Christmas Trees

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ ДЕКАБРЬ НАУКА И ПРАКТИКА 4/26/2018 РУССКО АНГЛИЙСКИЙ ЖУРНАЛ

ВИДЫ РОДА HELIANTHUS L. В ЕДИНОМ ПЕРЕЧНЕ КАРАНТИННЫХ ОБЪЕКТОВ ЕВРАЗИЙСКОГО ЭКОНОМИЧЕСКОГО СОЮЗА стр. 2 НОВОГОДНИЕ ЕЛКИ КАК УГРОЗА РАСПРОСТРАНЕНИЯ ВРЕДНЫХ И ПАТОГЕННЫХ ЛЕСНЫХ ОРГАНИЗМОВ стр. 9 БАКТЕРИОЗЫ ВОЗБУДИТЕЛИ БОЛЕЗНЕЙ ЗЕРНОБОБОВЫХ КУЛЬТУР И РАЗРАБОТКА МЕТОДОВ ИХ ДИАГНОСТИКИ стр. 28 ЭКСПЕДИЦИОННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ ВРЕДИТЕЛЕЙ ЮЖНОЙ ЧАСТИ КОРЕЙСКОГО ПОЛУОСТРОВА стр. 57

SPECIES OF THE HELIANTHUS L. GENUS IN THE COMMON LIST OF QUARANTINE OBJECTS OF THE EURASIAN ECONOMIC UNION page 6 “CHRISTMAS TREES” AS A THREAT TO THE SPREAD OF PATHOGENIC FOREST PESTS page 14 BACTERIAL DISEASE PATHOGENS OF GRAIN LEGUMES AND DEVELOPMENT OF METHODS FOR THEIR DIAGNOSTICS page 34 EXPEDITIONARY STUDIES OF PESTS IN THE SOUTHERN PART OF THE KOREAN PENINSULA page 61

RUSSIAN ENGLISH JOURNAL PLANT HEALTH DECEMBER ISSN 2306-9767 ISSN RESEARCH AND PRACTICE 4/26/2018

Тел./факс: 8 (499) 707-22-27 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА ДВУЯЗЫЧНЫЙ НАУЧНЫЙ ЖУРНАЛ №4 26 2018 г.

Главный редактор: Мартин Уорд — РЕДАКЦИЯ: А.Я. Сапожников, Генеральный директор ЕОКЗР Волкова Е.М. — кандидат директор ФГБУ «ВНИИКР» биологических наук, Ханну Кукконен — директор заведующая лабораторией Шеф-редактор: подразделения фитосанитарного сорных растений Светлана Зиновьева, надзора, EVIRA (Финляндия) начальник отдела по связям Волков О.Г. — начальник отдела биометода с общественностью Сагитов А.О. — доктор и СМИ ФГБУ «ВНИИКР» биологических наук, Кулинич О.А. — доктор Генеральный директор ТОО биологических наук, Выпускающий редактор: начальник отдела лесного карантина Ольга Лесных «Казахский НИИ защиты e-mail: [email protected] и карантина растений» Приходько Ю.Н. — кандидат сельскохозяйственных наук, Редакционная коллегия Сорока С.В. — кандидат начальник научно-методического журнала «Карантин растений. сельскохозяйственных наук, отдела фитопатологии Наука и практика»: директор РУП «Институт Скрипка О.В. — кандидат защиты растений» НАН Швабаускене Ю.А. — заместитель биологических наук, ведущий Республики Беларусь Руководителя Россельхознадзора научный сотрудник лаборатории микологии Джалилов Ф.С. — доктор Долженко В.И. — академик РАН, биологических наук, Усачева С.Е. — переводчик доктор сельскохозяйственных профессор, заведующий отдела фитосанитарных рисков наук, заместитель директора и международного взаимодействия Всероссийского лабораторией защиты растений НИИ защиты растений МСХА им. К.А. Тимирязева Быков И.И. — переводчик отдела фитосанитарных рисков Надыкта В.Д. — академик РАН, Абасов М.М. — доктор и международного взаимодействия доктор технических наук, биологических наук, Беломестнова А.А. — переводчик директор Всероссийского НИИ заместитель директора отдела фитосанитарных рисков биологической защиты растений ФГБУ «ВНИИКР» и международного взаимодействия Орлинский А.Д. — доктор Шероколава Н.А. — заместитель Красовский Г.С. — переводчик биологических наук, директора ФГБУ «ВНИИКР», отдела фитосанитарных рисков научный советник ЕОКЗР вице-президент ЕОКЗР и международного взаимодействия Павлюшин В.А. — академик РАН, Дизайн и верстка: Добровольская О.Б. — кандидат доктор биологических наук, Роман Солоха биологических наук, заместитель директор Всероссийского директора ФГБУ «ВНИИКР» Корректоры: НИИ защиты растений Татьяна Артемьева Санин С.С. — академик РАН, Камаев И.О. — кандидат Ольга Тренева доктор биологических наук, биологических наук, старший Менеджер по подписке профессор, заведующий научный сотрудник научно- и дистрибуции: отделом Всероссийского экспериментального отдела Павел Сафронов НИИ фитопатологии ФГБУ «ВНИИКР» +7 903 505 33 23

Журнал «Карантин растений. Наука и практика» зарегистрирован в Федеральной службе по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор), свидетельство о регистрации ПИ № ФС77-52594 от 25 января 2013 г. Учредитель: ООО «Успех», выпускается по заказу Федерального государственного бюджетного учреждения «Всероссийский центр карантина растений» (ФГБУ «ВНИИКР») Издатель: ООО «У-Строй» Адрес редакции: 115551, г.Москва, Шипиловский проезд, дом 39, корпус 2, этаж 15, помещение 53, комнаты 1, 3 Номер отпечатан в ООО «Юнион Принт», г. Нижний Новгород, Окский съезд, д. 2, тел.: (831) 416-01-68

Дата выхода ч.12.2018 г. Тираж 3000 экземпляров. Подписной индекс 70195 в Каталоге Агентства «Роспечать» Зиновьева Светлана Георгиевна +7 967 294 90 61 СОДЕРЖАНИЕ CONTENT

Виды рода Helianthus L. в Едином перечне карантинных объектов Species of the Helianthus L. Genus in the Common List Евразийского экономического союза of Quarantine Objects of the Eurasian Economic Union Д.Л. Белкин, зам. начальника Испытательного лабораторного центра D.L. Belkin, Deputy Head of the Testing ФГБУ «ВНИИКР» Laboratory Center of FGBU “VNIIKR” Ю.Ю. Кулакова, начальник научно-экспериментального отдела Y.Y. Kulakova, Head of the Research ФГБУ «ВНИИКР» and Testing Department of FGBU “VNIIKR” 2 6

«Новогодние елки» “Christmas trees” как угроза распространения вредных и патогенных лесных организмов as a reat to the Spread of Pathogenic Forest Pests О.А. Кулинич, Всероссийский центр карантина растений (ФГБУ «ВНИИКР») O.A. Kulinich, All-Russian Plant Quarantine Center (FGBU “VNIIKR”) А.Г. Щуковская, Всероссийский центр карантина растений (ФГБУ «ВНИИКР») A.G. Shchukovskaya, All-Russian Plant Quarantine Center (FGBU “VNIIKR”) Е.Н. Арбузова, Всероссийский центр карантина растений (ФГБУ «ВНИИКР») E.N. Arbuzova, All-Russian Plant Quarantine Center (FGBU “VNIIKR”) Н.И. Козырева, Институт проблем экологии и эволюции (ИПЭЭ РАН) N.I. Kozyreva, Institute of Ecology and Evolution Russian Academy of Sciences, Moscow 9 14

Особо опасные возбудители болезней Particularly Dangerous Pathogens of Candidatus Phytoplasma spp. косточковых культур рода Candidatus Phytoplasma spp. Genus for Stone Fruit Crops Г.Н. Бондаренко, старший научный сотрудник – начальник Испытательного G.N. Bondarenko, Senior Researcher, Head of the Laboratory лабораторного центра ФГБУ «ВНИИКР» and Testing Center of FGBU “VNIIKR” И.Г. Башкирова, агроном лаборатории анализа ГМО I.G. Bashkirova, Agronomist of the GMO Analysis Laboratory Испытательного лабораторного центра ФГБУ «ВНИИКР» of the Laboratory and Testing Center of FGBU “VNIIKR” 18 23

Бактериозы – возбудители болезней зернобобовых культур Bacterial Disease Pathogens of Grain Legumes и разработка методов их диагностики and Development of Methods for eir Diagnostics Е.В. Каримова, старший научный сотрудник НМОФ ФГБУ «ВНИИКР» E.V. Karimova, Senior Researcher of the RMPD of FGBU “VNIIKR” И.М. Игнатьева, научный сотрудник лаборатории I.M. Ignatyeva, Researcher of the Bacteriology Laboratory бактериологии ИЛЦ ФГБУ «ВНИИКР» of the LTC of FGBU “VNIIKR” 28 34

Неповирус кольцевой пятнистости малины Raspberry ringspot virus – Raspberry Ringspot Virus – New Quarantine Organism, новый карантинный организм, включенный в список ЕАЭС Included in the EEU List Ю.Н. Приходько, ведущий научный сотрудник НМОФ ФГБУ «ВНИИКР» Y.N. Prikhodko, Leading Researcher of NMOF FGBU “VNIIKR” К.О. Тихонова, научный сотрудник НМОФ ФГБУ «ВНИИКР» K.O. Tikhonova, Researcher of NMOF FGBU “VNIIKR” 41 47

Анализ возможностей формирования очагов карантинных объектов – e Analysis of Outbreak Formation Possibilities of Quarantine филлоксеры и ценхруса длинноколючкового Pests: Phylloxera (Dactylosphaira vitifoliae) and Spiny Burr Grass на территории Белгородской области (Cenchrus longispinus) in the Belgorod Region, Russia А.Н. Мирошников, ведущий энтофитопатолог A.N. Miroshnikov, Leading Entophytopatologist отдела карантина растений ФГБУ «Белгородская МВЛ» of the Plant Quarantine Department of FGBU “Belgorodskaya MVL” Л.П. Скотникова, начальник отдела L.P. Skotnikova, Head of Plant Quarantine Department карантина растений ФГБУ «Белгородская МВЛ» of FGBU “Belgorodskaya MVL” 52 55

Экспедиционные исследования вредителей Expeditionary Studies of Pests in the Southern Part of the Korean Peninsula южной части Корейского полуострова I.O. Kamayev, Senior Researcher of the Research И.О. Камаев, старший научный сотрудник and Testing Department FGBU “VNIIKR” научно-экспериментального отдела ФГБУ «ВНИИКР» G.S. Krasovsky, Translator of Phytosanitary Risk Г.С. Красовский, переводчик отдела фитосанитарных рисков and International Cooperation Department и международного взаимодействия ФГБУ «ВНИИКР» FGBU “VNIIKR” 57 61

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 1 УДК 632.3.01/.08, 632.2 ВИДЫ РОДА HELIANTHUS L. В ЕДИНОМ ПЕРЕЧНЕ КАРАНТИННЫХ ОБЪЕКТОВ ЕВРАЗИЙСКОГО ЭКОНОМИЧЕСКОГО СОЮЗА

Д.Л. Белкин, зам. начальника Испытательного лабораторного центра ФГБУ «ВНИИКР» Ю.Ю. Кулакова, начальник научно-экспериментального отдела ФГБУ «ВНИИКР»

Аннотация. В статье приведены сведения о географическом распро- странении подсолнечника калифор- нийского и подсолнечника реснитча- того, их краткое морфологическое описание и возможные пути распро- странения. Ключевые слова. Карантин расте- ний, Helianthus L., подсолнечник кали- форнийский, подсолнечник реснитча- тый, распространение, морфология, местообитания, вредоносность.

Helianthus L. или Подсолнечник, – сложный в таксономическом отно- шении род американского проис- хождения, относящийся к семейству Сложноцветные (Asteraceae Bercht. & J. Presl) и объединяющий, по раз- ным оценкам, до 110 однолетних и многолетних видов (Анащенко, 1974; Schilling, 2006; Schilling, Heiser, 1981; Schilling, Panero, 2011). В со- став флоры России включают 8 ви- дов рода Подсолнечник (Анащенко, 1974; Баркалов и др., 1992; Бочкин, 2003; Васильченко, 1959; Маевский, 2014; Майоров, 2004; Майоров и др., 2012; Протопопова, 1994; Скворцов, 1973; Сырейщиков, 1910; Терентье- ва, 2002; Ульянова, 1998), из которых наиболее распространенными явля- ются H. lenticularis Douglas ex Lindl. (подсол нечник сорнополевой) и H. tuberosus L. (подсолнечник клубне- носный). Среди всех видов подсолнеч- ников в мировом объеме встре- чаются как ценные культурные Рис. 1. Подсолнечник реснитчатый в цветении, апрель 2018 г. (фото В.Г. Кулакова) (H. annuus L., H. tuberosus L. и др.) Fig. 1. Texas blueweed in bloom, April 2018 (photo by V.G. Kulakov)

2 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Рис. 2. Корневая система подсолнечника реснитчатого (фото В.Г. Кулакова) Fig. 2. Root system of the Texas blueweed (photo by V.G. Kulakov) и декоративные (H. a r g o p h y l l u s Torr. Сонора, Тамаулипас) и отдельные руются желтые ложноязычковые et Gr., H. atrorubens L., районы Австралии (штаты Новый и красноватые трубчатые цветки. H. cucumerifolius Torr. et Gr., Южный Уэльс и Квинсленд), в кото- Плоды – серовато-коричневые об- H. decapetalus L. и др.), так и сор- рых является заносным сорным рас- ратнояйцевидные семянки с про- ные растения (H. lenticularis Dougl. тением (Abrams, Ferris, 1960; Mason, дольно-бороздчатой и голой поверх- ex Lindl., H. maximiliani Schrad. 1957; Schilling, 2006; Schilling, Heiser, ностью. Окраска семянок пестрая, и др.) (Анащенко, 1974; Abrams, 1981; Schilling, Panero, 2011). с серебристым блеском (Анащенко, Ferris, 1960; Hickman, 1993; Ma- Подсолнечник реснитчатый легко 1974; Волкова и др., 2007; Москален- son, 1957; Schilling, 2006; Schil- образует гибриды с другими вида- ко, 2001; Москаленко, Юдин, 1999; ling, Heiser, 1981; Schilling, Panero, ми, например с Helianthus laciniatus, Савотиков, Сметник, 1996; Schilling, 2011). что приводит к образованию поли- 2006; Schilling, Panero, 2011). В Единый перечень карантинных плоидных клонов внутри общего Подсолнечник реснитчатый пред- объектов Евразийского экономи- ареала видов. почитает заселять территории с су- ческого союза (ЕАЭС) включены Подсолнечник реснитчатый имеет хим и засушливым климатом, лег- Helianthus ciliaris DC. (подсолнеч- мощную корневую систему (рис. 2) кими песчаными и хорошо дрени- ник реснитчатый) и Helianthus и размножается преимущественно рованными почвами, а также может californicus DC. (подсолнечник кали- вегетативно (корневыми отпрыска- произрастать на участках производ- форнийский), которые отсутствуют ми из многочисленных подземных ства различных сельскохозяйствен- на территории Российской Федера- почек), образуя при этом плотные ных культур (зерновые, овощные ции (РФ) и Евразийского экономи- густые заросли (рис. 3). В морфоло- культуры), вдоль дорог (рис. 4), по ческого союза. гическом отношении вид имеет пря- свалкам и мусорным местам (Мо- Подсолнечник реснитчатый (He- мостоячие маловетвистые стебли от скаленко, 2001; Москаленко, Юдин, lianthus ciliaris DC.) – многолетнее 30 до 70 см высотой, которые покры- 1999; Schilling, 2006; Schilling, Heiser, травянистое растение (рис. 1), совре- ты короткими жесткими волосками. 1981; Schilling, Panero, 2011). менный ареал которого охватывает Важным отличительным признаком Вредоносность подсолнечни- юго-западные районы США (штаты является наличие ресничек по краю ка реснитчатого в родном ареале Аризона, Калифорния, Колорадо, линейной или ланцетной сизова- его произрастания проявляется Иллинойс, Канзас, Небраска, Нева- то-зеленой листовой пластинки. в снижении урожайности сельско- да, Новая Мексика, Оклахома, Техас, Как и все представители семейства хозяйственных культур, выносе Юта), Мексику (штаты Чиуауа, Ко- Сложноцветные, вид имеет соцве- питательных веществ из почвы и ауила, Дуранго, Сан-Луис-Потоси, тие-корзинку, в котором форми- ухудшении продуктивности паст-

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 3 бищ. Кроме того, при поедании его (рис. 6), леса, каньоны, предгорья и Таким образом, при детальном изу- сельскохозяйственными животными долины, способен произрастать на чении двух видов подсолнечников, может являться причиной отравле- многих типах почв (Москаленко, которые включены в Перечень каран- ния (Волкова и др., 2007; Москален- 2001; Abrams, Ferris, 1960; Schilling, тинных объектов ЕАЭС, авторами ко, 2001; Москаленко, Юдин, 1999; 2006; Schilling, Heiser, 1981; Schilling, были сделаны следующие выводы. Савотиков, Сметник, 1996; Schilling, Panero, 2011). Подсолнечник калифорнийский Heiser, 1981; Schilling, Panero, 2011). В литературных источниках при- не является агрессивным сорным Распространение сорняка на дальние водятся единичные сведения о засо- растением в своем существующем расстояния возможно в составе под- рении подсолнечником калифорний- ареале и не встречается на участках карантинной продукции (продоволь- ским посевов сельскохозяйственных производства сельскохозяйственной ственное зерно, семенной материал), культур, пастбищ и виноградников продукции в мировом масштабе, ве- однако в последние годы отсутствуют (Москаленко, 2001; Москаленко, роятность присутствия его плодов-се- достоверные данные об обнаружениях Юдин, 1999), однако детальный ана- мянок в грузах крайне низка. Данный плодов именно этого вида (Москален- лиз этих данных позволяет считать вид не представляет фитосанитарно- ко, 2001; Москаленко, Юдин, 1999; Са- ошибочным указание присутствия го риска для территории Российской вотиков, Сметник, 1996). данного вида в приведенных ценозах, Федерации и Евразийского экономи- Подсолнечник калифорнийский что противоречит данным о его эко- ческого союза. Поэтому предлагается (Helianthus californicus DC.) – много- логических особенностях и, вероят- пересмотреть его статус в качестве летнее травянистое растение (рис. 5). но, имеет отношение к другому виду карантинного объекта ЕАЭС. Вид является эндемиком Северной подсолнечника. Кроме того, имеют- Подсолнечник реснитчатый явля- Америки, а его ареал охватывает США ся сведения о выявлении семянок ется засорителем посевов различных (штат Калифорния) и Мексику (штат подсолнечника калифорнийского в культурных растений в своем родном Баха Калифорния) (Анащенко, 1974; продовольственной продукции пше- ареале, существует вероятность при- Москаленко, 2001; Abrams, Ferris, 1960; ницы из Канады (Москаленко, 2001; сутствия его плодов в составе подка- Hickman, 1993; Mason, 1957; Schilling, Москаленко, Юдин, 1999). Однако рантинной продукции, поступающей 2006; Schilling, Panero, 2011). ареал вида не охватывает указанную из США и Австралии. Однако в усло- Подсолнечник калифорнийский территорию, поэтому эти сведения виях современного товарооборота ве- размножается преимущественно ве- также можно считать ошибочными. роятность проникновения этого вида гетативно. Каждый год от материн- ского растения происходит отраста- ние новых молодых побегов, за счет которых подсолнечник калифор- нийский образует большие густые заросли (рис. 6) (Москаленко, 2001; Abrams, Ferris, 1960; Schilling, 2006; Schilling, Panero, 2011). В морфологическом отношении вид имеет голые прямостоячие стебли от 100 до 350 см высотой с очередными ланцетовидными листьями до 20 см длиной и до 6 см шириной. Как и у всех представителей семейства Слож- ноцветные, на верхушке стебля распо- лагаются соцветия-корзинки, в кото- рых формируются язычковые и труб- чатые цветки. Листочки обертки до 15 мм длиной и до 5 мм шириной, рас- ширенные у основания, заостренные кверху, по краю реснитчатые, немного превышают диаметр диска корзинки (рис. 7). Плоды – серо-буро-черные семянки обратнояйцевидной формы. Идентификация вида проводится по комплексу морфологических призна- ков строения листьев, цветков и ли- сточков корзинки (Москаленко, 2001; Abrams, Ferris, 1960; Hickman, 1993; Schilling, 2006; Schilling, Heiser, 1981; Schilling, Panero, 2011). Рис. 3. Заросли подсолнечника реснитчатого в штате Коауила (Мексика) Подсолнечник калифорнийский (фото В.Г. Кулакова) может заселять сухие каменистые Fig. 3. ickets of the Texas blueweed in the state of Coahuila (Mexico) местообитания, берега рек, болот (photo by V.G. Kulakov)

4 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА на территорию Российской Федера- ции и Евразийского экономическо- го союза крайне низка. Тем не менее нельзя полностью исключить потен- циальный фитосанитарный риск и возможный экономический ущерб в случае интродукции этого вида.

Литература 1. Анащенко А.В. К систематике рода Helianthus L. // Ботанический журнал, 1974. № 10. C. 1472-1481. 2. Баркалов В.Ю., Коробков А.А., Цвелев Н.Н. Род 2. Подсолнечник – Helianthus L. // Сосудистые растения советского Дальнего Востока. СПб.: Наука, 1992. Т. 6. С. 20-24. 3. Бочкин В.Д. Находки новых и редких адвентивных растений на железных дорогах Москвы // Про- блемы изучения адвентивной и си- нантропной флоры в регионах СНГ. М.: Гриф и К˚, 2003. С. 26-29. 4. Васильченко И.Т. Род 1510. Под- солнечник – Helianthus L. // Флора СССР. М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1959. Т. XXV. С. 541-545. 5. Волкова Е.М., Данкверт С.А., Маслов М.И., Магомедов У.Ш. Атлас плодов и семян сорных и ядовитых растений, засоряю- щих подкарантинную продук- Рис. 4. Фотосъемка подсолнечника реснитчатого в природе (фото Ю.Ю. Кулаковой) цию. М.: Т-во науч. изд. КМК, Fig. 4. Photography of the Texas blueweed in nature (photo by Y.Y. Kulakova) 2007. С. 278. 6. Маевский П.Ф. Флора средней 12. Савотиков Ю.Ф., Сметник А.И. 19. Mason H.L. Flora of the Marsches полосы Европейской части России. Справочник по вредителям, болез- of California. University of California 11-е изд. М.: Т-во науч. изд. КМК, ням растений и сорнякам, имею- Press, 1957. P. 819-820. 2014. С. 373. щим карантинное значение для тер- 20. Schilling E.E. Helianthus // Flo- 7. Майоров С.Р. Новые данные к ад- ритории Российской Федерации. ra North America. Oxford Univer- вентивной флоре Москвы и Москов- Нижний Новгород: Арника, 1996. sity Press, New York, 2006. Vol. 21. ской области // Бюллетень МОИП, С. 118-119. P. 141-169. отд. биол., 2004. Т. 109. Вып. 3. 13. Скворцов А.К. Новые данные 21. Schilling E.E., Heiser C.B.J. In- С. 75-77. об адвентивной флоре Московской frageneric classication of Helianthus 8. Майоров С.Р., Бочкин В.Д., области // Бюллетень ГБС РАН, (Compositae) // Taxon, 1981. Vol. 30. Насимович Ю.А., Щербаков А.В. 1973. Вып. 88. С. 31-35. P. 393-403. Адвентивная флора Москвы и 14. Сырейщиков Д.П. Иллюстри- 22. Schilling E.E., Panero J.L. Московской области. М.: Т-во рованная флора Московской губер- A revised classication of subtribe Heli- науч. изд. КМК, 2012. С. 282-283. нии. М., 1910. Ч. 3. С. 255-257. anthinae (Asteraceae: Heliantheae). II. 9. Москаленко Г.П. Карантинные 15. Терентьева Е. Подсолнечники: Derived lineages // Botanical Journal сорные растения России. Пенза: Немного истории // В мире расте- of the Linnean Society, 2011. Vol. 167. ИПК «Пензенская правда», 2001. ний, 2002. № 10. С. 28-35. P. 311-331. С. 212-220. 16. Ульянова Т.Н. Сорные расте- 23. [Электронный ресурс]. URL: 10. Москаленко Г.П., Юдин Б.И. ния во флоре России и других стран https://calphotos.berkeley.edu/cgi/ Атлас семян и плодов сорных рас- СНГ. СПб.: ВИР, 1998. 344 с. img_query?query_src=ucjeps&en- тений, встречающихся в подка- 17. Abrams L., Ferris R.S. Illustrated large=0000+0000+1009+2278 (дата рантинных грузах и материалах. Flora of the Pacic States: Bignonias to обращения: 10.09.2018). М.: Т-во науч. изд. КМК, 1999. Sunowers. Washington, Oregon, Cali- 24. [Электронный ресурс]. URL: С. 240-246. fornia. Stanford University Press, 1960. https://api.gbif.org/v1/image/unsafe/ 11. Протопопова В.В. Род 5. Vol. IV. P. 116. https%3A%2F%2Fstatic.inaturalist. Подсол нечник – Helianthus L. // Фло- 18. Hickman J.C. e Jepson Manual: org%2Fphotos%2F17158056%2Foriginal. ра Европейской части СССР. СПб.: Higher Plants of California. University of jpg%3F1525158696 (дата обращения: Наука, 1994. Т. 7. С. 27-32. California Press, Berkeley, 1993. P. 1-1400. 10.09.2018).

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 5 UDC 632.3.01/.08, 632.2 SPECIES OF THE HELIANTHUS L. GENUS IN THE COMMON LIST OF QUARANTINE OBJECTS OF THE EURASIAN ECONOMIC UNION D.L. Belkin, Deputy Head of the Testing Laboratory Center of FGBU “VNIIKR” Y.Y. Kulakova, Head of the Research and Testing Department of FGBU “VNIIKR”

Abstract. e article provides information about the geographical distribution of the California sunower and the Texas blueweed, their brief morphological description and possible ways of distribution. Keywords. Plant quarantine, Heli- anthus L., California sunower, Texas bluedweed, distribution, morphology, habitat, harmfulness.

Helianthus L. is a taxonomically complex genus of American origin, belonging to the Asteraceae Bercht. & J. Presl family and combining, according to various estimates, up to 110 annual and perennial species (Anash- chenko, 1974; Schilling, 2006; Schilling, Heiser, 1981; Schilling, Panero, 2011). e Russian ora comprises 8 species of the Helianthus genus (Anashchenko, 1974; Barkalov et al., 1992; Bochkin, 2003; Vasilchenko, 1959; Mayevsky, 2014; Mayorov, 2004; Mayorov et al., 2012; Protopopova, 1994; Skvortsov, 1973; Syreischikov, 1910; Terentye- va, 2002; Ulyanova, 1998), of which the most common are H. lenticularis Douglas ex. Lindl. and H. tuberosus L. (the Canada potato). Some of the sunower species in the world are valuable cultural (H. annuus L., H. tuberosus L. etc.) and ornamental ones (H. argophyllus Torr. et Gr., H. atrorubens L., H. cucumerifolius Torr. et Gr., H. decapetalus L. etc.), as well as weeds (H. lenticularis Dougl. ex Lindl., H. maximiliani Schrad. и др.) (Anashchenko, 1974; Abrams, Ferris, 1960; Hickman, 1993; Mason, 1957; Schilling, 2006; Schilling, Heiser, 1981; Fig. 5. General view of the California sunower (https://calphotos.berkeley...) Schilling, Panero, 2011). Рис. 5. Общий вид подсолнечника калифорнийского (https://calphotos.berkeley...)

6 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА covers the United States (California) and Mexico (Baja California) (Anash- chenko, 1974; Moskalenko, 2001; Abrams, Ferris, 1960; Hickman, 1993; Mason, 1957; Schilling, 2006; Schilling, Panero, 2011). The California sunflower is propa- gated mainly vegetatively. Every year new young shoots grow from the par- ent plant, which the sunower form large dense thickets (Fig. 6) (Moskalenko, 2001; Abrams, Ferris, 1960; Schilling, 2006; Schilling, Panero, 2011). e species has bare upright stems from 100 to 350 cm tall with regular lanceolate leaves up to 20 cm long and up to 6 cm wide. Like all members of the Asteraceae family, at the top of the Fig. 6. ickets of the California sunower (https://api.gbif.org...) stem are capitula, where ray and disk Рис. 6. Заросли подсолнечника калифорнийского (https://api.gbif.org...) owers are formed. e phyllaries are up to 15 mm long and up to 5 mm e Common List of Quarantine ligules and reddish disk orets. Fruits wide, extended at the base, pointed Objects of the Eurasian Economic are grayish-brown obovate achenes upwards, ciliated along the edge, slight- Union (EEU) comprises Helianthus with longitudinally furrowed and bare ly exceed the diameter of the capitula ciliaris DC. (the Texas blueweed) and surface. e color of achenes is mot- (Fig. 7). e fruits are gray-brown- Helianthus californicus DC. (the Cali- ley, with silvery luster (Anashchenko, black obovate achenes. Identication of fornia sunower), which are absent in 1974; Volkova et al., 2007; Moskalen- the species is carried out by a complex the territory of the Russian Federation ko, 2001; Moskalenko, Yudin, 1999; of morphological features of the struc- and the Eurasian Economic Union. Savotikov, Smetnik, 1996; Schilling, ture of leaves, owers and leaves of the e Texas blueweed (Helianthus ci- 2006; Schilling, Panero, 2011). capitula (Moskalenko, 2001; Abrams, liaris DC.) is a perennial herbaceous e Texas blueweed preferably in- Ferris, 1960; Hickman, 1993; Schilling, plant (Fig. 1), the areal of which covers habits areas with a dry and arid climate, 2006; Schilling, Heiser, 1981; Schilling, the south-west territories of the USA light sandy and well-drained soils, and Panero, 2011). (Arizona, California, Colorado, Illi- can also grow in areas of production e California sunower can grow on nois, Kansas, Nebraska, Nevada, New of various crops (grains, vegetables), dry rocky habitats, river banks, swamps Mexico, Oklahoma, Texas, Utah), along the roads (Fig. 4), on dumps and (Fig. 6), forests, canyons, foothills and Mexico (Chihuahua, Coahuila, Duran- garbage places (Moskalenko, 2001; valleys, able to grow on many types go, San Luis Potosi, Sonora, Tamaulipas) Moskalenko, Yudin, 1999; Schilling, of soils (Moskalenko, 2001; Abrams, and parts of Australia (New South Wales 2006; Schilling, Heiser, 1981; Schilling, Ferris, 1960; Schilling, 2006; Schilling, and Queensland), where it is an invasive Panero, 2011). Heiser, 1981; Schilling, Panero, 2011). weed plant (Abrams, Ferris, 1960; Ma- e harmfulness of the Texas blue- In the literature, there are few son, 1957; Schilling, 2006; Schilling, weed in its native habitat is manifested data on the contamination of Heiser, 1981; Schilling, Panero, 2011). in the reduction of crop yields, the re- agcicultural crops, pastures and e Texas blueweed easily forms moval of nutrients from the soil and the vineyards with the California hybrids with other species, such as deterioration of pasture productivity. sunflower (Moskalenko, 2001; Helianthus laciniatus, which leads to Moreover, when eaten by farm animals Moskalenko, Yudin, 1999), but a de- the formation of polyploid clones with- it may cause of poisoning (Volkova et tailed analysis of these data makes it in the general habitat of species. al., 2007; Moskalenko, 2001; Moskalen- possible to consider the indication e Texas blueweed has a strong root ko, Yudin, 1999; Savotikov, Smetnik, of the presence of this species in the system (Fig. 2) and propagates mainly 1996; Schilling, Heiser, 1981; Schilling, given cenoses erroneous, which con- vegetatively (by root osprings of nu- Panero, 2011). tradicts the data on its environmen- merous underground buds), forming e spread of the weed over long tal features and probably relates to dense thickets (Fig. 3). In terms of distances is possible with regulated another Helianthus species. In addi- morphology, the species has upright, products (food grains, seed), however, tion, there are data on the detection subramose stems from 30 to 70 cm there is no reliable data on the detec- of the California sunflower achenes tall, covered with short, sti hairs. tions of the fruit of this species in recent in wheat food products from Cana- An important distinguishing feature years (Moskalenko, 2001; Moskalenko, da (Moskalenko, 2001; Moskalenko, is the presence of hairs on the edge Yudin, 1999; Savotikov, Smetnik, 1996). Yudin, 1999). However, the habitat of a linear or lanceolate bluish-green e California sunower (Helianthus of the species does not cover the lamina. Like all members of the Astera- californicus DC.) is a perennial herba- specified territory, therefore this ceae family, the species has a capitu- ceous plant (Fig. 5). e species is en- information can also be considered la, where yellow ray orets with false demic to North America and its habitat erroneous.

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 7 us, in a detailed study of two He- lianthus species, which are included in the Common List of Quarantine Ob- jects of the EEU, the authors made the following conclusions. e California sunower is not an aggressive weed plant in its existing habitat and is absent in the areas of agricultural production on a global scale, the probability of the presence of its achenes in the plant products is extremely low. is species does not pose a pest risk to the territory of the Russian Federation and the Eurasian Economic Union. erefore, it is pro- posed to revise its status as a quarantine object of the EEU. e Texas blueweed is a weed of crops of dierent cultivated plants in Fig. 7. Inorescence of the California sunower (https://calphotos.berkeley...) their native habitat, there is a possibi- Рис. 7. Соцветие подсолнечника калифорнийского (https://calphotos.berkeley...) lity of the presence of its fruits in regulated products imported from the United 11th ed. M.: KMK Scientific Publish- 16. Ulyanova T.N. Weeds in the flo- States and Australia. However, in the ing Partnership, 2014. P. 373. ra of Russia and other CIS countries. conditions of modern trade turnover, 7. Mayorov S.R. New data to the ad- SPb.: VIR, 1998. 344 p. the probability of introduction of this ventive flora of Moscow and Moscow 17. Abrams L., Ferris R.S. Illus- species into the territory of the Russian region // Bulletin of the MSN, Biol. trated Flora of the Pacific States: Federation and the Eurasian Economic Dep., 2004. Vol. 109. Issue 3. P. 75-77. Bignonias to Sunflowers. Washing- Union is extremely low. Nevertheless, 8. Mayorov S.R., Bochkin V.D., Na- ton, Oregon, California. Stanford the potential pest risk and possible eco- simovich Y.A., Shcherbakov A.V. Ad- University Press, 1960. Vol. IV. nomic damage in the case of introduc- ventive flora of Moscow and Moscow P. 116. tion of this species cannot be complete- region. M.: KMK Scientific Publish- 18. Hickman J.C. The Jepson ly excluded. ing Partnership, 2012. P. 282-283. Manual: Higher Plants of Califor- 9. Moskalenko G.P. Quaran- nia. University of California Press, References tine weed plants of Russia. Pen- Berkeley, 1993. P. 1-1400. 1. Anashchenko A.V. To the taxo- za: Penzenskaia Pravda PPC, 2001. 19. Mason H.L. Flora of the Mar- nomy of the Helianthus L. genus // P. 212-220. sches of California. University of Botanical Magazine, 1974. № 10. 10. Moskalenko G.P., Yudin B.I. California Press, 1957. P. 819-820. P. 1472-1481. Atlas of seeds and fruits of weed 20. Schilling E.E. Helianthus // Flo- 2. Barkalov V.Y., Korobkov A.A., plants found in quarantined car- ra North America. Oxford Univer- Tsvelev N.N. Genus 2. Sunflower – goes and materials. M.: KMK Sci- sity Press, New York, 2006. Vol. 21. Helianthus L. / Vascular plants of the entific Publishing Partnership, P. 141-169. Soviet Far East. SPb.: Science, 1992. 1999. P. 240-246. 21. Schilling E.E., Heiser C.B.J. Vol. 6. P. 20-24. 11. Protopopova V.V. Genus 5. Sun- Infrageneric classification of He- 3. Bochkin V.D. Findings of new flower – Helianthus L. // Flora of the lianthus (Compositae) // Taxon, and rare adventive plants on the European part of the USSR. SPb.: Sci- 1981. Vol. 30. P. 393-403. railways of Moscow // Problems of ence, 1994. Vol. 7. P. 27-32. 22. Schilling E.E., Panero J.L. studying adventive and synanthropic 12. Savotikov Y.F., Smetnik A.I. The A revised classification of sub- flora in the CIS regions. M.: Grif i K°, reference book on pests, plant diseas- tribe Helianthinae (Asteraceae: 2003. P. 26-29. es and weed plants of quarantine im- Helianthe ae). II. Derived lineages // 4. Vasilchenko I.T. Genus 1510. portance for the territory of the Rus- Bota nical Journal of the Linnean Sunflower – Helianthus L. // Flora of sian Federation. Nizhny Novgorod: Society, 2011. Vol. 167. P. 311-331. the USSR. M.-L.: Publishing house of Arnika, 1996. P. 118-119. 23. [Electronic resource]. URL: the USSR Academy of Sciences, 1959. 13. Skvortsov А.К. New data on the https://calphotos.berkeley.edu/cgi/ Vol. XXV. P. 541-545. adventive flora of the Moscow region // img_query?query_src=ucjeps&en- 5. Volkova E.M., Dankvert S.A., Bulletin of the MBG RAS, 1973. Issue large=0000+0000+1009+2278 Maslov M.I., Magomedov U.S. Atlas 88. P. 31-35. (reference date: 10.09.2018). of fruits and seeds of weeds and poi- 14. Syreishchikov D.P. Illustrated 24. [Electronic resource]. URL: sonous plants, contaminating regu- flora of the Moscow province. М., https://api.gbif.org/v1/image/unsafe/ lated products. M.: KMK Scientific 1910. P. 3. P. 255-257. https%3A%2F%2Fstatic.inatural- Publishing Partnership, 2007. P. 278. 15. Terentyeva E. Sunflowers: ist.org%2Fphotos%2F17158056%- 6. Mayevsky P.F. Flora of the middle A little history // In a World of Plants, 2Foriginal.jpg%3F1525158696 (refer- zone of the European part of Russia. 2002. № 10. P. 28-35. ence date: 10.09.2018).

8 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА УДК 632.92:635.912 НОВОГОДНИЕ ЕЛКИ КАК УГРОЗА РАСПРОСТРАНЕНИЯ ВРЕДНЫХ И ПАТОГЕННЫХ ЛЕСНЫХ ОРГАНИЗМОВ

О.А. Кулинич, Всероссийский центр карантина растений (ФГБУ «ВНИИКР») А.Г. Щуковская, Всероссийский центр карантина растений (ФГБУ «ВНИИКР») Е.Н. Арбузова, Всероссийский центр карантина растений (ФГБУ «ВНИИКР») Н.И. Козырева, Институт проблем экологии и эволюции (ИПЭЭ РАН)

Аннотация. Представлен краткий пользуемые как основной материал (2015-2017 гг.) продукция по коду ТН анализ возможного заноса различных в флористическом новогоднем и рож- ВЭД 0604202000 «рождественские де- карантинных вредных организмов дественском декоре. ревья, свежие» была экспортирована с «рождественскими деревьями» и Однако нарядные хвойные деревья и в Российскую Федерацию из 13 стран свежесрезанными ветками хвойных их срезанные ветки являются не толь- мира (http://stat.customs.ru). Это Бе- пород. Приведен перечень карантин- ко источником праздничного настро- ларусь, Бельгия, Канада, США, Да- ных вредных организмов (насекомых, ения, но и потенциальной угрозой за- ния, Испания, Латвия, Нидерланды, нематод, фитопатогенных грибов), носа различных вредных организмов, Польша, Германия, Италия, Арме- которые могут быть занесены с ана- которые могут представлять угрозу ния, Эстония (рис. 1). лизируемой продукцией на террито- как для здоровья человека, так и для Наибольший объем поставок «рож- рию Российской Федерации из различ- окружающей среды, особенно если эти дественских деревьев» из-за рубежа ных стран мира. рождественские деревья были завезе- приходится на Данию и Польшу (соот- Ключевые слова. «Рождественские ны издалека. ветственно 905,2 и 928,8 т), максимум деревья», свежесрезанные ветки хвой- В предновогодний период Ин- этих поставок приходится на 2016 год. ных пород, занос, карантинные вред- тернет пестрит предложения- В 2017 году произошло существенное ные организмы, вредители, сосновая ми о поставке презентабельных снижение объема импорта «рожде- стволовая нематода, возбудители «новогодних елей» из-за рубежа. ственских деревьев» из этих стран и грибных болезней, интродукция, ущерб, В данной статье представлен увеличился объем поставляемой про- Россия, РФ. краткий анализ возможности за- дукции из Республики Беларусь. Суще- носа карантинных вредных орга- ственно обновился в 2017 году пере- Традиционным новогодним укра- низмов с новогодней продукцией чень стран – экспортеров «рождествен- шением каждого дома являются но- и степени угрозы для хвойных ских деревьев». В 2017 году появились вогодние елки, также известные как насаждений на территории РФ. новые страны-экспортеры – Эстония и «рождественские деревья», и свеже- По данным Федеральной таможен- Армения. Следует отметить, что если срезанные ветки хвойных пород, ис- ной службы, за три последних года поставки «рождественских деревьев»,

Рис.1. Импорт продукции «рождественские деревья» в Российскую Федерацию (2015-2017 гг.) (http://stat.customs.ru) Fig. 1. Import of products “Christmas trees” to the Russian Federation (2015-2017) (http://stat.customs.ru)

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 9 хотя и в ограниченном объеме, в 2015- территории РФ и Евразийского эко- в Северной Америке и входят в переч- 2016 гг. осуществлялись даже из Се- номического союза (ЕАЭС). Среди ни карантинных организмов многих верной Америки (Канады и США), то насекомых это несколько видов ли- стран мира. в 2017 году импорта данной продукции стоверток родов Choristoneura и Acleris. Как показывает таможенная ста- из этих стран не было. Возможно, это В зимнее время они могут присутство- тистика, «рождественские деревья» и связано с новыми фитосанитарными вать в стадии яиц на ветках дерева. срезанные ветки не импортируются требованиями ЕАЭС, которые всту- Жуки-короеды могут скрываться под в Россию из стран Азии, однако ниже пили в силу в июле 2017 года. Согласно корой веток и ствола хвойных деревь- мы также провели оценку фитосани- этим требованиям, импорт посадочно- ев. Это лубоеды рода Dendroctonus тарного риска при возможном заносе го материала хвойных пород, включая и несколько видов короедов, относя- опасных организмов из ближайших срезанные ветки и рождественские де- щихся к роду Ips. Особую опасность азиатских стран. ревья, запрещен ввиду фитосанитар- представляют жуки рода Dendroctonus, Из стран Восточной Азии (Китая, ной угрозы для хвойных насаждений наносящие большой вред лесным Кореи и Японии) с посадочным ма- Российской Федерации. хвойным массивам в Канаде и США териалом и «рождественскими дере- В отличие от рождественских де- и, согласно анализу фитосанитарного вьями», включая срезанные ветки, ревьев, свежие ветки хвойных пород риска, представляющие наибольшую также могут быть завезены: сосно- импортируются из гораздо большего угрозу хвойным насаждениям в РФ. вая стволовая нематода B. xylophilus, числа стран. По данным Федеральной Сосновая стволовая нематода можжевельниковый паутинный клещ таможенной службы, за три последних Bursaphelenchus xylophilus относится Oligonychus perditus (может находиться года (2015-2017 гг.) в Российскую Фе- к числу наиболее патогенных видов ор- на хвое новогодних деревьев); возбу- дерацию продукция по коду ТН ВЭД ганизмов, широко распространенных дитель коричневого ожога хвои сосны 0604204000 «ветки хвойных деревьев, на североамериканском континенте. Mycosphaerella gibsonii (в зимнее время свежие» была поставлена из 22 стран Местные хвойные породы устойчивы в виде стром на отмершей хвое пора- мира (http://stat.customs.ru). Крупней- к данному патогену, а вот большин- женных веток); возбудитель коричне- шими странами-поставщиками были ство европейских и азиатских хвойных вого пятнистого ожога хвои L. acicоla. Польша, Дания, Беларусь, Италия, Гер- восприимчивы к нему. В случае зара- Наибольшие поставки продукции мания (рис. 2). жения восприимчивого растения-хо- «рождественские деревья» и «срезан- В 2015 году «ветки хвойных деревь- зяина гибель дерева может произойти ные ветки» в РФ осуществляются из ев» на территорию РФ были постав- в течение одного сезона. Нематоды европейских стран. В целом фауна лены из 12 стран мира – не только из отлично выживают в стволе, ветках вредителей и возбудителей болезней Европы, но и из Южной Америки. дерева, коре и просто в древесине и в европейской части России и в Евро- Как и в случае с «рождественскими при благоприятных условиях (в случае пе сходна. Однако ряд вредоносных деревьями», основными экспортерами контакта зараженного и незараженно- организмов, которые уже проникли веток хвойных пород являются Поль- го материала) могут самостоятельно в Европу из Америки и наносят зна- ша, Дания, Германия. За три указан- перемещаться из зараженной древеси- чительный ущерб лесонасаждениям, ных года наибольший объем поставок ны в здоровые деревья (Sousa, 2011). пока отсутствует на территории Рос- приходился на 2016 год. В 2017 году К числу патогенов, которые могут сии. Все они могут быть завезены наблюдалось снижение количества присутствовать на ветках рождествен- с данным видом продукции в зимнее поставляемой продукции, однако и ских деревьев, следует отнести возбу- время. Это опять же сосновая ство- в этом году в число основных стран-по- дителей следующих грибных болезней: ловая нематода B. xylophilus, которая ставщиков входили Польша (187,1 т), рака (ожога) стволов и ветвей сосны может быть завезена с хвойными дере- Италия (115 т), Германия (110,9 т), Да- (Atropellis piniphila, A. pinicola), который вьями или ветками из Португалии или ния (91,6 т), Испания (22,2 т). Поставки в зимнее время сохраняется в апотеци- Испании; возбудитель коричневого веток хвойных, хоть и в минимальном ях на стволе и ветках или в виде мице- пятнистого ожога хвои L. acicola, вы- количестве, были осуществлены также лия под корой веток и ствола; корич- зывающий заболевание, широко рас- из США. невого пятнистого ожога хвои сос- пространенное в странах Евросоюза Ниже проведена оценка фитосани- ны Lecanosticta acicola (Mycosphaerella (Австрии, Хорватии, Словении, Чехии, тарного риска при возможном заносе dearnessii) – патоген перезимовывает Франции, Германии, Швейцарии, Лат- на территорию РФ вредных организ- в виде пучков спорогенного мицелия вии и Литве). Предполагаемый ущерб мов с рождественскими деревьями и в стромах (группа пикнид) на отмер- при интродукции этих организмов на ветками хвойных пород из различных шей хвое и ветках; веретеноподобной территории РФ оценивается в десятки стран мира. ржавчины сосны (Cronartium fusiforme) миллиардов долларов. Наибольший фитосанитарный и западной галлоподобной ржавчины Ввозимая в страну продукция про- риск представляет продукция «рож- сосны (Endocronartium harknessii) – ходит фитосанитарную экспертизу со дественские деревья» и «срезанные в зимнее время патоген сохраняется стороны НОКЗР, в России ее осущест- ветки хвойных пород», ввезенная из в виде галлов на стволе и ветках со- вляет Россельхознадзор. Инспектор Северной Америки (США и Канада). сен; желтой кольцевой гнили хвой- визуально проверяет «рождественские С американскими живыми (срублен- ных пород Coniferiporia weirii (Phellinus деревья» и «срезанные ветки» на нали- ными) елями, соснами и пихтами в weirii); ржавчины хвои ели Chrysomyxa чие вредителей или болезней. Однако Россию могут быть завезены вреди- arctostaphyli. Данные грибные патоге- далеко не всегда их можно выявить тели, входящие в Перечень карантин- ны, так же как и сосновая стволовая при визуальном осмотре и даже при ных организмов, отсутствующих на нематода B. xylophilus, распространены лабораторной экспертизе, особенно на

10 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Рис. 2. Импорт продукции «ветки хвойных пород, свежие» в Российскую Федерацию (2015-2017 гг.) (http://stat.customs.ru) Fig. 2. Import of production “branches of coniferous species, fresh” to the Russian Federation (2015-2017) (http://stat.customs.ru)

первичной стадии заражения продук- ками различных видов насекомых, Необходимо помнить, что весь ции. В связи с этим в международной которые при попадании в домашнее «новогодний природный материал», практике существуют определенные тепло начинают бурно развиваться включающий в себя «рождествен- фитосанитарные принципы: запрет (EPPO Reporting Service, 2014-2017; ские деревья» и срезанные ветки, яв- ввоза продукции, которая может со- INTERNET EUROPHYT). Ежегодно ляется продукцией фитосанитарного держать карантинные организмы, из в прессе публикуются сведения риска, которая подлежит обязатель- стран или районов распространения об обнаружении на новогодних дере- ной проверке и сертификации и не этих организмов (Кулинич, 2018; Ру- вьях насекомых, которые затем рас- может находиться в бесконтрольном ководство по применению фитосани- ползаются по квартире. Так, в канун обороте. тарных стандартов в лесном хозяй- 2018 года упоминались случаи обна- стве, 2011; ISPM 15, 2013). Стандарт ружения моск вичами насекомых на Литература ЕОКЗР PM 8/2 (1) рекомендует ввести рождественских пихтах, импортиро- 1. Кулинич О.А, Щуковская А.Г., Ар- запрет на ввоз живых рождественских ванных из Польши и Дании (http://so-l. бузова Е.Н., Козырева Н.И. Возмож- деревьев и срезанных веток из стран ru/news). ный занос карантинных организмов распространения карантинных орга- Не исключен риск заноса насеко- с древесными упаковочными матери- низмов. Следуя этой рекомендации, мых или иных вредных организмов и алами // Карантин растений. Наука и Директива Европейского союза (Ди- на продукции из Северной Америки. практика, 2018. № 2 (24). С. 12-16. ректива 29/2000 EC) ввела запрет на Правда, в последнем случае степень 2. Руководство по применению фи- ввоз живых рождественских деревьев ущерба будет многократно выше. тосанитарных стандартов в лесном и срезанных веток из стран Северной В большинстве случаев использо- хозяйстве. ФАО, Рим, 2011. 117 с. Америки, где распространены вреди- ванные рождественские деревья и 3. EPPO Reporting Service, 2014-2017, тели и возбудители болезней, которые ветки складируются около мусорных Paris. INTERNET EUROPHYT. Annual перечислены выше. В фитосанитарных баков и часто остаются там до весны, and monthly reports of interceptions of требованиях ЕАЭК, которые вступили тем самым создавая потенциальный harmful organisms in imported plants в силу с 1 июля 2017 года, также про- источник угрозы перехода жизне- and other objects. http://ec.europa.eu/ писаны аналогичные условия: запрет способных вредных организмов на food/plant/plant_health_biosecurity/ ввоза живых веток и рождественских декоративные зеленые насаждения europhyt/interceptio ns/index_en.htm. деревьев из стран, в которых распро- рекреационных территорий. 4. ISPM 15. Regulation of wood странены перечисленные выше каран- В ряде случаев садоводы-любите- packaging material in international тинные организмы. ли высаживают на дачных участках trade. FAO, Rome, 2013. Риск заноса и интродукции вредных живые рождественские деревья, при- 5. Sousa E., Naves P., Bonifacio L., организмов с рождественскими дере- обретенные с корневой системой в Henrigues J., Inacio M.L., Evans H. вьями и срезанными ветками хвойных контейнерах, тем самым подвергая Assessing risks of pine wood пород не столь велик, как для посадоч- риску возможного заселения инва- nematode Bursaphelenchus xylophi- ного материала, т.к. данная продукция зивными вредителями и патогенами lus transfer between wood packing поступает в зимнее время и предпола- хвойных насаждений как растения by simulating assembled pallets гается ее дальнейшая утилизация, но на собственном дачном участке, так in service // Bulletin OEPP/EPPO риск присутствует. Авторы статьи не и ближайшие лесонасаждения. Bulletin, 2011. № 41. P. 423-431. нашли в официальных информаци- Оптимальный вариант сниже- 6. [Электронный ресурс]. Ре- онных базах данных фактов регистра- ния угрозы возможного распро- жим доступа: http://so-l.ru/news/ ции сотрудниками НОКЗР различных странения опасных вредных орга- y/2018_01_09_novo godnie_syur pri- стран карантинных организмов в жи- низмов – это своевременная ути- zi (дата обращения: 10.11.2017). вых ветках и рождественских деревьях, лизация источника угрозы путем 7. [Электронный ресурс]. Режим однако мы ежегодно сталкиваемся сжигания или другими эффектив- доступа: http://stat.customs.ru (дата с фактами заноса с новогодними ел- ными методами. обращения: 15.12.2017).

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 11 Распространение в различных странах мира карантинных вредных организмов, связанных с продукцией «рождественские деревья и «свежесрезанные ветви хвойных пород» Страна распространения Растение-хозяин Карантинный вредный организм Пихта (Abies), ель (Picea), псевдотсуга (Pseudotsuga), Choristoneura fumiferana (Clemens) Канада, США можжевельник (Juniperus), Еловая листовертка-почкоед лиственница (Larix), сосна (Pinus) Пихта (Abies), ель (Picea), Choristoneura freemani Razowski Канада, США псевдотсуга (Pseudotsuga) Западная хвоевертка Пихта (Abies), псевдотсуга Acleris gloverana (Walsingham) Канада, США (Pseudotsuga), Западная черноголовая листовертка-почкоед тсуга (Tsuga), ель (Picea) Acleris variana (Fernald) Канада, США Пихта (Abies), ель (Picea) Восточная черноголовая листовертка Dendroctonus brevicomis LeConte Западный сосновый лубоед Dendroctonus ponderosae Hopkins Горный сосновый лубоед Dendroctonus valens (LeConte) Рыжий сосновый лубоед Ips calligraphus (Germar) Канада, США Сосна (Pinus) Восточный шестизубчатый короед Ips grandicollis (Eichho) Восточный пятизубчатый короед Ips pini (Say) Орегонский сосновый короед Ips plastographus (LeConte) Калифорнийский короед

Пихта (Abies), ель (Picea), сосна (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Канада, США, Мексика псевдотсуга (Pseudotsuga), тсуга (Tsuga), (Steiner & Buhrer) Nickle кедр (Cedrus), лиственница (Larix) Сосновая стволовая нематода

Atropellis pinicola Zeller & Goodding Рак (ожог) стволов и ветвей сосны Atropellis piniphila (Weir) Lohmann & Cash Рак (ожог) стволов и ветвей сосны Канада, США Сосна (Pinus) Lecanosticta acicola (von ümen) Sydow (=Mycosphaerella dearnessii) Коричневый пятнистый ожог хвои сосны

Endocronartium harknessii E. Meinecke Западная галлоподобная ржавчина сосны Сосна (Pinus), дуб (Quercus), Cronartium fusiforme Cummins США каштан (Castanea) Веретеноподобная ржавчина сосны Ель (Picea), толокнянка обыкновенная Chrysomyxa arctostaphyli Dietel Канада, США (Arctostaphylos uva-ursi) Ржавчина хвои ели Пихта (Abies), ель (Picea), сосна (Pinus), Coniferiporia weirii (Phellinus weirii) (Murrill) Канада, США псевдотсуга (Pseudotsuga), туя (uja), L.W. Zhou & Y.C. Dai тсуга (Tsuga) Желтая кольцевая гниль хвойных Neonectria neomacrospora Пихта (Abies), ель (Picea), Канада, США (C. Booth & Samuels) Mantiri & Samuels псевдотсуга (Pseudotsuga), тсуга (Tsuga) Рак бальзамической пихты

Гватемала, Гондурас, Мексика, Dendroctonus valens (LeConte) Сосна (Pinus) Никарагуа Рыжий сосновый лубоед

Куба, Доминиканская Ips calligraphus (Germar) Республика, Гватемала, Гаити, Сосна (Pinus) Восточный шестизубчатый короед Ямайка, Мексика, Никарагуа Куба, Доминиканская Ips grandicollis (Eichho) Республика, Гватемала, Ямайка, Сосна (Pinus) Восточный пятизубчатый короед Мексика, Никарагуа, Гондурас

12 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Страна распространения Растение-хозяин Карантинный вредный организм Lecanosticta acicola Колумбия, Коста-Рика, Куба, (von ümen) Sydow Гватемала, Гондурас, Ямайка, Сосна (Pinus) (=Mycosphaerella dearnessii) Мексика, Никарагуа Коричневый пятнистый ожог хвои сосны

Пихта (Abies), ель (Picea), сосна (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Португалия псевдотсуга (Pseudotsuga), тсуга (Tsuga), (Steiner & Buhrer) Nickle кедр (Cedrus), лиственница (Larix) Сосновая стволовая нематода

Австрия, Хорватия, Чехия, Lecanosticta acicola Франция, Грузия, Германия, (von ümen) Sydow Сосна (Pinus) Италия, Латвия, Литва, Словения, (=Mycosphaerella dearnessii) Швейцария Коричневый пятнистый ожог хвои сосны

Neonectria neomacrospora Бельгия, Дания, Норвегия, Пихта (Abies), ель (Picea), (C. Booth & Samuels) Mantiri & Samuels Швеция, Великобритания псевдотсуга (Pseudotsuga), тсуга (Tsuga) Рак бальзамической пихты Ips calligraphus (Germar) Филиппины Сосна (Pinus) Восточный шестизубчатый короед Dendroctonus valens (LeConte) Китай Сосна (Pinus) Рыжий сосновый лубоед Oligonychus perditus Pritchard & Baker Китай Можжевельник (Juniperus) Можжевельниковый паутинный клещ Пихта (Abies), ель (Picea), сосна (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Китай псевдотсуга (Pseudotsuga), тсуга (Tsuga), (Steiner & Buhrer) Nickle кедр (Cedrus), лиственница (Larix) Сосновая стволовая нематода

Lecanosticta acicula (von ümen) Sydow Китай Сосна (Pinus) (=Mycosphaerella dearnessii) Коричневый пятнистый ожог хвои сосны

Пихта (Abies), ель (Picea), сосна (Pinus), Coniferiporia weirii (Phellinus weirii) (Murrill) Китай псевдотсуга (Pseudotsuga), туя (uja), L.W. Zhou & Y.C. Dai тсуга (Tsuga) Желтая кольцевая гниль хвойных

Neonectria neomacrospora Пихта (Abies), ель (Picea), Китай (C. Booth & Samuels) Mantiri & Samuels псевдотсуга (Pseudotsuga), тсуга (Tsuga) Рак бальзамической пихты

Пихта (Abies), ель (Picea), сосна (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Корея псевдотсуга (Pseudotsuga), тсуга (Tsuga), (Steiner & Buhrer) Nickle кедр (Cedrus), лиственница (Larix) Сосновая стволовая нематода

Lecanosticta acicola (von ümen) Sydow Корея Сосна (Pinus) (=Mycosphaerella dearnessii) Коричневый пятнистый ожог хвои сосны

Пихта (Abies), ель (Picea), сосна (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Тайвань псевдотсуга (Pseudotsuga), тсуга (Tsuga), (Steiner & Buhrer) Nickle кедр (Cedrus), лиственница (Larix) Сосновая стволовая нематода

Пихта (Abies), ель (Picea), сосна (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Япония псевдотсуга (Pseudotsuga), тсуга (Tsuga), (Steiner & Buhrer) Nickle кедр (Cedrus), лиственница (Larix) Сосновая стволовая нематода

Lecanosticta acicola (von ümen) Sydow Япония Сосна (Pinus) (=Mycosphaerella dearnessii) Коричневый пятнистый ожог хвои сосны

Пихта (Abies), ель (Picea), сосна (Pinus), Coniferiporia weirii (Phellinus weirii) (Murrill) Япония псевдотсуга (Pseudotsuga), туя (uja), L.W. Zhou & Y.C. Dai тсуга (Tsuga) Желтая кольцевая гниль хвойных

Ips grandicollis (Eichho) Австралия Сосна (Pinus) Восточный пятизубчатый короед

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 13 UDC 632.92:635.912 “CHRISTMAS TREES” AS A THREAT TO THE SPREAD OF PATHOGENIC FOREST PESTS O.A. Kulinich, All-Russian Plant Quarantine Center (FGBU “VNIIKR”) A.G. Shchukovskaya, All-Russian Plant Quarantine Center (FGBU “VNIIKR”) E.N. Arbuzova, All-Russian Plant Quarantine Center (FGBU “VNIIKR”) N.I. Kozyreva, Institute of Ecology and Evolution Russian Academy of Sciences, Moscow

Abstract. A brief analysis of possible countries, and the volume of pro ducts Below is an assessment of phytosanitary introduction of various quarantine pests supplied from the Republic of Belarus risk in case of possible introduction of with Christmas trees and freshly cut co- increased. e list of “Christmas trees” pests with Christmas trees and branches niferous branches is presented. e list of exporting countries was signicantly of conifers from around the world into the quarantine pests (insects, nematodes, phy- updated in 2017. In 2017, new export- territory of the Russian Federation. topathogenic fungi), which can enter the ing countries – Estonia and Armenia – e greatest phytosanitary risk is posed territory of the Russian Federation with appeared. It should be noted that if the by Christmas trees and cut branches im- the analyzed products from dierent coun- supply of “Christmas trees”, although in a ported from North America (USA and tries of the world, is given. limited amount, in 2015-2016 was carried Canada). With the American live (felled) Keywords. Christmas trees, freshly cut out even from North America (Cana- spruces, pines and rs to Russia pests en- coniferous branches, entry, quarantine pests, da and the United States), then in 2017 tering the list of the quarantine objects pests, pine stem nematode, fungal pathogens, there was no import of these products absent in the territory of the Russian Fede- introduction, damage, Russia, RF. from these countries. Perhaps this is due ration and the Eurasian economic Union to the new phytosanitary requirements of (EAEU) can be introduced. Among the e traditional Christmas decorations the EAEU, which came into eect in July insects there are several species of leaf rol- of each house are “Christmas trees” and 2017. According to these requirements, ler moths of the Choristoneura and Acleris. fresh cut branches of conifers, used as the the import of conifer planting material, In winter, they may be present in the egg main material in the oral Christmas and including cut coniferous branches and stage on the branches of the tree. Bark new year decor. Christmas trees, is prohibited due to the beet les can hide under the bark of branches However, decorated conifers and cut phytosanitary threat to the conifers of the and trunks of coniferous trees. ese are branches are not only a source of festive Russian Federation. the bark beetles of the Dendroctonus ge- mood, but also a potential threat of intro- Unlike Christmas trees, fresh bran- nus and several bark beetle species of the duction of various pests that can be harm- ches of conifers are imported from a much Ips genus. Particular risk is posed by the ful to both human health and the environ- larger number of countries. According to beetles of the Dendroctonus genus, which ment, especially if these Christmas trees the Federal customs service, over the last does much harm to coniferous forests in were imported from afar. three years (2015-2017) products under Canada and the United States and, ac- In the new year period, the Internet the FEACN code 0604204000 “branches cording to the phytosanitary risk analysis, is full of proposals for the supply of pre- of coniferous trees, fresh” were exported to represents the greatest threat to coniferous sentable “Christmas trees” from abroad. the Russian Federation from 22 countries plantations in Russia. is article presents a brief analysis of the (http://stat.customs.ru). e largest sup- Pine wood nematode Bursaphelenchus possible introduction of quarantine pests plier countries were: Poland, Denmark, xylophilus is one of the most pathogenic with new year products and the degree of Belarus, Italy, Germany (Fig. 2). species, widely distributed in the North threat to so¥wood in the territory of the In 2015, “branches of coniferous American continent. Local conifers spe- Russian Federation. trees” on the territory of the Russian cies are resistant to this pathogen, but According to the Federal customs service, Federation were delivered from 12 most European and Asian conifers are over the last three years (2015-2017) pro- countries not only from Europe but susceptible to it. In case of infestation ducts under the FEACN code 0604202000 also from South America. of a susceptible host plant, the tree can “Christmas trees, fresh” were exported to As in the case of “Christmas trees”, the die within one season. Nematodes easily the Russian Federation from 13 countries main exporters of coniferous branches are survive in the trunk, tree branches, bark (http://stat.customs.ru). ese are Belarus, Poland, Denmark, Germany. When com- and in the wood and, under favorable Belgium, Canada, USA, Denmark, Spain, paring the volume of deliveries to Russia conditions (in the case of infested and Latvia, Netherlands, Poland, Germany, Ita- of these products for three years, the largest uninfested material contact), they can ly, Armenia, Estonia (Fig. 1). volume accounts for 2016. In 2017, there move independently from infested wood e largest volume of deliveries of is a decrease in the number of products to healthy trees (Sousa, 2011). “Christmas trees” from abroad accounts supplied, however, Poland (187.1 t), Italy Among the pathogens that may be pre- for Denmark and Poland (respectively (115 t), Germany (110.9 t), Denmark (91.6 t), sent on the branches of Christmas trees, 905.2 and 928.8 t), the maximum of these Spain (22.2 t) are among the priority coun- should include the following pathogens supplies accounts for 2016. In 2017, there tries. Deliveries of coniferous branches, of fungal diseases: cancer (blight) of the was a signicant decrease in the volume of though in a minimum quantity, were also trunks and branches of pine (Atropellis imports of “Christmas trees” from these made from the United States. piniphila , A. pinicola), in the winter time

14 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА pest remains in apothecia on stem and by the NPPO, in Russia it is carried out the degree of damage will be many times branches or in the form of mycelium by the Rosselkhoznadzor. e inspector higher. under the bark of branches and trunk; visually checks the “Christmas trees” and In most cases, used Christmas trees brown spot needle blight of pine Leca- branches for presence of pests or diseas- and branches are stored near garbage nosticta acicola (Mycosphaerella dear- es. However, not always they can be de- cans and o¥en remain there until spring, nessii), the pathogen overwinters in the tected during visual inspection and even thus creating a potential source of threat form of beams sporogenous mycelium in during laboratory examination, especial- of transition of viable pests on decorative stromach (pycnidia) in dead needles and ly at the initial stage of contamination of green plantings of recreational territories. branches; Southern fusiform rust of pine products. In this regard, there are certain In some cases, Amateur gardeners (Cronartium fusiforme) and western gall phyto sanitary principles in the interna- plant in suburban areas live Christmas rust of pine (Endocronartium harknessii) – tional practice: prohibition of import trees acquired with the root system in in winter, the pathogen persists in the of products that may contain quaran- containers, thereby exposing the risk of form of galls on the trunk and branches tine objects from countries (or areas) of possible settlement of invasive pests and of pine trees; laminated butt rot of coni- distribution of these objects (Kulinich, pathogens of coniferous plantations as fers Coniferiporia weirii (Phellinus weirii); 2018; Guide to the implementation of plants in their own suburban area, and broom rust of spurce Chrysomyxa arcto- phytosanitary standards in forestry, 2011; the nearest forest plantations. staphyli. ese fungal pathogens, as well ISPM 15, 2013). e EPPO standard PM e best option to reduce the threat of as pine wood nematode B. xylophilus, are 8/2 (1) recommends a ban on the im- the possible spread of pests is the time- common in North America and are in- port of live Christmas trees and branch- ly disposal of the source of the threat by cluded in the lists of quarantine objects of es from the countries where quarantine burning or other eective methods. many countries of the world. organisms are spread. Following this It should be remembered that all Customs statistics show that “Christmas recommendation, the European Council “new year’s natural material”, including trees” and cut branches are not imported Directive (Directive 29/2000 EC) banned “Christmas trees” and cut branches, is a to Russia from Asian countries, but below the importation of live Christmas trees product of phytosanitary risk, which is we have also assessed the phytosanitary and branches from North American subject to mandatory inspection and cer- risk of possible introduction of pests from countries where pests listed above are tication and cannot be in uncontrolled the nearest Asian countries. spread. e estimated damage caused by circulation. From East Asian countries (China, Ko- the introduction of these pests in Russia is rea and Japan) with planting material and estimated at tens of billions of dollars. e References “Christmas trees”, including cut branches, phytosanitary requirements of the EEC, 1. Kulinich O.A., Shchukovskaya A.G., can also be imported: Pine wood nema- which entered into force on July 1, 2017, Arbuzova E.N., Kozyreva N.I. Possible in- tode (pine wilt disease) B. xylophilus, juni- also prescribe similar conditions: prohi- troduction of quarantine pests with wood per spider mite Oligonychus perditus (can bition of importation of live branches and packaging materials // Plant Quarantine. be on the needles of Christmas trees); the Christmas trees from countries where Science and practice, 2018. № 2 (24). brown needle blight of pine Mycosphae- quarantine objects listed above are spread. P. 12-16. rella gibsonii (in winter in the form of a e risk of introduction with such pro- 2. Guide to the implementation of phy- stromas on dead needles of infected bran- ducts (Christmas trees and live branches tosanitary standards in forestry. FAO, ches); the brown spot of pine (L. acicоla). of coniferous trees) is not so great in com- Rome, 2011. 117 p. e largest deliveries of products “Christ- parison with the planting material, be- 3. EPPO Reporting Service, 2014-2017, mas trees” and cut branches in Russia are cause it comes in the winter, and its further Paris. INTERNET EUROPHYT. Annual made from European countries. In gener- disposal is expected, but the risk is present. and monthly reports of interceptions of al, the pests in the European part of Russia e authors of the article did not nd in harmful organisms in imported plants and Europe is similar. However, a number the o¦cial information databases the facts and other objects. http://ec.europa.eu/ of pests that have already entered into Eu- of registration of quarantine objects in food/plant/plant_health_biosecurity/europe from America and cause signicant live branches and Christmas trees by the rophyt/interceptio ns/index_en.htm. damage to forest plantations do not yet exist NPPO sta of dierent countries, but eve- 4. ISPM 15. Regulation of wood in Russia. All of them can be entered with ry year we are faced with the facts of intro- packag ing material in international trade. this species of product in the winter. is duction of various species of insects into FAO, Rome, 2013. is again a pine wood nematode (B. xyloph- the house with Christmas trees, which be- 5. Sousa E., Naves P., Bonifacio L., Hen- ilus), which can be imported from the co- gin to develop rapidly in warm conditions rigues J., Inacio M.L., Evans H. Assessing niferous trees or branches from Portugal or (EPPO Reporting Service, 2014-2017; risks of pine wood nematode Bursaphe- Spain; the brown spot needle blight of pine INTERNET EUROPHYT). Every year, lenchus xylophilus transfer between wood (L. acicula), which causes the disease wide- the press publishes information about the packing by simulating assembled pallets spread in the European Union (Austria, detection of insects on Christmas trees in service // Bulletin OEPP/EPPO Bulle- Croatia, Slovenia, the Czech Republic, that spread around the apartment. So, on tin, 2011. № 41. P. 423-431. France, Germany, Switzerland, Latvia and the eve of 2018, there were cases of detec- 6. [Electronic resource]. Access mode: Lithuania). e estimated damage caused tion of insects by Moscow residents on http://so-l.ru/news/y/2018_01_09_ by the introduction of these organisms Christmas rs imported from Poland and novogodnie_syurprizi (access date: on the territory of the Russian Federation Denmark (http://so-l.ru/news). 10.11.2017). amounts to tens of billions of dollars. e risk of introduction of insects or 7. [Electronic resource]. Access e products imported into the country other pests from North America is not mode: http://stat.customs.ru (access are subject to phytosanitary examination excluded. However, in the latter case, date: 15.12.2017).

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 15 Spread of quarantine pests associated with the commodities of “Christmas trees” and “fresh cut branches of conifers” in different countries of the world Country spread of pest Host plant Quarantine pest Fir (Abies), spruce (Picea), Douglas r (Pseudotsuga), Choristoneura fumiferana (Clemens) Canada, USA juniper (Juniperus), Eastern spruce budworm larch (Larix), pine (Pinus) Fir (Abies), spruce (Picea), Choristoneura freemani Razowski Canada, USA Douglas r (Pseudotsuga) Western spruce budworm Fir (Abies), Douglas r (Pseudotsuga), Acleris gloverana (Walsingham) Canada, USA tsuga (Tsuga), spruce (Picea) Western blackheaded budworm Acleris variana (Fernald) Canada, USA Fir (Abies), spruce (Picea) Eastern blackheaded budworm Dendroctonus brevicomis LeConte Western pine beetle Dendroctonus ponderosae Hopkins Mountain pine beetle Dendroctonus valens (LeConte) Red turpentine beetle Ips calligraphus (Germar) Canada, USA Pine (Pinus) Six-spined engraver beetle Ips grandicollis (Eichho) Five-spined bark beetle Ips pini (Say) Pine engraver beetle Ips plastographus (LeConte) California pine engraver Fir (Abies), spruce (Picea), pine (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Canada, USA, Mexico Douglas r (Pseudotsuga), hemlock (Steiner & Buhrer) Nickle (Tsuga), cedar (Cedrus), larch (Larix) Pine wood nematode Atropellis pinicola Zeller & Goodding Cancer (blight) of pine trunks and branches Atropellis piniphila (Weir) Lohmann & Cash Cancer (blight) of pine trunks and branches Canada, USA Pine (Pinus) Lecanosticta acicula (von ümen) Sydow (=Mycosphaerella dearnessii) Brown spot needle blight of pine Endocronartium harknessii E. Meinecke Western gall rust of pine Pine (Pinus), oak (Quercus), Cronartium fusiforme Cummins USA chestnut (Castanea) Southern fusiform rust of pine

Spruce (Picea), bear’s grape Chrysomyxa arctostaphyli Dietel Canada, USA (Arctostaphylos uva-ursi) Spruce needles rust Coniferiporia weirii (Phellinus weirii) Fir (Abies), spruce (Picea), pine (Pinus), (Murrill) L.W. Zhou & Y.C. Dai Canada, USA Douglas r (Pseudotsuga), cedar (uja), Laminated butt rot of conifers hemlock (Tsuga) (yellow ring rot of conifers) Fir (Abies), spruce (Picea), Neonectria neomacrospora Canada, USA Douglas r (Pseudotsuga), (C. Booth & Samuels) Mantiri & Samuels hemlock (Tsuga) Canker of balsam r Dendroctonus valens (LeConte) Guatemala, Honduras, Mexico, Nicaragua Pine (Pinus) Red turpentine beetle Cuba, Dominican Republic, Guatemala, Ips calligraphus (Germar) Pine (Pinus) Haiti, Jamaica, Mexico, Nicaragua Six-spined engraver beetle Cuba, Dominican Republic, Guatemala, Ips grandicollis (Eichho) Pine (Pinus) Jamaica, Mexico, Nicaragua, Honduras Five-spined bark beetle

16 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Country spread of pest Host plant Quarantine pest Lecanosticta acicola Colombia, Costa Rica, Cuba, Guatemala, (von ümen) Sydow Pine (Pinus) Honduras, Jamaica, Mexico, Nicaragua (=Mycosphaerella dearnessii) Brown spot needle blight of pine

Fir (Abies), spruce (Picea), pine (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Portugal Douglas r (Pseudotsuga), hemlock (Steiner & Buhrer) Nickle (Tsuga), cedar (Cedrus), larch (Larix) Pine wood nematode Lecanosticta acicola Austria, Croatia, Czech Republic, France, (von ümen) Sydow Georgia, Germany, Italy, Latvia, Lithuania, Pine (Pinus) (=Mycosphaerella dearnessii) Slovenia, Switzerland Brown spot needle blight of pine Neonectria neomacrospora Belgium, Denmark, Norway, Sweden, Fir (Abies), spruce (Picea), (C. Booth & Samuels) Mantiri & Samuels United Kingdom Douglas r (Pseudotsuga), hemlock (Tsuga) Canker of balsam r Ips calligraphus (Germar) Philippines Pine (Pinus) Six-spined engraver beetle

Dendroctonus valens (LeConte) China Pine (Pinus) Red turpentine beetle

Oligonychus perditus Pritchard & Baker China Juniper (Juniperus) Juniper spider mite

Fir (Abies), spruce (Picea), pine (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus China Douglas r (Pseudotsuga), hemlock (Steiner & Buhrer) Nickle (Tsuga), cedar (Cedrus), larch (Larix) Pine wood nematode

Lecanosticta acicula (von ümen) Sydow China Pine (Pinus) (=Mycosphaerella dearnessii) Brown spot needle blight of pine Coniferiporia weirii (Phellinus weirii) Fir (Abies), spruce (Picea), pine (Pinus), (Murrill) L.W. Zhou & Y.C. Dai China Douglas r (Pseudotsuga), cedar (uja), Laminated butt rot of conifers hemlock (Tsuga) (yellow ring rot of conifers)

Fir (Abies), spruce (Picea), Neonectria neomacrospora China Douglas r (Pseudotsuga), (C. Booth & Samuels) Mantiri & Samuels hemlock (Tsuga) Canker of balsam r

Fir (Abies), spruce (Picea), pine (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Korea Douglas r (Pseudotsuga), hemlock (Steiner & Buhrer) Nickle (Tsuga), cedar (Cedrus), larch (Larix) Pine wood nematode

Lecanosticta acicula (von ümen) Sydow Korea Pine (Pinus) (Mycosphaerella dearnessii) Brown spot needle blight of pine

Fir (Abies), spruce (Picea), pine (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Taiwan Douglas r (Pseudotsuga), hemlock (Steiner & Buhrer) Nickle (Tsuga), cedar (Cedrus), larch (Larix) Pine wood nematode

Fir (Abies), spruce (Picea), pine (Pinus), Bursaphelenchus xylophilus Japan Douglas r (Pseudotsuga), hemlock (Steiner & Buhrer) Nickle (Tsuga), cedar (Cedrus), larch (Larix) Pine wood nematode

Lecanosticta acicula (von ümen) Sydow Japan Pine (Pinus) (=Mycosphaerella dearnessii) Brown spot needle blight of pine Coniferiporia weirii (Phellinus weirii) Fir (Abies), spruce (Picea), pine (Pinus), (Murrill) L.W. Zhou & Y.C. Dai Japan Douglas r (Pseudotsuga), cedar (uja), Laminated butt rot of conifers hemlock (Tsuga) (yellow ring rot of conifers)

Ips grandicollis (Eichho) Australia Pine (Pinus) Five-spined bark beetle

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 17 УДК 632.911.2:632.913.1 ОСОБО ОПАСНЫЕ ВОЗБУДИТЕЛИ БОЛЕЗНЕЙ КОСТОЧКОВЫХ КУЛЬТУР РОДА CANDIDATUS PHYTOPLASMA SPP. Г.Н. Бондаренко, старший научный сотрудник – начальник Испытательного лабораторного центра ФГБУ «ВНИИКР» И.Г. Башкирова, агроном лаборатории анализа ГМО Испытательного лабораторного центра ФГБУ «ВНИИКР» Аннотация. В статье пред- насаждения, фитосанитарный распространена фитоплазма хло- ставлен обзор особо опасных видов контроль, посадочный материал. ротического скручивания листьев фитоплазм – возбудителей болез- абрикоса (Candidatus Phytoplasma ней косточковых культур. Среди На протяжении последних трех prunorum). Если рассматривать них фитоплазма хлоротическо- лет в России наблюдался как спад, другие рынки, то возможен ввоз из го скручивания листьев абрикоса так и подъем производства плодов Северной Америки и из некоторых (Candidatus Phytoplasma prunorum), косточковых культур (сливы, виш- стран Азии, где широко распро- фитоплазма X-болезни персика ни, черешни, абрикосов, персиков странены такие опасные организ- (Ca. Phytoplasma pruni) и возбуди- и других) в хозяйствах всех кате- мы, как фитоплазма X-болезни пер- тель «ведьминых метел» миндаля горий. Для получения большего сика и возбудитель «ведьминых ме- (Ca. Phytoplasma phoenicium), про- объема продукции организована тел» миндаля Ca. Phytoplasma pruni. никновение и распространение ко- программа развития и увеличения Проникновение исследуемых фито- торых стоит брать во внимание. площадей плодовых насаждений. плазм в латентном состоянии с им- В работе представлены данные о Нужно отметить, что отечествен- портным посадочным материалом географическом распространении, ные питомники и маточники не представляется возможным из-за растениях-хозяевах и универсаль- справляются с запланированны- отсутствия у них регуляционного ных методах диагностики фито- ми объемами агропроизводите- статуса. В связи с этим в работе уде- патогенов. лей (Башкирова и др., 2018). Как ляется внимание географическому Ключевые слова. Фитоплазма, правило, посадочный материал распространению, растениям-хозя- косточковые культуры, плодовые поступает из стран Европы, где евам и универсальным методам ди-

Рис. 1. Распространение исследуемых видов фитоплазм (составлено авторами) Fig. 1. e distribution of the types of phytoplasma under research (compiled by the authors)

18 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Таблица 1 названия: Peach X-disease, Peach Растения – хозяева рода Prunus для фитоплазм yellow leafroll phytoplasma, Western (https://www.eppo.int; https://www.cabi.org) X-disease phytoplasma. Фитоплазмы Возбудитель такого заболева- Культура Ca. Ph. Ca. Ph. ния, как «ведьмины метлы» мин- Ca. Ph. phoenicium prunorum pruni даля – Ca. Phytoplasma phoenicium (Verdin et al., 2003) – по генети- Абрикос обыкновенный Основной + - ческим признакам входит в ма- (Prunus armeniaca) лоизученную группу Pigeon pea Черешня (Prunus avium) + Основной - witches’ broom (16SrIX). Общепри- Слива домашняя нятые названия и сокращения: + + - (Prunus domestica) Phytoplasma phoenicium, Witches’ Миндаль обыкновенный broom of almond, Almond witches’ + + Основной broom phytoplasma, AlWB (https:// (Prunus dulcis) www.cabi.org; https://www.eppo. Персик обыкновенный Основной Основной Основной int; Bertaccini et al., 2014; Hodgetts, (Prunus persica) Dickinson, 2010; Zhao et al., 2010). Нектарин Если рассматривать вид Ca. (Prunus persica var. - - Основной Ph. prunorum, то он инфициру- nectarina) ет большое количество растений (табл. 1). В основном поражает Слива китайская Основной Основной - растения рода Prunus: абрикос (Prunus salicina) обыкновенный (P. armeniaca), Терн (Prunus spinosa) + - - персик обыкновенный (P. persica) Алыча культурная и сливу китайскую (P. salicina). + - - (Prunus cerasifera) Патоген был обнаружен и на ди- Черемуха антипка ких видах рода Prunus: терне + - - (P. spinosa) и черемухе поздней (Prunus mahaleb) (P. serotina). Более устойчивыми Слива узколистная - + - видами являются: слива домаш- (Prunus angustifolia) няя (P. domestica), алыча обык- Вишня обыкновенная новенная (P. cerasifera), черешня - Основной - (Prunus cerasus) (P. avium) и вишня обыкновенная Черемуха виргинская (P. cerasus). Экспериментальным - + - растением-хозяином является (Prunus virginiana) барвинок розовый (Catharanthus Дикий миндаль - - + roseus). Установлено, что фито- (Prunus scoparia) плазму переносят листоблошка

агностики группы фитопатогенов рода Ca. Phytoplasma. Для применения определенных ме- тодов диагностики необходимо по- нимать таксономическое положение возбудителей болезней косточковых культур. Фитоплазмы принадлежат к царству Bacteria, типу Firmicutes, клас- су Mollicutes, отделу Acholeplasmatales, семейству Acholeplasmataceae, роду Candidatus Phytoplasma. Фитоплазма хлоротического скру- чивания листьев абрикоса – Ca. Phytoplasma prunorum (Seemüller and Schneider) – принадлежит к группе Apple proliferation (16SrX). Обще- принятые названия и сокращения: Apricot chlorotic leafroll, European stone fruit yellows phytoplasma (ESFY). Фитоплазма X-болезни пер- Рис. 2. Симптомы повреждения Ca. Ph. prunorum – побурение среднего слоя коры сика – Ca. Phytoplasma pruni после зимы (фото G. Morvan, INRA, Montfavet) (IRPCM, 2004), относится к группе Fig. 2. Symptoms of Ca. Ph. prunorum damage – the middle layer of the bark aer the X-disease (16SrIII). Общепринятые winter (photo by G. Morvan, INRA, Montfavet)

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 19

. ложительный результат не под- mas and Phytoplasma Diseases a thology, 2014. Vol. 96 (1). P. 15-28. тверждался. Severe Threat to Agriculture // 17. Marcone C., Jarausch B., Ja- American Journal of Plant Sciences, rausch W. Candidatus Phyto plasma Литература 2014. Vol. 5. № 12. P. 1763-1788. prunorum, the causal agent of Eu- 1. Башкирова И.Г., Матяшова Г.Н., 9. Brzin J., Ermacora P., Osler R., ropean stone fruit yellows: an over- Завриев С.К., Рязанцев Д.Ю., Loi N., Ravnikar M., Petrovic N. view // Journal of Plant Pathology, Шнейдер Ю.А. Апробация тест- Detection of apple proliferation 2010. Vol. 92 (1). P. 19-34. сис тем для детекции фитоплазм by ELISA and PCR in growing 18. Quaglino F., Kube M., Jawhari M., яблони и груши // Защита и ка- and dormant apple trees // Plant Abou-Jawdah Y., Siewert C., Chou- рантин растений, 2018. Вып. 7. Diseases Prot., 2003. Vol. 110. eiri E., Sobh H., Casati P., Tedes- С. 40-41. P. 476-483. chi R., Lova M.M., Alma A., Bian- 2. Европейская организация 10. Davis R.E., Zhao Y., Dally E.L., co P.A. ‘Candidatus Phytoplasma по карантину и защите расте- Lee I-M., Jomantiene R., Doug- phoenicium’ associated with al- ний: Официальный сайт [Элек- las S.M. ‘Candidatus Phyto plasma mond witches’ broom disease: from тронный ресурс] / Европейская pruni’, a novel taxon associated with draft genome to genetic diversity и Средиземноморская органи- X-disease of stone fruits, Prunus among strain populations // BMC зация по карантину и защите spp.: multilocus characteriz ation Microbiology, 2015. Vol. 15. P. 148. растений, 2018. Режим досту- based on 16S rRNA, secY, and ribo- 19. Tedeschi R., Picciau L., Quagli- па: https://www.eppo.int (дата somal protein genes // Internation- no F., Abou‐Jawdah Y., Lova M.M., обращения: 21.09.2018). al Journal of Systematic and Evo- Jawhari M., Casati P., Cominetti A., 3. Международный центр сель- lutionary Microbiology, 2013. Vol. Choueiri E., Abdul-Nour H., Bi- ского хозяйства и биологических 63. P. 766-776. anco P.A., Alma A. A cixiid sur- наук [Электронный ресурс] / 11. Deng S., Hiruki C. Am- vey for natural potential vectors of CABI. 2018. Режим доступа: plification of 16S rRNA genes ‘Candidatus Phytoplasma phoeni- https://www.cabi.org (дата обра- from culturable and noncultu- cium’ in Lebanon and preliminary щения: 18.10.2018). rable mollicutes // Microbio- transmission trials // Annals of 4. Abou-Jawdah Y., Abou-Fakhr E., logical Methods, 1991. Vol. 14. Applied Biology, 2015. Vol. 166 (3). Sobn H., Lova M.M., Vercesi A., Bi- P. 53-61. P. 372-388. anco P.A. Almond witches’ broom 12. Green M.J., Thompson D.A., 20. Thébaud G., Yvon M., Alary R., phytoplasma (‘Candidatus Phytoplas- MacKenzie D.J. East and efficient Sauvion N., and Labonne G. Effi- ma phoenicium’): a real threat to al- DNA extraction from woody plants cient transmission of ‘Candidatus mond, peach and nectarine // 21st In- for the detection of phytoplasmas Phytoplasma pru no rum’ is delayed ternational Conference on Virus and by polymerase chain reaction // by eight months due to a long laten- other Graft Transmissible Diseases Plant Disease, 1999. Vol. 83. cy in its host-alternating vector // of Fruit Crops. Julius-Kühn-Archive, P. 482-485. Phytopathology, 2009. Vol. 99. 2010. Vol. 427. P. 418-420. 13. Hodgetts J., Dickinson M. P. 265-273. 5. Abou-Jawdah Y., Sobh H., Ak- Phytoplasma Phylogeny and Detec- 21. Varga K., Kölber M., Martini M., kary M. Blackwell Publishing Ltd tion Based on Genes other than 16S Pondrelli M., Ember I., Tökes G., First report of Almond witches’ rRNA // Phytoplasmas: Genomes, Lazar J., Mikulas J., Szendrey G., broom phytoplasma (‘Candidatus Plant Hosts and Vectors (eds Schweigert A., Bertaccini A. Phyto- Phytoplasma phoenicium’) causing P.G. Weintraub and P. Jones). CABI, plasma identication in Hungarian a severe disease on nectarine and 2010. P. 93-113. grapevines by two nested-PCR systems peach trees in Lebanon // Bulletin 14. IRPCM Phytoplasma/Spiro- // Proceedings of the 13th Meeting of OEPP/EPPO Bulletin, 2009. Vol. 39. plasma Working Team “Phytoplas- ICVG. Adelaide, 2000. P. 113-115. P. 94-98. ma Taxonomy Group ‘Candidatus 22. Verdin E., Salar P., Danet J.-L., 6. Arismendi N., Andrade N., Phytoplasma’, a taxon for the wall- Choueiri E., Jreijiri F., Zammer S.E., Riegel R., Carrillo R. Presence of a less, non-helical prokaryotes that Gélie B., Bové J.M., Garnier M. phytoplasma associated with witch- colonize plant phloem and insects” // ‘Candidatus Phytoplasma phoeni- es’ broom diseases in Ugni molinae International Journal of Systematic cium’ sp. nov., a novel phytoplasma Turcz. and Gaultheria phillyreifolia and Evolutionary Microbiology, associated with an emerging lethal (Pers.) // Sleumer determined by 2004. Vol. 54. P. 1243-1255. disease of almond trees in Lebanon DAPI, PCR and DNA sequencing, 15. Kirkpatrick B.C., Uyemoto J.K., and Iran // International Journal of 2010. Vol. 70 (1). P. 26-33. Purcell A.H. X-disease // “Com- Systematic and Evolutionary Micro- 7. Bashkirova I.G., Matyasho- pendium of Stone Fruit Disease” biology, 2003. Vol. 53 (3).P. 833-838. va G.N., Gins M.S. Detection and (J.M. Ogawa, E.I. Zehr, G.W. Bird, 23. Zhao Y., Wei W., Davis R.E., Identi fication of Phytoplasmas D.F. Richie, K. Uriu, J.K. Uyemo- Lee I.-M. Recent Advances in 16S from the Apple Proliferation Group to, eds.). APS Press, St. Paul, MN, rRNA Gene-based Phytoplasma on Fruit Crop // Russian Agri- USA, 128 pp., 1995. P. 57-58. Differentiation, Classification and cultural Sciences, 2018. Vol. 44. 16. Marcone C., Guerra L.J., Taxonomy // Phytoplasmas: Ge- P. 326-330. Uyemoto J.K. Phytoplasmal diseas- nomes, Plant Hosts and Vectors 8. Bertaccini A., Duduk B., Pal- es of peach and associated phyto- (eds P.G. Weintraub and P. Jones). trinieri S., Contaldo N. Phytoplas- plasma taxa // Journal of Plant Pa- CABI, 2010. P. 64-92.

22 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА UDC 632.911.2:632.913.1 PARTICULARLY DANGEROUS PATHOGENS OF CANDIDATUS PHYTOPLASMA SPP. GENUS FOR STONE FRUIT CROPS G.N. Bondarenko, Senior Researcher, Head of the Laboratory and Testing Center of FGBU “VNIIKR” I.G. Bashkirova, Agronomist of the GMO Analysis Laboratory of the Laboratory and Testing Center of FGBU “VNIIKR”

Abstract. The article describes America and some Asian coun- In order to apply certain diag- particularly dangerous phytoplas- tries is possible, where dangerous nostic methods, it is necessary ma species which are pathogens of organisms such as the X-disease to understand the taxonomic po- stone fruit crops diseases. These of peach and witches’ broom Ca. sition of the pathogens of stone include the apricot chlorotic leaf- Phyto plasma pruni. Penetration of fruit crops. Phytoplasmas belong roll phytoplasma (Candidatus Phy- the phytoplasmas under research to the kingdom of Bacteria, type toplasma prunorum), the peach in a latent state with imported Firmicutes, class Mollicutes, order X-disease phytoplasma (Ca. Phy- propagative material is possible Acholeplasmatales, family Achole- toplasma pruni) and the almond because of their lack of regula- plasmataceae, genus Candidatus witches’ broom phytoplasma (Ca. tory status. In this regard, paper Phytoplasma. Phytoplasma phoenicium), which focuses on the geographical dis- Phytoplasma causing the chlo- should be taken into account with tribution, host plants and univer- rotic leafroll of apricot – Ca. Phy- regard to their penetration and sal methods of diagnostics of Ca. toplasma prunorum (Seemüller spread capabilities. The paper pre- Phytoplasma. and Schneider), belongs to the sents data on geographical distribution, host plants and universal Fig. 5. Typical symptoms of the X-disease on peach (Marcone et al., 2014) methods of phytopathogen diagnos- Рис. 5. Типичные симптомы X-болезни на персике (Marcone et al., 2014) tics. Keywords. Phytoplasma, stone fruit crops, fruit plantations, phytosanitary control, propagative material.

Over the past three years, Russia has seen both a decline and an increase in the production of stone fruit crops (plums, sour cherries, cherries, apricots, peaches, etc.) in farms of all categories. In order to obtain a larger volume of products, a program of development and expansion of fruit plantations has been arranged. It should be noted that domestic nurseries and mother plantations are not able to cope with the planned volumes of agricultural producers (Bash- kirova et al., 2018). As a rule, the propagative material comes from the countries of Europe, where the chlorotic leafroll of apricot (Can- didatus Phytoplasma prunorum) is widely present. Considering other markets, the import from North

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 23 included in the A2 List (locally present) present) (locally List A2 the in included of the EU directive and since 1999 it is is it 1999 since and EUdirective the of officially removed from the A1 List of of List A1 the from removed officially EPPO. middle bark layer (Fig. 2), which Fruits are irregularly shaped and brooms is possible (Kirkpatrick et becomes darker and increases the fall off quickly (Thébaud et al., al., 1995; Davis et al., 2013; Mar- visible area of the lesion when 2009; Bashkirova et al., 2018). cone et al., 2014). the temperature drops further. In Special signs of Ca. Ph. pruni The most common symptoms of spring, leaves on infected trees are lacerated chlorotic, cross- Ca. Ph. phoenicium infection are are blossoming before the crack hatched leaves (Fig. 4). Leaves are the proliferation of shoots (Fig. of generative buds. Leaf plates small, with red spots, sometimes 6, 7) with the witchе’s brooms become twisted along the middle with enlarged stipulae. Fruits have (mainly on almonds), perpendicu- vein of the leaf (Fig. 3), irregular a soft watery structure and a short lar development of secondary intercostal chlorosis is observed. pedicel. The formation of witchе’s buds on branches with small yellowish leaves. Early flowering can Fig. 7. Symptoms of the witchеs’ broom on the almond tree be observed, followed by earlier caused by Ca. Ph. phoenicium (photo by Piero A. Bianco and M.M. Lova) development of all buds of infect- Рис. 7. Симптомы «ведьминых метел» на миндальном дереве, ed branches and sprouting. The вызванные Ca. Ph. phoenicium (фото Piero A. Bianco и M.M. Lova) fruits of the infected trees become deformed (Quaglino et al., 2015). Phytoplasmosis control means and methods to limit distribution include the use of healthy propagative material and insect vector control. Such preventive measures will limit the spread of phytopathogenic infections. A precise description of symptoms provides a reliable basis for finding infected trees during a relevant period to inspect gardens. Effective disease control depends primarily on early and accurate identification of the disease and its cause- and-effect connections (Green et al., 1999; Arismendi, 2010). Various biological and in- strumental methods are used to study, diagnose and identify species and phytoplasmas: visual diag nostics, vaccination of infected plants with indicator plants, microscopy, immunoassay, molecular biology methods (PCR, RFLP-analysis, etc.). To date, VNIIKR specialists can use universal primers P1/P7 with subsequent RFLP analysis and sequencing (Deng and Hiruki, 1991; Brzin et al., 2003). The last of the above mentioned molecular and genetic methods, if necessary, will allow to analyze the imported propagative material and to monitor the existing plants of stone fruit crops in the territory of the Russian Federation. It should be noted that in Russia research was carried out to identify the phytoplasma of the chlorotic leafroll of peach, but the literature data did not confirm a positive result.

References 1. Bashkirova I.G., Matyashova G.N., Zavriev S.K., Ryazantsev D.Y.,

26 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Shneyder Y.A. Testing systems for Detection of apple proliferation European stone fruit yellows: an the detection of apple and pear by ELISA and PCR in growing overview // Journal of Plant phytoplasmas // Plant protection and dormant apple trees // Plant Pathology, 2010. Vol. 92 (1). and quarantine, 2018. Issue 7. Diseases Prot., 2003. Vol. 110. P. 19-34. P. 40-41. P. 476-483. 18. Quaglino F., Kube M., Jawhari M., 2. European and Mediterranean 10. Davis R.E., Zhao Y., Dal- Abou-Jawdah Y., Siewert C., Plant Protection Organization: ly E.L., Lee I-M., Jomantiene R., Choueiri E., Sobh H., Casati P., Official site [Electronic resource] / Douglas S.M. ‘Candidatus Phyto- Tedeschi R., Lova M.M., Alma A., European and Mediterranean plasma pruni’, a novel taxon as- Bianco P.A. ‘Candidatus Phytoplas- Plant Protection Organization, sociated with X-disease of stone ma phoenicium’ asso ciated with 2018. Access mode: https://www. fruits, Prunus spp.: multilocus almond witches’ broom disease: eppo.int (access date: 21.09.2018). characterization based on 16S from draft genome to genetic di- 3. Centre for Agriculture and rRNA, secY, and ribosomal pro- versity among strain populations // Bioscience International [Elec- tein genes // International Jour- BMC Microbiology, 2015. Vol. 15. tronic resource] / CABI, 2018. Ac- nal of Systematic and Evolutiona- P. 148. cess mode: https://www.cabi.org ry Microbiology, 2013. Vol. 63. 19. Tedeschi R., Picciau L., Quagli- (access date: 18.10.2018). P. 766-776. no F., Abou‐Jawdah Y., Lova M.M., 4. Abou-Jawdah Y., Abou-Fakhr E., 11. Deng S., Hiruki C. Amplifi- Jawhari M., Casati P., Cominetti A., Sobn H., Lova M.M., Vercesi A., cation of 16S rRNA genes from cul- Choueiri E., Abdul-Nour H., Bian- Bianco P.A. Almond witches’ turable and nonculturable molli- co P.A., Alma A. A cixiid survey for broom phytoplasma (‘Candidatus cutes // Microbiological Methods, natural potential vectors of ‘Can- Phytoplasma phoenicium’): a real 1991. Vol. 14. P. 53-61. didatus Phytoplasma phoenicium’ threat to almond, peach and nec- 12. Green M.J., Thompson D.A., in Lebanon and preliminary trans- tarine // 21st International Con- MacKenzie D.J. East and effi- mission trials // Annals of Ap- ference on Virus and other Graft cient DNA extraction from woody plied Biology, 2015. Vol. 166 (3). Transmissible Diseases of Fruit plants for the detection of phyto- P. 372-388. Crops. Julius-Kühn-Archive, 2010. plasmas by polymerase chain reac- 20. Thébaud G., Yvon M., Alary R., Vol. 427. P. 418-420. tion // Plant Disease, 1999. Vol. 83. Sauvion N., and Labonne G. Effi- 5. Abou-Jawdah Y., Sobh H., Ak- P. 482-485. cient transmission of ‘Candidatus kary M. Blackwell Publishing Ltd 13. Hodgetts J., Dickinson M. Phytoplasma prunorum’ is delayed First report of Almond witches’ Phytoplasma Phylogeny and De- by eight months due to a long la- broom phytoplasma (‘Candidatus tection Based on Genes other than tency in its host-alternating vector Phytoplasma phoenicium’) caus- 16S rRNA // Phytoplasmas: Ge- // Phytopathology, 2009. Vol. 99. ing a severe disease on nectarine nomes, Plant Hosts and Vectors P. 265-273. and peach trees in Lebanon // Bul- (eds P.G. Weintraub and P. Jones). 21. Varga K., Kölber M., Martini letin OEPP/EPPO Bulletin, 2009. CABI, 2010. P. 93-113. M., Pondrelli M., Ember I., Tökes G., Vol. 39. P. 94-98. 14. IRPCM Phytoplasma/Spiro- Lazar J., Mikulas J., Szendrey G., 6. Arismendi N., Andrade N., plasma Working Team “Phyto- Schweigert A., Bertaccini A. . Phyto- Riegel R., Carrillo R. Presence plasma Taxonomy Group ‘Candi- plasma identication in Hungarian of a phytoplasma associated with datus Phytoplasma’, a taxon for the grapevines by two nested-PCR sys- witches’ broom diseases in Ugni wall-less, non-helical prokaryotes tems // Proceedings of the 13th molinae Turcz. and Gaultheria that colonize plant phloem and Meeting of ICVG. Adelaide, 2000. phillyreifolia (Pers.) // Sleumer insects” // International Jour- P. 113-115. determined by DAPI, PCR and nal of Systematic and Evolutio- 22. Verdin E., Salar P., Danet J.-L., DNA sequencing, 2010. Vol. 70 nary Microbiology, 2004. Vol. 54. Choueiri E., Jreijiri F., Zammer S.E., (1). P. 26-33. P. 1243-1255. Gélie B., Bové J.M., Garnier M. 7. Bashkirova I.G., Matya- 15. Kirkpatrick B.C., Uyemoto ‘Candidatus Phytoplasma phoeni- shova G.N., Gins M.S. Detection J.K., Purcell A.H. X-disease // “Com- cium’ sp. nov., a novel phytoplasma and Identification of Phytoplas- pendium of Stone Fruit Disease” associated with an emerging lethal mas from the Apple Proliferation (J.M. Ogawa, E.I. Zehr, G.W. Bird, disease of almond trees in Leba- Group on Fruit Crop // Russian Ag- D.F. Richie, K. Uriu, J.K. Uyemoto, non and Iran // International Jour- ricultural Sciences, 2018. Vol. 44. eds.). APS Press, St. Paul, MN, USA, nal of Systematic and Evolution- P. 326-330. 128 pp., 1995. P. 57-58. ary Microbiology, 2003. Vol. 53 8. Bertaccini A., Duduk B., 16. Marcone C., Guerra L.J., (3). P. 833-838. Paltrinieri S., Contaldo N. Uyemoto J.K. Phytoplasmal di- 23. Zhao Y., Wei W., Davis R.E., Phytoplasmas and Phytoplas- seases of peach and associated Lee I.-M. Recent Advances in 16S ma Dise ases a Severe Threat to phytoplasma taxa // Journal of rRNA Gene-based Phytoplasma Agri culture // American Journal Plant Pathology, 2014. Vol. 96 (1). Differentiation, Classification and of Plant Sciences, 2014. Vol. 5. P. 15-28. Taxonomy // Phytoplasmas: Ge- № 12. P. 1763-1788. 17. Marcone C., Jarausch B., Ja- nomes, Plant Hosts and Vectors 9. Brzin J., Ermacora P., Osler R., rausch W. Candidatus Phytoplas- (eds P.G. Weintraub and P. Jones). Loi N., Ravnikar M., Petrovic N. ma prunorum, the causal agent of CABI, 2010. P. 64-92.

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 27 УДК 632.3.01/.08 БАКТЕРИОЗЫ ВОЗБУДИТЕЛИ БОЛЕЗНЕЙ ЗЕРНОБОБОВЫХ КУЛЬТУР И РАЗРАБОТКА МЕТОДОВ ИХ ДИАГНОСТИКИ Е.В. Каримова, старший научный сотрудник НМОФ ФГБУ «ВНИИКР» И.М. Игнатьева, научный сотрудник лаборатории бактериологии ИЛЦ ФГБУ «ВНИИКР» Аннотация. Российская Федерация и анализ социальной обстановки на Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola экспортирует зерно зернобобовых территории страны определяет необ- (рис. 2) и бактериального ожога фасо- культур в страны, в фитосанитар- ходимость разработки современных ли Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli ных требованиях которых часто методов диагностики бактериозов. (рис. 3). прописано обязательное отсут- Контроль распространения вред- Данные патогены вызывают сни- ствие возбудителей бактериаль- ных организмов играет важную роль жение урожая и качества зерна зер- ных болезней зернобобовых культур. в охране сельского хозяйства и окру- нобобовых культур и являются очень В данной статье кратко рассмотрены жающей среды. Актуальность данной важными с точки зрения экономики. биолого-морфологические особенности темы в том, что РФ экспортирует зерно Контроль бактериозов возможен при возбудителей основных бактериаль- зернобобовых в разные страны, ко- использовании свободных от возбуди- ных болезней зернобобовых культур, торые предъявляют фитосанитарные телей болезней семян и соблюдении се- растения-хозяева, симптомы, ущерб и требования, в частности, отсутствие вооборота. Эффективные химические методы диагностики возбудителей. возбудителей бактериальных болезней средства защиты в настоящее время Ключевые слова. Curtobacterium в зерне зернобобовых на семенные отсутствуют. Интродукция фитопато- accumfaciens pv. accumfaciens, Pseudo- цели. генных бактерий в новые регионы мо- monas savastanoi pv. phaseolicola, Xantho- Основные бактериальные болезни жет произойти с семенным материа- monas axonopodis pv. phaseoli, зерно- зернобобовых вызывают возбудите- лом (главным образом фасоли и сои), бобовые культуры, бактерия, возбуди- ли ржаво-бурой пятнистости листьев зараженным бактериальной инфекци- тель болезни. фасоли Curtobacterium accumfaciens ей в латентном состоянии, что может pv. accumfaciens (рис. 1), угловатой вызвать серьезные проблемы при про- В последние годы внимание к зер- бактериальной пятнистости фасоли изводстве зернобобовых культур. нобобовым культурам возросло в связи с необходимостью ликвидации Рис. 1. Симптомы C. accumfaciens pv. accumfaciens (фото Harveson et al., 2015) белкового дефицита в питании и корм- Fig. 1. Symptoms of C. accumfaciens pv. accumfaciens (photo by Harveson et al., 2015) лении сельскохозяйственных живот- ных. Зерно зернобобовых культур – высокопитательный и концентриро- ванный продукт и корм для сельско- хозяйственных животных. Основная часть запасаемого зернобобовыми белка создается за счет азота воздуха в результате симбиотической деятельно- сти клубеньковых бактерий. Необходимость всестороннего ана- лиза возбудителей бактериальных бо- лезней зернобобовых культур, вклю- чающего в себя анализ вероятности их проникновения на территорию Российской Федерации с различными видами продукции, анализ вероят- ности акклиматизации в конкретных регионах России с учетом специфики абиотических и биотических факто- ров, анализ вероятности разносторон- него влияния на экономику России, анализ состояния окружающей среды

28 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Рис. 2. Симптомы P. savastanoi pv. phaseolicola (фото К. Науманна, Ашерслебен, Германия) Fig. 2. Symptoms of P. savastanoi pv. phaseolicola (photo by K. Naumann, Ashersleben, Germany)

Изучаемые бактериозы имеют ются началом XX в. Возбудитель что нематода Meloidogyne incognita мо- большое фитосанитарное значение C. accumfaciens pv. accumfaciens был жет способствовать проникновению для южной зоны Евразийского эконо- выявлен, но не акклиматизировался возбудителя в растение через механи- мического союза и зон культивирова- в Греции и Венгрии. Бактериоз распро- ческие повреждения. Заболевание уси- ния Phasoleus spp. странен в странах Северной и Южной ливается любым фактором, повреж- Возбудитель ржаво-бурой пятни- Америки, Европы, в некоторых стра- дающим растение (люди, животные, стости листьев фасоли C. accumfa- нах Африки. На территории Россий- сельхозоборудование и др.) (Harveson ciens pv. accumfaciens был включен ской Федерации был зафиксирован et al., 2011; Schwartz et al., 2005). Воз- Европейской и Средиземноморской в начале 1980-х гг. на сое на территории будитель проникает в растение через организацией по карантину и защите Дальнего Востока и некоторых южных раны на корнях и наземных частях. растений (ЕОКЗР) в Список А2 каран- регионах (Никитина, Щелко, 1982). Бактерия C. accumfaciens pv. тинных объектов (https://www.eppo. Для установления конкретной зоны accumfaciens заражает растение в от- int). Карибская комиссия по карантину распространения возбудителя на тер- сутствие капельно-жидкой влаги, про- и защите растений и Межафриканский ритории Российской Федерации мони- никновение возбудителя в растение совет по фитосанитарии также отно- торинг не проводился. через устьица не наблюдалось. Попа- сят возбудителя ржаво-бурой пятни- Главный способ распростране- дая в растение, бактерия достаточно стости листьев фасоли к карантинным ния бактерии C. accumfaciens pv. быстро заполняет сосудистую ткань. видам. accumfaciens на новые территории – Бактерия на мясопептонном агаре Основными и наиболее воспри- семена растений рода Phaseolus spp., образует желтые, круглые, гладкие, имчивыми к ржаво-бурой пятнисто- сои, гороха и др. плоские или слегка выпуклые коло- сти листьев фасоли (бактериальному Возбудитель ржаво-бурой пятнисто- нии, блестящие, полупрозрачные, заболеванию сои) хозяевами явля- сти листьев фасоли сохраняется как с ровными краями. При инкубации ются растения рода Phaseolus spp., на поверхности, так и внутри семян, на средах NBY и YPGA в темноте при в особенности фасоль обыкновен- оставаясь жизнеспособным при чрез- 23 ºС через 2-3 дня появляются круг- ная Phaseolus vulgaris, фасоль огнен- вычайно неблагоприятных условиях лые колонии размером 2-4 мм, гладкие, но-красная P. coccineus, фасоль луно- окружающей среды. Доказано, что с целыми краями, чаще выпуклые и видная P. lunatus, горох обыкновенный бактериоз сохраняет свою жизнеспо- полупрозрачные, реже плоские и полу- Pisum sativum, вигна угловатая (адзу- собность при хранении зараженных прозрачные (рис. 4). Окраска колоний ки) Vigna angularis, маш (бобы мунг) семян в лабораторных условиях в тече- варьирует в зависимости от темпера- V. radiata, черный маш (урд) V. mungo, ние 24 лет (https://www.eppo.int). туры и уровня рН от сливочно-жел- коровий горох V. unguiculata, соя Возбудитель C. accumfaciens pv. той до ярко-желтой или оранжевой, со культурная Glycine max, лобия Lablab accumfaciens способен сохраняться временем темнеет. purpureus. Заболевание отмечалось на в почве в неблагоприятный для бак- Молодые растения фасоли (высотой растениях рода Ipomoea, в частности терий зимний период по меньшей 5-8 см) при заражении возбудителем Ipomoea violacea, также ложная мари- мере в течение двух лет при севообо- C. accumfaciens pv. accumfaciens поги- хуана Zornia. роте «бобовые культуры – пшеница». бают. При заражении в более поздние Большинство культурных и диких Возбудитель бактериоза сохраняется фазы роста растение может выжить форм вышеперечисленных растений в растительных остатках и сорной рас- и сформировать зрелые семена. За- широко распространено на террито- тительности. болевание характеризуется потерей рии России. Информация о переносчиках бакте- тургора, увяданием листьев или их Первые упоминания о заболева- рии C. accumfaciens pv. accumfaciens частей при высокой температуре и нии, поражающем фасоль, датиру- отсутствует, однако имеются сведения, восстановлением состояния при сни-

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 29 жении температуры в вечерние часы. проводят обследования (Игнатьева, культуры предполагаемой бактерии В результате закупоривания сосудов Каримова, 2018). Однако по симпто- C. accumfaciens pv. accumfaciens. До- прекращается передвижение воды и мам ржаво-бурую пятнистость ли- ступны коммерческие антисыворот- питательных веществ к органам рас- стьев фасоли можно спутать с другими ки (например, Florilab, Neogen-Adgen, тения, листья становятся коричневы- бактериальными болезнями бобовых. Plant Research International). Для про- ми и опадают. Кроме того, возможно скрытое зара- ведения ИФ используют бактери- На бобах фасоли симптомы более жение растений. альную суспензию 106 КОЕ/мл, что заметны (рис. 5). При визуально здо- Для выявления и подтверждения описано в стандарте ЕОКЗР РМ 7/97 ровом виде семян они все могут быть бактериальной инфекции проводят (https://www.eppo.int). латентно инфицированы. На молодых выделение бактерий в чистую культуру Протоколы для проведения анализа бобах иногда появляются водянистые (рис. 6.1, 6.2) и их лабораторное опре- с помощью ПЦР, разработанные Tegli пятна, которые становятся впослед- деление; используют биохимические et al. (2002) и Guimaraes et al. (2001), ствии желтовато-зелеными. На зрелых тесты, современные методы серологи- описаны в диагностическом протоколе бобах повреждения более заметны: ческой и молекулярной диагностики, ЕОКЗР РМ 7/102 (https://www.eppo.int). пораженные бобы становятся оливко- такие как иммунофлуоресцентный ме- Метод ВОХ-ПЦР описан в стандарте во-зеленого цвета, в то время как здо- тод (ИФ), метод полимеразной цепной ЕОКЗР РМ 7/100 (https://www.eppo. ровые остаются желтыми. При систем- реакции (ПЦР), иммуноферментный int). Если необходимо подтверждение ном заражении семена белосемянных анализ (ИФА) и другие. и проверка патогенности идентифици- сортов фасоли становятся ярко-жел- Иммунофлуоресцентный ана- рованной бактерии, проводят тесты на тыми, у сортов с окрашенными семена- лиз может использоваться для под- патогенность на семенах и рассаде рас- ми изменение окраски менее заметно. тверждения идентичности чистой тений семейства бобовых. Можно заметить маленькое пятнышко желтой слизи возле рубчика, форма се- Рис. 3. Симптомы X. axonopodis pv. phaseoli (фото Говард Ф. Шварц, bugwood.org) мян также может быть изменена, они Fig. 3. Symptoms of X. axonopodis pv. phaseoli (photo by Howard F. Schwartz, bugwood.org) сморщиваются. Молодые ростки фасоли, заражен- ные C. accumfaciens pv. accumfaciens, увядают днем и восстанавливают тур- гор вечером. На нижних и позднее на верхних листьях растения появляется некроз. Некроз не проявляется при на- личии водянистых пятен. Взрослые растения не увядают, в засушливых условиях на листьях образуются маленькие хлоротические пятна. Некроз на шве бобов может привести к образованию незаполнен- ных семян нетипичной формы. Согласно имеющейся информа- ции, возбудитель C. accumfaciens pv. accumfaciens относится к важ- ным заболеваниям бобовых культур в США, в некоторые годы приводив- шим к полной гибели урожая. В 1947 г. в Айдахо были отмечены серьезные вспышки заболевания, потери урожая превысили 60%. Имеются сведения о внезап- ных вспышках заболевания в США в штатах Небраска и Северная Дакота в период 2003-2006 гг. (Harveson et al., 2006, 2011). В регионе ЕОКЗР возбудитель C. accumfaciens pv. accumfaciens имеет существенное значение, в особенно- сти на бобовых растениях в Турции. Эффективный контроль бактериоза возможен при использовании свобод- ных от возбудителя семян и соблюде- нии севооборота. Для обнаружения заболевания в течение вегетационного периода

30 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Бактериальный ожог фасоли Семена являются основным путем терным отличительным признаком X. axonopodis pv. phaseoli впервые распространения возбудителя при бактериального ожога фасоли. был описан в 1893 г., возбудитель заражении новых регионов и играют На бобах инфекция проявляется заболевания был выделен в чистую большую роль в сохранении жизне- на любом участке в виде малень- культуру и идентифицирован в 1897 г. способности X. axonopodis pv. phaseoli. ких водянистых пятен, которые Смитом (Zaumeyer, 1930). Заражение цветочных почек и моло- постепенно увеличиваются. Иногда X. axonopodis pv. phaseoli можно раз- дых стручков может привести к пере- пятна окружены четко выраженной делить на три группы. X. axonopodis носу X. axonopodis pv. phaseoli через со- узкой красно-коричневой или кир- pv. phaseoli var. fuscans выделяет судистую систему к формирующимся пично-красной каймой. диффузный коричневый пигмент в семенам, что вызывает внутреннюю Бактериальный ожог фасоли чистой культуре, выделение кото- инфекцию (Aggour et al., 1989). Расте- X. axo nopodis pv. phaseoli вызывает рого можно увеличить тирозином ния, выросшие из зараженных семян, значительные потери урожая зерно- (Goodwin and Sopher, 1994). Данный имеют повреждения семядолей, узлов бобовых в странах умеренного, тро- пигмент является результатом секре- и первичных листьев. пического и субтропического кли- ции и окисления гомогенистической Возбудитель X. axonopodis pv. phaseoli мата. Широкая распространенность кислоты в катаболическом пути ти- развивается на поверхности расте- возбудителя, способность вызы- розина. X. axonopodis pv. phaseoli var. ний-хозяев и других растений (Cafati, вать значительные потери урожая, indica выделяет диффузный корич- Saettler, 1980). Рост возбудителя на трудности, связанные с борьбой, невый пигмент в чистой культуре, поверхности растений-хозяев способ- распространение семенами и др. выделение которого нельзя увели- ствует развитию популяции, способ- факторы способствовали тому, что чить тирозином (Bradbury, 1986). ной при благоприятных условиях вы- X. axonopodis pv. phaseoli считается X. axonopodis pv. phaseoli не выделяет зывать заражение растений. Бактерии одним из наиболее важных патоге- коричневого пигмента в культуре. проникают в растения через устьица нов зернобобовых культур во всем Данный бактериоз поражает мно- или поранения, затем перемещаются мире (Irigoyen, Garbagnoli, 1997). гие виды Phaseolus: горох (Pisum в межклеточные пространства, при- Большие потери урожая наблю- sativum), люпин многолистный водя к постепенному растворению даются при раннем заражении (Lupinus polyphyllus), гиацинто- сердцевины стебля. Иногда бактерия растений. Это связано с преждев- вые бобы (Lab lab purpureus). Расы из паренхимной ткани проникает ременной дефолиацией, которая X. axonopodis pv. phaseoli были за- в проводящую систему растения, где уменьшает доступную область фо- регистрированы на вигне зонтич- продолжает свое развитие в форме тосинтеза, препятствует трансло- ной (Vigna umbellata, P. calcaratus), трахеобактериоза, вызывая систем- кации и снижает количество и раз- вигне борцелистной (Vigna aconiti- ную инфекцию. мер семян. В результате поражения folia), маше, или бобах мунг Признаки болезни проявляются на семян и бобов снижается качество (V. radiata, P. aureus), урде, или чер- всех надземных органах растения. продукции. ном маше (Vigna mungo) (Bradbury, При заражении молодого боба се- На степень вредоносности так- 1986). Opio et al. (1996) обнаружили мена сгнивают, сморщиваются или же влияет фаза роста культуры восемь рас X. axonopodis pv. phaseoli деформируются. При проникновении в момент заражения бактерио- на P. acuti folius. бактерий через ножку на рубчике се- зом: чем раньше произошло зара- Возбудитель бактериального ожо- мени можно наблюдать изменение жение, тем больших потерь уро- га фасоли X. axonopodis pv. phaseoli окраски, появление желтоватых или жая можно ожидать. распространен по всему миру – коричневых пятен на семенной обо- Бактерия X. axonopodis pv. phaseoli – в большинстве районов, где выращи- лочке. Иногда заражение семян может грамотрицательная аэробная под- вают зернобобовые культуры, за ис- быть бессимптомным. вижная палочка размером 0,4-0,9 х ключением засушливых тропических При посеве семян, зараженных воз- 0,6-2,6 мкм с одним полярным жгу- районов. будителем бактериального ожога фа- тиком. В культуре на сложной пи- О возбудителе заболевания сооб- соли X. axonopodis pv. phaseoli, часть тательной среде или среде, содер- щалось из некоторых штатов США, проростков погибает. Всходы имеют жащей тирозин, X. axonopodis pv. многих стран Северной, Централь- частично или полностью разрушен- phaseoli var. fuscans выделяет диф- ной и Латинской Америки, Азии и ную точку роста, поэтому семядоли фузный коричневый пигмент. тихоокеанских островов. остаются склеенными и растение по- Для обнаружения заболевания Возбудитель бактериального ожога гибает. Данный симптом известен как в течение вегетационного периода фасоли X. axonopodis pv. phaseoli яв- «змеиная головка». проводят обследования. Однако по ляется карантинным вредным орга- При заражении в поле на настоя- симптомам бактериальный ожог низмом и входит в Список А2 ЕОКЗР, щих листьях образуются точковид- фасоли можно спутать с другими встречается локально или широко ные, разрастающиеся до крупных бактериальными заболеваниями в ряде стран, производящих зерно- водянистые пятна красно-бурого бобовых. Кроме того, возможно бобовые культуры. цвета с узким желтым ободком. По- скрытое заражение растений. X. axonopodis pv. phaseoli сохраняет- вреждения темнеют, листья быстро Для выявления и подтверждения ся на поверхности и внутри семян, на некротизируются и опадают. Рас- бактериальной инфекции прово- зараженных растительных остатках, тения, пораженные возбудителем дится выделение бактерий в чистую поверхности растений-хозяев и дру- X. axonopodis pv. phaseoli, выглядят культуру и их лабораторное опреде- гих растений (Saettler, 1991). обожженными, что является харак- ление (Игнатьева, Каримова, 2018).

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 31 Для выявления и идентификации впоследствии некротизируются. Наи- прямого анализа бактериальных X. axonopodis pv. phaseoli используют более характерный признак бактерио- смывов и идентификации суспензий биохимические тесты, современные за фасоли – формирование широкого чистых культур. методы серологической и молеку- (1-3 см) бледно-зеленого ореола во- Исследование, основанное на ана- лярной диагностики, такие как им- круг пятна, появляющегося в резуль- лизе ПЦР, способствует проведению мунофлуоресцентный метод (ИФ), тате выделения патогеном токсинов. быстрой и достоверной диагностики иммуноферментный анализ (ИФА), Ореол всегда предшествует появле- Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola. метод полимеразной цепной реакции нию бактериальной пятнистости. На Сотрудники ФГБУ «ВНИИКР» (ПЦР) и другие. стеблях образуются продольные мас- разрабатывают современные высо- Реакцию непрямой иммунофлуорес- лянистые полосы с красно-бурой кай- кочувствительные методы выявле- ценции проводят с коммерческим на- мой, которые у молодых растений ча- ния и идентификации возбудителей бором фирмы Loewe (Германия). сто растрескиваются. На бобах обра- ржаво-бурой пятнистости листьев ИФА ((DAS)-ELISA) проводят зуется много мелких округлых пятен, фасоли Curtobacterium accumfaciens с помо щью коммерческих наборов, по периферии которых со временем pv. accumfaciens, угловатой бак- выпускаемых фирмами Loewe появляется бурая кайма. териальной пятнистости фасоли Biochemica GmbH (Германия), Семена недоразвитые, желтова- Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola ADGEN Phytodiagnostics, Neogen Eu- тые или кремовые, с низкой всхоже- и бактериального ожога фасоли rope Ltd. (Великобритания), согласно стью. На семенах могут появляться Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli, инструкциям производителей. характерные мелкие бесформенные что позволит проводить лаборатор- Бактерия Pseudomonas savastanoi язвочки, подобные повреждениям ную экспертизу подкарантинного pv. phaseolicola – возбудитель углова- насекомых. Из всех пораженных ча- материала при импорте его в РФ (Иг- той бактериальной пятнистости фасо- стей растения вытекает белый бакте- натьева, Каримова, 2018). При про- ли – является важным бактериальным риальный экссудат. ведении лабораторных валидацион- патогеном фасоли обыкновенной. Бактериальная инфекция сохраня- ных испытаний используют штаммы Основными и наиболее восприим- ется в семенах и пораженных расти- из бактериальной коллекции ФГБУ чивыми к Pseudomonas savastanoi pv. тельных остатках до их разложения. «ВНИИКР», насчитывающей более phaseolicola растениями-хозяевами яв- В почве погибает быстро. В расте- трехсот единиц (рис. 7.1, 7.2). ляются растения рода Phaseolus spp., ние может проникать через устьица Существенное влияние на достовер- в особенности фасоль обыкновенная и ранки. ность результатов диагностики ока- Phaseolus vulgaris. Импорт зерна бобовых на семен- зывает выбор праймеров и оптими- По данным EPPO Global Database, ные цели – основной путь распро- зация состава ПЦР-смеси. Различные возбудитель Pseudomonas savastanoi странения заболевания. Бактерии наборы для выделения ДНК харак- pv. phaseolicola включен в перечни ка- локализуются преимущественно теризуются определенным уровнем рантинных вредных организмов в та- между семенной кожурой и семя- чувствительности. Диагностические ких странах, как Бразилия, Парагвай, долями, а также на поверхности се- тест-системы различаются по степени Уругвай, Израиль и Бахрейн, а в Чили мян. В сильно пораженных семенах взаимодействия праймеров с реакци- объект включен в список ограниченно бактерии иногда обнаруживаются онной смесью. Для корректной работы распространенных карантинных объ- в тканях семядолей. диагностического набора необходимо ектов на территории государства. Было описано множество процедур проводить валидацию тест-системы Внешние признаки заболевания диагностики Pseudomonas savastanoi pv. для определения аналитической чув- подобны симптомам бактериального phaseolicola, но ни одна из них не явля- ствительности (рис. 8), аналитической ожога фасоли Xanthomonas axonopodis ется общепринятой. специфичности, селективности, по- pv. phaseoli и сильно варьируют в зави- Для выявления и подтверждения вторяемости и воспроизводимости. симости от условий среды. При посеве бактериальной инфекции проводится Важно также, чтобы тест-система была зараженных семян бактериоз развива- выделение бактерий в чистую куль- удобной для проведения стандартной ется системно. Иногда инфекционный туру и их лабораторное определение. лабораторной экспертизы, а приготов- процесс развивается очень быстро После 4-5 дней инкубации на среде ление реакционной смеси занимало и выражается в хлорозе и увядании МТ колонии Pseudomonas savastanoi как можно меньше времени. нижних листьев растений, приводя- pv. phaseolicola беловато-кремовые, щих к их преждевременному усыха- плоские, округлые, 4,5-5 мм в диаме- Литература нию. Листья пораженных растений тре. На среде MSP колонии округлые, 1. Aggour A.R., Coyne D.P., Vidaver A.K., желтоватые, верхние листья дефор- светло-желтые, куполообразные (ле- Eskridge K.M. Transmission of the мированные и мозаичные. Такие рас- ван-положительные), блестящие, про- common blight pathogen in bean seed // тения увядают в дневное время суток, дуцируют флуоресцирующий пигмент. Journal of the American Society of но независимо от этого могут продол- Перспективным направлением Horticultural Sciences, 1989. № 114. жить свое развитие и успевают образо- идентификации патогена является Р. 1002-1008. вать семена с зараженным зародышем. анализ на основе ПЦР. Быстрый и 2. Bradbury J.F. Guide to Plant Локальное развитие заболевания высокоспецифичный метод может Pathogenic Bacteria. Wallingford, UK: проявляется в виде единичных бурых быть использован как для выявле- CAB International, 1986. пятен на семядолях или многочис- ния возбудителя в экстракте семян 3. CABI Author(s) Sun Suli; Zhi Ye; Zhu ленных мелких (1-4 мм) маслянистых (с использованием предваритель- Zhen Dong; Jin Jing; Duan Can Xing; Wu пятен на настоящих листьях, которые ного выделения ДНК), так и для Xiao Fei; Wang Xiao Ming.

32 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА and Other Planting Material. APS Press, St. Paul, MN, 1989. 18. Schaad N.W. Laboratory Guide for Identication of Plant Pathogenic Bacteria. 2nd ed. APS Press, St. Paul, MN, 1988. 19. Schaad N.W., Cheong S.S., Tamaki S., Hatziloukas E., Panopoulos N.J. A combined biological and enzymatic amplication (BIO-PCR) technique to detect Pseudomonas syringae pv. phaseolicola in bean seed extracts // Phytopathology, 1995. № 85. Р. 243-248. 20. Schwartz H.F., Franc G.D., Han- s on L.E. and Harveson R.M. Disease management, 2005. P. 109-143 // Dry Bean Production and Pest Management. H.F. Schwartz, M.A. Brick, R.M. Harveson, and G.D. Franc, eds. Bull. No. 562A, Colo- rado State Univ., Fort Collins, CO. 21. Skjerve E., Olsvik O. Immuno- Рис. 4. Разная окраска колоний бактерий C. accumfaciens pv. accumfaciens magnetic separation of Salmonella from на среде NBY (фото Harveson et al., 2015) foods // International Journal of Food Fig. 4. Dierent colours of C. accumfaciens pv. accumfaciens colonies in NBY medium Microbiolology, 1991. № 14. Р. 11-18. (photo by Harveson et al., 2015) 22. Zaumeyer W.J. e bacterial blight 4. Cafati C.R., and Saettler A.W. Eect of [E.F. Smith] Dowson): detection, infec- of beans caused by Bacterium phaseoli // host on multiplication and distribution of tion and transmission through seeds. Fi- Technical Bulletin US Department of Ag- bean common blight bacteria // Phytopa- topatologia, 1997. riculture, 1930. № 186. USDA, Washing- thology, 1980. № 70. Р. 675-679. 11. Mohan S.K., Schaad N.W. An im- ton, USA. 5. EPPO A1 and A2 Lists of Pests proved Agar Plating Assay for Detect- 23. Бактериозы зернобобовых куль- Recommended for Regulation as Qua- ing Pseudomonas syringae pv. syringae тур и меры борьбы с ними / Методи- rantine Pests, PM 1/2 (27), European and P.s. pv. phaseolicola in Contaminat- ческие рекомендации. Ред. Павлюшин and Mediterranean Plant Protection ed Bean Seed // Phytopathology, 1987. В.А. СПб.: ВИЗР, 2006. 41 с. Organization, Paris, France, September № 77. Р. 139-1395. 24. Билай В.И., Гвоздяк Р.И., 2018. 12. Opio A.F., Allen D.J. and Teri J.M. Скрипаль И.Г., Краев В.Г., Эллан- 6. Gardan L., Bollet C., Ghorrah M.A., Pathogenic variation in Xanthomonas ская И.А., Зирка Т.И., Мурас В.А. Grimont F. & Grimont P.A.D. DNA campestris pv. phaseoli, the causal agent Микроорганизмы – возбудители relatedness among pathovar strains of of common bacterial blight in Phaseo- болезней растений. Ред. Билай В.И. Pseudomonas syringae subsp. savasta- lus Beans // Plant Pathology, 1996. Киев: Наукова думка, 1988. С. 254-255. noi Janse and proposal of Pseudomo- № 45. Р. 1126-1133. 25. Игнатьева И.М., Каримова Е.В. nas savastanoi sp. nov. // Internatio nal 13. Goodwin P.H., Sopher C.R. Brown Изучение бактериозов возбудителей Journal of Systematic Bacteriology, pigmentation of Xanthomonas campestris болезней зернобобовых культур и 1992. № 4. Р. 602-612. pv. phaseoli associated with homogentisic разработка методов их диагностики // 7. Harveson R.M., Schwartz H.F., acid // Canadian Journal of Microbiology, Современные подходы и методы Vidaver A.K., Lambrecht P.A., and 1994. № 40 (1). Р. 28-34. в защите растений, 2018. С. 193-197. Otto K. New outbreaks of bacterial 14. Prosen D., Hatziloukas E., 26. Станчева Й. Атлас болезней wilt of dry beans in Nebraska observed Schaad N.W., Panopoulas N.J. Specic сельскохозяйственных культур. Со- from field infections // Plant Dis., detection of Pseudomonas syringae pv. фия, 2003. Том 3. С. 100-102. 2006. № 90. Р. 681. phaseolicola DNA in bean seed by poly- 27. Кулакова Ю.Ю., Матяшова Г.Н., 8. Harveson R.M., Schwartz H.F., and merase chain reaction-based ampli- Каримова Е.Н., Комаров Д.А. Оцен- Urrea C.A. Bacterial wilt of dry beans cation of a phaseolotoxin gene region. ка фитосанитарных рисков вредных in western Nebraska. NebGuide G05- Phytopathology, 1993. № 83. Р. 965-70. // организмов, связанных с импорти- 1562-A (revised). Coop. Ext. Serv., 15. Publisher American Phytopatho- рованием, экспортированием и пе- Univ. of Nebr, Lincoln, 2011. logical Society (APS Press), St. Paul, ремещением зерна зернобобовых 9. International Rules for Seed Test- USA Citation Plant Disease, 2017, 101, 1. культур. М.: ФГБУ «ВНИИКР», 2017. ing. 7-023: Detection of Pseudomonas P. 95-102. С. 161-171, 229-239. savastаnoi pv. phaseolicola in Phaseo- 16. Saettler A.W. Common bacteri- 28. Никитина К.В., Щелко Л.Г. Труды lus vulgaris (bean) seed. Validated Seed al blight // Hall R., ed. Compendium of по прикладной ботанике, генетике и Health Testing Methods, 2018. Bean Diseases. St. Paul, USA: APS Press, селекции, 1982. № 71 (3). С. 86-88. 10. Irigoyen E.D. and Garbagno- 1991. Р. 29-30. 29. [Электронный ресурс]. https:// li C. Common bacteriosis in bean 17. Saettler A.W., Schaad N.W. and www.eppo.int (дата обращения (Xanthomonas campestris pv. phaseoli Roth D.A. Detection of Bacteria in Seed 05.09.2018).

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 33 UDC 632.3.01/.08 BACTERIAL DISEASE PATHOGENS OF GRAIN LEGUMES AND DEVELOPMENT OF METHODS FOR THEIR DIAGNOSTICS E.V. Karimova, Senior Researcher of the RMPD of FGBU “VNIIKR” I.M. Ignatyeva, Researcher of the Bacteriology Laboratory of the LTC of FGBU “VNIIKR”

Abstract. The Russian Federa- issue is relevant because the Russian (CPPC) and Inter-African Phy- tion exports grain legume products Federation exports seeds of grain le- tosanitary Council (IAPSC). to countries that have phytosanitary gumes to different countries that im- The main and most susceptible requirements for bacterial disease pose phytosanitary requirements, in host plants to the bacterial tan spot pathogen absence. The article brief- particular, the absence of pathogens of bean are plants of the Phaseo- ly considers the biological features of of bacterial diseases on leguminous lus spp. genus, especially bush bean bacterial pathogens of grain legumes, grain for seed purposes. Phaseolus vulgaris, runner bean host plants, symptoms, damage and The main bacterial diseases of P. coccineus, Lima bean P. lunatus, methods of diagnostics. grain legumes are caused by the bac- field pea Pisum sativum, adzuki bean Keywords. Curtobacterium flac- terial tan spot of bean Curtobacteri- Vigna angularis, mung bean V. radia- cumfaciens pv. flaccumfaciens, Pseu- um flaccumfaciens pv. flaccumfaciens ta, black gram V. mungo, black-eye domonas savastanoi pv. phaseolicola, (Fig. 1), the angular leaf spot of bean pea V. unguiculata, soybean Glycine Xanthomonas axonopodis pv. phaseo- Pseudomonas savastanoi pv. phaseo- max, Australian pea Lablab purpu- li, grain legumes, bacterium, disease licola (Fig. 2), and the bacterial reus. The disease has been reported pathogen. blight of bean Xanthomonas axono- on the plants of Ipomoea genus, in podis pv. phaseoli (Fig. 3). particular Ipomoea violacea, as well Seeds of grain legumes are a highly These pathogens reduce crop as Zornia. nutritious and concentrated product yields and quality of seeds of grain The majority of cultivated and and an important component of feed legumes which makes them eco- wild forms of the above-mentioned for farm animals. The high content nomically significant. Control of plants are widely spread in Russia. of protein in grain legumes is ob- bacterial diseases is possible when The first mention of bean disease tained by fixation of air nitrogen as using pathogen-free seeds and crop dates back to the early 20th century. a result of the symbiotic activity of rotation. Effective chemical protec- The pathogen C. flaccumfaciens pv. nodule bacteria. tion means against these pathogens flaccumfaciens has been identified The development of modern diag- are not currently available. The in- but has not established in Greece nostics methods is required due to troduction of these bacteria into and Hungary. Bacteriosis is common the need for a comprehensive analy- new regions may occur with infected in the Americas, Europe and some sis of bacterial pathogens of grain le- seed (mainly beans and soybeans), African countries. On the territo- gumes, including the analysis of the and the infection may be latent, ry of the Russian Federation it was probability of their introduction into which could cause serious problems reported in the beginning of 1980 the territory of the Russian Federa- in grain legume production. on the soybean in the Far East and tion with different types of products These bacterial diseases are of some southern regions (Nikitina, from various countries, the analysis phytosanitary significance for the Shchelko, 1982), which, however, of the probability of establishment countries of the Eurasian Economic requires confirmation by modern in specific regions of Russia, taking Union, first of all, for the cultivation methods. into account the specificity of abiotic area of Phasoleus spp. The main pathway of C. flaccumfa- and biotic factors, the analysis of the The pathogen C. flaccumfaciens ciens pv. flaccumfaciens to new terri- probability of a versatile impact on pv. flaccumfaciens was included tories is the seeds of beans, soybeans, the economy of Russia, the analysis into the European and Mediterra- peas and other plants. of the state of the environment and nean Plant Protection Organiza- The pathogen of the bacterial tan the analysis of the social situation in tion (EPPO) A2 List of quarantine spot of bean preserves both on the its territory. objects (https://www.eppo.int). The surface and inside the seeds, remain- Pest spread control plays an im- bacterial tan spot of bean has quar- ing viable under extremely adverse portant role in the protection of ag- antine status also for the Caribbe- environmental conditions. Bacterio- riculture and the environment. This an Plant Protection Commission sis has been shown to remain via-

34 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Fig. 5. Changes in the colour and shape of bean seeds infected by C. accumfaciens pv. accumfaciens (photo by Harveson et al., 2015) Рис. 5. Изменение цвета и формы семян фасоли при поражении C. accumfaciens pv. accumfaciens (фото Harveson et al., 2015) ble during storage of contaminated Once in the plant, the bacterium fills clogging of vessels, the movement of seeds for 24 years under laboratory the vascular tissue quickly enough. water and nutrients to the plant or- conditions (https://www.eppo.int). The bacterium forms yellow, gans stops, leaves become brown and The pathogen of C. flaccumfaciens round, smooth, flat or slightly con- fall off. pv. flaccumfaciens is able to persist vex colonies on the meat peptone The symptoms are more evident in the soil during unfavourable win- agar that are shiny, translucent, with on bean seeds (Fig. 5). If the seeds ter periods for at least two years in even edges. When incubated on NBY are visually healthy, they can all the case of “legume – wheat” crop and YPGA media in the dark at 23 °C, be infected with a latent infection. rotation. Bacteriosis is preserved in round colonies appear 2-3 days later, Watery spots sometimes appear on plant debris and weeds. 2-4 mm, smooth with whole edges, young seeds which subsequently There is no information about the more often convex and translucent, become yellowish-green, on mature vectors of C. flaccumfaciens pv. flac- less often flat and translucent (Fig. 4). plants damage is more evident – cumfaciens, but there is evidence that The colouration of colonies varies they become olive-green colour Meloidogyne incognita nematode depending on temperature and pH, while healthy seeds remain yel- may contribute to the penetration of from creamy yellow to bright yellow low. With systemic infestation, the the pathogen into the plant through or orange, which becomes darker seeds of white seed bean varieties wounds. The disease is exacerbated with time. become bright yellow; the change by any factor damaging the plant Young bean plants (5-8 cm high) in colour is less noticeable in va- (human, animal, agricultural equip- die overwhelmingly when infected rieties with coloured seeds. In the ment, etc.) (Harveson et al., 2011; with C. flaccumfaciens pv. flaccumfa- latter case, a small spot of yellow Schwartz et al., 2005). The pathogen ciens. When infected in later growth slime near the scar may be notice- penetrates the plant through dama- phases, the plant can survive and able, the shape of the seeds may ged roots and ground parts. form mature seeds. The disease is also be altered, wrinkled. C. flaccumfaciens pv. flaccumfa- characterized by the loss of turgor, The plants wilt during the day and ciens infects the plant in the absence wilting of leaves or their parts at regenerate the turgor in the evening, of drip-liquid water, while penetra- high temperature and restoration of when young bean sprouts become tion of the pathogen into the plant the condition at a low temperature infected with C. flaccumfaciens pv. through stomata was not observed. in the evening hours. As a result of flaccumfaciens. There is a necrosis

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 35 Protocols for PCR analysis developed by Tegli et al. (2002) and Gui- maraes et al. (2001) are described in EPPO PM 7/102 diagnostic protocol (https://www.eppo.int). BOX-PCR is described in EPPO RM 7/100 (https://www.eppo.int). If it is necessary to confirm and check the pathogenicity of the identified bacteria, pathogenicity tests are carried out on the seeds and seedlings of the Fabaceae family plants. The bacterial blight of bean caused by X. axonopodis pv. phaseoli was first described in 1893, and the pathogen was isolated in a pure culture and identified in 1897 by Smith (Zaumeyer, 1930). X. axonopodis pv. phaseoli is usually divided into three groups. X. axonopodis pv. phaseoli var. fuscans produces diffuse brown pigment in a pure culture, which is the result of the secretion and oxi dation of homogenistic acid, an intermediate in the catabolic pathway of tyrosine; and the pigment Fig. 6.1. Bacterial colonies of C. accumfaciens pv. accumfaciens on YPGA medium production can be increased with (photo by I.M. Ignatyeva, FGBU “VNIIKR”) tyrosine (Goodwin, Sopher, 1994). X. axonopodis pv. phaseoli var. in- Рис. 6.1. Колонии бактерий C. accumfaciens pv. accumfaciens dica produces a diuse brown pigment на среде YPGA (фото И.М. Игнатьевой, ФГБУ «ВНИИКР») in a pure culture, the secretion of which cannot be increased by tyrosine of the lower and later upper leaves of To detect the disease during the (Bradbury, 1986). X. axonopodis pv. the plant. Necrosis is not pronounced growing season, examinations are phaseoli does not produce brown pig- when there are watery spots. carried out (Ignatyeva, Karimova, ment in a culture. Adult plants do not wilt, small 2018). However, the symptoms of is bacteriosis affects many chlorotic spots are formed on leaves the bacterial tan spot of bean can be Phaseolus species, pea (Pisum sa- under dry conditions. Necrosis at confused with other legume bacteri- tivum), garden lupin (Lupinus poly- the bean seam may result in the for- al diseases. In addition, there may be phyllus), Australian pea (Lablab pur- mation of atypical, unfilled seeds. a hidden plant contamination. pureus). Races of X. axonopodis pv. According to available informa- To detect and confirm bacterial phaseoli were reported on rice bean tion, C. flaccumfaciens pv. flaccumfa- infection, bacteria are isolated in a (Vigna umbellata, P. calcaratus), ciens is one of the most important pure culture (Fig. 6.1, 6.2) and iden- mat bean (Vigna aconitifolia), green leguminous diseases in the United tified in laboratories; biochemical gram and mung bean (V. radiata, States, which in some years led to tests, modern methods of serolo- P. aureus), black gram (Vigna mungo) the complete loss of crops. In 1947, gical and molecular diagnostics such (Bradbury, 1986). Opio et al. (1996) in Idaho, there have been serious as immunofluorescence assay (IFA), identified eight races of X. axonopo- outbreaks of the disease, and yield polymerase chain reaction (PCR), dis pv. phaseoli on P. acutifolius. losses exceeded 60%. enzyme-linked immunosorbent as- The bacterial blight of bean There are reports about the sud- say (ELISA) and others are used. X. axonopodis pv. phaseoli is com- den outbreak of the disease in the Immunofluorescence assay (IFA) mon throughout the world, in most United States in Nebraska and North can be used to confirm the identity areas where grain legumes are Dakota in the period from 2003 to of the pure culture of the suspect- grown, except in arid tropical areas. 2006 (Harveson et al., 2006, 2011). ed bacterium C. flaccumfaciens pv. The pathogen has been report- In the EPPO region, the pathogen flaccumfaciens. Commercial an- ed from some states in the United of C. flaccumfaciens pv. flaccumfa- tisera are available (e.g. Florilab, States, many countries in North, ciens is significant, particularly in Neogen-Adgen, Plant Research In- Central and Latin America, Asia and legumes in Turkey. ternational). For IFA a bacterial the Pacific Islands. Effective bacteriosis control is suspension of 106 CFU/ml is used, The bacterial blight of bean possible with the use of bacteria-free as described in EPPO PM 7/97 X. axonopodis pv. phaseoli is a qua- seeds and crop rotation. (https://www.eppo.int). ran tine pest and is listed in the EPPO

36 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА List A2; it is found locally or widely der favourable conditions, cause an and the plant dies. This symptom is in a number of countries producing infestation of plants. The bacteria known as “snake head”. grain legumes in the EPPO region. penetrate the plants through the When the real leaves are contami- The bacterial blight of bean X. axo- stomach or wounds, then move to nated in the field punctures that nopodis pv. phaseoli is retained on intercellular spaces, leading to the grow to large, reddish-brown water and inside seeds, contaminated plant gradual dissolution of the stem core. spots with a narrow yellow rim from residues, surfaces of host plants and Sometimes some bacteria from pa- on them. Damaged places get darker, other plants (Saettler, 1991). renchymal tissue penetrates the con- leaves quickly necrotize and fall off. Seeds are the main pathway of ductive system of the plant, where it Plants affected by X. axonopodis the pathogen to new regions. In continues to develop in the form of pv. phaseoli look burned, which is addition, seeds play a major role tracheobacteriosis and causes sys- a characteristic feature of bacterial in the viability of X. axonopodis pv. temic infection. blight of bean. phaseoli. Disease symptoms appear on all Infection can occur in any part Infection of the flower buds and the above-ground organs of the of the seed in the form of small wa- young pods can lead to the transfer plant. tery spots, which gradually increase. of X. axonopodis pv. phaseoli through When a young bean is infected, Sometimes the spots are surrounded the vascular system to the formation the seeds tend to rot, wrinkle or de- by a distinctly narrow red-brown or of seeds, which causes an internal in- form. When bacteria penetrate the brick-red border. fection (Aggour et al., 1989). Plants funicle on the seed cicatrice, you The bacterial blight of bean grown from contaminated seeds can see a change in colour, yellowish X. axonopodis pv. phaseoli causes have damaged seed lobes, knots and or brownish spots on the seed coat. significant losses of grain le- primary leaves. Sometimes seed infection can be gumes in temperate, tropical and The pathogen X. axonopodis pv. asym ptomatic. subtropical climates. The high phaseoli develops on the surface of When sowing seeds infected with prevalence of the pathogen, its host plants and other plants (Ca- the bacterial blight of bean X. axo- ability to cause significant crop fati, Saettler, 1980). The growth of nopodis pv. phaseoli, some seedlings losses, difficulties in control, the pathogen on the surface of host die. Shoots have a partially or com- seed dispersal, etc. have made plants contributes to the develop- pletely destroyed growth point, so X. axonopodis pv. phaseoli one of ment of a population that can, un- the seed lobes remain glued together the most important pathogens for

Fig. 6.2. Bacterial colonies of C. accumfaciens pv. accumfaciens on YPGA medium, sowing with rearing (photo by I.M. Ignatyeva, FGBU “VNIIKR”) Рис. 6.2. Колонии бактерий C. accumfaciens pv. accumfaciens на среде YPGA, посев с разведениями (фото И.М. Игнатьевой, ФГБУ «ВНИИКР»)

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 37 grain legumes worldwide (Irigoyen, culture of complex or tyrosine-con- Indirect immunofluorescence Garbagnoli, 1997). taining nutrient media. reac tions are carried out with com- Large losses of crop yield are ob- To detect the disease during the mercial kits of Loewe company, served during an early infestation growing season, examinations are Germany. of plants. This is due to premature carried out. However, the symptoms IFA ((DAS)-ELISA) is carried out defoliation, which reduces the avail- of the bacterial blight of bean can be using commercial kits manufac- able area of photosynthesis, prevents confused with other bacterial legume tured by Loewe Biochemica GmbH translocation and reduces the num- diseases. In addition, there may be a (Germany), ADGEN Phytodiagnos- ber and size of seeds. As a result, the hidden plant contamination. tics, Neogen Europe Ltd. (The UK) quality of products is reduced. In order to detect and confirm according to the manufacturer’s in- The degree of harmfulness is also bacterial infection, bacteria are ex- structions. affected by the growth phase of the tracted into a clean culture and iden- Bacterium Pseudomonas savasta- culture at the time of infection with tified in the laboratory (Ignatyeva, noi pv. phaseolicola is an important bacteriosis: the earlier the infection Karimova, 2018). bacterial pathogen of bush beans occurred, the greater crop losses can To detect and identify X. axonopo- and causes angular leaf spot of bean. be expected. dis pv. phaseoli, they use bioche- The main and most susceptible Bacteria X. axonopodis pv. phaseoli mical tests, advanced serological host plants to Pseudomonas savasta- are gram-negative, aerobic, mobile and molecular diagnostic tech- noi pv. phaseolicola are plants of the rods with size 0.4-0.9 x 0.6-2.6 µm, niques such as immunofluorescence Phaseolus spp. genus, in particular, with one polar flagellum. X. axono- assay (IFA), immunoassay (ELISA), the bush bean Phaseolus vulgaris. podis pv. phaseoli var. fuscans pro- polymerase chain reaction (PCR) According to EPPO Global Data- duces a diffuse brown pigment in a and others. base, Pseudomonas savastanoi pv. phaseolicola is included in the list of Fig. 7.1. Collection of phytopathogenic bacteria of FGBU “VNIIKR”, placed for long-term quarantine pests in such countries as storage by cryopreservation method (-70 ºС) in the freezing chamber Brazil, Paraguay, Uruguay, Israel and (photo by I.M. Ignatyeva, FGBU “VNIIKR”) Bahrain, while in Chile the object is Рис. 7.1. Коллекция фитопатогенных бактерий ФГБУ «ВНИИКР», заложенных на included in the list of quarantine ob- длительное хранение методом криоконсервации (-70 ºС), jects with limited distribution. размещение в морозильной камере External symptoms of the disease (фото И.М. Игнатьевой, ФГБУ «ВНИИКР») are similar to those of the bacterial light of bean of Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli. Symptoms vary greatly depending on environmental conditions. When sowing infected seeds, bacteriosis develops systemati- cally. Sometimes the infectious process develops very quickly and is expressed in chlorosis and wilting of the lower leaves of plants, leading to premature drying. The leaves of the affected plants are yellowish, the upper leaves are deformed and mosaic. Such plants wilt during the daytime, but regardless of this can continue their development and have time to form seeds with an infected embryo. Local development of the disease is manifested in the form of single brown spots on the seeds or numerous, small (1-4 mm), oily spots on these leaves, which subsequently necrotize. The most characteristic feature of bean bacteriosis is the formation of a wide (1-3 cm) pale green halo around the stain, which appears as a result of the release of pathogenic toxins. The halo always precedes the appearance of bacterial spots. The stems form longitudinal oily stripes with red-brown edging, which are often cracked in young

38 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА plants. Many small, rounded spots are formed on the beans, on the periphery of which a brown border appears with time. Seeds are underdeveloped, yellowish or creamy, with low germina- tion. Seeds may have characteristic small, shapeless ulcers that look like insect damage. A white bacterial ex- udate flows out of all affected parts of the plant. Bacterial infection persists in the affected plant residues and seeds. In contaminated plant residues, the pathogen persists until decomposi- tion. It dies quickly in the soil. It can penetrate plants through the stomata and wounds. Import of legume grain for seed purposes is the main pathway of the disease. Bacteria are mainly located Fig. 7.2. Collection of phytopathogenic bacteria of FGBU “VNIIKR”, placed for long-term between the seed coat and the seed storage by the method of cryopreservation (-70 ºС) in a cryostand lobes, as well as on the surface of (photo by I.M. Ignatyeva, FGBU “VNIIKR”) the seeds. In severely affected seeds, Рис. 7.2. Коллекция фитопатогенных бактерий ФГБУ «ВНИИКР», заложенных на bacteria are sometimes found in the tissues of the seeds. длительное хранение методом криоконсервации (-70 ºС), размещение в криоштативе Many procedures have been de- (фото И.М. Игнатьевой, ФГБУ «ВНИИКР») scribed for the diagnostics of Pseu- domonas savastanoi pv. phaseolicola, MT medium incubation, Pseudo- (levan-positive), shiny, produce flu- but none of them are commonplace. monas savastanoi pv. phaseolicola orescent pigment. In order to detect and confirm bac- colonies are whitish-cream, flat, A promising direction of pathogen terial infection, bacteria are extract- rounded, 4.5-5 mm in diameter. On identification is PCR-based analy- ed into a clean culture and identified the MSP medium the colonies are s is. The rapid and highly specific in the laboratory. After 4-5 days of rounded, light yellow, dome-shaped method can be used to identify the pathogen in the seed extract (using Fig. 8. Results of determination of analytical sensitivity of test-systems for preliminary DNA extraction), as identication of phytopathogenic bacteria taking Curtobacterium accumfaciens well as for direct analysis of bacterial pv. acumfaciens as an example washing material and identification Рис. 8. Результаты определения аналитической чувствительности of pure crop suspensions. тест-систем для идентификации фитопатогенных бактерий на примере PCR-based analysis provides quick Curtobacterium accumfaciens pv. acumfaciens and reliable diagnostics of Pseudo- monas savastanoi pv. phaseolicola. Employees of research laboratories of FGBU “VNIIKR” carry out the development of modern highly sensitive methods of detection and identification of the bacterial tan spot of bean Curtobacterium flaccumfaciens pv. flaccumfaciens, the angular leaf spot of bean Pseudomo- nas savastanoi pv. phaseolicola and the bacterial blight of bean Xan- thomonas axonopodis pv. phaseoli, which allows to carry out laboratory studies of imported regulated articles – grain legumes (Ignatyeva, Karimova, 2018). During laboratory validation tests strains from the bacteriological collection of FGBU “VNIIKR” are used, which includes more than three hundred plant pathogenic strains (Fig. 7.1, 7.2).

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 39 The choice of primers and op- 8. Harveson R.M., Schwartz H.F., 19. Schaad N.W., Cheong S.S., Tama- timization of PCR mixture com- and Urrea C.A. Bacterial wilt of dry ki S., Hatziloukas E., Panopoulos N.J. position have a significant impact beans in western Nebraska. NebGuide A combined biological and enzymat- on the reliability of diagnostic G05-1562-A (revised). Coop. Ext. ic amplification (BIO-PCR) tech- results. Different DNA extraction Serv., Univ. of Nebr, Lincoln, 2011. nique to detect Pseudomonas syrin- kits are characterized by their 9. International Rules for gae pv. phaseolicola in bean seed ex- sensitivity level. Diagnostic test Seed Testing. 7-023: Detection tracts // Phytopathology, 1995. № 85. systems differ in the degree of of Pseudo monas savastanoi pv. Р. 243-248. interaction of primers with the phaseolicola in Phaseolus vulgaris 20. Schwartz H.F., Franc G.D., Han- reaction mixture. For correct (bean) seed. Validated Seed Health son L.E. and Harveson R.M. Disease opera tion of the diagnostic kit, it Testing Methods, 2018. management, 2005. P. 109-143 // Dry is necessary to carry out valida- 10. Irigoyen E.D. and Garbag- Bean Production and Pest Manage- tion of the test system in order to noli C. Common bacteriosis in ment. H.F. Schwartz, M.A. Brick, determine the analytical sensitiv- bean (Xanthomonas campestris pv. R.M. Harveson, and G.D. Franc, ity (Fig. 8), analytical specificity, phaseoli [E.F. Smith] Dowson): de- eds. Bull. No. 562A, Colorado State selectivity, repeatability and re- tection, infection and transmission Univ., Fort Collins, CO. producibility. It is also important through seeds. Fitopatologia, 1997. 21. Skjerve E., Olsvik O. Immu- that the test system is convenient 11. Mohan S.K., Schaad N.W. An nomagnetic separation of Salmo- for standard laboratory examina- improved Agar Plating Assay for nella from foods // International tion and that the preparation of Detecting Pseudomonas syringae Journal of Food Microbiolology, the reaction mixture takes as lit- pv. syringae and P. s. pv. phaseoli- 1991. № 14. Р. 11-18. tle time as possible. cola in Contaminated Bean Seed // 22. Zaumeyer W.J. The bacterial Phytopathology, 1987. № 77. blight of beans caused by Bacte- References Р. 139-1395. rium phaseoli // Technical Bulle- 1. Aggour A.R., Coyne D.P., Vida- 12. Opio A.F., Allen D.J. and tin US Department of Agriculture, ver A.K., Eskridge K.M. Transmis- Teri J.M. Pathogenic variation 1930. № 186. USDA, Washington, sion of the common blight pathogen in Xanthomonas campestris pv. USA. in bean seed // Journal of the Ameri- phaseoli, the causal agent of com- 23. Grain legume bacteriosis and can Society of Horticultural Scienc- mon bacterial blight in Phaseolus control measures / Methodologi- es, 1989. № 114. Р. 1002-1008. Beans // Plant Pathology, 1996. № 45. cal guidelines. Ed. Pavlyushin V.A. 2. Bradbury J.F. Guide to Plant Р. 1126-1133. SPb.: VIZR, 2006. P. 41. Pathogenic Bacteria. Wallingford, 13. Goodwin P.H., Sopher C.R. 24. Bilai V.I., Gvozdyak R.I., UK: CAB International, 1986. Brown pigmentation of Xanthomo- Skripal I.G., Kraev V.G., Ellan- 3. CABI Author(s) Sun Suli; Zhi nas campestris pv. phaseoli associa- skaya I.A., Zirka T.I., Muras V.A. Ye; Zhu Zhen Dong; Jin Jing; Duan ted with homogentisic acid // Microorganisms – plant patho- Can Xing; Wu Xiao Fei; Wang Xiao Canadian Journal of Microbiolo- gens. Ed. Bilai V.I. Kiev: Naukova Ming. gy, 1994. № 40 (1). Р. 28-34. dumka, 1988. P. 254-255. 4. Cafati C.R., and Saettler A.W. 14. Prosen D., Hatziloukas E., 25. Ignatyeva I.M., Karimo- Effect of host on multiplication and Schaad N.W., Panopoulas N.J. Specif- va E.V. Bacterial Disease Patho- distribution of bean common blight ic detection of Pseudomonas syringae gens of Grain Legumes Research bacteria // Phytopathology, 1980. pv. phaseolicola DNA in bean seed and Development of Methods for № 70. Р. 675-679. by polymerase chain reaction-based Their Diagnostics. Actual paths 5. EPPO A1 and A2 Lists of Pests amplication of a phaseolotoxin gene and methods in plant protection, Recommended for Regulation as region // Phytopathology, 1993. № 83. 2018. P. 193-197. Quarantine Pests, PM 1/2 (27), Euro- Р. 965-70. 26. Stancheva Y. Atlas of diseas- pean and Mediterranean Plant Pro- 15. Publisher American Phyto- es of agricultural crops. Sofia, tection Organization, Paris, France, pathological Society (APS Press), 2003. Vol. 3. P. 100-102. September 2018. St. Paul, USA Citation Plant Disea- 27. Kulakova Y.Y., Matyashova G.N., 6. Gardan L., Bollet C., Ghorrah M.A., se, 2017, 101, 1. P. 95-102. Karimova E.V., Komarov D.A. PRA Grimont F. & Grimont P.A.D. DNA 16. Saettler A.W. Common bacte- of Pests, Related to the Import, Ex- relatedness among pathovar strains rial blight // Hall R., ed. Compendi- port and Movement of Grain le- of Pseudomonas syringae subsp. um of Bean Diseases. St. Paul, USA: gumes. M.: FGBU “VNIIKR”, 2017. savastanoi Janse and proposal of APS Press, 1991. Р. 29-30. P. 161-171, 229-239. Pseudomonas savastanoi sp. nov. // 17. Saettler A.W., Schaad N.W. 28. Nikitina K.V., Shchelko L.G. International Journal of Systematic and Roth D.A. Detection of Bac- Applied Botany, Genetics and Se- Bacteriology, 1992. № 4. Р. 602-612. teria in Seed and Other Planting lection Works. 1982. № 71 (3). 7. Harveson R.M., Schwartz H.F., Material. APS Press, St. Paul, P. 86-88. Vidaver A.K., Lambrecht P.A., and MN, 1989. 29. [Electronic resource]. Euro- Otto K. New outbreaks of bacterial 18. Schaad N.W. Laboratory pean and Mediterranean Plant wilt of dry beans in Nebraska ob- Guide for Identification of Plant Protection Organization, 2018. served from field infections // Plant Pathogenic Bacteria. 2nd ed. APS Access mode: https://www.eppo. Dis., 2006. № 90. Р. 681. Press, St. Paul, MN, 1988. int (access date 05.09.2018).

40 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА УДК 632.38 НЕПОВИРУС КОЛЬЦЕВОЙ ПЯТНИСТОСТИ МАЛИНЫ RASPBERRY RINGSPOT VIRUS НОВЫЙ КАРАНТИННЫЙ ОРГАНИЗМ, ВКЛЮЧЕННЫЙ В СПИСОК ЕАЭС Ю.Н. Приходько, ведущий научный сотрудник НМОФ ФГБУ «ВНИИКР» К.О. Тихонова, научный сотрудник НМОФ ФГБУ «ВНИИКР»

Аннотация. Неповирус Raspberry Геном RpRSV состоит из двух и не транслирующийся участок на ringspot virus является карантин- молекул РНК (РНК-1 и РНК-2) с 5-конце. РНК-1 содержит 4 гена, ным вредным организмом, вклю- молекулярной массой соответ- кодирующих РНК-полимеразу, ченным в 2018 году в Единый пере- ственно 8,48 kb и 4,24 kb. Обе протеиназу, NTR-связывающий чень карантинных объектов Ев- геномные РНК необходимы для протеин и 5-концевой ковалент- разийского экономического союза. инфекционного процесса. Рас- но связанный протеин. В состав В статье кратко рассмотрены шифрована полная последова- РНК-2 входят два гена, кодирую- биологические особенности непо- тельность нуклеотидов РНК-1 и щих транспортный белок и белок вируса кольцевой пятнистости РНК-2 виноградного и вишневого оболочки. малины (RpRSV), его распростра- штаммов, РНК-2 шотландского РНК-1 кодирует детерминан- ненность и растения-хозяева. штамма (Blok et al., 1992; Wetzel ты, определяющие круг рас- Приведены симптомы RpRSV на et al., 2006), а также частичная тений-хозяев, переносимость основных растениях-хозяевах. последовательность нуклеотидов семенами и тип симптомов, Ключевые слова. Неповирус, ви- РНК-2 ряда других изолятов этого а РНК-2 – детерминанты, опре- рус кольцевой пятнистости ма- вируса (Scott et al., 2000). деляющие переносимость нема- лины, РНК, переносчики, растения Геномная организация RpRSV тодами, серологическую специ- хозяева, симптомы. типична для представителей рода фичность и тип симптомов Nepovirus. Обе геномные РНК (Harrison et al., 1972; Murant et Неповирус кольцевой пятни- имеют 3-концевой поли(А)-тракт al., 1978). стости малины (RpRSV) входит в Рис. 1. Вирионы RpRSV (Murant et al., 1978) Перечень регулируемых некаран- Fig. 1. RpRSV virions (Murant et al., 1978) тинных организмов Российской Федерации, в 2018 году включен в Перечень А1 карантинных объек- тов Евразийского экономическо- го союза. Данный патоген имеет статус карантинного объекта в Канаде, США, Норвегии, Турции, Украи не и Чили. RpRSV, впервые описанный на малине в Шотландии (Cadman, 1956), является представителем подгруппы А рода Nepovirus се- мейства Secoviridae. Вирионы RpRSV изометрической формы, с 5- или 6-гранной кон- фигурацией, диаметром 28-30 нм (рис. 1). Единственный белок обо- лочки имеет молекулярную массу 54 кДа (Murant, 1978).

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 41 RpRSV инфицирует все ткани и RpRSV легко передается также - английский штамм (English органы растений-хозяев, включая прививкой и механической ино- strain) переносится нематодой семена, пыльцу и меристемы. В за- куляцией соком больных расте- Longidorus macrosoma, отличается раженных клетках вирус образует ний, но не сохраняется в воде, от шотландского штамма сероло- включения, различимые в свето- растительных остатках и в почве гически; вом микроскопе. Эти включения (Brunt et al., 1996). - штамм желтой пятнистости могут агрегатироваться с рибо- В Великобритании идентифици- малины сорта Ллойд Джордж сомами и эндоплазматическим ровано три штамма RpRSV, зара- (Lloyd George yellow blotch strain) ретикулюмом и часто окружены жающих малину: заражает сорта малины, иммун- мембранами. Как правило, вирио- - типовой, или шотландский, ные к шотландскому штамму, се- ны RpRSV сосредоточены в цито- штамм (Scottish strain) переносит- рологически идентичен шотланд- плазме клеток (Murant et al., 1978). ся нематодой Longidorus elongatus; скому штамму, переносится нема- На большие расстояния RpRSV распространяется с зараженным посадочным материалом и с се- менами некоторых растений. Еще одним источником инфекции мо- жет являться почва на корнях са- женцев и почвенный субстрат в контейнерах с укорененными рас- тениями, в котором могут сохра- няться нематоды – переносчики RpRSV. Природными переносчика- ми RpRSV являются нематоды Longidorus elongatus, Longidorus macrosoma и Paralongidorus maximus, относящиеся к семейству Longidoridae (Brunt et al., 1996). Нематода Longidorus elongatus широко распространена в Европе (EFSA, 2013). В европейской части Российской Федерации этот вид также достаточно часто встреча- ется на плодовых, ягодных куль- турах и дикорастущих растениях (Приходько, Метлицкая, 1994), что обуславливает постоянную опасность заражения вирусом здоровых растений. Нематода Longidorus macrosoma распространена в 13 странах Ев- ропы (EFSA, 2013). Имеется со- общение о выявлении этого вида в ризосфере растений малины и земляники лесной в Воронежской области (Brown et al., 1990). Установлено, что RpRSV пе- реносится с семенами малины (может быть заражено до 18% семян), земляники (35-49%), сои культурной Glycine max (до 7,2%), сои уссурийской Glycine soja (до 20%), петунии Petunia violacea (до 16,5%), а также с семенами сор- ных растений – пастушьей сумки Capsella bursa-pastoris и звездчат- Рис. 2. Симптомы на листьях малины сорта Malling Jewel, ки средней Stellaria media. Зара- вызванные заражением RpRSV женные семена являются важней- (фото Scottish Horticultural Research Institute, Великобритания) шим способом сохранения RpRSV Fig. 2. Symptoms on raspberry leaves of the Malling Jewel variety в природе (Lister, Murant, 1967; caused by RpRSV infection Phatak, 1974). (photo by Scottish Horticultural Research Institute, Great Britain)

42 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА тодой Longidorus elongatus (Murant в) виноград (Vitis vinifera) пашенная (Veronica agrestis), веро- et al., 1978; Brunt et al., 1996). (Murant, 1978); ника персидская (Veronica persica), Известны вишневый и вино- г) овощные культуры: тыква марь (Chenopodium sp.), горец по- градный штаммы RpRSV, а также (Cucurbita pepo), артишок (Cynara чечуйный (Polygonum persicaria), целый ряд других изолятов этого cardunculus var. scolymus); молочай (Euphorbia peplus). вируса со специфическими и ге- д) травянистые цветочные Наиболее часто RpRSV выявля- нетическими особенностями. Раз- растения: нарцисс (Narcissus ли на малине, землянике садовой, личия между штаммами RpRSV pseudonarcissus), флокс (Phlox смородине, черешне, винограде, преимущественно обусловлены spp.), золотая розга гигантская нарциссе, вейгеле и бирючине наличием генетических различий (Solidago gigantea, петуния (Petunia (CABI, 2018). в гене белка оболочки их изолятов x hybrida), астильба (Astilbe spp.), В условиях средней поло- (Scott et al., 2000). георгин (Dahlia spp.), дельфиниум сы России на молодых листьях Растениями – хозяевами RpRSV (Delphinium spp.); растений малины, зараженных являются следующие виды (EFSA, е) декоративные кустарни- RpRSV, образуются ярко-жел- 2013; CBI, 2018; EPPO, 2018): ковые растения: бузина черная тые пятна, располагающиеся на а) плодовые культуры: че- (Sambucus nigra), вейгела (Weigela переплетении жилок и у краев решня (Prunus avium), вишня spp.), форзиция (Forsythia x листовых пластинок. Ткани ли- (Prunus cerasus), абрикос (Prunus intermedia), роза (Rosa spp.), бирю- стьев вокруг этих пятен дефор- armeniaca), слива домашняя чина (Ligustrum vulgare, Ligustrum мируются. На взрослых листьях (Prunus domestica), персик (Prunus vulgare ‘Atrovirens’, Ligustrum в средней части побегов разви- persica), миндаль (Prunus dulcis), ovalifolium), волчеягодник (Daphne вается хлоротический рисунок лавровишня (Prunus laurocerasus); odora, Daphne burkwoodii), бобов- в виде полос и вытянутых колец. б) ягодные культуры: малина ник (Laburnum spp.); Часто листья становятся морщи- (Rubus idaeus), земляника садовая ж) дикорастущие сорные рас- нистыми (рис. 2-3). Характерной (Fragaria x ananassa), земляника лес- тения: пастушья сумка (Capsella особенностью является образо- ная (Fragaria vesca), смородина крас- bursa-pastoris), ясколка обыкно- вание на некоторых сортах вдоль ная (Ribes rubrum), смородина чер- венная (Cerastium vulgatum), неза- жилок с нижней стороны листьев ная (Ribes nigrum), крыжовник (Ribes будка полевая (Myosotis arvensis), листоподобных выростов – эна- uva-crispa), ежевика (Rubus fruticosus, горец вьюнковый (Polygonum ций. Пораженные растения ста- Rubus procerus, Rubus sachalinensis), convolvulus), торица полевая новятся карликовыми, на наи- другие виды Rubus, смородина кро- (Spergula arvensis), звездчатка более восприимчивых сортах ваво-красная (Ribes sanguineum); средняя (Stellaria media), вероника развивается курчавость листьев,

Рис. 3. Симптомы на листьях малины сорта Абрикосовая, вызванные комплексной инфекцией неповирусов мозаики резухи и кольцевой пятнистости малины (фото К.О. Тихоновой) Fig. 3. Symptoms on raspberry leaves of Abrikosovaya variety caused by complex infection of raspberry mosaic and raspberry ringspot nepoviruses (photo by K.O. Tikhonova)

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 43 урожайность их резко снижается (Помазков, 1975; Кузнецова и др., 1974). У растений Rubus sachalinensis симптомы заражения RpRSV сход- ны с таковыми у малины красной (Gordejchuk et al., 1977). У зараженных растений ежеви- ки (Rubus procerus) сорта Himalaya Giant развивается прогрессирую- щая карликовость (Cadman, 1960). На землянике симптомы суще- ственно варьируют в зависимости от вегетационного периода, сор- та и штамма RpRSV. На листьях растений ряда сортов развива- ются отчетливые хлоротические пятна, кольца и линейные узоры. Иногда развивается обширный хлороз, который может либо огра- ничиваться отдельными сегмен- тами листа, либо охватывать всю листовую пластинку. Главными симптомами являются сильная прогрессирующая карликовость и возможность гибели растений (Lister, 1970). Рис. 4. Кольцевая пятнистость на листьях красной смородины, На красной смородине RpRSV вызванная заражением RpRSV (фото M. Schroder, Landwirtschaliches Technologiezentrum Augustenberg, Германия) вызывает болезнь под названием Fig. 4. Ringspot on red currant leaves caused by RpRSV infection «ложковидность листьев крас- (photo by M. Schroder, Landwirtschaliches Technologiezentrum Augustenberg, ной смородины» (spoon leaf of red Germany) currant). В первые 1-2 года после заражения на растениях красной морский Чемпион RpRSV ранней В зависимости от чувствитель- смородины развиваются симпто- весной вызывал симптомы жел- ности сортов на нижней стороне мы в виде ярко-желтой мозаики той кольцевой пятнистости, ко- листьев развиваются мало- или и кольцевой пятнистости (рис. 4). торые затем трансформировались многочисленные энации различ- В последующие годы зараженные в симптомы желтой крапчатости ной величины, приуроченные к растения проявляют симптомы (Gordejchuk et al., 1977). В Фин- центральной жилке (рис. 6). За- деформации листьев, тогда как ляндии в результате заражения раженные растения имеют изре- мозаика и кольцевая пятнистость RpRSV на листьях растений чер- женную крону и угнетенный вид исчезают. Деформация листьев ной смородины весной развива- (Grunger, Buser, 2015). сильно варьирует в зависимости лись желто-зеленые кольца, пятна На растениях винограда RpRSV от сорта смородины и штамма и линейный рисунок из коротких вызывает желтую мозаику и де- вируса. Листья некоторых сортов полос. В летний период эти сим- формацию листьев, практически проявляют лишь небольшое со- птомы исчезали (Bremer, 1983). идентичные симптомам вееро- кращение числа зубчиков, тогда На черешне RpRSV самостоя- листности винограда. На высоко как листья восприимчивых сор- тельно или в комплексе с илар- восприимчивых сортах эти сим- тов становятся почти округлыми вирусами некротической коль- птомы сочетаются с угнетением с очень слабой зубчатостью. Края цевой пятнистости косточковых роста побегов и значительным таких листьев обычно загибаются (PNRSV) и карликовости сливы сокращением числа ягод (рис. 7) вверх или вниз, приобретая лож- (PDV) вызывает болезнь Пфе- (Wetzel, Krczal, 2007). ковидную форму. фингера, или рашпилевидность На зараженных растениях розы На растениях крыжовника сор- листьев. На листьях зараженных развивается хлоротическое по- та Whynham’s Industry в Нидер- деревьев первоначально раз- желтение жилок и прогрессирую- ландах RpRSV вызывал мозаику виваются хлоротические пят- щая карликовость (рис. 8) (von листьев; ягоды были мелкими и на в сочетании с деформацией Bargen et al., 2015). созревали очень поздно; заражен- листьев (рис. 5). Затем листья Растения нарцисса, форзиции и ные растения плохо росли и обыч- зараженных деревьев обычно бирючины обыкновенной RpRSV но в течение нескольких лет поги- уменьшаются в размере, стано- заражает преимущественно в бес- бали (Converse, 1987). вятся узкими и жесткими, на симптомной форме (CABI, 2018). На листьях черной смородины верхушках побегов часто собра- Согласно данным ЕОКЗР сортов Бурая, Ликерная и При- ны в розетки. (EPPO, 2018), Raspberry ringspot

44 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА virus в настоящее время зареги- ГБС РАН (г. Москва) заражен- - саженцы плодовых, ягодных, стрирован в следующих странах: ность RpRSV растений некоторых декоративных культур и виногра- Европа: Албания, Беларусь, сортов розы достигала 41% (Чер- да должны происходить из зон, Болгария, Великобритания, Гер- вякова, Келдыш, 1994). мест и (или) участков производ- мания, Греция, Ирландия, Ита- Согласно последним данным, ства, свободных от RpRSV; лия, Латвия, Люксембург, Нидер- RpRSV был выявлен на малине в - посадочный материал, импор- ланды, Норвегия, Португалия, Московской, Рязанской и Брян- тируемый из ЕОКЗР, должен быть Российская Федерация, Сербия, ской областях соответственно в выращен в соответствии с обще- Турция, Финляндия, Франция, 19,0, 8,2 и 49,5% образцов из 216, признанными схемами сертифи- Чехия, Швейцария. 44 и 78 протестированных. кации для косточковых плодовых Азия: Казахстан. В Московской области встре- культур, ягодных культур и вино- Включение RpRSV в Перечень чаемость RpRSV на пяти основ- града; карантинных объектов, отсут- ных сортах малины варьировала - растения с открытой корневой ствующих на территории ЕАЭС, от 17,5 до 29,4% (Упадышев и др., системой должны быть свободны вызывает большие сомнения. 2014; Тихонова, 2016; Тихонова от почвы; при ввозе растений в В Российской Федерации и др., 2016). При совместном за- контейнерах почвенный субстрат RpRSV был широко распростра- ражении RpRSV и вирусом ку- должен быть проверен на отсут- нен в 50-70-е годы прошлого века стистой карликовости малины ствие нематод-переносчиков. (Помазков, 1975; Кузнецова и др., (RBDV) продуктивность некото- Для обеспечения этих мер не- 1974), что было взаимосвязано с рых сортов малины снижалась до обходимо практиковать предот- интродукцией зараженных кло- 44% (Тихонова и др., 2016). грузочное обследование участков нов малины английской селекции, В Республике Беларусь RpRSV производства, досмотр в пункте а также смородины и крыжовника широко распространен в насаж- пропуска и лабораторное иссле- голландской селекции. В после- де ни ях Института садоводства. дование образцов на наличие дующие годы, в связи с широким Так, девять протестированных RpRSV. внедрением в производство сортов сортов черной смородины были На территории Российской Фе- ягодных культур отечественной заражены этим вирусом на 100%. дерации должны соблюдаться сле- селекции и системы производ- Зараженность сортов красной дующие фитосанитарные меры: ства оздоровленного посадоч- смородины варьировала от 5 - систематические обследова- ного материала, распространен- до 100%, а зараженность мали- ния насаждений растений – хозя- ность этого вируса в нашей стра- ны составила в среднем 29,3% ев RpRSV с отбором и лаборатор- не несколько снизилась, однако (Valasevich, Kolbanova, 2010). ным исследованием образцов; о его выявлении по-прежнему име- Необходимо отметить, что все - выращивание семенного и по- ются многочисленные сообщения эти результаты были получены садочного материала только в ме- в отечественной литературе. с использованием метода имму- стах производства, свободных от Так, RpRSV был выявлен при ноферментного анализа (ИФА) RpRSV; обследовании насаждений ма- без дополнительной идентифи- - предпосадочное исследование лины в Московской, Ленин- кации выявленных изолятов ме- почвы на отсутствие нематод-пе- градской и Самарской областях тодом ПЦР. реносчиков. (Приходько, 2002). RpRSV вы- Для уточнения фитосанитарно- являли методом ИФА в коллек- го статуса RpRSV в Российской Литература ционных насаждениях красной Федерации необходимо проведе- 1. Келдыш М.А. Особенности рас- смородины научных учреждений ние его мониторинга на всех ос- пространения неповирусов в антро- в Московской области и в ана- новных растениях-хозяевах. погенных экосистемах // Бюллетень логичных насаждениях черной В связи с импортом большо- ГБС РАН, 1994. Вып. 169. С. 132-136. смородины в Московской, Ор- го количества растений – хозяев 2. Кузнецова А.А., Келдыш М.А., ловской и Самарской областях RpRSV существует постоянная Помазков Ю.И. Анализ некоторых (Суркова, 1994). Распростра- опасность проникновения новых изолятов курчавости малины // ненность RpRSV в коллекцион- штаммов этого вируса на терри- Промышленная культура малины ных насаждениях крыжовника торию Российской Федерации, а в РСФСР. М., 1974. С. 77-82. также была оценена как высо- наличие нематод-переносчиков 3. Мельникова Н.Н. Вирусные кая (Приходько, Суркова, 1994). обуславливает возможность его болезни древесных и декоратив- В результате проведенного серо- быстрого распространения в су- ных культур и разработка мер мониторинга RpRSV был выявлен ществующих насаждениях. борьбы с ними // Автореф. дисс. … в коллекционных насаждениях Для предотвращения проник- канд. с.-х. наук. М., 2005. 23 с. сирени и чубушника научных новения RpRSV на территорию 4. Мельникова Н.Н., Приходько Ю.Н. учреждений в городах Москвы и Российской Федерации должны Вирусные болезни древесных де- Подмосковья (Мельникова, При- практиковаться следующие фито- коративных культур в Подмос- ходько, 2006). В Российской Фе- санитарные меры: ковье // Агроэкологические аспек- дерации RpRSV выявляли также - посадочный и семенной мате- ты устойчивого развития АПК. на розе (Келдыш, 1994) и георги- риал всех растений-хозяев дол- Тезисы докл. науч. конф. Брянск, не (Шатило, 1991). В коллекции жен быть свободен от RpRSV; 2006. С. 47-50.

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 45 5. Помазков Ю.И. Вирусные бо- вителях родов Rosa и Sorbus // par des nematodes vecteurs // лезни плодовых и ягодных куль- Бюллетень ГБС, 1994. Вып. 170. Station de recherché Agroscope, тур в Нечерноземной зоне // Ав- С. 124-129. Switzerland, 2015. 4 s. тореф. дисс. … д. с.-х. наук. М., 15. Шатило В.И. Вирусные бо- 27. Harrison B.D., Murant A.F., 1975. 34 с. лезни георгин и оздоровление от Mayo M.A. Evidence for two 6. Приходько Ю.Н. Распростра- них методом культуры тканей // functional RNA species in ненность вирусных и фитоплаз- Автореф. дис. … канд. биол. наук. Raspberry ringspot virus // Journal менных болезней на плодовых и М., 1991. 21 с. of General Virology, 1972. Vol. 16. ягодных культурах европейской 16. Blok V.C., Wardell J., Jolly C.A., P. 339-348. части России // Доклады на от- Manoukian A., Robinson D.J., 28. Lister R.M. Soilborne viruses четной сессии 2002 г. секции са- Edwards M.L., Mayo M.A. The as pathogens in strawberry // доводства и виноградарства от- nucleotide sequence of RNA-2 of Virus diseases of small fruits and деления растениеводства РАСХН. Raspberry ringspot nepovirus // grapevines, a handbook (Ed. by М., 2002. С. 209-219. Journal of General Virology, 1992. Frazier N.W.), 1970. P. 34-36. 7. Приходько Ю.Н., Суркова О.Ю. Vol. 73 (9). P. 2189-2194. 29. Lister R.M., Murant A.F. Вирусные болезни крыжовника в 17. Bremer K. Viral diseases Seed-transmission of nematode- средней полосе России // Плодо- occurring on Ribes species in borne viruses // Annals of Applied водство и ягодоводство России / Finland // Annales Agriculturae Biology, 1967. Vol. 59. P. 49-62. Сб. науч. тр. ВСТИСП, 1994. Fenniae, 1983. Vol. 22. P. 104-109. 30. Phatak H.C. Seed-borne plant С. 124-134. 18. Brown D.J.F., Taylor C.E., viruses-identification and diagnosis 8. Приходько Ю.Н., Метлиц кая К.В. Choleva B., Romanenko N.D. The in seed health testing // Seed Sci. Нематоды – переносчики фито- occurrence of Longidoridae (Nema- Technol., 1974. Vol. 2. P. 3-155. патогенных вирусов плодовых и toda: Dorylaimida) in western USSR 31. Scientific opinion on the ягодных культур // Вестник РАСХН, with further comments on longi- risk to plant health posed by 1994. № 1. С. 27-29. dorid nematodes in Europe and the Arabis mosaic virus, Raspberry 9. Суркова О.Ю. Анализ рас- Mediterranean basin // Nemato- ringspot virus, Strawberry latent пространения вредоносности, этио- logia Mediterranea, 1990. Vol. 18. ringspot virus and Tomato black логии вирусных и вирусоподоб- P. 199-207. ring virus to the EU territory ных болезней красной и черной 19. Brunt A.A., Crabtree K., Dall- with the identification and смородины и разработка мер witz M.J., Gibbs A.J., Watson L. evaluation of risk reduction борьбы с ними в средней полосе and Zurcher E.J. Raspberry ringspot options // EFSA Journal, 2013. России // Автореф. дис. … канд. nepovirus // Plant Viruses Online: Vol. 11. P. 1-83. с.-х. наук. М., 1994. 20 с. Descriptions and Lists from the 32. Scott S.W., Zimmerman M.T., 10. Тихонова К.О. Распростра- VIDE Database.Version: 20th Au- Jones A.T., Le Gall O. Differences ненность, вредоносность вирус- gust 1996. http://biology.anu.edu. between the coat protein amino ных болезней и эффективные au/Groups/MES/vide. acid sequences of English and методы оздоровления малины // 20. CABI Crop Protection Scottish serotypes of Raspberry Автореф. дис. … канд. с.-х. наук. Compendium. http://www.cabi.org/ ringspot virus exposed on the М., 2016. 20 с. cpc/datasheet?/2018. surface of virus particles // Virus 11. Тихонова К.О., Упадышев М.Т., 21. Cadman C.H. Studies on the Research, 2000. Vol. 68 (2). Метлицкая К.В. О вредоносности etiology and mode of spread of P. 119-126. вирусов на малине и оздоров- Scottish raspberry leaf curl disease // 33. Valasevich N., Kolbanova E. лении от них // Плодоводство и Journal of Horticultural Science, Occurrence of small fruit viruses ягодоводство России / Сб. науч. 1956. Vol. 31. P. 111-118. in Belarus // 21st Int. Conf. Virus тр. ВСТИСП, 2015. Т. XXXIII. 22. Cadman C.H. Studies on and other Transmissible Diseases of С. 349-353. the relationship between soil- Fruit Crops / Julius-Kuhn-Archiv, 12. Тихонова К.О., Упадышев М.Т., borne viruses of the ringspot type 2010. Vol. 427. P. 129-132. Метлицкая К.В. Распространен- occurring in Britain and continental 34. von Bargen S., Demiral R., Büt- ность и вредоносность вирусов ма- Europe // Virology, 1960. Vol. 11. tner C. First detection of Raspberry лины и современные способы ее оз- P. 653-664. ringspot virus in mosaic diseased доровления // Сб. науч. тр. ВСТИСП, 23. Converse R.H. Virus diseases hybrid roses in Germany // New 2016. Т. XXXXI. С. 234-238. of small fruits // USDA Agricultural Disease Reports, 2015. Vol. 32. P. 18-19. 13. Упадышев М.Т., Метлицкая К.В., Handbook, 1987. № 631. 277 s. 35. Wetzel T., Ebel R., Moury B., Тихонова К.О., Евдокименко С.Н. 24. EPPO Global Database, 2018. Le Gall O., Endisch S., Reustle G.M., О распространенности вирусных 25. Gordejchuk O.G., Krylov O.V., Krczal G. Sequence analysis of болезней малины в Центральном Kyloba L.V., Samonina I.N. grapevine isolates of Raspberry регионе России // Плодоводство Zentralblatt fur Bakteriologia, ringspot nepovirus // Archives of и ягодоводство России / Сб. науч. Parasi tenkurde, Infectionskrank- Virology, 2006. Vol. 151. P. 599-606. тр. ВСТИСП, 2014. Т. XXXVII. Ч. 2. hei ten und Hygiene, 1977. Vol. 132. 36. Wetzel T., Krczal G. С. 184-190. P. 686-707. Molecular biology of Raspberry 14. Червякова О.Н., Келдыш М.А. 26. Grunder J.M., Buser A. Viroses ringspot virus // Plant Viruses, Вирусы непогруппы на предста- du cerisier (Prunus avium) causes 2007. Vol. 1. P. 45-51.

46 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА UDC 632.38 RASPBERRY RINGSPOT VIRUS NEW QUARANTINE ORGANISM, INCLUDED IN THE EEU LIST Y.N. Prikhodko, Leading Researcher of NMOF FGBU “VNIIKR” K.O. Tikhonova, Researcher of NMOF FGBU “VNIIKR”

Abstract. Raspberry ringspot virus is teinase, an NTR-binding protein and a quarantine pest included in the Com- a 5-terminal covalently bound protein. mon List of the Eurasian Economic RNA-2 contains two genes encoding Union in 2018. transport and coat proteins. e article briey describes the biologi- RNA-1 codes the determinants of cal characteristics of raspberry ringspot host range, seed tolerance and symptom nepovirus (RpRSV), its distribution and type, and RNA-2 – the determinants of host plants. Symptoms of RpRSV on the nematode specicity, serological speci- main host plants are presented. city and symptom type (Harrison et al., Keywords. Nepovirus, raspberry ring- 1972; Murant et al., 1978). spot virus, RNA, vectors, host plants, RpRSV particles infects all host tis- symptoms. sues and organs, including seeds, pol- len and meristems. In infected cells, the Raspberry ringspot virus (RpRSV) virus forms inclusions that are visible in is included in the List of Regulated the light microscope. ese inclusions Non-Quarantine Organisms of the can be aggregated with ribosomes and Russian Federation, and in 2018 it was endoplasmic reticulum and are o¥en included in the A1 List of Quarantine surrounded by membranes. As a rule, Objects of the Eurasian Economic RpRSV virions are concentrated in cel- Union. is pathogen has the status of lular cytoplasm (Murant et al., 1978). a quarantine object in Canada, USA, Over long distances, RpRSV is dis- Norway, Turkey, Ukraine and Chile. tributed with contaminated planting Fig. 5. Cherry leaves with symptoms of RpRSV, rst described on raspberry material and the seeds of some plant. RpRSV infection in Scotland (Cadman, 1956), is a repre- Another source of infection may be soil (photo by Universitat fur Bodenkultur, sentative of subgroup A of the genus on the roots of seedlings and soil sub- Vienna, Austria; T. Hasler, Swiss Fed. Res. Nepovirus family Secoviridae. strate in containers with rooted plants, Station for Fruit Growing, Switzerland) RpRSV isometric virions have 5- or which may contain nematodes that car- Рис. 5. Листья черешни с симптомами 6-faceted conguration, diameter 28- ry RpRSV. заражения RpRSV 30 nm (Fig. 1). e single coat protein Natural vectors of RpRSV are the (фото Universitat fur Bodenkultur, has a molecular weight of 54 kDa (Mu- nematodes Longidorus elongatus, Lon- Вена, Австрия; T. Hasler, Swiss Fed. Res. rant, 1978). gidorus macrosoma and Paralongidorus Station for Fruit Growing, Швейцария) e RpRSV genome consists of two maximus of the Longidoridae family RNA molecules (RNA-1 and RNA-2) (Brunt et al., 1996). berries (35-49%), soybean Glycine max with a molecular weight of 8.48 kb and e Longidorus elongatus nematode (up to 7.2%), wild sotbean Glycine soja 4.24 kb, respectively. Both genomic is widespread in Europe (EFSA, 2013). (up to 20%), petunia Petunia violacea RNAs are necessary for the infectious In the European part of the Russian (up to 16.5%), as well as with seeds of process. e complete sequence of Federation, this species is also quite the weeds – shepherd’s purse Capsella RNA-1 and RNA-2 nucleotides of the common in fruit and berry crops and bursa-pastoris and common chickweed grape and cherry strains and RNA-2 wild plants (Prikhodko, Metlitskaya, Stellaria media. Contaminated seeds of the Scottish strain has been decoded 1994), which causes a constant risk of are one of the most important way of (Blok et al., 1992; Wetzel et al., 2006), as infection with healthy plants. preserving RpRSV in nature (Lister, well as the partial sequence of RNA-2 e Longidorus macrosoma nematode Murant, 1967; Phatak, 1974). nucleotides of a number of other iso- is distributed in 13 European countries RpRSV is also easily transmitted by lates of the virus (Scott et al., 2000). (EFSA, 2013). is species has been re- gra¥ing and mechanical inoculation of e genomic organization of RpRSV ported to be found in the raspberry and diseased plants, but is not retained in is typical of the Nepovirus genus. Both strawberry rhizosphere in the Voronezh water, plant residues or soil (Brunt et genomic RNAs have a 3-terminal region (Brown et al., 1990). al., 1996). poly(A)-tract and a nontranslated area RpRSV has been found to be trans- ree strains of RpRSV have been at the 5-terminus. RNA-1 contains 4 mitted with raspberry seeds (can infect identied in the UK raspberry infect- genes coding RNA polymerase, pro- up to 18% of seeds), the seeds of straw- ing strains:

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 47 - e typical, or Scottish strain, is c) common grapevine (Vitis vinifera) interlacing and at the edges of the leaf transmitted by the nematode Longi- (Murant, 1978); plates. Leaf tissue around these spots dorus elongatus; d) vegetable crops: pumpkin (Cucur- is deformed. On mature leaves, a chlo- - e English strain is transmitted by bita pepo), artichoke (Cynara cardun- rotic pattern in the middle part of the the nematode Longidorus macrosoma culus var. scolymus); shoots develops in the form of stripes and diers serologically from the Scot- e) herbaceous ornamental plants: and elongated rings. Leaves o¥en be- tish strain; daodil (Narcissus pseudonarcissus), come wrinkled (Fig. 2-3). A characte- - Lloyd George yellow blotch strain ox (Phlox spp.), early goldenrod (Soli- ristic feature is the formation of leaf- infects raspberry varieties that are im- dago gigantean), garden petunia (Pe- like growths, i.e., enations, on some mune to the Scottish strain, is serologi- tunia x hybrida), astilba (Astilbe spp.), varieties along the veins on the lower cally identical to the Scottish strain and dahlias (Dahlia spp.), delphinium (Del- side of the leaves. e aected plants is transmitted by the nematode Longi- phinium spp.); become dwarfed, the most susceptible dorus elongatus (Murant et al., 1978; f) ornamental shrubs: black elder varieties develop leaf curvature and Brunt et al., 1996). (Sambucus nigra), weigela (Weigela their yield sharply decreases (Pomaz- Cherry and grape strains of RpRSV spp.), border forsythia (Forsythia x in- kov, 1975; Kuznetsova et al., 1974). and a number of other virus isolates termedia), rose (Rosa spp.), common In Rubus sachalinensis plants, symp- with specic and genetic features privet (Ligustrum vulgare, Ligustrum toms of RpRSV infection are similar to are known. e dierences between vulgare ‘Atrovirens’, Ligustrum ovalifo- those in red raspberry (Gordejchuk et RpRSV strains are mainly due to gene- lium), winter daphne (Daphne odora, al., 1977). tic distinctions of the coat protein gene Daphne burkwoodii), golden chain (La- Infested blackberry plants (Rubus (Scott et al., 2000). burnum spp.); procerus) of Himalaya Giant variety Host species of RpRSV are the fol- g) wild weeds: shepherd’s purse develop progressive stunting (Cadman, lowing (EFSA, 2013; CBI, 2018; EPPO, (Capsella bursa-pastoris), common 1960). 2018): mouse-ear chickweed (Cerastium vul- On strawberries, symptoms vary a) fruit crops: sweet cherry (Prunus gatum), common scorpiongrass (Myo- considerably depending on the vege- avium), sour cherry (Prunus cerasus), sotis arvensis), bearbind (Polygonum tation period, variety and strain of apricot (Prunus armeniaca), plum convolvulus), sandweed (Spergula ar- RpRSV. Clear chlorotic spots, rings and (Prunus domestica), peach (Prunus per- vensis), common chickweed (Stellaria linear patterns develop on the leaves of sica), almond (Prunus dulcis), common media), procumbent speedwell (Ve- a number of plant varieties. Sometimes laurel (Prunus laurocerasus); ronica agrestis), common speedwell there is extensive chlorosis, which can b) berry crops: raspberry (Rubus (Veronica persica), goosefoots (Cheno- either be limited to individual leaf seg- idaeus), garden strawberry (Fragaria podium sp.), red-leg (Polygonum persi- ments or cover the entire leaf plate. e xananassa), wild strawberry (Fragaria caria), petty spurge (Euphorbia peplus). main symptoms are severe progressive vesca), red currant (Ribes rubrum), RpRSV was most commonly found stunting and the possibility of plant black currant (Ribes nigrum), goose- on raspberries, strawberries, currants, death (Lister, 1970). berry (Ribes uva-crispa), blackberry cherries, grapes, daodils, weigels and On red currant, RpRSV causes a (Rubus fruticosus, Rubus procerus, Ru- privet (CABI, 2018). disease called spoon-shaped leaves of bus sachalinensis), other species of Ru- In the central part of Russia, young red currant. In the rst 1-2 years a¥er bus, red-owered currant (Ribes san- raspberry leaves infected with RpRSV infection, red currant plants develop guineum); show bright yellow spots on the vein symptoms of bright yellow mosaic and

Fig. 6. Formation of enations on the underside of cherry leaves caused by RpRSV infection (photo by J.M. Grunder, A. Buser, 2015, Switzerland) Рис. 6. Образование энаций на нижней стороне листьев черешни, вызванное заражением RpRSV (фото J.M. Grunder, A. Buser, 2015, Швейцария)

48 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА ringspot spotting (Fig. 4). In subsequent years, the infected plants show symptoms of leaf deformation, while mosaic and circular spots disappear. Leaf deformation varies greatly depending on the type of currant and the virus strain. e leaves of some varieties show only a slight reduction in the number of serratures, while the leaves of susceptible varieties become almost rounded and very weakly toothed. e edges of these leaves are usually bent up or down, becoming spoon-shaped. On gooseberry plants of the Whyn- ham’s Industry variety in the Nether- lands, RpRSV caused leaf mosaic; the berries were small and mature very late; infected plants grew poorly and usually died within a few years (Converse, 1987). On leaves of black currant of the Buraya, Likyornaya and Primorsky Chempion varieties RpRSV caused symptoms of yellow ringspot spotting, which then transformed into symptoms of yellow mottling (Gordejchuk et al., 1977). In Finland, RpRSV contamination of blackcurrant leaves in spring resulted in the development of yellow and green rings, spots and linear patterns of short stripes. In summer, these symptoms disappeared (Bremer, 1983). On cherry, RpRSV alone or in combination with Prunus necrotic ringpot ilarvirus (PNRSV) and Prine dwarf ilarvirus (PDV), causes Pfe¦nger disea se or rasp leaves. e leaves of in- Fig. 7. Yellow mosaic and deformation of grapevine leaves fected trees initially develop chlorotic caused by RpRSV infection (photo by T. Wetzel, G. Crkzal, 2007, Germany) spots in combination with leaf defor- Рис. 7. Желтая мозаика и деформация листьев винограда, вызванные mation (Fig. 5). Leaves of infected trees заражением RpRSV (фото T. Wetzel, G. Crkzal, 2007, Германия) then tend to shrink in size, become narrow and sti, and are o¥en gather in e da¡odil, forsythia and common the introduction of infected raspberry rosettes on top of the shoots. Depend- privet plants are predominantly infect- clones of English selection, as well as ing on the sensitivity of the varieties, ed by RpRSV in an asymptomatic form currants and gooseberries of the Dutch little or many enations of dierent sizes (CABI, 2018). selection. In the following years, due occurs on the underside of the leaves, According to EPPO (2018), Raspber- to the wide commercial development conned to the central vein (Fig. 6). In- ry ringspot virus is currently registered the berry crop varieties of the domes- fested plants have a sparse crown and in the following countries: tic selection and the production of the a depauperated appearance (Grunger Europe: Albania, Belarus, Bulgaria, healthy planting material, the preva- and Buser, 2015). Czech Republic, Finland, France, Ger- lence of this virus in our country has On grapevine plants, RpRSV causes many, Greece, Ireland, Italy, Latvia, slightly decreased, however, there are yellow mosaic and leaf deformation, Luxembourg, Netherlands, Norway, still numerous reports about its detec- almost identical to the symptoms of Portugal, Russian Federation, Serbia, tion in the domestic literature. Grapevine fanleaf virus. In highly sus- Switzerland, Turkey, United Kingdom. us, RpRSV was detected during ceptible varieties, these symptoms are Asia: Kazakhstan. the survey of raspberry plantations in combined with suppression of shoot e inclusion of RpRSV in the list Moscow, Leningrad and Samara re- growth and a signicant reduction in of quarantine objects absent in EEU is gions (Prikhodko, 2002). RpRSV was the number of berries (Fig. 7) (Wetzel, highly doubtful. detected by ELISA in red currant col- Krczal, 2007). In the Russian Federation, RpRSV lection plantations of scientic insti- Infected rose plants develop chloro- was widespread from the 1950s to 1970s tutions in the Moscow region and in tic yellowing and progressive stunting years (Pomazkov, 1975; Kuznetsova et similar black currant plantations in (Fig. 8) (von Bargen et al., 2015). al., 1974), which was associated with the Moscow, Orel and Samara regions

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 49 (Surkova, 1994). e prevalence of originate from areas, locations and/or - pre-planting soil testing for the ab- RpRSV in gooseberry collection plan- production sites free of RpRSV; sence of nematode vectors. tations was also assessed as high (Pri- - planting material imported from khodko, Surkova, 1994). As a result the EPPO region should be grown in References of seromonitoring, RpRSV was found accordance with generally accepted cer- 1. Keldysh M.A. Peculiarities of in the collection plantations of lilac tication schemes for stone fruit crops, spreading of nepoviruses in anthro- and mock orange of scientic institu- berries and grapes; pogenic ecosystems // Bulletin of tions in Moscow and Moscow region - plants with open root systems should GBS RAS, 1994. Issue 169. P. 132- (Melnikova, Prikhodko, 2006). In the be soil free; when importing plants in 136. Russian Federation, RpRSV was also containers, the soil substrate should be 2. Kuznetsova A.A., Keldysh M.A., detected on roses (Keldysh, 1994) and checked for absence of nematode vec- Pomazkov Y.I. Analysis of some dahlias (Shatilo, 1991). In the GBS RAS tors. raspberry leaf curl isolates // Indus- collection (Moscow), the infection of To ensure these measures, pre-ship- trial raspberry culture in the RSFSR. RpRSV in some rose varieties reached ment inspection of production sites, М., 1974. P. 77-82. 41% (Chervyakova and Keldysh, 1994). entry point inspection and laboratory 3. Melnikova N.N. Viral diseases According to the latest data, RpRSV testing of samples for RpRSVs should be of woody and ornamental crops and was detected on raspberry in the Mos- practiced. development of measures to control cow, Ryazan and Bryansk regions re- e following phytosanitary measures them // Synopsis of thesis, PhD in spectively in 19.0, 8.2 and 49.5% of the should be followed in the Russian Fede- Agriculture. М., 2005. 23 p. samples from 216, 44 and 78 tested. In ration: 4. Melnikova N.N., Prikhodko Y.N. the Moscow region, RpRSV abundance - systematic examination of host plan- Viral diseases of wood ornamental in the ve main raspberry varieties tations of RpRSV with sampling and cultures in the Moscow region // ranged from 17.5 to 29.4% (Upadyshev laboratory testing of samples; Agroecological aspects of sus- et al., 2014; Tikhonova, 2016; Tikhono- - cultivation of seed and planting ma- tainable development of agro-in- va et al., 2016). When RpRSV and terial only in production areas free from dustrial complex. Theses of scien- Raspberry bushy dwarf virus (RBDV) RpRSV; tific conference report. Bryansk. were co-infected, the productivity of some raspberry varieties decreased to 44% (Tikhonova et al., 2016). In the Republic of Belarus, RpRSV is widespread in the plantations of the Institute of Horticulture. us, nine black currant varieties tested were 100% infected with the virus. Infection of red currant varieties ranged from 5 to 100%, while raspberry infection averag ed 29.3% (Valasevich and Kol- banova, 2010). It should be noted that all these results were obtained using enzyme-linked immunoassay (ELISA) without addi- tional identication of the detected isolates by PCR. In order to clarify the phytosanitary status of RpRSV in the Russian Federa- tion, it is necessary to monitor it on all main host plants. Due to the import of a large number of host plants of RpRSV there is a constant danger of entry of new strains of the virus to the territory of the Russian Federation, and the presence of nematode vectors makes it possible to spread it quickly in existing plantations. In order to prevent the entry of RpRSV to the territory of the Russian Federation, the following phytosanitary measures should be practiced: - planting and seed material of all Fig. 8. Symptoms caused by RpRSV infection on a rose host plants should be free from RpRSV; (photo by S. von Bargen et al., 2015, Germany) - plants for planting of fruit, berry, Рис. 8. Симптомы, вызванные заражением RpRSV, на розе ornamental crops and grapes should (фото S. von Bargen et al., 2015, Германия)

50 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА PhD in Agriculture, Bryansk, 2006. papers of the All-Russian Selection en und Hygiene, 1977. Vol. 132. P. 47-50. and Technology Institute of Garden- P. 686-707. 5. Pomazkov Y.I. Viral diseases of ing and Nurseries, 2014. Vol. XXXVII. 26. Grunder J.M., Buser A. Viroses fruit and berry crops in the noncher- Part 2. P. 184-190. du cerisier (Prunus avium) causes nozem belt // Synopsis of thesis. PhD 14. Chervyakova O.N., Keldysh M.A. par des nematodes vecteurs // Sta- in Agriculture. М., 1975. 34 p. Nepovirus group on representatives tion de recherché Agroscope, Swit- 6. Prikhodko Y.N. Prevalence of of genera Rosa and Sorbus // Bulletin zerland, 2015. 4 s. viral and phytoplasmic diseases on of GBS, 1994. Issue. 170. P. 124-129. 27. Harrison B.D., Murant A.F., fruit and berry crops of the Euro- 15. Shatilo V.I. Viral diseases of Mayo M.A. Evidence for two func- pean part of Russia // Reports at the dahlias and recovery from them tional RNA species in Raspberry 2002 reporting session of the Hor- by the method of tissue culture // ringspot virus // Journal of General ticulture and Viticulture Section of Synop sis of thesis. PhD in Biology. Virology, 1972. Vol. 16. P. 339-348. the Department of Plant Industry of М., 1991. 21 p. 28. Lister R.M. Soilborne viruses as RAAS. М., 2002. P. 209-219. 16. Blok V.C., Wardell J., Jolly C.A., pathogens in strawberry // Virus di- 7. Prikhodko Y.N., Surkova O.Y. Manoukian A., Robinson D.J., Ed- seases of small fruits and grapevines, Gooseberry viral diseases in the wards M.L., Mayo M.A. The nucleo- a handbook (Ed. by Frazier N.W.), cent ral part of Russia // Fruit and tide sequence of RNA-2 of Raspber- 1970. P. 34-36. berry growing in Russia / Coll. of ry ringspot nepovirus // Journal of 29. Lister R.M., Murant A.F. research papers of the All-Russian General Virology, 1992. Vol. 73 (9). Seed-transmission of nematode-borne Selection and Technology Institute P. 2189-2194. viruses // Annals of Applied Biology, of Gardening and Nurseries, 1994. 17. Bremer K. Viral diseases occur- 1967. Vol. 59. P. 49-62. P. 124-134. ring on Ribes species in Finland // 30. Phatak H.C. Seed-borne plant 8. Prikhodko Y.N., Metlitskaya K.V. Annales Agriculturae Fenniae, 1983. viruses-identification and diagnosis Nematodes – vectors of phytopatho- Vol. 22. P. 104-109. in seed health testing // Seed Sci. genic viruses of fruit and berry crops // 18. Brown D.J.F., Taylor C.E., Technol., 1974. Vol. 2. P. 3-155. Bulletin of RAAS, 1994. No. 1. Choleva B., Romanenko N.D. The 31. Scientific opinion on the P. 27-29. occurrence of Longidoridae (Nema- risk to plant health posed by Ara- 9. Surkova O.Y. Analysis of harm- toda: Dorylaimida) in western USSR bis mosaic virus, Raspberry ring- fulness spread, etiology of viral and with further comments on longi- spot virus, Strawberry latent ring- virus-like diseases of red and black dorid nematodes in Europe and the spot virus and Tomato black ring currant and development of mea- Mediterranean basin // Nemato- virus to the EU territory with sures to control them in the central logia Mediterranea, 1990. Vol. 18. the identification and evalua- part of Russia // Synopsis of thesis, P. 199-207. tion of risk reduction options // PhD in Agriculture. М., 1994. 20 p. 19. Brunt A.A., Crabtree K., Dall- EFSA Journal, 2013. Vol. 11. P. 1-83. 10. Tikhonova K.O. Prevalence, witz M.J., Gibbs A.J., Watson L. and 32. Scott S.W., Zimmerman M.T., harmfulness of viral diseases and Zurcher E.J. Raspberry ringspot Jones A.T., Le Gall O. Differences effective methods of raspberry reco- nepovirus // Plant Viruses Online: between the coat protein amino acid very. Synopsis of thesis, PhD in Ag- Descriptions and Lists from the sequences of English and Scottish riculture. М., 2016. 20 p. VIDE Database. Version: 20th Au- serotypes of Raspberry ringspot vi- 11. Tikhonova K.O., Upadyshev M.T., gust 1996. http://biology.anu.edu.au/ rus exposed on the surface of virus Metlitskaya K.V. About harmfulness Groups/MES/vide. particles // Virus Research, 2000. of viruses on raspberry and recove- 20. CABI Crop Protection Com- Vol. 68 (2). P. 119-126. ry from them // Fruit growing and pendium. http://www.cabi.org/cpc/ 33. Valasevich N., Kolbanova E. berry growing in Russia / Coll. of datasheet?/2018. Occurrence of small fruit viruses research papers of the All-Russian 21. Cadman C.H. Studies on the in Belarus // 21st Int. Conf. Virus Selection and Technology Institute etiology and mode of spread of Scot- and other Transmissible Diseases of of Gardening and Nurseries, 2015. tish raspberry leaf curl disease // Fruit Crops / Julius-Kuhn-Archiv, Vol. XXXIII. P. 349-353. Journal of Horticultural Science, 2010. Vol. 427. P. 129-132. 12. Tikhonova K.O., Upadyshev M.T., 1956. Vol. 31. P. 111-118. 34. von Bargen S., Demiral R., Metlitskaya K.V. Prevalence and 22. Cadman C.H. Studies on the Büttner C. First detection of Raspber- harmfulness of raspberry viruses relationship between soil-borne vi- ry ringspot virus in mosaic diseased and modern methods of its recove- ruses of the ringspot type occurring hybrid roses in Germany // New Dis- ry // Coll. of research papers of the in Britain and continental Europe // ease Reports, 2015. Vol. 32. P. 18-19. All-Russian Selection and Technolo- Virology, 1960. Vol. 11. P. 653-664. 35. Wetzel T., Ebel R., Moury B., gy Institute of Gardening and Nurse- 23. Converse R.H. Virus diseases Le Gall O., Endisch S., Reustle G.M., ries, 2016. Vol. XXXXI. P. 234-238. of small fruits // USDA Agricultural Krczal G. Sequence analysis of 13. Upadyshev M.T., Metlitskaya K.V., Handbook, 1987. № 631. 277 s. grapevine isolates of Raspberry ring- Tikhonova K.O., Evdokimenko S.N. 24. EPPO Global Database, 2018. spot nepovirus // Archives of Virolo- About the prevalence of raspberry 25. Gordejchuk O.G., Krylov O.V., gy, 2006. Vol. 151. P. 599-606. viral diseases in the central part of Kyloba L.V., Samonina I.N. Zen- 36. Wetzel T., Krczal G. Molecular Russia // Fruit growing and berry tral blatt fur Bakteriologia, Para- biology of Raspberry ringspot virus // growing in Russia / Coll. of research siten kurde, Infectionskrankheit- Plant Viruses, 2007. Vol. 1. P. 45-51.

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 51 УДК 632.51 АНАЛИЗ ВОЗМОЖНОСТЕЙ ФОРМИРОВАНИЯ ОЧАГОВ КАРАНТИННЫХ ОБЪЕКТОВ ФИЛЛОКСЕРЫ И ЦЕНХРУСА ДЛИННОКОЛЮЧКОВОГО НА ТЕРРИТОРИИ БЕЛГОРОДСКОЙ ОБЛАСТИ А.Н. Мирошников, ведущий энтофитопатолог отдела карантина растений ФГБУ «Белгородская МВЛ» Л.П. Скотникова, начальник отдела карантина растений ФГБУ «Белгородская МВЛ»

Аннотация. Приводится информа- convexicollis Redtenbacher, 1849) (Орло- него времени, а также многочислен- ция о ликвидации в Белгородской обла- ва-Беньковская, 2013). ные специализированные выставки, сти в недавнем прошлом очагов двух Хорошо известным инвазионным проходящие в областном центре на карантинных объектов – филлоксеры видом является виноградная тля, регулярной основе (весной и осенью). и ценхруса длинноколючкового. Пока- или филлоксера Viteus vitifoliae Fitch. География участников таких выста- зана высокая вероятность заноса и В Едином перечне карантинных объ- вок включает не только центральные, акклиматизации таких объектов в ектов Евразийского экономического но и южные регионы России. В связи будущем. союза этот вид включен в список А2 с тем, что основным источником за- Ключевые слова. Инвазии, ка- (ограниченно распространенных на носа филлоксеры на новые террито- рантинный объект, Белгородская его территории). Родиной вредителя рии является посадочный материал область, филлоксера, Dactylosphaira являются восточные районы Север- (Данкверт и др., 2009), а данный вид vitifoliae, ценхрус длинноколючковый, ной Америки (Матвейкина, 2013). вредителя распространен в Крас- Cenchrus longispinus. В 60-х годах XIX века тля была за- нодарском крае и Республике Крым везена в Европу, где в одной только (Казас и др., 1960), откуда может по- В последнее время инвазионным Франции от ее «деятельности» погиб- ступить посадочный материал, веро- видам растений и животных уделяет- ло свыше 2,4 млн га виноградников ятность проникновения вредителя ся все большее внимание в специаль- (Данкверт и др., 2009). Вредитель ха- в Белгородскую область можно оце- ной литературе. Благодаря широкому рактеризуется четко выраженным по- нить как высокую. Акклиматизации спектру приспособительных механиз- лиморфизмом и повреждает надзем- этого вида будут способствовать из- мов такие организмы сравнительно ные и подземные части виноградной менения климата, затронувшие рас- легко адаптируются к различным лозы (Юрченко, Кононенко, 2018). сматриваемый регион. В частности, местообитаниям, вызывая значи- Несмотря на то что промышлен- с начала XX века зимний период на тельные изменения в экосистемах ное возделывание винограда в Рос- территории Белгородской области со- (Кузнецов, Стороженко, 2010). Кроме сии исторически сложилось в южных кратился на 10 дней, наблюдается тен- того, обосновавшийся на новом месте районах страны, любительское вино- денция к увеличению средних темпе- инвайдер может приводить к измене- градарство в последнее время повсе- ратур. Кроме того, увеличилась про- ниям границ ареалов последующих местно приобретает массовый харак- должительность весеннего периода – вселенцев. Например, относительно тер и становится модным увлечением. как за счет сокращения зимы, так и за недавняя инвазия ясеневой узкотелой Например, так происходит в Цен- счет некоторого сокращения летнего златки (Agrilus planipennis Fairmaire, тральном Черноземье, и в частности в периода (Лебедева, Крымская, 2008; 1888) в Центральную Россию вызва- Белгородской области, где благопри- Матвейкина, 2013). Обоснованию по- ла резкое расширение ареалов еще ятные климатические условия сочета- пуляций филлоксеры в Белгородской двух членистоногих, более южных – ются с подходящими плодородными области может способствовать и то, жука-усача (Tetrops starkii Chevrolat, почвами. Отчасти этому способству- что регион тесно соседствует с Укра- 1859) и другой близкой златки (Agrilus ют селекционные достижения послед- иной, на территории которой фитоса-

52 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Рис. 1. Вегетирующее растение Cenchrus longispinus на станции Белгород ЮВЖД, 2010 г. Fig. 1. Vegetative plant Cenchrus longispinus at the station Belgorod South railway, 2010

нитарная обстановка по филлоксере зоны по филлоксере и отменены ка- ются за одежду, обувь людей и шерсть не может считаться благополучной: рантинные фитосанитарные режимы животных (Волкова, 2011; Методиче- в 2007 году вредитель рассматривал- (Отчет о деятельности отдела.., 2017). ские рекомендации.., 2013). ся как регулируемый некарантинный Среди инвазионных видов особое Род Cenchrus L. включает около 25 вредный организм (Матвейкина, место занимают растения. Многие видов растений, распространенных в 2013)1 в отношении которого прини- инвазионные растения являются тропических и субтропических поя- маются фитосанитарные меры к вво- крайне вредоносными сорняками, сах обоих полушарий (Алексеев и зимому посадочному материалу. поэтому относятся к карантинным др., 2006). Растения этого сложного По данным Территориального объектам. Поселяясь на обочинах в таксономическом отношении рода управления Россельхознадзора по автомобильных и/или железных отдают предпочтение открытым ме- Белгородской области (далее – ТУ дорог и пустырях, такие растения стам с рыхлым, достаточно влажным РСХН), в 2013 году было зафиксиро- в короткие сроки (благодаря высо- субстратом и произрастают, как пра- вано два случая обнаружения этого ким адаптационным способностям) вило, в составе нарушенных фитоце- узкоспециализированного монофага проходят все стадии адвентизации, нозов: вдоль обочин дорог, на свалках винограда (Отчет о деятельности от- распространяются на поля и сельхоз- и в прочих местах (Методические ре- дела.., 2016) – в садоводческом потре- угодья, где, засоряя посевы, резко комендации.., 2013). бительском кооперативе и на приуса- снижают как сам урожай, так и его В 2009 году это адвентивное расте- дебном участке в одном из районов на качество (Разумова, 2018; Сухоруков, ние было обнаружено в Белгородской севере области. Площадь двух очагов Кушунина, 2012). Примером может области при изучении сорной расти- составила 0,061 га. В границах зара- служить ценхрус длинноколючковый тельности (Тохтарь, Фомина, 2010). женных территорий была установле- (Cenchrus longispinus (Hack.) Fern.). В 2010 году по данному объекту был на карантинная фитосанитарная зона В Едином перечне карантинных объ- наложен карантин (очаг площадью и введен карантинный фитосанитар- ектов Евразийского экономического 0,01 га) и установлена карантинная ный режим. Пораженные растения союза этот вид включен в список А2 фитосанитарная зона, площадь кото- винограда были выкорчеваны и унич- (ограниченно распространенных на рой составила 3,15 га. В дальнейшем тожены. Контрольные обследова- его территории). Растение отличается ежегодные обследования, проводи- ния, проведенные специалистами ТУ чрезвычайной засухоустойчивостью мые в очаге, вегетирующих растений РСХН и ФГБУ «Белгородская МВЛ» и высокой вредоносностью: вредит Cenchrus longispinus не выявили. По- в следующие годы, показали, что в полевым (особенно пропашным) этому с 2013 года очаг этого каран- карантинных фитосанитарных зо- культурам, негативно сказывается на тинного растения в Белгородской нах виноград не выращивался, новые продуктивности пастбищ, здоровье области считается ликвидированным. очаги филлоксеры не зафиксированы. людей и сельскохозяйственных жи- Ранее в России этот адвентивный В 2017 году, в связи с отсутствием ка- вотных. Карантинный сорняк имеет сорняк был зарегистрирован в Крас- рантинного объекта, были упразд- острые прочные соплодия, которые нодарском крае и Волгоградской об- нены карантинные фитосанитарные ранят кожные покровы, легко цепля- ласти (Цвелев, Бочкин, 1992). Соглас-

1 Информация с официального сайта Главной государственной фитосанитарной инспекции http://karantin.gov.ua/karantin_docs, по состоянию на 20 декабря 2014 г. (Приказ Министерства агрополитики Украины 29 ноября 2006 г. № 716 (в ред. от 04.08.2010 № 467)).

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 53 9. Национальный доклад о каран- тинном фитосанитарном состоянии территории Российской Федерации в 2016 году. М.: Росинформагротех, 2016. 55 с. 10. Национальный доклад о каран- тинном фитосанитарном состоянии территории Российской Федерации в 2017 году. М., 2018. 25 с. 11. Орлова-Беньковская М.Я. Tetrops starkii (Coleoptera: Cerambycidae) и Agrilus convexicollis (Coleoptera: Buprestidae) – вредители ясеня, со- путствующие ясеневой изумрудной узкотелой златке / VII чтения памя- ти О.А. Катаева: Материалы меж- дународной конференции «Вреди- тели и болезни древесных растений Рис. 2. А.Н. Мирошников проводит энтомологическую экспертизу России». Санкт-Петербург, 25-27 Fig. 2. A.N. Miroshnikov is carrying out an entomological expertise нояб ря 2013 г. СПб.: СПбГЛТУ, 2013. С. 67-68. но данным Национального доклада Поволжья. Т. 1. М.: Товарищество 12. Разумова Е.В. О возможности о карантинном фитосанитарном научных изданий КМК, 2006. 435 с. натурализации ипомеи плющевидной состоянии территории Российской 2. Волкова Е.М. Опасный сорняк на территории Воронежской области // Федерации, за последние годы (2016- осваивает новые регионы России // Защита и карантин растений, 2018. 2017 гг.) очаги ценхруса обнаружены Защита и карантин растений, 2011. № 9. С. 40-42. также в Ставропольском крае и Рес- № 8. С. 30-32. 13. Сухоруков А.П., Кушунина М.А. публике Крым (Национальный док- 3. Данкверт С.А., Маслов М.И., Новые данные по адвентивной лад.., 2016, 2018). По состоянию на 1 Магомедов У.Ш., Мордкович Я.Б. фракции флоры Белгородской об- января текущего года очаги данного (науч. ред.) Вредные организмы, ласти // Научные ведомости БелГУ. карантинного сорняка в России за- имеющие карантинное фитосани- Серия: Естественные науки, 2012. регистрированы на площади свыше тарное значение для Российской Фе- № 21 (140). С. 40-46. 19 га, а суммарная площадь установ- дерации. Воронеж: Научная книга, 14. Тохтарь В.К., Фомина О.В. Ценх- ленных карантинных фитосанитар- 2009. С. 153. рус длинноколючковый – еще один ных зон превышает 720 га (Нацио- 4. Казас И.А., Горкавенко А.С., американский «гость» Центрально- нальный доклад.., 2018). Пойченко В.М. Филлоксера и меры го Черноземья // Защита и карантин Обнаружение филлоксеры и борьбы с ней. Симферополь: Крым- растений, 2010. № 12. С. 26-27. ценхруса не только в администра- издат, 1960. 230 с. 15. Цвелев Н.Н., Бочкин В.Д. О новых тивных подразделениях Южного 5. Кузнецов В.Н., Стороженко С.Ю. и редких для Краснодарского края ад- и Северо-Кавказского федераль- Инвазии насекомых в наземные эко- вентивных растениях // Бюлл. МОИП., ных округов, но и в Центральной системы Дальнего Востока России // отд. биол., 1992. Т. 97. № 5. С. 99-106. России (Белгородская область) Российский журнал биологических 16. Юрченко Е.Г., Кононенко С.В. свидетельствует о потенциально инвазий, 2010. № 1. С. 12-18. Биоэкологические особенности ли- высокой вероятности проникно- 6. Лебедева М.Г., Крымская О.В. стовой филлоксеры на виноградни- вения карантинных объектов в Проявление современных клима- ках Тамани и поиск эффективных более северные регионы с после- тических изменений в Белгород- инсектицидов в борьбе с ней / Науч- дующей акклиматизацией. В связи ской области // Научные ведомости ные труды СКФНЦСВВ, 2018. Т. 18. с этим представляется совершенно БелГУ. Серия: Естественные науки, С. 91-96. обоснованным проведение целого 2008. № 3 (43). С. 188-195. 17. Отчет о деятельности отдела комплекса карантинных фитосани- 7. Матвейкина Е.А. Эффективность надзора в области карантина расте- тарных мероприятий. Кроме того, инсектицидов при защите виноград- ний ТУ РСХН по Белгородской обла- своевременное информирование ников от листовой формы филлоксе- сти в 2016 году. населения о потенциально опасных ры в условиях Южного берега Кры ма / 18. Отчет о деятельности отдела сорняках и беспозвоночных будет Е.А. Матвейкина, Е.П. Странишев- надзора в области карантина расте- способствовать их раннему обна- ская // «Магарач». Виноградарство и ний ТУ РСХН по Белгородской обла- ружению и, следовательно, суще- виноделие, 2013. № 2. С. 15-17. сти в 2017 году. ственному сокращению расходов 8. Методические рекоменда- 19. http://www.aif.ru/archive/ на борьбу с ними. ции по выявлению и идентифи- 1704032. кации ценхруса малоцветково- 20. https://altapress.ru/potrebitel/ Литература го (Cenchrus pauciflorus Benth.) story/umnaya-kultura-kak-reshit- 1. Алексеев Ю.В., Клинкова Г.Ю., и близких к нему видов. М.: problemi-vozdelivaniya-vinograda- Лактионов А.П. и др. Флора Нижнего ФГБУ «ВНИИКР», 2013. 60 с. na-altae-108591.

54 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА UDC 632.51 THE ANALYSIS OF OUTBREAK FORMATION POSSIBILITIES OF QUARANTINE PESTS: PHYLLOXERA ¢DACTYLOSPHAIRA VITIFOLIAE£ AND SPINY BURR GRASS ¢CENCHRUS LONGISPINUS£ IN THE BELGOROD REGION, RUSSIA A.N. Miroshnikov, Leading Entophytopatologist of the Plant Quarantine Department of FGBU “Belgorodskaya MVL” L.P. Skotnikova, Head of Plant Quarantine Department of FGBU “Belgorodskaya MVL”

Abstract. Information on the recent the aphid was brought into Europe, and decreased by 10 days, and there is a ten- elimi nation of two quarantine pest out- in France alone, more than 2.4 million dency of average temperatures increasing. breaks in the Belgorod region: phylloxera hecta res of vineyards died due to its ac- In addition, the duration of the spring has and Spiny burr grass, is provided. e high tivity (Dankvert et al., 2009). e pest is increased, due to the reduction of winter probability of introduction and acclimatiza- characterized by a clear polymorphism and summer periods (Lebedev, Krym- tion of such objects in the future is shown. and damages the above-ground and skaya, 2008; Matveykina, 2013). e es- Keywords. Invasion, quarantine ob- underground parts of the grape-vine tablishment of phylloxera populations in ject, Belgorod region, phylloxera, Dac- (Yurchenko, Kononenko, 2018). the Belgorod region may also be facilitated tylosphaira vitifoliae, Spiny burr grass, Despite the fact that the industrial cul- by the fact that the region is closely adja- Cenchrus longispinus. tivation of grapes in Russia has histori- cent to Ukraine, where the phytosanitary cally developed in the southern regions situation with respect to phylloxera cannot Recently, invasive species of plants and of the country, amateur viticulture in be considered safe: in 2007, the pest was animals get more and more attention recent years has become a common and considered as a regulated non-quarantine in the specialist literature. Due to a wide fashion able hobby. For example, this is pest, in respect of which phytosanitary range of adaptive mechanisms, such or- typical for the Central Black Earth Re- measures to the imported planting mate- ganisms are relatively easy to adapt to dif- gion, and in particular in the Belgorod rial are taken (Matveykina, 2013)1. ferent habitats, causing signicant changes region, where favorable climatic condi- According to the Regional O¦ce of in ecosystems (Kuznetsov, Storozhenko, tions are combined with suitable fertile Rosselkhoznadzor for the Belgorod region 2010). In addition, the new location of soils. is is partly a result of the recent (hereina¥er – Rosselkhoznadzor Regio- the invader can result in changes of the selection achievements, as well as nu- nal O¦ce), in 2013, two cases of detection habitat boundaries of subsequent immi- merous specialized exhibitions which are of this highly specialized monophage of grants. For example, the relatively recent held regularly in the regional center (in grapes were recorded (Report on the ac- invasion of the emerald ash borer (Agrilus spring and autumn). tivities of the Department.., 2016): in a planipennis Fairmaire, 1888) into Central e participants of such exhibitions are horticultural consumer cooperative and in Russia caused a vast expansion of the areas from not only Central but also Southern a homestead land in one of the districts in of two more arthropods, more southern: regions of Russia. Due to the fact that the the northern part of the region. e area of longhorn beetle (Tetrops starkii Chevrolat, main source of introduction of phylloxe- the two outbreaks was 0.061 ha. Within the 1859) and other close borer species (Agri- ra into new territories is planting material boundaries of the infected areas, a quaran- lus convexicollis Redtenbacher, 1849) (Or- (Dankvert et al., 2009), and this type of tine phytosanitary zone was established lova-Benkovskaya, 2013). the pest is distributed in Krasnodar Krai and a quarantine phytosanitary regime A well-known invasive species is the and the Republic of Crimea (Kazas et al., was introduced. e aected grape plants vine louse or the grapevine louse Viteus 1960), from where the planting material were grubbed up and destroyed. Control vitifoliae Fitch. In the Common list of can arrive, the probability of the pest in- surveys conducted by the experts of Ros- quarantine objects of the Eurasian Eco- troduction into the Belgorod region can selkhoznadzor Regional O¦ce and FGBU nomic Union, this type is included into be estimated as high. Climate change af- “Belgorodskaya MVL” in the following the list A2 (locally presented pests). e fecting the region will contribute to the ac- years, demonstrated that the grapes were place of origin of the pest is the Eastern climatization of this species. In particular, not grown in the phytosanitary quaran- parts of North America (Matveykina, since the beginning of the XX century, the tine zones and new outbreaks of phyllox- 2013). In the 60s of the XIX century, winter period in the Belgorod region has era were not recorded. In 2017, due to the

1 Information from the o£cial website of the Main State Phytosanitary Inspection http://karantin.gov.ua/karantin_docs, as of December 20, 2014 (Order of the Ministry of agrarian policy of Ukraine, November 29, 2006 № 716, as amended from 04.08.2010 № 467)).

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 55 absence of the quarantine object, quaran- Crimea (National report.., 2016, 2018). 8. Guidelines for the identica- tine phytosanitary zones for phylloxera As of January, 1 of the current year, the tion of low-owered Spiny burr grass were abolished and quarantine phytosan- outbreaks of this quarantine weed in (Cenchrus pauciorus Benth.) and spe- itary regimes were abolished (Report on Russia are registered within the area of cies close to it. М.: FGBU “VNIIKR”. the activities of the Department.., 2017). more than 19 hectares, and the total area 2013. 60 pages. Plants play a special role among invasive of the established quarantine phytosani- 9. National report on the quarantine species. Many invasive plants are extremely tary zones exceeds 720 hectares (Natio- phytosanitary situation of the territory harmful weeds, so they belong to quaran- nal report.., 2018). of the Russian Federation in 2016. М.: tine objects. Establishing on the roadsides e detection of the grapevine louse Rosinformagrotech, 2016. 55 pages. and/or near railways and waste grounds, and the spiny burr grass in the administ- 10. National report on the quarantine such plants within a short period of time rative units of the Southern and North- phytosanitary situation of the territory (due to high adaptive abilities) pass adven- ern Caucasus Federal districts and in of the Russian Federation in 2017. M., tive stages and spread on elds and farm- Central Russia too (Belgorod region) 2018. 25 pages. lands, where their contamination of crops indicates a potentially high introduction 11. Orlova-Benkovskaya M.Y. Tetrops extremely reduce the quantity and quality probability of the quarantine object to starkii (Coleoptera: Cerambycidae), of the harvest (Razumova, 2018; Sukho- the Northern regions and its subsequent and Agrilus convexicollis (Coleoptera: rukov, Kushunina, 2012). An example is acclimatization. In this regard, it seems Buprestidae) ash pests associated with the Spiny burr grass (Cenchrus longispi- quite reasonab le to carry out a whole emerald ash borer / Readings VII in nus (Hack.) Fern.). In the Common list range of quarantine phytosanitary mea- the memory of O.A. Kataev: Materials of quarantine objects of the Eurasian Eco- sures. In addition, timely informing of the international conference “Pests nomic Union, this type is included into the the public about potentially dangerous and diseases of woody plants of Russia”. list A2 (locally presented pests). e plant weeds and invertebrates will contribute St. Petersburg, 25-27 November 2013. is characterized by extreme drought resis- to their early detection and, therefore, SPb.: SPBGLTU, 2013. P. 67-68. tance and high harmfulness: it damag es signicantly lower costs of their control. 12. Razumova E.V. On the Possibility eld (especially tilled) crops, aects the of the Morning Glory Naturalization in productivity of pastures, human health References the Voronezh Region // Plant Protection and farm animals. Quarantine weed has 1. Alekseev Y.V., Klinkova G.Y., Lak- and Quarantine, 2018. No. 9. P. 40-42. sharp, strong collective fruits, which can tionov A.P et al. Flora of e Lower Volga 13. Sukhorukov A.P., Kushunina M.A. injure skin, easily cling to clothes, shoes region. Vol. 1. М.: Association of scientif- New data on the adventive fraction of and animal hair (Volkova, 2011; Methodi- ic publications KMK, 2006. 435 p. the Belgorod region ora // Scientic cal guidelines.., 2013). 2. Volkova E.M. Dangerous weed Bulletin of BelGU. Series: Natural Sci- e genus Cenchrus L. includes about comes to new regions of Russia // Plant ences, 2012. № 21 (140). P. 40-46. 25 species of plants distributed in tropical Protection and quarantine, 2011. No. 8. 14. Tokhtar V.K., Fomina O.V. Spiny and subtropical zones of both hemispheres P. 30-32. burr grass is another American “guest” (Alekseev et al., 2006). Plants of this taxo- 3. Dankvert S.A., Maslov M.I., Ma- in the Central Black Earth Region // nomically complex genus prefer open are- gomedov U.S., Mordkovich Y.B. (sc. Protection and quarantine of plants, as with a loose, fairly moist substrate and ed.). Pests of quarantine phytosanitary 2010. No. 12. P. 26-27. grow, as a rule, in disrupted phytocenoses: signicance for the Russian Federation. 15. Tsvelev N.N., Bochkin V.D. About along the roadsides, in landlls and other Voronezh: Nauchnaya kniga, 2009. new and rare adventive species of the places (Methodical guidelines.., 2013). P. 153. Krasnodar region plants // Bull. Mos- In 2009, this adventive plant was found 4. Casas I.A., Gorkavenko A.S., Boi- cow society of naturalists, Biology dep. in the Belgorod region during the studying chenko V.M. Phylloxera and the cont- 1992. Vol. 97. No. 5. P. 99-106. of the weed vegetation (Tokhtar, Fomina, rol measures. Simferopol: Krymizdat, 16. Yurchenko E.G., Kononenko S.V. 2010). In 2010, this object was quaran- 1960. P. 230. Bioecological features of leaf phylloxe- tined (outbreak area of 0.01 hectares) and a 5. Kuznetsov V.N., Storozhenko S.Y. ra in Taman vineyards and the search quarantine phytosanitary zone was estab- Insect invasions in terrestrial ecosys- for eective insecticides for control / lished, the area of which was 3.15 hectares. tems of the Russian Far East // Russian Scientic works of SKFNTSVV, 2018. In the future, annual surveys conducted in journal of biological infestations, 2010. Vol. 18. P. 91-96. the outbreak did not reveal any vegetating No. 1. P. 12-18. 17. A report on the activities of the De- plants Cenchrus longispinus. erefore, 6. Lebedeva M.G., Krymskaya O.V. partment of surveillance in the sphere of since 2013, the outbreak of this quarantine The appearance of modern climatic plant quarantine TU Rosselkhoznadzor plant in the Belgorod region is considered changes in the Belgorod region // for the Belgorod region in 2016. to be eliminated. Scientific Bulletin of BelGU. Series: 18. A report on the activities of the Earlier in Russia, this adventive weed Natural Sciences, 2008. № 3 (43). surveillance Department in the sphere of was registered in Krasnodar and Volgo- P. 188-195. plant quarantine TU Rosselkhoznadzor grad regions (Tsvelev, Bochkin, 1992). 7. Matveykina E.A. e eectiveness for the Belgorod region in 2017. According to the National report on the of insecticides in the protection of vine- 19. http://www.aif.ru/archive quarantine phytosanitary situation of yards from the leaf form of phylloxera in /1704032. the territory of the Russian Federation, the southern coast of Crimea / E.A. Mat- 20. https://altapress.ru/potrebitel/ in recent years (2016-2017) outbreaks of veykina, E.P. Stranishevskaya // “Maga- story/umnaya-kultura-kak-resh it- Spiny burr grass have also been found in rach”. Viticulture and winemaking, 2013. problemi-vozdelivaniya-vinograda- the Stavropol region and the Republic of No. 2. P. 15-17. na-altae-108591.

56 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА УДК 632 ЭКСПЕДИЦИОННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ ВРЕДИТЕЛЕЙ ЮЖНОЙ ЧАСТИ КОРЕЙСКОГО ПОЛУОСТРОВА И.О. Камаев, старший научный сотрудник научно-экспериментального отдела ФГБУ «ВНИИКР» Г.С. Красовский, переводчик отдела фитосанитарных рисков и международного взаимодействия ФГБУ «ВНИИКР»

Аннотация. Статья посвяще- Восточно-Азиатский регион, ох- molesta и коричнево-мраморный на экспедиционным исследованиям ватывающий Японские острова, клоп Halyomorpha halys; последние насекомых и клещей, а также по- Корейский полуостров, островную два вида в настоящее время широко левым наблюдениям, проведенным часть и восточную область равнин- распространились в мире. Этим был в условиях южной части Корей- ного Китая, является регионом про- обусловлен интерес специалистов ского полуострова специалистами исхождения многих инвазионных ФГБУ «ВНИИКР» к фауне данно- ФГБУ «ВНИИКР». видов, в том числе карантинных го региона, результатом чего стало Ключевые слова. Защита рас- вредителей. К таковым относятся, проведение экспедиционной поезд- тений, экспедиция, вредители, например, можжевельниковый пау- ки в первой половине августа 2018 насекомые, клещи, Корейский по- тинный клещ Oligonychus perditus, года. Подобные поездки продолжа- луостров. восточная плодожорка Grapholita ют традиции ФГБУ «ВНИИКР» по

Рис. 1. Сборы насекомых с Корейского полуострова, проведенные сотрудниками ФГБУ «ВНИИКР» в 1950-60-е гг. Fig. 1. Collecting of insects from the Korean Peninsula, carried out by the FGBU “VNIIKR” specialists in the 1950s-60s

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 57 исследованию мировой фауны вред- ных организмов. В частности, пер- вые экспедиционные исследования по карантинным объектам и вреди- телям на территории Корейского по- луострова сотрудниками института проводились еще с 1950-х (рис. 1). Предваряя описание проведенных в полевых условиях исследований, следует дать краткую характеристи- ку района исследований. Террито- рия южной половины Корейского полуострова в значительной мере (в центральной и восточной частях) покрыта относительно невысокими горами, главным образом докемб- рийского происхождения (рис. 2), в западной части расположены не- большие равнины. Данная террито- рия относится к умеренному кли- матическому поясу с избыточным увлажнением, субтропическому Рис. 2. Горный ландшафт и рисовые чеки Кореи (фото И.О. Камаева) (в основном равнины), океаниче- Fig. 2. e mountain landscape and paddy elds in Korea (photo by I.O. Kamayev) скому и континентальному (горная часть) и подвергается воздействию условиями, с учетом также распро- изготовления микропрепаратов и восточно-азиатского муссона. странения возделываемых сель- определения материала был выяв- Из сельскохозяйственных куль- скохозяйственных культур (рис. 5). лен можжевельниковый паутинный тур в данном регионе наибольшее Отдельное внимание уделялось де- клещ Oligonychus perditus (рис. 9) – значение имеют зерновые (в первую коративным культурам, особенно карантинный объект для ЕАЭС, очередь рис – 5,6 млн т было собра- представителям семейства кипа- особи которого встречались вместе но в 2016 г. (рис. 3), в существенно рисовые, поскольку они являются с особями другого, филогенетически меньшей степени – кукуруза, пше- предпочитаемыми растениями для близкого вида Oligonychus ununguis. ница, ячмень), плодовые и овощ- можжевельникового паутинного Оба вида широко распространены ные; последние в производственных клеща Oligonychus perditus. на территории Южной Кореи (Lee масштабах выращиваются по боль- Исследования декоративных на- et al., 1989). Можжевельниковый шей части в условиях защищенного саждений кипарисовых (туи, мож- паутинный клещ в большей степе- грунта (рис. 4), в частном секторе жевельников, биоты) в городских ни предпочитает растения, произ- возделываются в открытом грунте. условиях Сеула (рис. 6-7), Чхунч- растающие вдоль обочин дорог, то По производству лука Южная Корея хона, Дэчона, Пхентхэка, Вонджу есть находящиеся под воздействием входит в десять ведущих стран-про- (рис. 8) позволили обнаружить пау- неблагоприятных условий. Таким изводителей (412 тыс. т свежих луко- тинных клещей. В дальнейшем, уже образом, на одном растении могут вичных овощей и 1,2 млн т сушеных на базе ФГБУ «ВНИИКР», после обитать особи разных видов рода овощей), кроме того, здесь произво- дятся томаты (467 тыс. т), острый пе- рец (257 тыс. т) и др. Плодовые куль- туры также имеют значение для ана- лизируемого региона. В частности, производство цитрусовых в Южной Корее достигает 698,7 тыс. т, косточ- ковых – около 300 тыс. т, семечковых – около 800 тыс. т; кроме того, объемы выращиваемого урожая винограда составляют 245 тыс. т. Для всех выращиваемых культур ха- рактерен комплекс вредных организ- мов, некоторые из которых имеют ка- рантинное значение для стран ЕАЭС. В ходе поездки планировалось посещение всех ключевых локали- тетов южной половины Корейского полуострова с различными геомор- Рис. 3. Рисовые чеки Кореи (фото И.О. Камаева) фологическими и климатическими Fig. 3. Paddy elds in Korea (photo by I.O. Kamayev)

58 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА Oligonychus, включая карантинный объект, что необходимо учитывать при проведении лабораторных ис- следований. В результате поездки был собран материал по можжевельниковому паутинному клещу, до недавнего вре- мени отсутствовавший в акарологи- ческих коллекциях ведущих научных учреждений Российской Федерации, включая Зоологический институт РАН, Никитский ботанический сад-институт и ФГБУ «ВНИИКР». На растениях тиса в г. Чхунчхо- не паутинные клещи выявлены не были, хотя по литературным данным отмечались; однако были обнаруже- ны щитовки Pseudaulacaspis cockerelli (рис. 10) – вид, близкий к каран- тинному виду – тутовой щитовке Рис. 4. Ландшафт горной части Кореи, на переднем плане заметна теплица Pseudaulacaspis pentagona. Идентифи- (фото И.О. Камаева) кацию данного вида провели науч- Fig. 4. e landscape of the mountainous part of Korea, one can see a greenhouse in the ные сотрудники ФГБУ «ВНИИКР» foreground (photo by I.O. Kamayev) Н.А. Гура и А.В. Шипулин. В естественных условиях в окрест- ностях г. Дэчона на растениях пих- ты цельнолистной Abies holophylla и можжевельника Juniperus rigida были отмечен только Oligonychus ununguis (рис. 11). В декоративных насаждениях можжевельника г. Сеула была об- наружена особь коричнево-мра- морного клопа Halyomorpha halys – карантинного объекта ЕАЭС, мно- гоядного и чрезвычайно агрессив- ного инвайдера, в настоящее время угрожающего плодоводству южных регионов европейской части России. Осмотр дикорастущего дерева пер- сика в окрестностях Нагсан-Мьен по- зволил выявить многочисленные по- вреждения неодревесневающих побе- гов (рис. 12) – характерный симптом, Рис. 5. Карта исследованных локалитетов территории южной части Корейского вызываемый гусеницами восточной полуострова (изображение построено с помощью ПО Google Earth) плодожорки. Внутри побегов были Fig. 5. e map of the studied localities in the southern part of the Korean Peninsula обнаружены ходы и гусеницы вреди- (image is built by means of Google Earth SW) теля (рис. 13). Растительный материал с повреждениями был гербаризиро- косточку плода (рис. 15), при этом Среди филлофагов были отмече- ван для учебных целей, а гусеницы со- на один плод может приходиться ны гусеницы горностаевых молей браны для коллекции. На листьях рас- от 3 до 5 личинок. Кроме того, были (Yponomeutidae), скелетирующих тения встречались многочисленные обнаружены плоды с симптомами листья и опутывающих побеги шел- особи боярышникового паутинного бурой монилиозной гнили (рис. 16). ком. Плоды с внешней стороны были клеща Amphitetranychus viennensis – В лабораторных условиях миколога- повреждены жуками-бронзовками космополитического вредителя пло- ми ФГБУ «ВНИИКР» была проведена (Cetoniinae), а внутри – гусеницами довых культур. В плодах персика идентификация образца и подтверж- семейства Tortricidae: Grapholitini и (падалице) были выявлены гусеницы дено, что указанные симптомы были Pyralidae (при этом грушевая огнев- персиковой плодожорки Carposina вызваны Monilinia fructicola – каран- ка-плодожорка Numonia pyrivorella niponensis (рис. 14) и представители тинным объектом ЕАЭС. не была обнаружена). Рядом с на- семейства Pyralidae – последние круп- Деревья груши, высаженные саждениями груши располагался нее по размерам, с крупными замет- в районе г. Пхентхэка (рис. 17), были сад, в котором на растениях хмеля ными щитками и могут повреждать повреждены комплексом видов. наблюдалось массовое развитие

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 59 гусениц американской белой бабоч- ки Hyphantria cunea – карантинного объекта ЕАЭС (рис. 18). Исследование окрестностей г. Мун- ген (рис. 3) позволило выявить два вида черед Bidens spp. (рис. 19), гер- барные материалы которых были пе- реданы гербологам ФГБУ «ВНИИКР» для идентификации. В окрестностях г. Вонджу (рис. 20) обнаружены яйцекладки азиатско- го подвида непарного шелкопряда Lymantria dispar asiatica (карантин- ный объект), идентификация ко- торого была проведена молекуляр- но-генетическими методами в ФГБУ «ВНИИКР» по методике Камаева и др. (2015). Здесь же был обнаружен ягодник (Vaccinium sp.) с характер- ными повреждениями, нанесенны- Рис. 6. Парк в Сеуле (фото И.О. Камаева) ми азиатской ягодной дрозофилой Fig. 6. Park in Seoul (photo by I.O. Kamayev) Drosophila suzukii (карантинный объект). Подводя предварительные итоги Литература экспедиционных исследований на 1. Lee W.K., Lee B.H., Kim B.J. Корейском полуострове, следует Taxonomic studies on spider mites отметить, что в результате были по- (Tetranychidae, Acarina) of Korea. III. лучены сведения о фауне и биоло- Spider mites parasitic on conifers // гии важнейших сельскохозяйствен- Korean Journal of Systematic Zoology, ных и лесных вредителей, сделаны 1989. № 5. P. 13-24. оригинальные иллюстрации вред- 2. Камаев И.О., Мазурин Е.С., Ши- ных организмов и вызываемых ими пулин А.В. Непарный шелкопряд повреждений, а также был собран (Lymantria dispar): выделение внут- материал для научных коллекций, ривидовых комплексов и молеку- разработки молекулярно-генети- лярно-генетические подходы к иден- Рис. 7. Можжевельник Juniperus sp., ческих методов идентификации тификации азиатского подвида // зараженный Oligonychus perditus. вредных организмов, стандартных Карантин растений. Наука и прак- Парк в Сеуле (фото И.О. Камаева) образцов, учебных коллекций для тика, 2015. № 1 (11). С. 45-58. Fig. 7. Juniperus sp., infested by курсов повышения квалификации 3. http://www.fao.org/; http://faostat. Oligonychus perditus. Park in Seoul и стажировок. fao.org.) (photo by I.O. Kamayev)

Рис. 8. Можжевельник Juniperus sp., зараженный Oligonychus perditus. Рис. 9. Внешний вид Oligonychus perditus Насаждения в Вонджу (фото И.О. Камаева) (фото И.О. Камаева) Fig. 8. Juniperus sp., infested by Oligonychus perditus. Plantings in Wonju Fig. 9. Appearance of the Oligonychus perditus (photo by I.O. Kamayev) (photo by I.O. Kamayev)

60 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА UDC 632 EXPEDITIONARY STUDIES OF PESTS IN THE SOUTHERN PART OF THE KOREAN PENINSULA I.O. Kamayev, Senior Researcher of the Research and Testing Department FGBU “VNIIKR” G.S. Krasovsky, Translator of Phytosanitary Risk and International Cooperation Department FGBU “VNIIKR”

Abstract. e article is devoted to the expedition studies of insects and mites, as well as eld observations conducted in the southern part of the Korean Peninsula by the specialists of the FGBU “VNIIKR”. Keywords. Plant protection, expedition, pests, insects, mites, Korean Peninsula.

e East Asian region that includes the Japanese Islands, the Korean Peninsu- la, the insular part and the Eastern plain region of China, is the place of many invasive species origin, and also quarantine pests. ey include, for example, juniper spider mite, Oligonychus perditus, oriental fruit moth Grapholita molesta and brown marmorated stink bug Halyomorpha halys; the latter two species are currently widely distributed all over the world. is Fig. 10. Scale insects Pseudaulacaspis cockerelli, detected on a yew tree fact became the basis for the interest of (photo by I.O. Kamayev) FGBU “VNIIKR” experts in the fauna of Рис. 10. Щитовки Pseudaulacaspis cockerelli, обнаруженные на тисе this region and as a result, an expedition (фото И.О. Камаева) trip at the beginning of August in 2018 was organized. Such trips constitute the con- tinuation of FGBU “VNIIKR” traditions in regard to the research of global fauna of pests. In particular, the rst expeditionary research on quarantine objects and pests within the territory of the Korean Penin- sula was carried out by the specialists of the Institute in the 1950s (Fig. 1). A brief description of the research area should be given prior to the description of the eld studies. e territory of the southern half of the Korean Peninsula is largely (in the Central and Eastern parts) covered by relatively low mountains, mainly of Precambrian origin (Fig. 2); in the western part small plains are located. is area belongs to the humid temperate climatic zone, plains are mostly located in the subtropical zone and mountain part is in the oceanic and continental zones. is is exposed to the East Asian monsoon. Fig. 11. Natural conditions of needle r growing Abies holophylla (on the right side of the Speaking about the agricultural crops, photo) in the vicinity of Daejeon (photo by G.S. Krasovsky) cereals are the most important in this re- Рис. 11. Естественные условия произрастания пихты цельнолистной Abies gion (primarily rice: 5.6 million tons were holophylla (на фото справа) в окрестностях Дэчона (фото Г.С. Красовского) collected in 2016 (Fig. 3), corn, wheat,

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 61 and barley have much less value). Fruit and vegetables also are very important: they are produced mostly in greenhous- es for commercial purposes (Fig. 4), and cultivated in open ground for private use. South Korea is one of the ten leading countries in respect of onion production (412 thousand tons of fresh onion vegetables and 1.2 million tons of dried vegetables), in addition, tomatoes (467 thousand tons), hot pepper (257 thousand tons) and other vegetables are produced here. Fruit crops are also important for the analyzed region. In particular, the production of Fig. 12. e peach plant with numerous citrus fruits in South Korea reaches 698.7 injuries of young sowood shoots thousand tons, stone fruit production (photo by I.O. Kamayev) amounts to 300 thousand tons, poma- Рис. 12. Растение персика ceous production – to 800 thousand tons; с многочисленными повреждениями in addition, the volume of grapes is about молодых неодревесневающих побегов 245 thousand tons. (фото И.О. Камаева) All cultivated crops are characterized by a complex of harmful organisms, some of which are of quarantine importance for Fig. 13. Injuries of a young sowood shoot the EAEU countries. of the peach plant caused by caterpillars of During the trip, the experts planned to the Oriental fruit moth Grapholita molesta. visit all the key localities of the southern Dying-o of the shoot tips as well as the half of the Korean Peninsula with di erent excrements of the pest at the border of the geomorphological and climatic condi- woody part of the shoot and the gum are tions, taking into account the distribution also well marked (photo by I.O. Kamayev) of cultivated crops (Fig. 5). Special atten- Рис. 13. Повреждения молодого неодре- tion was paid to ornamental plants, espe- весневающего побега персика, вызван- cially to the representatives of the cypress ные гусеницей восточной плодожорки family, since they are the preferred plants Grapholita molesta. Хорошо заметны for the juniper spider mite Oligonychus усыхание верхушки побега, экскремен- perditus. ты вредителя на границе одревеснева- Research of cypress ornamental plant- ющей части побега и камедь ings (arborvitae, juniper, and biota) in the Fig. 14. A damaged peach fruit with (фото И.О. Камаева) urban environment of Seoul (Fig. 6-7), peach fruit moth caterpillar Carposina Chuncheon, Daejeon, Pyeongtaek, Won- niponensis. Analysis of the material in ju (Fig. 8) allowed to detect spider mites. laboratory conditions Later on, on the basis of FGBU “VNIIKR”, (photo by I.O. Kamayev) a¥er creating micropreparations and iden- Рис. 14. Поврежденный плод персика tication of the material the juniper spider с гусеницей персиковой плодожорки mite Oligonychus perditus (Fig. 9) was Carposina niponensis. Разбор материала identied. It is a quarantine object for the в камеральных условиях EAEU. e representatives of this species (фото И.О. Камаева) were detected together with individuals of

Fig. 15. A damaged peach fruit with caterpillars of the Pyralidae family Fig. 16. e peach fruits with brown rot of stone fruits symptoms caused (photo by G.S. Krasovsky) by Monilinia fructicola (photo by G.S. Krasovsky) Рис. 15. Поврежденный плод персика Рис. 16. Плоды персика с симптомами бурой монилиозной гнили, вызываемой с гусеницей семейства Pyralidae Monilinia fructicola (фото Г.С. Красовского) (фото Г.С. Красовского)

62 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА the other phylogenetically close species, Oli- gonychus ununguis. Both species are widely distributed throughout South Korea (Lee et al., 1989). e juniper spider mite mostly prefers plants that grow along the roadsides, which, therefore, are under the inuence of adverse conditions. us, one plant can have individuals of dierent species of the Oligony chus genus, including the quarantine object, which must be taken into account during laboratory studies. As a result of the trip, the juniper spider mite material which had been absent until recently in the acarological collections of leading Russian institutions including Zoological Institute of RAS, Nikitsky Botanical Garden, and FGBU “VNIIKR”, has been collected. e mites were not detected on yew plants in Chuncheon, although, the literature sources have data about the mite presence there, yet a lot of scale insects Pseudaula- Fig. 17. Pear trees plantings in the area of Pyeongtaek (photo by G.S. Krasovsky) caspis cockerelli were detected. is species Рис. 17. Деревья груши, насаждения в районе Пхентхэка (фото Г.С. Красовского) is close to a quarantine one: white peach scale Pseudaulacaspis pentagona. e identication of this species was conducted by N.A. Gura and A.V. Shipulin, the researchers of the FGBU “VNIIKR”. Individuals of Oligonychus ununguis species were detected in natural conditions in the vicinity of Daejeon on needle r Abies holophylla and juniper Juniperus rigida plants (Fig. 11). In the ornamental plantations of juniper in Seoul, an individual of the brown-marmorated stink bug Halyomorpha halys was found. is quarantine object for EAEU is a polyphagous and extremely aggressive invader, which currently poses a risk to fruit cultivation in the southern regions of the Eu- ropean part of Russia. During the examination of a wild peach tree in the vicinity of Nagsan-Myeon the specialists found numerous injuries of so¥wood shoots (Fig. 12), which is a typical symptom caused by the oriental fruit moth caterpillars. Inside the shoots galleries of the pest caterpillars were found (Fig. 13). e damaged plant material was herborized for training purposes, and the caterpillars were collected. e plant leaves had numerous individuals of sweet-cherry spider mite Amphitetrany- chus viennensis, a cosmopolitan pest of fruit crops. In peach fruits (windfalls), caterpillars of the peach fruit moth Carposina niponensis (Fig. 14) and representatives of the Pyralidae family were detected. e latter are larger in size, with a large noticeable pinacula and can damage the fruit stone (Fig. 15); in one fruit there can be from 3 to 5 larvae. In addition, Fig. 18. e caterpillars of the Fell webworm Hyphantria cunea (photo by G.S. Krasovsky) the fruits with the symptoms of brown rot of Рис. 18. Гусеницы американской белой бабочки Hyphantria cunea stone fruits were found (Fig. 16). In the labo- (фото Г.С. Красовского) ratory, the mycologists of FGBU “VNIIKR”

КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА 4| 26| 2018 63 identied the sample and conrmed that these symptoms were caused by the quarantine for EAEU species Monilinia fructicola Pear trees growing in the vicinity of Pyeong- taek (Fig. 17) were damaged by the complex of species. Among other phyllophagous, caterpillars of purple argent moth (Yponomeuti- dae) were found. ey skeletonize leaves and enlace the shoots with silk. Fruits from the outer side had been damaged by аlower cha- fers (Cetoniinae), the inner space of the fruit had been aected by the caterpillars of the Tortricidae family: Grapholitini and Pyralidae (the pear snout fruit moth Numonia pyrivorella was not found). Next to the pear plantings, there was a garden with hop plants on which the mass development of the Fall webworm caterpillars Hyphantria cunea, a quarantine object for the EAEU, was observed (Fig. 18). During research carried out at the out- skirts of the city of Mungyeong (Fig. 3), two Bidens species were identied. (Fig. 19). e herbarial materials were given to herbologists of FGBU “VNIIKR” for identication. In the vicinity of Wonju (Fig. 20), the egg-layings of the Asian gypsy moth Lyman- tria dispar asiatica (quarantine object) were found, their identication was carried out with molecular genetic methods in the FGBU “VNIIKR” by the technology of Kamaev et al. (2015). At the same territory the berry-bearing plants (Vaccinium sp.) with characteristic damage caused by cherry drosophila Drosophi la suzukii (quarantine object) were detected. Summing up the preliminary results of the expedition research on the Korean Pe- ninsula, it should be noted that in the end, information about the fauna and biology of Fig. 19. e plants of Bidens spp. on the road side next to the irrigation system of paddy the most important agricultural and forest elds in the vicinity of Mungyeong (photo by G.S. Krasovsky) pests was obtained, original illustrations of Рис. 19. Растения череды Bidens spр. на обочине дороги рядом с системой pests and the damage caused by them were орошения рисовых чеков Мунгена (фото Г.С. Красовского) made, and also the specialists received the material that can be used for scientic collections, development of molecular genetic methods of pest identication, standard samples, training collections for advanced courses and internships.

References 1. Lee W.K., Lee B.H., Kim B.J. Taxonomic studies on spider mites (Tetranychidae, Aca- rina) of Korea. III. Spider mites parasitic on conifers // Korean Journal of Systematic Zoo- logy, 1989. № 5. P. 13-24. 2. Kamayev I.O., Mazurin E.S., Shipulin A.V. Gypsy moth (Lymantria dispar): the segrega- tion of intra-species complexes and molecular genetic approaches to the identication of the Asian subspecies // Plant Health. Research Fig. 20. Egg layings of Asian gypsy moth Lymantria dispar asiatica detected in the and Practice, 2015. №1 (11). P. 45-58. vicinity of Wonju (photo by G.S. Krasovsky) 3. http://www.fao.org/; http://faostat. Рис. 20. Яйцекладки азиатского подвида непарного шелкопряда Lymantria fao.org. dispar asiatica, выявленные в окрестностях Вонджу (фото Г.С. Красовского)

64 4| 26| 2018 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА КАРАНТИН РАСТЕНИЙ. НАУКА И ПРАКТИКА ДВУЯЗЫЧНЫЙ НАУЧНЫЙ ЖУРНАЛ №4 26 2018 г.

Дата выхода ч.12.2018 г. Тираж 3000 экземпляров. Подписной индекс 70195 в Каталоге Агентства «Роспечать» Зиновьева Светлана Георгиевна +7 967 294 90 61 КАРАНТИН РАСТЕНИЙ ДЕКАБРЬ НАУКА И ПРАКТИКА 4/26/2018 РУССКО АНГЛИЙСКИЙ ЖУРНАЛ

RUSSIAN ENGLISH JOURNAL PLANT HEALTH DECEMBER ISSN 2306-9767 ISSN RESEARCH AND PRACTICE 4/26/2018

Тел./факс: 8 (499) 707-22-27