Les Récepteurs Couplés Aux Protéines G
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Université de Montréal Structure quaternaire des récepteurs de chimiokines CXCR4 et CCR2 et interaction avec leurs effecteurs. par Sylvain Armando Département de Biochimie Faculté de médecine Thèse présentée à la Faculté des études supérieures en vue de l’obtention du grade de docteur en Biochimie Décembre 2010 © Armando, 2010 ii Université de Montréal Faculté des études supérieures Cette thèse intitulée : Structure quaternaire des récepteurs de chimiokines CXCR4 et CCR2 et interaction avec leurs effecteurs présentée par : Sylvain Armando a été évaluée par un jury composé des personnes suivantes : Gérardo Ferbeyre, président-rapporteur Richard Leduc, examinateur externe, rapporteur Michel Bouvier, directeur de recherche Laurent Prézeau, directeur de recherche Pascal Chartrand, membre du jury Bernard Mouillac, représentant de l’université Montpellier 2 Graciela Pineyro, représentante du doyen de la FES 1 Résumé Les récepteurs couplés aux protéines G (RCPG) sont une famille très diversifiée de protéines membranaires capables de répondre à un grand nombre de signaux chimiques tels que des photons, des molécules odorantes, ou des hormones. En plus de cette diversité, l’étude des RCPG montre que des associations protéiques spécifiques multiplient les possibilités de signalisation de chacun de ces récepteurs. En permettant d’atténuer, de potentialiser, ou de générer une nouvelle voie de signalisation, l’association des RCPG en oligomères s’avère une importante source de diversité. L’utilisation du transfert d’énergie de résonance de bioluminescence (BRET) qui permet de détecter les interactions protéiques a révélé de nombreuses associations de RCPG. Durant cette thèse, des outils ont été développés pour combiner efficacement le BRET à des essais de complémentation de protéines (PCA) dans le but de savoir si l’oligomérisation des RCPG pouvait impliquer plus de deux récepteurs. Les résultats présentés montrent que les récepteurs de chimiokines CXCR4 et CCR2 forment des homo et hétéro tétramères, et que l’activation d’un dimère CCR2 peut moduler la conformation d’un dimère CXCR4 par un changement conformationnel trans-récepteur. La coopérativité négative de liaison de ligand qui a été démontrée auparavant entre CXCR4 et CCR2 dans des lymphocytes T CD4+ exprimant les récepteurs de manière endogène confirme la validité biologique de cette interaction. Les données présentées suggèrent également que ces complexes peuvent engager les effecteurs Gαi et β-arrestine2, indiquant qu’ils représentent la forme fonctionnelle de ces récepteurs. Enfin, nous avons pu confirmer que chaque récepteur de l’hétérodimère CXCR4-CCR2 est impliqué dans l’engagement des effecteurs lors de l’activation de CCR2. Un autre niveau de complexité dans la signalisation des RCPG est atteint par leur capacité à coupler de multiples protéines G. La liaison du facteur dérivé des cellules stromales (SDF-1) au récepteur CXCR4 permet la migration des lymphocytes T par une voie de signalisation dépendante de la protéine Gαi. Nous avons pu démontrer en revanche que la 2 migration des cellules de cancer du sein était initiée par un couplage de CXCR4 à la voie Gα13-Rho pour former des métastases dans des organes distants. Enfin, un dernier niveau de régulation des RCPG a été abordé par l’étude de la phosphorylation de CXCR4 suite à son activation, qui permet la désensibilisation du récepteur et l’engagement de voies de signalisation dépendantes de la β-arrestine. Il apparaît que la désensibilisation de la voie du calcium serait médiée par la phosphorylation de CXCR4 par les kinases des RCPG (GRK) GRK2 et GRK6 et le recrutement de β- arrestine2, alors GRK3, GRK6 et la β-arrestine1 potentialiseraient l’activation des kinases régulées par les signaux extracellulaires (ERK1/2). Nous suggérons également que c’est la phosphorylation de l’extrémité C-terminale de CXCR4 qui permettrait son association avec la β-arrestine. Mots-clés : Récepteurs couplés aux protéines G (RCPG), récepteur de chimiokine CXCR4, CCR2, transfert d’énergie de résonance de bioluminescence (BRET), dimère, tétramère, oligomère, essai de complémentation de protéines (PCA), complémentation bimoléculaire de luminescence (BiLC), complémentation bimoléculaire de fluorescence (BiFC), protéines G, β-arrestines, cancer, métastases, phosphorylation, kinases des RCPG (GRK). 3 Abstract G protein-coupled receptors (GPCRs) are a diverse family of membrane proteins capable of responding to a large number of extracellular stimuli including photons, odorant molecules and hormones. In addition to this diversity, it has been shown that GPCRs form specific protein:protein interactions, multiplying the signalling possibilities of each of these receptors. With the ability to diminish, to potentiate or even generate new signalling pathways, the oligomeric association of GPCRs plays an important role in generating this diversity. The use of bioluminescence resonance energy transfer (BRET), which allows the detection of interactions among proteins, has revealed numerous associations between GPCRs. During this thesis, tools have been developed that effectively combine BRET with protein complementation assays (PCA) with the goal of determining if interactions between GPCRs could involve more than two receptors. The results show that the chemokine receptors CXCR4 and CCR2 form both homo and hetero tetramers, and that the activation of a dimer of CCR2 can modulate the conformation of a CXCR4 dimer through a trans- receptor conformational change. Negative cooperativity of ligand binding has previously been demonstrated between CXCR4 and CCR2 in CD4+ T lymphocytes endogenously expressing the receptors, confirming the biological validity of this interaction. The data presented also suggests that these complexes can engage the effector proteins Gαi and β- arrestin 2, indicating that they represent a functional form of the receptors. Furthermore, we have confirmed that each receptor of the CXCR4-CCR2 heterodimer is implicated in the engagement of effectors during the activation of CCR2. An additional level of complexity in GPCR-promoted signaling exists in their capacity to couple of multiple G proteins. Binding of stromal cell-derived factor-1 (SDF-1) to CXCR4 is known to promote T lymphocyte migration through a Gαi-dependent signalling pathway. In addition to this mechanism, we have demonstrated that breast cancer cell migration can initiated by a coupling of CXCR4 to the Gα13-Rho pathway, leading to the formation of metastases in distant organs. 4 Finally, a novel level of GPCR regulation was revealed through the study of CXCR4 phosphorylation following its activation, which leads to the desensitization of the receptor and the engagement of β-arrestin-dependent signalling pathways. It appears that the desensitization of calcium signalling is mediated through the phosphorylation of CXCR4 by the GPCR kinases (GRKs) GRK2 and GRK6 and the recruitment of β-arrestin 2, whereas GRK3, GRK6 and β-arrestin 1 potentiate the activation of extracellular regulated kinase (ERK1/2). We also propose that the phosphorylation of the far C-terminal tail of CXCR4 is required for the interaction between the receptor and β-arrestin. Keywords : G protein coupled receptors (RCPG), chemokine receptor CXCR4, CCR2, bioluminescence resonance energy transfer (BRET), dimer, tetramer, oligomer, protein complémentation assay (PCA), bimolecular luminescence complementation (BiLC), bimolecular fluorescence complementation (BiFC), G proteins, β-arrestins, cancer, metastasis, phosphorylation, GPCR kinases (GRK). 5 6 Table des matières Introduction ................................................................................................................................ 16 Communication cellulaire. ............................................................................................................... 16 Les récepteurs couplés aux protéines G. ..................................................................................... 17 Généralités sur les RCPG. .............................................................................................................................. 17 Les différentes classes de RCPG. ................................................................................................................ 19 Structure et activation des RCPG .............................................................................................................. 21 Structure ............................................................................................................................................................................ 21 Activation des RCPG et couplage aux protéines G ........................................................................................... 23 Famille des protéines G hétérotrimériques. ......................................................................................... 24 Oligomérisation des RCPG ................................................................................................................ 40 Liaison de ligand radiomarqué, micro-agrégation et complémentation fonctionnelle ................. 41 Co-immunoprécipitation ............................................................................................................................................ 42 Cas particulier des récepteurs de classe C : ........................................................................................................ 44 Méthodes de transfert d’énergie par résonance de Förster et par bioluminescence