Revisión: 01 Defensas Fluviales del Río Aconcagua, Fecha Elab.: 08-04-18 Ruta 60 CH. N° Páginas: 52
Monitoreo de la Fauna Íctica del Proyecto de Construcción de las Defensas Fluviales del Río Aconcagua, Ruta 60 CH.
Marzo 2018
ELABORADO REVISADO APROBADO Nombre Diego Antón Daniel Gutiérrez Sergio Quiroz Cargo Biólogo Ing. Ambiental Biólogo Fecha 08/04/2018 11/04/2018 12/04/2018
Firma
Av. Manuel Blanco Encalada 1623, Of. 1504 – Valparaíso Fono: +56-032-3350578 www.erasustentable.cl
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CONTENIDOS
1 RESUMEN ...... 5 2 INTRODUCCIÓN ...... 6 3 OBJETIVOS ...... 7 3.1 Objetivo General ...... 7 3.2 Objetivos Específicos ...... 7 4 MATERIALES Y MÉTODOS ...... 8 4.1 Descripción del Área de Estudio ...... 8 4.2 Metodología ...... 10 4.2.1 Estudio de Gabinete ...... 10 4.2.2 Metodología de Terreno ...... 11 4.2.3 Parámetros de Estudio y Biometría ...... 12 4.2.4 Estado de Conservación y Origen ...... 13 4.2.5 Índices Ecológicos ...... 15 4.2.6 Fitoplancton, Zooplancton y Fitobentos ...... 16 4.2.7 Zoobentos ...... 23 4.3 Protección frente al Didymo ...... 26 5 RESULTADOS ...... 27 5.1 Riqueza Específica...... 27 5.2 Abundancia Específica ...... 29 5.3 Medidas Biométricas ...... 29 5.4 Estado de Conservación y Origen ...... 29 5.5 Índices Ecológicos...... 30 5.6 Fitoplancton, Zooplancton y Fitobentos...... 31 5.7 Zoobentos ...... 40 6 DISCUSIONES ...... 43 7 CONCLUSIONES ...... 45 8 REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS...... 46 9 ANEXOS ...... 48 9.1 Anexo 1: Equipo de Trabajo...... 48 9.2 Anexo 2: Medidas Biométricas ...... 50
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ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1. Ubicación del área de estudio en la Región de Valparaíso...... 8 Figura 2. Disposición espacial de las estaciones respecto al puente Tinajas...... 9 Figura 3. Paisaje fluvial del río Aconcagua en el tramo de estudio...... 10 Figura 4. Ejecución en terreno...... 11 Figura 5. Pecera de captura de individuos con sistema de aireación...... 12 Figura 6. Toma de medidas biométricas...... 13 Figura 7. Preservación de las muestras...... 18 Figura 8. Extracción de muestras de fitobentos...... 18 Figura 9. Desinfección de materiales de trabajo frente al Didymo...... 26 Figura 10. Individuos de Trichomycterus areolatus (Bagrecito)...... 27 Figura 11. Individuos de Cheirodon pisciculus (Pocha)...... 28 Figura 12: Cladophora sp presente en muestras de fitobentos...... 32 Figura 13. Abundancia del Fitoplancton (cel/L), estación E1...... 33 Figura 14. Abundancia del Fitoplancton (cel/L), estación E2...... 33 Figura 15. Abundancia del Fitoplancton (cel/L), estación E3...... 34 Figura 16. Abundancia del Fitoplancton (cel/L), estación E4...... 34 Figura 17. Abundancia del fitobentos, (cél/cm2). Estación E1...... 35 Figura 18. Abundancia del fitobentos, (cél/cm2). Estación E2...... 36 Figura 19. Abundancia del fitobentos, (cél/cm2). Estación E3...... 36 Figura 20. Abundancia del fitobentos, (cél/cm2). Estación E4...... 37 Figura 21. Dendrograma de Similitud Taxonómica de Jaccard, (Sj) y Dendrograma de Similitud Biocenótica de Winner, (Sw) del fitoplancton...... 39 Figura 22. Dendrograma de Similitud Taxonómica de Jaccard, (Sj) y Dendrograma de Similitud Biocenótica de Winner, (Sw) del fitobentos...... 40 Figura 23. Macroinvertebrados bentónicos...... 41 Figura 24. Gráfica de porcentaje de abundancia por familia...... 41
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ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1. Coordenadas UTM Datum WGS84 las estaciones de estudio...... 9 Tabla 2. Taxa asociados al índice diatómico general...... 22 Tabla 3. Clasificación de calidad de las aguas según índice diatómico general. .. 23 Tabla 4. Calidad del agua según IBF...... 25 Tabla 5. Valores de tolerancia para macroinvertebrados bentónicos...... 25 Tabla 6. Clasificación taxonómica de las especies registradas...... 27 Tabla 7. Presencia o ausencia de las especies registradas en las estaciones de muestreo...... 28 Tabla 8. Abundancia total de las especies registradas...... 29 Tabla 9. Abundancia por estación de muestreo de las especies registradas...... 29 Tabla 10. Categoría de conservación según la legislación vigente para las especies registradas...... 30 Tabla 11. Índice de diversidad de Shannon ...... 30 Tabla 12. Índices ecológicos de la comunidad fitoplanctónica...... 37 Tabla 13. Índices ecológicos de la comunidad fitobentónica...... 38 Tabla 14. Diagnóstico de cada punto muestreado en la Ruta 60 Ch, en base al IDG...... 38 Tabla 15. Abundancia de la comunidad bentónica registrada en el área de estudio por punto...... 40 Tabla 16. Listado taxonómico de las comunidades bentónicas registradas en las estaciones muestreadas con su puntaje de tolerancia...... 42 Tabla 15. Abundancia por campaña de trabajo...... 43
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1 RESUMEN
Se realizó el monitoreo de fauna íctica del proyecto “Construcción de las Defensas Fluviales del Río Aconcagua para el Camino Internacional Ruta 60 CH”, ubicado a 3 Km al Oeste de la ciudad de San Felipe.
Los trabajos en terreno cuantificaron una riqueza específica del área de dos especies: Trichomycterus areolatus (Bagrecito) y Cheirodon pisciculus (Pocha).
La abundancia total del área de estudio fue de 100 individuos, distribuidos en 99 individuos de Trichomycterus areolatus y un individuo de Cheirodon pisciculus (Pocha). Se registraron individuos en todas las estaciones de estudio.
El origen de las especies registradas fue Nativo, no registrándose ninguna especie de origen exótico. Además Cheirodon pisciculus una especie endémica de Chile. Respecto a los estados de conservación ambas especies están catalogadas como Vulnerables.
A nivel comunitario, la icitiofauna del área se encuentra distribuida de manera irregular apareciendo una especie dominante (Trichomycterus areolatus, 99 individuos) frente al resto (Cheirodon pisciculus, 1 individuo).
El estudio de los macroinvertebrados bentónicos, como complemento a la fauna íctica, muestra que los individuos registrados y categorizables (en las categorías de calidad de aguas), muestran que los individuos registrados son propios de aguas de buena calidad.
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2 INTRODUCCIÓN
El proyecto de “Construcción de las Defensas Fluviales del Río Aconcagua para el Camino Internacional Ruta 60 CH”, en adelante “el proyecto”, se ubica en la Región de Valparaíso, provincia de San Felipe, comunas de San Felipe y Panquehue, en la cuenca media del río Aconcagua.
El proyecto consiste en la construcción y operación de defensas fluviales a implementar en las riberas sur y norte, respectivamente, de la cuenca intermedia del río Aconcagua, entre San Felipe y Panquehue.
El proyecto fue aprobado por la Comisión Regional del Medio Ambiente de la Región de Valparaíso el 7 de Septiembre del 2007 mediante la RCA N° 261/2007. En el numeral 7.3 de dicha RCA se indica la realización de “un seguimiento al inicio de la operación y uno al cabo de 6 meses para evaluar el efecto del proyecto. Los resultados indicarán la necesidad de realizar subsecuentes monitoreos y su frecuencia”.
El presente informe muestra los resultados del monitoreo de fauna íctica realizado por el equipo de terreno de ERA Sustentable entre los días 15 y 16 de Marzo 2018. De manera complementaria al estudio de fauna íctica, se agregó un estudio de fitoplancton, zooplancton, fitobentos y zoobentos para analizar la calidad del agua.
Todos los trabajos detallados en el presente informe fueron realizados bajo la Resolución Exenta N° 1865/2017, del Ministerio de Economía, Fomento y Turismo, Subsecretaria de Pesca y Acuicultura
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3 OBJETIVOS
3.1 Objetivo General
Realizar un monitoreo de la fauna íctica del Río Aconcagua en la zona que fue intervenida por la construcción de las defensas fluviales de la ruta 60 CH, Comuna de San Felipe, Región de Valparaíso, Chile.
3.2 Objetivos Específicos
Caracterizar la composición íctica presente en el área de influencia del Proyecto.
Cuantificar la riqueza específica del área de influencia del Proyecto.
Cuantificar la abundancia de cada especie.
Determinar el estado de conservación y origen de cada especie.
Calcular los índices ecológicos (diversidad, uniformidad y dominancia) del área de influencia del Proyecto.
Caracterizar el fitoplancton, zooplancton y fitobentos presente en el área de influencia del Proyecto.
Caracterizar la fauna bentónica presente en el área de influencia del Proyecto.
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4 MATERIALES Y MÉTODOS
4.1 Descripción del Área de Estudio
El área de estudio se encuentra ubicado en la Región de Valparaíso, Provincia de San Felipe de Aconcagua, Comuna de San Felipe. Concretamente, el área de estudio está situado a 3 kilómetros al Oeste de la ciudad de San Felipe (Figura 1).
Área de estudio
San Felipe
Figura 1. Ubicación del área de estudio en la Región de Valparaíso. Fuente: Google Earth, ERA Sustentable.
El área de estudio se encuentra en las proximidades del puente Tinajas, donde en Mayo de 2015 se realizó el rescate y relocalización de fauna íctica. Se determinaron cuatro estaciones en terreno en las cuales se aplicó la metodología de pesca eléctrica, dos estaciones en aguas arriba del puente Tinajas y dos estaciones, aguas abajo del puente Tinajas. La Tabla 1 presenta las coordenadas del área de estudio y la Figura 2 la disposición geográfica de los puntos.
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Tabla 1. Coordenadas UTM Datum WGS84 las estaciones de estudio. Coordenadas UTM Datum WGS 84 Disposición respecto a Estaciones Este Norte puente Tinajas Estación 1 (E1) 334735 6376682 Aguas abajo Estación 2 (E2) 334908 6376564 Estación 3 (E3) 334986 6376522 Aguas arriba Estación 4 (E4) 334978 6376425 Fuente: ERA Sustentable.
Figura 2. Disposición espacial de las estaciones respecto al puente Tinajas. En rojo dirección de la corriente. Fuente: ERA Sustentable.
La Figura 3 muestra las imágenes del área de estudio por estación, donde se observa el río Aconcagua, con un caudal bajo debido a la época cuando se realizó el muestreo, fin de verano.
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A B
C D
Figura 3. Paisaje fluvial del río Aconcagua en el tramo de estudio, en las estaciones: (A) E1, (B) E2, (C) E3 y (D) E4. Fuente: ERA Sustentable.
4.2 Metodología
4.2.1 Estudio de Gabinete
La primera fase del monitoreo de fauna íctica, previo al trabajo en terreno, fue la revisión de los antecedentes existentes. Con este fin se utilizó la bibliografía existente sobre la ictiofauna de la Región y además se revisaron los proyectos presentados en la plataforma del SEA en el entorno del Proyecto.
Durante esta fase se establecieron los métodos y el diseño de muestreo para levantar la información en terreno. Además este estudio en gabinete permitió determinar el protocolo de trabajo y prevención de riesgos asociados al trabajo en el medio natural.
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4.2.2 Metodología de Terreno
Se realizó una caracterización ambiental del componente fauna íctica del polígono del Proyecto, en las cuatro estaciones de estudio determinadas. El terreno fue realizado los días 15 y 16 de Marzo 2018, con un horario de 9:00 a 17:00, por un equipo formado por un Biólogo y un asistente técnico.
El monitoreo de la fauna íctica fue realizado mediante el método de pesca eléctrica. La pesca eléctrica es la técnica de muestreo de peces más utilizada en ríos y aguas estancadas vadeables. Es efectiva y relativamente inocua. El método se basa en la creación de un campo eléctrico en una zona del medio acuático, que modifica el comportamiento del pez existente y facilita su captura. La corriente eléctrica puede generar en el individuos electrotaxis (natación obligada), electrotétano (contracción muscular) y electronarcosis (relajación muscular) (CHE, 2005). En este caso se utilizó un equipo SAMUS 725 MP (Figura 4).
Figura 4. Ejecución en terreno. Fuente: ERA Sustentable.
Los individuos en letargo momentáneo, fueron capturados con chinguillos y depositados en baldes con la misma agua del río más un sistema de aireación portátil, con el objeto de no provocar un estrés en. Los ejemplares fueron anestesiados con Dolical 80% (Tricaina Methanosulfonato 80%) en una concentración de 40mg/L y por un tiempo nunca superior a los 10 minutos, para su posterior manipulación biométrica. Terminadas las mediciones, los individuos se mantuvieron en baldes de recuperación (con agua del río) para ser liberados en su hábitat natural (Figura 5).
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A B
Figura 5. (A) Pecera de captura de individuos con sistema de aireación. (B) Preparación de la pecera de captura. Fuente: Elaboración propia.
De acuerdo a lo estipulado en la resolución del permiso de pesca de investigación, tras la identificación y la toma de medidas las especies de peces nativos serán devueltas al cauce de estudio, mientras que las especies exóticas serán sacrificadas en su totalidad, en consideración a su potencial rol invasivo y riesgo para la conservación de las especies nativas presentes en el área de estudio.
4.2.3 Parámetros de Estudio y Biometría
Los individuos monitoreados fueron identificados hasta el nivel taxonómico de especie. La identificación de las especies fue corroborada con el siguiente material bibliográfico: Gayana Zoología. 2006. Biodiversidad Dulceacuícola de Chile. Universidad de Concepción. Volumen 70. Quiroz, S. & D. Moreno. 2009. Guía de Campo Peces Dulceacuícolas. Fondo de protección Ambiental. Ruiz, V. & M. Marchant. 2004. Ictiofauna de Aguas Continentales. Universidad de Concepción. SERNAPESCA. 2012. Fichas Ícticas de Especies para la Pesca Recreativa en Chile. Especies Dulceacuícolas. Vila, I., A. Veloso, R. Schalatter & C. Ramirez. 2006. Macrófitas y Vertebrados de los Sistemas LÍmnicos de Chile. Editorial Universitaria.
Además, cada una de las especies fue cuantificada su número de individuos para determinar su abundancia.
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Los parámetros biométricos estudiados fueron: Longitud Total: por medio de un ictiómetro ó un pie de metro de 1 mm de precisión. Anchura: utilizando también el pie de metro. Peso: usando una balanza digital marca Jadever, modelo “SNUG- SF400A” de 0,1 g de precisión.
Figura 6. Toma de medidas biométricas. Fuente: ERA Sustentable.
4.2.4 Estado de Conservación y Origen
La determinación del estado de conservación de las especies registradas en el área de influencia del Proyecto fue mediante los antecedentes entregados por los once procesos del Reglamento de Clasificación de especies silvestres aprobados: D.S N°151/07, D.S N°50/08, D.S N°51/08, D.S N°23/09, D.S N°33/11, D.S N°41/11, D.S N°42/11, D.S N°19/12, D.S N°13/13, D.S N° 52/14, D.S. N°38/15, D.S. Nº 16/16 y D.S. Nº 06/17.
Se consideraron las siguientes categorías de conservación:
Especie en peligro de extinción: especies de la fauna silvestre expuestas a la amenaza de desaparecer, a corto o mediano plazo del patrimonio fáunico nacional.
Especie vulnerable: especies de la fauna silvestre que por ser objeto de una caza o captura intensiva, por tener una existencia asociada a determinados hábitats naturales que están siendo objeto de un progresivo
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proceso de destrucción o alteración, o debido a la contaminación de su medio vital, o a otras causas, están experimentando un constante retroceso numérico que puede conducirlas al peligro de extinción.
Especie rara: especies de la fauna silvestre cuyas poblaciones, ya sea por tener una distribución geográfica muy restringida por encontrarse en los últimos estadios de su proceso de extinción natural, son y han sido escasas desde tiempos inmemoriales.
Especie escasamente conocida: especies de la fauna silvestre respecto de las cuales sólo se dispone de conocimientos científicos rudimentarios e incompletos para determinar su correcto estado de conservación.
Especie en preocupación menor: Especies de taxones abundantes con amplia distribución, que no se encuentran bajo amenaza directa de desaparecer en un futuro próximo, siendo por lo tanto las de menor riesgo de la lista.
Respecto al origen de las especies, se clasificaron las especies en nativas, endémicas o introducidas en base al Inventario Nacional de Especies del Ministerio del Medio Ambiente.
Especie Nativa: Especie que tiene su origen biogeográfico en el lugar donde habitan.
Especie Endémica: Especies que se define por vivir exclusivamente dentro de un determinado territorio, ya sea un continente, un país, una región política administrativa, una región biogeográfica, una isla o una zona particular. Por lo tanto, las especies endémicas son un subconjunto de las especies nativas.
Especie Introducida o Exótica: Especies cuyo origen natural ha tenido lugar en otra parte del mundo y que por razones principalmente antrópicas han sido transportadas a otro sitio (voluntaria o involuntariamente). De igual modo, una especie exótica es aquella, aunque sea nativa del mismo país, ha sido introducida en una zona del país dónde no tiene distribución natural.
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4.2.5 Índices Ecológicos
4.2.5.1 Índice de Diversidad de Shannon-Weaver
La diversidad es un indicador que relaciona la riqueza específica (S) de una comunidad frente a la abundancia de cada especie. El índice de diversidad de Shannon-Weaver calculó la diversidad de la zona de estudio considerando las abundancias de las especies presentes (Shannon & Weaver, 1949). El índice de diversidad se expresó como bits/individuo. La fórmula para obtener el índice es la siguiente:
H’ = - pi log2 pi pi: Abundancia de una especie/abundancia total
El índice de Shannon es H’ = 0 cuando la muestra contiene una especie, y, H’ será máxima cuando todas las especies estén representadas por el mismo número de individuos, por lo tanto, no tiene límite superior definido. En función de la riqueza específica se puede obtener el valor máximo del índice de diversidad Shannon-Weaver, este valor está determinado por la siguiente fórmula:
H’ máx = log2 S
4.2.5.2 Índice de Uniformidad de Pielou (J’)
La uniformidad o equitatividad de una transecta o zona de estudio, indica la distribución de los individuos por especie, es decir, si la distribución de los individuos es equitativa o aparecen especies dominantes, en términos numéricos. El índice de uniformidad no presenta unidades. El índice de uniformidad de Pielou (J’) se calcula en base a la siguiente fórmula:
J’ = H’ / Log2 (S)
H’: Índice de diversidad de Shannon-Weaver. S: Riqueza específica. El índice de uniformidad de Pielou siempre registra un valor positivo con un rango entre 0 y 1, siendo 1 una comunidad de especies igualmente abundante, mientras
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que el 0 indica ausencia de uniformidad siendo una comunidad dominada por una sola especie (Pielou, 1969).
4.2.5.3 Índice de Dominancia de Simpson
La dominancia (D) de una comunidad es un indicador de la distribución de las abundancias específicas de las especies. Este índice manifiesta la probabilidad de que dos individuos tomados al azar en una muestra sean de la misma especie. El índice de dominancia de Simpson es un indicador afín al índice de uniformidad de Pielou indicado anteriormente. Este índice no presenta unidades. Su fórmula es la siguiente:
2 D = ∑ (pi) pi: Abundancia de una especie/abundancia total
El índice de dominancia de Simpson siempre registra un valor positivo con un rango entre 0 y 1 siendo 0 una comunidad de especies igualmente abundante, mientras que el 1 indica la presencia de una especie dominante respecto a la comunidad (Simpson, 1949).
4.2.6 Fitoplancton, Zooplancton y Fitobentos
El diagnóstico de la estructura comunitaria de las comunidades fitoplanctónicas, fitobentónicas y zooplanctónicas del Proyecto tiene como objetivo realizar una aproximación de la calidad del agua de este cuerpo fluvial.
De acuerdo con Parra, 1996 se considera al fitoplancton como una comunidad de organismos microscópicos fotosintetizadores que se hallan en suspensión en las aguas y que pueden ser delimitados ecológica y fisionómicamente. Por otra parte el fitobentos comprende a un complejo comunitario algológico fotoautotrófico que vive asociado a un sustrato del fondo de los cuerpos de aguas. En el fitobentos es factible distinguir las siguientes subcomunidades de algas:
Algas epipélicas: aquellas que crecen sobre el sedimento. Algas epilíticas: las que crecen sobre superficies rocosas. Algas epifíticas, que son las que crecen sobre superficies de vegetales. Algas epizoicas, las que crecen sobre superficies animales. Algas endófitas, las que crecen dentro de las células o tejidos vegetales.
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Algas episámmicas, que son las algas que crecen sobre los granos de arenas.
También se reconoce como una comunidad independiente la que se denomina metafiton, la cual está integrada por algas que se encuentran agregadas en la zona litoral, la cual no está estrictamente adherida a un sustrato ni es verdaderamente planctónica. Por otra parte el término perifiton, generalmente se refiere a una microflora algal que crece sobre un substrato, ya sea natural o artificial.
Estos grupos algológicos, por su naturaleza (ciclos de vida cortos, alta tasa reproductiva, presentar rangos de tolerancias particulares a la oferta ambiental, manifestarse con respuestas rápidas frente a una perturbación de su hábitat, etc.) son atractivos para utilizarlos como bioindicadores, (Badillo, M. el at., 2010). Una forma de evaluar la variación de la condición de estado de un ambiente en particular es mediante la respuesta de los bioindicadores. Para ellos existen diversos índices matemáticos que ofrecen un enfoque particular de los cambios de la fenología de las comunidades Estos corresponden a los de diversidad, de similitud y a los índices bióticos, (Toro, J. et al., 2003).
La comunidad zooplanctónica de agua dulce, está constituida por los rotíferos, cladóceros y copépodos siendo los principales grupos. Ellos conforman un grupo heterotróficos importante de la trama trófica, participando en el flujo de la energía procedente de microalgas hacia eslabones superiores. Son fundamentales, a lo menos en los primeros estadios de sus ciclos de vida.
El análisis de fitoplancton, zooplancton y fitobentos fue llevado a cabo en los cuatro puntos de estudio que se realizó el monitoreo de fauna íctica (Figura 7).
En cada uno de estos puntos se tomaron 3 unidades muestrales, para el análisis de comunidades fitoplanctónicas, zooplanctónicas y fitobentónicas epilíticas. La recolección tanto de fitoplancton como de zooplancton consistió en filtrar 50 litros de agua del rio a través de una red de plancton de 25µm de malla. Las muestras de fitoplancton se preservaron en lugol, mientras que las muestras de zooplancton se preservaron en alcohol (Figura 7).
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A B
Figura 7. (A) Preservación de las muestras. (B) Toma de muestras. Fuente: ERA Sustentable.
El estudio del fitobentos fue llevado a cabo en ocho piedras sumergidas y expuestas a la luz. Se extrajo el sustrato adherido en un área de 15cm x 15cm en cada piedra mediante raspado con navaja y/o cepilladas. El material fue depositado en un envase y completado con agua de rio. Las muestras fueron preservadas en terreno con lugol (Figura 8).
Figura 8. Extracción de muestras de fitobentos. Fuente: ERA Sustentable.
Las muestras de fitoplancton, zooplancton y fitobentos se trasladaron al laboratorio. En el laboratorio se realizó el análisis cualitativo y cuantitativo del material algológico analizando bajo microscopio fotónico con un aumento de 400X y el material zooplanctónico, bajo lupa estereoscópica.
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a) Análisis cualitativo: se realizó 5 preparaciones líquidas en cada una de las estaciones designadas. b) Análisis cuantitativo: se realizó 5 preparaciones observadas en una cámara tipo Sedgewick-Rafter.
Los resultados se promediaron y se aplicaron los siguientes índices:
Riqueza de especies (S)
La especie vale sólo por el hecho de estar presente sin importar su valor de importancia. Por lo tanto, este criterio cuantifica a las especies presentes, siendo un simple recuento de especie.
Índice de Diversidad de Shannon-Weaver
La diversidad es un indicador que relaciona la riqueza específica (S) de una comunidad frente a la abundancia de cada especie. El índice de diversidad de Shannon-Weaver calculó la diversidad de la zona de estudio considerando las abundancias de las especies presentes (Shannon & Weaver, 1949). El índice de diversidad se expresó como bits/individuo. La fórmula para obtener el índice es la siguiente:
H’ = - pi log2 pi pi: Abundancia de una especie/abundancia total
El índice de Shannon es H’ = 0 cuando la muestra contiene una especie, y, H’ será máxima cuando todas las especies estén representadas por el mismo número de individuos, por lo tanto, no tiene límite superior definido. En función de la riqueza específica se puede obtener el valor máximo del índice de diversidad Shannon-Weaver, este valor está determinado por la siguiente fórmula:
H’ máx = log2 S
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Índice de Uniformidad de Pielou (J’)
La uniformidad o equitatividad de una transecta o zona de estudio, indica la distribución de los individuos por especie, es decir, si la distribución de los individuos es equitativa o aparecen especies dominantes, en términos numéricos. El índice de uniformidad no presenta unidades. El índice de uniformidad de Pielou (J’) se calcula en base a la siguiente fórmula:
J’ = H’ / Log2 (S) H’: Índice de diversidad de Shannon-Weaver. S: Riqueza específica.
El índice de uniformidad de Pielou siempre registra un valor positivo con un rango entre 0 y 1, siendo 1 una comunidad de especies igualmente abundante, mientras que el 0 indica ausencia de uniformidad siendo una comunidad dominada por una sola especie (Pielou, 1969).
Índice de similitud de Jaccard
Corresponde al índice de similitud taxonómica y mide el grado de semejanza entre dos muestras en función a la presencia o ausencia de las especies. 푐 푆푗 = 푎 + 푏 + 푐 Sj: Índice de similitud de Jaccard a: número de especies presente sólo en la muestra “A”. b: número de especies presente sólo en la muestra “B”. c: número de especies presentes comunes en “A” y en “B”.
Índice de similitud de Winner
Corresponde al índice de similitud biocenótico y mide el grado de semejanza entre dos muestras a través de valores de importancia distintos a la presencia, tales como número de individuos, biomasa, cobertura, etc.
∑(푥 ∗ 푦) 푆푤 = √∑푥2 ∗ ∑푦2 x, y: valores de importancia de cada especie en las muestras “A” y “B”.
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Índice Diatómico General
El análisis de las muestras de fitobentos se realizó mediante el índice diatómico general (I.D.G) que está determinado por tres variables:
Sensibilidad: polución de cada especie (S), con valores entre 1 (más resistente) y 5 (más sensible). Amplitud ecológica (V): va desde 1 (forma ubicua) hasta 3 (Forma característica). Abundancia (A).
El IDG se calculó de la siguiente forma:
Aj= Abundancia (%) Sj= Sensibilidad a la polución (1 a 5) Vj= Valor indicativo de la especie (1 a 3) Los valores de IDG van en orden decreciente de los niveles de contaminación y se tomaron como referencia 106 taxa (Tabla 2). Con esta fórmula el valor del índice podrá variar entre 1 y 5, rango establecido para la clasificación de la calidad de las aguas (CHE, 2005).
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Tabla 2. Taxa asociados al índice diatómico general. Fuente: CHE, 2005. Sensibilidad Variabilidad Sensibilidad Variabilidad Taxa Taxa (S) (V) (S) (V) Achnantes 5 1 Gyrosigma 4 3 Amphipleura 5 3 Hantzschia 1 3 Amphora 3 2 Melosira 3 1 Anomoeoneis 5 2 Meridion 5 1 Navicula sterionella 4 1 2 2 orthostichae Navicula Attheya 2 3 punctatae 1 2 mutica Caloneis 4 2 Navicula (otras) 3 1 Campylodiscus 5 2 Neidium 4 3 Nitzschia Ceratoneis 5 2 4 2 dissipatae Cocconeis 4 1 Nitzschia (otras) 1 1 Cyclotella 3 1 Pinnularia 4 3 Cymatopleura 4 2 Rhizosoenia 2 3 Cymbella 5 1 Rhoiscophenia 4 1 Denticula 5 3 Rhopalodia 4 1 Diatoma 4 1 Stauroneis 5 2 Diploneis 5 1 Stenopterobia 5 3 Epithemia 5 2 Stephanodiscus 2 1 Eunotia 5 1 Surirella 3 3 Fragilaria 4 1 Synedra 3 1 Frustulia 5 2 Tabellaria 5 1 Gomphoneis 4 2 Tetracyclus 5 3 Gomphonema 3 2 Thalassiosira 2 3
Luego de la obtención del índice diatómico general, las aguas estudiadas se clasificaron con la Tabla 3.
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Tabla 3. Clasificación de calidad de las aguas según índice diatómico general.
Fuente: CHE, 2005.
4.2.7 Zoobentos
De manera complementaria al estudio de fauna íctica, se realizó un estudio de zoobentos para analizar la calidad del agua del área de estudio. El estudio del zoobentos, a través de los macroinvertebrados, permite analizar de manera integral los cuerpos de agua. Estos organismos responden frente a las perturbaciones que ocurren dentro de su hábitat, modificando la estructura de su población en composición, abundancia, presencia o ausencia.
Las comunidades de macroinvertebrados bentónicos de los ecosistemas acuáticos continentales chilenos han sido abordadas principalmente en los cuerpos de agua del sur del país por Campos et al. (1984); Valdovinos et al. (1993); Arenas, (1995); Valdovinos y Araya (1998); Valdovinos y Figueroa (2000); Muñoz et al. (2001); Valdovinos (2001); Moya et al. (2002) entre otros. Los estudios se han centrado principalmente en la utilización de estas especies acuáticas como bioindicadores de calidad de agua.
El análisis de fitoplancton, zooplancton y fitobentos fue llevado en los cuatro puntos de estudio de ictiofauna. Los esfuerzos de captura se realizaron con chinguillos tipo “D” con una red de 0.045 m2 de área de superficie de cobertura y de unos 250 um de abertura de malla. El muestreo se ejecutó removiendo el sustrato (sedimento y/o macrófitos) con la mano o el pie, de forma que los posibles animales y algas que se encuentran en el fondo del río y/o adheridos a las plantas acuáticas queden en
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suspensión en la columna de agua, así, con un movimiento zigzagueante de la red colocada a contracorriente todo el material removido entra en ella. Las muestras colectadas fueron almacenadas en bolsas plásticas, etiquetadas y fijadas en terreno con alcohol al 95%.
Posteriormente, las muestras se llevaron al laboratorio donde se fijaron con alcohol para ser examinadas bajo lupa estereoscópica, separando la totalidad de los organismos, clasificándolos e identificándolos hasta el nivel de familia, mediante la utilización de claves tales como Figueroa et al., (2003); Roldán, (2003); CONAMA, (2006).
La caracterización ecológica de las comunidades de cada sector estudiado se realizó tomando conjuntamente a todas las familias reconocidas, estableciéndose la riqueza específica (S).
Para determinar las calidad de las aguas se utilizó el IBF (Indice biótico de familia). Este índice fue desarrollado por Chuter (1972) para ríos de Sudáfrica y modificado por Hilsenhoff (1988) para aguas de climas templados de norteamérica y actualmente es uno de los más usados por la USEPA (Mackie, 2001). Este índice tienen una aplicación recién en Chile (Figueroa et al., 2003) por cada familia se determinó un puntaje de tolerancia, donde cero representa el menos tolerante y 10 corresponde al más tolerante a la contaminación orgánica.
Para calcular el IBF, se multiplicó el puntaje de tolerancia por el número de individuos. Los resultados fueron sumados y divididos por el número total de individuos de cada estación, según la siguiente ecuación: Donde:
N: número total de individuos en la muestra (Estación). ni: número de individuos en una Familia ti: puntaje de tolerancia de cada Familia.
Este índice, permitió clasificar la calidad del agua desde la Clase I (Excelente) a Clase VII (Muy malo), como se presenta en la Tabla 4, correspondiente a una escala de condición biológica que fue desarrollada para determinar el grado de contaminación orgánica (Tabla 5).
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Tabla 4. Calidad del agua según IBF.
Fuente: Hilsenhoff, 1988.
Tabla 5. Valores de tolerancia para macroinvertebrados bentónicos utilizados en la determinación de índice biótico de familia. El índice se basa en el supuesto que la riqueza de las taxa en el bentos refleja la calidad del agua. Fuente: Figueroa et al., 2003.
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4.3 Protección frente al Didymo
Todos los elementos de trabajo que entraron en contacto con agua en el área de trabajo (elementos de pesca eléctrica, wader, pecera) fueron desinfectados tras finalizar los trabajos para evitar la propagación del Didymo.
Figura 9. Desinfección de materiales de trabajo frente al Didymo. Fuente: ERA Sustentable.
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5 RESULTADOS
5.1 Riqueza Específica
El resultado del monitoreo de fauna íctica registró la presencia de dos especies de peces en el área del Proyecto. Se registraron dos órdenes (Characiformes y Siluriformes) y dos familias (Characidae y Trichomycteridae). Concretamente, se registraron las especies: Cheirodon pisciculus (Pocha) y Trichomycterus areolatus (Bagrecito).
Tabla 6. Clasificación taxonómica de las especies registradas. Nombre Nombre Clase Orden Familia Científico Vernáculo Cheirodon Characiformes Characidae Pocha pisciculus Actinopterygii Trichomycterus Siluriformes Trichomycteridae Bagrecito areolatus Fuente: ERA Sustentable.
Trichomycterus areolatus, bagrecito (Figura 10), es una especie que se distribuye en Chile entre Illapel y la Región de los Lagos (GESAM, 2006). El hábitat de esta especie se ha descrito en ambientes de ritrón, encontrándose a menudo bajo las piedras en las aguas “muertas” (debajo de bolones) en fuertes corrientes o al borde del flujo principal donde el agua es baja o forma pozones entre las piedras. Se encuentra en el litoral arenoso o pedregoso de los lagos en sectores donde desembocan pequeños afluentes. En estas partes se meten entre la arena y grava. (Campos et al, 1993).
Figura 10. Individuos de Trichomycterus areolatus (Bagrecito). Fuente: Elaboración propia.
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Cheirodon pisciculus, pocha (Figura 11), es una especie que se distribuye desde Vallenar hasta Colchagua (GESAM, 2006). Cheirodon pisciculus es un pez carnívoro que ocupa la zona superficial de los cursos de agua, prefiriendo aquellos lugares en que las aguas se remansan cerca de las orillas y con abundante vegetación subacuática. Tiende a formar cardúmenes que se asientan en zonas de poca profundidad.
Figura 11. Individuos de Cheirodon pisciculus (Pocha). Fuente: ERA Sustentable.
La distribución de las especies por estación de muestreo (Tabla 7) muestra la presencia de Trichomycterus areolatus en las cuatro estaciones (100%), mientras que Cheirodon pisciculus aparece en una de cuatro estaciones (25%).
Tabla 7. Presencia (P) o ausencia (-) de las especies registradas en las estaciones de muestreo. Estación de muestreo Trichomycterus areolatus Cheirodon pisciculus E1 P P E2 P - E3 P - E4 P - Fuente: ERA Sustentable.
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5.2 Abundancia Específica
La determinación de la abundancia total (Tabla 8) registró la presencia de cien individuos en el área de estudio. Por especie, Cheirodon pisciculus registró un individuo y Trichomycterus areolatus registró 99 individuos.
Tabla 8. Abundancia total de las especies registradas. Nombre Científico Nombre Vernáculo Abundancia Total Cheirodon pisciculus Pocha 1 Trichomycterus areolatus Bagrecito 99 Fuente: ERA Sustentable.
La Tabla 9 muestra la abundancia de las especies por estación de muestreo. Por especie, los individuos de Trichomycterus areolatus se registraron en todas las estaciones, siendo la estación con mayor abundancia E1 (47 individuos) y E3 la de menor abundancia (9 individuos). Cheirodon pisciculus registró únicamente un individuo en la estación E1.
Tabla 9. Abundancia por estación de muestreo de las especies registradas. Abundancia por especie Estación de muestreo Trichomycterus areolatus Cheirodon pisciculus E1 47 1 E2 16 - E3 9 - E4 27 - Fuente: ERA Sustentable.
5.3 Medidas Biométricas
El anexo 2 presenta individualizado las medidas de biométricas tomadas en el área de estudio a cada individuo.
5.4 Estado de Conservación y Origen
De acuerdo con los trece procesos del Reglamento de Clasificación de especies silvestres aprobados (D.S N°151/07, D.S N°50/08, D.S N°51/08, D.S N°23/09, D.S N°33/11, D.S N°41/11, D.S N°42/11, D.S N°19/12, D.S N°13/13, D.S N° 52/14, D.S. N°38/15, D.S. Nº 16/16 y D.S. Nº 06/17), se registraron las dos especies en estado de conservación (Trichomycterus areolatus y Cheirodon pisciculus).
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Trichomycterus areolatus se encuentra catalogada en categoría vulnerable según el D.S. 51/2008 del Ministerio Secretaría General de la Presidencia y Cheirodon pisciculus según el D.S. 38/2015 Ministerio de Medio Ambiente (Tabla 10).
Tabla 10. Categoría de conservación según la legislación vigente para las especies registradas. Nombre Nombre Estado de Legislación Vigente Origen Científico Vernáculo Conservación Trichomycterus DS 51/2008 Bagrecito Vulnerable Nativo areolatus MINSEGPRES Cheirodon Pocha Vulnerable DS 38/2015 MMA Endémica pisciculus Fuente: Elaboración propia
Respecto al origen de las especies, ambas son de origen nativo, siendo Cheirodon pisciculus una especie endémica de Chile. No se registraron especies introducidas.
5.5 Índices Ecológicos
Índice de Diversidad de Shannon
El índice de diversidad de Shannon Wiener integra dos componentes ambientales: la riqueza específica y la distribución de la abundancia por especie. En el caso del área de estudio, al tratarse de un lugar con un bajo número de especies (dos especies) que se encuentran distribuidas de una manera irregular, los valores del índice de Shannon y su porcentaje respecto al índice máximo ideal son mínimos, no alcanzando el 10%, lo que indica que las abundancias están distribuidas de la manera menos equitativa posible entre las especies (Tabla 11).
Tabla 11. Índice de diversidad de Shannon Riqueza Índice de Índice de Shannon H’/H’max (%) Específica Shannon (H’) máximo (H’max) 1 2 0,08 1 8,00% Fuente: ERA Sustentable.
1 Índice de Shannon máximo: Valor del índice de Shannon aplicado a una comunidad con el mismo número de especies que el estudio (2 especies) pero con una distribución homogénea de la abundancia de los individuos entre las especies.
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Índice de Uniformidad de Pielou
El índice de uniformidad de Pielou (J’) analiza la distribución equitativa de los individuos de una comunidad entre las diferentes especies presentes. Cuanto más se aproxime el índice a 1 la comunidad presentará una distribución más equitativa, mientras que el valor que se aproxime a 0 será de una comunidad más heterogénea.
El presente estudio línea de base presenta un valor del índice uniformidad de 0,08, lo que indica que las especies no están distribuidas de una manera uniforme.
Índice de Dominancia de Simpson
El índice de dominancia de Simpson (D) es un índice complementario al índice de uniformidad de Pielou. Los valores del índice que se aproximan a 0 indican una distribución homogénea de las abundancias por especie, mientras que los valores que se aproximan a 1 indican comunidades dominadas por 1 o 2 especies cuantitativamente.
En concordancia con los índices anteriores, el área de estudio está dominada por una especie, Trichomycterus areolatus, cuyos individuos representan el 99% de los individuos del área de estudio.
5.6 Fitoplancton, Zooplancton y Fitobentos
5.6.1 Análisis cualitativo del Fitoplancton y Fitobentos
El análisis de fitoplancton y fitobentos, a través de la microscopía, revela la presencia casi exclusiva de la Clase Bacillariophyceae representada por los siguientes taxa: Melosira varians C. Agardh, Diatoma vulgare Bory, Diatoma tenue Agardh, Navicula aff. briophyla, Synedra ulna (Nitzsch) Erh. var. ulna, Synedra acus Kuetzing var. acus, Cymbella affinis Kutzing, Cymbella minuta Hilse, Nitzschia aff. kuetzingiana Hilse, Nitzschia sp, Fragilaria crotonensis Kitton, Surirella ovata Kuetzing, Gomphonema parvulum (Kutzing) Kutzing, Neidium iridis (Hehr.) Cleve var. iridis. También se detectó cianobacterias representadas por Oscillatoria sp. y Anabaena tenuis Meneghini. Junto con lo anterior se puede mencionar la presencia de algas filamentosas como Mougeotia sp, Cladophora sp (Figura 12) y Stigeoclonium sp.
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Figura 12: Cladophora sp presente en muestras de fitobentos sobre piedra. Fuente: ERA Sustentable.
5.6.2 Análisis cuantitativo del Fitoplancton y Fitobentos
Abundancia Fitoplancton.
A continuación se desarrolla la abundancia del fitoplancton en el área de estudio. En la estación E1 destaca Synedra ulna por presentar la mayor abundancia seguida de Diatomea tenue, (Figura 13). Sin embargo Melosira varians es una especie constante, está presente en todos los puntos de muestreo, aunque con abundancia menor que Synedra ulna o Diatomea tenue, (Figura 13-Figura 16). También se observa (en los cuatro puntos de monitoreo) recambio de algunas especies con abundancia variables.
Se observó que la especie Mougeotia sp. es un (alga filamentosa típica del fitobentos) estuvo presente como un componente de la comunidad fitoplanctónica en pequeños fragmentos de 3 ó 4 células.
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Fitoplancton Abundancia (cel/L) Ruta 60 Ch Punto 1 300.000,0 250.000,0 200.000,0 150.000,0 100.000,0 50.000,0 0,0
Figura 13. Abundancia del Fitoplancton (cel/L), estación E1. Fuente: ERA Sustentable.
Fitoplancton Abundancia (cel/L) Ruta 60 Ch Punto 2 160.000,0 140.000,0 120.000,0 100.000,0 80.000,0 60.000,0 40.000,0 20.000,0 0,0
Figura 14. Abundancia del Fitoplancton (cel/L), estación E2. Fuente: ERA Sustentable.
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Fitoplancton Abundancia (cel/L) Ruta 60 Ch Punto 3 30.000,0 25.000,0 20.000,0 15.000,0 10.000,0 5.000,0 0,0
Figura 15. Abundancia del Fitoplancton (cel/L), estación E3. Fuente: ERA Sustentable.
Fitoplancton Abundancia (cel/L) Ruta 60 Ch Punto 4 300.000,0 250.000,0 200.000,0 150.000,0 100.000,0 50.000,0 0,0
Figura 16. Abundancia del Fitoplancton (cel/L), estación E4. Fuente: ERA Sustentable.
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Abundancia del Fitobentos
Del total de las especies presentes, las más importantes respecto a la abundancia fue Synedra ulna, por su persistencia en todos los puntos de muestreo, (Figura 17- Figura 20). Las restantes especies de diatomeas presentan una densidad variable. En la estación E1, es más importante desde el punto de vista de la abundancia Synedra ulna, mientras que en E2 lo es Diatoma vulgare. La estación E3 se observa Neidium iridis, con una mayor densidad (Figura 19). En la estación E4 destaca la presencia puntual y en una alta abundancia de Fragilaria crotonensis, (Figura 20).
Además, son considerable las presencias puntuales de: Oscillatoria sp (E2), Cladophora sp (E1, E4) y Stigeoclonium sp (E2).
Fitobentos Abundancia (cel/cm2) Ruta 60 Ch Punto 1 35000 30000 25000 20000 15000 10000 5000 0
Figura 17. Abundancia del fitobentos, (cél/cm2). Estación E1. Fuente: ERA Sustentable.
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Fitobentos Abundancia (cel/cm2) Ruta 60 Ch Punto 2 350000 300000 250000 200000 150000 100000 50000 0
Figura 18. Abundancia del fitobentos, (cél/cm2). Estación E2. Fuente: ERA Sustentable.
Fitobentos Abundancia (cel/cm2) Ruta 60 Ch Punto 3
90000 80000 70000 60000 50000 40000 30000 20000 10000 0
Figura 19. Abundancia del fitobentos, (cél/cm2). Estación E3. Fuente: ERA Sustentable.
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Fitobentos Abundancia (cel/cm) Ruta60 Ch Punto 4 700.000 600.000 500.000 400.000 300.000 200.000 100.000 0
Figura 20. Abundancia del fitobentos, (cél/cm2). Estación E4. Fuente: ERA Sustentable.
Índices Ecológicos del fitoplancton
La riqueza específica registrada en la estación E1 es la mayor de los cuatro puntos de estudio (nueve especies), el resto de puntos registró cuatro especies. Respecto a la diversidad (H’), el mayor valor se registra en E1 respecto a los otros puntos (E2, E3 y E4), que presentan un índice de diversidad similar (Tabla 12). El estudio de la uniformidad muestra que la comunidad fitoplanctónica en E1 muestra la menor equistribución de individuos por especie, debido a la redundancia de Synedra ulna, el resto de punto presenta un valor de uniformidad similar entre 0,79 y 0,80.
Tabla 12. Índices ecológicos de la comunidad fitoplanctónica. Estación Parámetro E1 E2 E3 E4 Riqueza (S) 9 4 4 4 Diversidad (H’) 2,24 1,59 1,59 1,57 Uniformidad (J) 0,69 0,80 0,80 0,79 Fuente: ERA Sustentable.
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Índices Ecológicos del fitobentos
Bajo el punto de vista de la riqueza de especies (S), todas las estaciones de estudio presentaron una diversidad similar, aunque levemente menor en la comunidad de la estación E4, (Tabla 13). La mayor diversidad (H’) se manifiesto en la comunidad de la estación E1 pese a que tiene un número especies similares al resto de las comunidades. Contrastando la información con el valor de uniformidad (J), la comunidad de la estación E1 es la más uniforme.
Tabla 13. Índices ecológicos de la comunidad fitobentónica. Estación Parámetro E1 E2 E3 E4 Riqueza (S) 5 5 5 4 Diversidad (H’) 1,94 1,62 1,56 1,72 Uniformidad (J) 0,84 0,63 0,67 0,61 Índice Diatómico General (IDG) 3,2 3,7 3,7 3,5 Fuente: ERA Sustentable.
Con respecto a la clasificación de la calidad de las aguas adoptadas según el Índice Diatómico General (IDG) permite indicar lo que sigue:
Tabla 14. Diagnóstico de cada punto muestreado en la Ruta 60 Ch, en base al IDG. Estación Parámetro E1 E2 E3 E4 Polución media. Polución Polución Polución media. Diagnóstico Eutrofización moderada. moderada. Eutrofización acentuada. Eutrofización. Eutrofización acentuada. Fuente: ERA Sustentable.
Similitud
La Figura 21 refleja el grado de similitud entre las muestras de la comunidad fitoplanctónica. Desde el punto de vista taxonómico (Sj), se observa que la composición taxonómica de la comunidad de la estación E1 es la más diferente al resto, siendo más similares entre si las comunidades E3 y E4, siendo comunes Melosira varians y Synedra ulna. Desde el punto de vista biocenótico (Sw), son más parecidas las comunidades E2 y E3, debido a la expresión de Melosira varians y Synedra ulna. Por la otra, son más similares las comunidades de las estaciones E1 y E4, debido a la expresión de Melosira varians.
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Figura 21. Dendrograma de Similitud Taxonómica de Jaccard, (Sj) y Dendrograma de Similitud Biocenótica de Winner, (Sw) del fitoplancton. Fuente: ERA Sustentable.
La Figura 22 muestra el grado de similitud de las comunidades fitobentónicas. Desde el punto de vista taxonómico (Sj), se observa que la composición taxonómica de las estaciones E1 y E3 son los más símiles en cuanto a las especies presentes. Las otras comunidades son más diferentes entre sí. Del total de especies de todas las comunidades, solo Synedra ulna es compartida entre todas. Desde el punto de vista biocenótico, la comunidad más disímil es E3, esta situación es compresible debido a la presencia exclusiva de Neidium iridis en esta comunidad y más, se manifiesta con la mayor abundancia en su núcleo. Las comunidades más similares están dadas en los Puntos E1 y E2. Lo que se justifica debido a la presencia en común y con las mayores abundancias en sus respectivas comunidades por Diatoma vulgare y Synedra ulna, que se podría concluir que ambas comunidades podrían ser una sola.
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Figura 22. Dendrograma de Similitud Taxonómica de Jaccard, (Sj) y Dendrograma de Similitud Biocenótica de Winner, (Sw) del fitobentos. Fuente: ERA Sustentable.
5.6.3 Zooplancton
No se registraron individuos de zooplancton en el área de estudio.
5.7 Zoobentos
El estudio de fauna bentónica registró la presencia de individuos de fauna en tres de los cuatro puntos con agua del área de estudio. La campaña registró la presencia de dos familias diferentes: Elmidae y Leptophlebiidae. En total, se registraron 48 individuos: siendo el grupo más abundante Elmidae con 44 individuos (Figura 23).
Tabla 15. Abundancia de la comunidad bentónica registrada en el área de estudio por punto. Abundancia Punto de estudio Familia (Individuos) E1 Elmidae 6 E2 Elmidae 20 Elmidae 18 E3 Leptophlebiidae 4 E4 - - Total 48 Fuente: ERA Sustentable.
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A B
Figura 23. Macroinvertebrados bentónicos: (A) Leptophlebiidae. (B) Elmidae. Fuente: ERA Sustentable.
Abundancia relativa por especie
Leptophlebiidae 8,33%
Elmidae 91,67%
Figura 24. Gráfica de porcentaje de abundancia por familia. Fuente: ERA Sustentable.
Índice Biótico para Zonas de Chile con Clima Mediterráneo (IBF).
La composición de las comunidades bentónicas encontradas en los tres puntos de estudio fue tabulada en una planilla Excel, clasificando cada especie en un listado taxonómico. A cada familia se le asignó el valor del índice biótico de familia para zonas de Chile con clima mediterráneo (IBF), este índice trabaja con puntajes de tolerancia. La Tabla 16 presenta los resultados por punto de estudio.
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Tabla 16. Listado taxonómico de las comunidades bentónicas registradas en las estaciones muestreadas con su puntaje de tolerancia. Puntaje de Estación Familia Abundancia IBF Calidad Tolerancia E1 Elmidae 6 - - - E2 Elmidae 20 - - - Elmidae 18 - E3 4 Muy buena Leptophlebiidae 4 4 Fuente: ERA Sustentable.
Los resultados obtenidos a través de índice biótico de familias presentan que la única familia cuantificable como indicador de la calidad del agua se trata de la familia Leptophlebiidae que entrega un índice de calidad de agua muy buena.
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6 DISCUSIONES
La realización de la primera campaña del monitoreo de fauna ícitca del proyecto Defensas Fluviales del Río Aconcagua Ruta 60 CH, registró la presencia de dos especies en el área de estudio: Trichomycterus areolatus y Cheirodon pisciculus.
La Tabla 17 compara temporalmente los resultados del presente monitoreo, la línea base del proyecto (Noviembre 2005) y el rescate de fauna íctica (Mayo 2015).
Tabla 17. Abundancia por campaña de trabajo. Abundancia Línea Base2 Rescate Monitoreo actual Trichomycterus areolatus 8 - 99 Basilichtys australis 2 - - Cheirodon pisciculus - - 1 Fuente: ERA Sustentable.
Los resultados obtenidos en el rescate de fauna íctica de Mayo 2015 (ausencia total de fauna íctica), según las observaciones en terreno y consultas al personal de OHL (empresa constructora), fue debido a los problemas de caudal del río Aconcagua. Según el personal de la zona, el río Aconcagua disminuía su caudal (hasta quedar seco en algunos tramos) por acción de la actividad minera en la cabecera de dicho río. A nivel de fauna íctica, la ausencia de un caudal continuo hace que las poblaciones íctica se fragmenten creando problemas de conservación.
La presente campaña, al registrar la presencia de fauna íctica es un indicador de unas condiciones ambientales favorables (en comparación con las condiciones del rescate), con un caudal continuo, lo que hace considerar que las actividades realizadas en el área de estudio por la construcción de las defensas fluviales no han tenido un efecto adverso sobre las poblaciones íciticas, de hecho, la zona de intervención ha podido recuperar las poblaciones ícticas.
La ausencia de Basilichtys australis se puede atribuir a la ausencia de un hábitat adecuado, la zona de estudio está compuesta principalmente por un sustrato de bolones, siendo el principal refugio de B. australis la vegetación acuática, por tanto, al no ser el ambiente más propicio para la especie no se registraron individuos (MMA, 2018).
2 Se consideran las estaciones cercanas al área de estudio del monitoreo: Estación San Felipe y El Escorial.
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Respecto a la calidad de agua, el índice diatómico general (IDG) muestra que la aguas del área de estudio pueden tener una polución moderada e indicios de eutrofización. La eutrofización es un fenómeno que se define como un proceso de deterioro de la calidad del recurso, que se origina por el enriquecimiento de nutrientes, principalmente nitrógeno y fósforo, condicionando la utilización de los mismos y ejerciendo grandes impactos ecológicos, sanitarios y económicos a escala regional (Ledesma, 2013).
En el área de estudio, el aporte de esos nutrientes sería de un foco independiente a la ruta 60 CH (autopista), siendo la actividad más probable para el origen del nitrógeno y fósforo en el área la agricultura.
Los macroinvertebrados bentónicos indican que las condiciones son “muy buenas”. La presencia de especies indicadoras de calidades muy buenas muestra que el ambiente, pese a haber sido perturbado por la construcción de las defensas fluviales, tiene unas buenas condiciones para el desarrollo de la biota acuática.
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7 CONCLUSIONES
Se realizó el monitoreo de fauna íctica del proyecto “Construcción de las Defensas Fluviales del Río Aconcagua para el Camino Internacional Ruta 60 CH”, ubicado a 3 Km al Oeste de la ciudad de San Felipe.
Los trabajos en terreno cuantificaron una riqueza específica del área de dos especies: Trichomycterus areolatus (Bagrecito) y Cheirodon pisciculus (Pocha).
La abundancia total del área de estudio fue de 100 individuos, distribuidos en 99 individuos de Trichomycterus areolatus y un individuo de Cheirodon pisciculus (Pocha). Se registraron individuos en todas las estaciones de estudio.
El origen de las especies registradas fue Nativo, no registrándose ninguna especie de origen exótico. Además Cheirodon pisciculus una especie endémica de Chile. Respecto a los estados de conservación ambas especies están catalogadas como Vulnerables.
A nivel comunitario, la icitiofauna del área se encuentra distribuida de manera irregular apareciendo una especie dominante (Trichomycterus areolatus, 99 individuos) frente al resto (Cheirodon pisciculus, 1 individuo).
La calidad del agua según los registros de calidad de las diatomeas (Índice Diatómico General) muestra una calidad media con indicios de polución moderada y eutrofización, contaminación del agua por nitrógeno y fósforo, los cuales no tienen origen en la actividad del proyecto.
El estudio de los macroinvertebrados bentónicos, como complemento a la fauna íctica, muestra que los individuos registrados y categorizables (en las categorías de calidad de aguas), muestran que los individuos registrados son propios de aguas de buena calidad.
En conclusión, las especies registradas en el área de estudio, muestran que la fauna íctica ha podido volver a habitar en el área de estudio, tras los trabajos de Mayo 2015 que no registraron individuos en el área de estudio. Este hecho, junto con la buena calidad registrada por macrobentos, muestra que el proyecto no ha supuesto un gran impacto en las poblaciones de fauna íctica.
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9 ANEXOS
9.1 Anexo 1: Equipo de Trabajo.
Equipo de Terreno
Juan Fernández M., Administrador de Terrenos Bióticos e Investigación, Biólogo: Profesional con 8 años de experiencia en todas las labores y metodologías aplicadas en terreno para estudios de fauna, rescates y monitoreos de fauna de baja movilidad, y especialista en reptiles y aves.
Juan Carlos Orellana Y., Asistente Técnico de Terrreno.
Análisis de Laboratorio
ANÁLISIS FITOPLANCTON, ZOOPLANCTON Y FITOBENTOS: María Angélica Carvajal A., Profesora de Biología, Bachiller en Biología y Magíster en Ciencias mención Botánica. Profesional con más de 25 años de experiencia en el campo de la Docencia e Investigación Científica en el área de la Botánica y Ecología. Experta en taxonomía y cultivo en microalgas. Enfoca la investigación en el área de la Ecofisiología del Plancton de agua dulce.
ANÁLISIS DE FAUNA BENTÓNICA: Sergio Quiroz J., Gerente, Biólogo y Magíster en Ciencias Biológicas Ecología y Sistemática: Profesional con 14 años de experiencia en estudios ambientales, con énfasis en el conocimiento de la fauna vertebrada, Desarrollo de planes de manejo, rescate y restauración de hábitat para especies en riesgo.
Equipo de Elaboración y Revisión del Informe:
ELABORADO POR: Diego Antón A., Biólogo y Licenciado en Ciencias Ambientales: Profesional con 9 años de experiencia en estudios ambientales, principalmente en estudios de línea de base para evaluaciones de impacto, seguimiento de proyectos y restauración ambiental.
REVISADO POR: Daniel Gutiérrez D., Administrador de Proyectos de Ingeniería, Ingeniero en Medio Ambiente y Recursos Naturales: Profesional con experiencia en la gestión metodológica de monitoreo de fauna y a su vez en la preparación de los informes bióticos enfocando índices ecológicos para la comprensión de la información recopilada.
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APROBADO POR: Sergio Quiroz J., Gerente, Biólogo y Magíster en Ciencias Biológicas Ecología y Sistemática: Profesional con 14 años de experiencia en estudios ambientales, con énfasis en el conocimiento de la fauna vertebrada, Desarrollo de planes de manejo, rescate y restauración de hábitat para especies en riesgo.
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9.2 Anexo 2: Medidas Biométricas
Ancho Largo Ancho Estación Especie Largo (cm) Estación Especie (cm) (cm) (cm) Cheirodon 5,7 1,4 8,3 1,2 pisciculus 4 0,6 3,5 0,5 3,7 0,5 7,5 1,1 6,4 0,8 3,9 0,6 4,3 0,6 5,4 0,8 8,9 1 Trichomycterus 4,9 0,9 E1 4,2 0,6 areolatus 6,3 0,7 3,8 0,5 5 0,5 3,5 0,6 6 0,6 3,8 0,5 6,3 0,5 4,2 0,5 3,6 0,4 4,8 0,7 3,5 0,4 4 0,5 5,8 0,9 3,9 0,6 5 0,5 4,1 0,6 6 0,6 3,7 0,5 6,3 0,5 5,5 1 3,4 0,5 E1 3,6 0,6 2,7 0,3 Trichomycterus areolatus 5 0,7 2,4 0,4 3,3 0,4 6,2 0,6 3,7 0,5 5 0,5 3,3 0,5 5,2 0,4 3,5 0,7 2,3 0,4 4,2 0,8 5 0,4 Trichomycterus E2 3,6 0,4 areolatus 4,9 0,8 3,7 0,4 3,5 0,5 4,2 0,7 7,5 1,1 4,6 0,6 3,9 0,6 3,5 0,5 5,4 0,8 3,8 0,7 5 0,5 4,2 0,5 6 0,6 3,7 0,6 6,3 0,5 4,5 0,6 3,4 0,5 6,7 1 2,7 0,3 6,5 0,9 2,4 0,4
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Ancho Largo Ancho Estación Especie Largo (cm) Estación Especie (cm) (cm) (cm) 6,2 0,6 6 0,6 5 0,5 4,2 0,7 5,2 0,4 4,6 0,6 Trichomycterus 2,3 0,4 E4 3,5 0,5 areolatus Trichomycterus 5 0,4 3,8 0,7 E2 areolatus 4,9 0,8 4,2 0,5 3,5 0,5 3,7 0,6 7,5 1,1 3,9 0,6 5,4 0,8 2,3 0,4 5 0,4 6,2 0,6 5 0,5 Trichomycterus E3 5,2 0,4 areolatus 6,3 0,7 5 0,5 6 0,6 2,3 0,4 3,5 0,7 4,2 0,8 3,6 0,4 3,7 0,4
4,2 0,7 4,6 0,6 3,5 0,5 3,8 0,7 4,2 0,5 Trichomycterus 3,7 0,6 E4 areolatus 4,5 0,6 6,7 1 6,5 0,9 3,5 0,4 5,8 0,9 8,3 1,2 3,5 0,5 5,2 0,4 6,3 0,7 5 0,5
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9.3 Anexo : Resolución Exenta N° 1865
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