Лабораторное Размножение Кубинской Жабы (Peltophryne Empusa Cope, 1862)
Total Page：16
File Type：pdf, Size：1020Kb
СОВРЕМЕННАЯ ГЕРПЕТОЛОГИЯ. 2017. Т. 17, вып. 1/ 2. С. 36 – 43 УДК 591.16:597.8 ЛАБОРАТОРНОЕ РАЗМНОЖЕНИЕ КУБИНСКОЙ ЖАБЫ (PELTOPHRYNE EMPUSA COPE, 1862) А. А. Кидов, К. А. Матушкина, С. А. Блинова, К. А. Африн Российский государственный аграрный университет – Московская сельскохозяйственная академия имени К. А. Тимирязева Россия,, 4127550 Москва,, Тимирязевская 49 E-mail: kidov_. a@ mail ru Поступила в редакцию 18.04.2016 г. Приводятся данные по размножению кубинской жабы (Peltophryne empusa ) в лабораторных условиях. Нерест стимулировали инъекцией сурфагона. Начало икрометания наблюдалось при температуре 27.0 – 27.5°C ранним утром через 10 – 12 часов после инъекции. Плодовитость самок составляла от 2415 до 7343 яиц. Инкубация длилась 12 – 24 часа. Общая длительность эмбриогенеза от откладки яиц до начала экзогенного питания личинок составляла около 2 суток. Личиночное развитие кубинской жабы продолжалось от 27 до 64 суток. Длина тела молодых жаб после полной резорбции хвоста составляла 6.8 – 10.5 мм. Ключевые слова: кубинская жаба,Peltophryne empusa , лабораторное разведение. DOI: 10.18500/1814-6090-2017-17-1-2-36-43 ВВЕДЕНИЕ nus galeatus (Günther, 1864 )) жаб, а также многих других представителей семейства (Гончаров и др., Как и в других сложных таксономических 1989; Кидов, Сербинова, 2008; Кидов и др., 2014, группах, работы, посвященные филогении и зоо- 2016; Ryboltovsky, 1997; Kidov et al., 2014). географии жаб семейства Bufonidae Gray, 1825 Кубинская жаба (Peltophryne empusa Cope, (Pramuk et al., 2001; Frost et al., 2006; Stö ck et al., 1862) (рис. 1), как следует из названия, является 2006; Zhan, Fu, 2011; Garcia-Porta et al., 2012; Re- эндемиком Кубы, а также расположенного от нее cuero et al., 2012) существенно преобладают по на расстоянии около 50 км острова Хувентуд (=Пи- числу над экологическими исследованиями (Ма- нос) в архипелаге Лос-Канарреос (Frost, 2015). тушкина, Кидов, 2013; Bardsley, Beebee, 2000; Спорадически распространена в низинных ксеро- Schneider, Sinsch, 2004; Sicilia et al., 2006). Для фильных и мезофильных лесах, а также саваннах большинства даже широко распространенных на высоте до 70 м над уровнем моря. Несмотря на тропических и горных видов совершенно не изу- то, что этот вид не является редким и упоминается чены особенности распределения, питания, раз- во многих фаунистических работах, посвященных множения (Измерение и мониторинг биологичес- Карибским островам (Barbour, 1916; Maclean et al., кого разнообразия, 2003; Орлов, Ананьева, 2007). 1977; Rodriguez-Schettino, Rivalta-Gonzales, 2008), Скрытный образ жизни, строго определенная су- сведений о его экологии в целом и репродуктив- точная и сезонная наземная активность не позво- ной биологии в частности крайне мало (Alonso, ляют в полной степени дать экологическую харак- Rodriguez, 2003; Hedges, Diaz, 2004). Большую теристику многим видам жаб в природе. В этой часть года кубинская жаба проводит в норах и дру- связи неудивительно, что для целого ряда буфонид гих подземных убежищах (Barbour, 1916). Размно- основным источником сведений являются содер- жается в период дождей, используя в качестве жащиеся в искусственных условиях группы. К мест нереста эфемерные водоёмы (лужи), в том настоящему времени накоплен существенный числе антропогенные (придорожные канавы). опыт в лабораторном культивировании жаб Самцы в воде образуют брачные хоры при темпе- (Burchfield, 1975; Jones, 1984; Brenner, 2009; Kunz, ратуре 24.8 – 26.0°C на открытых участках у само- 2009; Seuntjens, 2009), в том числе и в нашей го берега (Alonso, Rodriguez, 2003). Предполагает- стране (Гончаров и др., 1989; Сербинова, 2007; Ki- ся, что основную угрозу популяциям этого вида dov, 2009). Так, именно отечественным специа- составляет разрушение местообитаний из-за сель- листам принадлежат первые успехи в размноже- скохозяйственной деятельности, загрязнение пес- нии талышской (Bufo eichwaldi Litvinchuk, Rosa- тицидами, а также вселение адвентивного вида nov, Borkin et Skorinov, 2008), кавказской (B. verru- растений – дихростахиса сизого, или мимозы пе- cosissimus(Pallas, 1814)), ладахской ( Bufotes latas- пельной,Dichrostachys cinerea Wight et Arn (Hed- tii(Boulenger, 1882)) и шлемоголовой ( Ingerophry- ges, Diaz, 2004). © Кидов А. А., Матушкина К. А., Блинова С. А., Африн К. А., 2017 ЛАБОРАТОРНОЕ РАЗМНОЖЕНИЕ КУБИНСКОЙ ЖАБЫ В статье мы впервые представили данные о циями водной растительности. Температура воды размножении кубинской жабы в лабораторных в период икрометания поддерживалась на уровне условиях. 27.0 – 28.5°C. Нерест стимулировали с помощью инъек- ций сурфагона в подмышечные лимфатические мешки из расчета 25 мкг препарата на 1 г живой массы животного (рис. 2). Рис. 1. Самка кубинской жабы (Peltophryne empusa ) в террариуме МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ Материалом для исследования послужили взрослые кубинские жабы, отловленные в окрест- Рис. 2. Гормональная стимуляция размножения ку- ностях г. Сан-Герман (San German) в кубинской бинских жаб (Peltophryne empusa ) провинции Ольгин (Holguin) в 2011 г., а также их потомство, полученное в условиях лаборатории Количество яиц в кладке определяли пол- зоокультуры кафедры зоологии РГАУ – МСХА ным поштучным пересчетом. имени К. А. Тимирязева (Москва). От производи- В 2014 г. личинок выращивали в двухкрат- телей получали потомство в 2012, 2013 и 2014 гг., ной повторности в пластиковых бассейнах объе- однако в настоящей работе представлены преи- мом 45 л, заполненных водой до уровня 12 см, по мущественно результаты последнего года иссле- 100 личинок в каждом. Подмену 1/4 объема воды дований. в период эмбриогенеза и личиночного развития Взрослых животных содержали группой в осуществляли через день. Температура в бассей- террариуме горизонтального типа размером 100× нах находилась в пределах 23.0 – 28.5°C (рис. 3). ××50 50 см с субстратом из измельченной коры Кормление личинок проводили ежедневно хвойных деревьев фракцией 2 – 4 см, керамическим ошпаренными кипятком листьями шпината и са- укрытием и пластиковым бассейном, наполнен- лата, желтком вареного куриного яйца. ным водой. Фотопериод поддержи- 30 вали на уровне 16 ч в сутки, днев- ° ,C – 1 ная температура составляла 26 – – 2 30°C. Кормление осуществляли 28 – 3 преимущественно двупятнистыми – 4 сверчками (Grillus bimaculatus De – 5 Geer, 1773) лабораторного разведе- Температура 26 ния в присыпке из минерального премикса MicroCalcium (JBL GmbH & Co, Германия) и ReptoCal 24 (Tetra GmbH, Германия). Для размножения жаб либо 22 попарно (в 2013 и 2014 гг.), либо по 1 8 15 22 29 36 43 50 57 64 71 78 85 92 99 два самца на самку (в 2012 г.) отса- Длительность эксперимента, сут. живали в аквариумы, наполненные Рис. 3. Температурный режим при икрометании, эмбриогенезе и личиноч- отстоянной водой и погруженным в ном развитии кубинской жабы в 2014 г.:–12 икрометание, – выход них нерестовым субстратом – плас- эмбрионов из яйцевых оболочек,34–– переход на экзогенное питание, тиковыми декоративными имита- начало выхода на сушу (бассейн 2),5 – начало выхода на сушу (бассейн 1) СОВРЕМЕННАЯ ГЕРПЕТОЛОГИЯ 2017 Т./2 17, вып. 1 37 А. А. Кидов, К. А. Матушкина, С. А. Блинова, К. А. Африн После полной редукции хвоста животных икряного шнура через 12 – 14 часов после икро- пересаживали в пластиковые террариумы разме- метания, а через 24 ч все эмбрионы покинули ром 31×× 20 18 см с субстратом из вискозных сал- яйцевые оболочки (рис. 6). феток Practi Universal (ООО «Вистекс», Россия). Световой день при выращивании молоди, как и при содержании взрослых животных, под- держивали на уровне 16 ч при помощи люминес- центных лампReptiLight (NARVA, Germany) мощ- ностью 30 Вт и световым потоком 1150 лм. Кормление сеголетков нимфами первых возрастов двупятнистого сверчка в присыпке из минерального премикса начинали со 2 – 3-х суток после высадки из аквариума на сушу и осущест- вляли в дальнейшем ежедневно. Взрослых животных, предличинок, личинок и молодь после прохождения метаморфоза изме- ряли штангенциркулем с погрешностью 0.1 мм по стандартным методикам (Банников и др., 1977). Взвешивали животных при помощи весов марки «M-ETP FLAT» (КНР) с погрешностью 0.1 г. Рис. 4. Амплексус кубинских жаб (Peltophryne empusa ) РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ Личинки начинали переходить на внешнее Животные вскоре после проведения гормо- питание уже на вторые сутки после вылупления нальных инъекций начинали линять, а устой- при общей длине тела с хвостом 5.8 – 8.0 мм (n = чивый амплексус образовывался через3–7ч = 14 экз.), в среднем – 7.40 ± 0.14 (σ = 0.60) (рис. 7). (рис. 4). Начало икрометания наблюдалось при тем- пературе 27.0 – 27.5°C ранним утром, примерно через 10 – 12 ч после инъекции. Наматывание икряных шнуров происходило на нерестовый суб- страт (рис. 5). За период икрометания самки теряли от 3.2 до 12.6% массы, а самцы – от 6.0 до 10.7% (таб- лица). Обычно амплексус распадался сразу после икрометания, но в одном случае сохранялся еще 7 ч. После нереста взрослых жаб отсаживали в террариум, где самцы еще несколько суток про- должали попытки образовывать амплексус и вока- лизировали. Инкубация икры происходила очень быс- Рис. 5. Икра кубинской жабы (Peltophryne empusa ) тро, и первые предличинки начали отделяться от сразу после откладки Размерно-весовые и репродуктивные характеристики кубинских жаб (Peltophryne empusa ) в искусственных условиях Показатель Год Доля Пара Длина тела Масса взрослых Масса взрослых по- Кол-во яиц исследований развивающихся взрослых, мм до икрометания, г сле икрометания, г в кладке, шт. эмбрионов, % Самец 75.6 39.4 35.2 1 2415 – Самка 88.4 66.3 58.0 2013 Самец 83.1 39.3 37.8 2 7343 0.01 Самка 89.4 62.2 53.2 Самец –