DOCSLIB.ORG

Inspekcja Ochrony Środowiska Klucz Do

Total Page：16

File Type：pdf, Size：1020Kb

Download full-text PDF Read full-text
Inspekcja Ochrony Środowiska Klucz Do INSPEKCJA OCHRONY ŚRODOWISKA KLUCZ DO IDENTYFIKACJI ORGANIZMÓW FITOPLANKTONOWYCH Z RZEK I JEZIOR DLA CELÓW BADA Ń MONITORINGOWYCH CZ ĘŚ CI WÓD POWIERZCHNIOWYCH W POLSCE Biblioteka Monitoringu Środowiska Warszawa 2012 1 Praca wykonana na zlecenie Głównego Inspektoratu Ochrony Środowiska i sfinansowana ze środków Narodowego Funduszu Ochrony Środowiska i Gospodarki Wodnej Autorzy opracowania: Joanna Picińska-Fałtynowicz, Jan Błachuta – Zakład Ekologii IMGW PIB Oddział we Wrocławiu Fotografie: Joanna Picińska-Fałtynowicz; Joanna Siemiak Ilustracje: Joanna Picińska-Fałtynowicz, Jan Błachuta Korekta: Anna Janeczko-Mazur © Copyright by Inspekcja Ochrony Środowiska, Warszawa 2012 r. ISBN 978-83-61227-05-2 Wydanie I. Nakład 500 egz. Format A4. Przygotowanie do druku i druk: Drukarnia Speed sp. z o.o. z siedzibą w Długołęce ul. Robotnicza 45-47, 55-095 Długołęka [email protected] 2 Spis treści I. WSTĘP................................................................................................................................................. 4 II. CHARAKTERYSTYKA ZBIOROWISKA FITOPLANKTONU........................................................................ 5 III. CHARAKTERYSTYKA GLONÓW........................................................................................................... 6 IV. MIEJSCE GLONÓW WE WSPÓŁCZESNYM SYSTEMIE KLASYFIKACJI ŚWIATA ŻYWEGO ...................... 9 V. CZĘŚĆ SZCZEGÓŁOWA...................................................................................................................... 11 1. CYANOPROKARYOTA (CYANOBACTERIA = SINICE) ....................................................................... 13 2. EUGLENOZOA (EUGLENINY) ......................................................................................................... 39 3. DINOPHYTA (DINOFITY, BRUZDNICE) ........................................................................................... 45 4. CHLOROPHYTA (ZIELENICE).......................................................................................................... 55 Klasa: Prasinophyceae Chadefaud 1950....................................................................................... 56 Klasa: Chlorophyceae................................................................................................................... 57 Klasa: Ulvophyceae ...................................................................................................................... 94 Klasa: Conjugatophyceae ............................................................................................................. 97 5. CRYPTOPHYTA (KRYPTOFITY) ..................................................................................................... 105 6. BACILLARIOPHYTA (OKRZEMKI).................................................................................................. 109 Klasa: Coscinodiscophyceae Okrzemki centryczne ..................................................................... 112 Klasa: Fragilariophyceae Okrzemki pierzaste bezszczelinowe ................................................... 123 Klasa: Bacillariophyceae Okrzemki pierzaste szczelinowe.......................................................... 130 7. CHRYSOPHYCEAE (ZŁOTOWICIOWCE)........................................................................................ 157 8. XANTHOPHYCEAE (KSANTOFITY)................................................................................................ 167 SŁOWNIK TERMINÓW........................................................................................................................ 173 WYKAZ SYNONIMÓW......................................................................................................................... 177 INDEKS ............................................................................................................................................... 181 LITERATURA ....................................................................................................................................... 187 3 I. WSTĘP Polska jako państwo członkowskie Unii Europejskiej jest zobowiązana do realizacji zadań wyznaczonych w Ramowej Dyrektywie Wodnej (2000/60/WE) [RDW], dotyczącej gospodarowania wodami na terenie kraju. Celem ostatecznym, sformułowanym w dyrektywie jest osiągnięcie, do 2015 roku, co najmniej dobrego stanu wód, w tym dobrego stanu ekologicznego naturalnych części wód powierzchniowych oraz dobrego potencjału ekologicznego w przypadku części wód silnie zmienionych lub sztucznych. Z kolei, stan/potencjał ekologiczny jest oceniany na podstawie kondycji elementów biologicznych zdefiniowanych w Załączniku V RDW. W przypadku rzek, jezior i zbiorników zaporowych, jednym z tych elementów jest zbiorowisko fitoplanktonu. W 2007 roku Polska rozpoczęła monitoring wód powierzchniowych według zasad zgodnych z RDW, realizowany przez Wojewódzkie Inspektoraty Ochrony Środowiska (WIOŚ). Opracowano metody metryczne (indeksy) pozwalające ocenić stan/potencjał ekologiczny wód za pomocą fitoplanktonu. Indeksy są oparte na taksonach wskaźnikowych. Aby je wyliczyć należy wykonać analizę mikroskopową próbki fitoplanktonu. Podstawowym elementem analizy jest prawidłowe rozpoznanie organizmów. Niniejszy klucz umożliwia identyfikację taksonów wskaźnikowych fitoplanktonu z rzek, jezior i zbiorników zaporowych na poziomie zgodnym z listami obligatoryjnych taksonów wskaźnikowych niezbędnym do wyliczenia stosownych indeksów. 4 II. CHARAKTERYSTYKA ZBIOROWISKA FITOPLANKTONU Fitoplankton jest zbiorowiskiem fotoautotroficznych mikroskopijnych organizmów, tradycyjnie określanych jako glony, rozwijających się w toni wodnej różnego typu zbiorników wodnych. Fitoplankton stanowi, pierwsze ogniwo łańcucha pokarmowego (producenci), które w procesie fotosyntezy, z cząsteczki wody i dwutlenku węgla, z wykorzystaniem energii świetlnej, wytwarza związki organiczne i tlen. To oczywiście duże uproszczenie tego bardzo skomplikowanego procesu. Bardziej adekwatna jest definicja, że fotosynteza to proces przekształcenia energii świetlnej w energię chemiczną w formie ATP (adenozynotrifosforanu) i NADPH (zredukowanego fosforanu dinukleotydu nikotynoamidoadeninowego), a wówczas zrozumiałym staje się fakt, dlaczego rozwój fitoplanktonu jezt bezbośrednio uwarunkowany koncentracją nieorganicznych związków fosforu i azotu (nutrientów) w wodzie. Trzecim, bardzo ważnym czynnikiem warunkującym rozwój fitoplanktonu jest temperatura wody. Fitoplankton rozwija się w prześwietlonej (eufotycznej) warstwie toni wodnej. Powinna ona być dostatecznie głęboka, a przez to odizolowana od dna i strefy przybrzeżnej (litoralu), bo tylko wtedy można mówić o typowym, pelagicznym zbiorowisku. Takie warunki są spełnione w głębokich, stratyfikowanych jeziorach. W płytkich jeziorach i stawach, w fitoplanktonie zawsze będą obecne organizmy pochodzące z innych stref na skutek ciągłego mieszania się wody. W przypadku wód płynących, w małych rzekach woda niesie glony pochodzące z dna i brzegów (bentosowe) i i typowych organizmów planktonowych w nich nie ma. Rzeczywisty fitoplankton (potamoplankton) rozwija się tylko w rzekach dużych, dostatecznie głębokich. W Polsce przyjęto, że rzeka fitoplanktonowa musi mieć zlewnię o powierzchni co najmniej 5000 km 2. Fitoplankton rozwija się przez cały rok, również pod lodem, niemniej szczyt rozwoju przypada na sezon wegetacyjny, od wiosny do jesieni. 5 III. CHARAKTERYSTYKA GLONÓW Określenie glony jest od dawna powszechnie używane na całym świecie. Nie jest to termin taksonomiczny, a morfologiczno-ekologiczny, pozwalający ująć w jedną grupę organizmy odległe w systemie świata żywego, ale mające pewne wspólne cechy, przede wszystkim budowy morfologicznej (zewnętrznej) i preferencji w odniesieniu do środowiska życia. Są to organizmy bytujące w środowisku wodnym – oceanach i morzach, rzekach, jeziorach, stawach, kałużach, ale również tam, gdzie woda występuje w małych ilościach (wilgotna gleba, skały, pnie drzew) lub pojawia się tylko okresowo (np. pustynie). Do glonów zalicza się organizmy prokariotyczne (cyjanobakterie czyli sinice) i eukariotyczne organizmy fotoautotroficzne, dawniej omawiane w ramach klasycznej botaniki jako tzw. rośliny zarodnikowe, a obecnie sklasyfikowane w bardzo odległych jednostkach systemu (por. Rozdz. 3), takie jak dinofity, eugleniny, kryptofity, okrzemki, złotowiciowce, ksantofity, brunatnice, zielenice, glaukofity i krasnorosty. Obecnie, do roślin zalicza się tylko trzy ostatnie grupy, a w niniejszym kluczu są to wyłącznie zielenice. Glony to organizmy bardzo różnorodne pod względem budowy, niemniej wyróżniono sześć stopni morfologiczno-rozwojowych wspólnych dla wszystkich wymienionych wyżej grup, które są nadal istotne przy wyodrębnianiu niższych jednostek taksonomicznych (rzędy, rodziny) i są używane w szczegółowej części klucza. Stopnie morfologiczno-rozwojowe glonów (według Paschera): • monada (= wiciowiec) – komórka ruchliwa, z jedną lub wieloma wiciami, w typowej postaci naga, bez ściany komórkowej i metaboliczna (zdolna do zmiany kształtu), z wakuolami tętniącymi i stigmą (plamką oczną); reprezentowana wyłącznie przez glony eukariotyczne; • forma ryzopodialna (pełzak) – komórka naga, bez ściany komórkowej, metaboliczna, poruszająca się za pomocą nibynóżek; bardzo rzadka i wyłącznie u glonów eukariotycznych; • forma kapsalna (= tetrasporalna) – komórka naga, nieruchliwa, niemetaboliczna, może zawierać elementy monady (wakuole tętniące, stigma), zwykle otoczona warstwą galaretki; wyłącznie glony eukariotyczne; • forma kokalna –
Load more

Recommended publications
  • The 2014 Golden Gate National Parks Bioblitz - Data Management and the Event Species List Achieving a Quality Dataset from a Large Scale Event
    National Park Service U.S. Department of the Interior Natural Resource Stewardship and Science The 2014 Golden Gate National Parks BioBlitz - Data Management and the Event Species List Achieving a Quality Dataset from a Large Scale Event Natural Resource Report NPS/GOGA/NRR—2016/1147 ON THIS PAGE Photograph of BioBlitz participants conducting data entry into iNaturalist. Photograph courtesy of the National Park Service. ON THE COVER Photograph of BioBlitz participants collecting aquatic species data in the Presidio of San Francisco. Photograph courtesy of National Park Service. The 2014 Golden Gate National Parks BioBlitz - Data Management and the Event Species List Achieving a Quality Dataset from a Large Scale Event Natural Resource Report NPS/GOGA/NRR—2016/1147 Elizabeth Edson1, Michelle O’Herron1, Alison Forrestel2, Daniel George3 1Golden Gate Parks Conservancy Building 201 Fort Mason San Francisco, CA 94129 2National Park Service. Golden Gate National Recreation Area Fort Cronkhite, Bldg. 1061 Sausalito, CA 94965 3National Park Service. San Francisco Bay Area Network Inventory & Monitoring Program Manager Fort Cronkhite, Bldg. 1063 Sausalito, CA 94965 March 2016 U.S. Department of the Interior National Park Service Natural Resource Stewardship and Science Fort Collins, Colorado The National Park Service, Natural Resource Stewardship and Science office in Fort Collins, Colorado, publishes a range of reports that address natural resource topics. These reports are of interest and applicability to a broad audience in the National Park Service and others in natural resource management, including scientists, conservation and environmental constituencies, and the public. The Natural Resource Report Series is used to disseminate comprehensive information and analysis about natural resources and related topics concerning lands managed by the National Park Service.
    [Show full text]
  • Primer Reporte De Lemmermanniella Uliginosa (Synechococcaceae
    Revista peruana de biología 27(3): 401 - 405 (2020) Primer reporte de Lemmermanniella uliginosa (Sy- doi: http://dx.doi.org/10.15381/rpb.v27i3.17301 nechococcaceae, Cyanobacteria) en América del ISSN-L 1561-0837; eISSN: 1727-9933 Universidad Nacional Mayor de San Marcos sur, y primer reporte del género para Perú Nota científica First report of Lemmermanniella uliginosa (Synechococca- Presentado: 13/01/2020 ceae, Cyanobacteria) in South America, and the first record Aceptado: 12/03/2020 Publicado online: 31/08/2020 of the genus from Peru Editor: Autores Resumen Leonardo Humberto Mendoza-Carbajal El presente trabajo reporta por primera vez para el Perú a la cianobacteria bentónica [email protected] Lemmermanniella uliginosa, identificada en muestras de perifiton y sedimentos https://orcid.org/0000-0002-9847-2772 bentónicos procedentes del humedal de Caucato en el distrito de San Clemente, de- partamento de Ica. Además, se registra por primera vez al género Lemmermanniella Institución y correspondencia para el país. Se discuten aspectos morfo-taxonómicos de la especie comparándola Universidad Nacional Mayor de San Marcos, Museo de con poblaciones reportadas para otras localidades en zonas tropicales. Historia Natural, Apartado 14-0434, Lima-15072, Perú. Abstract This work presents the first record of Lemmermmanniella uliginosa from Peru Citación based on periphyton and sediment samples from Caucato wetland (San Clemente district, Ica department). Furthermore, the genus Lemmermmanniella is recorded Mendoza-Carbajal LH. 2020. Primer reporte de Lem- for the first time for Peru. Morpho-taxonomic comparison with other populations mermanniella uliginosa (Synechococcaceae, reported in tropical regions is discussed. Cyanobacteria) en América del sur, y primer reporte del género para Perú.
    [Show full text]
  • Synechococcus Salsus Sp. Nov. (Cyanobacteria): a New Unicellular, Coccoid Species from Yuncheng Salt Lake, North China
    Bangladesh J. Plant Taxon. 24(2): 137–147, 2017 (December) © 2017 Bangladesh Association of Plant Taxonomists SYNECHOCOCCUS SALSUS SP. NOV. (CYANOBACTERIA): A NEW UNICELLULAR, COCCOID SPECIES FROM YUNCHENG SALT LAKE, NORTH CHINA 1 HONG-RUI LV, JIE WANG, JIA FENG, JUN-PING LV, QI LIU AND SHU-LIAN XIE School of Life Science, Shanxi University, Taiyuan 030006, China Keywords: New species; China; Synechococcus salsus; DNA barcodes; Taxonomy. Abstract A new species of the genus Synechococcus C. Nägeli was described from extreme environment (high salinity) of the Yuncheng salt lake, North China. Morphological characteristics observed by light microscopy (LM) and transmission electron microscopy (TEM) were described. DNA barcodes (16S rRNA+ITS-1, cpcBA-IGS) were used to evaluate its taxonomic status. This species was identified as Synechococcus salsus H. Lv et S. Xie. It is characterized by unicellular, without common mucilage, cells with several dispersed or solitary polyhedral bodies, widely coccoid, sometimes curved or sigmoid, rounded at the ends, thylakoids localized along cells walls. Molecular analyses further support its systematic position as an independent branch. The new species Synechococcus salsus is closely allied to S. elongatus, C. Nägeli, but differs from it by having shorter cell with length 1.0–1.5 times of width. Introduction Synechococcus C. Nägeli (Synechococcaceae, Cyanobacteria) was first discovered in 1849 and is a botanical form-genus comprising rod-shaped to coccoid cyanobacteria with the diameter of 0.6–2.1 µm that divide in one plane. It is a group of ultra-structural photosynthetic prokaryote and has the close genetic relationship with Prochlorococcus (Johnson and Sieburth, 1979), and both of them are the most abundant phytoplankton in the world’s oceans (Huang et al., 2012).
    [Show full text]
  • Table S4. Phylogenetic Distribution of Bacterial and Archaea Genomes in Groups A, B, C, D, and X
    Table S4. Phylogenetic distribution of bacterial and archaea genomes in groups A, B, C, D, and X. Group A a: Total number of genomes in the taxon b: Number of group A genomes in the taxon c: Percentage of group A genomes in the taxon a b c cellular organisms 5007 2974 59.4 |__ Bacteria 4769 2935 61.5 | |__ Proteobacteria 1854 1570 84.7 | | |__ Gammaproteobacteria 711 631 88.7 | | | |__ Enterobacterales 112 97 86.6 | | | | |__ Enterobacteriaceae 41 32 78.0 | | | | | |__ unclassified Enterobacteriaceae 13 7 53.8 | | | | |__ Erwiniaceae 30 28 93.3 | | | | | |__ Erwinia 10 10 100.0 | | | | | |__ Buchnera 8 8 100.0 | | | | | | |__ Buchnera aphidicola 8 8 100.0 | | | | | |__ Pantoea 8 8 100.0 | | | | |__ Yersiniaceae 14 14 100.0 | | | | | |__ Serratia 8 8 100.0 | | | | |__ Morganellaceae 13 10 76.9 | | | | |__ Pectobacteriaceae 8 8 100.0 | | | |__ Alteromonadales 94 94 100.0 | | | | |__ Alteromonadaceae 34 34 100.0 | | | | | |__ Marinobacter 12 12 100.0 | | | | |__ Shewanellaceae 17 17 100.0 | | | | | |__ Shewanella 17 17 100.0 | | | | |__ Pseudoalteromonadaceae 16 16 100.0 | | | | | |__ Pseudoalteromonas 15 15 100.0 | | | | |__ Idiomarinaceae 9 9 100.0 | | | | | |__ Idiomarina 9 9 100.0 | | | | |__ Colwelliaceae 6 6 100.0 | | | |__ Pseudomonadales 81 81 100.0 | | | | |__ Moraxellaceae 41 41 100.0 | | | | | |__ Acinetobacter 25 25 100.0 | | | | | |__ Psychrobacter 8 8 100.0 | | | | | |__ Moraxella 6 6 100.0 | | | | |__ Pseudomonadaceae 40 40 100.0 | | | | | |__ Pseudomonas 38 38 100.0 | | | |__ Oceanospirillales 73 72 98.6 | | | | |__ Oceanospirillaceae
    [Show full text]
  • In Four Shallow and Mesophotic Tropical Reef Sponges from Guam the Microbial Community Largely Depends on Host Identity
    In four shallow and mesophotic tropical reef sponges from Guam the microbial community largely depends on host identity Georg Steinert1,2, Michael W. Taylor3, Peter Deines3,4, Rachel L. Simister3,5, Nicole J. de Voogd6, Michael Hoggard3 and Peter J. Schupp1 1 Institute for Chemistry and Biology of the Marine Environment, Carl von Ossietzky Universität Oldenburg, Wilhelmshaven, Germany 2 Laboratory of Microbiology, Wageningen University, Wageningen, The Netherlands 3 School of Biological Sciences, University of Auckland, Auckland, New Zealand 4 Zoological Institute, Christian-Albrechts-University Kiel, Kiel, Germany 5 Department of Microbiology and Immunology, University of British Columbia, Vancouver, Canada 6 Naturalis Biodiversity Center, Leiden, The Netherlands ABSTRACT Sponges (phylum Porifera) are important members of almost all aquatic ecosystems, and are renowned for hosting often dense and diverse microbial communities. While the specificity of the sponge microbiota seems to be closely related to host phylogeny, the environmental factors that could shape differences within local sponge-specific communities remain less understood. On tropical coral reefs, sponge habitats can span from shallow areas to deeper, mesophotic sites. These habitats differ in terms of environmental factors such as light, temperature, and food availability, as well as anthropogenic impact. In order to study the host specificity and potential influence of varying habitats on the sponge microbiota within a local area, four tropical reef sponges, Rhabdastrella
    [Show full text]
  • DOMAIN Bacteria PHYLUM Cyanobacteria
    DOMAIN Bacteria PHYLUM Cyanobacteria D Bacteria Cyanobacteria P C Chroobacteria Hormogoneae Cyanobacteria O Chroococcales Oscillatoriales Nostocales Stigonematales Sub I Sub III Sub IV F Homoeotrichaceae Chamaesiphonaceae Ammatoideaceae Microchaetaceae Borzinemataceae Family I Family I Family I Chroococcaceae Borziaceae Nostocaceae Capsosiraceae Dermocarpellaceae Gomontiellaceae Rivulariaceae Chlorogloeopsaceae Entophysalidaceae Oscillatoriaceae Scytonemataceae Fischerellaceae Gloeobacteraceae Phormidiaceae Loriellaceae Hydrococcaceae Pseudanabaenaceae Mastigocladaceae Hyellaceae Schizotrichaceae Nostochopsaceae Merismopediaceae Stigonemataceae Microsystaceae Synechococcaceae Xenococcaceae S-F Homoeotrichoideae Note: Families shown in green color above have breakout charts G Cyanocomperia Dactylococcopsis Prochlorothrix Cyanospira Prochlorococcus Prochloron S Amphithrix Cyanocomperia africana Desmonema Ercegovicia Halomicronema Halospirulina Leptobasis Lichen Palaeopleurocapsa Phormidiochaete Physactis Key to Vertical Axis Planktotricoides D=Domain; P=Phylum; C=Class; O=Order; F=Family Polychlamydum S-F=Sub-Family; G=Genus; S=Species; S-S=Sub-Species Pulvinaria Schmidlea Sphaerocavum Taxa are from the Taxonomicon, using Systema Natura 2000 . Triochocoleus http://www.taxonomy.nl/Taxonomicon/TaxonTree.aspx?id=71022 S-S Desmonema wrangelii Palaeopleurocapsa wopfnerii Pulvinaria suecica Key Genera D Bacteria Cyanobacteria P C Chroobacteria Hormogoneae Cyanobacteria O Chroococcales Oscillatoriales Nostocales Stigonematales Sub I Sub III Sub
    [Show full text]
  • 44 LAMPIRAN Lampiran 1. Alat Dan Bahan. Buku Identifiasi Refraktometer Multiparameter DO Meter Portable Sedgewick Rafter Plankto
    LAMPIRAN Lampiran 1. Alat dan bahan. Botol Sample Buku Identifiasi Refraktometer Multiparameter DO Meter Portable Mikroskop Sedgewick Rafter Plankton Net 44 Lampiran 2. Pengambilan Sampel Air A. Pengambilan Air Sampel. B. Penyaringan Sampel. C. Pengukuran Kualitas Air. D. Pengukuran DO. 45 Lampiran 3. Pengujian Sampel Fosfat dan Nitrat. A. Sample Uji B. Pengujian Sample C. Spektrofotometer 46 Lampiran 4. Kegiatan Saat Mengidentifikasi. Kegiatan Saat Mengidentifikasi 47 Lampiran 5. Tabel Kualitas Air Pada Stasiun Penelitian. Stasiun Parameter Satuan Titik 1 Titik 2 Titik 3 Rata-Rata UJI I Suhu oC 28.4 28.9 28.2 28.5 pH - 5.6 5.7 5.4 5.5 DO ppm 5.91 5.41 5.64 5.65 Fospat mg/L 0.20 0.20 Nitrat mg/L 4.7 4.7 Kecerahan cm 109 109 Arus m/s 0.20 0.20 II Suhu oC 31,6 31.0 30.8 31.1 pH - 6.5 6.6 6.2 6.4 DO ppm 5.30 5.25 5.06 5.20 Fospat mg/L 0.24 0.10 Nitrat mg/L 1.6 1.6 Kecerahan cm 28.5 28.5 Arus m/s 0.50 0.50 III Suhu oC 31.0 30.2 30.8 30.6 pH - 4.3 4.1 4.3 4.2 DO ppm 6.09 6.13 5.99 6.07 Fospat mg/L 0,08 0.08 Nitrat mg/L 2.8 2.8 Kecerahan cm 170 170 Arus m/s 0.50 0.50 IV Suhu oC 32.1 32.8 30.1 31.6 pH - 6.4 6.1 5.4 5.9 DO ppm 6.19 6.75 5.85 6.26 Fospat mg/L 1.31 1.31 Nitrat mg/L 2.3 2.3 Kecerahan cm 62 62 Arus m/s 0.50 0.50 48 Lampiran 6.
    [Show full text]
  • Tour Pages by Clicking This Link
    STATION 1 (Welcome) WELCOME TO THE CBEC TINY THINGS TOUR (STATION 1) This tour is designed to acquaint CBEC visitors with the amazingly diverse array of organisms here that are not typically noticed, mainly because they’re too small to be seen without either very careful observation or the aid of a magnifier (either a handheld device or a microscope). The tour will discuss representatives of the six kingdoms of living things (Bacteria, Archaea, Fungi, Plants, Protists, and Animals), as well as viruses. In addition to brief discussions of the particular organisms themselves, we’ll consider the role that these organisms play in their immediate environment, their effect on the larger biosphere, and their ability to teach us about the past and the future. Taking the Tour: To take the tour, visitors may use the Tiny Things Tour map, where the 14 stations are indicated with red numbers. The map should be used in conjunction with the printable list of stations. The list has the GPS coordinates for each station, along with QR codes that provide links to the web pages that describe each station. The GPS coordinates, as well as a simple description of each location are included on each station’s web page. If visitors haven’t brought along a mobile device (to view the web pages), they can print a copy of the tour pages by clicking this link. A guided version of the Tiny Things Tour is scheduled on a regular basis. Check the CBEC schedule for upcoming guided tours. Each web page includes a photo of the representative organism, it’s common name and scientific name, a description of the station location (including its GPS location), and a description of the organism and its environment.
    [Show full text]
  • Rapport 31 Tweede Druk (2016)
    REFERENTIES EN MAATLATTEN VOOR NATUURLIJKE WATERTYPEN VOOR DE KADERRICHTLIJN WATER 2015-2021 2012 RAPPORT 31 TWEEDE DRUK (2016) 978.90.5773.569.1 [email protected] www.stowa.nl Publicaties van de STOWA kunt u bestellen op www.stowa.nl TEL 033 460 32 00 Stationsplein 89 3818 LE Amersfoort POSTBUS 2180 3800 CD AMERSFOORT STOWA 2012-31 REFERENTIES EN MAATLATTEN VOOR NATUURLIJKE WATERTYPEN VOOR DE KADERRICHTLIJN WATER 2015-2021 COLOFON UITGAVE Stichting Toegepast Onderzoek Waterbeheer Postbus 2180 3800 CD Amersfoort AUTEURS Meren: W. Altenburg (Altenburg & Wymenga), G. Arts (Alterra), J.G. Baretta-Bekker (RWS), M.S. van den Berg (RWS), T. van den Broek (Royal Haskoning), R. Buskens (Taken Landschapsplanning), R. Bijkerk (Koeman & Bijkerk), H.C. Coops (RWS, WL/Delft Hydraulics), H. van Dam (Aquasense, Waternatuur), G. van Ee (Provincie Noord Holland, Hoogheemraadschap Hollands Noorderkwartier), C.H.M. Evers (Royal Haskoning), R. Franken (Wageningen Universiteit), B. Higler (Alterra), T. Ietswaart (Royal Haskoning, Provincie Friesland), N. Jaarsma (Witteveen+Bos), D.J. de Jong (RWS), A.M.T. Joosten (Stichting Alg), M. Klinge (Witteveen+Bos), R.A.E. Knoben (Royal Haskoning), J. Kranenbarg (RWS, WL/Delft Hydraulics), W.M.G.M. van Loon (RWS), R. Noordhuis (RWS), R. Pot (Roelf Pot onderzoek- en adviesbureau), F. Twisk (RWS), P.F.M. Verdonschot (Alterra), H. Vlek (Alterra), K. Wolfstein (RWS). Rivieren: J.J.G.M. Backx (RWS), M. Beers (OVB, AquaTerra), M.S. van den Berg (RWS), T. van den Broek (Royal Haskoning), R. Buskens (Taken Landschapsplanning), A.D. Buijse (RWS), H.C. Coops (RWS, WL/Delft Hydraulics), H. van Dam (Aquasense, Waternatuur), G.
    [Show full text]
  • (Cyanobacterial Genera) 2014, Using a Polyphasic Approach
    Preslia 86: 295–335, 2014 295 Taxonomic classification of cyanoprokaryotes (cyanobacterial genera) 2014, using a polyphasic approach Taxonomické hodnocení cyanoprokaryot (cyanobakteriální rody) v roce 2014 podle polyfázického přístupu Jiří K o m á r e k1,2,JanKaštovský2, Jan M a r e š1,2 & Jeffrey R. J o h a n s e n2,3 1Institute of Botany, Academy of Sciences of the Czech Republic, Dukelská 135, CZ-37982 Třeboň, Czech Republic, e-mail: [email protected]; 2Department of Botany, Faculty of Science, University of South Bohemia, Branišovská 31, CZ-370 05 České Budějovice, Czech Republic; 3Department of Biology, John Carroll University, University Heights, Cleveland, OH 44118, USA Komárek J., Kaštovský J., Mareš J. & Johansen J. R. (2014): Taxonomic classification of cyanoprokaryotes (cyanobacterial genera) 2014, using a polyphasic approach. – Preslia 86: 295–335. The whole classification of cyanobacteria (species, genera, families, orders) has undergone exten- sive restructuring and revision in recent years with the advent of phylogenetic analyses based on molecular sequence data. Several recent revisionary and monographic works initiated a revision and it is anticipated there will be further changes in the future. However, with the completion of the monographic series on the Cyanobacteria in Süsswasserflora von Mitteleuropa, and the recent flurry of taxonomic papers describing new genera, it seems expedient that a summary of the modern taxonomic system for cyanobacteria should be published. In this review, we present the status of all currently used families of cyanobacteria, review the results of molecular taxonomic studies, descriptions and characteristics of new orders and new families and the elevation of a few subfamilies to family level.
    [Show full text]
  • Research Article
    Ecologica Montenegrina 20: 24-39 (2019) This journal is available online at: www.biotaxa.org/em Biodiversity of phototrophs in illuminated entrance zones of seven caves in Montenegro EKATERINA V. KOZLOVA1*, SVETLANA E. MAZINA1,2 & VLADIMIR PEŠIĆ3 1 Department of Ecological Monitoring and Forecasting, Ecological Faculty of Peoples’ Friendship University of Russia, 115093 Moscow, 8-5 Podolskoye shosse, Ecological Faculty, PFUR, Russia 2 Department of Radiochemistry, Chemistry Faculty of Lomonosov Moscow State University 119991, 1-3 Leninskiye Gory, GSP-1, MSU, Moscow, Russia 3 Department of Biology, Faculty of Sciences, University of Montenegro, Cetinjski put b.b., 81000 Podgorica, Montenegro *Corresponding autor: [email protected] Received 4 January 2019 │ Accepted by V. Pešić: 9 February 2019 │ Published online 10 February 2019. Abstract The biodiversity of the entrance zones of the Montenegro caves is barely studied, therefore the purpose of this study was to assess the biodiversity of several caves in Montenegro. The samples of phototrophs were taken from various substrates of the entrance zone of 7 caves in July 2017. A total of 87 species of phototrophs were identified, including 64 species of algae and Cyanobacteria, and 21 species of Bryophyta. Comparison of biodiversity was carried out using Jacquard and Shorygin indices. The prevalence of cyanobacteria in the algal flora and the dominance of green algae were revealed. The composition of the phototrophic communities was influenced mainly by the morphology of the entrance zones, not by the spatial proximity of the studied caves. Key words: karst caves, entrance zone, ecotone, algae, cyanobacteria, bryophyte, Montenegro. Introduction The subterranean karst forms represent habitats that considered more climatically stable than the surface.
    [Show full text]
  • New Record of Fresh-Water Green Algae (Chlorophytes) from Korea
    JOURNAL OF Research Paper ECOLOGY AND ENVIRONMENT http://www.jecoenv.org J. Ecol. Environ. 36(4): 303-314, 2013 New record of fresh-water green algae (Chlorophytes) from Korea Han Soon Kim* Department of Biology, Kyungpook National University, Daegu 702-701, Korea Abstract The present study summarized the occurrence, distribution and autecology about 31 taxa of the green algae (Chloro- phytes) collected from several swamps, reservoir and highland wet-lands in the South Korea from 2010 to 2013. This pa- per deals with a total 31 taxa including of 26 genera which are recorded for the first time in Korea. Among these algae, 18 genera including Pyrobotrys Arnoldi, Volvulina Playfair, Dicellula Svirenko, Echinocoleum Jao & Lee, Hofmania Chodat, Gloeotila Kützing, Tetrachlorella Korschikov, Botryospherella P.C.Silva etc., were newly recorded in Korean fresh-water algal flora. Key words: Chlorophytes, Korean fresh-water algal flora, newly recorded INTRODUCTION Since Kawamura (1918) reported a species of Centri- fresh-water algae within regions of Korea, including un- tractus at lake Seoho, Suwon, about 1,800 taxa of fresh- usual environments (e.g., highland moorlands, mountain water algae, excluding diatoms, have been recorded in sphagnum bogs or wet-lands and crater) is immediately Korea (Chung 1968, Chung 1970, 1975, 1976, 1979, 1993, required. Chung et al. 1972a, 1972b, Chung and Lee 1986, Chung More than 500 samples were collected from various and Kim 1992, 1993, Wui and Kim 1987a, 1987b, Kim 1992, water bodies throughout the country were investigated 1996, Kim and Chung 1993, 1994, Kim et al. 2009), and for establishment fresh-water algal flora in Korea.
    [Show full text]