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1990年12月18日 第４種郵便物認可 ISSN 0914-5818 201 8

VOL. 3 2 NO. 2 C 2018 T VOL. 32 NO. 2 IN ( O 公開

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日 本 I 放 C 線 菌 学 http://www. actino.jp/ 会 日本放線菌学会誌 第28巻 1 号 誌 Published by ACTINOMYCETOLOGICA VOL.28 NO.1, 2014 The Society for Actinomycetes Japan SAJ NEWS

Vol. 32, No. 2, 2018

Contents

• Outline of SAJ: Activities and Membership S2

• Award Lecture (Dr. Tomohiko Tamura) S3

• Publication of Award Lecture (Dr. Tomohiko Tamura) S14

• The 2018 Annual Meeting of the Society for Actinomycetes Japan (Program) S15

• 63rd Regular Colloquim S25

• The 2019 Annual Meeting of the Society for Actinomycetes Japan S26

• Online access to The Journal of Antibiotics for SAJ members S27

S1 Outline of SAJ: Activities and Membership

The Society for Actinomycetes Japan (SAJ) Annual membership fees are currently 5,000 yen was established in 1955 and authorized as a for active members, 3,000 yen for student mem- scientific organization by Science Council of Japan bers and 20,000 yen or more for supporting mem- in 1985. The Society for Applied Genetics of bers (mainly companies), provided that the fees Actinomycetes, which was established in 1972, may be changed without advance announce- merged in SAJ in 1990. SAJ aims at promoting ment. actinomycete researches as well as social and The current members (April 2018 - March 2020) scientific exchanges between members of the Board of Directors are: Masayuki Hayakawa domestically and internationally. The Activities of (Chairperson; Univ. of Yamanashi), Yasuo SAJ have included annual and regular scientific Ohnishi (Vice Chairperson; Univ. of Tokyo), meetings, workshops and publications of The Atsuko Matsumoto (Secretary General; Kitasato Journal of Antibiotics (the official journal, joint Univ.), Akira Arisawa (MicroBiopharm Japan Co., publication with Japan Antibiotics Research Ltd.), Masayuki Igarashi (Inst. of Microb. Chem. Association), Actinomycetologica (Newsletter) (BIKAKEN)), Susumu Iwamoto (Kyowa Hakko and laboratory manuals. Contributions to Kirin Co., Ltd.), Miyuki Otsuka (Tamagawa International Streptomyces Project (ISP) and Univ.), Hisashi Kawasaki (Tokyo Denki Univ.), International Symposium on Biology of Masaaki Kizuka (Daiichi Sankyo RD Novare Actinomycetes (ISBA) have also been SAJ's Co., Ltd.), Hideaki Takano (Nihon Univ.), Shunji activities. In addition, SAJ have occasional special Takahashi (RIKEN), Takuji Nakashima (Kitasato projects such as the publication of books related to Univ.), Yoshimitsu Hamano (Fukui Pref. Univ.), actinomycetes: “Atlas of Actinomycetes, 1997”, Hideki Yamamura (Univ. of Yamanashi), Hisayuki “Identification Manual of Actinomycetes, 2001” Komaki (NITE), Masahiro Natsume (Tokyo Univ. and “Digital Atlas of Actinomycetes, 2002” of Agr. & Tech.) and Hideyuki Muramatsu (Inst. (http://atlas.actino.jp/). These activities have of Microb. Chem. (BIKAKEN)) . been planned and organized by the board of The members of the Advisory Board are: directors with association of executive committees Hiroyuki Osada (RIKEN), Keiko Ochiai, Ken- consisting of active members who belong to ichiro Suzuki (Tokyo Univ. Agr.), Taichi academic and nonacademic organizations. Manome and Mutsuyasu Nakajima (Nihon The SAJ Memberships comprise active members, student members, supporting Univ.). members and honorary members. Currently (as of Dec. 20, 2017), SAJ has about 448 active Copyright: The copyright of the articles members including student members, 21 oversea published in Actinomycetologica is transferred members, 14 honorary members, 3 oversea from the authors to the publisher, The Society for honorary members, and 13 supporting members. Actinomycetes Japan, upon acceptance of the The SAJ members are allowed to join the sci- manuscript. entific and social meetings or projects (regular and specific) of SAJ on a membership basis The SAJ Secretariat and to browse The Journal of Antibiotics from a c/o Institute of Microbial Chemistry (BIKAKEN) link on the SAJ website and will receive each 3-14-23 Kamiosaki, Shinagawa-ku, issue of Actinomycetologica, currently pub- Tokyo 141-0021, JAPAN lished in June and December. Actinomycete Phone: +81-3-6455-7169 researchers in foreign countries are welcome to Fax: +81-3-3441-7589 join SAJ. For application of SAJ membership, E-mail: [email protected] please contact the SAJ secretariat (see below).

S2 Ōmura award 2017

Diversity and Classification of Actinomycetes in Japan and Asia

Tomohiko Tamura

Resource Collection Division, Biological Resource Center, National

Institute of Technology and Evaluation (NBRC) 2-5-8, Kazusakamatari, Kisarazu, Chiba 292-0818, Japan

Introduction Richter & Rossello-Mora, 2009), genome-to-genome distance calculator (GGDC) (Auch et al., 2010a, 2010b), and whole Actinomycete is a filamentous Gram-positive bacterium genome analysis (Rossello-Mora, 2005; Meier-Kolthoff et al., characterized by a high guanine and cytosine (G+C) content 2013; Ramasamy et al., 2014; Chun & Rainey, 2014), are and a complex life cycle that includes branching and utilized for the classification of actinobacteria. The present, sporulating. In a broad sense, the term actinomycete is used and generally accepted, definition of taxon is mainly based on for the phylum Actinobacteria, including bacillar or coccoid the polyphasic approach based on all the above criteria microorganisms. These bacteria have been of great interest (Vandamme et al., 1996). because of their ability to produce various natural drugs and Here, I introduce our study on the classification and other bioactive metabolites, including enzyme inhibitors and re-classification of actinomycetes, enhancement and quality enzymes. Consequently, many actinomycetes have been improvement of culture collection, and diversity of isolated for hunting novel natural products. actinomycetes in Japan and Asia, based on a polyphasic Microbial taxonomy has changed with the development of approach. methods for analysis of classification diagnostics (Schleifer, 2009). The classical and/or traditional classification of bacteria Reconstruction of taxonomic position is mainly based on pigmentation, appearance of colonies, morphological features, growth requirements, and Celmer et al. (1981) described two actinomycete strains, physiological and biochemical characteristics of the cells namely, N381-16T (T = type strain) and N406-14, that (Pridham & Gottlieb, 1948; Waksman & Lechevalier, 1953; produced the antibiotics CP-54715 and CP-54716, Baldacci et al., 1954; Buchanan, 1955; Waksman, 1957). respectively. They were called Catenuloplanes japonicus Although these are still important characteristics for the as these strains produced straight chains of motile spores on description of taxa, they are not enough to distinguish between their aerial mycelia. In the course of isolating microorganisms many taxa. The numerical taxonomy analysis based on belonging to the order Actinomycetales, we detected 11 phenotypic data has been used to infer meaningful additional filamentous isolates developing motile arthrospore relationships in order to distinguish a large number of from soils in Japan, India, and Nepal. C. japonicus and these microorganisms (Sneath, 1984; Goodfellow, 1988). Up to the isolates possessed identical morphological, physiological, and latter half of the 1980s, chemotaxonomic methods based on chemotaxonomic characteristics but did not belong to any of chemical variation in actinobacterial cell components such as the previously described genera of filamentous cell walls and membranes were well-established (Goodfellow sporoactinomycetes such as the presence of L-lysine instead of et al., 1988; Goodfellow, 1989; Goodfellow & O'Donnell, diaminopimelic acid (DAP) as the peptidoglycan diamino acid 1993) as reliable and reproducible criteria for the description in the cell wall (chemotype VI) (Table 1). Therefore, we of actinomycete genera. Since the 1990s, genotypic proposed a new genus, Catenuloplanes, and a novel species, approaches have been also used for the classification of Catenuloplanes japonicus. actinobacteria. It is clear that the phylogenetic approach based Additionally, we found that strain RA 335, which was on 16S rRNA sequencing has fundamentally changed our view isolated from soil in Japan, produced zoospores, possessed of evolution and taxonomic relationships (Embley & L-lysine as the peptidoglycan diamino acid in the cell wall, Stackebrandt, 1994; Stackebrandt et al., 1997; Zhi et al., 2009). and formed mature mycelium that changed from orange to In recent years, an increasing number of genotypic approaches, dark blue. Actinoplanes caeruleus, as described by Horan such as multilocus sequence analyses (MLSA) (Guo et al., and Brodsky (Horan & Brodsky, 1986), and Actinoplanes 2008; McTaggart et al., 2010), average nucleotide identity azureus (Celmer et al., 1977) were known to have similar (ANI) (Konstantinidis & Tiedje, 2005; Goris et al., 2007; characteristics, unlike general Actinoplanes species

S3 containing meso-DAP in their cell walls (Vobis, 1989). Micromonospora, and Pilimelia in possessing L-lysine Therefore, Stackebrandt and Kroppenstedt (1987), and instead of meso-DAP as the cell wall diamino acid and Goodfellow et al. (1990) insisted that A. caeruleus should developing spores within the mycelia arranged in chains not be included in the genus Actinoplanes. Their strains instead of enclosed in a sporangial wall (Table 1). This fact possessed motile arthrospores and L-lysine as cell wall indicated that the members of the family diamino acid (wall chemotype VI and murein type A3α) like Micromonosporaceae do not possess phenotypic the members of the genus Catenuloplanes but differed with characteristics in common. regard to menaquinone system (MK-9(H4)), phospholipid type Koch et al. (1996) emended the family

(type II), and cellular fatty acids (iso-C16:0 and anteiso-C17:0) Micromonosporaceae, because the phenotypic (Table 1). Therefore, we proposed a novel genus, heterogeneity of the family has further increased, especially Couchioplanes and a novel member, Couchioplanes with respect to the peptidoglycan composition, phospholipid, caeruleus. and fatty acid type, and morphology, and showed that the As Catenuloplanes and Couchioplanes possess wall family Micromonosporaceae could be distinguished from chemotype VI, they could not be assigned to any family given other suprageneric groups of actinomycetes by 16S rDNA the chemotaxonomic characteristics at that time. We started similarity. Furthermore, Stackebrandt et al. (1997) proposed a using 16S rRNA gene sequence analysis for the classification new hierarchic classification system in which phylogenetically of the genus Luteococcus (Tamura et al., 1994). Based on neighboring taxa at the genus level are clustered into families, our result of the 16S rRNA gene sequence, C. japonicus IFO suborders, orders, subclasses, and a class irrespective of those 14176T, IFO 14177, and RA 330, and C. caeruleus IFO phenotypic characteristics on which the delineation of taxa had 13939T phylogenetically formed a clade with the members of been based in the past. The descriptions of higher taxa were the genera Actinoplanes and Dactylosporangium based solely on 16S rDNA/rRNA sequence-based belonging to the family Micromonosporaceae (Goodfellow phylogenetic clustering and the presence of taxon-specific 16S et al., 1990) (Figure 1). However, they differed from members rDNA/RNA signature nucleotides instead of a listing of a wide of the genera Actinoplanes, Dactylosporangium, array of phenotypic properties. This is an innovative and

S4 satisfactory application to bacterial systematics. Eighty-nine strains since many years. As NBRC contributes to the genera of gram-positive, high G+C bacteria were development of microbial researches, 16S rRNA gene hierarchically assigned to 35 families, 6 orders, and 5 sequences of almost all actinomycetes collected in NBRC, subclasses in the class Actinobacteria. This classification including almost all strains of Actinoplanes and based on 16S rRNA gene sequence fit that based on Streptomyces, have been sequenced and published as basic phenotypic properties (Goodfellow, 1989). This shows the information. Thus, Actinoplanes minutisporangius (Ruan importance of phenotypic data appeared because of many gene et al., 1985) and Actinoplanes aurantiacus (Kalakouskii & expression. The polyphasic taxonomy took into account all Kusnetsov, 1964) were transferred to the genus available phenotypic and genotypic data, integrated them in a Cryptosporangium as Cryptosporangium consensus type of classification, and framed a general minutisporangium and Cryptosporangium aurantiacum, phylogeny derived from 16S rRNA sequence analysis respectively (Tamura & Hatano, 2001). In addition, invalid (Vandamme et al., 1996). This has now become a standard species, Actinoplanes ianthinogenes, a producer of tool in actinomycete systematics. purpuromycin (Coronelli et al., 1974), and Actinoplanes ianthinogenes subsp. octamycini producing antibiotic Reclassification of NBRC collections complex 4041 (Gause et al., 1979), were proposed as valid species and were named A. ianthinogenes and A. Classification of actinomycete has been performed by octamycinicus, respectively, based on the polyphasic many researchers in the past and has been modified in taxonomic data (Tamura et al., 2011b). The 16S rRNA gene accordance with the transition of classification indicators. The sequence analysis of the family Streptomycetaceae revealed taxonomic position of organisms reported in the past by that some strains belonging to the genus Streptomyces traditional/classical indicators should be updated based on the formed a clade with the members of the genus Kitasatospora modern indicators. It is important for the development of (Figure 2). However, their strains, excluding Streptomyces systematics and/or biology and serves as the basis for future atroaurantiacus NBRC 14327, could be detected only research. NBRC has been preserving many actinomycete LL-diamino acid (A2pm). Their characteristics were different

S5 from the genus Kitasatospora, which possessed both LL- subtropical zones could be obtained from temperate zones T and meso-A2pm. Streptomyces tenebrarius NBRC 16177 , such as Chiba, the related strains of Amycolatopsis reported to produce nebramycin, (Higgins & Kastner, 1967) pigmentata and Amycolatopsis helveola were obtained was phylogenetically a close relative of Streptoalloteichus only from the subtropical region (Tamura et al., 2010a), and hindustanus, which was also reported to produce some relationships between taxa and habitat were observed. nebramycin with tallysomycins, and hence, it was designated Actinoallomurus yoronensis, Actinoallomurus with a novel combination name Streptoalloteichus amamiensis, Actinoallomurus fulvus, Actinoallomurus tenebrarius (Tamura et al., 2008b). Streptomyces iriomotensis, Actinoallomurus iriomotensis, caeruleus (Baldacci, 1944) and Streptomyces Actinoallomurus luridus, Virgosporangium ochraceum, flavidofuscus (Gause et al., 1983) were also identified as and Virgosporangium ochraceum were found at the Actinoalloteichus cyanogriseus and Nocardiopsis Iriomote, Ishigaki, and Okinawa main islands, as well as in the dassonvillei subsp. dassonvillei, respectively (Tamura et subarctic area of Amami Oshima (Tamura et al., 2001, 2009). al., 2008; Tamura et al., 2008a). The polyphasic analysis was The variety of actinomycetes obtained from subtropical able to objectively demonstrate the differences and relations samples is impressive. between bacteria. As for the strains belonging to invalid Angustibacter luteus was isolated from actinomycetes species and non-type species, their chances of reevaluation are that were found in the subarctic area at the Rishiri island and actually small. One of the important aims of culture collection was proposed as a representative strain of a new genus, is to reevaluate these microorganisms and bring out their because it was a facultative anaerobic, non-motile, short rod appeal. All reclassifications and changes of species name were microorganism. Moreover, it possessed iso-C17:0, iso-C15:0, and performed in the course of maintenance of the collection. The C16:0 as the major fatty acids and MK-9(H4) as the major name changes are reflected in the NBRC catalogue. menaquinone, and phylogenetically belonged to the family Kineosporiaceae (Tamura et al., 2010b). Furthermore, Novel actinomycetes Luteimicrobium subarcticum, Demequina flava, Demequina sediminicola, Luteimicrobium album, Microbial diversity could be a valuable factor in the Janibacter cremeus, and Actinomycetospora development of useful substances and environmental rishiriensis were reported (Hamada et al., 2010, 2012, conservation. Japan experiences various environments, from 2013a, 2013b; Yamamura et al., 2011). subarctic to subtropical; hence, we tried to isolate the main flora from these environments. Mangroves are tropical shrubs consisting of various plants belonging to the genus Rhizophora. Mangroves grow in various topologies, such as muddy shores with tangled roots above ground, spread out shores, and at the river mouth in tropics. They are known as the habitat of various organisms. However, studies on actinomycete at mangroves were scarce when we started our research. We tried to investigate the diversity of actinomycetes from mangrove regions at the Iriomote, Ishigaki, and Amami islands. The actinobacteria and Micromonospora strains are dominantly found in the highly salty regions growing Rhizophora mucronata. However, numerous rare sporoactinomycetes are found in the less salty regions growing Kandelia obovata. Surprisingly, Streptomyces is not a major actinomycete, despite being commonly found in its sea environment with Micromonospora strains. More Streptomyces strains were isolated from samples collected from fresh water areas than from brackish water areas. Strain TT97-42T was proposed as a member of a new genus, Polymorphospora rubra (Tamura et al., 2006). This organism is closely related in the phylogenetic tree to the genus Micromonospora, but its morphology is different from other species of this genus. Strains A3015T and 014-5T were reported as new species, Actinoallomurus caesius and Actinomycetospora corticicola, respectively (Tamura et al., 2009, 2011a). Many novel bacteria from the mangrove area were reported (Ara et al., 2007; Huang et al., 2008; Liao et al., 2009; Xiao et al., 2009; He et al., 2012), and the importance of microorganisms in the mangrove environment has also become clear. Although many actinomycete strains closely related to the isolates from

S6 useful for agriculture and livestock production determine their characteristics, and create a database that contributes to the preservation and sustainable use of microbial resources. During this project, diverse actinomycetes were isolated from various locations in Indonesia and deposited at the Microbiology Division of the Bioresource Center. Among those strains, our collaborator, Dr. Arif Nurkanto, studied and proposed four new species, namely, Actinoplanes tropicalis (= InaCC A 459T = NBRC 110973T), Actinoplanes cibodasensis (= InaCC A 458T = NBRC 110974T), Actinoplanes bogoriensis (= InaCC A 522T = NBRC 110975T), and Cryptosporangium cibodasense (= InaCC A 457T = NBRC 110976T) (Nurkanto et al., 2015a, 2015b, 2016). One new genus, Tropicihabitans flavus (= InaCC A 516T = NBRC 110109T), and three new species, Serinibacter tropicus (= InaCC A 515T = NBRC 110108T), The genus Spirilloplanes, consisting of organisms Cellulosimicrobium marinum (RS-7-4T =NBRC 110994T that develop tight spiral sporangia, was proposed to belong =InaCC A726T), and Kocuria pelophila (RS-2-3T =NBRC to the family Micromonosporaceae (Tamura et al., 110990T=InaCC A704T), were also proposed by Dr. Hamada 1997) (Figure 3). The type strain of type species of this et al. (2015a, 2015b, 2016a, 2016b) Indonesia is located in the genus was isolated from the soil at Yamanashi and is still the tropics, thus, there is a strong chance of discovering only strain of this genus. The genus Cryptosporangium, microorganisms that are different from those found in Japan. consisting of organisms that develop sporangia buried in The establishment of a microbial resource center in Indonesia the mycelium (Tamura et al., 1998) (Figure 4), was proposed that compiles diverse microorganism characteristics would to belong to the family Cryptosporangiaceae. The type contribute to the sustainable use of the microbiological strain of type species of this genus was isolated from the soil resource. at Yamanashi, and other strains were isolated from Okinawa, China (Tamura & Hatano, 2001), Mongolia (Ara et al., 2012), Genome base taxonomy Indonesia (Nurkanto et al., 2015b), and Thailand (Himaman et al., 2017). The genus Virgosporangium was proposed as a DNA-DNA hybridization (DDH) has been regarded as the new genus belonging to the family Micromonosporaceae gold standard for speciation in prokaryotic taxonomy (Wayne and consisted of organisms whose sporangia are longer et al., 1987). A DDH value of 70% is the recommended than those of the organisms belonging to the genus standard for delineating species. DDH experiments are one of Dactylosporangium (Tamura et al., 2001) (Figure 5). The a few universally applicable techniques for genome-wide members of the genus Virgosporangium were isolated from comparisons and have been performed to determine the mulberry and potato fields at Okinawa and vegetable fields at relatedness among bacterial strains. However, DDH Yamanashi. The genus Actinoallomurus was proposed as a experiments are often time consuming and skill-dependent, new genus possessing type species Actinoallomurus spadix, because relatively large quantities of high-quality DNA are originally reported by Nonomura and Ohara (1971) (Tamura et required for many combinations of comparisons. Furthermore, al., 2009). This genus belongs to the family unlike sequence data, DDH data cannot provide incremental Thermomonosporaceae and consists of organisms that databases because of the relative values among organisms. possess lysine with meso-A2pm in the cell wall. Eight new One of the most useful tools for bacterial identification is 16S species excluding type species were isolated from grassland, rRNA gene-based phylogeny. Correlations between 16S rRNA mangrove rhizosphere, citrus orchard, sugarcane field, gene sequence similarity and DDH relatedness data show that pineapple field, forest soil, and cow dung at the Iriomote 16S rRNA sequence similarities can be used to predict DDH island, Amami Oshima, and Chiba. It will be possible to relatedness below 70% (Stackebrandt & Goebel, 1994, discover new actinomycetes through careful separation in the Stackebrandt & Ebers, 2006). However, 16S rRNA-based future. analysis does not provide taxonomic resolution among closely related strains. MLSA has been used to explore a number of genera for prokaryotic taxonomy at the species level Science and Technology Research Partnership for (Adekambi & Drancourt, 2004; Guo et al., 2008; Deletoile et Sustainable Development (SATREPS) al., 2010; Rong & Huang, 2010; Rong et al., 2009, 2010; Zelazny et al., 2009). MLSA of multiple alternate regions of The NBRC actinomycete group joined the SATREPS DNA provides a more reliable understanding of the genome project, a Japanese government program that promotes than single-locus sequence-based identification schemes. international joint research, for the development of an Furthermore, many genome sequences have been determined internationally standardized microbial resource center to because of advances in sequencing technology and variety of promote life science research and biotechnology. In this digital DNA-DNA hybridization (GDDH) such as ANI (Goris project, researchers collect microorganisms that are potentially et al., 2007), GGDC (Auch et al., 2010), and the DNA

S7 maximal unique matches index (MUMi) (Deloger et al., 2009). the relationship within the genus Nocardia (Brown-Elliott et The results of ANI, MUMi, and GGDC have a high al., 2006; McNabb et al., 2006; McTaggart et al., 2010). correlation with DNA-DNA relatedness. The genus Nocardia, We sequenced 72 Nocardia strains and evaluated the first proposed by Trevisan (1889), is a member of the family inter- and/or intra-species relationship of Nocardia species Nocardiaceae, suborder Corynebacterineae (Stackebrandt using some of the aforementioned methods (Tamura et al., et al., 1997), and contains over 110 species with valid and 2012, 2018). The neighbor joining (NJ) phylogenetic tree published names (http://www.bacterio.net/nocardia.html). The derived from the nucleotide (nt) sequences concatenated the generic, medical, and industrial properties of the genus eight housekeeping genes (atpD - groL1 - groL2 – recA – Nocardia have been reviewed by Goodfellow and rpoA – secY – soda - ychF) (Figure 6). Of the 71 branches in Maldonado in detail (Goodfellow & Maldonado, 2012). the phylogenetic tree, 41 were supported by 100% bootstrap Genetic approaches such 16S rDNA sequence-based analyses value, and 46 were supported by the NJ phylogenetic tree and MLSA have been used to resolve the genetic diversity and based on the amino acid (aa) sequences that concatenated the

S8 eight housekeeping genes. Phylogenetically, Nocardia Hatano, Dr. Akira Yokota, Dr. Toru Hasegawa, Prof. Masayuki cerradoensis, Nocardia mikamii, Nocardia kruczakiae, Hayakawa and Prof. Hideo Nonomura for their kind guidance. Nocardia aobensis, Nocardia nova, Nocardia elegans, I am greatly thankful to my collaborators Dr. Akira Nakagiri, and Nocardia africana formed a coherent clade. This Dr. Katsuhiko Ando, Dr. Yasuyoshi Nakagawa, Dr. Hiroko species belonging to this clade were reported as Nocardia Kawasaki, Dr. Hisayuki Komaki, Dr. Moriyuki Hamada, Dr. asteroides Type III Drug Susceptibility Pattern (Wallace et Natsuko Ichikawa, Mr. Akira Hosoyama and Ms. Syoko Oji al., 1988; Brown-Elliott et al., 2006). Moreover, Nocardia for their contribution. I would also like to express my gamkensis, Nocardia exalbida, and Nocardia appreciation for support during this work to all members of arthritidis; Nocardia cummidelens, Nocardia soli, and NBRC and IFO. Finally, I would like to thank the members of Nocardia salmonicida; Nocardia coubleae and the SAJ for their continuing interest and support. Nocardia ignorata; and Nocardia brasiliensis and Nocardia vulneris formed coherent clades. N. coubleae REFERENCES and N. ignorata; and N. arthritidis, N. gamkensis, and N. exalbida were previously reported by McTaggart et al. Adekambi, T. & Drancourt, M. (2004). Dissection of (2010) as two sets of type strains that form distinct clusters. phylogenetic relationships among 19 rapidly growing Each clade was sustained in the maximum likelihood (ML) Mycobacterium species by 16S rRNA, hsp65, sodA, recA and maximum parsimony (MP) phylogenetic trees. The and rpoB gene sequencing. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. GGDC similarities between N. nova and N. elegans; N. 54, 2095-2105. exalbida and N. gamkensis; N. cummidelens, N. soli, and N. salmonicida; and N. coubleae and N. ignorata ranged Ara, I., Kudo, T., Matsumoto, A., Takahashi, Y. & Omura, from 73.7% to 92.9 % relatedness, which was higher than the S. (2007). Nonomuraea maheshkhaliensis sp. nov., a 70 % cut-off point of DDH relatedness for the assignment of novel actinomycete isolated from mangrove rhizosphere bacterial strains to the same genomic species (Wayne et al., mud. J. Gen. Appl. Microbiol. 53, 159-166. 1987). Each closely related species possessed similar phenotypic characteristics. Ara, I., Tsetseg, B., Daram, D., Suto, M. & Ando, K. (2012). Cryptosporangium mongoliense sp. nov., isolated from Conclusion soil. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 62, 2480-2484.

Microbial systematics is important for maintenance of Auch, A. F., Klenk, H. P. & Goker, M. (2010a). Standard microorganisms in NBRC. We tried to enrich the operating procedure for calculating genome-to-genome actinomycete collection of IFO/NBRC by reporting novel distances based on high-scoring segment pairs. Stand. species and genera of actinomycetes based on polyphasic Genomic Sci. 2, 142-148. taxonomy. For phylogeny, objectivity is essential. Therefore, it should be evaluated by cultural, physiological and Auch, A. F., von Jan, M., Klenk, H. P. & Goker, M. (2010b). biochemical properties, morphology to chemotaxonomy, and Digital DNA-DNA hybridization for microbial species phylogenetic systematic. Classification of microorganisms delineation by means of genome-to-genome sequence using a genomic approach will become common in the future, comparison. Stand. Genomic Sci. 2, 117-134. at least for prokaryotes. Even so, the importance of considering phenotypic properties in systematics studies does Baldacci, E. (1944). Contributo alla sistematica degli not change. The Organization for Economic Co-operation and attinomiceti: X-XVI - Actinomyces madurae; Development (OECD) defined that the Best Practice Proactinomyces ruber; Proactinomyces pseudomadurae, Guidelines for Biological Resource Centers (BRCs) are Proactinomyces polychromogenus; Actinomyces considered to be one of the key elements for sustainable violaceus; Actinomyces caeruleus; con un elenco international scientific infrastructure, which is necessary to alfabetico delle specie e delle varieta finora studiate. Atti underpin successful delivery of the benefits of biotechnology, dell'Istituto Botanico della Universita Laboratorio whether within the health sector, the industrial sector, or other Crittogamico di Pavia Series 5 3, 139-193. sectors, and in turn ensure that these advances help improve BRC. NBRC will need to be enriched to maintain the quality Baldacci, E., Spalla, C. & Grein, A. (1954). The of the collection for responding to the request of further classification of the Actinomyces species (= Streptomyces). advancement of biotechnology and life sciences. Arch. Mikrobiol. 20, 347-357.

Acknowledgements Brown-Elliott, B. A., Brown, J. M., Conville, P. S. & Wallace, R. J., Jr. (2006). Clinical and laboratory It was my great honor to receive the Ōmura Award of the features of the Nocardia spp. based on current molecular Society for Actinomycetes, Japan (SAJ) in 2017. This study taxonomy. Clin. Microbiol. Rev. 19, 259-282. was mainly conducted in the NITE Biological Resource Center (NBRC), National Institute of Technology and Buchanan, R. E. (1955). Taxonomy. Ann. Rev. Microbiol. 9, Evaluation and Institute for Fermentation, Osaka (IFO). I 1-20. express my gratitude to Prof. Ken-ichiro Suzuki, Dr. Kazunori

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S13

Publication of Award Lecture

The Society for Actinomycetes Japan Ōmura Award 2017,

Dr. Tomohiko Tamura

“Diversity and Classification of Actinomycetes in Japan and Asia” Actimomycetologica (2018) 32 [2], S3-13.

Resource Collection Division, Biological Resource Center, National Institute of Technology and Evaluation (NBRC)

S14 The 2018 Annual Meeting of the Society for Actinomycetes Japan (Program)

September 11th (Tue) 8:20 Registration 9:00 Opening Remarks 9:05 Oral Presentation Session 1 O-1 Microbial production of bioketone using hybrid enzymes ○Satoshi Yuzawa1,2, Mona Mirsiaghi1, Leonard Katz2,3, and Jay Keasling1,2,3 (1LBNL, 2JBEI, 3UC Berkeley) O-2 Characterization and application of interfacial bioprocess with an actinomycete ○Haruka Kuboki, Shinobu Oda (Genome Biotechnol. Lab., Kanazawa Inst. Technol.) O-3 Characterization of actinomycete strain AKA32 isolated from deep-sea water (P-54) in Izu-Akazawa, Japan ○Taehui Yang1, Katsuhisa Yamada2, Tao Zhou3, Enjuro Harunari3, Yasuhiro Igarashi3, Ikegami Yasuyuki4, Takeshi Terahara1, Takeshi Kobayashi1, Chiaki Imada1 (1Tokyo Univ. of Mar. Sci. and Technol., 2DHC Corporation, 3 Toyama Pref. Univ., 4Saga Univ.) O-4 Application of combined-culture strategy to rare-actinomycetes and (P-55) discovering novel secondary metabolites ○Shotaro Hoshino1, Takayoshi Awakawa1, Hiroyasu Onaka2, Ikuro Abe1 (1Grad. Sch. Pharm. Sci., The Univ. of Tokyo, 2Grad. Sch. Agri. And Life Sci., The Univ. of Tokyo.) O-5 Mechanism of succinylation involved in reveromycin biosynthesis (P-56) ○Naoko Kito1, Yumi Sato1, Hideo Okumura2, Takashi Kumasaka2, Hiroyuki Osada3, Shunji Takahashi1 (1 RIKEN CSRS Nat. Prod. Biosynth., 2JASRI, 3 RIKEN CSRS Chem. Biol.) O-6 Biosynthetic Gene Cluster of a-D-Tryptophan Containing Lasso Peptide, MS-271 (P-57) ○Zhi Feng, Yasushi Ogasawara, Satoshi Nomura, and Tohru Dairi (Grad. Sch. Engineering, Hokkaido Univ.) 10:23 Break 10:50 Invited Lecture 1 Continuing Fascination with Actinomycetes:From Phenotypic Screening to Chemical Biology Hideaki Kakeya (Graduate School of Pharmaceutical Sciences, Kyoto University) 11:35 Lunch

S15 12:45 The SAJ Plenary Meeting 13:15 Award Ceremony 13:45 Award Lectures Ōmura Award (SAJ Award) Investigation of secondary metabolite diversity in actinomycetes using spectrochemical approach Yasuhiro Igarashi (Department of Biotechnology, Toyama Prefectural University) SAJ Merit Award Discovery of various actinomycete metabolites and contribution to electron microscopic observation Shoichi Amano (Former Meiji Seika Co., Ltd) Hamada Award Study on biosynthesis of natural products synthesized from aminobenzoate in Actinobacteria Yohei Katsuyama (Graduate School of Agricultural and Life Sciences, The University of Tokyo) Screening for novel bacterial infection control compounds from actinomycetes Atsushi Fukumoto (Faculty of Pharmaceutical Sciences, Toho University)

SAJ Award for Corporation Efforts of stable supply and increasing production for tacrolimus produced by Streptomyces tsukubensis Astellas Pharma Tech Co., Ltd. 15:40 Break 16:00 Poster Short Presentation (odd numbers) 17:00 Poster Session (odd numbers) 18:00 Break 18:30 Banquet (Until 20:30)

September 12th (Wed) 9:00 Oral Presentation Session 2 O-7 Purification and identification of sporangium wall components of the rare (P-58) actinomycete Actinoplanes missouriensis ○Satoshi Maeda1 , Takeaki Tezuka1,2, Aya mizuike1, Ryouichi Fukuda1,2, Moriyuki Hamada3, Tomohiko Tamura3, Hiroyuki Horiuchi1,2, Yasuo Ohnishi1,2 (1Grad. Sch. of Agric. and Life Sci., Univ. of Tokyo, 2 CRIIM, Univ. of Tokyo, 3NITE・NBRC) O-8 Two glycoside hydrolases required for sporangium dehiscence in Actinoplanes (P-59) missouriensis ○Kyota Mitsuyama1, Takeaki Tezuka1, 2, Yasuo Ohnishi1, 2 (1Grad. Sch. of Agric. and Life Sci. Univ. of Tokyo, 2CRIIM Univ of Tokyo) S16 O-9 Analysis of the mechanisms for enhanced cell growth and secondary metabolite (P-60) production of Streptomyces strains in the presence of lincomycin ○Keiichiro Mukai1, Misaki Ishizuka1, Momoko Kobayashi2, Yu Imai3, Kozo Ochi, Takeshi Hosaka1, 2, 4 (1 Grad. Sch. of Sci. and Technol., Shinshu Univ., 2 Fac. Agric. Shinshu Univ., 3 Northeastern Univ., 4 IBS-ICCER, Shinshu Univ.) O-10 Automatic discrimination of actinomycete colonies using artificial intelligence (P-61) ○Keita Nakashima1, Hidetoshi Ando1, Hideki Yamamura2 , Masayuki Hayakawa2 (1Fac. Engineer. Univ. Yamanashi, 2Fac. Life Environ. Sci. Univ. Yamanashi) O-11 Isolation and characterization of actinobacteria derived from deep-sea (P-62) sediment in Japan ○Bungonsiri Intra1, Mihoko Mori1, 2, Satoshi Ōmura1, Atsuko Matsumoto1, 2 (1Kitasato Institute for Life Sciences, Kitasato University, 2Graduate School of Infection Control Sciences, Kitasato University) O-12 Actinobacteria from forest ecosystems of Northeast India: In vitro (P-63) antimicrobial and biosynthetic potential for polyketides discovery ○Priyanka Sharma1, Debajit Thakur2 (1Malaria Drug Discovery Lab, ICGEB, India, 2Microbial Biotechnology Lab, IASST, India) 10:18 Break 10:30 Poster Short Presentation (even numbers) 11:30 Poster Session (even numbers) 12:30 Lunch 13:30 Oral Presentation Session 3 O-13 Features of the member of a novel family “Dictyobacteraceae” belonging to the class Ktedonobacteria that forms sporangium like those of actinomycetes ○Shuhei Yabe, Yu Zheng, Ciung-Mei Wang, Yasuteru Sakai, Keietsu Abe, Akira Yokota (Grad. Sch. Agric. Sci., Tohoku Univ.) O-14 Reclassification of three strains misidentified as Streptomyces griseus ○Hisayuki Komaki, Tomohiko Tamura (NBRC) O-15 Butenolides from Streptomyces albus J1074 act as external signals to stimulate avermectin production in Streptomyces avermitilis ○Shigeru Kitani1,Thao Bich Nguyen1, Shuichi Shimma2, Takuya Nihira1 (1ICBiotech. Osaka Univ., 2Grad. Sch. Eng. Osaka Univ.) O-16 Analysis of function of antibiotics as an organocatalyst produced by Streptomyces vietnamensis ○Tatsuya Nishiyama, Narumi Enomoto, Reina Nagayasu, Hideaki Takano, Kenji Ueda (Life Science Research Center, College of Bioresource Sciences, Nihon University) O-17 Kasugamycin production from cellulosic biomass using cellulose-utilizing S17 streptomycetes Ami Sato, Tatsumasa Hibino, Kouhei Sakurada, Yuta Mutaguchi,○Kano Kasuga, Ikuo Kojima (Akita Prefectural Univ.) O-18 Streptopeptolin, a cyanopeptolin type peptide isolated from Streptomyces olivochromogenes ○Shinya Kodani1,2, Hisayuki Komaki3, Hikaru Hemmi4, Yuto Miyake1, Issara Kaweewan2, Hideo Dohra5 (1Grad. Sch. Integ. Sci., Shizuoka Univ., 2Grad. Sch. Sci. Tech., Shizuoka Univ., 3NBRC, 4NFRI, 5RIGST) O-19 Study on the novel polyketide linfuranones from Sphaerimonospora mesophila GMKU363 ○Hirofumi Akiyama1, Chantra Indananda2, Arinthip Thamchaipenet3, Hisayuki Komaki4, Akira Hosoyama4, Akane Kimura4, Naoya Oku1, Yasuhiro Igarashi1 (1Toyama Prefectural Univ., 2Burapha Univ., 3Kasetsart Univ., 4NBRC.) 15:01 Break 15:30 Invited Lecture 2 Nagoya Protocol Implementation- Points about conducting microbial research with overseas- Mutsuaki Suzuki (National Institute of Genetics, ROIS) 16:20 Poster Award Ceremony 16:30 Announcement from SAJ34 organizer 16:35 Closing Remarks

Poster Session P-1 Characterization of a biosurfactant-producing actinomycete isolated from marine sediments in Otsuchi Bay ○Yukiko Nampo1, Takuya Naemura1, Takeshi Terahara1, Moriyuki Hamada2, Tomohiko Tamura2, Takeshi Kobayashi1, Chiaki Imada1 (1Department of Marine Biosciences, TUMSAT, 2NBRC/NITE) P-2 Phylogenic analysis and secondary metabolite profiling of actinomycetes from deep–sea water in Izu-Akazawa ○Masayuki Yamada1, Taehui Yang2, Enjuro Harunari1, Katsuhisa Yamada3, Chiaki Imada2, Yasuhiro Igarashi1 (1Toyama Pref. Univ., 2Tokyo Univ. of Marine Sci. and Tech., 3DHC Co.) P-3 Isolation, phylogenic analysis, and secondary metabolite profiling of actinomycetes from the deep seawater of Toyama Bay -2nd report- ○Sae Kanaki1, Keiko Ogino1, Enjuro Harunari1, Hiroaki Takeuchi2, Yasuhiro Igarashi1 (1Toyama Pref. Univ., 2Kochi Univ.)

S18 P-4 Characterization and taxonomic study of Micromonospora sp. KV-964 isolated from plant roots ○Yunosuke Nakamura1, Shoici Ikeda1, Akira Také2, Satoshi Ōmura2, Atsuko Matsumoto1, 2 (1Grad. Sch. Infection Control Sci.; 2Kitasato Inst. Life Sci., Kitasato Univ.) P-5 Development of colony imaging technique for automatic discrimination of actinomycete colonies using artificial intelligence ○Hideki Yamamura1, Saki Amemiya1, Hidetoshi Ando2, Masayuki Hayakawa1 (1Fac. Life Environ. Sci,, Univ. Yamanashi, 2Fac. Engineer., Univ. Yamanashi) P-6 Isolation of Salinispora sp. from deep-sea sediments of the Shikoku Basin ○Dana Ulanova1,2 (1Fac. Agric. Mar. Sci. Kochi Univ., 2Cent. Adv. Mar. Core Res. Kochi Univ.) P-7 Phylogenetic diversity and novelty of actinomycete isolates from ant ○Hideyuki Muramatsu, Tamami Yoshida, Sayaka Takahashi, Rina Ando, Masayuki Igarashi (Institute of Microbial Chemistry BIKAKEN) P-8 Functional analysis of FliA proteins that control gene expression in sporangia in Actinoplanes missouriensis ○Yuichiro Hashiguchi1, Takeaki Tezuka1,2, Yasuo Ohnishi1,2 (1Grad. Sch. of Agric. and Life Sci. Univ. of Tokyo, 2CRIIM Univ. of Tokyo) P-9 Homeostatic regulation of nitric oxide by low molecular thiol compounds in Streptomyces coelicolor ○Yukiko Shibui, Shinsaku Ito, Syunsuke Yajime, Yasuyuki Sasaki (Tokyo Univ. Agric.) P-10 Nitric oxide regulates antibiotic production via two component system in Streptomyces coelicolor A3(2) M145 ○Sota Honma, Shinsaku Ito, Syunsuke Yajima , Yasuyuki Sasaki (Tokyo Univ. Agric.) P-11 Analysis of the mechanism for light-inducible carotenoid production in a rubber-degrading bacterium Gordonia polyisoprenivorans VH2 ○Yu Tajima, Sakiyama Arata, Tomomi Araki, Satoru Sumi, Hatsumi Takano-Shiratori, Kenji Ueda, Hideaki Takano (College of Bioresource Sci., Nihon Univ.) P-12 Correlation between G protein-coupled receptor-like regulatory system Cvn1 and c-di-GMP signal transduction system in Streptomyces griseus ○Erika Mukoyama, Taisuke Amano, Kenji Ueda, Hideaki Takano (College of Bioresource Sci., Nihon Univ.) P-13 Analysis of two light-response mechanisms in Corynebacterium glutamicum ○Yuto Suzuki, Mizuki Yasui, Satoru Sumi, Kenji Ueda, Hideaki Takano (College of Bioresource Sci., Nihon Univ.)

S19 P-14 Analysis of the mechanism of combined-culture dependent transcriptional activation by godA promoter ○Masataka Kirihara, Shumpei Asamizu, Kazuya Teramoto, Hiroyasu Onaka (Grad. Sch. Agri. Life Sci., Univ. Tokyo) P-15 Analysis of direct interaction between mixed colonies of Streptomyces variegatus and Mycobacterium septicum from natural soil ◯Manami Kato, Shumpei Asamizu, Kazuya Teramoto, Hiroyasu Onaka (Grad. Sch. Agri. Life Sci., Univ. Tokyo) P-16 Identification of mutation genes in nonresponsive Streptomyces mutants against mycolic acid-containing bacteria Shumpei Asamizu1,○Takumi Ishizuka1, Masaomi Yanagisawa1, Kazuya Teramoto1, Katsuya Satoh2, Hiroyasu Onaka1 (1Grad. Sch. Agricultural and Life Sci. Univ. Tokyo, 2QST) P-17 Verification and analysis of the phenomenon that the phenotypic and genetic characteristics of actinomycetes are changed after single colony isolation ○Ryo Morimoto1, Tomoko Maruyama1, Ryoko Hamauzu2, Shinya Kodani3, Takeshi Hosaka1, 2 (1Grad. Sch. of Sci. and Technol. Shinshu Univ., 2IBS-ICCER, Shinshu Univ., 3Grad. Sch. of Agric. Shizuoka Univ.) P-18 Analysis of the dose-dependent response of tylosin on cell growth and secondary metabolism of actinomycetes ○Momoko Kobayashi1, Keiichiro Mukai2, Misaki Ishizuka2, Yu Imai3, Takeshi Hosaka1,2,4 (1Fac. Agric. Shinshu Univ., 2Grad. Sch. of Sci. and Technol., Shinshu Univ., 3Northeastern Univ., 4IBS-ICCER, Shinshu Univ.) P-19 Analysis of the mechanisms of antibiotic overproduction in Streptomyces strains harboring a specific 23S rRNA mutation ○Kanata Hoshino1, Yu Imai2, Ryoko Hamauzu3, Kozo Ochi, Takeshi Hosaka3 (1Grad, Sch. of Sci. and Technol., Shinshu Univ., 2Northeastern Univ., 3IBS-ICCER, Shinshu Univ.) P-20 Chemical analysis of peptides produced by marine streptomycete Streptomyces spongiicola ○Mana Suzuki1, Minami Kanda2, Hideki Yamamura3, Masayuki Hayakawa3, Shinya Kodani1,2 (1Grad. Sch. Integ. Sci., Shizuoka Univ., 2Fac. Agr. Shizuoka Univ.,3Fac. Life Environ. Sci, Univ. Yamanashi) P-21 Isolation and structure determination of new antibacterial peptide curacomycin based on genome mining ○Issara Kaweewan1, Hisayuki Komaki2, Hikaru Hemmi3, Shinya Kodani1 (1Grad. Sch. Sci. Tech., Shizuoka Univ., 2NBRC, 3NFRI) P-22 Isolation of a new lasso peptide lavenducin from Streptomyces lavenduligriseus ○Nodoka Nishimura1, Issara Kaweewan2, Hiroyuki Nakagawa3, Shinya Kodani1,2

S20 (1Grad. Sch. Integ. Sci., Shizuoka Univ., 2Grad. Sch. Sci. Tech., Shizuoka Univ., 3Advanced Analysis Center, NARO) P-23 Biosynthesis of the sulfonamide-containing metabolite in actinomycete ○Takayoshi Awakawa1, Zhijuan Hu1,2, Ikuro Abe1 (1Grad. Sch. Pharm. Univ. of Tokyo, 2Ocean College, Zhejiang Univ.) P-24 Quorum seinsing inhibitor produced by Streptomyces sp. TOHO-IJ42 and TOHO-HR54 ○Atsushi Fukumoto, Manami Furukawa, Hirono Mitsuhashi, Yohei Iizaka, Yojiro Anzai (Fac. Pharmaceutical Sci., Toho Univ.) P-25 Studies on multistep oxidation reaction of multifunctional P450 enzyme RosC ○Yohei Iizaka, Hiroshi Kanai, Tomoko Suzuki, Yuna Maruyama, Atsushi Fukumoto, Yojiro Anzai (Fac. Pharmaceutical Sci. Toho Univ.) P-26 Screening of Kutzneria albida secondary metabolites synthesized using the secondary metabolism-specific nitrous acid biosynthetic pathway ○Akito Yamada1, Yohei Katsuyama1, 2, Yasuo Ohnishi1, 2 (1Grad. Sch. Agric. and Life Sci., Univ. of Tokyo, 2CRIIM, Univ. of Tokyo) P-27 Biosynthesis of iminimycin in Streptomyces griseus IFO13350 ○Hayama Tsutsumi1, Yohei Katsuyama1,2, Takeaki Tezuka1,2, Rei Miyano3, Yuki Inahashi3,4, Yōko Takahashi4, Takuji Nakashima3,4, Yasuo Ohnishi1,2 (1Grad. Sch. Agri. and Life Sci., Univ. of Tokyo, 2CRIIM, Univ. of Tokyo, 3Grad. Sch. Inf. Cont. Sci. Kitasato Univ., 4Kitasato Inst. Life Sci. Kitasato Univ.) P-28 Biosynthesis of the aromatic polyketide yoropyrazone in Streptomyces sp. IFM11307 ○Kasumi Fujita1, Yohei Katsuyama1,2, Kazufumi Toume3, Masami Ishibashi4, Yasuo Ohnishi1,2 (1Grad. Sch. Agric. And Life Sci. Univ. of Tokyo, 2CRIIM Univ. of Tokyo, 3Ins. of Nat. Med. Univ. of Toyama, 4Grad. Sch. Pharm. Sci. Chiba Univ.) P-29 Functional analysis of the genes encoding glycosyltransferase involved in biosynthesis of saprolmycin ○Takashi Kawasaki1, 3, Misato Satou2, Asako Moriyama2, Nobutaka Imamura2, Kazufumi Yazaki1. (1Research Institute for Sustainable Humanosphere, Kyoto Univ, 2Col. Pharm. Sci, Ritsumeikan Univ, 3Research Organization of Science and Technology, Ritsumeikan Univ.) P-30 Analysis of quinone cofactor involved in antibiotic production ○Keisuke Hara, Asako Umeshiro, Yusuke Yamauchi, Kenji Arakawa (Dept. Mol. Biotech., Grad. Sch. AdSM, Hiroshima Univ) P-31 Function analysis of a reductase gene srrG in secondary metabolic production of Streptomyces rochei ○Aiko Teshima, Li Xie, Hiroyuki Kawahara and Kenji Arakawa (Dept. Mol. Biotech. Grad. Sch. AdSM, Hiroshima Univ.) P-32 Genome mining of secondary metabolites by manipulation of the regulatory genes ○Yuya Misaki, Miyuki Iwakuni, Yuzuru, Takahashi, Toshihiro Suzuki, S21 Haruyasu Kinashi, Kenji Arakawa ( Dept. Mol. Biotechnol., Grad. Sch. AdSM, Hiroshima Univ.) P-33 Attempt to acquire unidentified secondary metabolites through comprehensive metabolome analysis ○Rikito Nishiura, Amirudin Akhmad Fauzi, Yosi Nindita and Kenji Arakawa (Dept. Mol. Biotech., Grad. Sch. AdSM, Hiroshima Univ.) P-34 Analysis of the macrocyclization mechanism of carbocyclic polyketide compounds ○Hazuki Ogata, Yuji Yukiyoshi , Kenji Arakawa (Dept. Mol. Biotech. Grad. Sch. AdSM, Hiroshima Univ.) P-35 New nanaomycin analogs produced by “Streptomyces rosa subsp. notoensis” OS-3966 Hirotaka Matsuo1,2,○Rei Miyano2, Yoshihiko Noguchi1,2, Akira Také3, Jun Nakanishi4, Katsumi Shigemura5, Tomoyasu Hirose1,2, Toshiaki Sunazuka1,2, Yōko Takahashi1, Satoshi Ōmura1, Takuji Nakashima1,2 (1Kitasato Inst. Life Sci., 2Grad. Sch. Inf. Cont. Sci. Kitasato Univ., 3Res. Org. for Nano and Life Innov. Waseda Univ., 4NIMS, 5Grad. Sch. Med. Kobe Univ.) P-36 GKU257-1A, a new polycyclic xanthone, produced by a marine actinomycete strain, Streptomyces sp. GKU257-1 ○Yuki Inahashi1, Kantinan Leetanasaksakul2, Takuya Suga1, Hirotaka Matsuo1, Rei Hokari1, Yōko Takahashi1, Kazuro Shiomi1, Arinthip Thamchaipenet 2, Takuji Nakashima1, Satoshi Ōmura1 (1Kitasato Inst. Life Sci., Kitasato Univ., 2 Dep. Genetics, Fac. Sci., Kasetsart Univ.) P-37 Enzymatic Studies on the Two Consecutive Hydroxylations involved in Actinorhodin Biosynthesis (4th Report) ○Akari Hotta1, Eriko Hoshi1, Makoto Hashimoto1, Takaaki Taguchi2, Kazuki Ishikawa1, Takuya Kumamoto3, Susumu Okamoto4, Koji Ichinose1 (1Fac. of Pharmacy, Musashino Univ., 2National Institute of Health Sciences, 3Grad. School of Pharmaceut. Sci., Hiroshima Univ., 4National Agriculture and Food Res. Organization) P-38 Searching for antimicrobial compounds produced by actinomycete antagonistic to Phialophora gregata f. sp. adzukicola 〇Ryosuke Kawamura, Ken Suzuki, Takara Taketani, Hiroshi Kawaide, Masahiro Natsume (Grad. School of Agric., Tokyo Univ. of Agric. and Technol.) P-39 Analysis of kinanthraquinone biosynthetic gene cluster ○Risa Takao1,2, Naoko Kito2, Hiroshi Takagi2, Toshihiko Nogawa3, Hiroyuki Osada1,3, Shunji Takahashi2 (1Saitama Univ. 2RIKEN CSRS Nat. Prod. Biosynth., 3RIKEN CSRS Chem. Biol.) P-40 Functional analysis of 1-aminocyclopropanecarboxylic acid synthase found in actinomycetes ○Yukiko Chinone1, Chitose Maruyama1, Junko Hashimoto2, Ikuko Kozone2, Kazuo Shin-ya3, Yoshimitsu Hamano1

S22 (1Grad. Sch. Biosci. Biotec. Fukui Pref. Univ., 2JBIC, 3AIST) P-41 Studies on the biosynthesis of the polyketide FR182877 produced by Streptomyces ○Nanase Masuda1, Kazuo Shin-ya3, Makoto Nishiyama1,2, Tomohisa Kuzuyama1,2 (1BRC, 2CRIIM, UTokyo, 3AIST) P-42 Studies on the biosynthesis of the meroterpenoid phenazinomycin ○Teruhito Kato1, Tomoyo Nakao1, Satoshi Omura3, Makoto Nishiyama1,2, Tomohisa Kuzuyama1,2 (1BRC, 2CRIIM, UTokyo, 3Kitasato Institute for Life Sciences, Kitasato University) P-43 Mechanism of the common deamination in the biosynthesis of meroterpenoids from Streptomyces ○Tomohiro Noguchi1, Makoto Nishiyama1,2, Tomohisa Kuzuyama1,2 (1BRC, 2CRIIM, UTokyo) P-44 Genome analysis of a D-cycloserine-producing Streptomyces lavendulae ATCC11924 Kento Yaoi1, Teruo Kuroda2, Daichi Morita2, Masanori Sugiyama2,○Takanori Kumagai2 (1Sch. Pharm. Sci., Hiroshima Univ, 2Grad. Sch. Biomed. & Health Sci., Hiroshima Univ.) P-45 Discovery and functional analyses of β-carboline alkaloid-metabolizing enzyme ◯Toshiki Nagakubo1, Takuto Kumano1, Takehiro Ohta2, Yoshiteru Hashimoto1, Michihiko Kobayashi1 (1Grad. School of Life and Environ. Sci., Univ. of Tsukuba. 2Grad. School of Life Sci., Univ. of Hyogo) P-46 Screening of red pigment-degrading microorganisms and enzymes ◯Sanae Hori, Takuto Kumano, Yuzu Terashita, Yoshiteru Hashimoto, Michihiko Kobayashi (Grad. School of Life and Environ. Sci., Univ. of Tsukuba) P-47 Exploration of D-peptide degrading enzyme from a poly-D-diaminobutyric acid producer, Streptoalloteichus hindustanus ○Hiroki Miyawaki1, Hibiki Fukumoto2, Yoshimitsu Hamano3, Tadao Oikawa1,2, Kazuya Yamanaka1,2 (1Kansai Univ., 2Grad. Sch. Sci. Eng. Kansai Univ., 3Fukui Prefectural Univ.) P-48 Cloning of the gene coding for novel PLP-independent diaminobutyric acid racemase involved in Poly-D-diaminobutyric acid biosynthesis ○Ryo Ozaki1, Hibiki Fukumoto2, Yoshimitsu Hamano3, Tadao Oikawa1,2, Kazuya Yamanaka1,2 (1Kansai Univ., 2Grad. Sch. Sci. Eng. Kansai Univ., 3Fukui Prefectural Univ.) P-49 Distribution analysis of actinomycetal secondary metabolites on the 16S rRNA-based phylogenetic tree ○Enjuro Harunari1, Hisayuki Komaki2, Yasuhiro Igarashi1 (1Toyama Pref. Univ., 2NBRC)

S23 P-50 Complete nucleotide sequence of a linear chromosome of Streptomyces rochei strain 7434AN4 Yosi Nindita1,〇Kuninobu Inada2, Amirudin Akhmad Fauzi1, Aiko Teshima1, Yuya Misaki1, Rukman Muslimin1, Jun Ishikawa3 , Haruyasu Kinashi1, and Kenji Arakawa1 (1Dept. Mol. Biotech., Grad. Sch. AdSM, Hiroshima Univ., 2N-BARD, Hiroshima Univ., 3NIID) P-51 Chemical modification of the bioactive molecules with ε-poly-L-lysine for improving cell membrane permeability and water solubility ○Yamato Takeuchi1, Kazunori Ushimaru2, Yasuo Kato3, Chitose Maruyama1, Yoshimitsu Hamano1 (1Grad. Sch. Biosci. Biotec. Fukui Pref. Univ., 2AIST, 3Grad. Sch. Eng. Toyama Pref. Univ.) P-52 Multiple centrifugation reduces fungal and non-motile bacterial contamination in selective isolation for motile actinomycetes ○Miho Ezura1, Hideyuki Muramatsu2, Masayuki Igarashi2 (1Institute of Microbial Chemistry, BIKAKEN, 2College of Bioresource Sci., Nihon Univ.)

P-53 Screening for antimicrobial agents and contamination control in bioethanol production ○Takanori Matsuda, Hiroto Nishijima, Kouji Yoshida, Kiyotaka Saga, Shin-Ichi Suzuki (Biomaterial in Tokyo, Ltd.)

P-54 Oral presentation O-3 P-55 Oral presentation O-4 P-56 Oral presentation O-5 P-57 Oral presentation O-6 P-58 Oral presentation O-7 P-59 Oral presentation O-8 P-60 Oral presentation O-9 P-61 Oral presentation O-10 P-62 Oral presentation O-11 P-63 Oral presentation O-12

S24 63rd Regular Colloquium

Date: Nov. 2 (Fri), 2018 Place: Kitasato University

Program:

1. “Toward the construction of an unnatural polyketide library: Engineering a bacterial chemical factory” Satoshi YUZAWA (Biotechnology Research Center, The University of Tokyo)

2. “Where do pufferfish acquire tetrodotoxin, and they use for what?” Shiro ITOI (Department of Marine Science and Resources, Nihon University)

3. “Skin microbiome; human health, skin disease, and space.” Takashi SUGITA, Otomi CHO (Department of Microbiology, Meiji Pharmaceutical University)

4. “Biochemical engineering analysis of conventional microbial culture method and it’s application.” Hideki AOYAGI, Masato TAKAHASHI (Faculty of Life and Environmental Sciences, University of Tsukuba)

S25 The 2019 (34th) Annual Meeting of the Society for Actinomycetes Japan

Dear All,

The 2019 (34th) annual meeting of SAJ will be held in September 2019 in Sapporo, Japan. Your presence and submitting papers are highly appreciated. Updated information will be provided on the SAJ Website (http://www.actino.jp/index-e.html).

We are looking forward to meeting you there.

Best Regards, Tohru Dairi, Prof. PhD Chair Person (Graduate School of Engineering, Hokkaido University)

General Outline

Dates: September 23 (Mon) - 24 (Tue), 2019 Venue: Hokkaido University, Conference Hall (https://www.global.hokudai.ac.jp/maps/?p=sapporo) TEL: +81-11-706-2042 Deadline for submission of abstracts will be in early July, 2019 Reception: September 23 (Mon), 2019 at HOTEL MYSTAYS Sapporo Aspen (https://www.mystays.com/en-us/location-hotel-mystays-sapporo-aspen-hokkaido/) Scientific program: Invited lectures, SAJ award lectures, and contributed paper sessions (oral/poster) will be arranged.

S26 Online Access to The Journal of Antibiotics for SAJ members

Eligible members of SAJ can access to online issues of The Journal of Antibiotics (JA) by taking following steps;

1. Open the SAJ official website (URL: http://www.actino.jp/) and click the banner of JA. 2. To register, enter your Membership number (10-digit figures starting with 154), First name, Last name, and E-mail address to receive a password and click 'Send'. You can find your Membership number on the envelope from SAJ. 3. Then, you will receive your password from SAJ. 4. Open the SAJ official website (URL: http://www.actino.jp/) and click the banner of JA again. To access the JA website, enter Membership number and password and click 'Login'. 5. Upon recognition of Membership number and password, SAJ site relays the access to the journal's website on nature.com 6. In the journal's website on nature.com, contents are freely available. Members can find the article from current issue table of contents, or archive issues list. Click 'PDF' or 'HTML' link of each article to read full contents.

Please note; Unique set of Membership number and password is issued and provided to each eligible members of SAJ. Members are not allowed to distribute this information to the third person or third parties. Depending on the network environment there's a case where access to full contents is not permitted even though Membership number and password is correct. In such case please contact us by email for alternative access method. When contacting please provide your membership number and password, and specify name and version of your Internet browser.

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S27

日本放線菌学会誌

会 報

第 32 巻 2 号

— 目 次 —

受賞論文のお知らせ ･･･････････････････････････････････････････････････････････ 2

浜田盛之博士の日本微生物資源学会奨励賞 ご受賞を祝して ････････････････････････ 3

五十嵐雅之先生、木村賢一先生の住木・梅澤記念賞ダブル受賞を祝して･･････････････ 4

仁平卓也先生を偲んで ･････････････････････････････････････････････････････････ 5

2018 年度（第 33 回）日本放線菌学会大会プログラム ･･････････････････････････････ 8

2018 年度（第 33 回）日本放線菌学会大会開催報告書 ･･････････････････････････････ 17

2018 年度（第 33 回）日本放線菌学会大会開催感想記 ･･････････････････････････････ 19

2019 年度（第 34 回）日本放線菌学会大会のご案内 ････････････････････････････････ 21

第 63 回日本放線菌学会学術講演会 ･･････････････････････････････････････････････ 22

2018 年度功績功労賞受賞論文（天野昭一氏）･････････････････････････････････････ 27

日本放線菌学会賛助会員 ･･････････････････････････････････････････････････････ 42

著作権について ･･････････････････････････････････････････････････････････････ 42

1 受賞論文掲載のお知らせ

2017年度大村賞受賞 田村 朋彦 博士 （製品評価技術基盤機構㲙イオテクノロジーセンター(NBRC)）

「日本及びアジア地域の放線菌多様性の研究とNBRC 放線菌リソースの充実」

Diversity and Classification of Actinomycetes in Japan and Asia

Dr. Tomohiko Tamura

Resource Collection Division, Biological Resource Center, National Institute of Technology and Evaluation (NBRC)

Actinomycetologica (2018) 32 [2], S3-S13.

2018年度功績功労賞受賞 天野 昭一 氏 （元 明治製菓）

「放線菌に魅せられて」

Fascinated by the actinomycetes

Mr. Shoichi Amano

日本放線菌学会誌 (2018) 32 [2], 27-40.

2 報告 浜田盛之博士の日本微生物資源学会奨励賞 ご受賞を祝して

本会会員の浜田盛之博士（製品評価技術基盤機構バイオテクノロジーセンター（NBRC）、 現経済産業省）が日本微生物資源学会奨励賞に輝かれ、2018 年 6 月 13 日に国立環境研究所 （茨城県つくば市）で授賞式及び受賞講演会が開催されました。ここに祝意をもってご報告 いたします。 この賞は微生物及びこれに準ずる培養生物の系統保存及び関連分野の学術の進歩に寄与 した若手研究者に贈られるもので、ご研究課題「非菌糸状放線菌の選択分離法の構築と分類 学的研究」が高く評価されました。浜田博士は 2015 年の日本放線菌学会浜田賞、2017 年の 世界微生物保存機関連盟 Skerman 賞に続く受賞となります。浜田博士は 2004 年に NBRC に 入構され 2009 年から放線菌の維持管理をご担当されるようになってから 10 年足らずの間 に、Micrococcales 目に属する 9 新属、34 新種を第一著者として提唱しています。また、 これまで分類学的な混沌が続いていたアクチノバクテリアの分類体系に、in silico ハイブ リダイゼーションやペプチドグリカンのアミノ酸分析を導入し系統分類と化学分類学的性 状の相関を明らかにしています。 現在、浜田博士は経済産業省へご出向中でありウェットな実験からは遠ざかってしまっ ていますが、出向から戻られた暁には再び NBRC で、これまでのご研究をさらに発展させ我 が国の系統分類研究のフロントランナーとして、ますますご活躍いただけるものと期待さ れます。 最後になりましたが、浜田博士ならびに共同研究者の皆様のますますのご発展を心より お祈りいたします。 乙黒美彩（山梨大学）

3 報告 五十嵐 雅之 先生、木村 賢一 先生の住木・梅澤記念賞 ダブル受賞を祝して

我が国の抗生物質研究の先駆者である、住木諭介博士及び梅澤濱夫博士の業績を永く称 えるため、1987 年に公益財団法人日本感染症医薬品協会（旧財団法人日本抗生物質学術協 議会）の学術賞として住木・梅澤記念賞が設けられておりますが、その 2018 年度の受賞者 に本会会員の五十嵐雅之先生（公益財団法人微生物化学研究会 微生物化学研究所）、 木村 賢一先生（岩手大学農学部応用生物化学科）が輝かれました。ここに祝意をもってお知らせ いたします。

五十嵐先生のご研究課題「多剤耐性菌に有効な新規抗生物質の探索」、木村先生のご研究 課題「遺伝子変異酵母株と新たな天然資源を用いた生理活性物質の探索研究」はいずれも放 線菌二次代謝における先生の研究成果を称えるものであり、本会会員一同にとって大きな 喜びとするところです。受賞式は、学士会館（東京九段下）にて、本年 11 月 8 日に挙行 されました。五十嵐先生、木村先生ならびに共同研究者の皆様のますますのご発展をお祈り いたします。 最後になりましたが、五十嵐先生ならび木村先生、共同研究者の皆様のますますのご発展 を心よりお祈りいたします。 山村英樹（山梨大学）

4 仁平卓也先生を偲んで

仁平卓也先生が、本年（2018 年）9 月 17 日に、65 歳の若さでお亡くなりになりました。 この青天の霹靂な知らせを、私は、翌朝、出張準備をしていた自宅にて受け取りました。後 に知ったことですが、仁平先生の奥様（智津子様）が、私が出張に出ると知り、仁平先生な ら「こんな生産性のない連絡を木谷にせず、出張に行かせなさい」と言うだろうと慮って頂 き、連絡しなかったそうです。そんなぶっきらぼうな言葉に暖かい意味を込められる仁平先 生が、急逝されました。ご逝去から 2 ヶ月が経ち、私も幾ばくかは落ち着いてきましたが、 仁平先生の言葉が未だに耳に聞こます。この追悼文にも、放線菌学会には失礼ながらも、「ち ゃっちゃっと適当に書いて、他の仕事に取りかかりなさい」と言われている様な気がしてな りません。しかし、仁平先生、「適当には」書けません。学会員の皆様には、仁平先生の人 となりに、しばしお付き合い願えたらと思います。 私が、仁平先生に出会ったのは、学部 2 回生（1993 年）の生物化学 II の講義です。印象 的なことは、黒板に板書する時、手をポケットに突っ込み、小銭をじゃらじゃらとさせてい ることでした。これは、仁平先生の長年の癖であり、現在の学生に聞いても、仁平先生と言 えば、「小銭じゃらじゃらの先生でしょ」という答えが返ってきます。学会員の皆様も、学 会にて、一度は見かけられたことがあるのではないでしょうか？また、講義中の私語に対し ては、非常に厳しく、講義が何度も中断したことを覚えています。その厳しさは、優しさの 裏返しと、私は考えて、仁平先生が助教授を務めていた研究室（山田靖宙先生が教授でした）

5 を 1995 年 6 月に選びました。それが放線菌との出会いでした。 研究室における仁平先生は、想像したとおりでした。基本的には、優しいのですが、試薬 室や実験台が片付いていないと、「掃除されたし」という文語調の張り紙をして、学生が慌 てて片付け始めるのが日常茶飯事でした。それが学科の共通実験室でも同様の張り紙をさ れるのが、仁平先生らしいところでもあります。研究室では、専用ティーポットにて、タイ マー計測して入れた紅茶を、愛用のカップになみなみと入れて、煙草を吸うのが定番のスタ イル。「スナック菓子は、不健康な食品だ」という割には、学生が持参したスナック菓子の 袋を開けておくと、あっという間に平らげたことも。こんなお茶目な一面と、強面のお顔と 発せられる言葉のギャップに、仁平先生のファンが多いのも事実でした。特に、この時期、 ダンディーな仁平やニヒルな仁平と言われていたことを思い出しました。 その姿勢は、放線菌の研究についても現れています。放線菌の二次代謝を調節する低分子 シグナル（放線菌ホルモン）に、仁平先生と山田先生が注目し、その分子機構の解明に長年、 取り組まれました。トリチウム化体を使ったアッセイなどでは、数百のサンプルに対し、RI 室に長い時間、籠もっていたと聞きます。その甲斐もあって、放線菌ホルモン受容体とその 遺伝子を世界に先駆けてクローン化することに成功しています。その後、研究に分子生物学 的手法を導入することにより、放線菌ホルモン受容体の DNA に結合する能力や二次代謝制 御における巧妙な役割を次々と明らかにされていきました。私もその当時の一員でして、今 から振り返ると、お酒を楽しく飲みながら、実験をする研究室であったことを思い出します。 2003 年に、大阪大学生物工学国際交流センターの教授になられてからは、放線菌に加え、 糸状菌も研究対象とされ、これら有用微生物の二次代謝を如何にして応用研究に結びつけ るかと腐心されていました。一方、国際共同研究にも積極的に取り組まれ、ご家族を同伴さ れたジョン・イネス研究所（イギリス）での Bibb 博士との放線菌ホルモン研究を始め、東 南アジア各国との交流にも、放線菌を軸に据えて、展開されていました。私も、仁平先生の おかげで、毎年、カンボジアとラオスを訪問し、植物内生放線菌または土壌放線菌からの有 用物質を単離する研究に従事し、現地研究者との交流などの貴重な経験をさせて頂きまし た。これらの仁平先生のご業績（「放線菌二次代謝を制御する分子機構の解明とその応用」） に対し、放線菌学会学会賞が 2014 年に授与されたことは、記憶に新しく、授与式での仁平 先生のお姿を誇らしく眺めていたことを、つい先日の様に思い出します。 厳しい言葉を時々、発せられましたが、物事を的確に見抜き、最小の労力にて、目的を最 短に達成されるというのが、仁平先生のスタイルであったと思います。私もそのスタイルを 目標にして、独自のスタイルを模索しているところです。無骨な言葉の叱咤激励を、まだま だ頂けると思っていた矢先、この残念な知らせが参りました。「長々と書きなさんなや、読 んでいる放線菌学会員、みんなの時間を奪っているとちゃいますか？」という仁平先生の野 太い声が聞こえてきましたので、これにて仁平先生への追悼文を終わります。

6 最後に、謹んで、仁平先生のご冥福をお祈りいたします。これまで、ありがとうございま した。天国で、煙草をプカプカとふかして、紅茶を飲みながら、ゆったりとおくつろぎくだ さい。

仁平先生退職記念パーティー（2018 年 3 月 15 日） たくさんの卒業生に囲まれて、幸せそうな仁平先生のお姿です。

冒頭のお写真は、教授室にて、2009 年に撮影したものです。同じ写真が、仁平先生のご 葬儀にて、人生スナップ写真として使用されましたので、ここにも掲載させて頂きました。 木谷 茂（大阪大学）

7 2018 年度 日本放線菌学会大会 プログラム

９月１１日 （火) （８時２０分：受付開始） ９時００分：開会の辞

９時０５分：一般講演-１ O-1 人工酵素を用いたバイオケトンの生産に関して ○湯澤 賢 1, 2, Mona Mirsiaghi1, Leonard Katz2, 3 and Jay Keasling1, 2, 3 （1LBNL, 2JBEI, 3UC Berkeley） O-2 単細胞微生物用界面バイオプロセスの特徴化と抗生物質生産への応用 〇窪木 遥, 小田 忍 （金沢工大ゲノム研） O-3 伊豆赤沢海洋深層水由来放線菌 AKA32 株の諸性状 (P-54) ○梁 太熙 1, 山田 勝久 2, 周 韜 3, 春成 円十朗 3, 五十嵐 康弘 3, 池上 康之 4, 寺原 猛１, 小林 武志 1, 今田 千秋１ （1 東京海洋大, 2 株式会社ディーエイチシー, 3 富山県立大, 4 佐賀大） O-4 希少放線菌に対する複合培養法の適用と新規二次代謝産物の獲得 (P-55) ○星野 翔太郎 1, 淡川 孝義 1, 尾仲 宏康 2, 阿部 郁朗 1 （1 東京大・薬, 2 東京大・農） O-5 リベロマイシン生合成に関わるサクシニル化酵素群の機能解析 (P-56) 〇鬼頭 奈央子 1, 佐藤 裕美 1, 奥村 英夫 2, 熊坂 崇 2, 長田 裕之 3, 高橋 俊二 1 （1 理研 CSRS 天然物生合成, 2 高輝度光科学研究センター, 3 理研 CSRS ケミ カルバイオロジー） O-6 Biosynthetic Gene Cluster of a-D-Tryptophan Containing Lasso Peptide, MS-271 (P-57) ○Zhi Feng, Yasushi Ogasawara, Satoshi Nomura and Tohru Dairi （Grad. Sch. Engineering, Hokkaido Univ.）

１０時２３分：休憩

１０時５０分：特別講演１ 天然物創薬ケミカルバイオロジー ―放線菌に魅せられて― 掛谷 秀昭（京都大学大学院薬学研究科システムケモセラピー・制御分子学分野）

１１時３５分：昼休み

１２時４５分：平成 30 年度総会

１３時１５分：平成 30 年度授賞式

１３時４５分：受賞講演

8 大村賞（学会賞） 先駆的ケミカルアプローチによる放線菌二次代謝多様性の解明 五十嵐 康弘（富山県立大学工学部生物工学科）

功績功労賞 多様な放線菌とその代謝産物の発見及び電子顕微鏡観察への貢献 天野 昭一（元・明治製菓株式会社）

浜田賞 放線菌における芳香族アミン由来天然物等の生合成機構に関する研究 勝山 陽平（東京大学大学院農学生命科学研究科）

放線菌により産生される細菌感染を制御するための化合物の探索 福本 敦（東邦大学薬学部）

企業賞 放線菌 Streptomyces tsukubensis が生産するタクロリムスの安定供給および増産への取り 組み アステラスファーマテック株式会社

１５時４０分：休憩

１６時００分：ショートプレゼンテーション （ポスター奇数番号）

１７時００分：ポスター発表 （奇数番号）

１８時００分：休憩・移動

１８時３０分：懇親会 （２０時３０分まで）

９月１２日 （水） （８時３０分：受付開始） ９時００分：一般講演-２ O-7 希少放線菌 Actinoplanes missouriensis の胞子嚢壁の構成成分の同定と胞子嚢 (P-58) 壁構成タンパク質の機能解析 〇前田 聡史 1, 手塚 武揚 1, 2, 水池 彩 1, 福田 良一 1, 2, 浜田 盛之 3, 田村 朋彦 3, 堀内 裕之 1, 2, 大西 康夫 1, 2 （1 東大院・農生科, 2 東大・微生物イノベ連携機構, 3 製品評価技術基盤機構・ NBRC） O-8 希少放線菌 Actinoplanes missouriensis の胞子嚢開裂に関わるグリコシダーゼ (P-59) ○光山 京太 1, 手塚 武揚 1, 2, 大西 康夫 1, 2 （1 東大院・農生科, 2 東大・微生物イノベ連携機構）

9 O-9 リンコマイシン存在下で放線菌の生育と二次代謝が向上する仕組みの解析 (P-60) ○向井 慶一郎 1, 石塚 美咲 1, 小林 桃子 2, 今井 優 3, 越智 幸三, 保坂 毅 1, 2, 4 （1 信州大院・総合理工, 2 信州大・農, 3 Northeastern Univ., 4 信州大・ バイオメディカル研） O-10 人工知能を用いた放線菌コロニーの自動識別 (P-61) ○中島 啓太 1, 安藤 英俊 1, 山村 英樹 2, 早川 正幸 2 （1 山梨大院・工, 2 山梨大院・生命環境） O-11 Isolation and characterization of actinobacteria derived from deep-sea (P-62) sediment in Japan ○Bungonsiri Intra1, Mihoko Mori1, 2, Satoshi Ōmura1 and Atsuko Matsumoto1, 2 （1Kitasato Institute for Life Sciences, Kitasato University, 2Graduate School of Infection Control Sciences, Kitasato University） O-12 Actinobacteria from forest ecosystems of Northeast India: In vitro (P-63) antimicrobial and biosynthetic potential for polyketides discovery ○Priyanka Sharma1 and Debajit Thakur2 （1Malaria Drug Discovery Lab, ICGEB, India, 2Microbial Biotechnology Lab, IASST, India）

１０時１８分：休憩

１０時３０分：ショートプレゼンテーション （ポスター偶数番号）

１１時３０分：ポスター発表 （偶数番号）

１２時３０分：昼休み （１２時００分～１３時２５分 ポスター発表賞投票）

１３時３０分：一般講演-３ O-13 放線菌様の胞子嚢を形成するクテドノバクテリア綱に属する新しい系統 「Dictyobacteraceae 科」の特徴 ○矢部 修平, 鄭 宇, 王 瓊渼, 酒井 康輝, 阿部 敬悦, 横田 明 （東北大院） O-14 Streptomyces griseus に誤同定されていた 3 菌株のゲノム解析による再分類 ○小牧 久幸, 田村 朋彦 （NBRC） O-15 ブテノライド型放線菌ホルモンによる異種間化学コミュニケーション ○木谷 茂 1，Nguyen Bich Thao1，新間 秀一 2，仁平 卓也 1 （1 阪大・生物工学国際交流セ，2 阪大院・工） O-16 グラナチシンも有機触媒である ○西山 辰也, 榎本 成美, 長安 伶奈, 髙野 英晃, 上田 賢志 （日大生資科・生命セ）

10 O-17 セルロース資化性放線菌を用いたセルロース系バイオマスからのカスガマイシン 生産 佐藤 亜美, 日比野 竜粛, 櫻田 浩平, 牟田口 祐太, ○春日 和, 小嶋 郁夫 （秋田県大） O-18 Streptomyces olivochromogenes から単離した cyanopeptolin タイプのペプチド streptopeptolin 〇小谷 真也 1,2, 小牧 久幸 3, 逸見 光 4, 三宅 湧登 1, Issara Kaweewan2, 道羅英夫 5 （1 静大院・総合, 2 静大院・創造, 3NBRC, 4 農研機構・食品部門, 5 静大・グリーン研） O-19 Sphaerimonospora mesophila GMKU363 株が生産する新規ポリケタイド linfuranone 類に関する研究 〇秋山 浩文 1, Chantra Indananda2, Arinthip Thamchaipenet3, 小牧 久幸 4, 細山 哲 4, 木村 明音 4, 奥 直也 1, 五十嵐 康弘 1 （1 富山県立大・生, 2Burapha Univ, 3Kasetsart Univ, 4NBRC）

１５時０１分：休憩

１５時３０分：特別講演２ 名古屋議定書への対応 -海外と微生物研究を行うときの注意点- 鈴木 睦昭 （国立遺伝学研究所 産学連携・知的財産室）

１６時２０分：ポスター賞表彰式

１６時３０分：次期大会長挨拶

１６時３５分：閉会の辞

11 ポスター発表

P-1 大槌湾海底堆積物より分離したバイオサーファクタント生産放線菌の諸性状 〇南保 由貴子 1, 苗村 卓弥 1, 寺原 猛 1, 浜田 盛之 2, 田村 朋彦 2, 小林 武志 1, 今田 千秋 1 （1 東京海洋大・海洋生物資源学科, 2 製品評価技術基盤機構・NBRC） P-2 伊豆赤沢海洋深層水由来放線菌の系統解析ならびに二次代謝生産プロファイル 解析 ○山田 将之 1，梁 太熙 2，春成 円十朗 1，山田 勝久 3，今田 千秋 2，五十嵐 康弘 1 （1 富山県立大・生工セ,2 東京海洋大,3 株式会社ディーエイチシー） P-3 富山湾海洋深層水からの放線菌分離：分離株の系統解析ならびに二次代謝生 産プロファイル解析 〜第二報〜 〇金木 紗恵 1，荻野景子 1，春成 円十朗 1, 竹内 啓晃 2，五十嵐 康弘 1 （1 富山県大・工，2 高知大・医） P-4 植物の根より分離された Micromonospora sp. KV-964 の生理性状と分類研究 ○中村 優之介 1, 池田 翔一 1, 武 晃 2, 大村 智 2, 松本 厚子 1, 2 （1 北里大院・感染制御科学府, 2 北里大・生命研） P-5 人工知能を用いた放線菌コロニーの自動識別システム開発のための撮影方法の 確立 ○山村 英樹 1, 雨宮 早紀 1, 安藤 英俊 2, 早川 正幸 1 （1 山梨大院・生命環境, 2 山梨大院・工） P-6 Isolation of Salinispora sp. from deep-sea sediments of the Shikoku Basin ○Dana Ulanova1,2 （1Fac. Agric. Mar. Sci. Kochi Univ.,2Cent. Adv. Mar. Core Res. Kochi Univ.） P-7 アリより分離した放線菌の多様性及び新規性について ○村松 秀行, 吉田 珠実, 高橋 清香, 安藤 里奈, 五十嵐 雅之 （微化研） P-8 希少放線菌 Actinoplanes missouriensis の胞子嚢形成・開裂期に働く σ 因子 FliA1, FliA2, FliA 3 の機能解析 ○橋口 優一朗 1, 手塚 武揚 1,2, 大西 康夫 1,2 （1 東大院・農生科, 2 東大・微生物イノベ連携機構） P-9 放線菌 Streptomyces coelicolor A3(2) M145 株における低分子チオール化合物の 意義 ○澁井 佑生子, 伊藤 晋作, 矢嶋 俊介, 佐々木 康幸 （東農大・バイオ）

P-10 放線菌 Streptomyces coelicolor A3(2) M145 における内在性 NO による抗生物質 生産制御機構の解明 ○本間 颯太, 伊藤 晋作, 矢嶋 俊介, 佐々木 康幸 （東農大･応生, 東農大院･農） P-11 ゴム分解性細菌 Gordonia polyisoprenivorans VH2 におけるカロテノイド生産の 光誘導メカニズムの解析 12 〇田島 侑, 榮山 新, 荒木 知珠, 角 悟, 高野（白鳥）初美, 上田 賢志, 髙野 英晃 （日大・生資科・生命研） P-12 Streptomyces griseus における GPCR 様制御系 Cvn1 と c-di-GMP シグナル伝達 系の関係性 ○向山 絵理香, 天野 泰介, 上田 賢志, 髙野 英晃 （日大・生資科・生命研） P-13 Corynebacterium glutamicum が有する２つの光誘導システムの解析 ○鈴木 勇人, 安井 瑞稀, 角 悟, 上田 賢志, 髙野 英晃 （日大・生資科・生命研） P-14 godA プロモーターの複合培養に応答した転写活性化機構の解析 ○桐原 正隆, 浅水 俊平, 寺本 和矢, 尾仲 宏康 （東大院・農） P-15 自然共分離株 Streptomyces variegatus と Mycobacterium septicum の接触相互 作用の解析 ○加藤 愛美, 浅水 俊平, 寺本 和矢, 尾仲 宏康 （東大院・農） P-16 ミコール酸含有細菌に対する二次代謝非応答性放線菌変異株の変異点の同定 浅水 俊平 1，○石塚 匠 1，栁澤 昌臣 1，寺本 和矢 1，佐藤 勝也 2，尾仲 宏康 1 （1 東大院・農，2 量研機構） P-17 単コロニー化で放線菌の性質が変化する現象の検証と解析 ○森本 諒 1, 丸山 友子 1, 濱渦 亮子 2, 小谷 真也 3, 保坂 毅 1, 2 （1 信州大院・総合理工, 2 信州大・バイオメディカル研, 3 静岡大・農） P-18 放線菌の生育と二次代謝に対する抗生物質タイロシンの濃度依存的作用 ○小林 桃子 1, 向井 慶一郎 2, 石塚 美咲 2, 今井 優 3, 保坂 毅 1, 2, 4 （1 信州大・農, 2 信州大院・総合理工, 3 Northeastern Univ., 4 信州大・ バイオメディカル研） P-19 23S rRNA 変異を有する Streptomyces 属放線菌が抗生物質を高生産する仕組み の解析 ◯星野 颯 1, 今井 優 2, 濵渦 亮子 3, 越智 幸三, 保坂 毅 3 （1 信州大院・総合理工, 2Northeastern Univ., 3 信州大・IBS-ICCER） P-20 海洋性放線菌 Streptomyces spongiicola の生産するペプチドの化学分析 ○鈴木 麻那 1, 神田 美波 2, 山村 英樹 3, 早川 正幸 3, 小谷 真也 1, 2 （1 静大院・総合, 2 静岡大・農, 3 山梨大院・生命環境） P-21 Isolation and structure determination of new antibacterial peptide curacomycin based on genome mining ○Issara Kaweewan1, Hisayuki Komaki2, Hikaru Hemmi3 and Shinya Kodani1 （1Grad. Sch. Sci. Tech. Shizuoka Univ., 2NBRC, 3NFRI） P-22 放線菌 Streptomyces lavenduligriseus の新規ラッソペプチド lavenducin の単離 ○西村 のどか 1, Issara Kaweewan2, 中川 博之 3, 小谷 真也 1, 2 （1 静大院・総合, 2 静大院・創造, 3 農研機構・高度解析セ） P-23 放線菌由来スルホンアミド含有アルカロイドの生合成研究 ○淡川 孝義 1, 胡 志娟 1,2, 阿部 郁朗 1 （1 東大院薬, 2 浙江大海洋） 13 P-24 Streptomyces sp. TOHO-IJ42 株及び TOHO-HR54 株の産生する quorum sensing 阻害物質 ○福本 敦, 古川 真奈美, 三橋 紘乃, 飯坂 洋平, 安齊 洋次郎 （東邦大・薬） P-25 多機能型 P450 酵素 RosC の多段階酸化反応に関する研究 ○飯坂 洋平, 金井 大, 鈴木 智子, 丸山 結菜, 福本 敦, 安齊 洋次郎 （東邦大・薬） P-26 二次代謝特異的亜硝酸生合成経路により生合成される Kutzneria albida 由来新 規天然物の探索 ○山田 研人 1, 勝山 陽平 1, 2, 大西 康夫 1, 2 （1 東大院・農生科応生工, 2 東大・微生物イノベ連携機構） P-27 Streptomyces griseus IFO13350 におけるイミニマイシン類の生合成研究 ○堤 隼馬 1, 勝山 陽平 1,2, 手塚 武揚 1,2, 宮野 怜 3, 稲橋 佑起 3,4, 高橋 洋子 4, 中島 琢自 3,4, 大西 康夫 1,2 （1 東大院・農生科, 2 東大・微生物イノベ連携機構, 3 北里大院・感染制御, 4 北里大・生命研） P-28 Streptomyces sp. IFM11307 由来芳香族ポリケタイド yoropyrazone 生合成に関す る研究 ○藤田 夏澄 1, 勝山 陽平 1,2, 當銘 一文 3, 石橋 正己 4, 大西 康夫 1,2 （1 東大院・農生科, 2 東大・微生物イノベ連携機構, 3 富山大・和漢研, 4 千葉大院・薬） P-29 Saprolmycin の生合成に関与する糖転移酵素遺伝子の機能解析 ○川崎 崇 1, 3, 佐藤 美鈴 2, 今村 信孝 2, 矢崎 一史 1 （1 京大・生存圏研究所, 2 立命館大・薬, 3 立命館大・総研） P-30 抗生物質生産に関与するキノン補酵素の機能解析 ○原 圭佑, 梅代 亜紗子, 山内 佑介, 荒川 賢治 （広島大院・先端研・分子生命） P-31 Streptomyces rochei の二次代謝生産における還元酵素遺伝子 srrG の機能解析 ○手島 愛子, 謝 麗, 河原 弘幸, 荒川 賢治 （広島大院・先端研・分子生命） P-32 制御遺伝子改変を基軸とした二次代謝産物のゲノムマイニング ○見崎 裕也, 岩國 美由季, 高橋 譲, 鈴木 敏弘, 木梨 陽康, 荒川 賢治 （広島大院・先端研・分子生命） P-33 網羅的メタボローム解析を駆使した未同定二次代謝産物取得の試み 〇西浦 凜貴斗, Amirudin Akhmad Fauzi, Yosi Nindita, 荒川 賢治 （広島大院・先端研・分子生命） P-34 カルボサイクリックポリケチド化合物の大員環形成メカニズムの解析 ○大方 葉月, 行吉 裕治, 荒川 賢治 （広島大院・先端研・分子生命） P-35 “Streptomyces rosa subsp. notoensis” OS-3966 株が生産する新規 nanaomycin 類縁体に関する研究 松尾 洋孝 1,2, ○宮野 怜 2, 野口 吉彦 1,2, 武 晃 3, 中西 淳 4, 重村 克己 5, 廣瀬 友靖 1,2, 砂塚 敏明 1,2, 高橋 洋子 1, 大村 智 1, 中島 琢自 1,2 （1 北里大・生命研, 2 北里大院・感染制御, 3 早大・ナノライフ創研機, 14 4NIMS, 5 神戸大院・医） P-36 海洋由来放線菌 Streptomyces sp. GKU 257-1 が生産する新規物質 GKU257-1A の構造解析および生物活性 ○稲橋 佑起 1, Kantinan Leetanasaksakul 2, 須賀 拓弥 1, 松尾 洋孝 1, 穗苅 玲 1, 高橋 洋子 1, 塩見 和朗 1, Arinthip Thamchaipenet 2, 中島 琢自 1, 大村 智 1 （1 北里大・生命研, 2 Dep. Genetics, Fac. Sci., Kasetsart Univ.） P-37 アクチノロジン生合成における連続水酸化反応機構の解析（第 4 報） ○堀田 あかり 1, 星 衣里子 1, 橋元 誠 1, 田口 貴章 2, 石川 和樹 1, 熊本 卓哉 3, 岡本 晋 4, 市瀬 浩志 1 （1 武蔵野大・薬, 2 国立衛研, 3 広島大院・医歯薬保健, 4 農研機構） P-38 アズキ落葉病菌の拮抗放線菌が生産する抗菌物質の探索 ○川村 亮介, 鈴木 健, 竹谷 隆良, 川出 洋, 夏目 雅裕 （農工大院・農） P-39 Kinanthraquinone 生合成遺伝子クラスターの解析 ○高尾 理沙 1,2, 鬼頭 奈央子 2, 高木 海 2, 野川 俊彦 3, 長田 裕之 1,3, 高橋 俊二 2 （1 埼玉大院・理工学, 2 理研 CSRS 天然物生合成, 3 理研 CSRS ケミカルバイ オロジー） P-40 放線菌由来 1-aminocyclopropanecarboxylic acid synthase の機能解析 ○茅根 千湖 1, 丸山 千登勢 1, 橋本 絢子 2, 小曽根 郁子 2, 新家 一男 3, 濱野 吉十 1 （1 福井県大院・生物資源, 2JBIC, 3 産総研） P-41 放線菌の生産するポリケタイド FR182877 の生合成研究 ○増田 七彩 1, 新家 一男 3, 西山 真 1,2, 葛山 智久 1,2 （1 東大・生物工学セ, 2 東大・微生物イノベ機構, 3 産総研） P-42 放線菌の生産するフェナジノマイシン生合成研究 ○加藤 輝仁 1, 中尾 智世 1, 大村 智 3, 西山 真 1,2, 葛山 智久 1,2 （1 東大・生物工学セ, 2 東大・微生物イノベ機構, 3 北里大生命研） P-43 放線菌のメロテルペノイド生合成に見出した普遍的脱アミノ化機構 ○野口 智弘 1, 西山 真 1,2, 葛山 智久 1,2 （1 東大・生物工学セ, 2 東大・微生物イノベ機構） P-44 D-サイクロセリン生産菌 Streptomyces lavendulae ATCC11924 のゲノム解析 矢尾井 健人 1, 黒田 照夫 2, 森田 大地 2, 杉山 政則 2, ○熊谷 孝則 2 （1 広大・薬, 2 広大院・医歯薬保健学） P-45 放線菌由来 β-カルボリンアルカロイド代謝酵素の発見と機能解析 ○永久保 利紀 1, 熊野 匠人 1, 太田 雄大 2, 橋本 義輝 1, 小林 達彦 1 （1 筑波大・生命環境系, 2 兵庫県大・生命理学研究科） P-46 赤色色素代謝微生物および酵素の探索 ○堀 早苗, 熊野 匠人, 寺下 柚子, 橋本 義輝, 小林 達彦 （筑波大・生命環境） P-47 Poly-D-diaminobutyric acid 生産放線菌 Streptoalloteichus hindustanus からの D-ペプチド分解酵素の探索 ○宮脇 大輝 1, 福本 響 2, 濱野 吉十 3, 老川 典夫 1,2, 山中 一也 1,2 15 （1 関西大・化生工, 2 関西大院・理工, 3 福井県大・生物資源） P-48 抗菌性ホモポリアミノ酸 Poly-D-diaminobutyric acid 生合成に関与する新規 PLP 非依存型 Diaminobutyric acid ラセマーゼのクローニング ○尾崎 僚 1, 福本 響 2, 濱野 吉十 3, 老川 典夫 1,2, 山中 一也 1,2 （1 関西大・化生工, 2 関西大院・理工, 3 福井県大・生物資源） P-49 放線菌二次代謝産物の 16S rRNA 系統樹における分布解析 ○春成 円十朗 1, 小牧 久幸 2, 五十嵐 康弘 1 （1 富山県大・生工セ, 2NBRC） P-50 Streptomyces rochei 7434AN4 株の線状ゲノムの全塩基配列決定 Yosi Nindita1, 〇稲田 晋宣 2, Amirudin Akhmad Fauzi1, 手島 愛子 1, 見崎 裕也 1, Rukman Muslimin1, 石川 淳 3, 木梨 陽康 1, 荒川 賢治 1 （1 広島大院・先端研・分子生命, 2 広島大・自然科学センター, 3 国立感染研） P-51 機能性分子の ε-poly-L-lysine 修飾による生体膜透過性・水溶性の一挙改善 ○武内 大和 1, 牛丸 和乗 2, 加藤 康夫 3, 丸山 千登勢 1, 濱野 吉十 1 （1 福井県大院・生物資源, 2 産総研, 3 富山県大・生工研セ） P-52 運動性放線菌の分離における 2 回遠心操作の効果 ○絵面 美穂 1, 2, 村松 秀行 1, 五十嵐 雅之 1 （1 微化研・第２生物活性, 2 日大院・生資科） P-53 抗菌活性物質のスクリーニングとバイオエタノール製造におけるコンタミネーショ ン制御 ○松田 高宜, 西島 拓人, 吉田 浩爾, 佐賀 清崇, 鈴木 伸一 （Biomaterial in Tokyo） P-54 口頭発表 O-3 P-55 口頭発表 O-4 P-56 口頭発表 O-5 P-57 口頭発表 O-6 P-58 口頭発表 O-7 P-59 口頭発表 O-8 P-60 口頭発表 O-9 P-61 口頭発表 O-10 P-62 口頭発表 O-11 P-63 口頭発表 O-12

16 2018 年度（第 33 回）日本放線菌学会大会開催報告

開催日時：2018 年（平成 30）年 9 月 11 日（火）～12 日（水） 開催場所：武蔵野大学有明キャンパス（東京都江東区有明 3-3-3） 参加人数： 233 名（正会員 85、名誉会員 4、賛助会員 10、終身会員 4、学生会員 56 非会員一般 16、非会員学生 47、うち外国人 13）懇親会 152 名

本年度大会は武蔵野大学有明キャンパスにて開催いたしました。放線菌およびその類 縁菌を対象とする産学官の研究者や学生の方々に本大会にご参加いただき、活発な研究 発表や意見交換はもとより、東京臨海副都心の刺激的な雰囲気もお楽しみいただくべく 準備を進めました。若手研究者の参加を奨励する観点から学生の大会参加費に関して一

律なものとした結果、参加者の半数近くを若手研究者と学生が占めることになりました。 特別講演者として、天然物を基盤とした最新のケミカルバイオロジー研究に従事され

ている掛谷秀昭先生ならびに名古屋議定書締約国となって 1 年を経過する我が国におけ る生物資源の利用を展望して鈴木睦昭先生にご登壇いただきました。Front & Diversity をコンセプトに企画したお二人のご講演も大変、素晴らしいものになり、活発な質疑も 行われました。学会各賞には今年度から新たに企業賞が設けられました。各賞の授賞式

に引き続き、5 席ある受賞講演の先生方（大村賞：五十嵐康弘博士、功績功労賞：天野 昭一氏、浜田賞：勝山陽平博士、浜田賞：福本敦博士、企業賞：アステラスファーマテ ック株式会社富山技術センター竹下敏一博士）にも印象深いご講演をいただき参加者の

皆様の心に深く刻まれるものとなりました。一般講演では、4 領域（1 菌の同定・分類、 2 生物学、3 単離・構造決定・生合成、4 その他）に分けて演題を募集し、72（口頭 19、 ポスター53、うち、外国語による発表演題は 5）演題が集まりました。口頭 11 題、ポス ター41 題が学生・ポスドクからの発表となり、対象者以外の正会員の参加者全員に選考 をお願いする形式でポスター賞の選考を行い、各領域で最も得票を集めた方 4 名を表彰 しました。受賞者以外の多くの対象者が得票した結果となり、多くの優秀な研究発表が

あったことを申し添えます。 大会１日目には、会場近くのホテルサンルート有明にて開催した懇親会にも多くの先 生方にお集まりいただきました。早川正幸学会長、名誉会員の別府輝彦、堀田国元両先 生には、心温まる応援メッセージを頂いたほか、特別講演者ならび学会各賞の受賞者か らもお言葉をいただき、和やかな会になりました。予想を上回る若手の「参戦」で追加

17 料理の手配が遅れたことを反省しております。 学術発表以外では、各種団体・企業様から 8 カ所のご協賛のブース展示を頂き、大会 の盛り上げに大きく寄与して頂きました。東京海洋大学（今田千秋先生）、玉川学園購買

部、また、学会公式学術誌 J. Antibiotics 誌編集部の皆様には、ご協力をいただき、深く 感謝申し上げます。共同研究の推進や新たなビジネスの機会をご提供すべく、展示スペ

ースをポスター会場に隣接して設置したことが奏功したと思われます。 大学施設を利用した会場で、至らぬ点もありましたが、参加者の皆様と学会関係者の 皆様の多大なご支援の下、盛会のうちに終了いたしましたことに関して、まずは実行委 員会一同、安堵しておりますが、今夏は、西日本の気象災害や北海道の大地震も発生し、 様々な影響を受けられた方々も参加者の中におられました。関係者で被害に遭われた

方々に衷心よりお見舞い申し上げるとともに一日も早い復旧をお祈りしております。 大会実行委員をはじめ、多くの学生アルバイトも含めた献身的な努力により実施する ことができました。学術集会を企画運営したことは関係者にとって貴重な経験となりま

した。大会開催の機会をいただきました学会理事会に感謝申し上げます。 本大会は、学会からの大会準備金に加えて、公益財団法人の国際交流助成を受けて開 催いたしました。海外からのエントリーも含めて、国際色豊かな研究発表が行われるこ とになりました。多様性の生物を代表する放線菌について言葉や国境を越えて大いに語

り合って頂けたのではないと思います。さらに 19 の団体・企業の皆様ならびに本学関係 者より温かいご協力とご支援を賜りました。ここに深く御礼を申し上げて大会報告とさ

せていただきます。 以上

2018 年度（第 33 回）日本放線菌学会大会 大会長 市瀬 浩志 武蔵野大学薬学部・薬学研究所

18 第 33 回（2018 年度）日本放線菌学会大会感想記

2018 年 9 月 11 日，12 日の両日，平成最後の大会となる第 33 回大会が，武蔵野大学有明 キャンパスで開催された．参加者は 200 名を超え（233 名：正会員 85 名，名誉会員 4 名， 賛助会員 10 名，終身会員 4 名，学生会員 56 名，非会員一般 16 名，非会員学生 47 名）， たいへん活気のある大会であった．参加者の半数近くを若手研究者と学生が占めていたこと も，活発な雰囲気につながったと感じている。一般講演は 19 演題の口頭発表と，53 演題の ポスター発表の計 72 演題であった．特別講演として，大会 1 日目には掛谷秀昭博士（京都大 学大学院薬学研究科システムケモセラピー・制御分子学分野）から「天然物創薬ケミカルバイ オロジー –放線菌に魅せられて−」， 大会２日目には鈴木睦昭博士（国立遺伝学研究所 産学 連携・知的財産室）から「名古屋議定書への対応 –海外と微生物研究を行うときの注意点−」 という演題でご講演いただき，活発な質疑が行われた． 大村賞（学会賞）は五十嵐康弘 博士（富山県立大学生物工学科） が「先駆的ケミカルアプローチに よる放線菌二次代謝多様性の解 明」に関して，また功績功労賞は 天野昭一氏（元・明治製菓株式会 社）が「多様な放線菌とその代謝 産物の発見及び電子顕微鏡観察へ の貢献」に関して，それぞれ授与さ 各賞受賞の先生方（左から浜田賞：福本敦博士、浜田賞：勝山 陽平博士、大村賞：五十嵐康弘博士、功績功労賞：天野昭一氏、 れた。浜田賞は勝山陽平博士（東 企業賞：アステラスファーマテック株式会社代表取締役社長 京大学大学院農学生命科学研究 中手利臣氏） 科）が「放線菌における芳香族アミ ン由来天然物等の生合成機構に関 する研究」で，福本敦博士（東邦大 学薬学部）が「放線菌により生産さ れる細菌感染を制御するための化 合物の探索」でそれぞれ授与され た．また，今年度より新設された企 業賞はアステラスファーマテック 株式会社富山技術センターが「放線 受賞講演の様子 菌 Streptomyces tsukubensis が生産するタクロリムスの安定供給および増産への取り組み」 で授与された．各賞受賞の先生方にはそれぞれに興味深い受賞講演をいただいた．

19 懇親会は大会１日目の夜に会場 近くのホテルサンルート有明に て，名誉会員の別府輝彦先生の乾 杯のご発声で和やかに始まった． 大会参加者の半数以上の 152 名に お集まりいただき，会場は大会と 同様熱気にあふれた．早川正幸学 会長，堀田国元先生，特別講演者な 懇親会会場の様子 らび学会各賞の受賞者からもお言葉をいただき，たいへん楽しい会であった． 本大会の試みとしてポスター会場に隣接して，共同研究の推進や新たなビジネスの機会を提 供すべく展示スペースを設けた．各種団体・企業からブース展示を頂き，大会の盛り上げに大 きく寄与して頂いた． 大会の最後にはポスター賞の表彰が行われた．学生およびポスドクによる発表（口頭 11 題， ポスター41 題）から，ポスター賞対象者以外の正会員の参加者全員の投票により，各領域（菌 の同定・分類，生物学，単離・構造決定・生合成，その他）で最も得票を集めた中島啓太氏（山 梨大学大学院工学専攻），光山京太氏（東京大学大学院農学生命科学研究科），茅根千湖氏（福 井県立大学大学院生物資源学研究科），武内大和氏（福井県立大学大学院生物資源学研究科） の 4 名が表彰され，２日間にわたる大会が無事閉会した． 最後に，大会運営を支援してくださった方々，大会を盛り上げてくださった参加者の皆様に 厚く御礼を申し上げたい．今年は西日本の豪雨や大会直前の北海道の大地震など，たいへんな 思いをされて大会に参加された方や，被災されて生活や研究に支障のあった方もいらっしゃ ったのではないかと思う．心よりお見舞い申し上げる．また，個人的には今回初めて実行委員 として大会運営に関わり，たいへん貴重な経験をさせていただいたことを関係の皆様に深く 感謝している．次期大会でまた皆様にお会いできることを楽しみにしている． 大塚みゆき（玉川大学農学部）

ポスター会場の様子 ポスター賞受賞者と市瀬浩志大会長

20 2019 年度（第34 回）日本放線菌学会大会のご案内

大会長 大利 徹 (北海道大学大学院・工学研究院)

2019 年度日本放線菌学会大会は、北海道大学札幌キャンパスにて9月末に開催すること になりました。8月から9月にかけては多くの学会が札幌で開催され、会場確保が年々難し くなっています。今回も一年半以上前から会場確保を試み、何とか札幌キャンパス内で確保 できましたが、9月後半の3連休の最終日から始まる日程となってしまいました。この時期 は札幌大通公園で札幌オータムフェスタが開催され、北海道名産食材を堪能できますこと から、早めに来札され楽しんでいただければと思います。多くの皆様のご参加を心よりお待 ち申し上げます。詳しい情報は日本放線菌学会のウェブサイト (http://www.actino.jp/index-j.html)を通じてご案内いたします。

大会ウェブサイトは整備次第公開の予定です。

概 要 ・期日: 2019 年 9 月 23 日（月）- 24日（火) ・会場: 北海道大学札幌キャンパス、学術交流会館 TEL: 011-706-2042 https://www.hokudai.ac.jp/bureau/property/s01/ ・交通: JR札幌駅、地下鉄札幌駅から徒歩8分 ・講演申込、講演要旨提出、大会参加の事前申込: 2019 年 7 月上旬締切予定 ・懇親会 日時: 2019 年 9 月 23日（月）18:30～20:30 (予定) 会場: ホテルマイステイズ札幌アスペン (https://www.mystays.com/hotel-mystays-sapporo- aspen-hokkaido/) ・プログラム（案） 1. 一般講演：口頭発表とポスター発表 2. 受賞講演 3. 特別講演

21 報告 第 63 回 日本放線菌学会学術講演会

主催 ： 日本放線菌学会

日時 ： 平成 30 年 11 月 2 日(金) 14:00〜17:40

場所 ： 北里大学 白金キャンパス プラチナタワー12 階

参加者： 57 名

プログラム

１．『非天然ポリケチドライブラリーの創生を目指して

～天然の優れた化学工場のリプログラム～』

湯澤 賢 (東京大学 生物生産工学研究センター）

２．『フグはフグ毒をどこから獲得し、何に使うのか？』

糸井 史朗 (日本大学 生物資源科学部）

３．『皮膚マイクロバイオーム研究は何を明らかにしたか～健康、疾病、そして宇宙～』

杉田 隆 (明治薬科大学 微生物学研究室）

４．『従来の微生物培養法の生物化学工学的解析とその利用』

青柳 秀紀 (筑波大学 生命環境系)

講演要旨

非天然ポリケチドライブラリーの創生を目指して ～天然の優れた化学工場のリプログラム～

湯澤 賢（東京大学 生物生産工学研究センター） [email protected]

DNA 配列解析の技術革新により、ここ数年に読まれたゲノムの情報は爆発的に増加している。 原核生物においては、ある１つの二次代謝産物の生合成に関与する遺伝子群はゲノム上の一箇 所にまとめてクラスター化されていることが多く、近年のゲノム解析によって、新規生合成遺 伝子クラスターの存在が多数予測されている。一方で、ゲノム情報の増加と反比例するように、 新しいと言える構造の天然物の発見例の数は伸び悩み、約１００化合物／年である 1)。これらの データは、過去３０年薬剤開発の重要なソースあるいはリード化合物であった原核生物由来の 天然物が今後も同様の地位に留まることは難しいことを示唆する。そこで私はタイプ I モジュラ ーポリケチド合成酵素（モジュラーPKS）のリデザインに着目している。モジュラーPKS は、極 めて多様な構造の化合物を合成するという特性から、優れた“天然の化学工場”と言える。モジュ

22 ラーPKS はア シル CoA を基質として利用するポリメラーゼであり、さまざまなアシル CoA を順 次縮合することにより、一般にポリ ケチドと総称される様々な化合物を合成する。最近、基 質 となるアシル CoA の種類がタンパク質合成におけるアミ ノ酸のそれに匹敵することが明らかに なった。これら多様な アシル CoA を自在に縮合することができれば、合成しうる 化合物の種類 は天文学的な数になる。本講演では、その鍵となるモジュラーPKS の基質特異性のリプログラミ ングに関する最新の研究成果を概説する 2,3)。

参考文献 1) Pye, C.R. et al. Retrospective analysis of natural products provides insights for future discovery trends. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 114, 5601-5606, 2017. 2) Yuzawa, S. et al. Comprehensive in vitro analysis of acyltransferase domain exchanges in modular polyketide synthase and its application for short-chain ketone production. ACS Synth. Biol., 6, 139-147, 2017. 3) Yuzawa S. et al. Short-chain ketone production by engineered polyketide synthases in Streptomyces albus. Nat. Commun., in press.

フグはフグ毒をどこから獲得し、何に使うのか？

糸井 史朗（日本大学 生物資源科学部 海洋生物資源科学科） [email protected]

フグは、わが国では、高級料理の代名詞のように扱われることがある一方で、釣り人からは 食べることのできない外道として嫌われることが多い。いずれもフグがその体内に致死的な毒 を保有していることによる。フグが毒を保有していることはよく知られているものの、この毒 がどのようにしてフグの体内に蓄積されるのか、また、何のためにフグが毒をもっているのか、 知られていない。そこで本講演では、これらの点に焦点を当てて、長年にわたる先駆者の方々 の研究成果に加え、演者が取り組んできた研究により得られた成果を紹介する。 フグは膨大な量の毒、テトロドトキシン（TTX）をその体内に蓄えているが、これはフグがつ くってはいない。では、なぜこんなにも体内に TTX があるのか。実は、フグは餌生物に含まれ る TTX を体内に取り込んでいる。TTX は、フグのみならず、小型巻貝類やヒラムシ、頭足類な どの海洋生物のほか、イモリやカエル、さらには Vibrio や Shewanella 属の細菌など、多種多様な 分類群の生物から検出されている。その上、孵化したフグに無毒の餌を与えて育てると無毒の フグができ、この無毒のフグに TTX を含む餌を与えると毒化する。つまり、TTX は細菌によっ て生産され、食物連鎖を通してフグの体内に蓄積する。一方で、細菌が生産する TTX の量がき わめて少量であるため、フグが持つ膨大な量の TTX を供給可能なのか疑問視する声もあった。 最近、演者らは、この疑問に対応可能な答えとなり得る現象を見出した。3 月に採捕したクサフ グは、この時期に産卵するヒガンフグの卵を大量に摂餌していた。これを受けて無毒のトラフ グに有毒卵を与える飼育実験を行ったところ、トラフグは積極的に有毒卵を摂餌し、速やかに 毒化した。この結果は、TTX を保有する高次捕食者間で TTX が循環していることを示唆してお り、細菌による TTX の生産量が少なくてもフグが多量の TTX を持ち得ることを示唆している。 フグが様々な生物群から TTX を獲得していることは上述の通りである。しかし、効率よく TTX を獲得するには、それなりの供給者が必要である。フグへの TTX 供給者として重要である と思われる生物の一つに、ヒラムシがあげられる。演者らは、オオツノヒラムシがきわめて多 量の TTX を保有し、体サイズ依存的にその保有毒量を増加させることを明らかにした。クサフ グの稚魚の腸内容物に含まれる餌生物の組成を調べると、個体差はあるもののオオツノヒラム シが検出される。また、若魚の腸内容物からもオオツノヒラムシが検出される。クサフグにオ オツノヒラムシを与える飼育実験を行ったところ、積極的に摂餌し、速やかに毒化した。オオ ツノヒラムシは、その生活史を通してクサフグの毒化に関与しているのであろう。

23 では、このようにして体内に貯めこんだ TTX をフグは何に使っているのだろうか。このよう な質問をすると、「自分の身を守るためでは」との答えが返ってきそうである。実際に、クサ フグについては、電気ショックを与えると体表から TTX を放出することから、身の危険に接し た際には身を守るために TTX を使用していると考えられる。しかし、フグが身を守るために使 用していることを証明した研究はなかった。最近、演者らは、フグにおける TTX の利用につい て明確な証拠を示した。クサフグやトラフグの孵化した直後の仔魚をメジナやスズキなどの無 毒魚の稚魚に与える飼育実験を行った結果、フグの仔魚は捕食者の口腔に取り込まれたものの、 即座に吐き出された。この原因について明らかにするため、フグの仔魚の組織切片を作製し、 抗 TTX 抗体を用いる免疫組織化学染色に供した結果、仔魚の体表に TTX が局在することが明ら かとなった。LC-MS/MS 分析の結果から、これら仔魚の保有毒量はきわめて少ないことが明らか となっており、わずかな量の TTX を効率よく使うために体表に局在させていることが示唆され た。では、この TTX はどこから得たのであろうか。トラフグ属はすべての種が卵巣に TTX を蓄 積する。つまり母親は、最も弱い時期のわが子を守るために、卵に TTX を蓄積しているものと 思われる。この研究については、フグが捕食者から吐き出されるのは TTX によるものではなく、 体表の何らかの成分によるのではないかとの指摘もあったが、無毒のクサフグ親魚から得た卵 を孵化させた仔魚は、捕食者に加えられた後、吐き出されることなく飲み込まれたことから、 仔魚を守るために TTX が利用されていることは確実であろう。

参考文献 1) Itoi et al. Larval pufferfish protected by maternal tetrodotoxin. Toxicon 78, 35-40, 2014. 2) Itoi et al. Toxic Takifugu pardalis eggs found in Takifugu niphobles gut: implications for TTX accumulation in the pufferfish. Toxicon 108, 141-146, 2015. 3) Itoi et al. Role of maternal tetrodotoxin in survival of larval pufferfish. Toxicon 148, 95-100, 2018. 4) Itoi et al. Including planocerid flatworms in the diet effectively toxifies the pufferfish, Takifugu niphobles. Sci. Rep. 8, 12302, 2018. 5) Kodama et al. External secretion of tetrodotoxin from puffer fishes stimulated by electric shock. Mar. Biol. 87, 199-202, 1985. 6) Noguchi and Arakawa, Tetrodotoxin – distribution and accumulation in aquatic organisms, and cases of human intoxication. Mar. Drugs, 6, 220-242, 2008. 7) Noguchi et al. TTX accumulation in pufferfish. Comp. Biochem. Physiol. D 1, 145–152, 2006. 8) Yamada et al. Seasonal changes in the tetrodotoxin content of the flatworm Planocera multitentaculata. Mar. Drugs 15, 56, 2017.

皮膚マイクロバイオーム研究は何を明らかにしたか －健康、疾病、そして宇宙－

杉田 隆、張 音実（明治薬科大学 微生物学研究室） [email protected]

ヒトの皮膚は、多種多様な細菌と真菌が常在している。細菌叢は部位により大きく異なるが、 真菌叢は部位に関わらず Malassezia が優位となる。これが皮膚における細菌叢と真菌叢の大きな 相違である。 皮膚マイクロバイオームとの関連が示唆されている代表的な皮膚疾患の一つが、アトピー性 皮膚炎である。本症は増悪と寛解を繰り返す慢性的皮膚炎であるが、その期（Phase）でマイク ロバイオームも大きく異なる。細菌においては、増悪期では黄色ブドウ球菌が、寛解期では表 皮ブドウ球菌などの non-aureus Staphylococcus spp.が優位になる。真菌に関しては、いずれの期で も Malassezia が優位であるが、その構成比率が重症度に応じて変化する。今日では、いわゆる悪 玉菌を抗菌薬によって除菌することよりも、善玉菌を増やしてマイクロバイオームのバランス を制御する方向へ研究はシフトしている。実際に、構成菌の比率を変化させると細胞障害性あ るいは炎症性サイトカインの産生も変化することがわかっている。

24 話は大きく変わるが、宇宙飛行士の健康管理にもマイクロバイオーム研究は貢献している。 国際宇宙ステーションは閉鎖環境であり、また微小重力環境である。半年間にわたり宇宙飛行 士の皮膚マイクロバイオームを経時的に調べたところ、船内では皮膚 Malassezia 量は顕著に増加 し、種多様性は低下した 1)。このことは、閉鎖環境に長期滞在した場合、身体は特定の菌のみで 構成されることを意味する。 本講演会では、アトピー性皮膚炎、尋常性ざそうおよび脂漏性皮膚炎を例にマイクロバイオ ームの特徴と疾患制御について、また長期閉鎖環境下でヒトの健康はどの様に変化すると予想 されるのか議論したい。

参考文献 1) Sugita T, et al. Comprehensive analysis of the skin fungal microbiota of astronauts during a half-year stay at the International Space Station. Med. Mycol. 54, 232-239, 2016.

従来の微生物培養法の生物化学工学的解析とその利用

青柳 秀紀、高橋 将人（筑波大学 生命環境系） [email protected]

約 100 年前にパスツールやコッホらにより確立された微生物純粋培養法により、多くの有用微 生物が自然界から探索・単離・培養され、微生物関連産業は大きく発展してきた。近年、遺伝 子情報の解析により、“従来の微生物培養法では自然界に存在する微生物のわずか 1%程度しか培 養できない”ことが明らかとなり、その限界が指摘されている。残された 99%の未培養微生物は “微生物ダークマター” 1)と呼ばれ、国内外でその利活用が期待され、次世代シークエンサー等を 用いた網羅的な環境ゲノム解析が活発に行われている。 しかしながら微生物機能の解明や実用的な利用をおこなうためには、実際にダークマター微 生物の培養化が必要になる。また、生物化学工学的視点も含めて、ダークマター微生物の解析、 探索、分離・単離、培養、評価、保存および利用に関する新たな技術開発や、これまで得られ ているビッグデーターとの連携も重要になる。この様な背景から、2016 年より公益社団法人日 本生物工学会の研究部会として、微生物ダークマターに関連する研究・基盤技術開発の活性化 を目的とした、“未培養微生物（微生物ダークマター）資源工学研究部会”がスタートしている 2)。 本講演ではこれまで微生物培養に広く使用されてきた振盪フラスコ培養などに焦点を当て、 演者の研究室で実施してきた研究を中心に、実験の過程で見出した課題と解決策について紹介 する。 振盪フラスコ培養法は約 85 年前に考案され、微生物の好気的培養（主に回分式の液体培養法） に現在に至るまで国内外で広く使用されている。しかしながら振盪フラスコ培養法は、現在に 至るまであまり進歩していない（？）3)。また、振盪フラスコ培養の詳細は十分に明らかにされ ているとも言い難い。例えば、サンプリング操作がフラスコ内の環境や微生物及ぼす影響は？、 三角フラスコと坂口フラスコの特性の違いは？、など、不明瞭な点も多い。 演者らは、三角フラスコを用いて土壌試料を振盪培養し、微生物の探索を行う過程で、サン プリングの有無により異なる培養微生物群集が形成していることを独自に見出した 4)。サンプリ ング操作を行う際の培養栓の開封に着目し、培養中に意図的に培養栓を短時間、開封する実験 を実施した結果、培養栓の開封の有無や開封条件によって異なる培養微生物群集が形成した。 培養栓の開封操作の再現性の向上と煩雑さを解消するために、間歇的な通気が可能な Automatic Aeration Flask System（AAFS）を開発した 4)。さらに、演者らは、フラスコ振盪培養中 の気相部と液相部（培養液）の CO2 と O2 濃度をリアルタイムにモニタリングできる Circulation Direct Monitoring and Sampling System（CDMSS：フラスコの振盪を中断することなく培養液と気 5) 相部の CO2 と O2 濃度の測定や培養液などのサンプリングが可能）を開発した 。CDMSS を用い 6) ることで、種々のフラスコの特性 や微生物の振盪フラスコ培養における CO2 と O2 の経時的な

25 濃度変化をはじめて明らかにすることができた 4-6)。種々検討した結果、短時間の間歇的な培養 栓の開封やフラスコ気相部への通気等による、フラスコ気相環境の変化は集積される培養微生 物群集に影響を及ぼすことが示され、新規微生物の探索などに活用できることが示唆された。

参考文献 1) Heidi Ledford: Promising antibiotic discovered in microbial ‘dark matter’. Nature, doi:10.1038/nature.2015.16675. 2) https://www.sbj.or.jp/division/division_mdarkmatter.html, at Oct. 25, 2018. 3) Masato Takahashi, Hideki Aoyagi: Practices of shake-flask culture and advances in monitoring CO2 and O2. Appl. Microbiol. Biotechnol., 102, 4279-4289, 2018. 4) Masato Takahashi, Hideki Aoyagi: Effect of intermittent opening of breathable culture plugs and aeration to the headspace of flasks on the cultured microbial community structure during shake-flask culture. J. Biosci. Bioeng., 126, 96-101, 2018. 5) Masato Takahashi, Yoshisuke Sawada, Hideki Aoyagi: Development of a circulation direct sampling and monitoring system for CO2 and O2 concentrations in the gas-liquid phases of shake-flask systems during microbial cell culture. AMB Express, 7, 163, 2017. 6) Masato Takahashi, Hideki Aoyagi: Monitoring of CO2 and O2 concentrations in the headspace of Sakaguchi flasks during liquid culture of microorganism. Appl. Microbiol. Biotechnol., 102, 6637- 6645, 2018.

26 2018 年度日本放線菌学会・功績功労賞受賞総説 放線菌に魅せられて

天野 昭一（元; 明治製菓） 〒215-0014 川崎市麻生区白山 1-2-1 Fascinated by the actinomycetes Shoichi Amano (Former; Meiji Seika LTD)

＜はじめに＞ 生物質・メデマイシン、そして Bialaphos ペニシリンやストレプトマイシンなどの について重点的に述べた。一方、放線菌画像 抗生物質の発見は人類にとって感染症の病 の分野では、近年、放線菌を含むバクテリア いから苦しむ人を救い、多大な恩恵を与え の分類学が 16S rRNA の塩基配列による分 てきた。そして、1960 代になると世界中で、 類が主流となり形態観察はあまり重要視さ 抗生物質の探索が活発になり、多くの抗生 れなくなっていることを念頭に、16S データ 物質が発見された。明治製菓はペニシリン、 の無い時代には電子顕微鏡による形態観察 ストレプトマイシン、カナマイシン、ネオサ は種の特定に大変重要な役割を果たしてき クリンといった抗生物質の製造メーカーと たことを示してみようと考えた。具体的な して実績を上げ続けたが、更には明治製菓 例として、私の撮った放線菌画像が本の表 独自の抗生物質を見出すべく、1961 年横浜 紙に掲載された例などを紹介しながら電子 に中央研究所を設立し本格的な新規有用抗 顕微鏡でしか見る事の出来ない放線菌の多 生物質の探索研究をスタートさせた。 様で美しい形態を示し、もっと大切にして 今回の受賞講演では、私が関わってきた もらいたいとの思いを示してみた。今回の 抗生物質探索研究の成果とその中で撮影し 発表では、なによりもこの強い思いをお伝 た放線菌画像を見ていただくことにした。 えできればと願っている。16S データだけで まず、新規抗生物質探索の分野としては、尾 は、放線菌の持つ本来の魅力は伝わらない 道で採集した土壌より分離した株の作る抗 と思うからだ。

27 メデマイシンの発見と実用化

Tsuruoka et al J. Antibiot. 24: 319, 476 (1971), JA 24: 460, 526 (1971). Midecamycins, SF-837

マクロライド系抗生物質 メデマイシンは明治製菓が 1974年感染症薬として発売 を開始し、数年にわたって 50億円以上の売り上げを記録。この生産株は天野と庄 村が尾道市で採取した土壌から分離培養し、抗菌物質スクリーニング・活性物質 の抽出精製を担当、その結果 新規の16員環マクロライドの発見に繋がった。

28 ➀ 寒天培地では胞子が豊富に形成されるが気中の発育が余り多すぎない所を選ぶ、そのた めには菌を寒天培地表面に画線に塗付する。 ② 培地濃度や培養温度などを変え最適な条件を選ぶ。 ③ 光学顕微鏡で観察しながら特徴的な形態が観察された所を見つけコルクボーラーでくり抜 き固定する。 ④ 固定はｵｽﾐｳﾑ酸による蒸気固定を12時間位行った後、試料を取り出しドラフトチャンバー に移しｵｽﾐｳﾑ酸を蒸発させる。 ⑤ 液体窒素に漬けて瞬間凍結する。液体窒素に漬けたまま凍結乾燥機にセットし乾燥する。 ⑥ 乾燥後、電顕用カーボン両面テープで試料台に接着する。試料台にはしっかりと接着し、 銀ペーストなども使い試料との隙間を無くし完全に接着させる。 ⑦ イオンスパッターで金属コーティングを行う、放線菌は気菌糸が立体的に入り組んでいるの で厚めにコーティングする事でチャージアップを起こさず高倍率でもきれいな写真が撮れる。 ⑧ 最近の電子顕微鏡は性能が向上し、明るさ、コントラスト、フォーカス、非点補正などの操 作は自動化されている、しかしマニュアルで調節すると綺麗な写真が撮れることもある。

29 ペプタイド系抗生物質 Bialaphos

V.B12を添加した1/4リンゴ酸カルシウム寒天培地で気菌糸 および疑似胞子嚢を 形成させる事に成功した。

30 胞子嚢内に 2～4個の胞子が形成さ れている。

新種； バラ色のコロニーに因んで “rosy” と命名

31 Herbidospora cretacea SF2625

32 33 34 35 36 37 Streptomyces fimbriatus

この画像は1997年に日本放線菌学会が出版 した 『放線菌図鑑』（Atlas of Actinomycetes) 朝倉書店の表紙に掲載された。そして“Digital Atlas of Actinomycetes, Ver, 2” に発展

38 39 菌株の共培養による新物質の生産

明治製菓を退職し、日本大学 生物資源科学部生命工学研究室に移籍してからは異なる放 線菌の共培養によって分化と抗生物質生産が誘導される現象を探索し、それが様々な放線菌 の間に認められることを見出した。S. scabrisporus と S. griseorubiginosus の間における抗生物 質生産を誘導する物質も単離同定を行いポリエーテル系の新物質 Promomycin を発見した。 更に Monensin に対する誘導活性を S. phaeopurpureus No. 574 の培養液から単離同定し SF2768 物質を得た。 この物質は偶然にも明治製菓が発見した物質に一致。

異なる株が誘発する物質 Monensinn が誘発する物質

Monensin 20γ/mL

S. phaeopurpureus

SF2768 (J. Antibiot. 64:703, 2011)

私は明治製菓に40年近く勤務し、そのほとんどの期間で微生物生産物の探索に関与した。こ の間、電子顕微鏡は常時担当していた。微生物部門担当の庄村さんには入社時から熱いご指 導を受けてきた。この講演タイトル ”放線菌に魅せられて” は、庄村さんが出版された本のタイ トルをお借りした。残念ながら三年前に亡くなった天国の彼に感謝の気持ちを伝えたい。

40

２０１８年度功績功労賞受賞

天野 昭一

（元・明治製菓株式会社）

「多様な放線菌とその代謝産物の発見及び電子顕微鏡観察への貢献」

Shoichi Amano

“Discovery of various actinomycete metabolites and contribution

to electron microscopic observation”

(Former Meiji Seika Co., Ltd)

41 日本放線菌学会賛助会員

長瀬産業（株）研究開発センター アステラスファーマテック（株）富山技術センター技術開発部 協和発酵キリン（株）研究本部創薬化学研究所 （公財）微生物化学研究会 微生物化学研究所 第一三共 RD ノバーレ（株）合成化学研究部天然物グループ 大鵬薬品工業（株）製薬業務部研究管理課 Meiji Seika フアルマ（株）足柄研究所 日本マイクロバイオファーマ（株）生物資源研究所 合同酒精（株）酵素医薬品研究所 味の素（株）イノベーション研究所 トヨタ紡織株式会社 基礎研究所 富士シリシア化学（株） チーム未来グループ

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日本放線菌学会誌 第 32 巻 2 号 ACTINOMYCETOLOGICA 平成 30 年 12 月 21 日発行

編集兼発行 日本放線菌学会 〒141－0021 東京都品川区上大崎 3-14-23 公益財団法人 微生物化学研究会 微生物化学研究所内 日本放線菌学会事務局 電話: 03-6455-7169 Fax: 03-3441-7589 E-mail [email protected] 年間購読料 5,000 円（会員無料） http://www.actino.jp/

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B5判 264頁＋ 口絵4頁 ISBN 978-4- 86399-101-9 C3047 みみずく舎：発行 ／医学評論社： 発売 定価4,104円（税 込み） 学会特別頒布価 格3,200円（税・ 送料込み）

日本放線菌学会編 日本学会事務センター刊 ISBN 978-4891140113 A4版上製、410頁 定価7,000円（税別） 特別価格 4,500円（税および送料別）

お申し込みは学会事務局 [email protected] まで 遺伝子を高機能にデザインしてものづくりに貢献します

高機能遺伝子デザイン技術研究組合 Technology Research Association of Highly Efficient Gene Design http://www.trahed.or.jp/ 物質生産を目的とした高機能遺伝子デザインを達成するための生産宿主の設計・構築・測定・学習の ゲノムデザインサイクル（GDC）の実施を支援する GDCプラットフォーム を開発しています。さらに長鎖DNA 合成、 ゲノム合成の実践を行っています。 TRAHED事業、実績歴史 ゲノムデザインサイクル(GDC)

年 2018 プラットフォーム 1990 2000 2010 2020 2030 DESIGN BUILD TRAHED設立(2012～)

GDCサイクルの確立 ■抗体の最適配列設計 ■抗体遺伝子構築 ■高生産因子探索用の ■高生産因子探索用の シンプロジェン設立(2016～) ライブラリー設計 ライブラリー構築 ■高生産因子の最適な ゲノム合成センター設立 (2018～) ■高生産因子の最適な GDC 集積クラスター プラットフォーム 集積クラスター構築 ゲノム編集技術(2014～) LEARN TEST ゲノム合成(2005～)

合成生物学(2002～)

ゲノム全塩基配列決定 ■ﾊｲｽﾙｰﾌﾟｯﾄｽｸﾘｰﾆﾝｸﾞ（HTS） ■抗体機能評価 分子生物学、遺伝子工学 ■バイオインフォマティクス ■ゲノム解析 解析とルール抽出 ■統合オミックス解析 バイオサイエンスの進行

有用物質を高生産する宿主微生物の開発 ゲノム合成センター（設立準備中） (国研)日本医療研究開発機構(AMED) 委託事業 「次世代治療・診断実現のための創薬基盤技術開発事業」 バイオ医薬品の高度製造技術の開発 ものづくりのために ●高性能な国産細胞株の構築（代表：神戸大学 近藤昭彦） 設計した微生物 ●先端的バイオ製造技術開発 （代表：神戸大学 石井純）

GDCプラットフォームによる高生産化サイクル

■ GDCにもとづくゲノム設計 ■ 長鎖DNA合成技術の適用 ■ ゲノム＞500 kbpの完全合成システム

有用微生物ゲノム合成 高等動植物ゲノム合成

長鎖DNA自動合成システム

10-100倍 ・・・・・・元の微生物 シャーシ株 分泌生産量

元株 Cycle 1 Cycle 2 高性能化 GDC cycle 構造や配列を最適化する 国産の高性能 独自技術開発 オリジナル株を開発 アカデミア、ヘルスケア。 ものづくり etc. A B C D

1990年12月18日 第４種郵便物認可 ISSN 0914-5818 201 8

VOL. 32 NO. 2 C 2014 T VOL. 27 NO. 1 IN (会員用) O

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ACTINOMYCETOLOGICA

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日 本 I 放 線 C 菌 学 会 http://www0.nih.go.jp/saj/index-j.html ３２ ２ 日本放線菌学会誌 第 巻 号 誌 Published by ACTINOMYCETOLOGICA VOL.３２ NO.２, 2018 The Society for Actinomycetes Japan