REPUBLIQUE DE COTE D'IVOIRE MINISTERE DE L'ENSEIGNEMENT SUPERIEUR ET DE LA RECHERCHE SCIENTIFIQUE
Année universitaire 2013-2014 Unité de Formation et Recherche en Sciences de la Nature UFR/ SN MEMOIRE DE MASTER 1 : Biodiversité et Gestion Durable des Ecosystèmes
Thème: Analyse de la distribution spatiale des Rubiaceae en Côte d'Ivoire
Presenté par: TUO Nanou Fatou
Soutenu publiquement le 23/02/2015 devant le Jury composé de:
Pr. BA.KA YOKO Adama Président Dr. KOFFI Kouao Jean Directeur Dr. KONE Moussa Examinateur DEDICACE
Je dédie ce mémoire à Monsieur Yéo Nahouo mon fiancé et mon fils Yéo Womangnon Ismael, qui m'ont assisté moralement tout au long de ce travail. En vous j'ai trouvé le courage et la force. Je vous serai reconnaissante durant toute ma vie. REMERCIEMENTS
Ce travail de mémoire de master I a été possible grâce à l'appui et l'aide de plusieurs personnes que je voudrais bien remercier. Tout d'abord, j'exprime mes remerciements les plus sincères au Docteur KOFFI Kouao Jean pour m'avoir donné la possibilité de réaliser ce travail ainsi que pour son encadrement et ses conseils. Je lui réitère mes sincères remerciements pour toutes les connaissances acquises auprès de lui, pour m'avoir fait profiter pleinement de sa rigueur dans le travail et surtout sa disponibilité et ses encouragements. Mes remerciements vont également à l'endroit du Professeur TIHO Seydou, doyen de l 'UFR des Sciences de la Nature(SN) et ses collaborateurs. Je remercie également Professeur YEO Kolo, responsable de la filière Biodiversité et A. Gestion Durable des Ecosystème (BioGDE), ainsi qu'à tous les enseignants de cette filière pour leurs connaissances partagées. Je tiens également à remercier Docteur KONE Moussa pour son soutien, et sa disponibilité. J'exprime aussi mes remerciements au Docteur MALAN Djah François Ethnobotaniste, pour son soutien et sa disponibilité.
J'exprime ma reconnaissance à l'endroit de mes camarades étudiants de la Biodiversité et Gestion Durable des ecosystèmes qui m'ont aidé et encouragé dans mes travaux. Enfin je remercie mes parents pour leurs soutiens moraux, financier et tout particulièrement ma petite sœur TUO Habibata. Je remercie enfin tous mes amis ainsi que ceux qui ont apporté leur contribution à l'élaboration de ce document
ii TABLES DES MATIERES
DEDICACE i
REMERCIEMENTS , , ii
TABLES DES MATIERES iii
LISTES DES FIGURES V
LISTE DES ABREVIATIONS vii
RESUME viii
INTRODUCTION 1
!-GENERALITES 3
1-1- Généralité sur le site d'étude 3
1-1-1- Climat 4
1-1-2- Végétation 4
1-1-3-Sols 6
1-2-Généralité sur les Rubiaceae 6
1-2-1- Description des Rubiaceae 6
1-2-2- Importance et utilisation des Rubiaceae 8
1-2-3- Position systématique 9
II - MATERIEL ET METHODES D'ETUDES 11
2-1-Materiels 11
2-2-Méthode d'études 11
2-2-1- Cartographie des différentes régions 11
2-2-2- Qualité des données 12
2-2-3- Cartographie des espèces échantillonnées _ 13
III-RESULTA 1'S 14
3-1-Analyse floristiques 14
3-1-1-Type chorologique 14
iii 1
3-1-2-Type biologique 15
3-2-Dégré d'échantillonnage 16
3-2-1- Effort d'échantillonnage 16
3-2-2- Présence des espèces dans les différentes régions 18
3-2-3- Fréquence du nombre d'espèces en fontion du nombre de régions 18
3-3-Analyse des paternes de distribution 19
3-3-1-Espèces à large distribution 19
3-3-2-Espèces à distribution restreintes 21
3-4-Identification des Rubiaceae endémique de la Côte d'Ivoire 23
3-5- Localisation des zones riches en espèces endémiques, espèces rares et en espèces menacées 24
IV-DISCUSSION 31
CONCLUSION 33
PERSPECTIVES 33
REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES: 34
ANNEXE 37
1
1 iv LISTES DES FIGURES
Figure 1: Carte de la Côte d'Ivoire 3 Figure 2: Carte de la végétation de la Côte d'Ivoire ( echelle 1/5.000.000è, d'après Guillamet et Adjanohoun, 1971) 5 Figure 3: Répartition géographique des espèces de la famille des Rubiaceae (la couleur rouge indique la présence des Rubiaceae dans le monde). www.mobot.org 6 Figure 4: Inflorescence d'Ixora coccinea L. 8 Figure 5: Fruit de Vangueria madagascariensis J.F.Gmel 8 Figure 6 : Cladogramme des principaux ordres d'angiospermes selon «Angiosperm Phylogeny Group » (APG III, 2009). Le cadre en rouge indique l'ordre de la famille des Rubiaceae I 0 Figure 7: Carte des 31 régions et des 2 Districts autonomes de la Côte d'Ivoire 12 Figure 8: Type chorologique des espèces de la famille de Rubiaceae 15 Figure 9: Type biologique des espèces de la famille des Rubiaceae 16 Figure 10: Distribution de tous les échantillons de Rubiaceae par rapport aux nouvelles régions 17 Figure 11: Densité de récolte dans les régions 17 Figure 12: Présence des espèces de la famille des Rubiaceae dans les régions selon les écchantillons récoltés 18 Figure 13: Nombre d'espèces dans une ou plusieurs régions (La barre en bleu indique Je nombre d'espèces et la barre en rouge indique le nombre de régions) 19 Figure 14 : Distribution de Chassalia kolly (Schumach.) Hepper dans les différentes régions de la Côte d'Ivoire 20 Figure 15: Distribution d'Oldenlandia corymbosa L dans les différentes régions de la Côte d'Ivoire 20 Figure 16 : Distribution de Nauclea latifolia (Sm.) E.A.Bruce dans les différentes régions de la Côte d'Ivoire 21 Figure 17: Distribution de Cephaelis abouabouensis (Schnell) Verde.dans la région du Sud Comoé 22 Figure 18: Distribution de Bertieraflmbriata Hepper dans la région de San Pedro 22 Figure 19: Distribution de Geophila obvallata Didr dans le District d'Abidjan 23
1 V Figure 20: Psychotria abouabouensis (Schnell) Verde. (Rubiaceae), une espèce rare (WCMC, 1991) de Taï, endémique de Côte d'Ivoire. Photo Adou Yao, 2000 24 Figure 21 : Localisation de Argostemma pumilum Benn (région du Tonkpi) 25 Figure 22: Localisation de Coffea stenophylla G.Don (régions du Tonkpi, Indénié-Djuablin, Agneby-Tiassa, District d'Abidjan) 26 Figure 23: Localisation de Mussaenda isertiana DC (les régions du Cavally et du District d' Abidjan) 26 Figure 24: Localisation de Nauclea gilletii (De Wild.) Merr (les régions de Nawa et d'Agneby-Tiassa) 27 Figure 25: Localisation de Nauclea xanthoxylon (A.Chev.) Aubrév (région des Grands Ponts) ...... 27 Figure 26: Localisation d' Oldenlandia chevalieri Pit (District d'Abidjan) 28 Figure 27: Localisation de Pavetta mollissima Hutch. & Dalziel (région de l 'Agneby-Tiassa) ...... 28 Figure 28: Localisation de Psilanthus manii (Hook.f.) A.P.Davis (les régions du Nawa, Gboklè, Loh-Djiboua et l'Agneby-Tiassa) 29 Figure 29: Localisation de Psychotria brachyanthoides De Wild (la région de la Mé 29 Figure 30: Localisation de Sericanthe toupetou (Aubrév. & Pellegr.) (régions San-Pédro et Nawa) 30 Figure 31: Localisation de Psychotria ivorensis K.Schum (régions du Gbêkè, Grands Ponts, et Gbôklé) 30
vi LISTE DES ABREVIATIONS
GC : Guinéo-Congolais GC-SZ : Guinéo-Congolaises-Soudano-Zambéziennes SZ : Soudano-Zambéziennes GCW: espèces endémiques du bloc forestier à l'ouest du Togo, comprenant le Ghana, la Côte-d'Ivoire, le Liberia, la Sierra Leone, la Guinée Bissau, la Gambie et le Sénégal GCI: espèces endémiques de la Côte d'Ivoire mp : microphanérophytes np : nanophanérophytes Lmp : microphanérophytes lianescentes Ch : Chaméphytes Th : thérophytes mP : mésophanérophytes MP : mégaphanérophytes Lnp : nanophanérophytes lianescentes Lmp(mp)): microphanérophytes lianescentes Hpy : hémicryptophytes pyrophytique Oro : orophile, orophyte Hél Rip : hélophile, hélophyte, ripicole Rip : ripicole Hél : hélophile, hélophyte Rip Hél : ripicole, hélophile, hélophyte Sax : saxicole Arén : arénicole APG: Angiosperm Phylogeny Group
1
vii RESUME La dégradation des écosystèmes représente une des plus grandes importantes causes de réduction de la biodiversité dans le monde. Ainsi on assiste à la disparition ou à la raréfaction d'un nombre important d'espèces végétales abritées par ces écosystèmes. Cette présente étude, intitulée « Analyse de la distribution spatiale des Rubiaceae en Côte d'Ivoire», a pour but: (1) d'analyser les paternes de distribution des espèces; (2) d'identifier les Rubiaceae endémiques, rares de la Cote d'ivoire ; (3) de déterminer la distribution des différents Rubiaceae endémiques ; ( 4) de localiser les zones riches en espèces endémiques, rares et menacées. Un système d'information géographique (SIG) a été utilisé pour réaliser des cartes de distribution spatiale de chaque espèce. Le choix de la famille des Rubiaceae se justifie par le fait qu'elle fait partie des familles les plus importantes de la flore tropicale tant sur le plan floristique par l'abondance et la variété de ces espèces que sur le plan économique, médical et ornemental. Les échantillons utilisés pour cette étude ont été extrait de la base de données SIG IVOIRE. Les analyses ont été faites à travers les régions de la Côte d'Ivoire. L'aspect floristique a révélé 1157 échantillons regroupés en 82 genres et 330 espèces. La carte de distribution spatiale de l'ensemble des échantillons a mis en évidence les niveaux de prospection. Certaines régions ont été plus explorées que d'autres. Les régions les plus explorées sont la région de l 'Agneby-Tiassa, le District d'Abidjan et la région du Tonkpi, nous avons onze espèces endémiques trouvées. Les cartes de localisation des onze espèces endémiques, superposées, montrent que les zones endémiques sont la région de l 'Agneby• Tiassa, le District d'Abidjan et la région du Nawa. Cette étude est une contribution à la protection et la conservation de la biodiversité en Côte d'Ivoire.
Mots clés : Rubiaceae, Phytogéographie, biodiversité, écosystème, Côte d'Ivoire,
viii INTRODUCTION
Les facteurs écologiques qui influencent la distribution des espèces végétales en Côte d'Ivoire sont connus à travers les travaux de Aké Assi (1961,1976, 1984); Guillaumet (1967), Guillaumet et Adjanahoun ( 1971 ). Ainsi, une meilleure connaissance de l'écologie des espèces végétales permettra de mieux comprendre leur distribution actuelle qui se fera par la phytogéographie. La phytogéographie ou géographie botanique ou encore géobotanique, est une science, au croisement de la botanique et de la géographie, qui étudie la répartition des végétaux à la surface du globe et les causes de cette répartition ainsi que les relations existantes entre les espèces ou communautés végétales d'une part, les caractéristiques géographiques, mésologiques (climat, sol) et biologiques (ensemble des organismes vivants) d'autre part. Elle repose sur des bases cartographiques dont l'outil principal est la carte de répartition spatiale. Celle-ci permet de connaître avec précision la distribution géographique d'une espèce ainsi que l'importance des divers facteurs qui la contrôlent (Lebrun, 2001). Les cartes de répartition spatiale indiquent les zones de fortes diversités spécifiques appelées hotspots, la diversité spatiale des espèces et les zones d'endémisme. Elles constituent donc un outil principal pour la gestion et la conservation des espèces. Elles permettent également de poser des hypothèses solides sur l'âge, l'origine géographique, la vitesse d'évolution et les voies de migration des taxons. Il est même possible, à partir de la distribution des espèces de mettre en évidence les différentes aires végétales et le découpage de la planète en unités phytogéographiques (régions, districts, secteurs, etc.). Cette étude préliminaire, concerne la répartition spatiale des espèces de la famille des Rubiaceae. La famille des Rubiaceae fait partie des familles les plus importantes de la flore tropicale tant sur le plan floristique par l'abondance et la variété de ces espèces que sur le plan économique, médical et ornemental. En effet, face à des phénomènes comme la déforestation et le changement climatique, l'état actuel des Rubiaceae et leur répartition écologique en Côte d'Ivoire est d'une importance capitale. Ainsi l'objectif de ce travail est d'analyser la distribution spatiale des espèces de la famille des Rubiaceae récoltées en Côte d'Ivoire, afin d'avoir une vue prospective sur l'avenir des espèces endémiques et rares de cette famille dans le pays.
Pour atteindre notre objectif, nous allons spécifiquement :
- Analyser les paternes de distribution ;
1 1---
Identifier les Rubiaceae endémiques, rares de la Côte d'Ivoire; Déterminer leur distribution spatiale ; Localiser les zones riches en espèces endémiques, rares et menacées.
Outre l'introduction et la conclusion, ce travail présente trois parties. La première partie traite des généralités sur le site d'étude et des Rubiaceae, la seconde partie fait ressortir les matéreils et méthodes untilisés en vue d'aboutir aux résultats et à la discussion qui constituent la troisième partie.
2 !-GENERALITES
1-l- Géné1r:alité sur le site d'étude
La présente étude porte sur toute l'étandue de la Côte d'Ivoire. La Côte d'Ivoire, est un pays 1 d'Afrique de l'Ouest, membre de I'Union africaine. D'une superficie de 322 462 km . eUe est limitée au nord par le Mali et le Burkina Faso, à l'ouest par le Liberia et la Guinée, à l'est par le Ghana ·et au sud par I'océan Atlantique {figure 1). La Côte d'Ivoire a pour capitale politique et administrativeYamoussoukro, Abidjan demeurant capitale économique, pour langue officielle le français et pour la monnaie. le franc CFA. Le pays fait partie de la CEDEAO. Le pays est caractérisé par son climat, sa végétation et ses sols.
Figure 1: Carte de la Côte d'Ivoire
3 1
1-1-1- Climat
Compris entre 4° et 10° de latitude nord, le territoire de la Côte d'Ivoire est distant de l'équateur d'environ 400 km sur ses marges méridionales, et du tropique du Cancer d'environ 1 400 km sur ses frontières septentrionales. Le climat, généralement chaud et humide, constitue dès lors une transition entre l'équatorial et le tropical. Équatorial le long des côtes, il est semi-aride à l'extrême nord. Le pays connaît en général des variations importantes de température entre le nord et le sud, mais également le long de l'année en fonction des saisons. Les températures oscillent autour de 28 °C en moyenne. Deux grandes zones climatiques se côtoient : le climat équatorial et le climat tropical de savane, lui-même plus ou moins sec. Le climat subéquatorial est caractérisé par deux saisons sèches et deux saisons humides. La grande saison sèche, chaude, est entrecoupée de quelques pluies et s'étend du mois de décembre au mois d'avril. La petite saison sèche couvre les mois d'août et de septembre. Quant aux saisons de pluie, elles s'échelonnent de mai à juillet pour la grande saison et d'octobre à novembre pour la petite saison. Le climat tropical de savane humide couvre le nord de la zone forestière du sud et le sud de la région des savanes. Cette région climatique connaît également quatre saisons : deux saisons sèches, de novembre à mars et de juillet à août et deux saisons pluvieuses, de juin à octobre et de mars à mai. Le climat de savane sec concerne principalement la Région des Savanes. La zone considérée est caractérisée par la présence intermittente entre les mois de décembre et février d'un vent frais et sec, l'harmattan. On y relève deux saisons : l'une sèche, de novembre à juin, ponctuée par quelques pluies au mois d'avril, et l'autre pluvieuse, couvrant la période de juillet à octobre. (Eldin, 1971)
1-1-2- Végétation
La Côte d'Ivoire a été subdivisée en domaines et secteurs basés non seulement sur les formations prédominant dans le paysage, mais aussi sur leur dynamisme actuel, ce qui nous amène à distinguer : le domaine guinéen qui comprend les secteurs ombrophile, mésophile, littoral et montagnard et le domaine soudanais qui comprend les secteurs subsoudanais et soudanais (Guillaumet et Adjanohoun, 1971). Le domaine guinéen a un climax prépondérant de forêt dense humide. On y distinguera 4 secteurs caractérisés par des groupements végétaux particuliers répondant à des conditions écologiques différentes : Climat dû à la latitude : Secteur ombrophile : climax principal de forêt dense humide sempervirente. Secteur mésophile : climax principal de forêt dense humide semi-décidue.
4 Climat dû à la proximité de la mer et à la nature des sols : Secteur littoral : pas de climax dominant, mais un ensemble de climax édaphiques. Climat dû à l'altitude: Secteur montagnard : climax principal de forêt dense humide montagnarde La zone soudanaise en Côte d'Ivoire septentrionale se subdivise en deux secteurs : le secteur subsoudanais le plus important, qui s'étend de la limite nord de la zone guinéenne aux frontières du Mali et du Burkina Faso ; le secteur présumé soudanais n'entame que peu cette zone subsoudanaise à l'extrême nord du pays, suivant une ligne Férédougou (au nord d'odienné), Ferkessédougou, Nassian (au sud de la réserve de Bouna), Farako. Le secteur subsoudanais est soumis au climat tropical subhumide (subsoudanien de transition) (figure 2).
N l
w w z 5 savane suo - (.')
Golfe de Guinée
Figure 2: Carte de la végétation de la Côte d'Ivoire (echelle 1/5.000.000è, d'après Guillamet et Adjanohoun, 1971)
5 En effet, dans ces différents secteurs les activités prémières de l'homme sont des pratiques agricoles caractérisées par de grandes plantations de café. de cacao et d'hévéa principale ressource de l'économie ivoirienne ensuite la culture des vivriers utiles pour l'alimentation des populations. Ainsi. l'augmentation de la population impacte sur l'exploitation forestière car elle modifie suffisamment la végétation naturelle.
1-1-,3- Sols
Les sols ferraliriques couvrent la majeure partie du territoire ivoirien, Aubert et Segalen {1'966). Ils sont notamment présents dans l'Est, I'Ouest, le Sud, les zones forestière et pré• forestière, les zones de savanes soudanaises ou sub-soudanaises, les aires septentrionales, etc. Les sols ferrugineux tropicaux qui se rencontrent sur des roches granitoïdes ont leur extension majeure dans le Nord-Est du pays, autour de la localité de Bouna et dans I'interfleuve entre le haut N'Zi et la haute Comoé. Aussi. fa présence des sols bruns eutrophes des pays tropicaux des sols hydromorphes, des pseudo-podzols de nappe (Leneuf, 1956) et des sols peu évolués d'apport marin,
1-2-Généralité sur les Rubiaceae l-2-l- Descriptieu des Rubiaceae
La famille des Rubiaceae est une famille cosmopolite et particulièrement répandue dans les régions tropicales, mais aussi dans les régions tempérés et froides {figure 3 •. .-
,.
••' .,
Figure 3: Répartition géographique des espèces de la famille des Rubiaceae (la couleur rouge indique la présence des Rubiaceae dans le monde). www.mobot.org
6 1
Les espèces tropicales sont en majorité ligneuses, alors que les espèces des régions tempérées sont herbacées. Ce sont des arbres, arbustes, des buissons, des lianes ou des plantes herbacées, parfois épiphytes, parfois à branches plagiotropes verticillées.
Les feuilles sont opposées décussées, simple entières, base du limbe parfois transformée en cavité myrmécophiles. Les stipules sont souvent grands et foliacés parfois glanduleux pouvant former des pseudo- verticilles avec les feuilles (genre Galium L.) ou stipules interpétiolaires ou intrapétiolaires libre ou soudées formant une gaine autour de la tige (genre Gardenia J. Ellis). L'inflorescence est variable : cymeuse, racemeuse ou paniculée, parfois fleur solitaire souvent pseudanté, capitule ou glomérule de fleurs très petites (genre Ixora L.). Les fleurs sont cyclique hétéro chlamyde, gamopétale, actinomorphe, tétra ou pentamère, isostémone, épigyne, les lobes calcinaux persistants sur les fruits parfois réduits ou au contraire hypertrophié unilatérale (Calycophyllum DC., Mussaenda L.). La corolle est en forme d'entonnoir, de cloche ou de tube, lobe parfois réduit. Les étamines sont en générale haplostémones, épipétale. Un disque nectarifère épigyne est souvent présent. Dans cette famille, les fleurs sont petites mais groupées et souvent colorées (figure 4) et parfois odorantes, à nectar attirant les insectes. L'ovaire est infère, bicarpellé et généralement biloculaire, un seul style souvent bifide. La placentation est généralement axile. Les fruits sont en capsule (genre Cinchona L.), septicide ou loculicide, baie (genre Rubia L.), akène (genre Galium L.) ou drupe (genre Coffea L) (figure 5) .. Chez certaines espèces, la dispersion des graines se fait par les animaux ou l'homme, grâce aux poils crochus présents sur les fruits Elle compte environ 611 genres et plus de 13150 espèces. Les principaux genres sont Psychotria L (1500 sp), Galium L. (400 sp), lxora L. (400 sp), Pavetta L. (400 sp) et Hedyotis L. ( 400 sp ), Mouellet (2005).
7 Figure 4: Inflorescence d'Ixora coccinea L.
Figure S: Fruit de Vangueria madagascariensis J.F.Gmel
1-2-2- Importance et utilisation des Rubiaceae
La famille des Rubiaceae fait partie des familles les plus importantes de la flore tropicale tant sur le plan floristique par l'abondance et la variété de ces espèces que sur le plan économique médical et ornemental.
En effet, certaines espèces du genre Coffea L. fournissent le café, Diverses espèces du genre Cinchona fournissent de la quinine, utilisée comme traitement contre le paludisme. Nous avons aussi le genre Psychotria L. dont certaines espèces sont utilisées pour leurs propriétés vomitives. Certaines espèces du genre Gardenia 1. Ellis, sont appréciées en ornement, c'est aussi le cas pour l'espèce Crucianella stylosa Trin. 'Red Ping Pong', plante tapissant à fleurs rose foncé. Parmi les espèces les plus remarquables de la famine des Rubiaceae on peut citer Galium mollugo L. ou caille lait, Rubia tlnctorum L. (garance des teinturiers) cultivée autrefois pour la production de l'alizarine, teinture rouge extraite des racines, ou Galium odoratum L. Scop. {aspérule odorante) utilisée pour aromatiser des boissons, Chinchona sp. plante riche en alcaloïdes.
8 De plus, certaines espèces de la famille des Rubiaceae sont utilisées dans l'alimentation humaine et en pharmacopée. En effet, le jus de Diodia rubricosa Hiem et Diodia scandens Sw. est instillé dans l'œil pour soigner diverses ophtalmies et combattre les céphalées; il est appliqué sur les dents cariées et sert à badigeonner les muqueuses buccales pour traiter diverses affections de la bouche ; il est aussi employé pour traiter par voie externe les lépreux et les varioleux. Le décocté est absorbé par les femmes qui souffrent d'aménorrhée. L'espèce Fadogia agrestis Schweinf. ex Hiem passe pour un bon antidysentérique. li sert aussi dans le traitement de la blennorragie, des maux de reins, des dents et du rachitisme des enfants. Un caractère magique s'attache aux différents Gardenia J. Ellis qui sont très généralement utilisés pour préserver des sorts, des empoisonnements et soigner les maladies réputées d'origine diabolique. Geophila obvallata Didr. et Geophila repens (L.) I.M.Johnst. sont assez fréquemment employés pour soigner les douleurs gastro-intestinales et intercostales, les céphalées, les maux de dents, les otites, la tachycardie et la stérilité des femmes. Le décocté de Macrosphyra longistyla (De.) Hiern est donné en boisson aux malades fiévreux ou atteints de la lèpre. Massularia acuminata (G.Don) Bullock ex Hoyle est utilisée comme poison de pêche. Il est parfois administré aux femmes enceintes pour favoriser leur grossesse et passe pour avoir des propriétés aphrodisiaques et antidysentériques. Mitracarpus scaber Zucc. ex Schult. & Schult.f. est préconisé dans le traitement de certaines affections. Les Mitragyna Korth. sont utilisés par les guérisseurs, on a Mitragyna inermis (Willd.) Kuntze, Mitragyna ciliata Aubrév. & Pellegr. ou Mitragyna stipulosa (DC.) Kuntze. Elles sont aussi recommandées dans le traitement de l'aménorrhée et pour faciliter les accouchements. Les écorces de Mitragyna inermis (Willd.) Kuntze sont aussi utilisées comme antilépreux diurétique et analgésique ; celles de Mitragyna stipulosa (DC.) Kuntze. sont utilisées pour soigner le pian, les maux dt: ventre, les convulsions des enfants et les troubles de la vue (Bouquet et Debray, 1974)
1-2-3- Position systématique
Selon APG III (Haston et al. 2009), les Rubiaceae sont les angiospermes de la classe des Eudicotylédones, de la sous-classe des Asteridae, de l'ordre des Gentianales. La figure 6 montre la position de l'ordre des Gentianales par rapport aux autres ordres au sein des angiospermes.
9 Ambollllalest Amborellanae ~est Nymphaeanae ~ ~ ~~per.w~l~es Austrobaileyanae <0 <:ane11a1es . M . ~- n ~~ales 1 agnohanae ~(D iO ~re~Clio~r.riinlaate s 1 - Poaes AN:if)ee;
o As~es . Lilianae :, lili.ies I 3g . . C-~es g rr&I Dlœto.1!ales f/) ~laies Alismalales ~es ~ yltaiest Ceratophvllanae Ra.'UIC\A\es Ranuncuranae Sat..lceae ~es Proteanae a,~ r------Buxaiesr Buxanae g_ r------TIOChoœnô'alest Trochodendranae [ f ~..:! Myrothamnanae f/) ,...rCFagiltes ~ Faba!es
0 Rosanae ~0 (I) (I) oC . 0 es 0 Gmales 0 ltaest .._ 5aitilragales t------Œl!eroaceae ------~,dopsi est Berberidopsidanae r------~ales Santalanae ..------~ llales Caryophyllanae ..------Coma!es ------Encales
Asteranae
Figure 6: Cladogramme des principaux ordres d'angiospermes selon «Angiosperm Pbylogeny Group » (APG III, 2009). Le cadre en rouge indique l'ordre de la famille des Rubiaceae
10 II - MATERIEL ET METHODES D'ETUDES
2-1-Materiels 1 Le materiel premier de notre étude porte essentiellement sur 1157 échantillons d'herbiers de Rubiaceae réalisé dans les différentes régions de la Cote d'Ivoire et gardé au conservatoire et 1 jardin botanique de Genève. Comme chaque région à des coordonnées géographiques et des cartes écologiques, cette base de données est appelée SIG IVOIRE. Le SIG IVOIRE est un 1 outil mis en place par les Conservatoire et Jardin botaniques de la Ville de Genève pour regrouper l'information botanique disponible sur la Côte d'Ivoire (échantillons d'herbier et relevés floristiques) et les interpréter en les couplant à des données environnementales par le biais d'un système d'information géographique (Gautier & al. 1999). Il vise à une meilleure 1 gestion des données existantes, afin d'exploiter au mieux l'information disponible pour répondre aux besoins de conservation des espèces vis à vis des processus de dégradation des milieux. Ces données sont gérées dans une base de données du logiciel MS ACCESS. C'est dans cette base de données que nous avons extrait les données sur les rubiaceae pour cette étude. Ensuite le matériel ayant servie à la réalisation des cartes de distribution est le logiciel QGIS (Quantum GIS) version 2.2 de Valmiera (http : //www.qgis.org).
2-2-Méthode d'études
2-2-1- Cartographie des différentes régions
Selon le nouveau découpage de la carte administrative réalisée par le Comité Nationale de Télédétection et 11 1 -9 -8 -7 -- - -6 -5 -4 -3 -2 -1 10 110 ~ 1 9 9 8 8 7 7 Légende 6 0 Décwpage a 6 5 5 -9 -2 -1 Figure 7: Carte des 31 régions et des 2 Districts autonomes de la Côte d'Ivoire. 2-2-2- Qualité des données Avant d'utiliser les espèces pour des recherches phytogéographiques, il convient d'abord de s'assurer de la valeur des déterminations car les faits phytogéographiques peuvent être influencés par le traitement taxonomique des plantes. Cette phrase de Leonard ( 1965), garde toute sa valeur pour cette étude. En effet, nous avons pris soin de vérifier le nom 12 1 base de données du professeur Aké Assi ( 1998) des plantes rares, devenues rares et en voie d'extinction en comparaison à notre base de données les espèces de Rubiaceae rares, devenues rares et en voie d'extinction. 2-2-3- Cartographie des espèces échantillonnées Avec le logiciel QGIS nous avons réalisé la carte de distribution spatiale de chaque espèce où sont directement positionnés les points correspondant aux différentes coordonnées géographiques des localités de récolte de tous les échantillons de cette espèce, afin de visualiser les différents modèles de distribution spatiale. En effet, nos données ont été encodé sur ACCESS ensuite importer sur EXCEL et convertie en format CSV (séparateur, point• virgule).Ces données converties en format CSV sont importées et ajouter en couche de texte délimité à la carte afin de voir la disposition des échantillons dans les différentes régions. 1 13 III-RESULTATS 3-1-Analyse floristiques Mille cent cinquante-sept échantillons de Rubiaceae ont été encodés et regroupés en 82 genres et 330 espèces. Les genres qui regroupent les plus grands nombre d'échantillons sont: les Psychotria L. ( 45 espèces), les Spermacoce (27 espèces), les Keetia (17 espèces). Par contre les genres les moins représentés sont : les Cephaelis, Vahlia, Oligocodon, Pausinystalia, Polysphaeria, Hazaliella avec chacun une espèce. Les espèces les plus échantillonnées sont : Sherbournia calycina (G.Don) Hua (15 échantillons), Crossopteryx febrifuga (Afzel. ex G.Don) Benth, Chassalia kolly (Schumach.) Hepper (14 échantillons). Par contre les espèces les moins récoltées sont : Ixora baldwinii Keay, Cephaelis casteneopilosa Aké Assi, Spermacocé hepperiana Verde. (1 échantillon). Le genre Cephaelis dans la nouvelle classification a été placé dans le genre Psychotria à l'exception de l'espèce Cephaelis castaneopilosa décrit par le professeur Aké Assi. 3-1-1-Type chorologique Dans notre base de données, les espèces Guinéo-Congolaises (GC) représentent 46%, suivi des espèces Guinéo-Congolaises et Soudano-Zambéziennes (GC-SZ) et les espèces endémiques du bloc forestier à l'ouest du Togo, comprenant le Ghana, la Côte-d'Ivoire, le Liberia, la Sierra Leone, la Guinée Bissau, la Gambie et le Sénégal (GCW) représentant respectivement 20% et 19%. Les espèces Soudano-Zambéziennes (SZ) ne représentent que 6%. Il faut souligner que dans notre base de données, 2% d'espèces sont endémiques de la Côte-d'Ivoire (GCI), (Figure 8). 14 GCI 2% Figure 8: Type cborologique des espèces de la famille de Rubiaceae (GC : Guinée-Congolais ; GC-SZ ~ Guinéo-Congolaises-Soudano-Zambézienn:es : SZ : Soudano-Zambéziennes: GCW: espèces endémiques du bloc forestier à l'ouest du Togo, comprenant le Ghana. la Côte-d'Ivoire. le Liberia, la Sierra Leone. la Guinée Bissau. la Gambie et le Sénégal; GCI: espèces endémiques de la Côte-d'Ivoire; X: autres). 3-1-2-Type biologique La figure 9 montre que les microphanérophytes (mp) représentent 30% des espèces de notre base de données. suivi des nanophanérophyres (np) 23% • des microphanérophytes lianescentes (Lmp) 19%, des Chaméphytes (Ch) 8%, des thérophytes (Th) 7% et des mêsophanërophytes (mP) 2%. Tandis que les mégaphanérophytes (MP). iles nanopbanéropbytes lianescentes (Lnp), les microphanérophytes lianescentes (Lmp (mp)), les hémicryptophytes pyropb:ytique (Hpy) représentent chacunl% des espèces de notre base de données. 15 ~ ••••••••• .,. _ _ Lmp(mp) Lnp 1% 1% Figure 9.: Type biologique des espèces de la famille des Rubiaoeae (mp microphanérophytes : np : nanophanérophytes ; Lmp : microphanéropbytes lianescentes : Ch : Chaméphytes ; Th : théropbytes ; mP .: mésophanérophytes : MP : mégaphanérophytes , Lnp: nanophanérophytes Iianescentes ; Lmp(mp)): microphanérophytes lianescentes ; Hpy: hémicryptophytes pyrophytique). 3-2-Dé.gré d'êchantillonuage 3-2-1- Effort d'échantillonnage La figure 10 montre que l'exploration des différentes régions de fa Côte d'Ivoire n'est pas uniforme, certaines régions comme I'Agnéby-Tiassa, le district d'Abidjan le Tonkpi ont été beaucoup explorées alors que d'autres comme le Moronou. le Guemon, la Marahoué I'ont été moins ou souvent n'ont pas été exploré comme le Folon. En ce qui concerne les différentes régions de la Côte d'Ivoire, des espèces ont été récoltées (Figure l 1). Les régions qui comprennent les plus grands nombre d'échantillons sont: Agneby-Tiassa (204 échantillons), District d'Abidjan (173 échantillons). Tonkpi (102 échantillons). Les régions qui comportent peu d'échantillons sont: District de Yamoussoukro (1 échantillon). Moronou (2 échantillons). Iffou {2 échantillons). En plus de ces régions on a la région du Folon qui n'a pas été échantillonné. 16 -2 -8 -6 -5 -1 -3 -2 -l 10 10 9 9 8 8 7 7 Légende • RUBlACEAE 6 ODKalr:ag,a 6 5 5 ,0. -9 -8 6 5 -4 -3 -2 -1 Figure 10: Distribution de tous les échantillons de Rubiaceae par rapport aux nouvelles régions 300 204 200 173 100 75 28 2119 17 22 20 16 7 ·6 2 4 3 0 Nombre d'échantillons aSudcomoé a Folon • Bounkani aTchologo • Kabadougou • Poro • Bagoué • Bafing • Gontougo • Worodougou • lndénié-Djuablin • Hambol • San Pédro aTomkpi alffou • Béré •Gboklè • Cavally • Grands ponts • Gbékè • District Abidjan •Nawa •Mé l.oh-Djiboua Guemon Haut Sassandra Agneby-Tiassa Bélier District Yamoussoukro Goh Marahoué N'Zi Moronou Figure 11: Densité de récolte dans les régions 17 3-2-2- Présence des espèces dans les différentes régions Les régions qui contiennent les plus grands nombres d'espèces sont: Agneby-Tiassa avec 143 espèces, le District d'Abidjan avec 115 espèces et le Tonkpi avec 84 espèces (Figure 12). Par contre celles qui contiennent les plus petits nombre d'espèces sont : les régions du Guemon Goh et N'zi avec 3 espèces chacune, Gontougo, lffou et Moronou avec 2 espèces chacune et le district de Yamoussoukro avec 1 espèce. Il n'y a pas eu de récolte dans la région du Folon ceci est encore une confirmation des résultats phytogéographique. 160 140 120 •• 8 'K,100 i ~ 8J !! .a E 8l ~ Figure 12: Présence des espèces de la famille des Rubiaceae dans les régions selon les écchantillons récoltés. 3-2-3- Fréquence du nombre d'espèces en fontion du nombre de régions L'analyse de la répartition des espèces de Rubiaceae dans les différentes régions de la Côte d'Ivoire montre que la majorité des espèces sont présente dans une seule région, ce sont exactement 117 espèces qui sont localisées dans une région chacune, ,67 espèces sont localisées dans 2 régions, 4 espèces sont repartie dans 9 régions. Chassalia kolly est la seule espèce repartie dans 10 régions (Figure 13 •. 18 Nombre de régions Figure 13: Nombre d'espèces dans une ou plusieurs régions (La barre en bleu indique le nombre d'espèces et la barre en rouge indique le nombre de régions 3-3-Analyse des paternes de distribution Les différentes cartes de distribution spatiale des espèces. mettent en évidence les différents paternes de distribution des espèces à travers les régions: espèces à large distribution et espèces à distribution restreinte, Dans cette étude, une espèce à large distribution est une espèce qui a été récoltée dans plus de deux régions, par contre une espèce à distribution restreinte est considérée comme une espèce récoltée dans seulement une seule région. 3-3-1-Espèces à large distribution Dans notre base de données. les espèces qui sont considérées comme espèces à large 1 distribution sont Chassa lia kottv (Schumach.) Hepper qui a été récoltée dans 10 régions (Figure 14): Tonkpi, Haut-Sassandra, Gbôklè, San Pédro, District d'Abidjan, la Mé Sud Comoé, Gbèkè, Agneby-Tiassa, Nawa. Oldenlandia corymbosa L. est repartie dans 9 régions (Figure 15): Poro, Hambol, Gbékè, Bélier, Marahoué, Agneby-Tiassa, District d'Abidjan, Gbôklè, Cavally. Nauclea latifolia (Sm.) E.A.Bruce a été récoltée dans 9 régions '(figure 16) : Poro, Kabadougou, Bounkani, Gontougo, Gbèkè, Bélier, Agneby-Tiassa, Grands ponts, District d'Abidjan. 19 -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 10 A 10 9 9 8 8 7 7 Légende 6 • au.sur,. lr.olly 6 D oécrupage a 5 0 1.00 km 5 1 J -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 14 : Distribution de Chassalia kolly (Schumach.) Hepper dans les différentes régions de la Côte d'Ivoire. -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 10 A 10 9 9 8 8 7 7 Légende 6 • ~lardia mryrnbcsa 16 D Oé 5 0 100 km 5 1 J -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 15: Distribution d'Oldenlandia corymbosa L dans les différentes régions de la Côte d'Ivoire. 20 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 LOI (~< ..J:: ~~ 110 ------. A Â 9 9 8 8 7 7 Légende 6 • Naudea l.tifolia D Dôa>uµage a 16 5 0 100 km 15 , 1 ,.,,,- -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 16 : Distribution de Nauclea latifolia (Sm.) E.A.Bruce dans les différentes régions de la Côte d'Ivoire. 3-3-2-Espèces à distribution restreintes La distribution de certaines espèces est très réduite à I région. Parmi ces espèces se trouvent le Cephaelis abouabouensis (Schnell) Verde.qui a été échantillonnée dans la région du Sud Comoé (Figure 17), Bertiera fimbriata Hepper dans la région de San Pedro (Figure 18) et Geophila obvallata Didr dans le District d'Abidjan (Figure 19). 21 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 101 (~<,:_;::- ~ \ \ ----A A 110 9 9 8 8 7 7 Légende 6 • Ciphoelis .bo.,.bo.,ensis 16 D Découpage a 5 0 100 km 15 1 1 ~ -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 17: Distribution de Cephaelis abouabouensis (Schnell) Verde.dans la région du Sud Comoé -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 101 (---.< ,.A ~ \ \ ----A A 110 gf 1 ~ (M j~~ ~ 19 8 8 7 C 7 Légende 6 • ·eerttera flmMata D Découpoge a 16 5 0 100 km 15 1 • 1 1 1 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 18 : Distribution de Bertiera fimbriata Hepper dans la région de San Pedro 22 -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 10 10 9 9 8 8 7 7 Légende 6 • Geq,hilo ob,allata D Déa,uµoge a 6 5 0 100 km 5 1 J -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 19: Distribution de Geophila obvallata Didr dans le District d'Abidjan 3-4-Identification des Rubiaceae endémique de la Côte d'Ivoire Dans la base de données des Rubiaceae, nous avons identifié quelques espèces endémiques, rares de la Côte d'Ivoire selon Aké Assi L (1998) et Aké Assi L (2010). Ce sont Argostemma pumilum Benn, Coffea stenophylla G.Don, Mussaenda isertiana DC, Nauclea gilletii (De Wild.) Merr, Nuuclea xanthoxylon (A.Chev.) Aubrév, Oldenlandia chevalieri Pit, Pavetta mollissima Hutch. & Dalziel, Psilanthus mannii (Hook.f.) A.P.Davis, Psychotria brachyanthoides De Wild, Psychutriu ivorensis K.S1,;hum, Sericanthe toupetou (Aubrév. & 1 Pellegr.) Robbr. Selon Adou Yao (2000), Psychotria abouabouensis (Schnell) Verde. est une espèce rare de Tai et endémique de Côte d'Ivoire (Figure 20). 1 1 23 Figure 20: Psycho/ria abouabouensis (Schnell) Verde. (Rubiaceae), une espèce rare (WCMC, 1991) de Taï, endémique de Côte d'Ivoire. Photo Adou Yao, 2000 3-5- Localisation des zones riches en espèces endémiques, espèces rares et en espèces menacées Les espèces endémiques ont été récoltées dans des régions bien précises, Argostemma pumilum Benn a été récolté dans la région du Tonkpi (Figure 21), Coffea slenophylla G.Don dans les régions du Tonkpi, Indêniê-Djuablin, Agneby-Tiassa, District d'Abidjan (Figure 22 •. Mussaenda isertiana DC dans les régions du Cavally et du District d' Abidjan (Figure 23). 'auclea gilleli (De Wild.) Men quant à lui a été récolté dans les régions de Nawa et d'Agneby-Tiassa (Figure 24). Nauclea xanthoxylon (A.Chev.) Aubrév dans la région des Grands Ponts (Figure 25). Oldenlandia chevalteri Pit dans le District d'Abidjan (figure 26, Pavel/a mollissina Hutch. & Dalziel dans la région del' Agneby-Tiassa (Figure 27), Psilantus 1 24 1 manii (Hook.f.) A.P.Davis dans les régions du Nawa, Gboklè, Loh-Djiboua et l' Agneby• Tiassa (Figure 28). Psychotria brachyanthoides De Wild dans la région de la Mé (Figure 29), 1 Sericanthe toupetou (Aubrév. & Pellegr.) Robbr à San-Pédro et Nawa (Figure 30) enfin Psychotria ivorensis K.Schum dans les régions du Gbèkè, Grands Ponts, et Gboklè (Figure 31). Cependant les régions qui regroupent le plus d'espèce endémique sont I' Agneby• Tiassa avec 4 espèces, le District d'Abidjan et le Nawa avec 3 espèces chacune. -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 /""I _n ~ 101 ~( J-.-. ~ \ \.. ~ A 110 9 9 8 8 7 7 Légende ) ( ( • A,çostemma pumik.tm 6 61 \... l \ )) \ D Déa,upoge a· ~ )_~ 0 SI f 100 km 5 1 1 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 21 : Localisation de Argostemma pumilum Benn (région du Tonkpi) 25 -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 10 10 9 9 8 8 7 7 Légende 6 • o:/fu st..-op~la D Déa>tJpogeO 6 5 0 100 bn 5 ' 1 -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 22: Localisation de Coffea stenophylla G.Don (régions du Tonkpi, Indénié-Djuablin, Agneby-Tiassa, District d'Abidjan) -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 10 10 9 9 8 8 7 7 Légende 6 • Mll".ÇINlei:I k.Prti;;v\;I CJ ~pagea 6 5 5 0 100 bn ' 1 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 23: Localisation de Mussaenda isertiana DC (les régions du Cavally et du District d' Abidjan) 26 1 -9 -8 -5 -4 -3 -2 -1 10 10 9 9 8 8 7 7 Légende 6 6 5 0 100 1cm 5 1 J -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 24: Localisation de Nauclea gilletii (De Wild.) Merr (les régions de Nawa et d' Agneby-Tiassa) -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 10 10 9 9 8 8 7 7 Légende 6 • Naudea xanll=-,la, D Dé 5 0 100 lem 5 1 1 -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 25: Localisation de Nauclea xanthoxylon (A.Chev.) Aubrév (région des Grands Ponts) 27 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 101 (____,( -.A ~n ------. ,, Â 110 9 9 8 8 7 7 Légende 6 • Oldenlancfia che.,..lieri D DémupageO 16 5 0 100 km 15 1 1 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 26: Localisation d' Oldenlandia chevalieri Pit (District d'Abidjan) -9 -2 -1 10 10 9 9 8 8 7 7 Légende 1 6 • l'wvethi md&lsslrnil D Déooupsge a 16 5 15 1 L,/'""""' -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 27: Localisation de Pavetta mollissima Hutch. & Dalziel (région de I 'Agneby-Tiassa) 28 1 -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 10 10 9 9 8 8 7 7 Légende 6 6 5 5 0 100 km 1 I -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 28: Localisation de Psilanthus manii (Hook.f.) A.P.Davis (les régions du Nawa, Gboklè, Loh-Djiboua et l' Agneby-Tiassa) -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 1 1 10 10 9 9 8 8 7 7 Légende • P5)Chotria l:r.oc:t>,<," hoides 6 n Démup,ge a 16 5 0 100 km 5 1 I -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 29: Localisation de Psychotria brachyanthoides De Wild (la région de la Mé 29 -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 10 Â 10 9 9 8 8 7 7 Légende • Seriartho ~!ou 6 D Découp,ge a 6 5 0 100 l:m 5 l J -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 30: Localisation de Sericanthe toupetou (Aubrév. & Pellegr.) (régions San-Pédro et Nawa) -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 10 Â 10 9 9 8 8 7,. 7 Légende 6 6 5 100 lem 5 J -9 -8 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Figure 31: Localisation de Psychotria ivorensis K.Schum (régions du Gbêkè, Grands Ponts, et Gbôklé) 30 IV-DISCUSSION La grande partie des récoltes des espèces de la famille des Rubiaceae est faite dans le sud de la Côte d'Ivoire (les régions de l' Agneby-Tiassa, le District d'Abidjan) et dans la région de montagne (le Tonkpi). Les régions les mieux connues floristiquement sont celles situées le long de la côte, les zones environnantes des centres d'activités et des institutions de recherche et des universités, des forêts classées, des parcs et réserves naturelles (les forêts du Banco, de Yapo et la réserve de Lamto). En dehors de ces régions, de grands espaces très diversifiés en végétation naturelle ne sont pas explorés ou ne le sont que très partiellement. Ces constats sont conformes à ceux de Hepper (1979) qui stipule qu'en Afrique, il y a des régions bien connues, des régions moyennement connues et des régions mal connues. Concernant la flore ivoirienne des Rubiaceae, les espèces sont généralement de type Guinéo• Congolaise (GC), cette structure chorologique telle qu'elle apparaît dans nos résultats est très comparable à celle des formations de forêts denses humides sempervirentes. Selon Sonké (1998), la forte proportion des espèces guinéennes dans le fond floristique d'une zone, est une preuve que cette zone appartient bien à la région guinéo-congolaise de White ( 1986). Pour les types biologiques, les phanérophytes dominent, ce qui est classique dans une forêt. Néanmoins, les lianes occupent une place de choix comme dans tout milieu forestier tropical. Aussi, la densité de récolte dans les régions est importante parce qu'elles nous renseignent sur le niveau de prospection de chaque région. Les informations de la figure 11 viennent confirmer celles de la figure 10 car sur cette figure nous avons les infomations phytogéographiques. Les espèces récoltées presque sur l'ensemble de la zone d'étude sont des espèces qui ont une large amplitude écologique. Elles sont capables de s'adapter aux facteurs édaphiques et abiotiques divergents. C'est le cas de Chassalia kolly. Ces espèces à large distribution spatiale, ont une facilité de reproduction dans différents types de climats, de végétations et de sols. Par contre, celles récoltées dans des endroits hien délimités sont des espèces gui ont vraisemblablement une amplitude écologique plus restreinte. C'est le cas de Bertiera fimbriata Hepper, cela pourrait être dû à une mauvaise qualité de l'échantillonnage ou des phénomènes édaphiques. D'après Schnell (1971), beaucoup d'espèces ont eu une aire beaucoup plus vaste, mais n'ont pu suivre les changements climatiques relativement rapides, ce qui pourrait expliquer la présence de certaines espèces dans des zones restreintes. 31 1 D'autres encore bien qu'étant abondamment récoltées dans une région, ont quelques spécimens dans les régions voisines. Ces dernières peuvent être qualifiées d'espèces de transition (Koffi et al. 2008). Dans le cadre de la conservation, la valeur indicatrice des Rubiaceae n'est pas constante dans toutes les régions d'étude en raison de la variation du nombre de représentation par espèce. L'utilisation d'espèces avec un nombre restreint d'échantillons pour caractériser les régions devrait donc être aperçue avec prudence. L'objectif de ce travail était d'analyser la distribution des Rubiaceae en Côte d'Ivoire. En effet la Côte d'Ivoire renferme des espaces naturels de grande valeur écologique. Ainsi on dénombre de nombreuse régions riche en espèces endémiques, donc la perte de la biodiversité végétale dans ces régions entrainera la disparition voire l'extinction de ces espèces. La déforestation, les pratiques culturales, la destruction des forêts classées dans les différentes régions de la Côte d'Ivoire, les feux de brousse, la cueillette des plantes médicinales sont la cause de la disparition ou d'extinction de certaines espèces végétales. La diversité spécifique des espèces est menacée par la destruction de leurs niches écologique. Cela peut être dû à une exploitation forestière anarchique et incontrôlée des différentes forêts, parcs et réserves. Il nous convient de préserver ces espèces en voie de disparition car il joue un rôle déterminant dans le fonctionnement de l'écosystème. 32 CONCLUSION Cette étude avait pour but d'analyser la distribution spatiale des Rubiaceaes en Côte d'Ivoire. Les résultats de cette analyse révèlent que : La carte de distribution de tous les échantillons montre que la prospection a été influencée par la proximité des grandes villes, des Université et centre de recherches, des parcs et réserves nationaux. Ensuite certaines espèces ont une large distribution ainsi elle se retrouve dans plusieurs régions par contre d'autre sont réduites dans des régions bien précise. Enfin, nous avons pu déterminer et localiser les espèces endémiques, rares, en voie d'extinction. En claire nos résultats révèle 11 espèces sont endémiques. La position géographique de la Côte d'Ivoire lui permet de bénéficier d'écosystèmes très diversifiés pour la conservation. Ainsi la solution pour une gestion durable de notre écosystème est la cogestion. Notion qui s'impose de nos jours en impliquant la population riveraine à la gestion. La SODEFOR devrait former les récolteurs des plantes médicinales aux techniques de prélèvement des écorces et d'autre part, leur expliquer, qu'ils doivent exploiter les forêts de façon rationnelle afin de la préserver pour la génération future. Elle doit aussi encourager les paysans à préserver les espèces d'exploitations forestiers dans les plantations, et de se procurer des ilots forestiers ruraux encore existants pour une gestion durable. Aux institutions de recherches d'approfondir des études associant la conservation de la biodiversité et de la sécurisation des ressources naturelles, à l'augmentation de la production des plantations des paysans. Enfin, elles doivent être conservées dans des centres floristiques comme le CNF (Centre Nationale Floristique) et le CNRA. PERSPECTIVES En perspective, nos travaux doivent être plus approfondi par des recherches complémentaires qui consisteraient à: ~ Utiliser le système de maillage comme Denys (1980), Lebrun ( 1981 ), Ndjele (1988), Crisp et al. (2001 ), K off et al. (2008) pour réduire la résolution afin d'approfondir les analyses avec les calculs d'indice; Faire la Classification hiérarchique avec le logiciel MVSP pour identifier les différentes zones floristiquement semblables ; ~ Faire la distribution potentielle surtout avec les espèces avec peu d'échantillons ; ~ Etablir le statut de conservation des espèces endémiques, rares ou peu connues dans la zone d'étude. 33 1 REFERENCES BIBLIOGRAPIIlQUES: Adou, Y.C.Y. (2000). Inventaire et étude de la diversité floristique du Sud du Parc National de Taï (Côte d'Ivoire). Mémoire présenté pour l'obtention du Diplôme d'études approfondies de Botanique, Option écologie végétale, Laboratoire de Botanique, Université de Cocody, Côte d'Ivoire, 1 OOp. Aké Assi. L. (1961). Contribution à l'étude floristique de la Côte d'Ivoire et des territoires limitrophes. Thèse Uni. Paris.205p. Aké Assi. L. (1976). Esquisse de la flore générale de Côte d'Ivoire. Boissiera 24: 543-549. Aké Assi. L. (1984). Flore de la Côte d'Ivoire.Thèse Uni. Abidjan, 6 vol. 1206 pp. Aké Assi. L. (1998). Impact de l'exploitation forestière et du développement agricole sur la conservation de la biodiversité biologique en Côte d'Ivoire. Le flamboyant, 46, pp 20-22. Aké Assi. L. (2010). La diversité floristique de quelques régions de l'Afrique de l'ouest: le processus de sa dégradation ébauchée: le cas de la Côte d'Ivoire. In Systématique et Conservation des Plantes Africaines edited by van der Burgt X, van der Maesen J, Onana JM, Royal Botanic Gardens, Kew, 2010: 451-458. Aubert(G), Segalen P. (1966). Projet de classification des sols ferrallitiques. Cahiers ORSTOM-Pédologie IV. 4, p. 97-112. Bouquet A., Debray M. (1974). Plantes médicinales de la côte d'ivoire. Travaux <::l documents de l'ORSTOM. no 32. Crisp M.D., Laffan S., Linder H.P., Monro A. (2001). Endemism in the Australian flora. Journal ofBiogeogrnphy, 28.pp. 183-198. Denys E. (1980). A tentative pytogeographical division of tropical Africa based on a mathematical analysis of distribution maps. Bull. Jard.bot. Nat. Belg. 50, 3/4, pp. 465-504. 34 Eldin M. (1971). le climat de Côte d'Ivoire in Avenard J.M., Eldin M., Girard G., Sircoulon J., Touchebeuf P., Guillaumet J.L., Adjanoboun E., Penaud A: Le milieu naturel de la Côte d'Ivoire. Mémoires ORSTOM n°50. Paris. 391p. Gautier L., Aké Assi L., Chatelain C. & Spichiger R. (1999). Ivoire: a geographic information system for biodiversity managment in Ivory Coast. In: Timberlake, J. & Kativus, S. (eds.) African Plants: Biodiversity Taxonomy and uses. Royal Bot. Gardens, Kew. pp. 183- 194. Guillaumet J.L. (1967). Recherches sur la flore et la végétation du Bas-Cavally (Côte d'Ivoire). ORSTOM., Paris. Guillaumet J.L. & Adjanohoun E. (1971). La végétation de la Côte d'Ivoire: in Avenard J.M., Eldin M., Girard G., Sircoulon J., Touchebeuf P., Guillaumet J.L., Adjanohoun E., Perraud A: Le milieu naturel de la Côte d'Ivoire, ORSTOM, Paris. 161-263p. Haston E., Richardson J.E., Stevens P.F., Chase M.W., Harris D.J. (2009). LAPG III: a linear sequence of the families in APG III. Botanical Journal of the Linnean Society 161: 128-131. APG III 119. Hepper N.F. (1979). Deuxième édition de la Carte du Degré d'Exploration Floristique de l'Afrique au Sud du Sahara. 9ème Réunion plénière de l'A.E.T.F.A.T., Las Palmas, du 18-23 mars 1978. Ed. G. KUNKEL. Koffi K.J., Champluvier D., Danho F.R.N., De Cannicre C., Traoré D., Lejoly J., Robbrecht E. & Bogaert J. (2008). Analyse de la distribution spatiale des Acanthaceae en Afrique Centrale et comparaison avec les théories phytogéographiques de Robyns, White et Ndjele. Sciences & Nature Vol. 5 N° 2: 101 - 110. Lebrun J.P. (1981). Les bases floristiques des grandes divisions chorologiques de l'Afrique sèche. I.E.M.V.T., Etude Botanique n°7, Paris, 483 p. 1 1 35 1 Lebrun J.P. (2001). Introduction à la flore d'Afrique. Cirad. Ibis Press. 155 p. Leneuf N., Aubert G. (1956). - Sur l'origine des savanes de la basse Cote d'Ivoire. C.R. Acnd. SC.,t. 243, pp. 859-860. Leonard J. (1965). Contribution à la subdivision phytogéographique de la Région Guinéo-Congolaise d'après la répartition géographique d'Euphorbiacées d'Afrique tropicale. Webbia 19, 2. pp. 627-649. Mouellet A.M. (2005). Screening phytochimique de deux espèces de plantes : crotalia retusa L (Papilionaceae) et hallea ciliata Aubrev & Pellegr. (Rubiaceae) récoltées au Gabon. Thèse d'état, Université de Bamako, 88p. Ndjele M.B. (1988). Les éléments phytogéographiques endémiques dans la flore vasculaire du Zaïre. Thèse, Fac de Sei. ULB. 528 p. Schnell R. (1971). Introduction à la phytogéographie des pays tropicaux : les milieux - les groupements végétaux. Géobiologie Ecologie Aménagement tome 2. 951 p. Sonké B. ( 1998). Études floristiques et structurales des forêts de la réserve de faune du Dja (Cameroun). Thèse de Doctorat, Université Libre Bruxelles, 267 p. WCMC (1991). Guide de la Diversité Biologique de la Côte d'Ivoire. WCMC, Cambridge, 25p. White F. (1986). La végétation de l'Afrique. Recherche sur les ressources naturelles. ORSTOM-UNESCO, Paris, XX, 384. 36 1 ANNEXE ANNEXEl : Résultats de la vérification du nom des espèces de Rubiaceae Ancien Nom Nom actualisé Adina microcephala Breonadia salicina (Vahl) Hepper & J.R.I.Wood Aidia genipiflora Aidia zenipitlora (DC.) Dandy Argocoffea aftelii Arzocofîeoosis afzelii (Hiern) Robbr. Argocoffeopsis afzelii Argocoffeopsis afzelii (Hiern) Robbr. Argocoffeopsis eketensis Argocoffeopsis eketensis (Wernham) Robbr Argocoffeopsis rupestris subsp. rupestris Argocoffeopsis rupestris (Hiern) Robbr. Argostemma pumilum Argostemma pumilum Benn Atractogyne bracteata Atractozvne bracteata (Wernham) Huteh. & Dalziel Aulacocalyx jasminiflora Aulacocalvx iasminiflora Hook.f Belonophora coffeoides subsp. hypoglauca (Welw. ex Belonophora hypoglauca Hiern) S.E.Dawson & Cheek Bertiera bracteolata Bertiera bracteolata Hiern Bertiera breviflora Bertiera breviflora Hiern Bertiera chevalieri Bertiera chevalieri Huteh. & Dalziel Bertiera fimbriata Bertiera fimbriata Hepper Bertiera racemosa var. racemosa Bertiera racemosa (G.Don) K.Sehum. Borreria compressa Spermacoce hepperiana Verde. Spermacocefilifolia (Sehumaeh. & Thonn.) J.-P.Lebrun & Borreria filifolia Stork Borreria intricans Spermacoce intricans (Hepper) H.M.Burkill. Borreria latifolia Spermacoce alata Aubl. Borreria octodon Spermacoce octodon (Hepper) Hakki. Borreria ocymoides Spermacoce ocvmoides Burm.f 1 Borreria paludosa Spermacoce quadrisulcata (Bremek.) Verde. Borreria radiata Spermacoce radiata (DC.) Hiern. Borreria rue/liae Spermacoce ruelliae DC 1 Borreria scabra Spermacoce ruelliae DC Borreria stachydea var stachydea Spermacoce stachvdea DC. Borreria verticillata Spermacoce verticillata L 1 - Breonadia salicina Breonadia salicina (Vahl) Hepper & J.R.I.Wood Calycosiphonia spathicalyx Calycosiphonia spathicalyx (K.Sehum.) Robbr Canthium cornelia Keetia cornelia (Cham. & Sehltdl.) Bridson. Canthium henriquesianum Psydrax acutifl,ora (Hiern) Bridson Canthium hispidum Keetia hispida (Ben th.) Bridson. Canthium horizontale Psvdrax parviflora (Afzel.) Bridson Canthium manense Psvdrax manensis (Aubrév. & Pellegr.) Bridson. 37 Annexe 1 (suite) Ancien Nom Nom actualisé Canthium mannii Keetia mannii (Hiern) Bridson Canthium multiflorum Keetia multiflora (Schumach. & Thonn.) Bridson. Canthium rubens Keetia rubens (Hiern) Bridson. Canthium shimperianum Psydrax schimperiana (A.Rich.) Bridson Canthium subcordatum Psydrax subcordata (DC.) Bridson. Canthium venosum Keetia venosa (Oliv.) Bridson Canthium vulgare Psydrax parviflora (Afzel.) Bridson. Cephaëlis abouabouensis '. Psychotria abouabouensis (Schnell) Verde. Cephaëlis biaurita Psvchotria biaurita (Hutch. & Dalziel) Verde. Cephaëlis castaneo-pilosa Cephaelis castaneopilosa Aké Assi Cephaëlis mangenotii Psvchotria mangenotii (Aké Assi) Verde. Cephaëlis ombrophila Psychotria ombrophila (Schnell) Verde. Cephaëlis peduncularis Psychotria peduncularis (Salisb.) Steyerm. Cephaëlis peduncularis var. guineensis Psvchotria peduncularis var .. euineensis (Sehnell) Verde. Cephaëlis peduncularis var. Psychotria peduncularis var. hypsophila (K.Schum. & hypsophila K.Krause) Verde. Cephaëlis peduncularis var. ivorensis Psvchotria peduncularis var. ivorensis (Schnell) Verde Cephaëlis peduncularis var. Psychotria peduncularis var. suaveolens (Schweinf. ex suaveolens Hiern) Verde Cephaëlis peduncularis var. tabouensis Psychotria peduncularis var. tabouensis (Sehnell) Verde. Cephaëlis spathacea Psychotria spathacea (Hiern) Verde Cephaëlis yapoensis Psycho tria yapoensis (Sehnell) Verde. Chassalia afzelii Chassalia afzelii (Hiern) K.Sehum Chassa/fa corallifera Chassalia corallifera (A.Chev. ex De Wild.) Hepper 1 Chassalia e!ongata Chassalia elongata Huteh. & Dalziel Chassalia kolly Chassalia kolly (Sehumaeh.) Hepper 1 Chassalia laxiflora Chassalia laxiflora Benth. Chassalia subherbacea Chassalia subherbacea (Hiern) Hepper Chazaliella lophoclada Chazaliella lophoc/ada (Hiern) E.M.A.Petit & Verde Chazaliella sciadephora Chazaliella sciadephora (Hiern) E.M.A.Petit & Verde. Coffea afzelii Argocoffeopsis afzelii (Hiern) Robbr. Coffea canephora Coffea canephora Pierre ex J\.Frochncr Coffea ebracteolata Coffea ebracteolata (Hiem) Brenan Coffea humilis Coffea humilis A.Chev Coffea liberica Cq[fea liberica Hiern Coffea rupestris Argocoffeopsis rupestris (Hiern) Robbr. Coffea spathicalyx Calycosiphonia spathicalvx (K.Schum.) Robbr. 1 Coffea stenophylla Coffea stenophylla G.Don 38 1 Annexe 1 (suite) Ancien Nom Nom actualisé Coffea x arabusta Coffea x arabusta Capot & Aké Assi Corynanthe pachyceras Corynanthe pachyceras K.Schum Craterispermum caudatum Craterispermum caudatum Hutch Craterispermum cerinanthum Craterispermum cerinanthum Hiem Craterispermum gracile Craterispermum caudatum Hutch. Craterispermum laurinum Craterispermum laurinum (Poir.) Benth Cremaspora triflora Cremaspora trijlora (Thonn.) K.Schurn. Crossopteryx febrifuga Crossopteryxfebrifuga (Afzel. ex G.Don) Benth Cuviera acutiflora Cuviera acutiflora DC Cuviera macroura Cuviera macroura K.Schum. Cuviera nigrescens Cuviera nigrescens (Elliott ex Oliv.) Wemham Dictyandra arborescens Dictyandra arborescens Welw. ex Hook.f Didymosalpinx abbeokutae Didymosalpinx abbeokutae (Hiem) Keay Diodia rubricosa Diodia rubricosa Hiem Diodia sarmentosa Diodella sarmentosa (Sw.) Bacigalupo & Cabral ex Borhidi Diodia serrulata Diodella serrulata (P.Beauv.) Borhidi. Euclinia longiflora Euclinia longiflora Salisb Fadogia agrestis Vangueria agrestis (Schweinf. ex Hiem) Lantz Fadogia cienkowskii Fadogia cienkowskii Schweinf Fadogia erythrophloea (K.Schum. & K.Krause) Hutch. & Fadogia erythrophloea Dalziel Feretia apodanthera Feretia apodanthera Delile 1 Gaertnera aurea Gaertnera aurea Malcomber Gaertnera cooperi Gaertnera cooperi Hutch. & M.B.Moss Gaertnera longevaginalis Gaertnera longivaginalis (Schweinf. ex Hiem) E.M.A.Petit Gaertnera paniculata Gaertnera paniculata Ben th Gardenia aqualla Gardenia aqualla Stapf & Hutch Gardenia erubescens Gardenia erubescens Stapf & Hutch Gardenia imperialis Gardenia imperialis K.Schum Gardenia nitida Gardenia nitida Hook 1 Gardenia ternifolia Gardenia ternifolia Schumach. & Thonn Gardenia ternifolia subsp. ternifolia Gardenia ternifolia Schumach. & Thonn Gardenia vogelii Gardenia vogelii Hook.f. Geophila afzelii Geophila afzelii Hiem Geophila hirsuta Hymenocoleus hirsutus (Benth.) Robbr. Geophila obvallata Geophila obvallata Didr - - Geophila repens Geophila repens (L.) I.M.Johnst Geophila uniflora Geophilu repens (L.) I.M.Jul111sl Hallea ledermanii Fleroya ledermannii (K.Krause) Y.F.Deng Heinsia crinita Heinsia crinita (Afzel.) G.Taylor Hutchinsonia barbata - Ilutchinsonia barbata Robyns 39 1 Annexe 1 (suite) Ancien Nom Nom actualisé Hymenocoleus hirsutus Hymenocoleus hirsutus (Benth.) Robbr Hymenocoleus libericus (A.Chev. ex Hutch. & Dalziel) Hymenocoleus libericus Robbr Hymenocoleus multinevis Hymenocoleus multinervis Robbr Hymenocoleus nervopilosus var. Hymenocoleus nervopilosus Robbr. nervopilosus Hymenocoleus rotundifolius Hymenocoleus rotundifolius (A.Chev. ex Hepper) Robbr Hymenodictyon floribundum Hymenodictyon floribundum (Hochst. & Steud.) B.L.Rob lxora aggregata lxora aggregata Hutch lxora baldwinii lxora baldwinii Keay 1 lxora brachypoda lxora brachypoda DC Jxora hiernii lxora hiernii Scott-Elliot lxora laxiflora lxora laxiflora Sm. lxora nigerica subsp. occidentalis lxora nigerica Keay lxora nimbana lxora nimbana Schnell Keetia bridsoniae Keetia bridsoniae Jongkind 1 Keetia cornelia Keetia cornelia (Cham. & Schltdl.) Bridson Keetia hispida Keetia hispida (Benth.) Bridson 1 Keetia leucantha Keetia leucantha (K.Krause) Bridson Keetia mannii Keetia mannii (Hiern) Bridson Keetia multiflora Keetia multiflora (Schumach. & Thonn.) Bridson Keetia rubens Keetia rubens (Hiern) Bridson Keetia rufivillosa Keetia rufivillosa (Robyns ex Hutch. & Dalziel) Bridson Keetia tenuiflora Keetia tenuiflora (Welw. ex Hiern) Bridson Keetia venosa Keetia venosa (Oliv.) Bridson Keetia venosissima Keetia venosissima (Hutch. & Dalziel) Bridson Kohautia confusa Kohautia confusa (Hutch. & Dalziel) Bremek Kohautia senegalensis Kohautia tenuis (Bowdich) Mabb Lasianthus batangensis Lasianthus batangensis K.Schum Leptactina densiflora Leptactina densiflora Hook.f. Leptactina densiflora var. glabra Leptactina densiflora Hook.f. Macrosphyru longistyla lvlacrosphyra longlstyla (OC.) Hiern Massularia acuminata Massularia acuminata (G.Don) Bullock ex Hoyle Mitracarpus scaber Mitracarpus hirtus (L.) DC. Mitracarpus villosus Mitracarpus hirtus (L.) DC Mitragyna ciliata Fleroya ledermannii (K.Krause) Y.F.Deng Mitragyna inermis Mitragyna inermis (Willd.) Kuntze Mitragyna stipulosa Fleroya stipulosa (DC.) Y.F.Deng Morelia senegalensis Morelia senegalensis A.Rich. ex DC Morinda geminata Morincj_a chrysorhiza (Thonn.) DC Morinda longiflora Morinda longiflora G.Don 40 Annexe 1 (suite) Ancien Nom Nom actualisé Morinda lucida Morinda lucida Benth Morinda morindoides Morinda morindoides (Baker) Milne-Redh Multidentia pobeguinii Multidentia pobeguinii (Huteh. & Dalziel) Bridson Mussaenda afzelii Mussaenda afzelii G.Don Mussaenda arcuata Mussaenda arcuata Poir. Mussaenda chippii Mussaenda chippii Wernham Mussaenda elegans Mussaenda elegans Sehumaeh. & Thonn Mussaenda erythrophylla Mussaenda erythrophylla Sehumaeh. & Thonn Mussaenda grandiflora Mussaenda grandiflora Benth Mussaenda isertiana Mussaenda isertiana DC Mussaenda nivea Mussaenda nivea A.Chev. ex Huteh. & Dalziel Mussaenda tristigmatica Mussaenda tristigmatica Cummins Nauclea diderrichii Nauclea diderrichii (De Wild.) Merr Nauclea esculenta Sarcocephalus latifolius (Sm.) E.A.Bruee. Nauclea gilletii Nauclea gilletii (De Wild.) Merr. Nauclea latifolia Sarcocephalus latifolius (Sm.) E.A.Bruee Nauclea pobeguinii (Pobég. ex Pellegr.) Merr. ex E.M.A. Nauclea pobeguinii Petit Nauclea xanthoxylon Nauclea xanthoxylon (A.Chev.) Aubrév Nichallea soyauxii Nichallea soyauxii (Hiern) Bridson Oldenlandia affinis Oldenlandia affinis (Roem. & Sehult.) DC Oldenlandia chevalieri Oldenlandia chevalieri Pit 0/denlandia corymbosa 0/denlandia corymbosa L. Oldenlandia decumbens Vahlia digyna (Retz.) Kuntze. Oldenlandia goreensis Oldenlandia goreensis (DC.) Summerh Oldenlandia herbacea Oldenlandia herbacea (L.) Roxb Oldenlandia lancifolia Oldenlandia lancifolia (Sehumach.) DC Oligocodon cunlif. feae Oligocodon cunlif. feae (Wernham) Keay Otomeria cameronica Otomeria cameronica (Bremek.) Hepper Otomeria elatior Otomeria e/atior (A.Rich.) Verde Oxyanthus formosus Oxyanthus formosus Hook.f. Oxyanthus pallidus Oxyanthus pallidus Hiern Oxyanthus rucernosus Oxyanthus racemosus (Schumach. & Thonn.) Keay Oxyanthus speciosus Oxyanthus speciosus DC Oxyanthus subpunctatus Oxyanthus subpunctatus (Hiem) Keay Oxyanthus unilocularis Oxyanthus unilocularis Hiem Parapentas setigera Parapentas setigera (Hiem) Verde Pauridiantha afzelii Pauridiantha afzelii (Hiern) Bremek Pauridiantha hirtella Pauridiantha hirtella (Benth.) Bremek Pauridiantha stipulosa Cof. fea mannii (Hook.f.) A.P.Davis Pausinystalia lane-poolei Pausinystalia /ane-poolei (Huteh.) Huteh. ex Lane-Poole 41 1 Annexe 1 (suite) Ancien Nom Nom actualisé Pavetta corymbosa Pavetta corymbosa (DC.) F.N.Williams Pavetta crassipes Pavetta crassipes K.Schum. Pavetta ixorifolia Pavetta ixorifolia Brernek Pavetta lasioclada Pavetta lasioclada (K.Krause) Mildbr. ex Brernek Pavetta micheliana Pavetta micheliana J.-G.Adam Pavetta mollissima Pavetta mollissima Hutch. & Dalziel Pavetta oblongifolia Pavetta oblongifolia (Hiern) Brernek Pavetta owariensis Pavetta owariensis P.Beauv. Pavetta platycalyx Pavetta platycalyx Brernek Pentodon pentandrus Pentodon pentandrus (Schurnach. & Thonn.) Vatke Pleiocoryne fernandensis Pleiocoryne fernandensis (Hiern) Rauschert Poecilocalyx stipulosa Pauridiantha stipulosa (Hutch. & Dalziel) Hepper Polysphaeria arbuscula Polysphaeria arbuscula K.Schurn Pouchetia a/ricana Pouchetia a/ricana A.Rich. ex DC. Psilanthus mannii Coffea mannii (Hook.f.) A.P.Davis Psychotria abouabouensis Psychotria abouabouensis (Schnell) Verde. Psychotria albicaulis Psychotria albicaulis Scott-Elliot Psychotria bidentata Psychotria bidentata (Benth.) Hiern Psychotria brachyantha Psychotria brachyantha Hiern Psychotria brachyanthoides Psychotria brachyanthoides De Wild Psychotria calva Psychotria umbellata Thonn Psychotria dorotheae Psychotria dorotheae Wernharn Psychotria ealaensis Psychotria ealaensis De Wild Psychotria elonato-sepala Psychotria elongatosepala (De Wild.) E.M.A.Petit Psycho tria fernandopoensis Psycho tria fernandopoensis E.M.A.Petit Psychotria gabonica Psychotria gabonica Hiern Psychotria globosa Psychotria globosa Hiern Psychotria guineensis Psychotria guineensis E.M.A.Petit Psychotria humilis Psychotria humilis Hiern Psychotria humilis var. cornuta Psychotria humilis var. cornuta (Hiem) E.M.A.Petit Psychotria ivorensis Psychotria adafoana K.Schum Psychotria kitsonii Psychotria kitsonii Hutch. & Dalziel Psychotria leptophyila Psychotria leptophylla Hiern Psychotria limba Psychotria limba Scott-Elliot Psychotria linderi Psychotria linderi Hepper Psychotria longituba Psychotria longituba A.Chev. ex De Wild Psychotria obscura Psychotria obscura Zoll. & Moritzi Psychotria peduncularis Psychotria peduncularis (Salisb.) Steyerm Psychotria peduncularis subsp. Psychotria peduncularis var. guineensis (Schnell) Verde. Guineensis 42 -1 ---- Annexe 1 (suite) Ancien Nom Nom actualisé Psychotria peduncularis var. Psychotria peduncularis var. ivorensis (Sehnell) Verde. ivorensis Psychotria psychotrioides Psychotria psychotrioides (DC.) Roberty Psychotria rufipilis Psychotria rufipilis A.Chev. ex De Wild. Psychotria sadebeckiana Psychotria sadebeckiana K.Sehum Psychotria schweinfurthii Psychotria schweinfurthii Hiern Psychotria sciadephora hazaliella sciadephora (Hiem) E.M.A.Petit & Verde. Psychotria subglabra Psychotria subglabra De Wild. Psychotria subobliqua Psychotria subobliqua Hiem Psychotria vogeliana Psychotria vogeliana Benth Psychotria yapoensis Psychotria yapoensis (Schnell) Verde. Psydrax arnoldiana Psydrax arnoldiana (De Wild. & T.Durand) Bridson Psydrax horizontalis Psydrax horizonta/is (Sehumaeh. & Thonn.) Bridson Psydrax manensis Psydrax manensis (Aubrév. & Pellegr.) Bridson Psydrax parviflora Psydrax parviflora (Afzel.) Bridson Psydrax subcordata Psydrax subcordata (DC.) Bridson Richardia brasiliensis Richardia brasiliensis Gomes Rothmannia hispida Rothmannia hispida (K.Sehum.) Fagerl Rothmannia longiflora Rothmannia longiflora Salisb. Rothmannia megalostigma Rothmannia munsae subsp. megalostigma (Wemham) Somers Rothmannia munsae Rothmannia munsae (Sehweinf. ex Hiem) E.M.A Rothmannia munsae subsp. Rothmannia munsae subsp. megalostigma (Wemham) megalostigma Somers Rothmannia urcelliformis Rothmannia urcelliformis (Hiem) Bulloek ex Robyns Rothmannia whitfieldii Rothmannia whitfieldii (Lindl.) Dandy Rutidea membranacea Rutidea membranacea Hiem Rutidea parviflora Rutidea parviflora DC Rutidea rufipilis Rutidea rufipi/is Hiern Rutidea smithii Rutidea smithii Hiem Rytigynia canthioides Rytigynia canthioides (Benth.) Robyns Rytigynia graci lipetiolata Rytigynia gracilipetiolata (De Wild.) Robyns Rytigynia senegalensis Rytigynia senegalensis Rytigynia umbellulata Rytigynia umbellulata (Hiem) Robyns Sabicea a/ricana Stipu/aria a/ricana P .Beauv Sabicea brevipes Sabicea brevipes Wemham Sabicea calycina Sabicea calycina Benth Sabicea cordata Sabicea cordata Huteh. & Dalziel Sabicea ferruginea Sabiceaferruginea (G.Don) Benth Sabicea harleyae Sabicea harleyae Hepper Sabicea rosea Sabicea rosea Hoyle Sabicea venosa Sabicea venosa Benth. 43 1 Annexe 1 (suite) Ancien Nom Nom actualisé Sabicea vogelii Sabicea vogelii Benth. Sacosperma paniculatum Sacosperma paniculatum (Benth.) G.Taylor Sarcocephalus latifolius Sarcocephalus latifolius (Sm.) E.A.Bruce Sericanthe chevalieri Sericanthe chevalieri (K.Krause) Robbr. Sericanthe cheva/ieri var. velutina Sericanthe chevalieri (K.Krause) Robbr. Sericanthe toupetou Sericanthe toupetou (Aubrév. & Pellegr.) Robbr Sherbournia bignoniiflora Sherbournia bignoniiflora (Welw.) Hua Sherbournia calycina Sherbournia calycina (G.Don) Hua Spermacocejilifolia (Schumach. & Thonn.) J.-P.Lebrun & Spermacoce filifolia Stork Spermacoce filiformis Spermacoce fi liformis Hiem Spermacoce hepperiana Spermacoce hepperiana Verde. Spermacoce intricans Spermacoce intricans (Hepper) H.M.Burkill Spermacoce ivorensis Spermacoce ivorensis Govaerts Spermacoce latifolia Spermacoce a/ata Aubl Spermacoce exilis (LO.Williams) C.D.Adams ex Spermacoce mauritiana W.C.Burger & C.M.Taylor Spermacoce octodon Spermacoce octodon (Hepper) Hakki Spermacoce ocymoides Spermacoce ocymoides Burm.f Spermacoce pusilla Spermacoce pusilla Wall. Spermacoce quadrisulcata Spermacoce quadrisulcata (Bremek.) Verde. Spermacoce radiata Spermacoce radiata (DC.) Hiem Spermacoce ruelliae Spermacoce ruelliae DC. Spermacoce stachydea Spermacoce stachydea DC. Spermacoce verticillata Spermacoce verticillata L. Stelechantha ziamaeana Pauridiantha ziamaeana (Jacq.-Fél.) Hepper Stipularia a/ricana Stipularia a/ricana P.Beauv. Tarenna bipindensis Tarenna bipindensis (K.Schum.) Bremek. Tarenna conforta Tarenna conferta (Benth.) Hiern Tarenna eketensis Tarenna eketensis Wernham Tarenna flavo-fusca Tarennafuscoflava (K.Schum.) S.Moore Tarenna gracilis Tarenna gracilis (Stapt) Keay 'l'arenna nitidula Tarenna nitidula (Benth.) Hiern Tarenna pavettoides Tarenna pavettoides (Harv.) Sim Tarenna soyauxii Nichallea soyauxii (Hiern) Bridson Tarenna thomasii Tarenna thomasii Hutch. & Dalziel Tarenna vignei Tarenna vignei Hutch. & Dalziel Tarenna vignei var. subglabra Tarenna vignei Hutch. & Dalziel Thecorchus wauensis Oldenlandia wauensis Schweinf. ex Hiem Tricalysia biafrana Tricalysia biafrana Hiern Tricalysia bracteata Empogona bracteata (Hiern) Tosh & Robbr. 44 Annexe 1 (suite) Ancien Nom Nom actualisé Tricalysia deightonii Empogona deightonii (Brenan) Tosh & Robbr. Tricalysia faranahensis Tricalysiafaranahensis Aubrév. & Pellegr. Tricalysia filiformistipulata Empogona filiformistipulata (De Wild.) Brernek. Tricalysia macrophylla Empogona macrophylla (K.Schum.) Tosh & Robbr. Tricalysia okelensis Tricalysia okelensis Hiem Tricalysia pallens Tricalysia pallens Hiem Tricalysia refiexa Empogona rejlexa (Hutch.) Tosh & Robbr. Tricalysia reflexa var. ivorensis Empogona refl,exa var. ivorensis (Robbr.) Tosh & Robbr. Tricalysia reticulata Tricalysia reticulata (Benth.) Hiem Uncaria a/ricana Uncaria a/ricana G.Don Uncaria talbotii Uncaria talbotii Wemharn Vangueria argentea Rytigynia argentea (Wernham) Robyns Vangueria vanguerioides Vangueriella vanguerioides (Hiern) Verde. Vangueriella disco/or Vangueriella disco/or (Benth.) Verde. Vangueriella nigerica Vangueriella nigerica (Robyns) Verde. Vangueriella orthacantha Vangueriella orthacantha (Mildbr.) Bridson & Verde. Vangueriella spinosa Vangueriella spinosa (Sehumaeh. & Thonn.) Verde. Vangueriella vanguerioides Vangueriella vanguerioides (Hiern) Verde. Vangueriopsis glabrescens Vangueriella glabrescens (Robyns) Verde. Vangueriopsis spinosa Vangueriella spinosa (Sehumach. & Thonn.) Verde. Vangueriopsis vangerioides Vangueriella vanguerioides (Hiern) Verde. Virectaria multiflora Virectaria multiflora (Sm.) Bremek. Virectaria procumbens Virectaria procumbens (Sm.) Bremek. 45 ANNEXE 2 : Résultats des types chorologiques et biologiques des espèces de la famille des Rubiaceae Type Nom actualisé Chorologie biologique Ecologique Breonadia salicina (Vahl) Hepper & J.R.I. Wood sz mp Rip Aidia genipiflora (DC.) Dandy GC mp Argocoffeopsis afzelii (Hiern) Robbr. GC Lmp Argocoffeopsis afzelii (Hiern) Robbr. GC Lmp Argocoffeopsis eketensis (Wernham) Robbr. GC-SZ Lmp Argocoffeopsis rupestris (Hiem) Robbr. GC np Argostemma pumilum Benn GCW Th Sax Atractogvne bracteata (Wernham) Huteh. & Dalziel GC Lmp Aulacocalyxjasminiflora Hook.f. GC mp Belonophora coffeoides subsp. hypoglauca (Welw. ex Hiern) S.E.Dawson & Cheek GC mp Bertiera bracteolata Hiern GC Lmp Bertiera breviflora Hiern GC np Bertiera chevalieri Huteh. & Dalziel GCW Lmp Bertierafimbriata Hepper GCW np Rip Hél Bertiera racemosa (G.Don) K.Schum. GC mp Spermacoce hepperiana Verde. GC-SZ Th Hél Spermacocefilifolia (Schumaeh. & Thonn.) J.-P.Lebrun & Stork GC-SZ Th Hél Spermacoce intricans (Hepper) H.M.Burkill. GCW Th Oro Spermacoce alata Aubl. GC Th Spermacoce octodon (Hepper) Hakki. GC-SZ np Spermacoce ocvmoides Burm.f. GC Ch Spermacoce quadrisulcata (Bremek.) Verde. X X Spermacoce radiata (DC.) Hiern. GC-SZ Th Spermacoce ruelliae DC. GC-SZ Th Spermacoce ruelliae DC. GC-SZ Th Spermacoce stachydea DC. GC-SZ Th Spermacoce verticillata L GC-SZ np Breonadia salicina (Vahl) Hepper & J.R.I. Wood sz mp Rip Calycosiphonla spalhicalyx (K.Sdnun.) Rubbr GC Lmp Keetia cornelia (Cham. & Sehltdl.) Bridsun. sz Lmp Rip Psvdrax acutiflora (Hiern) Bridson GC mp Keetia hispida (Benth.) Bridson. GC Lmp Psydrax parviflora (Afzel.) Bridson GC mp Psydrax manensis (Aubrév. & Pellegr.) Bridson. GCW mp Keetia mannii (Hiern) Bridson GC Lmp Keetia multiflora (Schumaeh. & Thonn.) Bridson. GC Lmp Keetia rubens (Hiern) Bridson. GCW Lmp 46 Annexe 2 (suite) Type Nom actualisé Chorologie biologique Ecologique Psydrax schimperiana (A.Rich.) Bridson sz mp Psydrax subcordata (DC.) Bridson. GC mp Keetia venosa (Oliv.) Bridson GC-SZ Lmp Psydrax parviflora (Afzel.) Bridson. GC mp Psychotria abouabouensis (Schnell) Verde. GCI np Psychotria biaurita (Hutch. & Dalziel) Verde. GCW np Cephae/is castaneopilosa Aké Assi GCI np Psychotria mangenotii (Aké Assi) Verde. GCW Ch Psychotria ombrophila (Schnell) Verde. GCW np Psychotria peduncularis (Salisb.) Steyerm. X X Psychotria peduncularis var. guineensis (Schnell) Verde. GC np Psychotria peduncularis var. hypsophila (K.Schum. & K.Krause) Verde. GC np Psychotria peduncularis var. ivorensis (Schnell) Verde. GC mp Psychotria peduncularis var. suaveolens (Schweinf. ex Hiern) Verde GC np Psychotria peduncularis var. tabouensis (Schnell) Verde. GCI np Psychotria spathacea (Hiern) Verde. GC np Psychotria yapoensis (Schnell) Verde. GCW Ch Chassalia afzelii (Hiem) K.Schum GCW Lmp Chassalia corallifera (A.Chev. ex De Wild.) Hepper GCW np Chassalia elongata Huteh. & Dalziel GCW np Chassalia kolly (Sehumaeh.) Hepper GC np Chassalia laxiflora Benth. GCW np Chassalia subherbacea (Hiern) Hepper GC Ch Chazaliella lophoclada (Hiem) E.M.A.Petit & Verde GCW np Chazaliella sciadephora (Hiem) E.M.A.Petit & Verde. GC np Argocoffeopsis afzelii (Hiern) Robbr. GC Lmp Cojfea canephora Pierre ex A.Froehner GC mp Cojfea ebracteolata (Hiern) Brenan GC np Coffea hum/lis A.Chev GCW np Coffea libericu Hiern GC mp Argocojfeopsis rupestris (Hiern) Robbr. GC np Calycosiphonia spathicalyx (K.Sehum.) Robbr. GC Lmp Cojfea stenophylla G.Don GCW mp Cojfea x arabusta Capot & Aké Assi GC mp Corynanthe pachyceras K.Sehum GC mP Craterispermum caudatum Huteh GC mp Craterispermum cerinanthum Hiern GC mp Craterispermum caudatum Huteh. GC mP Craterispermum laurinum (Poir.) Benth GC mp 47 Annexe 2 (suite) Type Nom actualisé Chorologie biologique Ecologique Cremaspora triflora (Thonn.) K.Schum. GC-SZ Lmp Rip Crossopteryxfebrifuga (Afzel. ex G.Don) Benth GC-SZ mp Cuviera acutiflora DC GC mp Cuviera macroura K.Schum. GC-SZ mp Hél Cuviera nigrescens (Elliott ex Oliv.) Wernham GC mp Dictyandra arborescens Welw. ex Hook.f GC mp Didymosalpinx abbeokutae (Hiem) Keay GC Lmp Diodia rubricosa Hiem GC Ch Diode/la sarmentosa (Sw.) Bacigalupo & Cabral ex Borhidi GC-SZ Lnp Diode/la serrulata (P.Beauv.) Borhidi. GC Ch Arén Euclinia longiflora Salisb GC mp Vangueria agrestis (Schweinf. ex Hiern) Lantz sz np Fadogia cienkowskii Schweinf sz np Fadogia erythrophloea (K.Schum. & K.Krause) Hutch. & Dalziel sz mp Feretia apodanthera Delile sz mp Gaertnera aurea Malcomber X X Gaertnera cooperi Hutch. & M.B.Moss GCW mp Gaertnera longivaginalis (Schweinf. ex Hiern) E.M.A.Petit GC np Gaertnera paniculata Benth GC mp Gardenia aqualla Stapf & Hutch sz np Gardenia erubescens Stapf & Hutch sz np Gardenia imperialis K.Schum GC-SZ mp Hél Gardenia nitida Hook GC-SZ np Gardenia ternifolia Schumach. & Thonn sz np Gardenia ternifo/ia Schumach. & Thonn sz np Gardenia vogelii Hook.f. GC np Geophila afzelii Hiem GC Ch Hymenocol!:us hirsutus (Benth.) Robbr. GC Ch Geophila obvallata Didr GC Ch Geophila repens (L.) I.M.Johnst GC-SZ Ch Geophila repens (L.) I.M.Johnst GC-SZ Ch 1 Fleroya ledermannii (K.Krause) Y.F.Deng GC MP Hél Heinsia crinita (Afzel.) G.Taylor GC mp Hutchinsonia barbata Robyns GCW np 1 Hymenocoleus hirsutus (Benth.) Robbr GC Ch Hymenocoleus libericus (A.Chev. ex Hutch. & Dalziel) Robbr GC Ch Hymenocoleus multinervis Robbr GCW Ch 1 48 1 1 Annexe 2 (suite) Type Nom actualisé Chorologie biologique Ecologique Hymenocoleus nervopilosus Robbr. GC Ch Hymenocoleus rotundifolius (A.Chev. ex Hepper) Robbr GC Ch Hymenodictyon floribundum (Hochst. & Steud.) B.L.Rob GC-SZ mp Sax Ixora aggregata Hutch GCW np Ixora baldwinii Keay X X Ixora brachypoda DC GC-SZ mp Hé! Rio Ixora hiernii Scott-Elliot GC np Ixora laxiflora Sm GC mp Ixora nigerica Keay X X Ixora nimbana Schnell GCW np Keetia bridsoniae Jongkind X X Keetia cornelia (Cham. & Schltdl.) Bridson sz Lmp Rip Keetia hispida (Benth.) Bridson GC Lmp Keetia leucantha (K.Krause) Bridson GC Lmp Keetia mannii (Hiern) Bridson GC Lmp Keetia multiflora (Schumach. & Thonn.) Bridson GC Lmp Keetia rubens (Hiern) Bridson GCW Lmp Keetia rufivillosa (Robyns ex Hutch. & Dalziel) Bridson GC LmP Keetia tenuiflora (Welw. ex Hiern) Bridson GC Lmp Keetia venosa (Oliv.) Bridson GC-SZ Lmp Keetia venosissima (Hutch. & Dalziel) Bridson GC Lmp Kohautia confusa (Hutch. & Dalziel) Bremek GC-SZ Hpy Kohautia tenuis (Bowdich) Mabb GC-SZ Hpy Lasianthus batangensis K.Schum GC np Leptactina densiflora Hook.f. GC Lmp Leptactina densiflora Hook.f. GC Lrnp Macrosphyra longistyla (DC.) Hiern GC-SZ Lmp (mp) Massularia acuminata (G.Don) Bullock ex Hoyle GC mp Mitracarpus hirtus (L.) DC. GC-SZ Th Mitracarpus hirtus (L.) DC GC-SZ Th - Fleroya ledermannii (K.Krause) Y.F.Deng GC MP Hél Mitragyna inermis (Willd.) Kuntze sz mp Hél Fleruya stipulosa (DC.) Y.F.Deng GC-SZ mP Hél Morelia senegalensis A.Rich. ex DC. GC-SZ mp Rio Hél Morinda chrysorhiza (Thonn.) DC GCW mp Morinda longiflora G.Don GC-SZ Lmp Morinda lucida Benth GC-SZ mp Morinda morindoides (Baker) Milne-Redh GC Lmp Multidentia pobeguinii (Hutch. & Dalziel) Bridson GCW mp Mussaenda afzelii G .Don GC Lmp 49 Annexe 2 (suite) Type Nom actualisé Chorologie biologique Ecologique Mussaenda arcuata Poir. GC-SZ Lmp Rip Hél Mussaenda chippii Wernham GCW Lmp Mussaenda elegans Schumach. & Thonn GC Lmp Mussaenda erythrophylla Schumach. & Thonn GC Lmp Mussaenda grandiflora Benth GCW Lmp Mussaenda isertiana DC GC Lmp Rip Hél Mussaenda nivea A.Chev. ex Hutch. & Dalziel GCW Lmp Mussaenda tristigmatica Cummins GCW Lmp Nauclea diderrichii (De Wild.) Merr. GC MP Sarcocephalus latifolius (Sm.) E.A.Bruce. GC-SZ Lmp(mp) Nauclea gilletii (De Wild.) Merr. GC MP Hél Sarcocephalus latifolius (Sm.) E.A.Bruce GC-SZ Lmpïmp) Nauclea pobeguinii (Pobég. ex Pellegr.) Merr. ex E.M.A. Petit GC-SZ mP Rip Hél Nauclea xanthoxylon (A.Chev.) Aubrév. GC mP RipHél Nichallea soyauxii (Hiern) Bridson GC np Oldenlandia a/finis (Roem. & Schult.) DC. GC Th 0/denlandia chevalieri Pit GCW np 0/den/andia corymbosa L GC-SZ Ch Vahlia digyna (Retz.) Kuntze. X X Oldenlandia goreensis (DC.) Summerh GC-SZ Ch Hé! 0/den/andia herbacea (L.) Roxb. GC-SZ Th Hél 0/denlandia lancifolia (Schumach.) DC. GC-SZ Ch Hé! Oligocodon cunlif eae (Wernham) Keay X X Otomeria cameronica (Bremek.) Hepper GC np Otomeria elatior (A.Rich.) Verde GC-SZ np Hél Oxyanthus formosus Hook.f. GC mp Oxyanthus pal!idus Hiern GC mp Oxyanthus racemosus (Schumach. & Thonn. Keay GC-SZ - - np Oxyanthus speciosus DC. GC mp Oxyanthus subpunctatus (Hiern) Keay oc np Rip Oxyanthus unilocularis Hiem GC np Parapentas setigera (Hiern) Verde GC Ch Pauridiantha afzelii (Hiern) Bremek GC mp Pauridiantha hirtella (Benth.) Bremek GC mp Hél Cojfea mannii (Hook.f.) A.P.Davis X X Pausinystalia lane-poolei (Hutch.) Hutch. ex Lane-Poole GCW mP Pavetta corymbosa (DC.) F.N.Williams GC-SZ mp Pavetta crassipes K.Schum. sz mp Pavetta ixorifolia Bremek GC np 50 1 Annexe 2 (suite) Type Nom actualisé Chorologie biologique Ecologique Pavetta lasioclada (K.Krause) Mildbr. ex Bremek GC-SZ mp Pavetta micheliana J.-G.Adam GCW mp Pavetta mollissima Hutch. & Dalziel GCW mp Pavetta oblongifo/ia (Hiern) Bremek X X Pavetta owariensis P.Beauv. GC mp Pave/ta platycalyx Bremek GCW mp Pentodon pentandrus (Schumach. & Thonn.) Vatke GC-SZ Ch Hél Pleiocoryne fernandensis (Hiern) Rauschert GC Lmp RipHél Pauridiantha stipulosa (Hutch. & Dalziel) Hepper GCW mp Rip Polysphaeria arbuscula K.Schum sz mp Pouchetia a/ricana A.Rich. ex DC. sz mp Coffea mannii (Hook.f.) A.P.Davis GC np Psychotria abouabouensis (Schnell) Verde. GCI np Psychotria albicaulis Scott-Elliot GCW np Psychotria bidentata (Benth.) Hiern GCW np Rip Psychotria brachyantha Hiern GC np Psychotria brachyanthoides De Wild GCI np Psychotria umbellata Thann GC np Psychotria dorotheae Wernham GC np Psychotria ealaensis De Wild GC Lmp Psychotria elongatosepala (De Wild.) E.M.A.Petit GC Lmp Psychotria fernandopoensis E.M.A.Petit GC np Psychotria gabonica Hiern GC mp Psychotria globosa Hiern X X Psychotria guineensis E.M.A.Petit GC mp Psychotria humilis Hiem X X Psychotria humilis var. cornuta (Hiern) E.M.A.Petit GC Ch Psychotria adafoana K.Schum GCW np Psychotria kitsonii Hutch. & Dalziel GC np Ps;_1chotria leptophylla Hiern GC np Psychotria limba Scott-Elliot GCW mp - - Psycholrlu linderi Hepper GCW np Psychotria longituba A.Chev. ex De Wild GCW np Psychotria obscura Zoll. & Moritzi GC-SZ np Psychotria peduncularis (Salisb.) Steyerm X X Psychotria peduncularis var. guineensis (Schnell) Verde. GC np Psychotria peduncularis var. ivorensis (Schnell) Verde. GC mp Psychotria psychotrioides (DC.) Roberty GC-SZ mp Hél Psychotria rufipilis A.Chev. ex De Wild. GCW np Psychotria sadebeckiana K.Schum. GC np 51 1 Annexe 2 (suite) Type Nom actualisé Chorologie biologique Ecologique Psychotria schweinfurthii Hiern GC-SZ np hazaliella sciadephora (Hiern) E.M.A.Petit & Verde. X X Psychotria subglabra De Wild GCW np Psychotria subobliqua Hiern GC np Psychotria vogeliana Benth. GC-SZ np Psychotria yapoensis (Sehnell) Verde. GCW Ch Psydrax arnoldiana (De Wild. & T.Durand) Bridson GC rnP Psydrax horizontalis (Sehumaeh. & Thonn.) Bridson GC-SZ Lmp Psydrax manensis (Aubrév. & Pellegr.) Bridson GCW mp Psydrax parviflora (Afzel.) Bridson GC mp Psydrax subcordata (DC.) Bridson GC mp Richardia brasiliensis Gomes sz Ch Rothmannia hispida (K.Sehum.) Fagerl GC mp Rothmannia longiflora Salisb GC mp Rothmannia munsae subsp. megalostigma (Wernham) Somers GC mp Hél Rothmannia munsae (Sehweinf. ex Hiern) E.M.A X X Rothmannia munsae subsp. megalostigma (Wernham) Somers GC mp Hél Rothmannia urcelliformis (Hiern) Bulloek ex Robyns GC mp 1 Rothmannia whitfieldii (Lindl.) Dandy GC mp Rutidea membranacea Hiem GC Lmp Rutidea parviflora DC. GC-SZ Lmp 1 Rutidea rufipilis Hiern GC Lmp Rutidea smithii Hiern GC Lmp Rytigynia canthioides (Benth.) Robyns GC mp -- -· 1 Rytigynia gracilipetiolata (De Wild.) Robyns GC mp Rytigynia senegalensis GC-SZ mp R.Y!jf:)lnia umbellulata (Hiern) Robyns GC mp 1 Stipularia a/ricana P.Beauv GC np H61 Sabicea brevipes Wernham GC-SZ Lmp Sabicea calycina Benth. GC Lnp Sabicea cordata Hutch. & Dalziel GCW Lnp Sabicea ferruginea (G.Don) Benth GCW Lmp Sabicea harleyae Hepper GCW Lmp Sabicea rosea Hoyle GC Lmp Sabicea venosa Benth. GC Lmp Sabicea vogelii Benth. GCW Lmp Sacosperma paniculatum (Benth.) G.Taylor GC Lmp j Sarcocephalus latifolius (Sm.) E.J\..Bruce X X Sericanthe chevalieri (K..Krause) Robbr X X 1 52 1 Annexe 2 (suite) Type Nom actualisé Chorologie biologique Ecologique Sericanthe chevalieri (K.Krause) Robbr. sz mp Sericanthe toupetou (Aubrév. & Pellegr.) Robbr. GCI mp Sherbournia bignoniiflora (Welw.) Hua GC Lmp Sherbournia calycina (G.Don) Hua GCW Lmp Sperrnacocefilifolia (Sehumaeh. & Tholll.) J.-P.Lebrun & Stork GC-SZ Th Hél Spermacoce filiformis Hiern X X Spermacoce hepperiana Verde. GC-SZ Th Hél Spermacoce intricans (Hepper) H.M.Burkill GCW Th Oro Spermacoce ivorensis Govaerts GCW np Oro Sperrnacoce alata Aubl GC Th Spermacoce exilis (L.O.Williams) C.D.Adams ex W.C.Burger & C.M.Taylor X X Spermacoce octodon (Hepper) Hakki GC-SZ np Spermacoce ocymoides Burm.f. GC Ch Spermacoce pusilla Wall. sz Th Spermacoce quadrisulcata (Bremek.) Verde. X X Spermacoce radiata (DC.) Hiern GC-SZ Th 1 Spermacoce ruelliae DC. GC-SZ Th Spermacoce stachydea DC. GC-SZ Th 1 Spermacoce verticillata L. GC-SZ np Pauridiantha ziamaeana (Jaeq.-Fél.) Hepper GCW mp Stipularia a/ricana P.Beauv. GC np Hél 1 Tarenna bipindensis (K.Sehum.) Bremek. GC Lmp Tarenna conferta (Benth.) Hiern GC-SZ mp Tarenna eketensis Wernham GC Lmp 1 Tarenna fuscoflava (K.Sehum.) S.Moore GC Lmp Tarenna gracilis (Stapf) Keay GCW mp Tarenna nitidula (Benth.) Hiern GCW mp Tarenna pavettoides (Harv.) Sim GC mp Nichallea soyauxii (Hiem) Bridson GC np Tarenna thomasii Huteh. & Dalziel GC mp Hé! Tarenna vignei Huteh. & Dalziel X X Tarenna vignei Huteh. & Dalzicl GCW mp Oldenlandia wauensis Sehweinf. ex Hiern sz Th Rip Tricalysia biafrana Hiem GC mp Empogona bracteata (Hiern) Tosh & Robbr. GCW mp Oro Tricalysia coriacea (Benth.) Hiem GC mp Hél Rip Empogona deightonii (Brenan) Tosh & Robbr. GCW np Tricalysia faranahensis Aubrév. & Pellegr. GCW mp 1 Empogona filiformistipulata (De Wild.) Bremek. GC np 1 53 1 1 Annexe 2 (suite) Type Nom actualisé Chorologie biologique Ecolozluue Empogona macrophylla (K.Sehum.) Tosh & Robbr. GC mp Tricalysia oke/ensis Hiern GC-SZ mp Tricalysia pa/lens Hiern GC mp Empogona reflexa (Huteh.) Tosh & Robbr. GC mp Empogona reflexa var. ivorensis (Robbr.) Tosh & Robbr. GCI mp Tricalysia reticulata (Benth.) Hiern GCW np Oro Uncaria a/ricana G.Don GC LmP Uncaria talbotii Wernham GC LmP Rytigynia argentea (Wernham) Robyns X X Vangueriella vanguerioides (Hiern) Verde. GCW mp Vangueriella disco/or (Benth.) Verde. GCW mp Vangueriella nigerica (Robyns) Verde. GC-SZ mp Vangueriella orthacantha (Mildbr.) Bridson & Verde. GC mp Vangueriella spinosa (Sehumaeh. & Thonn.) Verde. GC-SZ mp Vangueriella vanguerioides (Hiern) Verde. GCW mp Vangueriella glabrescens (Robyns) Verde. GC LmP Vangueriella spinosa (Sehumaeh. & Thonn.) Verde. GC-SZ mp Vangueriella vanguerioides (Hiern) Verde. GCW mp Virectaria multiflora (Sm.) Bremek. GC-SZ Th Virectaria procumbens (Sm.) Bremek. GC Ch 1 1 1 1 1 54 ANNEXE 3 Cartes de distribution spatiale de quelques espèces -.2_____:lL_ -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 101 C--. ( :;;:- 'l \ \ -· A 10 10 A 110 9 9 9 9 8 8 8 8 7 7 7 7 6 6 6 6 5 5 5 5 -9 -2 -1 -9 -2 -1 Argocojfeopsis afzelii (Hiern) Robbr. Nauc/ea latifolia (Sm.) E.A.Bruce -_9 _-8 -7 -6 -5 ±__,_3 _-2 10 110 101 L...-. ( :;;:- ~ \ \ - AÎ!O 9 19 91 ("\._ ~\ )_ l.. 9 f~~A ~ 1 8J rv 'i~ \ , r~ / 18 BI r-.. N \ ~ Â / 18 7J /~ l ( ~J >-< 7 17 71 /~l (,-..._{)-_/Y 17 6J \..._.\ \ ) /j \ D ..;;;_-;·,;---- -) l t 16 61 \... \ ', J[ )/\ ,;~·~ •.. ~ 16 1~ ____, - ~ ~ . ""' 15 SI f ls SL ~- -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 -9 -8 -7 -6 -5 -4 Oxyanthus speciosus DC Oxyanthus subpunctatus (Hiern) Keay 10 10 10 10 9 9 9 9 8 8 8 8 7 7 7 7 6 6 6 6 5 5 5 5 -9 -1 -1 Oxyanthus unllocularis Hiern Pavetta ixorifolia Bremek 55 -2 -1 -9 -2 -1 101 L-,,; :.;. :: - 't \ \ -· A 10 10 A 110 9 9 9 8 8 8 1: 7 7 71 / ,,::y 1 ( "J >--? l 17 6 6 61 \... l \ ) . l ? ) j \ 6 ;;;::;:;;:;,- 16 5 __ 5 SI f ~ ~· , - 15 -9 -1 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 ·1 Psycltotria e/ongatosepa/a (De Wild.) Psychotria calva Thonn E.M.A.Petit -_9 _-8 _ -7 -6 -5 -4 _-3 -2 -1 -9 -1 101 C-,r :.;. :::- 't \ \. -· A 10 j ~. A' (10 9 9 (9 8 ~M 8 BI rv"-l \ .r-'"'----..A r (8 71 /~l ( )-.,l'. y 17 71 1 ;::::,' 1 ( ['.. J r? l 17 " { 6( \... l \ rî ; JJ\ ,;::=:,-:;-- 16 6( \..... l \ ) l ? ))\ 6;::.-;::.-;;-··,. 16 ___, SI f ~ ls si (/S-=· .•.... - (5 - - - -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Psycltotria schweinfurthii Hiern Psycltotria vogeliana Benth -_9 _-!L -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 101 c:« :.;.:::- 't \ \. -· A l10 101 ~~Jfln .------. J..N (10 9 9 9 9 8 8 8 8 7 7 7 7 6 6 6 G 5 5 5 5 -9 -2 -1 -9 -2 -1 Rothmannia Iongiflora Salisb Rothmannia whitfieldii (Lindl.) Dandy 56 1 -L____-_8_ -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 -9 -5 -4 -3 -2 -1 101 L-, '( :.,c: ~ \ \ 10 10 -· A A 110 9 9 9 9 8 8 8 8 7 7 7 7 6 6 6 6 5 5 5 5 -9 -1 -9 -4 -3 -2 -1 Rytigynia canthioides (Benth.) Robyns Sabicea ferruginea (G.Don) Ben th -4 -2 -1 101 C-. '( :.,c: ~ \ \ 10 10 -· A A 110 9 9 9 9 8 8 8 8 7 7 7 7 6 6 6 6 5 5 5 5 -9 -2 -1 -9 -2 -1 Sacospermu paniculatum (Ben th.) G.Taylor Sherbournia ca/ycina (G.Don) Hua -_9 -- -8 -7 -6 -5 -4 -3 -1 -2 -1 101 L-, '( :.,c: ~ \ \_ 10 10 -· A A 110 9 9 9 9 8 8 8 8 7 7 7 7 6 6 6 6 5 5 5 5 -9 -2 -1 -2 -1 Spermacoce octodon (Hepper) Hakki Spermacoce ruelliae DC. 57 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 z 10( L-.< :.;.::- 't \ \_ -· .A.·~ 110 101 ~ -- A (10 9 9 91 ~~ t>: ~ ~ (9 8 8 8( 1'0"-l \ ',r'---,_ _A / (8 7 7 71 1 r<::::' l ( 1'. J >-< l (7 6 6 6( \._. J \ ) - l I }/\ 6;;;:;;:;;;~-- (6 5 5 - (5 51 --~ -8f~ · -9 -2 -1 -9 -4 -3 -2 ;l Spermacoce verticillata L. Tricalysia blafrana Hiern -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 -2.______:.8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 10( c.,., < :.;. ::- ~ \ \ 1 (.....,.(.,..!...,- ~ \. '\... .a.·- (10 -· Al1, ~ -- 9( L...... 9( ?'\.~( ~ L 1 (,_ 19 f\. ~\ .J ~ \ (9 8( A.N \ ~ Â / la 81 rv'-l \ ,,r~_A r' 18 7( } ,,<:: --/ ! ~ y (7 7( /~ l ( 1'. J >-< l 17 ( " { 6( \.;_ 1 ( }/\ o;;;:;;:;;;ë;- (6 6( \._ 1 \ ;- ( -) JI\,;~_"';;'"' 16 \ ) l --...... , V:: --. .., ,.,.._ - SI ) l~ 15 SL ! IS -9 -8 -7 -6 -5 -4 ·.:J---2 -9 -8 -7 -6 -5 -4 -3 -2 -1 Tricalysia coriacea (Benth.) Hiern Tricalysia rejlexa (Hutch.) Tosh & Robbr. 58