Travaux scientifiques réalisés et ouvrage publié avec les soutiens de :

Ministère de l’Ecologie, du Développement durable et de Région Rhône-Alpes L’Ain, Conseil Général l’Energie

Leader Programme européen de Union européenne développement rural

Entente Interdépartementale Compagnie Nationale du Rhône Syndicat Mixte Pays du Rhône-Alpes pour la Bugey Démoustication - 153 - Bull. Soc. linn. Lyon, hors-série n°3, 2014 : 153 - 168 Le marais de Lavours, une zone humide majeure pour la faune des diptères

Phil Withers 40 Montée du Cimetière 01600 Sainte Euphémie - [email protected]

Résumé. – La faune diptérologique du marais de Lavours a été étudiée pendant quatre ans. Diverses méthodologies de piégeage ont été utilisées dans les types d’habitats majoritairement représentés. Plus de 1 300 espèces de mouches sont répertoriées comme présentes dans la réserve. Les remarques sur certaines espèces sont fournies. Mots-clés. – Diptères, inventaire, zone humide. The Lavours marsh, a major wetland for dipteran fauna Abstract. – The dipteran fauna of the marais de Lavours was studied over a period of four years. A variety of trapping methods was used in areas representing the major habitat-types. Over 1 300 species of are documented as occurring in the reserve. Remarks on selected species are given. Keywords. – Diptera, inventory, wetland.

INTRODUCTION Les diptères (mouches, moucherons, tipules…) sont écologiquement les plus diversifiés de tous les insectes. Mondialement, environ 120 000 espèces ont été décrites, mais ce chiffre représente probablement moins de 40 % de la richesse totale réelle. Environ 20 000 espèces sont connues en et seulement la moitié est recensée en France. Ceci est en partie dû à l’absence de spécialistes modernes dans le domaine, ainsi qu’à la difficulté d’identification chez certaines familles : la littérature est soit trop ancienne pour être utile, soit très dispersée dans les ouvrages spécialisés à travers l’Europe. Il n’existe aucune liste faunistique pour la France. Dans la Réserve naturelle nationale du Marais de Lavours, les premières listes d’invertébrés datent des années quatre-vingts, et ont été constituées après trois ans d’étude par l’Université de Clermont Ferrand. La méthodologie s’est basée principalement sur quelques pièges à émergence et pièges enterrés répartis dans les prairies humides et les aulnaies. Les résultats ont fait l’objet de rapports interne à la réserve (Brunhes & Villepoux, 1987, 1988, 1990). Au moins une publication (Delécolle et al, 1991), sur une partie de la faune diptérologique, a suivi ces études. Plus récemment, la faune des diptères présente au marais de Lavours a été étudiée pendant quatre ans, de 2008 à 2011. Ce travail s’inscrit dans le programme d’étude de la réserve naturelle « Connaître les invertébrés pour préserver les habitats naturels humides », qui concerne un ensemble de taxons invertébrés (araignées, coléoptères, diptères, fourmis, mollusques, cloportes) et qui est basé sur de multiples méthodes d’échantillonnage. Il intervient également dans le cadre de l’année internationale de la biodiversité, décrétée en 2010 par les Nations Unies. - 154 -

MATÉRIEL ET MÉTHODES

Les habitats étudiés L’inventaire a porté sur les boisements, les milieux prairiaux ouverts et le bord d’un étang (carte 1). La zone forestière est composée d’une vieille forêt alluviale et d’une aulnaie jeune. La ripisylve est une chênaie-frênaie (code Corine biotope : 44.41) dominée par

Carte 1. Localisation des habitats étudiés. - 155 - le chêne pédonculé (Quercus robur) et le frêne (Fraxinus excelsior). Située le long du Séran sur sol argileux, elle se caractérise notamment par la présence de cavités dans les vieux arbres. Elle présente des zones avec un sol nu ou presque et des zones où les strates herbacées et arbustives sont plus développées. La forêt jeune est un bois marécageux d’aulne glutineux (Alnus glutinosa) typique des marais et plaines marécageuses de basse altitude (code Corine biotope : 44.911 et 44.3). Cette aulnaie s’est installée progressivement en colonisant les cariçaies et les phragmitaies du marais après l’arrêt de la fauche et du pâturage. Elle est donc en contact avec les prairies humides du marais et notamment avec la cariçaie eutrophe à Carex elata. Dans cette aulnaie, la végétation arbustive est assez développée, la végétation herbacée étant peu présente. Les prairies échantillonnées sont des cariçaies eutrophes à Carex elata (code Corine biotope : 53.2151) sur sol tourbeux. L’étang des Rousses est un plan d’eau d’un demi- hectare, sur substrat limono-argileux, bordé de roselières semi-aquatiques et de bosquets de saule cendré (Salix cinerea). Par endroit, le sol des berges est à nu.

Techniques d’inventaire En forêt, l’échantillonnage des mouches a été effectué principalement à l’aide des tentes Malaise qui capturent les insectes volants et avec des pièges à cavité. Ces pièges passifs étaient assistés par un fauchage par filet pendant les visites sur place. En 2009, une tente Malaise a été installée en chênaie-frênaie. Elle a fonctionné six semaines au printemps (du 21 avril au 2 juin) et trois semaines en automne (du 15 septembre au 6 octobre). En 2010, deux tentes Malaise ont été mises en place, une en chênaie-frênaie et une en aulnaie ; elles ont fonctionné sur les mêmes périodes qu’en 2009. Dans le même temps, les mouches des cavités de vieux arbres ont été échantillonnées en 2009 et en 2010 à l’aide de pièges à émergence qui bouchaient le trou au niveau de l’écorce. Six arbres ont été étudiés dont quatre (trois saules Figure 1. Piège à cavité arboricole blancs, deux frênes et un peuplier noir) dans la (cliché RNML). chênaie, les deux autres étant des saules blancs isolés près de l’étang des Rousses. Les pièges d’interception installés entre 1,50 et 16 mètres de hauteur, qui ont été utilisés pour l’étude des coléoptères xylophages, ont aussi fourni une quantité non négligeable de matériel. En 2008, deux tentes Malaise ont aussi été utilisées dans les prairies, sans interruption du 15 avril au 5 août (17 semaines), puis à nouveau en automne du 24 septembre au 7 octobre (trois semaines). En 2011, une tente Malaise a été installée du 22 mars au 22 novembre au bord de l’étang des Rousses. Enfin, des pièges Barber, utilisés principalement pour l’étude des araignées, ont aussi ajouté quelques espèces rares ou au moins rarement vues.

Le matériel ainsi récolté a été étudié pour les familles où la littérature disponible - 156 - permet une identification assez certaine. Dans quelques cas, les spécimens ont été envoyés aux autres spécialistes (voir remerciements), pour détermination ou confirmation. Une collection représentative des espèces, épinglées ou sur lames microscopiques, a été déposée au Musée des Confluences à Lyon.

RÉSULTATS ET DISCUSSION Environ 1 300 espèces de diptères sont répertoriées dans la réserve, ce qui fait du marais de Lavours un des milieux naturels les mieux étudiés pour ce groupe. Comme déjà mentionné, la véracité des espèces actuellement documentées pour la France n’est pas sûre : en conséquence, un pourcentage significatif de diptères de la réserve est cité pour la première fois pour le territoire national. Néanmoins, certaines familles sont sérieusement sous-représentées dans cet inventaire, mais selon le ciblage des récoltes, une augmentation considérable est possible dans les familles suivantes : Agromyzidae, Chamaemyiidae, Chloropidae, Empididae, Ephydridae, Fanniidae, , Phoridae, Sciaridae, Tachinidae, Tephritidae. Des méthodes de captures plus orientées, par exemple les pièges de charogne pour les mouches associées aux cadavres (ex. : Piophilidae), ou l’élevage des milieux spécifique (ex. : champignons) pourraient aussi augmenter la liste. Certaines familles sont absentes de l’inventaire : dans certains cas, par exemple les Dixidae, il est fort probable que la famille soit bien présente (les dixides ont des larves aquatiques), mais qu’à cause de leur comportement, les adultes n’aient pas été capturés. D’autres familles, en particulier celles associées aux forêts anciennes, sont probablement réellement absentes. La pauvreté des espèces de Culicidae est attribuée aux traitements effectués dans la réserve par l’Entente interdépartementale Rhône-Alpes pour la démoustication, avec la bactérie Bacillus thuringiensis. Les périodes de piégeage n’ont jamais inclus l’hiver : en conséquence, une partie de la faune typiquement active à cette époque n’a pas été répertoriée. Par exemple, la famille des devrait être représentée par plusieurs espèces. Avec une liste aussi exhaustive, il est peut-être illogique de sélectionner quelques espèces pour mention particulière. Néanmoins, il est important de citer quelques nouveautés ou taxons inattendus. Dans l’inventaire complet (voir liste en annexe), les espèces nouvelles pour la France sont indiquées par •.

Tipulidae Tipula (Pterelachisus) mutila Wahlgren ― Cette espèce a été rajoutée à la faune française par Kramer (2012) sur la base de spécimens récoltés dans les pièges aériens. Les larves semblent creuser le bois mort inondé. Cette espèce est rarement documentée (seulement deux citations en Europe dans les années 2000, un seul spécimen anglais de 1896), peut-être à cause de son éclosion précoce. Le marais de Lavours est situé à 800 km plus au sud de la localité la plus proche, en Allemagne.

Limoniidae Dicranomyia megacauda Alex. ― Dans les années quatre-vingt, cette espèce a été recensée à plusieurs reprises dans la réserve naturelle, dans des pièges à émergence, toujours en très faible quantité. Elle n’a jamais été formellement publiée comme espèce nouvelle pour la faune française. Malheureusement, l’espèce n’a pas été retrouvée et il - 157 - est fort possible qu’elle ait maintenant disparu de la réserve. En Europe occidentale, elle n’est connue qu’en Suisse. Erioptera fossarum Loew ― Kramer (2007) a rajouté cette espèce à la faune française sur la base d’un mâle et une femelle capturés à côté du pilotis, dans l’aulnaie de la réserve.

Mycetophilidae Epicypta scatophora (Perris) ― Cette espèce est ici citée pour la première fois en France depuis 1849.

Psychodidae Brunettia (Mirousiella) angustipennis (Tonnoir) ― L’espèce est une associée des formations de tuf et même quand elle est présente, cette petite mouche est très difficile à capturer car elle a une période de vol assez restreinte. Trichomyia parvula Szabó / Trichomyia urbica Haliday in Curtis ― Les espèces de Trichomyia sont associées aux arbres morts, le plus souvent dans les creux où s’accumulent les sources de nutriments comme les feuilles mortes. En Europe, T. urbica est assez fréquent dans ces milieux. Par contre, T. parvula n’est représenté que par une poignée de spécimens dans tous les musées confondus.

Scatopsidae Ferneiella incompleta (Verrall) ― Dans la liste des de France (Haenni & Withers, 2007), cette espèce n’est pas indiquée comme une espèce française : sa présence était cependant fort probable.

Chironomidae Pseudosmittia withersi Langton ― Une espèce de moucheron nouvelle pour la science a été décrite par Langton (2012) sur la base de deux mâles récoltés en 2008 dans la prairie dominée par Cladium mariscus. Micropsectra apposita (Walker)/contracta Reiss ― Les mâles de ces deux espèces ne sont pas séparables, bien que les femelles soient distinctes. Seuls les mâles de cette famille ont été étudiés dans le contexte de l’inventaire.

Rhagionidae Chrysopilus laetus Zetterstedt ― Cette espèce se trouve presque exclusivement dans les arbres creux ; les spécimens en collections sont généralement issus d’élevage. Figure 2. Pandivirilia melaleuca (cliché Anderson). Therevidae Pandivirilia melaleuca (Loew) ― Cette espèce est rarement vue au stade adulte, car les larves se trouvent dans les creux des très vieux aulnes, une ressource de plus en plus rare en Europe. - 158 -

Hybotidae Platypalpus caroli Grootaert ― Membre du groupe albiseta de Platypalpus, cette espèce est facilement confondue avec P. niveiseta (Zetterstedt). La dissection de la capsule génitale de plusieurs mâles a confirmé que l’espèce présente au marais de Lavours est bien caroli. L’espèce n’est connue en Europe qu’en Belgique et en Allemagne. Syndyas nigripes (Zetterstedt) ― Il s’agit d’une espèce typique des marais et plus particulièrement des tourbières ; elle n’est pas encore signalée en France. Figure 3. Megaselia lavoursensis (cliché H. Disney). Dolichopodidae Achalcus thalhammeri Lichtward ― La révision de ce genre par Pollet (1997) a considérablement simplifié les déterminations pour les Achalcus d’Europe. A. thalhammeri n’est pas cité dans cet ouvrage comme présent en France. Il est aussi noté que quelques spécimens paratypes de la nouvelle espèce nigropunctatus Pollet & Brunhes, décrite dans cet ouvrage, venaient du marais de Lavours. Systenus pallipes (von Roser) ― Les larves de Systenus se trouvent aussi dans les arbres creux, et les adultes, comme celles de Chrysopilus laetus, ne sont presque jamais capturés, sauf par élevage. Parent (1938) n’indique qu’une seule donnée pour la France : « environs de Paris ».

Platypezidae Figure 4. Microdon sp. (cliché C. Dussaix). Callomyia saibhira Chandler ― Une femelle Callomyia est identifiée comme appartenant à cette espèce, mais un mâle permettrait de confirmer cette détermination.

Phoridae Les phorides n’ont pas été intensivement étudiés dans la réserve, mis à part la faune des arbres creux (Disney & Withers, 2011). Parmi eux, trois espèces du genre Megaselia sont décrites pour la première fois dans le matériel collecté au marais de Lavours, dont une porte le nom spécifiquelavoursensis.

Syrphidae Cheilosia albitarsis (Mg.) / ranunculi Doczcal ― Les femelles de ces deux espèces sont impossibles à distinguer actuellement. L’absence de récolte de mâles ne permet pas une - 159 - détermination définitive de l’espèce concernée. Pour autant, il n’est pas exclu que les deux espèces soient en réalité présentes : elles habitent les mêmes milieux et sont en vol en même temps. Les larves semblent être associées à différentes espèces de Ranunculus. Microdon ― Le genre Microdon est très curieux, avec des larves atypiques dont la première découverte a été prise pour une limace ! Ces larves habitent les fourmilières et il est de plus en plus évident que chaque espèce préfère un nombre limité de fourmi-hôte. La morphologie des adultes ne donne pas assez d’informations pour séparer les espèces mais il devenu clair, depuis une dizaine d’années, que ce sont les stades développementaux (larves et pupes) qui présentent les caractéristiques les plus certaines pour établir une séparation nette. C’est pour cette raison que l’inventaire cite deux paires d’espèces quasi-impossibles à séparer sur les critères visibles sur l’adulte. M. analis semble être exclusivement associé avec Lasius platythorax, une fourmi présente sur la réserve. M. major préfère plutôt les fourmilières de Formica (exsecta, rufa, sanguinea et fusca) dont aucune n’est recensée sur la réserve : il est donc fort probable que c’est analis l’espèce concernée. La situation chez mutabilis/myrmicae est un peu plus compliquée. Pour mutabilis, les données indiquent une présence dans les fourmilières de Formica et Lasius, ce qui est assez surprenant, et il n’est pas exclu qu’une autre espèce encore inédite soit mélangée dans ces données. Pour myrmicae, le genre de fourmi préféré est Myrmica, avec scabrinodis, galienii et rubra (espèces présentes dans la réserve) citées comme abritant les larves de cette espèce. Une étude de répartition des espèces concernées et leurs hôtes serait très informative.

Pipunculidae Dorylomorpha (Dorylomyza) lautereri Albrecht ― La famille des Pipunculidae, dont presque tous les membres sont parasitoïdes de punaises, a été assez récemment le sujet d’un ouvrage faunistique pour la France (Withers, 2006). D. lautereri ne figure pas sur cette liste ; il est connu de la République Tchèque, de Finlande, d’Estonie, de Lituanie et d’Ukraine.

Psilidae Chyliza extenuata (Rossi) ― Les larves de Chyliza extenuata attaquent les Orobanches, où elles provoquent une galle souterraine sur la tige. Une association est citée avec Orobanche elatior et O. rapum-genistae, deux espèces qui n’existent apparemment pas dans la réserve naturelle.

Sciomyzidae Figure 5. Chyliza extenuata (cliché M. Le Masson). Antichaeta obliviosa Enderlein ― Les sont des mouches spécialisées sur le parasitisme des mollusques. Sans grande surprise, la faune malacologique de la réserve est très riche et comporte les espèces de mollusques représentant leur proie. Antichaeta obliviosa n’est pas signalé en France par Vala (1989), mais a été récemment cité (Speight & Knutson, 2012) pour la zone atlantique d’Europe, y compris la France. - 160 -

Odiniidae Neoalticomerus fabricei Withers & Papp ― Quelques spécimens paratypes de cette nouvelle espèce ont été trouvés dans le marais.

Agromyzidae Les agromyzides sont des mouches fort intéressantes car les larves creusent des galeries dans les feuilles et les tiges des plantes ; bien souvent, une espèce de mouche est spécifique d’un genre de plante, ce qui permet une bonne corrélation entre l’entomologie et la botanique (pour une fois). Les noms scientifiques de ces diptères donnent souvent un indice de cette relation : Cerodontha caricicola (Hering) et C. eucaricis Nowakowski sont associés aux Carex, C. iraeos (Robineau-Desvoidy) est associé à Iris pseudacorus, Liriomyza eupatorii (Kaltenbach) creuse Eupatorium (ainsi que Solidago et Galeopsis), L. valerianae (Hendel) se trouve avec Valeriana, Ophiomyia asparagi Spencer avec l’asperge et Phytomyza aconiti Hendel avec l’aconit. Parmi les 25 espèces répertoriées au marais de Lavours, six sont nouvelles pour la faune française, mais cette liste est loin d’être exhaustive.

Anthomyzidae Anagnota major Roháček & Freidberg ― Cette espèce est très rare en Europe, où elle semble être associée aux grandes espèces de Carex, en particulier C. gracilis. Anthomyza clara Roháček ― Dans sa description (Roháček, 2006), l’auteur indique que cette espèce est rare et localisée en Europe. C’est une autre espèce associée aux Carex, connue en Suisse, Lituanie et Estonie.

Milichiidae Desmometopa discipalpis ― Quelques spécimens de cette espèce ont été récoltés dans les pièges aériens. Chez les mâles (le seul sexe connu pour l’instant), les palpes sont extrêmement développés et le tibia postérieur est en forme de pelle. Une espèce voisine, D. palpalia (Wahlgren) est légèrement différente par la forme des pièces génitales : cette espèce est associée aux ormes attaqués par Cossus cossus, qui est peut-être aussi le gîte larvaire de discipalpis.

Heleomyzidae Suillia cepelaki Martinek ― Les espèces de Suillia sont presque toutes associées aux champignons. La liste pour la réserve n’est probablement pas complète car quelques espèces du genre qui sont largement distribuées en France ne sont pas encore répertoriées. La période d’échantillonnage dans la réserve n’était pas très propice aux champignons, car elle s’est peu déroulée en automne, la période où ces mouches sont les plus fréquentes. Suillia cepelaki n’a pas été trouvé ailleurs qu’en Slovénie depuis sa description. On la soupçonne d’être une espèce plutôt précoce dans l’année, les dates de capture étant en avril. De plus, il est aussi probable que cette espèce ne soit pas associée aux champignons, mais plutôt à l’ail des ours (Allium ursinum).

Sphaeroceridae Opalimosina calcarifera (Roháček) ― Espèce répertoriée auparavant uniquement en République Tchèque et en Hongrie. - 161 -

Drosophilidae Drosophila (Lordiphosa) hexasticha Papp ― Papp (1976) a capturé cette espèce dans des pièges d’émergence posés par terre, et il a signalé que certains spécimens étaient brachyptères. Le seul matériel de cette espèce capturé dans la réserve provient des pièges Barber, ce qui semble soutenir l’idée que cette espèce est terricole. Néanmoins, tous les spécimens portaient des ailes normales. Drosophila (Sophophora) suzukii Matsumura ― Cette espèce de « mouche à vinaigre » est un ravageur des fruits rouges (cerises, framboises, fraises…), accidentellement introduit du Japon. Malgré sa présence dans la région lyonnaise depuis 2010, il était extraordinaire que quelques dizaines de spécimens aient été trouvés dans les pièges aériens en fin de 2011. La réserve et la situation des pièges concernés sont loin de toute culture de ces fruits, et l’origine de cette mouche reste inconnue.

Scathophagidae Cordilura aemula Collin ― Les larves des Cordilura en Amérique se développent dans les tiges de Carex, Scirpus et Juncus et il est fort probable que ceci soit aussi le cas pour les espèces européennes. C. aemula n’était pas séparé d’autres espèces voisines avant 1958 et ne figure pas dans les espèces françaises. Malgré cela, il est très fréquent dans les milieux humides.

Fanniidae Fannia nidica Collin ― Les larves de F. nidica se trouvent dans les nids d’oiseaux. Cette espèce est peu connue en Europe, citée exclusivement en Angleterre et en République Tchèque.

CONCLUSION L’inventaire des diptères de la réserve naturelle dépasse les 1 300 espèces, parmi lesquelles 10 % n’étaient pas signalées en France. Cependant, cet inventaire pourrait être complété grâce à la prospection ciblée de certaines familles, comme les syrphes, de certains micro-habitats comme les champignons, mais aussi grâce à des collectes en hiver et au début du printemps.

Remerciements. – Un inventaire aussi développé n’est forcément pas le travail d’une seule personne. J’ai eu la grande fortune d’être aidé par beaucoup de spécialistes pour la détermination de certaines familles. En particulier, je suis reconnaissant de l’aide généreuse de mes collèges : David Henshaw (Agromyzidae), Peter Chandler (, , , ), John Kramer (Tipulidae, Cylindrotomidae, Pediciidae, Limoniidae), Peter Langton (Chironomidae), Henry Disney (Phoridae), Iain MacGowan (Lonchaeidae), Bernhard Merz (Tephritidae), Ruth Blackith (Sarcophagidae). Par ailleurs, ce travail a bénéficié du soutien financier du Conseil général de l’Ain.

RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES Brunhes J. & Villepoux O., 1987, 1988, 1990. Les arthropodes du marais de Lavours. Rapports internes à l’Entente Interdépartementale pour la Démoustication, Chindrieux. Delécolle J-C., Rieb J-P. & Brunhes J. 1991. Note préliminaire sur les Diptères Cératopogonidés de la tourbière - 162 -

eutrophe du marais de Lavours (Vallée du Rhône, Ain). Bulletin de la Société entomologique de France, 96(3) : 255-256. Disney R.H.L & Withers P. 2011. Scuttle (Diptera, Phoridae) reared from tree rotholes in France, including three new species of Megaselia Rondani. Fragmenta Faunistica, 54 (1): 29-41. Haenni J-P. & Withers P. 2007. Liste commentée des Scatopsidae de France continentale (Diptera). Bulletin de la Société entomologique de France, 112 (1) : 17-27. Kramer J. 2007. Erioptera (Mesocyphona) fossarum (Loew, 1873) (Diptera, Limoniidae) new to France. Dipterists Digest (Second Series), 14: 32. Kramer J. 2012. Tipula (Pterolachisus) mutila Wahlgren (Diptera, Tipulidae) new to France and its status in Britain. Dipterists Digest (Second Series), 19: 155-156. Langton 2012. Two new species of Orthocladiinae (Diptera, Chironomidae) from south-eastern France. Dipterists Digest ( Second Series), 19: 135-141. Papp L. 1976. Some terricolous Sphaerocerids and Drosophilids from (Diptera, Sphaeroceridae and Drosophilidae). Folia entomologica Hungarica (New Series), 29: 75-85. Parent O. 1938. Diptères Dolichopodidae. Faune de France, 35, 720 p. Pollet M. 1997. Systematic revision and phylogeny of the Palaearctic species of the genus Achalcus Loew (Diptera: Dolichopodidae) with the description of four new species. Systematic Entomology, 21: 353-386. Roháček J. 2006. A monograph of Palaearctic (Diptera) Part 1. Časopis Slezského Muzea Opava (A), 55, suppl. 1: 1-328. Speight M.C.D & Knutson L.V. 2012. Species accounts for Sciomyzidae and Phaeomyiidae (Diptera) known from the Atlantic zone of Europe. Dipterists Digest (Second Series), 19: 1-38. Vala J-C. 1989. Diptères Sciomyzidae euro-méditerranéens. Faune de France, 72 : 1-300. Withers P. 2006. A preliminary account of the fauna of Pipunculidae (Diptera) of continental France. Dipterists Digest (Second Series), 13: 145- 155.

ANNEXE Inventaire des diptères du marais de Lavours Les espèces nouvelles pour la France sont indiquées par •

NEMATOCERA

Tipulidae Erioptera flavata (Westhoff) Phylidorea abdominalis (Staeg.) Ctenophora pectinicornis (L.) •E. fossarum (Lw.) P. bicolor (Mg.) Dictenidia bimaculata (L.) E. fuscipennis Mg. P. ferruginea (Mg.) Nephrotoma appendiculata (Pierre) E. fusculenta Edw. P. fulvonervosa (Schummel) N. crocata (L.) E. lutea Mg. P. longicornis (Schummel) N. dorsalis (Fab.) E. nielseni de Meijere •Pilaria decolor (Zett.) N. guestfalica (Westhoff) Gnophomyia viridipennis (Gimmerthal) P. discicollis (Mg.) N.quadrifaria (Mg.) Gonempeda flava (Schummel) Pseudolimnophila lucorum (Mg.) Nigrotipula nigra (L.) Gonomyia bifida Tonn. P. sepium (Verrall) Tanyptera atrata (L.) G. tenella (Mg.) Achyrolimonia decemmaculata (Lw.) Tipula lateralis Mg. Ilisia maculata (Mg.) Antocha vitripennis (Mg.) T. luna Westhoff Molophilus bifidus Goetgh. Atypophthalmus inustus (Mg.) T. lunata L. •M. bihamatus de Meijere Dicranomyia autumnalis (Staeg.) T. marginella Theowald M. cinereifrons de Meijere D. frontalis (Staeg.) •T. mutila Wahlgren M. flavus Goethgh. •D. megacauda Alex. T. oleracea L. M. griseus (Mg.) D. mitis (Mg.) T. pabulina Mg. •M. maurus Lack. D. modesta (Mg.) T. paludosa Mg. M. medius de Meijere D. occidua Edw. T. pruinosa Wied. M. obscurus (Mg.) D. tristis (Schummel) T. vernalis Mg. M. occultus de Meijere Helius flavus (Walk.) M. ochraceus (Mg.) H. longirostris (Mg.) Cylindrotomidae •M. pleuralis de Meijere Limonia alpicola (Lack.) Triogma trisulcata (Schummel) M. propinquus (Egg.) L. dilutior (Edw.) M. scutellatus Goetgh. L. flavipes (Fab.) Pediciidae Ormosia bifida (Lack.) L. macrostigma (Schummel) Tricyphona immaculata (Mg.) O. lineata (Mg.) L. nubeculosa Mg. T. unicolor (Schummel) Symplecta hybrida (Mg.) L. phragmitidis (Schrank) Austrolimnophila ochracea (Mg.) L. stigma (Mg.) Limoniidae Dicranophragma nemorale (Mg.) L. trivittata (Schummel) Cheilotrichia cinerascens (Mg.) Epiphragma ocellare (L.) Metalimnobia quadrimaculata (L.) C. imbuta (Mg.) Limnophila schranki Oosterbroek - 163 -

Bibionidae L. bimaculata (Mg.) C. membranigera (Kieff.) •Bibio brunnipes (Fab.) L. crucigera Zett. •C. patula Hippa, Vilk. & Hell. B. leucopterus (Mg.) L. subfasciata (Mg.) •C. recurvispina Freeman B. marci (L.) Megalopelma nigroclavatum (Strobl) •C. subtilis (Leng.) B. reticulatus Lw. Monoclona rufilatera (Walk.) •C. warnckei Rudz. Dilophus febrilis (L.) Mycetophila autumnalis Lund. Cratyna ambigua (Leng.) M. caudata Staeg. C. falcifera (Leng.) Diadocidiidae M. curviseta Lund. •C. fulvicauda Felt Diadocidia ferruginosa (Mg.) M. fungorum (De Geer) C. nobilis (Winn.) M. gibbula Edw. C. pernitida (Edw.) Ditomyiidae M. hyrcania Lastovka & Matile C. uliginosa (Leng.) Ditomyia fasciata (Mg.) M. ichneumonea Say C. vagabunda (Winn.) Symmerus annulatus (Mg.) •M. idonea Lastovka Ctenosciara hyalipennis (Mg.) M. luctuosa Mg. Epidapus absconditus (Vimmer) Keroplatidae M. ocellus Walk. •E. microthorax (Börn.) Asindulum nigrum Lat. M. perpallida Chandler •E. echinatum Moh. & Koz. Cerotelion striatum (Gmelin) M. pumila Winn. •Leptosciarella nigrosetosa (Freeman) Macrocera angulata Mg. •M. sigmoides Lw. L. pilosa (Staeg.) M. centralis Mg. M. strigata Staeg. L. rejecta (Winn.) M. phalerata Mg. M. strigatoides Land. •L. subviatica Moh. & Menz. M. vittata Mg. M. stolida Walk. L. viatica (Winn.) Monocentrota lundstroemi Edw. M. trinotata Staeg. •Phytosciara flavipes (Mg.) Neoplatyura modesta (Winn.) Mycomya affinis (Sateg.) Pseudolycoriella brunnea (Buk. & Leng.) Orfelia bicolor (Macq.) M. flavicollis (Zett.) •P. subbruckii (Mohrig & Hövemeyer) •O. lugubris (Zett.) M. prominens (Lund.) •Scatopsciara (Xenopygina) curvilinea (Leng.) O. nemoralis (Mg.) Neoempheria bimaculata (v. Roser) S. (S.) nacta (Johan.) •Rutylapa ruficornis (Zett.) Phronia nitidiventris (v. der Wulp) S. (S.) tricuspidata (Winn.) •P. taczanowskyi Dziedzicki Schwenckfeldina carbonaria (Mg.) Mycetophilidae P. tenuis (Winn.) Sciara flavimana Zett. Acnemia amoena Winn. Platurocypta punctum (Stann.) S. humeralis Zett. A. nitidicollis (Mg.) P. testata (Edw.) S. ruficauda Mg. Allocotocera pulchella (Curtis) •Pseudexechia monica Kjærendsen & Chandler •Trichosia glabra (Mg.) Allodia barbata (Lund.) P. parallela (Edw.) T. morio (Fab.) A. neglecta Edw. P. trivittata (Staeg.) •Zygoneura sciarina Mg. A. ornaticollis (Mg.) Pseudobrachypeza helvetica (Walk.) Anatella simpatica Dzied. Rymosia bifida Edw. Apolephthisa subincana (Curtis) R. britteni Edw. •Atrichobrunettia angustipennis (Tonn.) Brachypeza bisignata Winn. R. fasciata (Mg.) Clogmia. tristis (Mg.) Brevicornu auriculatum (Edw.) R. signatipes (v. der Wulp) Clytocerus ocellaris (Mg.) B. glandis Last. & Mat. Sceptonia cryptocauda Chand. •Jungiella consors (Eaton) B. griseicolle (Staeg.) S. nigra (Mg.) J. longicornis (Tonn.) B. nigrofuscum (Lund.) Sciophila interrupta (Winn.) •J. pseudolongicornis (Wagner) B. proximum (Staeg.) S. nonnisilva Hutson Panimerus albifacies (Tonn.) B. sericoma (Mg.) •S. plurisetosa Edw. •P. denticulatus Krek •B. subfissicauda Zaitsev S. rufa Mg. P. goetghebueri (Tonn.) B. verralli (Edw.) Synapha fasciata Mg. P. maynei gp. •Clastobasis alternans (Winn.) •Synplasta rufilatera (Edw.) Paramormia ustulata (Hal. in Walk.) •C.loici Chandler Trichonta lyrica Gagné Peripsychoda auriculata (Hal. in Curtis) Coelosia fusca Bezzi T. pulchra Gagné •Pneumia compta Eaton Cordyla crassicornis Mg. T. vitta (Mg.) P. extricata Eaton C. fasciata Mg. •Zygomyia angusta Plassmann P. nubila (Mg.) C. murina Winn. Z. humeralis (Wied.) P. trivialis Eaton C. pusilla Edw. •Z. matilei Caspers Philosepedon humeralis (Mg.) Docosia expectata Laštovka & Ševčik Z. notata (Stann.) Psychoda cinerea Banks •D. nigra Land. Z. pseudohumeralis Caspers P. gemina (Eaton) Dynatosoma fuscicorne (Mg.) Z. setosa Barend. P. griscescens Tonn. D. rufescens (Zett.) Z. valeriae Chand. P. minuta Banks Ectrepesthoneura hirta (Winn.) Z. valida Winn. P. setigera Tonn. Epicypta aterrima (Zett.) Z. vara (Staeg.) P trinodulosa Tonn. E. limnophila Chand. Sycorax silacea Hal. in Curtis E. scatophora Edw. Sciaridae •S. similis (Müller) E. torquata Matile Bradysia alpicola (Winn.) Tinearia alternata (Say) Exechia bicincta (Staeg.) •B. aprica (Winn.) •Tonnoiriella nigricauda (Tonn.) •E. chandleri Caspers •B. austera Menz. & Hell. •Trichomyia parvula Szabó E. dizona Edw. B. giraudii (Egger) T. urbica Hal.in Curtis E. exigua Lund. •B. hilariformis Tuom. E. fulva Santos Abréu B. lobata Hondru Trichoceridae E. fusca (Mg.) •B. lilienthalae Moh. & Menz. Trichocera regelationis (L.) •E. macula Chand. •B. polonica (Leng.) •E. nigrofusca Lund. B. scabricornis Tuom. •E. pectinivalva Stack. •B. subscabricornis Moh. & Menz. Sylvicola cinctus (Fab.) E. pseudofestiva Lack. B. trivittata (Staeg.) S. fenestralis (Scop.) E. repanda Johan. •B. vagans (Winn.) S. punctatus (Fab.) E. repandoides Caspers •Corynoptera compressa (Walk.) E. spinuligera Lund. •C. deserta Hell. & Menz. Scatopsidae •Exechiopsis leptura (Mg.) C. forcipata (Winn.) Anapausis baueri Fritz Leia bilineata (Winn.) C. irmgardis (Leng.) A. talpae (Verrall) - 164 -

Apiloscatopse picea (Mg.) Chironomidae C. laetus Zett. A. scutellata (Lw.) Ablabesmyia monilis (L.) Ptiolina obscura (Fall.) Coboldia fuscipes (Mg.) Apsectrotanypus trifascipennis (Zett.) Rhagio scolopaceus (L.) •Colobostema infumatum (Hal.) Bryophaenocladius simus (Edw.) R. strigosus (Mg.) C. nigripenne (Mg.) Chironomus aprilinus Mg. R. tringarius (L.) C. triste (Zett.) C. luridus Strenzke Spania nigra Mg. Efcookella albitarsis (Zett.) C. obtusidens Goetgh. •Symphoromyia immaculata (Mg.) •Ferneiella brevifurca (End.) C. parathummi Keyl •F. incompleta (Verrall) C. pseudothummi Strenzke Tabanidae Holoplagia lucifuga (Lw.) C. riparius Mg. Atylotus rusticus (L.) Reichertella geniculata (Zett.) Conchapelopia melanops (Mg.) Chrysops caecutiens (L.) R. nigra (Mg.) Cricotopus bicinctus (Mg.) C. relictus Mg. Rhexoza subnitens (Verr.) C. curtus Hirvenoja C. viduatus (Fab.) Swammerdamella brevicornis (Mg.) C. sylvestris (Fab.) Dasyrhamphis ater (Rossi) Thripomorpha coxendix (Verrall) C. trifascia Edw. bigoti Gobert T. paludicola Enderlein C. trifasciatus (Mg.) H. crassicornis Wahl. T. verralli (Edw.) Dicrotendipes nervosus (Staeg.) H. grandis Mg. D. notatus (Mg.) H. pluvialis (L.) Ptychopteridae Endochironomus tendens (Fab.) Hybomitra bimaculata (Macq.) •Ptychoptera contaminata (L.) Kiefferulus tendipediformis (Goetgh.) •H. muehlfeldi (Brauer) Krenopelopia nigropunctata (Staeg.) Tabanus bovinus L. Culicidae Limnophyes asquamatus Andersen T. bromius L. Aedes (Ochlerotatus) annulipes (Mg.) L difficilis Brundin T. maculicornis Zett. A. vexans (Mg.) Metriocnemus beringiensis Cranston & Oliver T. miki Brauer Anopheles maculipennis agg. M. eurynotus (Holm.) •T. quatuornatus Mg. Coquillettidia richiardii (Ficalbi) •Micropsectra apposita (Walk.)/contracta Reiss T. regularis Jaenn. Culex pipiens L. M. lindebergi Säwedal T. sudeticus Zell. C. territans Walk. Microtendipes britteni (Edw.) Culiseta morsitans (Theob.) M. confinis (Mg.) Xylomyiidae M. diffinis (Edw.) Solva marginata (Mg.) Ceratopogonidae M. nitidus (Mg.) Allohelea tessellata (Zett.) M. pedellus (De Geer) Stratiomyiidae Atrichopogon brunnipes (Mg.) Monopelopia tenuicalcar (Kieff.) •Allognosta vagans (Lw.) A. forcipatus (Winn.) Natarsia nugax (Walk.) Beris chalybeata (Forst.) A. maculatus (Lundst.) Orthocladius glabripennis (Goetgh.) B. geniculata Hal. in Curtis A. minutus (Mg.) O. obumbratus Joh. B. vallata (Forst.) A. pavidus (Winn.) O. rubicundus (Mg.) Chloromyia formosa (Scop.) A. winnertzi Goetgh. Parachironomus monochromus (v. der Wulp) Lasiopa tsacasi Dus. & Rozk. Bezzia xanthogaster (Kieff.) P. parilis (Walk.) Microchrysa flavicornis (Mg.) Brachypogon nitidulus (Edw.) Paracladopelma camptolabis (Kieff.) M. polita (L.) B. sociabilis (Goetgh.) Paramerina cingulata (Stephens in Walker) •Nemotelus brevirostris Mg. B. vitiosus (Winn.) Paraphaenocladius exagitans (Joh.) N. notatus Zett. Clinohelea unimaculata (Macq.) Paratanytarsus austriacus (Kieff.). N. pantherinus (L.) Culicoides achrayi Kettle & Lawson P. dimorphis Reiss Odontomyia angulata (Panz.) C. albicans (Winn.) P. laetipes (Zett.) O. argentata (Fab.) C. delta Edw. Paratendipes nudisquama (Edw.) O. tigrina (Fab.) C. kibunensis Tokunaga Phaenopsectra flavipes (Mg.) Oplodontha viridula (Fab.) C. pallidicornis Kieff. Polypedilum acutum Kieff. Oxycera analis Wied. in Mg. C. punctatus (Mg.) P. nubeculosum (Mg.) O. leonina (Panz.) C. segnis Campbell & Pelham-Clinton P. scalaenum (Schrank) O. morrisii Curtis C. subfasciipennis Kieff. P. sordens (v. der Wulp) O. nigricornis Olivier Dasyhelea acuminata Kieff. P. tritum (Walk.) O. rara (Scop.) D. europaea Remm P. uncinatum (Goetgh.) O. trilineata (L.) D. holosericea (Mg.) Procladius choreus (Mg.) Pachygaster leachii Stephens in Curtis D. luteiventris Goetgh. P. rufovittatus (v. der Wulp) Sargus bipunctatus (Scop.) D. modesta (Winn.) Prodiamesa olivacea (Mg.) S. cuprarius (L.) D. stellata Remm Psectrotanypus varius (Fab.) S. flavipes Mg. D. turficola Wirth Pseudorthocladius filiformis (Kieff.) S. rufipes Wahl. D. undosternum Remm P. pilosipennis Brundin Stratiomys longicornis (Scop.) (larves) Forcipomyia bipunctata (L .) Pseudosmittia withersi Langton S. potamida Mg. F. brevipennis (Macq.) Schineriella schineri (Strobl) F. fuliginosa (Mg.) Smittia amoena Caspers Bombyliidae F. glauca Macfie S. aterrima (Mg.) Anthrax anthrax (Schrank) F. litoraurea (Ingram & Macfie) Tanypus kraatzi (Kieff.) Bombylius major L. F. paludis (Macfie) Tanytarsus buchonius Reiss & Fittkau B. minor L. F. tenuis (Winn.) •Telmatopelopia nemorum (Goetgh.) Hemipenthes maura (L.) F. velox (Winn.) Xenopelopia nigricans (Goetgh.) Villa hottentota (L.) Monohelea estonica Remm Zavrelia pentatoma Kieff. Palpomyia armipes (Mg.) Therevidae P. distincta (Hal.) Pandivirilia melaleuca (Lw.) P. grossipes Goetgh. Thereva nobilitata (Fab.) P. serripes (Mg.) T. strigata (Fab.) Schizohelea leucopeza (Mg.) Xylophagus ater Mg. Serromyia femorata (Mg.) Acroceridae S. morio (Fab.) Rhagionidae Ogcodes gibbosus (L.) Chrysopilus asiliformis (Preyssler) O. pallipes Lat. in Olivier C. cristatus (Fab.) O. varius Lat. in Olivier - 165 -

Asilidae R. (P.) tibiella Zett. R. fasciatum Mg. Choerades fimbriata (Mg.) Rhamphomyia (R.) laevipes (Fall.) R. micans (Mg.) C. fulva (Mg.) R. (R.) tibialis (Mg.) R. penicillatum Lw. C. marginata (L.) •R. (Holoclera) caliginosa Coll. R. quadrispinosum (Strobl) Dioctria linearis (Fab.) R. (H.) lamellata Coll. Sciapus platypterus (Fab.) Laphria flava (L.) •R. (H.) nigripennis (Fab.) Sympycnus pulicarius (Fall.) Leptogaster cylindrica (De Geer) E. (Xanthempis) stercorea L. S. spiculatus Gerst. Tolmerus atricapillus (Fall.) Syntormon bicolorellum (Zett.) Microphoridae S. denticulatum (Zett.) Hybotidae Microphor anomalus (Mg.) S. metathesis (Lw.) Bicellaria mera Coll. M. holosericeus (Mg.) S. pallipes (Fab.) B. vana Coll. S. pumilum (Mg.) Crossopalpus nigritellus (Zett.) Dolichopodidae Systenus pallipes (v. Roser) •Drapetis arcuata Lw. Achalcus bimaculatus Pollet Telmaturgus tumidulus (Radd.) •D. assimilis (Fall.) A. cinereus (Hal. in Walk.) Teuchophorus calcaratus (Macq.) D. ephippiata (Fall.) A. flavicollis (Mg.) T. spinigerellus (Zett.) D. exilis Mg. A. melanotrichus Mik Thrypticus bellus Lw. D. infitialis Coll. A. nigropunctatus Pollet & Brunhes •T.pollinosus Verrall D. parilis Coll. •A. thalhammeri Lichtw. Xanthochlorus ornatus (Hal.) •Euthyneura albipennis (Zett.) A. vaillanti Brunhes •E. myrtilli Macq. Acropsilus niger (Lw.) Platypezidae Hybos culiciformis (Fab.) Argyra diaphana (Fab.) Callomyia saibhira (prob. : ♀) Chandler Leptopeza flavipes (Mg.) A. elongata (Zett.) •Kesselimyia chandleri Vanhara Ocydromia glabricula (Fall.) A. vestita (Wied.) Platypeza consobrina Zett. Oedalea freyi Chvala Campsicnemus armoricanus Parent Polyporivora ornata (Mg.) O. tibialis Macq. C. curvipes (Fall.) Protoclythia modesta (Zett.) Oropezella sphenoptera (Lw.) C. pusillus (Mg.) P. rufa (Mg.) Platypalpus aeneus (Macq.) C. scambus (Fall.) P. agilis (Mg.) Chrysotimus molliculus (Fall.) Phoridae P. albicornis (Zett.) Chrysotus cilipes Mg. Anevrina thoracica (Mg.) •P. albiseta (Panz.) C. gramineus (Fall.) •A. unispinosa (Zett.) P. annulatus (Fall.) C. pulchellus Kow. Borophaga femorata (Mg.) P. annulipes (Mg.) Diaphorus oculatus (Fall.) Chaetopleurophora erythronota (Strobl) P. calceatus (Mg.) Dolichopus atratus Mg. Conicera dauci (Mg.) P. candicans (Fall.) D. caligatus Wahl. C. floricola Schmitz •P. caroli Groot. D. cilifemoratus Macq. C. tarsalis Schmitz P. clarandus (Coll.) D. latilimbatus Macq. Diplonevra florea (Fab.) P. cothurnatus Macq. D. longitarsis Stann. D. nitidula (Mg.) P. cursitans (Fab.) D. nitidus Fall. Gymnophora arcuata (Mg.) •P. exilis (Mg.) D. nubilus Mg. G. integralis Schmitz •P. interstinctus (Coll.) D. pennatus Mg. •Megaselia aculeata (Schmitz) P. laticinctus Walk. D. picipes Mg. •M. albocingulata (Strobl) •P. melancholicus (Coll.) D. planitarsis Fall. •M. analis (Lund.) P. niger (Mg.) D. plumipes (Scop.) •M. annulipes (Schmitz) P. pallidicornis (Coll.) D. popularis Wied. M. ciliata (Zett.) P. pallidiventris (Mg.) D. signatus Mg. •M. cinerea Schmitz •P. pseudofulvipes (Frey) D. simplex Mg. •M. deltofemoralis Disney P. stabilis (Coll.) D. ungulatus (L.) •M. fenestralis (Schmitz) P. vividus (Mg.) Gymnopternus aerosus (Fall.) M. flava (Fall.) Stilpon graminum (Fall.) G. angustifrons (Staeg.) •M. frameata Schmitz Symballophthalmus fuscitarsis (Zett.) G. assimilis (Staeg.) •M. hartfordensis Disney •Syndyas nigripes (Zett.) G. blankaartensis Pollet •M. ignobilis (Schmitz) Syneches muscarius (Fab.) G. chalybeus (Wied.) M. involuta (Wood) Tachydromia annulimana Mg. G. metallicus (Stann.) •M. lavoursensis Disney T. arrogans (L.) G. silvestris Pollet •M. longifurca (Lund.) •T. umbrarum Hal. Hercostomus chrysozygos (Wied.) •M. melanocephala (v. Roser) Tachypeza fuscipennis (Fall.) H. nanus (Macq.) M. nasoni (Malloch) T. nubila (Mg.) H. nigrilamellatus (Macq.) M. pleuralis (Wood) H. nigriplantis (Stann.) M. pseudogiraudii (Schmitz) Empididae H. plagiatus (Lw.) M. pusilla (Mg.) E. (Anachrostichus) nitida Mg. Hydrophorus praecox (Leh.) •M. putescavi Disney Chelipoda vocatoria (Fall.) Lamprochromus bifasciatus (Macq.) M. pygmaea (Zett.) Dolichocephala guttata (Hal.) Medetera muralis Mg. M. rufipes (Mg.) Empis chioptera Mg. M. petrophiloides Parent •M. shawi Disney E. nigripes Fab. M. truncorum Mg. •M. subcarpalis (Lund.) E. (Euempis) tessellata Fab. Micromorphus albipes (Zett.) Metopina oligoneura (Mik) Hilara brevistyla Coll. Nematoproctus distendens (Mg.) Phalacrotophora berolinensis Schmitz H. cornicula Lw. N. longifilus (Lw.) Phora atra (Mg.) H. longifurca Strobl N. praesectus (Lw.) P. holosericea Schmitz H. maura (Fab.) Neurigona erichsoni (Zett.) P. tincta Schmitz H. platyura Lw. •N. lineata (Old.) Pseudacteon fennicus Schmitz E. (Leptempis) variegata Mg. N. quadrifasciata (Fab.) P. formicarum (Verrall) E. (Lissempis) nigritarsis Mg. N. suturalis (Fall.) •Spiniphora excisa (Becker) R. (Megacyttarus) crassirostris (Fall.) Rhaphium appendiculatum Zett. R. (Pararhamphomyia) barbata (Macq.) R. auctum Lw. Lonchopteridae •R. (P.) caesia (Mg.) R. caliginosum Mg. Lonchoptera lutea Panz. R. (P.) physoprocta Frey R. crassipes (Mg.) •L. scutellata Stein - 166 -

Syrphidae P. rosarum (Fab.) L. caucasica Kov. Anasimyia lineata (Fab.) Rhingia campestris Mg. L. chorea (Fab.) A. transfuga (L.) Scaeva pyrastri (L.) L. contigua Coll. Baccha elongata (Fab.) S. selenitica (Mg.) L. contraria Cz. Brachyopa bicolor (Fall.) Sericomyia silentis (Harr.) L. fugax Becker B. insensilis Coll. Sphaerophoria infuscata Goeldin L. hackmani Kov. B. panzeri Goffe S. scripta (L.) •L. iona MacG. B. pilosa Coll. S. taeniata (Mg.) L. mallochi MacG. & Roth. Brachypalpoides lentus (Mg.) Syritta pipiens (L.) L. nitens (Bigot) Brachypalpus laphriformis (Fall.) Syrphus ribesii (L.) L. palposa Zett. Caliprobola speciosa (Rossi) S. vitripennis Mg. L. patens Coll. Chalcosyrphus nemorum (Fab.) Temnostoma bombylans (Fab.) •L. subneatosa Kov. Cheilosia albitarsis (Mg.)/ranunculi Doczcal T. vespiforme (L.) L. sylvatica Bel. Cheilosia fasciata Schiner & Egger Trichopsomyia flavitarsis (Mg.) L. tarsata Fall. C. pagana (Mg.) Tropidia scita (Harr.) Silba (Setisquamolonchaea) fumosa (Egg.) Chelosia proxima (Zett.) Volucella inflata (Fab.) C. scutellata (Fall.) V. pellucens (L.) Pallopteridae C. uviformis Becker Xanthogramma citrofasciatum (De Geer) Palloptera quinquemaculata (Macq.) C. variabilis (Panz.) X. dives (Rond.) Chrysogaster rondanii Maibach & Goeldlin X. laetum (Fab.) Piophilidae Chrysotoxum bicinctum (L.) X. pedissequum (Harr.) Neottiophilum praeustum (Mg.) C. cautum (Harr.) Xylota jakutorum Bagatshanova Parapiophila vulgaris (Fall.) C. elegans Lw. X. segnis (L.) C. festivum (L.) X. sylvarum (L.) Ulidiidae C. verralli Coll. Ceroxys hortulana (Rossi) Criorhina berberina (Fab.) Pipunculidae Herina frondescentiae (L.) Dasysyrphus tricinctus (Fall.) Beckerias pannonicus (Aczel) •H. oscillans (Mg.) D. pinastri (De Geer) Cephalops penultimus Ackland H. palustris (Mg.) D. venustus (Mg.) C. perspicuus (de Meijere) H. scutellaris R.-D. Epistrophe eligans (Harr.) Chalarus fimbriatus Coe Myennis octopunctata (Coq.) E. nitidicollis (Mg.) C. gynocephalus Jervis Otites guttata (Mg.) Episyrphus balteatus (De Geer) C. indistinctus Jervis Seioptera vibrans (L.) Eristalinus sepulchralis (L.) C. latifrons Hardy Eristalis arbustorum (L.) C. spurius (Fall.) Platystomatidae E. horticola (De Geer) Dasydorylas holosericeus (Beck.) Platystoma seminationis (Fab.) E. interrupta (Poda) Dorylomorpha (Dorylomyza) hungarica (Aczel) E. jugorum Egger •D. (D.) lautereri Albrecht Tephritidae E. pertinax (Scop.) D. (Dorylomorpha) extricata (Coll.) Acanthiophilus helianthi (Rossi) E. similis (Fall.) Eudorylas fuscipes (Zett.) Acidia cognata (Wied.) E. tenax (L.) E. inferus Coll. Cryptaciura rotundiventris (Fall.) Eumerus flavitarsis Zett. E. obliquus Coe Dioxyna bidentis (R.-D.) E. strigatus (Fall.) Jassidophaga villosa (v. Roser) Myoleja caesio (Harr.) Eupeodes bucculatus (Rond.) Nephrocerus flavicornis (Zett.) Tephritis formosa Lw.) E. corollae (Fab.) •N. lapponicus (Zett.) Trypeta zoe Mg. E. goedlini Mazanek, Laska & Bicik N. scutellatus (Macq.) Urophora solstitialis (L.) E. luniger (Mg.) Pipunculus campestris Lat. Ferdinandea cuprea (Scop.) Tomosvaryella kuthyi Aczel Lauxaniidae Helophilus pendulus (L.) T. palliditarsis (Coll.) Calliopum simillimum (Coll.) H. trivittatus (Fab.) Verrallia aucta (Fall.) Meiosimyza decempunctata (Fall.) Heringia brevidens (Egg.) M. decipiens (Lw.) H. latitarsis (Egg.) ACALYPTERATAE M..rorida (Fall.) H. vitripennis (Mg.) Minettia longipennis (Fab.) Lapposyrphus lapponicus (Zett.) Micropezidae •Poecilolycia vittata (Walk.) Lejogaster tarsata (Megerle) Neria cibaria (L.) Pseudolyciella pallidiventris (Fall.) Melangyna compositarum (Verrall) •N. commutata (Cz.) P. stylata (Papp) Melanogaster aerosa (Lw.) Rainieria calceata (Fall.) Sapromyza halidayi Shtalkin Melanostoma mellinum (L.) Tricholauxania praeusta (Fall.) M. scalare (Fab.) Trigonometopus frontalis (Mg.) Meligramma triangulifera (Zett.) Tanypeza longimana Fall. Meliscaeva auricollis (Mg.) Chamaemyiidae Mesembrius peregrinus (Lw.) Psilidae Parochthiphila spectabilis (Lw.) Microdon analis (Macq.)/major Andries Chamaepsila nigricornis (Mg.) M. devius (L.) C. rosae (Fab.) M. mutabilis (L.)/myrmicae Schönrogge •Chyliza (Dasyna) extenuata (Rossi) Neuroctena anilis (Fall.) Myathropa florae (L.) Loxocera albiseta (Schr.) Neoascia geniculata (Mg.) Psila fimetaria (L.) Sciomyzidae N. interrupta (Mg.) Antichaeta analis (Mg.) N. meticulosa (Scop.) A. atriseta (Lw.) N. podagrica (Fab.) Conops flavipes L. A. brevipennis (Zett.) N. tenur (Harr.) C. vesicularis L. •A. obliviosa Enderlein Orthonevra brevicornis (Lw.) Myopa testacea (L.) Colobaea bifasciella (Fall.) O. geniculata (Mg.) Physocephala vittata (Fab.) C. distincta (Mg.) Paragus haemorrhous Mg. Sicus ferrugineus (L.) Coremacera marginata (Fab.) Platycheirus albimanus (Fab.) Thecophora atra (Fab.) Elgiva cucularia (L.) P. clypeatus (Mg.) E. solicita (Harr.) P. fulviventris (Macq.) Lonchaeidae Hydromya dorsalis (Fab.) P. perpallidus Verrall L. bukowskii Cz. Ilione albiseta (Scop.) - 167 -

I. lineata (Fall.) P. ranunculicola Hering Chyromyiidae Limnia paludicola Elberg P. tetrasticha Hendel Chyromya flava (L.) L. unguicornis (Scop.) Pherbellia albocostata (Fall.) Sphaeroceridae P. annulipes (Zett.) Geomyza apicalis (Mg.) Apteromyia claviventris (Strobl) P. cinerella (Fall.) G. tripunctata Fall. Chaetopodella scutellaris (Hal.) P. dubia (Fall.) G. venusta (Mg.) Coproica ferruginata (Stenh.) P. griseola (Fall.) Opomyza florum (Fab.) •C. hirticula Coll. P. obtusa (Fall.) O. germinationis (L.) Copromyza stercoraria (Mg.) P. schoenherri (Fall.) Crumomyia nitida (Mg.) P. scutellaris (v. Roser) Anthomyzidae C. pedestris (Mg.) P. ventralis (Fall.) •Anagnota bicolor (Mg.) •Elachisoma aterrimum (Hal.) Pherbina coryleti (Scop.) •A. major Roh. & Freid. Gonioneura spinipennis (Hal.) Psacadina vittigera (Schin.) •Anthomyza clara Roh. Herniosina bequaerti (Villen.) P. zernyi (Mayer) A. collini Anderss. Ischiolepta crenata (Mg.) Pteromicra angustipennis (Staeg.) A. gracilis Fall. I. pusilla (Fall.) Renocera pallida (Fall.) •A. neglecta Coll. Leptocera caenosa (Rond.) R. stroblii Hendel L. nigra Olivier Sciomyza dryomyzina Zett. Aulacigastridae Lotophila atra (Mg.) S. testacea Macq. Aulacigaster leucopeza (Mg.) Minilimosina (Svarciella) splendens (Duda) Sepedon sphegea (Fab.) A. pappi Kassebeer M. (S.) vitripennis (Zett.) S. spinipes (Scop.) Opacifrons coxata (Stenh.) Tetanocera arrogans Mg. •Opalimosina calcarifera (Roh.) T. ferruginea Fall. Asteia amoena Mg. O. collini (Richards) T. fuscinervis (Zett.) Leiomyza dudai Sabrosky O. czernyi (Duda) T. hyalipennis v. Roser O. liliputana (Rond.) T. silvatica Mg. Milichiidae O. mirabilis (Coll.) Tetanura pallidiventris Fall. Desmometopa discipalpis Papp Phthitia spinosa (Coll.) D. m-nigrum (Zett.) Pseudocollinella humida (Hal.) Sepsidae D. sordida (Fall.) Pteremis fenestralis (Fall.) Nemopoda nitidula (Fall.) Madiza britannica Hennig Pullimosina heteroneura (Hal.) N. pectinulata Lw. Milichia ludens (Wahl.) Puncticorpus cribratum (Vill.) Sepsis fulgens Mg. Phyllomyza donisthorpei Schmitz Rachispoda limosa (Fall.) •S. nigripes Mg. P. longipalpis (Schmitz) R. lutosa (Stenh.) S. orthocnemis Frey P. securicornis Fall. R. lutosoidea (Duda) S. punctum (Fab.) •R. opinata (Roh.) S. thoracica (R.-D.) Chloropidae Spelobia bifrons (Stenh.) S. violacea Mg. Calamoncosis minima (Strobl) S. clunipes (Mg.) Themira annulipes (Mg.) Camarota curvipennis (Lat.) S. luteilabris (Rond.) T. leachi (Mg.) Cetema elongatum (Mg.) S. ochripes (Mg.) T. minor (Hal.) C. neglectum (Tonn.) S. palmata (Richards) Cryptonevra flavitarsis (Mg.) S. talparum (Richards) Clusiidae C. nigritarsis (Duda) Telomerina eburnea Roh. Clusia flava (Mg.) Elachiptera cornuta (Fall.) T. flavipes (Mg.) Clusiodes albimanus (Mg.) Gampsocera numerata (Heeger) Trachyopella melania (Hal.) C. ruficollis (Mg.) Lasiambia coxalis (v. Roser) C. verticalis (Coll.) Lasiosina herpini (Guérin-Méneville) Drosophilidae Lipara lucens Mg. Acletoxenus formosus (Lw.) L. pullitarsis Doskocil & Chvala Amiota alboguttata (Wahl.) •Neoalticomerus fabricei Withers & Papp L. rufitarsis Lw. A. flavopruinosa Duda Odinia boletina (Zett.) Neohaplegis tarsata (Fall.) Cacoxenus indagator Lw. Platycephala planifrons (Fab.) Chymomyza amoena (Lw.) Agromyzidae Rhopalopterum anthracinum (Mg.) •C. fuscimana (Zett.) C. (Butomomyza) eucaricis Nowakowski Thaumatomyia notata (Mg.) Drosophila (Dorsilopha) busckii Coq. •Cerodontha (C.) denticornis (Panz.) Hirtodrosophila confusa Staeg. C. (Dizygomyza) bulbiseta (Hendel) Lordiphosa andalusiaca Strobl C. (D.) caricicola (Hering) •Eccoptomera obscura (Mg.) L. fenestrarum (Fall..) •C. (D.) iraeos (R.-D.) Gymnomus caesius (Mg.) •L. hexasticha Papp C. (D.) morosa (Mg.) •Heteromyza oculata Fall. D. (Drosophila) histrio Mg. C. (Icteromyza) bohemani (Rydén) H. rotundicornis (Zett.) D. (D.) immigrans Sturt. C. (I.) geniculata (Fall.) Morpholeria variabilis (Loew) D. (D.) kuntzei Duda C. (Poemyza) incisa (Mg.) Oecothea fenestralis (Fall.) D. (D.) limbata v. Roser C. (P.) muscina (Mg.) O. praecox Lw. D. (D.) phalerata Mg. Liriomyza eupatorii (Kalt.) Scoliocentra villosa (Mg.) D. (Sophophora) subobscura Coll. L. flaveola (Fall.) Suillia affinis (Mg.) D. (S.) suzukii (Matsumura) L. richteri Hering S. atricornis (Mg.) D. (S.) tristis Fall. L. valerianae Hendel S. bicolor (Zett.) D. (D.) testacea v. Roser L. virgo (Zett.) •S. cepelaki Martinek D. (D.) transversa Fall. •Ophiomyia aeneonitens (Strobl) •S. dawnae Withers Leucophenga maculata (Dufour) O. asparagi Spencer S. flavifrons (Zett.) Phortica semivirgo (Maca) •O. cichorii Hering S. fuscicornis (Zett.) P. variegata (Fall.) O. galii Hering S. vaginata (Lw.) Scaptomyza (S.) graminum (Fall.) Phytomyza aconiti Hendel S. variegata (Lw.) S. (Parascaptomyza) pallida (Zett.) P. agromyzina Mg. Tephrochlaena halterata (Mg.) Stegana coleoptrata (Scop.) •P. mylini Hering Tephrochlamys flavipes (Zett.) •P. platonoffi Spencer T. rufiventris (Mg.) Diastatidae T. tarsalis (Zett.) Diastata nebulosa (Fall.) - 168 -

Campichoetidae Fanniidae P. vagabunda (Mg.) Campichoeta obscuripennis (Mg.) Fannia aequilineata Ringd. Stomorhina lunata (Fab.) C. punctum (Mg.) F. armata (Mg.) F. canicularis (L.) Ephydridae F. lepida (Wied.) Melanophora roralis (L.) Athyroglossa glabra (Mg.) •F. nidica Coll. Paykullia maculata (Fall.) Axysta cesta (Hal.) F. pallitibia (Rond.) Rhinophora lepida (Mg.) Dichaeta caudata (Fall.) F. polychaeta (Stein) Discomyza incurva (Fall.) F. serena (Fall.) Sarcophagidae Gymnoclasiopa plumosa (Fall.) F. similis (Stein) Brachicoma devia (Fall.) Hecamedoides glaucellus (Stenh.) F. sociella (Zett.) Nyctia halterata (Panz.) Hydrellia maura Mg. F. speciosa (Villen.) Ravinia pernix (Harr.) Ilythea spilota (Hal. in Curtis) F. umbrosa (Stein) Sarcophaga (Belleriomima) subulata Pand. Nostima semialata (Coll.) Piezura graminicola (Zett.) S. (Bercaea) africa (Wied.) Notiphila cinerea Fall. S. (Heteronychia) arcipes Pand. N. dorsata Stenh. Muscidae S. (D.) pumila Mg. N. riparia Mg. Azelia cilipes (Hal.) S. (Helicophagella) crassimargo Pand. Ochthera manicata (Fab.) Coenosia atra Mg. S. (H.) melanura Mg. Parydra fossarum (Hal.) C. campestris (R.-D.) S. (H.) rosellei Bötch. P. hecate (Hal.) C. dubiosa Hennig S. (Heteronychia) depressifrons Zett. P. littoralis (Mg.) C. intermedia (Fall.) S. (H.) haemorrhoa Mg. P. quadripunctata (Mg.) C. mollicula (Fall.) S. (H.) vagans Mg. Pelina aenea (Fall.) C. ruficornis (Macq.) Sarcophaga (Krameromyia) anaces Walk. Philygria maculipennis (R.-D.) C. tigrina (Fab.) S. (Liosarcophaga) aegyptiaca Salem Psilopa polita (Macq.) Gymnodia humilis (Zett.) S. (Mimarhopocnemis) granulata Kramer P. roederi Girsch. Haematobia irritans (L.) Sarcophaga (Myorhina) socrus Rond. Scatella stagnalis (Fall.) Haematobosca stimulans (Mg.) S. (M.) villeneuvi Bötch. •S. subguttata (Mg.) Helina evecta (Harr.) S. (Parasarcophaga) albiceps Mg. H. sexmaculata (Preyssler) S. (Robineauella) caerulescens Zett. Hydrotaea cyrtoneurina (Zett.) S. (Rosellea) aratrix Pand. H. dentipes (Fab.) Sarcophaga (S.) carnaria (L.) Scathophagidae H.irritans (Fall.) S. (S.) jeanleclerqi Lehrer Cleigastra apicalis (Mg.) Limnophora obsignata (Rond.) S. (S.) lehmanni Mueller •Cordilura aemula Coll. L. tigrina (Am Stein) S. (S.) subvicina Rohd. C. ciliata Mg. L. triangula (Fall.) S. (S.) variegata (Scop.) C. impudica Rond. Lispe melaleuca Lw. S. (Sarcotachinella) sinuata Mg. C. picipes Mg. L. nana Macq. S. (Thyrsocnema) incisilobata Pand. C. pubera (L.) L. pygmaea Fall. Sarcophila latifrons (Fall.) C. (Cordilurina) albipes Fall. L. tentaculata (De Geer) Leptopa filiformis Zett. Lispocephala alma (Mg.) Tachinidae Nanna flavipes (Fall.) L. erythrocera (R.-D.) Actia crassicornis (Mg.) N. tibiella (Zett.) L. verna (Fab.) A. dubitata Herting Norellisoma spinimanum (Fall.) Mesembrina meridiana (L.) A. infantula (Zett.) Parallelomma paridis Hering Morellia aenescens R.-D. A. pilipennis (Fall.) P. vittatum (Mg.) M. hortorum (Fall.) Blepharipa pratensis (Mg.) Phrosia albilabris (Fab.) Musca autumnalis De Geer Campylochaeta praecox (Mg.) Scathophaga furcata (Say) Muscina levida (Harr.) Carcelia rasa (Macq.) S. inquinata Mg. Mydaea corni (Scop.) Catharosia pygmaea (Fall.) S. lutaria (Fab.) M. nebulosa (Stein) Ceromya silacea (Mg.) S. scybalaria (L.) M. urbana (Mg.) Cinochira atra Zett. S. stercoraria (L.) •Phaonia apicalis Stein Compsilura concinnata (Mg.) S. suilla (Fab.) P. errans (Mg.) Cylindromyia auriceps (Mg.) P. palpata (Stein) C. intermedia (Mg.) P. rufiventris (Scop.) Dexiosoma caninum (Fab.) Anthomyia liturata (R.-D.) P. subventa (Harr.) Ectophasia crassipennis (Fab.) A. pluvialis (L.) •P. trimaculata (Bouché) Gymnosoma rotundatum (L.) A. procellaris Rond. P. tuguriorum (Scop.) Medina multispina (Herting) Botanophila fugax (Mg.) P. valida (Harr.) M. separata (Mg.) Delia antiqua (Mg.) P. villana R.-D. Nowickia ferox (Panz.) D. lamelliseta (Stein) Polietes lardarius (Fab.) Peleteria varia (Fab.) Emmesomyia grisea (R.-D.) P. meridionalis Peris & Llorente Peribaea tibialis (R.-D.) E. socia (Fall.) Potamia littoralis R.-D. Phasia obesa (Fab.) Eustalomyia hilaris (Fall.) Schoenomyza litorella (Fall.) P. pusilla Mg. Hydrophoria lancifer (Harr.) Spanochaeta dorsalis (v. Roser) Phorocera assimilis (Fall.) H. ruralis (Mg.) •Spilogona litorea (Fall.) P. obscura (Fall.) H. silvicola (R.-D.) Stomoxys calcitrans (L.) Siphona cristata (Fab.) nigrimana (Mg.) S. flavifrons Staeg. H. vagans (Panz.) Calliphoridae Tachina fera (L.) H. variata (Fall.) Angioneura cyrtoneurina (Zett.) T. ursina (Mg.) Leucophora grisella Hennig Bellardia viarum (R.-D.) Zenillia fulva (Fall.) L. obtusa (Zett.) B. vulgaris (R.-D.) Mycophaga testacea (Gimmerth.) Cynomya mortuorum (L.) Pegomya rubivora (Coq.) Lucilia bufonivora Moniez P. ulmaria Rond. L. silvarum (Mg.) Pegoplata palposa (Stein) Melanomya nana (Mg.) Zaphne ambigua (Fall.) Melinda gentilis R.-D. Z. inuncta (Zett.) Pollenia rudis (Fab.) Qu’il me soit permis de rendre hommage aux fondateurs de la réserve naturelle, qui ont tant œuvré pour la protection du marais de Lavours et le développement des recherches scientifiques sur cet éco- système exceptionnel : Guy Pautou, Raymond Gruffaz, Emmanuel Boutefeu, Philippe Lebreton, Guy Aïn, Hubert Tournier. Ce bulletin scientifique de la Société linnéenne de Lyon leur est dédié. F. Darinot, mars 2014.

Bastien Rouzier : photographies de la couverture et des p. 4 et 271 Cécile Guérin et Fabrice Darinot : infographie

Pour citer cet ouvrage : Darinot Fabrice, coordinateur. Bilan de 30 ans d’études scientifiques dans le marais de Lavours (1984-2014). Bull. Soc. linn. Lyon, hors-série n°3, 2014.