UNIVERSIDAD POLITÉCNICA DE MADRID ESCUELA TÉCNICA SUPERIOR DE INGENIEROS AGRÓNOMOS

CARACTERIZACIÓN DE VARIEDADES DE vinifera L. CULTIVADAS EN EXTREMADURA, MEDIANTE ESTUDIOS MORFOLÓGICOS, AGRONÓMICOS Y BIOQUÍMICOS

TESIS DOCTORAL

M. LUISA ASENSIO SÁNCHEZ

Ingeniero Agrónomo

Madrid 2000 UNIVERSIDAD POLITÉCNICA DE MADRID ESCUELA TÉCNICA SUPERIOR DE INGENIEROS AGRÓNOMOS DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA VEGETAL

CARACTERIZACIÓN DE VARIEDADES DE L. CULTIVADAS EN EXTREMADURA, MEDIANTE ESTUDIOS MORFOLÓGICOS, AGRONÓMICOS Y BIOQUÍMICOS

DOCTORANDO DIRECTOR M. LUISA ASENSIO SÁNCHEZ FÉLIX CABELLO SAENZ DE SANTA MARÍA INGENIERO AGRÓNOMO DR. INGENIERO AGRÓNOMO

Madrid, febrero 2O00 D. FÉLIX CABELLO SAENZ DE SANTA MARÍA, Funcionario Investigador del Instituto Madrileño de Investigación Agraria y Alimentaria de la Consejería de Agricultura y Medio Ambiente de la Comunidad de Madrid,

CERTIFICA:

Que la Tesis Doctoral "Caracterización de variedades de Vitis vinifera L. cultivadas en Extremadura, medíante estudios morfológicos, agronómicos y bioquímicos", ha sido realizada bajo mi dirección por el Ingeniero Agrónomo M. LUISA ASENSIO SÁNCHEZ, en el Servicio de Investigación y Desarrollo Tecnológico de la Consejería de Agricultura y Medio Ambiente de la Dirección General de Producción, Investigación y Formación Agraria de la Junta de Extremadura.

Y para que así conste a todos los efectos oportunos emito este Certificado en Madrid a 31 de enero de 2000.

Fdo.: Dr. Félix Cabello Sáenz de Santa María A mis padres

ÍNDICE pg- RESUMEN III ABSTRACT VII 1. INTRODUCCIÓN 1 1.1. El cultivo de la vid en el mundo y en España: orígenes e importancia económica 3 1.2. El cultivo de la vid en Extremadura: breve historia e importancia económica 5 1.3. Clasificación botánica de la vid 11 1.4. Importancia de la caracterización de la vid 13 1.5. La caracterización 14 1.6. Caracterización morfológica 15 1.7. Caracterización bioquímica 18 1.7.1. Isoenzimas 19 1.7.2. Otras técnicas moleculares '. 21 1.7.3. Aminoácidos 22 1.8. Caracterización agronómica: fenología 26 1.9. Variedades estudiadas : 30 1.9.1. Pardina 30 1.9.2. Blanca Cayetana 32 1.9.3. Jaén 34 1.9.4. Montúa •. 38 1.9.5. 42 1.9.6. Eva 44 1.9.7. : 47 1.9.8. Borba 49 1.9.9. Cigüentes 50 1.9.10. Maríal '. ...: ; 52 1.9.11. Perruno 53 • 1.9.12. Morisca .; 55 2. OBJETIVOS 57 2.1. Objetivos ; 59 2.2. Hipótesis 59 3. MATERIAL Y MÉTODOS 63 3.1. Elección de variedades 65 3.2. Material vegetal 66 3.2.1. Caracterización morfológica 69 3.2.2. Caracterización bioquímica 72 3.2.2.1. Isoenzimas 72 3.2.2.2. Aminoácidos 72 3.2.3. Caracterización agronómica: fenología .....74 3.3. Métodos 76 3.3.1. Caracterización morfológica ; 76 3.3.2. Caracterización bioquímica 82 3.3.2.1. Isoenzimas 82 3.3.2.2. Aminoácidos 88 3.3.3. Caracterización agronómica: fenología 92 4. RESULTADOS 103 4.1. Caracterización morfológica 105 4.2. Caracterización bioquímica 152 4.2.1. Isoenzimas 152 4.2.2. Aminoácidos 162 4.2.2.1. Composición amínica 170 4.2.2.2. Análisis de componentes principales 173 4.2.2.3. Cociente prolina:arginina 177 4.2.2.4. Evolución del contenido amínico durante la maduración 180 4.2.2.5. Incidencia de la fertilización nitrogenada 194 4.3. Caracterización agronómica: fenología 206 4.3.1. Ciclo vegetativo 206 4.3.2. Estados fenológicos 229 4.3.2.1. Brotación 230 4.3.2.2. Floración 231 4.3.2.3. Envero 232 4.3.2.4. Maduración 234 4.3.2.5. Caída de la hoja 235 4-3.2.6. Período floración-envero 236 4.3.3. Estudio fenológico por clones 238 4.3.3.1. Pardina-Blanca Cayetana 238 4.3.3.1.1. Brotación 239 . 4.3.3.1.2. Floración 239 - 4.3.3.1.3. Envero 239 4.3.3.1.4. Caída de la hoja 239 4.3.3.1.5. Período floración-envero 240 4.3.3.2. Montúa-Eva(4LS47) 240 4.3.3.2.1. Brotación 240 4.3.3.2.2. Floración 242 4.3.3.2.3. Envero 243 4.3.3.2.4. Caída de la hoja 243 4.3.3.2.5. Período floración-envero 244 4.3.3.3. Ghelva-Eva(4C01) 244 4.3.3.3.1. Brotación 244 4.3.3.3.2. Floración 244 4.3.3.3.3. Envero 246 4.3.3.3.4. Caída de la hoja 246 4.3.3.3.5. Período floración-envero 246 4.3.3.4. Alarije-Malfar 248 4.3.3.4.1. Brotación 248 4.3.3.4.2. Floración 248 4.3.3.4.3. Envero 249 4.3.3.4.4. Caída de la hoja 249 4.3.3.4.5. Período floración-envero 249 4.3.3.5. Borba-Cigüentes 252 4.3.3.5.1. Brotación 252 4.3.3.5.2. Floración 253 4.3.3.5.3. Envero 253 4.3.3.5.4. Caída de la hoja 253 4.3.3.5.5. Período floración-envero 254 4.3.3.6. Pemmo 254 4.3.3.6.1. Brotación 257 4.3.3.6.2. Floración 257 4.3.3.6.3. Envero 257 4.3.3.6.4. Caída de la hoja 257 4.3.3.6.5. Período floración-envero 258 5. DISCUSIÓN : , 261 5.1. Caracterización morfológica 263 5.2. Caracterización bioquímica ....278 5.2.1. Isoenzimas 278 5.2.2. Aminoácidos 282 5.2.2.1. Composición amínica 282 5.2.2.2. Análisis de componentes principales , 284 5.2.2.3. Cociente prolina:arginina 288 5.2.2.4. Evolución del contenido amínico durante la maduración 294 5.2.2.5. Incidencia de la fertilización nitrogenada 297 5.3. Caracterización agronómica: fenología • 300 5.3.1. Ciclo vegetativo 300 5.3.2. Estados fenológicos 302 5.3.2.1. Brotación 302 5.3.2.2. Floración 305 5.3.2.3. Envero 308 5.3.2.4. Maduración 310 5.3.2.5. Caída de la hoja 312 5.3.2.6. Periodo floración-envero 315 5.3.3. Estudio fenológico porciones 317 5.3.3.1. Brotación 317 5.3.3.2. Floración 318 5.3.3.3. Envero 319 5.3.3.4. Caída de la hoja 320 5.3.3.5. Período floración-envero 321 5.3.3.6. Clones virosados 322 6. CONCLUSIONES 325 7. BIBLIOGRAFÍA 329 ANEJOS 345 ANEJO 1:AMPEL0GRAFIA 347 ANEJO 2: EQUIVALENCIA ENTRE GRADOS BRIX, GRADOS BAUME Y GRADO ALCOHÓLICO PROBABLE 365 ANEJO 3: DATOS CLIMÁTICOS 367 ÍNDICE DE CUADROS pg- Cuadro n° 1. Material vegetal empleado en la caracterización morfológica 69 Cuadro n° 2. Material vegetal descrito sólo en 1996 71 Cuadro n° 3. Material vegetal empleado en el estudio amínico 74 Cuadro n° 4. Material vegetal empleado en el estudio fenológico 74 Cuadro n° 5. Datos ampelográficos de 1996 107 Cuadro n° 6. Datos ampelográficos de 1997 115 Cuadro n° 7. Datos ampelográficos correspondientes a la "descripción modelo" 125 Cuadro n° 8. Resumen de los resultados isoenzimáticos 167 Cuadro n" 9. Grados Brix de los mostos en 1996 y 1997 170 Cuadro n° 10. Contenidos amínicos en 1996 (mg/1) 171 Cuadren" 11. Contenidos amínicos en 1997 (mg/1) 172 Cuadro n° 12. Cociente prolina:argimna en 1996 178 Cuadro n° 13. Cociente prolina:arginina en 1997 179 Cuadro n° 14. Estado de maduración 181 Cuadro n" 15. Evolución de la composición amínica durante la maduración en 1997 (mg/1) 185 Cuadro n° 16. Suma de todos los aminoácidos analizados en 1996 y 1997 (mg/1) ....203 Cuadro n° 17. Nitrógeno amínico total en 1996 y 1997 (mg/1) 207 Cuadro n" 18. Suma de todos los aminoácidos analizados menos la prolina en 1996 y 1997 (mg/1) 209 Cuadro n" 19. Nitrógeno asimilable en 1996 y 1997 (mg/1) 211 Cuadro n° 20. Campaña 1996: grados Brix de los mostos en su pxmto de madurez 217 Cuadro n° 21. Campaña 1997: grados Brix de los mostos en su punto de madurez 222 Cuadro n" 22. Campaña 1998: grados Brix de los mostos en su pimto de madurez 226 Cuadro n° 23. Fecha media de brotación de cada variedad 230 Cuadro xf 24. Fecha media de ñoración de cada variedad 232 Cuadro n° 25. Fecha media de envero de cada variedad 232 Cuadro n° 26. Fecha media de maduración de cada variedad 234 Cuadro:n° 27. Fecha media de caída de hoja de cada variedad 235 Cuadron" 28. Período medio floración-envero de cada variedad 237 Cuadro n° 29. Fecha media de brotación del grupo Pardina-Blanca Cayetana 241 Cuadro n° 30. Fecha media de floración del grupo Pardina-Blanca Cayetana 241 Cuadro n° 31. Fecha media de envero del grupo Pardina-Blanca Cayetana 241 Cuadro n" 32. Fecha media de caída de la hoja del grupo Pardina-Blanca Cayetana 241 Cuadro n° 33. Período medio floración-envero del grupo Pardina-Blanca Cayetana 241 Cuadro n° 34. Fecha media de brotación del grupo Montúa-Eva (4LS47) 245 Cuadro n° 35. Fecha media de floración del grupo Montúa-Eva (4LS47) 245 Cuadro n° 36. Fecha media de envero del grupo Montúa-Eva (4LS47) 245 Cuadro rf 37. Fecha media de caída de hoja del grupo Montúa-Eva (4LS47) 245 Cuadro n° 38. Período medio floración-envero del grupo Montúa-Eva (4LS47) 245 Cuadro n° 39. Fecha media de brotación del grupo Chelva-Eva (4C01) 247 Cuadro n° 40. Fecha media de floración del grupo Chelva-Eva (4C01) 247 Cuadro n'' 41. Fecha media de envero del grupo Chelva-Eva (4C01) 247 Cuadro n° 42. Fecha media de caída de hoja del grupo Chelva-Eva (4C01) 247 Cuadro n° 43. Período medio floración-envero del grupo Chelva-Eva (4C01) 247 Cuadro n° 44. Fecha media de brotación del grupo Alarije-Malfar 250 Cuadro n° 45. Fecha media de floración del grupo Alarije-Malfar 250 Cuadro n° 46. Fecha media de envero del grupo Alarije-Malfar 250 Cuadro n° 47. Fecha media de caída de hoja del grupo Alarije-Malfar 251 Cuadro n° 48. Período medio floración-envero del grupo Alarije-Malfar 251 Cuadro n° 49. Fecha media de brotación del grupo Borba-Cigüentes 251 Cuadro n° 50. Fecha media de floración del grupo Borba-Cigüentes 255 Cuadro n° 51. Fecha media de envero del grupo Borba-Cigüentes 255 Cuadro n° 52. Fecha media de caída de hoja del grupo Borba-Cigüentes 256 Cuadro n° 53. Período medio floración-envero del grupo Borba-Cigüentes 256 Cuadro n° 54. Fecha media de brotación del grupo Perruno 259 Cuadro n° 55. Fecha media de floración del grupo Perruno 259 Cuadren" 56. Fecha media de envero del grupo Pemmo 259 Cuadro n° 57. Fecha media de caída de hoja del grupo Perruno 259 Cuadro n° 58. Período medio floración-envero del grupo Perruno 259 Cuadro n° 59. Descripción morfológica comparativa de Borba 265 Cuadro n° 60.. Descripción morfológica comparativa de Cigüentes 267 Cuadro n" 61. Descripción morfológica comparativa de Montúa, Eva y Chelva 269 Cuadro n" 62. Descripción morfológica comparativa de Perruno 274

Cuadro Al-1. Descripciones morfológicas y sinonimias de Pardina 347 Cuadro Al-2. Descripciones morfológicas y sinonimias de Blanca Cayetana 348 Cuadro Al-3. Descripciones morfológicas y sinonimias de Jaén 349 Cuadro Al-4. Descripciones morfológicas y sinonimias de Montúa 352 Cuadro Al-5. Descripciones morfológicas y sinonimias de Chelva 356 Cuadro Al-6. Descripciones morfológicas y sinonimias de Eva 357 Cuadro AÍ-7. Descripciones morfológicas y sinonimias de Alarije 359 Cuadro Al-8. Descripciones morfológicas y sinonimias de Borba 360 Cuadro Al-9. Descripciones morfológicas y sinonimias de Cigüentes 361 Cuadro Al-10. Descripciones morfológicas y sinonimias de Perruno 362 Cuadro A2-1. Equivalencia entre grados Brix, grados Baumé y grado alcohólico probable 365 Cuadro A3-1. Datos climáticos de la Finca "La Orden" del año 1996 367 Cuadro A3-2. Datos climáticos de Almendralejo del año 1996 368 Cuadro A3-3. Datos climáticos de la Finca "La Orden" del año 1997 368 Cuadro A3-4. Datos climáticos de Almendralejo del año 1997 369 Cuadro A3-5. Datos climáticos de la Finca "La Orden" del año 1998 369 Cuadro A3-6. Datos climáticos de Almendralejo del año 1998 370 Cuadro A3-7. Datos climáticos de la Finca "La Orden" del año 1999 370 Cuadro A3-8. Datos climáticos de Almendralejo del año 1999 371 ÍNDICE DE FIGURAS pg- Figura n° 1: Subzonas de producción de la Denominación de Origen "" 9 Figuran" 2. Campo fimdacional Finca "La Orden" (Guadajira-Badajoz) 67 Figura n° 3. Colección del Banco de Germoplasma de la Vid. Finca "El Encín" (Alcalá de Henares-Madrid) 67 Figura n° 4. Localización del material vegetal procedente de Extremadura 73 Figuran" 5. Reacción de laninhidrina con los aminoácidos 90 Figura n° 6. Estado A: yema de invierno 93 Figura n° 7. Estado B: yema de algodón 93 Figura n° 8. Estado C: punta verde 93 Figura n° 9. Estado D: salida de hojas 93 Figura n° 10. Estado E: hojas extendidas 93 Figuran" 11. Estado F: racimos (inflorescencias) visibles 95 Figuran" 12. Estado G: racimos (inflorescencias) separados 95 Figura n° 13. Estado H: botones florales separados 95 Figuran" 14. Estado I: floración 95 Figuran" Í5. Estado J: cuajado 95 Figura n" 16. Estado K: grano tamaño guisante 97 Figura n° 17. Estado L: racimo cerrado 97 Figuran" 18. Estado M: envero 97 Figura n" 19. Estado N: maduración 97 Figura n" 20. Estado P: plena caída de hoja 97 Figura n° 21. Dendrograma correspondiente a las descripciones morfológicas realizadas en 1996 111 Figura n° 22. Dendrograma correspondiente a las descripciones morfológicas realizadas en 1997 119 Figura n" 23. Dendrograma correspondiente a la descripción morfológica "modelo" 129 Figuran" 24. Jaén , • 131 Figura n° 25. Morisca 131 Figuran" 26. Jaén Tinto 135 Figuran" 27. Cigüentes 135 Figura n" 28. Borba (BOBA) : 139 Figuran" 29. Borba(BOCC) 139 Figura n" 30. Cigüente (CIBA) 141 Figuran" 31. Perruno Común (PEGR) 141 Figura n° 32. Beba 143 Figuran" 33. Mantúo 143 Figura n.° 34. Alarije 147 Figura n° 35. Marfal 147 Figura n° 36. Perruno Extremeño 149 Figuran" 37. Perruno Andaluz 149 Figuran" 38. Patrones isoenzimáticos de PER 153 Figura n° 39. Esquema de los zimogramas de PER 153 Figuran" 40. Patrones isoenzimáticos de AcPH 157 Figura n° 41. Esquema de los zimograma de AcPH 157 Figura n° 42. Patrones isoenzimáticos de CO 159 Figuran" 43. Esquema de los zimogramas de CO 159 Figuran" 44. Patrones isoenzimáticos deGOT 163 Figura n" 45. Esquema de los zimograms de GOT 163 Figura n" 46. Patrones isoenzimáticos de SOD 165 Figura n° 47. Esquema de los zimogramas de SOD 165 Figuran" 48. Aminograma correspondiente al clon 6M045 (Borba) 169 Figura n" 49. Análisis de componentes principales de 1996 175 Figura n" 50. Análisis de componentes principales de 1997 175 Figura n° 51. Aminograma correspondiente al estado de maduración I 182 Figura n" 52. Aminograma correspondiente al estado de maduración II 183 Figura n" 53. Aminograma correspondiente al estado de maduración III 184 Figura n° 54. Evolución del contenido amínico durante la maduración en el subgrupo AI 191 Figura n° 55. Evolución del contenido amínico durante la maduración en el subgrupo AJÍ 191 Figura n° 56. Evolución del contenido amínico durante la maduración en el subgrupo Allí 191 Figura n" 57. Evolución del contenido amínico durante la maduración en el subgrupo BI 191 Figura n° 58. Evolución del contenido amínico durante la maduración en el subgrupo Bn 191 Figura n° 59. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para lS04(mg/l) ; 195 Figura n" 60. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 2ALll(mg/l) '. 195 Figura n° 61. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 5TA210(mg/l) 197 Figura n° 62. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 5TA35(mg/l) 197 Figura n" 63. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 6M045(mg/l) 199 Figura n° 64. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 8CA19(mg/l) 199 Figura n° 65. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 8CA40(mg/l) 201 Figura n° 66. Comparación de la suma de todos los aminoácidos analizados en 1996 y 1997 (mgN/1) 203 Figura n° 67. Comparación del contenido en nitrógeno amínico total en 1996 y 1997 (mg/1) 207 Figura n° 68. Comparación de la suma de todos los aminoácidos analizados menos la prolina en 1996 y 1997 (mg/1) 209 Figura n° 69. Comparación del contenido en nitrógeno asimilable en 1996 y 1997 (mgN/1) 211 Figura n° 70. Ciclo vegetativo en 1996 213 Figuran" 71. Ciclo vegetativo en 1997 219 Figura n° 72. Ciclo vegetativo en 1998 223 Figura n° 73. Ciclo vegetativo en 1999 227

En este trabajo se han caracterizado las siguientes variedades de Vitis vinifera L.: Pardina, Blanca Cayetana, Montúa, Eva, Alarije, Marfal, Borba, Cigüentes, Perruno y Morisca, que se cultivan fundamentalmente en Extremadura. Los métodos que se han empleado para conseguir este objetivo han sido: descripción morfológica, estudio isoenzimático, análisis del contenido amínico de mostos en su madurez y observación de los distintos estados fenológicos de la vid.

Entre los cultivares estudiados se han detectado problemas de sinonimias y homonimias. Así, los nombres de Jaén, Pardina y Blanca Cayetana son tres denominaciones diferentes que hacen alusión a un mismo cultivar. Entre las accesiones consideradas de Mantúo, Montúa, Eva, Beba y Chelva se han podido identificar dos cultivares diferentes, pudiendo englobar cada uno de ellos las distintas denominaciones anteriormente mencionadas. Entre los clones de Borba y Cigüentes seleccionados por el SIDT-Extremadura se ha encontrado un error de identificación de variedades al corresponder todos ellos a un solo cultivar, que podría denominarse Cigüentes. Semejante problema también se ha detectado en la accesión de Malfar (7CN1), que corresponde a la variedad Alarije.

El estudio morfológico realizado, además de facilitar una adecuada caracterización de las accesiones descritas, también ha permitido comprobar cómo ciertos caracteres son variables en fimción de la localización geográfica de los clones. El análisis isoenzimático, cuyo sistema más discriminante ha sido el de catecol oxidasas, ha complementado con sus resultados los obtenidos mediante las descripciones morfológicas. Así mismo, el cociente prolina:arginina ha establecido diferencias entre algunos de los cultivares estudiados, siendo en algún caso esta diferencia fundamental.

En este trabajo también se ha pretendido una identificación de los clones incluidos en el mismo, consiguiéndose en algunos casos a través del análisis del contenido amínico de los mostos, así como con el estudio de su comportamiento en los distintos estados fenológicos observados. Cuando este estudio se hace extensivo a los clones virosados, se ha observado que también mediante estos dos métodos se detectan

III ciertas diferencias entre las accesiones infectadas y las libres de virus que corresponden a una misma variedad.

El seguimiento fenológico realizado también ha permitido comprobar cómo las condiciones ambientales influyen notablemente sobre la brotación, la floración y la caída de la hoja, mientras que sobre el envero y el período floración-envero tienen una mayor influencia las características genotípicas de la planta.

IV

In this work have been characterized the foUowing Vitis vinifera L. cultiváis: Pardina, Blanca Cayetana, Montúa, Eva, Alarije, Marfal, Borba, Cigüentes, Perruno and Morisca, which grow fundamentally in Estremadura. The methods which have been used to achieve this aim have been: morphological description, isoenzymatic research, free amino acid composition of juice at ripeness and observation of different phenological stages of grapevines.

Problems of synonymies and homonymes have been detected among the identified cultiváis. Thus, the ñames of Jaén, Pardina and Blanca Cayetana are three different denominations which refer to the same variety. Two dissimilar cultiváis have been identified among the studied clones of Mantúo, Montúa, Eva, Beba and Chelva, but this two groups are not clearly define because the different denominations mentioned could appear in both. An Identification- mistake among the clones of Borba and Cigüentes selected by SIDT-Extremadura has been found since all of them are the same cultivar, which could desígnate Cigüentes. Similar problem has been detected with the clone 7CN1 (Malfar), which corresponds to the Alarije cultivar.

The morphological research carried out besides provide a proper characterization of described clones, it has also allowed to confirm that certain characters are variable depending on clones geographical location. The isoenzymatic analysis, of which system more discriminatory has been catechol oxidases, has complement the results obtained with morphological descriptions. The ratio proline:arginine has also established differences among some of the identified cultivars, and in some case this dissimilarity is principal.

In this work has also tried to identify clones. This aim have been achieved in some cases with the analysis free amino acid composition of musts and phenological research. These two methods have also allowed to detect certain differences among clones infected with virus and those which are healthy and belong to the same cultivar.

VII With the phenological research has been verified how the enviroment influences on the sprouting, the flowering and the faUing of the leaf, meanwhile on the and the period between flowering and veraison have a major influence the genotype.

VIII i.

1.1.- El cultivo de la vid en el mundo y en España: orígenes e importancia económica

Desde muy antiguo el hombre conoce y aprecia los frutos de la vid. Hidalgo (1993) halla las primeras noticias sobre su cultivo en la región de Ararat en Armenia, la Trascaucasia, Asia Menor e Irán, donde empleaban variedades autóctonas de Vitis vinifera.

En la Biblia se hacen numerosas referencias sobre ella. La primera cita corresponde al año 2.500 a.C. en la que se describe como en la ciudad de Lagash, se cultivaba la vid y otros árboles frutales en huertos empleando el regadío.

También en Egipto se encuentran noticias concretas sobre su cultivo. Se han hallado en las necrópolis de gobernantes y oficiales del Nuevo hnperio, datadas entre 1580-1085 a.C., pinturas que muestran las técnicas del cultivo de viñedo, extendido en los oasis situados al sur del delta del Nilo.

El antiguo pueblo de los caldeos se dedicó a su cultivo, al igual que los hebreos, que consumían vino en las grandes celebraciones.

Posteriormente, los fenicios heredaron los conocimientos sobre la viticultura de los hebreos y los transmitieron a los griegos. Este último pueblo mejoró su cultivo, dándole un gran impulso al introducirlo en las costas mediterráneas de Italia,.Sicilia, sur de Francia y España.

Los romanos introdujeron definitivamente el cultivo de la vid en Europa, al llevarla consigo a todos los puntos del Imperio. Es de esta época la primera cita que existe sobre el cultivo de la vid en España realizada por el geógrafo romanó, Rufo Festo Avieno, quien transcribe el relato de un viaje reaüzado por un navegante griego hacia el año 520 a.C.

Ya en la Edad Media la viticultura permanece fimdamentalmente por la simbología que tiene el vino en la ceremonia cristiana; quedando en las órdenes monásticas la labor de mantener y ejercer los conocimientos de la viticultura.

Con el descubrimiento del continente americano España juega un papel fundamental en la introducción de la vid en dicho continente, quedando de esta manera instaurada la viticultura americana.

A mediados del siglo XVIII se inicia su cultivo en Sudáfrica, y es a finales del siglo XIX y principios del XX cuando aparecen las primeras plantaciones en Australia y Nueva Zelanda.

En la actualidad la viticultura tiene una gran importancia económica, habiéndose extendido esta actividad a los cinco continentes.

El incremento de superficie de viñedo que sucedió durante el período de 30 años comprendido entre 1951 y 1980, fiíe seguido por un descenso en los últimos 16 años contándose con una superficie mundial de 7.742.000 ha en 1996 (OIV, 1998). El continente europeo es el que tiene una mayor superficie (5.209.000 ha) seguido por el asiático (1.327.000 ha); los demás tienen un número de hectáreas bastante menor, dándose la paradoja de que sólo en España hay más superficie de viñedo que en cada uno de los restantes continentes.

España en 1996 contaba con 1.224.000 ha de viñedo (OIV, 1998), lo que supone que es el país del mundo que tiene más superficie dedicada a este cultivo, seguida por Italia y Francia. Sin embargo, estas posiciones cambian cuando se consideran los datos de producción de vino siendo la primera Italia, y después Francia y España. Esto tiene su explicación en nuestras condiciones climatológicas y al carácter de cultivo marginal que noimalmente ha tenido el viñedo en nuestro país. Respecto a la uva de mesa España ocupa el sexto puesto en cuanto a producción, y el decimoquinto en la producción de pasas.

En España el cultivo de la vid está extendido a todas las Comunidades Autónomas, aunque teniendo en cada una de ellas una importancia económica diferente. El viñedo se dedica fundamentalmente a la producción de vino y de mosto (96%), siendo mucho menor la superficie dedicada al cultivo de mesa (3,7%), y a la obtención de uvas para pasas (0,3%). Se estima que del cultivo de la vid depende el 5% de la población activa española, de una forma directa o indirecta (Hidalgo, 1984).

Las características de la viticultura española se pueden resumir según Hidalgo (1993) en: viñedos cultivados en condiciones de secano, apenas aparecen con cultivos asociados, situados en terrenos pobres, con un 30% de viñedos con pie firanco, con una baja densidad de plantación, fundamentalmente con pies bajos y podas cortas, de edad avanzada y una baja producción de uva.

1.2.- El cultivo de la vid en Extremadura: breve historia e importancia económica

Hidalgo (1993) considera que el inicio de la viticultura extremeña se remonta a los primitivos pueblos célticos y lusitanos. Sin embargo, el auge se produce durante el Imperio Romano al ubicarse la capital de Hispania Ulterior Lusitana, en Emérita Augusta, actualmente ciudad de Mérida. La gran actividad que se desarrollaba en esta ciudad conllevaba un importante comercio y consumo de vino.

Con la conquista árabe se produce un retroceso en esta actividad debido a la prohibición del consumo de vino en el Corán. Posteriormente la reconquista y sobre todo la trashumancia favorece el resurgir de la viticultura. Sin embargo, la mayor rentabilidad de la trashumancia no permitió una gran difusión de los viñedos, aunque sí el consumo de vino.

Rodríguez (1993) comenta como en el siglo XV y XVI el vino formaba parte fundamental en la dieta de las personas jxmto con el trigo y el aceite de oliva. En aquella época a todas aquellas personas que formaban parte de la poderosa entidad económico-religiosa que era el Monasterio de Santa María de Guadalupe, situado en la provincia de Cáceres, se les distribuía su ración correspondiente que variaba en función de su rango y estado civil. Según la documentación existente en dicho Monasterio se elaboraban vinos tanto para el consumo propio como para la hospedería, en los cuales se ponía especial cuidado pues por allí pasaban gente de rango de toda España y algunos extranjeros; también se elaboraba para el hospital con especial cuidado para los purgados; y en la botica se usaba el vino blanco para los elixires y tinto para los emplastos.

En el Libro "Agricultura General" de Alonso Herrera (1645) se destacan los vinos tintos del partido de Alcántara y los de la Vera de Plasencia.

En la actualidad el viñedo extremeño ocupa una superficie de 81.843 ha (Pulido y Escribano, 1995), concentrándose en la provincia de Badajoz el 95% del viñedo y sólo un 5% en Cáceres.

Las características que presenta la viticultura en esta región son: im viñedo destinado a la transformación en un 90%, correspondiendo el 10% restante a uva de mesa, aunque en este porcentaje se incluyen variedades de doble aptitud; producciones en tomo a los 2 millones de hl con altibajos según las condiciones climáticas de la campaña; frecuente asociación de la vid con el olivo; flindamentalmente se realiza el cultivo en secano con formas bajas y podas cortas, comenzando en las nuevas plantaciones a emplearse el riego y las formas apoyadas.

El Reglamento (CE) n° 3255/94 en la Comunidad de Extremadura clasifica las variedades de vid para su cultivo en:

- Recomendadas: Alarije, Borba, , Gamacha Tinta, Pardina, y Viura. - Autorizadas: , Cabemet Sauvignon, , Chelva, Eva, Graciano, Malvar, Máznela, , Monastrell, , Pedro Ximenez, y .

La Commiidad Autónoma de Extremadura tiene para sus vinos la Denominación de Origen "Ribera del Guadiana", de reciente creación por la Orden del 17 de marzo de 1997, posteriormente modificada por las Ordenes del 8 de julio de 1998 y del 25 de enero de 1999 de la Consejería de Agricultura y Comercio de dicha Comunidad Autónoma, y cuya ratificación por el Ministerio de Agricultura Pesca y Alimentación se obtuvo a través de la Orden del 16 de abril de 1999.

El Reglamento de la Denominación de Origen "Ribera del Guadiana" establece seis zonas de producción, que aparecen representadas en la figura n" 1:

1. Ribera Alta: Consta de 38 municipios situados en la región llana de la provincia de Badajoz. Esta está constituida por las vegas del Guadiana, las tierras lianas de La Serena y Campo de Castuera, que enlazan en la parte oriental con las Vegas Altas y Tierra de Barros. Sus suelos, como consecuencia de los depósitos cuaternarios dejados por el Guadiana y sus afluentes, son muy arenosos. Las variedades de mesa tienen una fiíerte presencia en esta zona. Las uvas de vinificación también tienen importancia, y entre ellas hay que destacar a Alarije y Borba dentro de las blancas, y en tintas a Tempranillo y algo de Garnacha. Las variedades principales aprobadas por la Denominación de Origen para esta subzona son: Montúa, Pedro Ximenez, Alarije, Borba, Garnacha Tinta, Tempranillo y Cayetana Blanca. 2. Tierra de Barros: ; En ella se integran 35 municipios distribuidos por el centro y sureste de la provincia de Badajoz, constituyendo la comarca de mayor producción vitícola. La zona de Tierra de Barros es de relieve prácticamente llano, con suelos fértiles, ricos en nutrientes y con notable capacidad parala retención de agua. El clima es bastante seco, con elevadas temperaturas en verano, acentuadas por la acción del viento solano. Las precipitaciones oscilan entre 350 y 400 mm. Los cultivares más importantes son blancos: Cayetana Blanca, Pardina, Montúa y ; y en tintos están Tempranillo y Garnacha. Como variedades principales para esta zona, según el Reglamento de la Denominación de Origen, tenemos a: Cayetana Blanca, Pardina, Macabeo, Montúa, Garnacha Tinta y Tempranillo. Matanegra: Son 8 miinicipios los que conforman esta subzona situada en el sur de la provincia de Badajoz. Existe cierta similitud en su suelo respecto a Tierra de Barros y en la climatología, aunque algo más suave que hace retrasar en unos días la recogida de la uva. Las variedades de uva blanca más extendidas son Eva o Beba de los Santos y Montúa, seguidas de Pardina, Cayetana Blanca y Macabeo; en tintas por orden de superficie de viñedo están Tempranillo, Garnacha y Cabemet Sauvignon. Los cultivares principales incluidos en el Reglamento para esta comarca son: Cayetana Blanca, Eva o Beba de los Santos, Garnacha Tinta y Tempranillo. Ribera Baja: Está constituida por 11 municipios ubicados en los márgenes del río Guadiana en su curso próximo a la frontera con Portugal. Los depósitos cuaternarios dejados por el Guadiana y sus afluentes han dado lugar a las Vegas Bajas con un carácter arcilloso-limoso. El clima es continental con moderada influencia atlántica en el que la mayor persistencia e intensidad de las lluvias está condicionada por los vientos del Oeste y Suroeste. Las variaciones climáticas son escasas: veranos' largos, otoños y primaveras cortas y suaves, con concentraciones de lluvias, e inviernos no muy rigurosos. En uvas blancas resulta mayoritaria la presencia de Cayetana Blanca y Pardina, con algunas parcelas de Macabeo; y en tintas Tempranillo y algo de Garnacha. Las variedades principales atendiendo al Reglamento son: Cayetana Blanca, Pardina, Macabeo, Montúa, Garnacha Tinta y Tempranillo. Montánchez: Los 27 mimicipios que forman esta subzona se sitúan en el sur de la provincia de Cáceres. Es una zona de complicada orografía, con abundantes cerros y pequeños valles en los que el viñedo aparece sobre suelos clasificados como tierras pardas acidas. El clima es continental, con veranos muy cálidos e inviernos no demasiado rigurosos. Las precipitaciones se sitúan entre 500 y 600 mm al año. aíBZDNAS Í)A), RIBBIA DEL Gl'ADUANA

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Figura n° 1. Subzonas de producción de la Denonainación de Origen "Ribera del Guadiana".

El cultivar más abundante es Borba, que ocupa unos dos tercios del total del viñedo, seguido por Alarije, Cayetana Blanca y Pedro Ximenez todas ellas blancas. Entre las tintas, minoritarias, sobresalen las plantaciones de Tempranillo y Garnacha. Las variedades principales contempladas por el Reglamento para esta zona son: Borba, Pedro Ximenez, Garnacha Tinta, Tempranillo y Malvar. 6. Cañamero: Presenta 4 municipios en la provincia de Cáceres y uno en Badajoz. La mayor parte de la comarca se encuentra situada en la Sierra de Guadalupe. Presenta un relieve bastante accidentado, situándose los cultivos preferentemente en las laderas, sobre terrenos pobres y de naturaleza pizarrosa. Así el cultivo de la vid se desarrolla a unos 600-800 m sobre el nivel del mar. El clima es suave, sin grandes contrastes térmicos, con xmas precipitaciones de alrededor de 750-800 mm al año. El cultivar predominante es Alarije, que ocupa las tres cuartas partes del total del viñedo. En mucha menor proporción se encuentran las también blancas Chelva, Marfal y las tintas Tempranillo y Garnacha. Es frecuente la mezcla de variedades y también el cultivo asociado, sobre todo, con ohvo. Se consideran como variedades principales en esta subzona a: Alarije, Verdejo, Garnacha Tinta y Tempranillo.

Además de los cultivares mencionados como principales el Reglamento de la Denominación de Origen "Ribera del Guadiana" considera como variedades autorizadas las siguientes:

- Blancas: Chardonnay, Parchada y Chelva o Montúa - Tintas: Bobal, Cabemet Sauvignon, Graciano, Máznela, Merlot, Monastrell y Syrah. ,

1.3.- Clasificación botánica de la vid

La botánica sistemática sitúa a la vid (Vitis vinifera L.) dentro del grupo de las

11 Cormofitas (plantas con raíz, tallo y hojas, autótrofas con clorofila y reproducción sexual, además de la vegetativa); Tipo Fanerógamas (plantas con flores y semillas); Subtipo Angiospermas (plantas con semillas encerradas en un ovario); Clase Dicotiledóneas (plantas leñosas con un solo ciclo de estambres situados delante de los pétalos); Familia Vitáceas (flores con corola de pétalos soldados superiormente y de prefloración valvar, con cáliz poco desarrollado, gineceo generalmente bicarpelar y bilocular, con fruto en baya) y Género Vitis (con flores exclusivamente dioicas en las especies silvestres, y hermafi-oditas o imisexuales en las cultivadas).

Dentro del género Vitis hay dos subgéneros o secciones:

- Sección Muscadinea: se caracteriza por tener zarcillos simples, 40 cromosomas, corteza no exfoliable y bayas poco azucaradas y con una maduración escalonada. Son vides situadas en el sudeste de EEUU y México. • V. rotundifolia • V. munsoniana • V. popenoen La primera de ellas es interesante por ser la única especie inmune a la filoxera; es cultivada para la producción de finta firesca, confituras, helados y obtención de vino. - Sección Euvitis: presenta zarcillos bifiírcados o compuestos, corteza exfoliable y 38 cromosomas. Son especies establecidas naturalmente en zonas templadas, cálidas y tropicales del Hemisferio Boreal. Diferentes autores establecen distintas ordenaciones dentro de esta sección. Si atendemos a la clasificación realizada por Galet (1967) este subgénero consta de 11 series que incluyen a 57 especies. Destacan V. candicans (serie 1. Candicansae), V. labrusca (serie 2. Labruscae), V. berlandieri (serie 5. Cinereae), V. aestivalis (serie 6. Aestivalae), V. cordifolia y V. montícola (serie 7. Cordifoliae), V. amurensis (serie 8. Flexuosae) y V. riparia y V. rupestris (serie 10. Ripariae), por tener alguna característica agronómica interesante (resistencia a la filoxera, a la cahza activa, a enfermedades criptogámicas, buena afinidad con V. vinifera,...) y emplearse como portainjerto, o como parentales en cruzamientos para obtener patrones o híbridos

12 productores directos. Por último, en la serie ll.Viniferae aparece V. vinifera que es la única especie significativamente cultivable, con aptitudes viníferas y bayas grandes y sabrosas.

Como se ha indicado el género Vitis cuenta con un gran número de especies, y dentro de cada una de ellas existen diferentes variedades. Si nos centramos en V. vinifera en ella se citan 10.000 cultivares diferentes, llegándose a hablar de hasta 20.000 teniendo en cuenta las hibridaciones (Martínez de Toda, 1991).

1.4.- Importancia de la caracterización de la vid

El estudio de la caracterización de variedades en Vitis vinifera tiene una gran transcendencia en esta especie, debido a la gran cantidad de cultivares existentes como se ha citado anteriormente. Esta gran diversidad varietal y heterogeneidad de poblaciones dificulta este estudio, sobre todo si se agrega el intercambio de material vegetal que tiene lugar entre diferentes regiones vitícolas y los cambios de denominaciones que se producen en este proceso. De esta manera, surgen los problemas de sinonimias y homonimias tan frecuentes en vid.

Ante tal ingente número de individuos- diferentes, urge la necesidad de una clara identificación de los mismos, sobre todo en un momento en que la dinámica actual de la viticultura ha generado una renovación de la estructura varietal de muchos viñedos. Ello está haciendo peligrar la conservación de muchas variedades tradicionales que se mantuvieron durante siglos en cultivo por alguna característica determinada, que si actualmente puede carecer de interés inmediato, quizá resulte interesante para alguna situación futura. Además hay que evitar la pérdida de cualquier recurso fitogenético, no sólo por el interés que pueda tener desde im punto de vista de mejora genética, sino por el valor que tiene en sí mismo.

Es importante conocer también las características agronómicas que tiene ese materíal minoritario para la viticultura actual, y de esta manera tener información sobre esas variedades, por si en el futuro volviesen a apreciarse, o para conocer las

13 posibilidades de mejora que ofrecen a las que actualmente se cultivan de forma mayoritaria.

1.5.- La caracterización varietal

La caracterización varietal tiene dos objetivos:

- Conocer las características agronómicas del cultivar: estados fenológicos, producción, calidad del ñuto y del vino, sensibilidad a plagas y enfermedades,... - Obtener una ficha identificativa de la planta que proporcione la mayor información posible sobre ella, tanto sobre su fenotipo como sobre su genotipo.

Inicialmente el proceso de identificación se realizaba mediante descripciones, siendo la ampelografía (del griego, ampelos = vid y grafos - descripción) la ciencia que se ocupa del estudio de las variedades.

A lo largo del tiempo para realizar estas descripciones varietales se han empleado diversos métodos de identificación y clasificación.

Las primeras descripciones ampelográficas se remontan a la época romana en la que se determinaban las aptitudes de los cultivares, sin describirlos morfológicamente y por tanto impidiendo su comparación con las variedades actuales.

En 1645, Alonso Herrera describe 16 variedades de vid, señalando aspectos morfológicos, enológicos y agronómicos.

Posteriormente, Simón Roxas Clemente (1807) en su libro "Ensayo sobre las variedades de viña que vegetan en Andalucía" realiza un detallado estudio morfológico de los cultivares que se localizaban en aquella región. Permitiendo de esta manera, relacionar aquellas denominaciones con las actuales y establecer comparaciones.

A principios del siglo XX la ampelografía toma cierta importancia debido a los

14 problemas surgidos con la replantación del viñedo europeo a causa de la invasión filoxérica. Es en esta época en la que aparece una obra clásica en este campo, se trata de "Ampelografía" de Viala y Vermorel (1902-1910). En este libro se incluyen descripciones morfológicas, características agronómicas y enológicas, y la resistencia a plagas y enfermedades de los cultivares.

Posteriormente, Galet (1956-1964) publica un libro de cuatro volúmenes en el que hace un exhaustivo estudio ampelográfico aunque solo de variedades cultivadas en Francia.

Por último, habría que destacar cinco libros de ampelografía publicados en España en los que se describen diversos cultivares españoles. Estas pubHcaciones tienen gran relevancia puesto que desde Roxas Clemente (1807) no se habían'hecho descripciones tan detalladas sobre variedades españolas. Estas obras son: "Viníferas jerezanas y de Andalucía Occidental" (Fernández de Bobadilla, 1956), "Descripciones ampelográficas nacionales" (Borrego, 1990), "Variedades de vid en Andalucía" (García de Lujan et al., 1990), "Manual de Ampelografía General" (Lezcano, 1991) y "Videiras Galegas. Catálogo de variedades autóctonas" (Freijanes y Alonso, 1997).

Actualmente la caracterización varietal se realiza de una forma más profunda y ; detallada empleando otros métodos además de la ampelografía. Los descubrimientos científicos en el mundo de la bioquímica y genética, así como los avances tecnológicos han permitido mejorar las técnicas de medición morfométricas, la elaboración de los datos obterúdos, el estudio de compuestos bioquímicos tales como taninos, antocianos, aminoácidos, ... e incluso el propio DNA de la planta dando un nuevo enfoque a la identificación varietal.

1.6.- Caracterización morfológica

La ampelografía ha sido el método más utilizado en la caracterización de variedades, basado en la descripción de diferentes caracteres morfológicos de la planta. Sin embargo, el número de caracteres utilizados y la complejidad de su defmición varía

15 con los autores y los objetivos que se persiguen: clasificación sistemática para su identificación, descripción de nuevas variedades, descripción de las características tecnológicas,...

Considerando estos problemas se celebró \ma reunión en Salónica (Grecia) en 1982, patrocinada por el Ministerio de Agricultura de Grecia, EUCARPIA (Asociación Europea para la Investigación en Mejora Genética Vegetal), ECP-GR (Programa Cooperativo Europeo sobre Conservación e Intercambio de Fuentes Genéticas Vegetales), IBPGR (International Board for Plant Genetic Resources), actualmente denominado IPGRI (International Plant Genetic Resources Institute) y la OIV (Oficina Internacional de la Viña y el Vino). En dicha reunión se acordó, por los representantes internacionales, aprobar xma lista de caracteres descriptivos.

Así desde 1984, y por primera vez, existe un método de descripción de variedades de vid aceptado intemacionabnente por la UPOV (Unión Internacional para la Protección de las Obtenciones Vegetales), el IPGRI y la OIV.

La relación completa de los caracteres descriptivos de variedades y especies de Vitis file publicada por la OIV (1984) y comprende 130 caracteres. Cada organismo (IPGRI, OrV y UPOV) emplea un número diferente de caracteres según la naturaleza de la descripción, desde 21 para los bancos de genes, hasta 78 para la protección de nuevas variedades, siendo 35 de ellos obHgatorios. Este número es todavía mucho más elevado cuando se trata de describir las características para el cultivo y las tecnológicas de las variedades, como sucede en el caso de la OIV.

Cada carácter va acompañado de un número OIV, y algunos llevan además el número correspondiente a las Directrices para el examen de los caracteres distintivos, homogeneidad y estabilidad de las obtenciones vegetales, pertenecientes a la UPOV y al número de la lista "Viñas" perteneciente al IPGRI.

Según el elemento de la planta que describen los caracteres, éstos se pueden agrupar en:

16 Sumidad - Hoja joven - Hoja adulta - Pámpano - Inflorescencia Racimo - Baya Sarmiento - Fenología Crecimiento - Resistencia a un factor abiótico - Resistencia a un factor biótico - Rendimiento en uva - Portainjertos

Todos los caracteres no son necesarios para realizar la descripción de un cultivar, de esta manera se han elaborado cuatro listas mínimas que se limitan a los caracteres considerados como esenciales para el objetivo que se busca. Estas son:

- Lista mínima para el establecimiento de colecciones de genes, son 21 caracteres Lista mínima para la protección de variedades: establecida por la UPOV y consta de 35 caracteres - Lista mínima para la descripción de variedades: con 78 caracteres - Lista mínima para trabajos de mejora: definida por el IPGRI con 95 caracteres

Con el empleo de estos caracteres por parte de los ampelógrafos, para realizar la caracterización de una variedad se consigue hacer comparables los resultados de la descripción entre diversos autores.

Con el fin de establecer una lista mínima de los caracteres descriptivos de las variedades de vid que sólo incluyese los caracteres más relevantes y que permitiese hacer una correcta distinción e identificación de los cultivares, Dettweiler publicó en

17 1991 "Preliminary minimal descriptor for grapevine varities" constituida por 41 caracteres morfológicos que corresponden a:

- Sumidad - Pámpano - Hoja joven Hoja adulta - Flor - Baya

Algimos de estos caracteres son modificaciones de los códigos de la OIV (1984) orientados a hacer más fácil la descripción, mientras que otros se mantienen iguales.

Sin embargo, la descripción morfológica a pesar de los esfuerzos de unificación en el empleo de los caracteres sigue teniendo dos grandes problemas: la fluctuación de algunos caracteres por las condiciones ambientales y la subjetividad en la descripción.

1.7.- Caracterización bioquímica

Más recientemente el estudio de los compuestos bioquímicos, tanto desde xm punto de vista cuantitativo como cualitativo, ha tomado una gran importancia en la caracterización varietal. El empleo de estas nuevas técnicas en este área está claramente justificado ya que estos caracteres son una expresión del código genético de la planta (Altube, et al., 1991; Cabello, 1992; Gorgocena et al., 1993).

Los compuestos bioquímicos presentan como ventajas que permiten con firecuencia la distinción de especies y variedades próximas en casos que son difíciles de resolver por medio de caracteres morfológicos, hacen posible la identificación de cultivares en período de latencia o en las primeras etapas de desarrollo de la planta, y generalmente son estables firente a los cambios en las condiciones ambientales.

Son muchos los compuestos bioquímicos que se pueden estudiar, dentro de ellos

18 se puede hacer una clasificación en metabolitos primarios (proteínas, enzimas, aminoácidos,...) y metabolitos secundarios (flavonoides, compuestos aromáticos, antocianos, azúcares, ácidos,...).

Teniendo en cuenta que las proteínas e isoenzimas son controladas directamente por el genoma de la célula, en contraste con los metabolitos secundarios y con los caracteres morfológicos, que están más influidos por las condiciones extemas, las primeras darán una información más directa de los caracteres hereditarios (Crawford, 1983).

1.7.1.- Isoenzimas

En 1959 Market y MoUet definieron a las isoenzimas como diferentes formas moleculares de una misma enzima, que se expresan en diferentes tejidos y/o momentos de desarrollo y catalizan una misma reacción.

Como otras proteínas, las isoenzimas se pueden separar por su movimiento relativo a través de un medio polarizado, atendiendo a su carga, a su peso molecular y al pH del medio. Basándose en esta propiedad han sido numerosos los estudios que se han realizado en el campo de la identificación varietal en vid (Schwennsen, et al., 1982; Stavrakakis y Loukas, 1983; Arulsekar y Parfitt, 1986; Subden, et al, 1987).

Para hacer comparables los estudios isoenzimáticos reahzados por diferentes grupos de investigación es preciso que se haya seguido una misma metodología.

La extracción de las isoenzimas en vid es complicada, debido a la gran cantidad de polifenoles presentes en todos los órganos de la planta. Para obtener los extractos del material vegetal estudiado se puede partir de cualquier tipo de tejido vegetal, ya que en todos ellos hay una mayor o menor concentración de isoenzimas para su posterior análisis. Los órganos más frecuentemente utilizados han sido: hojas (Dal Belin Peruffo et al., 1981; Arulsekar y Parfitt, 1986), bayas (Schwennsen et al., 1982; Chaparro et al,. 1989), polen (AhmeduUah y Wolfe, 1981; Stavrakakis y Loukas, 1983 y 1985),

19 raíces (Schaefer, 1982; Altube et al, 1992) y sarmientos (Subden et al, 1987; Bachmann, 1989 y 1994; Altube et al., 1991). Sin embargo, ante estas diversas posibilidades Bachmaim (1994) aclara que los órganos que tendrán un mayor interés y serán más adecuados para este tipo de estudios serán aquellos que tengan un alto contenido proteico y un bajo contenido en polifenoles, inclinándose en sus trabajos por el empleo de sarmientos en época de reposo invernal.

El estado fenológico en que se realiza el análisis isoenzimático es también un aspecto muy interesante que hay que considerar, pues los zimogramas obtenidos se pueden modificar según se encuentren en un momento u otro del ciclo vegetativo. Así Dal Belin Peruffo y Pallavicini (1975) encontraron nuevas bandas en los modelos obtenidos en las isoenzimas malato deshidrogenasa, ácido fosfatasa y glutamato deshidrogenasa en diferentes momentos de la maduración. Royo et al. (1989) analizando los patrones isoenzimáticos de peroxidasa en 8 clones de Garnacha, encontraron dos tipos de isoenzimas, unas que aparecían constantemente a lo largo del ciclo vegetativo y otras que solo lo hacían en ciertos momentos. Royo et al. (1997) sobre plantas cultivadas en dos localidades con diferentes condiciones climáticas, evaluaron las modificaciones que se producían en los zimogramas de esterasas, ácido fosfatasa, catecol oxidasas, glutamato oxalacetato transaminasa y peroxidasa al anaHzarlos en diferentes estados fenológicos, que incluían tanto el reposo vegetativo como el período de crecimiento. Todos los modelos obtenidos presentaban bandas erráticas y fijas, manteniéndose estas últimas siempre en las muestras tomadas durante la parada invernal.

Por tanto, para hacer comparables los resultados obtenidos con otros grupos de investigación no sólo se debe atender a los pvintos anteriormente indicados (muestras de tejidos comparables, similares estadios de desarrollo), sino también a las técnicas propiamente dichas de laboratorio: método de extracción y conservación, condiciones de electroforesis, tinción realizada,...

La elección de los sistemas enzimáticos empleados en un estudio de identificación debe estar basada en el empleo de isoenzimas que presenten

20 polimorfismo, y que éste se manifieste en modelos con pocas bandas, y además que estén perfectamente definidas (Bachmann, 1994). Las isoenzimas pueden actuar en el metabolismo principal o en el secundario. En este último debido a las continuas modificaciones que se tienen que realizar en las rutas metabólicas para que un vegetal se pueda adaptar a los cambios ambientales es más fácil que se produzcan nuevos polimorfismos por estas continuas adaptaciones. Sin embargo, una variación en las isoenzimas que desarrollan su actividad en el metabolismo principal puede suponer un gran cambio evolutivo (Sánchez-Yélamo, comunicación personal).

1.7.2.-Otras técnicas moleculares

En 1984, un grupo de investigadores desarrolló im método de amplificación de ADN in vitro, que permitía producir fácilmente grandes cantidades de imo o más firagmentos específicos (productos amplificados) a partir de un ADN molde de gran complejidad. Lo denominaron reacción en cadena de la polimerasa (PCR: polymerase chain reaction (Saiki et al., 1985)). Desde que este grupo de trabajo hizo público su descubrimiento han sido numerosas las aplicaciones que se han realizado en los campos de la medicina y la biología, abriendo nuevas perspectivas a los tradicionales problemas de caracterización varietal.

A partir de este hallazgo se han desarrollado una serie de técnicas basadas en la PCR. Dentro de ellas la más utilizada por su sencillez son los RAPDs (random amplified polymorphic DNA), que emplean cebadores cortos y buscan polimorfismo en el genoma sin conocimiento previo del mismo. Un ejemplo de esta aplicación en la caracterización de la yid la tenemos en el trabajo reahzado por Moreno (1996).

Otro método capaz de desvelar gran cantidad de polimorfismo se basa en la detección de microsatélites o secuencias repetitivas simples (SSRs), que son secuencias cortas de 1 a 10 pares de bases repetidas en tándem en número variable, que normalmente están dispersas en abundancia por todo el genoma, pero que su principal característica para este tipo de estudio es que son altamente polimórficas debido a la gran variabilidad en cuanto a la repetición en tándem. La detección de estos

21 polimorfismos empleando la técnica de la PCR se suele realizar mediante el método STMS (sequence-tagged microsattelite site), que requiere conocer previamente las secuencias que ñanquean el microsatélite a estudiar. Thomas y Scott (1993) hacen el primer estudio en vid aplicando esta técnica.

Los AFLPs también son una nueva y útil herramienta de trabajo en el estudio de la variabilidad. En ellos se somete primero al ADN a im tratamiento con al menos ima enzima de restricción y posteriormente, a ima modificación de los extremos de los fi-agmentos de restricción mediante la aplicación de pequeños oügonucleotidos de secuencia conocida (adaptadores). La amplificación se realiza utilizando cebadores que constan de dos partes, una secuencia complementaria al adaptador y que contiene completa la diana de restricción, y una secuencia selectiva que tiene por objeto que sólo amplifique una fracción del conjunto de fragmentos de restricción generados. Cervera et al. (1998) han desarrollado esta técnica en el estudio varietal de vid con éxito.

Además de las técnicas reseñadas basadas en la PCR, existen otras también aplicadas en estudios de variabiüdad. La más utilizada hasta hace pocos años denfro de los llamados marcadores de ADN, eran los RFLPs (restriction fragment length polymorphisms). Estos consisten en el empleo de fragmentos de ADN marcados radioactivamente, que hibridan con el genoma, sobre el que se aplican enzimas de restricción para que realicen la digestión del mismo. El primer estudio aplicando este método en caracterización de vid es de Striem et al. (1990).

1.7.3.-Aminoácidos

En general, el estudio de estas sustancias nitrogenadas presenta un gran interés debido a la influencia que tienen sobre el desarrollo de la materia viva; en nuestro caso, sobre el mosto en fermentación y el propio vino.

El nitrógeno constituye jimto con el carbono, hidrógeno y oxígeno el 95% de los componentes de las plantas. En el caso de la uva representa del 0,5 al 1% del peso total de la baya, distribuido de la siguiente manera: 24% en el hollejo, 24% en la pulpa y

22 52% en las pepitas. Para la síntesis de las sustancias nitrogenadas, que se realiza esencialmente durante el período de maduración, la vid aprovecha las diferentes formas en que el nitrógeno es absorbido del suelo por su sistema radicular y los glúcidos elaborados por su mecanismo fotosintético (Valdés, 1998).

En los años 30 se detectaron por primera vez aminoácidos en los mostos (Rapp y Versini, 1991). Desde entonces, se han realizado muchos estudios sobre la composición amínica de bayas y mostos (Castor, 1953; Lafon-Lafourcade y Guimberteau, 1962; Kliewer, 1968, 1970; Polo y Llaguno, 1974; Rapp, 1990; Huang y Ough, 1991; Spayd y Anderssen-Bagge, 1996). Las primeras investigaciones aportaron una información muy útil, pero se vieron limitadas por la instrumentación disponible, o por el reducido número de muestras que se podían analizar. Posteriormente, la cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) resolvió estos problemas permitiendo realizar trabajos mucho más amphos y precisos (Huang y Ough, 1991).

Los aminoácidos son ima fuente de energía para las levaduras que realizan la fermentación alcohólica y para las bacterias que desarrollan la fermentación maloláctica (Huang y Ough, 1989), contribuyen a la formación de algunos compuestos precursores de aromas y sabor (Rapp y Versini, 1991), y algunos de ellos en determinadas condiciones pueden intervenir en el proceso de formación de algunos compuestos indeseables, como el etil carbamato, que se trata de una sustancia presuntamente cancerígena (Ough, 1991).

Debido a la gran importancia que tienen los compuestos nitrogenados en el desarrollo de una adecuada fermentación y en la obtención de un vino de calidad son numerosos los estudios existentes como han recopilado Henschke y Jiranek (1992). Cáceres et al. (1987) exphcan la importancia del conocimiento previo de la fracción nitrogenada en un mosto, y Regodón (1997) y Valdés (1998) la estudian en mostos de variedades cultivadas en Extremadura. Ough et al. (1990) para poder evaluar las aptitudes de un mosto para su posterior fermentación, definen el término "nitrógeno asimilable" en un mosto, como la suma total de aminoácidos menos la prolina, expresado en mgN/1.

23 Hoy día se sabe que la composición amínica de los mostos está influida por diversos factores: la variedad (IQiewer, 1969 y 1970; Huang y Ough, 1991; Shiraishi, 1996), el patrón (Ough y Tabacman, 1979; Huang y Ough, 1989), las condiciones climáticas (Flanzy y Poux, 1965), la fertilización nitrogenada (Kliewer y Cook, 1974; Khewer, 1977; Bell et al, 1979; Ough y Bell, 1980; Bertrand et al., 1991; Spayd et al, 1994), el grado de maduración de la baya (Lafon-Lafourcade y Guimberteau, 1962; Nassar y Kliewer, 1966; Kliewer, 1968; Kluba et al, 1978) y la infección en la baya porBotrytis cinérea (Sponliolz, 1991).

En lo que respecta a la influencia varietal, Kliewer (1970) realiza una clasificación de varios cultivares de Vitis vinifera atendiendo al aminoácido predominante (proHna, arginina y a-alanina) en el mosto anaHzado. Posteriormente, Huang y Ough (1991) concluyen que especialmente los niveles de los aminoácidos predominantes varían entre las variedades, y emplean el ratio prolina:arginina como índice para compararlas, ya que la variación de dicho cociente refleja las diferencias genéticas que hay entre ellas. Sin embargo, Spayd y Anderssen-Bagge (1996) estudian durante cinco años la composición amínica de varios cultivares y observan grandes variaciones en las concentraciones de arginina, y en el ratio prolina:arginina que no les permite establecer agrupaciones entre los cultivares estudiados. Shiraishi (1996) considerando los aminoácidos básicos establece una clasificación en los cultivares estudiados atendiendo a las concentraciones de los aminoácidos predominantes: glutámico (Glu), arginina (Arg), alanina (Ala), Arg + Ala y Ala + Arg. Además determina como descriptor bioquímico al ratio y constituido por diez aminoácidos (y = [treonina + serina + alanina] / [aspártico + glutámico] + [valina + métionina + isoleucina + leucina + arginina], y concluye que sus variaciones están causadas por las diferencias genéticas existentes entre las variedades.

Flanzy y Poux (1965) estudiaron el contenido amínico de un mosto, que procedía de la misma cepa y de la misma parcela, durante dos años consecutivos. Y observaron que en el año más caluroso el contenido amínico era mayor, mientras que en el más fi-esco se incrementa la concentración de cada aminoácido, excepto para la prolina y la treonina, que eran los que provocaban la disminución del contenido

24 amínico total. Por tanto, concluyeron que las condiciones climáticas influían en la concentración de los aminoácidos presentes en un mosto.

Como ya se ha indicado, la composición amínica también se ha estudiado desde el punto de vista de la fertilización nitrogenada. Muchos investigadores han anahzado el efecto que tiene la aportación de nitrógeno en la composición del mosto, y han observado que se produce un incremento en las concentraciones de varios compuestos nitrogenados (Kliewer y Cook, 1971, 1974; Ough y Bell, 1980; Bertrand et al, 1991). IGiewer (1971) y Bell et al. (1979) comprobaron que incrementando la tasa de fertilización nitrogenada aumentaba la concentración de amoniaco, arginina, prolina y nitrógeno total en los mostos. Mientras otros aminoácidos como el ácido aspártico, ácido glutámico, cistina. Usina o metionina no presentaban un incremento lineal (Spayd et al., 1994).

Ough y Bell (1980) estudiaron los efectos de la fertilización nitrogenada en el metabolismo de los aminoácidos considerando tres niveles de fertilización. En el primero de ellos (112 kg/ha) comprobaron un notable incremento en todos los aminoácidos anaKzados; en el siguiente (224 kg/ha) algunos aminoácidos (alanina, vaüna, leucina, isoleucina, ácido aspártico) presentaban unos contenidos próximos al anterior ensayo, e incluso el ácido glutámico llegaba a disminuir; en el último tratamiento (448 kg/ha) la leucina y la isoleucina mantenían sus concentraciones,, mientras que el resto de aminoácidos disminuían sus valores.

Spayd et al. (1991) señalan la necesidad de considerar otros factores como la variedad, el clima, el suelo y la disponibilidad, de la planta para tomar nitrógeno del suelo, cuando se reaüzan estudios sobre la influencia de la fertilización nitrogenada en el contenido amínico de los mostos, puesto que se pueden llegar a conclusiones contradictorias debido a que no se han considerado estos factores.

También el grado de maduración de la baya influye en la composición amínica de los mostos. Lafon-Lafourcade y Guimberteau (1962) y Khewer (1968) observaron como la concentración de la proüna y arginina evolucionaba a lo largo de la

25 maduración, la primera alcanzaba su mayor contenido en la madurez, mientras que la arginina tenía su máximo en el inicio de este proceso, y generalmente disminuía su contenido al final del mismo. Nassar y Kliewer (1966) investigaron la variación del contenido amínico, en la variedad Thompson Seedless, en cuatro momentos del ciclo vegetativo (baya herbácea, baya madurando, baya madura y baya sobremadura), comprobando que las concentraciones de asparagina, cistina, glicina y glutamina apenas variaban a lo largo de todo el proceso, mientras que el resto de aminoácidos incrementaban sus valores. Kluba et al. (1978) realizaron su estudio sobre variedades de Vitis labruscana observando que el ácido aspártico, la glicina, la histidina y la lisina no modificaban su comportamiento durante la maduración.

1.8.- Caracterización agronómica: fenología

A lo largo del desarrollo anual de la vid se producen una serie de cambios morfológicos que siguen un orden cronológico. Estos son: lloros, brotación, crecimiento, detención del crecimiento, agostamiento, caída de la hoja y parada invernal; y que constituyen el ciclo vegetativo. Paralelamente a este ciclo transcurre el ciclo productivo que consta de: floración, cuajado, período herbáceo de las bayas, envero, período de maduración y maduración.

El conocimiento de los estados fenológicos es importante al tomar decisiones y programar el calendario de los tratamientos fitosanitarios y las prácticas culturales que se van a realizar. En las últimas décadas se han realizado diversas investigaciones con el objeto de predecir la brotación, floración y maduración. Un primer modelo fue presentado por Winkler y Williams (1939) con el que se determinaba el momento en que alcanzaba la madurez el fioito, basándose en la acumulación de unidades de calor o grados días. Modelos similares se desarrollaron posteriormente para su uso en viticultxira (Winkler, 1948; Van den Brink, 1974; Morris et al., 1980).

La integral térmica (grados día) es un parámetro que permite conocer las condiciones térmicas de una región determinada, y ha sido ampliamente propuesto y empleado con diferentes resultados en el estudio del desarrollo de la vid (Becker, 1984;

26 Mclntyre et al, 1987; Jackson y Cherry, 1988; Jiménez y Sotes, 1995).

La predicción del desborre ha sido desarrollada en el transcurso de estudios fisiológicos (Baldwin, 1966; Pouget, 1966; Pouget, 1967).

Modelos basados en grados día también se han aplicado en la determinación de la fecha de la floración (Mclntyre et al, 1982; WiUiams, et al, 1985). Otros autores (Caló et al, 1994; Besselat, et al, 1995) se han centrado en el efecto de la temperatura en el momento de la floración.

Sin embargo, algunos investigadores apuntan la necesidad de incluir otras variables climáticas en los modelos desarrollados. Mclntyre et al. (1982) sugieren una combinación entre la temperatura y la radiación solar, señalando que podría ser un buen indicador del período transcurrido entre la floración y la maduración. Jackson y Cherry (1988) emplean el índice latitud-temperatura como criterio para poder predecir la capacidad de maduración del fruto en un área determinada. Due et al. (1993) apuntan como el desarrollo vegetativo de la planta y su influencia en el microclima de la misma pueden tener efectos negativos en los resultados de los modelos de floración y de maduración.

La descripción de los distintos cambios morfológicos que se desarrollan en una planta también han sido objeto de estudio por diversos autores. Baggiohni (1952) establece 10 estados fenológicos en la viña designando a cada uno de ellos con letras, desde la A hasta la J, describiendo la primera de ellas la fase en que las yemas se encuentran en estado de reposo y la última el cuajado. Posteriormente, Eichhom y Lorenz (1977) proponen 22 estados fenológicos codificados por im sistema de dos cifiras (de 00 a 50). Lancashire et al. (1991) presentan un seguimiento fenológico para todos los cultivos basado en el empleo de tres cifiras (de 00 a 100) para determinar cada estado, que se denomina código BBCH. Posteriormente, Hack et al. (1992) publicaron definitivamente los estados de este nuevo sistema BBCH.

Estos últimos sistemas abarcan hasta el final del ciclo vegetativo de la vid y

27 pueden tener varios códigos para definir uno de los estados definidos por Baggiolini (1952), pues con estos métodos se puede determinar el inicio, el final y la situación intermedia de cada estado fenológico. Así mismo, estos dos sistemas permiten un mejor tratamiento estadístico de los estados fenológicos observados al emplearse cifiras numéricas.

Por último, Baillod y Baggiolini (1993) describen los estados: tamaño guisante (K), racimo cerrado (L), envero (M), maduración (N), agostamiento (O), caída de la hoja (P) completando el sistema de Baggiolini (1952). Estos ya eran utilizados en la práctica pero que no habían sido publicados. De esta manera, estos autores abarcaron todo el ciclo vegetativo de la planta mediante este método.

El empleo de la fenología como complemento en la caracterización de variedades se ha desarrollado con éxito como lo demuestran varios autores. Mclntyre et al. (1982) plantean el problema de cómo definir y emplear los términos de precocidad, medio y tardío al describir los distintos estados fenológicos, y observan que la mayoría de las variedades estudiadas a lo largo de 8 años manifiestan la brotación y la floración en unas fechas que las sitúan en unas posiciones regulares dentro del total de una población estudiada, independientemente de las condiciones ambientales. Sin embargo, la maduración es menos predecible debido a las prácticas culturales que se realizan durante el cultivo.

Bemard (1984) analizó en algunas variedades durante cuatro años el tiempo que requerían las yemas de una planta para alcanzar el 50% de las mismas la brotación, y en fimción de dicho período realizó una clasificación en cultivares con una duración de desborre corta, normal y larga; concluyendo que cada variedad tiene un comportamiento diferente.

Caló et al. (1984) y Caló et al. (1998) reahzaron un estudio sobre los principales estados fenológicos de varias variedades, concluyendo que la brotación y la floración están claramente influidas por las condiciones ambientales. También determinaron los períodos comprendidos entre la brotación-floración, floración-envero, envero-

28 maduración y brotación-maduración, encontrando que el período floración-envero está determinado fundamentalmente por el genotipo de la planta, mientras que en los períodos brotación-floración y envero-maduración el factor ambiental tiene una mayor influencia.

Forlani et al. (1987) estudiaron el comportamiento fenológico (brotación, floración, envero y vendimia) de 17 variedades durante 8 años, observando diferentes fechas fenológicas entre los cultivares y distinta duración entre estados. También señalaron que la brotación y la maduración se producen en momentos diferentes para cada cultivar, permitiendo establecer una clasiñcación entre variedades precoces, medias y tardías. Por el contrario, la floración y el cuajado acontecen en un período de tiempo muy próximo para todas las variedades.

Gioffré y Zappia (1989) emplearon las fechas de brotación, floración, envero, maduración y caída de la hoja, jimto con la ampelografía y algimos caracteres agronómicos, como las herramientas fundamentales para identificar el cultivar Greco di Blanco extensamente cultivado en Italia y con gran diversidad de biotipos.

Boursiquot et al. (1995) determinaron la fecha de brotación y de maduración durante 40 años sobre 2.236 variedades de Vitis vinifera, y observaron que la brotación era más precoz en los cultivares procedentes de Alemania y Centroeuropa, mientras que los más tardíos correspondían al Sur de Italia, existiendo una diferencia de 39 días entre los primeros y los últimos. Sin embargo, en la maduración la dispersión observada entre los cultivares más tempranos y los más tardíos era de 10,4 semanas pudiendo ser explicada esta gran variación por la presión ejercida por el hombre con el fin de seleccionar variedades más precoces.

Durante un proceso de selección clonal es de notable importancia también un conocimiento del comportamiento de los clones seleccionados. Caló et al. (1985) consideran el momento de la brotación, floración, envero y maduración como un elemento más de valor en la selección de clones del cultivar , hallando diferencias en las fechas de envero y maduración, factores que se deben considerar en

29 el manejo de los clones.

Silvestroni et al. (1995 y 1996) estudiaron la variabilidad clonal en varios cultivares de Vitis vinifera empleando la ampelometría y la fenología; y hallaron diferencias intraclonales en algunas de las variedades analizadas no sólo en sus caracteres morfométricos, sino también en algunos de los estados fenológicos descritos (brotación, floración, envero y maduración), corroborándose los resultados obtenidos por ambos métodos.

Muñoz (1995) observó, entre algunos clones de los cultivares sobre los que realizó un estudio fenológico, diferencias en la duración de los ciclos vegetativo y productivo, así como en las fechas de inicio de algunos estados fenológicos poniendo de manifiesto comportamientos diferentes bajo las mismas condiciones climáticas.

1.9.- Variedades estudiadas 1.9.1.- Pardina

Sinonimias

Jaén (Hidalgo, 1980), Parda (Hidalgo, 1980), Hoja Vuelta (Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes, 1974; Lara y Serrano, comunicación personal), Cayetana Parda (Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes, 1970), Pardilla (Popular).

Antecedentes

La primera referencia histórica que se ha encontrado sobre el cultivo de esta variedad es en 1971, en la que Hidalgo y Candela la sitúan en la provincia de Badajoz, ocupando un 35% de la superficie provincial dedicada al viñedo.

Posteriormente Hidalgo (1980) establece como sinonimias de Jaén, a Pardina y Parda, entre otras.

30 García de Lujan et al. (1990) cita entre las sinonimias de Jaén Blanco a Parda, realizando además ima descripción morfológica de este cultivar.

Hidalgo (1991) apunta que Jaén, Parda, Pardilla y Hoja Vuelta son nombres diferentes que hacen alusión a una misma variedad.

Marín y Morales (1993) describiendo las características de la variedad Parda escriben "Es la principal variedad cultivada en la provincia de Badajoz, proviene de una casta de la variedad Jaén".

Lara y Serrano (comunicación personal) consideran como sinonimia de Pardina a Hoja Vuelta, y describen morfológicamente a esta variedad.

El Reglamento de la Ley 25/1970 "Estatuto de la Viña, el Vino y los Alcoholes" para la Comimidad Autónoma de Extremadura incluye dentro de las variedades recomendadas a Pardina, considerando como sinonimias de ésta a Hoja Vuelta y Cayetana Parda.

Por último, señalar que en la comarca de Tierra de Barros (Badajoz) se utilizan indistintamente los nombres de Parda y Pardina para designar a la misma variedad, jimto con Pardilla y Hoja Vuelta.

. En el anejo 1, cuadro Al-1 se expone un resumen de las descripciones morfológicas que se han recogido para este cultivar, así como las sinonimias citadas por diversos autores.

Situación del cultivo

Según los datos del Registro vitícola de la provincia de Badajoz (1995) es la principal variedad cultivada en la provincia de Badajoz, ocupando un 58,21% de la superficie vitícola. Sin embargo, en la provincia de Cáceres según el Catastro vitícola y vinícola (1980) no se desarrolla su cultivo.

31 Su mayor concentración de superficie se encuentra en la comarca de Tierra de Barros (Badajoz). En los últimos años ha sido la variedad más utilizada para injertar nuevas plantaciones. Su destino es la vinificación.

1.9.2.- Blanca Cayetana

Sinonimias

Cayetana (Marcilla, 1954; Hidalgo y Galet, 1988; Hidalgo, 1991; Marín y Morales, 1993; Lara y Serrano, comunicación personal), Caetana Blanca (Lara y Serrano, comunicación personal). Cayetana Blanca (Hidalgo y Candela, 1971; Hidalgo, 1980, 1991; Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990; Marín y Morales, 1993; Lara y Serrano, comunicación personal), Jaén (García de los Salmones, 1935; Marcilla, 1954; Marín y Morales, 1993), Parda (Marín y Morales, 1993).

Antecedentes

García de los Salmones (1914) sitúa en la provincia de Badajoz el cultivo de la variedad Cayetano. Posteriormente, en 1915 de nuevo ubica a Cayetana Blanca en la región de Extremadura. En un ciclo de conferencias que sucedieron en 1934, García de los Salmones citó entre las principales cepas de Badajoz y Cáceres a Blanca Cayetana y añadió "Y es que ese blanco manchego tiene por origen la clase de viña Airen. Es la Blanca Cayetana (que no es sino Jaén) la del vino extremeño de esta zona".

Marcilla (1954) escribe "La cepa blanca predominante en las zonas más vitícolas de Badajoz, con el término de Almendralejo a la cabeza, es probablemente una casta de Jaén, llamada en el país Cayetana o Blanca Cayetana, muy productiva y que da vinos de pasto, muy fi-ancos de gusto".

Hidalgo y Candela (1971) sitúan el cultivo de Cayetana Blanca en la provincia de Badajoz y establecen como sinonimia de ella a Blanca Cayetana.

32 Hidalgo et al. (1976) presentan en el "Catastro vitícola y vinícola" una breve descripción de esta variedad.

Hidalgo (1980) establece como sinonimia de este cultivar a Cayetana Blanca. Este mismo autor en 1991 añade a la lista de sinonimias el nombre de Cayetana, al igual que Hidalgo y Galet (1988).

Borrego (1990) realiza xma descripción morfológica de esta variedad y establece como sinonimia de la misma a Cayetana Blanca.

Marín y Morales (1993) señalando las características del cultivar Parda escriben "y se confunde bastante con otra variedad cultivada en la comarca de Tierra de Barros, la Cayetana Blanca, lo que hace pensar si no son clones diferentes de la misma variedad". También citan varias sinonimias de este cultivar y lo describen morfológicamente.

Lara y Serrano (comunicación personal) establecen como sinonimias Blanca Cayetana, Caetana Blanca y Cayetana, además de realizar una descripción morfológica.

El Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes 25/1970, incluye a Cayetana Blanca como variedad recomendada en la Comunidad Autónoma de Extremadura.

En el anejo 1, cuadro Al-2 se han recopilado diversas descripciones.realizadas por varios ampelógrafos, junto a ellas se indican las sinonimias citadas a lo largo del tiempo.

Situación del cultivo

Su cultivo está muy extendido por la comarca de Tierra de Barros (Badajoz). Ocupa un 8,27% de la superficie vitícola en la provincia de Badajoz, según el Registro vitícola (1995). En la provincia de Cáceres es una variedad totalmente secundaria con un 1,3% de la superficie vitícola total, según el Catastro vitícola y vinícola (1980) de

33 Cáceres. Su producción se destina a la obtención de vino.

Hidalgo (1993) al establecer las variedades de vinificación más cultivadas en España, sitúa a Blanca Cayetana en el décimo lugar con un 1,68% de superficie.

1.9.3.- Jaén

Sinonimias

Amor Blanco (Viala y Vermorel, 1905; Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan et al, 1990), Aujubi (Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan et ai, 1990), Baladí (Hidalgo y Galet, 1988; García Lujan et al., 1990; Hidalgo, 1991), Baladí-Verdejo (Hidalgo y Galet, 1988; García de Lujan et al., 1990; Hidalgo, 1991), Belledy (Hidalgo y Galet, 1988; García de Lujan et al., 1990), Blanca Cayetana (García de los Salmones, 1935; Marcilla, 1954, Marín y Morales, 1993), Cagazal (Hidalgo, 1980, 1991; Borrego, 1990; García de Lujan et al, 1990), Calagraño (Hidalgo, 1980, 1991; Borrego, 1990; García de Lujan et al, 1990), Cirial (Hidalgo, 1980, 1991; Borrego, 1990), Chaselo (Fernández de Bobadilla, 1956; Hidalgo, 1980, 1991), Chávelo (Viala y Vermorel, 1905), Cheres (Hidalgo, 1980, 1991), (Viala y Vermorel, 1905; Hidalgo, 1980, 1991; García Lujan et al. 1990), Fartagoso (Hidalgo, 1980, 1991), Fartagosos (García de Lujan et al, 1990), Garrida (Viala y Vermorel, 1905; Fernández de Bobadilla, 1956; Hidalgo, 1980; García de Lujan et al, 1990), Garrido (Hidalgo, 1991), Garriga (Hidalgo, 1980, 1991), Garrilla (Roxas Clemente, 1807; Abela, 1885; Viala y Vermorel, 1905; Fernández de Bobadilla, 1956; Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan et al., 1990), Garrillo (Hidalgo, 1980, 1991), Hoja Vuelta (Hidalgo, 1991), Jaén Blanco (Roxas Clemente, 1807; Abela, 1885; Víala "y Vermorel, 1905; Comenge, 1942; Fernández de Bobadilla, 1956; Hidalgo, 1980, 1991; Hidalgo y Galet, 1988; García de Lujan et al, 1990), Jaén Blanco de Canarias (Comenge, 1942), Jaén Blanco de Málaga (Abela, 1885; Comenge, 1942), Jaén de Castilla (Abela, 1885; Hidalgo, 1980, 1991; García Lujan et al. 1990), Jaén de Letur (García de Lujan et al, 1990), Jaén de Letur de Maratella (García de Lujan et al., 1990), Jaén Doradillo (Abela, 1885; Viala y Vermorel, 1905; Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan et al., 1990), Jaén Prieto

34 (Hidalgo y Galet, 1988; García de Lujan et al., 1990), Jaén Prieto Blanco (Hidalgo, 1991), Jaénes (Hidalgo, 1980; García Lujan et al. 1990), Jaina (Hidalgo, 1980, 1991; García Lujan et al. 1990), Jarime (García de Lujan et al., 1990), Mariouti (Hidalgo y Galet, 1988; García de Lujan et al, 1990), Marianti (Hidalgo, 1991), Naves (Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan, et al, 1990), Padero (Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan et al, 1990), Parda (Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan et al, 1990; Marín y Morales, 1993), Pardina (Hidalgo, 1980), Pardilla (Hidalgo, 1991), Pirulet (García de Lujan et al., 1990), Piuret (Hidalgo, 1991), Plateadillo (Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan, et al, 1990), Plateado (Hidalgo, 1980; García de Lujan et al, 1990), Verdeja (Hidalgo y Galet, 1988; García de Lujan et al., 1990), Virales (García de Lujan et al., 1990; Hidalgo, 1991), Xarello (Fernández de Bobadilla, 1956).

Antecedentes

A rnediados del siglo XV el Monasterio de Santa María de Guadalupe acordó redactar el "Libro de Oficios"; se trata de un manuscríto que abarca diversas áreas, siendo una de ellas la viticultura. En ella se establece una relación de variedades cultivadas en aquella época en Guadalupe, entre las que se cita como uva blanca principal a la variedad Jaén.

Alonso Herrera (1645) describe esta variedad así como el vino que se obtiene a partir de ella.

Simón Roxas Clemente (1807) clasificó a los diferentes tipos de Jaénes en la Sección 1^. Tribu IV. Duracinae. Jaénes. Señaló la gran extensión que ocupaba en toda España, siendo en algunos puntos la única variedad o la principal con la que hacían vino aunque no en todas las zonas era un mismo cultivar. Y además señala que esos posibles errores pueden ser debidos "a'las diferencias de terreno y otros accidentes que pueden influir muy sensiblemente en muchos de estos caracteres, pero no en todos; antes bien parece muy probable que sería imposible al hombre hacer desaparecer algunos de ellos. Sin embargo, a vista de una afinidad tan íntima podría sospecharse que todos los Jaénes citados provienen de una misma variedad antigua alterada a poder

35 de siglos y a fuerza de cultivos variados, o solo modificada por la diversidad de circunstancias en que actualmente vive, según los países"; y añade "El primero que dé a conocer con exactitud todos los vidueños que llaman Jaénes en España hará a su patria un servicio real".

Roxas Clemente (1807) también escribe sobre la variedad Doradillo situándola en la Sección T. Variedades aisladas. Sobre ella señala "su mucha afinidad con la tribu de Jaénes" y la reconoce como el Jaén Doradillo de La Leña.

Abela (1885) escribiendo sobre Jaén blanco cita a D. Mariano del Amo que advierte sobre "la confiísión que en realidad existe para determinar las diferentes castas de Jaénes". Y añade "La Memoria de la Exposición Vinícola de 1877 señala la existencia del Jaén Blanco en Álava, Albacete, Alicante, Almería, Avila, Barcelona, Cáceres, Castellón, Ciudad Real, Córdoba, Cuenca, , Guadalajara, Jaén, Madrid, Málaga, Murcia, Salamanca, Sevilla y Toledo". Por último, indica que "en Francia dan este nombre de Jaén a algunos vidueños, reconociendo: Jaén Doradillo, Jaén Blanco, Jaén Blanc de Málaga, Jaén de Castilla, Jaén Negro de Granada, Jaén Negro de Sevilla, Jaén del Plan Blanc, Jaén de Letur de Moratella y Jaén de Letur Petit Blanc. Este último lo indican como sinónimo de Augubí de uvas redondas (...)".

También describe a Doradillo, indicando algunas sinonimias del mismo, y asimilándolo al Jaén Doradillo de La Leña.

Víala y Vermorel (1905) comentan "La gran extensión y multiplicación en suelos y microclima distintos, ha dado lugar a algunas confusiones e incluso quizás a ciertas variaciones; de hecho, las descripciones de Jaén no concuerdan en todas sus partes y varían firecuentemente según su procedencia".

García de los Salmones (1914) sitúa el cultivo de esta variedad en las provincias de Badajoz y Cáceres. Posteriormente, este mismo autor en 1915 y 1935 vuelve a ubicar a este cultivar en la región de Extremadura, indicando la confusión existente entre Jaén y Blanca Cayetana, que afirma, son la misma variedad.

36 Comenge (1942) señala dentro del Jaén Blanco al Jaén Blanco de Canarias, Jaén Blanco de Málaga, Jaén de la Sierra, Jaén Gordal de Castril, Jaén Verdal de Huesear, Orce, Sierra de Filabres y río Almanzara, etc..

Marcilla (1954) después de establecer la hipótesis de que Blanca Cayetana es una casta de Jaén, añade que también se realiza el cultivo de esta última variedad en la provincia de Badajoz.

Fernández de Bobadilla (1956) realizó una completa descripción tanto ampelográfica como ampelométricamente de este cultivar, así como estableció una lista de sinonimias.

Hidalgo et al. (1976) describieron morfológicamente a este cultivar.

Hidalgo (1980) menciona como sinonimias de Jaén a Parda y Pardina, entre otras denominaciones.

Borrego (1990) y García de Lujan et al. (1990) desarrollaron una ficha ampelográfica de esta variedad atendiendo a los códigos de la OIV, y además estableciendo diferentes sinonimias.

Hidalgo (1991) vuelve a citar como sinonimia de Jaén a Parda, e incluye la denominación de Hoja Vuelta entre otras.

Marín y Morales (1993) escribiendo sobre el cultivar Parda consideran la posibilidad de que éste sea una casta de Jaén, y de que Cayetana y Pardina sean dos clones de la misma variedad.

En el anejo 1, cuadro Al-3 se ha hecho un breve resumen de todas las descripciones morfológicas recopiladas en la bibliografía consultada, jxmto con las sinonimias citadas por diversos autores.

37 Situación del cultivo

En el Registro vitícola realizado en la provincia de Badajoz (1995) están censadas 420 ha, bajo el nombre de Calagraño (Jaén), que suponen un 0,5% de la superficie total de viñedo en esta provincia. En la provincia de Cáceres el Catastro vitícola y vinícola (1980) registra 21 ha, un 0,3% de la superficie total, del cultivar Jaén.

Hidalgo (1993) sitúa a Jaén como la 13^ variedad de vinificación más cultivada en el territorio nacional. En Extremadura se emplea para la obtención de vino.

1.9.4.- Montúa

Sinonimias

Chelva (Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes, 1970; Hidalgo y Candela, 1971; Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990), Chelva de Cebreros (Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990), Chelva de Guareña (Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990), Gabriela (Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan et al, 1990), Mantua (Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes, 1970; Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990; Hidalgo, 1991), Mantúas (Hidalgo, 1980), Mantúo (Hidalgo y Candela, 1971; Hidalgo, 1980, 1991; Borrego, 1990), Mantúo Castellano (Hidalgo, 1980, 1991; Hidalgo y Galet, 1988), Mantúo Gordo (Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan, et al., 1990), Mantúo de Granada (Hidalgo y Galet, 1988), Mantúo de Jerez (Hidalgo, 1980), Mantúo Laerén (Hidalgo, 1980), Mantúo Lairén (Hidalgo, 1980, 1991), Mantúo de Pilas (Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan, et al, 1990), Mantúo de Sanlúcaf (Hidalgo, 1980; Hidalgo y Galet, 1988), Mantúo Vigiriego (Hidalgo, 1980; Hidalgo y Galet, 1988), Mantúo de Xerez (Hidalgo y Galet, 1988), Monte Olivette (Hidalgo, 1980, 1991), Montúa (Hidalgo y Galet, 1988; Boixego, 1990; Hidalgo, 1991), Montúas (Hidalgo, 1980), Montúo (Hidalgo, 1980, 1991; Borrego, 1990), Montúo Castellano (Hidalgo, 1980, 1991), Montúo de Jerez (Hidalgo, 1980), Montúo Vigiriego (Hidalgo, 1980), Montúo de Xerez (Hidalgo, 1980), Pie de Rey (Hidalgo, 1991), Regahs

38 (Hidalgo, 1991), Tamorlana (Hidalgo, 1980, 1991), Uva de Puerto Real (Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan, et al, 1990), Uva Rey (Hidalgo, 1980, 1991; García de Lujan et al., 1990) y Uva de Rey (Hidalgo, 1980, 1991).

Antecedentes

Roxas Clemente (1807) sitúo a Mantúo Castellano, Mantúo bravio y Mantúo de Pilas en la Sección P. Tribu IIL Pensiles. Mantúos. Del primero de ellos establece como sinonimias Mantúo de Sanlúcar y Montúo, y señala "En Sanlúcar estiman para comer las uvas de este vidueño más que las de ningún otro". De Mantúo Bravio comenta "Llama el vulgo Mantúo Bravio a esta variedad, porque la supone hija o madre del Mantúo Castellano. Y en efecto, los caracteres diferenciales que las distinguen pueden todos deducirse de las diversas circunstancias dé su crianza actual". De Mantúo de Pilas apunta como sinonimias a Montúo de Sanlúcar, Monte Olívete, Uva de Puerto Real, Uva de Rey y Gabriela.

En la Sección P. Variedades aisladas, sitúa a Montúo Castellano y a Montúo Perruno. Del primero de ellos comenta "se cultivan algunas cepas y parras de este vidueño (...) estiman mucho su uva para comerla fresca y conservar colgada". Y cita como sinonimias Montúo de Xerez y Montúo Vigiriego. A Montúo Perruno lo sitúa en Granada, Motril, Molvizar y Torviscón. Y añade "este vidueño es el más común en la vega de Granada fuera del Ximenez, pues ocupa una tercera parte de sus viñas".

Abela (1885) cita a Mantúo Castellano, a Mantúo Bravio y a Mantúo de Pilas. Del primero de ellos establece como sinonimias a Mantúo, Mantúo de Sanlúcar y Castellana, y duda sobre si las Montúas de Málaga "corresponderán también a esta casta". En "el Mantúo de Pilas considera las mismas sinonimias que Roxas Clemente (1807) y comenta "La uva de esta variedad da muy buen vino, de bastante cuerpo, y al que pueden atribuirse en gran parte las cualidades del más renombrado, como Jerez, en estilo Palo cortado, ...". También escribe sobre Montúo Castellano "se cultiva poco en algunas cepas y parras", manteniendo las mismas denominaciones que Roxas Clemente (1807). Por último, describe a Montúo Perruno situando su cultivo en la vega de

39 Granada, al igual que Roxas Clemente.

Víala y Vermorel (1905) distinguen entre Mantáo de Pilas y Mantúo Castellano, describiendo y citando las diversas sinonimias de cada uno de ellos. Los caracteres que establecen la diferencia entre estos dos cultivares son la mayor longitud de los dientes de la hoja, la mayor abundancia de pelos en el peciolo, la mayor de las bayas y su volumen un poco más grueso.

De Mantúo de Pilas destacan su empleo para la obtención de uvas pasas y lo apreciada que es esta variedad para dicho ñn. Como sinonimias apuntan Mantúo de Sanlúcar, Monte Olívete, Uva de Puerto Real, Uva del Rey, Gabriela, Mantuna y Forastera Blanca, aimque sobre esta última manifiestan alguna duda sobre la autenticidad de la sinonimia.

De Mantúo Castellano indican que está todavía mucho más extendido que Mantúo de Pilas. Sobre los diferentes nombres que tiene en sus lugares de cultivo se destaca "Mantúo simplemente, es decir, el Mantúo por excelencia de Algeciras, Ronda, Sanlúcar, Huelva y Badajoz". Otras sinonimias son: Mantúo de Sanlúcar, Mantúo de Jerez, Mantúo Vigíriego, Castellano, Castellana y Verdejo.

García de los Salmones (1914) cita a Mantúo como variedad cultivada en la provincia de Badajoz.

Comenge (1942) establece el Clan III. Mantúos. Dentro de él sitúa a Mantúo de Pilas, Mantúo Castellano, Mantúo Bravio, distinguiéndolos de Montúo Perruno, que se encuentra en el Clan VI. Rebazo; y Montúo Castellano que lo incluye en el Clan V. Zurumí, asignándole como sinonimias Montúo, Montúo de Jerez y Montúo Vigíriego. También cita a las Montúas de Málaga sobre las que se cuestiona "¿será mi Mantúo Castellano?".

Marcilla (1954) comenta el incremento del cultivo de esta variedad en la comarca de Guareña-Villanueva de la Serena a mediados de los años 30, como

40 consecuencia de los bajos precios que tenía en el mercado el vino, y las bajas producciones que obtenían con las variedades que cultivaban (Pedro Ximenez, Lairén, Borba, Tinto Aragonés, Garnacha y Tinta Escobera, entre otras). Sin embargo, el cultivar Montúa, que ya existía en la zona, desplazó a las anteriormente citadas productoras de vino, pues ésta comenzó a cotizarse como uva de mesa no sólo en los mercados nacionales, sino también en los internacionales.

Fernández de Bobadilla (1956) clasifica a los Mantúos como variedades auxiliares o secundarias en los viñedos de la zona jerezana. Describe morfológica y morfométricamente a Mantúo de Sanlúcar o Mantúo Castellano, entre otras denominaciones, aludiendo a su aptitud como uva de mesa y a su escasa área de cultivo; y a Mantúo de Pilas comentando como sus uvas, maduran tardíamente, y la fácil conservación de sus racimos que la convierten en una variedad muy indicada para su venta a finales de otoño.

Hidalgo y Candela (1971) citan a la variedad Mantúo o Chelva en la provincia de Badajoz, como variedad de mesa.

Posteriormente Hidalgo et al. (1976) en el Catastro vitícola y vinícola presentan unas fichas con descripciones morfológicas de diversas variedades entre las que se incluyen Mantua y Chelva como dos cultivares diferentes. ;

Hidalgo (1980 y 1991) establece una larga lista de sinonimias para la variedad Mantúo.

Hidalgo y Galet (1988) señalan al cultivar Mantua como "de antiguo cultivo en la zona andaluza, provincia de Granada". Y como sinonimias mencionan al Mantúo Castellano, Mantúo de Sanlúcar, Mantúo Vigiriego, Mantúo de Granada y Mantúo de Xerez.

Hidalgo y Galet (1988) también describen a la variedad Chelva, y enumerando sus sinonimias mencionan entre ellas a Mantua y Montúa.

41 García de Lujan et al. (1990) desarrollaron una ficha ampelográñca, siguiendo los códigos de la OIV, de Mantúo de Pilas indicando además las diferentes denominaciones existentes. Ese mismo año, Borrego describió por el mismo procedimiento al cultivar Chelva, entre cuyas sinonimias señaló Montúo, Montúa, Mantua y Mantúo.

El Reglamento de la Ley 25/1970 "Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes", clasifica las variedades cultivadas en Extremadura como preferentes o autorizadas, estando en estas últimas Chelva o Mantua, considerándose por tanto sinónimos los dos nombres.

En el anejo 1, cuadro Al-4 se muestra un resumen de las descripciones morfológicas recopiladas de los diversos autores consultados, así como las distintas sinonimias que los mismos han establecido.

Situación del cultivo

Según el Registro vitícola de la provincia de Badajoz (1995) la variedad Mantua (Chelva) ocupa un 12% de la superficie de viñedo, situándola como la segunda vindfera .más cultivada en esta provincia. Por el contrario, en la provincia de Cáceres, según el Catastro vitícola y vinícola (1980), aparecen censadas 28 ha de Mantua, que no.llegan al 1% de la superficie total del viñedo. La mayor concentración de cultivo de Mantua en Badajoz se encuentra en Guareña, Fuente del Maestre, Badajoz y Santa Marta.

1.9.5.- Chelva

Sinonimias

Chelva de Cebreros (Hidalgo, 1980, 1991; Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990; Lara y Serrano, comunicación personal), Chelva de Guareña (Hidalgo, 1980, 1990; Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990; Lara y Serrano, comunicación personal), Mantua (Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes, 1970; Hidalgo y Galet, 1988;

42 Borrego, 1990; Laxa y Serrano, comunicación personal), Mantúo (Hidalgo y Candela, 1971; Borrego, 1990; Lara y Serrano, comunicación personal), Montúa (Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990); Montúo (Borrego, 1990; Lara y Serrano, comunicación personal), Villanueva (Hidalgo, 1991; Laxa y Serrano, comunicación personal).

Antecedentes

Hidalgo y Candela (1971) consideran sinónimas a Mantúo y Chelva, situando su cultivo en Badajoz.

Hidalgo et al. (1976) realizan una descripción morfológica de esta variedad, diferenciándola de Mantua.

Hidalgo (1980) establece como sinonimias de Chelva a Chelva de Cebreros y Chelva de Guareña. Posteriormente, este autor en 1991 añade a este grupo el nombre de Villanueva.

Hidalgo y Galet (1988) describen a este cultivar y escriben "variedad originaria y actualmente cultivada en Badajoz, de donde se extendió a las provincias vecinas de Cádiz y Ciudad Real, para pasar más tarde a Avila y Toledo". Como sinonimias de ella incluyen a Mantua y Montúa.

Borrego (1990) desarrolla una ficha ampelográfica de esta variedad asignándola como nombre más común Chelva, y como sinonimias Montúo, Mantua, Montúa, Mantúo, Chelva de Cebreros y Chelva de Guareña..

Lara y Serrano (comunicación personal) establecen una lista de sinonimias entre las que se incluye Mantúo, Mantua y Montúo, y además describen a este cultivar.

Como ya se ha indicado anteriormente al hablar de la variedad Montúa, en el Reglamento de la ley 25/1970 "Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes", el cultivar Chelva o Mantua se considera como variedad autorizada en la Comunidad

43 Autónoma de Extremadura.

En el anejo 1, cuadro Al-5 se incluye un breve resumen de las descripciones realizadas por diversos autores consultados, así como las sinonimias que han establecido.

Situación del cultivo

En el Registro vitícola de Badajoz (1995) se asimila que Mantua y Chelva son sinonimias, indicando para esta variedad una ocupación de superficie de viñedo de un 12%, siendo la segunda vinífera más cultivada en Badajoz. Sin embargo, en el Catastro vitícola y vinícola (1980) de Cáceres se distingue entre la superficie ocupada por Mantua y por Chelva, siendo para esta última de 63 ha.

Su aprovechamiento es tanto como uva de mesa, como para vinificación. De esta manera, Hidalgo (1993) sitúa a Chelva como la quinta variedad con aptitud de uva de mesa, más cultivada en el territorio nacional.

1.9.6.- Eva

Sinonimias

Beba (Hidalgo y Candela, 1971; Hidalgo, 1980, 1991; Hidalgo y Galet, 1988; Boixego, 1990; García de Lujan et al., 1990; Lara y Serrano, comunicación personal). Beba Dorada (Borrego, 1990; García de Lujan, 1990; Hidalgo, 1991; Lara y Serrano, comunicación personal). Beba Dorada de Huelva (Hidalgo, 1991), Beba Dorada de Jaén (Hidalgo, 1991), Beba Dorada de Jerez (Hidalgo y Galet, 1988; Hidalgo, 1991), Beba Dorado (Hidalgo, 1980), Beba de Huelva (Lara y Serrano, comunicación personal). Beba de Jaén (Lara y Serrano, comunicación personal). Beba de Jerez (Lara y Serrano, comunicación personal). Beba de los Santos (Hidalgo y Candela, 1971; Hidalgo, 1980, 1991; Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990; García de Lujan, et al, 1990; Lara y Serrano, comunicación personal). Beba de los Santos de Maimona

44 (Hidalgo y Galet, 1988; García de Lujan et al, 1990; Hidalgo, 1991; Lara y Serrano, comunicación personal), Beba de Palos (Hidalgo, 1991; Lara y Serrano, comunicación personal), Beva (Hidalgo, 1980, 1991), Bevan (Hidalgo y Candela, 1971; Borrego, 1990), Eva de los Santos (Hidalgo y Galet, 1988; Hidalgo, 1991), Eva de los Santos de Maimona (Hidalgo y Galet, 1988; García de Lujan et al, 1990; Hidalgo, 1991; Lara y Serrano, comunicación personal).

Antecedentes

Roxas Clemente (1807) sitúa a Beba en la Sección V. Variedades aisladas. De ella comenta "Las uvas de esta variedad, especialmente las expuestas al sol, toman un dorado muy sucio que las rodea siempre en círculos concéntricos". En algunos de los pueblos donde se realiza su cultivo "se conservan colgadas para comer en invierno".

Abela (1885) hace una descripción de Beba y alude a su empleo para la fabricación de pasas.

García de los Salmones (1914) cita a Eva como uva de hollejo blanco cultivada en la provincia de Badajoz. Este mismo autor en 1935 de nuevo cita a esta variedad entre las principales cepas de Badajoz y Cáceres.

Comenge (1942) sitúa a Beva en el Clan V. Zurumí, haciendo una breve descripción del cultivar.

Fernández de Bobadilla (1956) clasifica a las Bebas como variedades auxihares o secundarias en los viñedos jerezanos, y a Beba de Palos como variedad de mesa. Describe a Beba Dorada de Jerez de la que destaca su empleo como uva de mesa. También cita a Beba de Palos, Beba Dorada de Huelva y Beba Dorada de Jaén, considerando a todas ellas análogas a Beba Dorada de Jerez, pero señalando algunas diferencias morfológicas con respecto a ella.

Hidalgo y Candela (1971) citan a Eva o Beba de los Santos como una variedad

45 cultivada en la provincia de Badajoz, cuyo uso es para uva de mesa.

Hidalgo et al. (1976) presentan una descripción morfológica de Beba.

Hidalgo en 1980 y posteriormente en 1991, establece una larga lista de sinonimias para esta variedad.

Hidalgo y Galet (1988) escriben "Variedad de antiguo cultivo en Badajoz, fundamentalmente en Los Santos de Maimona, de donde viene una de sus sinonimias, extendiéndose a las provincias de Huelva y Sevilla".

En 1990, Borrego y García de Lujan et al. desarrollan ima ficha ampelográñca de este cultivar, así como establecen numerosas sinonimias del mismo.

Lara y Serrano (comunicación personal) citan varias sinonimias de Eva, y además describen a este cultivar.

Eva o Beba de los Santos es una variedad de vid autorizada para su cultivo en la Comunidad de Extremadura según el Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes 25/1970.

En el anejo 1, cuadro Al-6 se presentan las sinonimias y descripciones morfológicas que han hecho diversos autores de esta variedad a lo largo del tiempo.

Situación del cultivo

Según los datos del Registro vitícola de Badajoz de 1995, Beba es la cuarta variedad con mayor superficie de cultivo (5,73%), mientras que en la provincia de Cáceres no se encuentra censado este cultivar. En Badajoz, su cultivo se encuentra concentrado en Los Santos de Maimona, Puebla de Sancho Pérez y Usagre.

Hidalgo (1993) realiza una clasificación de las variedades de uva de mesa en

46 función de su superficie, quedando Eva en la posición 16^ con 0,10% de superficie cultivada a nivel nacional. En Extremadura se considera como uva de aptitud múltiple.

1.9.7.- Alarije

Sinonimias

Alarije Dorada (Hidalgo y Candela, 1971; Borrego, 1990), Alarije Dorado (Hidalgo, 1980, 1991; Lara y Serrano, comunicación personal), Alarije Verdoso (Hidalgo, 1991; Lara y Serrano, comunicación personal), Barcelonés (Hidalgo, 1991; Lara y Serrano, comunicación personal).

Antecedentes

En el "Libro de Oficios", manuscrito redactado en el Monasterio de Santa María de Guadalupe en 1448, se cita como uva blanca principal al cultivar Alarije.

Alonso Herrera (1645) escribe "Las alarijes son uvas que hacen las cepas altas, a manera de albulos, quieren la tierra de calidad que las albillas: son unas uvas muy bermejas, y que las abejas las comen mucho". Y añade que no se obtiene un buen vino a partir de ella.

García de los Salmones (1914) señala a Alarije como una variedad cultivada tanto en Badajoz como en Cáceres. Este mismo autor en 1935 la vuelve a citar entre las principales cepas blancas de Extremadura.

Comenge (1942) hace una breve descripción de esta variedad.

Marcilla (1954) menciona a este cultivar en la provincia de Badajoz.

Hidalgo y Candela (1971) distinguen entre Alarije Dorada y Alarije Verdosa y las consideran como dos variedades cultivadas en Cáceres, cuyo destino es

47 fimdamentalmente la vinificación.

Hidalgo et al. (1976) desarrollan una ficha ampelográfica de este cultivar.

Hidalgo (1980) cita como sinónima de Alarije a Alarije Dorado, posteriormente este mismo autor en 1991 considera también como sinonimia a Alarije Verdoso y Barcelonés.

Borrego (1990) describe morfológicamente a esta variedad, siguiendo los códigos de la OIV, y establece como sinonimia a Alarije Dorada.

Lara y Serrano (comunicación personal) consideran como sinonimias las mismas denominaciones que las indicadas por Hidalgo (1991)..

Según el Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes 25/1970, Alarije es una variedad recomendada para su cultivo en la Comunidad de Extremadura.

En la zona de Cañamero (Cacares) los agricultores designan Alarije Dorada y Alarije verdosa (también emplean los nombres de Alarij y Alari) a dos variedades, que las distinguen por presentar la primera imas uvas más doradas, más pequeñas, más dulces, y unos racimos más ralos que la Verdosa. De esta manera, entre los agricultores es más apreciada Alarije Dorada pues da más calidad de cosecha, aunque de Alarije Verdosa se obtiene más producción.

En el anejo 1, cuadro Al-7 se exponen las descripciones morfológicas recopiladas de varios autores que se han interesado por esta variedad, así como las referencias de sinonimias que se han hecho a lo largo del tiempo.

Situación del cultivo

Es ima variedad dedicada a la vinificación que en la provincia de Badajoz es de escasa importancia, ocupando un 0,93% de la superficie provincial dedicada al viñedo.

48 según el Registro vitícola de 1995. Por el contrario, en Cáceres es la segunda variedad más cultivada ocupando un 15,16% de la superficie. En Badajoz su mayor concentración de cultivo se encuentra en Navalvillar de Pela y Talarrubias, mientras que en Cáceres se localiza fundamentalmente en Cañamero.

Según Hidalgo (1993) la superficie a nivel nacional ocupada por esta variedad es de un 0,16%, lo que la sitúa en la posición 34^ entre las variedades con aptitud de vinificación.

1.9.8.-Borba

Sinonimias

No se conoce ninguna sinonimia de esta variedad.

Antecedentes

Abela (1885) en su libro "El libro del viticultor" incluye un índice sobre "las variedades que no se han podido insertar en el cuerpo de las clasificadas por ser incompleta su característica o conocerse sólo las localidades en que se las da los nombres indicados". Dentro de éste se cita a Borba, de la que la única información que se tiene es que se cultiva en la provincia de Badajoz.

García de los Salmones (1914) sitúa el cultivo de esta variedad en las dos provincias de la Comunidad de Extremadura. Posteriormente, en 1915 de nuevo señala a Borba como cultivar importante en la región.

Marcilla (1954) hablando de las cepas blancas más cultivadas en la provincia de Badajoz menciona a Borba Blanca.

Hidalgo y Candela (1971) citan a Borba en la provincia de Cáceres como una variedad de vinificación y que ocupa "bastante superficie relativa provincial".

49 Hidalgo et al. (1976) describen brevemente a este cultivar.

Borrego (1990) siguiendo los códigos de la OIV desarrolla una ficha morfológica de Borba. Así como posteriormente lo hicieron Lara y Serrano (comunicación personal).

El Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes 25/1970, considera a Borba como una variedad de vid recomendada en su cultivo en la Comunidad Autónoma de Extremadura.

En el anejo 1, cuadro Al-8 se presentan las descripciones recopiladas de los autores consultados.

Situación del cultivo

Borba en la provincia de Badajoz es xm cultivar poco extendido, ocupando un 0,71% de superficie, según los datos del Registro vitícola (1995). Sin embargo, en Gáceres se trata de la variedad más cultivada con un 43,99% de superficie total, según el Catastro vitícola y vinícola (1980), locaHzándose fundamentalmente en Alcuéscar, Montánchez y Arroyomolinos de Montánchez.

Hidalgo (1993) sitúa a Borba en la posición 3V, atendiendo a la superficie ocupada por esta variedad de vinificación en toda España. En Extremadura se emplea para la obtención de vino.

1.9.9.- Cigüentes

Sinonimias

Cigüente (popular en Castuera).

50 Antecedentes

El Padre Ecija (1448) al elaborar la lista de las variedades que se cultivaban en Guadalupe en aquella época, cita entre las uvas blancas principales a Cigüentes.

Alonso Herrera (1645) escribe de Cigüente que tiene un gran parecido con los albulos, aunque sus bayas tienen una mayor facilidad para pudrirse. Sobre su vino comenta "es muy oloroso y claro, y de mucha dura".

Abela (1885) en "El libro del viticultor" elabora un índice en el que se citan a todas aquellas variedades de las que no se tiene suficiente información para realizar una descripción completa, o sólo se conoce el lugar donde se emplea el nombre del cultivar citado. En este índice aparece Cigüentes, de la que sólo se sabe la zona donde se realiza su cultivo, que en este caso es Murcia.

García de los Salmones (1914) sitúa a Cigüente en dos poblaciones distintas de la provincia de Badajoz (Malpartida de la Serena y Villanueva de la Serena). Posteriormente, en 1935 de nuevo menciona a esta variedad como una de las principales que se cultivan en Extremadura.

Marcilla (1954) al establecer una relación de las variedades más representativas del viñedo extremeño cita a Cigüente en la provincia de Badajoz.

Borrego (1990) siguiendo los criterios de descripción establecidos por la OIV, realiza una descripción morfológica de Cigüente.

En el anejol, cuadro Al-9 aparece un resumen de las descripciones realizadas por aquellos autores que han estudiado esta variedad.

Situación del cultivo

Es una variedad que se destina a la vinificación. Su distribución en Extremadura

51 está centrada en la provincia de Badajoz con un 0,33% de la superficie total de viñedo, estando fundamentalmente concentrado su cultivo en Castuera, según los datos del Registro vitícola (1995). En el Catastro vitícola y vinícola de Cáceres (1980) no aparece citada esta variedad.

1.9.10.- Marfal

Sinonimias

Malfar (Hurtado, comunicación personal).

Antecedentes

En el "Libro de Oficios" redactado en el Monasterio de Santa María de Guadalupe en el siglo XV, por el Padre Ecija, se cita dentro del grupo de uvas de menos importancia a Masval, cuya denominación podría haber evolucionado hacia Marfal.

García de los Salmones (1914) cita a Marfal como variedad cultivada en la localidad de Herrera del Duque (Badajoz).

Hidalgo y Candela (1971) señalan en la provincia de Cáceres el cultivo de Marfal, indicando su uso para la vinificación.

Por último, hay que señalar que no se han encontrado descripciones morfológicas de este cultivar entre la bibliografía consultada.

Situación del cultivo

En el libro "Contribución al conocimiento del inventario vitícola nacional" de Hidalgo y Candela (1971) se indica que la extensión que ocupa Marfal es "regular" en la provincia de Cáceres. Sin embargo, esta variedad no aparece censada ná en el

52 Registro vitícola de Badajoz del995, ni en el Catastro vitícola y vinícola de Cáceres de 1980, apareciendo en este último la variedad Malvar con 161 ha.

En los viñedos de Cañamero (Cáceres) aparece asociada con otros cultivares, pues como indican los agricultores de la zona se obtiene mejor vino mezclando uva de diversas variedades. Su producción se destina a la vinificación.

1.9.11.- Perruno

Sinonimias

Casta de Montúo (Borrego, 1990; García de Lujan, et al., 1990; Hidalgo, 1991), Firmissima (García de Lujan, et al, 1990), Getibi (García de Lujan et al, 1990; Hidalgo, 1991), Granadina (García de Lujan et al, 1990), Jetibi (Borrego, 1990), Morata (García de Lujan et al., 1990), Perruna (Hidalgo, 1991), Perruno Común (García de Lujan et al, 1990; Hidalgo, 1991), Perruno Duro (Borrego, 1990, García de Lujan et al., 1990, Hidalgo, 1991), Perruno Fino (García de Lujan et al, 1990; Hidalgo, 1991), Perruno Tierno (García de Lujan et al., 1990; Hidalgo, 1991), Perruno de Arcos (García de Lujan et al., 1990; Hidalgo, 1991), Perruno de la Sierra (Borrego, 1990; García de Lujan et al, 1990; Hidalgo, 1991), Vidueño (Borrego, 1990; Hidalgo, 1991).

Antecedentes

Roxas Clemente (1807) distingue en la Sección 2^. Tribu VIIL Flaventes. Perrunos, a Perruno Común y Perruno Duro. Del primero comenta "Es la más estimada para vinos después del Listan Común, Ximenez Común y los Moscateles". Apunta como sinonimias de este cultivar a Perruno y Perruno Tierno. Respecto a Perruno Duro escribe "Sus uvas resisten mucho a las causas que pudren las de otras variedades"; señala que su cultivo no está muy extendido, y considera a Perruno de la Sierra como ima sinonimia.

. Este mismo autor en la Sección 1^. Variedades aisladas, sitúa a Montúo Perruno.

53 Sobre él señala que es el cultivar más común en la vega de Granada, a parte del Xerez, e indica que las zonas de cultivo son Granada, Motril, Molvizar y Torviscón.

Abela (1885) describe a Perruno Común y comenta la gran reputación que tiene este vidueño para los vinos de Jerez. Separada de esta variedad menciona a Perruno Duro sobre el que escribe "Sus uvas maduran tarde y resisten mucho las causas de la putrefacción".

También Abela (1885) describe a Montúo Perruno, situándolo en la vega de Granada, como lo hizo Roxas Clemente en 1807.

Cincinnato da Costa (1900) escribe sobre "Perrum, Perruno para los españoles", que es la variedad predominante en el Alentejo y la base fundamental para los vinos blancos en el bajo Alentejo. Tiene una madxxración tardía, y es muy sensible a enfermedades criptogámicas: oidio, mildiu, antracnosis.

Comenge (1942) distingue entre Perruno Común y Perruno Duro situándolos en clanes diferentes, al primero en el Clan II. Perrunos, y al último en el Clan único. Pelosas, junto con Perruna de Málaga, de la que reaHza una breve descripción. Este mismo autor también cita a Montúo Perruno que lo sitúa en el Clan VI. Rebazo.

Fernández de Bobadilla (1956) clasifica a los Perrunos como variedades auxiliares o secundarias, considerándolas como variedades productoras de cantidad más que de calidad. Describe a Perruno de Arcos y entre sus características comenta "Sus mostos son poco azucarados; así García de la Leña al hablar de ellos, dice: "Ni el sol las dulcifica". Señala también su empleo en la producción de "vinos de tipo oloroso de sólo aceptable calidad", habiendo perdido desde antiguo su estimación entre los viticultores y enólogos. Ya García de la Leña al hablar de los Perrunos, escribió que "el nombre está diciendo su ninguna bondad".

Este mismo autor distingue a Perruno de Arcos de Perruno, aunque en sus características enológicas "le es aplicable cuanto se ha dicho ya al hablar del Perruno de

.54 Arcos".

Hidalgo et al. (1976) presentan una ficha ampelográfica para este cultivar. Posteriormente Borrego (1990) y García de Lujan et al. (1990) también describen a Perruno, indicando cada uno diversas denominaciones atribuidas a esta variedad.

Hidalgo (1991) establece una larga lista de sinonimias.

En el anejo 1, cuadro Al-10 se exponen las descripciones realizadas por diversos ampelógrafos a lo largo del tiempo, así como las sinonimias que han citado.

Situación del cultivo

Es una variedad de vinificación cuyo cultivo en Extremadura se encuentra locaHzado exclusivamente en la provincia de Badajoz con un 1,25% de la superficie del viñedo, encontrándose la mayor concentración de ella en la comarca de La Serena, según los datos del Registro vitícola de Badajoz (1995).

Hidalgo (1993) sitúa a Perruno en la posición 36^ entre las variedades de vinificación cultivadas en España.

1.9.12.- Morisca

Sinonimias

No se conoce ninguna sinonimia de esta variedad.

Antecedentes

García de los Salmones (1914) sitúa en la provincia de Badajoz a Morisca Negra, Morisco Mollar, Verdal Morisca. Este mismo autor en 1915 y 1935 cita a Morisca como una variedad tinta importante en Badajoz y en Cáceres.

55 Marcilla (1954) señala el cultivo de Morisca en la provincia de Badajoz.

Hidalgo y Candela (1971) citan a esta variedad tanto en Badajoz como en Cáceres, aunque en la primera de ellas su cultivo tiene una mayor extensión.

Hidalgo (1989) indica como el cultivo de variedades tintas, que se realiza en la comarca de Tierra de Barros, está prácticamente ocupado por Morisca y Morisca Mollar.

Sin embargo, ninguno de los autores citados y consultados han realizado una descripción morfológica de esta variedad.

Situación del cultivo

Variedad de vinificación cultivada tanto en Badajoz como en Cáceres. Según el Registro vitícola de Badajoz ocupa un 0,66% de la superficie de cultivo, situándose fundamentalmente en Tierra de Barros. Por el contrario, en Cáceres está más extendido su cultivo en un 0,81% de la superficie vitícola, concentrándose su cultivo en Villanueva de la Sierra y en Guijo de Coria.

56 2.ÚBJETIVÚS

2.1.- Objetivos

Para realizar un adecuado programa de selección clonal es fundamental tener un conocimiento profundo de las variedades seleccionadas, en el que se incluye una correcta identificación de las mismas. En este proceso de caracterización no sólo se debe obtener una ficha identificativa, sino que también se debe realizar un estudio sobre las posibles sinonimias y homonimias que tienen los cultivares seleccionados.

La reciente creación de la Denominación de Origen "Ribera del Guadiana" orientada a obtener vinos de calidad, demandará un estudio detallado de las variedades admitidas, así como de sus posibilidades enológicas.

Por tanto, los objetivos planteados son:

1. Realizar una exhaustiva caracterización de las variedades estudiadas y aclarar las supuestas sinonimias y homonimias mediante diferentes métodos integrados de identificación varietal. 2. Identificar a los clones estudiados, señalando las diferencias que existen entre ellos según los métodos de caracterización empleados.

2.2.- Hipótesis

Las variedades caracterizadas en este trabajo son:

- Pardina

- Blanca Cayetana - Montúa - Eva - Alarije - Borba - Cigüentes - Marfal

59 - Perruno - Morisca

Revisando la bibliografía que hace referencia a estos cultivares se han encontrado como posibles sinonimias de los mismos las que a continuación se indican:

- Pardina y Blanca Cayetana sinónimas de Jaén - Chelva sinónima de Montúa - Eva sinónima de Beba - Alarije Dorada y Alarije Verdosa sinónimas de Alarije

Considerando las denominaciones que emplean los agricultores en las zonas en que está extendido el cultivo de cada xma de las variedades consideradas se puede establecer:

- La variedad Pardina habitualmente es denominada Parda, Pardilla u Hoja Vuelta, en la comarca de Tierra de Barros (Badajoz) - Cayetana o Blanca Cayetana son nombres muy comunes en Tierra de Barros (Badajoz) - Entre los agricultores de Guareña (Badajoz) está extendida la idea de que Montúa y Chelva son dos maneras diferentes de aludir a la misma variedad - Eva y Beba son dos denominaciones que se emplean indistintamente, y en algunos casos se añade la procedencia, Eva o Beba de los Santos (Los Santos de Maimona es una localidad situada en la provincia de Badajoz) - En Cañamero (Cáceres) los agricultores distinguen entre Alarije Dorada y Alarije Verdosa atendiendo a las características de sus racimos y bayas. Además, en la zona se emplean los nombres de Alarije, Alarij o Alari para hacer alusión a este cultivar - Se observa cierta confusión a la hora de decidir entre los términos de Cigüentes o Cigüente - En el proyecto de "Selección clonal sanitaria de la vid en Extremadura" realizado por el SIDT-Extremadura, se cita a la variedad "Malfar", siendo este término desconocido en la zona de Cañamero empleándose allí el nombre de Marfal

60 Así considerando toda esta información se pueden establecer como hipótesis de partida las siguientes posibles sinonimias:

- Pardina y Cayetana son sinonimias de Jaén, que a su vez cuentan con otras denominaciones extendidas en la zona de cultivo, también recogidas en la bibliografía: • Pardina: Parda, Pardilla, Hoja Vuelta • Blanca Cayetana: Cayetana - Montúa y Chelva son dos nombres distintos que aluden a la misma variedad, teniendo el primero de ellos un gran número de referencias bibliográficas - Eva y Beba son sinónimas - Alarije, Alarij o Alari Verdosa y Alarije, Alarij o Alari Dorada pueden ser sinónimas, o sus diferencias morfológicas se pueden traducir en dos cultivares distintos

61

5. MATEMML

3.1.- Elección de las variedades

El criterio de selección de las variedades estudiadas en este trabajo fue la necesidad de realizar una adecuada caracterización de los cultivares sobre los que se estaba llevando a cabo un proceso de selección clonal, que se desarrollaba en el Servicio de Investigación y Desarrollo Tecnológico (SIDT) de Extremadura.

Esta selección clonal hasta el año 1996, momento en que se inició la fase experimental de este trabajo, se había hecho sobre los cultivares que a continuación se indican, habiéndose obtenido en cada caso un número variable de clones, cultivados en la Finca "La Orden" (SDDT-Extremadura). Estas variedades son:

- Pardina - Blanca Cayetana - Montúa - Eva - Alarije - Borba - Cigüentes - Perruno

Considerando las hipótesis de partida de este trabajo y la bibliografía consultada se consideró interesante incluir en el trabajo accesiones de Jaén, Pardilla, Mantúo, Chelva, Beba, Alarije Dorada y Alarije Verdosa, que permitiesen aclarar los problemas de sinonimias con los que se encontraban relacionadas, y de esta manera no solo obtener una correcta caracterización. Todas estas accesiones indicadas se tomaron del Banco de Germoplasma de la Vid del Instituto Madrileño de Investigación Agraria y Aumentaría (MÍA).

. En el proyecto de selección clonal comentado anteriormente, además de las variedades ya citadas se incluía a Marfal y Morisca. De éstas todavía no se había conseguido encontrar clones que superasen los criterios aplicados en el proceso de

65 selección clonal. A pesar de ello, se consideró interesante también realizar im estudio de caracterización de las mismas, para ello se buscaron clones que representaran a estos cultivares. En el caso de la variedad Marfal no hubo ninguna dificultad, mientras que para Morisca se tuvo que posponer durante un año su caracterización.

En el caso de esta última variedad, Morisca, se intentó incluir en el estudio algún Jaén Rosado, y algún Jaén Tinto. La razón de esta inclusión era que ya se tenía como hipótesis de partida que Blanca Cayetana y Pardina eran sinónimas de Jaén, y se planteaba el hecho de que Morisca no se diferenciaba de Blanca Cayetana y Pardina, y Jaén Rosado de Jaén Blanco hasta el momento en que se producía el envero del racimo. Por tauto, de nuevo podía ocurrir que Morisca y Jaén Rosado fuesen el mismo cultivar. Sin embargo, en el Banco de Germoplasma de la Vid no apareció ningún clon correspondiente a Jaén Rosado, aunque si de Jaén Tinto que sí se mantuvo en este estudio.

3.2.- Material vegetal

El material vegetal utilizado para realizar este trabajo procede de cuatro campos experimentales:

1. Campo fundacional situado en la Finca "La Orden" (Badajoz) perteneciente al SIDT de Extremadura. Este está constituido por los clones elegidos en el proyecto de "Selección clonal sanitaria de la vid en Extremadura" dirigido por Joaquín Parejo (1994-1997). Cada clon está representado por diez cepas conducidas en espaldera, cultivadas en régimen de secano. La edad de las plantas al iniciarse el trabajo era de 2 años y la poda doble cordón royat. 2. Colección del Banco de Germoplasma de la Vid del IMIA de Madrid ubicado en la Finca "El Encín" (Alcalá de Henares-Madrid). Las plantas son de pie bajo y hay cuatro cepas que representan a cada cultivar. El cultivo se realiza en secano, con cepas podadas con cuatro pulgares a dos yemas vistas. La edad de las plantas al comenzar la experiencia era de 18 años. 3. Finca experimental "Casablanca" localizada en el término municipal de

66 „.;*

Figura n° 2: Campo fundacional Finca "La Orden" (Guadajira-Badajoz).

Figura xf 3. Colección del Banco de Germoplasma de la Vid. Finca "El Encín" (Alcalá de Henares-Madrid).

67

Almendralejo (Badajoz). El campo de experiencias se encuentra dividido en dos bloques con conducción en espaldera y poda doble cordón royat. Cada uno de ellos consta de 30 cepas, que al iniciarse el trabajo tenían 11 años. El cultivo se realiza en secano. 4. Finca "Mayordomo" situada en el término municipal de Solana de los Barros (Badajoz). Antiguo campo fundacional del proyecto de selección clonal de variedades de Extremadiu-a. Los clones en él injertados están representados por 12 cepas, conducidas en espaldera y poda doble cordón royat. Las plantas tenían 3 años de edad cuando se comenzó el estudio. Se cultivan en secano.

Las variedades estudiadas son: Pardina, Blanca Cayetana, Montúa, Eva, Alarije, Borba, Marfal, Cigüentes, Perruno y Morisca. Todas ellas blancas, excepto la última que es rosada. El resto de los cultivares incluidos son posibles sinonimias u homonimias de las variedades anteriormente mencionadas.

3.2.1.- Caracterización morfológica.

El material elegido procede de los cuatro campos citados anteriormente, y es el que aparece reflejado en la siguiente tabla.

Cuadro n" 1. Material vegetal empleado en la caracterización morfoló gica. . Variedad Tipo Clave Procedencia Localidad Provincia

Pardina Blanca 1S04 La Orden Solana de los Barros Badajoz Pardina Blanca PABA (M-6) El Encín - Badajoz Blanca Cayetana Blanca 2ALn La Orden Almendralejo Badajoz Blanca Cayetana Blanca 2T01 La Orden Torretnegía Badajoz Blanca Cayetana Blanca 2T013 La Orden Torremegía Badajoz Blanca Cayetana Blanca BOBA (M-9) El Encín - Badajoz Cayetana Blanca Blanca CBCC (M-30) El Encín Montánchez Cáceres Jaén Blanco Blanca JAGR(C-6) El Encín - Granada Jaén Blanca JAGU (1-51) El Encín Mondéjar Guadalajara Jaén Blanca JATO (J-44) El Encín - Toledo Montúa Blanca 3AL45 La Orden Almendralejo Badajoz Montúa Blanca 3GU19 La Orden Guareña Badajoz Montúa Blanca 3GU34 La Orden Guareña Badajoz Montúa Blanca 3ST17 La Orden Santa Marta Badajoz

69 Cuadren" 1. (Continuación). Variedad Tipo , Clave Procedencia Localidad Provincia 1 Mantúo Jerezano Blanca MJGR (B-43) El Encin - Granada Mantúo Blanca MAGR (B-47) El Encin - Granada Mantúo Basto o Perruno Blanca PRGR (C-7) El Encin - Granada Mantúo Blanca MTGR(C-9) El Encin - Granada Mantúo Blanca MABA (M-20) El Encin Almendralejo Badajoz Chelva Blanca 3C01 La Orden Fuente del Maestre Badajoz Chelva Blanca CHAV(I-15) El Encin Cebreros Avila Chelva Blanca CHCR(I-31) El Encin Valdepeñas Ciudad Real Eva Blanca 4LS47 La Orden Los Santos de Maimona Badajoz Eva Blanca 4C01 La Orden Fuente del Maestre Badajoz Eva Blanca EVBA (M-17) El Encin Almendralejo Badajoz Beba Blanca BECA(B-13) El Encin - Cádiz Beba Blanca BEHU (C-13) El Encin Moguer Huelva Beba Blanca BBHU (C-24) El Encin Bollullos del Condado Huelva Alarije Blanca 5TA13 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA19 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA25 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA27 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA210 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA31 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA34 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA35 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca ALCO (B-33) El Encin - Córdoba Alarije Blanca ALMA (J-27) El Encin INIA-Madrid Madrid Alarije Blanca ALTO (J-42) El Encin - Toledo Alarije Blanca ALBA (M-16) El Encin - Badajoz Alarije Dorada Blanca ALCC (M-26) El Encin Logrosán Cáceres Alarije Blanca AJCC (M-34) El Encin - Cáceres Alarij Verdosa Blanca AVCC (M-36) El Encin Cañamero Cáceres Borba Blanca 6M015 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M023 - La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M026 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M033 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M045 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M047 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca BOBA (M-19)- El Encin Guareña Badajoz Borba Blanca BOCC (M-33) El Encin - Cáceres Malfar Blanca .7CN1 Casablanca Cañamero Cáceres Marfal Blanca MACC (M-38) El Encin Cañamero Cáceres Cigüentes Blanca 8CA2 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA9 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA15 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA19 La Orden Castuera Badajoz

70 Cuadro nM. (Continuación). Variedad Tipo Clave Procedencia Localidad Provincia

Cigüentes Blanca 8CA20 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA26 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA31 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA33 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA40 La Orden Castuera Badajoz Cigüente Blanca CIBA (M-15) El Encin - Badajoz Cigüente Blanca CGBA(M-18) El Encín Guareña Badajoz Perruno Blanca 9CA13 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA22 . La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA25 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA36 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA37 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA39 La Orden Castuera Badajoz

Perruno Común Blanca PEGR(B-51) El Encín - • Granada Perruno Blanca PEMA (C-40) El Encín - Málaga Morisca Rosada 10AL3 Mayordomo Almendralejo Badajoz Morisca Rosada MOBA (M-7) El Encín - Badajoz Jaén Negro Tinta JANE (A-45) El Encín - Almería Jaén Negro Tinta JENE (B-52) El Encín - Granada Jaén Negro Tinta JNNE (C-8) El Encín - Granada Jaén Tinto Tinta JATN {C-3) El Encín Sorvilán Granada

Las descripciones morfológicas de los cultivares: Morisca (10AL3 y MOBA), Jaén negro (JANE, JENE y JNNE) y Jaén Tinto (JATN) sólo se pudieron realizar durante el segundo año de estudio (1997), por las razones anteriormente expuestas.

En 1996 también se describieron las accesiones que aparecen en el cuadro n° 2, representantes de la variedad Pardilla.

Cuadro n° 2. Material ve getal descrito sólo en 1996. Variedad Tipo Clave Procedencia Localidad Provincia

Pardillo Blanca PLCR (1-28) El Encín Tomelloso Ciudad Real Pardillo Blanca PACU a-44) El Encín - Cuenca 1 Pardilla Blanca PDGU (1-48) El Encín Mondéjar Guadalajara Pardillo Blanca PLMA(J-16) El Encín - Madrid

Inicialmente se incluyeron estas accesiones con el objeto de poder analizar la supuesta sinonimia existente entre Pardilla y Pardina. Sin embargo, los resultados

71 obtenidos durante 1996, pusioFon de manifiesto grandes diferencias entre estos dos cultivares, considerándose adecuada la eliminación de los clones indicados en el cuadro n°2.

En la ñgura n° 4 aparecen señalados los términos municipales de dónde procede todo el material vegetal estudiado originario de la Comunidad Autónoma de Extremadura.

3.2.2.- Caracterización bioquímica 3.2.2.1.- Isoenzimas

El material vegetal sobre el que se ha realizado el estudio isoenzimático es el que aparece en el cuadro n° 1, y es el mismo que el que se ha empleado en la caracterización morfológica.

Las accesiones indicadas en el cuadro n° 2 no se incluyeron en este análisis, a pesar de estar consideradas en el estudio morfológico, ya que a partir de los resultados de éste sé determinó la eliminación de este material vegetal.

Hay que señalar de nuevo que para la variedad Morisca el estudio sólo se pudo realizar durante el segundo año de experimentación (1997).

3.2.2.2.- Aminoácidos

La identificación y cuantificación de los distintos aminoácidos se ha efectuado sobre los mostos de algunos de los clones escogidos en el proceso de selección clonal reahzado por el SIDT-Extremadiura. El criterio seguido para elegir dichos clones fue el siguiente: considerar dos accesiones para cada variedad estudiada, que durante los dos años de estudio hubiesen alcanzado un contenido en sólidos solubles próximo a los 20 "Brix. El punto crítico en esta selección apareció en los mostos del año 1996, puesto que en algunos casos fiíe difícil alcanzar dicha concentración de azúcares, debido al fuerte ataque de mosquito verde (Empoasca spp.) ocurrido en dicha campaña, ya que

72 LEYENDA A: Ribera Alta 1: Guareña 1: Fuente del Maestre B: Tierra de Barros 2; Castuera 8: Los Santos de Maimona C: Matanegra 3: Santa Marta 9-: Montánchez D: Ribera Baja 4: Solana de los Barros 10: Cañamero E: Montánchez 5: Torremegía 11: Logrosán F: Cañamero 6: Almendralejo 12: Talarrubias

Figura n° 4. Localización del material vegetal procedente de Extremadura.

73 cuando hay una fuerte invasión de esta plaga los racimos no llegan a madurar adecuadamente (Ruiz Castro y Mendizábal, 1939; Toledo, 1992). En el cuadro n° 3 se señalan los clones considerados en este estudio.

Cuadro n° 3. Material vegetal empleado en el estudio amínico. Variedad Tipo Clave Procedencia Localidad Provincia

Pardina Blanca 1S04 La Orden Solana de los Barros Badajoz Blanca Cayetana Blanca 2ALn La Orden Almendralejo Badajoz Blanca Cayetana Blanca 2T01 La Orden Torremegía Badajoz Montúa Blanca 3GU19 La Orden Guareña Badajoz Montúa Blanca 3ST17 La Orden Santa Marta Badajoz Chelva Blanca 3C01 La Orden Fuente del Maestre Badajoz Eva Blanca 4LS47 La Orden Los Santos de Maimona Badajoz Eva Blanca 4C01 La Orden Fuente del Maestre Badajoz Alarije Blanca 5TA210 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA35 La Orden Talarrubias Badajoz Borba Blanca 6M023 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M045 La Orden Montánchez Cáceres Malfar Blanca 7CN1 Casablanca Cañamero Cáceres Cigüentes Blanca 8CA19 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA40 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA13 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA39 La Orden Castuera Badajoz Morisca Rosada 10AL3 Mayordomo Almendralejo Badajoz

Hay que señalar de nuevo que para la variedad Morisca el estudio sólo se pudo realizar durante el segundo año de experimentación (1997).

3.2.3.- Caracterización agronómica: fenología

El material vegetal empleado en el estudio fenológico es el que aparece- detallado en el cuadro n" 4.

Cuadro n ° 4. Material vegetal empleado en el estudio fenológico. . Variedad , Tipo Clave Procedencia Origen Proviacia Pardina Blanca 1S04 La Orden Solana de los Barros Badajoz Blanca Cayetana Blanca 2AL11 La Orden Almendralejo Badajoz Blanca Cayetana Blanca 2T01 La Orden Torremegía Badajoz Blanca Cayetana Blanca 2X013 La Orden Torremegía Badajoz

74 Cuadro xf 4 . (Continuación). Variedad -" Tipo Clave Procedencia Origen- Provincia

Montúa Blanca 3AL45 La Orden Almendralejo Badajoz Montúa Blanca 3GU19 La Orden Guareña Badajoz Montúa Blanca 3GU34 La Orden Guareña Badajoz Montúa Blanca 3STn La Orden Santa Marta Badajoz Chelva Blanca 3C01 La Orden Fuente del Maestre Badajoz Eva Blanca 4LS47 La Orden Los Santos de Maimona Badajoz Eva Blanca 4C01 La Orden Fuente del Maestre Badajoz Alarije Blanca 5TA13 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA19 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA25 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA27 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA210 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA31 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA34 La Orden Talarrubias Badajoz Alarije Blanca 5TA35 La Orden Talarrubias Badajoz Borba Blanca 6M015 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M023 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M026 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M033 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M045 La Orden Montánchez Cáceres Borba Blanca 6M047 La Orden Montánchez Cáceres Malfar Blanca 7CN1 Casablarica Cañamero Cáceres Cigüentes Blanca 8CA2 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA9 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA15 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA19 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA20 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA26 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA31 La Orden Castuera Badajoz Cigüentes Blanca 8CA33 La Orden Castuera Badajoz ' Cigüentes Blanca 8CA40 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA13 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA22 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA25 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA36 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA37 La Orden Castuera Badajoz Perruno Blanca 9CA39 La Orden Castuera Badajoz Morisca Rosada 10AL3 Mayordomo Almendralejo Badajoz

Hay que indicar que el clon 10AL3 (Morisca) sólo se incluyó en este estudio durante el año 1997, por los motivos anteriormente expuestos, sin embargo, en los años posteriores se tuvo que excluir del mismo por detectarse en dicho clon síntomas de

75 virosis, posteriormente corroborados. Por otra parte, sobre 3C01 (Chelva) y 4C01 (Eva) sólo se realizaron observaciones fenológicas durante los dos primeros años de estudio por ser posteriormente eliminados del proceso de selección clonal al no superar los criterios del mismo. Por último, los clones 3ST17 (Montúa), 4LS47 (Eva), 6M023 (Borba) y 6M033 (Borba) fueron arrancados a lo largo del mes de marzo de 1999 por haberse detectado en ellos virus, y por tanto sólo se anotaron los primeros estados fenológicos en ese año de dichos clones.

3.3.- Métodos 3.3.1.- Caracterización morfológica

Como ya se ha indicado anteriormente la localización de los cultivares se encuentra en Extremadura y Madrid. Las descripciones se han realizado en equipo, que ha estado formado como mínimo por dos personas, y en el que al menos dos ampelógrafos han descrito en los dos lugares de ubicación del material vegetal.

Las descripciones se han realizado siguiendo el "Código de los caracteres descriptivos de las variedades y especies de Vitis" (OIV, 1984). De esta lista de descriptores se han utilizado sólo una parte de ellos, que a continuación indicaremos, y que han permitido describir morfológicamente en distintos estados fenológicos diversos órganos de la planta (sumidad, hoja joven, pámpano, flor, hoja adulta, racimo y baya).

Los caracteres se describen atendiendo a su nivel de expresión, que se traduce en una cifira. Estos caracteres pueden ser cuantitativos o cualitativos.

Por caracteres cuantitativos entendemos aquellos que son medibles según una escala de una dimensión y cuya variación, de un nivel extremo a otro, es continua. Los niveles de expresión se han escalonado de 1 a 9; las notas del 1 al 3 indican siempre un carácter ausente o de valor poco pronunciado; mientras que del 7 ál 9 corresponden a un valor elevado o muy elevado.

Los caracteres cualitativos son aquellos que poseen niveles de expresión

76 discretos y discontinuos sin límite superior fijado arbitrariamente. Dentro de los caracteres cualitativos se encuentran los denominados alternativos o de doble estado, que son aquellos que pueden estar ausentes (nulo) o presentes, la notación que asigna la OrV es 1 para ausentes y 2 para presentes.

Algunos caracteres se han descrito atendiendo al "Preliminary minimal descriptor list for grapevine varieties" (Dettweiler, 1991) por su mayor facilidad y exactitud en la descripción morfológica.

Por tanto, la caracterización morfológica se ha realizado según los siguientes códigos OIV:

Sumidad

El momento de la descripción es cuando los pámpanos tienen entre 10 y 30 cm de longitud. Se deben describir 10 extremidades.

- Código OrV n° 001: forma de la extremidad - Código OIV n° 002: distribución de la pigmentación antociánica de la extremidad Código OrV n° 003: intensidad de la pigmentación antociánica de la extremidad - Código OIV n° 004: densidad de los pelos tumbados de la extremidad

Hoja joven

Observación a realizar sobre las 6 hojas terminales de 10 pámpanos, antes de la floración.

- Código Dettweiler n° 051 -1: color del haz (hoja 1 -3) - Código Dettweiler n° 051 -2: color del haz (hoj a 4-6) - Código OrV n° 052: intensidad de la pigmentación antociánica de las seis hojas terminales - Código OIVn° 053: densidad de los pelos tumbados entre los nervios

77 Código OIV n° 054: densidad de los pelos erguidos entre los nervios - Código OIV n° 055: densidad de los pelos tumbados sobre los nervios - Código OIV n° 056: densidad de los pelos erguidos sobre los nervios

Pámpano

La descripción se realiza sobre el tercio medio de 10 pámpanos, en la época de la floración.

- Código OIV n° 007: Pámpano: color de la cara dorsal de los entrenudos - Código OIV n° 008: Pámpano: color de la cara ventral de los entrenudos - Código OrV n° 009: Pámpano: color de la cara dorsal de los nudos - Código OrV n° 010: Pámpano: color de la cara ventral de los nudos - Código OrV n° 011: Pámpano: densidad de los pelos erguidos de los nudos - Código OIV n° 012: Pámpano: densidad de los pelos erguidos de los entrenudos - Código OIV n° 013: Pámpano: densidad de los pelos tumbados de los nudos - Código OrV n° 014: Pámpano: densidad de los pelos tumbados de los entrenudos - Código OIV n" 015: Pámpano: pigmentación antociánica de las yemas - Código OIV n° 016: Zarcillos: distribución sobre el pámpano - Código OIV n° 017: Zarcillos: longitud

Inflorescencia

Se realiza la descripción durante la floración, estableciendo la expresión morfológica del sexo de 10 inflorescencias.

- Código OIV n° 151: sexo de la flor

Hoja adulta

La descripción morfológica de 10 hojas adultas situadas por encima de los racimos en el tercio medio del pámpano, se realiza en el período comprendido entre el

78 cuajado y el envero.

- Código OIVn° 065: tamaño - Código OIV n° 067: forma del limbo - Código OIV n" 068: número de lóbulos Código OIV n° 070: pigmentación antociánica de los nervios principales del haz Código OIV n° 071: pigmentación antociánica de los nervios principales del envés Código OrV n° 075: hinchazón del haz Código OIV n° 076: forma de los dientes - Código OIV n° 077: longitud de los dientes - Código OIV n" 078: longitud de los dientes en relación a su anchura en la base - Código OrV n° 079: forma del seno peciolar - Código OrV n° 080: forma de la base del seno peciolar - Código OrV n° 081: particularidades del seno peciolar - Código OrV n° 082: forma de los senos laterales superiores - Código OrV n" 083: forma de la base de los senos laterales superiores Código Dettweiler n° 083-1: forma de la base de los senos laterales - Código Dettweiler n° 083-2: forma de la base de los senos laterales inferiores Código OrV n° 084: densidad de los pelos tumbados entre los nervios (envés). - Código OrV n° 087: densidad de los pelos erguidos de los nervios (envés). - Código OIV n° 088: vellosidad tumbada de los nervios principales (haz) - Código OrV n° 089: vellosidad erguida de los nervios principales (haz) - Código OIV n° 090:densidad de los pelos tumbados del pecíolo - Código OIV n° 091: densidad de los pelos erguidos del pecíolo

Racimo

La descripción se realiza sobre 10 racimos maduros.

- Código OrV n° 202: tamaño - Código OIV n° 204: compacidad - Código OIV n° 206: longitud del pedúnculo

79 Código OrV n° 207: lignificación del pedúnculo

Baya

La observación se realiza sobre 40 bayas maduras.

- Código OIV n° 220: tamaño - Código OIV n° 222: uniformidad de tamaño - Código OIV n° 223: forma - Código OIV n° 224: sección transversal - Código OrV n° 225: color de la epidermis - Código OIV n° 229: ombligo - Código OrV n° 230: coloración de la pulpa - Código OIV n° 236: sabores particulares - Código OIV n° 239: separación del pedicelo - Código OIV n° 241: presencia de pepitas - Código OrV n° 244: estrías transversales en la cara dorsal de las pepitas

La elección de estos caracteres para la descripción morfológica, se ha hecho siguiendo los criterios de la UPOV, al tomar aquellos que este organismo considera adecuados para realizar la distinción entre variedades; además se han tomado otros caracteres que se han considerado interesantes para obtener una amplia caracterización de las variedades estudiadas. Sin embargo, hay que señalar que no todos los caracteres que aparecen en la lista mínima de distinción de variedades establecida por la UPOV, han sido considerados, quedando cinco de ellos sin ser descritos por las siguientes razones:

- Código OIV n° 006: porte del pámpano. Este aspecto morfológico es imposible describirlo cuando las cepas están conducidas en espaldera, como es el caso de los campos experimentales situados en Badajoz. - Código OIV n° 085: densidad de los pelos erguidos entre los nervios principales. Este carácter no se describió siguiendo el criterio establecido en el grupo de trabajo

80 europeo integrado por Dettweiler y otros investigadores, que consideran más discriminantes los códigos OIV n° 084 y 087 para caracterizar una variedad atendiendo a la presencia de pelos tanto erguidos como tumbados en el envés de la hoja adulta (Cabello, comunicación personal). - Código OIV n° 086: densidad de los pelos tumbados en los nervios principales. En este punto se aplicó el mismo razonamiento apuntado en el código anterior. Código OIV n° 102: superficie del sarmiento. Este carácter no distingue entre variedades de Vitis vinifera L, y por tanto no ofrecía ningún tipo de discriminación. - Código OrV n° 301: época de la brotación. Este dato se ha tomado.para cada imo de los clones situados en Badajoz, sin embargo, no se ha incluido en la caracterización morfológica, porque se ha considerado más apropiado estudiarlo desde la perspectiva de la fenología.

Las descripciones morfológicas se han reahzado durante dos años (1996-1997), siguiendo las indicaciones de la OIV. Sin embargo, hay que señalar que durante el primer año de estudio el código OIV n° 082 y los códigos Dettweiler n° 083-1 y 083-2, sólo frieron descritos en uno de los dos centros de investigación donde se reahzaron los estudios ampelográficos, siendo posteriormente uniformizados los criterios en 1997.

Una vez obtenidos todos los valores de los caracteres descritos se procedió a su anáhsis estadístico. Este estudio se realizó en primer lugar y de una forma independiente, sobre las descripciones obtenidas durante los años 1996 y 1997. Posteriormente, el anáhsis se llevó a cabo sobre la descripción morfológica "modelo", que es como se ha denominado a la ficha identificativa de cada clon, obtenida considerando, de una forma conjunta, las descripciones de los años 1996 y 1997. Hay que señalar que en esta última no se consideró el carácter "uniformidad del tamaño de la baya", código n° 222, puesto que era muy variable y altamente dependiente de las condiciones climatológicas.

Para la obtención de las matrices de datos sobre las que se realizarán los estudios de agrupamiento se siguió el siguiente criterio. En los años 1996 y 1997 cada carácter está descrito sobre diez elementos, asignándole a cada uno de ellos un nivel de

81 expresión. Para determinar cuál es el valor de ese carácter se tomó la moda de esos diez niveles de expresión. En el caso de la descripción morfológica "modelo" cada carácter se determinó sobre la moda de los valores descritos a lo largo de los dos años de estudio.

Una vez recopilados todos los datos se introdujeron en el paquete estadístico "Numerical taxonomy system" (NTSYS), realizado por F.J. Rohlf (1986) en el Departamento de Ecología y Evolución de la Universidad de New York. De esta manera, se han realizado tres análisis de agrupamientos, uno correspondiente al año 1996, otro al año 1997 y por último el de la descripción morfológica "modelo".

Las unidades taxonómicas operativas (UTO) son los clones descritos. La matriz básica de datos está constituida por los valores de cada carácter, para cada UTO.

Sobre la matriz de datos se utilizó el coeficiente "average taxonomic distance" (Sokal, 1961), que permitió obtener la matriz de similitud. A continuación empleando el algoritmo de ligamiento promedio no ponderado (UPGMA) (Sneath and Sokal, 1973), se formaron agrupaciones de UTOs que se asociaban por su grado de similitud, dando lugar a los dendrogramas de agrupamiento.

En los dendrogramas obtenidos se establecieron los grupos y subgrupos existentes, teniendo para ello en cuenta los niveles de separación de las ramas principales, lo que sirvió para las formulaciones de inferencias sobre las relaciones entre UTOs.

3.3.2.- Caracterización bioquímica 3.3.2.1.- Isoenzimas

El estudio isoenzimático se ha realizado durante dos años, tomando como material de partida sarmientos de cada una de las accesiones estudiadas. Estos fueron recogidos después de la caída de las hojas y congelados a -20°C hasta el momento de reahzarse la extracción.

82 La elección de este órgano frente a los otros posibles, fue debida a que éste presenta como ventajas el estar disponible un largo período de tiempo, tener un menor contenido en polifenoles que otros órganos y la poca influencia del clima en el patrón enzimático. Además hay estudios anteriores que tomaron este órgano como material de partida y obtuvieron muy buenos resultados (Altube et al, 1991; Cabello, 1992; Bachmann, 1994).

Los extractos obtenidos se aplicaron sobre geles de poliacrilamida en los que se realizaron sendas electroforesis, y sobre los que se hicieron las tinciones correspondientes a los siguientes sistemas isoenzimáticos: peroxidasa (PER) (E.C. 1.11.1.7), ácido fosfatasa (ACPH) (E.C.3.1.3.2), catecol oxidasas (CO) (E.C.l.10.3.1), glutamato oxalacetato transaminasa (GOT) (E.C.2.6.1.1.) y superóxido dismutasa (SOD) (E.C. 1.15.1.1).

EXTRACCIÓN

Se homogeneizó 1 gr de sarmiento finamente cortado, 5 mi de tampón de extracción (Arulsekar y Parfitt, 1986) y 0,3 gr de polivinil polipirrolidona (PVPP) durante 90 segundos en el homogeneizador Polisón (Kinematica). A continuación se procedió a su centrifugación, tomándose el sobrenadante, que se congeló a -20°C hasta el momento de su empleo. Durante todo el proceso descrito se mantuvo la muestra en fiio para evitar cualquier tipo de calentamiento que provocase una pérdida de actividad enzimática.

El tampón de extracción, Tris-citrato 0,05 M, pH 8,0, tiene la siguiente composición para un litro de agua destilada (Arulsekar y Parfitt, 1986):

. Tris 6,05 gr Acido cítrico (monohidratado) 1,5 gr Cisteína hidroclorhídrica 1,0 gr Acido ascórbico 1,0 gr Polietilenglicol 4000 10,0 gr

83 Mercaptoetanol 0,8 mi

GELES

Estos se prepararon siguiendo el método Maurer (1971) modificado, estando constituidos por tres capas:

- Gel de muestra: 4% de acrilamida y Tris-CIH 0,5 M, pH 8,0 - Gel de separación: 6,3% de acrilamida y Tris-CIH 1,5 M, pH 8,8 - Gel de resolución: 10% de acrilamida y Tris-CIH 1,5 M, pH 8,8

ELECTROFORESIS

En cada pocilio presente en el gel de muestra se añadieron 140 )il de extracto. Una vez cargado el gel se procedía a la electroforesis que se realizaba a 4''C y a una intensidad constante de 2 mA por pocilio. La duración de la misma era de aproximadamente unos 150 minutos.

El tampón de los electrodos tenia un pH 8,6 y su composición para un litro de agua destilada era de:

Tris 3,0 gr Glicocola 14,4 gr

TINCIONES

Como ya se ha indicado anteriormente el estudio isoenzimático se realizó sobre cinco sistemas isoenczimáticos, teniendo cada uno de ellos un método propio de tinción.

Peroxidasa

En esta tinción se empleó el método indicado por Arulsekar y Parfitt (1986).

84 Este distingue dos soluciones, A y B:

Solución A: Tampón acetato sódico 0,05 M, pH 5 92,5 mi Cl2Ca 0,1 M 2,0 mi 33% H2O2 0,5 mi

Añadiendo este último reactivo al final.

Solución B: 3-amino 9-etil carbazol 50 mg Dimetil formamida 5 mi

Esta solución se disuelve a temperatura ambiente sin agitación y se mezcla con la solución A en el momento en que finaliza la electroforesis.

La tinción dura aproximadamente 30 minutos y se desarrolla en oscuridad, a temperatura ambiente y en agitación moderada.

Acido fosfatasa

Se utilizó el sistema de tinción desarrollado por (Schwennesen et al., 1982). También emplea dos soluciones:

Solución A: Tampón acetato de sodio 0,1 M, pH 4 99,5 mi MgCl210% (p/v) 0,5 mi Fasta Gamet GBC Salt 100,0 mg

Para obtener una buena disolución de estos compuestos es necesario mantener la mezcla en agitación al menos una hora antes de usarla.

85 Solución B: Acido a-naftil fosfato 100,0 mg Acetona al 50% 2,0 mi

Un poco antes de finalizar la electroforesis se filtra la solución A y se mezcla con la B, añadiendo todo el conjunto sobre el gel. Este se coloca en una estufa a 35°C en oscuridad durante unos 30 minutos. Pasado este tiempo se coloca a temperatura ambiente y en oscuridad, hasta observar claramente la aparición de bandas.

Catecol oxidasas

La tinción se efectúo siguiendo el método de Schwennsen et al, (1982). Los reactivos que se emplean son:

Catecol 300,0 mg P-Fenilendiamina 50,0 mg

Estos se disuelven en 100 mi de tampón acetato 0,1 M, pH 4,2 en completa oscuridad. Esta solución se vierte sobre el gel, que se aisla de la luz, y se mantiene a temperatura ambiente en agitación durante 30. minutos, al cabo de los cuales se da por finalizada la tinción.

Glutamato oxalacetato transaminasa

La tinción se realizó siguiendo el método desarrollado por Sánchez-Yélamo (1992). Para ello se tomaron:

Tampón Tris 0,05 M, pH 9 100,0 mi Acido D-L aspártico \ 1,064 g Acido a-cetoglutárico 0,106 g

Esta solución se lleva a pH 8 con NaOH, y pocos minutos antes de finalizar la

86 electroforesis se añaden:

Fast-BlueBB Salt 63 mg Piridoxal fosfato 50 mg

El gel se incuba en completa oscuridad con esta solución a 37°C durante 30 minutos.

Superóxido dismutasa

En este caso sé siguió el método establecido por Baum y Scandalios (1979), en el que se emplean los siguientes reactivos:

Riboflavina 6mg NBT 20 mg EDTA 50 mg

Estos se mezclan al final de la electroforesis con la solución constituida por:

Tris-CIH 1 M, pH 7,4 20 mi H2O 80 mi

Sobre el gel se vierte la solución obtenida, y éste se coloca en completa oscuridad y en una estufa a 37°C durante 30 minutos. A continuación, se saca el gel a temperatura ambiente y se expone a la luz hasta que alcance la tinción adecuada.

En todos los- sistemas isoenzimáticos indicados una vez que se alcanzaba la tinción más apropiada la reacción se paraba lavando repetidas veces el gel con agua.

Para la conservación de los geles obtenidos, una vez finalizado el proceso de tinción se procedía a la introducción de los mismos en una solución de metanol al 55% durante 12 horas aproximadamente hasta alcanzar el tamaño deseado. Esto era

87 aplicable a todos los sistemas isoenzimáticos excepto para GOT, que se introducían en metanol al 25% durante una hora en frío, pues de seguir la otra metodología se corría el riesgo de que se borrasen las bandas obtenidas. Una vez fijadas las bandas se procedía al secado de los geles al aire entre láminas de papel de celofán sobre placas de vidrio.

3.3.2.2.- Aminoácidos

Sobre 10 cepas de cada clon estudiado, se tomaron 100 bayas al azar distribuidas por todo el racimo. Estos frutos se estrujaron manualmente. El mosto obtenido se homogeneizó, y se tomó una parte alícuota que se filtró, centrifugó y congeló hasta el momento en que se analizó su contenido amínico.

Los compuestos amínicos se analizaron por cromatografía líquida de alta eficacia (HPLC), empleando un equipo especialmente diseñado para tal fin: un autoanalizador de aminoácidos (Biohcrom 20 de Pharmacia).

El primer paso para proceder a dicho análisis fiíe realizar la desproteneización de las muestras, proceso que se realizó añadiendo ácido 5-sulfosalicílico (ASS). La metodología que se siguió fue la siguiente (Ohara y Ariyoshi, 1979):

- Se preparó una disolución al 10% de ácido 5-sulfosalicílico (ASS) en etanol - Se añadieron 250 |j.l de esta disolución en un tubo eppendorf de 5 mi, que se introdujo en una estufa hasta que se evaporó totalmente el etanol - La muestra a anahzar se enfiló hasta 4° C, y se añadió 1 mi de la misma en el tubo eppendorf anteriormente preparado, realizando una mezcla completa con el ácido 5- sulfosalicílico (ASS) Se mantuvo durante una hora esta mezcla a 4° C - Transcurrido ese tiempo se centrifiígó a alta velocidad (14.000 rpm) durante 5 minutos Se separó el sobrenadante, y éste se filtró a través de un filtro de 0,22 ¡j,m.

Una vez obtenida la muestra desproteneizada y filtrada se procedió a su análisis. Las muestras se inyectaron en el autoanalizador de aminoácidos mediante unas cápsulas especiales. La carga de las mismas se realizó añadiendo en primer lugar tampón de carga (citrato de litio 0,2 M pH 2,2), a continuación 80 [ú de la muestra y por último, se completó con 10 |LI1 de tampón de carga.

La separación de los aminoácidos tuvo lugar en ima columna de intercambio iónico, constituida por resinas de intercambio catiónico, en las que los grupos aniónicos fijos son los grupos de ácido sulfónico (—SO3"), que previamente se "cargaron" con el ion Na"^. En esta columna se inyectó una disolución acida (pH 3,0) constituida por la mezcla de aminoácidos que se querían analizar. Esta disolución de aminoácidos al atravesar la columna desplazó a los iones Na"^ quedando los aminoácidos unidos a la matriz, tal y como se indica en la reacción siguiente:

Matriz—SOsNa + H3N—CH—COOH -^ Matriz—SO3H3N—CH—COOH + Na"" ! i R R

La elución se realizó mediante un gradiente de pH entre 2,8 y 3,55. Los diferentes eluyentes empleados fueron:

- Tampón 1: Citrato de litio 0,2 M. pH: 2,8 - Tampón 2: Citrato de litio 0,3 M. pH: 3,0 - Tampón 3: Citrato de litio 0,5 M. pH: 3,15 - Tampón 4: Citrato' de litio 0,9 M. pH: 3,5 - Tampón 5: Citrato de litio 1,65 M. pH: 3,55

La detección se realizó post-columna, empleando para ello ninhidrina. Esta se caracteriza por formar con los grupos aminos derivados coloreados que se detectan por espectrofotometría a 570 nm, excepto para la prolina que se detecta a 440 nm. La reacción de la ninhidrina con los aminoácidos aparece reflejada en la siguiente figura.

89 0-1 0 0

+ RCHO + CO,

o O- O Ninhidrina Aminoácido Pigmento púrpura

Figura n° 5. Reacción de la ninhidrina con los aminoácidos.

La cuantificación se realizó por comparación con un patrón extemo. Para ello se inyectó una solución que contenia todos los aminoácidos a determinar con una concentración de 0,5 nmoles/|J.l.

Los aminoácidos detectados y cuantificados han sido los siguientes: ácido aspártico (Asp), treonina (Thr), serina (Ser), asparagina (Asn), ácido glutámico (Glu), prolina (Pro), glicina (Gly), alanina (Ala), citrulina (Cit), valina (Val), metionina (Met), isoleucina (He), leucina (Leu), tirosina (Tyr), fenilalanina (Phe), ácido y-aminobutírico (Gaba), omitina (Om), Usina (Lys), histidina (His) y arginina (Arg). En algunas determinaciones analíticas ha sido imposible separar los aminoácidos alanina y citrulina teniéndose que expresar el contenido de los mismos como la suma de ambos.

El análisis del perfil amínico de los mostos se realizó durante dos años (1996 y 1997). En 1996 se tomó una única muestra en el momento de su madurez, mientras que en 1997 se decidió realizar un seguimiento de la evolución de la composición amínica en el mosto a lo largo del período de desarrollo del fhito, escogiendo para ello tres momentos durante el mismo:"al inicio (estado I), en una fase intermedia (estado II) y en la madurez (estado III). Estos estados, I, II y III, se han establecido alrededor de los grados Brix siguientes:

- Estado I: 14-16 "Brix - Estado II: 17-19 "^Brix - Estado III: a partir de 21,4 "Brix

En el anejo 2 aparece una tabla que muestra la correspondencia entre grados

90 Brix, grados Baumé y grado alcohólico probable.

Siguiendo con el calendario de la plantación de vid en la que se encontraban ubicados los clones estudiados se realizó una aplicación nitrogenada en 1997 de 28 kgN/ha en cobertera y 126 kgN/ha en fechas anteriores a la floración.

Con el objeto de poder realizar una identificación de los cultivares estudiados se han estudiado aspectos como: la composición amínica de los mostos, el cociente prolina: arginina (Huang y Ough, 1991), la concentración amínica mediante un método estadístico multivariante, y la evolución de la concentración de aminoácidos durante la maduración. Junto a estos aspectos también se ha considerado interesante analizar la incidencia que la fertilización nitrogenada realizada en el segundo año de estudio, ha podido tener sobre la composición amínica.

El método estadístico multivariante empleado en este estudio ha sido el análisis de componentes principales. Para realizar este análisis se han considerado a los aminoácidos como variables y a los clones como objetos.

El soporte informático utilizado ha sido el paquete estadístico SPSS. Este programa tiene como factor limitante que no deben superar en número las variables a los objetos. Inicialmente en este estudio se partía de 20 aminoácidos y 17 clones en 1996 y 18 en 1997, uno más en este último año por la inclusión en el mismo del clon 10AL3 (Morisca). Era por tanto preciso suprimir algún aminoácido. El criterio seguido para esta eliminación fue el siguiente. Ya que en algimos anáUsis se expresaban los contenidos de los aminoácidos alanina y citruHna como la suma de ambos, se decidió suprimirlos para evitar problemas en la interpretación de resultados. Por otra parte, además de este estudio estadístico se ha evaluado el valor del cociente pro lina: arginina para cada clon (Huang y Ough, 1991), de tal manera que ante la necesidad de reducir variables en el análisis de componentes principales, se consideró interesante no incluir estos aminoácidos al ya ser estudiado su efecto por otro método. Por tanto, en el anáhsis de componentes principales se han considerado todos los aminoácidos analizados, excepto la alanina, citrulina, prolina y arginina.

91 3.3.3.- Caracterización agronómica: fenología

Los estados fenológicos se han determinado según los criterios de Baggiolini (1952) y Baillod y Baggiolini (1993). Estos son (figuras n° 6-20):

- Estado A: yema de invierno. Estado de reposo, yema casi totalmente cubierta por dos escamas marrones - Estado B: yema de algodón. Yema húichada con las escamas separadas: protección algodonosa pardusca muy visible - Estado C: punta verde. La yema continúa hinchándose y alargándose hasta presentar la punta verde, que es el brote joven - Estado D: salida de hojas. Aparición de las hojas rudimentarias agrupadas en una roseta, cuya base aún está protegida por la borra que sale progresivamente de las escamas - Estado E: hojas extendidas. Primeras hojas completamente extendidas presentando los caracteres varietales. Sarmiento herbáceo visible - Estado F: racimos (inflorescencias) visibles. Aparecen racimos (inflorescencias) rudimentarias en el ápice del brote. De 4 a 6 hojas separadas Estado G: racimos (inflorescencias) separados. Los racimos (inflorescencias) se espacian y alargan sobre el brote. Órganos florales aún aglomerados - Estado H: botones florales separados. Aparición de la forma típica de la inflorescencia en la que los botones florales están aislados - Estado L floración. Corola (capuchón) empujada hacia arriba por los estambres. Cuando cae el capuchón, el ovario queda desnudo y los estambres se extienden como radios alrededor del mismo - Estado J: cuajado. El ovario empieza a engrosar tras la fecundación. Los estambres se marchitan pero permanecen a menudo fijados por su punto de unión - Estado K: grano tamaño guisante. Los granos alcanzan el tamaño de un guisante. Raquis aún visible. El racimo adopta la forma típica de la variedad y pende progresivamente - Estado L: racimo cerrado. Las bayas comienzan a tocarse y el racimo tiende a cerrarse progresivamente. Cierre rápido o lento o casi incompleto para algunos

92 Figura n° 6. Estado A: yema de invierno Figura n° 7. Estado B: yema de algodón m

11

íi

Figura n° 8. Estado C: punta verde Figura n° 9. Estado D: salida de hojas

Figura n° 10. Estado E: hojas extendidas

Figura n° 11. Estado F: racimos Figura n° 12. Estado G: racimos (inflorescencias) visibles (inflorescencias) separados

Figura n" 13, Estado H: botones Figura n° 14. Estado I: floración florales separados

Figura n*^ 15. Estado J: cuajado

Figura n° 16. Estado K: grano Figura n° 17. Estado L: racimo cerrado tamaño guisante

Figura n° 18. Estado M: envero Figura n° 19: Estado N: maduración

Figura n° 20. Plena caída de hoja

cultivares - Estado M: envero. Las bayas comienzan a hacerse traslúcidas en las variedades blancas o a cambiar de color en las tintas. Primera etapa de la maduración. El racimo se hace más compacto. El fin del envero se produce cuando todas las bayas están coloreadas o traslúcidas - Estado N: maduración. Las bayas han alcanzado su máximo desarrollo. El aumento de azúcares y la disminución de la acidez se estabiliza, desembocando en la vendimia. En este trabajo se ha fijado este punto cuando los finitos alcanzaban un contenido en azúcares de 12-13 °Baumé (21,4-23,1 °Brix) - Estado P: caída de la hoja. La hoja pierde el color verde adquiriendo un color que varía con la variedad, comenzando a caerse progresivamente desde la base del sarmiento hasta el extremo del mismo

El estudio fenológico se ha realizado durante los años 1996, 1997, 1998 y 1999. Sin embargo, hay que señalar que el ciclo vegetativo completo sólo se ha observado en los tres primeros años, ya que en 1999 en el mes de mayo se dio por finalizada la fase experimental de este trabajo.

El seguimiento fenológico se ha iniciado, durante todo el periodo de estudio, a partir del día 1 de marzo, realizándose observaciones a partir de dicha fecha cada dos días sobre las 10 cepas de cada clon estudiado. Con estos datos se ha establecido la fecha de cada estado fenológico para cada clon y la duración de cada uno de ellos.

En las cepas observadas se anotaba la fecha de entrada en un nuevo estado fenológico cuando al menos el 50% de las yemas o brotes o racimos manifestaban esta nueva fase. Glenn y Rogers (1964) proponen considerar plena floración cuando se han abierto el 50% de las flores. OIV (1984) establece la'fecha de la brotación (código OIV n° 301) cuando el 50% de las yemas se encuentran con borra (estado B de Baggiolini), y la fecha de la floración (código OIV n° 302) cuando el 50%i de las flores están abiertas. Una excepción a este criterio es el establecido en el estado P (caída de la hoja), que no se consideraba que una cepa alcanzaba el mismo hasta que no se producía la caída de las hojas en un 80% (Muñoz, 1995).

99 La fecha de inicio de un estado fenológico en un clon se ha establecido asignando al estado observado en cada cepa un valor numérico (A= 1, B= 2, C= 3,...), y procediéndose al cálculo de la media de los valores obtenidos sobre las 10 cepas estudiadas. Cuando dicho promedio indicaba que la mitad más una de las cepas habían alcanzado el siguiente estado fenológico se tomaba ese momento como el inicio de dicho estado.

También se ha considerado el período de tiempo transcurrido entre la floración y el envero, ya que investigaciones realizadas por Caló et al. (1984) y Caló et al. (1998) concluyeron que el período floración-envero está fundamentahnente determinado por las características genéticas de la variedad, teniendo popa influencia sobre él las condiciones ambientales.

Las observaciones fenológicas en las plantaciones donde están situados los clones 7CN1 (Malfar) y 10AL3 (Morisca) no sólo se reaUzaron sobre los mismos, sino que también se siguieron los estados fenológicos sobre variedades que están cultivadas en estas plantaciones y en el campo de ensayo de selección clonal, donde se encuentran situados el resto de los clones estudiados. De esta manera, estas variedades comunes se tomaron como referencia para comparar los estados fenológicos de ambos lugares.

Las prácticas culturales realizadas en todas las plantaciones fueron las mismas a lo largo de los cuatro años de estudio, y son las propias de la zona.

Sobre las fechas de brotación, floración, envero, maduración, caída de la hoja y el período floración-envero de cada cepa observada se ha reahzado un análisis de varianza apücandd el test de Duncan al 5%, empleando el programa estadístico COHORT-2. Este anáhsis de varianza se ha reahzado considerando como factor la variedad o el clon, según el tipo de estudio efectuado. Las fechas se han expresado como el número de días acumulados desde el 1 de marzo, asignándole a dicha fecha el valor 0.

En el anejo 3 aparecen reflejados los datos meteorológicos suministrados por la

100 estación situada en la Finca "La Orden" del SEDT-Extremadura y la estación meteorológica de Almendralejo del Centro Meteorológico Territorial de Extremadura. Estos datos son: la temperatura media, media de máximas, media de mínimas, máxima absoluta, mínima absoluta, humedad relativa y precipitación.

101

4,1.- Caracterización morfológica

Se han realizado las descripciones morfológicas de las variedades estudiadas, siguiendo los códigos de la OIV, a lo largo de los años 1996 y 1997. Considerando de una forma global los resultados obtenidos durante estos dos años, se ha construido la descripción morfológica llamada "modelo" para cada clon estudiado.

Los dendrogramas correspondientes a las descripciones realizadas en los dos años de estudio y para la denominada "modelo", muestran una asociación de cultivares muy similar.

Comenzaremos estudiando primero el diagrama de agrupamientos obtenido en 1996 (figura n" 21). Los datos correspondientes a los caracteres descritos durante dicho año están en el cuadro n° 5.

En este dendrograma sobre un nivel de disimilitud de 1,00 se pueden establecer diferentes agrupamientos. En el primero de ellos destaca la asociación que existe entre los clones de Blanca Cayetana, Pardina, Borba y Cigüentes, obtenidos a partir del proceso de selección clonal realizado por el SIDT-Extremadxira, junto con COBA (Cigüente) procedente del Banco de Germoplasma de la Vid. Este grupo se desdobla, aproximadamente, en un nivel de.disimilitud de 0,94, quedando en la rama superior Blanca Cayetana y Pardina, y en la inferior Borba, Cigüentes y CGBA.

Los clones de Blanca Cayetana (2AL11, 2T01, 2T013) y Pardina (1S04), anteriormente mencionados, se presentan completamente separados de los de Jaén (JAGR, JAGU y JATO), Blanca Cayetana (BCBA), Cayetana Blanca (CBCC) y Pardina (PABA) descritos en el Banco de Germoplasma de la Vid. Los caracteres que más han influido en esta separación han sido: la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017), en los clones estudiados en la Finca "La Orden" (Badajoz) el tamaño asignado es muy pequeño, mientras que los descritos en el Banco de Germoplasma de la Vid (Madrid) varían en tomo a una longitud media. El tamaño de la hoja adulta (código OrV n° 065) también cambia según se consideren las plantas en ima ubicación u otra.

105 así las situadas en Badajoz presentan una hoja muy pequeña, variando en el Banco de Germoplasma de la Vid entre un tamaño medio y grande. Es interesante destacar que en la mayoría de los clones considerados en el Banco de Germoplasma de la Vid al describirse la forma de la base de los senos laterales superiores en la hoja adulta (código OrV n° 083) se les asigna la forma de V, siendo una U la única forma que presentan los descritos en Badajoz. Esta variación de expresión en el carácter apenas se refleja en la matriz de similitud, y por tanto en el dendrograma, por estar codificados con los valores 1 y 2; sin embargo, no deja de ser un dato destacable.

En el agrupamiento constituido por los clones anteriormente citados (JAGR, JAGU, PABA, BCBA, JATO y CBCC), además se encuentran AVCC (Alarije Verdosa) y MACC (Marfal). Sin embargo, se produce un desdoblamiento sobre un nivel de disimilitud de 0,94, quedando en una rama el primer grupo indicado y en la segunda AVCC y MACC.

En el grupo constituido por los clones de Borba y Cigüentes tomados de la selección clonal, y CGBA (Cigüente), éste último se separa úimediatamente del resto a un nivel de disimilitud de aproximadamente 0,9. Los factores que contribuyen a ello son de nuevo los mismos que los indicados anteriormente. La longitud de los zarcillos (código OrV n° 017) para CGBA es entre corta y media, mientras que en general para los otros clones es muy pequeña. El tamaño de la hoja adulta (código OIV n° 065) también contribuye a esta diferenciación, pues CGBA cuenta con una hoja descrita como clase 6, mientras para el resto su tamaño no llega a superar la clase 2 ó 3.

El resto de los clones descritos bajo las denominaciones de Borba y Cigüente se mantienen separados tanto del grupo anteriormente comentado como entre ellos. BOBA (Borba) y BOCC (Borba) se sitúan en ramas independientes y sin ningún tipo de relación con otro clon. Por otra parte, CIBA (Cigüente) aparece asociado con PEGR (Perruno común) y con tres de: los cuatro clones de Pardillo estudiados (PACU, PLMA yPLCR).

En la rama conformada por 3C01 (Eva), 4C01 (Chelva), BBHU (Beba), BECA

106 Cuadro n" 5. Datos ámpelográficos de 1996.

Sumidad Hoja joven Pámpano Hoja adulta 001 002 003 004 051' 05P 052 053 054 055 056 151 007 008 009 010 011 012 013 014 015 016 017 065 067 068 070 071 075 076 1S04 7 3 5 5 3 3 5 7 6 1 3 2 2 1 1 1 1 3 3 1 1 3 1 3 3 1 1 5 2 PABA 7 3 6 7 3 3 3 7 5 1 3 1 1 3 3 1 1 4 6 3 3 1 1 2 2 2AL11 7 3 3 5 3 3 4 7 7 1 3 1 1 2 2 1 1 1 1 3 3 1 1 3 2 2T01 7 3 3 5 3 1 3 7 7 1 3 2 2 1 1 1 1 3 3 1 1 1 1 3 3 1 1 5 2 2T013 7 3 3 5 3 3 3 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 1 3 3 1 1 3 2 BCBA 7 3 5 5 3 . 1 3 .5 5 , 1 , 3 1 1 2 2 1 1 4 5 3 3 1 1 3 2 CBCC 7 3 5 5 3 3 3 7 5 1 ' 3 2 1 1 1 1 3 3 1 1 4 6 3 3 1 1 5 2 JAGR 7 3 5 5 3 3 4 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 5 5 3 3 1 1 2 2 JATO 7 3 5 6 3 3 3 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 5 7 3 3 1 1 5 2 JAGU 7 3 5 5 3 3 3 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 2 6 3 3 1 1 2 2 6M015 7 3 5 5 3 3 4 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 2 3 3 1 1 3 2 6M023 7 3 5 5 3 3 4 7 5 1 3 1 1 3 3 1 1 3 1 3 3 1 1 3 2 6M026 7 3 4 5 3 3 3 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 2 3 3 1 1 3 2 6M033 7 3 . 5 .5 3, 3, 5 7 , 5 1 3 1 1 2 3 1 1 1 2 3 3 1 1 3 2 6M045 7 3 5 5 3 3 5 7 7 1 3 1 1 2 2 1 1 1 3 3 3 1 1 4 2 6M047 7 3 5 5 3 3 5 8 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 3 3 3 1 1 3 2 8CA2 7 3 5 5 3 3 5 7 7 1 3 1 1 2 2 1 1 1 3 3 3 1 1 3 2 8CA9 7 3 5 5 3 3 5 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 2 3 3 1 1 4 2 8CA15 7 3 5 5 •• 3 3 4 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 2 3 3 1 1 3 2 8CA19 7 3 5 7 3 3 5 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 8CA20 7 3 5 5 3 3 5 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 2 3 3 1 1 4 2 8CA26 7 3 5 5 3 3 3 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 2 3 3 1 1 3 2 8CA31 7 3 5 5 3 3 5 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 3 3 3 1 1 3 2 8CA33 7 3 5 5 3 3 7 8 6 1 3 1 1 2 2 1 1 1 3 3 3 1 1 3 2 8CA40 7 3 5 5 3 3 5 8 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 2 3 3 1 1 3 2 CGBA 7 3 6 5 3 3 6 7 5 r 3 1 1 2 2 1 1 4' 6 3 3 1 1 3 2 PEOR 7 3 3 5 1 1 1 7 3 1 3 2 2 2 2 1 1 2 2 3 1 1 4 3 3 1 1 3 2 CIBA 7 2 3 5 1 1 3 7 5 1 3 1 1 1 3 3 1 1 1 5 3 3 1 1 1 3 BOBA 7 3 5 3 3 3 3 7 5 1 3 2 2 1 1 1 1 1 1 5 1 2 2 3 3 1 1 2 2 BOCC 7 3 6 7 3 3 3 7 3 1 3 2 1 1 2 2 1 1 1 5 3 3 1 1 2 2 MTGR 7 2 3 3 1 2 3 3 3 1 3 2 2 1 1 1 1 1 1 1 1 7 3 3 3 1 1 2 2 PEMA 7 2 3 3 1 2 3 1 3 1 3 1 1 1 1 1 1 1 4 3 3 3 1 1 2 3 PLMA 7 3 3 7 1 2 1 7 5 1 3 2 2 2 2 1 1 5 5 1 1 3 4 3 4 1 1 2 3 PACU 7 3 3 5 1 2 1 7 5 1 3 2 2 1 2 1 1 3 3 1 1 3 4 3 4 1 1 2 3 PLCR 7 3 3 7 1 2 3 7 5 1 3 1 2 2 2 1 1 5 5 1 1 1 4 3 3 1 1 3 3 PDGU 7 3 3 7 1 1 1 9 7 1 3 1 1 1 1 1 1 5 5 1 1 1 7 3 3 1 1 1 3 Cuadro n" 5. (Continuación).

Hoja adulta Racimo Baya 077 078 079 080 081 082 083 083' 083^ 084 087 088 089 090 091 202 204 206 207 220 222 223 224 225 229 230 236 239 241 244 1S04 5 7 4 2 3 - 1 3 3 6 2 1111 5 5 3 3 7 3 2 2 1 113 1 PABA 4 5 3 2 3 3 2 5 11111 5 7 3 3 7 4 2 2 1 113 1 2AL11 5 7 5 2 3 - 1 3 1 5 2 1111 5 5 3 3 7 4 2 2 1 113 1 2T0I 5 7 5 2 3 - 1 3 1 5 2 1111 5 5 3 3 9 4 2 2 1 113 1 2T013 5 7 4 2 3 - 1 3 1 6 2 1111 5 5 3 3 7 4 2 2 1 113 1 BCBA 4 5 3 2 3 3 2 4 2 1111 3 5 3 3 7 - 3 2 2 1 113 1 CBCC 3 4 6 2 3 3 2 5 5 5 3 5 9 1 3 2 2 1 113 1 JAGR 5 4 4 2 3 3 1 5 5 7 1 3 7 2 3 2 2 1 113 1 JATO 4 , 6 6 2 3 3 2 5 5 3 1 3 9 2 4 2 • 2 1 113 1 JAGU 5 5 6 2 3 3 2 5 ------2 2 1 113 1 6M015 7 9 2 - 1 3 3 3 3 7 1 3 7 2 7 2 2 1 113 1 6M023 5 7 2, - 1 3 3 5 5 7 1 3 7 1 4 2 2 1 113 1 6M026 5 7 3 - 1 3 • 3 5 3 1111 5 7 1 3 5 2 4 2 2 1 1 3 1 6M033 5 7 2 - 1 3 3 5 2 1111 5 5 2 3 7 2 4 2 2 1 1 3 1 6M045 5 5 3 - 1 3. 1 5 2 1111 3 7 2 3 5 2 4 2 2 1 1 3 1 6M047 5 5 3 - 1 3 , 3 5 4 1111 5 7 2 3 5 2 4 2 2 1 1 3 1 8CA2 5 5 3 - 1 3 3 5 2 1111 3 7 1 3 5 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA9 5 5 3 - 1 3 3 4 11111 5 9 3 3 5 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA15 5 7 2 - 1 3 3 6 3 1111 5 7 1 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA19 5 5 3 - 1 3 3 5 3 1111 5 5 1 3 5 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA20 5 5 3 - 1 3 3 5 4 1111 5 5 2 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA26 5 7 3 - 1 3 3 5 2 1111 5 7 1 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA31 5 7 2 - 1 3 3 5 3 1111 5 7 3 3 5 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA33 5 7 3 - 1 3 3 5 3 1111 3 5 1 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA40 5 5 2 - 13 3 5 2 1111 5 5 3 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 CGBA 5 5 2 3 1 5 3 1111 3 6 3 5 7 2 7 2 2 1 1 3 1 PEOR 4 4 3 2 1 3 11111 ------2 2 1 1 3 1 CIBA 2 2 2 3- • 1 • 2 2 11 1 1 5 6 3 3 7 1 3 2 2 1 1 3 1 BOBA 4 5 3 2 2 1 3 3 1111 3 5 2 7 5 1 4 2 2 1 1 3 1 BOCC 4 4 2 3 2 2 11111 5 1 1 5 5 2 3 2 2 1 1 3 1 MTGR 7 5 5 2 3 1 1 5 1 1 11 7 6 3 3 9 2 2 2 2 1 1 3 1 PEMA 5 5 3 3 3 1 1 7 1111 5 9 3 5 9 2 2 2 2 1 1 3 1 PLMA 3 4 4 3 2 1 3 3 1111 3 9 3 5 5 1 7 2 2 1 1 3 1 PACU 4 4 3 3 2 1 3 3 1111 3 8 3 5 7 2 3 2 2 1 1 3 1 PLCR 5 5 3 3 1 1 3 11111 1 9 3 7 7 2 3 2 2 1 1 3 1 PDGU 3 4 3 1 3 1 5 11111 - - - - - 2 2 1 1 3 1 Cuadro n° 5. (Continuación).

Sumidad Hoja joven Pámpano Hoja adi Ita 001 002 003 004 051' 05P 052 053 054 055 056 151 007 008 009 010 01 1 012 013 014 015 016 017 065 067 068 070 071 075 076 3C01 7 3 3 5 3 1 3 7 3 1 3 2 2 1 1 1 1 1 5 8 3 3 1 1 5 3 4C01 7 3 3 5 3 1 3 7 3 1 3 2 2 1 1 1 1 1 5 6 4 3 1 1 5 2 BECA 7 3 5 5 3 1 3 7 3 1 3 2 2 1 1 1 1 1 3 5 4 3 1 1 6 3 MJGR 7 3 5 6 3 2 3 7 3 1 3 2 2 1 2 2 1 1 3 4 3 3 1 1 4 2 BBHU 7 3 5 5 3 1 3 7 3 1 3 2 2 2 1 1 1 3 3 1 1 3 8 3 3 1 1 7 2 BEHU 7 3 5 5 3 2. . .3 7 5 1 3 2 2 1 1 1 1 1 7 6 3 3 1 1 4 2 MAGR 7 3 5 5 3 1 2 7 3 1 3 2 2 1 1 1 1 1 4 4 3 3 1 1 4 3 PRGR 7 3 5 5 3 2 3 7 5 1 3 2 2 1 1 1 1 1 6 7 4 3 1 1 4 3 CHAV 7 3 5 5 3 1 3 7 5 1 3 1 2 2 1 1 5 5 4 3 1 1 5 3 3AL45 7 3 2 7 1 1 7 7 1 3 1 3 5 1 1 1 3 4 3 1 1 5 3 3GU19 7 3 2 7 1 1 7 7 1 3 1 3 3 1 1 1 3 4 3 1 1 3 3 3GU34 7 3 2 7 1 1 7 7 1 3 1 3 3 1 1 1 3 4 3 I 1 5 3 3ST17 7 3 2 7 1 1 7 5 1 3 1 1 3 1 1 2 2 4 3 1 1 3 3 4LS47 7 3 2 7 1 1 7 7 1 3 1 1 3 1 1 2 2 4 3 1 1 5 3 CHCR 7 • 3 3 7 1 1 7 7 1 3 1 3 3 1 1 4 9 4 3 1 1 5 3 EVBA 7 3 3 7 1 1 7 7 1 3 1 3 3 1 1 "1 6 4 3 1 1 4 3 MABA 7 3 3 5 1 1 7 7 1 3 1 3 3 1 1 2 8 3 3 1 1 5 3 5TA13 7 2 2 4 3 2 2 7 5 1 3 1 4 4 3 3 1 1 2 3 5TA19 7 2 2 3 3 2 3 7 3 1 3 1 3 3 3 3 1 1 1 3 5TA25 7 2 2 3 3 2 3 7 3 1 3 1 5 4 3 3 1 1 2 3 5TA27 7 2 2 2 3 2 3 7 3 1 3 2 1 2 4 3 3 1 1 1 3 5TA210 7 2 2 3 3 2 3 7 3 1 3 1 4 4 3 3 1 1 2 3 5TA31 7 2 2 5 3 2 3 7 4 1 3 1 3 3 3 3 1 1 1 3 5TA34 7 2 3 3 3 2 3 7 3 1 3 1 4 2 3 3 1 1 2 2 5TA35 7 2 2 3 3 2 3 r 3 1 3 1 6 5 3 3 1 1 1 3 7CN1 7 2 3 5 3 2 3 7 3 • 1 3 1 2 5 3 3 1 1 1 '3 ALCO 7 2 3 3 3 2 . 3 5 3 1 3 1 5 8 4 3 1 1 1 3 ALMA 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 1 5 4 4 3 1 1 1 3 ALTO 7 2 3 3 3 2 3 5 . - 3 1 3 1 4 6 3 3 1 1 1 3 ALBA 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 2 1 1 4 7 4 3 1 1 1 3 , ALCC 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 , 3 1 5 7 3 3 1 1 1 3 AJCC 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 1 5 9 4 3 1 1 1 3 AVCC 7 3 5 5 3 3 7 3 1 3 1 4 8 4 3 1 1 3 2 MACC 7 3 5 5 3 3 7 5 1 3 1 4 7 4 3 1 1 2 2 9CA13 7 5 1 7 3 1 3 3 3 3 3 1 3 3 3 1 1 3 3 9CA22 7 5 1 7 3 1 3 3 3' 3 3 1 3 3 3 1 1 3 3 9CA25 7 5 1 7 5 1 3 3 3 3 3 1 1 2 1 2 3 3 3 1 1 3 3 9CA36 7 5 1 7 5 1 3 3 3 3 3 1 3 3 3 1 1 3 3 9CA37 7 5 1 7 5 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 3 3 1 1 3 3 9CA39 7 5 1 7 5 1 3 3 3 3 3 1 2 3 3 2 1 3 3 Cuadro n" 5. (Continuación).

Hoja adulta Racimo Baya 077 078 079 080 081 082 083 083" 083^ 084 087 088 089 090 091 202 204 206 207 220 222 223 224 225 229 230 236 239 241 244 3C01 5 5 7 - 1 2 2 5 3 1111 5 3 3 3 7 2 4 2 2 1 1 3 1 4C01 5 5 8 - 1 2 2 5 3 1111 5 3 3 3 9 2 4 2 2 1 113 1 BECA 4 3 7 3 1 5 5 6 6 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 MJGR 5 6 4 3 1 6 3 . 3 5 3 9 2 4 2 2 1 113 1 BBHU 6 5 6 1 3 1 6 7 5 5 3 7 2 4 2 2 1 1 3 1 BEHU 3 3 6 2 3 1 5 5 5 5 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 MAGR 5 3 4 1 1 3 1 4 5 2 5 3 9 2 4 2 1 2 1 113 1 PRGR 4 3 5 2 1 3 1 4 5 5 3 5 9 2 7 2 2 1 113 1 CHAV 3 3 7 2 1 3 1 5 7 6 3 3 9 2 7 2 1 2 1 113 1 3AL45 3 5 3 2 1 1 3 1 4 5 5 5 3 9 1 4 2 2 1 113 1 3GU19 5 5 3 2 1 1 3 3 4 5 5 3 3 9 1 4 2 2 1 113 1 3GU34 5 5 2 2 - 1 3 1 4 5 5 3 3 9 1 4 2 2 1 1 3 1 3ST17 5 7 3 2 - 1 3 3 3 5 5 3 3 , 7 2 4 2 2 1 1 3 1 4LS47 5 5 3 2 - 1 3 3 3 5 5 4 5 7 2 4 2 2 1 1 3 1 CHCR 5 5 3 2 • 3 2 - 3 . 7 5 3 5 9 1 4 2 2 1 1 3 1 EVBA 3 3 3 2 3 1 5 5 5 3 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 MABA 5 4 4 2 3 1 4 3 5 3 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 5TA13 5 7 2 - 1 3 3 3 2 1111 5 5 3 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA19 5 5 3 - 1 3 3 2 2 1111 5 5 2 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA25 5 5 2 - 1 3 3 2 2 1111 5 5 7 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA27 5 5 2 - 1 3 3 2 2 1111 5 5 6 3 3 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA210 5 5 2 - 1 3 3 2 2 1111 5 5 7 3 5 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA31 5 5 3 -, 1 3 3 2 2 1111 5 5 7 3 5 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA34 5 7 2 i 1 3 1 3 2 1111 3 3 3 3 9 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA35 5 5 3 i 1 3 3 2 2 1111 5 3 2 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 7CN1 7 7 3 - 1 3 3 3 2 1111 5 7 2 3 5 2 3 2 2 1 1 3 1 ALCO 6 7 2 3 1 2 2 1111 5 7 9 3 7 1 3 2 2 1 1 3 1 ALMA 3 3 2 1 3 1 2 11111 5 6 3 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 ALTO 5 5 2 3 1 3 3,1 1 1 1 5 5 5 3 9 1 3 2 2 1 1 3 1 ALBA 5 6 2 4 1 2 5 5 3 3 9 2 3 2 2 1 1 3 1 ALCC 4 3 2 3 1 2 5 5 3 3 7 1 3 2 2 1 1 3 1 AJCC 6 6 2 4 1 2 7 5 1 3 5 2 3 2 2 1 1 3 1 AVCC 6 4 3 3 1 2 3 5 1 5 9 2 3 2 2 1 1 3 1 MACC 3 4 4 . 3 , 1 2 3 5 1 , 3 9 2 3 2 2 1 1 3 1 OCA 13 3 5 5 2 - 2 1 1 2 2 1111 3 3 2 3 7 1 4 2 2 1 1 3 1 9CA22 3 5 6 2 - 2 1 1 2 5 3 3 3 7 2 4 2 2 1 1 3 1 9CA25 3 5 5 2 - 2 1 1 2 5 3 3 3 7 1 4 2 2 1 1 3 1 9CA36 3 5 6 2 - 2 1 1 2 5 3 3 3 7 1 4 2 2 1 1 3 1 9CA37 5 5 5 2 - 2 1 1 2 5 3 3 3 7 2 4 2 2 1 1 3 1 9CA39 5 5 7 2 - 2 1 1 3 3 1111 5 3 2 3 7 2 4 2 1 2 1 1 3 1 Figura ns 21. Dendrograma correspondiente a las descripciones morfológicas realizadas en 1996

(Beba), MJGR (Mantúo Jerezano), MAGR (Mantúo), BEHU (Beba), PRGR (Perruno o Mantúo Basto) y CHAV (Chelva), se ve una mayor similitud entre los clones de BEHU, PRGR y CHAV, y entre 3C01 y 4C01. Caracteres como la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017), o el tamaño de la hoja adulta (código OIV n° 065) sufren grandes fluctuaciones en las accesiones que forman este grupo contribuyendo a la diferenciación del mismo. En el caso de BEHU, PRGR y CHAV además, el distinto nivel de expresión que presentan en la densidad de pelos tumbados sobre los nervios en la hoja joven (código OIV n° 055) respecto al resto de clones, conlleva a su diferenciación en otra rama. Mientras que para 3C01 y 4C01 es la intensidad de la pigmentación antociánica en la extremidad (código OIV n° 003) la que marca esa diferencia.

Otro agrupamiento observado en este dendrograma es el constituido por todas las accesiones de Alarije descritas, excepto Alarije verdosa (AVCC), y Malfar (7CN1). Los clones ALCO y AJCC se separan del grupo a un alto nivel de disimilitud, que aproximadamente es de 1,09 y 1,02, respectivamente. En este hecho de nuevo influye el tamaño de la hoja adulta (código OIV n° 065), presentando ambos clones hojas muy grandes, mientras que los demás tienen en su mayoría una hoja de tamaño pequeño o medio. Por otra parte, caracteres como la longitud del pedúnculo del racimo (código OrV n° 206), y el tamaño de la baya (código OIV n° 220) presentan grandes oscilaciones dentro de los clones descritos, contribuyendo a obtener un agrupamiento menos compacto.

En el grupo constituido por los clones de Montúa (3AL45, 3GU19, 3GU34, 3ST17), de Mantúo (MABA), de Eva (4LS47, EVBA) y Chelva (CHCR), aparece, el clon de Pardilla (PDGU). Este posee unos caracteres morfológicos muy distintos del resto de Pardillos, que lo llevan a situarse en el grupo anteriormente citado con el que tiene una mayor similitud. También es interesante destacar como en esta agrupación, se observa una notable separación entre los individuos cultivados en Badajoz y los situados en Madrid. De nuevo, el tamaño de la hoja adulta (código OIV n° 065) marca una fuerte diferencia entre ellos, los ubicados en el Banco de Gennoplasma de la Vid tienen un tamaño mucho mayor que los descritos en Badajoz.

113 Los clones de Perruno tomados del proceso de selección clonal realizado por el SIDT-Extremadura aparecen asociados en un grupo bastante compacto, y sin ninguna relación con las otras accesiones de Perruno descritas (PEGR y PEMA). La primera de ellas, como ya se ha comentado anteriormente, aparece junto a los clones de Cigüente (CIBA) y Pardillo (PACU, PLMA y PLCR), mientras que PEMA muestra similitud morfológica con MTGR (Mantúo).

En el año 1997. también se ha realizado una descripción morfológica, mostrándose en el cuadro n° 6 los caracteres y los niveles de expresión correspondientes a cada una de las accesiones descritas. El diagrama de agrupamientos obtenido a partir de estos datos aparece en la figura n° 22. En él sobre un nivel de disimilitad de 1,02 se pueden establecer 11 ramificaciones.

La primera de ellas está constituida por todos los clones correspondientes a Pardina, Blanca Cayetana, Cayetana Blanca, Jaén y Morisca, excepto BCBA (Blanca Cayetana), que se agrupa con BOCC (Borba), separándose de ella sobre un nivel de disimilitud de 1,02. Anahzando los caracteres morfológicos de BCBA, se encuentra que la ubicación en una rama totalmente independiente del resto del grupo es fundamentabnente debida a: la densidad de pelos tumbados entre los nervios en la hoja joven (código OIV n° 053), BCBA presenta xma densidad entre baja y media, siendo alta para la mayoría de los otros clones. La longitud de los zarcillos (código OIV n° 017) también es un carácter determinante, aunque ñuctúa mucho entre los individuos descritos, al igual que en el año 1996; el valor medio de la longitud de los zarcillos varía entre corto y medio, sin embargo, hay clones que presentan valores muy diferentes, teniendo algunos los zarcillos largos, mientras que para otros son muy cortos; estos datos contribuyen a un mayor distanciamiento entre los clones que conforman la rama, y a separar a BCBA de esta agrupación. La longitud de los dientes en relación a su anchura en la base en la hoja adulta (código OIV n° 078) en este clon también marca una gran diferencia con el resto ya que para él esta relación es baja, teniendo un valor alto para el resto de las accesiones.

En este grupo también se observa una clara separación entre los clones

114 Cuadro n° 6. Datos ampelográficos de 1997.

Sumidad Hoja joven Pámpano Hoja adi Ita 001 002 003 004 051' 051^ 052 053 054 055 056 151 007 008 009 010 011 012 013 014 015 016 017 065 067 068 070 071 075 076 1S04 7 3 5 5 3 3 5 7 • 6 1 3 2 2 1 1 1 1 3 3 1 1 7 4 3 3 1 1 3 2 PABA 7 3 7 5 3 3 5 7 7 1 3 2 1 1 3 3 1 1 4 3 3 3 1 1 3 2 2AL11 7 3 3 4 3 3 3 8- 7 1 3 1 1 1 3 3 1 1 5 4 3 3 1 1 3 2 2T01 7 3 3 • 5 •3 1 3 8 • 5 1 3 2 1 1 .2 2 1 1 3 2 3 3 1 1 3 2 2T013 7 3 4 5 3 3 3 7 4 1 3 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 BCBA 7 3 5 3 . 3 1 3 4 5 1 3 1 1 1 1 1 1 1 2 3 3 1 1 3 2 CBCC 7 3 7 3 : 3 3 5 7 5 1 3 1 1 1 1 1 1 1 3 3 3 1 1 6 2 JAGR 7 3 5 3 3 3 5 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 7 4 3 3 1 1 4 2 JATO 7 3 5 4 3 3 5 7 5 1 3 1 1 1 1 1 1 4 3 3 3 1 1 3 2 JAGU 7 3 5 4 3 3 5 7 7 1 3 1 1 1 1 1 1 2 3 3 3 1 1 3 2 10AL3 7 3 3 4 3 1 5 6 5 1 3 1 1 1 1 1 1 5 4 3 3 1 1 2 2 MOBA 7 3 5 5 3 1 7 1 3 1 1 1 1 4 3 3 3 1 1 4 2 JANE 7 3 5 3 1 2 1 7 4 1 3 1 1 1 2 1 1 1 4 3 3 3 2 3 3 JENE 7 3 5 3 3 2 3 7 3 1 3 1 1 2 1 1 1 3 3 3 3 3 2 4 2 JNNE 7 3 5 4 3 2 5 7 7 1 3 1 1 2 1 1 1 3 2 3 3 1 1 3 2 JATN 7 3 5 3 1 2' • • 3 5 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 2 3 3 1 1 2 2 6M015 7 3 5 2 3 3 5 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 5 2 3 3 1 1 3 2 6M023 7 3 4 5 3 3 5 7 5 1 3 1 1 3 3 1 1 1 6 3 3 1 1 4 2 6M026 7 3 5 5 3 3 4 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 4 3 3 3 1 1 3 2 6M033 7 3 6 5 3 3 7 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 5 4 3 4 1 1 5 2 6M045 7 3 5 5 3 3 5 7 7 1 3 1 1 3 3 1 1 2 3 3 3 1 1 4 2 6M047 7 3 5 6 3 3 5 8 5 1 3 1 1 2 2 1 1 2 4 3 3 1 1 3 2 8CA2 7 3 5 6 3 3 7 7 7 1 3 1 1 3 3 1 1 5 3 3 3 1 1 3 2 8CA9 7 3 6 5 3 3 7 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 4 3 3 1 1 3 2 8CA15 7 • 3 4 4 3 3 5 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 4 2 3 3 1 1 4 2 8CA19 7 3 6 7 3 3 7 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 5 3 3 3 1 1 2 2 8CA20 7 3 4 3 3 3 7 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 8CA26 7 3 5 3 3 3 5 7 5 1 3 1 1 3 2 1 1 6 4 3 3 1 1 4 2 8CA31 7 3 5 3 3 3 7 7 5 1 3 11 2 3 1 1 4 4 3 3 1 1 3 2 8CA33 7 3 5 3 3 3 5 8 6 1 3 1 1 3 3 1 1 3 4 3 3 1 1 3 2 8CA40 7 3 6 5 3 3 7 8 5 1 3 1 1 3 3 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 CGBA 7 3 7 3 3 3 7 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 3 3 3 1 1 3 2 PEOR 7 3 3 3 1 2 3 7 3 1 3 2 2 3 3 1 1 1 1 2 1 3 4 3 3 2 1 3 2 CIBA 7 2 3 5 1 1 3 7 6 1 3 1 1 1 1 1 1 3 3 1 1 1 5 3 3 1 1 2 3 BOBA 7 3 5 3 3 1 3 5 4 1 3 2 2 1 1 1 1 1 1 1 1 1 3 3 3 1 1 3 ,2 BOCC 7 3 6 7 3 2 2 5 3 • 1 3 2 2 1 1 1 1 3 3 1 1 1 2 3 3 1 1 2 2 MTGR 7 2 5 3 1 2 3 3 4 1 3 2 2 1 1 1 1 1 1 1 1 3 2 3 3 1 1 3 2 PEMA 7 2 5 3 1 2 3 3 3 1 3 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 3 2 3 3 1 1 3 3 Cuadro n" 6. (Continuación).

Hoja adulta Racimo Baya 077 078 079 080 081 082 083 083' 083^ 084 087 088 089 090 091 202 204 206 207 220 222 223 224 225 229 230 236 239 241 244 1S04 5 6 3 2 3 2 3 3 7 5 7 3 3 9 2 4 2 1 2 1 113 1 PABA 6 6 3 2 3 2 2 11 7 3 5 4 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 2AL11 5 5 5 2 3 2 3 3 6 5 ' 7 2 3 7 2 4 2 1 2 1 113 1 2T01 5 7 5 2 3 1 3 1 5 • 5 5 2 3 9 1 4 2 1 2 1 1 1 3 1 2T013 5 7 5 2 3 2 1 3 3 7 5 7 1 3 9 2 4 2 1 2 1 113 1 BCBA 3 3 3 2 3 2 1 1 1 5 2 1111 3 5 4 3 7 2 3 2 2 1 113 1 cace 5 5 4 2 3 3 3 3 7 5 5 1 3 9 2 3 2 1 2 1 113 1 JAGR 7 7 5 2 3 3 3 3 7 7 5 1 3 8 2 3 2 1 2 1 113 1 JATO 5 7 6 2 3 3 > 1 1 7 5 3 2 3 9 1 4 2 1 2 1 113 1 JAGU 3 3 5 2 3 3 1 1 1 7 5 5 3 3 9 2 4 2 1 2 1 113 1 10AL3 5 7 4 2 3 2 3 3 5 5 7 3 3 9 2 4 2 > 2 1 113 1 MODA 5 5 3 2 3 1 3 1 5 3 7 2 3 9 2 4 2 > 2 1 113 1 JANE 7 7 6 2 3 2 3 3 7 5 • 7 1 3 9 2 3 2 5 2 1 113 1 JENE 7 7 6 2 1 3 3 3 6 5 6 2 3 9 2 3 2 5 2 1 113 1 JNNE 7 7 6 2 3 3 3 3 6 5 6 1 3 7 2 2 2 5 2 1 113 1 JATN 5 7 6 2 3 3 1 5 5 6 1 3 7 1 2 2 5 2 1 1 3 1 6M015 7 7 2 3 3 3 4 3 1111 5 5 3 3 9 2 7 2 2 1 1 3 1 6M023 5 7 2 3 3 3 4 3 1111 5 S 1 3 7 2 4 2 2 1 1 3 1 6M026 5 7 3 3 3 3 4 3 1111 3 5 1 3 7 2 4 2 2 1 1 3 1 6M033 7 7 2 3 3 3 5 2 1111 3 5 1 3 7 2 4 2 2 1 1 3 1 6M045 5 7 3 2 3 3 5 11111 3 5 3 3 9 2 7 2 2 1 1 3 1 6M047 5 7 3 2 3 3 6 4 1111 3 5 2 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 8CA2 5 7 2 3 3 3 6 2 1111 3 5 1 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA9 5 7 2 2 ' 3 3 5' 6 • 1 1 1 1 3 7 1 3 9 2 7 2 2 1 13 1 8CA15 5 7 2 3 3 3 7 2 1111 3 5 1 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA19 5 7 3 2 3 3 5 5 1111 3 7 1 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA20 5 7 3 3 3 3 5 3 1111 3 5 1 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA26 5 7 3 •2 3 3 5 4 1111 3 5 3 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA31 5 5 2 3 3 3 6 2 1111 3 5 4 3 9 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA33 5 7 3 1 3 3 6 3 1111 3 5 3 3 9 2 7 2 2 1 1 3 1 8CA40 5 5 2 3 3 3 5 4 1111 3 5 1 3 7 2 7 2 2 1 1 3 1 CGBA 7 6 3 2 3 3 7 5 7 1 3 8 1 7 2 2 1 1 3 1 PEOR 3 3 3 2 2 2 3 5 6 1 5 7 2 3 2 2 1 1 3 1 CIBA 3 3 3 3 3 3 3 3 5 1 3 5 1 3 2 2 1 1 3 1 BOBA 7 6 3 2 1 3 1 3 1 6 1 5 5 2 4 2 2 1 1 3 1 BOCC 3 3 2 2 ;! 1 1 3 3 3 1 4 6 2 3 2 2 1 1 3 1 MTGR 5 3 5 2 3 3 3 1 6 1111 5 5 1 3 9 •2 2 2 2 1 1 3 1 PEMA 5 3 3 ! 3 3 3 1 1 7 1111 5 7 1 3 7 2 2 2 1 2 1 1 3 1 Cuadro n" 6. (Continuación).

Sumidad Hoja joven Pámpano Hoja adulta 001 002 003 004 051' 05P 052 053 054 055 056 151 007 008 009 010 011 012 013 014 015 016 017 065 067 068 070 071 075 076 3C01 7 3 3 3 3 1 2 5 3 1 3 2 1 1 1 1 1 2 2 1 1 5 6 3 3 1 1 5 3 4C01 7 ' 3 3 3 3 1 2 5 3 1 3 1 1 1 1 1 1 2 2 1 1 5 6 4 3 1 1 4 2 BECA 7 3 6 3 3 2 5 5 4 1 3 2 2 1 1 1 1 1 1 1 1 1 5 4 3 1 1 3 3 MJGR 7 3 5 4 3 2 4 7 3 1 3 2 2 1 1 . 1 1 2 1 1 1 3 4 3 3 1 1 3 2 BBHU 7 3 6 3 3 1 5 5 3 1 3 2 2 1 1 1 1 1 1 1 1 3 5 3 3 1 1 4 2 BEHU 7 3 5 3 3 1 5 5 5 1 3 2 2 1 1 11 1 2 1 ! 4 5 3 3 1 1 3 2 MAGR 7 3 5 4 3 2 5 5 5 1 3 2 2 1 1 1 1 2 2 1 1 3 4 3 3 1 1 4 3 PRGR 7 3 5 3 3 2 5 5 3 1 3 2 2 1 1 1 1 2 2 1 1 2 7 4 3 1 1 5 3 CHAV 7 3 6 4 3 2 5 5 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 4 4 3 1 1 5 3 3AL45 7 3 2 7 1 5 5 1 3 1 1 2 3 1 1 3 4 4 3 1 1 3 3 3GU19 7 3 2 7 1 1, 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 7 4 3 1 1 4 3 3GU34 7 3 2 7 1 7 7 1 3 1 1 3 3 1 1 5 3 4 3 1 1 3 ,3 3ST17 7 3 2 6 1 5 5 • 1 3 1 1 2 3 1 1 1 3 4 3 1 1 3 3 4LS47 7 3 2 7 1 7 7 1 3 1 1 2 2 1 1 1 4 4 3 1 1 4 3 CHCR 7 3 3 5 3 2 3 7 7 1 3 1 1 3 3 1 1 5 5 4 3 1 1 4 3 EVBA 7 3 3 5 3 3 7 5 1 3 1 1 3 3 1 1 2 4 4 3 1 1 5 3 MABA 7 3 3 4 1 1 5 5 1 3 1 1 3 3 1 1 1 5 3 3 1 1 5 3 5TA13 7 2 2 3 3 2 2 6 3 1 3 1 1 2 1 3 6 3 3 1 3 5TA19 7 2 2 3 3 2 2 6 2 1 3 1 5 6 3 3 1 3 5TA25 7 2 3 5 3 2 2 7 3 1 3 1 4 8 3 3 1 3 5TA27 7 2 2 3 3 2 2 5 3 1 3 1 5 5 3 3 1 3 5TA210 7 1 1 3 3 2 2 4 3 1 3 1 5 5 3 3 1 3 5TA31 7 2 2 3 3 2 2 6 3 1 3 1 3 7 3 3 1 3 5TA34 7 2 3 3 3 1 1 5 3 1 3 1 3 4 3 3 1 2 5TA35 7 2 2 3 3 2 2 6 3 1 3 1 5 5 3 3 1 3 7CN1 7 2 3 5 3 2 2 5 3 1 3 1 1 3 3 3 1 3 ALCO 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 1 1 2 2 1 1 2 4 4 3 1 3 ALMA 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 1 2 4 4 3 1 3 ALTO 7 3 5 3 3 2 3 5 3 1 3 1 1 6 3 3 1 3 ALBA 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 1 3 6 4 3 1 3 ALCC 7 2 2 3 3 2 3 5 3 1 3 2 1 1 1 2 5 3 3 1 1 2 3 AJCC 7 2 5 3 3 2 3 5 3 1 3 1 3 5 4 3 1 1 2 3 AVCC 7 3 5 4 3 4 7 4 1 ' 3 1 1 2 1 3 4 4 3 1 1 2 2 MACC 7 3 4 5 3 3 7 5 1 3 1 1 1 1 3 4 4 3 1 1 2 2 9CA13 7 5 1 6 3 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 1 1 7 3 3 3 1 1 2 3 9CA22 7 5 1 4 3 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 1 1 1 3 3 3 2 1 3 3 9CA25 7 5 1 7 5 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 2 1 9 5 3 3 1 1 2 3 9CA36 7 3 1 6 3 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 1 1 5 3 3 3 1 1 2 3 9CA37 7 5 1 7 3 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 2 1 9 4 3 3 1 1 2 3 9CA39 7 3 1 7 5 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 1 1 7 4 3 3 3 1 2 3 Cuadro n" 6. (Continuación).

Hoja adulta Racimo Baya 077 078 079 080 081 082 083 083' 083^ 084 087 088 089 090 091 202 204 206 207 220 222 223 224 225 229 230 236 239 241 244 3C01 5 5 7 . 3 1 ,2 2 5 1,1 1 1 1 5 3 3 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 4C01 5 5 7 3 1 2 2 5 11 1 1 1 5 3 4 3 9 1 4 2 1 2 1 113 1 BECA 5 3 6 3 2 2 5 11111 3 5 5 5 9 1 4 2 2 1 1 3 1 MJGR 3 3 5 3 1 2 2 7 11111 5 . 5 2 3 9 2 4 2 1 2 1 113 1 BBHU 5 3 3 3 2 2 6 11111 5 5 4 3 9 1 4 2 2 1 1 3 1 BEHU 5 3 7 2 3 2 2 6 11111 5 7 1 5 9 2 4 2 2 1 1 3 1 MAGR 5 3 6 1 3 1 2 2 6 11111 7 5 3 3 8 1 4 2 1 2 1 1 3 1 PRGR 3 3 5 2 3 2 1 6 11111 5 6 3 3 9 2 7 2 2 1 1 3 1 CHAV 3 3 . .6 .2 ... 3, 2. 2 6 11111 5 5 4 3 9 2 7 2 1 2 1 1 3 1 3AL45 5 6 3 2 3 1 3 3 5 11111 5 5 5 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 3GU19 5 5 3 2 3 3 3 5 11111 5 7 4 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 3GU34 5 5 2 2 3 3 1 4 11111 5 5 4 3 9 2 4 2 2 1 1.3 1 3ST17 5 , 5 3 2 3 3 3 3 11111 3 5 1 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 4LS47 5 5 2 2 i 3 3 3 4 11111 3 5 2 5 9 1 4 2 2 1 1 3 1 CHCR 5 3 3 2 3 ;1 1 1 5 11111 5 5 3 3 7 1 4 2 2 1 113 1 EVBA 5 5 3 2 2 3 3 5 11111 5 5 2 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 MABA 3 3 3 2 3 3 3 5 11111 5 5 1 3 9 1 4 2 2 1 1 3 1 5TA13 5 7 2 3 3 3 3 11111 5 5 4 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA19 5 7 2 3 3 3 3 2 1111 5 7 7 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA25 5 7 2 , 3 , 3 3 3 "1 1 1 1 1 5 5 9 3 7 1 3 2 2 1 1 3 1 5TA27 5 5 2 3 3 3 3 2 1111 5 5 6 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA210 5 6 2 2 3 3 3 11111 5 5 5 3 9 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA31 5 5 2 3 3 3 3 3 1111 7 7 8 3 7 1 3 2 2 1 1 3 1 5TA34 5 7 2 3 3 1 3 11111 5 5 4 3 9 2 3 2 2 1 1 3 1 5TA35 5 5 2 3 3 3 3 2 1111 5 7 7 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 7CN1 5 5 2 3 3 3 3 11111 5 7 4 3 7 1 3 2 2 1 1 3 1 ALGO 7 . 7 2 3 3 3 2 11111 7 5 2 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 ALMA 5 3 2 3 3 3 2 11111 5 5 2 3 8 1 3 2 2 1 1 3 1 ALTO 7 7 2 4 3 3 2 11111 5 5 2 5 9 1 3 2 2 1 1 3 1 ALBA 7 7 2 3 3 . 3 2 3 1111 5 5 1 5 9 1 3 2 2 1 1 3 1 ALCC 3 3 2 3 3 3 2 11111 5 5 3 3 9 2 3 2 2 1 1 3 1 AJCC 7 7 2 3 3 3 2 11111 5 5 2 3 7 2 3 2 2 1 1 3 1 AVCC 5 5 3 3 3 1 3 11111 5 5 1 5 8 2 3 2 2 1 1 3 1 MACC 3 3 4 3 3 1 3 11111 5 5 2 5 9 2 3 2 2 1 1 3 1 9CA13 4 5 6 2 1 1 3 11111 5 5 2 3 7 2 4 2 2 1 1 3 1 9CA22 4 5 6 2 1 1 3 11111 5 5 2 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 9CA25 5 7 6 2 1 1 3 11111 5 3 1 3 9 1 4 2 2 1 1 3 1 9CA36 3 5 7 2 1 1 3 11111 5 3 2 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 9CA37 5 5 6 2 1 1 3 11111 5 5 3 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 9CA39 5 5 5 2 1 1 3 11111 3 5 2 3 9 2 4 2 2 1 1 3 1 1.50 1.20 0.9 0.60 0,30

1S(M

2AL1I

2T01 mn 10A13 H. MODA JM3!

JATO

JAGU

CBCC

PABA

5MD15. iím 6MM5,

8CA33

8CA3t

8CA2

3CM5

eCA9

BCAI9

6M023

6H026

6M01]

6M033

CGCA

3GÜI1

30131

3STI7

tS-l?

MABA

EVBA

CHCR

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CIBA

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3C0I

BECA

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BEHU

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CHAV

JANE

JENE

JNNE

JAfN nac BCBA

BOBA

5TA13 srAí-i

5rAI9

5TA35

5TA27

5IA31

5TA25

JCNl

ALMA

AlCC

AI.CO

AJCC Airo ALBA

MÍGR

PEUA

gCA13

gCA37

9CA25

9CA39

9CA36

9CA22 Figura n^ 22. Dendrograma correspondiente a las descripciones morfológicas realizadas en 1997, procedentes del Banco de Germoplasma de la Vid y los cultivados en Badajoz. Los caracteres que marcan esta diferencia son: la mayor intensidad de la pigmentación antociánica de la extremidad (código OIV n° 003) y la de las seis hojas jóvenes (código OIV n° 052) en los clones del Banco de Germoplasma de la Vid; el mayor grado de compacidad de los racimos (código OIV rf 204) en las plantas obtenidas a partir del proceso de selección clonal; y por último, la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017), aunque este último carácter presenta grandes variaciones para todos los individuos descritos como ya se ha indicado anteriormente. En las descripciones realizadas en 1997, al igual que en las de 1996, destaca en la forma de la base de los senos laterales superiores (código OIV n° 083) que la mayoría de los clones estudiados en el Banco de Germoplasma de la Vid presentan unos senos laterales superiores en forma de V, mientras que los descritos en Badajoz son en forma de U.

El mismo proceso de separación entre individuos según su lugar de cultivo, tiene lugar en la rama formada por los clones de Borba y Cigüentes tomados del proceso de selección clonal realizado por el SIDT-Extremadura, y CGBA (Cigüentes). Esta última accesión, procedente del Banco de Germoplasma de la Vid de Madrid, se ve diferenciada del resto por caracteres como la fuerte intensidad de la pigmentación antociánica de la extremidad (código OIV n° 003), la mayor longitud de los dientes en la hoja adulta (código OIV n° 077), y una mayor compactación en el racimo (código OrV n° 204). Además, la gran fluctuación que se produce en la longitud de los zarcillos (código OrV n" 017) conlleva a una gran descompactación del grupo en general, que en particular afecta a CGBA.

El siguiente grupo es el constituido por Montúa (3AL45, 3GU19, 3GU34, 3ST17), Mantúo (MABA), Eva (4LS47, EVBA) y Chelva (CHCR). En él destaca CHCR al separarse del bloque sobre un nivel de disimilitud de 0,94. En este hecho influyen los siguientes caracteres: el color del haz de las tres primeras hojas terminales (código OIV n" 051-1) para este clon es rojizo, mientras que para los demás es verde; la longitud de los dientes en relación a su anchura en la base en la hoja adulta (código OrV n° 078) es menor para CHCR; así como el tamaño de la baya (código OIV n° 220). Por último, de nuevo hay que señalar que la longitud de los zarcillos (código OIV n°

121 017) es un carácter altamente variable para todos los individuos descritos y por tanto con un notable efecto en la descompactación del grupo.

La rama que está foimada por PEGR (Perruno común), MACC (Marfal), AVCC (Alarije Verdosa) y CIBA (Cigüente) consigue agrupar en un solo conjunto a dos grupos que aparecen separados en el dendrograma anteriormente analizado: PEGR (Perruno Común) y CIBA (Cigüente), MACC (Marfal) y AVCC (Alarije Verdosa).

En el grupo constituido por 3C01 (Chelva), 4C01 (Eva), BECA (Beba), MJGR (Mantúo Jerezano), MAGR (Mantúo), BBHU (Beba), BEHU (Beba), PRGR (Perruno o Mantúo Basto) y CHAV (Chelva), de nuevo se observa una mayor asociación entre los clones procedentes del Banco de Germoplasma de la Vid, y los situados en Badajoz. Los caracteres que más influyen en esta diferenciación son: la intensidad de la pigmentación antociánica de la extremidad (código OIV n° 003) y la de las seis hojas jóvenes (código OIV n° 052) siempre más intensa en los clones cultivados en el Banco de Germoplasma de la Vid; la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017) y la longitud de los dientes en relación a su anchura en la base (código OIV n° 078) mayor en 3C01 (Chelva) y 4C01 (Eva); y la compacidad del racimo (código OIV n° 204) menor en 3C01 (Chelva) y 4C01 (Eva).

A continuación se observa el grupo constituido por los clones de Jaén Negro (JANE, JENE y JNNE) y Jaén Tinto (JATN), claramente diferenciado de las accesiones de Morisca (MOBA y 10AL3). El color de la epidermis (código OIV n" 225) y la forma del seno peciolar de la hoja adulta (código OIV n° 079) son los caracteres morfológicos que fimdamentalmente determinan esta separación.

Los clones de Borba tomados del Banco de Germoplasma de la Vid aparecen asociados hasta un nivel de disimilitud de 1,1, momento en el cual se sitúan en ramas independientes; presentándose BOCC asociada con BCBA (Blanca Cayetana) como ya se ha indicado, y BOBA aislada del resto de accesiones descritas.

En el grupo conformado por los clones de Alarije se observa un desdoblamiento

122 entre los descritos en la Finca "La Orden" y los estudiados en el Banco de Germoplasma de la Vid. Caracteres como la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017), o la longitud del pedúnculo del racimo (código OIV n° 206), siempre en menor proporción en los individuos ubicados en Madrid, son los que en mayor grado intervienen en esta separación.

El siguiente grupo es el constituido por MTGR (Mantúo) y PEMA (Perruno), asociación también observada en el dendrograma obtenido en 1996.

En el bloque constituido por las accesiones de Perruno elegidas en el proceso de selección clonal realizado por el SDDT-Extremadura, hay una de ellas que se diferencia de las demás, 9CA22. De nuevo, la longitud de los zarcillos (código OIV n" 017) es la que marca una mayor diferencia entre este clon y el resto, presentando 9CA22 xmos zarcillos muy cortos, y las demás accesiones fluctúan entre longitudes medias y muy largas. En menor medida la densidad de los pelos tumbados entre los nervios de la hoja joven (código OIV n° 053) también influye en la diferenciación del grupo, ya que el más homogéneo cuenta con una alta proporción de pelos tumbados, mientras que 9CA22 tiene una densidad entre baja y media.

Una vez analizados los dendrogramas correspondientes a los años 1996 y 1997, analizaremos el diagrama de agrupamientos obtenido a partir de la descripción morfológica "modelo". En el cuadro n" 7 aparecen los datos de los caracteres descritos para cada uno de los clones considerados.

El dendrograma que aparece en la figura n° 23, es el resultado de aplicar el programa estadístico NTSYS sobre la matriz básica de los datos correspondientes a la descripción morfológica "modelo". Cada uno de los caracteres que constituyen esta matriz tiene asignado un nivel de expresión, que es la moda de los valores descritos durante los años 1996 y 1997.

Analizando el diagrama de agrupamientos de la figura n° 23, se pueden establecer 12 grupos, sobre un nivel de disimilitud de 0,85.

123 El primero de ellos está constituido por todos los clones que representan a las variedades Pardina, Blanca Cayetana, Jaén y Morisca (figura n° 24 y 25). La descripción morfológica correspondiente a Pardina, Blanca Cayetana y Jaén es la siguiente: sumidad con una distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada. La hoja joven en el haz tiene una tonalidad rojiza, presentando en algunas ocasiones las hojas 4^ 5^ y 6^ un color verde. Los pámpanos son de color verde tanto en los nudos como en los entrenudos, y en su cara dorsal y ventral, aunque en algunos casos se describen rayas rojas en los entrenudos; también aparecen pelos tumbados en una baja proporción en los nudos y entrenudos. La hoja adulta es de pequeño tamaño, con cinco lóbulos, la forma del limbo es pentagonal, los dientes son rectilíneos, el seno peciolar, en forma de V, es fimdamentahnente cerrado, presentando un diente en el borde, en el envés los pelos tumbados tienen una densidad entre media y alta, mientras que los erguidos se encuentran en una pequeña proporción. El racimo tiene un tamaño medio, con irna compacidad entre media y alta. La baya es de gran tamaño, con forma elíptico corta, aunque a veces puede ser esférica, no tiene ningún sabor particular, aunque si con pepitas, y la epidermis es de color verde-amarillento.

Morisca (figura n° 25), que en muchos aspectos morfológicos es similar al grupo descrito anteriormente, se caracteriza por tener una sumidad con una distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada. Las tres primeras hojas jóvenes en el haz presentan una tonalidad rojiza, que se pierde en la tres siguientes. El pámpano es de color verde, aunque en algunas ocasiones puede tener estrías vinosas en la cara dorsal de los entrenudos; no tiene ni pelos erguidos, ni pelos tumbados. La hoja adulta es de pequeño tamaño, tiene cinco lóbulos y forma pentagonal, los dientes son rectilíneos, el seno peciolar, en forma de V, varía entre abierto y poco abierto, y con presencia de un diente en el borde, en el envés los pelos tumbados se presentan con una proporción media, mientras que no hay erguidos. El racimo es pequeño o mediano, con un alto grado de compacidad. La baya es de gran tamaño, con forma elíptico corta, no tiene ningún sabor particular, tiene pepitas y la epidermis es de color rosado.

En este grupo sobre un nivel de disimilitud de 0,85 se produce xma división apareciendo dos ramas, una superior constituida por Pardina (1S04, PABA), Blanca

124 Cuadro n" 7. Datos ampelográficos correspondientes a la "descripción modelo".

Sumidad Hoja joven Pámpano Hoja adulta 001 002 003 004 051" 05P 052 053 054 055 056 151 007 008 009 010 011 012 013 014 015 016 017 055 067 068 070 071 075 076 1S04 7 3 5 5 3 3 5 7 6 1 3 2 2 1 1 1 1 3 3 1 1 5 3 3 3 1 1 4 2 PABA 7 3 7 6 3 3 4 7 6 1 3 2 1 1 3 3 1 1 4 4 3 3 1 1 3 2 2ALH 7 3 3 5 3 3 3 7 7 1 3 1 1 1 2 3 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 2T01 7 3 3 5 3 1 3 7 6 1 • 3 2 2 1 1 1 1 3 3 1 1 2 2 3 3 I 1 4 2 2T013 7 3 3 5 3 3 3 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 2 2 3 3 1 1 3 2 BGBA 7 3 5 4 3 1 3 5 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 CBCC 7 3 6 4 3 3 4 7 5 1 3 2 1 1 1 1 3 3 1 1 3 4 3 3 I I 5 2 JAGR 7 3 5 4 3 3 5 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 6 5 3 3 1 1 3 2 JATO 7 3 5 5 3 3 4 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 5 5 3 3 1 1 4 2 JAGU 7 3 5 5 3 3 4 7 6 1 3 1 1.2 2 1 1 2 4 3 3 1 1 3 2 lOALl 7 3 3 4 3 1 5 6 5 1 3 1 1 1 1 1 1 5 4 3 3 1 1 2 2 MOBA 7 3 5 5 3 1 7 1 3 1 1 1 1 1 1 4 3 3 3 I 1 4 2 JANE 7 3 5 3 1 2 3 7 4 1 3 1 1 1 2 1 1 1 4 3 3 3 2 3 3 JENE 7 3 5 3 3 2 3 7 3 1 3 1 1 2 I 1 1 3 3 3 3 3 2 4 2 JNNE 7 3 5 4 3 2 5 7 7 1 3 2 2 1 1 1 1 2 1 1 1 .3 2 3 3 1 1 3 2 JATN 7 3 5 3 1 2 3 5 5 1 3 1 1 2 2 1 1 1 2 3 3 1 1 2 2 6M015 7 3 5 4 3 3 5 7 5 1 3 1 I 2 2 1 1 3 2 3 3 1 1 3 2 6M023 7 3 3 5 3 3 5 7 5 1 3 1 1 3 3 1 1 2 3 3 3 1 1 3 2 6M026 7 3 5 5 3 3 3 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 6M033 7 3 5 5 3 3 6 7 5 I 3 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 4 2 6M045 7 3 5 5 3 3 5 7 7 1 3 1 1 3 3 1 1 2 3 3 3 1 1 4 2 6M047 7 3 5 5 3 3 5 8 5 1 3 1 1 2 2 1 1 2 3 3 3 1 1 3 2 8CA2 7 3 5 5 3 3 6 7 7 1 3 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 8CA9 7 3 5 5 3 3 6 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 2 3 3 3 1 1 3 2 8CA15 7 3 5 5 3 3 5 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 2 3 3 1 1 3 2 8CA19 7 3 5 • 7 3 3 6 7 • 5 1 3 1 1 2 2 1 1 4 3 3 3 1 1 3 2 8CA20 7 3 5 4 3 3 6 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 8CA26 7 3 5 4 3 3 4 7 5 1 3. 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 8CA31 7 3 5 4 3 3 6 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 3 2 8CA33 7 3 5 4 3 3 6 8 6 1 3 1 1 3 3 1 1 2 3 3 3 1 I 3 2 8CA40 7 3 5 5 3 3 6 8 5 1 3 1 1 2 2 1 1 2 3 3 3 1 1 3 2 COBA 7 3 7 4 3 3 7 7 5 1 3 1 1 2 2 1 1 2 4 3 3 1 1 3 2 PEGR 7 3 3 4 1 2 2 7 3 1 3 2 2 3 3 1 1 2 2 3 1 2 4 3 3 2 1 3 2 CIBA 7 2 3 5 1 1 3 7 5 1 3 1 1 1 1 1 1 3 3 1 1 1 5 3 3 1 1 2 3 BOBA 7 3 5 3 3 1 3 6 5 1 3 2 2 1 1 1 1 1 1 3 1 2 3 3 3 1 1 3 2 BOCC 7 3 6 7 3 2 3 6 3 1 3 2 2 1 1 1 1 3 3 1 1 1 4 3 3 1 1 2 2 MTGR • 7 2 4 3 1 2. , .3 3 3 1 3 2 2 1 1 1 1 1 1 1 1 5 3 3 3 1 1 3 2 PEMA 7 2 4 3 1- 2 3 2 3 1 3 i 1 11 1 1 1 1 1 1 3 3 3 3 1 1 3 3 Cuadro rf 7. (Continuación).

Hoja adulta Racimo Baya 077 078 079 080 081 082 083 083' 083^ 084 087 088 089 090 091 202 204 206 207 220 223 224 225 229 230 236 239 241 244 1S04 5 7 3 2 3 2 3 3 7 2 1111 5 6 3 3 8 4 2 1 2 1 113 1 PABA 5 5 3 2 3 2 2 11 6 11111 4 6 3 3 8 4 2 1 2 1 113 1 2AL11 5 6 5 2 3 2 3 3 5 2 1111' 5 6 3 3 7 4 2 2 1 113 1 2T01 5 7 5 2 3 1 3 1 5 2 1111 5 5 3 3 9 4 2 1 2 1 113 1 2T013 5 7 5 2 3 2 3 3 7 2 1111 5 6 2 3 8 4 2 1 2 1 113 1 BCBA 4 4 3 2 3 2 ;! 1 1 5 2 1111 3 5 3 3 7 3 2 1 2 1 113 1 CBCC 4 5 5 2 3' • • 3 3 3 6 5 5 2 4 9 3 2 1 2 1 113 1 JAGR 6 6 5 2 3 3 3 3 6 6 6 1 3 7 3 2 1 2 1 113 1 JATO 5 7 6 2 3 3 :> 1 1 6 5 3 1 3 9 4 2 1 2 1 113 1 JAGU 4 4 5 2 3 3 ;1 1 1 6 5 5 3 3 9 4 2 1 2 1 1 13 1 lOALl 5 7 4 2 3 2 3 3 5 5 7 3 3 9 4 2 2 2 1 113 1 MOBA 5 5 3 2 3 1 3 1 5 3 7 2 3 9 4 2 2 2 1 113 1 JANE 7 7 6 2 3 2 3 3 7 5 7 1 3 9 3 2 5 2 1 113 1 JENE 7 7 6 2 1 3 3 3 6 5 6 2 3 9 3 2 5 2 1 113 1 JNNE 7 7 6 2 3 3 3 3 6 5 6 1 3 7 2 2 5 2 1 113 1 JATN • 5 7 6 2 3 3 1 5 5 6 1 3 7 2 2 5 2 1 113 1 6M015 7 8 2 3 3 3 3 2 1111 4 6 2 3 8 7 2 2 1 1 3 1 6M023 5 . 7 2 3 3 3 5 2 1111 5 6 1 3 7 4 2 2 1 1 3 1 6M026 5 7 3 3 3 3 5 3 1111 4 6 1 3 6 4 2 2 1 1 3 1 6M033 6 7 2 3 3 3 5 2 1111 4 5 1 3 7 4 2 2 1 1 3 1 6M045 5 6 3 2 3 3 5 2 1111 3 6 3 3 7 4 2 2 1 1 3 1 6M047 5 6 3 2 3 3 5 4 1111 4 6 2 3 7 4 2 2 1 1 3 1 8CA2 5 6 3 3 3 3 5 2 1 1 11 3 6 1 3 6 7 2 2 1 1 3 1 8CA9 .5 6 3 2 3 3 5 3 1111 4 8 2 3 7 7 2 2 1 1 3 1 8CA15 5 7 2 3 13 3 6 3 1111 4 6 1 3 7 7 2 2 1 1 3 1 8CA19 5 6 3 2 3 3 5 4 1 1 11 4 6 1 3 6 7 2 2 1 1 3 J 8CA20 5 6 3 3 3 3 5 3 1 11 1 4 5 1 3 .7 7 2 2 1 1 3 1 8CA26 5 7 3 2 3 3 5 3 1111 4 6 2 3 7 7 2 2 1 1 3 1 8CA31 5 6 2 3 3 3 5 3 1111 4 6 3 3 7 7 2 2 1 1 3 1 8CA33 5 7 3 1 3 3 5 3 1111 3 5 2 3 8 7 2 2 1 1 3 1 8CA40 5 5 2 3 3 3 5 3 1111 4 5 2 3 7 7 2 2 1 1 3 1 CGBA 6 6 3 3 3 3 6 2 1111 4 7 2 4 7 7 2 2 1 1 3 1 PEOR 3 3 3 2 2 2 3 11111 5 6 1 5 7 3 2 2 1 1 3 1 CIBA 3 3 3 3 3 3 3 11111 4 5 2 3 6 3 2 2 1 1 3 1 BOBA 5 5 3 2 1 3 1 3 2 1111 2 5 1 6 5 4 2 .2 1 1 3 1 BOCC 3 3 2 2 : 1 1 3 1 1 1 1 1 4 2 1 5 5 3 2 2 1 1 3 1 MTGR 6 4 5 2 3 3 3 1 5 1 i 1 1 6 5 2 3 9 2 2 2 1 1 3 1 PEMA 5 4 3 1 3 3 3 1 1 7 1111 5 8 2 4 8 2 2 2 1 1 3 1 Cuadro n" 7. (Continuación). Sumidad Hoja joven Pámpano Hoja adulta 001 002 003 004 051' 05P 052 053 054 055 056 151 007 008 009 010 011 012 013 014 015 016 017 065 067 068 070 071 075 076 3C01 7 3 3 4 3 3 6 . 1 3 1 3 2 2 1 1 1 1 2 2 1 1 5 7 3 3 1 1 5 3 4C01 7 3 3 4 3 3 6 3 1 3 2 2 1 1 1 1 2 2 1 1 5 6 4 3 1 1 5 2 BECA 7 3 5 4 3 4 6 , 3 1 3 2 2 1 1 1 1 1 1 1 1 2 5 4 3 1 1 5 3 MJGR 7 3 5 5 ,3 2 3 7 . 3 1 3 2 2 1 1 . 1 1 2 2 1 1 3 4 3 3 1 1 4 2 BBHU 7 3 5 4 3 4 6 1 3 1 3 2 2 1 1 1 1 2 2 1 1 3 6 3 3 1 1 5 2 BEHU 7 3 5 4 3 4 6 5 1 3 2 2 1 1 1 1 1 2 1 1 5 5 3 3 1 1 4 2 MAGR 7 3 5 5 3 3 6 4 1 3- 2 2 1 1 1 1 2 2 1 1 3 4 3 3 1 1 4 3 PRGR 7 3 5 4 3 2 4 6 4 1 3 2 2 1 1 1 1 2 2 1 1 4 7 4 3 1 1 5 3 CHAV 7 3 5 5 3 4 6 5 1 3 1 1 2 2 1 1 3 5 4 3 1 1 5 3 3AL45 7 3 2 7 1 6 6 1 3 1 1 3 4 1 1 2 3 4 3 1 1 4 3 3GU19 7 3 2 7 1 7 1 6 1 3 1 1 3 3 1 1 2 5 4 3 1 1 3 3 3GU34 7 3 2 7 1 7 1 7 1 3 1 1 3 3 1 1 3 3 4 3 1 1 4 3 3ST17 7 3 2 7 1 6 5 1 3 1 1 2 3 1 1 2 3 4 3 1 1 3 3 4LS47 7 3 2 7 1 7 7 1 3 1 1 2 3 1 1 2 3 4 3 1 1 4 3 CHCR 7 3 3 6 1 7 7 1 3 11 3 3 1 1 5 7 4 3 1 1 4 3 EVBA 7 3 3 6 • 1 7 6 1 3 1 1 3 3 1 1 2 5 4 3 1 1 4 3 MABA 7 3 3 5 1 6 6 1 3 1 1 3 3 1 1 2 6 3 3 1 1 5 3 5TA13 7 2 2 3 3 2 2 7 4 1 3 1 2 1 3 5 3 3 1 3 5TA19 7 2 2 3 3 2 3 7 3 1 3 1 4 5 3 3 1 3 5TA25 7 2 3 4 3 2 3 7 3 1 3 1 5 6 3 3 1 3 5TA27 7 2 2 3 3 2 3 6 3 1 3 2 1 4 5 3 3 1 3 5TA210 7 2 2 3 3 2 3 5 3 1 3 1 5 5 3 3 1 3 5TA31 7 2 2 4 3 2 3 7 3 1 3 1 3 5 3 3 1 3 5TA34 7 2 3 3 3 2 3 6 3 1 3 .1 3 3 3 3 1 2 5TA35 7 • 2 2 3 3 2 3 7 3 1 3 1 5 5 3 3 1 3 7CN1 7 2 3 5 3 2 3 6 3 1 3 1 2 4 3 3 1 3 ALGO 7 2 3 3 3 2 3 5 .3 1 3 2 1 1 3 6 4 3 1 3 ALMA 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 1 3 4 4 3 1 3 ALTO 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 1 3 6 3 3 1 3 ALBA 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 1 3 7 4 3 1 3 ALGO 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 2 1 3 6 3 3 1 1 2 3 AJCC 7 2 3 3 3 2 3 5 3 1 3 1 4 7 4 3 1 1 2 3 AVGC 7 3 5 5 3 3 7 4 1 3 1 1 2 1 3 6 4 3 1 1 2 2 MACC 7 3 5 5 3 3 7 5 • 1 3 1 1 1 1 3 5 4 3 1 1 2 2 9CA13 7 5 1 i 3 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 1 1 4 3 3 3 1 1 3 3 9CA22 7 5 1 6 3 • 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 1 1 1 3 3 3 2 1 3 3 9CA25 7 5 1 7 5 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 2 1 5 4 3 3 1 1 3 3 9CA36 7 4 1 7 4 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 1 1 3 3 3 3 1 1 3 3 9CA37 7 5 1 7 4 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 2 1 5 3 3 3 1 1 3 3 9CA39 7 4 1 7 5 1 3 3 3 3 3 1 1 2 2 1 1 4 3 3 3 3 1 3 3 Cuadro n" 7. (Continuación). Hoja adulta Racimo Baya 077 078 079 080 081 082 083 083' 083^ 084 087 088 089 090 091 202 204 206 207 220 223 224 225 229 230 236 239 241 244 3C01 5 5 7 3 1 2 2 5 2 1111 5 3 3 3 8 4 2 2 1 113 1 4C01 5 5 7 3 1 2 2 5 2 1111 5 3 3 3 9 4 2 2 1 113 1 BECA 5 3 7 3 1 2 2 5 4 5 5 3 9 4 2 1 2 1 113 1 MJGR 4 5 5 3 i 2 2 7 4 4 3 3 9 4 2 2 1 1 3 1 BBHU 5 5 5 3 1 2 2' 6 6 5 5 3 8 4 2 2 1 1 3 1 BEHU 4 3 6 2 3 1 2 2 5 5 6 3 3 9 4 2 2 1 113 1 MAGR 5 3 5 1 3 1 2 2 5 6 3 4 3 9 4 2 2 1 1 3 1 PRGR 4 3 5 2 3 12 1 5 5 5 3 3 9 7 2 2 1 1 3 1 CHAV 3 3 7 2 1 3 1 2 2 5 2 1111 6 5 3 3 9 7 2 1 2 1 113 1 3AL45 4 5 3 2 1 3 1 3 3 5 5 5 5 3 9 4 2 1 2 1 113 1 3GU19 5 5 3 2 3 1 3 3 5 5 6 3 3 9 4 2 2 1 13 1 3GU34 5 5 2 2 3 1 3 1 4 5 5 3 3 9 4 2 1 2 1 113 1 3ST17 5 6 3 2 3 1 3 3 3 4 5 2 3 8 4 2 1 2 1 113 1 4LS47 5 5 3 2 3 1 3 3 4 4 5 3 5 8 4 2 2 1 113 1 CHCR 5 4 3 2 3 2 11 4 6 5 3 3 8 4 2 2 1 113 1 EVBA 4 4 3 2 3 1 3 3 5 5 5 3 3 9 4 2 2 1 113 1 MABA 4 4 3 2 3 1 3 3 5 4 5 2 3 9 4 2 2 1 113 1 5TA13 5 7 2 3 1 3 3 3 2 1111 5 5 3 3 7 3 2 2 1 1 3 1 5TA19 5 6 2 3 1 3 3 3 2 1111 5 6 5 3 7 3 2 2 1 1 3 1 5TA25 5 6 2 3 1 3 3 3 2 1111 5 5 8 3 7 3 2 2 1 1 3 1 5TA27 5 5 2 3 1 3 3 3 2 1 1.1 1 5 5 6 3 5 3 2 2 1 1 3 1 5TA210 5 5 2 2 1 3 3 3 2 1111 5 5 6 3 7 3 2 2 1 1 3 1 5TA31 . 5 5 2 3 1 3 3 3 2 1111 6 6 7 3 6 3 2 2 1 1 3 1 5TA34 5 7 2 3 1 3 1 3 2 1111 4 4 3 3 9 3 2 2 1 1 3 1 5TA35 5 5 2 3 1 3 3 3 '21111 5 5 5 3 7 3 2 2 1 1 3 1 7CN1 6 6 2 3 13 3 3 2 1111 5 7 3 3 6 3 2 2 1 1 3 1 ALGO 7 7 2 3 1 3 3 2 11111 6 6 5 3 7 3 2 2 1 1 3 1 ALMA 4 3 2 3 1 3 3 2 11111 5 6 3 3 7 3 2 2 1 1 3 1 ALTO 6 6 2 3 1 3 3 3 2 1111 5 5 3 3 9 3 2 2 1 1 3 1 ALBA 6 3 2 3 1 3 3 2 2 1111 5 5 2 3 9 3 2 2 1 1 3 1 ALCC 4 3 2 3 13 3 2 11111 5 5 3 3 8 3 2 2 1 1 3 1 AJCC 6 6 2 3 1 3 3 2 11111 6 5 2 3 6 3 2 2 1 1 3 1 AVCC 5 5 3 3 1 3 1 3 11111 4 5 1 5 9 3 2 2 1 1 3 1 MACO 3 4 4 3 1 3 1 3 11111 4 5 1 5 9 3 2 2 1 1 3 1 9CA13 3 5 6 2 2 1 1 3 11111 4 4 2 3 7 4 2 2 1 1 3 1 9CA22 3 5 6 2 2 1 1 3 11111 5 4 3 3 8 4 2 2 1 1 3 1 9CA25 4 6 6 , 2 2 1 1 3 11111 5 3 2 3 8 4 2 2 1 1 3 1 9CA36 3 5 6 2 2 1 1 3 11111 5 3 3 3 8 4 2 2 1 1 3 1 9CA37 5 5 6 2 2 1 1 3 11111 5 4 3 3 8 4 2 2 1 1 3 1 9CA39 5 5 6 2 2 1 1 3 2 1111 4 4 2 3 8 4 2 2 1 1 3 1 Figura n2 23. Dendrograma correspondiente a la descripción morfológica "modelo".

•Sl&BSBBilBBl

Figura n° 24. Jaén. Figura n° 25. Morisca.

Cayetana (BCBA), Cayetana Blanca (CBCC) y Jaén (JAGR, JATO, JAGU), y una inferior formada por Blanca Cayetana (2AL11, 2T01, 2T013) y Morisca (10AL3, MOBA). En la superior sobre un nivel de disimilitud de 0,83 se produce un nuevo desdoblamiento, separando a Pardina (1S04) y Jaén (JAGR, JATO), de Jaén (JAGU), Pardina (PABA), Blanca Cayetana (BCBA) y Cayetana Blanca (CBCC). Caracteres tales como la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017), o la longitud de los dientes en relación a su anchura en la base en la hoja adulta (código OIV n° 078) influyen notablemente en esta disgregación al ser muy variables entre los individuos descritos.

En la rama inferior también hay una separación entre Morisca (10AL3, MOBA) y Blanca Cayetana (2AL11, 2T01, 2T013) que tiene lugar sobre un nivel de disimilitud de 0,82. El color rosado de la epidermis (código OIV n° 225) de Morisca es fundamentalmente el responsable de esta diferenciación que lleva a establecer dos cultivares morfológicamente diferentes, junto con la longitud de los zarcillos (código OIV n" 017) y la intensidad de la pigmentación antociánica de las seis hojas terminales (código OrV n° 052), que es mayor para Morisca que para Blanca Cayetana. En el caso de los clones de 2AL11, 2T01 y 2T013 los caracteres que han determinado esta disgregación, respecto al grupo de la rama superior son fundamentalmente: la intensidad de la pigmentación antociánica de la extremidad (código OIV n° 003), la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017), el tamaño de la hoja adulta (código OIV n" 065) y la longitud de los dientes en relación a su anchura en la base en la hoja adulta (código OrV n° 078). Estos son caracteres altamente variables entre todos los clones descritos de tal manera que influyen en la descompactación del grupo en general y en particular en el desligamiento de 2AL11, 2T01 y 2T013.

Los Jaénes tintos estudiados (figura n° 26) aparecen en un grupo separado del anterior a un nivel de disimilitud aproximadamente de 1,27. En ellos la sumidad tiene una pigmentación antociánica con una distribución no ribeteada. Las hojas jóvenes superiores tienen un color en el haz rojizo, aunque en algimos casos puede perderse esa tonalidad y aparecer verdes, mientras que las inferiores tienen zonas bronceadas. El pámpano es verde, aunque a veces puede tener rayas rojas en los entrenudos en la cara dorsal y ventral; apenas presenta pelos tumbados en los nudos y entrenudos siendo en

133 algunas ocasiones ausentes. La hoja adulta es de pequeño tamaño, pentalobulada, la forma del limbo es pentagonal, los dientes son rectilíneos, aunque en algunas ocasiones se alternen con los convexos, el seno peciolar tiene los lóbulos ligeramente superpuestos, en forma de V, pudiendo presentar un diente en el borde del mismo, a veces los nervios principales del haz y el envés tienen ima ligera pigmentación antociánica, en el envés, hay xma densidad de pelos tumbados entre media y alta, mientras que no aparecen erguidos. El racimo es de tamaño medio, con una compacidad entre media y alta. La baya puede tener un tamaño entre grande y muy grande, alternando la forma esférica, con la ligeramente aplastada, con pepitas, sin ningún sabor particular y con un color de epidermis rojo violeta-oscuro que establece una clara diferencia morfológica con Morisca.

Sobre un nivel de disimilitud de 0,94 aparece una rama integrada por todos los clones de Cigüentes y Borba obtenidos en el proceso de selección clonal, realizado por el SIDT-Extremadura, junto con CGBA (Cigüente) procedente del Banco de Germoplasma de la Vid (figura n° 27). En esta agrupación destaca la pigmentación antociánica no ribeteada de la sumidad. La hoja joven en el haz es de color rojizo, con una intensidad de la pigmentación antociánica entre media y fuerte. Los pámpanos son de color verde tanto en los nudos como en los entrenudos, así como en su cara dorsal y ventral; con ima muy baja presencia de pelos tumbados a lo largo de los mismos. La hoja adulta es de pequeño tamaño, pentalobulada, el limbo tiene forma pentagonal, los dientes son rectilíneos, el seno peciolar es abierto, en forma de U, en el envés la hoja tiene una densidad media de pelos tumbados y baja de erguidos. El racimo tiene un tamaño entre pequeño y medio, con una compacidad entre media y alta. La baya es grande, con forma obovate acuminada, aunque también puede ser elíptico corta, en función del grado de compacidad del racimo, tiene pepitas, no presenta ningún sabor particular, y la epidermis es de color verde-amarillento.

El resto de los clones descritos bajo los nombres de Borba y Cigüente aparecen agrupados hasta un nivel de disimilitud de 1,04, momento en el que se disgregan en diferentes grupos, situándose BOBA (Borba) y BOCC (Borba) en ramas totalmente independientes sin ningún tipo de asociación con cualquier otro clon descrito, y CIBA

134 Figura n'' 26. Jaén Tinto. Figura íf 27. Cigüentes.

(Cigüente) asociado a PEGR (Perruno Común).

La accesión de Borba (BOBA) (figura n° 28) se caracteriza por tener una distribución de la pigmentación antociánica en la sumidad no ribeteada. Las tres primeras hojas jóvenes de la sumidad tienen un color rojizo en el haz, mientras que las últimas son verdes. El pámpano es verde con rayas rojas en los entrenudos, en su cara dorsal y ventral, no presenta ni pelos erguidos ni tumbados en los nudos y entrenudos; y las yemas tienen una ligera pigmentación antociánica. La hoja adulta es pequeña, pentalobulada, la forma del limbo es pentagonal, los dientes son rectos, el seno peciolar es abierto, en forma de U, con el fondo a menudo delimitado por el nervio cerca del punto peciolar, en el envés los pelos tumbados y erguidos se encuentran en baja proporción. El racimo es muy pequeño, con una compacidad media. La baya es de tamaño medio, de forma elíptico corta, con pepitas, sin ningún sabor particular, y con un color de epidermis verde-amarillento.

El clon BOCC (Borba) (figura n° 29) presenta ima distribución de la pigmentación antociánica en la sumidad no ribeteada. De las seis hojas jóvenes descritas, las tres primeras tienen un haz de color rojizo, mientras que las tres siguientes tienen zonas bronceadas. El pámpano presenta rayas rojas en los entrenudos tanto en su cara dorsal como en la ventral, y pelos tumbados en una baja proporción en los nudos y entrenudos. La hoja adulta es pequeña, con cinco lóbulos, la forma del hmbo es pentagonal, los dientes son rectilíneos, el seno peciolar es muy abierto, en forma de U, en el envés no hay pelos erguidos, mientras que los tumbados aparecen en una baja proporción. El racimo es muy suelto y de tamaño medio. La baya es de tamaño medio, esférica, con pepitas, sin ningún sabor particular, y con un color de epidermis verde- amarillento.

El grupo formado por CIBA (Cigüente) y PEGR (Perruno Común) sobre un nivel de disimilitud de 0,82 se desdobla en dos ramas, debido a las diferencias morfológicas que presentan estos dos clones entre sí. De esta manera, a CIBA (Cigüente) (figura n° 30) se le podría describir con una sumidad que presenta una distribución de la pigmentación antociánica ribeteada. Las hojas jóvenes en el haz son

137 de color verde. El pámpano es verde, con una baja densidad de pelos tumbados en los nudos y entrenudos. La hoja adulta tiene un tamaño medio, es pentalobulada, con el limbo en forma pentagonal, los dientes, son convexos, su seno peciolar es abierto, en forma de U, en el envés los pelos tumbados aparecen en una baja proporción, mientras que no hay erguidos. El racimo tiene un tamaño y compacidad media. Las bayas tienen un tamaño entre medio y grande, son esféricas, con pepitas, sin ningún sabor particular, y con un color de epidermis verde-amarillento.

El clon de PEGR (Perruno Común) (figura n° 31) tiene una sumidad con la pigmentación antociánica no ribeteada. Las tres primeras hojas jóvenes de la extremidad son de color verde en el haz, mientras que las tres siguientes presentan zonas bronceadas en el mismo. El pámpano tiene rayas rojas en los entrenudos tanto dorsal como ventralmente, y los nudos son rojizos por la parte dorsal y ventral; los pelos tumbados se encuentran en un bajo porcentaje en los nudos y entrenudos; y las yemas tienen una ligera pigmentación antociánica. La hoja adulta es de pequeño tamaño, con cinco lóbulos, la forma del limbo es pentagonal, los nervios principales del haz presentan una ligera pigmentación antociánica, los dientes son rectos y de pequeño tamaño, el seno peciolar es abierto, en forma de U, én el envés la hoja tiene una baja densidad de pelos tumbados, mientras que no hay erguidos. El racimo es de tamaño y compacidad media. La baya es grande, esférica, con pepitas, sin ningún sabor particular y con un color de epidermis verde-amarillento.

Otra rama bastante heterogénea es la constituida por algimos de los Mantúos tomados para este trabajo (MJGR, MAGR), todas la Bebas (BECA, BBHU, BEHU), una de las tres Evas (3COI), dos de las tres Chelvas consideradas (4C01, CHAV) y un Perruno o Mantúo Basto (PRGR). Todos ellos (figura n° 32) se podrían describir como: sumidad con una distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada. De las seis hojas jóvenes sobre las que se describe el color del haz, las tres primeras son de color rojizo, siendo las restantes verdes, aunque en algunos casos puedan presentar zonas bronceadas. El pámpano cuenta con rayas rojas en los entrenudos en su cara dorsal y ventral, y con una baja densidad de pelos tumbados en los nudos y entrenudos. La hoja adulta tiene un tamaño entre medio y grande, es pentalobulada, la forma del limbo

138 Figura n° 28. Borba (BOBA). Figura n° 29. Borba (BOCC).

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Figura xf 30. Cigüente (CIBA). Figura n° 31. Perruno Común (PEGR). s!i^ini

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Figura n° 32. Beba Figura n° 33. Mantúo puede ser orbicular o pentagonal, los dientes se alterna entre rectilíneos y convexos, el seno peciolar es cerrado o con lóbulos superpuestos, en forma de U, aunque en ocasiones puede describirse como V, en el envés los pelos tumbados se encuentran con una densidad media, mientras que los erguidos apenas aparecen. El racimo es de tamaño medio, con una compacidad que se alterna entre baja y media. La baya es de gran tamaño, con forma elíptico corta, aunque también puede presentarse como obovate acuminada, tiene pepitas, sin ningún sabor particular, y el color de la epidermis es verde-amarillento. Es de destacar en esta rama la mayor similitud que presentan los clones descritos en Badajoz, 3COI y 4C01, respecto del resto, influyendo notablemente en esta separación la menor intensidad de la pigmentación antociánica de la extremidad (código OIV n° 003) que presentan.

Otro grupo es el formado por cuatro Montúas (3AL45, 3GU34, 3ST17, 3GU19), un Mantúo (MABA), dos Evas (4LS47, EVBA) y una Chelva (CHCR) (figura n° 33). Se caracteriza por tener una sumidad con una pigmentación antociánica de muy baja o baja intensidad, con una distribución no ribeteada, y una alta densidad de pelos tumbados. La hoja joven es de color verde en el haz. El pámpano también es de color verde, con una baja densidad de pelos tumbados en los nudos y entrenudos. La hoja adulta es de pequeño tamaño, pentalobulada, la forma del limbo es orbicular, los dientes son convexos, el seno peciolar es abierto, en forma de V, en el envés no hay pelos erguidos, mientras que los tumbados tienen ima densidad media. El racimo tiene un tamaño y compacidad media. La baya es de gran tamaño, con forma elíptico corta, con pepitas, sin ningún sabor particular, y con la epidermis de color verde-amarillento. Hay que resaltar en este grupo la rápida separación de CHCR (Chelva) del resto, sobre im nivel de disimilitud de 0,8. Caracteres como la longitud de los zarcillos (código OIV n°017) y el tamaño de la hoja adulta (código OIV n° 065) con valores mayores que el resto del grupo son determinantes en la disgregación de este bloque.

Otra agrupación es la que auna a todos los clones de Alarije procedentes de la selección clonal realizada por el SIDT-Extremadura, junto con los procedentes del Banco de Germoplasma de la Vid, excepto Alarije Verdosa (AVCC), y con Malfar (7CN1) (figura n° 34). Todos ellos presentan una distribución de la pigmentación

145 antociánica en la sumidad ribeteada. Las tres primeras hojas jóvenes tienen un color rojizo en el haz, mientras que las siguientes que se describen presentan zonas bronceadas. El pámpano es verde, aunque en algunas ocasiones puede tener rayas rojas en el entrenudo en su parte dorsal; no tiene ni pelos tumbados, ni erguidos. La hoja adulta es de tamaño medio, con cinco lóbulos, con el limbo en forma pentagonal, aunque algunas veces se puede describir como orbicular, los dientes son de lados convexos, el seno peciolar es muy abierto, en forma de U, en el envés los pelos tumbados están en una baja proporción, al igual que los erguidos, que incluso en algunos casos no aparecen. El racimo es de tamaño y compacidad media. La baya es grande, esférica, con pepitas, sin ningún sabor particular, y con un color de epidermis . verde-amarillento.

Alarije Verdosa (AVCC) aparece asociada con el clon de Marfal (MACC), ambos procedentes del Banco de Germoplasma de la Vid (figura n° 35). Se caracterizan por tener una pigmentación antociánica no ribeteada en la sumidad. Las tres primeras hojas jóvenes de la sumidad presentan un color rojo en el haz, mientras que las siguientes son verdes. El pámpano es verde, sin apenas pelos tumbados en los nudos y entrenudos. La hoja adulta es de tamaño medio, con cinco lóbulos, dispuestos en forma orbicular, con dientes rectos, el seno peciolar es abierto o poco abierto, en forma de U, en el envés los pelos erguidos no aparecen, mientras que los tumbados lo hacen en una baja proporción. El racimo es de tamaño y compacidad media. La baya es de gran tamaño, esférica, con pepitas, sin ningún sabor particular, y con vm. color en la epidermis verde-amarillento.

El siguiente bloque está constituido por todos los clones de Perruno obtenidos en el proceso de selección clonal realizado en Extremadura (figura rf 36). Todos ellos presentan una sumidad ausente de pigmentación antociánica. Las hojas jóvenes son verdes en el haz. Los pámpanos son de color rojizo en los nudos y entrenudos, tanto en su cara dorsal como ventral, además presentan pelos tumbados, aunque en una baja proporción, en los nudos y entrenudos, y algunas yemas tienen una ligera pigmentación antociánica. La hoja adulta es de pequeño tamaño, con cinco lóbulos, la forma del limbo es pentagonal, con dientes de lados convexos, el seno peciolar tiene los lóbulos

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Figura n° 34. Alarije. Figura n° 35. Marfal.

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Figura n° 36. Perruno Extremeño. Figura n° 37. Perruno Andaluz ligeramente superpuestos, en forma de V, en el envés hay pelos tumbados en una baja densidad, mientras que apenas aparecen erguidos. El racimo es de tamaño medio, con una compacidad entre baja y media. La baya tiene im tamaño entre grande y muy grande, con forma elíptico corta, con pepitas, sin ningún sabor particular, y con la epidermis de color verde-amarillento.

En la última rama aparece Mantúo (MTGR), junto con Perruno (PEMA). La descripción morfológica es la que a continuación se detalla (figura n" 37). La sumidad presenta una distribución de la pigmentación antociánica ribeteada. Las tres primeras hojas jóvenes, de. las seis descritas, presentan un color verde en el haz, mientras que las inferiores tienen zonas bronceadas. El pámpano es verde, aunque puede presentar rayas rojas en los entrenudos en la cara dorsal y ventral, con ausencia de pelos tumbados y erguidos tanto en los nudos como en los entrenudos. La hoja adulta es de pequeño tamaño, tiene cinco lóbulos, con una forma del limbo pentagonal, los dientes se alternan entre rectilíneos y convexos, el seno peciolar varía entre abierto y cerrado, en forma de U o V, pudiendo presentar un diente en el borde, en el envés no hay pelos tumbados, mientras que los erguidos tienen una densidad media o alta. El racimo es de tamaño medio, y la compacidad puede ser media o alta. La baya es de gran tamaño, ligeramente aplastada, con pepitas, sin ningún sabor particular, y con la epidermis de color verde-amarillento.

Por último, indicaremos la descripción morfológica obtenida para el grupo de Pardillos (PLMA, PLCR y PACU) realizada durante el.año 1996. Presentan una sumidad con una distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada y una alta densidad de pelos tumbados en la misma. El haz de las tres primeras hojas jóvenes es de color verde, mientras que el de las tres siguientes tiene zonas bronceadas. El pámpano presenta rayas rojas en los nudos y entrenudos tanto en su cara dorsal como ventral, con una densidad media de pelos tumbados en los nudos y entrenudos, aunque en algunas ocasiones la concentración es baja. La hoja adulta tiene un tamaño entre pequeño y mediano, con un limbo en forma pentagonal, el número de lóbulos puede variar entre 5 y 7, los dientes son convexos, el seno peciolar en forma de U, es abierto o poco abierto, con presencia bastante firecuente de un diente en el borde, en el envés los

151 pelos tumbados se presentan con una densidad baja, y los erguidos también, aunque algunas veces ésta puede ser nula. El racimo es de tamaño pequeño, con una gran compacidad. La baya es grande, con forma variable entre esférica y obovate acuminada, sin ningún sabor particular, con pepitas y con una epidermis de color verde- amarillento.

4.2.- Caracterización bioquímica 4.2.1.- Isoenzímas

Para cada uno de los cinco sistemas isoenzimáticos estudiados se han obtenido diferentes zimogramas, que han permitido establecer diferencias entre las accesiones consideradas. Los modelos resultantes para cada imo de estos sistemas son los que a continuación se detallan.

Peroxidasa (PER)

Han sido cuatro los zimogramas obtenidos entre todas las muestras consideradas. Estos aparecen reflejados en la figura n° 38 y su esquema se encuentra en la figura n° 39.

En todos ellos aparecen dos zonas de actividad enzimática. La superior presenta siete bandas (1, 2, 3, 4, 5, 6 y 7) siendo algunas de ellas de mayor intensidad (3 y 4), mientras que la inferior sólo cuenta con cuatro (8, 9,10 y 11).

Los modelos obtenidos agrupan las siguientes accesiones:

- • Modelo A (bandas 3, 4, 6, 9, 10 y 11): lo presentan todos los clones de Pardina, - Blanca Cayetana, Cayetana Blanca, Jaén, Morisca, Jaén Negro, Jaén Tinto, Montúa, Mantúo, Mantúo Jerezano, Mantúo Basto o Perruno, Eva, Beba, Chelva, y además los clones seleccionados por el SIDT-Extremadura de Borba y Cigüentes, junto con BOBA (Borba), CGBA (Cigüente), PEGR (Perruno Común), PEMA (Perruno), MACC (Marfal) y AVCC (Alarij Verdosa).

152 ^^•

m:/^

Modelo A Modelo B Modelo C Modelo D

Figura n° 38. Esquema de los zimogramas de PER,

9 9 9 9 10 10 10 10 11 11 11 11

Modelo A Modelo B Modelo C Modelo D

Figura n*^ 39. Esquema de zimogramas de PER.

- Modelo B (bandas 4, 6, 9, 10 y 11): está constituido por todas las accesiones de Alarije, excepto AVCC que está encuadrada en el modelo A como ya se ha indicado, 7CN1 (Malfar) y BOCC (Borba). - Modelo C (bandas 3, 4, 6, 8, 9, 10 y 11): lo muestran todos los clones de la variedad Perruno seleccionados por el SDDT-Extremadura. - Modelo D (bandas 1, 2, 5, 7, 9, 10 y. 11): sólo lo presenta el clon CIBA (Cigüente)

Acido fosfatasa (AcPH)

Son cuatro los patrones isoenzimáticos obtenidos para este sistema (figura n° 40), cuyo esquema aparece en la figura n° 41. De nuevo en los geles aparecen dos zonas de actividad enzimática: una superior y una inferior, siendo esta última igual para todas las muestras y constituida por las bandas (4, 5 y 6). En la parte superior es en la que se distinguen los cuatro modelos.

Los zimogramas que presentan las accesiones estudiadas son los siguientes:

- Modelo A (bandas 2, 4, 5 y 6): constituido por Pardina, Blanca Cayetana, Cayetana Blanca, Jaén, Morisca, Jaén Negro, Jaén Tinto, todos los clones de Perruno y Montúa seleccionados por el SE)T-Extremadura," jimto con Eva (4LS47, EVBA), Mantúo (MABA) y Chelva (CHCR). - Modelo B (bandas 1, 3, 4, 5 y 6): presentado por todos los clones de Alarije, excepto AVCC (Alarij Verdosa), Malfar (7CN1) y Cigüente (CIBA). - Modelo C (bandas 1, 2, 4, 5 y 6): formado por Mantúo Jerezano (MJGR), Mantúo (MAGR), Mantúo Basto o Perruno (PRGR), Eva (4C01), Beba (BECA, BEHU, BBHU), Chelva (3C01, CHAV), todos los clones seleccionados de Borba y Cigüentes por el SIDT-Extremadura, los de Borba y Cigüente procedentes del Banco de Germoplasma de la Vid, BOCC y CGBA, Perruno Común (PEGR), Alarij Verdosa (AVCC) y Marfal (MACC). - Modelo D (bandas 1, 4, 5 y 6): mostrado por Mantúo (MTGR), Borba (BOBA) y Perruno (PEMA).

155 Catecol oxidasas TCQ)

Seis son los modelos isoenzimáticos obtenidos, que aparecen representados en la figura n° 42 y cuyo esquema se encuentra en la figura n° 43. A continuación se describe a cada uno de ellos y las accesiones que les corresponden:

- Modelo A: presenta cinco bandas siendo las dos primeras mucho más intensas que el resto. Este zimograma constituido por las bandas 3, 5, 6 y 7 lo presentan las siguientes accesiones: aquellas que representan a Pardina, Blanca Cayetana, Cayetana Blanca, Jaén, Morisca, Jaén Negro, Jaén Tinto, Alarije, todos los clones seleccionados por el SIDT-Extremadura de Perruno, Borba, Cigüentes, las accesiones tomadas del Banco de Germoplasma de la Vid de esta última variedad (CroA, CGBA), Mantúo Jerezano (MJGR), Mantúo (MAGR), Eva (4C01), Beba (BECA, BEHU, BBHU), Chelva (3C01, CHAV), Mantúo Basto o Perruno (PRGR), Malfar (7CN1) y Marfal (MACC). - Modelo B: también tiene sus dos primeras bandas más intensas (5 y 6) y el resto presenta uuna tinción más tenue (7 y 9). Sólo hay un clon que presenta este zimograma, y es BOBA (Borba). - Modelo C: constituido por una sola accesión BOCC (Borba), consta de tres bandas (2,4y6). - Modelo D: son cinco las bandas que lo definen (3, 4, 5, 6 y 7), y también una sola accesión la que lo presenta PEGR (Perruno Común). - Modelo E: también cuenta con cinco bandas (1, 3, 5, 6 y 7), siendo la primera de ellas muy tenue, y las dos siguientes tienen una fuerte intensidad. Los clones que muestran este zimograma son MTGR (Mantúo) y PEMA (Perruno). - Modelo F: conformado por las bandas 3, 5, 6, 7 y 8. La número 5 se ha representado con línea discontinua, pues según el año de estudio presenta una tinción más o menos intensa..El resto de bandas tiene un comportamiento normal presentándose algima de ellas con mayor intensidad (3). Este zimograma corresponde a todos los clones seleccionados por el SIDT-Extremadura de Montúa, Eva (4LS47, EVBA), Mantúo (MABA) y Chelva (CHCR).

156 Modelo A Modelo B Modelo C Modelo D

Figura n° 40. Patrones isoenzimáticos de AcPH,

1 1 1 2 2 3

4 4 4 4

^ f

6 6 6 6 Modelo A Modelo B Modelo C Modelo D

Figura n° 41. Esquema de ios zimogramas de AcPH

Figura n° 42. Patrones isoenzimáticos de CO.

1 2

3 3 3 ^^—^^ 4 4 5 5 5 5

6 6 6 6 — 6

7 7 7 7

9

Modelo A Modelo B Modelo C Modelo D Modelo E Modelo F

Figura n° 43. Esquema de los zimogramas de CO.

Glutamato oxalacetato transaminasa (GOT)

Son tres los zimogramas obtenidos para este sistema, que aparecen en la figura n° 44, y cuyo esquema está representado en la figura n° 45. Todos ellos son muy sencillos y pueden presentar dos o tres bandas. Los patrones que presentan las accesiones estudiadas son los siguientes:

- Modelo A (bandas 1, 2 y 3): todos los clones de Pardina, Blanca Cayetana, Cayetana Blanca, Jaén, Morisca, Alarije, junto con Malfar (7CN1), Marfal (MACC) y Perruno Común (PEOR). - Modelo B (bandas 1 y 2): todos los clones seleccionados por el SIDT-Extremadura de las variedades Montúa, Eva, Borba, Cigüentes y Perruno, junto con los procedentes del Banco de Germoplasma de la Vid de Mantúo Jerezano (MJGR), Mantúo (MAGR, MABA), Mantúo Basto o Perruno (PRGR), Eva (EVBA), Beba (BECA, BEHU, BBHU), Chelva (3C01, CHAV, CHCR), Borba (BOCC, BOBA) y agüente (CIBA, CGBA). - Modelo C (bandas 3 y 4): todas las accesiones de Jaén Negro, Jaén Tinto, Mantúo (MTGR) y Perruno (PEMA).

Superóxido dismutasa (SOD)

Son tres los modelos obtenidos, que aparecen representados en la figura rf 46 y esquematizados en la figura n" 47. Estos son:

- Modelo A (bandas 1, 2, 3, 7, 10 y 11): lo presentan todas las accesiones de Pardina, Blanca Cayetana, Cayetana Blanca, Jaén, Morisca, Jaén Negro, Jaén Tinto, Alarije, Malfar (7CN1), todos los clones seleccionados por el SIDT-Extremadura de los cultivares Borba, Cigüentes y Perruno, junto con los procedentes del Banco de Germoplasma de la Vid de Borba (BOBA), Cigüente (CGBA), Marfal (MACC), Mantúo (MTGR) y Perruno (PEMA). - Modelo B (bandas 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 10 y 11): en este zimograma hay unas bandas erráticas que corresponden a los números 3, 5 y 7, y que están representadas con

161 líneas discontinuas. Estas se caracterizan porque en el patrón de una misma muestra pueden estar presentes o ausentes, considerando zimogramas tanto del mismo año como de otra fecha. Los clones que lo presentan son los seleccionados por el SIDT- Extremadura de las variedades Montúa, Eva, junto con Mantúo Jerezano (MJGR), Mantúo (MAGR, MABA), Mantúo Basto o Perruno (PRGR), Eva (EVBA), Beba (BECA, BEHU, BBHU), Chelva (3C01, CHAV, CHCR), Borba (BOCC) y Cigüente (GIBA). - Modelo C (bandas 1, 2, 3, 4, 5, 6, 8, 9, 10 y 11): este patrón isoenzimático presenta el mismo problema de erratismo en las bandas 3, y 5 que el anterior modelo. Este zimograma sólo lo ha presentado una accesión, Perruno Común (PEGR).

Un resumen de los resultados obtenidos es el que aparece en el cuadro n° 8, en el que ya están agrupadas las accesiones según los patrones isoenzimáticos resultantes, señalándose las asociaciones que se han generado.

4.2.2.- Aminoácidos

Se han obtenido y analizado los perfiles amínicos de los mostos considerados en este estudio durante los años 1996 y 1997. Un ejemplo de los aminogramas obtenidos es el que aparece en la figura n° 48.

La composición amínica de un mosto varía a lo largo de la maduración del fruto, y dado que este estudio trata de caracterizar las variedades según su perfil amínico, se ha intentado obviar este factor de variación. Es por ello, que se ha pretendido tomar todas las muestras en el mismo pxmto de maduración, que corresponde a su último y más avanzado estado de maduración. Sin embargo, esto no siempre ha sido posible en todos los casos, como se refleja en el cuadro n° 9. Este hecho hay que tenerlo en cuenta en el momento de interpretar los resultados.

En el anejo 2 se muestran las equivalencias entre grado Brix, grado Baumé y grado alcohólico probable.

162 I

*

Modelo A Modelo B Modelo C

Figura n° 44. Patrones isoenzimáticos de GOT.

Modelo A Modelo B Modelo C

Figura n° 45. Esquema de los zimogramas de GOT

Modelo A Modelo B Modelo C

Figura rf 46. Patrones isoenzimáticos de SOD

2 2 3 3 4 4 5 5 6 6 7 8 9 10 10 10 11 11 TI Modelo A Modelo B Modelo C

Figura n° 47. Esquema de los zimogramas de SOD.

Cuadro n° 8. Resumen de los resultados isoenzimáticos. ' -PER • AcTH co GOT • SOD 1S04 A A A A A PABA- A A A A A 2ALn A A A A A 2T01 A A A A A 2T013 , A A A A A BCBA A A A A A CBCC A A A A A JAGR A A A A A JATO A A A A A JAGU A A A A A 10AL3 A A A A A MOBA A A A A A

JANE A A A C A JENE A A A C A JNNE A A A c A JATN A A A c A

6M015 A C A B A 6M023 A C A B A 6M026 A C A B A 6M033 A C A B A 6M045 A C A B A 8CA2 A C A B A 8CA9 A C A B A 8CA15 A C A B A 8CA19 A C A B A 8CA20 A C A B A 8CA26 A C A B A 8CA31 A C A B A 8CA33 A C A B A 8CA40 A C A B A CGBA A C A B A

BOBA A D B B A

BOCC B C C B B

GIBA D B A B B

- 3AL45 A A F B B 3GU19 A A F B B 3GU34 A A F B B 3ST17 A A F B B 4LS47 A A F B B MABA A A F B B EVBA A A F B B CHCR A A F B B

167 Cuadro n° 8. (Continuación).

PER AcPH CO GOT SOD 3C01 A C A B B 4C01 A C A B B MJGR A C A B B MAGR A C A B B BECA A C A B B BEHU A C A B B BBHU A C A B B CHAV A C A B B PRGR A C A B B

5TA13 B B A A A 5TA19 B B A A A 5TA25 B B A A A 5TA27 B B A A A 5TA210 B B A A A 5TA31 B B A A A 5TA34 B B A A A 5TA35 B B A A A ALCO B B A A A

ALMA B B A A A ALTO B B A A A ALBA B B A A A ALCC B B A A A AJCC B B A A A 7CN1 B B A A A

AVCC A C A A A MACC A C A A A

9CA13 C A A B A 9CA22 C A A B A 9CA25 C A A B ' A 9CA36 C A A B A 9CA37 C A A B A 9CA39 C A A B A

PEOR A C D A C

PEMA A D E C A MTGR A D E C A

168 C:\EZCHROM\CHROM\97121 1.oes - Ch»nnel A

C:\EZCHROM\CHROMV971211.009 - Ch«nn«l B

Figura n" 48. Aminograma correspondiente al clon 6M045 (Borba).

169 Cuadro n° 9. Grados Brix de los mostos en 1996 y 1997. 1 Clon ,1996 1997

1S04 20,5 20,6 2AL11 20,7 21,6 2T01 17,5 20,3 3GU19 16 19,7 3ST17 11,6 20,3 3C01 20,5 19,1 4LS47 11,6 16 4C01 17,3 20 5TA210 25,1 22 5TA35 22,8 21,3 6M023 16,8 21,9 6M045 21,4 22,9 7CN1 21,7 18,4 8CA19 23,7 22,1 8CA40 22,7 23,1 9CA13 15,3 21,4 9CA39 15,6 20,2 10AL3 - 22,7

4.2.2.1.- Composición amínica

Los contenidos amínicos obtenidos en 1996 y 1997 aparecen en los cuadros n° 10 y 11, respectivamente. En dichos cuadros se indican aquellos casos en que analíticamente ha sido imposible eluir separadamente los aminoácidos alanina y citrulina, expresándose su contenido como la suma de ambos.

Considerando los datos de los cuadros n° 10 y 11, se observa que la arginina y la prolina son los dos aminoácidos predominantes en todos los clones considerados a lo largo de los dos años de estudio. En 1996 la arginina es el aminoácido mayoritario en: 1S04 (Pardina), 2AL11 (Blanca Cayetana), 2T01 (Blanca Cayetana), 3GU19 (Montúa), 3ST17 (Montúa), 4LS47 (Eva), 4C01 (Eva), 6M023 (Borba) y 9CA39 (Perruno). Y la prolina en: 3C01 (Chelva), 5TA210 (Alarije), 5TA35 (Alarije), 6M045 (Borba), 7CN1 (Malfar), 8CA19 (Cigüentes), 8CA40 (Cigüentes) y 9CA13 (Perruno). En 1997 la arginina se presenta con una concentración superior en: 2T01 (Blanca Cayetana), 4LS47 (Eva) y 7CN1 (Malfar); mientras que el contenido en proHna es

170 Cuadro n" 10. Contenidos amínicos en 1996 (mg/1)

Asp Thr Ser Asn . . Glu Gly Ala Cit Val Met He Leu Tyr Phe Gaba Om Lys His Arg Pro 1S04 38,91 57,53 38,32 33,48 86,48 5,38 57,96 13,17 42,75 1,92 16,34 40,76 6,26 22,92 36,34 8,10 9,45 48,20 342,22 231,94 2AL11 32, Í2 40,39 28,62 17,91 81,29 2,17 40,20 16,27 36,63 1,75 15,79 45,15 7,20 38,07 42,43 7,00 9,87 39,09 168,38 146,00 2T01 21,18 24,90 39,69 20,85 61,58 6,67 61,10* 0,00 31,55 0.69 8,32 14,96 7,15 10,43 32,25 6,29 5,86 16,45 237,77 144,84 3GU19 24,22 38,79 28,59 29,29 46,38 3,20 38,97 4,75 28,01 3,67 12,17 30,41 2,47 42,91 44,32 4,29 8,22 28,06 161,01 119,92 3ST17 25,18 47,99 38,79 36,55 26,05 5,00 34,87 6,16 22,97 1,21 11,18 20,85 1,38 22,84 22,28 6,95 5,74 29,21 298,87 16,20 3C01 19,99 47,14 34,88 49,37 70,71 7,94 54,24 2,88 41,55 10,56 16,04 37,21 8,74 25,77 76,67 13,83 18,30 32,57 197,67 468,78 4LS47 23,03 45,02 34,52 19.25 25,51 5,07 35,22 3,96 27,32 2,20 13,40 27,95 4,70 28,45 24,85 6,52 10,31 35,30 172,60 25,32 4C01 60,39 61,39 45,93 58.99 98,16 9,23 64,08 11,16 44,37 3,82 19,20 46,63 2,96 33,40 69,95 29,74 24,38 69,48 238,94 230,34 5TA210 14,03 64,33 51,19 8,14 37,71 6,62 52,15 12,09 34,65 4,21 13,63 34,87 2,92 31,07 63,43 7,00 8,12 22,22 155,06 226,16 5TA35 22,13 61,53 46,47 7,64 54,15 3,84 50,28 8,71 28,19 2,78 9,65 25,79 12,66 35,93 54,42 6,16 5,35 17,31 159,62 163,89 6M023 27,64 34,41 26,44 19,56 39,58 4,56 35,68 6,40 26,72 2,64 14,84 29,96 7,11 27,41 31,81 5,97 14,00 49,12 161,15 85,58 6M045 18,03 32,32 25,95 6,89 37,80 2,40 35,71 3.03 22,77 2,14 7,30 16,78 2,43 11,12 50,32 1,89 5,82 25,34 112,45 202,12 7CN1 22,78 36.36 26,53 17,37 29,29 3,41 34,57 7,29 22,63 2,07 8,31 20,56 3,90 30,98 39,14 7,56 5,37 16,55 147,65 191,30 8CA19 35,40 60,39 46,26 9,14 64,08 ,4,93 71,07 5,26 39,36 3,76 9,47 22,46 5,77 19,48 70,78 3,54 9,39 48,79 165,31 286,06 8CA40 20,78 41,45 32,31 6,33 47,60 4,48 41,08 6,85 28,48 2,91 6,87 19,12 3,53 14,41 50,02 2,61 6,98 34,96 220,19 502,79 9CA13 24,51 19,14 30,63 12,87 42,48 3,25 55,19* 0,00 23,76 0,70 6,67 13,06 4,10 11,12 26,31 2,91 4,81 12,36 138,05 194,41 9CA39 31,79 24,45 30,45 9,88 52,23 3,10. 53,74* 0,00 26,81 0,01 9,32 18,16 1.41 19,94 27,06 4,77 6,30 16,31 166,56 146,94

el valor señalado expresa la suma de los aminoácidos Alanina y Citrulina Cuadro n** 11. Contenidos amínicos en 1997 (mg/1)

Asp Thr Ser Asn Glu Gly Ala Cit Val Met lie Leu Tyr Phe Gaba Om Lys His Arg Pro 1S04 36,05 81,24 56,56 31,80 89,64 8,31 64,91 34,82 66.38 11,60 31,18 68,94 42,33 42,96 67,74 17,58 22,39 71.96 200.36 280,87 2ALn 29,99 67,71 50,35 25,95 84,34 10,65 65,97 42,54 64,31 13,25 27,92 61,02 47,85 37,76 67,45 19,47 21,06 63,66 185.59 276,15 2T01 39,59 76,49 55,21 61,06 100,51 9,71 66,02 45,87 65,23 6,62 30,54 66,12 42,22 38,26 69,32 29,74 24,19 70,84 230,17 183,32 3GU19 27,16 69,56 51,30 49,19 82,96 10,01 66,06 17,97 57,02 11,49 22,18 48,45 44,75 21,87 77,51 12,39 17,09 51,04 167,13 335,69 3ST17 26,44 71,22 51,32 38,25 90,18 12,84 68,42 22,77 60,06 15,35 26,48 56,10 53,45 30,11 81,06 11,91 22,31 66,14 182,03 406,87 3C01 49,45 97,89 59,09 34,75 96,07 11,33 69,65 11,20 60,74 13,41 28,44 60,39 35,88 54,31 70,56 41,17 22,51 76.33 211,89 329,86 4LS47 23,44 71,98 46,69 40,25 64,71 8,25 57,64 14,42 54,92 13,03 25,49 49,45 42,31 31,15 62,88 9,76 17,77 49.19 192,95 167,40 4C01 56,58 92,88 55,56 42,95 114,99 12,16 63,11 5,84 64,06 4,78 30,22 64,48 33,37 33,21 81,33 19,66 21,61 71,89 202,63 428,21 5TA210 16,97 63,71 45,89 24,77 44,17 8,76 58,06 17,51 50,59 12,91 27,07 49,84 60,08 60,47 62,38 16,56 13,87 30,37 153,52 189,10 5TA35 28,15 118,48 80,86 41,20 81,01 12,31 86,16 16,76 76,60 10,55 45,65 66,36 74,44 79.00 88,23 16,83 23,17 45,41 372,85 433,12 6M023 28,21 58,28 45,12 15,73 59,69 10,13 58,27 13,67 47,99 14,63 21,85 41,21 22,05 33.14 65.44 4,73 17,89 55,40 160.04 283,50 6M045 28.66 78,36 48,75 18,47 . 91,78 6,95 94,68 8,88 44,39 6,35 10,39 25,14 14,37 18,87 83.54 5,75 8,96 40,10 257.13 376,09 7CN1 13,65 57,95 37,93 12,68 44.03 6,40 49,25 8,59 41,64 8,20 26,82 44,59 49,31 46,83 55,91 12,01 15,03 • 23,45 162.57 92,57 8CA19 34,72 72,24 52,21 15,44 75,32 9,97 85,17 9,60 49,23 11,48 17,66 32,87 18,82 30,18 78,39 5,54 16,44 53,30 178.70 236,79 8CA40 48,20 85,99 59,03 21,83 90,66 11,33 69,14 17,11 53,92 13,64 19,87 42,73 25,02 38,53 77,13 7,25 17.70 57,67 168,45 298,82 9CA13 23,64 56,27 47,98' 19,70 81,44 12,12 75,74* 0,00 57,28 12,99 21,50 43,88 49,06 25,86 59,78 8,28 16.63 43.33 165,28 275,03 9CA39 23,33 55,55 47,78 11,89 78,90 13,58 69,38 4,27 51,13 9,22 23,74 45,53 47,46 28,83 58,60 11,96 16.65 39.38 158,70 261.78 10AL3 27,94 69,77 49,37 18,28 91,36 11,51 66,58 51,21 62,84 14,95 34,23 55,61 52,36 58,90 64,12 14,74 20.44 61.30 165,78 283,26

*: el valor señalado expresa la suma de los aminoácidos Alaniaa y Citrulina mayor en: 1S04 (Pardina), 2AL11 (Blanca Cayetana), 3GU19 (Montúa), 3ST17 (Montúa), 3C01 (Chelva), 4C01 (Eva), 5TA210 (Alaiije), 5TA35 (Alarije), 6M023 (Borba), 6M045 (Borba), 8CA19 (Cigüentes), 8CA40 (Cigüentes), 9CA13 (Perruno), 9CA39 (Perruno) y 10AL3 (Morisca).

El ácido y-aminobutírico, el ácido glutámico, la alanina y la treonina son los aminoácidos mayoritarios tras la arginina y la prolina en los mostos que presentan un valor próximo o superior a los 20 °Brix en los dos años estudio. Sin embargo, hay que señalar en los mostos analizados en 1997 que la alanina se presenta en un menor número de muestras como aminoácido mayoritario tras la arginina y la prolina, respecto a las analizadas en 1996.

4.2.2.2.- Análisis de componentes principales.

Se ha realizado un análisis de componentes principales, que permita diferenciar las variedades estudiadas. En él los objetos son los clones y las variables son los aminoácidos analizados, excluyéndose de este estudio a la alanina, la citrulina, la prolina y la arginina.

Los resultados obtenidos en 1996 aparecen reflejados en la figura n° 49.

La varianza total explicada por las componentes principales obtenidas es de un 64,2%, correspondiendo a la primera de ellas un 51,6% y a la segunda un 12,6%. Los aminoácidos ácido aspártico, asparagina e histidina presentan una fuerte asociación con la componente principal 1, mientras que la tirosina y la serina con la componente principal 2.

Los clones representados en este nuevo plano aparecen dispersos pudiéndose agrupar de la siguiente forma:

- Una amplia nube de puntos constituida por: 1S04 (Pardina), 2AL11 (Blanca Cayetana), 3GU19 (Montúa), 6M023 (Borba), 3ST17 (Montúa), 4LS47 (Eva),

173 8CA40 (Cigüentes), 2T01 (Blanca Cayetana), 7CN1 (Malfar), 6M045 (Borba), 9CA13 (Perruno) y 9CA39 (Perruno) - Un grupo formado por 8CA19 (Cigüentes), 5TA210 (Alarije) y 5TA35 (Alarije) - La accesión 3COI (Chelva), que se encuentra aislada de los demás puntos representados - El clon 4C01 (Eva), que no aparece junto a ningún otro clon y se caracteriza por la fuerte asociación que presenta con la componente principal 1.

También sobre las concentraciones de aminoácidos analizados en cada clon estudiado en 1997 se ha realizado un análisis de componentes principales, apareciendo reflejados los resultados en la figura n° 50.

La varianza total explicada por la componente principal 1 es de un 45,5%, siendo en la componente principal 2 de un 19,6%, ascendiendo por tanto la varianza total explicada por ambas a un 65,1%.

En la figura n" 50 se observa la fiíerte asociación que presenta la isoleucina con la componente principal 1, mientras que el ácido asp ártico y el ácido y-aminobutírico lo están con la componente principal 2.

Sobre la representación gráfica en el nuevo plano bidimensional de los clones estudiados se pueden hacer las siguientes observaciones.

Los clones 5TA35 (Alarije) y 4C01 (Eva) aparecen asociados a la componente principal 1 y 2 respectivamente, constituyendo ambos grupos independientes.

Por otra parte, 5TA210 (Alarije) y 7CN1 (Malfar) aparecen próximos al eje correspondiente a la componente principal 2, alcanzado altos valores negativos en ella.

Los clones 6M023 (Borba), 9CA13 (Perruno), 9CA39 (Perruno) y 4LS47 (Eva) constituyen ima nube de puntos claramente diferenciados del resto de muestras.

174 3C01 5TA210 A A * 5TA35 8CA19 A 1 Gaba S Tyl 4C01 8CA40 -a Phe His' A -3 -2 -1 2T01 (1 4LS47^P ™;*2AL11 A A 6M045 7CN1 3ST17 -1 • 9CA13 4 9CA39 -2

-3

Figura n° 49. Representación del análisis de componentes principales en 1996.

ÍCOI

2T01 8CA40 1 Glu 6M045 A Asp^'*^ is 3C01 Gaba<> Asn'é-Ser. 8CA19 Lys 3GU19 Giíir^k'rvai A 3sri 1S0T Leu 5TA35 2AL11 He —A—- -3 '2 • 1 6M02:^ 4LS47 9CA13^ A 10AL3 GCASa^

5TA210 7CN1 A A-2

-3

Figura n** 50. Representación del análisis de componentes principales en 1997.

En el cuadrante 11 aparecen dispersos los clones de 6M045 (Borba), 8CA19 (Cigüentes), 8CA40 (Cigüentes) y 3GU19 (Montúa), presentando este último una posición próxima a 3ST17 (Montúa). Este clon aparece asociado con 1S04 (Pardina) y 2AL11 (Blanca Cayetana), teniendo 3ST17 (Montúa) unas coordenadas semejantes a la glicina y 1S04 (Pardina) a la omitina. Por otra parte, el clon 2AL11 aparece fiíertemente asociado a la componente principal 1.

La accesión de Morisca (10AL3) muestra valores similares a los del aminoácido tirosina, y aparece aislada del resto de clones representados.

Por último, los clones 2T01 (Blanca Cayetana) y 3C01 (Chelva) aparecen asociados, y situados por encima de la nube de puntos constituida por los aminoácidos analizados.

4.2.2.3.- Cociente prolina rarginina

Huang y Ough (1991) emplearon el cociente prolina: arginina como un índice para comparar variedades. Si calculamos dicho cociente para las muestras consideradas en este estudio en el año 1996 obtenemos los resultados que aparecen en el cuadro n° 12.

Se observan valores muy semejantes para este cociente en los clones 2T01 (Blanca Cayetana) y 1S04 (Pardina), aunque su contenido en sólidos solubles indica un diferente grado de maduración; mientras que en 2AL11 (Blanca Cayetana) la relación prolina:arginina es ligeramente superior a estos dos clones.

Los clones 3ST17 (Montúa) y 4LS47 (Eva) muestran unos cocientes muy inferiores a los demás calculados. Sin embargo, hay que resaltar que ambos clones en el momento de su recolección tenían un bajo grado Brix, acompañado de unas mínimas concentraciones de prolina. Por otra parte, 3GU19 (Montúa) con una relación más elevada, difiere claramente del cociente obtenido por 3COI (Chelva). Por último, 4C01 (Eva), con una baja concentración de sóHdos solubles, presenta ima relación

177 prolina: arginina inferior a la unidad.

Cuadro n°12 . Cociente prolina:arginina en 1996.

CLON COCIENTE (Pro/Arg) GRADOBRIX

1S04 0,68 20,5 2ALn 0,87 20,7 2T01 0,61 17,5 3GU19 0,74 16,0 3ST17 0,05 11,6 3C01 2,37 20,5 4LS47 0,15 11,6 4C01 0,96 17,3 5TA210 1,46 25,1 5TA35 1,03 22,8 6M023 0,53 16,8 6M045 1,80 21,4 7CN1 1,30 21,7 8CA19 1,73 23,7 8CA40 2,28 22,7 9CA13 1,41 15,3 9CA39 0,88 15,6

Para los clones 5TA210 y 5TA35, ambos representantes de la variedad Alarije, los cocientes calculados indican una mayor concentración de prolina frente a arginina, siendo más elevado el correspondiente a 5TA210 que presenta un mayor nivel de azúcar, lo que se traduce en un mayor contenido de prolina.

El clon de Malfar analizado (7CN1) muesfra un mayor contenido de prolina respecto a la arginina, y tiene un cociente muy similar a 5TA210.

El valor del cociente calculado para 6M023 (Borba) es muy distinto al hallado para 6M045 (Borba), pero hay que considerar el diferente estado de maduración de las dos muestras. Sin embargo, este último clon presenta un valor muy próximo al obtenido para 8CA19 (Cigüentes), que por el contrario es inferior a la relación de 8CA40 (Cigüentes).

La variedad Perruno está representada por los clones 9CA13 y 9CA39. Ninguno de ellos alcanzó un alto grado de maduración, y los cocientes calculados a partir de las

178 concentraciones de los aminoácidos considerados apenas presentan relación entre ellos.

Sobre las muestras analizadas en 1997 se ha calculado el cociente pro lina: arginina, cuyos valores aparecen reflejados en el cuadro n° 13.

Cuadro n° 13 . Cociente pro lina: arginina en 1997.

CLON COCIBNTEtPro/Arg) GRAIX)BRD<;.;y.::\

1S04 1,40 20,6 2AL11 1,49 21,6 2T01 0,80 20,3 3GU19 2,01 19,7 3ST17 2,24 20,3 3C01 1,56 19,1 4LS47 0,87 16,0 4C01 2,11 20,0 5TA210 1,23 22,0 5TA35 1,16 21,3 6M023 1,77 21,9 6M045 1,46 22,9 7CN1 0,57 18,4 8CA19 1,33 22,1 8CA40 1,77 23,1 9CA13 1,66 21,4 9CA39 1,65 20,2 10AL3 1,71 22,7

El clon de Pardina (1S04) tiene un cociente muy próximo a 2AL11 (Blanca Cayetana) que, sin embargo, es muy diferente al obtenido por 2T01 (Blanca Cayetana), que indica su mayor contenido en arginina respecto a la pro lina.

Los clones de Montúa, 3GU19 y 3ST17, que alcanzan en esta campaña un mayor contenido en azúcares que el año anterior, presentan relaciones que señalan el doble contenido de prolina respecto a arginina. 4C01 (Eva) tiene un valor intermedio entre estos dos clones, sin embargo, 4LS47 (Eva) cuenta con un cociente menor a la unidad y un bajo grado Brix. Chelva (3COI), que también presenta un bajo grado de madurez, tiene un mayor contenido de prolina frente a la arginina que le confiere un cociente superior a la unidad, pero alejado de los anteriores clones.

179 Las accesiones de Alarije 5TA210 (Alarije) y 5TA35 (Alarije) tienen una relación prolina:arginina muy próxima.

El clon de Malfar (7CN1) durante el año 1997 no alcanza un alto contenido en sólidos solubles, que trae como consecuencia un bajo contenido amínico que se traduce en el menor cociente de todos los obtenidos.

La accesión 6M023 (Borba) con un estado de maduración próximo a 6M045 (Borba), presenta el mismo cociente que 8CA40 (Cigüentes). Por otra parte, 8CA19 (Cigüentes) cuenta con una relación muy semejante a 6M045 (Borba).

Los clones correspondientes a la variedad Perruno (9CA13 y 9CA39) con concentraciones de sólidos solubles próximas, presentan cocientes prácticamente idénticos.

Por último, el único clon estudiado de Morisca (10AL3) tiene un cociente elevado, que expresa la mayor relación de prolina frente a arginina.

4.2.2.4.- Evolución del contenido amínico durante la maduración

Se ha realizado un estudio sobre la evolución de la composición amínica en los mostos de los clones seleccionados, con el objeto de conocer el comportamiento de los distintos aminoácidos durante el proceso de la maduración, y así poder observar si existe alguna diferencia varietal en dicho comportamiento.

Para realizar dicho estudio se han establecido tres momentos en la maduración, el primero de ellos entre 14-16 "Brix (estado I), el segundo entre 17-19 "Brix (estado II) y el tercero a 21,4 °Brix (estado III): Los contenidos en sóHdos solubles de cada clon y etapa establecida aparecen en el cuadro n° 14.

En determinados clones no existen muestras de los tres estados establecidos, ya que en algimos casos el seguimiento de la maduración, se inició en un avanzado estado

180 de la misma, y en otros clones no llegaron a alcanzar un alto grado Brix y se decidió recolectar en ese punto de maduración.

Cuadro n° 14. Estado de maduración. Año 1997 Clon Estado I Estado II Estado m

1304 - 18,7 20,6 2AL1I 15,2 18,5 21,6 2T01 14,7 17,9 20,3 3GU19 15,6 18,2 19,7 3ST17 16,9 18,8 20,3 3C01 14,2 19,1 - 4LS47 15,3 16,0 - 4C01 14,2 18,0 20,0 5TA210 15,6 18,0 22,0 5TA35 15,4 18,7 21,3 6M023 14,7 18,4 21,9 6M045 16,6 19,7 22,9 7CN1 - 18,4 - 8CA19 13,9 18,5 22,1 8CA40 14,8 19,5 23,1 9CA13 15,9 18,6 21,4 9CA39 14,7 18,5 20,2 10AL3 - 17,3 22,7 •

Una muestra de los aminogramas obtenidos en los tres estados contemplados aparece en las figuras n° 51, 52 y 53.

Los contenidos amínicos obtenidos para cada uno de los momentos definidos se encuentran en el cuadro n° 15. Dado que en ciertas ocasiones no se han podido eluir separadamente los aminoácidos alanina y citrulina se muestran siemipre de foraia conjunta los contenidos de ambos. En dicho cuadro también se puede observar que en los clones 1S04 (Pardina), 3C01 (Chelva), 4LS47 (Montúa), 7CN1 (Malfar) y 10AL3 (Morisca) no hay datos en alguno de los tres estados definidos, sin embargo, se ha considerado interesante mostrar las concentraciones halladas en los estados muestreados como un hecho meramente orientativo.

De un primer examen de los datos del cuadro -n° 15, y atendiendo

181 C:\eZCHROM\CHROMN981221.006 -- Channel A

p.16

t 0.10 to.io I

.itllifl ..^^-AÜU

'•°%

C:\EZCHROM\CHROM>Sei 221.006 - Channol B

3.28

D.24

D.20

< 0.1 e Z _J O 0,12 oc a X o.oe o o a. o: Q OL 0.04 .1. .;_i.oaL ^-Jo.oo

Figura n° 51. Aminograma correspondiente al estado de maduración I.

182 C:\E2CHROM\CHROM\39030S.002 -- Chjinr.<=l A J.20|

lo.is

I 0.10 a 0.1O I

^•°%-

. C:\EZCHROM\CHROM\9e030S.002 - Ch«no«l B

Figura n° 52. Aminograma correspondiente al estado de maduración II.

183 C \£5;CHROM\CHROWV9r*030-\.OOS -- Chí»nn«f A

p.is

I O.IO 3.10 I

°-«&

C:\EZOHROMV;HROM\SeCI304.006 — ChaiVMl B

V ó I

Figura n° 53. Aminograma correspondiente al estado de maduración III.

184 Cuadro n° 15. Evolución de la composición amínica durante la maduración en 1997 (mg/1)

Asp Thr Ser Asn 0!u GJy Ala + Cil Val Mel He Leu Tyr Plie Gaba Om Lvs His Arg Pro Estado I ------1S04 Estado I! 29,49 55,94 36,17 31,80 70,49 4,35 79,91 48,79 7.61 17,30 37.94 24,19 27.06 44,93 12,49 13,34 50,70 177,68 165,42 Estado lli 36,05 81,24 56,56 31,80 89,64 8,31 99,73 66,38 11,60 31,18 68.94 42,33 42,96 67,74 17,58 22,39 71,96 200,36 280,87

Estado I 18.83 50.01 31.82 l'i.'l 74.10 4,43 70.81 27,16 3.98 9.16 20,38 20.68 17.83 33.18 9.51 7,06 28.75 271,12 34,12 2AL11 Estado 11 29.49 55.94 36.17 íl.Xít 70.49 4.35 79.91 48,79 7.61 17,30 37.94 24.19 27,06 44.93 12,49 13.34 50,70 177,68 165,42 Estado ni 29.99 67.71 50.35 2?.y5 84,34 10.65 108.50 64.31 13,25 27.92 61.02 47.85 37,76 67,45 19.47 21.06 63,66 1>Í5,59 276,15 Estado I M.tU 67,67 41.14 24.17 145.78 3.93 88.99 37,97 3.22 12.44 27.66 18.65 20.48 40.18 13,78 10,51 47,89 .163.68 48,89 2T01 Estado 11 2f-.(-.l 58.07 34.51 25,64 70. IS 4.65 82.14 49.10 6.48 20.04 38.67 23.70 30,29 48,82 16.28 15.53 50.80 184,86 90,90 Estado IH iV,59 76,49 55.21 61,06 100.51 9,71 111,89 65,23 6.62 30,54 66.12 42.22 38,26 69.32 29.74 24.19 70,84 230.17 183.32 Estado I :i \4 37.40 33.09 Í4.4W ! 05.03 3.85 51.76 17,32 4,45 4.69 10.33 12,23 *'.í!'.' 23,98 4,34 4,25 19,42 i6h.ij(l 34,41 3GU19 Estado II !:.j^; 63.68 45.02 5 1.1)7 79,84 5.29 68.94 37,97 8.96 11.32 23.58 29.43 25.14 59,60 6,62 9.10 44,01 169.09 149.44 Estado 111 :T.I,> 69.56 51.30 4'J.IM 82,96 10.01 84.03 57.02 11,49 22,18 48.45 44,75 :\.^r 77,51 12,39 17.09 51,04 167.1.1 335.69 Estado 1 if,22 79.4 1 60.2 U 22.38 81.30 5.59 88,18 28.81 0.00 8,73 16.40 20.93 15.90 54.22 oA^ 7.20 31.30 257.72 110.38 3ST17 Estado II 1.1.72 64.25 42.55 29.89 41.43 5.09 74.81 37,14 9.69 19.69 33.08 46.09 45.11 37,86 16.67 9.65 24.04 168.35 57,16 Estado 111 26.44 71.22 51,32 38.25 90.18 12.84 91.18 60.06 15.35 26.48 56.10 53,45 10.1 1 81,06 11.91 22.31 66.14 1 S2.03 406.87 Estado I 42,05 8 i,92 41,48 34,61 179,83 5,99 89,13 34,76 4,68 12.49 22,21 18,71 23,71 56,72 18,63 10,33 50,35 321,63 74,63 3C01 Estado 11 49,45 97,89 59,09 34,75 96,07 11,33 80,85 60,74 13,41 28,44 60,39 35,88 54.31 70,56 41,17 22,51 76,33 211,89 329,86

Estado III - • ------• - - Estado 1 22,16 39,18 33,47 21,40 113,49 4,50 62,81 21,59 3,16 7,10 12,79 19,09 11,69 24,44 5,85 5,31 18,18 222,79 71,10 4LS47 Estado 11 23,44 71,98 46.69 40,25 64,71 8.25 72,05 54,92 13.03 25,49 49,45 42,3! 31,15 62,88 9,76 17,77 49,19 192,95 167,40 Estado III ------Estado I 25,39 73,47 43.26 31.11 ¡61.8] 7,14 7t,(>l 30,12 5.5K 12,21 21.98 13.20 21,08 43,16 16.81 9.62 40.96 109.K4 37,11 4C01 Estado 11 21,36 73.91 38,67 14.00 ísí;.7l 6,61 Xj.34 38,30 0.75 13,69 25,80 14.48 19.47 46,27 10.37 9.93 43,92 111.12 149.33 Estado 111 56,58 92.88 55,56 42.95 1 14.99 12,16 68.96 64,06 4.78 30,22 64,48 33.37 33.21 81,33 19.66 21.61 71,89 :> í 428,21 Estado 1 27 M9 74,2 y 5U.S4 .)'>,4.í S5.24 5,34 75.14 29.86 5.92 9,77 20,23 35,49 32.91 33,91 10.33 5,81 16.99 307.18 46,28 5TA210 Estado 11 16,12 54. lU liMl 19.My 22,55 4,67 57.03 29.27 4,90 16.55 24.71 32.77 33,32 36,69 9.02 8.24 16,91 146.95 68.38 Estado III 16,97 6.Í.71 45.ÍÍ9 24.77 44.17 8,76 75,56 50.59 12.91 27.07 49,84 60.08 60,47 62.38 16.56 13.87 30.37 153,52 189,10 Estado I .Í9..52 79,85 59,94 26.62 26.90 5.89 99,33 39.32 1.81 10.52 19,51 25.49 20,27 56,35 5.56 7.46 37,10 292.61 145,52 3TA35 Estado II 26.1 5 66,75 47.93 39.09 69.77 7,28 80.32 43.97 10,55 17.75 31.47 33.42 31,26 56.53 5.99 11.35 44.80 164,50 123,90 Eslado III 2^.15 118.48 80.86 41.20 81.01 12.31 102.93 76.60 10,55 45.65 66,36 74.44 79,00 88.23 16,83 23,17 45,41 372.85 433,12

Subgrupo AI: Subgrupo AIíI: Subgrupo B!l: Subgrupo AII: Subgrupo Bl:

( f ((((<((((((< i ((<( ( ( i ( (. f i ( ( ( i I i ( ( <. ( ( í ( í ( f ( ( ( ( ( ( ( ( ( ( f ( ( ( ( (

Cuadro n** 15. (Continuación).

Asp Thr Ser Asn Glu Gly Ala + Cil Val Met He Leu Tyr Phe Gaba Om Lys His Arg Pro Esiado I 17,43 53,3Ü 42,57 13,32 48,63 5,72 60,19 19,29 4.80 6,61 10.78 7,06 14,03 34,58 -).''(. 6,35 23.56 195,60 56,02 6M023 Estado 11 12,36 34,45 26.49 7.70 38,00 5,83 50,00 16,85 0.00 5,51 9,37 4,85 8.67 30,22 5.11 5,48 23,51 150,08 99,65 Estado m 28.21 58,28 45,12 15.73 59,69 10.13 71.94 47.99 14.63 21.85 41,21 22,05 33,14 65.44 4,73 17.89 55,40 160.04 283.50

Estado I 2-1.7,1 65,01 40.51 14.1'' 90.03 7,11 73.92 27.34 ",.^1 -,'1^ Lí.sn >í_(Á\ I4.yn 48.99 ?.96 (1.73 26,0(1 209.34 89.14 6M045 Estado n ) 1.^(1 72.95 41.36 l'.\-r> 89.48 ii.2c. 74.63 41,08 i2.2if 12.91 25.66 17.ÍI7 27,14 72,02 4.41 12,41 44.54 174,94 182.11 Eslado 111 IKb'' 78.36 48.75 U.47 91,78 0.9? 103,56 44,39 (>,.Í5 10, !9 25.14 14.37 IK.tí? 83,54 5.75 >^.y6 40.1(1 257.13 376.09 Estado 1 ------> - - - 7CN1 Estado U 13,65 57,95 37,93 12,68 44,03 6,40 57,84 41,64 8,20 26,82 44,59 49,31 46,83 55,91 12,01 15,03 23.45 162,57 92,57 Estado UI . ------Estado [ MJM 51.11 39.84 18..i) 4c..» 1^ 5,98 46.18 17.58 3.37 5.83 11.83 7.82 12.65 36.29 4.73 4.91 20.01 191.81 56.45 8CAI9 Estado I! -11 !'.• 68,10 41.42 :Ü,I] X7.76 5,59 70.03 36,36 10,57 11.40 21.30 14.23 23,56 66,67 3,93 11.23 38.95 175.91 142.79 Estado m 14,7: 72,24 52.21 15.44 75.Í: 9,97 94.77 49,23 11.48 17,66 32,87 18,82 30,18 78,39 5.54 16,44 53,30 178.70 236,79 Estado 1 5 0.5 y 75.91 45,12 41.KS lt>1.44 5.86 68.20 28,95 6.08 9.60 16,39 9.87 IV, y 4 47.65 4.53 6.05 28.02 256.íí(, 92.28 8CA40 Eslado U 2K,?y 67,01 42.66 16.45 83.12 5.39 71.03 39,83 9.47 12.02 23,49 14.05 íjO.t.ü 72.39 2.66 9.19 37,68 168.14 190.30 Estado 111 4S,;Ü 85.99 59.03 21.83 yu,c6 11.33 86.25 53.92 13.64 19.87 42,73 25,02 18. .5 3 77,13 7.25 17,70 57,67 168.45 298.82 Eslado I ,u.t;5 50.12 34.16 15.2Í) 1IJ3.1: 4.29 4!.VV 18,32 3.60 5,08 10.61 6.64 12.67 30.73 ;.^:' 4.09 20,38 1 S6.3y 52.77

9CAI3 Estado II 2 ].(.(. 45.99 36.09 (1.87 2'J.N3 8,62 S2.6I 31,08 0.00 7.35 10.76 10.43 11.08 41.97 • 2.20 21,9! 235.16 135,35 Eslado III 2.Í.M 56.27 47.98 [y. 70 SI.44 12,12 7> 7-1 57,28 12.99 21,50 43.88 49,06 25.86 59.78 ^ iíi 16.63 43,33 165.28 275,03 Eslado I 2^})^ V)A>i 34.85 11.62 97.09 5.71 47.39 44,81 2.79 7.45 12.83 19.93 11,08 30,34 6.71 6.02 17.75 269.52 42.12 9CA39 Estado II il.4? ,,2,4-J 44.23 11.37 SO.ó 8 7.61 69,41 46,45 8.01 18.26 32.73 40,27 25,70 55.34 10.47 14.79 >1S.60 195.70 170.37 Estado III ;,Í..Í3 55,r'? 47,78 11.89 7ÍÍ.9Ü 13.58 73.65 51,13 9.22 23.74 45,53 47,46 28.83 58.60 !1,96 16.65 Y)M 158.70 261,78 Estado ¡ ------• - - - - - I0AL3 Estado 11 45,52 51,12 29,03 12,93 53,73 6,91 101,86 32,20 1,34 8,80 13,17 19,90 16,02 59,31 12,99 5,02 32,68 214,87 98,81 Eslado III 27,94 69,77 49,37 18,28 91,36 11,51 117,79 62,84 14.95 34,23 55.61 52,36 58,90 64,12 14,74 20.44 61,30 165,78 283,26

Subgrupo AI: Subgrupo Allí: Subgrupo BU; Subgrupo AU; Subgrupo BI: exclusivamente a los contenidos amínicos del inicio (estado I) y del final del proceso de maduración (estado III), se pueden establecer dos grandes grupos: A y B. El primero de ellos (Grupo A) se caracteriza por presentar un incremento en la concentración amínica durante la maduración, en tanto que en el segundo (Grapo B) se produce una disminución del contenido amínico.

Dentro de los dos grupos mencionados se pueden establecer diferentes subgrupos, según la evolución observada a lo largo del período estudiado. A continuación se comentan los modelos hallados en cada uno de estos dos grupos:

GRUPO A

Subgrupo AI: en los casos incluidos dentro de este modelo al mismo tiempo que va aumentando el nivel de sólidos solubles se produce un incremento paulatino del contenido amínico, de modo que se alcanza el máximo de concentración en el estado III. En la figura n° 54 se representa la evolución del contenido amínico durante la maduración de este subgrupo. Este comportamiento lo presentan los aminoácidos: valina, metionina, isoleucina, leucina, tirosina, ácido y-aminobutírico, lisina, histidina y prolina, en la mayoría de los clones estudiados. Subgrupo AII: en este modelo el máximo de concentración se alcanza en el estado II, tras él se produce un leve descenso, siendo la concentración en el estado III superior a la del I, pero inferior a la del II. Por tanto, el balance neto de la evolución de los aminoácidos durante la maduración es positivo. Para una mejor visualización del comportamiento de este subgrupo se ha representado la evolución del contenido amínico duianXe la maduración del mismo en la figura n° 55. Este modelo de comportamiento se ha observado en los siguientes casos: • Acidoaspártico:3GU19,6M045y8CA19 • Treonina: 9CA39 • Asparagina: 2AL11, 3GU19 y 6M045 • Acido glutámico: 8CA19 • Alanina + Citrulina: 9CA13 • Isoleucina: 6M045

189 • Leucina: 6M045 • Tirosina: 6M045 • Fenilalanina: 3GU19, 3ST17, 6M045 y 8CA40 • Omitina: 3ST17 y 9CA13 • Lisina: 6M045 • Histidina: 6M045 y 9CA39 • Arginina: 3GUI9 Subgrupo AHÍ: al igual que en el modelo AI el máximo de concentración se alcanza en el momento de la madurez, sin embargo, la curva de la evolución presenta un mínimo en el estado 11. En la figura n° 56 se ha representado el comportamiento de este modelo. Se ha hallado este tipo de evolución en los siguientes casos: Acido aspártico: 4C01 y 6M023 Treonina: 2T01, 5TA35, 6M023, 8CA40 y 9CA13 Serina: 2T01, 4C01, 5TA35, 6M023 y 8CA40 Asparagina: 4C01, 6M023 y 9CA39 Acido glutámico: 2AL11, 3ST17, 6M023 y 6M045 Glicina: 2AL11, 3ST17, 4C01, 5TA210, 8CA19 y 8CA40 Alanina + citrulina: 2T01, 3ST17, 5TA210, 5TA35, 6M023 Valina:5TA210y6MO23 Metionina: 5TA210, 6M023 y 9CA13 Isoleucina: 6M023 Leucina: 6M023 Tirosina: 5TA210 y 6M023 Fenilalanina: 4C01, 6M023 y 9CA13 Acido y-aminobutírico: 3ST17 y 6M023 Omitina: 4C01, 5TA210, 8CA19 y 8CA40 Lisina:6M023y9CA13 Histidina: 3ST17, 5TA210 y 6M023 Arginina: 5TA35 y 6M045 Prolina: 3ST17 y 5TA35

190 Figura n° 54. Subgrupo AI Figura n° 55. Subgrupo AII

Figura n° 56. Subgrupo Alil Figura n° 57. Subgrupo BI.

Figura n" 58. Subgrupo BII

GRUPO B

- Subgrupo BI: este modelo se caracteriza por un incremento de la concentración entre los estados I y II, presentándoseun máximo en este último. Tras este valor se produce un gran descenso en el contenido amínico, de modo que en el estado de madurez la concentración es menor que al inicio del período de maduración. La curva de evolución del contenido amínico de este subgrupo se encuentra en la figura n° 57. Este comportamiento se ha encontrado en los siguientes casos: • Acido aspártico: 9CA39 • Asparagina: 8CA19 • Alanina + citrulina: 4C01 • Metionina: 6M045 • Omitina: 6M023 • Arginina:4C01y9CA13 - Subgrupo Bu: en este modelo el primer estado presenta un máximo de concentración, seguido por el mínimo alcanzado en el estado II, alcanzándose en el punto de madurez un valor intemiedio al hallado en las dos fases anteriores. Una representación de la evolución del contenido amínico dentro de este subgrupo se encuentra en la figura n° 58. Se ha encontrado este comportamiento en los siguientes casos: • Acido aspártico: 2T01, 3ST17, 5TA210, 5TA35, 8CA40 y 9CA13 • Treonina: 3ST17 y 5TA210 • Serina:3ST17>5TA210 • Asparagina: 5TA210, 8CA40 y 9CA13 • Acido glutámico: 2T01, 3GU19,4C01, 5TA210, 8CA40, 9CA13 y 9CA39 • Glicina: 6M045 • Metionina: 4C01 • Omitina: 6M045 • Arginina: 2AL11,2T01, 3ST17, 5TA210, 6M023, 8CA19, 8CA40 y 9CA39

193 4.2.2.5.- Incidencia de la fertilización nitrogenada

Siguiendo el calendario de la plantación se realizó una aplicación nitrogenada en el segundo año de estudio, y es por ello que se ha considerado interesante hacer una evaluación de la incidencia de esta práctica sobre la composición amínica.

Para realizar este estudio se han considerado los mostos de aquellos clones que han presentado estados de maduración semejantes durante los dos años de estudio (superiores a los 20 °Brix), analizándose la variación de las concentraciones de los aminoácidos atendiendo fundamentalmente a que en el segundo año se realizó una aplicación nitrogenada.

En las figuras n° 59, 60, 61, 62, 63, 64 y 65 se encuentraa representadas las concentraciones de los aminoácidos analizados en los clones 1S04 (Pardina), 2AL11 (Blanca Cayetana), 5TA210 (Alarije), 5TA35 (Alarije), 6M045 (Borba), 8CA19 (Cigüentes) y 8CA40 (Cigüentes). En ellas, se puede observar que a pesar de las variaciones en las concentraciones de cada aminoácido los clones presentan perfiles semejantes en los dos años de estudio. También se puede apreciar que las concentraciones en el año 1997 son mayores, siendo especialmente notable este incremento para la tirosina en la mayoría de los casos considerados.

Las concentraciones de prolina y arginina presentan grandes variaciones en estos años de estudio, siendo en algunas ocasiones superiores en el año 1996. Por otra parte, en los clones: 1S04 (Pardina) en los aminoácidos ácido aspártico y asparagina; 2AL11 (Blanca Cayetana) en el ácido aspártico y la fenilalanina; 5TA210 (Alarije) en la treonina, serina y ácido y-aminobutírico; y 8CA19 (Cigüentes) en el ácido aspártico; se observan concentraciones muy similares en los dos años de estudio, siendo superiores las de 1996.

Se ha calculado la suma de las concentraciones de todos los aminoácidos analizados para cada año de estudio. Estos resultados están indicados en el cuadro n" 16 y en la figura n° 66 se han representado los valores de cada clon comparándose entre

194 ^ ^ ^ ^ ^ << f < ^ i <<<<(((<((((<(<(((<(( i (<((((<((((((((((((((((( (

Figura n° 59. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 1S04 (mg/1)

250 -

200-

• 1996 150- 01997

100- ^~1 50 I r í Jl n Jl ...n n 0- Jl 1JL É 1 1 Jl 1 fi\Bp Asn Glu Gly Ala Cit Val Met lie Leu Tyr Phe Gabc Orn Lys His Arg Pro Thr Ser

Figura n° 60. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 2AL11 (mg/1)

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Figura n° 61. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 5TA210 (mg/1)

Figura n"* 62. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 5TA35 (mg/1)

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400 350 ^ 300 250 ^ • 1996 200 D1997 150

100 ^

50

O Asp Thr Ser Asn Glu Gly Ala Cit Val Met Leu Tyr Phe Gaba Orn Lys Arg Pro

Figura r\° 63. Comparación de la composición aminica de 1996 y 1997 para 6M045 (mg/1)

Figura n ° 64. Comparación de la composición aminica de 1996 y 1997 para 8CA19 (mg/1)

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Figura n° 65. Comparación de la composición amínica de 1996 y 1997 para 8CA40 (mg/1)

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Cuadro n° 16. Suma de todos los aminoácidos analizados en ! 996 y 1997 (mg/1)

1S04 2ALI1 2T01 3GU19 3ST17 3COI 4LS47 4C0I 5T.A210 5TA35 6M023 6M045 7CNi 8CAÍ9 8CA40 9CA13 9CA39 1996 1138,43 816,33 752.54 699,66 680,24 [234,86 570,47 Í222,53 849,59 776,53 650,58 622,60 673,59 980,70 1093,75 626,33 649.20 1997 1327.63 1263,00 1311.05 1240,81 1393,31 1434,93 1043,66 1499,52 1006,60 1797,14 1056,95 1267.60 809,40 1084,06 1224,02 1095,76 1057,67

2000-,

1800-

1600-

1400-

1200- 1 • 1996 1000- ~~ 1 " DI 997 800 • • 1 600 - i 1 1 1 400 • 1 1 200 • 1 1 1 1 1S04 2AL11 2T01 3GU1E 3ST17 3C01 4LS47 4C01 5TA210 5TA35 6M023 6M04Í 7CN1 BCA19 8CA4C 9CA1C 9CA39

Figura n° 66. Comparación de la suma de todos los aminoácidos analizados en 1996 y 1997 (mg/1) los dos años de estudio.

En 1996 los mayores contenidos totales en aminoácidos se han obtenido para los clones 3C01 (Chelva) y 4C01 (Eva) con 1234,86 mg/1 y 1222,53 mg/1, respectivamente. Los menores valores son para 4LS47 (Eva) con 570,47 mg/1. En 1997 el máximo contenido es para 5TA35 (Alarije) con 1797,14 mg/1 y el menor valor es para 7CN1 (Malfar) con 809,4 mg/1. En todos los clones estudiados se comprueba que tras la aportación nitrogenada se produce un incremento en el contenido amínico total, siendo muy destacable el de 5TA35 (Alarije).

También se ha calculado el contenido en nitrógeno amínico total (NAT), a partir de la aportación de nitrógeno de cada aminoácido. Estos datos aparecen en el cuadro n° 17, y en la figura n° 67 se representan los valores obtenidos de cada clon para los dos años de estudio.

En 1996 el NAT varía entre 215,99 mgN/1 de 1S04 (Pardina) y 103,07 mgN/1 de 6M045 (Borba). En 1997 el máximo valor corresponde a 5TA35 (Alarije) con 300,63 mgN/1 y el menor a 6M023 (Borba) con 118,95 mgN/1. En 1S04 (Pardina) y 6M023 (Borba) se observa una disminución en el contenido de NAT en 1997 respecto al año anterior, presentando ambos clones valores muy próximos en los dos momentos de estudio.

La proHna es un aminoácido difícilmente metabolizable por las levaduras que llevan a cabo la fermentación de los mostos, es por esto que también se evalúan los contenidos de aminoácidos y/o nitrógeno sin considerar a este aminoácido.

Se ha calculado la suma total de los aminoácidos anaHzados menos la proHna, cuyos resultados aparecen en el cuadro n° 18, y en la figura n° 68 se representan los valores obtenidos cada año para cada clon. En esta figura se observa que en todos los casos las concentraciones son mayores en el año en que se reaüza la fertilización nitrogenada.

205 El máximo valor en 1996 lo presenta 4C01 (Eva) con 992,19 mg/1 y el mínimo 7CN1 (Malfar) con 420,48 mg/1; en 1997 5TA35 (Alarije) muestra el mayor contenido con 1364,02 mg/1 y el menor 6M023 (Borba) con 716,83 mg/1.

Según Ough et al. (1990) se ha calculado el nitrógeno asimilable a partir de la aportación nitrogenada de cada aminoácido, excluyendo la prolina. Los resultados se muestran en el cuadro n° 19 y se han representando en la figura n" 69.

El máximo valor en 1996 lo tiene 1S04 (Pardina) con 187,77 mgN/1 y el mínimo 6M045 (Borba) con 78,48 mgN/1; en 1997 el mayor contenido lo presenta 5TA35 (Alarije) con 247,95 mgN/1 y el menor 6M023 (Borba) con 99,49 mgN/1. En la figura n° 69 se observa que en los clones 1S04 (Pardina), 6M023 (Borba) y 4C01 (Eva) el nitrógeno asimilable es mayor en 1996 que en 1997, teniendo el último clon indicado contenidos muy similares en los dos años de estudio.

4.3.- Caracterización agronómica: fenología. 4.3.1.- Ciclo vegetativo

Se ha realizado el seguimiento fenológico de los estados definidos por Baggiolini (1952) y Baillod y Baggiolini (1993) hasta el momento de la caída de la hoja (estado P) durante los años 1996, 1997, 1998 y 1999, apareciendo representada la duración de cada uno de estos estados en las figuras n° 70, 71, 72 y 73. El estado L (racimo cerrado) no aparece en dichas figuras por la dificultad que presentó el reaUzar la observación fenológica de este estado. Las fechas aparecen expresadas como el número de días transcurridos desde el 1 de marzo, asignándole a éste el valor 0.

En 1996 (figura n° 70) la brotación se inicia el 18 de marzo en el clon 9CA37 (Perruno), existiendo un intervalo de 14 días entre este clon y el último que inicia este estado fenológico (5TA27-Alarije).

Los primeros estados de desarrollo (B, C, D, E, F) se caracterizan por su corta duración. La yema de algodón (estado B) se desarrolla durante xmos 4, 5 ó 6 días,

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Cuadro r\° 17. Nitrógeno amínico total en 1996yl997(mgN/l)

1S04 2AL11 2TOi 3GUÍ9 3ST17 3C01 4LS47 4C01 5TA2Í0 5TA35 6M023 6M045 7CN1 8CAÍ9 8CA40 9CA13 9CA39 1996 215,99 137.92 í 44,66 123,14 150.45 200,44 111,12 214,06 139,15 128,93 120,22 103,07 115,38 16iJ9 183,10 107,71 116,01 1997 212,55 200.21 219,91 195.41 217.46 23L92 174,98 236,60 157,44 300,63 118,95 214,19 133.82 177,55 191.75 173,97 166,83

• 1996 DI 997 DL 1S04 2AL11 2T01 3GU19 3ST17 3C01 4LS47 4C01 5TA210 5TA35 6M023 6M045 7CN1 SCAIQ 8CA40 9CA1M3 9CA39

Figura n° 67. Comparación de! contenido en nitrógeno amínico total en 1996 y 1997 (mgN/1)

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Cuadro n° 18, Suma de todos los aminoácidos analizados menos la prolina en 1996 y 1997 (mg/1)

1S04 2AL11 2T01 3GU19 3ST17 3C01 4LS47 4C01 5TA210 5TA35 6M023 6M045 7CN1 8CA19 8CA40 9CA13 9CA39 1996 906,49 670,34 607,70 579,74 664.04 766,08 545,15 992,19 623,42 612,64 482,30 565,00 420,48 694,64 590,97 431.92 502,26 1997 1046,76 986,84 1127.73 905,13 986,43 1105,07 876,26 1071,31 817.50 1364,02 716.83 773,45 891,51 847,28 925.20 820.73 795,89

1400- r~i 1200 •

1000-

• 1996 800- Pl D1997

600 •

400 •

200-

0 - 1S04 2AL11 2T01 3G J19 3ST17 3C01 4L£>4 7 4C01 5TA21 } 5TA35 6M02C 6M045 7CN1 6CA19 8CA40 9CA13 9CA39

Figuran" 68. Comparación de la suma de todos los aminoácidos analizados menos la prolina en 1996 y 1997 (mg/1)

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Cuadi-0 n° 19. Nitrógeno asimilable en 1996 y 1997 (mgN/1)

1S04 2AL11 2T0t 3GU19 3ST17 3C01 4LS47 4C01 5TA2 i 0 5TA35 6M023 6M045 7CN] 8CA19 8CA40 9CAI3 9CA39 1996 187,77 120,16 127,04 i 08,56 148,48 143,42 108,04 186,04 111,65 108,99 109,81 78,48 92,12 126,59 121,94 84,06 98,14 199? 178,39 166,62 197,62 ¡54,57 167,97 191,80 154,62 184,51 134,43 247,95 99,49 168,44 122,56 148.75 155,40 140,51 ! 34,99

300

250 -

200

• 1996 150 - D1997

100-

50 •

O liiiM1S04 2AL11 2T01 3GU19 3ST1? 3C01 4LS47 4C01 i5TA210 5TA35 6M023 6M045 7CN1 8CA19 8CA40 9CA13 9CA39

Figura n° 69. Comparación del contenido en nitrógeno asimilable en 1996 y 1997 (mgN/1)

QA IB DC DD lE IF ÍG DH II IJ DK IM IN DP

Figura n" 70. Ciclo vegetativo en 1996. momento en el que se inicia el siguiente estado, punta verde (estado C), que tiene ima duración aproximada de 4 días. La salida de hojas (estado D) también se produce sobre unos 3 ó 4 días, pasando inmediatamente a extenderse las hojas (estado E). Tampoco este estado fenológico abarca un largo período de tiempo, pues en unos 3 días comienzan a hacerse visibles los racimos (estado F) prolongándose esta situación 3 ó 4 días generalmente.

Hay que señalar que la única diferencia destacable entre los cultivares estudiados en estas primeras fases de desarrollo se produce en el estado E, donde los clones de la variedad Perruno manifiestan una tendencia a incrementar la duración de este estado (7-8 días) respecto a los demás.

Los estados fenológicos G (racimos (inflorescencias) separados) y H (botones florales separados) son los dos estados de mayor duración que se desarrollan antes de la floración, siendo más largo el período correspondiente a los botones florales separados, con una duración media para todos los cultivares de 21, 22 ó 23 días. Por el contrarío, el estado G se mantiene aproximadamente unos 14-15 días.

El inicio de la floración se produce escalonadamente a lo largo de 10 días. Los prímeros clones que manifiestan este nuevo estado corresponden a los cultivares Cigüentes y Borba, mientras que los más retrasados pertenecen a la varíedad Alarije.

El cuajado de la flor (estado J) generalmente se produce a los 5 días de haberse iniciado la floración, alcanzando el grano el tamaño guisante (estado K) después de unos 11-13 días, aproximadamente.

El período que abarca desde el momento en que el grano adquiere el tamaño guisante hasta que se produce el envero puede ser muy variable para cada clon. Así 8CA33 (Cigüentes) sólo necesita 28 días para que en él se produzcan los cambios fisiológicos que determinan el envero, mientras que 2T013 (Blanca Cayetana) requiere 68 días para el mismo proceso. Alrededor de 50 a 55 días es el período más habitual que precisan los clones estudiados para alcanzar el siguiente estado fenológico.

215 También el tiempo requerido por cada clon para alcanzar su madurez, definida en este trabajo con un contenido en sólidos solubles entre _21,4 °Brix y 23,1 "Brix, ha sido muy variable. Así el clon 5TA27 (Alarije) sólo necesitó 23 días para llegar a la madurez, mientras que tuvieron que transcurrir 7 semanas más para que 6M026 (Borba) alcanzase dicho estado.

En este punto hay que señalar que en la campaña de 1996 hubo problemas en algunos clones para alcanzar el contenido en sólidos solubles establecidos como pxmto de madurez. Esto podría ser debido al fiíerte ataque de mosquito verde (Empoasca spp.) que se produjo durante dicha campaña y que según algimos autores (Ruiz Castro y Mendizábal, 1939; Toledo, 1992) ocasiona dificultades para que el racimo llegue a madurar bien. En el cuadro n° 20 aparece indicado el contenido en azúcar que presentaban los mostos en el momento en que se consideró su madurez.

El tiempo que transcurre desde que se produce la madurez del íiuto (estado N) hasta la caída de las hojas (estado P) tiene marcado un cierto carácter varietal. Así se observa una rápida caída de las hojas por parte de la variedad Perruno, mientras que Alarije requiere un intervalo más largo para pasar a este estado fenológico. Sin embargo, es destacable como entre los primeros clones que pierden la hoja se sitúa 3ST17 (Montúa), 6M023 y 6M026 ambos correspondientes a la variedad Borba y 4LS47 (Eva), y entre los últimos en alcanzar este estado también se encuentran 3C01 (Chelva)y4C01(Eva).

En 1997 (figura n° 71) hay un intervalo de 11 días entre el primer clon que inicia la brotación (9CA25-Perruno) y el último (10AL3-Morisca). En este año hay que destacar la precocidad con que se produce la brotación, a principios del mes de marzo, respecto a los otros años de estudio.

Los estados fenológicos B, C, D, E y F también este año se desarrollan en cortos periodos de tiempo. El estado B tiene ima duración media de 3 días. El tiempo que transcurre estando la yema en punta verde es de unos 4 a 6 días. Entre 5 y 6 días se requieren para observar las primeras hojas completamente extendidas. Y para la

216 Cuadro n° 20. Campaña 1996: grado Brix de los mostos en su momento de madurez

Variedad Tipo Clave Procedencia ''Brix

Pardina Blanca IS04 La Orden 20,5 Cayetana Blanca 2ALn La Orden 20,7 Cayetana Blanca 2T01 La Orden 17,5 Cayetana Blanca 2T013 La Orden 19,5 Montúa Blanca 3AL45 La Orden 13,6 Montúa Blanca 3GU19 La Orden 16 Montúa Blanca 3GU34 La Orden 14,3 Montúa Blanca 3ST17 La Orden 11,6 Chelva Blanca 3C01 La Orden 20,5 Eva Blanca 4LS47 La Orden 11,6 Eva Blanca 4C01 La Orden 17,3 Alarije Blanca 5TA13 La Orden 21,4 Alarije Blanca 5TAI9 La Orden 21,4 Alarije Blanca 5TA25 La Orden 21,4 Alarije Blanca 5TA27 La Orden 21,8 Alarije Blanca 5TA210 La Orden 25,1 Alarije Blanca 5TA31 La Orden 21,4 . Alarije Blanca 5TA34 La Orden 23,5 Alarije Blanca 5TA35 La Orden 22,8 Borba Blanca 6M015 La Orden 20,9 Borba Blanca 6M023 La Orden 16,8 Borba Blanca 6M026 La Orden 20,4 Borba Blanca 6M033 La Orden 21,0 Borba Blanca 6M045 La Orden 21,4 Borba Blanca 6M047 " La Orden 23,5 Malfar Blanca 7CN1 Casablanca 21,7 Cigüentes Blanca 8CA2 La Orden 21,8 Cigüentes Blanca 8CA9 La Orden 21,4 Cigüentes Blanca 8CA15 La Orden 21,8 Cigüentes Blanca 8CA19 La Orden 23,7 Cigüentes Blanca 8CA20 La Orden 21,7 Cigüentes Blanca 8CA26 La Orden 21,8 Cigüentes Blanca 8CA31 La Orden 22,6 Cigüentes Blanca 8CA33 La Orden 22,3 Cigüentes Blanca 8CA40 La Orden 22,7 Perruno Blanca 9CA13 La Orden 15,3 Perruno Blanca 9CA22 La Orden 16,2 Perruno Blanca 9CA25 La Orden 19,1 Perruno Blanca 9CA36 La Orden 16,1 Perruno Blanca 9CA37 La Orden 21,0 Perruno Blanca 9CA39 La Orden 15,6

217 aparición de los racimos (inflorescencias) son necesarios entre 5 y 7 días, desarrollándose este estado en unos 4-6 días.

También es destacable en 1997 el mayor número de días que necesitan la mayoría de los clones de Perruno, respecto a los demás, para pasar del estado E al F.

La separación de los racimos (inflorescencias) (estado G) se desarrolla en un corto período de tiempo si se compara con el año anterior. Así la duración media es de 6 a 8 días. Sin embargo, hay algunas excepciones entre los clones de Perruno (9CA13, 9CA25, 9CA37 y 9CA39), de Blanca Cayetana (2AL11), Montúa (3GU19) y Alarije (5TA13) en los que este estado se prolonga entre 10 y 14 días.

La separación de los botones florales (estado H) se produce a lo largo de irnos 12-14 días, siendo este el estado que mayor duración tiene entre los que se suceden antes de la floración. Sin embargo, entre algunos clones de Perruno (9CA13, 9CA25 y 9CA39) el estado G transcurre durante un mayor número de días que el estado H.

La floración se desarrolla a lo largo de 7-8 días. Los primeros clones que empiezan a perder la corola corresponden a los cultivares de Cigüentes y Perruno, transcurriendo 11 días hasta que los últimos inician esta fase, 5TA34 (Alarije), 2T01 (Blanca Cayetana) y 3 AL45 (Montúa).

Desde que se produce el cuajado del fruto (estado J) hasta que el grano alcanza el denominado tamaño guisante (estado K) transcurren unos 13 días en la mayoría de los casos estudiados.

El tiempo necesario para que en el fhito se produzcan los cambios fisiológicos correspondientes al envero, es mucho más prolongado en 1997 que en 1996, y también muy variable entre clones. Así, 8CA26 (Cigüentes) sólo precisa 42 días para manifestar las características del envero y 1S04 (Pardina) necesita 81 días.

El proceso de maduración de nuevo manifiesta grandes diferencias entre los

--218 10AL3 9CA39 9CA37 9CA36 9CA25 9CA22 9CA13 8CA40 8CA33 8CA31 8CA26 8CA20 8CA19 8CA15 8CA9 lA 8CA2 IB 7CN1 DC 6M047 DD 6M045 lE 6M033 IF IG DH II IJ DK IM IN PP

Figura n'' 71. Ciclo vegetativo en 1997. clones estudiados, por ejemplo 5TA34 (Alarije) desde que envera hasta que alcanza la madxirez sólo precisa 24 días, mientras que deben transcurrir 55 días más hasta que 3GU34 (Montúa) llega a ese punto.

Los contenidos en sólidos solubles que presentaron los mostos en la campaña de 1997 aparecen reflejados en el cuadro n° 21. En él se puede observar que hay clones que no alcanzan contenidos en sólidos solubles entre 21,4 y 23,1 °Brix, obteniéndose concentraciones en tomo a los 16 "Brix (4LS47 (Eva) y 3GU34 (Montúa)), o próximas a los 19-20 °Brix.

El número de días transcurridos desde que el fruto alcanza la madurez hasta el inicio de la caída de la hoja también presenta grandes diferencias entre algunos cultivares. En algunos clones de Perruno (9CA25, 9CA37 y 9CA39) sólo transcurren 59 días hasta alcanzar el estado P, mientras en otros como 6M033 (Borba), 8CA2 (Cigüentes) y 8CA9 (Cigüentes) requieren casi 10 semanas más hasta que se produce la caída de la hoja.

La brotación en 1998 (figura n° 72) se desarrolla en todos los clones en un intervalo de 8 días, iniciándose el 8 de marzo en 9CA36 (Perruno).

Los. siguientes estados fenológicos hasta la aparición de los racimos, se producen de nuevo de una manera rápida no superando en ningún caso su duración media la semana. De todas estas fases las correspondientes a la punta de algodón (estado B) y racimos visibles (estado F) son las que se desarrollan en un período de tiempo medio más largo (7 días), mientras que los estados C, D y E tienen una duración media de 4 a 5 días.

El estado fenológico G se prolonga aproximadamente durante 10 días, siendo. inmediatamente seguido por la separación de los botones florales (estado H) que puede durar como media entre 16 y 26 días, siendo de nuevo el estado más prolongado antes de la floración.

221 Cuadro n° 21. Campaña 1997: grado Brix de los mostos en su momento de madurez

Variedad :' Tipo Clave Procedencia "Brix

Pardina Blanca 1S04 La Orden 20,6 Cayetana Blanca 2AL11 La Orden 21,6 Cayetana Blanca 2T01 La Orden 20,3 Cayetana Blanca 2T013 La Orden 21,4 Montúa Blanca 3AL45 La Orden 19,2 Montúa Blanca 3GU19 La Orden 19,7 Montúa Blanca 3GU34 La Orden 16,3 Montúa Blanca 3ST17 La Orden 20,3 Chelva Blanca 3C01 La Orden 19,1 Eva Blanca 4LS47 La Orden 16,0 Eva Blanca 4C01 La Orden 20,0 Alarije Blanca 5TA13 La Orden 21,2 Alarije Blanca 5TA19 La Orden 20,3 Alarije Blanca 5TA25 La Orden 23,0 Alarije Blanca 5TA27 La Orden 21,9 Alarije Blanca 5TA210 La Orden 22,0 Alarije Blanca 5TA31 La Orden 21,4 Alarije Blanca 5TA34 La Orden 22,0 Alarije Blanca 5TA35 La Orden 21,3 Borba Blanca 6M015 La Orden 21,9 Borba Blanca 6M023 La Orden 21,9 Borba Blanca 6M026 La Orden 22,6 Borba Blanca 6M033 La Orden 22,3 Borba Blanca 6M045 La Orden 22,9 Borba Blanca 6M047 La Orden 23,2 Malfar Blanca 7CN1 Casablanca 18,4 Cigüentes Blanca 8CA2 La Orden 22,4 Cigüentes Blanca 8CA9 La Orden 22,8 Cigüentes Blanca 8CA15 La Orden 22,4 Cigüentes Blanca 8CA19 La Orden - 22,1 Cigüentes Blanca 8CA20 La Orden 21,7 Cigüentes Blanca 8CA26 La Orden 21,6 Cigüentes • Blanca 8CA31 La Orden 22,7 Cigüentes Blanca 8CA33 La Orden -23,8 Cigüentes • Blanca 8CA40 La Orden 23,1 Perruno Blanca 9CA13 La Orden 21,4 Perruno Blanca 9CA22 La Orden 19,5 Perruno Blanca 9CA25 La Orden 18,9 Perruno Blanca 9CA36 La Orden 21,3 Perruno Blanca 9CA37 La Orden 20,0 Perruno Blanca 9CA39 La Orden 20,2 Morisca Rosada 10AL3 Mayordomo 22,7

222 QA IB nc DD lE IF IG DH II IJ DK IM IN DP

Figura n° 72. Ciclo vegetativo en 1998.

La floración se inicia en algunos 'clones de Perruno, Borba y Cigüentes, produciéndose a lo largo de los 9 días siguientes la caída del capuchón de la flor en los demás cultivares. La duración media de este estado es de 8 días.

Desde que se produce el engrosamiento del ovario (estado J) hasta que el grano alcanza el tamaño guisante (estado K), transcurren aproximadamente unos 14 días. Sin embargo, el período comprendido desde que el grano adquiere ese tamaño hasta que en él se produce el envero (estado M) es mucho más prolongado, aunque de nuevo muy variable para cada clon; así sólo necesita 32 días 8CA2 (Cigüentes) para alcanzar el envero y 2T013 (Blanca Cayetana) requiere 5 semanas más para llegar a dicho estado. Hay que señalar que la duración de este estado fenológico es más próxima a la indicada en 1996 que a la observada en 1997.

También el número de días necesarios para que el fruto alcance la maduración es muy diferente según los clones considerados. Así hay una diferencia de 40 días entre el primer clon que alcanza una concentración de azúcares entre 21,4 y 23,1 °Brix (5TA34-Alarije) y los últimos, 6M033 y 6M026 (Borba).

En el cuadro n° 22 se indica el contenido en sólidos solubles de los mostos de cada clon en el momento que se ha considerado como su madurez. La mayoría de los clones estudiados presentan un contenido en azúcares entre 21,4 y 23,1 °Brix, sin embargo, hay algunos que no alcanzan esta concentración en sólidos solubles y muestran valores entorno a los 18-19-20 "Brix.

El número de días transcurridos desde que alcanza la madurez el fruto hasta que se produce la pérdida de la hoja, de nuevo es menor en los clones correspondientes a la variedad Perruno, correspondiendo el mayor período a algunas accesiones de Cigüentes (8CA19 y 8CA26).

En 1999 (figura n° 73) las observaciones fenológicas sólo se reahzaron hasta el mes de mayo, y por tanto sólo se disponen de los datos correspondientes hasta la floración.

225 Cuadro n° 22. Campaña 1998: grado Brix de los mostos en su momento de madurez

Variedad Tipo Clave • Procedencia •"Biix

Pardina Blanca 1S04 La Orden 20,5 Cayetana Blanca 2AL11 La Orden 21,0 Cayetana Blanca 2T01 La Orden 21,4 Cayetana Blanca 2T013 La Orden 20,1 Montúa Blanca 3AL45 La Orden 19,2 Montúa Blanca 3GU19 La Orden 19,5 Montúa Blanca 3GU34 La Orden 18,0 Montúa Blanca 3ST17 La Orden 19,5 Eva Blanca 4LS47 La Orden 18,1 Alarije Blanca 5TA13 La Orden 21,6 Alarije Blanca 5TA19 La Orden 22,4 Alarije Blanca 5TA25 La Orden 23,3 Alarije Blanca 5TA27 La Orden 23,1 Alarije Blanca 5TA210 La Orden 21,9 Alarije Blanca 5TA31 La Orden 22,6 Alarije Blanca 5TA34 La Orden 22,2 Alarije Blanca 5TA35 La Orden 22,7 Borba Blanca 6M015 La Orden 21,5 Borba Blanca 6M023 La Orden 23,5 Borba Blanca 6M026 La Orden 21,6 Borba Blanca ' 6M033 La Orden 21,1 Borba Blanca 6M045 La Orden 21,4 Borba Blanca 6M047 La Orden 21,7 Malfar Blanca 7CN1 Casablanca 21,0 Cigüentes Blanca 8CA2 La Orden 22,1 Cigüentes Blanca 8CA9 La Orden 21,4 Cigüentes Blanca 8CA15 La Orden 21,6 Cigüentes Blanca 8CA19 La Orden 22,3 Cigüentes Blanca 8CA20 La Orden 22,7 . Cigüentes Blanca 8CA26 La Orden 22,2 Cigüentes Blanca 8CA31 La Orden 21,8 Cigüentes Blanca 8CA33 La Orden 21,7 . Cigüentes Blanca 8CA40 La Orden 22,5 Perruno Blanca 9CA13 La Orden 19,9 Perruno Blanca 9CA22 La Orden 18.7 Perruno Blanca 9CA25 La Orden 19,0 Perruno Blanca 9CA36 La Orden 20,0 ; Perruno Blanca 9CA37 La Orden 20,1 Perruno Blanca 9CA39 La Orden 18,5

226 9CA39 9CA37 9CA36 9CA25 sxs 9CA22 •WTTW 9CA13 8CA40 8CA33 r^oBo: 8CA31 IBPM • 8CA26 311^ 8CA20 11111,1 8CA19 8CA15 :siM} 8CA9 8CA2 7CN1 wmn • 6M047 t HHI i OA 6M045 "mi -J IB 6M033 • C

6M026 :@BC • D lE 6M023 IF 6M015 IG 5TA35 aH 5TA34 i^^^nn^ 5TA31 t, Mili 5TA210 5TA27 :oo 5TA25 5TA19 :^^H: 5TA13 -^rm 4LS47 Eftai 3ST17 3GU34

3GU19 JIMJJ. 3AL45 :s\ 2T013 311] 2T01 as 2AL11

1S04 SU]

50 100 150 200 250 300 350

Figura n° 73. Ciclo vegetativo en 1999.

La brotación comienza el día 12 de marzo en el clon de Perruno 9CA25 y se prolonga durante 19 días, momento en que inician el desborre los clones de Blanca Cayetana, 2T01 y 2T013, y de Cigüentes, 8CA2.

El estado B (yema de algodón) para la mayoría de los clones considerados tiene una duración próxima a los 5 días. Sin embargo, es destacable como en algunos clones este estado se prolonga entre 10 y 12 días: 4LS47 (Eva), 5TA19 (Alarije), 5TA27 (Alarije), 5TA31 (Alarije), 5TA34 (Alarije), 5TA35 (Alarije), 6M023 (Borba), 6M047 (Borba), 8CA9 (Cigüentes) y 8CA33 (Cigüentes).

Los siguientes estados fenológicos que van desde que la yema en punta verde (estado C) hasta la aparición de racimos (estado F) de nuevo se caracterizan por su corta duración. Los estados C, D y E se mantienen aproximadamente durante 3 días, mientras que F se prolonga unos 5 días.

La separación de racimos (inflorescencias) (estado G) se desarrolla aproximadamente en una semana en un elevado número de clones, aunque este período se puede ver incrementado en algunos de ellos.

El estado H (botones florales separados) es el de mayor duración entre los estados sucedidos antes de la floración, llegando a transcurrir entre 22 y 29 días.

Es destacable como en este año la floración se inicia prácticamente en todos los clones en 3 días, quedando sólo 4 clones fuera de este intervalo (3GU19-Montúa, 6M045-Borba, 6M047-Borba y 9CA13-Perruno), pero cuyas fechas de inicio de floración no se prolongan más de 3 días respecto al resto de los casos considerados.

4.3.2.- Estados fenológicos

Sobre las fechas de brotación, floración, envero, maduración, caída de la hoja y el período floración-envero se ha realizado un anáhsis de varianza aplicando el test de Duncan al 5%, considerándose como factor la variedad.

229 Por tanto, los elementos estudiados han sido: Pardina, Blanca Cayetana, Alarije, Borba, Malfar, Cigüentes, Perruno, diferenciando además entre Montúa, Chelva y los dos clones de Eva (4C01 y 4LS47) como consecuencia de los problemas de homonimias y sinonimias detectados entre estas accesiones mediante los métodos de caracterización expuestos en este trabajo.

4.3.2.1.- Brotacióa

Las fechas medias de brotación de cada variedad durante los cuatro años de estudio aparecen indicadas en el cuadro n° 23. Dichas fechas aparecen expresadas como el número de días transcurridos desde el 1 de marzo. Aquellas medias que tienen la misma letra no muestran diferencias significativas entre sí al nivel del 5%.

Cuadro ñ° 23. Fecha media de brotacióh de cada variedad.

1996 1997 1998 1999 Variedad Media Variedad Media Variedad Media Variedad Media Eva(4C01) 18,2'' Perruno AX Perruno 9,8' Perruno 13,2' Perruno nX Malfar 7,4'' Malfar 10,8'' Alarije 20,3'' Chelva 19,0'' Eva(4C01) 7,8"" Cigüentes B,0" Eva (4LS47) 21,0''" Malfar • 23,2'' Cigüentes 8,1" Borba 13,1"'' Borba 22,0" Cigüentes 24,3' Chelva 8,2" Alarije 13,6''" Malfar 24,0'' Borba 25,1'^" Borba 8,3"^ Cayetana 13,7" Cigüentes 24,4" Montúa 25,5"^ Montúa 8,8"° Eva (4LS47) 13,8" Pardina 27,3" Eva (4LS47) 25,9'' Pardina 9,rf Pardina 13,9" Montúa 27,8" Cayetana 26,8' Cayetana 9,rf Montúa 14,1" Cayetana 28,6" Pardina 28,9^ Alarije 9,7^8 Chelva - Chelva - Alarije 28,9'' Eva(4LS47) 10,18 Eva(4C01) - Eva(4C01) - Morisca - Morisca n,2^ Morisca - Morisca -

La brotación de los cultivares considerados se produce a mediados o finales del mes de marzo, excepto en 1997, que se inicia dicho estado sobre el 6 de marzo y finahza el 14 del mismo mes. El intervalo en que se desarrolla el desborre de todas las variedades es variable en función del año de estudio, así en 1998 solamente se precisan 4 días para que todos los cultivares se encuentren en estado B, mientras que en 1997 son 8, en 1996 son 11, o en 1999 son 15.

230' Durante todos los años se pone de manifiesto que Perruno es la variedad más precoz, apareciendo en 1996 acompañada de Chelva y Eva (4C01), y seguida en la mayoría de los años por Malfar. Sin embargo, entre los últimos cultivares en iniciar el ciclo vegetativo no aparece una continuidad durante todo el estudio, siendo Pardina el más estable de todos los observados (Alarije, Morisca, Eva (4LS47), Montúa, Blanca Cayetana). Borba y Cigüentes son dos cultivares que manifiestan una fecha de brotación constante durante todo el estudio, situándose entre los primeros en desborrar dentro del grupo de cultivares intermedios.

Es destacable la gran variabilidad de la variedad Alarije en su momento de brotación, presentándose algunos años entre los cultivares más tardíos (1996 y 1997), o entre los intermedios (1998), o entre los más precoces (1999).

4.3.2.2.- Floración

Sobre las fechas de floración de cada variedad (cuadro n° 24) durante los 4 años de estudio, se ha realizado un análisis de varianza aplicando el test de Duncan al nivel del 5%. Los resultados obtenidos a partir de este análisis aparecen en dicho cuadro, en el que aquellas medias que tienen asignada la misma letra no muestran diferencias significativas entre ellas.

Al analizar las fechas medias de floración de cada variedad en los cuatro años de estudio, se observa que el estado I se desarrolla en todas las variedades en un pequeño intervalo de tiempo comprendido entre 5 y 7 días. Las primeras variedades en iniciar esta nueva fase del ciclo vegetativo no se mantienen constantes a lo largo de los años observados, sin embargo, parece encontrarse entre los cultivares de Perruno y Cigüentes una tendencia a ser los primeros en perder la corola. Por otra parte, Alarije y Montúa manifiestan una floración tardía en la mayoría de los años de estudio. El resto de cultivares desarrollan el estado fenológico I en fechas comprendidas entre las establecidas por los dos grupos anteriormente mencionados. Es destacable como en el año 1997 la floración tiene lugar en tmas fechas muy adelantadas en comparación con las observadas en 1996, 1998 y 1999.

231 Cuadro n° 24. Fecha media de floración de cada variedad.

1996 1997 1998 1999 Variedad Media Variedad Media Variedad Media Variedad Media

Cigüentes . 19X Malfar - 54,0=' Borba . 71,9" Pardina l(><¡i^ " Borba 19,9'° Perruno 54,r Perruno 72,r Cigüentes 76,9=''' Perruno 80,1'' Eva(4C01) 54,4"^ Cigüentes 72,8'' Malfar 77,0"'' Cayetana 82,3' Cigüentes 54,8''' Eva (4LS47) 73,6' Perruno 77,8'"= Malfar 83,0" Morisca 55,3" Cayetana 74,7" Alarije 78,3' Pardina 83,2''= Borba 55,3'' Malfar 75,0" Cayetana 79,3" Montúa 83,6''' Pardina 57,0'= Pardina 76,1= Borba 79,9" Eva(4LS47) 83,8^ Chelva 57,2' Montúa 76,2= Montúa 82,8= Eva(4C01) 83,9^ Eva (4LS47) 57,5"" Alarije 77,0^ Chelva - Chelva 84,6^ Cayetana 58,2"= Chelva - Eva (4LS47) - Alarije 84,7« Montúa 58,7= Eva(4C01) - Eva(4C01) - Morisca - Alarije 59,7*' Morisca - Morisca -

4.3.2.3- Envero

Las fechas medias del estado fenológico M de cada variedad en los años 1996, 1997 y 1998 aparecen en el cuadro n° 25. Sobre ellas se ha realizado el análisis de varianza aplicando el test de Duncan al 5%, cuyos resultados aparecen reflejados en dicho cuadro, en el que aquellas fechas medias que tienen asignada la misma letra no muestran diferencias significativas entre ellas.

Cuadro n° 25. Fecha media de envero de cada variedad.

1996 1997 1998 Variedad Media Variedad Media Variedad Media Cigüentes 129,3' Cigüentes L 121,5' Cigüentes 134,1' Borba 145,9'' Borba 121,9' Borba 136,2'' Perruno 150,2' Chelva \21,& Eva (4LS47) 147,6" Alarije 150,7' Eva (4C01) 129,6' Montúa 149,4"^ Malfar 153,0'' Montúa 134,6" Alarije 158,6' Chelva 153,0" Malfar 141,9" Perruno 158,9' Montúa 153,6" Perrano 143,3' Malfar 161,0^ Eva (4LS47) 154,0" Cayetana ,150,8^ Cayetana 162,0^ Eva(4C01) 159,0' Alarije 151,2^ Pardina 163,0*' Cayetana 162,0^ Eva (4LS47) 153,3^ Chelva - Pardina 162,0^ Morisca 156,1'" Eva (4C01) - Morisca - Pardina 159,8' Morisca -

232 Es destacable como el envero se produce en fechas próximas durante los tres años considerados, a pesar de que en 1997 se iniciase la brotación en una época mucho más temprana.

El envero de todas las variedades estudiadas se desarrolla de una manera escalonada a lo largo de 29 a 38 días según el año de estudio.

En todos los años, y especialmente en 1996, destaca el cultivar Cigüentes como el primero en alcanzar este nuevo-estado fenológico, seguido a continuación por Borba; mientras que Pardina, junto a Blanca Cayetana en dos de los tres años considerados, es el último cultivar en enverar. En 1996 las variedades comprendidas entre estos dos grupos en sólo 9 días manifiestan este nuevo estado fenológico, mientras que en 1997 y 1998 transcuixe un mayor periodo de tiempo.

En el primer año de estudio se forman 6 grupos. El primero de ellos está formado por Cigüentes, y está claramente diferenciado del resto debido al menor número de días que requiere para alcanzar el envero, presentando además diferencias significativas con todos ellos. A continuación, y constituyendo también un grupo independiente, se encuentra Borba. Después en sólo im intervalo de 4 días enveran Perruno y Alarije, no mostrando diferencias significativas entre ellos, y Malfar, Chelva, Montúa y Eva (4LS47), que tienen asignada la misma letra. Posteriormente, alcanza el estado M Eva (4C01) que no aparece asociada a ningún cultivar. Y por último, se encuentran Blanca Cayetana y Pardina sin diferencias significativas entre ellas.

En 1997 el número de grupos formados se incrementa a 9, a pesar de sólo incluirse una variedad más (Morisca). Esto es debido, a que el envero en todos los cultivares se produce en un intervalo de tiempo mucho más amplio (38 días). Comparando el orden en que se desarrolló el envero en 1996 y en este año se puede destacar que: Cigüentes y Borba alcanzan este estado en fechas próximas; los clones de Chelva y Eva (4C01) muestran un envero más temprano que en 1996; y Blanca Cayetana se encuentra incluida en el grupo de cultivares que desarrollan el estado M en un período intermedio. También se puede señalar que no tienen diferencias

233 significativas entre ellas, Borba y Cigüentes, Malfar y Perrano, y Blanca Cayetana y Alarij

En 1998 son 8 las asociaciones formadas. En primer lugar, destacan Cigüentes y Borba, para ser seguidos a continuación por Eva (4LS47) y Montúa, después por Alarije y Perruno, que no muestran diferencias significativas entre ellos, y por último por Malfar, Blanca Cayetana y Pardina.

4.3.2.4.- Maduración

Sobre las fechas de maduración de cada cultivar se ha reahzado el análisis de varianza empleando el test de Duncan al 5%, apareciendo los resultados en el cuadro n° 26. Aquellas fechas medias de maduración que tiene la misma letra no presentan diferencias significativas entré ellas.

Cuadro n° 26. Fecha media de maduración de cada variedad.

1996 1997 1998 Variedad Media Variedad Media Variedad Media Cigüentes 176,0' Cigüentes 160,4' Cigüentes 180,3' Alarije 178,2^ Borba 169,9*' Alarije 194,6" Malfar . 186,0*' Chelva 184,0" Borba 194,9'' Borba 197,0' Morisca 185,0' Malfar 200,0' Chelva 201,0' Eva (4C01) 192,0" Eva(4LS47) 206,0" Perruno 212,2'' Malfar 194,0" Pardina 207,0" Eva (4CÚ1) 213,0'' Montúa 195,8"' Cayetana 207,0" Pardina 215,0" Alarije 200, r^ Montúa 208,0" Montúa 216,0'' Cayetana 201,7^^ Perruno 212,0' Cayetana 216,3'' Perruno 202,0^2 . Chelva - Eva (4LS47) 217,0" Eva (4LS47) 206,0« Eva (4C01) - Morisca - Pardina 206,0« Morisca -

La madurez establecida en este trabajo alrededor de los 21,4-23,1 °Brix, no es alcanzada por todos cultivares en las mismas fechas, existiendo una diferencia de más de un mes entre las más tempranas y las más tardías. Además, hay que señalar que cultivares como Montúa, Perruno y el clon de Eva (4LS47) no alcanzan la concentración de azúcares indicada anteriormente, a pesar de haber esperado siempre

234 hasta los últimos momentos de cada campaña para observar cuál era su mayor contenido en azúcares; es por ello, que siempre aparecen en los resultados obtenidos entre los cultivares más tardíos.

Cigüentes se muestra como el cultivar más precoz en la madurez durante los tres años de estudio, seguido por Alarije en 1996 y 1998, mientras que por Borba en 1997 y 1998. Blanca Cayetana y Pardina por el contrario se manifiestan como los cultivares más tardíos en alcanzar este momento del ciclo vegetativo, sin considerar los cultivares de Perruno, Montúa y Eva (4LS47) por los motivos anteriormente indicados. Malfar, Chelva y Eva (4C01) alcanzan su madurez en fechas intermedias a las establecidas por los cultivares más precoces y los más tardíos, aunque en 1996 Eva (4C01) no presenta diferencias significativas con Pardina y Blanca Cayetana.

4.3.2.5.- Caída de la hoja

Se ha realizado un análisis de varianza aplicando el test de Duncan al 5% sobre las fechas en que se produce la caída de la hoja de cada variedad. Los resultados aparecen en el cuadro n° 27, en el que aquellas fechas medias que tienen asignada la misma letra no presentan diferencias significativas entre ellas.

Cuadro n° 27. Fecha media de caída de hoja de cada variedad.

1996 1997 1998 Variedad Media Variedad Media Variedad Media Perruno 261,8' Perruno 265,7' Perruno 266,2' Montúa 267,2" Morisca 275,0" Malfar 266,7' Eva (4LS47) 268,2" Malfar 275,0" Borba 267,0' Borba 272,7" Cayetana 275,0" Eva (4LS47) 267,3' Malfar 276,0" Eva (4LS47) 275,2" Cigüentes 267,8' Cayetana 276,8" Cigüentes 277,4' Cayetana 267,8' Gigüentes 277,1" Pardina 278,1' Montúa 267,9' Pardina 277,6" Borba 278,1' Pardina 268,6' Alarije 290,r Montúa 282,7" Alarije 269,0' Eva (4C01) 303,3^ Alarije 282,8" Eva(4C01) - Chelva 306,0^ Eva(4C01) 283,0" Chelva - Morisca - Chelva 283,0" Morisca -

235 Analizando los resultados mostrados en el cuadro n° 27, se puede observar como en los años 1996 y 1997 la caída de la hoja se produce de una manera mucho más escalonada que en 1998, año en el que todos los cultivares alcanzan este estado fenológico en sólo tres días.

Considerando los resultados obtenidos se comprueba que las fechas de la caída de la hoja se mantienen muy constantes para cada variedad en los dos primeros años de estudio, produciéndose por tanto un comportamiento muy similar entre los cultivares considerados. Una excepción a este hecho se encuentra: en Eva (4C01) y Chelva (3COI), que en 1996 tienen una caída de la'hoja mucho más tardía que en 1997; y en Eva (4LS47) y Montúa, que en el primer año de estudio alcanzan el estado P en unas fechas mucho más precoces. Por otra parte, en 1998 al producirse la caída de la hoja en todos los cultivares en un intervalo de sólo tres días no se puede apreciar este comportamiento.

En los años 1996 y 1997 se puede observar como destaca Perruno por su prontitud en la caída de la hoja mostrando siempre diferencias significativas con todos los cultivares. A continuación es seguido por Eva (4LS47), Malfar, Blanca Cayetana, Borba, Pardina y Cigüentes que constituyen el grupo intermedio. Posteriormente, se encuentran Alarije, Chelva y Eva (4C01). Morisca en el año en que se incluye en este estudio muestra una pérdida de la hoja temprana.

Por último, en 1998, a pesar de que no existen diferencias significativas entre los cultivares considerados, también se puede apreciar en las fechas medias de caída de hoja una tendencia por parte de Perruno y Alarije a ser la primera y la última variedad, respectivamente, en perder la hoj a.

4.3.2.6.- Período floración-envero

El período de tiempo transcurrido entre la floración y el envero también se ha calculado para cada variedad, mostrándose en el cuadro n° 28 los resultados al realizar un análisis de varianza empleando el test de Duncan al 5%. Aquellos intervalos que

236 muestran la misma letra no presentan diferencias significativas entre ellos.

Cuadro n° 28. Período medio floración-envero de cada variedad.

\//-:^V''-.fi99&:^-:-: ••"'•. r-'rl99i:¿'•:'•'•- •::"'I998:'''- -Variedad Media Variedad Media Variedad Media Cigüentes 50,2' Borba 66,3' Cigüentes 61,3" Alarije 65,9" Cigüentes 66,7" Borba 64,2" Borba 65,9" Chelva 69,8" Montúa 73,2' Chelva 68,4' Eva(4C01) 75,2' Eva (4LS47) 74,0' Montúa 69,9"* Montúa 75,9' Alarije 81,6" Malfar 70,0'='' Malfar 87,9" Malfar 86,0' Perruno 70,1" Perruno 89,2" Perruno 86,8'^ Eva (4LS47) 70,2^ Alarije 91,7' Pardina 86,9'^ Eva(4C01) 75,1' Cayetana 92,6' Cayetana 87,3^ Par dina 78,8^ Eva (4LS47) 95,8^ Chelva - Cayetana 79,7^ Morisca ioo;8« Eva(4C01) - Morisca - Pardina • 102,8-" Morisca -

La duración de este período es varíable en función del año, oscilando alrededor de un mes, y del cultivar; así, en 1996 Cigüentes sólo requiere 50 días para alcanzar el envero desde la floración, mientras que Pardina en 1997 requiere casi 103 días.

Cigüentes es el cultivar que tiene el período floración-envero más corto durante los tres años de estudio. Borba no muestra diferencias significativas con este cultivar en 1997, mientras que en 1996 y 1998 no aparece asociado a él, mostrando en este último año un intervalo floración-envero próximo al de Cigüentes. Es de destacar la corta duración de este período para la variedad Alarije en 1996 que lo lleva a no mostrar diferencias significativas con Borba, sin embargo, en los otros dos años de estudio Alarije presenta un intervalo mucho más prolongado situándolo entre los más largos.

En 1996 se forma un grupo intermedio constituido por Chelva, Montúa, Malfar, Perruno y Eva (4LS47) cuya duración oscila entre 68 y 70 días. Este conjunto, sin embargo, en 1997 y 1998 no se mantiene apareciendo unas mayores diferencias entre los cultivares. Así, Montúa de todos ellos es el que tiene un período floración-envero más corto, seguido de Malfar y Perruno, no mostrando estos dos cultivares diferencias significativas entre ellos en los tres años de estudio. Eva (4LS47) en 1996 y 1997

237 presenta un intervalo más prolongado que en 1998.

Por último, Pardina es la variedad con el período floración-envero más prolongado de todas, apareciendo en 1996 y 1998 asociada con Blanca Cayetana.

4.3.3.- Estudio fenológico por clones

En este estudio se han agrupado los clones correspondientes a una misma variedad, junto con aquellos que han manifestado problemas de sinonimia. De esta manera, se ha podido analizar conjuntamente el comportamiento de aquellas accesiones que representan a un mismo cultivar.

Los grupos obtenidos son: Pardina-Blanca Cayetana, Montúa-Eva (4LS47), Chelva (3C0l)-Eva (4C01), Alarije-Malfar, Borba-Cigüentes y Perruno.

Para realizar este estudio sobre las fechas de brotación, floración, envero, caída de la hoja y el período comprendido entre la floración y el envero se ha empleado un anáhsis de varianza aplicando el test de Duncan al nivel del 5%. Los resultados aparecen en los cuadros n° 29-58, en los que las fechas medias que tienen asignada la misma letra no muestran diferencias significativas entre ellas.

La fecha de la maduración no se ha incluido en este estudio, ya que dicho momento se ha establecido para cada clon a partir del seguimiento de este estado fenológico sobre las 10 cepas que conforman el mismo, y por tanto no hay datos individuales de cada planta.

4.3.3.1.- Pardina-Blanca Cayetana

Este grupo lo constituyen los clones: 1S04 (Pardina), 2AL11 (Blanca Cayetana), 2T01 (Blanca Cayetana) y 2T013 (Blanca Cayetana).

238 4.3.3.1.1.- Brotación

Los resultados obtenidos del análisis de varianza aparecen reflejados en" el cuadro n° 29. Sobre ellos se puede observar una tendencia por parte del clon 2AL11 a adelantar su fecha de brotación, mientras que la accesión 2T01 manifiesta un cierto retraso en el momento del desborre, mostrando ambos clones diferencias significativas entre ellas en los años 1997,1998 y 1999.

4.3.3.1.2.-Floración

En el cuadro n° 30 se encuentran reflejados los resultados obtenidos al realizar el análisis de varianza sobre las fechas de floración de los clones considerados en este grupo. En dicho cuadro se puede observar como el clon 2T01 se manifiesta como un clon tardío en el momento de la floración, presentando en 1997 diferencias significativas con todas las accesiones consideradas, y en 1999 con 2AL11 y 1S04. Por otra parte, entre los clones más precoces se podría destacar a 2AL11, al ser el único clon que permanece en el grupo de los más adelantados durante los cuatro años estudiados.

Por último, señalar que en 1996 no existen diferencias significativas entre los clones en su fecha de floración.

4.3.3.1.3.-Envero

Observando los resultados del cuadro n° 31 se puede apreciar que no existen diferencias significativas entre las accesiones consideradas en los años 1996 y 1998, mientras que en 1997 se distinguen dos grupos, uno más precoz constituido por 2AL11 y 2T013, y otro más tardío formado por 1S04 y 2T01.

4.3.3.1.4.- Caída de la hoja

Como se puede apreciar en los resultados del cuadro n° 32, no hay uniformidad

239 en el comportamiento de los clones que se manifiestan como los más precoces en perder la hoja durante los años 1996 y 1997. En el primer año 2AL11 se presenta como el primero en iniciar la caída de la hoja, mientras que en 1997 no tiene diferencias significativas con 2T013 y 1S04. Elclon 2T01 en 1997 se manifiesta como la accesión, más precoz en alcanzar este estado fenológico, mientras que en 1996 aparece en el grupo de los más tardíos. Por otra parte, en 1998 los cuatro clones considerados no presentan diferencias significativas entre ellos.

4.3.3.1.5.- Período floración-envero

Del estudio del cuadro n" 33 se puede señalar que los resultados obtenidos no son uniformes durante los tres años anaüzados. En 1996 los clones no presentan diferencias significativas entre ellos. En 1997 las accesiones 1.S04 y 2T01 aparecen agrupadas y con un período floración-envero más prolongado que 2AL11 y 2T013, que no presentan diferencias significativas entre ellas. Por el contrario, en 1998 los clones 2AL11, 2T01 y 1S04 están asociados y presentan diferencias significativas respecto a 2T013, que aparece con un período ñoración-envero más largo que las otras accesiones.

4.3.3.2.-Montúa-Eva (4LS47)

Dentro de este grupo se han incluido los clones de Montúa: 3AL45, 3GU19, 3GU34 y 3ST17, y el de Eva 4LS47.

4.3.3.2.1.-Brotación

Los resultados obtenidos al realizar un análisis de varianza aplicando el test de Duncan al nivel del 5% sobre la fecha de brotación, aparecen en el cuadro n° 34.

Del estudio de dicho cuadro se puede comprobar como en los años 1998 y 1999 la accesión 3ST17 manifiesta una tendencia a situarse entre los clones más precoces en brotar, mientras que 3GU34 se muestra entre los más tardíos. Sin embargo, dicho

240 Cuadro n° 29. Fecha media de brotación del grupo Pardina-Blanca Cayetana. 1996 1997 1998 ; 1999 1 Clon Meíñfl Clon Media Clon Media Clon : Media 1 2AL11 25,2' 2AL11 7,5' 2T013 12,6' 2 AL 11 25,3' 2T01 27,2"" 1S04 9,\^ 2AL11 12,6' 1S04 27,3" 2T013 28,0'*' 2T013 9,2" 1S04 13,9' 2T013 29-^7' 1S04 28,9*' 2T01 10,6'= 2T01 15,9" 2T01 30,7=

Cuadro n° 30. Fecha media de floración del grupc Pardina-Blanca Cayetana. . vv';;;í;l996V^-:''-.:•::•:::•:;: 1997 1998 1999 .••' CtónrC ;-MMediaO:' Clon Media Clon Media Clon Media 2T01 82,2' 2 AL 11 55,9' 2T013 74,4' 1S04 76,0' 2T013 82,4' 2T013 56,6' 2AL11 74,5' 2 AL 11 77,3' 2 AL 11 82,4' 1S04 57,0' 2T01 75,3'" 2T013 80,3" 1S04 83,2' 2T01 62,2" 1S04 76,1" 2T01 80,3"

Cuadro n° 31. Fecha media de envero del grupo Pardina-Blanca Cayetana. 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 2T013 162,0' lALU 143,1' 2T01 161,2' 2T01 162,0' 2T013 145,7' 2AL11 161,9' 2 AL 11 162,0' 1S04 159,8" 2T013 162,9' 1S04 162,0' 2T01 163,6" 1S04 163,0'

Cuadro n° 32. Fecha media de caída de hoja del grupo; ^ardina-Blanca Cayetana. 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 2AL11 21AX 2T01 269,3' 2T013 267,5' 2T01 277,2" 2 AL 11 276,6" 2AL11 267,9' 1S04 277,6" 1S04 278,1" 2T01 268,0' 2T013 279,0" 2T013 278,6" 1S04 268,6'

Cuadro n" 33. Período mee io floración-envero del grupo Pardina-Blanca Cayetana. 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 1S04 78,8' 2AL11 87,2' 2 AL 11 86,5' 2T013 79,6' 2T013 89,1' 2T01 86,7' 2AL11 79,6' 2T01 101,4" 1S04 86,9' 2T01 79,8' 1S04 102,8" 2T013 88,6"

241 comportamiento no se mantiene en los años 1996 y 1997, que no presentan diferencias significativas entre ellos.

Los clones virosados 3ST17 y 4LS47 tienen unas fechas de brotación similares al resto de las accesiones incluidas en este estudio. El único momento en que destaca uno de estos clones es en 1999, año en el que 4LS47 muestra un desborre más precoz.

4.3.3.2.2.- Floración

Los resultados obtenidos al realizar un análisis de varianza sobre las fechas de floración, aparecen en el cuadro n° 35. Hay que señalar que en dicho cuadro no aparecen los datos correspondientes a la pérdida de la corola de las accesiones 3ST17 y 4LS47 del año 1999. Esto es debido a que en dicho año fue detectada la infección virótica que presentaban estos clones y se eliminaron de la plantación, no pudiéndose tomar dichos datos.

Anahzando los resultados obtenidos se podría destacar entre los clones más precoces en florecer a 3GU34, que en los años 1998 y 1999 manifiesta este adelanto, y situándose en 1997 entre las primeras accesiones en iniciar este nuevo estado fenológico, presentando diferencias significativas con respecto a 3AL45.

Entre los clones más tardíos en perder la corola se puede observar como el clon 3AL45 inicia su floración en una fecha más retrasada que el resto de las accesiones estudiadas. Este comportamiento incluso se puede apreciar en 1996, año en que no hay diferencias significativas entre los clones, pero que 3 AL45 presenta una fecha media de floración más tardía que el resto.

No se ha observado en ningún año una fecha de floración anómala entre los clones virosados (3ST17 y 4LS47).

242 4.3.3.2.3.- Envero

En el cuadro n° 36 se reflejan los resultados obtenidos al haber realizado un análisis de varianza sobre las fechas de envero de los clones de Montúa y Eva (4LS47).

El clon 3AL45 en 1998 presenta el envero más tardío de todas las accesiones estudiadas, y además muestra diferencias significativas con todas ellas. En 1997 tampoco aparece asociado a ningún clon, sin embargo, en dicho año 4LS47 tiene una fecha de envero más tardía que 3AL45.

En los clones virosados no se observa en sus fechas de envero ningún comportamiento anómalo, excepto en 1997 que 4LS47 inicia este estado fenológico en una época más tardía.

4.3.3.2.4.- Caída de la hoja

En el cuadro n° 37 aparecen los resultados obtenidos al realizar un análisis de varianza sobre las fechas de la caída de la hoja de los clones correspondientes a la variedad Montúa y al clon de Eva (4LS47).

En 1996 los clones más precoces en perder la hoja corresponden a 3ST17 y 4LS47, presentándose los demás sin diferencias significativas entre ellos. En 1997 de nuevo, hay un clon que destaca por la caída de la hoja en una fecha anterior a las demás accesiones, que es 4LS47. Por último, en 1998 no se encuentran diferencias significativas entre las accesiones consideradas.

Los clones virosados 3ST17 y 4LS47 en 1996 presentan una pérdida de hoja muy precoz, siendo especialmente notable para 3ST17. Sin embargo, en 1997 las diferencias en la fecha de inicio de este estado fenológico con respecto a las demás accesiones son inexistentes para 3ST17, y pequeñas para 4LS47; por último, en 1998 no hay diferencias significativas de estos dos clones con ninguna otra accesión.

243 4.3.3.2.5.- Período floración-envero

Se ha realizado un análisis de varianza sobre el período de floración-envero de las accesiones que constituyen este conjunto, obteniéndose los resultados que aparecen en el cuadro n° 38.

Analizando dicho cuadro se puede señalar que no hay una uniformidad en el comportamiento de los clones. Sin embargo, entre ellos destaca 3AL45, que en 1998 presenta diferencias significativas con todas las accesiones consideradas, y su intervalo floración-envero es el más prolongado. Y en 1997 tiene un período que lo sitúa entre los más largos, aunque menor al requerido por 4LS47.

No se observa un comportamiento diferente eñ los clones virosados, 3ST17 y 4LS47, aunque se puede señalar el mayor número de días que requiere 4LS47 en 1997.

4.3.3.3.- Chelva-Eva

Dentro de este grupo se han incluido los clones de Chelva (3COI) y el de Eva (4C01).

4.3.3.3.1.-Brotación

Los resultados obtenidos al realizar el análisis de varianza sobre las fechas de brotación, aparecen en el cuadro n° 39. En éste se puede apreciar como no existen diferencias significativas entre ambos clones en el momento de brotación en los dos años de estudio.

4.3.3.3.2.- Floración

En el cuadro n° 40 aparecen reflejados los resultados de realizar el análisis de varianza sobre la fecha de floración de Chelva y Eva (3C01).

244 Cuadro n° 34. Fecha media de brotación del grupo Montúa-Eva (4LS47). 1996 1997 1998 1999 Clon Media Clon Media Clon Media Clon Media 3AL45 24,4' 3GU34 8,0' 3ST17 12,8' 4LS47 21,0' 3GU34 24,5' 3ST17 8,6'" 3AL45 • 13,1' . 3ST17 26,0" 4LS47 25,9' 3GU19 a,2'"' 4LS47 13,8'" 3AL45 27,0""= 3ST17 26,3' 3AL45 9,5"' 3GU34 15,0" 3GU19 28,3'=" 3GU19 26,6' 4LS47 -io,r 3GU19 15,5" 3GU34 29,7"

Cuadro n° 35. Fecha media de floración del grupo Montúa-Eva (4LS47). 1996 • ;• 1997:. V :-:•; , o;, •:--:.:ni998: •;•••• v^:-;- 1999 "• Cloííf Media Clon , Media Clon Media Clon Medía _ 3GU19 83,0' 3GU19 57,0' 4LS47 ii,e 3GU34 19,

Cuadro n° 36. Fecha media de envero del grupo Montúa-Eva (4LS47). 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 3GU19 152,0' 3GU34 m,T 3ST17 146,7' 4LS47 154,0' 3GU19 129,0' 4LS47 147,6' 3ST17 154,0' 3ST17 138,6" 3GU34 148,1' 3GU34 • 154,0' 3AL45 143,0"= 3GU19 148,1' 3AL45 154,0' 4LS47 153,3" 3AL45 155,0"

Cuadro n° 37. Fecha media de caída de hoja del grupo Montúa-Eva (4LS47). 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 3ST17 244,5' 4LS47 275,2' 3GU19 161X 4LS47 268,2" 3AL45 280,2" 4LS47 leix 3GU34 274,7' 3GU19 282,4"' 3GU34 lii.e 3GU19 274,7' 3GU34 283,6' 3AL45 268,4' 3AL45 274,9' 3ST17 284,6' 3ST17 268,5'

Cuadro n° 38. Período medio floración-envero del grupo Montúa-Eva (4LS47).

1996 .r- : ;;,i997^ ;:•'• ^•^':••':•'•'...• :;:;1998'>';Í:::-.;^: :•••::: Cloít Media Clott Media ;:- aon-::W:-. Media 3GU19 69,0' 3GU34 69,8' 3ST17 69,9' 3AL45 69,8' 3GU19 72,0' 3GU19 71,7' 4LS47 70,2' 3ST17 79,7" 3GU34 73,5' 3GU34 70,4' 3AL45 82,1" 4LS47 74,0' 3ST17 70,6' 4LS47 95,8' 3AL45 78,0"

245 Las dos accesiones consideradas no presentan un comportamiento uniforme, ya que en 1996 no existen diferencias significativas entre ellos, y en 1997 el clon 4C01 inicia su floración en una fecha más precoz que 3C01, presentando diferencias significativas entre ellos.

4.3.3.3.3.-Envero

Se ha realizado un análisis de varianza sobre las fechas de envero de 3COI y 4C01, cuyos resultados aparecen en el cuadro n° 41.

Como se puede apreciar en dicho cuadro los dos clones que constituyen este grupo se comportan de diferente manera según el año considerado. Asi, en 1996 la accesión 3COI (Chelva) envera antes que 4CÓ1 (Eva) mostrando diferencias significativas entre ellas; mientras que en 1997 ambos clones tienen asignada la misma letra.

4.3.3.3.4.- Caída de la hoja

En el cuadro n° 42 aparecen los resultados de analizar las fechas de la caída de la hoja de las accesiones 3COI y 4C01.

En los dos años de estudio no se han obtenido diferencias significativas entre ambos clones, produciéndose la caída de la hoja en una fecha muy tardía.

4.3.3.3.5.- Período floración-envero

Se ha reahzado un anáfisis de varianza sobre los períodos de floración-envero correspondientes a los clones 3C01 y 4C01. Los resultados se muestran en el cuadro n°43.

Tanto en 1996 como en 1997 los dos clones considerados en su período floración-envero presentan diferencias significativas, mostrando un intervalo más corto

246 Cuadro n° 39. Fecha media de brotación del grupo Chelva-Eva (4C01).

1996 .-•'::=/:;:.., .v-^;':;'',:,-. 1991 ,-.

Clon Media •••„•;;•:;': Clon Media 4C01 18,2' 4C01 7,8' 3C01 19,0' 3C01 8,2'

Cuadro n° 40. Fecha media de floración del grupo Chelva-Eva (4C01).

1996 1997 Clon Media Clon Media 4C01 83,9' ' 4C01 54,4' 3C01 84,6' 3C01 57,2''

Cuadro n° 41. Fecha media de envero del grupo Chelva-Eva (4C01).

1996 1997 Clon Media Clon Media 3C01 153,0' 3C01 Ulfi'' 4C01 159,0*' 4C01 129,6'

Cuadro n° 42. Fecha media de caída de hoja del grupo Chelva-Eva (4C01).

1996 1997 Clon Medía Clon Media 4C01 . 303,3', 3C01 283,0' 3C01 , 306,0' 4C01 283,2'

Cuadro n° 43. Período medio floración-envero del grupo Chelva-Eva (4C01).

'-V •:;/1 :••;:• i-•":-::-'^^ 1997 [:• ^ • Clon Media Clon Media 3C01 68,4' 3C01 69,8' 4C01 75,1" 4C01 75,2"

247 3C01.

4.3.3.4.-Alarije-Malfar

Este grupo está constituido por los clones de Alarije: 5TA13, 5TA19, 5TA25, 5TA27, 5TA210, 5TA31, 5TA34 y 5TA35, y el de Malfar, 7CN1.

4.3.3.4.1- Brotación

En el cuadro n° 44 se presentan los resultados obtenidos al realizar el análisis de varianza sobre las fechas de brotación. En él se puede observar como en los años 1997 y 1999 no se aprecian apenas diferencias significativas entre los clones considerados, mientras qué en 1996 y 1998 dichas diferencias se ampHan.

El clon de Malfar (7CN1) en 1996, 1997 y 1998 se presenta como el más precoz en su brotación, no manteniéndose dicha situación en 1999, que aparece como el más tardío.

Entre los demás clones considerados no se puede apreciar en ninguno de ellos una mayor precocidad, o un desborre más tardío durante los cuatro años de estudio.

4.3.3.4.2- Floración

Los resultados obtenidos del análisis de varianza reaüzado sobre las fechas de floración se muestran en el cuadro n° 45. En él se puede observar como de nuevo el clon 7CN1 destaca durante los cuatro años de estudio por situarse entre los primeros en florecer. Así mismo, 5TA25 aparece en los años 1996, 1997 y 1999 entre las accesiones más tardías en perder la corola.

Hay que destacar que en 1998, no hay apenas diferencias significativas entre las accesiones consideradas, produciéndose la pérdida de la corola en este año en todos los clones en fechas muy próximas.

248 4.3.3.4.3.- Envero

En el cuadro rf 46 se muestran los resultados obtenidos al realizar un análisis de varianza sobre las fechas de envero.

El clon 5TA34 manifiesta durante los años 1997 y 1998 una fecha de envero precoz. Por otra parte, las accesiones 5TA13 y 5TA35 manifiestan una tendencia a enverar pronto, aunque siempre en fechas posteriores a 5TA34, excepto en 1996. Finalmente entre los clones más tardíos en alcanzar este estado fenológico se encuentra 5TA27, y jimto a él también se podría citar al clon 5TA210 y 5TA25.

4.3.3.4.4.- Caída de la hoja

Analizando los resultados que aparecen en el cuadro n° 47, se puede observar como el clon 7CN1 durante los tres años de estudio es de los primeros en perder la hoja mostrando diferencias significativas con la mayoría de las accesiones. Por otra parte, 5TA13 y 5TA34 también manifiestan una caída de la hoja precoz en 1996 y 1997, presentando diferencias significativas con el resto de clones. Por último, 5TA25 y 5TA210 se muestran como las accesiones más tardías en perder la hoja durante 1996 y 1997. En 1998, es destacable la caída de la hoja de todas las accesiones en fechas muy próximas.

4.3.3.4.5.- Período floración-envero

Ajiaüzando los resultados que aparecen en el cuadro n° 48, y comparándolos con los obtenidos para el estado fenológico M se observa ima gran semejanza entre ellos.

Así, el clon 5TA34 en los años 1997 y 1998 presenta el período floración- envero más corto de todos los casos considerados. Con un intervalo un poco más prolongado que el de esta accesión también aparecen 5TA13 y 5TA35 en 1998, en 1996 tienen un período que los sitúa entre los más cortos, y en 1997 no se observa esta

249 Cuadro n° 44. Fecha media de brotación del grupo Alarije-Malfar. \-'--y^':-^W6':M-':t' 1997 1998 1999 Clon Media y ! Clon Media Clon Media Clon ^ Media 7CN1 23,2' 7CN1 • 7,4=" 7CNr 10,8^ 5TA13 18,7" 5TA13 26,6'' 5TA13 8,6'" 5TA19 12,6" 5TA35 18,7' 5TA34 27,2'' 5TA31 9,4" 5TA27 12,8" : 5TA27 19,3' 5TA35 28,7''' 5TA27 9,5" 5TA35 f3,2"'' 5TA34 19,7'" 5TA31 29,0"' 5TA35 9,6" 5TA13 13,2"' 5TA31 20,0'" 5TA210 29,1"" 5TA210 9,7" 5TA25 13,8"' 5TA210 20,3'" 5TA19 29,1"' 5TA34 10,1" 5TA34 13,9"" 5TA19 22,7'" 5TA25 30,3"* 5TA25 10,2" 5TA210 14,2"' 5TA25 23,0'" 5TA27 31,8^ 5TA19 10,2" 5TA31 14,7' 7CN1 24,0"

Cuadro n° 45. Fecha media de floración del grupo Alarije-Malfar. 1996 1997 1998 1999 Clon Media Clon Media Clon Media Clon Media 5TA13 82,4' 7CN1 54,0' 7CN1 75,0' 5TA19 76,0' 7CN1 83,0' 5TA35 58,3" 5TA35 77,0" 5TA34 76,0' 5TA19 83,6'" 5TA13 58,4" 5TA34 77,0" 5TA27 76,7' 5TA31 84,6"' 5TA31 . 59,2" 5TA31 77,0" 7CN1 77,0'" 5TA210 85,1' 5TA19 ^9,2" 5TA210 77,0" 5TA31 78,3"' 5TA27 85,2' 5TA27 59,6" 5TA27 77,0" 5TA13 79,0' 5TA35 85,5' 5TA210 59,8" 5TA25 77,0" 5TA210 79,3' 5TA25 85,5' 5TA25 60,2" 5TA19 77,0" 5TA25 79,7' 5TA34 85,8' 5TA34 62,5' 5TA13 77,0" 5TA35 81,3"

Cuadro n° 46. Fecha media de envero del grupo Alarije-Malfar. 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 5TA13 145,0' 7CN1 141,9' 5TA34 154,0' 5TA19 145,0' 5TA34 146,2'" 5TA31 156,8" 5TA35 146,0' 5TA13 150,6"' 5TA35 156,8" 7CN1 153,0" 5TA35 151,4' 5TA13 158,2"' 5TA34 153,0" 5TA19 151,4' 5TA19 159,6'" 5TA31 153,0" 5TA210 152,1' 7CN1 161,0" 5TA25 153,0" 5TA25 152,1' 5TA210 161,0" 5TA210 155,0" 5TA31 152,3' 5TA27 161,0" 5TA27 155,0" 5TA27 . 154,1' 5TA25 161,0"

250 Cuadro n° 47. Fecha media de caída de hoja del grupo Alarije-Malfar. „ /Vr,V';.:-:.,1996-:y.:;y;'. •i9i9r::; :. mi Clon Media Clon Media Clon Media 5TA34 271,7' 5TA34 263,6' 7CN1 266,7' 7CN1 276,0'' 7CN1 275,0" 5TA19 267,4'" 5TA13 289,3' 5TA13 280,8'^ 5TA34 267,8'" 5TA19 289,4' 5TA35 285,0" 5TA13 268,5" 5TA35 293,0" 5TA31 285,0" 5TA210 - 268,9" 5TA27 293,9'' 5TA27 286,2" 5TA25 269,0" 5TA31 294,0'' 5TA25 287,2" 5TA27 269,7" 5TA25 294,1" 5TA210 287,4" 5TA35 270,2" 5TA210 295,6'' 5TA19 287,4" 5TA31 270,6"

Cuadro n° 48. Período medio floración-envero del grupo Alarije-Malfar. 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 5TA35 60,5' 5TA34 83,7' 5TA34 • 5TA19 61,4' 7CN1 87,9'" 5TA31 79,8" 5TA13 62,6' 5TA25 91,9"' 5TA35 79,8" 5TA34 67,2" 5TA19 92,2"=^ 5TA13 81,2"' 5TA25 67,5" 5TA13 92,2"' 5TA19 82,6^" 5TA31 68,4" 5TA210 92,3"' 5TA210 84,0"' 5TA27 69,8" 5TA35 93,1"' 5TA27 84,0"' 5TA210 69,9" 5TA31 _93,l"' 5TA25 84,0"' 7CN1 • 70,0" 5TA27 94,5' 7CN1 86,0'

Cuadro n°49. Fecha media de brotación del grupo Borba-Cigüentes 1996 1997 1998 1999 Clon Media Clon Media Clon Media Clon Media 6M04'5 21,3' 8CA9 5,5' 8CA40 11,4' 6M023 18,0' 8CA2 21,8' 8CA40 7,7" 6M026 11,4' 6M047 18,7'" 8CA31 22,5'" 6M047 7,7" 6M033 11,6' 8CA9 19,3'" 8CA9 22,7'" 8CA31 7,8" 8CA33 11,7' 8CA20 19,7'" 8CA20 22,9'" 8CA33 7,9" 8CA26 12,0'" 8CA33 20,0'" 6M033 23,7'" 8CA15 7,9" 8CA9 13,0'"' 6M026 21,0'" 8CA15 23,7'" 8CA26 8,2"' 6M047 13,0'"' 6M033 21,7" 8CA40 23,9'" 6M026 8,2"' 8CA2 13,4"' 8CA19 25,0' 6M026 24,1'" 6M015 8,2"' 6M015 13,5"' 8CA15 25,3' 8CA33 24,9"' 6M045 8,3"' 8CA19 13,5"' 8CA31 25,7' 6M015 25,2"' 6M033 8,4"=" 8CA31 13,8'" 6M045 26,0' 6M047 27,0'" 8CA2 8,6"'" 8CA15 14,1'" 8CA40 26,3' 8CA26 27,2'" 8CA20 Q -^bcd 8CA20 14,5'" 6M015 26,7' 8CA19 29,0" 8CA19 9,9'" 6M023 14,6'" 8CA26 27,3' 6M023 29,3" 6M023 10,1" 6M045 15,2" 8CA2 31,0"

251 situación por la gran homogeneidad existente en los resultados. Por último, entre las accesiones con un período más prolongado destacan 5TA27 y junto a ella 5TA210, que aunque no presentan diferencias significativas con respecto a otros clones, siempre tienen un período medio que los sitúa entre los más largos. También 7CN1 en los años 1996 y 1998 se sitúa entre las accesiones que tienen un intervalo prolongado, mientras que en 1997 aparece entre las que lo tienen más corto.

4.3.3.5- Borba-Cigüentes

En este grupo se han incluido los siguientes clones: 6M015, 6M023, 6M026, 6M033, 6M045 y 6M047, todos ellos correspondientes a la variedad Borba, junto con 8CA2, 8CA9, 8CA15, 8CA19, 8CA20, 8CA26, 8CA31, 8CA33 y 8CA40, que representan al cultivar Cigüentes.

4.3.3.5.1-Brotación

Del análisis de los resultados que figuran en el cuadro n° 49 se puede señalar que el clon 6M023 suele presentarse entre los últimos en iniciar el desborre, excepto en 1999; junto a él hay un grupo de accesiones, que varía según los años, que no tienen diferencias significativas con respecto a él. Entre los clones más precoces en brotar se podría destacar a 8CA9, que manifiesta este comportamiento especialmente en 1997, que tiene diferencias significativas con todas las accesiones consideradas; el resto de los años estudiados tiene una fecha media de brotación temprana, que se presenta asociada a otros clones.

Considerando las dos accesiones virosadas que forman parte de este grupo (6M023 y 6M033) y sus fechas de brotación, se puede señalar que no hay diferencias en su comportamiento con respecto a los demás. El clon 6M023 manifiesta un mayor retraso en su momento de brotación, pero nunca con una fecha claramente dispar del resto de sus homónimos.

252 4.3.3.5.2.- Floración

Analizando los resultados del cuadro n° 50 se observa que no hay un comportamiento muy homogéneo en los clones considerados en este estado fenológico. Entre ellos se podría destacar por su precocidad a 8CA40, y a 6M023 entre los más tardíos, aunque siempre aparecen asociados a un conjunto de clones con los que no presentan diferencias significativas.

Entre los clones virosados (6M023 y 6M033) no se encuentra ninguna diferencia en la floración respecto a los demás clones. Hay que señalar que los datos de la pérdida de la corola del año 1999 correspondientes a estas accesiones, no aparecen en el cuadro n" 50, ya que se arrancaron durante dicha campaña estos clones al ser detectada su infección vírica.

4.3.3.5.3.- Envero

Observando los resultados que aparecen en el cuadro n° 51, se puede señalar como entre los primeros clones que enveran se suelen encontrar accesiones correspondientes al cultivar Cigüentes, mientras que entre los últimos se sitúan algunas pertenecientes a Borba.

También se puede señalar como el clon 8CA40 suele manifestar un envero precoz, mientras que 6M023 se presenta con una fecha de envero más tardía.

Entre los clones virosados (6M023 y 6M033) no se observa un comportamiento diferente al resto de las accesiones consideradas. Sin embargo, se podría señalar el retraso mostrado por 6M023 en el momento del envero, aunque nunca en unas fechas muy distanciadas del resto del grupo.

4.3.3.5.4.- Caída de la hoja

Sobre los resultados reflejados en el cuadro n° 52 se pueden hacer las siguientes

253 observaciones. En los años 1996 y 1997 entre los clones que primero pierden la hoja se puede apreciar una tendencia por parte de 6M026, mientras que entre los últimos se puede situar a 6M045 y 8CA9. Por el contrario, en 1998 apenas existen diferencias significativas entre los clones estudiados.

Los clones virosados 6M023 y 6M033 no presentan un comportamiento anómalo en la fecha de la caída de la hoja, aunque el primero de ellos en 1996 adelanta un poco la fecha de inicio de este estado fenológico.

4.3.3.5.5.- Período floración-envero

En el cuadro n° 53 se encuentran los resultados obtenidos de realizar un análisis de varianza sobre el período floración-envero de cada uno de los clones que conforman este grupo.

Al igual que en el envero, se observa que los períodos floración-envero más cortos corresponden generalmente a clones que pertenecen al cultivar Cigüentes, mientras que aquellos que son más largos suelen ser de la variedad Borba.

El clon 6M023 es el que manifiesta un período floración-envero más estable durante los tres años de estudio y situándolo entre los más prolongados. Por el contrario, la accesión de Cigüentes 8CA2 en los años 1997 y 1998 requiere el menor número de días desde la floración hasta el envero.

En los clones virosados 6M023 y 6M033 no se detecta ningún comportamiento anómalo en la duración del período floración-envero, aunque como ya se ha señalado 6M023 se manifiesta siempre con un intervalo prolongado, y en 1996 ambas accesiones tienen el período medio más largo de todas las demás consideradas.

4.3.3.6- Perruno

Este grupo está constituido por los clones: 9CA13, 9CA22, 9CA25, 9CA36,

254 Cuadro n° 50. Fecha media de floración del grupo Borba-Cigüentes. 1996 1997 199aK 1999 Clon Media Clon Media C/on Media Clon Media 6M045 77,2' SCA24 51,6' 8CA40 68,7' 8CA9 74,3' 8CA33 77,2" 8CA40 51,9'" 6M033 69,4'" 8CA2 76,3" 6M026 78,1''' 6MOÍ5 53,5"" 6M023 70,8"' 8CA33 76,7" 8CA40 78,2""' 8CA31 53,7"" 6M047 71,3'" 8CA40 77,0" 8CA2- 78,8'"' 8CA2a 54,2'""' 8CA31 71,7'"' 8CA31 77,0" 8CA15 78,8'*" 8CA15 54,3'"'" 8CA26 71,7'"' 8CA26 77,0" 6M015 nQ •[ abcd 6M033 54,5'"'" 8CA2 72,0'"'^ 8CA20 -77,0" 8CA31 79,5''''' 6M047 54,8'"'" 6M026 72,2'""" 8CA19 77,0" 8CA26 -yQ -ybcde 8CA9 55,1'"'" 8CA33 73,2""''^ 6M026 77,7" 8CA19 gQ^Qbcde 6M045 55,8'"'" 8CA20 73,5'* 6M015 78,0" 8CA9 gQ^Qbcde 8CA33 56,3"'" 6M045 73,8* 8CAI5 80,0' 8CA20 80,4""^. 6M026 56,5"'" 6M015 74,0* 6M047 82,0" 6M033 81,0"'^ 8CA2 57,1'" 8CA15 74,5^ 6M045 82,0" 6M047 81,6'f 6M023 57,6'" 8CA19 74,8^ 6M023 - 6M023 82,6^ 8CA19 58,6" 8CA9 74,8^ 6M033 -

Cuadren" 51. Fec la media de envero del grupo Borba-Cigüentes. 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 8CA20 121,0' 8CA26 1.16,1' 8CA2 130,0' 8CA40 122,0' 6M015 117,0'" 8CA31 132,0'" 8CA33 122,0' 8CA40 117,3'"' 8CA40 133,5'"' 8CA19 128,0" 6M033 119,2'"'" 8CA9 133,5'"' 8CA9 133,0' 8CA2 JJ^gqabcde 8CA20 133,5'"' 8CA26 • 133,0' 8CA31 120,5'"'"' 6M026 134,0"' 8CA15 133,0' 8CA20 121,5"'"'^ 8CA26 134,0"' 8CA31 135,0' 8CA9 122,2'"'* 6M033 134,0"' 8CA2 137,0' 6M047 122,8"'* 8CA19 135,5"'" 6M047 137,0' 6M026 122,9"'* 6M015 135,5"'" 6M045 144,0" 6M045 123,1"'* 8CA15 136,5'" 6M015 144,0" 8CA33 123,4"'* 6M045 136,8'" 6M026 144,0" 8CA15 124,8'* 8CA33 138,2" 6M033 152,0' 6M023 126,6* 6M047 138,2" 6M023 154,0' 8CA19 127,4« 6M023 139,0"

255 Cuadro n° 52. Fecha media de caída de hoja del grupo Borba-Cigüentes. 1996 ••.• ::;;;::: -':1¡997-, :•;•;:;?•:i;:í-:,r::.--:1998,, • .:..,.,.;.;, Clon Media Clon : Media V::r'':y.ClqtÍ':\- ¿Media 6M023 263,7^ 8CA15 270,0' 8CA9 266,7' 6M026 269,5"'' 6M026 271,8' 6M015 266,8' 8CA26 272,4'"^ 8CA20 272,6' 6M023 267,0' 6M047 272,5''" 6M047 272,6' 6M026 267,0' 8CA19 274,5"' 6M023 277,4*' 6M033 267,0' 6M015 275,2"" 8CA31 277,4'' 6M045 267,0' 6M033 275,8'" 8CA40 277,8'' 8CA20 267,0' 8CA31 276,6" 8CA33 278,0* 8CA40 267,0' 8CA33 277,2" 8CA19 278,2"" 6M047 267,3'" 8CA15 278,2" 8CA26 278,8"" 8CA33 267,4'" 8CA2 278,2" 6M015 279,0""'' 8CA15 267,7'" 6M045 278,4" 8CA2 281,4"^ 8CA2 267,9'" 8CA20 - 279,0" 6M033 281,4"" 8CA31 268,9'" 8CA9 279,0" 8CA9 282,2" 8CA19 269,1" 8CA40 279,1" 6M045 287,0" 8CA26 269,1"

Cuadro n° 53. Período medio floración-envero del grupo Borba-Cigfuentes . 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 8CA20 40,6' 8CA2 62,8' 8CA2 58,0' 8CA40 43,8'" 6M015 63,5'" 8CA9 58,7'" -8eA33 44,8'" 8CA26 64,5'"" 8CA20 60,0'"" 8CA19 48,0" 6M033 64,7'"" 8CA31 60,3'"" 8CA9 53,0" 8CA40 65,4'"" 8CA19 60,7'""" 8CA26 53,3" 6M026 66,4'""" 6M015 61,5'"""' -8CA15 54,2" 8CA31 66,8'""" 6M026 61,8'"""" 6M047 55,4" 8CA33 67,1'""" 8CA15 62,0'"""" 8CA31 55,5" 8CA9 67,1'""" 8CA26 62,3"""" 8CA2 58,2" 8CA20 67,3'""" 6M045 63,0""" 6M015 64,9" 6M045 67,3'""" 6M033 64,6""^ 6M026 65,9" 6M047 68,0""" 8CA40 64,8"^ 6M045 66,8"" 8CA19 68,8"" 8CA33 65,0"^ 6M033 71,0' 6M023 69,0"" 6M047 66,9^ 6M023 71,4" 8CA15 70,5" 6M023 68,2^

256 9CA37 y 9CA39, todos ellos correspondientes a la variedad Perruno.

4.3.3.6.1.- Brotación

Observando las fechas de brotación y los resultados obtenidos a partir del análisis de varianza, que aparece en el cuadro n° 54, se puede señalar que no hay una uniformidad en el momento del desborre de los clones considerados. Por ejemplo, en 1996 y 1997 9CA36 muestra una brotación muy tardía, pero en 1998 y 1999 se convierte en uno de los primeros clones en desborrar.

4.3.3.6.2.- Floración

Analizando los resultados obtenidos en el cuadro n° 55 se puede observar como el clon 9CA25 es de los primeros clones en manifestar la floración, aunque sin diferencias significativas respecto a los demás. Por el contrario, 9CA39 en 1996 y 1998 se muestra como ima accesión tardía.

4.3.3.6.3.- Envero

Analizando los resultados que aparecen en el cuadro n° 56, se puede comprobar que el clon 9CA36 es uno de los primeros en enverar. Por el contrario, 9CA25 también se mantiene durante todo el período de estudio entre las últimas accesiones en enverar, apareciendo ambas accesiones con diferencias significativas entre ellas durante los tres años considerados.

4.3.3.6.4.- Caída de la hoja

En el cuadro n° 57 aparecen los resultados de realizar el análisis de varianza sobre las fechas de la caída de la hoja.

En 1996 los clones 9CA22 y 9CA36 presentan diferencias significativas, mostrándose el primero de ellos como el más precoz en perder la hoja, mientras que el

257 último como el más tardío. En 1997 y 1998 no existen dichas diferencias entre ninguna de las accesiones, sin embargo, se puede seilalar que en 1997 la fecha media de la pérdida de la hoja de 9CA22 es la más temprana de todas las accesiones, y la más tardía lade9CA36.

4.3.3.6.5.- Período floración-envero

En el cuadro n° 58 se puede apreciar como los clones 9CA36 y 9CA25 manifiestan un período floración-envero que los diferencia claramente. El primero de ellos requiere un menor número de días desde la floración hasta el envero que 9CA25, existiendo diferencias significativas entre ellos durante los tres años de estudio.

258 Cuadro n° 54. Fecha media de brotación del grupo Perruno. 1996 1991 1998 1999 Clon Media Clon Media Clon Media Clon Media 9CA37 17,0' 9CA25 3X 9CA36 7,0' 9CA25 11,3' 9CA39 18,0" 9CA13 4,0' 9CA22 9,0" 9CA36 12,3'" 9CA25 18,6"'^ 9CA39 4,3" 9CA25 9,0" 9CA39 12,7'" 9CA22 19,3' 9CA37 4,3' 9CA13 10,0"' 9CA37 14,0'" 9CA13 19,4' 9CA22 5,9" 9CA39 10,8'^ 9CA22 14,0'" 9CA36 21,1' 9CA36 6,4" 9CA37 12,0" 9CA13 15,7"

Cuadro n° 55. Fecha media de floración del grupo Perruno. 1996 .: .1997-;.:.VyS-.. :,..:,../:K:„ 1998:^-V.-;;,•::: 1999 Clon Media Clon Media Clon Medid Clon Media 9CA25 79,0' 9CA25 51,9' 9CA13 70,0' 9CA36 77,0' 9CA22 79,8'" 9CA13 52,6' 9CA25 71,7" 9CA37 77,0' 9CA13 80,0'"' 9CA37 53,9'" 9CA22 72,2" 9CA22 77,2' 9CA37 80,2'"' 9CA39 54,4'" 9CA36 72,2" 9CA25 77,2' 9CA36 80,9"' 9CA36 55,8" 9CA37 72,7" 9CA39 77,3' 9CA39 81,2' 9CA22 56,5" 9CA39 74,2' . 9eA13 81,0"

Cuadro n° 56. Fecha media de envero del grupo Perruno. 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 9CA37 . 145,0' 9CA36 136,5' 9CA22 157,0' 9CA36 148,0'" 9CA13 141,6" 9CA36 157,0' 9CA22 150,0"' 9CA22 142,0" 9CA37 157,4' 9CA39 153,0' 9CA39 142,3" 9CA13 160,2" 9CA25 153,0' 9CA37 144,9" 9CA39 161,0" 9CA13.. 153,0' 9CA25 153,6' 9CA25 161,0"

Cuadro n° 57. Fecha media de caída de hoja del grupo Perruno. 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 9CA22 257,1' 9CA22 262,5' 9CA22 266,0' 9CA13 259,4'" 9CA25 265,4' 9CA25 266,0' 9CA25 259,9'" 9CA13 266,0' 9CA39 266,0' 9CA39 262,9'" 9CA39 266,1' 9CA36 266,4' 9CA37 264,4'" 9CA37 266,4' 9CA13 266,4' 9CA36 266,1" 9CA36 266,6' 9CA37 266,6'

Cuadro n° 58. Período medio floración-envero c el grupo Perruno. 1996 1997 1998 Clon Media Clon Media Clon Media 9CA37 64,8' 9CA36 80,7' 9CA37 84,7' 9CA36 67,1'" 9CA22 85,5'" 9CA22 84,8' 9CA22 70,2"' 9CA39 . 87,9" 9CA36 84,8' 9CA39 71,8' 9CA13 89,0" 9CA39 86,8" 9CA13 73,0' 9CA37 91,0" 9CA25 89,3' 9CA25 74,0' 9CA25 101,7' 9CA13 90,2'

259

5. DISCUSIÓN

5.1.- Caracterización morfológica.

Los resultados obtenidos mediante el procedimiento de descripción morfológica se ven reflejados en los dendrogramas de las figuras n° 21, 22 y 23.

En la figura n° 23 se puede apreciar una primera rama constituida por los clones correspondientes a los cultivares de Pardina, Blanca Cayetana, Jaén y Morisca. Este grupo en principio puede parecer heterogéneo por los diversos nombres que comprende, pero si se analizan las distintas sinonimias citadas por diversos autores se "puede apreciar una mayor homogeneidad en el mismo.

García de los Salmones en 1935, ya indicó la confiísión existente entre Blanca Cayetana y Jaén, afirmando que se trataban de dosnombres que hacían referencia a una misma variedad. Posteriormente Marcilla (1954) escribió sobre la posibilidad de que Cayetana o Blanca Cayetana fuese una casta de Jaén. Hidalgo (1980) establece como sinonimia de Jaén a Pardina y Parda. Marín y Morales (1993) no sólo apuntan que Parda "proviene de una casta de Jaén", sino que Cayetana Blanca y Parda podrían ser "clones diferentes de la misma variedad". (No hay que olvidar que Parda es un nombre muy extendido en la comarca de Tierra de Barros (Badajoz) para designar a Pardina).

En el dendrograma se presenta como un grupo poco compacto, puesto que a un nivel de disimilitud de 0,85 ya surge un desdoblamiento. En la rama inferior del mismo aparecen asociados los dos clones de Morisca que morfológicamente presentan ima caracteristica, el color rosado de la epidermis de la baya, que diferencia claramente a este cultivar.

Para el resto de clones esta disgregación es debida a caracteres como: la intensidad de la pigmentación antociánica de la extremidad (código OIV n° 003), la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017), el tamaño de la hoja adulta (código OIV n° 065), y la longitud de los dientes en relación a su anchura en la base en la hoja adulta (código OIV n° 078). Los tres primeros caracteres son aspectos morfológicos en los que se observan modificaciones cuando se estudian los mismos cultivares en diferentes

263 puntos geográficos. Por otra parte, el código OIV n° 078 fue descrito en Extremadura y en el IMIA de Madrid empleando dos metodologías diferentes, siendo este aspecto determinante en la relación de los clones como se refleja en los resultados obtenidos, y como se comentará posteriormente.

Esta falta de compacidad en este grupo también se hace patente en los dendrogramas correspondientes a los años 1996 y 1997. En ellos caracteres como la intensidad de la pigmentación antociánica en la extremidad (código OIV n° 003), la intensidad de la pigmentación antociánica de las seis hojas terminales (código OIV n° 052), la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017), el tamaño de la hoja adulta (código OIV n° 065), y la compacidad del racimo (código OIV n° 204) son los que determinan esa falta de cohesión en el grupo, notablemente marcada por el lugar de cultivo de los clones descritos.

Ya Roxas Clemente escribiendo sobre Jaén indicó que "las diferencias de terreno y otros accidentes pueden influir muy sensiblemente en muchos de estos caracteres" pudiendo producir errores en las denominaciones.

Por último, hay que señalar como en el diagrama de agrupamientos correspondiente a 1997 el clon BCBA (Blanca Cayetana) no aparece asociado al grupo constituido por Pardina, Blanca Cayetana, Jaén y Morisca. Caracteres como la longitud de zarcillos (código OIV n° 017), o la longitud de los dientes en relación a su anchura en la base en la hoja adulta (código OIV n° 078) son determinantes en esta relación, mostrando una vez más la gran fluctuación que pueden tener estos caracteres, incluso dentro de clones cultivados en una misma plantación.

Todas las accesiones descritas bajo el nombre de Jaén Negro o Tinto presentan una morfología muy similar, como lo indica su relación en los dendrogramas. Como inicialmente se esperaba estos clones no han presentado una gran similitud con Morisca, apareciendo en los agrupamientos en ramas totalmente separadas. La distinta coloración de la epidermis de la baya, rojo violeta-oscuro para Jaén Tinto o Negro, y rosa para Morisca, era el carácter que en un principio mayores evidencias daba de la

264 diferencia entre estos dos cultivares. Pero además otros aspectos morfológicos han intervenido en la separación entre estas dos variedades: la coloración de las hojas jóvenes 4", 5" y 6" (código Dettweiler 051-2), la longitud de los dientes en la hoja adulta (código OIV n" 077), y la forma del seno peciolar de la hoja adulta (código OIV n° 079).

Todas las p^antas procedentes de la selección clonal realizada por el SIDT- Extremadura bajo la denominación de Borba y Cigüentes, aparecen con una gran similitud morfológica en todos los agrupamientos obtenidos, y asociadas al clon tomado en el Banco de Germoplasma de la Vid (IMIA-Madrid) CGBA (Cigüente). El resto de accesiones descritas: GIBA (Cigüente), BOBA (Borba) y BOCC (Borba) aparecen en diferentes ramas sin gran relación entre ellos.

Si buscamos en la bibliografía descripciones realizadas por otros ampelógrafos de estos cultivares, para poder identificar en alguna de ellas a las accesiones aquí descritas, podemos establecer las siguientes comparaciones. Para la variedad Borba se han encontrado tres referencias bibliográficas, que a continuación se contrastan con las descripciones aquí obtenidas del grupo constituido por los clones procedentes de la selección clonal y CGBA, y las accesiones de Borba (BOBA y BOCC).

Cuadro n° 59. Descripción morfológica comparativa de Borba. Lara y Serrano Código Hidalgo et al. iSelección Borrego (1990) (comunicación BOBA BOCC OIV (1976) clonal (SIDT) personal)- Nula 0 muy 003 - Débil Media Media Media baja 004 - Alta Medio Media Baja Alta 007 - Verde - Verde Rayas rojas Rayas rojas 067 Pentagonal Pentagonal Orbicular Pentagonal Pentagonal Pentagonal 068 3 ó 5 lóbulos 5 lóbulos 5 lóbulos 5 lóbulos 5 lóbulos 5 lóbulos 079 Lira cerrada Abierto Cerrado Abierto Abierto Muy abierto 084 Velloso Baja Media Media Baja Baja Nula 0 muy 087 Velloso Baja Baja Muy baja Nula baja

265 Cuadro n° 59. (Continuación). Lara y Serrano : Código •:; •íHidalgó et ál; •:: Selección (comunicación BOBA BOCC Borrego (1990) clonal (SIDT) •oiy : personal) Pequeño- Pequeño- Pequeño- 202 - Muy pequeño Muy pequeño mediano mediano mediano Medio- - 204 - Compacto Medio Medio Suelto compacto 220 - Media Media Grande Media Media Obovate 223 - Elíptico corta Elíptica corta Elíptico corta Esférica acuminada

Observando el cuadro podemos concluir que ninguna de las descripciones comparadas se asemeja en su totalidad. Así para Hidalgo et al. (1976), la hoja puede ser tri o pentalobulada, con él seno peciolar en forma de lira y cerrado y el envés velloso, mientras que para las accesiones aquí descritas la hoja siempre presenta cinco lóbulos, el seno peciolar es abierto o muy abierto, y en el envés de BOBA y BOCC la presencia de pelos es muy limitada. Borrego (1990) presenta una sumidad un tanto diferente por esa nula o baja intensidad de la pigmentación antociánica, ya que los clones tomados de la selección clonal y CGBA, y las accesiones de Borba del Banco de Germoplasma tienen una notable presencia de la misma. La descripción del pámpano tampoco se asemeja a BOBA, ni a BOCC. Sin embargo, la hoja adulta tiene una gran similitud con los clones aquí estudiados. Por último, en el racimo y la baya con BOBA es con la que mayor semejanza muestra con respecto a los caracteres descritos. Lara y Serrano (comunicación personal) presentan un cultivar también im tanto diferente, así la forma de la hoja es orbicular y su seno peciolar es cerrado, mientras que la forma pentagonal y la apertura del seno peciolar es la nota dominante en los clones descritos en este trabajo. Sin embargo, al igual que con la descripción mostrada por Borrego (1990), de nuevo el racimo y la baya muestran una mayor similitud con BOBA.

Respecto al cultivar Cigüentes nos encontramos con las anotaciones realizadas por Alonso Herrera (1645), las cuales nos ofrecen poca ayuda ai no tener referencias morfológicas. Borrego (1990) describe a esta variedad, comparándose a continuación con los clones tomados de la selección clonal agrupados con CGBA y la accesión de CIBA del Banco de Germoplasma de la Vid.

266 Cuadro n° 60. Descripción morfológica comparativa de Cigüentes.

" Código ©IV i-Borrego (1990) Selección clonal (SIDT) : CEBA , :/ 002 Ausente No ribeteada Ribeteada 003 Media-ñierte Media Baja 004 Nula 0 muy baja Media Media 007 Verde Verde Verde 067 Pentagonal Pentagonal Pentagonal 068 5 lóbulos 5 lóbulos 5 lóbulos 076 Rectos Rectos Convexos 079 Abierto Abierto Abierto 084 Alta-muy alta Media Baja 087 Media-alta Baja Nula 202 _ Muy pequeño Pequeño-mediano Pequeño-mediano 204 Medio Medio-álto Media 220 Grande Grande Media-grande 223 Esférica Obovate acuminada Esférica

De nuevo nos enfrentamos a descripciones morfológicas que no presentan una gran similitud. Así la sumidad descrita por Borrego (1990) no tiene apenas ningún parecido con la de las accesiones aquí estudiadas. La hoja adulta de CIBA tiene algunas discrepancias respecto a la indicada por Borrego (código OIV n° 076, 084 y 087), al igual que la correspondiente a los clones procedentes del SIDT y CGBA (código OIV n° 084 y 087). El tamaño del racimo (código OIV n° 202) tarnbién establece algunas diferencias, así como la forma de la baya (código OIV n° 223) respecto a las accesiones tomadas de la selección clonal y CGBA.

Por tanto, ninguna de las descripciones realizadas por diversos autores de los cultivares Borba y Cigüentes, se asemejan a las obtenidas en este trabajo para los clones de Borba y Cigüentes seleccionados por el SIDT-Extremadura y CGBA. Sin embargo, el hecho de que la accesión procedente del Banco de Germoplasma de la Vid, CGBA, morfológicamente presenta una mayor simihtud con los clones de Borba y de Cigüentes seleccionados por el SIDT-Extremadura plantea la sospecha de que todas estas accesiones correspondan al cultivar denominado Cigüentes.

Por último, se podría señalar como en la agrupación constituida por los clones de Borba y Cigüentes seleccionados por el SIDT-Extremadura y CGBA, y observada

267 en los tres diagramas de agrupamientos estudiados, hay una mayor relación por un lado entre los clones seleccionados por el SIDT-Extremadura bajo el nombre de Cigüentes, y por otro entre las accesiones denominadas Borba, aunque los clones 6M015 y 6M045 suelen presentar una mayor proximidad a la agrupación constituida por Cigüentes.

Otras dos agrupaciones que aparecen en los dendrogramas obtenidos son las constituidas por los clones que corresponden al nombre de Eva, Beba, Montúa, Mantúo y Chelva. En las dos su composición se mantiene constante en todos los agrupamientos, y su presentación es en dos ramas claramente diferenciadas, que se produce siempre sobre un nivel de disimilitud mayor a 1,13.

Estudiando el contenido de estos dos grupos se observa que la diferenciación es compleja, puesto que todas las denominaciones aparecen involucradas en las dos agrupaciones. Así tenemos que el primero de ellos comprende a clones con nombres tan variables como: Chelva (3C01, CHAV), Eva (4C01), Beba (BECA, BBHU, BEHU), Mantúo Jerezano (MJGR), Mantúo (MAGR), Mantúo Basto o Perruno (PRGR); y el segundo contiene a Montúa (3AL45, 3GU19, 3GU34, 3ST17), Eva (4LS47, EVBA), Mantúo (MABA) y Chelva (CHCR).

Revisando la bibliografía existente se habían establecido las sinonimias:

- Mantúo = Chelva (Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes, 1970; Hidalgo y Candela, 1971; Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990; Lara y Serrano, comimicación personal) - Eva - Beba (Hidalgo y Candela, 1971; Hidalgo, 1980, 1991; Hidalgo y Galet, 1988; Borrego, 1990; García de Lujan et al., 1990; Lara y Serrano, comunicación personal)

Esto es sin mencionar los nombres derivados a partir de los arriba indicados, y sin considerar las distinciones reahzadas por Roxas Clemente (1807) y posteriores autores entre diferentes Mantúos.

268 Considerando lo expuesto parecía claro que existían dos cultivares distintos, Mantúo y Eva, que tenían varías sinonimias asignadas.' Sin embargo, Hidalgo et al. (1976), y posteriormente Hidalgo y Galet (1988) diferencian entre Mantua, Chelva y Eva, presentando diferentes descripciones morfológicas para cada una de estas variedades.

Según la caracterización morfológica aquí presentada, en todos los dendrogramas obtenidos se forman dos agrupamientos que confirman la existencia de dos cultivares morfológicamente diferenciados, pero a los que corresponden los mismos nombres, de tal manera que no se puede asignar una denominación determinada a cada uno de ellos. Sin embargo, analizando los dos grupos obtenidos se observa una tendencia en los mismos a agrupar a las accesiones según su procedencia. Así, en el primero de ellos predominan los clones de origen andaluz, mientras que en el segundo los extremeños.

A continuación se presentan las descripciones recopiladas de otros ampelógrafos que han estudiado estas variedades. En el siguiente cuadro resumen sólo se han considerado aquellos caracteres que en este estudio han sido más discriminantes entre los dos tipos de cultivares obtenidos:

Cuadro n° 61. Descripción morfológica comparativa de Mantua, Eva y Chelva.

003 004 051'.:;;; '-:W^^^-V:.'Q.í:M-¡&: •:':^:019-:'\ Estrías Mantúo de Pilas - - - Abierto - vinosas Fernández de Mantúo de Manchas Bobadilla - - - - Muy cerrado Sanlúcar vinosas (1956) Estrías Beba - - - Cerrado - vinosas Mantua - - - - - Abierto Lóbulos Hidalgo et al. Chelva - - -' - - (1976) superpuestos Lóbulos no Beba - - - - - superpuestos Algunas Lanosa- Mantua - Verde Verde Verde veces vellosa cerrado Hidalgo y Lanosa- Bordes Lóbulos Galet (1988) Chelva - Verde Verde vellosa carminados superpuestos Blanco Blanco A veces Eva - Algodonosa Verde verdosas verdosas superpuestos

269 Cuadro n° 61. (Continuación).

003,, V-^: vi-: 004 •>:•: .. 051' : • •y-Q5M'iy ;; 007 • :fl79;;v'; Débil- Lóbulos Chelva Baja-media - - Verde media superpuestos Borrego Lóbulos (1990) Alta-muy Eva Débil - - Verde ligeramente alta superpuestos Rayas Mantúo de Pilas Débil Alta Verde Verde Abierto García de rojas Lujan et al. Zonas Zonas Lóbulos (1990) Beba Media Media Verde bronceadas bronceadas superpuestos Lóbulos Lara y Serrano Chelva Media Media - - - superpuestos (comunicación Lóbulos personal) Eva Débil Media - - - superpuestos 3C01,4C01, BECA, MJGR, Cerrado o Rayas BBHU, BEHU, Media Baja-media Rojizo Verde con lóbulos rojas MAGR, PRGR, superpuestos Resultados de CHAV esta tesis 3AL45,3GU19, 3GU34,3ST17, Muy baja Alta Verde.: _ Verde Verde Abierto 4LS47, CHCR, EVBA, MÁBA

Atendiendo a estas descripciones se pueden establecer algunas conclusiones:

- Fernández de Bobadilla (1956) describe tres variedades, dos de ellas con nombres muy_similares (Mantúo de Pilas y Mantúo de Sanlúcar). Sin embargo, al considerar sus descripciones, a pesar de contar con muy pocos valores de criterio, se encuentran más similares a Mantúo de Sanlúcar y Beba, que se podrían incluir en el primer grupo de los dos indicados en los resultados de esta tesis. Mantúo de Pilas presenta un seno peciolar abierto que lo sitúa más próximo morfológicamente al grupo constituido por 3AL45, 3GU19, 3GU34, 3ST17, 4LS47, CHCR, EVBA, MABA. - Hidalgo et al. (1976) de nuevo ofrecen pocos detalles con respecto a los caracteres que se han considerado más discriminantes. A pesar de ello, se considera a Mantua más próxima al segundo grupo establecido en los resultados de esta tesis, y a Chelva con aquel que su seno peciolar es cerrado o con los lóbulos ligeramente superpuestos, mientras que en Beba se plantea la duda de si estos autores al indicar que en su seno peciolar los bordes no están superpuestos, esto significa que éste es cerrado o abierto, en cuyo caso en el primer planteamiento se la podría asociar con Chelva y en el segundo con Mantua.

270 - Hidalgo y Galet (1988) también describen tres variedades. La descripción que presentan las mismas es muy próxima, siendo Chelva quizá la que más se aproxime al primer grupo establecido en los resultados de esta tesis. Las otras dos variedades al presentar en algunas ocasiones el seno peciolar cerrado, o con los bordes ligeramente superpuestos también parecen señalar una mayor "semejanza con ese grupo, a pesar de tener Mantua unas hojas jóvenes verdes y Eva una sumidad algodonosa. - Borrego (1990) estudia a los cultivares Chelva y Eva. El primero de ellos con la descripción morfológica presentada respecto a los códigos OIV n° 003, 004 y 079 muestra una mayor proximidad al primer grupo indicado en los resultados de esta tesis. Sin embargo, Eva parece mostrar caracteres semejantes a los dos grupos descritos en este trabajo, presentando en el código n° 004 un valor más próximo al segundo grupo, mientras que los lóbulos ligeramente superpuestos le aproximan más al primero. - García de Lujan et al._(1990) de todos los autores considerados quizá sea el que más se aproxime en sus descripciones a los dos grupos indicados en los resultados de esta tesis. De esta manera a Mantúo de Pilas se le incluiría en el segundo grupo presentado en el anterior cuadro, mientras que a Beba se la asociaría con el prímero de ellos. - Lara y Serrano (comunicación personal) presentan dos cultivares (Chelva y Eva) con apenas diferencias morfológicas. A través de estas descripciones se observa una gran similitud con el primer grupo presentado en los resultados de esta tesis.

Por tanto, al comparar las descripciones realizadas por los ampelógrafos anteriormente expuestos con las mostradas en este trabajo, se encuentra en un mayor número de ocasiones identificado el segundo grupo definido en los resultados de esta tesis con descripciones del cultivar Mantúo; mientras que el primer grupo se asemeja más a fichas ampelográficas correspondientes a Eva, Beba y Chelva.

Hidalgo y Galet (1988) al describir las variedades Mantua, Chelva y Eva señalaron como origen de las dos últimas la provincia de Badajoz, mientras que a la primera de ellas la ubicó en la zona andaluza, provincia de Granada. Como ya se ha

271 señalado anteriormente en las dos agrupaciones observadas en este trabajo también se ha detectado un agrupamiento de las accesiones según su lugar de origen, existiendo una relación entre los procedentes de Andalucía, correspondientes al primer grupo definido en los resultados de esta tesis, y los de Extremadura, que son el segundo grupo del cuadro n° 61. Considerando esta asociación según su lugar de procedencia, y según Hidalgo y Galet (1988), el primer grupo debería corresponder al cultivar Montúa, y el segundo a Eva.

Por tanto, se puede decir que morfológicamente existen dos cultivares claramente diferenciados, para- los cuales es muy complejo establecer su correcta denominación al existir citas bibliográficas contradictorias. Sin embargo, según los resultados obtenidos en este trabajo, y ya señalados, parece haber una identificación entre el primer grupo que aparece en el cuadro n° 61, definido en los resultados de esta tesis, con aquellos cultivares descritos bajo la denominación de Eva, Beba y Chelva, y el segundo grupo con las llamadas Mantúo, pudiendo ser ésta su correcta denominación.

En todos los agrupamientos obtenidos aparece un clon de Mantúo (MTGR) separado de los dos grupos constituidos por accesiones cuyos nombres son iguales o semejantes a éste. Morfológicamente son individuos completamente diferentes como lo muestra su relación en los dendrogramas, y por tanto, no muestran ningún parecido con las descripciones realizadas por otros autores de esta variedad o sus posibles sinonimias. MTGR siempre aparece asociado a otro clon. Perruno (PEMA) formando un grupo independiente en los agrupamientos.

Otro de los grandes grupos constituidos y cuya composición apenas se modifica en los agrupamientos obtenidos, es el formado por casi todos los clones de Alarije estudiados, excepto AVCC, y uno de los dos tomados de Malfar (7CN1). Por el contrario, la accesión de Alarije que ha quedado separada de este grupo (AVCC) se agrupa con la de Marfal (MACC), apareciendo asociadas en todos los dendrogramas, aunque sólo en uno de ellos conforman un grupo por sí mismo. En el agrupamiento de 1997 presentan una mayor similitud morfológica con el clon de Cigüente (CIBA) y con

272 el de Perruno (PEGR); mientras que en el dendrograma del año 1996 se encuentran más próximos al grupo constituido por diversos clones de Jaén, Pardina y Blanca Cayetana. En todos los casos el grado de similitud que presentan Alarij Verdosa (AVCC) y Marfal (MACC) es mayor entre ellos, que el que pueda tener con las otras accesiones con que se encuentran asociadas, ya que su morfología difiere bastante.

La separación entre Marfal (MACC) y Malfar (7CN1), y el clon de Alarij Verdosa (AVCC) del resto de Alarijes es muy clara, presentándose en todos los casos en ramas totalmente diferentes, ocurriendo su separación siempre sobre un nivel de disimilitud mayor a 1,15.

Hay que señalar que los clones de Marfal (MACC) y de Alarij Verdosa (AVCC), ambos procedentes del Banco de Germoplasma de la Vid, presentan una gran similitud morfológica con el cultivar que en Cañamero (Cáceres) tienen identificado como Marfal, según las comprobaciones realizadas en 1998-1999 recorriendo la citada zona.

El grupo de clones correspondientes a la variedad Perruno, tomados del proceso de selección clonal realizado por el SIDT-Extremadura, se caracteriza por tener una morfología muy similar, pero muy diferente a la de las accesiones tomadas bajo ese mismo nombre del Banco de Gennoplasma de la Vid del IMIA-Madrid. Una de ellas (PRGR) cuya denominación no aparecía clara (Mantúo Basto o Perruno) al realizar su descripción morfológica se vio que presentaba ima mayor similitud con el grupo de los Mantúos que con los Perrunos. PEGR (Perruno Común) se ha mostrado también como un cultivar independiente de los tomados tanto en el Banco de Germoplasma de la Vid, como de los procedentes de la selección clonal, aunque siempre próximo en los dendrogramas a CIBA, a pesar de tener unas características morfológicas dispares. Por último, PEMA (Perruno) tampoco aparece asociado con ninguno de los individuos estudiados bajo este nombre, aunque si con un clon de Mantúo (MTGR).

Si consideramos las descripciones realizadas por otros ampelógrafos podremos hacer las siguientes comparaciones:

273 Cuadro n° 62. Descripción morfológica comparativa de Perruno.

Fernández de Bobadilla García de Selección Código y (1956) Hidalgo et Borrego Lujan et al. clonal PEMA PEGR OIV Perruno de al. (1976) (1990) Perruno (1990) (SIDT) Arcos No No 002- Ribeteada Ausente Ribeteada - - - ribeteada ribeteada Q03 - - - Media Media Nula Débil-media Débil Baja- 004 - Alta Baja Media Baja - - media Estrías Rayas Rayas 007 Verde - Verde Rojo Verde vinosas rojas rojas Estrías Rayas 008 Verde - Verde Rojo Verde vinosas - rojas Estrías 009 Verde - - Verde Rojo Verde Rojo vinosas Estrías 010 Verde - - Verde Rojo Verde Rojo vinosas Zonas 051' - - - - Verde Verde Verde bronceadas Zonas Zonas Zonas 051^ - - - Verde bronceadas bronceadas bronceadas Rectos y 076 . Convexos Convexos Rectos Convexos Convexos Convexos Rectos convexos Bastante Lóbulos 079 Cerrado Abierto Abierto Cerrado Abierto Abierto cerrado superpuestos Con un Con un Con un 081 Ninguna - Ninguna Ninguna Ninguna diente diente diente Muy Muy 087 Aranoso Media Alta Nula Alta Nula abundantes abundantes Medio- 202 - Grandes Medio Pequeño Media Medio Medio grande Algo Algo Medio- Pequeño- Medio-

204 - • Medio Compacto compacto compacto compacto medio compacto Grande-muy Grande-muy 220 - - Pequeña Media Media Grande grande grande Ligeramente Elíptico Ligeramente 223 Discoidea Discoidea Esférica Esférica Esférica aplastada corta aplastada

Miguel Lara, en una comunicación personal manifestó que PEMA correspondía con la variedad Perruno que tienen identificada en el CIFA "Rancho de la Merced" (-Cádiz). Comparando la descripción obtenida para este clon y la realizada por García de Lujan et al. (1990) se comprueba una gran similitud, aunque en algún carácter presente ciertas discordancias (código OIV n° 079). Fernández de Bobadilla (1956) realiza la descripción de dos variedades Perruno de Arcos y Perruno, presentando ciertas diferencias entre ellas. Considerando la morfología de Perruno de Arcos ésta muestra mayores similitudes con PEMA, que con los clones tomados de la selección clonal (código OIV n° 007, 008, 009, 010, 081, 087). Hidalgo et al. (1976) describen brevemente a un Perruno que no presenta una morfología muy próxima a los grupos indicados en el cuadro n° 62, siendo con PEGR con el que muestra una mayor

274 semejanza (código OIV n° 079, 223). Borrego (1990) presenta un cultivar muy diferente respecto a los clones tomados de la selección clonal no sólo con respecto a la sumidad, sino también el pámpano, la densidad de pelos tumbados en el envés de la hoja (código OIV n° 087), o la forma de la baya (código OIV n° 223). Tampoco se asemeja a PEMA, siii embargo, en algunos aspectos encuentra un mayor parecido con el clon de PEGR.

Las descripciones más antiguas encontradas sobre esta variedad son muy poco precisas, de tal manera que es complicado establecer cualquier tipo de relación. La única información un poco aclaratoria es la indicación que aparece en el Perruno Común descrito por Roxas Clemente (1807) sobre la presencia de "pelos" cortos que pueden ser abundantes en las hojas inferiores, siendo este un carácter muy propio de la accesión PEMA. Los demás detalles de las descripciones son muy imprecisos.

Por tanto, se puede decir que los clones seleccionados por el SIDT-Extremadura bajo el nombre de Perruno no coinciden morfológicamente con los descritos por otros autores, ni con las accesiones tomadas del Banco de Germoplasma de la Vid del IMIA de Madrid.

Por último, comentar que inicialmente en este estudio se incluyeron tres accesiones de Pardillo, y una de Pardilla. Sobre ellas se realizaron las descripciones morfológicas correspondientes durante el año 1996. A partir de ellas se construyó el dendrograma que aparece en la figura n° 21, en el que se ve el agrupamiento de PACU (Pardillo), PLMA (Pardillo) y PLCR (Pardillo) con CIBA (Cigüente) y PEGR (Perruno común). Por otra parte, el clon de PDGU (Pardilla) se encuentra más próximo al grupo constituido por Montúa, Eva y Chelva, que al formado por las otras accesiones de Pardillo. Como se ve ninguno de los clones estudiados presenta similitud con Pardina o Blanca Cayetana o Jaén, con los que a priori se esperaba se asociasen. Es por esta razón que se eliminaron del estudio, pues no cumplían la hipótesis de la que se partía.

Como inicialmente se ha comentado al hablar del grupo constituido por Jaén, Blanca Cayetana, Pardina y Morisca, y se ha señalado en los resultados, hay ciertos

275 caracteres que presentan una gran fluctuación en función de su lugar de cultivo, que a veces llegan a dividir claramente a los clones según su lugar de procedencia en los agrupamientos; otros, sin embargo, mantienen valores muy estables. Entre los caracteres que más se modifican destaca fundamentalmente la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017), que no sólo suft-e variaciones cuando se considera su lugar de cultivo, sino que también fluctúa dentro de los clones procedentes del mismo lugar. El tamaño de la hoja adulta (código OIV n° 065) y~ la intensidad de la pigmentación antociánica en la extremidad (código OIV n° 003) también son aspectos morfológicos que se modifican según el punto donde se realiza la descripción, aunque el primero de ellos se mantiene en más casos estable que la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017), o la intensidad de la pigmentación antociánica en la extremidad (código OIV n° 003).

Según un estudio realizado por Dettweiler (1993) en el que se describían 44 variedades cultivadas en dos plantaciones diferentes, aquellos caracteres que no cambiaban con el lugar de cultivo eran: código OIV n° 004, 007, 008, 051-1, 051-2, 053, 223, 225-1. Como se observa estos tampoco son los aspectos morfológicos que se modifican en función de las condiciones ambientales en este trabajo.

En función de los resultados obtenidos podemos concluir que no se recomienda el empleo de los caracteres anteriormente indicados (código OIV n° 003, 017, 065) por su variabilidad, cuando se describan cultivares ubicados en diferentes puntos geográficos. Así mismo, hay algunos códigos que no discriminan entre variedades de Vitis vinifera L. (código OIV 001, 016, 244) que tampoco sería necesario incluirlos en las fichas identificativas.

También es interesante señalar la ambigüedad que puede presentar el código OIV n° 083. Un ejemplo de la misma se encuentra al describir dicho carácter entre las accesiones correspondientes a Pardina, Blanca Cayetana, Cayetana Blanca, Jaén y Morisca; para las ubicadas en el Banco de Germoplasma de la Vid los senos laterales superiores tienen forma de V, mientras que para las descritas en Badajoz la forma más característica es la U.

276 Además de los factores climáticos, el empleo de diferentes metodologías al realizar las descripciones influyen notablemente en la disposición de los clones en los agrupamientos, como ya se ha apuntado. Este es el caso de la descripción de la longitud de los dientes en la hoja adulta (código OIV n° 077) y de la longitud de los dientes en relación a su anchura en la base en la hoja adulta (código OIV n° 078).

En el SIDT-Extremadura el método de descripción de ambos caracteres fue realizando mediciones sobre 10 dientes de la hoja adulta con una regla. Los resultados obtenidos se transformaban mediante una tabla (Galet, 1980) a los valores indicados por la OIV (1 muy pequeño, 3 pequeño, 5 mediano,...). Sin embargo, en el IMIA- Madrid la determinación del tamaño de los dientes y la relación entre la longitud y la anchura de los mismos se hacía por comparación con los ejemplos indicados en las fichas del carácter establecidos por la OIV. El segundo método es mucho más subjetivo que el primero, pero también mucho más rápido.

En algunos casos se han observado valores diferentes de estos caracteres para clones que pertenecen al mismo cultivar y que han determinado claramente una disgregación en el grupo obtenido. De esta manera, se ve que es conveniente el empleo de las mismas técnicas cuando se hacen descripciones que posteriormente se van a comparar.

Por último, señalar que la ampelografía es el método más antiguo para caracterizar variedades de vid. La necesidad de unificar criterios al realizar una descripción era un hecho necesario, pues al intentar comparar los estudios efectuados por diversos ampelógrafos, que describían atendiendo a sus propios criterios (por ejemplo, Roxas Clemente), se hallaban enormes dificultades, pues normalmente eran descripciones demasiado ambiguas.

Sin embargo, actualmente describir morfológicamente un cultivar siguiendo las indicaciones y los caracteres establecidos por la OIV tampoco termina por solucionar los obstáculos anteriormente citados. Una vez solucionada la unificación de criterios, surge el problema de la subjetividad, dificultad mucho más difícil de superar. Si se

277 comparan descripciones realizadas sobre un mismo cultivar por diferentes autores, se observa que morfológicamente ese cultivar no es idéntico, pues para un ampelógrafo la densidad de pelos tumbados puede ser alta, mientras que para otro sólo es media, o incluso baja, o la intensidad de la pigmentación antociánica, o el hinchazón del haz, o la compacidad del racimo,... por citar algunos de los caracteres conflictivos.

Con este problema nos hemos enfrentado en este estudio al comparar diferentes descripciones de un mismo cultivar, como ya se ha reflejado. Esto nos plantea la necesidad de recurrir a otros métodos de caracterización menos subjetivos y fácilmente comparables con otros grupos de trabajo. Además,-así se corroboran los resultados obtenidos por los diferentes sistemas utilizados.

5.2.- Caracterización bioquímica. 5.2.1.- Isoenzimas

De todos los sistemas isoenzimáticos analizados, catecol oxidasas es el qué presenta mayor número de modelos, que permiten establecer diferencias entre los cultivares estudiados. Este polimorfismo lo convierte en un sistema muy interesante desde el punto de vista de la caracterización varietal, coincidiendo estos resultados con otros estudios realizados por Schwennsen et al. (1982), Altube et al. (1991) y Cabello (1992).

Acido fosfatasa y peroxidasa presentan cuatro zimogramas diferentes cada una de ellas, que también permiten una clara distinción entre las accesiones consideradas. Ya algunos autores apuntaron esta condición (Dal Belin Peruffo et al., 1981, Schwennsen et al., 1982, Altube et al, 1991, Cabello, 1992, Bachmann, 1994).

Por último, glutamato oxalacetato transaminasa y superóxido dismutasa han resultado ser los dos sistemas que cuentan con menos modelos diferentes, aunque se presentan en un número suficiente como para permitir la discriminación de variedades. De hecho, el sistema GOT es el que permite distinguir entre el grupo de Jaénes Negros y Tintos y el constituido por Pardina, Blanca Cayetana, Cayetana Blanca, Jaén y

278 Morisca, ya que es en él en el único que presentan un modelo diferente.

Considerando los resultados obtenidos en los cinco sistemas isoenzimáticos analizados se pueden hacer las siguientes agrupaciones, atendiendo a los zimogramas desarrollados para cada isoenzima. Un resumen de estos resultados es el que aparece en el cuadro n° 8.

- Grupo I: constituido por los clones tomados de Pardina (1S04, PABA), Blanca Cayetana (2AL11, 2T01, 2T013, BCBA), Cayetana Blanca (CBCC), Jaén (JAGR, JATO, JAGU) y Morisca (10AL3, MOBA). - Grupo II: formado por las accesiones de Jaén Tinto (JATN) y Jaén Negro (JANE, JENE, INNE). - Grupo III: es muy numeroso y está constituido por todos los clones de Borba y Cigüentes seleccionados en el SIDT-Extremadura, junto con CGBA (Cigüente) tomado en el Banco de Germoplasma de la Vid. - Grupo rV: sólo incluye a un individuo BOBA (Borba). - Grupo V: formado por BOCC (Borba). - Grupo VI: de nuevo sólo consta de una accesión CIBA (Cigüente). - Grupo VII: constituido por los clones de Montúa seleccionados por el SEDT- Extremadura (3AL45, 3GU19, 3GU34, 3ST17), junto con Eva (4LS47, EVBA), Mantúo (MABA) y Chelva (CHCR). - Grupo VIII: incluye a Chelva (3C01, CHAV), Eva (4C01)^ Beba (BECA, BEBOJ, BBHU), Mantúo Jerezano (MJGR), Mantúo (MAGR) y Mantúo Basto o Perruno (PRGR). - Grupo IX: contiene a todos los clones de Alarije seleccionados por el SIDT- Extremadura, junto con los tomados en el Banco de Germoplasma de la Vid bajo el nombre de Alarije (ALCO, ALMA, ALTO, ALBA, ALCC y AJCC) y Malfar (7CN1). - Grupo X: consta de dos accesiones: Alarij Verdosa (AVCC) y Marfal (MACC). - Grupo XI: formado por todos los clones de la variedad Perruno seleccionados por el SIDT-Extremadura. - Grupo XII: constituido por PEGR (Perruno Común).

279 - Grupo XIII: consta de los clones PEMA (Perruno) y MTGR (Mantúo).

Analizando las agrupaciones señaladas se pueden hacer una serie de puntualizaciones.

Las accesiones de Jaén, Blanca Cayetana, Cayetana Blanca y Pardina no presentan ninguna diferencia isoenzimática en ninguno de los cinco sistemas analizados, cumpliéndose de nuevo la hipótesis de que estas tres variedades son sinónimas. Junto a ellas se agrupa Morisca (10AL3, MOBA), que como era de esperar, por esa clara diferenciación morfológica en el color de sus bayas, se distinguen de los clones de Jaén Tinto y Jaén Negro por el zimograma mostrado en el sistema GOT, permitiendo una clara identificación.

De nuevo todos los clones de la variedad Borba seleccionados por el SIDT- Extremadura tienen los mismos perfiles isoenzimáticos, que a su vez son iguales a los de los clones de Cigüentes tomados del SIDT-Extremadura y a CGBA (Cigüente), procedente del Banco de Germoplasma de la Vid. Mientras tanto, las accesiones de Borba (BOBA, BOCC) y de Cigüente (CIBA) cuentan con zimogramas distintos no sólo entre sí, sino también con respecto al grupo anteriormente indicado. Confirmándose de esta manera los resultados obtenidos mediante la caracterización morfológica.

Isoenzimáticamente se han obtenido dos grupos (VII y VIII) que incluyen accesiones con nombres dispares (Montúa, Mantúo, Eva, Beba, Chelva), y que además se encuentran en ambos. De esta manera, se observa la existencia de dos cultivares distintos, pero cuya denominación está confusa por emplearse los mismos nombres para designar accesiones que están incluidas en los dos grupos; esto junto con el empleo de las diferentes sinonimias hace más complicado el problema. Sin embargo, en la discusión correspondiente a la caracterización morfológica se ha señalado como posible identificación al grupo Vil con cultivares de Montúa descritos por otros autores, y al grupo VIH con Eva, Beba y Chelva.

280 Junto a ellos se ha estudiado el clon de Mantúo (MTGR). Este ha mostrado unos perfiles isoenzimáticos completamente diferentes en AcPH, CO, GOT y SOD, a los de los dos grupos mencionados anteriormente, que lo colocan en una posición totalmente alejada de los mismos, como ya se había observado en los resultados obtenidos de la caracterización morfológica. Así mismo, este' clon muestra los mismos zimogramas en los cinco sistemas isoenzimáticos empleados que PEMA (Perruno), corroborando los resultados morfológicos obtenidos, que indicaban que ambas accesiones se trataban de un mismo cultivar.

Los clones de Alarije seleccionados en el SIDT-Extremadura, junto con 7CN1 (Malfar), presentan los mismos modelos que las accesiones de Alarije tomadas del Banco de Germoplasma de la Vid, excepto para AVCC (Alarij Verdosa), que desarrolla los mismos zimogramas que MACC (Marfal). Esta es de nuevo, la misma situación que se había planteado en el estudio morfológico. En él se distinguían claramente dos grupos, uno de ellos constituido por las accesiones de Alarije y 7CN1, y otro en el que aparecían asociados MACC y AVCC. Por tanto, se puede señalar la diferencia existente entre los clones de Malfar (7CN1) y Marfal (MACC), tratándose el primero de ellos de una sinonimia de Alarije, y el segundo de un cultivar diferente, denominado Marfal.

Por último, señalar que se han distinguido tres grupos diferentes entre las accesiones tomadas bajo el nombre de Perruno. El primero de ellos corresponde a todos los clones seleccionados por el SIDT-Extremadura de esta variedad, el segundo a la accesión de PEGR (Perruno Común) y el último a PEMA (Perruno), que aparece con los mismos perfiles isoenzimáticos que el cultivar Perruno descrito en el CIFA del "Rancho de la Merced" (Jerez de la Frontera-Cádiz).

Por tanto, se observa que los resultados obtenidos mediante la caracterización isoenzimática ratifican las agrupaciones formadas mediante la descripción morfológica, ya que aquellas accesiones que aparecen asociadas en los dendrogramas estudiados, muestran los mismos perfiles isoenzimáticos, excepto en el caso de PEGR (Perruno Común) y CIBA (Cigüente). Estos dos clones morfológicamente aparecen próximos, sin embargo, en los cinco sistemas isoenzimáticos anahzados muestran zimogramas

281 diferentes. Este hecho permite señalar una vez más la importancia que tiene el empleo de distintos métodos de caracterización para poder comparar los resultados de los mismos y complementarlos.

5.2.2.- Aminoácidos 5.2.2.1- Composición amínica

Los resultados de los perfiles amínicos considerados en este epígrafe aparecen en los cuadros n° 10 y 11. El primero de ellos muestra los datos de 1996 y el segundo los correspondientes a 1997.

La arginina es el aminoácido mayoritario en 1996 en ün elevado número de clones: 1S04 (Pardina), 2AL11 (Blanca Cayetana), 2T01 (Blanca Cayetana), 3GU19 (Montúa),' 3ST17 (Montúa), 4LS47 (Eva), 4C01 (Eva), 6M023 (Borba) y 9CA39 (Perruno). Sin embargo, en 1997 sólo tres clones presentan, este aminoácido como mayoritario (2T01 (Blanca Cayetana), 4LS47 (Eva) y 7CN1 (Malfar)). Para el resto de clones estudiados el aminoácido predominante es la pro lina tanto en 1996 como en 1997.

La explicación para esta variación en el aminoácido más abundante en los dos años de estudio puede deberse a los diferentes estados de madurez de los mostos analizados. Lafon-Lafourcade y Gtiimberteau (1962) y Kliewer (1968) encontraron que las concentraciones de prolina y arginina evolucionan a lo largo de la maduración, predominando en un primer momento la arginina y posteriormente la prolina. Si se anaüzan en el cuadro n° 9 los grados Brix de los mostos estudiados, se observa que, en general, en aquellos en que predomina la arginina su contenido en azúcares es bajo.

Este comportamiento tiene las siguientes excepciones:

- La pro lina es el aminoácido mayoritario en el clon 9CA13 (Perruno) en 1996, aunque tiene un bajo grado Brix. Por el contrario, 9CA39 (Perruno) en la misma campaña y con un similar estado de maduración tiene como aminoácido

282 predominante a la arginina, pudiendo indicar esto una evolución diferente en el perfil amínico según el individuo estudiado. La arginina es siempre el aminoácido más abundante en el clon 2T01 (Blanca Cayetana) independientemente del grado de madurez, coincidiendo estos resultados con Valdés (1998). - En los clones 1S04 (Pardina) y 2AL11 (Blanca Cayetana) la arginina es" el aminoácido mayoritario en 1996, en tanto que la prolina lo es en 1997, aunque presentan contenidos en sólidos solubles similares (cercanos a los 20 "Brix) en ambas campañas. Esta alternancia entre la arginina y la prolina ya fue descrita por Spayd y Anderssen-Bagge (1996) en un estudio realizado con las variedades Gewürztraminer, Semillon y . El hecho de que el clon de Pardina (1S04) presente el mismo comportamiento que el de Blanca Cayetana (2AL11) incrementa las sospechas sobre la posible sinonimia entre estas dos variedades.

Tras la arginina y la prolina los aminoácidos mayoritarios en los mostos que presentan un valor próximo o superior a los 20 ° Brix, se mantienen constantes a lo largo de los dos años de estudio. El ácido glutámico, el ácido y-aminobutírico y la treonina son predominantes en 1996 y 1997, pero la alanina es más abundante en los mostos de 1996 que en los de 1997. Estas variaciones pueden ser debidas a las condiciones climáticas que se produjeron en los dos años de estudio, que como ya indicaron Flanzy y Poux (1965), éstas influyen en la composición amínica de los mostos.

Cuando se comparan los resultados de este trabajo con los de otros autores (Khewer, 1969, 1970; Cáceres et al., 1987; Rapp y Versini, 1991; Huang y Ough, 1991; Henschke y Jiranek, 1992; Spayd y Anderssen-Bagge, 1996) se observan ciertas diferencias entre los aminoácidos más abundantes, después de la prolina y la arginina, hallados por estos investigadores y los encontrados en este estudio. Este hecho pone de manifiesto una vez más que factores como el patrón, la variedad, el clima, las condiciones nutricionales, el tipo de suelo,... influyen en la composición amínica de los mostos.

283 5.2.2.2.- Análisis de componentes principales

Analizando las figuras n° 49 y 50, que muestran los resultados obtenidos del análisis de componentes principales realizado en 1996 y 1997 respectivamente, se pueden hacer las siguientes observaciones.

En la nube de puntos seña;lada en la figura n° 49 (1996), y correspondiente a los clones 1S04 (Pardina), 2AL11 (Blanca Cayetana), 4LS47 (Eva), 3GU19 (Montúa), 6M023 (Borba), 3ST17 (Montúa), 9CA39 (Perruno), 9CA13 (Perruno), 7CN1 (Malfar), 6M045 (Borba), 2T01 (Blanca Cayetana) y 8CA40 (Cigüentes), se puede observar una diferenciación entre los clones correspondientes a una misma variedad y que tienen distintos contenidos en sólidos solubles (cuadro n° 9).

Los clones 1S04 (Pardina) y 2AL11 (Blanca Cayetana), que según los métodos morfológicos e isoenzimáticos presentados en este estudio corresponden a un mismo cultivar, tienen unas coordenadas próximas y un similar grado Brix; mientras que el clon correspondiente también a Blanca Cayetana (2T01) cuenta con una concentración de azúcares menor, situándole en una posición más alejada de ellos.

Otro suceso similar es el presentado por las accesiones de Borba, 6M023 y 6M045, y de Cigüentes, 8CA40. Según los resultados obtenidos a partir de la caracterización morfológica e isoenzimática existe un problema de sinonimia entre estos dos cultivares Observando los resultados obtenidos se comprueba que el clon 6M023, que tiene un grado Brix inferior al alcanzado por 6M045 y 8CA40, aparece más alejado de ellos, que a su vez muestran coordenadas más próximas.

Otro caso de sinonimias detectado mediante morfología e isoenzimas, es el presentado por los clones correspondientes a la variedad Montúa y la accesión de Eva, 4LS47. En 1996, 4LS47 y 3ST17 (Montúa) tienen el mismo contenido en azúcares y presentan coordenadas próximas en la figura n° 49. Sin embargo, el clon 3GU19 (Montúa), que presenta un mayor contenido en sólidos solubles, aunque su valor lo sitúa dentro de la primera etapa de maduración definida en el epígrafe 4.2.2.4, tiene una

284 posición similar a 4LS47 (Eva). Este hecho puede ser debido al bajo grado de maduración de los tres mostos analizados, que corresponden al estado inicial de la maduración, pudiendo presentar por ello sinülares contenidos en aminoácidos, y por tanto tener una posición próxima.

En la figura n° 49 se observa una segunda nube de puntos constituida por 5TA35 (Alarije), 5TA210 (Alarije), 8CA19 (Cigüentes), en la que todos ellos tienen un alto grado Brix, pudiendo ser esta la razón de su valor tan elevado en la componente principal 2.

La accesión 8CA19 (Cigüentes) aparece distanciada de aquellas con las que debería tener una mayor asociación (8CA40, 6M023, 6M045), siendo probablemente el mayor contenido en sólidos solubles alcanzado por ésta la razón de esta separación. Así el clon 8CA40 (Cigüentes), correspondiente a la nube de puntos ubicada en la parte' inferior de la figura, es el que tiene una posición más próxima a 8CA19 (Cigüentes), y es el que cuenta con mayor grado Brix de las accesiones anteriormente citadas (8CA40, 6M023 y 6M045).

Por otra parte, los clones 5TA35 (Alarije), 5TA210 (Alarije) y 7CN1 (Malfar), que según la caracterización realizada mediante métodos morfológicos e isoenzimáticos corresponden a la misma variedad, aparecen claramente diferenciadas. Esto puede ser esto debido a la diferente ubicación de las plantaciones en que se encuentran cultivados estos clones, aunque también pueden haber influido las diferencias en el contenido en sóhdos solubles que existen entre 7CN1 y especialmente 5TA210.

Por último, los clones 3C01 (Chelva) y 4C01 (Eva), que según la caracterización realizada mediante morfología e isoenzimas, corresponden a una misma variedad, aparecen claramente separados en la figura n° 49, aunque sus mostos presentaban diferentes contenidos en azúcares.

Cuando se comparan estos resultados con los obtenidos en 1997, campaña en la que se obtuvieron mostos con similares contenidos en sólidos solubles (cuadro n° 9), se

285 puede observar como algunos clones presentan posiciones próximas al igual que en 1996, mientras que otros aparecen claramente separados.

Las accesiones de Blanca Cayetana (2AL11 y 2T01) y de Pardina (1S04) este año presentan similares concentraciones de azúcares. Sin embargo, 2AL 11 y 1S04 aparecen con coordenadas próximas, al igual que en 1996, que también contaban con un grado Brix similar, mientras que 2T01 se sitúa en una posición más alejada.

Los clones 9CA13 y 9CA39, ambos correspondientes al cultivar Perruno, en los dos años de estudio han mostrado coordenadas semejantes, especialmente en" 1997, a pesar de que entre las dos campañas hay grandes diferencias en los contenidos en sóUdos solubles de los mostos analizados.

Por tanto, se puede decir que los clones 2AL11 y 1S04, y 9CA13 y 9CA39 tienen comportamientos similares en los dos años de estudio, señalando que en ambos casos los mostos analizados se encontraban en estados de madviración semejantes.

También los clones de Montúa 3GU19 y 3ST17 en 1996 y 1997 aparecen representados en posiciones próximas. En el segundo año ambos presentan casi el mismo grado Brix, mientras que en el primer año 3GU19 tiene un contenido en sóUdos solubles más elevado que 3ST17. Sin embargo, a pesar de esta diferencia, como ya se ha apuntado, ambos contenidos se pueden incluir en el mismo estado de maduración (estado I). Por tanto, también se puede señalar que no hay diferencias clónales entre 3GU19 y 3ST17 en los dos años de estudio. En 1997 el clon 4LS47 (Eva) alcanza un contenido en sóhdos solubles menor que el de 3GU19 y 3ST17, que se traduce en una posición más alejada de estos clones.

Las accesiones de Chelva (3C01) y de Eva (4C01) en 1997 tienen similares niveles de azúcares, presentando unas posiciones más próximas que en 1996, y observándose que a medida que se incrementa el contenido en sólidos solubles estos clones alcanzan mayores valores en la componente principal 2. Hay que señalar que en los dos años de estudio estas dos accesiones se han situado en posiciones alejadas a la

286 de los clones de Montúa y Eva (4LS47), coincidiendo por tanto con los resultados obtenidos con los métodos de caracterización morfológica e isoenzimática.

En 1997 los clones 8CA40 (Cigüentes), 8CA19 (Cigüentes) y 6M045 (Borba) tienen similares niveles de sólidos solubles, y aparecen situados en la misma zona del gráfico, aunque se observa una mayor asociación entre 8CA40 y 8CA19, apareciendo 6M045 en una posición un poco más alejada. Por otra parte, la accesión 6M023 (Borba), con un grado Brix muy semejante a 8CA19 (Cigüentes), aparece totalmente diferenciada de este grupo. Posteriores análisis pusieron de manifiesto que el clon 6M023 (Borba) estaba virosado, pudiendo ser esta la causa de esta distinción.

Las otras accesiones (8CA19, 8CA40 y 6M045) no parecen manifestar un mismo comportamiento en los dos años de estudio a pesar de haber presentado similares contenidos de sólidos solubles, pudiéndose señalar que siempre aquel clon que contaba con un mayor grado Brix era el que alcanzaba un valor más elevado en la componente principal 2.

Tampoco entre los clones de Alarije 5TA35 y 5TA210, y de Malfar 7CN1 se observa un mismo comportamiento en los dos años de estudio. Así, en 1996 7CN1, que tiene un contenido en sólidos solubles claramente inferior al de 5TA210 y algo menos acusado en el caso de 5TA35, se sitúa alejado de estos dos clones.' Sin embargo, en 1997 7CN1 con un grado Brix menor a 5TA210 y 5TA35, que tienen un contenido en azúcares similar, aparece próximo a 5TA210, mientras que ambos clones se encuentran muy distanciados de 5TA35. Por tanto, los clones 5TA210 y 5TA35 según el año de estudio tienen un comportamiento dispar entre ellos, al igual que 7CN1 respecto a ellos, como se puede apreciar en el año en que tienen unos contenidos en sólidos solubles comparables (1996).

Por último, en 1997 el clon de Morisca (10AL3) tiene unas coordenadas similares al aminoácido tirosina.

Por tanto, considerando los resultados obtenidos del análisis de componentes

287 principales durante los dos años de estudio, y siempre comparando entre clones que tienen similares contenidos en sólidos solubles, se puede concluir que aquellas accesiones que corresponden a una misma variedad, o a cultivares en los que se han detectado problemas de sinonimias u homonimias, pueden presentar posiciones próximas en los dos años de estudio (1S04 y 2AL11, 9CA13 y 9CA39, 3GU19 y 3ST17), o por el contrario pueden manifestar comportamientos diferentes (8CA19, 8CA40, 6M023 y 6M045, 5TA210, 5TA35 y 7CN1), haciéndose necesario en estos casos un estudio más amplio, en el que se considerasen otros factores como: portainjerto, producción, estudio del desarrollo vegetativo de la cepa, efecto de la fertihzación en los diversos órganos de la planta,... a partir del cual se pudiese concluir si estos comportamientos dispares son debidos a diferencias clónales.

También sería interesante ampliar este estudio sobre aquellos clones que sólo han presentado en un año similares niveles de azúcares con respecto a otras accesiones similares a ellos (2T01 y 2AL11 y 1S04, 3C01 y 4C01, 4LS47 y 3GU19 y 3ST17, 7CN1 y 5TA210 y 5TA35) para que de esta manera se pudiese establecer claramente su comportamiento.

5.2.2.3.- Cociente prolina:arginina

Huang y Ough (1991) emplearon el cociente prolina:arginina como un índice para mostrar diferencias significativas entre variedades. En este estudio también se ha utihzado dicho cociente, calculando el mismo durante los años 1996 y 1997. Los resultados obtenidos se encuentran en los cuadros n° 12 y 13 correspondientes a los años 1996 y 1997, respectivamente.

Al analizar estas relaciones se deben considerar los niveles de azúcar de los mostos anaUzados, ya que el estado de maduración influye notablemente en el contenido amínico, especialmente en las concentraciones de arginina y pro lina (Lafon- Lafourcade y Guimberteau, 1962; Kliewer, 1968). Las cantidades de estos dos aminoácidos se modifican a lo largo de la maduración, siendo en un primer momento mayor la concentración de arginina e incrementándose la de prolina en los últimos

288 estados. Este hecho por tanto influye notablemente en los cocientes calculados, especialmente en los mostos analizados en la campaña de 1996 en la que una gran parte de los clones estudiados no consiguieron que sus racimos madurasen por el fuerte ataque de mosquito verde que se produjo d\irante aquel año (Ruiz Castro y Mendizábal, 1939; Toledo, 1992).

Si analizamos primero los resultados obtenidos en 1996 deberemos por tanto hacer una valoración diferente de los cocientes obtenidos a partir de los clones con bajas concentraciones de sólidos solubles y aquellos que alcanzan la madurez.

Los mostos de los clones 2T01 (Blanca Cayetana), 3GU19 (Montúa), 3ST17 (Montúa), 4LS47 (Eva), 4C01 (Eva), 6M023 (Borba), 9CA13 (Perruno) y 9CA39 (Perruno) tienen unos niveles de azúcar entre 17 °Brix y 15 °Brix siendo en algunos casos, incluso inferior a los 12 "Brix.

Entre ellos destacan los cocientes tan pequeños que presentan 3ST17 (Montúa) y 4LS47 (Eva), y tan diferentes de los clones con los que deberían tener una mayor proximidad, 3GU19 (Montúa), 3C01 (Chelva) y 4C01 (Eva). En el bajo estado de maduración (11,6 °Brix) que presentan estos dos clones sus concentraciones de pro lina son muy bajas, siendo muy elevadas las de arginina que conllevan a ese cociente tan pequeño. Así mismo, 3GU19 y 4C01, con una concentración de sólidos solubles en tomo a los 16-17 "Brix, presentan relaciones menores a la unidad. Por el contrario, 3C01 (Chelva) con un estado de maduración mayor, es el que tiene el cociente más elevado de todos los clones considerados.

El clon 2T01 (Blanca Cayetana) con un nivel de azúcar de 17,5 °Búx, presenta una relación prolina:arginina muy próxima a 1S04 (Pardina) y un tanto inferior a 2AL11 (Blanca Cayetana).

Otro caso de escasa maduración es el del clon 6M023 (Borba) con 16,8 °Brix. En este estado se encuentra con un mayor contenido en arginina que en prolina que le confiere un cociente de pequeño valor, y alejado de los otros posibles clones con que

289 podría tener alguna relación.

Los clones de Perruno (9CA13 y 9CA39) también incluidos en el grupo de mostos con problemas para alcanzar la madurez, tienen unos cocientes diferentes, puesto que para estados de maduración similares uno de ellos (9CA39) tiene un mayor contenido en axginina que de prolina, y por tanto su relación es inferior a la unidad; mientras que 9CA13 presenta un cociente de 1,41.

Centrándonos en los clones que tienen similares niveles de azúcar, podemos observar que presentan relaciones semejantes:

- Cociente comprendido entre 0,68 y 0,87: 1S04 (Pardina) y 2AL11 (Blanca Cayetana) - Cociente comprendido entre 1,03 y 1,46: 5TA35 (Alarije), 7CN1 (Malfar) y 5TA210 (Alarije) - Cociente comprendido entre 1,73 y 1,80: 8CA19 (Cigüentes) y 6M045 (Borba) - Cociente comprendido entre 2,28 y 2,37: 8CA40 (Cigüentes) y 3C01 (Chelva)

Entre estos grupos hay que hacer una pequeña puntualización respecto al segimdo grupo. En él destaca el alto nivel de azúcares que tiene el clon 5TA210 (25,1 °Brix), que sitúa a este mosto como el procedente de una uva sobremadura y cuya concentración en prolina se ve notablemente incrementada, confiriéndole un cociente un tanto elevado;

En la campaña de 1997 se pudieron vendimiar los clones estudiados con similares estados de maduración, excepto para 7CN1 (Malfar), 3C01 (Chelva) y 4LS47 (Eva).

Los clones 3C01 con 19,1 "Brix y 4LS47 con 16 °Brix presentan unos cocientes muy diferentes de los obtenidos por los mostos de 3GU19 (Montúa), 3ST17 (Montúa) y 4C01 (Eva), que entre ellos presentan unos valores semejantes.

290 Los clones 5TA210 y 5TA35, representantes de la variedad Alarije, tienen unos cocientes similares. Sin embargo, 7CN1 (Malfar), que en la campaña de 1996 mostraba valores próximos a estos dos clones, al contar con \m estado de maduración inferior tiene un pequeño cociente y alejado de los obtenidos por estos, como consecuencia de las modificaciones que sufren las concentraciones de arginina y prolina a lo largo de la maduración.

Atendiendo a la similitud de los valores de estos cocientes obtenidos se pueden establecer las siguientes relaciones:

- Cociente de 0,80: 2T01 (Blanca Cayetana) - Cociente comprendido entre 1,16 y 1,23: 5TA35 (Alarije) y 5TA210 (Alarije) - Cociente comprendido entre 1,33 y 1,49: 8CA19 (Cigüentes), 1S04 (Pardina), 6M045 (Borba) y 2AL11 (Blanca Cayetana) - Cociente comprendido entre 1,65 y 1,77: 9CA39 (Perruno), 9CA13 (Perruno), 10AL3 (Morisca), 6M023 (Borba) y 8CA40 (Cigüentes) - Cociente comprendido entre 2,01 y 2,24: 3GU19 (Montúa), 4C01 (Eva) y 3ST17 (Montúa).

Comparando las agrupaciones obtenidas en 1996 y 1997, se observa que los clones 1S04 (Pardina) y 2AL11 (Blanca Cayetana), 5TA210 (Alarije) y 5TA35 (Alarije), y 8CA19 (Cigüentes) y 6M045 (Borba) presentan cocientes semejantes durante los dos años de estudio.

Los clones 5TA210 y 5TA35, ambos correspondientes a la variedad Alarije, en los dos años de estudio, como ya se ha señalado, muestran relaciones semejantes, siendo mucho mayor su grado de proximidad en 1997. En este aspecto es importante señalar el mayor grado Brix alcanzado por 5TA210 en 1996, que provoca vina mayor acumulación de prolina al ser este un aminoácido predominante en la sobremaduración, y que confiere a ese clon un cociente un poco más elevado que el de 5TA35. Es también interesante destacar la asociación mostrada en 1996 por el clon 7CN1 (Malfar) con estas dos accesiones, que no se pudo volver a corroborar en 1997 por no alcanzar

291 una maduración completa 7CN1. Esta proximidad en los cocientes vuelve a poner de manifiesto la confusión existente entre estas accesiones, llegándose a producir un caso de sinonimia.

El hecho de que los clones de Pardina (1S04) y Blanca Cayetana (2AL11), y de Cigüentes (8CA19) y Borba (6M045) aparezcan en los mismos grupos durante los dos años de estudio, pone de manifiesto posibles sinonimias entre Cigüentes y Borba, y entre Pardina y Blanca Cayetana, sinonimias que se han corroborado con los otros métodos de caracterización empleados en este estudio.

Dentro del grupo de clones correspondientes al cultivar Blanca Cayetana se observa como la accesión 2T01 en el año 1997, campaña en la que alcanzó un grado Brix similar a 2AL11 y 1S04, presenta un cociente inferior al obtenido por estos clones. El valor de este cociente pone de manifiesto la mayor concentración de arginina firente a la prolina. Este hecho se comprueba también en los clones 1S04 y 2AL11 en el año 1996. En dicha campaña a pesar de que estas accesiones alcanzaron altos niveles de azúcar, la concentración de arginina era superior a la prolina, traduciéndose en un cociente menor a la unidad. Esta alternancia en el aminoácido predominante ya ha sido descrita por otros autores en otras variedades (Spayd y Anderssen-Bagge, 1996). Y son estas alternancias las que producen estas diferencias en los cocientes calculados.

La agrupación de los clones 8CA19 (Cigüentes) y 6M045 (Borba) en los dos años de estudio, frente a la existente entre 8CA40 (Cigüentes) y 6M023 (Borba) en 1997, puede poner de manifiesto unas diferencias clónales que no han sido detectadas con otros métodos de caracterización empleados. Por otra parte, en los trabajos pubhcados en los que se emplea el cociente prolina:arginina como índice que permite distinguir variedades (Huang y Ough, 1991; Spayd y Anderssen-Bagge, 1996), emplean como material de partida mostos tomados en bodegas, de tal manera que son mostos univarietales, pero policlonales; de esta manera cualquier variación interclonal no puede ser detectada como las observadas en este trabajo.

En 1996 el clon 8CA40 (Cigüentes) presentó un cociente similar a 3C01

292 (Chelva). El alto valor de dicho cociente para 8CA40 fue debido al elevado contenido que alcanzó la prolina en ese momento, no produciéndose ese mismo hecho ni en clones semejantes, ni en el año posterior en esta misma accesión, pudiéndose considerar este hecho como una pequeña incidencia en el comportamiento de este clon.

Las accesiones 3GU19 (Montúa), 4C01 (Eva) y 3ST17 (Montúa) muestran cocientes muy elevados y semejantes en 1997. Un valor muy similar presentó 3C01 (Chelva) en 1996 cuando alcanzó un buen estado de maduración. Y es por tanto, que se puede concluir que una característica de estas variedades es que presentan un conteñido doble de prolina respecto a la arginina cuando alcanzan una maduración completa.

Según los otros métodos de caracterización empleados en este trabajo se ha podido establecer la existencia de dos variedades diferentes entre los clones 3GUI 9, 3ST17, 4LS47, 4C01 y 3C01. Sin embargo, con este cociente no ha sido posible encontrar una diferenciación entre ellos presentando por el contrario valores semejantes.

Es destacable la similitud en los cocientes obtenidos de los dos clones que representan a Perruno (9CA13 y 9CA39) cuando ambos presentan niveles de azúcar parecidos y próximos a la madurez, como ocurre en 1997.

El cultivar Morisca representado por 10AL3 en el único año en que se ha incluido en este trabajo, aparece en el grupo de Perruno, 6M023 (Borba) y 8CA40 (Cigüentes), pues presenta un ratio semejante a ellos, que indica su mayor contenido de prolina frente a la arginina.

Mediante el empleo de este cociente como ya se ha indicado se han podido establecer relaciones que engloban tanto a los clones tomados como representantes de una variedad como a los de otra, pudiendo tener un solo grupo hasta cuatro denominaciones diferentes. Ya Huang y Ough (1991) detectaron la posibilidad de que el cociente pro lina: arginina pudiese tener valores semejantes entre diferentes variedades. Esto confirma las posibilidades de emplear este cociente para diferenciar

293 cultivares, pero utilizando otros métodos complementarios.

Por último, podemos concluir que el empleo del cociente prolinararginina en el estudio de caracterización de variedades sólo es aplicable a aquellos mostos que tengan similares contenidos en azúcar y que éstos los sitúen en el fmal de la maduración. Hacer comparables datos cuando se parte de zumos con notables diferencias en sus niveles de azúcar es imposible por los cambios que se producen en las concentraciones de los aminoácidos que forman parte de este cociente.

5.2.2.4.- Evolución del contenido amínico durante la maduración

Los resultados de los análisis realizados sobre los mostos tomados durante el proceso de maduración aparecen reflejados en el cuadro n° 15, en el que se señalan los cinco modelos de comportamiento observados.

A medida que se produce un incremento en el contenido de sólidos solubles en los mostos analizados se pueden observar dos evoluciones diferentes en el contenido amínico. Un primer grupo, denominado A, en el que aumenta la concentración durante la maduración, mientras que en el grupo B dicha concentración es menor en el punto de madurez que al inicio de este proceso.

Ya otros autores (Nassar y Kliewer, 1966; Kluba et al, 1978) clasificaron los aminoácidos en: aquellos que incrementaban su contenido a medida que aumentaba el nivel de azúcar en el fruto, y aquellos que prácticamente mantenían constantes sus concentraciones.

En los aminoácidos analizados en este trabajo se observa una predominancia del grupo A frente al B, es decir, un incremento en su contenido a lo largo del proceso de maduración. Lafon-Lafourcade y Guimberteau (1962), Nassar y Kliewer (1966) y Kliewer (1968) también señalaron la mayor concentración amínica en los mostos correspondientes a estados de maduración avanzados.

294 El subgrupo AI, que corresponde a un incremento continuado del contenido anaínico durante la maduración, es el modelo predominante en los aminoácidos valina, metionina, isoleucina, leucina, tirosina, ácido y-aminobutírico, lisina, histidina y prolina. En el resto de aminoácidos en los que el contenido amínico es superior al final de la maduración que al inicio de la misma (treonina, serina, asparagina, glicina, alanina + citrulina, fenilalanina y omitina) los modelos mayoritarios se encuentran entre AI y Allí, siendo pocos los casos que manifiestan el subgrupo AII. Una excepción a este hecho se encuentra en el aminoácido asparagina, en el que ninguno de los tres tipos del grupo A predomina sobre los demás.

Entre estos aminoácidos es interesante señalar el gran incremento que se produce de prolina a lo largo de todo el proceso de maduración, alcanzándose al final de la misma concentraciones muy elevadas, y apareciendo como un aminoácido ligado a la madurez. Estos resultados coinciden con los obtenidos por Lafon-Lafouxcade y Guimberíeau (1962) y Kliewer (1968), que también observaron un aumento progresivo de este aminoácido en el último período de la maduración.

La arginina se presenta como un aminoácido que disminuye su contenido a medida que se incrementa el nivel de azúcares, siendo la evolución más habitual entre los clones considerados la correspondiente al subgrupo BE. Lafon-Lafourcade y Guimberteau (1962) y Kliewer (1968) también observaron como la concentración de este aminoácido, firecuentemente,disminuí a a medida que el finito alcanzaba la madurez o sobremadurez.

El ácido aspártico y el ácido glutámico son dos aminoácidos que según el clon considerado incrementan o disminuyen su concentración durante la maduración, no pudiéndose por tanto incluir de forma categórica en ninguno de dos grupos (A y B) establecidos en este trabajo. Kliewer (1970) analizó los mostos de varias variedades de vinificación correspondientes a una recolección tardía, y encontró una tendencia generalizada a incrementar las cantidades de estos aminoácidos, pero en algunos cultivares se apreciaba una disminución en el contenido del ácido aspártico y del ácido glutámico.

295 Al estudiar la evolución de los aminoácidos durante la maduración sobre los clones considerados en este estudio, se observa que el modelo predominante es el AI, siendo especialmente mayoritario en 2AL11 (Blanca Cayetana). Como excepción a este hecho se encuentran los clones 3ST17 (Montúa), 5TA210 (Alarije) y 6M045 (Borba) en los que no se presenta ningún subgrupo como mayoritario, y 6M023 (Borba) en el que el tipo Allí es el más frecuente. Estas excepciones establecen diferencias entre accesiones que corresponden a una misma variedad (3GU19 y 3ST17, 5TA210 y 5TA35, 6M023 y 6M045), y pueden permitir establecer ima diferenciación clonal entre ellas. Si además, se estudia en proñmdidad el comportamiento de los aminoácidos para cada uno de estos casos se pueden hacer las siguientes apreciaciones.

Las accesiones que representan a la variedad Montúa (3GUI9 y 3ST17) no tienen el mismo modelo de comportamiento (A o B) en los aminoácidos: ácido aspártico, treonina, serina, ácido glutámico y arginina. En 3GU19 el subgrupo AI es el tipo más abundante entre los aminoácidos analizados, mientras que para 3ST17 lo son los modelos AI y Allí.

En los clones de Alarije, 5TA210 y 5TA35, los aminoácidos: treonina, serina, asparagina, ácido glutámico y arginina tienen una evolución diferente. Cuando en un clon se produce un incremento neto del contenido de uno de estos aminoácidos, en el otro sé aprecia una disminución. También es interesante señalar que no hay un modelo predominante entre los aminoácidos analizados para 5TA210, pudiéndose encontrar modelos correspondientes al grupo A (AI o Allí), o al grupo B (BII). En el análisis de componentes principales, que aparece en el epígrafe 5.2.2.2, también se ha observado un comportamiento dispar entre estos dos clones.

Según los métodos de caracterización empleados en este trabajo se ha detectado un problema de sinonimia entre las variedades de Borba y Cigüentes. Si se analizan conjuntamente las evoluciones de los contenidos amínicos durante la maduración de los cuatro clones perteneciente a estos cultivares, se puede observar una gran similitud entre 8GA19 y 8CA40, ambos correspondientes a la variedad Cigüentes, mientras que entre los clones 6M023 y 6M045 hay grandes diferencias. Estas no sólo se manifiestan

296 respecto al subgrupo predominante en la evolución de los aminoácidos, AI para 8CA19 y 8CA40, Allí para 6M023, y AI y Allí para 6M045, sino también en el comportamiento de algunos aminoácidos, como el ácido aspártico, la asparagina, el ácido glutámico, la glicina, la metionina, la omítina y la arginina, en los que los cuatro clones considerados no muestran el mismo tipo de evolución (A o B). Ya esta diferencia entre 6M023 con 8CA19, 8CA40 y 6M045 se ha observado en el análisis de componentes principales realizado en 1997, y anteriormente expuesto. En el mismo se ha podido comprobar una mayor proximidad entre 8CA19 y 8CA40, mientras que 6M045 aparecía más distanciado de estos clones.

Las diferencias señaladas entre los clones 3GU19 y 3ST17, 5TA210 y 5TA35, 6M023, 6M045, 8CA19 y 8CA40 en el comportamiento de algunos aminoácidos y en el subgrupo predominante durante el proceso de maduración, podrían ser una herramienta muy útil para distinguir estas accesiones. Sin embargo, sería conveniente reahzar im estudio más prolongado para poder comprobar que estas diferencias son constantes.

Por último, habría que destacar que las diferencias clónales señaladas en las accesiones 3ST17 (Montúa) y 6M023 (Borba) podrían ser una consecuencia de las infecciones víricas detectadas en ambos clones, y que afectan a la evolución de los aminoácidos durante la maduración.

5.2.2.5.-Incidencia de la fertilización nitrogenada

Al analizar los perfiles amínicos de los clones con similares niveles de maduración en los dos años de estudio (figuras rf 59, 60, 61, 62, 63, 64 y 65), se observa, en líneas generales, un incremento en las concentraciones de los aminoácidos en el año en que se realizó la fertilización nitrogenada (1997). Ya diversos autores (Küewer y Cook, 1971,1974; Ough y Bell, 1980; Bertrand et al., 1991) señalaron que a medida que se incrementaba la tasa de fertilización nitrogenada sobre un viñedo, aumentaba el contenido en compuestos nitrogenados. También Kliewer (1971) y Bell et al. (1979) observaron que a medida que se producía un incremento en la tasa de

297 fertilización nitrogenada, aumentaba la concentración de arginina, prolina, amonio y nitrógeno total.

Sin embargo, hay algunas excepciones. Así en 1996 se observa un mayor contenido en arginina (1S04), o en prolina (8CA19), o en ambos aminoácidos a la vez (5TA210, 8CA40). Estos resultados coinciden con Spayd et al. (1991) y Spayd et al (1994) que obtuvieron resultados contradictorios sobre los efectos de la fertilización nitrogenada en la composición de elementos nitrogenados en frutos y vinos. Estas discrepancias pueden ser atribuidas a que al realizar investigaciones sobre los efectos de la fertilización nitrogenada es necesario conocer el estado del suelo, las caracteristicas de la planta, el clima, el patrón, la variedad, las prácticas culturales,..., puesto que todos estos factores pueden influir en la toma de nitrógeno por parte de la planta. Por tanto, las alteraciones indicadas pueden ser debidas a algunos de estos puntos que no se han considerado en este trabajo, ya que su objetivo fundamental no era estudiar los efectos de la fertilización sobre las variedades consideradas.

Comparando los resultados obtenidos en este estudio con el realizado por Ough y Bell (1980) se observa cierta similitud en los mismos. A pesar de considerarse diferentes dosis de fertilización a las del estudio citado, se comprueba como algunos aminoácidos (ácido aspártico, treonina y serina) disminuyen sus concentraciones en los mostos de algunos clones tomados en la campaña en que se produjo la aportación nitrogenada, como también observaron estos autores. Así mismo, se ha detectado una disminución en la asparagina, la fenilalanina y el ácido y-aminobutírico, aminoácidos que no fueron analizados en el trabajo anteriormente mencionado.

Regodón (1997) en los. mostos que anaüzó sobre variedades cultivadas en Extremadura obtuvo unos contenidos totales en aminoácidos libres comprendidos entre 1.285 y 1.690 mg/1. Estos valores se encuentran más próximos a las concentraciones observadas en este trabajo en 1997 para todos los clones estudiados (cuadro n° 16), siendo las de 1996 bastante más bajas.

La suma de las concentraciones de todos los aminoácidos analizados en 1996 y

298 1997 (figura n" 66) muestra en todos los clones analizados un menor contenido amínico el primer año, cuando aún no se ha realizado la fertilización nitrogenada. Ese año los clones con un estado de maduración poco avanzado presentan valores más pequeños que en 1997, en el que se ven aimientados tanto por la aportación de nitrógeno como por su mayor estado de maduración. Los incrementos también han sido notables en algunos clones a pesar de encontrarse con similares niveles de sólidos solubles, por ejemplo 2AL11 (Blanca Cayetana), 5TA35 (Alarije), o 6M045 (Borba).

Similares resultados obtenemos cuando se estudia la suma total de los aminoácidos analizados menos la prohna (figura n° 68). En ella se observa un aumento de dicha suma en 1997. Los mayores incrementos se observan tanto en clones que en 1996 tenían un menor porcentaje de sólidos solubles (2T01 (Blanca Cayetana) y 9CA13 (Perruno)), como en mostos que en los dos años de estudio tenían un similar grado Brix (5TA35 (Alarije), 8CA40 (Cigüentes) y 2AL11 (Blanca Cayetana)).

En ambos parámetros, tanto si se considera la suma de todos los aminoácidos como en la que se elimina el contenido en prohna, en el año 1997 hay dos clones (3C01 (Chelva) y 7CN1 (Malfar)) que tienen un menor grado Brix en este año que en 1996; a pesar de ello sus contenidos han sido mayores en 1997 posiblemente como efecto de la fertihzación realizada.

Si se estudia la figura n° 67 en la que está reflejado el NAT, se observa que los clones 1S04 (Pardina) y 6M023 (Borba) no siguen la tendencia general de incrementar su contenido en NAT al realizarse una fertilización nitrogenada. La misma situación vuelve a plantearse al anahzar la figura n° 69 en la que está representado el nitrógeno asimilable. Para los clones IS04 (Pardina), 4C01 (Eva) y 6M023 (Borba) es mayor el contenido en nitrógeno en 1996 que en 1997.

Estos resultados contradictorios vuelven a poner de relieve que las conclusiones obtenidas a partir de ensayos en los que se realizan aportaciones nitrogenadas deben ser considerados globalmente junto con otros aspectos como las condiciones nutricionales de la planta, el suelo, el clima, la variedad, el patrón, ..., puesto que todos estos factores

299 influyen en la asimilación del nitrógeno de la cepa (Spayd et al., 1991 y Spayd et al, 1994). Es por tanto que estos resultados deben ser analizados con especial cuidado, y considerando que muchos de los factores anteriormente citados no se han evaluado en este trabajo, pues no es el objeto del mismo su estudio. Además, también sería interesante incrementar el número de años durante los que se realizan este tipo de experiencias, pues darían una visión más global de la situación.

5.3.- Caracterización agronómica: fenología 5.3.1.- Ciclo vegetativo

La duración del ciclo vegetativo ha sido variable en los tres años de estudio en los que se ha realizado el seguimiento completo del ciclo vegetativo (1996, 1997 y 1998). En 1997 se ha observado un ciclo más prolongado, mientras que en 1996 y 1998 se han desarrollado períodos más cortos.

La brotación más temprana ocurrida en 1997, junto con una pérdida de la hoja en ima fecha muy similar a la de 1996, y más tardía que la de 1998, han sido los factores que han determinado la mayor duración del ciclo vegetativo en 1997. Por otra parte, el desborre tan tardío registrado en 1996 es la causa fundamental de que el ciclo vegetativo sea más corto que en 1997, sin embargo, en 1998, año en el que la brotación se produjo en una fecha intermedia a la observada en 1996 y 1997, es la rápida caída de la hoja el motivo por el que se observó un ciclo vegetativo más corto que en 1997, y similar a 1996.

Los primeros estados fenológicos observados (B, C, D, E y F) se caracterizan por su corta duración, apreciándose una hgera tendencia a incrementar la misma en los años en que se produce una brotación más temprana (1997 y 1998).

Jiménez y Sotes (1995) señalan que aquellas variedades que brotan más temprano tienen un período brotación-floración más prolongado que aquellas que lo hacen más tardíamente, probablemente debido a las mayores temperaturas que se alcanzan cuando desborran las últimas, favoreciendo éstas un desarrollo más rápido.

300 Este hecho se puede comprobar en el cultivar Perruno, que es el más precoz en brotar, observándose una mayor duración del estado E (hojas extendidas), que es más notable en 1997, y que tiene como consecuencia la mayor duración del período brotación- floración de este cultivar.

La floración en 1997 se desarrolla a lo largo del mes de abril, mientras que en 1996, 1998 y 1999 la pérdida de la corola se produce durante el mes de mayo. Factores como la temprana brotación desarrollada en 1997 y la alta temperatura media de máximas (24,2 °C) alcanzada en el mes de abril, pudieron provocar esta precocidad en la brotación de 1997. Ya Caló et al. (1994) señalaron que la temperatura media máxima era el factor.más importante para definir el momento de la floración.

Como consecuencia de este adelantamiento en el estado I en 1997 se produce una disminución en la duración de los estados G y H durante dicho año, desarrollándose éstos en los períodos más cortos de los cuatro años de estudio. Por otra parte, la mayor duración del estado G (separación de racimos (inflorescencias)) y del estado H (separación de los botones florales) tiene lugar en 1996, desencadenándose la floración en la fecha más tardía de todo el período de estudio.

El período transcurrido desde que el grano adquiere el denominado tamaño guisante hasta que en él se produce el envero es más prolongado en 1997, siendo la duración de este período similar en 1996 y 1998. A pesar de las diferencias señaladas en este período, el momento en que alcanzan el estado M los primeros clones que lo manifiestan en 1996 y 1997 apenas varía en. unos 6 días, siendo un poco mayor este intervalo en 1998 (15 días). Esto parece indicar que a pesar de que la floración tenga lugar en fechas más tempranas el proceso del envero finahza en una misma época, siempre que se haya cubierto un mínimo de tiempo en el que se producen los cambios necesarios en el finto, que desencadenan en el envero.

Desde que el grano manifiesta el envero hasta que éste alcanza la maduración transcurre un período de tiempo, que en la mayoría de los clones se hace mínimo en 1997. Por el contrario, en 1996 en' un gran número de casos este período es el más

301 prolongado de los tres registrados durante este estudio. Excepciones a estos hechos se encuentran entre los clones de Alarije, menos 5TA34, y de Malfar (7CN1), que es en 1996 cuando requieren un menor número de días desde el envero hasta la maduración. Por otra parte, los clones correspondientes al cultivar Cigüentes, excepto 8CA31, y algunos de Borba y Perruno, manifiestan un período envero-maduración más prolongado en 1998.

El hecho de que en 1996 se requiera un mayor número de días desde el estado M hasta el N puede ser debido al fuerte ataque de mosquito verde {Empoasca spp.) acaecido durante dicha campaña, que tiene como consecuencia problemas en la maduración de los racimos (Ruiz Castro y Mendigaba, 1939; Toledo, 1992); así como que las temperaturas medias alcanzadas durante los meses en que se desarrolla el proceso de maduración en 1996 (anejo 3) fueron las más bajas de los tres años de estudio.

La fecha de la caída de la hoja en 1996 y 1997 es muy próxima. Sin embargo, como consecuencia de que en 1997 la maduración de los frutos se produce antes que en 1996, el período de tiempo transcurrido entre ésta y la pérdida de la hoja es más prolongado en dicho año; mientras que en 1996 se observa en la mayoría de los clones el período más corto. En 1998 aLproducirse la caída de la hoja en unas fechas muy próximas para todas las variedades, se comprobó que en aquellos casos que se requería im mayor intervalo de tiempo desde que el fruto maduraba hasta que se alcanzaba el estado P, dicho período disminuía notablemente.

5.3.2.-Estados fenológicos 5.3.2.1.- Brotación

En el cuadro n° 23 aparecen las fechas medias de brotación de cada varíedad, pudiéndose observar que en 1997 y 1998 se produce el desborre entre prímeros y mediados del mes de marzo, mientras que en 1996 y 1999 este proceso tiene lugar a mediados y finales de dicho mes. Si se observan las temperaturas medias, así como las temperaturas medias de máximas del mes de marzo durante los cuatro años de estudio

302 se comprueba que en 1997 (tni= 15,4 °C, T= 24,2 °C) y 1998 (tm= 13,8 °C, T= 21,6 T) los valores alcanzados son más elevados que en 1996 (tm= 13 °C, T= 19 °C) y que en 1999 (tm= 12,4 °C, T= 18,8 "C), siendo especialmente notable esta diferencia en 1997. Por tanto, se puede comprobar como cuanto mayor son las temperaturas medias y las temperaturas medias de máximas, antes se produce el desborre. Estos resultados están en concordancia con los obtenidos por Muñoz (1995), y con Baldwin (1966) y Pouget (1966 y 1967) que establecían las fechas de brotación atendiendo a los datos de temperatura.

En 1999 se aprecia una mayor precocidad en el cultivar Perruno que en el resto de las variedades. Esto podría ser debido, como apimtó Pouget (1966), a que los cultivares con brotaciones tempranas se caracterizan por tener una débil dormición y una menor sensibilidad en el efecto que tienen las temperaturas bajas en el retraso de la brotación. De tal manera, que las temperaturas que se alcanzaron en la fecha en que se produce la brotación de Perruno, son suficientes para iniciar la misma en este cultivar, pero las condiciones no son las idóneas para las demás, pues probablemente las temperaturas que se alcanzaron eran bajas para las otras variedades y no favorecían el desborre de las mismas.

Observando las fechas de brotación de las variedades en los cuatro años de estudio, se puede comprobar que Perruno aparece siempre como la más precoz, seguida a continuación por Malfar, Cigüentes y Borba que desborran en imas fechas que las sitúan como de brotación media. El grupo constituido por Montúa, Eva (4LS47), Blanca Cayetana, Pardina y Alarije aparece como el más tardío, no mostrando diferencias significativas entre las variedades que lo constituyen en 1998, o la diferencia entre sus fechas medias de brotación no es superior a un día, como ocurre en 1997. Sin embargo, en 1996 y 1999, años en los que el desborre de todos los cultivares se desarrolla en un periodo de tiempo más prolongado, aparece diferenciado este grupo.

En 1996 se muestran como más precoces Montúa, Eva (4LS47) y Blanca Cayetana, y un poco más tardíos Pardina y Alarije. Sin embargo, si se observa la figura n° 70 se puede apreciar como la mayoria de los clones correspondientes a estas

303 variedades inician su brotación sobre la misma fecha, siendo unos pocos los que se adelantan o retrasan y modifican la fecha media de desborre de cada variedad, mostrando éstas como consecuencia valores diferentes entre ellas.

Por otra parte, hay que señalar el extraño comportamiento que manifiestan Alarije y Eva (4LS47) en 1999 al iniciar el desborre con una precocidad no habitual en ellas. Caló et al. (1984) y Caló et al. (1998) señalaron la influencia que tienen las condiciones ambientales sobre la brotación. Así, las temperaturas medias de mínimas alcanzadas en el invierno de 1999 (anejo 3) están muy por debajo de las registradas en los otros años de estudio, pudiendo haber influido este hecho en la fecha de brotación provocando la precocidad de las mismas, y por tanto manifestando un comportamiento muy diferente al de otros años.

Por tanto, se puede establecer la siguiente clasificación, en función de la fecha de brotación:

- Tempranas: Perruno - Medias: Cigüentes, Borba y Malfar - Tardías: Pardina, Blanca Cayetana, Montúa, Alarije y Eva (4LS47)

Dentro de esta agrupación no están incluidas ni Chelva, ni Eva (4C01), ya que con sólo dos años de estudio no se considera que se pueda establecer un comportamiento de las mismas, al mostrarse un año muy precoces, junto a Perruno, y otro con un desborre intermedio. Tampoco Morisca aparece en dicha clasificación, pues sólo se ha considerado un año mostrándose en el mismo como una variedad tardía.

Variedades que han mostrado problemas de sinonimia u homonimia con los otros métodos de caracterización empleados este trabajo, también los manifiestan en el estudio fenológico:

- Pardina y Blanca Cayetana tienen un comportamiento muy similar durante todo el estudio, mostrando sólo diferencias significativas en 1996. Si se anaUza el

304 comportamiento de los clones correspondientes a estas variedades en la figura n° 70, se observa que la pequeña diferencia en las fechas medias de brotación (2 días) es debida a la precocidad que presenta el clon de Blanca Cayetana 2AL11, respecto alS04(Pardina). - El cultivar Montúa y el clon de Eva (4LS47) en 1996 y 1998 no tienen diferencias significativas entre ellas, mientras que en 1997 y 1999 sí. Sin embargo, en 1997 4LS47 presenta una fecha de brotación muy próxima al clon más tardío de Montúa (3AL45) (figura n° 71), y además sólo hay una diferencia de apenas un día entre sus fechas medias de brotación. Por otra parte, el desborre tan precoz, ya comentado, que manifiesta 4LS47 en 1999 establece grandes diferencias con Montúa. - Chelva y Eva (4C01) en los dos años de estudio no presentan diferencias significativas, mientras que si las tienen con Montúa y Eva (4LS47). - Los cultivares de Malfar y Alarije en los cuatro años de estudio presentan diferencias significativas. Pero hay que señalar que Malfar junto con Morisca son los únicos cultivares que no se encuentran cultivados en la misma plantación que el resto de variedades, y que aunque se han tomado como referencia cultivares comunes a los dos campos de cultivo, las diferentes condiciones climáticas pueden llegar a establecer estas diferencias. - Borba y Cigüentes tienen unas fechas de brotación media muy similares y sin diferencias significativas entre ellas, mostrando sólo dichas diferencias en 1999, año en que el intervalo de desborre entre cultivares es mayor, aunque con una diferencia entre las fechas medias de brotación no superior a los 2 días.

5.3.2.2.- Floración

En el cuadro n° 24 aparecen los resultados de realizar un anáUsis de varianza aplicando el test de Duncan al 5% sobre las fechas medias de floración de cada variedad.

En dicho cuadro se puede apreciar como en 1997 la época de floración es mucho más temprana que en 1996, 1998 y 1999. Dos pueden ser los factores que influyen en este hecho. Por un lado, la brotación tan precoz que se observó en 1997

305 pudo desencadenar una floración tan temprana. Besselat et al. (1995) ya apuntaron como un desborre precoz induce generalmente a una floración temprana. De esta manera, se puede comprobar como según la fecha de brotación de cada año se desarrolla posteriormente la floración. Así el año en que primero se produce el desborre es en 1997, seguido de 1998, 1999 y 1996, siendo este el mismo orden en que se produce la pérdida de la corola.

Según Caló et al. (1994) y Besselat et al. (1995) otro factor que influye notablemente en el momento de la floración es la temperatura máxima. Si se analizan las temperaturas medias de máximas en el mes de abril durante los cuatro años estudiados (Tge^ 22,2 °C, 197= 24,2 °C, T98= 18,2 "C, 199= 22,4 °C), se comprueba como en 1997 se alcanza el máximo valor, llegando a temperaturas similares a ésta en 1996, 1998 y 1999 durante el mes de mayo (T96= 24,1 °C, T98= 22,7 °C, 199= 25,0 "C), momento en el que tuvo lugar la floración en esos años.

En 1996, 1997 y 1998 se comprueba que entre las primeras variedades que pierden la corola se encuentran Perruno, Borba y Cigüentes, que corresponden a cultivares con ima brotación precoz y media; entrando a continuación en floración el resto de variedades de una manera escalonada, mostrando Montúa y Alarije una tendencia a situarse entre los últimos en iniciar el estado I. _

La floración de los cultivares estudiados en 1999 no sigue el orden observado en los anteriores años. Así, el estado I es iniciado por Pardina, variedad que ha manifestado una floración mas tardía que Perruno, Borba y Cigüentes; o Alarije y Blanca Cayetana que también adelantan en su fecha de floración a Borba, cuando generalmente la pérdida de la corola se ha producido después de este cultivar. Sin embargo, si se comprueba la temperatura media de máximas en mayo de 1999 (T= 25,0 °C), y se compara con la de los meses en que se ha desarrollado la floración en 1996 (T= 24,1 °C), 1997 (T= 24,2 °C) y 1998 (T= 22,rC) se observa el valor más elevado registrado en dicho año. Caló et al. (1994) estudiaron el efecto de la temperatura máxima diaria en la floración, observando que este parámetro puede acortar o alargar el período brotación-floración en función de su valor y del cultivar. De esta manera, las

306 altas temperaturas alcanzadas en mayo de 1999 han podido determinar el comportamiento anómalo observado dicho año, respecto al apreciado en años anteriores.

Estos resultados corroban las conclusiones de Caló et al. (1984) y Caló et al. (1998). Estos autores señalaron como la floración está fuertemente influida por las condiciones ambientales y fundamentalmente por la temperatura máxima del período precedente a la floración.

Morisca en el único año de estudio en el que se ha considerado, aparece como una variedad temprana en su floración. Por otra parte, Chelva y Eva (4C01) en 1996 aparecen en el grupo de los últimos cultivares que pierden la corola, manteniendo dicha posición Chelva en 1997 y adelantándose Eva (4C01), siguiendo ambas el mismo orden en que iniciaron la brotación.

Analizando las fechas de floración de aquellas variedades en las que se han detectado problemas de sinonimia u homonimia mediante otros métodos de caracterización, se observa:

- Los cultivares de Pardina y Blanca Cayetana en los cuatro años de estudio muestran diferencias signiñcativas entre ellos, no existiendo diferencias superiores a un día, excepto en 1999, entre sus fechas medias de floración. En la figura n° 73 se puede observar como en dicho año el clon de Blanca Cayetana 2AL11 tiene una fecha de floración similar a la de Pardina, pero el hecho de que 2T01 y 2T013 presenten una pérdida de la corola más tardía retrasa la fecha media de floración del cultivar Blanca Cayetana con respecto a Pardina. - El cultivar Montúa y el clon de Eva (4LS47) en 1997 y 1998 no tienen asignada la misma letra, mientras que en 1996 no presentan diferencias significativas entre ellos. Cuando se observa la figura n° 71 correspondiente al año 1997, se comprueba que la diferencia existente entre las fechas medias de floración de Montúa y el clon 4LS47 es debida al retraso que muestra la accesión 3AL45, presentando los otros clones fechas próximas a la de 4LS47; además este hecho se refleja en una

307 diferencia de apenas un día entre las fechas medias de floración del cultivar Montúa y del clon 4LS47. Sin embargo, en 1998 4LS47 tiene una pérdida de la corola en una fecha intermedia a la manifestada por los clones de Montúa, que irnos la presenta más tardía (3ST17, 3GU19, 3AL45), mientras que 3GU34 se adelanta (figura rf 72). - El cultivar Chelva y el clon de Eva (4C01) presentan diferencias significativas los dos años de estudio. En 1996 sus fechas medias de floración apenas diñeren en un día, mientras que en 1997 dicha diferencia se incrementa en tres días. - Los cultivares de Malfar y Alarije tienen diferencias significativas en los cuatro años de estudio, apareciendo Malfar siempre con una floración más precoz. De nuevo, hay que resaltar la diferente ubicación de estas dos variedades y por tanto las diferentes condiciones ambientales con que se encuentran, que pueden conducir a un comportamiento diferente aunque fuesen el mismo cultivar. Por último, hay que señalar como en 1999, año en el que Alarije adelanta su fecha de floración, se produce una superposición de las fechas de floración de algunos clones de Alarije con Malfar (figura n° 73). - Los cultivares de Borba y Cigüentes no presentan diferencias significativas en 1997, mientras que en 1996, 1998 y 1999 si que existen dichas diferencias. Sin embargo, cuando se analizan las fechas medias de floración de dichas variedades se observa que las diferencias son muy pequeñas pudiendo variar entre menos de un día y 3 días.

5.3.2.3.- Envero

En el cuadro n° 25 aparecen las fechas medias de envero de cada variedad, observándose como en la mayoria de ellas este estado se alcanza en fechas próximas durante los tres años de estudio, a pesar de que en 1997 se produjese una brotación y floración más temprana. Ya Caló et al. (1984) y Caló et al. (1998) señalaron como en el envero podían influir las condiciones ambientales, aunque el genotipo tiene también una fuerte acción.

Observando las fechas medias del estado M de cada variedad se podría

308 establecer el orden de envero de ellas de la siguiente manera: Cigüentes, Borba, Montúa, Eva (4LS47), Perruno, Alarije, Malfar, Blanca Cayetana y Pardina.

Borba y Cigüentes en 1997 y 1998 muestran fechas de envero próximas, no existiendo diferencias significativas entre ellas en 1997, corroborándose las sospechas de una posible sinonimia. Sin embargo, en 1996 hay una notable diferencia entre ellas, que además se acrecienta con el retraso de algimos clones de Borba (6M023, 6M033) (figura n° 70). Esta diferencia puede ser debida al fiíerte ataque de mosquito verde (Empoasca spp.) que tuvo lugar en dicho año, y que al atacar las hojas produjo su marchitamiento y posterior debilitamiento, pudiendo provocar este hecho im retraso en el envero de la baya.

Montúa y Eva (4LS47) también fueron cultivares fuertemente atacados por esta plaga en 1996, presentando una fecha media de envero más tardía que en 1997 y 1998. Ambos cultivares no tienen diferencias significativas entre ellos en 1996, o presentan una ligera diferencia entre sus fechas medias en 1998, poniendo de manifiesto una vez más ima posible sinonimia entre ellos. Sin embargo, en 1997 es donde se hace más notable una separación entre estos dos cultivares, probablemente como consecuencia del acusado debilitamiento que presentó a lo largo de ese año 4LS47.

En 1996 y 1998 Perruno y Alarije no presentan diferencias significativas entre ellos, siendo inmedia;tamente seguidos por Malfar con el que no existe una diferencia entre sus fechas medias de envero superior a 2-3 días. Sin embargo, en 1997 son Malfar y Perruno los que no presentan diferencias significativas entre ellos y Alarije presenta un envero un poco más tardío. En este año se realizó una fertilización que trajo como consecuencia un mayor desarrollo de las cepas, especiahnente en esta variedad tan vigorosa, pudiendo provocar este hecho un envero más tardío en Alarije.

La proximidad en la fecha de envero de Malfar y Alarije pone de relieve la posible sinonimia existente entre estos dos cultivares, y detectada a través de otros métodos desarrollados en este trabajo.

309 Blanca Cayetana y Pardina en 1996 y 1998 son los últimos clones en enverar, no presentando diferencias significativas en el primer año, y en 1998 con una diferencia entre sus fechas medias de envero de un día. En 1997 es donde se aprecia un distanciamiento entre estos dos cultivares. Sin embargo, si se observa la figura n° 71, se aprecia que esta diferenciación es debida al adelantamiento en el envero de 2AL 11 y 2T013, alcanzando 2T01 el estado M en una fecha posterior a 1S04. Este comportamiento tan similar está en consonancia con los resultados obtenidos por otros métodos de caracterización que apuntan a una posible sinonimia entre estos dos cultivares.

El cultivar Morisca en el único año de estudio incluido aparece como vina variedad tardía, próxima a Pardina. Por otra parte, Chelva y Eva (4C01) muestran una fecha de envero próxima a Montúa en 1996 y 1997 y a Eva (4LS47) en 1996. Entre ellas tienen diferencias significativas los dos años de estudio, aunque en 1997 sus fechas medias de envero sólo difieren en dos días.

5.3.2.4.-Maduración

En el cuadro n° 26 aparece la fecha media de maduración de cada variedad, en el cual se puede apreciar como Cigüentes es la más temprana de todas ellas. A continuación en 1996 y 1998 se encuentran Alarije y Borba, no mostrando diferencias significativas la primera de ellas con Cigüentes en 1996, mientras que en 1998 tiene asignada la misma letra que Borba.

El cultivar Alarije en 1997 presenta una fecha media de maduración que la sitúa con las más tardías. Este diferente comportamiento puede ser una consecuencia del excesivo desarrollo vegetativo que presentó esta variedad en 1997 a raíz de la fertilización que se realizó en dicha campaña. Este vigor pudo crear un microclima en la planta, que junto con el exceso de fi-utos retrasó la maduración de las bayas (Due et al, 1993).

Por otra parte, Borba en 1996 madura más tardíamente que Alarije, teniendo

310 especial importancia en este aspecto los clones 6M023 y 6M026, que maduran más tardíamente (figura n° 70), y son los que retrasan la fecha media de maduración de Borba, ya que las otras accesiones alcanzan la maduración en una época próxima a las de Alarije. Estos clones mostraron un fuerte ataque de mosquito verde {Empoasca spp.) que provoca problemas en la maduración de los racimos (Ruiz Castro y Mendizábal, 1939; Toledo, 1992).

Los cultivares Cigüentes y Borba por tanto tienen diferentes fechas de maduración, siendo más temprano el primero de ellos. Por los otros métodos de identificación empleados en este trabajo se podría establecer que hay una sinonimia entre estas dos variedades, sin embargo, mediante este estudio fenológico se ha detectado una diferente fecha de maduración entre ellas pudiendo ser éste el origen de la confusión existente.

Malfar alcanza la madurez en 1996, 1997 y 1998 en fechas próximas a Alarije, pero siempre presenta diferencias significativas con respecto a ella. Según los resultados obtenidos con otros métodos de caracterización estas dos variedades son sinónimas, pudiendo ser debidas estas diferencias a las diferentes condiciones climatológicas existentes entre los dos campos de cultivo en que se encuentran ubicados estos dos cultivares.

Pardina y Blanca Cayetana no muestran diferencias significativas en los tres años de estudio, presentando siempre una maduración tardía. Este resultado confirma una vez más la sospecha de sinonimia entre estas dos variedades.

Los cultivares Montúa, Perruno y Eva (4LS47) no llegan alcanzar el grado de madurez establecido en este trabajo, de tal manera que siempre aparecen como cultivares de maduración tardía. Este hecho pone de manifiesto que los frutos de Montúa y Eva (4LS47) siguen una evolución en su madurez semejante confirmando su posible sinonimia.

El seguimiento de maduración en el cultivar de Chelva y el clon de Eva (4C01)

311 fue complicado ya que sus frutos a medida que maduraban eran comidos por perdices; A pesar de ello se puede establecer su fecha de maduración próxima a la de Alarije, Borba y Malfar. Eva (4C01) en 1996 presenta una fecha de madurez más tardía como consecuencia de la dificultad en tomar una muestra con un alto contenido de azúcares. Esta singular circunstancia pone de manifiesto el problema detectado de sinonimia entre Chelva y Eva (4C01), y de homonimia entre los dos clones de Eva considerados, ya que sólo éstos fueron atacados por las perdices.

El cultivar Morisca, sólo considerado \m año, aparece con una fecha de maduración próxima a Chelva y Eva (4C01).

Por tanto una vez analizadas todas las variedades estudiadas se puede hacer la siguiente clasificación en función del momento de su maduración:

- Tempranas: Gigüentes - Medias: Alarije, Borba, Malfar, Chelva, Eva (4C01), Morisca - Tardías: Blanca Cayetana, Pardina, Montúa, Eva (4LS47), Perruno

5.3.2.5.- Caída de la hoja

En el cuadro n° 27 aparecen las fechas medias de la caída de la hoja de cada variedad. En él se puede apreciar como el orden de la pérdida de la hoja se mantiene constante en 1996 y 1997, siendo el siguiente:

Temprana: Perruno - Media: Morisca, Eva (4LS47), Malfar, Blanca Cayetana, Pardina, Borba, Cigüentes, Montúa - Tardía: Alarij e, Chelva, Eva (4C01)

Sin embargo, sobre este orden se pueden hacer una serie de consideraciones. En 1996 Montúa, Eva (4LS47) y Borba presentan una caída de hoja mucho más temprana que la manifestada en 1997. En Montúa es debido a la rápida entrada en el estado P por

312 parte del clon 3ST17, como consecuencia del fuerte ataque de mosquito verde {Empoasca spp.) que provocó una rápida defoliación de las plantas. En Eva (4LS47), también como consecuencia de este ataque, se produce una temprana pérdida de la hoja. Y por último, en Borba los clones 6M023 y 6M026 también manifiestan el estado P más precozmente como consecuencia del suceso anteriormente indicado y así adelantan la fecha de la caída de la hoja de este cultivar (figura n° 70).

En 1996 Eva (4C01) y Chelva pierden la hoja en una época muy tardía y además distanciada de Alarije. Si se observan las heladas ocurridas durante el mes de diciembre en 1996 y 1997 (anejo 3) se comprueba que en el primer año no tiene lugar ninguna, mientras que en 1997 el día 6 de diciembre se registró la única helada de todo este mes. Esta fecha expresada como el número de días acumulados desde el 1 de marzo, asignándole a éste el valor O, tiene el valor de 280. Como se puede observar en el cuadro n° 27, tres días después de esta helada se produce la pérdida de la hoja de las variedades más tardías. Por tanto se puede decir que la disminución de las temperaturas por debajo de los O °C afecta claramente a la caída de la hoja.

Muñoz (1995) observa que el orden relativo de la caída de la hoja en las distintas variedades estudiadas no se mantiene constante en los distintos años; y considera que los factores ambientales tienen una mayor incidencia que los genéticos. Estos resultados pueden parecer contradictorios con los expuestos en este trabajo. Sin embargo, si se analizan las heladas registradas en el área de trabajo de Muñoz (1995) se comprueba que son más fi^ecuentes y más pronunciadas qué las ocurridas en el lugar y época de este estudio. Pudiéndose decir que un factor determinante en el inicio del estado P son las heladas como se puede observar en 1998. En dicho año, la pérdida de la hoja se produce en imas fechas muy próximas. Si se analizan las heladas ocurridas durante el mes de noviembre (anejo 3) se puede comprobar como el inicio de la caída de la hoja tiene lugar inmediatamente después de la primera helada registrada, que al ser seguida por otras en días sucesivos tiene como consecuencia la pérdida de la hoja de todas las variedades al mismo tiempo. Por tanto, se puede señalar que las temperaturas por debajo de O °C pueden tener una mayor interacción que los factores genéticos, mientras que las temperaturas suaves permiten un desarrollo de la caída de la hoja en

313 función de las características propias de cada cultivar.

Para aquellas variedades que han manifestado problemas de sinonimias u homonimias mediante otros métodos de caracterización empleados en este trabajo, se han corroborado • dichas sospechas al analizar su comportamiento en este estado fenológico, pero considerando sólo los resultados obtenidos durante los años 1996 y 1997:

- Blanca Cayetana y Pardina no presentan diferencias significativas en 1996, sin embargo, en 1997 si que se manifiestan dichas diferencias, aunque sus fechas medias de caída de hoja no difieren en más de dos días. - Borba y Cigüentes en 1997 tienen asignada la misma letra. Por otra parte, en 1996 el cultivar Borba tiene ima fecha media de caída de hoja más adelantada que Cigüentes por la pérdida precoz de la hoja de 6M023 y 6M026, mientras que las accesiones de Cigüentes y las de Borba, 6M015, 6M033, 6M045 y 6M047 entran en el estado P en épocas similares (figura n° 70). - Montúa y Eva (4LS47) en 1996 no tienen diferencias significativas entre ellas, presentando una fecha media del estado P muy temprana como ya se ha indicado por el fuerte ataque de mosquito verde. Sin embargo, en 1997 Eva (4LS47) pierde la hoja antes que el cultivar Montúa, probablemente debido al debilitamiento observado en este clon. - La diferente ubicación de las plantaciones en que están cultivadas Malfar y Alarije son probablemente xm factor determinante en la diferente fecha del estado P que presentan estos dos cultivares. Así, Malfar siempre tiene una caída de la hoja más precoz que Alarije, puesto que en su zona de cultivo se registran temperaturas más bajas que en la Finca "La Orden". - Chelva y Eva (4C01) son las más tardías en perder la hoja en 1996 con fechas muy próximas; mientras que en 1997 no tienen diferencias significativas entre ellas. En 1996 además presentan un estado P muy retrasado respecto a Montúa y Eva (4LS47), año en el que no están influidas por las bajas temperaturas.

314 5.3.2,6.- Período floración-envero

En el cuadro n° 28 aparecen los resultados de realizar sobre los períodos de floración-envero de los años 1996,1997 y 1998 un análisis de varianza aplicando el test de Duncan al 5%.

El cultivar Cigüentes, junto con Borba en 1997 y 1998, son los dos que tienen el período floración-envero más corto de todas las variedades consideradas, poniendo de manifiesto un mismo comportamiento entre estos cultivares, entre los que había sospecha de sinonimia. En 1996 Borba presenta una diferencia de 15 días en la duración de este período con respecto a Cigüentes. Como ya se ha indicado anteriormente esto puede ser debido a una mayor sensibilidad por parte de los clones de Borba al ataque de mosquito verde (Empoasca spp.) que podría tener como consecuencia un retraso en el envero de los ñutos. Hay que señalar la estabilidad que presenta la duración del período floración-envero en Borba a lo largo de los tres años, mientras que para Cigüentes en 1996 es muy corto.

Alarije en los tres años de estudio presenta un comportamiento diferente. En 1996 presenta un período floración-envero corto sin diferencias significativas con el manifestado por Borba. Sin embargo, en 1997 y 1998 éste se prolonga notablemente, pudiendo ser debido este incremento por el gran vigor que presenta esta variedad. Al tratarse de una planta joven a medida que aumenta la edad se produce un mayor desarrollo de la planta que puede retrasar el envero de los fiíitos, siendo probablemente más acusado en 1997 al realizarse en dicho año una fertilización.

Malfar presenta un período floración-envero con ima duración semejante durante todo el estudio, siendo un poco más corto en 1996, por la floración más tardía que tuvo lugar ese año. No presenta un comportamiento parecido a Alarije. Sin embargo, hay que señalar que Malfar en la fecha de floración presenta diferencias con el cultivar de Alarije, probablemente influidas por la distinta situación de las plantaciones en que se encuentran estos dos cultivares estando la floración notablemente influida por las condiciones ambientales (Caló et al, 1984 y Caló et al..

315 1998).

En el cultivar Montúa también es destacable la similar duración del período floración-envero en los tres años de estudio. En 1996 y 1998 no presenta diferencias significativas con Eva (4LS47), sin embargo, en este clon el intervalo de tiempo transcurrido entre el estado I y el estado M se hace más prolongado en 1997, como consecuencia del retraso en alcanzar el envero que presentó en dicho año probablemente debido al debilitamiento que mostró este clon.

Perruno también es un cultivar que presenta constante la duración del período floración-envero, en 1997 y 1998, siendo en 1996 un poco más corto como consecuencia de la floración tan retrasada que se produjo ese año en comparación con los anteriores.

Pardina tiene un período floración-envero similar en 1996 y 1998, años en los que no presenta diferencias significativas con Blanca Cayetana, sin embargo, en 1997 este intervalo se prolonga hasta 24 días más que en 1996. Por otra parte,.en Blanca Cayetana el número de días transcurridos entre la floración y el envero en los tres años de estudio es similar, siendo un poco más prolongado en 1997 y un poco más corto en 1996 por las fechas de floración tan dispares de esos dos años. En 1997, año en el que Pardina y Blanca Cayetana presentan períodos medios floración-envero con una diferencia de 10 días, se puede señalar como los clones, 2AL11 y 2T013 enveran antes que, 2T01, que, sin embargo, presenta una fecha de envero posterior a Pardina (1S04) (figura n° 71). Por tanto, se puede señalar el similar comportamiento durante todo el estudio de estas dos variedades entre las que se ha detectado un problema de sinonimias.

En el cultivar Chelva el período floración-envero tiene prácticamente la misma duración en los dos años de estudio, al igual que Eva (4C01). Sin embargo, en ambos casos las dos accesiones muestran diferencias significativas entre ellas y una diferencia entre sus períodos medios entre 5 y 7 días, surgiendo estas diferencias como consecuencia de la disparidad de sus fechas de floración (1997) o envero (1996). Por

316 otra parte, Chelva en 1996 no presenta diferencias significativas con respecto a Montúa, y Eva (4C01) en 1997 tiene asignada la misma letra que Montúa. Presentando por tanto estas variedades, que han manifestado problemas de sinonimias y homonimias mediante otros métodos de caracterización, una similitud en el período floración-envero, habiendo podido ser este hecho uno de los factores que ha contribuido a esta confusión.

Por último, Morisca sólo se ha incluido en este trabajo en 1997, presentando en él un largo intervalo entre la floración y el envero. Sin embargo, este período no se debería considerar cómo indicativo por la temprana floración ocurrida en dicho año y como consecuencia de ésta el mayor número de días transcurridos hasta alcanzar el envero.

En la mayoría de las variedades estudiadas el periodo floración-envero se muestra estable a lo largo de los años de estudio como indicaron Caló et al. (1998); en cuyo trabajo señalaron la constancia de este periodo a pesar de las diversas condiciones ambientales estando, por tanto este intervalo fundamentalmente determinado por las características genéticas de la variedad.

5.3.3.- Estudio fenológico por clones

Se ha analizado el comportamiento de los clones dentro de los grupos establecidos, en función del cultivar que representan y de las posibles sinonimias detectadas mediante otros métodos de caracterización expuestos en este trabajo.

5.3.3.1.- Brotación

Es importante conocer el comportamiento de los clones en el momento de su brotación, para poder realizar un adecuado manejo de los mismos. Ya que en aquellos que su desborre se inicia en una fecha más precoz son mayores las posibiHdades de que sufran las consecuencias de una helada primaveral.

317 En el grupo formado por ios clones de Pardina y Blanca Cayetana el estado fenológico B, permite establecer una distinción entre el clon más precoz en su brotación (2AL11), y el más tardío (2T01), ambos correspondientes al cultivar Blanca Cayetana. También entre las accesiones de Borba y Cigüentes destaca 6M023 por su retraso en la brotación. Dentro de este grupo se podría mencionar al clon 8CA9 que manifiesta una tendencia a ser de los primeros en iniciar el desborre.

Ya Silvestroni et al. en 1995 y 1996, encontraron diferencias en el momento de la brotación de algunos clones que correspondían a una misma variedad.

Dentro de los grupos Montúa-Eva (4LS47) y Perruno se observa una falta de uniformidad en el comportamiento de algimos clones, que durante los cuatro años de estudio sólo en dos de ellos manifiestan su precocidad o su retraso en el desborre. Estas diferencias impiden establecer un criterio sobre su actitud.

En el conjunto constituido por Alarije y Malfar, el clon 7CN1 se manifiesta como el más precoz. Sin embargo, hay que señalar la distinta ubicación de las plantaciones en que se encuentran las accesiones que constituyen este grupo, que es probablemente el factor que establece estas diferencias en la fecha de brotación.

5.3.3.2.- Floración

Este estado fenológico permite diferenciar algunos clones por su mayor precocidad o retraso en el momento de la floración. Así en el grupo Pardina-Blanca Cayetana, de nuevo son los clones 2AL11 y 2T01 los que se pueden distinguir de los demás considerados. Al igual que en la brotación, 2AL11 manifiesta una pérdida de la corola en unas fechas anteriores al grueso del grupo, y 2T01 posteriores. También en el grupo Montúa-Eva (4LS47), los clones 3GU34 y 3AL45 se han diferenciado del resto por su floración más precoz y más tardía, respectivamente. En el conjunto formado por Alarije y Malfar destaca 5TA25 (Alarije) con una pérdida de la corola tardía. En el bloque constituido por Borba-Cigüentes se puede destacar a la accesión 8CA40 por tener una floración muy temprana y constante a lo largo de los tres años de estudio y a

318 6M023 por tener una pérdida de la corola tardía. Por último, dentro de la variedad Perruno el clon 9CA25 presenta una floración precoz, aunque siempre sin mostrar diferencias significativas con respecto a los demás clones que constituyen este grupo.

También Silvestroni et al. (1995) hallaron diferencias entre algunos clones de una misma variedad considerando su fecha de floración.

De nuevo, al igual en la brotación en el conjunto constituido por Alarije y Malfar, el clon 7CN1 muestra una mayor precocidad en el momento de la floración que el resto de accesiones correspondientes al cultivar Alarije, pudiendo ser esto debido a la distinta situación geográfica en que se encuentran las plantaciones.

5.3.3.3.- Envero

Caló et al. (1985) y Silvestroni et al. (1995 y 1996) observaron diferencias en las fechas de envero entre algunos clones de aquellas variedades que consideraron. También en este estudio al analizar los resultados obtenidos en el envero se pueden hacer distinciones en prácticamente todos los grupos establecidos, como a continuación se señalan.

En el grupo constituido Montúa-Eva (4LS47) el clon 3AL45 muestra una tendencia a enverar en una fecha más tardía que el resto de accesiones consideradas. En 1997, el clon 4LS47 inicia este estado fenológico posteriormente a 3AL45, sin embargo, el debilitamiento mostrado por 4LS47 durante dicha campaña puede ser uno de los factores que influyen en el envero tan retrasado de la misma.

En el conjunto constituido por Alarije-Malfar son varios los clones que se pueden señalar por tener un envero más tardío o más temprano. Así, 5TA34 en los años 1997 y 1998 tiene una fecha de envero precoz, no ocurriendo de esta manera en 1996 cuya fecha media tiene un valor intermedio. El fuerte ataque de mosquito verde {Empoasca spp.) ocurrido durante dicha campaña pudo causar este retraso en el inicio de este estado fenológico. Junto a él los clones 5TA13 y 5TA35 manifiestan una

319 tendencia a enverar precozmente. Por el contrario, 5TA27, 5TA25 y 5TA210 muestran un mayor retraso en iniciar el estado M.

En el grupo constituido por Borba y Cigüentes se observa una tendencia a manifestar un envero más precoz entre los clones de Cigüentes, mientras que precisan un mayor número de días algunos de los correspondientes a Borba. Así im ejemplo de esta situación son las accesiones 8CA40 (Cigüentes) y 6M023 (Borba), que inicia la primera de ellas el estado M en una fecha más temprana que la segunda.

Por último, también en el grupo del cultivar Perruno se pueden distinguir dos clones por su precocidad y su retraso en enverar. En el primer caso se encuentra el clon 9CA36, mientras que en el segundo destaca 9CA25.

5.3.3.4.- Caída de la hoja

Como se ha expuesto anteriormente el estado fenológico P está fuertemente influido por la acción de las temperaturas por debajo de los O °C. Es por ello, que las observaciones realizadas durante el año 1998 no aportan una gran información en la caracterización de variedades y de clones al producirse durante dicho año heladas consecutivas durante varios días, que como consecuencia ocasionaron la caída de la hoja en fechas muy próximas, y por tanto no se observan diferencias significativas entre cultivares, o entre clones. De esta manera, las conclusiones se van a centrar en ios resultados obtenidos durante los años 1996 y 1997.

En el conjunto constituido por Alarije-Malfar y sólo considerando las observaciones realizadas durante 1996 y 1997, se puede comprobar que los clones 5TA34, 5TA13, 7CN1, 5TA25 y 5TA210 durante dicho años presentan una fecha de caída de hoja constante, que los identifica como clones más precoces en iniciar el estado fenológico P (5TA13, 5TA34 y 7CN1) y más tardíos (5TA25 y 5TA210). De nuevo, habría que señalar la influencia que puede tener la distinta situación geográfica que tienen las dos plantaciones en donde se encuentran los clones correspondientes a la variedad Alarije y el de Malfar (7CN1), en la fecha en que se manifiesta este estado

320 fenológico.

También sólo considerando los años 1996 y 1997 se puede observar dentro del grupo Borba-Cigüentes una distinción entre los clones 6M026, y 6M045 y 8CA9, por perder la hoja en una fecha más temprana o más tardía, respectivamente.

Dentro del grupo Montúa-Eva (4LS47) se podría señalar al clon 4LS47 como muy precoz en la pérdida de la hoja. Sin embargo, dicha conclusión no parece la más correcta al tratarse de una accesión fuertemente dañada por el ataque de mosquito verde {Empoasca spp.) durante la campaña de 1996, que pudo causar una rápida defoliación de la planta, y en 1997 dicha precocidad pudo ser una consecuencia del fuerte debilitamiento que mostró este clon durante dicho año.

5.3.3.5.- Período floración-envero

Al estudiar el período de tiempo que transcurre desde que se produce la floración hasta que se inicia el envero en el grupo constituido por Montúa y Eva (4LS47) se puede observar una tendencia por parte del clon 3AL45 a requerir un mayor número de días desde que la pérdida de la corola hasta que se alcanza el envero, que el resto de las accesiones consideradas. Es interesante señalar que en 1997 4LS47 presenta un período floración-envero más prolongado que 3AL45 y 3ST17, que no presentan diferencias significativas entre ellos. Sin embargo, como ya se ha señalado anteriormente el clon 4LS47 mostró a lo largo de la campaña de 1997 signos de un gran debilitamiento, que se pudieron traducir en un envero más tardío y por tanto en un período floración-envero más prolongado.

También en el grupo constituido por Alarije y Malfar el período floración- envero permite distinguir a algunos clones. Así, 5TA34 requiere un menor número de días desde que se produce la floración hasta que se alcanza el envero que el resto de los clones considerados. Sin embargo, hay que destacar que en 1996 aparece con un período medio algo más prolongado que el manifestado en 1997 y 1998. La expHcación a este extraño comportamiento se puede encontrar en el retraso que muestra 5TA34 en

321 alcanzar el envero, siendo posiblemente como consecuencia del fuerte ataque de mosquito verde {Empoasca spp.) que tuvo lugar en la campaña de 1996. Las accesiones 5TA13 y 5TA35 también muestran un período floración-envero de corta duración, aunque superior al de 5TA34; mientras que a 5TA27, 5TA210 y 7CN1 les corresponde un período más prolongado.

Este parámetro en el grupo Borba-Cigüentes también permite distinguir a 8CA2 como un clon con un período floración-envero corto, aunque en 1996 lo presenta im poco más prolongado; sin embargo, de nuevo habría que señalar el fuerte ataque de mosquito verde {Empoasca spp.) sucedido en dicha campaña, que pudo retrasar el envero de esta accesión. Así mismo, 6M023 destaca entre los clones que presentan un período más largo, aunque se trata de una planta virosada.

En el bloque constituido por los clones de Perruno también el período floración- envero se muestra muy estable en las accesiones 9CA25 y 9CA36, permitiendo su distinción. La primera de ellas se caracteriza por un periodo más prolongado que la segunda.

Por tanto, el periodo floración-envero permite diferenciar clones que corresponden a una misma variedad. Ya Caló et al. (1998) identificaron este parámetro como un buen indicador de las características genéticas de la planta, al no estar fuertemente influido por las condiciones ambientales en que se desarrolla la cepa.

El período floración-envero en los clones 3COI y 4C01 es un elemento decisivo para su distinción, al presentar durante los dos años incluidos en este estudio diferencias significativas. Sin embargo, el hecho de que sólo estén incluidas en este grupo dos muestras puede influir en la existencia de estas diferencias, y disminuye capacidad de discriminación a este parámetro.

5.3.3.6.- Clones virosados

Analizando el comportamiento de los cuatro clones virosados (3ST17, 4LS47,

322 6M023 y 6M033) incluidos en este estudio, dentro de los grupos correspondientes se puede concluir que no presentan grandes diferencias con los clones sanos de su misma variedad. Dichas diferencias a veces pueden ser explicadas por factores extemos, mientras que en otros casos la infección vírica, parece ser la causa de las mismas.

Por ejemplo, en 1999 el clon 4LS47 inicia su desborre más precozmente que las otras accesiones de su grupo. Sin embargo, en dicho año la brotación en algunos casos se produjo en una época más temprana, probablemente como consecuencia de las condiciones climáticas acontecidas durante el invierno y el período previo a la brotación, que fueron diferentes a la de años anteriores. Por otra parte, esta accesión es la última en brotar en 1997. Ese mismo año de nuevo el clon 4LS47 inicia el envero en una fecha más retrasada que la manifestada en años anteriores, pudiendo ser el debihtamiento mostrado por esta planta durante dicha campaña, a consecuencia de la virosis, uno de los factores que pudo causar dicho retraso, y que posteriormente también se refleja en un periodo floración-envero más prolongado que otros años. En 1996, 6M023, 3ST17 y 4LS47 adelantaron el momento de la caída de la hoja respecto a los demás, sin embargo, el fuerte ataque de mosquito verde (Empoasca spp.) que se produjo durante dicho año, debió jugar un papel decisivo en el adelanto de la pérdida de la hoja en aquellas cepas más atacadas al producirse el marchitamiento de las hojas.

El clon 6M023 presenta generalmente una brotación y un envero más tardío que el resto de las accesiones consideradas dentro de su grupo, mientras que el periodo floración-envero es algo más prolongado. Este diferente comportamiento podria ser una consecuencia de la diferenciación genética de esta accesión respecto a las demás, o de la infección vírica con que cuenta esta planta.

Es por tanto, en la brotación y en el envero más tardíos que presentan estos clones virosados en ciertas ocasiones donde no parecen existir factores extemos que afecten a este hecho, siendo la infección vírica la posible causa de este comportamiento. Estos son los únicos parámetros en los que se ha encontrado una diferencia en la tipificación de los clones virosados fi-ente a los clones libres de vims.

323

6.

1. Las denominaciones Jaén, Pardina y Blanca Cayetana, aún siendo diferentes, hacen referencia a una misma variedad. 2. Dentro del grupo de accesiones llamadas Eva, Beba, Mantúo, Montúa y Chelva se distinguen dos cultivares claramente diferenciados. Una de las variedades es Mantúo, con una aptitud preferentemente de mesa y de origen extremeño y la otra variedad es Beba, con mayor aptitud de transformación y de origen andaluz. En ambos cultivares hay homonimias y sinonimias de las cinco variedades antes mencionadas. 3. Se ha detectado un problema de sinonimia entre los clones de Alarije y el clon de Malfar, 7CN1 seleccionados por el SIDT-Exfcremadura, siendo todos ellos la variedad Alarije. 4. Los clones de las variedades Borba y Cigüentes seleccionados por el SBDT- Extremadura corresponden a un mismo cultivar, la variedad Cigüentes, según los datos obtenidos en el Banco de Germoplasma de Vid de "El Encín", aunque se observa cierta diferencia entre ellos morfológicamente y en la observación-de algunos estados fenológicos. 5. La variedad identificada como Perruno por el CIFA "Rancho de La Merced" (Jerez de la Frontera-Cádiz) no corresponde con los clones. de Perruno seleccionados por el SIDT-Extremadura, perteneciendo las plantas seleccionadas a una variedad autóctona de Extremadura, ya que no se ha encontrado ninguna similitud con las Perruno estudiadas en el Banco de Germoplasma de Vid de "El Encín". 6. Caracteres como la intensidad de la pigmentación antociánica de la extremidad (código OIV n° 003), la longitud de los zarcillos (código OIV n° 017) y el tamaño de la hoja adulta (código OIV n° 065) son variables en función de la localización geográfica de las accesiones descritas. Por ello, no se deben incluir en identificaciones que se realicen en ecologías distintas o en bases de datos de caracterización morfológica de vid que se realicen por diferentes centros. 7. El sistema isoenzimático catecol oxidasas ha sido el más discriminante de todos los empleados.

327 8. El estudio de la composición amínica de los mostos permite en algunos casos una distinción clonal. 9. El cociente prolina/arginina establece diferencias entre algunas de las variedades estudiadas, siempre que se analicen mostos con similares contenidos en azúcares. 10. A través de la relación prolina/arginina se observan diferencias entre los cultivares Pardina, Blanca Cayetana y Morisca, no habiéndose encontrado dichas diferencias mediante otras metodologías empleadas en este trabajo. 11. Atendiendo a las fechas de brotación, envero, maduración y caída de la hoja se pueden clasificar las variedades como precoces, medias y tardías. La fecha de brotación y floración está influida por las condiciones ambientales, especialmente por las temperaturas máximas; la floración se ve influida por el momento de la brotación. 12. El envero se produce siempre sobre las mismas fechas y el período floración- envero se presenta constante en los años de estudio, teniendo por tanto sobre ellos una mayor influencia el genotipo de la planta que las condiciones ambientales. Por ello este período puede emplearse en la distinción de variedades. Además, la fecha de caída de la hoja permite establecer diferencias entre las variedades, siempre que no se alcancen temperaturas por debajo de los 0° C, ya que en dicho caso las condiciones ambientales tienen mayor influencia que las características genotípicas de la planta. 13. Las fechas de brotación, floración, envero, caída de la hoja y el período floración-envero permiten establecer diferencias entre algunos clones. 14. Los clones virosados no manifiestan diferencias morfológicas, ni isoenzimáticas, aunque se observan algunas en el análisis de la composición amínica de los mostos y en el comportamiento fenológico. 15. Se deben emplear diferentes métodos de caracterización para poder comparar sus resultados y poder complementar los mismos.

328 '^ •>•

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343

ANEJO 1: AMPELOGRAFIA

Cuadro Al-1. Descripciones morfológicas y sinonimias de Pardina.

^-""-AUTORA""-" "" Ño^aBRE•"^/' V^-:':\DESCRIPGIDN:?Í:-':-:''^^?::1 Estatuto de la Viña, del Hoja Vuelta, Cayetana Vino y de los Alcoholes Pardina Parda - (1970) Amor Blanco, Aujubi, Cagazal, Calagraño, Cirial, Chaselo, Cheres, Doradillo, Fartagoso, Garrida, Garriga, Hidalgo (1980) Jaén Garrilla, Garrillo, Jaén - Blanco, Jaén de Castilla, Jaén Doradillo, Jaénes, Jaina, Naves, Padero, Parda, Pardina, Plateadillo, Plateado Amor Blanco, Aujubi, Sumidad con distribución de la Balad!, Baladí-Vérdejo, pigmentación antociánica ribeteada. Belledy, Cagazal, Hoia ¡oven con el color del haz Calagraño, Doradillo, amarillo-cobrizo. Pámciano verde, con Fartagosos, Garrida, una densidad de pelos tumbados baja. Garrilla, Jaén, Jaén de Hoia adulta de tamaño medio, con cinco Castilla, Jaén Doradillo, lóbulos, forma orbicular-pentagonal, García de Lujan et al. Jaén blanco Jaén de Letur, Jaén de dientes convexos, el seno peciolar en V, (1990) Letur de Maratella, Jaén cerrado, con presencia bastante Prieto, Jaénes, Jaina, frecuente de un diente en el borde, en el Jarime, Mariouti, Naves, envés con una baja densidad de pelos Padero, Parda, Pirulet, tumbados v media de ereuidos. Racimo Plateadillo, Plateado, de tamaño grande y compacidad media. Verdeja, .Virulés Bava mediana, esférica, elíptica-corta. Amor Blanco, Aujubi, Baladí, Baladí-Verdejo, Cagazal, Calagraño, Cirial, Chaselo, Cheres, Doradillo, Fartagoso, Garrido, Garriga, Garrilla, Garrillo, Hoja Hidalgo (1991) Jaén Vuelta, Jaén Blanco, - Jaén de Castilla, Jaén Doradillo, Jaén Prieto Blanco, Jaina, Marianti, Naves, Padero, Parda, Pardilla, Piuret, Plateadillo, Virulés Hoia adulta superficie lisa, con pocos Marín y Morales (1993) Parda Jaén, Blanca Cayetana eránulos. lampiña en el haz. Racimo grande. Bavas esféricas, gruesas. Hoia adulta mediana, cuneiforme, con cinco lóbulos, seno peciolar poco abierto, con la presencia de un diente en el borde, en el envés una densidad de Lara y Serrano, c.p. Pardina Hoja Vuelta pelos tumbados alta, y de erguidos media. Racimo mediano, con una compacidad media. Bava mediana, elíptico corta.

347 Cuadro Al-2. Descripciones morfológicas y sinonimias de Blanca Cayetana.

AUTOR NOMBRE' SINONIMIA DESCRPCI0N''v;^'•:Sfí"- García de los Salmones Blanca Cayetana Jaén -. (1935) Cayetana o Blanca Marcilla(1954) Jaén - Cayetana Hidalgo y Candela Cayetana Blanca Blanca Cayetana - (1971) Hoia adulta media-arande. cuneiforme, pentalobulada, seno peciolar con Hidalgo et al. (1976) Blanca Cayetana - lóbulos superpuestos, dientes convexos, envés velloso. Hidalgo (1980) Blanca Cayetana Cayetana Blanca - Sumidad vellosa, con los bordes ligeramente carminados. Pámpano enteramente verde, velloso al final. Hoias jóvenes superiores e inferiores verdes, envés algodonoso. Hoia adulta Cayetana Blanca y Hidalgo y Galet (1988) Blanca Cayetana cuneorbicular, tamaño medio, Cayetana pentalobulada, seno peciolar y laterales en paréntesis, envés aranoso, dientes rectos V convexos. Racimo medio- grande, compacidad media, pedúnculo herbáceo. Bavas medias, esféricas. Sumidad con distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada. Pámpano verde, sin pelos erguidos. Hoia adulta de tamaño pequeño, con cinco lóbulos, pentagonal, dientes Borrego (1990) Blanca Cayetana Cayetana Blanca rectos, seno peciolar cerrado, en forma de V, con una densidad de pelos tumbados media, y de erguidos nula o muy baia. Racimo entre mediano v grande, con una compacidad alta. Bava de tamaño medio, con forma esférica. Cayetana y Cayetana Hidalgo (1991) Blanca Cayetana - Blanca •Sumidad vellosa, con bordes ligeramente carminados. Pámpano verde. Hoias ióvenes superiores e inferiores verdes. Hoia adulta de tamaño Cayetana, Cayetana medio, cuneorbicular, con cinco Marín y Morales (1993) Blanca Cayetana Blanca, Parda, Jaén lóbulos, seno peciolar y laterales en paréntesis, dientes de lados rectos y convexos. Racimo medio-grande. compacidad media. Bava mediana, esférica. Hoia adulta mediana, cuneiforme, con cinco lóbulos, seno peciolar abierto, con Blanca Cayetana, un diente en el borde, en el envés hay Lara y Serrano, c.p. Cayetana Blanca Caetana Blanca, una densidad media de pelos tumbados Cayetana Y de erguidos. Racimo mediano, con una compacidad media. Baya mediana, elíptica corta.

348 Cuadro A1-3. Descripciones morfológicas y sinonimias de Jaén.

:^-:r::'"'^ AUTOR-:.:-,-:;:^.r- •';VNQMBRE;>:>Í ;:i:'f:í;SrNOMMiÁ;-V;,:í v; .•:V

349 Cuadro Al-3. (Continuación).

:...... ,: J.AUnQR, -5^::,, , ,Í,:;.:,N0MBRE;:,.^.; ;Í;„S,/SINONIMIA. .;# :.;;,;¥:, •.i/.afDESGRIÍ'GION Hoia adulta mediana, orbicular, con cinco lóbulos, seno peciolar con bordes Hidalgo et al. (1976) Jaén - superpuestos, dientes convexos, envés aranoso. Racimo mediano, suelto. Baya pequeña, forma esferoide. Amor Blanco, Aujubi, Cagazal, Calagraño, Cirial, Chaselo, Cheres, Doradillo, Fartagoso, Garrida, Garriga, Hidalgo (1980) Jaén Garrilla, Garrillo, Jaén - Blanco, Jaén de Castilla, Jaén Doradillo, Jaénes, Jaina, Naves, Padero, Parda, Pardina, Plateadillo, Plateado Sumidad vellosa, con bordes ligeramente carminados. Hoia joven verde-amarillento, envés velloso. Baladí verdejo, Belledy, Pámpano verde, aranoso. Hoia adulta Jaén Blanco, Jaén grande, pentagonal, con cinco lóbulos, Hidalgo y Galet (1988) Baladí Prieto, Mariouti, seno peciolar con los bordes Verdeja superpuestos, senos laterales en lira, dientes rectos, envés velloso. Racimo grande, soltura media. Bava de tamaño regular, esférica. Sumidad con una distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada. Hoja adulta de tamaño entre medio v grande, con cinco lóbulos, forma orbicular, dientes rectos, seno peciolar Calagraño, Cirial, con lóbulos superpuestos, en forma de Borrego (1990) Jaén Cagazal V, con presencia bastante frecuente de un diente en el borde, en el envés hay pelos tumbados con una densidad alta y nula 0 muv baia de erguidos. Racimo de tamaño medio, suelto. Baya grande, esférica. Amor Blanco, Aujubi, Sumidad con distribución de la Baladí, Baladí-Verdejo, pigmentación antociánica ribeteada. Belledy, Cagazal, Hoia ioven con un color del haz Calagraño, Doradillo, amarillo-cobrizo. Pámpano verde, con Fartagosos, Garrida, una densidad de pelos tumbados baja. Garrilla, Jaén, Jaén de Hoja adulta mediana, con cinco lóbulos, García de Lujan et al. Castilla, Jaén Doradillo, forma orbicular-pentagonal, dientes Jaén Blanco (1990) Jaén de Letur, Jaén de convexos, seno peciolar en V, cerrado, Letur de Maratella, Jaén con presencia bastante frecuente de un Prieto, Jaénes, Jaina, diente en el borde, en el envés con una Jarime, Mariouti, Naves, baja densidad de pelos tumbados y Padero, Parda, Pirulet, media de erguidos. Racimo grande v Plateadillo, Plateado, compacidad media. Baya mediana, Verdeja, Virulés esférica, elíptica-corta.

350 Cuadro Al-3. (Continuación). l'::-.:::~mnGRT-7''-r ••:;:: •''NOMBRB-:^í:-f ;.^:/:;siNONiMiA:,;••..::•; í'i/V 'íí ;;'?.DEseRipa0N. :^^-i:'a:y;::;-i Amor Blanco, Aujubi, Baladí, Baladí-Verdejo, Cagazal, Calagraño, Cirial, Chaselo, Cheres, Doradillo, Fartagoso, Garrido, Garriga, Garrilla, Garrillo, Hoja Hidalgo (1991) Jaén Vuelta, Jaén Blanco, Jaén de Castilla, Jaén Doradillo, Jaén Prieto Blanco, Jaina, Marianti, Naves, Padero, Parda, Pardilla, Piuret, Plateadillo, Virulés Hoja adulta con una superficie lisa, con pocos granulos, lampiña en el haz. Marín y Morales (1993) Parda Jaén, Blanca Cayetana Racimo grande. Bayas esféricas. gruesas.

351 Cuadro Al-4. Descripciones morfológicas y sinonimias de Montúa.

FAUTOR? "NOMBRE.:-:^ SMOMIHIA BESCR1PCI.0N- Brota temprano. Hojas medianas, color verde-amarillento, rojizas al desplegarse, casi enteras, a veces con 5 gajos enteros, rugosas, muy borrosas en Mantúo de Sanlúcar, Roxas Clemente (1807) Mantúo Castellano el envés, senos agudos, a veces algo Montúo ensanchados, dientes medianos. Racimos bastantes, ralos, grandes. Bayas grandes, casi redondas, tardías, carnosas y muy sabrosas. Se diferencia del Mantúo castellano por Roxas Clemente (1807) Mantúo Bravio sus hojas con menos borra. Bayas más tardías Montúo de Sanlúcar, Hoias con dientes más largos que el Monte OKvete, Uva de Mantúo Castellano, caen muy tarde. Roxas Clemente (1807) Mantúo de Pilas Puerto Real, Uva de Bayas muy redondas, muy grandes, de Rey, Gabriela un dulce algo empalagoso. Hojas grandes, lobadas o palmeadas, con cinco gajos, casi enteros, con senos acorazonados o ensanchados, muy Montúo de Xerez, Roxas Clemente (1807) Montúo Castellano rugosas, muy borrosas, dientes Montúo Vigiriego medianos. Racimos muchos, grandes, algo flojos. Bayas medianas, oblongas, muy carnosas. Brota muy tarde. Hoias medianas, muy rugosas, caen muy tarde. Muchos Roxas Clemente (1807) Montúo Perruno racimos, algo grandes..Bayas muy apiñadas, medianas, redondas, poco carnosas, maduran muy tarde. Hoias medianas, casi enteras, rojizas al Mantúo, Mantúo de desplegarse, después de color verde- Abela (1885) Mantúo Castellano Sanlúcar, Castellana, amariílento, caen muy tarde. Racimos ¿Montúas de Málaga? ralos, grandes. Bavas grandes, casi redondas, muy sabrosas. Abela (1885) Mantúo Bravio Bayas verdes, tardías. Montúo de Sanlúcar, Hoias con los dientes algo más largos, y Monte-Olivete, Uva de caen muy tarde. Bayas muy grandes, Abela (1885) Mantúo de Pilas Puerto Real, Uva de . bien redondas, sabor dulce, algo Rey, Gabriela empalagoso, muy tardías. Hoias grandes, algo irregulares, lobadas Montúo de Jerez, Abela (1885) Montúo Castellano o palmeadas. Bavas medianas, Montúo Vigiriego oblongas, muy sabrosas. Hoias medianas. Bavas muy apiñadas, Abela (1885) Montúo Perruno medianas, redondas, muy doradas, duras y ásperas. Brota temprano, precozmente. Hojas jóvenes rojizas cuando se despliegan. Mantúo, Mantúo de Hoia adulta mediana, con cinco lóbulos, Sanlúcar, Mantúo de senos laterales cordiformes, seno Víala y Vermorel (1905) Mantúo Castellano Jerez, Mantúo peciolar en U, rugosa, borrosa, dientes Vigiriego, Castellano, medianos. Racimos grande, un poco Castellana, Verdejo flojos. Baya grandes, casi redonda, maduración tardía.

352 Cuadro Al-4. (Continuación).

v;:¿:^ ^i-AOTOR-".-'- --Í: :':-:NOMBRE¡-r:K:i ;í^-«v:::;SINQM[M&fei-":- :-::...;:;.:,:;•:- DESCRIPGICyN: • Brota temprano, las hoias ióvenes inicialmente son blancas que pasan a Mantúo de Sanlúcar, color granate al abrirse las primeras. Monte Olivete, Uva de Hoja mediana, con cinco lóbulos, senos Vialay Vermorel(1905) Mantúo de Pilas Puerto Real, Uva del a veces profundos, envés velloso, Rey, Gabriela, Mantuna, dientes más alargados y agudos que el ¿Forastera Blanca? otro Mantúo. Racimos erandes. Bavas grandes o muy grandes, casi redondas, maduración tardía. Bavas muy grandes, muv redondas, Comenge (1942) Mantúo de Pilas - tardías. Hoias rojizas al desplegarse, caen muy Comenge(1942) Mantúo Castellano - tarde. Racimos ralos. Bavas casi redondas, tardías. Uvas tardías, que abortan Comenge (1942) Mantúo Bravio - frecuentemente Montúo, Montúo de Uvas medianas, obloneas, muv Comenge (1942) Montúo Castellano Jerez, Montúo Vigiriego sabrosas. Hoias medianas. Bavas muv apiñadas, Comenge (1942) Montúo Perruno - redondas, muy doradas, duras, ásperas. Montúas de Racimos eruesos v apretados. Bayas Comenge (1942) ¿Mantúo Castellano? Málaga redondas. Pámpano de color verde, con manchas vinosas cuando está tierno, pelos largos, esparcidos. Hoja grande, orbicular, cinco lóbulos, seno peciolar muy Mantúo Castellano, cerrado, cruzándose mucho en sus Fernández de Bobadilla Mantúo de Mantúo de Xerez, bordes, superficie rugosa, abullonada y (1956) Sanlúcar Mantúo Vigiriego, ondulada, en los dientes dominan los Castellano angulares y redondeados anchos, el envés es algodonoso. Muchos racimos, con el pedúnculo muv corto. Bavas oblongas, gordas, madurez media. Pámpano de color verde claro a verde, con estrías vinosas, bastante velloso. Hoia adulta erande, orbicular, aleo cuneiforme, con cinco lóbulos, seno Mantúo Gordo, Uva peciolar abierto, en V, rugosa, Fernández de Bobadilla Mantúo de Pilas Rey, Uva de Puerto ondulada, dientes angulares, envés (1956) Real, Gabriela bastante tomentoso, ligeramente vellosa. Racimos claros, pedúnculo mediano. Bava casi esférica, gorda, buena para la mesa, gusto azucarado y sabroso. Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes Chelva o Mantua - . (1970) Hidalgo y Candela Mantúo 0 Chelva - - (1971) Hoia adulta oentaaonal, con cinco lóbulos, seno peciolar en U abierto, Hidalgo et al. (1976) Mantua - dientes cóncavos, envés algodonoso. Racimo erande, suelto. Bava grande, esférica.

353 Cuadro Al-4. (Continuación). p::í"'-vSlrtOKí::''^-..^K- HOMBRE SINONIMIA DESCRIPCIÓN Gabriela, Mantúas, Mantúo Castellano, Mantúo Gordo, Mantúo de Jerez, Mantúo Lairén, Mantúo Laerén, Mantúo de Pilas, Mantúo de Sanlúcar, Mantúo Vigiriego, Hidalgo (1980) Mantúo Monte Olivette, Montúas, Montúo, Montúo Castellano, Montúo de Jerez, Montúo Vigiriego, Montúo de Xerez, Tamorlana, Uva de Puerto Real, Uva Rey, Uva de Rey Sumidad con ribetes carminados. vellosa. Pámpano verde, parcialmente aranoso. Hoias jóvenes de color verde, Mantúo Castellano, envés aranoso. Hoia adulta orbicular. Mantúo Vigiriego, grande, pentalobulada, seno peciolar en Hidalgo y Galet (1988) Mantua Mantúo de Sanlúcar, paréntesis, algunas veces cerrado, senos Mantúo de Granada, laterales en lira, dientes rectilíneos, Mantúo de Xerez envés aranoso, limbo olano. Racimos grandes, compactos. Bayas medias, esférica. Sumidad lanosa-vellosa, con bordes carminados. Pámpano parcialmente aranoso, enteramente verde. Hoias jóvenes superiores de color verde pálido, con los bordes ligeramente carminados, envés algodonoso; las inferiores enteramente verdes, envés Chelva de Cebreros, velloso. Hoias adultas orbiculares, Hidalgo y Galet (1988) Chelva Chelva de Guareña, medianas, pentalobuladas, seno peciolar Mantua, Montúa superpuesto, senos laterales en lira muy cerrados, envés aranoso, superficie con ampollas, dientes de lados convexos, nervios de primer orden en el haz verdes v en el envés rojizos. Racimos grandes, compacidad media. Bayas grandes, esféricas. Sumidad con distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada. Pámpano verde. Hoia adulta muy grande, pentagonal, con cinco lóbulos, Montúo, Montúa, dientes rectos, seno peciolar en V, con Mantua, Mantúo, Borrego (1990) Chelva lóbulos superpuestos, con frecuencia Chelva de Cebreros, con un diente en el borde, densidad de Chelva de Guareña pelos tumbados entre media y alta, y de erguidos nula o muy baja. Racimo entre pequeño y muy pequeño, muy suelto. Baya grande, con forma eiíptico-corta.

354 Cuadro Al-4. (Continuación).

:"^-;-.:ÁtM)R:::;ívr:;. r,-::.:NOMBRE>:,í::: Tv. :.-SIM3NBtó::••;/: : ,^WmMtíDES€SIBCJON - Sumidad con distribución de la pigmentación antociánica nbeteada. Hoias ióvenes de color verde. Pámpanos verdes con rayas rojas, con una densidad media de pelos tumbados. Gabriela, Mantúo Hoia adulta mediana, pentaeonal. con García de Lujan et al. Mantúo de Pilas Gordo, Uva de Puerto cinco lóbulos, con dientes rectos, el (1990) Real, Uva Rey seno peciolar en V, abierto, en el envés una densidad de pelos tumbados entre media y alta, y de erguidos baja. Racimo arande. con una compacidad media. Baya mediana, con forma ovoide. Gabriela, Mantua, Mantúo Castellano, Mantúo de Pilas, Mantúo Gordo, Mantúo Lairén, Monte Olivette, Hidalgo (1991) Mantúo Montúa, Montúo, - Montúo Castellano, Pie de Rey, Regalis, Tamorlana, Uva de Puerto Real, Uva de Rey, Uva Rey

355 Cuadro A1-5. Descripciones morfológicas y sinonimias de Chelva.

AUTOR NOMBKE ,- SINONIMIA • • DESCRIBCION Estatuto de la Viña, del Vino y de los Alcoholes Chelva o Mantua - - (1970) Hidalgo y Candela Mantúo 0 Chelva - - (1971) Hoia adulta mediana, orbicular-ovoide. con cinco lóbulos, seno peciolar con lóbulos superpuestos, dientes convexos, Hidalgo et al. (1976) Chelva - envés aranoso. Racimo grande, compacidad media. Bava grande, físiforme casi esférica. Chelva de Cebreros, Hidalgo (1980) Chelva Chelva de Guareña - Sumidad lanosa-vellosa, con bordes carminados. Pámpano parcialmente aranoso, enteramente verde. Hóias jóvenes superiores de color verde pálido, con los bordes ligeramente carminados, envés algodonoso; las inferiores enteramente verdes, envés Chelva de Cebreros, velloso. Hoias adultas orbiculares, Hidalgo y Galet (1988) Chelva Chelva de Guareña, tainaño medio, pentalobuladas, seno Mantua, Montúa peciolar superpuesto, senos laterales en lira muy cerrados, envés aranoso, superficie con ampollas^ dientes de lados convexos, nervios de primer orden en el haz verdes y en el envés rojizos. Racimos grandes, compacidad media. Bavas grandes, esféricas. Sumidad con distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada. Pámpano verde. Hoja adulta muv grande, pentagonal, con cinco lóbulos, Montúo, Montúa, dientes rectos, seno peciolar en V, con Mantua, Mantúo, lóbulos superpuestos, con frecuencia Borrego (1990) Chelva Chelva de Cebreros, con un diente en el borde, en el envés Chelva de Guareña con una densidad de pelos tumbados entre media y alta, y de erguidos nula o muy baia. Racimo entre pequeño v muv pequeño, muy suelto. Baya grande, con forma elíptico-corta. Chelva de Cebreros, Hidalgo (1991) Chelva Chelva de Guareña, - Villanueva Hoia adulta grande, orbicular, con cinco lóbulos, seno peciolar con los lóbulos Chelva de Cebreros, ligeramente superpuestos, con un diente Chelva de Guareña, en el borde, en el envés la densidad de Lara y Serrano, c.p. Chelva Mantua, Mantúo, los pelos tumbados es media y de los Montúo, Villanueva erguidos baia. Racimo grande, con compacidad media. Baya grande, elíptica corta.

556 Cuadro Al-6. Descripciones morfológicas y sinonimias de Eva. '••• -'^-AüTOR '•••=•- •'- NOMBRE ' • "SINONIMIAi'.'^ •:- • •••- ":':•'• DESCKlPeiON: ' ::: Brota muv temprano. Hoias palmeadas 0 lobadas, con cinco gajos, dientes medianos, senos acorazonados, muy Roxas Clemente (1807) Beba - borrosas. Muchos racimos, muv grandes. Bavas muv grandes, tardías. casi redondas, algo apiñadas, sabrosas. Horas grandes. Racimos grandes. Bayas Abela (1885) Beba - algo apiñadas, muy grandes, casi redondas. Hoias grandes. Bayas algo apiñadas, Comenge(1942) Beva - grandes, casi redondas. Pámpano verde con estrías vinosas. velloso claro. Hoias grandes, orbiculares, con cinco lóbulos, seno peciolar cerrado en 0 y también en lira, Fernández de Bobadilla Beba Dorada de Beba superficie ondulada, abuUonada y (1956) Jerez rugosa, dientes angulares, envés tomentoso muy blanco. Muchos racimos v claros. Bava ovoidea, con madurez tardía. Variedad muy análoga en caracteres a la de Jerez, con las siguientes diferencias: Hoja más ancha que larga y su espesor Fernández de Bobadilla es bastante más grueso. Puede presentar Beba de Palos - (1956) • hasta siete lóbulos. Los senos tanto superiores como inferiores, son muy profundos. La superficie no suele presentar ondulaciones. Variedad muy análoga en caracteres a la de Jerez, con las siguientes diferencias: Fernández de Bobadilla Beba Dorada de - Hoja más grande, ligeramente (1956) Huelva cuneiforme. Los dientes son angulares y redondeados. Variedad muy análoga en caracteres a la de Jerez, con las siguientes diferencias: La hoja tiene los senos superiores muy Fernández de Bobadilla Beba Dorada de - profundos y los inferiores profiíndos. (1956) Jaén Sus dientes son angulares, pero más anchos. Baya con forma ovoidea, pero más alargada. Hidalgo y Candela Beba de los Santos Bevan, Eva, Beba - (1971) Hoia adulta grande, pentagonal, con cinco lóbulos, con el seno peciolar en forma de lira con bordes no superpuestos, dientes normalmente Hidalgo et al. (1976) Beba - rectos, y a veces cóncavos, envés algodonoso. Racimo grande, con una compacidad pequeña. Bava media, con forma ovoide. Beba de los Santos, Beba - Hidalgo (1980) Beba Dorado, Beva, Eva

357 Cuadro Al-6. (Continuación). -':—''-:Ám(M: r/iv y-^. NOMBRE •^" -^V:' :siNONiMii&, :--; • t*ír, . JDESCRIECION ;: :• ,' Sumidad con bordes carminados, algodonosa. Pámnano verde, aranoso. Beba, Beba de los Hojas ióvenes verdes, vellosas. Hojas Santos, Beba de los adulta grande, orbicular-cuneiforme, Santos de Maimona, pentalobulada, seno peciolar en lira, a Hidalgo y Galet (1988) Eva Beba Dorada de Jerez, veces con los bordes superpuestos, Eva de los Santos, Eva senos laterales en lira, envés aranoso, de los Santos de superficie con ampollas, dientes Maimona convexos. Racimos medios, sueltos. Bayas gruesas o medias, elipsoide- ovoide. Sumidad con distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada. Pámpano verde. Hoja adulta orbicular. con cinco lóbulos, tamaño entre pequeño y mediano, dientes rectos, seno peciolar en V con los lóbulos Beba, Beba de los ligeramente superpuestos, con presencia Borrego (1990) Eva Santos, Bevan, Beba frecuente de un diente en el borde, en el Dorada envés los pelos tumbados se presentan con una densidad entre media y alta y los erguidos no existen. Racimo mediano, con una compacidad media. Bava muy grande, elíptico-corta. Sumidad con distribución de la pigmentación antociánica ribeteada. Hojas ióvenes amarillas con zonas bronceadas. Pámnano verde, con nula o muy baja presencia de pelos mmbados. Beba Dorada, Beba de Hoja adulta mediana, orbicular, con los Santos, Beba de los García de Lujan et al. cinco lóbulos, dientes convexos, seno Beba Santos de Maimona, (1990) peciolar en V, con los lóbulos Eva, Eva de los Santos ligeramente superpuestos, con presencia de Maimona bastante frecuente de un diente en el borde, en el envés hay una densidad media de pelos tumbados y baja de erguidos. Racimo grande, compacto. Bava mediana, elíptico-corta. Beba de los Santos, Beba de los Santos de Maimona, Beba de Palos, Beba Dorada, Beba Dorada de Huelva, Hidalgo (1991) Beba Beba Dorada de Jaén, - Beba Dorada de Jerez, Beva, Eva, Eva de los Santos, Eva de los Santos de Maimona Beba, Beba Dorada, Hoja adulta mediana, orbicular, con Beba de Huelva, Beba cinco lóbulos, seno peciolar con los de Jaén, Beba de Jerez, lóbulos ligeramente superpuestos, con Beba de los Santos, presencia de un diente en el borde, en el Lara y Serrano, c.p. Eva Beba de los Santos de envés la densidad de pelos tumbados es Maimona, Beba de media v la de erguidos es baja. Racimo Palos, Eva de los Santos grande, con una compacidad media. de Maimona Bava mediana, elíptica corta.

358 Cuadro Al-7. Descripciones morfológicas y sinonimias de Alarije.

S';\-/::'%UTORi-::-íí-;, }r^-^NOMBRB:----^^í ?:?'-S]NONI]vaA;"-C::- •S: Í: ^: >:VíDESCRIPCIQN:=-ír^-:-'"- Son unas uvas muy bermejas, y las Alonso Herrera (1645) Alarije - abejas las comen mucho. No hacen muy buen vino que es rojo. HoLas medianas, amarillentas. Racimos ralos. Bayas blancas, doradas, con Comenge(1942) Alarije - manchas más oscuras y venillas manifiestas. Hidalgo y Candela Alarije Dorada Alarije - (1971) Hidalgo y Candela Alarije Verdosa - - (1971) Hoja adulta grande, pentagonal, con cinco lóbulos, seno peciolar en V, Hidalgo et al. (1976) Alarije - dientes convexos, y envés aranoso. Racimo medio, alao apretado. Bava media, discoide. Hidalgo (1980) Alarije Alarije Dorado - Sumidad con una distribución de la pigmentación antociánica ribeteada. Pámpanos verdes. Hoja adulta entre grande y muy grande, con cinco lóbulos, pentagonal, dientes convexos, Borrego (1990) Alarije Alarije Dorada seno peciolar en V, muy abierto, con una densidad de pelos tumbados baja, y de erguidos nula o muv baia. Racimos pequeños, compacidad media. Bava muy grande, esférica. Alarije Dorado, Alarije Hidalgo (1991) Alarije - Verdoso, Barcelonés Hoja adulta grande, pentagonal, con siete lóbulos, seno peciolar abierto, en Alarije Alarije Dorado, Alarije el envés los pelos tumbados tienen una Lara y Serrano, c.p. Verdoso, Barcelonés densidad baja y los erguidos media. Racimo mediano, algo apretado. Baya mediana, esférica.

359 Cuadro Al-8. Descripci(Dne s morfológicas y sinonimias de Borba.

^^-':":-€r"MJTQR NOMBRE SINONIMIA- •- ' " -• DESCRIPCIÓN Hoja adulta grande, pentagonal, tri o pentalobuiada, seno peciolar en lira Hidalgo et al. (1976) Borba - cerrado, dientes convexos, envés velloso. Sumidad con distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada. Pámpano de color verde. Hoia adulta entre muy pequeña y pequeña, pentagonal, con cinco lóbulos, dientes Borrego (1990) Borba rectos, seno peciolar abierto en forma de V, en el envés la densidad de pelos tumbados entre los nervios es baja, y la de los erguidos nula o muy baja. Racimo muv pequeño, compacto. Baya mediana, elíptico-corta. Hoia adulta mediana, orbicular, con cinco lóbulos, seno peciolar cerrado, en el envés los pelos tumbados tienen una Lara y Serrano, c.p. Borba densidad media, y los erguidos baja. Racimo peqúeño-mediano, con una compacidad media. Baya mediana, elíptica-corta.

360 Cuadro Al-9. Descripciones morfológicas y sinonimias de Cigüentes. í^""-'^:.-A:ÜTOR-':^'^-'--- ••'^'•mQMSRE':m ':'''tmsmoÑMiÁmíy:íiK^.;^;,r;í'D£SCRlPCIONr-/•.;;-: : Cigüente es un género de uvas muy semejante a las albillas, así en el parecer, como en la propiedad, excepto que quieren tierras más calientes, y enjutas que no sean tan recias, y Alonso Herrera (1645) Cigüente - viciosas, porque son más aparejadas para podrir, por no tener el hollejo tan tieso, ni tan duro como lo . El vino destas es muy oloroso y claro, y de mucha dura. Sumidad con ausencia de pismentación antociánica. Pámoano verde. Hoia adulta con un tamaño entre pequeño y medio, pentagonal, con cinco lóbulos, dientes rectos, seno pecio lar en U, Borrego (1990) Cigüente - abierto, en el envés los pelos tumbados tienen una densidad entre alta y muy alta, y los erguidos entre media y alta. Racimo muv pequeño, compacidad media. Bava grande, esférica.

361 Cuadro Al-10. Descripciones morfológicas y sinonimias de Perruno.

- AUTOR NOMBRE ' SINONIMIA • DESCRIPCIÓN Brota temprano. Hojas mediaiías, casi enteras, rara vez lobadas, senos agudos, pelosas, con "pelos" cortos, y a veces bastante espesos en las inferiores, caen Roxas Clemente (1807) Perruno Común Perruno, Perruno Tierno temprano, dientes medianos. Muchos racimos, erandes. Bavas casi redondas. algo trasovadas, muy tardías y muy obtusas. Brota muy temprano. Hojas palmeadas. senos muy ensanchados, cinco gajos superpuestos, dientes largos, muy Roxas Clemente (1807) Perruno Duro Perruno de la Sierra peludas. Muchos racimos, grandes, muv apretados. Bavas muv obtusas, also ásperas, bastante carnosas, tardías. Brota muv tarde. Hojas medianas, muv rugosas, caen muy tarde. Muchos Roxas Clemente (1807) Montúo Perruno - racimos, alao erandes. Bavas muv apiñadas, medianas, redondas, poco carnosas, maduran muy tarde. Hojas casi enteras, rara vez lobadas. Abela (1885) Perruno Común - pelosas por el envés. Bavas de color amarillo latón, duras. Hojas medianas, palmeadas, con los Perruno, Perruno de la senos ensanchados y muy peludas. Abela (1885) Perruno Duro Sierra Muchos racimos, grandes y apretados. Bavas blancas, algo rosadas y duras. Hojas medianas. Bavas muv apiñadas, Abela (1885) Montúo Perruno - medianas, redondas, muy doradas, duras y ásperas. Hoias medianas, con tres lóbulos puntiagudos, senos laterales agudos, Cincinnato da Costa Perrum, Perruno seno peciolar cordiforme, dientes - (1900) para los españoles agudos, envés glabro. Muchos racimos. grandes. Bavas ovales, medianas, de sabor áspero, maduración tardía. Comenge(1942) Perruno Común Perruno, Perruno Tierno Uvas de color amarillo latón, duras. Hojas muv peludas. Uvas blancas, Comenge(I942) Perruno Duro Perruno de la Sierra duras. Racimos regulares. Uvas menudas, Perrunas de Comenge(I942) - verdes, de hollejo delgado, muy ásperas Málaga al comer. Pámpano verde, algo velloso. Hoia adulta grande, con cinco lóbulos, senos superiores muy profundos, y los inferiores menos marcados, seno Fernández de Bobadilla Perruno Fino, Perruno peciolar en V, bastante cerrado, con Perruno de Arcos (1956) Tierno, Perruno Común dientes en sus bordes, dientes angulares y redondeados, pelos cortos y muy abundantes. Muchos racimos, algo compactos. Bava forma discoidea, dura, poco dulce, madura tardíamente.

362 Cuadro Al-10. (Continuación).

í :::/.:•: V AUTOR NOMBRE • - SE<[ONIMIA;'>>:S;- ^vi;í-DEseRIPGI0Nri-v5;*í:íí Í:W^ Pámoano verde, con aleunas estrías vinosas, DOCO velloso. Hoja adulta grande, orbicular, con cinco lóbulos, senos superiores muy profundos, seno Perruno de la Sierra, peciolar completamente cerrado, dientes Fernández de Bobadilla Perruno Perruno Duro, Casta de redondeados anchos y agudos, (1956) Mantúo desiguales, pelos cortos abundantes. Muchos racimos, grandes, algo compactos. Bayas gordas y discoideas, duras, carnosas, su dulce es áspero; maduración tardía. Hoja adulta mediana, orbicular, con cinco lóbulos, seno peciolar en U Hidalgo et al. (1976) Perruno abierto, dientes convexos, envés aranoso. Racimo mediano. Baya pequeña, esférica. Sumidad con distribución de la pigmentación antociánica no ribeteada. Pámpano verde con ravas roías. Hoia adulta entre pequeña v media. Casta de Montúo, Jetibi, pentagonal, pentalobulada, dientes Borrego (1990) Perruno Perruno Duro, Perruno rectilíneos (convexos), seno peciolar en de la Sierra, Vidueño V, abierto, en el envés los pelos tumbados tienen una densidad baja, y los erguidos media.. Racimos pequeños, compacidad media. Bayas medias y esféricas. Sumidad con distribución de la pigmentación antociánica ribeteada. Hoia ¡oven amarilla con zonas Casta de Montúo, bronceadas. Pámoano verde, con pocos Firmissima, Getibi, pelos tumbados. Hoja adulta mediana, Granadina, Morata, pentagonal, con cinco lóbulos, dientes García de Lujan et al. Perruno de Arcos, Perruno convexos, seno peciolar en V, cerrado, (1990) Perruno Duro, Perruno en el envés no hay pelos tumbados, sin Común, Perruno Fino, embargo, los erguidos son bastante Perruno de la Sierra, numerosos. Racimo entre mediano y Perruno Tierno grande, con una compacidad entre media y alta. Baya mediana, ligeramente aplastada. Casta de Montúo, Getibi, Perruna, Perruno de Arcos, Perruno de la Hidalgo (1991) Perruno Sierra, Perruno Común, - Perruno Duro, Perruno Fino, Perruno Tierno, Vidueño

363

ANEJO 2: EQUIVALENCIA ENTRE GRADOS BRIX, GRADOS BAUME Y GRADO ALCOHÓLICO PROBABLE

Cuadro A2-1. Equivalencia entre grados Brix, grados Baumé y grado alcohólico probable (Jaulmes).

Grados Brix Grados Baumé Grado alcohólico Grados Brix Grados Baumá: Grado alcohólico! probable '7': probable:?;-;:.:: 9,9 5,5 5,0 16,6 " 93 9,1 10,1 5,7 5,1 16,8 9,4 9,3 10,3 5,8 5,2 17,0 9,6 9,4 10,6 5.9 5,4 17,2 9,7 9,5 10,8 6,1 5,5 17,4 9,8 9,7 11,0 6,2 5,7 • 17,7 9,9 9,9 11,3 6,3 5,8 17,9 10,1 10,0 11,5 6,5 6,0 18,2 10,2 10,1 11,8 6,6 6,1 18,4 10,3 10,3 12,0 6,7 6,3 18,6 10,4 10,4 12,2 6,9 6,4 18,8 10,6 10,6 12,4 7,0 6,5 19,0 10,7 10,7 12,7 7,1 6,7 19,2 10,8 10,9 12,9 7,3 6,8 19,4 10,9 11,0 13,2 7,4 7,0 19,7 11,0 11,2 13,4 7,5 7,1 19,9 11,2 11,3 13,6 7,6 7,2 20,1 11,3 11,4 13,8 7,8 7,4 20,3 11,4 11,6 14,1 7,9 7,6 20,6 11,5 11,7 14,3 8,0 7,7 20,8 11,7 11,9 14,6 8,2 7,8 21,0 11,8 12,0 14,8 8,3 8,0 21,2 11,9 12,1 15,0 8,4 8,1 21,4 12,0 12,3 15,2 8,5 8,3 21,6 12,1 12,5 15,4 8,7 8,4 21,8 12,3 12,6 15,6 8,8 8,6 22,1 12,4 12,8 15,9 8,9 8,7 22,3 12,5 12,9 16,2 9,1 8,8 22,5 12,6 13,0 16,4 9,2 9,0 22,7 12,8 13,2

365 Cuadro A2-1. (Continuación).

, Grados Brix Grados Baumé' •• Gradó alcohólico Grados Brix Grados'Baumé Grado alcohólico probable probable 23,0 12,9 13,3 30,0 16,8 18,3 23,2 13,0 13,5 30,2 16,9 18,4 23,4 13,1 13,6 30,4 17,0 18,6 23,6 13,2 13,8 30,6 17,2 18,7 23,8 13,3 13,9 30,8 17,3 18,8 24,0 13,5 14,0 31,0 17,4 19,0 24,2 13,6 14,2 31,2 17,5 19,1 24,4 13,7 14,3 31,4 17,6 19,3 24,6 13,8 14,5 31,6 17,7 19,4 24,8 13,9 14,6 31,8 17,8 19,6 25,1 14,0 14,8 32,0 17,9 19,7 25,3 14,2 14,9 32,2 18,0 19,9 25,5 14,3 15,1 32,5 18,2 20,0 25,7 14,4 15,2 32,7 18,3 20,1 25,9 14,5 15,4 32,9 18,4' 20,3 26,2 14,6 15,5 33,1 18,5 20,4 26,4 14,7 15,6 33,2 18,6 20,6 26,6 14,9 15,8 33,6 18,8 20,9 26,8 15,0 15,9 33,9 18,9 21,0 27,0 15,1 16,0 34,1 19,0 21,2 27,2 15,2 16,2 34,2 19,1 21,3 27,4 15,3 16,4 34,4 19,2 21,4 27,6 15,5 16,5 34,6 19,4 21,6 27,8 15,6 16,7 34,8 19,5 21,7 28,0 15,7 16,8 35,0 19,6 21,9 28,2 15,8 17,0 35,2 19,7 22,0 28,4 15,9 17,1 35,4 19,8 22,2 28,6 16,0 17,2 35,6 19,9 22,3 28,8 16,1 17,4 35,8 20,0 22,4 29,0 16,3 17,5 36,0 20,1 22,6 29,2 16,4 17,7 36,2 20,2 22,7 29,4 16,5 17,8 36,4 20,3 22,9 29,6 16,6 18,0 36,6 20,4 23,0 29,8 16,7 18,1 36,8 20,5 23,2

366 ANEJO 3: DATOS CLIMÁTICOS.

Los datos tomados de la estación metereológica situada en la Finca "La Orden", y los correspondientes a la estación de Almendralejo del Centro Metereológico Territorial de Extremadura son los que a continuación se muestran. Las abreviaturas empleadas son las siguientes:

P: Pluviometría (mm) Ta: Temperatura máxima absoluta (°C) T: Temperatura media de máximas (°C) tn,: Temperatura media (°C) t: Temperatura media de mínimas (°C) ta: Temperatura mínima absoluta (°C) HR: Humedad relativa (%) dh: días de helada E: Enero F: Febrero M: Marzo A: Abril M: Mayo J: Junio J: Julio A: Agosto S: Septiembre O: Octubre N: Noviembre D: Diciembre

Cuadro A3-1. Datos climáticos de la Finca "La Orden" del año 1996.

E F M A M J - J ' A S- 0 ' N- • • D

p 166,6 16,9 19,1 38,2 54,7 7,6 0,4 1,4 49,6 45,2 44,4 138,7

T 18,3 18,0 27,9 28,9 35,9 37,0 37,1 34,4 32,9 28,2 24,1 18,9

T 14,1 13,6 19,0 22,2 24,1 31,4 32,7 30,3 25,9 23,1 17,5 13,9

tm 11,6 8,9 13,0 15,7 18,0 23,3 24,5 22,8 19,7 16,2 12,2 10,2

t 8,9 4,2 6,9 9,3 12,0 15,2 16,3 15,3 13,5 9,3 6,9 6,6

ta 3,5 -2,6 -0,7 5,2 6,343 11,6 10,9 11,3 10,1 3,9 1,3 0,1 HR 91,8 79,7 73,2 69,9 70,4 57,6 55,4 60,6 68,3 72,3 76,2 83,8

dh 0 4 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Fecha Temperatura mínima Ultima helada invierno-primavera 17-3 -0,7 Primera helada de otoño-invierno

367 (Cuadr o A3-2. Datos climáticos de Almendralejo del año 1996

E F M A - M J J. • A. S 0 N '. D

p 185,7 19,0 30,5 49,5 61,5 2,5 0,0 0,0 47,5 19,6 23,5 141,1

Ta 18,0 17,0 27,0 - 36,0 40,0 39,0 35,0 34,0 29,0 25,0 19,0

T 13,0 12,5 18,0 21,8 23,4 32,4 34,1 31,3 25,4 23,4 17,6 13,3

tm 9,7 7,8 12,2 15,6 18,0 24,8 26,6 24,2 20,2 16,5 11,8 9,1

t 6,4 3,1 6,5 9,5 12,7 17,2 19,2 17,1 14,9 9,6 6,1 4,9

ta 3,0 -3,0 0,0 6,0 5,0 11,0 13,0 13,0 12,0 5,0 1,0 -1,0 HR 88,2 78,3 72,0 67,5 67,0 53,0 52,3 59,8 66,3 69,8 77,8 88,3

dh 0 4 1 0 0 0 0 0 0 0 0 4

Fecha Temperatura mínima Ultima helada de invierno-primavera 16-3 0,0 Primera helada de otoño-invierno 6-12 -1,0

Cuadro A3-3. Datos climáticos de la Finca "La Orden" del año 1997.

E F M A M J J A • a. O N, • D-.-;

p 124,0 4,2 0,0 32,8 83,6 32,6 51,5 6,6 70,6 39,2 346,6 98,1

Ta 18,3 24,2 26,8 32,3 32,4 31,2 37,5 36,8 35,2 30,9 22,4 18,2

T 13,4 17,9 24,2 24,2 23,4 25,8 30,8 31,4 29,5 24,4 17,2 14,3

tm 9,5 11,9 15,4 17,4 17,7 19,7 23,6 23,9 22,5 18,6 13,7 10,7

t 5,6 5,9 6,5 10,6 12,0 13,6 16,5 16,4 15,5 12,8 10,2 7,1

ta -0,7 3,1 3,2 5,4 5,0 10,0 9,9 10,8 11,9 1'^ 4,3 -0,3 HR 85,0 74,6 54,5 62,8 65,6 63,8 62,3 61,3 65,8 71,8 82,0 85,5

dli 1 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 1

Fecha Temperatura mínima Ultima helada de invierno-primavera 6-1 -0,7 Primera helada de otoño-invierno 6-12 -0,3

368 Cuadro A3-4. Datos climáti eos de Almen dralejo del año 1997

E F M A M J • J A S 0 •N D

p 114,5 0,5 0,0 48,5 51,5 34,5 .15,5 30,0 49,5 54,0 222,5 67,5

T 19,0 25,0 28,0 33,0 31,0 32,0 39,0 39,0 36,0 31,0 23,0 17,0

T 8,4 11,6 16,0 17,4 17,0 19,2 24,0 24,4 22,8 18,2 12,4 9,3

t™ 13,0 18,1 25,1 24,7 23,9 26,2 31,8 32,7 30,4 24,6 16,8 13,6

t 3,7 5,0 6,9 10,0 10,1 12,2 16,3 16,1 15,3 11,8 7,9 5,0

ta -3,0 1,0 4,0 7,0 3,0 8,0 8,0 11,0 9,0 3,0 3,0 -2,0

HR 87,5 74,8 53,8 64,8 63,8 62,8 55,8 58,0 61,0 72,5 88,5 90,8

dh 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 4

Fecha Temperatura mínima Ultima helada de invierno-primavera 7-1 -1,0 Primera helada de otoño-invierno 5-12 -0,2

Cuadro A3-5. Datos climáticos de la Finca "La Orden" del año 1998.

E F M A M J - K .A -S "o . N D; p 51,3 53,5 15,5 35,4 82,4 2,0 0,0 0,0 94,2 9,8 11,7 51,3

T. 16,7 21,1 26,0 29,0 29,2 36,7 39,7 38,6 34,4 28,5 24,2 19,7

T 13,2 17,1 21,6 18,2 22,7 29,2 33,6 33,8 28,1 23,7 19,1 14,6

tm 9,6 12,1 13,8 13,0 17,3 21,9 25,2 25,6 21,9 15,9 12,3 6,9

t 6,0 7,1 6,0 7,8 11,9 14,5 16,9 17,4 15,7 8,2 5,4 -0,7

ta 2,2 0,8 0,6 1,9 4,6 10,9 11,9 14,0 11,7 3,5 -3,5 -^'"^ HR 85,2 78,8 62,7 69,9 68,7 59,6 47,8 43,0 51,2 53,1 50,6 49,1

dh 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 5 20

Fecha Temperatura mínima Ultima helada de invierno-primavera Primera helada de otoño-inviemo 21-11 -0,3

369 Cuadro A3-6. Datos climáti eos de Almen dralejo del año 1998

• ••'-- F ,. M J • • J ; r. A,-,-- ^=S 0. . • N D

p 48,5 49,0 11,0 29,5 69,0 2,0 0,0 0,0 111,5 5,0 32,0 30,0

Ta 17,0 22,0 27,0 30,0 29,0 38,0 40,0 40,0 35,0 28,0 23,0 19,0

T 13,2 17,4 22,4 18,3 23,3 30,8 34,8 36,1 27,6 23,1 18,1 13,9

tm 8,4 11,2 14,2 12,0 16,6 22,4 26,2 27,2 21,0 15,4 11,6 6,6

t 3,7 5,0 6,1 5,6 9,8 13,9 17,5 18,4 14,4 7,8 5,1 -0,6

ta -1,0 -1,0 0,0 0,0 3,0 10,0 11,0 13,0 10,0 3,0 -3,0 -5,0

HR 89,0 81,0 60,0 70,0 72,0 56,0 54,0 52,0 68,0 67,0 77,0 77,0

dh 4 3 2 2 0 0 0 0 0 0 5 21

Fecha Temperatura mínima Ultima helada de invierno-primavera 13-4 0,0 Primera helada de otoño-invierno 22-11 . -3,0

Cuadro A3-7. Datos chmáticos de la Finca "La Orden" del año 1999.

E F .M A M J -J ~ A.. S . 0 . .N. D

p 38,9 8,9 41,3 84,5 59,0 ------

Ta 18,4 22,0 24,3 29,5 35,0 ------

T 14,1 16,3 18,8 22,4 25,0 ------

tm 7,9 8,5 12,4 15,6 18,6 ------

t 1,7 0,8 6,0 8,8 12,3 ------

ta -1,4 -4,4 -0,6 4,4 8,0 ------HR 56,1 53,4 67,8 52,3 55,6 ------

dh 6 15 1 0 0 ------

Fecha Temperatura mínima Ultima helada de invierno-primavera 7-3 -0,6 Primera helada de otoño-invierno

370 Cuadro A3-8. Datos climáticos de Almendralejo del año 1999

. E F M A ' M J- : J • ."A . S 0 D,' --•' p 9,0 2,5 35,5 42,5 48,5 - - - - -

% 19,0 21,0 25,0 31,0 ------T 13,3 15,3 18,6 22,6 ------

tm 6,8 7,8 11,7 14,8 ------

t 0,3 0,4 4,8 7,0 ------

ta -4,0 -5,0 -1,0 2,0 ------HR 81,0 69,0 71,0 62,0 65,0 ------

dh 19 15 2 0 ------

Fecha Temperatura mínima Ultima helada de invierno-primavera 7-3 -1,0 Primera helada de otoño-invierno

371

AGRADECIMIENTOS

A D. Félix Cabello Sáenz de Santa María por el interés que demostró desde el primer momento en que se planteó este trabajo, por su continua confianza, por el tiempo dedicado, por su paciencia, por su constante apoyo y por haberme iniciado en el mundo de la investigación.

A D. Jesús M. Ortiz Marcide por toda la ayuda prestada en todo momento y por facilitar mi labor en el Departamento de Biología Vegetal.

A Dña M. Esperanza Valdés por el tiempo dedicado y su continuo apoyo, sin el cual una parte de este trabajo no podría haberse realizado.

A Rosa Espino por su amistad, y su continua y desinterasada ayuda.

A Pilar Ponce, Jorge Luis Zuart, Elenita Torres, Almudena Lázaro e Ismael que me ayudaron en el trabajo de laboratorio y con los que los días ñxeron mucho más entretenidos.

A Teresa Hernández y Pepa Bemalte por su ayuda, y por la paciencia que mostraron conmigo durante el tiempo que estuve en el Laboratorio de Vegetales del Instituto de Tecnología Agro alimentaria.

A Julián Tapia por su colaboración en el material fotográfico que aparece en este trabajo.

A D. Ángel Rodriguez del Rincón, D. Femando Toribio y D. Emilio Osorio por haberme permitido y facilitado las distintas estancias que he realizado durante el período de realización de esta tesis.

A D. Ángel Sánchez por su compresión, y ofi-ecerme la posibilidad de finalizar este trabajo.

A Rocío Ruíz por no haberme permitido perderme en el absorbente mundo de la investigación.

A Luis M. Robredo por la ayuda prestada desde la finca "La Orden" desde el momento en que yo dejé de encontrarme allí. A Sara Espina por su colaboración y siempre amable disposición en todos los temas relacionados con la búsqueda bibliográfica.

A Gregorio Muñoz por sus "clases de estadística".

A Inmaculada Rodríguez por su ayuda en la impresión de las figuras que aparecen en este trabajo.

A José Francisco Gallego por compartir su experiencia como ampelógrafo e iniciarme en el complicado mundo de la descripción morfológica con su característico sentido del humor.

A D. Matías Rodríguez por facilitarme información y contactos con agricultores de la zona de Cañamero.

A todas aquellas personas que me han ayudado y colaborado en la reahzación de esta tesis y que desarrollan su trabajo en la finca "La Orden", "El Encín", el Departamento de Biología Vegetal y el Instituto de Tecnología Agroalimentaria.

Y a todos aquellos que no enumero no porque su ayuda haya sido menos valiosa, sino porque es imposible citar a cuantas personas se conocen durante casi cinco años de trabajo.