Das 3-Proteobakterium Alcaligenes Defragrans

Total Page:16

File Type:pdf, Size:1020Kb

Das 3-Proteobakterium Alcaligenes Defragrans Der anaerobe Abbau von Monoterpenen durch das 3-Proteobakterium Alcaligenes defragrans DISSERTATION zur Erlangung des Grades eines Doktors der Naturwissenschaft - Dr. rer. nat. - dem Fachbereich Biologie/Chemie der Universität Bremen vorgelegt von Udo Heyen aus Aurich Oktober 1999 Die vorliegende Doktorarbeit wurde in der Zeit von November 1996 bis Mai 1999 am Max Planck-Institut für marine Mikrobiologie in Bremen angefertigt. 1. Gutachter: Prof. Dr. Friedrich Widdel 2. Gutachter: Priv.-Doz. Dr. Jens Harder Tag des Promotionskolloquiums: 13.12.1999 Inhaltsverzeichnis Abkürzungen Zusammenfassung 1 Teil 1: Darstellung der Ergebnisse im Gesamtzusammenhang A Einleitung 1. Terpene und Terpenoide 4 1.1 Biosynthese und Strukturen 5 2. Monoterpene 7 2.1 Vorkommen, Strukturen und chemische Eigenschaften 7 2.2 Biosynthese 9 2.3 Physiologische und ökologische Bedeutung 9 3. Abbau biogener Monoterpene durch aerobe Mikroorganismen 12 3.1 Azyklische Monoterpene 12 3.2 Monozyklische Monoterpene 14 3.3 Bizyklische Monoterpene 15 4. Mikrobieller Abbau isoprenoider Naturstoffe unter anoxischen Bedingungen 17 5. Zielsetzung 19 B Ergebnisse und Diskussion 21 1. Beschreibung der vier monoterpenverwertenden, nitratreduzierenden Bakterien 21 2. Wachstumsversuche mit Alcaligenes defragrans 23 2.1 Bilanzierung des anaeroben Monoterpenabbaus 23 2.2 Versuche zur Erweiterung des Substratspektrums 24 2.3 Konkurrenzversuche mit verschiedenen Monoterpenen 25 2.4 Resistenz von Alcaligenes defragrans gegenüber Monoterpenen 28 2.5 Mass enanzucht von Alcaligenes defragrans im Fermenter 29 3. Metabolite des anaeroben Monoterpenstoffwechsels 30 3.1 Biotransformation von Isolimonen zu Isoterpinolen 30 3.2 Neutrale Metabolite des Abbaus bizyklischer Monoterpene 31 3.3 Isolierung und Identifizierung saurer Metabolite 34 4. Zellsuspensionsversuche mit Alcaligenes defragrans 35 5. Anaerobe Umsetzung von Monoterpenen in vitro 37 6. Ökologische Aspekte 38 6.1 Ätherische Öle als Wachstumssubstrat für Alcaligenes defragrans 39 6.2 Ätherische Öle als Wachstumssubstrat für Anreichemngen 40 C Literaturverzeichnis 42 Teil II: Publikationen A Publikationsilste mit Erläuterungen 61 B Publikationen 1 Alcaligenes defragrans sp. nov., description offour strains isolated on alkenoic monoterpenes ((+)-menthene, a-pinene, 2-carene, and a-phellandrene) and nitrate 63 2 Cometabolic isoterpinolene formation from isolimonene by denitrifying Alcaligenes defragrans 83 3 Geranic acid formation, an initial reaction of anaerobic monoterpene metabolism in Alcaligenes defragrans 95 4 Monoterpene tolerance of denitrifyingAlcaligenes defragrans 110 5 Denitrification on essential oils 118 Abkürzungen Abb. Abbildung Ade441 Oligonukleotidsonde, spezifisch für Alcaligenes defragrans AT1458 Oligonukleotidsonde, spezifisch für Bakterien der Genera Azoarcus und Thauera sowie für Alcaligenes defragrans ATP Adenosintriphosphat BET42a Oligonukleotidsonde, spezifisch für Bakterien der Beta Untergruppe der Proteobakterien C Kohlenstoff Grad Celsius CoA Coenzym A d Tag Da Dalton DAPI 4,6-Diamidino-2-phenylindol DMADP Dimethylallydiphosphat DNS, DNA Desoxyribonukleinsäure DSMZ Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH ECL Equivalent cham Iength Eco440, 1455, 1464 Oligonukleotidsonden, spezifisch für Escherichia coli E DTA Ethylendiamintetraessigsäure EI Elektronenionisierung et al. et alten (und andere) EMBL European Molecular Biology Laboratory EUB 338 Oligonukleotidsonde, spezifisch für Eubakterien eV Elektronenvolt F AD Flavinadenindinukleotid FAME Fettsäuremethylester FID Flammenionisationsdetektor FISH Fluoreszenz in situ Hybridisierung g Gramm g Erdbeschleunigung G+C Guanin und Cytosin GAM42a Oligonukleotidsonde, spezifisch flur Bakterien der Gamma Untergruppe der Proteobakterien GC Gaschromatographie GC-M S Gaschromatographie-Massenspektroskopie GDP Geranyldiphosphat h Stunde HEPES N-(2-Hydroxyethyl-)piperazin-N ‘-2-ethansulfonsäure HMN 2,2,4,4,6,8,8-Heptamethylnonan (RP)-HPLC (Reversed-Phase)-High Performance Liquid Chromatography IDP Isopentenyldiphosphat k Kilo Liter log P Dekadischer Logarithmus des Verteilungskoeffizienten im Zweiphasensystem n-Octanol/Wasser Mikro m Milli M Molar oder Mega min Minute mol Mol MPN Most probable number n Nano NAD(P) H Reduziertes Nikotinamid-adenin-dinukleotid(-phosphat) OD Optische Dichte p Piko Pa Pascal % Prozent %o Promille PCR Polymerase cham reaction pH Negativer dekadischer Logarithmus der Protonenkonzentration PVMS Polyvinylmethylsilikon RT Retentionsindex rDNS, rDNA DNS-Bereiche, die flur die ribosomale Ribonucleinsäure kodieren rRNS, rRNA Ribosomale Ribonukleinsäure rpm Umdrehungen pro Minute s Sekunde s(p)p. Spezies Tab. Tabelle T MP B 1 ‚2,3 ‚4-Tetramethoxy-5-(2-propenyl)-benzol UV Ultraviolett vol (v) Volumen wt (w) Gewicht Zusammenfassung 1 Die zuvor unter nitratreduzierenden Bedingungen mit den zyklischen, ungesättigten Monoterpenkohlenwasserstoffen p-Menth- 1 -en, a-Pinen, 2-Caren und a -Phellandren isolierten Bakterienstämme 5lMen, 54Pin, 62Car und 65Phen waren einander physiologisch und phylogenetisch sehr ähnlich. Alle Isolate waren bewegliche, mesophile, Gram-negative Stäbchen mit einem strikt respiratorischen Metabolismus. Neben Nitrat dienten auch reduziertere Stickstoffverbindungen (Nitrit, Distickstoffoxid) sowie Sauerstoff als Elektronen akzeptoren. In quantitativen Wachstumsansätzen wurde eine vollständige Oxidation der Monoterpene zu CO2 nachgewiesen. Alle Stämme metabolisierten neben den Monoterpenen auch einige Amino- und Fettsäuren. Kohlenhydrate, aromatische Verbindungen und Alkane wurden nicht verwertet. Auf der Grundlage der Bakterienzellfettsäuren und den Unterschieden in den 16S rDNS-Sequenzen wurden die vier monoterpenverwertenden Bakterienstämme als eine neue Spezies, Alcaligenes defragrans, innerhalb der Gattung Alcaligenes mit Stamm 54Pin als Typstamm beschrieben. 2 Alle vier Stämme waren in der Lage, unter anoxischen Bedingungen mit verschiedenen aliphatischen, mono- und bizyklischen Monoterpenen als alleiniger Kohlenstoffquelle zu wachsen. Aufgrund der übereinstimmenden Substratmuster scheint ein gemeinsamer Abbau- weg flur die Monoterpenkohlenwasserstoffe wahrscheinlich. Die beobachtete Bildung von monozyklischen p-Menthadienen während des Wachstum mit bizyklischen Monoterpenen deutet auf eine anfängliche Umwandlung der bizyklischen Strukturen zu monozyklischen Verbindungen hin. Diese Hypothese wird unterstützt durch den gleichzeitigen Abbau von mono- und bizyklischen Strukturen innerhalb definierter Terpengemische, wobei monozyklische Diene leicht bevorzugt wurden. In kometabolischen Studien konnte eine Isomensierung von Isolimonen zu Isoterpinolen nachgewiesen verden. Beide Verbindungen dienten nicht als Wachstumssubstrate. Diese Beobachtung belegt, daß A. defragrans zu Umlagerungen innerhalb des Kohlenstoffgerüstes der Monoterpene befähigt ist. In Wachstumsuntersuchungen mit unterschiedlichen Strukturisomeren einer Verbindung wurden 2-hybridisierten, methylsubstituierten Cl -Kohlenstoffatom selektiv die Isomere mit einem sp Cl-sp3-hybridisierten Isomere wurden nicht verwertet. Für den abgebaut. Die entsprechenden sp2-hybridisierte vollständigen Abbau der Monoterpene durch A. defragrans ist somit das Cl -Kohlenstoffatom eine essentielle Voraussetzung. Eine Hydratisierung der Alkene zu den entsprechenden Alkoholen als initialer Schritt des anaeroben Monoterpenabbaus erscheint anhand von früheren Untersuchungen als unwahrscheinlich. 3 Die azyklische Geraniumsäure wurde als erstes potentielles Aktivierungsprodukt aus Zellen vom Stamm 65Phen nach anaerobem Wachstum mit a-Phellandren isoliert. In anaeroben Studien mit dichten Zellsuspensionen konnte eine eindeutige Umsetzung von a-Phellandren, a-Pinen, Limonen und f3-Myrcen zu Geraniumsäure nachgewiesen werden. Dabei wurde mit der azyklischen Verbindung -Myrcen die höchste Transformationsrate in den Suspensionen erreicht. Unter C-limitierten Bedingungen und in Gegenwart von Nitrat erfolgte ein Abbau der gebildeten Geraniumsäure innerhalb der Zellsuspensionen. Mit der Umsetzung von 3-Myrcen zu Geraniumsäure in zelifreien Extrakten konnte der erste in vitro Enzymtest für die anaerobe Alkentransformation entwickelt und etabliert werden. Dieser Enyzmtest ermöglicht eine weitere Aufklärung der Bedeutung der Reaktion für den anaeroben Monoterpenabbau. 4 Ätherische Öle als natürlich vorkommende Monoterpengemische wurden sowohl von A. defragrans als auch von denitrifizierenden Anreicherungskulturen als Kohlenstoffquellen verwertet. In Gegenwart des reinen Öls führten nur die beiden hauptsächlich aus Monoterpen kohlenwasserstoffen bestehenden Öle, Zitronen- und Kiefernnadelöl, zu Wachstum und vollständiger Nitratreduktion, wohingegen Petersiliensamen-, Campher-, Salbei-, Fenchel- und Minzöl nur verwertet wurden, wenn sie in einer HMN-Phase verdünnt vorlagen. Thymianöl ffihrte zu keiner Nitratreduktion. Verbindungen, die in den verschiedenen Ölen durch die angereicherten Mikroorganismen metabolisiert wurden, waren Wachstumssubstrate der bisher auf Monoterpenen isolierten Bakterienstämmen (Alcaligenes defragrans, Thauera terpenica und Thauera linaloolentis) sowie Bomylacetat, a-, 3-Thujon, Campher, Borneol und aromatische Methoxypropenylbenzo le. Eine molekularökologische Analyse der Bakterien- populationen in den Anreicherungskulturen ergab, daß sie nicht von den bisher auf 2 Monoterpenen isolierten Bakterienstämmen dominiert wurden, was ein Anzeichen flur die weite Verbreitung der Fähigkeit zur anaeroben Monoterpenoxidation in der Natur ist. 5 Die Alcaligenes defragrans
Recommended publications
  • The Role of Earthworm Gut-Associated Microorganisms in the Fate of Prions in Soil
    THE ROLE OF EARTHWORM GUT-ASSOCIATED MICROORGANISMS IN THE FATE OF PRIONS IN SOIL Von der Fakultät für Lebenswissenschaften der Technischen Universität Carolo-Wilhelmina zu Braunschweig zur Erlangung des Grades eines Doktors der Naturwissenschaften (Dr. rer. nat.) genehmigte D i s s e r t a t i o n von Taras Jur’evič Nechitaylo aus Krasnodar, Russland 2 Acknowledgement I would like to thank Prof. Dr. Kenneth N. Timmis for his guidance in the work and help. I thank Peter N. Golyshin for patience and strong support on this way. Many thanks to my other colleagues, which also taught me and made the life in the lab and studies easy: Manuel Ferrer, Alex Neef, Angelika Arnscheidt, Olga Golyshina, Tanja Chernikova, Christoph Gertler, Agnes Waliczek, Britta Scheithauer, Julia Sabirova, Oleg Kotsurbenko, and other wonderful labmates. I am also grateful to Michail Yakimov and Vitor Martins dos Santos for useful discussions and suggestions. I am very obliged to my family: my parents and my brother, my parents on low and of course to my wife, which made all of their best to support me. 3 Summary.....................................................………………………………………………... 5 1. Introduction...........................................................................................................……... 7 Prion diseases: early hypotheses...………...………………..........…......…......……….. 7 The basics of the prion concept………………………………………………….……... 8 Putative prion dissemination pathways………………………………………….……... 10 Earthworms: a putative factor of the dissemination of TSE infectivity in soil?.………. 11 Objectives of the study…………………………………………………………………. 16 2. Materials and Methods.............................…......................................................……….. 17 2.1 Sampling and general experimental design..................................................………. 17 2.2 Fluorescence in situ Hybridization (FISH)………..……………………….………. 18 2.2.1 FISH with soil, intestine, and casts samples…………………………….……... 18 Isolation of cells from environmental samples…………………………….……….
    [Show full text]
  • Microbial Ecology of Denitrification in Biological Wastewater Treatment
    water research 64 (2014) 237e254 Available online at www.sciencedirect.com ScienceDirect journal homepage: www.elsevier.com/locate/watres Review Microbial ecology of denitrification in biological wastewater treatment * ** Huijie Lu a, , Kartik Chandran b, , David Stensel c a Department of Civil and Environmental Engineering, University of Illinois at Urbana Champaign, 205 N Mathews, Urbana, IL 61801, USA b Department of Earth and Environmental Engineering, Columbia University, 500 West 120th Street, New York, NY 10027, USA c Department of Civil and Environmental Engineering, University of Washington, Seattle, WA 98195, USA article info abstract Article history: Globally, denitrification is commonly employed in biological nitrogen removal processes to Received 21 December 2013 enhance water quality. However, substantial knowledge gaps remain concerning the overall Received in revised form community structure, population dynamics and metabolism of different organic carbon 26 June 2014 sources. This systematic review provides a summary of current findings pertaining to the Accepted 29 June 2014 microbial ecology of denitrification in biological wastewater treatment processes. DNA Available online 11 July 2014 fingerprinting-based analysis has revealed a high level of microbial diversity in denitrifica- tion reactors and highlighted the impacts of carbon sources in determining overall deni- Keywords: trifying community composition. Stable isotope probing, fluorescence in situ hybridization, Wastewater denitrification microarrays and meta-omics further
    [Show full text]
  • University of Oklahoma Graduate College
    UNIVERSITY OF OKLAHOMA GRADUATE COLLEGE CHARACTERIZATION OF SUBSURFACE MICROBIAL COMMUNITIES INVOLVED IN BIOREMEDIATION OF URANIUM AND NITRATE A DISSERTATION SUBMITTED TO THE GRADUATE FACULTY in partial fulfillment of the requirements for the Degree of DOCTOR OF PHILOSOPHY By ANNE MARIE SPAIN Norman, Oklahoma 2009 CHARACTERIZATION OF SUBSURFACE MICROBIAL COMMUNITIES INVOLVED IN BIOREMEDIATION OF URANIUM AND NITRATE A DISSERTATION APPROVED FOR THE DEPARTMENT OF BOTANY AND MICROBIOLOGY BY __________________________ Dr. Lee R. Krumholz, Chair __________________________ Dr. Joseph M. Suflita __________________________ Dr. Michael J. McInerney __________________________ Dr. Ralph S. Tanner __________________________ Dr. Elizabeth C. Butler Copyright by ANNE SPAIN 2009 All Rights Reserved. I dedicate this to my mom, Kristan Spain Acknowledgements The work presented in this dissertation thesis has been aided by the efforts of several people. First, I would like to thank each of my committee members, each of whom I have learned much from. Dr. Joe Suflita, Dr. Michael McInerny, Dr. Ralph Tanner, and Dr. Elizabeth Butler: not only have I learned much from each of you in classes and in department seminars, but also I have also gained a lot from your students who have used what they have learned from you to help me with my research efforts in various ways. The cooperation and fellowship among faculty and graduate students at the University of Oklahoma has been of extreme value to me, and is one of the things that drew me here for my graduate studies. And so again, I thank each of you for your positive attitudes, and your genuine willingness to help me as well as all graduate students here at OU.
    [Show full text]
  • Bisheriger Stand Des Wissens
    Genetische und biochemische Charakterisierung von Enzymen des anaeroben Monoterpen-Abbaus in Castellaniella defragrans Dissertation zur Erlangung des Grades eines Doktors der Naturwissenschaften ― Dr. rer. nat. ― Dem Fachbereich Biologie/Chemie der Universität Bremen vorgelegt von Frauke Lüddeke Bremen, November 2011 Diese Arbeit wurde von Oktober 2008 bis November 2011 am Max-Planck-Institut für Marine Mikrobiologie in Bremen angefertigt. Teile dieser Arbeit sind bereits veröffentlicht oder zur Veröffentlichung eingereicht. Erster Gutachter: Prof. Dr. Friedrich Widdel Zweiter Gutachter: PD Dr. Jens Harder Tag des Promotionskolloquiums: 14.12.2011 Zusammenfassung III Zusammenfassung Das Betaproteobakterium Castellaniella (ex Alcaligenes) defragrans metabolisiert anaerob Monoterpene zu CO2 unter denitrifizierenden Bedingungen. Im Abbau involviert und initial charakterisiert sind eine Linalool Dehydratase-Isomerase (ldi/LDI) und eine Geraniol-Dehydrogenase (geoA/GeDH), während für eine Geranial-Dehydrogenase (geoB/GaDH) ein Kandidatengen gefunden wurde. In dieser Arbeit wurde ein genetisches System für C. defragrans basierend auf dem Suizid- Vektor pK19mobsacB entwickelt und Deletionsmutanten generiert. Die physiologische Charakterisierung bestätigte den postulierten Abbauweg für β-Myrcen in vivo und deckte die Existenz eines bislang unbekannten Monoterpen-Stoffwechselwegs sowie neue Enzymaktivitäten auf. Neben den genetischen Studien wurde die biochemische Charakterisierung der Enzymaktivitäten nach heterologer Überexpression in E. coli
    [Show full text]
  • Microbial and Mineralogical Characterizations of Soils Collected from the Deep Biosphere of the Former Homestake Gold Mine, South Dakota
    University of Nebraska - Lincoln DigitalCommons@University of Nebraska - Lincoln US Department of Energy Publications U.S. Department of Energy 2010 Microbial and Mineralogical Characterizations of Soils Collected from the Deep Biosphere of the Former Homestake Gold Mine, South Dakota Gurdeep Rastogi South Dakota School of Mines and Technology Shariff Osman Lawrence Berkeley National Laboratory Ravi K. Kukkadapu Pacific Northwest National Laboratory, [email protected] Mark Engelhard Pacific Northwest National Laboratory Parag A. Vaishampayan California Institute of Technology See next page for additional authors Follow this and additional works at: https://digitalcommons.unl.edu/usdoepub Part of the Bioresource and Agricultural Engineering Commons Rastogi, Gurdeep; Osman, Shariff; Kukkadapu, Ravi K.; Engelhard, Mark; Vaishampayan, Parag A.; Andersen, Gary L.; and Sani, Rajesh K., "Microbial and Mineralogical Characterizations of Soils Collected from the Deep Biosphere of the Former Homestake Gold Mine, South Dakota" (2010). US Department of Energy Publications. 170. https://digitalcommons.unl.edu/usdoepub/170 This Article is brought to you for free and open access by the U.S. Department of Energy at DigitalCommons@University of Nebraska - Lincoln. It has been accepted for inclusion in US Department of Energy Publications by an authorized administrator of DigitalCommons@University of Nebraska - Lincoln. Authors Gurdeep Rastogi, Shariff Osman, Ravi K. Kukkadapu, Mark Engelhard, Parag A. Vaishampayan, Gary L. Andersen, and Rajesh K. Sani This article is available at DigitalCommons@University of Nebraska - Lincoln: https://digitalcommons.unl.edu/ usdoepub/170 Microb Ecol (2010) 60:539–550 DOI 10.1007/s00248-010-9657-y SOIL MICROBIOLOGY Microbial and Mineralogical Characterizations of Soils Collected from the Deep Biosphere of the Former Homestake Gold Mine, South Dakota Gurdeep Rastogi & Shariff Osman & Ravi Kukkadapu & Mark Engelhard & Parag A.
    [Show full text]
  • Appendix 1. Validly Published Names, Conserved and Rejected Names, And
    Appendix 1. Validly published names, conserved and rejected names, and taxonomic opinions cited in the International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology since publication of Volume 2 of the Second Edition of the Systematics* JEAN P. EUZÉBY New phyla Alteromonadales Bowman and McMeekin 2005, 2235VP – Valid publication: Validation List no. 106 – Effective publication: Names above the rank of class are not covered by the Rules of Bowman and McMeekin (2005) the Bacteriological Code (1990 Revision), and the names of phyla are not to be regarded as having been validly published. These Anaerolineales Yamada et al. 2006, 1338VP names are listed for completeness. Bdellovibrionales Garrity et al. 2006, 1VP – Valid publication: Lentisphaerae Cho et al. 2004 – Valid publication: Validation List Validation List no. 107 – Effective publication: Garrity et al. no. 98 – Effective publication: J.C. Cho et al. (2004) (2005xxxvi) Proteobacteria Garrity et al. 2005 – Valid publication: Validation Burkholderiales Garrity et al. 2006, 1VP – Valid publication: Vali- List no. 106 – Effective publication: Garrity et al. (2005i) dation List no. 107 – Effective publication: Garrity et al. (2005xxiii) New classes Caldilineales Yamada et al. 2006, 1339VP VP Alphaproteobacteria Garrity et al. 2006, 1 – Valid publication: Campylobacterales Garrity et al. 2006, 1VP – Valid publication: Validation List no. 107 – Effective publication: Garrity et al. Validation List no. 107 – Effective publication: Garrity et al. (2005xv) (2005xxxixi) VP Anaerolineae Yamada et al. 2006, 1336 Cardiobacteriales Garrity et al. 2005, 2235VP – Valid publica- Betaproteobacteria Garrity et al. 2006, 1VP – Valid publication: tion: Validation List no. 106 – Effective publication: Garrity Validation List no. 107 – Effective publication: Garrity et al.
    [Show full text]
  • Denitrification, Dissimilatory Nitrate Reduction, and Methanogenesis in the Gut of Earthworms (Oligochaeta): Assessment of Greenhouse Gases and Genetic Markers
    Denitrification, Dissimilatory Nitrate Reduction, and Methanogenesis in the Gut of Earthworms (Oligochaeta): Assessment of Greenhouse Gases and Genetic Markers Dissertation To obtain the Academic Degree Doctor rerum naturalium (Dr. rer. nat.) Submitted to the Faculty of Biology, Chemistry, and Earth Sciences of the University of Bayreuth by Peter Stefan Depkat-Jakob Bayreuth, July 2013 This doctoral thesis was prepared at the Department of Ecological Microbiology, University of Bayreuth, from April 2009 until July 2013 supervised by Prof. PhD Harold Drake and co-supervised by PD Dr. Marcus Horn. This is a full reprint of the dissertation submitted to obtain the academic degree of Doctor of Natural Sciences (Dr. rer. nat.) and approved by the Faculty of Biology, Chemistry and Geosciences of the University of Bayreuth. Acting dean: Prof. Dr. Rhett Kempe Date of submission: 02. July 2013 Date of defence (disputation): 15. November 2013 Doctoral Committee: Prof. PhD H. Drake 1st reviewer Prof. Dr. O. Meyer 2nd reviewer Prof. Dr. G. Gebauer Chairman Prof. Dr. H. Feldhaar Prof. Dr. G. Rambold CONTENTS I CONTENTS FIGURES ......................................................................................................X TABLES ................................................................................................... XIII APPENDIX TABLES .................................................................................... XV EQUATIONS.............................................................................................. XVI
    [Show full text]
  • Development of a PCR-Based Method for Monitoring the Status of Alcaligenes Species in the Agricultural Environment
    Biocontrol Science, 2014, Vol. 19, No. 1, 23-31 Original Development of a PCR-Based Method for Monitoring the Status of Alcaligenes Species in the Agricultural Environment MIYO NAKANO1, MASUMI NIWA2, AND NORIHIRO NISHIMURA1* 1 Department of Translational Medical Science and Molecular and Cellular Pharmacology, Pharmacogenomics, and Pharmacoinformatics, Mie University Graduate School of Medicine, Mie University, 2-174 Edobashi, Tsu, Mie 514-8507, Japan 2 DESIGNER FOODS. Co., Ltd. NALIC207, Chikusa 2-22-8, Chikusa-ku, Nagoya, Aichi 464-0858, Japan Received 1 April, 2013/Accepted 14 September, 2013 To analyze the status of the genus Alcaligenes in the agricultural environment, we developed a PCR method for detection of these species from vegetables and farming soil. The selected PCR primers amplified a 107-bp fragment of the 16S rRNA gene in a specific PCR assay with a detection limit of 1.06 pg of pure culture DNA, corresponding to DNA extracted from approxi- mately 23 cells of Alcaligenes faecalis. Meanwhile, PCR primers generated a detectable amount of the amplicon from 2.2×102 CFU/ml cell suspensions from the soil. Analysis of vegetable phyl- loepiphytic and farming soil microbes showed that bacterial species belonging to the genus Alcaligenes were present in the range from 0.9×100 CFU per gram( or cm2)( Japanese radish: Raphanus sativus var. longipinnatus) to more than 1.1×104 CFU/g( broccoli flowers: Brassica oleracea var. italic), while 2.4×102 to 4.4×103 CFU/g were detected from all soil samples. These results indicated that Alcaligenes species are present in the phytosphere at levels 10–1000 times lower than those in soil.
    [Show full text]
  • The Oxygen-Independent Metabolism of Cyclic Monoterpenes In
    Petasch et al. BMC Microbiology 2014, 14:164 http://www.biomedcentral.com/1471-2180/14/164 RESEARCH ARTICLE Open Access The oxygen-independent metabolism of cyclic monoterpenes in Castellaniella defragrans 65Phen Jan Petasch1, Eva-Maria Disch1, Stephanie Markert2,4, Dörte Becher2,5, Thomas Schweder2,4, Bruno Hüttel3, Richard Reinhardt3 and Jens Harder1* Abstract Background: The facultatively anaerobic betaproteobacterium Castellaniella defragrans 65Phen utilizes acyclic, monocyclic and bicyclic monoterpenes as sole carbon source under oxic as well as anoxic conditions. A biotransformation pathway of the acyclic β-myrcene required linalool dehydratase-isomerase as initial enzyme acting on the hydrocarbon. An in-frame deletion mutant did not use myrcene, but was able to grow on monocyclic monoterpenes. The genome sequence and a comparative proteome analysis together with a random transposon mutagenesis were conducted to identify genes involved in the monocyclic monoterpene metabolism. Metabolites accumulating in cultures of transposon and in-frame deletion mutants disclosed the degradation pathway. Results: Castellaniella defragrans 65Phen oxidizes the monocyclic monoterpene limonene at the primary methyl group forming perillyl alcohol. The genome of 3.95 Mb contained a 70 kb genome island coding for over 50 proteins involved in the monoterpene metabolism. This island showed higher homology to genes of another monoterpene-mineralizing betaproteobacterium, Thauera terpenica 58EuT, than to genomes of the family Alcaligenaceae, which harbors the genus Castellaniella. A collection of 72 transposon mutants unable to grow on limonene contained 17 inactivated genes, with 46 mutants located in the two genes ctmAB (cyclic terpene metabolism). CtmA and ctmB were annotated as FAD-dependent oxidoreductases and clustered together with ctmE, a 2Fe-2S ferredoxin gene, and ctmF, coding for a NADH:ferredoxin oxidoreductase.
    [Show full text]
  • Outline Release 7 7C
    Taxonomic Outline of Bacteria and Archaea, Release 7.7 Taxonomic Outline of the Bacteria and Archaea, Release 7.7 March 6, 2007. Part 4 – The Bacteria: Phylum “Proteobacteria”, Class Betaproteobacteria George M. Garrity, Timothy G. Lilburn, James R. Cole, Scott H. Harrison, Jean Euzéby, and Brian J. Tindall Class Betaproteobacteria VP Garrity et al 2006. N4Lid DOI: 10.1601/nm.16162 Order Burkholderiales VP Garrity et al 2006. N4Lid DOI: 10.1601/nm.1617 Family Burkholderiaceae VP Garrity et al 2006. N4Lid DOI: 10.1601/nm.1618 Genus Burkholderia VP Yabuuchi et al. 1993. GOLD ID: Gi01836. GCAT ID: 001596_GCAT. Sequenced strain: SRMrh-20 is from a non-type strain. Genome sequencing is incomplete. Number of genomes of this species sequenced 2 (GOLD) 1 (NCBI). N4Lid DOI: 10.1601/nm.1619 Burkholderia cepacia VP (Palleroni and Holmes 1981) Yabuuchi et al. 1993. <== Pseudomonas cepacia (basonym). Synonym links through N4Lid: 10.1601/ex.2584. Source of type material recommended for DOE sponsored genome sequencing by the JGI: ATCC 25416. High-quality 16S rRNA sequence S000438917 (RDP), U96927 (Genbank). GOLD ID: Gc00309. GCAT ID: 000301_GCAT. Entrez genome id: 10695. Sequenced strain: ATCC 17760, LMG 6991, NCIMB9086 is from a non-type strain. Genome sequencing is completed. Number of genomes of this species sequenced 1 (GOLD) 1 (NCBI). N4Lid DOI: 10.1601/nm.1620 Pseudomonas cepacia VP (ex Burkholder 1950) Palleroni and Holmes 1981. ==> Burkholderia cepacia (new combination). Synonym links through N4Lid: 10.1601/ex.2584. Source of type material recommended for DOE sponsored genome sequencing by the JGI: ATCC 25416. High- quality 16S rRNA sequence S000438917 (RDP), U96927 (Genbank).
    [Show full text]
  • Characterisation of Source-Separated Household Waste Intended for Composting ⇑ Cecilia Sundberg A, , Ingrid H
    Bioresource Technology 102 (2011) 2859–2867 Contents lists available at ScienceDirect Bioresource Technology journal homepage: www.elsevier.com/locate/biortech Characterisation of source-separated household waste intended for composting ⇑ Cecilia Sundberg a, , Ingrid H. Franke-Whittle b, Sari Kauppi c, Dan Yu c, Martin Romantschuk c, Heribert Insam b, Håkan Jönsson a a Department of Energy and Technology, Swedish University of Agricultural Sciences, Box 7032, SE-750 07 Uppsala, Sweden b University of Innsbruck, Institute of Microbiology, Technikerstr. 25, A-6020 Innsbruck, Austria c University of Helsinki, Department of Environmental Sciences, Niemenkatu 73, 15140 Lahti, Finland article info abstract Article history: Large-scale composting of source-separated household waste has expanded in recent years in the Nordic Received 24 March 2010 countries. One problem can be low pH at the start of the process. Incoming biowaste at four composting Received in revised form 6 October 2010 plants was characterised chemically, physically and microbiologically. The pH of food waste ranged from Accepted 16 October 2010 4.7 to 6.1 and organic acid concentration from 24 to 81 mmol kgÀ1. The bacterial diversity in the waste Available online 21 October 2010 samples was high, with all samples dominated by Gammaproteobacteria, particularly Pseudomonas and Enterobacteria (Escherichia coli, Klebsiella, Enterobacter). Lactic acid bacteria were also numerically impor- Keywords: tant and are known to negatively affect the composting process because the lactic acid they produce low- pH ers the pH, inhibiting other bacteria. The bacterial groups needed for efficient composting, i.e. Bacillales Lactic acid bacteria Bulk density and Actinobacteria, were present in appreciable amounts.
    [Show full text]
  • Identification and Isolation of a Castellaniella Species Important During Biostimulation of an Acidic Nitrate
    APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, Aug. 2007, p. 4892–4904 Vol. 73, No. 15 0099-2240/07/$08.00ϩ0 doi:10.1128/AEM.00331-07 Copyright © 2007, American Society for Microbiology. All Rights Reserved. Identification and Isolation of a Castellaniella Species Important during Biostimulation of an Acidic Nitrate- and Uranium-Contaminated Aquiferᰔ Anne M. Spain,1 Aaron D. Peacock,2 Jonathan D. Istok,3 Mostafa S. Elshahed,1† Fares Z. Najar,4 Bruce A. Roe,4 David C. White,2 and Lee R. Krumholz1* Department of Botany and Microbiology, University of Oklahoma, Norman, Oklahoma1; Center for Biomarker Analysis, University of Tennessee, Knoxville, Tennessee2; Department of Civil Engineering, Oregon State University, Corvallis, Oregon3; and Advanced Center for Genome Technology, University of Oklahoma, Norman, Oklahoma4 Received 9 February 2007/Accepted 30 May 2007 Immobilization of uranium in groundwater can be achieved through microbial reduction of U(VI) to U(IV) upon electron donor addition. Microbial community structure was analyzed in ethanol-biostimulated and control sediments from a high-nitrate (>130 mM), low-pH, uranium-contaminated site in Oak Ridge, TN. Analysis of small subunit (SSU) rRNA gene clone libraries and polar lipid fatty acids from sediments revealed that biostimulation resulted in a general decrease in bacterial diversity. Specifically, biostimulation resulted in an increase in the proportion of Betaproteobacteria (10% of total clones in the control sediment versus 50 and 79% in biostimulated sediments) and a decrease in the proportion of Gammaproteobacteria and Acidobacteria. Clone libraries derived from dissimilatory nitrite reductase genes (nirK and nirS) were also dominated by clones related to Betaproteobacteria (98% and 85% of total nirK and nirS clones, respectively).
    [Show full text]