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Fichas Tecnicas Perfil Para La Caracterizacion De Plagas

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SG/CEPS.028.2002 22 de junio de 2004 3.22.48 FICHA TECNICAS PERFIL PARA LA CARACTERIZACION DE PLAGAS EN LOS PAISES MIEMBROS DE LA COMUNIDAD ANDINA PREPARADO POR SECRETARIA GENERAL DE LA COMUNIDAD ANDINA Lima-Perú, 2002 LAS OPINIONES CONTENIDAS EN ESTE DOCUMENTO SON DE RESPONSABILIDAD DEL(OS) AUTOR(ES) Y NO REFLEJAN POSICIONES INSTITUCIONALES DE LA SECRETARÍA GENERAL DE LA COMUNIDAD ANDINA.. 1 Ficha A2 - Perú PERFIL PARA LA CARACTERIZACION DE PLAGAS A2 1. ORGANISMO CAUSAL. 1.1. NOMBRE DE LA PLAGA. A. NOMBRE CIENTÍFICO. Anastrepha spp. Schiner 1868 B. SINONIMIA (CABI, 2003) Acrotoxa Loew 1873 Pseudodacus Hendel 1914 Phobema Aldrich 1925 Lucumaphila Stone 1939 C. NOMBRES COMUNES. Esp : ” Moscas de la fruta” 1.2. NOMENCLATURA TAXONÓMICA. Reino : Animalia Phyllum : Arthropoda Clase : Insecta Orden : Diptera Familia : Tephritidae Género : Anastrepha CÓDIGO BAYER: 1ANSTG ; ANSTSP El género Anastrepha constituye el grupo más diverso de los tefrítidos nativos de América con 185 de especies descritas a la fecha. El estudio de sus relaciones supraespecíficas han derivado en la formación de por lo menos 18 grupos de especies (Hernández, 1997) entre ellos el grupo fraterculus, que incluye la mayoría de especies plagas (Norrbom, 2000). Tejada (2002) señala como las especies de mayor importancia económica en el Perú y de captura frecuente y de mayor densidad poblacional en trampas McPhail del Sistema de Detección del Programa Nacional de Moscas de la Fruta a: - A. fraterculus (Wiedemann, 1830) - Mosca Sudamericana de la fruta (Sinónimos: Acrotoxa fraterculus (Wiedemann), Anastrepha braziliensis Greene, Anthomyia frutalis Weyenburgh, Dacus fraterculus Wiedemann; Tephritis mellea Walker; Trypeta fraterculus (Wiedemann), T. unicolor Loew, Anastrepha peruviana Townsend, A. soluta Bezzi). - A. distincta Greene (1934).- Mosca del pacae - A. obliqua (Macquart, 1835) – Mosca del ciruelo (Sinónimos: Acrotoxa obliqua (Macquart); A. fraterculus var. ligata Costa Lima, A. f. var. mombinpraeoptans Seín, A. mombinpraeoptans Seín, Tephritis obliqua Macquart, Trypeta obliqua (Macquart), Anastrepha acidusa (Walker), A. trinidadensis Green (Walker)). - A. striata Schiner,1868 - Mosca de la guayaba - A. chiclayae Greene, 1934 – Mosca de la fruta. Anastrepha spp. - Pág. 1/9 - 2 Ficha A2 - Perú - A. serpentina (Wiedemann) 1830 - Mosca de las Zapotáceas (Sinónimo: Dacus serpentinus Wiedemann, Leptoxys serpentina (Wiedemann), Acrotoxa serpentinus (Wiedemann), T. serpentina (Wiedemann), Urophora vittithorax Macquart). - A. grandis (Macquart, 1846) – Mosca sudamericana delas cucurbitáceas (Sinónimo: Acrotoxa grandis (Macquart), Anastrepha latifasciata Hering 1935, A. schineri Hendel, Tephritis grandis Macquart, 1846, Trypeta grandis (Macquart)). Korytkowski (2001) menciona que a la fecha, en el Perú se han registrado 34 especies de Anastrepha y adicionalmente a las ya mencionadas cita a: Anastrepha alveata, A. atrox, A. bahiensis, A. barnesi, A. cryptostrepha, A. curitis, A. dissimilis, A. distans, A. freidbergi, A. hermosa, A. kuhlmanni, A. lambda, A. lanceola, A. leptozona, A. macrura, A. manihoti, A. montei, A. nigripalpis, A. ornata, A. pickeli, A. pseudoparallela, A. schultzi, A. shannoni, A. steyskali, A. tecta, A. turicai, A. willei . 1.3. BIOLOGÍA, ECOLOGÍA Y ENEMIGOS NATURALES. Las hembras fertilizadas insertan su ovipositor en el fruto y depositan una serie de huevos por debajo de la cáscara o en la pulpa (Boscan de Martínez, 1992; CABI, 2003), generalmente en frutos próximos a madurar (60-70% de madurez) o de no encontrarlos, lo hacen en frutos verdes o maduros (Aluja, 1993). La duración del estado de huevo está en función de las condiciones ambientales (Rodríguez, et. al., 1997). Al eclosionar, las larvas de la mayoría de las especies del género Anastrepha se alimentan de la pulpa de las frutas de sus hospederos, pero algunas especies pueden alimentarse de las semillas ya sea en parte o solo de ellas (White & Elson- Harris, 1992). La madurez de la larva por lo general coincide con la madurez del fruto y la caída del mismo. La larva abandona el fruto y se entierra a pocos centímetros de profundidad, produciéndose el empupado (Boscán de Martínez, 1992). Los adultos emergen después de 15 a 19 días (periodos más largos en condiciones frías). Los adultos están presentes todo el año (CABI, 2003). Las moscas adultas después de 2 a 5 días de emergencia alcanzan la madurez sexual. Los machos se concentran en un punto referencial del árbol frutal, formando un agrupamiento de machos (leks) que danzan liberando una feromona sexual. Las hembras fertilizadas, tienen la necesidad de ingerir sustancias ricas en proteína, buscan alimento y donde depositar los huevos. Una vez que la hembra localiza un fruto con condiciones favorables para el desarrollo de la progenie, procede la oviposición y alrededor del sitio de la postura con el ovipositor impregna este sitio con una feromona de marcaje de oviposición para evitar que otras moscas depositen sus huevos en el mismo fruto (Rodríguez et. al., 1997). Rodríguez et al., (1997) mencionan la duración del ciclo biológico de algunas de las especies de mayor importancia en el Perú: A. fraterculus: huevo 3 días, larva 8-9 días, pupa 12-14 días y A. striata, A. serpentina, A. obliqua: huevo 1-4 días, larva 10-25 días y pupa 10-15 días. PNMF (2001) señala que para las especies del género Anastrepha, una sola cópula es suficiente en todo su ciclo de vida y se menciona que resisten intentos de cópula después de iniciada la oviposición. A. fraterculus presenta de 8 a 10 generaciones por años y su capacidad de oviposición es de 400-800 huevos mientras que A. Anastrepha spp. - Pág. 2/9 - 3 Ficha A2 - Perú striata, A. serpentina, A. obliqua tienen de 4 a 8 generaciones por año y su capacidad de oviposición es de 100-800 huevos. CABI (2002) señala que el ciclo de A. grandis es 3-7 días para huevo, 13-28 días (promedio 17.7 días) para la larva y 14-23 días (promedio 19.7 días) para la pupa. Las larvas que desarrollan en melón tienen una tasa de mortalidad mayor a la de aquellas que desarrollan en zapallo. ENEMIGOS NATURALES (CABI, 2003) Entre los parasitoides de larvas se mencionan a: - Aceratoneuromyia indica. - Biosteres fullawayi. - Diachasmimorpha longicaudata, sinónimo de Biosteres longicaudatus. Ataca larvas del tercer estadío (Rodríguez et al., 1997). - Diachasmimorpha tryoni. - Diachasmoides tucumana. - Dirhinus giffardii. - Doryctobracon areolatus. - Doryctobracon crawfordi. - Opius bellus. - Opius concolor perproximus. - Opius concolor. - Opius fletcheri. - Opius humilis. - Pachycrepoideus dubius. - Tetrastichus giffardianus. - Trybliographa daci. - Utetes anastrephae. Entre los parasitoides de pupas se mencionan a: - Pachycrepoideus vindemmiae atacando pupas. 1.4. SINTOMATOLOGÍA Y DAÑOS. En general, los frutos atacados muestran signos de oviposición, pero éstos u otros síntomas del daño son difíciles de detectar en los estados iniciales de infestación. Los frutos pueden estar muy afectados internamente antes que los síntomas externos puedan ser apreciados, frecuentemente como una red de túneles acompañados por una pudrición (CABI, 2003) y cuando se compromete el eje central de la fruta, ésta cae al suelo (Wille, 1952). Wille (1952) menciona que el daño en chirimoyas se presenta como galerías en la pulpa en la región superficial cercana a la cáscara. En guayabas se observan galerías irregulares en toda la pulpa que resulta total o parcialmente dañada. En frutas de carozo, la región de la pulpa que rodea a la pepa, es la más dañada. En las frutas de pepita, la pulpa presenta galerías irregulares. Frutas muy dulces pueden producir un exudado azucarado (CABI, 2003). Anastrepha spp. - Pág. 3/9 - 4 Ficha A2 - Perú 1.5. MEDIOS DE DISEMINACIÓN. Existe evidencia que adultos de Anastrepha spp. pueden volar hasta 135 Km., por lo que el movimiento natural es un medio importante en la dispersión de la plaga. En el comercio internacional la dispersión a áreas no afectadas es factible mediante el transporte de frutas de los hospederos de Anastrepha spp. conteniendo larvas vivas (CABI, 2003). Existe el riesgo de transportar pupas en el suelo o empaque de plantas que ya han fructificado. El riesgo también implica a la fruta en carga y sus empaques en medios de transporte marítimos y aéreos, fruta en el correo, pupas en el suelo y en equipaje de viajeros (CABI, 2003). 1.6. SITUACIÓN FITOSANITARIA DE LA PLAGA EN EL PERÚ: A2 2. DISTRIBUCIÓN GEOGRÁFICA El género Anastrepha incluye actualmente 198 especies reconocidas, así como numerosas especies no descritas aún. La distribución del género incluye la parte sur de la Región Neartica (norte a Sur de Texas y Florida) y toda la región Neotropical (excepto Chile), sur de Argentina y muchas de las Antillas Menores (Norrbom, 2000). Ninguna especie del género Anastrepha se ha establecido en otros continentes (White & Elson-Harris, 1992). En Perú, la distribución señalada por Korytkowski (2001) y el PNMF (2002) es: - Anastrepha alveata (Tumbes y Junín. Torres et. al. (2004) la señalan también en Lambayeque y Piura); - A. atrox (Cajamarca, Ancash y Tingo María); - A. bahiensis (Lambayeque, Cajamarca, Ucayali); - A. barnesi (Chanchamayo en Junín); - A. chiclayae (Lambayeque, Piura y Lima. Torres et. al. (2004) la señalan también en Tumbes); - A. cryptostrepha (Cuzco); - A. curitis (Loreto); - A. dissimilis (Cajamarca); - A. distans (Cuzco); - A. distincta (Cajamarca, Piura, Ica, Lambayeque, Loreto. Torres et. al. (2004) la señalan también en Arequipa); - A. fraterculus (Ica, Lambayeque, Ayacucho, San Martín,
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    ZOBODAT - www.zobodat.at Zoologisch-Botanische Datenbank/Zoological-Botanical Database Digitale Literatur/Digital Literature Zeitschrift/Journal: Arthropod Systematics and Phylogeny Jahr/Year: 2019 Band/Volume: 77 Autor(en)/Author(s): Grebennikov Vasily V. Artikel/Article: Independent morphological and genetic diversification in close geographic and phylogenetic proximity: Typoderus weevils (Coleoptera) in the Uluguru Mountains, Tanzania 251-265 77 (2): 251 – 265 2019 © Senckenberg Gesellschaft für Naturforschung, 2019. Independent morphological and genetic diversification in close geographic and phylogenetic proximity: Typoderus weevils (Coleoptera) in the Uluguru Mountains, Tanzania Vasily V. Grebennikov Canadian Food Inspection Agency, 960 Carling Ave., Ottawa, ON, K1A 0C6, Canada [[email protected]] Accepted on April 10, 2019. Published online at www.senckenberg.de/arthropod-systematics on September 17, 2019. Published in print on September 27, 2019. Editors in charge: Sergio Pérez-González & Klaus-Dieter Klass. Abstract. The Eastern Arc Mountains (EAM) of Tanzania form an island-type archipelago of wet and cool rainforests widely separated by extremely hot and dry savannah. This paper reports novel phylogeographical analyses of the low-dispersing and forest-dependent Ty- poderus weevils in the Uluguru block of the EAM. One mitochondrial and two nuclear loci were used to infer phylogenetic relationships among 70 Typoderus specimens, 52 of them from 22 geographically diversifed Uluguru litter sifting samples. Various analyses consistently detected 11 geographically coherent Typoderus clades, six of them formed by the Uluguru specimens, where fve are taxonomically inter- preted as species: T. admetus sp.n., T. furcatus, T. peleus sp.n., T. polyphemus sp.n. and T. subfurcatus. The sixth Uluguru clade temporary named Typoderus sp.
  • CARACTERIZAÇÃO E EPIDEMIOLOGIA COMPARATIVA DE ESPÉCIES DE Colletotrichum EM ANONÁCEAS NO ESTADO DE ALAGOAS

    CARACTERIZAÇÃO E EPIDEMIOLOGIA COMPARATIVA DE ESPÉCIES DE Colletotrichum EM ANONÁCEAS NO ESTADO DE ALAGOAS

    1 UNIVERSIDADE FEDERAL DE ALAGOAS CENTRO DE CIÊNCIAS AGRÁRIAS PÓS-GRADUAÇÃO EM PROTEÇÃO DE PLANTAS JAQUELINE FIGUEREDO DE OLIVEIRA COSTA CARACTERIZAÇÃO E EPIDEMIOLOGIA COMPARATIVA DE ESPÉCIES DE Colletotrichum EM ANONÁCEAS NO ESTADO DE ALAGOAS RIO LARGO 2014 2 JAQUELINE FIGUEREDO DE OLIVEIRA COSTA CARACTERIZAÇÃO E EPIDEMIOLOGIA COMPARATIVA DE ESPÉCIES DE Colletotrichum EM ANONÁCEAS NO ESTADO DE ALAGOAS Tese apresentada ao Programa de Pós-Graduação em Proteção de Plantas da Universidade Federal de Alagoas, como parte dos requisitos para obtenção do título de Doutor em Proteção de Plantas. COMITÊ DE ORIENTAÇÃO: Profa. Dra. Iraildes Pereira Assunção Profa. Dra. Kamila Correia Câmara Prof. Dr. Gaus Silvestre de Andrade Lima RIO LARGO 2014 3 Catalogação na fonte Universidade Federal de Alagoas Biblioteca Central Divisão de Tratamento Técnico Bibliotecário Responsável: Valter dos Santos Andrade C837c Costa, Jaqueline Figueredo de Oliveira. Caracterização e epidemiologia comparativa de espécies de Colletotrichum em anonáceas no estado de Alagoas / Jaqueline Figueredo de Oliveira Costa. – 2014. 110 f. : il. Orientadora: Iraildes Pereira Assunção. Coorientadores: Kamila Câmara Corrêia, Gaus Silvestre de Andrade Lima. Tese (Doutorado em Proteção de plantas) – Universidade Federal de Alagoas. Centro de Ciências Agrárias. Rio Largo, 2014. Inclui bibliografia. 1. Fungicidas. 2. Ácido salicilhidroxâmico. 3. Annona squamosa. 4. Multilocus. 5. Pinhas. 6. Graviola – Doenças e pragas I. Título. CDU: 632.4:634.41 4 Folha de Aprovação JAQUELINE FIGUEREDO DE OLIVEIRA COSTA CARACTERIZAÇÃO E EPIDEMIOLOGIA COMPARATIVA DE ESPÉCIES DE Colletotrichum EM ANONÁCEAS NO ESTADO DE ALAGOAS Tese submetida ao corpo docente do Programa de Pós- Graduação em Proteção de Plantas da Universidade Federal de Alagoas e Aprovada em 18 de dezembro de 2014.
  • Characterising Plant Pathogen Communities and Their Environmental Drivers at a National Scale

    Characterising Plant Pathogen Communities and Their Environmental Drivers at a National Scale

    Lincoln University Digital Thesis Copyright Statement The digital copy of this thesis is protected by the Copyright Act 1994 (New Zealand). This thesis may be consulted by you, provided you comply with the provisions of the Act and the following conditions of use: you will use the copy only for the purposes of research or private study you will recognise the author's right to be identified as the author of the thesis and due acknowledgement will be made to the author where appropriate you will obtain the author's permission before publishing any material from the thesis. Characterising plant pathogen communities and their environmental drivers at a national scale A thesis submitted in partial fulfilment of the requirements for the Degree of Doctor of Philosophy at Lincoln University by Andreas Makiola Lincoln University, New Zealand 2019 General abstract Plant pathogens play a critical role for global food security, conservation of natural ecosystems and future resilience and sustainability of ecosystem services in general. Thus, it is crucial to understand the large-scale processes that shape plant pathogen communities. The recent drop in DNA sequencing costs offers, for the first time, the opportunity to study multiple plant pathogens simultaneously in their naturally occurring environment effectively at large scale. In this thesis, my aims were (1) to employ next-generation sequencing (NGS) based metabarcoding for the detection and identification of plant pathogens at the ecosystem scale in New Zealand, (2) to characterise plant pathogen communities, and (3) to determine the environmental drivers of these communities. First, I investigated the suitability of NGS for the detection, identification and quantification of plant pathogens using rust fungi as a model system.
  • Data Sheet on Glomerella Gossypii

    Data Sheet on Glomerella Gossypii

    EPPO quarantine pest Prepared by CABI and EPPO for the EU under Contract 90/399003 Data Sheets on Quarantine Pests Glomerella gossypii IDENTITY Name: Glomerella gossypii Edgerton Anamorph: Colletotrichum gossypii Southworth Taxonomic position: Fungi: Ascomycetes: Phyllachorales Common names: Anthracnose, pink boll rot or seedling blight of cotton (English) Anthracnose du cotonnier (French) Anthraknose (German) Antracnosis del algodonero (Spanish) Bayer computer code: GLOMGO EPPO A2 list: No. 71 EU Annex designation: II/B HOSTS The only host is cotton. Gossypium barbadense and G. hirsutum cultivars are mostly susceptible, while G. arboreum, G. herbaceum and G. thurberi cultivars show some resistance (Bollenbacher & Fulton, 1971). In the EPPO region, cotton is grown in Mediterranean and Eastern European countries. GEOGRAPHICAL DISTRIBUTION G. gossypii, which is probably indigenous to America, now occurs in most cotton-growing areas throughout the world but tends to be localized in the higher rainfall areas. EPPO region: Locally established in Bulgaria and Romania; reported from but not established in Italy (Sicily), Spain, Tunisia. Asia: Afghanistan, Armenia, Azerbaijan, Bangladesh, Cambodia, China (widespread), Georgia, India (Bihar, Madhya Pradesh, Maharashtra), Indonesia, Japan (Honshu), Korea Democratic People's Republic, Korea Republic, Myanmar, Pakistan, Philippines, Taiwan, Thailand. Mostly absent from the Near East. Africa: Central African Republic, Côte d'Ivoire, Ethiopia, Ghana, Kenya, Madagascar, Mali, Malawi, Mozambique, Nigeria, Sudan, Senegal, Somalia, Tunisia, Uganda, South Africa, Zaire, Zimbabwe. Probably present in most sub-Saharan countries. North America: Bermuda, Mexico, USA (Alabama, Arkansas, Florida, Georgia, Louisiana, Mississippi, North Carolina, Oklahoma, South Carolina, Texas; also Hawaii, Kentucky, Missouri, Tennessee). Central America and Caribbean: Barbados, Costa Rica, Cuba, Dominican Republic (unconfirmed), Guatemala, Honduras, Haiti, Jamaica, Nicaragua, Puerto Rico, El Salvador, Trinidad and Tobago.