Universidade De São Paulo Faculdade De Filosofia Ciências E Letras De Ribeirão Preto Curso De Graduação Em Ciências Biológicas

UNIVERSIDADE DE SÃO PAULO FACULDADE DE FILOSOFIA CIÊNCIAS E LETRAS DE RIBEIRÃO PRETO CURSO DE GRADUAÇÃO EM CIÊNCIAS BIOLÓGICAS

Diversidade de insetos aquáticos em riachos da Bacia Hidrográfica do Rio Pardo, Estado de São Paulo

Gabriel dos Santos Paulon

Monografia apresentada ao Departamento de Biologia da Faculdade de Filosofia, Ciências e Letras de Ribeirão Preto da Universidade de São Paulo, como parte das exigências para a obtenção do título de Bacharel em Ciências Biológicas.

Ribeirão Preto 2016

UNIVERSIDADE DE SÃO PAULO FACULDADE DE FILOSOFIA CIÊNCIAS E LETRAS DE RIBEIRÃO PRETO CURSO DE GRADUAÇÃO EM CIÊNCIAS BIOLÓGICAS

Diversidade de insetos aquáticos em riachos da bacia Hidrográfica do Rio Pardo, Estado de São Paulo

Gabriel dos Santos Paulon

Orientador: Dr. Rafael Alberto Moretto

Monografia apresentada ao Departamento de Biologia da Faculdade de Filosofia, Ciências e Letras de Ribeirão Preto da Universidade de São Paulo, como Parte das exigências para a obtenção do título de Bacharel em Ciências Biológicas.

Ribeirão Preto 2016

FICHA CATALOGRÁFICA

PAULON, GABRIEL DOS SANTOS

Diversidade de Insetos Aquáticos em riachos da Bacia Hidrográfica do Rio Pardo, Estado de São Paulo. Ribeirão Preto, 2016 IX+68 p.

Monografia apresentada à Faculdade de Filosofia, Ciências e Letras de Ribeirão Preto – USP. Departamento de Biologia

Orientador: Dr. Rafael Alberto Moretto

1. Bioindicadores; 2.BMWP; 3. Ecossistema aquático; 4. Distribuição da fauna aquática.

A vida é sacrifício, fechar os olhos e se entregar. No inicio é difícil, mas vai se acostumar.

Agradecimentos

Agradeço em primeiro lugar a minha família, meu pai Abelardo, minha mãe Sebastiana e ao meu irmão Samuel. A minha família, a qual do essencial tudo me deu e nada me faltou. Se hoje estou prestes a concluir meu curso de Bacharelado e Licenciatura em Ciências Biológicas, é por ter estado apoiado em ombro de gigantes.

Em segundo lugar, agradeço o meu orientador, Dr. Rafael Alberto Moretto, por ter tido a paciência de me orientar por quase 3 anos. Foi por sua boa vontade e dedicação que esse trabalho pode ser realizado. Você será a minha inspiração para o caminho acadêmico que estou prestes a percorrer, pois nunca lhe faltou dedicação e perseverança nos trabalhos por você realizado.

A minha faculdade, Faculdade de Filosofia Ciências e Letras de Ribeirão Preto (FFCLRP – USP) que tenho muito orgulho de pertencer, onde passei 5 anos, estudando e conhecendo diversos tipos de pessoas e mentalidades. Da qual fazem parte diversos professores com quem tive a honra e o prazer de ter aprendido, dentro e fora da sala de aula.

Também agradeço ao CRInt, e as pessoas que lá trabalham, Raquel e Lucas, que me possibilitaram realizar um grande sonho meu, intercâmbio pro Canadá. Obrigado por terem demonstrado a paciência nas minhas horas de desespero e de terem vibrado comigo a minha conquista. Por isso agradeço também a Concordia University of Edmonton, e aos professores Dra. Mariola Janowicz e ao Dr. Manfred Zeuch, que me receberam e me apoiaram no momento em que esse sonho era apenas uma possibilidade.

Agradeço também a minha namorada, Mayra Larissa Brunato, por ter me acalmado nos meus momentos de incertezas, e me animado nos meus momentos de desânimo. Obrigado de coração por estar ao meu lado, até nos momentos de coleta.

Devo agradecer também ao Prof. Dr. Fábio Nascimento, que dedicou seu tempo e mostrou apoio no decorrer desse projeto. Agradeço também ao Prof. Dr. Eduardo Andrade, por ter auxiliado a construção desse projeto. Ao Prof. Dr. Claudio Froehlich, que gentilmente me acolheu no Laboratório de Entomologia Aquática, pelas conversas e conselhos trocados durante um café, deixo aqui o meu muito obrigado.

Também agradeço aos demais especialistas que me auxiliaram na identificação dos espécimes, como também disponibilizaram parte do seu tempo para solucionar duvidas que apareceram durante o andamento desse trabalho: Dra. Anne Costa (especialista em Trichoptera), Mestrando Thiago Polizeli (especialista em Coleoptera), Dr. Rodolfo Mariano (especialista em Ephemeroptera), Mestranda Larissa Ribeiro (especialista em Odonata) , Dr. Rhainer Guillermo (especialista em Odonata) e a Doutoranda Carla Floriano (especialista em Hemiptera).

Agradeço as pessoas que participam diretamente da minha vida, como as minhas duas grandes amigas, de farra, de praça do Jacaré, de domingo de tarde, de filme com pipoca, Livia Doretto e Monique Elias. Obrigado por tudo.

Aos “brodi” da faculdade Ricardo Brandão, Gabriel Machado, Tiago Amaral, Guilherme Sandalo e Danilo Sasso e aos demais amigos, que viveram comigo esse período tão importante da minha vida. Obrigado pelos conselhos, pelo aperto de mão dado, pelas discussões e pelo ombro dado nos momentos difíceis.

Ao Conexão, cursinho popular no qual faço parte e onde fiz amigos que se disponibilizam a fazer o que amam em prol da educação.

Por último, mas não menos importante, agradeço ao CNPq pelo apoio financeiro e pela bolsa de iniciação científica (PIBIC).

Dedico esse trabalho a todos vocês que, de certa forma, mudaram a minha vida.

LISTA DE FIGURAS E TABELAS

Figura 1: Ninfa de Ephemerotera 9 Figura 2: Larva de Trichoptera 12 Figura 3: Ninfa de Plecoptera 13 Figura 4: Larva de Megaloptera 14 Figura 5: Larva de Coleoptera 16 Figura 6: Ninfa de Odonata da subordem Zygoptera 17 Figura 7: Ninfa de Odonata da subrordem Anisoptera 18 Figura 8: Larva de Diptera 19 Figura 9: Ninfa de Hemiptera 21 Figura 10: Bacia Hidrográfica do Rio Pardo 23 Figura 11: Ponto de Coleta em Serrana 24 Figura 12: Ponto de Coleta em Cássia dos Coqueiros 24 Figura 13: Córrego do Matadouro em Serrana – SP (Outubro de 2015) 25 Figura 14: Córrego do Matadouro em Serrana – SP (Março 2016) 25 Figura 15: Córrego do Matadouro em Serrana – SP ( Outubro de 2015) 26 Figura 16: Córrego do Matadouro em Serrana – SP (Outubro de 2015) 26 Figura 17: Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros – SP (Outubro de 2015) 27 Figura 18: Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros – SP (Março de 2016) 27 Figura 19: Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros – SP (Outubro de 2015) 28 Figura 20: Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros – SP (Março de 2016) 28 Figura 21: Ficha cadastral do Córrego do Matadouro (Serrana) 29 Figura 22: Ficha cadastral do Ribeirão da Boiada (Cássia dos Coqueiros) 30 Figura 23. Coleta de Insetos Aquáticos em Cássia dos Coqueiros em Março de 2015 32 Figura 24: Curva de Rarefação 37 Figura 25: Curva do Coletor 37 Figura 26: Diagrama de Whittaker – Abundância de Insetos Aquáticos, a nível de família, para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo 38 Figura 27: Proporção da Abundância de Insetos Aquáticos, a nível de família, para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo 38 Figura 28: Abundância de Insetos Aquáticos, a nível de gênero (exceto dípteros), para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo 39

Figura 29: Proporção da Abundância de Insetos Aquáticos, a nível de gênero (exceto dípteros), para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo 39

Tabela I. BMWP para Insetos Aquáticos 33 Tabela II. Classes de qualidade da água feitas para análise do BMWP 34 Tabela III. Dados abióticos coletados 35 Tabela IV. Dados bióticos 36 Tabela V. Relação das espécies raras por estimador de riqueza, considerando apenas o nível taxonômico de gênero 40 Tabela VI. Relação das espécies raras por estimador de riqueza, considerando apenas o nível taxonômico de família 41 Tabela VII. Compilação dos resultados dos estimadores de diversidade, juntamente com as informações de Abundância e Riqueza, considerando o nível taxonômico de família 41 Tabela VIII. Compilação dos resultados dos estimadores de diversidade, juntamente com as informações de Abundância e Riqueza, considerando o nível taxonômico de gênero 41 Tabela IX. Teste de correlação entre as variáveis abióticas. 42 Tabela X. Teste de correlação entre as variáveis abióticas incluindo a abundância como variável independente 42 Tabela XI. BMWP para o Córrego do Matadouro em Serrana (SP) 43 Tabela XII. BMWP para o Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros (SP) 44 Tabela XIII. BMWP para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo 44 Tabela XIV. Medianas dos resultados dos parâmetros físico-químicos por trecho de amostragem no Rio Pardo. Modificado de Sampaio, 2012 50

SUMÁRIO

Resumo 1

Abstract 2

1. Introdução 3

1.1. Ecologia de Ambientes Lóticos 5

1.2. Insetos Aquáticos 6

1.3. Ephemeroptera 7

1.4. Trichoptera 9

1.5. Plecoptera 12

1.6. Megaloptera 13

1.7. Coleoptera 14

1.8. Odonata 16

1.9. Diptera 18

1.10. Hemiptera 19

2. Objetivos 21

3. Material e métodos 22

3.1. Área de estudo 22

3.2. Coleta e identificação 31

3.3. Análise dos dados 32

4. Resultados 35

5. Discussão 45

6. Considerações finais 53

7. Referências Bibliográficas 54

Resumo

A degradação do meio ambiente vem ocorrendo de forma acelerada e os ecossistemas aquáticos têm se tornado cada vez mais vulneráveis e importantes, devido ao seu valor incalculável para a sociedade. A Bacia Hidrográfica do Rio Pardo, localizada entre os paralelos 22°15’ e 23°15’ de Latitude Sul e os meridianos 48º15’ e 50º’00’ de Longitude Oeste, ocupando a região Noroeste do Estado de São Paulo e o Sul do Estado de Minas Gerais, torna-se um importante recurso hídrico para as suas 27 cidades que a compõe. Nesse trabalho, de forma inédita para essa bacia, realizou-se um levantamento faunístico de insetos aquáticos (Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera, Diptera, Coleoptera, Megaloptera, Hemiptera e Odonota) por meio 4 coletas em 2 riachos pertencentes a Serrana, SP (Córrego do Matadouro) e Cássia dos Coqueiros, SP (Ribeirão da Boiada). O material coletado foi analisado e identificado até o nível taxonômico de gênero (exceto para a Ordem Diptera). Contudo, os dados se mostraram mais robustos quando tratados no nível de família, contrariando a hipótese previamente feita. As correlações feitas sobre os efeitos dos dados abiótica na distribuição da fauna de insetos aquáticos denotaram a influência da temperatura ambiente, oxigênio dissolvido e condutividade. Os dados bióticos foram analisados pelo Biological Monitoring Working Party (BMWP) adaptado para o Rio das Velhas por Junqueira & Campos (1998) e denotou que a qualidade da água do Córrego do Matadouro como BOM e para o Ribeirão da Boiada como EXCELENTE, resultando numa qualidade da água EXCELENTE ao extrapolar os dados para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo.

Abstract

The environmental degradation is occurring at on an accelerated way and the aquatic ecosystems have become increasingly vulnerable and important because it’s incalculable value for society. Therefore, the basin of the Pardo River, located between parallels 22°15’ and 23° 15’ South Latitude and the meridians 48º15’ and 50º00’ West Longitude, occupying the northern part of the São Paulo state and southern Minas Gerais state, it is an important water resource for the 27 cities there composes. This work has no precedents to this basin, held a faunal survey of aquatic insects (Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera, Diptera, Coleoptera, Megaloptera, Hemiptera and Odonota) through 4 collections in 2 streams belonging to Serrana, SP (Córrego do Matadouro) and Cassia dos Coqueiros, SP (Ribeirão da Boiada) under the abiotic conditions of the locals. The raised biotic data were analyzed and identified unto the genus taxonomic level (except for the Order of Diptera). However, the data were more robust when treated at family level, contradicting the hypothesis previously made. The correlations made on abiotic data on the distribution of aquatic insects fauna denoted the influence of ambient temperature, dissolved oxygen and conductivity. Biotic data were analyzed by the Biological Monitoring Working Party (BMWP) that was adapt to the Rio das Velhas by Junqueira & Campos (1998) denoted that the water quality of the Córrego do Matadouro as GOOD and the Ribeirão da Boiada as EXCELLENT and extrapolating the data for the basin of Rio Pardo, the water quality is EXCELLENT.

1. INTRODUÇÃO

Nos últimos anos, a degradação do meio ambiente vem ocorrendo de forma acelerada e contínua, devido aos múltiplos impactos ambientais provenientes das atividades antrópicas, como por exemplo, o aumento do nível de compostos xenobióticos nos ecossistemas aquáticos (Arias et al., 2007), as influências dos centros urbanos e industriais, como também da agricultura, contribuindo para a deterioração da qualidade ambiental dos ecossistemas aquáticos (Hepp et al., 2007). Por meio do monitoramento ambiental, é possível observar e avaliar as estratégias de manejo e conservação de áreas naturais, bem como se os planos de recuperação de ambientes degradados estão sendo efetivos, pois os métodos tradicionais de análise, usando apenas características físicas e químicas, não são tão abrangentes, trazendo poucos dados sobre a qualidade estética, recreativa e ecológica do ambiente aquático (Arias et al., 2007) . Dentre as diversas comunidades que vivem nos variados ecossistemas, a de insetos aquáticos é amplamente estudada e utilizada em avaliações e programas de monitoramento ambiental. Os insetos aquáticos, em geral, apresentam diferentes níveis de tolerância face às atividades antrópicas, as quais podem envolver a remoção das matas ciliares, a entrada de efluentes orgânicos ou industriais, a destruição de hábitat, entre outros (Ross, 1967; Rosenberg & Resh, 1993; Morse, 1997). Essa diferença de susceptibilidade frente a distúrbios ambientais confere aos macroinvertebrados bentônicos grande importância em programas de monitoramento biológico. Por isso, a prática de biomonitoramento com insetos aquáticos tem sido bastante utilizada em regiões temperadas, onde o conhecimento taxonômico e ecológico desses grupos é bastante amplo. Já na Região Neotropical, tal prática ainda não tem sido muito efetiva, devido talvez à pequena quantidade de estudos sobre a diversidade e carência de conhecimento taxonômico das ordens de insetos aquáticos, já que para a implementação de protocolos de biomonitoramento, a identificação da fauna desses insetos deve ser realizada a priori (Calor, 2009). Além disso, outros fatores que favorecem o uso de insetos aquáticos em programas de biomonitoramento são o fato de serem amplamente distribuídos e comuns na maioria dos ecossistemas dulcícolas, possuírem ciclo de vida relativamente longo, quando comparados com outros organismos, apresentarem tamanho grande, sendo sésseis ou de pouca mobilidade, o que permite que eles sejam coletados por métodos simples e de baixo custo (Resh & 3

Jackson, 1993). Por estarem intrinsecamente relacionadas às características dos locais onde vivem, a utilização de macroinvertebrados bentônicos fornecem de forma direta ou indireta as características dos locais onde vivem, como por exemplo, qualidade da água, condições do entorno, entre outras (Hepp et al., 2007). Entre os insetos aquáticos, Ephemeroptera, Plecoptera e Trichoptera (EPT) são ordens notoriamente importantes no ambiente aquático, principalmente devido à sua ampla distribuição, alta abundância e riqueza de espécies, como também por representarem abundantes recursos na cadeia alimentar de córregos (Righi-Cavallaro et al., 2010), o que denota que a comunidade dos EPT está estruturada de forma a aproveitar da melhor maneira possível os recursos ambientais (Bispo & Oliveira, 1998). Os estudos com as demais ordens que também apresentam pelo menos uma fase do desenvolvimento relacionada à água (Diptera, Coleoptera, Megaloptera, Hemiptera e Odonata) crescem de forma favorável, no sentido de aprimorar as técnicas de biomonitoramento. Diversos estudos já foram feitos utilizando as ordens supracitadas juntamente com EPT para se inferir a qualidade d’água de um determinado ambiente ou para o estabelecimento de áreas prioritárias para conservação (e.g. McGeoch, 1988; Rafael et al., 2012; Silva & Silva, 2011; Contreras-Ramos, 2011). Assim, por meio de análises da fauna de macroinvertebrados bentônicos, torna-se possível a elaboração de modelos estatísticos que permitem a caracterização do ambiente lótico e a inferência de sua integridade ambiental, utilizando-se índices bióticos baseados na condição de sensibilidade e tolerância dos táxons aos diferentes impactos, como, por exemplo, o Biological Monitoring Working Party (BMWP), criado em 1976 na Grã-Bretanha, índices multimétricos, que utilizam um conjunto de medidas bioindicadoras, de maneira a definir um sistema de classificação da qualidade da água, e modelos de predição de fauna, que, por meio de análises físico-químicas da água e de alguns parâmetros ambientais, são capazes de predizer a fauna de macroinvertebrados de locais não poluídos (Baptista, 2008). A grande problemática tona-se reconhecer as diferentes espécies ou linhagens filogenéticas, sendo esse um passo fundamental para documentar a biodiversidade, entender os processos ecológicos e evolutivos, além de estabelecer estratégias de conservação. Tendo como base a descrição dos grupos, na grande maioria, apenas machos adultos são utilizados na descrição e diagnose das espécies, o que torna o conhecimento sobre os estágios imaturos incipientes (Junqueira & Campos, 1998). 4

O conhecimento da fase imatura é essencial, pois, para a maior parte dos grupos, é nessa fase que os indivíduos vivem nos ambientes aquáticos. Sendo assim, o reconhecimento taxonômico dos espécimes e a obtenção das relações entre adultos e imaturos podem fornecer importantes ferramentas para os estudos ambientais (Malm et al., 2013). A seguir, para aumentar a inteligibilidade sobre o projeto, torna-se necessária uma breve descrição sobre ecologia de ambientes lóticos, os insetos aquáticos (de forma geral)e a, abordar a ecologia e a filogenia das ordens: Ephemeroptera, Trichoptera, Plecoptera, Diptera, Hemiptera, Odonata, Coleoptera e Megaloptera.

1.1. Ecologia de ambientes lóticos

Os ambientes aquáticos continentais são comumente divididos em ecossistemas lênticos e lóticos. O fator correnteza é o fato limitante dessa divisão, sendo que para ambientes lênticos, temos a estagnação das águas, como o observado em lagos, lagoas, represas, reservatórios, poças, brejos e pântanos (Ward, 1982). Já os ambientes lóticos são caracterizados pelo movimento unidirecional da correnteza, como nos rios e riachos (Merrit & Cummins, 1996). Os ambientes lóticos apresentam divisões quanto a sua origem, sendo que, o curso d’água originado diretamente de uma nascente, sem tributários, é considerado como de primeira ordem (normalmente é um riacho pequeno). Quando há a confluência de dois ambientes lóticos de primeira ordem, forma-se um de segunda ordem (normalmente são rios), e do encontro de dois ambientes lóticos de segunda ordem forma-se um de terceira ordem (a regra que dois ambientes lóticos de ordem “n” originam um de ordem “n+1”) (Strahler, 1957). O tamanho do córrego e a integridade do hábitat podem ser considerados os principais fatores que afetam a estruturação das comunidades dos organismos aquáticos, sendo potenciais fatores preditivos da riqueza de insetos aquáticos nos ambientes lóticos (Souza et al., 2011). Os rios de ordens distintas apresentam diferenças quanto ao regime térmico, à vazão e velocidade da correnteza, fontes predominantes de energia, disponibilidade de microhábitats e padrões de diversidade (Hildrew & Townsend, 1987). A biodiversidade tende a ser maior em riachos de porte médio, pois há grande heterogeneidade ambiental (Vannote et al,. 1980).

Outros fatores ambientais também são importantes em ambientes lóticos, como por exemplo, altitude, temperatura, concentração de oxigênio dissolvido e outras variáveis físicas e químicas, como pH e condutividade (Hynes, 1976). Por isso, essas variáveis são frequentemente mensuradas em estudos sobre diversidade de insetos aquáticos. A temperatura é um importante fator abiótico responsável pela distribuição de organismos em ambientes lóticos (Resh & Rosenberg, 1984). Ela pode afetar o desenvolvimento dos insetos, alterando o número de ciclos de vida completados anualmente (Ward & Stanford, 1982). Temperaturas elevadas também interferem no teor de oxigênio dissolvido, sem que temperaturas mais elevadas da água diminuam o teor de oxigênio dissolvido, interferindo diretamente também na distribuição da fauna (Vannote et al., 1980). O potencial hidrogeniônico (pH) dos riachos varia de acordo com a composição das rochas encontradas em seus leitos, as quais em alguns casos podem contribuir com elementos tamponantes como carbonatos e bicarbonatos. O registro da condutividade elétrica de um riacho revela a quantidade de sais dissolvidos na água. Os baixos valores de pH e oxigênio dissolvido, aliados ao aumento da condutividade elétrica, podem ser indicadores de poluição, provocada pelo enriquecimento orgânico e aumento da quantidade de sólidos suspensos na água (Hellawell, 1989; Alves et al., 2012).

1.2 Insetos Aquáticos

Os insetos pertencem ao filo Arthropoda, sendo constituintes da classe Hexapoda (Brusca & Brusca, 2002). Quanto ao seu posicionamento filogenético nesse grupo, temos duas hipóteses que mais se destacaram. Um delas defende Hexapoda como grupo irmão de Myriapoda (Ruppert, Fox & Barnes, 2005), e a outra hipótese considera Crustacea como um grupo parafilético do qual Hexapoda faz parte (Regier et al.,2010). Os insetos são seres que vivem no planeta Terra há aproximadamente 350 milhões de anos, e ao longo desse tempo eles se adaptaram a vida em vários habitats, inclusive o aquático, e desenvolveram diversas características (Triplehorn & Jonnson, 2011). O ciclo de vida também é algo muito variado, alguns insetos sofrem poucas alterações morfológicas durante o seu desenvolvimento, como os hemimetábolos, outros já mudam completamente, como os holometábolos (Triplehorn & Jonnson, 2011).

Quanto a morfologia geral dos insetos, sua forma é relativamente alongada e cilíndrica e possuem simetria bilateral (Triplehorn & Jonnson, 2011). O corpo é dividido em uma série de segmentos, os metâmeros, que são agrupados em três regiões distintas ou tagmata: a cabeça, o tórax e o abdômen (Triplehorn & Jonnson, 2011). As funções primárias de cabeça seriam: percepção sensorial, integração neural e coleta de alimentos; do tórax, sendo responsável pela locomoção, sustentando as pernas e as asas; o abdômen aloja a maior parte dos órgãos viscerais, incluindo componentes dos sistemas digestivos, excretor e reprodutor (Triplehorn & Jonnson, 2011). Em relação aos insetos aquáticos, eles são reconhecidos como aquáticos quando possuem parte do seu ciclo de vida é dependente da água, seja durante a fase imatura ou adulta (Yokoyama, 2008). A transição do ambiente aquático para terrestre surgiu de forma independe em vários grupos, através de adaptações comportamentais e modificações em seus sistemas para trocas gasosas com o ar (Brusca & Brusca, 2002). Para a obtenção do oxigênio no ambiente aquático, é possível observar diferentes estratégias, como: o desenvolvimento de brânquias, realizar trocas gasosas diretas da epiderme ou projeções cuticulares, utilizar tubos para obter o oxigênio diretamente do ar, reservar oxigênio através de bolhas de ar, de forma temporária, ou através de plastrões, de forma permanente (Rafael et al., 2012). Também surgiram adaptações morfológicas que permitiram a sua fixação no riacho, o que possibilitou superar a correnteza, e até mesmo superar a velocidade da água, como surgimento de pernas inseridas lateralmente, presença de estruturas de adesão ao substrato e corpo achatado dorsoventralmente (Merrit & Cummins, 1996). Cada ordem tratada nesse projeto, apresenta peculiaridades quanto a sua morfologia e ecologia, por isso, em seguida apresentamos uma breve descrição a respeito das ordens, como também a filogenia de cada uma.

1.3. A ordem Ephemeroptera

Os efemerópteros são insetos distribuídos mundialmente (exceto na região Antártica, no extremo Ártico e em pequenas ilhas oceânicas). Compreendem cerca de 4 mil espécies, das quais 199 são registradas no Brasil (Silva & Salle, 2012). São dulcícolas e desenvolvem-se nas proximidades de corpos d’água, algumas espécies desenvolvem tanto em ambientes

lênticos quanto lóticos (Silva & Salle, 2012), mas a maior diversidade é encontrada em riachos de fundo rochoso (Edmunds, 1984). Quanto à morfologia do inseto adulto, observamos uma cabeça triangular (em vista dorsal), olhos compostos (que, em machos de alguns grupos, diferenciam-se pelo seu tamanho avantajado, em comparação aos da fêmea), três ocelos, clípeo anterior à face, antena setácea, escapo curto, pedicelo pouco articula e flagelo setáceo e multiarticulado, aparelho bucal mastigador, tórax bem desenvolvido, protórax anular, mesotórax convexo dorsalmente, metatórax reduzido, meso e metatórax solidamente fundidos, mesonoto dividido em mesoscuto grande e converxo e um escutelo menor posterior, asas membranosas transparentes e iridescentes na maioria das espécies (Silva & Salle, 2012). A fase de imago é semelhante à de subimago, exceto que nesta, o inseto possui seu corpo envolto por uma cutícula transparente, suas genitálias e os olhos compostos são menores (Silva & Salle, 2012). As ninfas (Figura 1) são aquáticas e possuem brânquias abdominais bem desenvolvidas, epicrânio dividido (frontoclípeo, parte posterior, vértice e parte anterior), olho lateral ou dorsal, três ocelos, antenas filiformes, peças bucais mastigadores (arranjo hipognato ou prognato), no tórax, o pronoto é menos desenvolvido que o mesonoto e o metanoto é pequeno, pterotecas visíveis (nas ninfas maduras), três filamentos anais (que podem estar reduzido ou ausente) (Silva & Salle, 2012). Por possuírem alta sensibilidade às alterações ambientais, as ninfas de Ephemeroptera são utilizadas como bioindicadores de qualidade de água (Rosenberg & Resh, 1993) em diferentes níveis de poluição, alguns grupos possuem sua população aumentada, outras diminuídas e algumas desaparecem (Silva & Salle, 2012). Os principais contaminantes de origem agrícola de corpos d’agua são os fertilizantes e os agrotóxicos que prejudicam de forma direta, através da chuva e irrigação, ou indiretamente através da percolação no solo chegando a lençóis freáticos (Arias et al., 2007). Estudos mostram que fertilizantes agrícolas que contribuem para o aumento de algumas espécies de Ephemeroptera que se alimentam de algas (Egler, 2002). Já o uso de agrotóxicos pode reduzir drasticamente a população de macroinvertebrados dos ambientes dulcícolas, já que eles têm sistemas biológicos similares ao do organismo alvo (Arias et al., 2007). As alterações bruscas ambientais podem resultar em extinções locais, bem como mudanças drásticas nas abundâncias das espécies e isso pode ser muito prejudicial, principalmente quando tratamos de um grupo com grande sensibilidade, como no caso dos Ephemeroptera (Shimano et al., 2010). 8

Uma das primeiras classificações proposta para a ordem é de 1935, feita por Needham et al., a qual dividia Ephemeroptera em 3 famílias (Ephemeridae, Heptageniidae e Baetidae) e 17 subfamílias (Silva & Salle, 2012). Atualmente, a classificação de McCaferry & Edmunds (1979) ainda é a de maior aceitação, sendo baseada em teorias evolutivas observadas nos caracteres ninfais, que possibilitaram dividir a ordem em Schistonata, incluindo Baetoidea, Leptophleboidea e Ephemeroidea; e em Pannota incluindo: Ephemerelloidea, Caenoidea e Prosopistomatoideaea.

Figura 1. Ninfa de Ephemerotera. Retirada de http://www.troutnut.com/specimen/220.

1.4. A ordem Trichoptera

Os tricópteros são registrados em todos os continentes, exceto no continente Antártico (Ivanov & Moor, 2007), com cerca de 15.000 espécies em todo o mundo (Morse, 2015), aproximadamente 3.000 espécies para a região Neotropical (Morse, 2015) e 479 espécies para o Brasil (Calor, 2011; Paprocki & França, 2014). Os tricópteros s’ão insetos holometábolos que, na fase adulta, variam de 1 a 50 mm de comprimento, apresentam olhos compostos bem desenvolvidos, ocelos presentes e antenas filiformes (longas, podendo chegar a até varias vezes o comprimento do corpo), não apresentam mandíbulas, o aparelho bucal consiste na fusão do lábio com a hipofaringe, formando o haustelo, palpos labiais e maxilares bem desenvolvidos, tubérculos presentes dorsalmente na cabeça e tórax, três pares de pernas bem desenvolvidas, não diferenciadas e com esporões tibiais conspícuos, fêmeas de algumas espécies com perna posterior achatada

lateralmente, utilizada para natação e postura, e dois pares de asas bem desenvolvidas (Paprocki, 2012). A fase larval (Figura 2) é estritamente aquática, a sua morfologia corresponde a um pronoto e cabeça bem esclerosados, mesonoto e metanoto com graus variados de esclerosação ou membranosos. Quanto às pernas, essas têm modificações como cerdas, escovas e outras, que estão relacionadas aos hábitos ou alimentação. O abdômen é membranoso, portando brânquias em algumas famílias. Os últimos segmentos são modificados em falsas pernas anais, terminando em uma garra anal (Paprocki, 2012). As larvas constroem abrigos ou grumixás, com seda das glândulas salivares, possuindo diversas formas (como caracóis, tubos e carapaças de tartaruga) e de diversos materiais, como, por exemplo, folha, areia ou exclusivamente seda (Paprocki, 2012). Geralmente, a alimentação dos insetos aquáticos tende a ser singulares e pouco variadas nas primeiras linhagens dos Pterygota, como nos odonatos, que são exclusivamente predadores, ou nos que ocupam quantidade menores de habitats (megalópteos, hímenópteros e neurópeteros) (Hershey et al., 2010). Já os tricópteros, dípteros e coleópteros, grupos que surgiram posteriormente, apresentam uma alimentação mais diversificada (Hershey et al., 2010). Em Trichoptera, particularmente em algumas larvas, os abrigos servem como filtradores de partículas de matéria orgânica que irão servir para a alimentação (Rafael et al., 2012). A utilização de tricópteros para atividades de biomonitoramento dá-se pela sua capacidade de tolerar em vários níveis as atividades antrópicas, que envolvem desde a retirada de matas ciliares até a destruição completa do habitat. Essa diferença de susceptibilidade confere ao grupo grande importância em programas de monitoramento biológico (Ross, 1967; Rosenberg & Resh, 1993; Morse, 1997). A Ordem Trichoptera é dividida em quatro subordens, Annulipalpia, Integripalpia, Spicipalpia e Protomeropina. Essa última subordem é constituída de táxons fósseis, do período Permiano, e de posicionamento bastante controverso. Dentre as características morfológicas e moleculares que distinguem as outras três subordens, a divisão se deu com base nas diferenças dos tipos de grumixás. “Spicipalpia” é tida como um grupo parafilético em relação a Annulipalpia e Integripalpia (Frania & Wiggins, 1997; Grimald & Engel, 2005), e nela temos as famílias Glossosomatidae, Hydrobiosidae, Hydroptilidae e Rhyacophilidae,

cujas larvas não constroem abrigo, são livre-natante ou constroem uma espécie de cúpula ou bolsa (Holzenthal et al., 2007). A subordem Annulipalpia, proposta por Martinov em 1924, faz referência ao segmento terminal flexível dos palpos maxilares do adulto e apresentam as seguintes sinapomorfias: larvas com tergito abdominal X reduzido, genitália da fêmea com papilas laterais adjacentes ao cerco e aparato fálico na genitália masculina modificada, com parâmetros perdidos (Weaver, 1984; Wiggins, 1996). As larvas constroem abrigos fixos de seda em ambientes aquáticos de água doce e seus hábitos alimentares são classificados como filtradores, raspadores e coletores (Weaver & Morse, 1986). Tal subordem é dividida em 2 grande grupos, Hydropsychoidea e Philapotamoidea. As famílias que pertencem a Hydropsychoidea são Economidae, Polycentropodidae, Hydropsychidae e Dpseudopsidae. As famílias Philopotamidae, Stenopsychidae, Psychomyiidae e Xiphocentronidae pertencem ao grupo Philapotamoidea. (Calor, 2009). A subordem Integripalpia, também proposta por Martinov em 1924, possuem as seguintes sinapomorfias: ovos envoltos por espumalina, qual absorve água (Wichard, 1991), mesonoto esclerosado, seguimento abdominal com protuberâncias laterais e médio-dorsal (Weaver, 1984), asas posteriores maiores que as asas anteriores, especialmente na região anal (Morse 1997), além dos dados moleculares (Kjer et al., 2001 e 2002). Essa subordem também é dividida por dois grandes grupos, Plenintetoria e Brevitentoria. As famílias Apataniidae, Brachycentridae, Goeridae, Kokiriidae, Lepidostomatidae, Limnephilidae, Oeconesidae, Phryganeidae, Phryganopsychidae, Pisuliidae, Plectrotarsidae, Rossianidae e Uenoidae pertencem ao grupo Plenintetoria. O grupo Brevientoria é divido em Leptoceroidea e Sericostomatoidea. No grupo Brevientoria, em Leptoceroidea temos as famílias Atriplectididae, Calamoceratidae, Leptoceridae, Limnocentropodidae, Molannidae, Odontoceridae, Philorheithridae e Tasimiidae. As famílias Anomalopsychidae, Antipodoeciidae, Barbarochthonidae, Beraeidae, Calocidae, Chathamiidae, Conoesucidae, Helicophidae, Helicopsychidae, Hydrosalpingidae, Petrothrincidae e Sericostomatidae estão em Brevientoria em Sericostomatoidea (Holzenthal et al., 2007). As famílias de tricópteros que ocorrem no Brasil são: Ecnomidae, Hydropsychidae, Polycentropodidae, Xiphocentronidae, Philopotamidae, Hydrobiosidae, Glossomatidae, Hydroptilidae, Atriplectididae, Calamoceratidae, Leptoceridae, Odontoceridae, Lemnephilidae, Anomalopsychidae, Helicopsychidae e Sericostomatidae (Paprocki, 2012). 11

Figura 2. Larva de Trichoptera. Retirada de https:// trichopteragallery.com/gallery/132416.

1.5. A ordem Plecoptera

Os plecópteros possuem mais de 2.000 espécies descritas no mundo, sendo que na Região Neotropical há registro de mais de 420 espécies (Froelich, 2012). No Brasil, são cerca de 150 espécies divididas em duas famílias, Gripopterygidae e Perlidae (Froelich, 2012). Alguns estudos estimam 2500 espécies no mundo e no Brasil cerca de 300 espécies (Paprocki, 2012). Os plecópteros são insetos hemimetábolos, anfibióticos, de corpo mole, variando de 4 a 60 mm de comprimento, seus olhos são compostos e apresentam de dois a três ocelos, aparelho bucal mastigador (podendo ser reduzido em alguns grupos), antena longa e multiarticulada, pernas cursoriais simples, tarsos trímeros, dois pares de asas membranosas e o par posterior com lobo anal grande, dobrado quando em repouso e cerco multiarticulado (Froelich, 2012). Os imaturos são aquáticos e, no Brasil, estão restritos a águas correntes limpas e bem oxigenadas. Quanto as famílias que ocorrem no Brasil, as ninfas de Perlidae são predadoras e caracterizadas por apresentarem brânquias nos paraproctos, enquanto que as de Gripopterygidae são raspadoras e apresentam um tufo de brânquias anais; em ambas o número de instares é superior a dez (Froelich, 2012). As ninfas (Figura 3) podem ser encontradas sob pedras em riachos, e ocasionalmente em qualquer lugar do riacho onde exista oxigênio (Giller & Malmqvist, 1998). Os plecópteros são organismos pouco tolerantes a poluição e/ou atividades antrópicas que degradam seu habitat (Froelich, 2012; Hepp et al., 2007), já denotados em trabalhos que mostram que comunidades de macroinvertebrados bentônicos

estão intrinsecamente relacionadas as características dos locais onde vivem (qualidade da água, condições do entorno, etc.) (Hepp et al., 2007). A proposta mais recente da filogenia de plecópteros é de Zwick (2000). A ordem foi dividida em duas subordens, sendo elas Antarctoperalia e Arctopelaria. A subordem Antarctoperalia possui origem sul-gondwânica e incluem duas superfamílias, Eusthenoidea e Gripopterygoidea (ocorrem no sul da Região Neotropical). Os Arctopelaria originaram-se no Hemisfério Norte, e são ainda divididos em duas infraordens, os Euholognatha (cuja principal característica é o fato dos adultos possuírem peças bucais funcionais) e os Systellognatha (cujos adultos apresentam peças bucais atrofiadas). Na região Neotropical houve uma invasão de uma subfamília de Systellognatha, a Acroneuriinae (Perlidae), a qual se diferenciou em 10 gêneros, totalizando 400 espécies (Froelich, 2012).

Figura 3. Ninfa de Plecoptera. Retirada de http://www.worleybuggerflyco.com/plec32

1.6. A ordem Megaloptera

Os megalópteros possuem 346 espécies descritas no mundo, sendo 19 registradas no Brasil (Contreras-Ramos, 2011) e estima-se que essa fauna possa duplicar, pois ainda é pouco conhecida, principalmente no Nordeste e Centro-Oeste brasileiro (Hamada & Azevedo, 2012). A ordem é composta por duas famílias recentes, Corylidalidae e Sialidae, e ambas ocorrem no Brasil. (Hamada & Azevêdo, 2012). Para o Brasil, são conhecidas 15 espécies de Corydalidae e 4 de Sialidae (Hamada & Azevêdo, 2012). Quanto à morfologia das larvas (Figura 4), elas possuem o corpo alongado e achatado, com cabeça prognata, quadrangular e peças bucais bem desenvolvidas, antenas variando de 4 a 5 artículos, órgãos visuais constituídos por estemas separados, pernas com tarsos longos,

não articulados, terminando em duas garras (Hamada & Azevêdo, 2012). A larva de Corylidalidae possui 8 pares de filamentos abdominais laterais e um par de falsas pernas anais, cada uma com dois ganchos no ápice do abdômen e seu tamanho pode variar entre 25 a 90 mm, já a larva de Sialidae, varia entre 10 a 25mm e possui 7 pares de filamentos abdominais laterais e um filamento longo no ápice do abdômen (Hamada & Azevêdo, 2012). As larvas de Megaloptera são consideradas predadoras de topo de cadeia trófica em ambientes aquáticos (Hamada & Azevêdo, 2012). A presença ou ausência de predadores de topo tem efeito sobre toda a comunidade, podendo inclusive influenciar a produtividade e a ciclagem de nutrientes (Hillebrand, 2002), o que denota potencial para bioindicadores pela sua representatividade ecossistêmica. Quanto às relações filogenéticas de Megaloptera, Conteras-Ramos (2004), por meio de análises cladísticas, questiona a monofilia da família Corydalidae, apresentando Sialidae (resgatada como monofilética na análise) e duas Subfamílias de Corydalidae, denotando que Chauliodinae pode ser mais relacionada à Sialidae do que Corydalinae.

Figura 4. Larva de Megaloptera; Retirada de http://www.ecospark.ca/index/gallery?alderfly.

1.7. A ordem Coleoptera

Os coleópteros possuem distribuição cosmopolita com cerca de 350 mil espécies descritas (Lawrence & Britton, 1994). No Brasil, já foram descritas 28 mil espécies em 105 famílias, e estima-se que haja mais 130 mil novas espécies a serem registradas (Casari & Ide, 2012).

Quanto à morfologia das larvas de Coleoptera (Figura 5), temos uma capsula cefálica bem desenvolvida e geralmente esclerosada, sultura adfrontal ausente, antenas com quatro ou menos antenômeros, seis ou menos estemas de cada lado da cabeça, mandíbulas do tipo mastigador, glândula de seda labial mediana ou fiandeiras ausentes, abdômen sem falsas pernas ventrais com colchetes, sistema respiratório geralmente peripnêustico, nunca com o espiráculo metatorácico funcional, e espiráculos, se cribriformes, nunca com cicatriz edcisial completamente envolvida pela placa crivada (Casari & Ide, 2012). Os besouros possuem um importante papel na reciclagem de nutrientes, principalmente na fase larval (Casari & Ide, 2012) e também servem de alimento para anfíbios, peixes e outros invertebrados, estando suscetível a dinâmica do ambiente (McGeoch, 1998; Casari & Ide, 2012). Diante dessa relação com o ecossistema, a sua diversidade, abundância de espécies como também o fato de ocuparem diversos nichos e apresentarem diversidade de hábitos alimentares (só não ocorrendo hematofagia), corroboram ainda mais o seu uso como bons indicadores biológicos (Marioni et al., 2001, Silva & Silva, 2011). A relação das subordes de Coleoptera é controversa (Vanin & Ide, 2002; Casari & Ide, 2012). A partir de caracteres da asa membranosa, surgiu a relação de parentesco entre as subordens: (Polyphaga(Archostemata(Adephaga + Myxophaga))), baseado em Kukalová- Peck & Lawrence (2004). Essa posição basal da subordem Archostemata, quando somente grupos viventes são considerados, é corroborada inclusive por dados moleculares (Caterino et al., 2002) e a relação de grupos-irmãos entre Archostemata e os demais Coleopteras também encontra corroboração nas sequência de registo fossilífero (Casari & Ide, 2012). Em relação às subordens viventes, a monofilia dos grupos é suportada por caracteres autapomórficos, corroborados pelas transformações dos caracteres dos estágios imaturos (Casari & Ide, 2012). Os Archostemata são caracterizados principalmente por autapomorfias associadas aos hábitos borqueadores das larvas (endocarena dorsal, mandíbulas tridentadas e robustas, lígula esclerosada, pernas curtas e tergos com ampolas) (Lawrence et al., 1999). Caracteres larvais derivados de Myxophaga poderia ter evoluído a partir hábito de consumo de algas em substrato úmidos (Lepiceridae, Shpaeriusidae) ou higropétricos (Hydroscaphidae, Torridincolidae) (Beutel et al., 1999). Os caracteres derivados de Polyphaga se devem a presença de escleritos presternais e propleura interna no tórax (Casari & Ide, 2012). Outra modificação importante é a perda da

flexão da zona de flexão da asa membranosa, o que é uma apomorfia da linhagem eucinetoide (Hansen, 1997). Outra relação filogenética, apontado por Crowson (1955), considera Archostemata como grupo-irmão do caldo Polyphaga e Myxophaga – (Archostemata (Adephaga(Polyphaga e Myxophaga))). A hipótese foi corroborada por Beutel & Haas (2000), com base na articulação da base das asas.

Figura 5. Larva de Coleoptera. Retirada de http://www.performance-vision.com/123.htm.

1.8. A ordem Odonata

A estimativa é que existam 10 mil espécies de Odonata no mundo, no entanto, apenas cerca de 5.400 já foram descritas, das quais 2.600 pertencem à subordem Zygoptera (Figura 6) e mais de 2.800 à subordem Anisoptera (Figura 7) (Davies & Tobin 1984; 1985). No Brasil, são 828 espécies conhecidas, distribuídas em 14 famílias e 140 gêneros, mas ainda se estima que possam ser descritas mais 1.500 espécies (Costa et al., 2012). As ninfas de Odonata são aquáticas e predadoras, alimentam-se de larvas de outros insetos ou pequenos invertebrados, e sua morfologia corresponde a um aparelho bucal especializado, com o lábio em forma de máscara, dobrado sob a cabeça, com peças móveis distais que atuam como pina para captura das presas (Costa et al., 2012). Elas são agrupadas de acordo com sua ecologia, podendo ser errantes, vivendo agarradas em raízes de plantas submersas; rastejantes, vivendo no fundo, sobre ou sob pedras do leito de rios, riachos, lagos, lagoas, igarapés, etc; fossoriais, vivendo enterradas no substrato (Costa et al., 2012). Os odonatos são bons indicadores biológicos, as ninfas de algumas espécies necessitam de condições ambientais com o mínimo de influência antrópica, pois alterações drásticas provocam mudanças ecotópicas e ecológicas e assim resultam no desparecimento de 16

algumas espécies, como aconteceu com Acanthagrion taxaense Santos e Minagrion ribeiroi Santos (Coenagrionidae) na Lagoa e Canal das Taxas, Recreio das Bandeiras, Rio de Janeiro (Costa et al., 2012). Alguns estudos comportamentais, termorreguladores, de defesa territorial e reprodutiva, denotaram potencial como uso de biomonitoramento, ressaltando as espécies de Chalcopterys Selys (Polythoridae), da região amazônica, e Hetaerina e Mnesarete (Calopterygidae), da região Sudeste, como prováveis indicadores (Costa et al., 2012). A ordem Odonata é subdividida em 3 subordens, Anisoptera, Zygoptera e Anisozygoptera (Costa et al., 2012). Essa divisão foi estruturada por Tyllyard & Fresaer (1938) e é mantida até hoje. As propostas mais recentes a respeito da filogenia desse grupo são de Rehn (2003) e Grimaldi & Engel (2005). A primeira é baseada em um estudo morfológico do exoesqueleto, tendo 9 sinapomorfias definindo essa ordem (Costa et al., 2012). O grupo monofilético Zygoptera foi sustentado por 6 sinapomofias, e o grupo Anisoptera, por 9 sinapomorfias (Costa et al., 2012). O cladograma proposto por Rhen (2003) aborda as afinidades entre os gêneros, enquanto Grimaldi & Engel (2005) se restringiram até o nível de superfamília, o que o tornou mais simples (Costa et al., 2012).

Figura 6. Ninfa de Odonata da subordem Zygoptera. Retirada de http://www.keywordsking.com/Y29lbmFncmlvbmlkYWUgbGFydmFl/htm.

Figura 7. Ninfa de Odonata da subordem Anisoptera. Retirada de http://bugguide.net/node/view/253232.htm.

1.9. A ordem Diptera

Os dípteros estão entre as quatro ordens megadiversas de insetos holometábolos, compreendendo cerca de 153.000 espécies descritas (sem incluir as espécies fossilizadas) em cerca de 160 famílias (Thompson, 2008). Na região Neotropical, são reconhecidas cerca de 31 mil espécies em 118 famílias (Amorin, 2009). Quanto à morfologia do inseto adulto, o comprimento é variável (cerca de 0,5 mm, em alguns Ceratopogonidae, a 60mm, em alguns Mydidae), possuem os olhos compostos, podendo ser holópticos ou dicópticos, gena, subgena, vértice, fronte , face , clípeo e pós- crânio, incluindo occipício e pós-gena, as antenas variam entre as famílias (podem ser multiarticuladas e, em algumas famílias, os artículos e os flagelos se diferenciam), as peças bucais podem ser do tipo: sugador-lambedor não perfurante e sugador, o tórax é dividido em pro, meso e metatórax, a mesopleura está subdividida em: anepisterno, catepisterno, anepímero e catepímero, as pernas possuem tarsos pentâmeros e são bastantes variáveis, apenas o par de asas mesotorácicas é funcional e desenvolvido, a asa posterior é modificada em estrutura chamada balancim, o abdômen é composto por 11 segmentos, lateralmente estão os espiráculos, o órgão copulador masculino (edeago) está localizado atrás do esternito IX e o da fêmea entre os esternitos VII e IX (dependendo do grupo) (Carvalho et al. 2012). A morfologia dos imaturos é extremamente variável, em forma, estrutura e ocupação de hábitats, eles não possuem perna verdadeira, cerca da metade das espécies é aquática, podendo ser larvas decompositoras ou predadoras, e as espécies parasitoides possuem fase ativa no primeiro ínstar larval, passando por hiperrmetamorfose (Carvalho et al. 2012).

Abordando principalmente a fauna aquática, as larvas de Chironomidae (Figura 8) destacam-se dos demais insetos bentônicos pelo grande número de espécies e representatividade numérica (Armitage et al. 1995), como também pela facilidade e rapidez na colonização dos diferentes biótopos, além de ser um importante elo entre os produtores e os demais níveis da cadeia trófica (Benke, 1998). Sendo assim, essas características tornam a família um bom instrumento de pesquisa para entender as relações ecológicas da fauna com o meio (Mazão, 2013). A filogenia dos dípteros ainda não possui uma hipótese com ampla aceitação na literatura, principalmente para as linhagens que divergiram primeiro na evolução do grupo e para os “Acalyptratae”. As hipóteses mais recentes denotam, entre os maiores grupos, Bibionomorpha, Culicomorpha, Brachycera, Muscomorpha, Eremoneura, Cyclorrhapha, Schizophora e Calyptrate como monofiléticos e Orthorrhapha e “Aschiza” como parafiléticos (Wiegman et al. 2011).

Figura 8. Larva de Diptera. Retirada de http://www.troutnut.com/specimen/989.htm.

1.10. A ordem Hemiptera

Os hemípteros correspondem à mais diversa ordem entre os insetos hemimetábolos, ocupando os ambientes aquáticos e terrestres (podendo até ser semiaquáticos), apresentam geralmente uma coloração uniforme, com predomínio de negro ou castanho, com algumas espécies com cores brilhantes (vemelho, azul, amarela ou verde) (Grazia et al., 2012). São conhecidos cerca de 89 mil espécies em todo mundo, com uma estimativa de chegar a 150 mil espécies, elas são distribuídas em 4 subordens: Sternorryncha, com cerca de 16 mil espécies, Auchenorryncha, com cerca de 35 mil espécies, e Heteroptera, com cerca de 38 mil espécies (Grazia et al., 2012). No Brasil, são conhecidos 791 espécies de Sternorryncha, 4 mil de

Auchernorryncha e 5.400 espécies de Heteroptera, com estimativa de 30 mil espécies para toda a ordem no país (Grazia et al., 2012). Em relação à filogenia dos himipteros, o grupo Sternorryncha é tido como grupo- irmão de Auchernorryncha, Coleorryncha e Heteroptera (Grazia et al., 2012). Há propostas que Auchernorryncha seja subdividido em Fulgomorpha (= Achaeorryhncha) e Cicadomorpha (=Cypeorryncha), passando a ter 5 subordens para Hemiptera (Grazia et al., 2012). A subordem Sternorryncha Amyot & Serville 1843, está divida em quatro superfamílias, Aleyrodoidea, Alphidoidea, Ccoidea e Psylloidea (Carver et al., 1991). Os esternorrincos são terrestres, pequenos, variando de 1 mm a 5 mm de comprimento, cabeça opisgonata, com o rostro emergindo da parte posterior da cabeça, antena normalmente longa e filiforme, podendo ser ápteros ou alados e os tarsos monômeros ou dímeros (Grazia et al., 2012). A subordem Auchenorrhynca Dumeril, 1806, é considerado um grupo monofilético por alguns autores (e.g. Grilmaldi & Engel, 2005), outros já não o consideram como um grupo monofilético (e.g. Sorensen et al., 1995). Segundo Sorensen et al.(1995) Auchernorryncha poderia ser dividido em Clypeorrryncha e Acheorryncha. Os representantes dessas subordens são terrestres, variando de 3 mm a mais de 100 mm de comprimento, possuem antena cerdiforme, podendo ser curta ou longa, rostro com 3 artículos, asa anterior membranosa, podendo ser levemente esclerosada, mas, em geral, com ápice membranoso e tarsos trímeros (Grazia et al., 2012). A subordem Heteroptera Linnaeus 1758, é composto por 7 infraordens, segundo Cobben (1978), sendo elas: Enicocephalomorpha, Dipscoromorpha, Gerromorpha, Nepomorpha, Leptopodomorpha, Cimicomorpha e Pentatomomorpha. . Os membros desse grupo ocupam meios diversificados, podendo ser terrestre, aquáticos ou semi-aquáticos (Grazia et al., 2012). Os heterópteros apresentam uma coloração bem variável e um corpo variando de 0,5 a 110mm de comprimento, lábio inserido anteriormente na cabeça, tentório reduzido, asa anterior modificada em hemiélitro, sendo coriácea anteriormente e membranosa posteriormente, omatídeo e freno, constituem caracteres diagnóstico (Grazia et al., 2012). As ninfas se assemelham aos adultos e ocupam geralmente o mesmo hábitat (Schuh & Slater, 1995). Os hemípteros, segundo Brown (1977), estão dentre os insetos com uso potencial para programas de monitoramento ambiental, junto com as ordens Coleoptera, Diptera, 20

Hymenoptera, Lepidoptera e Orthoptera, ainda de acordo com esse autor. O papel desempenhado por eles no ecossistema é a de ciclagem de nutrientes, a decomposição e a produtividade secundária, polinização, o fluxo de energia, a predação, a dispersão de sementes, a regulação das populações de plantas e de outros organismos (Price, 1984). Oliveira et al. (2014) aponta trabalhos que insetos adultos das famílias Gerridae e Belostomatidae possuem a tendência de acumular metais pesados em ambientes contaminados, sendo o hábito alimentar predatório desse insetos um agravante para o acumulo de metais pesados (Corbi et al., 2011). O trabalho do Tchakonté et al. (2015) corrobora com fato de que as famílias Gyrinidae, Gerridae e Vellidae são negativamente influenciados por agentes poluentes antropogênicos em corpos d’águas, o que causa o desaparecimento dos táxons mais sensíveis.

Figura 9. Ninfa de Hemiptera. Retirada de http://bugguide.net/node/view/281408/.

2. Objetivos

Por meio de técnicas de monitoramento biológico da qualidade d’água, esse trabalho pretende realizar um levantamento faunístico de insetos aquáticos, com as já referidas ordens, para Bacia Hidrográfica do Rio Pardo, Estado de São Paulo, que está inserida na porção norte da Bacia do Paranapanema e Leste da Bacia do Paraná (Peron & Piroli, 2011), analisando dois riachos, que não foram significativamente afetados pelas atividades antrópicas, pertencentes à bacia. A partir dos dados de diversidade obtidos em cada riacho e utilizando ferramentas estatísticas, inferir a integridade ambiental da área em questão.

Além dos objetivos diretos do trabalho, este contribuiu ainda para o treinamento do aluno tanto em taxonomia de insetos aquáticos quanto para técnicas de avaliação ambiental de ecossistemas aquáticos.

3. Material e métodos

3.1. Áreas de estudo

O trabalho foi realizado em riachos da Bacia Hidrográfica do Rio Pardo, Noroeste do Estado de São Paulo, a qual está inserida na porção norte da Bacia do Paranapanema e Leste da Bacia do Paraná, entre os paralelos 22° 15‟e 23° 15‟ de Latitude Sul e os meridianos 48º 15‟ e 50º 00‟ de Longitude Oeste, possuindo uma área de 4.801,095 km2 (Peron & Piroli, 2011). A Bacia Hidrográfica do Rio Pardo abrange 8.993 km² (de área drenada) e envolve 27 municípios, totalizando uma população de 1.092.477 habitantes, tendo o setor agrícola como a base da economia dessa Bacia (Sistema Integrado de Gerenciamento de Recursos Hídricos do Estado de São Paulo). Para gerenciar esse importante recurso hídrico, em 1996, foi instalado o Comitê da Bacia Hidrográfica do Rio Pardo, no qual possui a sede da secretaria executiva em Ribeirão Preto, SP. Na Figura 10, segue a área de abrangência da bacia. Foram realizadas coletas em diversos pontos ao longo de dois riachos que fazem parte da Bacia Hidrográfica do Rio Pardo, um localizado no município de Serrana, SP, conhecido como Córrego do Matadouro (Figura 11), e outro no município de Cassia dos Coqueiros, SP, nomeado de Ribeirão da Boiada (Figura 12). O método de amostragem utilizando réplicas permitiu o tratamento dos dados para a construção dos modelos estatísticos. Abaixo são apresentadas fotos de ambos os riachos amostrados, nos dois períodos em que as coletas foram realizadas, outubro e março (Figuras 13 a 20), como também as fichas cadastrais de cada um dos riachos, gentilmente fornecido pelo Comitê da Bacia Hidrográfica do Rio Pardo (Figuras 21 e 22).

Figura 10. Bacia Hidrográfica do Rio Pardo. Retirado de http://www.sigrh.sp.gov.br/cbhpardo/.

Figura 11. Local de coleta no município de Serrana, SP.

Figura 12. Local de coleta no município de Cássia dos Coqueiros, SP.

Figura 13. Córrego do Matadouro em Serrana – SP (Outubro de 2015).

Figura 14. Córrego do Matadouro em Serrana – SP (Março 2016).

Figura 15. Córrego do Matadouro em Serrana – SP ( Outubro de 2015).

Figura 16. Córrego do Matadouro em Serrana – SP ( Outubro de 2015).

Figura 17. Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros – SP (Outubro de 2015).

Figura 18. Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros – SP (Março de 2016).

Figura 19. Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros – SP (Outubro de 2015).

Figura 20. Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros – SP (Março de 2016).

Figura 21. Ficha cadastral com informações a repeito do Córrego do Matadouro em Serrana (SP). Fornecida pelo Comitê da Bacia Hidrográfica do Rio Pardo. (http://www.sigrh.sp.gov.br/cbhpardo/apresentacao)

Figura 22. Ficha cadastral com informações a repeito do Ribeirão da Boiada, córrego no qual passa por Cássia dos Coqueiros (SP) e Mococa (SP). Fornecida pelo Comitê da Bacia Hidrográfica do Rio Pardo (http://www.sigrh.sp.gov.br/cbhpardo/apresentacao).

3.2. Coleta, identificação e preparação do material

Foram realizadas quatro grandes coletas, duas em cada um dos pontos das áreas de estudo, sendo uma em período seco (outubro de 2015) e outra em período chuvoso (março de 2016). A realização de diferentes coletas, preferencialmente em períodos de pluviosidade diferentes, tem o intuito de avaliar a integridade do ambiente e garantir a confiabilidade do trabalho, amostrando a possível influência do regime de chuvas sob a fauna. Foram levantados dados abióticos dos riachos amostrados, a fim de buscar padrões distribucionais das espécies, como a velocidade da água, mensurada com o uso do fluxômetro, a vazão, usando o produto da velocidade média por uma área de secção feita no riacho (Lind, 1979), a profundidade e largura, medidas com o auxílio de uma trena, o pH , condutividade, turbidez e oxigênio dissolvido, utilizando o Analisador Multiparâmetro Horiba, a temperatura ambiente e da água, mensuradas com o auxílio de um termômetro. As coletas foram realizadas durante o dia nos leitos dos riachos, totalizando 12 pontos de coleta, 6 em cada riacho, sendo que, em cada ponto amostrado, foi delimitada uma área de 1 m de comprimento, a qual foi repetida três vezes a montante de cada riacho. O método de amostragem foi por meio de uma rede do tipo surber, própria para coleta de insetos imaturos aquáticos, que permite a padronização da coleta, pois possui uma área fixa de 30x30cm, sendo possível visualiza-la na Figura 23. O material coletado foi triado em bandejas, separado e conservado em álcool 80%, todos os espécimes foram devidamente etiquetados e identificados. A identificação dos táxons foi realizada até o nível de gênero e baseada nas chaves de Rafael et al. (2012), Fernández & Domínguez (2001), Dominguéz & Fernández (2009), Costa & Simonka (2006), Dominguez et al. (2006), Heackman (2006), Mariano & Froehlich (2007), Souza et al. (2007), Passos, Nessimian & Junior (2007), Azevedo & Hamada (2008), Calor (2007) e Lecci & Froehlich (2007). Segundo Juqueira & Campos (1998), a identificação apenas até o nível de família é suficientemente precisa, pois quando se é utilizado índices como o BMWP, os scores atribuídos de acordo com a tolerância a famílias são padronizado para as espécies a elas pertencentes. Contudo, esse trabalho contrastou os dados nos dois níveis de identificação, gênero e família, para averiguar qual o mais preciso para os riachos amostrados, de acordo com a metodologia adotada. 31

Figura 23. Coleta de Insetos Aquáticos em Cássia dos Coqueiros em Março de 2015.

3.3. Análise dos dados

As matrizes obtidas foram analisadas do ponto de vista multivariado através de ordenações (DCA) e análise de agrupamento (UPGMA ou TWINSPAN) (Romesburg, 1984; Digby & Kempton, 1987; Manly, 1994; Gauch, 1995; Jongman et al., 1995, Legendre & Legendre, 1998; Krebs, 1999; McCune & Mefford, 1999). No caso da análise de agrupamento através da UPGMA, esta foi baseada em uma matriz de similaridade de Morisita-Horn (Wolda, 1981). A riqueza foi avaliada através curvas de rarefação (Hulbert, 1971; Simberloff, 1972) e de métodos não paramétricos de estimativas de riqueza (Magurran, 2004). Por meio de modelos lineares (Sokal & Rohlf, 1995; Underwood, 1997), identificamos fatores ambientais preditivos da riqueza, abundância e composição faunística nos riachos estudados. Para realizar as análises, utilizamos os programas PC-ORD 4® (McCune & Mefford, 1999) e EstimateS 9.0 (Colwell, 2004). Foram atribuídos scores para as famílias coletados, de acordo com o BMWP adaptado para o Rio das Velhas por Junqueira & Campos (1998) (Tabela I). Esse trabalho apenas contabilizou as famílias dos insetos aquáticos imaturos, excluindo as outras famílias de

macroinvertebrados bentônicos. Os scores são atribuídos de acordo com a sensibilidade das famílias a agentes poluentes presentes nos ambientes aquáticos. Os scores são somados pela presença das famílias no ambiente aquático e o total resulta na classificação da qualidade da água (Tabelas II). Vale salientar que para um trabalho de biomonitoramento, recomenda-se que a avaliação seja feita de forma periódica ao longo de vários anos para resultados mais robustos. É recomendado que se elabore um BMWP para os locais de análise, pois esse índice é muito especifico por ser dependente das características bióticas dos locais, pois esse índice é calculado de acordo com as qualidades saprobióticas do local com base na abundância dos macroinvertebrados bentônicos presentes no local (Alba- Tercedor & Sanches-Ortega, 1988; Junqueira & Campos, 1998; Sniffer, 2007).

Tabela I. BMWP para Insetos Aquáticos Imaturos. Modificado de Junqueira & Campos 1998.

Ephemeroptera Siphlonuridae 10 Leptophlebidae 8 Leptohyphidae 7 Baetidae 4 Plecoptera Gripopterygidae 10 Perlidae 8 Lepdoptera Pyralidae 10 Trichoptera Odontoceridae 10 Helicopsychidae 10 Hydrobiosidae 8 Philopotamidae 8 Leptoceridae 7 Polycentropodidae 7 Glossomatidae 6 Hydroptilidae 6 Hydropsychidae 5 Coleoptera Hydroscaphidae 10 Gyrinidae 6 Dysticidae 5 Elmidae 4 Hydrophilidae 4 Hemiptera

Hebridae 8 Vellidae 7 Naucoridae 5 Belostomatidae 5 Corixidae 5 Nepidae 5 Odonata Calopterygidae 8 Coenagrionidae 6 Gomphidae 5 Libellulidae 5 Diptera Dixidae 8 Simuliidae 5 Athericidae 4 Empidoidea 4 Tabanidae 4 Ceratopogonidae 3 Tipulidae 3 Culicidae 3 Chironomidae 2 Psychodidae 2 Stratiomyidae 2 Syrphidae 2 Megaloptera Corydalidae 5

Tabela II. Classes de qualidade da água feita para classificação feita para análise do BMWP. Modificada de Junqueira & Campos (1998).

Classe Score Qualidade da Água I ≥ 86 Excelente II 64 – 85 Bom III 37 – 63 Satisfatório IV 17 – 36 Ruim V ≤ 16 Muito Ruim

4. Resultados

Os resultados obtidos e aqui apresentados serviram de base para discutir a integridade e a condição ecológica encontradas nos dois riachos pertencentes à Bacia Hidrográfica do Rio Pardo. As análises foram feitas e interpretadas separadamente para os níveis de família e gênero, exceto para a Ordem Diptera, correspondente às famílias Simulidae, Chironomidae e Culicidae, devido a dificuldade que essa ordem apresenta para a identificação até o nível taxonômico de gênero. Abaixo, seguem os dados abióticos (Tabela III) e bióticos (Tabela IV), obtidos nos dois períodos de coleta (seca e chuva).

Tabela III. Dados abióticos coletados no Córrego do Matadouro em Serrana(SP) e no Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros (SP).

Estação Seca Chuvosa Córrego do Ribeirão da Córrego do Ribeirão da Localidade Mataouro Boiada Matadouro Boiada Coordenadas S 21o14’ 34” S 21o17’43” S 21o14’ 34” S 21o17’43”

geográficas W 47o35’30” W 47o8’42” W 47o35’30” W 47o8’42” Data da Coleta 22/10/2015 22/10/2015 22/03/2016 22/03/2016

Horário da Coleta 09:00 13:00 10:00 13:00

Temperatura 27,5 26 22 23 Ambiente (ºC) Temperatura do 24 21,5 25,4 24,77 riacho (ºC) Largura do 2,05 3,21 5.23 11.1 Riacho (m) Profundidade 7,9 14,08 15.3 27.07 média (cm) Vazão (m3/s) 0,03 0,246 0.045 0.492

pH 7,5 8,1 6.7 8.7

Condutividade 0,161 0,166 0.13 0.13 (mS/cm) Oxigênio 8,71 9,48 3.3 3.4 dissolvido (mg/l) Salinidade (mg/l) 0 0 0.06 0.06

Turbidez (NTU) 3 2 3 2

Predomínio Remanso Remanso Corredeira Corredeira

Ordem 1 1 1 1

Classe 4 2 4 2

Tabela IV. Dados bióticos coletados em cada coleta, sendo a primeira coleta ocorrida em Outubro de 2015 (período de seca) e a segunda em Março de 2016 (período de chuvas).

ORDEM FAMILIA Gênero Córr. Do Matadouro 1 Córr. Do Matadouro 2 Rib. Da Boiada1 Rib. Da Boiada 2 Calamoceratidae Phylloicus 79 4 5 0 Ecnomidae Austrotinodes 0 1 1 9 Hydrobiosidae Atopsyche 0 0 0 1 Leptonema 0 13 0 4 Trichoptera Hydropsychidae Smicridea 0 15 4 5 Oecets 2 0 1 0 Leptoceridae Triplectides 0 0 0 2 Polycentropodidae Polyplectropus 0 0 50 0 Calopterygidae Hetaerina 1 0 0 0 Odonata Gomphidae Peruvigomphus 14 0 1 0 Plecoptera Perlidae Anacroneuria 0 2 0 0 Megaloptera Corydalidae Corydalus 0 0 0 2 Heterelmis 3 0 49 2 Hexacylloepus 1 0 11 0 Coleoptera Elmidae Microcylloepus 0 0 1 0 Xenelmis 0 0 0 1 Americabaetis 0 0 6 0 Apobaetis 0 0 1 0 Baetidae Callibaetis 0 0 2 0 Cloeodes 0 0 1 0 Ephemeroptera Caenidae Caenis 0 0 0 6 Traverhyphes 4 0 1 0 Leptohyphidae Tricorythopsis 0 0 1 3 Leptophlebidae Farrodes 0 0 1 0 Chironomidae 155 3 214 2 Dptera Culicidae 2 0 28 0 Simulidae 0 1 11 5 Hemiptera Vellidae Rhagovelia 0 1 0 0 Riqueza 9 8 19 12 Abundância 261 40 389 42

A curva de rarefação (Figura 24), que relaciona a quantidade de coletas e a quantidade de espécimes coletados, juntamente com a curva do coletor (Figura 25), a qual infere, de forma acumulativa, o número de famílias dos espécimes encontrados com as coletas, denotam que o número de coletas não foi suficiente para estimar a riqueza total da área amostrada.

Figura 24. Curva de Rarefação.

Figura 25. Curva do Coletor.

Os Diagramas de Whittaker (Figuras 26 e 28) foram obitidos ordenando-se as espécies a partir das mais comuns para as mais raras no eixo das abscissas e a abundância no eixo das ordenadas (Melo, 2008), a fim de contrastar os dados a nível de gênero e a nivel de família, das identificações de insetos aquáticos. Também foram feitos gráficos de proporções de cada diagrama feito para melhor vizualição da relação dos gênero/famílias coletados em cada caso (Figuras 27 e 29).

Figura 26. Diagrama de Whittaker – Abundância de Insetos Aquáticos, em nível de família, para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo.

Figura 27. Proporção da Abundância de Insetos Aquáticos, em nível de família, para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo.

Figura 28. Abundância de Insetos Aquáticos, em nível de gênero (exceto dípteros), para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo.

Figura 29. Proporção da Abundância de Insetos Aquáticos, em nível de gênero (exceto para dípteros), para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo.

Por meio do indicador Jacknife 1, o qual considera as espécies raras como aquelas que ocorrem em apenas uma amostra, a riqueza estimada foi de 37,5 para gênero e 22,5 para família. Para os indicadores Jacknife 2 e Chao 2, os gêneros raros seriam aqueles que ocorrem 39

em até 2 amostras. Por meio deles, as riquezas estimadas foram 46,16 e 35,53 para gênero e 24,41 e 20,15 para família respectivamente. Para o estimador ICE, o pesquisador deve definir o número de amostras, entre 1 e 5, que as espécies devem ser consideradas raras (Santos, 2003), no caso, adotamos 3 amostras. A estimativa de riqueza para o estimador ICE foi de 44,43 para gênero e 23,47 para família. Já o Bootstrap interpreta os dados, diferentemente dos outros estimadores, considerando a frequência de todos os espécimes coletados, não só os raros, sendo o seu valor de 31, 88 para gênero e 19,48 para família. Os resultados dos estimadores em relação às espécies raras (tanto para gênero quanto para família) amostradas estão nas Tabelas V e VI e os seus respectivos valores estatísticos nas Tabelas VII e VIII, juntamente com o Índice de Shannon e abundância.

Tabela V. Relação das espécies raras por estimador de riqueza, considerando apenas o nível taxonômico de gênero. ORDEM FAMILIA Gênero Jacknife1 Jacknife 2 e Chao 2 ICE Calamoceratidae Phylloicus Ecnomidae Austrotinodes X Hydrobiosidae Atopsyche X X X Leptonema X X Trichoptera Hydropsychidae Smicridea X Oecets X X Leptoceridae Triplectides X X X Polycentropodidae Polyplectropus X X Calopterygidae Hetaerina X X X Odonata Gomphidae Peruvigomphus X X Plecoptera Perlidae Anacroneuria X X X Megaloptera Corydalidae Corydalus X X X Heterelmis X Hexacylloepus X X Coleoptera Elmidae Microcylloepus X X Xenelmis X X X Americabaetis X X X Apobaetis X X X Baetidae Callibaetis X X X Cloeodes X X X Ephemeroptera Caenidae Caenis X X X Traverhyphes X X Leptohyphidae Tricorythopsis X X Leptophlebidae Farrodes X X X Chironomidae Dptera Culicidae X X Simulidae X Hemiptera Vellidae Rhagovelia X X X

Tabela VI. Relação das espécies raras por estimador de riqueza, considerando apenas o nível taxonômico de família.

ORDEM FAMILIA Jacknife 1 Chao 2 e Jacknife 2 ICE Calamoceratidae X Ecnomidae X Hydrobiosidae X X Trichoptera Hydropsychidae X Leptoceridae X Polycentropodidae X X X Calopterygidae X X X Odonata Gomphidae X X Plecoptera Perlidae X X X Megaloptera Corydalidae X X X Coleoptera Elmidae X Baetidae X X X Caenidae X X X Ephemeroptera Leptohyphidae X X Leptophlebidae X X X Chironomidae Dptera Culicidae X X Simulidae X Hemiptera Vellidae X X X

Tabela VII. Compilação dos resultados dos estimadores de diversidade, juntamente com as informações de Abundância e Riqueza, considerando o nível taxonômico de família.

Local Jacknife Chao Jacknife ICE Bootstrap Ind. Abundância Riqueza 1 2 2 Shannon Serrana 17 19.5 17 67* 14.5 1.3 301 13 Cássia dos 20 18.7 20 40 17.5 1.7 431 16 Coqueiros Bacia Hidrográfica 22.5 20.1 24.4 23.4 19.4 1.7 732 19 do Rio Pardo

Tabela VIII. Compilação dos resultados dos estimadores de diversidade, juntamente com as informações de Abundância e Riqueza, considerando o nível taxonômico de gênero.

Local Jacknife Chao Jacknife ICE Bootstrap Ind. Abundância Riqueza 1 2 2 Shannon Serrana 20 25 20 92* 17 1.41 301 15 Cássia dos Coqueiros 34.5 37.2 34.5 94. 29.7 1.8 431 25 6* Bacia Hidrográfica do 37.5 35.5 46.1 44. 31.8 1.9 732 28 Rio Pardo 4 41

Para verificar a influência das condições abióticas sobre a abundância da fauna de insetos aquáticos, foram feitas regressões lineares. Após a análise de correlação dos dados entre as variáveis, em um primeiro momento, observamos a relação entre temperatura ambiente, condutividade e oxigênio dissolvido; temperatura do riacho e salinidade; largura do riacho, vazão e salinidade; profundidade média e vazão; vazão e pH; condutividade e oxigênio dissolvido (Tabela IX), no segundo momento, incluímos a abundância como variável independente (riqueza padronizada), e obtivemos correlação positiva entre ela, a temperatura ambiente, a condutividade e o oxigênio dissolvido (Tabela X).

Tabela IX. Teste de correlação entre as variáveis abióticas.

Condições Temperatura Temperatura Largura Profundidade Vazão pH Condutividade O2 dissolvido Salinidade Turbidez riacho Abióticas Ambiente do Riacho média (m³/s) (mg/l) (NTU)

Temperatura 1 ------ambiente Temperatura -0.636 1 ------do riacho Largura do -0.694 0.466 1 ------riacho Profundidade -0.683 0.301 0.978 1 ------média (cm) Vazão (m³/s) -0.296 -0.095 0.827 0.891 1 ------pH 0.1485 -0.368 0.549 0.614 0.899 1 ------Condutividade 0.927 -0.846 -0.777 -0.698 -0.303 0.0973 1 ------Oxigênio 0.932 -0.842 -0.772 -0.694 -0.298 0.106 0.999 1 ------dissolvido (mg/l) Salinidade -0.9578 0.788 0.794 0.735 0.348 -0.067 -0.994 -0.995 1 --- (mg/l) Turbidez 0.056 0.528 -0.504 -0.647 -0.885 -0.878 -0.074 -0.075 0 1 (NTU)

Tabela X. Teste de correlação entre as variáveis abióticas incluindo a abundância como variável independente.

O2 Condições Temp. Temp. Largura Profundidade Vazão Turbidez pH Condutividade dissolvido Salinidade Abundância Ambientais Ambiente Riacho Riacho média (m³/s) (NTU) (mg/l) Temperatura 1 ------ambiente Temperatura -0.636 1 ------do riacho

Largura do -0.694 0.466 1 ------riacho Profundaode -0.683 0.301 0.978 1 ------média (cm) Vazão (m³/s) -0.296 -0.095 0.827 0.891 1 ------

pH 0.148 -0.368 0.549 0.614 0.899 1 ------Condutividade 0.927 -0.846 -0.777 -0.698 0.097 1 ------0.303 Oxigênio - dissolvido 0.932 -0.842 -0.772 -0.694 0.106 0.999 1 ------0.298 (mg/l) Salinidade - -0.957 0.788 0.794 0.735 0.348 -0.994 -0.995 1 ------(mg/l) 0.067 Turbidez - - 0.056 0.528 -0.504 -0.647 -0.074 -0.075 0 1 --- (NTU) 0.885 0.878 - Abundância 0.840 -0.932 -0.718 -0.601 0.156 0.979 0.977 -0.952 -0.218 1 0.204

O Biological Monitoring Working Party (BMWP) foi usado de forma a medir e comparar a integridade de cada riacho analisado (Tabelas XI e XII) e foi extrapolado para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo (Tabela XIII).

Tabela XI. BMWP para o Córrego do Matadouro em Serrana (SP).

Ordem Família Score Leptohyphidae 7 Ephemeroptera Leptophlebidae 8 Calamoceratidae Polycentropodidae 7 Trichoptera Hydropsychidae 5 Ecnomidae Leptoceridae 7 Plecoptera Perlidae 8 Gomphidae 5 Odonata Calopterygidae 8 Coleoptera Elmidae 4 Hemiptera Vellidea 7 Chironomidae 2 Diptera Culicidae 3 Simulidae 5 BMWP 76

Tabela XII. BMWP para o Ribeirão da Boiada em Cássia dos Coqueiros (SP).

Ordem Família Score Baetidae 4 Leptohyphidae 7 Ephemeroptera Leptophlebidae 8 Caenidae Calamoceratidae Polycentropodidae 7 Hydropsychidae 5 Trichoptera Ecnomidae Leptoceridae 7 Hydrobiosidae 8 Plecoptera Perlidae 8 Gomphidae 5 Odonata Calopterygidae 8 Megaloptera Corydalidae 5 Coleoptera Elmidae 4 Chironomidae 2 Diptera Culicidae 3 Simulidae 5 BMWP 86

Tabela XIII. BMWP para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo.

Ordem Família Score Baetidae 4 Leptohyphidae 7 Ephemeroptera Leptophlebidae 8 Caenidae - Calamoceratidae Polycentropodidae 7 Hydropsychidae 5 Trichoptera Ecnomidae - Leptoceridae 7 Hydrobiosidae 8 Plecoptera Perlidae 8 Gomphidae 5 Odonata Calopterygidae 8 Megaloptera Corydalidae 5 Coleoptera Elmidae 4 Hemiptera Vellidea 7

Chironomidae 2 Diptera Culicidae 3 Simulidae 5 BMWP 93

5. Discussão

Ao iniciarmos esse trabalho, hipotetizamos que se comparassemos os dois riachos dessa pesquisa, o Córrego do Matadouro, pertencete ao município de Serrana (SP), com o Ribeirão da Boiada, do municio de Cássia dos Coqueiros (SP), ao pensarmos na contaminação aquática envolvendo dejetos humanos e poluição agrotóxica, teríamos uma diferença significativa em relação à fauna de ambos os riachos, com variações representativas da diversidade e presença ou ausência de macroinvertebrados bentonicos mais sensíveis à poluição, já que a hipótese inicial era que o riacho de Serrana seria mais poluído que o de Cássia dos Coqueiros, pois este encontra-se em uma área muito mais preservada e de acesso limitado, enquanto aquele passa diretamente por uma fazenda de cana-de-açúcar e estava visivelmente mais degradado. Os resultados relacionando a poluição com as análises das condições abióticas não tiveram diferenças consideráveis. Ao observamos a Tabela III, vemos que os fatores que poderiam influenciar diretamente na distribuição dos insetos aquáticos (oxigênio dissolvido, condutividade e pH), em relação à presença de agentes poluentes entre um riacho e outro, não apresentaram diferenças significativas, embora haja, na região circundade ao Córrego do Matadouro cana de açucar e dejetos humanos (latas de alumínio, roupas e sapatos) . Ao obervamos os espécimes coletados (Tabela IV), vemos que, no período de chuva, no Córrego do Matadouro coletamos espécies muito sensíveis à poluição, fato que será dioscutido posteriomente, derrubando de vez a nossa hipótese. O trabalho teve 732 espécimes coletadas (Figura 24), que foram identificadas até o nível de gênero, exceto para os dípteros. Tivemos oito ordens de insetos aquáticos coletadas, sendo elas Ephemeropteras, Trichoptera, Plecoptera, Megaloptera, Coleoptera, Odonata, Diptera e Hemiptera, correspondendo a um total de 19 famílias e 25 gêneros (Tabela IV) encontrados.

Uma segunda hipótese seria que, ao analisarmos os nossos dados bióticos, comparando os dois níveis taxonômicos, família e gênero, teríamos resultados mais robustos ao nível de gênero, mas os estimadores mostraram que nossos resultados são mais robustos a nível de família, o que discutiremos posteriormente. Não desprezamos o fato de que as identificações a nível de gênero são mais precisas do ponto de vista ecológico do que as identificações a nível de família, na qual a ecologia é mais generalizada (Junqueira & Campos 1998; Bapitista 2008). Como denotado por Melo (2008), os padrões de distribuição de espécies são verificados pelo número de coletas e o tamanho da área, sendo diretamente proporcionais, ou seja, quanto mais se coleta, maior o número de indivíduos. Logo, existe uma necessidade de padronização para poder estimar a riqueza de duas áreas de áreas diferentes (Melo, 2008). E assim, para verificar se o número de espécimes coletados se aproximou da riqueza total da área estudada, utilizamos a curva do coletor (Colwell & Coddington, 1994), a qual indica que a quatindade de coletas não foi suficente para amostrar a diversidade de insetos aquáticos (Figura 25). Contudo, vemos uma leve tendência ao platô da curva, sinal de que não estavamos tão distantes assim de amostrar a diversidade de cada local. Fato que é corroborado pelos indices preditivos de diversidade, que analisaram a diversidade com o nível taxônomico de família (Tabela VII), no qual os valores obtidos pelos estimadores se aproximan dos dados obtido por esse trabalho. Vale salientar que as coletas foram feitas em dois períodos, estação seca (outubro de 2015) e chuvosa (março de 2016), a fim de correlatar a abundância das espécies junto com a interferência da sazonalidade. Visualmente, foi perceptível a influência da sazonalidade sobre a fauna (Figuras 13,14,17 e 18) e, posteriormente, averiguada com as análises dos dados abióticos, denotado pelo aumento da vazão, profundidade e largura dos riachos (Tabela III) e da variação na fauna (Tabela III), pela redução drástica da abundância, devido ao aumento da vazão, um dos fatos que afeta toda fauna de macroinvertebrados bentônicos, como observado por Bispo & Oliveira (1998). Ao analizarmos o Diagrama de Whittaker (Figuras 26 e 28), verificamos a menor equabilidade das espécies pelo aspecto inclinado (Melo, 2008), denotando uma grande desproporcionalidade entre o número de espécimes coletados e identificados até o nível taxonômico de familília ou gênero (Figuras 27 e 28), o que não exibe diferenças

significativas nas ordenações dos espécimes coletados e nem no arranjo proporcional, que foi configurado na curva. Proporcionalmente, a ordem Diptera foi a predominante na coleta, representando cerca de 58% dos espécimes amostrados , tanto comparados com as indetificações a nível de gênero como de família, sendo aproximadamente 51% para chironomídeos, 4 % simulídeos e 3% para culicídeos. Outro grupo abundante foram os tricópteros. Calamoceratidae, família que possui apenas o gênero Phylloicus, foi a família mais abundante da ordem, representando 12% de todos os espécimeas coletados, comparados a nível de gênero e família. Com representatividade abaixo de 10%, tivemos Elmidae, Polycentropodidae. Hydropsychidae, Gomphidae, Ecnomidae, Baetidae, Leptohyphidae, Caenidae, Leptoceridae, Perlidae, Corydalidae, Hydrobiosidae, Calopterygidae, Leptophlebidae e Vellidae. Os chrinomídeos foram mais abundantes por vários motivos. Segundo Sanseverino, Nessimian & Oliveira (1998), a ditribuição de Chironomidae está intrisicamente relacionada com a presença de matéria orgânica, e ambientes brejosos. Segundo eles, os grupos encontrados nesse tipo de ambiente são os mais diversos possíveis, sendo inversamente relacionados com a vazão da correnteza. Ainda de acordo com esses autores, a diversidade da forma alimentar desse grupo é grande, mas o característico para a maioria dos ambientes aquáticos por eles estudados é a forma coletora, que é trivialmente encontrada em ambientes de Mata Atlântica, onde há a deposição de folhas em riachos o ano inteiro. Os espécimes dessa família também apresentam maior resistência e resiliência que outras famílias de insetos aquáticos (Abilio et al., 2005; Marçal, 2014), possuindo espécie resistência a dessecação por 20 meses, como Polypedilum vanderplanki (Hinton, 1952; McLachlan, 1983). Os chironomídeos, por serem bastante cosmopolitas em países tropicais, para o BMWP, apresenta um score mínimo, como podemos observar na Tabela I. A presença de trichopteros da família Calamoceratidae, relativamente em grande quantidade, está relacionado com a forma de construção do casulo (grumixás) pelo gênero Phylloicus, o qual é construido a partir de folhas, que são cortadas em formato oval e encontradas em local de remansos de rios e córregos, podendo ser muito abundantes em determinadas localidades, dependendo do tipo da cobertura vegetal em que se insere o riacho (Moretti et al., 2007). Estes invertebrados são fragmentadores, exercendo importante papel na conversão de matéria orgânica particulada grossa em matéria orgânica particulada fina, em ecossistemas lóticos (Wallace & Webster, 1996). Embora não tenha sido avaliada a matéria 47

particulada na água, a vazão no período de outubro de 2015, comparado com março de 2016, foi significativamente menor, aumentando as zonas de remanso, locais onde a correnteza é menor, e propiciando o acúmulo de folhas. Segundo Moretti et al. (2007) e Oliveira et al. (2009), para espécimes do gênero Phyloicus, a espécie a qual a folha pertencente não é o fator determinante para a construção de casulos, e sim a dureza das folhas (aquleas que apresentam maiores teores de polifenois) e a durabildiade. A família Calamoceratidae não aparece no BMWP calculado para o Rio das Velhas, feito por Junqueira & Campos (1998), para a peninsula Ibérica, Alba-Tercedor & Ortega (1988) Alba-Tercedor (1996), e nem no BMWP revisto para a Grã Bretanha, por SNIFFER (2007). Alguns trabalhos que fazem uso do BMWP já calculado por outros autores, optam por estipular um próprio score para táxons que, como Calamoceratidae, não foram previamente estipulados, outros, como é o caso desse trabalho, não contabilizam táxons que não foram estipulados previamente. A não atribuição de um valor, como visto em trabalhos que elaboraram o BMWP, se dá pelo não aparecimento nas coletas, pois a atribuição de valores está relacionado com a quantidade de espécimes coletados em relação aos diferentes níveis saprobioóticos (Junqueira & Campos, 1998). Há também grandes disparidades de valores atribuidos ao mesmo táxon em BMWPs de autores diferentes, ou de reviões de um indice feito, isso também se dá pelo mesmo motivo apresentado. Ao analisarmos o efeito da sazonalidade com a distribuição dos insetos aquáticos, atribuímos ao aumento da vazão como o grande responsável pela grande diferença de espécimes coletados em Outubro de 2015 (650 espécimes, o que represente 88% do total) para com Março de 2016 (82 espécimes, sendo proporcionalmente 12% do total). Contudo, a Tabela X nos motra que a distribuição da abundância está diretamente relacionada com as variáveis abióticas quantidade de oxigênio dissolvido, condutividade e temperatura ambiente. Tais variaveis também se correlacionam entre si, como mostrado na Tabela IX. O oxigênio dissolvido no ambiente aquático é proveniente do gás atmosférico, bem como de organismos fotossintéticos (Lind, 1979). Nesse trabalho tivemos uma grande variação do oxigênio dissolvido, sendo da 8,71 e 9,48 mg/l (para Córrego do Matadouro e Ribeirão da Boiada), caindo para 3,3 e 3,4, respectivamente, em um período que normalmente temos um aumento dessas condições em riachos (Sguarezi et al., 2007; Bleich, Silva & Rossete, 2008). De acordo com Sipaúba & Gaglionone (1993), vários fatores contribuem para 48

a perda ou ganho de oxigênio pelas águas dos rios, como pressão, turbulência, temperatura, fotossíntese, respiração de organismos e oxidação de matéria orgânica, reações inorgânicas, águas de afluentes. Segundo Arias et al. (2007), a concentração de pesticidas e mais longo o tempo de exposição, maiores as chances dos impactos negativos atingirem níveis superiores de organização biológica, como comunidades e ecossistemas, afentando a preseça de algas macrófitas responsáveis pela produção de parte do oxigênio. Assim, se um estresse dura tempo suficiente para levar à morte uma população de organismos, afetando suas taxas de crescimento e de reprodução, impedindo assim o recrutamento de novas espécies, ele é então capaz de alterar a estrutura da comunidade, assim como visto na queda de espécimes coletados nos períodos chuvosos, além do aumento da vazão, as chuvas poderiam ter possibilitado a lixiviação de agentes poluidores. Contudo, o aparecimento de espécimes, como Corydalidae, Baetidae, Perlidae e Vellidae nesse locais, por exemplo, denotam que provavelmente houve a dissolução desses componantes não afentando a fauna desses macroinvertebrados bentônicos. Não há uma explicação clara sobre a influencia da pluviosidade no oxigênio dissolvido. Há trabalhos que encontraram uma correlção positiva, como Sguarezi et al. (2007) e Bleich , Silva & Rossete (2008), uma relação de neutralidade na variação nesses períodos de alta pluviosidade, denotado por Oliveira et al. (2008), e uma relação negativa, onde o aumento da pluviosidade reduz as condições de oxigênio dissolvio (Carvalho et al,.2000; Junior et al,. 2013). No presente trabalho, vemos uma correlação positiva, entre a temperatura ambiente, a condutividade e o oxgiênio dissolvido (Tabela VIII). De acordo com Oliveira et al. (2008), temperaturas mais quentes favorecem para a dissolução do oxigênio em água, o que pode ser uma explicação plausível para a flutuação inesperada dos dados. Segundo Hynes (1970), a temperatura é importante em ambientes lóticos, pois regula o ciclo de vida dos insetos aquáticos. Necchi et al. (2000) denotou que margens de córregos que predominam mata de galeria tendenciam à menor temperatura, devido ao sombreamento. A temperatura também pode dificultar a dissolução de gases como o oxigênio na água (Maier 1978), o que pode limitar a distribuição dos insetos aquáticos. Nesse trabalho, a correlação apresentada foi de (r = 0,840, p<0,05), denotando influência da temperatura na abundância, e de (r = 0,932, p<0,05), denotando também influência na quantidade de oxigênio dissolvido. 49

De acordo com Maier (1978), é comum que os ambientes lóticos brasileiros apresentem pH próximo do neutro, o qual verificamos nesse trabalho, de 6,7 a 8,7,. A condutividade elétrica é usada na determinação do teor de sais dissolvidos na água, (Maier, 1978), o que, nesse trabalho, ambos apresentaram baixo valor. Ao compararmos os dados físico-químicos obtidos nesse trablho com os de Sampaio (2012), que obteve os dados em 12 locais diferentes do Rio Pardo, vemos que os valores obtidos para os dois riachos aqui amostrados e pertencentes à Bacia Hidrgráfica do Rio Pardo se enquandram nos valores por ela apresentados (Tabela XIV). Ao analisarmos os indices preditivos, temos que as famílias e gêneros raras (Tabela VI e VII) não foram considerados significativos para esse trabalho, pois o fator limitante foi a pequena quantidade de coletas. Como por exemplo, o estimador ICE, no qual considerou até 3 amostras como espécie raros, não tivemos apenas a seleção de chironomídeos.

Tabela XIV. Medianas dos resultados dos parâmetros físico-químicos por trecho de amostragem no Rio Pardo. Modificado de Sampaio, 2012.

Trecho de Ph Temperatura(oC) Oxigênio Condutividade Turbidez Amostragem Dissovido Elétrica (µS) (NTU) (Mg L-1) 1 5,2 18,7 7,5 13,4 0,1 2 5,8 18,5 7,3 30,7 30,8 3 6,2 20,7 8,1 46,4 21,2 4 6,1 22,4 7,9 51,9 8,0 5 6,3 22,7 7,4 59,0 14,0 6 6,1 22,1 7,1 56,1 34,1 7 6,4 22,9 6,6 54,2 24,3 8 6,3 23,8 6,8 60,0 21,0 9 6,4 23,9 6,9 61,2 24,5 10 6,5 23,4 7,3 62,6 17,6 11 6,5 23,4 7,3 60,4 22,9 12 6,4 23,8 4,2 59,4 14,1 Máximo 6,5 23,9 8,1 62,6 34,1 Mínimo 5,2 18,5 4,2 13,4 0,1

Contudo, ao considerarmos as espécies sensíveis à agentes poluentes, no qual apareceram em apenas uma amostra, apenas para o nível de gênero temos , Hydrobiosidae (Atopsyce), Polycentropodidae, Calopterygidae (Hetaerina), Perlidae (Anacroneuria),

Corydalidae (Corydalus), Emildae (Mycrocyloepus e Xenemls), Baetidae (Americabaetis, Apobaetis, Calibaetis e Cloeodes), Leptohyphidae (Traverhyphes), Leptophlebidae (Farrodes) e Vellidae (Rhagovelia). Para nível de família, teriamos Hydrobiosidae, Polycentropodidae, Calopterygidae, Perlidae, Corydalidae, Baetidae, Caenidae, Leptophlebidae e Vellidae, resultando na exclusão de apenas duas famílias (Emildae e Leptohyphidae), ao contrastarmos os dois resultados. Ao analisarmos as Tabelas XI e XII, as quais denotam o maior score para famílias sensíveis à poluição aquática, com a exceção de Baetidae, todos as outras famílias receberam score 5 ou mais. Então, para esse trabalho, podemos considera-las como espécies raras, com base no BMWP adaptado para o Rio das Velhas (Junqueira & Campos, 1998). Os resultados apontados pelos estimadores de diversidade, quando comparados entre os dois níveis de identificação (gênero e família), demonstraram que a diversidade a nível de família foi melhor amostrada em comparação com a diversidade de gêneros (Tabelas IV e V), pois os valores apontados pelos indices (Jacknife 1 , Chao 2 , Jacknife 2, Ice e Bootstrap) se aproximaram ao da riqueza estimada para o local, tendo baixa diferença em relação a riqueza amostrada. Quando comparamos as riquez estimadas, Ribeirão da Boiada apresentou maiores valores que o Córrego do Motadouro. O índice de Shaanon denotou também que Ribeirão da Boiada apresentou maior diversidade de insetos aquáticos do que o Córrego do Matadouro e que ele amostrou a diversidade da Bacia Hidográfica do Rio Pardo nessa metodologia, para os dois níveis taxônomicos comparados, gênero e família (Tabelas VII e VIII). No entanto, não podemos inferir que o índice de Shannon, nesses locais, atingiram valores altos ou baixos, pois os valores numéricos são subjetivos e apenas relevantes quando comparados com dados anteriories (Melo, 2008), o que não consta na literatura para esses locais. Um dos motivos é a qualidade da água, classificada pelo Conselho Nacional do Meio Ambiente (CONAMA), de acordo com a Resolução no 357, de 17 de Março de 2005 (Brasil), foi de Classe 4 para o Córrego do Mataoduro e Classe 2 para Ribeirão da Boiada. O objetivo dessa classificação se dá por fonecer um controle e monitoramento desses corpos d’agua. Segundo o próprio orgão, as condições da água apresentadas por corpos d’agua de classe 2 permitem a utilização para: a) o abastecimento para consumo humano, após tratamento convencional; b) a proteção das comunidades aquáticas; 51

c) à recreação de contato primário, tais como natação, esqui aquático e mergulho; d) à irrigação de hortaliças, plantas frutíferas e de parques, jardins, campos de esporte e lazer, com os quais o público possa vir a ter contato direto; e e) à aquicultura e à atividade de pesca. Em contraste, os corpos dágua classe 4 são destinados para: a) navegação; b) harmonia paisagistica.

O trecho da Resolução No 357, de 17 de março de 2005 do CONAMA sobre corpos d’agua classe IV, seção II, das águas doces: “Art 17. As águas doces de classe 4 observarão as seguintes condições e padrões: I – Materiais flutuantes, inclusive espumas não naturais: virtualmente ausentes; II- odor e aspecto : não objetáveis; III – óleo e graxa : toleram-se irisdescências; IV – substâncias facilmente sedimentáveis que contribuam para o assoreamento de canis de navegação: virtualmente ausentes; V – fenóis totais (substâncias que reagem com 4- aminoantipirina) até 1 mg /l de C6H5OH;

VI – OD , superior a 2mg/L O2 em qualquer amostra; e VII – pH: 6 a 9.” Tendo em vista a denominação da classe dos riachos estudados, para o Córrego do Matadouro, vemos que os padrões estudadas excedem as expectativas dadas pelo CONAMA. No caso do Ribeirão da Boiada, este também se enquadra na na classe estipulada pelo CONAMA, segundos os dados dessa pesquisa. Por meio do BMWP adpaptado para o Rio das Velhas (Junqueira & Campos, 1998), comparando a qualidade da água dos dois riachos obtivemos os scores de 76 para o Córrego do Matadouro, e de 86 para o Ribeirão da Boiada, sendo as qualidades da aágua consideradas BOA e EXCELENTES, segundo o índice estabelecido no estudo em questão (Tabela II). Esse resultado é corroborado pelos aspectos de diversidade encontrados no Ribeirão da Boiada, devido ao fato da área ser preservada, mesmo não estando enquadrada em um sistema de proteção ambiental nacional, ela se encontra distante de influências antrópicas, em comparação ao Córrego do Matadouro, o qual faz fronteira com a produção de cana-de- 52

açúcar. O score elevado se dá pelos espécimes encontrados no Ribeirão da Boiada que são mais sensíveis a poluição, apresentando valores elevados no índice BMWP utilizado.

6. Considerações finais

A Bacia Hidrográfica do Rio Pardo é uma importante bacia da região Noroeste do Estado de São Paulo. Como mostrado por Sampaio (2012) e Peron & Piroli (2011), ela possui alguns pontos críticos de despejo de componentes orgânicos e falta de mata ciliar. O presente trabalho é pioneiro ao tentar avaliar a integridade ambiental de riachos pertencentes à Bacia Hidrográfica do Rio Pardo utilizando dados bióticos e abióticos, ao mesmo tempo tentando relacionar os fatores ambientais determinantes na distribuição da fauna de insetos aquáticos e o quanto a atividade antrópica exerce influência sobre a variação da fauna. Ao extrapolar as condições ambientais e os dados bióticos desse trabalho para a Bacia Hidrográfica do Rio Pardo, chegamos a um parecer semelhante ao apresentado por Sampaio (2012), que defende que a bacia se encontra em boas condições, em termos de qualidade da água. Essa discussão é importante e atual, aparecendo diversas vezes na mídia, já que o Aquífero Guarani já não é mais suficiente para o abastecimento de água da cidade de Ribeirão Preto, a qual deve começar a captar água da Bacia do Rio Pardo em breve. Ao contrastarmos os dados bióticos obtidos a nível taxonômico de gênero ou a nível de família, vem à tona uma discussão já muito antiga quando falamos em monitoramento biológico. Qual nível taxonômico devemos usar? A resposta depende. As identificações até gênero fornecem dados mais espécificos sobre a qualidade da água, como já alertado por Junqueira & Campos (1998), contudo, os parâmetros oferecidos por indentificações até o nível taxonômico de família estabelecem algumas vantagens como: a) facilidade na identificação; b) rápida amostragem da biodiversidade local; c) avaliação geral da qualidade da água; d) facildiade de contrução de indices biomonitoramento, como BMWP; e) Referencial bibliográfico (a maioria dos trabalhos de biomonitoramento ainda estão relacionados a nível de família).

7. Referências bibliografias

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