Miscelanea 132, 2013 1

Miscelanea Nº 134

— 2015 — 2 C. M. Antelo, Z. J. Brandán Fernández: Las aves no Passeriformes de Tucumán

Miscelanea Serie no periódica cuya temática incluye innovaciones metodológicas, información biológica catalogada, actualizaciones y ensayos científicos.

ISSN 0074–025X

Cita bibliográfica: Mendiondo, M. E.: Catálogo bibliográfico fitoquímico argentino XVIII. Miscelanea 134, Fundación Miguel Lillo, Argentina.

© 2015, Fundación Miguel Lillo. Todos los derechos reservados.

Fundación Miguel Lillo Miguel Lillo 251, (4000) San Miguel de Tucumán, Argentina Telefax +54 381 433 0868

Editora de Miscelanea: Myriam del Valle Catania. Editor gráfico: Gustavo Sánchez.

Comité editorial: Graciela Ruiz de Bigliardo (Fundación Miguel Lillo, Universidad Nacional de Tucumán) Julieta I. Carrizo (Universidad Nacional de Tucumán) Santiago A. Catalano (CONICET, Universidad Nacional de Tucumán) Graciela I. Ponessa (Fundación Miguel Lillo) Guillermo M. Suárez (CONICET, Universidad Nacional de Tucumán) Gerardo L. Robledo (CONICET, Universidad Nacional de Córdoba) Ezequiel Aráoz (Universidad Nacional de Tucumán)

Asesores editoriales: Pastor Arenas (Universidad Nacional de Buenos Aires, Argentina) María Teresa Cosa (Universidad Nacional de Córdoba, Argentina) Massimiliano Dematteis (Universidad Nacional del Nordeste, Argentina) Jorge L. Frangi (Universidad Nacional de La Plata, Argentina) Eduardo Greizerstein (Universidad Nacional de Lomas de Zamora, Argentina) Jesús Muñoz (Real Jardín Botánico CSIC, España) Jefferson Prado (Instituto de Botánica de San Pablo, Brasil) Andrea I. Romero (Universidad Nacional de Buenos Aires, CONICET, Argentina) María del Mar Trigo Pérez (Universidad de Málaga, España) Gustavo Heiden (Universidad de San Pablo, Brasil)

Publicación indexada en Biosis Previews, CAB Abstracts, Zoological Record, Latindex, Entomology Abstracts (CSA), Referativnyi Zhurnal, Periodica.

Canje y ventas: Centro de Información Geo-Biológico del Noroeste Argentino, Fundación Miguel Lillo, Miguel Lillo 251, (4000) San Miguel de Tucumán, Argentina. [email protected], [email protected]

Impresión: Artes Gráficas Crivelli S.A.

Prohibida su reproducción total o parcial. Impreso en la Argentina. Printed in Argentina. CATALOGO BIBLIOGRAFICO FITOQUIMICO ARGENTINO XVIII María Elena Mendiondo*

RESUMEN: En este catálogo se incluyen trabajos fitoquímicos sobre plantas argentinas, nativas, adventicias y cultivadas y algunas especies de países sudamericanos limítrofes, publicados en 2007-2008. De cada especie se menciona el nombre científico y vulgar de la planta, autor del trabajo, título, cita bibliográfica, datos químicos y órgano de la planta usado.

PALABRAS CLAVES: Plantas argentinas; fitoquímica; bibliografía.

SUMMARY: This catalogue is a list of phytochemical papers, concerning Argentine , native, adventitious and cultivated, also some native species of other South American bounding countries, published in 2007-2008. In each case the scientific and common name of the species is given, as well as the author’s name, title, reference data, chemical data, and organ of the used.

KEY WORDS: Argentine plants; phytochemistry; bibliography.

* Miembro Carrera Personal Apoyo a la Investigación y Desarrollo del CONICET. * Investigador Adscripto Fundación Miguel Lillo. Miguel Lillo 251. (4000) San Miguel de Tucumán. Tucumán. República Argentina. E-mail: [email protected]

Recibido: 27/07/14 – Aceptado: 27/11/14

M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 

ADOXACEAE 1.- Sambucus nigra “sauco negro”. Turek, S. et al. 2007. Free and chemically bonded phenolic acids in barks of Viburnum opulus L. and Sambucus nigra L. Acta Pol. Pharm. 64(4): 377. Ácidos: cafeico, p-cumárico, ferúlico, gálico, siríngico, 3,4,5- trimetoxi-benzoico y clorogénico (ct.). a) ------Christensen, K. B. et al. 2008. PPARγ agonists identified in extracts of elderflowers (Sambucus nigra) by bioassay-guided fractionation. 7th Joint Meeting of GA, AFERP, ASP, PSE & SIF. Atenas. Grecia. Ácidos: linoleico, linolénico y 5-O- cafeoilquínico; naringenina; quercetina-3-O-rutinósido; kaempferol-3-O-rutinósido (fl.).

AGAPANTHACEAE 2.- Agapanthus africanus “agapanto”. Singh, D. N. et al. 2007. Steroidal saponins from the rhizomes of Agapanthus africanus (Linn). Indian J. Chem. Sect. B 46(7): 1154. (25R)-5α-spirost-7-en-2-α,3β,5α-triol-3-O[-α-L-ramnopiranosil(1→2)]-β-D- glucopiranósido; (25R)-5α-spirost-7-en-2α,3β,5α,9α-tetrol-3-O-β-D-glucopiranósido (rz.). a) ------Singh, D. N. et al. 2008. Antifungal activity of Agapanthus africanus extractives. Fitoterapia 79(4): 241. (25R)-spirost-7-en-2α,3β,5α-triol-3-O-[α-L- ramnopiranosil(1→2)-[β-D-galactopiranosil-(1→3)]-β-D-glucopiranósido (rz.).

AIZOACEAE 3.- Aptenia cordifolia. Dellagreca, M. et al. 2007. Phytotoxicity of secondary metabolites from Aptenia cordifolia L. Chem. Biodivers. 4(2): 118. 29 Compuestos principales: derivados tetranoroxineolignano, dilignano; β-ionona (h.).

ALISMATACEAE 4.- Echinodorus grandiflorus ssp. aureus. Schnitzler, M. et al. 2007. Trans-aconitic acid, glucosylflavones and hydroxycinnamoyltartaric acids from the leaves of Echinodorus grandiflorus ssp. aureus, a brazilian medicinal plant. Rev. Braz. Farmacogn. 18(2): 149. Isovitexina; swertisina; isoorientina, -7,3’-dimetiléter; swertiajaponina; ácido-2-O-cafeoil tartárico; ácido-dicafeoil tartárico; ácido trans-aconítico; ácido-2-O-feruloil tartárico; ácido cafeoil-feruloil tartárico; ácido- diferuloil tartárico; ácido chicórico (h.). 5.- Sagittaria montevidensis ssp. montevidensis “achira, saeta de Montevideo, flechadita”. Radke, V. S. C. de O. et al. 2007. Abietane diterpenes from Sagittaria montevidensis ssp. montevidensis Charm. & Schltdl. J. Braz. Chem. Soc. 18(2):444. 3β-hidroxi-9α,13α-epidioxiabiet-8(14)-eno; 3-oxo-9α,13α-epidioxiabiet-8(14)-eno (pet.).  Miscelanea Nº 134, 2015

AMARANTHACEAE 6.- Alternanthera maritima. Souza, J. G. et al. 2007. Ethanolic crude extract and flavonoids isolated fromAlternanthera maritima: neutrophil chemiluminescence inhibition and free radical scavenging activity. Z. Naturforsch. 62c (5-6): 339. Quercetina, -3-metiléter, -3-O-α-L-ramnosil-(1→6)-β-D-glucopiranósido; isoramnetina-3-O-α-L-ramnosil-(1→6)-β-D-glucopiranósido; acacetina-8C-3-O-α- L-ramnosil-(1→2)-β-D-glucopiranósido; vitexina-2”-O-β-D-glucopiranósido, -2”-O- α-L-ramnopiranósido (p.a.). 7.- Amaranthus spinosus. Ashok, K. et al. 2008. Estimation of rutin and quercetin in Amaranthus spinosus by HPLC. Asian J. Chem. 20(2): 1633. Rutina; quercetina (h.). a) ------Suryavanshi, V. S. et al. 2008. RP-LC determination of rutin in Amaranthus spinosus Linn. whole plant powder. Chromatographia 67(1-2): 189. Rutina (pl.) 8.- Pfaffia glomerata. Fenner, R. et al. 2008. Hypnotic effect of ecdysterone isolated from Pfaffia glomerata (Spreng.) Pedersen. Rev. Bras. Farmacogn. 18(2): 170. Ecdisterona (p. subt.).

AMARYLLIDACEE 9.- Hippeastrum vittatum. Silva, A. F. S. et al. 2008. Screening for cytotoxic activity of extracts and isolated alkaloids from bulbs of Hippeastrum vittatum. Phytomed. 15(10): 882. Licorina; vittatina; montanina (bl.).

ANACARDIACEAE 10.- Anacardium humile. de Almeida, A. C. A. et al. 2007. Avaliação dos níveis de apoptose na atividadede antiulcerogênica de Anacardium humile (cajuzinho-do- cerrado). XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Amentoflavona; ácido gálico; galato de metilo; catequina (h.). 11.- Astronium graveolens. da Silva, V. C. et al. 2008. Chemical profile ofAstronium graveolens by ESI-IT-MS/MS. XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. Ácido gálico, metil y etil galatos, mono hasta hexagaloil-glucosa; HHDP-glucosa; galoil-HHDP-glucosa; cafeoilglucosa; ácido galoilquínico; ácido clorogénico; miricetina-3-O-hexósido, -3-O-(O-galoil)-ramnósido, -3-O-ramnósido; quercetina-3-O-pentósido, -3-O-(O- galoil)-ramnósido, -3-O-ramnósido. 12.- Lithraea caustica. Russo, A. et al. 2007. Cytotoxicity activity of lithreol from Lithraea caustica (Anacardiaceae) against human neoplastic cells. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Litreol (= 3-[pentadecil-10-enil-catecol]) (h., br.). 13.- Lithraea molleoides “molle, chichita, molle de Córdoba”. López. P. G. et al. 2007. Estudio de la actividad antioxidante y sobre la proliferción de linfocitos de un compuesto aislado de Lithraea molleoides (Vell.) Engl. XVI Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. 1,3-dihidroxi-5-(tridec-4’,7’-dienil)-benceno. M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 

14.- Mangifera indica “mango”. Knölder, M. et al. 2007. Cyclooxygenase inhibitory 5-alkenyl-resorcinols isolated from mango (Mangifera indica L.) peels. 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. 5-(11Z-heptadecenil)-resorcinol; 5-(8Z,11Z- heptadecadienyl)-resorcinol (casc.). a) ------Knölder, M. et al. 2008. Anti-inflammatory 5-(11’Z-heptadecenyl)- and 5-(8’Z,11’Z-heptadecadienyl)-resorcinols from mango (Mangifera indica L.) peels. Phytochemistry 69(4): 988. -(11’Z-heptadecenil)-resorcinol; 5-(8’Z,11’Z- heptadecadienil)-resorcinol (casc.). b) ------Barreto, J. C. et al. 2008. Characterization and quantitation of polyphenolic compounds in bark, kernel, leaves, and peel of mango (Mangifera indica L.). J. Agric. Food Chem. 56(14): 5599. Compuestos fenólicos mayoritarios: mangiferina; penta-O-galoil-glucósido; ácido gálico; metil galato (ct.,h.,dr.,pi.). 15.- Myracrodruon urundeuva. Souza, S. M. C. et al. 2007. Anti-inflammatory and antiulcer properties of tannins from Myracrodruon urundeuva Allemão (Anacardiaceae) in rodents. Phytother. Res. 21(3): 220. Taninos (ct.tll.). 16.- Schinus areira “molle, aguaribay”. Vela Gurovic, M. S. et al. 2007. Aceites esenciales de Schinus areira L. con actividad inhibitoria de acetilcolinesterasa. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Elemol; β-eudesmol; α-cadinol; globulol (fr.). a) ------Vela Gurovic, M. S. et al. 2007. Essential oil from fruits and leaves of Schinus areira L. with acetylcholinesterase inhibitory activity.55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Elemol; β-eudesmol (fr, h.). 17.- Schinus johnstonii. Uhrich, A. et al. 2007. Rescatando la etnofarmacognosia de especies vegetales del distrito del golfo San Jorge (Patagonia Argentina). XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Quercetina; ramnetina; taninos. 18.- Schinus molle “molle de beber”. Quesada, S. et al. 2007. Composición química del aceite esencial de Schinus molle L. y su actividad citotóxica sobre líneas celulares tumorales. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata, Argentina. 42 constituyentes, los principales: α-pineno (31,1 %); β-pineno (22,7 %) (h.). a) ------Belhamel, K. et al. 2008. Chemical composition and antibacterial activity of the essential oil of Schinus molle L. grown in Algeria. Int. J. Essen.Oil Ther. 2(4): 175. Compuestos principales: α-felandreno (26,5 %); limoneno (8,6 %); β- felandreno (12,4 %); elemol (10,8 %); α-eudesmol (6,1 %) (as.es.). b) ------Díaz, C. et al. 2008. Chemical composition of Schinus molle essential oil and its cytotoxic activity on tumour cell lines. Nat. Prod. Res. 22(17): 1521. Compuestos mayoritarios: α y β-pineno (h.). c) ------Hayouni, WE. A. et al. 2008. Tunisian Salvia officinalis L. and Schinus molle L. essential oils: Their chemical compositions and their preservative effects against Salmonella inoculated in minced beef meat. Int. J. Food Microbiol. 125(3): 242. α-felandreno (35,86 %); β-felandreno (29,3 %); β-pineno (15,68 %); p-cimeno (5,43 %); α-pineno (5,22 %) (p.a.). 19.- Schinus terebenthifolius. Ceruks, M. et al. 2007. Polar phenolic constituents from Schinus terebinthifolius Raddi (Anacardiaceae). Quim. Nova 30(3): 597. Etil galato; metil galato; quercitrina; miricetrina; miricetina (h.).  Miscelanea Nº 134, 2015

a) ------Moustafa, A. M. Y. et al. 2007. Chemical composition and antifungal activity of the essential oil of Schinus terebenthifolius of Egyptian origin. Int. J. Essen Oil Ther. 1(2): 91. Compuestos mayoritarios: germacrene D (26,52 %); δ- selineno (15,11 %); β-amorfeno (6,30 %); isocariofileno (6,26 %); (-)-espatulenol (5,64 %); β-copaeno (3,21 %); hinesol (3,21 %); patchuleno (2,24 %) (p.a.). 20.- Tapirira guianensis. Correia S. de J. et al. 2008. Flavonoids, norisoprenoids and other terpenes from leaves of Tapirira guianensis. Quim. Nova 31(8): 2056. Lupeol; 24-metilencicloartan-3-ol; fitol; α y β-amirina; sitosterol; sitostenona; glicosil sitosterol; sitosterol esterificado con ácidos palmítico y esteárico; (6S,7E,9S)-6,9- dihidroxi-megas-tigma-4,7-dien-3-ona-9-O-β-glucopiranósido; (6S,7E,9R)-6,9- dihidroxi-megastigma-4,7-dien-3-ona-9-O-β-glucopiranósido; kaempferol, -3-O- ramnósido, -3-O-arabinofuranósido; quercetina-3-O-ramnósido (h.).

ANNONACEAE 21.- Annona cherimolia “mango”. Dal, H. K. et al. 2007. Xylomaticin and gonionenin, cytotoxic annonaceous acetogenins from the seeds of Annona cherimolia. Nat. Prod. Sci. 13(4): 355. Xylomaticina; gonionenina (s.). a) ------Ubaldo, S. D. et al. 2008. Antidepressant effect of an alkaloid extract from Annona cherimolia. 7th Joint Meeting of GA, AFERP, ASP, PSE & SIF. Atenas. Grecia. Liriodenina; annonaína. b) ------Hoyos, Z. et al 2008. Estudio de los componentes volatiles de Annona muricata L. y Annona cherimolia Mill., que crece en el estado Mérida, Venezuela. XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. Germacreno D (46,56 %); biciclogermacreno (11,66 %); β- cariofileno (6,08 %); germacreno B (5,51 %) (p.a.). 22.- Annona montana. Chuang, P. S. et al. 2008. Cyclopeptides with anti-inflammatory activity from seeds of Annona montana. J. Nat. Prod. 71(8): 1365. Ciclomantannas A, B, C y D; annomuricatina C; (+)-corituberina (s.). 23.- Duguetia furfuracea. Silva D. B. da et al. 2007. Chemical constituents of the underground stem bark of Duguetia furfuracea (Annonaceae). J. Braz. Chem. Soc. 18(8): 1560. (-)-Duguetina, -β-N-óxido; dicentrinona; (-)-N- metiltetrahidropalmatina; (+)-N-metilglaucina; 2,4,5-trimetoxiestireno; α-gurjuneno; aromadendreno; biciclogermacreno; (E)-metil-isoeugenol; α-asarona; policarpol; β-cariofileno óxido; asaraldehído; allantoína (ct.tll). a) ------Valter, J. L. et al. 2008. Chemical variability of the essential oil of the leaves from six individuals of Duguetia furfuracea (Annonaceae). Rev. Bras. Farmacogn. 18(3): 373. β-felandreno (42,2 %); mirceno (6,8 %); α-felandreno (4,6 %); terpin-4-ol (16,2- 21,6 %); sabineno (17,3-25,1 %); p-cimeno (5,6-8,3 %); biciclo-germacreno(21,4-29.1 %) (h.). 24.- Rollinia emarginata “araticá”. Alvarez Colom, O. et al. 2007. Bioactive components from Rollinia emarginata. Nat. Prod. Res. 21(3): 254. Vomifoliol; dehidrovomifoliol; blumenol C; loliólido; 7-epiloliólido; vanillina; dihidroactinólido (ct.tll). 25.- Xylopia langsdorffiana. Ribeiro, L. A. A. et al. 2007. The (8)17,12E,14- labdatrien-18-oic acid (labdane302), labdane-type diterpene isolated from Xylopia langsdorffiana St. Hil. & Tul. (Annonaceae) relaxes the guinea-pig trachea. Rev. Bras. Farmacogn. 17(2): 197. Ácido-(8)17,12E,14-labdatrien-18-oico (ct.tll.) M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 

a) ------Tavares, J. F. et al. 2007. Xylodiol, a new atisane diterpenoid from Xylopia langsdorffiana St. Hil. & Tul. (Annonaceae). Z. Naturforsch. 62b(5): 742. Xilodiol (= ent-atisane7α,16α-diol); ácido 8(17),12E,14-labdatrien-18-oico (h.). b) ------Tavares, J. F. et al. 2007. Composition and molluscicidal properties of essential oils from leaves of Xylopia langsdorffiana A. St. Hil. et Tul. (Annonaceae). J. Essent. Oil Res. 19(3): 282. 19 compuestos, los mayoritarios: germacreno D (22,9 %); trans-β-guaieno (22,6 %); β-cariofileno (15,7 %); α-pineno (7,3 %) (h.).

APIACEAE 26.- Anethum graveolens “eneldo”. Rojas, Y. et al. 2008. Estudio de los componentes volátiles de dos especies de Anethum graveolens L. del estado Mérida Venezuela. XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. α-felandreno (39,55 %); dill-éter (31,94 %); limoneno (17,71 %); α-felandreno (56,70 %); dill-éter (17,47 %); limoneno (14,48%) (as.es.). a) ------Badar, N. et al. 2008. Characteristics of Anethum graveolens (Umbelliferae) seed oil: Extraction, composition and antimicrobial activity. Int. J. Agric. Biol. 10(3): 329. Ácidos capricho, láurico, mirístico, palmítico, esteárico, oleico, linoleico, linolénico, araquidoico (s.). b) ------Hajhashemi, V. et al. 2008. Hypolipidemic activity of Anethum graveolens in rats. Phytother. Res. 22(3): 372. Mayores componentes: α-felandreno (32 %); limoneno (28 %); carvona (28 %) (p.a.). 27.- Anthriscus sylvestris “perifollo verde”. Geong, G. S. et al. 2007. Lignans and coumarins from the roots of Anthriscus sylvestris and their increase of caspase- 3 activity in HL-60 cells. Chem. Pharm. Bull. 30(7): 1340. Silvestrina (= (3’,4’,5’-trimetoxibenciliden)-3-(3”,4”-metilendioxi-bencil)-γ-butirolactona); nemorosina; (-)-deoxipodofilotoxina; (-)-deoxipodorizona; angeloil podofilotoxina; deoxipicropodofilotoxina; 5-metoxipsoraleno; isoscopoletina; escopoletina; falcarindiol (r.). 28.- Apium nodiflorum. Menghini, L. et al. 2007. In vitro inhibitory activity of essential oil of Apium nodiflorum against Helicobacter pylori. 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Limoneno (27,72 %); p-cimeno (23,06 %); miristicina (18,51 %); β-pineno (6,62 %) (ac.es.). 29.- Foeniculum vulgare “hinojo”. De Marino, S. et al. 2007. Phenolic glycosides from Foeniculum vulgare fruit and evaluation of antioxidative activity. Phytochemistry 68(13): 1805. Siringina-4-O-β-glucósido; sinapilglucósido; ácido oleanólico; 7α-hidroxi-campesterol; (3β,5α,8α,22E)5,8-epidioxi-ergosta-6,22-dien-3-ol; 2,3- dihidro-propilheptadec-5-enoato; cis y trans meyabenol; foeniculósidos X y XI; (3’R)-5-hidroxi-3-(3’-hidroxibutil)-isobenzofuran-1(3H)-ona (fr). a) ------Mojab, F. et al. 2007. GC-MS analysis of the essential oils of roots and leaves of Foeniculum vulgare Mill. J. Essent. Oil Bear. Plants 10(1): 36. Miristicina; dillapiol; apiol (r.); trans-anetol (h.). b) ------Gulfraz, M. et al. 2008. Composition and antimicrobial properties of essential oil of Foeniculum vulgare. Afr. J. Biotechnol. 7(24): 4364. trans-anetol (70,1 %); ácido linoleico (56 %); ácido palmítico (5,6 %); ácido oleico (5.2 %) (s.).  Miscelanea Nº 134, 2015

c) ------Sharifi, R. et al. 2008. Chemical composition of essential oils of Iranian Pimpinella anisum L. and Foeniculum vulgare Miller and their antifungal activity against postharvest pathogens. J. Essent. Oil Bear. Plants 11(5): 514. Ε-anetol (71,2 %); limoneno (8,2 %); fenchona (8,53 %); metilchavicol (7,01 %) (ac.es.). d) ------Singh, V. et al. 2008. Volatile constituents and antimicrobial activity of immature green seeds of Foeniculum vulgare Millar. J. Essent. Oil Bear. Plants 11(6): 655. Aldehído cúmico (87,3 %); fenchona (8,2 %); anetol (2,1 %); citronelal (1,6 %); geraniol (0,6 %) (s.). 30.- bonariensis “redondita de agua”. Anesini, C. et al. 2007. Actividad antiproliferativa de extractos de Hydrocotyle bonariensis “redondita de agua” sobre células de un linfoma murino. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Rutina; quercetina; quercitrina; hiperósido; ácidos clorogénico e isoclorogénico. 31.- Hydrocotyle umbellata. Martins, M. B. G. et al. 2008. Anatomical and chemical characterization of the leaf and root system of Hydrocotyle umbellata (Apiaceae). Rev. Bras. Farmacogn. 18(3): 402. Triterpenoides; saponinas; flavonoides; compuestos poliacetilenos; leucoceramidas (h., rz.). 32.- Laretia acaulis “llareta, yareta”. Borquez, J. et al. 2007. Azorellane diterpenoids from Laretia acaulis inhibit nuclear factor-kappa B activity. Phytother. Res. 21(11): 1082. Azorellanol; 7-deacetilazorellanol; 13-epiazorellanol (p.a.). 33.- Petroselinum crispum “perejil”. Douglas, S. A. et al. 2007. Chemical study of Petroselinum crispus (Apiaceae) species and its potental antithrombotic evaluation. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Apigenina-7-O-apiofuranosil-(1→2)-O-glucopiranósido; flavona- 5,7,4’-trihidroxi; cosmosiina; luteolina.

APOCYNACEAE 34.- Asclepias curassavica “bandera española, paina, mercurio”. Warashina, T. et al. 2008. Steroidal glycosides from the roots of Asclepias curassavica. Chem. Pharm. Bull. 56(3): 315. 12-O-benzoilsarcostina; 12-O-benzoildeacilmetaplexigenina; kidjolanina; 2-O-benzoiltailoron; 12-O-(E)-cinnamoiltailoron (r.). a) ------Warashina, T. et al. 2008. New cardenolide and acylated lignan glycosides from the aerial parts of Asclepias curassavica. Chem. Pharm. Bull. 56(8): 1159. Uzarigenina; 5,6-dehidrouzarigenina (= xysmalogenina); coroglaucigenina; gofrúsido; 6’-O-(E-4-hidroxi-cinamoil)-desglucouzarina; 6’-O-snapinoil- desglucouzarina; calactina, -16 α-acetoxi; 16α-acetoxi-calotropina; asclepina, -16α- hidroxi, -16α-acetoxi, -19-nor-16α-acetoxi-10β-hidroxi; uscharina, -16α-hidroxi; uscharidina; (+)-medioresinal; (+)-siringaresinol (p.a.). 35.- Aspidosperma pyrifolium. De Araújo, J. X. et al. 2007. Isolation and characterisation of the monoterpenoid indole alkaloids of Aspidosperma pyrifolium. Phytochemistry Rev. 6(1): 183. 15-Demetoxipirifolina; aspidofractinina; N- formilaspidofractinina (ct. tll.). 36.- Aspidosperma ramiflorum. Tanaka, J. C. A. et al. 2007. Antileishmanial activity of indole alkaloids from Aspidosperma ramiflorum. Phytomed. 14(6): 377. Ramiflorina A y B (ct.tll.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 

37.- Blepharodon nitidum. Aponte, J. C. et al. 2008. Anti-infective and cytotoxic compounds present in Blepharodon nitidum. Planta Med. 74(4): 407. 24- hidroperoxicicloart-25-en-3β-ol; 25-hidroperoxicicloart-23-en-3β-ol (pl.). 38.- Nerium oleander “laurel rosa, adelfa”. Bai, L. et al. 2007. Bioactive pregnanes from Nerium oleander. J. Nat. Prod. 70(1): 14. 21-Hidroxipregna-4,6-dien-3,12,20-triona; (20R-hidroxipregna-4,6-dien-3,12-diona; 16β,17β-epoxi-12β-hidroxipregna-4,6- dien-3,20-diona; neridienona A (= 12β-hidroxipregna-4,6,16-trien-3,20-diona); neridienona B (= 20S,21-dihidroxipregna-4,6-dien-3,12-diona) (ct., br.). a) ------Zhao, M. et al. 2007. Bioactive cardenolides from the stems and twigs of Nerium oleander. J. Nat. Prod. 70(7): 1098. Cardenólido N-1 (= 3β-O(β-D- sarmentosil)-14-hidroxi-5β,14β-card-20(22)-enólido); cardenólido N-2 (= 3β-O(β-D- sarmentosil)-8,14-epoxi-5β,14β-card-16,20(22)-dienólido); cardenólido N-3 (= 3β- O(β-D-diginosil)- 8,14; 16α,17-diepoxi-5β,14β-card-20(22)-enólido); cardenólido N-4 (= 3β-O(β-D-diginosil)-16β-acetoxi-14-hidroxi-5β,14β-card-20(22)-enólido); 3β,14-dihidroxi-5β,14β-card-20(22)-enólido; 3β-O-(β-D-diginosil)-14-hidroxi- 5β,14β-card-20(22)-enólido; 3β-O-(β-D-diginosil)14-hidroxi-5α,14β-card-20(22)- enólido; 3β-O-(β-D-diginosil)-8,14-epoxi-5β,14β-card-16,20(22)-dienólido; 3β-O- (β-D-diginosil)-8,14-dihidroxi-5β,14β-card-20(22)-enólido; 3β-O-(β-D-sarmentosil)- 16β-acetoxi-14-hidroxi-5β,14β-card-20(22)-enólido; 16β-acetoxi-3β,14-dihidroxi- 55β,14β-card-20(22)-enólido; 3β-O-(β-D-diginosil)-16β-acetoxi-14-hidroxi-5β,14β- card-20(22)-enólido (tll., br.). 39.- Plumeria rubra “franchipán”. Barreto, a. de S. et al. 2007. 15- Demethylisoplumieride acid, a new iridoid isolated from the bark of Plumeria rubra and latex of Himatanthus sucuuba. Quim. Nova 30(5): 1133. 15- Desmetilisoplumierídeo; 15-desmetilplumierídeo; plumierídeo; isoplumierídeo (ct.). 40.- Tabernaemontana catharinensis “palo víbora, horquetero, zapirandí, sapirandí”. Pereira, P. S. et al. 2008. Chemical constituents from Tabernaemontana catharinensis root bark: a brief NMR review of indole alkaloids and in vitro cytotoxicity. Quim. Nova 31(1): 20. Coronaridina; coronaridina hidroxiindolenina; voacangina; voacangina hidroxiindolenina; ibogamina; heyneanina; voacristina; voacristina hidroxiindolenina; 3-oxo-coronaridina; 20(30)-taraxasten-3β-il; iso- lupeil; bauerenil; α- y β-amirina; pseudotaraxastenil; iso-ursenil; lupeil; 20(30)- ursen-3β-il acetatos; stigmasterol; sitosterol; ácidos betulínico, oleanólico y ursólico (ct. r.)

AQUIFOLIACEAE 41.- Ilex brasiliensis. Filip, R. et al. 2008. Ilex brasiliensis: Phytochemical composition and mechanism of action against the proliferation of a lymphoma cell line. J. Food Biochem. 32(6): 752. Ácidos: clorogénico, cafeico, 3,4-dicafeoilquínico, 3,5- dicafeoilquínico y 4,5-dicafeoilquínico. 42.- Ilex paraguariensis “yerba mate”. Machado, C. C. V. et al. 2007. Volatile compounds profile and flavor analysis of yerba mateIlex ( paraguariensis) beverages. Quim. Nova 30(3): 513. Linalool; α-terpineol; trans-linalool óxido (mate verde); (E,Z)-2,4-heptadienal isómeros; 5-metilfurfural (mate cocido) 10 Miscelanea Nº 134, 2015

a) ------Costa Araujo, H. et al. 2007. Studies on the aroma of maté (Ilex paraguariensis St. Hil.) using headspace solid-phase microextraction. Phytochem. Anal. 18(6): 469. 70 Compuestos, algunos: propanal; (E)-2-pentenal; hexanal; (E)- 2-hexenal; 6-metil-5-hepten-2-ona; (E,Z)-2,4-heptadienal; (E,E)-2,4-heptadienal; (E,Z)-3,5-octadien-2-ona; β-ciclocitral; 3-etil 4-metil-(1H)-pirrol-2,5-diona; α- ionona; geranilacetona; β-ionona; dihidroactinidiólido; cafeína. b) ------Cogoi, L. et al. 2007. Análisis por HPLC de metilxantinas en frutos de Ilex paraguariensis. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Cafeína (0,12 %); teobromina (0,012 %) (fr.). c) ------Lozano, P. R. et al. 2007. Identification of characteristic aroma components of mate (Ilex paraguariensis) tea. ACS Symp. Ser. 946: 143. Geraniol; β-damascenona; 2-metoxifenol; linalool; β-ionona; eugenol; 2-acetil-1-pirrolina; (E,Z) 2,6-nonadienal; geranial (ac.es.). d) ------Bastos, D. H. M. et al. 2007. Phenolic antioxidants identified by ESI-MS from yerba maté (Ilex paraguariensis) and green tea (Camelia sinensis) extracts. Molecules 12(3): 423. Ácidos: cafeico, químico, cafeoilquínico, feruloilquínico y dicafeoilquínico; cafeoil glucosa; rutina (h.). e) ------Cansian, R. L. et al. 2008. Semi-volatile compounds variation among Brazilian populations of Ilex paraguariensis St. Hil. Braz. Arch. Biol. Technol. 51(1): 175. Cafeína; teobromina; fitol; escualeno; vitamina E; eicosano; pentatriacontano; stigmasterol (h.).

ARACEAE 43.- Philodendron imbe. Mendes Feitosa, C. et al. 2007. Constituintes químicos de Philodendron imbe Schott. Quim. Nova 30(1): 41. β-sitosterol; hexaprenol; 6β- hidroxi-stigmast-4-en-3-ona (h.); etil miristoleato; α-bisabolol; etil isopalmitato; 3-octadecenil-fenol etil palmitato (r.).

ARALIACEAE 44.- Hedera helix “hiedra”. Santos, S. et al.2007. Cuticular waxes from Ivy leaves (Hedera helix L.): analysis of high-molecular-weight esters. Phytochem. Anal. 18(1): 60. n-Alcanoles (45,3 %); monoácidos (18,8 %); triterpenos (9,7 %); n-aldehídos (8,7 %); n-alcanos (7,7 %) (h.).

ARECACEAE 45.- Butia capitata “palmera de la jalea”. Marin, R. et al. 2007. Fatty acids composition in Butia capitata and Butia yatay. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Ácido láurico (32,9 %); ácido cáprico (20,7 %); ácido oleico (11,48 %); ácido esteárico (2,46 %); ácido caprílico (15,75 %); ácido mirístico (7,09 %); ácido palmítico (4,4 %); ácido linoleico (1,81 %) (fr.). a) ------Genovese, M. I. et al. 2008. Bioactive compounds and antioxidant capacity of exotic fruits and commercial frozen pulps from Brazil. Food Sci. Technol. Int. 14(3): 207. VitaminaC. Derivados de quercetina y kaempferol (fr.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 11

b) ------Faria, J. P. et al. 2008. Chemical characterization of nut of Butia capitata var. capitata. Rev. Bras. Frutic. 30(2): 549. Acido láurico (42,1 %); ácido oleico (16,9 %) (nz.). 46.- Butia yatay “palma yatay”. Lu, Z. G. et al. 2007. Analysis of aromatic constituents in fruit and juice of yatay palm. J. Plnat. Resour. Environ. 16(3): 76. Mayor constituyente: etil hexanoato (58,062 %); ésteres (85,718 %); alcoholes (3,900 %); hidrocarbonos (1,614 %); ácidos carboxílicos (1,350 %); aldehídos (1,009 %); cetonss (0,593 %) (fr.); mayor constituyente: etil hexanoato (31,202 %); ésteres (59,831 %); ácidos carboxílicos (10,556 %); alcoholes (9,653 %); hidrocarbonos (3,078 %); aldehídos (2,684 %); cetones (1,841 %) (j.) a) ------Idem N° 45. Ácido láurico (43,1 %); ácido cáprico (12,56 %); ácido oleico (12,08 %); ácido esteárico (1,94 %); ácido caprílico (13,06 %); ácido mirístico (8,37 %); ácido palmítico (4,88 %); ácido linoleico (2,83 %) (fr.).

ARISTOLOCHIACEAE 47.- Aristolochia chamissonis. Francisco, C. S. et al. 2008. Classification of Aristolochia species based on GC-MS and chemometric analyses of essential oils. Phytochemistry 69(1): 168. 22 compuestos, los principales: 8,14-cedranediol (14,5 %); alcanfor (10,3 %); ciclocitral (10,3 %); ledol (7,0 %); germacreno A (6,8 %) (r.). 48.- Aristolochia chilensis. Urzúa, A. L. et al. 2008. Essential oil composition of Aristolochia chilensis a host plant of Battus polydamas. J. Chil. Chem. Soc. 53(1): 1372. 30 compuestos, los mayoritarios: isocariofileno (20,8 %); β-cariofileno (13,5 %); cariofileno óxido (12,9 %); 1(10)-∆ aristoleno (6,5 %); δ-cadineno (3,5 %) (h.) 49.- Aristolochia elegans “patito”. Idem N° 47. 21 compuestos, los mayoritarios: trans nerolidol (49,6 %); aromadendreno óxido-2 (10,6 %); aromadendreno óxido-1 (6,4 %); acetato isobornilo (3,8 %) (r.). 50.- Aristolochia esperanzae. Idem N° 47. Viridifloreno (42,2 %); α-aromadendreno (31,5 %); β-patchuleno (8,3 %) (r.). 51.- Aristolochia malmeana. Messiano, G. B. et al. 2008. Evaluation of insecticidal activity of diterpenes and lignans from Aristolochia malmeana against Anticarsia gemmatalis. J. Agric. Food Chem. 56(8): 2655. Ácido kolavénico; (-)-kusunokinina; (-)-hinokinina; (8S,8′R,9S)-cubebina (r., h.). a) ------Idem N° 47. Canfeno (46,3 %); β-gurjuneno (17,2 %); longicicleno (11,8 %); isoisativeno (10,2 %) (r.). 52.- Aristolochia melastoma. Idem N° 47. Limoneno (34,5 %); α-pineno (19,1 %); canfeno (15,3 %); β-pineno (12,6 %) (r.). 53.- Aristolochia ridicula. Machado, M. B. et al. 2008. Tetraflavonoid and biflavonoids from Aristolochia ridicula. Phytochemistry 69(18): 3095. Ridiculuflavona D (= 3”’,4’,4”’,5,5”,7”-hexahidroxi-7-metoxi-3,6”-biflavona); ridiculuflavonichalcona B (= 4’,5,5”,7”-tetrahidroxi-3’,3”,4”’-trimetoxi-7-O-β:6-α-flavona-chalcona); ridiculuflavonichalcona D (= 7”-hidroxi-3’,3”,4’,4”’,5,5”-hexametoxi-7-O-β:6-α- flavona-chalcona); ridiculuflavonichalcona E (= 3’,3”,4’,4”’,5,5”,7”-heptametoxi- 7-O-β:6-α-flavona-chalcona); ridiculuflavonichalcona C (= (4’,5,7”-trihidroxi- 3’,3”,4”’-trimetoxi-7-O-β:6-α-flavona-chalcona)-5”-O-β-[(7”-hidroxi-3”,4”’- dimetoxi)-5”-O-8-(4’,5,7-trihidroxi-3’-metoxi-flavona)]-chalcona);ridiculuflavona E (= 3”’,4’,4”’,5,5”,7,7”-heptametoxi-3,6”-biflavona) (h.). 12 Miscelanea Nº 134, 2015

ASPARAGACEAE 54.- Asparagus officinalis “espárrago”. Huang, X. F. et al. 2007. Studies on lignan components of Asparagus officinalis. Chin. Pharm. J. 42(5): 339. (+)-Nyasol; 3’- metoxinyasina; siringaresinol-4’,4”-O-bis-β-D-glucósido, -4-O-β-D-glucopiranósido (r.) a) ------Huang, X. F. et al. 2008. Steroids from the roots of Asparagus officinalis and their cytotoxic activity. J. Integr. Plant Biol. 50(6): 717. Sarsasapogenina O (r.). b) ------Sakaguchi, Y. et al. 2008. Major anthocyanins from purple asparagus (Asparagus officinalis). Phytochemistry 69(8): 1763. Cianidina-3-[3”-(O-β-D- glucopiranosil)-6”-(O-α-L-ramnopiranosil)-O-β-D-glucopiranósido], -3-rutionósido (pi.).

ASTERACEAE 55.- Acanthospermum hispidum “cuajilla”. Alva, M. et al.2007. Constituyentes volátiles de Acanthospermum hispidum DC. XXIV Jornadas Científicas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Tucumán.Argentina. β-cariofileno (35,2 %) (h., ifl.) a) ------Gbolade, A. A. et al. 2008. Comparative analysis of the essential oils from two Asteraceous plants found in Nigeria, Acanthospermum hispidum and Tithonia diversifolia. Nat. Prod. Comm. 3(10): 1735. Compuestos principales: β-cariofileno (28,0 %); α-pineno (15,9 %); biciclogermacreno (11,0 %); bisabolol (8,9 %); carvacrol metiléter (4,1 %) (p.a., h.). 56.- Achyrocline flaccida. Retta, D. et al. 2008. Essential oil composition of Achyrocline flaccida (Weinm.) DC. () from different locations of Argentina. Biochem. Syst. Ecol. 36(12): 877. 83 compuestos, los principales: α-pineno (25,5-55,2 %); β-cariofileno (50,6 %); limoneno (2,8 %); α-humuleno (12,1 %); α-copaeno (2,9 %); cis-β -ocimeno (0,4-2,8 %); δ-cadineno (1,0-3,0 %); β-pineno (0,4-1,0 %); cis-β- guaieno (0,5-2,2 %) (ifl.). 57.- Achyrocline hyperchlora. Liendro, M. N. et al. 2007. Flavonoids and volatile constituents from Achyrocline hyperchlora. Biochem. Syst. Ecol. 35(10): 720. Galangina-3-O-metiléter; flavona-5,7-dihidroxi-3,6-dimetiléter, -5,7-dhidroxi-3,6,8- trimetiléter, -5,7,8-trihidroxi-3,6-dimetiléter; calicopterina (= flavona-5,4’-dihidroxi- 3,6,7,8-tetrametiléter); quercetina,-3-O-metiléter (p.a.); butirofenona (8,65 %); 6- metil-5-hepten-2-ona (7,25 %); α-selineno (6,45 %); γ-eudesmol (4,60 %); eugenol (4,25 %) (p.a., fl.). 58.- Acroptilon repens. Zhan, Z. J. et al. 2008. Sesquiterpenoid alkaloid from Acroptilon repens. Nat. Prod. Res. 22(3): 222. 3β,8α-dihidroxi-13-pirrolidin-4(15),10(14)- (1αH,5αH,6βH,11βH)-guaiadien-12,6-ólido (p.a.). a) ------Quintana, N. et al. 2008. Phytotoxic polyacetylenes from roots of Russian knapweed (Acroptilon repens (L.) DC.). Phytochemistry 69(14): 2572. 5’-metoxi-1’- (5-prop-1-in-1-il-2-hienil)-hexa-2’,4’-diiin-6’-il acetato; 1-cloro-4-(5-penta-1,3-diin- 1-il-2-tienil)but-3-in-2-ol; 4’-cloro-1’-(5-penta-1,3-diin-1-il-2-tienil)-but-2’-in-3’-ol (r.). 59.- Ambrosia scabra. Sülsen, V. et al. 2008. In vitro antiprotozoal activity and chemical composition of Ambrosia tenuifolia and A. scabra essential oils. Nat. Prod. Comm. 3(4): 557. 24 compuestos, los mayoritarios: limoneno (22,0 %); cariofileno óxido (13,8 %); (E)-cariofileno (13,5 %) (p.a.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 13

60.- Ambrosia tenuifolia “yerba del pájaro, altamisa, ajenjo del campo”. Sülsen, V. et al. 2007. Trypanocidal and leishmanicidal activities of psilostachyn, a sesquiterpene lactone isolated from Ambrosia tenuifolia Sprengel (Asteraceae). XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Psilostachina (p.a.). a) ------Idem N° 59. 38 compuestos, los mayoritarios: germacreno D (22,9 %); biciclogermacreno (14,2 %) (p.a.). b) ------Sülsen, V. et al. 2007. Trypanocidal and leishmanicidal activities of flavonoids from Argentine medicinal plants. Am. J. Trop. Med. Hyg. 77(4): 654. Hispidulina (p.a.). c) ------Sülsen, V. et al. 2008. Trypanocidal and leishmanicidal activities of sesquiterpene lactones from Ambrosia tenuifolia Sprengel (Asteraceae). Antimicrob. Agents Chemother. 52(7):2415. Psilostachina; perusina (p.a.). 61.- Aphyllocladus spartioides “pular”. Viturro, C. et al. 2007. Compuestos volátiles y actvidad antioxidante de extractos acuosos de Aphyllocladus spartioides de Jujuy y Argentina. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. α-pineno (21,0-38,0 %); espatulenol; δ- cadinol; δ-cadineno (7,0-9,0 %); γ-cadineno (3,0-4,0 %). 62.- Artemisia absinthium “ajenjo”. Nikolova, M. et al. 2007. Phenological variations in the surface flavonoids ofArtemisia vulgaris L. and Artemisia absinthium L. Turk. J. Bot. 31(5): 459. Quercetagetina-3,6,7,3’,4’-pentametiléter (p.a.). a) ------Basta, a. et al. 2007. Chemical composition of Artemisia absinthium L. from Greece. J. Essent. Oil Res. 19(4): 316. Compuestos principales: cariofileno óxido (25,3 %); p-cimeno (16,8 %); 1,8-cineol (8,9 %); (Z)-lanceol acetato (7,3 %) (p.a.). b) ------Lopes Lutz, D. et al. 2008. Screening of chemical composition, antimicrobial and antioxidant activities of Artemisia essential oils. Phytochemistry 69(8): 1732. Mirceno (10,8 %); trans-thujona (10,1 %); trans-sabinil acetato (26,4 %) (p.a.). c) ------Mora, F. et al. 2008. Composición química del aceite esencial de las hojas de Artemisia absinthium L. que crece en Tovar-Edo Mérida-Venezuela. XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. 30 constituyentes, los mayoritarios: α-tujona (55,13 %); canfeno (2,56 %); chamazuleno (10,47 %) (h.). 63.- Artemisia copa “copa”. Catalán, C. et al. 2007. Composición química y actividad antioxidante del aceite esencial y extractos de Artemisia copa. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Jaceídina, -7-metiléter; acetato de linilo; crisantenona; linalool; acetato de crisantenilo (ac.es.). 64.- Artemisia douglasiana “matico”. Wendel, G. H. et al. 2008. Antidiarrheal activity of dehydroleucodine isolated from Artemisia douglasiana. Fitoterapia 79(1): 1. Dehidroleucodina (p.a.) 65.- Artemisia mendozana “ajenjo, ajenjo cuyano”. Lima, B. et al. 2008. Chemical composition and antibacterial activity of Artemisia mendozana D.C. essential oil. J. Essent. Oil Bear. Plants. 11(5): 496. 36 compuestos, los mayoritarios: alcanfor (22,4 %); artemiseol (11,1 %); artemisia alcohol (10,8 %); borneol (7,2 %) (p.a.). 14 Miscelanea Nº 134, 2015

66.- Baccharis arctostaphylloides. Botas, G. da S. et al. 2007. Elucidação química e atividade citotóxica do óleo esencial de Baccharis arctostaphylloides Baker frente a Artemia salina. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. 17 compuestos, los mayoritarios: limoneno (14,6 %); mirceno (12,6 %); β-cariofileno (10,7 %); β-eudesmol (10,4 %) (h., rm). 67.- Baccharis articulata “carqueja, carquejilla, pichana carqueja”. Simionatto, E. et al. 2008. Chemical composition and antimicrobial activity of the volatile oil from Baccharis articulata (Lam.) Pers. J. Essent. Oil Res. 20(4): 366. 29 compuestos, los principales: β-pineno (39,0 %); cis-guaieno (9,8 %); γ-muuroleno (5,8 %); limoneno (4,8 %); α-pineno (4,5 %); α-gurjuneno (4,4 %); espatulenol (4,2 %) (p.a.). 68.- Baccharis dracunculifolia “chilca, chilca del valle, romerillo grande”. Klopell, F. C. et al. 2007. Nerolidol, an antiulcer constituent from the essential oil of Baccharis dracunculifolia DC (Asteraceae). Z. Naturforsch. 62c (7-8): 537. Nerolidol (ac.es.) a) ------Missima, F. et al. 2007. Effect of Baccharis dracunculifolia D.C. (Asteraceae) extracts and its isolated compounds on macrophage activation. J. Pharm. Pharmacol. 59(3): 463. Baccharis óxido; friedelanol; viscidona; 11-hidroxi- 10,11-dihidro-euparina; 6-hidroxi-tremetona; isosakuranetina; aromadendrina-4’- metiléter; ácido dihidrocumárico; baccharina; ácido hautriwaico lactona; ácido hautriwaico acetato; drupanina; ácido cumárico (r., h.). b) ------da Silva Filho, A. A. et al. 2008. Antimicrobial activity of the extract and isolated compounds from Baccharis dracunculifolia D.C. (Asteraceae). Z. Naturforsch. 63c (1-2): 40. Acido ursólico, -2-hidroxi; isosakuranetina; aromadendrina-4-metiléter; baccharina; viscidona; ácido hautriwaico lactona; clerodanfuranoditerpeno (h.). c) ------Lago, J. H. G. et al. 2008. Composição química dos óleos essenciais das folhas de seis espécies do gênero Baccharis de “Campos de Altitude” da mata atlântica paulista. Quim. Nova 31(4): 727. β-elemeno (53,51 %); 2-fenil-propanoato de etilo (7,83 %); germacreno D (3,99 %) (h.). d) ------Queiroga, C. L. et al. 2008. Comparison of the chemical composition of the essential oil and the water soluble oil of Baccharis dracunculifolia DC. (Asteraceae). J. Essent. Oil Res. 20(2): 111. Limoneno; (E)-nerolidol; biciclogermacreno; espatulenol; (E,E)-farnesol (p.a.).

e) ------Piantino, C. R. et al. 2008. Supercritical CO2 extraction of phenolic compounds from Baccharis dracunculifolia. J. Supercrit. Fluids 47(2): 209. Artepillina (= ácido-3,5-diprenil-4-hidroxicinámico); ácido-3-prenil-4- hidroxicinámico; ácido-p-cumárico; kaempférido (= flavona-4-metoxi-3,5,7- trihidroxi) (h.). 69.- Baccharis gaudichaudiana “carqueja, carqueja dulce, chilca melosa”. Guo, Y. et al. 2007. Clerodane diterpenoids and flavonoids with NGF-potentiating activity from the aerial parts of Baccharis gaudichaudiana. Chem. Pharm. Bull. 55(10): 1532. Ácido 15-hidroxi-16-acetoxi-ent-clerod-3-en-18-oico; 5,16-epoxy-7α,18-dihidroxi- 15-metoxi-ent-clerod-3-eno; 13,14-dihidro-marrubiagenina; gaudichanólido; flavona-5,7,4’-trihidroxi, -5,7,3’,4’-tetrahidroxi, -7,4’-dihidroxi-5-metoxi (p.a.). 70.- Baccharis grisebachii “quinchamal”. Hadad, M. et al. 2007. Chemical composition and antimicrobial activity of essential oil from Baccharis grisebachii Hieron (Asteraceae). J. Chil. Chem. Soc. 52(2): 1186. 43 compuestos, los principales: timol (18,3 %); timol metiléter (16,7 %); timol acetato (10,9 %); α-pineno (7,2 %); α- humuleno (7,2 %); 4-terpineol (7,1 %); globulol (3,7 %) (p.a.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 15

71.- Baccharis incarum “ligia, tola, ñaca tola, pampa tola”. Alberto, M. R. et al. 2007. Propiedades antiinflamatorias deBaccharis incarum. XVI Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Flavona-5,4’-dihidroxi-3,6,7,8,3’-pentametiléter (pl.). 72.- Baccharis latifolia “chilca”. Rojas, J. et al. 2007. Composición química y actividad antibacteriana del aceite esencial de Baccharis latifolia y Baccharis prunifolia (Asteraceae). XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. 24 compuestos, los mayoritarios: curcumeno (12,19 %); limoneno (7,58 %); β-bisaboleno (2,80 %); trans-farneseno (2,22 %) (p.a.). 73.- Baccharis microdonta. Idem N° 68c. Óxido cariofileno (24,06 %); α-cadinol (8,44 %); α-pineno (8,11 %); viridiflorol (7,67 %) (h.). 74.- Baccharis salicifolia “chilca, chilca amarga, suncho, jarilla del río”. Salazar, W. et al. 2007. Estudio fitoquímico y de la actividad antihelmíntica de los extractos de Euphorbia huanchalana y Baccharis salicifolia. Rev. Soc. Quím. Perú. 73(3): 150. Alcaloides; flavonoides; esteroides; antraquinonas; cardiotónicos (p.a.). 75.- Baccharis schultzii. Idem N° 68c. Limoneno (33,50 %); gurjuneno (13,24 %); espatulenol (17,40 %) (h.). 76.- Bacharis trimera “carqueja”. Lago, J. H. G. et al. 2008. Chemical composition of male and female Baccharis trimera (Less.) DC. (Asteraceae) essential oils. Biochem. Syst. Ecol. 36(9): 737. 23 compuestos, los principales: E-cariofileno (16,1 %); α-cadineno (11,6 %) (fl. fem.); 25 compuestos los principales: α-humuleno (20,3 %); germacreno D (12,9 %); E-cariofileno (10,2 %) (fl. masc.). a) ------Idem N° 68c. α-humuleno (19,54 %); germacreno D (8,86 %); germacreno A (7,80 %); mirceno (6,09 %) (h.). 77.- Baccharis trinervis. Morales, A. et al. 2007. Composición química y actividad antibacterial del aceite esencial de Baccharis trinervis (Lam.) Pers. colectado en Venezuela. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. 47 compuestos, los principales: germacreno D (20,14 %); limoneno (15,40 %); δ-cadineno (5,18 %); β-cariofileno (4,79 %); α- pineno (4,51 %); biciclogermacreno (4,05 %; χ-selineno (3,69 %); δ-3-careno (3,4 %) (ac.es.). a) ------Rojas, J. et al. 2008. Chemical composition and antibacterial activity of the essential oil of Baccharis trinervis (Lam.) Pers. (Asteraceae) collected in Venezuela. Nat. Prod. Comm. 3(3): 369. Germacrene D (20,4 %); limoneno (15,4%); δ-cadineno (5,2 %); β-cariofileno (4,8 %); α-pineno (4,5 %); biciclogermacreno (4.0%) (ac.es.). 78.- Baccharis uncinella. Idem N° 68c. α-pineno (13,59 %); β-pineno (6,69 %); δ- cadineno (13,24 %); guaiol (11,35 %); cubenol (8,25 %) (h.). 16 Miscelanea Nº 134, 2015

79.- Bellis perennis “coqueta, margarita”. Morikawa, T. et al. 2008. Perennisosides I-VII, acylated triterpene saponins with antihyperlipidemic activities from the flowers of Bellis perennis. J. Nat. Prod. 71(5): 828. Perennisósido I (= 23-O- acetilbayogenina 28-O-α-L-ramnopiranosil (1→2)[β-D-glucopiranosil(1→ 3)]-6-O-acetil-β-D-glucopiranósido); perennisósido II (=23-O-acetilbayogenina 28-O-α-L-ramnopiranosil(1→2)[β-D-galacto-piranosil(1→3)]-6-O-acetil-β-D- glucopiranósido); perennisósido III (= 3-O-β-D-gluco-piranósido de bayogenina 28-O-α-L-ramnopiranosil (1→2)[β-D-glucopirano-sil(1→3)]-6-O-acetil-β-D- glucopiranósido); perennisósido IV (= 3-O-β-D-glucopiranósido de bayogenina 28-O-α-L-ramnopiranosil (1→2)[β-D-galactopiranosil(1→3)]-6-O-acetil-β- D-glucopiranósido); perennisósido V (= 3-O-β-D-glucopiranósido de 23-O- acetilbayogenina 28-O-α-L-ramnopiranosil (1→2)[β-D-glucopiranosil(1→ 3)]-β-D-glucopiranósido); perennisósido VI (= 3-O-β-D-glucopiranósido de 23- O-acetilbayogenina 28-O-α-L-ramnopiranosil (1→2)[β-D-galactopiranosil(1→ 3)]-β-D-glucopiranósido); perennisósido VII (=3-O-β-D-glucopiranósido de 23-O- acetilbayogenina 28-O-α-L-ramnopiranosil (1→2)[β-D-galactopiranosil(1→3)]-6-

O-acetil-β-D-glucopiranósido); bellidiósido A; asterbatanósido D; bernardiósido B2; bellissaponina BS6 (fl.). a) ------Yoshikawa, M. et al. 2008. Medicinal flowers. XXI. Structures of perennisaponins A, B, C, D, E and F acylated oleanane type triterpene oligoglycosides, from the flowers ofBellis perennis. Chem. Pharm. Bull. 56(4): 559. Perennisaponina A (= ácido poligalácico-28-O-α-L-ramnopiranosil(1→ 3)-β-D-xilopiranosil((1→4)-2-O-acetil-α-L ramnopiranosil(1→2)-4-O-acetil-β- D-fucopiranósido); perennisaponinas B, C, D, E, F; bellisaponinas BS1 y BS6;

bellisósidos A, D, E; asterbartanósido D; bernardiósido B2; apigenina, -7-O-β- D-glucopiranósido, -7-O-β-D-glucuronopiranósido metiléster; isoramnetina- 3-O-β-D-glucopiranósido, -3-O-β-D-glucuronopiranósido, -3-O-rutinósido, -3-O-robinobiósido; metilsiringato-4-O-β-D-glucopiranósido; (Z)-hexenil-β-D- glucopiranósido (fl.). 80.- Bidens alba. Priestap, H. A. et al. 2008. Investigation of the essential oils of Bidens pilosa var. minor, Bidens alba and linearis. J. Essent. Oil Res. 20(5): 396. α-pineno; β-cario-fileno; β-copaeno; germacreno D; 1-fenilhepta-1,3,5-triino; 1-fenilhept-5-ena-1,3-diino (p.a.); 7-fenilhept-2-ena-4,6-diinil acetato; eugenol isobutirato; 1’-isobutiriloxi-eugenol isobutirato. (r.). 81.- Bidens pilosa var. minor. Idem N° 80. α-pineno; β-cariofileno; β-copaeno; germacreno D; 1-fenilhepta-1,3,5-triino; 1-fenilhept-5-ena-1,3-diino (p.a.); 7- fenilhept-2-ena-4,6-diinil acetato (r.) 82.- Bidens squarrosa. Pérez Amador, M. C. et al. 2007. Actividad biológica, poliacetilenos y flavonoides deBidens squarrosa. XVI Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Poliacetilenos; flavonas; isoflavonas; flavonoles (h., tll., ifl.). a) ------Pérez Amador, M. C. et al. 2008. Biological activity of phototoxic compounds in Bidens squarrosa H.B.K. (Asteraceae). Phyton 77: 103. Poliacetilenos; tiofenos. 83.- Calea uniflora. Mendes do Nascimento, A. et al. 2007. Chromanones with leishmanicidal activity from Calea uniflora. Z. Naturforsch. 62c (5-6): 353. Mezcla de uniflorol A y B; 2,2-dimetil-6-(1-hidroxietil)-croman-4-ona (p.subt.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 17

84.- Chiliotrichum diffusum. Alcalde, S. M. et al. 2007. Actvidad antioxidante, cardiovascular y antiinflamatoria de extractos deChiliotrichum diffusum (Asteraceae) enriquecidos en flavonoides. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Flavonas y flavonoles mono y diglicosilados en C7 y C3 (p.a.); 3,7,4’-trihidroxiflavilio; apigenidina; pelargonidina; miricetina, kaempferol y derivados (fl.) a) ------Alcalde, S. M. et al. 2007. Evaluación farmacológica en relación al perfil fitoquímico del decocto de flores deChiliotrichum diffusum (G. F.).K. (Asteraceae). IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Cianidina-3,7,4’-trihidroxiflavilio; apigeninidina (fl.). 85.- Chromolaena odorata. Ling, S. K. et al. 2007. Platelet-activating factor (PAF) receptor binding antagonist activity of the methanol extracts and isolated flavonoids from Chromolaena odorata (L.) King and Robinson. Chem. Pharm. Bull. 30(6): 1150. Eriodictiol-7,4’-dimetiléter; quercetina-4’- metiléter, -7,4’-dimetiléter; naringenina-4’- metiléter; kaempferol-4’- metiléter, -3-O-rutinósido; taxifolina-4’- metiléter, -7-metiléter (h., tll., r.). a) ------Meccia, G. et al. 2007. Análisis químico y microbiológico del aceite esencial de Chromolaena odorata (L.) King & Robinson (ex Eupatorium odoratum L.). XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. 29 compuestos, los mayoritarios: α-zingibereno (40,2 %); germacreno D (17,9 %); β-pineno (8,2 %); α-pineno (6,0 %) (h.). b) ------Thoden, T. C. et al. 2007. Pyrrolizidine alkaloids of Chromolaena odorata act as nematicidal agents and reduce infection of lettuce roots by Meloidogyne incognita. Nematology 9(3): 343. 1,2-dehidropirrolisidin alcaloides (r.). 86.- Chrysanthemum coronarium. Choi, J. M. et al. 2007. Identification of campesterol from Chrysanthemum coronarium L. and its antiangiogenic activities. Phytother. Res. 21(10): 954. Campesterol. a) ------Ibrahim, L. F. et al. 2007. NMR spectral analysis of flavonoids from Chrysanthemum coronarium. Chem. Nat. Compd. 43(6): 659. Naringenina-5-O- glucósido; apigenina, -7-O-glucósido; luteolina, -7-O-glucósido; kaempferol, -3-O- glucósido; quercetina, -3-O-glucósido (p.a.). b) ------Shonouda, M. L. et al. 2008. Insecticidal effect of Chrysanthemum coronarium L. flowers on the pest Spodoptera littoralis Boisd and its parasitoid Microplitis rufiventris Kok. with identifying the chemical composition. J. Appl. Sci. 8(10): 1859. Principales constituyentes: 3-dihidro-metilen-2-(3H) furanona (17,8 %); jasmolina I (15,6 %); carveol 1 (13,6 -24,8 %); ácido fosfórico; tributiléster (11,4 %); cinerina II (11,1 %); 5-hidroxi-3 metil-1H-pirazol (42,7 %) (fl.) c) ------Song, M. C. et al. 2008. Heterocyclic compounds from Chrysanthemum coronarium L. and their inhibitory activity on hACAT-1, hACAT-2, and LDL- oxidation. Arch. Pharm. Res. 31(5): 573. 5,5’-dibutoxi-2,2’-bifurano; metil trans- ferulato; prunasina; sambunigrina; pterolactama; adenosina (p.a.). 87.- Chuquiraga aurea. Idem N° 17. Flavonas. 88.- Chuquiraga avellanedae “quilimbay”. Idem N° 17. Kaempferol; acacetina-7- glucósido; baicaleína; isoflavonas; ácidos palmítico y linoleico; cardenólidos. 18 Miscelanea Nº 134, 2015

89.- Conyza bonariensis “rama negra, melena de viejo, hierba carnicera”. Contreras, M. et al. Estudio del aceite esencial de Conyza bonariensis (L.) Cronquist que crece en Mérida-Venezuela. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. 13 compuestos, los mayoritarios: trans-β- farneseno (37,37 %); trans-ocimeno (20,72 %); β-sesquifelandreno (9,76 %) (h.). 90.- Coreopsis lanceolata “coreopsis, calliopsis” Kimura, Y. et al. 2008. Nematicidal activities of acetylene compounds from Coreopsis lanceolata L. Z. Naturforsch. 63c(11-12): 843. 1-fenilhepta-1,3,5-triino; 5-fenil-2-(1’-propinil)-tiofeno; 2-(3’- acetoxi-1’-propinil)-5-feniltiofeno (fl.). 91.- Crepis vesicaria. Malafronte, N. et al. 2008. Secondary metabolites from Crepis vesicaria L. (Asteraceae). XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Luteolina-7-O-α-L-ramnopiranosil-(1→6)-β-D- glucopiranósido, -7-O-β-D-glucopiranósido; kaempferol-7-O-β-D-glucopiranósido; ácido 3,5-dicafeoilquínico, -3,4,5-tricafeoilquínico, -5-cafeoilquínico; 3-oxo-8-(4- hidroxifenil)acetoxi-10(14),11(13)-guaiadien-12,6-ólido; 8-desacilcinaropicrina; onopordopicrina. 92.- Dasyphyllum inerme. Mendiondo, M. E. et al. 2008. Metabolitos secundarios de Dasyphyllum inerme (Rusby) Cabrera, subfamilia Barnadesioideae (Asteraceae). XXV Jornadas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Argentina. Quercetina- 3-O-glucósido, -3-O-ramnósido, -3-O-rutinósido; kaempferol-3-O-glucósido, -3-O- rutinósido; ácido clorogénico e isoclorogénico (p.a.). 93.- Doniophyton anomalum. Juárez, B. E. et al. 2007. Significado quimiotaxonómico de los flavonoides presentes enDoniophyton anomalum (D. Don) (Asteraceae). IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Quercetina-3-O-glucósido, -3-O-rutinósido; kaempferol-3-O-glucósido, -3-O-rutinósido (p.a.). 94.- Eclipta prostrata. Lee, M. K. et al. 2008. Antiproliferative activity of triterpenoids from Eclipta prostrata on hepatic stellate cells. Phytomed. 15(9): 775. Ácido echinocístico; eclalbasaponina I, II, III, V (p.a.). a) ------Wu, J. et al. 2008. Chemical constituents of Eclipta prostrata. Zhong Cao Yao 39(6): 814. Ácido-2, 2’, 5”, 2”-tertiofeno-5-carboxílico; β-sitosterol; apigenina; quercetina; luteolina; wedelolactona; demetil wedelolactona; ecliptasaponina C; luteolósido; linarina (p.a.). 95.- Elephantopus mollis. Tabopda, T. K. et al. 2007. Cytotoxic triterpene and sesquiterpene lactones from Elephantopus mollis and induction of apoptosis in neuroblastoma cells. Planta Med. 73(4): 376. 2 deethoxy 2 hydroxyphantomolina; 2,5 epoxi-2β-hidroxi-8α- (2 metilbut-2-enoiloxi)-4(15),10(14),11(13)- germacratrien- 12,6-α-ólido; elephanmollen; molephantina; molephantinina; phantomolina (h., r.). a) ------Tabopda, T. K. et al. 2008. Further cytotoxic sesquiterpene lactones from Elephantopus mollis Kunth. Chem. Pharm. Bull. 56(2): 231. (4βH)-5α-hidroxi-8α- (2-metilbut-2-enoiloxi)-2-oxo-1(10),11(13)-guaiadien-12,6α-ólido; (4βH)-8α-(2- metilbut-2-enoiloxi)-2-oxo-1(5),10(14),11(13)-guaiatrien-12,6α-ólido; 2,5-epoxi-2β- hidroxi-4α-metoxi-8α-(2-metilbut-2-enoiloxi)-4(15),10(14),11(13)-germacratrien- 12,6α-ólido;2β-metoxi-2-deetoxi phantomolina; 2β-metoxi-2-deetoxi-8-O-deacil phantomolina-8-O-tiglinato (r., tll.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 19

96.- Eupatorium arnottianum. Clavin, M. et al. 2007. Anti-inflammatory activity of flavonoids from Eupatorium arnottianum. J. Ethnopharmacol. 112(3): 585. Nepetina; jaceosidina; hispidulina; eriodictiol; hiperósido; rutina; ácidos cafeico y clorogénico (p.a.). 97.- Eupatorium betonicaeforme. Rocha, D. D. et al. 2007. Studies on the cytotoxicity of miscellaneous compounds from Eupatorium betonicaeforme (D.C.) Baker (Asteraceae). Chem. Biodivers. 4(12): 2835. 2,2-dimetil-6-vinilcroman-4-ona; 2-senecioil-4-vinilfenol; 6-acetil-2,2-dimetilcroman-4-ona; (4E)-8β-angeloiloxi- 9β,10β-dihidroxi-1-oxogermacra-4,11(13)-dien-12,6α-ólido; 3β-hidroxiicosan-1,5β- ólido (fl., r.). 98.- Eupatorium buniifolium “romerillo colorado, chilca”. Idem N° 60b. Santina (p.a.). 99.- Eupatorium polystachium. Souza, T. J. T. et al. 2007. Chemical composition and antioxidant activity of the volatile oil from Eupatorium polystachyum DC. Rev. Bras. Farmacogn. 17(3): 368. β-pineno (14,7 %); β-mirceno (15,3 %); limoneno (22,8 %); β-cariofileno (10,4 %); germacreno D (7,2 %); biciclogermacreno (12,0 %) (h.); β-pineno (9,8 %); β-mirceno (10,8 %); limoneno (20,5 %); β-cariofileno (15,4 %); germacreno D ( 9,4 %); biciclogermacreno (19,2 %) (fl.) 100.- Flourensia fiebrigii “maravilla”. Uriburu, M. L. et al. 2007. Prenylflavonoids from Flourensia fiebrigii. Phytochemistry 68(9): 1295. Flavanona (2S)-8-(3”-metilbut-2”- enil)-7,3’,4’-trihidroxi, -(2S)-8-(3”-metil-4”-hidroxi-but-2”-enil)-7,3’,4’-trihidroxi, -(2S)-8-(3”-metil-4”-hidroxibut-2”-enil)-5,3’,4’-trihidroxi-7-metoxi; tremetona, -6-metoxi; eriodictiol-8-prenilo; 2-isopropenil-3-oxiangeloil-5-acetil-cis-2,3- dihidrobenzofurano; 5,3’-dihidroxi-isobavachina-7-O-metiléter (p.a.). 101.- Flourensia oolepis “chilca”. Garcia, M. et al. 2007. Insecticidal effects of Flourensia oolepis Blake (Asteraceae) essential oil. Biochem. Syst. Ecol. 35(4): 181. 38 compuestos, los principales: τ-muuroleno (6,14 %); santolinetrieno (6,22 %); 2- metilen-4,8,8-trimetil-4-vinil-biciclo[5.2.0]nonato (10,15 %); δ-cadineno (10,27 %); γ-gurjuneno (20,69 %) (ac.es.). 102.- Flourensia thurifera. Urzúa, A. et al. 2007. Analysis of surface and volatile compounds of flower heads of Flourensia thurifera (Mol) D.C. J. Chil. Chem. Soc. 52(3): 1244. α-cubebeno (19,1 %); α-ocimeno (10,1 %); β-cariofileno (7,4 %);

linalool (2,1 %); n-alcanos de C23 a C31; C33 (fl.). 103.- Gaillardia megapotamica var. scabiosoides “botón de oro, margarita pampeana, margarita de la sierra”. Adams, A. et al. 2008. Composition of essential oils of Gaillardia megapotamica and Gaillardia cabrerae from Argentina. J. Essent. Oil Res. 20(6): 521. 53 compuestos, los mayoritarios: α- y β-pineno; limoneno; 1,8- cineol; β-cariofileno; espatulenol; cariofileno óxido (ac.es.). 104.- Galinsoga parviflora. Tariq, S. et al. 2008. Phytochemical studies on Galinsoga parviflora. J. Chem. Soc. Pak. 30(5): 762. β-sitosterol, -3-O-β-D-glucopiranósido; ácidos: octacosanoico, ursólico, 4-hidroxibenzoico, 3,4-dihidroxibenzoico y gálico. a) ------Contreras, M. et al. 2008. Componentes volátiles de Galinsoga parviflora (Asteraceae) que crece en los Andes Venezolanos. XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. 18 constituyentes, los mayoritarios: 1-pentadecano (58,56 %); farneseno (11,17 %); 1- octadecano (5,37 %); α-bisaboleno (4,98 %) (h.). 20 Miscelanea Nº 134, 2015

105.- Gochnatia foliolosa. Valant-Vetschera, K. M. et al. 2007. Chemodiversity of exudate flavonoids in seven tribes of Cichorioideae and (Asteraceae). Z. Naturforsch. 62c(3-4): 155. Genkwanina (= apigenina -7-metiléter); ramnocitrina (= kaempferol-7-metiléter); kumatakenina (= kaempferol-3,7-dimetiléter); ermanina (= kaempferol-3,4’-dimetiléter); kaempferol-3,7,4’-trimetiléter (p.a.). 106.- Gochnatia glutinosa “acancio, sacanza, tola muña”. López, M. E. et al. 2007. Actividad antirradicalaria de un flavonoide aislado de la resina deGochnatia glutinosa. XXIV Jornadas Científicas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Tucumán. Argentina. Quercetina-3-metiléter (h., fl.). a) ------Idem N° 105. Isokaempférido (= kaempferol-3-metiléter); kumatakenina; ermanina; kaempferol-3,4’, -3,7,4’-trimetiléter; ramnetina (= quercetina-7-metiléter); isoramnetina (= quercetina-3’-metiléter); quercetina-3-metiléter, -3,3’-dimetiléter, 3,7-dimetiléter; eriodictiol, -7-metiléter (p.a.). 107.- Grindelia chiloensis “melosa”. Idem N° 105. Isokaempférido; ermanina (ex.). 108.- Gutierrezia gilliesii “pegajosa, canchalagua”. Juárez, B. E. et al. 2007. Flavonoides de Gutierrezia gilliesii Griseb. (Asteraceae).XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Flavonas metiladas 3- O mono glicósidos y 7-O-diglicósidos de kaempferol, ramnetina y patuletina (p.a.). 109.- Gutierrezia mandonii “canchalagua, canchalahua, chillauva”. Clemente, S. V. et al. 2008. Insecticidal activity of the essential oil and extracts of Gutierrezia mandonii and G. repens (Asteraceae) growing in Argentina. J. Essent. Oil Res. 20(3): 276. 52 compuestos: sabineno (13,1 %); limoneno (13,3 %); terpinen-4-ol (4,1 %); espatulenol (4,1 %); (6R,7R)-bisabolona (6,6 %) (ac.es.). 110.- Gutierrezia repens. Alarcón, S. R. et al. 2007. Flavonoids from Gutierrezia repens (Asteraceae). J. Arg. Chem. Soc. 95(1-2): 20. Quercetina, -7,3’-dimetiléter, -3,7,3’- trimetiléter, -3,7,4’-trimetiléter (p.a.). a) ------Idem N° 109. β-pineno (17,8 %); (E)-β-ocimeno (7,0 %); (6R,7R)- bisabolona (58,0 %) (ac.es.). 111.- Gutierrezia resinosa. Idem N° 105. Quercetina-3-metiléter,-3,7-dimetiléter; crisosplenol D (= quercetagetina-3,6,7-trimetiléter); gosipetina-3,8-dimetiléter, -3,7,8-trimetiléter; flavona-5,3’,4’-trihidroxi-3,6,7,8-tetrametiléter, -5,4’-dihidroxi- 3,6,7,8,3’-pentametiléter; axillarina (= quercetagetina-3,6-dimetiléter); tomentina (= quercetagetina-3,7-dimetiléter); gosipetina-3,7,8-trimetiléter (ex.). 112.- Haplopappus berterii. Urzúa, A. et al. 2007. Secondary metabolites in the flower heads of Haplopappus berterii (Asteraceae) and its relation with insect- attracting mechanisms. J. Chil. Chem. Soc. 52(2): 1142. α y β pineno; β-mirceno; limoneno; 3-cubebeno; 4(15)-cubebeno; 1(10)-aristoleno; copaeno; isocariofileno; α-cariofileno; 4,9-bulgaradieno; 4,10(14)-bulgaradieno; 4,11-amorfadieno; 1(10),4- cadinadieno; 2,5,5-trimetil-1,3,4,5,6,7-hexahidro-2H-2,4α-etanonaftaleno; 2- metildacalino; 2,4,6-trimetiloctano; 2,6-dimetil-undecano; 4,6-dimetilundecano; 2,10-dimetilundecano; diosmetina (= flavona-5,7,3’- trihidroxi-4’-metoxi); tamirexina (= flavona-3,5,7,3’- tetrahidroxi-4’-metoxi); luteolina; quercetina (fl.). 113.- Haplopappus bustillosianus. Urzúa, A. et al. Chemical components from the surface of Haplopappus bustillosianus. Biochem. Syst. Ecol. 35(11): 794. n-alcanos

(1,9 %) desde C11 a C33 ; α-pineno; α-linalool; β-pineno; copaeno; isocariofileno; 3-cubebeno; 4(15)-cubebeno; humulatrieno; α-bisabolol; 4,10(15)-cadinadieno; 4,9- cadinadieno; 1,10(4)-cadinadieno; tunbergol; p-hidroxiacetofenona (p.a.) M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 21

114.- Haplopappus glutinosus. Idem N° 105. Apigenina; scutelarreina.6-metiléter, - 6,4’-dimetiléter; isokaempférido; ermanina; 6-hidroxi-kaempferol-3,6-dimetiléter; 6-hidroxi-kaempferol-3,6,4’-trimetiléter; jaceidina (= quercetagetina-3,6,3’- trimetiléter) (p.a.). 115.- Helianthus annuus “girasol, mirasol”. Ukiya, M. et al. 2007. Triterpene glycosides from the flower petals of sunflowerHelianthus ( annuus) and their anti-inflammatory activity. J. Nat. Prod. 70(5): 813. Helianthósido 4 (= {28-O-β-D-glucopiranosil-(1→4)-α-L-ramno-piranosil-(1→2)-β-D- xilopiranosilcaulofilogenina-3-O-α-L-ramnopiranosil(1→3)-[β -D-xilopiranosil-(1→ 4)]-β-D-glucopiranósido}); helianthósido 5 (= {28-O-α-L-ramno-piranosil-(1→ 2)- β-D-glucopiranosilechinocistic ácido-3-O-α-L-ramnopiranosil-(1→3)-[β-D- xilopiranosil-(1→4)]-β-D-glucopiranósido}); helianthósidos 1,2,3, B (pet.). a) ------Macías, F. A. et al. 2008. Helikauranoside A, a new bioactive diterpene. J. Chem. Ecol. 34(1): 65. Helikauranósido A; ácido (-)-kaur-16-en-19-oico; ácido grandiflórico; paniculósido IV (p.a.). 116.- Helianthus tuberosus “tupinambo, alcachofa de Jerusalén”. Pan, L. et al. 2008. Diterpenoids and sesquiterpene lactones from Helianthus tuberosus. 7th Annual Oxford International Conference on the Science of Botanicals & American Society of Pharmacognosy. Oxford. Estados Unidos. Compuestos: tres ent-kaurano diterpenos; un norlabdano diterpeno; dos germacrólidos-tipo sesquiterpeno; lactonas (p.a.). a) ------Yuak, X. et al. 2008. Analysis of chlorogenic acids in Helianthus tuberosus Linn. leaves using high performance liquid chromatography-mass spectrometry. Chin. J. Chromatrogr. 26(3): 335. 3 ácidos cafeoilquínicos; un ácido feruloilquínico; 3 ácidos dicafeoilquínicos (h.). 117.- Heterothalamus alienus “romerillo”. Duschatzky, C. B. et al. 2007. Essential oil composition of Heterothalamus alienus (Spreng.) Kuntze (Romerillo) from Argentina. Effect of harvesting period on the essential oil composition: Flavour Fragr. J. 22(1): 39. Compuestos mayoritarios: β-pineno (35,5 %); espatulenol (10,7 %); germacreno D (6,8 %) (h.); β-pineno (65,0 %); espatulenol (3,2 %); germacreno D (2,4 %) (h., fl.). a) ------Pacciaroni, A. D. V. et al. 2008. Antifungal activity of Heterothalamus alienus metabolites: Phytother. Res. 22(4): 524. Rutina; espatulenol; (1R,7S)- germacra-4(15),5,10(14)-trien-1β-ol; sakuranetina; padmatina 3-acetato; (2R,3R)- dihidroquercetina-7,3’,4’-trimetiléter, -7,4’-dimetiléter; (2R,3R)-3-acetoxi-5,7, 4’- trihidroxiflavanona (p.a.). 118.- Hyaloseris andrade-limae. Trimarco, J. et al. 2007. Fitotoxicidad de isoivasperin aislada de Hyaloseris andrade-limae Cl. Asteraceae. XXIV Jornadas Científicas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Tucumán.Argentina. Isoivasperin. 119.- Lactuca scariola “escarola”. Yadava, R. N. et al. 2007. A new bioactive triterpenoid saponin from the seeds of Lactuca scariola Linn. Nat. Prod. Res. 21(6): 500. Ácido 3-O-[β-D-galactopiranosil-(1→3)-O-β-D-xilopiranosil-(1→4)-O-α-L- ramnopiranosil]-oleanólico (s.). a) ------Yadava, R. N. et al. 2008. New antibacterial triterpenoid saponin from Lactuca scariola. Fitoterapia 79(4): 241. Ácido 3β-O-[α-L-ramnopiranosil]-30- norolean-12,19-diene-28-oico-28-O-[β-D -glucopiranosil-(1→4)-O-β-D-galacto- piranosil]-éster (tll.). 22 Miscelanea Nº 134, 2015

120.- Lagascea mollis. Alarcón, S. R. et al. 2007. Phytochemistry and phytotoxic activity of Lagascea mollis (Asteraceae). J. Arg. Chem. Soc. 95(1-2): 25. Patuletina-7-O- glucósido; xantorrizol; 12-hidroxi-13-en-xantorrizol; 11-en-13-hidroxi-xantorrizol; 12,13-epoxi-xantorrizol; 1α-angeloiloxicarotol (p.a.). 121.- Lapsana communis. Idem N° 105. Genkwanina; apigenina-7,4’-dimetiléter; crisoeriol (= luteolina-3’-metiléter); velutina (= luteolina-7,3’-dimetiléter); luteolina- 7,3’,4’-trimetiléter; kaempferol-3,7,4’-trimetiléter; pachipodol (= quercetina-3,7,3’- trimetiléter); retusina (= quercetina-3,7,3’,4’-tetrametiléter); ácido clorogénico (ex.). 122.- Mikania campanulata “guaco”. Krautmann, M. et al. 2007. C-15-functionalized eudesmanolides from Mikania campanulata. J. Nat. Prod. 70(7): 1173. (1S,4S,5S,6S,7S,10R)-1-hidroxi-15-acetoxieudesm-11(13)-en-6,12-ólido; (1S,4,5S,6S,7S,10R)-1,4-dihidroxi-15-acetoxieudesm-11(13)-en-6,12-ólido; (1R,4S,5S,6S,7S,10R)-1,4-dihidroxi-15-acetoxieudesm-11(13)-en-6,12-ólido; (1R,4S,5S,6S,7S,10R)-1-hidroxi-4,15-diacetoxieudesm-11(13)-en-6,12-ólido; (1S,4R,5S,6S,7S,10R)-1,15-diacetoxi-4-hidroxieudesm-11(13)-en-6,-12-ólido; (1S,5S,6S,7S,10R)-1-hidroxi-15-acetoxieudesma-4(15),11(13)-dien-6,12- ólido; (1S,5S,6S,7S,10R)-1,15-dihidroxeudesma-3,11(13)-dien-6,12-ólido; (1S,2R,5S,6S,7S,10R)-1,2,15-trihidroxeudesma-3,11(13)-dien-6,12-ólido; (1R,6S,7S,10R)-1,15-dihidroxieudesma-4,11(13)-dien-6,12-ólido (p.a.). 123.- Mikania laevigata “guaco”. Baratto, L. et al. 2007. An ent-kaurane diterpene from Mikania laevigata (Asteraceae). 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Ácido ent-15β-benzoiloxi- kaur-16(17)-en-19-oico (h.). a) ------Pedroso, A. P. D. et al. 2008. Isolation of syringaldehyde from Mikania laevigata medicinal extract and its influence on the fatty acid profile of mice. Rev. Bras. Farmacogn. 18(1): 63. Siringaldehído (= 4-hidroxi-3,5-dimetoxi benzaldehído) (h.). 124.- Mikania micrantha “guako”. Camargo, F. J. et al 2008. Estudio del aceite esencial y evaluación de la actividad alexitera de Mikania micrantha Kunth (guako). XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. α-tuyeno (15-16 %); α-pineno (15-10 %); α-felandreno (tr-10 %); α-terpineno (tr-6 %); limoneno (tr-5 %); β-cariofileno (5-7 %); germacreno D (10-5 %); biciclogermacreno (5-4 %) (p.a.). a) ------Huang, H. et al. 2008. Allelopathic potential of sesquiterpene lactones and phenolic constituents from Mikania micrantha H. B. K. Biochem. Syst. Ecol. 36(11): 867. Deoximikanólido; dihidromikanólido; mikamicranólido; flavona-3,5,7,4’- tetrahidroxi-6-metoxi-3-O-β-D-glucopiranósido (s.) 125.- Mikania periplocifolia “guaco, mikania guaco, guaco chico”. Camargo, F. J. et al. 2007. Variaciones estacionales en la composición de los aceites esenciales de Mikania periplocifolia de la provincia de Corrientes. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Germacreno D; cadineno (35,2 %) (otoño); globulol (17,9 %); germacreno D (5,7 %) (primavera) (ac.es.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 23

126.- Mutisia ledifolia “chinchircoma blanca”. Mendiondo, M. E. et al. 2008. Flavonoids from aerial parts in Mutisia ledifolia Wedd., tribu Mutisieae (Asteraceae). XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. Quercetina-3,7- diglucósido; isoramnetina-3-glucósido (p.a.). 127.- Nardophyllum armatum “suri-yanta”. D’Almeida, R. et al. 2007. Estudio fitoquímico y actividades biológicas de extractos deNardophyllum armatum Wedd. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Saponinas; terpenoides (p.a.). 128.- Nardophyllum scoparium. Idem N° 105. Quercetina-3-metiléter; axillarina; crisosplenol D; centaureidina (= quercetagetina-3,6,4’-trimetiléter); flavona-5,7,3’- trihidroxi-3,6,8,4’-tetrametiléter, -5,7,3’,4’-tetrahidroxi-3,6,8-trimetiléter (ex.). 129.- Parthenium hysterophorus “yerba de la oveja, altamisa del campo, escoba amarga, cicutilla”. Das, B. et al. 2007. Acetylated pseudoguaianolides from Parthenium hysterophorus and their cytotoxic activity. Phytochemistry 68(15): 2029. Parthenina; coronopilina; tetraneurina A; histerona D; pseudoguaianólidos acetilados (fl.). a) ------Das, R. et al. 2007. Two minor new parthenin analogues from Parthenium hysterophorus. Indian J. Heterocycl. Chem. 17(1): 7. Parthenina-8-β-iso-pentanoato; parthenina-8-β-iso-pentenoato (pl.). b) ------Das, B. et al. 2008. Two new pseudoguaianolides from the flowers of Parthenium hysterophorus. Helv. Chim. Acta 91(6): 1137. 3β-acetoxi-neoambrosina; 4β-acetoxi-11β,13-dihidroparthenina; 8β-hidroxcoronopilina; coronopilina; guaianólido derivado; hysterona D; parthenina; pseudoguaianólido derivado; tetraneurin A (fl.). c) ------Santhi, P. R. et al. 2008. Phytochemical studies on Parthenium hysterophorus Linn. Asian J. Chem. 20(2): 987. Galangina. 130.- Plazia daphnoides. Arze, J. B. L. et al. 2008. Essential oils from Bolivia. IX. Asteraceae: Plazia daphnoides Wedd. J. Essent. Oil Bear. Plants 11(2): 194. T- cadinol (10-11 %); β-cariofileno (10-11 %); bisabolol (9 %) (ac.es.). 131.- Pluchea quitoc “lucera, yerba del lucero”. Simionatto, E. et al. 2007. Essential oil of Pluchea quitoc Dc. (Asteraceae). J. Essent. Oil Res. 19(5). 494. 42 compuestos: sesquilavandulil acetato (7,6-24,1 %); sesquilavandulol (8,2-24,3 %); α-gurjuneno (20,0-20,5 %) (p.a.). 132.- Pluchea sagittalis “yerba del lucero, lucera”. Vera, N. et al. 2008. Eudesmanes from Pluchea sagittalis. Their antifeedant activity on Spodoptera frugiperda. Phytochemistry 69(8): 1689. 3α-(2,3-epoxi-2-metilbutiriloxi)-4α-formoxi-11- hidroxi-6,7-dehidroeudesman-8-ona; 3α-(2,3-epoxi-2-metilbutiriloxi)-4α,7α,11- trihidroxieudesman-8-ona (h., fl.). 24 Miscelanea Nº 134, 2015

133.- Pseudognaphalium robustum. Urzúa, A. L.et al. 2008. Epicuticular components from Pseudognaphalium robustum (Asteraceae): chemosystematic considerations. J.

Chil. Chem. Soc. 53(1): 1411. n-alcanos (4 %): C23H 48 ; C24H 50 ; C25H 52 ; C26H 54 ;

C27H56 ; C28H 58 ; C29H 60 ; C30H 62 ; C31H 64 ; C32H 66 C33H 68; C34H 70; C35H 72 ; C36H74;

C37H 76.; n-alquenos (0,3 %): 1-nonadeceno; alcoholes (1 %): 1-tetradecanol;1- hexadecanol. Ésteres de ácidos grasos saturados (3 %): metil dodecanoato (= metillaurato); metil tetradecanoato (= metilmiristato); metil hexadecanoato (= metil palmitato); metil heptadecanoato (= metil margarato); metil docosonoato; metil 5,9-dimetildecanoato; metil 9-oxononanoato; metil 12-metiltridecanoato (= metil isomiristato); metil 14-metilpentadecanoato; metil 6-metilheptanoato; metil 16- metil heptadecanoato (= metil isoestearato); metil 2-hexilciclopropanoctanoato. Ésteres de ácidos grasos no saturados (2,5 %): metil (Z)-7-hexadecenoato (= metil palmitoleato); metil (Z)-9-hexadecenoato; metil (Z)-9-octadecenoato (= metil oleato); metil acetilricinoleato; metil (Z)-12 acetoxi-9-octadecenoato. Aldehídos (0,5 %): nonanal; decanal. Triglicéridos (40 %): gliceril tridodecanoato (= trilaurina); gliceril trimiristato (= trimiristina); gliceril tripalmitato (= tripalmitina). Ácidos grasos (5 %): ácidos mirístico y láurico. Monoglicéridos (35 %): 2,3- dihidroxipropilpalmitato; 2,3-dihidroxipropillaurato; 2,3-dihidroxipropilmiristato (p.a.). 134.- Pterocaulon alopecuroides “fresadilla negra”. Alarcón, R. et al. 2008. Flavonoids from Pterocaulon alopecuroides with antibacterial activity. Planta Med. 74(12): 1463. (2R,3R)-5,4’-dihidroxi-3’-O-metil-7- γ,γ-dimetilaliloxi)dihidroflavonol; (2R,3R)-5,7,4’-trihidroxi-3’-O-metil-6-(α,α-dimetilalil)-dihidroflavonol; (2R,3R)- 5,7,4’-trihidroxi-6-(α,α-dimetilalil)-dihidroflavonol (p.a.). a) ------Purcell, A. et al. 2008. Coumarins from Pteurocaulon alopecuroides Lamarck inhibit nitric oxide generation in human lung epithelial callus cells. XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. Cumarina-5-(2’,3’-hidroxi-3’-metilbutiloxi)-6,7-metilenedioxi, -7-(2’,3’- hidroxi-3’-metilbutiloxi)-6-metoxi (p.a.). 135.- Pterocaulon balansae. Baratta, S. et al. 2007. Identificación de cumarinas y descripción morfoanatómica de Pterocaulon cordobense O. Kuntze, P. balansae Chodat y P. lorentzii Malme (Asteraceae).XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Cumarina-5-metoxi- 6,7-metilendioxi, -5-(3-metil-2-butenilox)-6,7-metilendioxi, -7-(2,3-epoxi-3- metilbutiloxi)-6-metoxi-7-(2,3-dihidroxi-3-metilbutiloxi)-6-metoxi, -7-(3-metil-2- buteniloxi)-6-metoxi. 136.- Pterocaulon cordobense “yaguareté-caá”. Idem N° 135. Cumarina-5-metoxi- 6,7-metilendioxi, -5-(3-metil-2-buteniloxi)-6,7-metilendioxi, -7-(2,3-epoxi-3- metilbutiloxi)-6-metoxi-7-(2,3-dihidroxi-3-metilbutiloxi)-6-metoxi, -7-(3-metil-3- buteniloxi)-6-metoxi, -7-(3-metil-2-buteniloxi)-6-metoxi, -7-hidroxi-6-metoxi (= escopoletina). 137.- Pterocaulon lorentzii “yerba infiel, tuya casó”. Idem N° 135. Cumarina-5-metoxi- 6,7-metilendioxi, -5-(3-metil-2-buteniloxi)-6,7-metilendioxi, -7-(2,3-epoxi-3- metilbutiloxi)-6-metoxi-7-(2,3-dihidroxi-3-metilbutiloxi)-6-metoxi, -7-hidroxi-6- metoxi (= escopoletina). 138.- Senecio argophylloides. Dambolena, J. S. et al. 2008. Essential oil composition of three species of Senecio from Argentina. J. Essent. Oil Bear. Plants 11(6): 623. β- tujeno (13-32 %); canfeno (53-9 %); sabineno (12-7 %) (p.a.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 25

139.- var. crassiflorus. Murari, A. L. et al. 2008. Composition and antibacterial activity of the essential oils of Senecio crassiflorus var. crassiflorus. Quim. Nova 31(5): 1081. Humuleno; germacreno D, -4-ol; germacreno B; biciclogermacreno; α-muuroleno; δ-amorfeno; δ-cadineno; óxido de cariofioleno; viridiflorol; α-cadinol; 1-epi-cubenol; τ-muurolol (h); humuleno; germacrenoA, B; germacreno D, -4-ol; biciclo-germacreno; δ-amorfeno; δ-cadineno; α-cadinol; τ-muurolol; alo-aromadendreno; β-eudesmano; (Z)-cadina-1,4-dieno (tll.); δ- elemeno; β-burbuneno; β-cariofileno; γ-gurjuneno; humuleno; germacrenoA, B, D; β-eudesmano; δ-amorfeno; δ-cadineno; (Z)-cadina-1,4-dieno; α-cadinol; τ-muurolol (tll., rz). 140.- Senecio desiderabilis. Deuschle, R. A. N. et al. 2007. Fractionation of dichlorometane extract from Senecio desiderabilis Vellozo and evaluation of the antimicrobial activity. Rev. Bras. Farmacogn. 17(2): 220. Germacreno D (p.a.). 141.- Senecio grisebachii. Zeinsteger, P. A. et al. 2007. Estudio micrográfico y fitoquímico de la planta tóxicaSenecio grisebachii Baker de Argentina. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Senecionina; retrorsina (h.). 142.- Senecio murinus. Idem N° 105. Kumatakenina; kaempferol-3-metiléter, -3,7,4’- trimetiléter; quercetina-3,7-dimetiléter (ex.). 143.- Senecio nutans “chachacoma, tola, tola hembra”. Belaunde, A. J. et al. 2007. Chemical composition and antibacterial activity of Senecio nutans essential oil. J. Essent. Oil Bear. Plants. 10(4): 332. α-felandreno; p-cimeno (p.a.). a) ------Lizárraga, E. et al. 2008. Composición del aceite esencial de dos poblaciones de Senecio nutans Sch. Bip. (Asteraceae). XXV Jornadas Científicas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Tucumán.Argentina. Muestra del Cerro Las Mesaditas: α-terpineno (19,7 %); o-ocimeno (12,2 %); muestra del Cerro Muñoz: sabineno (26,1 %); α-felandreno (24,2 %) (ac.es.). 144.- Senecio otites “trompetilla, tutuco”. Domínguez, D. M. et al. 2008. Bioactive furano-eremophilanes from Senecio otites Kunze ex DC. Z. Naturforsch. 63c(11- 12): 837. 6β-angeloiloxi-1,10-dehidrofuranoeremofilan-9-ona; 6β-hidroxi-1,10- dehidrofurano-eremofilan-9-ona; 6β-propioniloxi-1,10-dehidrofuranoeremofilan-9- ona (p.a.). 145.- Senecio subulatus “romerillo”. Idem N° 138. β-pineno (17-31 %); p-cimeno (18-33 %); γ-terpineno (16-54 %) (p.a.). 146.- Senecio viridis. Idem N° 138. β-felandreno (11-16 %) (p.a.). 147.- Silybum marianum “cardo asnal, cardo mariano”. Hasanloo, T. et al. 2008. Flavonolignan production in cell suspension culture of Silybum marianum. Pharm. Biol. 46(12): 786. Silimarina; mezcla flavolignanos: silibina, silicristina, silidianina (fr.). a) ------Hasanloo, T. et al. 2008. Determination of tocopherols and fatty acids in seeds of Silybum marianum (L.) Gaerth. J. Med. Plants 7(Suppl.4): 69. Ácidos palmítico (8,25 %), palmeótico (0,07 %), esteárico (6,67 %), oleico (31,58 %), isómero ácido oleico (0,53 %), linoleico (45,36 %), linolénico (0,87 %), araquídico (4,11 %), eicozantoico (0,088 %), behénico (2.6 %); α, γ y δ-tocoferol (s.). 26 Miscelanea Nº 134, 2015

148.- Smallanthus connatus. Bach, S. M. et al. 2007. Melampolides and other constituents from Smallanthus connatus. Biochem. Syst. Ecol. 35(11): 785. (4R*,5S*,6S*,7R*,8S*,9S*)-4α,5β-epoxi-8β-(2-metilbutanoiloxi)-9α- acetoxi-10-carbometoxi-melampo-1(10),11(13)-dien-6α,12-ólido; fluctuanina; espatulenol; β-cariofileno; ácido ent-kaur-16-en-19-oico; escualeno; α-amorfeno; biciclogermacreno; cariofileno óxido; epimanoil óxido; etil palmitato; etil linoleato; neofitadieno; α-humuleno; nonacosano; 1-docoseno; δ-cadineno; α-cadinol; ácidos linolénico, palmítico, linoleico; untriacontano; aromadendreno; viridiflorol; α- amirina; stigmasterol; sitosterol (h., fl.). 149.- Smallanthus siegesbeckius “yacón”. Coll Aráoz, M. V. et al. 2007. Lactonas sesquiterpénicas de Smallanthus siegesbeckius (Heliantheae, Asteraceae). IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Uvedalina; polimatina A y B (h.). 150.- Smallanthus sonchifolius “yacón”. Mercado, M. I. et al. 2007. Perfil de lactonas sesquiterpénicas de 25 cultivares de la planta medicinal andina Smallanthus sonchifolius (yacón). XXIV Jornadas Científicas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Tucumán. Argentina. Enhydrina; uvedalina; fluctuanina (h.). a) ------Mercado, M. I. et al. 2007. Constituyentes de la cera foliar de yacón (Smallanthus sonchifolius). IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Acidos clorogénico cafeico, dicafeoilquínico; γ-tocoferol; α- y β-amirina; ácido kaur-16-en-19-oico; stigmasterol; sitosterol (cer. h.). b) ------Dou, D. Q. et al. 2008. Studies on the anti-diabetic constituents of the leaves of Smallantus sonchifolius (Yacon). 7th Annual Oxford International Conference on the Science of Botanicals & American Society of Pharmacognosy. Oxford. Estados Unidos. Ácidos smallantaditerpénico A, B, C y D; ent-kauran- 3β,16β,17,19-tetrol; ent-kauran-16β,17,18,19-tetrol (h.) c) ------Qiu, Y. K. et al. 2008. Three novel compounds from the leaves of Smallanthus sonchifolius. J. Asian Nat. Prod. Res. 10(12): 1109. ent-kaurane- 3β,16β,17,18-tertol; 3R,7E-9-butoxil-megastigma-3-ol-3-O-β-D-glucopiranósido; 3S,5R,6Z-megastigma-6-en-3,5,8,9-tertol; octacosanol; flavona- 3’,4’,5-trihidroxi- 3,7-dimetoxi; 3,4-dihidroxibenzaldehído; isoramnetina; ent-kaurane-3β,16β,17-triol (h.). d) ------Ragasa, C. Y. et al. 2008. A bioactive diterpene from Smallanthus sonchifolius. Nat. Prod. Comm. 3(10): 1663. Ácido ent-kaurenoico (h.). e) ------Qiu, Y. K. et al. 2008. Studies on chemical constituents from leaves of Smallanthus sonchifolius. Zhong Cao Yao 39(10): 1446. 5, 8-dihidroxil-(5H, 8H)- β-ionol; ent-kaurane-3β,16β,17-triol; ácido ent-kaurane-16β,17-diol-19-oico; 3, 4- dihidroxibenzaldehído; 1-pentacosanol; 1-octacosanol (h.). f) ------Xie, W. et al. 2008. Study on chemical constituents of Smallanthus sonchifolius. Zhong Yao Cai 31(10): 1510. Ácido gálico; beta-sitosterol; ácido behénico; kaempferol; quercetina; ácido vanillico; ácido hexadecanoico (h.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 27

g) ------Hong, S. S. et al. 2008. Melampolides from the leaves of Smallanthus sonchifolius and their inhibitory activity of LPS-induced nitric oxide production. Chem. Pharm. Bull. 56(2): 199. 8β-epoxiangeloiloxi-9α-etoxi-14-oxo- acanthospermólido; 8β-angeloiloxi-9α-etoxi-14-oxo-acanthospermólido; allo- schkuhriólido; enhidrina; polymatina A; fluctuanina; 8β-angeloiloxi-9α-acetoxi- 14-oxo-acanthospermólido; 8β-angeloiloxi-14-oxo-acanthospermólido; ácido 8β- metacriloiloximelampolid-14-oico metiléster; uvedalina; polymatina B; ácido 8β-tigloiloximelampolid-14-oico metiléster; sonchifolina (h.). 151.- Sonchus arvensis. Xu, Y. J. et al. 2008. Quinic acid esters and sesquiterpenes from Sonchus arvensis. Food Chem. 111(1): 92. Ácido 1,3,4,5-tetra-(p- hidroxifenilacetil)-quínico; ácido 1,3,4-tri-(p-hidroxifenilacetil)-quínico; ácido 3,4,5-tri-(p-hidroxifenilacetil)-quínico metiléster; 1β-hidroxi-15-O-(p- hidroxifenilacetil)-5α,6βH-eudesma-3-en-12,6α-ólido; 1β-O-β-D-glucopiranosil-(6’- O-p-metoxifenilacetil)-5-O-(p-hidroxifenilacetil)-5α,6β-H-eudesma-3,11(13)-dien- 12,6α-ólido; ácido (1β,6α)-1,6,14-trihidroxieudesm-3-en-12-oico γ-lactona; ácido (1β,6α)-1,6-dihidroxi-14-O-[(4-hidroxifenil) acetil]eudesma-3,11(13)-dien-12-oico γ-lactona; 1β-O-β-D-glucopiranosil-or-15-O-(p-hidroxifenilacetil)-5α,6βH-eudesma- 3,11(13)-dien-12,6α-ólido; 1β-O-β-D-glucopiranosil-(6’-O-p-hidroxifenilacetil)-15- O-(p-hidroxifenilacetil)-5α,6βH-eudesma-3,11(13)-dien-12,6α-ólido (pl.). a) ------Idem N° 105. Luteolina; isoramnetina (ex.). b) ------Huo, B. S. et al. 2008. Content analysis of flavonoids in five species of Sonchus L. J. Plant Resour. Environ. 17(2): 77. Quercetina; luteolina; apigenina. 152.- Tagetes minuta “chinchilla, suico”. Chamorro, E. R. et al. 2008. Chemical composition of essential oil from Tagetes minuta L. leaves and flowers. J. Arg. Chem. Soc. 96(1-2): 80. β-felandreno; limoneno; β-ocimeno; dihidrotagetona; tagetona; tagetenona (h.,fl.). 153.- Tagetes pusilla “anís anís, anís del campo”. Buitrago, D. et al. 2008. Componentes volátiles de Tagetes pusilla de los Andes Venezolanos.XVII Congreso Italo-Latino- americano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. trans-anetol (69,97 %); 4-alil-anisol (30,03 %) (p.a.). 154.- Tanacetum parthenium “crisantemo de jardín, botón de plata, manzanilla grande”. Wu, C. et al. 2007. Identification of antioxidant phenolic compounds in feverfew (Tanacetum parthenium) by HPLC-ESI-MS/MS and NMR. Phytochem. Anal. 18(5): 401. Ácido 3,4-di-O-cafeoil quínico, -3,5-di-O-cafeoil quínico, -4,5-di-O-cafeoil quínico. a) ------Jäger, A. K. et al. 2008. Bioassay-guided isolation of apigenin with GABA-benzodiazepine activity from Tanacetum parthenium. 7th Joint Meeting of GA, AFERP, ASP, PSE & SIF. Atenas. Grecia. Apigenina. 155.- Tanacetum vulgare “yerba de San Marcos, lombriguera, tanaceto, palmita”. Sánchez, F. et al. 2007. Estudio de la composición de los aceites esenciales de plantas medicinales de la provincia de Misiones. Tanacetum vulgare. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. α y β-tuyona; cineol; sabineno (h.). 28 Miscelanea Nº 134, 2015

156.- Tridax procumbens “hierba del toro”. Gualtieri, M. et al. 2007. Composición química del aceite esencial de Tridax procumbens L. del estado de Mérida- Venezuela. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. 56 compuestos: 7-tridecanona (35,42 %); α- copaeno-8-ol (15,83 %); 6,10,14-trimetil-2-pentadecanona (15,37 %); fitol (10,77 %) (pol.). a) ------Quintal, Z. et al. 2008. Efecto leishmanicida de (3S)-16,17- dideshidrofalcarinol aislado de Tridax procumbens. 5ta Reunión Nacional de Investigación Productos Naturales. Guadalajara. México. (3S)-16,17- Dideshidrofalcarinol (pl.). b) ------Chen, W. H. et al. 2008. Chemical-constituent diversity of Tridax procumbens. Can. J. Chem. 86(9): 892. 1,2-dihidrodendroarboreol B; (3S,5R,6S,7E)- 3-tetradecanoato-5,6-epoxi-β-ionona; quercetagetina-3,6,4’-trimetoxi-7-O- neohesperidósido. 157.- Vernonia scorpioides. Albuquerque, M. R. J.R. et al. 2007. Chemical composition of the essential oil from Vernonia scorpioides (Asteraceae). Flavour Fragr. J. 22(4): 249. 18 compuestos, los mayoritarios: β-cariofileno (30,6 %); germacreno D (27,3 %); biciclogermacreno (8,5 %) (p.a.). 158.- Vernonia tweediana. Díaz, G. et al. 2008. Estudo fitoquímico e biológico de Vernonia tweediana Baker (Asteraceae). Lat. Am. J. Pharm. 27(1): 56. Lupeol; α y β-amirina; ácido palmítico (p.a.); lupenil palmitato; mezcla de α y β-amiril palmitato (r.). a) ------Zanon, R. B. et al. 2008. Phytoconstituents isolated from dichloromethane fraction of Vernonia tweediana Baker leaves. Rev. Bras. Farmacogn. 18(2): 226. α- y β-amirina; lupeol; β-sitosterol; stigmasterol; spinasterol (h.). 159.- Viguiera pazencis. Uriburu, M. L. et al. 2008. Caffeoyl esters of threonic acid and its lactone from Viguiera pazencis. J. Arg. Chem. Soc. 96(1-2): 55. 3-O-cafeoil- 2-C-metil-D-threono-1,4-lactona; ácido-4-O-cafeoil-2-C-metil-D-threónico; 2-C- metil-D-threono-1,4-lactona; ácido cafeico; carabrona; flavona-5,7,3’-trihidroxi-4’- metiléter, -5,7,3’-trihidroxi-6,4’-dimetiléter (p.a.). 160.- Xanthium cavanillessii “abrojo, cadillo grande”. Olivaro, C. et al. 2007. Una nueva sesqui-terpenlactona bioactiva del abrojo. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Xanthanólido (p.a.). 161.- Xanthium strumarium “lampourde”. Han, T. et al. 2007. Bioactivity-guided fractionation for anti-inflammatory and analgesic properties and constituents of Xanthium strumarium L. Phytomed. 14(12): 825. Ácidos: clorogénico, 5-O- dicafeoilquínico, 1,4-O-dicafeoil-quínico,1,3,5-O-tricafeoilquínico; cinarina (fr.). a) ------Ramírez Erosa, I. et al. 2007. Xanthatin and xanthinosin from the burs of Xanthium strumarium L. as potential anticancer agents. Can. J. Physiol. Pharmacol. 85(11): 1160. Xantantina; xantinosina. b) ------Yadava, R. N. et al. 2007. Novel biologically active triterpenoid saponin from the leaves of Xanthium strumarium Linn. Asian J. Chem. 19(2): 1224. 3-O[α- L-ramnopiranosil-(1→3)-O- β-D-xilopiranosil]maniladiol (h.). c) ------Idem N° 105. Kaempferol-6-hidroxi-6-metiléter, -6-hidroxi-3,6- dimetiléter; axillarina (ex.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 29

162.- Xenophyllum incisum “pupusa de agua, pupusa del cerro, poposa, popusa”. de Marchese, M. J. A. et al. 2007. Incisol, an alcohol with a novel sesquiterpene skeleton from Xenophyllum incisum. Biochem. Syst. Ecol. 35(3): 169. Incisol (= incisa-3(E),6(14),11-trien-9ª-ol); cadaleno; 6-hidroxitremetona; dehidrotremetona; euparina; 2,2-dimetil-6-acetil-cromeno; toxol angelato y acetato; zerumbona; T-muurolol; α, β y γ-eudesmol; 4-hidroxi-3-(isopenten-2-il)-acetofenona; pregnenolona; apocinina (= 4-hidroxi-3-metoxiacetofenona); acetovanillona (p.a.). 163.- Xenophyllum poposum. Romano, E. et al. 2008. Characterization and crystal structure of 2R-(-)-6-hydroxytremetone from Xenophyllum poposum (Phil.) V. A. Funk. Nat. Prod. Res. 22(2): 124. 2R-(-)-6-hidroxitremetona.

BIGNONIACEAE 164.- Jacaranda decurrens. Carvalho, C. A. et al. 2008. Antioxidant activity of Jacaranda decurrens Cham. 7th Annual Oxford International Conference on the Science of Botanicals & American Society of Pharmacognosy. Oxford. Estados Unidos. Ácidos oleanólico y ursólico; flavonoides; compuestos glicosilados (h.). 165.- Jacaranda puberula. Gonçalves Martins, M. B. et al. 2008. Anatomical and chemical characterization of Jacaranda puberula (Bignoniaceae) leaves present in Mata Atlântica. Rev. Bras. Farmacogn. 18(4): 600. Fitoquinoides; flavonoides (h.). 166.- Macfadyena unguis-cati “uña de gato”. Aboutable, E. A. et al. 2007. Phytochemical and bioactivity investigations of Macfadyena unguis-cati L. (Bignoniaceae). 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. 74 compuestos, los principales: n-decano (21,21 %); fitol (12,19%); β-amirina; escualeno; β-sitosterol; 5-ciclo-ergosta-7,22-dien-6-ona (p.a.). a) ------Aboutable, E. A. et al. 2008. Flavonoids, anti-inflammatory activity and cytotoxicity of Macfadyena unguis-cati L. Afr. J. Trad. CAM 5(1): 18. Acacetina- 8-metoxi-7-O-glucósido; apigenina-6-metoxi-7-O-glucósido; scutellarina-4’-O- metil-6-O apiosilgalactósido; acacetina-7-O glucosil-8-C-ramnosil-3-O-α- arabino- furanósido; kaempferol-4’-metil-6-metoxi-7-O-8-C-diglucósido; vicenina II (p.a.). 167.- Tabebuia heptaphylla “lapacho negro”. Garcez, F. R. et al. 2007. New constituents from the trunk bark of Tabebuia heptaphylla. Quim. Nova 30(8): 1887. 3β,6β,21β- trihidroxi-olean-12-eno; 8α-metil-8β-hidroxi-6β (3’,4’-dimetoxi)benzoiloxi- 1α,3α-dimetoxi-octahidro-ciclopenta[c]-pirano; 6-O-p-hidroxibenzoilajugol; 6-O-p-metoxibenzoilajugol; 6-O-3”,4”-dimetoxibenzoilajugol; 8α-metil-8-hidroxi- 6β-(4’-hidroxi)benzoiloxi-1α,3α-dimetoxi-octahidro-ciclopenta[c]pirano; 2-formil- 5-(3’,4’-dimetoxibenzoiloxi)-3-metil-2-ciclopenteno-1-acetaldehído; verbascósido; ácidos p-hidroxibenzoico, p-metoxibenzoico, 3,4-dimetoxi-benzoico; escualeno; sitostenona; sitosterol (ct. tr.).

BORAGINACEAE 168.- Cordia curassavica “María negra, salvia baguala”. Hernandez, T. et al. 2007. Antimicrobial activity of the essential oil and extracts of Cordia curassavica (Boraginaceae). J. Ethno-pharmacol. 111(1): 137. Compuestos mayoritarios: 4-metil- 4-etenil-3-(1-metiletenil)-1-(1-metilmetanol)ciclohexano (37,34 %); β-eudesmol (19,21 %); espatulenol (11,25 %); cadina-4(5),10(14)-dieno (7,93 %) (ac.es.). 30 Miscelanea Nº 134, 2015

a) ------De Oliveira, J. C. S. et al. 2007. Volatile constituents of the stem and leaves of Cordia species from mountain forests of Pernambuco (north-eastern Brazil). J. Essent. Oil Res. 19(5): 444. Espatulenol (27,1 %); trans-sesquisabineno hidrato (11,0 %); viridiflorol (10,7 %) (tll.); β-felandreno (25,3 %); cubebol (23,9 %); α-pineno (10,4 %) (h.). 169.- Cordia salicifolia “porangaba”. Tammaro, F. et al. 2007. Phytochemical investigation on leaves extract of Cordia salicifolia Cham. XVI Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. (+)-Espatulenol (0.53%); hidrocarbonos; alcoholes; ácidos grasos; β-sitosterol (h.). a) ------Menghini, L. et al. 2007. Phytochemical investigation on leaves of Cordia salicifolia Cham. (Fam. Boraginaceae). 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. (+)-espatulenol (0,53 %); β-sitosterol (0,24 %) (h.). 170.- Cordia verbenacea. Fernandes, E. S. et al. 2007. Anti-inflammatory effects of compounds alpha-humulene and (-)-trans-caryophyllene isolated from the essential oil of Cordia verbenacea. Eur. J. Pharmacol. 569(3): 228. α-humuleno; (-)-trans- cariofileno (ac.es.) a) ------Meccia, G. et al. 2008. Composición química y actividad antibacteriana del aceite esencial de Cordia verbenacea D.C. (Boraginaceae). XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. 34 componentes (94.2%), siendo los mayoritarios: δ-terpineno (23,9 %); biciclogermacreno (11,7 %); germacreno D (9,9 %); β-cariofileno (8,2 %) (h.). b) ------Roldão, E. D. F. et al. 2008. Evaluation of the antiulcerogenic and analgesic activities of Cordia verbenacea DC. (Boraginaceae). J. Ethnopharmacol. 119(1): 94. Flavonoides; esteroides; saponinas; ácidos; alcaloides; fenoles (h.).

BRASSICACEAE 171.- Brassica napus “nabo, nabizo, grelos”. Han, H. Y. et al. 2007. Down-regulation of prostate specific antigen in LNCaP cells by flavonoids from the pollen ofBrassica napus L. Phytomed. 14(5): 338. Naringenina; luteolina; kaempferol -3-(3-E-p- cumaroil-α-L-ramnopiranósido), -3-(2,3-di-E-p-cumaroil-α-L-ramnopiranósido) (pol.). 172.- Coronopus didymus “quimpe, mastuerzo”. Lizárraga, E. et al. 2007. Estudio de los compo-nentes volátiles y actividad antioxidante de extractos de Coronopus didymus. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Bencilmercaptano; bencenoacetonitrilo; disulfuro de bencilo; trisulfuro de bencilo (p.a.). 173.- Diplotaxis tenuifolia. Martínez-Sánchez, A. et al. 2007. Identification of new flavonoid glycosides and flavonoid profiles to characterize rocket leafy salads (Eruca vesicaria and Diplotaxis tenuifolia). J. Agric. Food Chem. 55(4): 1356. Quercetina mono- y diacil-tri-O-glucósidos (h.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 31

a) ------Martínez-Sánchez, A. et al. 2008. A comparative study of flavonoid compounds, vitamin C, and antioxidant properties of baby leaf Brassicaceae species. J. Agric. Food Chem. 56(7): 2330. Alto contenido vitamina C; kaempferol- 3,4’-diglucósido; quercetina-3,4’-diglucósido, -3,3’,4’-triglucósido, -3,4’- diglucosil-3’-(6-metoxicafeoil)-glucósido, -3,4’-diglucsil-3’-(6-sinapilglucosil), -3,4’-diglucosil-3’-(6-ferulilglucosil), -3,4’-diglucosil-3’-(6-p-cumararilglucosl), -3-(2-metoxicafeoil)-3’-(6-sinapilglucosil)-4’-glucósido, -3-(2-cafeoilglucosil)-3’- (6-sinapilglucosil)-4’-glucósido, -3-(2-ferulilglucosil)-3’-(6-sinapilglucosil)-4’- glucósido, -3-(2-ferulilglucosil)-3’-(6-ferulililglucosil)-4’-glucósido(h.). 174.- Eruca sativa. N° 173. Derivados de kaempferol (h.). a) ------Idem N° 173a. Quercetina-3-glucósido; kaempferol-3-glucósido, -3,4’- diglucósido; -3-(2-sinapilglucosil)-4’-glucósido; isoramnetina-3-glucósido, -3,4’- diglucósido (h.). 175.- Lepidium perfoliatum. Idem N° 17. Polímeros de arabinosa; galactosa y ramnosa. 176.- Malcolmia maritima. Tatsuzawa, F. et al. 2008. Triacylated cyanidin 3-(3X- glucosyl-sambubioside)-5-glucosides from the flowers ofMalcolmia maritima. Phytochemistry 69(4): 2008. Cianidina-3-O[2-O-(2-O-(trans-sinapil)-3-O-(β-D- glucopiranosil)-β-D-xilopiranosil)-6-O-(trans-p-coumaroil)-β-D-glucopiranósido]- 5-O[6-O-(malonil)-(β-D-glucopiranósido) y su cis-p-coumaroil isómero; cianidina 3-O-[2-O-(2-O-(trans-sinapil)-3-O-(β-D-glucopiranosil)-β-D-xilopiranosil)-6-O- (trans-p-cumaroil)-β-D-glucopiranósido]-5-O-(β-D-glucopiranósido); cianidina 3-O- [2-O-(3-O-(β-D-glucopiranosil)-β-D-xilopiranosil)-β-D-glucopiranósido]-5-O-(β-D- glucopiranósido) (fl., tll.). 177.- Nasturtium officinale “berro”. Afsharipour, S. et al. 2008. Volatile constituents of leaves and stems of Nasturtium officinale R. Br. J. Essent. Oil Res. 20(6): 517. 2-feniletil isotiocianato (72,9 %); pulegona (8,0 %); heptil isotiocianato (4,9 %); 4-fenilbutil isotiocianato (3,2 %) (h.); 2-feniletil isotiocanato (83,5 %); 4-fenilbutil isotiocianato (6,9 %); pulegona (2,2 %); sec-butil isotiocianato (1,9 %). (h., tll.). a) ------Idem N° 173a. Kaempferol-3-O-soforosil-7-O-ramnósido; quercetina-3-O- triglucosil-7-O-ramnósido, -3-O-gentiobiosil-7-O-ramnósido, -3-(cafeoil-diglucosil)- 7-O-ramnósido, -3-(cafeoil-triglucosil)-7-O-ramnósido (h.).

BUDDLEJACEAE Buddleja globosa “pañil, matico”. Goïty, L. et al. 2007. Metodología 178.- espectrofotométrica para la cuantificación del componente mayoritario de un extracto analgésico y anti-inflamatorio deBuddleja globosa. XVI Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Verbascósido; luteolina-7-O-glucósido.

CALCEOLARIACEAE 179.- Calceolaria alba. Chamy, M. C. et al. 2007. Diterpenoids from Calceolaria alba. Nat. Prod. Res. 21(2): 141. Metil-7α-maloniloxi-18-isovaleroilent-9(11),15- isopimaradieno; 3β-acetoxi-18-isovaleroil-7α-malonil-ent-9(11)-isopimaradieno; 3α-isovaleroil-18-hidroxi-7α-malonil-ent-9(11)-isopimaradieno (p.a.). 32 Miscelanea Nº 134, 2015

180.- Calceolaria polifolia. Garbarino, J. A. et al. 2007. New diterpenoids from Calceolaria polifolia. Nat. Prod. Res. 21(2): 137. 19-acetoxi-13,14-epoxi-ent- stemarano; 19-malonil-oxi-9-epi-scopadul-15-eno; ácido 9-epi-scopadul-15-eno- 19-oico; 19-hidroxi-9-epi-scopadul-15-eno; 19-acetoxi-ent-stemar-13(14)-eno; thyrsiflorina A; 13α-acetoxi-scopadulano; demalonil-thyrsiflorina; 19-maloniloxi- dehidroabietinol; ácido 4-epi-dehidroabietico; 19-metil maloniloxi-ent-isopimara- 8(9),15-dieno (p.a.).

CANNABACEAE 181.- Cannabis sativa “cannabis, marihuana”. Radwan, M. M. et al. 2008. Non- cannabinoid constituents from a high potency Cannabis sativa variety. Phytochemistry 69(14): 2627. 5-acetoxi-6-geranil-3-n-pentil-1,4-benzoquinona; 4,5-dihidroxi-2,3,6-trimetoxi-9,10-dihidro-fenantreno; 4-hidroxi-2,3,6,7-tetrametoxi- 9,10-dihidrofenantreno; 4,7-dimetoxi-1,2,5-trihidroxifenantreno; cannaflavinasA y C; β-sitosteril-3-O-β-D-glucopiranósido-2’-O-palmitato; α-cannabispiranol, -β- acetilo; crisoeriol; apigenina-6-prenilo (pl.). a) ------Appendino, G. et al. 2008. Antibacterial cannabinoids from Cannabis sativa: A structure-activity study. J. Nat. Prod. 71(8): 1427. Cannabidiol; cannabicromeno; cannabigerol; Δ9-tetrahidrocannabinol; cannabinol. b) ------Radwan, M. M. et al. 2008. Isolation and characterization of new cannabis constituents from a high potency variety. Planta Med. 74(3): 267. Ácido (±)-6,7-trans- epoxicannabigerólico; ácido (±)-6,7-cis-epoxicannabigerólico; (±)-6,7’′,6-triol; 7-metoxicannabispirona; ácido cannabigerólico; ácido 5’- metoxicannabigerólico; cannabispirona; β-cannabispiranol; dehidrocannabifurano; cannflavina B; cannabigerol. 182.- Humulus lupulus “lúpulo”. Khatib, A. et al. 2007. NMR assignment of iso-α-acids from isomerised extracts of Humulus lupulus L. cones. Phytochem. Anal. 18(5): 371. trans-isocohumulona; cis-isocohumulona; trans-isohumulona; cis-isohumulona; trans-isoadhumulona; cis-isoadhumulona (con.).

CAPRIFOLIACEAE 183.- Lonicera japonica “madreselva”. Zhao, N. X. et al. 2007. Chemical constituents in stem of Lonicera japonica. Chin. Trad. Herb. Drugs 38(12): 1774. Luteolina; loganina; japenol (= r-1-(4-hidroxi-3-metoxi-fenil)-trans-2, cis-3-dihidroximetil-7, 8-dihidroxi-6-metoxi-1, 2, 3, 4-tetrahidro-naftaleno) (tll.). a) ------Choi, C. W. et al. 2007. Antioxidant constituents and a new triterpenoid glycoside from Flos Lonicerae. Arch. Pharm. Res. 30(1): 1. Ácido oleanólico 28-O-α-L-ramnopiranosil-(1→2)-[β-D-xilopiranosil(1→6)]-β-D-glucopiranosil éster; crisoeriol, -7-O-β-D-glucopiranósido; luteolina, -7-O-β-D-glucopiranósido; 5-hidroximetil-2-furfural; ácido cafeico; ácido protocatéquico; isoramnetina-3-O- β-D-glucopiranósido; kaempferol-3-O-β-D-gluco-piranósido; quercetina-3-O-β-D- glucopiranósido; hederagenina-3-O-α-L-arabinopiranósido (fl.). b) ------Song, W. et al. 2008. Pyridinium alkaloid-coupled secoiridoids from the flower buds of Lonicera japonica. J. Nat. Prod. 71(5): 922. Lonijapósidos A, B y C (fl.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 33

c) ------Lin, L. M. et al. 2008. Two new triterpenoid saponins from the flowers and buds of Lonicera japonica. J. Asian Nat. Prod. Res. 10(10): 925. Lonicerósidos A, B, D y E; ácido clorogénico; swerósido; vogelósido; epi-vogelósido; lonicerósido (fl., pllo.).

CARYOPHYLLACEAE 184.- Stellaria media “capiquí”. Dong, Q. et al. 2007. Studies on chemical constituents from Stellaria media I. Zhongguo Zhongyao Zazhi 31(11): 1048. Apigenina6-C-β- D- galactopiranosil-8-C-α-L-arabinopiranósido, -6-C-α-L-arabinopiranosil-8-C-β-D- galactopiranósid, -6-C-β-D-galacto-piranosil-8-C-β-L-arabinopiranósido, -6-C-β-D- glucopiranosil-8-C-β-D-galactopiranósido, -6,8-di-C-α-L-arabinopiranósido. a) ------Vanhaecke, M. et al. 2008. Isolation and characterization of a pentasaccharide from Stellaria media. J. Nat. Prod. 71(11): 1833. Stellariosa (= α- D-galactosa-(1→6)-[α-D-galactosa-(1→4)]α-D-glucosa-(1→2)-β-D-fructosa-(1→ 1)-α-D-galactosa).

CECROPIACEAE Cecropia glaziovii. Rocha, F. F. et al. 2007. Antidepressant-like effect of Cecropia 185.- glazioviii Sneth and its constituents – In vivo and in vitro characterization of the underlying mechanism. Phytomed. 14(6): 396. Catequina, catequina-(4α→8)-ent- catequina (= pro-cianidina B3 isómero); epicatequina-(4β→8)-epicatequina (= procianidina B2). a) ------Luengas-Caicedo, P. E. et al. 2007. Seasonal and intraspecific variation of flavonoids and proanthocyanidins inCecropia glaziovi Sneth. leaves from native and cultivated specimens. Z. Naturforsch. 62c(9-10): 701. Flavonoides; proantocianidinas (h.). 186.- Cecropia pachystachya “ambay”. Dade, M. et al. 2007. Acido pomólico aislado de Cecropia pachystachya (CP) es inductor de apoptosis en PMN humanos. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Acido pomólico (h.). a) ------Schinella, G. et al. 2008. Anti-inflammatory and apoptotic activities of pomolic acid isolated from Cecropia pachystachya. Planta Med. 74(3): 215. Ácido pomólico (h.).

CELASTRACEAE 187.- Austroplenckia populnea. Andrade, S. F. et al. 2008. Antileishmanial, antimalarial and antimicrobial activities of the extract and isolated compounds from Austroplenckia populnea (Celastraceae). Z. Naturforsch. 63c(7-8): 497. Metil populnoato; ácido populnoico; stigmast-5-en-3-O-β-D-glucopiranósido (ct., mad.). 188.- Maytenus ilicifolia “quebrachillo, congorosa”. Gutierrez, F. et al. 2007. Terpenoids from the medicinal plant Maytenus ilicifolia. J. Nat. Prod. 70(6): 1049. Milicifolinas A, B, C y D (r.). 34 Miscelanea Nº 134, 2015

a) ------De Souza, L. M. et al. 2008. Analysis of flavonol glycoside isomers from leaves of Maytenus ilicifolia by offline and online high performance liquid chromatography-electrospray mass spectrometry. J. Chromatogr. 1207(1-2): 101. Flavonoles mono, di, tri y tetraglicósidos de kaempferol, quercetina y miricetina (h.). b) ------Cipriani, T. R. et al. 2008. Acidic heteroxylans from medicinal plants and their anti-ulcer activity. Carbohyd. Polym. 74(2): 274. Heteroxilano acídico (h.). 189.- Maytenus vitis-idaea “tala salado”. Vonka, C. A. et al. 2008. Taninos condensados en Maytenus vitis-idaea Griseb. “tala salado” (Celastraceae). Lat. Am. J. Pharm. 27(2): 240. Delfinidina (h.).

CELTIDACEAE 190.- Celtis iguanea “tala gateador”. Gatelli, E. et al. 2007. Actividad antioxidante y antifúngica de Celtis iguanea (Jacq.) Sarg. Celtidiaceae. XVI Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Rutina; isoquercitrina; ácido clorogénico. 191.- Celtis tala “tala amarillo, yoasí”. Vodka, C. A. et al. 2007. Avances en el estudio fitoquímico deCeltis tala Gillies ex Planch. (Celtidaceae). IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Ácidos: clorogénico, cafeico e isoclorogénico; 5-hidroxi-flavonas (h.).

CERVANTESIACEAE 192.- Jodina rhombifolia “sombra de toro, peje”. Lucero, I. et al. 2007. Caracterización fitoquímica y validación biológica deJodina rhombifolia (sombra de toro). XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Alcaloides. a) ------Lizárraga, E. et al. 2007. Flavonoides como parámetro fitoquímico para el estudio de muestras expendidas como “sombra de toro” (Jodina rhombifolia). XXIV Jornadas Científicas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Tucumán. Argentina. Flavonoides 3-O-monoglicosilados, -3-O-diglicosilados. -7-O- diglicosilados (h.).

CHENOPODIACEAE 193.- Chenopodium quinoa “quinoa”. Kuljanabhagavad, T. et al. 2008. Triterpene saponins from Chenopodium quinoa Willd. Phytochemistry 69(9): 1919. Ácido 3β-[(O-β-D-glucopiranosil-(1→3)-α-L-arabinopiranosil)oxi]-23-oxo-olean-12- en-28-oico β-D-glucopiranósido; ácido 3β-[(O-β-D-glucopiranosil-(1→3)-α-L- arabinopiranosil)oxi]-27-oxo-olean-12-en-28-oico β-D-glucopiranósido; ácido serjánico 3-O-α-L-arabinopiranosil 28-O-β-D-glucopiranosil éster; ácido serjánico 3-O-β-D-arabinopiranosil 28-O-β-D-glucopiranosil éster (fl, fr., s.); 3-O-β-D- glucopiranosil-(1→2)-O-β-D-glucopiranosil-(1→3)-α-L-arabinopiranosil ácido serjánico 28-O-β-D-glucopiranosil éster; 3-O-β-di éster; quinósido D; quinoa saponinas 1, 2, 3, 4, 5, 7, 8, 9; 3-O-β-D-glucopiranosil-(1→3)-α-L-arabinopiranosil ácido oleanólico 28-O-β-D-glucopiranosil éster; chikusetsu saponina; 3-O-β-D- glucopiranosil-(1→4)-O-β-D-glucopiranosil-(1→4)-O-β-D-glucopiranosil ácido fitolacagénico 28-O-β-D-glucopiranosil éster; saponina F; 3-O-β-D-glucopiranosil- (1→3)-α-L-arabinopiranosil-3β,23,30-trihidroxi- ácido olean-12-en-28 oico-28-O-β- D-glucopiranosil éster (fl., fr.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 35

a) ------Paśko, P. et al. 2008. Analysis of selected phenolic acids and flavonoids in Amaranthus cruentus and Chenopodium quinoa seeds and sprouts by HPLC. Acta Chromatogr. 20(4): 661. Ácidos: p-hidroxibenzoico, vanillico, p-cumárico, cafeico y cinámico; orientina; vitexina; isovitexina; morina; hesperidina; neohesperidina (s.). 194.- Suaeda divaricata “jume”. Idem N° 17. Flavonoles.

CLUSIACEAE 195.- Calophyllum brasiliense. Brenzan, M. A. et al. 2008. Activity of extracts and coumarins from the leaves of Calophyllum brasiliense on Leishmania braziliensis. Pharm. Biol. 46(6): 380. (-)-Mammea A/BB; amentoflavona (h.). 196.- Garcinia brasiliensis. Martins, F. T. et al. 2008. Composition, and anti-inflammatory and antioxidant activities of the volatile oil from the fruit peel of Garcinia brasiliensis. Chem. Biodivers. 5(2): 251. 38 compuestos, los principales: γ- muuroleno (10,3 %); espatulenol (8,7 %); δ-cadineno (8,3 %); torreyol (8,0 %); α- cadinol (7,0 %); cadaleno (6,3 %); γ-cadineno (5,3 %) (casc.) a) ------Almeida, L. S. B. et al. 2008. Antimicrobial activity of Rheedia brasiliensis and 7-epiclusianone against Streptococcus mutans. Phytomed. 15(10): 886. 7-epiclusianona (fr.). 197.- Rheedia brasiliensis “bacupari”. Almeida, L. S. B. et al. 2008. Antimicrobial activity of Rheedia brasiliensis and 7-epiclusianone against Streptococcus mutans. Phytomedicine 15(10): 886. 7-epiclusianona (fr.).

COMBRETACEAE 198.- Combretum fruticosum “flor de cepillos”. Bertucci, A.et al. 2008. Prospección química del bosque de galería del río Uruguay. Rev. Bras. Farmacogn. 18(1): 21. Terpenos; taninos; saponinas; flavonoides; glicósidos (h.). 199.- Combretum leprosum. Facundo, V. A. et al. 2008. Two new cycloartanes from Combretum leprosum Mart. (Combretaceae). Rev. Latinoamer. Quim. 36(3): 76. 4α-carboxi-3β,16α -dihidroxi-24-cicloarteno; 4α-carboxi-1α,3β-dihidroxi-25- hidroperoxi-trans-23(24)-cicloarteno; flavona-5,7,3’,4’-tetrahidroxi-3-metoxi, -5,3’,4’-trihidroxi-3,7-dimetoxi, -5,3’-dihidroxi-3,7,4’-trimetoxi; [3β,6β,16β- trihidroxi-lup-20(29)-eno; ácido móllico; ácido arjunólico; α-D-glucopiranósido de(3β)-stigmast-5-en-3-ilo (fl.). 200.- Terminalia australis “palo amarillo”. Idem N° 198. Saponinas; flavonoides; glicósidos (h.). 201.- Terminalia sericea. Eldeen, I. M. S. et al. 2008. Isolation and biological activities of termilignan B and arjunic acid from Terminalia sericea roots. Planta Med. 74(4): 411. Termilignano B; ácido arjúnico (r.).

CONVOLVULACEAE 202.- Evolvulus alsinoides. Gupta, P. et al. 2007. Anti-stress constituents of Evolvulus alsinoides: an ayurvedic crude drug. Chem. Pharm. Bull. 55(5): 771. 2,3,4- trihidroxi-3-metilbutil 3-[3-hidroxi-4-(2,3,4-trihidroxi-2-metilbutoxi)-fenil]-2- propenoato; 1,3-di-O-cafeoil ácido quínico metiléster; ácido cafeico; 6-metoxi-7-O- β-glucopiranósido cumarina; 2-C-metil eritritol; kaempferol-7-O-β-glucopiranósido, -3-O-β-glucopiranósido; quercetina-3-O-β-glucopiranósido. 36 Miscelanea Nº 134, 2015

203.- Ipomoea batatas var. batatas “batata”. Escalante Sanchez, E. et al. 2007. Batatins I and II, ester-type dimers of acylated pentasaccharides from the resin glycosides of sweet potato. J. Nat. Prod. 70(6): 1029. Batatinas I y II (r.) 204.- Ipomoea cairica “campanilla”. Lin, R. J. et al. 2008. Cytotoxic activity of Ipomoea cairica. Nat. Prod. Res. 22(9): 747. (+)-(8R,8’S)-thujaplicatin metiléter; arctigenina; matairesinol; trans-2,3-dibencilbutirolactona; ácidos: vanillico, p-hidroxibenzoico, metoxibenzoico, esteárico, palmítico y olénico; metilparaben; friedelinol; mezcla de β-sitosterol y stigmasterol. a) ------Ferreira, A. A. et al. 2008. Microwave-assisted derivatization and GC-MS analyses of amino acids from Ipomoea cairica aqueous extract. Chem. Nat. Compd. 44(5): 679. Alanina; glicina; valina; leucina; serina; treonina; metionina; lisina; histidina; trosina; triptofano (p.a.). 205.- Ipomoea pes-caprae. Escobedo Martínez, C. et al. 2007. Resin glycosides from Ipomoea pes-caprae. J. Nat. Prod. 70(6): 974. Pescrapósidos A, B; pescapreínas I, II, III, IV, V, VI, VII, VIII, IX; stoloriferina III (p.a.). a) ------Tao, H. et al. 2008. Resin glycoside constituents from Ipomoea pes-caprae (beach morning glory). J. Nat. Prod. 71(12): 1998. Pescapreínas X, XI, XII, XIII, XIV, XV, XVI, XVII (pl.). b) ------Wang, Q. J et al. 2008. Study on chemical constituents from Ipomoea pes-caprae (Linn.) sweet III. Chin. Pharm. J. 43(1): 20. Kaempferol; quercetina; miricetina; daucosterol; kaempferitrina; quercetrina, -7-O-β-D-glucósido; ácido nonadecanoico.

CUCURBITACEAE 206.- Lagenaria siceraria “porongo, calabaza de peregrino, guaje, bule”. Chen, X. R. et al. 2008. D:C-Friedooleanane-type triterpenoids from Lagenaria siceraria and their cytotoxic activity. Chem. Pharm. Bull. 56(3): 385. 3β-O-(E)-feruloil-D:C- friedooleanan-7,9(11)-dien-29-ol; 3β-O-(E)-cumaroil-D:C-friedooleanan-7,9(11)- dien-29-ol; ácido 3β-O-(E)-cumaroil-D:C-friedooleanan-7,9(11)-dien-29-oico; metil 2β,3β-dihidroxi-D:C-friedooleanan-8-en-29-oato; 3-epikarounidiol; ácido 3-oxo-D: C-friedooleanan-7,9(11)-dien-29-oico; brionolol; ácido briónonico; ácido 20- epibrionólico (tll.). a) ------Ghosh, K. et al. 2008. Structural studies of a methyl galacturonosyl- methoxyxylan isolated from the stem of Lagenaria siceraria (Lau). Carbohydr. Res. 343(2): 341. Polisacárido constituído por metil D-galacturonato, 2-O-metil-D-xilosa y D-xilosa (tll.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 37

207.- Momordica charantia “melón de San Cayetano”. Akihisa, T. et al. 2007. Cucurbitane-type triterpenoids from the fruits of Momordica charantia and their cancer chemopreventive effects. J. Nat. Prod. 70(8): 1233. Charantósido I (= (19R,23E)-5β,19-epoxi-19-metoxicucurbita-6,23,25-trien-3β-ol-3-O-β-D- glucopiranósido); charantósido II; charantósido III (= (23E)-5β,19-epoxi-cucurbita- 6,23,25-trien-3β-ol-3-O-β-D-glucopiranósido); charantósido IV (= (23E)-5β,19- epoxi-cucurbita-6,23,25-trien-3β-ol-3-O-β-D-allopiranósido); charantósido V (= (23R)-5β,19-epoxi-23-metoxicucurbita-6,24-dien-3β-ol-3-O-β-D-glucopiranósido); charantósido VI (= (23S)-5β,19-epoxi-23metoxicucurbita-6,24drien-3β-ol-3-O-β-D- allopiranósido); charantósidoVII (= (23E)-3β-hidroxicucurbita-6,23,25-trien-5β,19- ólido-3-O-β-D-glucopiranósido); charantósido VIII (= (23E)-3β-hidroxi-7β,25- dimetoxi -5,23-dien-19-al-3-O-β-D-glucopiranósido) (fr.). a) ------Pan, H. et al. 2007. Chemical constituents in immature fruits of Momordica charantia. Chin. Tradit. Herb. Drugs 38(1): 9. Germanicil acetato; aglicona de momordicósido I; aglicona de momordicósido L; charantina; β-sitosterol (fr.). b) ------Guan, J. et al. 2007. New cucurbitane saponin from Momordica charantia. Chin. Tradit. Herb. Drugs 38(8): 1133. 19R-5β,19-epoxicucurbita- 6,23,25-trien-3β,19-diol; 19S-5β,19-epoxy-cucurbita-6,23,25-trien-3β, 19-diol; 3-O- glucopiranósido de 5β, 19-epoxicucurbita-6,23,25-trien-3-ol; 3-O-allopiranósido de 5β,19-epoxicucurbita-6,23,25-trien-3-ol. c) ------Guan, J. et al. 2007. Chemical constituents in fruit of Momordica

charantia. Chin. Tradit. Herb. Drugs 38(12): 1777. Momordicósido F 1; 5, 25- stigmastadien-3-ol; aglicona de momordicósido I; charantina; β-sitosterol (fr.). d) ------Li, Q. Y. et al. 2007. Cucurbitane triterpenoids from Momordica charantia. Magnet. Reson. Chem. 45(6): 451. Momordicósido M (= 23-O-β-D-allopiranosil- 5β,19-epoxicucurbita-6,24-dien-3β,22(S),23(S) -triol-3-O-β-D-glucopiranósido); momordicósido N (= 23-O-β-D-allopiranosil-5β,19- epoxicucurbita-6,24-dien- 3β,22(S),23(S)-triol-3-O-β-D-allopiranósido); momordicósido O (= 23-O-β-D- allopiranosil-5β,19-epoxicucurbita-6,24-dien- 3β,19(R), 22(S),23(S)-tetraol-3-O-β- D-allopiranósido); momordicósido L (fr.). e) ------Li, Q. Y. et al. 2007. A new cucurbitane triterpenoid from Momordica charantia. Chin, Chem. Lett. 18(7): 843. Momordicósido P (= 5β,19- epoxycucurbita-6,23-dien-3β,19,25-triol-3-O-β-D-allopiranósido) (fr.). f) ------Braca, A. et al. 2008. Chemical composition and antimicrobial activity of Momordica charantia seed essential oil. Fitoterapia 79(2): 79. trans-nerolidol (61,6 %); α y β-pineno; octanal; p-cimeno; limoneno; 1,8-cineol; β-felandreno; linalool; cis y trans dihidrocarveol; carvona; (E)-anetol; safrol; metileugenol; germacreno D; α y β-selineno; miristicina; espatulenol; cedrol; β-bisalobol; δ-cadineno; apiol (s.). g) ------Huang, L. et al. 2008. Characterization of lectin isolated from Momordica charantia seed as a B cell activator. Immunol. Lett. 121(2): 148. Glicoproteína (galactosa específíca) (s.). 38 Miscelanea Nº 134, 2015

h) ------Chang, I. C. et al. 2008. Cucurbitane type triterpenoids from the items of Momordica charantia. J. Nat. Prod. 71(8): 1327. Cucurbita-5,23(E)-dien- 3β,7 β,25-triol; 3β-acetoxi-7β-metoxicucurbita-5,23(E)-dien-25-ol; cucurbita- 5(10),6,23(E)-trien-3β,25-diol; cucurbita-5,24-dien-3,7,23-triona; 3β,25-dihidroxi- 7β-metoxi-cucurbita-5,23(E)-dieno; 3β-hidroxi-7β,25-dimetoxi-cucurbita-5,23(E)- dieno; 3β,7β,25-trihidroxi-cucurbita-5,23(E)-dien-19-al; 25-metoxi-3β,7β- dihidroxicucurbita-5,23(E)-dien-19-al (tll.). i) ------Kobori, M. et al. 2008. α-Eleostearic acid and its dihydroxy derivative are major apoptosis-inducing components of bitter gourd. J. Agric. Food Chem. 56(22): 10515. Ácido α-eleosteárico (= ácido (9Z,11E,13E)-9,11,13-octadecatrienoico) y su 15,16-dihidroxi derivado (per., s.). j) ------Liu, Y. et al. 2008. Cucurbitane-type triterpene glycosides from the fruits of Momordica charantia. Planta Med. 74(10): 1291. β,25-dimetoxcucurbita- 5(6),23(E)-dien-19-al 3-O-β-D-allopiranósido; 25-metoxicucurbita-5(6),23(E)-dien-

19-ol 3-O-β-D-allopiranósido; momordicósidos A, F1, F2, G, K, y L; goyaglicósidos c y-d; [3β,7β,25-trihidroxicucurbita-5,23(E)-dien-19-al] (fr.). k) ------Chen, J. C. et al. 2008. Eight new cucurbitane glycosides, kuguaglycosides A-H, from the root of Momordica charantia L. Helvet. Chim. Acta 91(5): 920. Kuguaglicósidos A, B, C, D, E, F, G y H; 3β,23-dihidroxicucurbita-5,24- dien-7β-il β-D-glucopiranósido; karavilósidos III, V y XI; momordicósido K (r.). l) ------Chen, J. C. et al. 2008. Trinorcucurbitane and cucurbitane triterpenoids from the roots of Momordica charantia. Phytochemistry 69(4): 1043. Kuguacins A, B, C, D y E; 3β,7β,25-trihidroxicucurbita-5,(23E)-dien-19-al; 3β,25-dihidroxi-5β,19- epoxicucurbita-6,(23E)-dien; momordicina I (r.).

CYATHEACEAE 208.- Cyathea phalerata. Pizzolatti, M. G. et al. 2007. Cyathenosin A, a spiropyranosyl derivative of protocatechuic acid from Cyathea phalerata. Phytochemistry 68(9): 1327. Ciathenosina A (derivado de ácido protocaéquico) (tll.).

CYPERACEAE 209.- Cyperus articulatus var. articulatus “priprioca”. Zoghbi, M. das G. B. et al. 2008. Comparison of the main components of the essential oils of “priprioca”: Cyperus articulatus var. articulatus L., C. articulatus var. nodosus L., C. prolixus Kunth and C. rotundus L. J. Essent. Oil Res. 20(1): 42. Mustakona (9,8-14,5 %); cariofileno óxido (4,6-10,8 %); α y β-pineno (tb.). 210.- Cyperus articulatus var. nodosus. Idem N° 209. Mustakona (6,6-14,5 %); cariofileno óxido (5,4-13,7 %); α- y β-pineno (tb.) 211.- Cyperus prolixus. Idem N°209. Cariofileno óxido (6,9-26,9 %); α-ciperona (13,5- 20,6 %); 14-hidroxi-9-epi-β-cariofileno (9,6-16,7 %); α y β-pineno (tb.). 212.- Cyperus rotundus “cebollín, castañuela, corocillo, coquito, tamascal, tamascán”. Sahed, H. M. et al. 2007. A new steroid glycoside and furochromones from Cyperus rotundus L. Nat. Prod. Res. 21(4): 343. Sitosteril (6’-hentriacontanoil)-β-D- galactopiranósido; khellina; visnagina; ammiol; benzo-α-pirona; ácidos: salicílico, cafeico, protocatéquico y p-cumárico; tricina; isoramnetina (p.a.). a) ------Idem N°209. α-ciperona (22,8 %); ciperotundona (12,1 %); α y β-pineno (tb.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 39

b) ------Sahed, H. M. et al. 2008. Fructose-amino acid conjugate and other constituents from Cyperus rotundus L. Nat. Prod. Res. 22(17): 1487. N-(1-deoxi-α- D-fructos-1-il)-L-triptofano; n-butil-β-D-fructopiranósido; etil-α-D-glucopiranósido; adenosina; ácido (−)-(E)-cafeoil málico; vitexina; isovitexina; orientina; epiorientina; ácido clorogénico; miricetina-3-O-β-D-galactopiranósido; luteolina-7- O-β-D-glucurono-piranósido-6”-metiléster, -4’-O-β-D-glucuronopiranósido, -7-O-β- D-glucuronopiranósido; uridina; ácido elágico (p.a.). c) ------Kilani, S. et al. 2008. Comparative study of Cyperus rotundus essential oil by a modified GC/MS analysis method. Evaluation of its antioxidant, cytotoxic, and apoptotic effects. Chem. Biodivers. 5(5): 729. 33 compuestos, los mayoritarios: cypereno; α-cyperona; isolongifolen-5-ona; rotundeno; cyperorotundeno (tb.).

DILLENIACEAE 213.- Davilla elliptica. de Matos, D. C. et al. 2007. Anti-tumoral activity of extracts and pure compounds obtained from Byrsonima crassa, Davilla eliptica, Strychnos pseudoquina and Mouriri pusa. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Quercetina-3-O- galactopiranósido. a) ------Rodrigues, C. M. et al. 2008. High-performance liquid chromatographic separation and identification of polyphenolic compounds from the infusion of Davilla elliptica St. Hill. Phytochem. Anal. 19(1): 17. Flavonoides.

DIOSCOREACEAE 214.- Dioscorea polygonoides. Niño, J. et al. 2007. Diosgenin quantification by HPLC in a Dioscorea polygonoides tuber collection from colombian flora. J. Braz. Chem. Soc. 18(5): 1073. Diosgenina (2,64 %); diospolisaponina A; prosapogenina A (tb.). a) ------Sautour, M. et al. 2007. The Dioscorea genus: A review of bioactive steroid saponins. J. Nat. Med. 61(2): 91. Saponinas esteroides (r.).

ELAEOCARPACEAE 215.- Muntingia calabura “capulin, capulincillo”. Marquez Vizcaino, R. L. et al. 2007. Evaluación química del extracto total etanólico de las hojas y corteza fresca de Muntingia calabura (Elaeocarpaceae). Rev. Sci. Tech. 1(33): 455. Alcaloides; flavonoides; compuestos fenólicos; terpenos (h.); taninos; saponinas (ct.).

EPHEDRACEAE 216.- Ephedra breana “pingo pingo”. Ricco, R. A. et al. 2007. Taninos condensados de Ephedra breana Phil. Ephedraceae. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Prodelfinidina (tll. herbáceo); proapigenidina (tll. lignificado).

ERIOCAULACEAE 40 Miscelanea Nº 134, 2015

217.- Eriocaulon ligulatum. Aparecido da Silva, M. et al. 2007. Flavonoids and naphtho-pyranone from Eriocaulon ligulatum (Vell.) L. B. Smith. XVI Congreso Italo-Latino-americano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Eriocaulina; 6-metoxiapigenina-7-O-β-D-glucopiranósido, -7-O-β- D-allopiranósido; quercetina-6,4’-dimetoxi-3-O-β-D-6”[ (E)-3,4,5-trihidroxi- cinamato]glucopiranósido (cap.). a) ------Aparecido da Silva, M. et al. 2007. Flavonoids and naphtho-pyranone from Eriocaulon ligulatum and their mutagenic activity. Chem. Pharm. Bull. 55(11): 1635. Eriocaulina; quercetina-6,4’-dimetoxi-3-O-β-D-6”[(E)-3,4,5-trihidroxi- cinamato]glucopiranósido; 6-metoxiapigenina-7-O-β-D-glucopiranósido, -7-O-β-D- allopiranósido (cap.).

EUPHORBIACEAE 218.- Alchornea glandulosa. Calvo, T. R. et al. 2007. Constituents and antiulcer effect of Alchornea glandulosa: activation of cell proliferation in gastric mucosa during the healing process. Biol. Pharm. Bull. 30(3): 451. Miricetina- 3-O-α-L-ramnopiranósido; quercetina, -3-O-α-L-arabinopiranósido, -3-O-β-D- galactopiranósido; amentoflavona; metil galato; ácido gálico; pteroginidina (h.). 219.- Colliguaya integerrima “duraznillo, colaguaya, colihuai”. Idem N°17. Flavonoides; taninos; sulfatos; ácido ricinoleico. 220.- Croton lobatus. Barthélemy, A. et al. 2007. Antiplasmodial activity of constituents isolated from Croton lobatus. Pharm. Biol. 45(4): 263. 3-[(6Z,9Z)dodeca-6,9- dienoiloxi]-2-octanoiloxipropil(6Z,9Z)dodeca-6,9-dienoato; ácido (Z,Z,Z)-9,12,15- octadecatrienoico metiléster; ácido 8,11,17,21-tetrametil-(E,E,E,E)-8,10,17,21- tetraentetracosanoico; geranilgeraniol; colestan-3-ona; ácido betulínico; ácido (E)-3- (4-metoxi-fenil)-2-fenil-acrílico (tll., h.). 221.- Croton tenuissimus. Idem N°198. Triterpenos; esteroides; terpenos; taninos; saponinas; flavonoides; glicósidos (h.). 222.- Croton urucurana “sangre de drago”. Simionatto, E. et al. 2007. Chemical composition and evaluation of antibacterial and antioxidant activities of the essential oil of Croton urucurana Baillon (Euphorbiaceae) stem bark. J. Braz. Chem. Soc. 18(5): 879. 83 compuestos, los principales: α-bisabolol (38,3 %); α-eudesmol (9,3 %); guaiol (8,2 %); borneol (14,7 %); bornil acetato (5,2 %); 1-isopropil-7-metil-4- metilen-1,3,4,5,6,8-hexahidro-2H-naftalen-4α-ol (14,7 %); sesquicineol (10,5 %); γ-gurjuneno epóxido (5,4 %) (ct. tll.). a) ------Simionatto, E. et al. 2008. Bioactivity and chemical composition of the essential oil of Croton urucurana Baillon (Euphorbiaceae). J. Essent. Oil Bear. Plants 11(6). Borneol (14,7 %); bornil acetato (5,2 %); cadina-4,10(14)-dien-1α-ol (14,7 %); sesquicineol (10,5 %); γ-gurjuneno epóxido (5,4 %) (ct. tll.); germacreno- D (15,2 %); biciclogermacreno (36,4 %) (h.). 223.- Euphorbia helioscopia. Lu, Z. Q. et al. 2008. Cytotoxic diterpenoids from Euphorbia helioscopia. J. Nat. Prod. 71(5): 873. 7β,9α,14β-triacetoxi-3β-benzoiloxi- 12β,15β-epoxi-11β-hidroxijatropha-5E-eno; 14β-acetoxi-3β-benzoiloxi-7β,9α,15β- trihidroxijatropha-5E,11E-dieno; 7β,9α,14β-triacetoxi-3β-benzoiloxi-15β,17- dihidroxijatropha-5E,11E-dieno; 14α,15β-diacetoxi-3β,7β-dibenzoloxi-17-hidroxi-9- oxo-2βH,13βH-jatropha-5E,11E-dieno (pl.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 41

a) ------Tao, H. W. et al. 2008. Cytotoxic macrocyclic diterpenoids from Euphorbia helioscopia. Arch. Pharm. Res. 31(12): 1547. Euphornina L; euphoscopina F; epieuphoscopina B; euphoscopina B; euphoscopina C (pl.). 224.- Euphorbia heterophylla. Falodun, A. et al. 2008. Phytochemical and biological investigation of chloroform and ethylacetate fractions of Euphorbia heterophyllla leaf (Euphorbiaceae). J. Med. Plant Res. 2(12): 385. Saponinas; flavonoides; taninos; stigmasterol; β-stigmasterolglucósido; ácidos: benzoico y -4-hidroxi-benzoico (h.). 225.- Euphorbia hirta. Liu, Y. et al. 2007. Antimalarial flavonol glycosides from Euphorbia hirta. Pharm. Biol. 45(4): 278. Afzelina; quercitrina; miricitrina (p.a.). 226.- Euphorbia huanchahana. Idem N°74. Saponinas; taninos; cumarinas; esteroides; cardiotónicos; sesquiterpenlactonas (r.). 227.- Euphorbia sp. Gratti, A. et al. 2007. Estudio fitoquímico preliminar en especies patagónicas del género Euphorbia. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Cianidina; quercetina; taninos hidrolizables (p.a.). 228.- Jatropha multifida. Moharram, F. A. et al. 2007. Biological examination and novel biflavone di-C-glycosides fromJatropha multifida L. leaves. 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research.

Graz. Austria. Jatrofenol I (= 6,6”-di-C-β-D-C1-glucopiranosil-metilen-(8,8”)- 4 biapigenina); jatrofenol II (= 3,6”-di-C-β-D- C1-glucopiranosil-metilen-(6,8”)-

biapigenina); jatrofenol III (= 6,6”-di-C-β-D-C1-glucopiranosil-metilen-(3,8”)- biapigenina); apigenina-7-O-β-D-neohesperidósido; ácido ferúlico; quercetina; vicenina-II; isoorientina; vitexina; luteolina (h.). a) ------Das, B. et al. 2008. Diterpenoids from Jatropha multifida. Phytochemistry 69(14): 2639. Multifolona; (4E)-jatrogrossidentadiona acetato; jatrophona; citlalitrione; 3β-acetoxi-12-metoxi-13-metil-podocarpa-8,11,13-trien-7-ona; (4E)-jatro-grossidentadiona; 15-epi-(4E)-jatrogrossidentadiona; pictonarigenina; cleomiscosin A (tll.). 229.- Mabea fistulifera. Coqueiro, A. et al. 2007. Flavanone glycosides from Mabea fistulifera Mart. (Euphorbiaceae). Biochem. Syst. Ecol. 35(10): 717. Naringenina, -7-O-β-glucósido, -7-O-β-(3”,6”-di-p-cumaroil)-glucósido, -7-O-β-(3”-p-cumaroil)- glucósido, -7-O-β-(6”-p-cumaroil)-glucósido (s.). 230.- Ricinus communis “ricino, tártago, higuera del diablo”. Zhang, X. et al. 2007. Bioassay-guided fractionation of antifertility components of castorbean ( Ricinus communis L.) seed extracts. Nat. Prod. Res. 21(11): 982. Mezcla de ergost-5-en- 3-ol (6,10 %), stigmasterol (35,80 %), γ-sitosterol (44,77 %), fucosterol (8,40 %) y probucol análogo (4,93 %) (s.). a) ------Chakravartula, S. V. S. et al. 2007. Identification and characterization of phenolic compounds in castor seed. Nat. Prod, Res. 21(12): 1073. Ácidos: p- cumárico, ferúlico, o-cumárico, siríngico, cináamico (s.). b) ------Byamukama, R. et al. 2008. New anthocyanins from stem bark of castor, Ricinus communis. Nat. Prod. Comm. 3(9): 1497. Cianidina-3-O-β-xilopiranósido-5- O-β-glucopiranósido, -3-O-β-xilopiranósido-5-O-(6’’’-malonil-β- glucopiranósido), - 3-O-β-xilopiranósido-5-O- (6’’’-metilmalonato-β-glucopiranósido) (ct.tll.). c) ------Alam, P. et al. 2008. New aliphatic alcohols from root bark of Ricinus communis Linn. J. Nat. Remedies 8(2): 216. 24-fenil tetracosan- 6-ona-19-o1; n- tricos-10-en-1-ol-3-ona; 24-fenil-n-tetracosan-10-ona-19-β-ol (ct.r.). 42 Miscelanea Nº 134, 2015

d) ------. Chen, Z. et al. 2008. Simultaneous determination of flavones and phenolic acids in the leaves of Ricinus communis Linn. by capillary electrophoresis with amperometric detection. J. Chromatograph. 863(1): 101. Rutina; ácidos gentístico y ghálico; quercetina; disacárido glicósido (h.). 231.- Sebastiania commersoniana. Hnatyszyn, O. et al. 2007. Phytochemical analysis and antifungal evaluation of Sebastiania commersoniana extracts. Pharm. Biol. 45(5): 404. Quercetina; kaempferol; isoramnetina; isoquercitrina; galicina; ácidos: gálico, siríngico y cafeico; escopoletina. a) ------Idem N°198. Terpenos; triterpenos; esteroides; flavonoides (h.).

FABACEAE 232.- Amorpha fruticosa “falso índigo”. Dat, N. T. et al. 2008. Phenolic constituents of Amorpha fruticosa that inhibit NF-KB activation and related gene expression. J. Nat. Prod. 71(10): 1696. Tefrosina, -11-hidroxi; deguelina; amorfispironona; 1αR,6αS,12αR-11-hidroxi-amorfispironona; amorfrutina A; 2-carboxi-3-metoxi- 5-hidroxi-4-prenilbibencilo; 2-carboxi-5-hidroxi-3-metoxi-4-geranilbibencilo; 2-carboxi-3,5-dihidroxi-4-geranil-bibencilo; amorfastilbol; xantoangelol; 2’- metoxiisoliquiritigenina (h., br.). 233.- Andira anthelmia. Silva, V. de A.et al. 2008. Anthelmintic activity of flavonoids isolated from roots of Andira anthelmia (Leguminosae). Rev. Bras. Farmacogn. 18(4): 573. Biocanina A, -7-O-β-D-glucopiranósido, -7-O-α-L-ramnopiranosil-(1→ 6)-β-D-glucopiranósido, -7-O-β-D-apiofuranosil-(1→5)-β-D-apiofuranosil-(1→6)- β-D-glucopiranósido; genisteína; catequina (r.). 234.- Astragalus elongatus. Çaliş, İ. et al. 2008. Bioactive cycloartane-type triterpene glycosides from Astragalus elongatus. Z. Naturforsch. 63c(11-12): 813. Askendósido D (= 3-O-[α-arabinopiranosil-(1→2)-β-xilopiranosil]-6-O-β- xilopiranosil-cicloastragenol); askendósido G (= 3-O-[α-arabinopiranosil-(1→2)-β- xilopiranosil]-16-O-β-glucopiranosil-3β,6α,16β ,24(R)25-pentahidroxicicloartano); elongatósido (r.). 235.- Bauhinia forficata “pata de vaca, pezuña de vaca, mororó”. Gralato Lima, L. et al. 2007. Flavonóides presentes nas folhas de Bauhinia forficata. XVI Congreso Italo- Latino-americano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Kaempferitrina (= kaempferol-3,7-O-α-L-diramnósido); kaempferol-3-O-α-L- ramnopiranosil-(1→6)-β-D-glicopiranosil-7-O-α-L-ramnopiranósido, -3-O-β-D- glucosil-7-O-α-L-ramnopiranósido (h.). a) ------De Souza Menezes, F. et al. 2007. Hypoglycemic activity of two Brazilian Bauhinia species: Bauhinia forficata L. and Bauhinia monandra Kurz. Rev. Bras. Farmacogn. 17(1): 8. Quercetina-3,7-di-O-ramnósido; kaempferitrina (h.). b) ------Sartorelli, P. et al. 2007. Constituents of essential oil from Bauhinia forficata Link. J. Essent. Oil Res. 19(5): 468. γ-elemeno (38,4 %); α-bulneseno (17,3 %); cariofileno óxido (9,4 %); (Z)-β-farneseno (9,1 %) (h.). 236.- Bauhinia ungulata. Neto, M. M. et al. 2008. Flavonoids and alkaloids from leaves of Bauhinia ungulata L. Biochem. Syst. Ecol. 36(3): 227. Quercetina, - arabinofuranósido; quercitrina; 3-O-metil-D-pinitol; harmano; eleagnina (h.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 43

237.- Cajanus cajan “frijol de palo, gandul”. Ashidi, J. S. et al. 2007. Molecular mechanism of action of stilbene compounds from Cajanus cajan leaves in cancer cell lines. 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Longistilinas A y C (h.). a) ------Fu, Y. et al. 2008. Determination of vitexin and isovitexin in pigeonpea using ultrasonic extraction followed by LC-MS. J. Sep. Sci. 31(2): 268. Vitexina; isovitexina. 238.- Cassia tora. El-Halawany, A. M. et al. 2007. Estrogenic and anti-estrogenic activities of Cassia tora phenolic constituents. Chem. Pharm. Bull. 55(10): 1476. Toracrisona-8-O-[β-D-glucopiranosil(1→3)-O-β-D-glucopiranosil(1→ 6)-O-β-D-glucopiranósido]; toralactona 9-O-[β-D-glucopiranosil-(1→3)-O-β-D- glucopiranosil-(1→6)-O-β-D-glucopiranósido] (s). a) ------Jang, D. S. et al. 2007. Anthraquinones from the seeds of Cassia tora with inhibitory activity on protein glycation and aldose reductase. Biol. Pharm. Bull. 30(11): 2207. Aurantio-obtusina; criso-obtusina, -2-O-β-D-glucósido; obtusina; physcion; emodina; crisofanol; obtusifolina, -2-O-β-D-glucósido (s.). b) ------Zhu, L. et al. 2008. 2-Hydroxy-1,6,7,8-tetramethoxy-3- methylanthraquinone. Acta Crystallograph. Sect. 64(2): 371. Crisoobtusina (= 2- hidroxi-1,6,7,8-tetrametoxi-3-metilantraquinona) (s.). c) ------Zhu, L. et al. 2008. Preparative separation and purification of five anthraquinones from Cassia tora L. by high-speed counter-current chromatography. Sep. Purif. Technol. 63(3): 665. Aurantio-obtusina; 1-desmetilaurantio-obtusina; criso-obtusina; obtusina; 1-desmetilcriso-obtusina (s.). 239.- Copaifera langsdorfii “cupaí”. Pereira, F. J. et al. 2008. Isolamento, composição química e atividade anti-inflamatória do óleo esencial do pericarpo deCopaifera langsdorfii Desf. de acordo com hidrodestilações sucesivas. Lat. Am. J. Pharm. 27(3): 369. Germacreno B; (E)-cariofileno; 1,5-epoxisalvial-4(14)-eno; cariofileno óxido; isoespatulenol (per.). a) ------Lima Neto, J. et al. 2008. Chemical constituents of the fruits of Copaifera langsdorffii Desf. Quim. Nova 31(5): 1078. Ácido ent-kaur-16-en-19-oico; ácido polaltíco; nivenólido; mezcla de cariofileno óxido y ácido ent-kaur-16-en-19-oico (fr.); cumarina (s.). 240.- Dalea boliviana. Peralta, M. A. et al. 2007. Cromeno-flavanonas de raíces de Dalea boliviana como potenciales drogas antiinflamatorias. XVI Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Flavanona-5-hidroxi-6”,6”-dimetilcromeno-(7,8,2”,3”); flavanona-5,2’-dihidroxi-3’- prenil-6”,6”-dimetil-cromeno-(7,8,2”,3”) (r.). a) ------Peralta, M. A. et al. 2007. Flavonoids from Dalea boliviana as tyrosinase inhibitors. I Reunión Latinoamericana de Química Medicinal. Montevideo. Uruguay. Obovatina; 5,7,2’-trihidroxi-5’-(1”’,1”’-dimetilalil)-8-prenilflavanona; (2S)- 5,7,2’- trihidroxi-8,3’-diprenilflavanona; (2S)-5,2’-dihidroxi-6,6-dimetilcromeno- (7,8:2”,3”)-3’-prenilflavanona (p.a.). 241.- Desmodium uncinatum. Guchu, S. M. et al. 2007. C-methylated and C-prenylated isoflavonoids from root extract ofDesmodium uncinatum. Phytochemistry 68(5): 646. Uncinacarpano (= 1,9-dihidroxi-3-metoxi-2-metilpterocarpano); uncinanona D (= iso-flavanona-5,7-dihidroxi-2’,3’,4’-trimetoxi-6-(3-metilbut-2-enilo)); uncinanona E (= iso-flavanona-5,4’-dihidroxi-7,2’-dimetoxi-6-metilo) (r.). 44 Miscelanea Nº 134, 2015

242.- Erythrina speciosa. Faria, T. D. J. et al. 2007. Alkaloids from flowers and leaves of Erythrina speciosa Andrews. Quim. Nova 30(3): 525. Erisotrina; eritartina (fl.); nororientalina (h.). 243.- Geoffroea decorticans “chañar”. Quiroga, E. et al. 2007. Prenil isoflavanonas fungitóxicas aisladas de Geoffroea decorticans. XXIV Jornadas Científicas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Tucumán. Argentina. Lupeol; lupenona; prenil isoflavanona tetrahidroxi metoxi; prenil isoflavanona-trihidroxi metoxi (p.a.). 244.- Glycine max “soja, soya”. Ali, Z. et al. 2008. Glycinalside, a triterpenoid saponin containing a five-membered ring with novel hemiacetal functionality fromGlycine max. 7th Annual Oxford International Conference on the Science of Botanicals & American Society of Pharmacognosy. Oxford. Estados Unidos. Glicinálsido. 245.- Indigofera suffruticosa. Lopes, F. C. M. et al. 2007. Antiproliferative properties of indigotin alkaloid obtained from Indigofera suffruticosa. XVI Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Indigotina. a) ------Calvo, T. R. et al. 2007. Compounds and mutagenic activity from Indigofera suffruticosa Millar (Fabaceae).XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Quercetina-3-O- [4”’-O-α-L-ramnopiranosil-β-D-xilopiranosil(1→2)-β-D-galactopiranósido], -3- O-[β-D-apiofuranosil(1→6)-β-D-glucopiranósido], -3-O-[α-L-ramnopiranosil(1→ 6)-β-D-glucopiranósido], -3-O-[β-D-glucopiranosil(1→2)-β-D-galactopiranósido], -7-O-β-D-glucopiranósido; índigo, -3-O-β-glucopiranósido; isoindirubina-2,5,6- trihidroxi-6’-metoxi; indirubina; alantoína; ácido gálico; pinitol; sitosterol-3-O-β-D- glucopiranósido (p.a.). b) ------Barros, G. M. et al. 2008. Pharmacobotanical studies of wild indigo species (Indigofera suffruticosa and Indigofera truxillensis, Leguminosae,) with pharmacological properties. Rev. Pharm. Farmcogn. 18(2): 287. Compuestos fenólicos (h.); alcaloides (tll., r.). 246.- Indigofera truxillensis. Lopes, F. C. M. et al. 2008. A new flavonol triglycoside obtained from Indigofera truxillensis inhibits NO and TNF- production.XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. Kaempferol-3-O-[β-D-apiofuranosil-(1→2)-α-L-arabinopiranósido]-7-O-α-L- ramnopiranósido (p.a.). a) ------Idem N°245b. Compuestos fenólicos (h.); alcaloides (tll., r.). 247.- Inga edulis “ingá de comer, ingá del monte”. Souza, J. N. S. et al. 2007. Identification and antioxidant activity of several flavonoids ofInga edulis leaves. J. Braz, Chem. Soc. 18(6): 1276. Catequina; ácido galico; epicatequina; miricetina-3- ramnopiranósido; quercetina-3-glucopiranósido, -3-ramnopiranósido (h.). 248.- Inga laurina. Lokvam, J. et al. 2007. Galloyl depsides of tyrosine from young leaves of Inga laurina. J. Nat. Prod. 70(1): 134. L-tirosina; galoil, m-digaloil, m- trigaloil L-tirosina (h.). 249.- Lonchocarpus leucanthus “rabo de macaco”. Sanchez, F. et al. 2007. Estudio de la composición de los aceites esenciales de plantas medicinales de la provincia de Misiones. Lonchocarpus leucanthus. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Limoneno; germacreno D; elemol; espatulenol; biciclogermacreno; α-cadinol; metilchavicol (h.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 45

250.- Pterogyne nitens “palo rosa”. Fernandes, D. C. et al. 2008. Myeloperoxidase inhibitory and radical scavenging activities of flavone fromPterogyne nitens. Chem. Pharm. Bull. 56(5): 723. Nitensósido A (= sorbifolina-6-O-α -ramnopiranosil(1”’→ 6”)- β-glucopiranósido); nitensósido B (= pedalitina-6-O-α-ramnopiranosil(1”’→ 6”)-β-glucopiranósido); sorbifolina, -6-O-β-glucopiranósido; pedalitina, -6-O-β- glucopiranósido (h.). a) ------Regasini, L. O. et al. 2008. Chemical constituents of the flowers of Pterogyne nitens (Caesalpinioideae). Quim. Nova 31(4): 802. Quercetina-3-O- soforósido; taxifolina; astilbina; ourateacatequina; ácidos: cafeico, ferúlico, sinápico, clorogénico y gálico; pteroginina; pteroginidina (fl.) b) ------Regasini, L. O. et al. 2008. Flavonols from Pterogyne nitens and their evaluation as myeloperoxidase inhibitors. Phytochemistry 69(8): 1739. Pteroginósido (= kaempferol-3-O-(3”-O-4”’-metilgalato-α-L-ramnósido); kaempferol; afzelina; rutina; kaempferitrina; quercetina; isoquercetrina (fr.). 251.- Samanea saman. Naveen Prasad, R. et al. 2008. Preliminary phytochemical screening and antimicrobial activity of Samanea saman. J. Med. Plant Res. 2(10): 268. Saponinas; taninos; alcaloides; flavonoides; esteroides; terpenoides; glicósidos cardiotónicos (h.). 252.- Sarothamnus scoparius “retama negra, escoba negra”. Salazar, W. et al. 2008. Estudio fitoquímico y de actividad antihelmíntica de los extractos deSarothamnus scoparius y Lupinus ballianus Rev. Soc. Quím. Perú 74(2): 100. Alcaloides; flavonoides; saponinas; taninos; esteroides; triterpenos; antraquinonas; cumarinas; cardiotónicos (p.a.). 253.- Stryphnodendron adstringens. Lopes, G. C. et al. 2008. Chemotaxonomic significance of 5-deoxyproanthocyanidins inStryphnodendron species. Biochem. Syst. Ecol. 36(12): 925. Peracetato 4’-O-metilrobinetinidol-(4α /8)-4’-O-metlepigalocatequina; peracetato 4’-O-metilgalocatequina-(4α/8)- 4’-O-metilgalocatequna; peracetato 4’-O-metilrobinetinidol-(4α /8)-4’-O- metilgalocatequna; galocatequina; epigalocatequina (ct.). 254.- Tephrosia cinerea. Arriaga, A. M. C. et al. 2008. Composition and larvicidal activity of the essential oil from Tephrosia cinerea Pers. J. Essent. Oil Res. 20(5): 450. Cariofileno óxido (63,9 %) (h.). 255.- Zuccagnia punctata “jarilla macho, jarilla de la puna, laca, puspus”. Svetaz, L. et al. 2007. Antifungal activity of Zuccagnia punctata Cav.: evidence for the mechanism of action. Planta Med. 73(10): 1074. Chalcona 2’,4’-dihidroxi-3’-metoxi, -2’,4’- dihidroxi (fr., p.a.). a) ------Zampini, I. C. et al. 2008. Evaluation of genotoxic and antigenotoxic effects of hydroalcoholic extracts of Zuccagnia punctata Cav. J. Ethnopharmacol. 115(2): 330. Chalcona-2’,4’-dihidroxi (h.,tll.).

FAGACEAE 256.- Quercus ilex “encina”. Karioti, A. et al. 2007. A novel dimeric proanthocyanidin 3-O-glucoside from Quercus ilex L. (Fagaceae). 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Proantocianidina dímera glucosilada; catequina; quercetina-3-O-glucopiranósido; isoramnetina-3-O-glucopiranósido; kaempferol-3-O-(6”-E-p-cumaroil)- glucopiranósido, -3-O-(6”-Z-p-cumaroil)-glucopiranósido, -3-O-(2”,6”-di-E-p- cumaroil)-glucopiranósido (h.). 46 Miscelanea Nº 134, 2015

FLACOURTIACEAE 257.- Casearia sylvestris “guasatunga, café silvestre, laurel espada”. Sousa, F. G. et al. 2007. Clastogenic and anticlastogenic effect of the essential oil from Casearia sylvestris Swart. J. Essent. Oil Res. 19(4): 376. 37 compuestos los maytoritarios: β- cariofileno (27,5 %); biciclogermacreno (24,2 %) (h.). a) ------Da Silva, S. L. et al. 2008. Isolation and characterization of ellagic acid

derivatives isolated from Casearia sylvestris SW aqueous extract with anti-PLA2 activity. Toxicon 52(6): 655. Ácidos: elágico, -3’-O-metil elágico, -3,3’-di-O-metil elágico, -3-O-metil-3’,4’-metilendioxi elágico (h.).

FRANKENIACEAE 258.- Frankenia triandra. D’Almeida, R. et al. 2008. Estudio fitoquímico preliminar y actividades biológicas de extractos de Frankenia triandra J. Remy. XXV Jornadas Científicas. Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle.Tucumán. Compuestos fenólicos; flavonoides (p.a.).

GENTIANACEAE 259.- Gentianella multicaulis. Rosella, M. et al. 2007. Gentianella parviflora y Gentianella multicaulis (Gentianaceae); análisis comparativo por microscopía analítica cuali-cuantitativa y HPLC-DAD. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Acidos oleanólico y ursólico; swerchirina; isobellidifolina; demetilbellidifolina; bellidifolina; xantona- 1,5,8-trihidroxi-3,4-dimetoxi, -1,7,8-trihidroxi-3,4-dimetoxi; bisxantona-3-O-demetilswertipinicósido; amarogentina (h.). 260.- Gentianella parviflora. Idem N°259. Acidos oleanólico y ursólico; swerchirina; isobellidifolina; demetilbellidifolina; bellidifolina; xantona-1,5,8-trihidroxi-3,4- dimetoxi, -1,7,8-trihidroxi-3,4-dimetoxi (h.).

HIPPOCRATEACEAE 261.- Hippocratea excelsa “cancerina”. Mena Rejón, J. G. et al. 2007. Antigiardial activity of triterpenoids from root bark of Hippocratea excelsa. J. Nat. Prod. 70(5): 863. 21β-hidroxiolean-12-en-3-ona; dzununcanona; pristimerina; tingenona; xuxuarina E β; 21α-hidroxi-3-oxofriedelano (ct.r.). a) ------Cáceres Castillo, D. et al. 2008. 21β-Hydroxy-oleanane-type triterpenes from Hippocratea excelsa. Phytochemistry 69(4): 1057. 11β,21β-Dihidroxi-olean- 12-eno-3-ona; 3α,11α,21β-trihidroxi-olean-12-eno; 3α,21β-dihidroxi-11ª-metoxi- olean-12-eno; 3α,21β-dihidroxi-olean-9(11),12-dieno; 3α,21β-dihidroxi-olean-12- eno; 3α,21β-dihidroxi-11α-metox-urs-12-eno diacetato derivado; 3α,21β-dihdroxi- olean-12-eno diacetato derivado; α y β-amirina; ácidos ursólico y oleanólico; trans- poliisopreno; β-sitosterol (ct.tll.).

HYPERICACEAE 262.- Hypericum mutilum. Schühly, W. et al. 2007. A new phloroglucinol derivative and anti-MRSA active phloroglucinols from Hypericum mutilum L. (Clusiaceae). 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Uliginosinas A y B. M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 47

263.- Hypericum perforatum “yuyo de san Juan, corazoncillo”. Tatsis, E. C. et al. 2007. Identification of the major constituents ofHypericum perforatum by LC/SPE/ NMR and/or LC/MS. Phytochemistry 68(3): 383. Hipericina; pseudohipericina; protohipericina; protopseudohipericina; hiperforina; adhiperforina; quercetina; quercitrina; isoquercitrina; hiperósido; astilbina; miquelianina; I3,II8-biapigenina; ácidos clorogénico y 3-O-cumaroilquínico; hiperfirina; adhiperfirina (p.a.). a) ------Rückert, U. et al. 2007. Simultaneous determination of total hypericin and hyperforin in St. John’s wort extracts by HPLC with electrochemical detection. Phytochem. Anal. 18(3): 204. Protopseudo-hipericina; pseudohipericina; protohipericina; hipericina; hiperforina. b) ------Kurkin, V. A. et al. 2007. Flavonoids from the aerial part of Hypericum perforatum. Chem. Nat. Compd. 43(5): 620. 3,8”-bisapigenina; quercetina; 6,8”- diquercetina; hiperósido; rutina (p.a.). c) ------Saroglou, V. et al. 2007. Composition and antimicrobial activity of the essential oil of six Hypericum species from Serbia. Biochem. Syst. Ecol. 35(3): 146. Compuestos mayoritarios Germacreno D; α y β-pineno; (Z)-β-farneseno; espatulenol; (-)-cariofileno (ac.es.). d) ------Motavalizadeh, K. et al. 2008. Chemical composition of the essential oils from flowers, leaves, stems and roots ofHypericum perforatum L. from Iran. J. Essent. Oil Bear. Plants 11(5): 548. flower α-pineno (36,0 %); β-selineno (10,1 %); α-selineno (10,0 %); β-pineno (15,5 %) (fl.); α-pineno (14,5 %); β-selineno (25,4 %); α-selineno (13,5 %) (h.); germacreno D (37,8 %) (tll.); germacreno D (2,2 %) (r.). 264- Hypericum ternum. Bernardi, A. P. M. et al. 2007. Antioxidant activity of flavonoids isolated from Hypericum ternum. J. Chil. Chem. Soc. 52(4): 1326. Quercetina-3- metiléter, -3,7-dimetiléter; 13,118-biapigenina; hiperósido; isoquercitrina; guaijaverina (p.a.).

JUGLANDACEAE 265.- Juglans regia “nogal, nogal europeo”. Liu, J. X. et al. 2007. Regiolone from the pericarps of Juglans regia L. Acta Crstallograph. Sect. 63(5): 2713. Regiolona (per.) a) ------Kavroulaki, E. et al. 2007. Secondary metabolites from the pericarps of Juglans regia. 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Juglona; regiolona; esclerona (per.). b) ------Ito, H. et al. 2007. Two novel dicarboxylic acid derivatives and a new dimeric hydrolyzable tannin from walnuts. J. Agric. Food Chem. 55(3): 672. Glansregininas A y B; glansrina D (s.). c) ------Liu, J. X. et al. 2008. Two new diarylheptanoids from the pericarps of walnuts (Juglans regia). Chin. Chem. Lett. 18(8): 943. Juglaninas A y B (per.). d) ------Liu, J. X. et al. 2008. Cytotoxic diarylheptanoids from the pericarps of walnuts (Juglans regia). Planta Med. 74(7): 754. Juglaninas A y B (per.). e) ------Zhang, H. et al. 2008. Allelopathic substances from walnut (Juglans regia L.) leaves. Allelopath. J. 21(2): 425. Kaempferol, -3-O-L-arabinofuranósido (h.). f) ------Li, C. et al. 2008. Capillary zone electrophoresis for separation and analysis of four diarylheptanoids and an α-tetralone derivative in the green walnut husks (Juglans regia L.). J. pharm. Biomed. Anal. 48(3): 749. Juglaninas A, B, y C; roiptetol; esclerona 48 Miscelanea Nº 134, 2015

g) ------Jin, Z. X. et al. 2008. Study on hydrolysable tannin constituents of seed of Juglans regia I. Zhongguo Zhongyo Zashi 32(15): 1541. Gemina D; casuariina; pedunculagina; tellimagrandina I; rugosina F; heterofiliina D (s.). h) ------Jin, Z. X. et al. 2008. Studies on hydrolysable tannin constituents of seed of Juglans regia II. Zhongguo Zhongyo Zashi 33(14): 1705. Rugosina C; 1, 2, 3, 4, 6-penta-O-galoil-β-D-glucosa; 1, 2, 3, 6-tetra-O-galoil-β-D-glucosa; tellimagrandin II; casuarictina; 1-degaloilrugosina F (s.). i) ------Hanus, L. O. et al. 2008. Identification of cyclopropyl fatty acids in walnut (Juglans regia L.) oil. Biomed. Pap. Medical Faculty University Palacky, Olomouc, Czechoslovakia 152(1): 41. Ácidos: metil 9-ciclopropil-nonanoato, 6,7-metilen, 8,9-metilen, 9,10-metilen, 11,12-metilen octadecanoatos; ácido metil 9,10,12,13- dimetilen octadecanoato; ácido metil 9,10,12,13,15,16-trimetilen octadecanoato; metil 2-octil-ciclopropeno-1-octanoato (ac.).

LAMIACEAE 266.- Ballota nigra “ballota fétida, marrubio negro”. Tóth, E. et al. 2007. Martynoside, forsythoside B, ladanein and 7-α-acetoxy-royleanone from Ballota nigra L. 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Martinósido; forsithósido B; ladaneína; 7-α-acetoxy- royleanona; β-sitosterol (p.a.). a) ------Tóth, E. et al. 2007. Martynoside, forsythoside B, ladanein and 7-α- acetoxy-royleanone from Ballota nigra L. Biochem. Syst. Ecol. 35(12): 894. Martinósido; forsithósido B; ladaneína; 7-α-acetoxy-royleanona; β-sitosterol (p.a.). 267.- Cunila angustifolia. Sandri, I. G. et al. 2007. Antimicrobial activity of the essential oils of Brazilian species of the genus Cunila against foodborne pathogens and spoiling bacteria. Food Chem. 103(3): 823. Sabineno (41,4 %); γ-terpineno (11,4 %) (p.a.). a) ------Do Prado, G. P. et al. 2008. Seasonal variation of the essential oil from Cunila angustifolia Benth. (Lamiaceae). J. Essent. Oil Res. 20(4): 293. Pulegona (56,5 % invierno), (72,3 % primavera), (64,1 % verano), (56,0 % otoño) (h.). 268.- Glechoma hederacea “hiedra terrestre”. Yamauchi, H. et al. 2007. Two new glycosides from the whole plant of Glechoma oleracea. Chem Pharm. Bull. 55(2):

346. 7S,7’S,8R,8’R-icariol A2-9-O-β-D-glucopiranósido; 4-alil-2-hidroxifenil 1-O- β-D-apiosil-(1→6)-β-D-glucopiranósido; cistanósido E; dihidrodehidrodiconiferil alcohol 4-O-β-D-glucopiranósido; apigenina-7-O-β-D-glucuronopiranósido; luteolina-7-O-β-D-glucopiranósido (pl.). a) ------Kikuchi, M. et al. 2008. Glycosides from whole plants of Glechoma hederacea L. J. Nat. Med. 62(4): 479. (6R,7E,9R)-megastigma-4,7-dien-3- ona 9-O-β-D-glucopiranósido; apigenina-7-O-neohesperidósido; crisoeriol- 7-O-neohesperidósido; (+)-pinoresinol-4,4’-bis-O-β-D-glucopiranósido; (+)- siringaresinol-4,4’-bis-O-β-D-glucopiranósido; (+)-lariciresinol-4,4’-bis-O-β-D- glucopiranósido; (7R,8R)-treo-7,9,9’-trihidroxi-3,3’-dimetoxi-8-O- 4’-neolignan4- O-β-D-glucopiranósido (pl.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 49

269.- Hedeoma multiflorum “peperina de las lomas, peperina montana, cominito del campo”. Fernández, E. A. et al. 2007. Estudio del aceite esencial de Hedeoma multiflorum Benth. (Lamiaceae) “peperina de las lomas” obtenido de poblaciones naturales en la provincia de San Luis. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Pulegona (39,4-89,0 %); isomentona (5,1-37,7 %); mentona (2,9-28,5 %) (ac.es.). a) ------Vazquez, A. M. et al. 2007- Estudio comparativo de la composición química (Compuestos orgánicos volátiles) por HS-SPME/GC-MS de Hedeoma multiflorum Benth. (Lamiaceae) micropropagada y de poblaciones silvestres. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Pulegona; mentona; α-y β-pineno; mirceno; limoneno; trans-β-ocimeno; isomentona; cis-isopulegona; α-copaeno; (+)-aromadendreno; germacreno A y D; biciclogermacreno (ac.es.). 270.- Hyptis marrubioides. Sales, J. A. et al. 2007. Composition and chemical variability in the essential oil of Hyptis marrubioides Epl. J. Essent. Oil Res. 19(6): 552. Componentes principales: cariofila-4(14),8(15)-dien-5β-ol; eudesma-4(15),7-dien- 1β-ol; cariofileno óxido; β-cariofileno (h., tll.). 271.- Hyptis pectinata. Santos, P. O. et al. 2008. Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oil of Hyptis pectinata (l.) Poit. Quim. Nova 31(7): 1648. β- cariofileno (18.34%); óxido cariofileno (18,00 %); calamusenona (24,68 %) (h.). 272.- Lamium amplexicaule “lamio, ortiga mansa, zapatitos de la virgen”. Alipieva, K. et al. 2007. LC-ESI-MS analysis of iridoid glucosides in Lamium species. Biochem. Syst. Ecol. 35(1): 17. Lamálbido; sesamósido; lamiol, -5-deoxi; shanzhísido metiléster; lamiósido; barlerina (pl.). a) ------Nickavar, B. et al. 2008. Volatile components from aerial parts of Lamium amplexicaule from Iran. J. Essent. Oil Bear. Plants 11(1): 36. 41 compuestos, los mayoritarios: germacrene D (22,3 %); alcanfor (18,1 %) (p.a.). 273.- Lamium purpureum “ortiga muerta roja, lamio púrpura”. Idem N°271. Lamálbido; lamiol, -5-deoxi; shanzhísido metiléster; barlerina (pl.). 274.- Mentha acquatica “menta acuática, yerbamota”. Van Staden. J.et al. 2007. Psychotropic constituents of Mentha aquatica L. 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Naringenina; viridiflorol (h.). 275.- Mentha pulegium “menta, menta poleo, poleo europeo”. Diaz Maroto, M. C. et al. 2007. Volatile composition and olfactory profile of pennyroyal Mentha( pulegium L.) plants. Flavour Fragr. J. 22(2): 114. Pulegona; piperitona óxido; isopulegol, piperitona; piperitenona; isopulegona; piperitol; 1,8-cineol limoneno; α-pineno (pl.). a) ------Mahboubi, M. et al. 2008. Antimicrobial activity and chemical composition of Mentha pulegium L. essential oil. J. Ethnopharmacol. 119(2): 325. Compuestos mayoritarios: piperitona (38,0 %); piperitenona (33,0 %); α-terpineol (4,7 %); pulegona (2,3 %) (p.a.). 276.- Mynthostachys mollis “peperina, peperina cordobesa, toronjil”. De Rojas, Y. C. et al. 2007. Análisis y deteminación de la actividad microbial del aceite esencial del Myntostachys mollis. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. 32 compuestos, los mayoritarios: neomentol (27.9%); neomentilacetato (22.0%); l-mentona (21.8%); pulegona (16.8%) (p.a.). 50 Miscelanea Nº 134, 2015

a) ------Di Leo Lira, P. et al. 2007. Composición del aceite esencial de Acantholippia seriphioides (A. Gray) Mold. en poblaciones de San Luis y Mendoza. Bol. Soc. Argent. Bot. 42(suppl): 87. Timol (57,1 %); p-cimeno (20, 8 %) (Las Horquetas, Mendoza); timol (61,7 %); p-cimeno (21,3 %) (Zanjitas, San Luis); carvacrol (44,8-49,9 %), p-cimeno (13,1-16,4 %); γ-terpineno (12,3-14,6 %) quimiotipo A; dihidrocarvona (72,5-76,0 %) y limoneno (13,9-17,1 %) quimiotipo B (Paso de las Carretas, San Luis) (ac.es.). b) ------Elechosa, M. A. et al. 2007. Estudio comparativo del aceite esencial de Mynthostachys mollis (Kunth.). Griseb. “peperina” obtenido de colectas en 21 poblaciones de las provincias de Tucumán, Córdoba, San Luis y Catamarca. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Mentona (23,8-52.6 %); pulegona (38,6-49,2 %) (Córdoba); mentona (13,2-39,1 %); pulegona (52,0-76,5 %) (San Luis); linalool (68,5-71,7 %); acetato carvacrilo (44,0-50,3 %); pulegona (45,8 %); acetato mentilo; isomentona (Tucumán) (ac.es.). 277.- Mynthostachys verticillata. Cariddi, L. N. et al. 2007. Inhibition of immediate- type allergic reaction by Minthostachys verticillata (Griseb.) Epling essential oil. J. Essent. Oil Res. 19(2): 190. Pulegona (63,0 %); mentona (16,4 %) (ac.es.). 278.- Nepeta cataria “menta de gato, menta gatuna, albahaca de gatos, gatera”. Wang, M. et al. 2007. Quantification of nepetalactones in catnip Nepeta( cataria L.) by HPLC coupled with ultraviolet and mass spectrometric detection. Phytochem. Anal. 18(2): 157. Z,E-nepetalactona; E,Z-nepetalactona (p.a.). a) ------Zenasni, L. et al. 2008. The essential oils and antimicrobial activity of four Nepeta species from Morocco. J. Med. Plant Res. 2(5): 111. Neptalactona (82.0%); terpineno (4.2%); limoneno (4.1%) (pl.). b) ------Saeidinia, S. et al. 2008. Trypanocidal activity of oil of the young leaves of Nepeta cataria L. obtained by solvent extraction. J. Med. Plants 7(Suppl 4): 54. α- citral (51,95 %; β- citronelol (9,03 %); geraniol (4,31 %); nerol (32,24 %) (h.). 279.- Ocimum neurophyllum “albahaca de campo”. Martina, P. F. et al. 2007. Estudio de la composición de los aceites esenciales de plantas medicinales de la provincia de Misiones. Ocimum neurophyllum. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Componentes principales: elemicina; metileugenol; E-cariofileno; β-ocimeno; E,β-ocimeno; cineol; limoneno; isoborneol; mirceno; alcanfor (h.). 280.- Ocimum selloi “albahaca de campo, bergamota”. Franca, C. S. et al. 2008. Analgesic and antidiarrheal properties of Ocimum selloi essential oil in mice. Fitoterapia 79(7- 8): 487. Metil chavicol (98,0 %) (h.). a) ------Silva, M. G. V. et al. 2008. Variation of ursolic acid content in eight Ocimum species from northeastern Brazil. Molecules 13(10): 2482. Ácido ursólico (h.). 281.- Origanum vulgare “orégano”. Hawas, U. W. et al. 2008. Two new flavonoids from Origanum vulgare. Nat. Prod. Res. 22(17): 1540. Luteolina-7-O-α-L-ramnósido-4’- O-β-D-glucósido; quercetina-3-O-β-D-glucósido-4’-O-α-L-ramnósido (p.a.). a) ------Stoilova, I. et al. 2008. Chemical composition, olfactory evaluation and antioxidant effects of an essential oil of Origanum vulgare L. from Bosnia. Nat. Prod. Comm. 3(7): 1043. Carvacrol (66,2 %); p-cimeno (9,1 %); γ-terpineno (7,3 %); β-cariofileno (4,1 %) (ac.es.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 51

b) ------Lin, S. P. et al. 2008. Biotransformation and pharmacokinetics of 4- (3,4-dihydroxybenzoyloxymethyl) phenyl-O-β-D-glucopyranoside, an antioxidant isolated from Origanum vulgare. J. Agric. Food Chem. 56(8): 2852. 4-(3,4- dihidroxibenzoil-oximetil) fenil-O-β-D-glucopiranósido. c) ------De Souza, E. L. et al. 2008. Interference of heating on the antimicrobial activity and chemical composition of Origanum vulgare L. (Lamiaceae) essential oil. Ciênc. Tecnol. Aliment. 28(2): 418. o-cimeno; p-cimeno; α-pineno; mirceno; γ- terpineno; canfeno; limoneno; trans-cariofileno; carvacrol; borneol; dihidrocarveol; cineol (ac.es.). 282.- Peltodon radicans “paracary”. Costa, H. N. R. da et al. 2008. Chemical constituents and antiedematogenic activity of Peltodon radicans (Lamiaceae). Quim. Nova 31(4): 744. 3β -Hidroxi-α-amirina; 3β-hidroxi-β-amirina; β-sitosterol; stigmasterol; ácido ursólico; ácido toméntico (= ácido 2α,3β,9α-trihdroxi-urs-12-en-28-oico); metil 3β- hidroxi,28-metil-ursolato; sitosterol-3-O-β-D-glucopiranósido; stigmasterol-3-O-β- D-glucopiranósido (fl.). 283.- Salvia guaranitica “salvia azul”. Carrer, R. P. et al. 2007. Essential oil variation among Brazilian accessions of Salvia guaranitica L. Flavour Fragr. J. 22(5): 430. Germacreno D; β-cariofileno; -δ cadineno (h.). 284.- Salvia officinalis“salvia”. Edris, A. E. et al. 2007. Chemical composition, antimicrobial activities and olfactive evaluation of a Salvia officinalis L. (Sage) essential oil from Egypt. J. Essent. Oil Res. 19(2): 186. 28 compuestos, los mayoritarios: alcanfor (25,1 %); α-thujona (22,2 %); β-thujona (17,7 %) (ac.es.). a) ------Reuter, J. et al. 2007. Sage extract rich in phenolic diterpenes inhibits ultraviolet-induced erythema in vivo. Planta Med. 73(11): 1190. Carnasol; ácido carnósico (h.). b) ------Sagareishvili, T. et al. 2007. Chemical composition and antioxidant activity of Salvia officinalisL. cultivated in Georgia. 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. 1,8-cineol (17,5 %); α-tujona ( 31,6 %); β-tujona (17,6 %); luteolina, -7-β-D- glucurónido, -7-β-D-glucósido; vicenina-2; colina; ácido rosmarínico (h.). c) ------Veličković; D. T. et al. 2007. Extraction of flavonoids from garden Salvia( officinalis L.) and glutinous (Salvia glutinosa L.) sage by ultrasonic and classical maceration. J. Serb. Chem. Soc. 72(1): 73. Apigenina, -4’-metiléter; scutellareina-6- metiléter; isoscutellareina-8-metiléter; luteolina, 6-hidroxi-6- metiléter. d) ------Viuda Martos, M. et al. 2007. Chemical composition of the essential oils obtained from some spices widely used in Mediterranean Region. Acta Chim. Slov. 54(4): 921. Alcanfor (24,95 %); 1,8-cineol (24,75 %); canfeno (7,63 %) (ac.es.). e) ------Longaray Delamare, A. P. et al. 2007. Antibacterial activity of the essential oils of Salvia officinalis L. and Salvia triloba L. cultivated in South Brazil. Food Chem. 100(2): 603. α-thujona; 1,8-cineol; alcanfor; borneol; β-pineno (ac. es.). f) ------Damjanoviae-Vratnica, B. et al. 2008. Chemical composition and antimicrobial activity of essential oil of wild-growing Salvia officinalis L. from Montenegro. J. Essent. Oil Bear. Plants 11(1):79. α-thujona (29,50 %); alcanfor (22,52 %); 1,8-cineol (12,19 %); canfeno (5,35 %); borneol (4,43 %); limoneno (4,21 %) (ac.es.). 52 Miscelanea Nº 134, 2015

285.- Salvia sp. “óregano de jardín, orégano español”. Amani, S. M. et al. 2007. Composición química y actividad biológica del aceite esencial de Salvia sp. (Lamiaceae) de Tucumán, Argentina. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Α-eudesmol (21,8 %); trans-cariofileno (10,8 %); acetato de bornilo (9,7 %); germacreno B (4,8 %); δ- cadineno (4,0 %) (ac. es.). 286.- Salvia uliginosa. Mori, M. et al. 2008. Cyanosalvianin, a supramolecular blue metallo-anthocyanin, from petals of Salvia uliginosa. Phytochemistry 69(18): 3151. Ciano-salvianina (= 3-O-(6-O-p-cumarolglucopiranosil)-5-O-(4-O-acetl-6-O- malonilgluco-piranosil) delfinidina); apigenina-7,4’-di-O-glucopiranósido; magnesio (pet.). 287.- Satureja boliviana “muña muña, peperina, piperita”. Viturro, C. et al. 2007. Evaluación de la composición de los aceites esenciales de Satureja boliviana, S. odora y S. parvifolia obtenidos de colectas en Tucumán. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latino-americano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. (E)- cariofileno; germacreno D (Las Tacanas, Las Juntas) (ac.es.). 288.- Satureja odora “muña muña, muña peperina, pispa”. Idem N° 287. (E)-citral (Tafí del Valle) (ac.es.). 289.- Satureja parvifolia “muña, muña muña”. Luna, L. et al. 2008. Chemical composition and antibacterial activity of Satureja parvifolia (Phil.) Epling essential oil. J. Essent. Bear. Plants 11(1): 106. 26 compuestos, los mayoritarios: piperitona (34,9 %); piperitenona (27,3 %); cis-piperitenona epóxido (15,0 %); piperitenona óxido (6,0 %) (p.a.). a) ------Idem N° 287. E-citral (Tafí del Valle); carvacrol; acetato de carvacrol (Abra del Infiernillo, Los Cardones); piperitona (Los Cardones); e-isocitral- pulegona; carvacrol; acetato de carvacrol- piperitona (Tucumán) (ac.es.). 290.- Vitex cymosa “tarumá-í”. Leitao, S. G. et al. Caffeoylquinic acid derivatives from two Brazilian Vitex species. Biochem. Syst. Ecol. 36(4): 312. Acido 3,5-dicafeoil quínico (fr.). 291.- Vitex polygama. Idem N° 289. Acido 3,4-dicafeoil quínico metiléster; ácido 3,5- dcafeoil quínico metiléster (h.). a) ------Gallo, M. B. C. et al. 2008. Enzymatic inhibitory activity and trypanocidal effects of extracts and compounds from Siphoneugena densiflora O. Berg and Vitex polygama Cham. Z. Naturforsch. 63c(5-6): 371. Luteolina; quercetina-3-O-metiléter, -3,3’- O-dimetiléter; crisoeriol; kaempferol-3,7,4’-O-trimetiléter; acacetina; isoorientina; schaftósido; carlinósido; penduletina-4’-O-metiléter; ácido 2α,3α- dihidroxiolean-12-en-28-oico; ácido oleanólico; ácido 2α,3α,19α-trihidroxiurs- 12-en-28-oico; ácido euscafíco; ácido p-hidroxibenzoico; ecdisona 20-hidroxi- (= polypodina A); polipodina B; stachisterona; shidasterona; ácido metacrílico; cafeoil 6-O-β-D-glucopiranósido; sitosterol 3-O-β- D-glucopiranósido (= daucosterol) (h.).

LAURACEAE 292.- Cryptocarya mandioccana. Telascrea, M. et al. 2007. Essential oils from leaves of Cryptocarya mandioccana Meisner (Lauraceae): Composition and intraspecific chemical variability. Biochem. Syst. Ecol. 35(4): 222. β-cariofileno; espatulenol; cariofileno óxido; δ-cadineno; germacreno D; benzaldehído; biciclogermacreno (h.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 53

a) ------Telascrea, M. et al. 2008. Essential oils from leaves of Cryptocarya spp from the Atlantic rain forest. Quim. Nova 31(3): 503. β-cariofileno (13,8 %); espatulenol (10,2 %); cariofileno óxido (7,8 %); δ-cadineno (6,9 %); biciclogermacreno (6,4 %) (h.). 293.- Cryptocarya moschata “nuez moscada de Brasil”. Idem N° 292a. Linalool (34.3%); α-terpineno (17,0 %); γ-terpineno (10,4 %); 1,8-cineol (5,8 %); trans-ocimeno (4,8 %) (h.). 294.- Nectandra angustifolia “laurel mini”. Idem N° 198. Triterpenos; esteroides; terpenos; alcaloides; flavonoides (h.). 295.- Ocotea lancifolia “ laurel né, canela pilosa”. Fournet, A. et al. 2007. Phytochemical and antiprotozoal activity of Ocotea lancifolia. Fitoterapia 78(5): 382. (±)- Coclaurina; (-)-N-metil coclaurina; crostparina; glaziovina; (-)-caaverina; (+) laurotetanina; (+) nordo-mesticina; (+) norisoboldina; (+) norantenina; (±)-reticulina; (+)-corituberina; (+)-domesticina; (+)-isoboldina; (S)-palidina; norjuzifina.

LORANTHACEAE 296.- Tripodanthus acutifolius “corpo, yerba de pajarito”. Soberón, J. R. et al. 2007. Aislamiento, identificación y determinación de la actividad antioxidante de un glicoflavonoide deTripodanthus acutifolius (Ruiz et. Pav.) van Tieghem. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Flavona-5,7,3’,4’-tetrahidroxi-8-metiléter-3-O-glucósido (h.). a) ------Wagner, M. L. et al. 2008. Polifenoles de especies argentinas del género Tripodanthus (Loranthaceae). XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. Quercetina, -3-O-glucósido, -3-O-ramnosilglucósido, -3-O-arabinofuranósido; (+)-catequina; (-)-epicatequina; catequina-4-ol (leucocianidina) (h., tll.). b) ------Soberón, J. R. et al. 2008. Free radical scavenging activity of purified compounds from Tripodanthus acutifolius (Ruiz et Pavón) van Tieghem. Biocell 32(2). Rutina; nicotiflorina; hiperósido; isoquercitrina; 4-(3’,4’-dihidroxi)fenil-3-β- D-glucofuranosilbutano (h.). 297.- Tripodanthus flagellaris. Idem N° 296a. Quercetina, -3-O-glucósido, -3-O- ramnosilglucósido, -3-O- glucoramnosilglucósido; (+)-catequina; (-)-epicatequina; catequina-catequina; catequina-epicatequina (h., tll.).

LYCOPODIACEAE 298.- Huperzia saururus “cola de quirquincho”. Ortega, M. G. et al. 2007. Seasonal study of the alkaloid pattern of Huperzia saururus with habitat in Córdoba province (Argentina). J. Arg. Chem. Soc. 95(1-2): 1. Sauroína; sauroxina; 6-hidroxi- licopodina (p.a.). a) ------Vallejo, M. et al. 2007. Estudio químico de las partes subterráneas de Huperzia saururus. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Sauroína; sauroxina; 6-hidroxi-licopodina; N-demetilsauroxina; N-acetillicodina; HS3; N-metillicodina (p. sub.). 54 Miscelanea Nº 134, 2015

LYTHRACEAE 299.- Cuphea carthagenensis. Dezanet, A. et al. 2007. Development biomass production and flavonoid contents in plnats of Cuphea carthgenensis (Jacq.) Macbride, submitted to different substrates, irrigation systems and leaf pruning. Lat. Am. J. Pharm. 26(1):51. Quercetina-3-sulfato. 300.- Heimia salicifolia “quiebra arado, yerba de la vida”. Swamy Rumalla, C. et al. 2008. Alkaloids from Heimia salicifolia. Phytochemistry 69(8): 1756. 9β,2’- dihidroxi-4”,5”-dimetoxi-litran-12-ona (= 9β-hidroxivertina); (2S,4S,10R)-4-(3- hidroxi-4-metoxi-fenil)-quinolizidina-2-acetato; litrina; dehidrodecodina; litridina; vertina; heimidina; lifolina; epi-lifolina (h.). MALVACEAE 301.- Pavonia sepium “malva del bosque”. Idem N° 198. Glicósidos (fr.); terpenos; triterpenos; esteroides; saponinas; alcaloides; flavonoides; glicósidos (p.a.). 302.- Sida acuta “escobilla, escobilla negra, escobillo, escoba, sida, escoba de puerco”. Chen, C. R. et al. 2007. Tocopherols and triterpenoids from Sida acuta. J. Chin. Chem. Soc. 54(1): 41. 7a-metoxi-α-tocoferol; taraxast-1,20(30)-dien-3-ona; β- tocoferol; α-tocoferol; α-tocospiro B; taraxasterona (pl.). a) ------Avula, B. et al. 2008. Quantitative determination of ecdysteroids in Sida rhombifolia L. and various other Sida species using LC-UV, and their anatomical characterization. Nat. Prod. Comm. 3(5): 705. 20-hidroxiecdisona; 2-deoxiecdisona- 3-O-β-D-glucopiranósido (r.). 303.- Sida cordifolia “escobilla”. Sutradhar, R. K. et al. 2007. Three new flavonol C- glycosides from Sida cordifolia Linn. J. Iran. Chem. Soc. 4(2): 175. Kaempferol-3’- (3”,7”-dimetil- 2”,6”-octadien)-8-C-β-D-glucosil- 3-O-β-D-glucósido, -3’-(3”,7”- dimetil-2”, 6”-octadien)-8-C-β-D-glucosil-3-O-β-D-glucosil [1→4]-α-D-glucósido, -6-(3”-metil-2”-buten)- 3’-metoxil-8-C-β-D-glucosil-3-O-β-D-glucosil [1→4]-β-D- glucósido (p.a.). a) ------Sutradhar, R. K. et al. 2007. Alkaloids of Sida cordifolia L. Indian J. Chem. 46(11): 1896. 1,2,3,9-tetrahidro-pirrol [2,1-β] quinazolin-3-ilamina; 5’- hidroximetil-1’-(1,2,3,9-tetrahidropirrolo [2,1-β] quinazolin-1-il)-heptan-1-ona; 2- (1’-amino-butil) indol-3-ona; 2’-(3H-indol-3-ilmetil)-butan-1’-ol (p.a.). b) ------Sutradhar, R. K. et al. 2008. Bioactive flavones ofSida cordifolia. Phytochemistry Lett. 1(4): 179. Flavona-5,7-dihdroxi-3-isoprenilo, -5-hidroxi-3- isoprenilo; β-sitosterol; stigmasterol (p.a.). c) ------Idem N° 302a. 20-hidroxiecdisona; 20-hidroxi-(25-acetil)-ecdisona-3-O-β- D-glucopiranósido (r.) 304.- Sida rhombifolia “malvavisco, afata, falsa afata”. Jadhav, A. N. et al. 2007. Ecdysteroid glycosides from Sida rhombifolia L. Chem. Biodivers. 4(9): 2225. 25-acetoxi-20-hidroxi-ecdisona-3-O-β-D-glucopiranósido; pterosterona-3-O-β-D- glucopiranósido; ecdisona-3-O-β-D-glucopiranósido; ecdisona; 20-hidroxiecdisona; 2-deoxi-20-hidroxiecdisona-3-O-β-D-glucopiranósido; 20-hidroxiecdisona-3-O-β-D- glucopiranósido (pl.). a) ------Idem N° 302a. 20-hidroxiecdisona-3-O-β-D-glucopiranósido; 20- hidroxiecdisona; 2-deoxiecdisona-3-O-β-D-glucopiranósido; pterosterona-3-O-β- D-glucopiranósido; ecdisona, -3-O-β-D-glucopiranósido; 20-hidroxi-(25-acetil)- ecdisona-3-O-β-D-glucopiranósido (r.). 305.- Sida urens. Idem N° 302a. 2-deoxi ecdisona-3-O-β-D-glucopiranósido (r.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 55

MARANTHACEAE 306.- Thalia geniculata. Abdullah, Y. et al. 2008. Occurrence of rosmarinic acid, chlorogenic acid and rutin in Maranthaceae species. Phytochemistry Lett. 1(4): 199. Ácidos rosmarínico y clorogénico; rutina. a) ------Lagnika, L. et al. 2008. Phytochemical study and antiprotozoal activity of compounds isolated from Thalia geniculata. Pharm. Biol. 46(3): 162. Sitoindósido I (= [β-sitosterol-(6- O-hexadecanoil)-3-O-β-D-glucósido]); daucosterol (= β- sitosterol-3-0- β-D-glucósido); stigmasterol; β-sitosterol; geranilfarnesol (p.a.).

MELASTOMATACEAE

307.- Miconia cabucu. Rodrigues, J. et al. 2007. An unusual C6 - C6” linked flavonoid from Miconia cabucu (Melastomataceae). Phytochemistry 68(13): 1781. 5-hidroxi- 7,4’-dimetoxiflavona-(6-C-6”)-5”-hidroxi-3”’,4”’,7”-trimetoxiflavona; quercetina- 3-O-α-L-ramnopiranosil-(2→1)-O-β-D-xilopiranósido, -3-O-α-L-ramnopiranósido, -3-O-β-D-glucopiranósido; miricetina-3-O-α-L-ramnopiranosido; kaempferol-3-O-β D-(6”-cumaroil)-glucopiranósido; ácido gálico (h.). 308.- Miconia ioneura. Tracanna, M. I. et al. 2007. Estructura cristalina de 4H-1 benzopirano-4-ona, 5-hidroxi-2-(4-hidroxifenil)-7-metoxi-6,8-dimetil de Miconia ioneura Griseb. (Melastomataceae). XXIV Jornadas Científicas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Tucumán.Argentina. Sideroxilina (p.a.). a) ------Pagola, S. et al. 2008. Sideroxylin from Miconia ioneura: Monohydrate crystal structure from high resolution x-ray powder diffraction. Nat. Prod. Comm. 3(5): 759. Sideroxilina (= 4H-1-benzopiran-4-ona,5-hidroxi-2-(4- hidroxifenil)-7- metoxi-6,8-dimetil) monohidrato (h.).

MELIACEAE 309.- Guarea guidonia. Garcez, W. S. et al. 2008. 16,17-Seco- and 2,3:16,17-di-seco- pregnanes from Guarea guidonia. J. Braz. Chem. Soc. 19(6): 1073. Ácido 2α,3β- dihidroxi-16,17-seco-pregn-17-en-16-oico metiléster 2β,19-hemicetal; diácido 2,3:16,17-di-seco-pregn-17-en-3-oico -16-oico acid metiléster-19-hidroxi-2- ácido carboxílico -2,19-lactona (ct.tr.). 310.- Guarea macrophylla var. tuberculata. Lago, J. H. G. et al. 2007. Essential oil from of Guarea macrophylla Vahl var. tuberculata Vellozo (Meliaceae) leaves. Variation in the chemical component proportions. J. Essent. Oil Res. 19(4): 338. Biciclogermacreno; ledol; γ-cadineno; (Z)-metilcinamato; guai-6-en-10β-ol; manoil óxido (h.). 311.- Melia azedarach “paraíso”. Ayyad, S. N. et al. 2008. New nimbolinin and meliacarpin derivatives from Melia azedarach. Rev. Latinoamer. Quim. 36(1): 7. 11-α-hidroxi-1-cinamoil-3-feruloil-meliacarpina; nimbolinina B; 12-O- metilnimbolinina B; nimbolinina A; 12-O-metilnimbolinina A (ct. r.). a) ------Salib, J. Y. et al. 2008. New lactoyl glycoside quercetin from Melia azedarach leaves. Chem. Nat. Compd. 44(1): 13. Cinamoil-1-α-L-ramnósido; quercetina, -3-O-[ramnosil (1→6)-(4 -lactoil glucósido)]-4 -O-glucósido, -3-O- glucósido, -3-O-ramnósido; kaempferol, --3-O-glucósido, -3-O-ramnósido (h.). 56 Miscelanea Nº 134, 2015

312.- Trichilia catigua “catiguá colorado”. Tang, W. et al. 2007. Antioxidant phenylpropanoid-substituted epicatechins from Trichilia catigua. J. Nat. Prod. 70(12): 2010. Catiguaninas A y B; cinchonainas Ia, Ib, Ic, Id (ct.). a) ------Resende, F. O. et al. 2007. Antioxidant activity of polyphenolic compounds isolated from the bark of Trichilia catigua.55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria.

Epicatequina; procianidinas B2,, B4, C1;, cinchonainas Ia,, Ib, IIb, IIc; apocinina E (ct.).

MONIMIACEAE 313.- Hennecartia omphalandra. Marques, C. A. et al. 2008. Anatomical considerations and essential oil analysis of the hypanthium and the fruit of Hennecartia omphalandra J. Poisson (Monimiaceae). Rev. Bras. Farmacogn. 18(3): 415. Compuestos mayoritarios: biciclogermacreno (19,6 %); β-felandreno (8,7 %); germacreno D (5,3 %); α-bulneseno (5,1 %); valerianol (4,9 %) (fr.). 314.- Peumus boldus “boldo”. Mazutti, M. et al. 2008. Chemical profile and antimicrobial activity of boldo (Peumus boldus Molina) extracts obtained by compressed carbon dioxide extraction. Braz. J. Chem. Eng. 25(2): 427. 1,8-cineol; trans-sabineno; pinocarveol; pinocarvona; 4-terpineol; ascaridol; piperitona óxido; limoneno dióxido; n-eicosano (h.). a) ------Schwanz, M. et al. 2008. Analysis of heavy metals in samples of Peumus boldus Mol. (Monimiaceae). Rev. Bras. Farmacogn. 18(1): 98. Hierro; cobre; manganeso; níquel (h.).

MORACEAE 315.- Broussonetia papyrifera “morera de papel”. Xu, X. H. et al. 2007. Chemical constituents from the leaves of Broussonetia papyrifera. Chin. J. Nat. Med. 5(3): 190. Apigenina, -7-metoxi; cosmosiina; vitexina; luteolina, -7-O-β-D- glucopiranósido; 7-metoxicumarina; escopoletina; 1-hentriacontanol; quercetina; daucosterol (h.). a) ------Pang, S. Q. et al. 2007. Isoquinoline alkaloids from Broussonetia papyrifera fruits. Chem. Nat. Compd. 43(1): 100. Broussonpapirina; nitidina; oxiavicina; liriodenina (fr.). b) ------Ko, H. H. et al. 2008. Antityrosinase and antioxidant effects of ent- kaurane diterpenes from leaves of Broussonetia papyrifera. J. Nat. Prod. 71(11): 1930. Broussonetona A (= 7α,16α,17-trihidroxi-ent-kauran-6-ona); broussonetona B (= 7β,16α,17-trihidroxi-ent-kauran-6-ona); brossonetona C (= 7α,16α,17-trihidroxi- ent-kauran-6-ona-16,17- acetónido); apigenina, -7-O-glucósido, -7-O-glucurónido metiléster; vitexina; amentoflavona; taraxerol acetato; ácido glicérico metiléster (h.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 57

c) ------Feng, W. S. et al. 2008. Chemical constituents from the leaves of Broussonetia papyrifera. Yaoxue Xuebao 43(2): 173. Apigenina, -7-O-β-D- glucopiranósido, -7-O-β-D--glucopiranurónido; crisoerid-7-O-β-D-glucopiranósido; vitexina, -7-O-β-D- glucopiranósido; luteolina; flavona-5,7,4’-trihidróxido-6-C- [α-L- ramnopiranosil (1→2)]-β-D-glucopiranósido, -5,7,4′-trihidróxido-8-C-[α- L-ramnopiranosil (1→2)]-β-D- glucopiranósido; saponaretina; bencil benzoato-2, 6-di-O-β-D-gluco-piranósido; (2R, 3R, 5R, 6S, 9R)-3-hidroxi-5,6-epoxi-β-ionol-2- O-β-D)-glucopiranósido; (2R, 3R, 5R, 6S, 9R)-3-hydroxil-5,6-epoxi-acetil-β-ionol- 2-O-β-D)-glucopiranósido; ficustriol; (6S, 9S)-roseósido; 3β-hidroxi-5α, 6α-epoxi-

β-ionona-2α-O-β-D)-gluco-piranósido; icarisido B1; sammangaósido A; 3-hidroxi- 5α,6α-epoxi-β-ionona (h.). 316.- Morus alba “mora blanca”. Hunyadi, A. et al. 2007. Two novel glycosides from Morus alba L. - a new antidiabetic constituent of the plant? 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Miglitol; 20-hidroxiecdisona; inokosterona (h., ct.r). a) ------Kim, J. S. et al. 2008. Composition and quantitative analysis of stilbenoids in mulberry (Morus alba L.) leaves and fruits with DAD/UV HPLC. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 37(1): 124. Resveratrol; piceatannol; rapontigenina; astringina; pterostilbeno; piceid; rhaponticina; vitisina A (fr., h.). b) ------Du, Q. et al. 2008. Composition of anthocyanins in mulberry and their antioxidant activity. J. Food Comp. Anal. 21(5): 390. Cianidina-3-O-(6”- O-α-ramnopiranosil-β-D-glucopiranósido, -3-O-(6”-O-α-ramnopiranosil-β-D- galactopiranósido, -3-O-β-D-glucopiranósido, -3-O-β-D-galactopiranósido, -7-O-β- D-glucopiranósido (fr.).

MUNTINGIACEAE 317.- Muntingia calabura. Chen, J. J. et al. 2007. New dihydrochalcones and anti-platelet aggregation constituents from the leaves of Muntingia calabura. Planta Med. 73(6): 572. chalconadihidro-2,3-dihidroxi-4,3’,4’,5’-tetrametoxi, -4,2’,4’-trihidroxi-3’- metoxi; (2R,3R)-(-)-3,5-dihidroxi-6,7-dimetoxi flavanona; flavona-5,7-dihidroxi- 3-metoxi, -5,7-dihidroxi-6-metoxi, -5,4’-dihidroxi-3,7-dimetoxi; (2S)- flavan- 7,8,3’,4’,5’-pentametoxi, -5’-hidroxi-7,8,3’,4’-tetrametoxi; metil galato (h.).

MYRTACEAE 318.- Campomanesia adamantium. Lima Cardoso, C. A. et al. 2007. Avaliação do perfil cromatográfico em folhas deCampomanesia adamantium coletadas em diferentes municipios do MS. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Flavanona-5,7-dihidroxi-6-metilo, -5,7- dihidroxi-8-metilo; chalcona-2’,4’-dihidroxi-6’-metiléter-5’-metilo (h.). a) ------Pavan, F. R. et al. 2008. Evaluation of anti-Mycobacterium tuberculosis activity of fractions from Campomanesia adamantium Berg. (Myrtaceae). XVII Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. Flavanona-5,7-dihidroxi-6,8-dimetilo; chalcona-2’,4’-dihidroxi-6’-metiléter- 5’-metilo (h.). 58 Miscelanea Nº 134, 2015

b) ------Coutinho, I. D. et al. 2008. Identification of the volatile compounds of leaves and flowers in guavira Campomanesia( adamantium O. Berg.). J. Essent. Oil Res. 20(5): 405. 82 compuestos, limoneno (21,9 %) (h.); 37 compuestos, ledol (20,9 %) (fl.). c) ------Stefanello, M. E. A. et al. 2008. Essential oil composition of Campomanesia adamantium (Camb) O. Berg. J. Essent. Oil Res. 20(5): 424. 55 compuestos, los principales: geraniol (18,1 %); spatulenol (7,8 %); globulol (5,6 %) (h.). d) ------Coutinho, I. D. et al. 2008. Determination of phenolic compounds and evaluation of antioxidant capacity of Campomanesia adamantium leaves. Eclet. Quím. 33(4): 53. Flavanona-7-hidroxi-5-metoxi, -7-hidroxi-5-metoxi-6-metilo, -5,7- dihidroxi-6-metilo, -5,7-dihidroxi-8-metilo, -5,7-dihidroxi-6,8-dimetilo; chalcona- 2’,4’-dihidroxi-6’-metoxi, -2’,4’-dihidroxi-6’-metoxi-5’-metilo, -2’.4’-dihidroxi-6’- metoxi-3’-metilo, -2’,4’-dihidroxi-6’-methoxi-3’,5’-dimetilo (h.). 319.- Campomanesia pubescens. Marconata da Silva., J. R. et al. 2007. Isolamento e identificação de chalconas e avaliação da atividade antioxidante no extrato hexânico dos frutos de Campomanesia pubescens. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Chalcona-4’,6’- dihidroxi-2’-metoxi-3’,5’-dimetilo (fr., s.). 320.- Eucalyptus robusta. Sartorelli, P. et al. 2007. Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oils from two species of Eucalyptus. Phytother. Res. 21(3): 231. α-pineno (73,0 %) (h.). 321.- Eucalyptus saligna. Idem N° 320. p-cimeno (22,5-54,2 %); γ-terpineno (43.8 %) (h.). 322.- Eugenia brasiliensis. Lima, N. P. et al. 2008. Composition and chemical variation of the essential oil from leaves of Eugenia brasiliensis Lam. and Eugenia sp. (Myrtaceae). J. Essent. Oil Res. 20(3): 223. α-tujeno; trans-α-bergamoteno; espatulenol; cubenol; α-copaeno; β-cariofileno; allo-aromadendreno; cis-calameneno (h.). a) ------Reynertson, K. A. et al. 2008. Quantitative analysis of antiradical phenolic constituents from fourteen edible Myrtaceae fruits. Food Chem. 109(4): 883. Cianidina-3-glucósido; delfinidina-3-glucósido; rutina; miricetina;quercetina; quercitrina; ácido elágico (fr.). b) ------Pietrovski, E. F. et al. 2008. Topical anti-inflammatory activity ofEugenia brasiliensis Lam. (Myrtaceae) leaves. J. Pharm. Pharmacol. 60(4): 479. Quercetina; catequina; galocatequina (h.). 323.- Eugenia hyemalis. Bokesch, H. R. et al. 2008. HIV-1 ribonuclease H inhibitory phenolic glycosides from Eugenia hyemalis. J. Nat. Prod. 71(9): 1634. Hiemalósido A (= 2,3,6-tri-O-galoilarbutina); hiemalósidos B y C; 2-O-galoilarbutina; 4-O- galoilarbutina; 2,6-di-O-galoilarbutina; 2,4,6-tri-O-galoilarbutina; 1,2,6-tri-O-galoil- β-D-glucosa; kaempferol-3-O-(6-O-galoil-D-glucopiranósido); afzelina 2”-O-galato, -3”-O-galato; quercitrina (pl. sin r.). 324.- Eugenia mansoni “pitanga amarga”. Idem N° 198. Terpenos; saponinas; flavonoides; glicósidos; terpenos; esteroides; triterpenos; alcaloides (h.). 324’-Eugenia repanda “ñangapirí negro”. Idem N° 198. Taninos; saponinas; flavonoides; glicósidos; terpenos; esteroides; triterpenos; alcaloides (h.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 59

325.- Eugenia uniflora “ñangapirí, pitanga”. Bravi, V. et al. 2007. Aislamiento y caracterización de principios activos presentes en Eugenia uniflora L. solubles en éter de petróleo y determinación de su actividad antimicrobiana. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Nerolidol; pulegona; germacrona (h.). a) ------Idem N° 198. Taninos; saponinas; flavonoides; glicósidos (h.). b) ------Melo, R. M. et al. 2007. Identification of impact aroma compounds in Eugenia uniflora L. (Brazilian Pitanga) leaf essential oil. J. Braz. Chem. Soc. 18(1): 179. Furanoelemeno (= curzereno, 50,2 %); β-elemeno (5,9 %); α-cadinol (4,7 %) (h.).

c) ------Filho, G. L. et al. 2008. Supercritical CO2 extraction of carotenoids from pitanga fruits (Eugenia uniflora L.). J. Supercrit. Fluids 46(1): 33. Licopeno (66 %); rubixantina (32 %) (fr.). d) ------Marín, R. Volatile components and antioxidant activity from some Myrtaceous fruits cultivated in Southern Brazil. Lat. Am. J. Pharm. 27(2): 172. Ácido hexadecanoico (11,7 %) (fr.). 326.- Feijoa sellowiana “guayabo del Brasil”. El Dib, R. A. et al. 2007. Anti- inflammatory and analgesic activities ofFeijoa sellowiana Berg. leaves and investigation of their phenolic constituents. 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Nilocitina; 4,6- 4 hexahidroxidifenoil-β-D- C1-glucopiranosa; castalagina; ácido elágico, -pentósido, 4 -β-D- C1-glucopiranosa, -3-metoxi-3’-sulfato, -trimetoxi sulfato; metilflavogalonil sulfato; avicularina; quercitrina; hiperina (h.). a) ------Basile, A. et al. 2007. Bioactivities in Feijoa sellowiana Berg fruit. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Vitamina C; iodo; carotenoides; xantofilas; flavonoides; minerales (fr.). b) ------El-Shenaw, S. M. et al. 2008. Polyphenols and biological activities of Feijoa sellowiana leaves and twigs. Rev. Latinoamer. Quim. 36(3): 103. Ácido 3’- O-metilelágico 3-sulfato; nilocitina; estrictinina; casuarina; castalgina; ácido elágico, -4-O-metiléter; avicularina; hiperina; quercitrina (h., br.) c) ------Saj, O. P. et al. 2008. Chemical composition and antimicrobial properties of essential oil of Feijoa sellowiana O. Berg. (Pineapple guava). J. Pure Appl. Microbiol. 2(1): 227. Compuestos mayoritarios: limoneno (29,29 %); β-cariofileno (27,38 %); α-pineno (8,7 %); β-pineno (3,11 %); isocariofileno (1,37 %); estragol (1,35 %) (ac. es.). 327.- Hexachlamys edulis “ubajay”. Idem N° 198. Terpenos; saponinas; flavonoides; glicósidos; terpenos; esteroides; triterpenos; alcaloides (h.). 328.- Marlierea tomentosa. Messias, K. l. s. E 2008. Chemical composition and analgesic activity of the leaves and branches of Marlierea tomentosa Camb. Quim. Nova 31(7): 1747. α- y β-amirina; quercitrina; isoquercetina (h.); ácido arjunólico (rm.). 329.- Myrcia laruotteana. Stefanello, M. E.A. et al. 2007. Essential oil composition of Myrcia laruotteana Camb. J. Essent. Oil Res. 19(5): 466. 5 compuestos, los mayoritarios: α-bisabolol (20,7 %); 14-hidroxi-α-muuroleno (19,9 %) (h); bisabolol (28,1 %); 14-hidroxi-α-muuroleno (13,7%) (fl.). 330.- Myrcianthes cisplatensis “guayabo colorado”. Idem N° 198. Terpenos; saponinas; alcaloides; flavonoides; glicósidos (h.). 60 Miscelanea Nº 134, 2015

331.- Pimenta pseudocaryophyllus. Paula, J. A. M. et al. 2008. Pharmacognostic study about Pimenta pseudocaryophyllus (Gomes) L. R. Landrum leaves - Myrtaceae. Rev. Bras. Farmacogn. 18(2): 265. Taninos; compuestos fenólicos; flavonoides (h.). 332.- Psidium guajava “guayabo, guayabera”. Begum, S. et al. 2007. A new ethylene glycol triterpenoid from the leaves of Psidium guajava. Nat. Prod. Res. 21(8): 742. Ácido psidiumoico (= ácido-2α-glicolil-3β-hidroxiolean-12-en-28-oico); β- sitosterol; ácidos ursólico y oleanólico; obtusol (h.). a) ------Rattanachaikunsopon, P. et al. 2007. Bacteriostatic effect of flavonoids isolated from leaves of Psidium guajava on fish pathogens. Fitoterapia 78(6): 434. Morina, -3-O-xilósido, -3-O-arabinósido; quercetina, -3-O-arabinósido (h.). b) ------Cole, R. A. et al. 2007. Chemical composition of the leaf essential oil of Psidium guajava from Monteverde, Costa Rica. J. Essent. Oil Bear. Plants 10(5): 365. (2E)-hexenal (28,4 %); benzaldehído (8,2 %), 1,8-cineol (15,9 %); globulol (10,3 %); nerolidol (6,9 %) (h.). c) ------Yang, X. L. et al. 2007. Guajadial: An unusual meroterpenoid from guava leaves Psidium guajava. Org. Lett. 9(24): 5135. Guajadial (h.). d) ------Clery, R. A. et al. 2008. New sulfur components of pink guava fruit (Psidium guajava L.). J. Essent. Oil Res. 20(4): 315. Dimetil disulfuro; dimetil trisulfuro; benzotiazol; 3-mercaptohexanol; 3-mercaptohexil acetato (fr.). e) ------Chen, H. C. et al. 2007. Chemical composition of the leaf essential oil of Psidium guajava L. from Taiwan. J. Essent. Oil Res. 19(4): 345. Compuestos mayoritarios: β-cariofileno (27,7 %); α-pineno (14,7 %); 1,8-cineol (12,4 %) (h.). 333.- Ugni molinae “murtilla, murta”. Aguirre, M. C. et al. 2007. Actividad antiinflamatoria tópica de ácidos triterpénicos pentacíclicos 2-α-hidroxilados aislados desde las hojas de Ugni molinae Turcz. (Murtilla). XVI Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Ácidos: alfitólico, corosólico y asiático (h.). a) ------Scheuermann, E. et al. 2008. Evolution of aroma compounds of murtilla fruits (Ugni molinae Turcz) during storage. J. Sci. Food Agric. 88(3): 485. Componentes mayoritarios: metil 2-metil butanoato; etil butanoato; etil 2-metil butanoato; metil hexanoato; etil hexanoato; metil benzoato; etil benzoato; etil hexanoato; 4-metoxi-2,5-dimetil-furan-3-ona (fr.).

NYCTAGINACEAE 334.- Boerhavia diffusa “yerba tostada”. Maurya, R. et al. 2007. Flavonoids and phenol glycosides from Boerhavia diffusa. Nat. Prod. Res. 21(2): 126. Eupalitina-3-O-β- D-galactopiranosil-(1”’→2”)-O-β-D-galactopiranósido; flavona-3,5,3’-trihidroxi-7- metoxi, -7,4’-dihidroxi-3’-metilo; 3,4-dimetoxifenil-1-O-β-D-apiofuranosil-(1”→ 3’)-O-β-D-glucopiranósido. a) ------Agrawal, A. et al. 2008. Structural elucidation of bioactive principle of root of Boerhavia diffusa for its antifungal properties. Nat. Acad.Sci. Lett. 31(7-8): 215. Flavona-5,7-dihidroxi (r.). NYMPHAEACEAE 335.- Nelumbo nucifera “nelumbio”. Ohkoshi, E. et al. 2007. Constituents from the leaves of Nelumbo nucifera stimulate lipolysis in the white adipose tissue of mice. Planta Med. 73(12): 1255. Quercetina, -3-O-α-arabinopiranosil-(1→2)-β- galactopiranósido; rutina; (+)-catequina; hiperósido; isoquercitrina; astragalina (h.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 61

a) ------Park, C. H. et al. 2007. Phenolic compounds from the leaves of Nelumbo nucifera showing DPPH radical scavenging effect. Kor. J. Pharmacogn. 38(3): 263. Luteolina; quercetina-3-O-β-D-glucopiranósido, -3-O-β-D- glucuropiranósido, -3-O-β-D-xilofuranosil(1→2)-β-D- galactopiranósido; ramnetina-3-O-β-D- glucopiranósido; isoramnetina-3-O-β-D-glucopiranósido; adenina; ácido-p- hidroxibenzoico; uracilo (h.). b) ------Tian, N. et al. 2007. Isolation and preparation of flavonoids from the leaves of Nelumbo nucifera Gaertn. by preparative reversed-phase high performance liquid chromatography. Chin. J. Chromatograph. 25(1): 88. Hiperina; isoquercetina; astragalina (h.). c) ------Chen, Y. et al. 2007. Separation, identification and rapid determination of liensine, isoliensinine and neferine from embryo of the seed of Nelumbo nucifera Gaertn. by liquid chromatography coupled to diode array detector and tandem mass spectrometry. J. Pharm. Biomed. Anal. 43(1-4): 99. Liensina; isoliensinina; neferina (s.). d) ------Agnihotri, V. K. et al. 2008. Constituents of Nelumbo nucifera leaves and their antimalarial and antifungal activity. Phytochemistry Lett. 1(2): 89. (R)-roemerina; dehidroroemerina; 24-(R)-etilcolest-6-eno-5α-ol-3-O-β- D-glucopiranósido; N-metil-asimilobiba; 10-eicosanol; 7,11,15-trimetil-2- hexadecanona; nuciferina; anonaína; isofitol; trans-fitol; β-sitosterol-3-O-β-D- glucopiranósido; quercetina-3-O-β-D-glucopiranósido (h.). e) ------Duan, X. H. et al. 2008. A new benzylisoquinoline alkaloid from stems of Nelumbo nucifera. Chin. Chem. Lett. 19(3): 308. Nelumstemina (= 1-(4’- hidroxibenzoil) -6,7-dimetoxi-3,4-dihidroisoquinolina (tll.). 336.- Nymphaea caerulea “nenúfar azul”. Agnihotri, V. A. et al. 2008. Constituents of Nymphaea caerulea flowers and their antioxidant Activity. 7th Annual Oxford International Conference on the Science of Botanicals & American Society of Pharmacognosy. Oxford. Estados Unidos. Ácido 2S,3S,4S trihidroxi-pentanoico (= ácido 5-deoxiribónico); miricetina-3-O-(3”-O-acetil)-α-L-ramnósido (fl.). a) ------Agnihotri, V. A. et al. 2008. Antioxidant constituemts of Nymphaea caerulea flowers. Phytochemistry 69(10): 2061. Ácido 2S,3S,4S trihidroxi- pentanoico; ácido 2S,3S,4S trihidroxi-5-deoxi-ribónico; miricetina-3-O-(3”-O- acetil)-α-L-ramnósido, -3-O-α-L-ramnósido, -3-O-β-D-glucósido; quercetina-3-O- α-L-ramnósido, -3-O-β-D-glucósido; kaempferol-3-O-(3”-O-acetil)-α-L-ramnósido, -3-O-β-D-glucósido; naringenina-5-O-β-D-glucósido; isosalipurpósido; β-sitosterol, -palmitato; 24-metilen-colesterol palmitato; α-metil-5α-ergosta-7,24(28)-dien-3β,4β- diol; etil galato; ácidos: gálico, p-cumárico y 4-metoxi benzoico (fl.).

ONAGRACEAE 337.- Jussiaea repens “duraznillo de agua”. Marzouk, M. S. et al. 2007. Flavonoids and biological activities of Jussiaea repens. Nat. Prod. Res. 21(5): 436. Avicularina, -2”-(4”’-O-n-pentanoil)-galato; trifolina, -2”-O-galato; quercitrina; guaijaverina; reinutrina; juglanina; hiperina, -2”-O-galato; rutina; kaempferol; quercetina (p.a.). a) ------Huang, H. L. 2007. Antioxidative principals of Jussiaea repens: An edible medicinal plant. Int. J. Food Sci. Technol. 42(10) 1219. Kaempferol-3-O-β-D- glucopiranósido; quercetina-3-O-β-D-glucopiranósido; ácido rosmarínico (pl.). 62 Miscelanea Nº 134, 2015

ORCHIDACEAE 338.- Epidendrum mosenii. Walter Rosa, P. et al. 2007. Seasonal and biological variations of Epidendrum mosenii : quantification of 24-methylenecycloartanol using gas chromatography. Nat. Prod. Res. 21(11): 975. 24-metilencicloartanol (pl.). a) ------Rosa, P. W. et al. 2007. Seasonal phytochemical variation and antifungal evaluation of different parts of Epidendrum mosenii. Nat. Prod. Comm. 3(4): 535. Dihidroestilbeno-4,3’,5’-trihidroxi-3-metoxi; dihidroestilbeno-4,5-dihidroxi-3,3- dimetoxi; folidotina (r., tll., h.). 339.- Habenaria petalodes. Cota, B. B. et al. 2008. Chemical constituents of Habenaria petalodes Lindl. (Orchidaceae). J. Braz. Chem. Soc. 19(6): 1098. Habenariósido (= [(2R)-2-[(2,3,4,6-tetra-O-acetil-β-D-glucopiranosil)oxi]-2-(2-metilpropil)-1,4-dioxo- 1,butanodiil]bis(oximetilen-4,1-fenilen) bis-β-D-glucopiranósido; loroglossina; militarina; isoquercitrina; isoramnetina-3-O-β-D-glucopiranósido, -3,7-di-O-β-D- glucopiranósido (pl.).

OROBANCHACEAE 340.- Bellardia trixago “cuatro caras”. Formissano, C. et al. 2007. Composizione chimica e attività antifeedant dell’olio essenziale di Bellardia trixago (L.) All. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. 1’(E,E)-farnesial acetona (42,1 %) (p.a.); ácidos hexadecanoico (41,5 %) y octadecadienoico (35,7 %) (r.). a) ------Formissano, C. et al. 2008. Essential oil composition and antifeedant properties of Bellardia trixago (L.) All. (sin. Bartsia trixago L.) (Scrophulariaceae). Biochem. Syst. Ecol. 36(5-6): 454. 31 compuestos, los mayoritarios: (E-E)-farnesil acetona (42,1 %); trixagol (8,0 %); 4-vinil guaiacol (5,4 %) (p.a.); 13 compuestos, los mayoritarios: ácido hexadecanoico (41,5 %); ácido (Z,Z)-9,12-octadecadienoico (35,7 %); ácido (Z,Z,Z)-9,12,15-octadecatrienoico(7,6 %) (r.).

OXALIDACEAE 341.- Oxalis pes-caprae “pasto agrio”. Dellagreca, M. et al. 2008. Phenyl cinnamate derivatives from Oxalis pes-caprae. Chem. Biodivers. 5(11): 2408. 4’-acetilfenil 4-hidroxicinamato; 4’-acetilfenil- sinapato; 4’-acetilfenil-4-O-metilsinapato; 3’- acetilfenil-4-metilsinapato; 4’-(1-hidroxi-etil)fenil-sinapato; 3’-(1-hidroxietil)fenil 4-metilsinapato (h., bro.)

PAPAVERACEAE 342.- Papaver nudicaule “amapola de Islandia”. Philipov, S. et al. 2007. A new 8,14- dihydro-promorphinane alkaloid from Papaver nudicaule L. Nat. Prod. Res. 21(9): 852. 8,14-dihidroamurina; (+)-amurina; (−)-amurensinina; (−)-O-metilthalisopavina; (−)-flavinantina; (−)-amurensina (p.a.). a) ------Istatkova, R. et al. 2008. Alkaloids from Papaver nudicaule. Nat. Prod. Res. 22(7): 607. (−)-8,14-dihidroflavinantina; (+)-amuronina; pseudoprotopina; allocriptopina; (−)-dihidroamuronina; (−)-amurensinina N-óxido A; (−)- amurensinina N-óxido B (p.a.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 63

PARMELIACEAE 343.- Protousnea poepigii “barba del diablo”. Pellegrino Vidal, R. et al. 2007. Actividad antibacteriana y fraccionamiento bioguiado del extracto acetónico de “barba del diablo”: Protousnea poepigii (Parmeliaceae). XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Acido úsnico.

PHYLLANTHACEAE 344.- Phyllanthus niruri “helechito, rompepiedra”. Murugaiyah, V. et al. 2007. Determination of four lignans in Phyllanthus niruri L. by a simple high-performance liquid chromatography method with fluorescence detection. J. Chromatogrph. 1154(1-2): 198. Phyllanthina; hipophyllanthina; phyltetralina; nirantina (h.). a) ------Shakil, N. A. et al. 2008. Nematicidal prenylated flavanones from Phyllanthus niruri. Phytochemistry 69(3): 759. 8-(3-metil-but-2-enil)-2-fenil croman-4-ona; 2-(4-hidroxifenil)-8-(3-metil-but-2-enil)-croman-4-ona (pl.). b) ------Xiangrong, L. et al. 2008. Comparative analysis of essential oil compositions from Phyllanthus niriru, P. urinaria, and P. arenarius. Chem.Nat. Compd. 44(2): 257. 50 compuestos, los mayoritarios: 3,3,5-trimetilciclohexano (12,41 %); 3,7-dimetil-1,6-octadien-3-ol (10,17 %); n-ácido hexadecanoico (5,43 %); acetato etilo (4,36 %); 2-etoxipropano (3,71 %) (ac.es.). 345.- Phyllanthus sellowianus “sarandí blanco”. Idem N° 198. Terpenos; triterpenos; esteroides; saponinas; taninos; flavonoides; glicósidos (h.). 346.- Phyllanthus urinaria “chancapiedra”. Xu, M. et al. 2007. Phenolic antioxidants from the whole plant of Phyllanthus urinaria. Chem. Biodivers. 4(9): 2246. Repandinina B; furosina, ácido repandúsico A; mallotinina; geraniina; acetonilgeraniina D; corilagina; rutina; quercetina-3-O-β-D-glucósido; kaempferol- 7-metiléter; ácidos ascórbicoa, brevifolincarboxílico, gálico, protocatéquico; siringina; arbutina (pl.). a) ------Fang, S. H. et al. 2008. Anti-oxidant and inflammatory mediator’s growth inhibitory effects of compounds isolated from Phyllanthus urinaria. J. Ethnopharmacol. 116(2): 133. Phyllanthina; phyltetralina; trimetil-3,4- dehidrochebulato; metilgalato; ramnocitrina; metil brevifolincarboxilato; β- sitosterol-3-O-β-D-glucopiranósido; quercitrina; rutina (pl.). b) ------Idem N° 344b. 44 compuestos, los mayoritarios: 3,3,5-trimetilciclohexano (17,22 %); n-ácido hexadecanoico (12,38 %); benzaldehído (2,93 %); acetato etilo (2,61 %); 1,1-detoxietano (1,81 %) (ac.es.). PHYTOLACCACEAE 347.- Phytolacca americana “fitolaca, hierba carmín, uva de España”. Wang, L. et al. 2008. Bioactive triterpene saponins from the roots of Phytolacca americana. J. Nat. Prod. 71(1): 35. Phytolacca-saponina N-1 (= 28-O-(β-D-glucopiranosil)-3- O-[β-D-glucopiranosil-(1→4)-β-D-xilopiranosil]-11α-hidroxi-phitolaccagenina); phytolaccasaponina N-2 (= 28-O-(β-D-glucopiranosil)-3-O-[β-D-glucopiranosil-(1→ 4)-β-D-xilopiranosil]-11α-metoxi-phytolaccagenina); phytolaccasaponina N-3 (= 3- O-(β-D-glucopiranosil)-(1→4)-β-D-xilopiranosil]-11α-metoxiphytolaccagenina); 64 Miscelanea Nº 134, 2015

phytolaccasaponina N-4 (= 28-O-(β-D-glucopiranosil)-3-O-[β-D-glucopiranosil- (1→4)-β-D-xilopiranosil]-2-oxo-phytolaccagenina); phytolaccasaponina N-5 (= 28-O-(β-D-glucopiranosil)-3-O-{ β-D-glucopiranosil-(1→2)-[β-D-glucopiranosil- (1→4)]-β-D-xilopiranosil} ácido phytolacca-génico); esculentósido H; esculentósido A (= phytolacósido E); esculentósido M; esculentósido B (= phytolacósido E); esculentósido S; 28-O-(β-D-glucopiranosil) esculentósido R; esculentósido L (r.).

PINACEAE 348.- Cedrus deodara “cedro, cedro deodara””. Singh, S. K. et al. 2007. Chemically standardized isolates from Cedrus deodara stem wood having anticancer activity. Planta Med. 73(6): 519. (-)-Wikstromal; (-)-matairesinol; bencilbutirolactol (mad.). 349.- Pinus excelsa. Guerra, P. E. et al. 2007. Aceites esenciales en hojas de Pinus excelsa, P. monticola y P. strobus cultivados en la Patagonia argentina. XXXI Jornadas Argentinas de Botánica. Corrientes. Argentina. α y β-pineno; limoneno (17,8 %) (h.). 350.- Pinus koraiensis. Yang, X. et al. 2008. Two new diterpenoids acids from Pinus koraiensis. Fitoterapia 79(3): 149. Ácido-7-oxo-13β,15-dihidroxiabiet-8(14)-en-18- oico; ácido-7-oxo-12α,13β,15-trihidroxiabiet-8(14)-en-18-oico (con.). a) ------Lee, J. H. et al. 2008. Chemical composition and antimicrobial activity of essential oil from cones of Pinus koraiensis. J. Microbiol. Biotechnol. 18/3): 497. 87 compuestos, los principales: limoneno (27,90 %); α-pineno (23, 89 %); β-pineno (12,02 %); 3-careno (4,95 %); β-mirceno (4,53 %); isolongifoleno (3,35 %); (-)- bornil acetato (2,02 %); cariofileno (1,71 %); canfeno (1,54 %) (con.) b) ------Yang, X. L. et al. 2008. Isolation and identification of diterpenoids from Pinus koraiensis. J. Chin. Med. Mat. 31(1): 53. Ácidos: 8 (14)-podocarpen- 13-on-18-oico, 15-hidroxidehidroabiético, 12-hidroxiabiético, lambertiánico, dehidroabiético y sandaracopimárico; beta-sitosterol; daucosterol. 351.- Pinus monticola “pino blanco”. Idem N° 349. α y β-pineno; limoneno (14,0 %) (ac. es.). 352.- Pinus strobus “pino blanco”. Idem N° 349. α y β-pineno; mirceno (12,6 %) (ac.es.).

PIPERACEAE 353.- Ottonia martiana. Cunico, M. M. et al. 2007. Phytochemical and antibacterial evaluation of essential oils from Ottonia martiana Miq. (Piperaceae). J. Braz. Chem. Soc. 18(1): 184. espatulenol (17,83 %); (E)-nerolidol (10,33 %); viridiflorol (7,53 %); cariofileno óxido (6,41 %); δ-cadineno (4,16 %); mirceno (4,07 %); α- copaeno (3,86 %), β-cariofileno (3,21 %); allaromadendreno (3,11 %); α-pineno (2,10 %) (r.); espatulenol (17,37 %); (E)-nerolidol (9,14 %); viridiflorol (7,38 %); cariofileno óxido (5,77 %); δ-cadineno (3,90 %); mirceno (3,84 %); α-copaeno (3,69 %); β-cariofileno (3,07 %); alloaromadendreno (2,97 %); cubenol (2,35 %); α-pineno (2,01 %) (fr.); β-cariofileno (12,61 %); espatulenol (8,59 %); (E)-nerolidol (8,18 %); cariofileno óxido (7,37 %); α-copaeno (4,41 %); δ-cadineno (3;74 %); alloaromadendreno (3,15 %); viridiflorol (2,75 %); γ-muuroleno (2,51 %) (h.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 65

354.- Peperomia blanda “jergo”. Gaspareto Felipe, L. et al. 2008. Trypanocidal tetrahydrofuran lignans from Peperomia blanda. Phytochemistry 69(2): 445. rel- (7R,8S,7’S,8’S)-4-hidroxi-4’,5’-metilenedioxi-3,5,3’-trimetoxi-7,7’-epoxilignano; rel-(7R,8S,7’S,8’S)- 4’,5’-metilen-dioxi-3,4,5,3’-tetrametoxi-7,7’-epoxilignano; rel-(7R,8S,7’S,8’S)-4-hidroxi-3,4,5,3’,4’-pentametoxi-7,7’-epoxilignano; rel- (7R,8S,7’S,8’S)- 4,5,4’,5’-dimetilenedioxi-3,3’-dimetoxi-7,7’-epoxilignano; rel-(7R,8S,7’S,8’S)-9-hidroxi-4’,5’-metilenedioxi-3,4,5,3’-tetrametoxi-7,7’- epoxilignano; flavona-5-hidroxi-7,8,4’-trimetiléter, -5-hidroxi-7,8,3’,4’- tetrametiléter (p.a.). 355.- Peperomia galioides “congona, tigresillo”. Di Leo Lira, P. et al. 2007. Composition of the essential oil of two Peperomia from Peru: P. galioides and P. chalhuapuquiana. Rev. Latinoamer. Quím. 35(1-2): 7. β-cariofileno (13,1-16,0 %); α-humuleno (13,2-17,3 %); epi-α-bisabolol (15,1-21,3 %) (p.a.). a) ------De Feo, V. et al. 2008. Antibacterial activity and composition of the essential oil of Peperomia galioides HBK (Piperaceae) from Peru. Nat. Prod. Comm. 3(6): 933. Globulol (22,2 %); cariofileno (10,2 %); limoneno (9,8 %) (p.a.). 356.- Piper crassinervium. Lago, J. H. G. et al. 2007. 3α,4α-Epoxy-2-piperidone, a new minor derivative from leaves of Piper crassinervium Kunth (Piperaceae). Nat. Prod. Res. 21(10): 910. 3α,4α-epoxi-2-piperidona (h.). a) ------Lopes, A. A. et al. 2008. In vitro activity of compounds isolated from Piper crassinervium against Trypanosoma cruzi. Nat. Prod. Res. 22(12): 1040. 1,4- dihidroxi-2-(3’,7’-dimetil-1’-oxo-2’-E,6’-octadienil)benceno (h.). 357.- Piper glabratum. Flores, N. et al. 2008. Benzoic acid derivatives from Piper species and their antiparasitic activity. J. Nat. Prod. 71(9): 1539. Metil 3,4-dihidroxi- 5-(2-hidroxi-3-metil-3-butenil)benzoato; etil 4-hidroxi-3-(2-hidroxi-3-metil-3- butenil)benzoato; metil 3-[2-(acetoxi)-3-metil-3-butenil)-4,5-dihidroxi-benzoato (h.). 358.- Piper hispidum. Delgado, W. A. et al. 2007. Chemical composition of essential oil from fruits of Piper hispidum Kunth. Rev. Prod. Nat. 1(1). Limoneno (16,3 %); ?- pineno (14,5 %); ?-pineno (13,5 %); linalool (9,6 %); ?-terpineol ( 8,5 %), 1,8-cineol (5,1 %), alcanfor (4,4 %); canfeno (4,2 %); endoborneol (4,0 %); trans-pulegol (2,2 %); p-cimeno (2,2 %); dibencilol (1,2 %); cariofileno óxido (1,1 %) (fr.). a) ------Plazas, G. et al. 2008. Isolated flavonoids from inflorescences ofPiper hispidum Kunth (Piperaceae) and acetylated derivatives. Rev. Colomb. Quím. 37(2): 135. Flavanona-5-hidroxi-7-metoxi, -5-hidroxi-7,4’-dimetoxi; chalconadihidro- 2’,4’,6’-trimetoxi (ifl.). b) ------Facundo, V. A. et al. 2008. Constituintes químicos fixos e voláteis dos talos e frutos de Piper tuberculatum Jacq. e das raízes de P. hispidum H. B. K. Acta Amaz.38(4): 743. Dillapiol (57,5 %); elemicina (24,5 %); apiol (10,2 %) (r.). 359.- Piper lkotzkyanum. Lago, J. H. G. et al. 2007. Antifungal derivatives from Piper mollicomum and P. lhotzkyanum (Piperaceae). Quim. Nova 30(5): 1222. Ácido 2-metil-2-[4’-metil-3’-pentenil]-2H-1-benzopiran-6-carboxílico; flavanona-5,4’- dihidroxi-7-metoxi, -5-hidroxi-7,4’-dimetoxi; ácido 2,2-dimetil-2H-cromeno-6- carboxílico (h.). 360.- Piper mollicomum. Idem N° 359. Metil-2,2-dimetil-2H-cromeno-6-carboxilato; metil-8-hidroxi-2,2-dimetil-2H-cromeno-6-carboxilato; ácido 2-metil-2-[4’-metil- 3’-pentenil]-2H-1-benzopiran-6-carboxílico; ácido 2,2-dimetil-2H-cromeno-6- carboxílico; chalconadihidro-2’,6’-dihidroxi-4’-metoxi; flavanona-5,4’-dihidroxi-7- metoxi, -5-hidroxi-7,4’-dimetoxi (h.). 66 Miscelanea Nº 134, 2015

361.- Piper solmsianum var. solmsianum. Campos, M. P. et al. 2007. Antibacterial activity of extract, fractions and four compounds extracted from Piper solmsianum C. DC. var. solmsianum (Piperaceae). Z. Naturforsch. 62c (3-4): 173. Eupomatenoid- 3; eupomatenoid-5; conocarpano; orientina (h.). 362.- Piper umbellatum. Tabopda, T. K. et al. 2008. Bioactive aristolactams from Piper umbellatum. Phytochemistry 69(8): 1726. Piperumbellactams A, B, C, D; N-hidroxaristolam II; N-p-cumaroil tiramina; 4-nerolidilcatecol; N-trans- feruloiltiramina; E-3-(3,4-dihidroxifenil)-N-2-[4-hidroxifeniletil]-2-propenamida; β-amirina; friedelina; apigenina-8-C-neohesperidósido; acacetina-6-C-β-D- glucopiranósido; β-sitosterol y sus 3-O-β-D-glucopiranósido y 3-O-β-D-[6’- dodecanoil]-glucopiranósido (rm.).

PLANTAGINACEAE 363.- Bacopa monnieri. Bhandari, P. et al. 2007. Cucurbitacins from Bacopa monnieri. Phytochemistry 68(9): 1248. Bacobitacina A (= 2,7β,16α,20R-tetrahidroxi-25- acetoxi-cucurbita-1,5,23E-trien-3,11,22-triona); bacobitacina B (= 2,20R-dihidroxi- 16α,25- diacetoxi-cucurbita-1,5,23E-trien-3,11,22-triona); bacobitacina C (= 2-O-[{α-L- ramnopiranosil-(1→2)-α-L-arabinofuranosil-(1→4)}-{α-L-ramnopranosil-(1→ 2)-α-L-arabinopiranosil}]-cucurbitacina E); bacobitacina D (= 2-O-[{α-L- ramnopiranosil-(1→2)-α-L-arabinofuranosil-(1→4)}- -{α-L-ramnopiranosil-(1→ 2)-α-L-arabinopiranosil}]-7β,16α,20R-trihidroxi-25-acetoxi-cucurbita-1,15,23E- trien-3,11,22-triona); cucurbitacina E; monnierásido I y III; plantiósido B (p.a). a) ------Pawar, R. S. et al. 2007. Glycosides of 20-deoxy derivatives of jujubogenin and pseudojujubogenin from Bacopa monniera. Planta Med. 73(4): 380. Glicósidos de 20-deoxi derivados de jujubogenina y pseudojujubogenina. b) ------Zhou, Y. et al. 2007. Chemical constituents of Bacopa monnieri. Chem. Nat. Compd. 43(3): 355. p- hidroxilbencen metanol; ácidos ursólico, 3,4- dimetoxicinámico, y p-hidroxilbenzoico; lupeol, -28-hidroxi; β-daucosterina; ampelozigenina; feruloilglucósido; rosavina; quercetina; apigenina; luteolina; ziziotina; loliólido (pl.). c) ------Zhou, Y. et al. 2008. Triterpene saponins from Bacopa monnieri and their antidepressant effects in two mice models. J. Nat. Prod. 70(4): 652. Bacopásido I, II, VI, VII, VIII; bacopasaponina C (pl.). 364.- Linaria vulgaris “linaria común, lino montesino”. Guiso, M. et al. 2007. Chemotaxonomy of iridoids in Linaria vulgaris. Nat. Prod. Res. 21(13): 1212. 4-carboxy-booneína; antirrinósido; antirrido; 6-β-hidroxiantirrido; 10-β- glucosilaucubina (pl.). a) ------Vrchovská, V. et al. 2008. Assessing the antioxidative properties and chemical composition of Linaria vulgaris infusion. Nat. Prod. Res. 22(9): 735. Ácidos oxálico, aconítica, cítrico, ketoglutárico, ascórbico, málico, shikímico y fumárico; linarina. 365.- Plantago lanceolata “llantén”. Fleer, H. et al. 2007. Antispasmodic activity of an extract from Plantago lanceolata L. and some isolated compounds. Phytomed. 14(6): 409. Luteolina; acteósido; plantamajósido; catalpol peracetato; catalpol; isoacteósido; lavandulifoliósido; aucubina (p.a.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 67

a) ------Armatu, A. et al. 2007. Comparative study of the analgesic effect of different phenylethanoid-based fractions from Plantago lanceolata L. 55th International Congress and Annual Meeting of the Society for Medicinal Plant Research. Graz. Austria. Acteósido; luteolina-7-glucósido; aucubina; catalpol. 366.- Veronica elliptica. Johansen, M. et al. 2007. Chemical markers in Veronica sect. Hebe. Biochem. Syst. Ecol. 35(9): 614. Manitol; mezcla de 6-O-(2”- O-cafeoil)-ramnopiranosil-catalpol y angorósido A; 6-O-(2”-O-cinamoil)- ramnopiranosilcatalpol (h.).

POACEAE 367.- Cymbopogon citratus “cedrón del campo”. Rondón, J. et al. 2007. Estudio de los componentes volátiles de las raíces de Cymbopogon citratus L. del Estado de Mérida. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Componentes mayoritarios: α-gurjumeno (29,75 %); τ-muurolol (9,09 %); juniper alcanfor (5,94 %); β-himachaleno (1,23 %) (r.). 368.- Gynerium sagittatum. Benavides, A. et al. 2007. Flavonoids and isoflavonoids from Gynerium sagittatum. Phytochemistry 68(9): 1277. (2R,3R)-2,3-trans- 7,4’-dimetoxi-dihidroflavonol; 2,3-trans-3,4-cis-7,4’-dimetoxi-3,4-flavandiol; flavona-6-hidroxi-7,4’-dimetoxi, -6,7,4’-trimetoxi, -6,4’-dihidroxi-7-metoxi, -7,4’- dimetoxi; ferreirina (= isoflavanona-5,7,2’-trihidroxi-4’-metoxi); dihidrocajanina ( = isoflavanona-5,2’,4’-trihidroxi-7-metoxi); dalbergioidina (= isoflavanona-5,7,2’,4’- tetrahidroxi); biocanina A (= isoflavona-5,7-dihidroxi-4’-metoxi); dihidrobiocanina A (= isoflavanona-5,7-dihidroxi-4’-metoxi); isopratol; arjunolona (= flavona-6,4’- dihidroxi-7-metoxi); tricina, -7-O-β-D-glucósido; naringenina; ácidos cinámico, cumárico y ferúlico (r.). 369.- Saccharum officinarum “caña de azúcar”. Duarte Almeida, J. M. et al. 2007. Antiproliferative and antioxidant activities of a tricin acylated glycoside from sugarcane (Saccharum officinarum) juice. Phytochemistry 68(8): 1165. Tricina-7-O- β-(6”-metoxi-cinámico)-glucósido; orientina (j.). a) ------Colombo, R. et al. 2008. Study of C- and O-glycosylflavones in sugarcane extracts using liquid chromatography - Exact mass measurement mass spectrometry. J. Braz. Chem. Soc. 19(3): 483. Schaftósido; isoschaftósido; luteolina-8-C- (ramnosilglucósido); vitexina; orientina; tricina-7-O-neohesperidósido, -7-O- glucósido (h.). b) ------Vila, F. C. et al. 2008. HPLC microfractionation of flavones and antioxidant (radical scavenging) activity of Saccharum officinarum L. J. Braz. Chem. Soc. 19(5): 903. Luteolina-8-C-ramnosilglucósido (h.); diosmetina-8-C- glucósido; vitexina; schaftósido; isoschaftósido; luteolina-8-C-glucósido-4’,5’- dimetilo (j.). 370.- Vetiveria zizanioides “vetiver”. Champagnat, P. et al. 2008. Flavonoids from Vetiveria zizanioides and Vetiveria nigritana (Poaceae). Biochem. Syst. Ecol. 36(1): 68. Carlinósido; neocarlinósido; isoorientina; tricina-5-O-glucósido; luteolina 6,8- diC-arabinopiranósido (p.a.). 68 Miscelanea Nº 134, 2015

PODOCARPACEAE 371.- Prumnopitys andina “lleuque, uva de la cordillera”. Smith, E. C. J. et al. 2008. 2β-acetoxy-ferruginol, a new antibacterial abietane diterpene from the bark of Prumnopitys andina. Phytochemistry Lett. 1(4): 49. 2β-acetoxferruginol (ct.tll.).

POLYGALACEAE 372.- Polygala sabulosa. Duarte, F. S. et al. 2007. Participation of dihydrostyryl- 2-pyrones and styryl-2-pyrones in the central effects of Polygala sabulosa (Polygalaceae), a folk medicine topical anesthetic. Pharmacol. Biochem. Behav. 86(1): 150. 6-metoxi-7-preniloxicumarina; 4-metoxi-6-(11,12-metilendioxidihidrostiril)-2-pirona; 4-metoxi-6-(11,12- metilendioxi-14-metoxi-dihdrostiril)-2-pirona; 4-metoxi-6-(11,12-metilendioxi- 10,14-dimetoxi-dihidrostiril)-2-pirona; 4-metoxi-6-(11,12-metilendioxistiril)- 2-pirona; 4-metoxi-6-(11,12-metilendioxi-14-metoxistiril)-2-pirona; 4-metoxi- 6-(11,12-metilendioxi-10,14-dimetoxistiril)-2-pirona; 4-metoxi-6-(11,12- dimetoxistiril)-2-pirona (pl.). a) ------Pizzolatti, M. G. et al. 2008. Trypanocidal activity of coumarins and styryl-2-pyrones from Polygala sabulosa A.W. Bennett (Polygalaceae). Rev. Bras. Farmacogn. 18(2): 177. Apigenina; quercetina, -3-O-glucósido; α-spinasterol; 4- metoxi-6-(11,12-metilendioxi-14-metoxidihidrostiril)-2-pirona; 4-metoxi-6-(11,12- dimetoxistiril)-2-pirona; 6-metoxi-7-preniloxicumarina (pl.).

POLYGONACEAE 373.- Polygonum acuminatum. Derita, M. G. et al. 2008. Occurrence of polygodial in species of Polygonum genus belonging to Persicaria section. Biochem. Syst. Ecol. 36(1): 55. Poligodial (h.). 374.- Polygonum amphibium. Smolarz, H. D. et al. 2008. Flavonoid glucuronides with anti-leukaemic activity from Polygonum amphibium L. Phytochem. Anal. 19(6): 506. Quercetina-3-O-β-glucurónido, -3-O-α-ramnosil-(1→2)-β-glucurónido; kaempferol-3-O-α-ramnosil-(1→2)-β-glucurónido. 375.- Polygonum hydropiper. Miyazagua, M. et al. 2007. Components of the essential oil from sprouts of Polygonum hydropiper L. (‘Benitade’). Flavour Fragr. J. 22(3): 188. (E)-β-farneseno (44,1 %); fitol (10,8 %); (E)-cariofileno (9,3 %); (E)-nerolidol (6,9 %) (br.). a) ------Kiem, P. V. et al. 2008. New phenylpropanoid esters of sucrose from Polygonum hydropiper and their antioxidant activity. Arch. Pharm. Res. 31(11): 1477. Hidropiperósido A, B; vanicósido A, B, E (pl.). 376.- Polygonum persicaria. Idem N° 373. Poligodial (h.). 377.- Polygonum punctatum “yerba del bicho, sanguinaria, ajicillo”. Idem N° 373. Poligodial (h.). 378.- Triplaris americana. Oliveira, P. E. S. et al. 2008. Chemical constituents from Triplaris americana L. (Polygonaceae). Biochem. Syst. Ecol. 36(2): 14. Friedelina; friedelinol; vanicósido D; moupinamida; ácido gálico; quercetina, -3-O-α-L- arabinofuranósido (h., tll., fr.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 69

379.- Rumex obtusifolius. Spencer, P. et al. 2007. Isolation and characterisation of procyanidins from Rumex obtusifolius. Phytochem. Anal. 18(3): 193. Procianidinas oligoméricas y sus poligaloil derivados (h.). a) ------Wegiera, M. et al. 2007. Anthracene derivatives in some species of Rumex L. genus. Acta Soc. Bot. Pol. 76(2): 103. Aloe emodina (fr., h.); sennósido A (pl.); sennósido B ( h., r.); rheína (r.); barbaloína (aloína A + aloína B) (r.). 380.- Ruprechtia laxiflora “viraró cespo”. Idem N° 198. Terpenos; triterpenos; esteroides; saponinas; taninos; flavonoides; glicósidos (h.). 381.- Ruprechtia salicifolia “viraró”. Idem N° 198. Terpenos; triterpenos; esteroides; saponinas; taninos; flavonoides; glicósidos (h.).

POLYPODIACEAE 382.- Microgramma squamulosa “calaguala del mate, erva silvina, polipodio escamoso”. Jaime, G. S. et al. 2007. Sobre los caracteres foliares diagnósticos de Microgramma squamulosa (Kaulf.) Sota (Polypodiaceae). IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Taninos; lignina; flavonoides; grasas; mucílagos; almidón (h.). a) ------Suffredini, I. B. et al. 2008. Pharmacognostic and phytochemical study of the stem and roots from Microgramma squamulosa (Kaulf.) Sota (Polypodiaceae). Rev. Bras. Farmacogn. 18(2): 279. Flavonoides; taninos (tll., r.).

PORTULACACEAE 383.- Portulaca oleracea “fique, verdolaga”. Zhang, Z. J.et al. 2007. Study on chemical constituents of Portulaca oleracea. Zhong Yao Cai 30(10): 1248. Oleraceínas A, B, y E; hesperidina; ácido cafeico. a) ------Xiang, L. et al. 2007. Cyclic dipeptides from Portulaca oleracea. Zhong Cao Yao 38(11): 1622. Oleraceína E. b) ------Kumar, B. S. A. et al. 2008. Pharmacognostical studies of Portulaca oleracea Linn. Rev. Bras. Farmacogn. 18(4): 527. Alcaloides; carbohidratos; taninos; flavonoides; saponinas; esteroides; compuestos fenólicos; proteínas; aminoácidos (pl.). c) ------Ercisli, S. et al. 2008. Antioxidant and antibacterial activities of Portulaca oleracea l. grown wild in Turkey. Ital. J. Food Sci. 20(4): 533. Ácidos: linolénico (56,33 %), linoleico (14,01 %), palmítico (9,72 %), oleico (8,83 %), mirístico (5,04 %), esteárico (4,36 %) (h.). d) ------Elkhayat, E. S. et al. 2008. Portulene, a new diterpene from Portulaca oleracea L. J. Asian. Nat. Prod. Res. 10(11): 1039. Portuleno; lupeol; β-sitosterol, daucosterol. e) ------Xin, H. L. et al. 2008. Two novel triterpenoids from Portulaca oleracea L. Helv. Chim. Acta 91(11): 2075. Ácidos: (2α,3α)-3-{[4-O-(β-D- glucopiranosil)-β-D- xilopiranosil]oxi}-2,23-dihidroxi-30-metoxi-30- oxoolean-12-en-28-oico y (2α,3α)- 2,23,30-trihidroxi-3-[(β-D-xilopiranosil) oxi]olean-12-en-28-oico (p.a.). f) ------Xin. H. L. et al. 2008. Portulacerebroside A: New cerebroside from Portulaca oleracea L. Chin. J. Nat. Med. 6(6): 401. Portulacerebrósido (= (2S,3S,4R)-2-[(2’,4E) -2’-hidroxi-hexacsenoilamino]-3-4-dihidroxi-hexadecano-1- O-β- D-glucopiranósido) (p.a.). 70 Miscelanea Nº 134, 2015

384.- Talinum patens “carne gorda, verdolaga, rama de sapo, lechuguilla”. Oliveira Ramos, M. P. et al. 2007. Phytochemical study, antinociceptive and anti- inflammmatory effects of the leaves ofTalinum patens Willd. (Asteraceae). Nitrato de potasio; dotriacontano; tritriacontano; tetratriacontano; pentatriacontano; ácido heneicosanoico; urea; nanacosinonacosanoato; β-sitosterol-3-O-β-D-glucósido; stigmasterol; ácido-3-O-acetilaleuritólico (h., rm.).

PROTEACEAE 385.- Grevillea robusta “grevilea, roble sedoso, nogal del sur”. Chiang, T. H et al. 2007. Cytotoxic 5-alkylresorcinol metabolites from the leaves of Grevillea robusta. J. Nat. Prod. 70(2): 319. Graviciclo; dehidrograviciclo; bisgravillol; dehidrobisgravillol; dehidrogravifano; metildehidrogravifano; gravifano; metilgravifano; robustol; dehidrorobustol; bisnorstriatol; 5-[14’-(3”,5”-dihidroxifenil)-cis-tetradec-6’-en-1- il]resorcinol; cis-5-n-pentadecilresorcinol; cis-5-n-pentadec-8’-enilresorcinol (h.). a) ------Wang, H. et al. 2008. Secondary metabolites from Grevillea robusta. Biochem. Syst. Ecol. 36(5): 452. Robustásido A y B; rutina; nicotiflorina; ramnetina- 3-O-rutinósido; ramnocitrina-3-O-rutinósido; bisnorstriatol; 5,5’-(8(Z)-hexadecene- diil)-bisresorcinol (h.). b) ------Yamashita, Y. et al. 2008. Grevillosides A-F: Glucosides of 5- alkylresorcinol derivatives from leaves of Grevillea robusta. Phytochemistry 69(15):

2749. Grevillósidos A, B, C, D, E, F; icarísido F2 (h.).

PTERIDACEAE 386.- Adiantum tetraphyllum. Melos, J. R. L. et al. 2007. Chemical composition and evaluation of allelopathic potentials of Adiantum tetraphyllum Humb. & Bonpl. ex. Willd (Pteridaceae). Quím. Nova 30(2): 292. 30-normetil-lupan-20-ona; hopan-22- ol; fitol, fiten-3(20)-1,2-diol; quercetina, -3-O-β-D-glucósido (h.).

PUNICACEAE 387.- Punica granatum “granada”. Reddy, M. K. et al. 2007. Antioxidant, antimalarial and antimicrobial activities of tannin-rich fractions, ellagitannins and phenolic acids from Punica granatum L. Planta Med. 73(5): 461. Ácidos elágico y gallágico; puncalina; punicalagina (jg.). a) ------Naz, S. et al. 2007. Antibacterial activity directed isolation of compounds from Punica granatum. J. Food Sci. 72(9): M341. Pelargonidina-3-galactosa; cianidina-3-glucosa; ácido gálico; quercetina; miricetina (fr.) b) ------Xie, Y. et al. 2008. Medicinal flowers. XXIII. New taraxastane-type triterpene, punicanolic acid, with tumor necrosis factor-α inhibitory activity from the flowers of Punica granatum. Chem. Pharm. Bull. 56(11): 1628. Ácido punicanólico (= ácido 3β,20α-dihidroxi-taraxastan-28-oico); ácidos oleanólico, ursólico, maslínico y asiático; 1,2,6-tri-O-galoil-β-D-glucopiranósido; 1,2-di-O-galoil-4,6-O-(S)- hexahidroxi-difenil-β-D-glucopiranósido; luteolina; tricetina (fl.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 71

RANUNCULACEAE 388.- Aquilegia vulgaris. Yoshimitzu, H. et al. 2008. Two new cycloartane glycosides from the underground parts of Aquilegia vulgaris. Chem. Pharm. Bull. 56(11): 1625. Aquilegiósido K (= 26-O-β-D-glucopiranosil(16S,20S,22R,24Z).16,β22- epoxi-16α-metoxi-cicloart-24-en-3β,26-diol-3-O-β-D-glucopiranosil-(1→2)-β- D-glucopiranosil-(1→2)-β-D-galacto-piranósido); aquilegiósido L (= 26-O-β-D- glucopiranosil(22S,24Z)-cicloart-24-en-3β,16α,26-triol-3-O-β-D-glucopiranosil- (1→2)-β-D-glucopiranosil-(1→2)-β-D-galactopiranósido) (p.subt.).

RHAMNACEAE 389.- Condalia buxifolia “piquillín grande”. El-Seedi, H. R. et al. 2007. Cyclopeptide alkaloids. Phytochem. Rev. 6(1): 143.Scutianinas B y C; adouetina Y; condalina A. 390.- Discaria americana “brusquilla, quina del campo, coronillo del campo”. Idem N° 389. Discarinas B, C, y D; miriantina A; adouetina Y; franganina; discarenos C y D. a) ------Rodríguez, S. et al. 2008. Volatile components of Discaria americana Gillies & Hook (Rhamnaceae). Nat. Prod. Res. 22(3): 253. 4-Metilfenol (15,5 %); eugenol (11,0 %); 3-metilindol (9,7 %); α-terpineol (6,2 %) (p.a.). 391.- Gouania ulmifolia. Giacomelli, S. R. et al. 2007. Triterpenoids from Gouania ulmifolia. Planta Med. 73(5): 499. Ácidos gouaníco A y B (p.a.). 392.- Retamilla patagonica “malaspina, chaqui”. Idem N° 17. Flavonoides; proteínas. 393.- Scutia buxifolia “coronillo”. Idem N° 198. Terpenos; triterpenos; esteroides; saponinas; flavonoides; glicósidos (h.). a) ------Idem N° 390. Scutianinas B, C, D, E, F, H, J, K, L, M; scutianeno D (ct.r.).

ROSACEAE 394.- Crataegus monogyna “espino blanco, majuelo”. Leskovac, A. et al. 2007. Radioprotective properties of the phytochemically characterized extracts of Crataegus monogyna, Cornus mas and Gentianella austriaca on human lymphocytes in vitro. Planta Med. 73(11): 1169. Procianidinas; flavonoides (fr.). a) ------Prinz, S. et al. 2007. 4”’Acetylvitexin-2”-O-rhamnoside, isoorientin, orientin, and 8-methoxykaempferol-3-O-glucoside as markers for the differentiation of Crataegus monogyna and Crataegus pentagyna from Crataegus laevigata (Rosaceae). Chem. Biodivers. 4(12): 2920. 4”’-acetilvitexina-2”-O-ramnósido; vitexina, -2”-O-ramnósido; isovitexina; rutina; hiperósido; 8-metoxikaempferol-3-O- glucósido; isoquercitrina (h.,fl.) b) ------Bernatoniene, J. et al. 2008. Free radical-scavenging activities of Crataegus monogyna extracts. Medicina 44(9): 706. Ácido clorogénico; hiperósido;

rutina; quercetina; vitexina-2-O-ramnósido; epicatequina; catequina; procianidina B2 (fr.). 395.- Eriobotrya japonica “níspero, níspero japonés”. Zhou, C. et al. 2007. Determination of oleanolic acid, ursolic acid and amygdalin in the flower ofEriobotrya japonica Lindl. by HPLC. Biomed. Chromatogr. 21(7): 755. Amigdalina; ácidos ursólico y oleanólico (fl.). 72 Miscelanea Nº 134, 2015

a) ------Chen, J. et al. 2008. Hypoglycemic effects of a sesquiterpene glycoside isolated from leaves of loquat (Eriobotrya japonica (Thunb.) Lindl.). Phytomed. 15(1): 98. Nerolidol-3-O-α-L-ramnopiranosil-(1→4)-α-L-ramnopiranosil-(1→2)-[α- L-ramnopiranosil-(1→6)]-β-D-glucopiranósido (h.). b) ------Lv, H. er 2008. [Studies on the triterpenes from loquat leaf (Eriobotrya japonica)]. Zhongyaocai 31(9): 1351. Metil betuliato; ácidos: oleanólico, ursólico, maslínico, corosólico, torméntico, euscafíco; metil maslinato; metil corosolato; metil 2α,3α-dihidroxiurs-12-en-28-oato (h.). 396.- Rosa rubiginosa. Aguirre, G. U. et al. 2007. Producto forestal no maderero Rosa rubiginosa (L.), exótica de interés medicinal y comercial IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Vitamina C; riboflavina; pectinas; ácidos nicotínico y málico (fr.). 397.- Rubus rosaefolius. Kanegusuku, M. et al. 2007. Phytochemical and analgesic activity of extract, fractions and a 19-hydroxyursane-type triterpenoid obtained from Rubus rosaefolius (Rosaceae). Biol. Pharm. Bull. 30(5): 999. Ácidos torméntico y 28 metoxitorméntico (p.a.).

RUBIACEAE 398.- Alibertia sessilis. da Silva, V. C. et al. 2007. A new antifungal phenolic glycoside derivative, iridoids and lignans from Alibertia sesslis (Vell.) K. Schum. J. Braz. Chem. Soc. 18(7): 1405. Genipósido; ácido geniposídico; 6α-hidroxigenipósido; 6β- hidroxi-genipósido; 3,4,5-trimetoxifenil-1-O-β-D- (5-O-siringoil)-apiofuranosil-(1→ 6)-β-D-glucopiranósido; (+)-lioniresinol-3α-O-β-D-glucopiranósido; (-)-lioniresinol- 3α-O-β-D-glucopiranósido; ácidos clorogénico y salicílico; manitol (tll.). 399.- Chomelia obtusa. Barros, M. P. de et al. 2008. Chemical constituents and anti- inflammatory and antioxidant activities evaluation of the leaves extracts of Chomelia obtusa Cham. & Schltdl. (Rubiaceae). Quim. Nova 31(8): 1987. Ácido 3-O-β-D-quinovopiranosil-28-O-β-D-glicopiranosil quinóvico; ácido 3-O-β-D- quinovopiranosil-28-O-β-D-glicopiranosil cinchólico; mezcla de ácidos ursólico y oleanólico; quercetina-3-O-β-D-glicopiranosil, -3-O-α-L-ramnopiranosil-(1→6)- β-D-galactopiranósido; bornesitol; mezcla de ácidos 3,5 y 4,5-O-dicafeoil quínicos (h.). 400.- Coutarea hexandra “cascarilla”. Olmedo, D. et al. 2007. A new coumarin from the fruits of Coutarea hexandra. Nat. Prod. Res. 21(8): 625. 5-O-β-D-glucopiranosil- 4-(4-hidroxifenil)-7-metoxi-2H-cromen-2-ona; 5-O-β-D-galactopiranosil- 4-(4-hidroxifenil)-7-metoxi-2H-cromen-2-ona; 23,24-dihidrocucurbitacina F; 23,24-dihidro-25-acetil-cucurbitacina F; 2-O-β-D-glucopiranosil-23,24- dihidrocucurbitacina F (fr.). 401.- Galianthe brasiliensis “poaia do campo”. Idem N° 198. Triterpenos; esteroides; terpenos; flavonoides (h.). 402.- Genipa americana “genipapo”. Ono, M. et al. 2007. Three new monoterpenoids from the fruit of Genipa americana. Chem. Pharm. Bull. 55(4): 632. Genipacetal; genipamida; genipaol; genipita; gardendiol; deacetil ácido asperulosídico metiléster; shanzhisído (fr.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 73

403.- Guettarda pohliana. De Oliveira, P. R. N. de et al. 2008. Chemical constituents of the roots of Guettarda pohliana Müll. Arg. (Rubiaceae). Quim. Nova 31(4): 755. Ácido 8-O-β-D-glicopiranosil-3-O-β-D-quinovopiranosil quinóvico; ácido 28-O-β- D-glicopiranosil-3-O-β -D-glicopiranosil quinóvico; ácido 3-O-β-D-glicopiranosil quinóvico; ácido 28-O-β-D-glicopiranosil-3-O-β-D-glicopiranosil cinchólico; ácido quinóvico; daucosterol; ácido 4,5-O-dicafeoil químico (r.). 404.- Guettarda uruguensis “jazmín del Uruguay”. Idem N° 198. Taninos; flavonoides; glicósidos; terpenos; esteroides; triterpenos; alcaloides (h.). 405.- Heterophyllaea pustulata “cegadera”. Comini, L. R. et al. 2007. Characterizing some photophysical, photochemical and photobiological properties of photosensitizing anthraquinones. J. Photochem. Photobiol. A: Chem. 188(2-3): 185. Heterofilina; pustulina; 5,5′-bisoranjidiol; soranjidiol, -1-metiléter; rubiadina, -1- metiléter; damnacanthal; damnacanthol (tll.,h.). a) ------Comini, L. R. et al. 2007. Dermotoxicidad in vivo de extractos de Heterophyllaea pustulata J. D. Hooker. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Derivados antraquinónicos. 406.- Mitracarpus megapotamicus “peladilla”. Idem N° 198. Terpenos; flavonoides (p.a.). 407.- Psychotria carthagenensis “naranjillo, chal chal de la gallina”. Idem N° 198. Terpenos; triterpenos; esteroides; saponinas; taninos; flavonoides; glicósidos (h.). 408.- Psychotria nuda. Moreira Farias, F. et al. 2008. Strictosamide from Psychotria nuda (Cham. et Schltdl) Wawra (Rubiaceae). Biochem. Syst. Ecol. 36(12): 919. Strictosamida (alcaloide indólico) (h.). 409.- Psychotria umbellata. Kerber, V. A. et al. 2008. Psychollatine, a glucosidic monoterpene indole alkaloid from Psychotria umbellata. J. Nat. Prod. 71(4): 697. Psycollatina (h.). 410.- Richardia brasiliensis “yerba del pollo, poaia do campo, poaia branca”. Pinto, D. S. et al. 2008. Secondary metabolites isolated from Richardia brasiliensis Gomes (Rubiaceae). Rev. Bras. Farmacogn. 18(3): 367. Isoramnetina-3-O-rutinósido; ácido oleanólico; escopoletina; ácidos: p-hidroxi-benzoico y m-metoxi-p-hidroxi- benzoico. 411.- Richardia grandiflora. Tomaz, A. C. de A. et al. 2008. Chemical constituents from Richardia grandiflora (Cham. & Schltdl.) Steud. (Rubiaceae). Rev. Bras. Farmacogn. 18(1): 47. Mezcla de β-sitosterol y stigmasterol; ácidos: o-hidroxi benzoico y m-metoxi-p-hidroxi benzoico; faeofitina A.

RUTACEAE 412.- Citrus aurantifolia “lima”. Johann, S. et al. 2007. Complete 1H and 13C NMR assignments and antifungal activity of two 8-hydroxy flavonoids in mixture.An. Acad. Bras. Cienc. 79(2): 215. Mezcla de flavona-8-hidroxi-3,5,6,7,4’-pentametoxi y flavona- 8-hidroxi-3,5,6,7,3’,4’-hexametoxi (fr.). a) ------Elizondo Treviño, E. et al. 2008. 5,7-Dimetoxi-2H-cromen-2-ona un principio antimicobacteriano de Citrus aurantifolia. 5ta Reunión Nacional de Investigación en Productos Naturales. Guadalajara. México. 5,7-Dimetoxi-2H- cromen-2-ona (casc). 74 Miscelanea Nº 134, 2015

b) ------Piccinelli, A. L. et al. 2008. HPLC-PDA-MS and NMR characterization of C-glycosyl flavones in a hydroalcoholic extract ofCitrus aurantifolia leaves with antiplatelet activity. J. Agric. Food Chem. 56(5): 1574. Apigenina- 6,8-di-C-β-D-glucopiranósido (= vicenina II); diosmetina-6,8-di-C-β-D- glucopiranósido; apigenina-8-C-β-D-glucopiranósido (= vitexina); apigenina- 8-C-[α-L-arabinopiranosil-(1→6)]-O-β-D-glucopiranósido; apigenina-6-C- [α-L-arabinopoiranosil-(1→6)]-O-β-D-glucopiranósido; apigenina-6-C-β-D- glucopiranósido (= isovitexina) (h.). 413.- Esenbeckia febrifuga “guatambú mí, quina do mato”. Dolabela, M. F. et al. 2008. In vitro antiplasmodial activity of extract and constituents from Esenbeckia febrifuga, a plant traditionally used to treat malaria in the Brazilian Amazon. Phytomed. 15(5): 367. Bergapteno; isopimpinellina; lindersiamina; kokusaginina; skimmiamina; γ- fagarina; 1-hidroxi-3-metoxi-N-metil-acridona; rutaevina (tll.). 414.- Murraya paniculata “jazmín naranja, jazmín de azahar, azahar de la India”. Rout, P. K. et al. 2007. Composition of essential oil, concrete, absolute, wax and headspace volatiles of Murraya paniculata (Linn.) Jack flowers. Flavour Frag. J. 22(5): 352. δ- elemeno (1,4 %); (E)-cariofileno (3,6 %); germacreno D (2,7 %); (E)-nerolidol (25,7 %); bencil benzoato (8,1 %); fenil etil benzoato (8,0 %); manool (18,7 %) (fl.). a) ------Mesquita, S. G. et al. 2008. Chemical constituents from leaves of Murraya paniculata (Rutaceae). Rev. Bras. Farmacogn. 18(4): 563. 24-metilen-cicloartan-3β- ol; metil cafeato; someranzina; acetato murranganona; murrayatina; murrangatina; meranzina hidrato; phebalosina; murranganona (h.). b) ------Saied, S. et al. 2008. Two new coumarins from Murraya paniculata. J. Asian Nat. Prod. Res. 10(6): 515. Murrmeranzina; murralonginal; minumicrolina; murrangatina; meranzina hidrato; hainanmurpanina (p.a.). 415.- Poncirus trifoliata “naranjo trébol, naranjo trifoliado”. Han, A. R. et al. 2007. A new flavanone glycoside from the dried immature fruits ofPoncirus trifoliata. Chem. Pharm. Bull. 55(8): 1270. (2R)-5-hidroxi-4’-metoxiflavanona-7-O-{β- glucopiranosil-(1→2)-β-glucopiranósido}; (2S)-poncirina; (2S)-naringina; (2S)- poncirenina (fr.). a) ------Starkermann, C. et al. 2007. Volatile organic sulfur-containing constituents in Poncirus trifoliata (L) Raf. (Rutaceae). J. Agric. Food Chem. 55(11): 4511. S-(3- hidroxi-1,1-dimetilpropil)-L-cisteína; S-[3-(acetiloxi)-1,1-dimetilpropil]-L-cisteína; S-[1-(2-hidroxietil)butil]-L-cisteína (fr.). b) ------Xu, G. H. et al. 2008. Terpenoids and coumarins isolated from the fruits of Poncirus trifoliata. Chem. Pharm. Bull. 56(6): 839. Hispidol (= (3R,23S,24R)- 25-metoxitirucala-7-en-3,23,24-triol); hispidol A 25metiléter (= (3S,23S,24R)-25- metoxitirucala-7-en-3,23,24-triol); 21α-metilmelianodiol (= (21R,23R)-epoxi-24S- hidroxi-21α-metoxitirucala-7-en-3-ona); 21β-metilmelianodiol (= (21R,23R)-epoxi- 24S-hidroxi-21β-metoxitirucala-7-en-3-ona); isoschninaliol (= 7-(6S-hidroxi-3,7- dimetil-2,7-octadienil)-oxi-6-metoxi cumarina); 21α,25-dimetilmelianodiol; 21 β,25-dimetilmelianodiol; cariofileno β-óxido; β-sitosterol; aurapteno; bergapteno; imperatorina; isoimperatorina; felopterina; umbeliferona; isoschinilenol; escopoletina; heraclenol-3”-metiléter; poncirina; naringina; ácido avenalúmico metiléster; bis(2-metilheptil)ftalato (fr.). c) ------In, J. L. et al. 2008. 21-Methylmelianodiols from Poncirus trifoliata as inhibitors of interleukin-5 bioactivity in pro-B cells. Planta Med. 74(4): 396. 21α- metilmelianodiol; 21β-metilmelianodiol. M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 75

416.- Zanthoxylum monogynum. Maia, J. G. S. et al. 2007. Leaf essential oil composition of Zanthoxylum monogynum St.-Hil. J. Essent. Oil Bear. Plants 10(4): 282. 20 constituyentes: citronelal (57,1 %); limoneno (13,8 %); citronelil acetato (13,1 %); citronelol (6,2 %) (muestra 1); 14 compuestos: 2-undecanona (70,2 %); citronelal (22,5 %) (muestra 2) (h.). 417.- Zanthoxylum rhoifolium “tebetarí”. Costa, J. G. M. et al. 2008. Chemical composition, antibacterial and larvicidal activities of Zanthoxylum rhoifolium Lam fruits essential oil. J. Essent. Oil Bear. Plants 11(6): 571. trans β-ocimeno (33,90 %); linalool (23,27 %); undecanona (16,19 %) (fr.). a) ------Brugnoli, S. et al. 2008. Derivados del labdano aislados de las hojas de Zanthoxylum rhoifolium Lam.XVII Congreso Italo-Latino-americano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. (13S)-labdano-8β,15-diol; (13R)-labdano-8 β,15-diol; 13(S)-8β-13-epoxilabd-14-eno (h.). b) ------Boehme, A. K. et al. 2008. Bioactivity and chemical composition of the leaf essential oils of Zanthoxylum rhoifolium and Zanthoxylum setulosum from Monteverde, Costa Rica. Nat. Prod. Res. 22(1): 31. Germacreno D (14,6 %); limoneno (12,5 %); trans-2-hexenal (11,3 %); β-elemeno (9,2 %); 2-undecanona (9,2 %); mirceno (7,9 %); biciclogermacreno (7,5 %); germacreno A (5,2 %) (h.). c) ------Rivera, A. et al. 2008. Revised structure by computational methods for a coumarin isolated from Zanthoxylum rhoifolium (Rutaceae). Nat. Prod. Comm. 3(3): 333. 4-metoxi-3-(3-metilbut-2-enil)-2H-cromen-2-ona.

SALICACEAE 418.- Casearia sylvestris “guasatunga, burro-caá”. Santos, A. G. dos et al. 2007. Clerodane diterpenes from leaves of Casearia sylvestris Swartz. Quim. Nova 30(5): 1100. 15-hidroxi-3-cleroden-2-ona; ácido (-)-hardwíckico; casearinas B yG (h.). a) ------Da Silva, S. L. et al. 2008. Antimicrobial activity of ethanol extract from leaves of Casearia sylvestris. Pharm. Biol. 46(5): 347. Isobutil galato-3,5- dimetiléter; metil galato-3,5-dimetiléter (h). b) ------Da Silva, S. L. et al. 2008. Isolation and characterization of ellagic acid

derivatives isolated from Casearia sylvestris SW aqueous extract with anti-PLA2 activity. Toxicon 52(6): 655. Ácidos: elágico, 3’-O-metilelágico, -3,3’-di-O- metilelágico y 3-O-metil-3’,4’-metilendioxi elágico (h.). c) ------Wang, W. et al. 2008.Chemical studies of Casearia sylvestris Swartz. 7th Annual Oxford International Conference on the Science of Botanicals & American Society of Pharmacognosy. Oxford. Estados Unidos. Casearinas U y V; silvestrisídos A y B; ácidos hardwíckico y patagónico; ent-3β, 18-dihidroxikaur-16- eno; espatulenol; blumenol B (= 7, 8-dihidrovomifoliol); N-metil-trans-4-hidroxi-L- prolina; ácido cinámico; soyacerebrósido; feofórbido; metilfeofórbido; β-sitosterol; stigmastano-3,6-diol; daucosterol; β-D-glucopiranósido-(3β)-stigmast-5-en-3-il- 6- nonadecanoato. 419.- Salix alba “sauce blanco, sauce plateado”. Du, Q. et al. 2007. Isolation and structure determination of a lignan from the bark of Salix alba. Nat. Prod. Res. 21(5): 451. Sisimbrifolina (ct.). 76 Miscelanea Nº 134, 2015

SALVINIACEAE 420.- Salvinia molesta “helecho acuático, helechito de agua”. Choudhary, M. I. et al. 2008. Phenolic and other constituents of fresh water fern Salvinia molesta. Phytochemistry 69(4): 1018. 6’-O-(3,4-dihidroxi benzoil)-β-D-glucopiranosil éster; 4-O-β-D-glucopiranósido-3-hidroxi metil benzoato; ácidos hipogálico y cafeico; paeoniflorina; picurósido; metilbenzoato (pl.).

SAPINDACEAE 421.- Paullinia elegans “cipó timbó”. Idem N° 198. Saponinas; flavonoides; glicósidos; terpenos; esteroides; triterpenos; alcaloides; cardiotónicos (h.). 422.- Matayba elaeagnoides “camboatá”. de Souza, M. T. et al. 2007. Phytochemical and antinociceptive properties of Matayba elaeagnoides Radlk. barks. Z. Naturforsch. 62c(7-8): 550. Lupeol; α y β amirina; β-sitosterol, -3-O-β-D-glucopiranósido; escopoletina; umbeliferona; betulina (ct.).

SAPOTACEAE 423.- Pouteria salicifolia “mata ojo”. Idem N° 198. Terpenos; triterpenos; esteroides; saponinas; alcaloides; flavonoides; glicósidos (h.).

SCROPHULARIACEAE 424.- Capraria biflora. Lyra, D. P. et al. 2007. Development and validation of a chromato- graphic method for the determination of biflorin obtained fromCapraria biflora roots. Lat. Am. J. Pharm. 26(1): 125. Biflorina (r.). a) ------De Vasconcellos, M. C. et al. 2008. Antitumor activity of biflorin, an o- naphthoquinone isolated from Capraria biflora. Biol. Pharm. Bull. 30(8): 1416. Biflorina (h.).

SMILACACEAE 425.- Smilax campestris “zarzaparrilla”. Rugna, A. et al.2008. Estudio fitoquímico comparativo de flavonoides entre diferentes especies deSmilax L. – Smilacaceae –XVII Congreso Italo-Latino-americano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. Derivados 3-O-mono, di y triglicosidados de quercetina y kaempferol y polímeros de procianidina. a) ------Rugna, A. et al. 2008. Variaciones en el contenido de los polifenoles foliares en Smilax campestris Griseb.- Smilacaceae- según su grado de desarrollo. Lat. Am. J. Pharm. 27(2): 247. Fenoles totales (27,60 mg); taninos totales (7,32 mg): taninos condensados (2,42 mg) (h. jóvenes); fenoles totales (18,53 mg); taninos totales (2,37 mg): taninos condensados (1,62 mg) (h. adultas). 426.- Smilax cognata. Idem N° 425. Derivados 3-O-mono, di y triglicosidados de quercetina y 3-O-diglicosidados de kaempferol y polímeros y dímeros de procianidina y propelargonidina (h.). 427.- Smilax fluminensis. Idem N° 425. Derivados 3-O-mono y diglicosidados de quercetina y derivados 3-O-diglicosidados de kaempferol (h.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 77

SOLANACEAE 428.- Cestrum parqui “duraznillo negro, hediondilla, parqui”. Fiorentino, A. et al. 2007. Lignans, neolignans and sesquilignans from Cestrum parqui l’Her. Biochem. Syst. Ecol. 35(6): 392. Pinorresinol; (+)-mediarresinol; (+)-siringarresinol; (+)-laricirresinol, -5’-metoxi; (+)-justicirresinol; (-)-berchemol; alcohol dehidroconiferilo; (-)-simulanol; treo y eritro-4’,4”,7”,9”-tetrahidroxi-3,3’,3”,5’- tetrametoxi-4,8”-oxi-7,9’:7’,9-diepoxilignano (h.). 429.- Dunalia spinosa “chumi chumi”. Erazo, S. et al. 2007. Metabolito activo de Dunalia spinosa (solanaceae), especie pre-andina chilena. XVI Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Withaferina A (= 26-δ-lactona-1-oxo-4β,27-dihidroxi-5,6-epoxi-ergostano-2,24- dien) (p.a.). a) ------Erazo, S. et al. 2008. Active metabolites from Dunalia spinosa resinous exudates. Z. Naturforsch. 63c(7-8): 492. Dunaurona; lupeol; β-sitosterol; escopoletina; quercetina; withaferina A (p.a.) 430.- Jaborosa caulescens var. caulescens “charruga”. Nicotra, V. E. et al. 2007. Withanolides with phytotoxic activity from Jaborosa caulescens var. caulescens and J. caulescens var. bipinnatifida. J. Nat. Prod. 70(5): 808. Jaborosalactona 38 (= [(20R,22R)-5β,6β:2α,21-diepoxi-12β,17β-dihidroxi-1-oxowitha-2,24-dien- 26,22-ólido]); 12-O-metiljaborosalactona 38 (= [(20R,22R)-5β,6β:2α,21-diepoxi- 12β-metoxi-17β-hidroxi-1-oxowitha-2,24-dien-26,22-ólido]); jaborosalactona 39 (= [(20R,22R)-5β,6β:2α,21-diepoxi-12β,17β-dihidroxi-1-oxowitha-24-en-26,22- ólido]); jaborosalactona 40 (= [(22S,23R)- 12α,22-epoxi-12β,17β,21-trihidroxi- 1-oxowitha-2,5,24-trien-26,23-ólido]); jaborosalactona 41 (= [(22S,23S)-12α,22- epoxi-12β,17β,21-trihidroxi-1-oxowitha-2,5,24-trien-26,23-ólido]); jaborosalactona 42 (= [(22S,23S)-5α-cloro-12α,22-epoxi-6β,17β,21-trihidroxi-1-oxowitha-2,5,24- trien-26,23-ólido]); jaborosalactona 43 (= [(22S,23S)-5α-cloro-12α,22-epoxi-12β- etoxi-6β,17β-dihidroxi-1-oxowitha-2,24-dien-26,22-ólido]) (p.a.). 431.- Jaborosa caulescens var. pinnatifida “yerba sapo” Idem N° 430. Jaborosalactona 39 (= [(20R,22R)-5β,6β:2α,21-diepoxi-12β,17β-dihidroxi-1-oxowitha-24-en-26,22- ólido]); jaborosalactona 40 (= [(22S,23R)- 12α,22-epoxi-12β,17β,21-trihidroxi- 1-oxowitha-2,5,24-trien-26,23-ólido]); jaborosalactona 41 (= [(22S,23S)-12α,22- epoxi-12β,17β,21-trihidroxi-1-oxowitha-2,5,24-trien-26,23-ólido]); jaborosalactona 42 (= [(22S,23S)-5α-cloro-12α,22-epoxi-6β,17β,21-trihidroxi-1-oxowitha-2,5,24- trien-26,23-ólido]); 12-O-etiljaborosalactona 42 [(22S,23R)-5α-chloro-12α,22-epoxi- 12β-etoxi-6β,17β-trihidroxi-1-oxowitha-2,24-dien-26,23-ólido] (p.a.). 432.- Jaborosa kurtzii. Ramacciotti, N. S. et al. 2007. Withanolides from Jaborosa kurtzii. J. Nat. Prod. 70(9): 1513. Jaborosalactona 43 (= [(20S,22S)-12α,22-epoxi-12β,17β- dihidroxi-1-oxowitha-2,5,24-trien-26,22-ólido]); jaborosalactona 44 (= [(20R,22R)- 17 β-hidroxi-1,12-dioxowitha-2,5,24-trien-26,22-ólido) (p.a.). 78 Miscelanea Nº 134, 2015

433.- Jaborosa laciniata “flor negra”. Cirigliano, A. M. et al. 2007. Withanolides from Jaborosa laciniata. J. Nat. Prod. 70(10): 1644. Jaborosalactona 45 (= ((22S,23S)- 12α,22-epoxi-1,6β,12β,17β-tetrahidroxiwitha-1,3,5(10),24-tetraen-26,23-ólido)); 12-O-metil-jaborosalactona 45 (= ((22S,23S)-12α,22-epoxi-1,6β,17β-tetrahidroxi- 12β-methoxiwitha-1,3,5(10),24-tetraen-26,23-ólido)); jaborosalactona 46 (= ((22S,23S)-12α,22-epoxi-5α,6β,17β,19-tetrahidroxi-12β-metoxi-1-oxowitha-2,24- dien-26,23-ólido)); jaborosalactona 47 (= ((22S,23S)-12α,22-epoxi-4,5α,6β,17β,19- pentahidroxi-12β-metoxi-1-oxowitha-24-en-26,23-ólido)); jaborosalactona 48 (= ((22S,23S)-6 β,19:12α,22-diepoxi-5α,12β,17β-trihidroxi-1-oxowitha-2,24-dien- 26,23-ólido)); jaborosalactona 49 (= ((22S,23S)-5α-cloro-12α,22-epoxi-6β,12β,17β- trihidroxi-1-oxowitha-2,24-dien-26,23-ólido); trechonólido A; jaborotetrol; 12-O- metiljaborosotetrol (p.a.). 434.- Lycium barbarum “cambrón, espino cambrón”. Gao, Z. et al. 2008. Glycerogalactolipids from the fruit of Lycium barbarum. Phytochemistry 69(16): 2856. (2S)-1-O-palmitoil-2-O-linolenoil-3-O-[α-D-galactopiranosil-(1”→6’)-(3”- O-linolenoil)-β-D-galacto-piranosil]glicerol; (2S)-1-O-palmitoil-2-O-linolenoil-3- O-[α-D-galactopiranosil-(1”→6’)-(3”-O-linoleoil)-β-D-galactopiranosil]glicerol; (2S)-1-O-palmitoil-2-O-linolenoil-3-O-[α-D-galactopiranosil-(1”→6’)-(3”-O- palmitoil)-β-D-galactopiranosil]glicerol; (2S)-1-O-palmitoil-2-O-linoleoil-3-O-[α-D- galactopiranosil-(1”→6’)-(3”-O-palmitoil)-β-D-galactopiranosil]glicerol (fr.). a) ------Gao, Z. et al. 2008. Phytochemical investigation of Lycium barbarum fruits. 7th Annual Oxford International Conference on the Science of Botanicals & American Society of Pharmacognosy. Oxford. Estados Unidos. 19 compuestos: sitosteroles; 5- heterocíclicos; fenólicos; glicosfingolípidos; glicósidos con una cadena alquil poliinsaturada (fr.). b) ------Inbaraj, B. S. et al. 2008. Determination of carotenoids and their esters in fruits of Lycium barbarum Linnaeus by HPLC-DAD-APCI-MS. J. Pharm. Biomed. Anal. 47(4-5): 812. Zeaxantina monopalmitato y dipalmitato; β-criptoxantina monopalmitato; all-trans-β-caroteno; all-trans-zeaxantina (fr.). 435.- Physalis angulata “tomate de invierno”. He, Q. P. et al. 2007. Cytotoxic withanolides from Physalis angulata L. Chem. Biodiv. 4(3): 443. Physagulinas L, M, N, O (p.a.). a) ------Damu, A. G. et al. 2007. Isolation, structures, and structure-cytotoxic activity relationships of withanolides and physalins from Physalis angulata. J. Nat. Prod. 70(7): 1146. Withangulinas B, C, D, E, E, F, G, H; physalina; physalina W (pl.). b) ------Lee, S. W. et al. 2008. Withangulatin I, a new cytotoxic withanolide from Physalis angulata. Chem. Pharm. Bull. 56(2): 234. Withangulatina I (= (20S,22R)- 15α-acetoxi-5β,6β-epoxi-14α-hidroxi-1,4-dioxo-witha-2,16,24-trienólido) (pl.). c) ------Vieira, N. C. et al. 2008. Trypanocidal activity of a new pterocarpan and other secondary metabolites of plants from Northeastern Brazil flora. Bioorg. Med. Chem. 167(4): 1676. Physalina F. 436.- Solanum melongena “berenjena”. Rincón, M. D. et al. 2007. Obtención de la oleorresina de la berenjena (Solanum melongena L.) y su posible uso industrial. Sci. Tech. 1(33): 457. Nasunina (= delfinidina-3-(p-cumaroilrutinósido)-5-glucósido); vitaminas A y E; ácidos palmítico, esteárico, linoleico, pentildecanoato, etanotioico, benzoico (res.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 79

STERCULIACEAE 437.- Melochia chamaedrys. Dias, G. C. D. et al. 2007. Constituents of the roots of Melochia chamaedrys. Phytochemistry 68(5): 668. Chamaedrina; adouetina X; frangulalina; scutianina B y C; waltheriona A; ácido parasórbico; propacina; epicatequina (r.). a) ------Dias, G. C. D. et al. 2007. Alkaloids from Melochia chamaedrys. Planta Med. 73(3): 289. Chamaedrona; antidesmnona (r.). 438.- Waltheria douradinha “douradiña”. Gressler, V. et al. 2008. Quinolone alkaloids from Waltheria douradinha. Phytochemistry 69(4): 994. Waltheriona A, B; vanessina; antidesmona; O-metiltembamida (tll.).

THEACEAE 439.- Camellia sinensis “te”. Yoshikawa, M. et al. 2007. Bioactive saponins and glycosides. XXV. Acylated oleanane-type triterpene saponins from the seeds of tea

plant (Camellia sinensis). Chem Pharm. Bull. 55(1): 57. Theasaponinas A4, A5, C1,

E8, E9, G1 y H1 (s.). a) ------Morikawa, T. et al. 2007. Bioactive saponins and glycosides. XXVIII. New triterpene saponins, foliatheasaponins I, II, III, IV, and V, from Tencha (the leaves of Camellia sinensis). Chem. Pharm Bull. 55(2): 293. Foliatheasaponinas I, II, II, IV y V (h.). b) ------Yoshikawa, M. et al. 2007. Medicinal flowers. XIV. New acylated oleanane-type triterpen oligoglycosides with antiallergic activity from flower buds of chinese tea plant (Camellia sinensis). Chem. Pharm. Bull. 55(4): 598. Floratheasaponinas A, B, C, D, F, G, H, I (pllo.). c) ------Lee, V. S.Y. et al. 2008. Structural determination and DPPH radical- scavenging activity of two acylated flavonoid tetraglycosides in oolong tea (Camellia sinensis). Chem. Pharm. Bull. 56(6): 851. Kaempferol-3-O-[2-(E)- cumaroil-3-O-β-D-glucosil-3-O- β-D-glucosilrutinósido; quercetina-3-O-[2-(E)- cumaroil-3-O-β-D-glucosil-3-O- β-D-glucosilrutinósido (tll.). d) ------Yoshikawa, M. et al. 2008. Medicinal flowers. XXII. Structures of chakasaponins V and VI, chakanoside I, and chakafavonoside A from from flower buds of chines tea plant (Camellia sinensis). Chem. Pharm. Bull. 56(9): 1297. Chakasaponinas V y VI; chakanósido I; chakaflavonósido A (pimp.).

THELYPTERIDACEAE 440.- Thelypteris torresiana. Lin, A. S. et al. 2007. Novel flavonoids of Thelypteris torresiana. Chem. Pharm. Bull. 55(4): 635. Flavotorresina; multiflorina C .

TILIACEAE 441.- Tilia x viridis. Manuele, M. G. et al. 2008. Antiproliferative and antioxidant activities of Tilia x viridis: contribution of monoterpenes and scopoletin. XVII Congreso Italo-Latino-americano e Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. Limoneno (7,37 ± 0,5 %); α-pineno (4,8 ± 0,2 %); β-pineno (5,77 ± 0,3 %); escopoletina (9,5 ± 0,1 %). 80 Miscelanea Nº 134, 2015

VERBENACEAE

442.- Acantholippia seriphioides “tomillo andino, tomillo del campo, tomillo serrano”. Di Leo Lira, P. et al. 2007. Composición del aceite esencial de Acantholippia seriphioides (A. Gray) Mold. en poblaciones de San Luis y Mendoza. XXXI Jornadas Argentinas de Botánica. Corrientes. Argentina. En Las Horquetas: timol (57,1 %); p-cimeno (20,8 %); Zanjitas: timol (61,7 %); p-cimeno (21,3 %); Paso de las Carretas, quimiotipo a: carvacrol (44,8-49,9 %); p-cimeno (13,1-16,4 %); γ-terpineno (12,3-14,6 %); quimiotipo b: dihidrocarvona (72,5-76,0 %); limoneno (13,9-17,1 %) (p.a.). 443.- Aloysia citriodora “verbena limón”. Di Leo Lira, P. et al. 2008. Characterization of lemon verbena (Aloysia citriodora Palau) from Argentina by the essential oil. J. Essent. Oil Res. 20(4): 350. Limoneno (40,3 %); β-thujona (73,4 %); geranial (29,0 %); citronelal (21,6 %); neral (20,0 %) (ac.es.). 444.- Aloysia gratisima var. gratisima. Ricciardi, G. et al. 2007. Impacto de los componentes quirales en el aceite esencial de Aloysia gratisima var. gratisima (Gill. et Hook.) Tronc. del nordeste argentino.IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmaco-botánica. Tucumán. Argentina. Linalool (13,9 %); germacreno D (10,0 %); 3R-(-)-linalool (99,9 %); 3S-(+)-linalool (0,115 %); 1S-(-)- germacreno D (98,6 %); 7R-(+)-germacreno D (1,4 %) (ac.es.). 445.- Aloysia polystachya “burrito, té de burro, poleo de Castilla, poleo real, palo de Castilla”. Juárez, M. A. et al. 2007. Estudio del aceite esencial de Aloysia polystachya (Griseb.) Mold. de La Rioja y Jujuy. XXXI Jornadas Argentinas de Botánica. Corrientes. Argentina. En La Rioja: α-tuyona (64,7-73,5 %); β-tuyona (5,5-7,9 %); en Huaja: carvona (7,3 %); en Olta y Punta de los Llanos: limoneno (2- 4 %) y carvacrol (2-3 %); en Jujuy: carvona (26,3-47,4 %); α-tuyona (30,6-45,4 %); limoneno; cíñelo; β-tuyona (p.a.). 446.- Aloysia triphylla “cedrón”. Di Leo, Lira, P. et al. 2008. Characterization of lemon verbena (Aloysia citriodora Palau) from Argentina by the essential oil. J. Essent. Oil Res. 20(4): 350. Neral (20,0 %); geranial (29,0 %); limoneno (40,3 %); citronelal (21,6 %); β-thujona (73,4 %) (ac.es.). a) ------Sabini, L. et al. 2008. Evaluación de la toxicidad inducida por el aceite esencial de Aloysia triphylla obtenido de plantas de distinta procedencia. XXV Jornadas Científicas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Tucumán. Argentina. Neral (12,4-29,2 %); geranial (3,3-29,3 %); mezcla racémica citral (15,7- 58,4 %) y limoneno (8,2-21,3 %) (h., tll.). b) ------Freytes, S. A. et al. 2008. Efectos del aceite esencial de Aloysia triphylla sobre el crecimiento de Staphylococcus aureus. XXV Jornadas Científicas Asociación Biología Tucumán. Tafí del Valle. Tucumán.Argentina. Limoneno (2,9 %); neral (20,0 %); geranial (29,2 %); espatulenol (8,9 %); óxido de cariofileno (7,0 %) (ac.es.). 447.- Aloysia virgata var. platyphylla. Ricciardi, G. et al. 2008. Geographical and ontological variations in Aloysia virgata var. platyphylla (Briquet) Moldenke essential oil from Corrientes. J. Essent. Oil. Bear. Plants 11(3): 252. Sabineno; β- cariofileno; germacreno D (p.a.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 81

448.- Lantana camara “lantana, bandera española”. Begum, S. et al. 2008. Two new pentacyclic triterpenoids from Lantana camara Linn. Chem. Pharm. Bull. 56(9): 1317. Ácidos: lantanoico, camaranoico, lantánico, camarínico, oleanónico y ursólico (p.a.). a) ------Begum, S. et al. 2008. Pentacyclic triterpenoids from the aerial parts of Lantana camara and their nematicidal activity. Chem. Biodiv. 5(9): 1856. Ácidos: camarólico, lantrigloilico, amárico, lantanólico, lantanílico, pomólico, camarínico, lantoico y ursólico; camarina; lantacina; camarinina; ácidos: 3,25-epoxi-3α-hidroxi- 22β-{[(S)-3-hidroxi-2- metilidenbutanoil]oxi}olean-12-en-28-oico y 3,25-epoxi-3α- hidroxi-22β- [(3-metilbut-2-enoil)oxi]olea-9(11),12-dien-28-oico (p.a.). b) ------Begum, S. et al. 2008. Antimycobacterial activity of flavonoids from Lantana camara Linn. Nat. Prod. Res. 22(6): 467. Linarósido; lantanósido. c) ------De Oliveira, J. C. S. et al. 2008. Essential oil composition of two Lantana species from mountain forests of Pernambuco (northeast of Brazil). J. Essent. Oil Res. 20(6): 530. Germacreno D (28,6 %); germacreno D-4-ol (19,9 %); β-cariofileno (16,2 %); biciclogermacreno (14,7 %) (h.). d) ------Begum, S. et al. 2008. Noroleanane triterpenoids from the aerial parts of Lantana camara. Helv. Chim. Acta 91(3): 460. Lantadienona (= (3β,22β)-3,25- epox-3-hidroxi-22-{[(2Z)-2-metil-1-oxobut-2-enil]oxi}-28-noroleana-12, 17-dien- 11-ona); camaradienona (= (3β)-3,25-epoxi-3-hidroxi-28-noroleana-12,17-dien- 11- ona); lantadenos A y B; β-sitosterol 3-(β-D- glucopiranósido); ácidos: camaríco, lantanílico, lantanólico y camangeloiloico (p.a.). 449.- Lantana lilacina. Pereira, A. C. et al. 2008. Purification of an antibacterial compound from Lantana lilacina. Rev. Bras. Farmacogn. 18(2): 204. Acteósido (= [ß-3,4-dihidroxifenil)-etil]-(3’-O-α-L-ramnopiranosil)-(4’-O-cafeoil)-β-D- glicopiranósido) (h.). 450.- Lantana trifolia. Burgos, E. et al. 2008. Componentes volátiles de las flores de Lantana trifolia L. que crece en Mérida Venezuela. XVII Congreso Italo- Latinoamericano de Etnomedicina “Bernardino d’Ucria”. Palermo. Italia. 35 Constituyentes, los mayoritarios: γ-muuroleno (36,90 %); cariofileno (19,85 %); copaeno (3,84 %) (fl.). 451.- Lippia alba “salvia, salvia morada, falsa melisa”. Ricciardi, G. et al. 2007. Quimiotipos de Lippia alba (Miller) N. E. Br. identificados en el nordeste argentino. XVI Congreso Italo-Latino-americano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Ejemplares de Saenz Peña (Chaco): citral (21,7 %); linalool (40,8 %); β-cariofileno (5,1 %); germacreno D (4,6 %). Ejemplares de Perichón (Corrientes): mircenona (47,1 %); β-mirceno (15,2 %); (Z)-ocimenona (9,8 %); (E)-ocimenona (3,2 %). Ejemplares de Santa Ana (Corrientes): mircenona (35,8 %); β-mirceno (13,8 %); (Z)-ocimenona (8,0 %); (E)-ocimenona (2,3 %) (ac.es.). a) ------Filho, J. G. S. et al. 2007. Distribution of iridoid glucosides in plants from the genus Lippia (Verbenaceae): An investigation of Lippia alba (Mill.) N.E. Brown. Nat. Prod. Commm. 2(7): 715. Theviridósido; mussaenósido; gardósido (r.). b) ------Durán, D. G. et al. 2007. Estudio comparativo de la composición química de aceites esenciales de Lippia alba provenientes de diferentes regiones de Colombia, y efecto del tiempo de destilación sobre la composición del aceite. Rev. Sci Tech. 33: 435. Quimiotipo 1: carvona (41 %); quimiotipo 2: citral (neral + geranial 55 %); quimiotipo 3: carvona (25 %), limoneno (22 %) y citral (21 %) (h., tll.). 82 Miscelanea Nº 134, 2015

c) ------Timóteo, P. et al. 2008. HPLC/DAD/ESI-MS analysis of non-volatile constituents of three Brazilian chemotypes of Lippia alba (Mill.) N. E. Brown. Nat. Prod. Comm. 3(12): 2017. Verbascósido; tricina-7-O-diglucurónido; luteolin-7-O- glucurónido; mono-and di-O-glucu-rónico derivados de apigenina y tricina; ácido geniposídico; thevésido; 8-epi-loganina; mussaenósido (h.). 452.- Lippia citriodora”cedrón”. Argyropoulou, C. et al. 2007. Chemical composition of the essential oil from leaves of Lippia citriodora H.B.K. (Verbenaceae) at two developmental stages. Biochem. Syst. Ecol. 35(12): 831. Geranial; neral; limoneno (h.). 453.- Lippia integrifolia “incayuyo, poleo, manzanilla, yerba del inca”. Cerda García Rojas, C. M. et al. 2008. Vibrational circular dichroism of africanane and lippifoliane sesquiterpenes from Lippia integrifolia. J. Nat. Prod. 71(6): 967. (4R,9R,10R)-(+)-african-1(5)-eno-2,6-diona; (4R,9S,10R)-lippifoli-1(6)-en-5-ona (ac.es.). a) ------Catalán, C. A. N. et al. 2008. El aceite esencial de Lippia integrifolia (incayuyo) fuente de cetonas con esqueletos sesquiterpénicos sin precedentes. Jornadas Nacionales de Plantas Aromáticas Nativas y sus Aceites Esenciales, INTAUNSL, Merlo, San Luis. Cetonas con esqueletos sesquiterpénicos (ac.es.). 454.- Lippia junelliana “salvialora, salvia de la hora, verbena”. Juárez, M. et al. 2007. Estudio del aceite esencial de Lippia junelliana (Mold.). Troc. obtenido de colectas de Tucumán, Argentina. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Limoneno; carvona; davanona; piperitona; 1,8-cineol; α-bisabolol; (E)-nerolidol; espatulenol (p.a.). 455.- Stachytarpheta cayennensis “te criollo”. Adebajo, A. C. et al. 2007. Hypoglycaemic constituents of Stachytarpheta cayennensis leaf. Planta Med. 73(3): 241. 6β-hidroxi- ipolamida; ipolamida; isoverbascósido (h.). a) ------Froelich, S. et al. 2008. Phenylethanoid glycosides from Stachytarpheta cayennensis (Rich.) Vahl, Verbenaceae, a traditional antimalarial medicinal plant. Braz. J. Pharmacogn. 18(4): 517. Leucosceptósido A; martinósido; jionósido D (pl.). 456.- Verbena tenuisecta. Daboob, A. A. et al. 2008. Chemical constituents and antimicrobial activity of Verbena tenuisecta.7th Joint Meeting of GA, AFERP, ASP, PSE & SIF. Atenas. Grecia. 30 compuestos: 1-octen-3-ol (52,87 %); biciclo[3.2.0]- heptan-2-ona-6-hidroxi-5-metil-6-vinilo (13,89 %); limoneno (9,33 %); luteolina; apigenina; crisoeriol-7-O-glucósido, -7-O-ramno-arabinósido; isoramnetina-3-O- ramno-glucósido (pllo.). 457.- Vitex cymosa “taruma”. Sánchez, F. et al. 2007. Estudio de la composición de los aceites esenciales de plantas medicinales de la provincia de Misiones. Vitex cymosa. XVI Congreso Italo-Latinoamericano de Etnomedicina “Carlo Luigi Spegazzini”. La Plata. Argentina. Germacreno A, B y D; E-cariofileno; α-copaeno; espatulenol; metilchavicol; α-cadinol; β-culbebeno; α-humuleno; globulol; elemol; β-elemeno; δ-cadineno; α y β-pineno (h.). a) ------Leitão, S. G. et al. 2008. Caffeoylquinic acid derivatives from two Brazilian Vitex species. Biochem. Syst. Ecol. 36(4): 312. Ácido-3,5-dicafeoilquínico (fr.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 83

VISCACEAE 458.- Phoradendron liga “liga”. Wagner, M. L. et al. 2007. Estudio comparativo de los polifenoles en diferentes poblaciones de Phoradendron liga-Viscaceae de la República Argentina. IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano Farmacobotánica. Tucumán. Argentina. Apigenina-6-C-xilósido, -6-C-galactósido, -8-C-glucósido; luteolina-8-C-xilósido, -6-C-xilosil-8-C-glucósido, -6-C-glucosil- 8-C-glucósido, -8-C-xilosil-7-O-xilósido; leucoapigeninidina; leucoluteolinidina; proapigeninidina; dímero de apigeninaflavona; dímero de luteolinflavano.

VITACEAE 459.- Cissus verticillata “cortinas del cielo”. Da Silva, L. et al. 2007. Bicyclogermacrene, resveratrol and fungitoxic activity on leaves extracts of Cissus verticillata L. Nicolson & Jarvis (Vitaceae). Rev. Bras. Farmacogn. 17(3): 361. Resveratrol; biciclogermacreno (h.).

VOCHYSIACEAE 460.- Qualea grandiflora. Ayres, M. C. C. et al. 2008. Chemical constituents from leaves of the Qualea grandiflora: attribution of the NMR data of two diastereoisomeric acylated flavonoid glycosides. Quim. Nova 31(6): 1481. Kaempferol-3-O-α-L-(4”- E-p-cumaroil)-ramnósido,-3-O-α-L-(4”-Z-p-cumaroil)-ramnósido; escualeno; fitol; lupeol; α- y β-amirina; sitostenona; sitosterol, -3-O-β-D-glucopiranósido; ácidos ursólico y oleanólico (h.). 461.- Qualea parviflora.Nasser, A. L. M. et al. 2008. Identification of ellagic acid derivatives in methanolic extracts from Qualea species. Z. Naturforsch. 63c(11- 12): 794. Ácido 3,3’-di-O-metil elágico-4-O-β-D-glucopiranósido; ácido 3-O-metil elágico-4’-O-α-L-ramno-piranósido; ácido 3,3’,4-tri-O-metil elágico-4’-O-β-D- glucopiranósido; ácido 3,3’-di-O-metil elágico (ct.).

WINTERACEAE 462.- Drimys andina “canelo enano”. Muñoz Concha, D. et al. 2007. Presence of polygodial and drimenol in Drimys populations from Chile. Biochem. Syst. Ecol. 35(7): 434. Drimenol; poligodial (h.). 463.- Drimys angustifolia “casca d’anta, cataia”. Limberger, R. P. et al. 2007. Comparative analysis of volatiles from Drimys brasiliensis Miers and D. angustifolia Miers (Winteraceae) from Southern Brazil. Biochem. Syst. Ecol. 35(3): 130. Compuestos mayoritarios: sabineno (11,4 %); mirceno (8,2 %); terpinen-4-ol (7,5 %); limoneno (4,5 %); espatulenol (3,8 %); linalool (2,8 %) (h.); biciclogermacreno (25,4 %); espatulenol (10,0 %); linalool (2,7 %); terpinen-4-ol (1,3 %) (ct. tll.). 464.- Drimys brasiliensis “casca d’anta, cataia”. Idem N° 464. Biciclogermacreno (12,3 %); limoneno (8,4 %); mirceno (5,8 %) (h. frescas); sabineno (12,5 %); aromadendreno (12,1 %); terpinen-4-ol (9,7 %); mirceno (5,8 %) (h. secas); biciclogermacreno (18,7 %); α-gurjuneno (9,8 %); espatulenol (6,9 %) (ct. tll.); biciclogermacreno (28,3 %); α-gurjuneno (9,7 %); limoneno (6,5 %); linalool (4,5 %) (fr.). 84 Miscelanea Nº 134, 2015

a) ------Limberger, R. P. et al. 2008. Essential oil from leaves and stem bark of southeastern Drimys brasiliensis Miers (Winteraceae). J. Essent. Oil Res. 20(6): 504. Sabineno (9,5 %): mirceno (10,5 %); limoneno (10,6 %); ciclocolorenona (16,0 %); fenilpropano (h.); ciclocolorenona (28,3 %); espatulenol (22,9 %); fenilpropano (ct. tll.) b) ------Riveiro, V. L. S. et al. 2008. Chemical composition and larvicidal properties of the essential oils from Drimys brasiliensis Miers (Winteraceae) on the cattle tick Rhipicephalus (Boophilus) microplus and the brown dog tick Rhipicephalus sanguineus. Parasitol. Res. 102(3): 531. Ciclocolorenona (30,4 %); biciclogermacreno (11,8 %); α-gurjuneno (6,0 %). 465.- Drimys winteri “canelo”. Idem N° 462. Drimenol; poligodal (h.).

XIMENACEAE 466.- Ximenia americana “albaricoque, pata”. Makai, V. A. et al. 2008. In vitro antitrypanosomal activity of aqueous and methanolic crude extracts of stem bark of Ximenia americana on Trypanosoma congolense. J. Med. Plant Res. 2(3):55. Taninos; flavonoides; saponinas; terpenos; antraquinonas (ct.). a) ------Silva de Araujo, M. R. et al. 2008. Chemical constituents of Ximenia americana. Nat. Prod. Comm. 3(6): 857. 3-O(β-dextro-glucopiranosil)-sitosterol; ácidos oleanólico, -3-oxo, 3β-hidroxicicloart 24 en-26 oico y betúlico; stigmasterol (tll.).

ZINGIBERACEAE 467.- Hedychium coronarium “caña de ámbar, mariposa de ámbar”. Joy, B. et al. 2007. Antimicrobial activity and chemical composition of essential oil from Hedychium coronarium. Phytother. Res. 21(5): 439. 1,8-cineol (41,42 %); β-pineno (10,39 % ); α-terpineol (8,8 %); 1,8-cineol (37,44 %) (rz. frescos); β-pineno (17,4 %); α- terpineol (6,7 %) (rz.) a) ------Sabulal, B. et al. 2007. Chemical composition and antimicrobial activities of the essential oils from the rhizomes of four Hedychium species from South India. J. Essent. Oil Res. 19(1): 93. 1,8-cineol (48,7 %); sesquiterpenos (0,5 %) (rz.). b) ------García Ríos, A. et al. 2007. Análisis por HRGC de la composición de extractos y fracciones volátiles de flores deHedychium coronarium Köeng (fam. Zingiberaceae). Rev. Sci. Tech. 1(33): 225. SDE: α-pineno (6,2 %); β -pineno (16,7 %); 1,8-cineol (5,7 %); trans- β-ocimeno (4,2 %); linalol (3,6 %); β-cariofileno (9,6 %); β-farneseno (5,6 %); óxido de cariofileno (7,5 %); HS-SPME: 1,8-cineol (9,3 %); trans- β-ocimeno (24,2 %); benzoato de metilo (20,0 %); linalool (27,3 %) (fl.). c) ------Nakamura, S. et al. 2008. Medicinal flowers XXIV. Chemical structures and hepatoprotective effects of constituents from flowers ofHedychium coronarium. Chem. Pharm. Bull. 56(12): 1704. Coronalactósidos I y II; coronadieno; coronanirina C; 15-hidroxi-labda-8(17),11,13-trien-16,15-ólido (fl.). d) ------Chimnoi, N. et al. 2008. Labdane diterpenes from the rhizomes of Hedychium coronarium. Nat. Prod. Res. 22(14): 1249. (E)-labda-8(17),12-dien- 15,16-ólido; coronarina D, -metiléter, etiléter; isocoronarina D; coronarina B; labda- 8(17),11,13-trien-15,16-ólido; (E)-labda-8(17),12-dien-15,16-dial; 16-hidroxilabda- 8(17),11,13-trien-15,16-ólido (rz.). M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 85

e) ------Joshi, S. et al. 2008. Terpenoid compositions, and antioxidant and antimicrobial properties of the rhizome essential oils of different Hedychium species. Chem. Biodivers. 5(2): 299. trans-meta-menta-2,8-dieno; linalool (rz.).

ZYGOPHYLLACEAE 468.- Tribulus terrestris “roseta”. Kancheva, V. et al. 2007. Antioxidative properties of Tribulus terrestris from Bulgaria and radical scavenging activity of its flavonoid components. Riv. Ital. Sostanze Gr. 84(4): 210. Kaempferol, -3-O-β-D-glucósido, -3-O-β-D-rutinósido; quercetina, -3-O-β-D-glucósido, -3-O-β-D-rutinósido; isoramnetina, -3-O-β-D-glucósido, -3-O-β-D-rutinósido, -3-O-β-D-(6”-p-cumaroil)- glucósido; tilirósido (= kaempferol-3-O- β -D-(6”-p-cumaroil)-glucósido). a) ------Xu, Y. J. et al. 2007. Isolation and identification of a new furosteroidal saponin from fruits of Tribulus terrestris L. Chem. J. Chin. Univers. 28(3): (484). Tribulúsido A (= 26-O-β-D-glucopiranosil-(25R)-5α-furost-3β, 22α,26-triol-3-0-[β- D-xilopiranosil(1→3)]-[β-D-xilopiranosil(1→2)]-β-D-glucopyranosyl (1→4)-[α-L- ramnopiranosil(1→2)]-β-D-galactopiranósid) (fr.). b) ------Lv, A. L. et al. 2008. One new cinnamic imide derivative from the fruits of Tribulus terrestris. Nat. Prod. Res. 22(11): 1007. Tribulusimida C; N-p- coumaroiltiramina; terrestriamida; N-trans-cafeoiltiramina (fr.). c) ------Xu, T. H. et al. 2008. Two new furostanol saponins from Tribulus terrestris L. J. Asian Nat. Prod. Res. 10(5): 4519. Tribufurósido B (= 26- O-β-D-glucopiranosil-(25S)-5α-furost- 20(22)-en-2α,3β,26-triol-3-O-β-D- galactopiranosil(1→2)-β-D-glucopiranosil(1→2)-β-D-galactopiranósido); tribufurósido C (= 26-O-β-D-glucopiranosil-(25S)-5α-furost-20(22)-en- 2α,3β,26-triol-3-O-β-galactopiranosil(1→ 2)-β-D-glucopiranosil(1→2)-β-D- galactopiranósido) (fr.). d) ------Yuan, W. H. et al. 2008. Two furostanol saponins from the fruits of Tribulus terrestris. Chin. J. Nat. Med. 6(3): 172. Terrestrósido A (= 3-O-(β-D- xilopiranosil(1→3)-[β-D-xilopiranosil(1→2)]- β-D-glucopiranosil(1[4)-[α-L- ramnopiranosil(1→2)]-β-D-galactopiranosil}-26-O-β-D-glucopiranosil-5α-furost- 12-ona-22-metoxil-3β, 26-diol); terrestrósido B (= 3-O-(β-D-xilopiranosil (1→3)-[β- D-xilopiranosil(1→2)]-β-D-glucopiranosil(1→4)-[α-L-ramnopiranosil(1→2)1-β-D- galactopiranosil}-26-O-β-D-glucopiranosil-5a-furost-22-metoxil-3β, 26-diol) (fr.).

M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 87

INDICE ESPECIES Acantholippia seriphioides 442 Baccharis arctostaphylloides 66 Acanthospermum hispidum 55 Baccharis articulata 67 Achyrocline flaccida 56 Baccharis dracunculifolia 68 Achyrocline hyperchlora 57 Baccharis gaudichaudiana 69 Acroptilon repens 58 Baccharis grisebachii 70 Adiantum tetraphyllum 386 Baccharis incarum 71 Agapanthus africanus 2 Baccharis latifolia 72 Alchornea glandulosa 218 Baccharis microdonta 73 Alibertia sessilis 398 Baccharis salicifolia 74 Aloysia citriodora 443 Baccharis schultzii 75 Aloysia citriodora 443 Baccharis trinervis 77 Aloysia gratisima var. gratisima 444 Baccharis uncinella 78 Aloysia polystachya 445 Bacharis trimera 76 Aloysia triphylla 446 Bacopa monnieri 363 Aloysia virgata var. platyphylla 447 Ballota nigra 266 Alternanthera maritima 6 Bauhinia forficata 235 Amaranthus spinosus 7 Bauhinia ungulata 236 Ambrosia scabra 59 Bellardia trixago 340 Ambrosia tenuifolia 60 Bellis perennis 79 Amorpha fruticosa 232 Bidens alba 80 Anacardium humile 10 Bidens pilosa var. minor 81 Andira anthelmia 233 Bidens squarrosa 82 Anethum graveolens 26 Blepharodon nitidum 37 Annona cherimolia 21 Boerhavia diffusa 334 Annona montana 22 Brassica napus 171 Anthriscus sylvestris 27 Broussonetia papyrifera 315 Aphyllocladus spartioides 61 Buddleja globosa 178 Apium nodiflorum 28 Butia capitata 45 Aptenia cordifolia 3 Butia yatay 46 Aquilegia vulgaris 388 Cajanus cajan 237 Aristolochia chamissonis 47 Calceolaria alba 179 Aristolochia chilensis 48 Calceolaria polifolia 180 Aristolochia elegans 49 Calea uniflora 83 Aristolochia esperanzae 50 Calophyllum brasiliense 195 Aristolochia malmeana 51 Camellia sinensis 439 Aristolochia melastoma 52 Campomanesia adamantium 318 Aristolochia ridicula 53 Campomanesia pubescens 319 Artemisia absinthium 62 Cannabis sativa 181 Artemisia copa 63 Capraria biflora 424 Artemisia douglasiana 64 Casearia sylvestris 257 Artemisia mendozana 65 Casearia sylvestris 418 Asclepias curassavica 34 Cassia tora 238 Asparagus officinalis 54 Cecropia glaziovii 185 Aspidosperma pyrifolium 35 Cecropia pachystachya 186 Aspidosperma ramiflorum 36 Cedrus deodara 348 Astragalus elongatus 234 Celtis iguanea 190 Astronium graveolens 11 Celtis tala 191 Austroplenckia populnea 187 Cestrum parqui 428 88 Miscelanea Nº 134, 2015

Chenopodium quinoa 193 Echinodorus grandiflorus ssp. aureus 4 Chiliotrichum diffusum 84 Eclipta prostrata 94 Chomelia obtusa 399 Elephantopus mollis 95 Chromolaena odorata 85 Ephedra breana 216 Chrysanthemum coronarium 86 Epidendrum mosenii 338 Chuquiraga aurea 87 Eriobotrya japonica 395 Chuquiraga avellanedae 88 Eriocaulon ligulatum 217 Cissus verticillata 459 Eruca sativa 174 Citrus aurantifolia 412 Erythrina speciosa 242 Colliguaya integerrima 219 Esenbeckia febrifuga 413 Combretum fruticosum 198 Eucalyptus robusta 320 Combretum leprosum 199 Eucalyptus saligna 321 Condalia buxifolia 389 Eugenia brasiliensis 322 Conyza bonariensis 89 Eugenia hyemalis 323 Copaifera langsdorfii 239 Eugenia mansoni 324 Cordia curassavica 168 Eugenia repanda 324’ Cordia salicifolia 169 Eugenia uniflora 325 Cordia verbenacea 170 Eupatorium arnottianum 96 Coreopsis lanceolata 90 Eupatorium betonicaeforme 97 Coronopus didymus 172 Eupatorium buniifolium 98 Coutarea hexandra 400 Eupatorium polystachium 99 Crataegus monogyna 394 Euphorbia helioscopia 223 Crepis vesicaria 91 Euphorbia heterophylla 224 Croton lobatus 220 Euphorbia hirta 225 Croton tenuissimus 221 Euphorbia huanchahana 226 Croton urucurana 222 Euphorbia sp. 227 Cryptocarya mandioccana 292 Evolvulus alsinoides 202 Cryptocarya moschata 293 Feijoa sellowiana 326 Cunila angustifolia 267 Flourensia fiebrigii 100 Cuphea carthagenensis 299 Flourensia oolepis 101 Cyathea phalerata 208 Flourensia thurifera 102 Cymbopogon citratus 367 Foeniculum vulgare 29 Cyperus articulatus var. articulatus 209 Frankenia triandra 258 Cyperus articulatus var. nodosus 210 Gaillardia megapotamica Cyperus prolixus 211 var. scabiosoides 103 Cyperus rotundus 212 Galianthe brasiliensis 401 Dalea boliviana 240 Galinsoga parviflora 104 Dasyphyllum inerme 92 Garcinia brasiliensis 196 Davilla elliptica 213 Genipa americana 402 Desmodium uncinatum 241 Gentianella multicaulis 259 Dioscorea polygonoides 214 Gentianella parviflora 260 Diplotaxis tenuifolia 173 Geoffroea decorticans 243 Discaria americana 390 Glechoma hederacea 268 Doniophyton anomalum 93 Glycine max 244 Drimys andina 462 Gochnatia foliolosa 105 Drimys angustifolia 463 Gochnatia glutinosa 106 Drimys brasiliensis 464 Gouania ulmifolia 391 Drimys winteri 465 Grevillea robusta 385 Duguetia furfuracea 23 Grindelia chiloensis 107 Dunalia spinosa 429 Guarea guidonia 309 M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 89

Guarea macrophylla var. tuberculata 310 Jodina rhombifolia 192 Guettarda pohliana 403 Juglans regia 265 Guettarda uruguensis 404 Jussiaea repens 337 Gutierrezia gilliesii 108 Lactuca scariola 119 Gutierrezia mandonii 109 Lagascea mollis 120 Gutierrezia repens 110 Lagenaria siceraria 206 Gutierrezia resinosa 111 Lamium amplexicaule 272 Gynerium sagittatum 368 Lamium purpureum 273 Habenaria petalodes 339 Lantana camara 448 Haplopappus berterii 112 Lantana lilacina 449 Haplopappus bustillosianus 113 Lantana trifolia 450 Haplopappus glutinosus 114 Lapsana communis 121 Hedeoma multiflorum 269 Laretia acaulis 32 Hedera helix 44 Lepidium perfoliatum 175 Hedychium coronarium 467 Linaria vulgaris 364 Heimia salicifolia 300 Lippia alba 451 Helianthus annuus 115 Lippia citriodora 452 Helianthus tuberosus 116 Lippia integrifolia 453 Hennecartia omphalandra 313 Lippia junelliana 454 Heterophyllaea pustulata 405 Lithraea caustica 12 Heterothalamus alienus 117 Lithraea molleoides 13 Hexachlamys edulis 327 Lonchocarpus leucanthus 249 Hippeastrum vittatum 9 Lonicera japonica 183 Hippocratea excelsa 261 Lycium barbarum 434 Humulus lupulus 182 Mabea fistulifera 229 Huperzia saururus 298 Macfadyena unguis-cati 166 Hyaloseris andrade-limae 118 Malcolmia maritima 176 Hydrocotyle bonariensis 30 Mangifera indica 14 Hydrocotyle umbellata 31 Marlierea tomentosa 328 Hypericum mutilum 262 Matayba elaeagnoides 422 Hypericum perforatum 263 Maytenus ilicifolia 188 Hypericum ternum 264 Maytenus vitis-idaea 189 Hyptis marrubioides 270 Melia azedarach 311 Hyptis pectinata 271 Melochia chamaedrys 437 Ilex brasilienss 41 Mentha acquatica 274 Ilex paraguariensis 42 Mentha pulegium 275 Indigofera suffruticosa 245 Miconia cabucu 307 Indigofera truxillensis 246 Miconia ioneura 308 Inga edulis 247 Microgramma squamulosa 382 Inga laurina 248 Mikania campanulata 122 Ipomoea batatas var. batatas 203 Mikania laevigata 123 Ipomoea cairica 204 Mikania micrantha 124 Ipomoea pes-caprae 205 Mikania periplocifolia 125 Jaborosa caulescens var. caulescens 430 Mitracarpus megapotamicus 406 Jaborosa caulescens var. pinnatifida 431 Momordica charantia 207 Jaborosa kurtzii 432 Morus alba 316 Jaborosa laciniata 433 Muntingia calabura 215 Jacaranda decurrens 164 Muntingia calabura 317 Jacaranda puberula 165 Murraya paniculata 414 Jatropha multifida 228 Mutisia ledifolia 126 90 Miscelanea Nº 134, 2015

Mynthostachys mollis 276 Pluchea quitoc 131 Mynthostachys verticillata 277 Pluchea sagittalis 132 Myracrodruon urundeuva 15 Plumeria rubra 39 Myrcia laruotteana 329 Polygala sabulosa 372 Myrcianthes cisplatensis 330 Polygonum acuminatum 373 Nardophyllum armatum 127 Polygonum amphibium 374 Nardophyllum scoparium 128 Polygonum hydropiper 375 Nasturtium officinale 177 Polygonum persicaria 376 Nectandra angustifolia 294 Polygonum punctatum 377 Nelumbo nucifera 335 Poncirus trifoliata 415 Nepeta cataria 278 Portulaca oleracea 383 Nerium oleander 38 Pouteria salicifolia 423 Nymphaea caerulea 336 Protousnea poepigii 343 Ocimum neurophyllum 279 Prumnopitys andina 371 Ocimum selloi 280 Pseudognaphalium robustum 133 Ocotea lancifolia 295 Psidium guajava 332 Origanum vulgare 281 Psychotria carthagenensis 407 Ottonia martiana 353 Psychotria nuda 408 Oxalis pes-caprae 341 Psychotria umbellata 409 Papaver nudicaule 342 Pterocaulon alopecuroides 134 Parthenium hysterophorus 129 Pterocaulon balansae 135 Paullinia elegans 421 Pterocaulon cordobense 136 Pavonia sepium 301 Pterocaulon lorentzii 137 Peltodon radicans 282 Pterogyne nitens 250 Peperomia blanda 354 Punica granatum 387 Peperomia galioides 355 Qualea grandiflora 460 Petroselinum crispum 33 Qualea parviflora 461 Peumus boldus 314 Quercus ilex 256 Pfaffia glomerata 8 Retamilla patagonica 392 Philodendron imbe 43 Rheedia brasiliensis 197 Phoradendron liga 458 Richardia brasiliensis 410 Phyllanthus niruri 344 Richardia grandiflora 411 Phyllanthus sellowianus 345 Ricinus communis 230 Phyllanthus urinaria 346 Rollinia emarginata 24 Physalis angulata 435 Rosa rubiginosa 396 Phytolacca americana 347 Rubus rosaefolius 397 Pimenta pseudocaryophyllus 331 Rumex obtusifolius 379 Pinus excelsa 349 Ruprechtia laxiflora 380 Pinus koraiensis 350 Ruprechtia salicifolia 381 Pinus monticola 351 Saccharum officinarum 369 Pinus strobus 352 Sagittaria montevidensis ssp. montevidensis Piper crassinervium 356 5 Piper glabratum 357 Salix alba 419 Piper hispidum 358 Salvia guaranitica 283 Piper lkotzkyanum 359 Salvia officinalis 284 Piper mollicomum 360 Salvia sp. 285 Piper solmsianum var. solmsianum 361 Salvia uliginosa 286 Piper umbellatum 362 Salvinia molesta 420 Plantago lanceolata 365 Samanea saman 251 Plazia daphnoides 130 Sambucus nigra 1 M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 91

Sarothamnus scoparius 252 Tagetes minuta 152 Satureja boliviana 287 Tagetes pusilla 153 Satureja odora 288 Talinum patens 384 Satureja parvifolia 289 Tanacetum parthenium 154 Schinus areira 16 Tanacetum vulgare 155 Schinus johnstonii 17 Tapirira guianensis 20 Schinus molle 18 Tephrosia cinerea 254 Schinus terebenthifolius 19 Terminalia australis 200 Scutia buxifolia 393 Terminalia sericea 201 Sebastiania commersoniana 231 Thalia geniculata 306 Senecio argophylloides 138 Thelypteris torresiana 440 Senecio crassiflorus var. crassiflorus 139 Tilia x viridis 441 Senecio desiderabilis 140 Tribulus terrestris 468 Senecio grisebachii 141 Trichilia catigua 312 Senecio murinus 142 Tridax procumbens 156 Senecio nutans 143 Triplaris americana 378 Senecio otites 144 Tripodanthus acutifolius 296 Senecio subulatus 145 Tripodanthus flagellaris 297 Senecio viridis 146 Ugni molinae 333 Sida acuta 302 Verbena tenuisecta 456 Sida cordifolia 303 Vernonia scorpioides 157 Sida rhombifolia 304 Vernonia tweediana 158 Sida urens 305 Veronica elliptica 366 Silybum marianum 147 Vetiveria zizanioides 370 Smallanthus connatus 148 Viguiera pazencis 159 Smallanthus siegesbeckius 149 Vitex cymosa 290 Smallanthus sonchifolius 150 Vitex cymosa 457 Smilax campestris 425 Vitex polygama 291 Smilax cognata 426 Waltheria douradinha 438 Smilax fluminensis 427 Xanthium cavanillessii 160 Solanum melongena 436 Xanthium strumarium 161 Sonchus arvensis 151 Xenophyllum incisum 162 Stachytarpheta cayennensis 455 Xenophyllum poposum 163 Stellaria media 184 Ximenia americana 466 Stryphnodendron adstringens 253 Xylopia langsdorffiana 25 Suaeda divaricata 194 Zanthoxylum monogynum 416 Tabebuia heptaphylla 167 Zanthoxylum rhoifolium 417 Tabernaemontana catharinensis 40 Zuccagnia punctata 255

M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 93

INDICE NOMBRES VULGARES

Acancio 106 Canela pilosa 295 Achira 5 Canelo 465 Adelfa 38 Canelo enano 462 Afata 304 Cannabis 181 Agapanto 2 Caña de ámbar 467 Aguaribay 16 Caña de azúcar 369 Ajenjo 62, 65 Capiquí 184 Ajenjo cuyano 65 Cardo asnal 147 Ajenjo del campo 60 Cardo mariano 147 Ajicillo 377 Carne gorda 384 Albahaca de campo 279, 280 Carqueja 67, 69, 76 Albahaca de gatos 278 Carqueja dulce 69 Albaricoque 466 Carquejilla 67 Alcachofa de Jerusalén 116 Casca d’anta 463, 464 Altamisa 60 Cascarilla 400 Altamisa del campo 129 Castañuela 212 Amapola de Islandia 342 Cataia 463, 464 Ambay 186 Catiguá colorado 312 Anís anís 153 Cebollín 212 Anís del campo 153 Cedro 348 Araticá 24 Cedro deodara 348 Azahar de la India 414 Cedrón 446, 452 Bacupari 197 Cedrón del campo 367 Ballota fétida 266 Cegadera 405 Bandera española 34 Chachacoma 143 Barba del diablo 343 Chal chal de la gallina 407 Batata 203 Chancapiedra 346 Berenjena 436 Chañar 243 Bergamota 280 Chaqui 392 Berro 177 Charruga 430 Boldo 314 Chichita 13 Botón de oro 103 Chilca 68, 72, 74, 98, 101 Botón de plata 154 Chilca amarga 74 Brusquilla 390 Chilca del valle 68 Bule 206 Chilca melosa 69 Burrito 445 Chillauva 109 Burro-caá 418 Chinchilla 152 Café silvestre 257 Chinchircoma blanca 126 Calabaza de peregrino 206 Chumi chumi 429 Calaguala del mate 382 Cicutilla 129 Calliopsis 90 Cipó timbó 421 Camboatá 422 Cola de quirquincho 298 Cambrón 434 Colaguaya 219 Campanilla 204 Colihuai 219 Cancerina 261 Cominito del campo 269 Canchalagua 108, 109 Congona 355 Canchalahua 109 Congorosa 188 94 Miscelanea Nº 134, 2015

Copa 63 Guaco chico 125 Coqueta 79 Guaje 206 Coquito 212 Guako 124 Corazoncillo 263 Guasatunga 257 Coreopsis 90 Guasatunga 418 Corocillo 212 Guatambú mí 413 Coronillo 393 Guayabera 332 Coronillo del campo 390 Guayabo 332 Corpo 296 Guayabo colorado 330 Cortinas del cielo 459 Guayabo del Brasil 326 Cuajilla 55 Hediondilla 428 Cuatro caras 340 Helechito 344 Cupaí 239 Helechito de agua 420 Douradiña 438 Helecho acuático 420 Duraznillo 219 Hiedra 44 Duraznillo de agua 337 Hiedra terrestre 268 Duraznillo negro 428 Hierba carmín 347 Encina 256 Hierba carnicera 89 Eneldo 26 Hierba del toro 156 Erva silvina 382 Higuera del diablo 230 Escarola 119 Hinojo 29 Escoba amarga 129 Horquetero 40 Escoba 302 Incayuyo 453 Escoba de puerco 302 Ingá de comer 247 Escoba negra 252 Ingá del monte 247 Escobilla 302, 303 Jarilla de la puna 255 Escobilla negra 302 Jarilla del río 74 Escobillo 302 Jarilla macho 255 Espárrago 54 Jazmín de azahar 414 Espino blanco 394 Jazmín del Uruguay 404 Espino cambrón 434 Jazmín naranja 414 Falsa afata 304 Jergo 354 Falso índigo 232 Jume 194 Falsa melisa 451 Laca 255 Fique 383 Lamio 272 Fitolaca 347 Lamio púrpura 273 Flechadita 5 Lampourde 161 Flor de cepillos 198 Lapacho negro 167 Flor negra 433 Laurel espada 257 Franchipán 39 Laurel mini 294 Fresadilla negra 134 Laurel né 295 Frijol de palo 237 Laurel rosa 38 Gandul 237 Lechuguilla 384 Gatera 278 Liga 458 Genipapo 402 Ligia 71 Girasol 115 Lima 412 Granada 387 Linaria común 364 Grelos 171 Lino montesino 364 Grevilea 385 Llantén 365 Guaco 122, 123 M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 95

Llareta 32 Níspero 395 Lleuque 371 Níspero japonés 395 Lombriguera 155 Nogal 265 Lucera 131, 132 Nogal del sur 385 Lúpulo 182 Nogal europeo 265 Madreselva 183 Nuez moscada de Brasil 293 Majuelo 394 Ñaca tola 71 Malaspina 392 Ñangapirí 325 Malva del bosque 301 Ñangapirí negro 324’ Malvavisco 304 Orégano 281 Mango 21 Oregano de jardín 285 Manzanilla 453 Orégano español 285 Manzanilla grande 154 Ortiga mansa 272 Maravilla 100 Ortiga muerta roja 273 Margarita 79 Paina 34 Margarita de la sierra 103 Palma yatay 46 Margarita pampeana 103 Palmera de la jalea 45 María negra 168 Palmita 155 Marihuana 181 Palo amarillo 200 Mariposa de ámbar 467 Palo de Castilla 445 Marrubio negro 266 Palo rosa 250 Mastuerzo 172 Palo víbora 40 Mata ojo 423 Pampa tola 71 Matico 64, 178 Pañil 178 Melena de viejo 89 Paracary 282 Melón de San Cayetano 207 Paraíso 311 Melosa 107 Parqui 428 Menta acuática 274 Pasto agrio 341 Menta de gato 278 Pata 466 Menta gatuna 278 Pata de vaca 235 Mercurio 34 Patito 49 Mikania guaco 125 Pegajosa 108 Mirasol 115 Peje 192 Molle 13, 16 Peladilla 406 Molle de beber 18 Peperina 276, 287 Molle de Córdoba 13 Peperina cordobesa 276 Mora blanca 316 Peperina de las lomas 269 Morera de papel 315 Peperina montana 269 Mororó 235 Perejil 33 Muña muña 287, 288 Perifollo verde 27 Muña peperina 288 Pezuña de vaca 235 Murta 333 Pichana carqueja 67 Murtilla 333 Pingo pingo 216 Nabizo 171 Pino blanco 351, 352 Nabo 171 Piperita 287 Naranjillo 407 Piquillín grande 389 Naranjo trébol 415 Pispa 288 Naranjo trifoliado 415 Pitanga 325 Nelumbio 335 Pitanga amarga 324 Nenúfar azul 336 96 Miscelanea Nº 134, 2015

Poaia branca 410 Sauce plateado 419 Poaia do campo 401, 410 Sauco negro 1 Poleo 453 Sida 302 Poleo de Castilla 445 Soja 244 Poleo real 445 Sombra de toro 192 Polipodio escamoso 382 Soya 244 Poposa 162 Suico 152 Popusa 162 Suncho 74 Porangaba 169 Suri-yanta 127 Porongo 206 Tala gateador 190 Priprioca 209 Tala salado 189 Pular 61 Tamascal 212 Pupusa de agua 162 Tamascán 212 Pupusa del cerro 162 Tanaceto 155 Puspus 255 Tártago 230 Quebrachillo 188 Taruma 457 Quiebra arado 300 Tarumá-í 290 Quilimbay 88 Te 439 Quimpe 172 Té de burro 445 Quina del campo 390 Tebetarí 417 Quina do mato 413 Tigresillo 355 Quinchamal 70 Tola 7, 1431 Quinoa 193 Tola hembra 143 Rabo de macaco 249 Tola muña 106 Rama de sapo 384 Tomate de invierno 435 Rama negra 89 Tomillo andino 442 Redondita de agua 30 Tomillo del campo 442 Retama negra 252 Tomillo serrano 442 Ricino 230 Toronjil 276 Roble sedoso 385 Trompetilla 144 Romerillo 117, 145 Tupinambo 116 Romerillo colorado 98 Tutuco 144 Romerillo grande 68 Tuya casó 137 Rompepiedra 344 Ubajay 327 Roseta 468 Uña de gato 166 Sacanza 106 Uva de España 347 Saeta de Montevideo 5 Uva de la cordillera 371 Salvia 284 Verbena 454 Salvia 451 Verbena limón 443 Salvia azul 283 Verdolaga 383, 384 Salvia baguala 168 Vetiver 370 Salvia de la hora 454 Viraró 381 Salvia morada 451 Viraró cespo Salvialora 454 Viraró cespo 380 Sangre de drago 222 Yacón 149, 150 Sanguinaria 377 Yaguareté-caá 136 Sapirandí 40 Yareta 32 Sarandí blanco 345 Yerba de la oveja 129 Sauce blanco 419 Yerba de la vida 300 Yerba de pajarito 296 M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 97

Yerba de San Marcos 155 Yerba del bicho 377 Yerba del inca 453 Yerba del lucero 131, 132 Yerba del pájaro 60 Yerba del pollo 410 Yerba infiel 137 Yerba mate 42 Yerba sapo 431 Yerba tostada 334 Yerbamota 274 Yuyo de San Juan 263 Zapatitos de la virgen 272 Zap Zapirandí 40 Zarza Zarzaparrilla 425

M. E. Mendiondo: Catálogo bibliográfico fitoquímico XVIII 99

ABREVIATURAS Aceite (ac.) Jugo (j.) Aceite esencial (ac.es.) Látex (lx.) Agalla (agll.) Leño (l.) Aguja (ag.) Mesocarpio (mes.) Almidón (alm.) Micelio (mic.) Apice (ap.) Mucílago (muc.) Arilo (ar.) Nódulo (nod.) Baya (by.) Nudo (nud.) Botón (bot.) Nuez (nz.) Bráctea (bra.) Oleorresina (olr.) Brote (bro.) Pared celular (par.cel.) Cáliz (clz.) Pecíolo (pc.) Cápsula (cp.) Parte aérea (p.a.) Cariopsis (car.) Pectina (pec.) Celulosa (cel.) Pedúnculo (ped.) Ceniza (cen.) Pelo (pel.) Cera (cer.) Pericarpio (per.) Cloroplasto (clor.) Pétalo (pe.) Cono (con.) Piel (pi.) Corteza (ct.) Pigmento (pg.) Corteza tallo (ct.tll.) Pimpollo (pllo.) Corteza raíz (ct.r.) Planta total (pl.) Cotiledón (cot.) Plántula (plt.) Cutícula (cut.) Polen (pol.) Cutina (cu.) Pulpa (pul.) Drupa (dr.) Raíz (r.) Embrión (embr.) Rama (rm.) Endocarpio (endc.) Rastrojo (rjo.) Endosperma (endp.) Resina (res.) Epicarpio (ep.) Retoño (ret.) Espora (esp.) Rizoma (rz.) Esporofito (espf.) Savia (sav.) Estigma (estg.) Semilla (s.) Estilo (est.) Sépalo (sp.) Estróbilo (estr.) Súber (sb.) Exudado (exud.) Tallo (tll.) Filamento (fil.) Tegumento (teg.) Flor (fl.) Tejido (tj.) Folículo (fol.) Tubérculo (tb.) Fronda (fro.) Vacuola (vac.) Fruto (fr.) Vaina (v.) Gametofito (gam.) Zarcillo (zllo.) Germen (ger.) Xilema (xil.) Goma (gom.) Grano (gr.) Hoja (h.) Hojarasca (hjc.) Inflorescencia (ifl.)

84 A. R. Andrada et al.: Nuevo citotipo de Verbena gracilescens (Verbenaceae) 84 A. R. Andrada et al.: Nuevo citotipo de Verbena gracilescens (Verbenaceae)