BOLETÍN MUSEO ENTOMOLÓGICO FRANCISCO LUÍS GALLEGO ISSN 2027-4378 V 8 Nº 3 Julio-Septiembre

Especimen número 1 del MEFLG, catalogado por Francisco Luis Gallego en julio 28 de 1936, identificado como Calopteron palpale Kirsh por H.S Barber del Smithsonian Institute en diciembre 5 de 1936 M E F L G

Facultad de Ciencias Sede Medellín Volumen 8 Número 3 Julio-Septiembre 2016

Boletín del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego

bol.mus.entomol.Francisco Luis Gallego. ISSN 2027-4378

Publicación trimestral del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego de la Universidad Nacional de Sede Medellín.

Los artículos se presentan bajo responsabilidad de los autores, quienes editan sus propios trabajos. Las citaciones, copias de figuras, tablas y demás elementos que requieran autorización del autor para ser reproducidas, son responsabilidad del autor del documento, más no del Boletín.

Directora del Museo y del Boletín Adelaida María Gaviria Rivera

Comité Editorial Sandra Uribe Soto, Universidad Nacional de Colombia, Medellín, Colombia. Paula Andrea Sepúlveda Cano, Universidad del Magdalena, Colombia. Francisco Serna Cardona, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Germán Amat García, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Allan Smith Pardo, United States Department of Agriculture, San Francisco, CA, Estados Unidos. Victor Hugo González, University of Kansas, Lawrence, KS, Estados Unidos. Adelaida María Gaviria Rivera, Universidad Nacional de Colombia, Medellín, Colombia. John Alveiro Quiroz, Universidad Nacional de Colombia, Medellín, Colombia. Fernando Hernández - Baz, Universidad Veracruzana, Veracruz, México

Diseño Editorial Facultad de Ciencias Oficina de Comunicaciones María Eugenia Aristizabal

Diseño Ana María Restrepo Montoya

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http://www.unalmed.edu.co/~mentomol/ Contenido

NORMAS PARA PUBLICAR EN EL BOLETÍN DEL MEFLG...... 4

ARTÍCULO ORIGINAL ...... 6

REPORTE DE LOS FONDOS DEL MEFLG ...... 22

NUEVOS ESPECÍMENES TIPO DEL MEFLG...... 29

NOTAS DEL MUSEO ENTOMÓLOGICO FRANCISCO LUIS GALLEGO ...... 38 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de 2016-ISSN 2027-4378

NORMAS PARA PUBLICAR EN EL BOLETÍN DEL MEFLG.

Redacción: en tercera persona Unidades: sistema métrico decimal Letra: times new roman tamaño 12. Espacios entre renglones: sencillo Imágenes en: JPEG

Lista de referencias:

Artículo: Lyal C, Kirk P, Smith D y R Smith. 2008. The value of to biodiversity and agriculture. Tropical Conservancy: Biodiversity 9 (1&2): 8-14. Observe que se escribe el nombre completo de la revista.

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Referencias en el texto: Un solo autor: Kaesuk (2009b) o (Kaesuk 2009b) Varios autores: Lyal et al. (2008) o (Lyal et al. 2008)

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Cuando son varias citas en un mismo párrafo, por orden alfabético (Erwin 2006, Reid y Miller 2004), cuando son del (los) mismo(s) autor(es), por fecha de aparición (Erwin 2008, 2009) o (Erwin 2008a, 2008b)

Tablas para el reporte de los fondos del MEFLG: en word, siga el ejemplo de abajo. Letra: times new roman 8

Tabla. Mutillidae del Museo Entomológico Francisco Luís Gallego de la Universidad Nacional de Colombia Sede Medellín (IND: información no disponible).

Nº Especie Colector Identificador País Departamento Municipio Fecha Cantidad Catálogo

Agriocleptes albosparsu A.Madrigal D.Forero Colombia Antioquia Tarazá /07/1975 1 2975 Stål, 1854

Agriocleptes Santa Fé de albosparsus F. Gallego D.Forero Colombia Antioquia /11/1963 1 2975 Antioquia Stål, 1854

Agriocleptes albosparsus F. Gallego D.Forero Colombia Antioquia S. Andrés /02/1951 1 2975 Stål, 1854 Agriocleptes albosparsus R. Vélez D.Forero Colombia Antioquia Sopetrán /05/1972 2 2975 Stål, 1854

Agriocleptes albosparsus R. Vélez D.Forero Colombia Antioquia Sopetrán /03/1973 2 2975 Stål,, 1854

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ARTÍCULO ORIGINAL

Einige Sammlungen Von Schmetterlingen Erreicht in der Oberen und Mittleren Putumayo Gebiet, Kolumbien (, , Ithomiinae)

Julián A. Salazar E

Curador del Museo de Historia Natural. Universidad de Caldas. Manizales. julian. [email protected]

Zusammenfassung

Diese Arbeit zielt darauf ab, eine Liste der Familie Ithomiinae Schmetterlinge im oberen und mittleren Putumayo gefangen offen zu legen. 60 Arten mit entomologischen Netze, die Bedeutung der Region als einer der biodiverse von Kolumbien in Schmetterlinge und die dringende Notwendigkeit hervorgehoben Lebensräume noch zu konservieren bleiben gefangen betont.

Stichwort: Biodiversität, Putumayo, Pleistozän Zuflucht endemism , Ithomiinae

Mariposas de la Región de Alto y Medio Putumayo, Colombia (Lepidoptera, Nymphalidae, Ithomiinae)

Resumen

Este artículo tiene la finalidad de divulgar una lista de las mariposas incluidas enla subfamilia Ithomiinae que habitan en la región del alto y medio Putumayo. Mediante la captura con redes entomológicas, se registró un total de 60 especies, lo que indica una de las zonas de mayor biodiversidad de mariposas del país y que es necesario promover para su conservación.

Palabras clave: Biodiversidad, refugios pleistocénicos, endemismos, Putumayo, Ithomiinae

Einführung

Die Ithomiinae sind ausschließlich neotropical Schmetterlinge, die durch halbtransparente Flügel oder gestromt Schattierungen , schlanken Körper, kleine Köpfe und längliche Bauch gekennzeichnet sind. Sie stellen eine Unterfamilie besteht aus 320 Arten, darunter 47 Gattungen und phylogenetisch im Zusammenhang mit (Baumann, 1974; Lamas, 1999). Ein weiterer bemerkenswerter Unterschied, dass eine monophyletische

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Zeichen in der Gruppe unterstützt , ist das Vorhandensein von Büscheln von Riech- Haare in der Küstenregion der Hinterflügel (Lamas, 1999; Brower et al., 2006). Der Vorstand der Ithomiinae in seiner Raupenstadium, Pflanzen sind Solanaceae und Apocynaceae geringerem Umfang (Ackery, 1984; De Vries, 1987), während die Erwachsenen sind regelmäßige Besucher Blume (Boraginaceae) und Euphatorium (Asteraceae), von denen pirrolizinicos Alkaloide zu gewinnen Frauen integrieren (Boppré, 1984; Schulz et al., 2004; Lamas y Perez, 1983).

Ohne Ausnahme, diese Schmetterlinge fliegen Erwachsene in den unberührten oder Sekundärwälder und sind gute Indikatoren für Bewaldung in akzeptablem Zustand (Beccaloni y Gaston, 1995; Raimundo et al., 2003). Sie haben sich an Schatten Bedingungen angepasst und können oft zahlreiche Personen in Gebieten mit relativ kleinen Wald bilden heterogene Gruppen von Arten in Unterholz (Vélez y Salazar, 1991) gefunden werden. Angesichts dieser Konzentration kann dann Probenahme durchzuführen , die Ithomiinae Verwendung als Proben Waldreste von Pleistozän Herkunft bezeugt, beschuldigt hohen Grad an endemismus (Brown, 1977, 1987). Angesichts dieser Konzentration kann dann Probenahme durchzuführen, die Ithomiinae Verwendung als Proben Waldreste von Pleistozän Herkunft bezeugt, beschuldigt hohen Grad an Endemismus.

In diesem Sinne ist eine der wichtigsten Tierwelt Ithomiinae, durch die große Anzahl von Genres und existierenden Arten bewohnen biologischen Putumayo Region, speziell am Fuße dieses Berges der Ostkordillere Abdeckung der Abteilungen von Caquetá, Putumayo, Cauca und Nariño östlichen. Das Hauptziel dieser Arbeit ist es, eine Liste der Arten offen zu legen, die in der oberen und mittleren Putumayo, sowie zu zeigen einige der Lebensräume in der Region gesammelt wurden.

Hintergrund

Frühere Studien, die aufschlussreich Listings Ithomiinae der Region veröffentlicht wurden, sind in der Hand gezählt. Zum Beispiel Salazar (1995) veröffentlichte eine Liste von 85 Arten vorhanden , von denen 24 an die oberen Putumayo gehören und 66 in der Mitte Putumayo, aber gegen am Anfang als den Anden und Amazonasgebiet hoch diskriminiert. Alle innerhalb einer Gesamtlistevon 827 Arten von Schmetterlingen in allem, was die Abteilung von Putumayo bewohnen , kurz nach Fagua et al., (1999) für eine probenahme in der Nähe von Rio Pato -San Vicente del Caguán (Caquetá) Region durchgeführt von unzweifelhaften Einfluss des Putumayo nahmen sie 20 Arten sowie andere Kofán und in den Gebieten Ingano gesammelt (Ospina y Fagua, 2007). Eine benachbarte Fläche inventarisiert auch von Arias y Huertas (2001) ist die Serrania von Churumbelos , eine kleine Liste von 23 Arten an orten, zwischen 350 und 1450 meter über dem Meeresspiegel gefangen Berichterstattung. Schließlich Salazar et al., (2010) aufgezeichnet 40 Arten von Ithomiinae in einer Liste von 605 Arten von Schmetterlingen gesichtet für „Centro Experimental Amazónico“ (CEA) , ein Ort, neben den Becken der Mocoa und Pepino Rios in der Mittle Putumayo.

Darüber hinaus wird es in Betracht ziehen, die Arbeit von Brown (1977, 1980, 1987), die spezies Ithomiinae für Putumayo, decken alle neotropical Fauna und zum Teil auf

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Sammlungen im Bereich der Ernesto W. Schmidt-Mumm definiert und al. Dazu gehören Inserate der oben genannten Autoren und einem aktuellen Material zur Verfügung.

Biogeographische notes der putumayo gebiet

Für Kolumbien (Karte 1 ) mehrere Pleistozän Refugien , die hohe endemism Hafen bekannt sind, in die biogeographische Provinz des Amazonas gehört, und einer von ihnen ist der Putumayo.

Tatsächlich Ramirez - Chavez et al., (2013 ), einer Studie von Säugetieren in der Region und auch auf der Grundlage Hernandez-Camacho et al., (1992) schlagen vor, mehrere verwandte Bezirke : Teile Florencia, Caguan, Huitoto, Kofan, Ticuna und Bezirk hohe Putumayo.

Letzterer autor erklärt, dass der Fuß der Berge von Putumayo und Caqueta sind muiy und die Heimat der größten Artenvielfalt der kolumbianischen Amazonas zusammen. Endemism ist das Ergebnis der Situation nicht nur Mosaik von Pflanzenarten, aber auch von Tieren und Schmetterlinge sind keine Ausnahme. Für Ithomiinae Brown (1977) , die Muster der Differenzierung aller neotropical Fauna, sieht die Putumayo zwei prominente für Zentren von endemism und Evolution Subregionen studieren zu sein: untere Putumayo (Pt1) und hohe Putumayo (Pt2 ) (Karte 2).

Der erste von ihnen eher dem Schutz des Napo einschließlich Vorberg Dschungelgebiet des südlichen Kolumbien und nordöstlichen (Brown, 1987; Haffer, 1987; Prance, 1987).

Aufgrund der obigen Ausführungen und basiert auf Studien von mehreren Agenturen Morrone (2002, 2014) enthält die verschiedenen Bezirke von Putumayo vorgeschlagen von

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SM: Santa Marta DA: Darién Nc: Nechí Ct: Catatumbo Ch: Choco Va: Veatuari Mg: Magdalena Vl: Villavicencio Pt: Putumayo Np: Napo Im: Imeri Le: Loreto Ca: Cauca Mapa 3. Refugios cuaternarios de Colombia. Mapa: Guillermo Linero

Karte 1. Pleistozän Refugien von Kolumbien

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Hernandez-Camacho et al., (1992) in die Provinz Napo. Ebenso andere Autoren mit der Familie Schmetterlinge Riodinidae arbeiten, zum beispiel (Callaghan, 1985), bevorzugen die Putumayo vorläufig als Teil der östlichen Hängen der Anden gehören, mangels intensiver Sammlungen ihre endemism nach rechts propip zu rechtfertigen. Obwohl die Fauna der Berge vor allem von Arten in den tropischen Anden beschränkt besteht, angewendet Faktor der hohen Anden Schmetterlinge: Pieridae, Satyrinae - Pronophilini, Ithomiinae, Heliconiinae (Kattan et al., 2004; Rosser et al., 2012), bestimmte niedrig gelegenen Gebieten der östlichen Cordillera in Putumayo als caucana Boot , zeigen den Artenaustausch zwischen den östlichen Anden und der Amazonas Ebene (600-1500 m).

Biologische Putumayo Region für seine komplexen bergiges Gelände und Dschungel Schluchten hat auch llamdo, Orobioma durch die Anden “Abdeckung der mittleren Bereiche der östlichen Cordillera der Departements Meta, Caqueta, Cauca, Nariño und Putumayo (Garcia et al., 2012). Ihre besondere Form von Wasserregime vegetationsgürtel Tatsache Erhöhung als eines senkt sich auf den mittleren und unteren Putumayo in einem kontinuierlichen Streifen.In diesem papier schlagen wir die Putumayo und Napo Biom durch die Anwesenheit differenziert von stark lokalisierten Arten von Schmetterlingen, zu der Unterfamilie gehör Ithomiinae. Diese Hypothese wird durch Vitale y Bollino (2000) betrachtet, die behaupten, dass die Region ist ein Gebiet von neotropical endemism kurz nach Ecuador erweitert, mit der Nähe der Provinz Sucumbíos, wo es klar faunal Austausch ist (Mechanitis mazaeus messenoides Felder, typische unterart von Kolumbien und M. massaeus deceptus Butler von ecuadorianischen Napo), sowie andere eigene Fauna Elemente von Ecuador und .

Methode und untersuchungsgebiet

Die Arten, die hier aufgenommen wurden, mit entomologischen Netze in mehreren Besuchen in Putumayo und Diskriminierung in zwei Hauptbereiche erfasst:

I.- Mittleren putumayo

Es deckt die unteren Teile des Berges und Dschungelwanderung hügeligen Gebieten benachbarten sich zwischen den 300 und 800 meter über dem Meeresspiegel. Es enthält entsprechende östlich von Cauca und Nariño Putumayo Orte. Die Vegetation beobachtet gehören grundsätzlich Tropenwald und sehr feucht zu benetzen (Espinal y Montenegro, 1963). Die Sampling- Stationen waren : a.- Rio Guamues-Orito (350-680 m) b.- C.E.A.- Rio Pepino (530 m) c.- Rio Mocoa-Canalendre (580 m) d.- Rio Mocoa- Afán (580- 650 m) d.- Condagua-Rio Villalobos (600-1200 m)

II.- Oberen putumayo

Es besteht aus dem bergigen Dschungelgebiet, sowie Sibundoy Tal zwischen 1300 und 2500 meter über dem Meeresspiegel. Es ist die hohe Andenregion der Departements

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Putumayo, Cauca und Nariño. Die Pflanzengemeinschaften entsprechen feuchten und sehr feuchten subtropischen Wald, subtropischen regen Wald und unteren montanen feuchten Wald steilen Hängen (Espinal y Montenegro, 1963). Die Sampling- Stationen waren: a.- Monopamba-El Carmen, Nariño (1200-1750 m) b.- alto Rio Villalobos, bota caucana (1200-1600 m) c.- Straße Mocoa-Sibundoy, sektor los cristales (1700-1940 m) d.- San Francisco-schlucht La Honda (2340-2510 m) e.- Santiago-alto Rio Putumayo (2300-2500 m)

Expeditionen in Sammlung gerichtet waren an den folgenden Tagen und Jahren: 24 bis 31 Dezember 1985, 24 bis 28 Februar 1986, von 14 bis 24 September 1987, 21 bis zum 28 September 1990, 7 bis 12 August 1993, 5 bis 13 Januar 1998, 12 bis 22 September 2006, 4 bis 9 Januar 2009, 16 bis 29 Februar 2010, 5 bis 18 Januar 2011, 9 bis 13 März 2011, 13 bis 20 Mai 2016.

Das Material wird in den Sammlungen des Museum of Natural History Universität Caldas (MHN-UC), der entomologischen Sammlung Programm Biologia, Universidad de Caldas (CEBUC), Herr Julian Salazar Sammlung (CJASE) und das Institut für Forschung hinterlegt Alexander von Humboldt, Villa de Leyva (IiAVH) von ejemplars zusammengestellt von E.W.Schmidt-Mumm. Für die Identität der Spezies wurden folgende Autoren herangezogen: Haensch (1905, 1909), Niepelt (1928), Fox (1956, 1967), D`Almeida (1978), Takahashi (1978), Mielke y Brown (1979), Brown (1980), Lamas (1980, 1986, 1999), D`Abrera (1984), Brown y Freitas (1994), Vitale y Bollino (1999, 2000a, 2000 b, 2001a, 2001b) und Willmott y Lamas (2008). Zum Zwecke der Darstellung finden Sie hier Fotos von verschiedenen Lebensräume und Arten Auswahl aus den beiden Bereichen enthalten sucht.

Ergebnisse I.- Ithomiinae von Mittleren Putumayo gebiet (Liste von Salazar et al., (2010) gennomen erweitert und überarbeitet) Taf. I

Abbildung 390 m 650 m

Aeria eurimedia (Cr., 1777) X

Athesis acrisione deflavata Niepelt, 1928 1 X

Brevioleria aelia (Hew., 1852) X

Callithomia lenea (Cr., 1775) X

Ceratinia tutia poecila (Bates, 1862) X X

Aeria eurimedia (Cr., 1777) X

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Ceratinia tutia callichroma (Stgr., 1885) X

Dircenna adina xanthophane (Hpffr., 1874) X X zavaleta matronalis Weymer, 1883 14 X X Heterosais giulia (Hew., (1855)) X Hyposcada anchiala anchiala (Hew., 1868) 2 X X Hyposcada illinissa ssp.1 9 X Hyposcada illinissa ssp.2 X Hyposcada illinissa adina (Weymer, 1905) X Hypoleria sarepta cidonia (Hew., (1857) X

Hypothyris euclea intermedia (Btlr., 1877) X X Hypothyris ninonia diphes Fox, 1971 X Hypothyris anastasia honesta (Weymer, 1883) 4 X Hyaliris coeno norellana (Haensch, 1903) 13 X Hyaliris oulita lurida (Btlr., 1873) X Ithomia agnosia agnosia (Hew.,, 1855) X Ithomia salapia salapia (Hew., (1853) X X Ithomia salapia derasa (Hew., 1855) 11 X Mechanitis polymnia doryssides (Stgr., 1884) X X Mechanitis lysimnia roqueensis Bryk, 1953 10 X Mechanitis mazaeus deceptus Btlr., 1873 6 X X Mechanitis mazaeus messenoides (Fldr., 1865)

Melinaea marsaeus messenina (Fldr., 1865) marsaeus mothone (Hew., 1860) 5 X X Melinaea menophilus menophilus (Hew., 1856) 8 X X Melinaea menophilus zaneka Btlr., 1870 curvifascia (Weymer, 1883) 3 X Methona confusa psamathe (G & S., 1898) Napeogenes achaea nicolayi Fox & real, 1971 7 X Napeogenes inachia pozziana (Oberth., 1875) ilerdina lerida (Kirby, 1875) Oleria gunilla lota (Hew., 1872) 15 X X Oleria sexmaculata ssp. Pseudoscada florula aureola Bates, 1862 X Scada zibia perpuncta Kaye, 1918 12 X Scada reckia ethica (Hew.,(1861) X Tithorea tarricina hermias (G.&.S., 1898) X Tyridia psidii ino (Fldr., 1862) X

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II.- Ithomiinae von Oberen Putumayo gebiet

(Liste von Salazar (1995) gennomen erweitert und überarbeitet) Taf . II

Abbildung 1200 m 2500 m Dircenna adina lorica Weymer, 1875 X Elzunia humboldt (Latr. (1809) X Episcada mira (Hew., 1877) 19 X Godyris duillia (Hew., 1854) 18 X Godyris panthyale (Fldr., 1862) X Godyris nepos hewitsoni Haensch, 1903 16 X Greta libethris (Fldr.,1865) 30 X Greta alphesiboea (Hew., 1869) X Greta andromica andania Hpffr., 1874 X Greta theudelina bonita Vitale. & Boll., 2001 27 X Hyaliris antea antea (Hew., 1869) 17 X Hyalenna paradoxa praestigiosa Haensch, 1903 23 X Ithomia terra ssp. X Ithomia agnosia (Hew., 1855) X Megoleria susiana susiana (Fldr., 1862) 21 X Megoleria orestilla polylla (Lam. & Willm.,2008) 20 X Napeogenes larilla larilla (Hew., 1877) 25 X Oleria estella estella (Hew., 1868) X Oleria athalina banjana Haensch, 1903 X Oleria makrena (Hew., 1854) X Oleria sp. X Oleria athalina ssp. X Pagyris cymothoe sylvella (Hew., 1868) Pagyris ulla ssp. X Patricia dercyllidas hazalea Fox, 1956 26 X X

Pteronymia oneida ssp. 24 X

Pteronymia teresita thabena (Hew., 1869) X Pteronymia alida zabina (Hew (1857)

Tithorea tarricina bonita Hanesch, 1903 X

Veladyris pardalis aurea Lamas, 1980 22 X

Velamysta phengites ssp. 29 X

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Abb. 1 Rio Mocoa-Canalendre (520 m) Abb. 2 Rio Afán (580 m)

Abb. 4 Alto Villalobos (1600 m)

Abb. 3 Rio Villalobos (1200 m)

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Abb. 5 Mocoa Sibundoy (sektor Los Cristales) (1940 m)

Abb 6. San Francisco Quebrada la Honda (2340 m)

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Abbildung 1. Athesis acrisione deflavata (Niep.), 2. Hyposcada anchiala anchiala (Hew.), 3. Methona curvifascia (Weym.), 4. Hypothyris anastasia honesta (Weym.), 5. Melinaea marsaeus mothone (Hew.), 6. Mechanitis mazaeus deceptus (Btlr.), 7. Napeogenes achaea nicolayi (Fox & Real), 9. Hyposcada illinissa ssp., 10. Mechanitis lysimnia roqueensis (Bryk), 11. Ithomia salapia derasa (Hew.), 12. Scada zibia perpuncta (Kaye), 13. Hyaliris coeno norellana (Haensch), 14. Godyris zavaleta matronalis (Weym), 15. Oleria gunilla lota (Hew.)

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Abbildung 16. Godyris nepos hewitsoni (Hanesch), 17. Hyaliris antea antea (Hew.), 18. Godyris duillia (Hew.), 19. Episcada mira (Hew.), 20. Megoleria orestilla polylla (Lam. & Willm), 21. Megoleria susiana susiana (Fldr.), 22.Veladyris pardalis aurea (Lam.), 23. Hyalenna paradoxa praestigiosa (Haensch), 24. Pteronymia oneida ssp. 25. Napeogenes larilla larilla (Hew.), 26. Patricia dercyllidas hazalea (Fox), 27. Greta theudelina bonita (Vitale & Boll.), 28. Oleria athalina ssp., 29. Velamysta phengites ssp., 30. Greta libethris (Fldr.)

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Danksagungen

Der Autor dankt den Menschen, die zu der Zeit arbeitete teilweise mit der Registrierung und Erfassung von Arten, die hier im Zusammenhang mit ( in alphabetischer Reihenfolge) zu danken :

David Acosta, Yesid Calvo, Luis Constantino, Antonio Fajardo, Efrain Henao, Natalia Mojhana Bernal, Angie Ortega Moreno, Miguel Rodriguez, Ernesto W. Schmidt –Mumm (+), Gimena Ospina, Vaclav PacI, Leda Valdez, Jesús Velez, Jose I. Vargas und vor allem Greg Nielsen für ihre großzügige Unterstützung in preparaciópn der Blätter mit ausgestopften Exemplaren.

Literatur

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NOTA CORTA

Distribución espacial de las poblaciones de insectos: Modelos probabilísticos, índices de agregación y herramientas estadísticas para el análisis

Diego Esteban Martínez – Revelo1*, Adelaida María Gaviria Rivera2

1 Grupo de investigación en sistemática molecular, Universidad Nacional de Colombia, sede Medellín. 2 Grupo de investigación Interacciones Biológicas, Universidad Nacional de Colombia, sede Medellín.

*Autor para correspondencia: [email protected]

Determinar la distribución espacial de las poblaciones de insectos en agroecosistemas, es fundamental para el diseño de planes de monitoreo y toma de decisiones de control en el manejo integrado de plagas. Un plan de muestreo confiable y rentable requiere un conocimiento integral de los atributos ecológicos de la plaga objetivo como densidad, distribución espacial, dinámica poblacional, ciclos de vida y distribución de edades, entre otras (Binns and Nyrop 1992, Pedigo and Rice 2006). La distribución espacial de los individuos entendida como el esquema que adopta la población en un área geográfica, es decir, la ubicación de cada individuo como respuesta a las condiciones ambientales optimas, puede estar determinada por tres componentes: factores abióticos que afectan la tasa de crecimiento neto de las poblaciones; interacciones bióticas que pueden afectar la eficacia biológica o fitness de una manera reguladora; y los efectos del movimiento espacial de los individuos y poblaciones sobre la distribución de las especies (Soberón 2007, Pulliam 2000). A gran escala son más influyentes las condiciones abióticas y a escala local las interacciones bióticas (Soberón 2010).

Una población se distribuye de manera aleatoria cuando todos los espacios en el hábitat tienen la misma posibilidad de ser ocupados por los individuos, la probabilidad de encontrar un individuo no tiene relación con la de otro (independencia de probabilidades), se asocia a un hábitat continuo, sin variabilidad ni interacciones. La población presenta un patrón de distribución uniforme cuando todos los espacios en el hábitat tienen la misma posibilidad de ser ocupados por los individuos, sin embargo, la probabilidad de ocurrencia de un individuo disminuye la de otro, indicando fuertes interacciones de competencia y territorialidad. La distribución espacial agregada es uno de los patrones más comunes en la naturaleza y se caracteriza por que la probabilidad de ocurrencia de un individuo aumenta la de otro, indicando variabilidad ambiental y fenómenos ecológicos y etológicos como migración, oviposición agregada, respuesta de la población a características microclimáticas, comportamiento copulatorio o social, entre otras (Bliss and Fisher 1953, Badii et al. 2011, Davis 1994, Taylor 1984, Odum and Barret 2004).

Como los datos necesarios para determinar la distribución espacial de una población, provienen de la cuantificación de la densidad del insecto en el agroecosistema, el número de individuos detectado en una serie de unidades de muestreo puede ser representado en un histograma de frecuencias. Una primera aproximación para evaluar el patrón espacial

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de las especies, consiste en ajustar las frecuencias de densidad observadas a un modelo de distribución de probabilidad discreto. Para representar patrones aleatorios, uniformes o agregados se utiliza comúnmente las distribuciones de Poisson, binomial positiva y binomial negativa, respectivamente (Badii et al. 2011, Bliss and Fisher 1953, Cadahia 1977, Cassie 1962, Davis 1994).

Distribuciones de probabilidad discretas

El procedimiento de ajuste de las frecuencias observadas al modelo, consiste en construir un histograma donde se establece el rango de los datos (densidad máxima y mínima), el número de clases de densidad (xi) y el número de veces que el valor de la densidad aparece en cada clase (fo). Posteriormente, se emplea la función de probabilidad del modelo teórico para calcular la probabilidad de ocurrencia del individuo de la clase xi (Px Poisson o Px binomial positiva) y la frecuencia esperada por el modelo en la clase xi (fe). Por último, se realiza una prueba de bondad de ajuste para determinar la concordancia de las frecuencias observadas fo con las frecuencias esperadas por el 2 2 modelo teórico fe, evaluando la siguiente hipótesis Ho: fo = fe si X tabulado>X calculado o Ha: 2 2 fo ≠ fe cuando X tabulado

Determinar la distribución espacial de las poblaciones con base en modelos de probabilidad teóricos, tiene algunos limitantes. El ajuste a un modelo de distribución de frecuencias, depende principalmente del grado en el que los datos de densidad estabilizan los estadísticos para ser utilizados como parámetros poblacionales, por lo tanto, su uso se ve restringido si el modelo cambia a diferentes densidades o tamaños de muestra. De la misma manera, La gran cantidad de datos necesarios para verificar cualquier distribución con cierto grado de confianza, hace difícil confirmar que estos modelos sean estables (Taylor et al. 1978).

Índices de hacinamiento y agregación

Se recomienda usar índices de agregación basados en la relación entre el promedio, la varianza y el número de unidades de muestreo cuando el tamaño de muestra es relativamente pequeño (menos de 30) o el interés de la investigación es establecer el grado de agrupamiento, (Davis 1994). Estos índices describen el patrón de distribución espacial de las poblaciones y permiten realizar comparaciones de una o dos especies en biotopos o tiempos diferentes, sin necesidad de limitarse a las rígidas y a veces improbables hipótesis de los modelos teóricos descritos (Cadahia 1977).

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Algunos de los índices y sus derivaciones matemáticas, que incentivaron el desarrollo de otros estadísticos para medir el grado de agregación, se mencionan a continuación.

La tasa varianza / promedio es ampliamente usada para determinar el patrón de distribución espacial; esta relación se basa en la premisa de que en una población distribuida aleatoriamente, la varianza (s2) y el promedio (m) son iguales. La distribución de una población se puede clasificar de la siguiente manera: s2/m>1 representa una distribución agregada; s2/m=1 distribución aleatoria; y s2/m<1 indica una distribución uniforme.

Con el fin de obtener una prueba de significancia de la desviación del resultado con respecto a la distribución aleatoria, la tasa se modifica para incluir el número de muestras 2 (N), obteniéndose un índice de dispersión (ID): ID = (1-N)s /m. Este índice se distribuye aproximadamente como un X2 con n-1 grados de libertad y se compara mediante una 2 2 prueba de bondad de ajuste, según las hipótesis Ho: ID = 1 si X tabulado > X calculado o Ha: ID ≠ 2 2 1 cuando X tabulado < X calculado. La utilidad de este índice está limitada por su dependencia del tamaño de la unidad de muestreo y porque diferentes combinaciones de varianza – promedio pueden implicar el mismo resultado del índice. Green (1966), desarrolló una modificación de la tasa varianza – promedio que tiene la ventaja de ser independiente del 2 tamaño de muestra y se expresa como Cx = (s /m) -1/(n-1), cuando Cx = 0 se trata de una distribución aleatoria, Cx < 0 indica distribución uniforme y cuando Cx > 0 es agregada.

Los índices de agregación o patchiness, son conceptos estadísticos que corresponden a la magnitud de la variación relativa de la densidad poblacional por unidad de muestreo. Morisita (1959), planteó un índice que indica la probabilidad de que dos individuos seleccionados al azar, provengan de la misma unidad de muestreo Iδ = n Ʃxi (xi - 1)/N(N

-1), donde xi es el número de individuos en todas las unidades de muestreo, n es el número de unidades de muestreo y N es el total de individuos. Sin embargo Lloyd (1967), consideró que la confluencia de animales por área puede ser mayor a lo que representa su densidad promedio y para cuantificar qué tan aglomerado se encuentra un individuo con respecto a los demás planteó un promedio de hacinamiento (X*) semejante a la relación densidad/promedio, pero incluye la cantidad en que la relación de varianza (s2) – promedio (m) excede a la unidad, mediante la expresión: X* = m + (s2/m) -1. El promedio de hacinamiento dividido por el promedio de individuos X*/m, corrige la dependencia de la densidad (Kuno 1991). La interpretación de los resultados obtenidos con los métodos * de Morisita o Lloyd es similar a la tasa de varianza/promedio: si δ<1 o X /m<1 el patrón * * de distribución es uniforme, si δ=1 o X /m=1 es aleatoria y si δ>1 o X /m>1 es agregada. Para determinar si los resultados del cálculo del índice de Morisita퐼 son significativamente 퐼 퐼 diferentes a la aleatoriedad se puede realizar una prueba de significancia Z = (Iδ - 1)/(2/n. m2)1/2 comparando los valores de Z con los valores de la distribución normal, cuando Z > (α/2), si el patrón de distribución es significativamente agregado (Davis 1994).

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Regresiones lineales

Dos técnicas de regresión fueron propuestas para normalizar los datos del promedio de densidad y la varianza y obtener coeficientes de agregación independientes: la regresión del promedio de hacinamiento de Iwao (1968) y la ley de poder de Taylor (1961). Las dos propuestas relacionan el promedio aritmético (m) o de hacinamiento (X*) y la varianza (s2), mediante el uso de una regresión lineal para estimar dos parámetros: en Iwao X* = α+ βm; en Taylor Log (s2) = log(a) + b.log (m). Los coeficientes β de Iwao y b de Taylor son índices de agregación que representan el tipo de distribución espacial. Cuando los valores son mayores, menores o iguales a la unidad, indican un patrón de distribución de tipo agregado, uniforme o aleatorio, respectivamente. Según Taylor (1965), el coeficiente estabiliza los estadísticos y puede variar entre especies, y permanece constante para la misma especie en el mismo ambiente, aun cuando se realice un muestreo por diferentes métodos.

En términos descriptivos las técnicas de Iwao y Taylor son recomendables y fueron probadas en una gran cantidad de conjuntos de datos con un alto grado de certeza; Kuno (1991) resume las ventajas y desventajas de cada técnica.

Un importante aporte de las técnicas de regresión fue la posibilidad de calcular el número óptimo de muestras que se debe implementar en un monitoreo, con el fin de determinar la densidad poblacional a partir de los coeficientes estadísticos. El tamaño de muestra puede ser calculado teniendo en cuenta el error estándar, los límites de confianza (Badii et al. 2011) o involucrando criterios de precisión y certeza (Artur et al. 2014, Cullen et al. 2000).

Los modelos de probabilidad como los índices de hacinamiento y agregación tienen limitaciones, principalmente, porque las descripciones del patrón espacial dependen del tamaño de las unidades de muestreo y porque las técnicas no logran diferenciar entre patrones espaciales diferentes. Aunque algunos métodos como las regresiones corrigieron ciertas limitaciones en la estabilización de los parámetros estadísticos, ninguno incorpora la ubicación espacial de las unidades de muestreo, por lo que es necesaria una herramienta que utilice simultáneamente, tanto el valor como la ubicación de las unidades para cuantificar el patrón espacial (Liebhold et al. 1993).

Estadística espacial

Con el desarrollo de herramientas informáticas para la captura y procesamiento de grandes cantidades de datos experimentales como los sistemas de geoposicionamento global, la teledetección, los sistemas de información geográfica y los enfoques estadísticos que incorporan el espacio, se obtuvo un marco metodológico para el análisis de los patrones espaciales en las poblaciones de insectos (Liebhold et al. 1993). La geoestadística brindó el conjunto de métodos para analizar la dependencia espacial entre las muestras (autocorrelación) y la obtención de estimaciones de la variable de estudio en lugares que carecen de muestreo (Davis 1994, Duarte et al. 2015, Siarreta and Trematerra 2015).

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El procedimiento para la determinación de patrones espaciales de insectos con geoestadística, requiere un muestreo intensivo del área especificada y el número de muestras necesarias para un análisis espacial efectivo es de al menos 30 (Isaaks & Srivastava 1989, Duarte et al 2015). La determinación inicia con la implementación de un diseño experimental donde el universo de muestreo (en un agroecosistema corresponde al hábitat del insecto) se divide en una cuadrícula que a su vez se subdivide en una serie de parcelas, donde se obtienen los registros que incluyen las coordenadas geográficas de cada unidad de muestreo y la densidad de insectos. El método más utilizado para el análisis geoestadístico implica la construcción del semivariograma (Duarte et al 2015, Liebhold et al. 1993).

El semivariograma representa la dependencia espacial de un organismo y permite el cálculo de la varianza de la muestra en función de la distancia entre los puntos de muestreo. El umbral o punto en el que la semivarianza o la varianza de la muestra ya no aumenta en el semivariograma, define el rango de dependencia espacial. Los semivariogramas de patrones espaciales aleatorios y uniformes, muestran una relación lineal entre la varianza de la muestra y la distancia entre las unidades de muestreo, la pendiente de la línea es aproximadamente cero, haciendo así que el valor de la discontinuidad localizada y el umbral sean iguales. La variabilidad de la línea de regresión es mayor para la distribución aleatoria que para las distribuciones uniformes. Los patrones espaciales agregados exhiben un amplio rango de dependencia espacial y pueden ser modelados mediante variogramas teóricos de tipo esférico o exponencial (Davis 1994).

Conclusiones

Teniendo en cuenta la gran cantidad de herramientas para determinar la distribución espacial de las poblaciones de insectos y la cantidad de información disponible, sin duda, este parámetro ecológico es importante en la agricultura sostenible y su campo de investigación sigue en desarrollo. Los resultados que se pueden obtener aplicando las metodologías descritas tienen grandes implicaciones en el manejo integrado de plagas.

Cuantificar la densidad de insectos plaga y establecer su variación a través del tiempo con cierto grado de precisión y certeza, es una condición básica para la definición de umbrales de acción como criterio de decisión para la aplicación de medidas de control. De esta información depende la creación de mapas de distribución espacial para tomar decisiones de manejo en sitios específicos del cultivo, que señalan la ubicación precisa mediante coordenadas geográficas de lugares con altas densidades poblacionales (Duarte et al 2015).

Estimar el número de muestras que se debe tomar para que el muestreo sea representativo es importante para analizar medidas de compensación entre los costos económicos y el tiempo efectivo que implica la toma de datos ecológicos en diferentes tipos y áreas de cultivo.

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REPORTE DE LOS FONDOS DEL MEFLG

Lista de Coleoptera: Lycidae del MEFLG

Guillermo de Jesús Guarín-Candamil1. John Alveiro Quiroz-Gamboa1.

1Museo Entomológico Francisco Luís Gallego MEFLG Universidad Nacional deColombia, Sede Medellín.

Introducción

Los lícidos tienen forma de abanico, son de cuerpo blando, sus élitros están pobremente unidos y ensanchados apicalmente; su coloración varía entre amarillo, rojo y negro, cubiertos con una pilosidad escasa; tamaño de 2 a 22 mm, poseen antenas largas generalmente con 11 segmentos, las cuales son filiformes serradas e insertadas entre los ojos. Pronoto cubriendo parcialmente la cabeza, algunas veces con presencia de carinas y expandidos lateralmente, superficie rugosa, proepisterno cóncavo y debajo del pronoto. Formula tarsal 5-5-5; tarsos 1 a 4 con almohadillas plantares pubescentes; élitros paralelos o expandidos lateralmente, disco de los élitros con celdas y reticulaciones; esternitos abdominales visibles no fusionados, 8 en los machos y 7 en las hembras (Miller, 2002). Se cree que las larvas son carnívoras (Crowson 1955, Arnett 1968, Miller 1988), probablemente muchas, no todas, se alimentan de mixomicetos y productos del metabolismo de los hongos (Lawrence 1982).

En la Colección Taxonómica Central (CTC) del MEFLG hay catalogados 242 individuos, 15 géneros, a saber: Caenia sp. (1 sp.), Calodadon sp., Calopteron sp. (5 sp.), Emplectus sp., Errhacus sp., Falsocaenia sp., Leptoceletes sp., Linoptes sp., Lycomorphon sp., Lycostomus sp., Lycus sp., Macrolygistopterus sp., Mesopteron sp., Metapteron sp., y Plateros sp., (Tabla 1; Fotografías 1-23). De la colección de Lycidae se destaca el especimen número 1 del MEFLG, catalogado por Francisco Luis Gallego en julio 28 de 1936, identificado como Calopteron palpale Kirsch por H. S. Barber del Smithsonian Institute en diciembre 5 de 1936 (ver Portada del Boletín).

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Catalogo Altura No. Especie Localidad Hospedero Fecha Recolector Identificador Cant MEFLG (m.s.n.m.) Caenia loculata Venecia 1 325 IND IND Julio 1939 Gallego, F.L. H.S. Barber 1 (Bourgeois, 1878) (Antioquia) Calopteron juvenile Tres Palmas E.R. Peacock 2 4012 IND En Vuelo Septiembre 1972 R. Vélez 1 (Bourgeois, 1879) (Córdoba) 1985

Chigorodó R.D. Gordon 3 1340-3 Calopteron sp. IND Cacao Julio 1970 D. Galeano 1 (Antioquia) 1971 Calopteron porticum Plantas de 4 25 Colombia IND Julio 1969 H.S. Barber 1 Kirsch,? Algodón Calopteron palpale H.S. Barber 5 1 Colombia IND IND Julio 1936 Gallego, F.L. 1 (Kirsch, 1631) 1936 33934 - Calopteron palpale Medellín Septiembre 1941, Moreno Daniela 6 IND IND Gallego, F.L. 2 33935 (Kirsch, 1631) (Antioquia) Abril 1945 (2016) Calopteron palpale Moreno Daniela 7 542 Colombia IND IND IND 1 (Kirsch, 1631) (2016) Tres Palmas Moreno Daniela 8 33936 Calopteron sp. IND En vuelo Septiembre 1972 R. Vélez 1 (Cord.) (2016) Moreno Daniela 9 33937 Calopteron sp. Colombia IND En hoja Septiembre 1968 Gallego, F.L. 1 (2016) Medellín Moreno Daniela 10 33938 Calopteron sp. IND En muro Agosto 1968 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) (2016) Atlántico 11 394-1 Calopteron serratum (L.) IND Algodón Enero 1938 Gallego, F.L. IND 1 (Colombia) Medellín 12 394-2 Calopteron serratum (L.) IND Maleza Agosto 1946 Gallego, F.L. IND 1 (Antioquia) Tarazá 13 394-3 Calopteron serratum (L.) IND Maleza Julio 1971 R. Vélez IND 1 (Antioquia) Termales 14 394-4 Calopteron serratum (L.) IND Maleza Julio 1972 R. Vélez IND 1 (Antioquia) Termales 15 394-5 Calopteron serratum (L.) IND Maleza Julio 1972 R. Vélez IND 1 (Antioquia) Termales 16 394-6 Calopteron serratum (L.) IND Maleza Julio 1972 R. Vélez IND 1 (Antioquia) Medellín 17 4037-1 Calopteron sp. IND Maleza Septiembre 1947 Gallego, F.L. IND 1 (Antioquia) Medellín 18 4037-2 Calopteron sp. IND Maleza Enero 1953 Gallego, F.L. IND 1 (Antioquia) Medellín 19 4037-3 Calopteron sp. IND Maleza Enero 1953 Gallego, F.L. IND 1 (Antioquia) Sopetrán 20 4037-4 Calopteron sp. IND Maleza Mayo 1972 R. Vélez IND 1 (Antioquia) Medellín 21 4037-5 Calopteron sp. IND Maleza Septiembre 1947 Gallego, F.L. IND 1 (Antioquia) Buga 22 4037-6 Calopteron sp. IND Algodón Junio 1962 Alcaraz, H. IND 1 (Valle) Buga 23 4037-7 Calopteron sp. IND Algodón Junio 1962 Alcaraz, H. IND 1 (Valle) Medellín 24 4037-8 Calopteron sp. IND Maleza Enero 1953 Gallego, F.L. IND 1 (Antioquia) Sopetrán 25 4037-9 Calopteron sp. IND Maleza Mayo 1972 R. Vélez IND 1 (Antioquia) Medellín 26 4037-10 Calopteron sp. IND Maleza Enero 1953 Gallego, F.L. IND 1 (Antioquia) Buga 27 4037-11 Calopteron sp. IND Algodón Junio 1962 Alcaraz, H. IND 1 (Valle) Sopetrán 28 4037-12 Calopteron sp. IND Maleza Mayo 1972 R. Vélez IND 1 (Antioquia) Medellín 29 4037-13 Calopteron sp. IND Maleza Enero 1953 Gallego, F.L. IND 1 (Antioquia) Mutatá Moreno Daniela 30 398-1 398-3 Calopteron sp. IND Cítricos Septiembre 1972 R. Vélez 3 (Antioquia) 2016 Mutatá Moreno Daniela 31 398-4 398-5 Calopteron sp. IND Maleza Septiembre 1972 R. Vélez 2 (Antioquia) 2016 Amagá Moreno Daniela 32 398-6 Calopteron sp. IND Maleza Junio 1951 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016

Quetame Moreno Daniela 33 33967 Calopteron sp. IND Maleza Enero 1947 Gallego, F.L. 1 (Cundinamarca) 2016

Quetame Moreno Daniela 34 33968 Calopteron sp. IND Maleza Junio 1946 Gallego, F.L. 1 (Cundinamarca) 2016 Quetame Moreno Daniela 35 33969 Calopteron sp. IND Maleza Julio 1946 Gallego, F.L. 1 (Cundinamarca) 2016 Quetame Moreno Daniela 36 33970 Calopteron sp. IND Maleza Agosto 1946 Gallego, F.L. 1 (Cundinamarca) 2016 Mesitas Moreno Daniela 37 33971 Calopteron sp. IND Maleza Diciembre 1949 Gallego, F.L. 1 (Cundinamarca) 2016

30 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de 2016-ISSN 2027-4378

Caldas Moreno Daniela 38 33972 Calopteron sp. IND Maleza Marzo 1974 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Tarazá Moreno Daniela 39 33975 Calopteron sp. IND Maleza Julio 1975 A. Madrigal 1 (Antioquia) (2016) Tarazá Moreno Daniela 40 33976 Calopteron sp. IND Maleza Junio 1975 A. Madrigal 1 (Antioquia) (2016) Tarazá Moreno Daniela 41 33977 Calopteron sp. IND Maleza Junio 1975 R. Vélez 1 (Antioquia) (2016) Tarazá Moreno Daniela 42 33978 Calopteron sp. IND Maleza Julio 1975 R. Vélez 1 (Antioquia) (2016) Alejandría Moreno Daniela 43 33979 Calopteron sp. IND Maleza Noviembre 1974 R. Vélez 1 (Antioquia) (2016) 33980 - Porce Moreno Daniela 44 Calopteron sp. IND Fabaceae Octubre 1976 G, Morales 2 33981 (Antioquia) (2016) Santafé Moreno Daniela 45 33982 Calopteron sp. IND Pasto Mayo1982 José A. Ramírez 1 (Antioquia) (2016) 33983 - Tarazá Moreno Daniela 46 Calopteron sp. IND Maleza Julio 1975 A. Madrigal 2 33984 (Antioquia) (2016) 33985 - Porce Moreno Daniela 47 Calopteron sp. IND Fabaceae Octubre 1976 G, Morales 2 33986 (Antioquia) (2016) Turbo Moreno Daniela 48 33987 Calopteron sp. IND Maleza Octubre 1947 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Medellín Moreno Daniela 49 33988 Calopteron sp. IND Maleza Octubre 1947 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Medellín Moreno Daniela 50 33989 Calopteron sp. IND Frijol Mayo 1948 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Bucaramanga Moreno Daniela 51 33990 Calopteron sp. IND Maleza Febrero 1953 Gallego, F.L. 1 (Santander) 2016 Bucaramanga Moreno Daniela 52 33991 Calopteron sp. IND Maleza Enero 195- Gallego, F.L. 1 (Santander) 2016 Calima Moreno Daniela 53 33992 Calopteron sp. IND Maleza Diciembre 1960 Gallego, F.L. 1 (Valle) 2016 Medellín Moreno Daniela 54 33993 Calopteron sp. IND Maleza Febrero 1953 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Tarazá Moreno Daniela 55 33994 Calopteron sp. IND Anón Abril 1971 R. Vélez 1 (Antioquia) (2016) Puerto Tejada Moreno Daniela 56 33995 Calopteron sp. IND Cacaotal Julio 1952 Gallego, F.L. 1 (Cauca) 2016 Sopetrán Moreno Daniela 57 33996 Calopteron sp. IND Cacao Julio 1945 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Sierra Nevada Moreno Daniela 58 33997 Calopteron sp. 2800 IND Enero 1947 Gallego, F.L. 1 (Sta Marta.) 2016 Medellín Moreno Daniela 59 36365 Calopteron sp. IND Maleza Abril 1955 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Alejandría Moreno Daniela 60 36366 Calopteron sp. IND Maleza Abril 1972 R. Vélez 1 (Antioquia) (2016) Medellín Moreno Daniela 61 36367 Calopteron sp. IND Maleza Marzo 1953 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Calima Moreno Daniela 62 36368 Calopteron sp. IND Bosque Diciembre 1960 Gallego, F.L. 1 (Valle) 2016

S. Ferd. –M Moreno Daniela 63 36369 Calopteron sp. IND IND Noviembre 1946 Gallego, F.L. 1 (Colombia) 2016 Encarnación Moreno Daniela 64 36370 Calopteron sp. IND Verbenáceae Diciembre 1980 A. Madrigal C. 1 (Antioquia) 2016 Chinchiná Moreno Daniela 65 36371 Calopteron sp. IND Café Julio 1948 Gallego, F.L. 1 (Caldas) 2016 Calopteron tropicum Sierra Nevada 66 326-1 – 326-2 2800 IND Enero 1947 Gallego, F.L. IND 2 (Linnaeus, 1764) (Sta Marta.) Calopteron tropicum Venecia 67 326-3 IND Maleza Abril 1950 Gallego, F.L. IND 1 (Linnaeus, 1764) (Antioquia) Calopteron tropicum Tarazá 68 326-4 IND Maleza Julio 1972 R. Vélez IND 1 (Linnaeus, 1764) (Antioquia) Calopteron tropicum Sopetrán 69 326-5 – 326-6 IND Cacao Julio 1945 Gallego, F.L. IND 2 (Linnaeus, 1764) (Antioquia) Calopteron tropicum Medellín 70 326-7 IND Maleza Septiembre 194- Gallego, F.L. IND 1 (Linnaeus, 1764) (Antioquia) Calopteron tropicum Manizales 71 326-8 IND Azaleas Julio 1938 Gallego, F.L. IND 1 (Linnaeus, 1764) (Caldas) Calopteron tropicum Medellín 72 326-9 IND Maleza Mayo 1955 Gallego, F.L. IND 1 (Linnaeus, 1764) (Antioquia)

31 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de 2016-ISSN 2027-4378

Medellín Moreno Daniela 73 33973 Calopteron sp. IND Café Agosto 1947 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016

Medellín Moreno Daniela 74 33974 Calopteron sp. IND Piso Marzo 1953 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Piedras Blancas Moreno Daniela 75 36409 Calopteron sp. IND Pasto Enero 1969 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Puerto Tejada Moreno Daniela 76 36410 Calopteron sp. IND Cacaotal Julio 1952 Gallego, F.L. 1 (Cauca) 2016 Chigorodó 77 628-1 – 628-2 Calodadon sp. IND Cacao Octubre 1972 E. Urueta R. D. Gordon 3 (Antioquia) Pto. Araujo Moreno Daniela 78 36377 Calodadon sp. IND IND Octubre 1945 Gallego, F.L. 1 (Santander) 2016 Medellín Moreno Daniela 79 36378 Calodadon sp. IND Maleza Octubre 1947 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Medellín Moreno Daniela 80 36379 Calodadon sp. IND Maleza Octubre 194- Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Moreno Daniela 81 36408 Leptoceletes sp. IND En vuelo Febrero 1982 M. T. Carmona 1 (Antioquia) 2016 Puerto Araujo Moreno Daniela 82 36376 Linoptes sp. IND En platanillo Septiembre 1945 Gallego, F.L. 1 (Sant. Sur) 2016 Cocorná Moreno Daniela 83 36372 Lycomorphon sp. IND Maleza Julio 1977 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Cocorná Moreno Daniela 84 36373 Lycomorphon sp. IND Maleza Julio 1977 A. Madrigal C. 1 (Antioquia) 2016 Pto. Valdivia Moreno Daniela 85 858-1 – 858-2 Lycus sp. IND Guaquito Febrero 1942 Gallego, F.L. 2 (Antioquia) 2016 86 36374 Lycostomus sp. Colombia IND IND IND IND A. Molina 1 36405 - Caldas Moreno Daniela 87 Mesopteron sp. IND Maleza Marzo 1974 R. Vélez 2 36406 (Antioquia) 2016 Rionegro Moreno Daniela 88 36407 Mesopteron sp. IND Maleza Abril 1953 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Chigorodó Moreno Daniela 89 630-1 Metapteron sp. IND Cacao Febrero 1970 E. Urueta 1 (Antioquia) 2016 Apartadó Plantación de Moreno Daniela 90 630-2 – 630-4 Metapteron sp. IND Noviembre 1972 E. Urueta 3 (Antioquia) Cacao 2016

4011-1 – Porce 91 Plateros sp. IND Maleza Julio 1972 R. Vélez E. R. Peacock 2 4011-2 (Antioquia) Popayán 92 4011-3 Plateros sp. IND Agave Julio 1952 Gallego, F.L. E. R. Peacock 1 (Cauca) Puerto Araujo 93 4011-4 Plateros sp. IND Maleza Septiembre 1945 Gallego, F.L. E. R. Peacock 1 (Sant. Sur) 4011-5 – 94 Plateros sp. IND IND IND IND IND E. R. Peacock 2 4011-6 Atlántico 95 398 Plateros sp. IND Maleza Diciembre 1937 Gallego, F.L. E. R. Peacock 1 (Colombia) Moreno Daniela 96 13578 Plateros sp. IND Búcaro Diciembre 1970 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 4038-1 – Puerto Triunfo Moreno Daniela 97 Plateros sp. IND Búcaro Diciembre 1970 R. Vélez 11 4038-11 (Antioquia) 2016 4038-12 Sierra Nevada Moreno Daniela 98 Plateros sp. IND Café Junio 1941 Gallego, F.L. 2 4038-13 (Sta Marta.) 2016 36412 - Caldas Moreno Daniela 99 Platerodini IND Maleza Septiembre 1973 R. Vélez 3 36414 (Antioquia) 2016 Medellín Moreno Daniela 100 36415 Platerodini IND Maleza Septiembre 1947 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 36416 - Moreno Daniela 101 Platerodini Palmira (Val.) IND Algodón Abril 1946 Gallego, F.L. 2 36417 2016 Medellín Moreno Daniela 102 36418 Platerodini IND Maleza Abril 1953 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Cocorná Moreno Daniela 103 36419 Platerodini IND Bosque Marzo 1980 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Caldas Moreno Daniela 104 36420 Platerodini IND Maleza Octubre 1973 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Cocorná Moreno Daniela 105 36421 Platerodini IND Bosque Agosto 1956 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Betania Moreno Daniela 106 36437 Calopteron sp. 1750 Potrero Julio 1998 J. Cárdenas 1 (Antioquia) 2016

32 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de 2016-ISSN 2027-4378

36438 - Concepción F. J. Serna C.–J. Moreno Daniela 107 Calopteron sp. IND Rastrojo alto Diciembre 1996 3 36440 (Antioquia) G. Hurtado M. 2016 Arabia Moreno Daniela 108 36441 Calopteron sp. IND Trampa de luz Junio 1986 G. García 1 (Risaralda) 2016 36442 - Moreno Daniela 109 Calopteron sp. IND Maleza Septiembre 1988 R. Vélez 2 36443 (Antioquia) 2016 Jardín Moreno Daniela 110 36444 Calopteron sp. IND Bosque Diciembre 1991 G. Morales 1 (Antioquia) 2016 San Luis Moreno Daniela 111 36445 Calopteron sp. IND Bosque Agosto 1983 G. Morales S. 1 (Antioquia) 2016 36446 - Caldas Bosque Moreno Daniela 112 Calopteron sp. 400 Enero 2002 E. E. Martínez 2 36447 (Colombia) secundario 2016 Prado Moreno Daniela 113 36448 Calopteron sp. IND Ciprés Octubre 1973 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 San Luis Moreno Daniela 114 36449 Calopteron sp. IND Bosque Septiembre 1988 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 36450 - Mompox Moreno Daniela 115 Calopteron sp. IND Trampa de luz Diciembre 1994 A. Madrigal 2 36451 (Bolívar) 2016 Caldas Bosque Moreno Daniela 116 36452 Calopteron sp. 500 Enero 2002 E. E. Martínez 1 (Colombia) secundario 2016 Bajo Calima Moreno Daniela 117 36453 Calopteron sp. IND Bosque Septiembre 1995 G. Morales 1 (Valle) 2016 Turbo Moreno Daniela 118 36454 Calopteron sp. IND IND Septiembre 194- Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Antioquia Moreno Daniela 119 36455 Calopteron sp. IND Maleza Agosto 1947 Gallego, F.L. 1 (Colombia) 2016 Medellín Moreno Daniela 120 36456 Calopteron sp. IND Maleza Septiembre 1947 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016

Mesitas Moreno Daniela 121 36457 Calopteron sp. IND Maleza Enero 1950 Gallego, F.L. 1 (Cundinamarca) 2016 Caucasia Moreno Daniela 122 36458 Calopteron sp. IND IND Diciembre 1953 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Nariño Moreno Daniela 123 36459 Calopteron sp. IND Maleza Diciembre 1953 Gallego, F.L. 1 (Colombia) 2016 Medellín Moreno Daniela 124 36460 Calopteron sp. IND Trampa de luz Junio 1944 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Chintadó Moreno Daniela 125 36461 Calopteron sp. IND Bosque Noviembre 1982 F. Serna 1 (Chocó) 2016 Yotó Moreno Daniela 126 36462 Calopteron sp. IND Maleza Noviembre 1983 F. Serna 1 (Chocó) 2016 Yotó Moreno Daniela 127 36463 Calopteron sp. IND Maleza Septiembre 1983 R. Vélez 1 (Chocó) 2016 Caldas Bosque Moreno Daniela 128 36464 Calopteron sp. 500 Enero 2002 E. E. Martínez 1 (Colombia) secundario 2016 36465 - Caldas Bosque Moreno Daniela 129 Calopteron sp. 380 Enero 2002 E. E. Martínez 2 36466 (Colombia) secundario 2016 Santafé de Canavalia Moreno Daniela 130 36467 Calopteron sp. Antioquia IND Junio 1984 R. Vélez 1 enciformis 2016 (Antioquia) Santafé de Moreno Daniela 131 36468 Calopteron sp. Antioquia 600 IND Septiembre 2000 M. Trujillo 1 2016 (Antioquia) Medellín Moreno Daniela 132 36469 Calopteron sp. IND Maleza Junio 1953 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 36470 - Mompox Moreno Daniela 133 Calopteron sp. IND Trampa de luz Diciembre 1994 J. A. Quiroz 2 36471 (Bolívar) 2016 Santafé de Moreno Daniela 134 36472 Calopteron sp. Antioquia 650 Maleza Julio 1998 J. Cárdenas 1 2016 (Antioquia) Caquetá Moreno Daniela 135 36473 Calopteron sp. 460 En vuelo Enero 2001 M. Trujillo 1 (Colombia) 2016 Jardín Moreno Daniela 136 36474 Calopteron sp. IND Lulo Julio 1980 V. Cañas 1 (Antioquia) 2016 Frontino Moreno Daniela 137 36475 Calopteron sp. IND Bosque Julio 1983 G. Bolivar 1 (Antioquia) 2016 Caldas Moreno Daniela 138 36476 Calopteron sp. IND IND Abril 2009 S. Muchachasoy 1 (Antioquia) 2016 36477 - Chintadó Moreno Daniela 139 Calopteron sp. IND Bosque Noviembre 1983 F. Serna 2 36478 (Chocó) 2016

33 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de 2016-ISSN 2027-4378

Santafé de Moreno Daniela 140 36479 Calopteron sp. Antioquia IND En vuelo Febrero 1984 G. Osorio 1 2016 (Antioquia)

33480 - Sopetrán Moreno Daniela 141 Calopteron sp. IND Maleza Septiembre 1984 A. Madrigal 3 36482 (Antioquia) 2016

Sopetrán Moreno Daniela 142 36483 Calopteron sp. IND Maleza Marzo 1986 A. Vallejo I. 1 (Antioquia) 2016 Támesis Moreno Daniela 143 36484 Calopteron sp. IND Cacaotal Febrero 1990 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Puerto Wilches Moreno Daniela 144 36485 Calopteron sp. IND Cacaotal Marzo 1986 N. Serna 1 (Bucaramanga) 2016 Santafé de Moreno Daniela 145 36486 Calopteron sp. Antioquia IND En vuelo IND C. H. B. A. 1 2016 (Antioquia) Moreno Daniela 146 36487 Calopteron sp. Istmina (Chocó) IND Bosque Noviembre 1983 F. Serna 1 2016 Moreno Daniela 147 36488 Calopteron sp. Istmina (Chocó) IND Bosque Noviembre 1985 A. Saldarriaga 1 2016 Santafé de 36489 - Canavalia Moreno Daniela 148 Calopteron sp. Antioquia IND Junio 1984 R. Vélez 10 36498 enciformis 2016 (Antioquia) San Luis Moreno Daniela 149 36499 Calopteron sp. IND Bosque Septiembre 1988 G. Morales 1 (Antioquia) 2016

San Luis Moreno Daniela 150 36500 Calopteron sp. IND Bosque Junio 1986 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Sincelejo Moreno Daniela 151 36501 Calopteron sp. 200 Rastrojo Agosto 1999 A. Navarro 1 (Sucre) 2016 Moreno Daniela 152 36517 Calopteron sp. IND Vegetación Enero 1982 L. E. Tobón 1 (Antioquia) 2016

Frontino G. Morales – C. Moreno Daniela 153 36518 Calopteron sp. IND Bosque Junio 1989 1 (Antioquia) Mantilla 2016

Frontino G. Morales – C. Moreno Daniela 154 36520 Calopteron sp. IND Bosque Junio 1989 1 (Antioquia) Mantilla 2016

36525 - Frontino G. Morales – C. Moreno Daniela 155 Calodadon sp. IND Bosque Junio 1989 1 36526 (Antioquia) Mantilla 2016

San Luis Moreno Daniela 156 36527 Emplectus sp. IND Bosque Septiembre 1988 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 San Luis Moreno Daniela 157 36528 Errhacus sp. IND Bosque Agosto 1983 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Jericó Moreno Daniela 158 36502 Metapteron sp. IND Bosque Agosto 1992 G. Morales 1 (Antioquia) 2016 San Luis Moreno Daniela 159 36503 Metapteron sp. IND Bosque Septiembre 1988 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Turbo Moreno Daniela 160 36504 Metapteron sp. IND Hevea Febrero 1945 Gallego, F.L. 1 (Antioquia) 2016 Jardín Moreno Daniela 161 36505 Metapteron sp. IND Bosque Diciembre 1991 G. Morales 1 (Antioquia) 2016 Tarazá Moreno Daniela 162 36506 Metapteron sp. IND Maleza Abril 1971 A. Madrigal 1 (Antioquia) 2016 Frontino G. Morales – C. Moreno Daniela 163 36507 Mesopteron sp. IND Bosque Julio 1989 1 (Antioquia) Mantilla 2016 36508 - San Luis Moreno Daniela 164 Mesopteron sp. IND Bosque Septiembre 1988 G. Morales 2 36509 (Antioquia) 2016 La Estrella Moreno Daniela 165 36510 Mesopteron sp. IND Solanaceae Marzo 1985 R. Hincapié V. 1 (Antioquia) 2016 Palmas Moreno Daniela 166 36511 Mesopteron sp. IND Conifera Julio 1983 Luis Fdo. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Concepción F. J. Serna C.–J. Moreno Daniela 167 36512 Mesopteron sp. IND Rastrojo bajo Febrero 1997 1 (Antioquia) G. Hurtado M. 2016 Jardín Moreno Daniela 168 36515 Mesopteron sp. IND Maleza Febrero 1980 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 San Félix Moreno Daniela 169 36516 Mesopteron sp. IND Vegetación Febrero 1982 L. E. Tobón 1 (Antioquia) 2016 San Luis Moreno Daniela 170 36519 Mesopteron sp. IND Bosque Julio 1983 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Arabia Moreno Daniela 171 36521 Falsocaenia sp. IND Trampa de Luz Junio 1986 Gabriel García 1 (Risaralda) 2016 Puerto Triunfo Moreno Daniela 172 36522 Falsocaenia sp. IND Maleza- Bosque Junio 1985 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016

34 V 8 Nº3 Julio-Septiembre de 2016-ISSN 2027-4378

36523 - San Luis Moreno Daniela 173 Lycomorphon sp. IND Bosque Septiembre 1988 R. Vélez 2 36524 (Antioquia) 2016

El Retiro Moreno Daniela 174 36423 Caenia sp. IND En vuelo Octubre 1984 V. Hincapíe 1 (Antioquia) 2016 Carriaño Moreno Daniela 175 36422 Leptolycini 400 En bosque Enero 2002 E. E. Martínez 1 (Caldas) 2016 San Luis Moreno Daniela 176 36515 Lycus sp. IND IND Julio 1983 G. Morales 1 (Antioquia) 2016 Fredonia Moreno Daniela 177 36514 Macrolygistopterus sp. IND Suelo Abril 1989 H. M. Trujillo 1 (Antioquia) 2016 San Luis Moreno Daniela 178 36424 Platerodini IND IND Julio 1983 R. Vélez 1 (Antioquia) 2016 Quetáme Moreno Daniela 179 36425 Platerodini IND IND Enero 1947 Gallego, F.L. 1 (Cundinamarca) 2016 Carriaño Moreno Daniela 180 36426 Platerodini 290 Bosque Enero 2002 E. E. Martínez 1 (Caldas) 2016 Carriaño Moreno Daniela 181 36427 Platerodini 500 Bosque Enero 2002 E. E. Martínez 1 (Caldas) 2016 Carriaño Moreno Daniela 182 36428 Platerodini 400 Bosque Enero 2002 E. E. Martínez 1 (Caldas) 2016 Carriaño Moreno Daniela 183 36429 Platerodini 380 Bosque Enero 2002 E. E. Martínez 1 (Caldas) 2016 San Luis Moreno Daniela 184 36430 Platerodini IND Bosque Septiembre 1988 C. Mantilla 1 (Antioquia) 2016

36431 - San Luis Moreno Daniela 184 Platerodini IND Bosque Septiembre 1988 R. Vélez 2 36432 (Antioquia) 2016 36433 - San Luis Moreno Daniela 186 Platerodini IND Bosque Septiembre 1988 G. Morales 2 36434 (Antioquia) 2016 Santafé de Moreno Daniela 187 36435 Platerodini Antioquia 600 IND Octubre 2000 A. Botero 1 2016 (Antioquia)

Chinchiná Moreno Daniela 188 36436 Platerodini IND Café Julio 1938 Gallego, F.L. 1 (Caldas) 2016

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Fotografía 1. Caenia sp. Fotografía 2. Calodadon sp. Fotografía 3. Calopteron juvenile Bourg.

Fotografía 4. Calopteron palpale (Kirsch, Fotografía 5. Calopteron porticum Kirsch. Fotografía 6. Calopteron serratum (L.) 1631) ?

Fotografía 7. Calopteron sp. Fotografía 8. Calopteron tropicum Fotografía 9. Emplectus sp. (Linnaeus, 1764)

Fotografía 11. Eurrhacus sp. Fotografía 12. Falsocaenia sp. Fotografía 13. Leptoceletes sp.

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Fotografía 14. Linoptes sp. Fotografía 16. Lycomorphon sp. Fotografía 17. Lycostomus bucolicus Gorth.

Fotografía 18. Lycostomus sp. Fotografía 19. Lycus sp. Fotografía 20. Macrolygistopterus sp.

Fotografía 21. Mesopteron sp. Fotografía 22. Metapteron sp. Fotografía 23. Plateros sp. Bibliografía

Institute. Ann Arbor, Michigan. Arnett R A. 1968. The Beetles of the United States: A Manual for Identification. American Entomological

180 pp. Crowson R A. 1955. The Natural Classification of the Families of Coleoptera. Nathaniel Lloyd, London. Miller R S. 1988. Behaviour of Calopteron reticulatum (F.) Larvae (Coleoptera: Lycidae). Ohio 1. Sci., 88 (3): 119-120.

Miller R S. 2002. LYCIDAE Laporte 1836. En R. H. Arnet Jr, M. C. Thomas, P. E. Skelley and J. H. Frank. AMERICAN BEETLES, Volume II: Polyphaga: Scarabaeoidea through Curculionoidea (págs. 174- Nichols178). New S. York: 1989. CRC The Press. Torre-Bueno Glossary of Entomology. Departament of Entomology, American Museum of Natural History New York 840 pp

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NOTAS DEL MUSEO ENTOMÓLOGICO FRANCISCO LUIS GALLEGO

Publicaciones con material del museo y/o depositado

Huertas, B. Lamas, G. Fagua, G. Mallet, J. Nakahara, S. Willmott, K.. 2016. A remarkable new species from western Amazonia (Lepidoptera: Nymphalidae: Satyrinae). Conservación Colombiana – Número 24 – 27. 5 – 11 p.

Abstract

A distinctive new species of butterfly in the subtribe Euptychiina (Nymphalidae: Satyrinae), which is widespread throughout the upper Amazon in Colombia, Ecuador and Peru, is here described. The species is provisionally placed in the genus Magneuptychia Forster, 1964, although this is likely to change as the higher level taxonomy of Euptychiina is resolved and the genus is reviewed in detail.

Keywords: Systematics, Euptychiina, Colombia, Peru, Ecuador.

Resumen

Se describe una nueva especie de mariposa distintiva de la subtribu Euptychiina (Nymphalidae: Satyrinae), distribuida en la región amazónica de Colombia, Ecuador y Perú. La especie se ubica provisionalmente en el género Magneuptychia Forster, 1964, lo que puede cambiar cuando se haya resuelto la sistemática de Euptychiina y el género se revise en detalle.

Palabras clave: Sistemática, Euptychiina, Colombia, Perú, Ecuador.

Pyrcz, T. W. Clavijo, A. Uribe, S. Marin, M. A. Alvarez, C. F. y Zubek, A. 2016. Páramo de as an important centre of endemism in the northern Colombian Andes: new evidence from Pronophilina butterflies (Lepidoptera: Nymphalidae, Satyrinae, Satyrini). Zootaxa 4179 (1): 077–102 p. DOI: http://dx.doi.org/10.11646/ zootaxa.4179.1.3

Abstract

Páramo de Belmira (Páramo de Santa Inés) is the highest part of the Andean Central Cordillera in the Colombian department of Antioquia. It harbours a pocket of highlands grassland vegetation isolated from the nearest southerly other large paramo extensions by some 150 km. Butterflies sampling was carried out for over three years in the cloud forest–paramo mosaic and open grassland at 2650–3350 m. As a result, several new taxa of various butterflies groups were identified, including three species and two subspecies belonging to the Satyrinae subtribe Pronophilina, described herein: Lymanopoda casneri

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n. sp., L. ionius, Lilliput n. ssp., Panyapedaliodes rojasi n. sp., Pedaliodes nutabe n. sp. and Apexacuta orsedice mariadelmarae n. ssp. L. casneri is particularly interesting from the biogeographical perspective as its nearest relative is L. hazelana Brown, found in south–central Ecuador, some 1000 km southwards. Overall, 48 species of Pronophilina were identified. Considering the occurrence of several endemic species and subspecies of butterflies in the extremely restricted paramo grasslands in the study area, andthe anthropogenic pressure from surrounding locations, it is worth attributing the Páramo de Belmira a protection area status.

Keywords: Lepidoptera, Apexacuta orsedice mariadelmarae n. ssp., Belmira, endemism, Lymanopoda casneri n. sp., L. ionius lilliput n. ssp., new taxa, Panyapedaliodes rojasi n. sp., paramo, Pedaliodes nutabe n. sp., integrative taxonomy.

Muñoz, D. C. David, G. Yepes, F. Quiroz, J. A.. 2016. Primer Registro de Amyelois transitella (Walker) en el Fruto del Tamarindo: El caso de . Revista Científica Sabia, vol. 1 No. 3. 6 - 12 p. Buenaventura – Colombia. ISSN 2323- 0576.

Resumen

En el municipio de Santa Fe de Antioquia (Colombia), se halló por primera vez la polilla mayor de la vaina o la polilla Amyelois transitella Walker de la naranja ombligona, afectando gravemente frutos maduros de tamarindo (Tamarindus indica, Fabaceae). Esta leguminosa es una planta promisoria para el occidente antioqueño. Su demanda se ha incrementado en la última década, tanto a nivel local como en el ámbito nacional. Debido a la alta demanda y las posibilidades de crecimiento poblacional del insecto en las bodegas de almacenamiento durante el proceso de postcosecha, se considera muy importante registrar su presencia en los cultivos de los municipios en esta parte del país. De esta manera se contribuye a la generación de alertas sanitarias dirigidas a los productores y a los que procesan su pulpa para facilitar su mercadeo, ya que todos están sufriendo pérdidas por el desconocimiento de las recomendaciones sobre el manejo integrado de esta plaga.

Palabras clave: Amyelois, Polilla del fruto, Phycitinae, occidente antioqueño.

Abstract In the municipality of Santa Fe de Antioquia (Colombia) it was found for the first time the navel orangeworm, A. transitella (Walker), seriously affecting ripe tamarind fruit (Tamarindus indica, Fabaceae). This legume is a promising plant for the western Antioquia, Colombia, demand has increased in the last ten years, both locally and nationally. Due to high demand and growth potential of the insect population in the storage holds during postharvest, is considered very important to register their presence in crops of the municipalities of western Antioquia. This will contribute to the generation of sanitary alerts aimed at producers and the pulp processing to facilitate marketing, since they are all undergoing losses due to the lack of knowledge about the recommendations on integrated management for this pest. Keywords: Amyelois, navel orangeworm, Phycitinae, western Antioquia.

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Eventos

XVI Seminario Aconteceres Entomológicos, organizado por el Grupo de Entomología de la Universidad Nacional de Colombia, Sede Medellín – GEUN, con la colaboración del Museo Entomológico Francisco Luis Gallego – MEFLG. Fecha: 11 de noviembre de 2016. Lugar: Aula máxima de la Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Colombia – Sede Medellín. En el evento se certificó la asistencia de profesionales y estudiantes de instituciones como la Universidad Nacional de Colombia, el Politécnico Colombiano Jaime Isaza Cadavid y Universidad Católica de Oriente, entre otras (Ver Fotografías, afiche y programación del seminario). En este evento se conmemoró el Vigésimo aniversario del GEUN.

Fotografías de algunos momentos del evento

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Afiche del XVI Seminario Aconteceres Entomológicos

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Museo Entomológico Francisco Luis Gallego (MEFLG)

BOLETÍN DEL MUSEO ENTOMOLÓGICO FRANCISCO LUÍS GALLEGO

ISSN 2027-4378

Apartado Aéreo 3840

Correo: [email protected]

Teléfono: 430 9830

Medellín, Colombia

http://www.unalmed.edu.co/~mentomol/

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