Biblioteca De Ciencias Biologicas

Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo

UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

BIOLOGICAS Morfología de Prosaldius saccharidis Barber (Coleoptera: Curculionidae), Trujillo, Perú, 2017.

TESIS

PARA OBTENER EL TÍTULO DE

CIENCIASBIÓLOGO

Autores: Br.DE Cynthia Catherine Cuzco Bobadilla. Br. Eimy Yahaira Juarez Asmad. Asesor: Dr. Gaspar Epifanio Ayquipa Aycho.

BIBLIOTECA TRUJILLO – PERÚ

2018

Esta obra ha sido publicada bajo la licencia Creative Commons Reconocimiento-No comercial-Compartir bajo la misma licencia 2.5 Perú. Para ver una copia de dicha licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by-ns-sa/2.5/pe/ . No olvide citar esta tesis. Biblioteca Digital - Direccion de Sistemas de Informática y Comunicación - Universidad Nacional de Trujillo

AUTORIDADES DE LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE TRUJILLO

______Dr. Orlando Gonzáles Nieves RECTOR

BIOLOGICAS ______Dr. Rubén Vera Véliz VICERRECTOR ACADÉMICO

CIENCIAS

DE ______Dr. Weyder Portocarrero Cárdenas VICERRECTOR DE INVESTIGACIÓN

BIBLIOTECA ______Dr. Esteban Ilich Zerpa SECRETARIO GENERAL

AUTORIDADES DE LA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

Dr. Freddy Mejía Coico

DECANO

BIOLOGICAS

Dr. William Zelada Estraver

SECRETARIO

CIENCIAS

Dr. Freddy Peláez Peláez

DIRECTOR DE LA ESCUELA ACADÉMICO

PROFESIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

BIBLIOTECA

JURADO DICTAMINADOR

Ms.C. Aída Carbajal Villaverde

PRESIDENTE DEL JURADO

BIOLOGICAS

Ms.C. Roberto Rodríguez Rodríguez

SECRETARIO DEL JURADO

CIENCIAS

Dr. Gaspar Ayquipa Aycho

VOCAL DEL JURADO

BIBLIOTECA

iii

V°B° DEL ASESOR

El que suscribe, asesor de la presente tesis.

CERTIFICA:

Que la presente tesis ha sido desarrollada conforme a las

normativas de la escuela y el respectivo proyecto.

En lo referente al informe final, este ha sido revisado acogiendo las

observaciones y sugerencias alcanzadas, por BIOLOGICAS lo que autorizo a los

Bachilleres Cuzco Bobadilla Cynthia Catherine y Juarez Asmad Eimy

Yahaira continuar con los trámites correspondientes.

CIENCIAS

Dr. Gaspar Ayquipa Aycho

DOCENTE PRINCIPAL DEL DPTO. DE CIENCIAS BIOLÓGICAS BIBLIOTECA SECCIÓN ZOOLOGÍA

PRESENTACIÓN

Señores miembros del jurado dictaminador.

En cumplimiento con las disposiciones emanadas del Reglamento

vigente para la obtención de Grados y Títulos de la Escuela de Ciencias

Biológicas de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional

de Trujillo, nos es honroso someter a vuestra consideración y criterio la

presente tesis titulada: Morfología de Prosaldius saccharidis Barber

(Coleoptera: Curculionidae), Trujillo, Perú, 2017, con el propósito de BIOLOGICAS obtener el Título Profesional de Biólogo.

Dejamos a vuestra consideración la respectiva aprobación.

CIENCIAS Trujillo, marzo del 2018.

Cynthia Catherine Cuzco Bobadilla Eimy Yahaira Juarez Asmad Br. EN CIENCIAS BIOLÓGICAS Br. EN CIENCIAS BIOLÓGICAS BIBLIOTECA

APROBACIÓN DE LA TESIS

Los que suscriben, miembros del Jurado Dictaminador, declaramos

que el presente informe de tesis reúne los requisitos fundamentales

exigidos; por lo que ha sido APROBADA por UNANIMIDAD.

Ms.C. Aída Carbajal VillaverdeBIOLOGICAS

PRESIDENTE DEL JURADO

CIENCIAS Ms.C. Roberto Rodríguez Rodríguez

DESECRETARIO DEL JURADO

Dr. Gaspar Ayquipa Aycho BIBLIOTECA VOCAL DEL JURADO

DEDICATORIA

A Dios por haberme permitido llegar hasta este

momento tan importante de mi formación

profesional.

A mis padres y familiares por brindarme su apoyo a

lo largo de toda mi educación.

A Giorghino por acompañarme durante todo este

arduo camino y compartir conmigo alegrías y BIOLOGICAS esfuerzos.

A mi asesor Gaspar Ayquipa Aycho, por sus

valiosos conocimientos, su apoyo y orientación en

este asombroso mundo de la Entomología. CIENCIASCynthia Catherine Cuzco Bobadilla A Dios, por ser mi guía en cada momento. DE A mi familia, por ser parte de mi vida y de mi

recorrido por alcanzar mis metas.

A mi querida Liah, por llegar a este mundo y

llenar mis días de alegría y ternura.

A mi asesor Gaspar Ayquipa Aycho, por el

apoyo, la motivación, y por enseñarnos que la BIBLIOTECA Entomología es un área con gran riqueza.

Eimy Yahaira Juarez Asmad

vii

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos a los docentes del área de Entomología, Dr.

Gaspar Ayquipa Aycho, Ms.C. Roberto Rodríguez Rodríguez y Ms.C.

Aída Carbajal Villaverde, por sus enseñanzas a lo largo de nuestra

carrera universitaria, por formar nuestra vocación a la Entomología, y

por la orientación para la realización de esta tesis.

Al profesor Ms.C. Juan Rodríguez Soto porBIOLOGICAS la asesoría en el análisis estadístico.

A nuestros amigos, Br. Andrés Vargas Lujan y Br. Steisy

Huamanchumo Salvatierra, por brindarnos su apoyo moral y amistad.

CIENCIAS

BIBLIOTECA

viii

ÍNDICE

Autoridades…..…………………………………………………………………….….....i Jurado Dictaminador…………………………………………………………………....iii V°B° de la asesor...………………………………………………………………….....iv Presentación………………………………………………………………….…...….…v Aprobación de la Tesis………………………………………………………………...vi Dedicatoria………………………………………………………………………...... …vii Agradecimientos………………………………………………………………….…...viii Índice……………………………………………………………………………..……...ix Lista de tablas y figuras……….………………………………………………..……...xi Lista de anexos……………………………………………….…………….……....…xiv Resumen...... …………………………………………………………………….BIOLOGICAS...... xvii Abstract…..………………………………………………………………..……....….xviii I. INTRODUCCIÓN………………………………………………………..…..…..1 II. MATERIAL Y MÉTODOS……………………….…………………….……..…6 2.1. Lugar de ejecución……………………….………………………………...6 2.2. Trabajo de campo 2.2.1. Obtención del materCIENCIASial biológico….…………………..…… ..……...6 2.3. Trabajo en laboratorio 2.3.1. Crianza de ProsaldiusDE saccharidis..………………………..….…...7 2.3.2. Obtención de huevos de Prosaldius saccharidis……..…………...7 2.3.3. Recuperación de larvas y pupas de Prosaldius saccharidis…..…8 2.3.4. Recuperación y montaje de adultos de Prosaldius saccharidis....8 2.3.5. Descripción de la morfología de los estados biológicos………….9 2.3.5.1. Descripción del huevo………………………..……….…….…9 2.3.5.2. Descripción de la larva…………………………...………...... 9 2.3.5.3. Descripción de la pupa………………………………..……....9 BIBLIOTECA2.3.5.4. Descripción del adulto……………….……..………....……..10 2.3.6. Descripción de la genitalia de los adultos………………..……….10 2.3.7. Análisis estadístico………..………………………………...... 11 III. RESULTADOS………..…………………………………………………..…...12 3.1. Ubicación taxonómica…………………………………………………….12

3.2. Mediciones de los estados biológicos de Prosaldius saccharidis…...13 3.3. Descripción morfológica…………..…………………………………..….16 3.3.1. Huevo……...…………………………………...…………………..16 3.3.2. Larva………………………………………………………………..16 3.3.3. Pupa……………………………………………………………...…22 3.3.4. Adulto………………...………………………………………...…..24 3.3.4.1. Macho……………………………………………….…..24 3.3.4.2. Hembra……………………………………………….....38 3.3.5. Genitalia…………………………………..………………………..38 3.3.5.1. Macho………………………………………….……..…38 3.3.5.2. Hembra……………………...……………….………….39 IV. DISCUSIÓN………..………………………………………………….…….….45 V. CONCLUSIONES………..…………………………………………….…BIOLOGICAS.…...52 VI. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS………..……………………….…….....53 VII. ANEXOS ……………………………………………………………………….61 VIII. GLOSARIO………..……………………………………………...... 80

CIENCIAS

BIBLIOTECA

LISTA DE TABLAS Y FIGURAS

Tabla 1. Promedio y desviación estándar (mm) de las mediciones realizadas en

huevo, larva I, larva II, larva III, pupa y cámara pupal de Prosaldius

saccharidis Barber, utilizando estereoscopio Olympus SZX16, software:

DP2-BSW.

Tabla 2. Promedio y desviación estándar (mm) de las mediciones realizadas en el

adulto de Prosaldius saccharidis Barber, utilizando estereoscopio

Olympus SZX16, software: DP2-BSW.

Fig. 1. A. Huevo de Prosaldius saccharidis en fase inicial,BIOLOGICAS B. Huevo embrionado de

color crema oscuro.

Fig. 2. Cápsula cefálica de larva de Prosaldius saccharidis. A. Vista dorsal de larva

I, B. Vista dorsal de larva II, sfc: sutura fronto-clipeal, ec: endocarina, sf: sutura frontal, sc: sutura coronal,CIENCIAS md: mandíbula, o: ocelo, fr: frente, v: mancha en forma de “V”. Fig. 3. Aparato bucal de laDE larva de Prosaldius saccharidis. A. Mandíbula, labro, scrobiculum, maxila en vista dorso-frontal. B. Maxila, prementón y palpos

maxilares en vista dorsal, C. labro en vista dorsal, l: labro, md: mandibula,

scr: scrobiculum, mx: maxila, pm: prementón, pmx: palpos maxilares, pl:

palpos labiales, cl: clipeo.

Fig. 4. Larvas de Prosaldius saccharidis. A. Larva I, B. Larva II, C. Larva III.

Fig.BIBLIOTECA 5. Pupa de Prosaldius saccharidis. A. Vista ventral de pupa recién formada, B.

Vista lateral de pupa recién formada, C. Vista ventral de pupa a días de

emerger.

Fig. 6. Cámara pupal de Prosaldius saccharidis, localizada cerca al nudo de la caña

de azúcar.

Fig. 7. Adulto de Prosaldius saccharidis. A. Vista dorsal, B. Vista ventral, C. Vista

lateral, ab: abdomen, pt: pterotórax, pt: protórax, c: cabeza, oc: ojo

compuesto, ro: rostrum.

Fig. 8. Cabeza de Prosaldius saccharidis. A. Vista lateral, B. Antena en vista dorsal,

oc: ojo compuesto, ro: rostrum, md: mandíbula, es: escapo, pe: pedicelo, fl:

flagelo, ma: mazo antenal, fu: funículo.

Fig. 9. Protórax del adulto de Prosaldius saccharidisBIOLOGICAS. A. Vista dorsal, B. Vista ventral, C. Vista frontal, ps: prosternón, aps: apófisis prosternal, sps: sutura

pleuroesternal, pep: proepimerón.

Fig. 10. Mesotórax del adulto de Prosaldius saccharidis. A. Vista dorsal, B. Vista

dorsal. CIENCIAS Fig. 11. Pterotórax del adulto de Prosaldius saccharidis. A. Pterotórax con élitro, vista del área pleural,DE B. Pterotórax sin élitro, vista del área pleural, E. Pterotórax en vista ventral.

Fig. 12. Élitros del adulto de Prosaldius saccharidis, mostrando estrías e

interestrías, en vista dorsal.

Fig. 13. Ala metatorácica de Prosaldius saccharidis. A. Vista dorsal. B. Vista dorsal BIBLIOTECAde las alas metatorácicas en el metatórax del adulto, C: costal, Sc: subcostal, R: radial, M: medial, Cu: cubital, A: anal.

xii

Fig. 14. Patas de Prosaldius saccharidis. A. Patas protorácicas, B. Patas

mesotorácicas, C. Tarso, pretarso y uña de la pata protorácica, D. Pata

metatorácica.

Fig. 15. Abdomen de Prosaldius saccharidis. A. Abdomen de la hembra en vista

dorsal, B. Abdomen del macho en vista ventral, C. Abdomen de la hembra

en vista ventral.

Fig. 16. Esternitos y tergitos terminales del abdomen del macho de Prosaldius

saccharidis. A. Tergito VII y esternito VI en vista dorsal, B. Tergito VII en

vista dorsal, C. Tergito VII y esternito VII unidos, vista dorsal, D. Esternito BIOLOGICAS VII.

Fig. 17. Genitalia del macho de Prosaldius saccharidis. A. Genitalia, tergo VII y

esternito VII, vista ventral, B. Vista dorsal, C. Vista ventral, D. Aedeagus y

tegmen en vista ventral, E. Aedeagus, vista lateral, ae: tubo aedeagal, aa: apodema aedeagal, tg: tegmen,CIENCIAS ma: manubrio, pm: parámeros. Fig. 18. Esternitos y tergitos terminales del abdomen de la hembra de Prosaldius

saccharidis. A. TergitoDE VII y esternito VI en vista dorsal, B. Esternito VI en

vista dorsal, C. Tergito VII y esternito VII unidos, vista dorsal, D. Esternito

VII, la: lobulo apical, ev: espícula ventral.

Fig. 19. Genitalia de la hembra de Prosaldius saccharidis. A. Coxito y estilos en

vista lateral, B. Espermateca, vista lateral, st: estilos, cx: coxito, cor: cornu,

N: nódulo, R: ramus.

BIBLIOTECA

xiii

LISTA DE ANEXOS

Anexo 1. Plano de ubicación de (A) campo y (B) laboratorio de Entomología.

Trujillo, La Libertad, Perú. (L. Sur 8° 2’, L. Oeste 79 ° 1’, a 240

m.s.n.m).

Anexo 2. Recolección de material biológico. A. Reconocimiento de cañas de

azúcar con daño de Prosaldius saccharidis, B. y C. Trozos de caña de

azúcar recolectados en recipientes de plástico, D. Recipientes para la crianza del gorgojito negro. BIOLOGICAS

Anexo 3. Cópula de adultos de Prosaldius saccharidis, donde se observa la

genitalia masculina.

Anexo 4. Obtención de huevo, larva y pupa de Prosaldius saccharidis. A y B. Postura del gorgojito negro,CIENCIAS C. Pupa dentro de la caña de azúcar, D. Larva produciendo daño cerca del nudo de la caña de azúcar. DE Anexo 5. Trabajo de disección, montaje y descripción de los estados biológicos de

Prosaldius saccharidis en el estereoscopio.

Anexo 6. Imágenes y mediciones de Prosaldius saccharidis en el estereoscopio

OLYMPUS ZX16, software: DP2-BSW-version 2.2.

Anexo 7. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, del huevo de Prosaldius

BIBLIOTECAsaccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en

estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW-version 2.2.

Anexo 8. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de la cápsula cefálica,

cuerpo y mandíbula de larva I de Prosaldius saccharidis, promedio y xiv

desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16,

software: DP2-BSW.

Anexo 9. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de la cápsula cefálica,

cuerpo y mandíbula de larva II de Prosaldius saccharidis, promedio y

desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16,

software: DP2-BSW.

Anexo 10. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de la cápsula cefálica,

cuerpo y mandíbula de larva III de Prosaldius saccharidis, promedio y

desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16,

software: DP2-BSW-version 2.2. BIOLOGICAS

Anexo 11. Mediciones del largo, ancho ventral y lateral, en milímetros, de la pupa

de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados

en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW-version 2.2.

Anexo 12. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de la cámara pupal de CIENCIAS Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio OlympusDE SZX16, software: DP2-BSW-version 2.2. Anexo 13. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de cabeza, protórax y

abdomen del adulto de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación

estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-

BSW-version 2.2.

Anexo 14. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de antenas y rostrum del BIBLIOTECAadulto de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW.

Anexo 15. Mediciones de los bordes anteriores y posteriores, en milímetros, de

protórax y abdomen del adulto de Prosaldius saccharidis, promedio y

desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16.

Anexo 16. Mediciones de largo y ancho, en milímetros, del fémur, tibia, tarso y

uña de las ´patas protorácicas del adulto de Prosaldius saccharidis,

promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus

SZX16, software: DP2-BSW-version 2.2.

Anexo 17. Mediciones de largo y ancho, en milímetros, del fémur, tibia, tarso y

uña de las ´patas mesotorácicas del adulto de Prosaldius saccharidis,

promedio y desviación estándar, realizados BIOLOGICASen estereoscopio Olympus

SZX16, software: DP2-BSW-version 2.2.

Anexo 18. Mediciones de largo y ancho, en milímetros, del fémur, tibia, tarso y

uña de las ´patas metatorácicas del adulto de Prosaldius saccharidis,

promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus CIENCIAS SZX16, software: DP2-BSW-version 2.2.

BIBLIOTECA

xvi

RESUMEN

Prosaldius saccharidis Barber (Coleoptera: Curculionidae) “gorgojito

negro” es una plaga potencial que causa perjuicios en el cultivo de la caña de

azúcar en el país. El objetivo del presente trabajo fue determinar las características

de las diferentes fases biológicas de P. saccharidis. Los estados biológicos de la

plaga se obtuvieron del ex-CEPCAM-UNT, en el laboratorio se realizó la disección,

montaje, observación y descripción utilizando el estereoscopio Olympus SZX16,

software: DP2-BSW-version 2.2. El huevo presentó una longitud promedio de 0.54

± 0.03 mm; la larva III, una longitud promedio desde laBIOLOGICAS cabeza hasta el ápice del

abdomen de 0.94 ± 0.02 y 4.36 ± 0.18 respectivamente; la pupa tuvo una longitud

promedio de 4.22 ± 0.21 mm. La cabeza del adulto junto con el protórax presentó

una longitud promedio de 1.49 ± 0.15 mm. y el abdomen, 2.36 ± 0.14 mm. Se

concluye determinando las características morfológicas de los diferentes estados

biológicos de P. saccharidis, el CIENCIAS dimorfismo sexual, en la forma del tergito VII, esternitos V, VI y genitalia delDE adulto .

Palabras clave: Prosaldius saccharidis, Curculionidae, morfología.

BIBLIOTECA

xvii

ABSTRACT

Prosaldius saccharidis Barber (Coleoptera: Curculionidae) "black weevil" is

a potential pest that causes damages in the cultivation of sugarcane in the country.

El objetivo del presente trabajo fue determinar las características de las diferentes

fases biológicas de P. saccharidis. The biological states of the pest were obtained

from ex-CEPCAM-UNT, in the laboratory were performed the dissection, assembly,

observation and description using the Olympus SZX16 stereoscope, software: DP2- BSW-version 2.2. The egg presented an average lengthBIOLOGICAS of 0.54 ± 0.03 mm; the larva III, an average length in head and body of 0.94 ± 0.02 and 4.36 ± 0.18

respectively; the pupa had an average length of 4.22 ± 0.21 mm. The head of the

adult together with the prothorax presented an average length of 1.49 ± 0.15 mm.

and the abdomen, 2.36 ± 0.14 mm. It’s concludes by determining the morphological

characteristics of the different biologicalCIENCIAS states of P. saccharidis, the sexual dimorphism, in the form of tergitoDE VII, the esternitos, V, VI and genitalia of the adult.

Keywords: Prosaldius saccharidis, Curculionidae, morphology.

BIBLIOTECA

xviii

I. INTRODUCCIÓN

El cultivo de la caña de azúcar posee una rica fauna entomológica, debido

a que se trata de un cultivo extensivo, por lo que es común encontrar diferentes

insectos plaga claves, ocasionales y potenciales que afectan la producción y la

calidad del producto (Arana, 2013). En el año 1979, para el Perú, se registró la

existencia de 55 especies de insectos causando diferentes tipos de daño en el

cultivo de caña de azúcar, pertenecientes al orden Hemiptera, antes Homoptera,

Lepidoptera, Isoptera, Hymenoptera, Orthoptera y Coleoptera, clasificados según el

órgano al que atacan; dentro de esta relación de plagas,BIOLOGICAS 19 pertenecen al orden

Coleoptera, de los cuales 7 se ubican dentro de la familia Curculionidae (Ayquipa y

Cueva, 1979; Wille, 1952).

El orden Coleoptera presentaCIENCIAS 16 superfamilias, siendo Curculionoidea (= Rhynchophora) el grupo con mayor número de especies, 62 000, 5 800 géneros

(Oberprieler y cols., 2007)DE pertenecientes a las familias Nemonychidae,

Anthribidae, Belidae, Attelabidae, Caridae, Brentidae y Curculionidae (Anderson,

2002). Tradicionalmente la clasificación de grupo se basó en los trabajos de

Schoenherr y Lacordaire (Morrone, 1996).

BIBLIOTECAHernández y Cols. (2012), señalan la existencia de alrededor de 51 000 especies pertenecientes a la familia Curculionidae, posteriormente Morrone (2014)

eleva este número a aproximadamente 60 000 especies alrededor del mundo.

Estos insectos en su mayoría poseen hábitos fitófagos, alimentándose

principalmente de angiospermas, así como de gimnospermas, pteridofitas, briofitas,

líquenes y ocasionalmente fueron encontrados sobre algas y cianobacterias

(Emiliano, 2014; Morrone, 2014; Oberprieler, 2007). Los daños secundarios

ocasionados por las larvas son debido a que permiten la entrada de hongos

fitopatógenos, provocando pudriciones como el causante del hongo rojo

Colletotrichum falcatum (Ruiz y Cols., 2015).

Los curculionidos se caracterizan por tener forma oval, alargada, cilíndrica y en algunos casos, robustos; de color negro, gris, café,BIOLOGICAS verde y rojizo, con una longitud que varía generalmente de 0,1 a 3,5cm; cabeza más o menos esférica

prolongada en un pico que lleva en el extremo el aparato bucal; ojos redondos,

generalmente; la antena puede ser geniculada, moniliforme o clavada, de diez a

doce segmentos; el protórax tan ancho o más que la cabeza (Luna, 1983; Rodríguez, 2010). Lavia y cols. (1999)CIENCIAS y Morrone (2014), citan que la característica principal de los curculionidos es la presencia de una proyección anterior de la

cabeza, denominada rostro,DE rostrum o pico, en cuyo ápice se localiza el aparato

bucal masticador; y en ambos lados, una zona excavada, la escroba, donde se

aloja el escapo en posición de reposo. El rostro presenta distinta longitud según el

grupo y además lleva las antenas genículo-clavadas (Rodríguez, 2010).

BIBLIOTECASegún Morrone y Posadas (1998), las características de los élitros son muy variadas; en general son de forma elongada y convexa. Los élitros pueden

presentar tubérculos en número y posición variada; el ángulo externo del área

basal de los élitros se denomina hombro; en las formas no voladoras los hombros

son redondeados y las alas metatorácicas son reducidas o ausentes. Cada élitro

presenta 10 estrías o filas longitudinales de puntuaciones, separadas por áreas

denominadas interestrías. El pygydium puede estar cubierto o expuesto.

Anderson (2002), reconoció 17 subfamilias dentro de Curculionidae:

Dryophthorinae, Raymondionyminae, Curculioninae, Bagoininae, Ceutorhynchinae,

Conoderinae, Cossoninae, Cryptorhynchinae, Cyclominae, Entiminae, Hyperinae,

Lixinae, Mesoptilinae, Molytinae, Scolytinae, Platypodinae y Baridinae; esta última compuesta en su mayoría por gorgojos pubescentes yBIOLOGICAS negros, con o sin escamas en el cuerpo, la mayoría de sus larvas minan tallos, algunas están asociadas a

hongos en madera muerta y los adultos se encuentran en flores y tienen hábitats

semiacuáticos. Dentro de la subfamilia Baridinae se encuentra el género

Prosaldius.

CIENCIAS La subfamilia BaridinaeDE Schoenherr 1836, incluye varios taxones previamente tratados como subfamilias independientes. La mayoría se alimenta de

monocotiledóneas como Poaceae, Cyperaceae y Cannaceae, también es posible

hallarlos en dicotiledóneas como Piperaceae, Vitaceae, Annonaceae, Fabaceae y

Malpighiaceae (Luna, 1983; Morrone, 2014). De acuerdo con Morimoto y Yoshihara

(1996), esta subfamilia agrupa alrededor de 4 300 especies en el mundo. OberprielerBIBLIOTECA y cols. (2007), mencionan la existencia de 8 000 especies. El grupo, al igual que otras subfamilias de curculionidos es difícil de delimitar por su gran

diversidad estructural, principalmente en las formas neotropicales. El

mesoepimerón ascendido y redondeado es la característica distintiva de la

subfamilia; aunque este carácter también está presente en Ceutorhynchinae, se

diferencia de Baridinae porque presenta el uncus poco desarrollado o ausente en la

metatibia, y en Baridinae es bien desarrollado (Anderson, 2002; Davis, 2009;

Marvaldi y Lanteri, 2005; Soto, 2007; Soto, 2017).

El género mencionado, también denominado Apinocis Lea 1927, Prosaldius

Ogloblin 1930, Prosalidus Ogloblin 1930, Anacentrinus Buchanan 1932, Prosalidius

Zimmerman 1994 y Prosaldius Zimmerman 1994 (Barriga, 2010; GBIF Backbone Taxonomy, 2017; Lanteri y Cols., 1997; Pérez y Cols.,BIOLOGICAS 2013; Robert y Gentili, 1996), ha tenido incidencia en países de América Latina como Estados Unidos,

México, Costa Rica, Ecuador, Colombia, Argentina, Venezuela y Perú, asimismo se

ha registrado su presencia en Cuba, Hawái, Haití, Jamaica, Puerto Rico, El

Salvador, Nicaragua ( Maes y O´Brien, 1990; Maes y Téllez, 1988; O´Brien y Wibmer, 1982; Woodruff, 1972).CIENCIAS Países en donde es considerado una plaga secundaria o potencial según las características agroecológicas que se presenten

(Mendoza, 2013; PantaleónDE y cols., 2013; Salazar, 2015; Salazar y cols., 2016); los

daños perjudiciales registrados no han tenido gran importancia económica a

excepción de Perú (Saldarriaga, 1981).

Anderson (2002) elaboró la clave taxonómica del género Prosaldius describiéndoloBIBLIOTECA con mandíbulas no prominentes; el funículo con setas finas y largas; el pygydium, liso y cubierto por los élitros; élitros con estrías profundas; el tarso con

dos uñas; las coxas mesotorácicas y metatorácicas más juntas que las protorácicas

y el cuerpo con superficie dorsal plana, setas finas, de tamaño variado.

Prosaldius saccharidis Barber 1927 “gorgojito negro” es la especie que tuvo

incidencia en los valles de la costa norte peruana desde el año 1925,

convirtiéndose en una plaga muy importante en los años 1930 y 1931 para el valle

de Chicama donde se cultivaba la variedad “Blanca”, antigua Barbón, disminuyendo

la pureza del jugo de la caña y los porcentajes de sacarosa en la fábrica,

resultando en una grave pérdida de azúcar en toneladas por hectáreas (Wille,

1952).

Los diferentes estados biológicos del “gorgojitoBIOLOGICAS negro” se describieron, huevo de color blanco crema y de 0.5 mm; la larva es ápoda de cuerpo curveado,

amarillo o bruno claro, la cabeza de color bruno oscuro llegando a medir 6 mm en

su último instar; la pupa es blanca amarillenta, de 5 mm de largo y el adulto de

color bruno oscuro o negro brillante, protórax liso y punteado, élitros estriados

longitudinalmente y cuerpo alargado,CIENCIAS de 10 a 12 mm longitudinalmente (Mendoza, 2013; Saldarriaga, 1981 y Wille,DE 1952).

Las descripciones morfológicas de la especie son muy someras, lo cual ha

dificultado poder determinarlo como el causante de numerosas pérdidas en el

cultivo de la caña de azúcar. Por consiguiente, el objetivo del presente trabajo fue

determinar las características morfológicas de los diferentes estados biológicos de

ProsaldiusBIBLIOTECA saccharidis Barber (Coleoptera: Curculionidae), Trujillo, Perú, 2017.

II. MATERIAL Y MÉTODOS

2.1. Lugar de ejecución

El trabajo de campo se realizó en parcelas de caña de azúcar, cultivar

Blanca rayada, del campo experimental de la cátedra de Entomología

Aplicada, situada en el ex CEPCAM - UNT, y posteriormente en el laboratorio

de Entomología de la Sección de Zoología del departamento de Ciencias

Biológicas de la UNT (Anexo 1).

2.2. Trabajo de campo BIOLOGICAS

2.2.1. Obtención del material biológico

La colección de las diferentes muestras biológicas de los

estados biológicos de P. saccharidis, se realizó en plantaciones de CIENCIAS caña de azúcar del ex CEPCAM – UNT. El cultivo de caña de azúcar presentó un altoDE estrés hídrico, por causa del riego irregular por gravedad. Los tallos se cortaron aproximadamente de 8 cm, utilizando

un machete. Los tallos colectados se acondicionaron en recipientes de

plástico de 500 mL, para su traslado al laboratorio (Anexo 2). Los

adultos de P. saccharidis encontrados en el exterior de los tallos de la

caña de azúcar se colectaron manualmente en recipientes de plástico BIBLIOTECAde 250 mL. Todas las muestras fueron trasladadas a laboratorio.

2.3. Trabajo en laboratorio

Para obtener mayor número de especímenes y describir la morfología

de los estados biológicos de la plaga se estableció la crianza de P.

saccharidis. La descripción morfológica del insecto se realizó utilizando

microscopio Optimus®, estereoscopio Olympus SZX16 con software: DP2-

BSW-version 2.2 y una cámara fotográfica CANON-EOS 80D. Todas las

medidas de las estructuras fueron tomadas por triplicado.

2.3.1. Crianza de Prosaldius saccharidis

La crianza de los adultos de P. saccharidisBIOLOGICAS se realizó en cinco

recipientes de plástico de 250 mL. En las tapas de estos recipientes

se hicieron pequeños orificios para mantener la oxigenación, en la

base se colocó papel toalla y se adhirió con silicona una porción de

algodón humedecido con agua mineral para mantener la humedad CIENCIAS relativa de 90%. El sustrato alimenticio fueron fragmentos de caña de azúcar de 2 aDE 3 cm, lavados y desinfectados con hipoclorito al 10% (Anexo 2).

2.3.2. Obtención de huevos de Prosaldius saccharidis

La cópula de los especímenes se observó diariamente (Anexo

3). La búsqueda de los huevos se realizó cuidadosamente con pinzas BIBLIOTECAy alfileres, ubicando los orificios de ovoposición cerca de los nudos del tallo (Anexo 4). Los huevos se retiraron utilizando las fibras de la caña

de azúcar y alfileres, se colocaron en una placa Petri con fondo negro

y una porción de algodón con solución salina fisiológica para evitar el

desecamiento.

2.3.3. Recuperación de larvas y pupas de Prosaldius saccharidis

Las larvas y pupas se recuperaron de las muestras de caña

de azúcar llevadas a laboratorio utilizando un cuchillo (Anexo 4). Se

colocaron en placas Petri con fondo negro y fragmentos de caña de

azúcar para la alimentación de las larvas, se agregó una porción de

algodón humedecida con solución fisiológica para evitar el

desecamiento de las pupas. BIOLOGICAS

2.3.4. Recuperación, disección y montaje de adultos de Prosaldius

saccharidis

Los adultos de P. saccharidis fueron recuperados de las CIENCIAS cañas de azúcar que se llevaron a laboratorio. Parte de la población se utilizó paraDE la crianza y obtención de huevos, la otra, para la disección, montaje y descripción morfológica. Se diseccionó la

cabeza, antenas, rostrum, protórax, élitros, alas metatorácicas, patas

protorácicas, patas mesotorácicas, patas metatorácicas y abdomen

del insecto utilizando pinzas, agujas y alfileres. El montaje se realizó

utilizando el estereoscopio (Anexo 5). Se colocaron las estructuras en BIBLIOTECAláminas portaobjetos, fijándolas con bálsamo de Canadá y se cubrieron con laminillas. Con el fin de observar y describir mejor las

partes del insecto de mayor grosor se elevó el cubreobjetos con dos

bandas de papel de 6 mm de largo y 2 mm de ancho

aproximadamente.

2.3.5. Descripción de la morfología de los estados biológicos

2.3.5.1. Descripción del huevo

Los huevos almacenados en la placa Petri fueron llevados al

estereoscopio para determinar y caracterizar el color, forma y

superficie. Las mediciones del largo y ancho, se realizaron utilizando

imágenes fotogramétricas proporcionadasBIOLOGICAS por el estéreo Olympus

SZX16 (Anexos 6 y 7).

2.3.5.2. Descripción de la larva

Las larvas se llevaron al estereoscopio en placas de Petri CIENCIAS para la observación de las características morfológicas: color de cuerpo y cápsulaDE cefálica, forma, superficie, tipo de larva, números de segmentos abdominales y presencia de setas; estas observaciones se

realizaron para cada instar. La medición del largo y ancho del cuerpo

de las larvas se realizó sumergiéndolas previamente en agua caliente

para evitar el movimiento y oscurecimiento. Se disectó la cabeza de

cada espécimen, se midió el largo, ancho y se describió las estrías y BIBLIOTECAsuturas cefálicas (Anexos 8, 9 y 10).

2.3.5.3. Descripción de la pupa

La descripción morfológica fue realizada en base al largo y

ancho de la pupa y cámara pupal (Anexos 11 y 12). Se realizó la

descripción del color, forma, superficie, tipo de pupa y presencia de

setas.

2.3.5.4. Descripción del adulto

La descripción morfológica de los adultos se realizó mediante

el estereoscopio Olympus SZX16. Se registró la longitud, ancho y

color de la cabeza y cuerpo (AnexoBIOLOGICAS 13). Se realizaron las

descripciones morfológicas de las estructuras disectadas y montadas.

- En la cabeza, se describió la forma, superficie y color del aparato

bucal, tipo de antenas, ojos compuestos, rostrum; presencia de

suturas y longitud de antenas y rostrum (Anexo 14). CIENCIAS - En el tórax, se describió el protórax, forma, color, superficie, diámetro delDE borde anterior y posterior (Anexo 15), presencia de suturas y setas; en el pterotórax, suturas, placas del esternón,

pleura y tergo del mesotórax y metatórax.

- En las patas protorácicas, mesotorácicas y metatorácicas, se

describió la forma, color, superficie, presencia de setas,

pubescencias y medidas del fémur, tibia, tarsómeros y uña BIBLIOTECA(Anexos 16, 17 y 18). - En los élitros, se describió la forma, color y número estrías e

interestrías. En las alas metatorácicas, se describió la venación.

- En el abdomen, se realizó las medidas del borde anterior y

posterior (Anexo 15), número y forma de esternitos y tergitos.

2.3.6. Descripción de la genitalia de los adultos

Se removió el abdomen de los especímenes utilizando

alfileres y se extrajo los esternitos terminales, aedeagus, tegmen,

espermateca, coxito y estilos. Se realizó los montajes en bálsamo de

Canadá, elevándose los cubreobjetos con dos bandas de papel de 6

mm de largo y 2 mm de ancho aproximadamente (Angulo y Weigert,

1977; Castañeda y col., 2007; Gaiger y Vanin,BIOLOGICAS 2008). La descripción

morfológica de los montajes se realizó en el estereoscopio Olympus

SZX16.

2.3.7. Análisis estadístico CIENCIAS Los datos obtenidos de las mediciones de huevo, larva I, II, III,

pupa, cámara DEpupal y adulto de P. saccharidis fueron procesados en

Microsoft Excel 2013 para obtener el promedio y la desviación

estándar.

BIBLIOTECA

III. RESULTADOS

3.1. Ubicación taxonómica. Según los autores (Anderson, 2002; Barriga, 2010;

GBIF Backbone taxonomic, 2017; Gómez, 2013; Lanteri y Cols., 1997;

Robert y Gentili, 1996) Prosaldius saccharidis tiene la siguiente ubicación

taxonómica:

Reino: Animalia

Filo: Arthropoda BIOLOGICAS Clase: Insecta Linnaeus, 1758

Subclase: Pterygota Linnaeus, 1758

Orden: Coleoptera Linnaeus, 1758

Suborden: PolyphagaCIENCIAS Emery, 1886

Superfamilia:DE Curculionoidea Latreille, 1802

Familia: Curculionidae Latreille, 1802

Subfamilia: Baridinae Schonherr, 1836

Tribu: Madopterini Lacordaire 1866

Subtribu: Zygobaridina Pierce 1907 BIBLIOTECA Género: Prosaldius Zimmerman 1994

Especie: Prosaldius saccharidis Barber 1927

3.2. Mediciones de los estados biológicos de Prosaldius saccharidis

En la Tabla 1 se observan las mediciones del largo y ancho promedio del

huevo de P. saccharidis de 0.54 ± 0.03 mm y 0.27 ± 0.04 mm respectivamente. La

larva I, II y III presentaron una longitud total, desde el ápice de las mandíbulas

hasta el último segmento abdominal, de 2.34 mm, 4.13 mm y 5.55 mm

respectivamente. La pupa presenta una longitud promedio de 4.22 ± 0.21 mm,

ancho ventral promedio de 1.74 ± 0.10 mm y ancho lateral promedio de 1.20 ± 0.08

mm. La cámara pupal presenta una longitud promedio de 5.08 ± 0.40 mm y ancho

promedio de 2.11 ± 0.26mm. BIOLOGICAS

En la Tabla 2 se observan las mediciones de los diferentes segmentos y

apéndices del adulto de P. saccharidis. La longitud total del adulto, desde el ápice

del rostrum hasta el último segmento abdominal es de 5.18 mm. La antena

presenta una longitud total, desdeCIENCIAS la base del escapo hasta el último artejo de la maza antenal de 1.35 mm.DE Las patas del adulto presentaron una longitud total, desde la base del fémur hasta el ápice de la uña, de 2.04 mm en las patas

protorácicas; 1.9 mm, en las patas mesotorácicas; 2.16 mm, en las patas

metatorácicas.

BIBLIOTECA

Tabla 1. Promedio y desviación estándar (mm) de las mediciones realizadas en huevo, larva I, larva II, larva III, pupa y cámara pupal de Prosaldius saccharidis Barber, utilizando estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW.

Estado biológico Promedio (mm) ± D.E. (mm) Largo 0.54 ± 0.03 Huevo Ancho 0.27 ± 0.04 Largo 0.59 ± 0.04 Cápsula cefálica Ancho 0.58 ± 0.04 Largo 1.58 ± 0.08 Larva I Cuerpo Ancho 0.60 ± 0.05 Largo 0.17 ± 0.02 Mandíbula BIOLOGICAS Ancho de base 0.13 ± 0.02 Largo 0.78 ± 0.02 Cápsula cefálica Ancho 0.78 ± 0.01 Largo 3.13 ± 0.13 Larva II Cuerpo Ancho 1.05 ± 0.09 Largo 0.22 ± 0.02 Mandíbula CIENCIAS Ancho de base 0.18 ± 0.01 Largo 0.94 ± 0.02 CápsulaDE cefálica Ancho 0.80 ± 0.02 Largo 4.36 ± 0.18 Larva III Cuerpo Ancho 1.25 ± 0.08 Largo 0.25 ± 0.02 Mandíbula Ancho de base 0.21 ± 0.02 Largo 4.22 ± 0.21 Pupa Ancho ventral 1.74 ± 0.10 BIBLIOTECAAncho lateral 1.20 ± 0.08 Largo 5.08 ± 0.40 Cámara pupal Ancho 2.11 ± 0.26

Tabla 2. Promedio y desviación estándar (mm) de las mediciones realizadas en el adulto de Prosaldius saccharidis Barber, utilizando estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW.

Adulto Promedio (mm) ± D.E. (mm) Largo 1.49 ± 0.15 Cabeza y protórax Ancho 1.03 ± 0.07 Largo del escapo 0.60 ± 0.07 Antenas Largo de pedicelo y artejos 0.75 ± 0.11 Largo 1.33 ± 0.09 Rostrum Ancho basal 0.51 ± 0.65 Ancho apical 0.20 ± 0.03 Borde anterior 0.80 ± 0.09 Protórax Borde posterior 1.23 ± 0.09 Borde anterior BIOLOGICAS1.30 ± 0.01 Borde posterior 0.42 ± 0.02 Abdomen Largo 2.36 ± 0.14 Ancho 1.09 ± 0.07 Largo 0.93 ± 0.10 Fémur Ancho menor 0.20 ± 0.02 Ancho mayor 0.30 ± 0.05 Patas protorácicas Largo 0.67 ± 0.12 Tibia CIENCIASAncho menor 0.12 ± 0.02 Ancho mayor 0.16 ± 0.02 Tarso y uña Largo 0.44 ± 0.08 DE Largo 0.87 ±0.14 Fémur Ancho menor 0.16 ± 0.02 Ancho mayor 0.26 ± 0.04 Patas mesotorácicas Largo 0.51 ± 0.08 Tibia Ancho menor 0.47 ± 0.48 Ancho mayor 0.15 ± 0.01 Tarso y uña Largo 0.52 ± 0.03 Largo 0.91 ± 0.32 Fémur Ancho menor 0.16 ± 0.03 Ancho mayor 0.31 ± 0.04 BIBLIOTECAPatas metatorácicas Largo 0.67 ± 0.02 Tibia Ancho menor 0.14 ± 0.18 Ancho mayor 0.15 ± 0.01 Tarso y uña Largo 0.58 ± 0.02

3.3. Descripción morfológica

3.3.1. Huevo

En la Fig. 1 se observa el huevo de color blanco amarillento,

traslúcido en un inicio, de superficie lisa y brillante. Conforme avanza el

desarrollo embrionario la coloración del corion cambia a crema oscuro,

manteniendo la forma ovalada, superficie y brillo.

3.3.2. Larva BIOLOGICAS

La Fig. 2 muestra la larva de P. saccharidis con cabeza de tipo

prognata, forma ovalada, superficie lisa y esclerosada. En la larva I la cápsula cefálica es de colorCIENCIAS ámbar y con reducida presencia de setas cortas y erguidas. En la larva II la cápsula cefálica es de color ligeramente más oscuro o café claro. DEEn la larva III, presenta un color café oscuro. La parte anterior de la cabeza presenta mayor número de setas. Las suturas de la

cápsula cefálica se evidencian con mayor claridad conforme la larva se

desarrolla. La sutura coronal y frontal se observan unidas, acentuándose la

sutura ecdisial, con su forma típica en “Y” invertida. La frente presenta forma

triangular, donde la endocarina, bien definida desde la larva I, recorre más

BIBLIOTECAde la mitad de la frente, sin llegar a la sutura fronto-clipeal. En la parte

posterior de la cabeza se observa una mancha marrón en forma de “V”,

volviéndose mas notoria en la larva III. En la parte anterolateral, se

encuentran los ocelos, de color negro y redondeado.

En la Fig. 3 se distingue el aparato bucal de tipo masticador,

superficie esclerotizada, con forma triangular y un diente. El clípeo es de

forma trapezoidal y corto; a ambos lados se observa la presencia del

scrobiculum, pequeño y oscuro; el labro es semirectangular con bordes

redondeados y gran número de setas en la parte anterior. La maxila es más

clara que la mandíbula, los palpos maxilares son cortos y cónicos, con un

artejo; el labio posee prementón semicircular y palpos labiales pequeños,

de forma cónica y con un solo artejo.

En la Fig. 4 se observa la larva de tipoBIOLOGICAS curculioniforme, el cuerpo

presenta superficie suave y blanda, de color blanco crema, cubierta por una

reducida cantidad de setas cortas, erguidas y distribuidas de forma

discontinua desde la cabeza hasta el último segmento abdominal. El tórax

de la larva está compuesto de tres segmentos, siendo el protorácico más CIENCIAS largo que los segmentos meso y metatorácico. En el abdomen, se distinguen nueve segmentos.DE

BIBLIOTECA

11 X

BIOLOGICAS

CIENCIAS DE

11 X

Fig. 1. A. Huevo de Prosaldius saccharidis en fase inicial, B. Huevo embrionado de color crema oscuro.

BIBLIOTECA

A sfc sf

ec sc md

8 X

BIOLOGICAS

fr CIENCIAS v DE 8X

Fig. 2. Cápsula cefálica de larva de Prosaldius saccharidis. A. Vista dorsal de larva I, B. Vista dorsal de larva II, sfc: sutura fronto-clipeal, ec: endocarina, sf: sutura frontal, sc: sutura coronal, md: mandíbula, o: ocelo, fr: frente, v: mancha en forma de “V”.

BIBLIOTECA

A l scr

11 X mx

pm BIOLOGICAS

pmx pl

11 X

C CIENCIAS

clDE

11 X

Fig. 3. Aparato bucal de la larva de Prosaldius saccharidis. A. Mandíbula, labro, scrobiculum, maxila en vista dorso-frontal. B. Maxila, prementón y palpos maxilares BIBLIOTECAen vista dorsal, C. labro en vista dorsal, l: labro, mb: mandibula, scr: scrobiculum, mx: maxila, pm: prementón, pmx: palpos maxilares, pl: palpos labiales, cl: clipeo.

11 X

B BIOLOGICAS

11 X

CIENCIAS

DEC

11 X

BIBLIOTECAFig. 4. Larvas de Prosaldius saccharidis. A. Larva I, B. Larva II, C. Larva III.

3.3.3. Pupa

La Fig. 5 muestra la pupa de P. saccharidis, de tipo exarata. El

cuerpo presenta forma ovalada, de color crema en un inicio hasta café claro

a medida que la pupa madura, se observa los ojos compuestos negros y

ovalados. Las setas son cortas, erguidas, en un número reducido y

distribuidas al azar. El rostro es alargado hasta el pronoto y reposa sobres

las patas protorácicas y mesotorácicas. En las antenas, genículo-clavadas,

se diferencia claramente el escapo, el pedicelo, el funículo y la maza con

segmentación visible, alcanzando al borde BIOLOGICAS anterior del pronoto. Los

apéndices, patas y élitros, son fácilmente reconocibles. Los élitros presentan

estrías e interestrías bien definidas, ventralmente alcanzan a la tibia y

segundo segmento abdominal. Las patas se alojan por debajo de las alas.

En el abdomen se distingue dorsal y ventralmente siete y cinco segmentos CIENCIAS respectivamente, el último con el urogomphi. DE En la Fig. 6 se observa la cámara pupal, formada por la larva III

antes del empupamiento.

BIBLIOTECA

A B C

BIOLOGICAS 11 X 11 X 11 X

Fig. 5. Pupa de Prosaldius saccharidis. A. Vista ventral de pupa recién formada, B. Vista lateral de pupa recién formada, C. Vista ventral de pupa a días de emerger.

CIENCIAS DE

4X Fig.BIBLIOTECA 6. Cámara pupal de Prosaldius saccharidis, localizada cerca al nudo del tallo.

3.3.4. Adulto

3.3.4.1. Macho

En la Fig. 7 se observa el macho de P. saccharidis, el cuerpo se

encuentra organizado en tres partes. El primer tagma es la cabeza o

cápsula cefálica; el segundo, el tórax; y el último, el abdomen. El tórax a

su vez se divide en protórax y pterotórax.

En la Fig. 8 se observa la cabeza delBIOLOGICAS adulto de P. saccharidis,

de tipo prognata. Presenta forma semiesférica, compacta, esclerosa,

glabra, de color negro, con superficie brillante donde se puede observar

pequeñas puntuaciones distribuidas desuniformemente, pero

ordenándose en filas a lo largo del rostrum. El rostrum tiene una forma CIENCIAS curvada. Los ojos compuestos se encuentran a los lados, contiguos a la base de la cabeza,DE son oscuros, ovalados y con gran cantidad de puntuaciones.

Las antenas, de tipo genículo-clavada están ubicadas en los dos

tercios basales de la longitud del rostrum, donde se inserta el escapo de

base esférica; el pedicelo se encuentra en forma perpendicular al escapo BIBLIOTECAy da la forma acodada a la antena; el flagelo está formado por diez artejos, donde los últimos cuatro forman el mazo antenal o club, de

manera compacta sin estar soldados, y más ancho que los artejos

anteriores. Las setas están distribuidas por toda la antena y en mayor

número en la base de cada artejo y mazo antenal.

En la Fig. 8 se observa las mandíbulas en la parte apical de

rostrum, del mismo color que la cabeza, completamente esclerosadas,

de forma cónica y estrechas, con presencia de un solo diente. La

cabeza, observada ventralmente, carece del área gular, y en la parte

posterior, el borde del orificio occipital se une con el borde anterior del

protórax, mediante un ensamblaje preciso entre ambos.

BIOLOGICAS

En la Fig. 9 se observa el protórax, de color negro brillante,

superficie cubierta por pequeños poros, glabra, de forma trapezoidal en

vista frontal y semiredondeada en vista dorsal, los bordes laterales son

semiredondeados y los bordes anteriores y posteriores son casi rectos; CIENCIAS la región anterior es más angosta que la posterior. El pronoto exhibe una superficie semiplana,DE en vista ventral se observa el prosterno, que junto con la apófisis prosternal simulan una forma de copa. Entre las coxas, se

nota una línea, las coxas están separadas y rebordeando al prosterno;

en la parte anterior esta la sutura pleuroesternal que separan al

prosterno del proepimerón.

BIBLIOTECA

A B

BIOLOGICAS

8 X 8 X

C c

CIENCIAS oc DE ro ab pt pr 8 X

Fig. 7. Adulto de Prosaldius saccharidis. A. Vista dorsal, B. Vista ventral, C. Vista lateral, ab: abdomen, pt: pterotórax, pt: protórax, c: cabeza, oc: ojo compuesto, ro: rostrum.

BIBLIOTECA

A oc

BIOLOGICAS md

11 X

B CIENCIASma

fl DE fu

11 X

Fig. 8. Cabeza de Prosaldius saccharidis. A. Vista lateral, B. Antena en vista dorsal, oc: ojo compuesto, ro: rostrum, md: mandíbula, es: escapo, pe: pedicelo, fl: flagelo, ma: BIBLIOTECAmazo antenal, fu: funículo.

11 X

B BIOLOGICAS

CIENCIAS 11 X

BIBLIOTECA 11 X

Fig. 9. Protórax del adulto de Prosaldius saccharidis. A. Vista dorsal, B. Vista ventral, C. Vista frontal, ps: prosterno, aps: apófisis prosternal, sps: sutura pleuroesternal, pep: proepimerón.

El pterotórax, dividido en mesotórax y metatórax, presenta un color café

claro, con abundantes puntuaciones pequeñas distribuidas irregularmente. En la

Fig. 10A se observa el mesotórax de forma rectangular con bordes

semicirculares, el área tergal se observa corto sus estructuras reducidas, debido

a la asociación con los élitros. En la parte anterior se observa el mesoscutum

que ocupa la mayor área tergal del mesotórax, en medio del mesoscutum se

encuentra una línea longitudinal que lo divide simétricamente. En la parte

anterolateral se observa dos prolongaciones cuticulares dando la forma de curva

al mesonoto, y en donde la cutícula continúa hacia delante como una membrana

intersegmental. En la parte posterior del áreaBIOLOGICAS tergal se observa el

mesoscutellum, que se prolonga hacia atrás formando una apófisis ovalada,

característico el mesoscutellum. La Fig. 11 muestra en el área pleural del

mesotórax, al mesoepimerón semiredondeado, por encima del mesoepisternon y

en la parte superior del margen anterior del élitro. El mesoepisternon es CIENCIAS ligeramente más alargado que el mesoepimeron. En el área esternal del mesotórax, se observa alDE mesoster num, más ancho que largo, donde se insertan las coxas redondeadas, en el margen posterolateral.

En la Fig. 12 se observan los élitros de forma cónica, elongada y

convexa, con el ángulo posterior redondeado y cubierto con abundantes setas

cortas y erguidas; el margen posterior es menos ancho que el anterior. Los BIBLIOTECAélitros cubren el mesotórax, hasta el último segmento abdominal. En cada élitro la cutícula externa forma una serie de diez crestas y once canales longitudinales

denominados estrías e interestrías respectivamente. Las estrías se encuentran

fuertemente punteadas de forma ordenada y lineal.

La Fig. 10B se observa que el metatórax es más largo y ancho que el

mesotórax. El prescutum del área tergal metatorácica continua hasta los brazos

prealares. El metascutum, la zona más extensa, posee dos zonas laterales

simétricas, separadas por un surco longitudinal ancho, el surco scutellar. El

metascutellum es estrecho, de cutícula débil y se extiende a los laterales

formando lóbulos cónicos. La Fig. 11 muestra el área pleural metatorácica más

amplia que la mesotorácica, el metaepisternón es alargado y bordeado por la

parte superior por el élitro. En el área esternal se observa el metasternum, más

ancho que largo, y más amplio que el mesosternun. Las coxas son redondeadas,

aplanadas por la parte anterior. BIOLOGICAS

En la Fig.13 se aprecian las alas metatorácicas de tipo membranosas,

estas se doblan dos veces y se pliegan para ocultarse bajo los élitros. La

venación está formada por cuatro venas longitudinales esclerosadas en la mitad CIENCIAS basal de la lámina alar y dos venas longitudinales no esclerosadas en la mitad distal de la lámina alar. LaDE primera vena longitudinal esclerosada es la fusión de C, Sc y R, ubicada en la zona humeral. La vena M es muy reducida y se fusiona

más de la mitad de su longitud con el extremo distal de la vena C+Sc+R. La

vena Cu inicia en la base alar y sigue su trayecto hasta la altura de la vena M,

donde se curva y continua la vena Cu1 situada en el centro de la lámina alar

proyectándose hasta poco antes del margen inferior del ala. La vena A inicia en BIBLIOTECAla base alar y persiste hasta más de la mitad de la longitud de la vena Cu. En la mitad distal de la lámina alar se ubica la M1 y bajo esta, en el margen distal, la

M2, ambas sin esclerosamiento, reconocidas por ser franjas de cutícula más

oscura.

En la Fig. 14 se observan las patas del adulto de tipo caminadoras,

fuertemente esclerosadas, las coxas son redondeadas, con ornamentaciones de

orificios pequeños y se encuentran separadas por una sutura transversal, los

trocánteres son pequeños y delgados. Todas las patas del adulto de P.

saccharidis presentan las mismas estructuras con una única diferencia de

tamaño entre protorácicas, mesotorácicas y metatorácicas. Los fémures son los

segmentos más fuertes, la zona apical es más angosta que la zona distal,

presenta setas escasas y orificios pequeños distribuidos irregularmente. Las

tibias son delgadas, con puntuaciones y mayor grosor en la zona distal; en el

lado posterior se encuentra el espolón, erguido, de BIOLOGICASforma cónica y puntiaguda,

las setas se distribuyen con mayor abundancia en la parte terminal de la tibia,

formando una pubescencia de tamaño y forma que parecida al espolón. El tarso

presenta cinco segmentos o tarsómeros, los tres primeros están cubiertos por

abundantes setas, el primer tarsito es más largo que el segundo, el tercer tarsito CIENCIAS es bilobulado, el cuarto tarsito es diminuto y se encuentra oculto en el tarsito 3, el tarsito 5 es más alargadoDE que los anteriores y presenta escasas setas, lleva dos uñas abiertas, simples y curvas; no se observa presencia de arolium, pulvilli

y empodium.

BIBLIOTECA

A mesoscutum

mesoscutellum BIOLOGICAS 8 X

B metascutum CIENCIAS DE

metascutellum Surco scutellar 10 X

Fig. 10. A. Mesotórax del adulto de Prosaldius saccharidis, vista dorsal, B. Metatórax del adulto de Prosaldius saccharidis, vista dorsal.

BIBLIOTECA

A mesoepimeron

metaepisternon

mesoepisternon 8 X

B mesoepimeron BIOLOGICAS metaepisternon

mesoepisternon

8 X CIENCIAS C

mesosternumDE

metasternum

6 X

Fig. 11. Pterotórax del adulto de Prosaldius saccharidis. A. Pterotórax con élitro, vista del BIBLIOTECAárea pleural, B. Pterotórax sin élitro, vista del área pleural, E. Pterotórax en vista ventral.

8X 8X

Fig. 12. Élitros del adulto de Prosaldius saccharidis, mostrandoBIOLOGICAS estrías e interestrías, en vista dorsal.

CIENCIAS A B DE M1 M2

C+Sc+R M Cu 1

Cu A

6X 8X BIBLIOTECA Fig. 13. Ala metatorácica de Prosaldius saccharidis. A. Vista dorsal. B. Vista dorsal de las alas metatorácicas en el metatórax del adulto, C: costal, Sc: subcostal, R: radial, M: medial, Cu: cubital, A: anal.

En la Fig. 15 se observa el abdomen del adulto de forma cónica, cubierto

dorsalmente por los élitros, bajo ellos se observa un área dorsal con cutícula

delgada de color café claro y translúcida. En la área ventral y lateral, se observa el

abdomen esclerosado, de color negro y con ornamentaciones por la presencia de

puntuaciones. El abdomen consta de siete esternitos o placas abdominales

ventrales bien diferenciadas y siete tergitos o placas dorsales, los cuales se curvan

hacia arriba hasta el final del abdomen. En el área tergal abdominal se observa a

los seis primeros tergitos con la misma longitud, pero en anchura se observa una

disminución gradual hacia atrás; el tergito VII o pigidio es ligeramente más

esclerosado y largo, los bordes anterolaterales presentanBIOLOGICAS dos hendiduras ovaladas

y grandes, en la parte central dos surcos gruesos paralelos longitudinalmente y en

el borde posterior numerosas setas cortas y erguidas; este tergito posee forma

trapezoidal. En el área esternal abdominal, el borde anterior del esternito I presenta

dos cavidades redondeadas y en la parte central una protuberancia redondeada, el CIENCIAS esternito II es casi del mismo largo, pero menos ancho que el esternito I, los esternitos III y IV son cortos,DE casi igual de anchos y presentan mayor cantidad de setas que los esternitos I y II. El esternito V o placa subgenital exhibe abundantes

setas y forma trapezoidal.

La Fig. 16 muestra los esternitos VI y VII, ubicados en el interior del abdomen.BIBLIOTECA El esternito VI es muy corto, con el mismo ancho y forma característica del esternito V; el esternito VII presenta forma de “Y”.

A B coxa fémur

trocánter

espolón

tibia pretarso

tarso 10X 10X BIOLOGICAS

C D

tarsómeros CIENCIAS DE

uñas

11X 10.5 X

Fig.BIBLIOTECA 14. Patas de Prosaldius saccharidis. A. Patas protorácicas, B. Patas mesotorácicas, C. Tarso, pretarso y uña de la pata protorácica, D. Pata metatorácica.

11X

B BIOLOGICAS

11X CIENCIAS

DE C

BIBLIOTECA

11X

Fig. 15. Abdomen de Prosaldius saccharidis. A. Abdomen de la hembra en vista dorsal, B. Abdomen del macho en vista ventral, C. Abdomen de la hembra en vista ventral.

3.3.4.2. Hembra

Presenta las mismas características externas de forma, tamaño,

superficie y estructuras ya descritas, con la única diferencia en la forma

de los esternitos V, VI y VII (Fig. 15). El esternito V presenta forma

ligeramente puntiaguda o cónica. El esternito VI es muy corto, de igual

ancho y forma que el esternito V. El esternito VII presenta forma de “Y”

(Fig. 18). Los esternitos VI y VII se ubican en el interior del abdomen. El

tergito VII o pigidio posee forma cónica en las hembras.

3.3.5. Genitalia BIOLOGICAS

La genitalia comprende los órganos de copulación y estructuras

accesorias; se encuentran invaginadas dentro del abdomen, en la

cámara genital procedente de una membrana unida a los últimos tergos

y esternitos. CIENCIAS

3.3.5.1. Macho DE La Fig. 17 muestra la genitalia del macho. El esternito VI se

encuentra unido al esternito VII. El esternito VII posee la forma atípica de

“Y”, la proyección central es una estructura de cutícula tubular curveada

hacia arriba llamada espícula gastrale, más larga que la parte en forma

de “V”. Desde el borde apical de la espícula gastrale se inicia el BIBLIOTECAaedeagus o pen is, formado por un solo lóbulo aplanado o tubo aedeagal, esclerosado y en forma rectangular, los laterales se doblan hacia abajo,

dándole una apariencia de cuchara con la punta redondeada.

El aedeagus continúa hacia atrás formando dos filamentos, los

apodemas aedeagales de casi el doble de largo del tubo aedeagal,

mostrando la misma forma curvada que el aedeagus. El tegmen ubicado

desde el margen posterior del tubo aedeagal es corto, de cutícula débil,

y dividido en dos partes, los parámeros y el manubrio. Los parámeros

son dos prolongaciones en forma de anillo que rodeando a los

apodemas aedeagales. El manubrio, ubicado a la mitad de los

parámeros del borde posterior, es una prolongación ligeramente más

corta y gruesa que los parámeros.

BIOLOGICAS

3.3.5.2. Hembra

En la Fig. 18 se observa la genitalia de la hembra. Los

esternitos VI y VII se encuentran unidos. El esternito VII es CIENCIAS esclerotizado y presenta la forma atípica de “Y”; se divide en lóbulo apical y espículaDE ventral. El lóbulo apical se ubica en la parte anterior del esternito y presenta dos prolongaciones curveadas hacia adentro

engrosadas en la parte apical y cubiertas por numerosas setas cortas,

en la parte posterior se prolonga hacia el interior del abdomen la

espícula ventral, tan larga como el lóbulo apical y ligeramente más

ancho. BIBLIOTECA En la Fig. 19 se muestra la terminalia abdominal, con una

protuberancia ventral emergente o coxito de forma cónica y bilobulada

en la parte apical. En cada lóbulo se observa un estilo o hemiesternito.

Los estilos son cortos y cilíndricos. La espermateca es gruesa y tiene

forma de coma, el cornu es globoso y en el borde superior se aloja el

ramus pequeño y cónico, el nódulo simula una cola curveada, es más

largo y estrecho que el cornu, y termina en punta.

BIOLOGICAS

CIENCIAS

BIBLIOTECA

A B

T VII

S VI

11X 11X BIOLOGICAS

C D

CIENCIAS S VII DE espícula gastrale

11X 11X

Fig. 16. Esternitos y tergitos terminales del abdomen del macho de Prosaldius BIBLIOTECAsaccharidis. A. Tergito VII y esternito VI en vista dorsal, B. Tergito VII en vista dorsal, C. Tergito VII y esternito VII unidos, vista dorsal, D. Esternito VII.

A B C 11X 11X BIOLOGICAS 11X

ae CIENCIAS pm DE ma

tg aa

D E 11X 11X

Fig.BIBLIOTECA 17. Genitalia del macho de Prosaldius saccharidis. A. Genitalia, tergo VII y esternito VII, vista ventral, B. Vista dorsal, C. Vista ventral, D. Aedeagus y tegmen en vista ventral, E. Aedeagus, vista lateral, ae: tubo aedeagal, aa: apodema aedeagal, tg: tegmen, ma: manubrio, pm: parámeros.

A B T VII

S VI 11X 11X BIOLOGICAS

C D la S VI

CIENCIAS

DES VII ev

11X 11X

Fig. 18. Esternitos y tergitos terminales del abdomen de la hembra de Prosaldius saccharidis. A. Tergito VII y esternito VI en vista dorsal, B. Esternito VI en vista dorsal, C. Tergito VII y esternito VII unidos, vista dorsal, D. Esternito VII, la: lobulo BIBLIOTECAapical, ev: espícula ventral.

A cx st

11X

BIOLOGICAS

B R N cor CIENCIAS DE

11X

Fig. 19. Genitalia de la hembra de Prosaldius saccharidis. A. Coxito y estilos en vista lateral, B. Espermateca, vista lateral, st: estilos, cx: coxito, cor: cornu, N: nódulo, R: ramus.

BIBLIOTECA

IV. DISCUSIÓN

En la Fig. 1 el huevo de Prosaldius saccharidis, presenta un diámetro

ecuatorial ligeramente superior a lo registrado por Wille (1952), 0.04 mm, esta

diferencia casi mínima puede deberse a los avances tecnológicos de observación

microscópica y softwares de medición. Las características morfológicas de color,

superficie y brillo coinciden con lo registrado por Mendoza (2013), Saldarriaga

(1981) y Wille (1952).

En la Fig. 2 el cambio de color de la cápsula cefálicaBIOLOGICAS se explica debido al proceso de esclerosamiento, el cual aumenta con la edad (Martínez y col., 2014).

Este proceso está a cargo principalmente de la producción de escleroproteínas, las

cuales se forman por la conversión de proteínas larvales, elásticas, relativamente

blandas, cuya finalidad es la de brindar sostén y una cubierta rígida de protección (Rivera y cols., 2009). Los datos muestranCIENCIAS que la cabeza en la fase larval es casi tan ancha como larga, característica de la familia Curculionidae (Ulmer y cols.,

2007; Viedma, 1970). La longitudDE de la sutura coronal es ligeramente más larga

que las suturas frontales, juntas forman la sutura ecdisial, la endocarina es

claramente visible desde larva I y recorre más de la mitad de la frente, sin llegar a

la sutura fronto-clipeal, resultados similares a lo reportado por Marvaldi (2003) para

los miembros de la subfamilia Baridinae.

BIBLIOTECA En la Fig. 3 se observa que la cabeza de la larva es de tipo prognata, ya

que se proyecta hacia adelante siguiendo el eje longitudinal del cuerpo; las

mandíbulas se ubican en la región anterior, esclerotizadas y con forma triangular,

tal como se señala para diferentes especies de curculionidos como Rhyssomatus

Subtilis (Emiliano, 2014), Neochetina eichhoriae (Martínez, 2011), Conotrachelus

psidii (Monroy e Insuasty, 2006), Metamasius spp. (Rodríguez, 2010), Eurhonus

magnificus (Ulmer y cols., 2007), entre otros.

La Fig.4 muestra las características externas del cuerpo de la larva de P.

saccharidis, ápoda y de aspecto curvo o en forma de “C”, lo que concuerda con lo

mencionado por Mendoza (2013), Saldarriaga (1981) y Wille (1952). La longitud

total promedio (cabeza y cuerpo) es de 5.16 ± 0.2 mm, en referencia a este dato

Saldarriaga (1981) y Wille (1952), señalan que en suBIOLOGICAS etapa final la larva llega a

medir alrededor de 6 mm, contrario a ello, Mendoza (2013) describe que las larvas

de P. saccharidis completamente desarrolladas llegan a medir cerca de 5 mm.

En la Fig. 5 se muestra que la pupa de P. saccharidis es exarata, CIENCIAS caracteriza por tener los apéndices fuertemente adosados contra el cuerpo, típica de la familia Curculionidae (Duque,DE 2012; Emiliano, 2014; Monroy e Insuasty. 2006; Rodríguez, 2010, Vallejo y Cols., 2007). Morfológicamente, la pupa posee la misma

apariencia del adulto con diferencia en el color y la consistencia del cuerpo, lo

mismo que se señala en trabajos similares con otros curculionidos (Emiliano, 2014;

Monroy e Insuasty, 2006).

BIBLIOTECAEn la Fig. 7 se observa que el adulto de P. saccharidis, presenta características externas de forma, color y superficie comunes a la sub familia

Baridinae (Lanteri y Cols. 1997, Marvaldi y Lanteri. 2005). El tamaño de las

mandíbulas concuerda con lo registrado por Anderson (2002), quien señala que en

el género Prosaldius las mandíbulas no son prominentes. La longitud del rostrum

no presenta diferencias en cuanto al sexo de los individuos estudiados, contrario a

lo señalado por Ontiveros (2016), quien menciona que en muchos géneros de la

familia Curculionidae las hembras poseen un pico más largo y delgado que los

machos. Martínez y cols. (2014) describen esta diferencia de longitud en

Neochetina eichhorniae (Coleoptera: Curculionidae), asimismo Domínguez y cols.

(2015) describen que existe una mayor curvatura y menor longitud en el rostrum de

los machos de Conotrachelus perseae (Coleoptera: Curculionidae) en relación con

las hembras.

BIOLOGICAS

En la Fig. 8 se distingue que las antenas en P. saccharidis son de tipo

genículo-clavadas, con el escapo largo, formando un ángulo casi recto con el

pedicelo y el flagelo, en donde el ápice presenta una maza o clava, el funículo

presenta setas ligeramente largas y finas, característica descrita por Anderson CIENCIAS (2002) para el género Prosaldius. Se ubican en los dos tercios basales de la longitud del rostrum, dondeDE se inserta el escapo. Alonso (2015), señala que el flagelo se encuentra formado por nueve artejos, como número básico, siendo

común la reducción en número, pero puede llegar a ser superior por subdivisión, tal

como es el caso de P. saccharidis, donde el flagelo está formado por diez artejos y

las setas se distribuyen por toda la antena, con mayor presencia en la base de

cada artejo y mazo antenal, lo que concuerda con las claves taxonómicas presentadasBIBLIOTECA por Marvaldi y Lanteri (2005), para la determinación de los principales taxones de gorgojos adultos Sudamericanos.

En la Fig. 9 se percibe que el protórax de P. saccharidis posee forma

trapezoidal con bordes laterales semiredondeados, bordes anterior y posterior casi

rectos, asimismo se distingue que la región anterior es más angosta que la

posterior, característica que también es mencionada por Martínez y Cols. (2014)

para Neochetina eichhorniae (Coleoptera: Curculionidae). En la Fig.11, se observa

la presencia del mesoepimerón semiredondeado, sobre el mesoepisternón y en la

parte superior del margen anterior del élitro, carácter taxonómico, que permite

identificar a los miembros de la subfamilia Baridinae (Anderson, 2002; Davis, 2009;

Marvaldi y Lanteri, 2005; Soto, 2007; Soto, 2017). Sin embargo, esta característica

también es compartida con la subfamilia Ceutorhynchinae,BIOLOGICAS diferenciándose de los

Baridinae por presentar el VII tergito o pigidio expuesto y el uncus poco

desarrollado o ausente (Marvaldi y Lanteri, 2005; Soto, 2007).

En la Fig. 12 se observa que los élitros de P. saccharidis se encuentran CIENCIAS cubriendo el tergito VII o pygydium coincidiendo con lo señalado por Anderson (2002) para el género ProsaldiusDE . Los élitros poseen forma cónica, elongada, convexa y punta redondeada, con abundantes setas cortas y erguidas y una serie

de puntuaciones; características similares se registraron en Conotrachelus psidii

(Monroy e Insuasty, 2006), y Conotrachelus perseae (Domínguez y Cols., 2015).

Cada élitro presenta diez estrías y once interestrías, concordando con lo descrito

por Marvaldi y Lanteri (2005) y Ontiveros (2016). Los élitros en esta familia poseen unaBIBLIOTECA superficie dura y generalmente cóncava, brindando protección al segundo par de alas, membranosas (Alonso, 2015; Cruz; 2005). Las alas metatorácicas de P.

saccharidis son membranosas y poseen adaptaciones, modificaciones y

reducciones características de los coleópteros que les permiten usarse como

principal medio de locomoción aéreo, pero también doblarse y plegarse de un

modo preciso bajo los élitros (Domínguez, 2015). En la Fig. 13 se observa que la

venación de las alas membranosas de P. saccharidis está formada por cuatro

venas longitudinales esclerosadas en la mitad basal de la lámina.

La Fig. 14 muestra que en P. saccharidis, las tibias exhiben un espolón de

forma cónica y puntiaguda en el lado posterior de la zona distal, las setas se

distribuyen con mayor abundancia en la parte terminal de la tibia, asimismo presenta 5 tarsómeros. Referente a estos datos AlonsoBIOLOGICAS (2015), señala que usualmente el orden Coleoptera presenta dos espolones que pueden reducirse o

desaparecer y que los tarsos son básicamente de 5 artejos o tarsómeros. La

morfología del fémur en los curculionidos es muy similar en los tres pares de patas,

concordando con lo mencionado por Domínguez (2015). Martínez y cols. (2014) y Marvaldi y Lanteri (2005) mencionanCIENCIAS que las patas protorácicas proveen de numerosos caracteres para diferenciar una especie dentro de la familia

Curculionoidea, del mismoDE modo las tibias poseen características taxonómicas

diferentes entre especies o entre machos y hembras.

En las Figs. 15 y 16 se observa la región esternal del abdomen más

esclerotizada que la tergal, limitando fuertemente la movilidad al área entre la base

del abdomen y el metatórax, coincidiendo con lo registrado por Alonso (2015),

asimismoBIBLIOTECA se observa que el abdomen de P. saccharidis; macho y hembra, es forma

cónica, consta de siete esternitos o placas abdominales ventrales y siete tergitos en

el área dorsal. En la Fig. 15 se observa que los seis primeros tergitos poseen la

misma longitud, pero su ancho presenta una disminución gradual hacia atrás. En la

Fig.18 se observó que el tergito VII o pygydium posee diferencia morfológica entre

los sexos, tomando forma trapezoidal en el macho y cónica en la hembra, Monroy e

Insuasty (2006) señalan esta diferencia en C. perseae, donde el último tergito

abdominal en los machos es mucho más alargado y achatado hacia la parte

terminal; mientras que, en las hembras, fue más ancho lateralmente y termina en

forma ahusada.

La Fig. 17 muestra las estructuras de la genitalia masculina de P.

saccharidis, las que concuerdan con lo expuesto por MarvaldiBIOLOGICAS y Lanteri (2005) para

la Subfamilia Baridinae en el trabajo Clave de Taxones Superiores de Gorgojos

Adultos Sudamericanos, donde se señala que el tegmen en los adultos de esta

subfamilia es más corto que el aedeagus, el manubrio de igual forma es de menor

tamaño que la espícula gastrale y la placa dorsal del tegmen suele ser vestigial o CIENCIAS estar ausente. Todos estos caracteres en los coleópteros tienden a ser muy variados en forma, tamañoDE y estructuras (Castañeda y cols., 2007) y los diversos tipos de aedeagus tienen gran importancia en la sistemática de Coleoptera (Alonso,

2015).

En la Fig. 19 se distingue la genitalia de la hembra de P. saccharidis, la

espermateca es gruesa y tiene forma de coma, el cornu es globoso y el en borde

superiorBIBLIOTECA se aloja el ramus pequeño y cónico; el nódulo que simula una cola

curveada es más largo y estrecho que el cornu, y termina en punta, referente a ello

Domínguez y cols., (2015) señalan que en la Familia Curculionidae en general, la

espermateca es gruesa con forma bulbosa, y posee una prolongación hueca en

forma de “U”. Asimismo, Alonso (2015) señala que en las hembras pertenecientes

al orden Coleoptera, son frecuentes las reducciones y desapariciones de algunas

estructuras de la genitalia. Domínguez y cols. (2015) mencionan que usualmente la

herramienta morfológica más usada en taxonomía es la genitalia del macho, sin

embargo, poder identificar cualquier estructura morfológica de la hembra que

diferencie a la especie sería de particular valor para la taxonomía.

BIOLOGICAS

CIENCIAS

BIBLIOTECA

V. CONCLUSIONES

Las características morfológicas de los diferentes estados biológicos; huevo, larva,

pupa y adulto de Prosaldius saccharidis fueron:

- El huevo presentó un largo y ancho promedio de 0.54 ± 0.03 y 0.27 ± 0.04

mm, respectivamente.

- El instar larval I, II y III, presentaron un largo y ancho promedio de cabeza de 0.59 ± 0.04 y 0.58 ± 0.04 mm; 0.78 ± 0.02 y 0.78BIOLOGICAS ± 0.01 mm; 0.94 ± 0.02 y 0.80 ± 0.02 mm respectivamente. El cuerpo, una longitud y ancho promedio

de 1.58 ± 0.08 y 0.60 ± 0.05 mm; 3.13 ± 0.13 y 1.05 ± 0.09 mm; 4.36 ± 0.18 y

1.25 ± 0.08 mm respectivamente.

- La pupa presentó una longitudCIENCIAS promedio de 4.22 ± 0.21 mm, un ancho ventral promedio de 1.74 ± 0.10 mm y ancho lateral promedio de 1.20 ± 0.08 mm.

- En el adulto, la cabeza junto con el protórax presentó una longitud y ancho

promedio de 1.49 ± 0.15 y 1.03 ± 0.07 mm respectivamente. En el abdomen,

el largo y ancho promedio fueron 2.36 ± 0.14 y 1.09 ± 0.07 mm

respectivamente.

- BIBLIOTECA Se determinó dimorfismo sexual en la forma del tergito VII y esternitos V y VI

del adulto de P. saccharidis, en el macho de forma trapezoidal y en la hembra

de forma cónica.

VI. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Anderson, R.S. (2002). Curculionidae Latreille 1802. Thomas C., Skelley P.E. and

Frank. J.H. (eds.). American Beetles: Polyphaga Scarabaeoidea

Through Curculionoidea, 2: pp. 711-815.

Alonso, Z. M. (2015). Clase Insecta: Orden Coleoptera. Revista IDE@ - SEA, 55:

pp 1-18.

Angulo, A. O. y Weigert, G. Th. (1977). Pseudoletia puntalata (Balanchard) y

Pseudoletia unipuntalata (Guenée) Lepidoptera: Noctuidae. Agro Sur 5:

pp. 12-17. BIOLOGICAS

Arana, C. Y. (2013). Diversidad de Coleopteros Epígeos en el Cultivo de Caña de

Azúcar, Cartavio, La Libertad, Perú, 2012. (Tesis para Título). UNT.

Trujillo. Perú.

Ayquipa, G. y Cueva, M. (1979). Nombres científicos y comunes de los insectos CIENCIAS que atacan a la caña de azúcar. Revista Peruana de Entomología, 22: pp. 95-97. DE Barriga, T. J. (2010). Curculionidae Neotropical, Subfamilia Baridinae. Argentina.

Disponible en: http://coleopteraneotropical.org/paginas/2_PAISES/

Argentina/Curculionoidea/curGBar-arg.html.

Castañeda, V. A., Valdez, C. J., Equihua, M. A., Gonzales, H. H., Romero, N. J.,

Solís, A. J. y Ramírez, A. S. (2007). Genitalia de Tres Especies de BIBLIOTECAHeilipus Germar (Coleoptera: Curculionidae) Que dañan Frutos de Aguacate (Persea americana Mill) en México y Costa Rica. Revista

Neotropical Entomology, 36 (6): pp. 914- 918.

Cruz, L. J. (2005). Entomología, Morfología y Fisiología de los Insectos.

Universidad Nacional de Colombia. Facultad de Ciencias

Agropecuarias. Sede Palmira. Colombia.

Davis, S. R. (2009). Morphology of Baridinae and related groups (Coleoptera:

Curculionidae). Zookeys, 10: pp. 1-136.

Duque, G. D. (2012). Caracterización Molecular del Complejo Picudo del Plátano

(COLEOPTERA: CURCULIONIDAE) Géneros Cosmopolites y

Metamasius en Tres Localidades de Colombia. (Tesis para Título).

Universidad de Valle. Colombia.

Domínguez, J. V., Equihua, M. A., Valdez, C. J., Estrada,BIOLOGICAS V. E., Bravo, M. H. y

Domínguez, R. R. (2015). Morfología del Barrenador pequeño de la

Semilla del Aguacate Conotrachelus perseae (Barber) (Coleoptera:

Curculionidae). Revista Folia Entomológica Mexicana, 1(2): pp. 50-75.

Emiliano, C. L. (2014). Biología, distribución espacial e impacto económico de CIENCIAS Rhyssomatus sbtilis Fiedler 1937 (Coleoptera: Curculionidae), Plaga emergente en elDE cultivo de la soja en el noroeste argentino. (Tesis para Doctorado). Universidad Nacional de Tucumán. Argentina.

Gaiger, F., y Vanin, S. A. (2008). On utility of female genitalia in the systematics of

Curculionidae: examples from Entimini and Hylobiina (Coleoptera:

Curcuinidae). Annales de la Société entomologique de France, 44: pp.

47-57. doi: 10.1080/00379271.2008.10697543. GBIFBIBLIOTECA Backbone Taxonomy. (2017). Apinocis Lea, 1927. Disponible en: https://www.gbif.org/species/4745949

Gómez, Q. A. 2013. Claves para la Identificación de la Fauna Insectil más

importante de la Región (Ordenes y Familias). 3ra Edición. Editorial

Multicopias. Trujillo. Perú.

Hernández, L. F., Valdez, J. C., Illescas, C. R. Maldonado, E. J. y Orozco, M. S.

(2012). Descripción Morfológica del Edeago de Optatus palmaris

Champion (Coleoptera: Curculionidae). Southwestern Entomologist, 27:

pp. 225-229.

Lavia, G., Marinich, J Ramírez, W. (1999). El uso de la microscopía electrónica en

la caracterización morfológica del picudo del algodonero. Universidad

Nacional del Nordeste, Argentina.BIOLOGICAS Disponible en:

http://www.unne.edu.ar/unnevieja/Web/cyt/cyt/agrarias/a-015.pdf

Lanteri, A. A., Díaz, B. N., Loiácono, S. M. y Marvaldi, A. E. (1997). Gorgojos

perjudiciales a los cultivos de trigo en la Argentina (Coleoptera:

Curculionidae). Revista de la Sociedad Entomológica de Argentina, 56 CIENCIAS (1-4): pp. 77-89. Luna, K. C. (1983). ContribuciónDE al Estudio de los Coleoptera, Curculionidae, Baridinae, Asociados a las Compositae de la Cañada de Otongo,

Hidalgo. (Tesis para Título). Universidad Nacional Autónoma de

México. México.

Maes, J. M. y O'brien, C. W. (1990). Lista anotada de los Curculionoidea

(Coleoptera) de Nicaragua. Revista Entomológica de Nicaragua, 12: BIBLIOTECApp.1-78. Maes, J. M. y Tellez, R. J. (1988). Catálogo de los insectos y artrópodos terrestres

asociados a las principales plantas de importancia económica en

Nicaragua. Revista Entomológica de Nicaragua, 5: pp.1-95.

Martínez, M. O. (2011). Biología y Comportamiento de Neochetina eichhorniae

(Warner) (Coleoptera: Curculionidae: Erirhininae) en Condiciones de

Laboratorio. (Tesis para Maestría). México.

Martínez, M. O., Estrada, V. E., Equihua, M. A. y Valdez, C. J. (2014). Morfología

de Neochetina eichhorniae (Warner) (Coleoptera: Curculionidae). Acta

zoológica mexicana, 30(2): pp. 247-267. Disponible en

http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0065-

17372014000200001&lng=es&tlng=es.

Marvaldi, A. E. (2003). Key to larvae of the South American subfamilies of weevils

(Coleoptera, Curculionidae). Rev. Chil. Hist.BIOLOGICAS Nat., 76 (4): pp. 603-612.

Marvaldi, A. E. y Lanteri A. A. (2005). Key to higher taxa of South American weevils

based on adult characters (Coleoptera, Curculionoidea). Revista

Chilena de Historia Natural, 78: pp. 65-87.

Mendoza, M. J. (2013). El gorgojo o polilla del tallo de la caña de azúcar CIENCIAS Anacentrinus saccharidis Barber. Centro de Investigación de la caña de azúcar del Ecuador.DE Disponible en: http://cincae.org/. Monroy, R. A. e Insuasty, O. I. (2006). Biología del Picudo de la guayaba

Conotrachelus psidii (Marshall) (Coleoptera: Curculionidae). Revista de

Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 7: pp. 73-79.

Morimoto, K. y Yoshihara, K. (1996). On the genus of the oriental Baridinae

(Coleoptera: Curculionidae). Esakia, 36: pp. 1-59. Morrone,BIBLIOTECA J. J. (1996). Clave Ilustrada para la Identificación de las Familias Sudamericanas de Gorgojos (COLEOPTERA: CURCULIONIDAE).

Revista Chilena de Entomología, 23: pp. 59-63.

Morrone, J. J. (2014). Biodiversidad de Curculionoidea (Coleoptera) en México.

Revista Mexicana de Biodiversidad 85: pp. 312-324. doi:

10.7550/rmb.30038.

Morrone, J. J. y Posadas, P. (1998). Curculionoidea. In Biodiversidad de artrópodos

argentinos: una perspectiva biotaxonómica. J. J. Morrone y S.

Coscarón (eds.). La Plata. pp. 258-278.

Oberprieler, R. G., Marvaldi, A. E. y Anderson, R. S. (2007). Weevils, weevils,

weevils everywhere. Zootaxa: pp. 491- 520.

O'brien, C. W. y Wibmer, G. J. (1982). Annotated checklist of the weevils

(Curculionidae sensu lato) of North America,BIOLOGICAS Central America, and the

West Indies (Coleoptera: Curculionoidea). University of Minnesota.

American Entomological Institute, 34: pp. 382.

Ontiveros, G. J. (2016). Subfamilias, Tribus, Géneros y Especies de Curculionidae

en la Colección de Insectos del Departamento de Parasitología CIENCIAS Agrícola de la UAAAN-Altillo. (Tesis para Título). Universidad Autónoma AgrariaDE Antonio Narro. Saltillo, Coahuila, México Pantaleón, P. G., Fuentes, R. O., Hernández, H. E. (2013). Respuesta de

variedades de caña de azúcar a la incidencia de la escama café

Aclerda sacchari Teague, en el área de influencia de central

Motzorongo S.A. de C.V. Universidad Veracruzana. Región Orizaba-

Córdoba, México. Disponible BIBLIOTECAen:http://karolbeth.net/atam/inicio/images/PDF/XXXVI/ campo/campo1/fi tosanidad/completos/6.pdf.

Pérez, N. O., López, V. M. Jones, R. W. y Aragón, A. G. (2013). Apinocis angustus

(Casey): a Possible Emergent Pest of Sugarcane in México.

Southwestern Entomologist, 38: pp. 531-534.

Rivera, T. J., Blanco, G. D., Agrasal, A. C. y Olmo, L. R. (2009). Bioquímica

estructural. Conceptos y tests. 1° Edición. Editorial Tébar. Madrid.

España.

Robert, P. W. y Gentili, P. (1996). Coleoptera. Nomina Insecta Nearctica: A Check

List of the Insects of North America, 1: pp. 41-820. Disponible en

https://www.itis.gov/servlet/SingleRpt/RefRpt?search_type=publication&

search_id=pub_id&search_id_value=1547 BIOLOGICAS

Rodríguez, R. J. (2010). Biología y Distribución Espacial del Picudo (Metamasius

spp.) (Coleoptera: Curculionidae) en una Plantación Comercial de Piña

(Ananas comosus) (L.) Merr. Cutris, San Carlos. (Tesis para

Licenciatura). Instituto Tecnológico de Costa Rica. Sede Regional San CIENCIAS Carlos. Ruiz, M. C., Illescas, R. C.,DE Altamirano, H. U. y Wallace, J. R. (2015). Nuevos Registros de Picudos (Coleoptera: Curculionidae) Afectando Caña de

Azúcar (Saccharum officinarum L.) en Veracruz, México. Journal

Southwestern Entomologist, 40: pp. 427-431.

Salazar, B. J. D. (2015). Reporte de la presencia del gorgojo del tallo de la caña de

azúcar Apinocis saccharidis (Fam.: Curculionidae; Subfam.: Baridinae) BIBLIOTECAen Costa Rica. Liga Agrícola Industrial de la Caña de Azúcar (ed.) San José, Costa Rica. Disponible en:

https://www.laica.co.cr/biblioteca/servlet/DownloadServlet?c=443&s=17

74&d=23626.

Salazar, B. J. D., Oviedo R. A., Cadet, P. E., Sáenz, A. C. (2016). Control biológico

y otras estrategias de manejo de plagas implementadas en el cultivo de

la caña de azúcar. Liga Agrícola Industrial de la Caña de Azúcar LAICA

– DIECA. San José, Costa Rica. Disponible en:

http://www.laica.co.cr/biblioteca/servlet/DownloadServlet?c=443&s=177

4&d=28801.

Saldarriaga, V. A. (1981). Plagas de la caña de azúcar y métodos de control.

Industrialización de la caña. Disponible en:

http://digitool.gsl.com.mx:1801/webclient/StreamGate?folder_id=0&dvs

=1489382546596~19. BIOLOGICAS

Soto, H. M. (2007). Picudos (Coleoptera: Curculionidae) presentes en huertas de

aguacate Hass en Xalisco, Nayarit. (Tesis para Maestría). Universidad

Autónoma Agraria Antonio Narro. Buenavista. México.

Soto, H. M. (2017). Los géneros de Baridinae (Coleoptera: Curculionidae) en CIENCIAS México. Revista de Entomología Mexicana, 4: pp. 676-686 Ulmer, B. J., Duncan, R. E.,DE Prena, J. y Peña, J. E. (2007). Life History and Larval Morphology of Eurhinus magnificus Gyllenhal (Coleoptera:

Curculionidae), a New Weevil to the United States. Journal Neotropical

Entomology, 36 (3): pp. 383-390.

Vallejo, E. L., Sánchez, B. R. y Salgado, M. M. (2007). Redescripción del Adulto y

Descripción de los Estados Inmaduros de Cosmopolites sordidus BIBLIOTECAGermar, 1824 (COLEOPTERA: CURCULIONIDAE), El Picudo Negro Barrenador del Plátano en Colombia. Boletín Científico. Centro de

Museos. Museo de Historia Natural, 11: pp. 361-375.

Viedma, M. G. (1970). Descripción de la larva de Eubrychius velatus Beck

(Coleoptera, Curculionidae). Revista Miscelánea Zoológica, 2 (5): pp.

99-101.

Wille, J. E. (1952). Entomología Agrícola del Perú. Editorial Ministerio de

Agricultura. Lima. Disponible en:

https://www.iberlibro.com/Entomologia-Agricola-Peru-Wille-J.E-

Ministerio/10445959415/bd

Woodruff, R. E. (1972). Nicentrus saccharinus Marshall, a potential sugarcane pest

recently introduced into Florida (Coleoptera: Curculionidae). Dept. of

Agriculture and Consumer Services. Florida.BIOLOGICAS Entomology Circular, 124:

pp.2.

CIENCIAS DE

BIBLIOTECA

BIOLOGICAS ANEXOS

CIENCIAS DE

BIBLIOTECA

Escuela de Ciencias Biológicas

B BIOLOGICAS

CIENCIAS DE

Fuente: Google maps

Anexo 1. Plano de ubicación de (A) campo y (B) laboratorio de Entomología,

donde se realizó el trabajo. Trujillo, La Libertad, Perú. (L. Sur 8° 2’, L.

Oeste 79 ° 1’, a 240 m.s.n.m).

BIBLIOTECA

A B

BIOLOGICAS

C CIENCIASD DE

Anexo 2. Recolección de material biológico. A. Reconocimiento de cañas de BIBLIOTECAazúcar con daño de Prosaldius saccharidis, B. y C. Trozos de caña de azúcar recolectados en recipientes de plástico, D. Recipientes para la crianza del gorgojito negro.

BIOLOGICAS

CIENCIAS Anexo 3. Cópula de adultosDE de Prosaldius saccharidis, donde se observa la genitalia masculina.

BIBLIOTECA

A B

C D BIOLOGICAS

CIENCIAS DE

Anexo 4. Huevo, larva y pupa de Prosaldius saccharidis. A y B. Postura del gorgojito negro, C. Pupa dentro de la caña de azúcar, D. Larva produciendo daño cerca del nudo de la caña de azúcar.

BIBLIOTECA

BIOLOGICAS

CIENCIAS DE Anexo 5. Trabajo de disección, montaje y descripción de los estados biológicos de Prosaldius saccharidis en el estereoscopio.

BIBLIOTECA

BIOLOGICAS

CIENCIAS DE

Anexo 6. Imágenes y mediciones de Prosaldius saccharidis en el estereoscopio OLYMPUS ZX16, software: DP2-BSW-version 2.2.

BIBLIOTECA

Anexo 7. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, del huevo de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW-versión 2.2.

ANCHO DESCRIPCIÓN REPETICIÓN LARGO (mm) (mm) R1 0.59905 0.33558 HUEVO 1 R2 0.61259 0.33171 R3 0.59815 0.345 R1 0.53357 0.30542 HUEVO 2 R2 0.5447 0.31292 R3 0.54402 0.32377 R1 0.51472 0.23556 HUEVO 3 R2 0.51728 0.22435 R3 0.50145 0.2436 R1 0.50164 BIOLOGICAS0.2298 HUEVO 4 R2 0.50411 0.22866 R3 0.49478 0.21711 R1 0.53412 0.31684 HUEVO 5 R2 0.54812 0.31458 R3 0.53611 0.30125 R1 0.50489 0.23895 HUEVO 6 R2 0.51568 0.22579 R3 0.51452 0.22854 R1 CIENCIAS 0.55545 0.24545 HUEVO 7 R2 0.52145 0.23698 R3 0.52465 0.23695 DER1 0.54642 0.24522 HUEVO 8 R2 0.56246 0.24599 R3 0.54154 0.25641 PROMEDIO 0.53631125 0.267767917 D.E. 0.031456 0.043671

BIBLIOTECA

Anexo 8. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de la cápsula cefálica, cuerpo y mandíbula de larva I de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW.

CÁPSULA CEFÁLICA CUERPO MANDÍBULA DESCRIPCIÓN R LARGO ANCHO LARGO ANCHO LARGO ANCHO DE (mm) (mm) (mm) (mm) (mm) BASE (mm) R1 0.60366 0.5971 1.63417 0.64339 0.17038 0.12646 LARVA N° 1 R2 0.5906 0.61938 1.59289 0.64617 0.16333 0.14394 R3 0.6136 0.6111 1.66962 0.63545 0.1632 0.1328 R1 0.68481 0.52295 1.62502 0.57433 0.15665 0.10301 LARVA N°2 R2 0.64266 0.53954 1.73777 0.58961 0.19956 0.11217 R3 0.68719 0.54111 1.51277 0.61632 0.14351 0.1233 R1 0.53944 0.55766 1.43286 0.59293 0.15422 0.11458 LARVA N° 3 R2 0.55171 0.53486 1.4388 0.58652BIOLOGICAS 0.15444 0.11789 R3 0.55934 0.57178 1.41947 0.56736 0.17899 0.12369 R1 0.64225 0.69477 1.54563 0.57896 0.18788 0.13547 LARVA N° 4 R2 0.56685 0.61562 1.56966 0.59968 0.18999 0.13247 R3 0.60615 0.57918 1.62133 0.54236 0.1998 0.12963 R1 0.66805 0.60243 1.64544 0.59741 0.16446 0.12144 LARVA N° 5 R2 0.53033 0.60111 1.63233 0.56365 0.14788 0.10361 R3 0.60012 0.61034 1.61011 0.51114 0.16322 0.10996 R1 0.59612 0.59899CIENCIAS 1.48569 0.55599 0.19636 0.11002 LARVA N° 6 R2 0.58741 0.58787 1.45789 0.59978 0.17487 0.11113 R3 0.59631 DE0.58632 1.56321 0.62545 0.17888 0.13963 R1 0.51423 0.61422 1.51236 0.62355 0.14788 0.14885 LARVA N° 7 R2 0.54123 0.61477 1.5003 0.63299 0.149999 0.13302 R3 0.58744 0.61001 1.57896 0.64444 0.16355 0.14632 R1 0.61261 0.59663 1.62986 0.60123 0.19663 0.13269 LARVA N° 8 R2 0.59444 0.59625 1.67596 0.63222 0.14788 0.14781 R3 0.59699 0.58366 1.65999 0.60001 0.19988 0.12546 R1 0.55699 0.54789 1.59698 0.5412 0.15987 0.13256 LARVA N° 9 R2 0.54899 0.53603 1.58789 0.52333 0.16748 0.14782 R3 0.55223 0.523 1.5693 0.52269 0.14777 0.13269 BIBLIOTECAR1 0.54777 0.5441 1.6214 0.67899 0.16333 0.13471 LARVA N° 10 R2 0.53122 0.51236 1.59963 0.64877 0.17487 0.15896 R3 0.59966 0.5336 1.60021 0.68744 0.16325 0.15558 PROMEDIO 0.588346667 0.579487667 1.577583333 0.598778667 0.1690003 0.129589 D.E. 0.044888205 0.040107283 0.078071024 0.045244274 0.017710693 0.015089371

Anexo 9. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de la cápsula cefálica, cuerpo y mandíbula de larva II de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW. CABEZA CUERPO MANDÍBULA DESCRIPCIÓN R LARGO ANCHO LARGO ANCHO LARGO ANCHO DE (mm) (mm) (mm) (mm) (mm) BASE (mm) R1 0.77904 0.77684 3.14176 0.9955 0.19964 0.16986 LARVA N°1 R2 0.80651 0.78006 3.08506 1.018 0.21704 0.18313 R3 0.74933 0.77032 3.14176 1.02263 0.22511 0.19912 R1 0.81569 0.78452 3.42661 0.9945 0.22148 0.17422 LARVA N°2 R2 0.80559 0.78999 3.31266 0.98412 0.21856 0.16933 R3 0.80002 0.77899 3.36987 1.00399 0.21789 0.16987 R1 0.76589 0.76985 3.14711 1.15855 0.23652 0.17896 LARVA N°3 R2 0.77884 0.77895 3.17855 0.99852BIOLOGICAS 0.19852 0.18963 R3 0.77989 0.77691 3.26933 0.97851 0.19369 0.18742 R1 0.74561 0.76989 3.01258 0.98999 0.19874 0.19632 LARVA N°4 R2 0.75899 0.77142 3.09633 1.07821 0.20369 0.19784 R3 0.74033 0.77741 2.99638 0.93625 0.26492 0.17852 R1 0.80141 0.78333 3.236 1.15801 0.21478 0.17522 LARVA N°5 R2 0.80001 0.78102 3.2541 1.1659 0.22369 0.19633 R3 0.79988 0.77488 3.39651 1.23681 0.23698 0.18722 R1 0.76986 0.76987 CIENCIAS3.21458 1.02588 0.2269 0.18741 LARVA N°6 R2 0.76158 0.7741 3.01472 1.03694 0.21788 0.17692 R3 0.77896 0.78411DE 3.00052 1.14782 0.2369 0.18726 R1 0.75485 0.76392 2.93651 0.96372 0.21478 0.19632 LARVA N°7 R2 0.75698 0.76988 2.9832 0.97412 0.19871 0.18799 R3 0.76899 0.77111 2.97458 0.9982 0.18743 0.16985 R1 0.78412 0.77023 3.12789 1.03964 0.20369 0.17852 LARVA N°8 R2 0.78555 0.78003 3.10931 1.08722 0.21588 0.1741 R3 0.77488 0.7733 3.05468 1.12584 0.22369 0.1936 R1 0.79485 0.78963 3.01548 1.1302 0.23975 0.1963 LARVA N°9 R2 0.78999 0.78912 3.13333 1.15888 0.24896 0.18073 R3 0.79357 0.77101 3.03222 1.23699 0.23158 0.19733 BIBLIOTECAR1 0.741 0.76321 2.96991 0.96899 0.19633 0.16458 LARVA N°10 R2 0.7896 0.771 3.00123 0.98488 0.20175 0.16933 R3 0.76354 0.761 3.15508 0.99521 0.20012 0.17667 PROMEDIO 0.777845 0.77553 3.126261667 1.053134 0.217186667 0.182996667 D.E. 0.020907117 0.007600771 0.134580264 0.085373665 0.018136656 0.010565913

Anexo 10. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de la cápsula cefálica, cuerpo y mandíbula de larva III de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW -versión 2.2.

CABEZA CUERPO MANDÍBULA DESCRIPCIÓN R LARGO ANCHO LARGO ANCHO LARGO ANCHO (mm) (mm) (mm) (mm) (mm) (mm) R1 0.95671 0.79351 4.50185 1.272 0.2254 0.19824 LARVA N°1 R2 0.9642 0.77441 4.58917 1.12694 0.24366 0.18928 R3 0.95851 0.80949 4.55701 1.13673 0.23797 0.18757 R1 0.92669 0.78325 4.17612 1.27081 0.25137 0.22348 LARVA N°2 R2 0.92323 0.81193 4.18884 1.37557 0.25239 0.23492 R3 0.92953 0.79855 4.17425 1.3663 0.27029 0.22191 R1 0.93458 0.77582 4.41254 1.25871 0.25214 0.18711 LARVA N°3 R2 0.92644 0.78963 4.52141 1.23698BIOLOGICAS 0.25633 0.18963 R3 0.94745 0.77422 4.50021 1.12369 0.24141 0.18742 R1 0.94785 0.79852 4.23961 1.37174 0.23699 0.19632 LARVA N°4 R2 0.94238 0.78742 4.27899 1.3455 0.23148 0.23582 R3 0.93687 0.76512 4.23123 1.33453 0.23699 0.21458 R1 0.95683 0.79622 4.32699 1.15893 0.21011 0.19871 LARVA N°5 R2 0.95699 0.82144 4.47101 1.14702 0.21589 0.1952 R3 0.95012 0.81236CIENCIAS 4.25562 1.21001 0.20477 0.18633 R1 0.96325 0.79852 4.12458 1.36901 0.20355 0.17882 LARVA N°6 R2 0.95478 0.7963 4.19632 1.30784 0.21488 0.19514 R3 0.95785 DE0.7822 4.10278 1.31111 0.22699 0.20488 R1 0.94789 0.76589 4.10752 1.27895 0.27899 0.22141 LARVA N°7 R2 0.96322 0.77144 4.36988 1.21471 0.27158 0.23978 R3 0.96541 0.77552 4.36511 1.29574 0.26941 0.22006 R1 0.97412 0.79852 4.10218 1.19871 0.23698 0.19788 LARVA N°8 R2 0.97111 0.81471 4.57811 1.14759 0.2411 0.19635 R3 0.94725 0.81772 4.52188 1.25423 0.23699 0.19785 R1 0.92147 0.80125 4.53021 1.23697 0.27418 0.20147 LARVA N°9 R2 0.91478 0.80147 4.57931 1.24711 0.2781 0.20369 BIBLIOTECAR3 0.92369 0.80326 4.50258 1.20895 0.26982 0.21782 R1 0.91287 0.83265 4.69811 1.18742 0.27158 0.23985 LARVA N°10 R2 0.91238 0.821 4.47822 1.20144 0.26411 0.22544 R3 0.92001 0.79888 4.25888 1.25811 0.25478 0.28965 PROMEDIO 0.94361533 0.79570733 4.364684 1.248445 0.245341 0.209220333 D.E. 0.01862215 0.01760307 0.17687277 0.077159514 0.022464262 0.023262322

Anexo 11. Mediciones del largo, ancho ventral y lateral, en milímetros, de la pupa de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW-versión 2.2.

DESCRIPCIÓN R LARGO ANCHO ANCHO (mm) VENTRAL(mm) LATERAL (mm) R1 4.35527 1.86589 1.21001 PUPA 1 R2 4.35482 1.8896 1.20474 R3 4.36026 1.87596 1.26985 R1 3.81072 1.62224 1.19357 PUPA 2 R2 3.8097 1.63328 1.19347 R3 3.7967 1.66903 1.11554 R1 4.46856 1.76302 1.16562 PUPA 3 R2 4.41152 1.77007 1.19397 R3 4.36346 1.81998 BIOLOGICAS1.15179 R1 4.41348 1.69746 1.26536 PUPA 4 R2 4.42729 1.68624 1.28613 R3 4.4275 1.67862 1.29697 R1 4.01289 1.85553 1.05153 PUPA 5 R2 4.0191 1.88074 1.01415 R3 4.04514 1.65139 1.08166 R1 4.21456 1.63258 1.18933 PUPA 6 R2 4.36985CIENCIAS 1.63299 1.01585 R3 4.27701 1.60101 1.10258 R1 4.47022DE 1.75412 1.25447 PUPA 7 R2 4.46998 1.63699 1.24771 R3 4.29455 1.63303 1.25982 R1 4.3558 1.87961 1.24778 PUPA 8 R2 4.1233 1.80277 1.28488 R3 4.14775 1.80999 1.24101 R1 4.00369 1.62477 1.26303 PUPA 9 R2 3.91778 1.78933 1.23122 R3 4.00036 1.61477 1.26895 R1 4.12596 1.87255 1.22398 BIBLIOTECAPUPA 10 R2 4.31597 1.83355 1.2155 R3 4.35789 1.79633 1.23695 PROMEDIO 4.217369333 1.742448 1.199247333 D.E. 0.214970246 0.101354818 0.079397525

Anexo 12. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de la cámara pupal de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW-versión 2.2.

DESCRIPCIÓN REPETICIÓN LARGO ANCHO (mm) (mm) R1 5.68619 2.3718 CP 1 R2 5.68647 2.38591 R3 5.59027 2.32759 R1 4.84325 2.13177 CP 2 R2 4.69658 1.9724 R3 4.89852 2.04576 R1 4.48712 2.47852 CP 3 R2 4.57822 2.65478 R3 4.56988BIOLOGICAS 2.41233 R1 5.28774 1.84522 CP 4 R2 5.11203 1.51117 R3 5.19511 1.96311 R1 4.78222 1.87555 CP 5 R2 4.70145 1.84112 R3 4.62301 1.74585 R1 4.99888 2.45811 CP 6 CIENCIASR2 4.91402 2.27899 R3 4.89411 2.20114 DE R1 5.78965 2.29978 CP 7 R2 5.71022 2.30145 R3 5.87125 2.36944 R1 5.19855 2.01444 CP 8 R2 5.07822 2.19875 R3 5.04885 2.14855 R1 4.78922 2.01475 CP 9 R2 4.89996 1.99563 R3 4.84102 1.98477 R1 5.54789 1.84722 BIBLIOTECACP 10 R2 4.95882 1.96324 R3 5.29555 1.77599 PROMEDIO 5.085809 2.113837667 D.E. 0.400736598 0.262990632

Anexo 13. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de cabeza, protórax y abdomen del adulto de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2- BSW-versión 2.2.

CABEZA Y PROTÓRAX ABDOMEN DESCRIPCIÓN REPETICIÓN LARGO ANCHO LARGO ANCHO (mm) (mm) (mm) (mm) R1 1.62198 1.00233 2.45868 1.02846 ADULTO 1 R2 1.56253 1.00643 2.51956 1.07539 R3 1.5807 1.03893 2.40168 1.0831 R1 1.71717 1.182 2.56569 1.1351 ADULTO 2 R2 1.60757 1.19932 2.58972 1.12772 R3 1.69817 1.16428 2.58822 1.15491 R1 1.28131 1.03147 2.31231 1.10811 ADULTO 3 R2 1.23479 1.03956 2.32138 1.10441 R3 1.22284 1.0357 2.36669 1.10253 R1 1.57812 1.05503 2.39288 1.06946 ADULTO 4 R2 1.55206 1.0919 BIOLOGICAS2.41949 1.07206 R3 1.49992 1.06497 2.40036 1.07868 R1 1.53733 1.04029 2.4056 1.12256 ADULTO 5 R2 1.51446 1.03299 2.41704 1.11861 R3 1.51995 0.99685 2.39949 1.12698 R1 1.66488 1.12784 2.20232 1.19874 ADULTO 6 R2 1.67046 1.11135 2.18923 1.22032 R3 1.69641 1.10814 2.17962 1.24548 R1 1.3884 1.14467 2.41973 1.19272 ADULTO 7 R2 1.35948 1.14016 2.35778 1.19343 R3 1.3989 1.14347 2.37165 1.18708 R1 1.31928CIENCIAS 0.9432 2.37393 0.97508 ADULTO 8 R2 1.33347 0.95282 2.38926 0.97711 R3 1.33225 0.97529 2.41636 1.01894 R1 1.41556 0.92654 2.26711 1.0801 ADULTO 9 R2 DE1.33389 0.91806 2.2645 1.06944 R3 1.4113 0.93945 2.19351 1.05314 R1 1.50179 0.9873 2.2703 1.06704 ADULTO 10 R2 1.5074 1.04662 2.35542 1.09715 R3 1.58051 1.07764 2.3715 1.04739 R1 1.45874 1.00122 2.22145 0.99551 ADULTO 11 R2 1.54128 1.04585 2.14552 0.98899 R3 1.52111 1.10022 2.25484 1.02582 R1 1.34117 1.00544 2.36944 1.01478 ADULTO 12 R2 1.21778 0.94588 2.45874 1.01699 R3 1.27998 0.93145 2.41002 1.09998 R1 1.30026 0.99965 2.0589 1.14788 ADULTO 13 R2 1.60254 0.98744 2.04582 1.23361 R3 1.6411 0.97552 2.09641 1.10036 BIBLIOTECA R1 1.36885 0.95147 2.59633 1.0801 ADULTO 14 R2 1.58977 0.94785 2.321 1.06944 R3 1.54102 0.96415 2.65442 1.05314 R1 1.69302 0.98741 2.54441 0.99811 ADULTO 15 R2 1.71411 0.97488 2.31002 0.99665 R3 1.58893 0.99663 2.48996 0.99988 PROMEDIO 1.489834222 1.029770222 2.359073111 1.087832889 D.E. 0.146532494 0.074358913 0.142547746 0.070843217

Anexo 14. Mediciones del largo y ancho, en milímetros, de antenas y rostrum del adulto de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2-BSW.

ANTENAS ROSTRUM ESCAPO PEDICELO Y LARGO ANCHO ANCHO DESCRIPCIÓN R LARGO ARTEJOS (mm) BASAL APICAL (mm) (mm) (mm) (mm) R1 0.56155 0.8154 1.28214 0.34414 0.18347 ADULTO 1 R2 0.62001 0.86141 1.19227 0.34614 0.17348 R3 0.58857 0.79204 1.20277 0.36229 0.18892 R1 0.67769 0.90045 1.34687 0.30055 0.18313 ADULTO 2 R2 0.69486 0.8942 1.38859 0.3268 0.20497 R3 0.68043 0.93043 1.31476 0.30154 0.19434 R1 0.65534 0.80837 1.40003 0.31049 0.18666 ADULTO 3 R2 0.6772 0.8227 1.3856 BIOLOGICAS0.32487 0.17651 R3 0.6435 0.8461 1.40304 0.3288 0.19527 R1 0.60373 0.73742 1.33031 0.25032 0.24028 ADULTO 4 R2 0.62302 0.75402 1.33253 0.25772 0.23185 R3 0.61667 0.75867 1.3282 0.27051 0.22846 R1 0.56437 0.622 1.32292 0.26499 0.20999 ADULTO 5 R2 0.55241 0.62102 1.34714 0.26603 0.20171 R3 0.59598 0.59835CIENCIAS 1.30654 0.28731 0.20796 R1 0.3509 0.80956 1.30534 0.28725 0.21539 ADULTO 6 R2 0.62678 0.80447 1.3305 0.26874 0.18422 R3 0.62104 DE0.82386 1.2993 0.26411 0.16955 R1 0.54896 0.84752 1.35718 0.34042 0.1723 ADULTO 7 R2 0.54132 0.89631 1.36218 0.34041 0.16623 R3 0.51147 0.78999 1.3547 0.32955 0.14871 R1 0.63999 0.64711 1.14789 0.29987 0.20148 ADULTO 8 R2 0.65471 0.69875 1.17891 0.30015 0.21478 R3 0.51122 0.59863 1.6253 0.36554 0.23698 R1 0.51002 0.71487 1.3478 0.31125 0.19854 ADULTO 9 R2 0.5233 0.79632 1.36999 0.32144 0.18755 BIBLIOTECAR3 0.56999 0.74125 1.24588 0.25896 0.18753 R1 0.61444 0.48962 1.24785 2.14789 0.24899 ADULTO 10 R2 0.66511 0.58963 1.36987 2.65922 0.26987 R3 0.69841 0.59874 1.47882 2.40666 0.24888 PROMEDIO 0.598099667 0.753640333 1.330174 0.514798667 0.201933333 D.E. 0.073642708 0.112755641 0.09139497 0.645021114 0.028294571

Anexo 15. Mediciones de los bordes anteriores y posteriores, en milímetros, de protórax y abdomen del adulto de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16.

PROTÓRAX ABDOMEN DESCRIPCIÓN R BORDE BORDE BORDE BORDE ANTERIOR POSTERIOR ANTERIOR POSTERIOR (mm) (mm) (mm) (mm) R1 0.84499 1.26312 1.30341 0.41306 ADULTO 1 R2 0.81876 1.30272 1.31485 0.41582 R3 0.79697 1.30341 1.30599 0.41788 R1 0.97693 1.34013 1.29107 0.43269 ADULTO 2 R2 0.97602 1.35414 1.28456 0.42578 R3 0.97602 1.30102 1.29663 0.41879 R1 0.76989 1.13197 1.31488 0.43699 ADULTO 3 R2 0.74107 1.17794 BIOLOGICAS1.31899 0.48722 R3 0.75646 1.13104 1.29874 0.47963 R1 0.77011 1.17874 1.31478 0.40288 ADULTO 4 R2 0.76536 1.18946 1.30695 0.401478 R3 0.78655 1.20815 1.32478 0.40326 R1 0.90936 1.33037 1.28963 0.39785 ADULTO 5 R2 0.89166 1.32641 1.28471 0.39788 R3 0.88044 CIENCIAS1.32536 1.28474 0.40566 R1 0.69871 1.16031 1.29875 0.40177 ADULTO 6 R2 0.73721 1.17302 1.29357 0.40693 R3 0.70536DE 1.16661 1.28452 0.40488 R1 0.77432 1.20596 1.30485 0.41258 ADULTO 7 R2 0.80896 1.24779 1.30966 0.41788 R3 0.78961 1.14785 1.30745 0.41879 R1 0.68985 1.26996 1.31069 0.42658 ADULTO 8 R2 0.70485 1.24785 1.31087 0.42157 R3 0.70148 1.10222 1.30699 0.42998 R1 0.70411 1.39941 1.29475 0.40177 ADULTO 9 R2 0.69841 1.24475 1.29742 0.40369 BIBLIOTECAR3 0.89665 1.25966 1.30478 0.39968 R1 0.98711 1.14786 1.31996 0.40788 ADULTO 10 R2 0.84752 1.16933 1.32485 0.41235 R3 0.71101 1.00125 1.31478 0.40178 PROMEDIO 0.80385833 1.226927 1.30395333 0.4168326 D.E. 0.09460144 0.089048152 0.01202709 0.02110459

Anexo 16. Mediciones de largo y ancho, en milímetros, del fémur, tibia, tarso y uña de las ´patas protorácicas del adulto de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2- BSW-versión 2.2.

FÉMUR TIBIA TARSO

DESCRIPCIÓN R Y UÑA LARGO ANCHO ANCHO LARGO ANCHO ANCHO LARGO (mm) MENOR MAYOR (mm) MENOR MAYOR (mm) (mm) (mm) (mm) (mm) R1 1.07346 0.18144 0.33284 0.81022 0.12772 0.15387 0.34066 ADULTO 1 R2 1.0931 0.19824 0.33142 0.81076 0.12594 0.17307 0.35919

R3 1.08215 0.25724 0.32454 0.82038 0.13885 0.16914 0.30972

R1 0.94708 0.17534 0.34134 0.75822 0.09464 0.13616 0.49686 ADULTO 2 BIOLOGICAS R2 0.94043 0.207 0.30962 0.76019 0.11767 0.18877 0.5269

R3 0.9827 0.19915 0.35057 0.79095 0.1263 0.16216 0.52901

R1 0.82278 0.18489 0.35953 0.70382 0.12642 0.1777 0.34789 ADULTO 3 R2 0.91973 0.22437 0.36149 0.69051 0.14167 0.16417 0.36987

R3 0.9068 0.19637 0.36302 0.7168 0.12478 0.14333 0.38412

R1 0.83655 0.18822 0.24935 0.53754 0.08032 0.15963 0.43631 ADULTO 4 CIENCIAS R2 0.83239 0.14785 0.26987 0.61048 0.09875 0.15478 0.45841 R3 0.83287 0.19632DE 0.28745 0.54885 0.10255 0.14632 0.47822 R1 0.79051 0.19082 0.23441 0.50172 0.11252 0.15672 0.49011 ADULTO 5 R2 0.89998 0.21885 0.24851 0.52478 0.16854 0.13984 0.50147

R3 0.97844 0.20147 0.23147 0.51478 0.14785 0.12548 0.51477

PROMEDIO 0.929264667 0.197838 0.306362 0.673333333 0.122301333 0.156742667 0.436234

D.E. 0.098576106 0.024437659 0.048547742 0.121151901 0.02253717 0.016829867 0.076571517

BIBLIOTECA

Anexo 17. Mediciones de largo y ancho, en milímetros, del fémur, tibia, tarso y uña de las ´patas mesotorácicas del adulto de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2- BSW-versión 2.2.

FÉMUR TIBIA TARSO

DESCRIPCIÓN R Y UÑA LARGO ANCHO ANCHO LARGO ANCHO ANCHO LARGO (mm) MENOR MAYOR (mm) MENOR MAYOR (mm) (mm) (mm) (mm) (mm) R1 0.69302 0.13299 0.1924 0.57826 0.10972 0.1455 0.47514 ADULTO 1 R2 0.73021 0.15912 0.1936 0.37484 0.10023 0.13556 0.48963

R3 0.70481 0.14785 0.1958 0.54111 0.11331 0.13698 0.47111

R1 0.86904 0.16986 0.2929 0.60923 0.09344 0.14899 0.53049 ADULTO 2 R2 0.84799 0.16985 0.2875 0.59875 BIOLOGICAS0.09147 0.14896 0.52489

R3 0.82485 0.14782 0.29841 0.58744 0.09785 0.13698 0.51478

R1 1.10478 0.1902 0.3094 0.49026 0.09951 0.17691 0.5575 ADULTO 3 R2 1.03694 0.19006 0.30111 0.50148 0.09521 0.15789 0.54896

R3 1.05287 0.18744 0.29784 0.49632 0.09412 0.16485 0.54112

R1 0.74866 0.13698 0.25418 0.39869 0.96478 0.13598 0.52489 ADULTO 4 CIENCIAS R2 0.78963 0.14778 0.25478 0.40158 0.84756 0.13976 0.52478 R3 0.74125 0.15966DE 0.24178 0.41596 0.89633 0.14652 0.50169 R1 0.98445 0.14789 0.22458 0.54782 1.18528 0.16842 0.52104 ADULTO 5 R2 0.93254 0.14632 0.23698 0.52499 1.16987 0.17212 0.53966

R3 0.94822 0.13984 0.24855 0.53698 1.11478 0.16985 0.53155

PROMEDIO 0.867284 0.158244 0.255320667 0.506914 0.471564 0.152351333 0.519815333

D.E. 0.135721327 0.01920279 0.041366698 0.077225759 0.479778043 0.014711606 0.025466617

BIBLIOTECA

Anexo 18. Mediciones de largo y ancho, en milímetros, del fémur, tibia, tarso y uña de las ´patas metatorácicas del adulto de Prosaldius saccharidis, promedio y desviación estándar, realizados en estereoscopio Olympus SZX16, software: DP2- BSW-versión 2.2.

FÉMUR TIBIA TARSO

DESCRIPCIÓN R Y UÑA LARGO ANCHO ANCHO LARGO ANCHO ANCHO LARGO (mm) MENOR MAYOR (mm) MENOR MAYOR (mm) (mm) (mm) (mm) (mm) R1 1.17465 0.19749 0.3484 0.69959 0.0819 0.16926 0.59216 ADULTO 1 R2 1.15526 0.18979 0.33214 0.69644 0.08985 0.14589 0.59112

R3 1.19635 0.19632 0.34892 0.68477 0.08963 0.13699 0.59412

R1 0.91861 0.11453 0.26346 0.63037 0.09894 0.1548 0.56125 ADULTO 2 BIOLOGICAS R2 0.95478 0.12369 0.26489 0.64598 0.09478 0.15478 0.56963

R3 0.96785 0.12478 0.25477 0.65899 0.09111 0.15963 0.54111

R1 0.99665 0.11855 0.31478 0.64888 0.09241 0.14788 0.60012 ADULTO 3 R2 0.98752 0.13698 0.31478 0.64788 0.07944 0.13698 0.60058

R3 0.97852 0.12488 0.30699 0.69555 0.07896 0.13471 0.59992

R1 1.19872 0.18742 CIENCIAS0.26485 0.65993 0.79662 0.16974 0.57499 ADULTO 4 R2 0.15489 0.18962 0.27899 0.65112 0.09951 0.16222 0.58441

R3 0.17499 0.17921DE 0.27488 0.64841 0.09663 0.16001 0.571011

R1 0.93952 0.14955 0.34788 0.66399 0.10665 0.14586 0.58412 ADULTO 5 R2 0.94789 0.16985 0.32478 0.66101 0.09951 0.15633 0.59631

R3 0.94752 0.15748 0.341201 0.69455 0.09892 0.15478 0.58471

PROMEDIO 0.912914667 0.157342667 0.3054474 0.665830667 0.139657333 0.152657333 0.5830374

D.E. 0.319955849 0.031424272 0.035188278 0.022412597 0.181917302 0.011073958 0.016817765

BIBLIOTECA

GLOSARIO

Aedeagus. Órgano copulador masculino intromitente, que secreta esperma desde

los testículos durante la cópula.

Alinoto. Placa alar del mesonoto o del metanoto en los insectos alares, la cual se

divide en: prescutum, escutum y escutelum.

Área gular. Esclerito impar ubicada en el área ventral de la cabeza ausente en la

familia Curculionidae.

Arolio. Órgano en forma de cojín que se encuentra enBIOLOGICAS el pretarso de las patas de la mayoría de los insectos

Clava o club antenal. Masa apical, articulada y ensanchada de las antenas

Clípeo. Área superior del labio del aparato bucal, comprendida entre la frente y el labro. CIENCIAS Corión. Cubierta externa de los huevos de los insectos, vulgarmente se le llama DE cascarón.

Coxa. Segmento basal de la pata que se articula al cuerpo o en medio de las fosas

coxales.

Coxito. Órgano copulador femenino del insecto.

Empodium. BIBLIOTECA Lóbulo medio alargado en forma de espina delgada, situado entre la uñas del pretarso de las patas de algunos insectos.

Esclerito. Áreas endurecidas del exoesqueleto, delimitadas por suturas.

Escroba. Surco donde se aloja el escapo de la antena.

Espermateca. Órgano impar en forma de bulbo, donde se depositan

temporalmente los espermatozoides.

Esternon. Área ventral del cuerpo del insecto.

Estilos o hemiesternitos. Estructuras cilíndricas del área anterior del Coxito.

Labro o labrum. Área articulada con el clípeo, movible, forma el límite superior de

la boca cubriéndola a manera de techo.

Mesepimeron. Esclerito posterior de la pleura del mesotórax, separada del episternón por la sutura pleural. BIOLOGICAS

Mesepisternon. Esclerito anterior de la pleura del mesotórax, situada antes de la

sutura pleural.

Mesosternon. Área ventral del mesotórax.

Mesoscutellum. Esclerito final delCIENCIAS alinoto, ubicado en el mesotórax. Mesoscutum. Esclerito medioDE del alinoto, ubicado en el mesotórax.

Metepisternón. Esclerito anterior de la pleura del metatórax, situada antes de la

sutura pleural.

Metasternon. Área ventral del metatórax.

Metascutellum. Esclerito final del alinoto, ubicado en el metatórax.

Metascutum.BIBLIOTECA Esclerito medio del alinoto, ubicado en el metatórax.

Pygydium. Región conformada por la fusión de los últimos urómeros o segmentos

abdominales, los cuales presentan formas características que se pueden

tener en cuenta, para diferenciar especies. En coleópteros los segmentos

terminales del abdomen no cubiertos por los élitros, toman el mismo

nombre de pigidio.

Pleura. Área lateral del cuerpo del insecto.

Prementon. Parte más desarrollada del labium, contiene los músculos de los

palpos y de los lóbulos linguales, situados en el mentón.

Prescutum. Esclerito anterior del alinoto, ubicado en el mesotórax.

Scrobiculum. Área cóncava con distinto grado de esclerotizaciónBIOLOGICAS presente en la base dorsal de las mandíbulas.

Tegmen. Estructura del aparato reproductor del macho del insecto.

Tergo o noto. Área dorsal del cuerpo del insecto.

Urogomphi o urogonfo. EstructuraCIENCIAS ubicada en el extremo del abdomen de algunas larvas. DE

BIBLIOTECA