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Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07)
Rapport final septembre 2015
Étude réalisée par la Société d’Histoire naturelle ALCIDE-D’ORBIGNY
Entomologiste : Benjamin CALMONT 06.78.38.45.87 [email protected] [email protected]
Commanditaires : Communauté de communes Rhône Crussol 1278 rue, Henri Dunant BP 249 07502 GUILHERAND-GRANGES
Financements : Communauté de communes Rhône Crussol, Conseil général de l’Ardèche, NATURA 2000, DREAL Rhône-Alpes.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 1 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
- Sommaire
Résumé page 4 Introduction page 5
I) – Les sites de Châteaubourg, Crussol et Soyons page 6
A) Présentation du site d’étude page 6
II) - Les journées de prospection page 9
III) - Les prospections de terrain page 10
A) Les méthodes de prospection page 10 a) La recherche visuelle page 10 b) L’élevage page 10 c) Le piégeage page 11 d) Les chasses lumineuses page 12
B) Positionnement des différents pièges sur les sites d’étude page 13
IV) - Les Coléoptères saproxyliques et la dégradation du bois page 21
V) Les différentes espèces de coléoptères saproxyliques rencontrées page 28
VI) - Tableau et monographies des espèces de coléoptères saproxyliques bioindicatrices rencontrées page 39
Anthribidae Platystomos albinus (Linnaeus 1758) page 41 Tropideres albirostris (Herbst 1784) page 42 Biphyllidae Biphyllus lunatus (Fabricius, 1787) page 43 Bothrideridae Oxylaemus cylindricus (Panzer, 1796) page 44 Buprestidae Agrilus ater (Linnaeus, 1767) page 45 Eurythyrea micans (Fabricius, 1790) page 46 Cerambycidae Aegomorphus clavipes (Scopoli, 1763 page 47 Aegosoma scabricorne (Scopoli, 1763) page 48 Anisorus quercus Goeze, 1783 page 49 Anoplodera sexguttata (Fabricius, 1775) page 50 Arhopalus syriacus (Reitter, 1895) page 51 Cerambyx cerdo (Linnaeus, 1758) page 52 Chlorophorus glabromaculatus (Goeze, 1777) page 54 Deroplia genei (Aragona, 1830) page 55 Morimus asper (Sulzer, 1776) page 56 Pedostrangalia revestita (Linné, 1767) page 57 Pseudosphegesthes cinerea (Castelnau & Gory, 1836) page 58 Rhagium sycophanta (Schrank, 1781) page 59 Trichoferus holosericeus (Rossi, 1790) page 60 Trichoferus pallidus (Olivier, 1790) page 61 Xylotrechus antilope (Schönherr, 1817) page 62 Cetoniidae Gnorimus variabilis (Fabricius, 1775) page 63 Protaetia fieberi (Kraatz, 1880) page 64 Protaetia lugubris (Herbst, 1770) page 65 Cleridae Opilo mollis (Linné, 1758) page 66
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 2 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Opilo pallidus (Olivier, 1795) page 67 Tillus elongatus (Linnaeus, 1758) page 68 Elateridae Ampedus cardinalis (Schiödte, 1865) page 69 Ampedus glycereus (Herbst, 1784) page 70 Ampedus pomorum (Herbst, 1784) page 71 Ampedus rufipennis (Stephens, 1830) page 72 Ampedus sanguinolentus (Schrank, 1776) page 73 Brachygonus campadellii Platia & Gudenzi, 2000 page 74 Brachygonus ruficeps (Mulsant et Guillebau, 1855) page 75 Calambus bipustulatus (Linnaeus, 1767) page 76 Cardiophorus gramineus (Scopoli, 1763) page 77 Drapetes mordelloides Host, 1789 page 78 Elater ferrugineus (Linnaeus, 1758) page 79 Ischnodes sanguinicollis (Panzer, 1793) page 80 Stenagostus rhombeus (Olivier, 1790) page 81 Stenagostus rhombeus (Olivier, 1790) page 82 Eucnemidae Dromaeolus barnabita (Villa, 1837) page 83 Eucnemis capucina (Reitter, 1902) page 84 Hylis olexai (Palm, 1955) page 85 Microrhagus emyi (Rouget, 1856) page 86 Microrhagus pigmaeus (Fabricius, 1792) page 87 Lucanidae Lucanus cervus (Linné, 1735) page 88 Melandryidae Phloiotrya tenuis (Hampe, 1850 page 90 Mycetophagidae Mycetophagus decempunctatus Fabricius, 1801 page 91 Mycetophagus piceus (Fabricius, 1777) page 92 Oedemeridae Ischnomera caerulea (Linnaeus, 1758) page 93 Prostomidae Prostomis mandibularis (Fabricius, 1801) page 94 Tenebrionidae Allecula morio (Fabricius, 1787) page 95 Corticeus fasciatus (Fabricius, 1790) page 96 Platydema violaceum (Fabricius, 1790) page 97 Pryonichus ater (Fabricius, 1775) page 98 Pseudocistela ceramboides (Linnaeus, 1761) page 99 Trogositidae Temnochila caerulea (Olivier, 1790) page 100 Zopheridae Colobicus hirtus (Rossi, 1790) page 1001 Pycnomerus terebrans (Olivier, 1790) page 102
VII) Les autres espèces de coléoptères patrimoniales rencontrées page 103
Bostrichidae Psoa dubia (Rossi, 1792) page 104 Carabidae Aptinus pyrenaeus Dejean, 1825 page 105
VIII) Analyses et commentaires page 106
A) Analyses et commentaires page 106 B) Analyse des différents sites étudiés et des cortèges d’espèces de coléoptères page 110 IX) Recommandations générales pour la gestion forestière Annexe page 112 X) Recommandations pour la gestion du site naturel de Crussol-Soyons page 115 Annexes page 119
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- Résumé
Dans le cadre d’une mission de connaissance, nous avons mené un inventaire des coléoptères saproxyliques sur le site naturel de Crussol-Soyons (07), dans le département de l’Ardèche. Pour ce faire, nous avons réalisé un inventaire rigoureux et utilisé un protocole reproductible de piégeage des coléoptères saproxyliques. Ce dernier s’est déroulé sur deux années, en 2014 et 2015. Pour les besoins de cette étude, nous avons effectué 10 jours de terrain et nous avons placé, sur le terrain, 30 pièges interception (en 2014 et 2015), 30 pièges « Barber » (en 2014) et deux pièges à fosses avec vitre ainsi qu’une tente Malaise en 2015. Au cours de cet inventaire, nous avons piégé 7772 spécimens de coléoptères et avons pu inventorier 349 espèces de coléoptères dont 287 espèces de coléoptères saproxyliques. Parmi elles, nous avons observé 60 espèces de coléoptères saproxyliques bioindicatrices de qualité des forêts françaises (Brustel, 2004). De même, Dromaeolus barnabita (Villa, 1837), Biphyllus lunatus (Fabricius, 1787), Mycetophagus decempunctatus Fabricius, 1801 et Psoa dubia (Rossi, 1792) ont été recensés et sont nouveaux pour le département de l’Ardèche. L ’Aptinus pyrenaeus Dejean, 1825 atteint quant à lui, sur le site de Châteaubourg sa limite d’aire de répartition septentrionale. Tous ces résultats sont très intéressants et assez riches compte tenu du fait que les peuplements arborés sur les sites d’étude sont relativement jeunes et récents. Cette richesse et diversité entomologique s’expliquent par plusieurs facteurs. Le premier vient d’une mosaïque de milieu alternant zone ouverte de prairie et de pelouses avec des milieux forestiers plus fermés. Associé à cette mosaïque, on retrouve sur le site naturel Crussol-Soyons une diversité en essences d’arbres. Effectivement, outre la chênaie (verte ou pubescente) qui est bien présente sur le site, on a aussi des peuplements de résineux (pins essentiellement) et des arbres à bois tendre (peupliers, saules) dans la zone de ripisylve des Goules sur Châteaubourg. Associé à cette diversité en biotope, on retrouve logiquement une diversité entomologique qui lui est directement inféodée. La présence de quelques arbres matures, sur le site, permet à des espèces de coléoptères rares et patrimoniaux d’être présentes. De même, conjointement, le fait que le site soit jouxté par de vastes zones forestières et par la ripisylve du Rhône permet un flux d’insectes alimentant le site de Crussol-Soyons. On a donc une « trame verte et bleu » qui enrichi le site de Crussol- Soyons. Concernant la gestion du site, pour maintenir et stimuler la richesse entomologique, nous recommandons de maintenir l’alternance milieux ouverts milieux fermés avec du pâturage maitrisé et dirigé. Ceci, soit avec des ânes tels que cela est le cas actuellement sur Crussol ou alors avec des ovins et caprins. De même, comme nous l’avons vu le peuplement arboré sur le site est relativement jeune. Pour stimuler la biodiversité entomologique, il est bien évident qu’il faudrait laisser vieillir les arbres et les divers peuplements.
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Introduction
Dans le cadre d’une mission de connaissance, la Communauté de communes Rhône Crussol a confié à la Société d’Histoire naturelle Alcide-d’Orbigny, l’étude des coléoptères sur les massifs de Châteaubourg, Crussol et Soyons (07). Le site Châteaubourg, Crussol et Soyons est à la fois un site Natura 2000 et un Espace Naturel Sensible. Ce site, présentant des massifs arborés variés, il a donc été décidé d’étudier les coléoptères saproxyliques qui sont d’excellents bioindicateurs pour caractériser la naturalité des forêts, des bois, bocages et ripisylves.
Pour la réalisation de cet inventaire, nous avons décidé de réaliser un protocole de piégeage rigoureux et reproductible et de l’associer à des prospections de terrain. Parallèlement, de nombreuses larves, du terreau et divers types de bois ont été mis en élevage pour compléter cet inventaire. De même, des chasses nocturnes avec un groupe électrogène et une lampe U.V. ont été réalisées. Ce rapport constitue le rapport final d’une étude qui se déroule sur deux années, de 2014 à 2015. Dans ce dernier, nous présenterons, les sites d’étude, les différentes techniques d’investigation et de piégeage employées au cours de l’inventaire. De même, nous donnerons une liste de toutes les espèces de coléoptère saproxyliques observés. Pour chacune des espèces bioindicatrices et patrimoniales rencontrées, nous donnerons une brève monographie illustrée ainsi qu’une cartographie précise (coordonnées GPS) des lieux de capture. Les coléoptères saproxyliques sont d’excellents bioindicateurs de la qualité des forêts. De par leurs exigences écologiques, ils sont le strict reflet de l’état de santé d’une forêt. Grâce à un simple constat de présence absence et en fonction du nombre d’espèces rencontrées, on peut donc caractériser la qualité et la naturalité des massifs forestiers. Récemment, des listes de coléoptères saproxyliques bioindicateurs ont été établies. La liste des coléoptères saproxyliques bioindicateurs de qualité des forêts françaises publiée par Hervé Brustel en 2004 dans les dossiers forestiers (Office National des Forêts) fait référence en la matière. Nous utiliserons cette liste, dans ce rapport, pour tenter de caractériser l’entomofaune ainsi que les peuplements des coléoptères saproxyliques du site de Crussol-Soyons. Nous tenterons de dégager des cortèges d’espèces de coléoptères saproxyliques, en fonction des différents sites étudiés. Pour ce faire nous appuierons nos observations de terrain par une analyse statistique. Fort des résultats obtenus nous tenterons de replacer la richesse et la biodiversité entomologique des divers sites étudiés dans un contexte plus général. Nous comparerons donc ces résultats avec ceux acquis lors d’études entomologiques sur d’autres sites emblématiques et patrimoniaux.
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.I) – Les sites de Châteaubourg, Crussol et Soyons
A) Présentation du site d’étude
Les massifs de Châteaubourg, Crussol et Soyons, situés à l'est du département de l'Ardèche à hauteur de Valence, sont les contreforts calcaires les plus septentionaux de la vallée du Rhône. Ils constituent une zone de transition géologique entre les reliefs cristallins de l'Ardèche du nord et les premières collines d'âge jurassique (tertiaire) qui, au sud de la Voulte, s'élargissent pour former l'Ardèche méridionale calcaire. L'intérêt géologique de la montagne de Crussol a été mis en évidence dans l'inventaire des sites géologiques remarquables de Rhône-Alpes : "La montagne de Crussol offre une belle série du trias supérieur au jurassique supérieur, avec des niveaux très fossilifères (nombreuses ammonites)."
Le patrimoine paysager est de grande qualité. Les massifs de Châteaubourg, Crussol et Soyons sont des belvédères remarquables sur le Rhône, tout le Valentinois, les horizons préalpins et les contreforts du Massif Central.
Au niveau de la végétation, on retrouve sur ces sites une alternance de chênaie pubescence avec de la chênaie verte, sous forme de taillis et de boisements jeunes, peu exploités. De même, des reliquats de plantations de résineux (Pinus) sont présents sur Crussol et Soyons. Sur Châteaubourg, la présence sur le site du ruisseau la « Goule » apporte un peuplement forestier de ripisylve avec des peupliers et des saules.
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Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 7 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Site de Crussol
Site de Soyons
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.II) - Les journées de prospection
Nous avons effectué 10 journées de prospection de terrain avec quatre chasses nocturnes, avec l’aide d’un groupe électrogène. Les jours de terrain se sont étalés du mois d’avril à août pour cibler la période d’activité optimale des coléoptères saproxyliques.
Ils se répartissent de la manière suivante :
2014 : - le 9 avril 2014, pose des pièges sur le site et prospection de terrain. - le 28 avril 2014, relevé des pièges sur le site et prospection de terrain. - le 04 juin 2014, prospection de terrain et chasse nocturne lampe U.V. - le 05 juin 2014, prospection de terrain et chasse nocturne lampe U.V. - le 06 juin 2014, prospection de terrain.
2015 : - le 7 avril 2015, pose des pièges sur le site et prospection de terrain. - le 02 juin 2015, prospection de terrain et chasse nocturne lampe frontale. - le 03 juin 2015, prospection de terrain. - le 03 août 2015, prospection de terrain et chasse nocturne lampe frontale. - le 04 août 2015, prospection de terrain.
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.III) - Les prospections de terrain
A) Les méthodes de prospection a) La recherche visuelle
Lors des prospections de terrain, toutes les niches écologiques susceptibles d’abriter des coléoptères saproxyliques ont été soigneusement inspectées. Elles sont de plusieurs natures. Premièrement, nous distinguerons les lieux qui sont le siège du développement larvaire. Ces habitats ont généralement un lien direct avec les arbres morts et en cours de décomposition. Tous les arbres dépérissant ainsi que tous les troncs et les souches ont fait l’objet d’une recherche active de larves et d’adultes de coléoptères saproxyliques. Deuxièmement, nous avons aussi inspecté les lieux d’alimentation (trophotopes*). Ils peuvent être très différents des habitats où se déroule le développement larvaire. Par exemple, pour les esp èces floricoles les secteurs de prairie, les clairières ainsi que le long des chemins doivent faire l’objet d’une attention particulière. Les fleurs, notamment les ombellifères et les composés, dont sont friands les insectes se développent pour la plupart d’entre elles dans des milieux ouverts ou semi ouverts.
b) L’élevage
Une autre technique pour inventorier les coléoptères saproxyliques consiste à les élever. Effectivement, il est souvent plus facile de rencontrer les larves dans du terreau, du bois mort ou pourrissant que les adultes. Il existe donc deux types d’élevage. Le premier consiste à placer dans de petites boites (boites de pellicule ou pots de confiture) les larves récoltées dans un substrat similaire à celui dans lequel elles ont été trouvées. La deuxième, plus encombrante, consiste à prélever dans les sites d’études du bois mort, des branches et brindilles pour les mettre dans des caisses dites à émergence. Le bois est généralement récolté en fin de saison (dans notre cas en septembre) et il faut attendre le printemps suivant (le cycle larvaire peut parfois durer plusieurs années) pour voir émerger les coléoptères saproxyliques.
* Les termes annotés d’un astérisque ont leur définition en annexe Cette technique d’élevage permet souvent d’inventorier des espèces discrètes ou qui sont peu attirées par les produits fermentés. Ces espèces ont souvent tendance à échapper aux techniques d’inventaires traditionnelles.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 10 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O c) Le piégeage
Pour compléter les prospections visuelles, nous avons disposé des pièges pour collecter les coléoptères saproxyliques. Deux types de pièges attractifs ont été utilisés. Le premier type de piège est le piège interception. Il est constitué de deux vitres en plexiglas croisées entre elles, au-dessous de laquelle se trouve un entonnoir. Un récipient rempli de liquide attractif est fixé à ce même entonnoir. Le liquide attractif est dans le cadre de notre protocole constitué d’alcool ménager, salé. Le sel sert essentiellement à éviter que le milieu pourrisse et permet une meilleure conservation des coléoptères. L’alcool va subir une fermentation et dégager des composés qui constitueront un milieu fermentescible similaire à ceux que perçoivent les insectes comme source d’alimentation et également à un message de stress d’un arbre à coloniser. Ceci, au même titre qu’une plaie suintante de sève sucrée qui va évoluer au contact de différents micro-organismes. Les composés ainsi dégagés signalent une faiblesse de l’arbre hôte. Les pièges interception permettent de capturer des insectes durant leurs déplacements en vol. Ils sont extrêmement efficaces pour capturer des coléoptères saproxyliques. Placés dans les frondaisons des arbres ils permettent d’inventorier des espèces qui ne descendent jamais de la cime des arbres.
Pour pouvoir réaliser notre étude, nous avons placé sur le terrain 30 pièges interception.
Nous avons aussi utilisé des pièges à chute ou pièges Barber. Ces pièges sont des pièges très simples. Cette technique de piégeage consiste à enterrer au ras du sol un récipient rempli de liquide attractif (alcool ménager) auquel on ajoute un conservateur (sel). Les insectes sont donc attirés par l’alcool et finissent par tomber dans le piège. Ce type de piège est particulièrement efficace pour capturer des Carabidae qui sont des insectes très mobiles et qui effectuent de très nombreux déplacements au sol.
Pour notre protocole, nous avons posé 30 pièges Barber en 2014.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 11 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Remarque : la première année d’étude, a montré les limites du piège Barber. En effet, le relief en pente et caillouteux n’a pas permis au différents pièges d’être très efficace. En effet, lors de fortes pluies, ces derniers étaient soit lessivés soit remplies de terre, rendant leur efficacité quasiment nulle. Aussi, pour la deuxième année d’étude, en 2015, nous les avons remplacés par deux pièges à fosses plus grands ; utilisant des jardinières blanches. A ces jardinières seront ajoutées des plaques de plexiglass pour combiner un effet d’interception. La couleur blanche des jardinières attireront les espèces floricoles. Ce type de piège est extrêmement efficace et apportera de nombreuses espèces à notre inventaire.
De même, en 2015, nous avons positionné un piège dit « tente Malaise » pour optimiser l’inventaire. Ce type de piège apporte généralement des espèces supplémentaires lors des inventaires.
D) Les chasses lumineuses
Quatre prospections nocturnes à l’aide d’une lampe de poche ont été effectuées. Effectivement, de très nombreuses espèces de coléoptères saproxyliques ne sont actives qu’à la tombée de la nuit. Il est donc, à ce moment-là, plus facile de les observer et de les inventorier. De même nous avons aussi réalisé 2 chasses nocturnes avec un groupe électrogène, pour tenter d’attirer à l’aide d’une lampe U.V. des espèces qui auraient échappé à l’inventaire classique.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 12 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O B) Positionnement des différents pièges sur le site d’étude
Dans un souci de reproductibilité du protocole de piégeage, nous avons relevé les coordonnées G.P.S (U.T.M ; Lambert 93) de l’emplacement de chaque piège.
De même, afin que notre inventaire soit le plus exhaustif possible, nous avons disposé nos pièges sur plusieurs secteurs des sites d’étude qui présentaient des faciès arborés différents.
Zone enrésinée sur le site de Soyons, sur lesquels des pièges interception et Barber ont été posés.
Zone avec de vieux chênes pubescents sur le site de Soyons, sur lesquels des pièges interception et Barber ont été posés en 2014 et 2015.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 13 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Zone avec de taillis de chênes pubescents sur le site de Crussol, sur lesquels des pièges interception et Barber ont été posés.
Zone avec de taillis de chênes pubescents et de chênes verts sur le site de Crussol, sur lesquels des pièges interception et Barber ont été posés.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 14 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Zone de ripisylve sur le site de Châteaubourg, sur laquelle des pièges interception et Barber ont été posés .
Zone de chênaie pubescente sur le site de Châteaubourg, sur laquelle des pièges interception et Barber ont été posés.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 15 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Verger abandonné sur le site de Châteaubourg, sur lequel des pièges interception et Barber ont été posés.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 16 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Emplacement des pièges en 2014 et 2015
Pièges Coordonnées Lambert 93 Coordonnées Lambert 93 Piège interception et Barber n°1 Crussol 845958.96 6428715.43 Piège interception et Barber n°2 Crussol 846061.95 6428666.51 Piège interception et Barber n°3 Crussol 946091.95 6428640.54 Piège interception et Barber n°4 Crussol 946120.96 6428606.58 Piège interception et Barber n°5 Crussol 846071.99 6428594.55 Piège interception et Barber n°6 Crussol 846062.99 6428594.54 Piège interception et Barber n°7 Crussol 845753.29 6428332.47 Piège interception et Barber n°8 Crussol 845761.39 6428247.51 Piège interception et Barber n°9 Crussol 845830.40 6428098.61 Piège interception et Barber n°10 Crussol 845912.39 6428062.69 Piège interception et Barber n°11 Crussol 845964.40 6427992.74 Piège interception et Barber n°12 Crussol 845794.52 6427930.67 Piège interception n° 1' Crussol 845965,91 6428715,1 Piège interception n° 6' Crussol 845659 6428250 Piège interception n° 7' Crussol 845624 6428140 Piège interception n° 8' Crussol 845594 6427987 Piège interception n° 9' Crussol 845578 6427986 Piège interception n° 10' Crussol 845571 6427991 Piège interception n° 11' Crussol 845584 6428016 Piège Malaise Crussol 846037 6428640 Piège interception et Barber n°1 Châteaubourg 845779.53 6432845.48 Piège interception et Barber n°2 Châteaubourg 845772.54 6432836.47 Piège interception et Barber n°3 Châteaubourg 845732.56 6432826.46 Piège interception et Barber n°4 Châteaubourg 845396.07 6433892.77 Piège interception et Barber n°5 Châteaubourg 845396.06 6433917.76 Piège interception et Barber n°6 Châteaubourg 845552.06 6433810.90 Piège interception et Barber n°7 Châteaubourg 845533.04 6433840.87 Piège interception et Barber n°8 Châteaubourg 845518.04 6433855.86 Piège interception n°1' Châteaubourg 845815 6432844 Piège interception n°2' Châteaubourg 845783 6432848 Piège interception n°3' Châteaubourg 845765 6432841 Piège interception n°7' Châteaubourg 845408 6433891 Piège Barber vitre Châteaubourg 845407 6433892 Piège interception et Barber n°1 Soyons 845489.46 6421857.02 Piège interception et Barber n°2 Soyons 845488.47 6421853.02 Piège interception et Barber n°3 Soyons 845487.47 6421852.02 Piège interception et Barber n°4 Soyons 845479.50 6421821.03 Piège interception et Barber n°5 Soyons 845479.52 6421821.05 Piège interception et Barber n°6 Soyons 845450.51 64218820.01 Piège interception et Barber n°7 Soyons 845585.45 6421831.10 Piège interception et Barber n°8 Soyons 845644.43 6421822.13 Piège interception et Barber n°9 Soyons 845649.41 6421845.13 Piège interception et Barber n°10 Soyons 845644.39 6421879.12 Piège interception n°1' Soyons 845484 6421860 Piège interception n°5' Soyons 845481 6421806 Piège Barber vitre Soyons 845577 6421831
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 17 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Emplacement des pièges sur le site de Châteaubourg
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 18 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Emplacement des pièges sur le site de Crussol
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 19 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Emplacement des pièges sur le site de Soyons
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 20 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
.IV) Les Coléoptères saproxyliques et la dégradation du bois
Coléoptères saproxyliques : on définit les Coléoptères saproxyliques comme les espèces « qui dépendent, pendant une partie de leur cycle de vie, du bois mort ou mourant d’arbres moribonds ou morts – debout ou à terre – ou de champignons du bois, ou de la présence d’autres organismes saproxyliques » (Speight, 1989).
Les cycles de l’énergie et des différents éléments nutritifs, tels que le carbone et l’azote, passent en forêt par un stade de « capitalisation » important à l’intérieur des arbres. Cette particularité de la production primaire des arbres s’accompagne d’une grande complexité du processus de recyclage qui y est associé. Ceci implique une grande richesse et aussi une grande spécificité des organismes saproxyliques qui restituent pour l’ensemble de la forêt le budget énergétique et nutritif représenté par un arbre mort.
Les coléoptères saproxyliques par conséquent jouent un rôle essentiel dans la survie et la régénération des forêts.
Selon l’état de dégradation du bois, on distingue plusieurs types de Coléoptères saproxyliques qui lui sont associés.
- Les xylophiles primaires ou pionniers : Ce sont des coléoptères capables d’attaquer des essences végétales vivantes. Le forestier les scinde en deux groupes : les « ravageurs primaires » pour les quelques espèces qui peuvent éventuellement attaquer des arbres en pleine vitalité, et ceux dits « ravageurs secondaires » pour les espèces attaquant les arbres dépérissant ou morts. Les ravageurs primaires sont surtout des défoliateurs et c’est essentiellement parmi les ravageurs secondaires que l’on rencontre les coléoptères saproxyliques. Les xylophiles primaires ont la caractéristique d’être les premiers à attaquer des arbres (vivant plus ou moins stressés, déhiscents*, moribonds ou morts brutalement et depuis peu : coupe ou chablis par exemple).
- Les xylophiles secondaires Ces insectes occupent des bois morts qu’ils colonisent en relais des espèces précédemment évoquées, par vagues successives, en fonction de leur régime alimentaire. Ils sont donc tous saprophytes. Il s’agit d’insectes capables d’exploiter directement la cellulose des bois en raison d’une activité cellulasique adaptée, ou d’espèces qui bénéficient d’une dégradation préalable du matériau par d’autres organismes. Les xylophages vrais sont équipés de leurs propres enzymes pour dégrader la cellulose et les hémicellulose du bois, y compris au niveau du bois de cœur. Ces insectes présentent généralement les cycles de vie les plus longs. On retrouve parmi cette catégorie nombre de Cerambycidae, des Anobiidae, des Bostrichidae et quelques Buprestidae.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 21 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O - Les saproxylophages : Les saproxylophages sont des coléoptères qui sont incapables de digérer directement la cellulose. On les retrouve davantage dans du bois plus dégradé et plus déstructuré. Ces coléoptères ont donc besoin d’humidité et d’un matériau souple pour évoluer, se retrouvant ainsi au milieu de leurs crottes et de sciures ou débris générés par d’autres xylophages.
- Les mycétophages des carpophores*: Les champignons du bois, dits lignicoles sont très variés et hébergent également des coléoptères saproxyliques qui leur sont plus ou moins inféodés.
- Les zoophages prédateurs : Ce sont des coléoptères prédateurs d’espèces saproxyliques, on les retrouve donc parmi ces dernières dans le bois. Ils sont généralement plus spécialisés envers le stade de décomposition du bois qu’envers un type de proie. Cela s’explique sans doute par leurs faibles capacités de forage et de déplacement à l’intérieur des différents matériaux qu’exploitent leurs proies.
- Les Polyphages : Ce sont des coléoptères qui a l’état larvaire sont aussi bien capable de se nourrir de matière végétale que d’être prédateur occasionnel de diverses larves, nymphes ou même d’imago d’insectes.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 22 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Pour des raisons bien évidentes de temps, il serait trop fastidieux d’expliquer en détail, dans ce rapport, le protocole précis ayant permis l’obtention de liste d’espèces bioindicatrices. Les tableaux analytiques et schématiques issus de la thèse de M. Hervé Brustel nous permettent de comprendre la logique et le cheminement adoptés pour réaliser une telle liste de référence.
Pour définir une espèce comme bioindicatrice, il faut connaître plusieurs notions la caractérisant. La première est une notion de rareté par rapport à la zone d’étude. Elle peut se résumer avec le tableau et l’encart suivant.
Composantes de la rareté liée à la répartition des coléoptères saproxyliques sur une zone d’étude.
Niveau Ip Présence sur l’aire Abondance locale des Localités connues de considérée populations l’espèce / / / 1 Oui Oui En nombre 2 Oui En nombre 2 Oui Oui Peu nombreuses 3 Oui Peu nombreuses 4 Oui Oui / Très peu à unique
Traduction en 5 classes du niveau de rareté des coléoptères saproxyliques en France, nommé « Ip »
Ip = indice situant le niveau de rareté chorologique* des espèces comme une appréciation de leur valeur patrimoniale. - “/“ pour les espèces probablement non observée de la zone considérée. - “1“ pour les espèces communes et largement distribuées (faciles à observer). - “2“ pour les espèces peu abondantes mais largement distribuées, ou, localisées mais éventuellement abondantes (difficile à observer). - “3“ pour les espèces jamais abondantes et localisées (demandant en Général des efforts d’échantillonnage spécifiques). - “4“ pour quelques espèces très rares, connues de moins de 5 localités actuelles ou contenues dans un seul département en France.
* Les termes annotés d’un astérisque ont leur définition en annexe
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 23 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O La seconde notion qui caractérise les espèces bioindicatrices est la notion du niveau d’exigence des coléoptères saproxyliques vis-à-vis de leur habitat larvaire.
Classement des niveaux d’exigence de différents coléoptères saproxyliques vis-à- vis de leur habitat larvaire.
Rareté des Niveau de Organismes Exemples types de bois dégradation en interface (volumes, du matériau avec le bois
Niveau essences) 0 / / / Organismes -saproxyliques 1 frais Poecilium alni, Cerambycidae Xylophage des branches de chênes moyen Melasis buprestoides, Eucnemidae Sur petits bois “évolués“ de feuillus 2 carié Xantochroa carniolica, Oedemeridae Saproxylophage (essences très variées) carié oui Tillus elongatus, Cleridae prédateur Polyphage de xylophiles secondaires frais oui Colydium elongatum, Colydiidae prédateur de petits xylophages (bois divers) oui frais Saperda octopunctata, Cerambycidae xylophage sur Tilleul oui moyen Oplosia cinerea, Cerambycidae xylophage surtout sur Tilleul 3 moyen oui Bolitophagus spp., Tenebrionidae mycétophages des polypores oui carié Osmoderma eremita, Cetoniidae en grandes cavités de feuillus oui carié oui Brachygonus sp., Elateridae prédateurs en cavités oui frais oui Dermestoides sanguinicollis, Cleridae prédateur de grosses proies sur gros feuillus oui moyen oui Mycetoma suturale, Melandryidae mycétophage (Lasiochlaena spp. Sur gros bois)
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 24 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Cette appréciation de la sténoecie* sera nommée « If » pour « indice en lien avec le fonctionnement de la saproxylation », et peut être littéralement déclinée comme suit.
Traduction en 4 classes de niveau de sténoecie des coléoptères saproxyliques en France, nommé « If »
If = indice situant le niveau d’exigence biologique des coléoptères saproxyliques (habitat larvaire). - “0“ pour les espèces saproxyliques. - “1“ pour les espèces pionnières dans la dégradation du bois, et/ou peu exigeantes en terme d’habitat. - “2“ pour les espèces exigeantes en terme d’habitat : liées aux gros bois, à des essences peu abondantes, demandant une modification particulière et préalable du matériau par d’autres organismes et/ou prédatrices peu spécialisées. - “3“ pour les espèces très exigeantes dépendantes le plus souvent des espèces précédentes (prédateurs de proies exclusives ou d’espèces elles-mêmes exigeantes) ou d’habitats étroits et rares (champignons lignicoles, cavités, très gros bois en fin de dégradation, gros bois d’essences rares…)
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 25 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Légende des critères descriptifs utilisés pour caractériser les espèces de coléoptères saproxyliques bioindicateurs des forêts françaises de qualité.
~ « MILIEUX » : situations et types de milieux boisés ou l’espèce est présente - « Plaine » ou « Pla. » : présence en plaines et collines - « Montagne » ou « Mont. » : présence à l’étage montagnard - « Ripisylve » ou « Rip. » : présence en ripisylves, forêts alluviale ou autres zones humides - « arboré » : milieu boisé sans ambiance forestière obligatoire - « forestier » : milieu avec une ambiance forestière marquée - « arboré frais » : milieu boisé pas obligatoirement forestier mais humide ~ « ESSENCES » : essences concernées en priorité par l’habitat larvaire - « diverses » : diverses essences concernées, résineuses ou feuillus - « feuillus » : sur différentes espèces de feuillus - « résineux » : sur différentes espèces de conifères - « genre » : un ou plusieurs genres hôtes préférentiels ~ « HABITATS » : description sommaire des types de bois et du niveau de dégradation du matériau caractérisant l’habitat (larvaire) connu de l’espèce, si, habitats particuliers liés à la saproxylation (carpophores ou cavités). ~ « BIOLOGIE Larvaire » : régime alimentaire des larves ou position des foreurs dans l’évolution du bois (xylophile I –pour foreur pionnier du bois- ou xylophile II –pour foreur secondaire). ~ « If » : voir encart précédent ~ « Ip » : voir encart précédent. « Ipn », pour le nord du territoire, « Ips » pour le sud. Séparation correspondant à une ligne Lyon/La Rochelle pour les forêts de plaines et collines et Nice/Bordeaux pour les montagnes. ~ « SORTIE » : phénologie des adultes, mois et périodes ~ « IDENTIF » : (pour « facilité d’identification ») : cette notion est valable si l’utilisateur est certain de l’identification du genre. Les ouvrages de vulgarisation sont proscrits, quelle que soit la catégorie (y compris pour la majorité des espèces dites « facile » à identifier ! - « Facile » : reconnaissable à vue quand on connaît déjà l’espèce - « Délicate » : reconnaissable d’après étude de caractères spécifiques, l’aide extérieure d’un entomologiste expérimenté étant toujours souhaitable. - « Difficile » : demande une grande attention pour la détermination ou la validation d’un spécialiste. ~ « METHODES » : (pour « méthodes de capture les plus adaptées pour les imagos ») - « à vue » : pas de technique particulière, observation directe in situ - « battage » : technique du battage des supports sur nappe - « écorçage » : observation des imagos sous écorces - « élevage » : enfermement des bois habités pour observer l’émergence des imagos - « milieu hôte » ou « en loge » : se trouve par décorticage ou inspection de l’habitat ou se développe l’espèce, avec éventuellement « tamisage » et extraction (au « Berlèse* »). - « lampe : pour les espèces nocturnes capturées à vue par prospections sur les milieux hôtes à la lampe de poche. - « piège » : piège attractif en général au vin ou à la bière (« barber » : piège fosse) - « sur troncs », « sur fleurs »… : milieux fréquentés régulièrement par les imagos (à vue) - « UV » : insectes attirés aux pièges lumineux
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 26 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O D’une manière générale, les espèces de coléoptères saproxyliques inscrites sur la liste des coléoptères bioindicateurs de qualité des forêts françaises sont toutes inféodées à des niches et micro niches écologiques directement liées au bois. Plus on aura d’espèces issues de cette liste sur un secteur d’étude donné, plus le biotope offre des micros habitats variés. Ainsi plus cette liste d’espèces bioindicatrices sera importante et plus on tendra vers la naturalité.
D’après les résultats d’études déjà réalisées pour les coléoptères saproxyliques sur différents sites en France (cf. annexe page 91), il nous sera donc possible de comparer nos données et d’en évaluer la réelle richesse.
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.V) - Les différentes espèces de coléoptères
saproxyliques rencontrées
Dans ce chapitre, nous donnerons une liste d’espèce de coléoptères observées durant les deux année d’étude, sur les massifs de Châteaubourg, Crussol et Soyons. Cette liste ne concerne pas uniquement les coléoptères saproxyliques. Effectivement, il nous apparaissait inopportun d’occulter certaines espèces inventoriées qui sont dans le domaine de compétence de l’auteur sous le seul prétexte qu’elles n’étaient pas saproxyliques. Par voie de conséquent, ces espèces sont donc recensées dans ce rapport, mais ne feront pas l’objet d’une analyse fine et détaillée contrairement aux espèces saproxyliques.
Dans les tableaux ci-dessous, les espèces non saproxyliques seront donc figurées en vert. Les espèces saproxyliques seront quant à elles en noir et les espèces saproxyliques bioindicatrices de qualité des forêts françaises seront figurées en rouge.
La nomenclature adoptée, pour tous les taxons, dans notre rapport est celle utilisée par Fauna- Europea (http:/ / faunaeur.com).
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Crussol Piège Interception Soyons Piège Interception Châteaubourg observation
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Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Aderidae Euglenes oculatus (Paykull, 1798) 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Anobiidae Anobium hederae Ihssen, 1949 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Anobiidae Anobium punctatum (De Geer, 1774) 2 0 0 0 9 9 0 2 0 0 Anobiidae Dorcatoma setosella Mulsant & Rey, 1864 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Anobiidae Gastrallus laevigatus (Olivier, 1790) 0 0 0 0 4 0 0 0 0 0 Anobiidae Gastrallus sp 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Anobiidae Hadrobregmus denticollis (Creutzer, 1796) 2 0 0 0 2 0 0 2 0 0 Anobiidae Hemicoelus fulvicornis (Sturm, 1837) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anobiidae Hemicoelus nitidus (Fabricius, 1792) 1 3 0 0 1 0 0 0 0 0 Anobiidae Hemicoelus rufipennis (Duftschmid, 1825) 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anobiidae Oligomerus brunneus (Olivier, 1790) 26 3 0 0 22 0 0 4 0 0 Anobiidae Priobium carpini (Herbst, 1793) 0 0 0 0 7 0 0 17 0 0 Anobiidae Ptilinus pectinicornis (Linnaeus, 1758) 0 0 0 0 0 0 0 2 0 0 Anobiidae Ptinomorphus imperialis (Linnaeus, 1767) 0 0 0 0 1 0 0 1 1 0 Anobiidae Ptinomorphus regalis (Duftschmid, 1825) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0
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Crussol Piège Barber
Cr
Crussol Piège Interception Soyons Piège Interception Châteaubourg observation
Châteaubourg Châteaubourg Piège Barber
Crussol visuelleobservation Soyons visuelleobservation
Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Anobiidae Ptinus aubei Boieldieu, 1854 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anobiidae Ptinus bidens Olivier, 1790 1 66 0 0 1 1 0 0 0 0 Anobiidae Ptinus italicus Aragona, 1830 0 2 0 0 4 1 0 0 0 0 Anobiidae Ptinus lichenum Marsham, 1802 4 0 0 obs 3 1 obs 0 0 0 Anobiidae Ptinus sexpunctatus Panzer, 1789 2 0 0 0 6 0 0 0 0 0 Anobiidae Ptinus subpilosus Sturm, 1837 0 1 0 obs 0 0 obs 0 0 0 Anthribidae Platystomos albinus (Linnaeus, 1758) 1 0 0 obs 0 0 obs 1 0 obs Anthribidae Tropideres albirostris (Schaller, 1783) 1 0 0 obs 0 0 0 0 0 0 Biphyllidae Biphyllus lunatus (Fabricius, 1787) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Biphyllidae Diplocoelus fagi Guerin-Meneville, 1844 2 5 0 obs 9 0 0 2 0 obs Bostrichidae Lyctus brunneus (Stephens, 1830) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Bostrichidae Psoa dubia (Rossi, 1792) 1 0 0 0 0 0 0 10 1 0 Bostrichidae Scobicia chevrieri (Villa & Villa, 1835) 6 0 0 obs 3 0 obs 1 0 obs Bostrichidae Sinoxylon perforans (Schrank, 1798) 0 0 0 obs 1 0 0 1 0 0 Bostrichidae Sinoxylon sexdentatum (Olivier, 1790) 0 0 0 obs 0 0 0 1 0 0 Bostrichidae Xylopertha retusa (Olivier, 1790) 6 0 0 obs 0 0 obs 1 0 0 Bothrideridae Oxylaemus cylindricus (Panzer, 1796) 7 3 0 0 4 0 0 2 0 0 Buprestidae Agrilus angustulus (Illiger, 1803) 1 0 1 obs 0 0 0 0 0 obs Buprestidae Agrilus hastulifer Ratzeburg, 1837 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Buprestidae Agrilus laticornis (Illiger, 1803) 0 0 0 0 0 0 0 2 0 0 Buprestidae Agrilus sulcicollis Boisduval, 1835 1 0 0 0 1 0 0 1 0 0 Buprestidae Anthaxia quadripunctata (Linnaeus 1758) 0 0 0 obs 1 0 0 0 0 0 Buprestidae Anthaxia salicis (Fabricius, 1776) 1 0 1 obs 1 0 0 2 0 0 Buprestidae Anthaxia suzannae Théry, 1942 1 0 0 obs 0 0 obs 0 0 obs Buprestidae Chrysobothris affinis (Fabricius, 1794) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 obs Buprestidae Agrilus ater (Linnaeus, 1767) 0 0 0 0 0 0 0 0 0 obs Buprestidae Eurythyrea micans (Fabricius, 1794) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Carabidae Amara aenea (De Geer, 1774) 0 0 0 obs 0 0 obs 0 1 obs Carabidae Amara familiaris (Duftschmid, 1812) 0 0 0 obs 0 0 0 1 0 0 Carabidae Amara ovata (Fabricius, 1792) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Carabidae Anisodactylus binotatus (Fabricius, 1787) 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Carabidae Aptinus pyrenaeus Dejean, 1825 0 1 0 0 0 1 0 0 9 0 Carabidae Brachinus explodens Duftschmid, 1812 0 2 0 0 0 0 0 0 20 0 Carabidae Calathus fuscipes (Goeze, 1777) 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0
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Crussol Piège Interception Soyons Piège Interception Châteaubourg observation
Châteaubourg Châteaubourg Piège Barber
Crussol visuelleobservation Soyons visuelleobservation
Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Carabidae Carabus coriaceus Linnaeus, 1758 0 0 0 obs 0 1 0 0 0 0 Carabidae Carabus intricatus Linnaeus, 1761 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Carabidae Carabus violaceus Linnaeus, 1758 0 0 0 obs 0 1 obs 0 1 0 Carabidae Diachromus germanus (Linnaeus, 1758) 1 0 0 obs 0 0 0 1 0 obs Carabidae Dromius meridionalis Dejean 1825 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Carabidae Harpalus affinis (Schrank, 1781) 0 0 0 obs 0 0 obs 0 1 obs Carabidae Harpalus tardus (Panzer, 1797) 1 0 0 obs 1 0 obs 1 0 0 Carabidae Leistus rufomarginatus (Duftschmid, 1812) 1 1 0 obs 0 0 0 0 0 0 Carabidae Nebria brevicollis (Fabricius, 1792) 1 1 0 obs 0 0 0 0 0 obs Carabidae Parophonus maculicornis (Duftschmid, 1812) 0 0 0 0 0 0 0 0 1 obs Carabidae Platyderus depressus (Audinet-Serville, 1821) 1 0 0 obs 0 0 0 0 0 0 Carabidae Pterostichus madidus (Fabricius, 1775) 1 29 0 obs 0 83 obs 0 2 obs Carabidae Trechus quadristriatus (Schrank, 1781) 1 0 0 0 1 0 0 1 0 0 Cerambycidae Aegomorphus clavipes (Schrank, 1781) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Cerambycidae Aegosoma scabricorne (Scopoli, 1763) 0 0 0 obs 0 0 0 3 0 0 Cerambycidae Agapanthia cardui (Linnaeus, 1767) 0 0 0 obs 0 0 0 0 1 0 Cerambycidae Agapanthia villosoviridescens (De Geer, 1775) 0 0 0 obs 1 0 0 0 0 0 Cerambycidae Agapanthia violacea (Fabricius, 1775) 0 0 0 obs 0 0 0 0 0 0 Cerambycidae Alosterna tabacicolor (De Geer, 1775) 2 1 1 0 1 0 0 1 1 0 Cerambycidae Anaglyptus gibbosus (Fabricius, 1787) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Cerambycidae Anastrangalia sanguinolenta (Linnaeus, 1761) 2 0 0 obs 7 1 obs 0 0 0 Cerambycidae Anisorus quercus Goeze, 1783 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Cerambycidae Anoplodera sexguttata (Fabricius, 1775) 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Cerambycidae Arhopalus rusticus (Linnaeus, 1758) 14 0 0 0 24 2 obs 0 0 0 Cerambycidae Arhopalus syriacus (Reitter, 1895) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Cerambycidae Cerambyx cerdo Linnaeus, 1758 7 0 2 obs 2 0 0 0 0 0 Cerambycidae Cerambyx scopolii Fuessly, 1775 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Cerambycidae Chlorophorus glabromaculatus (Goeze, 1777) 4 0 0 0 3 0 0 0 0 0 Cerambycidae Clytus arietis (Linnaeus, 1758) 1 0 0 obs 1 0 0 3 0 obs Cerambycidae Deroplia genei (Aragona, 1830) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Cerambycidae Dinoptera collaris (Linnaeus, 1758) 1 0 0 obs 0 0 obs 0 0 obs Cerambycidae Exocentrus punctipennis Mulsant & Guil., 1856 0 0 0 0 0 0 0 2 0 0 Cerambycidae Grammoptera abdominalis (Stephens, 1831) 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Cerambycidae Grammoptera ruficornis (Fabricius, 1781) 1 0 0 obs 1 0 obs 1 1 obs
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Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Cerambycidae Grammoptera ustulata (Schaller, 1783) 2 0 0 obs 1 0 0 1 0 0 Cerambycidae Leptura aurulenta Fabricius, 1792 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Cerambycidae Mesosa nebulosa (Fabricius, 1781) 4 0 0 obs 0 0 obs 1 0 0 Cerambycidae Monochamus galloprovincialis (Olivier, 1795) 2 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Cerambycidae Morimus asper (Sulzer, 1776) 0 0 0 0 0 0 0 0 0 obs Cerambycidae Obrium brunneum (Fabricius, 1792) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Cerambycidae Paracorymbia fulva (De Geer, 1775) 1 0 0 obs 2 0 obs 3 0 obs Cerambycidae Parmena balteus (Linnaeus, 1767) 9 1 0 obs 4 1 obs 4 1 0 Cerambycidae Pedostrangalia revestita (Linnaeus, 1767) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Cerambycidae Phymatodes testaceus (Linnaeus, 1758) 17 0 0 obs 11 0 obs 1 1 0 Cerambycidae Plagionotus arcuatus (Linnaeus, 1758) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Cerambycidae Plagionotus detritus (Linnaeus, 1758) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Cerambycidae Poecilium fasciatum (Villers, 1789) 0 0 0 0 0 0 0 2 0 0 Cerambycidae Poecilium lividum (Rossi, 1794) 0 0 0 obs 0 0 0 1 0 0 Cerambycidae Pogonocherus hispidus (Linnaeus, 1758) 0 0 0 obs 1 0 obs 1 0 0 Cerambycidae Pseudosphegesthes cinerea (Castelnau, 1835) 2 0 0 0 5 0 0 0 0 0 Cerambycidae Rhagium inquisitor Linnaeus, 1758 14 0 0 obs 20 0 obs 0 3 0 Cerambycidae Rhagium sycophanta (Schrank, 1781) 4 0 0 obs 3 0 0 0 0 0 Cerambycidae Rutpela maculata (Poda, 1761) 1 0 0 obs 4 0 obs 3 0 obs Cerambycidae Spondylis buprestoides (Linnaeus, 1758) 16 0 0 0 2 0 0 0 0 0 Cerambycidae Stenopterus rufus Linnaeus, 1767 0 0 0 obs 0 0 obs 1 0 obs Cerambycidae Stenurella bifasciata (Müller, 1776) 1 0 2 obs 0 5 obs 2 2 obs Cerambycidae Stenurella melanura (Linnaeus, 1758) 2 1 3 obs 1 0 obs 2 0 0 Cerambycidae Trichoferus fasciculatus (Faldermann, 1837) 0 0 2 0 6 0 0 0 0 0 Cerambycidae Trichoferus holosericeus (Rossi, 1790) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Cerambycidae Trichoferus pallidus (Olivier, 1790) 4 0 0 0 3 0 0 0 0 0 Cerambycidae Xylotrechus antilope (Schönherr, 1817) 2 0 0 obs 1 0 obs 1 0 0 Cerambycidae Xylotrechus arvicola (Olivier, 1795) 3 0 0 obs 0 0 0 4 0 0 Cerambycidae Xylotrechus stebbingi Gahan, 1906 0 0 0 0 0 0 0 4 0 0 Cetoniidae Cetonia aurata (Linnaeus, 1761) 12 0 0 obs 16 3 obs 9 4 obs Cetoniidae Gnorimus variabilis (Linnaeus, 1758) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Cetoniidae Oxythyrea funesta (Poda, 1761) 1 0 0 obs 0 1 obs 1 3 obs Cetoniidae Protaetia cuprea (Fabricius, 1775) 15 0 0 obs 4 0 obs 2 1 obs Cetoniidae Protaetia fieberi fieberi (Kraatz, 1880) 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0
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Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Cetoniidae Protaetia lugubris (Herbst, 1786) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Cetoniidae Protaetia morio (Fabricius, 1781) 2 0 0 obs 0 0 obs 3 0 0 Cetoniidae Tropinota hirta (Poda, 1761) 0 0 0 obs 0 1 obs 0 0 0 Cetoniidae Valgus hemipterus (Linnaeus, 1758) 1 0 1 obs 0 0 obs 7 0 obs Ciidae Cis bicornis Mellie, 1848 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Ciidae Cis micans (Fabricius, 1792) 1 0 0 obs 0 0 0 0 0 0 Ciidae Cis rugulosus Mellié, 1848 1 0 0 obs 0 0 0 0 0 0 Ciidae Orthocis lucasi (Abeille de Perrin, 1874) 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Cleridae Clerus mutillarius Fabricius 1775 68 1 0 obs 42 0 0 12 0 0 Cleridae Korynetes caeruleus (De Geer, 1775) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Cleridae Opilo domesticus (Sturm, 1837) 3 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Cleridae Opilo mollis (Linnaeus, 1758) 7 0 0 0 2 0 0 0 0 0 Cleridae Opilo pallidus (Olivier, 1795) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Cleridae Thanasimus formicarius (Linnaeus, 1758) 10 0 0 obs 5 0 obs 3 1 0 Cleridae Tillus elongatus (Linnaeus, 1758) 0 0 0 0 2 0 0 0 0 0 Cleridae Trichodes alvearius (Fabricius, 1792) 1 0 1 obs 0 0 obs 1 0 obs Curculionidae Acalles parvulus Boheman, 1837 0 0 0 obs 0 0 0 0 1 0 Curculionidae Camptorhinus simplex Seidlitz, 1867 1 0 0 0 1 0 0 1 4 0 Curculionidae Camptorhinus statua (Rossi, 1790) 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 Curculionidae Cossonus parallelepipedus (Herbst, 1795) 22 0 0 0 5 0 0 0 0 0 Curculionidae Curculio villosus Fabricius, 1781 0 0 0 0 3 0 0 0 0 0 Curculionidae Dryocoetes autographus (Ratzeburg, 1837) 0 0 0 obs 3 1 obs 0 0 0 Curculionidae Dryocoetes villosus (Fabricius, 1792) 10 5 0 obs 2 0 0 0 1 0 Curculionidae Hylastes ater (Paykull, 1800) 3 0 0 obs 1 1 obs 0 0 0 Curculionidae Hylastes attenuatus Erichson, 1836 35 0 0 obs 34 7 obs 0 5 0 Curculionidae Hylastes linearis Erichson, 1836 12 0 0 0 15 0 0 0 0 0 Curculionidae Hylastinus obscurus (Marsham, 1802) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Curculionidae Hylesinus crenatus (Fabricius, 1787) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Curculionidae Hylesinus fraxini (Panzer, 1779) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 obs Curculionidae Hylesinus toranio (Danthoine 1788) 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Curculionidae Hylobius abietis (Linnaeus, 1758) 2 0 0 obs 5 0 obs 0 0 0 Curculionidae Orchestes avellanae (Donovan, 1797) 0 0 0 obs 1 1 obs 0 0 0 Curculionidae Orchestes pilosus (Fabricius, 1781) 1 0 0 obs 0 0 obs 0 0 0 Curculionidae Phloeophagus lignarius (Marsham, 1802) 0 0 0 0 1 0 obs 0 1 0
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Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Curculionidae Platypus cylindrus (Fabricius, 1792) 3 0 0 obs 1 0 obs 0 0 0 Curculionidae Rhyncolus elongatus (Gyllenhal, 1827) 29 0 0 0 5 1 0 3 0 0 Curculionidae Ruteria hypocrita (Boheman, 1837) 0 1 0 0 0 3 obs 0 0 0 Curculionidae Scolytus intricatus (Ratzeburg, 1837) 1 0 0 obs 5 0 obs 10 1 0 Curculionidae Scolytus mali (Bechstein, 1805) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Curculionidae Scolytus rugulosus (Müller, 1818) 6 0 0 0 0 0 0 2 0 0 Curculionidae Xyleborinus saxesenii (Ratzeburg, 1837) 138 1 0 obs 58 0 0 28 1 obs Curculionidae Xyleborus dispar (Fabricius, 1792) 156 5 0 0 129 1 0 38 9 obs Curculionidae Xyleborus dryographus (Ratzeburg, 1837) 496 10 0 0 128 5 0 58 15 0 Curculionidae Xyleborus eurygraphus (Ratzeburg, 1837) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Curculionidae Xyleborus monographus (Fabricius, 1792) 222 46 0 obs 203 42 0 63 6 0 Dasytidae Aplocnemus impressus (Marsham, 1802) 4 0 1 obs 2 0 0 1 0 0 Dasytidae Danacea nigritarsis (Kuster 1850) 0 0 4 0 0 0 0 0 0 0 Dasytidae Danacea sp 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Dasytidae Dasytes aeratus Stephens 1830 7 0 1 obs 2 0 obs 2 0 0 Dasytidae Dasytes croceipes Kiesenwetter, 1865 2 0 0 0 4 0 0 1 0 0 Dasytidae Dasytes pauperculus Laporte, 1840 1 0 0 0 2 0 0 2 0 0 Dasytidae Dasytes plumbeus (Müller, 1776) 7 0 0 obs 1 0 obs 1 3 0 Dasytidae Psilothrix viridicoerulea (Geoffroy, 1785) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 obs Dermestidae Ctesias serra (Fabricius, 1792) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Dermestidae Dermestes frischi Kugelann, 1792 1 0 0 obs 0 0 0 0 0 0 Dermestidae Dermestes olivieri Lepesme, 1939 3 0 0 0 0 0 0 2 0 0 Dermestidae Dermestes sardous Kuester, 1846 0 0 0 0 0 0 0 15 0 0 Dermestidae Dermestes undulatus Brahm, 1790 0 0 0 obs 0 0 obs 2 0 0 Dermestidae Megatoma undata (Linnaeus, 1758) 1 0 0 0 0 1 0 1 1 0 Drilidae Drilus flavescens Olivier, 1790 0 0 0 obs 2 0 0 4 0 obs Elateridae Adrastus pallens (Fabricius, 1792) 7 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Elateridae Agriotes gallicus Lacordaire, 1835 6 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Elateridae Agriotes pallidulus (Illiger, 1807) 1 0 0 obs 0 0 0 1 0 0 Elateridae Agriotes ustulatus (Schaller, 1783) 0 0 0 0 0 0 0 7 0 0 Elateridae Ampedus cardinalis (Schiödte, 1865) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Elateridae Ampedus glycerus Herbst, 1784 3 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Elateridae Ampedus pomorum (Herbst, 1784) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Elateridae Ampedus quercicola (Buysson, 1887) 7 0 0 obs 13 0 0 1 1 0
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Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Elateridae Ampedus rufipennis (Stephens, 1830) 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Elateridae Ampedus sanguineus (Linnaeus, 1758) 1 0 0 0 6 0 0 0 0 0 Elateridae Ampedus sanguinolentus (Schrank, 1776) 2 0 0 0 1 0 0 4 3 0 Elateridae Athous bicolor (Goeze, 1777) 1 1 0 obs 0 0 0 0 0 0 Elateridae Athous dejeani (Laporte de Castelnau, 1840) 2 1 0 obs 0 0 0 1 0 0 Elateridae Athous haemorrhoidalis (Fabricius, 1801) 23 2 1 obs 44 0 obs 22 9 obs Elateridae Athous tomentosus Mulsant, 1855 4 3 0 obs 1 0 obs 4 0 0 Elateridae Betarmon bisbimaculatus (Fabricius, 1803) 0 0 0 0 0 0 0 2 0 0 Elateridae Brachygonus campadellii Platia, 2000 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Elateridae Brachygonus ruficeps (Mulsant & Guill., 1855) 2 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Elateridae Calambus bipustulatus (Linnaeus, 1767) 4 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Elateridae Cardiophorus goezei Sánchez-Ruiz, 1996 1 0 0 obs 1 0 0 1 0 obs Elateridae Cardiophorus gramineus (Scopoli, 1763) 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Elateridae Cardiophorus nigerrimus Erichson, 1840 0 0 0 0 0 0 0 1 0 obs Elateridae Cidnopus pilosus (Leske, 1785) 0 0 0 obs 0 obs 0 1 0 obs Elateridae Dicronychus cinereus (Herbst, 1784) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Elateridae Drapetes mordelloides Host, 1789 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Elateridae Drasterius bimaculatus (Rossi, 1790) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Elateridae Elater ferrugineus Linnaeus, 1758 3 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Elateridae Hemicrepidius hirtus (Herbst, 1784) 8 2 0 obs 1 1 obs 3 0 0 Elateridae Idolus picipennis (Bach, 1852) 2 0 0 0 0 0 0 2 0 0 Elateridae Ischnodes sanguinicollis (Panzer, 1793) 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 Elateridae Lacon punctatus (Herbst, 1779) 0 0 0 obs 0 0 obs 2 0 0 Elateridae Limonius minutus (Linnaeus, 1758) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Elateridae Melanotus crassicollis (Erichson, 1841) 3 0 0 0 4 0 0 2 0 0 Elateridae Melanotus punctolineatus (Pelerin, 1829) 16 2 0 obs 25 1 obs 5 3 0 Elateridae Melanotus tenebrosus (Erichson, 1841) 1 0 0 obs 1 0 obs 1 0 0 Elateridae Nothodes parvulus (Panzer, 1799) 152 5 2 obs 152 10 obs 2 3 0 Elateridae Pheletes quercus (Olivier, 1790) 3 0 0 obs 12 32 obs 10 2 obs Elateridae Stenagostus rhombeus (Olivier, 1790) 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Elateridae Stenagostus rufus (De Geer, 1774) 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Erotylidae Dacne bipustulata (Thunberg, 1781) 1 0 0 0 0 0 0 2 0 obs Erotylidae Triplax russica (Linnaeus, 1758) 3 0 0 0 3 0 0 0 0 0 Erotylidae Tritoma bipustulata Fabricius, 1775 3 0 0 0 0 0 0 13 0 obs
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Crussol Piège Interception Soyons Piège Interception Châteaubourg observation
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Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Eucnemidae Dromaeolus barnabita (Villa, 1837) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Eucnemidae Eucnemis capucina Ahrens, 1812 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Eucnemidae Hylis olexai (Palm, 1955) 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Eucnemidae Melasis buprestoides (Linnaeus, 1761) 2 0 0 0 2 0 0 2 1 0 Eucnemidae Microrhagus emyi (Rouget, 1856) 1 0 0 0 4 0 0 1 0 0 Eucnemidae Microrhagus lepidus Rosenhauer, 1847 0 0 0 0 2 0 0 0 1 0 Histeridae Carcinops pumilio (Erichson, 1834) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Histeridae Margarinotus merdarius (Hoffmann, 1803) 5 0 0 0 1 1 0 0 0 0 Histeridae Margarinotus punctiventer (Marseul, 1854) 0 0 0 0 0 2 0 0 0 0 Histeridae Paromalus flavicornis (Herbst, 1792) 5 0 0 obs 5 0 obs 1 0 0 Histeridae Platysoma elongatum (Olivier, 1789) 8 0 0 0 4 0 0 0 0 0 Laemophloeidae Placonotus testaceus (Fabricius, 1787) 1 0 0 obs 0 0 0 0 0 obs Lampyridae Lampyris noctiluca (Linnaeus, 1767) 1 0 0 obs ob0 0 obs 0 0 0 Lampyridae Phosphaenus hemipterus (Goeze, 1777) 0 1 0 0 0 0 0 0 4 0 Latridiidae Cartodere nodifer (Westwood, 1839) 1 0 0 obs 0 0 obs 1 0 0 Latridiidae Enicmus brevicornis (Mannerheim, 1844) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Leiodidae Anisotoma humeralis (Fabricius, 1792) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Lucanidae Dorcus parallelipipedus (Linnaeus, 1785) 1 6 0 obs 0 2 obs 1 6 obs Lucanidae Lucanus cervus (Linnaeus, 1758) 4 0 0 obs 1 0 obs 4 0 0 Lymexylidae Hylecoetus dermestoides (Linnaeus, 1861) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Lymexylidae Lymexylon navale (Linnaeus, 1758) 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Melandryidae Abdera quadrifasciata (Curtis, 1829) 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Melandryidae Conopalpus brevicollis Kraatz, 1855 3 1 0 obs 7 0 obs 0 0 0 Melandryidae Marolia variegata (Bosc d'Antic, 1792) 0 0 0 0 1 0 obs 0 0 0 Melandryidae Phloiotrya tenuis (Hampe, 1850 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Melandryidae Rushia parreyssi (Mulsant, 1856) 43 0 0 0 50 0 0 0 0 0 Melolonthidae Amadotrogus vicinus (Mulsant, 1842) 0 0 0 0 0 0 obs 1 0 0 Melolonthidae Rhizotrogus aestivus (Olivier, 1789) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Melolonthidae Serica brunnea (Linnaeus, 1758) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Monotomidae Rhizophagus bipustulatus (Fabricius, 1792) 0 1 0 obs 1 0 obs 0 0 obs Monotomidae Rhizophagus parallelocollis Gyllenhal, 1827 3 0 0 0 3 0 0 0 0 0 Monotomidae Rhizophagus perforatus Erichson, 1845 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 Mordellidae Mordellistena variegata (Fabricius 1798) 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 Mordellidae Tomoxia bucephala (Costa, 1854) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0
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Châteaubourg Châteaubourg Piège Barber
Crussol visuelleobservation Soyons visuelleobservation
Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Mycetophagidae Eulagius filicornis (Reitter, 1887) 2 0 0 0 2 0 0 1 0 0 Mycetophagidae Litargus connexus (Geoffroy, 1785) 5 3 0 obs 2 1 obs 3 1 obs Mycetophagidae Mycetophagus decempunctatus Fabricius, 1801 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Mycetophagidae Mycetophagus piceus (Fabricius, 1777) 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 Mycetophagidae Mycetophagus quadriguttatus Müller, 1821 3 1 0 obs 2 0 0 0 0 0 Mycetophagidae Mycetophagus quadripustulatus (Linn., 1761) 0 0 0 0 0 0 0 7 0 0 Nitidulidae Amphotis marginata (Fabricius, 1781) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Nitidulidae Glischrochilus quadrisignatus (Say, 1835) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Nitidulidae Pityophagus laevior Abeille, 1872 0 0 0 0 2 0 0 0 0 0 Nitidulidae Pocadius ferrugineus (Fabricius, 1775) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Nitidulidae Soronia oblonga Brisout, 1863 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 Nitidulidae Stelidota geminata (Say, 1825) 1 3 0 0 2 0 0 5 8 0 Oedemeridae Anogcodes seladonius (Fabricius, 1792) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 obs Oedemeridae Chrysanthia viridissima (Linnaeus, 1758) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Oedemeridae Ischnomera caerulea (Linnaeus, 1758) 5 4 0 obs 0 0 0 0 0 0 Oedemeridae Nacerdes carniolica (Gistl, 1834) 4 0 0 0 2 5 0 4 0 0 Oedemeridae Oedemera femoralis Olivier, 1803 5 0 0 obs 1 1 obs 8 0 obs Oedemeridae Oedemera flavipes (Fabricius, 1792) 2 1 12 obs 0 9 obs 9 7 obs Oedemeridae Oedemera nobilis (Scopoli, 1763) 0 0 0 obs 0 2 obs 3 0 obs Oedemeridae Oedemera podagrariae (Linnaeus, 1767) 1 0 0 obs 1 3 obs 0 0 obs Prostomidae Prostomis mandibularis (Fabricius, 1801) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Pyrochroidae Pyrochroa serraticornis (Scopoli, 1763) 0 0 0 0 0 0 0 3 0 obs Salpingidae Salpingus aeneus (Olivier, 1807) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Salpingidae Salpingus planirostris (Fabricius, 1787) 3 1 0 obs 5 0 0 1 0 0 Salpingidae Vincenzellus ruficollis (Panzer, 1794) 0 0 0 0 3 0 0 0 0 0 Scraptiidae Anaspis fasciata (Forster 1771) 1 0 0 obs 1 0 obs 1 1 obs Scraptiidae Anaspis flava (Linnaeus, 1758) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 obs Scraptiidae Anaspis melanopa (Forster 1771) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Scraptiidae Trotomma pubescens Kiesenwetter, 1851 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Silphidae Ablattaria laevigata (Fabricius, 1775) 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Silphidae Necrodes littoralis (Linnaeus, 1758) 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Silphidae Nicrophorus humator (Gleditsch, 1767) 1 0 0 0 0 0 0 0 0 obs Silphidae Nicrophorus interruptus Stephens, 1830 0 0 0 0 0 0 0 3 0 obs Silvanidae Oryzaephilus surinamensis (Linnaeus, 1758) 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 36 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Malaise
visuelle visuelle
Espèce
Famille
ussol Piège
Soyons Piège Barber
Crussol Piège Barber
Cr
Crussol Piège Interception Soyons Piège Interception Châteaubourg observation
Châteaubourg Châteaubourg Piège Barber
Crussol visuelleobservation Soyons visuelleobservation
Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Silvanidae Uleiota planata (Linnaeus, 1761) 1 0 0 obs 3 1 0 1 0 obs Sphindidae Arpidiphorus lareyiniei Jacquelin Du Val, 1859 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Sphindidae Arpidiphorus orbiculatus (Gyllenhal, 1808) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Staphylinidae Dinarda dentata (Gravenhorst, 1806) 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Staphylinidae Scaphidium quadrimaculatum Olivier 1790 0 0 0 obs 2 0 obs 1 0 0 Tenebrionidae Allecula morio (Fabricius, 1787) 0 0 0 0 2 0 0 1 0 0 Tenebrionidae Alphitophagus bifasciatus (Say, 1824) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Tenebrionidae Asida sabulosa (Fuesslin, 1775) 0 0 0 obs 0 1 0 0 0 0 Tenebrionidae Corticeus fasciatus (Fabricius, 1790) 0 0 0 0 0 0 0 2 0 0 Tenebrionidae Cteniopus sulphureus (Linnaeus, 1758) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Tenebrionidae Diaperis boleti (Linnaeus, 1758) 0 0 0 0 4 0 0 0 0 0 Tenebrionidae Gonodera luperus (Herbst, 1783) 0 0 0 obs 0 0 0 3 0 0 Tenebrionidae Hymenalia rufipes (Fabricius, 1792) 1 0 0 obs 0 0 obs 0 0 0 Tenebrionidae Isomira murina (Linnaeus, 1758) 1 0 0 obs 0 0 obs 0 0 obs Tenebrionidae Lagria glabrata (Olivier, 1792) 1 0 0 obs 0 0 obs 0 0 0 Tenebrionidae Lagria hirta (Linnaeus, 1758) 2 1 0 obs 0 0 0 0 0 0 Tenebrionidae Mycetochara linearis (Illiger, 1794) 12 0 0 obs 14 1 0 1 0 0 Tenebrionidae Mycetochara quadrimaculata (Latreille, 1804) 36 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Tenebrionidae Nalassus dryadophilus Mulsant, 1854 1 1 0 obs 1 0 obs 2 0 obs Tenebrionidae Nalassus laevioctostriatus (Goeze, 1777) 0 0 0 obs 2 0 obs 1 0 0 Tenebrionidae Omophlus lepturoides (Fabricius, 1787) 1 0 0 obs 1 0 obs 0 0 0 Tenebrionidae Palorus depressus (Fabricius, 1790) 1 0 0 0 1 0 0 0 1 obs Tenebrionidae Platydema violaceum (Fabricius, 1790) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Tenebrionidae Prionychus ater (Fabricius, 1775) 0 0 0 0 2 0 0 0 0 0 Tenebrionidae Prionychus fairmairei (Reiche, 1860) 1 0 0 0 6 0 0 8 0 0 Tenebrionidae Pseudocistela ceramboides (Linnaeus, 1761) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Tenebrionidae Scaphidema metallicum (Fabricius, 1792) 1 0 0 0 0 0 0 1 1 0 Tetratomidae Hallomenus binotatus (Quensel, 1790) 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Throscidae Trixagus leseigneuri Muona, 2002 0 1 0 0 50 44 obs 0 0 0 Throscidae Trixagus sp 0 0 0 0 0 0 0 3 0 0 Trogidae Trox perlatus Goeze, 1777 0 0 0 0 21 0 0 5 0 0 Trogidae Trox perrisii Fairmaire, 1868 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Trogositidae Nemozoma elongatum (Linnaeus, 1761) 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Trogositidae Temnochila caerulea (Olivier, 1790) 5 0 0 0 2 0 obs 0 0 0
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 37 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Malaise
visuelle visuelle
Espèce
Famille
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Soyons Piège Barber
Crussol Piège Barber
Cr
Crussol Piège Interception Soyons Piège Interception Châteaubourg observation
Châteaubourg Châteaubourg Piège Barber
Crussol visuelleobservation Soyons visuelleobservation
Châteaubourg Châteaubourg Piège Interception Trogositidae Tenebroides mauritanicus (Linnaeus, 1758) 0 0 0 obs 0 0 0 1 0 0 Zopheridae Colobicus hirtus (Rossi, 1790) 1 0 0 obs 1 0 0 1 0 0 Zopheridae Colydium elongatum (Fabricius, 1787) 3 0 0 obs 2 0 0 0 0 obs Zopheridae Pycnomerus terebrans (Olivier, 1790) 0 0 0 obs 0 0 0 1 0 0 Zopheridae Synchita mediolanensis (A. & G.B. Villa, 1833) 2 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Zopheridae Synchita undata Guérin-Méneville, 1844 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0
Après deux années d’inventaire, nous avons obtenu les résultats suivants, sur les massifs de Châteaubourg, Crussol et Soyons : - 7772 spécimens piégés, 327 espèces de coléoptères dont 287 espèces de coléoptères saproxyliques. - 60 espèces bioindicatrices de qualité des forêts françaises (Brustel, 2004).
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 38 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
.VI) - Tableau et monographies des espèces de coléoptères saproxyliques bioindicatrices rencontrées
D’après les tableaux précédents, nous proposons, ici, d’individualiser les espèces bioindicatrices de qualité des forêts Françaises et de donner une brève synthèse quant à leur biologie, habitats et phénologie (cf. tableaux ci-après). Ce tableau nous permet d’avoir une idée des divers cortèges d’espèces bioindicatrices (xylophile I, xylophile II, saproxylophage, mycétophage et prédateur) et de voir quels sont leurs biotopes de prédilection et quelles sont leurs niches et micro niches écologiques observées sur les divers sites d’étude.
Par la suite, une monographie de chacune de ces espèces sera aussi proposée dans ce rapport. Sur ces dernières figureront des photos de l’espèce. Nous proposons une photo du mâle et de la femelle lorsque l’espèce observée possède un dimorphisme sexuel accusé. De même nous donnons le cas échéant des photos des larves et des nymphes de certaines espèces. Nous citerons aussi leur biologie, leur phénologie, leur répartition en Europe, en France, dans le département de l’Ardèche et donnerons les coordonnées G.P.S. de toutes les stations où elles ont été rencontrées.
Tableaux des espèces bioindicatrices observées sur les massifs de Châteaubourg, Crussol et Soyons (issu des Dossiers Forestiers, Brustel 2004).
Biologie I FAMILLE, espèces Milieux Essences Habitats If larvaire p Anthribidae Platystomos albinus xylophile II Plaine forestier feuillus branches mortes 2 2 Tropideres albirostris xylophile II Plaine forestier feuillus branches mortes 2 2 Biphyllidae Biphyllus lunatus mycétophage Plaine forestier feuillus carpophores, caries 2 3 Bothrideridae Oxylaemus cylindricus prédateur Plaine, montagne arboré feuillus bois carié 2 3 Buprestidae Agrilus ater xylophile I Plaine, Ripi., Mont. arboré Populus, Salix écorces 2 1 Eurythyrea micans xylophile I Ripisylve arboré Populus, Salix gros bois 2 1 Cerambycidae Aegomorphus clavipes xylophile I Plaine, Mont., Ripi. arboré feuillus bois divers 2 1 (Schrank)Aegosoma scabricorne xylophile I Plaine, Ripi. arboré feuillus gros bois 2 1 (Scopoli)Anisorus quercus xylophile I Plaine forestier Quercus radicole 3 1 Anoplodera sexguttata xylophile II Plaine, montagne forestier feuillus bois divers 2 1 Arhopalus syriacus xylophile I Plaine arboré Pinus gros bois 3 1 Cerambyx(Reitter) cerdo xylophile I Plaine arboré Quercus gros bois 3 2 Chlorophorus glabromaculatus xylophile I Plaine arboré feuillus bois divers 2 1 Deroplia genei xylophile I Plaine arboré Quercus branches 3 1 Pedostrangalia revestita xylophile I Plaine, Ripi. arboré feuillus bois cariés 3 1 Morimus(L.) asper xylophile I Plaine, Mont., Ripi. arboré diverses gros bois 2 1 Pseudosphegesthes cinerea xylophile I Plaine arboré Quercus branches 3 1 Rhagium sycophanta xylophile I Plaine forestier Quercus gros bois 1 1
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 39 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Biologie I FAMILLE, espèces Milieux Essences Habitats If larvaire p Trichoferus holosericeus xylophile I Plaine arboré feuillus troncs 3 1 Trichoferus(Rossi) pallidus xylophile I Plaine arboré Quercus troncs 2 1 Xylotrechus antilope xylophile I Plaine arboré Quercus branches 2 1 Cetoniidae Gnorimus variabilis saproxylophage Plaine arboré feuillus gros bois carié,cav. 2 2 Protaetia fieberi saproxylophage Plaine arboré feuillus cavités 3 2 Protaetia lugubris saproxylophage Plaine arboré feuillus cavités 3 2 Cleridae Opilo mollis prédateur Plaine, montagne, arboré feuillus branches 2 2 rip. Opilo pallidus prédateur Plaine arboré feuillus branches 2 2 Tillus elongatus prédateur Plaine arboré feuillus bois divers cariés 2 2 Elateridae Ampedus cardinalis prédateur Plaine forestier Quercus, cavité carie rouge 3 3 Castanea Ampedus(Schiödte) glycerus prédateur Plaine, montagne, arboré diverses bois cariés 2 3 rip. Ampedus pomorum prédateur Plaine, montagne, arboré feuillus bois cariés 2 2 rip. Ampedus rufipennis prédateur Plaine, Mont. arboré feuillus gros bois cariés 2 3 Ampedus(Stephens) sanguinolentus prédateur Plaine, ripisylves forestier feuillus bois cariés 2 3 Brachygonus campadellii prédateur Plaine arboré feuillus cavités 2 3 Brachygonus ruficeps prédateur Plaine forestier feuillus carie sous écorce 3 3 Calambus bipustulatus prédateur Plaine arboré feuillus écorces, souches 3 2 Cardiophorus gramineus polyphage Plaine arboré feuillus cavités basses 2 3 Drapetes mordelloides saproxylophage Plaine arboré feuillus bois cariés 3 2 Elater ferrugineus prédateur Plaine arboré feuillus cavités 2 3 Ischnodes sanguinicollis polyphage Plaine, ripisylves arboré feuillus cavités basses 3 3 Stenagostus rhombeus prédateur Plaine, Mont., Ripi. arboré diverses gros bois cariés 2 2 Stenagostus rufus prédateur Plaine, Mont. arboré résineux gros bois cariés 2 3 Eucnemidae Dromaeolus barnabita xylophile II Plaine arboré feuillus bois morts 2 2 Eucnemis capucina xylophile II Plaine arboré feuillus gros bois cariés 3 2 Hylis olexai xylophile II Plaine, Mont., Ripi. forestier diverses bois cariés 2 2 Microrhagus emyi xylophile II Plaine arboré feuillus bois morts 3 2 Microrhagus lepidus xylophile II Plaine arboré feuillus bois morts 3 2 Lucanidae Lucanus cervus saproxylophage Plaine, ripisylves arboré feuillus souches 1 2 Melandryidae Phloiotrya tenuis xylophile II Plaine, Mont. arboré feuillus bois divers 2 1 Mycetophagidae Mycetophagus decempunctatus mycétophage Plaine forestier feuillus carpophores 3 3 Mycetophagus piceus mycétophage Plaine forestier Quercus Mycélium carie 2 3 Oedemeridae Ischnomera caerulea saproxylophage Plaine, montagne arboré feuillus bois cariés 2 2 Prostomidae Prostomis mandibularis polyphage Plaine, Mont. forestier diverses gros bois cariés 3 3 Tenebrionidae Allecula morio saproxylophage Plaine arboré feuillus cavités tronc 2 3 Corticeus fasciatus polyphage Plaine arboré feuillus sous écorces bois 3 2 cariés Platydema violaceum mycétophage Plaine, montagne arboré feuillus sous écorces 2 3 Prionychus ater saproxylophage Plaine arboré feuillus cavités, caries 2 3 Pseudocistela ceramboides saproxylophage Plaine arboré feuillus bois carié 2 3 Trogositidae Temnochila caerulea prédateur Plaine arboré résineux pinus bois divers 2 2 Zopheridae Colobicus hirtus prédateur Plaine arboré feuillus sous écorces 3 2 Pycnomerus terebrans saproxylophage Plaine arboré feuillus bois cariés 3 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 40 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Platystomos albinus (Linnaeus 1758)
Il s’agit d’un Anthribidae long de 7-9 mm, La répartition connue et/ou publiée en qui vit et se développe sur le chêne, le Ardèche du Platystomos albinus est : Col hêtre, le bouleau, l'aulne, le saule et du Meyrand, Notre-Dame des Neiges probablement sur d'autres essences (Balazuc, 1984), Saint-Julien du Gua feuillues. On le rencontre de mai à (Calmont, 2009), Prunet (Calmont, 2011). septembre. Cette espèce a été prise au piège Carte de répartition de l’espèce, en France interception, sur Châteaubourg, en 2014. (données INPN, 2015). Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845552.06 6433810.90 845518.04 6433855.86
Indice Patrimonial, IP = 2
Europe ; Sibérie occidentale (Hoffman, 1945).
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 41 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Tropideres albirostris (Herbst, 1784)
Il s’agit d’un Anthribidae long de 4,5-5 mm. Les adultes apparaissent du premier printemps jusqu’en automne. On rencontre les larves, dans les branches mortes de chêne, de hêtre et de peuplier.
Répartition géographique : Europe moyenne, Suède et Sibérie Orientale.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Crussol, en 2014.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845912.39 6428062.69
Indice Patrimonial, IP = 2 La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Tropideres albirostris (Herbst, 1784) est : Payzac, Labeaume (Balazuc,
1984), Vallon Pont d’Arc, Saint-Remèze (Calmont, 2008), Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2010), Jaujac, Saint-Etienne-de- Serre, Malarce-sur-la-Thines (Calmont, 2011).
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 42 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Biphyllus lunatus (Fabricius, 1787)
Il s’agit d’un Biphyllidae long de 2,8-3,4 mm. Il s’agit d’une espèce rare et sporadique que l’on rencontre presque toute l’année, uniquement, sur les chênes, les frênes sur les champignons Daldinia concentrica.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Châteaubourg, en 2014.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845732.56 6432826.46
Il se trouve de manière sporadique, en Europe centrale et méridionale. Indice Patrimonial, IP = 2
D’après la bibliographie en notre possession, Biphyllus lunatus (Fabricius, 1787), n’était pas connu du département de l’Ardèche.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 43 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Oxylaemus cylindricus (Panzer, 1796)
Il s’agit d’un Bothrideridae long de 2,8-3,4 mm. Il s’agit d’une espèce toujours rare, sporadique et relique que l’on rencontre sur les vieux Chênes, sur lesquels il chasserait les scolytes Xyleborus monographus (Dajoz, 1977).
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015).
Cette espèce a été prise au piège
interception, sur Châteaubourg, Crussol et Soyons en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845779.53 6432845.48 845649.41 6421845.13 845479.50 6421821.03 946120.96 6428606.58 845794.52 6427930.67 Il se trouve de manière sporadique, en 846062.99 6428594.54 Europe centrale et méridionale. 845830.40 6428098.61 846061.95 6428666.51 La répartition connue et/ou publiée en 846071.99 6428594.55 Ardèche de l’Oxylaemus cylindricus 845489.46 6421857.02 (Panzer, 1796) est : Alissas, Saint-Julien- 845732.56 6432826.46 en-Saint-Alban (Sautière, 2001), Coux 845396.07 6433892.77 845396.06 6433917.76 (Sautière, 2005), Gras (Calmont, 2008) Berrias-et-Casteljau, Bannes (Calmont, 2012). Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 44 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Agrilus ater (Linnaeus, 1767)
Il s’agit d’un Buprestidae long de 7-11 mm. On rencontre les adultes en juin-juillet volant au soleil et se posant sur les feuilles et les troncs des vieux peupliers et des saules dans lesquels vivent les larves. On les rencontre aussi sur les troncs abattus et les souches. La larve évolue dans le tronc et les grosses branches des arbres déficients ou à demi- morts, munis de leur écorce. Généralement sur les peupliers, les saules et parfois les trembles (Schaeffer, 1949).
Répartition géographique : Europe La répartition connue et/ou publiée en méridionale, centrale et septentrionale, Ardèche de l’Agrilus ater (Linnaeus, 1767) jusqu’en Lituanie, Lettonie, Finlande, est : Russie et Asie Mineure. Vallon-Pont-d’Arc (Balazuc, 1984). Pont d’Ucel (Aberlenc, 1996) ; Chauzon, Carte de répartition de l’espèce, en France Rompon (Sautière, 2007) ; Saint-Remèze (données INPN, 2015). (Calmont, 2008, les Assions (Calmont, 2010).
Cette espèce a été observée en 2015 sur Châteaubourg.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845741.11 6432832.01
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 45 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Eurythyrea micans (Fabricius, 1790)
Il s’agit d’un Buprestidae de 16 à 22 mm. On rencontre les adultes de la mi-juin à
août sur les troncs et les souches des
peupliers. Il vole généralement au soleil,
l’après-midi, à 4-5 mètres au-dessus du sol
autours des peupliers. La larve se développe dans l’aubier des
gros troncs et grosses branches de
peupliers : Populus alba, Populus nigra,
Populus pyramidalis, dépérissants ou abattus. Elle est aussi citée du Salix alba.
En Algérie, des colonies ont été aussi
observées sur Eucalyptus globulus
(Schaeffer, 1949). La répartition connue et/ou publiée en
Répartition géographique : c’est une espèce Ardèche d’Eurythyrea micans (Fabricius,
surtout méditerranéenne occidentale. On la 1790) est : trouve en Espagne, Portugal, France, Italie, Andance, Payre, Privas, Boulogne, Chauzon,
Suisse, Tyrol, Allemagne, Autriche, Ruoms, Grospierres, Lagorce, Vallon-Pont-
Hongrie, Yougoslavie, Roumanie, Maroc, D’arc, Saint-Just (Balazuc, 1984) ; Saint-
Algérie, Tunisie. Remèze (Calmont, 2008), les Assions
(Calmont, 2010). Carte de répartition de l’espèce, en France
(données INPN, 2015). Cette espèce a été prise au piège interception,
sur Châteaubourg, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845772.54 6432836.47
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 46 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Aegomorphus clavipes (Schrank 1781)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 7-16 mm. Les adultes apparaissent en juin-juillet sur les arbres morts sur pied ou abattus. La larve très polyphage est citée du hêtre, du chêne de l’érable, du bouleau, du charme, du noisetier, du noyer, du mûrier, du peuplier, des pruniers, du saule, du tilleul, du figuier… (Villiers, 1978). Répartition géographique : Région paléarctique centrale et méridionale, y compris l’Afrique du Nord. Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). Dame-des-Neiges, Aubenas, Mont Tanargue, Larnas, Lagorce, Payzac, Labeaume (Balazuc, 1984). Toissieux, Labeaume (Balazuc, 1984). Toissieux, (Aberlenc, 1996), Marcols-les-Eaux, Chauzon (Sautière, 2004), Entraigues (Sautière, 2005). Saint-Remèze (Calmont, 2008), Saint-Julien du Gua (Calmont, 2009), les Assions (Calmont, 2010). Cette espèce a été prise au piège interception, sur Châteaubourg, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845408 6433891 La répartition connue et/ou publiée en Ardèche de l’Aegomorphus clavipes
(Scopoli, 1763) est : Les Sagnes, Vallon de Indice Patrimonial, IP = 2 la Landes, Forêt de Chap del Bosc, Notre- Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 47 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Aegosoma scabricorne (Scopoli, 1763)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 28-50 mm. Les adultes apparaissent en Juillet-août et sont nocturnes. Ils se tiennent durant le jour, dans les galeries larvaires, dans les cavités des troncs, sous les écorces déhiscentes ou au pied des arbres. Ils sont parfois attirés par les lumières. La larve se développe dans les troncs des vieux arbres morts sur pieds et appartenant à des essences très diverses : hêtre, peuplier, châtaignier, chêne, orme, saule, frêne, tilleul, sycomore, charme, marronnier etc. (Villiers, 1978). Répartition géographique : Europe moyenne et méridionale, Moyen-Orient. Aubenas, Saint-Montan, Labastide-de-Virac, Carte de répartition de l’espèce, en France Valence, Canton de Villefort, Pont-Saint- (données INPN, 2015). Esprit (Balazuc, 1984). Lagorce (Calmont 2002, donnée de terrain), Coux, Chauzon (Sautière, 2005), Saint-Remèze (Calmont, 2008), les Assions (Calmont, 2010). Cette espèce a été prise au piège interception, sur Châteaubourg, Crussol et des trous de sortie des adultes observés sur ces deux même sites, en 2014 et 2015. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845408 6433891 845783 6432848 845779.53 6432845.48 946091.95 6428640.54
La répartition connue et/ou publiée en Indice Patrimonial, IP = 2 Ardèche de l’Aegosoma scabricorne (Scopoli, 1763) est : Saint-Laurent-du-Pape, Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 48 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Anisorus quercus Goeze, 1783
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 12-22 mm. Les adultes apparaissent en mai, parfois jusqu’en juillet, dans le midi, en juin dans le Nord. On observe les adultes sur les chênes, les fleurs de châtaignier, d’églantier, de lavande. Les larves se développent dans les racines des chênes (Villiers, 1978). Répartition géographique : Europe moyenne et méridionale, Caucase, Transcaucasie, Turquie.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). La répartition connue et/ou publiée en Ardèche de l’Anisorus quercus Goeze, 1783 est : Alissas, Saint-Julien-en-Saint- Alban (Sautière, 2001), Coux (Sautière, 2005), Gras (Calmont, 2008).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Crussol, en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 946120.96 6428606.58 845794.52 6427930.67
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 49 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Anoplodera sexguttata (Schaller, 1783)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 7-12 mm. Les adultes se rencontrent de mai à août, dans les forêts, sur les fleurs d’ombellifères, de ronces, de spirées, de composées et parfois sur les saules. La larve vit dans diverses essences feuillues comme les chênes, les charmes et les hêtres (Villiers, 1978). Répartition géographique : Espèce répandue dans toute l’Europe et en Afrique du Nord. Généralement assez rare, quoique parfois abondante localement. La répartition connue et/ou publiée en Ardèche de l’Anoplodera sexguttata Carte de répartition de l’espèce, en France (Fabricius, 1775) est : Sainte-Marguerite- (données INPN, 2015). Lafigère (Balazuc, 1984). Torrenc ; (Aberlenc, 1996). Lyas (Sautière, 2000), Coux (Sautière, 2005), Vallon pont d’Arc, Saint-Remèze (Calmont, 2008), Saint- Julien du Gua (Calmont, 2009), Berrias-et- Casteljau, Lablachère (Calmont, 2012).
Cette espèce a été observée et prise au piège interception, sur Crussol et Châteaubourg, en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845583 6428014 845794.52 6427930.67 845772.54 6432836.47
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 50 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Arhopalus syriacus (Reitter, 1895)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 12-23 La répartition connue et/ou publiée en
mm. Ardèche de l’Arhopalus syriacus (Reitter, Les adultes se rencontrent en juin et août 1895) est : sur les pins et les épicéas morts sur pied ou Saint-Marcel-les-Annonay (Aberlenc, abattus dans lesquels vivent les larves. Ces 1996), Berrias-et-Casteljau (Calmont, dernières se rencontrent également dans les 2010). vieilles souches. Les adulte sont nocturnes et sont Cette espèce a été prise au piège fréquemment attirés par les lumières. interception, sur Soyons en 2015.
Répartition géographique : espèce répandue Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où dans toute l’Europe jusqu’en l’espèce a été observée sont : Transcaucasie ; Syrie, Sibérie, Chine, Afrique du Nord, Canaries. X Y 845644.39 6421879.12 Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 51 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Cerambyx cerdo (Linné, 1758)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 24-53 mm. On rencontre les adultes de mai à août suivant les régions, sur les troncs des vieux chênes. Surtout crépusculaires et plus ou moins nocturnes, mais parfois observés en plein soleil sur les fruits mûrs. La larve, qui évoluerait en trois ou quatre ans, a été signalée de divers chênes (dans le midi : chêne-blanc, chêne vert, chêne- liège), mais aussi de diverses essences telles que le charme, l’orme, le bouleau, le châtaignier, le frêne, robinier, noyer, amandier, aubépine, poirier, saule ; ces diverses citations demandent confirmation terrain), Vallon pont d’Arc, Saint-Remèze (Villiers, 1978). (Calmont, 2008), Saint-Julien du Gua Répartition géographique : l’espèce est (Calmont, 2009). largement répandue dans l’Europe centrale et méridionale, l’Afrique du Nord, le Cette espèce a été observée à vue et prise Caucase, l’Asie Mineure jusque dans l’Iran au piège interception, sur Crussol et septentrional. Soyons, en 2014 et 2015. En France, l’espèce est commune dans le midi et le centre, rare ou très rare dans le Nord. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où La répartition connue et/ou publiée en l’espèce a été observée sont :
Ardèche du Cerambyx cerdo (Linnaeus, 1758) est : Lussas, Lavilledieu, X Y 845585.45 6421831.10 Lentillières, Beaumont, Montagne de Berg, 846071.99 6428594.55 Balazuc, Lablachère, Payzac, Ruoms, 845753.29 6428332.47 Labeaume, Pazanan, Chandolas, 846037 6428640 Grospierres, Bois de Païolive, Berrias, 845479.50 6421821.03 Banne, Saint-Remèze, Bois de Lôoul, bois des Bruyères, Bois de Ronze (Balazuc, 1984), Lagorce (Calmont 2003, donnée de Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 52 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
En France, le Grand Capricorne du chêne bénéficie des statuts suivants : - Protection nationale (arrêté du 22/07/93 fixant la liste des insectes protégés sur le territoire national - JORF du 24/09/1993). - Annexe II de la Convention de Berne (convention du 19/09/79 relative à la conservation de la vie sauvage et du Cartographie milieu naturel de l’Europe - JORF du Fauna Europea 2004 28/08/1990 et du 20/08/1996). - Annexes II de la Directive «Habitats, Faune, Flore» (directive n°92/43/CEE concernant la conservation des habitats naturels ainsi que de la faune et de la flore sauvages - JOCE du 22/07/1992). - Annexes IV de la Directive «Habitats, Faune, Flore» (directive n°92/43/CEE concernant les espèces animales et végétales d'intérêt communautaire qui nécessitent une protection stricte - JOCE du 22/07/1992).
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015).
Répartition en Rhône-Alpes du Cerambyx cerdo (Linnaeus, 1758), d’après Allemand, 2009.
Répartition en Rhône-Alpes de l’Anisorus quercus Goeze, 1783 d’après Allemand, 2009.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 53 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Chlorophorus glabromaculatus (Goeze, 1777)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 9-18 mm. On rencontre les adultes de juin à août, sur les fleurs ou le bois mort. La femelle pond parfois sur le bois écorcé et peut-être par conséquent nuisible au bois ouvré. La larve est extrêmement polyphage et se développe dans le bois très secs de nombreuses essences ; chênes à feuilles caduques et persistantes, figuier, noyer, châtaignier, robinier, saule, érable, orme, prunier, poirier, etc. (Villiers, 1978). Répartition géographique : Europe occidentale méridionale, Afrique du Nord. La répartition connue et/ou publiée en Carte de répartition de l’espèce, en France Ardèche du Chlorophorus glabromaculatus (données INPN, 2015). (Goeze, 1777) est : Aubenas, Bois de Païolive, Vallon-Pont-d’Arc, Pont-Saint- Esprit (Balazuc, 1984), Lagorce (Calmont, 2002, donnée de terrain), Saint-Maurice d’Ibie (Sautière, 2004), Vallon pont d’Arc, Saint-Remèze (Calmont, 2008), les Assions (Calmont, 2012). Cette espèce a été observée prise au piège interception, sur Crussol et Soyons, en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845761.39 6428247.51 845644.43 6421822.13 846071.99 6428594.55 846062.99 6428594.54 845753.29 6428332.47 845481 6421806 845585.45 6421831.10
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 54 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Deroplia genei (Aragona, 1830)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 6-10 mm. On rencontre les adultes dès le premier printemps, parfois en hiver, sur les branches de chênes. La larve se développe dans le bois mort de chêne de toutes espèces, surtout dans les branches les plus élevées, notamment celles tuées par le bupreste Coraebus florentinus (Villiers, 1978).
Répartition géographique : Europe centrale et méridionale.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Deroplia genei (Aragona, 1830) est : Celles (Balazuc, 1984), Gras (Coll. Calmont B.).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Soyons, en 2014.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845585.45 6421831.10
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 55 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Morimus asper (Sulzer, 1776)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 16-38 mm. On rencontre les adultes au printemps et en été, marchand sur le sol, ou se déplaçant sur les souches, les troncs d’arbres ou les tas de bûches, le plus souvent en fin d’après-midi ou la nuit. La larve polyphage se développe dans le Hêtre, le Charme, l’Aulne, le Saule, l’Ailante, le Peuplier, le Chêne, le Sapin et le Mélèze (Villiers, 1978). Répartition géographique : Région méditerranéenne septentrionale.
Carte de répartition de l’espèce, en France La répartition connue et/ou publiée en (données INPN, 2015). Ardèche du Morimus asper (Sulzer, 1776) est : Granges-les-Valences, Toulaud, Canton de Villefort (Balazuc, 1984), Saint-Remèze (Calmont, 2008). Cette espèce a été observée sur un vieux peuplier à Châteaubourg, en 2014.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845741.11 6432832.01
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 56 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Pedostrangalia revestita (Linnaeus, 1767)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 8-15 mm. On rencontre les adultes en mai et juin, dans les parcs, les vergers, le long des routes ou des avenues, rarement en forêt, au vol ou sur les troncs des ormes, des peupliers, chênes, noyers, platanes, érables…On les trouves parfois sur les fleurs des ombellifères, des églantiers et des aubépines. La larve est citée du hêtre, du chêne, de l’orme, du cerisier, du micocoulier et de Prunus avium (Villiers, 1978). Répartition géographique : Europe centrale La répartition connue et/ou publiée en et méridionale. Ardèche du Pedostrangalia revestita En France, cette espèce est répandue (Linné, 1767) est : Bois de Païolive, Pont- presque partout mais est assez rare et très Saint-Esprit (Balazuc, 1984), localisée. Lagorce (Aberlenc, 1987), Balazuc, Saint- Vincent-de-Barrès, Saint-Paul-le-Jeune ; Carte de répartition de l’espèce, en France (Sautière, 2000), Gravières (Sautière, (données INPN, 2015). 2004), Vallon-Pont-d’Arc, Saint-Remèze
(Calmont, 2008), Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2010).
Cette espèce a été piégée à Soyons, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845585.45 6421831.10
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 57 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Pseudosphegesthes cinerea (Cast.&Gory, 1835)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 9-15 mm. On rencontre les adultes de juillet à août sur les fleurs, notamment celles des châtaigniers, des chardons, des spirées. On les obtient surtout en recueillant des branchettes mortes de chêne que l’on conserve en élevage. Ils apparaissent parfois dans les maisons, surtout dans du bois ouvré. La larve est connue du chêne rouvre, du chêne Blanc et du chêne vert. (Villiers, 1978). Répartition géographique : Europe centrale La répartition connue et/ou publiée en et méridionale. Ardèche du Pseudosphegesthes cinerea En France, cette espèce est très rare, mais (Castelnau & Gory, 1836) est : Ruoms, les est signalée de nombreux départements : Vans (Balazuc, 1984), Forêt de Mazan (Aberlenc, 1996), Coux, Lias, Rompon Carte de répartition de l’espèce, en France (Sautière, 2005), Saint-Remèze (Calmont, (données INPN, 2015). 2008, Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2012).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Crussol et Soyons, en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845481 6421806 845585.45 6421831.10 845644.43 6421822.13 845659 6428250 845450.51 64218820.01 845761.39 6428247.51
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 58 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Rhagium Sycophanta (Schrank, 1781)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 15-26 mm. Les adultes éclosent pour la plupart à l’automne mais restent en loge jusqu’au printemps. Ils se rencontrent sur les arbres morts, surtout sur les troncs renversés et les souches. On les rencontre parfois sur les fleurs d’aubépine, de sureau,…, mais seule la femelle semble floricole. La larve se développe surtout sous l’écorce du chêne, mais a également été signalée du châtaignier, du bouleau, de l’aulne et du hêtre (Villiers, 1978). Répartition géographique : Presque toute La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Rhagium sycophanta (Schrank, l’Europe, l’Ouest de la Sibérie et l’Asie mineure, très commun. Toute la France, 1781) est : Païolive (Aberlenc, 1987), plus rare dans le midi. Balazuc, Saint-Vincent-de-Barrès, Saint- Julien-en-Saint-Alban, Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). Pourchères (Sautière, 2000), Vallon-Pont- d’Arc, Saint-Remèze (Calmont, 2008), Bannes, Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2012). Cette espèce a été prise au piège interception, sur Crussol et Soyons, en 2014 et 2015. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 946091.95 6428640.54 845594 6427987 845489.46 6421857.02 845487.47 6421852.02 845585.45 6421831.10 845830.40 6428098.61 845912.39 6428062.69
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) Indice Patrimonial, IP = 1 59 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Trichoferus holosericeus (Rossi, 1790)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 13-24
mm. On rencontre les adultes de juin à août, le soir, sur les troncs d’arbres, parfois sur le bois ouvré, attaqué par les larves. La larve est signalée de nombreuses essences telles que le peuplier, le chêne vert, le cerisier, le prunier, l’amandier, le noyer, le figuier, le mimosa (Villiers, 1978).
Répartition géographique : Europe méridionale, Afrique du Nord, Asie- Mineure, Crimée,Caucase, Iran. La répartition connue et/ou publiée en En France, cette espèce est assez rare dans Ardèche du Trichoferus holosericeus le Nord et est plus commune dans le Sud. (Rossi, 1790) est : Canton de Villefort, Elle est souvent importée dans le bois Pont-Saint-Esprit (Balazuc, 1984), Vallon- ouvré, ce qui explique sans doute les Pont-d’Arc (Aberlenc, 1996), Saint-Remèze citations les plus septentrionales (Paris, (Calmont, 2008), Berrias-et-Casteljau Amiens, Reims, etc. (Calmont, 2010).
Carte de répartition de l’espèce, en France Cette espèce a été prise au piège (données INPN, 2015). interception, sur Châteaubourg, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845396.06 6433917.76
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 60 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Trichoferus pallidus (Olivier, 1790)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 14-21 mm. On rencontre les adultes volant par les belles soirées d’été en juillet-août, autour des grosses branches mortes de chêne, entre 20 h 30 et 21 h. Ils courent sur le bois à la nuit close. La larve vit dans le bois sec, sous les écorces épaisses des troncs de chêne ou de tilleul morts sur pied ou abattus, ou sous celles des grosses bûches (Villiers, 1978). Répartition géographique : Europe centrale et méridionale. En France, l’espèce est répandue partout, La répartition connue et/ou publiée en mais elle est toujours rare et localisée. Ardèche du Trichoferus pallidus (olivier, 1790) est : Bois de Païolive, Les Vans ; Carte de répartition de l’espèce, en France (Balazuc, 1984), Coux (Sautière, 2006), (données INPN, 2015). Saint-Remèze (Calmont, 2008), Semoline (Calmont, 2011), Bannes, Berrias-et- Casteljau (Calmont, 2012). Cette espèce a été prise au piège interception, sur Soyons et Crussol, en 2015. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845585.45 6421831.10 845488.47 6421853.02 845659 6428250 845624 6428140 845594 6427987 846071.99 6428594.55
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 61 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Xylotrechus antilope (Schönherr, 1817)
Il s’agit d’un Cerambycidae long de 7-14 La répartition connue et/ou publiée en mm que l’on rencontre de mai à août, sur Ardèche du Xylotrechus antilope les troncs d’arbres morts sur pied ou (Schönherr, 1817) est : Saint-Julien-du- abattus, les tas de bûches, parfois sur les Serre, Aubenas, Notre-Dame-des-Neiges, fleurs. Forêt de Chap del Bosc, Payzac, Labeaume, La larve se développe dans les chênes, Bois de Païolive, les Vans (Balazuc, 1984), notamment le chêne-liège dans le Midi Coux, Lyas (Sautière, 2005), Vallon-Pont- (Villiers, 1978). d’Arc, Saint-Remèze (Calmont, 2008), Répartition géographique : Europe centrale Malarce-sur-la-Thines (Calmont, 2011), et méridionale, Asie Mineure jusqu’en Iran, Bannes, Berrias-et-Casteljau (Calmont, Afrique du Nord. 2012).
Carte de répartition de l’espèce, en France Cette espèce a été prise au piège (données INPN, 2015). interception, sur Soyons et Crussol, en 2014 et 2015. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845644.43 6421822.13 845518.04 6433855.86 845830.40 6428098.61 845753.29 6428332.47
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 62 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Gnorimus variabilis (Linnaeus, 1758)
Il s’agit d’un Cetoniidae de 16 à 22 mm que l’on rencontre, en juillet, dans les cavités des arbres creux ou sur les fleurs de châtaignier, vers 11 heures. La larve se développe dans le terreau d’arbres divers ; aulne, chêne, châtaignier, hêtre et même pin maritime (Paulian, 1982). Répartition géographique : Toute l’Europe jusqu’en Asie Mineure. C’est une espèce toujours rare qui est localisée aux montagnes et aux forêts. Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). de Païolive (Balazuc, 1984). Les Vans (Aberlenc, 1987), Berrias-et-Casteljau, Sainte Marguerite, Saint-Ginest en Coiron, Sauvas (Tauzin, 2004). Vallon-Pont d’Arc, Saint-Remèze (Calmont, 2008), Saint-Julien du Gua (Calmont, 2009), Bannes, Lablachère, Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2010), Prunet (Calmont, 2012).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Soyons, en 2015. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845479.50 6421821.03
La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Gnorimus variabilis (Fabricius, 1775) est : Suc de Bauzon, Mayres, Laval Indice Patrimonial, IP = 2 d’Aurelle, Bois de Sanilhac, Auriolles, Labeaume, Grospierres, Casteljau, Bois Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 63 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Protaetia fieberi (Kraatz, 1880)
Il s’agit d’un Cetoniidae de 18-21 mm, que l’on rencontre parfois dans les cavités de vieux arbres. C’est une espèce discrète dont la biologie est encore mal connue. Un article en cours d’écriture de M Tauzin, nous permettra d’en savoir un peu plus sur sa biologie. Nous l’avons déjà obtenue d’élevage à partir de larves récoltées dans des cavités de Frêne. Elle est aussi connue du Platane (Valladares com. pers.). C’est une espèce frondicole relativement rare que l’on capture aux pièges à bière par individus
isolés. La répartition connue et/ou publiée en Répartition géographique : Europe centrale. Ardèche de Protaetia fieberi (Kraatz, 1880) est : Aubenas, Payzac, Labeaume, Vallée de Carte de répartition de l’espèce, en France l’Ibie, Les Vans (Balazuc, 1984). Casteljau, (données INPN, 2015). Bois de Païolive, Les Vans (Aberlenc, 1987). Thines, Boulieu, Mayres, Valgirone (Aberlenc, 1996). Dard, Lanas, Sauvas, Valuèges, Saint-Jean-de- Pourcharesse, Toulaud (Tauzin, 2008), Vallon-Pont-d’Arc, Saint Remèze (Calmont, 2008), Saint-Julien du Gua (Calmont, 2009), Bannes, Lablachère, Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2012), Valgorge, Saint-Etienne de Serre, Malarce-sur-la-Thines (Calmont, 2011).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Crussol et Soyons, en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845594 6427987 845488.47 6421853.02 845487.47 6421852.02
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 64 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Protaetia lugubris (Herbst, 1786)
Il s’agit d’un Cetoniidae de 19-25 mm, que Répartition géographique : Europe centrale et l’on rencontre de juin à août sur les plaies septentrionale ; toute l’Italie et la Sibérie. des arbres, dans les vielles forêts, les parcs. La répartition connue et/ou publiée en On trouve parfois les adultes sur les fleurs Ardèche de Protaetia lugubris (Herbst, 1770) de Sureau (Paulian, 1982). est : Les larves fréquentent les cavités des vieux Pranles, Valence (Balazuc, 1984). Boucieux arbres de différentes essences: divers le Roi, Saint-Etienne-de-Lugdarès, Mayres, chênes (Quercus ilex, Quercus suber, Valgirone (Aberlenc, 1996), Saint-Remèze Quercus robur, Quercus humilis, Quercus (Calmont, 2007), Saint-Julien du Gua pyrenaica) et saules (Salix sp.) surtout, et (Calmont, 2009), Berrias-et-Casteljau localement hêtres (Fagus sylvatica), (Calmont, 2010), Saint-Etienne-de-Serre, châtaigniers (Castanea sativa), et même Prunet, Valgorge, Burzet (Calmont, 2010a) vieux pruniers (Prunus domestica), vieux tilleuls (Tilia sp.) et merisiers creux Cette espèce a été prise au piège interception, (Prunus avium), (Tauzin, 2006). sur Crussol en 2015.
Carte de répartition de l’espèce, en France Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où (données INPN, 2015). l’espèce a été observée sont :
X Y 846062.99 6428594.54
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 65 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Opilo mollis (Linné, 1758)
Il s’agit d’un Cleridae de 8-13 mm, que l’on rencontre en mai-juin, dans les forêts et les
bois, sur les vieux arbres, feuillus ou conifères, où ils pourchassent les larves et les petits coléoptères saproxylophages. La larve se développe dans les branches mortes d’essences diverses et se nourrissent de larves de coléoptères saproxyliques.
Répartition géographique : cette espèce est cosmopolite.
En France, bien que n’étant jamais abondante, elle est présente sur tout le territoire. La répartition connue et/ou publiée en Ardèche de l’Opilo mollis (Linné, 1758) Carte de répartition de l’espèce, en France est : Burzet (Fabregoule, 2006), Vallon- (données INPN, 2015). Pont d’Arc, Saint-Remèze, Pourchères, Coux (Sautière, 2008), Saint-Julien du Gua (Calmont, 2009), Saint-Etienne de Serre, Semoline, Burzet, Malarce-sur-la-Thines (Calmont, 2011).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Crussol et Soyons, en 2014 et 2015. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845585.45 6421831.10 845659 6428250 845594 6427987 845578 6427986 845571 6427991 845584 6428016 845649.41 6421845.13 845585.45 6421831.10
Indice Patrimonial, IP = 2
.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 66 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Opilo pallidus (Olivier, 1795)
Il s’agit d’un rare Cleridae de 8-10,5 mm que l’on rencontre en juillet, sur les cimes des vieux arbres, notamment les chênes. Il pourchasse les larves et les petits coléoptères saproxylophages. La larve se développe dans les branches mortes de chênes-verts et de chênes pubescents ou elle traque les larves de coléoptères saproxyliques. Répartition géographique : Europe centrale et méridionale. En France cette espèce est absente de l’extrême Nord et du Nord-Ouest du pays. Elle est plus commune dans la zone La répartition connue et/ou publiée en méditerranéenne et se raréfie au fur et à Ardèche de l’Opilo pallidus (Olivier, 1795) mesure que l’on remonte vers le Nord. est : Saint-Alban-sous-Sampzon, Salavas, les Carte de répartition de l’espèce, en France Vans (Balazuc, 1984), Lablachère, Saint- (données INPN, 2015). Pierre-de-Colombier (Fabregoule, 2006), Alissas, Lachamp-Raphaël (Sautière 2008), Vallon-Pont-d’Arc, Saint-Remèze (Calmont, 2008), Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2012).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Crussol, en 2014.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845964.40 6427992.74
Indice Patrimonial, IP = 2
.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 67 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Tillus elongatus (Linnaeus, 1758)
Il s’agit d’un Cleridae de 6-8,5 mm que l’on rencontre en mai-juin, dans les forets et les bois, sur les vieux arbres, dans les vieilles futaies de plaine. Ce sont des prédateurs de larves et de coléoptères saproxylophages, notamment d’Anobiidae. La larve se développe dans les branches mortes d’essences diverses et se nourrissent de larves de coléoptères saproxyliques.
En France, bien que n’étant jamais abondante, elle est présente sur tout le territoire. Carte de répartition de l’espèce, en France La répartition connue et/ou publiée en (données INPN, 2015). Ardèche du Tillus elongatus (Linné, 1758) est : Burzet (Fabregoule, 2006), Saint- Julien du Gua (Calmont, 2009), Berrias-et- Casteljau (Calmont, 2012).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Soyons, en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845450.51 64218820.01 845479.50 6421821.03
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 68 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Ampedus cardinalis (Schiödte, 1865)
Il s’agit d’un rare Elateridae de 9,5-16 mm que l’on rencontre de mai à juillet, dans les grandes forêts. L’adulte crépusculaire, se cache le jour sous les écorces ou dans les fissures des cavités des vieux chênes. La larve se développe dans la carie rouge pulvérulente des vieux chênes, aussi vieux dans les cavités basses du tronc que celles des branches élevées (Leseigneur, 1972). Répartition géographique : Suède Danemark, Slovaquie, Espagne, Allemagne et grande Bretagne.
Carte de répartition de l’espèce, en France La répartition connue et/ou publiée en (données INPN, 2015). Ardèche de l’Ampedus cardinalis (Schiödte, 1865) est : Saint-Michel de Boulogne (Balazuc, 1984), Thueyts (Aberlenc, 1996), Saint-Julien du Gua (Calmont, 2009), Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2010), Saint-Etienne-de-Serre, Burzet, Malarce-sur-la-Thines (Calmont, 2010a).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Crussol, en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845594 6427987
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 69 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Ampedus glycereus (Herbst, 1784)
Il s’agit d’un Elateridae de 7-9,5 mm que l’on rencontre de mai à juillet, plus rarement en août dans les endroits frais, jusqu’à 1200 m d’altitude. La larve probablement carnivore se développe surtout dans la carie rouge de chêne au niveau du sol, mais aussi dans les caries de bouleau, de hêtre, de peuplier, de saule, d’aulne et même de pin ou d’épicéa. L’adulte passe l’hiver en loge et on le trouve alors abrité sous les écorces déhiscentes, volant autour des tas de bois ou posé sur les bûches et les tas de grumes. Par beau temps, il se pose souvent sur les On le rencontre dans toute la France arbres en fleur (aubépine, chêne, jusqu’à 1200 m. châtaignier, alisier), sur les Ombellifères (Leseigneur, 1972) La répartition connue et/ou publiée en Répartition géographique : toute l’Europe à Ardèche de l’Ampedus glycereus (Herbst, l’exception des régions scandinaves et du 1784) est : Boulogne, Lussas, Danemark. On le trouve aussi en Sibérie. Beaumont (Balazuc, 1984), Bois de Païolive, Thueyts, Sainte-Marguerite- Carte de répartition de l’espèce, en France Lafigère (Aberlenc, 1996), Vallon-pont (données INPN, 2015). d’Arc, Saint-Remèze (Calmont, 2008), Saint-Julien du Gua (Calmont, 2009), les Assions, Bannes, Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2010), Malarce-sur-la-Thines, Saint-Etienne-de-Serre, Burzet (Calmont, 2011).
Cette espèce a été prise au piège interception, sur Soyons, en 2014.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845479.52 6421821.05
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 70 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Ampedus pomorum (Herbst, 1784)
Il s’agit d’un Elateridae de 9-11 mm que Il est présent dans toute la France. Il est l’on rencontre, de fin mai jusqu’en juillet, commun dans les régions humides, les au battage, sur des essences variées, sur les marais, en forêt comme dans les zones arbres en fleur (aubépine) ou posé sur les découvertes. Il est plus rare dans les ombellifères. Il peut atteindre une altitude régions sèches. de 1400m. La larve se développe dans les caries La répartition connue et/ou publiée en blanches et rouges d’essences feuillues ; Ardèche l’Ampedus pomorum (Herbst, peuplier, aulne, saule, hêtre, plus rarement 1784) est : Le Pal, Saint-Laurent-les- dans l’orme, le pommier, le cerisier, le Bains (Balazuc, 1984), Vallon-Pont-d’Arc chêne, le châtaignier et les conifères (Calmont, 2003, observation de terrain), (Leseigneur, 1972). Saint-Remèze (Calmont, 2008), les Répartition géographique : Europe, Assions (Calmont, 2012). Caucase, Sibérie et Mandchourie. Cette espèce a été prise au piège Carte de répartition de l’espèce, en France interception, sur Soyons, en 2014. (données INPN, 2015). Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845479.52 6421821.05
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 71 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Ampedus rufipennis (Stephens, 1830)
Il s’agit d’un Elateridae de 9,5-13,5 mm. La On le trouve pratiquement dans toute la larve se développe le bois carié de divers France, en plaine et basse montagne, feuillus, surtout le Hêtre, mais aussi dans le surtout dans les vieilles futaies de Hêtre et Charme, le Chêne, le Tilleul, l’Orme, le de Chêne. Disparaît en altitude quand on Bouleau et le Pommier. La larve est aborde la zone des conifères. prédatrice de larves de Lucanidae. Les adultes sortent en avril. On les La répartition connue et/ou publiée en rencontre alors sous les écorces déhiscentes Ardèche de l’Ampedus rufipennis ou sur les arbres, souvent sur l’Aubépine en (Stephens, 1830) est : Mayres, Saint- fleur, et jusqu’en juillet sur le tronc des Laurent-les-Bains (Balazuc, 1984), Les arbres morts, les tas de bûches, etc. Ponte Assions, Berrias-et-Casteljau (Calmont, en mai, cycle larvaire normal de 15 mois, 2010), Malarce-sur-la-Thines (Calmont, nymphose en août-septembre (Leseigneur, 2010a). 1972). Cette espèce a été prise au piège Carte de répartition de l’espèce, en France interception, sur Crussol et Châteaubourg, (données INPN, 2015). en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 946091.95 6428640.54 845779.53 6432845.48
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 72 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Ampedus sanguinolentus (Schrank, 1776)
Il s’agit d’un Elateridae de 10-12 mm. La larve se développe dans les souches et les
troncs, à carie blanche en Général, de divers
feuillus : Peuplier, Bouleau, Chêne, Saule,
Aulne, dans les endroits frais et humides,
souvent dans les marais ou en bordure des étangs et des rivières. Accouplement et
ponte en mai. Le cycle larvaire dure 15
mois, la nymphose à lieu en août-septembre
et l’éclosion après une quinzaine de jours. L’adulte hiverne dans sa loge nymphale et
sort dès la fin avril. On peut le capturer
jusqu’en juillet mais surtout en mai-juin en battant les arbres et les arbustes en fleur : La répartition connue et/ou publiée en Aubépine, Bourdaine, Alisiers, Chênes, Ardèche de l’Ampedus sanguinolentus Pins sylvestre. Souvent il se tient sur les (Schrank, 1776) est : Pont-Saint-Esprit graminées dans les prairies et les clairières (Balazuc, 1984), Thueyts (Aberlenc, 1996), humides. Il s’abrite sous les écorces par Burzet, (Calmont, 2011), les Assions mauvais temps. (Calmont, 2012). Répartition géographique : toute l’Europe et la Sibérie, jusqu’en Manchourie. Cette espèce a été prise au piège interception et Barber, sur Crussol, On le trouve dans toute la France à basse Châteaubourg et Soyons, en 2014 et 2015. altitude. L’espèce n’est pas rare mais est localisée. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont : Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). X Y 946091.95 6428640.54 845765 6432841 845765 6432841 845772.54 6432836.47 845794.52 6427930.67 845794.52 6427930.67 845649.41 6421845.13 845732.56 6432826.46 845518.04 6433855.86 845533.04 6433840.87
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 73 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Brachygonus campadellii Platia & Gudenzi, 2000
Il s’agit d’un Elateridae long de 9,5-12 mm. On rencontre les adultes de la mi-mai à août, dans les cavités bien ensoleillées des vieux feuillus, soit dans la partie haute dominant les autres arbres de la forêt, soit dans la partie basse du tronc quand celui-ci est bien exposé. La larve vit aux dépens de celles de cétonides divers. (Leseigneur, 1972).
Répartition géographique : Europe méridionale.
Carte de répartition de l’espèce, en France La répartition connue et/ou publiée en (données INPN, 2015). Ardèche de Brachygonus campadellii Platia & Gudenzi, 2000 est : Coux, Malarce-sur- la-Thines, Valgorge, Saint-Etienne-de- Serre, Saint-Julien-du-Gua (Sautière, 2014).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Châteaubourg, en 2014.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845518.04 6433855.86
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 74 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Brachygonus ruficeps (Mulsant et Guillebau, 1855)
Il s’agit d’un rare Elateridae long de 5-6,5 mm. On rencontre les adultes de juin à août, dans les caries sèches et pulvérulentes de chêne, de châtaignier et de noyer, dans les cavités hautes ou dans les cavités basses bien ensoleillées. Les adultes volent le soir et peuvent se prendre au battage sur les arbres en fleur. La larve vivrait dans les détritus qui s’accumulent sous l’écorce des plaies anciennes de peu d’étendue et principalement sur les arbres isolés et les plus vigoureux. (Leseigneur, 1972). Répartition géographique : Suisse, Italie, Allemagne, Autriche, Tchécoslovaquie. Selon notre bibliographie, le Brachygonus ruficeps (Mulsant et Guillebau, 1855), Carte de répartition de l’espèce, en France n’était connue que des Gorges de l’Ardèche (données INPN, 2015). (Calmont, 2008) et de Saint-Julien du Gua (Calmont, 2009), Bannes, Berrias-et- Casteljau (Calmont, 2010), Valgorge, Prunet, Malarce-sur-la-Thines, Saint- Etienne-de-Serre (Calmont, 2010a), Coux (Sautière, 2014). Cette espèce a été prise au piège interception sur Crussol et Soyons, en 2015. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845578 6427986 845571 6427991 845585.45 6421831.10
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 75 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Calambus bipustulatus (Linnaeus, 1767)
Il s’agit d’un Elateridae de 7-8 mm que l’on observe de la fin avril à la mi juin, en battant les chênes, les Alisiers et les bourdaines en fleur. On peut le trouver en brossant les troncs des arbres morts (Quercus), sous les écorces déhiscentes, parfois sur les ombellifères, contre la tige des graminées, sur les tas de bûches. Il peut atteindre une altitude de 900-1000 mètres (Leseigneur, 1972).
Répartition géographique : toute l’Europe moyenne et boréale, de l’Italie du Nord, au Sud de la Suède ; se trouve aussi en La répartition connue et/ou publiée en Grande-Bretagne et en Irlande, mais pas en Ardèche du Calambus bipustulatus Espagne. (Linnaeus, 1767) est : Coux, Saint-Remèze, Gournier, Gras, Labastide-de-Virac, Saint- En France, cette espèce est assez rare dans Julien-du Gua, Berrias-et-Casteljau, Banne le bassin parisien, très rare dans les régions (Sautière, 2014). méridionales. Cette espèce a été prise au piège Carte de répartition de l’espèce, en France interception sur Crussol, en 2014 et 2015. (données INPN, 2015).
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845964.40 6427992.74 946091.95 6428640.54 846071.99 6428594.55 845659 6428250
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 76 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Cardiophorus gramineus (Scopoli, 1763)
Il s’agit d’un Elateridae peu commun de 7-8 On le rencontre dans toute la France, dans mm que l’on observe de la fin avril à mi- les régions boisées en dessous de 1000 m, août. La larve se développe dans les cavités surtout dans les forêts de chêne. à carie rouge sèche ou légèrement humide de hêtre, de chêne, parfois dans le tilleul. La répartition connue et/ou publiée en Elle ne semble pas être carnivore. Le cycle Ardèche du Cardiophorus gramineus larvaire est de 14 à 15 mois. La nymphose à (Scopoli, 1763) est : Labeaume, Saint- lieu en août-septembre, l’éclosion en Laurent-sous-Coiron, Pont-Saint-Esprit septembre. L’imago hiverne en loge et on (Balazuc, 1984), Saint-Etienne-de-Serre, peut le trouver en tamisant la carie rouge Valgorge, Malarce-sur-la-Thines (Calmont, des parois des cavités. 2010). Répartition géographique : toute l’Europe moyenne et méridionale, Russie Cette espèce a été prise au piège méridionale, Caucasie. interception sur Crussol, en 2015.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845659 6428250
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 77 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Drapetes mordelloides Host, 1789
Il s’agit d’un Elateridae de 3-5,5 mm que l’on observe en mai-juillet, sous les écorces, dans les souches et les polypores pourris. On les observe parfois en nombre dans les tas de sciures. Les larves se développent dans le bois décomposé de feuillus : chênes, hêtres, peupliers, ormes et bouleaux.
Répartition géographique : Europe centrale et méridionale.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Drapetes mordelloides Host, 1789 est : Coux, Vallon-Pont-d’Arc, Boulogne, Villeneuve-de-Berg (Sautière, 2014).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Châteaubourg, en 2014.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845779.53 6432845.48
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 78 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Elater ferrugineus (Linnaeus, 1758)
Il s’agit d’un Elateridae de 16-23 mm que l’on observe de juin-juillet à août dans les cavités des arbres creux. Il est crépusculaire et est fréquemment attiré par la lumière. Il peut atteindre 1500 mètres d’altitude en montagne. La larve est polyphage et s’attaque surtout aux larves et nymphes de cétonides (Osmoderma eremita, Cetonia aurata). Elle se développe dans les cavités à terreau d’arbres feuillus divers ; saules, marronniers, hêtres, chênes, tilleul, peuplier, ormes et cerisier. (Leseigneur, 1972). La répartition connue et/ou publiée en Répartition géographique : Toute l’Europe Ardèche de l’Elater ferrugineus (Linnaeus, jusqu’au Sud de la Scandinavie. Caucase. 1758) est : Carte de répartition de l’espèce, en France Desaignes, Labeaume, Païolive, Vallon et (données INPN, 2015). Vallée de l’Ibie, Salavas, les Vans (Balazuc, 1984), Vallon-Pont-d’Arc, Saint-Remèze (Calmont, 2008), Saint- Julien du Gua (Calmont, 2009), Saint- Etienne-de-Serre, Valgorge, Malarce-sur- la-Thines (Calmont, 2010).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Crussol, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845594 6427987
Indice Patrimonial, IP = 2 Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 79 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Ischnodes sanguinicollis (Panzer, 1793)
Il s’agit d’un Elateridae de 8,5-10 mm que En France, pas rare dans certaines grandes l’on observe de mai à juillet, dans les futaies, mais aussi dans les arbres creux des cavités de hêtre et de chêne au ras du sol. vieux parcs et jardins publics. L’adulte ne s’éloigne guère de la cavité et on peut le rencontrer par beau temps, vers La répartition connue et/ou publiée en 16 à 18 heures, se promenant sur le tronc ou Ardèche d’Ischnodes sanguinicollis sur le pourtour même de la cavité. (Panzer, 1793) est : Vernoux, Toulaud, La larve se développe dans le terreau qui se Saint-Vincent-de-Barrès, Coux, Saint- forme dans les cavités des vieux feuillus Remèze, Berrias-et-Casteljau (Sautière, (Leseigneur, 1972). 2014). Répartition géographique : pratiquement toute l’Europe sauf les régions boréales. Cette espèce a été prise au piège Également dans le Caucase et une partie de interception sur Châteaubourg et Soyons, l’Asie mineure. en 2014 et 2015.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845732.56 6432826.46 845479.52 6421821.05
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 80 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Stenagostus rhombeus (Olivier, 1790)
Il s’agit d’un Elateridae de 15,5-21 mm que Répartition géographique : Toute l’Europe, l’on observe de juin début juillet à jusque dans le Sud des pays scandinaves, en septembre. C’est un insecte nocturne qui Espagne, Portugal, Italie, Grèce et même en vient à la lumière. On peut le trouver Angleterre et en Irlande. parfois en battant le feuillage de chêne ou La répartition connue et/ou publiée en de hêtre mais c’est surtout la nuit, de 22 à Ardèche du Stenagostus rhombeus (Olivier, 24 heures T.U., qu’on peut le trouver 1790) est : courant sur les troncs de chênes et de Montagnes du bassin hydrographique de Hêtres morts sur pied. Il peut atteindre une l’Ardèche (Balazuc, 1984), Mayres altitude de 1300 mètres en montagne. La (Aberlenc, 1996), Lagorce (Calmont, 2003, larve, très caractéristique se développe dans donnée de terrain), Vallon-Pont d’Arc, la carie de hêtres, de chênes, aux dépens de Saint-Remèze (Calmont, 2008), Saint- larves de Cerambycidae. Elle est également Julien du Gua (Calmont, 2009), Jaujac citée du bouleau, du peuplier, du tilleul, du (Calmont, 2010a). 1150 m, 18-VIII-2001, châtaignier, du saule, du noyer et même de PA, 1 ex., (CS) ; Rompon, Coux, Flaviac résineux tel que le pin maritime. (Sautière, 2014). (Leseigneur, 1972). Cette espèce a été prise au piège Carte de répartition de l’espèce, en France interception sur Crussol, Soyons, (données INPN, 2015). Châteaubourg, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 846062.99 6428594.54 845578 6427986 845644.43 6421822.13 845644.39 6421879.12 845765 6432841 845408 6433891
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 81 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Stenagostus rufus (De Geer, 1774)
Il s’agit d’un Elateridae de 20-26 mm que La répartition connue et/ou publiée en l’on observe juillet à août. L’imago a des Ardèche du Stenagostus rhombeus (Olivier, meurs crépusculaires et nocturnes. Il vient à 1790) est : Vernoux, (Aberlenc, 1996), la lumière artificielle au début de la nuit. Le Prunet (Calmont, 2010a), Berrias-et- jour, il s’abrite sous les écorces déhiscentes, Casteljau (Calmont, 2010), Coux, Flaviac les planches, sous les bûches et les grumes. (Sautière, 2014). La larve se développe dans les souches cariées de pins et de sapins, principalement Cette espèce a été prise au piège dans les grosses racines. Elle est à la fois interception sur Crussol, en 2015. saprophage et carnivore. Elle s’attaque aux larves de Cerambycidae tels que les Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où Rhagium inquisitor, les Spondylis l’espèce a été observée sont : buprestoides et les Leptura rubra (Leseigneur, 1972). X Y Répartition géographique : Toute l’Europe, 845578 6427986 jusque dans le Sud des pays scandinaves, en Espagne, absent en Angleterre. Indice Patrimonial, IP = 2
InventaireCarte des de coléoptères répartition sur le site de Crussol l’espèce,-Soyons en(07 ) France 82 Rapport final septembre 2015 Entomologiste(données Cal INPN,mont B., 2015).S.H.N.A.O
Dromaeolus barnabita (Villa, 1837)
Il s’agit d’un rare Eucnemidae de 4-6 mm que l’on rencontre de mi-mai à août, en
forêt, sur les troncs et les branches mortes.
La larve se développe dans les arbres morts
de hêtres, de chênes, de charmes et de
saules.
Répartition géographique : cette espèce est
connue des pays suivants ; Allemagne,
France, Hongrie, Italie, Autriche, Bosnie- Herzégovine, Croatie, République Tchèque,
Pologne, Roumanie, Russie Centrale,
Slovaquie, Suisse, Suède. (Données Fauna
Europea).
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015).
Photo Pierre Zagatti. Espèce récoltée par Bruno Mériguet. http://www7.inra.fr/opie- insectes/observatoire/idf/sternoxia/dro-barnabita.htm
Cette espèce a été prise au piège sur Crussol, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845753.29 6428332.47
Indice Patrimonial, IP = 3
Selon la bibliographie en notre possession, cette espèce serait nouvelle pour l’Ardèche.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 83 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Eucnemis capucina (Ahrens, 1812)
Il s’agit petit coléoptère Eucnemidae, de 4,3 La répartition connue et/ou publiée en à 6,5 mm, que l’on rencontre, de juin à Ardèche d’Eucnemis capucina Ahrens, septembre, en forêt, sur les troncs des hêtres 1812 est : Pont-Saint-Esprit (Balazuc, morts sur pied ou abattus et sous leurs 1984), Thueyts (Aberlenc, 1996), Saint- écorces. La larve se développe dans le bois Julien-du-Gua, Burzet, Berrias-et-Casteljau, décomposé des hêtres, des peupliers, des Banne, Saint-Etienne-de-Serre, Malarce- saules, des tilleuls et dans les polypores. sur-la-Thines (Sautière, 2014).
Répartition géographique : Europe centrale. Cette espèce a été prise au piège Toute la France à l’exception de l’extrême interception sur Crussol et Soyons, en 2014 Nord-Ouest. et 2015.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 946091.95 6428640.54 845659 6428250 845958.96 6428715.43 946091.95 6428640.54 845487.47 6421852.02
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 84 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Hylis olexai (Palm, 1955)
Il s’agit d’un petit coléoptère Eucnemidae, de 3 à 5 mm, peu commun que l’on rencontre, de juin à août, dans les vieilles forêts et les bois humides, sur les branches mortes, les troncs abattus et la sur la végétation sous les vieux arbres. Les larves se développent dans le bois décomposé des hêtres, des chênes, des peupliers, des tilleuls, des bouleaux, des saules et des épicéas. On l’observe en plaine comme en montagne.
Répartition géographique : Europe centrale et méridionale. La répartition connue et/ou publiée en Ardèche Hylis olexai (Palm, 1955) est : Carte de répartition de l’espèce, en France Saint-Julien-du-Gua (Calmont, 2008). (données INPN, 2015). Cette espèce a été prise au piège interception sur Crussol et Châteaubourg, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845779.53 6432845.48 845571 6427991
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 85 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Microrhagus emyi (Rouget, 1856)
Il s’agit d’un Eucnemidae de 3-4 mm que l’on rencontre sur les grumes les tas de bois
et les troncs des arbres morts en forêt.
La larve se développe dans les arbres morts
de Hêtres et de Chênes.
Répartition géographique : cette espèce est
connue des pays suivants ; Espagne, Italie,
Allemagne, France, Corse, Autriche,
Croatie, République Tchèque, Pologne, Roumanie, Russie Centrale, Slovaquie,
Suisse, Suède. (Données Fauna Europea).
Carte de répartition de l’espèce, en France
(données INPN, 2015). .
Photo Pierre Zagatti. Espèce récoltée par Bruno Mériguet. www.inra.fr/opie-insectes/observatoire/idf/sternoxia/dir- emyi.htm
Cette espèce a été prise au piège interception sur Châteaubourg, Crussol et Soyons, en 2014 et 2015.
La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Microrhagus emyi (Rouget, 1856) est : Coux, Grospierres (Sautière, 2014).
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845489.46 6421857.02
845772.54 6432836.47 946120.96 6428606.58 845484 6421860
845484 6421860
845489.46 6421857.02
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 86 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Microrhagus pigmaeus (Fabricius, 1792)
Il s’agit d’un petit coléoptère Eucnemidae, de 3 à 4,5 mm, rare et localisé que l’on rencontre dans le bois carié des feuillus (saule, charme, noisetier) mais aussi des vieux conifères comme les sapins et les épicéas. On l’observe en plaine comme en montagne.
Répartition géographique : Europe centrale et méridionale.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015).
La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Microrhagus pigmaeus (Fabricius, 1792) est : Saint-Julien-du-Gua (Calmont, 2008).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Châteaubourg, Crussol et Soyons, en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93 où l’espèce a été observée sont :
X Y 845484 6421860 845488.47 6421853.02
845533.04 6433840.87
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 87 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Lucanus cervus (Linné, 1758)
Mâle Mâle Femelle
Il s’agit d’un Lucanidae de 25-85 mm de long que l’on rencontre de mai-juin jusqu’en août-septembre. En Général crépusculaire, les mâles volent à la recherche des femelles. Il est attiré par les lampes U.V. On peut l’observer aussi léchant des fruits ou des exsudations des troncs. La larve vit dans le bois mort, partiellement décomposé, en particulier dans les souches et les arbres creux ; essentiellement lié au chêne, elle se rencontre pourtant souvent dans d’autres essences non résineuses ; châtaignier, Répartition géographique : cette espèce est cerisier, frêne, peuplier, aulne, tilleul, saule connue des pays suivants ; Espagne, Italie, et même résineuses, pins et thuyas (Paulian, Allemagne, France, Corse, Autriche, 1982). Croatie, République Tchèque, Pologne, Répartition géographique : Europe Roumanie, Russie Centrale, Slovaquie, septentrionale et moyenne, au Sud jusqu’au Suisse, Suède. (Données Fauna Europea). Portugal et à la vallée du Pô.
Distribution du Lucanus cervus dans l’Union Européenne (Luce, 1996). En noir : distribution continue En hachuré : colonies éparses
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 88 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O La répartition connue et/ou publiée en L’espèce décline depuis une trentaine Ardèche du Lucanus cervus (Linné, d’années dans le nord de l’Europe, 1735) est : Désaignes, Le Cheylard, notamment en Suède et au Pays-Bas. Elle Boulogne, Jaujac, Montagne de Berg, a certainement disparue du Danemark Sanilhac, Planzolles, Chauzon, Ruoms, (Luce, 1996). La France est le seul pays Labeaume, Européen où l’espèce semble se Lablachère, Saint-Alban-sous-Sampzon, maintenir Sampzon, Grospierres, Saint-Pierre-le- Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où Déchausselat, Saint-Remèze, Bois de l’espèce a été observée sont : Lôoul, Bois des Bruyères. Bois de Païolive, Bois de Ronze (Balazuc, 1984). X Y Lagorce ; (Calmont, 2003 ; données de 845518.04 6433855.86 terrain), Vallon-Pont-d’Arc, Saint- 845779.53 6432845.48 Remèze (Calmont, 2008), Saint-Julien du 846061.95 6428666.51 Gua (Calmont, 2009), Banne, Berrias-et- 845479.50 6421821.03 Casteljau (Calmont, 2012), Malarce-sur- 946120.96 6428606.58 la-Thines (Calmont, 2011). 845779.53 6432845.48 845772.54 6432836.47 En France, le Lucane bénéficie des statuts suivants : - Annexe III de la Convention de Berne Indice Patrimonial, IP = 1
(convention du 19/09/79 relative à la conservation de la vie sauvage et du Carte de répartition de l’espèce, en milieu naturel de l’Europe - JORF du France (données INPN, 2015). 28/08/1990 et du 20/08/1996). - Annexes II de la Directive «Habitats, Faune, Flore» (directive n°92/43/CEE concernant la conservation des habitats naturels ainsi que de la faune et de la flore sauvages - JOCE du 22/07/1992).
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 89 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Phloeotrya tenuis (Hampe, 1850)
Il s’agit d’un Melandryidae de 6-12 mm La répartition connue et/ou publiée en que l’on rencontre sur les arbres Ardèche du Phloiotrya tenuis (Hampe, dépérissant, les chandelles mortes 1850 est : Saint-Julien-du-Gua (Calmont, récemment. 2008).
La larve se développe dans le bois mort ou Cette espèce a été prise au piège dépérissant de divers feuillus tels que les interception sur Crussol, en 2015. hêtres et les chênes notamment. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93 où Répartition géographique : cette espèce est l’espèce a été observée sont :
présente en Europe centrale et méridionale. X Y En France on la rencontre dans les vieux 946120.96 6428606.58 massifs forestiers. 845594 6427987
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 90 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Mycetophagus decempunctatus Fabricius, 1801
Il s’agit d’un coléoptère Mycetophagidae, de 4 à 4,5 mm, que l’on rencontre dans les vieilles forêts. Les adultes s’observent dans les polypores ou sous les écorces des arbres, à proximité de ces derniers. Distribution géographique : Europe occidentale et centrale.
En France cette espèce est présente dans tout le pays et semble plus rare dans les zones méditerranéennes.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015).
D’après la bibliographie en notre possession, Mycetophagus decempunctatus Fabricius, 1801, n’était pas connu du département de l’Ardèche.
Cette espèce a été prise au piège interception sur Crussol, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93 où l’espèce a été observée sont :
X Y 946120.96 6428606.58 845594 6427987
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 91 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Mycetophagus piceus (Fabricius, 1777)
Il s’agit d’un coléoptère Mycetophagidae, de 4 à 4,5 mm, que l’on rencontre dans les cavités atteintes de carie rouge des vieux feuillus.
Distribution géographique : Europe occidentale et centrale.
En France cette espèce est présente dans tout le pays et semble plus rare dans les zones méditerranéennes.
Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015).
La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Mycetophagus piceus (Fabricius, 1777) est : Saint-Julien du Gua (Calmont, 2009), Valgorge, Malarce-sur-la- Thines, Burzet, Semoline, Saint-Etienne- de-Serre (Calmont, 2011).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Crussol, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845644.39 6421879.12 845779.53 6432845.48 845772.54 6432836.47
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 92 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Ischnomera caerulea (Linnaeus, 1758)
Il s’agit d’un coléoptère Oedemeridae de 5,5 -9 mm que l’on rencontre d’avril à juillet, sur les fleurs d’aubépine et de chêne, en forêt et en ripisylve. Les larves se développent, dans les bois pourri de divers feuillus, châtaignier, érable, hêtre, orme et chêne. Elles ont néanmoins une grande préférence pour cette dernière essence (Vasquez, 2002). Répartition géographique : Europe centrale et méridionale. Répartition géographique : Angleterre, Suède, Europe occidentale et centrale, à l’Est jusqu’à l’Iran. La répartition connue et/ou publiée en Ardèche de l’Ischnomera caerulea Carte de répartition de l’espèce, en France (Linnaeus, 1758) est : Rochecolombe, (données INPN, 2015). Labeaume, le Barbouillet, Païolive (Balazuc, 1984), Saint-Remèze, Vallon Pont-d ’Arc (Calmont, 2009), Saint- Etienne-de-Serre (Calmont, 2011), Banne, Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2012).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Crussol et Châteaubourg, en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 846062.99 6428594.54 845584 6428016 946091.95 6428640.54
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 93 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Prostomis mandibularis (Fabricius, 1801)
Il s’agit d’un Coléoptère Prostomidae de 6- 7 mm que l’on rencontre pratiquement toute l’année. C’est une espèce relique que l’on observe dans les vieilles forêts conservées, dans les troncs et les souches pourries en carie rouge de feuillus (hêtres et châtaigniers) ou de résineux (sapins et épicéas). Distribution géographique : Europe centrale et de l’Est. France, Italie, Allemagne, Suède, Pologne, Slovaquie, Slovénie, Russie, République Tchèque, Russie. La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Prostomis mandibularis est : Cette espèce a été prise au piège Saint-Michel-de-Boulogne (Balazuc, 1984), interception sur Châteaubourg, en 2015. Saint-Julien-du-Gua (Calmont, 2008), Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2010). Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où Carte de répartition de l’espèce, en France l’espèce a été observée sont : (données INPN, 2015). X Y 845779.53 6432845.48
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 94 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Allecula morio (Fabricius, 1787)
Il s’agit d’un rare Tenebrionidae, Alleculinae de 8-9 mm que l’on rencontre de fin juin à août septembre sur les vieux chênes morts ou mourants et dans les cavités des très vieux arbres. On peut parfois les apercevoir, volant le soir autour de ces derniers. On rencontre les larves dans le terreau et le bois décomposé des cavités des chênes et de hêtres.
Répartition géographique : la répartition en Europe de cette espèce est la suivante ; Autriche, Danemark, Finlande, Allemagne, La répartition connue et/ou publiée en Italie, Suède, France. (Données, Fauna Ardèche de l’Allecula morio (Fabricius, Europea). 1787) est : Saint-Maurice-d’Ibie (Balazuc, 1984), Païolive (Brustel, 2003), Saint- On le rencontre en France centrale Remèze (Calmont, 2008), Berrias-et- méridionale. Casteljau (Calmont, 2012).
Carte de répartition de l’espèce, en France Cette espèce a été prise au piège (données INPN, 2015). interception sur Soyons et Châteaubourg, en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845488.47 6421853.02 845732.56 6432826.46
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 95 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Corticeus fasciatus (Fabricius, 1790)
Il s’agit d’un coléoptère Tenebrionidae, rare et localisé, de 3-3,5 mm que l’on rencontre sur une bonne partie du territoire, sous les écorces et dans la carie des vieux feuillus, notamment des chênes.
Répartition géographique : Europe méridionale et moyenne, au Nord jusqu’au Danemark, Algérie, Tunisie, Maroc (Soldati, 2010).
Carte de répartition de l’espèce, en France La répartition connue et/ou publiée en (données INPN, 2015). Ardèche du Corticeus fasciatus (Fabricius, 1790) est : Saint-Priest (Sautière, 2004).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Châteaubourg, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845779.53 6432845.48
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 96 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Platydema violaceum (Fabricius, 1790)
Il s’agit d’un Tenebrionidae de 6-7 mm que Distribution géographique : Cette espèce se l’on rencontre de septembre à juin, dans les rencontre en Europe et au Caucase. En pleurotes, sous les écorces et dans le bois Europe les pays où elle a été signalée sont : décomposé des vieux arbres, Chênes, Albanie, Bosnie-Herzégovine, Autriche, Tilleul, Robinier, Saule, Peuplier, Hêtre, Belgique, Angleterre, Bulgarie, Croatie, Pommier, etc. L’adulte hiverne. République Tchèque, Danemark, Estonie, Les larves sont mycétophages et se Finlande, Allemagne, France Grèce, Italie, développent dans certains champignons Lettonie, Lituanie, Luxembourg, Pologne, lignicoles : Pleurotus notamment. Roumanie, Slovaquie, Suède. (Données, Fauna Europea). Carte de répartition de l’espèce, en France (données INPN, 2015). La répartition connue et/ou publiée en Ardèche de Platydema violaceum (Fabricius, 1790) est : Saint-Laurent-les- Bains (Aberlenc, 1996), Saint-Julien du Gua (Calmont, 2009), les Assions (Calmont, 2012).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Châteaubourg, en 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845772.54 6432836.47
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 97 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Prionychus ater (Fabricius, 1775)
Il s’agit d’un Tenebrionidae, Alleculinae de La répartition connue et/ou publiée en 10-12 mm que l’on rencontre de mai à Ardèche du Prionychus ater (Fabricius, juillet sur les branches mortes et sous les 1775) est : Labeaume, Auriolles (Balazuc, écorces des vieux arbres au bois 1984), Vallon-Pont-d’Arc, Saint-Remèze décomposé. La larve et très commune dans (Calmont, 2008), Saint-Julien du Gua le bois décomposé et le terreau des cavités (Calmont, 2009), Berrias-et-Casteljau des hêtres, des chênes, des peupliers et des (Calmont, 2012). saules. Répartition géographique : cette espèce est Cette espèce a été prise au piège connue des pays suivants ; Autriche interception sur Soyons, en 2014 et 2015. Danemark, Finlande, Italie, Lettonie, Lituanie, Norvège, Pologne, Nord de la Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où Russie, Suède, Sicile et France. (Données, l’espèce a été observée sont : Fauna Europea). Carte de répartition de l’espèce, en France X Y (données INPN, 2015). 845450.51 64218820.01 845489.46 6421857.02
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 98 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Pseudocistela ceramboides (Linnaeus 1758)
Il s’agit d’un Tenebrionidae, Alleculinae de 9-11 mm que l’on rencontre de mai à août sur les vieux arbres morts ou mourants et dans les cavités des très vieux arbres. On peut parfois les apercevoir, volant le soir autour de ces derniers. Ils sont attirés par la lumière. On rencontre les larves dans le terreau des cavités des vieux feuillus, chênes, saules, peupliers, châtaigniers et bouleaux. Répartition géographique : la répartition en Europe de cette espèce est la suivante ; Autriche, Danemark, Lettonie, Lituanie, Finlande, Allemagne, Norvège, Pologne La répartition connue et/ou publiée en (Données, Fauna Europea). Ardèche du Pseudocistela ceramboides (Linnaeus, 1761) est : gorges de l’Ardèche Carte de répartition de l’espèce, en France (Calmont, 2008), de Saint-Julien du Gua (données INPN, 2015). (Calmont, 2009), Berrias-et-Casteljau et de Bannes (Calmont, 2012).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Châteaubourg, en 2014.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845779.53 6432845.48
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 99 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Temnochila caerulea (Olivier, 1790)
Il s’agit d’un Trogositidae, de 11-15 mm, La répartition connue et/ou publiée en inféodé aux résineux où il s’attaque à Ardèche du Temnochila caerulea (Olivier, diverses larves de coléoptères Scolytidae. 1790) est : Aubenas, Seyras, Payzac, On le rencontre fréquemment sous les Vallon-Pont-d’Arc, Bannes (Balazuc, écorces des arbres des pins morts ou 1984), Saint-Remèze (Calmont, 2008), sénescents. Les larves sont Berrias-et-Casteljau et de Bannes (Calmont, 2012). Répartition géographique : Europe centrale et méridionale. Cette espèce a été prise au piège interception sur Crussol et Soyons en 2014 Carte de répartition de l’espèce, en France et 2015. (données INPN, 2015). Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845649.41 6421845.13 845644.39 6421879.12 845624 6428140 845594 6427987 845578 6427986
Indice Patrimonial, IP = 2
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 100 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Colobicus hirtus (Rossi, 1790)
Il s’agit d’un Zophoridae de 3-5 mm que l’on rencontre d’avril à septembre, sous les écorces déhiscentes et plus ou moins moisies de nombreux feuillus. Notamment le chêne et le hêtre mais aussi le tilleul, le noisetier, le pommier, le cerisier, l’orme, le saule et le peuplier. La larve est prédatrice et la nymphose a lieu sous les écorces (Dajoz, 1977).
Répartition géographique : la répartition en Europe de cette espèce est donnée par la carte (Données, Fauna Europea). La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Colobicus hirtus (Rossi, 1790) est : Saint-Julien-du-Gua (Calmont, 2009), Semoline, Burzet, Malarce-sur-la-Thines, Saint-Etienne-de-Serre, Valgorge (Calmont, 2011).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Châteaubourg, Crussol et Soyons en 2014 et 2015.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où Carte de répartition de l’espèce, en France l’espèce a été observée sont : (données INPN, 2015). X Y 845479.50 6421821.03 846061.95 6428666.51 846061.95 6428666.51 846062.99 6428594.54 845830.40 6428098.61 845830.40 6428098.61 845912.39 6428062.69 845794.52 6427930.67 845396.06 6433917.76
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 101 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Pycnomerus terebrans (Olivier, 1790)
Il s’agit d’un Zopheridae de 3-5,5 mm que l’on rencontre dans les vieux arbres morts (chêne, hêtre, châtaignier en particulier), au bois décomposé. Les imagos éclosent dés le mois de mars ; leur maximum d’abondance est en juin et juillet. On les rencontre toute l’année et ils hivernent. C’est sans doute un prédateur de microarthropodes. C’est une espèce relique inféodée aux vieilles forêts, rare et à répartition sporadique.
Répartition géographique : Europe centrale et méridionale. La répartition connue et/ou publiée en Ardèche du Pycnomerus terebrans (Olivier, Carte de répartition de l’espèce, en France 1790) est : Saint-Julien du Gua (Calmont, (données INPN, 2015). 2009), Berrias-et-Casteljau (Calmont, 2012), Saint-Etienne-de-Serre, Valgorge (Calmont, 2011).
Cette espèce a été prise au piège interception sur Châteaubourg, en 2014.
Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 845779.53 6432845.48
Indice Patrimonial, IP = 3
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 102 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
.VII) Les autres espèces de coléoptères
saproxyliques patrimoniales rencontrées
Dans ce chapitre, nous traiterons deux espèces de coléoptères patrimoniaux (non inscrites sur la liste des bioindicateurs de H. Brustel) observées lors de cette première année d’étude sur les sites d’étude. Il s’agit du Bostrichidae Psoa dubia (Rossi, 1792) et du Carabidae Aptinus pyrenaeus Dejean, 1825 qui sont de rares coléoptères, qui n’était pas connu d’Ardèche pour le premier ou en limite d’aire de répartition pour le second.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 103 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Psoa dubia (Rossi, 1792)
Il s’agit d’un rare Bostrichidae 6-11 mm. Les adultes s’observent au printemps sur les fleurs d’aubépine. Les larves se développent dans les sarments de vignes cultivées et sauvages. On les rencontre parfois dans les fagots de chêne.
Répartition géographique : Europe méridionale, Chypre, Turquie et Maghreb.
En France, il est localisé aux départements du Gard, du Var, du Vaucluse et de la Drôme ; il est aussi présent en Corse. Cette espèce a été prise au piège Cette espèce n’était pas connue du interception sur Châteaubourg et Crussol en département de l’Ardèche, selon la 2014 et 2015. bibliographie en notre disposition. Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où l’espèce a été observée sont :
X Y 846062.99 6428594.54 845772.54 6432836.47 845408 6433891 845779.53 6432845.48 845732.56 6432826.46 845396.06 6433917.76 845518.04 6433855.86
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 104 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Aptinus pyrenaeus Dejean, 1825
Il s’agit d’un rare Carabidae 7-10 mm que l’on rencontre du mois d’avril à août. Elle vit en plaine comme en montagne, dans les lieux arides, mais aussi près de l’eau, sous les pierres.
Répartition géographique : cette espèce n’est présente qu’en Espagne et en France.
En France, il est localisé aux départements du l’Aude, de l’Ariège, de l’Hérault, des Pyrénées-Orientales, de la Lozère et de l’Ardèche.
La répartition connue et/ou publiée en Les coordonnées G.P.S., Lambert 93, où Ardèche de l’Aptinus pyrenaeus Dejean, l’espèce a été observée sont : 1825 est : Orgnac-l’Aven, Saint-Laurent- du-Pape, Laveyrune (Coulon, 2000). X Y 845830.40 6428098.61 Cette espèce est, sur le site de 845644.43 6421822.13 Châteaubourg, en limite d’aire de 845488.47 6421853.02 répartition septentrionale 845487.47 6421852.02 845649.41 6421845.13
Cette espèce est bien présente sur le site de Soyons, Châteaubourg et Crussol.
Répartition de l’Aptinus pyrenaeus en Ardèche d’après Coulon, 2000.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 105 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O .VIII) Analyses et commentaires
A) Analyse des données
1) Répartition des bioindicateurs en fonction de leurs régimes alimentaires.
Le diagramme ci-dessus montre les différents cortèges de coléoptères saproxyliques bioindicateurs inventoriés (60 espèces), en fonction de leurs régimes alimentaires (xylophile I, II, saproxylophage, mycétophage, polyphage, saprophage et prédateur).
Répartition des 60 espèces de coléoptères bioindicateurs inventoriés sur Crussol-Soyons, en fonction de leurs régimes alimentaires.
Pour pouvoir expliquer les résultats obtenus, il faut savoir que généralement, plus une forêt, une ripisylve est vieille, plus elle va offrir une biomasse de bois mort importante. Associés à ces gros volumes de bois morts nous retrouvons les xylophiles secondaires (II) et les saproxylophages. Donc plus une forêt est âgée plus la proportion de ces deux groupes d’espèces sera importante. Inversement, dans une forêt relativement jeune, ou les bois mort et quasiment inexistant, ce sont les xylophiles primaires (I) qui vont dominer.
Sur le site naturel de Crussol-Soyons, on remarque que les xylophiles I (16) sont très bien représentés par rapport aux xylophiles II (9) et le saproxylophages (10). On peut déduire que le cortège de coléoptères saproxyliques observé sur ce site correspond à un cortège de coléoptères caractéristiques de forêts de recolonisation, avec des peuplements arborés peu âgés. La présence des xylophiles II (9) et le saproxylophages (10) tend à monter que de-ci de- là, quelques arbres matures sont présents.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 106 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Les coléoptères saproxyliques mycétophages se développent sur des champignons lignicoles et des carpophores. Ce type de champignons ne pousse généralement que sur de très vieux arbres, ou sur de gros volumes de bois morts. Les champignons lignicoles sont donc généralement caractéristiques des vieilles forêts conservées et non exploitées. Les coléoptères mycétophages sont par conséquent eux aussi inféodés à de vieilles forêts possédant de gros volumes de bois. Généralement, dans nos inventaires, lorsque nous avons 5 espèces ou plus de mycétophages, c’est que nous nous situons sur un site riche et varié. Effectivement, ce cortège d’espèces figure dans des proportions moindres, dans la liste de H. Brustel, par rapport aux autres cortèges (xylophiles I et II, saproxylophages et prédateurs). Sur le site naturel de Crussol-Soyons, nous avons obtenu 4 espèces de mycétophages bioindicateurs. Cela indique que ce dernier présente un peuplement intéressant mais non caractéristique de vieilles forêts conservées.
Le cortège de prédateurs est très bien représenté (17 espèces bioindicatrices sur 60). Ceci tend à montrer que le cortège de coléoptères saproxyliques présent sur le site naturel de Crussol- Soyons est important et bien établi. Effectivement, un cortège d’espèces de coléoptères prédatrices ne peut être nombreux que si les proies sont elles aussi abondantes. Les résultats obtenus montrent, là-aussi, que le peuplement de coléoptères saproxyliques sur le site naturel de Crussol-Soyons est abondant et bien diversifié.
Un autre constat de cette richesse et de cette diversité vient du fait que tous les types de régimes alimentaires connus (xylophiles I et II, saproxylophages, mycétophages, polyphages, saprophages et prédateurs) pour les coléoptères saproxyliques sont eux aussi représentés sur le site d’étude.
2) le nombre d’espèces bioindicatrices de qualité des forêts françaises
Bois de R.N. des Gorges site naturel de hêtraie de Saint- Eyrole, Dents Païolive de l’Ardèche Crussol- Julien du Gua (7 de Rez (85 (1 669 ha), (1 575 ha), trois Soyons (457 ha), deux années ha), trois deux années années d’étude ha), deux d’étude années d’étude années d’étude d’étude 89 63 60 56 32
Après deux années d’étude, il a été obtenu 60 espèces de coléoptères bioindicateurs de qualité des forêts Françaises. Ce résultat est très intéressant et montre que le site naturel de Crussol- Soyons possède un intérêt certain pour les coléoptères saproxyliques.
En comparaison, le site naturel de Crussol-Soyons, avec une année d’étude en moins, possède une richesse en coléoptères saproxyliques proche de celle de la Réserve naturelle des Gorges de l’Ardèche.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 107 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
-
Soyons
-
s autour
83)
07)
Hêtraiede Saint Julien du (07) Gua Massifs autour desMonges (04) Massif deLure (04) Massif Cévennes (30,34, des Forêtdu Luberon (84,04) lesite naturel de Crussol (07) R.N. desGorges de (07) l’Ardèche Massif Maures(83) des Gorges Verdon(83, 04) du Massif de Sainte la (13,83) Baume Boisde Païolive ( Massane Albères orientales et (66) 22 26 27 29 30 30 35 40 40 40 46 48
NB : les chiffres pour le site naturel de Crussol-Soyons sont différents dans ce second tableau car les milieux de référence et la liste d’espèces bioindicatrices associées ne sont pas les mêmes : forêts françaises en général, dans le premier cas (cf. tableau en annexe page 213-218) et forêts méditerranéennes dans l’autre cas (cf. tableau en annexe page 219-220).
On voit bien, ici, d’après les résultats de cette étude, que le site naturel de Crussol-Soyons possède un bon potentiel pour les coléoptères saproxyliques. Surtout, lorsque l’on sait qu’il s’agit d’une forêt de recolonisation qui ne présente que quelques arbres âgés disséminés. La richesse du site provient de plusieurs facteurs favorables. Premièrement, même s’ils ne sont pas nombreux, quelques arbres matures sont présents sur le site. Ces derniers permettent à certaines espèces de coléoptères saproxyliques exigeantes et lié aux vieux bois de subsister. Deuxièmement, le site naturel de Crussol-Soyons est en lien direct avec un vaste massif forestier qui joue un rôle de «trame verte ». Ce dernier permet un flux constant de coléoptères vers Crussol-Soyons, maintenant une biodiversité intéressante. De même, troisièmement, la présence quasi-contiguë du Rhône apporte « une trame bleu » qui permet à tout un cortège d’espèces liées aux ripisylves d’être présentes sur le site d’étude.
3) Indices patrimoniaux (Ip) de niveau « 4 ».
On peut évaluer l’intérêt patrimonial d’une forêt, d’une ripisylve ou d’un bocage, en fonction des Indices patrimoniaux (Ip) des espèces de coléoptères inventoriées. On peut classer les forêts en fonction du nombre d’espèces ayant des Ip de niveau « 4 ». En effet, le niveau « 4 » a été construit selon une philosophie différente des 3 autres classes associées aux saproxyliques. Ce niveau reflète une rareté extrême au niveau national qui induit pour un gestionnaire une responsabilité de conservation accrue. Il a été ainsi défini 3 classes : - Classe 1 : aucune espèce Ip = 4 : forêt d'intérêt patrimonial local à intérêt patrimonial régional - Classe 2 : une à trois espèces Ip = 4 : forêt d'intérêt patrimonial régional à intérêt patrimonial national - Classe 3 : plus de trois espèces Ip = 4 : forêt d'intérêt patrimonial national à intérêt patrimonial supranational.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 108 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Sur le site naturel de Crussol-Soyons aucune espèce Ip = 4 n’a été observée, ce qui est assez logique étant donné que l’on est sur une forêt relativement jeune.
Avec aucune espèce Ip4, nous nous situons dans la Classe 1 et l’on peut donc considérer que le site naturel de Crussol-Soyons possède pour les coléoptères saproxyliques un intérêt patrimonial local à un intérêt patrimonial régional.
4) Effet année
Nous allons voir, dans ce chapitre, l’importance de réaliser des inventaires entomologiques sur plusieurs années.
Nombre d’espèces Nombre de spécimens Année piégées au piège piégés interception 2014 4121 244 2015 3651 215
Dans le schéma ci-dessous non avons fait figurer les résultats obtenus lors des deux années d’étude. Il est intéressant de voir que seulement 110 espèces de coléoptères piégées sur un total de 349 espèces ont été piégées au cours des deux années. On voit ici les spécificités de chaque année et les similitudes ou dissimilitudes entre ces dernières. Il est, aussi, intéressant de voir que l’année 2015 a apporté 105 nouvelles espèces à l’inventaire, par rapport à 2014. Ceci tant à indiquer que malgré une longue liste de coléoptères inventoriés et très intéressante, notre inventaire est loin d’être exhaustif. Il y a encore de nombreuses espèces qui n’ont pas encore été trouvées sur le site naturel de Crussol-Soyons. On peut facilement en déduire qu’au final le site abrite plus de 60 espèces bioindicatrices.
2014
244 espèces
2015
110 espèces
215 espèces
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 109 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O B) Analyse des différents sites étudiés et des cortèges d’espèces de coléoptères
Dans ce paragraphe, les différents cortèges d’espèces de coléoptères saproxyliques piégés lors de cette d’études et les différents pièges seront analysés par une Classification Ascendante Hiérarchique (CAH). Cette analyse ne concerne que les 30 pièges interception utilisés en 2014 et 2015.
L'objet des méthodes de classification hiérarchique est de rechercher à chaque étape les deux classes les plus proches, on les fusionne, on continue jusqu'à qu'il n'y ait qu'une classe. Elle consiste à fournir un ensemble de partitions plus ou moins fines obtenues par regroupements successifs de parties. Dans la classification ascendante hiérarchique, on regroupe les individus les plus proches et ainsi de suite de proche en proche. A présent, nous allons nous intéresser aux différents cortèges d’espèces de coléoptères observés et à la similarité et dissimilarité des différents sites étudiés. Pour cette analyse, nous avons utilisé les tableaux de matrice en annexe page (222 à 229). Le coefficient de similarité de Jaccard utilisé pour cette analyse permet d'étudier l'existence de relation entre deux variables qualitatives.
L’analyse statistique réalisée, sur les espèces de coléoptères saproxyliques piégés et les différents pièges, donne le dendrogrammes ci-dessous.
Pour comprendre ce dendrogramme, il faut savoir que l’axe horizontal correspond aux divers sites inventoriés et que l’axe vertical correspond quant à lui à la similarité entre les sites. Au niveau d’un nœud, plus la distance est courte, plus la similarité entre les sites est grande. Ainsi sur notre dendrogramme, plus les nœuds seront situés en bas, plus les sites associés à ces mêmes nœuds seront similaires.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 110 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O On voit bien ici que la distribution des coléoptères piégés individualise trois ensembles bien tranchés. Le premier, en vert regroupe des pièges présents uniquement sur le site de Châteaubourg (1, 1’, 2, 2’, 3, 3’). Ces pièges étaient tous placés dans la ripisylve du cours d’eau intermittent la Goule qui se jette une centaine de mètre plus loin dans le Rhône. Cet ensemble, en vert, individualise en fait un cortège de coléoptères saproxyliques lié au ripisylve et inféodé aux arbres à bois tendre tels que les saules, les Peupliers et les frênes. Le second, en bleu, individualise des pièges posés sur Soyons (8, 9 et 10) et sur Crussol (7’, 8’, 9’ et 10’). Tous ces pièges étaient posés dans des zones enrésinés avec des pins. L’ensemble en bleu caractérise un cortège d’espèces de coléoptères lié aux pinèdes. Le troisième, en rouge, regroupe quant à lui tous les autres pièges posés sur les trois sites. Cet ensemble caractérise des cortèges d’espèces saproxyliques inféodées à la chênaie. On touche, ici, du doigt, la notion de mosaïque de milieu, qui fait que plus un biotope abrite des milieux, des essences d’arbres diversifiés, plus il sera riche est varié. C’est pourquoi, lors d’inventaires entomologiques, il est important de cibler un maximum de niches écologiques pour tenter d’être le plus exhaustif possible.
Ici, on voit un des atouts, du site naturel de Crussol-Soyons ; à savoir une diversité en peuplements végétaux, mixant des forêts de chênaies (pubescente ou verte), des résineux et une ripisylve à arbres à bois tendres sur Châteaubourg. A cette diversité végétale est strictement associée une grande diversité entomologique.
Schéma présentant les cortèges de coléoptères bioindicateurs liés à la chênaie, la pinède et la ripisylve.
Tropideres albirostris, Anisorus quercus, Anoplodera sexguttata, Cerambyx cerdo, Chlorophorus glabromaculatus, Deroplia genei, Pedostrangalia revestita, Pseudosphegesthes cinerea, Rhagium sycophanta, Trichoferus holosericeus, Trichoferus pallidus, Xylotrechus antilope, Gnorimus variabilis, Protaetia fieberi, Opilo pallidus, Tillus elongatus, Ampedus cardinalis, Ampedus Bioindicateurs glycerus, Brachygonus campadellii, Calambus bipustulatus, Cardiophorus gramineus, Elater inventoriés ferrugineus, Dromaeolus barnabita, Eucnemis capucina, Microrhagus lepidus, Phloiotrya tenuis, dans la Mycetophagus decempunctatus, Ischnomera caerulea, Prionychus ater, Colobicus hirtus, chênaie Pycnomerus terebrans
Platystomos albinus, Oxylaemus cylindricus, Brachygonus ruficeps, Aegosoma scabricorne, Protaetia lugubris, Stenagostus rhombeus Ampedus pomorum, Ampedus rufipennis, Ampedus sanguinolentus, Ischnodes sanguinicollis, Microrhagus emyi, Lucanus cervus, Mycetophagus piceus, Allecula morio Agrilus ater, Eurythyrea micans, Hylis olexai Arhopalus syriacus, Opilo Aegomorphus clavipes, Morimus asper, mollis, Stenagostus rufus, Drapetes mordelloides, Prostomis Temnochila caerulea mandibularis, Corticeus fasciatus, Platydema violaceum, Pseudocistela ceramboides
Bioindicateurs Bioindicateurs inventoriés inventoriés dans la pinède dans la ripisylve
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 111 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
.X) Recommandations générales pour la gestion forestière
Recommandations générales
De nombreux facteurs influencent naturellement le simple maintien voire les dynamiques de populations des cortèges d’insectes forestiers dont les coléoptères saproxyliques. Certains facteurs sont liés à des conditions biogéographiques ou à des événements du passé comme les successions glacières sur lesquels l’homme n’a pas et ne peut avoir d’emprise directe et volontaire. Par contre, les aménagements forestiers et les gestes de la gestion courante des milieux ont des conséquences directes (habitat existant) ou indirectes (genèse de milieux) sur les organismes vivants.
Toutes les essences et tous les diamètres d’arbres ont une faune spécifique. L’équilibre des classes d’âge, la diversité et le mélange des peuplements sont à favoriser. Il est donc primordial de favoriser les forêts mixtes ayant des peuplements d’âge variés, par rapport à des peuplements mono spécifiques réguliers. Toutefois, il faut bien avoir à l’idée que certaines mesures préconisées qui sont citées ici sont peu compatibles avec une gestion basée sur la sylviculture et la vente de bois. Le forestier est souvent plus sensible aux notions de production, de rendement à l’hectare et de rentabilité qu’à la notion de diversité biologique. Les populations biologiques d’un milieu sont le produit de la lente coévolution et de l’interaction des plantes et des animaux : les régénérations naturelles des espèces locales offrent une pérennité et une stabilité plus favorables que l’intensive culture d’essences exotiques. Par exemple des essences telles que le robinier et l’ailante sont à proscrire. Ces essences allochtones, lorsqu’elles sont plantées, ne sont colonisées et exploitées que par un nombre très réduit d’espèces de coléoptères saproxyliques.
Le Robinier et l’Ailante sont des plantes invasives à proscrire ou tout du moins à limiter. Effectivement, elles n’abritent que de très faibles cortèges d’espèces de coléoptères saproxyliques. Leur grande aptitude à coloniser les milieux, avec leurs drageons, entre autre, modifie considérablement le fasciés arboré dans lesquels elles s’implantent. Généralement ces arbres s’implantent au détriment d’autres espèces autochtones. De même, les plantations d’épicéas, de Douglas et de cèdres sont à proscrire pour des raisons similaires.
L’un des premiers facteurs favorisant une faune entomologique variée est la diversité des milieux car elle permet une grande diversité des habitats et biotopes recherchés par les différents insectes. Au niveau des pratiques forestières, des futaies régulières par unités variables, mais aussi les taillis, les taillis sous futaies, apportent souvent une hétérogénéité plus favorable que les concepts de futaies irrégulières ou jardinées, peuplements souvent assez fermés qui tendent vers une forme d’homogénéité à l’échelle de la forêt. Les très gros arbres offrent des bois morts stables et durables, ou des cavités de grande taille, pour les espèces rares à cycles longs et pour les successions riches et complexes de faune. Les
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 112 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O survieillissements de bouquets d’arbres ou d’arbres isolés sont indispensables. Pour favoriser et maintenir une grande biodiversité entomologique, mais aussi avicole et mammalogique, dans une forêt ou un massif forestier, deux principes sont indispensables. Le premier est donc de laisser des îlots d’arbres sénescents qui constitueront des parcelles forestières d’arbres âgés qui fixeront et maintiendront in situ une grande biodiversité. Parallèlement le survieillissement d’arbres isolés et dispersés dans toute la forêt est aussi nécessaire. Ces arbres permettent en effet une continuité au sein de la forêt. Ils jouent le rôle d’arbres relais permettant aux cortèges entomologiques de se déplacer d’étapes en étapes vers les zones abritant de grosses concentrations de vieux arbres.
Comme nous l’avons vu dans ce rapport, le bois mort et les arbres blessés sont les précurseurs d’un processus lent et complexe de genèse d’habitats pour les insectes saproxyliques. Ce matériau déprécié pour le forestier mérite d’être conservé, en partie tout au moins. De plus le coût d’exploitation de ce type de matériau s’avère au final n’être généralement que peu ou pas rentable.
Les milieux ouverts comme les clairières, les bords de pistes, les affleurements rocheux ou certaines zones humides offrent des milieux très contrastés avec les milieux boisés environnants. Ces milieux accueillent donc une faune spécifique et de nombreuses plantes à fleur visités par les insectes forestiers. Ils constituent de ce fait des trophotopes essentiels qu’il convient de maintenir ouverts.
La mosaïque des milieux est un gage certain de biodiversité entomologique car elle permet la création de très nombreuses niches écologiques. Il convient donc d’alterner milieux ouverts et milieux forestiers. Effectivement, les milieux ouverts en permettant le développement de nombreuses fleurs fournissent des trophotopes essentiels à la survie de nombreuses espèces d’insectes. De même, les sentiers et les chemins jouent aussi ce rôle d’une part et offrent, au même titre que les lisières, des couloirs et des corridors essentiels pour le déplacement des insectes dans la recherche de leur biotope de prédilection.
Contrairement à ce que l’on pourrait croire, le fait de laisser du bois mort en place ne constitue pas des futurs foyers d’invasions pour des espèces de coléoptères saproxyliques ravageurs (comme certains Scolytidae par exemple). Des études réalisées après la tempête de 1999 ont montré que malgré une énorme accumulation de bois morts, les insectes saproxyliques ravageurs n’ont pas pullulé. Au cours des années suivant la tempête, ces ravageurs ont été régulés naturellement. L’accumulation de bois fournissant « le gîte et le couvert » a permis aux cortèges de saproxyliques de bien se mettre en place. Parallèlement, des cortèges d’organismes prédateurs se sont installés permettant une régulation stable et durable des saproxyliques et des ravageurs.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 113 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Nous étayerons ce paragraphe avec les écrits de M. Nageleisen, spécialiste du Département de la Santé des forêts du Ministère de l’Agriculture et de la Forêt : « Les insectes ravageurs forestiers sont biologiquement inféodés aux seuls arbres vivants. Au nombre de quelques dizaines d’espèces, ils peuvent être classés en ravageurs primaires et ravageurs secondaires selon leur capacité à surpasser les réactions de l’arbre vivant. (…) Ces insectes se nourrissent de tissus vivant et laissent la place à d’autres cortèges, les insectes saproxylophages, lorsque leur hôte meurt. (…) Les insectes saproxylophages qui se succèdent depuis l’arbre récemment mort à l’arbre réduit à l’état de matière organique décomposée appartiennent à de très nombreuses familles et comptent des milliers d’espèces, toutes incapables d’investir des tissus vivants. (…) De fait, les arbres morts anciens ne présentent aucun danger pour la forêt. Au contraire, plusieurs études semblent montrer qu’ils abritent un cortège important de parasitoïdes et prédateurs qui exercent un certain contrôle des populations d’insectes ravageurs. Seuls les arbres en train de mourir ou récemment mort, qui peuvent pendant un cours laps de temps héberger encore quelques ravageurs secondaires, présentent éventuellement un danger à évaluer selon l’essence, les insectes et leur niveau de population » (Nageleisen, 2002).
Souvent, pour les gestionnaires des milieux embroussaillés ou avec des enchevêtrements de bois morts et de chandelles, constituent un « désordre relatif » qui faut s’empresser de nettoyer. Le « nettoyage complet » n’est pas synonyme de milieu en bon état de conservation. Il est préférable de laisser en état ces zones qui apparaissent peu esthétiques sur le plan visuel, mais qui sont le siège d’un foisonnement d’espèces saproxyliques. D’autant plus que la nature reprend vite ses droits et que les chablis, les troncs et les entrelacs de branches mortes finissent par se fondre et disparaître, dans les milieux, au bout de quelques années.
Ces quelques propositions de gestion semblent facilement réalisables par les gestionnaires et les forestiers. Les notions d’écologie et de gestion forestières ne sont pas opposées et au contraire elles peuvent facilement être conciliées.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 114 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
.X) Recommandations pour la gestion du site
naturel de Crussol-Soyons
Dans ce chapitre, nous donnerons quelques recommandations de gestion pour maintenir mais aussi stimuler la grande richesse en coléoptères saproxyliques présente sur le site naturel de Crussol-Soyons
Lors de la gestion courante et de l’entretien des haies, des chemins et des lisières, il est important de laisser in situ, ou en lisière de bois, les branches coupées lors de tailles diverses. Ces branches mortes, in fine, constitueront un substrat pour le développement d’un grand nombre de coléoptères saproxyliques. Cette gestion est d’ailleurs actuellement bien prise en compte et est bien appliquée sur les propriétés gérées par la Communauté de communes Rhône Crussol.
En effet comme on peut le voir sur les photos ci-jointes de nombreux troncs et diverses branches issues de coupes d’entretien ont été laissés sur place, sur le site de Crussol. Nous ne pouvons qu’encourager ce type de gestion qui permet de fixer et de maintenir de nombreuses espèces de coléoptères saproxyliques sur le site naturel de Crussol-Soyons. Comme nous l’avons vu précédemment, un des intérêts entomologique du site vient de sa mosaïque de milieu et notamment de son alternance entre les milieux ouverts et fermés. Cette alternance permet à de nombreuses espèces de coléoptères de trouver dans les milieux ouverts telles que les prairies et les diverses pelouses des zones d’alimentations (trophotopes) riches en fleurs. Les zones plus fermées et forestières, en fournissant du bois morts permettent quant à elles de nourrir les stades larvaires des coléoptères saproxyliques. Il est donc primordial de gérer cette alternance de milieux, en maintenant et en empêchant la fermeture des zones de pelouses et de prairies, avec du pâturage équin, ovin ou même caprin. Cette gestion pastorale des milieux doit être toutefois bien contrôlée et maitrisée. En effet, il faut toutefois éviter un trop gros chargement en bêtes et veiller à ne pas les laisser stationner trop longtemps dans une parcelle. Effectivement, l’appétit de ces dernières et la dégradation par piétinement peuvent être très néfaste à la végétation et par conséquence à la faune entomologique. De même, les déjections des animaux, si ces derniers sont trop nombreux et laissés trop longtemps au sein d’une parcelle, peuvent enrichir le substrat du sol et induire une modification du recouvrement végétal. Les orchidées étant un des atouts naturels, majeurs, du site naturel de Crussol-Soyons, il est bien évident que cette gestion évitant la fermeture des milieux est déjà prise en compte. Notamment sur Crussol où une gestion par pâturage équin (avec des ânes) est déjà mise en place.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 115 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Concernant la mosaïque des milieux, nous avons vu que les parcelles enrésinées avec du pin apportent une faune entomologique bien spécifique. Les autres essences de résineux allochtones tels que les cèdres, notamment ceux présents sur Crussol, n’ont pas de cortèges entomologiques associées. Ils n’offrent de ce point de vue que peu d’intérêt. Concernant, les parcelles de pins, elles se situent le plus souvent sur des parcelles appartenant à des propriétaires privées. Bien que ces pinèdes ne semblent pas exploiter, il serait intéressant, si ce n’est pas déjà le cas, de sensibiliser les propriétaires sur leur intérêt écologique. Ainsi, par le biais de conventions passées avec ces derniers, on pourrait assurer la pérennité des pinèdes pour maintenir une biodiversité entomologique sur le site naturel de Crussol-Soyons.
Les arbres invasifs tels que les robiniers et les ailantes sont des espèces introduites qui, la plupart du temps, n’hébergent qu’un nombre très limité de coléoptères. De plus ces essences n’ayant que peu de prédateurs, ils colonisent rapidement les milieux au détriment des espèces autochtones. Ces plantes invasives sont difficiles à détruire. Nombre d'entre elles tendent à s'étendre et à densifier leurs populations suite à la coupe de leurs parties aériennes. Elles ont souvent une forte capacité à rejeter de souche ou à produire des drageons et des stolons. C'est typiquement le cas de l'ailante qui est bien présent sur le site. La gestion d'une population de plante invasive doit toujours s'envisager sur le moyen ou le long terme. La lutte doit souvent être menée de manière rigoureuse durant plusieurs années consécutives pour pouvoir s'en défaire. Ce laps de temps est nécessaire pour épuiser progressivement tout le stock de graines contenu dans le sol et pour venir à bout de la capacité de multiplication végétative de la plante. Il est donc indispensable de mettre en place un suivi régulier des parcelles gérées. Donc dans le cas présent, il convient d’écorcer les ailantes repérés sur le site et de détruire régulièrement les repousses de drageons.
Bien que le site ne présente pas de vieux peuplements arborés, nous avons vu que les quelques rares arbres matures présents abritaient de nombreux coléoptères saproxyliques patrimoniaux. Aussi, il est primordial de maintenir ces arbres matures, mais aussi de favoriser le vieillissement général du couvert forestier. Nous ne pouvons que favoriser une politique de non gestion forestière du site naturel de Crussol-Soyons visant à laisser vieillir la forêt. Les seules actions de gestion ne concerneraient, au final, que des coupes visant à limiter la
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 116 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O fermeture du milieu dans les zones ouvertes et des coupes visant à sécuriser les divers chemins, parkings et autres endroits fréquentés, d’éventuel arbres dangereux ou menaçant pour la sécurité des promeneurs. Toutefois, il faut que le gestionnaire garde bien à l’idée qu’un arbre mort abrite la vie durant des décennies. En effet, des cohortes d’insectes, mais aussi de nombreux oiseaux et petits mammifères vont coloniser ces arbres au fil du temps. Ces arbres morts lorsqu’ils sont proche de parking, de sentiers sont systématique coupés, sous le seul prétexte que cela « n’est pas beau » .La notion, de gêne visuelle devrait être bannie des modes de gestion et des mentalités car elle n’est basée que sur le seul postulat : « cela n’est pas esthétique » qui est purement subjectif et qui va à l’encontre d’une gestion, intelligente et raisonnée, des milieux. Nous avons, ici, bien conscience du danger que peuvent représenter des arbres morts ou mourant au sein de milieu fréquenté par de nombreux citoyens. Il suffit d’employer quelques principes simples de gestion pour diminuer la dangerosité de ces arbres tout en concervant leurs potentialités en tant que niches écologiques pour les coléoptères saproxyliques. Les arbres présentant un réel danger peuvent être écimés. On peut ainsi laisser en place des chandelles sur une hauteur de trois à quatre mètres, voire plus sans que ces dernières fassent encourir un danger direct à la population. Avec le temps et en fonction de l’état de dégradation de ces chandelles on peut les raccourcir pour éviter tous risques de chutes. Il est important, de laisser du bois mort sur pied car certain type de coléoptères ne colonisent que les chandelles.
Concernant les vieux arbres, les arbres qui abritent la plus grande richesse entomologique et le plus d’espèces patrimoniales sont les arbres qui présentent des cavités. On retrouve ce type d’arbre sur Soyons et dans une moindre mesure sur Crussol. Les arbres à cavité ont tous une origine anthropique liée, notamment, aux pâturages et au bois de chauffage. Traditionnellement, autrefois, il était d’usage d’émonder le houppier des arbres, tous les dix ans environ pour donner le feuillage, à consommer, aux bétails ou pour faire du bois de chauffage. En appliquant cette technique, on favorise une importante ramification des charpentières des arbres. A leur niveau, l’eau et l’humidité ont tendance à s’accumuler et au fil du temps le bois pourri et les cavités se forment. Ces cavités fournissent à terme un habitat favorable pour des espèces patrimoniales très exigeantes qui ne colonisent que ce type de milieu. Sur le site naturel de Crussol-Soyons, cette technique pourrait être remise au goût du jour, en parallèle avec une activité pastorale. Ainsi, en combinant, le fait de laisser vieillir la forêt avec des pratiques d’émondage, on permettrait à terme d’avoir de nombreux arbres matures à cavités d’être présents sur le site. Parallèlement, cela permettrait d’installer toute une entomocènose sténoèce et une biodiversité riche et variée sur le site.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 117 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Concernant, le site de Châteaubourg, nous avons vu que ce dernier possédait une entomofaune riche et patrimoniale liée à la ripisylve du ruisseau la Goule. Or, une partie de ce ruisseau, qui abrite de nombreux coléoptères saproxyliques patrimoniaux est étonnamment exclue du site Natura 2000 n°FR 820 1662 (voir carte ci-joint). Il serait, si cela était possible lors d’une éventuelle réactualisation de contour de ce site Natura 2000, d’intégrer cette micro parcelle en jaune qui abrite une faune remarquable.
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 118 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Annexes
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 119 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O * Lexique :
*Chorologie, n. f., discipline de la biogéographie qui a pour objet d’expliquer les raisons de la répartition géographique des espèces vivantes, par opposition à la génomie qui consiste en la description de la répartition géographique de ces espèces. *Sténoecie, n. f. propriété caractérisant les niches écologiques étroites. *Espèces sténoèces, espèces qui ne se développent que dans un champ étroit de contraintes environnementales. *Berlèse, appareil en forme d’entonnoir utilisé en écologie des sols pour prélever la faune de la litière. *Trophotope, lieu de nourrissage des coléoptères. *Carie, résultat de la dégradation et du pourrissement du bois qui en fonction de l’humidité et du degré de dégradation de la lignine et de la cellulose évolue soit en carie rouge, soit en carie blanche. *Déhiscent, terme employé pour qualifier les arbres arrivant en fin de vie qui présentent des signes de dégradation. *Carpophore, il s’agit de la partie visible des champignons à basides qui se développent sur des organismes ligneux.
Crédit photographique :
Toutes les photos fournis dans ce rapport ont été réalisés par B.Calmont (S.H.N.A.O.), sauf mention contraire. Elles sont la propriété de l’auteur et sont donc soumises au Copy Right et toutes reproductions sont interdites sauf autorisation de leur auteur.
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(Linnaeus, 1758) sur le site d’étude(Linnaeus, site sur 1758) le
Platystomos albinus Platystomos
u
Cartographie d Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 124 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le sur d’étude le site
s (Schaller, 1783) s (Schaller,
Tropideres albirostri Tropideres
u
Cartographie d Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 125 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site site surd’étude le
(Fabricius, 1787) (Fabricius,
Biphyllus lunatusBiphyllus
u
Cartographie d Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 126 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
(Panzer, site sur1796) (Panzer, d’étude le
Oxylaemus cylindricus cylindricus Oxylaemus
Cartographie d’ Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 127 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
e
(Panzer, site sur1796) (Panzer, d’étud le
Oxylaemus cylindricus cylindricus Oxylaemus
Cartographie d’ Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 128 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
(Panzer, site sur1796) (Panzer, d’étude le
Oxylaemus cylindricus cylindricus Oxylaemus
Cartographie d’ Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 129 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site d’étude site sur le
(Linnaeus, 1767)
Agrilus ater Agrilus ater
Cartographie d’ Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 130 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
(Fabricius, site (Fabricius, sur1794) d’étude le
Eurythyrea micans micans Eurythyrea
Cartographie d’ Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 131 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
li, 1763) sur le site site sur 1763) d’étude le li,
(Scopo
Aegomorphus clavipes
Cartographie d’ Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 132 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
(Scopoli, d’étude(Scopoli, site sur1763) le
Aegosoma scabricorne Aegosoma
Cartographie d’ Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 133 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
(Scopoli, d’étude(Scopoli, site sur1763) le
Aegosoma scabricorne Aegosoma
Cartographie d’ Cartographie
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Goeze, 1783 sur le site d’étude site sur 1783 le Goeze,
Anisorus quercus
Cartographie d’ Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 135 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site d’étude site sur le
(Fabricius, (Fabricius, 1775)
’Anoplodera sexguttata ’Anoplodera
d
Cartographie Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 136 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site d’étude site sur le
(Fabricius, (Fabricius, 1775)
d’Anoplodera sexguttata d’Anoplodera
Cartographie Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 137 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site d’étude site sur le
(Reitter, 1895) (Reitter,
Arhopalus syriacus
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 138 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site d’étude site sur le
(Linnaeus, 1758)
Cerambyx cerdo cerdo Cerambyx
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 139 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site d’étude site sur le
(Linnaeus, 1758)
Cerambyx cerdo cerdo Cerambyx
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 140 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site d’étude site sur le
(Goeze, 1777) 1777) (Goeze,
Chlorophorus glabromaculatus
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 141 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site d’étude site sur le
(Goeze, 1777) 1777) (Goeze,
Chlorophorus glabromaculatus
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 142 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site d’étude site sur le
(Aragona, 1830)
Deroplia genei genei Deroplia
u
d
graphie
Carto
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 143 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Sulzer 1776 sur le site d’étude site sur 1776 le Sulzer
Morimus asper
Cartographie Cartographie du
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 144 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
sur le site d’étude site sur le
(Linné, 1767) 1767) (Linné,
Pedostrangalia revestita Pedostrangalia
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 145 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site site d’étudele
Gory, 1836) sur 1836) Gory,
(Castelnau &
Pseudosphegesthes cinerea
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 146 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site site d’étudele
(Castelnau & Gory, 1836) sur 1836) (Castelnau & Gory,
Pseudosphegesthes cinerea
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 147 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
(Schrank, sur 1781)
Rhagium sycophanta Rhagium
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 148 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
d’étude
le site le
(Schrank, sur 1781)
Rhagium sycophanta Rhagium
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 149 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
(Rossi, sur 1790)
Trichoferus holosericeus
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 150 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Olivier, 1790) (Olivier,
Trichoferus pallidus Trichoferus pallidus
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 151 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Olivier, 1790) (Olivier,
Trichoferus pallidus Trichoferus pallidus
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 152 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site site d’étudele
sur
(Schönherr, 1817) 1817) (Schönherr,
echus antilope echus antilope
Xylotr
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 153 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site site d’étudele
sur
(Schönherr, 1817) 1817) (Schönherr,
Xylotrechus antilope antilope Xylotrechus
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 154 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Linnaeus, 1758)
Gnorimus variabilis Gnorimus variabilis
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 155 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site site d’étudele
sur
(Kraatz, 1880) (Kraatz,
Protaetia fieberi fieberi Protaetia
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 156 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site site d’étudele
sur
(Kraatz, 1880) (Kraatz,
Protaetia fieberi fieberi Protaetia
u
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 157 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Linnaeus, 1758)
Opilo mollis Opilo mollis
e l’ e
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 158 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Linnaeus, 1758)
Opilo mollis Opilo mollis
e l’ e
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 159 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
(Olivier, 1795) (Olivier,
us
l’Opilo l’Opilo pallid
e
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 160 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Linnaeus, 1758)
Tillus Tillus elongatus
e
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 161 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
(Schiödte, 1865) (Schiödte,
cardinalis cardinalis
Ampedus Ampedus
’
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 162 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Herbst, Herbst, 1784
Ampedus glycerus glycerus Ampedus
’
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 163 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Herbst, Herbst, 1784
Ampedus glycerus glycerus Ampedus
’
d
aphie
Cartogr
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 164 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
(Herbst, 1784) 1784) (Herbst,
Ampedus pomorum pomorum Ampedus
’
d
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 165 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Stephens, 1830)
Ampedus rufipennisAmpedus
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 166 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
site d’étudesite
le
sur
(Stephens, 1830)
Ampedus rufipennisAmpedus
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 167 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Ampedus sanguinolentusAmpedus (Schrank, 1776)
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 168 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Ampedus sanguinolentusAmpedus (Schrank, 1776)
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 169 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Brachygonus campadellii Platia & Platia Gudenzi,Brachygonus 2000 campadellii
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 170 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Mulsant & Guillebeau, 1855) (Mulsant & Guillebeau,
Brachygonus ruficeps
du
aphie
Cartogr
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 171 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Mulsant & Guillebeau, 1855) (Mulsant & Guillebeau,
Brachygonus ruficeps
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 172 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Linnaeus, 1767)
Calambus bipustulatusCalambus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 173 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Scopoli, 1763) (Scopoli,
Cardiophorus gramineus
du
e
Cartographi
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 174 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site site d’étudele
sur
Host, 1789 1789 Host,
Drapetes mordelloides mordelloides Drapetes
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 175 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Linnaeus, 1758
Elater Elater ferrugineus
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 176 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
1793)
(Panzer,
Ischnodes sanguinicollis
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 177 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
(Panzer, 1793) (Panzer,
Ischnodes sanguinicollis
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 178 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
(Olivier, 1790) 1790) (Olivier,
Stenagostus rhombeus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 179 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
(Olivier, 1790) 1790) (Olivier,
Stenagostus rhombeus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 180 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
(Olivier, 1790) 1790) (Olivier,
Stenagostus rhombeus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 181 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(De Geer, 1774) Geer, (De
Stenagostus rufus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 182 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site site d’étudele
sur
(Villa, 1837) (Villa,
Dromaeolus barnabita
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 183 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
rens, 1812 rens,
Ah
Eucnemis capucina Eucnemis
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 184 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Ahrens, 1812
Eucnemis capucina Eucnemis
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 185 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Palm, Palm, 1955)
Hylis olexai ( olexai Hylis
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 186 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Palm, Palm, 1955)
Hylis olexai ( olexai Hylis
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 187 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Rouget, 1856)
myi myi
Microrhagus e
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 188 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Rouget, 1856)
Microrhagus emyi Microrhagus emyi
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 189 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Rosenhauer, 1847
Microrhagus lepidus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 190 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
de
le site d’étu site le
sur
Rosenhauer, 1847
Microrhagus lepidus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 191 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Rouget, 1856)
Microrhagus emyi Microrhagus emyi
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 192 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Linnaeus, 1758)
Lucanus ( cervus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 193 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
Linnaeus, 1758)
Lucanus ( cervus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 194 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
1758)
Linnaeus,
Lucanus ( cervus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 195 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site site d’étudele
sur
(Hampe, 1850) (Hampe,
Phloiotrya tenuis Phloiotrya
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 196 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
Fabricius, 1801 1801 Fabricius,
Mycetophagus decempunctatus decempunctatus Mycetophagus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 197 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Fabricius, (Fabricius, 1777)
Mycetophagus piceus piceus Mycetophagus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 198 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Fabricius, (Fabricius, 1777)
Mycetophagus piceus piceus Mycetophagus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 199 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Linnaeus, 1758)
Ischnomera caerulea Ischnomera caerulea
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 200 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Fabricius, (Fabricius, 1801)
Prostomis mandibularis mandibularis Prostomis
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 201 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
(Fabricius, 1787) (Fabricius,
io io
Allecula mor Allecula
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 202 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
(Fabricius, 1787) (Fabricius,
Allecula morio Allecula
d’
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 203 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Fabricius, (Fabricius, 1790)
Corticeus fasciatus fasciatus Corticeus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 204 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
’étude
le site site d le
sur
(Fabricius, (Fabricius, 1790)
Platydema violaceum Platydema
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 205 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le d’étudele site
sur
(Fabricius, 1775) (Fabricius,
Prionychus ater Prionychus ater
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 206 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Linnaeus, 1761)
Pseudocistela Pseudocistela ceramboides
de de
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 207 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Olivier, 1790) (Olivier,
Temnochila caerulea Temnochila
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 208 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Olivier, 1790) (Olivier,
ochila ochila caerulea
Temn
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 209 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Rossi, 1790)
Colobicus hirtusColobicus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 210 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Rossi, 1790)
Colobicus hirtusColobicus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 211 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
de
le site d’étu site le
sur
(Rossi, 1790)
Colobicus hirtusColobicus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 212 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
le site d’étude site le
sur
(Olivier, 1790) (Olivier,
Pycnomerus terebrans Pycnomerus
du
Cartographie
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 213 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Extraits de la thèse d’Hervé Brustel : Coléoptères saproxyliques et valeur biologique des forêts françaises. Liste de coléoptères saproxyliques et données biologiques
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 214 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Extraits de la thèse d’Hervé Brustel : Coléoptères saproxyliques et valeur biologique des forêts françaises. Liste de coléoptères saproxyliques et données biologiques (suite)
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 215 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Extraits de la thèse d’Hervé Brustel : Coléoptères saproxyliques et valeur biologique des forêts françaises. Liste de coléoptères saproxyliques et données biologiques (suite)
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 216 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Extraits de la thèse d’Hervé Brustel : Coléoptères saproxyliques et valeur biologique des forêts françaises. Liste de coléoptères saproxyliques et données biologiques (suite)
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 217 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Extraits de la thèse d’Hervé Brustel : Coléoptères saproxyliques et valeur biologique des forêts françaises. Liste de coléoptères saproxyliques et données biologiques (suite)
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 218 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Extraits de la thèse d’Hervé Brustel : Coléoptères saproxyliques et valeur biologique des forêts françaises. Liste de coléoptères saproxyliques et données biologiques (suite)
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 219 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Extraits de la thèse d’Hervé Brustel : Coléoptères saproxyliques et valeur biologique des forêts françaises. Liste de coléoptères saproxyliques et exemples de forêts françaises
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 220 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O Extraits de la thèse d’Hervé Brustel : Coléoptères saproxyliques et valeur biologique des forêts françaises. Liste de coléoptères saproxyliques et exemples de forêts françaises
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 221 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 222 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
g5
Espèce oyons1'
Soyons1 Soyons2 Soyons3 Soyons4 Soyons5 Soyons6 Soyons7 Soyons8 Soyons9
S Soyons5' Crussol1 Crussol2 Crussol3 Crussol4 Crussol5 Crussol6 Crussol7 Crussol8 Crussol9
Crussol6' Crussol6' Crussol7' Crussol8' Crussol9' Crussol1'
Soyons10
Crussol10 Crussol11 Crussol12
Crussol10' Crussol10' Crussol11'
Châteubourg1 Châteubourg2 Châteubourg3 Châteubour Châteubourg4 Châteubourg6 Châteubourg7 Châteubourg8
Châteubourg1' Châteubourg2' Châteubourg3' Châteubourg7'
Abdera quadrifasciata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Aegomorphus clavipes 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Aegosoma scabricorne 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Agapanthia villosoviridescens 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Agrilus angustulus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Agrilus hastulifer 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Agrilus laticornis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Agrilus sulcicollis 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Agriotes gallicus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Agriotes ustulatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 1 Agriotes pallidulus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 Allecula morio 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Alphitophagus bifasciatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 Alosterna tabacicolor 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 Amadotrogus vicinus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Amara familiaris 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Amara ovata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 1 0 1 0 Ampedus cardinalis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ampedus glycerus 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ampedus pomorum 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ampedus quercicola 1 0 0 1 0 0 0 1 1 0 1 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 1 0 1 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ampedus rufipennis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ampedus sanguineus 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ampedus sanguinolentus 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 1 0 0 0 0 1 1 1 1 Amphotis marginata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anaglyptus gibbosus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anaspis fasciata 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 1 0 0 0 0 Anaspis flava 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 Anaspis melanopa 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anastrangalia sanguinolenta 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anisorus quercus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anisotoma humeralis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anobium hederae 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 Anobium punctatum 1 0 1 1 0 1 0 0 1 1 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 1 1 0 Anogcodes seladonius 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Anoplodera sexguttata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anthaxia quadripunctata 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Anthaxia salicis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Anthaxia semicuprea 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Aplocnemus impressus 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 1 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Arhopalus rusticus 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Arhopalus syriacus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 223 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
9' 9'
spèce
E
Soyons1 Soyons2 Soyons3 Soyons4 Soyons5 Soyons6 Soyons7 Soyons8 Soyons9
Soyons1' Soyons1' Soyons5' Crussol1 Crussol2 Crussol3 Crussol4 Crussol5 Crussol6 Crussol7 Crussol8 Crussol9
Crussol6' Crussol6' Crussol7' Crussol8' Crussol Crussol1'
Soyons10
Crussol10 Crussol11 Crussol12
Crussol10' Crussol10' Crussol11'
Châteubourg1 Châteubourg2 Châteubourg3 Châteubourg5 Châteubourg4 Châteubourg6 Châteubourg7 Châteubourg8
Châteubourg1' Châteubourg2' Châteubourg3' Châteubourg7'
Arpidiphorus lareyiniei 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Arpidiphorus orbiculatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Athous bicolor 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Athous dejeani 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Athous haemorrhoidalis 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0 1 1 0 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1 0 1 1 1 0 1 0 1 1 1 1 1 1 Athous tomentosus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 1 1 0 0 1 0 1 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 1 1 0 0 Betarmon bisbimaculatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Biphyllus lunatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Brachygonus campadellii 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Brachygonus ruficeps 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Calambus bipustulatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Camptorhinus simplex 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 Carabus intricatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Carcinops pumilio 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 1 0 1 0 Cardiophorus goezei 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Cardiophorus gramineus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Cardiophorus nigerrimus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 Cartodere nodifer 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Cerambyx cerdo 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Cerambyx scopolii 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Cetonia aurata 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0 0 1 0 1 1 1 0 1 1 0 1 0 1 1 1 0 1 1 1 1 0 1 1 1 1 0 1 1 1 1 0 0 1 Chlorophorus glabromaculatus 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Chrysanthia viridissima 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Chrysobothris affinis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Cidnopus pilosus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 Cis bicornis 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Cis micans 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Cis rugulosus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Clerus mutillarius 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 0 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 0 Clytus arietis 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 1 0 Colobicus hirtus 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 1 0 0 1 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Colydium elongatum 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Conopalpus brevicollis 1 0 1 1 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Corticeus fasciatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Cossonus parallelepipedus 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Cteniopus sulphureus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ctesias serra 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Curculio villosus 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Dacne bipustulata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Danacea sp 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 Dasytes aeratus 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 1 0 1 1 0 0 1 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 1 1 1 0 0 0 0 1 0 Dasytes croceipes 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 1 0 0 1 0 0 1 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 224 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
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Espèce
Soyons1 Soyons2 Soyons3 Soyons4 Soyons5 Soyons6 Soyons7 Soyons8 Soyons9
Soyons1' Soyons1' Soyons5' Crussol1 Crussol2 Crussol3 Crussol4 Crussol5 Crussol6 Crussol7 Crussol8 Crussol9
Crussol6' Crussol6' Crussol7' Crussol8' Crussol9' Crussol1'
Soyons10
Crussol10 Crussol11 Crussol12
Crussol10' Crussol10' Crussol11'
Châteubourg1 Châteubourg2 Châteubourg3 Châteubourg5 Châteubourg4 Châteubourg6 Châteubourg7 Châteubourg8
Châteubourg1' Châteubourg2 Châteubourg3' Châteubourg7'
Dasytes pauperculus 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 1 0 0 0 0 Dasytes plumbeus 0 0 0 0 1 1 1 0 0 1 0 0 0 0 1 0 1 1 0 1 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 1 0 1 1 0 0 1 0 0 0 0 0 Dermestes frischi 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Dermestes olivieri 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Dermestes undulatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 Deroplia genei 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Diachromus germanus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Diaperis boleti 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Dicronychus cinereus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Dinoptera collaris 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Diplocoelus fagi 1 0 1 0 0 0 0 0 1 0 1 1 0 0 1 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 Dorcatoma setosella 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 Dorcus parallelipipedus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 Drapetes mordelloides 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Drasterius bimaculatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 1 0 0 Drilus flavescens 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 1 1 Dromaeolus barnabita 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Dromius meridionalis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Dryocoetes autographus 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Dryocoetes villosus 0 0 1 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 1 0 1 1 1 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Elater ferrugineus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Enicmus brevicornis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Eucnemis capucina 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Euglenes oculatus 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Eulagius filicornis 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Eurythyrea micans 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Exocentrus punctipennis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 Gastrallus laevigatus 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Gastrallus sp 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Grammoptera abdominalis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Grammoptera ruficornis 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 Grammoptera ustulata 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Glischrochilus quadrisignatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Gnorimus variabilis 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Gonodera luperus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Hadrobregmus denticollis 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 1 1 1 0 Hallomenus binotatus 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Harpalus tardus 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Hemicoelus fulvicornis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hemicoelus nitidus 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Hemicoelus rufipennis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hemicrepidius hirtus 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 0 0
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 225 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Espèce russol1'
Soyons1 Soyons2 Soyons3 Soyons4 Soyons5 Soyons6 Soyons7 Soyons8 Soyons9
Soyons1' Soyons1' Soyons5' Crussol1 Crussol2 Crussol3 Crussol4 Crussol5 Crussol6 Crussol7 Crussol8 Crussol9
Crussol6' Crussol6' Crussol7' Crussol8' Crussol9' C
Soyons10
Crussol10 Crussol11 Crussol12
Crussol10' Crussol10' Crussol11'
Châteubourg1 Châteubourg2 Châteubourg3 Châteubourg5 Châteubourg4 Châteubourg6 Châteubourg7 Châteubourg8
Châteubourg1' Châteubourg2' Châteubourg3' Châteubourg7'
Hylastes ater 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hylastes attenuatus 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hylastes linearis 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hylastinus obscurus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hylecoetus dermestoides 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hylesinus crenatus 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hylesinus fraxini 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hylesinus toranio 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Hylis olexai 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hylobius abietis 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Hymenalia rufipes 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Idolus picipennis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 1 0 Ischnodes sanguinicollis 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ischnomera caerulea 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Isomira murina 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Korynetes caeruleus 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Lacon punctatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Lagria glabrata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Lagria hirta 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Lampyris noctiluca 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Leistus rufomarginatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Leptura aurulenta 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 Limonius minutus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Litargus connexus 0 1 1 0 1 1 0 1 1 1 0 0 0 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0 1 0 0 0 0 1 0 1 1 1 0 0 0 0 1 1 1 0 1 Lucanus cervus 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Lyctus brunneus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Lymexylon navale 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Margarinotus merdarius 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Marolia variegata 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Megatoma undata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 Melanotus crassicollis 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Melanotus punctolineatus 1 1 0 1 1 1 0 1 1 1 0 1 1 1 1 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 1 0 1 0 0 1 1 0 1 1 1 0 0 0 1 0 0 Melanotus tenebrosus 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 1 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 Melasis buprestoides 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 1 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Mesosa nebulosa 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 Microrhagus emyi 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Microrhagus lepidus 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Monochamus galloprovincialis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Mycetochara linearis 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 1 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 Mycetochara quadrimaculata 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Mycetophagus decempunctatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Mycetophagus piceus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 226 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
'
l9
Espèce
Soyons1 Soyons2 Soyons3 Soyons4 Soyons5 Soyons6 Soyons7 Soyons8 Soyons9
Soyons1' Soyons1' Soyons5' Crussol1 Crussol2 Crussol3 Crussol4 Crussol5 Crussol6 Crussol7 Crussol8 Crusso
Crussol6' Crussol6' Crussol7' Crussol8' Crussol9' Crussol1'
Soyons10
Crussol10 Crussol11 Crussol12
Crussol10' Crussol10' Crussol11'
Châteubourg1 Châteubourg2 Châteubourg3 Châteubourg5 Châteubourg4 Châteubourg6 Châteubourg7 Châteubourg8
Châteubourg1' Châteubourg2' Châteubourg3 Châteubourg7'
Mycetophagus quadriguttatus 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Mycetophagus quadripustulatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Nacerdes carniolica 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 1 0 0 0 0 Nalassus dryadophilus 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Nalassus laevioctostriatus 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 Nebria brevicollis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Necrodes littoralis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 Nemozoma elongatum 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Nicrophorus humator 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Nicrophorus interruptus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 Nothodes parvulus 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0 0 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0 1 0 Obrium brunneum 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 Oedemera femoralis 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 1 0 1 0 1 0 1 0 1 1 1 1 0 1 0 0 0 1 0 1 1 1 0 0 0 1 1 1 1 0 1 Oedemera flavipes 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 1 1 1 0 0 0 0 0 0 1 1 Oedemera nobilis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 1 1 1 1 0 Oedemera podagrariae 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Oligomerus brunneus 1 1 1 1 1 1 1 0 1 0 0 1 1 0 1 1 1 1 1 0 1 0 0 1 1 1 0 0 0 0 1 1 1 1 1 0 0 0 1 1 0 1 0 Omophlus lepturoides 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Opilo domesticus 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Opilo mollis 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Opilo pallidus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Orchestes avellanae 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Orchestes pilosus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Oxylaemus cylindricus 0 0 1 1 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 1 0 1 1 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Oxythyrea funesta 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 Palorus depressus 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Paracorymbia fulva 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 1 1 Parmena balteus 0 0 0 1 1 1 0 1 1 1 0 0 0 1 1 0 1 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 1 0 1 0 1 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 Paromalus flavicornis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 0 0 Pedostrangalia revestita 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Pheletes quercus 1 0 1 0 0 0 1 1 0 1 1 0 0 1 0 1 0 0 1 1 1 1 1 1 1 0 0 0 0 0 0 1 1 1 1 0 1 0 0 1 0 1 0 Phloeophagus lignarius 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Phloiotrya tenuis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Phymatodes testaceus 1 0 1 1 0 1 1 1 1 1 0 0 0 1 1 0 1 1 1 0 1 0 0 1 1 0 1 0 0 1 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 Pityophagus laevior 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Placonotus testaceus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Plagionotus arcuatus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Plagionotus detritus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Platydema violaceum 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Platyderus depressus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Platypus cylindrus 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 1 1 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Platysoma elongatum 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 227 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
rg1
yons6
Espèce
Soyons1 Soyons2 Soyons3 Soyons4 Soyons5 So Soyons7 Soyons8 Soyons9
Soyons1' Soyons1' Soyons5' Crussol1 Crussol2 Crussol3 Crussol4 Crussol5 Crussol6 Crussol7 Crussol8 Crussol9
Crussol6' Crussol6' Crussol7' Crussol8' Crussol9' Crussol1'
Soyons10
Crussol10 Crussol11 Crussol12
Crussol10' Crussol10' Crussol11'
Châteubou Châteubourg2 Châteubourg3 Châteubourg5 Châteubourg4 Châteubourg6 Châteubourg7 Châteubourg8
Châteubourg1' Châteubourg2' Châteubourg3' Châteubourg7'
Platystomos albinus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 Pocadius ferrugineus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Poecilium fasciatum 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Poecilium lividum 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Pogonocherus hispidus 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Priobium carpini 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 1 0 Prionychus ater 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Prionychus fairmairei 1 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 1 0 Prostomis mandibularis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Protaetia cuprea 0 0 1 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 1 1 0 1 1 1 1 1 0 0 1 0 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 0 0 1 0 Protaetia fieberi 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Protaetia lugubris 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Protaetia morio 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 1 1 0 0 0 1 0 Pseudocistela ceramboides 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Pseudosphegesthes cinerea 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Psilothrix viridicoerulea 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Psoa dubia 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 1 0 0 0 1 1 1 1 0 Pterostichus madidus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ptilinus pectinicornis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 1 0 Ptinomorphus imperialis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 1 1 0 Ptinomorphus regalis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Ptinus aubei 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ptinus bidens 0 0 1 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ptinus italicus 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ptinus lichenum 1 1 0 0 1 1 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Ptinus sexpunctatus 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Pycnomerus terebrans 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Pyrochroa serraticornis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 Rhagium inquisitor 0 1 0 0 1 0 1 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Rhagium sycophanta 1 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Rhizophagus bipustulatus 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Rhizophagus parallelocollis 1 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Rhizotrogus aestivus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Rhyncolus elongatus 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Rushia parreyssi 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Rutpela maculata 1 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 1 Salpingus aeneus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Salpingus planirostris 0 0 0 0 0 1 0 1 0 1 1 0 1 0 1 1 1 1 0 1 1 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 1 0 1 0 0 1 0 0 0 0 Scaphidema metallicum 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Scaphidium quadrimaculatum 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 Scobicia chevrieri 1 0 0 0 0 1 1 1 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 Scolytus intricatus 1 0 0 1 1 0 1 0 0 0 0 1 1 0 1 0 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 228 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
l7
rg2' rg2'
Espèce
Soyons1 Soyons2 Soyons3 Soyons4 Soyons5 Soyons6 Soyons7 Soyons8 Soyons9
Soyons1' Soyons1' Soyons5' Crussol1 Crussol2 Crussol3 Crussol4 Crussol5 Crussol6 Crusso Crussol8 Crussol9
Crussol6' Crussol6' Crussol7' Crussol8' Crussol9' Crussol1'
Soyons10
Crussol10 Crussol11 Crussol12
Crussol10' Crussol10' Crussol11'
Châteubourg1 Châteubourg2 Châteubourg3 Châteubourg5 Châteubourg4 Châteubourg6 Châteubourg7 Châteubourg8
Châteubourg1' Châteubou Châteubourg3' Châteubourg7'
Scolytus mali 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Scolytus rugulosus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 Serica brunnea 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Sinoxylon perforans 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Sinoxylon sexdentatum 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Spondylis buprestoides 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Stelidota geminata 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 1 0 0 1 1 1 1 Stenagostus rhombeus 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 Stenagostus rufus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Stenurella bifasciata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 0 Stenurella melanura 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 1 1 0 0 Synchita mediolanensis 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Synchita undata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Temnochila caerulea 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Tenebroides mauritanicus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 Thanasimus formicarius 1 0 1 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 1 0 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 1 0 Tillus elongatus 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Tomoxia bucephala 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 1 0 Trechus quadristriatus 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Trichodes alvearius 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 Trichoferus fasciculatus 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Trichoferus holosericeus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Trichoferus pallidus 0 1 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Triplax russica 0 0 1 1 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 1 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Tritoma bipustulata 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 1 1 1 1 1 0 1 0 1 1 1 1 Trixagus leseigneuri 1 1 1 1 1 0 0 0 1 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Tropideres albirostris 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Trotomma pubescens 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Trox perrisii 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Uleiota planata 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 1 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 1 0 1 1 1 0 Valgus hemipterus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 1 0 1 0 0 0 1 1 1 Vincenzellus ruficollis 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Xyleborinus saxesenii 1 1 1 1 0 0 1 1 0 0 0 1 0 0 1 1 1 1 1 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0 1 1 1 1 1 1 0 0 1 1 1 1 1 Xyleborus dispar 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 Xyleborus dryographus 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 0 1 1 1 1 1 1 Xyleborus eurygraphus 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Xyleborus monographus 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0 0 0 0 0 1 0 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 0 Xylopertha retusa 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 1 1 1 1 1 0 1 1 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Xylotrechus antilope 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 0 0 Xylotrechus arvicola 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 1 0 1 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 0 1 1 1 0 0 0 0 1 1 0 1 Xylotrechus stebbingi 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1 0 0 0 0 0 0 1 0 1 0
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 229 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O
Inventaire des coléoptères sur le site Crussol-Soyons (07) 230 Rapport final septembre 2015 Entomologiste Calmont B., S.H.N.A.O