Electronic Supplementary Material

Hydrobiologia

Do environmental filters predict the trait composition of fish communities in reservoir cascades?

Natália Carneiro Lacerda dos Santos1,2; Herick Soares de Santana1; Jean Carlo Gonçalves Ortega1; Rosa Maria Dias1,2; Lis Fernandes Stegmann3; Isabela Maria da Silva Araújo4; William Severi4; Luis Mauricio Bini5; Luiz Carlos Gomes1,6; AngeloAntonio Agostinho1,6

1-Programa de Pós-graduação em Ecologia de Ambientes Aquáticos Continentais – Universidade Estadual de Maringá, Av. Colombo, 5790, CEP 87020-900 Maringá, PR, Brasil. [email protected] Programa de Pós-graduação em Ecologia de Ambientes Aquáticos Continentais – Universidade Estadual de Maringá, Maringá-PR 2- PostdoctoralFellowship, CNPq, at Universidade Estadual de Maringá 3-Instituto Nacional de Pesquisas da Amazônia, Manaus-AM 4-Programa de Pós-Graduação em Recursos pesqueiros e Aquicultura - Universidade Federal Rural de Pernambuco, Departamento de Pesca e Aquicultura, Recife-PE 5-Universidade Federal de Goiás, Instituto de Ciências Biológicas, Departamento de Ecologia, Goiânia, GO 6-Núcleo de Pesquisas em Limnologia, Ictiologia e Aquicultura – Programa de Pós- graduação em Ecologia de Ambientes Aquáticos Continentais – Universidade Estadual de Maringá, Maringá-PR. Table S1: Location and characteristics of the studied reservoirs.

RRPALRAO SS14213A IS28172A MS39254R XS46512R CP14444A SP21115R CP32352R CP43331R CP55114A TP68612R RP72913R FI11613A SI28742R SI32753A SI46314R CI51731R Table S2: Traits, categories, and abbreviations used in the analyses of the fish species.

Trait Category Abbreviation Detritivore Det Invertivore Inv Insectivore Ins Diet Herbivore Herb Omnivore Omn Planktivore Plan Piscivore Pisc Migrator Mig Migration Non Migrator Nmig External fecundation ExFec Fecundation Internal fecundation InFec With parental care WPC Parental care Without parental care NPC Pelagic Pel Position in the water Benthopelagic Bent column Bentonic Bem Large BSL Body size Medium BSM Small BSS Table S3: Traits used in the analyses of the fish species of the São Francisco River Basin, Paranapanema River Basin, and Iguaçu River Basin: Det = detritivore; Inv = invertivore; Ins = insectivore; Herb = herbivore; Omn = omnivore; Plank = planktivore; Pisc = piscivore; Mig = migrator; Nmig = non-migrator; ExFec = external fecundation; InFec = internal fecundation; WPC = with parental care; NPC = no parental care; Pel = pelagic; Bent = benthopelagic; Ben = benthonic; BSL = large body size; BSM = medium body size; BSS = small body size; Ref = references.

C Plan De Mi NMi FecE Cp p Pisc Omn k t g g SCP xt Bem B Pel P CpM G Ref Acestrorhynchus britskii(Menezes, 1969) x x x x x x 12;23;28;53 Acestrorhynchus lacustris(Lütken, 1875) x x x x x x 9;23;28;53 Ageneiosus valenciennesi(Bleeker, 1864) x x x x x x 28;37 Anchoviella vaillanti(Steindachner, 1908) x x x x x 23;28;52;53 Apareiodon affinis(Steindachner, 1879) x x x x x x 13;28;37 Apareiodon vittatus(Garavello, 1977) x x x x x x 8;28;57 Apareiodon piracicabae(Eigenmann, 1907) x x x x x x 28;37;41;57 Apteronotus brasiliensis(Reinhardt, 1852) x x x x x 28;37;57 Astronotus ocellatus(Agassiz, 1831) x x x x x 28;57 Table S3: To be continued Traits B Plan ExtFe Inv Pisc Ins Herb Omn Det Mig NMig WPC NPC I Bem Bent Pel S BSM BSL Ref k c S Astyanax lacustris (Garutti & Britski, 2000) x x x x x x 2;5;14;28;34;35 Astyanax bifasciatus (Garavello & Sampaio, 2010) x x x x x x 8;28;36;57 Astyanax dissimilis (Garavello & Sampaio, 2010) x x x x x x 8;28;36;57 Astyanax eigenmanniorum(Cope, 1894) x x x x x x 8;28;57 Astyanax fasciatus(Cuvier, 1819) x x x x x x 5;8;28;37;58 Astyanax gymnodontus (Eigenmann, 1911) x x x x x x 8;28;36;57 Astyanax minor (Garavello & Sampaio, 2010) x x x x x x 8;28;36;57 Bergiaria westermanni(Lütken, 1874) x x x x x x 22;23;24 Brycon orthotaeniaGünther, 1864 x x x x x x 22;28;52;55 Bryconops cf.affinis(Günther, 1864) x x x x x x 28;35;44;49 Bryconamericus ikaa Casciotta, Almirón & Azpelicueta, 2004 x x x x x x 8;19;28;57 Bryconamericus sp.* x x x x x x 13;22;57;58 Cichla monoculusAgassiz, 1831 x x x x x x 27;28;35;38;39 Cichla spp. * x x x x x x 28;34;35;39;62 Cichlasoma aff.facetum(Jenyns, 1842) x x x x x x 28 Cichlasoma sanctifranciscense Kullander, 1983 x x x x x x 22;23;28 Corydoras aff. paleatus x x x x x x 28;57;58 (Jenyns, 1842) Colossoma macropomum (Cuvier, 1816) x x x x x x 22;25;28;31;40;61

Table S3: To be continued Traits In Pis In Her Om Mi ExtFe BS Plank Det WNPC InFec Bem Bent Pel BSS BSM Ref v c s b n g c L Coptodon rendalli(Boulenger, 1897) x x x x x 28;60 Conorhynchos conirostris (Valenciennes, 1840) x x x x x x 22;28;55 Crenicichla britskiiKullander, 1982 x x x x x 20;28;37;57 Crenicichla haroldoiLuengo & Britski, 1974 x x x x x 20;28;37;57 Crenicichla iguassuensisHaseman, 1911 x x x x x 8;28;36;57 Crenicichla lepidotaHeckel, 1840 x x x x x 22;23;28 Crenicichla niederleinii (Holmberg, 1891) x x x x x 20;28;36;57 Crenicichla sp2 * x x x x x 8;28;36;57 Ctenopharyngodon idella (Valenciennes, 1844) x x x x x 28;56;57 Curimatella lepidura (Eigenmann & Eigenmann, 1889) x x x x x 22;28;32;55 Cyphocharax cf. santacatarinae (Fernández-Yépez, 1948) x x x x x 8;28 Cyprinus carpioLinnaeus, 1758 x x x x x 8;28;36 Duopalatinus emarginatus (Valenciennes, 1840) x x x x x 22;23;28 Eigenmannia virescens(Valenciennes, 1836) x x x x x 8;20;28;34 Franciscodoras marmoratus(Lütken, 1874) x x x x x 22;28;55 Galeocharax knerii(Steindachner, 1879) x x x x x 20;27;28 Geophagus brasiliensis (Quoy & Gaimard, 1824) x x x x x 8;28;37;57 Glanidium ribeiroiHaseman, 1911 x x x x x 8;28;57 Gymnotus carapoLinnaeus, 1758 x x x x x 16;17;20;48

Table S3: To be continued Traits N P Plan De Mi NMi BS Inv Ins Omn P InFec ExtFec Bent e BSS BSM Ref k t g g L C l Hemig ramm us margi natusE llis, 1911 x x x x x 13;20;28;57 Hopli as aff. malab aricus( Bloch, 1794) x x x x 6;8;20;22;28 Hopli as interm edius( Günthe r, 1864) x x x x 20;28 Hoplo sternu m littora le(Han cock, 1828) x x x x 23;28;43;52 Hypop hthal mus edenta tus Spix & Agassi z, 1829 x x x x x x 20;28;37;57 Hypos tomus ancist roides( Ihering, 1911) x x x x 20;28;38;57 Hypos tomus cf.aur ogutta tusKne r, 1854 x x x x 20;28;57 Hypos tomus comm ersoni Valenci ennes, 1836 x x x x 8;28;36;57 Hypos tomus derbyi( Hasem an, 1911) x x x x 8;28;36;57 Hypos tomus herma ni(Iheri ng, 1905) x x x x 20;28;57 Hypos tomus myersi (Goslin e, 1947) x x x x 8;28;57 Hypos tomus nigro macul atus(S chubart , 1964) x x x x 20;28;57 Hypos tomus regani (Iherin g, 1905) x x x x 20;28;41;57 Hypos tomus sp1 * x x x x 8; 20;28;45 Hypos tomus spp * x x x x 8; 20;28;45 Hypos tomus strigat iceps( Regan, 1908) x x x x 8,28,34;57 Iherin gichth ys labros us(Lüt ken, 1874) x x x x x 8;28;38;57 Lepor ellus vittatu s(Valen ciennes , 1850) x x x x x x 22;23;28 Lepori nus ambly rhync hus Garave llo & Britski, 1987 x x x x x x 4;28;47;57 Table S3: To be continued

W Her De ExtF P BS Ins Plank Mig P NPC Bem Bent BSS BSM Ref b t ec el L C Megaleporinus elongatusValenciennes, 1850 x x x x x 15;20;28;57 Leporinus friderici(Bloch, 1794) x x x x x 4;20;28;34;57 Leporinus lacustrisAmaral Campos, 1945 x x x x 20;28;57 Megaleporinus macrocephalus Garavello & Britski, 1988 x x x x x x 20;28 Leporinus melanopleuraGünther, 1864 x x x x x x 28 Megaleporinus obtusidens(Valenciennes, 1837) x x x x x 15;20;28;55;57 Leporinus octofasciatusSteindachner, 1915 x x x x 23;28;55;57 Leporinus piau Fowler, 1941 x x x x x 3;23;28;52;57 Megaleporinus reinhardti Lütken, 1875 x x x x x 3;23;28;46;55 Leporinus sp1 * x x x x 8;10;22;28 Leporinus sp2 * x x x x 8;20;22;28 Leporinus taeniatusLütken, 1875 x x x x x 23;28;52 Lophiosilurus alexandriSteindachner, 1876 x x x x x 23;28;55 Loricariichthys platymetopon Isbrücker & Nijssen, 1979 x x x x x 20;28;37 Megalancistrus barrae(Steindachner, 1910) x x x x x 24;28 Megalancistrus parananus(Peters, 1881) x x x x x 20;28 Metynnis maculatus(Kner, 1858) x x x x x 20;28 Metynnis spp. * x x x x x 23;24;28 Moenkhausia costae(Steindachner, 1907) x x x x 23;24;28 Table S3: To be continued Traits De NMi ExtF P BS Inv Pisc Omn Plank Mig NPC Bem Bent BSS BSL Ref t g ec el M Moenk ausia interm ediaEi genma nn, 1908 x x x x x x 14;20;59 Myleu s mican s(Lütke n, 1875) x x x x x 28;33;52 Odont esthes bonari ensis (Valen ciennes , 1835) x x x x x x 28;35;36 Oligos x x x x x x 1;20;36;28;57 arcus longir ostris Menez es & Géry, 1983 Oreoc hromi s cf. nilotic us(Lin naeus, 1758) x x x x x x 8;22;23;28 Ortho spinus franci scensi s (Eigen mann, 1914) x x x x x x 22;28;52 Pachy urus franci sci(Cu vier, 1830) x x x x x x 22;26;28 Pachy urus squam ipenni sAgassi z, 1831 x x x x x x 28;32 Pimel odella sp. * x x x x x x 20;28;37;57 Phena X x x x x x 22;28 cogast er franci scoens is Eigenm ann, 1911 Pimel odus absco nditus Azpelic ueta, 1995 x x x x x x 20;62 Pimel odus macul atusLa cepède, 1803 x x x x x x 8;20;32;37;57 Pimel odus ortanu sKner, 1858 x x x x x x 20;37;57 Pimel odus britski i Garave llo & Shibatt a, 2007 x x x x x x 8;28 Pimel x x x x x x 8;34;36;57 odus ortma nniHas eman, 1911 Pimel odus spp. * x x x x x x 8;18;35;36;57 Pinina mpus pirina mpu (Spix & Agassi z, 1829) x x x x x x 28;38;57 Plagio scion squam osissi mus(H eckel, 1840) x x x x x x 22;28;54

Table S3: To be continued Trait s In Her Plan ExtFe BS Inv Pisc Ins Omn Mig NMig WPC F Bem Bent Pel BSS BSM Ref b k c L ec Prochi 22;28;52;55 lodus argent eusSpi x & Agassi z, 1829 x x x x Prochi 22;23;24 lodus brevis Steinda chner, 1875 x x x x Prochi 22;28;52;55 lodus costat usVale ncienne s, 1850 x x x x Prolor 20;28;37;57 icaria prolix a (Isbrüc ker & Nijssen , 1978) x x x x x Prolor 28;37;57 icaria sp. * x x x x x Pseud x x x x x 22;28;30;55 oplaty stoma corrus cans(S pix & Agassi z, 1829) Pteryg 22;28;52 oplich thys etenta culatu s(Spix & Agassi z, 1829) x x x x Pterod 28;29;37;57 oras granul osus(V alencie nnes, 1821) x x x x x Pygoc 22;28;32;55 entrus piraya (Cuvier , 1819) x x x x x Rham 8;28;36;57 dia brann eri Hasem an, 1911 x x x x x Rham 20;28;38;57 dia quelen (Quoy & Gaimar d, 1824) x x x x x Rham 8;28;36 dia voulez i Hasem an, 1911 x x x x x Rham 28;37;57 phicht hys hahni( Meinke n, 1937) x x x x x Rhaph 28;37;42;57 iodon vulpin usSpix & Agassi z, 1829 x x x x x Rhinel 28;37;57 epis aspera Spix & Agassi z, 1829 x x x x x Rhino 28;37;57 doras dorbig nyi(Kn er, 1855) x x x x x Rinelo 7;28;34 ricari a sp. * x x x x x Roebo 13;28;57 ides descal vaden sisFow ler, 1932 x x x x x Roebo 22;28;52 ides xenod on(Rei nhardt, 1851) x x x x x

Table S3: To be continued

ExtFe Inv Pisc Ins Herb Omn Plank Det Mig NMig WPC NPC InFec Bem Bent Pel BSS BSM BSL Ref c Salmi x x x x x x 21;28; nus 37;42 brasil iensis (Cuvie r, 1816) Salmi nus franci scanu 22;23; s x x x x x x 2828 Lima & Britski , 2007 Schiz odon knerii x x x x x x 22;23; (Steind 28 achner, 1875) Satan operc a pappa x x x x x x 13;28 terra (Hecke l, 1840) Schiz odon borell 28;37; ii x x x x x x 57 (Boule nger, 1900) Schiz odon 28;37; nasut x x x x x x 57 usKne r, 1858 Serra salmu s 3;22;5 brand x x x x x x 4;28 tiiLütk en, 1875 Serra salmu s macul x x x x x x 28;37 atusK ner, 1858 Serra salmu s margi x x x x x x 28;37; natus 57 Valenc iennes, 1837 Steind x x x x x x 28;38; achne 57 rina brevip inna (Eigen mann & Eigen mann, 1889) Steind achne rina elega x x x x x x 28 ns (Steind achner, 1875) Steind achne x x x x x x 28;37 rina sp. Stern opygu s macru rus x x x x x x 28;37; (Bloch 57 & Schnei der, 1801) Synbr anchu s marm x x x x x x 11;28 oratus Bloch, 1795 Tatia x x x x x x 28;57 jarac atia Pavane lli & Bifi, 2009 Tatia neivai (Iherin x x x x x x 28;57 g, 1930) Tetra gonop terus chalc x x x x x x 32;22; eusSpi 28 x & Agassi z, 1829

Table S3: To be continued Traits ExtFe Inv Pisc Ins Herb Omn Plank Det WPC NPC InFec Bem Bent Pel BSS BSM BSL Ref c Trachelyopterus galeatus(Linnaeus, 1766) x x x x x 20;22;28 Triportheus angulatus x x x x x 28;60 (Spix & Agassiz, 1829) Triportheus guenteri x x x x x 22;53;28 (Garman, 1890)

Table S4: Summary of the most important environmental variables (A) and traits (B) that were positively and negatively associated with the partial RLQ axes for the analyzed set of hydrographic basins. We interpreted variables with correlation coefficients above 0.5 (in bold). (C) corresponds to the explained variance that refers to the co-inertia of the environmental data (R) and functional traits (Q) represented in each axis of the partial RLQ.

Axis 1 Axis 2 A) Environmental Variables Position 0.73 0.25 Age -0.16 -0.55 Area -0.61 0.06 Length -0.69 0.19 Residence time -0.67 -0.24 Turbidity -0.53 0.43 Operation 0.78 -0.08 Temperature 0.02 0.47 DSO 0.06 -0.36 Chlorophyll –a 0.06 0.46

B) Traits Invertivore -0.52 -0.07 Piscivore 0.53 -0.03 Insetivore 0.28 -0.37 Herbivore -0.19 0.00 Omnivore -0.21 0.35 Planktivore 0.02 0.07 Detritivore -0.09 0.16 Migrator -0.60 0.19 Non migrator 0.60 -0.19 With Parental Care -0.19 0.52 Without Parental Care 0.19 -0.52 Internal Fecundation 0.13 0.71 External Fecundation -0.13 -0.71 Benthonic 0.07 0.82 Benthopelagic -0.02 -0.73 Pelagic -0.07 0.06 Small body size 0.28 -0.52 Medium body size -0.48 0.25 Large body size 0.22 0.39 C) Explained variance (%) 79.88 12.67 Accumulated variance (%) 79.88 92.46

References

1 Abelha, M. C. F., E. A. L. Kashiwaqui & E. Goulart, 2012. Estrutura populacional, condição e dieta de Oligosarcus paranensis (Menezes and Gery, 1983) (Osteichthyes: Characidae) em dois reservatórios do sul do Brasil. Biota Neotropica 12: 187-197.

2 Abelha, M. C. F., E. Goulart & D. Peretti, 2005. Estrutura trófica e variação Sazonal do espectro alimentar da Assembleia de peixes do reservatório de Capivari, Paraná, Brasil. In Rodrigues, L., S. M. Thomaz, A. A. Agostinho & L.C. Gomes (eds), Biocenoses em Reservatórios: Padrões espaciais e temporais. RiMa Editora, São Carlos: 197-209.

3 Alvim, M. C. C. & A. C. Peret, 2004. Food resources sustaining the fish fauna in a section of the upper São Francisco river in Três Marias, MG, Brazil. Brazilian Journal Biology 64: 195-202.

4 Andrian, I. F., C. R. C. Dória, G. Torrente & C. M. L. Ferretti, 1994. Espectro alimentar e similaridade na composição da dieta de quatro espécies de Leporinus (Characiformes, Anostomidae) do rio Paraná (22º10’-22º50’S-53º10’-53º40’W), Brasil. Revista Unimar 16: 97-106.

5 Barbieri, G. & M. C. Barbieri, 1988. Curva de maturação, tamanho de primeira maturação gonadal e fecundidade de Astyanax bimaculatus e A. fasciatus, da represa do Lobo, Estado de São Paulo (Osteichthyes, Characidae). Revista Ceres 35: 64– 77.

6 Barbieri, G., 1989. Dinâmica da reprodução e crescimento de Hoplias malabaricus (Bloch, 1794) (Osteichthyes, Erythrinidae) da Represa do Monjolinho, São Carlos/SP. Revista Brasileira de zoologia 6:223–233.

7 Barbieri, G., 1994. Dinâmica de reprodução do cascudo, Rineloricaria latirostris Boulenger (Siluriformes, Loricariidae) do rio Passa Cinco, Ipeúna, São Paulo. Revista Brasileira de Zoologia 11: 605-615. 8 Baumgartner, G., D. Baumgartner, C.S. Pavanelli, A. G. Bifi, T. Debona & V. A. Frana, 2012. Peixes do baixo rio Iguaçu. 1. EDUEM, Maringá.

9 Bazzoli, N. & H. P. Godinho, 1991. Reproductive biology of the Acestrorhynchus lacustris Reinhardt, 1874 pisces characidae from Três Marias reservoir, Brazil. Zoologischer Anzeiger 226: 285-297.

10 Bulla, K., L. C. Gomes, L. E. Miranda & A. A. Agostinho, 2011. The ichthyofauna of drifting macrophyte mats in the Ivinhema River, upper Paraná River basin, Brazil. Neotropical Ichthyology 9: 403-409.

11 Braga, A. L. C., P. S. Pompeu, R. F. Carvalho & R. L. Ferreira, 2008. Dieta e crescimento de Synbranchus marmoratus (Bloch, 1975) (Pisces, Synbranchiformes) durante período de pré-estivação em uma lagoa marginal da bacia do São Francisco, Minas Gerais. Revista Brasileira de Zoociências 10: 133-138.

12 Cantanhêde, G., N. S. Hahn, R. Fugi & É. A. Gubiani, 2008. Alterations on piscivorous diet following change in abundance of prey after impoundment in a Neotropical river. Neotropical Ichthyology 6: 631-636.

13 Cassatti, L., H. F. Mendes & A. M. Ferreira, 2003. Aquatic macrophytes as feeding site for small fishes in the Rosana Reservoir, Paranapanema river, Southeastern Brazil. Brazilian Journal of Biology 63: 213-222.

14 Crippa, V.E.L., N.S.Hahn& R.Fugi, 2009. Food resource used by small-sized fish in macrophyte patches in ponds of the upper Paraná river floodplain. Acta Scientiarum. Biological Sciences31: 119-125.

15Carolsfeld, J., B.Harvey, C.Ross & A.Baer, 2003. Migratory fishes of South America. World Fisheries Trust/The World Bank/International Development Research Centre, Ottawa.

16 Cognato, D. P. & C. P. Fialho, 2006. Reproductive biology of a population of Gymnotusaff. carapo (Teleostei: Gymnotidae) from southern Brazil. Neotropical Ichthyology4: 339-348.

17 Crampton, W. G. R. & C. D. Hopkins, 2005. Nesting and parental care in the weakly electric fish Gymnotus (Gymnotiformes: Gymnotidae) with descriptions of larval and adult electric organ discharges of two species. Copeia 1: 48-60. 18 Deus, C. P. & M. Petrere Júnior, 2003. Seasonal diet shifts of seven fish species in an Atlantic rainforest stream in southeastern Brazil. Brazilian Journal of Biology 63:579-588.

19 Delariva, R. L., 2002. Ecologia trófica da ictiofauna do rio Iguaçu – PR sobre efeitos do represamento de Salto Caxias. Maringá. PhD Thesis. Universidade Estadual de Maringá, Paraná, Brazil.

20 Duke Energy International geração Paranapanema. 2008. Peixes do rio Paranapanema. Editora Horizonte. 199p.

21 Esteves, K. E. & A. V. P. Lobo, 2001. Feeding pattern of Salminus maxillosus (Pisces, Characidae) at Cachoeira das Emas, Mogi-Guaçu River (São Paulo State, Southeast Brazil).Revista Brasileira de Biologia 61: 267-276.

22 FADURPE, 2009. Programa de inventário dos ecossistemas aquáticos do reservatório de Sobradinho. Relatório tri-anual das atividades. Recife. Pernambuco.

23 FADURPE, 2010. Programa de inventário dos ecossistemas aquáticos do reservatório de Itaparica. Relatório tri-anual das atividades. Recife. Pernambuco.

24 FADURPE, 2010. Programa de inventário dos ecossistemas aquáticos do reservatório do Complexo de Paulo Afonso. Relatório tri-anual das atividades. Recife. Pernambuco.

25 Ferraz de Lima, J. A., G. Barbieri & J. R. Verani, 1984. Período de reprodução, tamanho e idade de primeira maturação gonadal do pacu, Colossoma mitrei, em ambiente natural (rio Cuiabá-Pantanal de Mato Grosso). In Anais III Simpósio Brasileiro de Aqüicultura, São Carlos.

26 Fugi, R., N. S. Hahn, G. C. Novakowski & G. C. Balassa, 2007. Ecologia alimentar da corvina, Pachyurus bonariensis(Perciformes, Sciaenidae) em duas baías do Pantanal, Mato Grosso, Brasil. Iheringia, Série Zoologica 97: 343-347.

27 Fugi, R., K. Luz-Agostinho & A. A. Agostinho, 2008. Trophic interaction between an introduced (peacock bass) and a native (dogfish) piscivorous fish in a Neotropical impounded river. Hydrobiologia 607:143–150.

28 Froese, R. & D. Pauly, 2016. FishBase. http://www.fishbase.org. 29 Gaspar da Luz, K. D., R. Fugi, F. Abujanra & A. A. Agostinho, 2002. Alterations in the Pterodoras granulosus (Valenciennes, 1833) (Osteichthyes, Doradidae) diet due to the abundance variation of a bivalve invader species in the Itaipu reservoir, Brazil. Acta Scientiarum. Biological Sciences24: 427-432.

30 Godinho, A. L., B. Kynard & H. P. Godinho, 2007. Migration and spawning of female surubim (Pseudoplatystoma corruscans, Pimelodidae) in the Sao Francisco river, Brazil. Environmental Biology Fishes80:421–433.

31 Golding, M. & M.L. Carvalho, 1982. Life history and management of the Tambaqui (Colossoma macropomum, Characidae): An important amazonian food fish. Revista Brasileira de Zoologia 1: 1007-133.

32 Gomes, J. H. C. & J. R. Verani, 2003. Alimentação de espécies de peixes do reservatório de Três Marias. In Godinho, H. P. & A. L. Godinho (eds), Águas, peixes e pescadores do São Francisco das Minas Gerais. PUC Minas, Belo Horizonte: 195-227.

33 Godinho, A. L. & H. P. Godinho, 2003. Breve visão do São Francisco. In Godinho, H. P. & A. L. Godinho (eds), Águas, peixes e pescadores do São Francisco das Minas Gerais. PUC Minas, Belo Horizonte: 15-23.

34 Graça, W. J. & C. S. Pavanelli, 2007. Peixes da planície de inundação do alto rio Paraná e áreas adjacentes. EDUEM, Maringá.

35 Hahn, N. S., I. F. Andrian, R. Fugi & V. L. L. Almeida, 1997a. Ecologia trófica. In Vazzoler, A. E. A. M.,A. A. Agostinho& N. S. Hahn (eds),A planície de inundação do alto rio Paraná: aspectos físicos, biológicos e sócio-econômicos. Maringá, EDUEM: 209-228.

36 Hahn, N. S., R. Fugi, V. L. L Almeida, M. L. Russo & V. E. Loureiro, 1997b. Dieta e atividade alimentar de peixes do reservatório de Segredo. In Agostinho, A. A. & L. C. Gomes (eds), Reservatório de Segredo - Bases Ecológicas para o Manejo. Maringá, EDUEM: 141-162.

37 Hahn, N. S., A. A. Agostinho, L. C. Gomes & L. M. Bini, 1998. Estrutura trófica da ictiofauna do reservatório de Itaipu (Paraná, Brasil) nos primeiros anos de sua formação. Interciência 23: 299-305. 38 Hahn, N. S., R. Fugi & I. F. Andrian, 2004. Trophic ecology of the fish assemblages.

In Thomaz, S.M.,A. A. Agostinho & N. S. Hahn (eds), The Upper Paraná River

and its floodplain: physical aspects, ecology and conservation. Leiden, The

Netherlands, Backhuys Publishers: 247-269.

39 Kolm, N., N. B. Goodwin, S. Balshine& J. D. Reynolds, 2006. Life history evolution in cichlids 1: revisiting the evolution of life history in relation to parental care. Journal of Evolutionary Biology 19:66-75.

40 Kubitzki, K. & A.Ziburski, 1994. Seed Dispersal in Flood Plain Forests of Amazonia. Biotropica 26: 30-43.

41 Luz-Agostinho, K. D. G., L. M. Bini, R. Fugi, A. A. Agostinho & H. F. Júlio, 2006. Food spectrum and trophic structure of the ichthyofauna of Corumbá reservoir, Paraná river Basin, Brazil. Neotropical Ichthyology 4:61-68.

42 Luz–Agostinho, K. D. G., A. A. Agostinho, L. C. Gomes, H. F. Júlio Jr & R. Fugi, 2009. Effects of flooding regime on the feeding activity and body condition of piscivorous fish in the Upper Paraná River floodplain. Brazilian Journal Biology 69: 481-490.

43 Machado-Allison, A. J. & T. M. Zaret, 1984. Datos sobre la biologia reproductiva de Hoplosternum littorale (Siluriformes— Callichyidae) de Venezuela. Acta Cientifica Venezolana 35:142–146.

44 Marçal-Simabuku, M.A. & A.C. Peret, 2002. Alimentação de peixes (Osteichthyes, Characiformes) em duas lagoas de uma planície de inundação brasileira da bacia do rio Paraná. Interciencia27: 299-306.

45 Mazzoni, R. & E. P. Caramaschi, 1997. Observations on the reproductive biology of female Hypostomus luetkeni Lacèpéde 1903. Ecology of Freshwater fish 6: 53- 56.

46 Medeiros, T. N., A. A. F. Rocha, N. C. L. Santos & W. Severi, 2014. Influência do nível hidrológico sobre a dieta de Leporinus reinhardtii(Characiformes, Anostomidae) em um reservatório do semiárido brasileiro Iheringia, Série Zoologia104: 290-298. 47 Mendonça, F. P., N. S. Hahn & V. E. Loureiro-Crippa, 2004. Feeding aspects of Leporinus amblyrhynchus(Characiformes: Anostomidae) in the first stages of formationof a Neotropical reservoir, Brazil. Neotropical Ichthyology2: 145-150.

48 Nanjappa, P., L. Brand & M.J. Lannoo, 2000. Swimming patterns associated with foraging in phylogenetically and ecologically diverse American weakly electric teleosts (Gymnotiformes). Environmental Biology of Fishes 58: 97-104.

49 Nogueira, B. P., N. Bazzoli, J. E. Santos & M. D. M. Barros, 1997. Biologia reprodutiva do Bryconops cf. affinis = Creatochanes affinis (Gunther, 1864) (Teleostei: Characiformes) na lagoa do Pantaninho, Lagoa da Prata, Minas Gerais. Bios 5:43–51.

50 Pinto, G. A., A. A. F. Rocha, N. C. L. Santos, T. N. Medeiros & W. Severi, 2011. Variação sazonal na dieta de Triportheus guentheri(garman, 1890) (Actinopterygii: Characidae), no reservatório de Sobradinho, rio São Francisco, BA. Boletim do Instituto de Pesca 37: 295-306.

51 Pompeu, P. S., 1999. Dieta da pirambeba Serrasalmus branditi Reinhardt (Teçeostei, Characidae) em quatro lagoas marginais do rio São Francisco, Brasil. Revista brasileira de Zoologia 16: 19-26.

52 Pompeu, P. S. & H. P. Godinho, 2003. Dieta e estrutura trófica das comunidades de peixes de três lagoas marginais do médio São Francisco. In Godinho, H. P. & A. L. Godinho (eds), Águas, peixes e pescadores do São Francisco das Minas Gerais. PUC Minas, Belo Horizonte: 183-194.

53 Rocha, A.A.F., N. C. L Santos, G. A. Pinto, T. N. Medeiros & W. Severi, 2011. Diet composition and food overlap of Acestrorhynchus britskii and A. lacustris (Characiformes: Acestrorhynchidae) from Sobradinho reservoir, São Francisco river, Bahia State. Acta Scientiarum. Biological Sciences 33: 407-415.

54 Santos, N. C. L., T. N. Medeiros, A. A. F. Rocha, R. M. Dias & W. Severi, 2014. Uso de recursos alimentares por Plagioscion squamosissimus - piscívoro não- nativo no reservatório de Sobradinho-BA, Brasil. Boletim do Instituto de Pesca 40: 397–408.

55 Sato, Y., N. Fenerich-Verani, A. Pires, O. Nuñer, H. P. Godinho & J. R. Verani, 2003. Padrões Reprodutivos De Peixes Da Bacia Do São Francisco. In Godinho, H. P. & A. L. Godinho (eds), Águas, peixes e pescadores do São Francisco das Minas Gerais. PUC Minas, Belo Horizonte: 229-274.

56 Sigler, W. F. & J. W. Sigler, 1987. Fishes of the great Basin: a natural history. Reno, University of Nevada Press.

57 Suzuki, H. I., C. K. Bulla & A. A. Agostinho, 2005. Estratégias reprodutivas de assembleias de peixes em reservatórios. In Rodrigues, L., M.S. Thomaz, A. A. Agostinho & L. C. Gomes. Biocenoses em Reservatórios: Padrões espaciais e temporais. Editora RIMA, São Carlos: 223-242.

58 Teresa, F. B. & L. Casatti, 2012. Influence of forest cover and mesohabitats types on functional and taxonomic diversity of fish communities in Neotropical lowland streams. Ecology of Freshwater Fish 21: 433-442.

59 Tófoli, R. M., N. S. Hahn, G. H. Z. Alves & G. C. Novakowski, 2010. Uso do alimento por duas espécies simpátricas de Moenkhausia(Characiformes, Characidae) em um riacho da RegiãoCentro-Oeste do Brasil. Iheringia, Série Zoologica 100: 201-206.

60 Vidotto-Magnoni, A. P. & E. D. Carvalho, 2009. Aquatic insects as the main food resource of fish the community in a Neotropical reservoir. Neotropical Ichthyology 7: 701-708.

61 Vieira, F. E., V. J. Isaac & N. N. Fabré, 1999. Biologia reprodutiva do tambaqui, Colossoma macropomum Cuvier, 1818 (Teleostei, Serrasalmidae), no baixo Amazonas, Brasil. Acta Amazonica 29 :625-638.

62 Zaret, T.M., 1980. Life history and growth relationships of Cichla ocellaris, a predator South American cichlid. Biotropica 12:144–157.