MISSION ENTOMOLOGIQUE Octobre 2010

Réserve Naturelle de la Trinité, site de Roche Bénitier

Etude réalisée par la Etude commandée par

Mission entomologique SEAG Octobre 2010 – Réserve Trinité / Station Roche Bénitier

Réserve Naturelle de la Trinité Site de Roche Bénitier

Mission d’inventaire entomologique Octobre 2010 Rapport

Objet : Ce rapport fait état des résultats obtenus suite à l’échantillonnage effectué sur le site de Roche Bénitier dans la Réserve Naturelle de la Trinité par la Société Entomologique Antilles-Guyane du 2 octobre 2010 au 10 octobre 2010. Le rapport présente les différentes méthodes mises en œuvre, quelques photos par famille, des commentaires et quelques travaux statistiques sur les familles et ordres étudiés. Les listes d’espèces déterminées ainsi que les déterminateurs sont donnés en annexe.

Maître d’ouvrage : Office National des Forêts Direction Régionale de Guyane Contact : Marguerite Delaval, conservateur de la Réserve de la Trinité

Réalisation de l’étude Société entomologique Antilles-Guyane Président : Pierre-Henri DALENS Association Loi 1901 06 94 26 14 76 N° SIRET : 498 671 742 00019 Mail : [email protected] 18 Lotissement Amaryllis Secrétaire : Stéphane BRÛLÉ 97354 Rémire-Montjoly 06 94 26 21 19 Mail : [email protected]

Citation conseillée du rapport : BRÛLÉ S., TOUROULT J. & DALENS P.-H., (coord.). 2011. -- Résultats de la mission entomologique du site de Roche Bénitier, Réserve de la Trinité (Guyane), Octobre 2010 . Rapport de la Société entomologique Antilles-Guyane, SEAG, ONF, 93 pp.+ annexes. Non publié.

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Remerciements Nous tenons à remercier Marguerite DELAVAL (ONF), conservateur de la Réserve Naturelle de la Trinité.

Nous remercions également l’ensemble de nos collègues entomologistes (cf. Annexe 2) pour avoir accepté de collaborer à ce travail d’inventaire de la Réserve.

Remarques préliminaires :

L’ensemble des photos in situ a été réalisé par les membres de la S.E.A.G présents lors de la mission, à savoir Denis BLANCHET, Serge FERNANDEZ, Sylvain PINCEBOURDE, Eddy POIRIER et Vincent VEDEL ; les graphes de répartition, les courbes d’accumulation, la présentation du rapport et quelques photos d’insectes in vivo ont été réalisés par Stéphane BRÛLÉ.

Ce rapport est un travail collectif des membres de la SEAG et d’autres experts associés. Les auteurs des différentes sections de ce rapport collectif sont mentionnés sous le titre de chaque section taxonomique.

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Sommaire

I / Présentation générale et équipe impliquée sur le terrain p.7

II / Méthodes p.8 1°) Récoltes actives a) Collecte à vue p.8 b) Battage p.8 c) Fauchage p.8 2°) Piégeage par interception p.9 a) Piège à interception vitré p.9 b) Piège Malaise p.9 c) Piège à filet cryldé p.10 3°) Piégeage par attractivité p.10 a) Piège lumineux p.11 b) Pièges à appâts fermentés p.11 c) Pièges collants ou sticky-trap p.12 4°) Récolte et élevage de larves p.12 5°) Conditions météorologiques et effort de collecte par méthode de piégeage p.13

III / Résultats : Projet Ecologie thermique (Sylvain PINCEBOURDE) p.14

IV / Résultats généraux p.20

V / Résultats : Ordre des Coleoptera p.22 1°) Buprestidae (Stéphane BRÛLÉ) p.22 2°) Cantharidae (Robert CONSTANTIN) p.22 3°) Carabidae p.22 4°) Cerambycidae (Pierre-Henri DALENS) p.23 5°) Chrysomelidae p.25 6°) Cleridae (Robert CONSTANTIN) p.26 7°) Coccinellidae p.26 8°) Curculionidae (Joachim RHEINHEIMER) p.26 9°) Elateridae (Jacques CHASSAIN) p.27 10°) Erotylidae p.28 11°) Geotrupidae Bolboceratinae (Olivier BOILLY) p.28 12°) Hybosoridae Ceratocanthinae (Alberto BALLERIO) p.28 13°) Lampyridae (Robert CONSTANTIN) p.29 14°) Lycidae (Robert CONSTANTIN) p.29 15°) Melolonthidae p.29 16°) Mordellidae (Pascal LEBLANC) p.30 17°) Passalidae p.30 18°) Phengodidae (Robert CONSTANTIN) p.31 19°) Scarabeidae sensu lato (Julien TOUROULT) p.31 20°) Staphylinidae Pselaphinae p.33 21°) Telegeusidae (Robert CONSTANTIN) p.33 22°) Tenebrionidae p.33 23°) Autres familles de Coleoptera p.34

VI / Résultats : Ordre des Lepidoptera p.35 1°) Lépidoptères nocturnes - Heterocera et Généralités p.35

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a) Arctiidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.42 b) Apatelodidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.45 c) Cossidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.45 d) Geometridae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.45 e) Hedylidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.47 f) Thyrididae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.47 g) Lasiocampidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.48 h) Mimallonidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.48 i) Megalopygidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.49 j) Noctuidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.49 k) Lymantridae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.51 l) Uraniidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.51 m) Limacodidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.52 n) Dalceridae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.52 o) Notodontidae (Philippe COLLET & Eddy POIRIER) p.52 p ) Saturniidae (Frédéric BENELUZ) p.53 q) Sphingidae (Frédéric BENELUZ) p.53 2°) Lépidoptères diurnes – Rhopalocera p.57 a) Riodinidae (Serge FERNANDEZ) p.57 b) Autres familles de Rhopalocera (Mohamed BENMESBAH) p.60 3°) Conclusions Lépidoptères p.62

VII / Résultats : Ordre des Orthoptera p.65

VIII / Résultats : Ordre des Mantodea p.66

IX / Résultats : Ordre des Phasmatodea p.66

X/ Résultats : Ordre des Blattoptera p.66

XI / Résultats : Ordre des Hemiptera p.67 1°) Résultats généraux p.67 2°) Pentatomoidea (Roland LUPOLI) p.67 3°) Reduviidae (Denis BLANCHET) p.68 4°) Membracidae p.69 5°) Fulgoridae (Pierre-Henri DALENS) p.70

XII / Résultats : Ordre des Hymenoptera p.71

XIII / Résultats : Ordre des Diptera p.72

XIV / Résultats : Ordre des Odonata p.73

XV / Résultats : Classe des Arachnides (Vincent VEDEL) p.74

XVI / Récapitulatifs – Conclusions p.92

Annexe 1 : Listes établies par les membres de la S.E.A.G et les spécialistes collaborateurs p.94

Annexe 2 : Identificateurs par groupes taxonomiques. p.128

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Annexe 3 : Liste des publications citant des spécimens collectés dans la Réserve de la Trinité lors de la Mission Octobre 2010 – S.E.A.G p.130

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I / Présentation générale et équipe impliquée sur le terrain

La mission entomologique a eu lieu sur le site de la station Roche Bénitier et assurée par la S.E.A.G, Société entomologique Antilles-Guyane. Ces missions avaient pour but de réaliser un inventaire entomologique le plus complet possible de la zone et de mettre en place un dispositif de collecte permanent basé principalement sur des pièges d’interception.

La mission a eu lieu aux dates ci-dessous : Mission : du 2 octobre 2010 au 10 octobre 2010

L’équipe de la S.E.A.G qui est intervenue durant cette mission était constituée au total de 5 entomologistes ayant des spécialités complémentaires : - BLANCHET Denis, spécialiste Hemiptera Reduviidae Triatominae - FERNANDEZ Serge, spécialiste Rhopalocera Riodinidae - PINCEBOURDE Sylvain, spécialiste Ecologie thermique (Coleoptera Phanaeini) - POIRIER Eddy, spécialiste Heterocera - VEDEL Vincent, spécialiste Arachnodea.

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II / Méthodes 1°) Récoltes actives a) Collecte à vue

Capturés au filet entomologique ou par collecte directe à la main, à vue sur et sous tronc, sur fleurs, les Lépidoptères et quelques Coléoptères capturés par observation directe dans la zone concernée ont fait l’objet d’une identification immédiate ; les Odonates, quelques Orthoptères et Hyménoptères entre autres ont également été capturés pour identification. Plusieurs sorties de chasse à vue de nuit sur tronc et sur feuilles ont permis de trouver principalement des Arachnides et quelques insectes xylophages, plus actifs durant la nuit.

Sylvain PINCEBOURDE partant en chasse à vue Vincent VEDEL lors d’une chasse à vue de nuit.

b) Battage La technique du battage consiste, en frappant leur support, à faire tomber dans un carré de toile des insectes présents dans les branches. Des sorties quotidiennes ont été pratiquées à l’aide d’un « parapluie japonais » dans le but de récolter les arachnides et autres insectes difficiles à détecter visuellement comme les Coléoptères Elateridae, Cerambycidae ou Curculionoidae et les Hémiptères ; le battage a été effectué de jour comme de nuit.

c) Fauchage Quelques séances de fauchage ont été pratiquées à l’aide d’un filet fauchoir pour récolter les arthropodes vivant dans les hautes herbes et les arbustes, entre autres les Arachnides, les Orthoptères, Hémiptères, divers petits Coléoptères et Hyménoptères.

Vincent VEDEL lors d’une séance de fauchage

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2°) Piégeage par interception a) Piège à interception vitré

Quatre pièges à interception vitrés d’une surface de 2m² chacun ont été mis en place et ont été relevés la veille de la fin de la mission. Ce type de piège à interception permet de capturer l’ensemble des insectes volants et occasionnellement des arthropodes aptères tombant des feuilles et branches lors d’averses ou de coups de vent.

Pièges à interception vitrés placés en chablis et en sous-bois.

L’ensemble des familles déterminables par les collaborateurs spécialistes a été trié (Cerambycidae, Curculionidae, Buprestidae, …). Cependant, le rendement de ces pièges a été très décevant car peu d’insectes ont été collectés en comparaison avec d’autres sites à la même période : ceci peut s’expliquer par la présence quasi-permanente de vent au sommet de la Roche Bénitier qui doit « limiter » le vol des insectes et par conséquent leur capture.

b) Piège Malaise

Deux pièges « Malaise » ont été mis en place et ont été relevés la veille de la fin de la mission. Ce type de dispositif permet généralement de collecter Hyménoptères, Diptères et divers Coléoptères : la remarque de la faible densité des insectes dans les pièges à interception vitrés est aussi valable pour les pièges Malaise.

L’ensemble des familles déterminables par les collaborateurs spécialistes a été trié et identifié.

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c) Piège à filet cryldé

2 kg de toile d’araignée synthétique permettant la capture de Coléoptères ont été installés sur le site. Les filets ont été inspectés quotidiennement afin de ne pas récolter des spécimens endommagés, principalement par les fourmis. Ceux-ci ont été démontés à la fin de la mission.

3°) Piégeage par attractivité

a) Piège lumineux Huit nuits de piégeage lumineux (PL) ont été réalisées lors de la mission. Le piège a été placé au sommet de la Roche Bénitier (coord. GPS 04°37'08.0''N 53°24'31.9''W ) et celui-ci a dû être haubané et arrimé à la roche afin que la structure puisse résister à la force du vent.

Le piège PL a été équipé d’une lampe d’appel de 250W et de deux lampes de 150W.

La collecte des spécimens a débuté à la tombée de la nuit (18h30 environ) et s’est poursuivie jusqu’à l’aube (6h30 environ). Plusieurs nuits ont été marquées par un fort vent : les insectes n’ont ainsi pu se poser sur le drap que pendant quelques heures lorsque le vent était tombé et cela a évidemment eu une incidence sur les collectes.

Ce type de piégeage est indispensable pour l’échantillonnage des Hétérocères (papillons nocturnes) mais permet également de capturer

de nombreuses familles de Coléoptères (Cerambycidae, Scarabeidae Dynastinae, Curculionidae, Chrysomelidae …) mais aussi des Hémiptères (Cicadidae, Cicadellidae, Fulgoridae, Pentatomoidea, Reduviidae …), des Orthoptères et autres Dictyoptères (Mantodea, Blattoptera).

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b) Pièges à appâts fermentés • Pièges aériens (vin rouge ou nectar de banane)

Les pièges ont été fabriqués à partir de bouteilles de 5 litres en PET (polyéthylène téréphtalate) dont le côté a été découpé afin de créer une entrée puis le piège est rempli avec un litre de vin ou de nectar de banane . L’utilisation de liquide présente l’avantage de permettre une filtration et donc un relevé plus complet et pratique que lors de l’utilisation de banane fruit.

Dix bouteilles de 5 litres (5 pièges banane et 5 pièges vin) ont donc été mises en place et ont été relevées la veille de la fin de la mission ; les pièges ont été placés à des hauteurs différentes, de hauteur d’homme à 10-15m.

Ces pièges à appâts fermentés permettent de capturer généralement des Coléoptères Nitidulidae, Elateridae, Cetoniinae, Rutelinae, Histeridae et Cerambycidae mais ceux-ci ont été peu productifs car une unique espèce de Cetoniinae a été capturée.

L’ensemble des familles déterminables par les collaborateurs spécialistes a été trié et identifié.

• Pièges à Nymphalidae

Cinq pièges à Nymphalidae ont été placés au sol et cinq autres pièges en hauteur dans les arbres durant la mission.

Ce type de piège permet de capturer des lépidoptères Nymphalidae ou Noctuidae Catocalinae ainsi que des coléoptères Cetoniinae et quelques Cerambycidae ; les pièges placés près du sol ciblant les Satyrinae. L’obtention de spécimens en bon état a nécessité un relevé quotidien voire biquotidien.

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c) Pièges collants ou sticky-trap

Une vingtaine de pièges collants jaunes a été disposée lors de la mission sur le site en sub-canopée, en chablis et en lisière de sous-bois. Reconnus pour capturer généralement des Hyménoptères et des Diptères mais aussi les petites espèces de Coléoptères floricoles, leur rendement durant cette mission, pourtant en saison sèche, a été nul. Il est possible, comme cela avait déjà été évoqué pour les Nouragues, que la couleur jaune utilisée ne soit pas attractive pour les insectes floricoles de Guyane (essais à refaire avec d’autres couleurs).

4°) Récolte et élevage de larves

Douze caisses d’émergence (60 litres chacune) ont été remplies de bois mort prélevé sur le site lors de la mission dont deux caisses exclusivement remplies de Rhodognaphalopsis flaviflora [Bombacaceae]. Notre expérience montre que cette méthode est très efficace pour obtenir des Cerambycidae discrets, des Buprestidae, Curculionidae et autres Hyménoptères parasitoïdes (Ichneumonidae, Découverte de larves et de galeries dans du bois Braconidae , …) : plusieurs espèces de mort collecté sur le site (de gauche à droite, Eddy POIRIER, Cerambycidae et de Buprestidae n’ont d’ailleurs Sylvain PINCEBOURDE et Serge FERNANDEZ) été obtenues qu’avec cette méthode et certaines espèces ont émergé plus de 6 mois après le ramassage. L’ensemble des Coléoptères et des Hyménoptères parasitoïdes obtenus ex larva a été envoyé aux spécialistes (aucun Diptère obtenu).

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5°) Conditions météorologiques et effort de collecte par méthode de piégeage

Durant les 9 jours de la mission, le temps a été très sec (une seule averse durant la mission) et très chaud avec une forte brise quasi-permanente : les températures moyennes de l’air étaient de 25°C le matin, de 32,6°C à midi et de 31,4°C l’après-midi (mesures Sylvain PINCEBOURDE). Les conditions météorologiques auraient donc été globalement favorables aux collectes d’insectes si la présence de vent continu ne les avait pas autant perturbé es : la majorité des collectes lors des nuits de piégeage lumineux n’a été efficace que pendant quelques heures, par exemple les nuits du 4/10 et du 6/10 n’ont été favorables qu’entre minuit et 2h30, ce qui a réduit de beaucoup les collectes d’insectes. Ainsi, les récoltes de Lépidoptères nocturnes ont été à peine satisfaisantes. Parallèlement, les densités de Coléoptères et Lépidoptères diurnes circulant se sont révélées assez faibles.

Piège ou méthode de Abrév. Efforts de collecte cumulés Conditions météo et influence collecte (préciser les unités de mesure sur les résultats pertinentes) Collecte au filet et VU 64 heures.homme Peu favorable pour les Odonates recherche à vue tous (vent), faible pour les ordres Rhopalocères. Battage et examen de BT 64 heures.homme (hors Conditions plutôt favorables troncs de jour et de nuit déplacements) pour les arachnides mais peu de chablis frais pour les xylophages. Fauchage FC 16 heures.homme Résultats peu intéressants sinon en arachnides. Piège à interception PV 32 jours.vitre Moyennement productif malgré vitré la disposition distincte en sous- bois, forêt de transition et zone ouverte (présence de vent). Piège Malaise PM 16 jours.piège Résultats convenables pour les Hyménoptères. Piège à toile cryldé PC 2 kg soit 50m linéaires Peu de captures.

Piège lumineux PL 8 nuits complètes Configuration peu favorable du site en raison du vent. Résultats d’ensemble modestes y compris pour les Hétérocères. Piège à appâts PA 80 jours.piège Résultats médiocres. Aucune fermentés capture intéressante. Piège à Nymphalidae PN 80 jours.piège Système convenable. Piège collant 160 jours.piège Aucun insecte capturé par cette méthode. Elevage (bois) LV 12 sacs de 60 litres Résultats corrects.

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III / Résultats : Projet Ecologie thermique – Sylvain PINCEBOURDE

Projet 1 : Écologie thermique des insectes phytophages sur un Inselberg

Objectif général Dans les régions tropicales et sub-tropicales d’Amérique du sud, les inselbergs montrent une diversité spécifique unique. Cette diversité est notamment liée à la grande variabilité de macrohabitats disponibles sur les Inselbergs (Burke 2003). L’habitat de savane-roche, en particulier, est un habitat spécifique aux inselbergs. La mosaïque de zones de surfaces granitiques nues et de zones de végétation font de la savane-roche un habitat au climat particulièrement chaud et sec. Cet habitat est donc souvent considéré comme extrême d’un point de vue bioclimatique (Burke 2003). Toutefois, il existe encore très peu de données sur les conditions microclimatiques au sein des savanes-roches. La diversité des conditions microclimatiques représente pourtant autant de niches possibles pour les insectes vivant dans ces habitats. Plus spécifiquement, les savane-roches de Guyane française sont dominées par une plante appartenant au genre Clusia , sur laquelle plusieurs espèces d’insectes peuvent se développer tels que des mineuses (microlepidoptera). Ces insectes se développent dans un microclimat formé par le Clusia . Cette étude consiste donc à mesurer la température des différents microclimats liés au Clusia , et à déterminer l’utilisation de ces conditions microclimatiques par un insecte mineur de feuille. Ces deux aspects ont été étudiés en deux temps.

Caractérisation de l’hétérogénéité thermique dans les canopées de Clusia

Objectif – Des deux espèces de Clusia communes en Guyane, seule l’espère Clusia nemorosa a été observée sur la Roche Bénitier. Cette espèce de ligneux buissonnant a une taille variable jusqu’à 3-5m de haut. Ses feuilles ont un aspect très caractéristique d’une feuille de succulente (plantes grasses), très épaisse et coriace. La première étape du projet consistait à mesurer l’hétérogénéité thermique (température de surface) des buissons de Clusia à l’échelle du paysage, c’est-à-dire à partir de photos thermiques infrarouges prises à une échelle globale. Une seconde partie consistait à échantillonner la température de surface foliaire en distinguant les feuilles ombragées des feuilles exposées directement aux radiations solaires.

Méthode – Une caméra thermique infrarouge (Flir Systems, B335) a été utilisée pour mesurer la température de surface des éléments de sol et de végétation sur cinq localisations dans une savane-roche près de la station météorologique. Les cinq localisations ont une orientation différente. En parallèle, un grand buisson de Clusia (exposé plein sud) a été sélectionné pour effectuer des mesures de température de 10 feuilles ombragées et 10 feuilles exposées au soleil. Ces deux types de mesures ont été faits quatre fois par jour (matin, midi, fin d’après midi et durant la nuit) durant 4 jours consécutifs. Cette approche méthodologique permet de quantifier l’hétérogénéité de température microclimatique à l’échelle du paysage ainsi qu’à une échelle spatiale plus fine (hétérogénéité des températures de feuille à l’échelle d’un buisson).

Résultats – Les données de température sont en cours d’analyse approfondie. Les premières analyses montrent une très grande hétérogénéité de température à l’échelle du paysage. La surface granitique peut monter jusqu’à 67°C tandis que dans le même temps des éléments de

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végétation ne sont qu’à 27,7°C (la température de l’air ambiant étant de 33,9°C durant cet exemple), soit un écart maximum de près de 40°C (figure 1). Une forte hétérogénéité a également été mesurée à l’échelle d’un buisson de Clusia , avec un écart maximum de plus de 17°C entre les différentes parties d’un même buisson (figure 2). Cette analyse à l’échelle du buisson montre par ailleurs qu’il n’existe pas de gradient vertical de température de surface végétale. La température élevée de la surface du granite ne semble donc pas causer une température plus élevée des feuilles du Clusia situées proches du sol. Ceci est plutôt surprenant compte tenu de la chaleur radiative renvoyée par le granite. Des mécanismes physiologiques spécifiques permettent probablement au Clusia d’abaisser la température de feuille lorsque la chaleur dégagée par le sol est importante.

66,6°C

18,2°C

Figure 1. Photographie (à gauche) et image thermique (à droite) d’un paysage de savane-roche prises le 3 octobre 2010 à 12:10 (heure locale). Le code couleur de l’image thermique renvoie la valeur de température de surface des éléments du paysage. Les images ont été prises en direction du nord.

53,6°C

17,7°C Figure 2. Photographie (à gauche) et image thermique (à droite) d’un buisson de Clusia dans la savane-roche prises le 3 octobre 2010 à 12:10 (heure locale). Le code couleur de l’image thermique renvoie la valeur de température de surface des éléments de la photographie. Les images ont été prises en direction du nord.

Une analyse plus détaillée sur la différence de température entre feuilles de Clusia ombragées et feuilles exposées aux radiations solaires montre des écarts de température importants. Ainsi, au matin (température de l’air ambiant 24,7°C), les feuilles ombragées ont une température de 26,1 + 0,3 °C (moyenne + écart type) tandis que les feuilles exposées sont déjà à une température de 30,0 + 1,4 °C. A midi, les feuilles exposées peuvent atteindre les 40°C en surface, tandis qu’à l’ombre les feuilles ne dépassent pas les 35°C.

Discussion – L’environnement de la savane-roche des inselbergs est fortement hétérogène d’un point de vue thermique. Tout organisme (pas seulement les insectes) peut trouver une température vraiment différente en se déplaçant sur de courtes distances. Dans le cas des

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insectes phytophages, le choix de la feuille comme support (soit pour se nourrir soit comme site de repos) est crucial au regard des températures que peuvent atteindre les feuilles du Clusia . Les larves d’insectes ont un développement qui dépend de la température de leur corps, jusqu’à un seuil de température qui stoppe ce développement et induit la mort. Dans le cas des feuilles exposées, non seulement la feuille peut atteindre des températures élevées (~40°C), mais le corps de l’insecte exposé aussi au soleil peut être encore plus chaud (figure 3). Seules quelques observations d’insectes à la surface des feuilles du Clusia ont été faites au cours de cette mission (voir aussi partie ci-dessous sur la mineuse). Par ailleurs, la température de surface des feuilles du Clusia est de façon surprenante pas aussi élevée qu’attendu au début de la mission, surtout lorsque l’on considère les niveaux de radiation solaires très importants et la chaleur dégagée par le granite brûlant. Ceci suggère des mécanismes de régulation de température de feuille très actifs chez Clusia nemorosa ; par exemple un système d’évapo-transpiration très important.

39,1°C

3,4°C Figure 3. Photographie et image thermique infrarouge d’une feuille de Clusia nemorosa avec une chenille à sa surface exposées aux radiations solaires. Ici, la température corporelle d’une chenille est de 37,8°C, et la température de surface foliaire est de 34,6°C.

Relation Clusia nemorosa – mineuse Gracillariidae

Objectif – La température des feuilles de Clusia nemorosa est très hétérogène dans l’espace. Nous avons donc voulu déterminer si des espèces d’insectes montrent une préférence pour des feuilles ombragées, permettant de limiter le risque de mortalité suite à une trop forte température, ou bien pour des feuilles exposées, permettant par exemple d’accélérer le développement larvaire. Des missions récentes effectuées aux Nouragues (par Carlos Lopez- Vaamonde, INRA) ont découvert qu’un insecte mineur de feuille (microlépidoptère de la famille des Gracillariidae – identification en cours) s’est spécialisé sur Clusia nemorosa . La larve de ce papillon se développe à l’intérieur des tissus de la feuille du Clusia , dans une galerie appelée mine. La larve ne peut pas se déplacer lorsque la température dans la mine atteint des valeurs critiques pour sa survie. En climat tempéré, la température dans les mines de Gracillariidae (sur le pommier) est plus élevée que la température de feuille et de l’air ambiant, ce qui permet aux larves d’accélérer leur développement larvaire. L’objectif était donc ici d’échantillonner les Clusia à la recherche de cette mineuse, puis de mesurer la température des feuilles et des mines afin de montrer si les mineuses Gracillariidae en milieu tropical ont ce même fonctionnement qu’en milieu tempéré.

Méthode – Les buissons de Clusia ont été inspectés à vue durant la journée pour rechercher la mineuse. Lorsqu’une mine a été trouvée, une image thermique infrarouge a été prise (Flir Systems, B335). Le type d’exposition de la mine a été noté (ombragée, exposée ou bien mi- ombre), ainsi que la hauteur de la mine par rapport au sol dans le buisson.

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Résultats – Au total, seulement 16 feuilles de Clusia minées ont pu être observées. Ces feuilles minées étaient situées à 1,2 + 0,5 m du sol (moyenne + écart type). Sur les 16 mines échantillonnées, 44% étaient sur des feuilles ombragées, 38% sur des feuilles exposées et 19% à mi-ombre. La température des mines (moyenne + écart type : 34,2 + 3,3 °C) n’est pas différente de la température moyenne de la surface des feuilles (34,1 + 3,4 °C). La température de surface foliaire était assez hétérogène (intervalle de 4,4 + 3,0 °C) et la température des mines appartient à ce même intervalle. Toutefois, la mine modifie légèrement la répartition de la température de façon locale à la surface des feuilles car les mines se distinguent très bien sur les images thermiques infrarouges (figure 4). Par ailleurs, une forte condensation a été observée dans les mines situées sur des feuilles exposées. Cette condensation s’observe sous la forme de formation de gouttelettes visibles par transparence à l’intérieur de la mine.

Discussion – L’environnement thermique de la mine ne se distingue pas de la surface foliaire, bien que les images thermiques montrent une modification locale de la température due à la présence de la mine. Cette observation signifie que la température dans les mines atteint des valeurs aussi élevées que pour les feuilles, c’est-à-dire au moins jusque 40°C. Ces minuscules larves doivent donc présenter un niveau de tolérance thermique très élevé. La condensation observée dans les mines est certainement due à la différence de température entre l’air ambiant et l’intérieur de la mine.

47,0°C

31,4°C

40,0°C

23,0°C

Figure 4. Deux exemples de prise de vue sur des mines de Gracillariidae sur Clusia nemorosa . A gauche, la photographie correspondant à l’image thermique infrarouge à droite. Le code couleur se rapporte à une échelle de température.

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Projet 2 : Thermorégulation des Sphingidae durant les pièges lumineux

Objectif – Les lépidoptères Sphingidae comptent parmi ces papillons ayant la capacité de faire monter la température du thorax afin d’atteindre une température corporelle optimale pour le vol. Ces papillons utilisent leurs muscles alaires pour dégager de la chaleur métabolique afin de faire monter leur température thoracique. De nombreuses études se sont portées sur ce comportement de thermorégulation en laboratoire. Toutefois, des mesures de température thoracique sur le terrain sont rares, voire quasiment inexistantes en forêt tropicale primaire. L’objectif de cette étude est d’effectuer des mesures de température thoracique de Sphingidae lors de chasses au piège lumineux. Au-delà de la quantification des températures thoraciques, nous avons également souhaité mesurer à quel point la température thoracique peut renseigner sur l’heure d’arrivée d’un Sphingidae sur le drap blanc lors d’un piège lumineux. Cette étude s’inscrit dans un contexte d’acquisition de données préliminaires pour éventuellement servir de base au développement d’un projet futur de plus grande envergure.

Méthode – Les mesures de température thoraciques ont été effectuées lors d’une session de piège lumineux effectuée le 7 octobre 2010. Une caméra thermique infrarouge (Flir Systems, B335) a été utilisée pour mesurer in situ la température corporelle des Sphingidae arrivant en volant (i) directement sur le drap blanc et (ii) indirectement en se posant sur le sol granitique. Une seconde session de mesures a été faite 15 minutes après l’arrivée des papillons afin de mesurer le taux de refroidissement du thorax sur chaque support (drap blanc et sol granitique). Le sol granitique reste relativement chaud durant plusieurs heures en début de nuit (il dégage lentement la chaleur accumulée durant la journée), ce qui peut contribuer à modifier le comportement de thermorégulation des papillons à leur arrivée à proximité du drap blanc.

Résultats – La température de l’air lors des mesures était de 24,5°C. La température thoracique des Sphingidae (9 espèces différentes, 14 individus au total) arrivant en volant sur le drap blanc était de 31,6 + 2,5 °C (moyenne + écart type) tandis que celle des Sphingidae se posant sur le sol granitique chauffé (30,5 °C en moyenne) était de 38 + 1,6 °C. Les mêmes mesures après 15 minutes montrent que la température thoracique des Sphingidae sur le drap blanc ne se distingue pas de celle de l’air ambiant. En revanche, la température thoracique des papillons restés sur le sol granitique (30 + 1,6 °C) est toujours plus élevée que la température ambiante. La figure 5 illustre les 2 cas de figure (sur drap blanc et sur le sol).

34,1°C

23,2°C

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38,8°C

23,9°C

Figure 5. Photographie (à gauche) et image thermique infrarouge (à droite) de deux espèces de Sphingidae (en haut Adhemarius roessleri et en bas Pachylia darceta ). Le code couleur renvoie à la valeur de température sur les images thermiques. Le papillon du haut est posé sur le drap blanc tandis que celui du bas est posé sur le sol granitique qui est encore chaud.

Discussion – Ces données préliminaires montrent que les sphinx arrivant au piège lumineux en volant ont une température thoracique entre 7°C et 13°C supérieure à la température de l’air. Toutefois, cette température chute très rapidement lorsque les papillons sont posés sur le drap blanc (dont la surface est à la température de l’air ambiant). Au contraire, les papillons posés au sol parviennent à conserver une température thoracique élevée grâce à la chaleur dégagée par le granite. Ceci leur permet de conserver la capacité de s’envoler à nouveau rapidement. Cette conclusion est corroborée par le fait que les papillons posés au sol sont souvent plus nerveux et agités que ceux posés sur le drap blanc. L’échantillonnage reste toutefois assez faible, ce qui n’a pas permis de détecter une différence entre les espèces au niveau de la température thoracique.

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IV / Résultats généraux Nombre de spécimens collectés par groupe– Bilan général des retours et des collectes

Tableau du nombre d’espèces identifiées et du nombre de spécimens renseignés par les spécialistes

Nbre total Nbre d’espèces Ordre Famille de spécimens identifiées Lycaenidae 2 2 Nymphalidae 77 23 Pieridae 5 2 Riodinidae 65 42 Apatelodidae 18 15 Arctiidae 364 186 Cossidae 19 13 Dalceridae 7 2 Geometridae 218 118 Hedylidae 4 3

Lasiocampidae 32 23

Limacodidae 12 8 Lepidoptera Lymantridae 13 8 Megalopygidae 7 6 Mimallonidae 38 18 Noctuidae 233 159 Notodontidae 236 126 Saturniidae 83 28 Sphingidae 68 48 Thyrididae 15 9 Uranidae 3 3 Sous-TOTAL 1519 842 Anthicidae 1 1 Anthribidae 5 3 Buprestidae 43 8 Cantharidae 1 1 Carabidae 6 5 Catopidae 1 1 Cerambycidae 222 73 Chrysomelidae 17 10 Cleridae 1 1 Coccinellidae 24 10

Curculionidae 49 31

Dytiscidae 2 2

Elateridae 16 14 Coleoptera Erotylidae 3 3 Geotrupidae 4 1 Histeridae 1 1 Hybosoridae 4 3 Lampyridae 5 4 Lycidae 2 2 Melolonthidae 3 1 Mordellidae 7 6 Passalidae 4 4 Phengodidae 5 4 Scarabeidae 81 14

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Staphylinidae 1 1 Telegeusidae 1 1 Tenebrionidae 2 2 Sous-TOTAL 511 207 Cicadellidae 11 6 Cydnidae 12 3 Fulgoridae 4 3 Hemiptera Membracidae 5 5 Pentatomidae 9 5 Reduviidae 13 7 Vellidae 1 1 Sous-TOTAL 54 30 Apidae 1 1 Ampulicidae 1 1 Braconidae 19 13 Crabonidae 12 8 Hymenoptera Evaniidae 1 1 Stephaniidae 2 1 Sous-TOTAL 36 25 Acrididae 3 1 Romaleidae 2 1 Orthoptera Tettigoniidae 53 19 Sous-TOTAL 58 21 Mantodea Mantidae 1 1 Sous-TOTAL 1 1 Phasmatodea Prisopodidae 1 1 Sous-TOTAL 1 1 Aeshnidae 4 2 Coenagrionidae 7 3 Heliocharitidae 2 1 Libellulidae 12 6 Odonata Megapodagrionidae 2 1 Polythoridae 4 1 Pseudostigmatidae 4 2 Sous-TOTAL 35 16 Neuroptera Ascalaphidae 1 1 Sous-TOTAL 1 1 Arachnodea Ttes familles confondues >>> 450 256

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V / Résultats : Ordre des COLEOPTERA

1°) Buprestidae (Stéphane BRÛLÉ)

La mission sur la Roche Bénitier dans la Réserve Naturelle de la Trinité a permis la collecte sur place de 5 spécimens de 4 espèces communes de Buprestidae, Actenodes nobilis , Chrysobothris cordicollis , Psiloptera equestris , Euchroma gigantea mais également d’un unique spécimen d’ Agrilus au piège à vitre : cette espèce, Agrilus moraguesi n.sp, a été récemment décrite dans la première contribution à la connaissance du genre Agrilus (CURLETTI & BRÛLÉ, 2011).

Actenodes nobilis

On peut aussi signaler l’absence de capture de spécimens de Trachyini pourtant fréquemment rencontrés dans les pièges à interception, probablement car ces micro-buprestes (entre 2 et 6mm) doivent limiter leurs déplacements par vent important.

En dehors des captures sur le site, la mise en enceinte d’élevage de bois prélevé sur site a Euchroma gigantea permis d’obtenir 3 espèces non capturées durant la mission : Actenodes florencae , Spectralia sulcifera , Chrysesthes tripunctata ; ces 3 espèces sont également assez communes. Cependant, la mise en enceinte d’élevage est particulièrement intéressante pour l’obtention d’ Agrilus mâles (précieux pour la description d’espèces nouvelles) : la technique ex-larva permet d’obtenir un sex-ratio de 50-50, contre 98% de spécimens femelles dans les pièges vitrés.

2°) Cantharidae (Robert CONSTANTIN)

Les Cantharidae forment une grande famille de plus de 4000 espèces. Les larves vivent sur le sol comme prédateurs libres, à la recherche de micro-arthropodes. Les adultes sont fréquents sur les feuillages. Seul un individu de l’espèce Chauliognathus flavolineatus a été capturé durant la mission, certainement pour la même raison que celle évoquée pour les Lycidae (cf. page 28).

3°) Carabidae Insectes prédateurs (larves et adultes). L’appelation anglo-saxone de « ground beetles » est trompeuse puisque de nombreuses espèces sont ailées et se déplacent dans les feuillages.

Pour 6 spécimens collectés, 5 espèces ont pu être isolées dont 3 nouvelles espèces pour les captures de la SEAG, faisant du site de la Roche Bénitier un site particulièrement intéressant pour cette famille.

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4°) Cerambycidae (Pierre-Henri DALENS)

Les Cerambycidae ou longicornes sont des insectes dont les larves sont xylophages primaires (bois vivant : certains Cerambycini et Torneutini), secondaires (bois mort mais structuré : une majorité d’espèces), tertiaires (bois dégradé : Prioninae, Parandrinae, Lepturinae) ou mineuses de tiges (certains Aganpanthiini et Apomecynini). Les adultes ont un rôle souvent limité à la reproduction mais certaines espèces sont opophages ou floricoles. Ils jouent un rôle important dans l’écologie forestière de la Guyane de part leurs intéractions privilégiées avec les arbres. La Guyane recelle une diversité particulièrement importante, avec probablement plus de 1800 espèces (Touroult & al, 2011 Bulletin de l’ACOREP Hors-série Guyane vol.3), dont à peine environ 1200 sont répertoriées.

Au total, sur la mission de 9 jours et les données d’élevage, 222 spécimens ont été obtenus, appartenant à 73 espèces.

Concernant les méthodes de capture , on relève : - Lors de la mission proprement dite : - 1 espèce au battage ; - 2 espèces au piège à vitre ; - 6 espèces à la toile d’interception ; - 44 espèces au piège lumineux (avec un nombre relativement important de Cerambycini - 12 espèces -, classiques avec ce mode de capture) ; - Après le retour, 23 espèces ont été obtenues à partir des enceintes d’émergence réalisées avec du bois collecté sur place (6 lots de 15kg de bois)

On peut faire deux observations sur ces résultats : - L’absence de spécialiste de ce groupe lors de la mission n’a pas été favorable à d’importantes captures sur le terrain avec les méthodes de battage et de chasse à vue, - La collecte de bois pour la mise en enceinte d’élevage constitue un complément important à la mission sur le terrain (31% des espèces obtenues avec la méthode).

Deux lots de bois ont été effectués en collectant une essence identifié : Rhodognaphalopsis flaviflora [Bombacaceae]. Cette essence, qui n’avait pas été étudiée par Tavakilian lors de ses élevages de Petit Saut (résultats publiés en 1997), a permis l’obtention des espèces suivantes : Cerambycinae : - Chlorida denticulata Buquet, 1860 « endémique » de Guyane. Lamiinae : - Acanthoderes (Acanthoderes) daviesii (Swederus, 1787) ; - Leptostylus plautus Monné & Hoffmann, 1981 ; - Ozineus strigosus Bates, 1863.

Parmi les espèces capturées, on peut citer les espèces suivantes : Cerambycinae : - Atiaia tomentosa (in litteris ) : espèce dont la description est en cours de publication, déjà capturée sur de nombreux sites prospectés par la SEAG.

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- Chrysoprasis bipartita Zajciw, 1963 : espèce spectaculaire peu commune obtenue en

série par élevage (essence non identifiée).

Chrysoprasis bipartita

- Pantomallus costulatus (Btes, 1870): espèce nouvelle pour le département, déjà signalée de l’Amazonas (Brésil) et du Pérou. Lamiinae : - Aegoschema sp : deuxième spécimen capturé sur ce site (le premier en collection IRD à Paris), semblant « endémique » du site, et devant faire l’objet d’une prochaine description.

En conclusion, il s’agit d’un échantillonnage modeste (moins de 5% de la faune totale estimée) mais qui a pu mettre en évidence des espèces intéressantes. Ceci incite à des compléments de prospection afin de mieux cerner l’originalité de la faune de la Réserve.

Chlorida denticulata Callichroma velutinum

Eclipta eperuaphila Plocaederus bipartitus

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Steirastoma melanogenys Oreodera jacquieri

5°) Chrysomelidae

Vaste famille d’insectes phytophages à l’état larvaire et adulte.

10 espèces Chrysomelidae ont été capturées sur le site.

Colaspis sp. Diabrotica sp.

Walterianella sp.

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6°) Cleridae (Robert CONSTANTIN)

Les Cleridae sont une famille composée d'environ 3400 espèces, surtout présentes dans les régions tropicales. Les larves sont prédatrices, vivant en milieu forestier, sur les troncs ou sous les écorces. Les adultes sont aussi prédateurs, parfois floricoles, mais leurs proies diffèrent. Les Cleridae sont bien représentés en Guyane, avec une cinquantaine d'espèces signalées, mais il est vraisemblable qu’il en existe deux à trois fois plus.

A la Trinité (site de Roche Bénitier), un seul spécimen d’un genre encore indéterminé a été capturé.

7°) Coccinellidae Insectes prédateurs

24 individus de 10 espèces distinctes ont été capturés durant la mission essentiellement au piège à interception vitré et Polytrap, 7 espèces ayant été capturées à la vitre et 3 espèces au piège Polytrap (aucune espèce commune aux deux types de pièges) : - Une espèce du genre Azyia ; - Quatre espèces du genre Hinda ; - Une espèce du genre Curinus ; - Deux espèces du genre Exoplectra dont Exoplectra coccinea ; - Une espèce du genre Clypeaspis ; - Une espèce de la tribu Hyperaspidini de genre encore indéterminé.

Exoplectra coccinea Hyperaspidini sp.

8°) Curculionidae (Joachim RHEINHEIMER)

Les Curculionidae composent en Guyane la famille de coléoptères probablement la plus importante de par son nombre d’espèces (de 2500 à 4000 selon certains spécialistes), il n’est donc pas surprenant d’obtenir durant la mission 31 espèces pour 49 spécimens capturés ; il est également intéressant de signaler que seules deux espèces sont communes aux 5 techniques de chasses utilisées pour la capture de Curculionidae et que, par conséquent, ces 5 techniques (PL, PV, PC, VU et BT) sont fortement complémentaires pour un bon échantillonnage de cette famille.

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On peut signaler, parmi les espèces capturées, Rhineilipus bifurcatus nouvelle pour la faune de Guyane et Nettarhinus anthribidiformis nouveau genre pour la Guyane.

Nettarhinus anthribidiformis

Heilipodus sp. Compsus niveus

9°) Elateridae (Jacques CHASSAIN) Insectes saproxyliques aux premiers stades larvaires puis prédateurs pour les stades suivants et l’adulte.

16 spécimens d’Elateridae ont été capturés sur le site pour 14 espèces ; les captures se sont faites exclusivement au piège lumineux et au battage, aucun spécimen n’a été capturé au piège à interception vitré.

Parmi les espèces mentionnées en annexe, trois espèces sont remarquables : - Anchastus gantieri est peu commun, il a été recemment décrit (Chassain, 2010). Il est déjà connu de Bélizon, Saül (Point de Vue du Belvédère), Borne 1 et Tibourou. - Saltamartinus scriptus est également peu commun avec seulement une trentaine de spécimens en collection. - Lacon sp. présente un intérêt en ce sens qu'il n'est pas possible pour l'instant de lui assigner un nom d'espèce. Ce qui ne veut pas dire qu'il soit nouveau, mais quelques recherches sont nécessaires avant de pouvoir statuer sur son identité.

Anchastus gantieri Saltamartinus scriptus Photos J. CHASSAIN 27

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10°) Erotylidae Insectes saprophages liés aux champignons lignivores

Les captures pour cette famille ont été rares durant la mission, ceci pouvant s’expliquer par le rendement très faible des pièges vitrés qui donnent normalement de bons résultats pour cette famille. Seuls 3 spécimens de 3 espèces distinctes ont été capturés : - Deux espèces de la sous-famille des Erotylinae dont une espèce du genre Gibbifer et une autre du genre Dacne ; - Une espèce de la sous-famille des Langurinae. Gibbifer sp.

Langurinae sp. - Photo J.-H. YVINEC

11°) Geotrupidae Bolboceratinae (Olivier BOILLY)

Les tribus des Bolboceratini et des Athyreini appartiennent à la famille des Bolboceratidae. Ces groupes très discrets et pourtant très présents en Amérique du sud ont été jusqu’ici peu étudiés, l’apparition de pièges à interception a permis la capture d’un plus grand nombre de spécimens et la découverte de nouvelles espèces. La biologie de ce groupe est encore peu connue, mais il semble que certaines espèces soient coprophages ou saprophages, d’autres se développeraient au détriment de champignons endogés. Les adultes restent le plus clair de leur vie cachés dans des terriers profonds. Ils accumulent la nourriture nécessaire à la totalité du cycle dans des cellules larvaires, puis pondent un œuf dans chaque cavité.

Durant la mission, 4 spécimens d’un Athyreus giuglarisi n.sp. ont été capturés, cette espèce est nouvelle et a été récemment décrite (BOILLY, 2011 ; cf. Hors série Guyane ACOREP Septembre 2011) : deux des spécimens mâles capturés sont des paratypes de cette espèce.

12°) Hybosoridae Ceratocanthinae (Alberto BALLERIO)

Peu de spécimens (4 individus) ont été collectés sur le site pendant la mission, ceci, en dehors des conditons difficiles de vol, peut aussi s’expliquer par un pic d’abondance de cette sous- famille en avril. C’est pour cette raison que seules 3 espèces de Ceratocanthinae ont été capturées sur le site avec cependant une espèce du genre Ceratocanthus nouvelle pour la science et qui sera prochainement décrite.

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13°) Lampyridae (Robert CONSTANTIN) Les Lampyridae sont bien connus du public par leurs larves (les vers-luisants) et par les adultes bio-luminescents, dont les Lucioles. Sur le plan taxonomique, les Lampyridae comprennent près de 2000 espèces dans le monde, dont environ 700 en région néotropicale.

Durant la mission, 5 spécimens de 4 espèces distinctes ont été capturés avec 4 types de pièges différents (PV, PC, VU, PL). 2 espèces ont été identifiées Photinoides mystrionophorus et Photuris fulvipes , une troisième espèce est à confirmer comme étant Lucidota minor , et la dernière espèce appartient au genre Aspisoma.

Photuris fulvipes - Photo R. CONSTANTIN Aspisoma sp.

14°) Lycidae (Robert CONSTANTIN) Cette famille est bien représentée dans les régions tropicales. Les larves vivent dans le bois en décomposition et le nombre d'espèces de Lycidae par station est un bon indicateur de la qualité des milieux. Les adultes ont une courte vie sur la strate arbustive.

Les Lycidae n’ont été collectés, durant la mission, qu’au battage et en seulement deux individus de 2 espèces du genre Idiopteron et Mesopteron . C’est très insuffisant lorsqu’on sait que leur pic d’apparition se situe en milieu de saison sèche, ceci doit s’expliquer par la difficulté à voler de ces petits coléoptères en raison du vent au somment de la Roche Bénitier.

15°) Melolonthidae

3 spécimens d’une espèce du genre Hilarianus , peu courante en collection, ont été capturés au piège lumineux.

Hilarianus sp. – Photo M. MORON RIOS 29

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16°) Mordellidae (Pascal LEBLANC) Insectes saproxyliques à l’état larvaire et floricoles à l’état adulte.

Les récoltes de cette réserve sont trop faibles en nombre d'espèces et d'exemplaires pour apporter des éléments significatifs. Les spécimens correspondent pour la plupart à des espèces dèjà rencontrées dans d'autres stations, mais qui n'ont pour l'instant pas pu recevoir d'identité précise. Photos Pascal LEBLANC

Mordella sp.14 Mordella sp.20 Mordella sp.23

Falsomordellistena forticornis Pseudotolida sp.02

17°) Passalidae Insectes saproxyliques dont la particularité est que les adultes vivent en communauté avec les larves.

Seule l’espèce Popilius tetraphyllus capturée sur le site est considérée comme « Peu Commune » d’après Stéphane BOUCHER, spécialiste des Passalidae. Les 3 autres espèces capturées sont très communes et ont déjà été capturées sur l’ensemble des sites d’étude de la S.E.A.G.

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18°) Phengodidae (Robert CONSTANTIN)

La capture de Phengodidae dans les pièges à interception vitré est fréquente et d'un grand intérêt car l'observation de ces coléoptères atypiques est exceptionnelle par d’autres méthodes.

La famille des Phengodidae est exclusivement néotropicale avec environ 250 espèces dont une seule, Phrixothrix gibbosus Wittmer, 1976, était connue des trois Guyanes : des 4 espèces capturées durant la mission, Brasilocerus wygodzinskyi , Eurymastinocerus reductipennis , Oxymastinocerus nigripennis et Taximastinocerus parallelus , seule Brasilocerus wygodzinskyi est nouvelle pour la Guyane, les 3 autres espèces ayant déjà été capturées aux Nouragues Saut-Pararé. Brasilocerus wygodzinskyi Photo R. CONSTANTIN

19°) Scarabeidae sensu lato

Scarabeinae :

Insectes copro-nécrophages

Seules 3 espèces communes ont été capturées sur le site durant la mission dont Coprophanaeus dardanus représentant près de 95% des individus collectés. Ces résultats sont très modestes mais peuvent s’expliquer par les éléments suivants : -les captures sont plus limitées en saison sèche, -les milieux ouverts comme les savanes- roches sont peu propices à la circulation de ces insectes, Oxysternon festivum. Espèce très commune en Guyane. Position -les sols rocheux sont défavorables à d’attente sur une feuille en sous-bois. l’abondance des espèces fouisseuses.

Rutelinae : Insectes saproxyliques à l’état larvaire, certains floricoles à l’état adulte.

Les 11 spécimens capturés se répartissent en 5 espèces de Rutelini et autant de Geniatini.

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Cetoniinae :

Insectes saproxyliques à l’état larvaire, certains opophages à l’état adulte.

Groupe peu diversifié en Guyane, comptant une vingtaine d’espèces environ.

On signale la capture d’une unique espèce, Inca clathrata , dans les pièges à appâts.

Inca clathrata

Dynastinae : (Julien TOUROULT) Insectes saproxyliques à l’état larvaire, certains floricoles à l’état adulte ( Cyclocephala sur fleurs de palmiers).

La faune semble relativement originale. Au delà d'un petit fonds de faune assez classique ( C. bicolor, S. popei, S. surinamensis, ...), deux espèces rares, Moraguesia champenoisi et Cyclocephala ohausiana , attirent l'attention.

Moraguesia champenoisi Cyclocephala ohausiana Photos Yannig PONCHEL

Après 180 piègeages lumineux et 14000 Dynastinae examinés (collectes de la SEAG 2008- 2010), aucun exemplaire de Cyclocephala ohausiana n'avait été collecté ! Moraguesia champenoisi appartient à un genre monospécifique, pour l'instant endémique de Guyane et décrit sur un exemplaire unique des sommets des Monts Tumuc-Humac (Dechambre, 2008). La capture de plusieurs exemplaires au sommet de la Trinité étend donc

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notablement sa répartition et semble confirmer qu'il s'agit d'une espèce inféodée aux zones hautes de Guyane.

20°) Staphylinidae Pselaphinae

Insectes saproxyliques prédateurs

Un seul spécimen du genre Fustiger a été capturé au piège à interception vitré.

Fustiger sp. (2mm) – Photo V. BRACHAT

21°) Telegeusidae (Robert CONSTANTIN)

Les Telegeusidae sont une très petite famille composée de 2 genres et de 7 espèces. Ils sont connus du Sud des États-Unis, du Mexique, d'Equateur et du Vénézuela. Une unique espèce, Pseudotelegeusis howdeni Wittmer, 1976, a été capturée au piège à interception vitré sur la Roche Bénitier . Décrite de Trinidad et du Vénézuela, nous avions déjà récolté cette espèce aux Nouragues, il s’agit donc de la deuxième citation pour la Guyane.

22°) Tenebrionidae

2 espèces de Tenebrionidae ont été capturées au piège lumineux.

Poecilesthus sp. Taphrosoma dohrni

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23°) Autres familles de Coleoptera

1 espèce d’Anthicidae 3 espèces d’Anthribidae 1 espèce de Catopidae 2 espèces de Dytiscidae 2 espèces Hydrophilidae 1 espèce de Trogossitidae

Anthicidae Anthicus sp. – Photo R. Constantin Dytiscidae Platynectes decemnotatus dans une petite crique (04°37'01.8''N 53°24'49.4''W)

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VI / Résultats : Ordre des LEPIDOPTERA

1°) Lépidoptères nocturnes - Heterocera et Généralités (Philippe COLLET & Eddy POIRIER)

Matériel et méthodes

Calendrier des prospections

La mission s’est déroulée pendant 8 jours, au début du mois d’octobre 2010. Elle vient compléter les huit missions d’inventaire entomologique échelonnées de mars 1997 à octobre 2008.

La localité prospectée

Il s’agit de l’inselberg de la Roche Bénitier, culminant à 460 m d’altitude au nord-ouest des Montagnes de la Trinité.

Les techniques de prospection

Les Lépidoptères ont été capturés à l’aide des techniques habituelles : Chasse à vue au filet, de jour et au crépuscule. Piégeage à la lumière artificielle. Un piège lumineux a été installé auprès de la station météo, sur un affleurement rocheux granitique, au sommet de l’inselberg. Il a fonctionné pendant 8 nuits complètes successives.

Nomenclature utilisée. Ouvrages et sites internet consultés

Nous avons préféré ne pas suivre la nouvelle classification des Noctuoidea, profondément remaniée ces dernières années. En effet, il nous a semblé plus parlant de retenir l’ancienne classification car les listes proposées ont le mérite de pouvoir être facilement comparées aux derniers travaux d’inventaires réalisés en Guyane.

Selon les familles, les principales sources suivantes ont été consultées :

Noctuidae : Le « Lepidopterorum catalogus » de POOLE (1989) sans oublier l’aide de nos collègues du MNHN, B. LALANNE-CASSOU et J. BARBUT.

Geometridae : Les 3 ouvrages de PITKIN (1993, 1996 & 2002). Par ailleurs, le site internet de l’U.S. National Museum of Natural History nous a fourni d’utiles informations grâce aux photographies des spécimens types de Geometridae mises en ligne.

Notodontidae : Les articles de THIAUCOURT (1974 et suiv.) et l’aide qu’il veut bien nous prodiguer depuis longtemps maintenant.

Arctiidae, Arctiinae et Pericopinae : Les ouvrages de WATSON (1971 et 1986) et les diverses publications de TOULGOET (1982 et suiv.). Il y a lieu de noter que la plupart du matériel a été déterminé par S. FERNANDEZ et est déposé dans sa collection personnelle.

Arctiidae, Ctenuchinae : L’ouvrage « Euchromiini de Guyane française » de CERDA (2008) et l’aide du même auteur en ce qui concerne les Ctenuchini .

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Sphingidae et Saturnidae : Comme à l’accoutumée, nous avons laissé le soin à F. BENELUZ d’assurer l’inventaire et de rédiger séparément les commentaires relatifs à ces deux familles.

Pour les autres familles : L’« Atlas of Neotropical Lepidoptera » de HEPPNER (1995- 1996). Les photographies mises en ligne sur le site de barcoding « BOLD Systems » ont été consultées…avec les vérifications qui s’imposent.

Enfin, il nous semble utile de signaler que les « micro-Lépidoptères » n’ont pas été récoltés lors de cette mission.

Déterminations des spécimens

Les Lépidoptères récoltés lors de cette mission 2010 ont été déterminés par les membres de la SEAG (cf. Annexe 2 pages 122-123 )

Conservation du matériel récolté

La totalité du matériel inventorié a été conservé et peut être consulté à tout moment. Les espèces dites banales n’ont pas été préparées. Elles sont conservées par la SEAG en papillotes identifiées. Par contre, les espèces présentant plus d’intérêt ont été étalées et elles sont déposées dans la collection personnelle de Ph . COLLET.

Considérations générales sur la diversité

Un total de 839 espèces a été inventorié lors de cette mission. Les Hétérocères dominent largement et représentent 91,8 % du total collecté.

Il nous a semblé intéressant de compiler nos résultats avec ceux des missions précédentes. Autant la tâche a été relativement aisée avec la liste dressée lors de la mission 2008 par nos collègues d’Entomo-Fauna, autant les listes issues des missions antérieures (CHAMPENOIS 2001 & 2004) sont - pour la plupart des familles - référencées sur la base d’une collection privée et donc difficilement exploitables. Ces données n’ont été retenues qu’en ce qui concerne les Arctiidae Arctiinae et Pericopinae, pour lesquelles les déterminations ont été « traduites en clair » depuis cette date par VINCENT (2008).

Le tableau 1 ci-après récapitule le nombre d’espèces collectées par famille sur le site de la Trinité lors des deux dernières missions (et pour la totalité des missions en ce qui concerne les Arctiinae et les Pericopinae). Ces chiffres sont comparés aux dernières estimations à jour de la faune de Guyane française.

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Mission 2010 Mission 2008 Pourcentage de la Familles Guyane (SEAG) (EntomoFauna) TOTAL faune de Guyane Noctuidae 1 400 160 108 231 16,4 Geometridae 1 000 118 139 ≥ 139 ≥ 13,9 Hedylidae 15 3 7 8 53,3 Arctiidae, Arctiinae + Pericopinae 425 126 203 + 10 239 56 Arctiidae, Ctenuchinae 360 52 43 76 21,1 Arctiidae, Lithosiinae 100 8 0 8 8,0 Notodontidae 1 000 126 64 151 15,1 Cossidae 100 13 1 14 14,0 Megalopygidae 90 6 1 7 7,8 Apatelodidae 100 15 1 16 16,0 Lymantriidae 40 8 0 8 20,0 Lasiocampidae 200 23 1 24 12,0 Mimallonidae 110 18 0 18 16,4 Thyrididae 60 9 0 9 15,0 Limacodidae 100 8 0 8 8,0 Sphingidae 125 48 32 58 46,4 Saturniidae 170 28 39 47 27,6 macro-Hétérocères divers 50 5 2 6 12,0 Sous-TOTAL "Hétérocères" 5 445 774 649 1067 19,6 Pieridae 30 2 3 4 13,3 Papilionidae 40 0 0 0 0,0 Nymphalidae 330 23 27 44 13,3 Riodinidae 450 42 10 46 10,2 Lycaenidae 250 2 0 2 0,8 Hesperidae 650 0 7 7 1,1 Sous-TOTAL "Rhopalocères" 1 750 69 47 103 5,9 TOTAL GENERAL 7 195 843 696 1170 16,2 Tableau 1 – Espèces collectées par famille et pourcentage de la faune de Guyane.

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En ce qui concerne les Hétérocères et si l’on additionne les résultats des deux dernières missions, il apparaît qu’il a été inventorié 15 à 20 % environ de la faune de Guyane française sur le site de la Trinité. Les pourcentages (surlignés en gras) qui s’écartent sensiblement de ce ratio concernent les familles ou sous-familles suivantes :

- Arctiidae Lithosiinae : ces papillons, souvent de très petite taille, ont malheureusement échappé aux investigations.

- Megalopygidae – Limacodidae : aucune explication plausible ne vient étayer ces faibles scores.

- Arctiidae Arctiinae et Pericopinae : Comme il a été mentionné ci-dessus, les données concernant ces deux sous-familles consituent l’ensemble des espèces relevées pendant les 9 dernières missions. On constate que l’inventaire réalisé lors de notre mission 2010 ajoute 34 espèces supplémentaires à la courbe de cumul d’espèces - déjà très importante - dressée par VINCENT en 2008. Nous confirmons donc les propos de l’auteur selon lequel son « inventaire ne semble pas exhaustif et de futures prospections permettraient la découverte d’espèces supplémentaires ». Le total obtenu de 239 espèces représente dorénavant plus de 56 % de la faune de Guyane, ce qui confirme la richesse en Arctiidae de la réserve.

- Hedylidae : Cette famille est tout à fait atypique comme l’ont montré les observations réalisées lors de la précédente mission (LEVEQUE, 2009). Elle aussi est très bien représentée dans la Réserve de la Trinité.

- Saturniidae – Sphingidae : Ces papillons attrayants et de grande taille sont systématiquement bien représentés dans les inventaires.

Courbes d’accumulation

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Résultats par famille

a) Arctiidae

Liste des espèces : Sous-famille des Arctiinae

Amaxia beata (Dognin, 1909) Amaxia bella (Schaus, 1905) Amaxia chaon chaon (Druce, 1883) Amaxia consistens Rothschild, 1917 Amaxia elongata Toulgoët, 1987 Amaxia erythrophleps Hampson, 1901 Amaxia gnosia (Schaus, 1905) Amaxia pandama (Druce 1893) Ammalo helops (Cramer, 1775) Apyre separata Walker, 1854 Araeomolis albipicta (Dognin, 1909) Araeomolis propinqua Toulgoët, 1998 Astralarctia pulverosa (Schaus, 1905) Azatrephes paradisea (Butler, 1877) Castrica phalaenoides (Drury, 1773) Cratopalpis barrosi (Almeida, 1968) Cratopalpis rectiradia (Hampson, 1901) Cresera affinis (Rothschild, 1909) Cresera hieroglyphica (Schaus, 1905) Cresera ilus (Cramer, 1776) Cresera similis (Rothschild, 1909) Dialeucias pallidistriata Hampson, 1901 Dialeucias violascens Schaus, 1905 Emurena fernandezi Watson, 1975 Echeta semirosea (Walker, 1865) Ennomomima miniata (Rothschild, 1909) Elysius ruffin Schaus, 1924 Ennomomima modesta (Schaus, 1905)

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Epimolis incisa (Rothschild, 1909) Ochrodota brunnescens Rothschild, 1909 Epimolis ridenda (Dognin, 1911) Ochrodota grisescens Toulgoët, 1999 Eriostepta bacchans Schaus, 1905 Opharus gemma Schaus, 1894 Eriostepta nigripuncta (Joicey & Talb., 1918) Ordishia rutila (Stoll, 1782) Eriostepta roseirata Hampson, 1901 Ormetica contraria (Walker, 1854) Ernassa cruenta (Rothschild, 1909) Ormetica sphingidea euplesia (Perty, 1833) Eucyrta albicollis (Felder, 1874) Ormetica sypilus (Cramer, 1777) Eupsodosoma bifasciata (Cramer, 1779) Ormetica zenzeroides (Butler, 1877) Eupsodosoma involuta involuta (Sepp, 1855) Parathyris cedonulli (Stoll, 1781) Eupsodosoma larissa (Druce, 1890) Parathyris semivitrea (Joicey & Talbot, 1916) Evius albicoxae (Schaus, 1905)) Phaeomolis tavakiliani Toulgoët, 1987 Glaucostola binotata (Schaus, 1905) Premolis amaryllis Schaus, 1905 Glaucostola maroniensis Joicey & Talb., 1918 Premolis semirufa (Walker, 1856) Gorgonidia buckleyi whitfordi (Roth., 1909) Pryteria hamifera (Dognin, 1907) Gorgonidia garleppi maronensis (Roth., 1917) Regobarrosia flavescens (Walker, 1856) Haemanota concelata Laguerre, 2005 Regobarrosia villiersi Toulgoët, 1984 Haemanota flavipurpurea (Dognin, 1914) Rhipha flammans (Hampson, 1901) Haemanota sanguidorsia (Schaus, 1905) Rhipha strigosa (Walker, 1854) Haemaphlebiella strigata Jones, 1914 Robinsonia fogra Schaus, 1895 Himerarctia docis (Hubner, 1831) Robinsonia klagesi Rothschild, 1910 Hyperandra appendiculata (Herr.-Sch., 1856) Robinsonia marginata Rothschild, 1909 Hypercompe brasiliensis (Oberthür, 1881) Robinsonia morula Druce, 1906 Hyperthaema punctata Rothschild, 1935 Robinsonia sanea Druce, 1895 Hyperthaema ruberrima Schaus, 1905 Scaptius sanguistrigata (Dognin, 1910) Hyponerita lavinia (Druce 1890) Selenarctia elissa (Schaus, 1892) Hyponerita similis Rothschild, 1909 Senecauxia coraliae Toulgoët, 1989 Idalus albescens (Rothschild, 1909) Sutonocrea lobifer (Herrich-Schäffer, 1855) Idalus aleteria (Schaus, 1905) Symphlebia neja (Schaus, 1905) Idalus critheis Druce, 1884 Thyromolis pythia Druce, 1900 Idalus daga (Dognin, 1902) Trichromia androconiata (Rothschild, 1909) Idalus dorsalis (Seitz, 1921) Trichromia carmen (Schaus, 1905) Idalus intermedia (Rothschild, 1909) Trichromia coccineata (Schaus, 1905) Idalus lineosus Walker, 1869 Trichromia complicata (Schaus, 1905) Idalus nigropunctata (Rothschild, 1909) Trichromia drucei (Rothschild, 1909) Idalus ochreata (Schaus, 1905) Trichromia gaudialis (Schaus, 1905) Idalus vitrea vitrea (Cramer, 1780) Trichromia interna (Schaus, 1905) Lepidokirbyia venigera Toulgoët, 1982 Trichromia klagesi (Rothschild, 1909) Lophocampa maronensis (Schaus, 1905) Trichromia leucoplaga (Hampson, 1905) Lophocampa sobrina (Stretch, 1872) Trichromia lophosticta (Schaus, 1911) Machaeraptenus crocopera (Schaus, 1905) Trichromia occidentalis (Rothschild, 1909) Melese dorothea (Stoll, 1782) Trichromia onytes (Cramer, 1777) Melese hampsoni Rothschild, 1909 Trichromia persimilis (Rothschild, 1909) Melese incertus (Walker, 1855) Trichromia rubrosignata Rothschild, 1917 Melese klagesi Rothschild, 1909 Trichromia tremula (Schaus, 1905) Melese niger Toulgoët, 1982 Trichromia viola (Dognin, 1909) Munona iridescens Schaus, 1894 Viviennea moma (Schaus, 1905) Neonerita dorsipuncta Walker, [1858] Viviennea superba (Druce 1883) Nyearctia leucoptera (Hampson, 1920) Zatrephes flavipuncta Rothschild, 1909 Zatrephes trailii Butler, 1877

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Commentaires :

- La plupart des Arctiinae ont été déterminés par S. FERNANDEZ. Quelques Ctenuchinae indéterminés ont été soumis à Jean-Aimé CERDA pour description. Au final, 99 % des 186 espèces d’Arctiidae se sont vues attribuer un nom.

- Les 27 espèces d’Arctiinae venant en complément des listes relatives aux missions précédentes (voir ci-dessus) sont indiquées en rouge.

- A l’instar de ce qui a été constaté pour d’autres familles, la majorité des Arctiidae listées font partie du fonds de faune caractéristique des stations de l’intérieur de la Guyane et sont, dans l’ensemble, fréquemment rencontrées. Les quelques espèces mentionnées ci-dessous nous semblent par contre particulièrement intéressantes. Elles sont figurées ci-après :

Haemanota flavipurpurea Premolis amaryllis Trichromia occidentalis Loxophlebia sp. Agyrta sp. (descr. en cours) Arctiidae sp.

Haemanota flavipurpurea Premolis amaryllis

Trichomia occidentalis Loxophlebia sp.

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Agyrta sp. Arctiidae sp.

b) Apatelodidae

Commentaires :

- 15 Apatelodidae ont été inventoriés et 93 % d’entre eux ont été identifiés jusqu’à l’espèce.

- La plupart sont des espèces fréquentes à l’exception d’ Apatelodes lepida et de Colla lilacina , peu communément rencontrés. Ces 2 espèces sont figurées ci-après :

Apatelodes lepida Colla lilacina

c) Cossidae

Commentaires :

- Sur les 13 espèces de Cossidae dénombrées, 69 % se sont vues attribuer un nom.

- Aucune espèce n’est véritablement notable.

d) Geometridae

Commentaires :

- Sur les 120 taxons recensés, près de 91 % ont été identifiés jusqu’à l’espèce. Les géomètres de Guyane Française sont encore mal connus et il est vraisemblable que notre liste subira quelques corrections à l’avenir.

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- A l’instar des noctuelles, la plupart des espèces collectées sont communes sur le terrain en Guyane. Les espèces suivantes semblent intéressantes et sont figurées ci-dessous :

Dolerophyle nerisaria Pero albivena Pero contrasta Ischnopteris chryses Rhomboptila tipaldii Oospila rosipara Tachyphyle basiplaga Phrudocentra sordulenta Pterocypha gibbosaria Tricentrogyna radaria

Dolerophyle nerisaria Pero albivena

Pero contrasta Ischnopteris chryses

Rhomboptila tipaldii Oospila rosipara

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Tachyphyle basiplaga Phrudocentra sordulenta

Pterocypha gibbosaria Tricentrogyna radaria

e) Hedylidae

Commentaires :

- 3 taxons ont été inventoriés sur le site.

f) Thyrididae

Commentaires :

- Nous donnons une représentation des deux sexes de Tanyodes inconspicua , compte tenu des errements taxonomiques dont cette espèce a fait l’objet (HAUSER & all, 2003) (BECKER, 2011). La mise en synonymie de cette espèce avec Tanyodes rufitibia , établie par BECKER sur la base des planches coloriées de Felder, nous semble hasardeuse et reste à prouver.

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Tanyodes inconspicua [mâle] Tanyodes inconspicua [femelle]

g) Lasiocampidae

Commentaires :

- 23 Lasiocampidae ont été inventoriés et pratiquement toutes les déterminations ont été réalisées jusqu’à l’espèce.

- Considérant nos faibles connaissances en ce qui concerne les Lasiocampidae de Guyane, nous ne mettrons pas en évidence d’espèce représentative.

h) Mimallonidae

Commentaires :

- 18 Mimallonidae ont été inventoriés. La plupart (83 %) ont été identifiés jusqu’à l’espèce. Deux espèces des genres respectifs Arianula et Psychocampa sont nouvelles pour la science et sont en cours de description.

- Pratiquement toutes les espèces listées sont fréquentes en Guyane. Les deux Trogoptera méritent cependant d’être notés. Ils figurent ci-dessous :

Trogoptera lilacea Trogoptera sp.

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i) Megalopygidae

- La totalité des 6 taxons inventoriés l’ont été jusqu’à l’espèce. Tous sont fréquemment rencontrés dans le département.

j) Noctuidae

Commentaires :

- 159 espèces ont été dénombrées. Près de 95 % d’entre elles se sont vues attribuer un nom. Les autres portent, en général, le numéro sous lequel elles sont enregistrées au Muséum de Paris.

- Pratiquement toutes les noctuelles listées lors de cette mission sont communes sur le terrain en Guyane. Néanmoins, une dizaine d’entre elles nous sont apparues dignes d’intérêt. Elles sont récapitulées et figurent ci-dessous :

Bryolymnia marginata Ephyrodes eviola Eulepidotis colleti n.sp. Eulepidotis hemithea (?) Eulepidotis ornata Eulepidotis sabina Hemicephalis grandirena Phycoma marcellina Scythognatha anemolia Triommatodes sp n° 1123 Hemeroblemma stiva – nouvelle espèce pour la Guyane

- A noter que l’armature génitale du spécimen d’ Eulepidotis hemithea , proche d’Eulepidotis bourgaulti , est en cours d’étude par J. BARBUT.

Bryolymnia marginata Ephyrodes eviola

Eulepidotis colleti Eulepidotis hemithea (?)

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Eulepidotis ornata Eulepidotis sabina

Hemicephalis grandirena Phycoma marcellina

Scythognatha anemolia

Triommatodes sp.n°1123 [mâle] Triommatodes sp.n°1123 [femelle]

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Hemeroblemma stiva

k) Lymantridae

Commentaires :

- L’espèce Thagona mentor mérite quelque intérêt et est illustrée ci-dessous :

Thagona mentor

l) Uraniidae

Commentaires :

- 3 taxons ont été inventoriés sur le site.

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m) Limacodidae

Commentaires :

- 8 taxons ont été inventoriés et 88 % d’entre eux ont été identifiés jusqu’à l’espèce.

- Les espèces listées sont communes en Guyane.

n) Dalceridae

Commentaires :

- 2 taxons ont été inventoriés sur le site.

o) Notodontidae

Commentaires :

- 128 taxons ont été inventoriés. Près de 98 % d’entre eux ont été identifiés jusqu’à l’espèce.

- Une large majorité des Notodontidae listés sont fréquents en Guyane. Les quelques espèces mentionnées ci-dessous nous semblent cependant intéressantes. Elles sont photographiées ci- dessous :

Rifargira exarmata Phedosia turbida Rosema orvoeni Gopha niveigutta Sericochroa hymen Hemiceras undilinea

Rifargira exarmata Phedosia turbida

Rosema orvoeni [mâle] Rosema orvoeni [femelle]

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Gopha niveiguttata Sericochroa hymen

Hemiceras undilinea

p) Saturniidae (Frédéric BENELUZ)

Cette famille d’Hétérocères compte près de 170 espèces en Guyane ; la mission a permis la capture de 28 espèces soit 16,5% des espèces connues de Guyane : cependant, les espèces collectées ne représentent pas de nouvelles citations pour le site étudié ; elles sont assez communément observées dans la plupart des stations du département.

Eacles imperialis cacicus (chenille et imago)

q) Sphingidae (Frédéric BENELUZ)

Ces hétérocères sont assez bien représentés localement avec leurs 124 espèces (soit 12,4 % de la diversité mondiale). La famille est mise en exergue grâce à la présence de trois espèces présentes en octobre 2010 à la Trinité (Roche Bénitier) parmi les 47 espèces collectées durant la mission. Ce sont de nouvelles données pour ce site exceptionnel très insuffisamment prospecté entomologiquement. Indépendamment de son altitude élevée pour le département (625 m), il

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Mission entomologique SEAG Octobre 2010 – Réserve Trinité / Station Roche Bénitier présente une imbrication de biotopes rarement observée en Guyane (forêt primaire, forêt de transition, forêt de dôme venté et végétation xérique).

Xylophanes crenulata Vaglia & Haxaire, 2010 Répandu en Amazonie, Xylophanes crenulata est membre d'un complexe d'espèces bien représenté en Guyane française avec plusieurs endémiques difficiles à déterminer. Rarement observé, il semble très local et pourrait être saisonnier (saison des pluies).

Xylophanes crenulata

Adhemarius d.daphne (Boisduval, 1875) . Ce sphinx méconnu mais très répandu en Amérique tropicale peut facilement être confondu en Guyane avec ses congénères A. gannascus (Stoll, 1790) et A. gagarini (Zikán,

1935).

La présence de cette espèce en Guyane a été Adhemarius daphne [femelle]

révélée en 2005 par J. Haxaire dans sa

"Révision du complexe gannascus " d’après 4

exemplaires récoltés dans les proches

environs de Saül. Depuis, elle n’avait été prise

que par J.-P. Champenois à l’extrême sud du

département à la Borne 1 en septembre 2006 ;

sa présence dans le bassin versant de

l’Approuague récemment attestée (Station des

Nouragues, Pararé) étendait sa distribution

vers le nord du département.

L'exemplaire trouvé à la Trinité (nouvelle Adhemarius daphne [mâle] donnée) permet d’envisager une répartition Photos Jean HAXAIRE

plus étendue en Guyane

Perigonia ilus Boisduval, 1870 Récemment séparée de Perigonia lusca (Fabricius, 1777). Cette petite espèce à la fois rarement collectée et difficile à déterminer fait partie d'un complexe d'espèces au comportement à tendance lucifuge. Elle peut cependant se montrer aux lampes quelques nuits dans l'année, pour des raisons encore indéterminées dont la plus probable est la présence d'un spot nectarifère proche du site de piégeage (du pollen est souvent relevé en Perigonia ilus abondance sur leur proboscis).

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Bibliographie sommaire

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MÖSCHLER (H. B.) , 1880. – Beiträge zur Schmetterlings-Fauna von Surinam. III. Verhandlungen der Kaiserlich-Königlichen Zoologisch-Botanischen Gesellschaft in Wien , 30 (1). MÖSCHLER (H. B.) , 1886. – Beiträge zur Schmetterlings-Fauna von Jamaica. Adhandlungen der Senckenbergischen Naturforschenden Gesellschaft , 14 PITKIN (L. M.) , 1993. – Neotropical Emerald moths of the genera Nemoria , Lissochlora and Chavarriella , with particular reference to the species of Costa Rica (Lepidoptera : Geometridae). Bulletin of the Natural History Museum (Entomology) , 62 PITKIN (L. M.) , 1996. – Neotropical Emerald moths : a review of the genera (Lepidoptera : Geometridae). Zoological Journal of the Linnean Society , 118 PITKIN (L. M.) , 2002. – Neotropical ennomine moths : a review of the genera (Lepidoptera : Geometridae). Zoological Journal of the Linnean Society , 135 POOLE (R.W.) , 1989. – Lépidopterorum catalogus . Fascicule 118, 3 vol. PROUT (L. B.) , 1916. – New Neotropical Geometridae. Novitates Zoologicae , 23. RINDGE (F. H.) , 1964. – A revision of the genera Melanolophia , Pherotesia and Melanotesia (Lepidoptera, Geometridae). Bulletin of the American Museum of Natural History , 126 RINDGE (F. H.) , 1967. – A revision of the Neotropical species of the moth genus Glena (Lepidoptera, Geometridae). Bulletin of the American Museum of Natural History , 135 RINDGE (F. H.) , 1978. – A revision of the genus Sabulodes (Lepidoptera, Geometridae). Bulletin of the American Museum of Natural History , 160 RINDGE (F. H.) , 1990. – A revision of the Melanolophiini (Lepidoptera, Geometridae). Bulletin of the American Museum of Natural History , 199 . SCHAUS (W.) , 1898 et suiv.. – Diverses publications dans les périodiques suivants : Journal of the New York Entomological Society /Transaction of the American Entomological Society/Proceedings of the United States NationalMuseum /Annals andMagazines of Natural History etc SCOBLE (M. J.) , 1994. – A taxonomic revision of the genera Phrygionis Hübner and Pityeja Walker (Geometridae : Ennominae, Palyadini). Zoological Journal of the Linnean Society , 111 SCOBLE (M. J.) , 1995. – A review of the moth tribe Palyadini with the description of a new genus (Geometridae : Ennominae). Systematic Entomology , 20 TASSEL (T.) , 2007a. – Les Sphingidae de Guyane. Lépidoptères de Guyane , tome 1 : Généralités – Hétérocères 1. TASSEL (T.) , 2007b. – Liste des Arctiidae de Guyane. Lépidoptères de Guyane , tome 1 : Généralités – Hétérocères 1. THIAUCOURT (P) , 1978. – Description d’un genre nouveau et de six espèces nouvelles de notodontes sud-américains. Lambillionea 77 (9-10). TOULGOËT (H. DE ), 1987. – Description de nouvelles Arctiidae d’Amérique latine, suivie de la liste des espèces les plus marquantes récoltées à la Guyane française en janvier-février 1986 (23 e note). Nouvelle Revue Entomologie (N. S.), 4 (3). VINCENT (B.) , 2008. – Les sous-familles Arctiinae et Pericopinae de la Réserve naturelle de la Trinité (Guyane) (Lepidoptera, Arctiidae). Bulletin de la Société Entomologique de France , 113 ( 3). WALKER (F.) , 1856. – List of the Specimens of Lepidopterous insects in the Collection of the British Museum . Vol. 9. WALKER (F.) , 1857. – List of the Specimens of Lepidopterous insects in the Collection of the British Museum . Vol. 11. WALKER (F.) , 1865. – List of the Specimens of Lepidopterous insects in the Collection of the British Museum . Vol. 33. WARREN (W.) , 1904. – New American Thyrididae, Uraniidae and Geometridae. Novitates Zoologicae , 11. WATSON (A.) & G OODGER (D. T.) , 1986. – Catalogue of the neotropical tigermoths. Occasional Papers on Systematic Entomology.

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2°) Lépidoptères diurnes - Rhopalocera Pour les Lépidoptères Rhopalocères, c’est la nomenclature en vigueur dans la « Liste des Rhopalocères de Guyane » de LACOMME (2003) qui a été retenue.

Concernant les Rhopalocères, les ratios obtenus sont beaucoup plus faibles que pour les Hétérocères. Ils sont quasi nuls pour 3 familles. Ces mauvais scores confirment, s’il en était encore besoin, toute la difficulté à collecter les papillons diurnes en quantité significative en Guyane Française.

a) Riodinidae (Serge FERNANDEZ) 42 espèces de Riodinidae (sur environ 450 espèces en Guyane) regroupant toutes les tribus (sauf les Symmachiini) ont été capturées au cours du séjour La zone abritant la plus grande diversité, à cette époque de l’année, se situe entre la DZ et le point d’eau proche (layon menant à la DZ Aya) . Deux observations intéressantes ont été faites dans ce secteur à savoir la découverte des postes respectifs d’ Argyrogrammana trochilia et d’ Hyphilaria parthenis virgatula . Les mâles arrivent respectivement vers 15h30 et 16h30, volent autour de gros arbres et se posent sous les feuilles à 3 ou 4 mètres du sol, puis disparaissent après environ 45 minutes : les rares observations de postes d’ A.trochilia laissaient penser que ce Riodinidae choisissait plutôt les zones de bas fonds humides ; quant à H.parthenis , aucun poste n’était connu jusqu'à présent. D’autres observations ont été faites : - La partie sommitale a révélé la présence de deux espèces du genre Calydna (Calydna calamisa et Calydna cabira ), d’une importante population du genre Theope (Theope philotes , Theope nycteis et Theope brevignoni ) et de deux espèces de Stalachtini croisées régulièrement. - Etonnamment aucun autre poste d’ Argyrgrammana ou de Calospila n’a été trouvé sur le point culminant de l’inselberg, zone où nous pouvions espérer en rencontrer. - Plusieurs femelles d’ Euselasia psammathe ont été observées en train de pondre sur les Clusia bordant la DZ, et Euselasia labdacus , dont la chenille se nourrit également sur Clusia , a été capturé dans la forêt sommitale . - Une des particularités du mont tabulaire réside dans la présence, inhabituelle sur un inselberg, d’une zone plate et humide (même au mois d’octobre) trés proche du sommet, qui permet le maintien d’une petite population de Mesosemiini qui

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affectionnent habituellement les marécages et bords de criques ( Semomesia capanea et S. croesus , Mesosemia gneris ). - Sur les pentes de l’inselberg Euselasia artos a été rencontré et enfin deux espèces de Riodinini ( Panara phereclus et Syrmatia nyx ) ont été vues au dessus de la première crique sur le layon menant à Aya en même temps que Nymphidium acherois.

Photos S. Fernandez

Calydna calamisa

Calydna cabira

Argyrogrammana trochilia

Hyphilaria parthenis virgatula

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Mesosemia gneris

Mesosemia cyanira

Euselasia psammathe

Euselasia labdacus

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Syrmatia nyx Panara phereclus

Stalachtis calliope

Stalachtis terpsichore

b) Autres familles de Rhopalocera (Mohamed BENMESBAH)

Parmi les papillons diurnes (rhopalocères) et particulièrement parmi les 3 familles Lycaenidae, Nymphalidae et Pieridae , 2, 2 et 23 espèces ont été respectivement répertoriées avec par sous- famille : - 1 espèce de Brassolinae ; - 2 espèces de Charaxinae ; - 3 espèces d’Heliconiinae ; - 1 espèce d’Ithomiinae ; - 3 espèces de Limenitidinae ; - 3 espèces de Morphinae ;

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- 10 espèces de Satyrinae La courte durée des prélèvements sur le terrain ainsi que les conditions de chasse non optimales expliquent en partie ces résultats très limités. Ainsi la plupart des espèces recensées sont communes et rencontrées assez fréquemment sur le littoral et le proche intérieur guyanais. Cependant, on peut noter la présence de 3 espèces qui ne se rencontrent que très occasionnellement : Phoebis rurina (Coliadinae), Taygetis cleopatra (Satyrinae) et Dynastor darius (Brassolinae).

Phoebis rurina – Photo P. COLLET

Taygetis cleopatra (?) – Photo P. COLLET

Dynastor darius [mâle] – Photos P. COLLET

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Aussi, la capture de l’espèce Megeuptychia monopunctata (Satyrinae), dont la localité type est l’Equateur, est à signaler car cette espèce est nouvelle pour la Guyane.

Megeuptychia monopunctata

Ainsi et malgré la quantité très limitée de matériel, 3 espèces sur 25 sont peu fréquentes et une quatrième nouvelle pour la Guyane, fait rare lorsqu’on sait que ces groupes de papillons font partie des insectes les plus populaires et étudiés au monde. Ces résultats sont donc très encourageants et incitent à poursuivre les recherches afin de mettre en évidence d'autres espèces présentes sur le site de la Trinité dont les particularités géographiques pourraient encore réserver son lot de surprises. Seule la multiplication des missions et des prélèvements sur le site permettront de confirmer ces hypothèses et d'élargir nos connaissances sur la richesse et les spécificités du site.

3°) Conclusions Lépidoptères

Cette neuvième mission entomologique effectuée dans la Réserve Naturelle de la Trinité nous a permis d’inventorier, en huit jours, plus de 840 espèces de macro-lépidoptères. Cette liste vient compléter de manière significative les inventaires réalisés par les différentes équipes de lépidoptéristes qui ont prospecté dans la réserve depuis plus d’une dizaine d’années. Ainsi, nous ajoutons 34 espèces supplémentaires d’Arctiidae (Arctiinae + Pericopinae) à la liste dressée par VINCENT en 2008. Si l’on cumule les résultats des deux dernières missions (Entomo-Fauna et SEAG), il apparaît qu’il a été inventorié de 15 à 20 % environ de la faune de Guyane française sur le site de la Trinité. Ce score est intéressant mais il demeure en deçà des 25 % obtenus dans la station de Pararé (Réserve des Nouragues). On rappelera, par ailleurs, que la faune des lépidoptères diurnes est faiblement représentée dans nos listes. Cet état de fait est une constante en Guyane.

La grande majorité des Lépidoptères capturés font partie du fonds de faune caractéristique des stations de l’intérieur de la Guyane et sont, dans l’ensemble, fréquemment rencontrées dans cette zone. Quelques espèces intéressantes, voire rares, ont néanmoins été capturées et sont illustrées.

Les Arctiinae et Pericopinae inventoriées dans la réserve depuis 1997 représentent aujourd’hui plus de 55 % de la faune de Guyane Française. Et pourtant, il semble que la courbe d’accumulation concernant ces deux sous-familles ne montre toujours pas de plateau indiquant que le cumul des prospections peut être qualifié d’exhaustif. Que l’on doive appliquer ce ratio de 55 % (hypothèse basse) aux autres familles afin d’aboutir à un inventaire exhaustif et l’on mesure alors la nécessité de poursuivre les prospections dans la réserve.

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Lycaenidae :

Arawacus aetolus Evenus sponsa [mâle]

Riodinidae :

Alesa telephae [mâle]

Argyrogrammana trochilia [mâle]

Serge FERNANDEZ chassant l’ Argyrogrammana

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Semomesia capanea [mâle] Semomesia capanea [femelle]

Calospila thara Metacharis lucius [mâle]

Sarota gyas Emesis lucinda Euselasia lisias

Nymphalidae :

Chenille de Morpho helenor Morpho menelaus

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VII / Résultats : Ordre des ORTHOPTERA

21 espèces d’Orthoptera ont été capturées sur le site de Roche Bénitier dont une spectaculaire espèce du genre Machimoides .

Phaneropterinae sp.

Copiphora sp. Cycloptera speculata , l’une de nos sauterelles-feuille guyanaise s

Machimoides sp.

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VIII / Résultats : Ordre des MANTODEA

Seule une espèce commune de Mantidae liée aux forêts de l’intérieur, Stagmatoptera supplicaria, a été capturée au piégeage lumineux.

IX / Résultats : Ordre des PHASMATODEA

Seule une espèce de phasme a été collectée au piégeage lumineux, il s’agit d’une espèce de la famille des Prisopodidae, Prisopus horstokkii , dont le genre se capture fréquemment lors de ce type de piégeage.

Stagmatoptera cf. supplicaria Prisopus horstokkii

X / Résultats : Ordre des BLATTOPTERA

Les spécimens de Blattoptera collectés au piégeage lumineux, au piège à interception vitré et au piège Malaise sont actuellement bloqués en douane à Cuba, notre collègue Esteban GUTTIEREZ a entamé des procédures pour récupérer les spécimens qui seront traités dès réception.

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XI / Résultats : Ordre des HEMIPTERA

Insectes aux pièces buccales de type piqueur-suceur. Se nourrissent de sève ou de liquides biologiques animaux (hémolymphe, sang)

1°) Résultats généraux

2°) Pentatomoidea (Roland LUPOLI)

La mission effectuée en octobre 2010 sur le site de la Roche Bénitier (Réserve Trinité) a permis la capture de 21 spécimens de 8 espèces de Pentatomoidea, dont : - 3 espèces de Cydnidae dont une espèce de Dallasiellus probablement nouvelle pour la science et Pangaeus piceatus également nouvelle donnée pour la Guyane. - 5 espèces de Pentatomidae

Edessa sp.9, commune en Guyane.

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3°) Reduviidae (Denis BLANCHET) Insectes entomophages ou hématophages

7 espèces ont été collectées sur le site : - Deux espèces de Triatominae, Panstrongylus geniculatus et Panstrongylus lignarius , ont été collectées sur le site lors de piégeages lumineux : cette sous-famille regroupant des réduves hématophages pouvant transmettre le parasite Tr ypanosoma cruzi (maladie de Chagas) et généralement communes au piège lumineux ; cependant la mission n’a permis la capture que de 7 spécimens malgré l’examen des parois rocheuses, du sol et d’infractuosités par Denis BLANCHET, spécialiste des Triatominae, équipé d’un masque FFP3. Les quelques exemplaires obtenus ont été conditionnés en alcool et ont été confiés au Laboratoire de Parasitologie du Centre Hospitalier de Cayenne afin d’effectuer des analyses complémentaires (taux d’infestation des vecteurs de la maladie de Chagas, étude des souches de Trypanosoma cruzi ). -

- Deux spécimens de Zelurus sp. (stade L2) ont été collectés dans un arbre creux (04°36'53.6''N 053°24'34.8''W) et au sol ; ces spécimens ont été conservés après mission afin de tenter un élevage. Ils ont été nourris sur tiques Argasidae mais n’ont pas mué. - Un spécimen de Notocirtus sp. adulte a été collecté sur Rhodognaphalopsis flavivora , celui-ci a été maintenu vivant, a pondu 3 œufs dont sont sorties 3 larves mortes au Zelurus sp . sur tique Argasidae Ornithodorus sp. stade 1. - Un spécimen de Brotostoma basalis (femelle aptère), dont le régime alimentaire est composé de Iulidae présents sur le site, a été capturé sur la roche. - Et deux espèces à vue, Micrauchenus lineola (thermitophage) et Ghilianella Iulidae sp. lobuliventris .

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Notocyrtus sp.

Visite d’infractuosité dans la roche Micrauchena lineola

Brontostoma basalis Ghilianella lobuliventris

4°) Membracidae

5 espèces de Membracidae ont été collectées sur le site.

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Lycoderes sp. Darnis lateralis Folicarina bicolor

5°) Fulgoridae (Pierre-Henri DALENS)

3 espèces de Fulgoridae ont été collectées sur le site lors du piégeage lumineux. Aucune espèce collectée n’est remarquable.

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XII / Résultats : Ordre des HYMENOPTERA

Près de 40 spécimens ont été étudiés pour 25 espèces identifiées parmi les familles suivantes : - Braconidae (13 espèces), - Crabonidae (8 espèces), - Apidae (1 espèce) [spécimens en cours d’identification] , - Evaniidae (1 espèce), - Ampulicidae (1 espèce) et - Stephanidae (1 espèce).

Evaniidae Braconidae

Ampulicidae Braconidae ssf Microgastrinae

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XIII / Résultats : Ordre des DIPTERA

L’ensemble des spécimens collectés dans les pièges à interception vitrés et dans les pièges Malaise ont été envoyés à Chris RAPER afin de les séparer par familles et adresser les lots aux spécialistes suivants : • Paul Beuk (NL) – Empididae • Eric Fisher (USA) – Asilidae • Steve Gaimari (USA) – Lauxanioids • Martin Hauser (USA) – Stratiomyidae • Chris Raper (UK) – Tachinidae, Pantophthalmidae & Mesembrinellinae (Calliphoridae) • Menno Reemer (NL) – Syrphidae • John Smit (NL) – Tephritidoidea • Theo Zeegers (NL) – Tabanidae & Bibionidae • Adrian Pont (UK) – Muscidae

Les spécimens sont en cours d’étude, les données seront donc communiquées ultérieurement.

Asilidae Stratiomyidae Lauxaniidae

Syrphidae Tachinidae

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XIV / Résultats : Ordre des ODONATA

Plus de 30 spécimens d’Odonates ont été collectés sur les sites de Roche Bénitier et Aya pour un total de 16 espèces essentiellement à vue (13 espèces) lors de la mission et au piège lumineux (2 espèces), la dernière espèce, commune en sous-bois, Argia oculata a été capturée au piège à vitre. Les espèces collectées sont typiques de la faune de l'intérieur de la Guyane.

Aeshnidae : Les deux espèces de Coryphaeschna sont communes. Coenagrionidae : En dehors de l’espèce Argia oculata commune en sous-bois, un spécimen d’une nouvelle espèce du genre Argia a été capturé sur le site AYA : cette espèce est en cours de description par Rosser GARRISON, spécialiste américain qui révise actuellement ce genre très difficile. Heliocharitidae : Une seule espèce de cette famille a été capturée sur AYA. Libellulidae : Six espèces de Libellulidae ont été capturées durant la mission dont deux espèces d’ Uraci s exclusivement au piège lumineux. Megapodagrionidae : Une seule espèce de cette famille a été capturée sur AYA. Heliocharitidae : Une seule espèce de cette famille a été capturée sur AYA et sur la Roche Bénitier, Polythore picta se rencontre communément en sous-bois. Pseudostigmatidae : Sur les 2 espèces capturées, Mecistogaster linearis , bien plus rare que Mecistogaster lucretia , n’était présente qu’en un unique individu dans la collection de Laurent JUILLERAT.

Polythore picta Argia oculata

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XV / Résultats : Classe des ARACHNIDES (Vincent VEDEL)

1) Généralités

Le site de la réserve de La Trinité a été échantillonné par la Société Entomologique des Antilles-Guyane (SEAG) du 3 au 12 octobre 2010, c’est-à-dire en fin de saison de sèche. Le camp de base était situé sur l’Inselberg même, appelé Roche Bénitier, mais l’échantillonnage s’est étendu jusqu’au camp Aya.

2) Protocoles d’échantillonnages et d’analyses

2.1 L’échantillonnage :

L’échantillonnage a été effectué selon un protocole standardisé permettant ensuite de comparer quantitativement (nombre et abondance) et qualitativement (les espèces présentes) les données entre lieu d’échantillonnage et entre différents sites de ce lieu. Le tableau 1 décrit les types d’échantillonnages effectués pour les quatre sites étudiés à la Trinité.

Sites échantillonnés Type de site Point GPS (UTM) Effort d’échantillonnage Inselberg P48 Inselberg 22N0232697-0510954 4, 2, 3, 0 Bas-fond de l’Inselberg Bas-fond 22N0232800-0510002 2, 0, 0, 0 Bas-fond P45 Bas-fond 22N0231967-0509224 1, 1, 1, 0 Terra Firme P42 Terra Firme 22N0232072-0509938 2, 2, 1, 0

Tableau 1 : Sites échantillonnés avec l’effort d’échantillonnage pour chacun ; les chiffres correspondent aux nombres d’heures passées à échantillonner respectivement avec : un filet de fauchage, un parapluie japonais, un tamis ou à vue dans la litière, un piège à vitre ou Malaise.

Les sites d’échantillonnage correspondent à des transects de 120 mètres par 5 mètres suivant un habitat relativement homogène, situés dans 3 parcelles GenTree Baraloto, dont la phénologie a été étudiée récemment, et au bas-fond situé en bord de crique, au pied de l’inselberg. La parcelle P48 est située dans la forêt sur l’Inselberg même. C’est une forêt peu dense, sèche et constituée d’arbres de tailles moyennes. La parcelle P42 est une forêt peu dérangée, constituée de végétation de terre non inondée. Elle est située à mi-chemin entre le camp de Aya et de Roche bénitier, en bord de layon. La troisième parcelle, P45, est un bas- fond coincé entre 2 criques, à proximité du camp Aya. Sa litière humide (et inondée à la saison des pluies) était constituée d’une épaisseur allant de 5 à 10 cm de feuilles mortes et autres détritus végétaux.

Les techniques d’échantillonnages utilisées dans le protocole permettent d’accéder à toutes les strates accessibles de l’habitat étudié, sauf la canopée.

1) A vue Méthode : De jour et de nuit (avec une lampe frontale en l’occurrence). Matériels : Pincettes, lampe frontale. Espèces visées : Espèces chasseuses présentes sur les troncs, feuilles, sols et araignées faisant des toiles (tôt le matin la rosée aide à repérer les toiles). Espèces mygalomorphes vivant dans des terriers ou tubes au sol.

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2) Tamis Méthode : Introduire rapidement les feuilles mortes de la litière ainsi qu’un peu de litière dans le tamis. Agiter celui-ci pour que les feuilles restent en haut du tamis et que les insectes et arachnides (se mettant en boule pour se protéger) tombent dans le drap posé en dessous. Matériels : Tamis de litière. Espèces visées : Araignées chasseuses au sol, araignées minutes se terrant dans la première couche d’humus.

3) Fauchage au filet Méthode : Faucher les herbes et les feuillages des buissons et arbres juvéniles de 10 cm à 1,50m. Le contenu du filet est régulièrement étalé et trié sur un drap blanc. Matériels : 1 filet de fauchage, 1 drap blanc. Espèces visées : Espèces chasseuses, à l’affût et à toile vivant ou se cachant le jour dans les herbes, feuillages, tronc.

4) Battage au parapluie japonais Méthode : Battre vigoureusement avec un bâton les feuillages, branches et troncs de la végétation allant de 1,5 à 2,5 m de hauteur, voire en canopée dans le cas d’un accès à cette hauteur. Les individus retombent dans un « parapluie japonais » qui est un tissu blanc accroché à une structure pour le maintenir manuellement. Le tri des arachnides récoltés peut s’effectuer directement sur ce tissu. Matériels : 1 bâton, 1 parapluie japonais, 1 aspirateur à bouche . Espèces visées : espèces errantes, à toile et à l’affût vivant dans le feuillage, sur les branches et sur les troncs des plus basses strates à la canopée.

2.2 Analyse des données

Les échantillons sont conservés dans des tubes labellés contenant de l’alcool à 70%. Dans certains cas une patte d’individu sera stockée dans de l’alcool absolu pour une étude moléculaire (bare-coding).

L’identification à la famille est ensuite assurée par Vincent VEDEL (SEAG) et l’identification à l’espèce par un réseau constitué de plus de 30 spécialistes répartis dans le monde (la famille des Ctenidae étant en partie assurée par Vincent VEDEL). Ces données ont ensuite été analysées statistiquement en utilisant différents packages (ex : Presence (http://www.mbr- pwrc.usgs.gov/software/presence.html) et EstimateS 8.2 ) pour obtenir les différents indices de diversité et leur courbe de raréfaction. Tous les individus seront conservés par les institutions des spécialistes et les Holotypes des nouvelles espèces renvoyés au Musée National d’Histoire Naturelle de Paris (MNHN) en attendant la construction d’un Musée en Guyane.

3) Familles d’araignées collectées sur les 4 sites

3.1 Données brutes :

3.1.1 Données Générales du lieu La Trinité

En annexe 1, la liste prévisionnelle des espèces (en attente des identifications des spécialistes).

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Les figures 1 et de 2 .1 à 2.5 représentent le nombre d’individus et de morpho-espèces classés respectivement par guildes (Fig.1) et par familles (Fig.2.1-2.5) ainsi que le total obtenu pour chaque site.

En regardant les données brutes (Annexe1), nous pouvons tout d’abord être surpris par le nombre important de singletons (1 seul individu collecté par morpho-espèce), ce qui est caractéristique à la fois de sites hyper-diversifiés et/ou sous-échantillonnés. 162 Morpho- espèces sur 244 ne sont représentées que par 1 seul individu.

Ensuite, nous pouvons noter la grande richesse spécifique pour les 4 grandes guildes (Fig.1), 106 morpho-espèces (M-E) pour 167 individus collectés chez les araignées tissant une toile orbiculaire, 26 M-E pour 38 individus chez les autres tisseuses, 32 M-E pour 53 individus chez les chasseuses à l’affût et enfin 78 M-E pour 181 individus chez les araignées errantes. Ces dernières sont donc les seules à présenter un ratio de richesse spécifique inférieur à 50% (78x100/181=43,1%). Les deux guildes dominantes (tisseuses de toile orbiculaires et errantes) sont celles qui regroupent le plus grand nombre de familles et les familles les plus nombreuses (Araneidae pour les tisseuses et Salticidae et Ctenidae pour les errantes). Elles regroupent donc ici logiquement le plus grand nombre d’individus (respectivement 167 et 181) et le plus grand nombre de morpho-espèces (106 et 78).

Guildes d'araignées représentées dans les 4 sites Nbr indiv. ou M-E. de la réserve de la Trinité 200 181 180 167 160

140

120 106 100 78 80

60 53 38 40 32 26 20

0 Toiles orbiculaires Autres types de toiles à l'affût errantes

Nombre d'individus Nombre de morpho-espèces

Fig.1 : Nombre d’individus et de morpho-espèces collectés sur les 4 sites de La Trinité, classés par guildes. Lorsque l’on classe ces M-E par famille (Tableau 2 et Fig. 2.1), nous pouvons compter la présence de 31 familles sur La Trinité. Les 4 familles dominantes sont, dans l’ordre, les Araneidae et les Salticidae avec 90 individus chacune, les Ctenidae avec 44 individus et les Philodromidae avec 32 individus. Les plus diverses sont dans l’ordre les Araneidae (62 M-E), les Salticidae (32), les Philodromidae (17) et les Ctenidae (16). Il semblerait donc que les deux familles d’araignées errantes (Salticidae et Ctenidae) aient un ratio de richesse spécifique (le rapport du nombre d’individus par rapport aux nombres de M-E) inférieur aux 2 autres familles appartenant à d’autres guildes.

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La diversité générale représentée par le nombre de familles (16) dont au moins 10 individus représentant les 4 guildes ont été collectés montre 1) que la diversité du site est importante et 2) que les différentes niches représentées par les différentes techniques de chasse des guildes sont largement occupés.

Familles Nombres d’individus Nombre de morpho-espèces estimées Anyphaenidae 1 1 Araneidae 90 62 Caponiidae 0 0 Clubionidae 9 4 Corinnidae 3 1 Ctenidae 44 16 Deinopidae 6 4 Dictynidae 9 8 Dipluridae 2 2 Eresidae 2 2 Gasteracanthidae 23 13 Gnaphosidae 3 2 Hersiliidae 1 1 Indéterminée 3 3 Lycosidae 0 0 Mimetidae 18 13 Mysmenidae 1 1 Oonopidae 2 1 Oxyopidae 4 3 Palpimanidae 0 0 Philodromidae 32 17 Pholcidae 1 1 Salticidae 90 32 Scytodidae 10 5 Segestriidae 6 5 Senoculidae 1 1 Sparassidae 5 4 Synotaxidae 4 2 Tetragnathidae 18 9 Teraphosidae 6 1 Theridiidae 9 7 Thomisidae 14 9 Uloboridae 18 9 Zodariidae 7 6 TOTAL 442 244

Tableau 2 : Total des exemplaires échantillonnés et de morpho-espèces identifiées à la Réserve de la Trinité en Octobre 2010.

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Mission entomologique SEAG Octobre 2010 – Réserve Trinité / Station Roche Bénitier

Nbr M-E La Trinité (total) 160

140

120

100

80

60

40

20

0 Ctenidae Eresidae Dipluridae Pholcidae Salticidae Araneidae Lycosidae Zodariidae Mimetidae Hersiliidae Corinnidae Dictynidae Uloboridae Oonopidae Oxyopidae Theridiidae Deinopidae Caponiidae Scytodidae Thomisidae Clubionidae Senoculidae Segestriidae Sparassidae Synotaxidae Mysmenidae Indéterminée Gnaphosidae Teraphosidae Palpimanidae Anyphaenidae Philodromidae Tetragnathidae Gasteracanthidae Familles représentées

Fig.2.1 : Total des individus (barre du bas ) et de morpho-espèces (barre du haut, des mêmes couleurs dans des tonalités différentes que celles de la barre du bas) collectés sur les 4 sites de La Trinité classés par familles. Les bleus pour les familles incluant dans la guilde des tisseuses de toiles orbiculaires , les roses=errantes , les violets=autres types de toiles et les verts=à l’affût ).

3.1.2 Les 4 sites de La Trinité

Une lecture détaillée de la distribution des araignées collectées, site par site (Annexe 1, Fig. 2.2 à 2.5), permet de noter que sur le site de l’Inselberg (P48) et celui de la Terra Firme (P42) les Araneidae et les Salticidae sont de loin les plus présentes (respectivement 58 individus et 40

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Mission entomologique SEAG Octobre 2010 – Réserve Trinité / Station Roche Bénitier pour le site P48 et 12 et 19 pour le site P42) et les plus diverses (41 et 16 pour P48 et 11 et 12 pour le site P42) par rapport aux autres familles.

Concernant les 2 sites de bas-fonds, cette dominance est beaucoup moins marquée, avec une importante présence de nombreuses autres familles telle que les Ctenidae, Gasteracanthidae, Mimetidae, Philodromidae, Tetragnathidae, Thomisidae et Uloboridae.

De plus la présence d’une espèce indicatrice à la fois des zones non-inondées et de milieu non-anthropisé telle que la Teraphosa leblondii , suggère à la fois la richesse du site (proies importantes) et le peu d’impact causé par l’humain dans ces lieux.

La richesse en M-E par rapport à l’effort d’échantillonnage additionné (= heures d’échantillonnages selon une méthode active) (Tableau 2) peut aussi être un indicateur de la diversité d’un habitat. Ici, nous obtenons pour la parcelle IP48 15,2 M-E par heure d’échantillonnage actif, 18 pour BF1, 26,7 pour BFP45, et 10.6 pour TFP42 (Tableau 3). Il apparaît donc ici clairement que les bas-fonds , spécialement à proximité d’eau, sont nettement plus riches en espèces que l’Inselberg et encore plus que la Terra Firme.

Sites Effort d’échantillonnage Nbr de M-E Rapport Nbre M-E/ Unité additionné d’échantillonnage IP48 9 137 15.2 BF1 2 36 18.0 BFP45 3 80 26.7 TFP42 5 53 10.6

Tableau 3 : Rapport du nombre de morpho-espèces collectées par unité d’échantillonnage (ou heure de collectes par une des méthodes actives) pour les 4 sites étudiés de La Trinité.

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Nbr M-E Inselberg P48 Nbr M-E Terra Firme P42 120 35

30 100

25 80

20

60

15

40 10

20 5

0 0 Ctenidae Eresidae Ctenidae Eresidae Pholcidae Salticidae Dipluridae Dipluridae Pholcidae Salticidae Araneidae Araneidae Zodariidae Lycosidae Lycosidae Zodariidae Mimetidae Hersiliidae Hersiliidae Mimetidae Uloboridae Corinnidae Dictynidae Corinnidae Dictynidae Uloboridae Theridiidae Oonopidae Oxyopidae Oonopidae Oxyopidae Theridiidae Caponiidae Deinopidae Deinopidae Caponiidae Scytodidae Scytodidae Thomisidae Thomisidae Clubionidae Clubionidae Senoculidae Senoculidae Segestriidae Sparassidae Synotaxidae Segestriidae Sparassidae Synotaxidae Mysmenidae Indéterminée Indéterminée Mysmenidae Gnaphosidae Gnaphosidae Teraphosidae Teraphosidae Palpimanidae Palpimanidae Philodromidae Anyphaenidae Anyphaenidae Philodromidae Tetragnathidae Tetragnathidae Gasteracanthidae Gasteracanthidae Familles représentées Familles représentées

Fig.2.2 Fig.2.3

Nbr M-E Bas-fond de l'Inselberg Nbr M-E Bas-fond P45 18 40

16 35

14 30

12 25

10

20

8

15 6

10 4

2 5

0 0 Ctenidae Ctenidae Eresidae Eresidae Dipluridae Dipluridae Pholcidae Salticidae Pholcidae Salticidae Araneidae Araneidae Lycosidae Lycosidae Zodariidae Zodariidae Hersiliidae Hersiliidae Mimetidae Mimetidae Corinnidae Corinnidae Dictynidae Dictynidae Uloboridae Uloboridae Oonopidae Oxyopidae Oonopidae Oxyopidae Theridiidae Theridiidae Caponiidae Deinopidae Caponiidae Deinopidae Scytodidae Scytodidae Thomisidae Thomisidae Clubionidae Clubionidae Senoculidae Senoculidae Segestriidae Sparassidae Synotaxidae Segestriidae Sparassidae Synotaxidae Indéterminée Indéterminée Mysmenidae Mysmenidae Gnaphosidae Gnaphosidae Teraphosidae Teraphosidae Palpimanidae Palpimanidae Anyphaenidae Anyphaenidae Philodromidae Philodromidae Tetragnathidae Tetragnathidae Gasteracanthidae Gasteracanthidae Familles représentées Familles représentées

Fig.2.4 Fig.2.5

Fig.2.2-2.5 : Total des individus (barre du bas ) et de morpho-espèces (barre du haut, des mêmes couleurs dans des tonalités différentes que celles de la barre du bas) collectés sur les 4 sites de La Trinité classés par familles. Les bleus pour les familles incluant dans la guilde des tisseuses de toiles orbiculaires , les roses=errantes , les violets=autres types de toiles et les verts=à l’affût ).

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3.2 Données statistiques

3.2.1 Estimateurs de richesse spécifiques

La richesse spécifique (nombre de morpho-espèces identifiées) de La Trinité ainsi que les estimateurs statistiques (Chao 1, Chao2, Jack Knife1, Jack Knife2, Michaelis-Menten et le nombre de singletons (1 M-E représentée seulement par 1 individu) et doubletons (1 M-E représentée seulement par 2 individus) sont représentés en fonction du nombre d’individus collectés (Fig. 3.1) et du nombre de sites d’échantillonnages (Fig. 3.2).

Les différents estimateurs utilisent plusieurs équations et sont par conséquent sensibles à divers paramètres obtenus dans la composition et le nombre de M-E et d’individus. Donc, le calcul de tous ces estimateurs permet d’avoir une estimation inférieure et une supérieure dans laquelle se trouve la richesse spécifique (nombre total de M-E) réelle.

A la Trinité, la richesse spécifique observée est de 244 M-E. D’après les estimateurs calculés, la richesse spécifique la plus faible serait de 392 M-E (±55.49) d’après JK1, et l’estimation la plus importante serait de 897 M-E d’après MM. La richesse spécifique observée étant de 244 M-E, il apparaît clairement que le site a été sous-échantillonné et qu’un nombre important d’espèces n’ont pas encore été collectées (entre 148 et 653 M-E). L’énorme divergence entre les estimateurs est principalement causée par le nombre important de singletons. Ces courbes d’accumulation nous montrent aussi, grâce à leur forme asymptotique, le nombre d’individus (Fig.3.1) ou de sites échantillonnés (Fig. 3.2) nécessaires pour évaluer la richesse spécifique d’un lieu. A La Trinité, la plupart des courbes des estimateurs atteignent leur plateau vers 260 individus ou 2,5 sites d’échantillonnages. Ceci représenterait la valeur minimum pour évaluer la richesse d’un site. Cependant, le nombre de M-E augmente continuellement, même après le nombre d’individus collectés (452 individus) et le nombre de sites (4 sites).

Nous pouvons donc conclure d’après ces courbes d’accumulation, que vu la richesse importante du lieu La Trinité, pour avoir une estimation approximative du nombre d’espèces présentes, la collection de 250 individus ou de 2,5 sites serait un minimum . Au-delà, l’effort apporte moins rapidement de nouvelles M-E mais cela permet la découverte d’encore au moins une centaine de M-E et d’affiner les estimations de la richesse spécifique totale en s’approchant de la richesse spécifique réelle.

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Courbe d'accumulation Nbre M-E 1000 900 ME observées 800 Chao 1 700 Chao 2 600 JK1 500 JK2 400 MM 300 Singletons 200 Doubletons 100 0 200 250 300 350 400 450 500 Nombre d'individus échantillonnés

Fig. 3.1 : Courbe d’accumulation représentant la richesse spécifique (Nombre de M-E présentes) d’un lieu en fonction du nombre d’individus collectés.

Courbe d'accumulation Nbre M-E 1000 900 ME observées 800 Chao 1 700 Chao 2 600 JK1 500 400 JK2 300 MM 200 Singletons 100 Doubletons 0 1 2 3 4 Nombre de sites échantillonnés

Fig.3.2 : Courbe d’accumulation représentant la richesse spécifique (Nombre de M-E présentes) d’un lieu en fonction du nombre d’individus collectés.

3.2.2 Indices de diversité

Un indice de diversité est une mesure mathématique de la diversité des espèces dans une communauté. Il donne plus d’informations sur la composition de la communauté que la richesse spécifique. Il prend en compte l’abondance relative (rareté ou au contraire la banalité) d’une espèce. Il représente un outil indispensable pour comprendre la structure de la communauté.

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Les 4 indices les plus communs ont été calculés pour avoir, comme dans le paragraphe précédent, une fourchette de valeurs en fonction des sensibilités propres à chaque indice (Tableau 4).

Type d’indice Fisher’s Alpha Shannon Shannon Simpson exponentiel (réciproque) Valeur 222.2 5.19 180.7 167.8

Tableau 4 : Indice représentant la richesse de la diversité de La Trinité

Les 4 indices, malgré leurs divergentes sensibilités (Shannon est sensible à la présence d’espèces rares) montrent une extrême richesse de la biodiversité. Par exemple, l’index de Shannon a typiquement une valeur comprise entre 1.5 (faible diversité) à 3.5 (riche diversité). A La Trinité nous obtenons un index de 5.19. De même les 3 autres indices ont un minimum de 1 (1 seule espèce présente) et une valeur maximum du nombre d’espèces présentes (chaque araignée trouvée serait une espèce différente). Par conséquent avec leurs scores situés entre 167,8 et 222,2 ils nous indiquent que le site est extrêmement varié.

Un autre indice, prenant en compte la rareté d’une espèce selon un score, et donc plus adapté est en cours de développement.

3.2.3 Comparaison de la distribution de M-E entre sites

Le nombre d’espèces communes à deux sites a été calculé. Puis un indice de similarité entre chaque site a aussi été calculé pour permettre d’identifier une similarité de distribution de M-E entre 2 sites. Les 4 indices de similarité les plus performants ont été utilisés pour avoir, comme dans le paragraphe précédent, une fourchette de valeurs en fonction des sensibilités propres à chaque indice (Tableau 5).

Comparaison Nbre de M-E Nbre de M-E Jaccard Sorensen Morisita- Bray- dans chaque communes aux Classic Classic Horn Curtis site 2 sites P48-BF1 137-36 12 0.075 0.139 0.222 0.13 P48-BFP45 137-80 21 0.107 0.194 0.317 0.198 P48- TFP42 137-53 19 0.111 0.2 0.221 0.162 BF1-BFP45 36-80 13 0.126 0.224 0.264 0.2 BF1-TFP42 36-53 7 0.085 0.157 0.149 0.116 BFP45-TFP42 80-53 9 0.073 0.135 0.156 0.109

Tableau 5 : Comparaison de la distribution des M-E entre les 4 sites de La Trinité, avec le calcul des 4 indices de similarité les plus performants.

Les indices sont des probabilités représentant la similarité entre les 2 sites. Leur valeur est donc située entre 0 et 1 où 0 représente l’absence de similarité entre les 2 sites et 1 une similarité totale.

Ici, les valeurs varient entre 0,073 (Indice Jaccard entre le bas-fond P45 et la Terra Firme P42) pour les sites les moins similaires et 0,264 (indice Morisita-Horn entre les 2 sites de bas-fond) pour la plus élevée. On peut voir que les sites les plus proches en distribution d’espèces sont bien les 2 bas-fonds, mais leurs valeurs de similarité restent tout de même très faibles. Ensuite les sites les plus

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Mission entomologique SEAG Octobre 2010 – Réserve Trinité / Station Roche Bénitier différents sont l’Inselberg et les bas-fonds, où là la similarité est extrêmement faible. Ces résultats sont logiques et correspondent bien aux distributions des habitats, mais possèdent une similarité faible qui représente probablement à la fois un sous-échantillonnage et une richesse exceptionnelle des sites.

4) Conclusions

Après un échantillonnage de 4 sites (représentant 3 habitats différents: inselberg, terra firme et 2 bas-fonds) de la Réserve de La Trinité, ont été récoltées 442 araignées appartenant à 244 morpho-espèces issues de 31 familles.

La richesse spécifique (nombre de M-E), le nombre de singletons (1 espèce représentée seulement par 1 individu), les estimateurs de richesse spécifique issus des courbes d’accumulation, les indices de diversité ainsi que les indices de similarité entre sites tendent tous vers la même direction :

1) La Réserve de la Trinité est un site d’ une richesse en arachnofaune (et donc en entomofaune en général) exceptionnelle (estimateur de richesse spécifique) avec des estimations de la richesse spécifique totale allant de 392 à 897 morpho-espèces et une diversité très abondante (indice de diversité et indice de similarité entre sites). 2) Ce site a été largement sous-échantillonné d’où une divergence importante des différents estimateurs et indices utilisés et d’où le nombre élevé de singletons.

Les bas-fonds semblent plus riches et plus divers que les sites de terra firme et de l’inselberg qui présentent une nette dominance de deux familles (Araneidae et Salticidae).

La composition des espèces (pas seulement la richesse en espèces) est encore difficilement évaluable en raison du peu de connaissance taxonomique des araignées dans la région . La rareté ou la banalité d’une espèce, ainsi que sa spécificité à un habitat sont en train d’être évaluées par l’auteur. Pour y remédier, les individus identifiés en morpho-espèce ont été envoyés chez des taxonomistes pour une identification à l’espèce certaine et des échantillons de la famille de Ctenidae dans un programme de Bare-Coding. En outre, la présence abondante de l’espèce géante Teraphosa leblondii , espèce pourchassée pour être revendue, montre que le site est isolé de passages humains.

Enfin, nous pouvons noter une dominance de certaines familles en nombre et en diversité (les Salticidae, les Philodromidae, les Araneidae et les Ctenidae) sur l’ensemble des sites. Ces familles sont situées dans chacune des guildes classées selon leur technique alimentaire de chasse (Fig.1). Par conséquent la représentation des familles dominantes de chaque guilde suggère que la méthode utilisée (le protocole standardisé) pour collecter est efficace et échantillonne de manière homogène les différents micro-habitats où se trouvent les araignées.

5) Perspectives et recommandations

Un site où l’abondance, la richesse et la diversité en araignées sont élevées est indicateur d’un site peu perturbé par l’activité humaine. D’autre part, cette richesse

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Mission entomologique SEAG Octobre 2010 – Réserve Trinité / Station Roche Bénitier exceptionnelle et cette diversité abondante démontrent que La Trinité mérite son classement en réserve naturelle et doit continuer de l’être .

Pour affiner les connaissances sur ce site sous-échantillonné il faudrait collecter les araignées de manière plus intense et à différentes saisons . Un considérable effort de collecte, en appliquant pour chaque point de récolte un protocole standardisé, permettrait de bien mieux appréhender la réelle diversité des araignées de la Trinité. Un tel protocole permettrait en outre d’étudier la corrélation entre abondance et effort de collecte, y compris avec d’autres sites en Guyane. Cette comparaison avec d’autres sites en Guyane (en cours) permettrait d’affiner la connaissance de cette diversité, en discrimant par exemple les espèces qui nous paraîssent rares de celles qui s’avèreront l’être. Un indice de diversité spécifique pourrait alors être développé et utilisé.

La mise en place d’une méthode pour échantillonner efficacement la canopée permettrait aussi de découvrir de nombreuses espèces et une diversité probablement remarquable.

L’identification au niveau de l’espèce par des spécialistes de familles va pouvoir déterminer plus en détail la richesse de cette collection, et permettre l’éventuelle description de nouvelles espèces pour la Science et donc augmenter l’intérêt faunistique de ce site.

Enfin, l’écologie et la phénologie de ces araignées sont très peu connues. Ces connaissances nous permettraient un échantillonnage encore plus efficace et une estimation de la richesse spécifique totale et de la diversité encore plus complète.

Unité d'effort (SN-B-H-T) 4-2-3-0 2-0-0-0 1-1-1-0 2-2-1-0 Family SPECIES IP48 BFI BFP45 TFP42 Trinité 2010 ANYPHAENIDAE SP.1 1 1 ARANEIDAE SP.1 0 SP.4 1 1 SP.8 1 1 SP.26 1 1 SP.27 9 2 1 12 SP.29 1 1 SP.31 2 2 SP.36 1 1 SP.37 2 1 3 SP.39 1 1 SP.40 1 1 SP.45 1 1 SP.46 1 1 SP.47 1 1 SP.48 1 1 SP.49 1 1 SP.50 1 1 2 SP.51 1 1 SP.52 1 1 SP.53 1 1 SP.54 1 1 SP.55 1 1 SP.56 1 1 SP.57 1 2 3 SP.58 1 1 SP.59 1 1 SP.60 1 1 SP.61 1 1

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SP.62 1 1 SP.63 1 1 SP.64 1 1 1 3 SP.65 1 1 SP.66 2 2 SP.67 1 1 2 SP.68 1 1 SP.69 1 1 SP.70 1 1 SP.71 1 1 SP.72 4 4 SP.73 2 2 SP.74 1 1 SP.75 1 1 SP.76 1 1 SP.77 1 1 SP.78 2 2 4 SP.79 1 1 SP.80 1 1 SP.81 1 1 SP.82 1 1 SP.83 2 2 SP.84 1 1 SP.85 1 1 SP.86 1 1 SP.87 1 1 SP.88 1 1 SP.89 1 1 SP.90 2 2 SP.91 3 3 Aspidolasius SP.1 1 1 Hypognatha SP.1 1 1 Edricus SP.1 1 1 Edricus SP.2 1 1 CAPONIIDAE SP.1 0 CLUBIONIDAE SP.4 1 1 SP.5 3 1 4 SP.6 1 1 2 SP.7 1 1 2 CORINNIDAE SP.3 1 1 1 3 CTENIDAE SP.9 4 2 1 7 SP.10 3 2 3 1 9 SP.18 2 2 SP.20 1 1 SP.23 1 1 SP.24 1 1 SP.27 2 2 4 SP.28 1 1 SP.33 5 1 6 SP.37 5 5 SP.38 1 1 SP.39 1 1 SP.40 1 1 SP.41 2 2 SP.42 1 1 DEINOPIDAE Deinopis SP.1 2 2 SP.3 1 1 Deinopis SP.4 2 2 Deinopis SP.5 1 1 DICTYNIDAE SP.2 2 2

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SP.3 1 1 SP.4 1 1 SP.5 1 1 SP.6 1 1 SP.7 1 1 SP.9 1 1 SP.10 1 1 DIPLURIDAE SP.1 1 1 SP.2 1 1 ERESIDAE SP.1 1 1 SP.2 1 1 GASTERACANTHIDAE SP.4 1 1 SP.6 1 1 Micrathena SP.8 1 1 Micrathena SP.9 1 1 SP.10 1 1 SP.11 1 1 SP.12 1 1 Micrathena gracilis 1 1 2 Micrathena triangularis 2 1 3 Micrathena schreibersii 6 6 Micrathena sexspinosa 1 1 Gasteracantha cancriformis 1 1 Chaecitis SP.1 1 2 3 GNAPHOSIDAE SP.10 1 1 SP.11 1 1 HERSILIIDAE SP.1 1 1 MIMETIDAE SP.4 1 1 SP.5 1 1 SP.6 3 3 SP.7 2 1 3 SP.8 1 1 SP.9 1 1 SP.10 1 1 SP.11 1 1 SP.12 1 1 SP.13 1 1 SP.14 1 1 SP.15 1 1 SP.16 2 2 MYSMENIDAE SP.2 1 1 OONOPIDAE SP.1 2 2 OXYOPIDAE Oxyopes SP.1 2 2 Oxyopes SP.2 1 1 SP.3 1 1 PHILODROMIDAE SP.2 2 2 SP.5 1 1 SP.7 1 1 SP.8 1 1 SP.9 4 4 SP.10 2 2 1 5 SP.11 2 1 3 SP.12 2 2 SP.13 1 1 SP.14 1 1 SP.15 1 1 SP.16 2 2 SP.17 1 1 SP.18 2 2 SP.19 1 1 SP.20 1 1

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SP.T4 3 3 PHOLCIDAE SP.3 1 1 SALTICIDAE SP.1 3 1 1 5 SP.3 3 2 5 SP.19 1 1 SP.20 2 2 SP.25 1 2 3 SP.26 1 1 SP.29 2 2 4 SP.36 3 1 4 SP.37 1 1 2 SP.38 1 1 SP.39 1 1 SP.40 1 1 SP.41 1 1 5 7 SP.42 1 1 SP.43 2 2 SP.44 1 1 SP.45 1 1 SP.46 7 3 5 1 16 SP.47 10 1 11 SP.48 1 1 SP.49 1 1 2 SP.50 1 1 SP.51 1 1 SP.52 4 1 1 6 SP.53 1 1 2 SP.54 1 1 SP.55 1 1 SP.56 1 1 SP.57 2 2 SP.58 1 1 SP.59 1 1 SP.60 1 1 SCYTODIDAE SP.2 2 2 SP.3 1 1 SP.5 2 2 SP.6 4 4 SP.7 1 1 SEGESTRIIDAE SP.1 1 1 SP.2 1 1 SP.3 1 1 SP.4 1 1 SP.5 1 1 2 SENOCULIDAE SP.1 1 1 SPARASSIDAE SP.3 1 1 SP.4 2 2 SP.5 1 1 SP.6 1 1 SYNOTAXIDAE SP.1 3 3 SP.2 1 1 TETRAGNATHIDAE SP.4 1 1 SP.5 2 1 3 SP.6 1 2 3 SP.7 1 1 1 1 4 SP.8 1 1 SP.9 1 1 Leucauge SP.10 2 2 SP.11 2 2 SP.12 1 1 THERAPHOSIDAE SP.1 Teraphosa leblondii 3 3 6

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THERIDIIDAE SP.3 1 1 SP.4 1 1 SP.5 1 1 SP.6 1 2 3 SP.7 1 1 SP.8 1 1 Anolesimus eximius 1 1 THOMISIDAE SP.4 1 1 SP.5 1 1 2 SP.22 1 1 SP.24 2 2 SP.26 1 1 SP.27 1 1 1 3 SP.28 1 1 SP.29 1 1 2 SP.30 1 1 ULOBORIDAE SP.8 1 1 2 SP.9 1 1 SP.10 1 1 SP.11 1 1 SP.12 2 2 SP.13 1 1 2 SP.14 2 2 3 7 SP.15 1 1 SP.16 1 1 ZODARIIDAE SP.5 1 1 SP.7 1 1 SP.8 1 1 2 SP.9 1 1 SP.10 1 1 SP.11 1 1 UNDETERMINED SP.1 1 1 SP.2 1 1 SP.5 1 1

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Photos d’arachnides prises au cours de la mission (certaines espèces n’ont pas été capturées par le protocole d’effort mais figurent au listing général)

Amaurobiidae sp. Ctenidae Ctenus sp.

Deinopidae Deinopis guianensis Hersilidae Hersilia sp.

Salticidae Hypaeus sp. Salticidae sp. Salticidae sp.

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Trechaleidae sp.

Nephiliidae Nephila clavipes ou cornuta Gasteracanthidae Micrathena gracilis

Theraphosidae Theraphosa leblondii à proximité de son abri.

Theraphosidae Ephebopus sp.

Même espèce consommant une sauterelle de la sous-famille des Phaneropterinae.

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XVI / Récapitulatifs - Conclusions

Ordre Nombre de familles Nombre d’espèces Nombre de identifiées identifiées spécimens collectés

Lepidoptera 21 843 1519 Coleoptera 27 207 511 Hymenoptera 6 25 36 Hemiptera 7 30 54 Orthoptera 3 21 58 Odonata 7 16 35 Mantodea 1 1 1 Phasmatoptera 1 1 1 Neuroptera 1 1 1 Sous-Total Insectes 74 1145 2216 Arachnodea 34 256 > 450 TOTAL 108 1401 >>> 2663

Avec plus de 2600 taxons inventoriés (dont plus de 2200 pour les seuls insectes), les résultats globaux montrent une bonne efficacité du dispositif mis en place par l’équipe.

Comparativement à d’autres missions de la SEAG, les collectes furent assez modestes numériquement. Le principal facteur incriminé est le vent, particulièrement puissant sur le site.

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Par contre, le choix des dates retenues était très favorable (milieu de la saison sèche) puisque c’est une période où la majorité des familles de coléoptères (coprophages, cicindèles, psélaphides et Cératocanthides exclus) sont encore abondants et à partir de laquelle les lépidoptères voient leur activité augmenter.

Si, comme nous venons de l’écrire, les collectes n’ont pas été importantes, quelques espèces intéressantes ont été rencontrées dans quasiment tous les groupes étudiés. Ceci tient à la diversité des méthodes de piégeage utilisées et également aux qualités propres du site. Ce dernier semble en effet posséder une véritable originalité faunistique, qui tranche avec l'habituelle homogénéité des zones forestières guyanaises qui se caractérisent par une très forte diversité locale mais une faible variabilité d'un site à l'autre. Des missions d’inventaire supplémentaires seront nécessaires pour mieux la définir. Nul doute que l’investissement de l’ONF dans la conservation et la connaissance de cette réserve, avec notamment la réalisation très récente de carbets sur la zone Aya, permettra, dans les années à venir, de consolider les connaissances de l’entomofaune de ce site particulier.

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Annexe 1 : Listes établies par les membres de la S.E.A.G et les spécialistes collaborateurs

Liste des LEPIDOPTERA :

Apatelodidae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 15 espèces

Famille Sous-famille Espèce Apatelodidae Apatelodinae Apatelodes lepida (Schaus, 1905) Apatelodidae Apatelodinae Apatelodes nina (Stoll, 1782) Apatelodidae Apatelodinae Apatelodes pandara Druce, 1893 Apatelodidae Apatelodinae Apatelodes satellitia (Walker, 1855) Apatelodidae Apatelodinae Drepatelodes quadrilineata (Schaus, 1920) Apatelodidae Apatelodinae Drepatelodes umbrilinea (Schaus, 1905) Apatelodidae Epiinae Colla amoena Dognin, 1923 Apatelodidae Epiinae Colla glaucescens Walker, 1865 Apatelodidae Epiinae Colla lilacina Dognin, 1916 Apatelodidae Epiinae Colla opalifera Dognin, 1911 Apatelodidae Epiinae Epia lebethra Druce 1890 Apatelodidae Epiinae Epia muscosa (Hübner, 1820) Apatelodidae Epiinae Quentalia ephonia (Stoll, 1791) Apatelodidae Epiinae Quentalia sp. Apatelodidae Phiditiinae Phiditia maculosa (Dognin, 1916)

Arctiidae – Identificateurs Serge FERNANDEZ (Arctiinae - Photos), Philippe COLLET & Eddy POIRIER

Eriostepta albiscripta

Hypercompe cunigunda Ochrodota grisescens

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204 espèces

Famille Sous-famille Espèce Arctiidae Arctiinae Amaxia beata (Dognin, 1909) Arctiidae Arctiinae Amaxia bella (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Amaxia chaon chaon (Druce, 1883) Arctiidae Arctiinae Amaxia consistens Rothschild, 1917 Arctiidae Arctiinae Amaxia elongata Toulgoët, 1987 Arctiidae Arctiinae Amaxia erythrophleps Hampson, 1901 Arctiidae Arctiinae Amaxia gnosia (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Amaxia pandama (Druce 1893) Arctiidae Arctiinae Ammalo helops (Cramer, 1775) Arctiidae Arctiinae Apyre separata Walker, 1854 Arctiidae Arctiinae Araeomolis albipicta (Dognin, 1909) Arctiidae Arctiinae Araeomolis propinqua Toulgoët, 1998 Arctiidae Arctiinae Astralarctia pulverosa (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Azatrephes paradisea (Butler, 1877) Arctiidae Arctiinae Castrica phalaenoides (Drury, 1773) Arctiidae Arctiinae Cratopalpis barrosi (Almeida, 1968) Arctiidae Arctiinae Cratopalpis rectiradia (Hampson, 1901) Arctiidae Arctiinae Cresera affinis (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Cresera hieroglyphica (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Cresera ilus (Cramer, 1776) Arctiidae Arctiinae Cresera similis (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Dialeucias pallidistriata Hampson, 1901 Arctiidae Arctiinae Dialeucias violascens Schaus, 1905 Arctiidae Arctiinae Echeta semirosea (Walker, 1865) Arctiidae Arctiinae Elysius ruffin Schaus, 1924 Arctiidae Arctiinae Emurena fernandezi Watson, 1975 Arctiidae Arctiinae Ennomomima miniata (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Ennomomima modesta (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Epimolis incisa (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Epimolis ridenda (Dognin, 1911) Arctiidae Arctiinae Eriostepta bacchans Schaus, 1905 Arctiidae Arctiinae Eriostepta nigripuncta (Joicey & Talbot, 1918) Arctiidae Arctiinae Eriostepta roseirata Hampson, 1901 Arctiidae Arctiinae Ernassa cruenta (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Eucyrta albicollis (Felder, 1874) Arctiidae Arctiinae Eupsodosoma bifasciata (Cramer, 1779) Arctiidae Arctiinae Eupsodosoma involuta involuta (Sepp, 1855) Arctiidae Arctiinae Eupsodosoma larissa (Druce, 1890) Arctiidae Arctiinae Evius albicoxae (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Glaucostola binotata (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Glaucostola maroniensis Joicey & Talbot, 1918 Arctiidae Arctiinae Gorgonidia buckleyi whitfordi (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Gorgonidia garleppi maronensis (Rothschild, 1917) Arctiidae Arctiinae Haemanota concelata Laguerre, 2005 Arctiidae Arctiinae Haemanota flavipurpurea (Dognin, 1914) Arctiidae Arctiinae Haemanota sanguidorsia (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Haemaphlebiella strigata Jones, 1914

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Arctiidae Arctiinae Himerarctia docis (Hubner, 1831) Arctiidae Arctiinae Hyperandra appendiculata (Herrich-Schäffer, 1856) Arctiidae Arctiinae Hypercompe brasiliensis (Oberthür, 1881) Arctiidae Arctiinae Hyperthaema punctata Rothschild, 1935 Arctiidae Arctiinae Hyperthaema ruberrima Schaus, 1905 Arctiidae Arctiinae Hyponerita lavinia (Druce 1890) Arctiidae Arctiinae Hyponerita similis Rothschild, 1909 Arctiidae Arctiinae Idalus albescens (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Idalus aleteria (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Idalus critheis Druce, 1884 Arctiidae Arctiinae Idalus daga (Dognin, 1902) Arctiidae Arctiinae Idalus dorsalis (Seitz, 1921) Arctiidae Arctiinae Idalus intermedia (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Idalus lineosus Walker, 1869 Arctiidae Arctiinae Idalus nigropunctata (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Idalus ochreata (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Idalus vitrea vitrea (Cramer, 1780) Arctiidae Arctiinae Lepidokirbyia venigera Toulgoët, 1982 Arctiidae Arctiinae Lophocampa maronensis (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Lophocampa sobrina (Stretch, 1872) Arctiidae Arctiinae Machaeraptenus crocopera (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Melese dorothea (Stoll, 1782) Arctiidae Arctiinae Melese hampsoni Rothschild, 1909 Arctiidae Arctiinae Melese incertus (Walker, 1855) Arctiidae Arctiinae Melese klagesi Rothschild, 1909 Arctiidae Arctiinae Melese niger Toulgoët, 1982 Arctiidae Arctiinae Munona iridescens Schaus, 1894 Arctiidae Arctiinae Neonerita dorsipuncta Walker, [1858] Arctiidae Arctiinae Nyearctia leucoptera (Hampson, 1920) Arctiidae Arctiinae Ochrodota brunnescens Rothschild, 1909 Arctiidae Arctiinae Ochrodota grisescens Toulgoët, 1999 Arctiidae Arctiinae Opharus gemma Schaus, 1894 Arctiidae Arctiinae Ordishia rutila (Stoll, 1782) Arctiidae Arctiinae Ormetica contraria (Walker, 1854) Arctiidae Arctiinae Ormetica sphingidea euplesia (Perty, 1833) Arctiidae Arctiinae Ormetica sypilus (Cramer, 1777) Arctiidae Arctiinae Ormetica zenzeroides (Butler, 1877) Arctiidae Arctiinae Parathyris cedonulli (Stoll, 1781) Arctiidae Arctiinae Parathyris semivitrea (Joicey & Talbot, 1916) Arctiidae Arctiinae Phaeomolis tavakiliani Toulgoët, 1987 Arctiidae Arctiinae Premolis amaryllis Schaus, 1905 Arctiidae Arctiinae Premolis semirufa (Walker, 1856) Arctiidae Arctiinae Pryteria hamifera (Dognin, 1907) Arctiidae Arctiinae Regobarrosia flavescens (Walker, 1856) Arctiidae Arctiinae Regobarrosia villiersi Toulgoët, 1984 Arctiidae Arctiinae Rhipha flammans (Hampson, 1901) Arctiidae Arctiinae Rhipha strigosa (Walker, 1854) Arctiidae Arctiinae Robinsonia fogra Schaus, 1895 Arctiidae Arctiinae Robinsonia klagesi Rothschild, 1910 Arctiidae Arctiinae Robinsonia marginata Rothschild, 1909

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Arctiidae Arctiinae Robinsonia morula Druce, 1906 Arctiidae Arctiinae Robinsonia sanea Druce, 1895 Arctiidae Arctiinae Scaptius sanguistrigata (Dognin, 1910) Arctiidae Arctiinae Selenarctia elissa (Schaus, 1892) Arctiidae Arctiinae Senecauxia coraliae Toulgoët, 1989 Arctiidae Arctiinae Sutonocrea lobifer (Herrich-Schäffer, 1855) Arctiidae Arctiinae Symphlebia neja (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Thyromolis pythia Druce, 1900 Arctiidae Arctiinae Trichromia androconiata (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Trichromia carmen (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Trichromia coccineata (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Trichromia complicata (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Trichromia ducrei (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Trichromia gaudialis (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Trichromia interna (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Trichromia klagesi (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Trichromia leucoplaga (Hampson, 1905) Arctiidae Arctiinae Trichromia lophosticta (Schaus, 1911) Arctiidae Arctiinae Trichromia occidentalis (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Trichromia onytes (Cramer, 1777) Arctiidae Arctiinae Trichromia persimilis (Rothschild, 1909) Arctiidae Arctiinae Trichromia rubrosignata Rothschild Arctiidae Arctiinae Trichromia tremula (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Trichromia viola (Dognin, 1909) Arctiidae Arctiinae Viviennea moma (Schaus, 1905) Arctiidae Arctiinae Viviennea superba (Druce 1883) Arctiidae Arctiinae Zatrephes flavipuncta Rothschild, 1909 Arctiidae Arctiinae Zatrephes trailii Butler, 1877 Arctiidae Ctenuchinae Pseudosphex aequalis Walker, 1864 Arctiidae Ctenuchinae Agyrta hermieri Toulgoët, 2000 Arctiidae Ctenuchinae Calonotos aequimaculatus Zerny, 1931 Arctiidae Ctenuchinae Calonotos aterrima Sepp, 1848 Arctiidae Ctenuchinae Calonotos helymus (Cramer, 1775) Arctiidae Ctenuchinae Calonotos longipennis Rothschild, 1911 Arctiidae Ctenuchinae Chrostosoma endochrysa (Dognin, 1911) Arctiidae Ctenuchinae Chrostosoma evadnes (Stoll, 1781) Arctiidae Ctenuchinae Correbia lycoides (Walker, 1854) Arctiidae Ctenuchinae Correbidia calopteridia Butler, 1878/1884 Arctiidae Ctenuchinae Cosmosoma neleum Möschler, 1878 Arctiidae Ctenuchinae Delphyre flaviceps Druce, 1905 Arctiidae Ctenuchinae Delphyre germana (Heliura) Arctiidae Ctenuchinae Delphyre maculosa (Hampson, 1898) Arctiidae Ctenuchinae Delphyre pusilla Butler, 1878 Arctiidae Ctenuchinae Delphyre varians Hampson, 1901 Arctiidae Ctenuchinae Ecdemus hypoleucus Herrich-Schäffer, 1854 Arctiidae Ctenuchinae Epanycles imperialis (Walker, 1854) Arctiidae Ctenuchinae Epidesma lenaeus Cramer, 1780 Arctiidae Ctenuchinae Epidesma venata Butler, 1877 Arctiidae Ctenuchinae Eucereon aoris Möschler, 1877 Arctiidae Ctenuchinae Eucereon metoidesis Hampson, 1905

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Arctiidae Ctenuchinae Eucereon simile Draudt, 1915 Arctiidae Ctenuchinae Eucereon sp.11 Arctiidae Ctenuchinae Heliura flava Dognin, 1910 Arctiidae Ctenuchinae Heliura marica (Cramer, 1775) Arctiidae Ctenuchinae Heliura rhodophila Walker, 1856 Arctiidae Ctenuchinae Heliura suffusa Lathy, 1899 Arctiidae Ctenuchinae Heterodontia attenuata (Hampson, 1905) Arctiidae Ctenuchinae Heterodontia haematica Perty, 1833 Arctiidae Ctenuchinae Hyaleucerea erythrotela Walker, 1854 Arctiidae Ctenuchinae Hyaleucerea leucoprocta Dognin, 1909 Arctiidae Ctenuchinae Laemocharis porphyria (Walker, 1854) Arctiidae Ctenuchinae Lepidoneiva telephus (Walker, 1854) Arctiidae Ctenuchinae Leucotmemis hemileuca (Butler, 1876) Arctiidae Ctenuchinae Loxophlebia bisigna (Kaye, 1911) Arctiidae Ctenuchinae Loxophlebia crocata (Herrich-Schäffer, 1854) Arctiidae Ctenuchinae Loxophlebia postflavia Druce, 1898 Arctiidae Ctenuchinae Loxophlebia splendens Möschler, 1872 Arctiidae Ctenuchinae Loxozona lanceolata Walker, 1854 Arctiidae Ctenuchinae Mesothen mimus Cerda, 2008 Arctiidae Ctenuchinae Mystrocneme varipes Walker, 1854 Arctiidae Ctenuchinae Orcinia calcarata (Walker, 1854) Arctiidae Ctenuchinae Pheia toulgoeti Cerda, 2008 Arctiidae Ctenuchinae Pseudaclytia opponens Walker, 1864 Arctiidae Ctenuchinae Pseudopompilia mimica Druce, 1898 Arctiidae Ctenuchinae Pterigopterus leucomelas (Walker, 1856) Arctiidae Ctenuchinae Sesiura smaragdina (Walker, [1865]) Arctiidae Ctenuchinae Sphecosoma melapera Dognin, 1909 Arctiidae Ctenuchinae Telioneura hypophaea Hampson, 1905 Arctiidae Ctenuchinae Teucer carmania Hampson, 1898 Arctiidae Ctenuchinae Xanthyda chalcosticta (Butler, 1876) Arctiidae Lithosiinae Agylla sericea (Druce, 1885) Arctiidae Lithosiinae Agylla subvoluta Schaus, 1905 Arctiidae Lithosiinae Ardonea peculiaris Druce, 1906 Arctiidae Lithosiinae Ardonea tenebrosa Walker,[1865] Arctiidae Lithosiinae Areva trigemmis Hübner, 1827 Arctiidae Lithosiinae Arhabdosia subvarda Schaus, 1905 Arctiidae Lithosiinae Lithoprocris methylaea ? Hampson, 1900 Arctiidae Lithosiinae Prepiella sp. Arctiidae Pericopinae Sagaropsis horae (Druce 1885)

Opharus gemma Senecauxia coraliae

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Cossidae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 13 espèces

Famille Sous-famille Espèce Cossidae Cossulinae Biocellata bistellata (Dognin, 1910) Cossidae Cossulinae Cossula arpi Schaus, 1901 Cossidae Cossulinae Cossula cossuloides (Schaus,1905) Cossidae Cossulinae Cossula cleptes Dyar, 1910 Cossidae Cossulinae Cossula magna Schaus, 1905 Cossidae Hypoptinae Givira pr. aroa (Schaus, 1894) Cossidae Hypoptinae Givira pr. daphne (Druce, 1901) Cossidae Hypoptinae Givira fidelis Schaus, 1911 Cossidae Hypoptinae Givira pr. guata Schaus, 1921 Cossidae Hypoptinae Inguromorpha polybia (Schaus, 1892) Cossidae Hypoptinae Inguromorpha sp.1 Cossidae Zeuzerinae Psychonoctua albogrisea (Dognin, 1916) Cossidae Hypoptinae Puseyia puseyia Dyar & Schaus, 1937

Dalceridae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 2 espèces

Famille Sous-famille Espèce Dalceridae Acraginae Acraga sp. gr. infusa Schaus, 1905 Dalceridae Dalcerinae Dalcera abrasa Herrich-Schäffer, [1854]

Geometridae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 120 espèces

Famille Sous-famille Espèce Geometridae Desmobathrinae Dolerophyle nerisaria Walker, 1860 Geometridae Desmobathrinae Leptoctenopsis calexaria (Walker, 1860) Geometridae Desmobathrinae Leptoctenopsis subpurpurea (Warren, 1897) Geometridae Oenochromiinae Ophiogramma cuprinaria (Guenée, [1858]) Geometridae Desmobathrinae Pycnoneura rectilineata Warren, 1906 Geometridae Ennominae Aplogompha costimaculata (Warren, 1900) Geometridae Ennominae Ballantiophora gibbiferata (Guenée, [1858]) Geometridae Ennominae Ballantiophora sp. Geometridae Ennominae Berberodes cassiteris Warren, 1906 Geometridae Ennominae Berberodes rufimacula (Warren, 1906) Geometridae Ennominae Berberodes violacea (Warren, 1906) Geometridae Ennominae Euclysia dentifasciata Dognin, 1910 Geometridae Ennominae Glena unipennaria cosmeta Rindge, 1967 Geometridae Ennominae Gyostega floccosa Warren, 1904 Geometridae Ennominae Gyostega violacea (Warren, 1906) Geometridae Ennominae Herbita lilacina (Warren, 1897) Geometridae Ennominae Herbita nedusia Druce, 1892 Geometridae Ennominae Herbita sp. Geometridae Ennominae Herbita versilinea (Warren, 1904) Geometridae Ennominae Hymenomima cogigaria (Möschler, 1882) Geometridae Ennominae Hymenomima memor (Warren, 1906)

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Geometridae Ennominae Hymenomima semialba Warren, 1897 Geometridae Ennominae Hymenomima tharpoides russula Dognin, 1916 Geometridae Ennominae Iridopsis litharia ( Guenée, [1858]) Geometridae Ennominae Iridopsis sp. Geometridae Ennominae Ischnopteris bryifera bryifera (Felder & Rogenhofer, 1875) Geometridae Ennominae Ischnopteris chryses Druce, 1893 Geometridae Ennominae Leuciris mysteriotis Prout, 1911 Geometridae Ennominae Leuciris sp. Geometridae Ennominae Macaria achetata Guenée, 1858 Geometridae Ennominae Macaria delia (Schaus, 1912) Geometridae Ennominae Macaria festivata Guenée, [1858] Geometridae Ennominae Macaria nundinata Guenée, 1858 Geometridae Ennominae Macaria regulata (Fabricius, 1775) Geometridae Ennominae Macaria sp. Geometridae Ennominae Microgonia rufaria Warren, 1901 Geometridae Ennominae Mimomma ochriplaga Warren, 1907 Geometridae Ennominae Nematocampa completa Warren, 1904 Geometridae Ennominae Opisthoxia corinnaria (Guenée, [1858]) Geometridae Ennominae Oxydia hispata Guenée, 1859 Geometridae Ennominae Palyas locuples Oberthür, 1916 Geometridae Ennominae Paragonia cruraria (Herrich-Schäffer, 1854) Geometridae Ennominae Paragonia tasima (Cramer, [1779]) Geometridae Ennominae Patalene aenetusaria (Walker, 1860) Geometridae Ennominae Patalene humerata (Warren, 1905) Geometridae Ennominae Patalene luciata ( Stoll, [1790]) Geometridae Ennominae Patalene sp. Geometridae Ennominae Patalene trogonaria (Herrich-Schäffer, [1856]) Geometridae Ennominae Patalene virgultaria (Felder & Rogenhofer, 1875) Geometridae Ennominae Perigramma famulata pallida Dognin, 1923 Geometridae Ennominae Pero albivena (Warren, 1897) Geometridae Ennominae Pero constrictifascia (Warren, 1897) Geometridae Ennominae Pero contrasta Poole, 1987 Geometridae Ennominae Pero exquisita (Thierry-Mieg, 1894) Geometridae Ennominae Pero externa (Warren, 1896) Geometridae Ennominae Pero nigra (Warren, 1904) Geometridae Ennominae Pero odonaria (Oberthür, 1883) Geometridae Ennominae Pero polygonaria (Herrich-Schäffer, 1855) Geometridae Ennominae Pero protea Poole, 1987 Geometridae Ennominae Pero teleclyta Prout, 1928 Geometridae Ennominae Pero yahua (Poole, 1987) Geometridae Ennominae Phyllodonta sp. Geometridae Ennominae Polla varipes (Felder & Rogenhofer, 1875) Geometridae Ennominae Psamatodes nicetaria ( Guenée, 1858) Geometridae Ennominae Pyrinia augustata regina Herbulot, 1988 Geometridae Ennominae Pyrinia coearia Walker, 1860 Geometridae Ennominae Pyrinia sanitaria Schaus, 1901 ? Geometridae Ennominae Pyrinia transitata (Guenée, [1858]) Geometridae Ennominae Rhomboptila tipaldii (Thierry-Mieg, 1893) Geometridae Ennominae Semiothisa heterogenata (Guenée, 1858) Geometridae Ennominae Semiothisa perpendiculata (Guenée, 1858)

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Geometridae Ennominae Semiothisa sp. Geometridae Ennominae Sericoptera area (Cramer, 1775) Geometridae Ennominae Sericoptera mahometaria Herrich-Schäffer, 1853 Geometridae Ennominae Sericoptera penicillata (Warren, 1894) Geometridae Ennominae Sphacelodes sp. Geometridae Ennominae Thyrinteina arnobia arnobia (Stoll, 1782) Geometridae Ennominae Trotopera arrhapa (Druce, 1891) Geometridae Ennominae Trotopera maranharia (Felder & Rogenhofer, 1875) Geometridae Geometrinae Chloropteryx subrufescens (Warren, 1906) Geometridae Geometrinae Lophochorista ockendeni (Druce, 1911) Geometridae Geometrinae Neagathia corruptata (Felder & Rogenhofer, 1875) Geometridae Geometrinae Nemoria parvipuncta (Warren, 1900) Geometridae Geometrinae Nemoria punctilinea (Dognin, 1902) Geometridae Geometrinae Nemoria tutala (Dognin, 1898) Geometridae Geometrinae Nemoria venezuelae (Prout, 1932) Geometridae Geometrinae Oospila albicoma albicoma (Felder & Rogenhofer, 1875) Geometridae Geometrinae Oospila ciliaria (Hübner, 1823) Geometridae Geometrinae Oospila concinna Felder & Rogenhofer, 1875 Geometridae Geometrinae Oospila confundaria (Möschler, 1890) Geometridae Geometrinae Oospila continuata (Warren, 1906) Geometridae Geometrinae Oospila marginata Warren, 1897 Geometridae Geometrinae Oospila obeliscata (Warren, 1906) Geometridae Geometrinae Oospila rosipara (Warren, 1897) Geometridae Geometrinae Oospila rufilimes (Warren, 1905) Geometridae Geometrinae Oospila sellifera Warren, 1906 Geometridae Geometrinae Oospila semispurcata (Warren, 1906) Geometridae Geometrinae Oospila sporadata (Warren, 1906) Geometridae Geometrinae Oospila violacea Warren, 1897 Geometridae Geometrinae Phrudocentra sordulenta Dognin, 1923 Geometridae Geometrinae Phrudocentra vagilinea (Warren, 1906) Geometridae Geometrinae Pyrochlora majorcula (Dyar, 1925) Geometridae Geometrinae Pyrochlora rhanis (Cramer, 1777) Geometridae Geometrinae Rhodochlora brunneipalpis brunneipalpis Warren, 1894 Geometridae Geometrinae Synchlora gerularia Hübner, [1823] Geometridae Geometrinae Tachychlora amilletes Prout, 1932 Geometridae Geometrinae Tachyphyle allineata (Warren, 1900) Geometridae Geometrinae Tachyphyle basiplaga (Walker, 1861) Geometridae Larentiinae Pterocypha gibbosaria Herrich Schäffer, 1855 Geometridae Sterrhinae Aphanophleps vinosaria Warren, 1906 Geometridae Sterrhinae Hemipterodes rotundata Dognin, 1911 Geometridae Sterrhinae Hemipterodes sp. Geometridae Sterrhinae Idaea elegantaria (Herrich-Schäffer, 1854) Geometridae Sterrhinae Idaea expolitata (Guenée, 1858) Geometridae Sterrhinae Idaea speciosa Felder & Rogenhofer, 1875 Geometridae Sterrhinae Pseudasellodes fenestraria Guenée, [1858] Geometridae Sterrhinae Ptychamalia immunda (Dognin, 1908) Geometridae Sterrhinae Semaeopus bimacula Warren, 1897 Geometridae Sterrhinae Tricentrogyna radaria ( Schaus, 1901) Geometridae Sterrhinae Xystrota admirabilis (Oberthür, 1883)

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Hedylidae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 3 espèces

Famille Sous-famille Espèce Hedylidae Macrosoma hedylaria (Warren,1894) Hedylidae Macrosoma nigrimacula (Warren,1897) Hedylidae Macrosoma rubedinaria (Walker,1862)

Lasiocampidae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 23 espèces

Famille Sous-famille Espèce Lasiocampidae Macromphaliinae Artace cribaria (Ljungh, 1825) Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis ampira Druce, 1890 Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis charax (Druce, 1897) Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis claudia (Stoll, 1782) Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis fibra cayennensis Draudt, 1927 Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis gibea (Druce, 1899) Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis intuta (Dognin, 1916) Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis moeschleri Heppner, 1996 Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis mollis (Sepp, [1848]) Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis necopinella (Dognin, 1916) Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis praedicabilis Draudt, 1927 Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis roxana (Schaus, 1905) Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis tornipuncta (Schaus, 1905) Lasiocampidae Macromphaliinae Euglyphis viridiflava (Schaus, 1905) Lasiocampidae Macromphaliinae Titya angustipennis (Schaus, 1905) Lasiocampidae Macromphaliinae Titya cinerascens nigra (Schaus, 1905) Lasiocampidae Macromphaliinae Titya mexicana plurilinea (Walker, 1862) Lasiocampidae Macromphaliinae Titya pr. noctilux Walker, 1856 Lasiocampidae Macromphaliinae Titya sp. Lasiocampidae Macromphaliinae Tolype caieta Druce, 1897 Lasiocampidae Macromphaliinae Tolype multilinea (Schaus, 1905) Lasiocampidae Macromphaliinae Tolype poggia (Schaus, 1905) Lasiocampidae Macromphaliinae Tolype primitiva taruda (Schaus, 1905)

Limacodidae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 8 espèces

Famille Sous-famille Espèce Limacodidae Acharia sp. Limacodidae Dichromapteryx dimidiata Dyar, 1906 Limacodidae Euphobetron cupreitincta Dyar, 1906 Limacodidae Natada debella Dyar, 1905 Limacodidae Natada simois (Stoll, 1790) Limacodidae Phobetron hipparchia (Cramer, 1777) Limacodidae Semyra irena Dyar, 1906 Limacodidae Tanadema mas Dyar, 1906

Lycaenidae – Identificateur Christophe FAYNEL 2 espèces

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Famille Sous-famille Espèce Lycaenidae Theclinae Arawacus aetolus (Sulzer, 1776) Lycaenidae Theclinae Evenus sponsa (Möschler, 1877)

Lymantridae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 8 espèces

Famille Sous-famille Espèce Lymantridae Caviria sp. Lymantridae Desmoloma erratica Schaus, 1906 Lymantridae Desmoloma mollis Dyar, 1910 Lymantridae Desmoloma signata Dyar, 1910 Lymantridae Sarsina dirphioides (Walker, 1865) Lymantridae Thagona bilinea Dognin, 1911 Lymantridae Thagona crassilinea (Dognin, 1923) Lymantridae Thagona mentor (Dyar, 1910)

Megalopygidae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 6 espèces

Famille Sous-famille Espèce Megalopygidae Megalopyginae Megalopyge opercularis briseis (J.E. Smith, 1797) Megalopygidae Megalopyginae Megalopyge tharops (Stoll, 1781) Megalopygidae Trosiinae Norape ovina (Sepp, [1855]) Megalopygidae Trosiinae Thoscora acca acca acca (Schaus, 1892) Megalopygidae Trosiinae Thoscora pellucida (Möschler, 1877) Megalopygidae Trosiinae Trosia tricolora (Fabricius, 1787)

Mimallonidae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 18 espèces

Famille Sous-famille Espèce Mimallonidae Lacosominae Adalgisa croesa Schaus, 1928 Mimallonidae Lacosominae Arianula sp. nov. (Descr. en cours) Mimallonidae Lacosominae Druentica inscita (Schaus, 1890) Mimallonidae Lacosominae Druentica partha (Schaus, 1905) Mimallonidae Lacosominae Lacosoma briasia Schaus, 1928 Mimallonidae Lacosominae Lacosoma otalla Schaus, 1905 Mimallonidae Lacosominae Menevia lantona (Schaus, 1905) Mimallonidae Lacosominae Menevia lucara (Schaus, 1905) Mimallonidae Lacosominae Roelmana maloba (Schaus, 1905) Mimallonidae Lacosominae Trogoptera semililacea (Dognin, 1916) Mimallonidae Lacosominae Trogoptera sp. Mimallonidae Mimalloninae Cicinnus fogia Schaus, 1905 Mimallonidae Mimalloninae Cicinnus marona Schaus, 1905 Mimallonidae Mimalloninae Cicinnus moengus Schaus, 1928 Mimallonidae Mimalloninae Mimallo brosica Schaus, 1928 Mimallonidae Mimalloninae Psychocampa sp. nov. (Descr. en cours) Mimallonidae Mimalloninae Psychocampa vitreata (Schaus, 1905) Mimallonidae Mimalloninae Roelofa narga (Schaus, 1905)

Noctuidae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 159 espèces

Famille Sous-famille Espèce

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Noctuidae Agaristinae Darceta severa (Cramer,1782) Noctuidae Agaristinae Erocha irrorata Jones, 1915 Noctuidae Agaristinae Neotuerta lycaon (Druce,1897) Noctuidae Agaristinae Vespola caerulifera Walker, 1867 Noctuidae Amphipyrinae Argyrosticta ditissima (Walker, [1858]) Noctuidae Amphipyrinae Bryolymnia marginata Schaus, 1911 Noctuidae Amphipyrinae Condica cupentia (Cramer,1780) Noctuidae Amphipyrinae Dypterygia assuetus (Butler, 1879) Noctuidae Amphipyrinae Dypterygia lignaris (Schaus, 1898) Noctuidae Amphipyrinae Dypterygia ordinarius (Butler, 1879) Noctuidae Amphipyrinae Elaphria callopistrica (Hampson, 1909) Noctuidae Amphipyrinae Elaphria obscura (Schaus, 1906) Noctuidae Amphipyrinae Elaphria rubripicta (Hampson, 1909) Noctuidae Amphipyrinae Gonodes liquida (Möschler, 1886) Noctuidae Amphipyrinae Gonodes obliqua Druce, 1909 Noctuidae Amphipyrinae Hampsonodes mastoides (Hampson, 1910) Noctuidae Amphipyrinae Hampsonodes orbica (Hampson, 1910) Noctuidae Amphipyrinae Hampsonodes pygmaea (Hampson, 1914) Noctuidae Amphipyrinae Heterochroma hypatia (Druce, 1889) Noctuidae Amphipyrinae Oxythres splendens Druce, 1900 Noctuidae Amphipyrinae Spodoptera marima (Schaus, 1904) Noctuidae Calpinae Gonodonta syrna Guenée,1852 Noctuidae Chloephorinae Brabantia rhizoleuca (Brabant, 1912) Noctuidae Chloephorinae Closteromorpha reniplaga Felder, 1874 Noctuidae Chloephorinae Drobeta exscendes Walker, 1858 Noctuidae Chloephorinae Drobeta pulchra (Schaus, 1904) Noctuidae Chloephorinae Drobeta sp. pr. perplexa (Schaus, 1904) Noctuidae Chloephorinae Iscadia chlorographa (Dognin, 1910) Noctuidae Chloephorinae Iscadia furcifera (Walker,1865) Noctuidae Chloephorinae Motya griselda (Dyar, 1914) Noctuidae Chloephorinae Orotermes japyx (Schaus, 1914) Noctuidae Chloephorinae Orotermes monstrosa Dognin, 1919 Noctuidae Erebinae Antiblemma acclinalis Hübner, 1823 Noctuidae Erebinae Antiblemma binota Felder & Rogenhofer, 1874 Noctuidae Erebinae Antiblemma eschata Hampson, 1924 Noctuidae Erebinae Antiblemma lothos (Cramer, 1777) Noctuidae Erebinae Antiblemma patifasciens (Walker, 1858) Noctuidae Erebinae Antiblemma sp.n° 303 Noctuidae Erebinae Antiblemma sterope (Stoll, 1780) Noctuidae Erebinae Antiblemma steropioides (Möschler, 1880) Noctuidae Erebinae Anticarsia anisospila (Walker, 1869) Noctuidae Erebinae Argidia sp. n°106 Noctuidae Erebinae Argidia sp. n°330

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Noctuidae Erebinae Argidia sp. n°336 Noctuidae Erebinae Argidia suprema Schaus, 1912 Noctuidae Erebinae Argidia tarchon (Cramer, 1777) Noctuidae Erebinae Azeta mimica Felder & Rogenhofer, 1874 Noctuidae Erebinae Baniana pastoria Schaus, 1911 Noctuidae Erebinae Baniana ypita Schaus, 1901 Noctuidae Erebinae Ceromacra putida Dognin, 1912 Noctuidae Erebinae Ceromacra tymber (Cramer, 1777) Noctuidae Erebinae Chamyna homichlodes Hübner, [1821] Noctuidae Erebinae Coenipeta catoxantha (Hampson, 1926) Noctuidae Erebinae Coenipeta hemiplaga (Felder & Rogenhofer, 1874) Noctuidae Erebinae Coeriana crinipes (Cramer, 1776) Noctuidae Erebinae Cryptochrostis duquefi Barbut, 2007 Noctuidae Erebinae Cryptochrostis flavala Hampson, 1926 Noctuidae Erebinae Cryptochrostis suppulchraria Hübner, [1823] Noctuidae Erebinae Dectocraspedon sp. Noctuidae Erebinae Deinopa holophaea Hampson, 1926 Noctuidae Erebinae Eudyops polyleuca (Hampson, 1926) Noctuidae Erebinae Dyomyx cimolia Guenée, 1852 Noctuidae Erebinae Dyomyx inferior (Herrich-Schäffer, 1869) Noctuidae Erebinae Encruphion xanthotricha Hampson, 1926 Noctuidae Erebinae Ephyrodes eviola Hampson, 1926 Noctuidae Erebinae Epidromia pannosa Guenée, 1852 Noctuidae Erebinae Epidromia poaphiloides (Guenée,1852) Noctuidae Erebinae Epitausa delina (Herrich-Schäffer,[1858]) Noctuidae Erebinae Epitausa rubripuncta (Guenée, 1852) Noctuidae Erebinae Epitausa terranea (Schaus, 1911) Noctuidae Erebinae Euclystis cayuga Schaus, 1921 Noctuidae Erebinae Euclystis consurgens (Walker, 1858) Noctuidae Erebinae Euclystis insana (Guenée,1852) Noctuidae Erebinae Euclystis lala (Druce, 1890) Noctuidae Erebinae Euclystis laloides (Schaus, 1911) Noctuidae Erebinae Euclystis mnyra Schaus, 1921 Noctuidae Erebinae Euclystis nescia (Schaus, 1911) Noctuidae Erebinae Euclystis proba (Schaus, 1911) Noctuidae Erebinae Euclystis recurva (Walker, 1858) Noctuidae Erebinae Euclystis sublignaris (Schaus, 1911) Noctuidae Erebinae Eulepidotis alabastraria Hübner, 1823 Noctuidae Erebinae Eulepidotis albata (Felder & Rogenhofer, 1874) Noctuidae Erebinae Eulepidotis bourgaulti (Bar, 1875) Noctuidae Erebinae Eulepidotis caeruleilinea (Walker, 1858) Noctuidae Erebinae Eulepidotis corrina (Cramer, 1775) Noctuidae Erebinae Eulepidotis guttata (Felder & Rogenhofer, 1874)

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Noctuidae Erebinae Eulepidotis hemithea ( Druce, 1889) Noctuidae Erebinae Eulepidotis holoclera Dyar, 1914 Noctuidae Erebinae Eulepidotis juliata (Stoll, 1790) Noctuidae Erebinae Eulepidotis juncida (Guenée, 1852) Noctuidae Erebinae Eulepidotis ornata (Bar, 1876) Noctuidae Erebinae Eulepidotis osseata (Bar, 1875) Noctuidae Erebinae Eulepidotis pr. rectimargo (Guenée, 1852) Noctuidae Erebinae Eulepidotis sabina (Bar, 1875) Noctuidae Erebinae Eulepidotis serpentifera (Brabant, 1909) Noctuidae Erebinae Eulepidotis viridissima (Bar, 1876) Noctuidae Erebinae Goniohelia gallinago Felder & Rogenhofer, 1874 Noctuidae Erebinae Gonuris flaminia Möschler, 1880 Noctuidae Erebinae Helia exsiccata (Walker, 1858) Noctuidae Erebinae Helia hermelina (Guenée, 1852) Noctuidae Erebinae Helia sp. Noctuidae Erebinae Hemeroblemma hampsoni Feige, 1976 Noctuidae Erebinae Hemeroblemma helima (Stoll, 1782) Noctuidae Erebinae Hemeroblemma leontia (Stoll, 1790) Noctuidae Erebinae Hemeroblemma opigena pandrosa (Cramer, 1776) Noctuidae Erebinae Hemeroblemma schausiana Dognin, 1912 Noctuidae Erebinae Hemicephalisgrandirena Schaus, 1915 Noctuidae Erebinae Herpoperasa apicata (Dognin, 1912) Noctuidae Erebinae Hypogrammodes balma (Guenée, 1852) Noctuidae Erebinae Isogona fuscata (Schaus, 1914) Noctuidae Erebinae Lephana tetraphorella Walker, 1866 Noctuidae Erebinae Lesmone nigrilunata (Schaus, 1914) Noctuidae Erebinae Letis herilia (Stoll,1780) Noctuidae Erebinae Letis melba Felder & Rogenhofer, 1874 Noctuidae Erebinae Letis mycerina (Cramer,1777) Noctuidae Erebinae Letis nymphaloides (Walker,1858) Noctuidae Erebinae Letis occidua (Linnaeus,1758) Noctuidae Erebinae Letis scops Guenée,1852 Noctuidae Erebinae Melipotis fasciolaris (Hübner,[1831]) Noctuidae Erebinae Melipotis januaris (Guenée,1852) Noctuidae Erebinae Metalectra carneomacula (Guenée,1852) Noctuidae Erebinae Metalectra schizospila (Walker, 1865) Noctuidae Erebinae Metria celia (Stoll,1782) Noctuidae Erebinae Metria compotrix (Hübner, 1818) Noctuidae Erebinae Metria simplicior (Walker, [1858]) Noctuidae Erebinae Metria thermochroa (Hampson,1913) Noctuidae Erebinae Obroatis cratinus Schaus, 1912 Noctuidae Erebinae Obroatis roseipalpis Schaus, 1912 Noctuidae Erebinae Obroatis signata (Butler, 1879)

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Noctuidae Erebinae Ophisma despagnesi Guenée,1852 Noctuidae Erebinae Ophisma minna Guenée, 1852 Noctuidae Erebinae Ophisma tecta Schaus, 1894 Noctuidae Erebinae Ophisma toulgoeti Barbut & Lalanne-Cassou, 2010 Noctuidae Erebinae Oxidercia toxea (Stoll,1782) Noctuidae Erebinae Parachaea macaria (Cramer, 1777) Noctuidae Erebinae Pararcte schneideriana (Stoll,1782) Noctuidae Erebinae Peteroma discisigna (Walker, [1858]) Noctuidae Erebinae Phycoma marcellina (Stoll, 1780) Noctuidae Erebinae Ramphia albizona (Latreille,1817) Noctuidae Erebinae Selenisa lanipes (Guenée,1852) Noctuidae Erebinae Selenisa suero (Cramer, 1777) Noctuidae Erebinae Sosxetra grata Walker,1862 Noctuidae Erebinae Syllectra congemmalis Hübner, 1823 Noctuidae Erebinae Syllectra erycata (Cramer, 1780) Noctuidae Erebinae Thermesia coenosa (Möschler, 1880) Noctuidae Erebinae Triommatodes plumosa Warren, 1889 Noctuidae Erebinae Triommatodes sp. n° 1123 Noctuidae Erebinae Triommatodes sp. n° 1206 Noctuidae Erebinae Tyrissa perstrigata Schaus, 1911 Noctuidae Erebinae Zale viridans (Guenée,1852) Noctuidae Hadeninae Chytonix pyrrha Schaus, 1914 Noctuidae Hadeninae Leucania senescens Möschler, 1890 Noctuidae Heliothinae Heliothis virescens (Fabricius, 1777) Noctuidae Herminiinae Lascoria albibasalis (Walker, [1866]) Noctuidae Herminiinae Rejectaria atrax (Dognin, 1891) Noctuidae Herminiinae Rejectaria niciasalis (Walker, [1859]) Noctuidae Herminiinae Scytognatha anemolia (Druce, 1891) Noctuidae Hypeninae Rowdenia syllificalis (Schaus, 1904) Noctuidae Plusiinae Argyrogramma verruca (Fabricius, 1794)

Notodontidae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 128 espèces

Famille Sous-famille Espèce Notodontidae Dioptinae Getta niveifascia Walker, 1854 Notodontidae Disphraginae Disphragis aroensis Schaus,1901 Notodontidae Disphraginae Disphragis echina Schaus, 1905 Notodontidae Disphraginae Disphragis marginalis Schaus, 1905 Notodontidae Disphraginae Disphragis sabaria Schaus,1928 Notodontidae Disphraginae Farigia amazonica Thiaucourt, 1988 Notodontidae Disphraginae Farigia benepicta Schaus, 1923 Notodontidae Disphraginae Farigia magniplaga Schaus,1905 Notodontidae Disphraginae Goodgeria apella (Schaus,1901)

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Notodontidae Disphraginae Goodgeria cinga (Schaus,1924) Notodontidae Disphraginae Goodgeria notabilis (Schaus,1905) Notodontidae Disphraginae Hemipecteros lunula (Dognin,1908) Notodontidae Disphraginae Sericochroa albidula (Dognin, 1911) Notodontidae Disphraginae Sericochroa annieae Thiaucourt, 1997 Notodontidae Disphraginae Sericochroa arimata reticulata Thiaucourt, 1997 Notodontidae Disphraginae Sericochroa emetaria (Schaus,1905) Notodontidae Disphraginae Sericochroa felderi Thiaucourt, 1997 Notodontidae Disphraginae Sericochroa guianensis (Schaus,1904) Notodontidae Disphraginae Sericochroa hymen Dyar, 1908 Notodontidae Disphraginae Sericochroa infanta (Dyar,1908) Notodontidae Disphraginae Sericochroa navatteae Thiaucourt, 1997 Notodontidae Disphraginae Toulgoëtigia pallida (Schaus, 1894) Notodontidae Disphraginae Trichomaplata andromede Thiaucourt, 1995 Notodontidae Disphraginae Trichomaplata cassiope (Schaus, 1892) Notodontidae Dudusinae Crinodes besckei [Hübner,1824] Notodontidae Hapigiinae Hapigia plateada Schaus, 1904 Notodontidae Hapigiinae Hapigia repandens Schaus,1905 Notodontidae Hapigiinae Hapigia rufescens Schaus,1901 Notodontidae Hemiceratinae Apela cataphaea Forbes, 1939 Notodontidae Hemiceratinae Apela divisa Walker,1855 Notodontidae Hemiceratinae Apela divisula Forbes, 1939 Notodontidae Hemiceratinae Apela leechi (Druce, 1904) Notodontidae Hemiceratinae Apela lilacina Dognin,1923 Notodontidae Hemiceratinae Apela senecauxi Thiaucourt, 1995 Notodontidae Hemiceratinae Canodia dardania (Druce,1895) Notodontidae Hemiceratinae Canodia difformis Herrich-Schäffer,1854 Notodontidae Hemiceratinae Euhemiceras striata (Druce, 1909) Notodontidae Hemiceratinae Euhemiceras striolata (Butler, 1879) Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras cadmioides Dognin, 1923 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras colorata Dognin, 1923 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras conspirata Schaus,1905 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras gortynoides Schaus, 1905 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras lissa (Druce, 1890) Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras lissana Thiaucourt,1994 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras losa Druce,1890 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras meona [Stoll, 1781] Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras metallescens Schaus,1905 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras oleagina Dognin,1908 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras plana Butler, 1879 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras poulsoni Schaus, 1905 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras satelles Schaus,1905 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras sp.2

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Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras trinubila Guenée,1852 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras undilinea Schaus, 1905 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras unimacula Dyar, 1908 Notodontidae Hemiceratinae Hemiceras vinicosta Guenée,1852 Notodontidae Non assignée Anita definita Dognin,1922 Notodontidae Non assignée Anita galibensis Schaus, 1905 Notodontidae Non assignée Arpema phaleroides Rothschild,1917 Notodontidae Non assignée Azaxia luteilinea Druce, 1904 Notodontidae Non assignée Boriza argentipunctata Dognin,1911 Notodontidae Non assignée Chliaroides kurunensis (Dognin,1908) Notodontidae Non assignée Dicentria limosoides Schaus, 1911 Notodontidae Non assignée Dicentria praealta Dognin, 1923 Notodontidae Non assignée Drugera innoxia (Schaus, 1911) Notodontidae Non assignée Dyasia viviana Schaus,1905 Notodontidae Non assignée Gopha niveigutta Schaus, 1905 Notodontidae Non assignée Kalkoma cynedrida Schaus, 1923 Notodontidae Non assignée Kurtia gallica Thiaucourt,1991 Notodontidae Non assignée Lirimiris lignitecta Walker,1865 Notodontidae Non assignée Magava multilinea Walker, 1865 Notodontidae Non assignée Malocampa amphissa (Druce,1890) Notodontidae Non assignée Malocampa bolivari Schaus,1894 Notodontidae Non assignée Malocampa piratica Schaus,1905 Notodontidae Non assignée Malocampa punctata [Stoll, 1780] Notodontidae Non assignée Malocampa sida (Schaus, 1892) Notodontidae Non assignée Maschane caesia Felder, 1874 Notodontidae Non assignée Maschane ochreata Schaus, 1905 Notodontidae Non assignée Phedosia turbida Möschler, 1878 Notodontidae Non assignée Rosema demorsa R.Felder,1874 Notodontidae Non assignée Rosema deolis (Cramer, 1775) Notodontidae Non assignée Rosema epigena [Stoll, 1782] Notodontidae Non assignée Rosema marona Schaus,1905 Notodontidae Non assignée Rosema myops R.Felder,1874 Notodontidae Non assignée Rosema orvoeni Thiaucourt, 1978 Notodontidae Non assignée Trumanda stigmatica Rothschild, 1917 Notodontidae Nystaleinae Ankale maltha (Schaus, 1905) Notodontidae Nystaleinae Bardaxima lucilinea Walker,1858 Notodontidae Nystaleinae Bardaxima marcida (Felder,1874) Notodontidae Nystaleinae Bardaxima metcalfi (Schaus, 1928) Notodontidae Nystaleinae Calledema marmorea Butler,1878 Notodontidae Nystaleinae Elasmia pronax (Dognin, 1908) Notodontidae Nystaleinae Hippia mumetes [Cramer, 1779] Notodontidae Nystaleinae Lyricinus xylophasoides (Butler, 1878) Notodontidae Nystaleinae Marthula grisescens Schaus,1905

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Notodontidae Nystaleinae Marthula minna Schaus, 1905 Notodontidae Nystaleinae Marthula ochreata (Schaus, 1905) Notodontidae Nystaleinae Marthula salandera (Schaus, 1905) Notodontidae Nystaleinae Marthula sp. Notodontidae Nystaleinae Notoplusia clara [Stoll,1780] Notodontidae Nystaleinae Nystalea aequipars (Walker, 1858) Notodontidae Nystaleinae Nystalea albipicta Schaus, 1923 Notodontidae Nystaleinae Nystalea lineiplena Walker, 1857 Notodontidae Nystaleinae Nystalea superciliosa Guenée,1852 Notodontidae Nystaleinae Nystalea zeuzeroides Rothschild, 1917 Notodontidae Nystaleinae Pentobesa ankistron Weller, 1991 Notodontidae Nystaleinae Pentobesa aroata (Schaus, 1901) Notodontidae Nystaleinae Pentobesa densissima Dyar, 1915 Notodontidae Nystaleinae Pentobesa sinistra Weller, 1991 Notodontidae Nystaleinae Strophocerus cossoides Schaus,1904 Notodontidae Nystaleinae Strophocerus flocciferus Möschler, 1883 Notodontidae Nystaleinae Strophocerus rectilinea Dognin,1908 Notodontidae Nystaleinae Strophocerus thermesia (Felder, 1874) Notodontidae Rifarginae Draudtargia merita (Schaus,1905) Notodontidae Rifarginae Draudtargia picta (Schaus,1904) Notodontidae Rifarginae Rifargia presbytica Dyar, 1911 Notodontidae Rifarginae Rifargira demissa (Schaus,1905) Notodontidae Rifarginae Rifargira distinguenda (Walker,1856) Notodontidae Rifarginae Rifargira exarmata (Dognin, 1910) Notodontidae Rifarginae Rifargira incisura (Dognin, 1909) Notodontidae Rifarginae Rifargira lemoulti (Schaus,1905) Notodontidae Rifarginae Rifargira lineata (Druce,1887) Notodontidae Rifarginae Rifargira mistura (Schaus,1905) Notodontidae Rifarginae Rifargira myconos (Schaus,1892) Notodontidae Rifarginae Rifargira onerosa (Schaus,1905) Notodontidae Rifarginae Rifargira senecauxi Thiaucourt, 1995 Notodontidae Rifarginae Rifargira spontiva Dognin, 1909 Notodontidae Rifarginae Rifargira stellata (Schaus, 1920)

Nymphalidae & Pieridae – Identificateurs Mohamed BENMESBAH & Serge FERNANDEZ 25 espèces Famille Sous-famille Espèce Nymphalidae Brassolinae Dynastor darius anaxarete (Cramer, 1776) Nymphalidae Charaxinae Agrias sahlkei Honrath, 1885 [Identification Serge FERNANDEZ] Nymphalidae Charaxinae Memphis vicinia (Staudinger, 1887) Nymphalidae Heliconiinae Heliconius demeter bouqueti E. Nöldner, 1901 Nymphalidae Heliconiinae Heliconius numata (Cramer, 1780) Nymphalidae Heliconiinae Heliconius wallacei flavescens Weymer, 1890 Nymphalidae Ithomiinae Napeogenes rhezia (Hewitson, 1867) Nymphalidae Limenitidinae Adelpha plesaure Hübner, 1823 Nymphalidae Limenitidinae Colobura dirce (Linné, 1758) [Identification Serge FERNANDEZ]

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Nymphalidae Limenitidinae Tigridia acesta (Linné, 1758) [Identification Serge FERNANDEZ] Nymphalidae Morphinae Morpho hecuba hecuba (Linné, 1771) [Identification Serge FERNANDEZ] Nymphalidae Morphinae Morpho helenor helenor (Cramer, 1776) [Identification Serge FERNANDEZ] Nymphalidae Morphinae Morpho menelaus menelaus (Linné, 1758) [Identification Serge FERNANDEZ] Nymphalidae Satyrinae Caeruleuptychia brixius (Godart, 1824) Nymphalidae Satyrinae Cissia harpyia (Felder & Felder, 1867) [Identification Serge FERNANDEZ] Nymphalidae Satyrinae Erichthodes antonina (Felder & Felder, 1867) Nymphalidae Satyrinae Euptychia marceli Brévignon, 2005 Nymphalidae Satyrinae Euptychia rufotincta (Weymer, 1911) Nymphalidae Satyrinae Magneuptychia harpyia (Felder & Felder, 1867) Nymphalidae Satyrinae Megeuptychia monopunctata Willmott & Hall, 1995 Nymphalidae Satyrinae Pierella astyoche (Erichson, 1848) Nymphalidae Satyrinae Taygetis cleopatra (Cramer, 1779) Nymphalidae Satyrinae Taygetis echo (Cramer, 1779) Pieridae Dismorphinae Moschoneura pinthous pinthous (Linné, 1758) Pieridae Coliadinae Phoebis rurina Felder, 1861

Riodinidae – Identificateur Serge FERNANDEZ 42 espèces

Famille Tribu Espèce

Riodinidae Emesini Argyrogrammana trochilia (Westwood, 1851) Riodinidae Emesini Calydna cabira belemia Brévignon & Gallard, 1998 Riodinidae Emesini Calydna calamisa Hewitson, 1854 Riodinidae Emesini Emesis lucinda lucinda Cramer 1775 Riodinidae Eurybiini Alesa amesis (Cramer, 1777) Riodinidae Eurybiini Alesa telephae (Boisduval, 1836) Riodinidae Eurybiini Cremna actoris actoris (Cramer, 1776) Riodinidae Eurybiini Eunogyra curupira Bates, 1868 Riodinidae Eurybiini Hyphilaria parthenis virgatula Stichel, 1909 Riodinidae Eurybiini Napaea eucharila eucharila (Bates, 1867) Riodinidae Euselasiini Euselasia eunaeus (Hewitson, 1856) Riodinidae Euselasiini Euselasia issoria (Hewitson, 1869) Riodinidae Euselasiini Euselasia labdacus labdacus (Stoll, 1780) Riodinidae Euselasiini Euselasia lisias (Cramer, 1777) Riodinidae Euselasiini Euselasia melaphaea melaphaea (Hübner, 1823) Riodinidae Euselasiini Euselasia orfita orfita (Cramer, 1777) Riodinidae Euselasiini Euselasia psammathe psammathe Seitz, 1917 Riodinidae Helicopini Sarota gyas Westwood , [1851] Riodinidae Mesosemiini Mesosemia cyanira ackeryi Brévignon, 1997 Riodinidae Mesosemiini Mesosemia evias Stichel, 1923 Riodinidae Mesosemiini Mesosemia gneris Westwood, 1851 Riodinidae Mesosemiini Semomesia capanea capanea Cramer, 1779 Riodinidae Mesosemiini Semomesia croesus croesus Fabricius, 1776 Riodinidae Nymphidiini Adelotypa aristus aristus Stoll, 1790 Riodinidae Nymphidiini Adelotypa penthea penthea (Cramer, 1777) Riodinidae Nymphidiini Calospila rhesa (Hewitson, 1858) Riodinidae Nymphidiini Calospila thara nomia (Godman, 1903) Riodinidae Nymphidiini Nymphidium acherois acherois Boisduval 1836

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Riodinidae Nymphidiini Nymphidium azanoides amazonensis Callaghan, 1986 Riodinidae Nymphidiini Nymphidium cachrus cachrus (Fabricius, 1787) Riodinidae Nymphidiini Theope brevignoni (Gallard, 1996) Riodinidae Nymphidiini Theope eudocia eudocia Westwood, [1851] Riodinidae Nymphidiini Theope nycteis (Westwood, 1851) Riodinidae Nymphidiini Theope philotes (Westwood, 1851) Riodinidae Riodinini Charis auius auius (Cramer, 1776) Riodinidae Riodinini Charis cleonus Stoll, 1782 Riodinidae Riodinini Metacharis lucius Fabricius, 1793 Riodinidae Riodinini Panara phereclus barsacus (Westwood, 1851) Riodinidae Riodinini Pheles heliconides heliconides Herrich-Schäffer 1853 Riodinidae Riodinini Symartia nyx Riodinidae Stalachtini Stalachtis euterpe euterpe Linnaeus, 1758 Riodinidae Stalachtini Stalachtis terpsichore Seitz, 1917

Saturniidae – Identificateur Frédéric BENELUZ 28 espèces Famille Sous-famille Espèce Saturniidae Arsenurinae Arsenura armida armida (Cramer, 1779) Saturniidae Arsenurinae Titaea lemoulti (Schaus, 1905) Saturniidae Arsenurinae Titaea tamerlan amazonensis Lemaire,1980 Saturniidae Ceratocampinae Adeloneivaia boisduvalii (Doumet, 1859) Saturniidae Ceratocampinae Adeloneivaia jason jason (Boisduval, 1872) Saturniidae Ceratocampinae Adeloneivaia pelias (Rothschild, 1907) Saturniidae Ceratocampinae Adeloneivaia subangulata subangulata (Herrich-Schäffer, (1855)) Saturniidae Ceratocampinae Adelowalkeria plateada (Schaus, 1905) Saturniidae Ceratocampinae Cicia pelota (Schaus, 1905) Saturniidae Ceratocampinae Citheronia hamifera hamifera W.Rothschild,1907 Saturniidae Ceratocampinae Citioica anthonilis (Herrich-Schäffer, 1854) Saturniidae Ceratocampinae Eacles imperialis cacicus (Boisduval, 1868) Saturniidae Ceratocampinae Eacles penelope (Cramer, 1775) Saturniidae Ceratocampinae Othorene hodeva (Druce, 1904) Saturniidae Ceratocampinae Othorene purpurascens (Schaus, 1905) Saturniidae Ceratocampinae Schausiella subochreata (Schaus, 1904) Saturniidae Ceratocampinae Syssphinx molina (Cramer, 1780) Saturniidae Hemileucinae Automerina auletes (Herrich-Schäffer, 1854) Saturniidae Hemileucinae Automeris arminia (Stoll,1781) [identification Philippe COLLET] Saturniidae Hemileucinae Automeris egeus (Cramer, 1775) Saturniidae Hemileucinae Automeris hamata Schaus, 1906 Saturniidae Hemileucinae Automeris midea (Maassen & Weyding, 1885) Saturniidae Hemileucinae Dirphia fraterna seraphini , Bouvier, 1929 Saturniidae Hemileucinae Hylesia canitia (Cramer, 1780) Saturniidae Hemileucinae Hylesia metabus (Cramer, 1775) Saturniidae Hemileucinae Hylesia rosacea thaumex Draudt, 1929 [identification Philippe COLLET] Saturniidae Oxyteninae Therinia buckleyi buckleyi (Druce, 1890) Saturniidae Saturniinae Rothschildia erycina erycina (Shaw, 1796)

Sphingidae – Identificateur Frédéric BENELUZ 47 espèces Famille Sous-famille Espèce Sphingidae Macroglossinae Callionima inuus (Rothschild & Jordan, 1903) Sphingidae Macroglossinae Callionima nomius (Walker, 1856)

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Sphingidae Macroglossinae Callionima pan pan (Cramer, 1779) Sphingidae Macroglossinae Callionima parce (Fabricius, 1775) Sphingidae Macroglossinae Enyo lugubris lugubris (Linnaeus, 1771) Sphingidae Macroglossinae Enyo ocypete (Linnaeus, 1758) Sphingidae Macroglossinae Erinnyis alope alope (Drury, 1770) Sphingidae Macroglossinae Erinnyis ello ello (Linnaeus, 1758) Sphingidae Macroglossinae Eumorpha anchemolus (Cramer, 1779) Sphingidae Macroglossinae Eumorpha capronnieri (Boisduval, 1875) Sphingidae Macroglossinae Hemeroplanes ornatus Rothschild,1894 Sphingidae Macroglossinae Isognathus occidentalis Clark, 1929 Sphingidae Macroglossinae Isognathus scyron (Cramer, 1780) Sphingidae Macroglossinae Isognathus swainsonii (Felder & Felder,1862) Sphingidae Macroglossinae Madoryx oiclus oiclus (Cramer, 1779) Sphingidae Macroglossinae Madoryx plutonius plutonius (Hübner, 1819) Sphingidae Macroglossinae Oryba achemenides (Cramer, 1779) Sphingidae Macroglossinae Pachylia darceta Druce, 1881 Sphingidae Macroglossinae Pachylia ficus (Linnaeus, 1758) Sphingidae Macroglossinae Pachylia syces syces (Hübner, 1819) Sphingidae Macroglossinae Pachylioides resumens (Walker, 1856) Sphingidae Macroglossinae Perigonia ilus Boisduval, 1870 Sphingidae Macroglossinae Pseudosphinx tetrio (Linnaeus, 1771) Sphingidae Macroglossinae Xylophanes amadis (Stoll, 1782) Sphingidae Macroglossinae Xylophanes anubus (Cramer, 1877) Sphingidae Macroglossinae Xylophanes chiron nechus (Cramer, 1777) Sphingidae Macroglossinae Xylophanes crenulata Vaglia & Haxaire, 2010 Sphingidae Macroglossinae Xylophanes fusimacula (Felder,1874) Sphingidae Macroglossinae Xylophanes guianensis (Rothschild, 1894) Sphingidae Macroglossinae Xylophanes tersa tersa (Linnaeus, 1771) Sphingidae Macroglossinae Xylophanes thyelia thyelia (Linnaeus, 1758) Sphingidae Macroglossinae Xylophanes titana Druce, 1878 Sphingidae Smerinthinae Adhemarius daphne daphne (Boisduval, 1875) Sphingidae Smerinthinae Adhemarius gagarini (Zikan, 1935) Sphingidae Smerinthinae Adhemarius gannascus (Stoll, 1790) Sphingidae Smerinthinae Adhemarius palmeri (Boisduval, 1875) Sphingidae Smerinthinae Adhemarius roessleri Eitschberger, 2002 Sphingidae Smerinthinae Protambulyx eurycles (Herrich-Schäffer, 1854) Sphingidae Smerinthinae Protambulyx goeldii Rothschild & Jordan, 1903 Sphingidae Sphinginae Agrius cingulatus (Fabricius, 1775) Sphingidae Sphinginae Amphimoea walkeri (Boisduval, [1875]) Sphingidae Sphinginae Cocytius duponchel (Poey, 1832) Sphingidae Sphinginae Cocytius lucifer (Rothschild & Jordan, 1903) Sphingidae Sphinginae Neococytius cluentius (Cramer, 1775) Sphingidae Sphinginae Manduca albiplaga (Walker, 1856) Sphingidae Sphinginae Manduca diffissa tropicalis (Rothschild & Jordan,1903) Sphingidae Sphinginae Manduca lucetius (Cramer, 1780)

Thyrididae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 9 espèces

Famille Sous-famille Espèce Thyrididae Siculodinae Microsca hedilalis (Walker, 1859) Thyrididae Striglininae Banisia extravagans (Warren, 1908) Thyrididae Striglininae Banisia furva furva (Warren, 1905) Thyrididae Striglininae Banisia myrsusalis (Warren, 1859) Thyrididae Striglininae Rhodogonia miniata Warren, 1897 Thyrididae Striglininae Rhodoneura perlula (Guenée, 1858) Thyrididae Striglininae Tanyodes inconspicua (Herrich Schäffer, 1854) Thyrididae Striglininae Tanyodes rufitibia (Felder & Rogenhofer, 1873) Thyrididae Thyridinae Dysodia sp. nr speculifera (Sepp, [1852-1855])

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Uraniidae – Identificateurs Philippe COLLET & Eddy POIRIER 3 espèces

Famille Sous-famille Espèce Uraniidae Erosia incendiata (Guenée, 1857) Uraniidae Molybdophora concinnaria (Hübner, 1818) Uraniidae Urania leilus (Linnaeus, 1758)

Liste des COLEOPTERA :

Anthribidae – Identificateur José MERMUDES 3 espèces Famille Espèce PV Anthribidae Phaenithon sp.1 × Anthribidae Phaenithon sp.2 × Anthribidae Phaenithon sp.3 ×

Buprestidae – Identificateur Stéphane BRÛLÉ 8 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PC VU PV EL Buprestidae Agrilinae Agrilini Agrilus moraguesi Curletti & Brûlé, 2011 1 Buprestidae Buprestinae Actenodini Actenodes florencae Bleuzen, 1989 3 Buprestidae Buprestinae Actenodini Actenodes nobilis (Linnaeus, 1758) 1 1 4 Buprestidae Buprestinae Chrysobothrini Chrysobothris cordicollis Gory & Laporte, 1837 1 Buprestidae Buprestinae Pterobothrini Spectralia sulcifera (Gory & Laporte, 1837) 9 Buprestidae Chrysochroinae Dicercini Psiloptera equestris (Olivier, 1790) 1 Buprestidae Chrysochroinae Paraleptodemini Chrysesthes tripunctata (Fabricius, 1787) 21 Buprestidae Chrysochroinae Paraleptodemini Euchroma gigantea (Linnaeus, 1758) 1

Cantharidae – Identificateur Robert CONSTANTIN 1 espèce Famille Espèce BT Cantharidae Chauliognathus flavolineatus Pic, 1947 1

Carabidae – Identificateur Terry ERWIN 5 espèces Famille Tribu Espèce PL PV Carabidae Lebiini Agra sp.D 1 Carabidae Lebiini Apenes sp.A 2 Carabidae Lebiini Lebia sp.AA 1 Carabidae Pentagonicini Pentagonia sp.K 1 Carabidae Plochioni Plochionus sp.C 1

Cerambycidae - Identificateur Pierre-Henri DALENS 73 espèces Sous-famille Tribu Espèces PL PV PC BT LV Cerambycinae Bothriospilini Chlorida denticulata Buquet, 1860 4

Cerambycinae Callichromatini Callichroma velutinum (Fabricius, 1775) 1

Cerambycinae Cerambycini Atiaia sp (in litteris) 5

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Cerambycinae Cerambycini Coleoxestia sp 1 2

Cerambycinae Cerambycini Coleoxestia sp 2 1

Cerambycinae Cerambycini Juiaparus batus batus (Linnaeus, 1758) 4 1

Cerambycinae Cerambycini Jupoata rufipennis (Gory in Guérin-Méneville, 1831) 3 1

Cerambycinae Cerambycini Plocaederus bipartitus (Buquet, 1860) 4

Cerambycinae Cerambycini Plocaederus fasciatus (Olivier, 1795) 1

Cerambycinae Cerambycini Plocaederus fragosoi Martins & Monné, 2002 3

Cerambycinae Cerambycini Plocaederus mirim Martins & Monné, 2002 1

Cerambycinae Cerambycini Plocaederus plicatus (Olivier, 1790) 1

Cerambycinae Cerambycini Plocaederus sp. 2

Cerambycinae Cerambycini Potiaxixa longipennis (Zajciw, 1966) 2

Cerambycinae Clytini Mecometopus rhinotragoides Thomson, 1860 1 Cerambycinae Clytini Neoclytus ictericus (Gounelle, 1911) 1

Cerambycinae Eburiini Beraba odettae Martins & Galileo, 2008 1 Cerambycinae Eburiini Pantomallus costulatus (Bates, 1870) 1

Cerambycinae Elaphidionini Ambonus distinctus (Newman, 1840) 1 Cerambycinae Elaphidionini Clausirion comptum Martins & Napp, 1984 1

Cerambycinae Elaphidionini Clausirion sp. 1

Cerambycinae Elaphidionini Protosphaerion loreum Gounelle, 1909 2

Cerambycinae Hesperophanini Dubiefostola auricollis Tavakilian & Monné, 1991 5 Cerambycinae Hesperophanini Eusapia guyanensis Huedepohl, 1988 1

Cerambycinae Hesperophanini Liostola nitida Zajciw, 1962 1

Cerambycinae Heteropsini Chrysoprasis beraba Napp & Martins, 1997 1 Cerambycinae Heteropsini Chrysoprasis bipartita Zajciw, 1963 50

Cerambycinae Hexoplonini Gnomidolon conjugatum (White, 1855) 1

Cerambycinae Ibidionini Compsibidion sp. 1 Cerambycinae Ibidionini Pygmodeon involutum (Bates, 1870) 1

Cerambycinae Ibidionini Pygmodeon sp. aff. involutum 1 26

Cerambycinae Ibidionini Thoracibidion striatocolle (White, 1855) 1

Cerambycinae Piezocerini Hemilissa cornuta Bates, 1870 1 Cerambycinae Piezocerini Hemilissa sp. 1

Cerambycinae Rhinotragini Acatinga gallardi (Penaherrera-Leiva & Tavakilian, 2004) 1 Cerambycinae Rhinotragini Eclipta aberlenci (Tavakilian & Penaherrera-Leiva, 2005) 5

Cerambycinae Rhinotragini Eclipta eperuaphila (Tavakilian & Penaherrera-Leiva, 2005) 1

Cerambycinae Rhinotragini Eclipta lauraceae (Penaherrera-Leiva & Tavakilian, 2004) 2

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Cerambycinae Rhinotragini Tomopterus consobrinus Gounelle, 1911 1

Cerambycinae Torneutini Coccoderus longespinicornis Fuchs, 1964 1 Cerambycinae Torneutini Gigantotrichoderes flabellicornis (Zajciw, 1965) 1

Lamiinae Acanthocinini Acanthocinini sp. 1 12 Lamiinae Acanthocinini Acanthocinini sp. 2 1

Lamiinae Acanthocinini Acanthocinini sp. 3 2

Lamiinae Acanthocinini Leptocometes spitzi (Melzer, 1934) 1

Lamiinae Acanthocinini Leptostylus plautus Monné & Hoffmann, 1983 1 1

Lamiinae Acanthocinini Lepturgantes sp. 1

Lamiinae Acanthocinini Lepturges (Chaeturges) sp. aff. dorsalis 2

Lamiinae Acanthocinini Lepturges (Lepturges) elegantulus Bates, 1863 1

Lamiinae Acanthocinini Lophopoeum circumflexum Bates, 1863 3

Lamiinae Acanthocinini Nyssodrysternum impensum Monné, 1985 2

Lamiinae Acanthocinini Nyssodrysternum signiferum (Bates, 1864) 7

Lamiinae Acanthocinini Nyssodrysternum sp. 1

Lamiinae Acanthocinini Ozineus strigosus Bates, 1863 1

Lamiinae Acanthocinini Paroecus charpentierae Villiers, 1971 1

Lamiinae Acanthocinini Stenolis sp. 1

Lamiinae Acanthoderini Acanthoderes daviesii (Swederus, 1787) 1 5 Lamiinae Acanthoderini Aegoschema sp. 1

Lamiinae Acanthoderini Oreodera bituberculata Bates, 1861 1

Lamiinae Acanthoderini Oreodera boucheri Néouze & Tavakilian, 2010 1

Lamiinae Acanthoderini Oreodera jacquieri Thomson, 1865 1

Lamiinae Acanthoderini Oreodera sororcula Martins & Monné, 1993 1

Lamiinae Acanthoderini Plistonax albolinitus (Bates, 1861) 2

Lamiinae Acanthoderini Psapharochrus bivittus (White, 1855) 7

Lamiinae Acanthoderini Psapharochrus lateralis (Bates, 1861) 6

Lamiinae Acanthoderini Punctozotroctes wappesi Tavakilian & Néouze, 2007 1

Lamiinae Acanthoderini Steirastoma genisspina Schwartzer, 1923 2

Lamiinae Acanthoderini Steirastoma melanogenys White, 1855 1

Lamiinae Anisocerini Xylotribus decorator (Fabricius, 1801) 1

Lamiinae Calliini Hemicladus buqueti Tavakilian, Touroult & Dalens, 2009 1

Lamiinae Hemilophini Murupeaca tavakiliani Galileo & Martins, 2004 1

Parandrinae Parandrini Parandra (Parandra) glabra (Degeer, 1774) 1

Prioninae Mallaspini Esmeralda coerulea (Schoenherr, 1817) 2

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Chrysomelidae Bruchinae – Identificateurs Daiara MANFIO & Cibele STRAMARE RIBEIRO-COSTA Chrysomelidae (Autres sous-familles) – Identificateur Robert CONSTANTIN 10 espèces Famille Sous-famille Espèce PL VU Chrysomelidae Bruchinae Merobruchus sp. 2 Chrysomelidae Alticinae sp. 1 Chrysomelidae Alticinae Omophoita sp. 1 Chrysomelidae Alticinae Walterianella sp. 2 Chrysomelidae Eumolpinae Colaspis sp. 5 Chrysomelidae Eumolpinae sp. 1 Chrysomelidae Galerucinae Diabrotica sp. 1 Chrysomelidae Galerucinae sp.1 1 Chrysomelidae Galerucinae sp.2 1 Chrysomelidae Galerucinae sp.3 2

Cleridae – Identificateur Robert CONSTANTIN 1 espèce Famille Sous-famille Espèce PV Cleridae Clerinae sp. 1

Coccinellidae – Identificateurs L.M. ALMEIDA, G. H. CORRÊA & P. B. SANTOS 10 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PV PT Coccinellidae Coccinellinae Azyini Azya sp. 1 Coccinellidae Coccinellinae Brachiacantini Hinda sp.1 1 Coccinellidae Coccinellinae Brachiacantini Hinda sp.6 1 Coccinellidae Coccinellinae Brachiacantini Hinda sp.7 13 Coccinellidae Coccinellinae Brachiacantini Hinda sp.9 2 Coccinellidae Coccinellinae Chilocorini Curinus sp.1 1 Coccinellidae Coccinellinae Exoplectrini Exoplectra sp.2 1 Coccinellidae Coccinellinae Exoplectrini Exoplectra coccinea (Fabricius, 1801) 1 Coccinellidae Coccinellinae Hyperaspidini sp. 1 Coccinellidae Coccinellinae Hyperaspidini Clypeaspis sp. 2

Curculionidae – Identificateur Joachim RHEINHEIMER 31 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PL PV PC VU BT Curculionidae Anthonominae Anthonimini Anthonomus sp. 1 Curculionidae Baridinae Geraeus sp. 2 Curculionidae Baridinae Loboderes sp. 1 Curculionidae Conoderinae Lechriops sp.1 10 Curculionidae Conoderinae Lechriops sp.2 1 Curculionidae Conoderinae Lechriops sp.3 1 Curculionidae Conoderinae Lechriops sp.4 2 Curculionidae Conoderinae Lechriops sp.5 1 Curculionidae Conoderinae Macrocopturus sp. 1 Curculionidae Conoderinae Zygops histrio Boheman, 1838 1 Curculionidae Cryptorhynchinae Cryptorhynchini Cryptorhynchus sp. 1 Curculionidae Cryptorhynchinae Cryptorhynchini Cophes cylindricornis (Germar, 1824) 1 1

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Curculionidae Entiminae Eustylini Compsus lacteus (Fabricius, 1781) 1 Curculionidae Entiminae Eustylini Compsus niveus (Fabricius, 1787) 1 Curculionidae Entiminae Entimini Phaedropus candidus (Fabricius, 1775) 1 Curculionidae Hyperinae Cepurini Haplopodus glaucus (Chevrolat, 1877) 1 Curculionidae Molytinae Hylobiini Heilipodus sp.1 1 Curculionidae Molytinae Hylobiini Heilipodus sp.2 2 Curculionidae Molytinae Hylobiini Heilipodus sp.3 2 1 Curculionidae Molytinae Hylobiini Heilipus apiatus (Olivier, 1807) 1 Curculionidae Molytinae Hylobiini Hilipinus scapha (Boheman, 1835) 2 Curculionidae Molytinae Hylobiini Rhineilipus bifurcatus (Hustache, 1938) 1 Curculionidae Molytinae Hylobiini Marshallius contaminatus (Boheman, 1 1843) Curculionidae Molytinae Ithyporini Conotrachelus sp.1 1 Curculionidae Molytinae Ithyporini Conotrachelus sp.2 1 Curculionidae Molytinae Ithyporini Rhyssomatus sp.1 1 Curculionidae Molytinae Nettarhinini Nettarhinus anthribiformis Schoenherr, 1 1826 Curculionidae Molytinae Sternechini Sternechus sp.1 1 Curculionidae Rhynchophorinae Metamasius distortus (Gemminger & 3 Harold, 1871) Curculionidae Rhynchophorinae Metamasius sp. 1 Curculionidae Rhynchophorinae Rhinostomus barbirostris (Fabricius, 1 1775)

Ditiscidae – Identificateur Daniel LOHEZ 2 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PL VU Ditiscidae Agabinae Platynectes decemnotatus Aubé 1 Ditiscidae Ditiscinae Acilini Thermonectus circumscriptus Latreille 1

Elateridae – Identificateur Jacques CHASSAIN 14 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PL BT Elateridae Agrypninae Agrypnini Lacon pollinarius (Candèze) 1 Elateridae Agrypninae Agrypnini Lacon sp. 1 Elateridae Agrypninae Conoderini Conoderus sp.aff. sericeus Candèze 1 Elateridae Agrypninae Hemirhipini Saltamartinus scriptus (Candèze) 1 Elateridae Agrypninae Pyrophorini Pyrearinus amplicollis (Candèze) 1 Elateridae Agrypninae Pyrophorini Pyrearinus fulgurans (Candèze) 1 Elateridae Elaterinae Ampedini Dicrepidius sp. 1 Elateridae Elaterinae Ampedini Dipropus latus (Candèze) 1 Elateridae Elaterinae Ampedini Dipropus nigrita (Candèze) 1 Elateridae Elaterinae Ampedini Dipropus sp. 1 Elateridae Elaterinae Ampedini Stenocrepidius sp. 1 Elateridae Elaterinae Physorhinini Monelasmus guyanensis Candèze 1 Elateridae Elaterinae Physorhinini Anchastus gantieri Chassain 1 Elateridae Semiotinae Pyrophorini Semiotus ligneus (Linnaeus) 3

Erotylidae – Identificateur Jean-Hervé YVINEC 3 espèces Famille Espèce PL PV Erotylidae Gibbifer sp. 1

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Erotylidae Dacne sp. 1 Erotylidae Langurinae sp. 1

Geotrupidae Bolboceratinae – Identificateur Olivier BOILLY 1 espèce Famille Sous-famille Tribu Espèce PV Geotrupidae Bolboceratinae Bolboceratini Athyreus giuglarisi n.sp. Boilly, 2011 4

Histeridae – Identificateur Nicolas DEGALLIER 1 espèce Famille Sous-famille Tribu Espèce PC Histeridae Histerinae Hololepta (Leionota) devia Marseul, 1853 1

Hybosoridae – Identificateur Antonio BALLERIO 3 espèces Famille Sous-famille Espèce PV PC PL Hybosoridae Ceratocanthinae Ceratocanthus amazonicus Paulian, 1982 1 Hybosoridae Ceratocanthinae Ceratocanthus sp. (n.p.) 1 Hybosoridae Ceratocanthinae Ceratocanthus sp.4 1 1

Hydrophilidae – Identificateur Pierre QUENEY 2 espèces Famille Sous-famille Espèce PV Hydrophilidae Hydrophilinae Helochares sp. 1 Hydrophilidae Sphaeridiinae Moraphilus sulcatus d’Orchymont, 1925 1

Lampyridae – Identificateur Robert CONSTANTIN 4 espèces Famille Sous-famille Espèce PL PV PC VU Lampyridae Lampyrinae Aspisoma sp.4 1 Lampyridae Lampyrinae Lucidota cf. minor Pic 1 Lampyridae Lampyrinae Photinoides mystrionophorus MacDermott 1 Lampyridae Photurinae Photuris fulvipes Blanchard 1 1

Lycidae – Identificateur Robert CONSTANTIN 2 espèces Famille Espèce BT Lycidae Idiopteron sp.1 1 Lycidae Mesopteron sp.3 1

Mordellidae – Identificateur Pascal LEBLANC 6 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PV Mordellidae Mordellinae Mordellini Mordella sp.14 1 Mordellidae Mordellinae Mordellini Mordella sp.20 1 Mordellidae Mordellinae Mordellini Mordella sp.23 1 Mordellidae Mordellinae Mordellistenini Falsomordellistena forticornis (Champion, 1891) 2 Mordellidae Mordellinae Mordellistenini Falsomordellistena sp. 1 Mordellidae Mordellinae Mordellistenini Pseudotolida sp.2 1

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Passalidae – Identificateur Stéphane BOUCHER 4 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce Eval VU PL Passalidae Passalinae Passalini Passalus interruptus (Linnaeus) TC 1 Passalidae Passalinae Passalini Passalus striolatus Eschscholtz TC 1 Passalidae Passalinae Passalini Pertinax convexus (Dalman) TC 1 Passalidae Passalinae Proculini Popilius tetraphyllus (Eschscholtz) PC 1 Eval. S. BOUCHER TC : très commune ; C : commune ; AC : assez commune ; PC : peu commune ; R : rare

Phengodidae & Telegeusidae – Identificateur Robert CONSTANTIN 5 espèces Famille Espèce PV Phengodidae Mastinocerinae Brasilocerus wygodzinskyi Wittmer, 1976 1 Phengodidae Mastinocerinae Eurymastinocerus reductipennis (Wittmer, 1970) 1 Phengodidae Mastinocerinae Oxymastinocerus nigripennis Wittmer, 1988 2 Phengodidae Mastinocerinae Taximastinocerus parallelus Wittmer, 1976 1 Telegeusidae Pseudotelegeusis howdeni Wittmer, 1976 1

Scarabeidae Dynastinae – Identificateur Yannig PONCHEL 10 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PL Scarabeidae Dynastinae Cyclocephalini Cyclocephala bicolor Laporte de Castelnau, 1840 2 Scarabeidae Dynastinae Cyclocephalini Cyclocephala diluta Erichson, 1847 4 Scarabeidae Dynastinae Cyclocephalini Cyclocephala durantonorum Dechambre, 1999 1 Scarabeidae Dynastinae Cyclocephalini Cyclocephala ohausiana Höhne, 1923 1 Scarabeidae Dynastinae Cyclocephalini Cyclocephala perforata Arrow, 1911 5 Scarabeidae Dynastinae Cyclocephalini Stenocrates clipeatus Endrödi, 1966 2 Scarabeidae Dynastinae Cyclocephalini Stenocrates popei Endrödi, 1971 6 Scarabeidae Dynastinae Oryctini Strategus surinamensis Burmeister, 1847 1 Scarabeidae Dynastinae Pentodontini Hylobothynus pontis Ratcliffe, 1982 1 Scarabeidae Dynastinae Phileurini Moraguesia champenoisi Dechambre, 2008 7 Scarabeidae Dynastinae Phileurini Phileurus valgus (Olivier, 1789) 1

Scarabeidae Rutelinae – Identificateur Marc SOULA 10 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PL PC Scarabeidae Rutelinae Rutelini Epichalcoplethis aciculata Bates, 1904 1 Scarabeidae Rutelinae Rutelini Hoplopelidnota metallica Laporte, 1840 (identification P.H. DALENS) 1 Scarabeidae Rutelinae Rutelini Macraspis olivieri (Waterhouse, 1881) (identification P.H. DALENS) 1 Scarabeidae Rutelinae Rutelini Pelidnota touroulti Soula, 2008 1 Scarabeidae Rutelinae Rutelini Strigidia girardi Bouchard, 2003 (identification P.H. DALENS) 1 Scarabeidae Rutelinae Geniatini Leucothyreus sp.1 1 Scarabeidae Rutelinae Geniatini Leucothyreus sp.2 1 Scarabeidae Rutelinae Geniatini Leucothyreus sp.3 1 Scarabeidae Rutelinae Geniatini Leucothyreus sp.4 1 Scarabeidae Rutelinae Geniatini Lobogenites sp.1 2

Scarabeidae Cetoniinae & Scarabeinae – Identificateur Pierre-Henri DALENS 4 espèces Famille Sous-famille Espèce PV PA Scarabeidae Cetoniinae Inca clathrata (Olivier, 1792) 1

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Scarabeidae Scarabeinae Coprophanaeus dardanus (MacLeay, 1819) 36 Scarabeidae Scarabeinae Oxysternon festivum (Laporte, 1840) 1 Scarabeidae Scarabeinae Phanaeus chalcomelas (Perty, 1830) 1

Staphylinidae Pselaphinae – Identificateur Volker BRACHAT 1 espèce Famille Sous-famille Tribu Espèce PV Staphylinidae Pselaphinae Clavigerini Fustiger sp. 1

Tenebrionidae – Identificateur Julio FERRER 2 espèces Famille Espèce PL Tenebrionidae Taphrosoma dohrni Kirsch, 1866 1 Tenebrionidae Poecilesthus sp. 1

Trogossitidae – Identificateur Franz WACHTEL 1 espèce Famille Sous-famille Espèce PL Trogossitidae Trogossitinae Tenebroides sp. 2

Autres familles de Coleoptera – 1 espèce Famille Sous-famille Espèce PV

Catopidae sp. (identification P. LEBLANC) 1 Anthicidae Anthicus sp. (identification R. CONSTANTIN) 1

Liste des HEMIPTERA :

Cicadellidae – Identificateur Daniela TAKYIA 6 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PV Cicadellidae Idiocerinae Idiocerini sp. 2 Cicadellidae Cicadellinae Cicadellini Acrulogonia smidti (Metcalf, 1965) 4 Cicadellidae Cicadellinae Cicadellini Acrulogonia sp.1 2 Cicadellidae Cicadellinae Cicadellini Acrulogonia sp.2 near resima (Metcalf, 1965) 1 Cicadellidae Cicadellinae Cicadellini Macugonalia sp. 1 Cicadellidae Deltocephalinae sp. 1

Fulgoridae – Identificateur Pierre-Henri DALENS 3 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PL Fulgoridae Aphaeninae Diloburini Aracynthus sanguineus (Olivier, 1791) 1 Fulgoridae Aphaeninae Diloburini Flatolystra distincta Nast, 1950 2 Fulgoridae Lystrinae Poiocerini Scaralis versicolor Distant, 1906 1

Membracidae – Identificateur Albino SAKAKIBARA 5 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce VU PL Membracidae Darninae Darnini Darnis lateralis (Coquebert, 1801) 1 Membracidae Darninae Darnini Stictopelta squares (Fairmaire, 1846) 1 Membracidae Darninae Darnini Sundarion notabile Souza & Rothéa, 2005 1

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Membracidae Membracinae Membracini Folicarina bicolor Sakakibara, 1992 1 Membracidae Stegaspidinae Stegaspini Lycoderes sp. 1

Pentatomoidea – Identificateur Roland LUPOLI 8 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PL PV Cydnidae Cydninae Geotomini Cyrtomenus emarginatus Stal, 1862 2 Cydnidae Cydninae Geotomini Dallasiellus sp.2 1 Cydnidae Cydninae Geotomini Pangaeus piceatus Stal, 1862 9 Pentatomidae Edessinae Edessa sp.9 1 Pentatomidae Pentatominae Chlorocorini Loxa virescens Amyot & Serville, 1842 2 Pentatomidae Pentatominae Chlorocorini Rhyncholepta grandicallosa Bergroth, 1911 1 Pentatomidae Pentatominae Nezarini Chinavia runaspis ( Dallas, 1851) 2 Pentatomidae Pentatominae Pentatomini Banasa excavata Thomas & Yonke, 1988 3

Reduviidae – Identificateurs Denis BLANCHET (Triatominae) et Jean-Michel BERENGER 7 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PL VU Reduviidae Ectrichodiinae Brontostoma basalis (Stal, 1859) 1 Reduviidae Harpactorinae Apiomerini Micrauchenus lineola (Fabricius, 1787) 1 Reduviidae Harpactorinae Harpactorini Notocyrtus sp. 1 Reduviidae Reduviinae Zelurus sp. 2 Reduviidae Stenopodainae Ghilianella lobuliventris Bergroth, 1918 1 Reduviidae Triatominae Panstrongylus geniculatus Latreille, 1811 6 Reduviidae Triatominae Panstrongylus lignarius (Walker, 1873) 1

Vellidae – Identificateur Jean-Michel BERENGER 1 espèce Famille Espèce VU Vellidae sp. 1

Vellidae sp. (Hemiptère semi-aquatique)

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Liste des HYMENOPTERA :

Braconidae - Identificateur Yves BRAET 13 espèces Famille Sous-famille Espèce PV Braconidae Agathidinae Dichelosus sp.3 1 Braconidae Braconinae Bracon sp. 1 Braconidae Cenocoeliinae Capitonius sp.1 1 Braconidae Cenocoeliinae Capitonius sp.2 1 Braconidae Cenocoeliinae Capitonius sp.13 1 Braconidae Cheloninae Chelonus (Baculonus ) pachytellus Braet, 2001 1 Braconidae Microgastrinae Apanteles sp.1 3 Braconidae Microgastrinae Apanteles sp.2 4 Braconidae Microgastrinae Paroplitis sp.1 1 Braconidae Microgastrinae Paroplitis sp.2 1 Braconidae Microgastrinae Protomicroplitis sp.1 2 Braconidae Rogadinae Aleiodes sp.1 1 Braconidae Rogadinae Aleiodes sp.2 1

Crabonidae – Identificateur Marc TUSSAC 8 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PV LV Crabonidae Craboninae Crabonini Chimila sp. 1 Crabonidae Craboninae Larrini Liris sp. 2 Crabonidae Craboninae Miscophini Nitela sp. 2 Crabonidae Craboninae Trypoxylini Pison sp. 2 Crabonidae Craboninae Trypoxylini Trypoxylon sp. forme 02 1 Crabonidae Craboninae Trypoxylini Trypoxylon sp. forme 15 2 Crabonidae Craboninae Trypoxylini Trypoxylon sp. forme 57 1 Crabonidae Pemphredoninae Pemphredonini Pemphredonina sp. 1

Autres familles Hymenoptera - 4 espèces Famille Sous-famille Espèce Nombre de Déterminateur spécimens Evaniidae Evaniscus sp.1 ( rufithorax ?) 1 PL Yves BRAET Apidae Apinae Euglossa (Euglossella) stilbonota Dressler, 1982 1 PV Gérard LE GOFF Ampulicidae Dolichurinae Dolichurus sp.01 1 PV Marc TUSSAC Stephanidae Hemistephanus erugatus 2 LV Yves BRAET

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Liste des ORTHOPTERA - Identificateur Didier MORIN 21 espèces Famille Sous-famille Tribu Espèce PL PC Acrididae Proctolabinae Eucephalacris elongata Descamps, 1977 1 Romaleidae Romaleinae Romaelini Colpolopha obsoleta (Audinet-Serville, 1831) 1 Tettigoniidae Conocephalinae Copiphorini Caulopsis sp. 1 Tettigoniidae Conocephalinae Copiphorini Copiphora sp. 1 Tettigoniidae Conocephalinae Copiphorini Neoconocephalus cf. karollenkoi ToledoPiza, 1983 1 Tettigoniidae Phaneropterinae Gr. Scaphurae Aganacris sphex (Rehn, 1918) 1 Tettigoniidae Phaneropterinae Ceraiaella triannulata Hébard, 1933 1 Tettigoniidae Phaneropterinae Eucereia femorata (Chopard, 1918) 3 Tettigoniidae Phaneropterinae Eucereia rufovariegata (Chopard, 1918) 1 Tettigoniidae Phaneropterinae Eucereia sp.1 2 Tettigoniidae Phaneropterinae Eucereia sp.2 1 Tettigoniidae Phaneropterinae Eucereia subaquila Grant, 1964 3 Tettigoniidae Phaneropterinae Machimoides sp. 1 Tettigoniidae Phaneropterinae spp. (6 espèces) × Tettigoniidae Phaneropterinae Vellea cruenta Burmeister, 1838 4 Tettigoniidae Pseudophyllinae Pterochrozini Cycloptera speculata (Stoll C., 1787) 1

Liste des MANTODEA - Identificateur Alexandre FRANCOIS 1 espèce Famille Sous-famille Espèce PL Mantidae Stagmatopterinae Stagmatoptera cf. supplicaria (Burmeister, 1838) 1

Liste des PHASMATODEA - Identificateur Oskar CONLE 1 espèces Famille Espèce Nombre de spécimens collectés Prisopodidae Prisopus horstokkii (Haan, 1842) 1 mâle

Liste des NEUROPTERA :

Ascalaphidae – Identificateur Marc THOUVENOT 1 espèce Famille Sous-famille Tribu Espèce Ascalaphidae Ascalaphinae Ululodes macleayanus (Guilding, 1825)

Ululodes macleayanus

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Liste des ODONATA - Identificateur Laurent JUILLERAT 16 espèces Famille Espèce AYA RB PL VU PM PV Aeshnidae Coryphaeschna amazonica De Marmels, 1989 × × Aeshnidae Coryphaeschna viriditas Calvert, 1952 × × Coenagrionidae Acanthagrion apicale Selys, 1876 × × Coenagrionidae Argia oculata Hagen in Selys, 1865 × × × Coenagrionidae Argia sp. nov. (Garrison in prep.) × × Heliocharitidae Heliocharis amazona Selys, 1853 × × Libellulidae Erythrodiplax famula (Erichson, 1848) × × Libellulidae Fylgia amazonica spp. lychnitina De Marmels, 1989 × × Libellulidae Micrathyria spinifera Calvert, 1909 × × Libellulidae Perithemis thais Kirby, 1889 × × Libellulidae Uracis fastigiata (Burmeister, 1839) × × Libellulidae Uracis imbuta (Burmeister, 1839) × × Megapodagrionidae Oxystigma cyanofrons Williamson, 1919 × × Polythoridae Polythore picta (Rambur, 1842) × × × × Pseudostigmatidae Mecistogaster lucretia (Drury, 1773) × × Pseudostigmatidae Mecistogaster linearis (Fabricius, 1776) × ×

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Liste des ARACHNODEA - Identificateur Vincent VEDEL 256 espèces Famille Espèce Amaurobiidae sp. (1 espèce) Anyphaenidae sp. (1 espèce) Araneidae Aspidolasius sp. Araneidae Edricus spp. (2 espèces) Araneidae Hypognatha sp. Araneidae spp. (58 espèces) Caponiidae sp. (1 espèce) Clubionidae spp. (4 espèces) Corinnidae sp. (1 espèce) Ctenidae Ctenus sp. Ctenidae spp. (15 espèces) Deinopidae Deinopis guianensis Taczanowski, 1874 Deinopidae Deinopis spp. (3 espèces) Deinopidae sp. (1 espèce) Dictynidae spp. (8 espèces) Dipluridae spp. (2 espèces) Eresidae spp. (2 espèces) Gasteracanthidae Chaecitis sp. Gasteracanthidae Gasteracantha cancriformis (Linnaeus, 1758) Gasteracanthidae Micrathena gracilis (Walckenauer, 1805) Gasteracanthidae Micrathena schreibersii (Perty, 1833) Gasteracanthidae Micrathena sexspinosa (Hahn, 1822) Gasteracanthidae Micrathena triangularis (Koch, 1836) Gasteracanthidae Micrathena spp. (2 espèces) Gasteracanthidae spp. (5 espèces) Gnaphosidae spp. (2 espèces) Hersilidae Hersilia sp. Hersilidae sp. (1 espèce) Mimetidae spp. (13 espèces) Mysmenidae sp. (1 espèce) Nephiliidae Nephila clavipes ou cornuta Oonopidae sp. (1 espèce) Oxyopidae Oxyopes spp. (2 espèces) Oxyopidae sp. (1 espèce) Philodromidae spp. (17 espèces) Pholcidae sp. (1 espèce) Salticidae Hypaeus sp. Salticidae spp. (32 espèces) Scytodidae spp. (5 espèces) Segestriidae spp. (5 espèces) Senoculidae sp. (1 espèce) Sparassidae spp. (4 espèces) Synotaxidae spp. (2 espèces) Tetragnathidae Leucauge sp. Tetragnathidae spp. (8 espèces) Theraphosidae Ephebopus sp. Theraphosidae Theraphosa leblondii Latreille, 1804

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Theridiidae Anolesimus eximius (Keyserling, 1884) Theridiidae spp. (6 espèces) Thomisidae spp. (9 espèces) Trechaleidae sp. (1 espèce) Uloboridae spp. (9 espèces) Zodariidae spp. (6 espèces) Indéterminés spp. (3 espèces)

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Annexe 2 : Identificateurs par groupes taxonomiques.

Nom – Prénom Spécialité Ordre Groupe VEDEL Vincent Arachnidae MERMUDES José Ricardo M. Coleoptera Anthribidae BRÛLÉ Stéphane Coleoptera Buprestidae CONSTANTIN Robert Coleoptera Cantharoidea – Cleroidea – Chrysomelidae ERWIN Terry Coleoptera Carabidae DALENS Pierre-Henri Coleoptera Cerambycidae – Scarabaeoidae – Cassidinae STRAMARE RIBEIRO-COSTA Cibele Coleoptera Chrysomelidae Bruchinae MANFIO Daiara Coleoptera Chrysomelidae Bruchinae MASSUTTI ALMEIDA Lúcia Coleoptera Coccinellidae CORRÊA Geovan Coleoptera Coccinellidae BATISTA DOS SANTOS Paula Coleoptera Coccinellidae RHEINHEIMER Joachim Coleoptera Curculionoidea LOHEZ Daniel Coleoptera Ditiscidae CHASSAIN Jacques Coleoptera Elateridae – Eucnemidae - Throscidae YVINEC Jean-Hervé Coleoptera Erotylidae BOILLY OLivier Coleoptera Geotrupidae Bolboceratinae DEGALLIER Nicolas Coleoptera Histeridae BALLERIO Antonio Coleoptera Hybosoridae QUENEY Pierre Coleoptera Hydrophiloidea LEBLANC Pascal Coleoptera Mordellidae BOUCHER Stéphane Coleoptera Passalidae PONCHEL Yannig Coleoptera Scarabeidae Dynastinae SOULA Marc Coleoptera Scarabeidae Rutelinae TOUROULT Julien Coleoptera Scarabeoidea – Cerambycidae BRACHAT Volker Coleoptera Staphylinidae Pselaphinae FERRER Julio Coleoptera Tenebrionidae WACHTEL Franz Coleoptera Trogossitidae RAPER Chris Diptera Pantophthalmidae TAKYIA Daniela Hemiptera Cicadellidae DALENS Pierre-Henri Hemiptera Fulgoridae SAKAKIBARA Albino Hemiptera Membracidae LUPOLI Roland Hemiptera Pentatomoidea BERENGER Jean-Michel Hemiptera Reduviidae BLANCHET Denis Hemiptera Reduviidae TUSSAC Marc Hymenoptera Aculeata – Vespidae – Trigonalidae LE GOFF Gérard Hymenoptera Apoidea PAULY Alain Hymenoptera Apoidea BRAET Yves Hymenoptera Braconidae – Formicidae BENMESBAH Mohamed Lepidoptera Nymphalidae COLLET Philippe Lepidoptera Heterocera POIRIER Eddy Lepidoptera Heterocera FAYNEL Christophe Lepidoptera Lycaenidae FERNANDEZ Serge Lepidoptera Riodinidae BENELUZ Frédéric Lepidoptera Saturniidae – Sphingidae – Castniidae FRANCOIS Alexandre Mantodea

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THOUVENOT Marc Neuroptera Ascalaphidae JUILLERAT Laurent Odonata MORIN Didier Orthoptera CONLE Oskar Phasmatoptera

Séance de travail : lépidoptéristes versus arachnologue … (De gauche à droite : Serge FERNANDEZ, Vincent VEDEL [Bis] et Eddy POIRIER)

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Annexe 3 : Liste des publications citant des spécimens collectés dans la Réserve de la Trinité lors de la Mission Octobre 2010 – S.E.A.G

BARBUT, J. & LALANNE-CASSOU, B. 2011. Description d'une nouvelle espèce d' Eulepidotis Hübner, 1823, découverte dans la réserve naturelle de la Trinité (Guyane française) (Lepidoptera, Erebidae, Eulepidotinae). Bulletin de la SEF, vol. 116, no2, pp. 181- 184 .

BOILLY, O. 2011. Description d'une nouvelle espèce d' Athyreus Macleay de Guyane française et compléments de description (Coleoptera, Scarabaeoidea, Bolboceratidae, Athyreini). ACOREP-France - Coléoptères de Guyane - Tome III, p. 3-8

BOILLY, O. 2011. Les Bolboceratidae de Guyane française (Coleoptera, Scarabaeoidea). ACOREP-France - Coléoptères de Guyane - Tome III, p. 9-21

BRÛLÉ, S. 2011. Etat des connaissances sur les Buprestes de Guyane (Coleoptera, Buprestoidea). ACOREP-France - Coléoptères de Guyane - Tome III, p. 62-87

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L’équipe S.E.A.G prenant des forces avant une nuit complète de piégeage lumineux : de gauche à droite, Denis BLANCHET, Serge FERNANDEZ, Sylvain PINCEBOURDE et Eddy POIRIER et derrière l’objectif Vincent VEDEL.

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