML IMEDEA PA1759 STU1N4R014 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA PA1722 STU1N4B007 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2309 STU1N5A019 Linyphiidae Grammonota sp.2 FML IMEDEA PA2072 STU1N4B008 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA2711 STU1N5H018 Anyphaenidae Wulfila pulverulentus IMEDEA PA1670 STU1N4H015 Uloboridae Uloboridae indet. IMEDEA PA2041 STU1N5H022 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA3083 STU1N4H020 Tetragnathidae Glenognatha sp.3 FML IMEDEA PA1249 STU1N5R003 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA PA1981 STU1N5R018 Linyphiidae Linyphiidae indet. IMEDEA PA1762 STU1N5R008 Uloboridae Philoponella sp.11 FML IMEDEA PA1414 SAB1DDA014 Corinnidae Corinnidae indet. IMEDEA ANEXO_5 5. Evidencia Total. Detalle del mejor filograma de Máxima Verosimilitud obtenido de 100 réplicas con RAxML en el Capítulo 5. Se representan las familias Araneidae, Anapidae, Dyctinidae, Deinopidae, Hersiliidae, Prodidomidae, Miturgidae, Agelenidae, Zodariidae, Amarurobiidae, Sparassidae, Clubionidae, Hahniidae.

ANEXO_5 5. Evidencia Total. Detalle del mejor filograma de Máxima Verosimilitud obtenido de 100 réplicas con RAxML en el Capítulo 5. Se representan las familias Mimetidae, Oecobidae, Mysmenidae, Salticidae, Anyphaenidae. ANEXO_5 5. Evidencia Total. Detalle del mejor filograma de Máxima Verosimilitud obtenido de 100 réplicas con RAxML en el Capítulo 5. Se representan las familias Pholcidae, Drymusidae, Scytodidae, Caponiidae, Palpimanidae, Ochyroceratidae, Nesticidae, Tetragnahtidae. ANEXO_5 5. Evidencia Total. Detalle del mejor filograma de Máxima Verosimilitud obtenido de 100 réplicas con RAxML en el Capítulo 5. Se representan las familias Theridiidae, Symphytognathidae.

ANEXO_5 5. Evidencia Total. Detalle del mejor filograma de Máxima Verosimilitud obtenido de 100 réplicas con RAxML en el Capítulo 5. Se representan las familias Nemesiidae, Cyrtaucheniidae, Theraphosidae, Ctenizidae, Dipluridae, Senoculidae, Thomisidae, Lycosidae, Trechaleidae, Oxyopidae, Pisauridae, Ctenidae, Tengellidae.