IL Libro Del Museo by Enrico Bonino and Carlo Kier Is a Pleasant Treat

Home , Balnibarbi (trilobite), Calymenina, Cheiruridae, Cheirurina, Dalmanitidae, Illaenidae

Trilobite_book_Copertina_Hi_res2.pdf 1 11/09/2009 18:24:55

Mu seu With regard to human interest in fossils, trilobites may rank second only to dinosaurs. Having studied trilobites most of my life, to m ck th a e Trilobiti – IL libro del Museo by Enrico Bonino and Carlo Kier is a pleasant treat. I am captivated by the abundant color images B P ● a

of more than 500 diverse species of trilobites, mostly from the authors’ own collections. A s t

Specimens amply represent famous trilobite localities around the world and typify forms from most of the 250-million-year U L ● history of trilobites. Numerous specimens are masterpieces of modern professional preparation. I eagerly await a promised TRILOBITI S e l n e s t English edition. Carlo Kier a o tori H

Richard A. Robison Bonino Enrico Professor Emeritus University of Kansas IL libro del Museo L’idea di colmare una lacuna italiana di un libro scritto in lingua patria sui trilobiti non può che trovare il mio più incoraggiante appoggio. Alla base di tutto questo sta non solo la reciproca stima, ma una vera passione per gli argomenti trattati. Se a questo si aggiunge una buona competenza informatica di elaborazione dati ed un buon gusto estetico non può che nascere un buon libro che spicca rispetto a tanti per la dovizia di belle immagini corroborate da una scelta puntuale ed esplicativa al massimo dell’eccellenza. Prof. Maurizio Gnoli Titolare del corso di “Paleontologia” e “Paleontologia dei Vertebrati” Università degli Studi di Modena-Reggio Emilia.

CMY Enrico Bonino nato in provincia di Bergamo nel 1966, Enrico si è laureato in Geologia presso il Dipartimento di K Scienze della Terra dell'Università di Genova. Attualmente risiede in Belgio dove svolge attività come specialista nel settore cartografico utilizzando tecniche di trattamento di immagini satellitari e GIS. Le competenze acquisite nel settore del digital image processing, una buona dote artistica e la conoscenza di software di desktop publishing, hanno permesso di poter gestire l'organizzazione grafica nel museo BackToThePast di Cancun e parallelamente di creare decine di poster illustrativi relativi alle collezioni esposte. Oltre alla passione per questa classe di artropodi, i suoi interessi sono orientati alle forme di vita vissute nel Precambriano.

Carlo Kier nato a Milano nel 1961, si è laureato in Legge ed è attualmente presidente della catena Enrico Bonino di alberghi Azul Hotel a Cancun in Messico dove risiede, e dove si dedica ad attività legate all'ambiente marino. All'età di 16 anni, ha iniziato una lunga collaborazione con il Carlo Kier Museo di Storia Naturale di Milano, e dal 1970 prese inizio la vera passione per i trilobiti, con la collaborazione di Jake Skabelund e Dave Comfort dando avvio a quella che oggi è diventata una delle collezioni più importanti al mondo. La sua instancabile attività di ricerca sul terreno in varie parti del globo, e la collaborazione con professionisti del settore, ha permesso la descrizione di nuove specie di trilobiti ed artropodi. Una forte determinazione e la costruzione di un nuovo complesso alberghiero (AZUL Sensatori) hanno infine concretizzato la realizzazione di un sogno... il primo museo esclusivamente dedicato ai trilobiti del mondo, il museo BackToThePast. TRILOBITI - IL libro del Museo TRILOBITI TRILOBITI IL Libro del Museo

Enrico Bonino Carlo Kier seum Mu o the t P k a c s a t B ● ●

Carretera Cancun - Puerto Morelos Km 27.5 Bahia Petempich, Puerto Morelos Quintana Roo, Mexico, 77580 http://www.backtothepast.com.mx Email: [email protected]

TRILOBITI - IL libro del Museo / Enrico Bonino & Carlo Kier Include riferimenti bibliografici ed indice generale e cronologico.

Il presente volume, il poster allegato Systematic relationship and Chronological extent of the nine Trilobite orders (Bonino E., 2009) ed i poster tematici esposti nel museo Back To The Past sono disponibili direttamente su richiesta agli autori o attraverso il sito http://www.backtothepast.com.mx/shopk/shop.php?cat=3

Nessuna parte di questo libro può essere riprodotta o trasmessa in qualsiasi forma o con qualsiasi mezzo elettronico, meccanico o altro senza l’autorizzazione scritta degli autori.

I Edizione 2009 Tiratura limitata di 200 copie

Casa Editrice Marna s.c. Via Santuario, 5 - 23890 Barzago (Lc) Tel. +39 031.874415 - Fax +39 031.874417 E-mail: [email protected] Internet: www.marna.it

EAN: 9788872034897

Stampato da Associazione Padre Monti Divisione Stampa Digitale Saronno

In copertina sullo sfondo, Chiasmacantha ceratops (Deiracephalus aster), Cambriano della Weeks Formation, Millard County, Utah, USA. Nei riquadri, da sinistra a destra: Acanthopyge (Belenopyge) consanguinea, Ordoviciano della Haragan & Bois d’Arc Formation, Oklahoma, USA; Olenoides sp., Cambriano della Weeks Formation, Millard County, Utah, USA; Bristolia insolens e Bristolia fragilis, Cambriano della Carrara Formation presso Emigrant Pass, Nevada, USA. In retrocopertina un affioramento di marne fossilifere del Cambriano inferiore nella Carrara Formation, Nevada, USA. Olenoides “abbotti” Cambriano medio Whirlwind Formation - Drum Mountains - Utah - USA Foto: Dave Comfort Spathacalymene nasuta Siluriano medio Osgood Formation - Indiana - USA Foto: Jake Skabelund TRILOBITI IL libro del Museo

Enrico Bonino Carlo KieKier con la collaborazione di Jake Skabelund e Dave ComfortComfor

Sommario

IntroduzIone 1 Introduzione al volume 2 Introduzione al volume del Prof. Maurizio Gnoli 3 Introduzione al volume del Dr. Samuel M. Gon III 4 Il Museo Back to the Past 5

Ringraziamenti 7

Cenni di classificazione e terminologia 10 Cladistica 11 trIlobItI (Classe trIlobIta) 13

Introduzione generale 14 orIgIne 20

MorfologIa 27 Composizione dell’esoscheletro 28 Trilobiti in sezione sottile 30 Cephalon 33 Glabella 33 Linee di sutura 34 Spine cefaliche 35 Ipostoma 36 Piastra rostrale 38 Occhi 39 Occhi Olocroali (od Olocroici) 40 Occhi Schizocroali (o Schizocroici) 42 Struttura delle lenti 42 Occhi Abatocroali (o Abatocroici) 44 Morfologia funzionale 44 Evoluzione dell’apparato visivo 45 Cecità 46

Thorax 51 Avvolgimento 53 Pygidium 58

Sculture dell’esoscheletro o Prosopon 62

VII Domi o nodi 62 Tubercoli 62 Spine 63 Perforazioni (pits) e depressioni 64 Creste o terrazzi 66

Struttura delle parti molli 67

Ontogenesi 70 Exuviazione 72

Anomalie morfologiche e Predazione 78 Predazione 78 Preambolo 78 Predatori e prede 80 Deformazioni “funzionali” 86

Paleoecologia 88 Morfotipi 89 Phacomorfe 89 Pelagiche 90 Illaenomorfe 90 Atheloptiche 90 Miniaturizzate 90 Forme con bordo cefalico perforato 90 Olenimorfe 90 Forme con Spine cefaliche marginali 91

Ambienti di vita 92 Forme pelagiche (zooplanctivori pelagici) 92 Forme planctoniche 93 Forme bentoniche 94

Postura 95

Alimentazione 97 Predatori e Necrofagi 97 Detritivori (Particle-feeders) 99 Planctonivori (Alimentazione a base di plancton) 99 Olenomorfi: relazioni simbiotiche? 100 Filtratori (Filter feeders) 100

Ichnofossili 102

Tafonomia 108 Provincialismo Faunistico 113 Importanza paleontologica 114

Provincialismo faunistico 114

VIII Provincialismo funzione delle condizioni climatiche 114 Provincialismo funzione della batimetria e distanza 115 Cambriano 116 Ordoviciano 117 Siluriano 118 Carbonifero e Permiano 119

I Trilobiti in Italia 122 Sardegna 124 Cambriano 124 Gruppo di Nebida. 125 Gruppo di Gonnesa 126 Gruppo di Iglesias 126 Ordoviciano 130 Formazione di Monte Argentu 130 Formazione di Monte Orri 130 Formazione di Portixeddu 131 Formazione di Domusnovas 131 Formazione di Rio San Marco 132 Formazione di San Vito 132 Gruppo Vulcanico Acido 132 Formazione di Punta Serpeddi 132 Formazione di Tuviois 133 Siluriano e Devoniano 133

Friuli 139 Ordoviciano 139 Siluriano 139 Devoniano 139 Carbonifero 140 Permiano 141

Sicilia 142

Classificazione 145 Ordine Agnostida 149 Sottordine AGNOSTINA 150 Sottordine EODISCINA 151 Ordine Redlichiida 152 Sottordine OLENELLINA 153 Sottordine REDLICHIINA 154 Ordine Corynexochida 155 Sottordine ILLAENINA 156 Sottordine CORYNEXOCHINA 157 Sottordine LEIOSTEGIINA 158

IX Ordine Lichida 159 Superfamiglia LICHOIDEA 160 Superfamiglia ODONTOPLEUROIDEA 161 Superfamiglia DAMESELLOIDEA 162 Ordine Phacopida 163 Sottordine CALYMENINA 164 Sottordine PHACOPINA 165 Superfamiglia PHACOPOIDEA 166 Superfamiglia DALMANITOIDEA 167 Superfamiglia ACASTOIDEA 168 Sottordine CHEIRURINA 169

Sottoclasse Librostoma 170 Evoluzione dell’ipostoma 170 Ordine Proetida 172 Superfamiglia PROETOIDEA 174 Superfamiglia AULACOPLEUROIDEA 175 Superfamiglia BATHYUROIDEA 176 Ordine Asaphida 177 Superfamiglia ANOMOCAROIDEA 179 Superfamiglia ASAPHOIDEA 180 Superfamiglia DIKELOCEPHALOIDEA 181 Superfamiglia REMOPLEURIDIOIDEA 182 Superfamiglia CYCLOPYGOIDEA 183 Superfamiglia TRINUCLEIOIDEA 184 Ordine Ptychopariida 186 Sottordine PTYCHOPARIINA 188 Superfamiglia PTYCHOPARIOIDEA 189 Superfamiglia ELLIPSOCEPHALOIDEA 191 Sottordine OLENINA 192 Ordine Harpetida 193 Ordine Nektaspida 195

Tavole 198 Introduzione alle Tavole 199

Cambriano 200 Maotianshan Shale Member 201 Pioche Shale Formation 207 Jince Formation 212 Spence Shale member 218 Wheeler Shale Formation 225 Marjum Formation 229 Weeks Formation 236 X McKay Group 250 Ordoviciano 256 Fezouata Formation 257 Fillmore Formation 264 Valongo Formation 268 Túnel Ordovicico del Fabar 278 St. Pietroburgo 281 Bobcaygeon Formation 291 Beecher’s Trilobite bed 294 Rust Formation 299 Ktaoua Group 308 Cincinnatian Series 312

Siluriano 317 Rochester Shales Formation 318 Hemse marls (Hemse Group) 321

Devoniano 325 Haragan & Bois D’Arc Formation 326 Hunsrück Slate 334 Draa Valley 338 Formazione di Ahrdorf - Membro di Flesten 355 Emsiano sup. ed Eifeliano del Nord Europa 365 Penn Dixie quarry 379

Carbonifero 382 Calcaire de Tournai 383 Lake Valley / Cabellero Formation 386 Aprath 390

Preparazione 395 Cercare trilobiti 396 Precauzioni 399

Tecniche di preparazione 401 Bibliografia 409 Indice generale 422 Indice dei trilobiti 430

XI ...ai miei genitori, presso cui ho trovato sempre appoggio e passione, a mia moglie, che con amore ha sopportato le lunghe serate di lavoro, a mio figlio, Uomo in divenire.

XII IntroduzIone

Dicranurus monstrosus Draa Valley, Marocco Devoniano inf. - med. Coll. C. Kier Introduzione 1 Introduzione al volume

Sebbene il progetto iniziale per la creazione di questo volume fosse stato quello di voler proporre un catalogo che illustrasse gli esemplari più belli in mostra nel primo museo al mondo dedicato ai trilobiti “Back to the Past”, subito ci siamo resi conto che l’aggiunta di una più dettagliata sezione relativa alla descrizione della morfologia, paleoecologia, tassonomia avrebbe parzialmente colmato una profonda lacuna presente nella letteratura paleontologica italiana. Non esiste infatti alcun testo specifico recente che tratti di questi organismi e che sia accessibile alla comunità di collezionisti privati e strutture pubbliche (musei, università) se non in lingua inglese. Il profondo interesse manifestato da amici e colleghi per il progetto, non ha fatto che spingere ulteriormente le nostre ricerche in questa direzione, ampliare in maniera considerevole la prima parte e sviluppare di conseguenza nuovi contatti con collezionisti ed Istituti di ricerca internazionali per la ricerca di nuovo materiale bibliografico e fotografico. Contatti che hanno fornito eccellenti risultati: grazie all’afflusso di nuove informazioni, è stato possibile ampliare anche la seconda parte del volume con tavole uniche riguardanti giacimenti fossiliferi a trilobiti meno noti ma non per questo meno importanti. Il volume, come brevemente accennato in precedenza, è stato progettato in due parti, in cui la prima riguarda la tassonomia e la sistematica, mentre la seconda parte (e forse la più esteticamente interessante) raccoglie le schede contenenti le immagini di quasi tutti i trilobiti presenti nel museo (in data 2009), organizzati in sequenza cronologica e per sito di provenienza. La sezione dedicata alla tassonomia ed alla sistematica, ha richiesto per essere creata un’approfondita ricerca bibliografica, onde anche evitare di ripetere le “classiche” informazioni ed immagini che si rinvengono sui testi di divulgazione scientifica più noti al pubblico ed accessibili su Internet. Lo sviluppo delle conoscenze scientifiche nel settore della sistematica, e la cladistica in particolare, hanno portato ad un’evoluzione del pensiero e ad una rinnovata interpretazione della morfologia degli organismi fossili a fini tassonomici. Questo ha dato origine per esempio ad un’importante riorganizzazione di alcuni ordini dei Trilobiti, con la creazione, o la scissione, di nuovi ordini. Un grande sforzo è stato compiuto al fine di poter ottenere un maggior numero di informazioni aggiornate possibili ma, dato lo sviluppo a volte imprevedibile di alcuni settori della paleontologia (funzione anche del rinvenimento di nuovi siti paleontologici o nuove interpretazioni), non è impossibile che in corrispondenza dell’uscita di questo volume, alcune informazioni possano risultare già “datate”. La seconda parte del volume è composta dalle tavole illustrative, organizzate secondo uno schema cronologico che si sviluppa dal Cambriano al Carbonifero (attualmente mancano nel museo i trilobiti del Permiano). Per ogni tavola, corrispondente ad un sito paleontologico particolare, è riportata la distribuzione paleogeografica dei continenti con la localizzazione del sito, una descrizione della situazione paleo-ambientale, sedimentologica e geologica, con l’aggiunta di un diorama illustrativo o una fotografia della località in cui si rinvengono le associazioni fossilifere in esame. L’apporto di ulteriore materiale fotografico ed informazioni riguardanti trilobiti e paleositi di particolare interesse mondiale (alcuni dei quali purtroppo non più accessibili per ricerca scientifica) ha permesso l’aggiunta di nuove schede descrittive che hanno arricchito ed impreziosito la già notevole mole di informazioni raccolte. Deve essere chiaro al lettore che l’elenco dei lagerstätten descritti nel volume non è esaustivo (e non potrebbe neppure esserlo), così come il numero delle specie qui riportate. Non deve quindi sorprendere se all’appello possano localmente essere assenti specie relativamente note o di particolare interesse. La maggior parte delle tavole ed i disegni presenti nel volume sono stati riprodotti o disegnati ex-novo dall’autore (E.B.), mentre le immagini dei trilobiti appartengono ad esemplari che non sono quasi mai stati pubblicati sino ad ora. Molte specie illustrate inoltre non sono mai state scientificamente descritte e classificate.

L’insieme di questi fattori fanno di quest’opera indubbiamente un volume di prima importanza, che ci auguriamo possa risultare utile ed interessante allo specialista, così come al semplice appassionato. Enrico Bonino& Carlo Kier 2 Introduzione al volume del Prof. Maurizio Gnoli

Maurizio Gnoli, titolare del corso di “Paleontologia” e “Paleontologia dei Vertebrati” dell’Università degli Studi di Modena-Reggio Emilia.

Come curatore della Rubrica “Paleoweb” di PaleoItalia, periodico della Società Paleontologica Italiana, che viene spedito ai soci assieme al Bollettino SPI, cercavo informazioni sul WEB per preparare materiale per il consueto articolo e mi sono imbattuto nella pagina internet di Enrico Bonino: http://www.keyobs.be/fr/ ebonino/index.html, che mi ha subito sorpreso per la ricchezza ed il rigore dei temi trattati. Specifico subito che per quasi 40 anni ho lavorato presso l’Università di Modena e Reggio Emilia come pubblicista e ricercatore nel cosiddetto “Gruppo Paleozoico”, formato da un team di amici dediti alla ricerca scientifica sui più disparati argomenti paleontologici attinenti al periodo della storia della Terra che si estende da 542 a 251 milioni di anni fa. Guarda caso Enrico Bonino, geologo ed ideatore del libro in oggetto, ha come principali argomenti d’interesse le prime testimonianze fossili della vita sul nostro pianeta, spesso presenti in località che per diversi motivi presentano fossili eccezionalmente ben conservati rispetto lo standard geologico e chiamati dagli addetti ai lavori “Fossil Lagerstätten”. Altro argomento da sempre a lui confacente e caro, sono i Trilobiti. Dopo la stesura dell’articolo cui facevo riferimento è nato fra noi un cospicuo scambio elettronico epistolare, una sorta di sostentamento scientifico reciproco ed appagante per entrambi. Quando mi prospettò anni fa l’idea di colmare una lacuna tutta italiana di un libro scritto in lingua patria sui trilobiti non poteva che trovare il mio più incoraggiante appoggio. Alla base di tutto questo sta non solo la reciproca stima, ma una vera passione per gli argomenti trattati. Se a questo si aggiunge una buona competenza informatica di elaborazione dati ed un buon gusto estetico non può che nascere un buon libro che spicca rispetto a tanti per la dovizia di belle immagini corroborate da una scelta puntuale ed esplicativa al massimo dell’eccellenza. Al di la di una ricca stesura degli argomenti specifici trattati, una parte che sorprende il lettore è proprio quella riguardante i Trilobiti in Italia, ovviamente nelle regioni dove si rinvengono questi artropodi fossili: Sardegna, Friuli e Sicilia. Bravo Enrico!

Prof. Maurizio Gnoli

Introduzione 3 Introduzione al volume di Samuel M. Gon III

Samuel M. Gon III, Ph.D. Creator and webmaster of A Guide to the Orders of Trilobites http://www.trilobites.info.

Trilobites have been a delightful obsession of mine for some time. As a young graduate student in Zoology over 20 years ago, I gravitated to these amazing Paleozoic arthropods, whose huge diversity and worldwide presence symbolized the diversification of life on Earth. I remember hunting for and devouring any books that offered significant focus on the Trilobita. My obsession eventually found virtual expression when in 1999, a decade ago now, I first unveiled A Guide to the Orders of Trilobites, a website celebrating trilobite diversity and evolution. That website opened international doors for me, introducing me to like-minded trilobitophiles on all continents, and confirming for me that trilobites were worthy of life-long dedication. One of these “fellow trilobitophiles” is Enrico Bonino.

So when Enrico announced that he and Carlo Kier were working on a new book dedicated to trilobites, it drew my attention immediately. It was not a primarily technical work, such as the Treatise of Invertebrate Paleontology (Volume O -- the so-called “Trilobite Bible”), and yet neither was it a purely popular account. The authors offer us a substantive work, exploring the “world of trilobites,” their origins, morphology, classification, ecology, and paleogeography in extensively researched and richly illustrated sections, then present a large photographic catalogue of trilobites (and some close relatives) organized in geochronological order and by lagerstätten -- one can see trilobites from all over the world, over 500 species illustrated – more than adequate to illustrate the richness and distinctiveness of this singularly wonderful class of ancient arthropods. Even some specimens only very recently discovered (2009) and published are included, like the giant asaphids from the Valongo Formation of Portugal.

A work such as this could not have come into being without the cooperation of a large, international community of collectors, preparators, researchers, and public institutions that participated in sharing some of the finest trilobite specimens known, and I enjoyed contributing illustrations and feedback to this project over the years. The majority of the trilobites in this book are to be found in the Back To The Past Museum (an impressive collection, one of the best private exhibitions of trilobites in the world), but in addition, it was a delight to recognize specimens coming from other notable collectors such as Peter Cameron, Sam Stubbs, Mark Marshall, Jake Skabelund and many others not possible to enumerate here.

Like many who devote their lives to our extinct trilobed antecedents, Enrico and Carlo don’t consider the amount of time, research, international networking, and artistic creation that resulted in this book. It is a product of the joy that comes from immersion into the world of creatures hundreds of millions of years gone by, a joy that now we can all share, no matter what language we speak!

Samuel M. Gon III, Ph.D. Honolulu, Hawai`i

4 Sezione descrittiva Il Museo Back to the Past

Situato non molto distante dalla zona di impatto del meteorite che colpì la Terra circa 65 milioni di anni fa, dando origine al famoso cratere Chicxulub, si trova il Museo “Back to the Past”. In un contesto paradisiaco della costa orientale dello Yucatan, lambito dal blu del Mare Caraibico e prossimo alla città di Cancun in Messico, questo museo presenta una delle più importanti collezioni di trilobiti al mondo per qualità, rarità, interesse scientifico e contenente più di 300 specie esposte. Questi gioielli, provenienti dai quattro angoli del pianeta, sono il risultato di anni di ricerca diretta sul terreno, acquisto o scambio da parte del proprietario del museo stesso, e co-autore del presente volume, Carlo Kier. Il gruppo di persone che ha dato avvio a questo ambizioso progetto è composto dal sottoscritto (Enrico Bonino, geologo ed avente funzione di disegnatore artistico e consulente scientifico del museo), Jake Skabelund (biologo e noto cercatore professionista di fossili americano) e Carlo Kier. Nel backstage, ma con una funzione più che fondamentale, sono presenti specialisti come Dave Comfort, Bob Carroll e Scott Wergiels per la preparazione dei pezzi da esporre. È evidente che senza il paziente e professionale lavoro di pulizia e rimozione della dura matrice inglobante i preziosi fossili, nulla di quanto esposto potrebbe essere visibile. Il museo, oltre ad offrire una descrizione strettamente scientifica dei reperti esposti, rivolge particolare attenzione al settore della didattica. Accanto ad ogni vetrina sono inserite ricostruzioni ambientali e poster illustrativi con la descrizione dell’ambiente di vita, la geologia, le faune e le flore che condividevano la medesima nicchia ecologica dei trilobiti. Il percorso si sviluppa dagli albori del Cambriano, per procedere in un viaggio virtuale nel tempo attraverso tutto il corso del Paleozoico sino al Permiano. Ogni periodo è riccamente illustrato da esemplari talora unici, ed è riconoscibile dai colori utilizzati come sfondo alle vetrine stesse, tinte che ricalcano i colori standard utilizzati dall’ICS (International Commission of Stratigraphy) per la scala cronostratigrafica ufficiale. Il museo è in continuo aggiornamento a misura che nuovi esemplari saranno acquisiti ed integrati nelle vetrine. Obiettivo principale è quello di ispirare nuove generazioni di giovani collezionisti, futuri paleontologi, e far prendere conoscenza di questi antichi ed affascinanti organismi che hanno colonizzato tutti gli ambienti marini del Paleozoico per quasi trecento milioni di anni. Un sito Internet è stato appositamente creato per offrire l’opportunità, per chi non può facilmente recarsi sul luogo, di poter ammirare parte della collezione, l’organizzazione delle vetrine ed accedere al negozio on-line dove poter acquistare materiale illustrativo e trilobiti. L’indirizzo internet è: http://www.backtothepast.com.mx

Fig. 1 - Dettaglio della sezione riguardante le faune del Devoniano del Marocco.

Introduzione 5 Fig. 2 - Entrata del museo. A destra la scala cronologica e la distribuzione dei trilobiti comparata ai differenti regni animale e vegetale, sullo sfondo le vetrine con le collezioni organizzate per cronologia e luogo di provenienza.

Fig. 3 - Ad ogni lagerstätten è associato un poster tematico in cui sono illustrati i principali fossili che ne caratterizzano le faune. Essi sono accompagnati da una descrizione paleogeografica, geologica, sedimentologica e la posizione cronostratigrafica del sito.

6 Sezione descrittiva Ringraziamenti

Senza l’apporto appassionato di decine di collezionisti privati, professori e ricercatori universitari è evidente che questo volume non sarebbe potuto essere pubblicato. Ciononostante vorrei ringraziare personalmente le persone chiave che hanno permesso lo sviluppo e la finalizzazione di questa “opus magna”. - Innanzitutto il mio più devoto ringraziamento lo rivolgo a mia moglie Anne-Sophie Fontenelle, la quale ha sopportato pazientemente le mie lunghe serate (quando non erano nottate) davanti al computer, sia a disegnare che redigere il testo. - Un grande debito lo possiedo nei confronti dell’amico Carlo Kier che ha finanziariamente supportato l’intera opera oltre che mettere a disposizione tutta la sua eccezionale collezione di trilobiti ed il suo immenso archivio fotografico. Senza la sua perseveranza, passione ed entusiasmo non credo che sarei riuscito a portare a termine questo complesso lavoro. A pieno titolo è da considerarsi come co-autore del presente volume! - Senza l’amichevole, appassionata e professionale collaborazione di Dave Comfort e Jake Skabelund nella compilazione dell’archivio di immagini e per la loro valutazione scientifica, certamente il presente volume sarebbe risultato molto meno ricco ed interessante. Ringrazio inoltre Dave per aver scritto il capitolo relativo alla preparazione dei fossili; le sequenze fotografiche inserite a fine testo illustrano in maniera eccellente come il lungo processo di eliminazione della dura matrice richieda un notevole grado di pazienza e competenza. - Ringrazio il Prof. Maurizio Gnoli e la Prof.sa Annalisa Ferretti dell’Università di Modena-Reggio Emilia per il materiale fotografico messo a disposizione relativo all’analisi in sezione sottile. Inoltre il naturale ottimismo ed amabilità di Maurizio mi ha spronato quand’anche le energie venivano meno durante lo sviluppo del progetto. - La sezione che riguarda l’analisi dell’apparato visivo dei trilobiti non potrebbe essere stata sviluppata senza il prezioso apporto del Prof. Riccardo Levi-Setti dell’Università di Chicago (USA). Un particolare ringraziamento va anche al Prof. Euan N.K. Clarkson del Grant Institute of Geology di Edinburgh (Inghilterra) per aver gentilmente fornito le immagini riguardanti gli occhi olocroali di Sphaerophthalmus acquisiti al microscopio elettronico. - Ad Adolf Seilacher, Emeritus Professor all’Institute and Museum für Geologie und Paläontologie dell’Università di Tübingen (Germania) e Professore associato alla Yale University, New Haven, Connecticut, USA, per le immagini relative alle tracce fossili. - Ringrazio la direttrice del Museo Geominero dell’Instituto Geológico y Minero de España, Isabel Rábano, per aver permesso l’utilizzo del materiale fotografico acquisito presso il Museo de El Carmen a Ribadesella (Spagna). In esso sono conservati interessanti esemplari di trilobiti provenienti dall’Ordoviciano delle Asturie. - Le tavole relative ai trilobiti provenienti dagli Shales della Beecher’s Trilobite Bed, non potrebbero essere state pubblicate senza il permesso del Peabody Museum of Natural History, Yale University (USA) ed in particolare grazie alla collaborazione di Susan H. Butts (Collection Manager alla Division of Invertebrate Paleontology) e Thomas Whiteley. Le immagini a raggi-X sono state acquisite dal Dr. J. Chisne che ringrazio per il prezioso lavoro effettuato. Il Dr. Whiteley ha inoltre personalmente collaborato alla compilazione delle tavole relative ai trilobiti provenienti dalla Walcott Rust Formation. Il suo archivio fotografico ha permesso di creare tavole contenenti fossili unici nel loro genere. - Parte dei temi affrontati lungo il corso dell’opera sono organizzati basandomi sulla struttura creata da Samuel M. Gon III nel suo straordinario sito internet http://www.trilobites.info. La possibilità di poter utilizzare liberamente il materiale messo gentilmente a disposizione (come le ricostruzioni dei trilobiti, le tavole sinottiche ed i testi) ha facilitato l’organizzazione e lo sviluppo della parte grafica. - La sezione dedicata ai trilobiti della Sardegna non potrebbe esser stata creata senza il prezioso ausilio del Prof. Gian Luigi Pillola e del Dr. Francesco Leone entrambi dell’Università di Cagliari. Le faune a trilobiti ed artropodi della Sardegna sono in Italia le meglio studiate, nonostante ancora molto lavoro sia da fare. - Non riuscendo a trovare riscontri positivi dalle altre strutture del nord e sud Italia, riguardo ad una collaborazione, anche solo per fornire qualche breve informazione di studio sulle faune a trilobiti presenti nelle più note località, non si è potuto approfondire questo capitolo, molto importante a livello scientifico e culturale per la nostra nazione. Anche in questo settore (purtroppo) c’è ancora molto da fare... - Ringrazio vivamente il Dr. Jih-Pai Lin (Alex), Postdoctoral Associate, presso il Department of Geology

Introduzione 7 and Geophysics della Yale University, per aver permesso la pubblicazione di materiale proveniente dai siti del Cambriano inferiore di Chengjiang (Cina), dalla Russia ed Australia, oltre che ad avermi assistito nella classificazione tassonomica di molti trilobiti. - Il Prof. Andrey Yu. Ivantsov del Paleontological Institute, Russian Academy of Sciences, Mosca, Russia, per aver permesso la pubblicazione dei trilobiti provenienti dalla Sinsk Formation, Lena River, Siberia. - L’amico Allart van Viersen, guest conservator al Natuurhistorisch Museum Maastricht (Olanda), per la sua preziosa collaborazione e disponibilità nella correzione del testo e classificazione dei trilobiti del Nord Europa e Marocco. - Il Prof. James G. Gehling per aver permesso la pubblicazione degli esemplari presenti nel South Australian Museum. - Il Prof. Richard A. Robison, Professor Emeritus presso il Department of Geology, University of Kansas, per le discussioni ed i suggerimenti relativi alla classificazione dei trilobiti del Cambriano degli USA. La partecipazione attiva di collezionisti privati di tutto il mondo ha inoltre permesso l’inserimento di nuove e rare specie, per la prima volta visibili, ed esclusivamente, in questo volume: - Bob Carroll e George Hansen per le faune devoniane dell’Oklahoma della Black Cat Mountains. - Peter Cameron e Juan Corbacho Amado per l’eccellente materiale proveniente dall’Ordoviciano e Devoniano del Marocco. - Paul Chinnici per il sito, ormai definitivamente chiuso, del Siluriano della Rochester Shale. - Tomas Hekkers, Roy van der Brul e Paul J. Hille per le faune del Cambriano della Jince Formation della Repubblica Ceca. - Benedikt Magrean, Andreas Rückert e Harald Prescher per aver fornito interessantissimo materiale relativo alle faune del Devoniano dell’Eifel (Germania) e del Belgio. Un particolare ringraziamento ad Erich Thomas per le informazioni e le foto riguardanti il Carbonifero di Aprath (Germania occidentale). - Wouter Südkamp e Ru Smith hanno permesso l’utilizzo di immagini provenienti dal sito (anch’esso praticamente esaurito) delle Hunsrück Shales (Bundenbach, Germania occidentale). - Jorge Pereira e Manuel Valério hanno fornito le eccezionali fotografie dei trilobiti giganti rinvenuti nella portoghese Valongo Formation. - Chris Jenkins, per gli esemplari provenienti dalla McKay Formation in Canada. Non meno importante è stata la collaborazione ricevuta da colleghi ed amici che si sono prodigati nella lettura e correzione del testo, o sia per fornire materiale fotografico. Voglio quindi qui ricordare in ordine sparso l’amico Enrico Soleri (fondamentali sono stati i suoi suggerimenti per una migliore impostazione e lettura del testo), Nando Musmarra, Diana Riboli, Gianpaolo Di Silvestro, Luc Hennion, Laurence Ho, i membri dei forum Trilobites2 (http://tech.groups.yahoo.com/group/trilobites2/), www.paleobusiness.com e www.paleofox.com, Mark Bourrie, Dan e Jason Cooper, Ben Dattilo, Chris (Kenneth) Gass, Pete Peterson, Dustin Rooks, Mark Wolvers, James Cook, Aleksey Leonidovich Nagovitsyn, Sam Stubbs e Mark Marshall. Infine un grande ringraziamento va rivolto anche ai musei ed alle università che hanno permesso l’utilizzo del materiale proveniente dalle loro collezioni o fornito informazioni importanti per lo sviluppo dell’opera:

- Arkhangelsk Regional Museum (Russia). - Early Life Institute and Department of Geology, Northwest University, Xian (Cina). - Forschungsinstitut und Naturmuseum Senckenberg (Germania). - Geological Museum of Barcellona (Spagna). - Institut Royal des Sciences Naturelles de Belgique (Belgio). - Katholieke Universiteit Leuven (Belgio). - Palaeontological Institute (PIN), Russian Academy of Sciences, Moscow (Russia). - Palaeontological Museum of Guizhou University, Guiyang, (Cina). - Peabody Museum of Natural History, Yale University (USA). - Saint-Petersburg Palaeontological Laboratory (Russia). - South Australian Museum (SAM), Paleontological Collection, Adelaide, (Australia). - Università di Cagliari (Italia). - Università di Reggio Emilia - Modena (Italia). - University of Alberta (Canada). - Yunnan Geological Survey, Kunming, Yunnan (Cina).

8 Sezione descrittiva Bibliografia

Alberti G. (1963), Sul Devoniano inferiore e medio nella Sardegna meridionale. “Acc. Naz. Lincei, Rend. Cl. Sc. Fis. Mat. e Nat”. Ser. 8, 34(5): 553-559. Alpert S.P., Moore J.N. (1975), Lower Cambrian trace fossils evidence for predation on trilobites, “Lethaia” 8: 223-230. Alvaro J.J, Elicki O., Geyer G., Adrian W.A., Rushton A.W.A., Shergold J.H. (2003), Palaeogeographical controls on the Cambrian trilobite immigration and evolutionary patterns reported in the western Gondwana margin, “Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology” 195: 5-35. Babcock L.E. (1993), Trilobite malformations and the fossil record of behavioral asymmetry. “J. Paleontol.” 67(2):217-229. Babcock L.E. (2003), Trilobites in Paleozoic Predator-Prey Systems, and their role in reorganization of Early Paleozoic Ecosystems, in “Predator-prey Interactions in the Fossil Records”, Kluver Academic/Plenum Publishers, New York, 55:92. Barca S., Del Rio M., Pittau Demelia P. (1981), Acritarchs in the “Arenarie di S. Vito” of South-East Sardinia (Italy): stratigraphical and geological implications, “Bollettino della Società Geologica Italiana”, 100: 369-375. Barca S., Del Rio M., Pittau Demelia P. (1988), New geological and stratigraphical data and discovery of lower Ordovician acritarcs in the san Vito Sandstone Formation of the Genn’Argiolas Unit (sarrabus, southeastern Sardinia), “Rivista Italiana di Paleontologia e Stratigrafia”, 94(3): 339- 360. Barrientos Y., Laverack M.S. (1986), The larval crustacean dorsal organ and its relationship to the trilobite median tubercle. “Lethaia” 19(4), pp.309. Bengston S. (1994), The advent of animal skeletons, “Early Life on Earth”, Columbia University Press, 412-425. Bengston S., Conway Morris S., Cooper B.J., Jell P.A., Runnegar B.N. (1990), Early Cambrian fossils from South Australia, “AAP Mem.” 9: 1-364. Bengston S. & Yue Z. (1992), Predatorial borings in Late Precambrian mineralized skeletons. “Science” 257: 367-369. Bergström J. (1969), Remarks on the appendages of trilobites “Lethaia” 2(4): 395-414. Bergström J. (1973), Organisation, life and systematics of trilobites “Fossils and Strata” 2: 1-69. Bergström J. (1977), Proetida - a disorderly order of trilobites “Lethaia” 10(2): 95-105. Bergström J. & Hou X-G. (2003), Arthropod origins, “Bulletin of Geosciences”, 78(4): 323–334. Birkenmajer K., Bruton D.L. (1971), Some trilobite resting and crawling traces. “Lethaia”, 4: 303-319. Brasier M.D. (1982), Foraminiferid architectural history; a review using the MinLOC and PI methods. “Journal of Micropalaeontology” 1: 95–105. Brasier M.D. (1989), Towards a Biostratigraphy of the Earliest Skeletal Biotas In Cowie J.W. e Brasier M.D. (eds.), The Precambrian-Cambrian Boundary, Clarendon Press: 40-74. Brenchley P.J., Romano M., Young T.P., Storch P. (1991), Hirnantian glaciomarine diamictites - evidence for the spread of glaciation and its effect on Upper Ordovician faunas In: C.R. Barnes e S.H. Williams (Eds.), Advances in Ordovician geology “Geol. Surv. Canada Paper” 90(9): 325-336. Bornemann J.G. (1891), Die Versteinenmgell des Cambrischel1 Schichlensystems der fuse! Sardiniel1. (Zweite Abteilung). “Nova Acta KsI. Leop. Carol. Deutsch. Akad. Naturforsch.”, 56 (3): 124-525. Brands S.J. (comp.) (1989-2007), Systema Naturae 2000. The Taxonomicon. Universal Taxonomic Services, Amsterdam, The Netherlands. [http://sn2000.taxonomy.nl/]. Brennan S.T., Lowenstein T.K., Horita J. (2004), Seawater chemistry and the advent of biocalcification,

Bibliografia 409 “Geology”, 32(6): 473-476. Brett C.E., Walker S.E. (2002), Predators and predation in Paleozoic marine environments. In: M. Kowalewski and P. H. Kelley (eds.), The Fossil Record of Predation. “The Paleontological Society Papers”, 8: 93-118. Brezinski D.K. (1986), An opportunistic Upper Ordovician trilobite assemblage from Missouri, “Lethaia”, 19: 315-325. Briggs D.E.G., Erwin D.H., Collier F.J. (1994), The Fossils of the Burgess Shale, “Smithsonian Institution Press”, 238 pp. Bruthansova J. (2003), Exuviation of selected Bohemian Ordovician trilobites. In Trilobites and their relatives “Spec. Pap. Palaeontol.” 70: 293-308 in: Lane P.D., Derek S. and Fortey R.A. (eds.) Blackwell Publishing. Bruton D.L. (1983), Cambrian origins of the Odontopleurid trilobites “Palaeontology” 26(4): 875–885. Bruton D.L., Haas W. (2003), The puzzling eye of Phacops, “Special Papers in Palaeontology”, 70: 349–361. Budd G.E. (1995), Kleptothule rasmusseni gen. et sp. nov.: an olenellinid-like trilobite from the Sirius Passet fauna (Buen Formation, Lower Cambrian, North Greenland). “Tran. R. Soc. Edinburgh: Earth Science” 86: 1-12. Budd G.E. (1999), A nektaspid arthropod from the Early Cambrian Sirius Passet fauna, with a description of retrodeformation based on functional morphology. “Palaeontology”, 42: 99–122. Budil P. e Bruthansová J. (2005), Moulting in Ordovician dalmanitoid and acastoid trilobites of the Prague Basin. Preliminary observation “Geological Acta” 3(4): 673-383. Campbell K.S.W. (1975a), The functional morphology of Cryptolithus “Fossil and Strata” 4: 65-86. Campbell K.S.W. (1975b), The functional anatomy of trilobites: musculature and eyes. “Journal and Proceedings of the Royal Society of New South Wales”, 108: 168–188. Campbell K.S.W. (1976), The functional anatomy of phacopid trilobites: musculature and eyes. “Journal and Proceedings, Royal Society of New South Wales”, 108: 168-188. Campbell K.S.W. (1977), Trilobites of the Haragan, Bois d’Arc and Frisco Formations (Early Devonian), Arbuckle Mountains region, Oklahoma. “Bull. Okla. Geol. Surv.”, 123: 1-227. Caron J.-B., Rudkin D.M., Milliken S. (2004), A new Late Silurian (Pridolian) naraoiid (Euarthrapoda: Nektaspida) from the Bertie Formation of southern Ontario, Canada—delayed fallout from the Cambrian explosion, “Journal of Paleontology”, 78: 1138–1145. Chatterton B.D.E., Edgecombe G.E., Speyer S.E., Hunt A.S., Fortey R.A. (1994), Ontogeny and relationship of Trinucleoidea (trilobita), “Journal of Paleontology”, 68(3): 523-540. Chatterton B.D.E., Fortey R., Brett K., Gibb S., McKellar R. (2006), Trilobites from the Lower to Middle Devonian Timrhanrhart Formation, Jbel Gara el Zguilma, southern Morocco, “Palaeontographica Canadiana”, 25: 179pp. Chatteron B.D.E., Fortey R. (2008), Linear clusters of articulated trilobites from Lower Ordovician (Arenig) strata at Bini Tinzoulin, north of Zagora, southern Morocco, “Cuadernos del Museo Geominero”, 9: 73-78. Chen J.Y, Edgecombe G.D., Ramsköld L. (1997), Morphological and ecological disparity in naraoiids (Arthropoda) from the Early Cambrian Chengjiang fauna, China “Rec. Australian Museum” 49(1): 1–24. Checchia-Rispoli G. (1933), Una nuova trilobite deI Cambriano di Sardegna (Olenopsis broilii), “Mem. Soc. Geol.Ital”,1: 1-10, 1 pl, Roma. Chlupáč I., Feist R., Morzadec P. (2000), Trilobites and standard Devonian stage boundaries “Cour. Forsch. Senck.” 220: 87-98. Clarkson E.N.K. (1973a), The eyes of Asaphus raniceps Dalman (Trilobita), “Palaeontology”, 16: 425- 444. Clarkson E.N.K. (1973b), Morphology and evolution of the eye in Upper Cambrian Olenidae (Trilobita). “Palaeontology”, 16: 735-763.

410 Bibliografia Clarkson E.N.K. (1979), The Visual system of trilobites “Paleontology” 22(1): 1-22. Clarkson E.N.K. (1993), Invertebrate Paleontology and Evolution 4th Ed. Chapman/Hall, N.Y. Clarkson E.N.K., Levi-Setti R. (1975), Trilobite eyes and the optics of Des Cartes and Huygens, “Nature”, 254: 663-667. Clarkson E.N.K., Levi-Setti R., Horva G. (2006), The eyes of trilobites: The oldest preserved visual system, “Arthropod Structure and Development”, 35: 247-259. Clarkson E.N.K., Taylor C.M. (1995), Ontogeny of the trilobite Olenus wahlenbergi Westergård, 1992 from the upper Cambrian Alum Shales of Andrarum, Skåne, Sweden. “Transactions of the Royal Society of Edinburgh: Earth Sciences”, 86: 13–34. Cocks L.R.M., Fortey R.A. (1982), Faunal evidence for oceanic separations in the Palaeozoic of Britain “J. Geol. Soc.” 139: 465-478. Cocks, L.R.M., Fortey, R.A. (1990), Lower Palaeozoic facies and faunas around Gondwana “Geol. Soc. Lond., Spec. Pub.” 37: 183-200. Cocozza T., Gandin A. (1990), Carbonate deposition during early rifting: the Cambrian of Sardinia and the Triassic- Jurassic of Tuscany, Italy, “Spec. Publs. int. Ass. Sediment.”, 9: 9-37. Conway Morris S., Jenkins R.J.F (1985), Healed injuries in Early Cambrian trilobites from South Australia, “Alcheringa”, 9: 167–177. Cooper P. (2004), Silurian (Late Llandovery-Ludlow) Atrypid Brachiopods from Gotland and the United Kingdom, “NRC Research Press”, 215pp. Cotton, T.J., S.J. Braddy. (2000), A “big hand” for the chelicerates? Phylogeny of arachnomorph arthropods and the origins of the Chelicerata. “The Systematics Association - 3rd Young Systematics Forum” (former site). Cotton T.J., Fortey R.A. (2005), Comparative morphology and relationships of the Agnostida In: Koenemann S. e Jenner R. (eds.), Crustacean Issues 16, Crustacea and Arthropod Relationships Boca Raton, CRC Press. Cowie J.W. (1993), Lower Cambrian faunal provinces, In Faunal Provinces in Space and Time, Geological Journal Special Issue n.4: 21-46. Crônier C., Courville P. (2003), Variations du rythme du développement chez les trilobites Phacopidae néodévoniens, “C.R. Paleovol” 2: 577-585. Crônier C., Viersen van A.P. (2007), Trilobite palaeobiodiversity during the Devonian in the Ardenne Massif, “Bull. Soc. Géol. Fr.”, 6: 473-483. Crônier C., Viersen van A.P. (2008), The ‘Mur des douaniers’, an exceptionally well-preserved Early Eifelian fossil site, “Bull. Soc. Géol. Fr.”, 1: 89-95. Daley A.C., Budd G.E., Caron J-B., Edgecombe G.D., Collins D. (2009), The Burgess Shale Anomalocaridid Hurdia and its significance for early euarthropod evolution, “Science” 323: 1597-1600 Dalingwater J.E., Miller J. (1977), The laminae and cuticular organization of the trilobite Asaphus raniceps “Palaeontology” 20: .21-32. Dalingwater J.E. (1973), Trilobite cuticle microstructure and composition “Palaeontology” 16: 827-839. Dalziel I.W.D. (1997), Neoproterozoic-Paleozoic geography and tectonics; review, hypothesis, environmental speculation “Geol. Soc. Am. Bull.” 109: 16-42. Davis R.A., Fraaye, R.H.B., Holland, C.H. (2001), Trilobites within nautiloid cephalopods. “Lethaia”, 34: 37–45. Debrenne F., Naud G. (1981), Méduses et traces fossiles supposées précambriennes dans la formation de San Vito, Sarrabus, Sud-Est de la Sardaigne, “Bulletin de la Société Géologique de France”, 23(1): 23-31. Debrenne F., Zhuralevlev A.Y. (1997), Cambrian food web: a brief review, “Geobios” (20): 181-188. Des Cartes, R. (1637), Oeuvres de Des Cartes. La Géometrie, Livre 2, J. Maire, Leyden. Di Napoli A.E. (1953) - Stratigrafia di un sondaggio eseguito in corrisponenza alla “Pietra di Salomone”, “Contributi di Sc.Geologiche, Roma (Consiglio Nazionale delle Ricerche)”, 3: 99-110.

Bibliografia 411 Dzik J. (2003), Anatomical information content in the Ediacaran fossils and their possible zoological affinities “Integrative and comparative biology” 431: 114-126. Dzik J., Lendzion K. (1988), The oldest arthropods of the East European Platform “Lethaia” 21: 2-8. Ebach, M.C., McNamara K.J. (2002), A systematic revision of the family Harpetidae (Trilobita) “Rec. West. Aust. Mus.” 21: 235-267. Edgecombe G.D., Ramsköld L. (1999), Relationship of Cambrian Arachnata and the systematic position of Trilobita “J. Paleont.” 73: 1155-1175. Egorova L.L, Shabanov Y.Y., Pegel T.V., Savitsky V.E., Sukhov S.S., Chernysheva N.E. (1982), The Mayan Stage of the stratotype area (Mid Cambrian of the southeastern part of the Siberian Platform). Mezhvedomstvennyy stratigraficheskiy komitet, 8: 1- 146, Moscow, Nauka. (In Russo). Eldredge N. (1977), Trilobites and evolutionary patterns In A. Hallam (ed.) Patterns of Evolution as Illustrated by the Fossil Record: 305-332, Amsterdam, New York, Elsevier. Eldredge N., Ormiston R. (1979), Biogeography of Silurian and Devonian trilobites of the Malvinokaffric realm, in “Historical Biogeography, Plate Tectonics and the Changing environment” (eds. J.Gray and A.Boucot), Oregon State University Press, Portland, Ore. 147-167. Fatka O., Szbad M., Budil P. (2009), Malformed agnostids from the Middle Cambrian Jince Formation of the Příbram-Jince Basin, Czech Republic. “Bulletin of Geosciences” 84(1): 1-6. Fauvel P., (1923). “Bulletin de la Société Zoologique de France”, 47: 424. Fedonkin, M.A., Gehling, J.G., Grey, K., Narbonne, G.M., Vickers-Rich, P. (2007), The Rise of Aniamls: Evolution and Diversification of the Kingdom Animalia, Johns Hopkins University Press, Baltimore, 327p. Feist R. (1991), The Late Devonian trilobite crises “Historical. Biology” 5: 197-214. Fortey R.A. (1985), Pelagic trilobites as an example of deducing the life habits of extinct arthropods “Tran. R. Soc. Edinburgh” 76: 219-230. Fortey R.A. (1990), Ontogeny, hypostome attachment and trilobite classification “Palaeontology” 33: 529-576. Fortey R.A. (1997), Classification In Whittington H.B. et alii(1997) Treatise on Invertebrate Paleontology. Part O Arthropoda 1. Trilobita, Revised. Vol.1: 289-302, Introduction, Order Agnostida, Order Redlichiida. Geological Society of America and University of Kansas, Boulder, Colorado, Lawrence, Kansas. Fortey R.A. (2000), Olenid trilobites: The oldest known chemoautotrophic symbionts? PNAS, v.97(12), pp. 6574–6578. Fortey R.A. (2004), The Lifestyles of the Trilobites “American Scientist” 92(5): 446-453. Fortey R.A. (2000b), Trilobite! Eyewitness to Evolution Alfred A. Knopf (ed.) New York. Fortey R.A., Chatterton B. (2003), A Devonian Trilobite with an Eyeshade “Science” 301(19): 1689. Fortey R.A., Chatterton B. (1988), Classification of the trilobite Suborder Asaphina. “Palaeontology” 31: 165–222. Fortey R.A., Clarkson E.N.K. (1976), The function of the glabellar ‘tubercle’ in Nileus and other trilobites “Lethaia” 9: 101–106. Fortey R.A., Huges N.C. (1998), Brood pouches in trilobites “J. Paleontol.” 72(4): 638-649. Fortey R.A., Morris S.F. (1978), Discovery of nauplius-like trilobite larvae “Palaeontology”31: 823-833. Fortey R.A., Owens R.M. (1975), Proetida, a new Order of Trilobites “Fossils and Strata” 4: 227–239. Fortey R.A., Owens R.M. (1979), Enrollment in the classification of trilobites“Lethaia” 12(3): 219-226. Fortey R.A., Owens R.M. (1990), Trilobites In : K.J. McNamara (ed.) Evolutionary trends in Invertebrates London, Belhaven Press, pp.121-142. Fortey R.A., Owens R.M. (1997), Evolutionary History In H.B. Whittington et al. Treatise on Invertebrate Paleontology, Part O Arthropoda 1, Trilobita, Revised. Vol.1: 249-287, Introduction, Order Agnostida, Order Redlichiida. Geological Society of America and University of Kansas, Boulder, Colorado, e Lawrence, Kansas. Fortey R.A., Owens R.M. (1999), Feedings habits in Trilobites “Palaeontology” 42(3), pp.429-465.

412 Bibliografia Fortey R.A., Seilacher A. (1997), The trace fossil Cruziana semiplicata and the trilobite that made it “Lethaia” 30(2): 105- 112. Fortey R.A., Theron J.N. (1994), A new Ordovician arthropod, Soomaspis, and the agnostid problem. “Palaeontology”, 37: 841–861. Fortey R.A., Whittington H.B. (1989), The Trilobita as a natural group “Hist. Biol.” 2: 125-138. Fortey R.A., Wilmot N.V. (1991), Trilobite cuticle thickness in relation to palaeoenvironment, “Paläont. Z.”, 65: 141-151. Fraaye R.H.B., Jäger M. (1995a), Ammonite inquilinism by fishes: examples from the Lower Jurassic of Germany and England. “Neues Jahrbuch für Geologie und Paläontologie, Monatsheft”, 9: 541– 552. Fraaye R.H.B., Jäger M. (1995b), Decapods in ammonite shells: examples of inquilinism from the Jurassic of Germany and England. “Palaeontology”, 38: 63–75. Gambera V. (1897), Relazione sulla scoperta di fossili nell’Iglesiente, “Ass. Min. Sarda”, 2(2): 5-6, Cagliari. Gandin A., (1989), Depositional and paleogeographic evolution of the Cambrian in south-western Sardinia. In Sassi, F.P. & Bourrouilh, R. (Eds), IGCP Project No. 5, Correlation of Prevariscan and Variscan events of the Alpine-Mediterranean mountain belt. Newsletter (1987), 7: 151-166. Gandin A., Pillola, G.L., (1985), Biostratigrafia e sedimentologia della Formazione di Cabitza nell’Iglesiente. In Gruppi di lavoro del CNR: “Paleozoico” e “Evoluzione magmatica e metamorfica della crosta fanerozoica”. Riunione Scientifica. Siena 13-14 Dicembre 1985: 30-31. Gandin A., Minzoni N., Couriault-Radé P., (1987), Shelf to basin transition in the Cambrian-Lower Ordovician of Sardinia (Italy), “Geologische Rundschau”, 76 (3): 827-836. Gehling J.G. (1991), The case for Ediacaran fossil roots to the metazoan tree. “Mem. Geol. Soc. India” 20: 181-224. Gemmellaro, G. G. (1890), I crostacei dei calcari con Fusulina della valle del fiume Sosio nella Provincia di Palermo in Sicilia. “Memorie della Società Italiana delle Scienze” 8: 11–40. Glaessner M.F. (1979), Precambrian In: R.A. Robison e C. Teichert (eds.) Treatise on Invertebrate Paleontology. Geol. Soc. America and University of Kansas, Boulder, Colorado, and Lawrence, Kansas. Part A. pp.79-118. Gheyselink R.F.C.R. (1937), Permian trilobites from Timor and Sicily. PhD Thesis, Amsterdam, pp. 1-108. Gon III M.S. (2005), A Guide to the Orders of Trilobite. Pagina web http://www.trilobites.info Gortani M. (1923), Observazioni sul Paleozoico della Sardegna, “Bollettino della Società Geologica Italiana”, 41(4): 362-371. Greco B. (1935), La fauna permiana del Sosio conservata nei Musei di Pisa, di Firenze e di Padova, parte 1, “Palaeontographia Italica”, 35: 101-190. Hagadorn W. (2009), Cambrian’s fiercest hunter defanged, “Nature”, http://www.nature.com/ news/2009/090807/full/news.2009.811.html. Hamman W., Laske R., Pillola G.L. (1990), Tariccoia arrusensis n. g. n. s., an unusual trilobite-like arthropod. Rediscovery of the “phyllocarid” beds of Taricco (1922) in the Ordovician “Puddinga” sequence of Sardinia. “Bollettino della Società Paleontologica Italiana”, 29(2): 153-178. Hammann W., Leone F. (1997), Trilobites on the post-Sardic (Upper Ordovician) sequence of southern Sardinia. Part I. “Beringheria, Würzburg geowissenschaftlinche Mitteilungen”, 20: 3-217. Hammann W., Leone F. (2007), Trilobites on the post-Sardic (Upper Ordovician) sequence of southern Sardinia. Part II. “Beringheria, Würzburg geowissenschaftlinche Mitteilungen”, 38: 3-138. Hansen G.P. (2009), Trilobites of Black Cat Mountain, iUniverse, Inc., 376pp. Hollingsworth, J.S. (2008), The first trilobites in Laurentia and elsewhere. In: I.Rábano, R. Gozalo and D. García-Bellido (Eds.), “Advances in trilobite research” Cuadernos del Museo Geominero, nº 9. Instituto Geológico y Minero de España, Madrid. Horváth G., Clarkson E.N.K., Pix, W. (1997), Survey of modern counterparts of schizochroal trilobite

Bibliografia 413 eyes: structural and functional similarities and differences. “His. Biol.” 12: 229-263. Hou X.-G., Bergström J. (1997), Arthropods of the Lower Cambrian Chengjiang fauna, southwest China. “Fossils and Strata”, 45: 1–115. Hughes N.C. (2003) - Trilobite tagmosis and body patterning from morphological and developmental perspectives. Integr. Comp. Biol., 43: 185-206. Hughes N.C., Minelli A., Fusco G. (2006), The ontogeny of trilobite segmentation: a comparative approach, “Paleobiology”, 32: 602–27. Hughes N.C. (2007), The evolution of trilobite body patterning “Annu. Rev. Earth Planet. Sci.” 35: 401–434. Hupé, P. (1953), Classe des Trilobites In J. Piveteau ‘Traité de Paléontologie. Volume 3’. Edition, Masson, Paris, pp. 44-246. Huygens C., (1690), Traité de la Lumière, Pierre van der Aa, Leyden. Ivanov A.V. (1963), Pogonophora. Translated and edited by D. B. Carlisle. Academic Press, New York. Ivantsov A.Y. (1999), Trilobite-like arthropod from the lower Cambrian of the Siberian Platform, “Acta Palaeontologica Polonica”, 44(4): 455-466. Ivantsov A.Y. (2004) - Vendian Animals on the Phylum Proarticulata, “The Rise and Fall of the Vendian Biota”. IGSP Project 493. 2004. Abstracts. Prato, Italy, p. 52. Jaanusson V. (1979), Ordovician In: R.A. Robison e C. Teichert (eds.) Treatise on Invertebrate Paleontology. Geological Society of America and University of Kansas, Boulder, Colorado, and Lawrence, Kansas. Part A. pp.136-166. Jell P.A. (1975), The abathochroal eye of Pagetia, a new type of trilobite eye. “Fossil and Strata” 4: 33- 43. Jell P.A. (1975), Australian Middle Cambrian eodiscoids with a review of the superfamily “Palaeont. Abt.” 150: 1-97. Jell P.A., Adrain J.M. (2003), Available generic names for Trilobites “Mem. Queensland Mus.” 48(2): 331-553. Jell P.A. (2003), Phylogeny of early Cambrian trilobites “Spec. Pap. Palaeont.” 70: 45-571. Jensen S. (1990), Predation by early Cambrian trilobites on infaunal worms - evidence from the Swedish Mickwitzia Sandstone “Lethaia” 23(1): 29–42. Juan C. Gutiérrez-Marco L., Sá A.A., García-Bellido D.C., Rábano I., Manuel Valério M. (2009), Giant trilobites and trilobite clusters from the Ordovician of Portugal, “Geology”, 37(5): 443-446. Kesling R.V., Heany F., Kauffman E.G., Oden A.L. (1958), Bolbineossia, a new Beyrichiid ostracod genus “J. Paleont.” 32(1): 147-151. Kloc G.J. (1992), Spine function in the odontopleurid trilobites Leonaspis and Dicranurus from the Devonian of Oklahoma. “North American Paleontological Convention Abstracts and Program. Paleontological Society Special Publication”, 6: 167. Knell R.J., Fortey R.A. (2005), Trilobite spines and beetle horns: sexual selection in the Paleozoic?, “Biology Letters“, 1(2): 196-199. Laske R., Bechstadt T., Boni M. (1994), The post-Sardic ordovician series. In: Bechstadt T, Boni M (eds) Sedimentological, stratigraphical and ore deposits field guide of the autochtonous cambro- ordovician of southwestern Sardinia. Memorie descrittive della Carta Geologica D‘Italia, Serv Geol It, Roma, vol XLVIII, pp 115–146. Lauterbach K.E. ( 1983), Synapomorphien zwischen Trilobiten und Cheliceratenzweig der Arachnata, “Zool. Anz.” 210: 213-238. Lebrun P. (1995), Trilobites: anatomie, écologie, classification, gisements. Minéraux & Fossiles, hors- série, 2: 1-104. Lebrun P. (2002), Trilobites de France. Tome I – Généralités sur les trilobites, Massif armoricain (Bretagne, Normandia, Vendée). Minéraux et Fossiles, hors-série, 14: 1-132. Lee J.G., Duck K.C., Pratt B.R. (2001), A teratological pygidium of the Upper Cambrian Trilobite Eugonocare (Pseudoeugonocare) bispinatum from the Machari Formation, Korea, “Journal of

414 Bibliografia Paleontology”, 75(1): 216-218. Lee M.R., Torney C., Owen A.W. (2007), Magnesium-rich intralensar structures in schizochroal trilobite eyes, “Palaeontology”, 50(5): 1031-1037. Leone F., Hamman W., Laske R., Serpagli E., Villas E. (1991), Lithostratigraphic units and biostratigraphy of the post-sardic Ordovician sequence in south-west Sardinia. “Bollettino della Società Paleontologica Italiana”, 30: 201–235. Lerosey-Aubril R., Feist R. (2005a), First Carboniferous protaspid larvae (Trilobita) “J. Palaeont.” 79(4): 702-18. Lerosey-Aubril R., Feist R. (2005b), Ontogeny of a new cyrtosymboline trilobite from the Famennian of Morocco “Acta Palaeontologica Polonica” 50(3): 449–464. Levi-Setti R. (1993), Trilobites (second edition). University of Chicago Press. Lieberman, B.S. (2003), Taking the pulse of the Cambrian radiation “Int. Comp. Biol.” 43: 229-237. Lin J.-P. (2006), Taphonomy of Naraoiids (Arthropoda) from the Middle Cambrian Kaili Biota, Guizhou Province, South China, “PALAIOS”, 21(1), 15-25. Lin J.-P. (2007), Preservation of the gastrointestinal system in Olenoides (Trilobita) from the Kaili Biota (Cambrian) of Guizhou, China. “Memoirs of the Association of Australasian Palaeontologists”, 33: 179-189. Lin J.-P., Gon III S.M., Gehling J.G., Babcock L.E., Zhao Y.L., Zhang X.L., Hu S-X., Yuan J.L., Yu M.Y., Peng J. (2006), A Parvancorina-like arthropod from the Cambrian of South China “Hist. Biol.” 18(1): 33-45. Lin J.-P., Yuan J.-L. (2009), Reassessment of the mode of life of Pagetia Walcott, 1916 (Trilobita: Eodiscidae) based on a cluster of intact exuviae from the Kaili Formation (Cambrian) of Guizhou, China. “Lethaia”, 42: 67–73. Liñán E., Gozalo R., Álvarez M.E.D., Vintaned J.A.G., Zamora S. (2008), Nuevos trilobites del Ovitense inferior (Cámbrico Inferiore bajo) de Sierra Morena (España) “Ameghiniana” 45(1): 123-138. Lindström G. (1901), Researches on the visual organs of the Trilobites “Kongliga Svenska Vetenskaps- Akademiens Handlingar” 34: 1-86. Little C.T.S., Herrington R.J., Haymon R.M., Danelian T. (1999), Early Jurassic hydrothermal vent community from the Franciscan Complex, San Rafael mountains, California. “Geology”, 27: 167– 170. Liu Q., HuiLin L., Liangzhong C., Shixue H. (2006), Panlongia, a new trilobitomorph genus from the Lower Cambrian, Kunming, Yunnan, “Acta Palaeontologica Sinica”, 45(3): 384-392. Loi A., Pillola G.L., Leone F. (1995), The Cambrian and Early Ordovician of southwestern Sardinia. In: Cherchi, A. (Ed.), Sardinia 95, 6th Paleobenthos International Symposium, Guide-book. Rend. Sem. Fac. Sci. Univ. Cagliari, Suppl., 65: 63-81. Loi A., Pillola G.L., Leone F. (1996), La limite Cambrien-Ordovicien dans le SW de la Sardaigne: relations avec des evenements eustatiques globaux. “C.R. Acad. Sci. sér.” 2, 323: 881-888. Ludvigsen R. (1977), Rapid repair of traumatic injury by an Ordovician trilobite. “Lethaia” 10(3): 205- 207. Luo H., Li Y., Hu S., Fu X., Hou S., Liu X., Chen L., Li F., Pang J., Liu Q. (2008), Early Cambrian Malong Fauna and Guanshan Fauna from Eastern Yunnan, China, Yunnan Science and Technology Press, Kunming, China, 134pp, 40 tavole. Magrean B., Viersen, van A.P. (2005), A revision of Devonian trilobites from Belgium – Part 1. The genera Cornuproetus and Radiaspis. “Bulletin de l’Institut royal des Sciences naturelles de Belgique”, 75: 87-93. Martin R.E. (1999), Taphonomy. A process approach, “Cambridge Paleobiology Series 4. Cambridge University Press”, pp. 508. McCormick T., Fortey R.A. (1998), Independent testing of a paleobiological hypothesis: the optical design of two Ordovician pelagic trilobites reveals their relative paleobathymetry. “Paleobiology” 24(2): 235–253.

Bibliografia 415 McKerrow S., Scotese C.R. (eds) (1990), Palaeozoic Palaeogeography and Biogeography. Geological Society Memoir, 12: 1-240 McMeniamin M.A.S. (1986), The Garden of Ediacara. “Palaios”, 1: 178-182. McMeniamin M.A.S. (1988), Paleoecological feddback and the Vendian-Cambrian transition. “Trends in Ecology and Evolution” 3: 205-208. McMeniamin M.A.S., McMeniamin D.L.S. (1990), The emergence of Animals: The Cambrian Breackthrough. Columbia University Press. McNamara K.J., Rudkin D.M. (1984), Techniques of trilobite exuviation, “Lethaia”, 17: 153-173. MacNaughton R.B. (2007), The Application of Trace Fossils to Biostratigraphy, In: “Trace Fossils: Concepts, Problems, Prospects” by W. Miller, Elsevier, pp.135-148. Meneghini G. (1880), Nuovi fossili Siluriani di Sardegna. “Mem. R. Acc. Lincei, serie 3”. V: 216-229. Meneghini G. (1881), Ulteriori notizie sui Trilobiti in Sardegna. “Proc. Verb. Atti Soc. Tosc. Sc. Nat.”, II: 234-236. Meneghini G. (1888), Paleontologia dell’Iglesiente in Sardegna. Fauna cambriana. Trilobiti. “Mem. serv. Descriz. Carta geol. Italia, publ. R. Comitato geol. Regno”, III (2): VII + 49 pp. Miller J. (1976), The sensory fields and life mode of Phacops rana (Green, 1832) (Trilobita); “Transactions of the Royal Society of Edinburgh”, 69(16): 337-367. Miller J., Clarkson E. N. K. (1980), The post-ecdysial development of the cuticle and the eye of the Devonian trilobite Phacops rana milleri Stewart 1927. “Philosophical Transactions of the Royal Society of London”, Series B, 288: 461–480. Moore R.C., others (ed.) (1959), Treatise on Invertebrate Paleontology. Part O. Arthropoda 1 (Arthropoda General Features, Protarthropoda, Euarthropoda General Features, Trilobitomorpha). Geological Society of America and University of Kansas, Boulder, Colorado, and Lawrence, Kansas. Nedin C. (1999), Anomalocaris predation on nonmineralized and mineralized trilobites, “Geology”, 27(11): 987-990. Nicosia M.L, Rasetti F. (1970), Revisione dei Trilobiti del Cambriano dell’Iglcsiente (Sardegna) descritti da Meneghini, “Acad. Naz. Lincei, Mem. Cl. Sci. Fis. Mat. e Nat.”, (VIII), 10, sec. II, 1, 1-20, 3 pl, Roma. Öpik A.A. (1967), The Mindyallan fauna of north-western Queensland “Bur. Min. Res. Geol. Geophys. Australia Bull.” 74: 1-404 / 1-167 (2 vols.). Öpik A.A. (1979), Middle Cambrian agnostids: Systematics and biostratigraphy “Bur. Min. Res. Geol. Geophys. Bull.” 172, 1: 1-188. 2: 1-120. Osgood R.G. Jr (1970), Trace fossils of the Cincinnati area “Palaeontographica Americana” 6(41): 281- 444. Osmolska H. (1975), Fine morphological characters of some Upper Paleozoic trilobites. “Fossils & Strata”, 4: 201-207. Oslo. Owen A.W. (1980), The trilobite Tretaspis from the Upper Ordovician of the Oslo Region, Norway “Palaeontology” 23(4): 715-747. Owen A.W. (1985), Trilobite Abnormalities, “Trans. Royal Society Edinburgh”, Earth Sci. 76: 255-272. Owens R.M. (1983), A review of Permian trilobite genera “Spec. Pap. Palaeont.” 30: 15-42. Owens R.M., Hahn G. (1993), Biogeography of Carboniferous and Permian trilobites “Geologica et Palaeontologica” 27: 1565-180. Owens R.M. (2003), The stratigraphical distribution and extinctions of Permian trilobites. “Special Papers in Palaeontology”, 70: 377-397. Paterson J.R., Jago J.B., Brock G.A., Gehling J.G. (2007), Taphonomy and palaeoecology of the emuellid trilobite Balcoracania dailyi (early Cambrian, South Australia), “Palaeogeography, Palaeoclimatology, Palaeoecology”, 249(3-4): 302-321. Peng S, Babcock LE, Lin H. (2005), Polymerid Trilobites from the Cambrian of Northwestern Hunan, China. Volume 2: Ptychopariida, Eodiscida, and Undetermined Forms. “Beijing: Science”. 355 pp.

416 Bibliografia Peng S., Yang X., Hughes N.C. (2008), The oldest known stalk-eyed trilobite, Parablackwelderia Kobayashi, 1942 (Damesellidae, Cambrian), and its occurrence in Shandong, China, “Journal of paleontology”, 82(4): 842-850. Pillola G.L., Gutiérrez-Marco J.C. (1988), Graptolites du Tremadoc du sud-ouest de la Sardaigne (Italie): paléoécologie et contexte tectono-sédimentaire. “Géobios” 21: 553-565. Pillola G.L (1986), Biostratigraphy of the Campo Pisano and Cabitza Formations: preliminary report. IGCP Project No 5: Correlation of Prevariscan and Variscan Events in the Alpine Mediterranean Mountains Belts. Final Meeting, Abstracts, Sardinia, May 25-31, 67-68, Cagliari. Pillola G.L (1990a), Lithologie et Trilobites du Cambrien inférieur du SW de la Sardaigne (Italie): implications paléobiogéographiques. “C. R. Acad. Sci. Paris”, 310 (2): 321•328, 2 pl., Paris. Pillola G.L. (1990b), Données lithologiques et stratigraphiques sur le Cambrien et le Trémadoc de l’Iglesiente (SW de la Sardaigne). “Newsletter IGCP Project (July 1987)”, 7(5): 228-239. Pillola G.L. (1991), Trilobites du Cambrien inferieur du SW de la Sardaigne, Italie, “Paleontographia Italica”, LXXVIII, 1: 174, tavv. 32. Pillola G.L. (1991b), Occurrence of Proteuloma (Trilobita) in the Cabitza Formation (Cambro-Tremadoc, SW Sardinia, Italy): palaeobiogeographic implications. In: “Geologia del Basemento Italiano. Convegno in memoria di Tommaso Cocozza, Siena”, 21-22 Marzo 1991, pp. 59-61. Pillola G.L., Leone F. (1993), Biostratigraphical and sedimentological data from the Cabitza Formation (Middle Cambrian-Tremadoc, SW Sardinia, Italy): palaeogeography and Cambrian-Ordovician boundary. IGCP 319, Liverpool, Abstracts, p.22. Pillola G.L., Leone F. (1997a), Arenig (Lower Ordovician) biota from SE Sardinia: biofacies and palaebiogeography, Geoitalia, 1° Forum FIST, 2:72-73. C.L.E.U.P. Padova. Pillola G.L., Leone F. (1997b), Lower ordovician (Arenig) Trilobites from SE Sardinia (Italy): palaeobiogeographical and structural implications, “Second International Trilobite Conference Brock University, St. Catharines, Ontario, TRILO 97”, p.43. Pillola G.L., Leone F., Loi A. (2002), The Cambrian and Early Ordovician of SW Sardinia (Italy), “Rendiconti della Società Paleontologica Italiana”, 1: 37-49. Pillola G.L., Piras S. (2003), Significato paleoambientale dell’ichnofossile Glockerichnus Pickerill, 1982 nella Fm. di San Vito (Cambro-Ordoviciano), “Giornate di Paleontologia”, Alessandria, 22- 25 Maggio 2003. Pillola G.L., Ferretti A., Corriga M.G., Corradini C. (2009), Highly tectonized Silurian and Lower Devonian sediments at Funtanamare (SW Sardinia), “Rendiconti della Società Paleontologica Italiana”, 3(2): 247-252. Pompeckj J.F. (1901), Versteinerungen der Paradoxides-Stufe von La Cabitza in Sardinien und Bemerkungen zur Gliederung des sardischen Cambrium, “Z. deutsch. geol. Ges.”, 53(1): 1-23. Pratt, B.R. (1998), Probable predation on Upper Cambrian trilobites and its relevance for the extinction of soft-bodied Burgess Shale-type animals. “Lethaia”, 31: 73-88. Přibyl A., Vaněk J. (1976), Palaeoecology of Berounian trilobites from the Barrandian area, “Rozpravy České akademie věd, Řada matematicko-přírodních Věd”, 86(5): 3–40. Rábano I. (1989), El genero Uralicha Delgados, 1892 (Trilobita, Lichaida) en el Ordovicico de la Peninsula Ibérica “Bol. Soc. Min.” 100: 21-47. Ramsköld L., Edgecombe G.D. (1991), Trilobite monophyly revisited, “Hist. Biol.”, 4: 267-283. Ramskold L., Edgecombe G.D. (1996), Trilobite appendage structure - Eoredlichia reconsidered, “Alcheringa”, 20: 269-76. Rasetti F. (1972), Cambrian Trilobite Faunas of Sardinia, “Atti accad. naz. Lincei, Mem., Cl. Scie. fis. mat. nat”, Ann. CCCLXIX, Ser. VIII, XI, Sez. IIa, 1: 1-100. Repina L.N. , Okuneva O.G. (1969), Cambrian arthropods of the Maritime Territory, “Palaeontologischeskii Zhurnal”, 1: 95–103. Richter R. (1920), Vom Bau und Leben der Trilobiten II. Dar Aufenthalt auf dem Boden. Der Schutz. die Ernährung “Senckenbergiana”, 2(1): 23-43.

Bibliografia 417 Robison R. (1984), New occurrence of the unusual trilobite Naraoia from the Cambrian of Idaho and Utah, “University of Kansas Paleontological Contributions”, 112: 1–8. Rong J., Harper D.A. (1988), A global synthesis of the latest Ordovician Hirnantian brachiopod faunas. “Transactions of the Royal Society of Edimburgh: Earth Sciences” (79): 383-402. Roy K., Fahraeus L.E. (1989), Tremadocian (Early Ordovician) nauplius-like larvae from the Middle Arm Point Formation, Bay of Islands, western Newfoundland “Can. J. Earth Sci.” 26: 1802-1806. Rudkin D.M. (1979), Healed injuries in Ogygopsis klotzi (Trilobita) from the Middle Cambrian of British Columbia, “Royal Ontario Museum, Life Sciences Occasional Paper”, 32: 1–8. Rudkin D.M. (1985), Exoskeleton abnormalities in four trilobites, “Canadian Journal of Earth Sciences”, 22: 479–483. Rudkin D.M.(2003), The world’s bigger trilobite -Isotelus rex new species from the upper Ordovician of Northern Manitoba, Canada “J. Paleont.” 77(1): 99-112. Ruedemann R. (1916), On the presence of a median eye in trilobites “PNAS” 2(4): 234–237. Ruggieri G. (1959), Una nuova trilobite del Permiano del Sosio (Sicilia), “Memorie degli Istituti di Geologia e Mineralogia dell’Università di Padova”, XXI: 1-10, 2 tav. Samtleben C., Munnecke K.A., Bickert T. (2000), Development of Facies and C/O-Isotopes in Transects through the Ludlow of Gotland: Evidence for Global and Local Influences on a Shallow-marine Environment, “FACIES”, 43: 1-38. Sandberg C.A., Morrow J.R., Ziegler W. (2002), Late Devonian sea-level changes, catastrophic events, and mass extinctions in Koeberl C. e MacLeod K.G. (eds.), Catastrophic Events and Mass Extinctions: Impacts and Beyond: Boulder, Colorado “Geol. Soc. Am. Spec. Pap.”, 356: 473-487. Schram F.R. (1982), The fossil record and evolution of Crustacea: 93-147. In The Biology of Crustacea, Vol. I. L.G. Abele, (ed.) New York, Academic Press. Schrank E. (1977), Zur Paläobiogeographie silurischer Trilobiten “N. Jb. Geol. Paläont. Ab.” 155: 108- 136. Sdzuy K. (1961), Das Kambrium Spaniens. “Teil II, Trilobiten: Akad. Wiss. Lit. Wiesbaden, Math. Naturw. Kl.”, 7-8: 217-408. Seilacher, A. (1970), Cruziana stratigraphy of ‘non-fossiliferous’ Palaeozoic sandstones. In: Crimes, T.P. and Harper, J.C. (Eds.), “Trace Fossils”, Seel House Press, Liverpool, pp. 447–476. Seilacher, A. (1991), An updated Cruziana stratigraphy of Gondwanan Palaeozoic sandstones. In: Salem, M.J., Hammuda, O.S. and Eliagoubi, B.A. (Eds.), “The Geology of Libya”—Volume IV, Elsevier, Amsterdam, pp. 1565–1581. Seilacher, A. (2007), Trace Fossil Analysis, Springer, 1-226. Serpagli E. (1982), II. Le conoscenze paleontologiche del Paleozoico Sardo (Rassegna dei dati), “Guida alla Geologia del Paleozoico sardo. Guide Geologiche Regionali, Soc. Geol. It.”, 25-32. Shergold J. H. (1997), Explanatory Notes for the Cambrian Correlation Chart In Whittington H. B. et alii (1997), Treatise on Invertebrate Paleontology. Part O Arthropoda 1. Trilobita, Revised. Vol.1: Introduction, Order Agnostida, Order Redlichiida. Geological Society of America and University of Kansas, Boulder, Colorado, and Lawrence, Kansas. pp.303-311. Shergold J. H., Laurie J. R., Sun X.-W. (1990), Classification and review of the trilobite order Agnostida Salter, 1864: An Australian perspective “Bur. Min. Res., Geol. Geophys. Rep.”, 296: 1-93. Simkiss K. (1977), Biomineralization and detoxification. “Calcified Tissue Research”, 24: 199-200. Sliter W. V. (1971), Predation on benthic foraminifers. “Journal of Foraminferal Research”, 1: 20–29. Šnajdr M. (1979), Two trinucleid trilobites with repair of traumatic injury. “Veštiník Ustředního Ústavu Geologického”, 54: 49–50. Šnajdr M. (1981), Bohemian Proetidae with malformed exoskeletons (Trilobita), “Sborník Geologických Vĕd Paleontologie”, 24: 37–60. Šnajdr M. (1990), Bohemian Trilobites Geological Survey, Prague. Sören J. (1990), Predation by early Cambrian trilobites on infaunal worms - evidence from the Swedish Mickwitzia Sandstone. “Lethaia” 23(1): 29-42.

418 Bibliografia Speyer, S.E. (1985), Moulting in phacopid trilobites. “Transactions of the Royal Society of Edinburgh: Earth Sciences”, 76: 239–253. Speyer S.E. (1987), Comparative taphonomy and paleoecology of trilobite lagerstätten “Alcheringa” 11: 205-232. Speyer S.E. (1988), Biostratinomy and functional morphology of enrollment in two Middle Devonian trilobites “Lethaia” 21(2): 121–138. Speyer S.E. (1991), Trilobite taphonomy: a basis for comparative studies of arthropod preservation, functional anatomy and behaviour. In: Donovan, S.K. (ed.) The Process of Fossilization. Belhaven Press, New York, 194–219. Stitt J.H. (1976), Functional Morphology and Life Habits of the Late Cambrian Trilobite Stenopilus pronus Raymond “J. Paleont.” 50(4): 561-576. Størmer L. (1980), Sculpture and microstructure of the exoskeleton in Chasmopinid and Phacopid trilobites, “Palaeontology”, 23(2): 237-271. Stürmer W. (1970), Soft Parts of Cephalopods and Trilobites: Some Surprising Results of X-ray Examinations of Devonian Slates, “Science”, 170: 1300-1302. Stürmer W., Bergström J. (1973), New discoveries on trilobites by X-rays, “Paläontologische Zeitschrift”, 47: 104-141. Taricco M. (1920), Rinvenimento di Dyctionema nel Cambriano della Sardegna, “Bollettino della Società Geologica Italiana”, 39: 34-40. Taricco M. (1922), Sul Paleozoico del Fluminense (Sardegna). “Bollettino del Regio Comitato Geologico d’Italia”, 48(6) (1920-1921): 1-22, Roma. Tasch P. (1980), Palaeobiology of the Invertebrates. Data Retrieval from the Fossil Record. 2nd Rev. Ed. John Wiley and Sons Ltd. Terfelt F. (2003), Upper Cambrian trilobite biostratigraphy and taphonomy at Kakeled on Kinnekulle, Västergötland, Sweden. “Acta Palaeontologica Polonica” 48 (3): 409–416. Thomas A. T., Holloway D.J. (1988), Classification and Phylogeny of the Trilobite Order Lichida “Phil. Tran. R. Soc. London Series B, Biol. Sc.” 321(1205): 179-262. Tripp R. P., Evitt W. R. (1981), Silicifield Lichidae (Trilobita) from the Middle Ordovician of Virginia “Geol. Mag.” 118: 665-677. Vannier J., Chen J.-Y. (2002), Digestive system and feeding mode in Cambrian naraoiid arthropods “Lethaia” 35: 107– 120. Vannier J., Chen J.-Y. (2005), Early Cambrian Food Chain: New evidence from fossil aggregates in the Maotianshan Shale biota, SW China, “PALAIOS”, 20: 3-26. Vannier J., Steiner M., Renvoisé E., Hu S.-X., Casanova J.P. (2007), Early Cambrian origin of modern food webs: evidence from predator arrow worms,”Proc.R.Soc.B”, 274: 627-633. Viersen van A.P. (2008), First record of the odontopleurid trilobite Koneprusia from the lower Eifelian of Vireux-Molhain (Northern France), with remarks on the associated trilobite fauna, “Geologica Belgica”, 11: 83-91. Viersen van A.P., Prescher H. (2008), Devonian Proetidae (Trilobita) from the Ardennes Massif (Belgium, N. France) and the Eifel Hills (W. Germany). In: Steurbaut E., Jagt J.W.M. & Jagtyazykova E.A. (Editors), Annie V. Dhondt Memorial Volume. Bulletin de l’Institut Royal des Sciences Naturelles de Belgique, Sciences de la Terre, 78: 9-29. Viersen van A.P., Prescher H., Savelsbergh J. (2009), Description of two new trilobites from the Ahrdorf Formation (Middle Devonian) at the “Trilobitenfelder” of Gees, Eifel, Rhenish Mountains. “Bulletin de l’Institut Royal des Sciences Naturelles de Belgique, Sciences de la Terre”, 79: 43-53. Vinassa De Regny P. (1927), Fossili ordoviciani sardi. Parte I, “Memorie della Regia Accademia Nazionale dei Lincei, Classe di Scienze Fisiche 6(2):437-496, 4 plates. Walcott C.D. (1912), Cambrian geology and paleontology, II, Middle Cambrian Branchiopoda, Malacostraca, Trilobita and Merostomata, “Smithsonian Miscellaneous Collections”, 57: 146– 228.

Bibliografia 419 Whittington H.B. (1963), Middle Ordovician trilobites from Lower Head, western Newfoundland “Bull. Mus. comp. Zool. Ham.” 129: 1-118. Whittington H.B. (1965), Platycoryphe, an Ordovician homalonotid trilobite “J. Paleont.” 39: 487-491. Whittington H.B. (1980), Exoskeleton, moult stage, appendage morphology, and habits of the Middle Cambrian trilobite Olenoides serratus “Paleontology” 23(1): 171-204. Whittington H.B. (1980a), The significance of the fauna of the Burgess Shale, Middle Cambrian, British Columbia “Proc. Geol. Ass.” 91: 127-148. Whittington H.B. (1985a), The Burgess Shale. Yale University Press, New Haven, 151 p. Whittington, H.B. (1985b), Tegopelte gigas, a second soft-bodied trilobite from the Burgess Shale, British Columbia, “Journal of Paleontology”, 59: 1251-74. Whittington H.B. (1997a), Abnormalities of the exoskeleton. In: Whittington, H.B. et al. “Treatise on Invertebrate Paleontology, Part O, Arthropoda 1 Trilobita (Revised)”. The Geological Society of America and the University of Kansas, 159-161. Whittington H.B. (1997b), The Trilobite body. In: Whittington, H.B. et al. “Treatise on Invertebrate Paleontology, Part O, Arthropoda 1 Trilobita (Revised)”. The Geological Society of America and the University of Kansas, 159-161. Whittington H.B. (2002), Lichidae (Trilobita): Morphology and Classification “J. Paleont.” 76(2): 306- 320. Whittington H.B., Almond J.E. (1987), Appendages and habits of the upper Ordovician trilobite Triarthrus eatoni “Phil. Trans. R. Soc. Lond.” 317: 1-46. Whittington H.B., Evitt W. R (1953), Silicified Middle Ordovician Trilobites “Mem. Geol. Soc. Am.” 59: 1-137. Whittington H.B., Hughes C.P. (1972),. Ordovician geography and faunal provinces deduced from trilobite distribution. “Phil. Tran. R. Soc. Lond.” B263: 235-78. Whittington H.B., Wilmot N.V. (1997), Microstructure and sculpture of the exoskeletal cuticle, In: Kaesler, R. L., ed. “Treatise on Invertebrate Paleontology, Part O, Arthropoda 1, Trilobita, revised. Volume 1: Introduction, Order Agnostida, Order Redlichiida”. The Geological Society of America, Inc. & The University of Kansas. Boulder, Colorado & Lawrence, Kansas. Whittington H. B. et al. (1997), Treatise on Invertebrate Paleontology. Part O Arthropoda 1. Trilobita, Revised. Vol.1: Introduction, Order Agnostida, Order Redlichiida. The Geological Society of America and The University of Kansas. Wilmot N. V. (1990), Biomechanics of trilobite exoskeletons “Palaeontology” 33: 749-768. Whiteley T. E., Kloc G.J., Brett C.E. (2002), Trilobites of New York. An Illustrated Guide. Cornell University Press. Zhang W.T., Lu Y.H., Zhu Zh.L., Qian Y.Y., Lin H.L., Zhou Zh.Y., Zhang S.G., Yuan J.L. (1980), Cambrian Trilobite Faunas of South- western China “Palaeont. Sinica” 159: 1-497. Zhang W. T., Hou X.-G. (1985), Preliminary notes on the occurrence of the unusual trilobite Naraoia in Asia, “Acta Palaeontologica Sinica”, 24: 591–595. Zhang X., Clarkson E.N.K. (1990), The eyes of lower Cambrian eodiscid trilobites “Palaeontology” 33: 911-932. Zhang X.-L., Shu D.-G., Erwin D.H. (2007), Cambrian naraoiids (Arthropoda): Morphology, ontogeny, systematics, and evolutionary relationships. “Journal of Paleontology”, 81 (sp68): 1–52. Zhao Y.L., Yang R.D., Yuan J.L., Zhu M.Y., Quo Q.J., Yang X.L., Tai T.S. (2001), Balang, Guizhou Province-Cambrian stratigraphy at Balang, Guizhou Province, China: Candidate section for a global unnamed series and stratotype section for the Taijiangian stage “Palaeoworld” 13: 189– 208. Zhu X.-J., Hughes N.C. & Peng S.-C. (2007), On a new species of Shergoldia Zhang & Jell 1987 (Trilobita), the family Tsinaniidae and the order Asaphida, “Memoirs of the Association of Australasian Palaeontologists”, 34: 243-53.

420 Bibliografia Indice generale A Ampyx nasutus 55, 184, 282 Asteropyginae indet. 339 Andegavia sp. 55, 353 Athabaskia bithus 157, 220 Acadolenus snajdri 216 Anello assiale 51 Atopidae 189 Acadoparadoxides sirokyi 213 Anisopyge 121 Aulacopleura 175 Acanthopleurella 72 Anomalie morfologiche e Predazione Aulacopleura koninki 100, 175 Acanthopleurella stipulae 14 Predazione 78 Aulacopleuridae 175 Acanthopyge (Lobopyge) consanguinea Anomalocarididi 81 Aulacopleuroidea 172 78, 327 Anomalocaris 94 Auritamiidae 182 Acanthopyge sp. 59, 339 Anomalocaris saron 81 Acastava cf. schmidti 372 Anomocare 179 B Acastidae 168 Anomocaridae 179 Bailiella 128 Acastoidea 165 Anomocarioides 179 Balcoracania 154 Achatella achates 303 Anomocaroidea 177 Balcoracania dailyi 51, 111 Acidaspides praecurrens 162 Antagmidae 189 Balizoma 134 Acidaspis jessi 98 Araiopleura 184, 185 Balnibarbi 192 Acidaspis kuckersiana 161, 283 Arapahoia spatulata 237 Basilicus sp. (Basiliella) 258 Acrocephalitidae 189 Archaeaspinus 18, 23 Bathycheilidae 164 Acropyge weggeni 121 Archegonus (Laevibole) laevicauda 391, Bathycheilus 164 Aglaspididi 82 392 Bathycheilus castilianus 270 Aglaspis 248 Archegonus (Phillibole) cauliquercus Bathyuridae 176 Agnostidae 150 391 Bathyuriscus wasatchensis 73, 223 Agnostina 149 Archegonus (Phillibole) nehdenensis Bathyuroidea 172 Agnostoidea 150 393 bauplan 28, 186 Agnostotes sp. 251 Archegonus (Phillibole) polleni 391 Bavarilla 164 Agnostus 149 Arctinurus 160 Bavarillidae 164 Agnostus pisiformis 68, 93 Arctinurus boltoni 59, 63, 319 Beckwithia typa 246, 249 Agraulidae 191 Arrotolamento 53 Beecher’s Trilobite bed 68, 294 Agraulos ceticephalus 191, 216 Cilindrico 53 Belenopyge branikensis 345 Agraulos sp. 128 Incompleto 53 Bellacartwrightia calliteles 59, 168, 380 alae 193 Sferoidale 53 Bigotinidae 191 Albertella sp. 211 Spirale 53 Black Cat Mountain 326 Alcaldops n.sp. aff. argovejensis 339 Spirale aperta 53 Blackwelderia sinensis 162 Aldonaia ornata 191 Spirale invertita 53 Bobcaygeon Formation 291 Aldonaiidae 191 Tasca 53 Boedaspis ensifer 55, 161, 283 Alimentazione 97 Asaphellus cf. fezouataensis 258 Bohemilla 182 Allolichas halli 313 Asaphellus toledanus 270 Bohemillidae 182 Alokistocarella sp. 59, 190, 219 Asaphidae 180 Bohemoharpes 76 Alokistocaridae 189 Asaphid n.sp. 259 Bohemoharpes acuminatus 77, 194, 324 Alsataspididae 184 Asaphiscidae 189 Bojoscutellum campaniferum 41 Altiocculus drumensis 230 Asaphiscus 189 Bolaspidella housensis 226 Altiocculus harrisi 226 Asaphiscus wheeleri 190, 226 Bolaspidella sp. 190, 230 Alum Shales 100, 149 asaphoide 177 Bolaspididae 189 Ambienti di vita 92 Asaphoidea 177 Bolbineossia sp. 70 Amecephalus idahoense 219 Asaphoidichnus 105 Bollandia (Griffithides) globiceps 174, Amecephalus laticaudum 220 Asaphopsoides sp. 182 385 Amecephalus packi 219 Asaphus delphinus 282 Bornemannaspis solitaria 126 Amecephalus piochensis 222 Asaphus expansus 180 Brachyaspidion microps 228 Ameropiltonia lauradanae 387 Asaphus kowalewskii 44, 94, 282 Brachyaspidion sulcatum 226 Ammagnostidae 150 Asaphus lepidurus 48 Brachymetopidae 175 Ammagnostus laiwuensis 150, 237 Asaphus punctatus 39, 282 Brachymetopus 121, 175 Amphilichas cf. A. conifrons 300 Asaphus raniceps 41, 282 Breizhops bigranulosus 373 Amphilichas cornutus 300 Asaphus robustus 282 Breviscutellum sp. 330 Amphilichas sp. 306 Asteropyge comes 356 Bristolia bristolensis 153, 208 Amplectobelua symbrachiata 205 Asteropyge longispina 356 Bristolia fragilis 210 Ampyx 184 Asteropyge pruemensis 372 Bristolia insolens 208, 211 Ampyx cf. priscus 113, 258 Asteropyge punctata 366 Bristolia mohavensis 59, 153, 208

Indice generale 421 Buenaspis 18, 195 251 Corynexochus latus 128 Bug X 327 Chancia ebdome 220 Corynexochus sardous 128 Bulaiaspis 149 Changshaniidae 189 Coscinocyathus 127 Bumastoides holei 48, 59, 91, 302 Chasmops praecurrens 283 Coxa 68 Bumastoides porrectus 302 Cheilocephalidae 158 Crepicephalidae 189 Bumastus 155, 156 Cheiropyge 172 Cresta larvale 71 Bumastus ioxus 319 Cheiruridae 169 Creste oculari 146 Bundenbachia beneckei 337 Cheirurina 163 Cricocosmia jinningensis 206 Burgess Shale 68, 94 Cheiruroidea 169 Crotalocephalus 169 Burmeisterella armata 335 Cheiruroididae 157 Crozonaspis struvei 43 Cheirurus (Crotalocephalus) gaertneri Cruziana 102 C 135 Cruziana goldfussi 106 Cabellero Formation 386 Cheirurus (Crotalocephalus) gibbus 59, Cruziana semiplicata 103, 106, 107 caeca 193 169, 340 Cryptolithus 94, 184 Caesura 42 Chelicerata 152 Cryptolithus bellulus 295 Calcaire de Tournai 383 Chengjiang 68, 202 Cryptolithus tesselatus 101, 313 Calmoniidae 168 Chengkouiidae 191 Ctenocephalus 128 Calodiscidae 151 Chiasmacantha ceratops 55, 73, 238 Ctenocephalus coronatus 215 Calodiscus foveolatus 128 Chlustinia keyserlingi 310 Ctenocephalus sp. 128 Calymene 76 Chotecops ferdinandi 336 Ctenopyge 192 Calymene blumenbachi neotuberculata Cincinnatian Series 312 Cummingella belisama belisama 385 323, 324 Clarkeia 119 Cuticola 28 Calymenella boisseli 136 Clavagnostidae 150 Cyanorus singularis 22 Calymenella sp. 311 Cliffia cf. lataegenae 251 Cybele bellatula 44, 54, 283 Calymene niagarensis 319 Cloudina 79 Cybele sp. 48, 284 Calymene polgari 98 Coaptation 53 Cybeloides plana 293 Calymene tuberculata 77, 322-323 Colpocoryphe bohemica 72 Cyclocoeloma tuberculata 52 Calymenidae 164 Colpocoryphe rouaulti 164 Cyclopyge 92, 183 Calymenina 163 Colpocoryphe thorali 270 Cyclopyge marginata 132 Calymenoidea 164 Coltraneia oufatenensis 96 Cyclopygidae 183 Calyptaulax callicephalus 305 Coltraneia sp. 341 Cyclopygoidea 177 Cameraceras 82 Comptonaspis sp. 387 Cyphaspis 175 Canadaspis 18 Comptonaspis swallowi 387 Cyphaspis balanops 358 Carbonocoryphe suprahercynica 141 Comura bultyncki 86, 87, 341 Cyphaspis carrolli 328, 329 Carolinites 92, 172, 176 Comura sp. 55 Cyphaspis ceratophthalmus 358 Carrara Formation 207 Condylopygoidea 150 Cyphaspis cf. ceratophtalmus 378 Cavetia sp. 58 Conocoryphe 90, 128 Cyphaspis cf. ranuncula 373 Cecità 46 Conocoryphe cirina 215 Cyphaspis gaultieri 373 Cecità secondaria 46 Conocoryphe (Conocoryphe) brevifrons Cyphaspis sp. 175, 342 Cedaria minor 84, 237, 239 128 Cyrtometopella sp. 290 Cedarina schachti 54, 55, 239, 240 Conocoryphe gerlinda 91, 214 Cyrtometopus clavifrons 283 cefalizzazione 22 Conocoryphe sulzeri 100, 189, 214 Cyrtometopus sembnitzikii 284 Celmidae 176 Conocoryphidae 189 Celmus 176 Conokephalinidae 189 D Cephalon 33 Coosella 189 Daguinaspis 18 Ceratarges armatus 358 Coosella sp. Type 1 48, 238 Dalmanites limulurus 113, 167, 319 Ceratarges berolinensis 357 Coosella sp. Type 2 59, 190, 238 Dalmanitidae 167 Ceratarges sp. 55, 340 Coosia 189 Dalmanitina socialis 43, 110 Ceratonurus sp. 328, 340 Cordania 175 Dalmanitoidea 165 Ceratopyge 180 Cordania falcata 328, 329 Damesella paronai 162 Ceratopygidae 180 Cordania wessmani 175, 328 Damesellidae 162 Ceraurinus icarus 313 Cornea 40 Dameselloidea 159 Ceraurinus marginatus 293 Cornuproetus beekeri 295 Deanaspis goldfussi 136 Ceraurus 169 Cornuproetus cornutus cornutus 356, Dechenella daumeriesi 64, 368 Ceraurus globulobatus 37, 293 357, 367 Dechenella verneuili 368 Ceraurus n.sp. 304 Cornuproetus sp. 367 Declivolithus aff. alfredi 310 Ceraurus pleurexanthemus 303 Corrugatagnostus 149 Deiracephalus aster 238 Cerci 68 Corynexochidae 157 Degamella 92 Cerniere 53 Corynexochina 155 Densonella semele 84, 240 Cernuolimbus cf. pegakanthodes 179, Corynexochoidea 157 Detritivori (Particle-feeders) 99

422 Indice Diacalymene sp 319 Eccoptochile almadenensis 270, 279 fenestrae 101 Diacanthaspis (Diacanthaspis) minuta Ecdysis 34, 72 Fillmore Formation 264 161 Ectillaenus 155 Filtratori 100 Diacanthaspis parvula 307 Ectillaenus giganteus 270, 279 Fixigena 33, 39 Diademaproetus sp. 369 Edelsteinaspididae 157 Flexicalymene granulosa 314 Diaphanometopidae 167 effacement 90, 151, 155, 156, 177 Flexicalymene meeki 54, 103, 164, 315 Dicanthophyge sp. 73, 251 Eldonia eumorpha 206, 263 Flexicalymene retrorsa 314 Diceratocephalidae 189 Eldredgeops rana 43, 166, 380 Flexicalymene senaria 307 Dickinsonia 18 Eldredgeops rana crassituberculata 48, forma ptychoparioide generalizzata 99 Dicranopeltis nereus 319 54 Formation de Jemelle 355 Dicranurus 161 Elkanaspis 182 Forme Atheloptiche 90 Dicranurus hamatus elegantus 55, 331 Ellipsocephalidae 191 Forme Bentoniche 94 Dicranurus monstrosus 55, 343 Ellipsocephaloidea 186, 188 Forme con bordo cefalico perforato 90 Dikelocephalidae 181 Ellipsocephalus hoffi 191, 216 Forme con spine cefaliche marginali 91 Dikelocephalus 181 Ellipsocephalus vetustus 216 Forme Illaenomorfe 90 Dikelocephalus gracilis 181 Elrathia kingii 84, 150, 186, 226 Forme Miniaturizzate 90 Dikelokephalina sp. 262 Elviniidae 189 Forme Olenimorfe 90 Dikelokephalinidae 179 Emeraldella sp. 18, 246, 248 Forme Pelagiche 90, 92 Dikelokephaloidea 177 Emsiano sup. ed Eifeliano del Nord Forme Phacomorfe 89 Dimeropyge 172 Europa 365 Forme Planctoniche 93 Dimeropygidae 176 Emuella 154 Fortiforceps 82 Dimorphichnus 102 Emuelloidea 154 Fossette 39, 155 Dinesidae 157 Enantiaspis enantiopa 127 Foulonia sp. 261 Dionide mareki 270 Encrinuraspis beaumonti 76 Fritzaspis sp. 23 Dionide sp. 185 Encrinuridae 169 Friuli 140 Dionididae 184 Encrinuroides vigilans 293 fulcrum 153, 160 Diplagnostidae 150 Encrinurus macourus 322 Furca mauretanica 18, 263 Diplagnostus 128 Encrinurus punctatus 322 Furcaster paleozoicus 337 Dipleura deckayi 164 Enditi 82 Fuxianhuia protensa 205 Diplichnites 102 Endopodite 68 Distribuzione Famiglie 16 Entomaspididae 193 G Ditomopyge fatmii 121 Entomaspis 193 Gabriceraurus dentatus 169, 293 Dohmiella dewildei 369 Eocryphops cyclophthalmus 347 Geesops cf. schlotheimi 373 Dohmiella sp. 369 Eodalmanitina destombesi 270 Geesops schlotheimi 359, 360 Dokimocephalidae 157 Eodiscidae 151 Geesops sparsinodosus gallicus 366 Dolerolenus 154 Eodiscina 149 Genae 34 Dolerolenus bifidus 129 Eodiscoidea 151 Genevievella granulata 78, 239 Dolerolenus courtessolei 129 Eodrevermannia sp. 135 Gerasaphes ulrichana 305 Dolerolenus longioculatus 126, 127 Eoharpes 193 Gerastos catervus 366 Dolerolenus zoppii 125, 129 Eoharpes cristatus 271 Gerastos cf. cuvieri 374 Dolichometopidae 157 Eohomalonotus sp. 259 Gerastos cultrijugati 370, 371 Domicilium 70 Eoredlichia intermedia 154, 203 Gerastos cuvieri 356, 360 Domi o nodi 62 epichnia 102 Gerastos granulosus 361 Doppietto 45 Epipodite 68 Gerastos prox lessensis 370 Doryagnostidae 150 Erbenochile erbeni 45, 168, 344 Gerastos sp. 48 Dorypyge sp. 128 Estaingiidae 191 Giordanella meneghinii 127 Dorypyge swasii 231 Estinzioni di massa 14 Giordanella vincii 129 Dorypygidae 157 Estoniops exilis 284 Girvanella 126 Doublure 33 Eudolatites sp. 310 Glabella 33 Draa Valley 338 Eulomidae 189 Glaphuridae 176 Drepanura 162 Eurekiidae 181 Glossopleura bion 48, 221 Drepanura premesnili 162 Eurycare 192 Glossopleura gigantea 84, 221 Dresbachia amata 239, 249 Evoluzione dell’apparato visivo 45 Glossopleura similaris 59, 221 Drotops armatus 55, 166, 344 Exopodite 68 Glossopleura gigantea 223 Drotops megalomanicus 42 Exuviazione 72 Glyptagnostidae 150 Durofagia 82 Gnatobase 68 Duslia insignis 263 F Goldius goolaertsi 367 Fallotaspidoidea 153 Goldius grafi 357 E Fallotaspis cf. typica 153 Gonatoparia 34 Eccaparadoxides pusillus 213 Fecal pellets 76 Gondwanaspis sp. 161

Indice generale 423 Goniotelus 174, 176 Illaenidae 156 Kootenia spencei 222 Grasping appendage 245 Illaenina 155 Ktaoua Formation 308 Griffithidella doris 389 Illaenoidea 156 Kuanyangia pustulosa 204 Griffithides acanthiceps 98 Illaenula struvei 377 Kunming 202 Grinnellaspis (Actinopeltis) globosus Illaenuridae 158 309 Illaenus 90, 131 Guanshan 68, 202 Illaenus dalmani 286 L Gudralisium lindlarense 374 Illaenus incisus 96, 156, 286 Labiostria sp. 252 Illaenus insignis 156, 319 Labiostria westropi 252 H Illaenus sarsi 156 labrum 146 Hammatocnemidae 169 Illaenus tauricornis 286 Lachnostoma latucelsum 58, 265 Hapalopleura 184 Importanza paleontologica 115 Laethoprusia sp. 328 Haragan & Bois D’Arc Formation 326 Inouyiidae 189 Laggania cambria 81 Harpes macrocephalus 374 Inquilinismo 76 Lake Valley 386 Harpes perradiatus 194, 345 Ipostoma 36 Langston Formation 218 Harpetidae 193 Conterminante 37, 97 Latham Shale 207 Harpetina 193 Impendente 37 Leanchoilia 94 Harpides 193 Natante 37 Lecanopygidae 176 Harpides plautini 194, 285 Irvingella sp. 252 Lehua corbachoi 260 Harpides sp. 66, 194, 262 Isabelinia glabrata 271, 280 Lehua ponti 55, 260 Harpididae 193 Isocolidae 189 Lehua sp. 260 Hebediscidae 151 Isoteloides flexus 265 Lehua velai 260 Hebediscina sardoa 125 Isotelus brachycephalus 315 Lehua vinculum 260 Hedinaspis canadensis 251 Isotelus gigas 48, 64, 98, 306 Leiostegidae 158 Helianthaster rhenanus 337 Isotelus iowensis 58 Leiostegiina 155 Helmetia expansa 197 Isotelus mafritzi 293 Leiostegioidea 158 Heliomedusa minuta 206 Isotelus maximus 54, 315, 316 Leningradites longispinus 287 Heliopyge helios 375 Isotelus rex 14 Leonaspis deflexa 95 Heliopyge troaonensis 374 Isotelus walcotti 307 Leonaspis sp. 346 Helmetiidae 196 Leptoplastinae 192 Hemiarges sp. 307 J Leptoplastus 192 Hemirhodon amplipyge 231 Jakutidae 157 Lermontovia 191 Holaspis 71 Jegorovaia 184, 185 Leviceraurus mammilloides 293 Hollardops mesocristata 345 Jenkinsonia varga 228 Librigena 33 Holotrachelidae 176 Jince Formation 212 Libristoma 149, 170 Homalonotidae 163, 164 Jincella prantli 128 Lichakephalidae 160 Hoplolichas plautini 55, 63, 285 Lichas 160 Hoplolichoides conicotuberculatus 285 K Lichidae 160 Housia sp. 179, 251 Kaili Formation 21 Lichoidea 159 Housiidae 179 Kainellidae 182 Limulus polyfemus 82, 92, 111 Hungaiidae 182 Kaolishaniella 158 Linee di sutura 34 Hungioides bohemicus arouquensis 275 Kaolishaniidae 158 Atrofizzazione 35 Hunsrück Slate 68, 334 Kathwaia capitorosa 121 Burlingiiforme 34 Huntoniatonia huntonensis 167, 330 Kayserops daleidensis 374 Cedariiforme 35 Huntoniatonia lingulifer 330 Kayserops sp. 375 Cheiruriforme 34 Huntoniatonia oklahomae 329 Kettneraspis elliptica 364 Dalmanitiforme 34 Hupetina antiqua 23 Kettneraspis seiberti 377 Entomaspidiforme 35 Hurdia victoria 81 Kettneraspis sp. 159, 376 Isoteliforme 35 Hydrocephalus carens 154 Kettneraspis williamsi 55, 91, 332 Kainelliforme 35 Hydrocephalus minor 213 Kingstoniidae 189 Marginalizzazione 46 Hypagnostus parvifrons 59, 150, 217 Kleptothule rasmusseni 22 Metapariale 35 hypichnia 102 Kochina vestita 58, 72, 221 Perirostrale 38 Hypodicranotus 182 Kolihapeltis rabatensis 352 Ptychopariiforme 35 Hypodicranotus striatulus 98, 305 Kolihapeltis sp. 55, 156 Liobole 141 Koneprusia dahmani 345 Liobolina nebulosa 392 I Koneprusia maillieuxi 361 Liolophops sublevatus 377 Ichnofossili 102 Koneprusia sp. 55, 378 Liosolenopleura serventi 128 Idahoiidae 182 Konservat lagerstätten 67 Lira 66 Iglesiella ichnusae 125, 126 Kootenia n.sp. 231 Lisaniidae 189 Ignotogregatidae 189 Kootenia sp. 59, 157, 222 Litavkaspis rejkovicensis 191, 215

424 Indice Litavka valley 212 Microphillipsia tetraptera 143 Ogyginus corndensis corndensis 48 Liwia 18, 195 Mimetaster hexagonalis 18, 68, 337 Ogyginus fortey 112, 274 Liwiidae 195, 196 Mimetismo 52 Ogyginus sp. 273 Llanoaspididae 189 Miomeridi 51 Ogygiocaris 180 Lloydolithus lloydi 185 Misszhouia longicaudata 18, 196 Ogygopsis typicalis 223 Lobi glabellari 33 Modocia brevispina 228 Oinochoe 160 Lobi pleurali 28 Modocia laevinucha 232 Olekmaspis 191 Lobo assiale 28 Modocia typicalis 84, 190, 230, 232 Olenellina 152 Lobo occipitale 33 Modocia weekensis 241 Olenelloidea 153 Lobo palpebrale 39 Morfologia 27 Olenellus clarki 153, 211 Lobopyge sp. 375 Morfotipi 89 Olenellus fremonti 55, 209 Lochkovella deckeri 48, 91, 166, 332, Morgatia hupei 277 Olenellus gilberti 210 333 Morocconites malladoides 346, 347 Olenellus nevadensis 208, 210 Lochkovella misera 135 Moustache trilobite 261 Olenellus schucherti 250 Loganellidae 181 Mrakibina cattoi 349 Olenellus terminatus 210 Loganellus 182 Olenellus cf. transitans 209 Loganopeltidae 193 N Olenidae 192 Lonchocephalidae 189 Namuropyge 175 Olenina 186 Lonchocephalus plena 91, 240 Nanillaenus americanus 301 Oleninae 192 Lonchodomas 184 Naraoia 94 Olenoides abbotti 232 Lorenzellidae 189 Naraoia bertiensis 195 Olenoides inflatus 232 lunette 156 Naraoia compacta 195 Olenoides nevadensis 226, 233 Naraoia spinosa 18, 196 Olenoides pugio 235 M Naraoiidae 195, 196 Olenoides rooksi n.sp. 233 Macropleure 51, 152 Nebidella limbata 127 Olenoides serratus 68, 157 Maculae 36, 45 Nektaspida 14, 18, 195 Olenoides sp. 94, 244 Maladioidella cf. colcheni 103 Neoasaphus kowalewskii 44 Olenoides superbus 48, 59, 84, 91, 233, Malong 68 Neocobboldia 44 234 Malungia laevigata 203 Neometacanthus sp. 372 Olenoides trispinosus 235 Mansuyia 158 Neometacanthus stellifer 362 Olenomorfi 100 Mapaniidae 189 Neoproetus verrucosus 144 Olenus truncatus 100 Marble Mountains 207 Neoproterozoico 79 Olenus wahlenbergi 100 Maritimella rara 195 Nepeidae 189 Ommatidi 40 Marjumia typa 231 Nephalicephalus n.sp. 242 Onnia ? sp. 65, 91, 311 Marjumiidae 189 Neseuretinus turcicus 136 Ontogenesi 70 Marrella splendens 18, 68, 94 Neseuretus tristani 272 Opabinia regalis 94 Marrolithus bureaui 185 Nileidae 183 Opipeuter 92 Maryvillia 189 Nileus cf. armadillo 183 Opipeuteridae 182 Maryvillia arion 240 Niobella lindstroemi 288 Opisthothorax 51, 152 Marywadea ovata 22 Nobiliasaphus delessei 271 Opistoparia 34 Maurotarion axitiosum 333 Nobiliasaphus nobilis 273 Opsidiscus 44 McKay Group 250 Nobiliasaphus n.sp 259 optimum eye design 92 Meadowtownella trentonensis 304 Nodi 53 ORDINE AGNOSTIDA 149 Megalaspidella 180 Norwoodia 189 ORDINE ASAPHIDA 177 Megistaspidella triangularis 59, 287 Norwoodia bellaspina 37, 242 ORDINE CORYNEXOCHIDA 155 Megistaspis nericus 180 Norwoodiidae 189 ORDINE HARPETIDA 193 Membrana intrasclerale 42 Novakella 92 ORDINE LICHIDA 159 Menomonia 189 Novakella bergeroni 91, 183 ORDINE NEKTASPIDA 195 Menomoniidae 189 Nunnaspis stitti 387, 389 ORDINE PHACOPIDA 163 Menoparia 182 Nyterops hollandi 63, 371 ORDINE PROETIDA 172 Meraspis 71 Nyterops nyter 370, 371 ORDINE PTYCHOPARIIDA 186 Merceriella 79 ORDINE REDLICHIIDA 152 Mesonacis sp. 250 O Ordosiidae 158 Metacanthina barrandei 346 Occhi 38, 39 Orometopidae 184 Metadoxides armatus 129 Occhi Abatocroali 44 Orsten antracolitici 68, 149 Metagnostidae 150 Occhi Olocroali 40 Oryctocephalidae 157 Meteoraspis dis 84, 190, 241 Occhi Schizocroali 42 Oryctocephalus 157 Metopolichas cf. platyrhinus 160 Doppietto 42 Orygmaspis contracta 252 Metopolichas huebneri 59, 160, 287 Odontopleuridae 161 Orygmaspis sp. 252 Microparia 92 Odontopleuroidea 159 Orygmaspis sp. Type 2 252

Indice generale 425 Orygmaspis sp. Type 3 252 Peronopsis integra 150, 217 Prionocheilus inermis 136 Orygmaspis sp. Type 4 252 Peronopsis interstricta 150, 226, 228 Prionocheilus mendax 275 Orygmaspis sp. Type 5 252 Petigurus 30 Proasaphiscidae 189 Osmolska cavities 31 Phacopidae 166 Proaulacopleura sp. 228 Otarion 172, 175 Phacopidina micheli 270 Proceratopyge 105 Otarionella sp. 55, 342 Phacopina 163 Proceratopyge rectispinata 254 Otarion oceanicum 376 Phacopoidea 165 Proetidae 173, 174 Phacops cf. imitator 362, 363 Proetina 172 P Phacops imitator 370 Proetoidea 172 Paciphacops campbelli 333 Phacops latifrons 378 Proetus sp. 304 Pagetia 44, 149 Phacops sp. 349 Proetus granulatus 323-324 Pagetia cf. P. significans 151 Phacops speculator 347 Profallotaspis jakutensis 23 Pagetiidae 151 Phaetonellus planicauda 351 Progenesis 72 90, 155 Pagodia 128 Phaetonellus sp. 174, 349 Proliobole podarge 141 Pagodiidae 158 Phalagnostus nudus 217 Proparia 34 Palaeolenidae 191 Pharostomatidae 164 Prosopiscidae 167 Panlongia tetranudosa 197 Phaselus 70 Prosopon 62 Pandaspinapyga sp. 288 Phillipsia 174 Protaspis 71 Panderia 38 Phillipsia oehlerti 144 Proteuloma geinitzi 128 Panderia triquetra 288 Phillipsia sosiensis 144 Prothorax 51, 152 Panderiidae 156 Phillipsiidae 173, 174 Protichnites 102 Papyriaspididae 189 Phylacteridae 189 Protolenus (Protolenus) pisidianus 128 Parabadiella 21 Phytophilaspis pergamena 197, 198 Protopresbynileus sp. 265 Parablackwelderia luensis 44 Piastra rostrale 146 38 Provincialismo faunistico 115 Parabolina 192 Pilekiidae 169 funzione della batimetria e distanza Parabolinella bolbifrons 70 Piltonia carlakertisae 174, 387 116 Parabolinella n.sp. 254 Piltonia kuehnei 174, 385 funzione delle condizioni climatiche Parabolinoididae 179 Pioche Shale 207 115 Paraceraurus exsul 59, 169, 288 Placoparia cambriensis 275 Provincia Malvino-Kaffrica 115 Paradamesella 162 Placoparia (Coplacoparia) tournemini Pseudobasilicus lawrowi 289 Paradoxides (Acadoparadoxides) 272, 280 Pseudocybele altinasuta 59, 169, 265 mureroensis 128 Placoparia sp. 169, 309 Pseudocybele lemurei 267 Paradoxides (Eccaparadoxides) Planctonivori 99 Pseudocybele nasuta 54, 265 brachyrachis 128 Plectodiscus discoides 337 Pseudocybele n.sp. 265 Paradoxides (Eccaparadoxides) plesiomorfiche 187 Pseudogygites 82 mediterraneus 128, 129 Pleure 51 Pseudokainella 182 Paradoxides gracilis 98, 154, 214 Pleuroctenium 149 Pseudomegalaspis patagiata 180 Paradoxidoidea 154 Pliomera fischeri 289 Pseudonaraoia hammanni 18 Paralejurus hamlagdadicus 41, 349 Pliomeridae 169 Pseudophillipsia 172 Paralejurus sp. 66, 349 Polymeridi 51 Pseudophillipsia anshunensis 121 Paranepholenellus cf. besti 209 Polypleuraspis 157 Pseudophillipsia elegans 143, 144 Parapeytoia 82 Porcellio scaber 53 Pseudophillipsia gemmellaroi 144 Paraphillipsia middlemissi 121 Porterfieldia 100 Pseudophillipsia obtusicauda 121 Parapilekia sp. 260 Postura 95 Pseudosphaerexochus pahnschi 289 Paraszechuanella 158 attiva 95 Pseudotubercoli 62 Pardailhania hispida 128 avvolta 95 Pseudowaribole (Dushania) heisingi Parvancorina minchami 18, 22 bumastoide 95 393 Parvancorinomorpha 18 cadaverica 95 Pseudowaribole (Geigibole) thomasi Peachella iddingsi 209, 211 riposo 95 394 Pedinopariops brongniarti 362, 363 Pre-coxa 68 Pseudowaribole inusitata 141 Pedinopariops sp. 376 Predatori e Necrofagi 97 Psychopyge elegans 55, 350 pedomorfosi 149 Pre-epipodite 68 Psychopyge termierorum 350 Peltura 100 Pre-protaspis 70 Pterocephalia norfordi 179, 254 Pelturinae 192 Presbynileus ibexensis 265 Pterocephalidae 179 Penn Dixie quarry 379 Priapulidi 82 Pteroparia coumiacensis 46 Perforazioni (pits) e depressioni 64 Pricyclopyge 92, 183 Pterygometopidae 166 Permoproetus postcarbonarius 143, 144 Pricyclopyge longicephala 62, 183 Ptychagnostidae 150 Peronopsidae 150 Primaspis crosotus 294 Ptychagnostus 128 Peronopsis 128 Primicaris larvaformis 18, 22 Ptychagnostus praecurrens 150 Peronopsis fallax 128 Prionocheilus 164 Ptychaspididae 181

426 Indice Ptychoparia striata 214 Saukiidae 181 Spine cefaliche 35 Ptychopariidae 189 Scabriscutellum n.sp. 59 Spine ed ornamentazioni 52 Ptychopariina 186 Scabriscutellum sp. 156, 353 Spine genali Ptychoparioidea 188 Schinderhannes bartelsi 81 Metafixigenali 36 Ptychpariioidea 186 Schmalenseeia fusilis 51 Metagenali 36 Ptyocephalus yersini 265 Scisti a Fillocaridi 131 Metalibrigenali 36 Pudoproetus sp. 389 Sclera interlentare 42 Profixigenali 36 Pygidium 58 Scleriti 14 Progenali 36 Isopigio 58 Sculptures 62, 146 Prolibrigenali 36 Macropigio 58 Scutelluidae 156 Spine progenali 36 Micropigio 58 Scutellum geesense 363 Spine (Prosopon) 63 Subisopigio 58 Scutellum masai 353 Spinibole (Coombewoodia) coddonensis Scutellum n.sp. aff. pustulatum 58, 353 394 Q Scutellum sp. 156, 376 Spriggina floundersi 22 Quadrops flexuosa 48, 87, 352 Seleneceme 177, 184 Stalked eyes 39 Selenocoryphe platyura 9, 242 Staurocephalidae 169 R Selenopeltis buchii 55 Stenaster sp. 293 Rachide 28 Selenopeltis gallica 277 Stenopilus pronus 53 Radiaspis comes 361, 376 Selenopeltis inermis beyrichi 406 Sterniti 69 Radiaspis sp. 351 Selenopeltis sp. 159, 310 St. Petersburg 281 Radnoria simplex 136 Selle 53 Struttura delle lenti 42 Raphiophoridae 184 Sensillae 30 Struttura delle parti molli 67 Raphiophorus 177, 184 Serrania gordaensis 23 Styginidae 156 Raymondites sp. 176 Setae 52, 68 sulphur-eating bacteria 100 Redlichia 154 Shirakiellidae 158 Sup.fam. ACASTOIDEA 168 Redlichia takooensis 83, 154 Shumardia 189 Sup.fam. ANOMOCAROIDEA 179 Redlichiina 152 Shumardia (Conophrys) salopiensis 71 Sup.fam. ASAPHOIDEA 180 Redlichioidea 154 Shumardiidae 189 Sup.fam. AULACOPLEUROIDEA 175 Reedops cephalotes hamlagdadianus sinapomorfie 146 Sup.fam. BATHYUROIDEA 176 346 Skania sundbergi 18, 22 Sup.fam. CYCLOPYGOIDEA 183 Reedops maurulus 349 Skioldia aldna 197 Sup.fam. DALMANITOIDEA 167 Rejkocephalus rotundatus 213 Skreiaspis brianensis 128 Sup.fam. DAMESELLOIDEA 162 Remopleurides 182 Skreiaspis spinosa 217 Sup.fam. DIKELOCEPHALOIDEA 181 Remopleurides nanus 182 Solchi glabellari 33 Sup.fam. ELLIPSOCEPHALOIDEA Remopleurididae 182 Solco pleurale 51 191 Remopleuridioidea 177 Solenopleuridae 189 Sup.fam. LICHOIDEA 160 Resserops sp. 154 Solenopleuropsis (Manublesia) ribeiro Sup.fam. ODONTOPLEUROIDEA 161 Retamaspis melendezi 277 128 Sup.fam. PHACOPOIDEA 166 Rhabdinopora flabelliformis 128 Soomaspis 18, 195 Sup.fam. PROETOIDEA 174 Rhenops cf. anserinus 336 Sottoclasse LIBROSTOMA 170 Sup.fam. PTYCHOPARIOIDEA 189 Rorringtoniidae 175 Sottordine AGNOSTINA 150 Sup.fam. REMOPLEURIDIOIDEA 182 Rostrellum 38 Sottordine CALYMENINA 164 Sup.fam. TRINUCLEIOIDEA 184 Rotadiscus ? sp. 263 Sottordine CHEIRURINA 169 Supporto oculare 39 Rusophycus 102 Sottordine CORYNEXOCHINA 157 Sutura palpebrale 39 Sottordine EODISCINA 151 Suture circumoculari 146 S Sottordine ILLAENINA 156 Svalbardites 30 Sottordine LEIOSTEGIINA 158 Sydneya 18 Saharops bensaidi 351 Sottordine OLENELLINA 153 Symphysops armata 136 Saltaspis 192 Sottordine OLENINA 192 Szechuanella 158 Salterian mode 72 Sottordine PHACOPINA 165 Salterocoryphe salteri 164 Sottordine PTYCHOPARIINA 188 T Salterocoryphe sp. 277 Sottordine REDLICHIINA 154 Sanctacaris 18, 82 Taihungshania 183 Spathacalymene nasuta 164 Sao hirsuta 215 Taishunghaniidae 183 Spence Shale member 218 Sardaspis laticeps 126, 129 Taklamakania 184 Spencia sp. 223 Sardegna 125 Taklamakania europaea 136 Spencia typicalis 224 Sardoredlichia carinata 127 Tanglangia 82 Sphaerocoryphe robusta 59, 302 Sardoredlichia frabouleti 129 Tariccoia arrusensis 18, 129, 132, 195, Sphaerophthalmus alatus 40, 41 Sardoredlichia praespinosa 127 197 Sphooceras truncatum 76 Sarrabesia teichmuelleri 136 Tegopeltiidae 196 Spina caudale 58 Saukia 181 Telephina 92, 172, 176 Indice generale 427 Telephinidae 176 Waribole (Latibole) laticampa 394 Telopodite 68 Weberides 174 Telson 58, 94 Wenndorfia sp. 351 Terraces ridges 66, 96, 146 Weeksina unispina 84, 190, 241 Thaleops laurentiana 301 Weymouthiidae 151 Thigriffides 120 Wheeler Shale Formation 225 Thoracocare 155 White Sea 79 Thoracopygon 72 Windom Shale member 379 Thorax 51 Wolhow river 281 Thysanopeltis 156 Wuaniidae 189 Thysanopyge 180 Wujiajiania n.sp. 254 Toernquistiidae 176 Wujiajiania sp. 100, 192 Trabeculae 39 Wutingaspis tingi 204 Trachomatichnites 105 Tremaglaspis cf. unite 263 X Tretaspis hisingeri 101 Xandarella spectaculum 205 Triadaspis bigeneris 240 Xandarelliidae 196 Triarthrinae 192 Xenasaphus devexus 75, 112, 290 Triarthrus eatoni 67, 100, 192, 296, 298 Xylokorys 18 Tricrepicephalidae 189 Tricrepicephalus 189 Y Tricrepicephalus coria 190, 242 Yohoia 82 Trimerocephalus mastophtalmus 46 Yorgia waggoneri 79 Trimerus 163 Yukoniidae 151 Trimerus delphinocephalus 164, 319 Yunnanaspis 154 Trinucleidae 184 Yunnanocephalidae 191 Trinucleoidea 177 Yunnanocephalus 191 Trinucleus 184 Yunnanocephalus yunnanensis 204 Tropidocoryphe 174 Tropidocoryphe bassei 361 Z Tropidocoryphidae 173 Zacanthoides grabaui 51, 224 Tsinaniidae 156 Zacanthoides idahoensis 224 Tsunydiscus 149 Zacanthoides typicalis 48, 224 Tsunyidiscidae 151 Zacanthoididae 157 Tubercoli 62 Zeliszkella torrubiae 277 Tubercolo mediano 33 Zlichovaspis rugosa 48, 167, 354 U Ulugtella mediterranea 136 Undescribed 242 Uralichas hispanicus tardus 309 Uralichas ribeiroi 14 Uromystrum 176 Utahcaris 82 Utaspis marjumensis 190, 235 Utiidae 189 V Vachonisia rogeri 18, 68 Valongo Formation 268 Vendia 18 Verme Priapulide 249 W Walliserops hammii 87, 354 Walliserops trifurcatus 55, 168, 354 Wanneria sp. 250 Waptia ovata 206 Warburgella rugulosa canadensis 98 Waribole 141 428 Indice Indice dei trilobiti (citati o illustrati)

In questo indice sono elencati i circa 700 generi e specie di trilobiti illustrati o citati nel corso del presente volume. L’organizzazione è per periodo geologico ed ordine alfabetico. Di alcuni esemplari non è stato possibile determinare l’autore che ha descritto il fossile (seconda colonna), di conseguenza il relativo campo è stato lasciato vuoto. Il nome tra parentesi indica sinonimi dello stresso genere. Il numero di pagina (terza colonna) quando evidenziato in grassetto, rimanda a materiale fotografico, se in corsivo ad una ricostruzione o un di- segno, infine un carattere normale corrisponde ad una citazione nel corso del testo. L’ultima colonna a destra riporta l’ordine di appartenenza: AGN (Agnostida), ASA (Asaphida), COR (Cory- nexochida), HAR (Harpetida), LIC (Lichida), NEK (Nektaspida), ODO (Odontopleurida), PHA (Phacopida), PRO (Proetida), PTY (Ptychopariida), RED (Redlichiida), UND (Non determinato). Per ulteriori approfondimenti si consiglia di consultare il lavoro di Jell & adraIn (2003): i nomi degli autori sono stati estratti dal citato lavoro, a partire dal sito internet ION (Index to Organism Names: http://www. organismnames.com/) e dal materiale bibliografico disponibile.

Cambriano

Acadolenus snajdri Fatka & Kordule, 1981 216 PTY Acadoparadoxides sirokyi Snajdr, 1986 213 RED Acidaspides praecurrens Lermontova, 1951 162 ODO Acidaspis jessi Perry & Chatterton, 1979 98 ODO Acidaspis kuckersiana Schmidt 1885 161 ODO Agnostotes Opik, 1963 251 AGN Agnostus Brongniart, 1822 149 AGN Agnostus pisiformis Linnaeus, 1757 68, 93 AGN Agraulos Hawle & Corda, 1847 128 PTY Agraulos ceticephalus Barrande, 1846 191, 216 PTY Albertella Walcott, 1908 211 COR Aldonaia ornata Lermontova, 1940 191 PTY Alokistocarella Resser 1938 59, 190, 219 PTY Altiocculus drumensis Sundberg, 1994 230 PTY Altiocculus harrisi Robison, 1971 226 PTY Amecephalus idahoense Resser, 1939 219 PTY Amecephalus laticaudum Resser, 1939 220 PTY Amecephalus packi Resser, 1935 219 PTY Amecephalus piochensis Walcott, 1886 222 PTY Ammagnostus laiwuensis Lorenz, 1906 150, 237 AGN Anomocare Hohm & Westergaard, 1930 179 ASA Anomocarioides Lermontova, 1940 179 ASA Arapahoia spatulata Miller, 1936 237 PTY Asaphiscus Meek, 1873 189 ASA Asaphiscus wheeleri Meek, 1873 190, 226 ASA Athabaskia bithus Walcott, 1916 157, 220 COR Bailiella Matthew, 1885 53, 128 PTY Balcoracania Pocock, 1970 154 RED Balcoracania dailyi Pocock, 1970 51, 111 RED Bathyuriscus wasatchensis Resser, 1939 73, 223 COR Blackwelderia sinensis Bergeron, 1899 162 LIC Bolaspidella Resser, 1937 190, 230 PTY Bolaspidella housensis Walcott, 1886 226 PTY Brachyaspidion microps Robinson, 1971 228 PTY Brachyaspidion sulcatum Robinson, 1964 227 PTY Bristolia bristolensis Resser, 1928 153, 208 RED Bristolia fragilis Palmer & Halley, 1979 210 RED Bristolia insolens Resser, 1928 208, 211 RED

Indice cronologico dei trilobiti 429 Bristolia mohavensis Hazzard & Crickmay, 1933 60, 153, 208 RED Buenaspis Budd, 1999 18, 195 NEK Calodiscus foveolatus Howell, 1935 128 AGN Cedaria minor Walcott, 1924 84, 237, 239 PTY Cedarina schachti Adrain, Peters & Westrop, 2009 54, 56, 239-240 PTY Cernuolimbus cf. pegakanthodes Pratt, 1992 179, 251 ASA Chancia ebdome Walcott, 1924 220 PTY Chiasmacantha ceratops Beebe, 1990 (unpublished) 56, 73, 238 PTY Cliffiacf. lataegenae Wilson, 1949 251 PTY Conocoryphe Hawle & Corda, 1847 90,128 PTY Conocoryphe (Conocoryphe) brevifrons Thoral, 1948 128 PTY Conocoryphe cirina Barrande, 1846 215 PTY Conocoryphe gerlinda Šnajdr, 1982 91, 214 PTY Conocoryphe sulzeri Schlotheim, 1823 100, 189, 214 PTY Coosella Lochman, 1936 189 PTY Coosella Type 1 Lochman, 1936 48, 85, 238 PTY Coosella Type 2 Lochman, 1936 59, 190, 238 PTY Coosia Walcott, 1911 189 PTY Corynexochus latus Rasetti, 1972 128 COR Corynexochus sardous Rasetti, 1972 128 COR Ctenocephalus coronatus Barrande, 1846 215 PTY Ctenocephalus Hawle & Corda, 1847 128 PTY Ctenopyge Linnarsson, 1880 40, 192 PTY Daguinaspis Hupé, 1953 18 RED Damesella paronai Airaghi ,1902 162 LIC Deiracephalus aster Walcott, 1916 238 PTY Densonella (Menomonia) semele Walcott, 1916 85, 240 PTY Dicanthophyge Palmer, 1965 73, 251 ASA Dikelocephalus Owen, 1852 181 ASA Dikelocephalus gracilis Ulrich & Resser, 1930 181 ASA Dolerolenus Leanza, 1949 128, 154 RED Dolerolenus bifidus Bornemann, 1891 128 RED Dolerolenus courtessolei Pillola, 1991 128 RED Dolerolenus longioculatus Pillola, 1991 124 RED Dolerolenus zoppii Meneghini, 1882 125, 130 RED Dorypyge Dames, 1883 128 COR Dorypyge swasii Sundberg, 1994 231 COR Drepanura Bergeron, 1899 162 LIC Drepanura premesnili Bergeron, 1899 162 LIC Dresbachia amata Walcott, 1916 239, 249 PTY Eccaparadoxides pusillus Barrande, 1846 213 RED Elkanaspis Ludvigsen, 1982 182 ASA Ellipsocephalus hoffi Schlotheim, 1823 191, 216 PTY Ellipsocephalus vetustus Pompeckj, 1895 216 PTY Elrathia kingii Meek, 1870 85, 150, 186, 226 PTY Emuella Pocock, 1970 154 RED Enantiaspis enantiopa Bornemann, 1891 127 RED Entomaspis Ulrich in Bridge, 1931 193 HAR Eoredlichia intermedia Lu, 1940 154, 203 RED Eurycare Angelin, 1854 192 PTY Fallotaspis cf. typica Hope, 1953 153 RED Fritzaspis Hollingsworth, 2007 23 RED Genevievella granulata Walcott, 1916 78, 239 PTY Giordanella meneghinii Bornemann, 1883 127 RED Giordanella vincii Pillola, 1991 130 RED Glossopleura bion Walcott, 1916 49, 221 COR Glossopleura gigantea Resser, 1939 84, 221 COR Glossopleura packi Resser, 1935 223 COR Glossopleura similaris Resser, 1939 60, 221 COR Hebediscina sardoa Rasetti, 1972 125 AGN

430 Indice Hedinaspis canadensis Chatterton & Ludvigsen, 1998 251 ASA Hemirhodon amplipyge Robison, 1964 231 COR Housia Walcott, 1916 179, 251 ASA Hupetina antiqua Sdzuy, 1987 23 PTY Hydrocephalus carens Barrande, 1852 154 RED Hydrocephalus minor Boeck, 1827 213 RED Iglesiella ichnusae Rasetti, 1972 126 RED Irvingella Ulrich & Resser in Walcott, 1924 252 PTY Jakutus primigenius Ivantsov, 2005 157 COR Jegorovaia Lu in Wang, 1964 185 ASA Jenkinsonia varga Robinson, 1971 228 PTY Jincella prantli Ruzicka, 1944 128 PTY Kaolishaniella Sun, 1935 158 COR Kochina vestita Resser, 1939 58, 72, 221 PTY Kootenia Walcott, 1889 59, 157, 222 COR Kootenia spencei Resser, 1939 222 COR Kuanyangia pustulosa Lu, 1941 204 RED Labiostria Palmer, 1955 252 ASA Labiostria westropi Chatterton & Ludvigsen, 1998 252 ASA Leptoplastus Angelin, 1854 40, 192 PTY Lermontovia Suvorova, 1956 90, 191 PTY Liosolenopleura serventi Thoral, 1948 128 PTY Litavkaspis rejkovicensis Fatka, Kordule & Snajdr, 1987 191, 215 PTY Liwia Dzik & Lendzion, 1988 19, 195 NEK Loganellus Devine, 1863 182 ASA Lonchocephalus plena 91, 240 PTY Maladioidella cf. colcheri Shergold, Linan & Palacios, 1983 103 ASA Malungia laevigata Lu, 1961 203 RED Mansuyia Sun, 1924 158 COR Marjumia typa Walcott, 1916 231 PTY Maryvillia Walcott, 1916 189 PTY Maryvillia arion Walcott, 1916 240 PTY Mesonacis Walcott, 1885 250 RED Metadoxides armatus Meneghini, 1881 127, 130 RED Meteoraspis dis 85, 190, 241 PTY Misszhouia longicaudata Zhang & Hou, 1985 196 NEK Modocia brevispina Robison, 1964 228 PTY Modocia laevinucha Robison, 1964 232 PTY Modocia typicalis Resser, 1938 84, 190, 230, 232 PTY Modocia weekensis Shanan, 2003 241 PTY Naraoia Walcott, 1912 82, 97, 201 NEK Naraoia bertiensis Caron, Rudkin & Milliken, 2004 18, 195 NEK Naraoia compacta Walcott, 1912 18, 195 NEK Naraoia spinosa Zhang & Hou, 1985 18, 196 NEK Nebidella limbata Rasetti, 1972 127 RED Neocobboldia Zhang & Clarkson, 1990 44 AGN Nephalicephalus Shanan, 2003 (Unpublished) 243 PTY Norwoodia Walcott, 1916 189 PTY Norwoodia bellaspina Shanan, 2003 (Unpublished) 37, 243 PTY Ogygopsis typicalis Resser, 1939 223 COR Olekmaspis Suvorova, 1956 191 PTY Olenellus clarki Resler, 1928 110, 153, 211 RED Olenellus fremonti Walcott, 1910 56, 209 RED Olenellus gilberti Meek in White, 1874 210 RED Olenellus nevadensis Walcott, 1910 208, 210 RED Olenellus schucherti Resser & Howell, 1938 250 RED Olenellus terminatus Palmer, 1998 210 RED Olenellus cf. transitans Walcott, 1910 209 RED Olenoides Meek, 1877 229, 244 COR Olenoides «abbotti» (Unpublished) 232 COR

Indice cronologico dei trilobiti 431 Olenoides inflatus Walcott 232 COR Olenoides nevadensis Meek, 1870 226, 233 COR Olenoides pugio Walcott, 1908 235 COR Olenoides rooksi n.sp. (Unpublished) 233 COR Olenoides serratus Rominger, 1887 68, 157 COR Olenoides superbus 48, 61, 85, 91, 234 COR Olenoides trispinosus Rasetti, 1946 235 COR Olenus truncatus Brunnich, 1781 100 PTY Olenus wahlenbergi Westergaard, 1922 100 PTY Opsidiscus Westergaard, 1949 44 AGN Oryctocephalus Walcott, 1886 157 COR Orygmaspis contracta Frederickson, 1949 252 ASA Orygmaspis Resser, 1937 253 ASA Orygmaspis Type 2 253 ASA Orygmaspis Type 3 253 ASA Orygmaspis Type 4 253 ASA Orygmaspis Type 5 253 ASA Pagetia Walcott, 1916 44, 149 AGN Pagetia significans Etheridge, 1902 151 AGN Pagodia Walcott, 1905 128 COR Parabadiella Zhang, 1966 21 RED Parablackwelderia luensis Peng, Yang & Hughes, 2008 44 LIC Parabolina Salter, 1849 192 PTY Parabolinella Brögger, 1882 254 PTY Parabolinella bolbifrons Fortey & Owens, 1997 70 PTY Paradamesella Yang in Zhouet et al., 1977 162 LIC Paradoxides (Acadoparadoxides) mureroensis Sdzuy, 1958 128 RED Paradoxides (Eccaparadoxides) brachyrachis Linnarsson, 1883 128 RED Paradoxides (E.) mediterraneus Pompeckj, 1901 128, 130 RED Paradoxides gracilis Boeck, 1827 98, 154, 214 RED Paranepholenellus cf. besti Webster, 2007 209 RED Pardailhania hispida Thoral, 1935 128 PTY Peachella iddingsi Walcott, 1884 209, 211 RED Peltura Milne-Edwards, 1840 100, 103 PTY Peronopsis fallax Linnarsson, 1869 128 AGN Peronopsis integra Beyrich, 1845 150, 217 AGN Peronopsis interstricta White, 1874 226, 228 AGN Phalagnostus nudus Beyrich, 1845 217 AGN Pleuroctenium Hawle & Corda, 1847 149 AGN Polypleuraspis Poulsen, 1927 157 COR Proaulacopleura Kobayashi, 1936 228 ASA Proceratopyge Wallerius, 1895 105, 128, 178 ASA Proceratopyge rectispinata Troedsson, 1937 254 ASA Profallotaspis jakutensis Khomentovsky & Repina, 1965 23 RED Protolenus (Protolenus) pisidianus Dean & Ozgul, 1994 128 PTY Pseudokainella Harrington, 1938 182 ASA Pterocephalia norfordi Chatterton & Ludvigsen, 1998 179, 254 ASA Ptychagnostus Jaeckel, 1909 128, 229 AGN Ptychagnostus praecurrens Westergaard, 1936 150 AGN Ptychoparia striata Emmrich, 1839 214 PTY Redlichia Cossmann, 1902 154 RED Redlichia takooensis Lu, 1950 83, 154 RED Rejkocephalus (Hydrocephalus) rotundatus Barrande, 1846 213 RED Resserops Richter & Richter, 1940 154 RED Sao hirsuta Barrande, 1846 215 PTY Sardaspis laticeps Bornemann, 1881 126, 130 RED Sardoredlichia carinata Rasetti, 1972 127 RED Sardoredlichia frabouleti Pillola, 1991 130 RED Sardoredlichia praespinosa Rasetti, 1972 127 RED Saukia Walcott, 1914 181 ASA

432 Indice Schmalenseeia fusilis Peng, Babcock & Lin, 2004 51 UNC Selenocoryphe platyura Beebe, 1990 10, 69, 243 PTY Serrania gordaensis 23 PTY Skreiaspis brianensis Courtessole, 1973 128 PTY Skreiaspis spinosa Jahn, 1896 217 PTY Solenopleuropsis (Manublesia) ribeiro De Verneuil & Barrande, 1860 128 PTY Spencia Resser, 1939 223 PTY Spencia typicalis Resser, 1939 224 PTY Sphaerophthalmus alatus Boeck, 1838 40, 41 PTY Stenopilus pronus Raymond, 1924 53 PTY Thoracocare Robinson & Campbell, 1974 90, 155 COR Triadaspis bigeneris Opik, 1967 240 AGN Tricrepicephalus coria Walcott, 1916 190, 242 PTY Tsunydiscus Zhang, 1966 149 AGN Utaspis marjumensis Robison, 1964 190, 235 PTY Wanneria Walcott, 1910 250 RED Weeksina unispina Walcott, 1916 85, 190, 241 PTY Wujiajiania Lu & Lin, 1980 100, 192 PTY Wutingaspis tingi Kobayashi, 1944 204 RED Yunnanaspis Zhang, 1966 154 RED Yunnanocephalus Kobayashi, 1936 191 PTY Yunnanocephalus yunnanensis Mansuy, 1912 204 PTY Zacanthoides grabaui Pack, 1906 51, 56, 224 COR Zacanthoides idahoensis Walcott, 1908 224 COR Zacanthoides typicalis Walcott, 1886 49, 224 COR

Ordoviciano

Acanthopleurella stipulae Fortey & Rushton, 1980 14 PTY Achatella achates Billings, 1860 303 PHA Allolichas halli Foerste, 1888 313 LIC Amphilichas Raymond ,1905 306 LIC Amphilichas cf. A. conifrons Ruedemann, 1916 300 LIC Amphilichas cornutus Clarke, 1894 300 LIC Ampyx Dalman, 1827 112, 133, 184 ASA Ampyx cf. priscus Thoral, 1935 113, 258 ASA Ampyx nasutus Dalman, 1827 56, 184, 282 ASA Araiopleura Harrington & Leanza, 1957 178, 185 ASA Asaphellus cf. fezouataensis Vidal, 1998 258 ASA Asaphellus Callaway, 1877 133 ASA Asaphellus toledanus Gil Cid, 1976 269 ASA Asaphopsoides Hupe, 1955 182 ASA Asaphus Brongniart, 1822 33, 39, 99 ASA Asaphus delphinus Lawrow, 1856 282 ASA Asaphus expansus Dalman, 1827 180 ASA Asaphus kowalewskii Lawrow, 1856 44, 94, 282 ASA Asaphus lepidurus Nieszkowski, 1859 49 ASA Asaphus punctatus Lesnikova, 1949 39, 282 ASA Asaphus raniceps Dalman, 1828 34, 41, 282 ASA Asaphus robustus 282 ASA Balnibarbi Fortey, 1974 91, 192 PTY Basilicus (Basiliella) Salter, 1849 258 ASA Bathycheilus Holub, 1908 164 PHA Bathycheilus castillanus Hammann, 1983 269 PHA Bavarilla Barrande, 1968 164 PHA Boedaspis ensifer (Acidaspis kuckersiana) Whittington & Bohlin, 1958 56, 161, 283 ODO Bohemilla Barrande, 1872 182 ASA Bulaiaspis Lermontova in Chernysheva, 1956 149 PTY Bumastoides holei Foerste, 1920 49, 59, 91, 302 COR Bumastoides porrectus Raymond, 1925 302 COR

Indice cronologico dei trilobiti 433 Calymenella Bergeron, 1890 311 PHA Calymenella boisseli Bergeron, 1890 132, 134, 136 PHA Calyptaulax callicephalus Hall, 1847 305 PHA Carolinites Kobayashi, 1940 93, 99, 172, 176 PRO Celmus Angelin, 1854 176 PRO Ceraurinus icarus Billings, 1860 313 PHA Ceraurinus marginatus Barton, 1913 292 PHA Ceraurus globulobatus Bradley, 1930 37, 292 PHA Ceraurus n.sp. Green, 1832 304 PHA Ceraurus pleurexanthemus Green, 1832 299, 303 PHA Chasmops praecurrens Schmidt, 1881 283 PHA Chlustinia keyserlingi Barrande, 1846 310 ODO Colpocoryphe bohemica Vanek, 1965 72 PHA Colpocoryphe rouaulti Henry, 1970 164 PHA Colpocoryphe thorali Dean, 1966 269 PHA Cornuproetus beekeri Ruedemann, 1926 295 PRO Cornuproetus cornutus cornutus Goldfuss, 1843 356-357, 367 PRO Corrugatagnostus Kobayashi, 1939 149 AGN Crozonaspis struvei Henry, 1968 43 PHA Cryptolithus Green, 1832 94, 178, 184 ASA Cryptolithus bellulus Ulrich, 1878 295 ASA Cryptolithus tesselatus Green, 1832 101 313 ASA Cybele Lovén, 1846 50, 284 PHA Cybele bellatula Dalman, 1826 44, 54, 283 PHA Cybeloides plana Sinclair, 1944 293 PHA Cyclopyge Hawle & Corda, 1847 90, 92, 183 ASA Cyclopyge marginata Hawle & Corda, 1847 132 ASA Cyrtometopella Nikolaisen, 1961 290 PHA Cyrtometopus clavifrons Dalman, 1827 283 PHA Cyrtometopus sembnitzikii 284 PHA Dalmanitina socialis Barrande, 1846 43, 110 PHA Deanaspis goldfussi fluminensis Barrande, 1846 132, 137 ASA Declivolithus aff. alfredi Zzelisko, 1906 310 ASA Degamella Marek, 1961 90 ASA Diacanthaspis parvula Walcott, 1877 307 ODO Dikelokephalina Brögger, 1896 178, 262 ASA Dimeropyge Öpik, 1937 172 PRO Dionide Barrande, 1847 185 ASA Dionide mareki Henry & Romano, 1978 270 ASA Eccoptochile almadenensis Romano, 1980 270, 279 PHA Ectillaenus Salter, 1867 155 COR Ectillaenus giganteus Burmeister, 1843 270, 279 COR Encrinuraspis beaumonti Barrande, 1846 76 PHA Encrinuroides vigilans 292 PHA Eodalmanitina destombesi Henry, 1965 270 PHA Eoharpes Raymond, 1905 193 HAR Eoharpes cristatus Romano, 1975 271 HAR Eohomalonotus Reed, 1918 259 PHA Estoniops exilis Eichwald, 1858 284 PHA Eudolatites Delo, 1935 310 PHA Flexicalymene granulosa Foerste, 1909 314 PHA Flexicalymene meeki Foerste, 1910 54, 103, 164, 315 PHA Flexicalymene retrorsa Foerste, 1910 314 PHA Flexicalymene senaria Conrad, 1841 299, 307 PHA Foulonia Pribyl & Vanek, 1985 261 PHA Gabriceraurus dentatus Raymond & Barton, 1913 169, 292-293 PHA Gerasaphes ulrichana Clarke, 1894 305 ASA Goniotelus Ulrich, 1927 174, 176 PRO Grinnellaspis (Actinopeltis) globosus Poulsen, 1946 309 PRO Hapalopleura Harrington & Leanza, 1957 184 ASA

434 Indice Harpides Beyrich, 1846 66, 194, 262 HAR Harpides plautini Schmidt, 1894 194, 285 HAR Hemiarges Gürich, 1901 307 LIC Hoplolichas plautini Schmidt, 1885 56, 63, 285 LIC Hoplolichoides conicotuberculatus Nieszkowski, 1859 285 LIC Hungioides bohemicus arouquensis Thadeu, 1955 275 ASA Hypodicranotus striatulus Walcott, 1875 98, 305 ASA Illaenus Dalman, 1827 90, 131 COR Illaenus dalmani Volborth, 1863 286 COR Illaenus incisus Jaanusson, 1957 96, 156, 286 COR Illaenus sarsi Jaanusson, 1954 156 COR Illaenus tauricornis Kutorga, 1848 286 COR Isabelinia glabrata Salter, 1853 271, 280 ASA Isoteloides flexus Hintze, 1953 265 ASA Isotelus brachycephalus Foerste, 1919 315 ASA Isotelus gigas Dekay, 1824 49, 64, 306 ASA Isotelus iowensis Owen, 1852 58 ASA Isotelus mafritzi 292 ASA Isotelus maximus Locke, 1838 54, 315-316 ASA Isotelus rex Rudkin, Young, Elias & Dobrzanski, 2003 14 ASA Isotelus walcotti Walcott, 1918 307 ASA Lachnostoma latucelsum Ross, 1951 58, 265 ASA Lehua Barton, 1916 260 PHA Lehua corbachoi Vela, 2007 260 PHA Lehua ponti Vela, 2007 56, 260 PHA Lehua velai Corbacho, 2008 260 PHA Lehua vinculum Barrand,e 1872 260 PHA Leningradites longispinus Balashova, 1976 287 ASA Leviceraurus mammilloides Hessin, 1988 292 PHA Lichas Dalman, 1827 160 LIC Lloydolithus lloydi Murchison, 1839 185 ASA Marrolithus bureaui Oelhert, 1895 185 ASA Meadowtownella trentonensis Hall, 1847 304 ODO Megalaspidella Kobayashi, 1937 180 ASA Megistaspidella triangularis Schmidt, 1906 60, 287 ASA Megistaspis nericus 180 ASA Menoparia Ross, 1951 182 ASA Metopolichas huebneri Eichwald, 1843 60, 160, 287 LIC Metopolichas cf. platyrhinus Schmidt, 1907 160 LIC Morgatia hupei Nion & Henri, 1967 277 PHA Moustache trilobite 261 ASA Nanillaenus americanus Billings, 1859 301 COR Neseuretinus turcicus Dean, 1967 134, 137 PHA Neseuretus tristani Brongniart, 1822 272, 278 PHA Nileus cf. armadillo Dalman, 1827 183 ASA Niobella lindstroemi Schmidt, 1901 288 ASA Nobiliasaphus delessei Dufet, 1875 271 ASA Nobiliasaphus n.sp. Pribyl & Vanek, 1965 259 ASA Nobiliasaphus nobilis Barrande, 1846 273, 278 ASA Novakella Whittard, 1961 92 ASA Novakella bergeroni Kloucek, 1916 91, 183 ASA Ogyginus Raymond, 1912 273 ASA Ogyginus armoricanus Tromelin & Lebesconte, 1876 107 ASA Ogyginus corndensis corndensis Murchison, 1839 49 ASA Ogyginus fortey Rabano, 1989 112, 274 ASA Ogygiocaris Angelin, 1854 180 ASA Onnia Bancroft, 1929 65, 91, 311 ASA Opipeuter (Opipeuterella) Fortey, 1974 39, 90, 92 PRO Pandaspinapyga Esker & Levin, 1964 288 PHA Panderia Volborth, 1863 38 COR

Indice cronologico dei trilobiti 435 Panderia triquetra Volborth, 1863 288 COR Paraceraurus exsul Beyrich, 1846 60, 169, 288 PHA Parapilekia Kobayashi, 1934 260 PHA Paraszechuanella Liu in Zhou et al., 1977 158 COR Petigurus Raymond, 1913 30 PRO Phacopidina micheli Tromelin, 1877 269 PHA Placoparia Hawle & Corda, 1847 309 PHA Placoparia cambriensis Hick, 1875 275 PHA Placoparia (Coplacoparia) tourneminei Rouault, 1847 272 PHA Pliomera fischeri Eichwald, 1825 289 PHA Porterfieldia Cooper, 1953 100 PTY Presbynileus ibexensis Hintze, 1954 265 ASA Pricyclopyge Richter & Richter, 1954 93 ASA Pricyclopyge longicephala Kloucek, 1916 62, 183 ASA Primaspis crosotus Locke, 1843 294 ODO Prionocheilus Rouault, 1847 132, 164, 278 PHA Prionocheilus inermis Kobolova in Sokolov & Yolkin, 1978 134, 137, 139 PHA Prionocheilus mendax Vanek, 1965 275 PHA Proetus Steininger, 1831 304 PRO Proteuloma geinitzi Barrande, 1868 128 PTY Protopresbynileus Hintze, 1954 265 ASA Pseudobasilicus lawrowi Schmidt, 1898 289 ASA Pseudocybele altinasuta Hintze, 1952 60, 169 266 PHA Pseudocybele lemurei Hintze, 1952 267 PHA Pseudocybele n.sp. Ross, 1951 266 PHA Pseudocybele nasuta Ross, 1951 54, 265 PHA Pseudogygites Kobayashi, 1934 82 ASA Pseudomegalaspis patagiata Tornquist, 1884 180 ASA Pseudonaraoia hammanni Budil, Fatka, Bruthansova, 2003 18 NEK Pseudosphaerexochus pahnschi Schmidt, 1881 289 PHA Ptyocephalus yersini 265 ASA Radnoria simplex Kolobova in Sokolov & Yolkin, 1978 137, 139 PRO Raymondites Sinclair, 1944 176 PRO Remopleurides nanus Leuchtenberg, 1843 182 ASA Retamaspis melendezi Hammann, 1972 276 PHA Saltaspis Harrington & Leanza, 1952 192 PTY Salterocoryphe Hammann, 1977 276 PHA Salterocoryphe salteri Rouault, 1851 164, 278 PHA Sarrabesia teichmuelleri Hammann & Leone, 1997 134, 137 PHA Seleneceme Clark, 1924 177, 184 ASA Selenopeltis Hawle & Corda, 1847 310 ODO Selenopeltis buchii Barrande, 1846 56 ODO Selenopeltis gallica Bruton, 1978 277 ODO Selenopeltis inermis beyrichi Hawle & Corda, 1847 406 ODO Selenopeltis macrophtalma Kloucek, 1916 278 ODO Shumardia Billings, 1862 71 PTY Shumardia (Conophyris) salopiensis Callaway, 1877 71 PTY Soomaspis Fortey & Theron, 1995 18, 195 NEK Sphaerocoryphe robusta Walcott, 1875 60, 302 PHA Svalbardites Fortey, 1974 30 PTY Symphysops armata Barrande, 1872 132, 137 ASA Szechuanella Lu, 1962 158 COR Taihungshania Sun, 1931 178, 183 ASA Taklamakania Zhang, 1979 184 ASA Taklamakania europaea Hammann & Leone, 1997 137, 139 ASA Telephina Marek, 1952 90, 92, 118, 172, 176 PRO Thaleops laurentiana Amati & Westrop, 2004 301 COR Thysanopyge Kayser, 1898 180 ASA Tretaspis hisingeri Owen, 1980 101 ASA Triarthrus Green, 1832 33, 62, 192 PTY

436 Indice Triarthrus eatoni Hall, 1838 67, 69, 100, 192, 296-298 PTY Trinucleus Murchison, 1839 34, 131, 184 ASA Ulugtella mediterranea Hammann & Leone, 1997 134, 137 COR Uralichas hispanicus tardus Vela & Corbacho, 2009 309 LIC Uralichas ribeiroi Delgado, 1892 14 LIC Uromystrum Whittington, 1953 101, 176 PRO Xenasaphus devexus Eichwald, 1859 75, 112, 290 ASA Zeliszkella torrubiae Verneuil & Barrande, 1855 277 PHA

Siluriano

Acidaspis jessi Perry & Chatterton, 1979 98 ODO Arctinurus Castelnau, 1843 160 ODO Arctinurus boltoni Bigsby, 1825 60, 63, 69, 319 LIC Aulacopleura Hawle & Corda, 1847 91 PRO Aulacopleura koninki Barrande, 1846 100, 175 PRO Balizoma Holloway, 1980 134 PHA Bohemoharpes Vanek, 1963 76 HAR Bohemoharpes acuminatus 77, 194, 324 HAR Bumastus Murchison, 1839 155, 156 COR Bumastus ioxus Hall, 1852 320 COR Calymene Brongniart, 1822 76, 140 PHA Calymene blumenbachi neotuberculata Schrank, 1970 323-324 PHA Calymene niagarensis Hall, 1852 320 PHA Calymene polgari Siveter & Chatterton, 1996 98 PHA Calymene tuberculata Brüennich, 1885 77, 322-323 PHA Dalmanites limulurus Green, 1832 113, 167, 320 PHA Diacalymene Kegel, 1927 320 PHA Diacanthaspis (Diacanthaspis) minuta Barrande, 1846 161 ODO Dicranopeltis nereus Hall, 1863 320 LIC Encrinurus (Encrinurus) macourus Schmidt, 1859 322 PHA Encrinurus punctatus Weber, 1932 322 PHA Illaenus insignis Hall, 1865 156, 320 COR Leonaspis deflexa Lake, 1896 95 ODO Proetus granulatus Lindström, 1885 323-324 PRO Raphiophorus Angelin, 1854 177, 184 PTY Spathacalymene nasuta Ulrich, 1879 164 PHA Trimerus Green, 1832 39, 90, 163 PHA Trimerus delphinocephalus Green, 1832 164, 320 PHA Warburgella rugulosa canadensis Ormiston, 1967 98 PRO

Devoniano

Acanthopyge Hawle & Corda, 1847 60, 339 LIC Acanthopyge (Belenopyge) consanguinea Clarke, 1894 78, 327 LIC Acastava cf. schmidti Richter, 1909 372 PHA Alcaldops n.sp. (Heliopyge) aff. argovejensis Smeenk, 1983 339 PHA Andegavia Kim, 1997 353 COR Asteropyge Hawle & Corda, 1847 68 PHA Asteropyge comes Basse, 2003 356 PHA Asteropyge longispina 356 PHA Asteropyge pruemensis Basse, 2003 376 PHA Asteropyge punctata Steininger, 1831 366 PHA Asteropyginae indet. 339 PHA Belenopyge branikensis Barrande, 1872 345 LIC Bellacartwrightia calliteles Green, 1837 60, 168, 380-381 PHA Bojoscutellum campaniferum Beyrich 41 COR Breizhops bigranulosus Morzadec, 1983 373 PHA Breviscutellum Šnajdr, 1960 329 COR

Indice cronologico dei trilobiti 437 Burmeisterella armata Burmeister, 1843 335 PHA Cavetia Pillet, 1973 58, 353 COR Ceratarges Gürich, 1901 56, 340 LIC Ceratarges armatus Goldfuss, 1839 358 LIC Ceratarges berolinensis Richter, 1909 357 LIC Ceratonurus Prantl & Pribyl, 1949 328, 340 ODO Cheirurus (Crotalocephalus) gaertneri Alberti, 1962 135 PHA Cheirurus (Crotalocephalus) gibbus Beyrich, 1845 60, 169, 340 PHA Chotecops ferdinandi Kayser, 1880 68, 335-336 PHA Coltraneia Liebermann & Kloc, 1997 341 PHA Coltraneia oufatenensis Morzadec, 2001 96 PHA Comura Richter & Richter, 1926 56, 86 PHA Comura bultyncki Morzadec, 2001 86-87, 341 PHA Cordania Clarke, 1892 101, 175 PRO Cordania falcata Whittington, 1960 328-329 PRO Cordania wessmani Adrain & Kloc, 1997 175, 328 PRO Cornuproetus Richter & Richter, 1919 367 PRO Cornuproetus cornutus cornutus Goldfuss, 1843 356-357, 367 PRO Cyphaspis Burmeister, 1843 175, 342 PRO Cyphaspis balanops Erben, 1953 358 PRO Cyphaspis carrolli Adrain & Kloc, 1997 328-329 PRO Cyphaspis ceratophthalmus Goldfuss, 1843 358 PRO Cyphaspis cf. ranuncula Erben, 1953 373 PRO Cyphaspis gaultieri Rouault, 1851 373 PRO Dechenella daumeriesi van Viersen & Prescher, 2008 64, 368 PRO Dechenella verneuili Barrande, 1852 368 PRO Diademaproetus Alberti, 1964 369 PRO Dicranurus Conrad, 1841 52, 161 ODO Dicranurus hamatus elegantus Campbell, 1977 56, 331 ODO Dicranurus menghii Hamman & Leone, 2007 132 ODO Dicranurus monstrosus Barrande, 1852 56, 343 ODO Dipleura deckayi Green, 1832 164 PHA Dohmiella Lütke, 1990 369 PRO Dohmiella (Gerastos) dewildei van Viersen, 2006 369 PRO Drotops armatus Struve, 1996 56, 166, 344 PHA Drotops megalomanicus Struve, 1990 42 PHA Eldredgeops rana Stumm, 1953 49, 54, 166, 380-381 PHA Eocryphops cyclophthalmus Walther, 1907 ? 347 PHA Eodrevermannia Pribyl, 1946 135 PRO Erbenochile erbeni Alberti, 1981 45, 168, 344 PHA Geesops cf. schlotheimi Bronn, 1825 355, 359-360 PHA Geesops sparsinodosus gallicus Struve, 1982 366 PHA Gerastos Goldfuss, 1843 49 PRO Gerastos catervus van Viersen, 2006 366 PRO Gerastos cultrijugati Richter & Richter, 1918 370-371 PRO Gerastos cuvieri Steininger, 1831 356, 360 PRO Gerastos granulosus Goldfuss, 1843 361 PRO Gerastos prox lessensis van Viersen & Prescher, 2008 370 PRO Goldius goolaertsi van Viersen, 2007 367 COR Goldius grafi Basse (in Basse & Muller, 2004) 357 COR Gondwanaspis (Taemasaspis) Feist, 2002 161 ODO Gudralisium lindlarense Basse, 2003 364 PHA Harpes Goldfuss, 1839 135, 140 HAR Harpes macrocephalus Goldfuss, 1839 374 HAR Harpes perradiatus Richter & Richter, 1943 194, 345 HAR Heliopyge helios Richter & Richter, 1926 375 PHA Heliopyge troaonensis Morzadec, 1969 374 PHA Hollardops (Modellops) mesocristata Le Maitre, 1952 345 PHA Huntoniatonia huntonensis Ulrich & Delo, 1940 167, 329 PHA Huntoniatonia lingulifer Ulrich & Delo, 1940 329 PHA

438 Indice Huntoniatonia oklahomae Richardson, 1949 329 PHA Illaenula struvei Basse & Müller, 2000 377 PHA Kayserops Delo, 1935 375 PHA Kayserops daleidensis Basse, 2003 374 PHA Kettneraspis Prantl & Pribyl, 1949 159, 376 ODO Kettneraspis elliptica Burmeister, 1843 364 ODO Kettneraspis seiberti Basse, 2004 377 ODO Kettneraspis williamsi Whittington, 1956 56, 91, 332, 405 ODO Kolihapeltis Prantl & Pribyl, 1947 56, 156 COR Kolihapeltis rabatensis Alberti, 1966 352 ODO Koneprusia Prantl & Pribyl, 1949 56, 378 ODO Koneprusia dahmani Chatterton, Fortey, Brett, Gibb & McKellar, 2006 345 ODO Koneprusia maillieuxi Magrean, 2006 361 ODO Laethoprusia Ramsköld, 1991 328 ODO Leonaspis Richter & Richter, 1917 135, 346 ODO Liolophops sublevatus Struve, 1970 377 PHA Lobopyge (Belenopyge) Pribyl & Erben, 1952 375 LIC Lochkovella deckeri Delo, 1935 49, 91, 166, 332-333 PHA Lochkovella misera Barrande, 1852 135 PHA Maurotarion axitiosum Campbell, 1977 333 PRO Metacanthina barrandei Oehlert, 1889 346 PHA Morocconites malladoides Struve, 1989 346-347 PHA Mrakibina cattoi Morzadec, 2001 349 PHA Neometacanthus Richter & Richter, 1948 372 PHA Neometacanthus stellifer Burmeister, 1843 355, 362 PHA Nyterops hollandi van Viersen, 2007 63, 371 PHA Nyterops nyter Struve, 1970 370 PHA Oinochoe Thomas & Holloway, 1988 160 LIC Otarion Zenker, 1833 172, 175 PRO Otarion oceanicum Morzadec, 1983 377 PRO Otarionella Weyer, 1965 342 PRO Paciphacops campbelli Ramsköld & Werdelin, 1991 333, 405 PHA Paralejurus Hawle & Corda, 1847 66, 348 PHA Paralejurus hamlagdadicus Alberti, 1983 41, 348 PHA Pedinopariops Struve, 1972 376 PHA Pedinopariops brongniarti Steininger, 1831 362-363 PHA Phacops Emmrich, 1839 349 PHA Phacops imitator Struve, 1970 370 PHA Phacops latifrons Bronn, 1825 378 PHA Phacops speculator Alberti, 1970 347 PHA Phaetonellus Novak, 1890 349 PRO Phaetonellus planicauda Alberti ,1970 351 PRO Psychopyge elegans Termier & Termier, 1950 56, 350 PHA Psychopyge termierorum Morzadec, 2001 350 PHA Pteroparia coumiacensis Feist, 1976 46 PRO Quadrops flexuosa Morzadec, 2001 49, 87, 352 PHA Radiaspis Richter & Richter, 1917 132, 351 ODO Radiaspis comes Basse, 1998 361, 377 ODO Reedops cephalotes hamlagdadianus Alberti, 1983 346 PHA Reedops maurulus Alberti, 1970 348 PHA Rhenops cf. anserinus Richter, 1916 335-336 PHA Saharops bensaidi Morzadec, 2001 351 PHA Scabriscutellum Richter & Richter, 1956 58, 60, 156, 353 COR Scutellum (Bronteus, Goldfussia) Pusch, 1833 56, 156, 376 COR Scutellum geesense Richter & Richter, 1956 363 COR Scutellum masai 353 COR Thysanopeltis Hawle & Corda, 1847 156 COR Trimerocephalus mastophthalmus Richter, 1926 46 PHA Tropidocoryphe Novak, 1890 174 PRO Tropidocoryphe bassei van Viersen, Prescher & Savelsbergh, 2009 361 PRO

Indice cronologico dei trilobiti 439 Walliserops hammii Chatterton, Fortey, Brett, Gibb & McKellar, 2006 87, 354 PHA Walliserops trifurcatus Morzadec, 2001 56, 168, 354 PHA Wenndorfia Sandford, 2005 351 PHA Zlichovaspis rugosa Barrande, 1852 49, 167, 354 PHA

Carbonifero

Ameropiltonia lauradanae Brezinski, 2000 387 PRO Archegonus (Laevibole) laevicauda Sarres, 1857 391 PRO Archegonus (Phillibole) cauliquercus Brauckmann, 1981 391 PRO Archegonus (Phillibole) nehdenensis Hahn & Hahn, 1969 392-393 PRO Archegonus (Phillibole) polleni Woodward, 1894 391 PRO Bollandia (Griffithides) globiceps Phillips, 1836 174, 384 PRO Brachymetopus McCoy, 1847 120, 175 PRO Carbonocoryphe suprahercynica Richter & Richter, 1950 141 PRO Comptonaspis Brezinski, 1988 387 PRO Comptonaspis swallowi Shumard, 1855 387 PRO Cummingella belisama belisama Hahn & Brauckmann, 1985 384 PRO Griffithidella doris Hall, 1860 399 PRO Griffithides acanthiceps Woodward, 1896 98 PRO Liobole Richter & Richter, 1949 141 PRO Liobolina Richter & Richter, 1951 141 PRO Liobolina nebulosa Richter & Richter, 1951 392 PRO Namuropyge (Coignouina) Richter & Richter, 1939 175 PRO Nunnaspis stitti Brezinski, 2000 388-389 PRO Phillipsia Portlock, 1843 120, 174 PRO Piltonia carlakertisae Brezinski, 2000 174, 388 PRO Piltonia kuehnei Goldring, 1955 174, 384 PRO Proliobole (Panibole) podarge Hahn & Hahn & Müller, 1998 141 PRO Pseudowaribole (Dushania) heisingi Hahn & Brauckmann, 1988 393 PRO Pseudowaribole (Geigibole) thomasi Brauckmann, 1974 394 PRO Pseudowaribole inusitata Hahn, Hahn & Mueller, 2000 141 PRO Pudoproetus (Zhifangia) Hessler, 1963 389 PRO Spinibole (Coombewoodia) coddonensis Woodward, 1902 394 PRO Thigriffides Hessler, 1965 120 PRO Waribole Richter & Richter, 1926 141 PRO Waribole (Latibole) laticampa Osmolska, 1962 394 PRO Weberides Reed, 1942 174 PRO

Permiano

Acropyge weggeni Hahn & Hahn, 1981 121 PRO Anisopyge Girty, 1908 121 PRO Brachymetopus McCoy, 1847 121 PRO Cheiropyge (Suturikephalion) Diener, 1897 172 PRO Ditomopyge fatmii Grant, 1966 121 PRO Kathwaia capitorosa Grant, 1966 121 PRO Microphillipsia tetraptera Ruggeri, 1959 143 PRO Neoproetus (Griffithides) verrucosus Gemmellaro, 1892 144 PRO Paraphillipsia middlemissi Diener, 1847 121 PRO Permoproetus postcarbonarius Gemmellaro, 1890 143 PRO Phillipsia oehlerti Gemmellaro, 1892 144 PRO Phillipsia pulchella Gemmellaro, 1892 144 PRO Phillipsia sosiensis Gemmellaro, 1892 144 PRO Pseudophillipsia Gemmellaro, 1892 172 PRO Pseudophillipsia anshunensis Qian Yiyuan, 1977 121 PRO Pseudophillipsia elegans Gemmellaro, 1892 143 PRO Pseudophillipsia gemmellaroi Greco, 1935 144 PRO Pseudophillipsia obtusicauda Kayser, 1883 121 PRO

440 Indice