Contrat d’étude Ifremer 2013 n° 5210063

Contrôle de surveillance 2013 de la masse d’eau côtière FRGC53 et de la masse d’eau de transition FRGT30

Partie 1 : invertébrés

SAURIAU P.-G. 1, AUBERT F. 1, LEGUAY D. 2, MASSE A. 1, SAURIAU M. 1

1 LIENSs, CNRS, Université de la Rochelle, 2 rue Olympe de Gouges, 17000 La Rochelle 2 IFREMER, Place Gaby Coll, BP 5, 17137

Avril 2014

Sommaire

1. INTRODUCTION...... 1

2. MATERIEL & METHODES ...... 4 2.1. STATIONS DU CONTROLE DE SURVEILLANCE INVERTEBRES BENTHIQUES ...... 4 2.1.1 Arcay et La Flotte...... 4 2.1.2 Plage de la Charge Neuve...... 5 2.2. CALENDRIER DE REALISATION DES OPERATIONS A LA MER...... 6 2.3. CONTROLE DE QUALITE SUR LES PRELEVEMENTS ...... 8 2.3.1 Arcay...... 8 2.3.2 La Flotte ...... 8 2.3.3 Plage de la Charge Neuve...... 9 2.4. ANALYSE DES SEDIMENTS ...... 10 2.5. ANALYSE DES ECHANTILLONS FAUNISTIQUES ...... 13 2.6. DETERMINATION DES ESPECES ...... 15 2.7. ANALYSE DE LA QUALITE ECOLOGIQUE : INDICE M-AMBI...... 16 3. RESULTATS...... 20 3.1. PLAGE CHARGE NEUVE...... 20 3.1.1 Analyse des sédiments ...... 20 3.1.2 Analyse faunistique...... 21 3.1.3 Analyse statut écologique selon le M-AMBI...... 26 3.2. LA FLOTTE ...... 27 3.2.1 Analyse des sédiments ...... 27 3.2.2 Analyse faunistique...... 28 3.2.3 Analyse statut écologique selon le M-AMBI...... 36 3.3. ARCAY ...... 37 3.3.1 Analyse des sédiments ...... 37 3.3.2 Analyse faunistique...... 38 3.3.3 Analyse statut écologique selon le M-AMBI...... 43 3.3.4 Bilan du statut écologique selon le M-AMBI...... 44 4. BILAN DU TEMPS PASSE AUX PRELEVEMENTS ET ANALYSES ...... 45

5. BIBLIOGRAPHIE...... 46

Contrat de prestation 2013 5210063 : invertébrés benthiques

1. Introduction

La Directive Cadre sur l’Eau 2000/60/CE établit un nouveau cadre pour une politique communautaire dans le domaine de l’eau. Elle fixe comme objectif général d’atteindre, à l’horizon 2015, un bon état écologique et chimique des masses d’eaux souterraines et de surface, ces dernières incluant les eaux côtières (MEC) et les eaux de transition (MET) (http://envlit.ifremer.fr/surveillance/directive_cadre_sur_l_eau_dce). Le contrôle de surveillance de l’état écologique s’effectue entre autres éléments biologiques sur les macrophytes, les macroinvertébrés et les phanérogames marines. Dans le district Loire-Bretagne (Figure 1), les masses d’eau côtière et de transition les plus méridionales retenues pour le contrôle de surveillance sont la masse d’eau côtière « Pertuis breton » FRGC53 et la masse d’eau de transition « Estuaire du Lay » FRGT31.

Figure 1 : Masse d’eau côtière « Pertuis breton » FRGC53 dans le district Loire-Bretagne. Source http://envlit.ifremer.fr/surveillance/directive_cadre_sur_l_eau_dce

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Les opérations de surveillance retenues en 2013 pour la masse d’eau côtière Pertuis breton FRGC53 (Figure 2) étaient : o échantillonnage stationnel des invertébrés benthiques de substrat meuble en avril 2013 sur les stations subtidales La Flotte et Arcay selon le protocole DCE (Anonymes, 2005) de cinq réplicats (0,1 m²) par station ; o échantillonnage stationnel des invertébrés benthiques de substrat meuble en avril 2013 sur la station intertidale de la plage de la Charge Neuve selon le protocole DCE (Anonymes, 2005) de cinq réplicats (0,1 m²) par station ; o échantillonnage stationnel sur une grille de 30 points des herbiers de la zostère naine Zostera noltei Hornemann en septembre 2013 sur les stations Plage de la Charge Neuve et Fiers d’Ars selon le protocole DCE (Auby et al., 2012).

Figure 2 : Masse d’eau côtière « Pertuis breton » FRGC53. Source http://envlit.ifremer.fr/surveillance/directive_cadre_sur_l_eau_dce. La station herbier Plage de la Charge Neuve est identique à la station faune des invertébrés et la station herbier Fier d’Ars n’est pas encore visible sur la carte.

- 2 - Contrat de prestation 2013 5210063 : invertébrés benthiques

Les opérations de surveillance retenues en 2013 pour la masse d’eau de transition « Estuaire du Lay » FRGT30 (Figure 3) étaient : o échantillonnage stationnel sur une grille de 30 points des herbiers de la zostère naine Zostera noltei Hornemann en septembre 2013 sur la station Lay crochon 1982 selon le protocole DCE (Auby et al., 2012).

Figure 3 : Masse d’Eau de Transition « Estuaire du Lay » FRGT30. Source http://envlit.ifremer.fr/surveillance/directive_cadre_sur_l_eau_dce. La station herbier Lay crochon 1982 n’est pas encore visible sur la carte.

L’objet de ce document est d’exposer les résultats de l’échantillonnage stationnel des invertébrés benthiques subtidaux et intertidaux dans la masse d’eau côtière FRGC53 Pertuis Breton. Deux précédents documents ont fait l’objet des rendus de résultats du contrôle de surveillance 2013 pour : - les macroalgues intertidales (Sauriau & Bréret, 2014) ; - les herbier de Zostera (Zosterella) noltei (Sauriau et al., 2014).

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2. Matériel & méthodes

2.1. Stations du contrôle de surveillance invertébrés benthiques

2.1.1 Arcay et La Flotte

o Stations échantillonnées pour la faune des sables fins à vases sableuses ; o Stations échantillonnées depuis 2007 (Tableau 1 et Tableau 2) ; o Echantillonnage stationnel et quantitatif de cinq réplicats à la benne Van Veen de 0,1 m² de la macrofaune invertébrée benthique de substrat meuble subtidal selon protocole DCE (Anonymes, 2005).

Tableau 1 : Caractéristiques des suivis sur la station échantillonnée.

Station Arcay Regroupement La Flotte Moyens à la mer Embarcation côtière avec treuil (bateau de location) Paramètres Macrofaune benthique (détermination) 1 granulométrie + 1 matière organique Fréquence mars-avril, tous les 3 ans du plan de gestion Opérateur prélèvement CNRS CREMA (2006-2007) Opérateur tri et détermination CNRS CRELA (2008-2009) Opérateur mesure CNRS LIENSs (2010-2013) granulométrie Opérateur mesure matière organique Début prélèvements 2006 (prospection) et 2007-2013 (surveillance)

Tableau 2 : Caractéristiques des suivis sur la station échantillonnée.

Station La Flotte Regroupement Arcay Moyens à la mer Embarcation côtière avec treuil (bateau de location) Paramètres Macrofaune benthique (détermination) 1 granulométrie + 1 matière organique Fréquence mars-avril, tous les 3 ans du plan de gestion Opérateur prélèvement CNRS CREMA (2006-2007) Opérateur tri et détermination CNRS CRELA (2008-2009) Opérateur mesure CNRS LIENSs (2010-2013) granulométrie Opérateur mesure matière organique

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Début prélèvements 2006 (prospection) et 2007-2013 (surveillance)

2.1.2 Plage de la Charge Neuve

o Station échantillonnée pour la faune des sables fins à vases sableuses ; o Station échantillonnée depuis 2007 (Tableau 3) ; o Echantillonnage stationnel et quantitatif de cinq réplicats avec un quadrat de 0,1 m² de la macrofaune invertébrée benthique de substrat meuble intertidal selon protocole DCE (Anonymes, 2005).

Tableau 3 : Caractéristiques des suivis sur la station échantillonnée.

Station Plage de la Charge Neuve Regroupement Non Moyens à la mer Accès pédestre à deux personnes Paramètres Macrofaune benthique (détermination) 1 granulométrie + 1 matière organique Fréquence mars-avril, tous les 3 ans du plan de gestion Opérateur prélèvement CNRS CREMA (2006-2007) Opérateur tri et détermination CNRS CRELA (2008-2009) Opérateur mesure CNRS LIENSs (2010-2013) granulométrie Opérateur mesure matière organique Début prélèvements 2006 (prospection) et 2007-2013 (surveillance)

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2.2. Calendrier de réalisation des opérations à la mer

Les opérations se sont déroulées sur un total de 2 jours entre le 04/04/2013 et le 11/04/2013 (Tableau 4). o En domaine subtidal un regroupement des opérations à la mer de printemps s’est opéré avec les opérations réalisées dans les masses d’eau côtière FRFC02 Pertuis Charentais et FRFC01 Côte nord est Oléron. Le travail à la mer a mobilisé 5 personnes jour-mer le 04/04/2013 y compris le pilote du navire ESTRAN (Figure 4); o En domaine intertidal le suivi des invertébrés de la station intertidale Plage de la Charge Neuve a été réalisé le 11 avril 2013.

Au total, les suivis 2013 de la surveillance DCE ont mobilisés un total de 7 personnes jour-mer sur 2 jours en mer ou sur les estrans. Ces chiffres ne comprennent pas ni le temps nécessaire à la préparation des opérations à la mer ni le temps de dépouillement des informations collectées.

Tableau 4 : Calendrier des opérations à la mer sur les sites échantillonnés.

Code Nom point Code Type de suivi Type Dates Nombre Opérateurs point (toponymie) masse de personnes d’eau station jour-mer RB148 Arcay FRGC53 Subtidal Meuble Point 04/04/2013 5 CNRS LIENSs Faune des Embarquement Invertébrés N/O ESTRAN RB132 La Flotte FRGC53 Subtidal Meuble Point 04/04/2013 5 CNRS LIENSs Faune des Embarquement Invertébrés N/O ESTRAN RB131 Plage de la FRGC53 Intertidal Meuble Point 11/04/203 2 CNRS LIENSs Charge Faune des Neuve Invertébrés Total - - - - 2 jours 7 -

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P-G. Sauriau © Figure 4 : Navire Océanographique ESTRAN utilisé pour l’échantillonnage DCE avec benne en domaine subtidal. Cliché © Sauriau/CNRS 2008.

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2.3. Contrôle de qualité sur les prélèvements

2.3.1 Arcay

Il y a eu deux essais manqués sur les 7 mises à l’eau, chacune des 5 autres bennes étant validées car remplies entre 75 et 100% (Figure 5).

Arcay Subtidal meuble faune : 5 réplicats validés

Figure 5 : Situation géographique de la station Arcay et validation des prélèvements.

2.3.2 La Flotte

Aucune benne n’a nécessité d’être refaite. Un problème de batterie (seconde batterie déchargée en fin de journée) sur l’appareil photo numérique n’a pas permis de prendre les clichés de validation (Figure 6).

La Flotte Subtidal meuble faune : 5 réplicats validés

Pas de cliché Pas de cliché disponible disponible

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Figure 6 : Situation géographique de la station La Flotte et validation des prélèvements.

2.3.3 Plage de la Charge Neuve

Les réplicats prélevés au quadrat et à la pelle ou à la main en accès pédestre ne posent pas de difficulté à part le tamisage long et parfois difficile lorsque des flaques d’eau sont peu nombreuses ou peu profondes ou lorsque la météo est humide à souhait (Figure 7). Plage Charge Neuve Intertidal meuble faune : 5 réplicats validés

Figure 7 : Situation géographique de la station Plage de la Charge Neuve et validation des prélèvements y compris granulométriques.

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2.4. Analyse des sédiments

Le principe général de l’analyse granulométrique à visée biosédimentaire (Chassé & Glémarec, 1976) est d’obtenir une estimation du type sédimentaire à partir des 3 principales fractions de sédiments que sont les pélites (< 63 μm), les sables (63 μm < X < 2 mm) et les graviers (> 2 mm) selon les coupures en unités communément admises (Figure 8).

Figure 8 : Echelle granulométrique AFNOR, unité Φ et classifications communes utilisées (Cojan & Renard, 1999). Pour l’analyse, chaque prélèvement est vidé dans un bol identifié pour être séché à l’étuve à 80°C pendant 72h. Un sous-échantillon de 100g (200g pour les sables) est remouillé dans un

- 10 - Contrat de prestation 2013 5210063 : invertébrés benthiques défloculant (métaphosphate de sodium à 40 g/l), et malaxé avec une spatule voire éventuellement passé aux ultrasons 20 mn pour désagréger les amas les plus petits. Le lendemain l’échantillon est tamisé à l’eau sur maille de 63 µm jusqu’à obtenir un filtrat clair, le but étant d’éliminer les pélites. Le refus de tamis est récupéré et mis à l’étuve à 80°C pendant 72h. L’échantillon est ensuite passé sur une colonne de tamis normalisés (Figure 9). La colonne contient 17 tamis (4000 µm, 2000 µm, 1600 µm, 1250 µm, 1000 µm, 800 µm, 630 µm, 500 µm, 400 µm, 315 µm, 250 µm, 200 µm, 160 µm, 125 µm, 100 µm, 80 µm, 63 µm), répartis en deux passages successifs (4000 à 400 et 315 à 63 µm). Chaque tamis est pesé vide au préalable puis plein avec sa fraction de sédiment après tamisage avec une balance Sartorius FB12CCE-S afin de déterminer le type et la quantité de sédiments dans chaque échantillon. Une précision à 0,01 g est utilisée pour les pesées. La tamiseuse Retsch est mise en marche 15 minutes à 2000 vibrations par secondes avec une amplitude verticale de 1,5 mm.

Figure 9 : Colonne de tamis normalisés AFNOR sur tamiseuse Retsch et balance Sartorius à 0,01 g. Photo © CNRS / Sauriau P.-G. 2008. Les tamis sont ultérieurement débarrassés de leurs impuretés grâce à un appareil de nettoyage aux ultrasons Elma. Cette méthode est considérée aujourd’hui comme la méthode la

- 11 - Contrat de prestation 2013 5210063 : invertébrés benthiques plus efficace dans les procédés de nettoyage de précision sans influence néfaste sur le maillage des tamis. Les résultats des différentes pesées sont ensuite analysées par la macro- procédure GRADISTAT (Blott & Pye, 2001), permettant d’obtenir des paramètres de forme et le type de sédiment. Le type de sédiment est alors interprété vis-à-vis de la classification de Chassé & Glémarec (1976) reprise par Hily (1976) dans les Pertuis Charentais (Figure 10).

Figure 10 : Type biosédimentaire (Chassé & Glémarec, 1976).

L’analyse de la teneur en matière organique suit le principe de la perte au feu à 450 °C. Chaque sédiment est référencé par son numéro de station puis mis à l’étuve à 100°C 72 h afin d’obtenir un échantillon totalement sec. Les masses des coupelles numérotées sont mesurées ainsi que la masse des coupelles + le sédiment sec (environ 1g) par pesée sur une balance Mettler AE 240 avec une précision à 0,0001 g. Les échantillons sont ensuite placés dans un four à moufles 450°C pendant 5h permettant une crémation effective sur 4h compte tenue du temps de montée en température du four pendant 1h. Des cendres minérales sont ainsi obtenues et sont également pesées sur la même balance après refroidissement à température ambiante dans un dessiccateur. La formule suivante permet de déterminer la teneur en matières organiques : Matière sèche (g) – matière minérale (g) % matières organiques = Matière sèche (g)

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La perte au feu est une méthode simple et peu coûteuse mais elle n’est pas très précise vis-à-vis d’une mesure de carbone ou d’azote organique particulaire. Elle peut aussi être biaisée lorsque le sédiment renferme une proportion significative d’argile dont l’eau constitutive des feuillets est évaporée à 450°C (Barillé-Boyer et al., 2003). Elle permet cependant d’avoir une estimation en première approximation des teneurs en matières organiques des sédiments.

2.5. Analyse des échantillons faunistiques L’analyse des échantillons faunistiques commence par un lavage sur tamis afin de récupérer leurs eaux de fixation formolée, eaux qui sont récupérées dans des bidons normalisés afin d’être traitées par une entreprise spécialisée. Ce rinçage s’effectue dans un évier spécialement aménagé en extérieur ou sous sorbonne avec connexion directe au bidon de récupération des eaux formolées. Le lavage se termine par un rinçage soigneux afin d’éliminer le maximum de sédiments fins et les résidus formolés (Figure 11). Ce rinçage nécessite généralement d’utiliser une série de tamis parmi les suivants de 10 mm, 5 mm, 1 mm et 0,5 mm pour le dernier de façon à récupérer des refus homogènes en taille.

L’opération de tri des refus s’effectue en deux étapes successives chacune d’elle réalisée si possible par un opérateur différent :

• Etape 1 : tri à vue par un premier opérateur. Le tri est facilité lorsque la forme des débris coquilliers est homogène (cf. le lavage sur la série de tamis) ou bien lorsque leur faible quantité permet un étalement monocouche dans la bassine de tri. En cas de refus de tamis hétérogène en taille, un tamisage successif sur trois ou quatre mailles de tamis a été effectué (10 mm, 5 mm, 1 mm et 0,5 mm) afin d’homogénéiser la taille des débris coquilliers. Le tri à vue est aussi facilité après un rinçage hydraulique des éléments faunistiques les plus légers, récupération dans un tamis de 0,5 mm, coloration au rose Bengale du refus puis rinçage (Figure 11). • Etape 2 : tri de vérification à la loupe binoculaire des refus de tamis les plus fins (1 et 0,5 mm) par un opérateur différent de celui ayant réalisé le premier tri. La détection des organismes de la macrofaune (annélides, crustacés, juvéniles de mollusques) est facilitée par la coloration au rose Bengale. Elle est de courte durée de façon à contrôler l’intensité de coloration (Figure 11). Ce procédé a l’avantage de faciliter la détection des plus petits organismes tout en n’altérant pas ou peu leur

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coloration d’origine. Le temps de coloration est de l’ordre de quelques dizaines de secondes à moins d’une demi-minute.

A

B C

D E

Figure 11 : Opérations de rinçage des eaux de fixation puis de lavage (A), de tri hydraulique (B), de coloration des refus (C) puis rinçage (D) et de tri à la binoculaire € des éléments les plus fins. Photos © CNRS / Chenoun M., Sauriau M. & Cajeri P.

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2.6. Détermination des espèces Les espèces déterminées font partie de la faune macroscopique (macrofaune > 1 mm). Ces espèces peuvent appartenir à : • l’endofaune (faune vivant dans les sédiments) et vivre isolement ou en association, • l’épifaune (faune vivant au-dessus des sédiments), être libre de leur mouvement (épifaune vagile) ou bien fixée (épifaune fixée). Dans chacun de ces deux cas, les espèces peuvent vivre isolement ou en colonie. La nomenclature de la faune suit celle donnée par l’European Register of Marine Species (ERMS) disponible sur le site MarBef (http://www.marbef.org/) et incluse dans le World Register of Marine Species (WoRMS) (http://www.marinespecies.org/index.php) : • Chaque espèce est nommée par son non latin binomial de genre et d'espèce suivi du nom de l'auteur l'ayant initialement décrite et de la date de publication de la description, par exemple Spisula subtruncata (da Costa, 1778). • Lorsque un spécimen est abîmé ou lorsqu'un ou des appendices permettant de caractériser l'espèce de ce spécimen est ou sont absents, par exemples palpes, branchies, élytres, tâches oculaires, etc., l'analyse taxinomique ne peut être menée à son terme et seul le nom de genre est utilisé, par exemple le Némerte Lineus. • En cas d'incertitude sur le genre, seul de nom de la famille est utilisé, par exemple HESIONIDAE et, en cas d’incertitude sur la famille ou sur les niveaux supérieurs de la taxinomie, seul le nom de l'embranchement, par exemple NEMERTEA, est utilisé. Les déterminations faunistiques s’appuient en particulier sur les ouvrages listés en Tableau 5. Les ouvrages généraux de Hayward & Ryland (1990a, 1990b) sont utilisés avec parcimonie, leur analyse révélant que ne sont listées que 75% de la faune des Pertuis Charentais (de Montaudouin & Sauriau, 2000), ce chiffre descendant à 60% pour les polychètes. La validation des fichiers de saisies et la qualification des données taxinomiques ont été assurées par P.-G. Sauriau (CNRS) et certains spécimens ont été revus par J. Jourde (ULR). La participation du laboratoire LIENSs depuis 2011 aux tests de taxinomie benthique organisés par Unicomarine (rings tests NMBAQC semestriels) ou le RESOMAR (Exercice annuel) a favorisé une mise à jour générale des connaissances sur des groupes faunistiques ou taxons reconnus difficiles comme les familles des Ampharetidae, Cirratulidae, Glyceridae, Goniadidae, Hesionidae, Lumbrineridae, Opheliidae, Maldanidae, Nephtidae ou le genre Bathyporea.

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Tableau 5 : Ouvrages principaux utilisés pour les déterminations taxinomiques.

Embranchement Ouvrage Annelida Fauvel (1923, 1927), Hartmann-Schröder (1971), George & Hartmann- Schröder (1985), Pleijel (1988), Westheide (1990), Pleijel & Dales (1991), Chambers & Muir (1997), Rouse & Pleijel (2001), Dauvin et al. (2006) + documents NMBAQC Arthropoda Naylor (1972), Lincoln (1979), Mauchline (1984), Smaldon et al. (1993), Ingle (1996), Dauvin & Bellan-Santini (1988), Bellan-Santini & Dauvin (1988), Dauvin & Bellan-Santini (1996, 2002), Ingle & Christiansen (2004), Martin (2011) + documents NMBAQC Chordata Millar (1969, 1970), Degraer et al.(2006); Cnidaria Manuel (1988), Wood (2005) Echinodermata Southward & Campbell (2006), Martin (2011) Mollusca Tebble (1966), Glémarec (1968), Jones & Baxter (1987), Graham (1988), Thompson (1988), Poppe & Goto (1991, 1993), Houart (2001), Degraer et al. (2006), Martin (2011) Nemertea Gibson (1994) Phoronida Emig (1979) Sipunculida Gibbs (2001)

2.7. Analyse de la qualité écologique : indice M-AMBI La méthode d’analyse de la qualité écologique est basée sur le concept d’indice biotique : • Un indice biotique permet de statuer sur l’état écologique d’un fond sédimentaire à partir de la composition faunistique des peuplements qu’il héberge. • La méthode repose sur la reconnaissance parmi les espèces constitutives du peuplement de cinq groupes écologiques de polluo-sensibilités différentes (Hily, 1984) en relation avec la réponse de chaque espèce à la teneur en matière organique des sédiments, que celle-ci soit d’origine pétrolière, anthropique (rejets urbains) ou industrielle comme les résidus de traitement de bois (Tableau 6).

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Tableau 6 : Groupes écologiques de polluo-sensibilités différentes (Hily, 1984).

Groupe Type d’espèces Caractéristiques Groupes trophiques Largement dominantes en conditions suspensivores, normales - disparaissent les premières carnivores sélectifs, Sensibles à une I lors de l’enrichissement du milieu. - quelques déposivores hypertrophisation dernières à se réinstaller tubicoles de sub- surface Indifférentes à Espèces peu influencées par une carnivores et II une augmentation de la quantité de MO nécrophages peu hypertrophisation sélectifs naturellement présentes dans les vases, déposivores tubicoles mais, leur prolifération étant stimulée de surface profitant Tolérantes à une III par l’enrichissement du milieu, elles du film superficiel hypertrophisation sont le signe d’un déséquilibre du chargé en matière système organique Opportunistes de cycle de vie court (souvent <1 an) déposivores de sub- IV second ordre proliférant dans les sédiments réduits surface Opportunistes de prolifèrent dans les sédiments réduits V premier ordre sur l’ensemble de leur épaisseur déposivores jusqu’à la surface

• Différents indices ont été proposés (Grall & Glémarec, 2003) mais l’un des plus utilisés aujourd’hui est l’AZTI Marine Benthic Index ou AMBI disponible sur le site de l’AZTI (http://ambi.azti.es/). Les réflexions menées depuis la proposition initiale de l’AMBI par Borja et al. (2000, 2003, 2004) et les difficultés d’interprétation de cet indice comme explicitées par Borja & Muxika (2005) ont abouti à la proposition d’un indice multivarié ou M-AMBI (Muxika et al., 2007). • Cet indice est retenu et utilisé par la France dans le cadre de la DCE à l'issue de sa participation au GIG NEA. Il est basé sur les métriques suivantes : - Richesse spécifique : la richesse spécifique (RS) se définit classiquement comme le nombre d'espèces recensées à une échelle d'espace déterminée, ici la station ponctuelle. - Diversité spécifique : la diversité (H’), intégrant d'une part la richesse spécifique et d'autre part l'abondance relative des espèces, reflète l'équilibre dynamique de la biocénose et permet d'estimer le degré d'évolution entre les stades pionnier et mature d'un peuplement. L'indice le plus couramment utilisé en écologie est celui de Shannon (1948) ; par analogie avec la théorie de l’information, ce dernier exprime la diversité d'une communauté en fonction du nombre d'espèces récoltées et du nombre d'individus de chaque espèce (Frontier & Pichod-Viale, 1991) : n H’= - ∑ (pi log2 pi) i=1 Avec n : nombre d'espèces et pi : fréquence relative de l'espèce i dans le prélèvement. - AMBI : cet indice se base sur la reconnaissance parmi les espèces constitutives des peuplements benthiques de cinq groupes écologiques de polluo-

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sensibilités différentes (Tableau 6) et une pondération particulière de chaque groupe écologique par une constante qui représente le niveau de perturbation auquel les espèces sont associées : AMBI={(0×%GI )(+ 1,5×%GII )+(3×%GIII)+(4,5×GIV )+(6×%GV )}100 Avec GI, GII, GIII, GIV et GV : proportion d’individus de chacun des groupes écologiques • Cet indice est calculé pour chaque station à partir d’une analyse factorielle des correspondances, déterminant trois axes perpendiculaires minimisant le critère des moindres carrés (Bald et al., 2005). La projection dans ce nouveau repère des deux points de référence correspondant à l’état le plus dégradé et l’état le meilleur, permet de définir un nouvel axe sur lequel sont projetés l’ensemble des points des stations (Figure 12). Pour chacun d’eux est calculée la distance qui le sépare du point le plus dégradé, en considérant que le segment de droite du point le plus dégradé à celui du meilleur état, à une longueur de 1. Cette distance bornée par 0 et 1 est le M-AMBI.

Figure 12 : Définition du statut des stations échantillonnées par projection sur l'axe factoriel défini par les conditions de référence (Bald et al., 2005).

• Les stations échantillonnées lors du contrôle de surveillance se réfèrent à trois types d’environnement hydro-sédimentaires (sables fins plus ou moins envasés subtidaux, sables fins plus ou moins envasés intertidaux, sables fins à moyens exposés) et, conséquemment, à trois conditions de référence distinctes (Tableau 7).

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Tableau 7 : Conditions de référence retenues pour le calcul de la valeur de M-AMBI dans les eaux côtières par la France.

Environnement Etat AMBI Diversité Richesse hydro-sédimentaire écologique de Shannon-Weaver spécifique Sables fins plus ou Très bon 1 4 58 moins envasés subtidaux Très mauvais 6 0 1

Sables fins plus ou Très bon 1 4 35 moins envasés intertidaux Très mauvais 6 0 1

Sables (fins à moyens) Très bon 1 3,5 15 exposés Très mauvais 6 0 1

• Les indices AMBI et M-AMBI sont calculés à partir du logiciel AMBI 4.1 (http://ambi.azti.es/). • La grille de lecture du M-AMBI, telle qu'adoptée par la France au sein du GIG NEA, est exposée dans le suivant (Tableau 5 suite). Elle permet par exemple à partir d’une valeur de l’indice M-AMBI de 0,78 de classer le statut écologique en TRES BON.

Tableau 7 (suite) : Valeurs définissant les cinq états écologiques de l’indice M-AMBI dans les masses d’eaux côtières françaises. Classes [0 - 0,2] ] 0,2 - 0,39] ] 0,39 - 0,53] ] 0,53 - 0,77] ] 0,77 – 1]

Etat écologique Très mauvais Mauvais Moyen Bon Très bon

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3. Résultats 3.1. Plage Charge Neuve

3.1.1 Analyse des sédiments

L’analyse granulométrique indique que ce sont des sédiments vaso-sableux composés à 52 % de sables fins de taille de grains jusqu’à 250 µm et 47 % de pélites (Tableau 8). Le taux de matière organique réalisé sur trois sous-échantillons est moyen de 3,8 à 5,3 % (Tableau 9). Des résultats similaires ont été obtenus depuis 2007 mais avec un moins fort envasement de cette station en 2010 par rapport à 2007 et 2013.

Tableau 8 : Résultats bruts (g) de l’analyse granulométrique.

Information Maille Pesée Pesée Commentaire Sédiment de tamis tamis vide tamis+sédiment (g) (g) (g) DATE_ANALYSE 4000 603,22 604,4 débris, herbe 1,18 21/06/2013 2000 494,58 495,01 0,43 OPERATEUR_ANALYSE 1600 454,37 454,58 0,21 M_Sauriau 1250 422,09 422,32 0,23 SED_ANALYSE 1000 416,73 416,95 0,22 100 800 384,61 384,79 0,18 NOM_ME 630 402,64 402,83 0,19 Pertuis_Breton 500 363,61 363,81 0,20 NOM_STATION 400 348,42 348,67 0,25 Plage Charge Neuve 315 343,28 343,57 0,29 MOIS_STA 250 330,2 330,61 0,41 Avril 200 328,73 329,5 0,77 CODE_ME 160 315,7 317 1,30 FRGC53 125 312,13 326,42 14,29 CODE_STA 100 309,41 327,1 17,69 IMFZno1 80 298,93 310,23 11,30 CODE_ANNEE 63 298,91 303,02 4,11 2013 0 377,06 377,45 46,75

Tableau 9 : Résultats de l’analyse de la teneur en matières organiques. (%) TYPE DATE ANALYSE ANALYSE ANALYSE ANALYSE NOM_STA NOM_STA CODE_ME CODE_ME MOIS_STA MOIS_STA BATHY_STA BATHY_STA OPERATEUR CODE_POINT CODE_POINT CODE_ANNEE CODE_ANNEE TAUX_MO_SED

FRGC53 2013 Plage Charge Neuve Intertidal avril MO perte au 17/06/2013 M_Sauriau IMFZno1 5,33 feu 4,68 3,81

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3.1.2 Analyse faunistique

Pour la station échantillonnée, un ensemble de 29 taxons a été déterminé (Tableau 10).

Tableau 10 : Composition taxinomique de la station.

Taxon Auteur Embranchement Classe Sous-Classe Ordre Famille Abra tenuis (Montagu, 1803) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Veneroida Semelidae ACTINIARIA - Cnidaria Anthozoa Hexacorallia Actiniaria - Ampharete finmarchica (M. Sars, 1864) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Ampharetidae Aphelochaeta marioni (Saint-Joseph, 1894) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Cirratulidae Boccardiella hamata (Webster, 1879) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Spionida Spionidae Capitella capitata (Fabricius, 1780) Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Capitellidae Carcinus maenas (Linnaeus, 1758) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Portunidae Cerastoderma edule (Linnaeus, 1758) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Veneroida Cardiidae Clymenura sp. Verrill, 1900 Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Maldanidae Cyclope neritea (Linnaeus, 1758) Mollusca Gastropoda Caenogastropoda Neogastropoda Nassariidae Exogone (Exogone) naidina Örsted, 1845 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Syllidae Glycera tridactyla Schmarda, 1861 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Glyceridae Heteromastus filiformis (Claparède, 1864) Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Capitellidae Idotea balthica (Pallas, 1772) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Isopoda Idoteidae Littorina littorea (Linnaeus, 1758) Mollusca Gastropoda Caenogastropoda Littorinimorpha Littorinidae Loripes lucinalis (Lamarck, 1818) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Lucinoida Lucinidae Magelona johnstoni Fiege, Licher & Mackie, 2000 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Spionida Magelonidae Microdeutopus gryllotalpa Costa, 1853 Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Amphipoda Aoridae Notomastus latericeus Sars, 1851 Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Capitellidae Pachygrapsus marmoratus (Fabricius, 1787) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Grapsidae Peringia ulvae (Pennant, 1777) Mollusca Gastropoda Caenogastropoda Littorinimorpha Hydrobiidae Philocheras trispinosus (Hailstone in Hailstone & Westwood, 1835) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Crangonidae Polygordius appendiculatus Fraipont, 1887 Annelida Polychaeta Polychaeta incertae sedis - Polygordiidae Scrobicularia plana (da Costa, 1778) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Veneroida Semelidae Streblospio shrubsolii (Buchanan, 1890) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Spionida Spionidae

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Tharyx sp. Webster & Benedict, 1887 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Cirratulidae Tubificoides benedii (Udekem, 1855) Annelida Clitellata Oligochaeta Haplotaxida Tubificidae Tubulanus polymorphus Renier, 1804 Nemertea Palaeonemertea - - Tubulanidae Venerupis philippinarum (A. Adams & Reeve, 1850) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Veneroida Veneridae

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La richesse spécifique totale obtenue en sommant les 5 réplicats est de 29 taxons et se répartie en 5 embranchements dont 2 dominants avec 49 % d’annélides, 28 % de mollusques et 17 % d’arthropodes (Figure 13). Cependant, les mollusques sont les plus abondants avec en moyenne 89 % des abondances suivis des annélides avec 10 % des abondances (Figure 14).

Richesse spécifique : Charge Neuve 2013 Annelida 3%0% Arthropoda Bryozoa Chordata 28% Cnidaria Echinodermata 49% Mollusca Nemertea 0% 3% Phoronida 0% Porifera 17% Sipuncula

Figure 13 : Répartition des taxons par embranchement selon le nombre d’espèces.

Abondance : Charge Neuve 2013 Annelida Arthropoda 0% 10% 1%0% Chordata

Cnidaria

Echinodermata

Mollus ca

Nemertea

Phoronida

Sipuncula 89%

Figure 14 : Répartition des taxons par embranchement selon les abondances.

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Tableau 11 : Richesse et abondances spécifiques Plage de la Charge Neuve.

Richesse spécifique Total 20 18 23 22 24 29 Abondance au m² Moyenne ± EC 7190 7090 11580 12380 11280 9904 ± 63 Année 2013 Embranchement Espèce 1 2 3 4 5 Total % Annelida Ampharete finmarchica 1 0 20 1 4 0.1% 0.7 Aphelochaeta marioni 7 14 15 17 18 71 1.4% 18.7 Boccardiella hamata 6 5 13 9 11 44 0.9% 11.2 Capitella capitata 3 3 3 3 2 14 0.3% 0.2 Clymenura sp. 0 8 0 0 2 10 0.2% 12 Exogone (Exogone) naidina 3 0 2 5 0 10 0.2% 4.5 Glycera tridactyla 1 1 1 3 1 7 0.1% 0.8 Heteromastus filiformis 10 9 10 21 2 52 1.1% 46.3 Magelona johnstoni 0 0 0 1 0 10.0% 0.2 Notomastus latericeus 41 32 48 4 12 137 2.8% 353.8 Polygordius appendiculatus 0 0 0 0 5 5 0.1% 5 Streblospio shrubsolii 9 5 16 8 4 42 0.8% 22.3 Tharyx sp. 2 0 0 0 0 2 0.0% 0.8 Tubificoides benedii 13 7 18 24 14 76 1.5% 39.7 Arthropoda Carcinus maenas 0 3 6 0 1 10 0.2% 6.5 Idotea balthica 0 3 5 13 12 33 0.7% 32.3 Microdeutopus gryllotalpa 0 3 2 4 2 11 0.2% 2.2 Pachygrapsus marmoratus 1 0 1 1 0 3 0.1% 0.3 Philocheras trispinosus 0 0 1 0 0 10.0% 0.2 Cnidaria ACTINIARIA 0 0 22 2 6 0.1% 1.2 Mollusca Abra tenuis 67 56 10597 83 408 8.2% 413.8 Cerastoderma edule 4 5 12 5 2 28 0.6% 14.3 Cyclope neritea 3 0 3 1 2 9 0.2% Littorina littorea 6 1 4 9 1 21 0.4% Loripes lucinalis 2 2 0 4 3 11 0.2% Peringia ulvae 533 542 873 986 934 3868 78.1% Scrobicularia plana 0 0 5 7 3 15 0.3% Venerupis philippinarum 6 10 11 14 10 51 1.0%

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Nemertea Tubulanus polymorphus 1 0 00 1 2 0.0%

La richesse spécifique par réplicat varie entre 18 et 24 espèces pour un cumul sur 0,5 m² de 29 espèces (Tableau 11).

Les abondances par réplicat varient d’environ 7000 à plus de 12000 individus par m² pour une valeur moyenne avec son intervalle de confiance à 95 % de 9900 ± 100 individus par m².

L’espèce la plus abondante est l’hydrobie Peringia ulvae avec 78 % des abondances. Le mollusque bivalve Abra tenuis repésente 8 % des abondances. La polychète Notomastus latericeus représente environ 3 % des abondances. Au moins 2 espèces sont rares avec un seul individu collecté sur la station, ce sont Magelona sp. et Philocheras trispinosus.

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3.1.3 Analyse statut écologique selon le M-AMBI

Parmi les individus recensés, plus de 93 % appartiennent au groupe écologique III des espèces tolérantes (est ici retrouvé l’effet des effectifs de Peringia ulvae). Tous les réplicats présente des espèces des groupes IV et V des espèces opportunistes de premier et second ordre (Figure 15). L’indice AMBI est de 3,05 avec 29 taxons retenus et une diversité de 1,50.

Figure 15 : Proportion des groupes écologiques dans les 5 réplicats.

Le calcul de l’indice M-AMBI réalisé sur le regroupement des 5 réplicats par station fournit une valeur de 0,59. Le statut écologique de cette station en 2013 est bon.

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3.2. La Flotte

3.2.1 Analyse des sédiments

L’analyse granulométrique indique que les sédiments sont composés à 57 % de pélites et 36% de sables fins dont le mode est à 113 µm. Ce sont des vases sableuses (Tableau 12) avec une faible fraction grossière. Le taux de matière organique réalisé sur trois sous-échantillons est moyen de 3,4 à 4,7 % (Tableau 13). Des résultats sensiblement similaires caractérisent cette station de vases sableuses suivie depuis 2006 avec certaines années une proportion des graviers pouvant atteindre 12 %

Tableau 12: Résultats bruts (g) de l’analyse granulométrique.

Information Maille Pesée Pesée Commentaire Sédiment de tamis tamis vide tamis+sédiment (g) (g) (g) DATE_ANALYSE 4000 603,23 607,12 débris 3,89 21/06/2013 2000 494,57 497,36 2,79 OPERATEUR_ANALYSE 1600 454,35 455,27 0,92 M_Sauriau 1250 422,09 423,1 1,01 SED_ANALYSE 1000 416,78 417,48 0,70 100,06 800 384,65 385,38 0,73 NOM_ME 630 402,61 403,46 0,85 Pertuis_Breton 500 363,61 364,28 0,67 NOM_STATION 400 348,39 349,12 0,73 La Flotte 315 343,24 343,89 0,65 MOIS_STA 250 330,19 330,85 0,66 Avril 200 328,73 329,53 0,80 CODE_ME 160 315,68 316,72 1,04 FRGC53 125 312,17 316,84 4,67 CODE_STA 100 309,43 319,25 9,82 SMF1 80 298,9 308,05 9,15 CODE_ANNEE 63 298,91 302,25 3,34 2013 377,06 377,4 57,64

Tableau 13 : Résultats de l’analyse de la teneur en matières organiques. (%) NOM_STA NOM_STA CODE_ME CODE_ME MOIS_STA MOIS_STA BATHY_STA BATHY_STA CODE_POINT CODE_POINT CODE_ANNEE CODE_ANNEE TAUX_MO_SED TYPE_ANALYSE TYPE_ANALYSE DATE_ANALYSE DATE_ANALYSE OPERATEUR_ANALYSE OPERATEUR_ANALYSE 4,36 MO perte au FRGC53 2013 La Flotte Subtidal avril 17/06/2013 M_Sauriau 1 3,44 feu 4,71

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3.2.2 Analyse faunistique

Pour la station échantillonnée, un ensemble de 78 taxons a été déterminé (Tableau 14).

Tableau 14 : Composition taxinomique de la station.

Taxon Auteur Embranchement Classe Sous-Classe Ordre Famille Abra alba (W. Wood, 1802) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Veneroida Semelidae Abra nitida (O.F. Müller, 1776) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Veneroida Semelidae Acanthochitona fascicularis (Linnaeus, 1767) Mollusca Polyplacophora Neoloricata Chitonida Acanthochitonidae ACTINIARIA - Cnidaria Anthozoa Hexacorallia Actiniaria - Ampelisca armoricana Bellan-Santini & Dauvin, 1981 Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Amphipoda Ampeliscidae Ampharete finmarchica (M. Sars, 1864) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Ampharetidae Amphibalanus amphitrite (Darwin, 1854) Arthropoda Maxillopoda Thecostraca - Cirripedia Sessilia Balanidae Amphipholis squamata (Delle Chiaje, 1828) Echinodermata Ophiuroidea - Ophiurida Amphiuridae Amphiura filiformis (O.F. Müller, 1776) Echinodermata Ophiuroidea - Ophiurida Amphiuridae Anapagurus hyndmanni (Bell, 1846) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Paguridae Anomia ephippium Linnaeus, 1758 Mollusca Bivalvia Pteriomorphia Pectinoida Anomiidae Antalis novemcostata (Lamarck, 1818) Mollusca Scaphopoda - Dentaliida Dentaliidae Anthura gracilis (Montagu, 1808) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Isopoda Anthuridae Aonides oxycephala (Sars, 1862) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Spionida Spionidae Aonides paucibranchiata Southern, 1914 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Spionida Spionidae Aphrodita aculeata Linnaeus, 1758 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Aphroditidae Ascidiella aspersa (Müller, 1776) Chordata Ascidiacea - Phlebobranchia Ascidiidae Athanas nitescens (Leach, 1813 [in Leach, 1813-1814]) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Alpheidae Barnea parva (Pennant, 1777) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Myoida Pholadidae Calyptraea chinensis (Linnaeus, 1758) Mollusca Gastropoda Caenogastropoda Littorinimorpha Calyptraeidae Chaetozone gibber Woodham & Chambers, 1994 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Cirratulidae Cheirocratus sundevalli (Rathke, 1843) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Amphipoda Cheirocratidae Chone sp. Krøyer, 1856 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Sabellida Sabellidae Cirratulus cirratus (O. F. Müller, 1776) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Cirratulidae Cirratulus sp. Lamarck, 1801 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Cirratulidae Corbula gibba (Olivi, 1792) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Myoida Corbulidae

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Crepidula fornicata (Linnaeus, 1758) Mollusca Gastropoda Caenogastropoda Littorinimorpha Calyptraeidae Cylichna cylindracea (Pennant, 1777) Mollusca Gastropoda Heterobranchia - Opisthobranchia Cephalaspidea Cylichnidae Emarginula sp. Lamarck, 1801 Mollusca Gastropoda Vetigastropoda - Fissurellidae Euclymene oerstedi (Claparède, 1863) Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Maldanidae Euclymene sp. Verrill, 1900 Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Maldanidae Eulalia viridis (Linnaeus, 1767) Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Phyllodocidae Eunice pennata (O.F. Müller, 1776) Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Eunicida Eunicidae Eunice vittata (Delle Chiaje, 1828) Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Eunicida Eunicidae Eurynome spinosa Hailstone, 1835 Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Majidae Gibbula umbilicalis (da Costa, 1778) Mollusca Gastropoda Vetigastropoda - Trochidae Glycera tridactyla Schmarda, 1861 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Glyceridae Glycera unicornis Savigny in Lamarck, 1818 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Glyceridae Goniada maculata Örsted, 1843 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Goniadidae Gonothyraea loveni (Allman, 1859) Cnidaria Hydrozoa Hydroidolina Leptothecata Campanulariidae Gyptis propinqua Marion & Bobretzky, 1875 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Hesionidae Harmothoe spinifera (Ehlers, 1864) Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Polynoidae Heteromastus filiformis (Claparède, 1864) Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Capitellidae Hyala vitrea (Montagu, 1803) Mollusca Gastropoda Caenogastropoda Littorinimorpha Iravadiidae Idunella longirostris (Chevreux, 1920) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Amphipoda Liljeborgiidae Inachus phalangium (Fabricius, 1775) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Inachidae Iphimedia minuta G.O. Sars, 1882 Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Amphipoda Iphimediidae Lagis koreni Malmgren, 1866 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Pectinariidae Leptochiton cancellatus (Sowerby, 1840) Mollusca Polyplacophora Neoloricata Lepidopleurida Leptochitonidae Lineus sp. Sowerby, 1806 Nemertea Anopla Heteronemertea - Lineidae Lysidice ninetta Audouin & Milne-Edwards, 1833 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Eunicida Eunicidae Magelona alleni Wilson, 1958 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Spionida Magelonidae Malacoceros fuliginosus (Claparède, 1870) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Spionida Spionidae Maldane glebifex Grube, 1860 Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Maldanidae Mediomastus sp. Hartmann, 1944 Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Capitellidae Microdeutopus gryllotalpa Costa, 1853 Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Amphipoda Aoridae Mimachlamys varia (Linnaeus, 1758) Mollusca Bivalvia Pteriomorphia Pectinoida Pectinidae Monticellina sp. Laubier, 1961 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Cirratulidae Musculus subpictus (Cantraine, 1835) Mollusca Bivalvia Pteriomorphia Mytiloida Mytilidae Nassarius incrassatus (Strøm, 1768) Mollusca Gastropoda Caenogastropoda Neogastropoda Nassariidae Nassarius reticulatus (Linnaeus, 1758) Mollusca Gastropoda Caenogastropoda Neogastropoda Nassariidae

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Nematonereis hebes Verrill, 1900 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Eunicida Eunicidae NEMERTEA - Nemertea - - - - Nephtys cirrosa (Ehlers, 1868) Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Nephtyidae Nereimyra punctata (Müller, 1788) Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Hesionidae Notomastus latericeus Sars, 1851 Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Capitellidae Ocenebra erinaceus (Linnaeus, 1758) Mollusca Gastropoda Caenogastropoda Neogastropoda Muricidae Orbinia armandi (McIntosh, 1910) Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Orbiniidae Ostrea edulis Linnaeus, 1758 Mollusca Bivalvia Pteriomorphia Ostreoida Ostreidae Pagurus cuanensis Bell, 1846 Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Paguridae Phascolion (Phascolion) strombus strombus (Montagu, 1804) Sipuncula Sipunculidea - Golfingiida Phascolionidae Pherusa plumosa (Müller, 1776) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Flabelligeridae Pholoe inornata Johnston, 1839 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Pholoidae Phoronis sp. Wright, 1856 Phoronida - - - - Phyllodoce lineata (Claparède, 1870) Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Phyllodocidae Phyllodoce longipes Kinberg, 1866 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Phyllodocidae Pilargis verrucosa Saint-Joseph, 1899 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Pilargidae Pilumnus hirtellus (Linnaeus, 1761) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Pilumnidae Pisidia longicornis (Linnaeus, 1767) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Porcellanidae Polygordius appendiculatus Fraipont, 1887 Annelida Polychaeta Polychaeta incertae sedis - Polygordiidae Protocirrineris sp. Czerniavsky, 1881 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Cirratulidae Protodorvillea sp. Pettibone, 1961 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Eunicida Dorvilleidae Sabellaria spinulosa Leuckart, 1849 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Sabellida Sabellariidae Scoletoma impatiens (Claparède, 1868) Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Eunicida Lumbrineridae Serpula concharum Langerhans, 1880 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Sabellida Serpulidae Serpula vermicularis Linnaeus, 1767 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Sabellida Serpulidae Solen marginatus Pulteney, 1799 Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta - Solenidae Spiochaetopterus costarum (Claparède, 1869) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Spionida Chaetopteridae SPIONIDAE Grube, 1850 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Spionida Spionidae Spirobranchus lamarcki (Quatrefages, 1866) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Sabellida Serpulidae Sthenelais boa (Johnston, 1833) Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Sigalionidae Syllis sp. Lamarck, 1818 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Syllidae Terebellides stroemii Sars, 1835 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Trichobranchidae Tubulanus polymorphus Renier, 1804 Nemertea Palaeonemertea - - Tubulanidae Xantho pilipes A. Milne-Edwards, 1867 Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Xanthidae

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La richesse spécifique totale obtenue en sommant les 5 réplicats est de 95 taxons et se répartie en 9 embranchements dont 3 embranchements dominants avec 52 % d’annélides, 22 % de mollusques et 16 % d’arthropodes (Figure 16). Corrélativement, les annélides sont les plus abondants avec 85 % des abondances suivis des arthropodes et des mollusques avec 6 et 5% des abondances, respectivement (Figure 17).

Richesse spécifique : La Flotte 2013 Annelida Arthropoda 3%1%0%1% Bryozoa Chordata 22% Cnidaria Echinodermata Mollusca 52% 2% Nemertea 2% Phoronida 1%0% Porifera

16% Sipuncula

Figure 16 : Répartition des taxons par embranchement selon le nombre d’espèces.

Abondance : La Flotte 2013 Annelida 5%1%3%0% 0% Arthropoda 6% Chordata

Cnidaria

Echinodermata

Mollusca

Nemertea

Phoronida

Sipuncula 85%

Figure 17 : Répartition des taxons par embranchement selon les abondances.

- 31 - Contrat de prestation 2013 5210063 : invertébrés benthiques

Tableau 15 : Richesse et abondances spécifiques La Flotte.

Richesse spécifique Total 39 54 32 49 40 95 Abondance au m² Moyenne ± EC 2860 8740 1880 4210 6370 4812 ± 381 Année 2013 Embranchement Espèce 1 2 3 4 5 Total % Annelida Ampharete finmarchica 3 2 1 4 1 11 0.5% 1.7 Aonides oxycephala 4 2 0 2 1 9 0.4% 2.2 Aonides paucibranchiata 1 0 3 0 0 4 0.2% 1.7 Aphrodita aculeata 1 0 0 0 0 10.0% 0.2 Chaetozone gibber 7 0 10 3 5 25 1.0% 14.5 Chone sp. 0 6 0 0 0 6 0.2% 7.2 Cirratulus cirratus 2 0 0 0 0 2 0.1% 0.8 Cirratulus sp. 0 10 0 0 0 10 0.4% 20 Euclymene oerstedi 37 1 0 0 0 38 1.6% 270.3 Euclymene sp. 0 26 12 21 40 99 4.1% 225.2 Eulalia viridis 0 2 0 0 0 2 0.1% 0.8 Eunice pennata 1 1 4 1 0 7 0.3% 2.3 Eunice vittata 0 0 0 0 1 10.0% 0.2 Glycera tridactyla 1 0 1 0 0 2 0.1% 0.3 Glycera unicornis 0 1 0 1 0 2 0.1% 0.3 Goniada maculata 0 0 1 0 0 10.0% 0.2 Gyptis propinqua 0 0 1 0 0 10.0% 0.2 Harmothoe spinifera 0 1 0 0 0 10.0% 0.2 Heteromastus filiformis 0 0 6 0 4 10 0.4% 8 Lagis koreni 0 0 0 0 1 10.0% 0.2 Lysidice ninetta 0 1 1 0 0 2 0.1% 0.3 Magelona alleni 1 1 0 1 0 3 0.1% 0.3 Malacoceros fuliginosus 0 0 5 0 0 5 0.2% 5 Maldane glebifex 26 28 28 36 11 129 5.4% 83.2 Mediomastus sp. 24 5 22 5 2 58 2.4% 110.3 Monticellina sp. 0 0 4 0 0 4 0.2% 3.2 Nematonereis hebes 10 10 8 7 10 45 1.9% 2

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Nephtys cirrosa 0 0 0 1 1 2 0.1% 0.3 Nereimyra punctata 0 0 0 1 0 10.0% 0.2 Notomastus latericeus 0 0 2 1 3 6 0.2% 1.7 Orbinia armandi 0 0 0 1 0 10.0% 0.2 Pherusa plumosa 0 1 1 0 0 2 0.1% 0.3 Pholoe inornata 17 19 1 2 9 48 2.0% 68.8 Phyllodoce lineata 0 1 0 0 0 10.0% 0.2 Phyllodoce longipes 0 0 0 4 0 4 0.2% 3.2 Pilargis verrucosa 0 1 0 0 0 10.0% 0.2 Polygordius appendiculatus 0 0 0 4 0 4 0.2% 3.2 Protocirrineris sp. 33 59 4 29 90 215 8.9% 1070.5 Protodorvillea sp. 5 1 0 0 1 7 0.3% 4.3 Sabellaria spinulosa 10 171 1 45 62 289 12.0% 4626.7 Scoletoma impatiens 9 11 11 9 4 44 1.8% 8.2 Serpula concharum 0 1 0 0 0 10.0% 0.2 Serpula vermicularis 0 13 0 0 0 13 0.5% 33.8 Spiochaetopterus costarum 1 2 3 2 0 8 0.3% 1.3 SPIONIDAE 3 0 0 0 0 3 0.1% 1.8 Spirobranchus lamarcki 38 414 25 134 308 919 38.2% 29343.2 Sthenelais boa 1 1 0 1 0 3 0.1% 0.3 Syllis sp. 0 0 1 0 0 10.0% 0.2 Terebellides stroemii 1 0 0 0 1 2 0.1% 0.3 Arthropoda Ampelisca armoricana 7 2 4 16 0 29 1.2% 39.2 Amphibalanus amphitrite 0 1 0 0 0 10.0% 0.2 Anapagurus hyndmanni 2 1 0 0 0 3 0.1% 0.8 Anthura gracilis 1 5 0 2 1 9 0.4% 3.7 Athanas nitescens 0 0 0 1 0 10.0% 0.2 Cheirocratus sundevalli 0 0 0 0 3 3 0.1% 1.8 Eurynome spinosa 0 0 0 1 1 2 0.1% 0.3 Idunella longirostris 0 0 0 0 1 10.0% 0.2 Inachus phalangium 0 2 0 0 1 3 0.1% 0.8 Iphimedia minuta 0 1 0 0 3 4 0.2% 1.7 Microdeutopus gryllotalpa 1 0 0 0 6 7 0.3% 6.8 Pagurus cuanensis 0 0 0 1 0 10.0% 0.2 Pilumnus hirtellus 0 3 0 1 3 7 0.3% 2.3

- 33 - Contrat de prestation 2013 5210063 : invertébrés benthiques

Pisidia longicornis 3 26 0 6 33 68 2.8% 221.3 Xantho pilipes 1 1 0 0 0 2 0.1% 0.3 Chordata Ascidiella aspersa 0 0 0 1 0 10.0% 0.2 Cnidaria ACTINIARIA 0 1 0 1 0 2 0.1% 0.3 Gonothyraea loveni 0 1 0 0 0 10.0% 0.2 Echinodermata Amphipholis squamata 0 0 0 0 2 2 0.1% 0.8 Amphiura filiformis 0 1 0 1 0 2 0.1% 0.3 Mollusca Abra alba 0 0 2 0 0 2 0.1% 0.8 Abra nitida 3 0 0 0 0 3 0.1% 1.8 Acanthochitona fascicularis 2 0 0 1 1 4 0.2% 0.7 Anomia ephippium 0 4 0 1 1 6 0.2% 2.7 Antalis novemcostata 5 5 2 4 1 17 0.7% 3.3 Barnea parva 0 1 0 0 0 10.0% 0.2 Calyptraea chinensis 1 0 0 0 0 10.0% 0.2 Corbula gibba 0 1 0 9 0 10 0.4% 15.5 Crepidula fornicata 0 0 0 1 1 2 0.1% 0.3 Cylichna cylindracea 0 0 0 1 0 1 0.0% 0.2 Gibbula umbilicalis 0 0 0 1 2 3 0.1% 0.8 Hyala vitrea 0 1 1 16 0 18 0.7% 48.3 Leptochiton cancellatus 9 6 2 1 1 19 0.8% 12.7 Mimachlamys varia 0 2 0 2 3 7 0.3% 1.8 Musculus subpictus 0 1 0 11 0 12 0.5% 23.3 Nassarius incrassatus 2 1 0 5 0 8 0.3% 4.3 Nassarius reticulatus 0 0 0 0 1 1 0.0% 0.2 Ocenebra erinaceus 1 1 0 5 0 7 0.3% 4.3 Ostrea edulis 0 0 0 1 0 1 0.0% 0.2 Puncturella noachina 0 1 0 0 0 1 0.0% 0.2 Solen marginatus 1 0 0 0 0 1 0.0% 0.2 Nemertea Lineus sp. 0 1 1 1 1 4 0.2% 0.2 NEMERTEA 0 1 0 0 0 1 0.0% 0.2 Tubulanus polymorphus 0 0 9 0 2 11 0.5% 15.2 Phoronida Phoronis sp. 10 11 11 15 14 61 2.5% 4.7 Phascolion (Phascolion) strombus Sipuncula strombus 1 0 0 0 0 1 0.0% 0.2

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La richesse spécifique par réplicat varie entre 32 et 54 pour un cumul de 95 espèces sur 0,5 m² (Tableau 15).

Les abondances par réplicat varient d’environ 1900 à près de 9000 individus par m² pour une valeur moyenne avec son intervalle de confiance à 95 % de 4800 ± 400 individus par m².

Les deux espèces les plus abondantes sont des annélides Spirobranchus lamarcki avec 38 % des abondances et Sabellaria spinulosa avec 12 % des abondances. Au moins 8 espèces dépassent les 2 % d’abondance montrant que l’asemblage faunistique est équilibré en termes de rang- fréquence. Au moins 27 espèces sont rares avec un seul individu collecté sur la station parmi lesquels 12polychètes, 4 arthropodes et 7 mollusques.

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3.2.3 Analyse statut écologique selon le M-AMBI

Parmi les individus recensés, 32 % appartiennent au groupe écologique I des espèces sensibles et 50 % au groupe II des espèces indifférentes. Tous les réplicats présentent des individus des groupes IV et V dans des proportions inférieures à 10 – 15 % (Figure 18). L’indice AMBI est de 1,60 avec une richesse de 93 taxons et une diversité de 4,1.

Figure 18 : Proportion des groupes écologiques dans les 5 réplicats.

Le calcul de l’indice M-AMBI réalisé sur le regroupement des 5 réplicats par station fournit une valeur calculé de 1,08 ramenée à la borne supérieur de 1. Le sttut écologique de cette station est très bon.

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3.3. Arcay

3.3.1 Analyse des sédiments

L’analyse granulométrique indique que la quasi-totalité des sédiments est composé à 98 % de sables moyens de taille de grains comprise entre 160 et 500 µm. Ce sédiment avec moins de 1 % de pélites n’est que très légèrement envasé, ces pélites provenant des estrans vaso- sableux de proximité (Tableau 16). Le taux de matière organique réalisé sur trois sous- échantillon est faible (autour de 0,7 %) montrant que ces sables moyens dunaires sont assez propres (Tableau 17) bien que influencés par les apports turbides de l’estuaire du Lay. Des résultats très similaires sont obtenus depuis 2006 sur cette station.

Tableau 16 : Résultats bruts (g) de l’analyse granulométrique.

Information Maille Pesée Pesée Commentaire Sédiment de tamis tamis vide tamis+sédiment (g) (g) (g) DATE_ANALYSE 4000 603,23 604,04 coquilles tellines + spisules 0,81 18/05/2013 2000 coquilles tellines + spisules 494,57 495,99 + hydrobies 1,42 OPERATEUR_ANALYSE 1600 454,37 455,44 1,07 A_Massé 1250 422,09 423,99 coquilles tellines + spisules 1,90 SED_ANALYSE 1000 416,79 419,19 2,40 200,01 800 384,65 388,2 3,55 NOM_ME 630 402,62 411,42 8,80 Pertuis_Breton 500 363,57 378,38 14,81 NOM_STATION 400 348,43 375,52 27,09 Arcay 315 343,16 378,97 35,81 MOIS_STA 250 330,08 374,88 44,80 Avril 200 328,69 366,15 37,46 CODE_ME 160 315,7 331,17 15,47 FRGC53 125 312,12 315,07 2,95 CODE_STA 100 309,39 309,61 0,22 SMF2 80 298,88 298,98 0,10 CODE_ANNEE 63 298,89 298,94 0,05 2013 1,30

Tableau 17 : Résultats de l’analyse de la teneur en matières organiques. (%) (%) NOM_STA NOM_STA CODE_ME CODE_ME MOIS_STA _ANALYSE BATHY_STA BATHY_STA OPERATEUR CODE_POINT CODE_POINT CODE_ANNEE CODE_ANNEE TAUX_MO_SED TAUX_MO_SED TYPE_ANALYSE DATE_ANALYSE DATE_ANALYSE

0,68 FRGC53 2013 Arcay Subtidal avril MO perte au feu 18/06/2013 M_Sauriau 2 0,71 0,74

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3.3.2 Analyse faunistique

Pour la station échantillonnée, un ensemble de 38 taxons a été déterminé (Tableau 18).

Tableau 18 : Composition taxinomique de la station.

Taxon Auteur Embranchement Classe Sous-Classe Ordre Famille Acrocnida brachiata (Montagu, 1804) Echinodermata Ophiuroidea - Ophiurida Amphiuridae Angulus tenuis (da Costa, 1778) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Veneroida Tellinidae Armandia polyophthalma Kükenthal, 1887 Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Opheliidae Bathyporeia elegans Watkin, 1938 Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Amphipoda Pontoporeiidae Caulleriella sp. Chamberlin, 1919 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Cirratulidae Crepidula fornicata (Linnaeus, 1758) Mollusca Gastropoda Caenogastropoda Littorinimorpha Calyptraeidae Ensis siliqua (Linnaeus, 1758) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta - Pharidae Glycera capitata Örsted, 1843 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Glyceridae Glycera oxycephala Ehlers, 1887 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Glyceridae Glycera sp. Savigny, 1818 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Glyceridae Goniada maculata Örsted, 1843 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Goniadidae Kurtiella bidentata (Montagu, 1803) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Veneroida Montacutidae Liocarcinus holsatus (Fabricius, 1798) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Eucarida Decapoda Polybiidae LUMBRINERIDAE Schmarda, 1861 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Eunicida Lumbrineridae Lumbrineris sp. Blainville, 1828 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Eunicida Lumbrineridae Magelona mirabilis (Johnston, 1865) Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Spionida Magelonidae MALDANIDAE Malmgren, 1867 Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Maldanidae Mediomastus fragilis Rasmussen, 1973 Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Capitellidae Nephtys cirrosa (Ehlers, 1868) Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Nephtyidae Ophiura albida Forbes, 1839 Echinodermata Ophiuroidea - Ophiurida Ophiuridae Owenia fusiformis Delle Chiaje, 1844 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Sabellida Oweniidae Phoronis sp. Wright, 1856 Phoronida - - - - POLYNOIDAE Malmgren, 1867 Annelida Polychaeta Errantia - Aciculata Phyllodocida Polynoidae Sphaeroma serratum (Fabricius, 1787) Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Isopoda Sphaeromatidae Spisula solida (Linnaeus, 1758) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Veneroida Mactridae Tharyx sp. Webster & Benedict, 1887 Annelida Polychaeta Sedentaria - Canalipalpata Terebellida Cirratulidae

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Thracia phaseolina (Lamarck, 1818) Mollusca Bivalvia Heterodonta - Euheterodonta Anomalodesmata Thraciidae Travisia forbesii Johnston, 1840 Annelida Polychaeta Sedentaria - Scolecida - Opheliidae Urothoe brevicornis Bate, 1862 Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Amphipoda Urothoidae Urothoe poseidonis Reibish, 1905 Arthropoda Malacostraca Eumalacostraca - Peracarida Amphipoda Urothoidae

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La richesse spécifique totale obtenue en sommant les 5 réplicats est de 30 taxons et se répartie en 5 embranchements dont 3 dominants avec 53 % d’annélides, 20 % de mollusques et 17 % d’arthropodes (Figure 19). Les annélides sont les plus abondants avec 59 % des abondances suivis des mollusques et arthropodes avec respectivement 23 % et 13 % des abondances (Figure 20).

Richesse spécifique : Arcay 2013 Annelida 0%3%0% Arthropoda Bryozoa 20% Chordata Cnidaria Echinodermata Mollusca 7% 53% Nemertea 0% Phoronida Porifera 17% Sipuncula

Figure 19 : Répartition des taxons par embranchement selon le nombre d’espèces.

Abondance : Arcay 2013 Annelida 0%1%0% Arthropoda

23% Chordata

Cnidaria

Echinodermata

4% Mollusca 0% 59% Nemertea Phoronida 13% Sipuncula

Figure 20 : Répartition des taxons par embranchement selon les abondances.

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Tableau 19 : Richesse et abondances spécifiques Pointe d’Arcay.

Richesse spécifique Total 849147 30 Abondance au m² Moyenne ± EC 180 40 120 210 120 134 ± 10 Année 2013 Embranchement Espèce 1 2 3 4 5 Total% Annelida Armandia polyophthalma 0 0 0 0 1 11.5% 0.2 Caulleriella sp. 0 0 0 0 1 11.5% 0.2 Glycera capitata 1 0 0 0 0 11.5% 0.2 Glycera oxycephala 2 0 0 0 0 2 3.0% 0.8 Glycera sp. 0 0 1 1 1 3 4.5% 0.3 Goniada maculata 0 0 0 2 0 2 3.0% 0.8 LUMBRINERIDAE 0 0 1 0 0 11.5% 0.2 Lumbrineris sp. 0 0 0 1 0 11.5% 0.2 Magelona mirabilis 0 1 0 0 0 11.5% 0.2 MALDANIDAE 0 0100 11.5% 0.2 Mediomastus fragilis 0 0 0 1 0 11.5% 0.2 Nephtys cirrosa 4 0 0 2 2 8 11.9% 2.8 Owenia fusiformis 0 0 0 1 0 11.5% 0.2 POLYNOIDAE 0 0100 11.5% 0.2 Tharyx sp. 0 0 0 2 0 2 3.0% 0.8 Travisia forbesii 6 0 1 1 4 12 17.9% 6.3 Arthropoda Bathyporeia elegans 0 0 2 0 0 2 3.0% 0.8 Liocarcinus holsatus 0 0 2 0 0 2 3.0% 0.8 Sphaeroma serratum 0 1 0 0 0 11.5% 0.2 Urothoe brevicornis 1 1 0 0 0 2 3.0% 0.3 Urothoe poseidonis 0 1 0 1 0 2 3.0% 0.3 Echinodermata Acrocnida brachiata 0 0 0 1 1 2 3.0% 0.3 Ophiura albida 0 0 0 1 0 11.5% 0.2 Mollusca Angulus tenuis 1 0 0 0 0 11.5% 0.2 Crepidula fornicata 0 0 0 2 0 2 3.0% 0.8 Ensis siliqua 0 0 2 0 0 2 3.0% 0.8 Kurtiella bidentata 0 0 0 4 0 4 6.0% 3.2 Spisula solida 0 0 1 1 2 4 6.0% 0.7

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Thracia phaseolina 2 0 0 0 0 2 3.0% 0.8 Phoronida Phoronis sp. 1 0 0 0 0 11.5% 0.2

La richesse spécifique par réplicat varie entre 4 et 14 espèces pour un cumul de 30 espèces sur 0,5 m² (Tableau 19).

Les abondances par réplicat varient d’environ 40 à plus de 200 individus par m² pour une valeur moyenne avec son intervalle de confiance à 95 % de 130 ± 10 individus par m².

Les deux espèces les plus abondantes sont des annélides Travisia forbesii et Nephtys cirrosa avec respectivement 18 et 12 % des abondances. Presque la moitié des 30 espèces sont rares soit 14 espèces avec un seul individu observé dont une majorité d’annélides (10 espèces).

- 42 - Contrat de prestation 2013 5210063 : invertébrés benthiques

3.3.3 Analyse statut écologique selon le M-AMBI

Parmi les individus recensés, 54 % appartiennent au groupe écologique I des espèces sensibles et environ 35 % au groupe II des espèces indifférentes. Seuls deux réplicats présentent des individus du groupe V des espèces opportunistes de premier ordre (Figure 21). L’indice AMBI est de 0,86 avec une richesse de 30 taxons et une diversité de 4,43.

Figure 21 : Proportion des groupes écologiques dans les 5 réplicats.

Le calcul de l’indice M-AMBI réalisé sur le regroupement des 5 réplicats par station fournit une valeur de 0,87 et fournit un classement du statut écologique en très bon.

- 43 - Contrat de prestation 2013 5210063 : invertébrés benthiques

3.3.4 Bilan du statut écologique selon le M-AMBI

Le calcul de l’indice M-AMBI réalisé sur le regroupement des 5 réplicats par station fournit une estimation des statuts écologiques des trois stations La Flotte, Pointe d’Arcay en subtidal et Plage de la Charge Neuve en intertidal pour 2013. Le statu écologique est soit Très bon (deux stations subtidales) ou Bon (station intertidale) (Figure 22).

FRGC53 Pertuis Breton 2013 Etat écologique déduit de l'indice biotique M-AMBI 1 Très bon 0.9

0.8

0.7 Bon

0.6

0.5 Moyen

M-AMBI 0.4

0.3 Dégradé

0.2

0.1 Très dégradé 0 Pointe d'Arcay Neuve La Flotte Charge Plage de la avril 2013 avril 2013 avril 2013 Stations

Figure 22 : Statut écologique 2013 de la masse d’eau FRGC53 selon l’indice M-AMBI pour les invertébrés benthiques.

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4. Bilan du temps passé aux prélèvements et analyses

La réalisation des analyses biologiques a mobilisé (Tableau 20) : • 7 personnes-jour pour les prélèvements en mer ; • 2 personne-jour pour les analyses granulométriques et teneur en matière organique ; • 5 personnes-jours pour le lavage et tri faunistique ; • 34 personnes-jours pour les déterminations faunistiques ; • 4 personnes-jours pour la saisie des données, leur vérification et la rédaction.

Tableau 20 : Effort en personne-jour pour chacune des opérations afférentes à l’analyse biologique de la macrofaune intertidale et subtidales des trois stations du suivi de surveillance DCE 2013 pour le Pertuis Breton

Opération Nombre (personne-jour) Opération à la mer 7 Granulométrie + matière organique 2 Lavage + tri faunistique 5 Déterminations taxinomiques, validation 34 & qualification taxinomique Saisie données, validation fichier 2 Rédaction 2 Total 52

Au total la réalisation des prélèvements, leur analyse faunistique et leur validation a mobilisé un effort de 52 personnes-jours soit, en équivalent temps plein avec 20 jours ouvrés par mois, à 2,6 mois de travail à temps plein pour une seule personne.

- 45 - Contrat de prestation 2013 5210063 : invertébrés benthiques

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