РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ НАУК Южный научный центр RUSSIAN ACADEMY OF SCIENCES Southern Scientific Centre

CAUCASIAN ENTOMOLOGICAL BULLETIN

Том 15. Вып. 2 Vol. 15. No. 2

Ростов-на-Дону 2019 © “Кавказский энтомологический бюллетень” составление, редактирование compiling, editing

На титуле оригинальная фотография С. Маршалла (Stephen Marshall) Argyrochlamys marshalli Grichanov, 2010

Адрес для переписки: Максим Витальевич Набоженко [email protected]

E-mail for correspondence: Dr Maxim Nabozhenko [email protected]

Русская электронная версия журнала – http://www.ssc-ras.ru/ru/journal/kavkazskii_yntomologicheskii_byulleten/ English online version – http://www.ssc-ras.ru/en/journal/caucasian_entomological_bulletin/

Издание осуществляется при поддержке Южного научного центра Российской академии наук (Ростов-на-Дону) ­e journal is published by Southern Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences under a Creative Commons Attribution- NonCommercial 4.0 International License

Журнал индексируется в eLibrary.ru, ­omson Reuters (Zoological Record, Biological Abstracts, BIOSIS Previews, Russian Science Index Citation), ZooBank, DOAJ, Crossref ­e journal is indexed/referenced in eLibrary.ru, ­omson Reuters (Zoological Record, Biological Abstracts, BIOSIS Previews, Russian Science Index Citation), ZooBank, DOAJ, Crossref

Техническое редактирование и компьютерная верстка номера – С.В. и М.В. Набоженко; корректура – С.В. Набоженко Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 233–235 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Synaphosus shirin Ovtsharenko, Levi et Platnik, 1994 (Gnaphosidae) и Holocnemus pluchei (Scopoli, 1763) () – два новых вида пауков (Aranei) в фауне Кавказа

Synaphosus shirin Ovtsharenko, Levi et Platnik, 1994 (Gnaphosidae) and Holocnemus pluchei (Scopoli, 1763) (Pholcidae) – two new of (Aranei) in the fauna of the Caucasus

© А.В. Пономарёв1, Н.Ю. Снеговая2, В.Ю. Шматко1 © A.V. Ponomarev1, N.Yu. Snegovaya2, V.Yu. Shmatko1

¹Федеральный исследовательский центр Южный научный центр Российской академии наук, ул. Чехова, 41, Ростов-на-Дону 344006 Россия ²Институт зоологии НАН Азербайджана, проезд 1128, квартал 504, Баку AZ1073 Азербайджан

¹Federal Research Centre the Southern Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Chekhov str., 41, Rostov-on-Don 344006 Russia. E-mail: [email protected] ²Institute of Zoology NAS of Azerbaijan, passage 1128, district 504, Baku AZ1073 Azerbaijan. E-mail: [email protected]

Ключевые слова: пауки, новые находки, Азербайджан, Грузия. Key words: spiders, new records, Azerbaijan, Georgia.

Резюме. Приводятся данные о находках двух вида пауков из семейств Gnaphosidae и Pholcidae. новых для фауны Кавказа видов пауков: Synaphosus Ниже приводятся данные о находках этих видов и shirin Ovtsharenko, Levi et Platnik, 1994 (Gnaphosidae) иллюстрации их копулятивных органов. Материал и Holocnemus pluchei (Scopoli, 1763) (Pholcidae). хранится в Зоологическом музее Московского Даны рисунки копулятивных органов собранных государственного университета (ЗММГУ, Москва, экземпляров. Первый вид, новый для фауны Кавказа Россия) и в личной коллекции А.В. Пономарёва (К.П.). и Азербайджана, был описан из Западного Ирана Фотографии выполнены в Южном научном центре (провинция Керманшах: Кесре-Ширин) по одной Российской академии наук на микроскопе (тринокуляр) самке, в дальнейшем был отмечен на Кипре; Бадамлы МИКМЕД-6 с использованием цифровой фотокамеры в Нахичеванской Автономной Республике является SONY NEX-C3 16.2mp и микрофотонасадки МФН-12. самой северной точкой ареала вида. Holocnemus pluchei распространен в Центральной и Южной Семейство Gnaphosidae Европе, Турции, Северной Африке, был указан для Synaphosus shirin Ovtsharenko, Levi et Platnick, 1994 Крыма (Бахчисарай); впервые отмечается на Кавказе, (Рис. 1) новый вид для фауны Азербайджана (Баку: Ходжасан; Мингеаур) и Грузии (Они). Synaphosus shirin Ovtsharenko, Levy et Platnick, 1994: 23, Abstract. Two species are recorded for the figs 82, 83 (♀). Chatzaki, Russell-Smith, 2017: 248, figs 29–34 (♂♀). ♀ Caucasus for the first time: Synaphosus shirin Ovtsharenko, Материал. Азербайджан: 1 (ЗММГУ), Нахичеванская Автономная Республика, Шахбузский р-н, Бадамлы, 39.438219°N / Levi et Platnik, 1994 (Gnaphosidae) and Holocnemus pluchei 45.546314°E, 1549 м н.у.м., 3.05.2018 (Н.Ю. Снеговая). (Scopoli, 1763) (Pholcidae). Copulative organs of collected Замечания. Вид описан из Западного Ирана specimens are illustrated. ­e first species, new for the (Кесре-Ширин) по одной самке [Ovtsharenko et al., fauna of the Caucasus and Azerbaijan, was described 1994]. В дальнейшем был отмечен на Кипре [Chatzaki, from West Iran (Kermanshah Province: Qasr-e Shirin) Russell-Smith, 2017]. Вид, новый для фауны Кавказа on the basis of one female. Later it was recorded for Cyprus. и Азербайджана. Бадамлы является самой северной Badamly in the Nakhchivan Autonomous Republic is точкой ареала вида. Для подтверждения правильности northernmost locality of the species range. Holocnemus нашего определения приводим рисунок эпигины pluchei is distributed in Central and Southern Europe, обнаруженной самки (рис. 1). Turkey, North Africa, was found in Crimea (Bakhchisaray); the first record for the Caucasus, new record for Azerbaijan Семейство Pholcidae (Baku: Hocasan; Mingachevir) and Georgia (Oni). Holocnemus pluchei (Scopoli, 1763) (Рис. 2–4) В процессе обработки материала, собранного Н.Ю. Снеговой и П.П. Ивлиевым в Азербайджане Holocnemus pluchei: Huber, 1995: 291, figs 1A, 2A–B, 4A–B, 6A–D, и Грузии, выявлены 2 новых для фауны Кавказа 7A–C, 10A (♂♀); Kovács et al., 2006: 9, figs 1–3 (♂♀).

Краткое сообщение / Short Communication DOI: 10.23885/181433262019152-233235 234 А.В. Пономарёв, Н.Ю. Снеговая, И.Ю. Шматко

Рис. 1–4. Копулятивные органы Synaphosus shirin (1) и Holocnemus pluchei (2–4). 1, 4 – эпигина, вид снизу; 2 – пальпа самца ретролатерально; 3 – пальпа самца пролатерально. Масштабные линейки: рис. 1 – 0.1 мм; рис. 2–4 – 0.5 мм. Figs 1–4. Copulatory organs of Synaphosus shirin (1) and Holocnemus pluchei (2–4). 1, 4 – epigyne, ventral view; 2 – male palp, retrolateral view; 3 – male palp, prolateral view. Scale bars: Fig. 1 – 0.1 mm; Figs 2–4 – 0.5 mm.

Материал. Азербайджан: 2♀ (К.П.), Баку, Ходжасан, 40.399581°N / 49.752853°E, 191 м н.у.м., 27.04.2016 (Н.Ю. Снеговая); 3♂, 3♀ (ЗММГУ), Благодарности Мингечаур, 40.787597°N / 46.891394°E, 261 м н.у.м., 3–6.05.2016, (Н.Ю. Снеговая). Грузия: 1♂ (К.П.), Рача-Лечхуми, Они, 42.571306°N / Авторы искренне признательны П.П. Ивлиеву 43.432556°E, 795 м н.у.м., 28.06.2018 (П.П. Ивлиев). (Ростов-на-Дону, Россия) за предоставленный материал Замечания. Строение копулятивных органов из Грузии. наших экземпляров (рис. 2–4) характерны для H. pluchei [Huber, 1995; Kovács et al., 2006]. Вид распространен Литература в Центральной и Южной Европе, Турции, Северной Африке [Nentwig et al., 2019; World Spider Catalog, 2019]. Надольный А.А. 2013. Первая находка Holocnemus pluchei (Aranei, Был отмечен в Крыму (Бахчисарай, заброшенный дом) Pholcidae) в Крыму. Вестник зоологии. 47(5): 408. Chatzaki M., Russell-Smith A. 2017. New species and new records of ground [Надольный, 2013]. Впервые отмечается на Кавказе, spiders (Araneae: Gnaphosidae) from Cyprus. Zootaxa. 4329(3): 237– новый для фауны Азербайджана и Грузии. 255. DOI: 10.11646/zootaxa.4329.3.3 Synaphosus shirin Ovtsharenko, Levi et Platnik, 1994 (Gnaphosidae) 235

Huber B.A. 1995. Copulatory mechanism in Holocnemus pluchei and Nentwig W., Blick T., Gloor D., Hänggi A., Kropf C. 2019. Araneae. Spinnen opilionoides, with notes on male cheliceral apophyses and Europas. Version 06.2019. URL: https://araneae.nmbe.ch/?lang=de stridulatory organs in Pholcidae (Araneae). Acta Zoologica. 76(4): (дата обращения: 10.06.2019). DOI: 10.24436/1 291–300. DOI: 10.1111/j.1463-6395.1995.tb01001.x Ovtsharenko V.I., Levy G., Platnick N.I. 1994. A review of the ground spider Kovács G., Szinetár C., Eichardt J. 2006. Holocnemus pluchei (Scopoli, Synaphosus (Araneae, Gnaphosidae). American Museum Novitates. 3095: 1–27. 1763) (Araneae: Pholcidae) in . Állattani Közlemények. World Spider Catalog. Version 20.0. 2019. URL: http://wsc.nmbe.ch (дата 91(1): 9–18. обращения: 10.06.2019).

Поступила / Received: 24.06.2019 Принята / Accepted: 9.11.2019 A.V. Ponomarev, N.Yu. Snegovaya, V.Yu. Shmatko

References

Chatzaki M., Russell-Smith A. 2017. New species and new records of Nadolny A.A. 2013. [ e first record of Holocnemus pluchei (Aranei, ground spiders (Araneae: Gnaphosidae) from Cyprus. Zootaxa. Pholcidae) from Crimea]. Vestnik zoologii. 47(5): 408 (in Russian). 4329(3): 237–255. doi: 10.11646/zootaxa.4329.3.3 Nentwig W., Blick T., Gloor D., Hänggi A., Kropf C. 2019. Araneae. Spinnen Huber B.A. 1995. Copulatory mechanism in Holocnemus pluchei and Europas. Version 06.2019. Available at: https://araneae.nmbe. Pholcus opilionoides, with notes on male cheliceral apophyses and ch/?lang=de (accessed 10 June 2019). DOI: 10.24436/1 stridulatory organs in Pholcidae (Araneae). Acta Zoologica. 76(4): Ovtsharenko V.I., Levy G., Platnick N.I. 1994. A review of the ground spider 291–300. DOI: 10.1111/j.1463-6395.1995.tb01001.x genus Synaphosus (Araneae, Gnaphosidae). American Museum Kovács G., Szinetár C., Eichardt J. 2006. Holocnemus pluchei (Scopoli, Novitates. 3095: 1–27. 1763) (Araneae: Pholcidae) in Hungary. Állattani Közlemények. World Spider Catalog. Version 20.0. 2019. Available at: http://wsc.nmbe.ch 91(1): 9–18. (accessed 10 June 2019). 236 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 237–239 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

‰e first record of the invasive cricket species Velarifictorus micado (Saussure, 1877) (: : ) for Transcaucasia (Georgia)

Первое указание вселенца Velarifictorus micado (Saussure, 1877) (Orthoptera: Gryllidae: Gryllinae) для Закавказья (Грузия)

© J. Mulder1, A.V. Gorochov2 © Дж. Малдер1, А.В. Горохов2

1Natural History Museum Rotterdam, Westzeedijk, 345, Rotterdam 3015AA Netherlands. E-mail: [email protected] 2Zoological Institute of the Russian Academy of Sciences, Universitetskaya Emb., 1, Saint Petersburg 199034 Russia. E-mail: [email protected]

1Музей естественной истории в Роттердаме, Вестзедейк, 345, Роттердам 3015AA Нидерланды 2Зоологический институт Российской академии наук, Университетская наб., 1, Санкт-Петербург 199034 Россия

Key words: Orthoptera, Gryllidae, Transcaucasia, Colchian lowland, invasive species. Ключевые слова: Orthoptera, Gryllidae, Закавказье, Колхидская низменность, инвазивный вид.

Abstract. A few crickets specimens collected in Among the numerous tiny Pteronemobius heydenii Georgia turned out to belong to the genus Velarifictorus (Fischer, 1853) specimens, some bigger dark crickets were Randell, 1964 and to the species micado, which is widely seen. In the field, their whitish palps were remarkable, but distributed in East Asia. ­e species is common in urban identification of the species at first sight was problematic. surroundings in Japan, China and Korean Peninsula, known Four specimens of this species were collected; they are in the South of Russian Far East and in some countries deposited in the first author’s collection. However, species of South-East Asia. Velarifictorus micado is known for determination with the help of keys for Transcaucasia its expansion potential; it has invaded a large part of the and Europe turned out to be impossible. ­e male was United States of America after introduction in 1959. ­e subsequently studied by the second author. species has not been observed in Europe so far, but now it is Measurements were taken and the specimen’s recorded for the first time in Georgia. Invasion of adherent morphology was described qualitatively and quantitatively. Turkish and Russian lowland territory is to be expected. Male genitalia were extracted and photographed. Consequences of the introduction are debated. Резюме. Несколько экземпляров сверчков, собранных Velarifictorus (Velarifictorus) micado (Saussure, 1877) в Грузии, оказались принадлежащими к роду Velarifictorus (Figs 1–5) Randell, 1964 и виду V. micado, который широко ♂ распространен в Восточной Азии. Этот вид обычен Material. 1 (JM 20180043), 3 nymphs (JM 20180027-29), Georgia, Mingrelia, environs of Matskhovriskari Railway Station near the Abasha вокруг урбанистических ландшафтов в Японии, Китае River, 42°13ʹ45ʺN / 42°10ʹ01ʺE, 20 m above sea level, on the border of a и на Корейском полуострове, отмечен на российском marshy patch and dry landscape, 4.08.2018 (coll. J. Mulder). Дальнем Востоке и в некоторых странах Юго- Brief description of the male. Body (Figs 1, 2) somewhat Восточной Азии. Вид отличается высоким инвазионным smaller than that of Acheta domesticus (Linnaeus, 1758) but slightly потенциалом. Отмечалась инвазия этого вида на larger than in Modicogryllus frontalis (Fieber, 1844), M. truncatus территорию Соединенных Штатов Америки. Этот вид (Tarbinsky, 1940) and Eumodicogryllus bordigalensis (Latreille, 1804) usual around Black Sea Coast of Georgia. Head rather large, не был известен в Европе, впервые указывается для almost semiglobular but with moderately elongate mouthparts Грузии. Ожидается инвазия этого вида на прилегающие and more or less straight clypeal suture; rostrum between antennal территории Турции и России. Обсуждаются последствия cavities approximately as wide as scape; epicranium shiny black этой интродукции. with light thin transverse stripe between lateral ocelli and three pairs of lightish spots (between lateral ocellus and eye, behind eye During a trip through Georgia in July-August 2018 on posterior part of vertex, and on gena under eye); mouthparts covering a large part of the country, the first author brown to light brown with almost dark brown areas on clypeus and labrum as well as with yellowish maxillae and labium having observed some small crickets in the Samagrelo part of whitish palps; antennae dark brown with light areas on scapes. the Samagrelo – Zemo Svaneti Region. Opposed to Pronotum transverse, with almost parallel lateral sides and clearly the mountainous part of the region (Zemo Svaneti), oblique ventral edges of lateral lobes; pronotal coloration dull Samagrelo, also known as Mingrelia, is a lowland area blackish with light ventral part of lateral lobes. with the subtropical climate. It is part of the Colchian Tegmina almost reaching abdominal apex, harp with lowland. two oblique veins (longest of them somewhat S-shaped), with

Short Communication / Краткое сообщение DOI: 10.23885/181433262019152-237239 238 J. Mulder, A.V. Gorochov

Figs 1–5. Velarifictorus (Velarifictorus) micado, male. 1–2 – imago: 1 – posterodorsal view, 2 – lateral view; 3–5 – genitalia: 3 – from above, 4 – from below, 5 – from the left side. Рис. 1–5. Velarifictorus (Velarifictorus) micado, самец. 1–2 – имаго: 1 – постеродорсально, 2 – латерально; 3–5 – гениталии: 3 – сверху, 4 – снизу, 5 – с левой стороны. moderately large and almost rectangular mirror almost as long as probably has been unintentional. Eggs in root balls or wide and having one dividing vein in distal half and with apical substrate of especially ornamental plants may be a possible area slightly shorter than mirror (f. brachyptera); hind wings vector. ­e nearby railway station could be an explanation shortened, invisible in rest position (in f. macroptera, known from of its occurrence there. eastern Asia, tegminal apical area somewhat longer than mirror, and hind wings significantly protruding beyond tegminal apices); ­e subtropical climatological circumstances of this tegminal coloration shiny dark with ventral parts of lateral fields region seem to be perfect and, although flying capacity cream. Legs typical of Gryllinae; outer tympanum oval and rather normally is absent, a distribution expansion is to be large, almost 3.5 times as long as small and almost round inner expected to have happened already or will happen in the tympanum; hind tibia with five pairs of dorsal spines (except for near future. ­is will undoubtedly include adherent Turkish apical spurs); hind basitarsus with 5–7 dorsal denticles on each and Russian territory as well. ­e circumstances in the side and a pair of much larger apical spurs; all legs light but with dark marble distal parts of femora, dark to darkish spots mountainous regions of Georgia are probably unsuitable on tibiae and on middle parts of femora (however, outer side for the species. Rarely the species can be macropterous, of hind femur with numerous dark oblique stripes on middle which enables flight and enhances the dispersal capacity. and subbasal parts). Supra-anal plate barely elongate, moderately ­e expansion pattern in all probability will follow the way narrowing backwards, with widely truncate apex; subgenital plate other Eastern Asian alien species have exhibited almost roundly angular at apex, approximately 1.5 times as long in the region, e.g. the brown marmorated stink bug as anal plate; cerci distinctly longer than tegmina; genitalia as in Halyomorpha halys (Stål, 1855) [Gapon, 2016; Murvanidze Figs 3–5. Measurements of male (in mm). Body length from rostral et al., 2018] or the Japanese planthopper Ricania japonica apex to apex of subgenital plate 17; length of pronotum 3.1; width Melichar, 1898. In the United States it has spread until a of pronotum 4.9; length of tegmen 8.6; length of hind femur 10.4. latitude of 43°N. All morphological characters are congruent to We do not expect this species to have a severe Velarifictorus micado f. brachyptera. socio-economic impact on agriculture nor to be directly detrimental to biodiversity. ­e species can reach extremely Discussion high densities though [Hall et al., http://dpr.ncparks.gov/ orth/index.php], which theoretically could impact other ­is Japanese burrowing cricket has its original crickets by predation and competition for space and food. distribution in East Asia and cannot be considered a native Management strategies like eradication measures are not inhabitant of Georgia. It is common in urban surroundings feasible. in Japan, China and Korea, known in the South of Russian Far East and in some countries of South-East Asia. It is known Acknowledgements for its expansion potential. ­e enormous expansion after introduction in the United States has been documented We would like to thank the anonymous referees for the well [Walker, 1977; Bowles, 2018]. Introduction in Georgia valuable comments on the manuscript. ­e first record of the invasive cricket species Velarifictorus micado 239

Hall S., Corey E., Howard T. Orthoptera of North Carolina. Available at: References http://dpr.ncparks.gov/orth/index.php (accessed 21 March 2019). Murvanidze M., Krawcyk G., Inasaridze N., Dekanoidze L., Bowles D.E. 2018. Introduced Japanese burrowing cricket (Orthoptera: Gryllidae: Velarifictorus (Velarifictorus) micado) range continues Samsonadze N., Macharashvili M., Khutsishvili S., Shengelaia S. to expand in North America. Journal of Orthoptera Research. 2018. Preliminary data on the biology of brown marmorated 27(2): 177–181. DOI: 10.3897/jor.27.29067 stink bug Halyomorpha halys (, ) in Gapon D.A. 2016. First records of the brown marmorated stink bug Georgia. Turkish Journal of Zoology. 42: 617–624. DOI: 10.3906/ Halyomorpha halys (Stål, 1855) (Heteroptera,: Pentatomidae) in zoo-1802-34 Russia, Abkhazia, and Georgia. Entomological Review. 96(8): Walker T.J. 1977. Japanese burrowing cricket widely established in 1086–1088. DOI: 10.1134/S001387381608011X southeastern United States. Florida Entomologist. 60(4): 308–309.

Received / Поступила: 11.07.2019 Accepted / Принята: 4.09.2019 240 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 241–247 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Мраморный щитник Halyomorpha halys (Stål, 1855) (Heteroptera: Pentatomidae): расширение ареала в европейской части России, описание имаго, личиночных стадий и диагностика вида

‰e brown marmorated stink bug Halyomorpha halys (Stål, 1855) (Heteroptera: Pentatomidae): expansion of its range in the European part of Russia, description of the imago and larvae, and the diagnostics of the species

© Д.А. Гапон © D.A. Gapon

Зоологический институт Российской академии наук, Университетская наб., 1, Санкт-Петербург 199034 Россия Zoological Institute of the Russian Academy of Sciences, Universitetskaya Emb., 1, St Petersburg 199034 Russia. E-mail: [email protected], [email protected]

Ключевые слова: новое указание, Россия, имаго, личинки, идентификация, мраморный щитник, Halyomorpha halys. Key words: new record, Russia, imago, larvae, nymphs, identification, brown marmorated stink bug, Halyomorpha halys.

Резюме. Приводится новое региональное Казахстана [Есенбекова, 2017]. В 2017 году вид был указание Halyomorpha halys (Stål, 1855) с территории отмечен в Краснодаре, Северском и Динском районах европейской части России (Ростовская область), Краснодарского края [Нейморовец, 2018]. Есть свидетельствующее о дальнейшем распространении на основания считать, что на Черноморском побережье север этого инвазивного вида, впервые обнаруженного России мраморный щитник был интродуцирован не на Черноморском побережье Кавказа в 2016 году. позднее 2013 года [Гапон, 2016]. Появление его там Дается полное морфологическое описание имаго хронологически совпадает с подготовкой к проведению и всех личиночных стадий, а также сведения для зимних Олимпийских игр 2014 года в Сочи и вызвано, идентификации вида. вероятно, нарушениями карантинных мер при ввозе Abstract. A new regional record of Halyomorpha посадочного материала из Западной Европы. Только halys (Stål, 1855) from the territory of the European part of лишь 1 июля 2017 года вступил в силу Единый перечень Russia is given; this find indicates the further spread to the карантинных объектов Евразийского экономического north of this invasive species, first recorded in Russia on союза [2016], в который был включен мраморный the Black Sea coast of the Caucasus three years ago. Until щитник как отсутствующий на территории Союза, хотя now, the northernmost place of finding of H. halys in Russia еще в 2013 году он значился в «Списке оповещения» was Staromyshastovskaya Village of the Dinsky District in Европейско-средиземноморской организации по the Krasnodar Region. In 2019, stable populations of the защите растений [EPPO Alert List, 2019]. Несомненно, species were found in Rostov-on-Don (Rostov Region). ­e что этот экологически пластичный вид, расселившийся в article also provides an illustrated complete morphological Северной Америке до юга Канады, будет продвигаться в description of the imago and all larval instars, as well as европейской части России дальше на север до некоторых data for identification of the species, including characters пределов. По данным Чжу с соавторами [Zhu et al., that distinguish H. halys from all the more or less similar 2012], полученным методами максимальной энтропии species of the shield bugs in the fauna of European Russia. (MaxEnt) и Genetic Algorithm for Rule Set Production (GARP), H. halys в Восточной Европе способен жить Введение между 40-й и 50-й или даже 60-й параллелями. То есть в России можно ожидать распространения мраморного Мраморный щитник Halyomorpha halys (Stål, 1855), щитника по крайней мере на территории всего Северного опасный многоядный вредитель сельскохозяйственных Кавказа, Калмыкии, Ростовской и Астраханской культур, завезенный из Восточной Азии в Северную областей, в Волгоградской, на юге Воронежской и Америку, а оттуда в Европу, был найден 3 года назад Белгородской областей. Управления Россельхознадзора на Кавказе – в Адлере и Сочи [Гапон, 2016; Митюшев, названных регионов распространили в Интернете 2016], – а также в Абхазии и Грузии [Гапон, 2016]. предупреждение о возможности появления вредителя В том же году он был выявлен в Алматинской области и предписание обращаться по горячим линиям в

Научная статья / Research Article DOI: 10.23885/181433262019152-241247 242 Д.А. Гапон

случае его обнаружения. В Ростовской области с Описание имаго и личинок целью выявления клопа используются феромонные ловушки (К.С. Артохин, личное сообщение). Halyomorpha halys Периодически мраморный щитник обнаруживается (рис. 1–3). Тело широкоовальное, слабовыпуклое карантинными службами, например, в Ростове- Имаго дорсально и вентрально, от 12 до 17 мм длиной (у собранных на-Дону в багаже граждан, приезжающих из Сочи в Ростове-на-Дону экземпляров длина тела 13.2–15.6 мм, (К.С. Артохин, Д.Г. Касаткин, личное сообщение), ширина тела 7.6–8.85 мм). в партии семян подсолнечника, перевезенной из Окраска и опушение. Верх тела (рис. 1, 3) от светло- Венгрии в Воронеж [Аноним, 2018], но пока еще за до темно-коричневого, густо покрытый крупной темной пределами Краснодарского края H. halys не был найден пунктировкой, с «мраморным» рисунком, то есть с свободноживущим в природных условиях. неправильно расположенными, соединенными друг с другом Для выявления вредителя и организации мер небольшими участками более темного цвета на более светлом, по борьбе с ним необходима его точная видовая коричневато-желтом, фоне; крупных светлых участков на диагностика. Опубликованные мной прежде [Гапон, дорсальной стороне тела нет; позади каждого из мозолистых возвышений на переднеспинке обычно расположены 2016] дополнения к определительным таблицам два маленьких гладких светлых пятнышка, два таких же Кержнера и Ячевского [1964], позволяющие пятнышка находятся в боковых углах щитка, и обычно три – идентифицировать H. halys, не вполне удобны для между ними на переднем крае щитка. Небольшие участки в использования в полевых условиях. По этой причине, основании головы сверху, на переднеспинке у переднего края а также по просьбам коллег, занимающихся защитой и темные полоски на брюшном ободке сверху с зеленоватым растений, и в связи с тем, что в печати появляются металлическим отливом; такие же участки имеются на не вполне корректные описания вида и данные к его нижней поверхности головы и груди (наиболее крупные диагностике, я привожу здесь полное морфологическое в передней части переднегруди); часто отдельные точки описание имаго и всех личиночных стадий вида, а также сверху тела и снизу груди также с металлическим блеском. Мозолистые возвышения темно-коричневые. I, II и основание сведения, дающие возможность просто и быстро, без III членика усиков светлые, густо покрытые темными точками, сильной оптики, отличить H. halys от других настоящих вершина III членика темная, IV членик с двумя светлыми щитников (Pentatomidae), распространенных в непунктированными кольцами в основании и на вершине и европейской части России. Имаго и личинки V возраста с широким черным кольцом в середине, V членик черный, со описаны по материалам, хранящимся в коллекции светлым кольцом в основании (рис. 9). Ноги в целом такого же Зоологического института РАН (Санкт-Петербург, цвета, как верх тела; сочленения бедра и голени иногда более Россия); личинки II–IV возрастов – по многочисленным темные; бедра в основании светлые, без пунктировки; голени в фотографиям, любезно предоставленным мне середине часто более светлые из-за разреженности и меньшего К.С. Артохиным, а также по некоторым снимкам, размера точек пунктировки. Надкрылья обычно с розоватым или красноватым оттенком. Перепоночка коричневатая, с размещенным на различных сайтах сети Интернет. темными продольными пятнами на жилках в основании, в середине их длины и на вершине; ячейки без пятен. Брюшной Новая находка Halyomorpha halys ободок сверху с контрастными широкими темными и светлыми полосками; светлые полоски расширяются кнаружи; Первый экземпляр, мертвая самка, края полосок отчетливые, прямые. Низ тела (рис. 2) беловатый, в мелкой разреженной пунктировке, лишь передне- и свидетельствующий о дальнейшем продвижении среднегрудь также с более крупными и густыми точками; H. halys на север, был обнаружен 1 мая 2019 года в брюшко в средней части гладкое, непунктированное. Стерниты закрытом помещении на берегу Дона в черте Ростова- брюшка в углах с маленькими темными пятнышками, между на-Дону. Экземпляр передал мне местный житель ними – с полукруглыми беловатыми непунктированными Е.А. Войченко. 19 сентября 2019 года в том же городе, участками. VII стернит брюшка у переднего края часто с в Центральном городском парке им. М. Горького и небольшим округлым темным пятном. Верх тела, низ головы в Покровском сквере, я собрал 10 экземпляров этого и груди без опушения. Усики с короткими прилегающими вида (2♂, 3♀ и 5 личинок V возраста, две из которых щетинками; бедра с разреженными, голени и лапки с более через 2 дня перелиняли в самца и самку, остальные густыми короткими тонкими щетинками; стерниты брюшка у заднего края с редкими короткими щетинками; пигофор и были зафиксированы). Все экземпляры были собраны генитальные пластинки самки в довольно длинном и густом на плодах кленов Acer platanoides и A. negundo с еще не опушении. усохшими крыльями. Вероятно, собранные экземпляры Голова в 0.93–0.95 раза длиннее своей ширины. принадлежат ко второму поколению, развившемуся в Предглазничная часть головы довольно длинная, с почти данном месте за текущий год. Присутствие личинок параллельными боковыми краями, вогнутыми в основании; старших возрастов говорит о существовании передний край головы тупоугольно выступающий. Наличник устойчивых самовоспроизводящихся популяций в открытый, равномерной ширины на всем протяжении Ростове-на-Дону и, вероятно, также в других местах или немного суженный на вершине, одинаковой длины со Ростовской области. скуловыми пластинками. Глаза довольно крупные, сидячие. Усиковые бугорки короткие, с заостренными вершинами, До сих пор самым северным местом обнаружения но не вытянутые в зубец или шип. Усики длинные, мраморного щитника в европейской части России тонкие; 0.7–0.9 : 1.43–1.58 : 1.55–1.75 : 2.18–2.25 : 2.1–2.2 мм. была станица Старомышастовская Динского Хоботковые пластинки очень низкие, доходящие почти до района Краснодарского края [Нейморовец, 2018], основания головы, с прямым нижним краем, лишь на переднем расположенная более чем на 200 км юго-западнее конце приподнятым и дуговидно выпуклым. Хоботок доходит Ростова-на-Дону. до середины первого видимого стернита брюшка. Мраморный щитник Halyomorpha halys (Stål, 1855) (Heteroptera: Pentatomidae) 243

Рис. 1–5. Габитус Halyomorpha halys (1–3) и Rhaphigaster nebulosa (4–5). 1 – самка, вид с дорсальной стороны; 2, 5 – самка, вид с вентральной стороны; 3–4 – самец, вид с дорсальной стороны. Figs 1–5. Habitus of Halyomorpha halys (1–3) and Rhaphigaster nebulosa (4–5). 1 – female, dorsal view; 2, 5 – female, ventral view; 3–4 – male, dorsal view. 244 Д.А. Гапон

Рис. 6–10. Личинки Halyomorpha halys (6–8) и усики имаго H. halys (9) и Rhaphigaster nebulosa (10). 6 – личинки I возраста; 7 – личинка II возраста; 8 – личинка V возраста. Стрелками обозначены светлые кольца на члениках усиков H. halis. 6–8 – фотографии К.С. Артохина. Figs 6–10. Larvae of Halyomorpha halys (6–8) and antennae of imagines of H. halys (9) and Rhaphigaster nebulosa (10). 6 – I instar larvae; 7 – II instar larva; 8 – V instar larva. ­e arrows indicate the light rings on the antennal segments of H. halis. 6–8 – photos of K.S. Artokhin.

Боковые края переднеспинки практически прямые, Бедра без каких-либо бугорков или зубцов; голени гладкие или слегка шероховатые, с едва намеченным тонким трехгранно-призматические, без пластинчатых расширений. ребрышком; в передней части их, сразу позади передних углов Перепоночка заходит за вершину брюшка. иногда бывает несколько очень маленьких острых зубчиков. Брюшко снизу в основании без бугорка или шипа. Задние Передние углы переднеспинки с маленьким закругленным на углы сегментов выступающие в виде очень коротких широких вершине или острым зубчиком, направленным латерально; зубчиков. Генитальный сегмент самца с широкой и глубокой боковые углы широко остроугольные, умеренно выдающиеся прямоугольной вырезкой. Передние генитальные пластинки за боковые края надкрылий; задние углы тупоугольные, самки шире своей длины, с прямым задним краем; срединные сглаженные. Щиток с вытянутой суженной вершиной, без пластинки с почти прямыми наружными и внутренними мозолистых участков, кроме боковых углов и основания. краями, закругленные на задних концах; задние пластинки Среднегрудная часть испарительной площадки широкая, на выпуклом заднем крае со сглаженным темным зубчиком; доходит до наружного края плейрита, довольно длинная; промежуточная пластинка трапециевидная, немного длиннее заднегрудная ее часть крупная, занимает больше половины своей ширины; проктигер продольно-прямоугольный. площади плейрита, но не доходит до его наружного края, Личинка. I возраст (рис. 6). Тело равномерно спереди шире, чем сзади, с вогнутым наружным краем. широкоовальное, без отчетливой пунктировки. Голова, Отверстие пахучей железы довольно крупное. Перитрема усики, грудь и ноги черные. Брюшко желтовато-зеленоватое, длинная, узкая, сужающаяся кнаружи. желтовато- или красновато-оранжевое, II–VIII тергиты Мраморный щитник Halyomorpha halys (Stål, 1855) (Heteroptera: Pentatomidae) 245

по бокам с поперечными, не соединяющимися темными наружной части каждого темного пятна на брюшном ободке, пятнами, немного расширяющимися кнаружи, достигающими начиная со II тергита. Верх головы, груди и черные пятна на бокового края брюшка и немного заходящими на вентральную тергитах брюшка пунктированы ярко-белыми точками. поверхность; II сегмент с маленьким поперечным пятном на Голова почти горизонтальная, ее предглазничная часть заднем крае; темное пятно, окружающее первую пару пахучих более или менее прямоугольная, на вершине несколько желез, широкое и короткое, в виде вытянутой цифры 8; изогнутая вниз; боковые края головы перед глазами с глубокой пятна, окружающие вторую и третью пары пахучих желез, вырезкой, дистальнее этой вырезки загнутые вверх; передний длиннее и несколько ýже, более или менее прямоугольные; край головы тупоугольно выпуклый. Вершина наличника VII, VIII тергиты и задний край IX тергита с поперечными широкая, не выступает за вершины скуловых пластинок. темными пятнами. Усиковые бугорки продолжены в довольно длинные острые Голова сильно наклонная, почти вертикальная. шипы. Предглазничная ее часть довольно короткая, треугольно Боковые края грудных сегментов распластаны в довольно округленная, с немного выступающим вперед наличником. широкие пластинки, несущие острые зубцы – четыре (реже Усиковые бугорки незаметные. три) крупные на переднегруди, три крупные на среднегруди и Переднеспинка длиннее других грудных сегментов два (реже три) мелкие на заднегруди. Переднегрудь длиннее сверху, с плавно и довольно сильно выпуклым задним прочих сегментов, с плавно выпуклым задним краем; задний краем. Задний край среднеспинки менее сильно выпуклый. край среднегруди слабо треугольно-выпуклый, с почти Заднеспинка примерно такой же длены, как среднеспинка, прямыми, едва заметно вогнутыми боковыми участками; ее задний край широко трапециевидный, с округленными задний край заднегруди широко трапециевидный. задними углами, прямой в срединной части. Боковые и Бедра с несколькими беспорядочно расположенными задний края заднегруди узко светлые. Боковые края грудных мелкими зубчиками и одним немного более крупным острым сегментов без ребрышка и зубцов, с короткими уплощенными зубцом на вершине спереди. трапециевидно-округленными лопастями. Бедра без зубчиков, I тергит брюшка очень короткий, сильно укороченный с едва заметными разбросанными бугорками; передние голени в середине. II тергит в медиальной части также сильно без пластинчатого расширения. укорочен и шире I тергита на латеральных участках. Брюшко сильно выпуклое сверху. I тергит с широко Боковые края I и заднебоковые углы II тергита образуют по трапециевидным задним краем; заднебоковые углы его с одному мощному острому черному зубцу, направленному коротким черным зубчиком, направленным латерально, и латерально и вверх. Пахучие железы расположены у передних беловатым участком ковнутри от него. I и II тергиты сильно краев IV, V и VI тергитов; передняя их пара их расставлена укорочены, особенно в медиальной части. Пахучие железы немного шире, чем две остальных пары, расставленные передней пары расставлены немного шире, чем железы одинаково. Испарительные площадки желез двух задних пар остальных пар, расставленные одинаково. Испарительные приподнятые, с более выпуклыми бугорками. площадки желез двух задних пар приподнятые, с более III возраст в целом похож на II-й; отличия заключаются выпуклыми бугорками. в следующем. Задний край переднеспинки сверху II возраст (рис. 7) разительно отличается от I-го. Тело слабовыпуклый, почти прямой. Задний край среднеспинки яйцевидной формы. Голова, грудь сверху и снизу, а также пятна посредине с более длинным треугольным выступом (зачатком на брюшке черноватые, с тусклым зеленоватым металлическим щитка), по бокам почти прямой, слабо выпуклый в наружной отливом. III членик усиков с контрастным белым кольцом на части. Задний край заднеспинки по бокам с очень короткими и вершине. Пятна в передних углах переднеспинки, на боковых широкими округлыми выступами, посредине слабовыпуклый. краях средне- и заднеспинки, передний край переднегруди Шипы на передне-, среднегруди и I, II сегментах брюшка снизу, края тазиковых впадин, вертлуги, основания бедер, а длиннее (на переднегруди наиболее длинные шипы также фон брюшка беловатые. У только что перелинявших находятся в задних углах). Непунктированные матовые личинок фон брюшка между пятнами оранжевый, но боковой интенсивно-черные участки на груди сверху небольшие, край беловатый. I тергит брюшка с двумя маленькими по паре на каждом сегменте. Кроме того, ковнутри от них поперечными черными пятнышками по бокам средней расположены маленькие желтовато-коричневые пятнышки линии; II тергит с таким же медиальным пятнышком. Черные и тонкая прерывистая медиальная полоска того же цвета. пятна по бокам тергитов брюшка поперечные, немного Бочки каждого грудного сегмента с небольшим желтовато- расширяющиеся кнаружи, не соприкасающиеся и обычно коричневым пятнышком. Голени всех ног с белым кольцом не доходящие до боковых краев брюшка, с вогнутыми посредине; передние голени могут быть лишь с белым наружными краями; длина их больше, чем расстояние от их пятнышком на наружной поверхности. Черные пятна на боках внутренних краев до темных пятен в середине тергитов; пятна III–IX тергитов брюшка касаются бокового края брюшка на II тергите маленькие, треугольные. Пятно, окружающее передними и задними концами их вогнутого наружного переднюю пару пахучих желез, сравнительно короткое, в виде края. Бугорки на испарительных площадках около отверстий цифры 8, но с почти прямым задним краем. Пятно вокруг пахучих желез желтовато-коричневые. Черные пятна по бокам второй пары желез длиннее, почти прямоугольное; вокруг стернитов брюшка иногда сливаются в сплошную полосу, но третьей пары – длинное, трапециевидно сужающееся кзади. при этом наружный край каждого сегмента остается белым. Бугорки около отверстий пахучих желез черные. Медиальные IV возраст в целом похож на предыдущие два возраста. черные пятна на VIII и IX тергитах короткие, трапециевидно Тело темнее и более коричневое. Шипы на боковых краях сужающиеся кзади. Границы межу сегментами брюшка, грудных сегментов и на I, II сегментах брюшка относительно маленькие пятнышки между наружными и срединными короче, чем у предыдущего возраста, за исключением шипов темными пятнами, а также узкие поперечные полоски позади в задних углах переднеспинки, остающихся почти такими же них винно-красные. Стерниты брюшка по бокам с черными длинными. Зачаток щитка и крыловые зачатки передней пары пятнами, наружные края которых вогнутые; ковнутри от этих сильно выступающие. Последние треугольно-округленные, пятен вентриты с черной густой пунктировкой, исчезающей в немного не доходят до заднего края I тергита брюшка. середине брюшка; VI–VIII или VII–VIII вентриты в середине Задний край заднегруди в середине плавно и довольно с поперечным прямоугольным черным пятном. Верх тела сильно выпуклый. Крыловые зачатки задней пары широко матово блестящий, кроме трех интенсивно-черных матовых округленные, доходят, но не выступают за задний край непунктированных участков на среднегруди и таких же I тергита брюшка; наружные края их беловатые. Желтовато- двух участков на заднегруди, а также округлых пятнышек в коричневые пятна на груди сверху крупнее, медиальная 246 Д.А. Гапон

полоска отчетливее. Поперечные пятна на боках брюшных параллельными (а не сходящимися) боковыми краями тергитов шире и длиннее, чем у предыдущего возраста. предглазничной части головы; скуловыми пластинками, Верх тела без матовых интенсивно-черных участков. равными по длине наличнику (а не выступающими за VI и VII вентриты в середине у переднего края с длинными него); боковыми углами переднеспинки, существенно и широкими прямоугольными черными пятнами, пятно на VII вентрите короткое, на II и IV вентритах пятна маленькие, (а не слегка) выступающими за боковые края округлые. надкрылий; прямыми (а не вогнутыми) передними и V возраст (рис. 8) отличатся от предыдущего возраста задними краями черных полос на брюшном ободке. следующим. Боковые края переднеспинки только в Halyomorpha halys отличается от габитуально передней части с узким пластинчатым полупрозрачным наиболее похожего на него Rhaphigaster nebulosa расширением, уменьшающимся кзади и несущим спереди (рис. 4, 5, 10) отсутствием длинного, направленного два коротких широких зубца. На всем протяжении боковой вперед шипа в основании брюшка снизу; параллельными край переднеспинки с очень мелкими и иногда несколькими немного более крупными зубчиками. В задней части (а не сходящимися) боковыми краями предглазничной он узко черный; медиальнее весь край окантован узкой части головы; не зачерненными вершинами голеней светлой полосой, расширяющейся кпереди. Боковые углы и лапками; продольными темными пятнами на переднеспинки немного приподнятые, прямоугольно перепоночке, расположенными только на жилках (а не округленные, с маленькими черным зубчиком спереди. округлыми и расположенными также на ячейках); Средне- и заднегрудь без зубчиков по бокам. Зачаток прямыми (а не вогнутыми) краями черных полос на щитка длинный, доходит до заднего края I тергита брюшка. брюшном ободке; мелкими, не сильно разреженными Крыловые зачатки передней пары длинные, почти полностью закрывающие таковые задней пары, со слабо сходящимися, точками пунктировки на нижней поверхности брюшка, почти параллельными наружным и внутренним краями и отсутствующими в средней ее части (а не округлыми, треугольно закругленные на вершине; наружные края их с сильно разреженными черными пятнышками, несколькими очень маленькими зубчиками в основании. Обе покрывающими бока и среднюю часть низа брюшка). пары крыловых зачатков доходят до середины III тергита Личинки H. halys отличаются от таковых всех брюшка. Среднеспинка только с одной парой округлых остальных щитников фауны России следующими желтовато-коричневых пятен, заднеспинка без таковых. признаками. Темные пятна у боковых краев тергитов Голова и грудь сверху в беспорядочно расположенных маленьких неправильной формы пятнышках такого же цвета, брюшка четко очерченные и очень широкие: ширина их образующих зачаток «мраморного» рисунка имаго. Голени примерно равна (I возраст) или больше (II–V возрасты) с более широкими беловатыми кольцами. Наружные края расстояния от внутреннего их края до срединных черных пятен на боках тергитов и стернитов брюшка сильно темных пятен (то же у (Hahn, 1835), вогнутые, так что белые участки кнаружи от них поперечные но при этом тело его личинок опушено длинными или по крайней мере одинаковой длины и ширины. волосками). Боковые края грудных сегментов личинок I и II тергиты брюшка без зубцов по бокам, лишь с немного I возраста образуют недлинные трапециевидно выступающими задними их углами. закругленные черные лопасти, разделенные глубокими треугольными промежутками; задние углы I тергита К идентификации Halyomorpha брюшка с коротким черным зубчиком. Личинки II– halys IV возрастов отличаются наличием длинных острых шипов перед глазами, таких же зубцов на боковых От большинства щитников фауны европейской краях грудных сегментов, а также в задних углах части России имаго Halyomorpha halys отличается I и II сегментов брюшка; у личинок V возраста эти крупными размерами тела, составляющими в длину зубцы значительно короче. Личинки II –V возрастов от 12 до 17 мм. По внешнему виду этот клоп более отличаются ярко-белыми точками пунктировки на или менее сходен с Picromerus bidens (Linnaeus, 1758), дорсальной поверхности тела. Pinthaeus sanguinipes (Fabricius, 1781), Troilus luridus Личинки H. halys II–IV возрастов и особенно (Fabricius, 1775), видами рода Carpocoris Kolenati, 1846, V возраста более всего похожи на соответствующих Codophila varia (Fabricius, 1787), Dolycoris baccarum личинок Picromerus bidens, Pinthaeus sanguinipes, (Linnaeus, 1758), Peribalus strictus vernalis (Wolff, Pentatoma rufipes и Rhaphigaster nebulosa. Ото 1804), Pentatoma rufipes (Linnaeus, 1758), но наиболее всех этих видов они, кроме перечисленных выше похож на Rhaphigaster nebulosa (Poda, 1761). От всех признаков, отличаются также наличием контрастного перечисленных видов отличить мраморного щитника светлого кольца на вершине III членика усиков проще всего по окраске усиков (рис. 9): наличию у него (у Picromerus bidens и Rhaphigaster nebulosa, такие контрастных светлых колец в основании и на вершине кольца расположены в основании III и IV члеников, IV членика и в основании V членика (то есть сочленение у Pinthaeus sanguinipes – в основании IV членика, IV и V члеников светлое). а у Pentatoma rufipes усики одноцветно-темные, в Иногда самая вершина IV членика усиков младших возрастах – с красноватыми сочленениями). бывает светлая у Dolycoris baccarum при том, что Отличия от Picromerus bidens и Pinthaeus sanguinipes основание IV и V, а также вершина II и III члеников заключаются также в хоботке обычной толщины у него со светлыми кольцами. От этого вида H. halys (не сильно утолщенном), немного отодвинутом назад отличается отсутствием приподнятых волосков на от основания верхней губы; отличия от Pentatoma голове и переднеспинке (у D. baccarum они хорошо rufipes – в почти прямоугольной (а не параболически заметны при рассмотрении сбоку); коричневатой (а не закругленной) форме головы и наличии светлых колец красновато-серой или красно-бурой) переднеспинкой; на голенях. Мраморный щитник Halyomorpha halys (Stål, 1855) (Heteroptera: Pentatomidae) 247

Единый перечень карантинных объектов Евразийского экономического Благодарности союза. 2016. URL: https://docs.eaeunion.org/docs/ru-ru/01413200/ cncd_06032017_158 (дата обращения: 18.10.2019). Я сердечно признателен К.С. Артохину (ООО Есенбекова П.А. 2017. Первое указание мраморного клопа Halyomorpha «Агролига России», Ростов-на-Дону, Россия) за halys (Stål, 1855) (Heteroptera, Pentatomidae) из Казахстана. Евразиатский энтомологический журнал. 16(1): 23–24. DOI: предоставленные фотографии личинок H. halys. 10.15298/euroasentj.16.1.05 Работа выполнена в рамках гостемы Кержнер И.М., Ячевский Т.Л. 1964. 19. Отряд Hemiptera (Heteroptera) – АААА-А19-119020690101-6. полужесткокрылые, или клопы. В кн.: Определитель насекомых европейской части СССР. Т. 1. Низшие, древнекрылые, с неполным превращением. М. – Л.: Наука: 655–845. Литература Митюшев И.М. 2016. Первый случай обнаружения мраморного клопа в России. Защита и карантин растений. 3: 48. Аноним. 2018. В Воронеже на складе временного хранения Нейморовец В.В. 2018. Восточноазиатский мраморный клоп выявлен опасный коричнево-мраморный клоп. Коммуна. Halyomorpha halys (Heteroptera: Pentatomidae): морфология, Информационный портал Воронежа и Воронежской области. биология, расширение ареала и угрозы для сельского хозяйства URL: https://communa.ru/selskoe_khozyaystvo/v-voronezhe-na- Российской Федерации (аналитический обзор). Вестник защиты sklade-vremennogo-khraneniya-vyyavlen-opasnyy-korichnevo- растений. 1(95): 11–16. DOI: 10.31993/2308-6459-2018-1(95)-11-16 mramornyy-klop-/ (дата обращения: 18.10.2019). EPPO Alert List. 2019. URL: https://www.eppo.int/ACTIVITIES/plant_ Гапон Д.А. 2016. Первые находки восточноазиатского мраморного quarantine/alert_list (дата обращения: 18.10.2019). клопа Halyomorpha halys (Stål, 1855) (Heteroptera, Pentatomidae) Zhu G., Bu W., Gao Y., Liu G. 2012. Potential geographic distribution of в России, Абхазии и Грузии. Энтомологическое обозрение. 95(4): brown marmorated stink bug invasion (Halyomorpha halys). PLoS 851–854. ONE. 7(2): 1–10. DOI: 10.1371/journal.pone.0031246

Поступила / Received: 23.10.2019 Принята / Accepted: 27.11.2019 D.A. Gapon

References

Anonymous. 2018. In Voronezh, the dangerous brown marmorated stink SSSR. T. 1. Nizshie, drevnekrylye, s nepolnym prevrashcheniem bug was detected in a temporary storage warehouse. Kommuna. [Key to the of the European part of the USSR. Vol. 1. Informatsionnyy portal Voronezha i Voronezhskoy oblasti. Available at: Apterygota, Paleoptera, Hemimetabola]. Moscow – Leningrad: https://communa.ru/selskoe_khozyaystvo/v-voronezhe-na-sklade- Nauka: 655–845 (in Russian). vremennogo-khraneniya-vyyavlen-opasnyy-korichnevo-mramornyy- Mityushev I.M. 2016. First case of the detection of the marmorated stink bug klop-/ (accessed 18 October 2019) (in Russian). in Russia. Zashchita i karantin rasteniy. 3: 48 (in Russian). Gapon D.A. 2016. First records of the brown marmorated stink bug Neimorovets V.V. 2018. Brown marmorated stink bug Halyomorpha halys Halyomorpha halys (Stål, 1855) (Heteroptera, Pentatomidae) in (Heteroptera: Pentatomidae): morphology, biology, distribution and Russia, Abkhazia, and Georgia. Entomological Review. 96(8): 1086– threats to agriculture in the Russian Federation (analytical review). 1088. 2016. DOI: 10.1134/S001387381608011X Plant Protection News. 1(95): 11–16 (in Russian). DOI: 10.31993/2308- EPPO Alert List. 2019. Available at: https://www.eppo.int/ACTIVITIES/ 6459-2018-1(95)-11-16 plant_quarantine/alert_list (accessed 18 October 2019). e common list of quarantine objects of the Eurasian Economic Union. Esenbekova P.A. 2017. First record of Halyomorpha halys (Stål, 1855) 2016. Available at: https://docs.eaeunion.org/docs/ru-ru/01413200/ (Heteroptera, Pentatomidae) from Kazakhstan. Eurasian Entomological cncd_06032017_158 (accessed 18 October 2019) (in Russian). Journal. 16(1): 23–24 (in Russian). DOI: 10.15298/euroasentj.16.1.05 Zhu G., Bu W., Gao Y., Liu G. 2012. Potential geographic distribution of Kerzhner I.M., Jaczewski T.L. 1964. 19. e Order Hemiptera brown marmorated stink bug invasion (Halyomorpha halys). PLoS (Heteroptera). In: Opredelitel’ nasekomykh evropeyskoy chasti ONE. 7(2): 1–10. DOI: 10.1371/journal.pone.0031246 248 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 249–251 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Новый вид рода Leptacinus Erichson, 1839 (Coleoptera: Staphylinidae: Xantholininae) из Ростовской области (Россия)

A new species of the genus Leptacinus Erichson, 1839 (Coleoptera: Staphylinidae: Xantholininae) from Rostov Region of Russia

© Э.А. Хачиков © E.A. Khachikov

Южный федеральный университет, пр. Стачки, 194/1, Ростов-на-Дону 344090 Россия Southern Federal University, Stachki av., 194/1, Rostov-on-Don 344090 Russia. E-mail: [email protected]

Ключевые слова: Coleoptera, Staphylinidae, Xantholininae, Leptacinus, новый вид, Ростовская область, Россия. Key words: Coleoptera, Staphylinidae, Xantholininae, Leptacinus, new species, Rostov Region, Russia.

Резюме. В работе описан Leptacinus size. Both these species distinctly differ by the structure stradomskyi sp. n. (Staphylinidae: Xantholininae) из of protibiae (two lines of spicules at apex in L. batychrus Ростовской области (Россия), который имеет сходные and absence of spicules in L. stradomskyi sp. n.), the size признаки с Leptacinus batychrus, (Gyllenhal, 1827), of body (the new species is much smaller) and sparser L. marocanus, Coiffait, 1969, L. merkli, Adam, 1987, punctation of abdomen in the new species. Leptacinus L. khachikovi A. Bordoni, 2011. Новый вид по строению stradomskyi sp. n. differs from L. merkli by the rounded гениталий наиболее близок к L. batychrus. Гениталии shape of male genitalia, shorter and wider genital ventro- этих двух видов достоверно отличаются только apical sclerite and the presence of curved duct in the размерами (у L. stradomskyi sp. n. они значительно phallobase. Leptacinus marocanus has not the curved duct; меньше). Оба вида отличаются строением передних the ventro-apical sclerite is without median constriction, голеней (у L. batychrus с 2 рядами спикул на вершине, only apically divided by deep emargination. ­e ventro- у нового вида они отсутствуют), размерами тела apical sclerite is absent in L. khachikovi. Other species (новый вид гораздо меньше) и брюшком с менее густой of the genus Leptacinus occurring in the south of the пунктировкой у L. stradomskyi sp. n. От L. merkli новый European part of Russia (L. astrakhanicus K. Grebennikov, вид отличается округлой формой гениталий, более 2001, L. dubius Bordoni, 1975, L. nigerrimus Coiffait, коротким и широким вентро-апикальным склеритом и 1971) differ from L. stradomskyi sp. n. by the not dissected наличием извитого канала в фаллобазе. У L. marocanus genital ventro-apical sclerite without emarginations нет извитого канала, а в вентро-апикальном склерите on apical margin; this sclerite is absent in L. rufonitens гениталий нет срединного сужения, он только Coiffait, 1966. апикально разделен глубокой выемкой. Данный склерит отсутствует у L. khachikovi. Другие виды рода При изучении гениталий самца из рода Leptacinus Leptacinus, встречающиеся на юге европейской части Erichson, 1839, собранного в Ростовской области, России (L. astrakhanicus K. Grebennikov, 2001, L. dubius выявлено их оригинальное строение, выраженное в Bordoni, 1975, L. nigerrimus Coiffait, 1971), отличаются от следующем: вентро-апикальный склерит с глубокой L. stradomskyi sp. n. цельным, не рассеченным вентро- медиальной выемкой; внутри фаллобазы имеется апикальным склеритом без каких-либо выемок по извитой канал. Такие структуры гениталий в данном апикальному краю. У L. rufonitens Coiffait, 1966 данная роде присутствуют (как по отдельности, так и вместе) структура отсутствует. еще у четырех видов: Leptacinus batychrus (Gyllenhal, Abstract. A new rove Leptacinus 1827), L. marocanus Coiffait, 1969, L. merkli Adam, 1987, stradomskyi sp. n. (Xantholininae) is described from L. khachikovi A. Bordoni, 2011 [Coiffait, 1972; Ádám, Rostov Region of Russia (Ust-Donetsk District, Krymskiy 1987; Ciceroni, 1994; Bordoni, 2011; Assing, Schülke, village, in the burrows of marmots). ­e new species 2012]. Сравнительный анализ всех вышеприведенных is similar to Leptacinus batychrus (Gyllenhal, 1827), видов и экземпляра из Ростовской области позволил L. marocanus Coiffait, 1969, L. merkli Adam, 1987, диагностировать его как новый для науки вид. Его L. khachikovi A. Bordoni, 2011. ­e structure of male описание приводится ниже. genitalia of L. stradomskyi sp. n. is the very similar to those В работе для сравнения с новым видом приведены in L. batychrus and differs only by significantly smaller оригинальные иллюстрации двух морфотипов

Научная статья / Research Article DOI: 10.23885/181433262019152-249251 250 Э.А. Хачиков

Рис. 1–9. Leptacinus spp., имаго и гениталии самцов. 1, 5–6 – L. stradomskyi sp. n.; 2–4 – L. batychrus; 7–9 – L. khachikovi, голотип. 1–2, 7 – габитус; 3–6, 8–9 – гениталии и их структуры (6 – вентро- апикальный склерит, 9 – извитой канал). Figs 1–9. Leptacinus spp., imagoes and male genitalia. 1, 5–6 – L. stradomskyi sp. n.; 2–4 – L. batychrus; 7–9 – L. khachikovi, holotype. 1–2, 7 – habitus; 3–6, 8–9 – genitalia and their structures (6 – ventral- apical sclerit, 9 – curved duct).

гениталий Leptacinus batychrus. Оба они, несмотря на Leptacinus stradomskyi Khachikov, sp. n. их явное различие, на данном этапе понимаются как (Рис. 1, 5, 6) структуры, присущие вышеупомянутому виду [Coiffait, 1972; Assing, Schülke, 2012]. Подобная изменчивость Материал. Голотип, ♂: Россия, Ростовская обл., Усть- Донецкий р-н, х. Крымский, норы сурков, 2.05.1998 (Э.А. Хачиков). известна для других таксонов Xantholininae [Хачиков, Сравнительный материал. Leptacinus batychrus (Gyllenhal, 2018]. Более подробное обсуждение этого вопроса 1827) (рис. 2–4): 1♂, Россия, Дагестан, окр. Махачкалы, пос. Агычаул, выходит за рамки данной работы. 18.07.1997 (Э.А. Хачиков); 1♂, Россия, Краснодарский кр., пос. Сукко, 15.07.2018 (Э.А. Хачиков). Leptacinus khachikovi Bordoni, 2011 (рис. 7–9): 1♂, голотип, Россия, Материал и методы Дагестан, окр. Махачкалы, пос. Агычаул, 18.07.1997 (Э.А. Хачиков). Описание. Голотип. Длина тела 4.5 мм. Его окраска Экземпляр описываемого вида смонтирован в основном темно-коричневая. Поверхность умеренно блестящая. Ноги, антенны и ротовой аппарат светло- на картонную плашку (приклеен водорастворимым коричневые. Голова плавно сужена в дистальном направлении. клеем) и подколот на булавку. Гениталии помещены Она покрыта редкой крупной пунктировкой и поперечной на пластиковую прозрачную плашку в жидкость штриховатостью. Глаза маленькие, по своей продольной Фора – Берлезе и подколоты на одну булавку с длине в 4–5 раз короче таковой висков. 5–10-й членики соответствующим экземпляром. антенн поперечные, 11-й сильно удлинен, 2-й и 3-й умеренно При описании гениталий намеренно не удлиненные. Длина 4-го членика почти равна его ширине. используются термины «пенис» и «эдеагус», поскольку В продольных рядах диска переднеспинки по 7 точек. в данном случае половые структуры видов рода Надкрылья в редкой пунктировке, местами собранной Leptacinus в полной мере представлены только в продольные ряды. Щиток в основании с поперечными линиями. Сегменты брюшка в очень редкой крупной фаллобазой или, по крайней мере, ее гомологом. Более пунктировке и поперечной микроскульптуре, латерально расширенно этот вопрос рассмотрен ранее [Хачиков, переходящей в косые ряды. 2018]. Гениталии овальной формы. Внутри фаллобазы имеется Типовой и сравнительный материал хранится в извитой канал. Вентро-апикальный склерит широкий личной коллекции автора. в основании, латерально заужен, апикально с глубокой медиальной выемкой. Парамеры узкие, изогнутые. Род Leptacinus Erichson, 1839 Дифференциальный диагноз. Новый вид имеет сходные признаки с видами Leptacinus Типовой вид Staphylinus batychrus Gyllenhal, batychrus, L. marocanus, L. merkli, L. khachikovi. 1827. В первую очередь он по строению гениталий близок Новый вид рода Leptacinus Erichson, 1839 251

к L. batychrus. Гениталии этих двух видов достоверно в энтомологии, теоретическое значение которого еще отличаются только размерами. У L. stradomskyi sp. n. предстоит оценить. они значительно меньше. Основным габитуальным признаком, разграничивающим эти виды, является Благодарности строение передних голеней. У L. batychrus на их вершине имеется 2 ряда спикул. У описываемого Автор крайне признателен за изготовление вида данный признак отсутствует. Также у нового иллюстраций К.В. Макарову (Московский педагогический вида гораздо меньшие размеры тела, а брюшко с государственный университет, Москва, Россия) и менее густой пунктировкой. От вида L. merkli новый Д.Г. Касаткину (Ростовский филиал ФГУ «ВНИИКР», вид отличается округлой формой гениталий, более Ростов-на-Дону, Россия). коротким и широким вентро-апикальным склеритом и наличием извитого канала. У L. marocanus нет извитого канала, а в вентро-апикальном склерите Литература гениталий нет срединного сужения, он только Гребенников К.А. 2001. Новые виды стафилинид (Coleoptera, апикально разделен глубокой выемкой [Coiffait, Staphylinidae) с Нижнего Поволжья. Энтомологическое обозрение. 1972; Ciceroni, 1994]. Данный склерит отсутствует у 80(2): 443–448. Хачиков Е.А. 2018. Виды рода Phacophallus Coiffait, 1956 (Coleoptera: L. khachikovi. Таким образом, перечисленные признаки Staphylinidae: Xantholininae) юга европейской части России. позволяют дифференцировать L. stradomskyi sp. n. от Евразиатский энтомологический журнал. 17(5): 317–319. DOI: сравниваемых здесь видов. 10.15298/euroasentj.17.5.01 Другие виды рода Leptacinus, встречающиеся Ádám L. 1987. Staphylinidae of the Kiskunság National Park (Coleoptera). Natural History of the National Parks of Hungary. 5: 126–168. на юге европейской части России (L. astrakhanicus Assing V., Schülke M. 2012. Die Käfer Mitteleuropas. Band 4. Staphylinidae I. K. Grebennikov, 2001, L. dubius Bordoni, 1975, Zweite neubearbeitete Auflage. Heidelberg: Spektrum Akademischer L. nigerrimus Coiffait, 1971 [Coiffait, 1972; Bordoni, 1975; Verlag. i-xii + 560 p. Bordoni A. 1975. Intorno ad alcuni Xantholininae dei Musei di Torino e di Гребенников, 2001]), отличаются от L. stradomskyi sp. n. Berlino (Col. Staphylinidae). Redia. 56: 193–198. цельным, не рассеченным вентро-апикальным Bordoni A. 2011. Notes on Palaearctic Xantholinini. VI. New species and склеритом без каких-либо выемок по апикальному new records from Caucasus. Fragmenta Entomologica. 43(1): 41–56. краю. У вида L. rufonitens Coiffait, 1966 данная структура Ciceroni A. 1994. Revisione delle specie italiane del genere Leptacinus Erichson con note sinonimiche su alcuni Xantholinini europei e отсутствует. nordafricani. Bollettino del Museo Civico di Storia Naturale di Verona. Этимология. Вид назван в честь Бориса 18(1991): 97–119. Витальевича Страдомского, безвременно ушедшего Coiffait H. 1972. Coléopteres Staphylinidae de la région Paléarctique occidentale. I. Généralités. Sousfamilles: Xantholininae et из жизни, однокурсника автора данной статьи, яркого Leptotyphlinae. Nouvelle Revue d’Entomologie (Supplément). 2: биолога, оставившего неординарный научный вклад 1–651.

Поступила / Received: 26.09.2019 Принята / Accepted: 27.11.2019 E.A. Khachikov

References

Ádám L. 1987. Staphylinidae of the Kiskunság National Park (Coleoptera). Ciceroni A. 1994. Revisione delle specie italiane del genere Leptacinus Natural History of the National Parks of Hungary. 5: 126–168. Erichson con note sinonimiche su alcuni Xantholinini europei e Assing V., Schülke M. 2012. Die Käfer Mitteleuropas. Band 4. Staphylinidae I. nordafricani. Bollettino del Museo Civico di Storia Naturale di Verona. Zweite neubearbeitete Auflage. Heidelberg: Spektrum Akademischer 18(1991): 97–119. Verlag. i-xii + 560 p. Coiffait H. 1972. Coléopteres Staphylinidae de la région Paléarctique Grebennikov K.A. 2001. New staphylinid species (Coleoptera, Staphilinidae) occidentale. I. Généralités. Sousfamilles: Xantholininae et from the Lower Volga Area. Entomological Review. 81(3): 301–305. Leptotyphlinae. Nouvelle Revue d’Entomologie (Supplément). 2: 1–651. Bordoni A. 1975. Intorno ad alcuni Xantholininae dei Musei di Torino e di Khachikov E.A. 2018. e species of the genus Phacophallus Coiffait, 1956 Berlino (Col. Staphylinidae). Redia. 56: 193–198. (Coleoptera: Staphylinidae: Xantholininae) from the southern area of Bordoni A. 2011. Notes on Palaearctic Xantholinini. VI. New species and the European part of Russia. Euroasian Entomological Journal. 17(5): new records from Caucasus. Fragmenta Entomologica. 43(1): 41–56. 317–319 (in Russian). DOI: 10.15298/euroasentj.17.5.01 252 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 253–256 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Новый синоним Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 (Coleoptera: Staphylinidae: Oxytelinae)

A new synonym for Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 (Coleoptera: Staphylinidae: Oxytelinae)

© М.Ю. Гильденков © M.Yu. Gildenkov

Смоленский государственный университет, ул. Пржевальского, 4, Смоленск 214000 Россия Smolensk State University, Przhevalsky str., 4, Smolensk 214000 Russia. E-mail: [email protected]

Ключевые слова: Coleoptera, Staphylinidae, Oxytelinae, Coprophilus, лектотип, синонимия. Key words: Coleoptera, Staphylinidae, Oxytelinae, Coprophilus, lectotype, synonymy.

Резюме. Длительное время Coprophilus (Zonyptilus) south of the European part of Russia and we assume that it solskyi Bernhauer, 1908 был известен только из Румынии. has much wider distribution. Reitter identified this species Достоверные данные о распространении этого вида на as Coprophilus lateralis Fauvel, 1875 (Zonoptilus lateralis юге европейской части России заставили предположить, in the original paper) using a material from Dobruja. Later, что он обладает гораздо более широким ареалом. Bernhauer described the new species C. solskyi on the В свое время Рейттер, изучая материал Coprophilus basis of the same material. Tóth studied a type specimen из Добруджи, определил его как Coprophilus lateralis of C. solskyi, indicated it as holotype and redescribed the Fauvel, 1875 (в оригинале Zonoptilus lateralis). Бернхауер species, comparing it with C. pentatoma Fauvel, 1897 and позднее описал по этому материалу из Добруджи новый C. drugmandi Tóth, 1991. ­e most important moment вид – C. solskyi. Ласло Тот изучил типовой экземпляр in the work of Tóth is a description of clypeus (matt in C. solskyi из коллекции Бернхауера, обосновал, что вид C. solskyi and C. drugmandi, and shiny in C. pentatoma). описан по одному голотипу, и дал переописание вида, Reitter and Bernhauer didn’t mention a number of сравнивая его с C. pentatoma Fauvel, 1897 и описанным specimens of C. solskyi and indication of the holotype is им в той же работе C. drugmandi Tóth, 1991. Очень incorrect in the work of Tóth. As a result the lectotype of важным моментом в работе Тота является описание Coprophilus (Zonyptilus) solskyi is designated here. Tóth наличника – у C. solskyi и C. drugmandi он матовый, у distinguished C. fauveli Tóth, 1992 from C. solskyi by the C. pentatoma – блестящий. С учетом отсутствия прямых structure of male genitalia, brown spot in scutellum area указаний на уникальность изученного Рейттером и and shiny clypeus (as in C. pentatoma), and only by the Бернхауером экземпляра C. solskyi трактовка Тотом shiny clypeus from C. drugmani. Study of type specimens изученного им экземпляра как голотипа некорректна. and additional material of C. pentatoma, C. solskyi and В связи с этим лектотип для C. solskyi обозначен здесь. C. fauveli showed that clypeus of all three species is shiny, При описании C. fauveli Tóth, 1992 кроме строения not shagreen or matt. ­e holotype of C. fauveli has not эдеагуса ключевыми признаками, отличающими этот distinct brown spot, only dark area as in C. solskyi. ­e вид от C. solskyi, Тот считал наличие коричневого structure of aedeagus is absolutely identical in C. solskyi and пятна в области щитка и блестящий наличник (как C. fauveli. ­us, both taxa are conspecific and the following у C. pentatoma), в качестве отличительного признака от new synonymy is established: Coprophilus (Zonyptilus) C. drugmandi – только блестящий наличник. Изучение solskyi Bernhauer, 1908 = Coprophilus (Zonyptilus) fauveli типовых и дополнительных материалов C. pentatoma, Tóth, 1992, syn. n. C. solskyi и C. fauveli показало, что наличник у всех блестящий, без признаков шагренировки и матовости. Введение У голотипа C. fauveli нет выраженного коричневого пятна в области щитка, имеется затемнение, подобное Представители рода Coprophilus Latreille, 1829 таковому у C. solskyi. Никаких различий в строении ведут скрытый образ жизни и плохо представлены эдеагусов C. solskyi и C. fauveli нет, оно идентично. в собраниях музеев, в связи с чем данные о Таким образом, C. solskyi и C. fauveli конспецифичны, распространении большинства видов требуют на основании чего устанавливается синонимия: уточнений. Таксономия рода сильно осложняется Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 = высокой степенью изменчивости ряда видов, что = Coprophilus (Zonyptilus) fauveli Tóth, 1992, syn. n. вместе со слабой изученностью распространения Absctract. Long time Coprophilus (Zonyptilus) solskyi привело к значительному числу синонимов и неверному Bernhauer, 1908 (Coleoptera, Staphylinidae) was known пониманию некоторых таксонов [Гильденков, 2015, only from . ­is species reliably occurs in the 2018, 2019; Gildenkov, 2016, 2017a, b].

Научная статья / Research Article DOI: 10.23885/181433262019152-253256 254 М.Ю. Гильденков

Длительное время вид Coprophilus (Zonyptilus) A. Fauvel Coprophilus pentatoma Fvl. R.I.Sc.N.B. 17.479», «Allotypus ♀ C. Zonoptilus fauveli sp. n. det. dr. Tóth L. 1990», «Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 был известен только из solskyi Bernhauer, 1908 det. M. Gildenkov, 2014». Румынии, что отражено в последних каталогах Staphylinidae [Herman, 2001; Schülke, Smetana, 2015]. Coprophilus (Zonyptilus) rufipennis (Reitter, 1894) Достоверные данные о распространении этого вида (Рис. 3, 6, 7) на юге европейской части России, в Ростовской области, приведенные совсем недавно [Гильденков, Типовой материал. Синтипы: 1♂ (HNHM), «Margelan Reitter», Хачиков, 2017], заставили предположить, что этот «Z. rufipennis m. 1894», «coll. Reitter», «Holotypus 1894 Zonoptilus вид обладает гораздо более широким ареалом. rufipennis Reitter», «Coprophilus rufipennis Rtt. det. Székessy», «Lectotypus Zonoptilus rufipennis Reitter, 1894 des. M. Gildenkov, 2014», Изучение типовых экземпляров Coprophilus solskyi и «Coprophilus (Zonyptilus) rufipennis (Reitter, 1894) det. M. Gildenkov, Coprophilus (Zonyptilus) fauveli Tóth, 1992, описанного 2014» (рис. 3, 6, 7); 1♀ (HNHM), «Margelan Reitter», «coll. Reitter», из Азербайджана, подтвердило это предположение и «Paratypus 1894 Zonoptilus rufipennis Reitter», «Allotype», «Paralectotypus Zonoptilus rufipennis Reitter, 1894 des. M. Gildenkov, 2014», «Coprophilus позволило установить новую синонимию. (Zonyptilus) rufipennis (Reitter, 1894) det. M. Gildenkov, 2014»; 1♂ (HNHM), «Margelan Reitter», «coll. Reitter», «Paratypus 1894 Zonoptilus rufipennis Reitter», «Paralectotypus Zonoptilus rufipennis Reitter, 1894 Материал и методы des. M. Gildenkov, 2014», «Coprophilus (Zonyptilus) rufipennis (Reitter, 1894) det. M. Gildenkov, 2014». Места хранения материала обозначены следующим образом: cMG – личная коллекция автора, Смоленск, Россия Обсуждение (private collection of Mikhail Gildenkov, Smolensk, В свое время Рейттер, изучая материал Coprophilus Russia); из Добруджи, определил его (при этом не указано, FMNH – музей естественной истории имени был ли экземпляр единственным) как Coprophilus М. Филда, Чикаго, США (Field Museum of Natural lateralis Fauvel, 1875 (в оригинале Zonoptilus lateralis) History, Chikago, USA); [Reitter, 1894]. Бернхауер [Bernhauer, 1908] позднее HNHM – Венгерский музей естествознания, интерпретировал C. lateralis как вариетет C. pennifer Будапешт, Венгрия (Hungarian Natural History Museum, (Motschulsky 1845), а Coprophilus из Добруджи описал Budapest, Hungary); как новый вид C. solskyi (при этом он также не указал, IRSNB – Королевский бельгийский институт был ли экземпляр единственным). Ласло Тот изучил естественных наук, Брюссель, Бельгия (Institut Royal типовой экземпляр C. solskyi из коллекции Бернхауера, des Sciences Naturelles de Belgique, Brussels, Belgium). обозначил его в качестве голотипа и дал переописание Этикетки приведены в оригинальном написании. вида [Tóth, 1991]. Однако с учетом отсутствия прямых Препарирование, измерения и рисунки выполнены с указаний на уникальность изученного Рейттером и использованием микроскопа МБС-10, снабженного Бернхауером экземпляра C. solskyi трактовка Тотом окуляр-микрометром и мерной сеткой. Препараты изученного им экземпляра как голотипа некорректна. гениталий обработаны 10%-м KOH и зафиксированы В связи с этим, а также в связи с малой известностью в эупарале. Фотографии получены на Canon EOS 5D вида C. solskyi и выявленной синонимией для него Mark III с объективом Canon MP-E 65 mm, использована обозначается лектотип. Ласло Тот, давая переописание технология extended focus. C. solskyi [Tóth, 1991], сравнивает его с Coprophilus (Zonyptilus) pentatoma Fauvel, 1897, C. (Z.) bimaculatus Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 Luze, 1904, C. (Z.) longicornis Bernhauer, 1903 и описанным (Рис. 1, 4, 5, 8) им в той же работе C. (Z.) drugmandi Tóth, 1991. При этом Тот приводит для всех видов рисунки антенн, ♂ Типовой материал. Лектотип (обозначен здесь), (FMNH): переднеспинок и эдеагусов, дает определительный Румыния, Добруджа, «lateralis Fv? Dobrudscha Herke», «c. Epplsh Steind. d», «solskyi Bernh. Typus», «Chicago NHMus M. Bernhauer ключ [Tóth, 1991]. Согласно описаниям и ключу Collection», «Holotypus 1991 ♂ Coprophilus (Zonoptilus) solskyi C. solskyi и C. pentatoma имеют одноцветные Bernhauer, 1908 det. Tóth L. 1991», «Coprophilus (Zonyptilus) solskyi надкрылья, C. bimaculatus и C. longicornis – надкрылья Bernhauer, 1908 det. M. Gildenkov, 2014», «Lectotypus Coprophilus solskyi Bernhauer, 1908 des. M. Gildenkov, 2019». с желто-красным пятном на вершине, а C. drugmandi – Дополнительный материал. 1♂ (cMG): Россия, «Ростовская обл., надкрылья с коричневым пятном в области щитка. Ростов н/Д, 6.VII 1992, Хачиков Э.А.», «Coprophilus (Zonyptilus) В ключе C. bimaculatus и C. longicornis отличаются rufipennis (Reitter, 1894) det. M. Gildenkov, 2009», «Coprophilus строением предпоследнего членика антенн. Отражены (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 det. M. Gildenkov, 2014». различия всех перечисленных видов и в рисунках эдеагусов (прорисованы только контуры, но в двух Coprophilus (Zonyptilus) fauveli Tóth, 1992 проекциях). Тут необходимо отметить, что после (Рис. 2, 9–11) изучения нами типовых материалов C. bimaculatus и C. longicornis были синонимизированы с C. pentatoma Типовой материал. 1♂, голотип (IRSNB), Азербайджан, Баку, «Bakou», «Col. et det. A. Fauvel Coprophilus pentatoma Fvl. R.I.Sc.N.B. [Gildenkov, 2017b], так как никаких различий в 17.479», «Holotypus ♂ C. Zonoptilus fauveli sp. n det. dr. Tóth L. 1990», строении эдеагусов и антенн у типовых экземпляров «Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 det. M. Gildenkov, данных видов выявлено не было. Очень важным 2014»; 1♀, паратип (IRSNB), «Bakou», «Col. et det. A. Fauvel Coprophilus pentatoma Fvl. R.I.Sc.N.B. 17.479», «Paratypus ♀ C. Zonoptilus fauveli sp. n. моментом в работе Тота [Tóth, 1991] является описание det. dr. Tóth L. 1990», «Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 наличника – у C. solskyi и C. drugmandi он матовый, det. M. Gildenkov, 2014»; 1♀, паратип (IRSNB), «Bakou», «Col. et det. у C. pentatoma, C. bimaculatus и C. longicornis – Новый синоним Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 255

Рис. 1–11. Coprophilus Latreille, 1829, имаго, эдеагусы и этикетки к типовым экземплярам. 1, 4, 5, 8 – C. (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908, самец, лектотип; 2, 9–11 – C. (Zonyptilus) fauveli Tóth, 1992, самцы: 2, 9 – голотип, 10–11 – паратипы; 3, 6–7 – C. (Zonyptilus) rufipennis (Reitter, 1894), самец, синтип. 1–3 – имаго; 4, 6 – эдеагус вентрально; 5, 7 – эдеагус латерально; 8–11 – этикетки. Масштабная линейка (4–7) – 0.25 мм. Figs 1–11. Coprophilus Latreille, 1829, imago, aedeagi, and labels for typical specimens. 1, 4, 5, 8 – C. (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908, male, lectotype; 2, 9–11 – C. (Zonyptilus) fauveli Tóth, 1992, males: 2, 9 – holotype, 10–11 – paratypes; 3, 6–7 – C. (Zonyptilus) rufipennis (Reitter, 1894), male, syntype. 1–3 – imago; 4, 6 – aedeagus ventrally; 5, 7 – aedeagus laterally; 8–11 – labels. Scale bar (4–7) – 0.25 mm.

блестящий. При описании C. fauveli [Tóth, 1992] 2017b] C. pentatoma, C. solskyi и C. fauveli, показало, что кроме строения эдеагуса ключевыми признаками, наличник у всех этих видов блестящий, без признаков отличающими этот вид от C. solskyi, Тот считает наличие шагренировки и матовости. У голотипа C. fauveli нет коричневого пятна в области щитка и блестящий выраженного коричневого пятна в области щитка наличник, в качестве отличительного признака от (рис. 2), имеется затемнение, подобное таковому у C. drugmandi – только блестящий наличник. Изучение C. solskyi (рис. 1), что противоречит описанию C. fauveli типовых и дополнительных материалов [Gildenkov, [Tóth, 1992] и выявляет его неточность. У паратипов 256 М.Ю. Гильденков

C. fauveli такое пятно действительно более выражено, Благодарности оно формируется из затемнения, что довольно просто объясняется изменчивостью в окраске, которую Автор выражает глубокую благодарность коллегам, демонстрируют многие виды Coprophilus [Гильденков, предоставившим материалы для исследований: 2018, 2019; Gildenkov, 2017b]. Никаких различий в Альфреду Ф. Ньютону, Маргарэт К. Тэйер, строении эдеагусов C. solskyi и C. fauveli нет, оно Джеймсу Х. Буну (Alfred F. Newton, Margaret K. ­ayer, идентично (рис. 4, 5). James H. Boone, FMNH), Дьердью Макранчи (György Таким образом, изучение типовых экземпляров Makranczy, HNHM), Ивоннику Жерару (Yvonnick Coprophilus solskyi и Coprophilus (Zonyptilus) fauveli Gérard, IRSNB), Эдуарду Хачикову (Южный показало их полную идентичность, в том числе и в федеральный университет, Ростов-на-Дону, Россия). строении эдеагуса, на основании чего устанавливается Особую благодарность автор выражает Кириллу синонимия: Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, Макарову за фотографии (Московский педагогический 1908 = Coprophilus (Zonyptilus) fauveli Tóth, 1992, syn. n. государственный университет, Москва, Россия). С учетом полученных результатов возникают обоснованные сомнения в верности указанных Тотом [Tóth, 1991, 1992] признаков и для C. drugmandi, что Литература требует дальнейшего изучения. Гильденков М.Ю. 2015. Coprophilus schubertii (Motschulsky, 1860) Дифференциальный диагноз. Coprophilus и Coprophilus piceus (Solsky, 1867). Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908. Представитель рода средних pseudopiceus – новый вид из Европы (Coleoptera: Staphylinidae: размеров (4.2–4.7 мм). Длина тела голотипа 4.7 мм Oxytelinae). Известия Смоленского государственного университета. 2/1: 6–17. (рис. 1). Пропорции тела голотипа: длина головы от Гильденков М.Ю. 2018. Новая синонимия в роде Coprophilus Latreille, основания до переднего края наличника относится к 1829 (Coleoptera, Staphylinidae, Oxytelinae). В кн.: Зоологические ее наибольшей ширине примерно как 0.49 : 0.72; длина исследования регионов России и сопредельных территорий: переднеспинки относится к ее наибольшей ширине Материалы IV международной научно-практической конференции (Нижний Новгород, 26 января 2018 г.). Нижний примерно как 1.03 : 0.94; длина надкрылий относится Новгород: Мининский университет: 130–138. к их ширине примерно как 1.14 : 1.2. Половой Гильденков М.Ю. 2019. К пониманию видов Coprophilus (Zonyptilus) диморфизм выражен не сильно, самцы довольно часто, pennifer (Motschulsky 1845) и C. (Zonyptilus) marginalis (Reitter но не всегда (самец из Ростовской области) имеют 1894) (Coleoptera, Staphylinidae). Зоологический журнал. 98(1): 19–27. DOI: 10.1134/S0044513419010070 более объемную и более выпуклую переднеспинку. Гильденков М.Ю., Хачиков Э.А. 2017. Новые данные о распространении Голова и брюшко черно-бурые; переднеспинка темно- Coprophilus Latreille, 1829 (Coleoptera: Staphylinidae: Oxytelinae) на бурая, с красноватым оттенком, немного светлее юге европейской части России, на Кавказе и в Турции. Кавказский энтомологический бюллетень. 13(1): 35– 37. DOI: 10.23885/1814- головы и брюшка; ноги и антенны бурые; надкрылья 3326-2017-13-1-35-37 желто-бурые, с большим или меньшим темно-бурым Bernhauer M. 1908. Beitrage zur Kenntnis der paläarktischen Staphyliniden- затемнением в области переднего края, щитка и шва Fauna. Münchner Koleopterologische Zeitschrift. 3: 320–335. (рис. 1). Иногда это затемнение оформляется в почти Gildenkov M.Yu. 2016. New for Russia rove of the subfamily Oxytelinae (Coleoptera: Staphylinidae), with notes on the synonymy правильное темно-бурое треугольное пятно, углы of Coprophilus sibiricus. Far Eastern Entomologist. 307: 17–20. основания которого находятся в области плеч, а его Gildenkov M.Yu. 2017а. A new species of the genus Coprophilus Latreille, вершина доходит до вершины надкрылий в области 1829 (Coleoptera: Staphylinidae: Oxytelinae) from central China. Far шва. Эдеагус имеет характерное строение, склериты Eastern Entomologist. 334: 17–20. Gildenkov M.Yu. 2017b. New synonymies of Coprophilus (Zonyptilus) в центральной части внутреннего мешка эдеагуса pentatoma Fauvel, 1897 (Coleoptera: Staphylinidae: Oxytelinae). крупные, овальные (рис. 4, 5), значительно крупнее, чем Zootaxa. 4306(1): 130–136. DOI: 10.11646/zootaxa.4306.1.8 у C. pentatoma [Gildenkov, 2017b: fig. 3] и C. (Zonyptilus) Herman L.H. 2001. Catalog of the Staphylinidae (Insecta: Coleoptera). 1785 to the end of the second Millennium. III. Oxyteline Group. Bulletin of rufipennis (рис. 6, 7). Окраской, размерами и строением the American Museum of Natural History. 265: 1067–1806. эдеагуса наиболее близок к С. rufipennis (рис. 3, 6, 7). Reitter E. 1894. Neue Revision der Coleopteren-Gattung Zonoptilus Motsch. Coprophilus solskyi характеризуется менее выпуклым Wiener Entomologische Zeitung. 13(9): 291–292. телом, надежно отличается, учитывая изменчивость, Schülke M., Smetana A. 2015. Oxytelinae. In: Catalogue of Palaearctic Coleoptera. Volume 2/1. Hydrophiloidea – Staphylinoidea. (I. Löbl, только деталями строения эдеагуса (рис. 4–7), а также D. Löbl eds). Leiden – Boston: Brill: 757–795. имеет другой ареал. Tóth L. 1991. New data to the knowledge of the Palearctic Coprophilus Распространение. Румыния, юг европейской Latreille, 1829 species (Coleoptera, Staphylinidae). Annales Historico- части России (Ростовская область), Азербайджан. Naturales Musei Nationalis Hungarici. 83: 91–101. Tóth L. 1992. Coprophilus (Zonoptilus) fauveli sp. n. from Azerbaidzhan Возможно, что распространен более широко, по (Coleoptera, Staphylinidae: Oxytelinae). Acta Zoologica Hungarica. побережью Черного и Каспийского морей. 38: 373–376.

Поступила / Received: 10.08.2019 Принята / Accepted: 13.10.2019 M.Yu. Gildenkov

References

Bernhauer M. 1908. Beitrage zur Kenntnis der paläarktischen Staphyliniden- Gildenkov M.Yu. 2019. On the knowledge of Coprophilus (Zonyptilus) Fauna. Münchner Koleopterologische Zeitschrift. 3: 320–335. pennifer (Motschulsky, 1845) and Coprophilus (Zonyptilus) marginalis Gildenkov M.Yu. 2015. Coprophilus schubertii (Motschulsky, 1860) (Reitter, 1894) (Coleoptera, Staphylinidae). Entomological Review. and Coprophilus piceus (Solsky, 1867). Coprophilus (Zonyptilus) 99(2): 193–202. DOI: 10.1134/S0013873819020076 pseudopiceus – a new species from Europe (Coleoptera: Staphylinidae: Gildenkov M.Yu., Khachikov E.A. 2017. New data on distribution of Oxytelinae). Izvestiya Smolenskogo Gosudarstvennogo Universiteta. Coprophilus Latreille, 1829 (Coleoptera: Staphylinidae: Oxytelinae) 2/1: 6–17 (in Russian). in the south of European part of Russia, in the Caucasus and Turkey. Gildenkov M.Yu. 2016. New for Russia rove beetles of the subfamily Caucasian Entomological Bulletin. 13(1): 35–37 (in Russian). DOI: Oxytelinae (Coleoptera: Staphylinidae), with notes on the synonymy 10.23885/1814-3326-2017-13-1-35-37 of Coprophilus sibiricus. Far Eastern Entomologist. 307: 17–20. Herman L.H. 2001. Catalog of the Staphylinidae (Insecta: Coleoptera). 1785 Gildenkov M.Yu. 2017. A new species of the genus Coprophilus Latreille, to the end of the second Millennium. III. Oxyteline Group. Bulletin of 1829 (Coleoptera: Staphylinidae: Oxytelinae) from central China. Far the American Museum of Natural History. 265: 1067–1806. Eastern Entomologist. 334: 17–20. Reitter E. 1894. Neue Revision der Coleopteren-Gattung Zonoptilus Motsch. Gildenkov M.Yu. 2017. New synonymies of Coprophilus (Zonyptilus) pentatoma Fauvel, 1897 (Coleoptera: Staphylinidae: Oxytelinae). Wiener Entomologische Zeitung. 13(9): 291–292. Zootaxa. 4306(1): 130–136. DOI: 10.11646/zootaxa.4306.1.8 Schülke M., Smetana A. 2015. Oxytelinae. In: Catalogue of Palaearctic Gildenkov M.Yu. 2018. New synonymy in the genus Coprophilus Latreille, Coleoptera. Volume 2/1. Hydrophiloidea – Staphylinoidea. (I. Löbl, 1829 (Coleoptera, Staphylinidae, Oxytelinae). In: Zoologicheskie D. Löbl eds). Leiden – Boston: Brill: 757–795. issledovaniya regionov Rossii i sopredel’nykh territoriy: Materialy Tóth L. 1991. New data to the knowledge of the Palearctic Coprophilus IV mezhdunarodnoy nauchno-prakticheskoy konferentsii [Zoological Latreille, 1829 species (Coleoptera, Staphylinidae). Annales Historico- researches regions of Russia and adjacent territories: Proceedings of Naturales Musei Nationalis Hungarici. 83: 91–101. the IV International correspondence scientific-practical conference Tóth L. 1992. Coprophilus (Zonoptilus) fauveli sp. n. from Azerbaidzhan (Nizhny Novgorod, Russia, 26 January 2018)]. Nizhny Novgorod: (Coleoptera, Staphylinidae: Oxytelinae). Acta Zoologica Hungarica. Minin University: 130–138 (in Russian). 38: 373–376. Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 257–272 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

‰e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. 8. New or little-known taxa from , Indochina and Sumatra, with notes on the genus Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017

Жуки-дровосеки трибы Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) фауны Азии. 8. Новые и малоизвестные таксоны из Индии, Индокитая и Суматры с заметками о роде Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017

© A.I. Miroshnikov1, 2 © А.И. Мирошников1, 2

1Russian Entomological Society, Krasnodar, Russia. E-mail: [email protected] 2Sochi National Park, Moskovskaya str., 21, Sochi, Krasnodar Region 354002 Russia

1Русское энтомологическое общество, Краснодар, Россия 2Сочинский национальный парк, ул. Московская, 21, Сочи, Краснодарский край 354002 Россия

Key words: Coleoptera, Cerambycidae, Carinolesthes, Diorthus, Zatrephus, new species, India, Indochina, Sumatra. Ключевые слова: Coleoptera, Cerambycidae, Carinolesthes, Diorthus, Zatrephus, новые виды, Индия, Индокитай, Суматра.

Abstract. A brief review of the genus Carinolesthes происходящим также из Южной Индии. Эти 3 вида Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017, as well as a key образуют своеобразную группу, которая подчеркивает to its species are given. A new species of this genus, очень сильное морфологическое сходство между C. dembickyi sp. n., is described from the Northeastern родами Diorthus и Lamellocerambyx Pic, 1923. Вместе с India. ­e need to clarify the generic attribution of тем даны некоторые недавно выявленные устойчивые C. ningshanensis (Chiang, 1981) is justified. Two new species отличия между этими родами. Описан новый вид of the genus Diorthus Gahan, 1891, both from Southern Zatrephus sumatranus sp. n. с Суматры. Также описаны India, D. dembickyi sp. n. and D. aurosetosus sp. n., similar ранее неизвестные самка Elydnus barclayi Miroshnikov, to another South Indian species D. sericeus Gardner, 1939, 2017 и самец Pachydissus patricius Holzschuh, 1991, are described. ­ese three species form a peculiar group причем последний вид впервые приводится из Западной which illuminates a very strong morphological similarity Малайзии. Представлено большое количество цветных between the genera Diorthus and Lamellocerambyx Pic, иллюстраций рассматриваемых таксонов, в том числе 1923. At the same time, some recently revealed stable их типовых экземпляров. differences between these genera are given. A new species, Zatrephus sumatranus sp. n., is described from Sumatra. ­e previously unknown female of Elydnus barclayi Introduction Miroshnikov, 2017 and male of Pachydissus patricius Holzschuh, 1991 are also described, while the latter species ­e present paper provides a brief review of the genus is being recorded from Western Malaysia for the first time. Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017, with Numerous and detailed colour pictures of the species the description of a new species and the discussion of the studied, including their type specimens, are provided. generic attribution of C. ningshanensis (Chiang, 1981). Резюме. Дан краткий обзор рода Carinolesthes Two new species of the genus Diorthus Gahan, 1891 and Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017 и предложена one new species of the genus Zatrephus Pascoe, 1857 are таблица для определения его видов. Описан новый also described here. ­e additional differences between вид этого рода – C. dembickyi sp. n. из Северо- the genera Diorthus and Lamellocerambyx Pic, 1923 are Восточной Индии. Обоснована необходимость в shown. Besides this, some other new data are given. уточнении родовой принадлежности C. ningshanensis ­e material treated in this work belongs to the (Chiang, 1981). Описаны 2 новых вида рода Diorthus following institutional and private collections: Gahan, 1891 – D. dembickyi sp. n. и D. aurosetosus sp. n. BM – Bishop Museum (Honolulu, USA); (оба из Южной Индии, причем из одного и того же BMNH – Natural History Museum (London, United местонахождения), – сходные с D. sericeus Gardner, 1939, Kingdom);

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-257272 258 A.I. Miroshnikov

IRSN – Institut Royal de Sciences naturelles de Based on the material I have studied and discussed Belgique (Bruxelles, Belgium); below, it seems necessary to make some important MNHN – Muséum national d’Histoire naturelle clarifications and additions to the main characteristics (Paris, ); of this genus. However, these features apply only to NHMD – Natural History Museum of , C. pericalles, C. aurosignata and a new species described University of Copenhagen (Copenhagen, Denmark); below, since the generic attribution of Carinolesthes NWAFU – Northwest Agriculture and Forestry ningshanensis sensu Vitali et al. [2017a], in my opinion, is University (Yangling, China); highly controversial (see below). cAM – collection of Alexandr Miroshnikov ­e genus Carinolesthes is characterized by the (Krasnodar, Russia); following combination of features, which makes it clearly cCH – collection of Carolus Holzschuh (Villach, distinguishable from Pseudaeolesthes Plavilstshikov, 1931 ); and other similar genera of the tribe. Antennomeres 3–5 cDH – collection of Daniel Heffern (Houston, USA); or 3–6 strongly to weakly inflated in various combinations cLD – collection of Luboš Dembický (Brno, Czech and at least the same antennomeres with a dense or very Republic); dense recumbent setation; all antennomeres endoapically cNO – collection of Nobuo Ohbayashi (Kamimiyada, unspined. Pronotum barely transverse (not more than Miura City, Japan). 1.08 times as wide as long), or vice versa, hardly longitudinal (not more than 1.02 times as long as wide), with small but Genus Carinolesthes Vitali, Gouverneur distinct or poorly expressed, conical, lateral tubercles, et Chemin, 2017 on disc with rough and/or moderately coarse (but not too coarse), mainly transverse, partly irregular, in places Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017a: 53. Vitali sinuous folds and, in addition, with four or five separate et al., 2017b: 98. sharply expressed spots of dense, recumbent, bright setae. Type species: Aeolesthes (Pseudaeolesthes) pericalles Elytra with smooth ridges and with a recumbent, dense, Gressitt et Rondon, 1970. bright setation forming this or that peculiar iridescent Remarks. ­is genus has been established for three pattern of longitudinal stripes; elytral apices not toothed, species, namely, C. pericalles (Gressitt et Rondon, 1970), at the most with a small, very short denticle at sutural C. aurosignata (Pic, 1915) and C. ningshanensis (Chiang, angle. Venter mainly without dense recumbent setation, 1981), with the following diagnosis and remarks [Vitali et al., this being well-developed only on sides of prosternum in 2017a: 53]: “Diagnosis. – Body convex, elongated. Head with middle part, on mesepisterna and on sides of metasternum, an interantennal ridge posteriorly bifurcate but disappearing, including episterna, or only on metasternum partly. delimiting a hardly guessable triangular interocular space. Scape slightly concave externally, smooth dorsally; antennae Carinolesthes pericalles (Gressitt et Rondon, 1970) endoapically mutic and ectoapically compressed (♂) or th (Figs 1, 4, 8, 9, 12–14) toothed (♀) from the 7 article, antennomeres III to V or VI strongly inflated and pubescent, especially in females. Aeolesthes (Pseudaeolesthes) pericalles Gressitt et Rondon, Prothorax as long as wide, with or without lateral spines, 1970: 61 (type locality: Laos, Xieng Khouang Province, Plaine des dorsally transversely wrinkled; prosternal intercoxal process Jarres, 1000 m (according to the original description and the label not tuberculate; procoxal cavities rounded. Elytra elongated, of the holotype)). Catalogue..., 2010: 158; Nga et al., 2014: 430. apically narrowed in males, parallel-sided in females, with Aeolesthes pericalles: Hua, 1984: 4; Hua, 2002: 191; Wang, longitudinal smooth ridges on the disc; elytral pubescence Hua, 2009: 161. giving changing pattern condensed along longitudinal Carinolesthes pericalles: Vitali et al., 2017a: 53. ♂ stripes. Femoral apex mutic... Material. 1 , holotype (BM) (Figs 8, 9), “P. des Jarres, 28.3.[19]64”, “Laos: P. des Jarres, 28.III.1964”, “J.A. Rondon Collection Bishop Mus.”, Remarks. – Carinolesthes n. gen. is related to “Holotype Aeolesthes pericalles J.L. Gressitt et Rondon”, “Aeolesthes Pseudaeolesthes, from which it differs in the pronotal (Pseudaeolesthes) pericalles Gressitt et Rondon, 196[?]” (Fig. 12); 1♀, sculpture (with fine transverse rather than strong paratype (allotype) (BM) (Figs 1, 4), same labels as holotype, but “Allotype ♂ ♀ longitudinal wrinkles), the elytra peculiarly sculptured Aeolesthes pericalles J.L. Gressitt et Rondon” (Fig. 13); 3 , 1 , paratypes (BM), same labels as holotype, but “Paratype Aeolesthes pericalles by longitudinal smooth ridges and the inflated basal J.L. Gressitt et Rondon”; 1♀, paratype (BM), “X. Khouang, 30.4.[19]64”, antennomeres. “Laos: Ban ­euong, 18 km NW of Xieng Khouang, 1035 m”, “Paratype ­e Vietnamese (sic) Carinolesthes aureosignata Aeolesthes pericalles J.L. Gressitt et Rondon”. (sic) differs from C. pericalles, in primitive characters Morphological notes. Pronotum barely transverse, linking it to Pseudaeolesthes: pronotum spined at sides, 1.04–1.06 times as wide as long, at least so in the holotype antennomeres III-V feebly inflated and antennomere VI male and the female (allotype). nearly normal. In contrast, the posteriorly bifurcate Distribution. Laos, Vietnam. ­e records in Yunnan, interantennal ridge (linear in Pseudaeolesthes) and the China [Hua, 2002; Wang, Hua, 2009; Catalogue..., 2010] ridged elytra belong patently to Carinolesthes n. gen. require confirmation. According to the original descriptions (Chiang, 1981), the Chinese Aeolesthes ningshanensis differs from Carinolesthes aurosignata (Pic, 1916) aureosignata (sic) in the golden pubescence, the transverse (Figs 3, 6, 7, 11, 16) pronotum and the rounded elytral apices. ­e inflated antennomeres III-V and the ridged elytra belong to Aeolesthes aurosignatus Pic, 1916: 325 (type locality: “Chine Carinolesthes n. gen.”. méridionale” (according to the original description) or “Haut ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) 259

Figs 1–6. Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017, females, habitus, dorsal and ventral views. 1, 4 – C. pericalles (Gressitt et Rondon, 1970), paratype (allotype); 2, 5 – C. dembickyi sp. n., holotype; 3, 6 – C. aurosignata (Pic, 1916) (Xizang, China). 6 – photograph by Florence Trus. Рис. 1–6. Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017, самки, общий вид сверху и снизу. 1, 4 – C. pericalles (Gressitt et Rondon, 1970), паратип (аллотип); 2, 5 – C. dembickyi sp. n., голотип; 3, 6 – C. aurosignata (Pic, 1916) (Тибет, Китай). 6 – фотография Флоренции Трус. 260 A.I. Miroshnikov

Figs 7–13. Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017 and “Carinolesthes”, habitus, dorsal and ventral views, and labels. 7, 11 – C. aurosignata (Pic, 1916), female, holotype; 8–9, 12 – C. pericalles (Gressitt et Rondon, 1970), male, holotype; 10 – “Carinolesthes” ningshanensis (Chiang, 1981), female, paratype; 13 – C. pericalles, female, paratype (allotype). 7, 11 – photographs by Gérard Chemin. Рис. 7–13. Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017 и «Carinolesthes», общий вид сверху и снизу и этикетки. 7, 11 – C. aurosignata (Pic, 1916), самка, голотип; 8–9, 12 – C. pericalles (Gressitt et Rondon, 1970), самец, голотип; 10 – «Carinolesthes» ningshanensis (Chiang, 1981), самка, паратип; 13 – C. pericalles, самка, паратип (аллотип). 7, 11 – фотографии Жерара Шемена. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) 261

Yunnan” (according to the label of the holotype)). Hua, 1984: 3; elytra; length ratio of antennomeres 1–11, 24 : 6 : 21 : 19 : 20 : 29 : 2002: 191; Wang, Hua, 2009: 161. 28 : 22 : 20 : 15 : 17; antennomere 1 with a clear, partly dense, in Pseudaeolesthes ? aurosignatus: Plavilstshikov, 1931: 75. places confluent, heterogeneous puncturation; antennomere 2 Pseudaeolesthes aurosignatus: Pic, 1946: 107; Gressitt, slightly transverse; antennomeres 3 and 4 strongly, 5 moderately 1942: 5; 1951: 136. inflated, antennomere 6 non-inflated, as in Figs 2, 5. Aeolesthes (Pseudaeolesthes) aurosignata: Catalogue..., 2010: Pronotum barely longitudinal, 1.02 times as long as wide; 158. base 1.2 times as wide as apex; with rough and moderately coarse, Carinolesthes aureosignata (incorrect subsequent spelling): irregular, partly sinuous, in places transverse, partly longitudinal Vitali et al., 2017a: 53. folds; tuberculated on sides, with a most developed median Material. 1♀, holotype (by monotypy) (MNHN) (Fig. 7), “Aeolesthes”, tubercle. “A. aureosignatus (sic) Pic, type, Ht Yunnan”, “Museum Paris, Yunnan, Scutellum triangular, with a narrow emargination apically. P. Guerry 1924”, “Muséum Paris”, “Holotype” (Fig. 11); 1♀ (IRSN) (Figs 3, 6), [China] “­ibet, Vrianatong”, “Carinolesthes aurosignata (Pic, 1915) ♀ det. Elytra in basal part nearly parallel-sided, beyond middle A. Miroshnikov 2019” (preliminary identification). clearly narrowed towards apex, 2.45 times as long as humeral Morphological notes. Pronotum barely transverse, width; in middle part of disc behind the basal quarter very distinctly depressed; each elytron with two smooth ridges, namely, about 1.06 or 1.08 times as wide as long in the holotype with a short ridge located near middle of disc and occupying basal female and the Tibetan female, respectively. third of elytra, and with a long ridge starting from humerus and Distribution. China: Yunnan and Xizang (labels of the about reaching the apical quarter of elytra; unlike C. pericalles and holotype; [Gressitt, 1951]). C. aurosignata, without clear lateral ridges; with a heterogeneous, Based on the material studied, Gressitt’s data on the small and very small, predominantly dense puncturation; near distribution of this species in Xizang are confirmed here. suture, partly, especially in basal quarter just behind the scutellum, At the same time, the records in Fujian (China), Taiwan with small, dense, mainly transverse wrinkles; apical external angle and Laos [Hua, 1984, 2002; Catalogue..., 2010] are doubtful. rounded, sutural angle with a very short obtuse denticle. ­e indication of “Vietnamese Carinolesthes aureosignata” Prosternum near apex with a very well-expressed, moderately deep, transverse groove; behind it with rough, long, [Vitali et al., 2017a: 53] is without any doubt a misprint. transverse folds; in middle part with rough, more or less short, irregular, partly transverse folds; prosternal process moderately Carinolesthes dembickyi Miroshnikov, sp. n. wide between coxae, with rough heterogeneous sculpture, at (Figs 2, 5, 15) apex dorsally distinctly protruding; mesosternal process between coxae very clearly wider than prosternal process, in apical part Material. Holotype, ♀ (cLD) (Figs 2, 5): NE India, Arunachal Pradesh, with rough, dense, scabrous punctures, without tubercle dorsally; ʹ ʹ Anini vic., ~1700 m, 28°54 N / 95°56 E, 30–31.05.2007 (leg. L. Dembický). metasternum and sternites mainly with a clear, small, more or less Diagnosis. Based on female characters, this new dense, partly heterogeneous puncturation; metasternum with a species is similar to C. pericalles and C. aurosignata, but distinct median groove; last (visible) sternite broadly subtruncate differs very clearly from both by the peculiar location of the apically; last (visible) tergite truncate, with a shallow emargination spots of dense, recumbent, bright setae on the pronotum, at apex. namely, the presence of a large median spot in its basal Legs moderately long; metatarsomere 1 subequal to part, as in Figs 2, 15 (cf. Figs 1, 3, 7, 8, 14, 16); the presence metatarsomeres 2 and 3 combined. Recumbent dense setation mainly reddish golden, forming of only two and not so well expressed longitudinal ridges peculiar iridescent pattern of longitudinal stripes on elytra, as in on each elytron; the less expressed conical lateral tubercles Fig. 2, five spots on pronotal disc, namely, four symmetrical spots of the pronotum, as in Fig. 15 (cf. Figs 14, 16); the shorter on its sides, two in basal half and two in apical half, and large antennae (especially compared to C. aurosignata), as in longitudinal median spot in basal part, in addition, longitudinal, Figs 2, 5 (cf. Figs 1, 3, 4, 6); the prosternal process being less wide, lateral stripes of pronotum, as in Figs 2, 15; recumbent strongly protruding at the apex; the more robust femora, as setation of venter very weakly developed, more or less dense or at in Figs 2, 5 (cf. Figs 1, 3, 4, 6, 7); the somewhat less coarse least numerous setae mainly present on mesepisterna by a narrow sculpture of the head ventrally; the predominantly lighter stripe along inner margin and on sides of metasternum, including tones of red coloration of the integument, as in Figs 2, 5 their episterna, as in Fig. 5; more or less long, erect, light setae mostly developed on head, pronotum and apex of abdomen. (cf. Figs 1, 3, 4, 6, 7); the very weakly developed recumbent Northeastern India. bright setation on the sides of the prosternum in its middle Distribution. I am pleased to dedicate this new species part and on the mesepisterna, as in Fig. 5 (cf. Figs 4, 6). Etymology. to my colleague and friend, Mr. Luboš Dembický (Brno, Besides this, C. dembickyi sp. n. differs from C. pericalles by ), who collected the holotype and constantly the less strongly inflated antennomeres 3–5, non-inflated provides a very important assistance to my entomological shape of antennomere 6, the clearly less dense setation of research. the basal antennomeres (except for antennomere 1), as in Figs 2, 5 (cf. Figs 1, 4). Description. Female. Body length 26.2 mm, humeral width “Carinolesthes” ningshanensis (Chiang, 1981) 6.9 mm. Coloration of integument mainly of red tones; eyes, (Fig. 10) mandibles along inner margins and apically, most of pronotum (mainly in the folds area), partly mesepisterna, as well as Aeolesthes (Pseudaeolesthes) ningshanensis Chiang, 1981: 79, metosternum by a narrow stripe near margin of its episterna black. 83, pl. 1, fig. 3 (type locality: China, Shaanxi, Ningshan (according Head with moderately developed antennal tubercles; eyes to the original description)). Lin, 2017: 146, pl. 11, fig. 6 (female relatively small; genae long; with somewhat rough, but shallow paratype). punctures on vertex and with very well-expressed transverse Aeolesthes ningshanensis: Hua, 2002: 191; Wang, Hua, 2009: granules on neck dorsally and partly laterally; submentum 161; Hua et al., 2009: 149, pl. 21, fig. 241, ♂ (sex of specimen is and neck on most part of lateral sides and ventrally with rough doubtful). transverse folds; antennae very clearly failing to reach apex of Carinolesthes ningshanensis: Vitali et al., 2017a: 53. 262 A.I. Miroshnikov

Material. 1♀, paratype (NWAFU, see [Lin, 2017: 147]) (photograph; Genus Diorthus Gahan, 1891 Fig. 10), [China], “Shaanxi, Ningshan, Huoditang, VIII. 1959 leg. Shu-Qin Li”. Remarks. ­rough the courtesy of Dr. Meiying Lin Diorthus Gahan, 1891: 27 (Pachydissus subgen., “section”). (Institute of Zoology, Chinese Academy of Sciences, Beijing, Gahan, 1906: 132; Plavilstshikov, 1931: 81; Gressitt, Rondon, 1970: China), currently I have been able to examine this species at 70; Adlbauer, 2006: 62; Catalogue..., 2010: 160; Nga et al., 2014: least from a picture of the paratype, female (Fig. 10). 433; Kariyanna et al., 2017: 30; Miroshnikov, 2018: 234. Judging from this photograph and the original Diorthrus (misspelling): Aurivillius, 1912: 56. description (including a picture of the holotype female), Tapinolachnus auct. (non J. ­omson, 1865): Özdikmen, “Carinolesthes” ningshanensis is characterized by Turgut, 2009: 302 (part.). the following important features: pronotum strongly Type species: Hammaticherus simplex White, transverse, about 1.3 times as wide as long, with strongly 1853 = Cerambyx cinereus Fabricius, 1793, by subsequent developed lateral conical tubercles, with coarse and very designation [Gahan, 1906]. coarse, irregular, partly longitudinal folds on disc, with a Remarks. An annotated checklist of this genus was continuous, dense, recumbent setation, except for middle published recently, in which seven species were considered, part; antennomeres 3–6 nearly normal in structure, devoid including one new [Miroshnikov, 2018]. Along with that, of dense recumbent setae; elytra with smooth ridges and it was noted that the South Indian species D. sericeus longitudinal stripes of dense, recumbent, bright setae. ­e Gardner, 1939 morphologically is not so a characteristic features of the recumbent setation of venter are not known representative of the genus. to me yet. In the course of the study of a material collected Apparently this species is a transitional form between by Mr. Luboš Dembický (Brno, Czech Republic) also Carinolesthes and Pseudaeolesthes, seemingly closer to the in Southern India, two previously unknown species latter. But its generic attribution needs to be clarified. (described below) similar to D. sericeus have been It is also notewortly that both the holotype [Chiang, identified. It seems obvious to me that all these three species 1981: pl. 1, fig. 3] and the paratype (Fig. 10), judging from form a peculiar group which illuminates a very strong their photographs, are partly damaged and deformed, morphological similarity between the genera Diorthus and including the elytra. ­erefore, these females differ Lamellocerambyx Pic, 1923. noticeably each other in the pictures, at least in the shape At the same time, these genera differ from each other of the elytra. not only in the features indicated earlier [Miroshnikov, 2018], but also in the shape of antennomere 2 which in Distribution. China: Shaanxi. Lamellocerambyx is very clearly flattened in the basal part ventrally, as indicated by arrows in Fig. 31 (cf. Figs 28–30). Key to species of Carinolesthes

1. Pronotum barely transverse or hardly longitudinal, with Diorthus dembickyi Miroshnikov, sp. n. (Figs 17, 18, 20, 21, 23, 24, 28, 29, or without small, conical, lateral tubercles, on disc with 33, 34, 36, 37, 39, 41, 42, 44, 45) four or five separate, sharply expressed spots of dense, recumbent setae; antennomeres 3–5 or 3–6 strongly to Material. Holotype, ♂ (cLD) (Fig. 23): S India, Tamil Nadu, Nilgiri weakly inflated and with a dense recumbent setation ... Hills, 11 km SE Kotagiri, Kunchappanai, 1000–1200 m, 11°24ʹN / 76°56ʹE, ...... 2 3–15.05.2002 (leg. L. Dembický). Paratypes: 1♀ (cLD), 1♂, 1♀ (Fig. 24) – Pronotum strongly transverse, with very well-developed, (cAM ex cLD), same label as holotype. Comparative material. Diorthus sericeus Gardner, 1939: 1♂, conical, lateral tubercles, without separate spots lectotype (BMNH) (Fig. 26), [India] “S. Mangalore, 400 [m], Madras, of dense, recumbent setae, with a continuous, J.C.M. Gardner, 30.IV.1931” (upperside), “No. 86.M.” (underside), dense, recumbent setation, except for middle part; “Ex Pterocarpus marsupium”, “R.R.D. 119, B.C.R. 126, Cage 779”, “Diorthus sericeus J.C.M. Gardner sp. n., Type”, “Type”, “Brit. Mus. 1939–414”, antennomeres 3–6 nearly normal in structure, devoid “NHMUK 011220588”, “Lectotypus ♂ Diorthus sericeus Gardner, 1939, of dense recumbent setae ...... A. Miroshnikov des., 2018”; 1♀, paralectotype (BMNH) (Fig. 27), [India] ...... “Carinolesthes” ningshanensis “Sappal, 1700 [m], Palghat, Madras, J.C.M. Gardner, 2.V.1931” (upperside), 2. Pronotal disc with four spots of dense recumbent setae; “No. M.74” (underside), “Ex Acacia sp.”, “R.R.D. 119, B.C.R. 154, Cage 768”, “Diorthus sericeus J.C.M. Gardner sp. n., Allotype”, “Type”, “Brit. Mus. 1939– each elytron with four smooth ridges; female antennae 414”, “NHMUK 011220589”, “Paralectotypus ♀ Diorthus sericeus Gardner, about reaching or distinctly extending beyond the 1939, A. Miroshnikov des., 2018”. apex of elytra ...... 3 Diagnosis. ­is new species is most similar to – Pronotal disc with five spots of dense recumbent setae; D. sericeus, but differs clearly by the structure of the each elytron only with two smooth ridges; female antennae, in particular, the more strongly elongated antennae very clearly failing to reach the apex of elytra antennomeres 3, 5 and 6, especially so in the male, as in ...... C. dembickyi sp. n. Figs 23, 24 (cf. Figs 26, 27); the less coarse sculpture of the 3. Elytra at least partly, including humeri, dark red-brown antennomere 1, especially so in the male and the more and red-brown tones; antennomeres 3 and 4 (male) strongly inflated antennomere 4 in the male, as in Fig. 23 or 3–6 (female) strongly inflated; pronotum with less (cf. Fig. 26). Also it is distinguished by the greater length strongly developed lateral conical tubercles ...... in the female, as in Fig. 24 (cf. Fig. 27); the less coarse ...... C. pericalles sculpture of the head dorsally; the more strongly elongated – Elytra almost entirely, including humeri, black; female elytra, especially so in the male, as in Fig. 23 (cf. Fig. 26); antennomeres 3–5 more or less weakly inflated (male the more closely spaced upper lobes of the eyes in the male, unknown); pronotum with more strongly developed as in Figs 17, 23 (cf. Fig. 26); the mostly darker red tones in lateral conical tubercles ...... C. aurosignata the integument coloration, as in Figs 23, 24 (cf. Figs 26, 27). ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) 263

Figs 14–22. Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017 and Diorthus Gahan, 1891, details of structure. 14 – C. pericalles (Gressitt et Rondon, 1970); 15 – C. dembickyi sp. n.; 16 – C. aurosignata (Pic, 1916) (Xizang, China); 17–18, 20–21 – D. dembickyi sp. n.; 19, 22 – D. aurosetosus sp. n. 14, 18 – paratypes (14 – allotype); 15, 17, 19–20, 22 – holotypes; 14–16, 18, 21 – females; 17, 19–20, 22 – males; 14–16 – pronotum, dorsal view; 17–19 – head and pronotum, dorsal view; 20–22 – prosternal process, lateral view. Рис. 14–22. Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017 и Diorthus Gahan, 1891, детали строения. 14 – C. pericalles (Gressitt et Rondon, 1970); 15 – C. dembickyi sp. n.; 16 – C. aurosignata (Pic, 1916) (Тибет, Китай); 17–18, 20–21 – D. dembickyi sp. n.; 19, 22 – D. aurosetosus sp. n. 14, 18 – паратипы (14 – аллотип); 15, 17, 19–20, 22 – голотипы; 14–16, 18, 21 – самки; 17, 19–20, 22 – самцы; 14–16 – переднеспинка сверху; 17–19 – голова и переднеспинка сверху; 20–22 – простернальный отросток сбоку. 264 A.I. Miroshnikov

Figs 23–31. Diorthus Gahan, 1891 and Lamellocerambyx Pic, 1923, habitus, dorsal view, and antennomere 2, lateral view. 23–24, 28–29 – D. dembickyi sp. n.; 25, 30 – D. aurosetosus sp. n.; 26–27 – D. sericeus Gardner, 1939; 31 – L. laosensis Pic, 1923. 23, 25, 28, 30 – holotypes; 24, 29 – paratype; 26 – lectotype; 27 – paralectotype; 23, 25, 26, 28, 30–31 – males; 24, 27, 29 – females. Рис. 23–31. Diorthus Gahan, 1891 и Lamellocerambyx Pic, 1923, общий вид сверху и 2-й членик усиков сбоку. 23–24, 28–29 – D. dembickyi sp. n.; 25, 30 – D. aurosetosus sp. n.; 26–27 – D. sericeus Gardner, 1939; 31 – L. laosensis Pic, 1923. 23, 25, 28, 30 – голотипы; 24, 29 – паратип; 26 – лектотип; 27 – паралектотип; 23, 25, 26, 28, 30–31 – самцы; 24, 27, 29 – самки. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) 265

Description. Body length 15–18.8 mm, humeral width Distribution. Southern India. 3.9–5.3 mm, thereby holotype 17.3 and 4.7 mm, respectively. Etymology. I am pleased to dedicate this new species Coloration of integument mainly combines red-brown and dark to my colleague and friend, Mr. Luboš Dembický (Brno, red-brown tones; eyes, partly mandibles, folds of pronotum or Czech Republic), who collected it. almost entirely pronotum black. Head with moderately or very well-developed antennal tubercles; upper lobes of eyes rather close together, especially Diorthus aurosetosus Miroshnikov, sp. n. so in male; with a more or less rough sculpture dorsally; genae (Figs 19, 22, 25, 30, 32, 35, 38, 40, 43) moderately short; submentum with rough, heterogeneous, very ♂ dense and confluent punctures; neck ventrally and partly laterally Material. Holotype, (cLD) (Fig. 25): S India, Tamil Nadu, Nilgiri ′ ′ and gula with sharp transverse folds; antennae of male much longer Hills, 11 km SE Kotagiri, Kunchappanai, 1000–1200 m, 11°24 N / 76°56 E, 3–15.05.2002 (leg. L. Dembický). than body, reaching beyond apex of elytra by antennomere 7, in female very clearly longer than body, reaching beyond apex of elytra Diagnosis. Based on male characters, this new by antennomere 9; length ratio of antennomeres 1–11 in male species is very similar to D. dembickyi sp. n., but differs (holotype taken as an example), 22 : 5 : 30 : 19 : 36 : 36 : 35 : 32 : 31 : clearly by the structure of the antennae, in particular, their 31 : 58, in female (one of the paratypes taken as an example), 22 : 6 : greater length, as in Fig. 25 (cf. Fig. 23), the length ratio of 30 : 19 : 28 : 25 : 24 : 20 : 19 : 17 : 22; antennomere 1 with a sharply antennomeres 3, 4 and 5 combined, to last antennomere, expressed cicatrix (apical carina), with a heterogeneous, rough, as in Fig. 25 (cf. Fig. 23), the golden erect and recumbent mostly confused puncturation; antennomere 2 slightly transverse setation, the features of the erect setation, as well as by the or subequal in length and width; antennomeres 3 and 4 of male prosternal process being very strongly protruding at the very clearly inflated; in male, sculpture of bases of antennomeres 4 apex dorsally, as in Fig. 22 (cf. Figs 20, 21), the shape of the and 5 similar to that of adjacent parts of these segments, thereby in front of bases without any constriction, like in D. sericeus. last (visible) tergite at the apex, as in Fig. 32 (cf. Figs 33, 34), Pronotum barely or slightly transverse, 1.06–1.1 times as the predominance of a golden setation on the head, the wide as long, sometimes subequal in length and width; base darker coloration of the integument in general, the larger 1.11–1.15 times as wide as apex; with coarse and very coarse, body, the structure of the genitalia, as in Figs 35, 38, 40, 43 mostly transverse, partly sinuous folds. (cf. Figs 36, 37, 39, 41, 42, 44, 45). Scutellum triangular, narrowly rounded apically. Description. Male. Body length 22.2 mm, humeral width Elytra in basal part nearly parallel-sided, beyond middle 6.3 mm. Coloration of integument mostly of dark brown tones, clearly narrowed towards apex, or distinctly narrowed towards partly with a reddish tint; head dorsally, antennomeres 1–3 partly, apex starting from base; 2.23–2.32 times as long as humeral width; eyes, mandibles, almost entirely pronotum, as well as scutellum with a more or less small, heterogeneous, dense puncturation; along margins black. apical external angle sharply protruding; sutural angle drawn into Head with well-developed antennal tubercles; upper lobes a very clear or long sharp tooth. of eyes rather close together; with a more or less rough sculpture Prosternum in apical part with rough, mainly transverse dorsally; genae moderately short; submentum with rough, folds; in front of middle with a more or less deep, transverse groove; heterogeneous, very dense and confluent punctures; neck ventrally prosternal process distinctly or very clearly (but not too strong) and partly laterally and gula with sharp transverse folds; antennae protruding at apex dorsally; mesosternal process between coxae about 2.2 times as long as body (while in D. dembickyi sp. n., male much wider than prosternal process, without tubercle dorsally; antennae no more than 1.9 times as long as body), reaching beyond metasternum and sternites with a heterogeneous puncturation; apex of elytra by antennomere 7; length ratio of antennomeres 1–11, metasternum with a distinct median groove; last (visible) sternite 29 : 6 : 39 : 25 : 49 : 51 : 51 : 46 : 47 : 51 : 116; antennomere 1 with at apex in male with a clear, but shallow emargination, in female a sharply expressed cicatrix (apical carina), with a heterogeneous, rounded; last (visible) tergite at apex in male broadly truncate, rough, mostly confused puncturation; antennomere 2 very clearly without emargination, as in Figs 33, 34, in female subtruncate or transverse; antennomeres 3 and 4 very clearly inflated; sculpture of rounded, with a weak emargination. bases of antennomeres 4 and 5 similar to that of adjacent parts of Legs moderately long; femora without distinct carina; these segments, thereby in front of bases without any constriction, metatarsomere 1 noticeably shorter than metatarsomeres 2 and 3 like in D. sericeus and D. dembickyi sp. n.; last antennomere barely combined. longer than antennomeres 3, 4 and 5 combined (while in male Recumbent dense setation mainly greyish, forming, in of D. dembickyi sp. n., antennomeres 3, 4 and 5 combined addition to everything else, patterned iridescent surface on 1.5–2 times as long as last antennomere). elytra and median wide stripe on pronotum; dorsum, except Pronotum barely transverse, 1.05 times as wide as long, for scutellum, with numerous reddish and yellow setae; venter sometimes subequal in length and width; base 1.12 times as wide with less numerous and less noticeable similar setae; in male, as apex; with coarse and very coarse, mostly transverse, partly antennomeres 1–8, partly on inner side and partly ventrally, with sinuous folds. numerous, erect, thin, silver-grey setae in the form of a sparse Elytra clearly narrowed towards apex starting from base, gentle brush, thereby antennomeres 1–6 with longest setae while 2.2 times as long as humeral width; with a more or less small, antennomeres 7–8 with shortest ones; antennomeres 1–5 of female heterogeneous, dense puncturation; apical external angle sharply with similar, but relatively short, mainly suberect setae; antennae protruding; sutural angle drawn into a pretty long sharp tooth. of both male and female with a greyish, recumbent, moderately Prosternum in apical part with rough, mainly transverse dense setae, these gradually becoming more sparse towards apex; folds; in front of middle with a moderately deep, transverse more or less long, erect, light setae, in addition to antennae, mostly groove; prosternal process very strongly protruding at apex developed on head and pronotum. dorsally; mesosternal process between coxae much wider than Male genitalia (Figs 36, 37, 39, 41, 42, 44, 45). Apex of tergite 8 prosternal process, without tubercle dorsally; metasternum and with a very deep emargination dividing it into two protrusions sternites with a heterogeneous puncturation; metasternum with being distinctly rounded apically, as in Figs 36, 37; penis distinctly a distinct median groove; both last (visible) sternite and tergite narrowed in front of apex, as in Figs 44, 45; tegmen narrow at very broadly rounded apically, with a distinct emargination as in Fig. 32 base, apical parts of parameres clearly inclined towards each other, (while in male of D. dembickyi sp. n., last (visible) tergite broadly as in Figs 39, 41, 42. truncate, without emargination, as in Figs 33, 34; see also above). 266 A.I. Miroshnikov

Legs moderately long; meso- and metafemora without distinct on the vertex; the weakly developed antennal tubercles; carina, only promemora with a poorly expressed carina in basal the less convex tubercles at the very base of the elytra on part; metatarsomere 1 noticeably shorter than metatarsomeres 2 sides of the scutellum; the less sharp puncturation on the and 3 combined. elytra, metasternum and sternites; the apical tubercle of Recumbent dense setation, except for antennae and partly head, mainly greyish, forming, in addition to everything else, the prosternal process being strongly protruding obliquely patterned iridescent surface on elytra and median wide stripe on upwards. Zatrephus sumatranus sp. n. can also be compared pronotum; dorsum with numerous reddish setae; venter with less to Z. spinosus Brongniart, 1890, but is distinguished, numerous and less noticeable similar setae; antennomeres 1–9, partly like from Z. crassinus, by the less deep, shorter and partly on inner side and partly ventrally, with numerous, erect, narrower median groove between the upper lobes of the thin, golden setae in the form of a sparse gentle brush, thereby eyes and on the vertex, the less convex tubercles at the very antennomeres 1–7 with longest setae while antennomeres 8–9 base of the elytra on sides of the scutellum, as well as by with shortest ones (whereas in male of D. dembickyi sp. n., only the predominance of transverse folds on the pronotal disc, antennomeres 1–6 with longest setae; see also above); antennae with a golden, recumbent, moderately dense setae, these gradually the clearly more uniform, dense, recumbent setation of the becoming more sparse towards apex; more or less long, erect, elytra being somewhat more sparse in front of their apical light setae, in addition to antennae, mostly developed on head and third. pronotum. Description. Male. Body length 23.8 mm, humeral width Male genitalia (Figs 35, 38, 40, 43). Apex of tergite 8 with 6.9 mm. Head mostly dorsally and partly ventrally, eyes, partly a very deep emargination dividing it into two protrusions being mandibles, the very base, the very apex and partly folds of obtuse-angled apically, as in Fig. 35; penis near apex gradually pronotum, partly scutellum black; pronotum partly, scutellum narrowed towards the very apex, as in Fig. 43; tegmen relatively mostly, elytra, mostly venter of dark red-brown tones; remaining wide at very base, as in Fig. 38, apical parts of parameres weakly parts mainly combines red and red-brown tones. inclined towards each other, as in Figs 38, 40 (for comparison see Head with weakly developed antennal tubercles; with also above a description of the genitalia of D. dembickyi sp. n.). a moderately deep, relatively narrow, pretty short, median Distribution. Southern India. groove partly between upper lobes of eyes and partly on vertex; Etymology. ­e formation of the name of this new genae moderately short; eyes weakly convex; neck dorsally species is related to the golden coloration of both erect and with rough, transverse, short folds, while ventrally with coarse, transverse, more or less long folds; submentum without distinct recumbent setation of the antennae. puncturation; antennae reaching beyond apex of elytra by penultimate antennomere; length ratio of antennomeres 1–10 (last Genus Zatrephus Pascoe, 1857 antennomere missing), 23 : 5 : 22 : 21 : 22 : 31 : 35 : 35 : 34 : 32; antennomere 1 with a clear dense, partly confluent puncturation; Zatrephus Pascoe, 1857: 94. ­omson, 1864: 235; Pascoe, antennomere 2 strongly transverse; antennomeres 3 and 4 strongly, 1869: 523; Lacordaire, 1868: 267; Gemminger, 1872: 2805; 5 moderately inflated, as in Fig. 46. Aurivillius, 1912: 62; Gressitt, Rondon, 1970: 88; Catalogue..., Pronotum barely transverse, 1.03 times as wide as long; 2010: 162; Heffern, 2013: 12; Miroshnikov, 2017: 208; Miroshnikov, strongly narrowed towards apex starting about from middle, base 2018: 232. 1.26 times as wide as apex; on disc barely convex, with coarse, Type species: Zatrephus pannosus Pascoe, 1857, by predominantly transverse, partly somewhat sinuous folds. subsequent designation [Gressitt, Rondon, 1970]. Scutellum strongly narrowed towards apex, broadly truncate Remarks. Until now, eight species of this genus apically. have been known, two of which described just recently Elytra in basal part nearly parallel-sided, beyond middle [Miroshnikov, 2017, 2018]. clearly narrowed towards apex, 2.28 times as long as humeral width; at the very base on sides of scutellum with a very clear (but Below further one species of the genus stemming from not too strong) tubercle; with a small, somewhat heterogeneous, Sumatra is described. dense puncturation; apical external angle obtuse, sutural angle drawn into a long sharp tooth, thereby both angles masked under Zatrephus sumatranus Miroshnikov sp. n. a dense setation. (Figs 46, 47, 49) Prosternum with a well-expressed transverse groove in front of middle, with coarse irregular folds in apical part; prosternal Material. Holotype, ♂ (cLD) (Figs 46, 47): “Indonesia, Sumatra, process nearly parallel-sided dorsally, with a strong apical W of Sungai Akar [now Talang Lakat], 300 m, IV.1999, native collector”. tubercle; mesosternal process without tubercle dorsally, between ♂ Comparative material. Zatrephus crassinus Holzschuh, 1992: 1 , coxae clearly wider than prosternal process; mesosternum partly, holotype (cCH) (photograph); 1♂ (NHMD), E Malaysia, Sabah, Crocker Range, 04.2005 (local collector), “Zatrephus sp., O. Mehl det. 2005”, metasternum and sternites with a small dense puncturation; Zatrephus crassinus Holzschuh, 1992 ♂ det. A. Miroshnikov 2017; 1♀ metasternum with a gentle median groove; last (visible) sternite (cLD), W Malaysia, Perak, 40 km SE Ipoh, Banjaran Titi Wangsa, Ringlet, broadly subtruncate apically, last (visible) tergite with a poorly 900 m, 29.03–15.04.2004 (leg. P. Čechovský); 1♂ (cDH) (photograph). noticeable emargination at apex. Zatrephus spinosus Brongniart, 1890: 1♂ (cAM), E Malaysia, Sabah, Legs relatively short; metatarsomere 1 clearly shorter than Trus Madi Mt., 22.03.2000 (local collector), “Zatrephus spinosus Brongniart, metatarsomeres 2 and 3 combined. det. K. Hüdepohl [20]01”; 1♀ (cDH), same locality, but taken on 24.03.2004 Recumbent setation combines red/reddish and white/whitish (local collector), “Zatrephus spinosus Brongniart, det. D. Heffern”; 1♂ (cDH), Sabah, Tawau, 26.03.2004 (local collector), “Zatrephus spinosus tones, densest on elytra and venter; red setae strongly dominating Brongniart, det. D. Heffern”; 1♂ (cDH), Sabah, Crocker Range, Kipandi mainly on head dorsally, pronotum and basal antennomeres Park, 700 m, 20.04.2013 (local collector), “Zatrephus spinosus Brongniart, whereas whitish setae clearly prevailing on venter; elytral setation det. D. Heffern”; 1♀ (cNO) (photograph). clearly spotted; more or less long, erect, light setae mostly Diagnosis. Based on male characters, this new species developed on head and pronotum. seems to be especially similar to Z. crassinus Holzschuh, Distribution. Indonesia: Sumatra. 1992, but differs by the less deep, shorter and narrower Etymology. ­e formation of the name of this new median groove between the upper lobes of the eyes and species is related to its distribution in Sumatra. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) 267

Figs 32–45. Diorthus Gahan, 1891, last (visible) tergite, dorsal view, and genitalia. 32, 35, 38, 40, 43 – D. aurosetosus sp. n.; 33–34, 36–37, 39, 41–42, 44–45 – D. dembickyi sp. n. 32–33, 35–36, 38–41 – holotypes; 34, 37, 42, 45 – paratypes; 35–37 – tergite 8, dorsal view; 38–39 – tegmen, ventral view; 40–42 – apical part of tegmen, ventral view; 43–45 – apical part of penis, ventral view. Рис. 32–45. Diorthus Gahan, 1891, последний (видимый) тергит сверху и гениталии. 32, 35, 38, 40, 43 – D. aurosetosus sp. n.; 33–34, 36–37, 39, 41–42, 44–45 – D. dembickyi sp. n. 32–33, 35–36, 38–41 – голотипы; 34, 37, 42, 45 – паратипы; 35–37 – 8-й тергит сверху; 38–39 – тегмен снизу; 40–42 – вершинная часть тегмена снизу; 43–45 – вершинная часть пениса снизу. 268 A.I. Miroshnikov

Figs 46–50. Zatrephus Pascoe, 1857 and Elydnus Pascoe, 1869. 46–47, 49 – Z. sumatranus sp. n., male, holotype; 48, 49 – E. barclayi Miroshnikov, 2017, female. 46, 48 – habitus, dorsal view; 47 – habitus, ventral view; 49 – head, pronotum and very base of elytra, dorsal view; 50 – head and pronotum, dorsal view. Рис. 46–50. Zatrephus Pascoe, 1857 и Elydnus Pascoe, 1869. 46–47, 49 – Z. sumatranus sp. n., самец, голотип; 48, 49 – E. barclayi Miroshnikov, 2017, самка. 46, 48 – общий вид сверху; 47 – общий вид снизу; 49 – голова, переднеспинка и основание надкрылий сверху; 50 – голова и переднеспинка сверху. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) 269

Genus Elydnus Pascoe, 1869 Pachydissus patricius Holzschuh, 1991 (Figs 51, 53, 55, 57) Elydnus Pascoe, 1869: 516. Gemminger, 1872: 2803; Gahan, 1891: 23 (Dymasius subgen.); Aurivillius, 1912: 60 (Dymasius Pachydissus patricius Holzschuh, 1991: 36 (type locality: subgen.); Gressitt, Rondon, 1970: 78 (Dymasius subgen.); ­ailand, NE Bangkok, Saraburi (according to the original Hüdepohl, 1990: 75; Hüdepohl, 1998: 213; Vives, 2005: 245; description)). Miroshnikov, 2017: 222, fig. 404; Miroshnikov, 2018: Heffern, 2013: 10; Miroshnikov, 2017: 182. 212, fig. 74. Material. 1♂ (cLD) (Fig. 51), W Malaysia, Pahang, 15 km E Type species: Elydnus amictus Pascoe, 1869, by Kampong Dong, Benom Mts., 300–1000 m, 3°53ʹN / 102°01ʹE, 24.03– subsequent designation [Gressitt, Rondon, 1970]. 15.04.1998 (leg. L. Dembický), “Pachydissus patricius Holzschuh, 1991 ♂ Remarks. ­is genus includes six species det. A. Miroshnikov 2019”. Comparative material. Pachydissus borneoensis Miroshnikov, 2018: [Miroshnikov, 2017; Miroshnikov, Tichý, 2018]. Some of 1♂, holotype (NHMD) (Fig. 52), E Malaysia, Sabah, Crocker Range, 03.2003 them are still known only from one sex. (local collector). Remarks. ­is species was described on the basis of Elydnus barclayi Miroshnikov, 2017 single female. Male features are given here for the first time. (Figs 48, 50) Description of the male. Closely resembles a female. Body length 33 mm, humeral width 8.1 mm. Antennae much longer than body, reaching beyond apex Elydnus barclayi Miroshnikov, 2017: 183 (type locality: of elytra by antennomere 7; basal antennomeres pretty robust; “Peninsular Siam, Nakon Sri Tam[m]arat, Khao Luang , 2000 ft. ʹ ʹ length ratio of antennomeres 1–11, 36 : 14 : 60 : 27 : 76 : 70 : [8°33 N / 99°44 E]” (according to the original description and the 70 : 66 : 65 : 72 : 139; antennomere 1 with a coarse sculpture label of the holotype)). forming, in addition to everything else, in middle part dorsally a 1♀ (cLD), W Malaysia, Johor, Endau-Rompin NP, Material. distinct longitudinal rib, the latter occupying more than half of Pulau Jasin, 50–400 m, 2°18ʹN / 103°12ʹE, 19.03.1998 (leg. L. Dembický, P. Pacholátko), “Elydnus barclayi Miroshnikov, 2017 ♀ det. A. Miroshnikov antennomere length starting from base, as well as with a small 2019”. dense puncturation; antennomere 2 subequal in length and width; ­is species was described on the basis apical external angle of antennomeres 3–10 rounded or obtuse, not Remarks. drawn towards laterad; antennomeres 3 and 4 partly with a well- of two males. Female features are given here for the first visible longitudinal impression both dorsally and ventrally. time. Pronotum distinctly longitudinal, 1.11 times as long as wide; Description of the female. Closely resembles a male. Body base 1.13 times as wide as apex; with coarse, partly sinuous, mainly length 28.4 mm, humeral width 6.6 mm. transverse folds; with a recumbent, dense, light setation, forming a Antennae very clearly longer than body, nearly reaching peculiar pattern, as in Figs 51, 53, nearly like in female. the apex of elytra by apex of antennomere 9; length ratio of Elytra in basal third nearly parallel-sided, but then very antennomeres 1–11, 25 : 6 : 30 : 21 : 24 : 39 : 43 : 41 : 38 : 36 : 54; distinctly narrowed towards apex, 2.58 times as long as humeral antennomere 5, 1.14 times as long as antennomere 4 (in male width; apical external angle very well-expressed, sutural angle 1.10–1.13 times; while in similar species, E. amictus Pascoe, drawn into a very clear sharp tooth. 1869, antennomere 5, 1.28–1.37 or 1.19–1.36 times as long as Last (visible) sternite with a distinct emargination at apex; antennomere 4 in male and female, respectively [Miroshnikov, last (visible) tergite widely rounded apically. 2017]); submentum 2.4 times as wide as long (in male 2.34– Notes. ­e male structure of P. patricius reliably 2.42 times; while in male and female of E. amictus, submentum confirms the very clear differences between this species 2.68–2.89 times as wide as long, as a rule [Miroshnikov, 2017]). and the similar species, P. borneoensis Miroshnikov, 2018, Pronotum barely longitudinal, 1.02 times as long as wide; described from Borneo. base 1.16 times as wide as apex. ­e male, like a female, clearly differs from the male Elytra in basal third nearly parallel-sided, in apical part of P. borneoensis by the somewhat peculiar both sculpture distinctly broadened, in apical third clearly narrowed towards and setation of the pronotum, including the presence of a apex; 2.7 times as long as humeral width; with a recumbent longitudinal, pretty wide, bare (devoid of a setation), very dense setation being clearly golden tones partly, like in male (in E. amictus, setation in the vast majority of cases with a silvery tint well-expressed area in the basal half lateral to the midline, partly [Miroshnikov, 2017]). as indicated by arrows in Fig. 53 (cf. Fig. 54), as well as by Last (visible) sternite widely rounded apically; last (visible) the presence of a well-expressed median groove between tergite truncate at apex. the upper lobes of the eyes and on the vertex, as in Fig. 53 (cf. Fig. 54). Additionally, in the male of P. patricius, Genus Pachydissus Newman, 1838 compared to the male of P. borneoensis, the antennomere 1 with a clearly less sharp longitudinal rib dorsally; the Pachydissus Newman, 1838: 494. ­omson, 1864: 231; basal antennomeres are distinctly more robust, especially Lacordaire, 1868: 265; Gemminger, 1872: 2804; Gahan, 1891: so antennomeres 3 and 4, as in Fig. 51 (cf. Fig. 52); the 24; Reitter, 1894: 356; Gahan, 1906: 133; Aurivillius, 1912: 56; antennomeres 3, 4 and 5 combined only 1.17 times as long Plavilstshikov, 1931: 83; Gressitt, 1951: 141; Gressitt, Rondon, as the last antennomere (while in P. borneoensis 1.35 times); 1970: 71; Adlbauer, 2002: 158; Catalogue..., 2010: 162; Ślipiński, the scutellum is more broadly rounded apically; last (visible) Escalona, 2016: 223; Kariyanna et al., 2017: 34; Miroshnikov, 2017: sternite with a distinct emargination at the apex (while in 220; Bouyer, 2018: 15; Miroshnikov, 2018: 211. P. borneoensis, the last (visible) sternite widely truncate Type species: Pachydissus sericus Newman, 1838, by apically); both tergite 8 and tegmen of peculiar shape in the monotypy. apical part, as in Figs 55, 57 (cf. Figs 56, 58). Remarks. ­is genus includes eleven Asian species Distribution. Until now, this species has only been [Miroshnikov, 2018], but at least one of them needs a known from ­ailand [Holzschuh, 1991]. clarification of its generic attribution. Most of the species Based on the material studied, P. patricius is being are still known only from one sex. recorded here from Western Malaysia for the first time. 270 A.I. Miroshnikov

Figs 51–58. Pachydissus Newman, 1838, males. 51, 53, 55, 57 – P. patricius Holzschuh, 1991 (Western Malaysia); 52, 54, 56, 58 – P. borneoensis Miroshnikov, 2018, holotype. 51–52 – habitus, dorsal view; 53–54 –head and pronotum, dorsal view; 55–56 – apical part of tegmen, ventral view; 57–58 – tergite 8, dorsal view. Рис. 51–58. Pachydissus Newman, 1838, самцы. 51, 53, 55, 57 – P. patricius Holzschuh, 1991 (Западная Малайзия); 52, 54, 56, 58 – P. borneoensis Miroshnikov, 2018, голотип. 51–52 – общий вид сверху; 53–54 –голова и переднеспинка сверху; 55–56 – вершинная часть тегмена снизу; 57–58 – 8-й тергит сверху. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) 271

Hua L.-Z. 1984. A list of the longicorn beetles of Laos (Coleoptera: Acknowledgements Cerambycidae). Guangzhou: Institute of Entomology, Zhongshan University. 155 p. I am very grateful to Maxwell V.L. Barclay and Hua L.-Z. 2002. List of Chinese Insects. 2. Guangzhou: Zhongshan (Sun Michael F. Geiser (BMNH), James H. Boone (BM), ­ierry Yatsen) University. 612 p. Hua L.-Z., Nara H., Saemulson [Samuelson] G.A., Langafelter [Lingafelter] Deuve, Azadeh Taghavian and Gérard L. Tavakilian S.W. 2009. Iconography of Chinese Longicorn Beetles (1406 Species) (MNHN), Alain Drumont (IRSN), Alexey Yu. Solodovnikov in Color. Guangzhou: Sun Yat-sen University Press. 474 p. (NHMD) for the opportunity to study the museum Hüdepohl K.-E. 1990. ­e longhorn beetles of the Philippines. Part II. material, to Luboš Dembický (Brno, Czech Republic) Entomofauna. Zeitschrift fur Entomologie. 11(3/1–2): 45–102. Hüdepohl K.-E. 1998. Über südostasiatische Cerambyciden XV und who has provided some very valuable specimens from his Disteniiden (Coleoptera: Cerambycidae, Disteniidae). Entomofauna. private collection. I would like to express my sincere thanks Zeitschrift für Entomologie. 19(12): 209–230. to Gérard Chemin (Champigny-sur-Marne, France), Xavier Kariyanna B., Mohan M., Gupta R., Vitali F. 2017. ­e checklist of longhorn beetles (Coleoptera: Cerambycidae) from India. Zootaxa. 4345(1): Gouverneur (Rennes, France), Meiying Lin (Institute 1–317. DOI: 10.11646/zootaxa.4345.1.1 of Zoology, Chinese Academy of Sciences, Beijing, Lacordaire J.T. 1868. Histoire naturelle des insectes. Genera des Coleopteres, China), Florence Trus (IRSN) for the helpful provision ou expose methodique et critique de tous les genres proposes jusqu’ici of various pictures and/or valuable information, again to dans cet ordre d’insectes. T. 8. 1869. Paris: Librairie encyclopedique de Roret. 552 p. Alexey Yu. Solodovnikov who helped a lot in my prompt Lin M. 2017. Vesperidae, Disteniidae, Cerambycidae. In: Insect Fauna of receipt of the material for study. My special thanks are due the Qinling Mountains. Xi’an: World Publishing Corporation: [2] + to Kirill V. Makarov (Moscow Pedagogical State University, 1–510 + 37 colour pls (in Chinese). Miroshnikov A.I. 2017. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, Moscow, Russia) and my wife Tatiana P. Miroshnikova for 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. having rendered great help in the preparation of pictures. 1. New or little-known taxa, mainly from Indochina and Borneo, with reviews of some genera. Caucasian Entomological Bulletin. 13(2): 161–233, color pls 1–6. DOI: 10.23885/1814-3326-2017-13-2-161- References 233 Miroshnikov A.I. 2018. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, Adlbauer K. 2002. Die afrikanischen Arten der Gattung Pachydissus 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. Newman, 1838 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycini). Coleoptera, 4. New or little-known taxa, mainly from Indochina and Borneo, Schwanfelder Coleopterologische Mitteilungen. 6(1/2): 157–185. with reviews or annotated checklists of species of some genera. Adlbauer K. 2006. Die Cerambycini der Äthiopischen Region. – Die Caucasian Entomological Bulletin. 14(2): 197–246, color pls 1–6. Gattungen Diorthus, Margites, Dissaporus, Graciliderolus, DOI: 10.23885/181433262018142-197246 Microderolus und Spiniderolus. (Cerambycidae: Cerambycinae). Miroshnikov A.I., Tichý T. 2018. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Coleoptera, Schwanfelder Coleopterologische Mitteilungen. 10: 61– Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the 82. fauna of Asia. 3. A new or little-known species of the genus Elydnus Aurivillius Chr. 1912. Cerambycidae: Cerambycinae. In: Coleopterorum Pascoe, 1869. Russian Entomological Journal. 27(3): 277–280. DOI: Catalogus, auspiciis et auxilio W. Junk, editus a S. Schenkling. Pars 39. 10.15298/rusentj.27.3.06 Berlin: W. Junk: 3–574. Newman E. 1838. Entomological Notes. ‚e Entomological Magazine. 5(5): Bouyer T. 2018. Notes sur le genre Pachydissus Newman, 1838 483–500. (Cerambycidae, Cerambycinae, Cerambycini). Entomologia Africana. Nga C.T.Q., Long K.D., ­inh T.H. 2014. New records of the tribe 23(2): 15–26. Cerambycini (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) from Catalogue of Palaearctic Coleoptera. Vol. 6. Chrysomeloidea. (I. Löbl, Vietnam. Tap Chi Hoc. 36(4): 428–443. A. Smetana eds). 2010. Stenstrup: Apollo Books. 924 p. Özdikmen H., Turgut S. 2009. On Turkish Cerambyx Linnaeus, 1758 Chiang S. 1981. New longicorn beetles from China. Acta Entomologica with zoogeogrephical [zoogeographical] remarks (Coleoptera: Sinica. 24(1): 78–84, pl. 1 (in Chinese). Cerambycidae: Cerambycinae). Munis Entomology & Zoology. 4(2): Gahan C.J. 1891. Notes on longicorn Coleoptera of the group Cerambycinae, 301–319. with descriptions of new genera and species. ‚e Annals and Pascoe F.P. 1857. On New Genera and Species of Longicorn Coleoptera. Magazine of Natural History. 7(6): 19–34. Part II. ‚e Transactions of the Entomological Society of London (N.S.). Gahan C.J. 1906. Cerambycidae. In: ­e fauna of British India, including 4(4): 89–112, pls. 22–23. Ceylon and Burma. Coleoptera. Vol. 1. London: Taylor and Francis. Pascoe F.P. 1869. Longicornia Malayana; or, a Descriptive Catalogue of the xviii + 329 p. Species of the three Longicorn Families Lamiid., Cerambycid. And Gemminger M. 1872. Cerambycidae. In: Gemminger M., Harold E. Prionid. collected by Mr. A. R. Wallace in the Malay Archipelago Catalogus Coleopterorum hucusque descriptorum synonymicus (Part VI). ‚e Transactions of the Entomological Society of London. et systematicus. T. 9. Scolytidae, Brenthidae, Anthotribidae, 3(3): 497–552 + pl. XX. Cerambycidae. Monachii: E.H. Gummi (G. Beck): 2751–2988 + 11 p. Pic M. 1916. Nouveaux Cérambycides [Col.] de la Chine méridionale II. Gressitt J.L. 1942. A provisional synopsis of the longicorn beetles of China – Bulletin de la Société Entomologique de France. 1915. 20: 325–327. subfamily Cerambycinae. Lingnan Natural History Survey and Pic M. 1946. Refutations d’anciennes critiques et fausses synonymies. Museum. Special Publication. 4: 1–34. Miscellanea Entomologica, Narbonne. 1945. 42(9): 105–111. Gressitt J.L. 1951. Longicorn beetles of China. In: Longicornia. Etudes et Plavilstshikov N.N. 1931. Cerambycidae I. Teil. Cerambycinae: Disteniini, notes sur les Longicornes. Vol. 2. Paris: Paul Lechevalier. 667 p. + Cerambycini I (Protaxina, Spondylina, Asemina, Saphanina, 22 pls. Achrysolina, Oemina, Cerambycina). In: Bestimmungs-Tabellen der Gressitt J.L., Rondon J.A. 1970. Cerambycids of Laos (Disteniidae, Prioninae, europäischen Coleopteren. Heft 101. Troppau. 102 p. Philinae, Aseminae, Lepturinae, Cerambycinae). In: Gressitt J.L., Reitter E. 1894. Uebersicht der Arten der Coleopteren-Gattung Cerambyx L. Rondon J.A., Breuning S. von. Cerambycid-beetles of Laos. Pacific und einer Darstellung der mit dieser zunächst verwandten Genera der Insects Monograph. Vol. 24. Honolulu: Entomology Department, palaearctischen Fauna. Entomologische Nachrichten. 20(23): 353–356. Bernice P. Bishop Museum: 1–314. Ślipiński S.A., Escalona H.E. 2016. Australian Longhorn Beetles (Coleoptera: Heffern D.J. 2013. A Catalog and Bibliography of Longhorned Beetles from Cerambycidae). Vol. 2. Subfamily Cerambycinae. Melbourne: CSIRO Borneo (Coleoptera: Cerambycidae, Disteniidae and Vesperidae). Publishing. 640 p. Electronic Version, 2013.1. 107 p. Available at: https://www.zin.ru/ ­omson J. 1864. Systema Cerambycidarum ou exposé de tous les genres animalia/coleoptera/pdf/heffern_2013_borneo_catalog.pdf (accessed compris dans la famille des Cérambycides et familles limitrophes. 31 October 2019). Livres 1–3. Liège: H. Dessain. 352 p. Holzschuh C. 1991. 45 neue Bockkäfer aus Asien, vorwiegend aus ­ailand Vitali F., Gouverneur X., Chemin G. 2017a. Revision of the tribe (Coleoptera: Disteniidae und Cerambycidae). FBVA Berichte: Cerambycini: redefinition of the genera Trirachys Hope, 1843, Schriftenreihe der Forstlichen Bundesversuchsanstalt in Wien. 51: Aeolesthes Gahan, 1890 and Pseudaeolesthes Plavilstshikov, 1931 35–75. (Coleoptera, Cerambycidae). Les Cahiers Magellanes. 26: 40–65. 272 A.I. Miroshnikov

Vitali F., Gouverneur X., Chemin G. 2017b. Revision of the tribe Vives E. 2005. Dos nuevas especies de Cerambycidae asiaticos (Coleoptera). Cerambycini: new Asian taxa with remarks on the genera Trirachys Nouvelle Revue d’Entomologie (N.S.). 22(3): 243–248. Hope and Parolesthes Vitali et al. (Coleoptera Cerambycidae). Les Wang Z.-C., Hua L.-Z. 2009. Collect and revision of list on longicorn beetles Cahiers Magellanes. 28: 89–100. in China. Journal Beihua University (Natural Science). 10(2): 159–192.

Received / Поступила: 7.11.2019 Accepted / Принята: 3.12.2019 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 273–275 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

‰e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. 9. A new species of the genus Dymasius J. ‰omson, 1864 from Southern India

Жуки-дровосеки трибы Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) фауны Азии. 9. Новый вид рода Dymasius J. ‰omson, 1864 из Южной Индии

© A.I. Miroshnikov1, 2, X. Gouverneur3 © А.И. Мирошников1, 2, К. Гувернью3

1Russian Entomological Society, Krasnodar, Russia. E-mail: [email protected] 2Sochi National Park, Moskovskaya str., 21, Sochi, Krasnodar Region 354002 Russia 3rue de la Santé, 3, Rennes F-35000 France. E-mail: [email protected]

1Русское энтомологическое общество, Краснодар, Россия 2Сочинский национальный парк, ул. Московская, 21, Сочи, Краснодарский край 354000 Россия 3Рю де ля Санте, 3, Ренн F-35000 Франция

Key words: Coleoptera, Cerambycidae, Cerambycini, Dymasius, new species, Southern India. Ключевые слова: Coleoptera, Cerambycidae, Cerambycini, Dymasius, новый вид, Южная Индия.

Abstract. A new species, Dymasius austroindicus Base de données..., 2019]. However, the distribution Miroshnikov et Gouverneur, sp. n., is described from of D. strigosus, described from “India” but at present Southern India. It is especially similar to D. lineolatus reliably known only from , needs to be clarified Holzschuh, 2015 inhabiting Laos and ­ailand, but differs [Miroshnikov, 2018]. clearly in the structure of the pronotum, in particular, ­is paper describes a new species of this genus based the less coarse sculpture on the disc and the somewhat on the specimen collected by Mr. Luboš Dembický (Brno, peculiar pattern of less bright, recumbent, dense setae, the Czech Republic) in Southern India. unicolorous elytral pattern of recumbent, dense, light setae, ­e material examined is kept in the following private the less coarse sculpture of antennomere 1, the narrower collections: head at eye level and the peculiar shape of the lower lobes cAM – collection of Alexandr Miroshnikov of eyes, at least so in the male, as well as in the stronger (Krasnodar, Russia); blackened femora and some other minor traits. cCH – collection of Carolus Holzschuh (Villach, Резюме. Описан новый вид Dymasius austroindicus Austria); cLD – collection of Luboš Dembický (Brno, Czech Miroshnikov et Gouverneur, sp. n. из Южной Индии. Он особенно сходен с D. lineolatus Holzschuh, 2015, Republic); cSM – collection of Sergey Murzin (Moscow, Russia); распространенным в Лаосе и Таиланде, но явно cXG – collection of Xavier Gouverneur (Rennes, отличается строением переднеспинки, в частности France). менее грубой скульптурой на диске и несколько своеобразным рисунком из менее ярких лежачих Dymasius austroindicus густых щетинок, одноцветным рисунком из лежачих Miroshnikov et Gouverneur, sp. n. густых светлых щетинок на надкрыльях, менее грубой (Figs 2, 4, 6) скульптурой 1-го членика усиков, более узкой головой на уровне глаз и своеобразной формой нижних долей Material. Holotype, ♂ (cLD) (Fig. 2): S India, Tamil Nadu, Nilgiri глаз, по крайней мере у самца, а также более сильно Hills, 11 km SE Kotagiri, Kunchappanai, 1000–1200 m, 11°24′N / 76°56′E, затемненными бедрами и некоторыми другими менее 3–15.05.2002 (leg. L. Dembický). Comparative material. Dymasius lineolatus Holzschuh, 2015: 1♂, существенными признаками. holotype (cCH) (photograph); 3♂, 1♀ (cLD), 1♂ (Fig. 1) (cAM), Laos, Luang Phrabang env., 19°53.420′N / 102°08.229′E, 16–19.02.2010 (leg. M. Pejcha); Until now, the following four species of the genus 2♂, 4♀ (cSM), 2♀ (cAM), N ­ailand, 100 km N Chaing Mai, Chiang Dao Hill Resort, 600 m, 10–23.03.2010 (leg. S. Murzin). Dymasius J. ­omson, 1864 have been known from India: Dymasius sp.: 1♂ (cXG), Sri Lanka, Southern Province, D. strigosus J. ­omson, 1864, D. minor Gahan, 1906, Tissamaharama, 16.05.2010 (local collector). D. subvestitus Holzschuh, 1984 and D. gilvago Holzschuh, Diagnosis. ­is new species seems to be especially 1999 [Kariyanna et al., 2017; Miroshnikov, 2017, 2018; similar to D. lineolatus Holzschuh, 2015, but differs clearly

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-273275 274 A.I. Miroshnikov, X. Gouverneur

Figs 1–6. Dymasius J. ­omson, 1864, males. 1, 3, 5 – D. lineolatus Holzschuh, 2015; 2, 4, 6 – D. austroindicus sp. n., holotype; 1–2 – habitus, dorsal view; 3–4 – pronotum, dorsal view; 5–6 – head, ventral view. Рис. 1–6. Dymasius J. ­omson, 1864, самцы. 1, 3, 5 – D. lineolatus Holzschuh, 2015; 2, 4, 6 – D. austroindicus sp. n., голотип; 1–2 – общий вид, сверху; 3–4 – переднеспинка, сверху; 5–6 – голова, снизу. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) 275 in the structure of the pronotum, in particular, the less Remarks. ­e collection of the second author coarse sculpture on the disc and the somewhat peculiar contains one male from Sri Lanka that is very similar to pattern of less bright, recumbent, dense setae, as in Fig. 4 D. austroindicus sp. n., but differs at least by the wider (cf. Fig. 3), the unicolorous elytral pattern of recumbent, head, the shorter antennae, the coarser sculpture of dense, light setae, as in Fig. 2 (cf. Fig. 1), the less coarse the antennomere 1, the less elongated antennomeres 3 sculpture of antennomere 1, the narrower head at eye level and 4, the somewhat peculiar sculpture and the brighter and the peculiar shape of the lower lobes of eyes, at least so recumbent setation of the pronotal disc, the less elongated in the male, as in Fig. 6 (cf. Fig. 5), the stronger blackened elytra, the almost entirely blackened femora. ­is specimen femora partly. probably belongs to another new species, but it requires Description. Male. Body length 10.7 mm, humeral width further study. 2.35 mm, thereby holotype largest. Eyes black; head mostly, Distribution. Southern India. pronotum on sides, venter predominantly, femora partly or mainly Etymology. ­e formation of the name of this new from dark brown to brown-black; antennae, tibiae and tarsi species is related to its distribution in Southern India. entirely, femora at base red; remaining parts reddish brown and dark reddish brown tones. Head without median groove between upper lobes of eyes; Acknowledgements antennal tubercles well-expressed; eyes large, very close together on ventral side of head; submentum distinctly longitudinal; We are very grateful to Luboš Dembický (Brno, Czech genae relatively long; antennae reaching beyond apex of elytra Republic) and Sergey Murzin (Moscow, Russia) provided by last antennomere; length ratio of antennomeres 1–11, 18 : 6 : 23 : 17 : 23 : 26 : 25 : 22 : 21 : 18 : 22; antennomere 1 devoid of a some valuable specimens from their private collections, as cicatrix (apical carina), without rough sculpture, only with dense well as again to Luboš Dembický who generously shared a punctures; antennomere 2 very distinctly longitudinal. picture of the holotype of Dymasius lineolatus. We would Pronotum very clearly longitudinal, 1.25–1.3 times as long as also like to express our sincere thanks to Kirill V. Makarov wide; base 1.15 times as wide as apex; on disc weakly convex, with (Moscow Pedagogical State University, Moscow, Russia) heterogeneous, mostly irregular folds. and Tatiana P. Miroshnikova (Krasnodar, Russia) for having Scutellum triangular, sharpened apically. rendered great help in the preparation of pictures. Elytra very distinctly narrowed towards apex, 2.62–2.77 times as long as humeral width; with a rough, more or less regular, moderately dense puncturation; apical external angle obtuse, but References well-expressed, sutural angle subrectangular. Prosternum mostly with irregular, mainly transverse, more Base de données Titan sur les Cerambycidés ou Longicornes (systématique: or less rough folds; prosternal process without apical tubercle; G. Tavakilian). Available at: http://titan.gbif.fr/ (accessed 31 October 2019). mesosternal process between coxae distinctly wider than Kariyanna B., Mohan M., Gupta R., Vitali F. 2017. ­e checklist of longhorn beetles (Coleoptera: Cerambycidae) from India. Zootaxa. 4345(1): prosternal process, without tubercle dorsally; metasternum and 1–317. DOI: 10.11646/zootaxa.4345.1.1 sternites with a small dense puncturation; metasternum with a Miroshnikov A.I. 2017. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, distinct median groove; last (visible) sternite truncate apically; last 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. (visible) tergite rounded at apex. 1. New or little-known taxa, mainly from Indochina and Borneo, with Legs moderately long; femora with a distinct, tibiae with a reviews of some genera. Caucasian Entomological Bulletin. 13(2): poorly expressed, longitudinal carina on sides; metatarsomere 1 161–233, color pls 1–6. DOI: 10.23885/1814-3326-2017-13-2-161-233 clearly shorter than metatarsomeres 2 and 3 combined. Miroshnikov A.I. 2018. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. Recumbent dense setation on dorsum mainly yellowish, 4. New or little-known taxa, mainly from Indochina and Borneo, on venter greyish, forming longitudinal stripes on elytra and a with reviews or annotated checklists of species of some genera. peculiar pattern on pronotum; more or less long, erect, light setae Caucasian Entomological Bulletin. 14(2): 197–246, color pls 1–6. mostly developed on head and pronotum. DOI: 10.23885/181433262018142-197246

Received / Поступила: 7.11.2019 Accepted / Принята: 18.12.2019 276 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 277–281 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

‰e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. 10. A new species of the genus Mimimbrius Miroshnikov, 2017 from Borneo

Жуки-дровосеки трибы Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) фауны Азии. 10. Новый вид рода Mimimbrius Miroshnikov, 2017 с Борнео

© A.I. Miroshnikov1, 2, D.J. Heffern3 © А.И. Мирошников1, 2, Д.Дж. Хефферн3

1Russian Entomological Society, Krasnodar, Russia. E-mail: [email protected] 2Sochi National Park, Moskovskaya str., 21, Sochi, Krasnodar Region 354002 Russia 3Florida State Collection of , Museum of Entomology, 10531 Goldfield Lane, Houston, TX 77064 USA. E-mail: [email protected]

1Русское энтомологическое общество, Краснодар, Россия 2Сочинский национальный парк, ул. Московская, 21, Сочи, Краснодарский край 354002 Россия 3Флоридская государственная коллекция членистоногих, Музей энтомологии, 10531 Голдфилд Лейн, Хьюстон, TX 77064 США

Key words: Coleoptera, Cerambycidae, Cerambycini, Mimimbrius, new species, Borneo. Ключевые слова: Coleoptera, Cerambycidae, Cerambycini, Mimimbrius, новый вид, Борнео.

Abstract. A new species, Mimimbrius sabahensis ­e material treated here belongs to the following Miroshnikov et Heffern, sp. n., is described from Borneo. institutional and private collections: It is especially similar to M. dembickyi Miroshnikov, 2017 BM – Bishop Museum (Honolulu, USA); inhabiting Southern ­ailand, but differs clearly by the cAM – collection of Alexandr Miroshnikov somewhat peculiar sculpture of the pronotal disc, the (Krasnodar, Russia); more strongly developed recumbent light setation in its cAN – collection of Alexandr Napolov (Riga, Latvia); apical third; the presence of a distinct emargination at the cDH – collection of Daniel Heffern (Houston, USA); apex of the last (visible) sternite in the male; the noticeably cLD – collection of Luboš Dembický (Brno, Czech narrower longitudinal strips of recumbent, dense, light Republic). setae between the upper lobes of the eyes, especially so in the male; the structure of the male genitalia, in particular, Mimimbrius sabahensis Miroshnikov et Heffern, sp. n. the peculiar shape of the apical parts of tergite 8, penis and (Figs 1, 2, 7, 8, 13, 14, 18, 22) tegmen, as well as by some other minor traits. Резюме. Описан новый вид Mimimbrius Material. Holotype, ♂ (cDH) (Fig. 2): E Malaysia, Sabah, Crocker sabahensis Miroshnikov et Heffern, sp. n. с Борнео. Он Range, 3.04.2006 (local collector), “DJHC Acc # 09–5834”, “Imbrius sp. near особенно сходен с M. dembickyi Miroshnikov, 2017, geminatus, det. D. Heffern”. Paratype: 1♀ (cAM) (Fig. 1), E Malaysia, Sabah, распространенным в Южном Таиланде, но явно Trus Madi Mt., 2.04.2007 (local collector), “Imbrius sp. near geminatus, det. D. Heffern”. отличается несколько своеобразной скульптурой Comparative material. Mimimbrius subargenteus (Gressitt et диска переднеснинки, более сильно развитым лежачим Rondon, 1970): 1♂, holotype (BM) (Fig. 4), “Laos: Vientiane Prov., Phou светлым покровом в его вершинной трети, наличием Kou Khouei”, “P. K. Khouei, 31.V.[19]66”, “J.A. Rondon Collection Bishop отчетливой выемки на вершине последнего (видимого) Mus.”, “Holotype Zegriades subargenteus J.L. Gressitt et Rondon”, “Zegriades subargenteus Gressitt & Rondon det. 196[?]”; 1♂, paratype (BM), “Laos: стернита самца, заметно более узкими продольными [Champassak Prov.] Ile de Khong”, “Ile de Khong, 15.IV.[19]65”, “J.A. Rondon полосами из лежачих густых светлых щетинок между Collection Bishop Mus.”, “Paratype Zegriades subargenteus Gressitt & верхними долями глаз, особенно у самца, строением Rondon”; 1♂ (cAM) (Fig. 5), N ­ailand, Lamphun, Mae ­a, 20.04.2011 гениталий самца, в частности своеобразной формой (local collector); 1♂ (cAN), same label; 1♂ (cAM) (Fig. 6), N ­ailand, Mae ʹ ʺ вершинных частей 8-го тергита, пениса и тегмена, а Hong Son, Pai env., road to Mae Yen Waterfall, 575–615 m, 19°21 42 N / 98°27ʹ46ʺE – 19°22ʹ01ʺN / 98°30ʹ29ʺE, 27.04–9.05.2013 (leg. I. Melnik). также некоторыми менее существенными признаками. Mimimbrius dembickyi Miroshnikov, 2017: 1♂, holotype (cLD) (Fig. 3), S ­ailand, Nakhon Si ­ammarat, Khao Luang, Kiriwong, ­e Oriental genus Mimimbrius Miroshnikov, 2017 08°16ʹ12ʺN / 99°26ʹ24ʺE, 9.04.1997 (local collector). has been established for four species, including one new Diagnosis. ­is new species seems to be especially [Miroshnikov, 2017]. ­is paper describes another new similar to M. dembickyi Miroshnikov, 2017, but differs species from Eastern Malaysia. clearly by the somewhat peculiar sculpture of the pronotal

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-277281 278 A.I. Miroshnikov, D.J. Heffern

Figs 1–6. Mimimbrius Miroshnikov, 2017, habitus, dorsal view. 1–2 – M. sabahensis sp. n.; 3 – M. dembickyi Miroshnikov, 2017; 4–6 – M. subargenteus (Gressitt et Rondon, 1970). 1, 3–4 – males, holotypes; 2 – female, paratype; 5–6 – males from ­ailand. Рис. 1–6. Mimimbrius Miroshnikov, 2017, общий вид сверху. 1–2 – M. sabahensis sp. n.; 3 – M. dembickyi Miroshnikov, 2017; 4–6 – M. subargenteus (Gressitt et Rondon, 1970). 1, 3–4 – самцы, голотипы; 2 – самцы, голотипы; 5–6 – самцы из Таиланда. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) 279

Figs 7–12. Mimimbrius Miroshnikov, 2017, head and pronotum, dorsal view. 7–8 – M. sabahensis sp. n.; 9 – M. dembickyi Miroshnikov, 2017; 10–12 – M. subargenteus (Gressitt et Rondon, 1970). 7, 9, 11 – males, holotypes; 8 – female, paratype; 10, 12 – males from ­ailand. Рис. 7–12. Mimimbrius Miroshnikov, 2017, голова и переднеспинка сверху. 1–2 – M. sabahensis sp. n.; 3 – M. dembickyi Miroshnikov, 2017; 4–6 – M. subargenteus (Gressitt et Rondon, 1970) 7, 9, 11 – самцы, голотипы; 8 – самцы, голотипы; 10, 12 – самцы из Таиланда. 280 A.I. Miroshnikov, D.J. Heffern

Figs 13–25. Mimimbrius Miroshnikov, 2017, head and prosternum, ventral view, and male genitalia. 13–14, 18, 22 – M. sabahensis sp. n.; 15, 21, 23 – M. dembickyi Miroshnikov, 2017; 16–17, 19–20, 24–25 – M. subargenteus (Gressitt et Rondon, 1970). 13 – female, paratype; 14–16, 18–19, 22–24 – holotypes; 17, 20, 25 – specimen from ­ailand; 14–17 – apical part of penis, ventral view; 18–21 – tergite 8, dorsal view; 22–25 – apical part of tegmen, ventral view. Рис. 13–25. Mimimbrius Miroshnikov, 2017, голова и простернум снизу и гениталии самца. 13–14, 18, 22 – M. sabahensis sp. n.; 15, 21, 23 – M. dembickyi Miroshnikov, 2017; 16–17, 19–20, 24–25 – M. subargenteus (Gressitt et Rondon, 1970). 13 – самка, паратип; 14–16, 18–19, 22–24 – голотипы; 17, 20, 25 – экземпляр из Таиланда; 14–17 – вершинная часть пениса снизу; 18–21 – 8-й тергит сверху; 22–25 – вершинная часть тегмена снизу. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) 281 disc, the more strongly developed recumbent light setation Elytra nearly parallel-sided, strongly elongated, 2.97 in its apical third, as in Figs 7, 8 (cf. Fig. 9) (see also description or 2.83 times as long as humeral width in male and female, below); the presence of a distinct emargination at the apex respectively; with a small, somewhat heterogeneous, more or of the last (visible) sternite in the male; the noticeably less dense puncturation (without double puncturation radically differing in size); apical external angle widely rounded, sutural narrower longitudinal strips of recumbent, dense, light angle almost right. setae between the upper lobes of the eyes, especially so Prosternum with a distinct transverse groove in front of in the male, as in Figs 7, 8 (cf. Fig. 9); the structure of the middle, with rough irregular folds between this groove and male genitalia, in particular, the peculiar shape of the apical anterior border of coxal cavities; prosternal process with a lateral parts of tergite 8, penis and tegmen, as in Figs 14, 18, 22 tooth in apical part on each side characteristic of the genus (cf. Figs 15, 21, 23). Mimimbrius sabahensis sp. n. can also (Fig. 13); mesosternal process between coxae very clearly wider be compared to M. subargenteus (Gressitt et Rondon, 1970), than prosternal process; mesosternum partly, metasternum and but differs very distinctly by the structure of the pronotum, sternites with a small dense puncturation; metasternum with a gentle median groove; last (visible) sternite at apex in male with a in particular, the irregular folds and tubercles on the disc, distinct emargination, in female widely rounded; last (visible) tergite including only individual transverse folds, as in Figs 7, 8 at apex in male with a shallow emargination, in female truncate. (cf. Figs 10–12), the less strongly elevated, shorter and Legs moderately developed; femora claviform; femora and more weakly expressed sculptural formation in the apical tibiae with a longitudinal carina (characteristic of the genus) third, as in Figs 7, 8 (cf. Figs 10–12), the clearly narrower extending over entire length, from base to apex, and located almost symmetrical fragments of recumbent, dense, yellow completely in the middle part of both external and inner sides; setation near apex lateral to the midline, as in Figs 7, 8 metatarsomere 1 very clearly shorter than metatarsomeres 2 and 3 (cf. Figs 10–12), the less strongly expressed median tubercle combined. Recumbent setation of head dorsally and pronotum mainly between these fragments of setation, as well as by the more yellow and partly yellowish, of remaining parts, including elytra, numerous recumbent light setae on antennomere 1, as in greyish (male), or of head dorsally and pronotum yellow, of Figs 7, 8 (cf. Figs 10–12), the brighter recumbent dense basal antennomeres, elytra and partly metasternum yellowish, of setation at least on the head dorsally, especially so in the remaining parts greyish (female); dense setae between upper lobes female, as in Figs 7, 8 (cf. Figs 10–12), the structure of the of eyes forming two symmetrical, very well-expressed, clearly male genitalia, as in Figs 14, 18, 22 (cf. Figs 16, 17, 19, 20, divided, longitudinal, narrow strips, as in Figs 7, 8; dense setae on 24, 25), and some other minor traits. pronotum forming more or less symmetrical individual fragments Description. Body length 11.7–13.5 mm, humeral width only along sides, near both apex and base in middle part, as in 2.5–3 mm, thereby holotype smallest. Coloration of integument Figs 7, 8; setation of elytra only partly masking puncturation, as combines reddish-brown and dark reddish-brown tones; eyes in Figs 1, 2; antennomere 1, predominantly on inner side, with black. numerous greyish or yellow setae; head, pronotum laterally, elytra Head with moderately developed antennal tubercles; with and abdomen at apex, prosternum, most of antennomeres in apical a sharp median groove between bases of antennae, eyes and part, legs mainly on tibiae and trochanters with more or less long, on vertex; eyes large, strongly convex, with very large ocelli erect, partly suberect, sparse or individual, thin setae. characteristic of the genus (Figs 7, 8, 13); genae relatively short; Genitalia as in Figs 14, 18, 22. submentum with a heterogeneous, rough and coarse sculpture; Distribution. Eastern Malaysia. behind eyes with sharp transverse folds both laterally and ventrally; Etymology. ­e formation of the name of this new antennae in both sexes longer than body, nearly reaching the apex species is related to its distribution in Sabah, Malaysia. of elytra by apex of penultimate antennomere in male or reaching beyond the apex of elytra by last antennomere in female; length ratio of antennomeres 1–11 in male, 17 : 5 : 19 : 14 : 18 : 26 : 31 : Acknowledgements 31 : 32 : 32 : 39, in female, 21 : 6 : 21 : 16 : 20 : 30 : 32 : 33 : 33 : 33 : 43; antennomere 1 with a somewhat heterogeneous, rough, We are very grateful to James H. Boone (BM) for partly dense puncturation; antennomere 2 slightly longitudinal; the opportunity to study the museum material, to Luboš antennomeres 6–10 clearly serrate; last antennomere with a Dembický (Brno, Czech Republic) and Alexandr Napolov weakly expressed appendage. (Riga, Latvia) who provided some valuable specimens from Pronotum clearly longitudinal, 1.21 or 1.15 times as long as their private collections. We would also like to express our width in male and female, respectively; base 1.15 or 1.22 times as wide as apex in male and female, respectively; with a very sharp sincere thanks to Kirill V. Makarov (Moscow Pedagogical constriction near apex; on disk with rough and coarse, irregular, State University, Moscow, Russia) and Tatiana P. partly transverse, folds and tubercles, as in Figs 7, 8, thereby some Miroshnikova (Krasnodar, Russia) for having rendered tubercles, flattened dorsally in male, relatively weakly expressed, great help in the preparation of pictures. as indicated by arrows in Fig. 8, while in female, all tubercles rounded dorsally, not flattened (in M. dembickyi, some tubercles, flattened dorsally in male (female unknown), very well-expressed, References as indicated by arrows in Fig. 9); sculptural formation in apical Miroshnikov A.I. 2017. ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, one-third of disk moderately elevated, with a poorly expressed 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. puncturation and with a noticeable, but not too clear median 1. New or little-known taxa, mainly from Indochina and Borneo, with tubercle. reviews of some genera. Caucasian Entomological Bulletin. 13(2): Scutellum strongly narrowed towards apex, triangular. 161–233, color pls 1–6. DOI: 10.23885/1814-3326-2017-13-2-161-233

Received / Поступила: 20.11.2019 Accepted / Принята: 18.12.2019 282 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 283–286 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Новый вид подрода Parahanibotus Savitsky, 2019 рода Otiorhynchus Germar, 1822 (Coleoptera: Curculionidae) из Северо-Западного Ирана

A new species of the subgenus Parahanibotus Savitsky, 2019 of the genus Otiorhynchus Germar, 1822 (Coleoptera: Curculionidae) from northwest Iran

© Г.Э. Давидьян © G.E. Davidian

Всероссийский институт защиты растений, шоссе Подбельского, 3, Санкт-Петербург, Пушкин 196608 Россия All-Russian Institute of Plant Protection, Podbelskiy roadway, 3, St Petersburg, Pushkin 196608 Russia. E-mail: [email protected]

Ключевые слова: Curculionidae, Otiorhynchus, Parahanibotus, новый вид, Иран. Key words: Curculionidae, Otiorhynchus, Parahanibotus, new species, Iran.

Резюме. Описан новый для науки вид Otiorhynchus характерен партеногенетический способ размножения. (Parahanibotus) shtepaneki Davidian, sp. n. из Северо- Самец известен только у O. auripes Stierlin, 1875 из Западного Ирана. Он наиболее близок к O. eques близкородственного подрода Prohanibotus Savitsky, Reitter, 1895, O. pareques Reitter, 1912 и O. mazdaranicus 2019. Magnano, 2006, от которых отличается бороздчатой Ареал долгоносиков подрода Parahanibotus скульптурой диска переднеспинки, а также строением расположен в границах Атропатанского кокситов и spiculum ventrale. Строением spiculum зоогеографического округа в составе Североиранской ventrale похож на O. hebraeus Stierlin, 1861 (типовой вид провинции. Северные пределы подрода находятся в подрода Nubidanus Reitter, 1912). Армении (гора Арагац и горы вокруг озера Севан), Abstract. A new species Otiorhynchus (Parahanibotus) а южные – в Курдских горах восточнее Армянского shtepaneki Davidian, sp. n. is described from northwest Iran Тавра и иранском Лурестане. Западная граница ареала (Hamadan Province). It is closely related to O. eques Reitter, пролегает примерно по меридиану Эрзурум – Муш, а 1895, O. pareques Reitter, 1912 and O. mazdaranicus восточная – по вулкану Демавенд. Magnano, 2006, from which easily differs in the long В обзоре подрода Hanibotus Reitter, 1912 [Давидьян, median keel and furrowed sculpture of pronotum, tergite 7 Савицкий, 2012] O. auripes был перенесен из подрода arcuately emarginated and in the structure of coxite and Panorosemus Reitter, 1912 в подрод Hanibotus. Этот spiculum ventrale (without pocket-like depressions). ­e номенклатурный акт ошибочно воспроизводится в new species is similar to O. hebraeus Stierlin, 1861 (type более поздней публикации Биалуки [Białooki, 2015] как species of subgenus Nubidanus Reitter, 1912) by the «new subgeneric placement». structure of spiculum ventrale, but easily differs in the body shape, structure of rostral dorsum, tibiae and spermatheca. Otiorhynchus shtepaneki Davidian, sp. n. (Рис. 1–6) Материалом для настоящей работы послужили сборы, любезно предоставленные автору чешским Материал. Holotype, ♀: Iran, Hamadan Province, N of Razan, коллегой В. Цирисом (Mr V. Zieris). Фотографии Garmak Village, 35°32ʹ21.08ʺN / 049°06ʹ01.97ʺE, 22.04.2018 (P. Štěpánek leg.). гениталий и терминалий выполнены с препаратов в Голотип хранится в глицерине на микроскопе Axio Imager M-1 фирмы Carl Сведения о голотипе. коллекции Зоологического института РАН (Санкт- Zeiss в лаборатории биометода Всероссийского НИИ Петербург, Россия). Жук наклеен на прямоугольную защиты растений (Санкт-Петербург, Россия). картонную пластинку, в правом заднем углу которой отдельно подклеено отчлененное брюшко, а в левом Род Otiorhynchus Germar, 1822 заднем углу в каплю водорастворимого фиксатора Подрод Parahanibotus Savitsky, 2019 помещены гениталии и терминалии. Описание. Самка. Тело вальковатое, черного цвета, Типовой вид O. mazdaranicus Magnano, 2006, по голени и лапки темно-коричневые (рис. 1). Мандибулы без первоначальному обозначению. куколочных придатков. Голова коническая, ее бока почти Подрод включает 9 видов ксерофильных прямолинейно сходятся к усиковым птеригиям. Голова на долгоносиков [Давидьян, Савицкий, 2012, 2015, уровне глаз слегка шире головотрубки на уровне птеригий. 2016; Савицкий, 2019], для которых, по-видимому, Головотрубка поперечная, в 1.4 раза шире своей длины

Научная статья / Research Article DOI: 10.23885/181433262019152-283286 284 Г.Э. Давидьян

Рис. 1–6. Otiorhynchus shtepaneki sp. n., голотип. 1 – общий вид; 2 – голова, усики, переднеспинка и передние ноги, вид сверху; 3 – голова, правый усик, переднеспинка и правая передняя нога, вид сверху и сбоку; 4– брюшко; 5 – сперматека; 6 – кокситы и spiculum ventrale. Figs 1–6. Otiorhynchus shtepaneki sp. n., holotype. 1 – general view; 2 – head, antennae, pronotum and fore legs, dorsal view; 3 – head, right antenna, pronotum and right fore leg, dorso-lateral view; 4 – abdomen; 5 – spermatheca; 6 – coxites and spiculum ventrale.

до вершинного края птеригий и в 1.21 раза шире самой поперечным вдавлением, в 1.2 раза ýже спинки головотрубки узкой своей части. Верх головы грубо и густо пунктирован, у места прикрепления усиков. Глаза дорсолатеральные, основная половина темени пунктирована реже, в сплошной явственно выпуклые, не выступают за контуры головы. изодиаметрической микроскульптуре. Эпистом блестящий, Продольный диаметр глаза в 1.14 раза больше поперечного, с несколькими маленькими щетинконосными точками. слегка больше расстояния от глаза до усиковых птеригий и Основной край эпистома почти прямоугольный, вершинный слегка меньше длины усиковых ямок. край явственно, почти симметрично вырезан, эпистомальный Рукоять усиков булавовидная, равномерно утолщается киль в средней части сильно сглажен, на эпистомальных к вершине. 1–6-й членики жгутика усиков примерно углах заметно приподнят. Спинка головотрубки в основной одинаковой ширины; 1-й из них в 2.07 раза длиннее половине почти параллельносторонняя, с отчетливым своей ширины и в 1.37 раза длиннее 2-го членика; срединным килем, далее заметно расширена к вершине, слабо 2-й членик в 1.51 раза длиннее ширины; 3-й членик едва вдавлена, с едва намеченным срединным килем. Лоб с узким удлиненный; 4–6-й круглые; 7-й более широкий, одинаковой Новый вид подрода Parahanibotus Savitsky, 2019 рода Otiorhynchus Germar, 1822 285

длины и ширины, слабо расширен к вершине. Булава широко сильно поперечная, в 2.14 раза шире длины, ее дорсальная веретеновидная, в 2.47 раза длиннее ширины, 1-й членик пластинка почти в 2 раза длиннее вентральной (рис. 6). булавы заметно короче ее половины. Вершинный край ламеллы широко и неглубоко дуговидно Переднеспинка едва поперечная, в 1.01 раза шире вырезан с маленькими пучками преимущественно коротких длины, на боках равномерно закруглена, наиболее широкая волосков по бокам от вырезки. Манубриум spiculum посередине, без окаймления перед основным краем и с едва ventrale заметно утолщен примерно в вершинной трети. намеченной поперечной перетяжкой перед вершиной. Диск Кокситы желобковидные, дуговидно изогнуты внутрь, переднеспинки почти по всей длине с отчетливым, довольно почти одинаковой ширины по всей длине, на вершине узко широким сглаженным срединным килем, в сплошной крупной закруглены, без стилуса, в отчетливых тонких и длинных пунктировке, формирующей ячеистую скульптуру. Точки, как волосках (рис. 6). Вершинную треть кокситов сверху правило, шире промежутков между ними. Частично сливаясь прикрывает полупрозрачная, слабо склеротизованная друг с другом, они образуют слабо извилистые продольные пластинка. Сочленовная мембрана, соединяющая дорсальную бороздки. пластинку ламеллы spiculum ventrale с кокситами, без Надкрылья удлиненно овальные, на боках слабо кармановидных образований. Collum и ramus сперматеки выпуклые, наиболее широкие базальнее середины. Надкрылья хорошо развиты, немного расставлены и не соприкасаются в 1.51 раза длиннее ширины и в 1.49 раза шире переднеспинки. друг с другом (рис. 5). Диск надкрылий поперечно выпуклый, заметно приподнят Длина тела голотипа 6.1 мм, ширина 2.68 мм. над среднегрудным сочленовным кольцом, вершинный Сравнительный диагноз. Otiorhynchus скат отвесный. Точечные бороздки надкрылий отчетливые, shtepaneki sp. n. относится к подроду Parahanibotus постепенно сужающиеся к вершине, расстояние между [Савицкий, 2019], где наиболее близок к O. eques, точками в бороздках слегка больше диаметра точек. O. pareques и O. mazdaranicus. Отличается от них Промежутки надкрылий одинаковые, почти плоские, в 3–4 раза шире бороздок, с 1–2 спутанными рядами из очень диском переднеспинки с длинным срединным килем маленьких щетинконосных точек примерно в 3 раза меньшего и продольно бороздчатой скульптурой, дуговидно размера по сравнению с точками в бороздках. Промежутки на вырезанным по вершинному краю 7 тергитом, а вершинном скате и по бокам надкрылий с отчетливым рядом также строением кокситов и spiculum ventrale, из приподнятых щетинконосных точек. без кармановидных образований. Кроме того, Передние бедра заметно толще средних и задних. от O. mazdaranicus новый вид отличается менее Шиповидный зубец на передних бедрах крупный, с удлиненной булавой, а также более короткими отчетливой щетинконосной точкой на его дистальном члениками жгутика усиков и лапок. крае. Дистальнее основного зубца находятся еще 3 мелких зубчика, два из которых заметно отстоят от основного зубца, Строением ламеллы spiculum ventrale, а также а 3-й расположен рядом с ним (рис. 2, 3). Средние бедра с почти лентовидными кокситами новый вид более всего единственным маленьким шиповидным зубчиком примерно похож на O. hebraeus (типовой вид подрода Nubidanus). такого же размера, как дополнительные зубчики на передних Распространение. Северо-Западный Иран, бедрах. Заднее левое бедро без зубцов, правое – с двумя провинция Хамадан. очень маленькими, по-видимому, аберрантными зубчиками, Этимология. Вид назван именем П. Штепанека расположенными значительно базальнее их обычного (Mr Pavel Štěpánek, Kladno, Czech Republic), впервые его месторасположения. Все голени с отчетливым мукро, собравшего. наиболее крупным на передних из них, без шпоры рядом с мукро. Передние голени на вершине сильно расширены с внутренней строны и слабо с наружной, примерно одной Обсуждение ширины с вершинной частью бедра. Наружный край передних голеней прямой, без зернышек, внутренний край слабо Как уже было отмечено, по совокупности внешних S-образно изогнут, с 6–8 довольно крупными скошенными признаков и строению сперматеки O. shtepaneki sp. n. к вершине зубчиками. Средние голени по внутреннему краю относится к подроду Parahanibotus. Вместе с тем в вершинной половине с 3–4 зубчиками, задние голени без зубчиков. Лапки узкие, с длинным коготковым члеником: строением spiculum ventrale и отчасти кокситов он 1-й членик передних лапок слабо удлиненный, в 1.17 раза более всего похож на O. hebraeus из подрода Nubidanus. длиннее ширины; 2-й поперечный, в 1.4 раза шире длины; Размывание диагностических признаков указанных 3-й в 1.21 раза шире длины и в 1.4 раза длиннее 2-го членика; подродов в строении spiculum ventrale и кокситов коготковый членик выступает за вершинный край 3-го на отражает объективно существующие сложности в их длину, почти в 2 раза превосходящую длину последнего. классификации [Давидьян, Савицкий, 2012]. 7-й тергит по вершинному краю явственно дуговидно Классическое представление о географическом вырезан. Брюшко в 1.31 раза длиннее ширины (рис. 4). партеногенезе среди долгоносиков рода Межтазиковый выступ 1-го вентрита прямо обрезан, в 2.07 раза ýже брюшка. Два первых вентрита в 1.46 раза Otiorhynchus основано на том, что для большинства длиннее 3–5-го вентритов вместе взятых. партеногенетических форм известны обоеполые Тело в простом раздельном волосковидном опушении популяции, которые, как правило, занимают небольшую светло-коричневого цвета. Волоски на переднеспинке часть общего ареала вида. Среди видов из близких примерно такие же, как на брюшке, слегка короче волосков подродов Hanibotus, Parahanibotus и Prohanibotus эта на надкрыльях. Косо торчащие волоски на промежутках точка зрения пока не находит подтверждения, так как надкрылий заостренные и слабо изогнуты, их длина самцы известны только у одного O. auripes. Клональная равна ширине промежутков, иногда слегка меньше. Точки сущность партеногенетических таксонов, по-видимому, в бороздках надкрылий со слабо различимыми, едва приподнятыми тонкими волосками, не выступающими за не может объяснить существующее морфологическое края точки. разнообразие Parahanibotus. Поэтому мы допускаем, Длина spiculum ventrale в 2.33 раза больше ширины что источником такого разнообразия может служить ламеллы. Ламелла spiculum ventrale явственно двухслойная, межвидовое скрещивание. 286 Г.Э. Давидьян

Давидьян Г.Э., Савицкий В.Ю. 2015. Новый вид подрода Hanibotus Благодарности Reitter, 1912 рода Otiorhynchus Germar, 1822 (Coleoptera, Curculionidae) из Турции. Бюллетень МОИП. Отдел Автор выражает признательность чешскому биологический. 120(4): 31–36. коллеге Владимиру Цирису (Mr V. Zieris, Pardubice, Давидьян Г.Э., Савицкий В.Ю. 2016. К синонимии жуков-долгоносиков рода Otiorhynchus Germar, 1822 (Coleoptera: Curculionidae: Czech Republic), любезно предоставившему для Entiminae) из Закавказья и Турции. Кавказский энтомологический изучения интересные материалы из Ирана. бюллетень. 12(2): 273−276. DOI: 10.23885/1814-3326-2016-12-2- 273-276 Савицкий В.Ю. 2019. Новые подроды и малоизвестные виды жуков- Литература долгоносиков рода Otiorhynchus (Coleoptera, Curculionidae) из Ирана и сопредельных стран. Зоологический журнал. 98(11): Давидьян Г.Э., Савицкий В.Ю. 2012. Обзор жуков-долгоносиков 1213–1222. DOI: 10.1134/S0044513419080117 подрода Hanibotus Reitter, 1912 рода Otiorhynchus Germar, 1822 Białooki P. Z. 2015. Descriptions of new taxa of Otiorhynchini and related (Coleoptera: Curculionidae). Кавказский энтомологический tribes (Coleoptera: Curculionidae: Entiminae) from the бюллетень. 8(1): 71−99. DOI: 10.23885/1814-3326-2012-8-1-71-99 and Balkans. Israel Journal of Entomology. 44–45: 13–50.

Поступила / Received: 21.04.2019 Принята / Accepted: 2.10.2019 G.E. Davidian

References

Białooki P. Z. 2015. Descriptions of new taxa of Otiorhynchini and related Curculionidae) from Turkey. Byulleten’ Moskovskogo obshchestva tribes (Coleoptera: Curculionidae: Entiminae) from the Middle ispytateley prirody. Otdel biologicheskiy. 120(4): 31–36. (in Russian). East and Balkans. Israel Journal of Entomology. 44–45: 13–50. DOI: Davidian G.E., Savitsky V.Yu. 2016. To synonymy of the weevil genus 10.5281/zenodo.31467 Otiorhynchus Germar, 1822 (Coleoptera: Curculionidae: Entiminae) Davidian G.E., Savitsky V.Yu. 2012. A review of weevils of the subgenus from Transcaucasia and Turkey. Caucasian Entomological Bulletin. Hanibotus Reitter, 1912 of the genus Otiorhynchus Germar, 1822 12(2): 273−276 (in Russian). DOI: 10.23885/1814-3326-2016-12-2-273-276 (Coleoptera: Curculionidae). Caucasian Entomological Bulletin. 8(1): Savitsky V.Yu. 2019. New subgenera and little-known species of the weevil 71−99 (in Russian). DOI: 10.23885/1814-3326-2012-8-1-71-99 genus Otiorhynchus (Coleoptera, Curculionidae) from Iran and Davidian G.E., Savitsky V.Yu. 2015. New species of the subgenus Hanibotus neighbouring countries. Zoologicheskii zhurnal. 98(11): 1213–1222. Reitter, 1912 of the genus Otiorhynchus Germar, 1822 (Coleoptera, DOI: 10.1134/S0044513419080117 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 287–291 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Морфология преимагинальных стадий долгоносика Plinthus caucasicus (Desbrochers des Loges, 1875) (Coleoptera: Curculionidae: Molytinae)

‰e morphology of immature stages of Plinthus caucasicus (Desbrochers des Loges, 1875) (Coleoptera: Curculionidae: Molytinae)

© Ю.Г. Арзанов © Yu.G. Arzanov

Ростовское отделение Русского энтомологического общества, Ростов-на-Дону, Россия Rostov Branch of the Russian Entomological Society, Rostov-on-Don, Russia. E-mail: [email protected]

Ключевые слова: Coleoptera, Curculionidae, Molytinae, Plinthus caucasicus, личинка старшего возраста, куколка, морфология, кормовые предпочтения. Key words: Coleoptera, Curculionidae, Molytinae, Plinthus caucasicus, larva, pupa, morphology, host plants.

Резюме. Приведены описания личинки старшего Назаренко, 1997, 2003, 2012]. Среди кавказских видов возраста и куколки Plinthus caucasicus (Desbrochers Plinthus Germar, 1817 самого крупного рода в трибе des Loges, 1875) – эндемика Восточного Кавказа. Вид [Давидьян, 2008], опубликованы данные только распространен в субальпийском и альпийском поясах о Plinthus (Caucasoplinthus) alternans Reitter, 1888 восточной части Большого Кавказа (Внутренний [Арзанов, 2016]. Дагестан, Северо-Восточная Грузия, Северо-Западный Plinthus caucasicus (Desbrochers des Loges, Азербайджан). Личинки и куколки были собраны на 1875), которому посвящена настоящая статья, Богосском хребте, в антропогенных районах возле встречается в субальпийском и альпийском горных Генухского перевала в корневищах Rumex alpinus L., поясах во Внутреннем Дагестане (Богосский хребет), имаго – на стеблях и листьях этого растения. Лагодехском районе Грузии и в Белоканском районе Описана и проиллюстрирована хетотаксия личинок Азербайджана [Давидьян, 1993]. Личинки старшего и куколок. Это второй после Plinthus alternans Reitter, возраста и куколки собраны в корневищах альпийского 1888 кавказский вид рода Plinthus Germar, 1817, для щавеля Rumex alpinus L. на антропогенных участках которого описаны преимагинальные стадии. в окрестностях Генухского перевала на Богосском Abstract. ­e descriptions of a mature larva and хребте. Имаго (всего 4 экземпляра) собраны там же на pupa of the endemic Caucasian weevil Plinthus caucasicus стеблях и листьях растений. (Desbrochers des Loges, 1875) are given. ­e species is Фиксирование и обработка материала проводились distributed in subalpine and alpine levels of the eastern по методике Назаренко [1997]. При описании личинок part of the Greater Caucasus (Inner Dagestan in Russia, и куколок использована терминология Мэй [May, 1977]. northeast Georgia and northwest Azerbaijan). Mature Описанные в настоящей работе личинки и куколки larvae and pupae of this species were collected in the хранятся в коллекции автора. rhizome of Rumex alpinus L. in anthropogenic areas near Genukh Pass of Bogos Range. Adults (four specimens) were Морфология и описание личинки collected on stems and leaves of the same plant. ­e material is deposited in the collection of the author. Chaetotaxy of и куколки larvae and pupae is described and illustrated using terms of Plinthus caucasicus (Desbrochers des Loges, 1875) B.M. May, published in 1977. ­is is the second Caucasian species (after Plinthus alternans Reitter, 1888) of the large Материал. 11 личинок, 9 куколок, Россия, Республика Дагестан, genus Plinthus Germar, 1817 with described immature Цунтинский р-н, окр. пос. Генух, пер. Генухский, 2459 м н.у.м., в stages. корневищах Rumex aplinus, 13.07.2019 (Ю.Г. Арзанов). Описание личинки старшего возраста (рис. 1–15). Изученность морфологии преимагинальных Общая морфология. Все грудные (­) и брюшные (Ab) сегменты снежно-белого цвета. Кутикулярные части Ab I–VIII не несут стадий долгоносиков трибы Plinthini пока остается шиповидных отростков. Переднеспинка имеет хорошо неудовлетворительной: из 150 палеарктических видов изолированную слабо хитинизированную светло-желтую трибы [Alonso-Zarazaga et al., 2017] преимагинальные площадку, занимающую большую ее часть. Тело компактное, стадии исследованы лишь у 3 видов [Арзанов, 2016; слегка изогнуто, круглое в поперечном сечении, Ab I в самом

Научная статья / Research Article DOI: 10.23885/181433262019152-287291 288 Ю.Г. Арзанов

Рис. 1–9. Plinthus caucasicus, личинка, хетотаксия. 1, 4, 7 – грудные сегменты; 2, 5, 8 – 1-й брюшной сегмент; 3, 6, 9 – 7–10-й брюшные сегменты; 1–3 – вид сверху; 4–6 – вид снизу; 7–9 – вид сбоку. Хеты: as – alar, dls – dorsolateral, dpls – dorsopleural, ds – dorsal, ls – lateral, lsts – laterosternal, msts – mesosternal, pda – pedal, pds – postdorsal, prns –pronotal, prs – prodorsal, ss – spiracular, sts – sternal, ts – terminal, vpls – ventropleural. Figs 1–9. Plinthus caucasicus, larva, chaetotaxy. 1, 4, 7 – thoracic segments; 2, 5, 8 – first abdominal segment; 3, 6, 9 – abdominal segments VII–X; 1–3 – dorsal view; 4–6 – ventral view; 7–9 – lateral view. Setae: as – alar, dls – dorsolateral, dpls – dorsopleural, ds – dorsal, ls – lateral, lsts – laterosternal, msts – mesosternal, pda – pedal, pds – postdorsal, prns – pronotal, prs – prodorsal, ss – spiracular, sts – sternal, ts – terminal, vpls – ventropleural. Морфология преимагинальных стадий долгоносика Plinthus caucasicus 289

Рис. 10–15. Plinthus caucasicus, личинка, голова, ротовые органы, хетотаксия. 10 – голова, внешний вид, сверху; 11 – нижняя губа (lrm – labrum) и наличник (cl – clypeus); 12 – прелабиум (lpa – labial palpomeres, plb – prelabium); 13 – эпифаринкс (lr – labral rods); 14 – мандибула; 15 – максилла (stp – stipes, ma – mala, mpa – maxillar palpomere). Хеты: als – anteriolateral, ams – anteriomedial, cls – clypeal, des – dorsal epicranial, dms – dorsal molar, fs –frontal, les – lateral epicranial, ligs – ligular, lrms – labral, mpxs – maxillar palm, mds – mandibular dorsal, pfs – palpiferal, plbs – prelabial, stps – stipal. Figs 10–15. Plinthus caucasicus, larva, head, mouth parts, chaetotaxy. 10 – head, habitus, dorsal view; 11 – labrum (lrm) and clypeus (cl); 12 – prelabium (plb), labial palpomeres (lpa); 13 – epipharynx (lr – labral rods); 14 – mandible; 15 – maxilla (stp – stipes, ma – mala, mpa – maxillar palpomere). Setae: als – anteriolateral, ams – anteriomedial, cls – clypeal, des – dorsal epicranial, dms – dorsal molar, fs –frontal, les – lateral epicranial, ligs – ligular, lrms – labral, mpxs – maxillar palm, mds – mandibular dorsal, pfs – palpiferal, plbs – prelabial, stps – stipal.

широком месте в среднем 4.96 мм, общая длина тела 10.6 мм pda 1–6 (pedal setae) равной длины. Хетотаксия метаторакса (табл. 1). Проторакс несколько короче мезо- и метаторакса. такая же, как мезоторакса. Ab I такой же величины, как и метаторакс, Ab II–VII шире, Брюшко. Ab I одинаковой величины с метатораксом, чем Ab I. Дорсальные части мезо- и метаторакса разделены Ab II–VII сходны между собой, немного шире, чем Ab I. на две доли; дорсальная часть каждого из Ab I–VII разделена Ab VIII намного меньше предыдущих сегментов; Ab IX на три доли, Ab VIII – на две доли. Боковые складки Ab I–VII меньше, чем Ab VIII; Ab X – в виде четырех маленьких слабо изолированы. Дыхальца двухкамерные, расположены долей. Хетотаксия брюшка. Ab I–VII на каждой стороне с по бокам тела в средней части и ориентированы поперек одной короткой prs, шестью различными по длине pds 1–6, продольной оси тела: первая пара находится на переднегруди, расположенными в средней части сегментов: от центра остальные 8 пар – на брюшных сегментах (Ab I–VIII). первые две короткие, затем одна длинная, одна короткая и Хетотаксия хорошо развита, хеты коричневые, две длинные. Далее следует одна dls, по паре ss 1–2, dpls 1–2, волосковидные, различные по размеру. На каждой стороне разной длины и vpls 1–2, одна lsts (laterosternal seta) и пара проторакса, в пределах склеротизованного щитка, находится коротких msts 1–2. Ab VIII на каждой стороне несет по одной 10 пар prns 1–10 (pronotal setae) неравной длины (пять короткой prs, три pds 1–3 (средняя длинная, две другие длинных и пять коротких), пара разных по длине vpls 1–2 короткие), пару длинных dpls 1–2, две vpls 1–2, одну lsts и пару (ventropleural setae), передняя из которых в 2 раза длиннее, msts 1–2. Ab IX имеет ls 1–3 (lateral setae), ds 1–3 (dorsal setae), и две равные msts 1–2 (mesosternal setae). Мезоторакс на sts 1–3 (sternal setae). Ab X содержит лишь две ts 1–2 (terminal каждой стороне имеет по одной очень короткой prs (prodorsal setae). setae), четыре pds 1–4 (postdorsal setae) – из них две короткие, Голова и ротовые органы. Голова овальной формы, ее ближе к середине, одна as (alar seta), одна dpls (dorsopleural длина около 2.4 мм, ширина 2.2 мм (табл. 1), слегка сжата с seta), хеты ss (spiracular setae) отсутствуют. Педальная область боков, с явственным Y-образным швом. Эндокарина слабо грудных сегментов состоит из шести различных по длине хет – выделяется во фронтальной области и равна 1/2 длины лба. 290 Ю.Г. Арзанов

Рис. 16–20. Plinthus caucasicus, куколка, голова, переднеспинка, внешний вид, хетотаксия. 16 – габитус, вид снизу; 17 – габитус, вид сверху; 18 – габитус, вид сбоку; 19 – голова; 20 – переднеспинка. Хеты: as – apical, ds – dorsal, fes – femoral, ls – lateral, os – orbital, pls – posterolateral, sos – super-orbital, sls – superlateral. Figs 16–20. Plinthus caucasicus, pupa, head, pronotum, habitus, chaetotaxy. 16 – habitus, ventral view; 17 – habitus, dorsal view; 18 – habitus, lateral view; 19 –head; 20 – pronotum. Setae: as – apical, ds – dorsal, fes – femoral, ls – lateral, os – orbital, pls – posterolateral, sos – super-orbital, sls – superlateral.

Голова светло-коричневая, наличник и мандибулы черные, (maxillar palm seta), 2-й членик узкий и удлиненный, без хет. верхняя губа темно-коричневая. Все хеты волосковидные, Прелабиум сердцевидной формы, более хитинизирован на светло-коричневые, различные по длине. Хетотаксия головной боках, несет по переднему краю 2-члениковые лабиальные капсулы имеет пять разных по длине des 1–5 (dorsal epicranial пальпы (labial palp), по сторонам в середине с одной plbs setae), по паре fs 1–2 (frontal setae), les 1–2 (lateral epicranial setae) (prelabial seta), и по переднему краю между пальпами на и ves 1–2 (ventral setae); pes (postericranial setae) отсутствуют. лигуле находится по две пары ligs 1–2 (ligular setae). Лигула с Верхняя губа (lrm) трапециевидной формы, в 2 раза микроскопическими шипиками. длиннее ширины, имеет три lrms 1–3 (labral setae). Клипеус Описание куколки (рис. 16–20). Общая морфология. поперечный, в 2.7 раза шире длины, в углах его основания Головотрубка у самки примерно в 2.6 раза длиннее ширины, имеется две cls 1–2 (clypeal setae). Эпифаринкс ромбовидной в подогнутом положении доходит до средних тазиков, у самца формы, с апикальными хетами ams 1–3 (anteriomedial setae), в 2.4 раза длиннее ширины, немного не доходит до средних по бокам с als 1–4 (anteriolateral setae) и по центру в передней тазиков. Длина переднеспинки самки равна ширине, у самца части с mes 1–2 (median setae). В середине несколько наклонно переднеспинка слабо поперечная. Хетотаксия метаторакса и расположена пара сильно склеротизованных продольных lr мезоторакса состоит из двух пар одинаковых хет ds 1–2 (dorsal (labral rods). Мандибулы массивные, двухзубчатые на вершине, setae), расположенных в средней части. Ab I–VII примерно по внешней стороне с парой длинных хет mds 1–2 (mandibular одинаковой длины, слабо увеличиваются от Ab I к Ab VII; dorsal setae). Максиллы. Стипес несет pfs 1–2 (palpiferal setae) Ab VIII полукруглый, Ab IX заметно меньше предыдущих. Ab I– и одну длинную stps (stipal seta); мола имеет восемь dms 1–8 VIII с тремя, Ab IX с двумя парами темных склеротизованных (dorsal molar setae). Максиллярные пальпы 2-члениковые, шиповидных выпуклостей, образующих правильный 1-й членик широкий, трапециевидный, несет одну mpxs поперечный ряд вдоль основного края сегмента. Псевдоцерки Морфология преимагинальных стадий долгоносика Plinthus caucasicus 291

короткие, треугольные, хорошо склеротизованные. Куколка Таблица 1. Основные измерения личинок и куколок Plinthus имеет семь пар функциональных дыхалец на Ab I–VII. Половой caucasicus (мм). диморфизм проявляется в длине головотрубки, пропорциях Table 1. Main measurements of larvae and pupae of Plinthus caucasicus (mm). переднеспинки и в строении Ab IX: гонотека у самцов цельная, у самок разделена поперечным швом на две половины. Пол № HW HL BL BH BW Хетотаксия. Хеты светло-коричневые, короткие, прямые, Sex примерно равной длины, расположены на выступающих конусовидных бугорках различной высоты. Головная капсула 1 2.5 2.5 10.5 4.2 5.3 – не имеет vs (vertical setae). Головотрубка с одной парой sos 2 2.3 2.8 11 4.2 5.5 – (super-orbital setae), парой os 1–2 (orbital setae) и одной rs 3 2.2 2.6 9.5 4.3 5 – (rostral seta). Переднеспинка имеет пару as 1–2 (apical setae), пару ds 1–2 (dorsal setae), одну ls (lateral setae) и по паре 4 2.5 2.8 10.5 4.5 5.3 – sls 1–2 (superlateral setae) и pls 1–2 (posterolateral setae). 5 2.2 2.5 10.7 5 4.5 – Хетотаксия метаторакса и мезоторакса состоит из двух пар Личинки 6 2 2.5 11 4.2 4.5 – равных ds 1–2, расположенных в средней части. Тергиты Larvae Ab I–VII с тремя парами ds 1–2, расположенными по 7 2.1 2.6 11 4.2 5 – заднему краю на невысоких конусовидных бугорках. Ab VIII 8 2.2 2.7 9.7 4.2 4.5 – имеет полукруглую форму, несет одну пару ds 1–2 в средней части. Ab IX с крупным зубцевидным псевдоцерком и одной 9 2.2 2.7 10.5 4.5 5.3 – парой ds 1–2. Стерниты Ab I–VII без хет. Вершина каждого 10 2.5 2.7 11 4.3 4.7 – бедра с парой почти одинаковой длины fes 1–2 (femoral setae). 11 2 2.5 10.8 5 5 – 1 2 – 12.5 – 6.5 ♀ Благодарности 2 2.2 – 11.5 – 7 ♀ ♂ Я очень благодарен Рамазану Алибеговичу 3 2 – 11.2 – 6 Муртазалиеву (Горный ботанический сад 4 2 – 11.5 – 6.2 ♂ Куколки Дагестанского научного центра РАН, Махачкала, 5 1.8 – 11 – 6 ♂ Pupae Россия), организовавшему интересную поездку во 6 2 – 11.2 – 6.2 ♂ Внутренний Дагестан, и моему спутнику в этой ♂ поездке Владимиру Ивановичу Ланцову (Институт 7 2.2 – 11.4 – 5.8 экологии горных территорий им. А.К. Темботова 8 2 – 11.2 – 5.8 ♂ РАН, Нальчик, Россия). Я также признателен моему 9 2.1 – 11 – 6 ♂ товарищу и коллеге Генрику Эдисоновичу Давидьяну Примечание. HW – ширина головы, HL – длина головы, BL – (Всероссийский институт защиты растений, Санкт- длина тела, BH – высота тела, BW – ширина тела. Петербург, Россия) за дружескую поддержку при Note. HW – head width, HL – head length, BL – body length, BH – выполнении этой работы. body height, BW – body width.

Назаренко В.Ю. 2003. Морфология личинки старшего возраста жука- Литература долгоносика Plinthus tischeri (Coleoptera, Curculionidae). Вестник зоологии. 37(4): 71–74. Арзанов Ю.Г. 2016. Морфология преимагинальных стадий долгоносика Назаренко В. Ю. 2012. Описание куколки жука-долгоносика Minyops Plinthus (Caucasoplinthus) alternans Reitter, 1888 (Coleoptera: costalis Gyllenhal, 1834 (Coleoptera: Curculionidae). Известия Curculionidae: Molytinae). Кавказский энтомологический Харьковского энтомологического общества. 20(1): 55–58. бюллетень. 12(1): 131–134. DOI: 10.23885/1814-3326-2016-12-1-131-134 Alonso-Zarazaga M.A., Barrios H., Borovec R., Bouchard P., Caldara R., Давидьян Г.Э. 1993. Материалы к познанию долгоносиков рода Colonnelli E., Gültekin L., Hlaváč P., Korotyaev B., Lyal C.H.C., Plinthus Germ. (Coleoptera, Curculionidae) с Кавказа. В кн.: Machado A., Meregalli M., Pierotti H., Ren L., Sánchez-Ruiz M., Труды Зоологического института РАН. Т. 251. Новые данные по Sforzi A., Silfverberg H., Skuhrovec J., Trýzna M., Velázquez de систематике насекомых. СПб.: Зоологический институт РАН: Castro A.J., Yunakov N.N. 2017. Cooperative catalogue of Palaearctic 108–121. Coleoptera Curculionoidea. Zaragoza: Sociedad Entomológica Давидьян Г.Э. 2008. Жуки-долгоносики рода Plinthus Germ. (Coleoptera, Aragonesa S.E.A. 729 p. Curculionidae) Кавказа. Автореф. дис. ... канд. биол. наук. СПб. 19 с. May B.M. 1977. Immature Stages of Curculionidae Larvae of Назаренко В.Ю. 1997. К биологии редкого и малоизученного жука- the soildwelling Weevils of the New Zealand. Journal of долгоносика Mіnyops carіnatus (Coleoptera, Curculіonіdae) в the Royal Society of New Zealand. 7(2): 189–228. DOI: Украине. Вестник зоологии. 31(4): 62–66. 10.1080/03036758.1977.10427160

Поступила / Received: 20.09.2019 Принята / Accepted: 4.10.2019 Yu.G. Arzanov

References

Arzanov Yu.G. 2016. e morphology of the immature stages of the weevil Nazarenko V.Yu. 1997. On the bionomics of weevil Mіnyops carіnatus (Coleoptera, Plinthus (Caucasoplinthus) alternans Reitter, 1888 (Coleoptera: Curculіonіdae) in . Vestnik zoologii. 31(4): 62–66 (in Russian). Curculionidae: Molytinae). Caucasian Entomological Bulletin. 12(1): Nazarenko V.Yu. 2003. e morphology of old-stage larva of the weevil Plinthus 131–134. DOI: 10.23885/1814-3326-2016-12-1-131-134 tischeri (Coleoptera, Curculionidae). Vestnik zoologii. 37(4): 71–74 (in Russain). Davidian G.E. 1993. Materials to the knowledge of weevils of the genus Nazarenko V.Yu. 2012. Description of the pupa of the weevil Minyops costalis Plinthus Germ. (Coleoptera, Curculionidae) from the Caucasus. In: Gyllenhal, 1834 (Coleoptera: Curculionidae). Izvestiya Khar’kovskogo Trudy Zoologicheskogo instituta RAN. T. 251. Novye dannye po entomologicheskogo obshchestva. 20(1): 55–58 (in Russain). Alonso-Zarazaga M.A., Barrios H., Borovec R., Bouchard P., Caldara R., Colonnelli E., sistematike nasekomykh [Proceedings of the Zoological Institute of Gültekin L., Hlaváč P., Korotyaev B., Lyal C.H.C., Machado A., Meregalli M., the Russian Academy of Sciences. Vol. 251. New insect Pierotti H., Ren L., Sánchez-Ruiz M., Sforzi A., Silfverberg H., Skuhrovec J., data]. St Petersburg: Zoological Institute of the Russian Academy of Trýzna M., Velázquez de Castro A.J., Yunakov N.N. 2017. Cooperative Sciences: 108–121 (in Russian). catalogue of Palaearctic Coleoptera Curculionoidea. Zaragoza: Davidian G.E. 2008. Zhuki-dolgonosiki roda Plinthus Germ. (Coleoptera, Sociedad Entomológica Aragonesa S.E.A. 729 p. Curculionidae) Kavkaza [ e weevils of the genus Plinthus Germ. May B.M. 1977. Immature Stages of Curculionidae Larvae of the soildwelling (Coleoptera, Curculionidae) of the Caucasus. PhD Abstract]. Weevils of the New Zealand. Journal of the Royal Society of New St Petersburg. 19 p. (in Russain). Zealand. 7(2): 189–228. DOI: 10.1080/03036758.1977.10427160 292 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 293–298 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

New faunistic records of Myrmeleontoid lacewings (: Myrmeleontidae, Ascalaphidae, Nemopteridae) in Armenia

Новые фаунистические находки мирмелеонтоидных сетчатокрылых (Neuroptera: Myrmeleontidae, Ascalaphidae, Nemopteridae) в Армении

© V.A. Krivokhatsky1, G.H. Karagyan2, T.L. Ghrejyan2, M.Yu. Kalashian2 © В.А. Кривохатский1, Г.А. Карагян2, Т.Л. Креджян2, М.Ю. Калашян2

1Zoological Institute of the Russian Academy of Sciences, Universitetskaya Emb., 1, St Petersburg 199034 Russia. E-mail: [email protected] 2Scientific Center of Zoology and Hydroecology of the National Academy of Sciences of Armenia, P. Sevak str., 7, Yerevan 0014 Armenia. E-mails: [email protected], [email protected], [email protected]

1Зоологический институт Российской академии наук, Университетская наб., 1, Санкт-Петербург 199034 Россия 2Научный центр зоологии и гидроэкологии Национальной академии наук Республики Армения, ул. П. Севака, 7, Ереван 0014 Армения

Key words: , owlflies, spoonwings, Armenia. Ключевые слова: муравьиные львы, аскалафы, нитекрылки, Армения.

Abstract. New records of 19 species of myrmeleontoid 1834), Creoleon griseus (Klug in Ehrenberg, 1834) и lacewings (Neuroptera: Myrmeleontidae, Ascalaphidae, морфа Libelloides macaronius kolyvanensis morpha alba Nemopteridae) of Armenian fauna are presented. In Krivokhatsky, Bagaturov et Prokopov, 2018 впервые comparison with adjacent Caucasian countries Armenian указываются для Армении. Мы предлагаем новый fauna of antlions, spoonwings and owlflies could be статус для трех таксонов, которые интерпретируются characterized as manifold, organized under the influence здесь как подвиды вида Delfimeus irroratus (Olivier, of Anatolian faunistic center. laticollis (Navás, 1811): D. irroratus morgani stat. n., D. irroratus 1913), Delfimeus irroratus iranensis (Hölzel, 1972), iranensis stat. n. and D. irroratus friedeli (Hölzel, D. irroratus morgani (Navás, 1913), Neuroleon tenellus 1972), stat. n. Все 4 таксона (включая номинaтивный (Klug in Ehrenberg, 1834), Creoleon griseus (Klug in подвид) отличаются рисунком пронотума и цветом Ehrenberg, 1834), Libelloides macaronius kolyvanensis крыльев и имеют частично перекрывающиеся ареалы. morpha alba Krivokhatsky, Bagaturov et Prokopov, 2018 Крупнейший (переднее крыло 25 мм) номинативный are reported for Armenia for the first time. Here we подвид и маленький подвид D. irroratus friedeli с густым proposed a new status for three taxa, which are interpreted жилкованием не были найдены в Армении. as subspecies of Delfimeus irroratus (Olivier, 1811): D. irroratus morgani stat. n., D. irroratus iranensis stat. n. Special studies of lacewings including antlions have and D. irroratus friedeli (Hölzel, 1972), stat. n. All four not been conducted in Armenia. Some data on antlions taxa (including the nominotypical subspecies) differ in were published in reviews dedicated to larger territories the pronotum pattern and the color of wings and have a and based on the materials collected in 19th–20th partially sympatric distribution. ­e largest representatives centuries [Esben-Petersen, 1913; Hölzel, 1972; Aspöck (forewing 25 mm) nominotypical subspecies and a small et al., 1980a, b; Zakharenko, Krivokhatsky, 1993; Aspöck subspecies D. irroratus friedeli with dense venation were et al., 2001]. In recent years the fauna of antlions was not found in Armenia. studied rather comprehensively in neighboring territories: Резюме. Представлены новые указания 19 видов Dagestan [Ilyina, Krivokhatsky, 2012; Ilyina et al., 2014] мирмелеонтоидных сетчатокрылых для Армении. По and Krasnodar Region [Shchurov, Makarkin, 2013] of сравнению с фаунами соседних кавказских стран фауна Russia, Georgia [Dobosz et al., 2017, 2018], Azerbaijan муравьиных львов, нитекрылок и аскалафов Армении [Kerimova, Krivokhatsky, 2018a, b], Turkey [Ari, 2014; может быть определена как переходная, находящаяся Canbulat, 2007]. под влиянием Анатолийского фаунистического ­e material for this study was collected mainly in центра. Distoleon laticollis (Navás, 1913), Delfimeus central and southern provinces of Armenia (Kotayk, Ararat irroratus iranensis (Hölzel, 1972), D. irroratus morgani and Syunik) during 2016–2017. ­e material was fixed (Navás, 1913), Neuroleon tenellus (Klug in Ehrenberg, using the methods applying for cytogenetic and molecular

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-293298 294 V.A. Krivokhatsky, G.H. Karagyan, T.L. Ghrejyan, M.Yu. Kalashian studies in ethanol-acetic mixture and partly in ethanol. Additional material. Armenia: 5♂ (ZIN), Meghri, Aras River, Data on correctly recognizable specimens from the photos 30.08.1932 (I. Rodionov). taken from the natural habitats are included into the list as Notes. Small light subspecies, forewing 20 mm, well. ­e material is deposited in the Zoological Institute pronotum without obvious brown pattern. Since 2001 of the Russian Academy of Sciences (ZIN, St Petersburg, Krivokhatsky [2003] in the Internet project ZInsecta above Russia); some data on the structure of the reproductive mentioned listed the the following four taxa as conspecific: systems of have already been published Delfimeus irroratus (Olivier, 1811) = Maracanda morgani [Kuznetsova et al., 2019]. Navás, 1913 = Pignatellus friedeli Hölzel, 1972 = Pignatellus In addition to these recently collected materials, data iranensis Hölzel, 1972. Here we proposed a new status for on materials from the collections of ZIN and Moscow State three taxa which are interpreted as subspecies of Delfimeus University (ZMM, Moscow, Russia) were partly taken into irroratus (Olivier, 1811): D. irroratus morgani stat. n., consideration as well. For these materials the label data D. irroratus iranensis stat. n. and D. irroratus friedeli (Hölzel, are provided together with current geographic names 1972), stat. n. All four taxa (including the nominotypical corresponding to well-known web-resources [e.g., Google subspecies) differ in the pronotum pattern and the color Earth] and given in the square brackets. of wings and have a partially sympatric distribution. ­e largest representatives (forewing 25 mm) nominotypical Family Myrmeleontidae subspecies and a small subspecies D. irroratus friedeli with Palpares libelluloides (Linnaeus, 1764) dense venation differ from each other according to the diagnosis of Hölzel [1972] and were not found in Armenia. Material. 1♀, Ararat Prov., env. Lanjar vill., 39.81887°N / 44.98507°E, Distribution. ­e South-Western Palaearctic species. 1796 m, 18.08.2016 (A. Danchenko); 1♀, Ararat Prov., env. Dashtakar vill., According to the most recent compendium [Aspöck et al., 39.92319°N / 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan). 2001] Delfimeus irroratus was recorded from Armenia; two Distribution. Palpares libelluloides is a widespread taxa D. irroratus morgani and D. irroratus iranensis, were Eastern Mediterranean species with two main exclaves: reported for Iran only. Both subspecies are recorded from the South European-African and the Caucasian-Asian. Armenia for the first time. ­e species is regularly collected in Armenia since 1926 [Krivokhatsky et al., 2017]. Macronemurus persicus Navás, 1915 Macronemurus persicus var. graciosa Palpares turcicus Koçak, 1976 Krivokhatsky, Dobosz et Khabiev, 2015 (Fig. 1) Material. 1♀, 1♂, Ararat Prov., env. Dashtakar vill., 39.92319°N / Material. 2♀, Ararat Prov., ~5 km ENE Surenavan vill., 39.8097°N / 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan). 44.8354°E, Uranots locality, 12.07.2007 (Fig. 1, photo by M. Kalashian). Distribution. ­is Irano-Anatolian species is Macronemurus persicus var. persica Navás, 1915 represented in ZIN collection by materials from Armenia (Fig. 2) since 1864 [Krivokhatsky et al., 2017]. Material. 1♀, Ararat Prov., env. Goravan vill., Goravan Sands Distoleon laticollis (Navas, 1913) Sanctuary, 11.07.2007 (Fig. 2, photo by M. Kalashian). Distribution. Kura-Araxian – South-Turanian species, Material. 2♂, Ararat Prov., env. Dashtakar vill., 39.92319°N / from Armenia previously reported from Meghri. Nominative 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan). Additional material. Israel: 1♂ (ZIN), Akhziv, 29.07.1996 variation Macronemurus persicus var. persica predominate (M. Volkovitsh, M. Dolgovskaya) (photo published in [Krivokhatsky, 2003]). among Armenian populations [Krivokhatsky et al., 2015]. Distribution. Described from Syria in the genus Formicaleo sensu Brauer, 1854. Reported by Hölzel [1972] Neuroleon (Ganussa) tenellus (Klug in Ehrenberg, 1834) from Israel, Lebanon, Sudan and Ethiopia. Widely spread on ♀ Arabian Peninsula and in [Aspöck et al., 2001]. East- Material. 2 , Ararat Prov., env. Dashtakar vill., 39.92319°N / 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan). Mediterranean species, firstly recorded from Armenia. Distribution. ­e widely distributed Southern Palaearctic, mainly East-Mediterranean species Delfimeus irroratus (Olivier, 1811) [Krivokhatsky, 1996]; biogeographic indicator for Anatolian Delfimeus irroratus subsp. iranensis (Hölzel, 1972), stat. n. original fauna [Krivokhatsky, Emeljanov, 2000]. Recorded Material. 1♂, Ararat Prov., env. Dashtakar vill., 39.92319°N / from Armenia for the first time. 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan). Additional material. Azerbaijan: 1♂ (ZIN), Ordubad, 19.06.1931 Creoleon plumbeus (Olivier, 1811) (M. Rjabov). Iran: 2♂ (ZIN), Shahrud, 6.07.1914 (A. Kiritshenko). (Fig. 3) See explanation for a new status in the next Notes. Material. 1♂, Syunik Prov., N env. Kapan town, Shahumyan locality, subspecies. ­e dark brown subspecies, diagnosed by 1.08.2007 (Fig. 3, photo by M. Kalashian); 2♂, 3♀, Ararat Prov., env. Lanjar pronounced v-shaped figure on pronotum. vill., 39.81887°N / 44.98507°E, 1796 m, 18, 22.08.2016 (A. Danchenko). Additional material. Armenia: 1♀ (ZIN), Echmiadzin, 4.07.1925; 1♂ (ZIN), Lori Prov., Achtala [Akhtala], 26.08.1925; 1♀ (ZIN), Yerevan Delfimeus irroratus subsp. morgani (Navás, 1913), stat. n. env., 2.07.1928 (A. Shelkovnikov); 1♂ (ZIN), Meghri, 3.07.1929 (A. Shelkovnikov); 1♂ (ZIN), Zanga [Hrazdan] River Valley, pr. Erivan, Material. 1♂, 2♀, Ararat Prov., env. Dashtakar vill., 39.92319°N / 13.07.1932 (G. Kostylev); 1♀ (ZIN), Aras, 6.08.1932 (M. Rjabov); 1♀ (ZIN), 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan). Yerevan, 15.09.1991 (M. Kalashian). New faunistic records of Myrmeleontoid lacewings 295

Figs 1–10. Myrmeleontoid lacewings. 1 – Palpares turcicus, female, Uranots; 2 – Macronemurus persicus var. persica, female, Goravan; 3 – Creoleon plumbeus, male, Shaumyan; 4 – Acanthaclisis occitanica morpha typica, female, Hatsavan; 5 – Libelloides macaronius kolyvanensis, female, Geghanush; 6 – Nemoptera sinuata, male and female, Khosrov Reserve; 7 – Lerthta ledereri, female, Goravan; 8 – Lerthta ledereri, male, Turkey; 9 – Olivierina extensa, female, Goravan; 10 – O. extensa, female, Meghri. 1–3, 5–7, 9 – photos by M. Kalashian, 4 – photo by S. Shinkarenko, 8 – photo by Ju. Samartseva, 10 – photo by V. Krivokhatsky. Рис. 1–10. Мирмелеонтоидные сетчатокрылые. 1 – Palpares turcicus, самка, Ураноц; 2 – Macronemurus persicus var. persica, самка, Гораван; 3 – Creoleon plumbeus, самец, Шаумян; 4 – Acanthaclisis occitanica morpha typica, самка, Ацаван; 5 – Libelloides macaronius kolyvanensis, самка, Гегануш; 6 – Nemoptera sinuata, самец и самка, Хосровский заповедник; 7 – Lerthta ledereri, самка, Гораван; 8 – Lerthta ledereri, самец, Турция; 9 – Olivierina extensa, самка, Гораван; 10 – Olivierina extensa, самка, Мегри. 1–3, 5–7, 9 – фото М. Калашяна, 4 – фото С. Шинкаренко, 8 – фото Ю. Самарцевой, 10 – фото В. Кривохатского. 296 V.A. Krivokhatsky, G.H. Karagyan, T.L. Ghrejyan, M.Yu. Kalashian

Distribution. ­e ancient-Mediterranean Creoleon Nohoveus zigan (Aspöck, Aspöck et Hölzel, 1980) plumbeus is biogeoraphic indicator for Anatolian original fauna [Krivokhatsky, Emeljanov, 2000]. It is known from Material. 1♀, Armavir prov., Yervandashat env., 40.10367°N / 43.68528°E, 957 m, 21.09.2016 (G. Karagyan); 1♂, env. Armenia since the beginning of 19th century [Hagen, 1858]. Goravan vill., Goravan Sands Sanctuary, 39.88915°N / 44.73302°E, 956 m, 31.05.2017 (T. Ghrejyan). Creoleon griseus (Klug, 1834) Distribution. ­e South-Scythian – North-Turanian species [Krivokhatskiy, 1994], recorded from Armenia as Material. 1♀, Yerevan, 40.20888°N / 44.53647°E, 1250 m, 15.08.2016 (I. Stepanyan). Nohoveus punctulatus (Steven in Waldheim, 1846) [Aspöck Distribution. Ancient-Mediterranean, mainly Sahara- et al., 2001]. Turanian species, firstly recorded from Armenia. Species known from Sudan, , , Israel, Palestina, South Cueta anomala Navás, 1915 Arabia, Oman, Iran, Turkmenistan, Uzbekistan, Tadjikistan Material. 1♂, Ararat Prov., env. Dashtakar vill., 39.92319°N / and India. 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan). Additional material. Armenia: 1♀ (ZIN), No 7346, Ehegnadzor Myrmeleon hyalinus Olivier, 1811 [Yeghegnadzor], 1.07.1979 (A. Zakharenko). ♂ ♀ subsp. distinguendus Rambur, 1842 Azerbaijan: 1 (ZIN), Geok-Tapa, 24.07.1901 (R. Shmidt); 1 (ZIN), Aras River, between Nuvadi and Syurtui, 3.09.1932 (I. Rodionov); 1♀ (ZIN), Aresch, no date (A. Schelkownikow). Material. 1♂, Ararat Prov., env. Dashtakar vill., 39.92319°N / 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan). Distribution. ­is widespread Kura-Aras-Anatolian Additional material. Armenia: 1♀ (ZIN), Migry [Meghri], Aras species occures in Iran, Anatolia and the Caucasus River, 2.06.1957 (V. Trjapitzyn). [Krivokhatsky, 2011]. It has been recorded for Armenia Distribution. ­e widespread Sahara-Turanian and Azerbaijan without a distinct locality by Krivokhatskiy species. ­e subspecies distinguendus is distributed in [2011]. Localities of this species in Armenia are published South Europe and common in Transcaucasia. It was not here for the first time. recorded from Armenia in the recent compendium [Aspöck et al., 2001] where this taxon is listed as a separate species. Acanthaclisis occitanica (Villers, 1789) Acanthaclisis occitanica morpha typica Myrmecaelurus trigrammus (Pallas, 1771) (Fig. 4)

Material. 1♀, Ararat Prov., env. Dashtakar vill., ♀ ♀ Material. 1 , Ararat Prov., Hatsavan vill., at light, 10.06.2018 (Fig. 4, 39.92319°N / 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan); 1 , Kotayk photo by S. Shinkarenko). Prov., env. Geghadir vill., 23.08.2016 (A. Danchenko); 1♀, Armavir Prov., Yervandashat env., 40.10367°N / 43.68528°E, 957 m, 21.09.2016 (G. Karagyan). Acanthaclisis occitanica morpha nigrilenta Additional material. Armenia: 1♂ (ZMM), Yerevan env., 16.07.1932 Krivokhatsky, 2005 (P. Kostylev); 1♂ (ZMM), Dzhrvezh, Yerevan env., 23.06.1960 (G. Dlussky); 2♀ (ZMM), Migry [Meghri], 6.08.1977 (A. Lisetsky); 1♂, 1♀ (ZMM), Migry 1♂, Ararat Prov., env. Azat Reservoir, 40.07675°N / [Meghri], 10.07.[19]?? (N. Filippov). Material. 44.51297°E, 1071 m, 11.06.2017 (G. Karagyan). Distribution. ­e Ancient-Mediterranean West Distribution. South-West-Palaearctic species, known Palaearctic species. It was not recorded from Armenia in from Armenia; black striped morpha nigrilenta was not the recent compendium [Aspöck et al., 2001], but listed and registered in Armenia previously [Krivokhatsky, 2005]. indicated for the country on a map of distribution of the species in the fauna of Russia [Krivokhatskiy, 2011]. Family Ascalaphidae Libelloides macaronius kolyvanensis (Laxmann, 1770) Myrmecaelurus solaris Krivokhatsky, 2002 (Fig. 5) Material. 2♂, 2♀, Ararat Prov., env. Dashtakar vill., 39.92319°N / 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan); 1♂, 2♀, Ararat Prov., env. Libelloides macaronius kolyvanensis morpha typica Lanjar vill., 39.81887°N / 44.98507°E, 1796 m, 22.08.2016 (A. Danchenko); ♀ 1 , Kotayk Prov., env. Geghadir vill., 28.08.2016 (A. Danchenko). Material. 1♀, Syunik Prov., ~5 km N Shvanidzor vill., 21.06.2007 Distribution. ­e Irano-Turanian species, which is (photo by M. Kalashian); 1♀, Syunik Prov., between Kapan town and known from Armenia by the type series (four paratypes Geghanush vill., 27.06.2007 (Fig. 5, photo by M. Kalashian); 2♂, 1♀, Syunik Prov., env. Aygedzor vill., 38.99019°N / 46.18598°E, 1355 m, 4.06.2017 deposited in ZIN) from this country. Paratypes originated (G. Karagyan). from Chimankend [Urtsadzor], Yerevan, Migry [Meghri] and Vedi [Krivokhatsky, 2002]. Libelloides macaronius kolyvanensis morpha alba Krivokhatsky, Bagaturov et Prokopov, 2018 Nohoveus armenicus (Krivokhatsky, 1993) 2♂, Syunik Prov., env. Aygedzor vill., 38.99019°N / ♀ Material. Material. 1 , Ararat Prov., env. Dashtakar vill., 46.18598°E, 1355 m, 4.06.2017 (G. Karagyan). 39.92319°N / 44.74741°E, 965 m, 6.08.2016 (G. Karagyan). Additional material. Armenia: 1♀ (ZIN), Garni env., Ghehard Distribution. ­e mostly West-Scythian subspecies, [Geghard] River, 1350 m, 13.07.2003 (A. Koval). known from the Pontic biogeographic province of the Distribution. ­e Turano-Anatolian species, known Caucasus. It was recorded for Armenia as Libelloides from Armenia (type locality is Echmiadzin), Azerbaijan, macaronius (Scopoli, 1763) [Aspöck et al., 2001] and as Turkey, and Iran [Krivokhatsky, 1993; Kerimova, Libelloides macaronius kolyvanensis (Laxmann, 1770) Krivokhatsky, 2018b]. [Krivokhatsky et al., 2018]. ­e rare species in Armenia, New faunistic records of Myrmeleontoid lacewings 297 only seven specimens collected from 1924 to 1982 (morpha Acknowledgements typica) are deposited in ZIN [Krivokhatsky et al., 2018]. Morpha alba is recorded for Armenia for the first time. It is We would like to express our gratitude to remarkable that specimens of both morphs were collected Dr A. Danchenko (Moscow State University, Moscow, from one population. Russia) and Dr I. Stepanyan (Scientific Center of Zoology and Hydrology of the National Academy of Sciences of Family Nemopteridae Armenia, Yerevan, Armenia) for careful collection of the Nemoptera sinuata Olivier, 1811 material, to Ju. Samartseva (Zoological Institute of the (Fig. 6) Russian Academy of Sciences, St Petersburg, Russia) for preparation of the photo of collection specimen of Lerthta Material. 2♂, 1♀, Khosrov Forest State Reserve, Central (Vedi) area, 24.06.2006 (Fig. 6, photo by M. Kalashian); 1♀, Ararat Prov., env. Zangakatun ledereri, and to S. Shinkarenko (Volgograd State Technical vill., 39.841384°N / 45.046694°E, 1870 m, 30.07.2016 (A. Danchenko); University, Volgograd, Russia) for providing with the photo 1♂, Ararat Prov., env. Azat Reservoir, 40.07675°N / 4451297°E, 1071 m, of Acanthaclisis occitanica. Special thanks to Dr R. Dobosz 11.06.2017 (G. Karagyan); 1♂, Syunik Prov., env. Aygedzor vill., 38.99019°N / 46.18598°E, 1355 m (G. Karagyan). (Upper Silesian Museum, Bytom, ), our reviewer, Distribution. ­e East-Mediterranean species; who helps us very much. well-known and usual for Transcaucasia [Alexandrov- ­e study was performed in the framework of the state Martynov, 1930; Makarian, 1930; Dobosz, Krivokhatsky, research project АААА-А19-119020690082-8 of ZIN RAS. 2019]; common in some biotopes in Armenia. References Lertha ledereri (Sélys-Longchamps, 1866) (Figs 7, 8) Alexandrov-Martynov O.M. 1930. Zur Kenntnis der Nemopteriden Persiens und einiger Mittelmeerlander. Zoologischer Anzeiger. 90(9/12): 235– Material. 1♀, Ararat Prov., env. Goravan vill., Goravan Sands 250. Sanctuary, 30.05.2009 (Fig. 7, photo by M. Kalashian); 2♂, Ararat Prov., env. Ari I. 2014. A checklist of Turkish neuropteran species (Insecta: Neuroptera) Goravan vill., Goravan Sands Sanctuary, 39. 88915°N / E44.73302°E, 956 m, with remarks on provincial distribution in Turkey. Acta Entomologica 31.05.2017 (T. Ghrejyan). Slovenica. 22(1): 59–86. Additional material. Armenia: 1♂ (ZIN), Asni [currently abandoned], Aspöck H., Aspöck U., Hölzel H. 1980a. Die Neuropteren Europas. Eine near Arazdayan, Armenia mer., 3.07.1933 (S. Paramonov), ”Lerthta ledereri zusammenfassende Darstellung der Systematik, Ökologie und Selys, S. Paramonov det.”; 1♂, 3♀ (ZIN), Vedi env., Gorovan Sands, 29– Chorologie der Neuropteroidea (Megaloptera, Raphidioptera, 30.05.1996 (M. Volkovitsh). Planipennia) Europas. Vol. 1. Krefeld: Goecke & Evers. 495 p. Turkey: 1♂ (ZIN), “Nemoptera Ledereri Selys Long., Bos Dagh(Tmol), Aspöck H., Aspöck U., Hölzel H. 1980b. Die Neuropteren Europas. Eine Anatolia”, “Lerthta ledereri Selys, Kolbe det.” (Fig. 8). zusammenfassende Darstellung der Systematik, Ökologie und Anatolian species, known from Turkey Chorologie der Neuropteroidea (Megaloptera, Raphidioptera, Distribution. Planipennia) Europas. Vol. 2. Krefeld: Goecke & Evers. 355 p. and Armenia. Aspöck H., Hölzel H., Aspöck U. 2001. Kommentierter katalog der Neuropterida (Insecta: Raphidioptera, Megaloptera, Neuroptera) der Olivierina extensa (Olivier, 1811) Westpaläarktis. Denisia. 2: 1–606. (Figs 9, 10) Canbulat S. 2007. A checklist of Turkish Neuroptera with annotating on provincial distributions. Zootaxa. 1552(1): 35–52. DOI: 10.11646/ zootaxa.1552.1.2 ♀ Material. 1 , Ararat Prov., env. Goravan vill., Goravan Sands Dobosz R., Japoshvili G., Krivokhatsky V., Wąsala R. 2018. Contributions to ♂ Sanctuary, 12.07.2007 (Fig. 9, photo by M. Kalashian); 1 , Ararat Prov., env. the knowledge of neuropterid insects (Neuropterida: Raphidioptera, Goravan vill., Goravan Sands Sanctuary, 39. 88915°N / 44.73302°E, 956 m, Neuroptera) of Georgia (Sakartvelo). Part II. Annals of the Upper 31.05.2017 (T. Ghrejyan). Silesian Museum in Bytom, Entomology. 26: 1–21. DOI: 10.5281/ ♂ ♀ Additional material. Armenia: 1 , 1 (ZIN), Migry env. [Meghri], zenodo.1147632 ♀ 8.07.1931 (All-Union Institute of Plant Protection leg.); 1 (ZIN), Migry Dobosz R., Krivokhatsky V.A. 2019. Nemoptera sinuata Olivier, 1811 env. [Meghri], Vedi, 8.07.1931 (All-Union Institute of Plant Protection ♀ (Neuroptera: Nemopteridae) – old new record for Russia. Russian leg.); 1 , Zangezur, pr. Megry [Meghri], 07.1935, “Olivierina extensa Oliv., Entomological Journal. 28(1): 64–65. DOI: 10.15298/rusentj.28.1.09 Ph. Zaitzev det.”; 1♀ (ZIN), Meghri, Aras Valley, 23.06.1974 (M. Volkovitsh); Dobosz R., Krivokhatsky V., Wąsala R., Plewa R., Aladshvili N. 2017. New 1♀, Meghri, 27.06.2010 (M. Volkovitsh) (Fig. 10). data on the occurrence of lacewings (Neuroptera) in Georgia. Acta Azerbaijan: 1♂, 1♀ (ZIN), Disar, near Ordubad, Nakhichevan, entomologica silesiana. 25: 1–10. DOI: 10.5281/zenodo.834169 24.07.1933 (Znoiko). Esben-Petersen P. 1913. Notes concerning Neuroptera from Caucasus. Iran: 1♂ (ZIN), Abbasan, W Persia, Luristan, 16.05.1914 (Nesterov); Izvestiya Kavkazskogo muzeya. 7: 287–294. 2♂ (ZIN), Abbasan, Persian-Turkestan boundary, “Olivierina extensa, Google Earth. Available at: https://www.google.com/intl/en_uk/earth/ Ph. Zaitzev det.”, 15.06.1914 (Nesterov); 1♀ (ZIN), Fars Prov., Barm i versions/ (accessed 10 June 2018). Firuze, Shiraz env., 19.07.2003 (V. Lukhtanov); 1♂ (ZIN), Azerbaijan Prov., Hagen H. 1858. Russlands Neuroptera. Stettiner Entomologische Zeitung. 19: Chaijerli, 2100 m, 13.07.2004 (V. Lukhtanov). 110–134. Turkey: 1♂ (ZIN), Elazığ, 23 km NE Kavancılar, 3.07.2005 Hölzel H. 1972. Die Neuropteren Vorderasiens. IV. Myrmeleonidae. Beiträge (M. Volkovitsh); 1♀ (ZIN), Iğdır, Ararat foot, 82 km W Aralık, 8.07.2005 (M. Volkovitsh). zur Naturkundlichen Forschung in Südwestdeutschland. Suppl. 1: 3–103. Notes. Almost all of studied specimens are Ilyina E.V., Krivokhatsky V.A. 2012. To the fauna of antlions (Neuroptera: characterized by the presence of the distinct apical white Myrmeleontidae) of Daghestan. Caucasian Entomological Bulletin. round spot on the apical extension of the hind wing 8(1): 159–160 (in Russian). DOI: 10.23885/1814-3326-2012-8-1-159-160 (Figs 9, 10). Only Nakhichevan specimens have the similar Ilyina E.V., Khabiev G.N., Krivokhatsky V.A. 2014. Myrmeleontoid lacewings (Neuroptera: Myrmeleontidae, Ascalaphidae) of Sarykum spot slightly expressed, cloudy. According to R. Dobosz and environs. In: Trudy gosudarstvennogo prirodnogo zapovednika (personal communication), they should be referred to the “Dagestanskiy” [Proceedings of Dagestanskiy State Natural Reserve. species Lertha palmonii Tjeder, 1970, but status of this form Iss. 5]. Makhachkala: ALEF: 32–36. is disputable and needs further study and clarification. Kerimova I.G., Krivokhatsky V.A. 2018a. Current composition of the fauna of antlions (Neuroptera: Myrmeleontidae) of Azerbaijan. Caucasian Distribution. ­e Anatolian species known from Entomological Bulletin. 14(1): 55–66. DOI: 10.23885/1814-3326- Turkey and Armenia. 2018-14-1-55-66 298 V.A. Krivokhatsky, G.H. Karagyan, T.L. Ghrejyan, M.Yu. Kalashian

Kerimova I.G., Krivokhatsky V.A. 2018b. About fauna and distribution Entomological Review. 95(9): 1212–1224. DOI: 10.1134/ of owlflies (Neuroptera, Ascalaphidae) in Azerbaijan. In: Artvin S0013873815090092 Çoruh University. International Artvin Sympozium. Abstract Book Krivokhatsky V.A., Emeljanov A.F. 2000. Use of general zoogeographical (18–20 October 2018). Artvin: Artvin Çoruh University: 33. subdivisions in particular zoogeographical researches for the example Krivokhatskiy V.A. 1994. Review of the Myrmecaelurus (Nohoveus) zigan of the Palaearctic antlions fauna (Neuroptera, Myrmeleontidae) group (Neuroptera, Myrmeleontidae), with description of a new Entomological Review. 80(9): 1042–1056. species from Armenia. Entomological Review. 73(5): 23–27. Krivokhatsky V., Hajiesmailian A., Mirmoayedi A., Khabiev G., Dobosz R., Krivokhatsky V.A. 1996. Antlions of the subgenus Ganussa (genus Ostroverkhova M. 2017. Palpares turcicus Koçak, 1976 – new name Neuroleon) from Middle Asia (Neuroptera: Myrmeleontidae). for Iranian fauna and its place in the P. libelluloides species group Zoosystematica Rossica. 1995. 4(2): 301–306. (Neuroptera: Myrmeleontidae). Proceedings of the Zoological Institute Krivokhatsky V.A. 2002. New Asian species of antlions (Neuroptera, of the Russian Academy of Sciences. 321(4): 377–402. Myrmeleontidae) Entomological Review. 82(5): 558–562. Kuznetsova V.G, Maryańska-Nadachowska A., Khabiev G.N, Karagyan G., Krivokhatsky V.A. 2003. Catalogue of collection (Neuroptera, Krivokhatsky V.A. 2019. Variation in the number of testicular Myrmeleontidae). ZInsecta. Available at: https://www.zin.ru/ follicles and ovarioles among 18 lacewing species of the families projects/zinsecta/index.html (last updated 10 October 2003). Myrmeleontidae, Ascalaphidae, and Nemopteridae (Insecta, Neuroptera, Krivokhatsky V.A. 2005. Black-striped morphs of antlions (Neuroptera, Myrmeleontiformia). ZooKeys. 894: 33–51. DOI: 10.3897/zookeys.894.47040 Myrmeleontidae). Entomological Review. 85(3): 236–243. Makarian M.Ya. 1930. New data on distribution of some representatives Krivokhatsky V.A. 2011. Murav’inye l’vy (Neuroptera: Myrmeleontidae) of the family Nemopteridae (Neuroptera) in Transcaucasia. Rossii [Antlions (Neuroptera: Myrmeleontidae) of Russia. In: Zakavkazskyi kraevedcheskyi sbornik. Seriya A. Estestvoznanie. St Petersburg – Moscow: KMK Scientific Press Ltd. 334 p. T. 1 [Transcaucasian local history collection of papers. Series A. (in Russian). Natural History. Vol. 1]. Tiflis: 145–148 (in Russian). Krivokhatsky V.A., Bagaturov M.F., Prokopov G.A. 2018. Owlflies Shchurov V.I., Makarkin V.N. 2013. New records of Neuroptera from the (Neuroptera: Ascalaphidae) of Crimea and alied taxa from the West North-Western Caucasus. Caucasian Entomological Bulletin. 9(2): Palaearctic. Caucasian Entomological Bulletin. 14(Suppl.): 41–72 273–279 (in Russian). (in Russian). DOI: 10.23885/18143326201814S4172 Zakharenko A.V., Krivokhatsky V.A. 1993. Lacewing (Neuroptera) Krivokhatsky V.A., Dobosz R., Khabiev G.N. 2015. Antlions and owlflies of the European part of former USSR. Izvestiya Khar’kovskogo (Neuroptera: Myrmeleontidae, Ascalaphidae) of Kyrgyzstan. entomologicheskogo obshchestva. 1(2): 34–83 (in Russian).

Received / Поступила: 20.06.2019 Accepted / Принята: 13.10 2019 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 299–316 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Сетчатокрылообразные (Neuropterida) и скорпионницы (Mecoptera) с Северо-Западного Кавказа

Neuropterida and Mecoptera from the North-Western Caucasus

© В.Н. Макаркин1, В.И. Щуров2 © V.N. Makarkin1, V.I. Shchurov2

1Федеральный научный центр Биоразнообразия наземной биоты Восточной Азии Дальневосточного отделения РАН, пр. 100 лет Владивостоку, 159, Владивосток 690022 Россия 2Филиал ФБУ «Российский центр защиты леса» «Центр защиты леса Краснодарского края», проезд Одесский, 4, Краснодар 350020 Россия

1Federal Scientific Center of the East Asia Terrestrial Biodiversity, Far Eastern Branch of the Russian Academy of Sciences, 100 let Vladivostoku av., 159, Vladivostok 690022 Russia. E-mail: [email protected] 2“Centre of Forest Health of Krasnodar Region”, branch of the Federal Budget Institution “Russian Centre of Forest Health”, Odesskiy passage, 4, Krasnodar 350020 Russia. E-mail: [email protected]

Ключевые слова: сетчатокрылые, верблюдки, вислокрылки, скорпионницы, Краснодарский край, Республика Адыгея, Северо-Западный Кавказ. Key words: Neuroptera, Raphidioptera, Megaloptera, Mecoptera, Krasnodar Region, Republic of Adygea, North-Western Caucasus.

Резюме. Приведены новые фаунистические Region is especially noteworthy. ­is is northern-most данные о 43 видах сетчатокрылых, 3 видах верблюдок, known occurrence of the species. ­e occurrence of the 1 виде вислокрылок и 3 видах скорпионниц Северо- chrysopid species Peyerimhoffina gracilis (Schneider, Западного Кавказа. Два вида сетчатокрылых 1851) in Russia is reliably confirmed for the first time by (Coniopteryx haematica McLachlan, 1868 и Chrysoperla specimens from Krasnodar Region and Adygea. A larva mutata (McLachlan, 1898)) и один вид вислокрылок of Dendroleon pantherinus (Fabricius, 1787) was found in (Sialis zhiltzovae) впервые отмечены в России. the fruiting body of a tinder fungus, a previously unknown Местонахождение термофильного Chrysoperla mutata habitat, expanding our understanding of the ecology of its на севере Краснодарского края является самым preimaginal phase. In total, 72 species of Neuroptera are северным для вида. Распространение Peyerimhoffina known now from the North-Western Caucasus, 52 from gracilis (Schneider, 1851) в России фактически впервые Krasnodar Region and 24 from Adygea. ­e occurrence of подтверждено материалом из Краснодарского the raphidiopteran species Xanothostigma xanthostigma края и Республики Адыгея. Четырнадцать видов (Schummel, 1832) in Krasnodar Region is new. In total four сетчатокрылых и скорпионниц являются новыми для species of the order are known now from the North-Western Краснодарского края и семь для Республики Адыгея. Caucasus. Megaloptera is represented in this region by Личинка Dendroleon pantherinus (Fabricius, 1787) two species. Sialis zhiltzovae Vshivkova, 1985 is recorded обнаружена в плодовом теле трутовика, что является from Krasnodar Region, Adygea and from Russia for the нетипичным ее местообитанием и расширяет наши first time. Data on the distribution (including altitudinal) представления об экологии преимагиальных фаз этого and phenology of three species of the family Panorpidae вида. (Mecoptera) are significantly updated. Panorpa connexa Abstract. An extensive study of Neuropteroidea and McLachlan, 1869 is recorded for the first time from the Mecoptera collected in Krasnodar Region and the Republic North-Western Caucasus, and P. similis Esben-Petersen, of Adygea in 2018 allowed the discovery of new species for 1915 is recorded for the first time from Krasnodar Region. the regions and for Russia, clarification of the taxonomic affiliation of some dubious specimens, and establish well- Введение founded conclusions about the ecological preferences of species. Nine species of Neuroptera are recorded for the first Настоящая работа продолжает серию публикаций, time from the North-Western Caucasus (and the Caucasus посвященных изучению фауны, экологии и фенологии as a whole); 13 species (mainly ) are new сетчатокрылообразных (Neuroptera, Raphidioptera) for Krasnodar Region and 7 for Adygea. Two species of и скорпионниц (Mecoptera) Северо-Западного Neuroptera (Coniopteryx haematica McLachlan, 1868 and Кавказа [Макаркин, Щуров, 2010, 2011, 2013, 2015; Chrysoperla mutata (McLachlan, 1898)) are recorded from Щуров, Макаркин, 2013, 2017]. Как и прежде, к Russia for the first time. ­e finding of the thermophilic рассматриваемому региону мы относим Краснодарский species Chrysoperla mutata in the north of Krasnodar край и лежащую внутри его границ Республику Адыгея,

Научная статья / Research Article DOI: 10.23885/181433262019152-299316 300 В.Н. Макаркин, В.И. Щуров

Рис. 1. Места сборов Neuroptera, Raphidioptera, Megaloptera, Mecoptera в Краснодарском крае и Республике Адыгея. Указаны границы муниципальных образований Краснодарского края. Fig. 1. Collecting localities of Neuroptera, Raphidioptera, Megaloptera and Mecoptera in Krasnodar Region and the Republic of Adygea of Russia. ­e boundaries of the administrative subdivisions of Krasnodar Region are shown. Explanation of the numbers (1–76) is given in the text at the end of each locality citation.

южные районы Ростовской области, значительную часть 1868 и Chrysoperla mutata (McLachlan, 1898). Особенно Ставропольского края, западные долины Карачаево- примечательна неожиданная находка термофильной Черкесской Республики и Республики Абхазия, однако и ксерофильной златоглазки Ch. mutata на севере наши исследования ограничиваются в основном Краснодарского края, это местонахождение является первыми двумя регионами (рис. 1). самым северным для вида. Распространение другой Обширные сборы сетчатокрылых (Neuroptera) златоглазки, Peyerimhoffina gracilis (Schneider, 1851), в 2018 года позволили обнаружить новые виды для России фактически впервые подтверждено материалом региона и страны, а также уточнить таксономическую из Краснодарского края и Республики Адыгея. Для принадлежность некоторых сомнительных особей. Северо-Западного Кавказа (или для Кавказа в целом) Кроме того, наблюдения, повторявшиеся в одних и тех впервые приводится 9 видов сетчатокрылых, для же биотопах на протяжении ряда лет (преимущественно Краснодарского края 13 видов (преимущественно из в 2009–2018 годах), позволили сделать обоснованные семейства мелких Coniopterygidae) и для Адыгеи 7 видов. заключения о биотопической приуроченности и Таким образом, всего в настоящее время на Северо- экологических предпочтениях видов. Два вида оказались Западном Кавказе известно 72 вида сетчатокрылых, в новыми для России: Coniopteryx haematica McLachlan, Краснодарском крае – 52 и в Адыгее – 24. Сетчатокрылообразные (Neuropterida) и скорпионницы (Mecoptera) с Северо-Западного Кавказа 301

После изучения дополнительного материала по [Щуров, Макаркин, 2017], а также проследить Raphidioptera Xanothostigma xanthostigma (Schummel, возможные трофические связи и установить 1832) впервые включен в фауну Краснодарского края. фенологические особенности этих насекомых. Всего на Северо-Западном Кавказе теперь известно Существенная часть рассматриваемого материала 4 вида верблюдок. является побочным результатом полевых наблюдений В данной статье мы в первый раз рассматриваем в рамках двух направлений государственного данные о вислокрылках (Megaloptera) региона. Этот экологического мониторинга: лесопатологического отряд представлен на Северо-Западном Кавказе двумя и контроля популяций охраняемых видов Insecta, видами. Sialis zhiltzovae Vshivkova, 1985, впервые включенных в Красные книги Краснодарского края и приводимый для России, обнаружен и в Краснодарском Республики Адыгея. крае (на границе с Республикой Абхазия), и в Республике Всего обследовано более 180 отдельных Адыгея, в непосредственной близости от территории местообитаний, объединяемых здесь в края. 76 местонахождений, показанных на карте региона с Существенно уточнены сведения (как запада на восток (рис. 1). Их номера (1–76) приведены предшествующих исследователей, так и наши) о в разделе «Материал» в круглых скобках. Большая распространении в регионе трех видов скорпионниц часть материала хранится в Федеральном научном семейства Panorpidae (Mecoptera). Два вида рода центре Биоразнообразия наземной биоты Восточной Panorpa Linnaeus, 1758 впервые приводятся для Азии (Владивосток, Россия); ссылка на это в тексте Краснодарского края. Panorpa connexa McLachlan, 1869 опущена. Регионы (Краснодарский край или Адыгея), также впервые указан для Республики Адыгея и всего для которых виды указаны впервые, отмечены Северо-Западного Кавказа. Получены дополнительные звездочкой *. Виды, впервые приводимые для России, данные о стациальном распределения скорпионниц, отмечены двумя звездочками **. а также их фенологии в разных высотных поясах В тексте употребляются следующие аббревиатуры: рассматриваемого региона. АГУ – Адыгейский государственный университет (Майкоп, Россия); ГКХ – Главный Кавказский хребет; Материал и методы ГПЗУ – Государственный природный заповедник «Утриш»; КГПБЗ – Кавказский государственный Приводимый материал собран преимущественно природный биосферный заповедник. В.И. Щуровым (ссылка на которого в тексте опущена) Фотографии 2–7, 12–13 и 17–23 сделаны либо передан ему коллегами, упоминаемыми отдельно. В.И. Щуровым, 8–11 и 14–16 – В.М. Локтионовым. Наши сборы сделаны в основном в 2017–2018 годах способами, пригодными для отлова и выведения Отряд Neuroptera чешуекрылых () как основного объекта Семейство Coniopterygidae фаунистических исследований, а также во время учета Aleuropteryx umbrata Zelený, I964 потенциальных вредителей деревьев и кустарников, филлофагов, как объекта профессиональной Материал. *Краснодарский кр.: 1♂, Краснодар, микрорайон Комсомольский, 24 м н.у.м., около 9:30, особь слетела с Prunus cerasifera деятельности второго соавтора статьи. Все наблюдения Ehrh., 11.05.2017 (13). проводились круглогодично, как днем, так и ночью. Замечания. Отличается от других видов рода тем, Активно использовались пищевые приманки, на которые что на дорсальной стороне брюшка самца имеется прилетели имаго Chrysopidae и Panorpidae, а также непарная структура, тянущаяся от 7-го тергита феромонные ловушки, применявшиеся для контроля до эктопрокта и заканчивающаяся несколькими численности некоторых Lepidoptera и привлекшие зубчиками, направленные вниз [см. Zelený, 1964: Panorpa. Значительная часть имаго прилетела на figs 2, 3; Meinander, 1972: figs 15C, E]. искусственные источники света – чаще лампы Встречается преимущественно на лиственных прямого включения (ДРВ) мощностью 250 и 160 Вт, деревьях, но также отмечен на соснах и можжевельнике одновременно размещавшиеся по разные стороны [Dobosz, Popov, 2018]. от светоотражающего экрана. Источником энергии Распространение. Юго-Восточная Европа, служила портативная инверторная электростанция Турция, Израиль, Египет [Aspöck et al., 2001]. В России мощностью 1000 Вт. В автономных горных экспедициях раньше отмечался только в Крыму без более точных также использовался каталитический газовый фонарь данных [Дорохова, 1987]. Впервые найден на Кавказе. «Kovea». Некоторые особи собраны на лету в свете луча налобного светодиодного фонаря или на кормовых субстратах. Aleuropteryx loewii Klapalek, 1894 С 2016 года в целях мониторинга чужеродных Материал. *Краснодарский кр.: 4♀, Анапский р-н, п-ов Абрау, вредных организмов в регионе активно применяется ГПЗУ, хр. Кузня, 446 м н.у.м., кошение по ветвям Pinus sylvestris L., обкашивание подлеска и нижних ветвей 27.06.2018 (2). деревьев (Quercus, Castanea, Abies, Pinus, Buxus) Замечания. От близкого вида A. juniperi Ohm, 1968 энтомологическим сачком. Это позволило обнаружить отличается большим числом члеников усиков (в данном новых представителей Coniopterygidae и Chrysopidae, случае 25, у A. juniperi 22–23) и более сильным изгибом получить дополнительные сборы в уже нам известных CuP на передних крыльях; от A. umbrata – однотонной пунктах, обследованных по аналогичной методике светло-бурой мембраной. 302 В.Н. Макаркин, В.И. Щуров

Встречается преимущественно на соснах. Нами самок из Адыгеи, ранее приведенных нами как собран на нижних ветвях низкорослых сосен во Coniopteryx sp. для урочища Поляна Шестакова в втором ярусе южной опушки сухого грабинниково- истоках реки Большой Сахрай [Щуров, Макаркин, 2017: пушистодубового леса на доминирующем водоразделе 80, рис. 9], относятся именно к этому виду. полуострова. Распространение. Широко распространенный Распространение. Широко распространен в палеарктический вид, однако в России известен Европе, встречается в Турции. В России ранее был лишь из нескольких регионов: Ленинградская и отмечен только в Волгоградской области [Рохлецова, Белгородская области, Ингушетия, Чечня, Иркутская Кривохатский, 2006]. Впервые найден на Кавказе. область и Хабаровский край [Meinander, 1972; Захаренко, Кривохатский, 1993; Макаркин, 1995 (как Coniopteryx (Coniopteryx) pygmaea Enderlein, 1906 C. parthenia Navás et Marcet, 1910, см. ниже); Abrahám, 2000]. Впервые отмечен на Северо-Западном Кавказе. Материал. *Краснодарский кр.: 1♂, Лагонакское нагорье, выше ур. Желоб, пер. Азишский, верхняя граница буково-пихтового леса с сосной и березой, 1749 м н.у.м., кошение по ветвям Abies, 9.05.2018 (62); Coniopteryx (Coniopteryx) tineiformis Curtis, 1834 2♂, 5♀, хр. Азиш-Тау, истоки р. Сухой Курджипс, буково-пихтовый лес, 1461 м н.у.м., кошение по нижним ветвям крупных Abies, 9.05.2018 (63); Материал. *Краснодарский кр.: 1♂, Апшеронский р-н, ГКХ, 1♀, КГПБЗ, г. Чугуш, долина р. Ачипсе, смешанный лес, 979 м н.у.м., истоки р. Тугупс, каштаново-пихтово-буковый лес, 958 м н.у.м., кошение кошение по нижним ветвям Abies, 17.05.2018 (69); 2♀, там же, смешанный по ветвям Abies, Fagus, Alnus glutinosa (L.) Gaerthner, 10.07.2018 (36). лес, 1027 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Abies, 17.05.2018 (69); Замечания. Вид встречается главным образом на ♀ 1 , там же, ниже устья р. Туровая, пихтово-буковый лес с каштаном и различных лиственных деревьях и кустарниках. дубом, 1165 м н.у.м., кошение по ветвям Abies, 17.05.2018 (69); 1♀, там же, выше устья р. Туровая, пихтово-буковый лес с каштаном и дубом, Распространение. Европа, Турция, Канада, США. 1197 м н.у.м., кошение по ветвям Abies, 17.05.2018 (69); 1♀, там же, выше В России распространен только в европейской части, устья р. Рудовая 1-я, каштаново-буковый лес с пихтовым подлеском, от Карелии до Крыма [Meinander, 1962; Захаренко, 823 м н.у.м., кошение по подросту Abies, 17.05.2018 (70); 2♂, 1♀, Апшеронский р-н, истоки р. Гогопсе, Ю склон г. Шесси, верхняя опушка Кривохатский, 1993]. Впервые отмечен на Кавказе. кленово-пихтового леса, 1646 м н.у.м., кошение по Abies днем, вместе с личинками и имаго Psyllidae, 4.06.2018 (31); 6♂, 6♀, Туапсинский р-н, Coniopteryx (Metaconiopteryx) esbenpeterseni долина р. Большой Пшиш, СЗ отрог г. Шесси, смешанный лес (Abies Tjeder, 1930 nordmanniana (Steven) Spach, Fagus orientalis Lipsky, Quercus petraea L. ex Liebl.), 570 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Abies и Quercus, *Республика Адыгея: 1♂, Майкопский р-н, долина 5.06.2018 (19); 1♂, 1♀, там же, смешанный лес, 584 м н.у.м., кошение Материал. р. Кужетка, пихтово-буковый лес с подлеском Buxus colchica Pojark., по нижним ветвям Abies, 5.06.2018 (21); 1♀, там же, смешанный 448 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Fagus, 8.07.2018 (45). лес, 861 м н.у.м., кошение по подросту Abies, 5.06.2018 (26); 5♂, 4♀, Краснодарский кр.: 1♂, Крыловский р-н, долина р. Балка Грузская, Анапский р-н, п-ов Абрау, ГПЗУ, хр. Кузня, 446 м н.у.м., кошение по ур. Крыловский лес, под пологом рукотворного многопородного нижним ветвям Pinus sylvestris, 27.06.2018 (2). *Республика Адыгея: 1♂, леса, 59 м н.у.м., кошение по Quercus, Prunus, Cotinus coggygria Scop., 1♀, Майкопский р-н, западные истоки р. Кужетка, подлесок пихтово- 12.07.2018 (66); 4♂, Сочи, долина р. Аше, окр. пос. Водопадный, букового леса, 722 м н.у.м., кошение по подросту Abies, 2.07.2017 (40); грабово-дубовый лес, 41 м н.у.м., кошение по ветвям Quercus pubescens 1♂, 1♀, там же, подлесок пихтово-букового леса, 713 м н.у.м., кошение Willd., Carpinus orientalis Miller, 19.07.2018 (15); 2♂, долина р. Дагомыс по подросту Abies, 9.07.2017 (40); 2♀, там же, подлесок пихтово- Восточный, выше с. Барановка, каштаново-дубовый лес, 127 м н.у.м., букового леса, 701 м н.у.м., кошение по подросту Abies, 16.07.2017 (40); кошение по нижним ветвям Quercus, Fagus и Castanea sativa Mill., 2♀, долина р. Пшеха, З склон г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, под пологом 19.07.2018 (37); 1♀, долина р. Мзымта, ущ. Ахштырь, выше с. Казачий пихтово-букового леса с Prunus laurocerasus L. и Ilex colchica Pojark. в Брод, колхидский пойменный лес, 66 м н.у.м., кошение по Acer, Ulmus, подлеске, 1323 м н.у.м., кошение по подросту Abies, 2.07.2017 (48); 1♀, Alnus, 19.07.2018 (61); 1♀, долина р. Чвижепсе, ниже с. Медовеевка, там же, под пологом пихтово-букового леса, 1524 м н.у.м., кошение по ♂ ♀ дубово-каштановый лес в пойме, 235 м н.у.м., кошение по Castanea подросту Abies, 27.07.2017 (49); 3 , 2 , там же, 1299 м н.у.м., кошение ♂ ♂ ♀ и Corylus avellana L., 19.07.2018 (64); 1 , Апшеронский р-н, долина по ветвям и подросту Abies ночью и в полдень, 2.05.2018 (47); 6 , 2 , р. Пшеха, окр. х. Армянский, дубовый лес, 311 м н.у.м., кошение по там же, 1382 м н.у.м., кошение по ветвям и подросту Abies, 2.05.2018 подросту Quercus petraea, 28.07.2018 (39); 2♂, 6♀, долина р. Цеце, (48); 1♂, КГПБЗ, там же, верхняя опушка леса, 1557 м н.у.м., кошение ♀ восточнее х. Акредасов, дубовый лес, 175 м н.у.м., кошение в подлеске по нижним ветвям и подросту Abies, 2.05.2018 (49); 6 , там же, по ветвям Quercus, Acer, Prunus, Ulmus, 28.07.2018 (24). 1413 м н.у.м., кошение по ветвям и подросту Abies, 1.07.2018 (48); 1♀, там же, 1557 м н.у.м., кошение по нижним ветвям и подросту Abies, Замечания. Вид обитает на различных лиственных 1.07.2018 (49); 3♀, там же, субальпийские луга, 1685 м н.у.м., кошение по деревьях и кустарниках в равнинных и низкогорных ветвям одиночных Pinus sylvestris, 9.07.2018 (50); 2♀, там же, смешанный лесах. В Краснодарском крае часто встречаются очень лес, 1227 м н.у.м., кошение по Acer pseudoplatanus L., Sorbus sp. в пойме ручья, 11.08.2018 (47); 2♀, 1♀, там же, под пологом пихтово-букового мелкие самцы с крайне светлой окраской тела и жилок, леса, 1322 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Abies, 11.08.2018 (48). длина их передних крыльев 1.8–1.9 мм; самки чуть Замечания. Макаркин [1995] трактовал виды темнее, с передними крыльями не более 2.2 мм длиной. Coniopterygidae в соответствии c монографий В других регионах у этого вида передние крылья семейства [Meinander, 1972]. Однако позднее Гюнтер длиннее, 2.4–3.2 mm [Meinander, 1972]. [Günther, 1993] переизучил типы Coniopteryx pygmaea Распространение. Южная и Центральная Европа, и показал, что они идентичны C. parthenia sensu Турция, Закавказье. На Севером Кавказе отмечен в Meinander, 1972, а C. pygmaea sensu Meinander, 1972 Краснодарском крае, Адыгее и Ингушетии [Щуров, идентичен C. hoezeli H. Aspöck, 1964. Теперь эта новая Макаркин, 2017]. трактовка является общепризнанной. Таким образом, Coniopteryx parthenia sensu Макаркин, 1995 является Coniopteryx (Metaconiopteryx) lentiae C. pygmaea, а C. pygmaea sensu Макаркин, 1995 – Aspöck et Aspöck, 1964 C. hoezeli. Материал. *Республика Адыгея: 1♂, Майкопский р-н, долина В горных районах Северо-Западного Кавказа этот р. Пшеха, З склон г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, буково-пихтовый лес, вид самый многочисленный на хвойных. Большинство 1384 м н.у.м., кошение по нижним ветвям и подросту Abies, 2.07.2017 (48). Сетчатокрылообразные (Neuropterida) и скорпионницы (Mecoptera) с Северо-Западного Кавказа 303

Замечания. Поимка этого вида на хвойных ур. Новопокровский лес, 85 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Quercus, Fraxinus, Prunus, Ulmus pumila, 4.07.2018 (73); 1♂, 11♀, там довольно необычна, поскольку он встречается почти же, центр лесного массива и внутренние опушки, 87 м н.у.м., кошение исключительно на лиственных деревьях и кустарниках, по нижним ветвям Quercus, обильно заселенным имаго Calophya только как исключение на хвойных (например, на rhois (Löw, 1877) (Psylloidea: Calophyidae), 4.07.2018 (73); 1♂, 7♀, можжевельнике) [Monserrat, 2016b]. там же, 105 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Quercus, Fraxinus, Swida, 4.07.2018 (73); 3♂, 6♀, Усть-Лабинский р-н, долина р. Лаба, Распространение. Средняя и Южная Европа, З ст. Тенгинская, ур. Дубки, 91 м н.у.м., кошение в подлеске по Quercus, Грузия, Турция, Ливан, Израиль, Иран [Aspöck et al., Crataegus, Swida, Prunus, 8.07.2018 (59); 2♂, 3♀, Горячий Ключ, долина 2001]. В России ранее был известен только из Самарской р. Псекупс, В ст. Саратовская, дубовый лес, 57 м н.у.м., кошение по ветвям Quercus в очаге Corythucha arcuata и Altica quercetorum, области [Ковригина, 1978]. Впервые указывается для 10.07.2018 (14); 3♂, 12♀, Каневской р-н, долина р. Сухая Челбаска, Северного Кавказа. ур. Челбасский лес, 34 м н.у.м., кошение в подлеске по ветвям Quercus, Acer campestre L., Ulmus pumila, 12.07.2018 (17); 3♂, 1♀, Крыловский р-н, **Coniopteryx (Holoconiopteryx) haematica долина р. Балка Грузская, ур. Крыловский лес, северная опушка, 77 м н.у.м., кошение в подлеске по Quercus, Prunus, Cotinus, 12.07.2018 McLachlan, 1868 (66); 4♂, 5♀, там же, кошение в подлеске по Quercus, Acer tataricum, 12.07.2018 (66); 1♂, 4♀, там же, южная опушка массива, 59 м н.у.м., Материал. *Краснодарский кр.: 2♂, 3♀, Новопокровский р-н, кошение в подлеске по Quercus, Prunus, Cotinus, 12.07.2018 (66); 2♂, долина р. Корсун, ур. Новопокровский лес, рукотворный дубовый лес, 1♀, Павловский р-н, долина р. Бейсуг, В пос. Анапский, рукотворный 85 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Quercus, Fraxinus, Prunus, Ulmus лесной массив среди агроценозов, 43 м н.у.м., кошение по ветвям Ulmus pumila L., 4.07.2018 (73); 1♂, 3♀, Горячий Ключ, долина р. Псекупс, pumila, Celtis australis L., Prunus, 12.07.2018 (27); 1♂, Апшеронский р-н, В ст. Саратовская, дубовый лес, 57 м н.у.м., кошение по ветвям Quercus долина р. Пшеха, ниже х. Армянский, дубовый лес, 311 м н.у.м., кошение в очаге массового размножения клопа Corythucha arcuata (Say, 1832) по подросту Quercus petraea, 28.07.2018 (39); 1♂, 2♀, долина р. Цеце, и листоеда Altica quercetorum Foudras, 1860, 10.07.2018 (14); 1♂, 1♀, В х. Акредасов, дубовый лес, 175 м н.у.м., кошение по Quercus, Acer, Крыловский р-н, долина р. Балка Грузская, ур. Крыловский лес, под Prunus, Ulmus, 28.07.2018 (24); 5♀, водораздел р. Пшеха и р. Курджипс, пологом рукотворного многопородного леса, 59 м н.у.м., кошение по истоки р. Орлов Ерик, дубовый лес, 399 м н.у.м., кошение по Quercus, Quercus, Prunus, Cotinus, 12.07.2018 (66); 1♂, 1♀, Северский р-н, долина Acer, Sorbus torminalis, 24.08.2018 (54); 1♀, Северский р-н, долина р. Убин, г. Собер-Оашх, грабово-дубовый лес, 386 м н.у.м., кошение по р. Убин, вершина г. Собер-Оашх, грабово-дубовый лес, 674 м н.у.м., ♂ ♀ подросту Quercus и Fagus, 21.08.2018 (10); 1 , 1 , Апшеронский р-н, кошение под пологом по подросту Quercus и Carpinus, 21.08.2018 (11); водораздел р. Пшеха и р. Курджипс, истоки р. Орлов Ерик, дубовый лес, 2♀, там же, северный склон, 314 м н.у.м., грабово-дубовый лес, кошение 399 м н.у.м., кошение в подлеске по Quercus, Acer, Sorbus torminalis (L.) под пологом по подросту Quercus и Carpinus, 21.08.2018 (9). Crantz, 24.08.2018 (54). Замечания. В регионе этот вид не редок. Обитает преимущественно на дубах, Замечания. Он особенно характерен для дубрав, в том числе но может встречаться и на других лиственных деревьях, рукотворных и азональных. Интересна высокая а также (очень редко) на сосне и можжевельнике плотность его имаго, выявленная на нижних ветвях [Monserrat, Marín, 1992; Monserrat, 2016b]. опушечных дубов с высокой численностью крошечных Распространение. Широко распространен в имаго псиллиды Calophya rhois, которая трофически Европе; Марокко, Турция, Грузия [Aspöck et al., 2001; связана с Cotinus coggygria (личное сообщение Dobosz et al., 2018]. Впервые указывается для России. Е.С. Лабиной), произрастающей в подлеске этого искусственного насаждения в степной зоне. Возможно, Coniopteryx sp. именно эта многочисленная листоблошка могла Материал. Краснодарский кр.: 1♀, Лагонакское нагорье, плато привлекать S. aleyrodiformis, поскольку никаких иных Утюг, выше ур. Желоб, пер. Азишский, сосново-пихтовый лес с буком мелких членистоногих здесь одновременно встречено и кленом, 1726 м н.у.м., кошение по ветвям и подросту Abies, 9.05.2018 не было. (62); 1♀, Туапсинский р-н, долина р. Большой Пшиш, СЗ отрог г. Шесси, смешанный лес (пихта, бук, дуб, граб, каштан), 538 м н.у.м., Распространение. Широко распространенный кошение по Quercus, 5.06.2018 (18); 1♀, Геленджик, Молоканова палеарктический вид. На Севером Кавказе отмечен щель, среднее теч. р. Азмашах, грабово-дубовый лес, 111 м н.у.м., на только в Краснодарском крае [Щуров, Макаркин, 2017]. свет ламп ДРВ, 20.06.2018 (8); 1♀, Анапский р-н, п-ов Абрау, ГПЗУ, хр. Кузня, 446 м н.у.м., кошение по Pinus sylvestris, 27.06.2018 (2); 1♀, Новопокровский р-н, долина р. Корсун, ур. Новопокровский лес, Conwentzia pineticola Enderlein, 1905 массив и внутренние опушки, 87 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Quercus, обильно заселенным имаго Calophya rhois (Löw, 1877) Материал. *Краснодарский кр.: 1♀, Новороссийск, п-ов Абрау, Ю (Psylloidea), 4.07.2018 (73); 6♀, Усть-Лабинский р-н, долина р. Лаба, склон г. Орёл, выше оз. Сладкий Лиман, можжевелово-пушистодубовый З ст. Тенгинская, ур. Дубки, рукотворный лес с преобладанием Quercus шибляк, 54 м н.у.м., кошение по Juniperus excelsa Bieb., особь слетела с petraea, кошение по Quercus, Crataegus, Swida, Prunus, 91 м н.у.м., дерева в 19:30, 27.06.2018 (4). *Республика Адыгея: 1♂, Майкопский р-н, 8.07.2018 (59); 3♀, Апшеронский р-н, ГКХ, истоки р. Тугупс, каштаново- долина р. Пшеха, З склоны г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, верхняя опушка пихтово-буковый лес, 958 м н.у.м., кошение по ветвям Abies, Fagus, леса, 1557 м н.у.м., кошение по нижним ветвям и подросту Abies, Alnus, 10.07.2018 (38); 1♀, Крыловский р-н, долина р. Балка Грузская, 1.07.2018 (49); 1♂, 1♀, там же, КГПБЗ, С борт ручья Пшехасу, верхняя ур. Крыловский лес, 77 м н.у.м., кошение в подлеске по Quercus, Acer граница леса в субальпике, 1685 м н.у.м., кошение по ветвям одиночных tataricum L., 12.07.2018 (66); 2♀, долина р. Пшеха, ниже х. Армянский, Pinus sylvestris, 9.07.2018 (50). дубовый лес, 311 м н.у.м., кошение по подросту дуба, 28.07.2018 (39). Замечания. Внешне Conwentzia pineticola отличается от C. psociformis бурыми ногами и буроватой Semidalis aleyrodiformis (Stephens, 1836) крыловой мембраной, а также меньшим числом члеников усиков: у изученных самок 35, у самцов 36–37 Материал. Краснодарский кр.: 1♀, Туапсинский р-н, долина р. Большой Пшиш, СЗ отрог г. Шесси, 1364 м н.у.м., смешанный лес, (у C. psociformis 36–43 члеников у самок и 38–43 у самцов) кошение по нижним ветвям L., 5.06.2018 (28); 1♀, Сочи, [Meinander, 1972]. Обитает на различных хвойных. долина р. Дагомыс Восточный, выше с. Барановка, каштаново- Распространение. Довольно широко дубовый лес, 127 м н.у.м., кошение по Quercus, Carpinus и Castanea, 19.07.2018 (37); 4♀, Выселковский р-н, долина р. Челбас, С пос. Газырь, распространенный в Голарктике вид. В России лесополоса у железной дороги, 52 м н.у.м., кошение по ветвям Ulmus встречается в ряде областей европейской части, на и Quercus, 4.07.2018 (58); 9♀, Новопокровский р-н, долина р. Корсун, Северном Кавказе (Чечня), в Иркутской области, в 304 В.Н. Макаркин, В.И. Щуров

Якутии, на севере Хабаровского края и в Магаданской Распространение. Широко распространенный области [Захаренко, Кривохатский, 1993; Макаркин, бореальный голарктический вид. На Северном 1995; Рохлецова, 2001; Abrahám, 2000]. Впервые Кавказе отмечен в Краснодарском крае, Адыгее, указывается для Северо-Западного Кавказа. Ставропольском крае, Чечне, Ингушетии и Дагестане [Макаркин, Щуров, 2010, 2011; Щуров, Макаркин, 2017]. Conwentzia psociformis (Curtis, 1834) Wesmaelius malladai (Navás, 1925) Материал. *Республика Адыгея: 1♀, Майкопский р-н, г. Пшехо- Су, ур. Подчуб, под пологом пихтово-букового леса, 1491 м н.у.м., на Материал. Республика Адыгея: 2♂, 1♀, Майкопский р-н, КГПБЗ, свет ламп ДРВ, 2.05.2018 (49). долина р. Пшеха, З склоны г. Пшехо-Су, нижний пояс скал, 1845 м н.у.м, Замечания. У изученной самки ноги очень на свет ламп ДРВ, а также кошение ночью по низкорослым Acer светлые, крыловая мембрана почти не затенена и усики trautvetteri Medw., 30.06–1.07.2018 (51); 1♂, там же, верхняя граница леса в субальпике, 1685 м н.у.м., кошение по ветвям Pinus sylvestris, 9.07.2018 36-члениковые (30–35 члеников у самок C. peniticola) (50); 1♂, 1♀, там же, скалы в субальпийском поясе, 1842 м н.у.м., на свет [Meinander, 1972]. Обитает на различных лиственных ламп ДРВ, 11.08.2018 (51). деревьях и кустарниках. Распространение. Северная Европа (в том Распространение. Европа, Грузия, Турция, числе Мурманская область и Республика Коми), горы Израиль, Египет; интродуцирован в США и Новую Центральной и Южной Европы, северо-восток Турции, Зеландию [Meinander, 1972; Aspöck et al., 2001]. В России Армения, Алтай и Бурятия. На Северном Кавказе был отмечен в Самарской, Кировской и Белгородской отмечен в Краснодарском крае, Адыгее, Карачаево- областях и на Северном Кавказе (Ставропольский Черкесии, Северной Осетии, Чечне и Ингушетии край) [Захаренко, Кривохатский, 1993]. [Макаркин, Щуров, 2010, 2011; Щуров, Макаркин, 2013, 2017]. Семейство Sisyridae Sisyra nigra (Retzius, 1783) Hemerobius humulinus Linnaeus, 1758

Материал. Краснодарский кр.: 1 экз., Усть-Лабинский р-н, долина Материал. Краснодарский кр.: 1 экз., Апшеронский р-н, р. Лаба, выше ст. Некрасовская, остепненный луг на крутом берегу Лагонакское нагорье, плато Утюг, пер. Азишский, сосново-пихтовый надпойменной террасы, 78 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 27.04.2018 (42). лес, кошение по Abies, Pinus, 9.05.2018 (64); 1♀, ГКХ, истоки р. Тугупс, Замечания. Этот вид, видимо, более характерен смешанный лес, 958 м н.у.м., кошение по Castanea, Acer, Abies, для заболоченного левого берега Лабы, изобилующего 10.07.2018 (36); 3 экз., хр. Азиш-Тау, ур. Козлова Поляна, пихтово- буковый лес, 1250 м н.у.м., под пологом на свет ламп ДРВ, 18.08.2017 старицами, относимого к Красногвардейскому району (65); 1♂, Каневской р-н, долина р. Сухая Челбаска, ур. Челбасский лес Республики Адыгея, но он формально там пока не отмечен. (рукотворный), 34 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Quercus petraea, Распространение. Вид распространен в Северной Acer campestre, Ulmus pumila, 12.07.2018 (17); 1♂, Отрадненский р-н, Америке, Европе (в том числе в европейской части хр. Скалистый, долина р. Малый Тегинь, выше ст. Надёжная, грабово- буковый лес, 917 м н.у.м., кошение по Fagus и Carpinus, 6.09.2018 России), Грузии, Иране, Западной Сибири [Макаркин, (75). Республика Адыгея: 1♀, Майкопский р-н, З склон г. Пшехо-Су, Ручин, 2014]. На Северном Кавказе отмечен только в ур. Подчуб, под пологом пихтово-букового леса, 1524 м н.у.м., на свет Краснодарском крае [Макаркин, Щуров, 2015; Щуров, ламп ДРВ, 27.07.2017 (49). Макаркин, 2017]. Распространение. Широко распространенный голарктический вид. На Северном Кавказе известен из Семейство Osmylidae Краснодарского и Ставропольского краев, Кабардино- Osmylus elegantissimus Kozhanchikov, 1951 Балкарии, Ингушетии, Чечни и Дагестана [Макаркин, Щуров, 2010, 2011; Щуров, Макаркин, 2013, 2017]. Материал. Краснодарский кр.: 1♂, верховья р. Серебрячка, плато Черногорье, ур. Агулова балка, под пологом пихтового-букового леса, Hemerobius fujimotoi Nakahara, 1960 1400 м н.у.м., на свет лампы ДРВ, 28.05.1998 (38); 1♂, 1♀, ГКХ, КГПБЗ, долина р. Пслух, 960 м н.у.м., опушка смешанного леса на кордоне (Рис. 2) Пслух, на свет лампы ДРВ, 11–13.09.2017 (А.С. Бондаренко) (72); 1♂, долина р. Чвижепсе, дубово-каштановый лес в пойме, 365 м н.у.м., Материал. *Краснодарский кр.: 1♀, Апшеронский р-н, на свет ламп ДРВ в подлеске, 16.05.2018 (64). Республика Адыгея: 1 Лагонакское нагорье, плато Утюг, выше ур. Желоб, пер. Азишский, экз., Майкопский р-н, долина р. Цица ниже слияния рек Шумичка и сосново-пихтовый лес с буком и кленами, 1726 м н.у.м., кошение по Серебрячка, дубово-буково-пихтовый лес, пойменный самшитник на Pinus sylvestris, 9.05.2018 (62). галечнике, 617 м н.у.м., особь вспугнута под пологом леса, 2.07.2017 (46). Замечания. Вид характерен для темнохвойных Замечания. Охраняемый в Краснодарском крае и (пихта, ель), но может встречаться на других породах. Адыгее относительно редкий вид, активно летящий на На Главном Кавказском хребте вид отмечен только свет, что облегчает его целенаправленный поиск. в горах Западного Кавказа (Абхазия, Краснодарский Распространение. Вид известен из Грузии, Армении, край, Адыгея, Карачаево-Черкесия) в хвойных и Азербайджана, Турции и Южного Казахстана. Встречается смешанных лесах у верхней границы леса [Макаркин, во всех регионах Северного Кавказа, кроме Северной 1985; Макаркин, Щуров, 2011]. Пойманная нами особь Осетии и Дагестана [Макаркин, Щуров, 2010, 2015]. (рис. 2) была выкошена с сосны у верхней границы леса, но там же в массе произрастет и пихта Нордмана. Семейство Распространение. Вид имеет дизъюнктивный Wesmaelius nervosus (Fabricius, 1793) ареал: Западный Кавказ – Малый Кавказ и Восточная Сибирь – Япония, – хотя существует обоснованное Материал. Республика Адыгея: 4♀, Майкопский р-н, долина р. Пшеха, З склоны г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, под пологом пихтово- предположение, что он может обитать в горах Средней букового леса, 1491 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 2.05.2018 (49). Азии [Макаркин, Щуров, 2011: рис. 2]. Сетчатокрылообразные (Neuropterida) и скорпионницы (Mecoptera) с Северо-Западного Кавказа 305

Hemerobius contumax Tjeder, 1932 Курской, Белгородской и Тюменской областях, на Алтае, в Красноярском и Приморском краях [Макаркин, Материал. Республика Адыгея: 1♀, Майкопский р-н, З склон Клепиков, 2013]. На Северном Кавказе известен из г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, под пологом пихтово-букового леса с колхидским подлеском, 1524 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 27.07.2017 (49). всех регионов, кроме Адыгеи и Северной Осетии Распространение. Европа и Турция. На Северном [Макаркин, Щуров, 2010, 2015; Щуров, Макаркин, 2013, Кавказе известен из Краснодарского края и Адыгеи 2017]. [Макаркин, Щуров, 2010, 2015; Щуров, Макаркин, 2017]. Micromus paganus (Linnaeus, 1767) Hemerobius nitidulus Fabricius, 1777 Материал. Республика Адыгея: 1♂, 1♀, Майкопский р-н, З склон г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, под пологом пихтово-букового леса, ♀ Материал. Республика Адыгея: 1 , Майкопский р-н, долина 1524 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 9.07.2018 (49). р. Пшеха, З склоны г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, верхняя граница леса, 1685 м н.у.м., кошение по одиночным Pinus sylvestris, 9.07.2018 (50). Распространение. Широко распространенный Распространение. Широко распространенный палеарктический вид. На Северном Кавказе известен из палеарктический вид. На Северном Кавказе известен всех регионов, кроме Кабардино-Балкарии и Северной из Краснодарского края, Адыгеи, Северной Осетии, Осетии [Макаркин, Щуров, 2010; Щуров, Макаркин, Ингушетии и Чечни [Макаркин, Щуров, 2011, 2015; 2013, 2017]. Щуров, Макаркин, 2017]. Sympherobius elegans (Stephens, 1836) Hemerobius lutescens Fabricius, 1793 (Рис. 4)

Материал. Краснодарский кр.: 1 экз., Апшеронский р-н, Материал. Краснодарский кр.: 1 экз., Апшеронский р-н, хр. Азиш-Тау, ур. Козлова Поляна, пихтово-буковый лес, 1250 м н.у.м., хр. Азиш-Тау, ур. Козлова Поляна, пихтово-буковый лес, 1250 м н.у.м., ♀ под пологом на свет ламп ДРВ, 18.08.2017 (65). под пологом на свет ДРВ, 18.08.2017 (65); 1 , долина р. Цеце, окр. х. Акредасов, дубовый лес, 175 м н.у.м., кошение на опушке и в подлеске Распространение. Европа, Армения, Турция. На по ветвям Quercus, 28.07.2018 (24); 2♀, Усть-Лабинский р-н, долина Северном Кавказе известен из всех регионов, кроме р. Лаба, выше ст. Некрасовская, остепненный луг у южной опушки Карачаево-Черкесии и Северной Осетии [Макаркин, рукотворного массива Morus nigra L. на крутом берегу надпойменной Щуров, 2010, 2011; Щуров, Макаркин, 2013]. террасы, 78 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 27.04.2018 (44); 1 экз., Сочи, в пойме р. Чвижепсе, дубово-каштановый лес с колхидским подлеском, 365 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 16.05.2018 (64); 1 экз. Геленджик, Hemerobius micans Olivier, 1792 Молоканова щель, среднее теч. р. Азмашах, грабово-дубовый лес, 111 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 20.06.2018 (8) (рис. 4). Материал. Краснодарский кр.: 1♀, Туапсинский р-н, долина Распространение. Европа, Турция, Азербайджан р. Большой Пшиш, СЗ отрог г. Шесси, смешанный лес (пихта, бук, и Казахстан. На Северном Кавказе известен из клен), 1429 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Abies, 5.06.2018 (29); 1♀, Апшеронский р-н, хр. Азиш-Тау, ур. Козлова Поляна, пихтово- Краснодарского края, Адыгеи, Ингушетии и Чечни буковый лес, 1250 м н.у.м., под пологом на свет ламп ДРВ, 24.08.2018 [Макаркин, Щуров, 2011, 2015; Щуров, Макаркин, 2013, (65); 1♀, Отрадненский р-н, хр. Скалистый, долина р. Малый Тегинь, 2017]. выше ст. Надёжная, грабово-буковый лес, 917 м н.у.м., кошение по подросту Fagus и Carpinus, 6.09.2018 (75). Республика Адыгея: 2♂, 1♀, Майкопский р-н, долина р. Кужетка, пихтово-буковый лес с Buxus Sympherobius pygmaeus (Rambur, 1842) colchica в подлеске, 448 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Fagus, (Рис. 5) 8.07.2018 (45). Замечания. Характерный вид буковых лесов. Материал. Краснодарский кр.: 6 экз., Геленджик, Молоканова Интересно отменить, что у особей Hemerobius micans щель, нижнее теч. р. Азмашах, грабово-дубовый лес, 111 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 20.06.2018 (8) (рис. 5); 1♂, 1♀, Новороссийск, п-ов Абрау, с Украины (Закарпатская область) не было отмечено ни Сухая щель, пушистодубово-можжевеловый лес, 14 м н.у.м., на свет одной аномалии в жилковании [Makarkin et al., 2016: ламп ДРВ, 27–28.06.2018 (5); 3 экз., Горячий Ключ, долина р. Псекупс, table 1], что само по себе необычно. Однако у самки, В ст. Саратовская, дубовый лес, 57 м н.у.м., кошение по нижним собранной на северо-западных отрогах горы Шесси, ветвям дуба в очаге массового размножения Corythucha arcuata и Altica quercetorum, 10.07.2018 (14); 1♀, Сочи, долина р. Аше, окр. имеются лишь две самостоятельные ветви RP (= Rs), а пос. Водопадный, грабово-дубовый лес, 41 м н.у.м., кошение ветвям не три, как у всех нормальных особей. Quercus pubescens и Carpinus orientalis, 19.07.2018 (15). Распространение. Европа, Закавказье, Турция, Распространение. Западнопалеарктический Ливан и Северный Иран. На Северном Кавказе отмечен вид, распространенный на востоке до Казахстана и в Краснодарском крае, Адыгее, Ставропольском крае, Туркменистана. На Северном Кавказе известен из Ингушетии и Дагестане [Макаркин, Щуров, 2011, 2015; Краснодарского края, Адыгеи, Чечни и Дагестана Щуров, Макаркин, 2013]. [Макаркин, Щуров, 2011, 2015; Щуров, Макаркин, 2013, 2017]. Micromus variegatus (Fabricius, 1793) (Рис. 3) Sympherobius pellucidus (Walker, 1853)

♂ Материал. Краснодарский кр.: 1 , Геленджик, Молоканова щель, Материал. Республика Адыгея: 1♀, Майкопский р-н, КГПБЗ, среднее течение р. Азмашах, грабово-дубовый лес, 111 м н.у.м., на свет долина р. Пшеха, З склоны г. Пшехо-Су, нижний пояс скал, 1845 м н.у.м., ламп ДРВ, 20.06.2018 (8). на свет ламп ДРВ, а также кошение по ветвям одиночных Acer Распространение. Европа, Закавказье, Турция, trautvetteri на осыпи, 30.06–1.07.2018 (51). Иран, Казахстан, Северо-Восточный Китай, Корея, Распространение. Европа, Турция, Армения. В Япония, Канада [Aspöck et al., 2001; Klimaszewski et al., России известен только из Адыгеи [Макаркин, Щуров, 2009]. В России отмечен (кроме Кавказа) в Ярославской, 2011]. 306 В.Н. Макаркин, В.И. Щуров

Семейство Chrysopidae Курджипс, буково-пихтовый лес, 1475 м н.у.м., кошение по нижним ветвям крупных Abies, 26.08.2018 (63); 1♂, там же, опушка пихтово- Hypochrysa elegans (Burmeister, 1839) букового леса, 1230 м н.у.м., кошение по подросту Abies, 26.08.2018 (65). Республика Адыгея: 1 экз., Майкопский р-н, долина р. Пшеха, ♀ Материал. Краснодарский кр.: 1 , Усть-Лабинский р-н, долина 1300 м н.у.м., кошение по Abies, 19.09.2017 (47); 1♂, 2♀, З склон г. Пшехо- р. Лаба, окр. ст. Некрасовская, остепненный луг у южной опушки Су, ур. Подчуб, под пологом пихтово-букового леса с колхидским рукотворного массива Morus nigra L. на крутом берегу надпойменной подлеском, 1275 м н.у.м., кошение по Abies, 24.08.2017 (47); 1♂, 2♀, там террасы, 78 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 27.04.2018 (42). же, пихтово-буковый лес, 1322 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Распространение. Центральная и Южная Европа, Abies, 11.08.2018 (48). Закавказье, Турция, Иран. В России известен только на Замечания. Типичный вид старых пихтовых Северном Кавказе: Краснодарский и Ставропольский и буково-пихтовых лесов. Он обитает почти края и Дагестан [Макаркин, Щуров, 2010, 2015; Щуров, исключительно на хвойных; имаго выкашиваются Макаркин, 2013]. преимущественно с нижних ветвей крупных пихт. На свет летит слабо. Italochrysa italica (Rossi, 1790) Распространение. Европа, Турция [Aspöck et al., 2001; Canbulat, 2007]. В России встречается только Материал. Краснодарский кр.: 1♂ (коллекция АГУ), Геленджик, на Северо-Западном Кавказе (Краснодарский и долина р. Мезыб, окр. с. Дивноморское, 30 м н.у.м., 30.07.2012 (М.И. Шаповалов) (7); 1♀, п-ов Абрау, ур. Сухая щель, грабинниково- Ставропольский края, Адыгея) [Макаркин, Щуров, дубовый шибляк с Juniperus excelsa, кошение днем по Quercus 2011]. pubescens, 28.06.2018 (4). Замечания. Редкий в Краснодарском крае вид, Chrysotropia ciliata (Wesmael, 1841) встречающийся в узкой полосе причерноморских сухих лесов с преобладанием дуба пушистого, с Материал. Краснодарский кр.: 1♀, Апшеронский р-н, хр. Азиш- ветвей которого чаще всего и слетают эти крупные Тау, ур. Козлова Поляна, пихтово-буковый лес, 1250 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 18.08.2017 (65); 2♂, 2♀, Сочи, долина р. Чвижепсе, дубово- златоглазки. каштановый лес в пойме, 365 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 16.05.2018 (64); Распространение. Южная и Центральная 1♂, Туапсинский р-н, долина р. Большой Пшиш, ЮЗ отрог г. Шесси, Европа, Закавказье, Турция, Египет, Израиль, Ливан, смешанный лес (пихта, бук, дуб, граб, липа, клен, ольха) с вечнозеленом Ирак, Туркменистан и Таджикистан [Луппова, 1959; колхидским подлеском, 900 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 31.05.2018 (20); 1♂, там же, СЗ отрог г. Шесси, смешанный лес, 1364 м н.у.м., кошение Захаренко, Кривохатский, 1993; Aspöck et al., 2001]. по нижним ветвям Salix caprea, 5.06.2018 (28); 3♂, долина р. Пшеха, В России распространен только в Краснодарском крае ниже х. Армянский, дубовый лес, 311 м н.у.м., кошение по подросту [Макаркин, Щуров, 2010]. Quercus, 28.07.2018 (39). Республика Адыгея: 1♂, Майкопский р-н, долина р. Кужетка, подлесок пихтово-букового леса с Buxus colchica, 448 м н.у.м., кошение по Fagus, 8.07.2018 (45); 1♀, долина р. Пшеха, Nineta flava (Scopoli, 1763) З склоны г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, 1524 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 8–9.09.2018 (49). Материал. Краснодарский кр.: 1♂, хр. Азиш-Тау, ур. Козлова Распространение. Широко распространенный Поляна, пихтово-буковый лес, 1250 м н.у.м., под пологом на свет ламп ДРВ, 18.08.2017 (65); 1♀, Апшеронский р-н, ГКХ, истоки р. Тугупс, палеарктический вид. На Северном Кавказе известен смешанный лес, 970 м н.у.м., кошение по Acer, 10.07.2018 (36). из Краснодарского и Ставропольского краев, Адыгеи, Республика Адыгея: 1♂, 1♀, Майкопский р-н, З склон г. Пшехо-Су, Ингушетии и Чечни [Макаркин, Щуров, 2011; Щуров, ур. Подчуб, под пологом пихтово-букового леса, 1524 м н.у.м., на свет Макаркин, 2013]. ламп ДРВ, 9.07.2018 (49). Ранее было отмечено, что в роде Замечания. Chrysopa pallens (Rambur, 1838) Nineta Navás, 1912 у самцов жилки иногда утолщены [Brooks, Barnard, 1990: 229]. Действительно, Материал. Краснодарский кр.: 1 экз., Павловский р-н, долина большинство ветвей субкосты у изученных самцов р. Бейсуг, окр. пос. Анапский, лесополоса среди агроценозов, Nineta flava утолщено [Макаркин, Ручин, 2019: рис. 4], 43 м н.у.м., кошение по ветвям Ulmus, Celtis, Prunus, 12.07.2018 (27); 1♀, Кущёвский р-н, долина р. Ея, окр. ст. Кущёвская, лесополоса тогда как они не утолщены у изученных самок. Следует, вдоль железной дороги, кошение по ветвям Quercus, 12.07.2018 (33); однако, заметить, что у самцов по крайней мере трех 1♀, Крыловский р-н, долина р. Балка Грузская, ур. Крыловский лес, других видов рода, Nineta pallida (Schneider, 1846), рукотворный лиственный лес сложного состава с преобладанием нескольких видов и географических форм дуба, 77 м н.у.м., кошение в N. vittata (Wesmael, 1841) и N. alpicola Kuwayama, 1956 подлеске по Quercus, Acer, Cotinus, 12.07.2018 (66). (= N. carinthiaca (Hölzel, 1965)), утолщение ветвей Замечания. В настоящее время признаются субкосты не отмечено, хотя первый соавтор этой статьи валидными два близких вида этого комплекса, изучил большой материал по двум последним видам. оба распространенные в Европе: Chrysopa pallens Возможно, подобный половой диморфизм характерен (= Ch. septempunctata Wesmael, 1841) и Ch. gibeauxi только для N. flava. (Leraut, 1989) [Canard, ­ierry, 2017]. Все приведенные Распространение. Европа, Турция [Макаркин, выше и ранее отмеченные экземпляры из Ручин, 2019]. На Северном Кавказе известен из Краснодарского края [Макаркин, Щуров, 2011, 2015; Краснодарского края, Адыгеи, Кабардино-Балкарии, Щуров, Макаркин, 2013, 2017] относятся к Ch. pallens Ингушетии, Чечни и Дагестана [Щуров, Макаркин, [см. также Макаркин, Ручин, 2019]. 2017]. Вид широко распространен в равнинных и низкогорных районах Краснодарского края. Обитает Nineta pallida (Schneider, 1846) на лиственных деревьях, в кустарниковых зарослях и

Материал. *Краснодарский кр.: 1♂, Апшеронский р-н, хр. Азиш- реже в травянистом ярусе, в том числе в агроценозах Тау, ур. Козлова Поляна, пихтово-буковый лес, 1250 м н.у.м., под (в садах, на полях), в полезащитных и придорожных пологом на свет ламп ДРВ, 24.08.2018 (65); 1♀, там же, истоки р. Сухой лесополосах. Сетчатокрылообразные (Neuropterida) и скорпионницы (Mecoptera) с Северо-Западного Кавказа 307

Рис. 2–7. Представители семейств Hemerobiidae и Chrysopidae (Neuroptera) и Sialidae (Megaloptera), обитающие в Краснодарском крае. 2 – самка Hemerobius fujimotoi Nakahara, 1960 (местонахождение 62); 3 – самец Micromus variegatus (Fabricius, 1793) (местонахождение 8); 4 – Sympherobius elegans (Stephens, 1836) (местонахождение 8); 5 – S. pygmaeus (Rambur, 1842) (местонахождение 8); 6 – Chrysopa fuscostigma Еsben- Petersen, 1933 (местонахождение 31); 7 – самец Sialis zhiltzovae Vshivkova, 1985 (местонахождение 60). Figs 2–7. Representatives of families Hemerobiidae and Chrysopidae (Neuroptera) and Sialidae (Megaloptera) from Krasnodar Region of Russia. 2 – Hemerobius fujimotoi Nakahara, 1960, female (locality 62); 3 – Micromus variegatus (Fabricius, 1793), male (locality 8); 4 – Sympherobius elegans (Stephens, 1836) (locality 8); 5 – S. pygmaeus (Rambur, 1842) (locality 8); 6 – Chrysopa fuscostigma Еsben-Petersen, 1933 (locality 31); 7 – Sialis zhiltzovae Vshivkova, 1985 (locality 60).

Распространение. Широко распространенный Распространение. Широко распространенный палеарктический вид [Tsukaguchi, 1995]. На Северном палеарктический вид, но в Восточной Азии встречается Кавказе известен из Краснодарского края, Ингушетии локально. На Северном Кавказе известен из и Чечни [Макаркин, Щуров, 2011, 2015; Щуров, Краснодарского и Ставропольского краев, Ингушетии Макаркин, 2013, 2017]. и Чечни [Макаркин, Щуров, 2010, 2011, 2015; Щуров, Макаркин, 2013, 2017]. Chrysopa perla (Linnaeus, 1758) Chrysopa fuscostigma Еsben-Petersen, 1933 Материал. Краснодарский кр.: 1♀, Апшеронский р-н, долина р. Гогопсе, ЮЗ отрог г. Шесси, буково-пихтовый субклимаксовый лес, (Рис. 6) 1105 м н.у.м., кошение в подлеске, 1.06.2018 (25); 1♀, Павловский р-н, долина р. Бейсуг, окр. пос. Анапский, лесополоса среди агроценозов, Материал. Краснодарский кр.: 1♀, Апшеронский р-н, долина 43 м н.у.м., кошение по ветвям Ulmus, Celtis, Prunus, 12.07.2018 (27). р. Гогопсе (истоки), водораздел З отрога г. Шесси, парковый буково- 308 В.Н. Макаркин, В.И. Щуров

Рис. 8–9. Самка предположительно Cunctochrysa albolineata (Killington, 1935), собранная на полуострове Абрау (местонахождение 5). 8 – голова и грудь сверху; 9 – экземпляр сбоку. Масштабная линейка 1 мм. Figs 8–9. Female of presumable Cunctochrysa albolineata (Killington, 1935) collected in the Abrau Peninsula (locality 5). 8 – head and thorax, dorsal view; 9 – specimen in lateral view. Scale bar 1 mm.

кленовый лес с преобладанием Acer trautvetteri, 1583 м н.у.м., 2.06.2018 ламп ДРВ, 27–28.06.2018 (5); 1♂, 4♀, там же, г. Орёл, 54 м н.у.м., клиф, (30); 3♂, 3♀, там же, г. Шесси, субальпийские луга южного склона, можжевелово-дубовый шибляк с грабинником и Colutea cilicica Boiss. 1600–1802 м н.у.м., 2–4.06.2018 (31) (рис. 6). Республика Адыгея: et Balansa, в подлеске и на опушках, 28.06.2018 (4). ♀ 1 , Майкопский р-н, КГПБЗ, долина р. Пшеха, З склоны г. Пшехо- Замечания. Самка, собранная на полуострове Су, ур. Подчуб, нижний пояс скал, 1845 м н.у.м., на свет ламп ДРВ и ночное кошение по Acer trautvetteri, 30.06–1.07.2018 (51); 1♂, там же, Абрау, сильно отличается от других (в том числе из верхняя граница леса, луга, 1557 м н.у.м., 1.07.2018 (49); 1♂, 1♀, там других регионов) мелкими размерами (длина переднего же, субальпийские луга у осыпей и скал, 1780 м н.у.м., вечерний лёт, крыла 9.2 мм) и окраской жилок (рис. 8, 9). Она 9.07.2018 (51); 1♂, там же, СЗ отрог выше 1800 м н.у.м., субальпийские луга, 27.07.2017 (52); 1♂, там же, субальпийские луга, 1700 м н.у.м., больше похожа на Cunctochrysa cosmia (Navás, 1918), 11.08.2018 (51). жилкование которого более темное [Dobosz, Junkiert, Замечания. Типичный вид горных разнотравных 2018: fig. 1]. Однако возвратная жилка (базальная ветвь лугов. Обычен в субальпийской зоне, но встречается субкосты) у этой самки зеленая, что характерно для и на прогалинах у верхней границы леса, поросших C. albolineata, а не для C. cosmia. Мы предварительно высокотравьем. относим этот необычный экземпляр к C. albolineata, Распространение. Россия (Краснодарский край, поскольку другие признаки этому не противоречат Республика Адыгея), Грузия и Турция [Макаркин, (окраска головы и груди) [см. также Макаркин, Ручин, Щуров, 2015; Щуров, Макаркин, 2017]. 2019]. Распространение. Преимущественно Cunctochrysa albolineata (Killington, 1935) южнопалеарктический вид, распространенный от (Рис. 8, 9) Великобритании до Японии [Aspöck et al., 2001; Dobosz et al., 2019]. На Северном Кавказе известен из Материал. Краснодарский кр.: 1♀, Новороссийск, п-ов Абрау, Краснодарского и Ставропольского краев, Адыгеи, Сухая щель, пушистодубово-можжевеловый лес, 14 м н.у.м., на свет Ингушетии, Чечни и Дагестана [Макаркин, Щуров, 2011].

Peyerimhoffina gracilis (Schneider, 1851) (Рис. 10, 11)

Материал. *Краснодарский кр.: 1 экз. (19), 1 личинка (18), Туапсинский р-н, долина р. Большой Пшиш, СЗ отрог г. Шесси, смешанный лес (пихта, бук), 571 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Abies, 5.06.2018. *Республика Адыгея: 1♂, Майкопский р-н, З склоны г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, смешанный лес, 1300 м н.у.м., кошение по Abies, 19.09.2017 (47); 1♂, там же, 1256 м н.у.м., кошение по Abies, 29.09.2017 (47); 2 личинки, там же, 1413 м н.у.м., буково-пихтовый лес, кошение по ветвям и подросту Abies, 1.07.2018 (48). Замечания. Взрослые особи внешне хорошо отличаются от других златоглазок, известных из России и сходных размерами и окраской головы, темной травянисто-зеленой окраской, узкими крыльями с желтовато-зеленой или зеленой птеростигмой и заостренным на конце брюшком как самок, так и Рис. 10–11. Самец и личинка Peyerimhoffina gracilis (Schneider, самцов (рис. 10). Личинки также хорошо отличаются от 1851), собранные в буково-пихтовых лесах урочища Подчуб (местонахождения 47, 48). других личинок, в частности окраской головы (рис. 11) 10 – самец сбоку; 11 – личинка сверху. Масштабные линейки 1 мм. [см. также Díaz-Aranda, Monserrat, 1995: figs 13, 25]. Figs 10–11. Male and larva of Peyerimhoffina gracilis (Schneider, Этот вид обитает почти исключительно на 1851) collected in beech-fir forests of the Podchub natural boundary (localities 47, 48). хвойных, предпочитая пихты и ели, значительно реже 10 – male, lateral view; 11 – larva, dorsal view. Scale bars 1 mm. на соснах [Monserrat, Marín, 1994; Szentkirályi, 2001; Сетчатокрылообразные (Neuropterida) и скорпионницы (Mecoptera) с Северо-Западного Кавказа 309

Рис. 12–16. Самец Chrysoperla mutata (McLachlan, 1898) и его местообитания в урочище Крыловский лес (местонахождение 66). 12 – голова и грудь спереди; 13 – экземпляр сбоку; 14 – коготок передней лапки сбоку; 15 – северная опушка рукотворного лиственного Крыловского леса, 6 июня 2015 года; 16 – участок Крыловского леса с преобладанием свидины, бересклета и скумпии в подлеске, 11 мая 2013 года. Figs 12–16. Male of Chrysoperla mutata (McLachlan, 1898) and its habitats in the Krylovskiy Forest natural boundary (locality 66). 12 – head and thorax, frontal view; 13 – specimen in lateral view; 14 – claw of protarsus, lateral view; 15 – northern edge of the planted deciduous Krylovskiy Forest, 6 June 2015; 16 – an area of the Krylovskiy Forest with a predominance of Swida, Euonymus and Cotinus in the undergrowth, 11 May 2013.

Czechowska, 2002]. Златоглазки имеют специфический ветвям Quercus, Acer, Ulmus, 12.07.2018 (17); 4♂, 4♀, Павловский р-н, полет при вспугивании: они медленно и недалеко долина р. Бейсуг, окр. пос. Анапский, лесополоса среди агроценозов, 43 м н.у.м., кошение по ветвям Ulmus, Celtis, Prunus, 12.07.2018 (27); перепархивают. 1♂, Крыловский р-н, долина р. Балка Грузская, ур. Крыловский лес, Ковригина [1978: 750] пишет, что собрала рукотворный лесной массив в степной зоне, северная часть, 77 м н.у.м., 2 экземпляра в Самарской области «на поляне c кошение в подлеске по Quercus, Acer, Cotinus, 12.07.2018 (66); 1♀, там же, юго-западная опушка, 59 м н.у.м., 12.07.2018 (66); 1♀, Северский р-н, малиной и ежевикой в лиственном лесу, по склонам долина р. Убин, г. Собер-Оашх, грабово-дубовый лес, 386 м н.у.м., Жигулей на травянистой растительности», что совсем кошение под пологом по подросту Quercus и Fagus, 21.08.2018 (10). не характерно для этого вида. Распространение. Широко распространенный Распространение. Большая часть Европы (без палеарктический вид. На Северном Кавказе известен из северных регионов), Северная Африка, Грузия, Турция Краснодарского и Ставропольского краев, Кабардино- [Aspöck et al., 2001; Duelli et al., 2015]. В России ранее Балкарии, Ингушетии, Чечни и Дагестана [Захаренко, отмечался в Самарской области [Ковригина, 1978] Кривохатский, 1993; Abrahám, 2000; Макаркин, Щуров, и в Карачаево-Черкесии (Тебердинский заповедник) 2015; Щуров, Макаркин, 2013, 2017]. [Дорохова, 1979], но Захаренко и Кривохатский [1993] замечали, что не видели ни одного экземпляра из Pseudomallada flavifrons (Brauer, 1851) европейской части России. Таким образом, это первое достоверное указание вида для России. Материал. Краснодарский кр.: 1♂, Белореченский р-н, долина р. Дунайка, ниже х. Дунайский, дубовый лес, 140 м н.у.м., днем активны в подлеске, 5.11.2017 (41); 3♀, Геленджик, Молоканова щель, Pseudomallada prasinus (Burmeister, 1839) среднее теч. р. Азмашах, грабово-дубовый лес, 111 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 20.06.2018 (8); 1♂, там же, 28.09.2018 (8); 1♀, Новороссийск, Материал. Краснодарский кр.: 1♀, Геленджик, Молоканова щель, хр. Маркотх, щель Батырь, В пос. Верхнебаканский, лесные культуры среднее теч. р. Азмашах, грабово-дубовый лес, 111 м н.у.м., на свет Pinus nigra pallasiana (D. Don) Holmboe в ковыльно-асфоделиновой ламп ДРВ, 20.06.2018 (8); 2♀, Каневской р-н, долина р. Сухая Челбаска, степи, 304 м н.у.м., кошение по молодым Pinus, 28.06.2018 (6); 1♀, ур. Челбасский лес (рукотворное), 34 м н.у.м., кошение в подлеске по Новопокровский р-н, долина р. Корсун, ур. Новопокровский лес, 310 В.Н. Макаркин, В.И. Щуров

воздуха в июле – августе 2014 и 2015 годов превышала +38 °С (по нашим наблюдениям, +41 °С), в июле 2016–2017 годов и в июне 2018 года температура была выше +39 °С. Максимальная дневная температура в этой зоне опускается ниже +30 °С только к середине сентября. Урочище Крыловский лес, созданное в середине XX века на залежных землях, прежде покрытых степью, представляет Рис. 17. Перезимовавшая самка Chrysoperla carnea (Stephens, средневозрастной лесной массив с преобладанием 1836) под корой бука на хребте Азиш-Тау (местонахождение 65), 13 разных видов и экологических форм дуба, гледичии, февраля 2019 года. ясеня и очень густым подлеском из бересклета, Fig. 17. Overwintered female of Chrysoperla carnea (Stephens, 1836) under bark of beech in the Azish-Tau Ridge (locality 65), 13 February 2019. свидины и скумпии (рис. 15, 16). Сбор насекомых здесь проводится с 2012 года, но Chrysoperla mutata собран впервые. В настоящее время лес связан практически рукотворный дубовый лес в степной зоне, 87 м н.у.м., кошение по непрерывными полезащитными и придорожными нижним ветвям Quercus, 4.07.2018 (73); 2♂, 1♀, Северский р-н, долина р. Убин, г. Собер-Оашх, грабово-дубовый лес, 386 м н.у.м., кошение по лесополосами (менее сложного породного состава) подросту Quercus и Fagus, 21.08.2018 (10). с коренными лесами в низовьях Дона и Кубани, что Распространение. Северная Африка, Европа, позволяет рассчитывать на находки этого вида и в Ливан, Израиль, Турция, Грузия и Иран. На Северном других пунктах региона. Кавказе отмечен в Краснодарском крае и Дагестане Распространение. Северная Африка, Южная [Щуров, Макаркин, 2017]. Европа (Испания, Крит, острова Греции), Грузия, Южная Азия от Турции и Израиля до Пакистана **Chrysoperla mutata (McLachlan, 1898) и Западной Индии [Brooks, 1994; Duelli et al., 2015; (Рис. 12–14) Monserrat, 2016a]. Впервые отмечается в России.

Материал. *Краснодарский кр.: 1♂, Крыловский р-н, долина Chrysoperla carnea (Stephens, 1836), s. l. р. Балка Грузская, ур. Крыловский лес (рукотворный, многопородный, (Рис. 17) лиственный с преобладанием дуба), 77 м н.у.м., кошение в подлеске по Quercus, Acer, Cotinus, 12.07.2018 (66). Материал. Краснодарский край: 1♀, Апшеронский р-н, Замечания. Chrysoperla mutata хорошо хр. Лагонакский, окр. х. Гуамка, дубово-грабовый лес, 400 м н.у.м., отличается от всех других западнопалеарктических днем, 6.10.2017 (55); 2♀, Краснодар, 24 м н.у.м., в помещении на окнах, 3.11.2017 (13); 2♀, долина р. Цеце, окр. ст. Линейная, дубовый лес, видов рода характерной окраской жилок, в частности 144 м н.у.м., кошение по подросту Quercus, 5.11.2017 (16); 1♂, 2♀, целиком темными ступенчатыми сериями и темными Белореченский р-н, долина р. Дунайка, ниже х. Дунайский, дубовый лес, окончаниями других поперечных жилок на переднем 140 м н.у.м., активны днем, 5.11.2017 (41); 1♂, 3♀, Усть-Лабинский р-н, крыле (рис. 13). Другие признаки этого экземпляра долина р. Лаба, З ст. Тенгинская, ур. Дубки, рукотворный дубовый лес, 91 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, +17 °C, 9.11.2017 (59); 1♀, Сочи, (например, окраска головы и переднеспинки, форма долина р. Чвижепсе, дубово-каштановый колхидский лес в пойме, коготков: рис. 12, 14) в целом хорошо соответствуют 365 м н.у.м., на свет ДРВ, 16.05.2018 (64); 1♀, Туапсинский р-н, долина описанию вида в работе Брукса [Brooks, 1994], хотя эти р. Малый Пшиш, г. Шесси, субальпийский луг, 1600 м н.у.м., 4.06.2018 (31); 1♂, 4♀, Геленджик, Молоканова щель, среднее теч. р. Азмашах, признаки довольно сильно варьируют у этого вида. грабово-дубовый лес, 111 м н.у.м., на свет ДРВ, 20.06.2018 (8); 1♀, Находка этого термофильного и ксерофильного Анапский р-н, п-ов Абрау, ГПЗУ, хр. Кузня, 446 м н.у.м., кошение по вида на севере Краснодарского края является Quercus pubescens, 27.06.2018 (3); 1♀, Новороссийск, п-ов Абрау, Сухая совершенно неожиданной; это самое северное щель, дубово-можжевеловый лес на приморском клифе, на свет ламп ДРВ, 27–28.06.2018 (5); 1♀, Новопокровский р-н, долина р. Корсун, местонахождение вида. В Южной Европе этот вид очень ур. Новопокровский лес, рукотворный лес с преобладанием дуба, редок [Canard et al., 2007]. На острове Крит его собирали 85 м н.у.м., кошение по нижним ветвям Fraxinus excelsior L., 4.07.2018 в основном на оливковых деревьях [Canard, 2003]. (73); 2♀, ГКХ, истоки р. Тугупс, каштаново-пихтово-буковый лес, 735 м н.у.м., кошение по ветвям Abies и Fagus, 10.07.2018 (35); 1♀, ГКХ, В Испании он приурочен к жарким средиземноморским истоки р. Тугупс, грабово-пихтово-буковый лес, 1000 м н.у.м., кошение районам и обитает на Eucalyptus globulus Labill, Quercus по ветвям Castanea и Fagus, 10.07.2018 (36); 1♀, Каневской р-н, долина rotundifolia Lam, Ceratonia siliqua L. и Olea europaea L. р. Сухая Челбаска, ур. Челбасский лес, 34 м н.у.м., кошение в подлеске [Monserrat, Marín, 1994; Monserrat, 2016a]. В Иране по ветвям Quercus, Acer, Ulmus, 12.07.2018 (17); 1♀, долина р. Аше, окр. пос. Водопадный, грабово-дубовый лес, 41 м н.у.м., кошение по вид довольно обычен и встречается на Pinus eldarica Quercus, Carpinus, 19.07.2018 (15); 1♀, долина р. Восточный Дагомыс, (Medw.) Silba, Robinia pseudoacacia L. и Salix sp. [­ierry выше с. Барановка, каштаново-дубовый лес, 127 м н.у.м., кошение в et al., 2004]. В пустынных и полупустынных регионах подлеске по Quercus, Carpinus и Castanea, 19.07.2018 (37); 2♀, долина и странах Ch. mutata встречается в оазисах и обитает р. Мзымта, ущ. Ахштырь, выше с. Казачий Брод, пойменный лес, 66 м н.у.м., кошение по Acer, Ulmus, Alnus, Staphylea, 19.07.2018 (61); на различных лиственных деревьях и кустарниках, в 1♀, Кущёвский р-н, долина р. Ея ниже ст. Кисляковская, ур. Бугелы основном вечнозеленых (Phoenix, Nerium, Eucalyptus, (Бугеры), балка Глубокая, целинная степь, 49 м н.у.м., кошение по Ulmus , Olea, Prunus, Quercus), и на хвойных Pinus и pumila, 12.08.2018 (34); 1♂, 1♀, Северский р-н, долина р. Убин, г. Собер- Оашх, грабово-дубовый лес, 386 м н.у.м., кошение в подлеске, 21.08.2018 Tetraclinis [Monserrat, 2016a]. Предполагается, что он (10); 3♀, там же, грабово-дубовый лес на вершине, 674 м н.у.м., кошение зимует на имагиальной стадии [Canard, ­ierry, 2014]. по подросту Quercus, Carpinus, Staphylea pinnata L., 21.08.2018 (11); Крыловский – летом знойный и сухой район 1♀, хр. Азиш-Тау, ур. Козлова Поляна, 1250 м н.у.м., под пологом ♀ Краснодарского края, умеренно холодный и пихтово-букового леса, на свет ламп ДРВ, 24.08.2018 (65); 1 , там же, под корой Fagus, 13.02.2019 (65); 1♂, 2♀, хр. Азиш-Тау, истоки р. Сухой малоснежный зимой. В долине реки Ея, по данным Курджипс, буково-пихтовый лес, 1475 м н.у.м., кошение по нижним метеопункта в станице Кущёвская, дневная температура ветвям крупных Abies, 26.08.2018 (63); 1♂, 4♀, Отрадненский р-н, Сетчатокрылообразные (Neuropterida) и скорпионницы (Mecoptera) с Северо-Западного Кавказа 311

Рис. 18–21. Личинка Dendroleon pantherinus (Fabricius, 1787), собранная в субсредиземноморской дубраве на побережье полуострова Абрау (местонахождение 1), и ее местообитание. 18 –личинка, вид сверху (вставка показывает пучок длинных волосков в середине среднегруди); 19 – вид снизу; 20 – вид сверху, стрелка показывает удлиненный 9-й стернит; 21 – плодовое тело трутовика Phellinus rimosus, в котором укрывалась и охотилась личинка. Figs 18–21. Larva of Dendroleon pantherinus (Fabricius, 1787) collected in sub-mediterranean oak forests on the coast of the Abrau Peninsula (locality 1) and its habitat. 18 – larva, dorsal view (the inset shows a tuft of long hairs in the middle of the mesothorax); 19 – same, ventral view; 20 – same, dorsal view, arrow shows elongate 9th sternite; 21 – the fruiting body of the tinder fungus Phellinus rimosus, in which the larva hid and hunt.

хр. Скалистый, долина р. Малый Тегинь, выше ст. Надёжная, буковый прогретого воздуха на пологий склон этой куэсты, что ♀ лес, 825 м н.у.м., кошение по Fagus, 6.09.2018 (75). Республика Адыгея: 3 , спровоцировало преждевременный выход с зимовки Майкопский р-н, КГПБЗ, З склон г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, нижний пояс скал, 1845 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, ночное кошение по одиночным Ch. carnea, а также иных насекомых, которые были Acer trautvetteri, 30.06–1.07.2018 (51); 1♂, там же, под пологом буково- активны в эти «февральские окна». пихтового леса, 1560 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 8–9.07.2018 (49); 1♀, Цвет этой самки в целом зеленый (летний), там же, верхняя граница леса, 1685 м н.у.м., кошение по Pinus sylvestris, 9.07.2018 (50); 1 экз., там же, пихтово-буковый лес, 1322 м н.у.м., но тело сверху розовато-рыжее (рис. 17). Такая же кошение по нижним ветвям Abies, 11.08.2018 (48); 1♀, там же, под окраска наблюдалась у особей, активно летавших пологом пихтово-букового леса, 1322 м н.у.м., кошение по нижним 30 марта 2019 года в приморском парке поселка ветвям Abies, 11.08.2018 (48); 1♀, там же, 1524 м н.у.м., на свет ламп Дагомыс города-курорта Сочи (местонахождение 76). ДРВ, 8–9.09.2018 (49). Она сильно отличается от красновато-бурой окраски Замечания. Самый обычный и массовый вид всего тела и жилок, характерной для большинства семейства в регионе. Зимует на имагиальной стадии. других имаго в этот же фенопериод. Неясно, вызваны Самка этого вида обнаружена 13 февраля 2019 года ли цветовые различия зимующих в разных биотопах под корой бука в среднегорьях хребта Азиш-Тау (на Ch. carnea продолжительностью воздействия низких высоте 1150 м н.у.м.) при дневной температуре +10 °С температур (большей или меньшей), однако климат (местонахождение 65). По данным ближайшей пихтово-буковых лесов на хребте Азиш-Тау очень метеостанции в долине реки Белая (станица Даховская), отличается (кроме суммы атмосферных осадков) от к этой дате более 20 дней подряд среднесуточная условий колхидского леса на приморских склонах температура воздуха достигала +3.7 °С при слабых в устье реки Дагомыс, особенно зимой. Однако ночных заморозках и дневном максимуме до +17.6 °С. возможно, сезонный полиморфизм популяции в этом Температурная инверсия могла привести к забросу случае отражает таксономический статус особей: под 312 В.Н. Макаркин, В.И. Щуров

Рис. 22–23. Panorpa similis Esben-Petersen, 1915 на субальпийских лугах южного склона горы Шесси (местонахождение 31). 22 – самец; 23 – самка. Figs 22–23. Panorpa similis Esben-Petersen, 1915 in subalpine meadows of the southern slope of the Shessi Mountain (locality 31). 22 – male; 23 – female.

названием «Chrysoperla carnea» на Северо-Западном Phellinus rimosus (размером 15.5 × 12 × 9.5 см) для Кавказе могут скрываться 2–3 вида-двойника выведения мицетофильных Tineidae (рис. 21). Личинка [Макаркин, Ручин, 2010; Макаркин, Щуров, 2015]. могла скрываться только в глубоких трещинах Распространение. В Европе встречаются плодового тела. Она могла питаться его обитателями, несколько видов-двойников из группы carnea, которые поскольку из этого гриба так и не появилось ни одного хорошо различаются только по характерной «песне» насекомого. Попытки ее кормить не увенчались (низкочастотной вибрации брюшка при контакте с успехом, личинка погибла. субстратом) [Макаркин, Щуров, 2015]. На Северо- Личинка взрослая (видимо, 3-й стадии), длиной Западном Кавказе теоретически могут встречаться примерно 10 мм вместе с челюстями, и характеризуется, 4 вида, которые отмечены на южном макросклоне в частности, пучком длинных черных волосков в Большого Кавказа: Ch. carnea s. str., Ch. lucasina (Lacroix, середине среднегруди и удлиненным конусообразным 1912), Ch. pallida Henry, Brooks, Duelli et Johnson, 2002 9 стернитом (его длина явно больше, чем ширина). и Ch. mediterranea (Hölzel, 1972) [Duelli et al., 2015]. Этими признаками личинка отличается от личинок Однако для надежного определения видов этой группы всех других видов европейских муравьиных львов требуется живой материал и применение специальных [Badano, Pantaleoni, 2014]. Сверху она покрыта мелким акустических методов. мусором (рис. 18–20). Другие авторы также отмечают, что тело личинки покрыто мусором [Badano, Pantaleoni, Семейство Myrmeleontidae 2014], что для личинок муравьиных львов является Dendroleon pantherinus (Fabricius, 1787) скорее исключением и более характерно для личинок (Рис. 18–20) некоторых аскалафов и златоглазок. Личинки D. pantherinus живут в основном в дуплах Материал. Краснодарский кр.: 1 личинка, Анапский р-н, лиственных деревьев (в частности каштана и дуба), п-ов Абрау, ГПЗУ, Водопадная щель, субсредиземноморский но не только в них. Они также были отмечены под грабинниково-пушистодубовый лес с участием Pistacia mutica Fischer корой деревьев и даже в жилых домах, где прятались в et C.A. Meyer и 3 видов Juniperus, в плодовом теле трутовика Phellinus rimosus (Berk.) Pilát, 1940 на Fraxinus oxycarpa Willd., собранном затененных местах. Следовательно, они потенциально 9.11.2017 (1). способны заселять различные пустоты на стволах и под Замечания. Свободно ползающая личинка пологом леса [Roubal, 1936; Gepp, 2010; Colombo et al., муравьиного льва этого вида была обнаружена 3 марта 2013; Badano, Pantaleoni, 2014; Kuras, Mazalová, 2018]. 2018 года в садке, куда 11 ноября 2017 года было Этим объясняется нахождение личинки в трещинах помещено отделенное от коры плодовое тело трутовика плодового тела трутовика. Сетчатокрылообразные (Neuropterida) и скорпионницы (Mecoptera) с Северо-Западного Кавказа 313

Относительно редкий вид, охраняемый в Замечания. Личинка старшего возраста и самка Краснодарском крае [Красная книга..., 2017]. были выкошены с двух соседних с пихт, обильно Распространение. Широколиственные леса заселенных мелкими Cicadellidae, поэтому личинка Южной и Средней Европы, Грузия, Азербайджан, отнесена к этому виду. Северная Турция. В России распространен в Распространение. Россия (Краснодарский край и Краснодарском крае и Дагестане [Кривохатский, 2011; Адыгея), Абхазия и Турция [Макаркин, Щуров, 2013, Щуров, Макаркин, 2017]. 2015].

Distoleon tetragrammicus (Fabricius, 1798) Xanothostigma xanthostigma (Schummel, 1832)

Материал. Краснодарский кр.: 1♀, Новороссийск, п-ов Абрау, = Raphidia (Raphidia) euxina: Щуров, Макаркин, 2017: 87 Сухая щель, дубово-можжевеловый лес на приморском клифе, на свет (non Navás, 1915, non Макаркин, Щуров, 2015). ♂ ламп ДРВ, 27–28.06.2018 (5); 1 , Краснодар, 24 м н.у.м., микрорайон Материал. *Краснодарский кр.: 1♀, Усть-Лабинский р-н, долина Комсомольский, под уличным фонарем в 21:00, 7.07.2018 (13). р. Кубань, В ст. Воронежская, 55 м н.у.м., однорядная придорожная Республика Адыгея: личинка 18.06.2007, ex pupa 20.07.2007 (коллекция лесополоса из липы и березы, на формирующихся листьях Tilia ♀ АГУ) (М.И. Шаповалов), 2 , Майкопский р-н, долина р. Белая, окр. platyphyllos Scop., повреждаемых молодыми гусеницами Lymantria ♀ пос. Каменномостский, 370 м н.у.м. (68); 1 (коллекция АГУ), долина dispar (Linnaeus, 1758), 9.05.2017 (33). р. Белая, р. Шунтук, окр. с. Шунтук, 310 м н.у.м., на свет, 10.08.2007 (М.И. Шаповалов) (67). Замечания. Помещенная в садок самка убила двух личинок шелкопряда непарного I и II возрастов, Распространение. Марокко, Южная и Средняя Европа, страны Закавказья, Турция, Сирия, Иордания, одну из которых частично съела. Очевидно, именно повышенная плотность гусениц привлекла эту особь в Израиль, Иран и Западный Казахстан. На Северном очаг массового размножения названного фитофага. Кавказе отмечен в Краснодарском и Ставропольском Кавказские особи Xanothostigma xanthostigma краях, Кабардино-Балкарии, Ингушетии, Чечне и внешне очень сходы с Raphidia euxina Navás, 1915. Дагестане [Abrahám, 2000; Кривохатский, 2011]. Находка самки X. xanthostigma заставила вновь изучить 2 особи из Краснодарского края, указанные Megistopus flavicornis (Rossi, 1790) нами как Raphidia euxina [Макаркин, Щуров, 2015; Материал. Республика Адыгея: 1♀ (коллекция АГУ), Щуров, Макаркин, 2017]. Самка из Краснодара точно Майкопский р-н, долина р. Белая, р. Шунтук, окр. с. Шунтук, 310 м н.у.м., относится к роду Raphidia Linnaeus, 1758 и, по всей на свет, 27.05.2007 (М.И. Шаповалов) (67). вероятности, к R. euxina; ее морфологические признаки Распространение. Марокко, Южная и Средняя не противоречат этому [Макаркин, Щуров, 2015]. Европа, страны Закавказья, Турция, Израиль, Иран Определение самца из станицы Ильская (см. его точные и Туркменистан. На Северном Кавказе отмечен в этикеточные данные в работе Щурова, Макаркина Краснодарском и Ставропольском краях, Кабардино- [2017]) оказалось ошибочным; изучение его гениталий Балкарии, Чечне и Дагестане [Abrahám, 2000; Макаркин, (ранее не изученных) однозначно показало, что он Щуров, 2010; Кривохатский, 2011]. относится к X. xanthostigma. Распространение. Широко распространенный Семейство Ascalaphidae палеарктический вид. В европейской части России Libelloides hispanicus ustulatus (Evesmann, 1850) самые южные области, где вид был отмечен – Самарская и Саратовская, хотя он встречается в Закавказье Материал. Краснодарский кр.: 1♂ (коллекция В.И. Щурова), (Азербайджан и Армения). Впервые отмечается для Мостовский р-н, долина р. Малая Лаба, КГПБЗ, выше кордона Северного Кавказа. 3-я Рота, скальный выход левого берега (отрог хр. Малые Балканы), 934–1095 м н.у.м., 13.07.2007 (74). Замечания. Относительно редкий вид, часто Phaeostigma notatum (Fabricius, 1781) приуроченный к скальным выходам в лесном и горно- Материал. Краснодарский кр.: 1♂, Северский р-н, долина луговом поясах, охраняемый в регионе [Красная р. Илич (Супс), Ю ст. Калужская, опушка леса с доминированием книга..., 2017]. Quercus robur L. и Quercus hartwissiana Steven, 107 м н.у.м., кошение по Распространение. Вид имеет дизъюнктивный подросту Quercus, 18.04.2018 (12). ареал: Юго-Западная Европа (Португалия, Испания, Распространение. Центральная и Северная Франция и Андорра) и Северный Кавказ, страны Европа, горы Южной Европы, Грузия [Dobosz et al., Закавказье, Турция и Иран (L. hispanicus ustulatus). 2018]. На Северном Кавказе известен из Карачаево- На Северном Кавказе отмечен в Краснодарском крае, Черкесии и Краснодарского края [Макаркин, Щуров, Адыгее, Карачаево-Черкесии, Северной Осетии и 2013; Щуров, Макаркин, 2017]. Дагестане [Макаркин, Щуров, 2010; Щуров, Макаркин, 2017]. Отряд Megaloptera Семейство Sialidae Отряд Raphidioptera **Sialis zhiltzovae Vshivkova, 1985 Семейство Raphidiidae (Рис. 7) Raphidia (Raphidia) grusinica Материал. *Краснодарский кр.: 1♀, Сочи, хр. Аибга, долина H. Aspöck, U. Aspöck et Martynova, 1968 р. Псоу, выше х. Аибга-5, 850 м н.у.м., на берегу ручья под пологом грабово-букового леса, 10.06.2000 (71). *Республика Адыгея: 5♂, Материал. Республика Адыгея: 1♀, 1 личинка, Майкопский р-н, Красногвардейский р-н, долина р. Грязнуха, 68 м н.у.м., выше аула Уляп, З склоны г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, 1382 м н.у.м., кошение по ветвям и остепненный луг на невысокой террасе над заболоченной поймой, лёт подросту Abies, 1.07.2018 (48). около 15:45, 27.04.2018 (60). 314 В.Н. Макаркин, В.И. Щуров

Замечания. В пойме реки Грязнуха насекомые Panorpa similis Esben-Petersen, 1915 сидели на сухих злаках трав в характерных позах (Рис. 22, 23) (иногда полностью подогнув брюшко под грудь) и ♀ слабо перелетали при вспугивании (рис. 7). В полете Материал. *Краснодарский кр.: 1 , Усть-Лабинский р-н, долина р. Лаба, З cт. Тенгинская, степь на высоком берегу надпойменной напоминают имаго ручейников (Trichoptera). террасы над лесом, 91 м н.у.м., 9.05.2017 (57); 1♂, Апшеронский р-н, На Кавказе известно всего 2 очень близких долина р. Цица, подножье г. Матазык (Лысая), пойма ручья под вида вислокрылок, оба эндемики Западного Кавказа пологом дубово-каштаново-грабовый леса с самшитовым подлеском, 366 м н.у.м., 2.07.2017 (43); 1♂, Северский р-н, долина р. Илич (Супс), (Sialis abchasica Vshivkova, 1985 и S. zhiltzovae) и оба выше ст. Калужская, в подлеске дубового леса, 107 м н.у.м., 18.04.2018 встречаются в Абхазии. Как показывают наши данные, (12); 1♂, долина р. Лаба, 78 м н.у.м., В ст. Некрасовская, остепненный Sialis zhiltzovae широко распространен в околоводных луг у южной опушки рукотворного массива Morus nigra L. на крутом берегу надпойменной террасы, на свет ламп ДРВ, 27.04.2018 (42); 1♂, биотопах региона – от горнолесных до лесостепных. Белореченский р-н, долина р. Псенафа, ниже пос. Подгорный, дубовые Sialis abchasica отмечен в Краснодарском крае в колки и остепненные луга на крутом берегу, 138 м н.у.м., 27.04.2018 окрестностях станицы Северская [Вшивкова, 1985]. (56); 1♂, Туапсинский р-н, долина р. Большой Пшиш, ЮЗ отрог Россия (отмечается впервые): г. Шесси, 900 м н.у.м., смешанный лес (пихта, бук, дуб, граб, липа, клен, Распространение. ольха), в подлеске, 31.05.2018 (20); 1♂, 2♀, г. Шесси, водораздельный Краснодарский край, Республика Адыгея. Абхазия гребень западного отрога, в подлеске смешанного леса (пихта, бук, [Вшивкова, 1985]. граб, клен), 1680 м н.у.м., на свет каталитического газового фонаря «Kovea», 2.06.2018 (30); 4♂, 4♀, истоки р. Гогопсе, г. Шесси, 1600– 1800 м н.у.м., субальпийские луга южного склона и вершины, днем в Отряд Mecoptera массе, 2–4.06.2018 (31) (рис. 22, 23); 1♀, хр. Азиш-Тау, ур. Козлова Семейство Panorpidae Поляна, под пологом пихтово-букового леса, 1250 м н.у.м., на свет Panorpa arcuata (Navás, 1912) ламп ДРВ, 24.08.2018 (65). Республика Адыгея: 2♂, 3♀, Майкопский р-н, долина р. Цица, выше слияния с р. Шумичка, под пологом дубово- буково-пихтового леса, 629 м н.у.м., обычен, 2.07.2017 (46); 1♂, истоки ♀ Материал. Краснодарский кр.: 1 , Апшеронский р-н, р. Кужетка, в подлеске буково-пихтового леса, 701 м н.у.м., 16.07.2017 хр. Азиш-Тау, ур. Козлова Поляна, под пологом пихтово-букового (42); 3♂, 1♀, КГПБЗ, З склоны г. Пшехо-Су, субальпийские луга, выходы ♂ ♀ леса, 1250 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 18.08.2017 (65); 1 , 6 , там скал, осыпи, 1700–1840 м н.у.м., вечерний лёт и на свет ламп ДРВ, 30.06– ♂ ♀ же, под пологом леса на свет ламп ДРВ, 24.08.2018 (65); 2 , 2 , 1.07.2018 (51); 1♂, там же, верхняя граница леса, 1685 м н.у.м., кошение хр. Лагонакский, г. Разрытая, истоки балки Разрытвинская, буково- по Pinus sylvestris, 9.07.2018 (50); 1♂, 3♀, там же, скальные выходы на ♂ пихтовый лес, 1000–1300 м н.у.м., в подлеске, 29.08–7.09.2017 (53); 2 , субальпийском лугу, 1715 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 27.07.2018 (51); ГКХ, КГПБЗ, долина р. Пслух, опушка смешанного леса на кордоне 1♂, 1♀, там же, СЗ отрог г. Пшехо-Су, пер. Майкопский, субальпийские Пслух, 960 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 11–13.09.2017 (А.С. Бондаренко) луга, 1900–2000 м н.у.м., 28.07.2018 (52); 2♂, 1♀, там же, ур. Подчуб, под ♂ (72); 1 , среднее теч. р. Курджипс, выше х. Гуамка, дубово-грабовый пологом пихтово-букового леса с колхидским подлеском, 1572 м н.у.м., ♂ лес, 600 м н.у.м., 29.09.2017 (55); 1 , там же, под пологом грабово- на свет ламп ДРВ, 28.07.2018 (49). дубового леса, 483 м н.у.м., на клеевом вкладыше феромонной ловушки, 19–25.10.2017 (55); 1♀, долина р. Пшиш, окр. ст. Тверская, грабово- Замечания. Внешне хорошо отличается от двух дубовый лес, 208 м н.у.м., в подлеске, 6.10.2017 (23); 1♂, долина р. Цеце, других видов, обычных в регионе, черным рострумом окр. ст. Линейная, дубовый лес, 144 м н.у.м., кошение по подлеску (рис. 22, 23). днем, 5.11.2017 (16); 2♂, 1♀, Белореченский р-н, долина р. Дунайка, ниже х. Дунайский, 140 м н.у.м., под пологом дубового леса, активны Распространение. Россия (Краснодарский край, днем при +12 °C, 5.11.2017, обычен (41); 1♀, Усть-Лабинский р-н, Адыгея) [Щуров, Макаркин, 2017]. долина р. Лаба, З ст. Тенгинская, ур. Дубки, рукотворный дубовый лес, 91 м н.у.м., на клее ловчего кольца на стволе дуба, 5–15.11.2017 (59); Panorpa connexa McLachlan, 1869 1♂, 1♀, Отрадненский р-н, хр. Скалистый, долина р. Малый Тегинь, выше ст. Надёжная, грабово-буковый лес, 917 м н.у.м., кошение по *Краснодарский кр.: 1♀, Усть-Лабинский р-н, долина Fagus и Carpinus, 6.09.2018 (75); 1♀, водораздел рек Пшеха и Курджипс, Материал. р. Лаба, 91 м н.у.м., степь на высоком берегу, З cт. Тенгинская, 9.05.2017 истоки р. Орлов Ерик, 400 м н.у.м., в подлеске скальнодубового леса, (57); 1♂, 1♀, там же, 78 м н.у.м., В ст. Некрасовская, остепненный луг 4.11.2018 (54). Республика Адыгея: 1♂, Майкопский р-н, долина у южной опушки рукотворного массива Morus nigra L. на крутом р. Цица выше слияния с р. Шумичка, под пологом дубово-буково- берегу надпойменной террасы, на свет ламп ДРВ, 27.04.2018 (42); 1♂, пихтового леса, 629 м н.у.м., 2.07.2017, массовый вид (46); 7♂, 1♀, З Апшеронский р-н, долина р. Цеце, окр. х. Акредасов, под пологом склоны г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, под пологом пихтово-букового леса, дубового леса, 161 м н.у.м., 1.06.2017 (23); 1♂, долина р. Цица, подножье 750–1500 м н.у.м., 19.09.2017, массовый вид (48); 1♂, там же, буково- г. Матазык, 366 м н.у.м., дубово-каштаново-грабовый лес с пойменным пихтовый лес, 1560 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 8–9.07.2018 (49); 1♂, самшитником, на клей феромонной ловушки на Cydalima perspectalis 1♀, там же, 28.07.2018, (49); 1♂, 1♀, КГПБЗ, ЮЗ склон г. Пшехо-Су в (Walker, 1859), 1–12.06.2017 (43); 1♂, долина р. Цица, выше устья балки истоках р. Пшехасу, нижний пояс скал, субальпийские высокотравные Бурсовая, пойменный дубово-грабовый лес с самшитовым подлеском, луга, 1715 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 27.07.2018 (51); 1♂, там же, 371 м н.у.м., на клей феромонной ловушки на Cydalima perspectalis, субальпийские луга, скальные полки и осыпи, 1840 м н.у.м., вечерний 1–12.06.2017 (44); 1♂, 1♀, Белореченский р-н, долина р. Псенафа, лёт, 11.08.2018 (51); 2♂, там же, субальпийские луга, 1700 м н.у.м., 138 м н.у.м., ниже пос. Подгорный, дубовые колки и остепненные дневной лёт, 21.09.2018 (51). луга на крутом берегу, обычен под пологом дубов, 27.04.2018 Замечания. Характерный вид грабово-дубовых и (56); 1♂, Туапсинский р-н, долина р. Большой Пшиш, ЮЗ отрог пихтово-буковых лесов, в папоротниковом подлеске г. Шесси, смешанный лес (пихта, бук, дуб, граб, липа, клен, ольха), ♀ которых обычен. Встречается и в рукотворных 900 м н.у.м., днем в подлеске, 31.05.2018 (20). *Республика Адыгея: 1 , Майкопский р-н, долина р. Цица, под пологом буково-пихтового леса, лиственных древостоях лесостепной зоны. Мартынова 700 м н.у.м., 18.05.2017 (46); 1♂, там же, выше слияния с р. Серебрячка, [1957: 736] отмечала, что этот вид «летает с июля до под пологом дубово-буково-пихтового леса, 621 м н.у.м., на клей ноября; наибольшее количество собрано в октябре феромонной ловушки на Cydalima perspectalis, 12–22.06.2017 (46); 1♀, там же, под пологом буково-пихтового леса, 750 м н.у.м., 22.06.2017 (46); и ноябре». По нашим данным, его максимальная 1♂, З слон г. Пшехо-Су, ур. Подчуб, под пологом пихтово-букового леса численность отмечена в среднегорьях в конце августа – с колхидским подлеском, 1572 м н.у.м., на свет ламп ДРВ, 28.07.2018 (49). сентябре. Выше лесного пояса, на лугах, попадается Замечания. Мартынова [1957: 734] отмечала, гораздо реже. что этот вид «летает с мая по сентябрь, но чаще Распространение. Россия (Краснодарский край), встречается в июне». По нашим наблюдениям, в Абхазия [Щуров, Макаркин, 2017]. лесостепной зоне региона он многочисленен уже в Сетчатокрылообразные (Neuropterida) и скорпионницы (Mecoptera) с Северо-Западного Кавказа 315

конце апреля, в предгорьях и низкогорьях более обычен Захаренко А.В., Кривохатский В.A. 1993. Сетчатокрылые (Neuroptera) европейской части бывшего СССР. Известия Харьковского в июне. В высокогорьях и древесно-кустарниковых энтомологического общества. 1(2): 34–83. насаждениях степной зоны встречен не был. Активно Ковригина А.М. 1978. Сетчатокрылые (Neuropteroidea) Среднего летит в феромонные ловушки, привлекаемый запахом Поволжья. Энтомологическое обозрение. 57(4): 746–751. насекомых, приклеившихся на вкладыши. Красная книга Краснодарского края. Животные. III издание. 2017. Краснодар: Администрация Краснодарского края. 720 с. Распространение. Украина (?), Грузия, Армения, Кривохатский В.А. 2011. Муравьиные львы (Neuroptera: Myrmeleontidae) Турция. Был известен из «разных мест Кавказа», в России. СПб. – М.: Товарищество научных изданий КМК. 334 с. частности из России («Кубань») [Мартынова, 1957: 732], Луппова Е.П. 1959. О сетчатокрылых (Neuroptera) заповедника но без указания конкретных районов. Нами найден в «Тигровая балка». Труды Института зоологии и паразитологии АН Таджикской ССР. 115(1): 69–87. Краснодарском крае и Адыгее. Макаркин В.Н. 1985. Обзор сетчатокрылых сем. Hemerobiidae (Neuroptera) фауны СССР. I. Роды Hemerobius L., Micromus Ramb. и Paramicromus Nakah. Энтомологическое обозрение. 64(1): 158– Благодарности 170. Макаркин В.Н. 1995. 25. Отряд Neuroptera – Сетчатокрылые. В Мы благодарны А.С. Бондаренко (ФБУ кн.: Определитель насекомых Дальнего Востока России. Т. 4. Сетчатокрылообразные, скорпионницы, перепончатокрылые. «Рослесозащита», Краснодар, Россия) и Ч. 1. СПб.: Наука: 37–68. М.И. Шаповалову (Адыгейский государственный Макаркин В.Н., Клепиков М.А. 2013. Новые данные о фауне университет, Майкоп, Россия) за передачу собственных сетчатокрылых (Neuroptera) и верблюдок (Raphidioptera) сборов Neuroptera для обработки. Мы признательны Ярославской и Костромской областей. Евразиатский энтомологический журнал. 12(6): 570–574. коллегам-биологам и лесопатологам, принимавшим Макаркин В.Н., Ручин А.Б. 2019. Новые данные о сетчатокрылых участие в экспедициях (служебных и частных) второго (Neuroptera) и верблюдках (Raphidioptera) Мордовии (Россия). автора: А.С. Замотайлову, А.И. Белому (Кубанский Кавказский энтомологический бюллетень. 15(1): 147–157. DOI: 10.23885/181433262019151-147157 государственный аграрный университет, Краснодар, Макаркин В.Н., Щуров В.И. 2010. К познанию фауны сетчатокрылых Россия), Е.Н. Вибе, Н.В. Охрименко, К.С. Радченко, (Neuroptera) Северо-Западного Кавказа. Кавказский А.В. Щуровой, Т.Н. Щуровой (ФБУ «Рослесозащита», энтомологический бюллетень. 6(1): 63–70. DOI: 10.23885/1814- Краснодар, Россия), А.Ю. Солодовникову, 3326-2010-6-1-63-70 Макаркин В.Н., Щуров В.И. 2011. Новые данные о сетчатокрылых Н.Ю. Солодовниковой (Копенгаген, Дания). Благодарим (Neuroptera) Кавказа. Кавказский энтомологический бюллетень. В.М. Гнездилова и Е.В. Лабину (Зоологический институт 7(1): 61–67. DOI: 10.23885/1814-3326-2011-7-1-61-67 РАН, Санкт-Петербург, Россия) за определение Макаркин В.Н., Щуров В.И. 2013. К фауне верблюдок (Raphidioptera) Северо-Западного Кавказа. Кавказский энтомологический Psyllidae из наших сборов, связанных с Neuroptera. бюллетень. 9(1): 183–186. DOI: 10.23885/1814-3326-2013-9-1-183- Обследование лесов Кавказского заповедника 186 и заповедника «Утриш» оказалось возможным Макаркин В.Н., Щуров В.И. 2015. К познанию сетчатокрылых только благодаря продолжительной поддержке (Neuroptera) и верблюдок (Raphidioptera) Краснодарского края (Россия). Кавказский энтомологический бюллетень. 11(2): 395– их руководителей, а также всесторонней помощи 403. DOI: 10.23885/1814-3326-2015-11-2-395-403 сотрудников, которым мы безмерно признательны. Мартынова О.М. 1957. Скорпионницы (Mecoptera) фауны СССР. II. Мы также выражаем благодарность В.М. Локтионову Семейство Panorpidae. Энтомологическое обозрение. 36(3): 721– 747. (Федеральный научный центр биоразнообразия Рохлецова А.В. 2001. Дополнения к фауне сетчатокрылообразных наземной биоты Восточной Азии, Владивосток, (Neuropteroidea) Ульяновской области. В кн.: Природа Россия) за помощь в фотографировании златоглазок Симбирского Поволжья. Вып. 2. Ульяновск: УлГПУ: 106–109. и Петеру Дуэлли (Peter Duelli, Swiss Federal Research Рохлецова А.В., Кривохатский В.А. 2006. К познанию фауны Волго- Уральских сетчатокрылых (Neuroptera). В кн.: Энтомологические Institute WSL, Бирменсдорф, Швейцария) за помощь в и паразитологические исследования в Поволжье. Вып. 5. Саратов: определении Chrysoperla mutata. Изд-во Саратовского университета: 23–31. В 2016–2019 годах Российский фонд Щуров В.И., Макаркин В.Н. 2013. Новые данные о сетчатокрылых (Neuroptera) Северо-Западного Кавказа. Кавказский фундаментальных исследований и Администрация энтомологический бюллетень. 9(2): 273–279. DOI: 10.23885/1814- Краснодарского края софинансировали изучение 3326-2013-9-2-273-279 инвазий чужеродных дендрофильных насекомых в Щуров В.И., Макаркин В.Н. 2017. Новые данные о сетчатокрылообразных Краснодарском крае и Республике Адыгее в рамках (Neuroptera, Raphidioptera) и скорпионницах (Mecoptera) Северо- Западного Кавказа. Кавказский энтомологический бюллетень. проектов №№ 16-44-230780 и 19-44-230004, одним из 13(1): 77–90. DOI: 10.23885/1814-3326-2017-13-1-77-90 дополнительных результатов чего стало обнаружение Abrahám L. 2000. ­e lacewings fauna of the Checheno-Ingushetia in the новых для фауны России и/или Северо-Западного Caucasian region (Neuroptera). Somogyi Múzeumok Közleményei. 14: Кавказа видов Neuroptera, Megaloptera и Psyllidae, 285–296. Aspöck H., Hölzel H., Aspöck U. 2001. Kommentierter Katalog der упомянутых в настоящей статье. Neuropterida (Insecta: Raphidioptera, Megaloptera, Neuroptera) der Westpaläarktis. Denisia. 2: 1–606. Badano D., Pantaleoni R.A. 2014. ­e larvae of European Myrmeleontidae. Литература Zootaxa. 3762(1): 1–71. DOI: 10.11646/zootaxa.3762.1.1 Brooks S.J. 1994. A taxonomic review of the common green lacewing genus Вшивкова Т.С. 1985. Вислокрылки (Megaloptera, Sialidae) Европы и Chrysoperla (Neuroptera: Chrysopidae). Bulletin of the Natural Кавказа. Энтомологическое обозрение. 64(1): 146–157. History Museum (Entomology). 63(2): 137–210. Дорохова Г.И. 1979. Сетчатокрылые сем. Chrysopidae (Neuroptera) Brooks S.J., Barnard P.C. 1990. ­e green lacewings of the world: a generic фауны СССР. Энтомологическое обозрение. 58(1): 105–111. review (Neuroptera: Chrysopidae). Bulletin of the British Museum of Дорохова Г.И. 1987. Отряд Neuroptera – сетчатокрылые. В кн.: Natural History (Entomology). 59(2): 117–286. Определитель насекомых европейской части СССР. Том 4. Canard M. 2003. Chrysoperla mutata (McLachlan, 1898), une espèce nouvelle Большекрылые, верблюдки, сетчатокрылые, скорпионовые мухи, pour la Crète et l’île de Chios, Grèce (Neuroptera: Chrysopidae). ручейники. Шестая часть. Л.: Наука: 36–73. Bulletin de la Société Entomologique de France. 108: 216. 316 В.Н. Макаркин, В.И. Щуров

Canard M., Letardi A., ­ierry D. 2007. ­e rare Chrysopidae (Neuroptera) Günther K.K. 1993. Welche Art muss Coniopteryx pygmaea Enderlein, 1906 of southwestern Europe. Acta Oecologica/Oecologia Applicata. 31(3): heissen? (Neuroptera, Coniopterygidae). Deutsche Entomologische 290–298. DOI: 10.1016/j.actao.2006.12.004 Zeitschrift (N.F.). 40(1): 167–171. Canard M., ­ierry D. 2014. ­e distribution of Chrysoperla mutata Klimaszewski J., LeSage L., Savard K. 2009. First record of adventive species (McLachlan 1898) and Chrysoperla pudica (Navás 1914) (Neuroptera Micromus variegatus (Fabricius) from eastern Canada (Neuroptera, Chrysopidae). Entomofauna. 35(17): 405–412. Hemerobiidae). ZooKeys. 27: 1–6. DOI: 10.3897/zookeys.27.220 Canard M., ­ierry D. 2017. ­e complex of the pale green lacewing Kuras T., Mazalová M. 2018. Distribution of the antlion Dendroleon pantherinus Chrysopa pallens (Rambur, 1838) sensu lato (Neuropterida, (Neuroptera: Myrmeleontidae) in the Czech Republic. Acta Musei Chrysopidae). Bulletin de la Societe Entomologique de France. 122(1): Silesiae, Scientiae Naturales. 67(1): 1–6. DOI: 10.2478/cszma-2018-0001 75–82. Makarkin V.N., Wedmann S., Weiterschan T. 2016. A new genus of Canbulat S. 2007. A checklist of Turkish Neuroptera with annotating on Hemerobiidae (Neuroptera) from Baltic amber, with a critical review provincial distributions. Zootaxa. 1552: 35–52. of the Cenozoic Megalomus-like taxa and remarks on the wing Colombo R., Braud Y., Danflous S. 2013. Contribution à la connaissance venation variability of the family. Zootaxa. 4179(3): 345–370. DOI: de Dendroleon pantherinus (Fabricius 1787) (Neuroptera: 10.11646/zootaxa.4179.3.2 Myrmeleontidae). Revue de l’Association Roussillonnaise Meinander M. 1962. ­e Neuroptera and Mecoptera of eastern d’Entomologie. 22(2): 47–53. Fennoscandia. Fauna Fennica. 13: 1–96. Czechowska W. 2002. Raphidioptera and Neuroptera (Neuropterida) of the Meinander M. 1972. A revision of the family Coniopterygidae (Planipennia). canopy in montane, upland and lowland fir forests of Abies alba Mill. Acta Zoologica Fennica. 136: 1–357. Fragmenta Faunistica. 45(1): 31–56. Monserrat V.J. 2016a. Los crísopidos de la Península Ibérica y Baleares Díaz-Aranda L.M., Monserrat V.J. 1995. Aphidophagous predator diagnosis: (Insecta, Neuropterida, Neuroptera: Chrysopidae). Graellsia. 72(1): key to genera of European chrysopid larvae (Neur.: Chrysopidae). e037. DOI: 10.3989/graellsia.2016.v72.i1 Entomophaga. 40(2): 169–181. DOI: 10.1007/BF02373066 Monserrat V.J. 2016b. Los coniopterígidos de la Península Ibérica e Islas Dobosz R., Japoshvili G., Krivokhatsky V., Wąsala R. 2018. Contributions to Baleares (Insecta, Neuropterida, Neuroptera: Coniopterigydae). the knowledge of neuropterid insects (Neuropterida: Raphidioptera, Graellsia. 72(2): e047. DOI: 10.3989/graellsia.2016.v72.i2 Neuroptera) of Georgia (Sakartvelo). Part II. Annals of the Upper Monserrat V.J., Marín F. 1992. Substrate specificity of Iberian Silesian Museum in Bytom Entomology. 26(006): 1–21. Coniopterygidae (Insecta: Neuroptera). In: Current Research in Dobosz R., Junkiert Ł. 2018. Cunctochrysa cosmia (Navás, 1918) – a species Neuropterology. Proceedings of the Fourth International Symposium of green lacewings new to Poland (Neuroptera: Chrysopidae). Annals on Neuropterology (24–27 June 1991, Bagnères-de-Luchon, Haute- of the Upper Silesian Museum in Bytom Entomology. 27(009): 1–8. Garonne, France). Toulouse: 279–290. Dobosz R., Makarkin V.N., Sergeyev M.E. 2019. Contributions to the Monserrat V.J., Marín F. 1994. Plant substrate specificity of Iberian knowledge of the entomofauna of the Sikhote-Alin Biosphere Reserve. Chrysopidae (Insecta: Neuroptera). Acta Oecologica. 15(2): 119–131. I. Neuropteroid insects: alderflies (Megaloptera: Sialidae), snake-flies Roubal J. 1936. Dendroleon pantherinus F. Casopis Ceskoslovenské (Raphidioptera) and lacewings (Neuroptera). Annals of the Upper Spolecnosti Entomologické. 33: 172–173. Silesian Museum in Bytom Entomology. 28(004): 1–30. Szentkirályi F. 2001. Lacewings in vegetables, forests, and other crops. Dobosz R., Popov A. 2018. New data about the distribution of Neuropterida In: Lacewings in the crop environment. Cambridge: Cambridge in and Romania. Annals of the Upper Silesian Museum in University Press: 239–291. Bytom Entomology. 27(001): 1–39. ­ierry D., Canard M., Mirmoayedi A. 2004. Chrysoperla mutata Duelli P., Bolt D., Henry C.S. 2015. Neuroptera of the Caucasian (McLachlan, 1898): Looking at the live adult, description of its Republic of Georgia. Entomological News. 124(4): 229–244. DOI: larva and some bioecological remarks (Neuroptera, Chrysopidae). 10.3157/021.124.0401 Entomofauna. 25(23): 345–353. Gepp J. 2010. Ameisenlöwen und Ameisenjungfern. Myrmeleontidae. Tsukaguchi S. 1995. Chrysopidae of Japan (Insecta, Neuroptera). Osaka. ii + 224 p. Eine weltweite Betrachtung unter besonderer Berücksichtigung Zelený J. 1964. Aleuropteryx umbrata n. sp. a new species of Neuroptera Mitteleuropas. 3., neubearbeitete Auflage. Hohenwarsleben: Westarp from Moldavian SSR (Neuroptera, Coniopterygidae). Casopis Wissenschaften-Verlagsgesellschaft. 168 p. Ceskoslovenské Spolecnosti Entomologické. 61(4): 327–329.

Поступила / Received: 3.04.2019 Принята / Accepted: 19.08.2019 V.N. Makarkin, V.I. Shchurov

References

Abrahám L. 2000. e lacewings fauna of the Checheno-Ingushetia in the Kovrigina A.M. 1978. Neuropteroidea of the Middle Volga region. Caucasian region (Neuroptera). Somogyi Múzeumok Közleményei. 14: Entomologicheskoe obozrenie. 57(4): 746–751 (in Russian). 285–296. Krasnaya kniga Krasnodarskogo kraya. Zhivotnyye. III izdaniye [Red Data Aspöck H., Hölzel H., Aspöck U. 2001. Kommentierter Katalog der Neurop- Book of Krasnodar Region. . 3rd edition]. 2017. Krasnodar: terida (Insecta: Raphidioptera, Megaloptera, Neuroptera) der West- Administration of Krasnodar Region. 720 p. paläarktis. Denisia. 2: 1–606. Krivokhatsky V.A. 2011. Murav’inye l’vy (Neuroptera: Myrmeleontidae) Badano D., Pantaleoni R.A. 2014. e larvae of European Myrmeleontidae. Rossii [Antlions (Neuroptera: Myrmeleontidae) of Russia]. St Peters- Zootaxa. 3762(1): 1–71. DOI: 10.11646/zootaxa.3762.1.1 burg, Moscow: KMK Scientific Press Ltd. 334 p. (in Russian). Brooks S.J. 1994. A taxonomic review of the common green lacewing genus Kuras T., Mazalová M. 2018. Distribution of the antlion Dendroleon Chrysoperla (Neuroptera: Chrysopidae). Bulletin of the Natural pantherinus (Neuroptera: Myrmeleontidae) in the Czech Republic. History Museum (Entomology). 63(2): 137–210. Acta Musei Silesiae, Scientiae Naturales. 67(1): 1–6. DOI: 10.2478/ Brooks S.J., Barnard P.C. 1990. e green lacewings of the world: a generic cszma-2018-0001 review (Neuroptera: Chrysopidae). Bulletin of the British Museum of Luppova E.P. 1959. On the lacewings (Neuroptera) of the “Tigrovaya bal- Natural History (Entomology). 59(2): 117–286. ka” Reserve. Trudy Instituta zoologii i parazitologii Akademii nauk Canard M. 2003. Chrysoperla mutata (McLachlan, 1898), une espèce Tadzhikskoy SSR. 115(1): 69–87 (in Russian). nouvelle pour la Crète et l’île de Chios, Grèce (Neuroptera: Makarkin V.N. 1985. A review of the Hemerobiidae (Neuroptera) of the Chrysopidae). Bulletin de la Société Entomologique de France. 108: USSR 1. e genera Hemerobius, Micromus, and Paramicromus. 216. Entomological Review. 64(2): 99–113. Canard M., Letardi A., ierry D. 2007. e rare Chrysopidae (Neuroptera) Makarkin V.N. 1995. Order Neuroptera. In: Opredelitel’ nasekomykh of southwestern Europe. Acta Oecologica/Oecologia Applicata. 31(3): Dal’nego Vostoka Rossii. T. 4. Setchatokryloobraznye, skorpionnitsy, 290–298. DOI: 10.1016/j.actao.2006.12.004 pereponchatokrylye. Ch. 1 [Key to the insects of the Russian Far Canard M., ierry D. 2014. e distribution of Chrysoperla mutata East. Vol. 4. Neuropteroidea, Mecoptera, . Part 1]. (McLachlan 1898) and Chrysoperla pudica (Navás 1914) (Neuroptera St Petersburg: Nauka: 37–68 (in Russian). Chrysopidae). Entomofauna. 35(17): 405–412. Makarkin V.N., Klepikov M.A. 2013. New records of Neuroptera and Canard M., ierry D. 2017. e complex of the pale green lacewing Raphidioptera from from Yaroslavskaya and Kostromskaya Oblasts. Chrysopa pallens (Rambur, 1838) sensu lato (Neuropterida, Euroasian Entomological Journal. 12(6): 570–574 (in Russian). Chrysopidae). Bulletin de la Societe Entomologique de France. 122(1): Makarkin V.N., Ruchin A.B. 2019. New data on Neuroptera and Raphidioptera 75–82. of Mordovia (Russia). Caucasian Entomological Bulletin. 15(1): 147– Canbulat S. 2007. A checklist of Turkish Neuroptera with annotating on 157 (in Russian). DOI: 10.23885/181433262019151-147157 provincial distributions. Zootaxa. 1552: 35–52. Makarkin V.N., Shchurov V.I. 2010. Contribution to the knowledge of Colombo R., Braud Y., Danflous S. 2013. Contribution à la connaissance the Neuroptera fauna of the North-Western Caucasus. Caucasian de Dendroleon pantherinus (Fabricius 1787) (Neuroptera: Entomological Bulletin. 6(1): 63–70 (in Russian). DOI: 10.23885/1814- Myrmeleontidae). Revue de l’Association Roussillonnaise 3326-2010-6-1-63-70 d’Entomologie. 22(2): 47–53. Makarkin V.N., Shchurov V.I. 2011. New data on Neuroptera of the Czechowska W. 2002. Raphidioptera and Neuroptera (Neuropterida) of the Caucasus. Caucasian Entomological Bulletin. 7(1): 61–67 (in Russian). canopy in montane, upland and lowland fir forests of Abies alba Mill. DOI: 10.23885/1814-3326-2011-7-1-61-67 Fragmenta Faunistica. 45(1): 31–56. Makarkin V.N., Shchurov V.I. 2015. A contribution to the knowledge Díaz-Aranda L.M., Monserrat V.J. 1995. Aphidophagous predator diagnosis: of Neuroptera and Raphidioptera of Krasnodar Region (Russia). key to genera of European chrysopid larvae (Neur.: Chrysopidae). En- Caucasian Entomological Bulletin. 11(2): 395–403 (in Russian). DOI: tomophaga. 40(2): 169–181. DOI:10.1007/BF02373066 10.23885/1814-3326-2015-11-2-395-403 Dobosz R., Japoshvili G., Krivokhatsky V., Wąsala R. 2018. Contributions to Makarkin V.N., Shchurov V.I. 2013. A contribution to the Raphidioptera the knowledge of neuropterid insects (Neuropterida: Raphidioptera, fauna of the North-Western Caucasus. Caucasian Entomological Neuroptera) of Georgia (Sakartvelo). Part II. Annals of the Upper Sile- Bulletin. 9(1): 183–186 (in Russian). DOI: 10.23885/1814-3326-2013- sian Museum in Bytom Entomology. 26(006): 1–21. 9-1-183-186 Dobosz R., Junkiert Ł. 2018. Cunctochrysa cosmia (Navás, 1918) – a species Makarkin V.N., Wedmann S., Weiterschan T. 2016. A new genus of of green lacewings new to Poland (Neuroptera: Chrysopidae). Annals Hemerobiidae (Neuroptera) from Baltic amber, with a critical review of the Upper Silesian Museum in Bytom Entomology. 27(009): 1–8. of the Cenozoic Megalomus-like taxa and remarks on the wing Dobosz R., Makarkin V.N., Sergeyev M.E. 2019. Contributions to the knowl- venation variability of the family. Zootaxa. 4179(3): 345–370. DOI: edge of the entomofauna of the Sikhote-Alin Biosphere Reserve. I. 10.11646/zootaxa.4179.3.2 Neuropteroid insects: alderflies (Megaloptera: Sialidae), snake-flies Martynova O.M. 1957. Mecoptera of the fauna of the USSR. II. Family (Raphidioptera) and lacewings (Neuroptera). Annals of the Upper Panorpidae. Entomologicheskoe obozrenie. 36(3): 721–747 Silesian Museum in Bytom Entomology. 28(004): 1–30. (in Russian). Dobosz R., Popov A. 2018. New data about the distribution of Neuropterida Meinander M. 1962. e Neuroptera and Mecoptera of eastern in Bulgaria and Romania. Annals of the Upper Silesian Museum in By- Fennoscandia. Fauna Fennica. 13: 1–96. tom Entomology. 27(001): 1–39. Meinander M. 1972. A revision of the family Coniopterygidae (Planipennia). Dorokhova G.I. 1979. e family Chrysopidae (Neuroptera) in the USSR. Acta Zoologica Fennica. 136: 1–357. Entomological Review. 58(1): 55–59. Monserrat V.J. 2016a. Los crísopidos de la Península Ibérica y Baleares Dorokhova G.I. 1987. Order Neuroptera. In: Opredelitel’ nasekomykh evro- (Insecta, Neuropterida, Neuroptera: Chrysopidae). Graellsia. 72(1): peiskoi chasti SSSR. T. 4. Bol’shekrylyye, verblyudki, setchatokrylyye, e037. DOI: 10.3989/graellsia.2016.v72.i1 skorpionovyye mukhi i rucheyniki. Shestaya chast’ [Keys to the in- Monserrat V.J. 2016b. Los coniopterígidos de la Península Ibérica e Islas sects of the European part of the USSR. Vol. 4. Megaloptera, Raph- Baleares (Insecta, Neuropterida, Neuroptera: Coniopterigydae). idioptera, Neuroptera, Mecoptera, Trichoptera. Part 6]. Leningrad: Graellsia. 72(2): e047. DOI: 10.3989/graellsia.2016.v72.i2 Nauka: 36–73 (in Russian). Monserrat V.J., Marín F. 1992. Substrate specificity of Iberian Duelli P., Bolt D., Henry C.S. 2015. Neuroptera of the Caucasian Coniopterygidae (Insecta: Neuroptera). In: Current Research in Republic of Georgia. Entomological News. 124(4): 229–244. DOI: Neuropterology. Proceedings of the Fourth International Symposium 10.3157/021.124.0401 on Neuropterology (24–27 June 1991, Bagnères-de-Luchon, Haute- Gepp J. 2010. Ameisenlöwen und Ameisenjungfern. Myrmeleontidae. Garonne, France). Toulouse: 279–290. Eine weltweite Betrachtung unter besonderer Berücksichtigung Monserrat V.J., Marín F. 1994. Plant substrate specificity of Iberian Mitteleuropas. 3., neubearbeitete Auflage. Hohenwarsleben: Westarp Chrysopidae (Insecta: Neuroptera). Acta Oecologica. 15(2): 119–131. Wissenschaften-Verlagsgesellschaft. 168 p. Rokhletsova A.V. 2001. Additions to the Neuropteroidea fauna of Ul’yanovsk Günther K.K. 1993. Welche Art muss Coniopteryx pygmaea Enderlein, 1906 Province. In: Priroda Simbiskogo Povolzh’ya [ e Nature of the Sim- heissen? (Neuroptera, Coniopterygidae). Deutsche Entomologische birsk Volga region]. Vol. 2. Ul’yanovsk: Ul’yanovsk State Technical Zeitschrift (N.F.). 40(1): 167–171. University Publishing House: 106–109 (in Russian). Klimaszewski J., LeSage L., Savard K. 2009. First record of adventive species Rokhletsova A.V., Krivokhatsky V.A. 2006. Contribution to the knowledge Micromus variegatus (Fabricius) from eastern Canada (Neuroptera, of the fauna of the Volgo-Ural Neuroptera. In: Entomologicheskie i Hemerobiidae). ZooKeys. 27: 1–6. DOI: 10.3897/zookeys.27.220 parazitologicheskie issledovaniya v Povolzh’e. Vyp. 5 [Entomological V.N. Makarkin, V.I. Shchurov

and parasitological investigations in the Volga region. Iss. 5]. Saratov: ierry D., Canard M., Mirmoayedi A. 2004. Chrysoperla mutata Saratov University: 23–31 (in Russian). (McLachlan, 1898): Looking at the live adult, description of its Roubal J. 1936. Dendroleon pantherinus F. Casopis Ceskoslovenské larva and some bioecological remarks (Neuroptera, Chrysopidae). Spolecnosti Entomologické. 33: 172–173. Entomofauna. 25(23): 345–353. Shchurov V.I., Makarkin V.N. 2013. New records of Neuroptera from the Tsukaguchi S. 1995. Chrysopidae of Japan (Insecta, Neuroptera). Osaka. ii + North-Western Caucasus. Caucasian Entomological Bulletin. 9(2): 224 p. 273–279 (in Russian). DOI: 10.23885/1814-3326-2013-9-2-273-279 Vshivkova T.S. 1985. Sialidae (Megaloptera) of Europe and the Caucasus. Shchurov V.I., Makarkin V.N. 2017. New records of Neuropterida Entomologicheskoe obozrenie. 64(1): 146–157 (in Russian). (Neuroptera: Raphidioptera) and scorpion-flies (Mecoptera) from the Zakharenko A.V., Krivokhatsky V.A. 1993. Neuroptera from the European North-Western Caucasus. Caucasian Entomological Bulletin. 13(1): part of the former USSR. Izvestiya Khar’kovskogo entomologicheskogo 77–90 (in Russian). DOI: 10.23885/1814-3326-2017-13-1-77-90 obshchestva. 1(2): 34–83 (in Russian and English). Szentkirályi F. 2001. Lacewings in vegetables, forests, and other crops. Zelený J. 1964. Aleuropteryx umbrata n. sp. a new species of Neuroptera In: Lacewings in the crop environment. Cambridge: Cambridge from Moldavian SSR (Neuroptera, Coniopterygidae). Casopis University Press: 239–291. Ceskoslovenské Spolecnosti Entomologické. 61(4): 327–329. Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 317–322 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Effects of a gel bait on the suppression of noxious Crematogaster rogenhoferi Mayr, 1879 (Formicidae: Myrmicinae) in Sri Lanka

Воздействие гелевой приманки на ядовитых муравьев Crematogaster rogenhoferi Mayr, 1879 (Formicidae: Myrmicinae) в Шри-Ланке

© R.K.S. Dias, K.G.I. Udeshika © Р.К.С. Диас, К.Г.И. Удешика

Department of Zoology and Environmental Management, Faculty of Science, University of Kelaniya, Kelaniya 11600 Sri Lanka. E-mail: [email protected]; [email protected] Кафедра зоологии и управления средой, факультет науки, Университет Келании, Келания 11600 Шри-Ланка

Key words: nuisance acrobat ant, environmental-friendly control, mortality, host trees. Ключевые слова: опасные муравьи-акробаты, контроль численности, процент смертности, гнездовые деревья.

Abstract. Crematogaster rogenhoferi Mayr, 1879 in показал 68% средней смертности рабочих особей. При a home garden in Sri Lanka was reported to cause health проведении полевого эксперимента с применением hazards and an investigation was conducted from February полосок геля шириной 1 см на расстоянии 10 см и меда to November in 2016 to list the tree species bearing its nests на расстоянии 1 см от трех гнезд начальной стадии и and to record the nest structure, nest intensity and colony только лишь полосок меда на расстоянии 1 см от трех demography for the evaluation of its level of infestation контрольных гнезд зафиксирована значительно более and to recommend a method for the suppression of its высокая средняя смертность рабочих особей – 89,2%. population size. ­ree types of nests on 19 tree species were В двух полностью сформированных гнездах, recognized. ­e largest nest had all life stages. ­e standard обработанных Optigard Ant Gel аналогичным образом, laboratory experiment conducted with the provision of средняя смертность рабочих и королев через 24 часа 0.25 g of Optigard Ant Gel bait (OAG) showed 68% of составила 97,5%. Применение полоски геля Optigard Ant mean mortality of workers. A field experiment conducted Gel шириной в 1 см на стволе дерева рекомендуется в by applying separate 1 cm band of OAG and honey at качестве метода подавления численности C. rogenhoferi 10 cm and 1 cm distance from three initial stage nests and a в домашних садах. honey band only at 1 cm distance from three control nests recorded a significantly higher 89.2% of mean mortality Introduction of workers. Two mature nests treated with OAG similarly while two other similar nests served as simultaneous ­e species-rich ant genus Crematogaster Lund, 1831 control nests resulted significantly higher 97.5% of mean has a global distribution throughout warm-temperate mortality of workers and queens in OAG-treated nests, to subtropical and tropical climates. Arboreal species of after 24 hours. Hence, application of 1 cm band of OAG Crematogaster can be dominant elements, with polydomous on the tree trunk, if essential, is recommended as a method and strongly territorial colonies that live in carton nests. for suppressing the population size of C. rogenhoferi in a ­ey possess exceptional dispersal and colonization abilities home garden. [Blaimer, 2012a]. Noxious bites followed by spraying Резюме. После сообщений о том, что Crematogaster of venom of Crematogaster workers may cause allergic rogenhoferi Mayr, 1879 в домашнем саду в Шри-Ланке reactions and are associated with local pathophysiological представляет опасность для здоровья людей, с февраля events, characterized by pain, swelling and redness at the по ноябрь 2016 года было проведено исследование с human body part for about 1–2 days [Kang et al., 2004; целью составления списка видов деревьев, на которых Hoffman, 2010; Dias, 2011; Rifflet et al., 2011; Chantarasawat муравьи строят гнезда, изучения плотности гнезд на et al., 2013]. ­eir gaster is brought high up over the rest территории, их структуры, а также демографии колоний of the mesosoma upon disturbance, either as a defensive для оценки локальной популяции и рекомендации or aggressive gesture but the sting is of spatulate form, метода подавления численности муравьев. Было which is used to spray venom by contact rather than by выявлено 3 типа гнезд на 19 видах деревьев. В самом injection [Blaimer 2012a, b]. Dufour gland secretions большом гнезде присутствовали все жизненные стадии (venom) of several Crematogaster species consist of long муравьев. Стандартный лабораторный эксперимент с chain conjugated dienones, furan, and trihydroxylated использованием 0,25 г геля-приманки Optigard Ant Gel cyclohexane derivatives, as well as diterpenes. In some

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-317322 318 R.K.S. Dias, K.G.I. Udeshika

Crematogaster species, formation of highly toxic aldehydes stage nests (MN) were larger than SN but partly complete during the emission of venom has been reported [Rifflet et with the workers and dealate queens only as colony al., 2011]. members. ­e fully-formed nests (LN) were the largest, Crematogaster is characterized by the unique post- globular and complete nests with all life stages. Six SN, petiole articulation on the dorsal surface of the gaster, two MN and two LN were detached carefully from the host the square-shaped head, 11-segmented antennae, strong, plants, placed in polythene bags of appropriate size and thick mandibles and a very narrow sting at the apex of brought to the laboratory. Length and width of each nest the gaster [Bingham, 1903; Bolton, 1992; Hosoishi, Ogata, was measured and the structure was described. Colony 2009; Blaimer, 2010, 2012c]. Among the 13 species of the demography of each type of nest was recorded by opening genus recorded from Sri Lanka [Dias, 2014] C. rogenhoferi the nest carefully and preserving all life stages quickly in Mayr, 1879 is characterized by the presence of angular 70% ethanol. Number of individuals of each life stage margins on the broadly flared pronotum, a bilobed post- including eggs seen in each nest was counted with the petiole having a median longitudinal impression and naked eye or using a low power stereo-microscope. Mean the elongated gaster [Bingham, 1903]. A home garden percentage abundance of each life stage in each type of in Pahala Imbulgoda, Gampaha District in Sri Lanka nest was calculated (Mean percentage abundance = (No. of was heavily infested with C. rogenhoferi in 2016 and the individuals of a particular life stage / total No. of individuals workers caused human health problems through their in all nests) × 100) / No. of nests). noxious bites and venom [Udeshika, 2016]. We report here Preliminary laboratory experiments for recording the tree species in the home garden that had C. rogenhoferi responses of workers. A band of vaseline was applied nests and structure and colony demography of differently along the open edge of ten, 100 ml Petri dishes and the sized nests of the species. Many formulations experimental workers of the species were kept for 7 days in are not suitable for suppressing arboreal ant populations them with the provision of sufficient honey and water for th but baits formulated as pastes or gels can be applied to acclimation to the laboratory conditions. On 12 March tree trunks, branches and vegetation to control them while in 2016, six 100 ml Petri dishes with a band of vaseline minimizing hazards to the environment [Vanderwoude, applied along its open edge were set as three control and Nadeau, 2009]. Optigard Ant Gel bait (OAG; active three experimental units. Two pieces of cotton wool each ingredient: ­iamethoxam) is a highly palatable, non- wetted with water or honey and a small piece of original repellent ant bait and transfers within ant colonies through nest were placed in each Petri dish. A 0.25 g drop of OAG the attending workers, resulting in control of workers, from the syringe was added to each experimental unit. brood and queens (http://www.syngenta-us.com/images/ ­irty workers acclimated to laboratory conditions were resource_pages/pmp/optigard-ant-gel-tech-bulletin.pdf). carefully transferred to each of the control and experimental However, effects of OAG on the worker and queen of units. After 1 hour, each set of units was observed every arboreal Crematogaster species are not reported. Hence, 10 minutes and behaviour of the workers was recorded for the current investigation was conducted (a) to describe the a half an hour. After 7 hours (at the end of day time), total structure and colony demography of nests, (b) to record the number of dead workers observed in each control and responses including percentage mortality of C. rogenhoferi experimental units was recorded and mean mortality (%) workers to Optigard Ant Gel bait in the laboratory and of workers observed in the control and experimental units (c) to calculate percentage mortality of workers and the was calculated (= (No. of dead workers in each category / queen caused by OAG in the field. Total No. of workers (= 90)) × 100) / 3). Any significant difference between mean percentage mortality (Arcsine transformed proportions) of the workers in the control Material and methods and OAG-treated units was analyzed using two sample t-test in Minitab 14.0. Description of the locality and the field survey on Field experiment for the calculation of 2 C. rogenhoferi population. A home garden of 385 m mortality (%) of OAG-fed workers in Initial stage nests. consisting of many plant species that formed a canopy Six nests at reachable heights were located for the field (names in results section), was situated at 7°04ʹ18ʺ N / trial in June, 2016. To prevent the movement of workers 79°98ʹ75.67ʺ E, Pahala-Imbulgoda of Gampaha District from any other nest or along other branches of the tree, in Sri Lanka. Floor of the land was covered with a thick a thick wax band was applied on all such branches. On leaf litter layer. ­e land was surveyed for the nests of the trunk that was without wax application, 1 cm band the species while walking and recording preliminary of honey as a food source was applied at 1 cm distance visual observations on the presence of nests and their from all the nests. One cm wide band of OAG was also microhabitats with the naked eye and using a pair of applied on the same trunk at a 10 cm distance from each binoculars in February 2016. Scientific names of the plant of the three experimental nests, external to the honey species that had the nests were listed with reference to ­e band. ­ree nests on the branches without ant gel bait Plant List [2013]. band served as the control nests. Each experimental and Investigation on the structure and colony control nest was fully-covered with a perforated, very large demography of nests. Based on the preliminary polythene bag for collecting dead ants if fallen from each observations recorded in the field and laboratory, three nest and to prevent the effects of raining. After 24 hours, types of nests were recognized according to the level of each nest was severed carefully, enclosed in a polythene completion and the life stages seen in each nest. Initial bag of appropriate size while minimizing the escape of nest stage nests (SN) were smaller with loosely woven leaves members and brought to the laboratory. Each nest was and the workers as only members whereas intermediate placed in a separate basin containing a 0.05 m band of wax Effects of a gel bait on the suppression of noxious Crematogaster rogenhoferi 319

Figs 1–4. Nests of Crematogaster rogenhoferi. 1 – small nest (SN); 2 – intermediate nest (MN); 3 – fully-formed whole nest (LN); 4 – the leaf folds inside the nest. Рис. 1–4. Гнезда Crematogaster rogenhoferi. 1 – маленькое гнездо (SN); 2 – среднее гнездо (MN); 3 – полностью сформированное гнездо (LN); 4 – сложенные листья расположены в складчатом виде и образуют внутренние камеры. along its top, inner edge. From each nest, live workers were Field experiment for the calculation of mortality collected immediately into a bottle containing 70% ethanol (%) of OAG-fed life stages in mature nests. Nests while dead workers were preserved next in 70% ethanol in with the workers and dealate queens were considered a separate bottle with appropriate labels. Number of live as mature nests in this experiment. Four mature nests at and dead workers was recorded and percentage mortality reachable heights could only be located; two nests served of workers observed in each nest was calculated ((No. of as the control and the other two nests were treated with dead workers/ Total No. of workers) × 100) and the values OAG as described in the previous section. Mortality (%) of mean mortality (%) of workers in the control and treated of worker and queen in each control and OAG-treated nests were estimated (= (∑ percentage mortality observed nest was calculated according to the procedure described in each control or OAG treated nest) / 3). Any significant previously under the initial stage nests. Any significant difference between the mean mortality (%) (Arcsine difference between the mean percentage mortality (Arcsine transformed proportions) observed in the control and transformed proportions) observed in the two control and OAG-treated nests was analyzed using two sample t-test two OAG-treated mature nests was analyzed using two in Minitab 14.0. sample t-test in Minitab 14.0. 320 R.K.S. Dias, K.G.I. Udeshika

(Ceylon olive), Lansium parasiticum (Osbeck) K.C. Sahni et Bennet (langsat), Limonia acidissima Groff (wood- apple), Mangifera indica L. (mango), Musa balbisiana Colla (banana), Myristica fragrans Houtt (nutmeg), Persea americana Mill (avocado), Phyllanthus acidus (L.) Skeels (gooseberry), Ph. emblica L. (Indian gooseberry), Swietenia mahagoni (L.) Jacq. (mahogany) and Tectona grandis L. f. (teak). Many workers occupied small cavities and crevices in the tree trunks and spaces in the thick leaf litter layer on the ground. ­ey invaded the home while foraging and sometimes bit the occupants and visitors aggressively causing allergic reactions. Plucking of flowers and fruits in the garden was impossible due to the biting habit of workers. People who entered the premises or tried to pluck fruits or flowers developed health hazards such as painful itching and related symptoms. Structure of each nest type and colony demography. ­e SN nests (Fig. 1) were observed among the tree forks and mean length and mean width of SN ranged from 5–9 cm and 4.7–9 cm, respectively. Green leaves had been bent occasionally to form the nest and a black, hard paste and a clay-like material covered the green leaves. Fig. 5. Mean percentage mortality of workers observed in Optigard Number of workers being the only members (100%) ranged Ant Gel bait-treated units (n = 30) and the control units (n = 30) at the end from 115 to 375. MN nests (Fig. 2) ranged from 6–11 cm of preliminary laboratory experiment. in mean length and 8–15 cm in mean width. A black hard Рис. 5. Средняя смертность (%) рабочих особей после воздействия Optigard Ant Gel (n = 30) и контрольной группы (n = 30) в конце paste and clay well-covered the nest externally. Inside the предварительного лабораторного эксперимента. nest, brownish leaves had a pleated arrangement. ­ose had more than 2000 workers (98.5%) and several dealate queens (1.5%). ­e LN nests (Fig. 3) were of elongated Results globular shape with 36–45 cm mean length and 20–24 cm mean width. Many brownish leaves covered with hard black Preliminary observations on the nest occurrence paste were seen outside and inside of LN and the folded and medical importance of C. rogenhoferi. leaves arranged in pleated manner formed inner chambers Crematogaster rogenhoferi nests hanged from forks of (Fig. 4). Colonies in LN nests consisted of the workers 19 tree species, Artocarpus heterophyllus Lam. (jackfruit), (90.7%), dealate queens (0.07%), eggs (1.4%), larvae (3.1%) Averrhoa bilimbi L. (bilimbi), A. carambola L. (star and pupae (4.7%) while total number of life stages observed fruit), Azadirachta indica A. Juss. (neem), Cinnamomum in each LN ranged from 13,385 to 18,134. verum J. Presl. (cinnamon), Citrus aurantiifolia (Christm.) Mean mortality (%) of workers caused by OAG bait. Swingle (lime), C. sinensis (L.) Osbeck (orange), Each worker that reached the OAG carried a small amount Cocos nucifera L. (coconut), Elaeocarpus serratus L. of the gel to the piece of nest. In the laboratory experiment, workers provided with OAG showed a higher significant (p < 0.05) mean percentage mortality than that observed Table 1. Percentage mortality of C. rogenhoferi workers observed in the control initial stage nests and those treated with OAG in the field in the control group (Fig. 5). In the field experiment, initial experiment. stage nests provided with OAG resulted a significantly Таблица 1. Процент смертности рабочих особей C. rogenhoferi, higher (p < 0.05) percentage mortality of the workers наблюдаемых в контрольных и обработанных Optigard Ant Gel гнездах начальной стадии (SN) в полевом эксперименте. (Table 1) than that observed in the control nests. Also, mature nests treated with OAG showed significantly higher Mean mortality (p < 0.05) of the adult life stages, the workers Nest Mortality, % mortality, % / N and dealate queens (Table 2), than that observed in each Гнездо Смертность, % Средняя corresponding control nest. смертность, % Control 1 3.9 375 Discussion Control 2 2.0 4.67a 298 Control 3 8.0 115 Arboreal nests of C. rogenhoferi have been reported Experimental 1 85.5 265 from the forest trees in other countries [Watanasit, Jantarit, b 2006; Chavhan, Pawar, 2011; Langshiang, Hajong, 2018]. Experimental 2 90.2 89.27 221 ­e presence of its nests on Artocarpus heterophyllus, Experimental 3 92.1 128 Averrhoa bilimbi, A. carambola, Azadirachta indica, Note. N – total number of workers observed in each nest. Superscripts Cinnamomum verum, Citrus aurantiifolia, C. sinensis, indicate significantly different values (p < 0.05). Примечание. N – общее количество рабочих в каждом гнезде. Cocos nucifera, Elaeocarpus serratus, Lansium Верхние индексы указывают достоверное различие (р < 0.05). parasiticum, Limonia acidissima, Mangifera indica, Effects of a gel bait on the suppression of noxious Crematogaster rogenhoferi 321

Musa balbisiana, Myristica fragrans, Persea americana, Table 2. Percentage mortality of the adult caste, both workers and queen, observed in the control and OAG treated mature nests of Phyllanthus acidus, P. emblica, Swietenia mahagoni and C. rogenhoferi in the field experiment. Tectona grandis trees was recorded for the first time Таблица 2. Процент смертности имаго (как рабочих особей, так in Sri Lanka. Variations in size, structure and colony и королевы) наблюдаемой в контрольных и обработанных Optigard Ant Gel полностью сформированных гнездах C. rogenhoferi в полевом demography of initial stage nests, intermediate stage nests эксперименте. and fully-formed nests of the species was described for the Mean first time and is very useful in locating its nests in future Nest Mortality, % mortality, % / N studies. Colour images of the initial, intermediate and large Гнездо Смертность, % Средняя nests of the species provided here will be very useful as смертность, % the clues for the quick identification of the presence of the Control 1 1.7 2049 2.3a species in any habitat, even without any knowledge on the Control 2 2.9 11857 identification of the ant species. Findings also revealed that Experimental 1 96.1 2134 SN built by workers were occupied later by dealate queens 97.5b Experimental 2 98.9 16822 (polygynous colony) for the oviposition because workers and dealate queens were only observed in intermediate Note. N – total number of workers observed in each nest. Superscripts indicate significantly different values (p < 0.05). nests. It seemed that an intermediate stage nest was Примечание. N – общее количество рабочих в каждом гнезде. expanded gradually to a large nest because oviposition by Верхние индексы указывают достоверное различие (р < 0.05). queens produced progeny continuously, which demanded more chambers for the new members of the colony. Nest materials included leaves covered with a black paste, plant Conclusion fibre and clay although Langshiang and Hajong [2018] revealed the presence of an additional material, the fungal Arboreal acrobat-ant, C. rogenhoferi, built smaller hyphae. Watanasit and Jantarit [2006] reported that a (initial stage nests) to larger nests (fully-formed nest) on large number of winged females occupied the nests of 19 tree species. Nests were of different levels of completion the species and total population of each nest varied from and had workers only or workers and queens or all life 1520 to 67755 individuals in a National park in ­ailand. stages except the winged forms. Optigard Ant Gel bait Few queens and many workers but winged females were tested first time for the species caused 68% of mean observed in a mature nest and total population size mortality of the workers in the laboratory and 97.5% (115 to 18134 individuals) was smaller in the nests collected mean mortality of workers and queens in the field can be from the current home garden. recommended for the suppression of its population size. Laboratory experiment was conducted to record the preliminary observations so that it ended after 7 hours, at the Acknowledgements end of the day time and showed that workers carried the gel to the nest and a higher percentage died only in the treated Authors thank University of Kelaniya for the provision units. Significantly higher proportions of experimental of facilities, Mrs. A.L.M.S.D. Ambegoda for granting workers in the laboratory experiment and the colony permission to enter the home garden and her assistance members of the species died after consumption of OAG in to carry out the field survey. Mr. D. Chaturanga and the field experiments, most probably, due to the action of Mr. W.S. Udayakantha are thanked for the field assistance. thiamethoxam on nicotinic acetylcholine receptors in their Many thanks to the anonymous reviewers for improving nervous system (http://www.syngenta-us.com/images/ the quality of the manuscript. resource_pages/pmp/optigard-ant-gel-tech-bulletin.pdf). Very small amount of gel bait carried to the nest by workers should have been fed to the queens; perhaps the trophallactic References activity also contributed to the death of the queens. Perforated polythene bags used to cover the nests were large Bingham C.T. 1903. ­e Fauna of British India Including Ceylon and Burma. Hymenoptera Vol. 2. Ants and cuckoo wasps. London: Taylor and enough to provide ventilation and a very small percentage Francis. 508 p. died (perhaps due to natural reasons) in the control nests Blaimer B.B. 2010. Taxonomy and Natural History of the Crematogaster although covered with such bags. Optigard Ant Gel bait (Decacrema) group in Madagascar. Zootaxa. 2714(1): 1–39. DOI: 10.11646/zootaxa.2714.1.1 was tested for C. rogenhoferi fore th first time in Sri Lanka Blaimer B.B. 2012a. A subgeneric revision of Crematogaster and discussion and a considerable percentage mortality of both workers of regional species-groups (Hymenoptera: Formicidae). Zootaxa. and queens observed in the field clearly indicated that it can 3482(1): 47–67. DOI: 10.11646/zootaxa.3482.1.3 be used in the suppression of the population size. Dealate Blaimer B.B. 2012b. Untangling complex morphological variation: taxonomic revision of the subgenus Crematogaster (Oxygyne) in fertile queens lay eggs continuously and the colony size is Madagascar, with insight into the evolution and biogeography of expanded so that killing of the queens is essentially required this enigmatic ant clade (Hymenoptera: Formicidae). Systematic for the suppression of the population size. In addition, Entomology. 37(2): 240–260. DOI: 10.1111/j.1365-3113.2011.00609.x removal of leaf litter from the ground and reduction of tree Blaimer B.B. 2012c. Acrobat ants go global: origin, evolution and systematics of the genus Crematogaster. Molecular Phylogenetics and Evolution. canopies to allow more sunshine to the home garden that 65(2): 421–436. DOI: 10.1016/j.ympev.2012.06.028 confine workers to the nests (personal observation) are also Bolton B. 1992. A review of the ant genus Recurvidris, a new name for essential to remove temporary microhabitats of the species. Trigonogaster Forel. Psyche. 99(1): 35–48. DOI: 10.1155/1992/58186 Chantarasawat N., Sitthicharoenchai D., Chaisueku L.C., Lekprayoon C. ­ose practices together with repeated Optigard Ant Gel 2013. Comparison of ant (Hymenoptera: Formicidae) diversity in dry bait application are recommended for the elimination of dipterocarp and mixed-deciduous forests at Sri Nan National Park, C. rogenhoferi from the home garden. Northern ­ailand. Tropical Natural History. 13(1): 1–19. 322 R.K.S. Dias, K.G.I. Udeshika

Chavhan A., Pawar S.S. 2011. Distribution and Diversity of Ant Species Syngeta US. Optigard Ant Gel Technical bulletin. Available at: http://www. (Hymenoptera: Formicidae) in and around Amravati City of syngenta-us.com/images/resource_pages/pmp/optigard-ant-gel-tech Maharashtra, India. World Journal of Zoology. 6(4): 395–400. bulletin.pdf (accessed 3 February 2016). Dias R.K.S. 2011. Biology of medically important ants in Sri Lanka. In: Rifflet A., Tene N., Orivel J., Treilhou M., Dejean A., Vetillard A. 2011. Medically important ants, bees, wasps and spiders. Peradeniya: Paralyzing action from a distance in an arboreal African ant Species. Sanduni Offset Printers: 30–68. PLoS ONE. 6(12): e28571. DOI: 10.1371/journal.pone.0028571 Dias R.K.S. 2014. Ants of Sri Lanka. Colombo: Biodiversity Secretariat, Udeshika K.G.I. 2016. Autecology and morphometrics of Crematogaster Ministry of Environment & Renewable Energy, Sri Lanka. 273 p. rogenhoferi Mayr, 1879, a medically important ant species (Formicidae: Hoffman D.R. 2010. Ant venoms. Current Opinion in Allergy and Clinical Myrmicinae) in Sri Lanka and the effects of Optigard Ant Gel bait Immunology. 10(4): 342–346. DOI: 10.1097/ACI.0b013e328339f325 on its life stages. Undergraduate thesis submitted for B. Sc. (Special) Hosoishi S., Ogata K. 2009. A checklist of the ant genus Crematogaster in Zoology Degree, University of Kelaniya. 82 p. Asia (Hymenoptera: Formicidae). Bulletin of the Institute of Tropical ­e Plant List. Version 1.1. 2013. Available at: www.plantlist.org (accessed Agriculture, Kyushu University. 32: 43–83. 10 March 2016). Kang J.D., Kim S.J., Youn N.H., Kim B.J., Park S.D. 2004. A case of ant sting Vanderwoude C., Nadeau B. 2009. Application methods for paste bait by Crematogaster matsumurai Vagala. Annals of Dermatology. 16(2): formulations in control of ants in arboreal situations. Proceedings of 87–90. DOI: 10.5021/ad.2004.16.2.87 Hawaiian Entomological society. 41: 113–119. Langshiang E.S., Hajong S.R. 2018. Determination of structural features Watanasit S., Jantarit S. 2006. ­e ant nest of Crematogaster rogenhoferi of the nest material of Crematogaster rogenhoferi (Mayr, 1879), Mayr, 1879 (Hymenoptera: Formicidae) at Tarutao National Park, (Hymenoptera: Myrmicinae). Journal of Entomology and Zoology Satun Province, Southern ­ailand. Songklanakarin Journal of Science Studies. 6(1): 1626–1631. and Technology. 28(4): 723–730.

Received / Поступила: 4.11.2018 Accepted / Принята: 12.06.2019 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 323–326 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

New records and distribution update of Polistes (Gyrostoma) wattii Cameron, 1900 (Hymenoptera: : Polistinae)

Новые данные о находках и распространении Polistes (Gyrostoma) wattii Cameron, 1900 (Hymenoptera: Vespidae: Polistinae)

© F. Ceccolini © Ф. Чекколини

Natural History Museum of the University of Florence, Zoological Section “La Specola”, Via Romana, 17, Florence I-50125 . E-mail: [email protected] Музей естественной истории Флорентийского университета, зоологический отдел «La Specola», Флоренция I-50125 Италия

Key words: Hymenoptera, Vespidae, Polistes wattii, first records, new records, distribution. Ключевые слова: Hymenoptera, Vespidae, Polistes wattii, первые указания, новые находки, распространение.

Abstract. ­e distribution of Polistes (Gyrostoma) wattii Cameron, 1900 is summarized and new occurrence records are given through collected or photographed material. ­e known distributional range of the species is here expanded westward and the first records from Israel, Uzbekistan, Samangan () and Assam (India) are provided. A map of the countries for which P. wattii is reliably recorded is quoted. Another one about the known Indian states of occurrence of the species is provided, emphasizing different faunistic knowledge between the north-western and north-eastern parts of this country. Further research is certainly needed to better define the distribution of P. wattii in Central Asia and in India. Резюме. Суммированы данные по распространению осы Polistes (Gyrostoma) wattii Cameron, 1900, представлены новые находки по коллекционным или сфотографированным экземплярам. Ареал вида значительно шире в западной части, чем считалось ранее. Вид впервые указан для Израиля (Эйлат), Узбекистана (Наманган), регионов Саманган в Афганистане и Ассам в Индии. Дана карта стран, в которых P. wattii зарегистрирован достоверно. Представлено распространение этой осы по штатам Индии, анализируются различия в полноте фаунистических данных между северо-западными и северо-восточными частями страны. Для более точного представления об ареале P. wattii в Центральной Азии и Индии необходимы дополнительные исследования. Fig. 1. Countries for which Polistes wattii is reliably recorded. Question mark is due to the lack of precise localities in China, for which only a generic “S China” is reported. Arrow shows Mauritius. Circles mark the countries added by this work. Introduction Рис. 1. Страны, в которых Polistes wattii зарегистрирован достоверно. Вопросительный знак связан с отсутствием точных Polistes (Gyrostoma) wattii Cameron, 1900 is a местонахождений в Китае (в литературе указан «Южный Китай»). Стрелкой показан Маврикий. Кружками отмечены страны, temperate species of paper wasp nesting in cavities of trees добавленные в этой работе. or human building [Temreshev, 2018]. It is widespread in almost all central south Asia: Das and Gupta [1989] and Carpenter [1996] synthesized the faunistic knowledge Oman, Iraq, Iran, Afghanistan, Pakistan, India, China, and of this wasp reporting overall the following countries in Mauritius (herein probably imported) (Fig. 1). Subsequently, which it was known: Saudi Arabia, , other countries have been added to those in which this

Short Communication / Краткое сообщение DOI: 10.23885/181433262019152-323326 324 F. Ceccolini

United Arab Emirates: 1♀, Dubai Emirate, Dubai, Emirates Towers, 25.215636°N / 55.281337°E, 24.04.2015 (photo by Tamsin Carlisle, IN); 3 specimens, same locality, Mushrif Park, 25.21421°N / 55.448165°E (un = 202 m) (photos by Tamsin Carlisle, IN); 1 specimen, Sharjah Emirate, Arabian Wildlife Centre, 25.280124°N / 55.695489°E, 10.10.2015 (photo by Tamsin Carlisle, IN); 1♀, Sharjah Emirate, Al Bataeh, 25.281851°N / 55.69566°E, 16.04.2019 (photo by John Pereira, IN); 1♀, Sharjah Emirate, 25.346357°N / 56.280569°E (un = 8 m), 25.04.2019 (photo by John Pereira, IN); 1♀, Fujairah Emirate, Al Hayl, 25.082886°N / 56.224325°E, 26.11.2016 (photo by Tamsin Carlisle, IN); 1♀, Fujairah emirate, 24.986111°N / 56.235833°E, 20.03.2019 (photo by John Pereira, IN); 1 specimen, Fujairah Emirate, 25.35247°N / 56.261187°E (un = 4 m), 7.05.2019 (photo by “brendanwj”, IN). Oman: 1♀, Ad Dakhiliyah Governorate, Saiq Platear, Jebel Akhdar, 23.1°N / 57.4°E (un = 7.98 km), 12.04.2013 (photo by Tamsin Carlisle, IN); 1♀, Ad Dakhiliyah Governorate, Nizwa, 23.112721°N / 57.476186°E (un = 6.16 km), 9.01.2019 (photo by Arno Beidts, IN); 1 specimen, Muscat Governorate, Muscat Province, Sultan Qaboos Street, 23.586666°N / 58.391388°E, 11.11.2017 (photo by Matt Rempel, IN); 1 specimen, Muscat Governorate, Muttrah Province, 23.622347°N / 58.474667°E (un = 201 m), 15.12.2018 (photo by Arno Beidts, IN). Afghanistan: 1♀ (Fig. 2), Samangan Province, Aybak District, 36.315551°N / 67.964286°E (un = 10.29 km), 15.10.2016 (photo by Nasser Fig. 2. Polistes wattii from Aybak District, Afghanistan (photo by Halaweh, IN). Nasser Halaweh). Uzbekistan: 1♀, Namangan Region, Namangan District, Namangan, Рис. 2. Polistes wattii, Айбак, Афганистан (фото Насера Халаве). 40.991236°N / 71.605797°E (un = 31 m), 5.10.2015 (photo by Vyacheslav Yusupov, IN); 2♀ on the nest, Namangan Region, Turakurgan District, 40.883135°N / 71.453325°E (un = 244 m), 29.05.2017 (photo by Vyacheslav species was known: Kazakhstan [Kazenas, 2014; Temreshev, Yusupov, IN); 1♀, same locality, 30.05.2017 (photo by Vyacheslav Yusupov, IN). India: 1♀ (MZUF), National Capital Territory of Delhi, New Dehli 2018], Tajikistan [Castro, Dvorak, 2010; Dubatolov, 2019], [in original label the name of the state Haryana is added in brackets, and Turkmenistan [Dubatolov, 2019] (Fig. 1). but it is apparently a mistake], 25.09.1979, (leg. M.L. Azzaroli); 10♀ Most of the data come from Pakistan and India. In (MZUF), Punjab State, Chandigarh, 10.1979 (Punjab University leg.); 1♀ (MZUF), Assam State, Barpeta District, Barpeta road, 23–24.06.1995 (leg. the first country, P. wattii is recorded in all provinces exept L. Bartolozzi, K. Werner); colony in the nest, Madhya Pradesh State, Satna Balochistan [Das, Gupta, 1984, 1989; Gusenleitner, 2007; District, 24.26936°N / 80.756651°E (un = 2.63 km), 25.11.2015 (photo by Mahmood et al., 2012; Siddiqui et al., 2015; Faiz et al., 2016; Chief RedEarth, IN); 1♀, Rajasthan State, Jhunjhunun District, Mandawa, Habib et al., 2017; Rafi et al., 2017; A.K. Khan et al., 2017; 28.055319°N / 75.150589°E (un = 562 m), 4.10.2017 (photo by Lorenzo Zambetti, IN); 2 specimens, same locality, 28.055471°N / 75.150932°E K. Khan et al., 2018; M.T. Khan et al., 2018], while in India (un = 697 m), 4.10.2017 (photo by Lorenzo Zambetti, IN); 1 specimen, the known distribution is more fragmented. After Das Rajasthan State, Jodhpur District, Gulab Sagar, 26.296483°N / 73.023743°E and Gupta [1989] and Carpenter [1996], who summarized (un = 9 m) (photo by Julie, IN). the distribution of the species in India in many states (Himachal Pradesh, Punjab, Delhi, Uttar Pradesh, West Discussion Bengal, Meghalaya, Gujarat, Orissa), other states (Bihar, Chhattisgarh, Haryana, Jammu and Kashmir, Jharkhand, New records of P. wattii are provided, adding some Madhya Pradesh, Rajasthan, Uttarakhand) are overall particularly interesting data. reported in Girish Kumar [2010], Tan et al. [2014], and ­e record from Eilat is the first one for Israel. So far Girish Kumar and Sharma [2015]. Iraq and Saudi Arabia were the most western states in which ­e present work adds new records of P. wattii, also this species was known; therefore its known distributional documenting new countries or regions for this species, and range is here expanded westward. updates its distribution. Records from the Namangan Region are the first ones from Uzbekistan. In Afghanistan, although this Material and methods country is often quoted among ones in which P. wattii is present [Carpenter, 1996; Schmid-Egger et al., 2017] and ­e examined material consists of collected or in Dunford et al. [2014] it is reported “very common near photographed specimens from Natural History Museum man-made structures located on military installations”, of the University of Florence, Italy (MZUF) and iNaturalist exact localities are listed in literature only for Herat, (IN, www.inaturalist.org). For each site, the following Nangarhar, and Kabul provinces [Blüthgen, 1961 (sub information is provided: number of specimens (specifying Polistes aff. Hebraeus (F.), but identified as P. wattii by sex when possible), locality, geographical coordinates, Gusenleitner [1972]); Gusenleitner, 1972; Tan et al., 2014]; date, collector or photographer, repository or source. ­e Gusenleitner [1972] supposed that records of P. olivaceus uncertainty (un) of data is indicated according to the point- (DeGeer, 1773) reported by Giordani Soika [1962] in other radius method [Wieczorek et al., 2004]. regions of Afghanistan are attributable to P. wattii, but he Each record was identified or confirmed by the author. could not confirm it. Record from Aybak is the first one for Samangan Province. Further researches is certainly needed Polistes (Gyrostoma) wattii Cameron, 1900 to better define the distribution of this species in Central Asia. Material. Israel: 1 specimen, Southern District, Eilat, 29.55913°N / ­e first record from Assam State is given through 34.947639°E (un = 31 m), 10.03.2018 (photo by Eitan-Shmuel Palti, IN). specimen collected in Barpeta. Faunistic knowledge about New records and distribution update of Polistes (Gyrostoma) wattii 325

P. wattii in India is still not satisfactory: this species is known in Northern India, but, whilst the western part of subcontinent was recently well investigated [Girish Kumar, 2010; Tan et al., 2014; Girish Kumar, Sharma, 2015], few records come from eastern part, where so far P. wattii was known only for West Bengala and Meghalaya [Das, Gupta, 1989; Carpenter, 1996]. Figure 3 summarizes the faunistic distribution for India, emphasizing different knowledge between the north-western and north-eastern parts. Further research is needed to understand how this difference is real or it results from lack of samples. Although many papers cite the species occurring in China [Das, Gupta, 1989; Carpenter, 1996; Rafi et al., 2017] no exact localities are reported in literature. Also Tan et al. [2014] in their work about the subgenus Gyrostoma Kirby, 1828 in China wrote “No specimens from China were available” and mentioned P. watti among Chinese wasp fauna because recorded from China by Das and Gupta [1984, 1989] and Carpenter [1996]. ­e only reference giving a more precise indication is one by Schmid-Egger et al. [2017] who indicated South China.

Acknowledgements

I would like to thank Luca Bartolozzi (Museo di Storia Naturale dell’Università degli Studi di Firenze, Florence, Fig. 3. Map of the known Indian states of occurrence of Polistes wattii. Italy) who allowed me to study the material under his care Circle marks the state added with the present work. and Fabio Cianferoni (CNR-National Research Council, Рис. 3. Карта распространения Polistes wattii в Индии (по штатам). Florence, Italy) for the critical reading of the manuscript. Кружком отмечен штат, добавленный в этой работе.

References Journal of ‚reatened Taxa. 7(14): 8096–8127. DOI: 10.11609/ jott.2426.7.14.8096-8127 Blüthgen P. 1961. Ergebnisse der Deutschen Afghanistan-Expedition 1956 Gusenleitner J. 1972. Beiträge zur Kenntnis der Fauna Afghanistans der Landessammlungen für Naturkunde Karlsruhe Diploptera und (Vespoidea, Hymenoptera). Acta Musei Moraviae. Scientiae Apoidea (partim) (Hymenoptera). Beiträge zur naturkundlichen Naturales. 56–57: 315–334. Forschung in Südwestdeutschland. 19: 277–287. Gusenleitner J. 2007. Über Vespidae aus Pakistan (Hymenoptera: Vespidae). Carpenter J.M. 1996. Distributional Checklist of Species of the Genus Linzer Biologische Beiträge. 39(2): 969–972. Polistes (Hymenoptera: Vespidae; Polistinae, Polistini). American Habib A., Rustamani M.A., Khatri I., Dhiloo K.H., Yaseen M., Dhiloo K.H., Museum Novitates. 3188: 1–39. Mastoi S.M. 2017. Wasps of sphecidae and vespidae of Tando Jam. Castro L., Dvořák L. 2010. New and noteworthy records of vespid wasps Journal of Entomology and Zoology Studies. 5(6): 466–469. (Hymenoptera: Vespidae) from the Palaearctic region (III). Acta iNaturalist. Available at: www.inaturalist.org (accessed 10 June 2019). Musei Moraviae, Scientiae biologicae. 95(2): 37–53. Kazenas V.L. 2014. Collection materials on eusocial wasps (Hymenoptera, Das B.P., Gupta V.K. 1984. A catalogue of the families Stenogastridae Vespidae: Vespinae et Polystinae) of Kazakhstan in the Institute of and Vespidae from the Indian subregion (Hymenoptera: Zoology of the Ministry of Education and Science of the Republic of Vespoidea). Oriental Insects. 1983. 17(1): 395–464. DOI: Kazakhstan (Almaty). Selevinia. 22: 193–196 (in Russian). 10.1080/00305316.1983.10433698 Khan A.K., Khan M.R., Rafi M.A., Qasim M. 2017. Wasp fauna of Das B.P., Gupta V.K. 1989. ­e Social Wasps of India and the Adjacent (Eumeninae, Vespinae and Polistinae) of district Poonch, Azad Jammu Countries (Hymenoptera: Vespidae). Oriental Insects. Monograph 11. and Kashmir (Pakistan). Journal of Entomology and Zoology Studies. Gainesville, Florida, USA: Association for the Study of Oriental 5(6): 1587–1590. Insects. 292 p. Khan K., Rasool M., Zahid M. 2018. Taxonomic study of polistinae species Dubatolov V.V. 2019. Vespidae collection of Siberian Zoological Museum. (Hymenoptera: Vespidae) of Dir, Pakistan. Journal of Entomology and Available at: http://szmn.eco.nsc.ru/Hymenop/Vespidae.htm Zoology Studies. 6(2): 791–794. (accessed 2 May 2019). Khan M.T., Rafi M.A., Sultana R., Munir A., Ahmad S. 2018. Wasps of Dunford J.C., Turbyville J.C., Leavengood Jr. J.M. 2014. Checklist of subfamilies Eumeninae, Vespinae and Polistinae from Sindh-Pakistan. medically important Hymenoptera of Afghanistan. Insecta mundi. Journal of Entomology and Zoology Studies. 6 (2): 892–897. 339: 1–13. Mahmood K., Ullah M., Aziz A., Hasan S.A., Inayatullah M. 2012. To the Faiz A., Rafi M.A., Shah S.W., Zia A., Shah A., Shah S.W., Khan R.U., knowledge of Vespidae (Hymenoptera) of Pakistan. Zootaxa. 3318(1): Saeed M. 2016. Wasp fauna of (Eumeninae, Vespinae and Polistinae) 26–50. DOI: 10.11646/zootaxa.3318.1.2 in forests of Gilgit-Baltistan (Pakistan). Pure and Applied Biology. Rafi M.A., Carpenter J.M., Qasim M., Shehzad A., Zia A., Khan M.R., 5(4). DOI: 10.19045/bspab.2016.50073 Mastoi M.I., Naz F., Ilyas M., Shah M., Bhatti A.R. 2017. ­e Giordani Soika A. 1962. ­e 3rd Danish Expedition to central Asia. vespid fauna of Pakistan. Zootaxa. 4362(1): 1–28. DOI: 10.11646/ Zoological Results 29. Diploptera (Insecta) from Afghanistan. zootaxa.4362.1.1 Videnskabelige meddelelser fra Dansk Naturhistorik Forening. 124: Schmid-Egger C., van Achterberg K., Neumeyer R., Morinière J., Schmidt S. 131–134. 2017. Revision of the West Palaearctic Polistes Latreille, with Girish Kumar P. 2010. New distributional records of some species of the the descriptions of two species – an integrative approach using subgenus Polistes (Gyrostoma) Kirby (Hymenoptera: Vespidae) morphology and DNA barcodes (Hymenoptera, Vespidae). ZooKeys. from various states of India and adjacent countries. Records of the 713: 53–112. DOI: 10.3897/zookeys.713.11335 Zoological Survey of India. 110(4): 41–45. Siddiqui J.A., Bodlah I., Carpenter J.M., Naeem M., Ahmad M., Bodlah M.A. Girish Kumar P., Sharma G. 2015. Taxonomic studies on vespid wasps 2015. Vespidae (Hymenoptera) of the Pothwar region of Punjab, (Hymenoptera: Vespoidea: Vespidae) of Chhattisgarh, India. Pakistan. Zootaxa. 3914(5): 501–524. DOI: 10.11646/zootaxa.3914.5.1 326 F. Ceccolini

Tan J.-L., van Achterberg K., Duan M.-J., Chen X.-X. 2014. An illustrated the Republic of Kazakhstan. Acta Biologica Sibirica. 4(1): 38–45 key to the species of subgenus Gyrostoma Kirby, 1828 (Hymenoptera, (in Russian). DOI: 10.14258/abs.v4i1.3915 Vespidae, Polistinae) from China, with discovery of Polistes Wieczorek J., Guo Q., Hijmans R.J. 2004. ­e point-radius (Gyrostoma) tenuispunctia Kim, 2001. Zootaxa. 3785(3): 377–399. method for georeferencing locality descriptions and DOI: 10.11646/zootaxa.3785.3.3 calculating associated uncertainty. International Journal of Temreshev I.I. 2018. On the expansion of the areas of Vespa orientalis Geographical Information Science. 18(8): 745–767. DOI: and Polistes wattii (Hymenoptera: Vespidae) on the territory of 10.1080/13658810412331280211

Received / Поступила: 10.06.2019 Accepted / Принята: 31.07.2019 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 327–334 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

‰e aculeate Hymenoptera in the collection of the Institute of Zoology of the National Academy of Sciences of Azerbaijan, Baku. Part 4. Wasps of the family Vespidae (Hymenoptera: Vespoidea)

Жалящие перепончатокрылые в коллекции Института зоологии Национальной Академии наук Азербайджана, Баку. Часть 4. Осы семейства Vespidae (Hymenoptera: Vespoidea)

© Kh.A. Aliyev 1, M.M. Maharramov2, A.A. Mammadov1 © Х.А. Алиев 1, М.М. Магеррамов2, А.А. Мамедов1

1Institute of Zoology of the National Academy of Sciences of Azerbaijan, passage 1128, district 504, Baku AZ 1073 Azerbaijan. E-mail: [email protected] 2Institute of Bioresources of Nakhchivan Branch of the National Academy of Sciences of Azerbaijan, Babak str., 10, Nakhchivan AZ 7000 Azerbaijan. E-mail: [email protected]

1Институт зоологии НАН Азербайджана, проезд 1128, квартал 504, Баку AZ 1073 Азербайджан 2Институт биоресурсов Нахичеванского отделения НАН Азербайджана, ул. Бабек, 10, Нахичевань АZ 7000 Азербайджан

Key words: Vespidae, Azerbaijan, fauna, distribution, species. Ключевые слова: Vespidae, Азербайджан, фауна, распространение, виды.

Abstract. Wasps of the family Vespidae in the Introduction collection of the Institute of Zoology of the National Academy of Sciences of Azerbaijan (Baku) are represented Vespidae are spread all over the world except by 28 genera and 59 species, nine of them, Antarctica. Currently, there are 5274 species in the fauna dusmetiolus, Odynerus (Spinicoxa) reniformis, of the planet belonging to 256 genera, four subfamilies Pseudepipona (Pseudepipona) lativentris, Polistes (Masarinae, Eumeninae, Polistinae, Vespinae) of the family (Polistes) bischoffi, P. (P.) dominula, P. (P.) semenowi, Vespidae. In the Palaearctic 1181 species and 90 genera of Dolichovespula media, D. sylvestris and Vespula vulgaris, the family are known [Antropov et al., 2017]. are new to the fauna of Azerbaijan. A total of 57 species In Russia, it could be 201 and 39 if add the data by are reported from Azerbaijan, eight from Russia (mainly Fateryga and Mokrousov [2019]; 298 species and subspecies from Itum-Kale in Chechen Republic and Botlikh in and 53 genera have been reported from Turkey [Yıldırım, Dagestan; several deposited specimens were collected 2012; Yıldırım, Gusenleitner, 2012], and 182 species and in Ural, Crimea, Vologda and Leningrad regions), three 51 genera from Iran [Ebrahimi, Carpenter, 2008]. from Ukraine, two each from Turkmenistan, Iran and Only Vespa crabro Linnaeus, 1758, Vespula germanica Kazakhstan, and one each from Georgia and Uzbekistan. (Fabricius, 1793), Polistes chinensis (Fabricius, 1793), Habitats and general geographic distribution is given for P. gallicus (Linnaeus, 1767), P. nimpha Christ, 1791, each species. Katamenes sichelii (de Saussure, 1852), Odynerus dantici Резюме. Осы семейства Vespidae представлены Rossi, 1790, Ancistrocerus parietum Linnaeus, 1758 have в коллекции Института зоологии Национальной hitherto been recorded from the Republic of Azerbaijan Академии наук Азербайджана (Баку) 59 видами из [Bogachev, 1951; Aliyev, 1996]. At least 50 species of 28 родов. Из них 9 видов, Ancistrocerus dusmetiolus, Eumeninae were reported by Aliyeva [2010]. ­en, Odynerus (Spinicoxa) reniformis, Pseudepipona 66 species of Eumeninae were reported by Fateryga et al. (Pseudepipona) lativentris, Polistes (Polistes) bischoffi, [2019] and an additional one by Fateryga and Mokrousov P. (P.) dominula, P. (P.) semenowi, Dolichovespula media, [2019]. Some of them were even described from Azerbaijan D. sylvestris и Vespula vulgaris, впервые отмечены для by Morawitz [1885, 1895] and Kostylev [1940]. At least фауны Азербайджана. Всего в коллекции хранится 2 species of Masarinae could be added (Celonites laetus 57 видов из Азербайджана, 8 – из России (в основном Panfilov, 1968 described from Azerbaijan and C. tauricus из Итум-Кале в Чеченской Республике и Ботлиха reported by Fateryga [2017]). в Дагестане; некоторые коллекционные экземпляры ­e present contribution provides an annotated list были собраны на Урале, в Крыму, в Вологодской of species of the family Vespidae kept in the collection of и Ленинградской областях), 3 – с Украины, по 2 из the Institute of Zoology, National Academy of Sciences Туркменистана, Ирана и Казахстана, по одному из of Azerbaijan, Baku. ­e material comes from the entire Грузии и Узбекистана. Для каждого вида приведены territory of Azerbaijan, as well as Russia, Iran, Georgia, ландшафтно-биотопическая приуроченность и общее Turkmenistan, Uzbekistan, Kazakhstan, and Ukraine, географическое распространение. mostly using Malaise traps and entomological nets set in

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-327334 328 Kh.A. Aliyev, M.M. Maharramov, A.A. Mammadov montane or steppe landscapes. ­e taxonomy and general Caucasus, Turkey, Cyprus, Israel, Iran, Afghanistan, North distributions of Vespidae follows several literature sources America, New Zealand. [Tobias, Kurzenko, 1978; Carpenter, 1986, 1996, 2001; Carpenter, Kojima, 1997; Antropov et al., 2017]. Ancistrocerus parietum (Linnaeus, 1758) ­e collectors’ names, when known, are abbreviated ♂ as follows: AB – A. Bogachev; KhA –Kh. Aliyev; MV – Material. Azerbaijan: 1 , Nakhchivan, 20.05.1933 (AB). Kazakhstan: 1♀, Zaysan. Ukraine: 1♀, 13.08.1921. M. Vinovsky; ID – I. Drapolyuk; EE – E. Elistratov; VR – Note. ­e species inhabits lowland semi-desert V. Rusanova; OA – O. Aliev; M – Mamedov; S – Suvorov; landscapes. So – Soldatov; MM – M. Maharramov; EG – E. Guseynov; Distribution. North Africa, Europe (Western, T – Tertyshnikov; AM – A. Mammadov. Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, ­e species newly reported from Azerbaijan are Urals, Western and Eastern Siberia, Far East), Caucasus, marked with an asterisk *. Turkey, Iran, Kazakhstan, Central Asia, China, Mongolia, Korean Peninsula, North America. Family Vespidae Subfamily Eumeninae Genus Antepipona de Saussure, 1855 Genus Alastor Lepeletier de Saint Fargeau, 1841 Antepipona cribrata (Morawitz, 1885) Alastor (Alastor) mocsaryi (André, 1884) = Odynerus cribratus Morawitz, 1890. = A. biegelebeni Giordani Soika, 1942. Material. Azerbaijan: 1♀, Poylu village, Eldar, on flowers, 18.05.1935 Material. Azerbaijan: 1♀, Zakataly, Perzivan, 19.05.1987 (KhA). (MV). Note. ­e species lives in lowland forested landscapes. Note. ­e species inhabits middle mountain steppe Distribution. Europe (Western, Southern, and landscapes. Eastern), Russia (European part), Caucasus, Turkey, Syria, Distribution. Russia (European part), Azerbaijan, Lebanon. Turkey, Afghanistan.

Genus Ancistrocerus Wesmael, 1836 Antepipona deflenda (S. Saunders, 1853) Ancistrocerus auctus (Fabricius, 1793) = Odynerus parvulus Lepeletier de Saint Fargeau, 1845. Azerbaijan: 1♀, Nakhchivan, 31.05.1933 (AB). Kazakhstan: ♀ Material. Material. Azerbaijan: 1 , Agdash, Turianchay State Nature Reserve, 1♀, Uralsk, 6.06.1927 (leg. V. Koloskov). 4.10.1994 (KhA). Note. ­e species inhabits lowland semi-desert and ­e species inhabits middle mountain steppe Note. middle mountain steppe landscapes. landscapes. Distribution. North Africa, Europe (Western, Distribution. Europe (Western, Southern, and Northern, Southern, and Eastern), Russia (European Eastern), Russia (European part), Caucasus, Turkey, Syria, part, Urals), Caucasus, Turkey, Cyprus, Lebanon, Israel, Jordan, Israel, Iraq, Iran, Central Asia, Kazakhstan. Jordan, Iraq, Iran, Kazakhstan, Turkmenistan, Uzbekistan, Tajikistan, China. Ancistrocerus claripennis ­omson, 1874 Antepipona orbitalis (Herrich-Schäffer, 1839) Material. Azerbaijan: 1♂, Absheron, Inzhirnaya, on Foeniculum, 25.08.1986 (KhA). Material. Azerbaijan: 2♀, Agdash, Turianchay State Reserve, Note. ­e species inhabits lowland semi-desert 7.05.1992 (KhA); 2♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Nakhchivan, landscapes. 920 m, 14.09.2016 (MM). Distribution. Europe (Western, Northern, Southern, Note. ­e species inhabits lowland semi-desert and Eastern), Russia (European part), Caucasus, Turkey, landscapes. Iran, Tajikistan, China. Distribution. North Africa, Europe (Western, Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, *Ancistrocerus dusmetiolus (Strand, 1914) Urals, Western and Eastern Siberia), Caucasus, Turkey, Kazakhstan, Mongolia. Material. Azerbaijan: 1♀, Khyzy, Diravar, 10.08.2000 (KhA). Note. ­e species inhabits middle mountain steppe Genus Brachyodynerus Blüthgen, 1938 landscapes. Brachyodynerus quadrimaculatus (André, 1884) Distribution. Europe (Western, Southern, and Material. Russia: 1♂, Checheno-Ingushetia [now Chechen Republic], Eastern), Russia (Western and Eastern Siberia), Turkey, Sovetskoe, Itum-kala, 30.06.1987 (ID). Azerbaijan, Afghanistan, Central Asia, Kazakhstan. Note. ­e species inhabits middle mountain steppe landscapes. Ancistrocerus gazella (Panzer, 1798) Distribution. Europe (Southern), Russia (European part), Azerbaijan, Turkey. Material. Azerbaijan: 1♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Shakhbuz, Batabat, ca 1790 m, 26.07.2016 (MM). Genus de Saussure, 1855 Note. ­e species inhabits middle mountain steppe Delta unguiculatum (Villers, 1789) landscapes. Distribution. North Africa, Europe (Western, Material. Azerbaijan: 2♀, Agdash, Turianchay State Nature Reserve, Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part), 5.08.1994 (KhA). ­e aculeate Hymenoptera in the collection of the Institute of Zoology 329

Note. ­is species inhabits foothill steppe landscapes. Distribution. North Africa, Europe (Western, Distribution. North Africa, Europe (Western, Southern, and Eastern), Russia (European part), Caucasus, Southern, and Eastern), Russia (European part), Caucasus, Turkey, Cyprus, Syria, Lebanon, Israel, Jordan, Saudi Turkey, Cyprus, Syria, Lebanon, Israel, Saudi Arabia, Iran, Arabia, Yemen, Oman, Iraq, Iran, Afghanistan, Pakistan, Central Asia. Kazakhstan, Central Asia, China, Mongolia, Korean Peninsula. Genus Discoelius Latreille, 1809 Discoelius dufourii Lepeletier de Saint Fargeau, 1841 (Eumenes) pomiformis (Fabricius, 1781)

Material. Azerbaijan: 1♀, Shakh-dagh Mt, 2000 m, Laza, 25.09.1933 Material. Azerbaijan: 1♀, Agdash, Turianchay State Nature Reserve, (AB). Russia: 1♀, Checheno-Ingushetia [now Chechen Republic], Sovetskoe, 8.05.1994 (KhA); 5♀, 1♂, same locality, 30.09–4.10.1994 (KhA); 1♀, 1♂, Itum-Kala, 28.06.1987 (ID). Kazakh, 11.05.1979 (KhA). Russia: 1♂, Checheno-Ingushetia [now Chechen Note. ­is species inhabits subalpine landscapes. Republic], Sovetskoe, Itum-Kala, 30.06.1987 (ID). Distribution. Europe (Western, Northern, Southern, Note. ­is species inhabits foothill steppe landscapes. and Eastern), Russia (European part, Urals, Western Distribution. North Africa, Europe (Western, and Eastern Siberia, Far East), Caucasus, Turkey, Iran, Southern, and Eastern), Russia (European part, Urals), Kazakhstan, China, Mongolia, Korean Peninsula. Caucasus, Turkey, Lebanon, Pakistan, Kazakhstan, Central Asia, India, China, Korean Peninsula. Discoelius zonalis (Panzer, 1801) Eumenes (Eumenes) subpomiformis Blüthgen, 1938 Material. Russia: 1♀, Ural, western slope of Kolosleyka Mt, Minyar, on fire weed, 8.08.1986 (ID). Material. Azerbaijan: 1♂, Absheron, Dubendy, 25.05.1999 (EG); ♀ ♂ Note. ­is species inhabits foothill steppe landscapes. 1 , Khyzy, Dizavar, 10.08.2000 (KhA). Uzbekistan: 1 , Kitab State Nature Reserve, Obie, 18.06.1989 (So). Distribution. Europe (Western, Northern, Southern, ­is species inhabits lowland semi-desert and and Eastern), Russia (European part, Urals, Western and Note. foothill steppe landscapes. Eastern Siberia, Far East), Caucasus, Turkey, Iran, China, Distribution. North Africa, Europe (Western, Mongolia, Korean Peninsula, Japan. Southern, and Eastern), Russia (European part), Caucasus, Turkey, Lebanon, Israel, Kazakhstan, Central Asia. Genus Eumenes Latreille, 1802 Eumenes (Eumenes) coarctatus (Linnaeus, 1758) Genus Euodynerus Dalla-Torre, 1904 Euodynerus (Euodynerus) caspicus (Morawitz, 1873) = E. lunulatus Fabricius, 1804. Material. Azerbaijan: 1♀, Kirovobad [now Ganja], 29.07.1932, (MV); Azerbaijan: 1♂, Absheron, Dubendy, 25.05.1999 (EG); 1♂, 1♂, same locality, 27.08.1932 (MV); 4♂, Milskaya steppe, 14–26.05.1934 Material. 1♀, Salyan, Bendovan, 30.05.2000 (KhA). (AB); 1♂, Eli-su, Kakh Distr., 1900 m, 11.07.1934 (AB); 1♀, Baku, 4.09.1934 (AB); 1♂, Samukh, Garagashly, 3.06.1935 (AB); 1♂, Shemakha, Mejsary, Note. ­e species inhabits lowland semi-desert 2.07.1937 (AB); 1♂, Agdash, Turianchay State Nature Reserve, 5.10.1998 landscapes. ♀ (KhA); 1 , Nakhchivan Autonomous Republic, Babek, Shikhmahmud, Distribution. Russia (European part), Azerbaijan, 945 m, 14.06.2016 (MM). Georgia: 1♂, Suram, 25.07.1911 (MV). Iran, Kazakhstan, Turkmenistan, Kyrgyzstan, China, ­is species inhabits lowland steppe and semi- Note. Mongolia. desert, foothill steppe and middle mountain landscapes. Distribution. North Africa, Europe (Western, Euodynerus (Euodynerus) dantici (Rossi, 1790) Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, Urals, Western and Eastern Siberia, Far East), Caucasus, Material. Azerbaijan: 1♀, Kurtmakhmudlu village, Karyaginsk, Turkey, Cyprus, Syria, Israel, Jordan, Iran, Kazakhstan, 3.05.1929 (EE); 1♀, Kirovabad [now Ganja], 18.06.1933 (MV); 1♀, 1♂, ♀ Central Asia, China, Mongolia, Japan. Milskaya steppe, 16.06.1934 (AB); 1 , Talysh, Alekseevka, 7.08.1936 (AB); 1♂, Vedi, Khosrov State Nature Reserve, 23.06.1980 (KhA). Russia: 1♀, Sympheropol, 10.06.1922 (leg. Merkulov). Eumenes (Eumenes) dubius de Saussure, 1852 Note. ­e species inhabits lowland semi-desert and middle mountain steppe landscapes. ♂ Material. Azerbaijan: 2 , Agdash, Turianchay State Nature Reserve, North Africa, Europe (Western, 5–7.08.1994 (KhA); 1♂, same locality, 5.10.1998 (KhA); 3♀, Khyzy, Dizavar, Distribution. 10.08.2000 (KhA). Southern, and Eastern), Russia (European part, Urals, Note. ­is species inhabits foothill steppe landscapes. Eastern Siberia, Far East), Caucasus, Turkey, Syria, Distribution. North Africa, Europe (Western, Lebanon, Jordan, Iran, Afghanistan, Kazakhstan, Central Southern, and Eastern), Russia (European part), Caucasus, Asia, China, Mongolia, Korean Peninsula, Southern Asia, Turkey, Cyprus, Syria, Lebanon, Israel, Jordan, Iraq, Iran, Japan. Kazakhstan, Turkmenistan, Tajikistan, South America. Euodynerus (Euodynerus) disconotatus Eumenes (Eumenes) mediterraneus Kriechbaumer, 1879 (Lichtenstein, 1884) Material. Azerbaijan: 1♀, Khyzy, Diravar, 10.08.2000 (KhA). Material. Azerbaijan: 1♀, Absheron, Inzhirnaya, 13.09.1986 (KhA); 1♀, Baku, 16.09.1986 (KhA); 5♀, 1♂, Agdash, Turianchay State Nature Note. ­e species inhabits middle mountain steppe Reserve, 30.09.–4.10.1994 (KhA); 1♀, same locality, 5.10.1998 (KhA). landscapes. Note. ­is species inhabits foothill steppe and lowland Distribution. Europe (Western, Southern, and semi-desert landscapes in sandy places. Eastern), Russia (European part), Caucasus, Turkey, 330 Kh.A. Aliyev, M.M. Maharramov, A.A. Mammadov

Cyprus, Jordan, Saudi Arabia, Iraq, Iran, Afghanistan, Genus Jucancistrocerus Blüthgen, 1938 Pakistan, Kazakhstan, Central Asia. Jucancistrocerus jucundus (Mocsary, 1883)

Euodynerus (Pareuodynerus) posticus Material. Azerbaijan: 1♀, Eldar, Poylu, 18.05.1935 (AB); 1♀, Samukh, Garagashly, 3.06.1935 (AB); 1♂, Nakhchivan Autonomous Republic, (Herrich-Schäffer, 1841) Shakhbuz, Kulus, 1450 m, 3.06.2016 (MM). Note. ­e species inhabits lowland semi-desert and Material. Azerbaijan: 1♂, Nakchivan Autonomous Republic, Shakhbuz, Batabat, 1850 m, 12.06.2016 (MM). middle mountain steppe landscapes. Distribution. Europe (Southern and Eastern), Note. ­e species inhabits middle mountain steppe Caucasus, Turkey, Afghanistan. landscapes. Distribution. North Africa, Europe (Western, Genus Katamenes Meade-Waldo, 1910 Southern, and Eastern), Russia (European part), Caucasus, Katamenes sichelii (de Saussure, 1852) Turkey, Israel, Iran. = Eumenes baerii Radoszkowski, 1893. Genus Eustenancistrocerus Blüthgen, 1938 Material. Azerbaijan: 1♀, Absheron, Amiradzhany, 17.06.1933 (VR); 1♀, Baku, Zykh, 24.06.1936 (T); 5♀, 1♂, Baku, Botanical garden, 10.06.1937 Eustenancistrocerus (Parastenancistrocerus) amadanensis (MV); 2♀, Baku, 23.09.1937 (MV). (de Saussure, 1855) Note. ­e species lives in lowland semi-desert landscapes. = E. transitorius (Morawitz, 1890). Distribution. North Africa, Europe (Southern), Material. Azerbaijan: 1♀, Lerik, Kosmalyan, 25.07.1987 (KhA); 1♀, Salyan, Shirvan State Nature Reserve, 6.06.1999 (KhA); 1♀, Nakhchivan Russia (European part, Urals), Caucasus, Turkey, Israel, Autonomous Republic, Shakhbuz, Kulus, 1450 m, 3.07.2016 (MM). Jordan, Saudi Arabia, Iraq, Iran, Afghanistan, Kazakhstan, Note. ­e species inhabits lowland semi-desert and Central Asia, India, China, Mongolia. middle mountain steppe landscapes. Distribution. North Africa, Europe (Southern and Genus Leptochilus de Saussure, 1853 Eastern), Russia (European part), Caucasus, Turkey, Leptochilus (Lionotulus) alpestris (de Saussure, 1855) Cyprus, Syria, Israel, Saudi Arabia, Iraq, Iran, Pakistan, Material. Azerbaijan: 1♀, Absheron, Primorsk, on Tamarix, 7.06.1986 (KhA). Kazakhstan, Central Asia. Note. ­e species inhabits lowland semi-desert landscapes. Genus Hemipterochilus Ferton, 1909 Distribution. North Africa, Europe (Western, Hemipterochilus aberrans (Morawitz, 1885) Southern, and Eastern), Russia (European part), Caucasus, Turkey, Jordan, Turkmenistan. Material. Azerbaijan: 1♂, Nakhchivan Autonomous Republic, Shakhbuz, Batabat, 1870 m, 12.07.2016 (MM). Leptochilus (Neoleptochilus) regulus (de Saussure, 1855) Note. ­e species inhabits middle mountain steppe landscapes. Material. Azerbaijan: 1♂, Mardakert, Leninavan, 30.08.1980 (KhA). Distribution. Europe (Southern and Eastern), Note. ­e species inhabits middle mountain steppe Armenia, Azerbaijan, Turkey, Syria, Lebanon. landscapes. Distribution. North Africa, Europe (Western, Hemipterochilus bembeciformis (Morawitz, 1867) Southern, and Eastern), Russia (European part), Caucasus, Turkey, Cyprus, Syria, Jordan, Iran. Material. Azerbaijan: 1♀, Milskaya steppe, 25.05.1934 (AB). Russia: 1♀, Dagestan, Botlikh, Tlokh, 10.05.1988 (KhA). Genus Microdynerus ‰omson, 1874 Note. ­e species inhabits lowland semi-desert and Microdynerus (Pseudomicrodynerus) parvulus middle mountain steppe landscapes. (Herrich-Schäffer, 1838) Europe (Western, Southern, and Distribution. ♂ Eastern), Russia (European part, Urals), Caucasus, Turkey, Material. Azerbaijan: 1 , Kilyazi, Tazakend, 10.06.2000 (KhA). ­e species inhabits middle mountain steppe Kazakhstan, Central Asia. Note. landscapes. Distribution. Europe (Western, Southern, and Hemipterochilus sp. Eastern), Russia (European part, Urals, Western Siberia), Caucasus, Turkey, Iran, Kazakhstan, Uzbekistan. Material. Azerbaijan: 2♂, Kalaalty, 4.06.1986 (leg. G. Huseynzadeh); 1♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Ordubad, Bilav, 1300 m, 2.06.2016 (MM). Microdynerus sp. Note. ­ese samples could not be identified to the Material. 1♂, Azerbaijan: Salyan, Shirvan State Nature Reserve, species level. 6.06.1999 (KhA). Note. ­is sample could not be identified to the Genus Ischnogasteroides Magretti, 1884 species level. Ischnogasteroides sp. Genus Odynerus Latreille, 1802 Material. Azerbaijan: 1♂, Agdash, Turianchay State Nature Reserve, Odynerus (Odynerus) melanocephalus (Gmelin, 1790) 7.08.1994 (KhA); 1♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Nakhchivan, 900 m, 14.09.2016 (KhA, MM). Material. Azerbaijan: 1♂, Milskaya steppe, 17.06.1935 (AB); 1♀, 1♂, Note. ­ese samples could not be identified to the Agdash, Turianchay State Nature Reserve, 6.07.1993 (KhA); 1♀, Shemakha, species level. Pirkuli, 13.06.1999 (KhA); 2♂, 1♀, Baku, 17.04.2000 (KhA). ­e aculeate Hymenoptera in the collection of the Institute of Zoology 331

Note. ­e species inhabits lowland semi-desert and Distribution. North Africa, Europe (Western, middle mountain steppe landscapes. Southern, and Eastern), Russia (European part, Urals, Distribution. Europe (Western, Northern, Southern, Western and Eastern Siberia, Far East), Caucasus, Turkey, and Eastern), Russia (European part, Urals, Western Syria, Kazakhstan, Central Asia, China, Mongolia, North Siberia), Caucasus, Turkey, Cyprus, Syria, Israel, Jordan, America. Iraq, Iran, Afghanistan, Kazakhstan, Central Asia. *Pseudepipona (Pseudepipona) lativentris (Saussure, 1855) Odynerus (Odynerus) poecilus de Saussure, 1856 Material. Azerbaijan: 2♂, Absheron, Inzhirnaya, on Foeniculum, 13.09.1986 (KhA). ♂ ♀ Material. Azerbaijan: 1 , 1 , Galaalty, 4.06.1986 (leg. G. Huseynzadeh). Note. ­e species inhabits lowland semi-desert Note. ­e species inhabits lowland semi-desert landscapes. landscapes. Distribution. North Africa, Southern Europe, Azerbaijan, Distribution. Europe (Western, Southern, and Turkey, Cyprus, Lebanon, Israel, Iran, Central Asia. Eastern), Russia (European part), Azerbaijan, Turkey. Genus Psiliglossa S. Saunders, 1872 Odynerus (Spinicoxa) albopictus de Saussure, 1856 Psiliglossa odyneroides (S. Saunders, 1850)

= O. calcaratus Morawitz, 1885. Material. Azerbaijan: 1♀, Baku, Inzhirnaya, 23.06.1985 (KhA); 1♂, Material. Azerbaijan: 8♀, Salyan, Shirvan State Nature Reserve, Agdash, Turianchay State Nature Reserve, 8.05.1992 (KhA). 6.06.1999 (KhA). Note. ­is species inhabits foothill steppe and lowland Note. ­e species inhabits lowland semi-desert semi-desert landscapes in sandy places. landscapes. Distribution. Europe (Southern and Eastern), Russia Distribution. Europe (Western, Southern, and (European part), Caucasus, Turkey, Turkmenistan. Eastern), Russia (European part), Caucasus, Turkey, Syria, Israel, Jordan, Iraq, Iran, Kazakhstan, Turkmenistan, Genus Pterocheilus Klug, 1805 Uzbekistan. Pterocheilus (Pterocheilus) phaleratus (Panzer, 1797)

*Odynerus (Spinicoxa) reniformis (Gmelin, 1790) Material. Azerbaijan: 1♀, Baku, Karadag, 24.04.2000 (KhA); 1♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Shakhbuz, Batabat, ca 1870 m, 12.06.2016 (MM). Material. Azerbaijan: 1♀, Ismailly, State Nature Reserve, 1500 m, 13.07.2001 (KhA). Note. ­e species inhabits lowland semi-desert and Note. ­e species inhabits middle mountain steppe middle mountain steppe landscapes. landscapes. Distribution. Europe (Western, Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, Urals, Western and Distribution. North Africa, Europe (Western, Eastern Siberia), Georgia, Azerbaijan, Turkey, Kazakhstan, Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, Mongolia. Urals, Western and Eastern Siberia), Turkey, Azerbaijan, Israel, Kazakhstan. Genus Stenancistrocerus de Saussure, 1863 Stenancistrocerus (Paratropancistrocerus) obstrictus Genus Onychopterocheilus Blüthgen, 1955 (Morawitz, 1895) Onychopterocheilus (Onychopterocheilus) crabroniformis (Morawitz, 1867) Material. Azerbaijan: 3♂, Salyan, Bendovan, 29.05.2000 (KhA). Note. ­e species inhabits lowland semi-desert ♀ Material. Russia: 1 , Dagestan, Botlikh, Tlokh, 11.05.1988 (KhA). landscapes. Note. ­e species inhabits middle mountain steppe Distribution. Russia (European part), Caucasus. landscapes. Distribution. Russia (European part, Urals, Western Genus Symmorphus Wesmael, 1836 and Eastern Siberia), Azerbaijan, Kazakhstan. Symmorphus (Symmorphus) bifasciatus (Linnaeus, 1761)

Genus Paragymnomerus Blüthgen, 1938 = S. mutinensis Baldini, 1894. Paragymnomerus signaticollis (Morawitz, 1888) Material. Azerbaijan: 1♂, Eli-su, Kakhi distr., 07.1934 (AB); 1♀, Milskaya steppe, 17.04.1935 (AB). Russia: 1♀, Suda, Cherepovets Distr. (leg. V. Belizin). Material. Azerbaijan: 1♂, Zakataly, Perzivan, 26.05.1986 (KhA). Note. ­e species inhabits lowland semi-desert and ­e species lives in lowland forested landscapes. Note. middle mountain steppe landscapes. Distribution. Europe (Eastern), Russia (European Distribution. Europe (Western, Northern, Southern, part), Azerbaijan, Turkey, Turkmenistan, Uzbekistan, and Eastern), Russia (European part, Urals, Western and Tajikistan. Eastern Siberia, Far East), Caucasus, Turkey, Kazakhstan, Central Asia, China, Mongolia, Korean Peninsula, Japan. Genus Pseudopipona de Saussure, 1856 Pseudepipona (Pseudepipona) herrichii (de Saussure, 1856) Genus Syneuodynerus Blüthgen, 1951 Syneuodynerus egregius (Herrich-Schäffer, 1839) Material. Azerbaijan: 1♀, 1♂, Samukh, Karagachly, 3.06.1935 (AB). Note. ­e species inhabits middle mountain steppe Material. Azerbaijan: 2♀, Mardakert, Leninavan, 30.08.1980 (KhA); landscapes. 1♀, Agdash, Turianchay State Nature Reserve, 18.08.1998 (KhA); 1♂, 332 Kh.A. Aliyev, M.M. Maharramov, A.A. Mammadov

Ismailly, Khanagi, 700 m, 9.07.2001 (KhA); 1♂, Nakhchivan Autonomous 3♀, Absheron, Inzhirnaya, 15.04.1986 (KhA); 4♀, Absheron, Primorsk, on ♀ Republic, Ordubad, Bilav, 1300 m, 2.06.2016 (MM). Tamarix, 7.07.1986 (KhA); 2 , Absheron, Inzhirnaya, 6.09.1993 (KhA); 6♀, Agdash, Turianchay State Nature Reserve, 2–5.10.1994 (KhA); 3♀, Note. ­e species inhabits lowland semi-desert and 2♂, Lerik, Gilidara, 20.09.1995 (KhA); 17♂, 4♀, Agdash, Turianchay State middle mountain steppe landscapes. Nature Reserve, 5.10.1998 (KhA); 1♀, Sharur, Akhura, 2.06.2003 (KhA); Distribution. North Africa, Europe (Western, 1♀, Ordubad, Bilav, 27.04.2012 (KhA); Julfa, Ashabi-Kahf, 1.05.2012 ♀ Southern, and Eastern), Russia (European part), Caucasus, (KhA); 1 , Shamkir, Kura riverside, 24.05.2012 (leg. Sh. Maharramova); 3♀, Babek, Sirab, 22.06.2012 (KhA); 2♀, Ordubad, Bilav, 5.09.2012 Turkey, Cyprus, Syria, Israel, Jordan, Iran, Turkmenistan. (KhA); 1♀, 2♂, Ordubad, Aghdara, 6.09.2012 (KhA); 1♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Julfa, Gazanchi, 7.05.2014 (MM); 1♀, 2♂, Baku, ♂ ♀ ♀ Subfamily Polistinae 15.06.2015 (AM); 1 , 1 , Balakhany, 5.07.2015 (AM); 1 , Gandja, Ashygly, 8.08.2015 (AM);1♂, 4♀, Baku, Mardakan, 6.09.2015 (AM); 1♀, Genus Polistes Latreille, 1802 Nakhchivan Autonomous Republic, Babek, Zeynaddin, 950 m, 14.06.2016 *Polistes (Polistes) bischoffi Weyrauch, 1937 (MM); 1♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Shakhbuz, Shakbuzkend, 1300 m, 27.06.2016 (MM); 1♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Babek, Material. Azerbaijan: 1♂, Baku, 2.09.1999 (KhA). Shikhmahmud, 930 m, 1.07.2016 (MM); 2♀, Nakhchivan Autonomous ♀ ­e species inhabits lowland semi-desert Republic, Shakhbuz, Batabat, 1800 m, 26.07.2016 (MM). Turkmenistan: 1 , Note. Mary, Karakum Canal, 3.04.1987 (KhA). landscapes. Note. ­e species lives in all vertical landscape belts North Africa, Europe (Western, Distribution. except the nival one, reaching up to 2200 m a.s.l. Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, Distribution. North Africa, Ethiopia, Europe Far East), Azerbaijan, Turkey, Iran, Kazakhstan, Mongolia. (Western, Southern, and Eastern), Russia (European part, Western Siberia), Transcaucasia, Turkey, Israel, Jordan, Polistes (Polistes) chinensis (Fabricius, 1793) Iran, Kazakhstan, Turkmenistan, Kyrgyzstan, Afghanistan, Material. Azerbaijan: 11♂, Agdash, Turianchay State Nature Reserve, Pakistan, Mongolia. 5.10.1998 (KhA). Note. ­is species inhabits in foothill steppe Polistes (Polistes) nimpha (Christ, 1791) landscapes. Distribution. Russia (Western and Eastern Siberia, = Polistes opinabilis Kohl, 1898. Material. Azerbaijan: 1♀, Shakh-dagh Mt, Laza, 25.09.1933 (AB); Far East), Azerbaijan, Turkey, Iran, Kazakhstan, China, 1♀, Kusary, Laza, 9.08.1985 (KhA); 1♀, Kakhi, 5.07.1986 (KhA); 1♀, Lerik, Mongolia, Korean Peninsula, Japan. Gilidara, 2000 m, 21.08.1995 (KhA); 2♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Shakhbuz, Batabat, 1800 m, 26.07.2016 (MM). *Polistes (Polistes) dominula (Christ, 1791) Note. ­is species inhabits lowland forested and middle mountain steppe landscapes, reaching up to 2000 m a.s.l. = Polistes bucharensis Erichson, 1849 [Schmid-Egger et al., Distribution. North Africa, Europe (Western, 2017]. Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, ♂ ♀ Material. Azerbaijan: 1 , Kakhi, 5.07.1986 (KhA); 7 , Agdash, Urals, Western and Eastern Siberia, Far East), Transcaucasia, Turianchay State Nature Reserve, 1.07.1994 (KhA); 1♀, Yardimli, Kurekchi, 1800 m, 15.08.1995 (KhA); 1♀, Baku, 2.09.1999 (KhA); 2♀, Salyan, Shirvan Turkey, Israel, Jordan, Iraq, Iran, Kazakhstan, Kyrgyzstan, State Nature Reserve, 3.05.2000 (KhA); 1♀, Salyan, Bendovan, 29.05.2000 Pakistan, India, China, Mongolia. (KhA); 1♂, 1♀, Khyzy, Dizavar, 10.08.2000 (KhA); 1♀, Ismailli, Khanagi, 9.07.2001 (KhA); 1♂, 1♀, Quba, Amsar, 700 m, 11.08.2007 (leg. Yunusov); 2♀, Quba, Askipara, 17.08.2007 (leg. Yunusov); 3♀, Shakhbuz, Vaykhir, *Polistes (Polistes) semenowi Morawitz, 1889 3.05.2012 (KhA); 1♀, Babek, Sirab, 22.06.2012 (KhA); 1♂, Ordubad, Bilav, 5.09.2012 (KhA); 4♂, 8♀, Baku, 15.06.2015 (AM); 2♂, 4♀, Gandja, Ashygly, Material. Azerbaijan: 1♀, Lerik, Gilidara, 2000 m, 21.08.1998 (KhA). 8.08.2015 (AM); 3♂, 5♀, Baku, Mardakan, 6.09.2015 (AM). Note. ­e species inhabits high-mountain steppe Note. ­e species inhabits lowland semi-desert, landscapes. foothill steppe, low-mountain forested, middle-mountain Distribution. North Africa, Southern Europe, Turkey, steppe landscapes, reaching up to 1800 m a.s.l. Azerbaijan, Iran, Turkmenistan. Distribution. North Africa, Europe (Western, Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, Polistes (Polistes) sulcifer Zimmermann, 1930 Urals, Western Siberia), Transcaucasia, Turkey, Syria, Israel, Jordan, Iran, Afghanistan, Pakistan, Kazakhstan, Material. Azerbaijan: 1♂, Ganja, 14.06.1933 (MV). Central Asia, India, China, Mongolia. Note. ­is species inhabits foothill steppe landscapes. Distribution. North Africa, Europe (Western, Polistes (Polistes) gallicus (Linnaeus, 1767) Southern, and Eastern), Russia (European part), Transcaucasia, Turkey, Israel, Iran. = Polistes foederatus Kohl, 1898; = P. mongolicus (Buyisson, 1911)) [Schmid-Egger et al., 2017]. Subfamily Vespinae ♀ Material. Azerbaijan: 1 , Kurtmakhmudly village, Karyagin Distr., Genus Dolichovespula (Rohwer, 1916) 7.05.1920 (EE); 2♀, Shamkir, 11.05.1928 (S); 1♀, Gandja, 14.05.1928 (S); 1♀, Salyany, 21.10.1932 (AB); 1♀, Baku, Zykh, 15.05.1933 (VR); 1♂, 1♀, *Dolichovespula media (Retzius, 1783) Karabakh, Lysogorsk, 1800 m, 28.08.1933 (AB); 1♀, Yevlakh, 12.05.1937 (leg. E. Gauser); 3♀, Mardakert, Leninavan, 21.04.1976 (KhA); 1♀, Material. Azerbaijan: 1♀, Eli-su distr., Kakh, 1900 m, 11.07.1934 Neftchala, Karaiman, 15.07.1976 (ID); 1♀, Kazakh, 11.05.1979 (KhA); 2♀, (AB); 2♀, 1♂, Kusary, Laza, 2200 m, 18.08.1980 (KhA). Lenkoran, Azfilial, 3–7.10.1984 (KhA); 1♀, Lenkoran, Azfilial, on Geranium, Note. ­is species lives in mountain steppes and on ♂ ♀ ♂ 16.05.1985 (KhA); 2 , 1 , 14 km Kilyazi-Altyagach, 25.06.1985 (KhA); 1 , mountain slopes of northern exposition. A rare species. Lerik, Lalakeran, on Teucrium, 3.07.1985 (KhA); 7♀, Baku, Inzhirnaya, on Foeniculum, 4.08.1985 (KhA); 3♂, 2♀, Baku, Inzhirnaya, Foeniculum, Distribution. , Europe (Western, Northern, 21.08.1985 (leg. N. Aliyeva); 1♂, Absheron, Inzhirnaya, 28.08.1985 (OA); Southern, and Eastern), Russia (European part, Urals, ­e aculeate Hymenoptera in the collection of the Institute of Zoology 333

Western and Eastern Siberia, Far East), Georgia, 1♀, Baku, Inzhirnaya, on Foeniculum, 24.08.1985 (leg. N. Aliyeva); 2♀, ♀ Azerbaijan, Turkey, Syria, Kazakhstan, China, Mongolia, same locality, 28.08–1.09.1985 (OA); 1 , same locality, 9.09.1985 (leg. S. Kerimova); 1♀, Agdash, Turianchay State Nature Reserve, 8.05.1992 Korean Peninsula, Japan. (KhA); 1♀, same locality, 5.10.1998 (KhA); 1♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Nakhchivan, 900 m, 25.04.2016 (MM); 4♀, same locality, 900 *Dolichovespula sylvestris (Scopoli, 1763) m, 13–23.05.2016 (MM). Iran: 1♀, 1♂, Shakhverdi, Karadakhski mahal, 13–27.09.1929 (leg. Bordkevitch); 1♀, Chesh-saray, 2.10.1929 (leg. Shlyaposhnikov); 3♀, Veramin, 23.04.1947 (AB). Turkmenistan: 10♀, Azerbaijan: 2♀, Lerik, Gilidara, 2000 m, 20–21.08.1995 Material. Ashkhabad, Chuli, 21.09.1981, 27.09.1994 (KhA). (KhA). Inhabits all biotopes in Azerbaijan. Note. ­is species inhabits middle mountain steppes, Note. reaching up to 2000 m a.s.l. Distribution. Europe (Western, Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, Urals, Western and Distribution. Morocco, Europe (Western, Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, Urals, Eastern Siberia, Far East), Transcaucasia, Turkey, Syria, Western and Eastern Siberia, Far East), Transcaucasia, Lebanon, Israel, Jordan, Iraq, Iran, Kazakhstan, Uzbekistan, Turkey, Syria, Iran, Kazakhstan, Uzbekistan, Kyrgyzstan, Turkmenistan, Tajikistan, Afghanistan, Pakistan, India, Afghanistan, Pakistan, India, China, Mongolia. China, Mongolia, Korean Peninsula. Madeira, Azores, Canaries, North Africa, , Australia, Tasmania, Genus Vespa Linnaeus, 1758 New Zealand, North America, South America (Argentina, Vespa crabro Linnaeus, 1758 Chile).

Material. Azerbaijan: 2♀ Sernye vody, Lenkoran uezd, 18.08.1925 *Vespula vulgaris (Linnaeus, 1758) (leg. D. Maskalenko); 1♀, Nakhchivan ASSR, Djafarkhan, 2.10.1927 (leg. Bocharnikov); 2♀, Nakhchivan on Aras, 20.07.1928 (M); 1♀, Zagatala, Material. Azerbaijan: 2♀, Talysh, Lenkoran, Azfilial, 10.05.1976 27.07.1934 (VR); 1♀, Djapharkhan, Gormabulag, in wood, 20.10.1941 (AB); (KhA); 1♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Shakhbuz, Nursu, 1700 m, 1♀, Lenkoran, Azfilial, 10.05.1976 (KhA); 1♀, Yardimli, Avash, 16.06.1996 26.06.2016 (MM). Ukraine: 1♀, Poltava, Triby, 4.08.1923 (leg. Belgovsky). ♀ (KhA); 2 , Nakhchivan Autonomous Republic, Babek, Sirab, 1200 m, ­is species inhabits lowland subtropical 1.06.2016 (MM). Russia: 1♀, Petergof Station, 2.08.1925 (leg. J. Antonova). Note. biotopes. Note. Inhabits forested places. Strongly harmful to beekeeping. To control it, good results were obtained by Distribution. Europe (Western, Northern, Southern, adding selenium compounds to minced meat placed in the and Eastern), Russia (European part, Urals, Western and vicinity of apiaries [Kadymov, 1981]. Eastern Siberia, Far East), Georgia, Azerbaijan, Turkey, Iran, Kazakhstan, Kyrgyzstan, India, China, Mongolia, Distribution. Europe (Western, Northern, Southern, and Eastern), Russia (European part, Urals, Western and Korean Peninsula, Japan. Eastern Siberia, Far East), Georgia, Azerbaijan, Turkey, Iran, Kazakhstan, Turkmenistan, China, Mongolia, Korean ­e wasp family Vespidae in the collection of the Peninsula, Japan. Institute of Zoology, Baku is represented by 28 genera and 59 species, nine of which, Ancistrocerus dusmetiolus, Vespa orientalis Linnaeus, 1771 Odynerus (Spinicoxa) reniformis, Pseudepipona (Pseudepipona) lativentris, Polistes (Polistes) bischoffi, Material. Azerbaijan: 1♀, Kzil Orda, 20.06.1926 (leg. K. Ruzayev); P. (P.) dominula, P. (P.) semenowi, Dolichovespula media, Nakhchivan, 26.07.1926 (leg. Kulibekdza); 2♀, Nakhchivan on Aras, D. sylvestris and Vespula vulgaris, are new to the fauna ♀ ♀ 14.06.1928 (leg. M. Akhnazarov); 1 , Ordubad, 11.07.1928 (M); 2 , of Azerbaijan. A total of 57 species are reported from Ordubad, 24.05.1933 (AB); 3♀, Nakhchivan, 1.10.1948 (leg. Amanov); 1♀, Ordubad, 31.08.1949 (leg. Amanov); 1♀, Baku, 20.09.1985 (leg. A. Piriyev); Azerbaijan, eight from Russia, three from Ukraine, two 1♀, 2♀, Nakhchivan Autonomous Republic, Babek, Sirab, 1200 m, each from Turkmenistan, Iran and Kazakhstan, and one 1.06.2016 (MM). Iran: 8♀, Cheshsaray, Alemdar mahal, 2–11.10.1929 (leg. each from Georgia, Uzbekistan. Shlyaposhnikov). Note. In contrast to Vespa crabro, this species settles primarily in open and dry habitats. Over the last References 15–16 years there has been an increase in the population Aliyev Kh.A. 1996. Aculeate Hymenoptera. In: Zhivotnyy mir numbers on the Absheron Peninsula, especially in the Azerbaydzhana. T. 2. Chlenistonogie [Animals of Azerbaijan. Vol. 2. vicinity of garbage dumps. Arthropoda]. Baku: Elm: 315–328 (in Russian). Distribution. North Africa, Europe (Southern Aliyeva M.G. 2010. Flight dynamics of the wasps from the Eumenidae family and Eastern), European part of Russia, Transcaucasia, (Hymenoptera, Vespoidae) in the Nakhchivan AR. Baki Universitetinin Xәbәrlәri. Tәbiәt Elmlәri Seriyası. 2: 55–60 (in Russian). Turkey, Syria, Lebanon, Israel, Jordan, Saudi Arabia, Antropov A.V., Astafurova Yu.V., Belokobylskij S.A., Byvaltsev A.M., Bahrain, Yemen, Oman, Iraq, Iran, Afghanistan, Pakistan, Danilov Yu.N., Dubovikoff D.A., Fadeev K.I., Fateryga A.V., Turkmenistan, Uzbekistan, Tajikistan, India, Nepal. Kurzenko N.V., Lelej A.S., Levchenko T.V., Loktionov V.M., Mokrousov M.V., Nemkov P.G., Proshchalykin M.Yu., Rosa P., Sidorov D.A., Sundukov Yu.N., Yusupov Z.M., Zaytseva L.A. 2017. Genus Vespula ‰omson, 1869 Annotated catalogue of the Hymenoptera of Russia. Volume I. Symphyta Vespula germanica (Fabricius, 1793) and Apocrita: Aculeata. In: Proceedings of the Zoological Institute of the Russian Academy of Sciences. Supplement № 6. St Petersburg, Material. Azerbaijan: 3♀, Nakhchivan, 18.05.1927 (M); 1♀, Zoological Institute of the Russian Academy of Sciences: 1–475. Kurtmakhmudly village, Karyagin distr. [now Fizuli], 31.05.1929 (EE); Bogachev AB. 1951. Class Insecta. In: Zhivotnyy mir Azerbaydzhana [Fauna 3♀, 1♀, Seid-Duvan, 27.09.1929 (leg. Shlyaposhnikov); 1♀, Milskaya of Azerbaijan]. Baku: Academy of Sciences of Azerbaijan SSR: 271– steppe, 15.06.1934 (AB); 1♀, Leninavan village, 21.04.1976 (KhA); 2♀, 375 (in Russian). Talysh, Lenkoran, Azfilial, 10.05.1976 (KhA); 2♀, Absheron, Botanical Carpenter J.M. 1986. A synonymic generic checklist of the Eumeninae Garden, 10.07.1976 (ID); 1♀, Absheron, 4.04.1983 (KhA); 1♀, Baku, (Hymenoptera: Vespidae). Psyche. 93(1–2): 61–90. DOI: Inzhirnaya, 9.05.1985 (KhA); 1♀, Lenkoran, Bilasar, 21.05.1985 (KhA); 10.1155/1986/12489 334 Kh.A. Aliyev, M.M. Maharramov, A.A. Mammadov

Carpenter J.M. 1996. Distribution checklist of species of the genus Polistes Kostylev G. 1940. Espèces novivelles et peu connues de Vespides, (Hymenoptera: Vespidae: Polistinae: Polistini). American Museum d’Euménides et de Masarides paléarctiques (Hymenoptera) II. Novitates. 3188: 1–39. Bulletin de la Société des Naturalistes de Moscou. Section Biologique. Carpenter J.M. 2001. Checklist of species of the subfamily Masarinae 49(5–6): 24–42. (Hymenoptera: Vespidae). American Museum Novitates. 3325: 1–39. Morawitz F. 1885. Eumenidarum species novae. Horae Societatis Carpenter J.M., Kojima J. 1997. Checklist of the species in the subfamily Entomologicae Rossicae. 19: 135–181. Vespinae (Insecta: Hymenoptera: Vespidae). Natural History Bulletin Morawitz F. 1895. Materialien zu einer Vespidenfauna des Russischen of Ibaraki University. 1: 51–92. Reiches. Horae Societatis Entomologicae Rossicae. 29: 407–493. Ebrahimi E., Carpenter J.M. 2008. Catalog of the vespid wasps of Iran (Hymenoptera, Schmid-Egger C., van Achterberg K., Neumeyer R., Morinière J., Schmidt Vespidae). Zootaxa. 1785(1): 1–42. DOI: 10.11646/zootaxa.1785.1.1 S. 2017. Revision of the West Palaearctic Polistes Latreille, with Fateryga A.V. 2017. New records of solitary vespid wasps (Hymenoptera: the descriptions of two species – an integrative approach using Vespidae: Eumeninae, Masarinae) from Russia and adjacent countries. morphology and DNA barcodes (Hymenoptera, Vespidae). ZooKeys. Far Eastern Entomologist. 334: 1–16. 713: 53–112. DOI: 10.3897/zookeys.713.11335 Fateryga A.V., Mokrousov M.V. 2019. New records of eumenine wasps Tobias V.I., Kurzenko N.V. 1978. Family Eumenidae. In: Opredelitel’ (Hymenoptera: Vespidae: Eumeninae) from Russia with description nasekomykh evropeyskoy chasti SSSR. Tom 3. Pereponchatokrylyye. of a new species of Leptochilus de Saussure, 1853. Zootaxa. 4612(3): Pervaya chast’ [Keys to the insects of the European part of the USSR. 412–422. DOI: 10.11646/zootaxa.4612.3.7 Vol. 3. Hymenoptera. Part 1]. Leningrad: Nauka: 152–173 (in Russian). Fateryga A.V., Proshchalykin M.Yu., Aliyev Kh.A., Maharramov M.M. Yıldırım E. 2012. ­e distribution and biogeography of Vespidae 2019. To the knowledge of eumenine wasps (Hymenoptera: Vespidae: (Hymenoptera: Aculeata) in Turkey. Turkish Journal of Zoology. 36(1): Eumeninae) of Nakhchivan Autonomous Republic of Azerbaijan. Far 23–42. Eastern Entomologist. 379: 25–32. DOI: 10.25221/fee.379.2 Yıldırım E., Gusenleitner J. 2012. Contribution to the knowledge of the Kadymov V.A. 1981. Common Hornet (Vespa crabro L.) of the Lenkoran Vespidae (Hymenoptera, Aculeata) of Turkey, with a checklist of the zone of Azerbaijan. Izvestiya Akademii nauk Azerbaydzhanskoy SSR. Turkish species. Turkish Journal of Zoology. 36(3): 361–374. DOI: Seriya biologicheskikh nauk. 3: 92–96 (in Russian). 10.3906/zoo-1012-62

Received / Поступила: 13.03.2019 Accepted / Принята: 11.08.2019 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 335–338 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

New records of caddisflies of the genus Plectrocnemia Stephens, 1836 (Trichoptera: Polycentropodidae) from Siberia (Russia)

Новые находки ручейников рода Plectrocnemia Stephens, 1836 (Trichoptera: Polycentropodidae) из Сибири (Россия)

© S.V. Dragan © С.В. Драган

Katanov Khakas State University, Lenin av., 90, Abakan 695000 Russia. E-mail: [email protected] Хакасский государственный университет им. Н.Ф. Катанова, пр. Ленина, 90, Абакан 655000 Россия

Key words: Trichoptera, Polycentropodidae, Plectrocnemia, distribution, Khakassia, Siberia. Ключевые слова: Trichoptera, Polycentropodidae, Plectrocnemia, распространение, Хакасия, Сибирь.

Abstract. Previously, caddisflies of the genus streams of the Ural Mountains [Pan’kov, Krasheninnikov, Plectrocnemia Stephens, 1836 were unknown in the 2016]; in the Eastern Palaearctic this species is known fauna of Siberia. In May-October 2018 adult P. kusnezovi only from the Xinjiang-Uygur Autonomous Region of Martynov, 1934 and P. wui (Ulmer, 1932) were collected China [Huang et al., 2005]. Recently larvae of P. conspersa in the upper part of the Yenisei River basin (Republic were found in some streams of the Salair Ridge (Southern of Khakassia, Abakan city, Abakan River valley) with a Siberia) [Baturina, 2019]. But since P. kusnezovi and P. wui UV lamp. ­ese records clarify the northern and western could be found in the streams of the Salair Ridge, and their boundaries of their ranges. Distribution of P. kusnezovi and larvae have not yet been described, the distribution of P. wui in Asia and flight periods in the region are given. P. conspersa in Western Siberia requires further study. A possible record of P. conspersa (Curtis, 1834) in Western Siberia is discussed; this species is known from the Ural Mountains, Southern Siberia (Salair Ridge) and Xinjiang- Uygur Autonomous Region of China. Резюме. Ранее ручейники из рода Plectrocnemia Stephens, 1836 не были известны в фауне Сибири. С мая по октябрь 2018 г. в верхнем участке бассейна Енисея (Республика Хакассия, окрестности Абакана, долина реки Абакан) собраны P. kusnezovi Martynov, 1934 и P. wui (Ulmer, 1932) с помощью УФ-лампы. Настоящие находки уточняют северную и западную границы ареалов этих видов. Приведены распространение P. kusnezovi и P. wui в Азии и данные о периоде лёта в регионе. Обсуждается возможная находка P. conspersa (Curtis, 1834) в Западной Сибири, поскольку он известен с Урала, из Южной Сибири (Салаирский хребет) и Синьцзян-Уйгурского автономного округа Китая.

In the recent fauna of Russia 11 species of caddisflies of the genus Plectrocnemia Stephens, 1836 are known including seven species from the Russian Far East [Ivanov, Melnitsky, 2013; Oláh et al., 2018]. In the period of May 27 – October 13, 2018, the author collected P. kusnezovi Martynov, 1934 and P. wui (Ulmer, 1932) in the lower part of the Abakan River valley (upper part of the Yenisei River basin). Both species are recorded here for the fauna of Siberia for the first time. ­e records of P. kusnezovi are the most western, and of P. wui are the Figs 1–2. Distribution of Plectrocnemia kusnezovi (1) and P. wui (2) most northern localities of the genus. In addition, the in Asia. Red circles – the author’s records, green circles – published data. Рис. 1–2. Распространение Plectrocnemia kusnezovi (1) и P. wui (2) widespread species P. conspersa (Curtis, 1834) сould be в Азии. Красные кружки – данные автора; зеленые кружки – found in Western Siberia, since this species is known in the опубликованные данные.

Short Communication / Краткое сообщение DOI: 10.23885/181433262019152-335338 336 S.V. Dragan

Figs 3–4. Plectrocnemia spp., male genital structures, lateral view. Scale bar 0.5 mm. Рис. 3–4. Plectrocnemia spp., генитальные структуры самца, вид сбоку. Масштабная линейка 0.5 мм. 3 – P. kusnezovi Martynov, 1934; 4 – P. wui (Ulmer, 1932).

Material and methods Plectrocnemia kusnezovi Martynov, 1934 (Figs 1, 3) ­e caddisflies were collected with a UV lamp BLB- T5/4W operated daily from 21:00 to 24:00, except for Material. Republic of Khakassia, Abakan city, Abakan River valley: 53°41ʹ59.6ʺN / 91°29ʹ47.4ʺE, ~250 m a.s.l., 1♂, 11.08.2018, 2♂, 19.08.2018; days with rain. In total, 88 samples were collected. ­e 53°42ʹ49.5ʺN / 91°30ʹ19.6ʺE, ~245 m a.s.l., 1♂, 2.07.2018, 1♂, 9.07.2018, 1♂, material is stored in 95% ethanol in the author’s collection 8.08.2018, 1♂, 11.08.2018, 1♂, 15.08.2018 (DC), 5♂, 19.08.2018 (ZM KhSU), (DC, Abakan, Russia) and the collection of the Zoological 1♂, 8.09.2018 (DC). Museum of Khakass State University (ZM KhSU, Abakan, Distribution. Russia (S: KK; FE: AMU, KHA, PRI), Russia). ­e material was identified using keys and Mongolia, China, Democratic People’s Republic of Korea, descriptions [Martynov, 1934; Hwang, 1958; Schmid, Republic of Korea. Plectrocnemia kusnezovi has not yet 1959; Kachalova, 1987; Arefina, 1997; Arefina et al., 2003; been recorded in Japan, as evidenced by the results of many Malicky, 2004, 2008; Ohkawa, Ito, 2007; Tobias, Tobias, years of research [Tanida, 2016; Inaba et al., 2019]. 2010; Oláh, Johanson, 2010; Morse et al., 2012; Zhong et Flight period. July-September. al., 2012; Nozaki, Shimura, 2013; Pandher, 2018; Oláh et al., 2018]. Species names are given according to the Trichoptera Plectrocnemia wui (Ulmer, 1932) World Checklist [Morse, 2019]. (Figs 2, 4) ­e genital structures of caddisflies were photographed using a ToupCam 9.0 MP camera and Helicon Focus 7.02 Material. Republic of Khakassia, Abakan city, Abakan River valley, image stacking software for combining 105 frames in one 53°42ʹ49.5ʺN / 91°30ʹ19.6ʺE, ~245 m a.s.l. , 1♂, 22.06.2018, 1♂, 28.06.2018 (DC), 1♂, 1.07.2018 (ZM KhSU). focused image. ­e distribution maps are based on published data Distribution. Russia (S: KK; FE: YEV, KHA, PRI, [Martynov, 1934; Levanidova, 1964; Botoșăneanu, 1970; SAK), Kazakhstan, China, Democratic People’s Republic of Spuris, 1989; Vshivkova, 1991, 2016; Kumanski, 1992; Korea, Republic of Korea, Japan. Levanidova et al., 1995; Arefina, 1997, 2005; Tiunova et al., Flight period. June-July. 2003; Arefina, Armitage, 2005; Yang et al., 2005; Hwang, Chun, 2006; Arefina-Armitage, 2007; Ohkawa, Ito, 2007; Plectrocnemia spp. Nozaki, Tanida, 2007; Chuluunbat, Morse, 2007; Tiunova, Material. Republic of Khakassia, Abakan city, Abakan River valley: Arefina-Armitage, 2010; Oláh, 2010; Ivanov, 2011; Zhong 53°41ʹ59.6ʺN / 91°29’47.4”E, ~250 m a.s.l., 1♀, 11.08.2018, 3♀, 19.08.2018; et al., 2012; Ivanov, Melnitsky, 2013; Vshivkova et al., 53°42ʹ49.5ʺN / 91°30ʹ19.6ʺE, ~245 m a.s.l., 1♀, 24.06.2018, 1♀, 28.06.2018, 2013; Potikha, Vshivkova, 2016; Vshivkova, Akatkina, 1♀, 29.06.2018, 2♀, 2.07.2018, 1♀, 12.07.2018, 1♀, 13.07.2018, 1♀, 2016; Vshivkova et al., 2016; Yang et al., 2016; Tanida, 21.07.2018, 2♀, 7.08.2018, 2♀, 10.08.2018, 2♀, 11.08.2018, 4♀, 16.08.2018, 3♀, 17.08.2018, 10♀, 19.08.2018, 1♀, 21.08.2018, 2♀, 23.08.2018, 1♀, 2016; Chuluunbat et al., 2016; Smirnova et al., 2016; 24.08.2018, 1♀, 25.08.2018 (DC). Oláh et al., 2018]. ­e borders of Siberia are based on the Note. In total 40 specimens were studied, but zoning scheme used in the report on the caddisfly fauna identification of female caddisflies of the genus of Russia [Ivanov, 2011]. In distribution parts the following Plectrocnemia to species level is not yet possible. abbreviations are used: S – Siberia (KK – Republic of Khakassia); FE – Russian Far East (AMU – Amur Region; YEV – Jewish Autonomous Region; KHA – Khabarovsk Acknowledgements Region; PRI – Primorsky Region; SAK – Sakhalin Region). Flight periods for species are indicated in the studied area I am grateful to Dr Hans Malicky (Lunz am See, Austria) and based on author’s data. and Dr János Oláh (Debrecen, Hungary) for comments and New records of caddisflies of the genus Plectrocnemia Stephens, 1836 337 verification of species identification; to Dr John C. Morse [Keys to the insects of the European part of the USSR. Vol. 4. Megaloptera, Raphidioptera, Neuroptera, Mecoptera, Trichoptera. (Department of Plant and Environmental Sciences, Clemson Part 6]. Leningrad: Nauka: 107–193 (in Russian). University, Clemson, USA.), Dr Vladimir D. Ivanov Kumanski K.P. 1992. Studies on Trichoptera of Korea (North) III. (St Petersburg State University, St Petersburg, Russia), Superfamily Hydropsychoidea. Insecta Koreana. 9: 52–77. Dr Kazumi Tanida (Osaka Prefecture University, Sakai, Levanidova I.M. 1964. On zoogeography of the hydrofauna of the southern regions of the Far East. In: Izvestiya Tikhookeanskogo nauchno- Osaka, Japan), Dr Takao Nozaki (Midorigaoka, Kanagawa, issledovatel’skogo instituta rybnogo khozyaystva i okeanografii. Japan), Drs Brian Armitage and Tatiana Arefina-Armitage T. 55 [Proceedings of the Pacific Research Institute of Fisheries and (Instituto Conmemorativo Gorgas de Estudios de la Salud, Oceanography. Vol. 55]. Vladivostok: 175–195 (in Russian). Levanidova I.M., Vshivkova T.S., Arefina T.I., Zasypkina I.A. 1995. A tabular Panama, Republic of Panama) for valuable comments and check-list of caddisflies (Insecta: Trichoptera) of the Russian Far East. relevant literature. I am also grateful to Dr Johann Waringer Far Eastern Entomologist. 16: 1–19. (Department of Limnology and Bio-Oceanography, Malicky H. 2004. Atlas of European Trichoptera. Dordrecht: Springer. 359 p. University of Vienna, Vienna, Austria) for the comments Malicky H. 2008. Beschreibungen von neuen Trichopteren aus Asien. Braueria. 35: 45–57. on the manuscript and its linguistic correction. Martynov A.V. 1934. Rucheyniki. 1. Trichoptera – Annulipalpia [Caddisflies. 1. Trichoptera – Annulipalpia]. Leningrad: Academy of Sciences of the USSR. 343 p. (in Russian). References Morse J.C. 2019. Trichoptera World Checklist. Available at: http://entweb. clemson.edu/database/trichopt/index.htm (accessed 20 November Arefina T.I. 1997. 9. Polycentropodidae. In: Opredelitel’ nasekomykh 2019). Dal’nego Vostoka Rossii. T. V. Rucheyniki i cheshuekrylye. Ch. 1 [Key Morse J.C., Zhong H., Yang L.-F. 2012. New species of Plectrocnemia and to insects of the Russian Far East. Vol. V. Trichoptera and Lepidoptera. Nyctiophylax (Trichoptera, Polycentropodidae) from China. ZooKeys. Pt 1]. Vladivostok: Dal’nauka: 69–76 (in Russian). 169: 39–59. DOI: https://doi.org/10.3897/zookeys.169.1827 Arefina T.I. 2005. Caddisfly fauna (Insecta, Trichoptera) of the Jewish Nozaki T., Shimura N. 2013. Two polycentropodid caddisflies (Trichoptera, Autonomous Region (Russian Far East). In: Chteniya pamyati Insecta) collected from Yonaguni-jima, westernmost Japan. In: Vladimira Yakovlevicha Levanidova. T. 3 [V.Ya. Levanidov’s Biennial Biology of Inland Waters. Supplement No. 2 (Proceedings of the Memorial Meetings. Vol. 3]. Vladivostok: Dal’nauka: 312–327 1st Symposium of the Benthological Society of Asia: the 1st Symposium (in Russian). of the Benthological Society of Asia, the 5th Symposium of the Aquatic Arefina T.I., Armitage B.J. 2005. New findings of caddisflies (Insecta: Entomologists Societies of East Asia: Matsumoto, Japan 11–14 June, Trichoptera) from Sakhalin Island. In: Proceedings of the 2012). Sakai: Scientific Research Society of Inland Water Biology: 11th International Symposium on Trichoptera (Osaka, 2003). 101–108. Kanagawa: Tokai University Press: 15–24. Nozaki T., Tanida K. 2007. ­e caddisfly fauna of a huge spring-fed Arefina T.I., Vshivkova T.S., Morse J.C. 2003. Two New Species of the Genus stream, the Kakida River, in central Japan. In: Proceedings of the Plectrocnemia Stephens (Trichoptera: Polycentropodidae) from the XIIth International Symposium on Trichoptera (México, June 18–22, Russian Far East. Aquatic Insects. 25(2): 157–167. DOI: https://doi. 2006). Columbus, Ohio: ­e Caddis Press: 243–255. org/10.1076/aqin.25.2.157.14036 Ohkawa A., Ito T. 2007. ­e genus Plectrocnemia Stephens of Japan Arefina-Armitage T.I. 2007. Fauna of water invertebrates in the Bureya River (Trichoptera; Polycentropodidae). Limnology. 8: 183–210. DOI: Basin. 6.1.3. ­e Caddisflies (Trichoptera). In: Gidroekologicheskiy https://doi.org/10.1007/s10201-007-0224-2 monitoring zony vliyaniya Bureyskogo gidrouzla [Hydro-ecological Oláh J. 2010. New species and new records of Palaearctic Trichoptera in monitoring in Bureyskaya Hydro-Electric Power Station zone the material of the Hungarian Natural History Museum. Annales influences]. Khabarovsk: Institute of Water and Ecology Problems Historico-Naturales Musei Nationalis Hungarici. 102: 65–117. of Far Eastern Branch of the Russian Academy of Sciences: 161–180 Oláh J., Johanson K.A. 2010. Generic review of Polycentropodidae with (in Russian). description of 32 new species and 19 new species records from the Baturina N.S. 2019. New records of caddisflies (Trichoptera) from Salair Oriental, Australian and Afrotropical Biogeographical Regions. Ridge, West Siberia. Far Eastern Entomologist. 388: 16–22. DOI: Zootaxa. 2435: 1–63. https://doi.org/10.25221/fee.388.2 Oláh J., Johanson K.A., Li W., Park S.J. 2018. On the Trichoptera of Korea Botoșăneanu L. 1970. Trichopères de la République Démocratique- with Eastern Palaearctic relatives. Opuscula Zoologica Budapest. Populaire de la Corée. Annales Zoologici. 27(15): 275–359. 49(2): 99–139. DOI: http://dx.doi.org/10.18348/opzool.2018.2.99 Chuluunbat S., Morse J.C. 2007. Caddisflies (Insecta: Trichoptera) of Selenge Pandher M.S. 2018. Addition of a new species to the genus Plectrocnemia River Basin, Mongolia. In: Proceedings of the XIIth International Stephens, 1836 (Trichoptera: Polycentropodidae) from Indian Symposium on Trichoptera (México, June 18–22, 2006). Columbus, Himalaya. Records of the Zoological Survey of India. 118(2): 174–177. Ohio: ­e Caddis Press: 51–57. DOI: 10.26515/rzsi/v118/i2/2018/123533 Chuluunbat S., Morse J.C., Sosorburam B. 2016. Caddisflies of Mongolia: Pan’kov N.N., Krasheninnikov A.B. 2016. Current state of knowledge of a Distribution and diversity. Zoosymposia. 10: 096–116. DOI: http:// faunal inventory of Trichoptera (, Trichoptera) from the dx.doi.org/10.11646/zoosymposia.10.1.10 Ural Mountains and neighboring regions. Zoosymposia. 10: 331–339. Huang X-Y., Zhang J-H., Wang W. 2005. Studies on Trichoptera in Xinjaing. DOI: http://dx.doi.org/10.11646/zoosymposia.10.1.31 Journal of Shihezi University (Natural Science). 23(4): 468–472 Potikha E., Vshivkova T. 2016. ­e caddisfly faunas (Insecta, Trichoptera) (in Chinese). of Protected Natural Areas in southern Far East Russia. Zoosymposia. Hwang C.-L. 1958. Descriptions of Chinese caddis flies (Trichoptera). Acta 10: 357–383. DOI: http://dx.doi.org/10.11646/zoosymposia.10.1.33 Zoologica Sinica. 10(3): 279–285 (in Chinese). Schmid F. 1959. Quelques Trichopteres de Chine. Mitteilungen aus dem Hwang J.H., Chun D.-J. 2006. New records of polycentropodid caddisflies Zoologischen Museum in Berlin. 35(2): 317–345. DOI: https://doi. from Korea (Insecta: Trichoptera). Entomological Research. 36: 94–97. org/10.4039/Ent1181165-11 DOI: 10.1111/j.1748-5967.2006.00015.x Smirnova D., Kushnikova L., Evseeva A., Grishaeva O., Kraynyuk V., Pilin D., Inaba S., Ito T., Ohkawa A. 2019. A catalogue of Japanese Trichoptera, Family Sklyarova O., Epova J., Baymukanova Z., Timirkhanov S. 2016. ­e Polycentropodidae Stephens. Available at: http://tobikera.eco.coocan. Trichoptera of Kazakhstan: A review. Zoosymposia. 10: 398–408. jp/catalog/Polycentropodidae.html (accessed 20 November 2019). DOI: http://dx.doi.org/10.11646/zoosymposia.10.1.36 Ivanov V.D. 2011. Caddisflies of Russia: Fauna and biodiversity. Zoosymposia. Spuris Z. 1989. Synopsis of the fauna of the Trichoptera of the USSR. 5: 171–209. DOI: http://dx.doi.org/10.11646/zoosymposia.5.1.15 In: Latvijas Entomologs. Supplementum IV. Riga: Zinatne: 1–86 Ivanov V.D., Melnitsky S.I. 2013. Family Polycentropodidae in the fauna (in Russian). of Russia. In: Problemy vodnoy entomologii Rossii: Materialy Tanida K. 2016. Family Polycentropodidae. In: Catalogue of the Insects of X (2) Trikhopterologicheskogo simpoziuma [Problems of aquatic Japan. Vol. 5. Neuropterida, Mecoptera, Siphonaptera, Trichoptera entomology of Russia: Proceedings of the X (2) Trichopterology and Strepsiptera. Fukuoka: Entomological Society of Japan: 90–93 Symposium]. Vladikavkaz: K.L. Khetagurov North Ossetian State (in Japanese). University: 21–25 (in Russian). Tiunova T.M., Arefina-Armitage T.I. 2010. Chapter 9. Fauna and Kachalova O.L. 1987. 27. Trichoptera. In: Opredelitel’ nasekomykh distribution of the water invertebrates in the Zeya River Basin. 9.3. evropeyskoy chasti SSSR. T. 4. Bol’shekrylye, verblyudki, ­e Caddisflies (Trichoptera). In: Gidroekologicheskiy monitoring setchatokrylye, skorpionovye mukhi i rucheyniki. Shestaya chast’ zony vliyaniya Zeyskogo gidrouzla [Hydro-ecological monitoring in 338 S.V. Dragan

zone of influence of Zeya Hydro-Electric Power Station]. Khabarovsk: rossiyskogo uchenogo-entomologa Zhil’tsovoy Lidii Andreevny Institute of Water and Ecological Problems of Far Eastern Branch of [Problems of aquatic entomology in Russia and adjacent countries: the Russian Academy of Sciences: 165–185 (in Russian). Proceedings of the VI All-Russian (with international participation) Tiunova T.M., Teslenko V.A., Arefina T.I., Makarchenko M.A., Zorina O.V. symposium on amphibiotic and aquatic insects, dedicated to 2003. Fauna of aquatic insects in Barabashevka River basin (Southern the memory of the famous Russian entomologist scientist Lydia Primorye). In: Chteniya pamyati Vladimira Yakovlevicha Levanidova. Andreyevna Zhiltsova]. Vladikavkaz: K.L. Khetagurov North Ossetian T. 2 [V.Ya. Levanidov’s Biennial Memorial Meetings. Vol. 2]. State University: 39–48 (in Russian). Vladivostok: Dal’nauka: 61–69 (in Russian). Vshivkova T., Flint O., Ito T., Ivanov V., Holzenthal R., Melnitsky S., Mey W., Tobias W., Tobias D. 2010. A catalogue of illustrations for the identification Nozaki T., Oh M.W., Drozdov K., Tojo K., Saito R., Tori T. 2016. of the caddis flies (Insecta: Trichoptera) known to occur in Norway, ­e List of Caddisflies (Insecta, Trichoptera) collected in South Sweden and Finland - adults. Addendum: Checklist of caddisfly species Primorye during the symposium and post-symposium excursions of (Trichoptera) from NE Norway (Finnmark) and the Kola Peninsula. the XIV International Symposium on Trichoptera (5 and 8−13 July Available at: http://trichoptera.insects-online.de/Trichoptera%20 2012). Zoosymposia. 10: 064–084. DOI: http://dx.doi.org/10.11646/ fennoscandinavica-aktuell/index.htm (accessed 20 November 2019). zoosymposia.10.1.7 Vshivkova T.S. 1991. ­e longitudinal distribution of Trichoptera in a salmon Vshivkova T.S., Flint O.S., Holzenthal R.W., Kjer K.M., Frandsen P.B., river of South Primorye. In: Proceedings of the 6th International ­omson R.E., Egorov A.B. 2013. First data on Trichoptera fauna Symposium on Trichoptera. Poznan: Adam Mickiewicz University (Insecta) of streams and ponds of Vostok Bay Basin (Peter the Great Press: 41–51. Bay, Primorye Territory). In: Zhizn’ presnykh vod [Freshwater Life]. Vshivkova T.S. 2016. Rucheyniki (Insecta, Trichoptera) zapadnogo Vladivostok: Dal’nauka: 123–143 (in Russian). Prikhankov’ya (Pogranichnyy i Khankayskiy rayony, Primorskiy Yang L.-F., Sun Ch.-H., Morse J.C. 2016. An amended checklist of the krai) [Caddis flies (Insecta, Trichoptera) of the Western Prihankovye caddisflies of China (Insecta, Trichoptera). Zoosymposia. 10: 451–479. (Pogranichnyy and Hankayskiy districts, Primorskiy Region)]. In: DOI: http://dx.doi.org/10.11646/zoosymposia.10.1.42 Zhizn’ presnykh vod [Freshwater Life]. Vladivostok: Dal’nauka: 147– Yang L.-F., Sun Ch.-H., Wang B.-X., Morse J.C. 2005. Present status of 173 (in Russian). Chinese Trichoptera, with an annotated checklist. In: Proceedings Vshivkova T.S., Akatkina A.M. 2016. Trichoptera fauna of Bikin River of the 11th International Symposium on Trichoptera (Osaka, 2003). basin: from A.V. Martynov to the present days. In: Problemy vodnoy Kanagawa: Tokai University Press: 441–460. entomologii Rossii i sopredel’nykh stran: Materialy VI Vserossiyskogo Zhong H., Yang L.-F., Morse J.C. 2012. ­e genus Plectrocnemia Stephens (s mezhdunarodnym uchastiem) simpoziuma po amfibioticheskim in China (Trichoptera, Polycentropodidae). Zootaxa. 3489(1): 1–24. i vodnym nasekomym, posvyashchennogo pamyati izvestnogo DOI: http://dx.doi.org/10.11646/zootaxa.3489.1.1

Received / Поступила: 7.05.2019 Accepted / Принята: 22.11.2019 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 339–345 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Two new species of the subfamily (Lepidoptera: ) from West Kazakhstan

Два новых вида из подсемейства Phycitinae (Lepidoptera: Pyralidae) из Западного Казахстана

© E.V. Tsvetkov © Е.В. Цветков

Русское энтомологическое общество, Санкт-Петербург, Россия Russian Entomological Society, St Petersburg, Russia. E-mail: [email protected]

Key words: Lepidoptera, Pyraloidea, Pyralidae, Phycitinae, , , new species, Kazakhstan. Ключевые слова: Lepidoptera, Pyraloidea, Pyralidae, Phycitinae, Asalebria, Gymnancyla, новые виды, Казахстан.

Abstract. Asalebria (Exophora) vernalis sp. n. [1988]. ­e difference between these subgenera is mainly and Gymnancyla subgilvella sp. n. are described from in maxillary palps structure. Male maxillary palps are Atyrau and Mangistau Regions of Kazakhstan. Male and very small and always without scale tufts in the subgenus female genitalia of these species are illustrated. Asalebria Exophora (type species Nephopteryx (sic) florella Mann, (Exophora) vernalis sp. n. differs by wing colouration and 1862), while males of the subgenus Asalebria (type species by genitalia structure from all known Asalebria species. Salebria venustella Ragonot, 1887) have larger maxillary Gymnancyla subgilvella sp. n. can be mixed with two palps which bear brush like scale tufts. ­e subgenus Gymnancyla species, G. gilvella (Ragonot, 1887) and Praesalebria Amsel, 1954 (= Postsalebria Amsel, 1955) was G. nomiella (Ragonot, 1887). ­e differences from two recently established for Asalebria pseudoflorella (Schmidt, mentioned species are found in both male and female 1934) [Vives Moreno, Gastón, 2017]. Later Exophora was genitalia and also in venation. regarded as a junior synonym of Praesalebria [Slamka, Резюме. Asalebria (Exophora) vernalis sp. n. и 2019]. However, the maxillary palps of A. ferruginella Gymnancyla subgilvella sp. n. описаны из Атырауской pseudoflorella bear scale tufts. So, possibly Praesalebria и Мангистауской областей Казахстана. Приводятся should be regarded as a synonym of Asalebria. A new иллюстрации гениталий самцов и самок этих видов. Asalebria species is described here in the subgenus Asalebria (Exophora) vernalis sp. n. отличается окраской Exophora. крыльев и строением гениталий от всех известных ­e genus Gymnancyla Zeller, 1848 was placed to so- видов рода Asalebria. Gymnancyla subgilvella sp. n. called trifine Acrobasiina in the classification of Roesler может быть спутан с двумя видами рода Gymnancyla, [1973], a group of species, belonging to the subtribe G. gilvella (Ragonot, 1887) и G. nomiella (Ragonot, 1887). Acrobasiina. ­e genus was considerably enlarged after Отличия от двух упомянутых видов имеются в строении establishing the synonymy with Ragonot, 1887 гениталий самцов и самок, а также в жилковании. [Leraut, 2014] and during the last years it was completed with several new species [Du, Yan, 2009; Liu, Li, 2010; Introduction Alipanah et al., 2014; Gastón, Vives Moreno, 2018]. So, at present it includes nearly 24 species. ­e subfamily Phycitinae is divided into four tribes: Gymnancyla species occur in the south of the Anerastiini, Cabniini, Cryptoblabini and . Two Palaearctic. ­ey inhabit arid places, often semideserts described below species belong to the genera Asalebria Amsel, and saline lands. ­e hostplants were listed for different 1953 and Gymnancyla Zeller, 1848 of the tribe Phycitini. species of Gymnancyla: Atriplex halymus, Atriplex nitens, ­e representatives of the genus Asalebria inhabit Anabasis aphylla, Halocnemum strobilaceum, Salsola sp., southern areas of the Palaearctic. West and Central Asia Halothamnus sp., Haloxylon sp. (Chenopodiaceae) are the regions of species richness. ­e ecology of the most and Nitraria sp. (Nitrariaceae) [Roesler, 1973, 1993; number of species is not studied, it is known that Genista Falkovitsh, 1999]. ­e genus is divided into four subgenera: (Fabaceae) is a hostplant for A. venustella (Ragonot, 1887) Gymnancyla Zeller, 1848, Spermatophthora Lederer, 1852, and A. florella (Mann, 1862) [Roesler, 1993]. Dentinodia Ragonot, 1887 and Bazaria Ragonot, 1887. Considering the recent taxonomic changes we conclude that the genus Asalebria consists of nearly Material and methods 15 species [Leraut, 2001, 2014; Asselbergs, 2007; Anikin et al., 2017; Slamka, 2019]. In May, 2016 the author have undertaken first Division into two subgenera, Exophora Roesler, 1988 expedition to West Kazakhstan. ­e visited localities were and Asalebria Amsel, 1953 was proposed by Roesler along the route Atyrau – Kulsary – Beineu – Shetpe. ­ese

Научная статья / Research Article DOI: 10.23885/181433262019152-339345 340 E.V. Tsvetkov places present various hyperthermic habitats: semidesert Two black discal spots stretched along veins, especially the lower or steppe saline lands, sandy semideserts, chalk steppes spot which is larger than the upper. Black postdiscal line wavy and rocky mountain places. Formally the territory belongs and sometimes unclear. It is angled inwards at M1 vein and also to Atyrau and Mangistau Regions of Kazakhstan. abruptly angled inwards at A vein. Submarginal area pale ochreous with small darkening at costa, sometimes suffused with blackish Energy saving fluorescent lamp (85 W, 6400 K) was scales. Outer edge of the forewing contrasted with blackish scales used for attracting to light, collecting by a net during the day forming dotted marginal line. Fringe white with two thin brownish and evening time didn’t give results (except for some single parallel lines or brownish blurred band. Hindwing pale brown with specimens from other groups of Lepidoptera). Among the thin dark brown marginal line. Fringe white. Forewing underside collected Phycitinae rather large series of two unknown brown with darker medial area. Hindwing underside pale brown. species were distinguished. Later, after the examination ­in marginal brown line present on both wings. of genitalia they were recognized as Asalebria sp. and, Male genitalia (Figs 11, 13, 14). Uncus almost triangular with probably, Gymnancyla sp. ­ese species seemed to be blunt apex. Its side edges curved down and strongly sclerified. Gnathos elongate with conically pointed apex and small caudally undescribed, however, it was not certainly clear for a time, pointed spine. Proximal part of gnathos curved up and stretched even considering the revision of these genera [Roesler, into thin process. Branches of gnathos relatively short, ribbon like 1973, 1988, 1993] and fully data on the recently described and slightly wavy, broadened at their ends and pointed cranially species. More detailed verification of the status was then at junction with gnathos. Side lobes of tegumen very short and carried out taking into account some unrevised names broad. Valva elongate, tapering from the base to rounded apex. of taxa and also some little known taxa [Ragonot, 1893; Sacculus narrow, strongly sclerified, occupies some less than a half Ragonot, Hampson, 1901; Chrétien, 1913; Zerny, 1914; of valva length. Costa well sclerified but apical part of valva lacks Toll, 1948]. costal sclerotization. Transtilla long and not strongly sclerified. Its anterior edge arcuate, central part broadened, posterior edge with Another author’s expedition to West Kazakhstan was V-shaped hollow. Anellus nearly heart shaped with more heavily along the same route in late April and in the beginning sclerified U-shaped part. ­is U-shaped structure consists of two of May, 2019. ­e same two species were observed and connected triangular lobes. Vinculum rounded with tapering photographed (Figs 21, 22), additional material was side edges. Aedeagus cylindrical with excavation from ventral collected including the specimen of Asalebria sp. from the side at proximal 1/4 occupied by ductus ejaculatorius base. Large newly found locality in the Mangistau Mountain Range. cornutus abruptly curved at its base. Eighth sternum weakly sclerified, especially in its posterior part. Anterior margin of the sternum slightly convex with heavy sclerotization along the edge. Asalebria (Exophora) vernalis sp. n. Culcita as pair of scale tufts (thin scales) on the sides of sternum (Figs 1–5, 11–14, 19, 21) (Fig. 12). Female genitalia (Fig. 19). Papillae analis elongate, not Holotype, ♂ (Zoological Institute of the Russian Academy Material. tapering, nearly 0.4 mm. Anterior apophyses equal to posterior of Sciences, St Petersburg, Russia): Kazakhstan, Atyrau Region, Akkergeshen Plateau, 47°19′14″N / 54°24′14″E, 1.05.2016, (leg. E.V. Tsvetkov). Paratypes: apophyses and nearly 0.7 mm in length. Both pairs of apophyses 10♂, the same label as in holotype; 1♂, 6♀, Kazakhstan, Mangistau bear flat widenings in posterior 1/3 and also at their ends. ­e Region, 11 km E Sarga village, terrace of Ustyurt Plateau, 3.05.2016 widenings at the base of anterior apophyses angulate from one (leg. E.V. Tsvetkov); 10♂, the same locality, 25.04.2019 (leg. E.V. Tsvetkov); side. Eighth tergum trapezoidal with very broad posterior margin, 1♀, Kazakhstan, Mangistau Region, S environs of Akmysh spring, straight anterior and posterior edges. Posterior margin with large ′ ″ ′ ″ 44°13 13 N / 51°58 51 E, 3.05.2019 (leg. E.V. Tsvetkov). Some paratypes hollow, an area of weak sclerotization occupies central part of tergum. are deposited in collection of Zoological Institute of Russian Academy of Antrum broad and flat, almost rectangular and well sclerified. Sciences (St. Petersburg); 11 paratypes (10♂, 1♀) collected in 2019 are kept in the author’s collection. Ductus bursae with slightly shorter and broader sclerite and very Description. Head and body. Abdomen, thorax and legs short membranous part between the sclerite and antrum. Corpus covered with mixture of white and blackish scales. Head covered bursae elongate, membranous, anteriorly rounded. Its conical with white and dark grey scales. Frons convex, chaetosemata posterior part (1/6–1/5 of corpus bursae) located behind the base present behind ocelli. Antennae slightly longer than 1/2 of the of ductus bursae and it is hidden by ductus bursae in ventral view. forewing with tiny sharp spine on the last flagellomere. Scape Seminal duct arises from the apex of the cone. nearly 3 times as long as wide. Male flagellum with three spine-like Diagnosis. Asalebria vernalis sp. n. is well projections on flagellomeres 2–4. Flagellomere 5 bears a minute distinguished from other species of the genus in the wing spine. Sinus very small. Dorsal side of flagellum chequered (dark colouration. Some external similarity with little known grey and whitish areas on each segment). Cilia whitish, longer in A. palella (Caradja, 1916) and A. pallidisignata (Toll, 1948) males (1/2 of segment width) than in females (1/3 of segment width should be mentioned. In male genitalia of the described or shorter). Labial palps 1.5 diameter of eye in length, pointed up species cornutus is abruptly curved at its base (almost at and ahead. Maxillary palps very small with rounded segments, covered with flat scales (Figs 3, 4). right angle) which allows to distinguish the species from Wings (Figs 1, 2, 21). Venation (Fig. 5). Forewing. Length other Asalebria by males. Besides, in A. palella uncus with 8–9 mm. Forewing relatively wide and short, triangular with abrupt side convexities in contrary to A. vernalis sp. n. slightly convex edges. Basal area pale-ochreous, whitish, sprinkled Asalebria pallidisignata (known by a female) contrastingly with dark grey or black scales. Its part adjacent to antemedial different in female genitalia [Toll, 1948]. line lighter and lacks grey suffusion, usually with small blackish Asalebria aralensis (Kusnetzov, 1908) is also known markings at A vein and at the cell. Black antemedial line angular, from West Kazakhstan, type material of this species was starts from nearly 1/3 of costa, directed almost at right angle to examined [Sinev, 1990]. Its male genitalia are quite different hind margin of the wing. ­e line contrasted by pale ochreous area from inner side and fused with greyish color of medial from those of A. vernalis sp. n. area from outer side. Area between antemedial and postmedial Biology. ­e series of the described species were lines much darker than basal area, greyish (black, dark grey and taken in chalk steppe, saline semidesert lands and rocky brownish scales), partly lightened (pale ochreous or whitish). places. Its flight period is in late April and early May. Two new species of the subfamily Phycitinae (Lepidoptera: Pyralidae) from West Kazakhstan 341

Figs 1–10. Asalebria vernalis sp. n. (1–5) and Gymnancyla subgilvella sp. n. (6–10), morphology and habitus of imago. 1–2, 6–7 – type specimens (scale bars 1 cm): 1, 6 – males, holotypes, 2, 7 – females, paratypes; 3–5, 8–10 – head and venation: 3, 8 – head in lateral view, 4, 9 – labial and maxillary palps, 5, 10 – venation. Рис. 1–10. Asalebria vernalis sp. n. (1–5) и Gymnancyla subgilvella sp. n. (6–10), морфология и внешний вид имаго. 1–2, 6–7 – типовые экземпляры (масштабные линейки 1 см): 1, 6 – самцы, голотипы, 2, 7 – самки, паратипы; 3–5, 8–10 – голова и жилкование: 3, 8 – голова латерально, 4, 9 – губные и челюстные щупики, 5, 10 – жилкование. 342 E.V. Tsvetkov

Figs 11–18. Male genitalia and eighth sternite of Asalebria vernalis sp. n. (11–14) and Gymnancyla subgilvella sp. n. (15–18). 11, 15 – aedeagi; 12, 16 – eighth sternites; 13, 17 – genitalia (aedeagus extracted); 14, 18 – uncus and gnathos, lateral view. Scale bar 1 mm. Рис. 11–18. Гениталии и восьмой стернит самцов Asalebria vernalis sp. n. (11–14) и Gymnancyla subgilvella sp. n. (15–18). 11, 15 – эдеагусы; 12, 16 – восьмые стерниты; 13, 17 – гениталии (эдеагус извлечен); 14, 18 – ункус и гнатос латерально. Масштабная линейка 1 мм. Two new species of the subfamily Phycitinae (Lepidoptera: Pyralidae) from West Kazakhstan 343

Gymnancyla subgilvella sp. n. (Figs 6–10, 15–18, 20, 22)

Material. Holotype, ♂(Zoological Institute of the Russian Academy of Sciences, St Petersburg, Russia): Kazakhstan, Mangistau Region, 11 km E Sarga village, terrace of Ustyurt Plateau, 3.05.2016 (leg. E.V. Tsvetkov). Paratypes: 15♂, 4♀, the same label as in holotype; 3♂, 1♀, the same locality, 25.04.2019 (leg. E.V. Tsvetkov); 5♂, Kazakhstan, Mangistau Region, 9 km SW Sai Otes village, canyon, 7.05.2016 (leg. E.V. Tsvetkov); 1♂, Kazakhstan, Atyrau Region, Akkergeshen Plateau, 47°19′14″N / 54°24′14″E, 1.05.2016 (leg. E.V. Tsvetkov). ­e most of paratypes are deposited in collection of the Zoological Institute of the Russian Academy of Sciences (St Petersburg, Russia), 4 paratypes (3♂, 1♀) collected in 2019 are kept in the author’s collection. Description. Head and body. Abdomen, thorax, legs and head covered with mixture of white and blackish scales. Frons convex without crest, chaetosemata present behind ocelli. Antennae nearly 2/3 of the forewing with pointed last flagellomere. Scape nearly 2 times as long as wide. Each of male flagellomeres 2–5 with hardly noticeable apical spine. Sinus not expressed. Dorsal side of flagellum chequered (dark grey and whitish areas on each segment). Cilia whitish, in males much longer (1.5–2 of segment width) than in females (1/2 of segment width). Labial palps nearly 1.5 diameter of eye, pointed up and ahead (Figs 8, 9). Concavity on the inner side of second segment absent. Maxillary palps small, segment 1 thin and elongate (Fig. 9). Segments 2 and 3 rounded, covered with long scales forming a tuft. Wings (Figs 6, 7, 22). Venation (Fig. 10). Forewing. Length 8–9 mm. Forewing triangular with slightly convex edges. Ground color grey or brownish grey (a mixture of white and dark brown or blackish scales). Black antemedial line straight, directed at right angle to hind edge of the wing. ­e line is extensive from costa to Cu + M stalk at which it is interrupted. From Cu + M stalk to the hind edge of the wing only a small black spot at A vein is visible. ­e spot is marked with V-shaped white line from the inner side. ­is V-shaped line is the most clear part of angulate light line bordering antemedial black line. In basal area a trace of ochreous Figs 19–20. Female genitalia of the described Phycitinae species. small spot adjacent to hind edge of the wing and to V-shaped white 19 – Asalebria vernalis sp. n.; 20 – Gymnancyla subgilvella sp. n. line sometimes present. Two small discal spots often unclear. Scale bar 1 mm. Black postdiscal line oblique, angled inwards at M1 and A veins. Рис. 19–20. Гениталии самок описываемых видов подсемейства Sometimes it is marked from the outer side with thin light line. Phycitinae. Short black apical streak adjacent to this line. Black marginal line 19 – Asalebria vernalis sp. n.; 20 – Gymnancyla subgilvella sp. n. Масштабная линейка 1 мм. thin and dotted. Fringe white with two brownish parallel lines. Hindwing pale brown with dark brown marginal line. Fringe whitish with one clear brownish line and also short brownish line sternum flatly V-shaped with adjacent well sclerified narrow area. parallel to it. ­e second (outer) line starts from costa and then Areas of sclerotization also on the sides of the sternum. Large fading. Forewing underside dark brown. Submarginal area pale prominence of posterior margin present in the centre and also two brown or whitish, so as the costal streak and hind 1/4 of the wing. much shorter convexities on the sides. Culcita as pair of scale tufts Costal streak narrow, occupies small sector from costa to Sc vein. (thin scales) on the sides of sternum (Fig. 16). ­e tufts are easily ­e streak starts from the base of the wing and interrupts reaching damaged and often lost during preparation. R3 vein. Dark brown dotted marginal line present. Hindwing Female genitalia (Fig. 20). Papillae analis relatively large underside pale brown, anal 1/2 whitish; brown marginal line (0.6–0.7 mm), tapering, densely covered with long curved bristles. present. Anterior apophyses nearly equal to posterior apophyses and rather Male genitalia (Figs 15, 17, 18). Uncus triangular, broad short (0.35–0.4 mm). Eighth tergum trapezoidal with very broad at the base and rounded at apex. Gnathos elongate, apically posterior margin, straight anterior and posterior edges. Small pointed, narrowed and slightly curved up at distal 1/3. Branches membranous hollow in the centre of posterior margin. Antrum of gnathos very stout, evenly narrowing to their ends. Lateral broad cup like, weakly sclerified. Ductus bursae very narrow lobes of tegumen as small well sclerified elongate vanes. Transtilla and short, membranous. Corpus bursae elongate pear shaped, components adjacent to lobes of tegumen. ­e components are membranous. Signum present on corpus bursae as very small relatively large weakly sclerified angulate plates. Valva long and rounded spiny plate. narrow with almost parallel costal and ventral edges. Its apex Diagnosis. Gymnancyla subgilvella sp. n. is similar to widely rounded, distal 1/6 of valva upcurved. Costa well sclerified G. gilvella (Ragonot, 1887) and G. nomiella (Ragonot, 1887) from the base to 5/6 of valva. Costal sclerotization widening in the habitus. Large series of the last two species were to apex from 1/6 to 1/3–1/2 of valva width. Sacculus occupies nearly half of ventral edge of valva. It is narrow with stout basal collected in West Kazakhstan in the same localities and the prominence occupying 1/3 of sacculus. Distal 2/3 of sacculus imagines clearly differed from G. subgilvella sp. n. by larger slightly convex. Anellus as nearly U-shaped plate. Vinculum short size and by less sharply pointed forewing. Gymnancyla and widely rounded. Aedeagus cylindrical with excavation from nomiella can be also distinguished by presence of ventral side at proximal 2/5 occupied by ductus ejaculatorius crest on the frons and by longer labial palps. Veins M2 base. Sclerified elements in vesica absent. Anterior edge of eighth and M3 are on common stalk in G. nomiella (merged in 344 E.V. Tsvetkov

Figs 21–22. Imagoes in nature, Sarga village environs, 26.04.2019, males. Рис. 21–22. Имаго в природе, окрестности пос. Сарга, 26.04.2019, самцы. 21 – Asalebria vernalis sp. n.; 22 – Gymnancyla subgilvella sp. n.

G. subgilvella sp. n.), male and female genitalia of these two genitalia and also habitus much resemble Bazaria species are quite different. representatives, in particular, there is a close similarity with In distinguishing from the described species, G. gilvella G. (Bazaria) gilvella (Ragonot, 1887). So, yet we refrain is with veins M2 and M3 on common stalk on the hindwing. from referring the new species to any subgenera. In male genitalia aedeagus is with group of small cornuti in vesica, clasper present as small well sclerified crest, References vinculum angled. Females of the compared species have two large spiny plates on bursa copulatrix which allows to Alipanah H., Asselbergs J., Shams-Zadeh M. 2014. Gymnancyla distinguish them easily from females of G. subgilvella sp. n. (Gymnancyla) iranella (Lepidoptera: Pyralidae, Phycitinae), a new species from Iran. Zootaxa. 3794(2): 279–288. DOI: 10.11646/ having one very small signum on bursa. zootaxa.3794.2.6 Biology. In West Kazakhstan the species occurs in Anikin V.V., Sachkov S.A., Zolotuhin V.V. 2017. “Fauna Lepidopterologica different types of open habitats: semidesert lands with Volgo-Uralensis”: from P. Pallas to present days. Munich – Vilnius: chalky or saline soil, rocky canyons. Its flight period is in Museum Witt Munich, Nature Research Centre Vilnius. 696 р. Asselbergs J. 2007. Order Lepidoptera, superfamily Pyraloidea. In: late April and first decade of May. fauna of the United Arab Emirates. Vol. 1. Abu Dhabi: Dar Al Ummah Printing: 469–561. Chrétien P. 1913. Description d’une nouvelle espèce de Phycide d’Algérie. Taxonomic notes Bulletin de la Société entomologique de France, Paris. 1913: 373. Du Y.-L., Yan L. 2009. First record of the genus Bazaria Ragonot from China, Subgeneric position of G. subgilvella sp. n. is with description of a new species (Lepidoptera: Pyralidae: Phycitinae). Transactions of the American Entomological Society. 135(3): 377–382. questionable and the problem is mainly in poorly DOI: 10.3157/061.135.0304 developed taxonomy of the genus Gymnancyla and Falkovitsh M.I. 1999. New turanian species of Phycitid (Lepidoptera, several related genera. ­e genus Gymnancyla is close Phycitidae), associated with Chenopodiaceae. Entomologicheskoe to Prorophora Ragonot, 1887 and Ragonot, obozrenie. 78(4): 910–923 (in Russian). Gastón J., Vives Moreno A. 2018. Revisión del género Gymnancyla 1887. According to the Roesler’s system [1973, 1993] it Zeller, 1848 en España continental y descripción de una nueva was distinguished from two mentioned genera by the wing especie (Lepidoptera: Pyralidae, Phycitinae). SHILAP Revista de venation and some details in the head structure. But clear lepidopterología. 46(183): 505–517. Leraut P. 2001. Contribution à l’étude des Phycites Paléarctiques differences can hardly be defined after the genus enlarging. (Lepidoptera, Pyralidae, Phycitinae). Revue française d’Entomologie, A number of Gymnancyla species (some species of the Paris. 23(2): 129–141. subgenus Bazaria) have a crest like structure on the frons Leraut P. 2014. Moths of Europe. Volume IV. Pyralids 2. Verrières-le- Buisson: N.A.P. Editions. 440 p. which is typical for Prorophora and Christophia. ­e Liu J.-Y., Li H.H. 2010. Taxonomic Study of the genus Gymnancyla Zeller genitalia of several species are much similar to those of (Lepidoptera, Pyralidae, Phycitinae) in China. Acta Zootaxonomica some Prorophora and Christophia. Rather variable head Sinica. 35 (3): 619–626. Ragonot E.L. 1893. Monographie des Phycitinae et des . In: structure and variable venation in the genus Gymnancyla Mémoires sur les Lépidoptères VII. St. Petersburg. I–LVI, 1–658, are also worth mentioning. So, the accepted system and pls 1–23. species composition of these three genera are disputable. Ragonot E.L., Hampson G.F. 1901. Monographie des Phycitinae et des Obviously, the revision of Gymnancyla and several related Galleriinae. In: Mémoires sur les Lépidoptères VIII. St. Petersburg. I– XIV, 1–602, pls 24–57. generic and subgeneric taxa is demanded. Roesler R.U. 1973. Phycitinae. Trifine Acrobasiina. In: Amsel H. G., Gregor Taking into account hindwing venation of F., Reisser H. (Eds) Microlepidoptera Palaearctica. 4 (1−2). Textband: G. subgilvella (veins M and M merged) and the structure i–xvi, 752 S.; Tafelband: 170 Taf. 2 3 Roesler R.U. 1988. Die bisher als Pristophorodes gelaufigen Genera of female genitalia, the species should be referred to Asalebria Amsel, 1953, und Ocrisiodes Amsel, 1950, in der Palaarktis. the subgenus Gymnancyla. However, the head, male Taxonomische Neuorientierung und Beschreibung neuer Taxa Two new species of the subfamily Phycitinae (Lepidoptera: Pyralidae) from West Kazakhstan 345

(Lepidoptera, Pyraloidea, Phycitinae). Entomofauna. Zeitschrift für Toll S. 1948. Beitrag zur Mikrolepidopterenfauna von Nordost-Persien. Entomologie. 9(24): 461–492. Zeitschrift der Wiener entomologischen Gesellschaft. 32: 107–116. Roesler R.U. 1993. Phycitinae. 2. Quadrifine Acrobasiina, 1. In: Vives Moreno A., Gastón J. 2017. Contribución al conocimiento de los Microlepidoptera Palaearctica. Bd. 8. Karlsruhe: G. Braun. 305 p. Microlepidoptera de España, con la descripción de una especie nueva Sinev S.Yu. 1990. Type specimens of the Phycitidae (Lepidoptera) kept in the (Insecta: Lepidoptera). SHILAP Revista de Lepidopterología. 45(178): collection of the Zoological Institute of the Academy of Sciences of the 317–342. USSR. II. Entomologicheskoe obozrenie. 69(2): 419–431 (in Russian). Zerny H. 1914. Über paläarktische Pyraliden des k. k. naturhistorischen Slamka F. 2019. Pyraloidea of Europe (Lepidoptera), Volume 4, Phycitinae – Hofmuseums in Wien. Annalen des naturhistorischen Hofmuseums, Part 1. Identification – Distribution – Habitat – Biology. Bratislava. 432 p. Vienna. 28(3–4): 295–348.

Received / Поступила: 14.02.2019 Accepted / Принята: 4.12.2019 346 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 347–354 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

К познанию фауны пядениц (Lepidoptera: Geometridae) Таджикистана

To the knowledge of the fauna of geometrid moths (Lepidoptera: Geometridae) of Tajikistan

© С.В. Василенко © S.V. Vasilenko

Институт систематики и экологии животных Сибирского отделения Российской академии наук, ул. Фрунзе, 11, Новосибирск 630091 Россия Institute of Systematics and Ecology of Animals of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences, Frunze str., 11, Novosibirsk 630091 Russia. E-mail: [email protected]

Ключевые слова: Lepidoptera, Geometridae, новые местонахождения, фауна, Таджикистан. Key words: Lepidoptera, Geometridae, new localities, fauna, Tajikistan.

Резюме. Приведен аннотированный список 83 видов ­e species Rheumaptera montivagata (Duponchel, пядениц, собранных в Таджикистане в 2015–2018 годах. 1830), Eupithecia subpulchrata Alphéraky, 1882, Впервые в регионе были обнаружены Rheumaptera obsoletaria (Rambur, 1833), Scopula ansulata (Lederer, montivagata (Duponchel, 1830), Eupithecia subpulchrata 1871) and S. minorata (Boisduval, 1833) are recorded for Alphéraky, 1882, Idaea obsoletaria (Rambur, 1833), the region for the first time. Two species, Menophra sp. and Scopula ansulata (Lederer, 1871) и S. minorata (Boisduval, Idaea sp., need further studying. 1833). Обсуждаются таксономические проблемы морфологически близких видов: Aplocera hissara Изучение видового состава пядениц Таджикистана Vasilenko, 1995 – A. plagiata (Linnaeus, 1758) и Epirrhoe продолжается уже более 150 лет. Однако впервые dubiosata (Alphéraky, 1883) – E. alternata (Müller, наиболее полно фауна геометрид этого региона была 1764), имеющих сходные фрагменты COI. У этих пар обобщена в работе Вийдалеппа [1988], в которой видов, встречающихся парапатрично, наблюдаются приведено 219 видов. Несколько позже список был разные экологические предпочтения. Два собранных им расширен до 241 вида [Viidalepp, 1996], что, по вида, Menophra sp. и Idaea sp., требуют дальнейшего нашему мнению, для территории Таджикистана изучения. явно недостаточно. Для сравнения приводим два Abstract. ­e materials on geometrid moths that сопредельных региона, в которых было обнаружено were collected by the members of Russian entomological значительно больше видов пядениц: Кыргызстан – expedition in Tajikistan in 2015–2018 are studied. An 286 видов и Казахстан – 362 [Вийдалепп, 1988; annotated list of 83 species of geometrid moths is given. Viidalepp, 1996]. Слабая изученность видового состава ­e existing taxonomic problems of morphologically пядениц Таджикистана подтверждается наличием similar species with close barcoding of DNA are работ, вышедших в последние годы, в которых описаны discussed: Aplocera hissara Vasilenko, 1995 – A. plagiata новые виды и приведены ранее не известные для этой (Linnaeus, 1758) and Epirrhoe dubiosata (Alphéraky, территории таксоны [Weisert, 2002; Viidalepp, 2003; 1883) – E. alternata (Müller, 1764). ­ese pairs of Viidalepp, Kostjuk, 2005; Rajaei et al., 2012; Mironov, species occurring parapatrically have different ecological Ratzel, 2012; Erlacher, Erlacher, 2016]. preferences. Aplocera plagiata is widely distributed in Основой для данной статьи послужили материалы lowlands of Central Asia; sometimes the species occurs сотрудников Института систематики и экологии in low- and middle-mountains. Most of the mountain животных Сибирского отделения РАН (ИСИЭЖ systems of this region are populated by close species СО РАН, Новосибирск, Россия) А.В. Баркалова и A. hissara and A. dzungarica Vasilenko, 1995. For В.К. Зинченко, которые в течение 2016–2018 годов example, in Turkmenistan A. hissara inhabits only the проводили сборы различных групп насекомых, в том isolated Kugitang plateau, while A. plagiata occurs in числе и пядениц, в ряде районов Таджикистана (рис. 1). the surrounding plains and Kopetdag; the second species Бабочек собирали днем сачком и ночью на свет с has not yet been collected in Tajikistan, but can be found помощью лампы DRW-160. in the future. Epirrhoe alternata was collected only in Распространение видов дано по Вийдалеппу low-mountains, in humid floodplain biotopes, while [Viidalepp, 1996] с дополнениями. Виды, впервые E. dubiosata inhabits steppe areas in middle-mountains; указанные для Таджикистана, отмечены звездочкой *. this data indirectly evidence about the species level of Приведенный в статье материал хранится в both taxa. энтомологических коллекциях ИСИЭЖ СО РАН.

Научная статья / Research Article DOI: 10.23885/181433262019152-347354 348 С.В. Василенко

Phaselia narynaria (Oberthür, 1913)

Материал. 1♀, окр. кишлака Тошбулок, 3–4.06.2016. Распространение. Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан, Иран, Афганистан.

Opistograptis luteolata (Linnaeus, 1758)

Материал. 8♂, 5♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 6–9, 12–16, 21–22, 24–27.05.2016; 1♂, берег оз. Искандеркуль, 12.06.2018; 5♂, 9♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–1.07, 6–9.07.2017, 23, 30.06, 1, 7.07.2018; 8♂, ущ. Кондара, 24–26.07.2018. Замечания. В сборах представлен центральноазиатским подвидом O. l. emaculata Graeser, 1892, хотя некоторые европейские специалисты по Рис. 1. Основные точки сборов пядениц в Таджикистане. результатам исследованных фрагментов гена COI 1 – берег оз. Искандеркуль: Согдийская обл., Айнинский р-н, C берег оз. Искандеркуль, 2207 м, 39.08°N / 68.37°E; 2 – окр. кишлака рассматривают его как отдельный вид [BoldSystem, Колон: Варзобский р-н, Варзобское ущелье, 3 км СВ кишлака Колон, 2014a]. Сиёхкук, 2440 м, 39.06°N / 68.87°E; 3 – ущ. Кондара: Варзобский р-н, Распространение. Европа, Россия, Турция, Варзобское ущелье, 1243 м, 38.809°N / 68.817°E; 4 – окр. кишлака Дехи- Колон: Сангворский р-н, 0.5–4 км Ю кишлака Дехи-Колон, долина Грузия, Армения, Казахстан, Узбекистан, Кыргызстан, р. Балангу, С отроги хр. Хазратиши, 1718 м, 38.67°N / 70.495°E; 5 – окр. Таджикистан, Афганистан. кишлака Тошбулок: Хатлонская обл., Хуросонский р-н, 998 м, 38.238°N / 68.733°E; 6 – кишлак Анджироб: Хатлонская обл., Шамсиддин- Ourapteryx purissima ­ierry-Meig, 1905 Шохинский р-н, 920 м, 37.824°N / 70.192°E; 7 – Хорог, ботанический сад: Горно-Бадахшанская автономная обл., окр. Хорога, 2250 м, ♂ ♂ 37.48°N / 71.598°E; 8 – окр. кишлака Джеланды: Горно-Бадахшанская Материал. 1 , берег оз. Искандеркуль, 13.06.2018; 1 , окр. ♂ ♀ автономная обл., Шугнанский р-н, 3587 м, 37.57°N / 72.57°E. кишлака Колон, Сиёхкук, 1–2.07.2018; 5 , 1 , Хорог, ботанический сад, Fig. 1. ­e main localities of collected geometrids in Tajikistan. 12–22.07.2018. 1 – shore of Iskanderkul Lake: Sughd Region, Ayni District, N shore Замечания. В работах Вийдалеппа [Вийдалепп, of Iskanderkul Lake, 2207 m, 39.08°N / 68.37°E; 2 –Kolon village vicinity: 1988; Viidalepp, 1996] вид рассматривается как Varzob District, Varzob Canyon, 3 km NE Kolon village, Siahkak, 2440 m, 39.06°N / 68.87°E; 3 – Kondara Canyon: Varzob District, Varzob Canyon, подвид O. ebuleata (Guenée, [1858]), хотя эти таксоны 1243 m, 38.809°N / 68.817°E; 4 – Dehi-Kolon village vicinity: Tavildara морфологически хорошо различаются [Stüning, 1994]. District, 0.5–4 km S Dehi-Kolon village, Belanga River valley, N spurs of Кроме того, между ними были выявлены различия Hazratisho Ridge, 1718 m, 38.67°N / 70.495°E; 5 –Toshbulok village vicinity: в исследованных фрагментах гена COI [BoldSystem, Khatlon Region, Khuroson District, 998 m, 38.238°N / 68.733°E; 6 – Anjirob village (Khatlon Region, Shamsiddin Shohin District, 920 m, 37.824°N / 2014b]. 70.192°E; 7 – Khorugh town, Botanical Garden (Gorno-Badakhshan Распространение. Казахстан, Россия (Алтай), Autonomous Region, Khorugh town vicinity, 2250 m, 37.48°N / 71.598°E; Узбекистан, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан, 8 –Dzhelandy village vicinity: Gorno-Badakhshan Autonomous Region, Shughnon District, 3587 m, 37.57°N / 72.57°E. Северный Афганистан (?).

Artemidora alpheraky Wagner, 1918 Eilicrinia subcordaria (Herrich-Schäffer, 1850) Материал. 1♀, берег оз. Искандеркуль, 13.06.2018. ♀ Материал. 1 , ущ. Кондара, 24–25.07.2018. Распространение. Казахстан, Узбекистан, Распространение. Юго-Западная Россия Кыргызстан, Таджикистан. [Миронов и др., 2008], Турция, Азербайджан, Казахстан, Узбекистан, Кыргызстан, Таджикистан. Artemidora andrea Weisert, 2002

Eilicrinia orias Wehrli, 1931 Материал. 2♂, 5♀, окр. кишлака Дехи-Колон, долина р. Балангу, 1800–2000 м н.у.м., 38.6°N / 70.5°E, 6–7, 20–22, 26–27.05, 6–7.06.2016; 3♂, ♀ Материал. 2♀, окр. кишлака Дехи-Колон, долина р. Балангу, 1 , ущ. Кондара, 24–26.07.2018. 1800–2000 м н.у.м., 38.6°N / 70.5°E, 6–7, 12–13.05.2016; 4♂, 4♀, Хорог, Замечания. В сборах представлен двумя формами: ботанический сад, 13–14, 20–22.07.2018. бабочки поздневесенних – раннелетних генераций Распространение. Таджикистан, Пакистан. крупные и темноокрашенные, средне- и позднелетние насекомые мелкие, светлые. Odontopera muscularia (Staudinger, 1892) Распространение. Юго-Западный Казахстан, Туркменистан, Таджикистан. Материал. 1♂, берег оз. Искандеркуль, 13.06.2018; 1♂, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 25–26.06.2018. Распространение. Казахстан, Узбекистан, Artemidora maracandaria (Erschov, 1874) Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан, Северо- Материал. 2♂, 1♀, берег оз. Искандеркуль, 23–24.06.2018; Западный Китай. 2♂, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 25–26.06, 2–3.07.2018; 1♀, окр. кишлака Колон, под пер. Анзоб, 2800–3100 м н.у.м., 39.067°N, / 68.87°E, Plagodis ochraceata Viidalepp, 1988 26.06.2018; 1♂, окр. кишлака Колон, Варзобское ущелье, 2800–3770 м н.у.м., 39.058°N / 68.88°E, 2.07.2018. Материал. 2♀, ущ. Кондара, 24–25.07.2018. Распространение. Узбекистан, Туркменистан, Распространение. Казахстан, Таджикистан. Кыргызстан, Таджикистан, Северо-Западный Китай. К познанию фауны пядениц (Lepidoptera: Geometridae) Таджикистана 349

Nychiodes antiquaria Staudinger, 1892 Распространение. Узбекистан, Кыргызстан, Таджикистан. Материал. 2♂, 1♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–1.07, 12– 13.07.2017; 2♂, 1♀, кишлак Анджироб, 22–23.07.2018; 1♀, ущ. Кондара, 25–26.07.2018. Eumannia oxygonaria Püngeler, 1899 Распространение. Казахстан, Узбекистан, Кыргызстан, Материал. 1♂, окр. кишлака Дехи-Колон, долина р. Балангу, Туркменистан, Таджикистан, Иран, Афганистан. 1800–2000 м н.у.м., 38.6°N / 70.5°E, 8–9.05.2016. Распространение. Таджикистан, Северный Menophra potopolskii (Viidalepp, 1988) Афганистан. Материал. 1♂, 1♀, ущ. Кондара, 25–27.07.2018. Распространение. Узбекистан, Туркменистан, Ramitia obliquelineata Viidalepp, 1988 Таджикистан, Иран. Материал. 1♂, 8♀, окр. кишлака Дехи-Колон, долина р. Балангу, 1800–2000 м н.у.м., 38.6°N / 70.5°E, 6–16.05.2016. Menophra sp. Распространение. Узбекистан, Таджикистан. Материал. 8♂, берег оз. Искандеркуль, 13–15.06.2018. Замечание. По строению генитального аппарата Alcis depravata (Staudinger, 1892) вид относится к группе subplagiata. Материал. 6♂, 2♀, берег оз. Искандеркуль, 12–17.06.2018; 31♂, 11♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–1.07, 2–13.07.2017, Charissa (Dysgnophos) sibiriata (Guenée, [1858]) 23, 25, 30.06, 1–2, 7–8.07.2018; 1♂, 1♀, Хорог, ботанический сад, 20– 22.07.2018. Материал. 1♀, окр. кишлака Джеланды, 15–16.07.2018. Распространение. Казахстан, Узбекистан, Распространение. Казахстан, Россия (Алтай), Кыргызстан, Таджикистан, Северо-Западный Китай. Кыргызстан, Таджикистан, Иран, Северный Афганистан, Северо-Западный Китай, Монголия. Alcis nobilitaria (Staudinger, 1892)

Acrognophos iveni (Erschov, 1874) Материал. 1♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 8–9.07.2017. Распространение. Южный Казахстан, Материал. 3♂, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 7–8.07.2017; 9♂, окр. кишлака Джеланды, 15–17.07.2018. Кыргызстан, Таджикистан. Распространение. Казахстан, Кыргызстан, Таджикистан, Северный Афганистан. Alcis shivae Wiltshire, 1967

Материал. 4♂, 4♀, окр. кишлака Джеланды, 15–19.07.2018. Rhipignophos vastaria (Staudinger, 1892) Распространение. Таджикистан, Афганистан. Материал. 3♂, 3♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 2–11.07.2017, 22.06, 4.07.2018. dalmataria (Guenée, [1858]) Распространение. Кыргызстан, Таджикистан, Иран, Афганистан, Северный Пакистан. Материал. 2♀, кишлак Анджироб, 22–23.07.2018; 7♂, 2♀, ущ. Кондара, 24–26.07.2018. Zystrognophos nimbata (Alphéraky, 1888) Распространение. Юго-Восточная Европа, Россия [Миронов и др., 2008], Турция, Армения, Азербайджан, Материал. 1♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 12–13.07.2017. Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Кыргызстан, Распространение. Казахстан, Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан, Северо-Западный Китай. Таджикистан, Северный Иран, Северный Афганистан, Северо-Западный Китай. Stegania wiltshirei (Ebert, 1965)

Ctenognophos solianikovi Viidalepp, 1988 Материал. 5♂, окр. кишлака Дехи-Колон, 6–14.05.2016. Распространение. Таджикистан, Афганистан. Материал. 1♂, 2♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–1.07, 12–13.07.2017. Gnopharmia cocandaria (Erschov, 1874) Распространение. Таджикистан. Материал. 8♂, 1♀, берег оз. Искандеркуль, 13–14, 17–18.06.2018; Aspitates stschurowskyi (Erschov, 1874) 1♂, 2♀, кишлак Анджироб, 22–23.07.2018; 4♂, 11♀, ущ. Кондара, 24– 27.07.2018. Материал. 13♂, 6♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–1.07, Замечания. По данным Вийдалеппа [Viidalepp, 2–13.07.2017, 25.06.2018; 4♂, 4♀, Хорог, ботанический сад, 12–13, 20– 1988, 1996], в Таджикистане встречается два вида 22.07.2018. рода – G. cocandaria (= maculifera Staudinger, 1892) Распространение. Казахстан, Кыргызстан, и G. inermis Wiltshire, 1967. Как показали недавние Таджикистан, Северный Афганистан, Северная Индия. исследования [Rajaei et al., 2012], весь изученный материал из этого региона относится к G. cocandaria. Biston stuningi Viidalepp, 2002 Ошибки в определении бабочек были вызваны сильной изменчивостью ряда генитальных структур. Материал. 1♂, берег оз. Искандеркуль, 13.06.2018; 1♂, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 2–3.07.2018; 6♂, Хорог, ботанический сад, Распространение. Узбекистан, Кыргызстан, 12–13, 20–21.07.2018. Таджикистан, Северный Афганистан. 350 С.В. Василенко

Digrammia rippertaria (Duponchel, 1830) [Hausmann et al., 2011]. Это могло быть обусловлено рядом факторов, в том числе и вероятной Материал. 5♂, 4♀, ущ. Кондара, 24–25.07.2018. интрогрессией митохондриальных генов в результате Распространение. Восточная Европа, Россия гибридизации в предковых линиях данных таксонов, [Миронов и др., 2008], Турция, Казахстан, Туркменистан, что было обнаружено в некоторых других группах Кыргызстан, Таджикистан, Монголия. пядениц [Yamamoto et al., 2016; Василенко, Беляев, 2017]. ‚etidia correspondens (Alphéraky, 1883) Распространение. Туркменистан, Таджикистан, Афганистан (?). Материал. 1♀, Хорог, ботанический сад, 21–22.07.2018. Россия [Миронов и др., 2008], Распространение. Orthonama obstipata (Fabricius, 1794) Южный Казахстан, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан, Северо-Западный Китай, Западная Материал. 18♂, 5♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 6–9, 12–16, Монголия. 21–22.05.2016; 2♂, 3♀, кишлак Анджироб, 22–23.07.2018; 3♂, 2♀, ущ. Кондара, 24–26.07.2018. Chlorissa talvei Viidalepp, 1988 Распространение. Южная Европа, Россия, Кавказ, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Материал. 1♂, Хорог, ботанический сад, 21–22.07.2018; 2♂, 1♀, Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан, Китай, ущ. Кондара, 24–25.07.2018. Корейский полуостров, Япония, Северная Америка. Распространение. Таджикистан. Catarhoe rubidata ([Denis et Schiffermüller], 1775) Phaiogramma etruscaria (Zeller, 1849) Материал. 1♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 16–17.05.2016. ♂ ♂ Материал. 1 , окр. кишлака Тошбулок, 3–4.06.2016; 2 , берег Замечания. В сборах представлен азиатским оз. Искандеркуль, 13–14.06.2018; 2♂, 2♀, ущ. Кондара, 24–26.07.2018. подвидом C. r. fumata (Eversmann, 1844). Распространение. Европа, Россия [Миронов Распространение. Европа, Россия, Турция, и др., 2008], Турция, Армения, Азербайджан, Иран, Армения, Азербайджан, Иран, Казахстан, Узбекистан, Казахстан, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан. Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан. Herochroma crassipunctata (Alphéraky, 1888) Protorhoe centralisata (Staudinger, 1892) Материал. 1♂, окр. кишлака Колон, 2–3.07.2018; 1♂, 1♀, Хорог, 3♂, 5♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 15–25.05.2016; 1♂, ботанический сад, 12–13, 20–21.07.2018. Материал. окр. кишлака Дехи-Колон, долина р. Гурумбак, 1826 м н.у.м., 38.66°N / Распространение. Таджикистан. 70.49°E, 27–28.05.2016. Замечания. Ранее этот вид рассматривался как Aplocera hissara Vasilenko, 1995 центральноазиатский подвид европейского P. unicata (Guenée, [1858]). Сравнительно недавно европейскими Материал. 19♂, 4♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 6–27.05.2016; 1♂, окр. кишлака Дехи-Колон, долина р. Гурумбак, 1826 м н.у.м., 38.66°N / исследователями [Rajaei et al., 2017] была показана его 70.49°E, 27.05.2016; 6♂, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–1.07.2017, самостоятельность. 30.06–1.07.2018. Распространение. Израиль, Иордания, Северный Замечания. По мнению европейских энтомологов Иран, Узбекистан, Туркменистан, Кыргызстан, [Hausmann, Viidalepp, 2012], основанном на Таджикистан. изучении фрагментов гена митохондриальной цитохромоксидазы, A. hissara необходимо Epirrhoe dubiosata (Alphéraky, 1883) рассматривать только как подвид широко распространенного A. plagiata (Linnaeus, 1758). С этим Материал. 1♂, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 8–9.07.2017. трудно согласиться, поскольку кроме того, что у Замечания. По мнению ряда исследователей данных таксонов имеются хорошие морфологическия [Hausmann, Viidalepp, 2012; Nazymbetova et al., 2016], различия, ареалы обоих видов достаточно хорошо основанному на результатах штрихкодирования, разделены на территории Центральной Азии. Так, этот таксон необходимо рассматривать только A. plagiata широко представлен в равнинной части как центральноазиатский подвид широко Центральной Азии, хотя может проникать в горы, где распространенного E. alternata (Müller, 1764). Оба встречается в низко- и среднегорьях. Большая часть таксона хорошо различаются между собой как горных систем этого региона заселена близкими к морфологически, так и своими экологическими нему видами A. hissara и A. dzungarica Vasilenko, 1995. предпочтениями. В коллекциях ИСИЭЖ СО РАН Например, в Туркменистане A. hissara встречается имеются экземпляры обоих видов с Джунгарского только на обособленном плато Кугитанг [Vasilenko, Алатау, и если E. alternata отлавливался только в 1995], тогда как на равнинной части этой территории и низкогорьях во влажных пойменных биотопах, то в горах Копетдага обитает A. plagiata. В Таджикистане E. dubiosata населяет степные участки в среднегорьях. A. plagiata до сих пор не обнаружен, но его находки не Эти данные косвенно говорят в пользу видовой исключены в дальнейшем. самостоятельности обоих таксонов. Отсутствие же различий в исследованных Распространение. Казахстан, Узбекистан, фрагментах гена COI известно и у других видов Кыргызстан, Таджикистан. К познанию фауны пядениц (Lepidoptera: Geometridae) Таджикистана 351

Photoscotosia palearctica (Staudinger, 1882) Eupithecia hilariata Dietze, 1908

Материал. 2♂, 3♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 11–13.07.2017, Материал. 1♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 5–6.07.2017; 1♂, 2♀, 30.06–2.07.2018. берег оз. Искандеркуль, 13.06.2018. Распространение. Россия (Алтай, Тыва), Распространение. Казахстан, Узбекистан, Казахстан, Кыргызстан, Таджикистан, Северо- Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан Западный Китай, Монголия. [Mironov, Ratzel, 2012], Китай.

Cidaria distinctata Staudinger, 1892 Eupithecia innotata Hufnagel, 1767

Материал. 9♂, 3♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–1.07, Материал. 2♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–1.07.2017, 2–13.07.2017; 4♂, берег оз. Искандеркуль, 12–14, 17–18.06.2018. 1.07.2018. Распространение. Казахстан, Узбекистан, Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Турция, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан, Иран, Казахстан, Узбекистан, Кыргызстан (?), Таджикистан, Афганистан, Пакистан, Индия, Китай. Афганистан.

Stamnodes pauperaria (Eversmann, 1848) Eupithecia kruusi Viidalepp, 1988

Материал. 6♂, 4♀, окр. кишлака Колон, под пер. Анзоб, 2800– Материал. 1♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 24–25.05.2016. 3100 м н.у.м., 39.067°N / 68.87°E, 6–7, 11–12.07.2017; 1♂, окр. кишлака Распространение. Узбекистан, Туркменистан, Колон, Варзобское ущелье, 2800–3770 м н.у.м., 39.058°N / 68.88°E, 2.07.2018; 12♀, окр. кишлака Джеланды, 15–17.07.2018. Таджикистан. Замечания. Высокогорный альпийский вид. Eupithecia minusculata Alphéraky, 1882 Представлен в сборах центральноазиатским подвидом S. p. divitaria (Staudinger, 1882). Материал. 2♀, кишлак Анджироб, 22–23.07.2018. Распространение. Россия (Алтай, Тыва), Южный Распространение. Северная Африка, Южная Казахстан, Узбекистан, Кыргызстан, Таджикистан, Европа, Россия [Миронов и др., 2008], Кавказ, Казахстан, Пакистан, Индия, Западный Китай. Узбекистан, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан, Северо-Западный Китай, Монголия. *Rheumaptera (Hydria) montivagata (Duponchel, 1830) Eupithecia mirificata Brandt, 1938 Материал. 1♀, берег оз. Искандеркуль, 13–14.06.2018. Замечания. В Таджикистане представлен Материал. 1♀, Хорог, ботанический сад, 12.07.2018. среднеазиатским подвидом R. m. hyrcana Staudinger, Распространение. Иран, Афганистан, 1871, который отмечается на Кавказе, в Турции, Таджикистан. Туркменистане и Иране [Hausmann, Viidalepp, 2012]. Это первая находка данного вида на исследуемой Eupithecia nigrilinea (Warren, 1896) территории. Распространение. Южная Европа, Кавказ, Турция, Материал. 10♂, 7♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–1.07, Иран, Туркменистан, Таджикистан. 5–13.07.2017, 30.06, 1, 4, 7.07.2018; 1♀, Хорог, ботанический сад, 13.07.2018. Узбекистан, Туркменистан, Gymnoscelis rufifasciata (Haworth, 1809) Распространение. Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан, Пакистан, Материал. 2♂, 2♀, ущ. Кондара, 24–25.07.2018. Индия, Непал, Северный Таиланд [Mironov, Ratzel, Распространение. Европа, Россия [Миронов и др., 2012]. 2008], Кавказ, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан, Eupithecia omnigera Vojnits, 1982 Северо-Западный Китай. Материал. 1♂, 1♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, Eupithecia centaureata ([Denis et Schiffermüller], 1775) 30.06–1.07.07.2017. Распространение. Кыргызстан, Таджикистан, Материал. 7♀, берег оз. Искандеркуль, 13–14, 17–18.06.2018; Северо-Западный Китай. 4♂, 8♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–1.07, 2–9.07.2017, 23.06, 4–7.07.2018. Eupithecia rebeli Bohatsch, 1893 Распространение. Европа, Россия [Миронов и др., 2008] Кавказ, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Материал. 1♂, 2♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–3.07.2017, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан, 30.06.2018. Китай, Монголия, Тайвань. Распространение. Узбекистан, Таджикистан, Северо-Западный Китай. Eupithecia dzhirgatalensis Viidalepp, 1988 Eupithecia remmi Viidalepp, 1988 Материал. 2♂, 2♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 2–3, 5–6, 8–9.07.2017, 30.06.2018. Материал. 1♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 28–29.05.2016. Распространение. Южный Казахстан, Таджикистан. Распространение. Узбекистан, Таджикистан. 352 С.В. Василенко

Eupithecia solianikovi Viidalepp, 1988 Кыргызстан, Таджикистан, Северо-Западный Китай, Монголия. Материал. 29♂, 41♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06– ♀ 13.07.2017, 23.06, 1, 4, 7.07.2018; 1 , Хорог, ботанический сад, 12.07.2018. Idaea deversaria (Herrich-Schäffer, 1847) Распространение. Таджикистан. Материал. 4♀, Хорог, ботанический сад, 20–22.07.2018. *Eupithecia subpulchrata Alphéraky, 1882 Распространение. Европа, Россия [Миронов и др., 2008], Кавказ, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, ♀ Материал. 1 , окр. кишлака Дехи-Колон, 26–27.05.2016. Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан. Замечания. Горностепной вид. Для Таджикистана приводится впервые. Idaea forsteri Wiltshire, 1967 Распространение. Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Таджикистан, Афганистан [Mironov, Материал. 2♂, 11♀, ущ. Кондара, 24–26.07.2018; 3♂, 11♀, Хорог, Ratzel, 2012], Северо-Западный Китай. ботанический сад, 12–15, 20–22.07.2018; 1♀, кишлак Анджироб, 22– 23.07.2018. Eupithecia tshimganica Viidalepp, 1988 Распространение. Южный Казахстан, Западный Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан. Материал. 1♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 9–10.07.2017. Распространение. Узбекистан, Таджикистан, Idaea nocturna (Staudinger, 1892) Афганистан [Mironov, Ratzel, 2012]. Материал. 1♂, 1♀, окр. кишлака Колон, 9–10.07.2017, 30.06.2018. Eupithecia turkmena Mironov, 1989 Распространение. Южный Казахстан, Таджикистан.

Материал. 1♂, 2♀, окр. кишлака Тошбулок, 2–4.06.2016. Idaea ossiculata (Lederer, 1870) Распространение. Туркменистан, Таджикистан. Материал. 1♂, окр. кишлака Дехи-Колон, долина р. Гурумбак, 1826 м н.у.м., 38.66°N / 70.49°E, 22.05.2016; 2♂, 41♀, окр. кишлака Колон, Eupithecia vulgata (Haworth, 1809) Сиёхкук, 8–9, 11–13.07.2017, 7.07.2018; 7♂, 9♀, берег оз. Искандеркуль, 12–17.06.2018; 1♂, 1♀, Хорог, ботанический сад, 12–13, 21–22.07.2018; Материал. 1♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 13–14.05.2016. 3♀, ущ. Кондара, 24–26.07.2018. Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Распространение. Европа, Россия [Миронов и др., Турция, Иран, Казахстан, Кыргызстан, Таджикистан, 2008], Кавказ, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Афганистан [Mironov, Ratzel, 2012], Северный Китай, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан. Монголия, Корейский полуостров. *Idaea obsoletaria (Rambur, 1833) Horisme nigrovittata (Warren, 1888) Материал. 2♀, ущ. Кондара, 25–26.07.2018. Материал. 1♂, 5♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 6–16.05.2016. Замечания. Суббореальный степной вид. Для Распространение. Таджикистан, Индия, Шри-Ланка. фауны Таджикистана приводится впервые. Представлен в сборах подвидом I. o. rufularia Herrich-Schäffer, 1845. Rhodostrophia praecisaria Staudinger, 1892 Распространение. Европа, Россия [Миронов и др., 2008], Кавказ, Турция, Казахстан, Туркменистан, Материал. 4♀, берег оз. Искандеркуль, 12–13.06.2018; 6♂, 14♀, Таджикистан. окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06–11.07.2017, 23.06, 7.07.2018; 2♂, 1♀, окр. кишлака Колон, 29.06.2018. Idaea rufaria (Hübner, [1799]) Распространение. Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан. Материал. 3♂, окр. кишлака Тошбулок, 1–4.05.2016. Idaea darvasica Viidalepp, 1988 Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Турция, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Кыргызстан, Материал. 2♂, 2♀, Хорог, ботанический сад, 12–13, 21–22.07.2018. Таджикистан. Распространение. Таджикистан. Idaea rusticata ([Denis et Schiffermüller], 1775) Idaea degeneraria (Hübner, [1799]) Материал. 3♂, 41♀, Хорог, ботанический сад, 12–14, 20– 22.07.2018; 7♀, ущ. Кондара, 24–26.07.2018. Материал. 2♀, кишлак Анджироб, 22–23.07.2018; 5♀, ущ. Кондара, 24–26.07.2018. Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Кыргызстан, Кыргызстан, Таджикистан, Китай, Монголия. Таджикистан, Северный Китай. Idaea straminata (Borkhausen, 1794) Idaea descitaria (Christoph, 1893) Материал. 3♂, 8♀, Хорог, ботанический сад, 12–15, 20–22.07.2018. Материал. 1♂, 1♀, берег оз. Искандеркуль, 12–14.06.2018. Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Турция, Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Кыргызстан, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Таджикистан, Китай, Монголия, Корейский полуостров. К познанию фауны пядениц (Lepidoptera: Geometridae) Таджикистана 353

Idaea sp. По мнению Хаусманна [Hausmann, 2004], S. minorata это комплекс близких таксонов, имеющих Материал. 1♂, ущ. Кондара, 25–26.07.2018. схожее строение генитального аппарата самцов, а Замечания. Крылья бабочки сильно потертые. отсутствие различий в изученных фрагментах гена Сохранившийся рисунок выглядит, как у I. forsteri, но COI у популяций из разных регионов Старого Света не насекомое больше него почти в 1.5 раза. Гениталии позволяет на данном этапе их разделить. самца также имеют сходное строение, но в отличие Распространение. Северная и Южная Африка, от сравниваемого вида у данного экземпляра кроме Мадагаскар, Южная Европа, Турция, Аравийский крупной узко-листовидной пластинки имеется еще ряд полуостров, Таджикистан, Афганистан, Пакистан, мелких игловидных корнутусов. Суматра. Новый вид для фауны Таджикистана.

*Scopula ansulata (Lederer, 1871) Scopula ornata (Scopoli, 1763)

♂ ♀ Материал. 1 , 1 , окр. кишлака Тошбулок, 2–3.06.2016. Материал. 2♂, ущ. Кондара, 25–26.07.2018. Замечания. Горно-степной вид. На территории Замечания. Широко распространенный лугово- Таджикистана обнаружен впервые. степной вид. Распространение. Узбекистан, Туркменистан, Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Таджикистан, Северный Иран, Афганистан. Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Кыргызстан, Таджикистан, Северо-Западный Китай, Scopula beckeraria (Lederer, 1853) Монголия, Корейский полуостров, Япония.

Материал. 9♂, окр. кишлака Дехи-Колон, 6–9, 13–16, 21–22.05.2016; 1♂, окр. кишлака Колон, 6–7.07.2017; 2♂, 1♀, Хорог, ботанический сад, Scopuloides vantshica (Viidalepp, 1988) 14–15, 20–22.07.2018; 1♀, окр. кишлака Джеланды, 15–16.07.2018. Материал. 2♀, окр. кишлака Тошбулок, 2–3.06.2016. Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Распространение. Таджикистан. Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан, Северо- Западный Китай, Монголия. Glossotrophia sacraria (Bang-Haas, 1910) Материал. 1♀, окр. кишлака Тошбулок, 3–4.06.2016; 1♂, 2♀, Scopula decorata ([Denis et Schiffermüller], 1775) Хорог, ботанический сад, 13, 20–22.07.2018. Замечание. Редкий степной вид. Представлен Материал. 19♂, 15♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 30.06– 9.07, 13.07.2017, 30.06–2.07, 7–8.07.2018. в наших сборах центральноазиатским подвидом G. s. ariana Ebert, 1965. Ранее этот таксон рассматривался Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Турция, Казахстан, Кыргызстан, Таджикистан, Северо- как самостоятельный вид [Hausmann, 1993; Hausmann, Западный Китай, Монголия. Viidalepp, 2012]. Распространение. Греция (Родос), Турция, Scopula halimodendrata (Erschov, 1874) Ливан, Иран, Казахстан, Туркменистан, Таджикистан, Афганистан. Материал. 1♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 7.05.2016; 1♀, окр. кишлака Тошбулок, 2.06.2016. Rhodometra sacraria (Linnaeus, 1767) Распространение. Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Западный Кыргызстан, Таджикистан. Материал. 1♀, кишлак Анджироб, 22–23.07.2018. Распространение. Северная Африка, Европа, Scopula marginepunctata (Goeze, 1781) Россия (Крым, Астраханская область), Кавказ, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Материал. 5♂, 15♀, окр. кишлака Дехи-Колон, 6–10, 15–16, Кыргызстан, Таджикистан, Северо-Западный Китай, 21–22, 26.05.2016; 6♀, окр. кишлака Колон, Сиёхкук, 2–8.07.2017, Монголия. 25.06, 4.07.2018; 1♀, Хорог, ботанический сад, 12.07.2018; 1♂, кишлак Анджироб, 22–23.07.2018; 3♀, ущ. Кондара, 24–26.07.2018. Ochodontia adustaria (Fischer von Waldheim, 1840) Распространение. Европа, Россия, Кавказ, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, Материал. 1♂, 2♀, ущ. Кондара, 24–26.07.2018. Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан, Северо- Распространение. Россия [Миронов и др., Западный Китай, Монголия. 2008], Кавказ, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Кыргызстан, Таджикистан, Северо-Западный Китай, *Scopula minorata (Boisduval, 1833) Монголия.

Материал. 2♂, кишлак Анджироб, 22–23.07.2018. Lythria purpuraria (Linnaeus, 1758) Замечания. Бабочки мелкие. Длина переднего крыла не превышает 8 мм. Рисунок крыльев схож Материал. 1♀, окр. кишлака Дехи-Колон, долина р. Балангу, с таковым у Idaea mancipiata (Staudinger, 1871) или 1800–2000 м н.у.м., 38.6°N / 70.5°E, 7.05.2016; 1♂, 1♀, окр. кишлака у светлоокрашенных экземпляров I. obsoletaria. Колон, Сиёхкук, 3, 12.07.2017. Возможно, из-за внешнего сходства с указанными Распространение. Европа, Россия, Кавказ, выше видами, которые, как правило, обычны в сборах, Турция, Иран, Казахстан, Узбекистан, Туркменистан, на S. minorata могли не обратить внимание другие Кыргызстан, Таджикистан, Афганистан, Северо- исследователи. Западный Китай, Монголия. 354 С.В. Василенко

Hausmann A. 2004. ­e Geometrid Moths of Europe. Vol. 2. . Благодарности Stenstrup: Apollo Books. 600 p. Hausmann A., Haszprunar G., Hebert P.D.N. 2011. DNA Barcoding the Автор выражает признательность А.В. Баркалову и Geometrid Fauna of Bavaria (Lepidoptera): Successes, Surprises, В.К. Зинченко (ИСИЭЖ СО РАН) за предоставленный and Questions. PLoS ONE. 6(2): e17134. DOI: 10.1371/journal. pone.0017134 материал, В.Г. Миронову (Зоологический институт Hausmann A., Viidalepp J. 2012. ­e Geometrid Moths of Europe. Vol. 3. РАН, Санкт-Петербург, Россия) и Е.А. Беляеву Subfamely Larentiine I. Stenstrup: Apollo Books. 743 p. (Федеральный научный центр биоразнообразия Mironov V., Ratzel U. 2012. Eupithecia Curtis, 1825 of Afghanistan наземной биоты Восточной Азии Дальневосточного (Geometridae: Larentiinae). Nota lepidopterologica. 35(2): 197–231. Nazymbetova G.S., Hausmann A., Yelikbayev B.K., Taranov B.T. 2016. отделения РАН, Владивосток, Россия) за советы и Ecological-faunistic Review of the Geometrid Moths (Lepidoptera, помощь в определении ряда видов. Geometridae) of Northern Tien-Shan Mountains. Acta Zoologica Работа выполнена в рамках программы Bulgarica. 68(2): 191–198. фундаментальных научных исследований ИСИЭЖ СО Rajaei H., Stüning D., Trusch R. 2012. Taxonomic revision and zoogeographical patterns of the species of Gnopharmia Staudinger, РАН на 2013–2020 годы (VI.51.1.5). 1892 (Geometridae, Ennomiinae). Zootaxa. 3360(1): 1–52. DOI: 10.11646/zootaxa.3360.1.1 Rajaei H., Stadie D., Hausmann A. 2017. Taxonomic revision of the genus Литература Protorhoe Herbulot, 1951 (Lepidoptera, Geometridae, Larentiinae), new taxonomic changes and description of two new species. Zootaxa. Василенко С.В., Беляев Е.А. 2017. Обзор пядениц группы видов 4282(2): 269–291. DOI: 10.11646/zootaxa.4282.2.3 Xanthorhoe incursata (Hübner 1813 [“1796”]) (Lepidoptera, Stüning D. 1994. On the identity of Ourapteryx ebuleata Guenee, 1857, Geometridae, Larentiinae) азиатской части России, с описанием O. multistrigaria Walker, 1866 and O. caschmirensis Bastelberger, нового вида. Зоологический журнал. 96(8): 911–925. DOI: 10.7868/ 1911, with description of two new species (Lepidoptera: Geometridae, S0044513417080141 Ennominae). Nachrichten des Entomologischen Vereins Apollo. Вийдалепп Я.Р. 1988. Фауна пядениц гор Средней Азии. М.: Наука.240 с. 15(1/2): 109–134. Миронов В.Г., Беляев Е.А., Василенко С.В. 2008. Geometridae. Vasilenko S.V. 1995. Neue Arten der Aplocera plagiata (Linnaeus, 1758) - В кн.: Каталог чешуекрылых (Lepidoptera) России. СПб. – М.: Gruppe aus den Gebiergen Mittelasiens. Atalanta. 26(1/2): 303–309. Товарищество научных изданий КМК: 190–226, 336–340. Viidalepp J. 1996. Checklist of the Geometridae (Lepidoptera) of the former BoldSystem. 2014a. Opisthograptis emaculata. URL: http://www. U.S.S.R. Stenstrup: Apollo Books. 111 p. boldsystems.org/index.php/Taxbrowser_Taxonpage?taxid=562332 Viidalepp J.R. 2003. Two new species of the genus Biston (Lepidoptera, (дата обращения: 2.10.2019). Geometridae, Ennominae) from Central Asia. Vestnik zoologii. 37(3): BoldSystem. 2014b. Ourapteryx purissima. URL: http://www.boldsystems. 89–92. org/index.php/Taxbrowser_Taxonpage?taxid=368898 (дата обращения: Viidalepp J., Kostjuk J. 2005. Pljushtchia prima, new genus and species 2.10.2019). from Tadjikistan (Lepidoptera: Geometridae). European Journal of Erlacher S., Erlacher J. 2016. A systematic revision of the genus Entomology. 102: 777–785. DOI: 10.14411/eje.2005.105 Gnophopsodos Wehrli, 1945, with description of two new species Weisert F. 2002. Beschreibung von veir neuen Arten der Gattung (Lepidoptera: Geometridae). Zootaxa. 4169(3): 435–456. DOI: Artemidora aus Zentralasien (Geometridae: Ennominae). Zeitschrift 10.11646/zootaxa.4169.3.2 der Arbeitsgemeinschaft Österreichischer Entomologen. 54: 1–13. Hausmann A. 1993. Zweiter Beitrag zur Taxonomie und Systematik der Yamamoto S., Beljaev E.A., Sota T. 2016. Phylogenetic analysis of the Gattung Glossotrophia Prout, 1913 (Lepidoptera, Geometridae, winter geometrid genus Inurois reveals repeated reproductive season Sterrhinae). Mitteilungen der Münchner Entomologischen Gesellschaft. shifts. Molecular Phylogenetics and Evolution. 94(Pt A): 47–54. DOI: 83: 77–107. 10.1016/j.ympev.2015.08.016

Поступила / Received: 10.02.2019 Принята / Accepted: 27.03.2019 S.V. Vasilenko

References

BoldSystem. 2014. Opisthograptis emaculata. Available at: http://www. new taxonomic changes and description of two new species. Zootaxa. boldsystems.org/index.php/Taxbrowser_Taxonpage?taxid=562332 4282(2): 269–291. DOI: 10.11646/zootaxa.4282.2.3 (accessed 2 October 2019). Rajaei H., Stüning D., Trusch R. 2012. Taxonomic revision and BoldSystem. 2014. Ourapteryx purissima. Available at: http://www.boldsys- zoogeographical patterns of the species of Gnopharmia Staudinger, tems.org/index.php/Taxbrowser_Taxonpage?taxid=368898 (accessed 1892 (Geometridae, Ennomiinae). Zootaxa. 3360(1): 1–52. DOI: 2 October 2019). 10.11646/zootaxa.3360.1.1 Erlacher S., Erlacher J. 2016. A systematic revision of the genus Gnophop- Stüning D. 1994. On the identity of Ourapteryx ebuleata Guenee, 1857, sodos Wehrli, 1945, with description of two new species (Lepidop- O. multistrigaria Walker, 1866 and O. caschmirensis Bastelberger, tera: Geometridae). Zootaxa. 4169(3): 435–456. DOI: 10.11646/zoo- 1911, with description of two new species (Lepidoptera: Geometridae, taxa.4169.3.2 Ennominae). Nachrichten des Entomologischen Vereins Apollo. Hausmann A. 1993. Zweiter Beitrag zur Taxonomie und Systematik der 15(1/2): 109–134. Gattung Glossotrophia Prout, 1913 (Lepidoptera, Geometridae, Vasilenko S.V. 1995. Neue Arten der Aplocera plagiata (Linnaeus, 1758) - Sterrhinae). Mitteilungen der Münchner Entomologischen Gesellschaft. Gruppe aus den Gebiergen Mittelasiens. Atalanta. 26(1/2): 303–309. 83: 77–107. Vasilenko S.V., Beljaev E.A. 2017. Review of geometrid moths of the Hausmann A. 2004. e Geometrid Moths of Europe. Vol. 2. Sterrhinae. Xanthorhoe incursata (Hübner 1813 [“1796”]) group (Lepidoptera, Stenstrup: Apollo Books. 600 p. Geometridae, Larentiinae) from the Asian part of Russia, with Hausmann A., Haszprunar G., Hebert P.D.N. 2011. DNA Barcoding the description of a new species. Entomological Review. 97(8): 1149–1165. Geometrid Fauna of Bavaria (Lepidoptera): Successes, Surprises, DOI: 10.1134/S0013873817080152 and Questions. PLoS ONE. 6(2): e17134 1–9. Available at: https:// Viidalepp J. 1996. Checklist of the Geometridae (Lepidoptera) of the former www.researchgate.net/publication/50596853 DOI: 10.1371/journal. U.S.S.R. Stenstrup: Apollo Books. 111 p. pone.0017134 Viidalepp J., Kostjuk J. 2005. Pljushtchia prima, new moth genus and species Hausmann A., Viidalepp J. 2012. e Geometrid Moths of Europe. Vol. 3. from Tadjikistan (Lepidoptera: Geometridae). European Journal of Subfamely Larentiine I. Stenstrup: Apollo Books. 743 p. Entomology. 102: 777–785. DOI: 10.14411/eje.2005.105 Mironov V., Ratzel U. 2012. Eupithecia Curtis, 1825 of Afghanistan Viidalepp J.R. 1988. Fauna pyadenits gor Sredney Azii [e Geometrid Fauna (Geometridae: Larentiinae). Nota lepidopterologica. 35(2): 197–231. of the Middle-Asian Mountains]. Moscow: Nauka. 240 p. (in Russian). Mironov V.G., Beljaev E.A., Vasilenko S.V. 2008. Geometridae. In: Katalog Viidalepp J.R. 2003. Two new species of the genus Biston (Lepidoptera, cheshuyekrylykh (Lepidoptera) Rossii [Catalog of the Lepidoptera of Geometridae, Ennominae) from Central Asia. Vestnik zoologii. 37(3): Russia]. St Petersburg – Moscow: KMK Scientific Press Ltd.: 190–226, 89–92. 336–340 (in Russian). Weisert F. 2002. Beschreibung von veir neuen Arten der Gattung Nazymbetova G.S., Hausmann A., Yelikbayev B.K., Taranov B.T. 2016. Artemidora aus Zentralasien (Geometridae: Ennominae). Zeitschrift Ecological-faunistic Review of the Geometrid Moths (Lepidoptera, der Arbeitsgemeinschaft Österreichischer Entomologen. 54: 1–13. Geometridae) of Northern Tien-Shan Mountains. Acta Zoologica Yamamoto S., Beljaev E.A., Sota T. 2016. Phylogenetic analysis of the Bulgarica. 68(2): 191–198. winter geometrid genus Inurois reveals repeated reproductive season Rajaei H., Stadie D., Hausmann A. 2017. Taxonomic revision of the genus shifts. Molecular Phylogenetics and Evolution. 94(Pt A): 47–54. DOI: Protorhoe Herbulot, 1951 (Lepidoptera, Geometridae, Larentiinae), 10.1016/j.ympev.2015.08.016 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 355–358 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Новый подвид Koramius hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888) (Lepidoptera: Papilionidae) с Заалайского хребта, Кыргызстан

A new subspecies of Koramius hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888) (Lepidoptera: Papilionidae) from the Trans-Alai Range, Kyrgyzstan

© С.К. Корб1, А.А. Шапошников2 © S.K. Korb1, A.A. Shaposhnikov2

1Нижегородское отделение Русского энтомологического общества, а/я 97, Нижний Новгород 603009 Россия 2 Русское географическое общество, Подольск, Московская область 142100 Россия

1Nizhny Novgorod Branch of the Russian Entomological Society, P.O. Box 97, Nizhny Novgorod 603009 Russia. E-mail: [email protected] 2Russian Geographical Society, Podolsk, Moscow Region 142100 Russia. E-mail: [email protected]

Ключевые слова: парусники, новый подвид, распространение, новая находка, горы Средней Азии. Key words: Papilionids, new subspecies, distribution, new record, mountains of Middle Asia.

Резюме. Описан новый подвид Koramius hunza A. Bang-Haas, 1935 was interpreted as a subspecies of stradomskyi Korb et Shaposhnikov, subsp. n. (типовое K. hunza, but it is transferred here to K. staudingeri as a местонахождение: Кыргызстан, Заалайский хребет, subspecies: K. staudingeri shigarensis, stat. rev. перевал Кызыл-Арт, 4200–4500 м). Новый подвид хорошо отличается особенностями окраски: он Лухтанов с соавторами [Lukhtanov et al., 2016] значительно темнее, его рисунок в целом контрастнее и убедительно доказали, что в Средней Азии внутри насыщеннее (у других подвидов не встречается черный суперкомплекса Koramius delphius (Eversmann, 1853) цвет в постдискальном, дискальном и дискоидальном встречается несколько подкомплексов близких рисунке). Географически новый подвид хорошо видов: K. delphius, K. staudingeri (A. Bang-Haas, обособлен от ближайших известных популяций вида 1882), K. cardinal (Grum-Grshimailo, 1887) и др. Виды (перевал Беик, Ваханский хребет), расстояние между внутри этих подкомплексов имеют высокий уровень новым местонахождением и ближайшим известным изменчивости крылового рисунка [Корб, 2009], но составляет около 300 км в направлении юг – север. хорошо различаются по ДНК [Lukhtanov et al., 2016] и Рассматриваются вопросы систематики в группе гениталиям самцов [Корб, 2012]. K. hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888). В состав этого вида В ходе полевых работ 2019 года, осуществлявшихся включены следующие подвиды: номинативный, K. h. eva в ходе совместной экспедиции Нижегородского и (Kotzsch, 1936), K. h. abramovi (O. Bang-Haas, 1915), K. h. Волгоградского отделений Русского энтомологического tytlerianus Bryk et Eisner, 1932 и K. h. stradomskyi subsp. n. общества, на границе Кыргызстана и Таджикистана Таксон shigarensis A. Bang-Haas, 1935 переносится из (Заалайский хребет, перевал Кызыл-Арт) была подвида K. hunza в K. staudingeri также в ранге подвида: собрана серия K. hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888). K. staudingeri shigarensis, stat. rev. Находка оказалась весьма неожиданной: ближайшее Abstract. A new subspecies Koramius hunza местонахождение этого вида – перевал Беик на границе stradomskyi Korb et Shaposhnikov, subsp. n. is described Таджикистана и Китая, а известный до настоящего from Kyrgyzstan, Trans-Alai Range, Kyzyl-Art Pass, времени ареал вида почти целиком лежит в Ваханском 4200–4500 m. ­e new subspecies differs very well from коридоре Афганистана, центральной части Северного other subspecies by the wings colouration: it is darker, its Пакистана и прилегающем районе Китая [Tshikolovets, pattern in general is more contrast and more saturated, Pages, 2016; Tshikolovets et al., 2018]. Основываясь while another subspecies have wing pattern without black на огромном для условий сверхвысокогорий (почти colour in the postdical, discal and discoidal patterns. ­e 300 км в направлении юг – север) разрыве ареала new subspecies is very good isolated from the closely (рис. 13) и значительных внешних отличиях, описываем related known populations (Beik Pass, Wakhan Range); обнаруженную нами популяцию как новый подвид. the distance between the new locality and the closely located known one is about 300 km in the direction from Koramius hunza stradomskyi south to north. Some questions within the systematics of Korb et Shaposhnikov, subsp. n. the K. hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888) species-group are (Рис. 1, 2, 15–17) discussed. ­e species K. hunza includes the following ♂ subspecies: K. h. eva (Kotzsch, 1936), K. h. abramovi Материал. Голотип, (Зоологический институт РАН, Санкт- Петербург, Россия): Кыргызстан, Заалайский хр., пер. Кызыл-Арт, 4200– (O. Bang-Haas, 1915), K. h. tytlerianus Bryk et Eisner, 4500 м, 20.07.2019 (А.А. Шапошников). Паратипы: 9♂ (в коллекциях 1932 and K. h. stradomskyi subsp. n. ­e taxon shigarensis авторов), с той же этикеткой.

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-355358 356 С.К. Корб, А.А. Шапошников

Описание. Самец (рис. 1, 2). Длина переднего крыла применения молекулярно-генетических методов 28–30 мм. Крылья как сверху, так и снизу белые, с интенсивным группа разделилась на большее, чем ранее, число видов контрастным черным и темно-серым рисунком. Крыловой [Lukhtanov et al., 2016]. Между тем, традиционные рисунок сверху и снизу крыла идентичен, однако на нижней взгляды на этот вопрос также распространены широко; поверхности он не такой контрастный и насыщенный, как на верхней. Рисунок на переднем крыле: темно-серая краевая и в частности, довольно часто встречается мнение, что субмаргинальная перевязи, между которыми находится полный многие виды данной группы, близкие к K. staudingeri, ряд белых v-образных пятен; черная постдискальная перевязь, являются или подвидами K. staudingeri [Korb, Bolshakov, состоящая из двух фрагментов – более крупного у костального 2016], или подвидами K. delphius [Tshikolovets, Pages, края крыла и более мелкого у анального его края; дискальная 2016]. Наиболее радикальная точка зрения [Rose, ячейка содержит 2 обширных пятна черного цвета – дискальное Weiss, 2011]: видовой статус придается практически и дискоидальное, причем первое значительно больше второго. всем внутривидовым таксонам как минимум в группах Базальное черное затемнение на переднем крыле выражено K. hunza и K. cardinal. слабо. Рисунок на заднем крыле: широкая темно-серая краевая кайма, до анального угла разделенная на два участка (обширный В этом ключе необходим всесторонний анализ краевой и истончающийся к анальному углу субмаргинальный), имеющихся материалов. К примеру, вывод Лухтанова между которыми находятся 3–4 полулунных белых пятна; в с соавторами [Lukhtanov et al., 2016] о том, что анальном углу крыла имеется 2 черных округлых пятна; 2 других таксоны K. hunza и K. cardinal конспецифичны, не черных пятна округлой формы примерно такого же размера, поддерживается характером внешних признаков, тем как анальные, расположены в средней части костального края более, на кладограмме в их работе [Lukhtanov et al., и в середине постдискальной области. Базальное затемнение 2016: fig. 14] таксоны разделяются на два кластера обширное, выходит за границы дискальной ячейки. Самка с глубиной различий по последовательности первой неизвестна. Гениталии самца (рис. 15–17) типичного для рода Koramius субъединицы цитохромоксидазы (COI) более 2%. Moore, 1902 строения: дорсовентрально уплощенные, сильно Заметим, что Лухтанов с соавторами [Lukhtanov et склеротизированные; вальва ориентирована в дорсовентральной al., 2016] «повышают» в этой работе порог различий плоскости, широкая, в форме параллелепипеда, с пучком густых по COI для признания таксона видом в группе щетинок на вершине каудального отростка и с массивной K. delphius до 3%, никак это не аргументируя. Мы удлиненной заостренной гарпой; эдеагус тонкий, цилиндрический, предпочитаем использовать ставшее универсальным постепенно расширяется к основанию, в основании булавовидно значение в 2% различий по COI достаточным для расширенный; ункус и ветви гнатоса двулопастные, небольшие, определения таксонов в качестве разных видов ветви гнатоса длиннее лопастей ункуса. [Hebert et al., 2003]. Дифференциальный диагноз. Наиболее Статус таксонов K. hunza eva и K. hunza tytlerianus близкими к новому подвиду являются номинативный Bryk et Eisner, 1932 требует отдельных пояснений. подвид (рис. 3, 4) и подвид K. hunza abramovi (O. Bang- Самец K. hunza tytlerianus (голотип) изображен в Haas, 1915) (рис. 5, 6). От них обоих новый подвид хорошо опубликованной недавно книге [Tshikolovets, Pages, отличается значительно более яркой и контрастной 2016: pl. 12, fig. 4]. В типовой серии имеется также окраской, а также полным отсутствием красного самка (паратип), ее мы иллюстрируем в настоящей цвета в округлых черных пятнах постдискального ряда работе (рис. 7, 8). Также публикуем фотографию заднего крыла (как сверху, так и снизу). Крыловой самца K. hunza eva (паратип) (рис. 10–12). Из этих рисунок номинативного подвида намного тоньше, чем изображений следует, что отнесение данных таксонов у нового; у подвида abramovi крыловой рисунок серый к разным видам надуманно: различий в крыловом или темно-серый, без черных элементов, тогда как у рисунке на видовом уровне нет (ср. изображение самца нового подвида он имеет обширные черные элементы tytlerianus в цитированной выше книге и изображение (постдискальный, дискальный и дискоидальный eva в нашей статье), однако и считать их синонимами рисунки). Отличия K. hunza stradomskyi subsp. n. в силу очевидных различий на подвидовом уровне от афганского подвида K. hunza eva (Kotzsch, 1936) (крыловой рисунок первого более размыт, на переднем (рис. 1, 2, 10–12) еще более значительны: кроме того, крыле имеются значительно более обширные серые что крыловой рисунок подвида eva значительно перевязи, занимающие не менее половины площади светлее, чем у нового (элементы крылового рисунка крыла, тогда как у K. hunza eva они занимают не более разных оттенков серого цвета), темные округлые 30% площади крыла, и т.д.) нельзя. На этом основании пятна в анальном углу eva сильно редуцированы, а предлагаем интерпретировать оба таксона в качестве пятна постдискального ряда на заднем крыле имеют не хороших подвидов K. hunza наряду с номинативным округлую, а вытянуто-овальную форму. подвидом и подвидом abramovi. Экология. Новый подвид собран на высотах 4200– Таксон shigarensis A. Bang-Haas, 1935, 4500 м на открытых мелкощебнистых осыпях (рис. 14). установленный как Parnassius delphius shigarensis из Этимология. Подвид назван именем известного «Baltistan, Baltora Gebirge nordöstl. des Ortes Shigar, генетика и большого знатока голубянок Бориса Flußlauf des Shigarshu 5000 m» (рис. 9), имеет спорный Витальевича Страдомского. статус. В последнем каталоге дневных бабочек Индии [A synoptic catalogue..., 2015] он отнесен к K. hunza Обсуждение в ранге подвида. Нами исследована типовая серия данного таксона (1♂, лектотип, 5♂, 1♀, паралектотипы, Систематика группы K. delphius в настоящее места хранения: Museum für Naturkunde Leibniz- время претерпевает серьезные изменения: с началом Institut für Evolutions- und Biodiversitätsforschung, Новый подвид Koramius hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888) (Lepidoptera: Papilionidae) 357

Рис. 1–14. Koramius, имаго, распространение, местонахождение. 1–2 – K. hunza stradomskyi Korb et Shaposhnikov, subsp. n., самец, голотип: 1 – вид сверху, 2 – вид снизу; 3–4 – K. hunza hunza (Grum- Grshimaïlo, 1888), самка (3) и самец (4), синтипы, по [Groum-Grshimaïlo, 1890: pl. 10, figs 1a, 1b]; 5–6 – K. hunza abramovi (O. Bang-Haas, 1915), самец, лектотип: 5 – вид сверху, 6 – вид снизу; 7–8 – K. hunza tytlerianus Bryk et Eisner, 1932, самка, паратип: 7 – вид сверху, 8 – вид снизу; 9 – K. staudingeri shigarensis (A. Bang-Haas, 1935), самец, лектотип, вид сверху; 10–12 – K. hunza eva (Kotzsch, 1936), самец, паратип: 10 – вид сверху, 11 – вид снизу, 12 – этикетки; 13 – распространение Koramius hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888), показана северная часть ареала в Пакистане и Афганистане (кружки) и новая находка вида на границе Кыргызстана и Таджикистана (звездочка); 14 – биотоп K. hunza stradomskyi Korb et Shaposhnikov, subsp. n. (фото А.А. Шапошникова). Figs 1–14. Koramius, imagoes, distribution, locality. 1–2 – K. hunza stradomskyi Korb et Shaposhnikov, subsp. n., male, holotype: 1 – upperside, 2 – underside; 3–4 – K. hunza hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888), female (3) and male (4), syntypes, after [Groum-Grshimaïlo, 1890: pl. 10, figs 1a, 1b]; 5–6 – K. hunza abramovi (O. Bang-Haas, 1915), male: 5 – upperside, 6 – underside; 7– 8 – K. hunza tytlerianus Bryk et Eisner, 1932, female, paratype: 7 – upperside, 8 – underside; 9 – K. staudingeri shigarensis (A. Bang-Haas, 1935), male, lectotype, upperside; 10–12 – K. hunza eva (Kotzsch, 1936), male, paratype: 10 – upperside, 11 – underside, 12 – labels; 13 – distribution of Koramius hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888), black circles – the northern part of its area in Pakistan and Afghanistan, black star – the new record; 14 – habitat of K. hunza stradomskyi Korb et Shaposhnikov, subsp. n. (photo by A.A. Shaposhnikov). 358 С.К. Корб, А.А. Шапошников

Рис. 15–17. Koramius hunza stradomskyi Korb et Shaposhnikov, subsp. n., голотип, гениталии самца. 15 – дорсально; 16 – вентрально; 17 – латерально, вальва отделена для просмотра ее внутренних структур. Figs 15–17. Koramius hunza stradomskyi Korb et Shaposhnikov, ssp. n., holotype, male genitalia. 15 – dorsal view; 16 – ventral view; 17 – lateral view, valva separated for internal view.

Берлин, Германия; Staatliches Museum für Tierkunde Groum-Grshimaïlo G. 1890. Le Pamir et sa faune lépidoptérologique. Mémoires sur les Lépidoptères. 4: 1–575. Dresden, Дрезден, Германия), выяснено, что он не Hebert P.D., Ratnasingham S., de Waard J.R. 2003. Barcoding life: несет характерных признаков K. hunza, а относится к cytochrome c oxidase subunit 1 divergences among closely related K. staudingeri: K. staudingeri shigarensis (A. Bang-Haas, species. Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological 1935), Sciences. 270(Suppl 1): 96–99. stat. rev. Korb S.K., Bolshakov L.V. 2016. A systematic catalogue of butterflies of the former Soviet Union (Armenia, Azerbaijan, Belarus, Estonia, Georgia, Kyrgyzstan, Kazakhstan, Latvia, Lituania, , Russia, Tajikistan, Turkmenistan, Ukraine, Uzbekistan) Литература with special account to their type specimens (Lepidoptera: Hesperioidea, Papilionoidea). Zootaxa. 4160(1): 1–324. DOI: 10.11646/zootaxa.4160.1.1 Корб С.К. 2009. Эволюция крылового рисунка, островной эффект и Lukhtanov V.A., Sourakov A., Zakharov E.V. 2016. DNA barcodes as a tool вопросы систематики парусников надвида Parnassius staudingeri in biodiversity research: testing pre-existing taxonomic hypotheses in A. Bang-Haas, 1882 (Lepidoptera, Papilionidae). Алтайский Delphic Apollo butterflies (Lepidoptera, Papilionidae). Systematics and зоологический журнал. 4: 15–31. Biodiversity. 14(6): 599–613. DOI: 10.1080/14772000.2016.1203371 Корб С.К. 2012. Систематика трибы Parnassiini (Lepidoptera: Papilionidae) Rose K., Weiss J.-C. 2011. ­e Parnassiinae of the World. Part 5. Keltern: на основании исследования четырех генов и морфологии имаго. Goecke et Evers. 92 p. Эверсманния. 31–32: 5–37. Tshikolovets V.V., Pages J. 2016. ­e butterflies of Pakistan. Pardubice: A synoptic catalogue of the butterflies of India. 2015. New Delhi: Butterfly Tshikolovets Publications. 318 p. Research Centre, Bhimtal and Indinov Publishing. 261 p. DOI: Tshikolovets V.V., Pliushch I., Pak O., Skrylnik I. 2018. ­e butterflies of 10.13140/RG.2.1.3966.2164 Afghanistan. Pardubice: Tshikolovets Publications. 262 p.

Поступила / Received: 16.08.2019 Принята / Accepted: 4.10.2019 S.K. Korb, A.A. Shaposhnikov

References

A synoptic catalogue of the butterflies of India. 2015. New Delhi: Butterfly Korb S.K., Bolshakov L.V. 2016. A systematic catalogue of butterflies of the Research Centre, Bhimtal and Indinov Publishing. 261 p. DOI: former Soviet Union (Armenia, Azerbaijan, Belarus, Estonia, Georgia, 10.13140/RG.2.1.3966.2164 Kyrgyzstan, Kazakhstan, Latvia, Lituania, Moldova, Russia, Tajikistan, Groum-Grshimaïlo G. 1890. Le Pamir et sa faune lépidoptérologique. Turkmenistan, Ukraine, Uzbekistan) with special account to their Mémoires sur les Lépidoptères. 4: 1–575. type specimens (Lepidoptera: Hesperioidea, Papilionoidea). Zootaxa. Hebert P.D., Ratnasingham S., de Waard J.R. 2003. Barcoding animal life: 4160(1): 1–324. DOI: 10.11646/zootaxa.4160.1.1 cytochrome c oxidase subunit 1 divergences among closely related Lukhtanov V.A., Sourakov A., Zakharov E.V. 2016. DNA barcodes as a tool species. Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological in biodiversity research: testing pre-existing taxonomic hypotheses in Sciences. 270(Suppl 1): 96–99. Delphic Apollo butterflies (Lepidoptera, Papilionidae). Systematics and Korb S.K. 2009. Evolution of wing pattern, island effect and aspects of Biodiversity. 14(6): 599–613. DOI: 10.1080/14772000.2016.1203371 systematics of butterfly superspecies Parnassius staudingeri A. Bang- Rose K., Weiss J.-C. 2011. e Parnassiinae of the World. Part 5. Keltern: Haas 1882 (Lepidoptera, Papilionidae). Altai Zoological Journal. 4: Goecke et Evers. 92 p. 15–31 (in Russian). Tshikolovets V.V., Pages J. 2016. e butterflies of Pakistan. Pardubice: Korb S.K. 2012. Systematics of the tribus Parnassiini (Lepidoptera: Tshikolovets Publications. 318 p. Papilionidae) based on the study of four genes and imago morphology. Tshikolovets V.V., Pliushch I., Pak O., Skrylnik I. 2018. e butterflies of Eversmannia. 31–32: 5–37 (in Russian). Afghanistan. Pardubice: Tshikolovets Publications. 262 p. Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 359–365 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Boloria eunomia (Esper, 1799) (Lepidoptera: Nymphalidae) revised in the Caucasus: taxonomy, life history, rediscovery and conservation in Armenia

Новые данные о Boloria eunomia (Esper, 1799) (Lepidoptera: Nymphalidae) на Кавказе: таксономия, биология, новое нахождение и охрана вида в Армении

© D.V. Morgun © Д.В. Моргун

Moscow Centre of Environmental Education, Regional Research and Tourism, Odesskaya str., 12A, Moscow 117303 Russia. E-mail: [email protected] Московский детско-юношеский центр экологии, краеведения и туризма, ул. Одесская, 12А, Москва 117303 Россия

Key words: Lepidoptera, Boloria eunomia, Caucasus, taxonomy, ecology, rediscovery, Armenia, fauna. Ключевые слова: Lepidoptera, Boloria eunomia, Кавказ, таксономия, экология, новое нахождение, Армения, фауна.

Abstract. ­e population of Boloria eunomia tenera of Ukraine (Kiev) and a series from Armenia in the same Morgun, 2011 is reliably found for the first time since collection and in the collection of the Zoological Museum the 1920–1930s. Short survey of the research history of the Moscow State University (Moscow, Russia). ­e late of this species in Armenia is given. ­e taxonomy of the XIX century references to the species occurrence in Talysh species is discussed. New data on ecology and distribution (Azerbaijan) and Akhaltsikhe (Georgia) have not been of B. eunomia in Transcaucasia upon the population confirmed by the actual material and seem to be in doubt rediscovered in Armenia are presented. ­e Caucasian [Lederer, 1870; Bohatsch, 1886; Tschikolovets, Nekrutenko, Boloria eunomia (Esper, 1799) populations peculiarities 2012]. ­e closest reliable finding of the species belongs to and the suggestions on conservation of the species in Erzurum Province in Eastern Anatolia (Turkey). Armenia are given. In 2011 I described subspecies B. e. exspectata Morgun, Резюме. Впервые с 1920–1930-х годов достоверно 2011 and B. e. tenera Morgun, 2011 from the Caucasus обнаружена популяция Boloria eunomia tenera Morgun, region. In 2010 and 2011 I collected a series of this species 2011. Приводится краткий обзор исследования вида в in the Great Caucasus in Teberda vicinities. ­e exspectata Армении, обсуждается его таксономия. Сообщаются holotype and parartypes were collected in the same locality, новые данные о распространении и экологии вида in the upper flow of Nazylykol River. ­e type material of в Закавказье, полученные при исследовании его в tenera was stated upon museum samples collected in the Армении. Обсуждаются особенности биологии Boloria Tsakhkadzor vicinities in Armenia [Morgun, 2011]. eunomia (Esper, 1799) на Кавказе, даются рекомендации по охране вида. Material studied and results Introduction Boloria eunomia tenera was previously known only by museum specimens from the Tsakhkadzor vicinities Boloria eunomia (Esper, 1799) (= aphirape Hübner, (Kotayk Region of Armenia) in the south-eastern part of 1799) belongs to the family Nymphalidae Swainson, the Tsakhkuni Mountains. In L.A. Sheljuzko’s collection 1827, subfamily Argynninae Duponchel, [1835] and is there is a male and a female from the same locality characterized by a broad сircumboreal distribution in the labeled “Armenia, Darachichag (dub. Erivani), 22.VI.1934, Holarctic. ­is species has almost continuous distribution Tkachukov B.”. In recent years the literature sources devoted in tundra and forest-tundra in Eurasia (Scandinavia, the to the butterfly fauna of Armenia did not include concrete north of the European and Asiatic parts of Russia) and references to new reliable observations and provided the North America (from Labrador and Alaska to Wisconsin abstract information [Dantchenko et al., 2011]. in the south, and also in the Rocky Mountains to Central In 2017 the species was rediscovered in Armenia a Colorado [Gorbunov, 2001; Pyle, 2006; Tuzov, Bozano, little more than 80 years since the last verified findings. 2006; Lvovsky, Morgun, 2007; Nève et al., 2008]. From the One female was found not far from the type locality of Caucasus region it has been recently known only by museum the tenera subspecies on 6 July 2017 (Figs 1, 2). In 2018 material (a single specimen from the Great Caucasus in the a special investigation of this place was undertaken. As a Institute of Zoology of the National Academy of Sciences result, 17 males were registered from 13 to 16 June. Boloria

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-359365 360 D.V. Morgun eunomia tenera occurs above the village Tsakhkadzor geographical distribution or relatively minor morphological within an area of not more than 100 m2 (Figs 3–18). ­e characters with molecular data, including B. e. exspectata population inhabits a damp grass subalpine meadow with from the North Caucasus. Based on the analysis of DNA the aspect of Polygonum bistorta L. at an altitude of about barcodes they mentioned that molecular data provide 2250 m a.s.l. (Figs 19–21). We found that the population is evidence to support a monotypic species hypothesis rather not dense enough, and the imagines activity is significantly than the recognition of several subspecific forms, with the determined by the direction of the wind and the weather exception of B. e. riamia Korshunov et Ivonin, 1998 from conditions in general. ­e limits of its occurrence are Siberia in Russia [Yakovlev et al., 2018]. But these authors clearly defined by the snakeweed association, on which didn’t analyze B. e. tenera due to the absence of the available butterflies feed; the species is extremely stenotopic. ­e fresh material of this subspecies. ­us, its status remains to survey of the slope above and below the biotope height, be a subspecific rank. as well as of meadows, including similar phytocenosis In the type diagnosis of this subspecies it was shown at the same height and slope exposure, within a radius that the B. e. tenera males have a very thin pattern, partially of approximately 10 km, did not give any results. It can reduced in the discal and postdiscal areas, compared to be assumed that this relict population is unique to this males of other subspecies. ­e females are more saturated species in the studied locality and in the region as a whole. orange, with bright wings upperside background and Moreover, now it is one of the southernmost confirmed slightly developed dark pattern than females of other locations of the species in the West Palaearctic [Kudrna, subspecies, characterized by well-developed dark suffusion. 2002; Tolman, 2008]. ­e closest population possibly ­e B. e. tenera individuals have a soft pattern on the wings belonging to the same subspecies tenera is reliably known underside, more dull than individuals of other subspecies from Şenyurt in the Erzurum Province (Turkey), where it of B. eunomia. ­e spots are of yellow and orange shades, was found in 2017 at 2400 m a.s.l. and was also associated and gray in the postdiscal row on the hind wing (grey-blue, with the snakeweed meadows (data of Nurdan Çakır and yellowish or white in adults of other subspecies). Dark Munir Hançer, personal communication). elements on the underside of the forewing are partially ­e type series of B. e. tenera was collected by reduced. ­e noticeable stable difference in the genitalia V. Gamburaev in the third decade of June. ­e specimens of of B. e. tenera male is the configuration and proportions 1930s were collected by B. Tkachukov in the third decade of the costal process of the valva. It has a narrow base of July. ­e species was spotted at a damp gramineous and and “stem”, then – sharply isolated, massive, in the form varied grass meadow at 1800–1900 m a.s.l. of a rounded foot, which has numerous ventral-oriented ­e imagines of exspectata from the North Caucasus teeth on the outer edge. ­e B. e. eunomia individuals of fly in the second half of July in the broad river valley, lowland populations have a narrow process costal margin among the damp sites of alpine meadows formed by grass, throughout its length, with a prominent sharply forward sedges and cotton grass associations with Alchemilla bottom corner, forked or triangular with a notch at the caucasica Bus., A. vulgaris L., Geranium gymnocaulon DC. bottom. ­e males of the North Caucasian population have and distinct aspect of the larval host plant – snakeweed a costal process with a wide base, in shape-trapezoidal, Polygonum bistorta L. ­e imagines fly above the swampy without prominent corners and projections, but with a sites, feed and overnight on the flowers of snakeweed. smooth notch in the center of the outer edge. ­e caudal process of valva in B. e. tenera is hidden under the rest in In 2011 the population was quite abundant: on average, the lateral projection, has a sharp, forked top, rather than about 50 individuals were observed on 2 km of the linear lobate, blunt, as in males of other subspecies. ­e apical route passing through the biotope of the species. Adults are edge of valva in B. e. tenera lies almost on one line with observed annually, and that fact excludes typical for some the lower edge of the costal process, unlike specimens of alpine species bicyclic development. European populations. ­us, unique configuration and proportions of costal Discussion processes of valva was found in the male genitalia of B. e. exspectata and B. e. tenera: massive, wide, indistinctly A study of the specimens from two known population prominent relative to the apical edge of the valva in showed stable features of their external and internal both subspecies, trapezoidal with rounded corners in morphology that differ individuals of both mountain B. e. exspectata and oval, foot-shaped in B. e. tenera. In this Caucasian and Transcaucasian populations from each diagnostic and taxonomic context it was shown that this other and from lowland North European ones. In addition described subspecies differ by a complex of the distinctive to the complex of morphological differences of Caucasian morphological and ecological peculiarities. and Transcaucasian populations individuals, the obvious Significant environmental differences are determined ecological features associated with the peculiarities of the by the relict nature of distribution and habitation of North species distribution in the highlands were identified. ­us, Caucasian population in the alpine zone and B. e. tenera the North Caucasian population of B. eunomia inhabits the in the subalpine zone of high mountains, both of which highest altitudes (2300–2500 m a.s.l.) comparing it to other different from the biotopes of the species in the lowland European populations. part of its European range on the set of abiotic factors. However, in 2018 R.V. Yakovlev and his co-authors In the North Caucasus, the species is known by one revealed little congruence between previous interpretations common macropopulation in the upper reaches of the of different subspecies of B. eunomia based mainly on Nazylykol River that is a tributary of the Dzhemagat River, Boloria eunomia (Esper, 1799) (Lepidoptera: Nymphalidae) revised in the Caucasus 361

Figs 1–8. Boloria eunomia tenera (Armenia, Kotayk Region, Tsakhkadzor, 2250 m). 1–2 – female (6.07.2017, E.A. Mikhaylova leg., coll. D.V. Morgun); 3–8 – males (13–16.06.2018, E.A. Mikhaylova leg., ex coll. D.V. Morgun); 1, 3, 5, 7 – wings upperside; 2, 4, 6, 8 – wings underside. Рис. 1–8. Boloria eunomia tenera (Армения, Котайкская область, Цахкадзор, 2250 м). 1–2 – самка (6.07.2017, leg. Е.А. Михайлова, из коллекции Д.В. Моргуна); 3–8 – самцы (13–16.06.2018, leg. Е.А. Михайлова, из коллекции Д.В. Моргуна); 1, 3, 5, 7 – верхняя сторона крыльев; 2, 4, 6, 8 – нижняя сторона крыльев. 362 D.V. Morgun

Figs 9–16. Boloria eunomia tenera, males (Armenia, Kotayk Region, Tsakhkadzor, 2250 m, 13–16.06.2018, E.A. Mikhaylova leg., coll. D.V. Morgun). 9, 11, 13, 15 – wings upperside; 10, 12, 14, 16 – wings underside. Рис. 9–16. Boloria eunomia tenera, самцы (Армения, Котайкская область, Цахкадзор, 2250 м, 13–16.06.2018, leg. Е.А. Михайлова, из коллекции Д.В. Моргуна). 9, 11, 13, 15 – верхняя сторона крыльев; 10, 12, 14, 16 – нижняя сторона крыльев. Boloria eunomia (Esper, 1799) (Lepidoptera: Nymphalidae) revised in the Caucasus 363

Figs 17–23. Boloria eunomia. 17–18 – B. e. tenera, male (Armenia, Kotayk Region, near Tsakhkadzor, 2250 m, 13–16.06.2018, E.A. Mikhaylova leg., coll. D.V. Morgun): 17 – wings upperside, 18 – wings underside; 19–20 – varied grass subalpine meadows, biotope of B. e. tenera; 21 – snakeweed Polygonum bistorta L., adult and larval host plant of B. e. tenera; 22–23 – B. eunomia, male (Russia, Karachay-Cherkess Republic, Teberda Biosphere Reserve, Nazylykol River, 2450 m, 21.07.2011, D.V. Morgun leg., coll. D.V. Morgun): 22 – wings upperside, 23 – wings underside. Рис. 17–23. Boloria eunomia. 17–18 – B. e. tenera, самец (Армения, Котайкская область, Цахкадзор, 2250 м, 13–16.06.2018, leg. Е.А. Михайлова, из коллекции Д.В. Моргуна): 17 – верхняя сторона крыльев, 18 – нижняя сторона крыльев; 19–20 – разнотравные субальпийские луга, биотоп B. e. tenera; 21 – горец змеиный Polygonum bistorta L., кормовое растение имаго и гусениц B. e. tenera; 22–23 – B. eunomia, самец (Россия, Карачаево-Черкесская Республика, Тебердинский биосферный заповедник, Назылыкол, 2450 м, 21.07.2011, leg. Д.В. Моргун, из коллекции Д.В. Моргуна): 22 – верхняя сторона крыльев; 23 – нижняя сторона крыльев. 364 D.V. Morgun

Figs 24–31. Boloria eunomia from the North Caucasus (Russia, Karachay-Cherkess Republic, Teberda Biosphere Reserve, Nazylykol River, 2450 m). 24–29 – females (21–22.07.2011, D.V. Morgun leg., coll. D.V. Morgun): 24, 26, 28 – wings upperside, 25, 27, 29 – wings underside; 30–31 – imagoes in nature (21.07.2011, D.V. Morgun leg., coll. D.V. Morgun). Рис. 24–31. Boloria eunomia с Северного Кавказа (Россия, Карачаево-Черкесская Республика, Тебердинский биосферный заповедник, Назылыкол, 2450 м). 24–29 – самки (21–22.07.2011, Д.В. Моргун leg., из коллекции Д.В. Моргуна): 24, 26, 28 – верхняя сторона крыльев, 25, 27, 29 – нижняя сторона крыльев; 30–31 – имаго в природе (21.07.2011, Моргун Д.В. leg., из коллекции Д.В. Моргуна). Boloria eunomia (Esper, 1799) (Lepidoptera: Nymphalidae) revised in the Caucasus 365 at an altitude of 2250 to 2500 m a.s.l., on the territory differentiation that correlate with clear ecological differences of the Teberda Biosphere Reserve (Karachay-Cherkess of populations. Taking into account the identified risks Republic, near Teberda) (Figs 22–31). Until recent times it of population elimination in the recreationally significant was known from the Caucasus by a single specimen from region of Armenia, the population of the species needs the Teberda vicinities that was stored in L.A. Sheljuzhko’s protection and constant monitoring and is subject to collection in the Zoological Museum of the Kiev University. inclusion into the regional red list. ­is specimen, labeled “Teberda (Cauc. s.) ms. Dzhilt- raus 7.VII.1935 ­. Weidinger leg. Coll. L. Sheljuzhko”, Acknowledgements was included in Sheljuzhko’s collection in the second part of the 1930s when he bought the F.F. Weidinger’s private I express my deep gratitude to E.A. Mikhaylova collection. (Moscow, Russia) for providing material from expeditions ­e rediscovered population of tenera is characterized in Armenia and B.A. Gavrilov (Veliky Novgorod, Russia) by a smaller number and density than the North Caucasian for technical assistance in the article preparation. one (that occurs in a protected natural area) and faces a risk of elimination due to the intensive recreational development of the territory. Tsakhkadzor is one of the References largest tourist areas of Armenia; it is a center of sports Bohatsch O. 1886. Beitrag zur Lepidopterenfauna Transkaukasien. Wiener events and a popular resort for several decades. ­ere is entomologische Zeitung. 5: 123–128. a ski trail and a cable car on the slope of the mountain Dantchenko A.V., Aghababyan K.E., Khanamiryan G.G., Andreev S.A. 2011. inhabited by the population of the species. ­e traffic of To the fauna of butterflies of Armenia. In: Materialy mezhdunarodnoy konferentsii “Biologicheskoye raznoobrazie i problemy okhrany fauny hiking trails in the area is high too. Moreover one of the Kavkaza” [Proceedings of the International Conference “Biological routes passes in close proximity to the biotope inhabited diversity and conservation problems of the fauna of the Caucasus” by the population. ­is determines significant risks to the (Yerevan, Armenia, 26–29 September 2011)]. Yerevan: Erevan National University: 123–128 (in Russian). sustainability of the species population. Besides, grazing Gorbunov P.Yu. 2001. ­e butterflies of Russia: classification, genitalia, near this biotope and above the slope which becomes more keys for identification (Lepidoptera: Hesperioidea et Papilionoidea). intense in the middle of summer is observed. Together Ekaterinburg: ­esis. 320 p. (in Russian). with the recreation on this site, it creates extremely Kudrna O. 2002. ­e distribution atlas of European butterflies. Apollo Books. 342 p. unfavorable conditions that can cause the elimination of Lederer J. 1870. Contributions à la faune des Lépidoptères de la Transcaucasie the species in this area. Taking into consideration high Annales de la Société entomologique de Belgique. 13: 17–54. environmental requirements, low population size and Lvovsky A.L., Morgun D.V. 2007. Bulavousye cheshuekrylye Vostochnoy Evropy [Butterflies of Eastern Europe]. Moscow: KMK Scientific Press density of the species, these limiting factors tend to posess Ltd. 443 p. (in Russian). risk to the species in a short term perspective. One of Morgun D.V. 2011. New subspecies of Boloria (Proclossiana) eunomia the effective mechanisms could be legislative protection (Esper, 1799) (Lepidoptera: Nymphalidae) from the Caucasus. of the species, for instance its inclusion in the red list of Caucasian Entomological Bulletin. 7(1): 85−93 (in Russian). DOI: 10.23885/1814-3326-2011-7-1-85-93 animal species of Armenia with the assessment of regional Nève G., Pavlíčko A., Konvička M. 2009. Loss of genetic diversity through status as Endangered by IUCN/SSC Regional Applications spontaneous colonization in the bog fritillary butterfly, Proclossiana Working Group. However, the species does not appear in eunomia (Lepidoptera: Nymphalidae) in the Czech Republic. European Journal of Entomology. 106(1): 11–19. DOI: 10.14411/ the global red list and at the global level can be assessed eje.2009.002 as LC – causing the least concern. Another measure is a Pyle M.R. 2006. Field Guide to North American Butterflies. New York: creation of a local protected area in the refugium, where Alfred A. Knopf, Inc. 928 p. this relict species could be preserved. It should be noted, Tschikolovets V., Nekrutenko Yu. 2012. ­e Butterflies of Caucasus and Transcaucasia (Armenia, Azerbaijan, Georgia and Russian that the subspecies is a regional endemic and has not Federation). Kyiv – Pardubice: Tshikolovets Publication. 424 p. been found anywhere else in the Transcaucasia in recent Tolman T. 2008. Butterflies of Britain and Europe. Field Guide. London: decades. According to the current IUCN criteria for the red Collins. 384 p. Tuzov V.K., Bozano G.C. 2006. Guide to the Butterflies of the Palearctic lists, further studies, as well as immediate environmental Region. Nymphalidae. Part II. Tribe Argynnini: Boloria, Proclossiana, measures, are needed to specify its status and to save it in Clossiana. Milano: Omnes Artes. 72 p. Armenian nature. Yakovlev R.V., Shapoval N.A., Kuftina G.N., Kulak A.V., Kovalev S.V. 2018. Notes on the molecular taxonomy of the Proclossiana eunomia ­us, the new material of B. eunomia tenera from complex (Lepidoptera, Nymphalidae: Argynnini): analysis of Transcaucasia confirms the presence of stable internal DNA barcodes. Ukrainian Journal of Ecology. 8(1): 222–232. DOI: and external morphological features for subspecific 10.15421/2018_206

Received / Поступила: 9.03.2019 Accepted / Принята: 14.10.2019 366 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 367–374 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Description of two new species of the groundstreak genus Arzecla Duarte et Robbins, 2010 (Lepidoptera: Lycaenidae: ‰eclinae: Eumaeini) from Colombia

Описание двух новых видов рода Arzecla Duarte et Robbins, 2010 (Lepidoptera: Lycaenidae: ‰eclinae: Eumaeini) из Колумбии

© Zs. Bálint1, G. Katona1, K. Kertész2 © Ж. Балинт1, Г. Катона1, К. Кертес2

1Department of Zoology, Hungarian Natural History Museum, Baross u., 13, Budapest H-1088 Hungary. E-mails: [email protected]; [email protected] 2Institute of Technical Physics and Materials Science, Centre for Energy Research, P.O. Box 49, Budapest H-1525 Hungary. E-mail: [email protected]

1Отдел зоологии, Венгерский музей естественной истории, ул. Барош, 13, Будапешт H-1088 Венгрия 2Институт технической физики и материаловедения, Центр энергетических исследований, а/я 49, Будапешт H-1525 Венгрия

Key words: Lycaenidae, Arzecla, Andes, Transandean species, biogeography, check-list, identification key, taxonomy. Ключевые слова: Lycaenidae, Arzecla, Анды, трансандийские виды, биогеография, чек-лист, определительная таблица, таксономия.

Abstract. Two species of Arzecla Duarte et Robbins, bands on the ventral wingsurfaces of both sexes have long 2010 are described from Colombia, namely: Arzecla been treated as closely related to each other [Draudt, 1920; straboris Bálint, sp. n. (type locality: El Aguila, Manizales, d’Abrera, 1995], but Duarte and Robbins placed further Caldas), and Arzecla straelena Bálint, sp. n. (type locality: species in the genus lacking the mentioned conspicuous Cerro Ingrumá, Riosucio, Caldas), both on the basis of a wing trait. From other calycipodine hairstreaks Arzecla can single male specimen. New species possess a combination be discriminated on the basis of two characters provided of characters, unique in the genus, hence they are easy by the male genitalia. Wing pattern sexual dimorphism is to identify. A checklist with biogeographic and country minimal throughout the genus, grossly contrasting some indications and a key for identification based on wing other calycopidines [Duarte, Robbins, 2010; Costa et characters for all described Arzecla species is provided. al., 2019]. In the followings two species with Colombian Specimens examined for comparative purpose are listed as type localities will be described in Arzecla. Both of the an Appendix. Eleven figures. new species possess the conspicuous ventral colouration Резюме. Два вида рода Arzecla Duarte et and pattern typical for Arzecla, plus the male genitalia Robbins, 2010 описаны из Колумбии: Arzecla straboris characters recorded by Duarte and Robbins [2010]. Bálint, sp. n. (типовое местонахождение: El Aguila, Consequently they can be readily classified. Manizales, Caldas) и Arzecla straelena Bálint, sp. n. More than fifty Arzecla specimens deposited in the (типовое местонахождение: Cerro Ingrumá, Riosucio, Hungarian Natural History Museum (HNHM, Budapest) Caldas), – каждый по одному самца. Виды обладают were studied for comparative purposes. ­ese are listed сочетанием уникальных признаков, поэтому их легко in an Appendix. Type material was examined personally идентифицировать. Составлен чек-лист с указанием in the Natural History Museum (London, UK) [Bálint, распространия по странам, определительная таблица 2005], and in the Muséum National d’Histoire Naturelle на основе признаков крыльев для всех описанных (MNHN, Paris, France) [Faynel, Bálint, 2004]; plus the видов Arzecla, а также список видов использованного Lycaenidae type documentation in the HNHM has been сравнительного материала. also consulted (for the Smithsonian Museum of Natural History, Washington DC, USA; SMNH). Introduction Specimens and internal structures were examined via traditional methods, using binocular stereo microscope ­e purpose of this paper is to contribute new data supplemented by a digital camera (OLYMPUS 70SZX12 to the knowledge of Lycaenidae taxonomy in the light of and DP70). Necessary specimens were dissected and recent publications. In this case it is for the groundstreak databased in the HNHM. ­e preparations are being kept genus Arzecla [Warren et al., 2016], established in the with the relevant specimens in plastic microvials filled subtribe Calycopidina by Duarte and Robbins [2010] for with glycerine. Optical imaging of the genitalia structures ten formerly described species [Warren et al., 2016]. All under large magnification was carried out using an Axio Arzecla species with conspicuous alternating light and dark Imager A1 microscope (Carl Zeiss AG, Jena, )

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-367374 368 Zs. Bálint, G. Katona, K. Kertész

Figs 1–2. Male generic characters of Arzecla. Upper arrows indicate the genitalia gnathos and lower arrows the vinculum-tegumen process, both with teeth. Рис. 1–2. Родовые признаки самцов Arzecla. Верхние стрелки указывают на гнатос, нижние стрелки – на винкулярно-тегуменный отросток, оба с зубцами. 1 – A. straboris Bálint, sp. n.; 2 – A. straelena Bálint, sp. n. using reflected light in the Institute of Technical Physics Arzecla straboris Bálint, sp. n. and Materials Science (Budapest, Hungary). (Figs 1, 3, 4, 17) Terminology used in descriptive text is compatible with previous papers on calycopidine eumaeines [Costa et Material. Holotype, ♂ (HNHM): in moderate condition (half of al., 2018, 2019; Bálint, 2019]. A checklist for all the Arzecla both antennae missing, abdomen dissected: Bálint genitalia preparation no. 1523), set dorsally, with the printed label “COLOMBIA, Caldas, species with their known distribution and biogeographical El Aquila [= Aguila], Manizales, 1800 m, March 22, 1996, Julián Salazar leg.”. indications (according to Brown [1993]) is given. A key for Diagnosis. Similar to congeners with brown dorsal identification based on wing characters for all the Arzecla wingsurface in pointed forewing shape and underside species is also provided. pattern with brown basal and postdiscal area divided ­e paper is written for the memory of late Dr Boris by a yellow median-submedian band, but male dorsal Stradomsky (1959–2019). Together with his wife Elena A. wingsurface dull metallic blue as in A. albolineata (Lathy, Fomina they contributed significantly to the knowledge of 1936) (type locality: Rio Aguatal, Colombia) (Figs 7–10, the family Lycaenidae. ­e new species are being described 18) what is the single described congener with blue dorsal in the followings are dedicated to and named after them. wingsurface. However A. albolineata ventral wingsufaces are not striped but unicolourous in both sexes. Classification and generic placement Description. Body: frontoclypeus with erecting black hairs, labial palp black and extremely short, eyes brown, large and Both of the species being described belong to the tribe hairy, parocular area and scape light brown, thorax and abdomen Eumaeini because they posses the following three diagnostic black, femurs hairy. Wings. Forewing costal length measured characters: (1) ten forwing veins; (2) greyhound shaped from wing base to apex 12 mm (holotype); hindwing with short male genitalia in lateral aspect and without sclerotized filemantous black tail at vein CuA1 terminus, and with a longer juxta; (3) male foretarsus fused and stubby tipped, used tail at vein CuA2 terminus; dorsal forewing surface muted blue for walking [Eliot, 1973]. Both species are placed in the with 2–3 mm wide black costal and outer marginal band, dorsal genus Arzecla (type species: ‚ecla arza Hewitson, 1874, hindwing surface also muted blue with thin (1 mm) greyish marginal band, tornal area orange; fringes grey in both wings; by original designation of Duarte and Robbins [2010] of forewing ventral surface basal and postmedian area warm brown, Calycopidina (males without androconia), because there median area warm yellow, submarginal area lighter brown having are two or more rows of small teeth on the male genitalia a narrow short line in the subapical area to vein M1, inner margin gnathos [Duarte, Robbins, 2010: fig. 10] and the posterior area grey; ventral hindwing surface colouration and pattern similar ventro-lateral edge of the vinculum-tegumen has a process to those of forewing, but with much wider postmedian band, with teeth on the ventral surface [Duarte, Robbins, 2010: lighter submarginal area narrower, supplemented with the typical fig. 5] (Figs 1, 2). “W” shaped median-postmediam hairstreak pattern and the Description of two new species of the groundstreak genus Arzecla 369

Figs 3–6. Arzecla specimens from Colombia (left column – dorsal view, right column – ventral view). 3–4 – A. straboris Bálint, sp. n., male, holotype; 5–6 – A. straelena Bálint, sp. n., male, holotype. Scale 1 mm. Рис. 3–6. Виды Arzecla из Колумбии (левая колонка – вид сверху, правая колонка – вид снизу). 3–4 – A. straboris Bálint, sp. n., самец, голотип; 5–6 – A. straelena Bálint, sp. n., самец, голотип. Масштаб делений 1 мм.

“­ecla-spot” in cell CuA1; tornus black with orange antemarginal congener A. albolineata male genitalia has a distinctively scaling. Genitalia typical eumaeine with brush organ (hairs short shaped valva and aedeagus terminus, lacking brush organ and densely arranged, fused to tegumen dorsally), large uncus with (Fig. 18). All the other known Arzecla species are dorsally heavily sclerotized anal margin, ganthos also heavily sclerotized brown or rufous brown. ­e ventral wing pattern and and slithly curved with pointed apices, valva short with bulbous apex, aedeagus almost 3 times longer than valval length, apex colouration of A. straboris resembles the brown species with long and slender cornutus, terminus widely open. Female not sympatric Panamerican A. arza and Transandean A. tarpa known. (Godman et Salvin, 1887). ­e similarity is especially Bionomics. Geographical: known only from the type distinctive in the case of A. arza as both species have locality: El Aguila, Manizales, Caldas, Columbia (Fig. 22). “single banded” ventral forewing surfaces. However in the Spatial: the holotype specimen was collected at 1800 m. hindwing ventral surface of A. arza there is a light brownish Temporal: the holotype specimen was collected in March. white or yellow coloured median band what fuses distally Etymology. ­e species group name “straboris” is with the postmedian pattern and reaches the inner margin feminine noun. It is an arbitrary combination of syllables (this band is yellow in A. straboris sp. n. and separated by “stra” and “boris” taken from the name of the late Boris an area of dark scales from the postmedian pattern and Stradomsky, who was an excellent researcher of Lycaenidae does not reach the inner margin) (Figs 3, 4, 11, 12). ­e (cf. [Stradomsky, 2016]). ­e species is dedicated to him. genitalia of A. arza is also distinctive with no brush organ Remarks. In the genus the male dorsal blue and a lobe-like tegumen-vinculum process with rounded colouration is shared only by the species A. albolineata ventrolateral edge (A. straboris sp. n. has brush organ and and A. staboris. However, the underside pattern and the process is not lobe-like) (Figs 17, 19). According to the colouration of these species are qualitatively different website of “Butterflies of America” [Warren et al., 2016] (see diagnosis). It is also worth to mention, that the blue A. arza has a Panamerican distribution from Mexico to 370 Zs. Bálint, G. Katona, K. Kertész

Figs 7–12. Arzecla species for comparision from Colombia (left column – dorsal view, right column – ventral view). 7–10 – A. albolineta (Lathy, 1936) specimens from Colombia: 7–8 – male (MNHN holotype: “Rio Aguatal”), 9–10 – female (HNHM voucher: Agaucatal, Valle); 11–12 – A. arza (Hewitson, 1874), male (HNHM voucher: Manizales, Caldas). Scale 1 mm. Рис. 7–12. Колумбийские виды Arzecla для сравнения (левая колонка – вид сверху, правая колонка – вид снизу). 7–10 – A. albolineta (Lathy, 1936), экземпляр из Колумбии: 7–8 – самец (MNHN, голотип: “Rio Aguatal”), 9–10 – самка (коллекция HNHM: Agaucatal, Valle); 11–12 – A. arza (Hewitson, 1874), самец (коллекция HNHM: Manizales, Caldas). Масштаб делений 1 мм. Description of two new species of the groundstreak genus Arzecla 371

Figs 13–16. Arzecla taminella (Schaus, 1902), specimens from Brazil (left column – dorsal view, right column – ventral view). 13–14 – female (SMNH syntype: “Castro, Paraná”); 15–16 – male (HNHM voucher: Santa Catarina). Scale 1 mm. Рис. 13–16. Arzecla taminella (Schaus, 1902), экземпляры из Бразилии (левая колонка – вид сверху, правая колонка – вид снизу). 13–14 – самка (синтип из SMNH: “Castro, Paraná”); 15–16 – самец (коллекция HNHM: Santa Catarina). Масштаб делений 1 мм.

Brazil. In the HNHM material there is a pair from Brazil, pattern with brown basal and postdiscal area divided by a whose female has dorsal blue colouration (see Appendix). yellow median-submedian band. Superficially the closest ­e female polymorphy regarding dorsal wing structural species is A. taminella (Schaus, 1902) (type locality: colouration in Lycaenidae can be easily influenced by Castro, Parana, Brazil; Figs 13, 14), but A. straelena sp. n. environmental variables, whilst the male colouration is lacks orange scaling entirely (A. taminella hindwing highly stress resistant [Piszter et al., 2019]. Consequently dorsal wingsurface is orange scaled in tornal area, as well the dorsal wing surface colouration in Arzecla must be also as the ventral hindwing “­ecla-spot”) and the submargin a good taxonomic character as this has been demonstrated without pattern (A. taminella is delicately patterned in also for other Neotropical lycaenids [Bálint et al., 2008, the submarginal area of both wings; Figs 15, 16). Another 2019]. Nevertheless we are of the opinion that A. arza feature is that the submedian yellow band and the sensu auctorum most probably hides at least two hitherto postmedian pattern is not devided by a wide dark area, unrecognized biological species. ­is must be discussed by which trait typifies A. taminella. a separate paper focusing to this topic. Description. Body: frontoclypeus with erecting black hairs, labial palp black and extremely short, eyes brown, large and hairy, Arzecla straelena Bálint, sp. n. parocular area and scape black, thorax and abdomen black, femurs (Figs 2, 5, 6, 20) hairy. Wings. Forewing costal length measured from wing base to apex 9 mm (holotype); hindwing with short filemantous black tail at Material. Holotype, ♂ (HNHM): in moderate condition (left antenna vein CuA1 terminus, and with a longer tail at vein CuA2 terminus; missing, wings slightly worn; abdomen dissected: Bálint genitalia preparation dorsal wing surfaces unicolourous warm brown, hindwing with no. 1522 ), set dorsally, with the printed label “COLOMBIA, cerro Ingrumá, a transverse light medial-submedial band (transparent from the Mpio de Riosucio, Caldas, 2270 m, 10.VII.1994. leg. J. Salazar, HNHM via ventral surface); fringes brown but in hindwing tornal area longer K. Johnson”. and basally white forewing ventral surface basal and median area Diagnosis. Similar to congeners with brown dorsal warm brown, postmedial area somewhat lighter, medial-submedial wingsurface in pointed forewing shape and underside area warm yellow; ventral hindwing surface colouration and 372 Zs. Bálint, G. Katona, K. Kertész

Figs 17–21. Arzecla male genitalia capsules in lateral view, under same magnification. 17 – A. straboris sp. n., HNHM holotype (Bálint gen. prep no. 1523); 18 – A. albolineata (Lathy, 1936), HNHM voucher (El Faro, Rio Cali, Valle) (Bálint gen. prep. no. 1552); 19 – A. arza (Hewitson, 1874), HNHM voucher (Manizales, Caldas, Colombia) (Bálint gen. prep. no. 1696); 20 – A. straelena sp. n., HNHM holotype (Bálint gen. prep no. 1522); 21 – A. taminella (Schaus, 1902), HNHM voucher (Pedra Grande, São Bento do Sul, Santa Catarina, Brazil) (Bálint gen. prep. no. 1671). Scale bars (for Figs. 17–19 and 20–21) 0.12 mm. Рис. 17–21. Генитальная капсула самцов Arzecla, вид сбоку, увеличение одинаковое для всех образцов. 17 – A. straboris sp. n., голотип из HNHM (Bálint gen. prep no. 1523); 18 – A. albolineata (Lathy, 1936), экземпляр из HNHM (El Faro, Rio Cali, Valle) (Bálint gen. prep. no. 1552); 19 – A. arza (Hewitson, 1874), экземпляр из HNHM (Manizales, Caldas, Colombia) (Bálint gen. prep. no. 1696); 20 – A. straelena sp. n., голотип из HNHM (Bálint gen. prep no. 1522); 21 – A. taminella (Schaus, 1902), экземпляр из HNHM (Pedra Grande, São Bento do Sul, Santa Catarina, Brazil) (Bálint gen. prep. no. 1671). Масшабные лиинейки (для рис. 17–19 и 20–21) 0.12 мм. pattern similar to those of forewing, supplemented with the typical Bionomics. Geographical: known only from the type “W” shaped medial-postmedial hairstreak transverse pattern locality: cerro Ingrumá, Municipio de Riosucio, Caldas, and faint “­ecla-spot” in cell CuA1; tornus black with white Colombia (Fig. 22). Spatial: the holotype specimen was antemarginal scaling. Genitalia typical eumaeine with small brush collected at 2270 m. Temporal: the holotype specimen was organ (hairs short, densely arranged, fused to tegumen dorsally), collected in July. uncus large with heavily sclerotized anal margin and slender with pointed apex, valva short with membraneous and bulbous apex, Etymology. ­e species group name “straelena” is aedeagus more than 3 times longer than valval length, with large feminine noun. It is an arbitrary combination of the syllables apical cornutus and a sligthly sclerotized but widely open terminus. “stra” and “elena” taken from the name of Elena A. Fomina, Female not known. the wife of late Boris Stradomsky. She worked jointly with her husband and they published important papers on Lycaenidae [e.g. Stradomsky, Fomina, 2009, 2014]. ­e species is dedicated to her. Remarks. ­e holotype specimen is smaller than A. taminella, the hindwing ventral median-submedian band is conspicuously transparent in the dorsal wingsurface, and the submarginal area of the wings is practically patternless (cf. Figs 7, 8 and 13–16). ­e genitalia has a brush organ comprised by hairs shorter than those in A. taminella and in comparision the basal part of the gnathos is longer than that of A. taminella having sharped elbow whilst it is rounded in A. taminella (Figs 20, 21). In the Transandean and Amazonian regions A. taminella occurs together with the rare congeneric species A. calatia (Hewitson, 1873). According to its holotype, figured by d’Abrera [1995: 1211], it is the only Fig. 22. Geographic situation of the type localities of Arzecla Arzecla species with vivid light yellow submarginal ventral straelena sp. n. (Riosucio) and A. straelena sp. n. (El Aguila) in department wingsurface areas of both wings. ­e male A. calatia has Caldas, Colombia. not been documented yet. As sexual dimorphism in Arzecla Рис. 22. Типовые местонахождения Arzecla straelena sp. n. (Риосусио) and A. straelena sp. n. (Эль-Агила) в департаменте Кальдас, is very limited, we can suspect that the male is similarly Колумбия. patterned. In fact, it is the case testified by a male specimen Description of two new species of the groundstreak genus Arzecla 373 depicted recently in nature in the Upper Amazonian region 4a. Ventral wingsurfaces brown with contrasting light of Peru [Garwood, 2019]. D’Abrera [1995: 1211] figured a brown or yellow transverse bands ...... 5 male A. taminella as “T. ? sp. ♂V” from Tarapoto (Peru). 4b. Ventral wingsurfaces brown with a single contrasting ­ese data confirm that the two species is sympatric in the white-red/brown postmedian transverse line ...... 10 Upper-Amazonian region, as well as in the Atlantic region, 5a. Ventral wingsurfaces with faint basal dark scaling and where A. calatia has been recorded recently [Leviski et al., median areas with conspicuous wide dark brown 2016]. coloured band ...... A. parulus Supposedly the new species A. straelena has a wider 5b. Ventral wingsurfaces with contrasting basal dark scaling distribution in the eastern side of the Andes, probably it and submedian areas with light coloured transverse is restricted to cloud forest habitats above the lowland band ...... 6 rainforest belt. 6a. Submedian transverse band vivid yellow, smaller species (forewing costa length <15 mm) ...... 7 Check-list of Arzecla species with biogeographical 6b. Submedian transverse band pale yellow or light grey, (and country) indications larger species (forewing costa length >15 mm) ...... 9 7a. Ventral wingsurface submarginal areas vivid yellow .... 1. Arzecla albolineata (Lathy, 1936) Duarte et Robbins, ...... A. calatia 2010; Andean (Colombia). 7b. Ventral wingsurface submarginal areas light brown ..... 8 2. Arzecla arza (Hewitson, 1874) Duarte et Robbins, 8a. Hindwing ventral surface yellow submedian band 2010; Panamerican (from Mexico to Brazil). narrow ( mm) supplemented by a wider (3 mm) 3. Arzecla calatia (Hewitson, 1873) Duarte et Robbins, postmedian brown area ...... A. taminella 2010; Panamerican. 8b. Hindwing ventral surafce yellow postmedian band wide 4. Arzecla canacha (Hewitson, 1877) Duarte et (3 mm) supplemented by a narrow (1 mm) postmedian Robbins, 2010; Transandean (Venezuela, Colombia). brown area ...... A. straelena sp. n. 5. Arzecla nubilum (H. Druce, 1907) Duarte et 9a. Hindwing postbasal brown area wide (3 mm), Robbins, 2010; Atlantic (SE Brazil). submarginal area with the very light brown colouration 6. Arzecla paralus (Godman et Salvin, 1887) Duarte of the submedian band ...... A. tarpa et Robbins, 2010; Transandean (Guatemala to Venezuela). 9b. Hindwing postbasal brown area not so wide (2 mm), 7. Arzecla sethon (Godman et Salvin, 1887) Duarte et submarginal area light brown and darker coloured Robbins, 2010; Transandean (Mexico to Venezuela). than the yellow or light brown submedian band ...... 8. Arzecla straboris Bálint, sp. n.; Andean (Colombia)...... A. arza 9. Arzecla straelena Bálint, sp. n.; Andean (Colombia). 10a. Ventral wingsurface basal and submedian area lighter 10. Arzecla taminella (Schaus, 1902) Duarte et than postmedian and and marginal areas, postmedian Robbins, 2010; Panamercian (from Mexico to Brazil). white line basally bordered with light brown scales ... 11. Arzecla tarpa (Godman et Salvin, 1887) Duarte ...... A. sethon et Robbins, 2010; Transandean (Mexico to Panama, 10b. Ventral wingsurface basal and submedian only slightly Venezuela). or not darker than postmedian and marginal area, 12. Arzecla tucumanensis (K. Johnson et Kroenlein, posmedian line basally bordered by red or rufous 1993) Duarte et Robbins, 2010; Amazonian (Chahco) scales ...... 11 (Argentina). 11a. Ventral wingsurface postmedian line basally bordered Notes. ­e genus Arzecla is primarily Transandean, as by rufous scales ...... A. nubilum one third of the species (n = 4) represents this distributional 11b. Ventral wingsurface postemdioan line basally bordered pattern (33%). ­e percentage of the Andean (n = 3) and the by red scales ...... A. tucumanensis Panamerican (n = 3) species is still worth to mention (25%). Together they give the half of the species number. ­e Appendix: Material (n = 54) deposited in the HNHM Amazonian (n = 1) and Atlantic (n = 1) distributions are and used for comparision less remarkable. In the Atlantic region hitherto a single endemic species is recorded, but probably there are further Arzecla albolineata – Colombia, Valle: 2. A. arza – taxa worth to be recognized. Brazil, Santa Catarina: 2; Colombia, Caldas: 3; Venezuela, Aragua: 2; Venezuela, Miranda: 2; Venezuela, Sucre: 1. A key for Arzecla species based on wing characters A. canacha – Colombia, Valle: 3; Venezuela, Aragua: 1; Venezuela, Tachira: 1. A. nubilum – Brazil, Parana: 13; 1a. Dorsal wingsurfaces blue ...... 2 Brazil, Rio Grande do Sul: 6; Brazil, Santa Catarina: 6; 1b. Dorsal wingsurfaces not blue but brown or brown with Venezuela, Merida: 1. A. paralus – Venezuela, Aragua: 1. rufous median patch ...... 3 A. sethon – Columbia, Cundinamarca: 1, Venezuela, 2a. Ventral wingsurfaces brown with contrasting yellow Zuila: 1. A. taminella – Brazil, Santa Catarina: 1. A. tarpa – submedian transverse band ...... A. straboris sp. n. Venezuela, Tachira: 1. A. tucumanensis – Argentina, 2b. Ventral wingsurfaces brown with contrasting white Jujuy: 6. postmedian transverse line ...... A. albolineata Notes. ­e wings of the A. arza female from Santa 3a. Dorsal forewing surface unicolourous brown ...... 4 Catarina (Brazil) is dorsally blue. ­e A. nubilum specimen 3b. Dorsal forewing surface with rufous median patch .... from Merida (Venezuela) is most probably representing an ...... A. canacha undescribed taxon. 374 Zs. Bálint, G. Katona, K. Kertész

D’Abrera B. 1995. Butterflies of the Neotropical Region. Part VII. Lycaenidae. Acknowdegements Victoria, Black Rock, Hill House. i–xi, 1098–1270. Draudt M. 1920. 87. Orcidia-Gruppe. In: Die Gross-Schmetterlinge der ­anks are due to Dr Robert K. Robbins and to an Erde. Band 5. Stuttgart: Alfred Kernen. 791–792. anonymous reviewer for their constructive comments they Duarte M., Robbins R.K. 2010. Description and phylogenetic analysis of the Calycopidina (Lepidoptera, Lycaenidae, ­eclinae, Eumaeini): made on the manuscript. a subtribe of detritivores. Revista brasileira de Entomologia. 54(1): ­e paper was supported by the National Research, 45–65. DOI: 10.1590/S0085-56262010000100006 Development and Innovation Office of Hungary-NKFIH Garwood K. 2019. Unknown Lycaenidae. Peru Lycaenidae. Available K 115724 grant. at: https://www.flickriver.com/photos/kgarwood/48862469166/ (accessed 14 December 2019). Eliot J.N. 1973. ­e higher classification of the Lycaenidae (Lepidoptera): a tentative arrangement. Bulletin of the British Museum of Natural References History (Entomology). 28(6): 373–506. DOI: 10.5962/bhl.part.11171 Faynel Ch., Bálint Zs. 2004. Supplementary information on neotropical Bálint Zs. 2005. Frederick W. Goodson and his contribution to the taxonomy Eumaeini primary type material and further historical specimens of neotropical hairstreak butterflies (Lepidoptera: Lycaenidae: deposited in the Muséum national d’Histoire naturelle, Paris Eumaeini). Systematics and Biodiversity. 2(4): 355–373. DOI: 10.1017/ (Lycaenidae, ­eclinae). Bulletin de la Société entomologique de S1477200004001550 France. 109(3): 263–286. Bálint Zs. 2019. Notes on Arumecla species in Ecaudor (Lepidoptera: Leviski G.L., Queiroz-Santos L., Siewert R.R., Salik L.M.G., Casagrande M.M., Lycaenidae: ­eclinae: Eumaeini). Lepidoptera Novae. 11(1–2): 1–4. Mielke O.H.H. 2016. Butterflies (Lepidoptera: Papilionoidea) in a Bálint Zs., Boyer P., Kertész K., Biró L.P. 2008. Observations on the spectral coastal plain area in the state of Paraná, Brazil. Tropical Lepidoptera reflectances of certain high Andean Penaincisalia and ‚ecloxurina, Reserach. 26(2): 62–67. with the description of a new species (Lepidoptera: Lycaenidae: Piszter G., Kertész K., Horváth E.Z., Bálint Zs., Biró L.P. 2019. Reproducible Eumaeini). Journal of Natural History 42(25–26): 1792–1804. DOI: phenotype alteration due to prolonged cooling of the pupae of 10.1080/00222930802097675 Polyommatus icarus butterflies. PLoS ONE. 14(11): e0225388. DOI: Bálint Zs., Katona G., Kertész K. 2019. A new species of Penaincisalia 10.1371/journal.pone.0225388 (Lepidoptera: Lycaenidae) from Peru. Opuscula Zoologica Budapest Stradomsky B.V. 2016. A molecular phylogeny of the subfamily 50(2): 137–144. DOI: 10.18348/opzool.2019.2.137 Polyommatinae (Lepidoptera: Lycaenidae). Caucasian Entomological Brown Jr. K.S. 1993. Neotropical Lycaenidae: an overview. In: Conservation Bulletin. 12(1): 145–156. DOI: 10.23885/1814-3326-2016-12-1-145-156 Biology of Lycaendiae (Butterflies). Gland: International Union for Stradomsky B.V., Fomina E.A. 2009. ­e developmental stages of some blue Conservation of Nature and Natural Resources: 45–61. butterflies (Lepidoptera: Lycaenidae) of Russian South. Caucasian Costa M., Viloria Á.L., Attal S., Benmesbah M., Neild A.F.E., Bálint Zs. 2018. Entomological Bulletin. 5(2): 269–272. DOI: 10.23885/1814-3326- Lepidoptera from the Pantepui. Part V. New Lycaenidae (­eclinae: 2009-5-2-269-272 Eumaeini). Opuscula Zoologica Budapest. 49(2): 163–179. DOI: Stradomsky B.V., Fomina E.A. 2014. ­e developmental stages of some 10.18348/opzool.2018.2.163 blue butterflies (Lepidoptera: Lycaenidae) of Russian South. Costa M., Viloria Á.L., Attal S., Benmesbah M., Fratello S., Bálint Zs. 2019. Part VI. Caucasian Entomological Bulletin. 10(2): 277–280. DOI: Lepidoptera from the Pantepui. Part VII. A distinctive Lamprospilus 10.23885/1814-3326-2014-10-2-277-280 species from the Guiana Highlands (Lepidoptera: Lycaenidae: Warren A.D., Davis K.J., Stangeland E.M., Pelham J.P., Grishin N.V. 2016. ­eclinae). Opuscula Zoologica Budapest. 50(2): 111–128. DOI: Illustrated Lists of American Butterflies. Available at: http://www. 10.18348/opzool.2019.2.111 butterfliesofamerica.com/ (accessed 8 December 2019).

Received / Поступила: 9.10.2019 Accepted / Принята: 17.12.2019 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 375–380 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

‰e lesser-known Kumaon Meadow Blue Polyommatus dux Riley, 1926 (Lepidoptera: Lycaenidae: Polyommatinae: Polyommatini) from Uttarakhand, Western Himalaya

Малоизученная голубянка Polyommatus dux Riley, 1926 (Lepidoptera: Lycaenidae: Polyommatinae: Polyommatini) из Уттаракханда, Западные Гималаи

© G.N. Das1, S. Gayen1, A.K. Sanyal1, V. Kumar1, Zs. Bálint2 © Г.Н. Дас1, С. Гайен1, А.К. Саньял1, В. Кумар1, Ж. Балинт2

1Zoological Survey of India, Prani Vigyan Bhawan, M-Block, New Alipore, Kolkata-700053 India. E-mail: [email protected] 2Department of Zoology, Hungarian Natural History Museum, Baross u., 13, Budapest H-1088 Hungary

1Зоологическая служба Индии, Прани Вигьян Бхаван, М-Блок, Новый Алипор, Калькутта-700053 Индия 2Отдел зоологии, Венгерский музей естественной истории, ул. Барош, 13, Будапешт H-1088 Венгрия

Key words: Lycaenidae, Polyommatus, high altitude distribution, Kumaon Himalaya, wing surfaces. Ключевые слова: Lycaenidae, Polyommatus, высотное распределение, Кумаон, Гималаи, рисунок крыла.

Abstract. In spite of that Western Himalaya (Garhwal приведены сведения о находке Polyommatus dux Riley, and Kumaon) geographically seems to be Oriental, the fauna 1926 в типовом местонахождении (Кумаон, Индия, of this high mountainous area has strong affinities with the Гималаи), который является необычным видом этой Palaearctic region. ­e inner valleys of Kumaon Himalaya группы с обширной структурной окраской нижней are close to Tibet, what is characterised by Sino-Himalayan стороны заднего крыла. С момента описания вид не xero-mountain elements, including the genus Polyommatus был зарегистрирован, поэтому наша находка – вторая Latreille, 1804, one of the most diverse lycaenid genera in со времени его открытия. На основе нового материала the Palaearctic region. In the Himalayas Polyommatus is даны переописание и диагноз вида, описаны структуры represented by the diverse stoliczkanus species group. Here гениталий самца. Приведены сведения о наблюдениях we report on Polyommatus dux Riley, 1926 from Kumaon бабочек в природе, кратко обсуждены факторы, Himalaya (type locality), what is an unusual member of влияющие на окраску крыльев. Вид уязвим и находится the group displaying a hindwing ventral wingsurface with под угрозой исчезновения в результате сокращения extensive structural colouration. Since the description ареала, вызванного изменением климата, и, таким the species has not been recorded. ­erefore our finding образом, может рассматриваться как экологический is the second record since its discovery. On the basis of индикатор в природоохранных исследованиях в new material, the external habitus of the male is diagnosed высокогорном регионе Гималаев (Кумаон, Индия). and genitalia structures are described. Field observations are briefly recorded, imagines in nature are documented Introduction and the phenomena related to the butterfly wing surfaces are briefly discussed. ­e species is vulnerable to climate ­e Himalayan ranges are one of the important change driven range restriction and extinction threats, biodiversity hotspots in Indian subcontinent embracing and thus considered as a candidate for flagship species for interesting studies on Lepidoptera [Mani, 1986; Das et al., ecological studies in nature conservation investigations in 2018]. ­e lycaenid (Lycaenidae) butterfly fauna of Himalaya the high-altitude region of the Kumaon Himalaya, India. needs taxonomic and systematic revision, especially the Резюме. Несмотря на то, что Западные Гималаи Palaearctic part where lots of species complexes remain (Гархвал и Кумаон) биогеографически частично unresolved in genera like Polyommatus Latreille, 1804 относятся к Ориентальной области, фауна этого [Bálint, 1992a, b]. ­e subtribe Polyommatina, represented высокогорного района тесно связана с Палеарктикой. by Polyommatus and further genera in the region, is the Фауна внутренних долин гималайского Кумаона largest and most taxonomically challenging group within близка к таковой Тибета, для которого характерны the Palaearctic Lycaenidae, with about 400 known species китайско-гималайские ксерофильные горные worldwide [Vila et al., 2011]. элементы, включая род Polyommatus Latreille, 1804, From Himalaya, 21 species of Polyommatus have so один из самых разнообразных родов Lycaenidae в far been reported, of which ten species are found in India Палеарктике. В Гималаях Polyommatus представлен [Bálint, 1995; Tshikolovets, 2005; Varshney, Smetacek, разнообразной группой видов stoliczkanus. В работе 2015]. In Himalaya, most of the species were recorded

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-375380 376 G.N. Das, S. Gayen, A.K. Sanyal, V. Kumar, Zs. Bálint

Figs 1–4. Polyommatus dux from Kumaon Himalaya, India, collected in 2017. 1–2 – male: 1 – upperside (the spot in the wing surface median area is due to mishandling the specimen during the preparation procedure), 2 – underside; 3–4 – female: 3 – upperside; 4 – underside. Рис. 1–4. Polyommatus dux, Кумаон, Индия, Гималаи, 2017. 1–2 – самец: 1 – верхняя сторона (пятно в средней области крыла связано с повреждением во время препарирования), 2 – нижняя сторона; 3–4 – самка: 3 – верхняя сторона; 4 – нижняя сторона. from Central and Western regions between 3000 to 4000 m Underside (Fig. 2). Forewing: ground colour is light grey with altitude where stoliczkanus species group of Polyommatus white scale suffusion, basal area with some iridescent greenish to is the most diverse [Bálint, 1995]. One of these species, blue scaling. No spot in cell but sometimes with an obsolete white Kumaon Meadow Blue Polyommatus dux Riley, 1926, scaling round spot. A large white end-cell spot without black thin line. A series of seven discal black spots from 1b to 6 interspace, was known only on the basis of the type material. ­e ringed by white scales. Two spots closest to inner margin coalesced description of P. du x was based on the holotype male in space 1b and spots in 4, 5 and 6 arranged in a line or so on. specimen collected by H.G. Champion during the month Marginal area pattern suffused with white scaling, spots obsolete. of June-July in 1924 along Gori River, Milam village [Riley, Veins conspicuous black ending by some white scale suffusion. 1926], additionally two males and three females paratypes Black border thread-like, cilia whitish. Hindwing: basal and also originated from Milam and Burfu villages (Kumaon, postbasal area with metallic green scale suffusion up to discal area, Uttarakhand, India) [Bálint, 1999]. Furthermore, no sometimes beyond it. Postdiscal spots obsolete or inconspicuous, subsequent occurrence of the species was recorded since marginal area diffused with white scales. Terminal and costal border appearing as greyish thin line. Cilia white. its description from India [Singh, 2009; Smetacek, 2012; Male genitalia (Figs 5–9). Uncus strong, horseshoe shaped Singh, Sondhi, 2016; Sondhi, Kunte, 2018]. (lobe ventrally curved) and without having any dentation on ­e present account provides a detailed redescription ventral margin of the lobe. Subuncus slightly hooked, distal part as of P. du x which is being reported from India (type locality) long as proximal one. Tegumen strong with weak suspensorium. after 91 years, also describing the hitherto undocumented Vinculum also strong, with about same length as juxta. Valva male genitalia structures. ­e used terminology follows strong, angulated with sclerotized costal process. Aedeagus the works of Mehta [1933]. A brief account is also given straight, approximately 1 mm in length, subzonal element four on the first field observation of the species. ­e structural times longer than suprazonal. Female (Figs 3–4). Forewing costa length 11 mm (n = 1), coloration and the reduced marking typifying the hindwing outer margin somewhat longer than in male. ventral surface of the species are briefly discussed. Upperside (Fig. 3). Forewing: ground colour uniform brownish, with dark black thin border. Basal area with few Polyommatus dux Riley, 1926 iridescent green scales, in general spotless, sometimes having a (Figs 1–9) white discal spot traversed by a thin black line. Veins dark brown. Cilia as in male. Hindwing: brownish ground colour with some Polyommatus dux Riley, 1926: 278. D’Abrera, 1995: 500; shining blue scales at base. Veins dark brown, border black and Bálint, 1999: 28. thread like. Marginal area having some obsoleted iridescent blue Polyommatus eros dux: Evans, 1932: 232. scales with inconspicuous brown spots ornamented by some Polyommatus (group stoliczkanus) dux: Bálint, Johnson, crescent orange scaling. Cilia as in male. 1997: 24. Underside (Fig. 4): ground colour as in male. Forewing: Material. 1♀, Uttarakhand, Pithoragarh, Martoli, 3223 m, 3.10.2017; basal area with some shining blue scales, discal and postdiscal 1♂, Uttarakhand, Pithoragarh, Milam, 3497 m, 4.10.2017. Specimens are spots prominent; discal spot whitish and triangular in shape deposited to National Zoological Collection, Zoological Survey of India. with a black central line, postdiscal spots as in male. A series of Resdescription. Male (Figs 1–2). Forewing costa length 11 mm obsoleted spots at marginal area decreasing in order towards apex (n = 1). Forewing apex is somewhat produced and elongated in shape. with some iridescent orange scales on forewing. Terminal and Upperside (Fig. 1). Forewing: ground colour shining blue, with costal border black or brown. Cilia whitish. Hindwing: ground thread like black marginal border. ­in black or brown costal line, colour dark brown. Basal and subbasal area as in male, green slightly increasing in size towards apex. Veins with somewhat white suffusion extends beyond discal area. Spots more prominent than scale suffusion and at terminal area veins with black scaling. Cilia of in male. Triangular-shaped white spot at cell-end, a series of white anteterminal area blackish and terminal cilia white. Hindwing: costal postdiscal spots. Marginal area suffused with white scales, seven and anal areas with grey scaling, rest of ground colour as in forewing. orange spots with a dark brown crescent scaling of each orange Vein 7 completely black. Margin black, thread like. spots, may diffused. Cilia white with dark brown thread margin. A lesser-known Kumaon Meadow Blue Polyommatus dux Riley, 1926 377

Figs 5–9 . Male genitalia structures of Polyommatus dux. 5 – full view of genital capsule, dorsal view, valve are moved out and flattened; 6 –genital capsula, dorso-lateral view, aedeagus removed; 7 – uncus and subuncus, dorsal view; 8 – left valva, lateral view; 9 – aedeagus, dorsal view. Рис. 5–9. Генитальные структуры самца Polyommatus dux. 5 – общий вид генитальной капсулы дорсально, клапан выдвинут и сплющен; 6 – генитальная капсула, дорсолатерально, эдеагус удален; 7 – ункус и субункус, дорсально; 8 – левая вальва, вид сбоку; 9 – эдеагус, вид сверху.

Notes. ­e specimens were identified on the basis of 2019]. ­e taxa P. du x and P. fraterluci seem to be different comparison with the type material examined [Bálint, 1999] in their dorsal and ventral structural colorations, hence and illustrated [D’Abrera, 1995; Varshney, Smetacek, 2015]. further investigations are in need to test their colours In habitus, P. dux closely resembles to P. fraterluci Bálint, experimentally. 1995 (Himachal Pradesh, India) because of their reduced Distribution. Burfu, Martoli, Milam (District underside pattern and extensive metallic scaling in the Pithoragarh, Uttarakhand, India) (Fig. 10). hindwing basal area. On the basis of this observation, the Field observations (Figs 11–14). During the study latter taxon sometimes being considered as a subspecies of period, on 3rd October, 2017 at around 16:30–17:00 hrs. P. dux [Varshney, Smetacek, 2015]. Further investigations a pair of P. du x was found chasing each other and are necessary to clarify the status of these taxa in relation nectaring on Malva pusilla (Malvaceae) and Nepeta sp. not only between them but within the whole stoliczkanus (Lamiaceae) at Martoli village (near Burfu) (30.353462°N / complex. Experimentally it was demonstrated that in 80.191896°E, 3223 m), which comes under Munsyari Polyommatus icarus (Rottemburg,1775) via cold shock block of Pithoragarh district, Uttarakhand and associated it was easy to alter the underside wing pattern and the habitat is designated as Deciduous Alpine Scrub (15/C2) wing surface size of the individuals, but the structural [Champion, Sheth, 1968] (Fig. 11). Another pair of P. dux coloration was highly stress resistant [Kertész et al., 2017, was sighted at Burfu village (30.367164°N / 80.183769°E, 378 G.N. Das, S. Gayen, A.K. Sanyal, V. Kumar, Zs. Bálint

Fig. 10. Map showing the localities of Polyommatus dux, from Kumaon Himalaya, India. Рис. 10. Карта местонахождений Polyommatus dux, Кумаон, Индия, Гималаи.

Figs 11–14. Habitat of Polyommatus dux and butterflies in nature. 11 – habitat, Kumaon Himalaya, India, southern facing mountain sides at 3200 m, above an abandoned village, extensively grazed by livestock; 12 – male nectaring on Malva pusilla; 13 – female nectaring on Malva pusilla; 14 – mating pair. Рис. 11–14. Местообитание Polyommatus dux и бабочки в природе. 11 – местообитание, Кумаон, Индия, Гималаи, южные склоны гор с пастбищами на высоте 3200 м, над заброшенной деревней; 12 – самец, питающийся нектаром на Malva pusilla; 13 – самка, питающаяся нектаром на Malva pusilla; 14 – спаривающиеся особи. A lesser-known Kumaon Meadow Blue Polyommatus dux Riley, 1926 379

3343 m), on 4th October, 2017, around 09:00 hrs. On the high-altitude adaptation [Márk et al., 2009]. However, same day, a total of five individuals were also recorded this is supported only by empirical evidence and not by at Milam village (30.435711°N / 80.149915°E, 3497 m), observation. Probably the phenomenon is indeed a result including a mating pair (Figs 12–14). ­e ambient of a peculiar climate, but host plant utilization or a rare temperature and humidity were recorded 20–26 °C and molecular trait, or all together can be also the source of this 35–42% respectively on those days. ­e species have been pattern. We mention that most of the species Neolysandra treated as rare by Evans [1932]. Kocak, 1977, living in the western Palaearctic region and Geologically, the area falls within the Trans-Himalayan the Siberian-Mongolian Maculinea cyanecula (Eversmann, region (1C, Cold Arid Region of Eastern Himachal and 1848), all possess this peculiar trait. In phenomenon (3) Uttarakhand) [Kumar et al., 2017] that represents high Polyommatus dux is also involved as some of the females altitude desert type vegetation characterised by barren and we know have extensive blue coloration, but entire blue rocky areas with small shrubs patches typical of mountain females are not yet detected. We suspect that practically river valleys of Kumaon Himalaya. ­e vegetation is all the other congeneric species (e.g. P. annamaria Bálint, characterised by extensive patches of dwarf Rhododendron 1992, P. ariana Moore, 1865, P. stoliczkana (C. et R. Felder, and dwarf Junipers associated with shrubs like Cassiope [1865]), etc.) possess populations where female blue fastiglata (Ericaceae), Salix hylematica (Salicaceae), Malva phenotype dominates, that also mirrors the strong pusilla etc., occasionally surrounded by outlying patches of influence of environmental variables [Bálint et al., 2018]. subalpine forest trees like Betula sp. (Betulaceae). ­e area Any future study concentrating on the life history and is under dry and cold climatic conditions with prolonged ecology of P. du x would result many interesting data and winter extending from October to April where summer is scientific evidences in relation to these phenomena briefly very short, May to August. ­e temperature is low due to discussed above. high elevation; maximum temperature is recorded in the We recorded P. dux at the type locality after 91 years, month of July (32 to 35 °C) whereas minimum temperature which is also the second record of the species since its goes below 0 °C in the month of January (−22 °C). ­e discovery in India. ­e individuals were abundant after area receives scanty rainfall with 1242 mm average annual a certain ridge beyond 3200 m in the Milam valley. ­is precipitation with 263 mm precipitation in wettest month suggests that the species is a strict habitat specialist, and and 18 mm during driest month, when most of the valley most probably endemic to the region. Considering its remains under snow-cover. habitat fidelity and altitudinal range-restriction, P. du x can be of utmost important in future monitoring surveys Discussion assessing impact of climate atrocities on fragile Himalayan ecosystems, which will further promote habitat-based ­e stoliczkanus-group of Polyommatus is one of the nature conservation in the area. most complex groups of the genus. It is characterised by xero-mountain elements of the Himalayas, but it is also Acknowledgements found in the entire Pamir-Himalaya region, including Nepal [Shields, 1982; Tshikolovets, 2005; ­sikolovets, ­e authors are grateful to Ministry of Environment, Pagés, 2016; Tshikolovets et al., 2018]. According to Vila Forest and Climate Change (MoEFCC), Government of et al. [2011], this group of taxa might have been originated India, New Delhi and Govind Ballabh Pant National Institute from the Himalayas, and some of them now inhabit wide of Himalayan Environment & Sustainable Development areas in Eurasia. Many of them are basically high-altitude (GBPIHED), for financing the project “Lepidoptera (Insecta) species occurring at elevation between 3000 to 4000 m, as potential indicator taxa for tracking climate change in and about 45% of species are endemic [Bálint, 1995]. ­is Indian Himalayan Landscape” under National Mission on group of lycaenids displays three interesting phenomena: Himalayan Studies (NMHS) program (HSF2015-16_1003), (1) in many cases the pigment-based ventral wing pattern at Zoological Survey of India, Kolkata, West Bengal, India. is highly reduced, (2) hindwing ventral surface is often with Sincere thanks to the Uttarakhand Forest Department for extensive structural coloration and (3) in certain populations providing necessary permission to conduct field work. ­e the blue female phenotype is the dominant one. authors are grateful to the Director, Zoological Survey of ­e phenomenon (1) is certainly generated by India for the opportunity and encouragement. We are also environmental variables, and it is highly disputable how thankful to Dr. Angshuman Raha and entire Lepidoptera this trait is fixed genetically (Kertész et al. 2017, 2019]. team for their constant support during the study period. Phenomenon (2) is not restricted to Polyommatus, but Sincere gratitude towards Dr. Ishwari Rai, Indian Institute several lycaenid butterfly genera in this region display of Remote Sensing, for identifying plant species recorded similar metallic green hindwing ventral coloration from the study area. We are also thankful to Laxman (e.g. Lycaenini: Lycaena kasyapa (Moore, 1865); Prasad and Jaigeer Lal for providing necessary assistance Polyommatini: Agriades jaloka (Moore, 1874), Albulina during fieldwork. Zs. Bálint is supported by the Hungarian arcaseia (Fruhstorfer, 1916), almost all the Pamiria scientific grants (OTKA K 111741 & 115724). species (P. chrysopis (Grum-Grshimailo, 1888), P. galathea (Blanchard, 1844), P. omphisa (Moore, 1874), etc.), Patricius felicis (Oberthür, 1896), P. younghusbandi (Elwes, References 1906)). When physical properties of this phenomenon Bálint Zs. 1992a. Faunistic data of Lycaenid butterflies from the Himalayan were investigated it was considered that it was a trait for Region I (Lepidoptera, Lycaenidae). Linneana Belgica. 13(8): 395–422. 380 G.N. Das, S. Gayen, A.K. Sanyal, V. Kumar, Zs. Bálint

Bálint Zs. 1992b. New taxa of the Polyommatus section (sensu Eliot, 1973) Márk G., Vértesy Z., Kertész K., Bálint Zs., Biró L.P. 2009. Order-disorder from Central Asia. Studies on Central Palaearctic Lycaenids II. effects in structure and color relation of photonic-crystal-type (Lepidoptera, Lycaenidae). Linneana Belgica. 13(8): 423–445. nanostructures in butterfly wing scales. Physical Review E. 80(5): Bálint Zs. 1995. Two new Polyommatus species from the Himalayan 051903. DOI: 10.1103/PhysRevE.80.051903 region (Lepidoptera, Lycaenidae, Polyommatini). Annales Historico- Mehta D.R. 1933. Comparative morphology of the male genitalia in Naturales Musei Nationalis Hungarici. 87: 93–102. Lepidoptera. Records of the Indian Museum. 35: 197–266. Bálint Zs. 1999. Annotated list of type specimens of Polyommatus sensu Eliot Riley N.D. 1926. Entomological Notes on a Tour of the Kumaon-Tibet Border of the Natural History Museum, London (Lepidoptera, Lycaenidae). in 1924 by H. G. Champion, M.A., F.E.S. with descriptions of three Neue Entomologische Nachrichten. 46: 1–89. new Rhopalocera. Entomologist’s Monthly Magazine. 62: 271–279. Bálint Zs., Johnson K. 1997. Reformation of the Polyommatus section with Shields O. 1982. International Nepal Himalaya Expedition for Lepidoptera a taxonomic and biogeographic overview (Lepidoptera, Lycaenidae, Palaearctica (ENHELP) 1977, Report No. 1: Introduction and Polyommatini). Neue Entomologische Nachrichten. 40: 1–68. Lycaenidae. Journal of Research on the Lepidoptera. 20(2): 65–80. Bálint Zs., Kertész K., Piszter G., Biró L.P. 2018. When she is getting more Singh A.P. 2009. Butterflies of Kedarnath Musk Deer Reserve, Garhwal observable: A hypothesis why otherwise brown lycaenid females Himalayas, India. Journal of ‚reatened Taxa. 1(1): 37–48. DOI: are getting blue (Lepidoptera: Lycaenidae, Polyommatini). In: ­e 10.11609/JoTT.o1873.37-48 ­ird International Congress of the Middle East Butterflies. Tel Aviv, Singh A.P., Sondhi S. 2016. Butterflies of Garhwal, Uttarakhand, western Israel, 31.5.2018–2.6.2018. Book of Abstracts. Beit Arye: ­e Israeli Himalaya, India. Journal of ‚reatened Taxa. 8(4): 8666–869. DOI: Lepidopterist’s Society: 16–17. 10.11609/jott.2254.8.4.8666-8697 Champion H.G., Seth S.K. 1968. A revised survey of the forest types of India. Smetacek P. 2012. Butterflies (Lepidoptera: Papilionoidea and Hesperoidea) New Delhi: Government of India Press: 404 p. and other protected fauna of Jones Estate, a dying watershed in the D’Abrera B. 1995. Butterflies of the Holarctic Region. Part III. Nymphalidae Kumaon Himalaya, Uttarakhand, India. Journal of ‚reatened Taxa. (concl.), Libytheidae, Riodinidae & Lycaenidae. Victoria: Hill House. 4(9): 2857–2874. DOI: 10.11609/JoTT.o3020.2857-74 i–vii, 333–524 p. Sondhi S., Kunte K. 2018. Butterflies of Uttarakhand – A Field Guide. Bishen Das G.N., Gayen S., Ali M., Jaiswal R.K., Lenin E.A., Chandra K. 2018. Singh Mahendra Pal Singh (Dehradun), Titli Trust (Dehradun), Insecta: Lepidoptera (Butterflies). In: Faunal Diversity of Indian National Centre for Biological Sciences (Bengaluru), and Indian Himalaya. Kolkata: Zoological Survey of India: 611–650. Foundation for Butterflies (Bengaluru). 310 p. Evans W.H. 1932. ­e Identification of Indian Butterflies. 2nd Revised Tshikolovtes V.V. 2005. ­e Butterflies of Ladak (N.-W. India). Brno-Kyiv. Edition. Bombay: Bombay Natural History Society. 454 p. 176 p. Kertész K., Piszter G., Horváth Zs.E., Bálint Zs., Biró L.P. 2017. Changes Tshikolovets V., Pagès J. 2016. ­e Butterflies of Pakistan. Pardubice. 392 p. in structural and pigmentary colours in response to cold stress in Tshikolovets V., Pliushch I., Pak O., Skrylnik Yu. 2018. ­e Butterflies of Polyommatus icarus. Scientific Reports. 7: 1118. DOI: 10.1038/s41598- Afghanistan. Pardubice. 328 p. 017-01273-7 Varshney R.K., Smetacek P. 2015. A synoptic catalogue of the Butterflies Kertész K., Piszter G., Bálint Zs., Biró L.P. 2019. Biogeographic patterns in of India. New Delhi: Butterfly Research Centre, Bhimtal & Indinov. the structural blue of male Polyommatus icarus butterflies. Scientific 261 p. reports. 9(1): 2338. DOI: 10.1038/s41598-019-38827-w Vila R., Bell Ch.D., Macniven R., Goldman-Huertas B., Ree R.H., Kumar A., Adhikari B.S., Rawat G.S. 2017. Biogeographic delineation of the Marshall Ch.R., Bálint Zs., Johnson K., Benyamini D., Pierce N.E. Indian Trans-Himalaya: need for revision. Current Science. 113(6): 2011. Phylogeny and Palaeoecology of Polyommatus blue butterflies 1032–1033. show Beringia was a climate-regulated gateway to the New World. Mani M.S. 1986. Butterflies of the Himalaya. New Delhi: Dr. W. Junk Proceedings of the Royal Society B. 278(1719): 2737–2744. DOI: Publishers, Oxford & IBH Publishing Co. 181 p. 10.1098/rspb.2010.2213

Received / Поступила: 4.04.2019 Accepted / Принята: 15.08.2019 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 381–386 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Материалы к фауне чешуекрылых (Lepidoptera) Цимлянских песков в Ростовской области (Россия). Сообщение I

Materials to the Lepidoptera fauna of Tsimlyansk Sands in Rostov Region of Russia. Report I

© Р.В. Романчук1, Э.А. Хачиков1, С.В. Поушкова2 © R.V. Romanchuk1, E.A. Khachikov1, S.V. Poushkova2

1Южный федеральный университет, пр. Стачки, 194/1, Ростов-на-Дону 344090 Россия 2Федеральный исследовательский центр Южный научный центр Российской академии наук, пр. Чехова, 41, Ростов-на-Дону 344006 Россия

1Southern Federal University, Stachki av., 194/1, Rostov-on-Don 344006 Russia. E-mail: [email protected] 2Federal Research Centre the Southern Scientific Centre of the Russian Academy of Sciences, Chekhov av., 41, Rostov-on-Don 344006 Russia. E-mail: [email protected]

Ключевые слова: Lepidoptera, Heterocera, видовой состав, экологические группы, донские флювиогляциальные пески. Key words: Lepidoptera, Heterocera, species composition, ecological groups, Don River fluvio-glacial sands.

Резюме. Приведены новейшие сведения о from 12 families are registered in Tsimlyansk District. фауне разноусых чешуекрылых Цимлянских песков We collected 65 species, from which 28 ones collected Ростовской области. Дополнен видовой состав for the first time in Tsimlyansk Sands (Nolidae (1), Heterocera Цимлянского района и региона в целом. (1), (7), Geometridae (7), Cossidae (3), На сегодняшний день видовой состав разноусых Sessiidae (1), Sphingidae (2), Pyralidae (2), Crambidae (2), чешуекрылых Цимлянского района составляет 323 Zygaenidae (2)) and one species, Eilicrinia subcordiaria вида из 12 семейств. Мы зарегистрировали 65 видов (Herrich-Schäffer, 1852) is recorded for Rostov Region for из 12 семейств. Впервые для Ростовской области the first time. ­e majority of species belongs достоверно указывается пяденица Eilicrinia subcordiaria to the following ecological groups: steppe xerophilous (Herrich-Schäffer, 1852), а для Цимлянских песков (29 species), steppe hemixerophilous (28 species) and 28 видов из различных семейств: Nolidae (1), Erebidae (1), forest mesophilous (22 species). ­e following ecological Noctuidae (7), Geometridae (7), Cossidae (3), Sessiidae (1), groups of Pyraloidea moths dominate: steppe mesophilous Sphingidae (2), Pyralidae (2), Crambidae (2), Zygaenidae (2). (27 species), polizonal eurybionts (23 species) and meadow Большая часть представителей надсемейства mesophilous (19 species). Among Geometridae the most Noctuoidea относится к степным ксерофилам diverse species are from hemixerophilous (20 species) and (29 видов), степным гемиксерофилам (28 видов) meadow-steppe mesophiles (13 species) ecological groups. и лесным мезофилам (22 вида). Доминирующие экологические группы огневкообразных представлены Введение степными мезофилами (27 видов), полизональными эврибионтами (23 вида) и луговыми мезофилами Цимлянские пески (Доно-Цимлянский песчаный (19 видов); пядениц – гемиксерофилами (20 видов) и массив) расположены на территории Ростовской и лугово-степными мезофилами (13 видов). Волгоградской областей. В ландшафте превалирует Abstract. ­e study provides the latest information грядово-ложбинный рельеф, состоящий из трех on the Heterocera fauna of Tsimlyansk Sands in Rostov параллельно вытянутых долинообразных понижений, Region. ­is sands near Don River (Rostov and Volgograd рассекающих массив с северо-северо-востока на regions of Russia) have the fluvio-glacial Pleistocene юго-юго-запад, разграниченных на всем протяжении origin, unique landscapes with sand dunes, halophytic грядами высоких бугристых песков [Демина, biotopes and birch groves between the dunes; fauna of 2009]. Цимлянские пески относятся к азональным the area contains the diverse and atypical insects for the ландшафтам степной области и содержат ряд steppe zone of Europe. ­e territory of Tsimlyansk Sands ксеротермических плейстоценовых реликтов [Чиграй, has the great importance for protection of rare animals Набоженко, 2017]. listed in regional, the All-Russian and the International Растительный покров Доно-Цимлянского Red Books. ­e species composition of Heterocera песчаного массива носит азональный характер и was summarized and updated for Tsimlyansk District отличается богатством и своеобразием. Псаммофитные and Rostov Region. In total, 323 species of butterflies и гемипсаммофитные степи сочетаются с богатыми

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-381386 382 Р.В. Романчук, Э.А. Хачиков, С.В. Поушкова

настоящими и заболоченными лугами, болотной, Собранный материал хранится в частной коллекции прибрежно-водной и лесной растительностью Р.В. Романчука (Ростов-на-Дону, Россия). [Зозулин, 1992; Демина, 2009]. Новые для Цимлянского района и Цимлянских Песчаные массивы Среднего и Нижнего Дона песков виды бабочек отмечены знаком *, новый для имеют флювиогляциальный генезис и современный Ростовской области вид – знаком **. пустынный облик приобрели после отступления донской морены Днепровского ледника, являясь реликтами Список таксонов плювиальной эпохи [Полынов, 1951]. Цимлянский песчаный массив расположен в подзоне каштановых почв, Надсемейство Noctuoidea которые формируются на неперевеянных (плейстоцен- Семейство Nolidae голоценовые легкосупесчаные почвы) и перевеянных Подсемейство Eariadinae песках разного возраста в зависимости от фазы *Earias clorana (Linnaeus, 1761) дефляции (голоценовые песчаные почвы) [Демина, 2009]. Для данной территории наиболее характерны 4 экз., западнопалеарктический лесной мезофил, голоценовые связнопесчаные почвы террас на песках, обычный в Ростовской области. перевеянных в позднеледниковую фазу дефляции 18–10 тыс. л. н. [Гаель, Смирнова, 1999]. Семейство Erebidae Несмотря на общую изученность Ростовской Подсемейство Eublemminae области, в отношении фауны чешуекрылых Доно- Eublemma pallidula (Herrich-Schäffer, 1856) Цимлянский песчаный массив остается одной из самых малоисследованных территорий. Первые данные 2 экз., средиземноморский вид, степной ксерофил, по фауне Heterocera этой части региона приведены редкий и локальный в Ростовской области. в работе немецких исследователей прошлого века [Alberti, Soffner, 1962], осуществлявших сбор бабочек Подсемейство Herminiinae в Ростовской области в 1942 году. Новейшие сведения *Zanclognatha lunalis (Scopoli, 1763) о разноусых чешуекрылых Цимлянского района (пос. Саркел) имеются в ряде публикаций [Poltavsky 3 экз., транспалеарктический вид, лесной мезофил, et al., 2015, 2016; Полтавский, 2016; Poltavsky, Artokhin, обычный, местами массовый в Ростовской области. 2018]. Уникальность природных комплексов Цимлянского Подсемейство Catocalinae района определяет необходимость интенсификации cailino (Lefebvre, 1827) энтомологических исследований на данной территории. Целью работы был сбор дополнительных сведений 1 экз., средиземноморский вид, степной ксерофил, о таксономическом составе чешуекрылых группы обычный, но малочисленный в Ростовской области. Heterocera Цимлянских песков в Ростовской области и обобщение их с данными предыдущих исследований. Grammodes stolida (Fabricius, 1775) Работа посвящается светлой памяти Б.В. Страдомского. 1 экз., тропический и субтропический вид, полизональный гемиксерофил, обычный, но малочисленный в Ростовской области. Материал и методы Callistege fortalitium (Tauscher, 1809) Сбор чешуекрылых группы Heterocera осуществлен на территории Ростовской области 1 экз., монголо-сибирский вид, степной ксерофил, в окрестностях хутора Нижнегнутов у границы с очень редкий в Ростовской области. Волгоградской областью (48°02ʹ29.1ʺN / 42°21ʹ00.5ʺE) 22 июня 2019 года. Использовалась ртутная лампа Lygephila craccae (Denis et Schiffermüller, 1775) Philips HPL-N 250W/542 E40, размещенная перед белым светоотражающим экраном. Представители семейства 2 экз., транспалеарктический вид, полизональный Cossidae собраны вручную в степном биотопе. гемиксерофил, обычный в Ростовской области. Экологические группы представителей надсемейства Noctuoidea приводятся в соответствии Семейство Noctuidae с монографией Полтавского [2016]. Принадлежность Подсемейство Noctuinae видов Pyraloidea и Geometridae к экологическим Agrotis ipsilon (Hufnagel, 1766) группам определялась по совокупности сведений о местообитании и питании, предоставленных 1 экз., космополитический вид, полизональный А.Н. Полтавским, а также полученных в результате эврибионт, обычный в Ростовской области. собственных наблюдений. Система бабочек дана по современным каталогам Noctua interposita (Hübner, [1789]) [Аникин и др., 2008; Полтавский, 2016]. Верификация таксонов проводилась с использованием справочной 1 экз., средиземноморский вид, лугово-степной коллекции А.Н. Полтавского (Ростов-на-Дону, Россия). мезофил, обычный в Ростовской области. Материалы к фауне чешуекрылых (Lepidoptera) Цимлянских песков в Ростовской области 383

Подсемейство Eustrotiinae Подсемейство Hadeninae *Phyllophila obliterata (Rambur, 1833) Lacanobia oleracea (Linnaeus, 1758)

1 экз., транспалеарктический вид, степной ксерофил, 1 экз., транспалеарктический вид, степной обычный в Ростовской области. гемиксерофил, массовый в Ростовской области.

Подсемейство Heliothinae Anarta trifolii (Hufnagel, 1766) *Periphanes delphinii (Linnaeus, 1758) 5 экз., голарктический вид, степной ксерофил, 1 экз., средиземноморский вид, полизональный массовый в Ростовской области. ксерофил, редкий, занесен в региональную Красную книгу (категория I – под угрозой исчезновения) [Терсков, 2014]. Семейство Arctiidae Подсемейство Arctiinae Phragmatobia fuliginosa (Linnaeus, 1758) Подсемейство Acontiinae Acontia trabealis (Scopoli, 1763) 1 экз., голарктический вид, полизональный эврибионт, массовый в Ростовской области. 5 экз., транспалеарктический вид, степной мезофил, массовый в Ростовской области. Подсемейство Lithosiinae Eilema pygmaeola (Doubleday, 1847) Подсемейство Acronictinae Acronicta megacephala (Denis et Schiffermüller, 1775) 1 экз., евро-сибирский вид, лесной мезофил, локально массовый в Ростовской области. 3 экз., евро-сибирский вид, степной мезофил, обычный в Ростовской области. Надсемейство Geometroidea Семейство Geometridae *Simyra nervosa (Denis et Schiffermüller, 1775) Подсемейство Geometrinae *Pseudoterpna pruinata (Hufnagel, 1767) 2 экз., транспалеарктический вид, степной мезофил, редкий и локальный в Ростовской области. 2 экз., палеарктический вид, степной мезофил, обычный в Ростовской области. *Simyra albovenosa (Goeze, 1781) Подсемейство Ennominae 1 экз., транспалеарктический вид, луговой *Chiasmia clathrata (Linnaeus, 1758) гигрофил, редкий в Ростовской области, потенциальный вредитель риса. 1 экз., палеарктический вид, лугово-степной мезофил, обычный в Ростовской области. Подсемейство Metoponiinae Aegle kaekeritziana (Hübner, [1799]) *Narraga tessularia (Metzner, 1845)

3 экз., восточносредиземноморский вид, степной 1 экз., палеарктический вид, степной ксерофил, ксерофил, обычный в Ростовской области. обычный в Ростовской области. *Stegania cararia (Hubner, 1790) Подсемейство Xyleninae Cosmia diffinis (Linnaeus, 1767) 1 экз., палеарктический вид, лугово-степной мезофил, обычный в Ростовской области. 3 экз., западнопалеарктический вид, лесной мезофил, массовый в Ростовской области. **Eilicrinia subcordiaria (Herrich-Schäffer, 1852) (Рис. 1, 2) *Cosmia trapezina (Linnaeus, 1758) 7♂, 11♀ (leg. Э.А. Хачиков), палеарктический вид, 2 экз., транспалеарктический вид, лесной мезофил, степной мезофил, новый для Ростовской области. массовый в Ростовской области. Замечания. Вид был определен на основе морфологии гениталий. В «Каталоге чешуекрылых *Abromias oblonga (Haworth, 1809) (Lepidoptera) России» [Миронов и др., 2008] данный вид приводится для всего Волго-Донского региона, 1 экз., транспалеарктический вид, лесной мезофил, в который входят Саратовская, Волгоградская и редкий в Ростовской области. Ростовская области.

* suspecta (Hübner, [1817]) Peribatodes rhomboidaria (Denis et Schiffermuller, 1775)

1 экз., голарктический вид, лесной мезофил, 2 экз., палеарктический вид, степной мезофил, обычный в Ростовской области. обычный в Ростовской области. 384 .В. Романчук, Э.А. Хачиков, С.В. Поушкова

Подсемейство Larentiinae *Camptogramma bilineata (Linnaeus, 1758)

1 экз., палеарктический вид, лугово-степной мезофил, обычный в Ростовской области.

Надсемейство Cossoidea Семейство Cossidae Подсемейство Cossinae *Parahypopta caestrum (Hubner, 1808)

9 экз., палеарктический вид, степной мезофил, обычный в Ростовской области.

*Cossus cossus (Linnaeus, 1758)

1 экз., палеарктический вид, лесной мезофил, обычный в Ростовской области.

Подсемейство Zeuzerinae *Phragmataecia castaneae (Hubner, 1790)

3 экз., палеарктический вид, луговой гигрофил, обычный в Ростовской области.

Надсемейство Sesioidea Семейство Sesiidae Подсемейство Sesiinae *Synanthedon andrenaeformis (Laspeyres, 1801)

Рис. 1–2. Eilicrinia subcordiaria (Herrich-Schäffer, 1852), общий вид. 1 – самец; 2 – самка. 1 экз., палеарктический вид, лесной мезофил, Figs 1–2. Eilicrinia subcordiaria (Herrich-Schäffer, 1852), general view. редкий и локальный в Ростовской области. 1 – male; 2 – female. Надсемейство Bombycoidea Isturgia arenacearia (Denis et Schiffermuller, 1775) Семейство Sphingidae Подсемейство Smerinthinae *Laothoe populi (Linnaeus, 1758) 1 экз., палеарктический вид, лугово-степной мезофил, обычный в Ростовской области. 1 экз., палеарктический вид, лесной мезофил, обычный в Ростовской области. Подсемейство Sterrhinae Idaea ochrata (Scopoli, 1763) Подсемейство Macroglossinae *Deilephila porcellus (Linnaeus, 1758) 7 экз., палеарктический вид, гемиксерофил, массовый в Ростовской области. 1 экз., палеарктический вид, полизональный эврибионт, обычный, иногда массовый в Ростовской Idaea rufaria (Hubner, 1799) области.

2 экз., палеарктический вид, гемиксерофил, Надсемейство Pyraloidea массовый в Ростовской области. Семейство Pyralidae Подсемейство Phycitinae Scopula ornata (Scopoli, 1763) lineana (Scopoli, 1786) 1 экз., палеарктический вид, гемиксерофил, обычный в Ростовской области. 4 экз., палеарктический вид, полизональный эврибионт, обычный в Ростовской области. Scopula virgulata (Denis et Schiffermuller, 1775) * ceratoniae (Zeller, 1839)

3 экз., палеарктический вид, лугово-степной 4 экз., космополитический вид, лесной мезофил, ксерофил, обычный в Ростовской области. обычный в Ростовской области.

*Cyclophora albiocellaria (Hubner, 1789) nebulella (Denis et Schiffermuller, 1775)

2 экз., палеарктический вид, лугово-степной 5 экз., палеарктический вид, полизональный мезофил, обычный в Ростовской области. эврибионт, обычный в Ростовской области. Материалы к фауне чешуекрылых (Lepidoptera) Цимлянских песков в Ростовской области 385

Etiella zinckenella (Treitschke, 1832) Подсемейство Odontiinae Aporodes floralis (Hubner, 1809) 3 экз., палеарктический вид, полизональный эврибионт, обычный в Ростовской области. 1 экз., палеарктический вид, степной ксерофил, обычный в Ростовской области. Pseudophycita deformella (Moschler, 1866) Подсемейство Schoenobiinae 2 экз., палеарктический вид, лугово-степной *Scirpophaga praelata (Scopoli, 1763) мезофил, обычный в Ростовской области. 1 экз., палеарктический вид, луговой гигрофил, Подсемейство Galleriinae обычный в Ростовской области. *Achroia grisella (Fabricius, 1794) *Donacaula forficella (­unberg, 1794) 3 экз., палеарктический вид, лугово-степной мезофил, обычный в Ростовской области. 2 экз., палеарктический вид, луговой гигрофил, обычный в Ростовской области. zelleri (Joannis, 1932) Подсемейство Spilomelinae 3 экз., палеарктический вид, лугово-степной Pleuroptya ruralis (Scopoli, 1763) мезофил, массовый в Ростовской области. 1 экз., палеарктический вид, лесной мезофил, anella (Denis et Schiffermuller, 1775) обычный в Ростовской области.

5 экз., палеарктический вид, лугово-степной Надсемейство Zygaenoidea мезофил, массовый в Ростовской области. Семейство Zygaenidae Подсемейство Zygaeninae Семейство Crambidae *Zygaena loti (Denis et Schiffermuller, 1775) Подсемейство Crambinae Chilo luteellus (Motschulsky, 1866) 1 экз., палеарктический вид, степной ксерофил, обычный в Ростовской области. 9 экз., палеарктический вид, луговой гигрофил, обычный в Ростовской области. *Zygaena purpuralis (Brunnich, 1763)

Chrysoteuchia culmella (Linnaeus, 1758) 1 экз., палеарктический вид, степной ксерофил, обычный в Ростовской области. 11 экз., палеарктический вид, полизональный эврибионт, массовый в Ростовской области. Надсемейство Yponomeutoidea Семейство Yponomeutidae Euchromius ocellea (Haworth, 1811) Подсемейство Yponomeutinae Yponomeuta evonymella (Linnaeus, 1758) 7 экз., палеарктический вид, луговой мезофил, массовый в Ростовской области. 1 экз., палеарктический вид, лесной мезофил, обычный в Ростовской области. Подсемейство Pyraustinae Pyrausta aurata (Scopoli, 1763) Обсуждение 1 экз., палеарктический вид, степной ксерофил, обычный в Ростовской области. Мы выявили 65 видов разноусых чешуекрылых из 12 семейств: Nolidae – 1, Erebidae – 6, Noctuidae – 15, Pyrausta sanguinalis (Linnaeus, 1767) Arctiidae – 2, Geometridae – 13, Cossidae – 3, Sessiidae – 1, Sphingidae – 2, Pyralidae – 8, Crambidae – 11, 10 экз., палеарктический вид, степной ксерофил, Zygaenidae – 2, Yponomeutidae – 1. В 10 из 12 указанных массовый в Ростовской области. семейств было отмечено 28 новых для исследуемой территории видов: Nolidae – 1, Erebidae – 1, Loxostege sticticalis (Linnaeus, 1761) Noctuidae – 7, Geometridae – 7, Cossidae – 3, Sessiidae – 1, Sphingidae – 2, Pyralidae – 2, Crambidae – 2, 1 экз., палеарктический вид, полизональный Zygaenidae – 2. эврибионт, массовый в Ростовской области. Общий видовой состав чешуекрылых группы Heterocera Цимлянских песков и Цимлянского района Ostrinia nubilalis (Hubner, 1796) представлен 323 видами бабочек. Три наиболее крупные таксономические группы включают Noctuoidea 1 экз., палеарктический вид, степной мезофил, (147 видов), Pyraloidea (110 видов) и Geometridae массовый в Ростовской области. (53 вида). 386 Р.В. Романчук, Э.А. Хачиков, С.В. Поушкова

Всего для фауны разноусых чешуекрылых Благодарности Цимлянского района Ростовской области было известно 294 вида [Alberti, Soffner, 1962; Полтавский, Авторы выражают благодарность Лиман, 2010; Poltavsky et al., 2015, 2016; Полтавский, А.Н. Полтавскому, старшему научному сотруднику 2016; Poltavsky, Artokhin, 2018]: Noctuoidea – 138, Ботанического сада Южного федерального Geometridae – 46, Pyraloidea – 106, Sphingidae – 3, университета (Ростов-на-Дону, Россия), за помощь в Lasiocampidae – 1. верификации таксонов, за предоставленные материалы На текущий момент количество учтенных видов по семейству Geometridae и надсемейству Pyraloidea, за совкообразных возросло до 147 (30.2% от фауны ценные рекомендации и консультацию при подготовке Noctuoidea Ростовской области), огневкообразных рукописи, а также рецензентам за ценные замечания. до 110 (56.1% от фауны Pyraloidea Ростовской области), Авторы признательны Н.С. Елфимовой, пядениц до 53 (30.1% от фауны Geometridae Ростовской специалисту лаборатории гидробиологии центра области), бражников до 5 (27.8% от фауны Sphingidae аквакультуры Азово-Черноморского филиала ФГБНУ Ростовской области и 0.4% от фауны чешуекрылых «ВНИРО» («АзНИИРХ», Ростов-на-Дону, Россия), региона). Данные по Cossidae, Sesiidae и Zigaenidae для за фотографии Eilicrinia subcordiaria и их цифровую Цимлянского района указываются впервые. обработку. Таким образом, выявленный видовой состав чешуекрылых группы Heterocera Цимлянских песков и Цимлянского района составляет 323 вида из 12 семейств Литература

(32.6% от фауны Heterocera Ростовской области и 28.5% Гаель А.Г., Смирнова Л.Ф. 1999. Пески и песчаные почвы. М.,: Изд-во от всей фауны чешуекрылых Ростовской области). ГЕОС. 252 с. Выявленные виды совкообразных, огневкообразных Демина О.Н. 2009. Сообщества класса Festucetea vaginatae Soo em. и пядениц принадлежат к широкому спектру Vicherek 1972 на территории Цимлянских песков в Ростовской области. В кн.: Материалы Московского центра Русского экологических групп. Большинство Noctuoidea географического общества. Биогеография. Выпуск 15. М.: Изд-во относится преимущественно к степным ксерофилам Московского центра Русского географического общества: 27–38. (29 видов), степным гемиксерофилам (28 видов) и Зозулин Г.М. 1992. Леса Нижнего Дона. Ростов-на-Дону: Изд-во Ростовского университета. 208 с. лесным мезофилам (22 вида). В меньшей степени Каталог чешуекрылых (Lepidoptera) России. 2008. СПб. – М.: представлены полизональные эврибионты (15 видов), Товарищество научных изданий КМК. 424 с. лесные гемиксерофилы (9 видов), полизональные Миронов В.Г., Беляев В.А., Василенко С.В. 2008. Geometridae. гемиксерофилы (8 видов), степные мезофилы (7 видов) В кн.: Каталог чешуекрылых (Lepidoptera) России. СПб. – М.: Товарищество научных изданий КМК: 190–226. и лугово-степные мезофилы (6 видов). Наиболее Полтавский А.Н. 2016. Совкообразные чешуекрылые (Lepidoptera: малочисленные группы включают луговых гигрофилов Noctuoidea) Ростовской области. Ростов-на-Дону: Изд-во (5 видов), полизональных мезофилов (5 видов), луговых Южного федерального университета. 127 с. Полтавский А.Н., Лиман Ю.Б. 2010. Каталог Macrolepidoptera мезофилов (4 вида), лугово-степных гемиксерофилов Ростовской области (по результатам исследований 1972–2009 гг.). (4 вида), лесных ксерофилов (1 вид), полизональных Методическое пособие. Ростов-на-Дону: Изд-во ООП ГОУ ДОД гемиксерофилов (1 вид), луговых гемиксерофилов ОЦТТУ. 58 с. (1 вид), лугово-степных ксерофилов (1 вид) и Полынов Б.Б. 1951. Избранные труды. М.: Изд-во АН СССР. 751 с. Терсков Е.Н. 2014. Шпорниковая совка Periphanes delphinii Linnaeus, полизональных ксерофилов (1 вид). 1758. В кн.: Красная книга Ростовской области. Том 1. Животные. Среди экологических групп огневкообразных Ростов-на-Дону: Министерство природных ресурсов и экологии наибольшим числом видов выделяются степные Ростовской области: 123. мезофилы (27 видов), полизональные эврибионты Чиграй С.Н., Набоженко М.В. 2017. Жуки-чернотелки рода Anatolica Eschscholtz, 1831 (Coleoptera: Tenebrionidae: Pimeliinae: Tentyriini) (23 вида) и луговые мезофилы (19 видов). В меньшей донских песков. В кн.: Труды Русского энтомологического степени в сборах присутствуют лесные мезофилы общества. Том 88(1). Насекомые и паукообразные Приазовья. (12 видов), лугово-степные мезофилы (11 видов), СПб.: Зоологический институт РАН: 46–57. Alberti B., Soffner J. 1962. Zur Kenntnis der Lepidopteren-Fauna Sud- und луговые гигрофилы (9 видов) и степные ксерофилы Sudostrusslands. Munchner entomologishe Geselschaft. 52(1): 146–198. (9 видов). Poltavsky A.N., Artokhin K.S. 2018. ­e Pyraloidea (Lepidoptera) of the Среди экологическихе групп пядениц Rostov-on-Don Province of Russia, III. Family Pyralidae. Entomologist’s доминирующими являются гемиксерофилы (20 видов) Gazette. 69(3): 86–209. DOI: 10.31184/G00138894.693.1637 Poltavsky A.N., Artokhin K.S., Poltavsky M.A. 2015. ­e Pyraloidea и лугово-степные мезофилы (13 видов). В меньшей (Lepidoptera) of the Rostov-on-Don Province of Russia, I. Family степени представлены степные ксерофилы (6 видов), Crambidae (excluding subfamilies Crambinae, Heliothelinae, лесные мезофилы (4 вида) и степные мезофилы (4 вида). Cybalominae). Entomologist’s Gazette. 66(3): 99–119. Poltavsky A.N., Artokhin K.S., Poltavsky M.A. 2016. ­e Pyraloidea Наиболее малочисленные группы включают луговых (Lepidoptera) of the Rostov-on-Don Province of Russia, II. Family мезофилов (1 вид) и полизональных эврибионтов Crambidae (subfamily Crambinae). Entomologist’s Gazette. 67(2): (1 вид). 85–103.

Поступила / Received: 28.08.2019 Принята / Accepted: 6.12.2019 R.V. Romanchuk, E.A. Khachikov, S.V. Poushkova

References

Alberti B., Soffner J. 1962. Zur Kenntnis der Lepidopteren-Fauna Sud-und Poltavsky A.N. 2016. Sovkoobraznye cheshuekrylye (Lepidoptera: Sudostrusslands. Munchner entomologishe Geselschaft. 52(1): 146– Noctuoidea) Rostovskoy oblasti [Noctuid moths (Lepidoptera: 198. Noctuoidea) of Rostov Region]. Rostov-on-Don: Southern Federal Chigray S.N., Nabozhenko M.V. 2017. Darkling-beetles of the genus University. 127 p. (in Russian). Anatolica Eschscholtz, 1831 (Coleoptera: Tenebrionidae: Poltavsky A.N., Artokhin K.S. 2018. e Pyraloidea (Lepidoptera) of the Pimeliinae: Tentyriini) of the Don River sands. In: Trudy Russkogo Rostov-on-Don Province of Russia, III. Family Pyralidae. Entomologist’s entomologicheskogo obshchestva. Tom 88(1). Nasekomye i Gazette. 69(3): 86–209. DOI:10.31184/G00138894.693.1637 paukoobraznye Priazov’ya [Proceedings of the Russian Entomological Poltavsky A.N., Artokhin K.S., Poltavsky M.A. 2015. e Pyraloidea Society. Vol. 88(1). Insects and of the Cis-Azov Region]. (Lepidoptera) of the Rostov-on-Don Province of Russia, I. Family St Petersburg: Zoological Institute of the Russian Academy of Crambidae (excluding subfamilies Crambinae, Heliothelinae, Sciences: 46–57 (in Russian). Cybalominae). Entomologist’s Gazette. 66(3): 99–119. Demina O.N. 2009. Associations of the class Festucetea vaginatae Soo em. Poltavsky A.N., Artokhin K.S., Poltavsky M.A. 2016. e Pyraloidea Vicherek 1972 on the territory of Tsimlyansk Sands in Rostov Region.. (Lepidoptera) of the Rostov-on-Don Province of Russia, II. Family In: Materialy Moskovskogo tsentra Russkogo geograficheskogo Crambidae (subfamily Crambinae). Entomologist’s Gazette. 67(2): 85–103. obshchestva. Biogeografiya. Vypusk 15 [Materials of Moscow Poltavsky A.N., Liman Yu.B. 2010. Katalog Macrolepidoptera Rostovskoy Center of the Russian Geographical Society. Biogeography. Issue 15]. oblasti (po rezul’tatam issledovaniy 1972–2009 gg.) [Catalogue of Moscow: Moscow Center of the Russian Geographical Society: 27–38 Macrolepidoptera of Rostov Region (based on research 1972–2009)]. (in Russian). Rostov-on-Don: Regional Center for Technical Creativity of Students. Gael’ A.G., Smirnova L.F. 1999. Peski i peschanye pochvy [Sands and sandy 58 p. (in Russian). soils]. Moscow: GEOS. 252 p. (in Russian). Polynov B.B. 1951. Izbrannye trudy [Selected works]. Moscow: Academy of Katalog cheshuekrylykh (Lepidoptera) Rossii [Catalogue of the Lepidoptera Sciences of the USSR. 751 p. (in Russian). of Russia]. 2008. St Petersburg – Moscow: KMK Scientific Press. Terskov E.N. 2014. Periphanes delphinii Linnaeus, 1758. In: Krasnaya kniga 424 p. (in Russian). Rostovskoy oblasti. Tom 1. Zhivotnye [Red Book of the Rostov Region. Mironov V.G., Belyaev V.A., Vasilenko S.V. 2008. Geometridae. In: Katalog Volume 1. Animals]. Rostov-on-Don: Ministry of Natural Resources cheshuekrylykh (Lepidoptera) Rossii [Catalogue of the Lepidoptera and Ecology of the Rostov Region: 123 (in Russian). of Russia]. St Petersburg – Moscow: KMK Scientific Press: 190–226 Zozulin G.M. 1992. Lesa Nizhnego Dona [Forests of the Lower Don]. (in Russian). Rostov-on-Don: Rostov University. 208 p. (in Russian). Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 387–399 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Обзор фауны кровососущих комаров (Diptera: Culicidae) Тюменской области России и сопредельных территорий

A review of the mosquitoes fauna (Diptera: Culicidae) of Tyumen Region of Russia and adjacent territories

© Т.А. Хлызова © T.A. Khlyzova

Тобольская комплексная научная станция УрО РАН, ул. им. академика Юрия Осипова, 15, Тобольск, Тюменская область 626152 Россия Tobolsk Complex Scientific Station of the Ural Branch of the Russian Academy of Sciences, Academician Yuriy Osipov str., 15, Tobolsk, Tyumen Region 626152 Russia. E-mail: [email protected]

Ключевые слова: Diptera, Culicidae, кровососущие комары, распространение, анализ и сравнение фаун, Западная Сибирь, Урал. Key words: Diptera, Culicidae, mosquitoes, distribution, faunal analysis and comparison, West Siberia, Urals.

Резюме. Обобщены материалы научных работ, for the analysis of the similarity of faunas from посвященных фауне кровососущих комаров Тюменской, different regions. Архангельской, Свердловской, Челябинской, Курганской, ­e World fauna includes 3564 species of mosquitoes, Оренбургской, Омской, Томской, Новосибирской 110 from them occur on the territory of Russia. Forty областей, Республик Коми и Башкортостан, Пермского three mosquito species are distributed in Tyumen Region и Красноярского краев России, севера Республики according to published data and material of our studies; Казахстан, а также результаты собственных 36 species are known in the northern parts of Tyumen исследований, проведенных на территории Тюменской Region (Khanty-Mansi and Yamal-Nenets autonomous и Курганской областей. Анализ литературных данных areas), three of them (Aedes punctodes (Dyar, 1922), показал, что в настоящее время для территории этих A. nigripes (Zetterstedt, 1838), A. churchillensis Ellis et Brust, регионов известно 62 вида семейства Culicidae, из 1973) were not registered in the south of the Region yet. них в Тюменской области встречаются 43 вида. Из We registered 48 species of Culicidae occurring to the рассмотренных регионов наиболее богата фауна west, in Arkhangelsk, Sverdlovsk, Perm regions and Komi комаров Свердловской области – 47 видов, наименьшее Republic; nine of them were not registered in Tyumen видовое разнообразие наблюдается в Архангельской Region; ranges of two of these species (Anopheles claviger области – 24 вида. Максимальная общность видового (Meigen, 1804) and A. maculipennis Meigen, 1818) don’t состава комаров отмечена для Тюменской и Томской expand to the Asian part of Russia. In the regions to the областей (84.7%). Среди рассматриваемых в статье east (Omsk, Tomsk, Novosibirsk and Krasnoyarsk regions) регионов максимальное сходство фаун комаров (93%) and to the south (Republic of Bashkortostan, Chelyabinsk, выявлено для Томской и Новосибирской областей, Kurgan, Orenburg regions and the north of Kazakhstan) минимальная общность фаун (40%) – для Архангельской of Tyumen Region, 46 (five of them are absent in Tyumen и Оренбургской областей. Region) and 56 (17 of them are absent in Tyumen Region) Abstract. Currently, continuous studies of ranges and species of mosquitoes were respectively registered. In population density of insects which transmit vector-borne total, 62 species of Culicidae occur in 13 mentioned diseases in Russia are unfortunately absent or such studies administrative territories of Russia and North Kazakhstan are carried out only in certain regions. ­is makes it very (43 species in Tumen Region). We established on the basis difficult to assess the risk of introduction and spread of such on the faunistic analysis, that two mosquito species, Aedes insects. ­e aim of this study is to summarize and analyze detritus (Haliday, 1833) and Culex torrentium Martini, the current state of our knowledge of at least mosquitoes. 1925, unknown in the south of Tyumen Region, are We analyzed more than 100 scientific publications distributed on bordered territories to the west and the east. studying the fauna and composition of mosquitoes in Both species will probably be found in Tyumen Region the Tyumen, Arkhangelsk, Sverdlovsk, Chelyabinsk, during futher investigations. ­e geographic distribution Kurgan, Orenburg, Omsk, Tomsk, Novosibirsk, Perm of seven species is limited by the European part of Russia; and Krasnoyarsk regions, Republic of Bashkortostan and they don’t occur in the Trans-Ural region and Siberia. ­e Komi Republic of Russia, the north of Kazakhstan. Own ranges of five species extend east of Tyumen Region. studies (116732 collected specimens) covered the south ­e faunal similarity of mosquitoes of the studied of Tyumen Region, the Yamalo-Nenets Autonomous Area regions fluctuates from 40 to 93%. ­e mosquito fauna of and Kurgan Region in 2004–2018. We used Jaccard index Tyumen Region is closest to those in Tomsk Region (84.7%)

Review Paper / Обзорная статья DOI: 10.23885/181433262019152-387399 388 Т.А. Хлызова and minimally similar to those in Arkhangelsk Region Цель работы – обобщение материалов собственных (48.8%). ­e analysis of literature data shows that the исследований и имеющихся литературных данных mosquito fauna was better studied and current monitoring по фауне кровососущих комаров семейства Culicidae is continous in Komi Republic, Sverdlovsk, Tomsk, Тюменской области и сопредельных территорий. Novosibirsk and Tyumen (south) regions, where the Задачи исследования: large scientific institutions dealing with entomology and – изучение видового состава кровососущих parasitology are presented. Information on mosquitoes in комаров Ямало-Ненецкого автономного округа, other regions is outdated or fragmentary after our analysis Курганской и юга Тюменской областей; of the species composition. – анализ литературных данных по фауне семейства Culicidae Тюменской области и субъектов Российской Введение Федерации, расположенных вблизи ее западных, восточных и южных границ; Кровососущие комары (Diptera: Culicidae) широко – на основе данных о видовом составе распространены на территории Российской Федерации кровососущих комаров рассматриваемых регионов и имеют важное медико-эпидемиологическое значение оценка возможности проникновения на территорию как гематофаги и переносчики опасных заболеваний Тюменской области возбудителей заболеваний, ранее человека и животных. Первые сведения о видовом здесь не регистрировавшихся. составе комаров Тюменской области и граничащих с ней регионов были получены в 1912 году в ходе экспедиции Материал и методы на Полярный Урал (цит. по [Румш, 1948]). Масштабные систематические исследования на территории Урала, Собственные исследования проведены на юге Сибири и примыкающих к ним регионов проводились Тюменской области (Нижнетавдинский, Ялуторовский, в 50–70-х годах XX века, когда началась активная Исетский, Ишимский, Тобольский, Бердюжский, разработка новых месторождений углеводородов, Казанский районы), в Ямало-Ненецком автономном хозяйственное освоение Приобья, строительство округе (Ямальский, Тазовский и Приуральский районы) крупных гидроэлектростанций. Выполнение этих работ и в Курганской области (Каргапольский район) в 2004– вызвала необходимость индивидульной и групповой 2018 годах. Тюменская область обладает сложной защиты коллективов людей от нападения насекомых системой административно-территориального деления: комплекса «гнус». Для биологического обоснования в ее состав входят Ямало-Ненецкий автономный защитных мероприятий изучалась фауна и экология округ (ЯНАО), Ханты-Мансийский автономный округ этих насекомых, в том числе и комаров [Бельтюкова (ХМАО) и непосредственно сама Тюменская область. и др., 1958; Шипицина и др., 1959; Пестрякова и др., Во избежание путаницы территорию области без 1968; Ермакова, 1972; Щепеткин, 1972 и др.]. Позднее, округов в этой работе мы называем югом Тюменской в конце XX – начале XXI века, велась активная области. работа по разработке и внедрению новых средств и Для сбора имаго кровососущих комаров методов защиты сельскохозяйственных животных использовали отлов пробирками «на себе» и от нападения кровососущих двукрылых насекомых, энтомологическим сачком со съемными мешочками в которой затрагивались и вопросы видового состава [Палий, 1970; Расницын, Косовских, 1979]. Всего за этих насекомых [Непоклонов, 1987; Павлов, 1990; период исследований было отловлено и определено Гультяев, 2002; Самандас, 2011; Гавричкин и др., 2016]. 116732 особи комаров. При установлении видового В настоящее время систематические исследования, состава использовали определительные таблицы направленные на изучение ареалов и плотности Гуцевича с соавторами [1970], Кухарчук [1980] и популяции основных переносчиков возбудителей Горностаевой и Данилова [1999]. Со времени выхода трансмиссивных заболеваний в России, к сожалению, указанных определителей в системе семейства практически отсутствуют или проводятся только Culicidae произошли значительные изменения [Reinert, в отдельных регионах, что значительно затрудняет 2000a, b; Reinert et al., 2004, 2008; Wilkerson et al., 2015], оценку риска их вселения и распространения. до настоящего времени таксономический состав рода Для современного мира характерно наличие Aedes Meigen, 1818 является предметом научных больших потоков миграции населения, которые в дискуссий. Приведенный фаунистический список сочетании с идущими в настоящее время на планете кровососущих комаров составлен в соответствии со процессами изменения климата значительно списком валидных видовых названий [Harbach, 2013] и увеличивают вероятность проникновения наиболее системой трибы Aedini, предложенной Вилкерсоном с пластичных видов кровососущих членистоногих в соавторами [Wilkerson et al., 2015]. Общность видового северные регионы, что будет оказывать прямое влияние состава в различных регионах устанавливали по на эпидемиологическую ситуацию и эпизоотии коэффициенту Жаккара [Песенко, 1982]. трансмиссивных болезней [Маркович, 2003]. Все Проведен анализ более 100 научных публикаций, это указывает на необходимость изучения видового посвященных изучению видового состава кровососущих состава кровососущих насекомых, в том числе и комаров Тюменской, Архангельской, Свердловской, комаров, не только одного конкретного региона, но и Челябинской, Курганской, Оренбургской, Омской, территорий, расположенных в непосредственной от Томской, Новосибирской областей, Республик него близости. Башкортостан и Коми, Пермского и Красноярского Обзор фауны кровососущих комаров (Diptera: Culicidae) 389

краев, а также севера Республики Казахстан (Северо- В ходе собственных исследований на территории Казахстанской, Павлодарской и Костанайской юга Тюменской области мы обнаружили 32 вида областей). Некоторые из этих регионов не имеют кровососущих комаров, из которых 7 (Aedes общей границы с Тюменской областью, но были rossicus Dolbeskin, Gorickaja et Mitrofanova, 1930, рассмотрены в данной статье, что позволяет A. albescens (Edwards, 1921), A. subdiversus (Martini, сформировать более полное представление о фауне 1926), A. implicatus (Vockeroth, 1954), A. mercurator комаров рассматриваемой территории. (Dyar, 1920), Culiseta longiareolata (Macquart, 1838), C. оchroptera (Peus, 1935)) указаны для региона впервые. Результаты Согласно литературным данным и материалам наших исследований фауна кровососущих комаров юга В мировой фауне кровососущие комары Тюменской области в настоящее время представлена представлены 3564 видами [Harbach, 2013], из них 40 видами (табл. 1). на территории Российской Федерации, по данным Ханты-Мансийский автономный округ. Первые Горностаевой [2009], встречаются 106 видов. сведения о комарах округа содержатся в работе Попова В приведенном автором списке отсутствуют 4 вида [1932], в результате исследований этого автора на комаров (Aedes churchillensis Ellis et Brust, 1973, Culex территории региона выявлены 10 видов. Дальнейшее pusillus Macquart, 1850, C. martini Medschid, 1930, изучение комаров в округе продолжено только в Culiseta fumipennis (Stephens, 1825)), указанных в 60-х годах XX века в период активного освоения работах Николаевой [2002] и Николаевой и Гилева новых нефтегазоносных районов. Виноградская [2006] для Ямало-Ненецкого автономного округа, и Одинец [1970] в 1965 году в водоемах поселка Свердловской, Оренбургской и Курганской областей. Белый Яр отметили развитие преимагинальных фаз С учетом этих данных в настоящее время фауна 7 видов комаров, из которых впервые для ХМАО комаров России насчитывает не менее 110 видов. указаны 4 (Aedes hexodontus (Dyar, 1916), A. punctor Наиболее полные списки фауны кровососущих (Kirby, 1837), A. impiger (Walker, 1848), A. nigrinus). комаров европейского севера России представлены в В окрестностях села Октябрьское Поляковой [1968] работе Шаркова с соавторами [1984], Западной Сибири найдены дополнительно к ранее известным 2 вида и Урала – в работах Кухарчук [1980, 1981], Николаевой (Aedes communis (De Geer, 1776) и A. intrudens (Dyar, [2002], Некрасовой с соавторами [2008], Редькиной 1919)). Ишмуратов [1968] обнаружил на территории [2008]. По данным этих авторов, на севере европейской округа 20 видов кровососущих комаров, дополнив части России обитают 35 видов семейства Culicidae, на фаунистический список региона 7 видами (Aedes территории Западной Сибири – 46 видов, в регионах, vexans (Meigen, 1830), A. flavescens (Müller, 1764), входящих в состав Уральского федерального округа – A. nigripes (Zetterstedt, 1838), A. diantaeus (Howard, Dyar 54 вида. et Knab, 1913), A. euedes Howard, Dyar et Knab, 1913, Юг Тюменской области. По фауне кровососущих A. pullatus (Coquillett, 1904), Linnaeus, комаров региона литературные данные достаточно 1758). Пустовалов [1969] в Ханты-Мансийском ограниченны. В результате проведенных Кухарчук районе зарегистрировал обитание 16 видов, при [1966] исследований на севере региона близ границы этом новыми для округа были 5 видов (Aedes pionips с ХМАО зарегистрировано 18 видов. В этом же году (Dyar, 1919), A. caspius (Pallas, 1771), A. behningi, Culex на юге региона Букштынов [1966] выявил 17 видов, modestus, C. bergrothi). В результате исследований, указав дополнительно к обнаруженным Л.П. Кухарчук проведенных Ермаковой [1972], фаунистический еще 6 видов (Anopheles maculipennis Meigen, 1818, список пополнился еще 2 видами (Aedes rossicus и Aedes dorsalis (Meigen, 1830), A. euedes Howard, Dyar A. sticticus). В Нижневартовском районе Кухарчук et Knab, 1913, Culex modestus Ficalbi, 1890, C. pipiens [1981] зарегистрировала 21 вид комаров, из них новыми Linnaeus, 1758, Culiseta alaskaensis (Ludlow, 1906)). для региона были 3 (Anopheles messeae Falleroni, 1926, Попов и Таранов [1969] приводят данные об обитании Coquillettidia richiardii (Ficalbi, 1889), Aedes leucomelas на территории юга области 30 видов комаров, при этом (Meigen, 1804)). пополнив фаунистический список региона 8 видами После выхода в свет работ Кухарчук [1980, 1981], (Aedes behningi (Martini, 1926), A. impiger (Walker, 1848), посвященных комарам Сибири и Дальнего Востока, A. nigrinus (Eckstein, 1918), A. sticticus (Meigen, 1838), Culex vagans Wiedemann, 1828, C. territans Walker, 1856, в изучении кулицид округа наблюдался длительный Culiseta bergrothi (Edwards, 1921), C. morsitans (­eobald, перерыв. В 2006 году опубликованы результаты 1901)). В результате цитогенетических исследований исследований Николаевой и Гилева, благодаря Anopheles maculipennis [Стегний, Кабанова, 1976] которым стало известно о находках на территории установлено, что в азиатской части России этот вид округа Aedes implicatus. Таким образом, кровососущие не встречается, все прежние указания A. maculipennis комары Ханты-Мансийского автономного округа, по следует отнести к A. beklemishevi Stegnii et Kabanova, литературным данным, представлены 34 видами. До 1976. В связи с этим все упоминаемые в литературе настоящего времени фауна комаров округа, особенно данные по A. maculipennis из регионов, расположенных его северной части, остается недостаточно изученной. восточнее Урала, в том числе и с юга Тюменской Ямало-Ненецкий автономный округ. Изучение области, нами отнесены к A. beklemishevi. Таким комаров на территории округа начато Киселевой образом, по литературным данным, кровососущие [1927], в результате проведенных ею исследований комары региона представлены 32 видами. для Тазовской губы (мыс Поворотный) выявлено 390 Т.А. Хлызова

Таблица 1. Видовой состав кровососущих комаров Тюменской области и сопредельных территорий. Table 1. Species composition of mosquitoes in Tyumen Region of Russia and adjacent territories.

Регион / Region

Вид Species Тюменской области Тюменской South of Tyumen Region South of Tyumen Юг Republic of Bashkortostan Республика БашкортостанРеспублика Север Казахстан Республики Пермский край / Perm Region крайПермский / Perm Омская область Region / Omsk Yamal-Nenets Autonomous Area Autonomous Yamal-Nenets Khanty-Mansi Autonomous Area Khanty-Mansi Autonomous Томская область / Tomsk Region область / Tomsk Томская Республика Коми / Komi Republic / Komi Коми Республика North of the RepublicNorth of Kazakhstan of the Курганская область RegionКурганская / Kurgan Ямало-Ненецкий автономный округЯмало-Ненецкий Ханты-Мансийский автономный округ Красноярский край / Krasnoyarsk Region Оренбургская область Region / Orenburg Свердловская область Region / Sverdlovsk Челябинская областьЧелябинская Region / Chelyabinsk Архангельская областьАрхангельская Region / Arkhangelsk Новосибирская область / Novosibirsk Region

Anopheles Meigen, 1818 1 A. plumbeus + 2 A. claviger + + + + + + 3 A. maculipennis + + + + + + + 4 A. messeae + + ++++++++++++ 5 A. beklemishevi + + + + + + + + + + + + 6 A. hyrcanus + Aedes Meigen, 1818 7 A. cinereus +++ ++++++++++++ 8 A. rossicus + + + + + + + + + + + + + 9 A. vexans + + +++++++++++++ 10 A. geniculatus + + 11 A. communis +++++++++++++++ 12 A. dorsalis ++++++++++++++++ 13 A. albescens + + + + + 14 A. rusticus + + 15 A. subdiversus + + + + + + + + + + 16 A. alektorovi + 17 A. annulipes + + + + + 18 A. behningi +++ ++++++++++++ 19 A. cantans ++++++++++++++++ 20 A. caspius + + +++++++++++ 21 A. cataphylla ++++++++++++++++ 22 A. cyprius ++++++++++++++++ 23 A. detritus + + + + + 24 A. diantaeus +++ +++++++++++ 25 A. euedes ++++++++++++++++ 26 A. excrucians ++++++++++++++++ 27 A. fitchii + 28 A. flavescens ++++++++++++++++ 29 A. hexodontus ++++++++++++++ 30 A. impiger + + + + + + + + + + + 31 A. implicatus + + + 32 Ae. intrudens ++++++++++++++++ 33 A. leucomelas + + +++++++++++++ 34 A. mercurator + + + + + + 35 A. montchadskyi + 36 A. nigrinus +++ +++ ++ ++ + 37 A. nigripes + + + + + + + + + 38 A. pionips +++++++++++++++ Обзор фауны кровососущих комаров (Diptera: Culicidae) 391

Таблица 1 (окончание). Table 1 (completion).

Регион / Region

Вид Species Тюменской области Тюменской South of Tyumen Region South of Tyumen Юг Republic of Bashkortostan Республика БашкортостанРеспублика Север Казахстан Республики Пермский край / Perm Region крайПермский / Perm Омская область Region / Omsk Yamal-Nenets Autonomous Area Autonomous Yamal-Nenets Khanty-Mansi Autonomous Area Khanty-Mansi Autonomous Томская область / Tomsk Region область / Tomsk Томская Республика Коми / Komi Republic / Komi Коми Республика North of the RepublicNorth of Kazakhstan of the Курганская область RegionКурганская / Kurgan Ямало-Ненецкий автономный округЯмало-Ненецкий Ханты-Мансийский автономный округ Красноярский край / Krasnoyarsk Region Оренбургская область Region / Orenburg Свердловская область Region / Sverdlovsk Челябинская областьЧелябинская Region / Chelyabinsk Архангельская областьАрхангельская Region / Arkhangelsk Новосибирская область / Novosibirsk Region

39 A. pullatus +++ +++++++++ 40 A. punctor ++++++++++++++++ 41 A. punctodes + 42 A. rempeli + + + 43 A. riparius ++++++++++++++++ 44 A. sticticus + + +++++++++++++ 45 A. stramineus + + + + 46 A. churchillensis + 47 A. sibiricus + + + + Culex Linnaeus, 1758 48 C. modestus + + + + + + + + + + 49 C. pipiens +++ ++++++++++++ 50 C. torrentium + + + + + 51 C. vagans + + + + + 52 C. territans + +++ ++++++++ 53 C. pusillus + + 54 C. martini + Culiseta Felt, 1904 55 C. longiareolata + + + + + + + 56 C. morsitans + + + + + + + + + + + 57 C. ochroptera + ++ ++++ +++++ 58 C. alaskaensis ++++++++++++++ + 59 C. annulata + + + + 60 C. bergrothi + + + + + + + + + + + + 61 C. fumipennis + + + Coquillettidia Dyar, 1905 62 C. richiardii +++ ++++++++++++ Всего видов 40 34 27 24 37 36 47 38 42 41 34 37 43 39 40 28 In total 43 48 46 56

6 видов. Дальнейшее исследование этой группы для округа впервые. В результате исследований, насекомых на территории округа было продолжено в проведенных Щепеткиным [1972, 1974], фаунистический 70-х годах XX века. Полякова [1970, 1973] обнаружила список комаров округа пополнился еще 1 видом (Aedes на территории ЯНАО 17 видов комаров, из которых 14 nigripes). При изучении экологии преимагинальных (Aedes punctor, A. communis, A. hexodontus, A. pionips, фаз развития кровососущих комаров на Южном A. pullatus, A. intrudens, A. diantaeus, A. impiger, Ямале Николаева [1980] помимо уже известных для A. cataphylla (Dyar, 1916), A. cantans (Meigen, 1818), региона видов обнаружила личинок Aedes euedes. A. flavescens, A. riparius (Dyar et Knab, 1907), Culiseta Значительно позднее Николаева и Гилев [2006] в ходе alaskaensis, Coquillettidia richiardii) были указаны исследований на Южном Ямале зарегистрировали 392 Т.А. Хлызова

3 не указанных другими исследователями вида (Aedes выделить в них информацию, относящуюся к churchillensis, A. punctodes (Dyar, 1922), A. implicatus). конкретным субъектам РФ затруднительно, а иногда По литературным данным, фауна комаров округа практически невозможно, поэтому собранные нами из представлена 25 видами. доступной литературы сведения о фауне кровососущих В результате наших исследований, проведенных комаров этих регионов могут быть неполными. в тундровой и лесотундровой зонах округа, Пермский край. В своей работе Штакельберг зарегистрировано 14 видов комаров, из них 2 – Aedes [1927] приводит сведения об обитании на территории nigrinus и A. behningi – указаны для региона впервые. края 9 видов кровососущих комаров (Aedes cinereus, Таким образом, в настоящее время известно 27 видов A. cyprius (Ludlow, 1920), A. dorsalis, A. flavescens, комаров, обитающих на территории Ямало-Ненецкого A. cataphylla, A. punctor, Culiseta alaskaensis, автономного округа. При этом наиболее полно C. morsitans, Coquillettidia richiardii). В Перми исследована фауна комаров материковой части и Митрофанова [1929] выявила обитание Aedes rossicus. Южного Ямала и практически не изученными остаются В своей работе по кровососущим комарам Среднего территории полуостровов Ямал и Гыданский. Урала Колосов [1936] указал 28 видов. К сожалению, В северных регионах Тюменской области, ХМАО в полной мере учитывать этот список при описании и ЯНАО, обитают 36 видов, из них 3 вида (Aedes фаун Пермского края и Свердловской области в punctodes, A. nigripes, A. churchillensis) на юге области настоящее время не представляется возможным, пока не обнаружены. С учетом видового состава так как границы изучавшегося Ю.М. Колосовым комаров всех трех административных образований региона и точки нахождения видов трудно привязать Тюменской области фаунистический список комаров к современным субъектам РФ, часть определенных данного региона насчитывает 43 вида. видов требовала подтверждения (по мнению самого Архангельская область. Первые сведения о автора), а последующие работы других исследователей кровососущих комарах региона содержатся в работах поставили под сомнение находки некоторых видов. Фрея [Frey, 1921] и Эдвардса [Edwards, 1926], в Дальнейшие исследования видового состава комаров результате исследований этих авторов установлено региона продолжены лишь в 90-х годах XX века. обитание Culiseta alaskaensis. Штакельберг [1927, 1937] В результате исследований, проведенных Кутузовой привел данные о находках на территории области [1992] и Николаевой [2002], установлено обитание в комаров Anopheles maculipennis и Aedes communis. регионе 35 видов комаров, в том числе и 10 известных В сводке по комарам севера СССР Румш [1948] указал ранее. Позднее Кутузова и Самарина [2008], занимаясь для региона еще 3 вида (Aedes riparius, A. cataphylla, изучением комаров Пермского Прикамья, дополнили Culiseta bergrothi). Мончадский [1950, 1951] отметил фаунистический список региона еще 1 видом – Aedes Aedes cinereus Meigen, 1818 и A. dorsalis (Meigen, 1830). caspius. До настоящего времени видовой состав В 1959 году в результате исследований, проведенных кровососущих комаров такого крупного субъекта Грачевой и Шевкуновой, на территории области РФ, как Пермский край, остается слабо изученным, выявлен A. leucomelas. Белокур [1960] привел данные из доступной литературы известно об обитании на об обитании в регионе еще 2 видов – A. excrucians территории края 36 видов кровососущих комаров. (Walker, 1856) и A. punctor. В 1961 году опубликована Республика Коми. Первые сведения о фауне работа Шевкуновой и Грачевой, содержащая сведения кровососущих комаров региона получены в ходе о находках еще 2 видов – Aedes rusticus (Rossi, 1790) и экспедиции Кузнецовых на Полярный Урал в Culiseta ochroptera. Тамарина и Александрова [1974а, б] 1912 году (цит. по [Румш, 1948]), во время которой при изучении фауны комаров побережья Белого было установлено обитание в этих северных широтах моря пополнили известный ранее фаунистический 2 видов – Aedes punctor и A. riparius. После длительного список 4 новыми для региона видами (Aedes intrudens, перерыва в изучении фауны комаров республики вышла A. hexodontus, A. pionips, A. impiger). В 1984 году вышла в работа Белокура [1960], посвященная кровососущим свет работа Шаркова с соавторами [1984], посвященная комарам севера региона, в ней содержались сведения комарам и мошкам европейского севера СССР, об обитании на изучаемой территории 7 видов этих где приведены данные об обитании на территории насекомых, из них 6 (Anopheles maculipennis, Aedes области 22 видов семейства Culicidae, из них новыми diantaeus, A. cantans, A. excrucians, A. communis, Culiseta для региона являются 9. Из проанализированных alaskaensis) указаны для республики впервые. В 60– нами литературных данных достоверно известно 80-х годах XX века изучением комаров республики об обитании на территории Архангельской области занималась Остроушко [1965, 1967, 1980, 1989], в 25 видов кровососущих комаров, при этом практически результате проведенных ею исследований установлено все исследования комаров проведены в Ненецком обитание в регионе 32 видов, из них 26 были новыми для автономном округе, фауна комаров остальной региона. В 2005 году опубликована работа Панюковой, территории изучена слабо. в которой фаунистический список комаров региона Современные исследования отечественных пополнен еще 4 видами (Culex territans, C. modestus, диптерологов [Медведев и др., 2007; Медведев, Culiseta ochroptera, Coquillettidia richiardii). В настоящее 2011, 2013; Пестов, Панюкова, 2013; Панюкова, время сотрудниками Института биологии Коми 2016] посвящены европейскому северу России научного центра Уральского отделения РАН создана (Архангельская область, Республика Коми, север и поддерживается база данных «Биоразнообразие Пермского края и Кировской области), к сожалению, двукрылых насекомых комплекса гнуса европейского Обзор фауны кровососущих комаров (Diptera: Culicidae) 393

Северо-Востока России» [http://ib.komisc.ru:8000/ вида для Сибири следует отнести к A. beklemishevi. В dbgnus], основной вклад в составление которой внесла работе Мальковой и др. [2013] предпринята попытка Е.В. Панюкова. В базе данных помимо указанных выше обобщить сведения о кровососущих комарах Западной видов комаров приводятся сведения о находках на Сибири, в том числе и Омской области, в результате территории региона еще 1 вида – Anopheles claviger авторами составлен фаунистический список из 34 (Meigen, 1804). В 2017 году вышла в свет работа видов, при этом не указаны 4 вида, отмеченные на Панюковой и Остроушко, в которой авторы ставят территории области ранее другими исследователями, под сомнение правильность определения собранных но приведены 4 новых для региона вида (Aedes ранее комаров, отнесенных ими к виду Culex modestus, stramineus Dubitzky, 1970, A. rempeli (Vockeroth, 1954), ввиду плохой сохранности материала и невозможности A. hexodontus, A. impiger), обитание которых в Омской подтверждения точности определения. На этом области самими авторами ставится под сомнение. основании вид исключен из общего списка комаров Таким образом, по литературным данным, в Омской региона. Таким образом, фауна кровососущих комаров области обитают комары 38 видов. Республики Коми в настоящее время насчитывает Томская область. Изучение кровососущих 37 видов. комаров на территории области начато Рузским [1915, Свердловская область. Изучение комаров 1925]. Его работы посвящены изучению малярийных на территории региона начато Колосовым [1936]. комаров Anopheles beklemishevi (по старым данным, Затем, после длительного перерыва, его продолжила A. claviger) и A. messeae. Внуковский [1926] установил, Сюткина [1967], по ее данным, в регионе встречаются что в регионе встречаются 6 видов комаров, добавив 20 видов кровососущих комаров. Николаева [2002] к ранее известным 3 (Aedes cantans, A. communis и зарегистрировала на территории области еще 21 вид Culex pipiens). В этом же году вышла работа Плетнева комаров (Anopheles claviger, A. maculipennis, A. messeae, [1926], в которой содержались сведения о 7 видах A. beklemishevi, Aedes annulipes (Meigen, 1830), комаров, обитающих на территории региона, из A. caspius, A. behningi, A. cyprius, A. sticticus, A. nigrinus, них пять (Aedes detritus, A. albescens, A. diantaeus, A. pullatus, A. nigripes, A. impiger, A. detritus (Haliday, A. nigripes, A. cataphylla) указаны для Томской 1833), Culex torrentium Martini, 1925, C. territans, области впервые. В 1928 году Внуковский дополнил C. vagans Wiedemann, 1828, Culiseta annulata (Schrank, список комаров региона еще 5 видами (Aedes dorsalis, 1776), C. bergrothi, C. fumipennis, Coquillettidia richiardii). A. excrucians, A. cyprius, A. punctor, A. sticticus). Маслов Спустя несколько лет Николаева и Гилев [2006] привели [Maslov, 1930а, b] на территории области обнаружил данные о находках на территории области комаров 23 вида, добавив к прежнему списку 6 новых (Aedes Aedes mercurator, A. rossicus, Culex pusillus, Culiseta leucomelas, A. riparius, Culex modestus, C. territans, longiareolata, C. ochroptera. В 2007 году Николаева Culiseta alaskaensis, Coquillettidia richiardii). Изучением дополнила уже известный фаунистический список еще кровососущих комаров в Томской области занималась 1 видом – Aedes subdiversus. Таким образом, видовой и Киселева [1936], в результате проведенных ею состав кровососущих комаров Свердловской области, исследований обнаружено 26 видов, из них пять (Aedes по литературным данным, представлен 47 видами. vexans, A. caspius, A. stramineus, A. flavescens, Culex Анализ литературных данных показал, что фауна vagans) были зарегистрированы впервые. Тарабухин комаров регионов, примыкающих к Тюменской [1945] пополнил известный фаунистический список области с запада, представлена 48 видами. Из 2 новыми для региона видами (Aedes intrudens, Culiseta обитающих в Архангельской и Свердловской областях, ochroptera). В результате проведенных В.М. Поповым Республике Коми и Пермском крае кулицид 9 видов [1953а, б, в] исследований найдены еще 5 не отмеченных не зарегистрированы в Тюменской области, ареалы ранее видов (Aedes galloisi Yamada, 1921, A. rossicus, двух из них (Anopheles claviger и A. maculipennis) не A. pullatus, Culiseta longiareolata, C. morsitans). простираются на территорию азиатской части России. Апенкина [1963] дополнила фаунистический список Омская область. Первые сведения о комарах комаров региона 2 видами – Aedes impiger и A. pionips. региона содержатся в работе Штакельберга [1927], в ней В 1964 году Полякова [1964] помимо ранее известных приведены данные о находках 3 видов кровососущих видов обнаружила на территории области комаров комаров (Aedes cinereus, A. cataphylla, A. albescens). A. euedes и A. hexodontus. В последующем Пестрякова Позднее изучением фауны комаров в регионе с соавторами [1968] отметила обитание в Томской занимались Нецкий [1952], обнаруживший 25 видов, и области еще одного вида – A. nigrinus. Кухарчук [1980] Федоров с соавторами [1971], указавший на обитание зарегистрировала в Томской области 24 вида комаров, на территории Омской области 33 видов комаров и добавив к ранее известным 1 вид – A. subdiversus. добавивший к фаунистическому списку, приведенному В работе Лужковой с соавторами [1988] приводятся Г.И. Нецким, 7 новых, не зарегистрированных ранее данные об обитании в Томском Приобье 38 видов в регионе, видов (Anopheles claviger, A. messeae, комаров, из них впервые для региона указан только Aedes caspius, A. euedes, A. behningi, A. sticticus и Culiseta bergrothi. В результате исследований, Culex torrentium). В результате проведенных позднее проведенных в Томске Редькиной и Островерховой цитогенетических исследований малярийных комаров [2006], список комаров пополнился еще 1 видом – Aedes обитание в азиатской части России Anopheles claviger не behningi. Редькина в своей диссертационной работе подтверждено, по мнению Гордеева [1997], определение [2008] привела для Томской области фаунистический этого вида было ошибочным и все указания этого список комаров из 42 видов. В результате проведенного 394 Т.А. Хлызова

ею переопределения особей Aedes galloisi, собранных и A. excrucians. Более активное изучение комаров ранее другими исследователями, было установлено, региона развернулось в конце 50-х годов XX века. В это что определение этого вида было произведено время в окрестностях Красноярска выявлено обитание неверно и отловленные особи относятся к виду Aedes 18 видов [Бельтюкова и др., 1958; Шипицина и др., 1959], sibiricus (Danilov et Fillipova, 1978). Таким образом, из них 12 были указаны для региона впервые (Aedes фауна кровососущих комаров Томской области, по vexans, A. cantans, A. riparius, A. behningi, A. flavescens, литературным данным, насчитывает 43 вида. A. cyprius, A. diantaeus, A. intrudens, A. pionips, Новосибирская область. Изучением малярийных A. sibiricus, Culex pipiens, C. territans). Несколькими комаров на территории области занимался Тарабухин годами позднее вышла работа Савельева [1963], [1941], который указал для региона Anopheles посвященная фауне комаров полуострова Таймыр, beklemishevi. Рузский [1946] при изучении фауны в ней приведены данные об обитании в регионе еще Барабинской степи установил обитание там 11 видов 1 вида – Aedes hexodontus. Мирзаева и Полякова [1967] комаров (Aedes cinereus, A. cantans, A. excrucians, пополнили фаунистический список комаров края A. flavescens, A. subdiversus, A. sticticus, A. diantaeus, 1 видом – A. pullatus. Значительный вклад в изучение A. cataphylla, A. leucomelas, Culex territans, C. pipiens). кровососущих комаров Красноярского края внес Беззубова и Ваншток [1961] нашли на территории Мезенев [1967, 1968, 1972, 1976], который занимался региона 27 видов, добавив к ранее известным изучением фауны и экологии имаго и личинок на 15 новых (Aedes vexans, A. caspius, A. dorsalis, полуострове Таймыр и в Эвенкии; в результате A. riparius, A. cyprius, A. intrudens, A. communis, проведенных им исследований на территории региона A. pullatus, A. nigripes, A. detritus, Culex modestus, зарегистрировано еще 6 видов (Anopheles messeae, Culiseta alaskaensis, C. morsitans, C. ochroptera, Aedes fitchii (Felt et Yonng, 1904), A. leucomelas, A. euedes, Coquillettidia richiardii). В 1966 году опубликовано A. rempeli, Culiseta bergrothi). Стегний и Кабанова [1976] несколько научных работ о кровососущих комарах при описании вида Anopheles beklemishevi указали, что региона [Кухарчук, 1966; Полякова, 1966; Полякова, его ареал на восток простирается до реки Енисей, Мирзаева, 1966], благодаря которым ранее известный следовательно, этот вид встречается в западной части фаунистический список комаров пополнился края. Кухарчук [1980, 1981] в своих работах приводит 4 видами: Anopheles messeae, Culiseta longiareolata, данные об обитании в Красноярском крае, помимо уже Aedes punctor и A. euedes. В 1970 году Полякова и известных ранее, еще 2 видов – Coquillettidia richiardii и Кухарчук опубликовали материалы о находках в Aedes caspius. В работе Мирзаевой [2017], обобщающей регионе нового для фауны страны вида – Aedes rempeli. литературные данные и материалы собственных В своей книге, посвященной систематике комаров исследований, для севера края указаны 27 видов Сибири, Кухарчук [1980] для Новосибирской области комаров, причем упоминание об Aedes mercurator приводит список из 33 видов комаров, из них 7 обнаружено в доступной литературе по фауне региона (Aedes galloisi, A. rossicus, A. hexodontus, A. stramineus, впервые. Таким образом, по литературным данным, A. albescens, A. pionips, Culiseta bergrothi) указаны для кровососущие комары на территории Красноярского региона впервые. В работах по изучению комаров юга края представлены 34 видами, большая часть области Мирзаевой с соавторами [2007] и Кононовой источников содержит сведения о фауне кулицид с соавторами [2007] приведены данные о 28 видах, в Таймырского, Долгано-Ненецкого и Эвенкийского том числе и об Aedes behningi, упоминаний о котором районов, расположенных на севере региона, южные в более ранней литературе по Новосибирской области районы края до настоящего времени остаются слабо обнаружить не удалось. Полторацкой и Мирзаевой изученными. [2013] в окрестностях Новосибирска в 2001–2008 годах В регионах, находящихся рядом с восточной зарегистрировано 26 видов комаров, известный список границей Тюменской области, встречаются видов дополнен двумя (Aedes nigrinus и A. sibiricus). 46 видов кровососущих комаров, пять из них не Кроме того, авторами произведено переопределение зарегистрированы на территории Тюменской области. имеющихся коллекционных материалов комаров Республика Башкортостан. Литературные A. galloisi, отловленных на территории региона, и сведения о кровососущих комарах республики установлено, что эти особи тоже принадлежат к виду ограниченны. По данным Николаевой [2002], на A. sibiricus. Таким образом, фауна кровососущих территории этого региона встречается 31 вид комаров Новосибирской области представлена кровососущих комаров. В работе Некрасовой с 41 видом. соавторами [2008] приведены сведения об обитании Красноярский край. Первые сведения о в республике 34 видов комаров, из них 6 видов (Aedes кровососущих комарах региона содержатся в работе geniculatus (Oliver, 1791), A. behningi, A. annulipes, Штакельберга [1927], где приведены данные о находках A. subdiversus, A. diantaeus, Culiseta annulata) не были на территории региона 5 видов (Culiseta alaskaensis, ранее обнаружены. В настоящее время для региона Aedes cataphylla, A. sticticus, A. punctor, A. communis). известно 37 видов кровососущих комаров. Киселевой [1936] в ходе исследований в тундровой зоне Челябинская область. В окрестностях Троицка региона зарегистрировано 6 видов, из них три (Aedes Кутузовой [2002] зарегистрировано 30 видов комаров. dorsalis, A. nigripes, A. impiger) указаны для региона Николаева [2002] приводит данные об обитании в впервые. Румш [1948] приводит для севера края 5 видов Челябинской области 34 видов. В сводке по комарам комаров, добавив к ранее известным 2 новых – A. cinereus Урала [Некрасова и др., 2008] фаунистический список Обзор фауны кровососущих комаров (Diptera: Culicidae) 395

комаров региона дополнен 8 видами (Anopheles Мирзаева, 2013], то с экземплярами с примыкающей hyrcanus (Pallas, 1771), A. plumbeus Stephens, 1828, территории Казахстана, скорее всего, произошла та Aedes euedes, A. albescens, A. leucomelas, Culex modestus, же самая ошибка). Таким образом, по литературных C. territans, Culiseta alaskaensis, C. morsitans). Таким данным, на севере Республики Казахстан кровососущие образом, фауна кровососущих комаров Челябинской комары представлены 28 видами. Видовой состав области, по литературным данным, в настоящее время комаров этого региона до настоящего времени представлена 43 видами. остается слабо изученным, современные исследования Курганская область. На территории региона в этом направлении в основном проводятся в южных и изучение кровососущих комаров начато Бирюковым западных областях республики. [1926], в результате исследований этого автора В регионах, расположенных вблизи южной установлено обитание Anopheles maculipennis (как границы Тюменской области и примыкающих к ним, указано выше, по современным данным указания зарегистрировано обитание 56 видов кровососущих этого вида для азиатской части России отнесены к комаров. Из них 17 видов на территории Тюменской A. beklemishevi). Позднее изучение комаров продолжено области не выявлены. Колосовым [1936], который отметил для области еще Общность фаун кровососущих комаров 6 видов (Aedes cinereus, A. caspius, A. cataphylla, A. cyprius, рассматриваемых регионов колеблется в пределах Culex pipiens, Culiseta alaskaensis). Логиновский [1974] от 40 до 93% (табл. 2). Максимальное сходство дополнил фаунистический список комаров региона видового состава выявлено между Томской и еще 4 видами (Aedes flavescens, A. excrucians, A. riparius, Новосибирской областями, наименьшее – между Coquillettidia richiardii). В 1977 году Новикова Архангельской и Оренбургской областями. Видовой установила обитание на территории области Aedes состав кровососущих комаров Тюменской области vexans. Николаева [2002] в сводке комаров Уральского имеет наибольшее сходство с таковым Томской федерального округа указывает для Курганской области (84.7%), минимальное – с составом Culicidae области 33 вида. Некрасова с соавторами [2016] Архангельской области (48.8%). дополнили имеющийся список 4 новыми для региона Регионы, расположенные близ восточной границы видами (Aedes intrudens, A. hexodontus, A. diantaeus и Тюменской области (Омская, Томская и Новосибирская A. sticticus). области, Красноярский край) характеризуются В результате собственных исследований, большей однородностью фаун комаров. Коэффициент проведенных на территории области, нами Жаккара в этой группе регионов находится в пределах зарегистрировано 10 видов комаров, из которых 2 – от 63.6 до 93%. Culiseta bergrothi и Aedes pionips – в материалах Фауна регионов, расположенных рядом с предыдущих исследователей не указаны. В настоящее южной границей Тюменской области (Республика время для региона известно 39 видов кровососущих Башкортостан, Челябинская, Курганская и комаров. Оренбургская области, север Республики Казахстан) Оренбургская область. Сведения о комарах характеризуется меньшей однородностью по области впервые встречаются в работе Штакельберга сравнению с восточными регионами. Коэффициент [1927] и содержат данные о находках 2 видов – Anopheles Жаккара в этой группе регионов находится в пределах claviger и Culiseta annulata. Дальнейшее изучение от 51 до 77.7%. фауны комаров продолжено в начале XXI века. В работе Самая низкая общность видового состава Николаевой [2002] для этого региона указано 30 видов отмечена в регионах, расположенных западнее комаров. Степин [2002] обнаружил 22 вида семейства Тюменской области (Архангельская и Свердловская Culicidae, установив обитание на территории области области, Республика Коми и Пермский край), здесь Aedes punctor. В работе Некрасовой с соавторами [2008] коэффициент Жаккара колеблется от 44.8 до 87.1%. приведены данные о находках 29 видов комаров, из На территории Урала и Сибири, где расположено них 3 (Aedes caspius, A. cantans и A. cyprius) указаны для большинство рассматриваемых субъектов РФ, имеются региона впервые. Вигоров с соавторами [2015] дополнил природные очаги туляремии, омской геморрагической фаунистический список комаров региона еще 3 видами лихорадки и малярии, в распространении возбудителей (Aedes communis, A. pionips и A. diantaeus). Таким этих заболеваний активное участие принимают образом, по литературным данным, для Оренбургской кровососущие комары. В последнее годы к ним области известны 39 видов кровососущих комаров. добавилась лихорадка Западного Нила, вспышки Север Республики Казахстан (Северо- которой были зарегистрированы в Челябинской, Казахстанская, Павлодарская и Костанайская Омской и Новосибирской областях [Якименко и др., области). Изучением фауны кровососущих комаров 2015; Адищева и др., 2016]. Ранее это заболевание на на территории региона занимался А.М. Дубицкий. территории России фиксировали только в европейской В своей монографии [Дубицкий, 1970] он приводит части. Учитывая то, что возбудители этого заболевания данные о находках 27 видов. Позднее совместно с обнаружены в регионах, расположенных западнее Ю.Н. Тупицыным [Тупицын, Дубицкий, 1972] им и восточнее Тюменской области, а также высокую опубликованы данные о находке еще 1 вида – Aedes общность фауны комаров региона с фаунами Омской и sibiricus (в источнике указан как A. galloisi, но так как Новосибирской областей (72.3 и 78.7% соответственно), произведено переопределение особей этого вида, нельзя исключать возможность проникновения собранных ранее на территории Западной Сибири, и возбудителей этого заболевания в южные районы доказана неверность их определения [Полторацкая, Тюменской области. 396 Т.А. Хлызова

Таблица 2. Общность видового состава кровососущих комаров (по коэффициенту Жаккара, %). Table 2. Similiraty of species composition of mosquitoes (Jaccard index, %).

Регион Region Perm RegionPerm Omsk RegionOmsk Tomsk Region Tomsk Komi Republic Komi Kurgan Region Kurgan Пермский крайПермский Омская область Orenburg RegionOrenburg Томская область Томская Sverdlovsk Region Sverdlovsk Республика Коми Республика Novosibirsk Region Chelyabinsk RegionChelyabinsk Krasnoyarsk Region Arkhangelsk RegionArkhangelsk Красноярский край Курганская областьКурганская Челябинская областьЧелябинская Свердловская область Оренбургская область Архангельская областьАрхангельская Новосибирская область Republic of Bashkortostan Республика БашкортостанРеспублика Север Казахстан Республики North of the RepublicNorth of Kazakhstan of the

Тюменская область 48.8 70.8 71.7 76.4 72.3 84.7 78.7 67.3 66.6 68.6 70.8 60.7 57.7 Tyumen Region Архангельская область 60.5 57.8 44.8 47.6 50 47.7 52.6 52.5 45.6 46.5 40 44.4 Arkhangelsk Region Республика Коми 87.1 68 63 71.7 69.5 73.1 80.4 73.9 61.7 65.2 51.1 Komi Republic Пермский край 76.5 68.1 69.5 71.1 75 78 75.5 59.5 63 50 Perm Region Свердловская область 70 74.5 72.5 65.3 75 73 75.5 72 56.2 Sverdlovsk Region Омская область 81.8 83.7 63.6 63 65.3 71.1 57.1 60.9 Omsk Region Томская область 93 65.2 68 70 76 55.7 62.7 Tomsk Region Новосибирская область 70.4 69.5 68 73.9 56.8 64.2 Novosibirsk Region Красноярский край 61.3 60.4 62.2 48.9 55 Krasnoyarsk Region Республика Башкортостан 77.7 61.7 72.7 62.5 Republic of Bashkortostan Челябинская область 57.6 64.7 51 Chelyabinsk Region Курганская область 62.5 63.4 Kurgan Region Оренбургская область 59.5 Orenburg Region

Обсуждение разнообразие отмечается в регионах, примыкающих к южной границе Тюменской области (Оренбургская, На территории 13 рассмотренных субъектов РФ Челябинская и Курганская области, Республика и севера Республики Казахстан семейство Culicidae Казахстан), где комары представлены 56 видами. представлено 62 видами. Наиболее богата фауна Из 62 видов 10 (Aedes dorsalis, A. excrucians, комаров Свердловской области (47 видов), наименьшее A. flavescens, A. punctor, A. cataphylla, A. cantans, видовое разнообразие отмечено в Архангельской A. riparius, A. euedes, A. cyprius, A. intrudens) области (24 вида). встречаются во всех рассмотренных нами регионах, Фауна комаров Тюменской области в настоящее а 8 распространены только в каком-либо одном время представлена 43 видами. В регионах, регионе: Aedes martini – в Оренбургской области, расположенных западнее Тюменской области Aedes alectorovi (Stackelberg, 1943) – в Курганской (Архангельская и Свердловская области, Пермский области, A. fitchii – в Красноярском крае, A. punctodes край, Республика Коми), встречаются 48 видов. и A. churchillensis – в ЯНАО, A. montchadskyi (Dubitzky, В регионах, прилегающих к восточной границе 1968), Anopheles plumbeus и A. hyrcanus – в Челябинской Тюменской области (Омская, Томская и Новосибирская области. На территории юга Тюменской области не области, Красноярский край) семейство Culicidae зарегистрировано 22 вида комаров, отмеченных для представлено 46 видами. Максимальное видовое смежных регионов. При сравнении фаунистических Обзор фауны кровососущих комаров (Diptera: Culicidae) 397

списков кровососущих комаров Тюменской области и Виноградская О.Н., Одинец А.А. 1970. К фауне и биологии кровососущих комаров в окрестностях поселка Белый Яр Тюменской области граничащих с ней территорий установлено, что 2 вида по наблюдениям 1965 г. Сообщение 1. Биология водных стадий. (Aedes detritus и Culex torrentium), не выявленных на Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 3: 329– юге Тюменской области, обитают в смежных с востока 334. и запада регионах. В связи с этим при дальнейших Внуковский В.В. 1926. Материалы по фауне и биологии комаров (Culicidae) Томского округа. Сибирский медицинский журнал. 2: исследованиях фаунистический список комаров юга 17–26. Тюменской области может быть пополнен этими Внуковский В.В. 1928. К познанию фауны двукрылых (Diptera) видами. Ареалы 7 видов (Anopheles maculipennis, Каменского округа (Западная Сибирь). Известия Западно- Сибирского государственного музея. 1: 85–86. A. plumbeus, A. claviger, Aedes rusticus, A. geniculatus, Гавричкин А.А., Хлызова Т.А., Фёдорова О.А., Никонов А.А. 2016. A. montchadskyi, Culex martini) ограничены Сроки проведения мероприятий по защите мясного скота от европейской частью России, в Зауралье и Сибири насекомых комплекса «гнус» и оводов на юге Тюменской области. виды не встречаются. Ареалы 3 видов (Aedes fitchii, Вестник мясного скотоводства. 1(93): 38–42. Гордеев М.И. 1997. Адаптационные стратегии в популяциях A. rempeli, A. sibiricus) простираются к востоку от малярийных комаров. Автореф. дис. ... докт. биол. наук. Москва. границ Тюменской области. 42 с. Проведенный анализ литературных данных Горностаева Р.М. 2009. Новый список комаров (Diptera: Culicidae) показывает, что наиболее полные и систематические России. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1: 60–62. исследования фауны кровососущих комаров Горностаева Р.М., Данилов А.В. 1999. Комары Москвы и Московской проведены и продолжаются в настоящее время области. М.: Товарищество научных изданий КМК. 342 с. на территории Республики Коми, Свердловской, Грачева Л.И., Шевкунова Е.А. 1959. Материалы по изучению кровососущих комаров на юге Архангельской области. Томской, Новосибирской и юга Тюменской Зоологический журнал. 38(2): 1751–1753. областей, где расположены крупные научные Гультяев Ю.В. 2002. Эффективность препарата ВЕТЕРИН 20% э. к. при учреждения, занимающиеся вопросами энтомологии защите крупного рогатого скота от двукрылых кровососущих и паразитологии. По видовому составу комаров насекомых. Автореф. дис. ... канд. вет. наук. Тюмень. 23 с. Гуцевич А.В., Мончадский А.С., Штакельберг А.А. 1970. Фауна СССР. остальных регионов сведения или устаревшие, или Насекомые двукрылые. Т. 3, вып. 4. Комары. Семейство Culicidae. имеют отрывочный характер. Л.: Наука. 384 с. Дубицкий А.М. 1970. Кровососущие комары (Diptera, Culicidae) Казахстана. Алма-Ата: Наука. 222 с. Благодарности Ермакова Р.М. 1972. Комары (фауна и экология) нефтегазодобывающих районов Тюменской области и экологическое обоснование мероприятий по борьбе с ними. Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Статья подготовлена при финансовой поддержке Москва. 16 с. Министерства науки и высшего образования Ишмуратов И.Н. 1968. Двукрылые насекомые Ханты-Мансийского Российской Федерации в рамках темы НИОКТР национального округа и особенности нападения их на пушных «Биоразнообразие ветландных экосистем юга Западной зверей, находящихся в клетках. В кн.: Проблемы ветеринарной санитарии: Труды ВНИИВС. Т. 31. Москва: Росглавполиграфпром Сибири» (АААА-А19-119011190112-5). Комитета по печати при Совете Министров РСФСР: 23–29. Киселева Е.Ф. 1927. К фауне комаров Тазовской губы. Русский гидробиологический журнал. 6: 11–12. Литература Киселева Е.Ф. 1936. Материалы по фауне Culicidae Сибири. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2: 220–240. Адищева О.С., Малхазова С.М., Орлов Д.С. 2016. Распространение Колосов Ю.М. 1936. Каталог двукрылых Среднего Урала. Свердловск. лихорадки Западного Нила в России. Вестник Московского 27 с. университета. Серия 5. География. 4: 48–54. Кононова Ю.В., Мирзаева А.Г., Смирнова Ю.А., Протопопова Е.В., Апенкина Н.Н. 1963. Кровососущие двукрылые насекомые долины Дупал Т.А., Терновой В.А., Юрченко Ю.А., Шестопалов А.М., реки Оби. В кн.: Природа поймы реки Оби и ее хозяйственное Локтев В.Б. 2007. Видовой состав кровососущих комаров освоение. Томск: Изд-во Томского университета: 318–323. (Diptera: Culicidae) и возможность формирования очагов Беззубова В.П., Ваншток А.П. 1961. Фауна кровососущих комаров циркуляции вируса Западного Нила на юге Западной Сибири. Новосибирской области. В кн.: Труды Новосибирского Паразитология. 41(6): 459–470. медицинского института и Новосибирской областной санитарно- Кутузова Т.М. 1992. Видовой состав и численность комаров рода Aedes эпидемиологической станции. Т. 38. Вопросы природноочаговых Meigen в природных и антропогенных биоценозах Пермской болезней Западной Сибири. Новосибирск: 176–178. области. В кн.: Насекомые в естественных и антропогенных Белокур В.М. 1960. К фауне кровососущих двукрылых насекомых биогеоценозах Урала. Материалы IV совещания энтомологов Ненецкого автономного округа и северной части Коми АССР. Урала (Пермь, 24–26 марта 1992 г.). Екатеринбург: Наука, Энтомологическое обозрение. 39(2): 404–409. УрО РАН: 79–81. Бельтюкова К.Н., Бей-Биенко И.Г., Буянова О.Ф., Детинова Т.С., Кутузова Т.М. 2002. Сезонная динамика видового разнообразия и Рерберг М.С., Шленова М.Ф. 1958. Предварительные данные к численности кровососущих комаров в природных биотопах разработке системы мероприятий по борьбе с гнусом в условиях лесостепного Зауралья. Вестник Челябинского государственного строительства Красноярской ГЭС. Медицинская паразитология педагогического университета. Серия 10. Экология. Валеология. и паразитарные болезни. 27(1): 20–26. Педагогическая психология. 3: 73–79. Биоразнообразие двукрылых насекомых комплекса гнуса европейского Кутузова Т.М., Самарина Н.С. 2008. Кровососущие комары на юго- Северо-Востока России. URL: http://ib.komisc.ru:8000/dbgnus западе подтаежной зоны Пермского Прикамья. Вестник (дата обращения 3.05.2019). Пермского университета. Биология. 9(25): 27–31. Бирюков В.П. 1926. Природа и население Шадринского округа Кухарчук Л.П. 1966. Кровососущие комары (Culicuinae) Приобья. Уральской области. Шадринск: Типография Коммунотреста. В кн.: Биологические основы борьбы с гнусом в бассейне Оби. 338 с. Новосибирск: Наука: 9–52. Букштынов В.И. 1966. Фауна и экология кровососущих двукрылых Кухарчук Л.П. 1980. Кровососущие комары (Diptera, Culicidae) Сибири. насекомых юга Тюменской области. В кн.: Проблемы ветеринарной Систематика. Новосибирск: Наука. 220 с. санитарии: Труды ВНИИВС. Т. 23. М.: Росглавполиграфпром Кухарчук Л.П. 1981. Экология кровососущих комаров (Diptera, Комитета по печати при Совете Министров РСФСР: 309–310. Culicidae) Сибири. Новосибирск: Наука. 232 с. Вигоров Ю.Л., Некрасова Л.С., Вигоров А.Ю. 2015. О позднелетней Логиновский Г.Е. 1974. Кровососущие комары (Diptera, Culicinae) фауне кровососущих комаров в юго-восточном углу Курганской области. В кн.: Вопросы энтомологии Сибири. Свердловской области. Фауна Урала и Сибири. 1: 12–25. Новосибирск: Наука: 148–149. 398 Т.А. Хлызова

Лужкова А.Г., Вечер Л.Ф., Мертвецова О.А., Панкова Т.Ф., Фоминых В.Г., в Северной Азии: Материалы 7 Межрегионального совещания Франц Т.Г. 1988. Естественные враги гнуса бассейна Средней энтомологов Сибири и Дальнего Востока в рамках Сибирской Оби. Томск: Изд-во Томского университета. 152 с. зоологической конференции (Новосибирск, 20–24 сентября Малькова М.Г., Якименко В.В., Винарская Н.П., Немчинова Н.Н., 2006 г.). Новосибирск: 411–413. Михайлова О.А. 2013. Кровососущие комары Западной Сибири: Новикова А.В. 1977. Фаунистические компоненты природных очагов Фауна, систематика, особенности экологии, методы полевых туляремии Курганской области (Материалы ландшафтно- и лабораторных исследований. Методическое пособие. Омск: эпидемиологического районирования). Автореф. дис. ... канд. Омский научный вестник. 80 с. биол. наук. Свердловск. 25 с. Маркович Н.Я. 2003. Реакция биоты на потепление климата в Европе. Остроушко Т.С. 1965. К фауне и биологии кровососущих комаров и Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 4: 23–26. мокрецов Интинского района Коми АССР. Известия филиала Медведев С.Г. 2011. Фауна кровососущих насекомых комплекса ВГО. 10: 128–131. гнуса (Diptera) северо-западного региона России. Анализ Остроушко Т.С. 1967. Кровососущие комары Коми АССР и их распространения. Энтомологическое обозрение. 90(3): 527–547. биология. Паразитология. 1(4): 311–318. Медведев С.Г. 2013. Организация исследований насекомых Остроушко Т.С. 1980. Кровососущие комары бассейна Печорского комплекса гнуса (Diptera: Culicidae, Ceratopogonidae, Tabanidae) Щугора (Северный Урал). В кн.: Кровососущие членистоногие Ю. С. Балашовым. Паразитология. 47(3): 245–260. Европейского Севера. Петрозаводск: Карельский филиал АН Медведев С.Г., Айбулатов С.В., Беспятова Л.А., Бродская Н.К., СССР: 65–80. Панюкова Е.В., Халин А.В., Янковский А.В. 2007. Фауна Остроушко Т.С. 1989. Экология и распространение комаров в Коми кровососущих насекомых комплекса гнуса (Diptera) северо- АС С Р. Труды Коми научного центра Уральского отделения АН западного региона России. Ι. Общая характеристика фауны. СССР. 100: 94–101. Энтомологическое обозрение. 86(4): 827–844. Павлов С.Д. 1990. Методы изучения и эффективность химических Мезенев Н.П. 1967. Кровососущие комары (Culicuinae) юго-западной средств против кровососущих двукрылых насекомых (гнуса) в части Таймыра. Паразитология. 1(5): 422–430. животноводстве. Автореф. дис. ... докт. вет. наук. Ленинград. 35 с. Мезенев Н.П. 1968. Соотношение компонентов гнуса на Таймыре и в Палий В.Ф. 1970. Методика изучения фауны и фенологии насекомых. других районах Крайнего Севера. Паразитология. 2(4): 347–352. Воронеж: Центрально-Черноземное книжное изд-во. 189 с. Мезенев Н.П. 1972. Комплекс гнуса в северных районах Таймыра. В кн.: Панюкова Е.В. 2005. Дополнение к фауне кровососущих комаров Зоологические проблемы Сибири (Материалы IV совещания (Diptera, Culicidae) Республики Коми. Вестник Института зоологов Сибири). Новосибирск: Наука: 140–142. биологии Коми НЦ УрО РАН. 9: 17–21. Мезенев Н.П. 1976. Состав комплекса гнуса Эвенкии. Бюллетень Панюкова Е.В. 2016. Обзор фауны кровососущих комаров научно-технической информации НИИ сельского хозяйства (Diptera, Culicidae) европейского северо-востока России. Крайнего Севера. 2: 37–38. Вестник Института биологии Коми НЦ УрО РАН. 2: 18–26. Мирзаева А.Г. 2017. Кровососущие двукрылые севера Красноярского DOI: 10.31140/j.vestnikib.2016.2(196).3 края. Сообщение 1. Кровососущие комары. Евразиатский Панюкова Е.В., Остроушко Т.С. 2017. Фауна европейского северо- энтомологический журнал. 16(2): 158–172. DOI: 10.15298/ востока России. Кровососущие комары (Diptera: Culicidae). М.: euroasentj.16.2.09 Товарищество научных изданий КМК. 209 с. Мирзаева А.Г., Полякова П.Е. 1967. Кровососущие насекомые Песенко Ю.А. 1982. Принципы и методы количественного анализа в Енисейского Заполярья. В кн.: Итоги исследований по проблеме фаунистических исследованиях. М.: Наука. 287 с. борьбы с гнусом. Доклады совещания (Новосибирск, 25–28 января Пестов С.В., Панюкова Е.В. 2013. Ландшафтно-зональное распределение 1966 г.). Новосибирск: Наука: 27–36. кровососущих комаров и слепней (Diptera: Culicidae, Tabanidae) Мирзаева А.Г., Смирнова Ю.А., Юрченко Ю.А., Кононова Ю.А. 2007. на северо-востоке Русской равнины. Паразитология. 47(4): 320– К познанию фауны и экологии кровососущих комаров (Diptera: 332. Culicidae) лесостепных и степных районов Западной Сибири. Пестрякова Т.С., Гуковская В.М., Суковатова Л.М., Красикова Н.С., Паразитология. 41(4): 235–267. Учайкина Г.И. 1968. Кровососущие двукрылые севера Томской Митрофанова Ю.Г. 1929. К фауне комаров Среднего Урала. Известия области. В кн.: Природа и экономика Александровского Биологического НИИ и Биологической станции при Пермском нефтеносного района. Томск: Изд-во Томского университета: государственном университете. 6(8): 373–376. 251–255. Мончадский А.С. 1950. Нападение комаров на человека в природных Плетнев Е.А. 1926. Биология и экология комаров (Culicidae) Томского условиях Субарктики и факторы, его регулирующие. В кн.: края. Архив натуралистов. 12: 1–27. Паразитологический сборник. Т. 12. М. – Л.: Изд-во АН СССР: Полторацкая Н.В., Мирзаева А.Г. 2013. О новых находках редкого для 123–166. Западной Сибири вида комаров Aedes sibiricus Danilov et Filippova, Мончадский А.С. 1951. Личинки кровососущих комаров СССР и 1978 (Diptera, Culicidae). Евразиатский энтомологический сопредельных стран. (Подсемейство Culicinae). М. – Л.: Изд-во журнал. 12(2): 144–146. АН СССР. 291 с. Полякова П.Е. 1964. К фауне и экологии комаров среднего Приобья. Некрасова Л.С., Вигоров Ю.Л., Вигоров А.Ю. 2008. Экологическое В кн.: Доклады зоологического совещания, посвященного разнообразие кровососущих комаров Урала. Екатеринбург: 100-летию со дня рождения Михаила Дмитриевича Рузского. УрО РАН. 208 с. Томск: Изд-во Томского университета: 166–168. Некрасова Л.С., Вигоров Ю.Л., Захарова Е.Ю., Чибиряк М.В. 2016. Полякова П.Е. 1966. Кровососущие комары (Diptera, Culicidae) Кровососущие комары (Diptera, Culicidae) Курганской области. Среднего Приобья. В кн.: Фауна и экология членистоногих Фауна Урала и Сибири. 1: 75–87. Сибири. Новосибирск: Наука: 112–115. Непоклонов А.А. 1987. Защита северных оленей от гнуса и оводов. Полякова П.Е. 1968. Кровососущие комары (Diptera, Culicinae) Ветеринария. 6: 16–18. северотаежной подзоны Оби и Енисея. Известия СО АН СССР. Нецкий Г.И. 1952. Кровососущие комары Омской области. Медицинская 10(2): 108–113. паразитология и паразитарные болезни. 1: 49–54. Полякова П.Е. 1970. Материалы по фауне кровососущих комаров Николаева Н.В. 1980. Экология личинок кровососущих комаров (Diptera, Culicinae) Севера Сибири. В кн.: Фауна Сибири: Сборник Южного Ямала. Свердловск: Препринт. 66 с. БИН СО АН СССР. Новосибирск: Наука: 132–137. Николаева Н.В. 2002. Ревизия фауны кровососущих комаров (Diptera, Полякова П.Е. 1973. К фауне кровососущих комаров (Diptera, Culicidae) Culicidae) Уральского федерального округа и сопредельных Севера Сибири. В кн.: Итоги исследований живой природы территорий Урала. В кн.: Биоразнообразие и биоресурсы Урала Сибири: Труды Биологического института. Новосибирск: Наука: и сопредельных территорий: Материалы II международной 151–163. конференции (Оренбург, 17–18 декабря 2002 г.). Оренбург: Полякова П.Е., Кухарчук Л.П. 1970. Новый для фауны СССР вид Изд-во ОГПУ: 177–179. комара – Aedes (?) rempeli Vock. (Diptera, Culicidae) из Западной Николаева Н.В. 2007. Изменения фауны кровососущих комаров Урала Сибири. В кн.: Фауна Сибири: Сборник БИН СО АН СССР. и Западной Сибири как реакция на трансформацию среды. В кн.: Новосибирск: Наука: 130–131. Биоразнообразие и роль животных в экосистемах: Материалы Полякова П.Е., Мирзаева А.Г. 1966. Изучение экологии комаров ІV Международной научной конференции (9–12 октября 2007 г., (Diptera, Culicidae) Причулымья. Медицинская паразитология и Днепропетровск). Днепропетровск: Изд-во ДНУ: 347–349. паразитарные болезни. 35(1): 35–38. Николаева Н.В., Гилев А.В. 2006. Эколого-эпидемиологическая оценка Попов В.В., Таранов В.И. 1969. К фауне кровососущих комаров биоразнообразия кровососущих комаров (Diptera, Culicidae) (Диптера, Кулицине) Тюменской области. В кн.: Вопросы краевой Урала и Западной Сибири. В кн.: Энтомологические исследования инфекционной патологии. Материалы научно-практической Обзор фауны кровососущих комаров (Diptera: Culicidae) 399

конференции, посвященной 30-летию учения академика Тарабухин И.А. 1945. К вопросу о фауне Culicidae в Западной Сибири. Е.Н. Павловского. Тюмень: 47–49. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 6: 12–14. Попов В.М. 1953а. Кровососущие клещи и насекомые Западной Сибири Тупицын Ю.Н., Дубицкий А.М. 1972. Обнаружение нового для и их значение в эпидемиологии заболеваний с природной фауны Казахстана подрода и вида кровососущего комара Aedes очаговостью. В кн.: Вопросы краевой патологии фитонцидов и (Stegomyia) galloisi Yamada, 1921. Медицинская паразитология и производства бакпрепаратов. Томск: 45–61. паразитарные болезни. 1: 106–107. Попов В.М. 1953б. Фауна кровососущих комаров Томской области и их Федоров В.Г., Пендикова Е.Г., Алифанов В.И., Таранюк Г.С. 1971. эпидемиологическое значение. В кн.: Вопросы краевой патологии Кровососущие комары Омской области. В кн.: Вопросы фитонцидов и производства бакпрепаратов. Томск: 62–86. инфекционной патологии. Омск: Западно-Сибирское книжное Попов В.М. 1953в. Материалы по экологии комаров Aedes excrucians изд-во: 268–273. Walk. и Ae. cinereus Mg. в условиях лесной зоны Западной Шарков А.А., Лобкова М.П., Усова З.В. 1984. Кровососущие комары Сибири. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. (сем. Culicidae) и мошки (сем. Simuliidae) европейского севера 6: 521–528. СССР. Петрозаводск: Карелия. 151 с. Попов Л.В. 1932. Материалы к фауне насекомых Тобольского севера. Шевкунова Е.А., Грачева Л.И. 1961. Материалы по фауне кровососущих В кн.: Работы энтомологического отделения паразитологического комаров Архангельской области. Медицинская паразитология и отдела Свердловского санитарно-бактериологического паразитарные болезни. 30(2): 228. института. Вып. 1. Свердловск: 21–24. Шипицина Н.К., Детинова Т.С., Шленова М.Ф., Бельтюкова К.Н., Пустовалов И.Н. 1969. К фауне кровососущих комаров (Диптера, Буянова О.Ф., Бей-Биенко И.Г. 1959. Защита строителей Кулицинэ) Ханты-Мансийского национального округа. В кн.: Красноярской ГЭС от гнуса. Медицинская паразитология и Вопросы краевой инфекционной патологии. Материалы научно- паразитарные болезни. 4: 456–463. практической конференции, посвященной 30-летию учения Штакельберг А.А. 1927. Кровососущие комары (сем. Culicidae) Союза академика Е.Н. Павловского. Тюмень: 50–51. ССР и сопредельных стран. Л.: Изд-во АН СССР. 167 с. Расницын С.П., Косовских В.П. 1979. Усовершенствованный метод Штакельберг А.А. 1937. Фауна СССР. Насекомые двукрылые. Т. 3. учета обилия комаров сачком вокруг человека и сравнение его Вып. 4. Семейство Culicidae. М. – Л.: Изд-во АН СССР. 257 с. с учетом темным колоколом. Медицинская паразитология и Щепеткин В.А. 1972. Комары (Диптера, Кулицине) Ямало-Ненецкого паразитарные болезни. 1: 18–24. национального округа. В кн.: Труды Научно-исследовательского Редькина Н.В. 2008. Кровососущие комары (Diptera, Culicidae) института сельского хозяйства Северного Зауралья. Вып. 4. антропогенных территорий юго-востока Западной Сибири на Вопросы ветеринарной арахноэнтомологии и ветеринарной примере городов Томска и Стрежевого. Автореф. дис. ... канд. санитарии. Тюмень: 37–44. биол. наук. Томск. 20 с. Щепеткин В.А. 1974. Кровососущие двукрылые и овода Ямало- Редькина Н.В., Островерхова Г.П. 2006. К фауне кровососущих Ненецкого национального округа Тюменской области и меры комаров (Diptera: Culicidae) г. Томска. В кн.: Энтомологические защиты от них северных оленей. Автореф. дис. ... канд. вет. наук. исследования в Северной Азии: Материалы 7 Межрегионального Москва. 26 с. совещания энтомологов Сибири и Дальнего Востока в рамках Якименко В.В., Ткачев С.Е., Макенов М.Т., Василенко А.Г., Тикунова Н.В. Сибирской зоологической конференции (Новосибирск, 20– 2015. Обнаружение вируса лихорадки Западного Нила на 24 сентября 2006 г.). Новосибирск: 426–428. юге Западной Сибири. В кн.: Итоги и перспективы изучения Рузский М.Д. 1915. О малярийном комаре в г. Томске. Сибирская проблем инфекционных и паразитарных болезней. Сборник жизнь. № 228. трудов Российской научно-практичической конференции в Рузский М.Д. 1925. Материалы по фауне курорта «Карачинское озеро». связи с 50-летием со дня организации Тюменского научно- Известия Томского университета. 75: 283–290. исследовательского института краевой инфекционной Рузский М.Д. 1946. Зоодинамика Барабинской степи. Труды Томского патологии. Т. 2 (Тюмень, 24–25 сентября 2015 г.). Тюмень: Изд-во университета. 97: 17–68. Тюменского государственного университета: 224–233. Румш Л.Т. 1948. Комары Севера СССР. В кн.: Паразитологический Edwards F.W. 1926. Una revision delle zanzare delle regioni Paleartiche. сборник. Вып. 10. М. – Л.: Изд-во Академии наук СССР: 87–95. Rivista di malariologia. 5: 3–6. Савельев Д.В. 1963. Изучение видового состава и динамики активности Frey R. 1921. Provisorisk förteckning över Finlands culicider. Meddelander кровососущих двукрылых в лесотундре Таймыра. Труды НИИСХ af 50 c. Pro fauna et flora Fennica. 47: 98–103. Крайнего Севера. 12: 253–257. Harbach R.E. 2013. Mosquito Taxonomic Inventory. URL: http://mosquito- Самандас А.М. 2011. Оптимизация системы защиты северных оленей taxonomic-inventory.info/ (дата обращения: 10.05.2019). от гнуса, оводов и некробактериоза на Крайнем Севере. Автореф. Maslov A.W. 1930a. Erganzung zuder Liste der Culicidae der Tomsker дис. ... докт. вет. наук. СПб. 48 с. Kreises (Westsibirien). Zoologischer Anzeiger. 89(1/2): 1–4. Стегний В.Н., Кабанова В.М. 1976. Цитоэкологическое изучение Maslov A.W. 1930b. Zur Biologie von An. maculipennis. Zeitschrift für природных популяций малярийного комара на территории angewandte entomologie. 16: 3. СССР. Сообщение 1. Выделение нового вида Anopheles в Reinert J.F. 2000a. Restoration of Ayurakitia to generic rank in tribe комплексе maculipennis методом цитодиагностики. Медицинская Aedini and a revised definition of the genus. Journal of the American паразитология и паразитарные болезни. 2: 192–198. Mosquito Control Association. 16(2): 57–65. Степин А.Ю. 2002. Кровососущие комары (Diptera, Culicidae) Reinert J.F. 2000b. New classification for the composite genus Aedes (Diptera: Оренбургской области (фауна, экология, медицинское и Culicidae: Aedini), elevation of the Ochlerotatus to generic rank, ветеринарное значение). Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Уфа. reclassification of the other subgenera, and notes on certain and species. 23 с. Journal of the American Mosquito Control Association. 16(3): 175–188. Сюткина К.А. 1967. К фауне кровососущих комаров Среднего Урала. В Reinert J.F., Harbach R.E., Kitching I.J. 2004. Phylogeny and classification of кн.: Итоги исследования по проблеме борьбы с гнусом. Доклады Aedini (Diptera: Culicidae) based on morphological characters of all совещания (Новосибирск, 25–28 января 1966 г.). Новосибирск: life stages. Zoological Journal of the Linnaen Society. 142: 289–368. Наука: 65–70. DOI: 10.1111/j.1096-3642.2004.00144.x Тамарина Н.А., Александрова К.В. 1974а. О кровососущих комарах Reinert J.F., Harbach R.E., Kitching I.J. 2008. Phylogeny and classification (Diptera: Culicidae) побережья Белого моря. Ι. Обзор видов. of Ochlerotatus and allied taxa (Diptera: Culicidae: Aedini) based Научные доклады высшей школы. Биологические науки. 8: 16–21. on morphological data from all life stages. Zoological Journal of the Тамарина Н.А., Александрова К.В. 1974б. О кровососущих комарах Linnaen Society. 153: 29–114. DOI: 10.1111/j.1096-3642.2008.00382.x (Diptera: Culicidae) побережья Белого моря. ΙΙ. Оценка фауны. Wilkerson R.C., Linton Y.-M., Fonseca D.M., Schultz T.R., Price D.C., Научные доклады высшей школы. Биологические науки. 12: 7–9. Strickman D.A. 2015. Making mosquito taxonomy Useful: A stable Тарабухин И.А. 1941. О распространении подвидов A. maculipennis Mg. classification of tribe Aedini that balances utility with current в Новосибирской области. Медицинская паразитология и knowledge of evolutionary relationships. PLoS One. 10(7): 1–26. DOI: паразитарные болезни. 10(3–4): 444–450. 10.1371/journal.pone.0133602

Поступила / Received: 10.06.2019 Принята / Accepted: 17.09.2019 T.A. Khlyzova

References

Adishcheva O.S., Malkhazova S.M., Orlov D.S. 2016. West Nile Fever in Gutsevich A.V., Monchadskiy A.S., Shtakel’berg A.A. 1970. Fauna SSSR. Russia. Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 5. Geografiya. 4: Nasekomyye dvukrylyye. T. 3, vyp. 4. Komary. Semeystvo Culicidae 48–54 (in Russian). [Fauna of the USSR. Dipterous insects. Vol. 3, iss. 4. Mosquitoes. Apenkina N.N. 1963. Blood-sucking dipterous insects of the valley of Family Culicidae]. Leningrad: Nauka. 384 p. (in Russian). Ob River. In: Priroda poymy reki Obi i yeye khozyaystvennoye Harbach R.E. 2013. Mosquito Taxonomic Inventory. Available at: http:// osvoyeniye [Nature of a flood plain of the Ob River and its economic mosquito-taxonomic-inventory.info/ (accessed 10 May 2019). development]. Tomsk: Tomsk University: 318–323 (in Russian). Ishmuratov I.N. 1968. Dipterous insects of the Khanty-Mansi National Bel’tyukova K.N., Bey-Bienko I.G., Buyanova O.F., Detinova T.S., District and the features of their attack on fur-bearing animals in cages. Rerberg M.S., Shlenova M.F. 1958. Preliminary data for development In: Problemy veterinarnoy sanitarii: Trudy VNIIVS. T. 31 [Problems of of the system of actions for fight against mosquitoes in the conditions Veterinary Sanitation: Proceedings of All-Union Research Institute of of construction of the Krasnoyarsk hydroelectric power station. Veterinary Sanitation. Vol. 31]. Moscow: Rosglavpoligrafprom of the Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni. 27(1): 20–26 Press Committee under the Council of Ministers of the RSFSR: 23–29 (in Russian). (in Russian). Belokur V.M. 1960. To the fauna of blood-sucking dipterous insects of Kiseleva E.F. 1927. To the fauna of mosquitoes of Taz Bay. Russkiy Nenets Autonomous Area and the northern part of Komi ASSR. gidrobiologicheskiy zhurnal. 6: 11–12 (in Russian). Entomologicheskoe obozrenie. 39(2): 404–409 (in Russian). Kiseleva E.F. 1936. Materials on the fauna of Culicidae of Siberia. Bezzubova V.P., Vanshtok A.P. 1961. Fauna of blood-sucking mosquitoes Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni. 2: 220–240 of Novosibirsk Region. In: Trudy Novosibirskogo meditsinskogo (in Russian). instituta i Novosibirskoy oblastnoy sanitarno-epidemiologicheskoy Kolosov Yu.M. 1936. Katalog dvukrylykh Srednego Urala [Catalog of Diptera stantsii. T. 38. Voprosy prirodnoochagovykh bolezney Zapadnoy of the Middle Urals]. Sverdlovsk. 27 p. (in Russian). Sibiri [Proceedings of the Novosibirsk Medical Institute and the Kononova Yu.V., Mirzayeva A.G., Smirnova Yu.A., Protopopova E.V., Novosibirsk Regional Sanitary and Epidemiological Station. Vol. 38. Dupal T.A., Ternovoi V.A., Yurchenko Yu.A., Shestopalov A.M., Natural focal diseases of Western Siberia]. Novosibirsk: 176–178 Loktev V.B. 2007. Species composition of mosquitoes (Diptera, (in Russian). Culicidae) and possibility of the West Nile virus natural foci formation Bioraznoobraziye dvukrylykh nasekomykh kompleksa gnusa yevropeyskogo in the south of Western Siberia. Parazitologiya. 41(6): 459–470 Severo-Vostoka Rossii [Biodiversity of mosquitoes (Diptera) of (in Russian). the European North-East of Russia]. Available at: http://ib.komisc. Kukharchuk L.P. 1966. Blood-sucking mosquitoes (Culicuinae) of Priobye. ru:8000/dbgnus (accessed 3 May 2019) (in Russian). In: Biologicheskiye osnovy bor’by s gnusom v basseyne Obi [Biological Biryukov V.P. 1926. Priroda i naseleniye Shadrinskogo okruga Ural’skoy principles of the control of blood-sucking Diptera in the Ob River oblasti [Nature and population of the Shadrinsk District of the Ural basin]. Novosibirsk: Nauka: 9–52 (in Russian). Region]. Shadrinsk: Kommunotrest Typography. 338 p. (in Russian). Kukharchuk L.P. 1980. Krovososushchiye komary (Diptera, Culicidae) Bukshtynov V.I. 1966. Fauna and ecology of blood-sucking dipterous Sibiri. Sistematika [Blood-sucking mosquitoes (Diptera, Culicidae) of insects of the south of the Tyumen Region. In: Problemy veterinarnoy Siberia. Systematics]. Novosibirsk: Nauka. 220 p. (in Russian). sanitarii: Trudy VNIIVS. T. 23 [Problems of Veterinary Sanitation: Kukharchuk L.P. 1981. Ekologiya krovososushchikh komarov (Diptera, Proceedings of All-Union Research Institute of Veterinary Sanitation. Culicidae) Sibiri [Ecology of blood-sucking mosquitoes (Diptera, Culicidae) of Siberia]. Novosibirsk: Nauka. 232 p. (in Russian). Vol. 23]. Moscow: Rosglavpoligrafprom of the Press Committee under Kutuzova T.M. 1992. Species composition and number of mosquitoes of the Council of Ministers of the RSFSR: 309–310 (in Russian). the genus Aedes Meigen in natural and anthropogenic biocenoses Dubitskiy A.M. 1970. Krovososushchiye komary (Diptera, Culicidae) of Perm Region. In: Nasekomye v estestvennykh i antropogennykh Kazakhstana [Blood-sucking mosquitoes (Diptera, Culicidae) of biogeotsenozakh Urala. Materialy IV soveshchaniya entomologov Kazakhstan]. Alma-Ata: Nauka. 222 p. (in Russian). Urala [Insects in natural and anthropogenic biogeocenoses of the Edwards F.W. 1926. Una revision delle zanzare delle regioni Paleartiche. Urals. Materials of the IV meeting of entomologists of the Urals (Perm, Rivista di malariologia. 5: 3–6. Russia, 24–26 March 1992]. Yekaterinburg: Nauka, Ural Branch of the Ermakova R.M. 1972. Komary (fauna i ekologiya) neftegazodobyvayushchikh Russian Academy of Sciences: 79–81 (in Russian). rayonov Tyumenskoy oblasti i ekologicheskoye obosnovaniye Kutuzova T.M. 2002. Seasonal dynamics of the species diversity and number meropriyatiy po bor’be s nimi [Mosquitoes (fauna and ecology) of oil of blood-sucking mosquitoes in natural biotopes of the forest- and gas extraction areas of Tyumen Region and ecological justification steppe Trans-Ural region. Vestnik Chelyabinskogo gosudarstvennogo of actions for fight against them. PhD Abstract]. Moscow. 16 p. pedagogicheskogo universiteta. Seriya 10. Ekologiya. Valeologiya. (in Russian). Pedagogicheskaya psikhologiya. 3: 73–79 (in Russian). Fedorov V.G., Pendikova E.G., Alifanov V.I., Taranyuk G.S. 1971. Blood- Kutuzova T.M., Samarina N.S. 2008. e mosquitoes of the south- sucking mosquitoes of Omsk Region. In: Voprosy infektsionnoy western subnemoral zone of the Perm Prikamye. Vestnik Permskogo patologii [Problems of infectious pathology]. Omsk: West Siberian universiteta. Biologiya. 9(25): 27–31 (in Russian). Book Publishing House: 268–273 (in Russian). Loginovskiy G.E. 1974. Blood-sucking mosquitoes (Diptera, Culicinae) Frey R. 1921. Provisorisk förteckning över Finlands culicider. Meddelander of Kurgan Region. In: Voprosy entomologii Sibiri [Questions of af 50 c. Pro fauna et flora Fennica. 47: 98–103. entomology of Siberia]. Novosibirsk: Nauka: 148–149 (in Russian). Gavrichkin A.A., Khlyzova T.A., Fyodorova O.A., Nikonov A.A. 2016. Luzhkova A.G., Vecher L.F., Mertvetsova O.A., Pankova T.F., Fominykh V.G., Timing for the protection of beef cattle against insects of “Gnat” Frants T.G. 1988. Estestvennye vragi gnusa basseyna Sredney Obi complex and gadflies in the south of the Tyumen region. Herald of [Natural enemies of midges in the Central Ob River basin]. Tomsk: beef cattle breeding. 1(93): 38–42 (in Russian). Tomsk University. 152 p. (in Russian). Gordeyev M.I. 1997. Adaptatsionnye strategii v populyatsiyakh malyariynykh Mal’kova M.G., Yakimenko V.V., Vinarskaya N.P., Nemchinova N.N., komarov [Adaptation strategy in populations of malaria mosquitoes. Mikhaylova O.A. 2013. Krovososushchiye komary Zapadnoy SciD Abstract]. Moscow. 42 p. (in Russian). Sibiri: Fauna, sistematika, osobennosti ekologii, metody polevykh Gornostayeva R.M. 2009. A new list of mosquitoes (Diptera: Culicidae) of i laboratornykh issledovaniy. Metodicheskoye posobiye [Blood- Russia. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni. 1: 60–62 sucking mosquitoes of Western Siberia: Fauna, systematics, features (in Russian). of ecology, methods of field and laboratory researches. Methodical Gornostayeva R.M., Danilov A.V. 1999. Komary Moskvy i Moskovskoy manual]. Omsk: Omsk scientific bulletin. 80 p. (in Russian). oblasti [Mosquitoes of Moscow and the Moscow region]. Moscow: Markovich N.Ya. 2003. Biota response to climate warming in Europe. KMK Scientific Press Ltd. 342 p. (in Russian). Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni. 4: 23–26 Gracheva L.I., Shevkunova E.A. 1959. Materials on study of blood-sucking (in Russian). mosquitoes in the south of Arkhangelsk Region. Zoologicheskii Maslov A.W. 1930. Erganzung zuder Liste der Culicidae der Tomsker Kreises zhurnal. 38(2): 1751–1753 (in Russian). (Westsibirien). Zoologischer Anzeiger. 89(1/2): 1–4. Gultyaev Y.V. 2002. Effektivnost’ preparata VETERIN 20% e. k. pri Maslov A.W. 1930. Zur Biologie von An. maculipennis. Zeitschrift für zashchite krupnogo rogatogo skota ot dvukrylykh krovososushchikh angewandte entomologie. 16: 3. nasekomykh [e effectiveness of the drug veterin 20% emulsifiable Medvedev S.G. 2011. e fauna of bloodsucking insects of the gnus complex concentrate in the protection of cattle from dipteran blood-sucking (Diptera) of Northwest Russia. Analysis of distribution. Entomological insects. PhD Abstract]. Tyumen. 23 p. (in Russian). Review. 91(9): 1092–1107. DOI: 10.1134/S001387381109003X T.A. Khlyzova

Medvedev S.G. 2013. Organization of studies of the gnus complex Nikolayeva N.V., Gilev A.V. 2006. Ecological and epidemiological assessment of bloodsucking dipterans (diptera: culicidae, ceratopogonidae, of the biodiversity of blood-sucking mosquitoes (Diptera, Culicidae) tabanidae) by Yu. S. Balashov. Entomological Review. 93(9): 1218– of the Urals and Western Siberia. In: Entomologicheskie issledovaniya 1227. DOI: 10.1134/S0013873813090145 v Severnoy Azii: Materialy 7 Mezhregional’nogo soveshchyaniya Medvedev S.G., Aybulatov S.V., Bespyatova L.A., Brodskaya N.K., entomologov Sibiri i Dal’nego Vostoka v ramkakh Sibirskoy Panyukova E.V., Khalin A.V., Yankovsky A.V. 2007. Bloodsucking zoologicheskoy konferentsii [Entomological researches in Northern dipteran insects (Diptera) attacking humans and animals (the Asia: Materials of the 7th Interregional meetings of entomologists of “gnus” complex) in northwestern Russia: I. General characteristics Siberia and the Far East within the Siberian Zoological Conference of the fauna. Entomological Review. 87(9): 1218–1231. DOI: 10.1134/ (Novosibirsk, Russia, 20–24 September 2006)]. Novosibirsk: 411–413 S0013873807090114 (in Russian). Mezenev N.P. 1967. Bloodsucking mosquitoes (Culicuinae) from the south- Novikova A.V. 1977. Faunisticheskie komponenty prirodnykh western part of Taimir. Parazitologiya. 1(5): 422–430 (in Russian). ochagov tulyaremii Kurganskoy oblasti (Materialy landshaftno- Mezenev N.P. 1968. On the complex of bloodsucking Diptera (gnus) from epidemiologicheskogo rayonirovaniya) [Faunistic components of the Taimir Peninsula. Parazitologiya. 2(4): 347–352 (in Russian). natural centers of tularemia in Kurgan Region (Materials of landscape Mezenev N.P. 1972. Midges complex in the northern regions of Taimyr. and epidemiological zoning). PhD Abstract]. Sverdlovsk. 25 p. In: Zoologicheskiye problemy Sibiri (Materialy IV soveshchaniya (in Russian). zoologov Sibiri) [Zoological problems of Siberia (Materials of the Ostroushko T.S. 1965. To the fauna and biology of blood-sucking mosquitoes IV meeting of Siberian zoologists)]. Novosibirsk: Nauka: 140–142 and midges of the Inta District of the Komi ASSR. Izvestiya filiala (in Russian). VGO. 10: 128–131 (in Russian). Mezenev N.P. 1976. Composition of midges complex of Evenkia. Byulleten’ Ostroushko T.S. 1967. Bloodsucking mosquitoes from the Komi ASSR and nauchno-tekhnicheskoy informatsii NII sel’skogo khozyaystva Kraynego their biology. Parazitologiya. 1(4): 311–318 (in Russian). Severa. 2: 37–38 (in Russian). Ostroushko T.S. 1980. Blood-sucking mosquitoes of the Shchugor Mirzaeva A.G. 2017. Bloodsucking insects (Diptera) of the northern part River basin, a tributary to the Pechora River (Northern Urals). of Krasnoyarskii Krai. 1. Bloodsucking mosquitoes. Euroasian In: Krovososushchiye chlenistonogiye Evropeyskogo Severa Entomological Journal. 16(2): 158–172 (in Russian). DOI: 10.15298/ [Blood-sucking arthropods of the European North]. Petrozavodsk: euroasentj.16.2.09 Karelian Branch of the Academy of Sciences of the USSR: 65–80 Mirzaeva A.G., Polyakova P.E. 1967. Blood-sucking insects of the Yenisei (in Russian). Arctic. In: Itogi issledovaniy po probleme bor’by s gnusom. Doklady Ostroushko T.S. 1989. Ecology and distribution of mosquitoes in the Komi soveshchaniya [Results of researches on fight against midges. Meeting ASSR. Trudy Komi nauchnogo tsentra Ural’skogo otdeleniya AN SSSR. reports (Novosibirsk, Russia, 25–28 January 1966)]. Novosibirsk: 100: 94–101 (in Russian). Nauka: 27–36 (in Russian). Paliy V.F. 1970. Metodika izucheniya fauny i fenologii nasekomykh [Methods Mirzaeva A.G., Smirnova Yu.A., Yurchenko Yu.A., Kononova Yu.A. 2007. of study of insects fauna and phenology]. Voronezh: Central Black On the fauna and ecology of mosquitoes (Diptera: Culicidae) in forest- Earth Book Publishing House. 189 p. (in Russian). steppe and steppe regions of Western Siberia. Parazitologiya. 41(4): Panyukova E.V. 2005. Addition to the fauna of blood-sucking mosquitoes 235–267 (in Russian). (Diptera, Culicidae) of Komi Republic. Vestnik Instituta biologii Komi Mitrofanova Yu.G. 1929. To the fauna of mosquitoes of Central Ural NTs UrO RAN. 9: 17–21 (in Russian). Mountains. Izvestiya Biologicheskogo NII i Biologicheskoy stantsii pri Panyukova E.V. 2016. Review of fauna of mosquitoes (Diptera: Culicidae) Permskom gosudarstvennom universitete. 6(8): 373–376 (in Russian). European north-east of Russia. Vestnik Instituta Biologii Komi Monchadsky A.S. 1950. e attack of mosquitoes on humans in natural NTs UrO RAN. 2(196): 18–26 (in Russian). DOI: 10.31140/j. conditions of the Subarctic and the factors that regulate it. In: vestnikib.2016.2(196).3 Parazitologicheskiy sbornik. T. 12 [Collected papers on parazitology. Panyukova E.V., Ostroushko T.S. 2017. Fauna evropeyskogo severo-vostoka Vol. 12]. Moscow – Leningrad: Academy of Sciences of the USSR: Rossii. Krovososushchiye komary (Diptera: Culicidae) [Fauna of the 123–166 (in Russian). European northeast of Russia. Blood-sucking mosquitoes (Diptera: Monchadsky A.S. 1951. Lichinki krovososushchikh komarov SSSR i Culicidae)]. Moscow: KMK Scientific Press Ltd. 209 p. (in Russian). sopredel’nykh stran. (Podsemeystvo Culicinae) [Larvae of blood- Pavlov S.D. 1990. Metody izucheniya i effektivnost’ khimicheskikh sucking mosquitoes of the USSR and adjacent countries. (Subfamily sredstv protiv krovososushchikh dvukrylykh nasekomykh (gnusa) v Culicinae)]. Moscow – Leningrad: Academy of Sciences of the USSR. zhivotnovodstve [Methods of study and the effectiveness of chemicals 291 p. (in Russian). against blood-sucking dipterans (gnats) in animal husbandry. Nekrasova L.S., Vigorov Yu.L., Vigorov A.Yu. 2008. Ekologicheskoye SciD Abstract]. Leningrad. 35 p. (in Russian). raznoobraziye krovososushchikh komarov Urala [Ecological variety of blood-sucking mosquitoes of the Urals]. Yekaterinburg: Ural Branch Pesenko Yu.A. 1982. Printsipy i metody kolichestvennogo analiza v of the Russian Academy of Sciences. 208 p. (in Russian). faunisticheskikh issledovaniyakh [Principles and methods of Nekrasova L.S., Vigorov Yu.L., Zakharova E.Yu., Chibiryak M.V. 2016. quantitative analysis in faunistic studies]. Moscow: Nauka. 287 p. Mosquitoes (Diptera, Culicidae) of the Kurgan region. Fauna Urala i (in Russian). Sibiri. 1: 75–87 (in Russian). Pestov S.V., Panjukova E.V. 2013. Landscape and zonal distribution of Nepoklonov A.A. 1987. Protection of reindeers from midges and gadflies. bloodsucking mosquitoes and horse flies (Diptera: Culicidae, Veterinariya. 6: 16–18 (in Russian). Tabanidae) in the northeastern Russian Plain. Parazitologiya. 47(4): Netskiy G.I. 1952. Blood-sucking mosquitoes of Omsk Region. Meditsinskaya 320–332 (in Russian). parazitologiya i parazitarnye bolezni. 1: 49–54 (in Russian). Pestryakova T.S., Gukovskaya V.M., Sukovatova L.M., Krasikova N.S., Nikolayeva N.V. 1980. Ekologiya lichinok krovososushchikh komarov Uchaykina G.I. 1968. Blood-sucking Diptera from north of Tomsk Yuzhnogo Yamala [Ecology of larvae of blood-sucking mosquitoes of Region. In: Priroda i ekonomika Aleksandrovskogo neftenosnogo the Southern Yamal]. Sverdlovsk: Preprint. 66 p. (in Russian). rayona [e nature and management of the Aleksandrovsky oil- Nikolayeva N.V. 2002. Review of blood-sucking mosquitoes fauna (Diptera, bearing region]. Tomsk: Tomsk University: 251–255 (in Russian). Culicidae) of Ural Federal District and adjacent territories of the Pletnev E.A. 1926. Biology and ecology of mosquitoes (Culicidae) of Tomsk Urals. In: Bioraznoobraziye i bioresursy Urala i sopredel’nykh Region. Arkhiv naturalistov. 12: 1–27 (in Russian). territoriy: Materialy II mezhdunarodnoy konferentsii [Diversity and Poltoratskaya N.V., Mirzaeva A.G. 2013. New records of the rare species bioresources of the Urals and adjacent territories. Materials of the Aedes sibiricus Danilov et Filippova, 1978 (Diptera, Culicidae) from 2nd international conferences (Orenburg, Russia, 17–18 December West Siberia, Russia. Euroasian Entomological Journal. 12(2): 144– 2002). Orenburg: Orenburg State Pedagogical University: 177–179 146 (in Russian). (in Russian). Polyakova P.E. 1964. To the fauna and ecology of mosquitoes of the Nikolayeva N.V. 2007. Changes of fauna of blood-sucking mosquitoes Middle Ob region. In: Doklady zoologicheskogo soveshchaniya, of the Urals and Western Siberia as reaction to transformation posvyashchennogo 100-letiyu so dnya rozhdeniya Mikhaila of the environment. In: Bioraznoobraziye i rol’ zhivotnykh v Dmitriyevicha Ruzskogo [Reports of the zoological meeting dedicated ekosistemakh: Materialy IV Mezhdunarodnoy nauchnoy konferentsii to the 100-year anniversary of Mikhail Dmitrievich Ruzsky]. Tomsk: (9–12 oktyabrya 2007 g., Dnepropetrovsk) [Biodiversity and a role Tomsk University: 166–168 (in Russian). of animals in ecosystems: Materials of the ІV international scientific Polyakova P.E. 1966. Blood-sucking mosquitoes (Diptera, Culicidae) of the conference (Dnepropetrovsk, Ukraine, 9–12 October 2007)]. Middle Ob region. In: Fauna i ekologiya chlenistonogikh Sibiri [Fauna Dnepropetrovsk: Dnepropetrovsk National University: 347–349 and ecology of arthropods of Siberia]. Novosibirsk: Nauka: 112–115 (in Russian). (in Russian). T.A. Khlyzova

Polyakova P.E. 1968. Blood-sucking mosquitoes (Diptera, Culicinae) of the reclassification of the other subgenera, and notes on certain and north-taiga subzone of Ob and Yenisei rivers. Izvestiya SO AN SSSR. species. Journal of the American Mosquito Control Association. 16(3): 10(2): 108–113 (in Russian). 175–188. Polyakova P.E. 1970. Materials to the fauna of blood-sucking mosquitoes Reinert J.F. 2000. Restoration of Ayurakitia to generic rank in tribe Aedini (Diptera, Culicinae) of the northern Siberia. In: Fauna Sibiri: Sbornik and a revised definition of the genus. Journal of the American BIN SO AN SSSR [Fauna of Siberia: Collected papers of Biological Mosquito Control Association. 16(2): 57–65. Institute of the Siberian Branch of the Academy of Sciences of the Reinert J.F., Harbach R.E., Kitching I.J. 2008. Phylogeny and classification USSR]. Novosibirsk: Nauka: 132–137 (in Russian). of Ochlerotatus and allied taxa (Diptera: Culicidae: Aedini) based Polyakova P.E. 1973. To the fauna of blood-sucking mosquitoes (Diptera, on morphological data from all life stages. Zoological Journal of the Culicidae) of the northern Siberia. In: Itogi issledovaniy zhivoy Linnaen Society. 153: 29–114. DOI: 10.1111/j.1096-3642.2008.00382.x prirody Sibiri: Trudy Biologicheskogo instituta [Results of researches Reinert J.F., Harbach R.E., Kitching I.J. 2004. Phylogeny and classification of of wildlife of Siberia: Proseedings of Biological Institute]. Novosibirsk: Aedini (Diptera: Culicidae) based on morphological characters of all Nauka: 151–163 (in Russian). life stages. Zoological Journal of the Linnaen Society. 142: 289–368. Polyakova P.E., Kukharchuk L.P. 1970. Aedes (?) rempeli Vock. (Diptera, DOI: 10.1111/j.1096-3642.2004.00144.x Culicidae), new to the fauna of the USSR species from Western Rumsh L.T. 1948. Mosquitoes of the North of the USSR. In: Siberia. In: Fauna Sibiri: Sbornik BIN SO AN SSSR [Fauna of Siberia: Parazitologicheskiy sbornik. Vyp. 10 [Collected papers on Collected papers of Biological Institute of the Siberian Branch of the parazitology. Vol. 10]. Moscow – Leningrad: Academy of Sciences of Academy of Sciences of the USSR]. Novosibirsk: Nauka: 130–131 the USSR: 87–95 (in Russian). (in Russian). Ruzskiy M.D. 1915. About a malaria mosquito in Tomsk. Sibirskaya zhizn’. Polyakova P.E., Mirzayeva A.G. 1966. Study of ecology of mosquitoes No 228 (in Russian). (Diptera, Culicidae) in Chulym River region. Meditsinskaya Ruzskiy M.D. 1925. Materials to the fauna of the “Karachi Lake” resort. parazitologiya i parazitarnye bolezni. 35(1): 35–38 (in Russian). Izvestiya Tomskogo universiteta. 75: 283–290 (in Russian). Popov L.V. 1932. Materials to the fauna of insects of the Tobolsk North. In: Ruzskiy M.D. 1946. Zoodynamics of Baraba Steppe. Trudy Tomskogo Raboty entomologicheskogo otdeleniya parazitologicheskogo otdela universiteta. 97: 17–68 (in Russian). Sverdlovskogo sanitarno-bakteriologicheskogo instituta. Vyp. 1 Samandas A.M. 2011. Optimizatsiya sistemy zashchity severnykh oleney ot [Proceedings of the Entomological Branch of the Parasitological gnusa, ovodov i nekrobakterioza na Kraynem Severe [Optimization Department of the Sverdlovsk Sanitary and Bacteriological Institute. of the system of protection of reindeer from gnats, gadflies and Iss. 1]. Sverdlovsk: 21–24 (in Russian). necrobacteriosis in the Far North. SciD Abstract]. St Petersburg. 48 p. Popov V.M. 1953. Blood-sucking mites and insects of Western Siberia and (in Russian). their significance in the epidemiology of diseases with natural foci. In: Savel’yev D.V. 1963. Study of species composition and dynamics of activity Voprosy krayevoy patologii fitontsidov i proizvodstva bakpreparatov of blood-sucking dipterans in the Taimyr forest-tundra. Trudy NIISKh [Problems of regional pathology of phytoncides and production of Kraynego Severa. 12: 253–257 (in Russian). bacterial preparations]. Tomsk: 45–61(in Russian). Sharkov A.A., Lobkova M.P., Usova Z.V. 1984. Krovososushchiye komary Popov V.M. 1953. Fauna of blood-sucking mosquitoes of the Tomsk Region (sem. Culicidae) i moshki (sem. Simuliidae) evropeyskogo severa SSSR and their epidemiological significance. In: Voprosy krayevoy patologii [Blood-sucking mosquitoes (family Culicidae) and blackflys (family fitontsidov i proizvodstva bakpreparatov [Problems of regional Simuliidae) of the European North of the USSR]. Petrozavodsk: pathology of phytoncides and production of bacterial preparations]. Karelia. 151 p. (in Russian). Tomsk: 62–68 (in Russian). Shchepetkin V.A. 1972. Mosquitoes (Diptera, Culiсinae) of the Yamal- Popov V.M. 1953. Materials on ecology of Aedes excrucians Walk. and Nenets National District. In: Trudy Nauchno-issledovatel’skogo Ae. cinereus Mg. in the conditions of a forest zone of Western Siberia. instituta sel’skogo khozyaystva Severnogo Zaural’ya. Vyp. 4. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni. 6: 521–528 Voprosy veterinarnoy arakhnoentomologii i veterinarnoy sanitarii (in Russian). [Proceedings of the Scientific Research Institute of Agriculture of the Popov V.V., Taranov V.I. 1969. To the fauna of blood-sucking mosquitoes Northern Trans-Urals. Vol. 4. Problems of veterinary arachnology, (Diptera, Culicinae) of Tyumen Region. In: Voprosy kraevoy entomology and veterinary sanitation]. Tyumen: 37–44 (in Russian). infektsionnoy patologii: Materialy nauchno-prakticheskoy konferentsii, posvyashchennoy 30-letiyu ucheniya akademika Shchepetkin V.A. 1974. Krovososushchiye dvukrylyye i ovoda Yamalo- E.N. Pavlovskogo [Problems of regional infectious pathology. Nenetskogo natsional’nogo okruga Tyumenskoy oblasti i mery Materials of the scientific and practical conference devoted to the zashchity ot nikh severnykh oleney [Blood-sucking dipterans and 30th anniversary of the doctrine of the academician E.N. Pavlovsky]. botfly of the Yamal-Nenets National District of the Tyumen Region Tyumen: 47–49 (in Russian). and a measure of protection of reindeers from them. PhD Abstract]. Pustovalov I.N. 1969. To the fauna of blood-sucking mosquitoes (Diptera, Moscow. 26 p. (in Russian). Culicinae) of Khanty-Mansi National District. In: Voprosy krayevoy Shevkunova E.A., Gracheva L.I. 1961. Materials on the fauna of blood- infektsionnoy patologii: Materialy nauchno-prakticheskoy sucking mosquitoes of Arkhangelsk Region. Meditsinskaya konferentsii, posvyashchennoy 30-letiyu ucheniya akademika parazitologiya i parazitarnye bolezni. 30(2): 228 (in Russian). E.N. Pavlovskogo [Problems of regional infectious pathology. Shipitsina N.K., Detinova T.S., Shlenova M.F., Bel’tyukova K.N., Materials of the scientific and practical conference devoted to the Buyanova O.F., Bey-Bienko I.G. 1959. Protection of builders of 30th anniversary of the doctrine of the academician E.N. Pavlovsky]. the Krasnoyarsk Hydroelectric Power Station against midges. Tyumen: 50–51 (in Russian). Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni. 4: 456–463 Rasnitsyn S.P., Kosovskikh V.P. 1979. An improved method for accounting (in Russian). for the abundance of mosquitoes with a butterfly net around a Shtakelberg A.A. 1927. Krovososushchiye komary (sem. Culicidae) Soyuza person and comparing it with the ‘dark bell’ method. Meditsinskaya SSR i sopredel’nykh stran [Blood-sucking mosquitoes (family parazitologiya i parazitarnye bolezni. 1: 18–24 (in Russian). Culicidae) of the USSR and adjacent countries]. Leningrad: Academy Red’kina N.V. 2008. Krovososushchiye komary (Diptera, Culicidae) of Sciences of the USSR. 167 p. (in Russian). antropogennykh territoriy yugo-vostoka Zapadnoy Sibiri na Shtakelberg A.A. 1937. Fauna SSSR. Nasekomyye dvukrylyye. T. 3. Vyp. 4. primere gorodov Tomska i Strezhevogo [Blood-sucking mosquitoes Semeystvo Culicidae [Fauna of the USSR. Diptera. Vol. 3. Iss. 4. Family (Diptera, Culicidae) of anthropogenic territories of the southeast of Culicidae]. Moscow – Leningrad: Academy of Sciences of the USSR. Western Siberia on the example of Tomsk city and Strezhevoy town. 257 p. (in Russian). PhD Abstract]. Tomsk. 20 p. (in Russian). Stegniy V.N., Kabanova V.M. 1976. Cytoecological study of natural Red’kina N.V., Ostroverkhova G.P. 2006. To the fauna of blood-sucking populations of the malaria mosquito in the USSR. 1. Segregation of a mosquitoes (Diptera: Culicidae) of Tomsk city. In: Entomologicheskie new species of the genus Anopheles in the maculipennis complex by issledovaniya v Severnoy Azii: Materialy 7 Mezhregional’nogo cytodiagnostics. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni. soveshchyaniya entomologov Sibiri i Dal’nego Vostoka v ramkakh 2: 192–198 (in Russian). Sibirskoy zoologicheskoy konferentsii [Entomological researches Stepin A.Yu. 2002. Krovososushchiye komary (Diptera, Culicidae) in Northern Asia: Materials of the 7th Interregional meetings of Orenburgskoy oblasti (fauna, ekologiya, meditsinskoye i veterinarnoye entomologists of Siberia and the Far East within the Siberian znacheniye) [Blood-sucking mosquitoes (Diptera, Culicidae) Zoological Conference (Novosibirsk, Russia, 20–24 September 2006)]. of Orenburg Region (fauna, ecology, medical and veterinary Novosibirsk: 426–428 (in Russian). significance). PhD Abstract]. Ufa. 23 p. (in Russian). Reinert J.F. 2000. New classification for the composite genus Aedes (Diptera: Syutkina K.A. 1967. To the fauna of blood-sucking mosquitoes of Central Culicidae: Aedini), elevation of the Ochlerotatus to generic rank, Ural Mountains. In: Itogi issledovaniy po probleme bor’by s gnusom. T.A. Khlyzova

Doklady soveshchaniya [Results of researches on fight against Region according to observations in 1965. Report 1. Biology of water midges. Meeting reports (Novosibirsk, Russia, 25–28 January 1966)]. stages. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni. 3: 329– Novosibirsk: Nauka: 65–70 (in Russian). 334 (in Russian). Tamarina N.A., Aleksandrova K.V. 1974. About blood-sucking mosquitoes Vnukovskiy V.V. 1926. Materials to the fauna and biology of mosquitoes (Diptera: Culicidae) of the White Sea coast. Ι. Review of species. (Culicidae) of Tomsk Region. Sibirskiy meditsinskiy zhurnal. 2: 17–26 Nauchnye doklady vysshey shkoly. Biologicheskie nauki. 8: 16–21 (in Russian). (in Russian). Vnukovskiy V.V. 1928. To the knowledge of Diptera fauna of Kamensk District Tamarina N.A., Aleksandrova K.V. 1974. About blood-sucking mosquitoes (Western Siberia). Izvestiya Zapadno-Sibirskogo gosudarstvennogo (Diptera: Culicidae) of the White Sea coast. ΙΙ. Fauna assessment. muzeya. 1: 85–86 (in Russian). Nauchnye doklady vysshey shkoly. Biologicheskie nauki. 12: 7–9 Wilkerson R.C., Linton Y.-M., Fonseca D.M., Schultz T.R., Price D.C., (in Russian). Strickman D.A. 2015. Making mosquito taxonomy Useful: A stable Tarabukhin I.A. 1941. About distribution of A. maculipennis Mg. subspecies classification of tribe Aedini that balances utility with current in Novosibirsk Region. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye knowledge of evolutionary relationships. PLoS One. 10(7): 1–26. DOI: bolezni. 10(3–4): 444–450 (in Russian). 10.1371/journal.pone.0133602 Tarabukhin I.A. 1945. On the Culicidae fauna in Western Siberia. Yakimenko V.V., Tkachyov S.E., Makenov M.T., Vasilenko A.G., Tikunova N.V. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni. 6: 12–14 2015. Detection of West Nile virus in the south of West Siberia. In: (in Russian). Itogi i perspektivy izucheniya problem infektsionnykh i parazitarnykh Tupitsyn Yu.N., Dubitskiy A.M. 1972. Aedes (Stegomyia) galloisi Yamada, bolezney. Sbornik trudov Rossiyskoy nauchno-praktichicheskoy 1921, a new for Kazakhstan subgenus and species of blood-sucking konferentsii v svyazi s 50-letiyem so dnya organizatsii Tyumenskogo mosquito. Meditsinskaya parazitologiya i parazitarnye bolezni. 1: nauchno-issledovatel’skogo instituta krayevoy infektsionnoy patologii. 106–107 (in Russian). T. 2 [Results and prospects of studying the problems of infectious Vigorov Yu.L., Nekrasova L.S., Vigorov A.Yu. 2015. On late summer fauna and parasitic diseases. Proceedings of the Russian Scientific and of mosquitoes in the southeastern corner of the Sverdlovsk region. Practical Conference in connection with the 50th anniversary of the Fauna Urala i Sibiri. 1: 12–25 (in Russian). organization of the Tyumen Scientific Research Institute of Regional Vinogradskaya O.N., Odinets A.A. 1970. To the fauna and biology of blood- Infectious Pathology. Vol. 2 (Tyumen, Russia, 24–25 September sucking mosquitoes in the environs of Belyy Yar village of Tyumen 2015)]. Tyumen: Tyumen State University: 224–233 (in Russian). 400 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 401–403 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Новые данные по таксономии и фауне палеарктических видов рода rypticus (Diptera: Dolichopodidae)

New data on the taxonomy and fauna of Palaearctic species of the genus rypticus (Diptera: Dolichopodidae)

© О.П. Негробов1, О.В. Селиванова1, О.О. Маслова2 © O.P. Negrobov1, O.V. Selivanova1, O.O. Maslova2

1Воронежский государственный университет, Университетская пл., 1, Воронеж 394018 Россия 2Воронежский государственный педагогический университет, ул. Ленина, 86, Воронеж 394024 Россия

1Voronezh State University, Universitetskaya sq., 1, Voronezh, 394018 Russia. E-mail: [email protected] 2Voronezh State Pedagogical University, Lenin str., 86, Voronezh 394024 Russia

Ключевые слова: Diptera, Dolichopodidae, ‚rypticus, новый вид, Монголия. Key words: Diptera, Dolichopodidae, ‚rypticus, new species, Mongolia.

Резюме. Описан новый вид ‚rypticus mongoliensis central part of the European part of Russia for the first time. Negrobov, Selivanova et Maslova, sp. n. из Монголии. ‚rypticus bellus Loew, 1869 are indicated for the faunas of По палеарктической таблице новый вид близок к Karelia, Rostov and Lipetsk regions, Kyrgyzstan, Tajikistan ‚. atomus Frey, 1915, от которого отличается формой и and Uzbekistan for the first time. ‚rypticus virescens хетотаксией сурстилей: у ‚. atomus сурстили прямые, Negrobov 1967 and ‚rypticus laetus Verrall, 1912 are new на вершине с 6 щетинками и волосками, у нового вида records for Ryazan Region. сурстили изогнутые, более 40 щетинок и волосков. По морфологии гипопигия новый близок к ‚. smaragdinus Введение Gerstaecker, 1864, от которого отличается строением и хетотаксией сурстилей, в том числе изогнутыми и Род ‚rypticus Gerstaecker, 1864 в пределах расширенными у основания сурстилями. подсемейства Medeterinae ввиду особенностей Три вида впервые указаны для фауны Монголии: морфологии был выделен в отдельную трибу ­rypticini ‚. intercedens Negrobov, 1967, ‚. emiliae Negrobov, [Негробов, 1986]. В отличие от подавляющего 1971 in Negrobov et Stackelberg, 1971 и ‚. politus большинства хищных личинок в семействе Negrobov, 1967. ‚rypticus cuneatus (Becker, 1917) Dolichopodidae личинки видов рода ‚rypticus приводится впервые для средней полосы европейской фитофаги, обитающие в околоводной растительности. части России, ‚. virescens Negrobov, 1967 и ‚. laetus Род ‚rypticus в мировой фауне к настоящему Verrall, 1912 – для Рязанской области. ‚rypticus времени насчитывает 99 видов, встречающихся bellus Loew, 1869 впервые указывается для фауны практически во всех зоогеографических областях. Карелии, Ростовской и Липецкой областей России, для Последняя ревизия палеарктических видов рода Кыргызстана, Таджикистана и Узбекистана. ‚rypticus опубликована Негробовым и Штакельбергом Abstract. A new species, ‚rypticus mongoliensis [Negrobov, Stackelberg, 1971, 1972]. Из Палеарктики в Negrobov, Selivanova et Maslova, sp. n. is described from этом роде описано 25 видов [Grichanov, 2017]. В России Mongolia. According to the Palaearctic table of Negrobov, отмечен 21 вид рода ‚rypticus [Negrobov et al., 2009, Stackelberg, published in 1971, the new species is close 2013]. to the ‚rypticus atomus Frey, differing in the form and В европейской части России указано 13 видов рода chetotaxy of surstyli. ‚rypticus atomus has straight ‚rypticus: ‚. atomus Frey, 1915, ‚. bellus Loew, 1869, surstyli, with 6 bristles and hairs at apex, while the new ‚. cuneatus (Becker, 1917), ‚. incanus Negrobov, 1967, species has curved surstyli, more than 40 setae and hairs. ‚. intercedens Negrobov, 1967, ‚. laetus Verrall, 1912, On the morphology of the hypopygium, the new species ‚. nigricauda Wood, 1913, ‚. politus Negrobov, 1967, is close to ‚rypticus smaragdinus Gerstaecker, 1864, ‚. pollinosus Verrall, 1912, ‚. smaragdinus Gerstaecker, differing in the structure and chetotaxy of the surstyli, 1864, ‚. tarsalis Parent, 1932, ‚. tonsus Negrobov, 1972, including curved and broadened at the base of the surstyli. ‚. virescens Negrobov, 1967 [Negrobov et al., 2013]. ­ree species are listed for the fauna of Mongolia Из восточной части Палеарктики известен ряд for the first time: ‚rypticus intercedens Negrobov, видов. С Алтая указано 3 вида: эндемичные ‚. altaicus 1967, ‚rypticus emiliae Negrobov, 1971 in Negrobov et Negrobov, 1971 и ‚. emiliae Negrobov, 1971, а также Stackelberg, 1971 and ‚rypticus politus Negrobov, 1967. ‚. bellus Loew, 1869. ‚rypticus vestitus Negrobov, ‚rypticus cuneatus (Becker, 1917) is recorded for the 1972 описан из Казахстана. Из Красноярского края

Научная статья / Research Article DOI: 10.23885/181433262019152-401403 402 О.П. Негробов, О.В. Селиванова, О.О. Маслова

черные, постпедицел овальный, с округлой вершиной, его длина примерно равна ширине. Ариста апикальная, длинная, не утолщена, с мелкими волосками. Отношение длины 3-го членика усика к длине аристы 0.7 : 5.9. Постокулярные щетинки в нижней части головы желтовато-белые. Грудь фиолетовая с зеленым оттенком. Среднеспинка блестящая, с желтыми щетинками и волосками. Проплевры снизу с 1 крепкой желтой щетинкой. 5 пар дорсоцентральных щетинок, в передней части груди они мелкие, к задней части увеличивающиеся по длине, задние их них больше расстояния между рядами дорсоцентральных щетинок. Акростихальные щетинки хорошо развиты, расположены в 2 ряда в передней части среднеспинки. Щиток с 2 крепкими черными краевыми щетинками и 2 волосками по бокам от них. Ноги в большей части желтые, за исключением темных тазиков, тазики с желтыми щетинками. Бедра снизу без длинных щетинок, с короткими желтыми волосками. Все голени и членики лапок без длинных щетинок. Отношение длины передних голеней к длине члеников передних лапок (с 1-го по 5-й) 6.9 : 3.4 : 1.8 : 1.2 : 0.9 : 1. Отношение длины средних голеней к длине члеников средних лапок (с 1-го по 5-й) 7.7 : 4.2 : 2.3 : 1.4 : 1.1 : 1.2. Задние бедра с короткими переднедорсальными волосками. Отношение длины задних голеней к длине члеников задних лапок (с 1-го по 5-й) 9.6 : 2.2 : 2.7 : 1.9 : 1.4 : 1.5.

Крылья прозрачные, без затемнений. R4 + 5 и M1 у вершины параллельные. Отношение длины отрезка костальной жилки

между R2 + 3 и R4 + 5 и отрезком той же жилки между R4 + 5 и M1 –

3.6 : 1.1. Вершинный отрезок CuA1 длиннее задней поперечной жилки (dm-cu) – 5.3 : 1.6. Анальная лопасть небольшая, анальный угол тупой. Закрыловые чешуйки желтые с белыми Рис. 1–3. ‚rypticus mongoliensis sp. n. волосками. Жужжальца желтые. 1 – гипопигий латерально; 2 – гипопигий вентрально; 3 – Брюшко зеленое, блестящее, с желтыми волосками. сурстиль вентрально. Эпандрий овальный, его длина больше ширины. Гипандрий Figs 1–3. ‚rypticus mongoliensis sp. n. 1 – hypopygium, lateral view; 2 – hypopygium, ventral view; 3 – в середине без утолщения. Сурстили желтые, узкие, слабо surstylus, ventral view. изогнутые, расширенные у основания, с длинными волосками. Фаллус на вершине овальный, без отростков. Церки овальные, их длина больше ширины. описан ‚rypticus aphroditus Negrobov et Tsurikov, Самка по внешней морфологии сходна с самцом. Яйцеклад 1986. Из Приморья указан ‚. riparius Negrobov, клиновидной формы, вершина изогнута в дорсальную сторону, апикальная часть яйцеклада с вентральной стороны 1971. Из Монголии [Негробов, 1974] известен с мелкими зубцами. ‚. paludicola Negrobov, 1971, описанный ранее с Саян. Длина тела 1.6–1.7 мм, длина крыла 1.6–1.7 мм. Из палеарктической части Китая приводится 2 вида, Диагноз. По палеарктической таблице [Negrobov, ‚. pollinosus Verrall, 1912 и ‚. bellus Loew, 1869 [Yang Stackelberg, 1971] новый вид близок к ‚rypticus et al., 2011]. atomus [Negrobov, Stackelberg, 1971: figs 213–220], В работе использованы коллекционные материалы от которого отличается формой и хетотаксией лаборатории систематики насекомых Зоологического сурстилей. У ‚. atomus сурстили прямые, на вершине института РАН (ЗИН, Санкт-Петербург, Россия) и с 6 щетинками и волосками, у нового вида сурстили кафедры экологии и систематики беспозвоночных изогнутые, более 40 щетинок и волосков. животных Воронежского государственного По строению гипопигия новый вид близок университета (ВГУ, Воронеж, Россия). к ‚. smaragdinus [Negrobov, Stackelberg, 1972: figs 336–342], от которого отличается строением ‚rypticus mongoliensis гипопигия, в том числе изогнутыми и расширенными у Negrobov, Selivanova et Maslova, sp. n. основания сурстилями. (Рис. 1–3) Этимология. Новый вид назван по стране сбора материала. Материал. Голотип, ♂: Монголия, Кобдский аймак, урочище Елхон, 29 км ЮВ Алтая на Бодончи, 27.07.1970 (Э.П. Нарчук). Паратипы: 5♂, 2♀, Монголия, с этикеткой, как у голотипа; 1♂, Монголия, Гоби- ‚rypticus intercedens Negrobov, 1967 Алтайский аймак, Ю берег оз. Бур-Нур, 17.07.1979 (Э.П. Нарчук); 3♂, ♂ 1♀, Монголия, Гоби-Алтайский аймак, Ю берег оз. Бур-Нур, 17.07.1979 Материал. 1 (ЗИН), Монголия, Баян-Хонгорский аймак, оазис ♂ (И.М. Кержнер); 1♂, Монголия, Гоби-Алтайский аймак, Шаргын-Гоби, Эхин-Гол, 11–14.08.1969 (И.М. Кержнер); 1 (ЗИН), Монголия, Баян- 10 км СВ и В Баяна, 23.08.1967 (А.Ф. Емельянов). Типы хранятся в ЗИН. Хонгорский аймак, Тороин-Булак, 13 км В Цаган-Булака, 16.08.1969 ♂ Описание. Самец. Лоб зеленый с фиолетовым оттенком, (И.М. Кержнер); 1 (ЗИН), Монголия, Сухэ-Баторский аймак, пески Онгон-Элс, 15 км ЮЮВ Хонгора, 5–6.07.1971 (И.М. Кержнер). блестящий, без пыльцы. Лицо блестящее, без пыльцы, фиолетовое с зеленым оттенком, почти доходит до нижнего Распространение. Вид описан из Ярославской края глаз, его ширина в средней части меньше ширины области России. Указан для Норвегии, Швеции, 3-го членика усиков. Хоботок и пальпы темно-бурые. Усики Финляндии, Франции, Германии, Турции, Ирана, Саян, Новые данные по таксономии и фауне палеарктических видов рода ‚rypticus 403

Якутии [Grichanov, 2017]. Для Монголии отмечается Ростовской и Липецкой областей России, для впервые. Кыргызстана, Таджикистана и Узбекистана.

‚rypticus emiliae Negrobov, 1971 ‚rypticus laetus Verrall, 1912 in Negrobov et Stackelberg, 1971 Материал. 1♂ (ВГУ), Россия, Рязанская обл., Брыкин Бор, Окский Материал. 1♂ (ЗИН), Монголия, Восточный аймак, р. Халхин- государственный природный биосферный заповедник, 10.07.2006 Гол, 12 км ЮЗ сомона Халх-Гол, 18.07.1971 (М.А. Козлов). (С. Погонин). Распространение. Вид был описан с Алтая, найден Распространение. В России вид был известен в Якутии [Grichanov, 2017]. Для Монголии отмечается только из Ленинградской и Воронежской областей впервые. [Grichanov, 2017]. Впервые указывается для Рязанской области. ‚rypticus politus Negrobov, 1967 ‚rypticus virescens Negrobov, 1967 Материал. 1♂ (ЗИН), Монголия, Гоби-Алтайский аймак, 15 км ♂ ЮЮЗ г. Алаг-Хайрхан-Ула, 20.07.1970 (Э.П. Нарчук). Материал. 2 (ВГУ), Россия, Рязанская обл., Окский государственный природный биосферный заповедник, 2.08.2006 Распространение. Вид описан из южной части (С. Погонин). Украины, указан также для Казахстана. Для Монголии Распространение. В России отмечен из отмечается впервые. Ленинградской области и с Северного Кавказа [Grichanov, 2017]. Впервые указывается для центра ‚rypticus cuneatus (Becker, 1917) европейской части России – Рязанской области.

Материал. 2♂ (ВГУ), Россия, Воронежская обл., Усманский бор, 25 км NNE Воронежа, 2.08.1999 (М.Н. Цуриков). Литература Распространение. Редкий вид. Известен из Великобритании, Швеции, Финляндии Венгрии и Негробов О.П. 1974. К фауне Dolichopodidae (Diptera) Монгольской Северного Казахстана. В России был указан только из Народной Республики. В кн.: Насекомые Монголии. Выпуск 2. Л.: Наука: 335–347. Карелии и Ленинградской области [Grichanov, 2017]. Негробов О.П. 1986. О системе и филогении двукрылых сем. Dolichopodidae (Diptera). Энтомологическое обозрение. 65(1): ‚rypticus bellus Loew, 1869 182–186. Grichanov I.Ya. 2017. Alphabetic list of generic and specific names of predatory flies of the epifamily Dolichopodoidae (Diptera). Second Россия: 1♂ (ВГУ), Ростовская обл., Цимлянский Материал. edition. Вестник защиты растений. Приложение. 23: 3–563. DOI: р-н, Семенкинская, 25.09.1965 (О.П. Негробов); 2♂ (ВГУ), Карелия, 10.5281/zenodo.884863 Лоухский р-н, о. Средний, Кереть, 11–14.07.1974 (О.П. Негробов); Negrobov O.P., Selivanova O.V., Maslova O.O. 2009. Fauna of the genus 1♂ (ВГУ), Липецкая обл., окр. с. Рябинки, р. Воргол, 17.071972 ‚rypticus Gerstacker (Diptera, Dolichopodidae) of Russia and (О.П. Негробов); 1♂ (ВГУ), Липецкая обл., Добринка, 2.08.1991 adjacent territory. International Journal Dipterological Research. (О.Н. Чалая). 1♂ (ВГУ), Казахстан, Кустанайская обл., 5 км ЮЗ 20(3): 193–207. Кустаная, 10.09.1983 (В. Коробов). 2♂ (ВГУ), Кыргызстан, оз. Иссык- Negrobov O.P., Selivanova O.V., Maslova O.O., Chursina M.A. 2013. Check- Куль, Ананьево, 1600 м, 6.07, 20.08.1979 (И.Я. Гричанов); 5♂ list of predatory flies of the family Dolichopodidae (Diptera) in the (ВГУ), Кыргызстан, Сары-Челекский заповедник, Аркит, 1200 м, fauna of Russia. В кн: Вестник защиты растений. Приложение. 4–30.06, 9.07.1978 (И.Я. Гричанов); 1♂ (ВГУ), Таджикистан, запов. Рамит, Фауна и таксономия хищных мух Dolichopodidae (Diptera). ущ. Сорбо, 1200 м, 1.06.1979 (И.Я. Гричанов). 1♂ (ВГУ), Узбекистан, Сборник научных работ. СПб.: ВИЗР РАСХН: 47–93. окр. Самарканда, 18.08.1982 (И.Я. Гричанов). 1♂ (ЗИН), Армения, Negrobov O.P., Stackelberg A.A. 1971. Dolichopodidae. In: Die Fliegen der ущ. Ошакан, р. Касах, 5.09.1991 (В.А. Рихтер). Palaearktischen Region. Teil 29 (Lf. 284). Stuttgart: Schweizerbartsche Распространение. Вид был известен Verlagsbuchhandlung: 238–256. из Ленинградской и Воронежской областей, Negrobov O.P., Stackelberg A.A. 1972. Dolichopodidae. In: Die Fliegen der Краснодарского и Красноярского краев России, из Palaearktischen Region. Teil 29 (Lf. 289). Stuttgart: Schweizerbartsche Verlagsbuchhandlung: 257–302. Абхазии, Армении, Азербайджана и Казахстана Yang D., Zhang L., Wang M., Zhu Y. 2011. Fauna Sinica, Insecta, Vol. 53. [Grichanov, 2017]. Впервые указывается для Карелии, Dolichopodidae. Beijing: Science Press. 1912 p. (in Chinese).

Поступила / Received: 19.05.2019 Принята / Accepted: 15.08.2019 O.P. Negrobov, O.V. Selivanova, O.O. Maslova

References

Grichanov I.Ya. 2017. Alphabetic list of generic and specific names of Negrobov O.P., Selivanova O.V., Maslova O.O., Chursina M.A. 2013. Check- predatory flies of the epifamily Dolichopodoidae (Diptera). 2nd list of predatory flies of the family Dolichopodidae (Diptera) in the ed. Plant Protection News, Supplements. 23: 1–563. DOI: 10.5281/ fauna of Russia. In: Vestnik zashchity rasteniy. Prilozhenie. Fauna i zenodo.884863 taksonomiya khishchnykh mukh Dolichopodidae (Diptera). Sbornik Negrobov O.P. 1974. To the fauna of Dolichopodidae (Diptera) of the nauchnykh rabot [Plant Protection News. Supplement. Fauna and Mongolian People’s Republic. In: Nasekomye Mongolii. Vypusk 2 taxonomy of Dolichopodidae (Diptera). Collection of papers]. [Insects of Mongolia. Number 2]. Leningrad: Nauka: 335–347 St Petersburg: VIZR RAAS: 47–93. (in Russian). Negrobov O.P., Stackelberg A.A. 1971. Dolichopodidae. In: Die Fliegen der Negrobov O.P. 1986. On the system and phylogeny of the family Palaearktischen Region. Teil 29 (Lf. 284). Stuttgart: Schweizerbartsche Dolichopodidae (Diptera). Entomologicheskoe obozrenie. 65(1): 182– Verlagsbuchhandlung: 238–256. 186 (in Russian). Negrobov O.P., Stackelberg A.A. 1972. Dolichopodidae. In: Die Fliegen der Negrobov O.P., Selivanova O.V., Maslova O.O. 2009. Fauna of the genus Palaearktischen Region. Teil 29 (Lf. 289). Stuttgart: Schweizerbartsche rypticus Gerstacker (Diptera, Dolichopodidae) of Russia and Verlagsbuchhandlung: 257–302. adjacent territory. International Journal Dipterological Research. Yang D., Zhang L., Wang M., Zhu Y. 2011. Fauna Sinica, Insecta, Vol. 53. 20(3): 193–207. Dolichopodidae. Beijing: Science Press. 1912 p. (in Chinese). 404 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 405–411 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Leafminer flies (Diptera: Agromyzidae: Agromyzinae) of the fauna of Russia and other countries of the Palaearctic

Минирующие мухи (Diptera: Agromyzidae: Agromyzinae) фауны России и других стран Палеарктики

© E.P. Nartshuk © Э.П. Нарчук

Zoological Institute of the Russian Academy of Sciences, Universitetskaya Emb., 1. St Petersburg 199034 Russia. E-mail: [email protected] Зоологический институт Российской академии наук, Университетская наб., 1, Санкт-Петербург199034 Россия

Key words: Diptera, Agromyzinae, fauna, Russia, Palaearctic Region. Ключевые слова: двукрылые насекомые, минирующие мухи, фауна, Россия, Палеарктическая область.

Abstract. A list of 38 species of the genera Agromyza are mining in leaves, stalks and seeds of different plants, Fallén, 1823 (9 species), Euhexomyza Lonsdale, 2014 a few produce galls or are mining in the young xylem of (1 species), Japanagromyza Sasakawa, 1958 (1 species), trees or roots. Host plants of most species are mono- Melanagromyza Hendel, 1920 (11 species) and and dicoledonous plants. A few species develop in ferns, Ophiomyia Braschnikov, 1897 (16 species) (Agromyzidae: horsetails or liverworts. Most species are more or less host Agromyzinae) occurring on the territory of Russia and some specific. Larvae of many species damage cultivated plants other countries together with localities and collection data and trees and a few are quarantine objects. ­e agromyzid is given. All the species are deposited in the collections of fauna of Russia and countries of the former USSR is the Zoological Institute of the Russian Academy of Sciences insufficiently studied. Stackelberg [1958] published the in St Petersburg, Russia. All, except Melanagromyza soja list of species of most Acalyptratrae families, occurring (Zehntner, 1900), were determined by V.V. Zlobin. Known in Leningrad Region of the USSR, but Agromyzidae were host plant genera are given for each species. New records omitted. Nartshuk and Tschirnhaus [2017] published the for Russia, Armenia, Azerbaijan, Belarus, Iran, Kazakhstan, list of species of Agromyza Fallén, 1810 from the collection Kyrgyzstan, Mongolia, Turkmenistan and Uzbekistan are of the Zoological Institute of the Russian Academy of given. Japanagromyza salicifolii (Collin, 1911) described Sciences (ZIN, St Petersburg, Russia) and gave a short from Egypt is recorded for the first time in Asia (on border review of previous publications on Agromyzidae of Russia of Russia and Kazakhstan). and adjacent countries. Резюме. Приведен список 38 видов минирующих ­is paper is the second in the set of papers мух из родов Agromyza Fallén, 1823 (9 видов), on the agromyzid fauna of Russia. In this paper Euhexomyza Lonsdale, 2014 (1 вид), Japanagromyza 9 species of the genus Agromyza with new distribution Sasakawa, 1958 (1 вид), Melanagromyza Hendel, 1920 data and all species of other genera of the subfamily (11 видов) и Ophiomyia Braschnikov, 1897 (16 видов) Agromyzinae occurring on the territory of Russia and (Agromyzidae: Agromyzinae), обитающих на территории adjacent countries, which were found in the collections России и других стран, с указанием мест нахождения determined by V.V. Zlobin (1953–2008) are considered. и дат сбора. Материал хранится в коллекции Melanagromyza sojae is determined by E.P. Nartshuk. Зоологического института Российской академии наук All material is deposited in ZIN. Distribution is given (Санкт-Петербург, Россия). Все виды, за исключением according Martinez [2011] with additions from Černý Melanagromyza soja (Zehntner, 1900), определены [2005], Guglya [2010, 2011, 2016, 2017], Papp, Černý В.В. Злобиным. Для каждого вида указаны известные [2015], Černý et al. [2018]. ­e data on host plants of кормовые растения. Приведены новые находки Benavent-Corai et al. [2005] is used to give an ecological для фауны Азербайджана, Армении, Белоруссии, background for the listed Agromyzinae species with Ирана, Казахстана, Киргизстана, Монголии, России, additions from Černý [2005], Černý et al. [2018], in Туркменистана и Узбекистана. Japanagromyza salicifolii other cases authors are cited. (Collin, 1911), описанный из Египта, впервые отмечается Some mentioned below species were described and для Азии (найден на границе России и Казахстана). discussed in the taxonomic papers [Zlobin, 1986, 1998, 2005; Nartshuk, 2009; Nartshuk, Bagachanova, 2010; Introduction Nartshuk, Khruleva, 2011]. New records are listed for Armenia (3 species), Leafminer flies (Diptera: Agromyzidae) is a big family Azerbaijan (2), Belarus (2), Iran (1), Kazakhstan (1), of Acalyptratae with more than 3000 species and global Kyrgyzstan (3), Mongolia (3), European Russia (16), distribution. Larvae are phytophagous, most of them Tajikistan (2), Turkmenistan (3), Uzbekistan (2).

Research Article / Научная статья DOI: 10.23885/181433262019152-405411 406 E.P. Nartshuk

Genus Agromyza Fallén, 1823 Host plants. Fabaceae: Anthyllis, Medicago, Melilotus, Agromyza ambigua Fallén, 1823 Onobrychis, Trifolium, Trigonella, Vicia. Distribution. All Palaearctic including North Africa, Material. Russia. Leningrad Region: 3 specimens, Luga, 9, 21.08.1953, 4.06.1954 (A. Stackelberg). Voronezh Region: 1 specimen, Belogor’ye, Turkey, Afghanistan, East Siberia, also in India. 3.07.1987 (Panteleeva). Volgograd Region: 1 specimen, Sarepta (now Volgograd), 1872 (A. Becker). Stavropol Region: 1 specimen, Stavropol, Agromyza nigrella (Rondani, 1875) 18.06.1909 (Uvarov). Ukraine. 1 specimen, Podolia Province, Kamenets District, Bagovitsa, 12.06.1896 (Sainog). Material. Russia. Yakutia: 197 specimens, Nyurba, Leninskiy District Kazakhstan. 1 specimen, Mountain Kokshetau near the Terrsakkan (now Nyurba District), 25.08.1987 (V. Zlobin). River, 20.06.1957 (E. Nartshuk). Host plants. Poaceae: Avena, Dactylis, Festuca, Turkmenistan. 1 specimen, Kopet Dag, Ipaikala, 10 km E Karaul, Glyceria, Holcus, Hordeum, Lolium, Phleum, Poa, Secale, 1500 m, 15.06.1972 (Tanasijtshuk); 1 specimen, Koylibay, Malye Barsuki, 13.08.1931 (Luppova). Setaria, Trisetum, Triticum. Host plants. Poaceae: Agropyron, Avena, Hordeum, Distribution. Holarctic species. Palaearctic: Secale, Triticum. , North Africa, Britain Islands, Norway Distribution. All Palaearctic and Nearctic regions. (mainland), Sweden, Finland, France (mainland), Netherlands, Denmark (mainland), Germany, Poland, Agromyza bromi Spencer, 1966 Estonia, Lithuania, Czech Republic, , Hungary, , Italy (mainland), former , Russia, Material. Russia. Voronezh Region: 3 specimens, Rogachevka, on Nearctic and Oriental regions. Hordeum, 1989 (Ushchekov). Novosibirsk Region: 1 specimen, Novosibirsk, 26.06.1926. Yakutia: 1 specimen, Yakutsk, 20.07.1987 (V. Zlobin); 1 specimen, Mikhailovka, 60 km NE Amga, 1.08.1987 (V. Zlobin). Agromyza nigripes Meigen, 1830 Belarus. 3 specimens, Mogilev Region, on Hordeum, 1988 (Ushchekov). Material. Mongolia. 1 specimen, Ara-Khangai aimak, 40 km SSW Host plants. Ceratochloa unioloides (= Bromus Tevshrulekh, 18–19.06.1975 (E. Nartshuk). cantharticus), probably other Poaceae. Host plants. Larva forms a long widening mine on Distribution. Britain Islands, Sweden, Danish the upper surface of leaf of Glyceria maxima and Holcus mainland, , France, Belgium, Switzerland, Germany, (Poaceae). Poland, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Hungary, Distribution: Holarctic species known from Europe , Bulgaria, Ukraine, Russia, Turkey. New record for and Canada, but also in the Oriental Region (India). New Belarus. record for Mongolia.

Agromyza lapponica Hendel, 1931 Agromyza pseudoreptans Nowakowski, 1964

Russia. North Ural: 2 specimens, Voykar River, 17.08.1925 Material. Material. Russia. Smolensk Region: 1 specimen, Smolenskoe (Fridolin). Irkutsk Region: Padun on Verkhnyaya Tunguska River, 1867 Poozer’ye National Park, 22.06.1992 (V. Zlobin). and 29.05.1868 (Chekanovski). Yakutia: 2 specimens, Bestyakh on Lena River, 12.06.1925 (Bianki); 3 specimens, Khamuran Apbyn near Aldan Host plants. Larva forms linear-blotch mine, normally River mouth, 1.06.1926 (Bianki); 1 specimen, Keedai Lake, road to Amga, adjoining margin of leave of Urtica dioica (Urticaceae). 15.07.1925 (Bianki); 2 specimens, Innyala River mouth, 20, 23.06.1976 (Kovalev); 2 specimens, Nyurba, Leninskiy District (now Nyurba District), Humulus, Loasa, Laportea, Parietari are also listed as host 24, 30.06.1987 (V. Zlobin). Kamchatka: 1 specimen, Petropavlovsk, plants. 22.07.1907 (Smirnov). Distribution. Holarctic species. Palaearctic: Canary Belarus. 1 specimen, Belovezha, 1956. Islands, Britain Islands, Ireland, Norway (mainland), Kazakhstan. 1 specimen, Karaganda Region, Kent Mt., 1200 m, 24.07.1957 (E. Nartshuk); 7 specimens, Talgar, Alma-Ata Nature Reserve, Sweden, Finland, , France (mainland), Belgium, 26.06.1990 (V. Zlobin). the Netherlands, Denmark (mainland), Germany, Poland, Host plant. Unknown. Estonia, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Austria, Distribution. Sweden, Finland, Russia, Armenia, Hungary, Switzerland, Italy (mainland), , Ukraine, Kazakhstan, Mongolia. New record for Belarus. Russia, Georgia, Kazakhstan, Uzbekistan, North Korea. Nearctic: Canada and United States. Agromyza mobilis Meigen, 1830 Agromyza reptans Fallén, 1823 Material. Russia. Yakutia: 1 specimen, Tolon, Lenskiy District, 15.07.1987 (V. Zlobin). Poaceae: Agropyron, Brachypodium, Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Rozhdestveno, Host plants. 19.06.1956 (A. Stackelberg); 1 specimen, Yashchera, Luga District, Bromus, Echinochloa, Holcus, Hordeum, Secale. 20.08.1968 (A. Stackelberg). Distribution. Palaearctic: Britain Islands, Norway, Host plant. Urtica (Urticaceae). Sweden, Finland, Portugal, Spain, France, Belgium, the Distribution. Palaearctic: Canary Islands, Britain Netherlands, Denmark, Germany, Poland, Estonia, Latvia, Islands, Ireland, Norway (mainland), Sweden, Portugal Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Austria, Hungary, (including Madeira), France (mainland), Belgium, the Switzerland, Andorra, Italy, Greece, former Yugoslavia, Netherlands, Denmark (mainland), Germany, Poland, Ukraine, Russia, Turkey, China, Japan. Estonia, Latvia, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Hungary, Switzerland, Italy (mainland and Sardinia), Agromyza nana (Fallén, 1823) Turkey, Moldova, Russia, Abkhasia, Kazakhstan, Material. Russia. St Petersburg: 1 specimen, 20.07.2000, on Trifolium Turkmenistan, Kyrgyzstan. Nearctic and Oriental (V. Zlobin); 1 specimen, 14.08.2000, on Marticaria (V. Zlobin). regions. Leafminer flies (Diptera: Agromyzidae: Agromyzinae) 407

Genus Euhexomyza Lonsdale, 2014 Distribution. Palaearctic: Algeria, Egypt, Sweden, Euhexomyza schineri (Giraud, 1861) Portugal, Spain (including Canary Islands), France (mainland), Denmark (mainland), Germany, Poland, Material. Russia. Smolensk Region: 1 specimen, Smolenskoe Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Austria, Hungary, Poozer’ye National Park, 22.06.1992 (V. Zlobin). Krasnodar Region: 1 specimen, Kabardinka, S Novopossiisk, 1.07.1990 (E. Nartshuk). Switzerland, Italy, Maltese Islands, Croatia, Bulgaria, Host plant. Larva forms oval gall on twigs of Greece, Cyprus, Israel, Ukraine, Russia, Kazakhstan, (Salicaceae). Uzbekistan, Iran., the Oriental Region. Distribution. Holarctic species. Palaearctic: Britain Islands, Finland, Portugal, Spain (mainland), France Melanagromyza angeliciphaga Spencer, 1969 (mainland), Belgium, Germany, Poland, Lithuania, Austria, Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Vyborg District, Italy (mainland), Iran, China, Japan. Nearctic: Canada, Bolshoy Berezovy Island, 31.05.1981 (Kandybina). Krasnodar Region: United States. New record for European Russia. 1 specimen, Sochi, Abigo, 8.07.2002, inferential from stem of Heracleum Note. ­e species had usually been a member of mantegazziamum (Hansen). the genera Melanadronyza Hendel, 1920 or Hexomyza Host plants. Angelica, Heracleum, Pastinaca Enderlein, 1936. Lonsdale [2014] erected the genus (Apiaceae). Euhexomyza Lonsdale, 2014 and included schineri in this Distribution. Palaearctic: Britain Islands, Sweden, genus. Finland, Spain (mainland), France (mainland), Belgium, the Netherlands, Denmark (mainland), Germany, Poland, Genus Japanagromyza Sasakawa, 1958 Estonia, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Hungary, Japanagromyza salicifolii (Collin, 1911) Greece, Kazakhstan, Japan. New records for European Russia. Material. Kazakhstan. 16 specimens, Ural River, Yanvartsevo, 8.07.1949 (Vyrzhikovskaya); Guriev (now Atyrau), Ural River, puparium Melanagromyza cunctans (Meigen, 1830) 17.05.1980 in mina on leaf of Populus nigra f. pyramidalis, adult 30.05.1980 (without name of collector). Material. Russia. Moscow: 1 specimen, Bitsa, 14.08.1936 Host plants. Populus, Salix (Salicaceae). (Rohdendorf). Distribution. Egypt. New record for Asia: Kazakhstan. Host plant. Lotus (Fabaceae). Larva feeds in the Probably occurs in Dagestan and Orenburg Region of upper part of the stem, forms a slender, cylindrical gall Russia. immediately below inflorescence. Distribution. Palaearctic: Egypt, Britain Islands, Genus Melanagromyza Hendel, 1920 Sweden, Portugal, Spain (including Canary Islands), Melanagromyza aeneoventris (Fallén, 1823) Andorra, France (including Corsica), Belgium, the Netherlands, Denmark, Germany, Poland, Lithuania, Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Vyborg District, Bolshoy Berezovy Island, 13.06.1980 (Kandybina). Smolensk Region: Czech Republic, Slovakia, Austria, Liechtenstein, Hungary, 30 specimens, Smolenskoe Poozer’ye National Park, 15, 22.06.1992, Switzerland, Italy, Maltese Islands, former Yugoslavia, 13–15.06.1993 (V. Zlobin). Voronezh Region: 4 specimens, Ramon, 29.08, , Greece, Romania, Bulgaria, Turkey, Cyprus, 6.10.1972, 26.06.1974 (Slobodinyuk). Ulyanovsk Region: 1 specimen, Ukraine, Kazakhstan, Uzbekistan, Iran, Pakistan, China. Tetyushi, 18.08.1989 (Basov). Crimea: 1 specimen, Karadag, 8.05.1992 (Richter). Irkutsk Region: 1 specimen, Baikalsk vic., Solsan River valey, Afrotropical (including Madagascar), and Oriental (India) 17.06.1980 (Shilenkova). regions. New record for European Russia. Mongolia. 1 specimen, Ulan-Bator, 24–29.06.1970 (I. Kerzhner); 2 specimens, Central Aimak, Zaisan, N slope of Bogdo Ula Mt., Melanagromyza dettmeri Hering, 1933 15, 29.06.1967 (I. Kerzhner); 1 specimen, Gobi-Altai Aimak, Adzh-Bogdo Ridge, 10 km SSE Ikh-Bogdo-Ula Mt., 18.07.1970 (I. Kerzhner); 1 specimen, Gobi-Altai Aimak, S slope of Ikh-Bogdo-Ula Mt., 40 km E Bayan Gobi, Material. Russia. Smolensk Region: 5 specimens, Smolenskoe 6–7.08.1969 (Zaitzev). Poozer’ye National Park, 15–16, 18.06.1992 (V. Zlobin). Japan. 1 specimen, Honshu, Inuyama, Gifu Prefecture, 10.10.1981 Host plants. Centaurea, Senecio, Tragopogon (Tanasijtshuk). (Asteraceae). Host plants. Carduus, Cirsium, Inula, Senecio Distribution. Palaearctic: Britain Islands, Ireland, (Asteraceae). Larva feeds as internal stem-borer. Spain (mainland), France (mainland), the Netherlands, Distribution. Palaearctic: Britain Islands, Ireland, Denmark (mainland), Germany, Poland, Latvia, Lithuania, Norway (mainland), Sweden, Finland, Portugal, Spain, Czech Republic, Slovakia, Belarus, Japan. New record for France (mainland), Belgium, the Netherlands, Denmark European Russia. (mainland), Germany, Poland, Estonia, Latvia, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Austria, Hungary, Switzerland, Melanagromyza heracleana Zlobin, 2005 Italy (mainland), former Yugoslavia, Bulgaria, Greece, Turkey, Ukraine, Kazakhstan, Iran, Pakistan, Taiwan, Japan. Material. Russia. Karachay-Cherkessia: 3 specimens (holotype and New records for European Russia and Mongolia. two paratypes), near Arkhyz, 1000–1700 m, 06.2002 (J. Hattendorf). Turkey. 1 specimen, Ankara Province, Kızılcahamam, 2.07.2007 (Koçak). Melanagromyza albocilia Hendel, 1931 Host plants. Larva develops as stem-borer of Heracleum mantegazzianum (Apiaceae) [Zlobin, 2005] and Material. Russia. Voronezh Region: 1 specimen, Ramon, 22.08.1973, puparium in stem of Convolvolus. Penza Region: 1 specimen, Bashmakovo H. platytaenium Boiss. [Koçak et al., 2009]. District, Lipovka, puparium in stem of Convolvulus. Distribution. Palaearctic: south of European Russia, Host plant. Convolvulus (Convolvalaceae). Turkey. 408 E.P. Nartshuk

Melanagromyza lappae (Loew, 1850) Host plants. Coreopsis, Crepis, Hypochoeris, Launaea, Leontodon, Picris, Sonchus and Taraxacum Material. Russia. Leningrad Region: 2 specimens, Yukki, St Petersburg (Asteraceae). vic., 27.07.1931 (A. Stackelberg). Distribution. Palaearctic: Morocco, Algeria, Egypt, Arctium, Stemmacantha (Asteraveae). Host plants. Britain Islands, Ireland, Sweden, Finland, Portugal Palaearctic: Azores Islands, Britain Distribution. (including Madeira), Spain (including Balearic and Canary Islands, Sweden, Finland, Spain (mainland), France Islands), Andorra, France (mainland), Belgium, Denmark (mainland), the Netherlands, Denmark (mainland), (mainland), Germany, Poland, Lithuania, Czech Republic, Germany, Poland, Estonia, Lithuania, Czech Republic, Austria, Liechtenstein, Hungary, Switzerland, Italy (Sicily), Austria, Hungary, Switzerland, Romania, Russia. Maltese Islands, former Yugoslavia, Albania, Greece, Ukraine, Kazakhstan, , Iran. Afrotropical and Melanagromyza nigrissima Spencer, 1976 Oriental (India) regions. New records for European Russia. Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Vyborg District, Bolshoy Berezovy Island, 31.05.1981 (Kandybina). Ophiomyia campanularum Starý, 1930 Host plants. Anthriscus, Heracleum (Apiaceae). Distribution. Palaearctic: Sweden, Finland, France Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Vyborg District, Bolshoy Berezovy Island, 24.08.1979 (Kandybina). (mainland), Denmark (mainland), Estonia, Latvia, Campanula (Campanulaceae). Larva Lithuania, Czech Republic, Hungary, Belarus, Ukraine. Host plant. forms stem mine in grain. New record for European Russia. Distribution. Palaearctic: Sweden, Germany, Poland, Hungary, Switzerland, Czech Republic, Slovakia. New Melanagromyza pubescens Hendel, 1923 record for European Russia. Material. Russia. Leningrad Region: 2 specimens, Yukki, St Petersburg vic., 16‒18.07.1933 (Stackelberg). Smolensk Region: 19 specimens, Ophiomyia cunctata (Hendel, 1920) Smolenskoe Poozer’ye National Park, 18.07, 10.08.1991, 15–16.06.1992 (V. Zlobin). Amur Region: 9 specimens, Zeya, 10.08.1978, 19.07.1981 Material. Turkmenistan. 3 specimens, Ashgabad, on Sonchus (Shatalkin), 3‒5.08.1981 (Ozerov), 3.08.1981 (Gorbunov). Primorsky Region: oberceus L., 10.08.2000 (Kokanova). 1 specimen, 40 km SO Ussuriysk, 25.07.1983 (Ozerov). Estonia. 1 specimen, Nyursi, 14 km SE Vyru, 11.06.1989 (E. Nartshuk). Host plants. Bellis, Crepis, Hypochaeris, Lactuca, Mongolia. 1 specimen, Khubsugul Aimak, 10 km SE Muren, Lapsana, Picris, Prenanthes, Sonchus, Taraxacum 23–24.07.1975 (E. Nartshuk). (Asteraceae). Larva forms whitish blotch mine with Host plant. Artemisia (Asteraceae). Larva feeds in the offshoots into leaf blade. lower part of plant. Distribution. Palaearctic: Algeria, Britain Islands, Distribution. Palaearctic: Britain Islands, Sweden, Norway, Sweden, Finland, Spain (including Balearic and Finland, Portugal, Spain, Belgium, Denmark (mainland), Canary Islands), Andorra, France, Denmark (mainland), Germany, Poland, Estonia, Lithuania, Czech Republic, Germany, Poland, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Slovakia, Austria, Hungary, Italy (mainland), Romania, Greece, Austria, Hungary, Switzerland, Italy (mainland), former Turkey, Ukraine, Russia (east to Kuril Islands), China, Yugoslavia, Albania, Greece, Turkey, Cyprus, Moldova, Nepal, Mongolia, North Korea, Japan. Afrotropical Region. Ukraine, Russia. New record for Turkmenistan.

Melanagromyza sojae (Zehntner, 1900) Ophiomyia curvipalpis (Zetterstedt, 1848)

Material. Russia. Amur Region: 4 specimens, Blagoveshchensk, 1985 Material. Russia. Leningrad Region: 5 specimens, Yukki, (Dubovitskaya) (det. E.P. Nartshuk). St Petersburg vic., 25.07, 2–3, 20.08.1933 (A. Stackelberg); 1 specimen, Host plants. Aeschynomene, Cajanus, Flemingia, Gobzhitsy, Luga vic., 3.07.1934 (A. Stackelberg). Crimea: 2 specimens, Glycine, Indigofera, Medicago, Melilotus, Phaseolus, Karadag, 5.08.1989 (Lvovsky). Irkutsk Region: 1 specimen, Listvyanka, 21.06.1965 (O. Negrobov). Yakutia: 1 specimen, Mikhailovka, 60 km NE Swainsona (Fabaceae). Amga, 17.07.1987 (Bagachanova). Distribution. Near East, East Palaearctic, Oriental Turkmenistan. 3 specimens, Kopetdag, Ipaikala, 10 km E Karaul, and Australasian regions. Spencer [1966] recorded the 23.06.1972 (Loginova), 27.06.1972 (Zaitzev); 2 specimens, Kugitang, species for Crimea (Russia). Chordzha Filata, 11–18.06.1965 (Tanasijtshuk). Uzbekistan. 2 specimens, Khiva, 10.04.1927 (L. Zimin). Kyrgyzstan. 1 specimen, Chatkal Nature Reserve, 20.07.1978 Melanagromyza tripolii Spencer, 1957 (Tanasijtshuk). Tajikistan. 1 specimen, Khorog, Botanical Garden, 2.09.1965 Material. Uzbekistan. 1 specimen, Nuratau Mt., 5 km S Farish, (Tanasijtshuk). 29.05.1984 (Tanasijtshuk). Host plants. Achillea, Anthemis, Artemisia, Aster, Host plant. Unknown. Centaurea, Crepis, Matricaria, Reichardia, Tanacetum Distribution. Palaearctic: Britain Islands, Spain (Asteraceae).. Larva forms narrow stem-mine. (mainland), France (mainland), the Netherlands, Denmark Distribution. Palaearctic: Morocco, Egypt, Britain (mainland), Germany, Czech Republic, Slovakia, Hungary, Islands, Norway, Sweden, Finland, Portugal, Spain Italy (mainland), Turkey, Ukraine. New record for Uzbekistan. (including Canary Islands), Andorra, France (mainland), Belgium, Denmark (mainland), Germany, Poland, Estonia, Genus Ophiomyia Braschnikov, 1897 Lithuania, Czech Republic, Austria, Hungary, Switzerland, Ophiomyia beckeri (Hendel, 1923) Italy, Maltese Islands, former Yugoslavia, Romania, Bulgaria, Greece, Turkey, Cyprus, Israel, Ukraine, Russia, Material. Russia. Smolensk Region: 1 specimen, Smolenskoe Poozer’ye National Park, 15.06.1992 (V. Zlobin). Krasnodar Region: Iran, Afghanistan, Japan. New records for Kyrgyzstan, 3 specimens, Dubinka, 10.05.1983 (Polyakov). Tajikistan, Turkmenistan, Uzbekistan. Leafminer flies (Diptera: Agromyzidae: Agromyzinae) 409

Ophiomyia definita Spencer, 1971 2–3, 20.08.1933 (A. Stackelberg); 1 specimen, Nizhnyaya Bronnaya, Petergof vic., 8.06.1918 (A. Stackelberg); 1 specimen, Gobzhitsy, Luga vic., 12.08.1931 (A. Stackelberg). Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Yukki, St Petersburg vic., 5.08.1933 (A. Stackelberg). Host plants. Aster, Erigeron, Solidago (Asteraceae). Host plant. Unknown. Distribution. Holarctic species. Palaearctic: Britain Distribution. Britain Islands, Sweden, Belgium, Islands, Norway, Sweden, Finland, Spain (including Estonia, Lithuania, Czech Republic, Hungary. New record Canary Islands), Andorra, France (mainland), Belgium, for European Russia. the Netherlands, Denmark (mainland), Germany, Poland, Latvia, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Austria, Italy Ophiomyia halimodendronis (Zlobin, 1998) (including Sicily), former Yugoslavia, Bulgaria, Yemen, Oman, Belarus, Ukraine, China, Japan. Nearctic: Canada. Material. Armenia: 15 specimens (including holotype and paratypes), New record for European Russia. Abovyan, 11.05.1985 (Arutyunyan). Host plant. Larva forms gall on twig of Halimodendron Ophiomyia nasuta (Melander, 1913) holodendron (Pal.) Voss. (Fabaceae). Distribution. Armenia. Material. Russia. 1 specimen, Komi Republic: Ust-Tzilma [earlier in Arkhangelsk Region], 14.07.1905 (Zhuravski). Ophiomyia heringi Starý, 1930 Leningrad Region: 1 specimen, Fan-der-Flint, Luga vic., 19.06.1925 (A. Stackelberg); 5 specimens, Yukki, St Petersburg vic., 8.08.1931, 15.06.1932, 18.06.1933 (A. Stackelberg); 1 specimen, Vyborg District, Bolshoy Berezovy Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Yukki, St Petersburg vic., 30.07.1933 (A. Stackelberg). Island, 10.06.1980 (Kandybina); 1 specimen, St Petersburg, on flowers Convolvolus, 16.06.1995 (V. Zlobin); 1 specimen, Lesnoe, St Petersburg, Host plants. Campanula, Crepis, Hieracium, 29.06.1999 (Ivanov). Pskov Region: 1 specimen, Kharlamova Gora, Hypochaeris, Jasione, Lapsana, Leontodon, Matricaria, Gdov District, 1.06.1891 (Pleske); 2 specimens, Oparino, Novorzhevskiy Mycelis, Phyteuma, Prenanthes, Reichardia, Scorzonera, District, 20.06, 11.07.1915 (Kuznetzov); 2 specimens, Isborsk, 6.06.1969 (Tanasijtshuk). Smolensk Region: 1 specimen, Smolenskoe Poozer’ye Sonchus, Tragopogon (Asteraceae). Larva forms an National Park, 11.06.1993 (V. Zlobin). Lipetsk Region: Nature Reserve external stem mine with frass in two rows of disconnected “Galich’ya Gora”, 2 specimens, 20–25.05.1977 (Panteleeva), 1 specimen, strips on host plants. 20.07.1977 (V. Zlobin); 1 specimen, Lebedyan District, Vyazovo, 4.06.1982 Palaearctic: Britain Islands, Sweden, (Panteleeva); 1 specimen, Ivovo, 13.06.1985 (Panteleeva); 1 specimen, Distribution. Donskoe, 1.08.1985 (Panteleeva). Kursk Region: 2 specimens, Central Finland, Portugal, France (mainland), Germany, Poland, Black Earth Nature Reserve, 2.07.1953 (E. Nartshuk); 1 specimen, Latvia, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Austria, Gorshechnoe, 18.07.1985 (Panteleeva). Voronezh Region: 1 specimen, Hungary, Switzerland, Italy. New record for European Russia. Kantemirovskiy District, Volokon, 17.07.1984 (Panteleeva); 1 specimen, Bogucharskiy District, Nizhniy Liman, 12.07.1986 (Panteleeva). Penza Region: 1 specimen, Nizhniy Lomov District, 23.06.1864 (Chekanovski). Ophiomyia labiatarum Hering, 1937 Krasnodar Region: 1 specimen, Krasnaya Polyana, cordon Peluk, 7.06.1978 (Richter). Crimea: 1 specimen, Krasnoles’ye, 19.05.1983 (E. Nartshuk). Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Gobzhitsy near Kurgan Region: 2 specimens, Kurgan, 14.06.1951 (E. Nartshuk). Kemerovo Luga, 19.08.1934 (A. Stackelberg). Region: 1 specimen, Tisul’, Mariinsk District, 2–4.06.1911 (Gorchakovski). Altai: 1 specimen, Ukhaly, Biysk District, 05.1911 (Yurganova); 1 specimen, Host plants. Clinopodium vulgare, Galeopsis, Elinovo, Soloneshnoe District, 18.06.1988 (A. Kireitshuk). Irkutsk Region: Lamium album, L. galeobdolon, L. maculatum, Leonurus, 1 specimen, Baykalsk vic., Solsan River valley, 17.06.1980 (Shilenkova); Nepeta, Prunella, Salvia, Satureja, Scutellaria galericulata, 1 specimen, Baykalsk vic., Kharlakhta River valley, 18.06.1980 (Shilenkova). Stachys officinalis, S. palustris, S. recta and S. sylvatica Transbaikalia: 1 specimen, Dzhibatai, Vitim River basin (Rohdendorf). Amur Region: 1 specimen, Bolshoy Never, 3.06.1927 (Zakharzhevski). (Lamiaceae). Larva forms external stem mine. Primorsky Region: 1 specimen, Nature Reserve “Kedrovaya pad’”, 16.06.1962 Distribution. Holarctic species. Palaearctic: Egypt, (E. Nartshuk); 3 specimens, Ussuriysk District, Kamenushka, 15.06.1978 Britain Islands, Norway, Sweden, Finland, Portugal, (V. Zlobin). Kuril Islands: 1 specimen, Shikotan, 15.08.1971 (Tanasijtshuk). Finland. 1 specimen, Espo, near Helsinki, 21.07.1985 (E. Nartshuk). Spain (mainland), Andorra, France (mainland), Belgium, Austria. 1 specimen, Graz, Steiermark, 1901 (Pleske). Germany, Poland, Latvia, Lithuania, Czech Republic, Czech Republic. 1 specimen, Konojedyz, Kahn vic., 27.08.1970 Slovakia, Austria, Hungary, Switzerland, Croatia, Bulgaria, (B. Rohdendorf). Greece, Turkey, Cyprus, Israel, Ukraine. Nearctic: Canada, Ukraine. 1 specimen, Poltava Region, Yareski, Mirgorod District, 2.09.1925 (Fabri); 1 specimen, Uzhgorod vic., Nevitskoe, 15.05.1983 United States. New record for European Russia. (Tanasijtshuk); 1 specimen, Lvov Region, Nature Reserve “Rostoch’e”, Yavorov District, 3.08.1987 (Tanasijtshuk). Ophiomyia longilingua (Hendel, 1920) Armenia. 1 specimen, Kirovokan, 31.07.1959 (Richter); 1 specimen, Megri, 22.08.1959 (Zaitzev); 5 specimens, Yerevan, Bernadzor, 23–25.08, 4.09.1962 (Richter); 1 specimen, Parakar, 24.08.1962 (Richter); 17 specimens, Material. Russia. Leningrad Region: 2 specimens, Yukki, Yerevan, 28–30.07, 4–5.08.1969 (Richter). St Petersburg vic., 06.1929, 30.07.1933 (A. Stackelberg). Azerbaijan. 1 specimen, 12 km S Lenkoran, Talysh, 26.06.1938 Estonia. 1 specimen, Saaremaa, Nature Reserve “Vidumyae”, (Veltishchev); 1 specimen, Lerik, Talysh, 5.05.1969 (Tanasijtshuk); 25.07.1987 (E. Nartshuk). 1 specimen, Zakataly, 21 km NW Katek River, 22.08.1969 (Richter). Host plant. Knautia (Dipsacaceae). Kazakhstan. 3 specimens, Alma-Ata vic., 1907 (Shnitnikov); Distribution. Palaearctic: Britain Islands, Norway, 18 specimens, Bolshaya Almaatinka River, 21.07–1.09.1928 (Shnitnikov); 1 specimen, Tastyakh on Bolshaya Almaatinka River,10.08.1928 (Shnitnikov); Finland, France (mainland), Germany, Latvia, Lithuania, 1 specimen, Georgievka on Chu River, 20.07.1929 (Magatov); 1 specimen, Czech Republic, Austria, Hungary, Switzerland, Greece, Akmola Region, Borovsk, 24.06.1932 (V. Popov); 3 specimens, Taldy-Kurgan Ukraine. New record for European Russia. Region, Ucharal, Teptekh River, 9.07.1978 (I. Kerzhner); 1 specimen, Kungei Ala-Tau Ridge, 30.08.1988 (A. Kireitshuk). Turkmenistan. 1 specimen, Botaldur, 50 km NO Turkestan, 28.05.1966 Ophiomyia maura (Meigen, 1838) (I. Kerzhner). Iran. 1 specimen, Tavriz, 2.06.1914 (Andrievsky). Material. Russia. Leningrad Region: 2 specimens, St Petersburg, Kyrgyzstan. 1 specimen, Gon-Kysyl-Su Canyon, 16.06.1953 (Petrova); 13.07.1998 (V. Zlobin); 4 specimens, Yukki, St Petersburg vic., 1 specimen, Osh Region, Mashalagan, Alai Ridge, 15 km W Shakhimardan, 410 E.P. Nartshuk

18.07.1966 (Tanasijtshuk); 1 specimen, canyon of River Sary-dzhad, 10 km Slovakia, Austria, Hungary, Switzerland, former Yugoslavia, below Sary-dzhad, Kungei Ala-Tau, 21.08.1971 (Sugonyaev); 1 specimen, Romania, Bulgaria, Greece, Turkey, Israel, Ukraine, Russia, 15 km SE Leilek, Korgan vic., Turkestan Ridge, 18.07.1982 (Dolgovskaya). Tajikistan. 6 specimens, Khorog, 21–22.07.1915 (Lasdin); 7 specimens, Uzbekistan, Tajikistan, China, Japan. New records for Kulyab vic., 19–25.07, 6–15.09.1933 (V. Popov); 1 specimen, Nasar-Ailak Armenia, Azerbaijan. River, 10.08.1962 (Zaitzev); 1 specimen, Margusor Lakes, Zeravshan, 20.05.1967 (Gurjeva); 9 specimens, Vanch vic., 5.07.1977 (V. Zlobin). Mongolia. 1 specimen, Songino, Ulan-Bator vic., 12.06.1980 Ophiomyia pulicaria (Meigen, 1830) (I. Kerzhner). Material. Russia. Leningrad Region: 3 specimens, Yukki, St Petersburg Host plant. Taraxacum (Asteraceae) [Frick, 1959]. vic., 8.07.1931, 6, 16.07.1932 (Stackelberg); 1 specimen, Komarovo, Distribution. Holarctic species. Palaearctic: Britain 31.08.1949 (Stackelberg). Smolensk Region: 1 specimen, Smolenskoe Islands, Norway, Sweden, Finland, Spain (mainland), Poozer’ye National Park, 16.06.1992 (V. Zlobin). Karachay-Cherkessia: France (mainland), Denmark (mainland), Germany, 1 specimen, Malaya Khatipara Mt., 8.07.1982 (E. Nartshuk); 2 specimens, Teberda Nature Reserve, Teberda River, 11.07.1982 (E. Nartshuk); Poland, Estonia, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, 1 specimen, Dzhamagat valley, 8.07.1982 (E. Nartshuk). Amur Region: Austria, Hungary, Switzerland, Italy, Bulgaria, Greece, 1 specimen, Zeya River, 31.07.1978 (Shatalkin). Turkey, Belarus, Ukraine, Russia, Kazakhstan, Japan. Turkmenistan. 2 specimens, Ashgabat, on Sonchus olevaceus L., 10.08.2000 (Kokanova); 1 specimen, Kopetdag, Nokhur, on Sonchus Nearctic: Canada, United States. New records for Armenia, transcaspica, 3.06.2001 (Kokanova). Azerbaijan, Kyrgyzstan, Tajikistan, Turkmenistan, Uzbekistan. 1 specimen, Khiva, 14.04.1927 (L. Zimin). Mongolia, Iran. Host plants. Andryala, Chondrilla, Crepis, Hieracium, Hypochaeris, Lapsana, Leontodon, Picris, Reichardia, Ophiomyia orbiculata (Hendel, 1931) Sonchus, Taraxacum (Asteraceae). ­e larva forms leaf mine. Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Yukki, St Petersburg Distribution. Palaearctic: Britain Islands, Norway, vic., 23.06.1932 (A. Stackelberg); 2 specimens, Yashchera, Luga District, Sweden, Finland, Portugal, Spain (including Canary 8.06.1964, 12.06.1965 (A. Stackelberg). Voronezh Region: 4 specimens, Povorino, near Ilmen’, 18.07.1987 (Panteleeva). Karachay-Cherkessia: Islands), Andorra, France (including Corsica), Belgium, 1 specimen, Teberda Nature Reserve, 27.07.1982 (E. Nartshuk). Irkutsk the Netherlands, Denmark (mainland), Germany, Region: 1 specimen, Baykalsk, Kharlakhta River valley, 17–18.06.1980 Estonia, Latvia, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, (Shilinkova). Estonia. 2 specimens, Nature Reserve “Vidumaya”, 20.07.1987 Austria, Hungary, Switzerland, Italy (mainland), former (E. Nartshuk); 2 specimens, Saaremaa: 5 km S Kingisepp, 26.07.1987 Yugoslavia, Bulgaria, Greece, Turkey, Belarus, Ukraine, (E. Nartshuk). Russia, Kazakhstan, China, Japan. Nearctic, Afrotropical Armenia. 1 specimen, Yerevan, 4.08.1969 (Richter). (Kenya) and Oriental Regions. New records for Uzbekistan, Kyrgyzstan. 1 specimen, Karasu River, 23.07.1982 (Dolgovskaya). Tajikistan. 1 specimen, canyon Kondora, 30.08.1962 (Zaitzev). Turkmenistan. Host plants. Lathyrus, Pisum and probably Vicia (Fabaceae). Larva forms stem-mine. Ophiomyia ranunculicaulis Hering, 1949 Palaearctic: Britain Islands, Norway, Distribution. Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Gobzhitsy, Luga vic., Sweden, Finland, Portugal, Spain (mainland), France 12.07.1934 (A. Stackelberg). (mainland), Denmark (mainland), Germany, Poland, Host plant. Ranunculus (Ranunculaceae). Estonia, Latvia, Lithuania, Czech Republic, Slovakia, Distribution. Palaearctic: Britain Islands, Sweden, Austria, Liechtenstein, Hungary, Switzerland, Italy Finland, Spain (mainland), France (mainland), the (including Sicily), former Yugoslavia, Croatia, Romania, Netherlands, Germany, Poland, Latvia, Lithuania, Czech Bulgaria, Greece, Turkey, Cyprus, Belarus, Ukraine, Russia, Republic, Slovakia, Hungary, former Yugoslavia, Turkey, Kazakhstan, Uzbekistan, Iran. New records for Armenia, Belarus, Ukraine. New record for European Russia. Kyrgyzstan, Tajikistan. Ophiomyia rostrata (Hendel, 1920) Ophiomyia pinguis (Fallén, 1820) Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Yukki, St Petersburg Material. Russia. Leningrad Region: 1 specimen, Sablino, 4.07.1923 vic., 26.07.1933 (A. Stackelberg). (A. Stackelberg); 1 specimen, Kartashovka, 9.07.1926 (A. Stackelberg); Host plant. Convolvulus arvensis (Convolvulaceae) 8 specimens, Gobzhitsy, Luga vic., 10–14.08.1931, 9.07.1934 (A. Stackelberg); [Ostrauskas et al., 2003]. 1 specimen, Tolmachevo, Luga vic., 27.07.1932 (A. Stackelberg); 3 specimens, Luga, 28.06, 17.08.1953 (A. Stackelberg); 2 specimens, Vyborg Distribution. Palaearctic: Britain Islands, Ireland, District, Bolshoy Berezovy Island, 23.07.1978 (Kandybina). Smolensk Sweden, Spain (mainland), France (mainland), the Region: 2 specimens, Smolenskoe Poozer’ye National Park, 15, 30.06.1982 Netherlands, Germany, Poland, Lithuania, Czech Republic, (V. Zlobin). Tambov Region: 1 specimen, Mordovo, Tokarevka District, 17.07.1987 (Panteleeva). Lipetsk Region: 1 specimen, Donskoe, 3.06.1987 Austria, Hungary, Bulgaria, Turkey, Ukraine, Uzbekistan. (Panteleeva); 1 specimen, Don River, 3 km above Donskoe, 26.07.1987 New record for European Russia. (Panteleeva). Armenia. 1 specimen, Ashtarak, 25.05.1961 (Richter). Azerbaijan. 1 specimen, Mir-Bashir, 30.05.1985 (Kuliev). Acknowledgements Uzbekistan. 2 specimens, Khiva, 14.04.1927 (L. Zimin). Host plants. Cichorium, Lactuca, Leontodon I thank Yu.A. Guglya (Kharkov, Ukraine) for help with (Asteraceae). literature. ­e study was performed in the frames of the Distribution. Palaearctic: Egypt, Britain Islands, state research projects (АААА-А19-119020690082-8), and Norway, Sweden, Finland, Spain (mainland), France supported by the Presidium of the Russian Academy of (mainland), Belgium, the Netherlands, Denmark Sciences program No 41 “Biodiversity of natural systems (mainland), Germany, Poland, Lithuania, Czech Republic, and biological sources of Russia”. Leafminer flies (Diptera: Agromyzidae: Agromyzinae) 411

Martinez M. 2011. Fauna Europaea: Agromyzidae. In: Fauna Europaea: References Diptera, Brachycera. Fauna Europaea version 2.6. Available at: http:// www.fauna-eu.org (accessed 12 June 2016). Benavent-Corai J., Martinez M., Peydró R. J. 2005. Catalogue of the hosts- Nartshuk E.P. 2009. Family Agromyzidae. In: Nasekomye Lazovskogo plants of the world Agromyzidae (Diptera). Bollettino di Zoologia zapovednika [Insects of Lazovsky Nature Reserve]. Vladivostok: agraria e di Bachicoltura. Serie II. 37(Supplement): 3–97. Dalnauka: 372‒373 (in Russian). Černý M. 2005. Additional notes on the fauna of Agromyzidae (Diptera) in Nartshuk E.P., Bagachanova A.K. 2010. Leaf-miner flies (Diptera: Switzerland. Revue Suisse de Zoologie. 112(4): 771‒805. DOI: 10.5962/ Agromyzidae) of Yakutia (Russia). Euroasian Entomological Journal. bhl.part.80326 9(3): 525‒534 (in Russian). Černý M., Andrade R., Gonçalves A.R., von Tschirnhaus M. 2018. New Nartshuk E.P., Khruleva O.A. 2011. Plant-feeding dipterans (Diptera, records of Agromyzidae (Diptera) from Portugal, with an updated Chloropidae, Agromyzidae) from Wrangel Island (the Chukchi Sea). checklist. Acta Musei Silesiae Sciantiae Naturales. 67: 7‒57. DOI: Entomological Review. 91(7): 849‒854. DOI: 10.1134/S0013873811070062 10.2478/cszma-2018-0002 Nartshuk E.P., von Tschirnhaus M. 2017. Leafminer flies (Diptera: Frick K.E. 1959. Synopsis of the species of Agromyzid leaf-miners described Agromyzidae) of the fauna of Russia and adjacent countries: ­e from North America (Diptera). Proceedings of the US Natural Museum. genus Agromyza Fallén. Studia Dipterologica. 2015. 22(2): 215‒232. 108(3407): 347‒465. DOI: 10.5479/si.00963801.108-3407.347 Ostrauskas H., Pakalniškis S., Taluntytė L. 2003. ­e species composition of Guglya Yu.A. 2010. Rearing of mining flies from subfamily Agromyzinae plant mining dipterous (Insecta: Diptera) of greenhouse surroundings (Diptera: Agromyzidae) and new faunistic data from the in Lithuania. Ekologija. 3: 3‒11. territory of Kharkov Region of Ukraine. Izvestiya Kharkovskogo Papp L., Černý M. 2015. Agromyzidae (Diptera) of Hungary. Vol. 1. entomologicheskogo obchshestva. 18(2): 57‒59 (in Russian). Agromyzinae. Nagykovácsi: Pars Ltd. 416 p. Guglya Yu.A. 2011. A study of the fauna of leaf-miner flies of the subfamily Spencer K.A. 1966. A revision of European species of the genera of Agromyzinae (Diptera: Agromyzidae) of Ukraine. Report 1. Melanagromyza Hendel and Hexomyza Enderlein with a supplement 28 new species for the fauna of Ukraine. Izvestiya Kharkovskogo of the genus Ophiomyia Braschnikov. Beiträge zur Entomologie. entomologicheskogo obchshestva. 19(2): 61–68 (in Russian). 16(1/2): 2‒60. Guglya Yu.A. 2016. A study of the fauna of leaf-miner flies of the subfamily Stackelberg A.A. 1958. Materials on Diptera fauna of Leningrad Region. III. Agromyzinae (Diptera: Agromyzidae) of Ukraine. Report 4. Nine Diptera, Acalyptata. Part I. In: Trudy Zoologicheskogo instituta AN new species for the fauna of Ukraine. Izvestiya Kharkovskogo SSSR. T. 24 [Proceedings of the Zoological Institute of the Academy entomologicheskogo obchshestva. 24(2): 17–24. of Sciences of the USSR. Vol. 24]. Leningrad: 103–191 (in Russian). Guglya Yu.A. 2017. A study of the fauna of leaf-miner flies of the subfamily Zlobin V.V. 1986. Contribution to the fauna of mining flies (Agromyzidae, Agromyzinae (Diptera: Agromyzidae) of Ukraine. Report 5. Seven Diptera) of the Zeya State Nature Reserve. In: Trudy Zoologicheskogo new species for the fauna of Ukraine. Izvestiya Kharkovskogo instituta AN SSSR. T. 146 [Proceedings of the Zoological Institute of entomologicheskogo obchshestva. 25(1): 48–56. the Academy of Sciences of the USSR. Vol. 146]. Leningrad: 51–53, Koçak E., Özdemir M., Zlobin V.V. 2009. Insects associated with the 118 (in Russian). endemic Heracleum platytaenium Boiss. (Apiaceae) with new records Zlobin V.V. 1998. A new species of Hexomyza Enderlein (Diptera: for the Turkish fauna. Turkish Journal of Zoology. 33(2): 245‒247. Agromyzidae) causing twig-galls on Halimodendron holodendron DOI: 10.3906/zoo-0806-23 in Armenia. International Journal of dipterological Research. 9(2): Lonsdale O. 2014. Redefinition and synonymy of genera in the Ophiomyia 173–177. genus group, with the description of Euhexomyza new genus (Diptera: Zlobin V.V. 2005. A new species of Melanagromyza feeding on giant Agromyzidae). ‚e Canadian Entomoloigists. 146(5): 481‒513. DOI: hogweed in the Caucasus (Diptera: Agromyzidae). Zoosystematica 10.4039/tce.2014.2 Rossica. 14(1): 173‒177.

Received / Поступила: 8.05.2019 Accepted / Принята: 12.11.2019 412 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 413–419 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Борис Витальевич Страдомский Boris Vitalievich Stradomsky (29.11.1959–4.08.2019)

Без пользы жить – временная смерть. И.В. Гёте

Нам дана короткая жизнь, но память об отданной за благое дело жизни вечна. Цицерон

Любимцы богов умирают молодыми. Плавт

Памяти друга, товарища и коллеги

4 августа 2019 года ушел из жизни один из основателей журнала «Кавказский энтомологический бюллетень» и бессменный член его редколлегии, редактор журнала «Эверсманния», основоположник молекулярно- генетических исследований в энтомологии на юге России, один из авторов уникального проекта «Бабочки Кавказа», высочайший знаток дневных бабочек Кавказа, прекрасный человек и отзывчивый друг, наш коллега Борис Витальевич Страдомский. Борис Витальевич (Б.В.) родился 27 ноября 1959 года. С раннего детства Б.В., как и многие мальчишки того времени, коллекционировал марки и уже в этом дошкольном возрасте пытался придать осмысленный и систематический порядок своей коллекции. Увлечение родителей природой, посещение уникальных горных мест привили Б.В. любовь к естествознанию и волей-неволей прививали ему интерес к коллекционированию насекомых. Этому во многом способствовала доставшаяся от деда коллекция экзотических насекомых, которая своими яркими красками и разнообразием форм будоражила воображение молодого Бориса. Родители Бориса Витальевича – профессиональные химики, были докторами химических наук и всю свою жизнь занимались гидрохимией, работой связанной не только с лабораторными анализами, но и с исследованиями в полевых условиях. С одной стороны, Б.В. с детства окружала атмосфера химических формул и реакций, которая закрепляла любовь к этому предмету. С другой стороны, интерес к живой природе, переданный дедом, доктором медицинских наук, основателем ростовской школы инфекционистов, тянул его к раскрытию природных тайн, в биологию. Все это привело к тому, что, следуя семейным традициям и в то же время не забрасывая свои увлечения животными, Б.В. в 1977 году поступил на биолого-почвенный факультет Ростовского госуниверситета. Учеба на биофаке в то время существенно отличалась от современной. Особенно это отражалось в том, что и влекло молодых людей на этот факультет: на в полевых практиках по ботанике и зоологии, которые проходили в очаровательных

Памятная статья / Memorial Article 414 Борис Витальевич Страдомский

местах донских степей и в предгорьях Адыгеи. Помимо наслаждения прекрасными видами природы у студентов тех лет проявлялся азарт при изучении ее тайн, сборе естественнонаучных материалов, рождался некоторый соревновательный эффект – кто больше и разнообразней составит коллекцию, кто более аккуратно смонтирует образцы. Борис здесь всегда был на высоте. Однако свою судьбу Б.В. связал с биохимией. Университет он окончил с красным дипломом и сразу поступил в аспирантуру. В 1987 году он защитил кандидатскую, а через 5 лет докторскую диссертацию. Интересно отметить, что к 1992 году Борис был самым молодым доктором биологических наук в России. Б.В. несколько лет работал в Ростовской медицинском институте на кафедре фармакологии, где продолжал свои биохимические исследования. В ходе этой работы им с соавторами запатентовано 10 изобретений в различных областях медицины – психоневрологии, фармакологии, косметологии и медицинской ветеринарии. Им и коллегами предложены новые лекарственные препараты для лечения заболеваний, вызываемых вирусом герпес, для лечения рассеянного склероза, препараты для ускорения процессов регенерации тканей, препараты противовоспалительного, регенерационного и антимикробного действия. В 2000 году Б.В. принял руководство над проектом по строительству нового фармацевтического завода. Как только завод «Фармпрепарат» заработал, он стал заместителем генерального директора по научной работе. При его непосредственном участии в аптеки страны поступил уникальный препарат «Стелланин», оказывающий исцеляющее действие при ожогах, трофических язвах, пролежнях и пр. Все эти годы Б.В. продолжал собирать коллекцию насекомых, главным образом жесткокрылых, в Ростовской области, и выезжая ежегодно, зачастую по несколько раз, в горные районы Карачаево-Черкесии, Адыгеи, Краснодарского края, также на Дальний Восток, в Казахстан (Джунгарский Алатау), Дагестан, Крым и на Урал. Примерно в это время и произошло наше первое знакомство. Меня сразу же поразил его максимализм, когда он объявил, что собирается в своей коллекции поставить все виды рода Carabus, которые обитают на Кавказе. Меня, надо сознаться, это по началу забавляло, так как я представлял все трудности, связанные с этим, а он, судя по всему, относился к такого рода коллекциям с ребяческим энтузиазмом. Он выписывал и выменивал недостающие виды, и за довольно короткий срок коллекция приобрела уже почти законченный вид. Но все это было все-таки ребячеством, и вызывало у меня дружеский сарказм. Я видел, что работать он хотел и умел, горел желанием сделать какое-то свершение, равное по масштабам его биохимическим достижениям. И вот однажды, когда Б.В. был у меня в музее, я показал ему одну коробочку с прекрасно смонтированными бабочками-голубянками, составленную доцентом кафедры зоологии, орнитологом Георгием Борисовичем Бахтадзе. Когда-то Бахтадзе как пытливый и любознательный зоолог пытался разобраться с этой группой, но пришел к выводу, что для решения проблем с идентификацией видов нельзя пользоваться только иллюстрациями, хотя и выполненными на высоком уровне, а определительные таблицы для этой группы насекомых не совершенны. Нужны иные подходы. Вместе с ним мы заинтриговали Б.В. и предложили ему заняться голубянками с привлечением его знаний из других областей наук. Как и с чего начать, никто из нас не знал, но Б.В. с ярким энтузиазмом включился в эту работу. Уже через 2 года Б.В. сделал открытие – им было найдено в Ростовской области 2 новых для науки вида. И не где-нибудь у чёрта на рогах, а в окрестностях хорошо известного всем студентам биофака поселка Недвиговка (база практики РГУ в 30 км от Ростова). Надо сознаться, что я, и Г.Б. Бахтадзе отнеслись к этому довольно скептически. С присущей ему энергией и безукоризненной скрупулезностью Б.В. убеждал нас, что это новые виды. Даже опубликовав описания в совместной с Б.В. статье, я продолжал сомневаться в валидности этих видов, связывая это с банальной сезонной изменчивостью, но время подтвердило правильность выводов Бориса не только на основе морфологии, но и на генетическом уровне. И с этого момента, как принято говорить, все закрутилось. Для начала Б.В. предложил всем лепидоптерологам свой простой, но очень результативный способ для стандартизации монтирования влажных препаратов гениталий самцов, что позволило надежно идентифицировать таксоны. Потом была серия работ по выявлению значения признаков кариотипа для видовой идентификации. Этот модный в начале XXI века подход считался достаточно надежным. Б.В. на ряде близких видов установил, что число хромосом может сильно варьироваться в пределах вида, а у разных видов сильно перекрываться. То есть им было установлено, что по крайней мере у голубянок метод идентификации видов по кариотипу не является надежным. Итогом нескольких лет работы с голубянками стала монография Б.В. о бабочках подсемейства Polyommatinae европейской части России, Центрального и Западного Кавказа. В ней Б.В. приводит надежный определитель надвидовых таксонов, при этом помимо прикладных целей демонстрирует и свои представления о системе группировки родов внутри подсемейства. В дальнейшем, когда для Б.В. стало очевидно, что ничего принципиально интересного в фаунистическом плане он уже не получит, так как видовой состав был им полностью исследован на юге европейской части России и ожидать новых находок не представлялось возможным, он сосредоточил внимание на филогенетических исследованиях с применением молекулярно-генетических методов. Это было новое направление в изучении голубянок на юге европейской части России. Для получения свежего, пригодного для анализа материала необходимы были стационарные исследования, которые Б.В. начал проводить в Тебердинском заповеднике. Окончательные результаты были получены в лаборатории Южного научного центра Российской академии наук, куда он, без отрыва от работы на фармзаводе, устроился ведущим научным сотрудником. Б.В. сосредоточил свои исследования Борис Витальевич Страдомский 415

Б.В. Страдомский в экспедициях на юге европейской части России. На правой нижней фотографии с Ю.Г. Арзановым. B.V. Stradomsky in expeditions in the south of the European part of Russia. In the lower right photo with Yu.G. Arzanov.

на комплексном изучении митохондриального (COI) и Фоминой. Результаты этих трудов представлены рядом ядерного (ITS2) локусов ДНК. Эта работа проведена прекрасно иллюстрированных статей, в которых им на 69 видах представителях семейства голубянок имеются фото всех преимагинальных стадий – яйца, юга европейской части России и Северного Кавказа в гусеницы младшего и старшего возраста и куколки. сравнительном аспекте с морфологией их гениталий, с Всего в этой работе собраны сведения о 54 видах из 18 последующим построением филогении и таксономии, родов голубянок. что решило ряд сложных вопросов по группировке Подводя итог энтомологической деятельности видов внутри родов и родов внутри триб. Б.В., следует отметить, что им опубликована 91 работа, Очень привлекла Б.В., особенно в последнее время, из них 1 монография, описано 10 новых для науки работа с преимагинальными стадиями голубянок. Это видов. В отличие от ряда энтомологов, стремящихся направление в энтомологии является одним из самых потешить самолюбие и увековечить свое имя в ответственных и сложных, так как для получения названиях описываемых таксонов, у Б.В. был иной безукоризненных результатов необходимо проследить принцип работы. Он добивался истины и в своих все стадии развития насекомого от яйца до куколки. работах стремился не к установлению нового таксона, Только в этом случае отнесение гусеницы к тому а к восстановлению старых, порой забытых, названий, или иному виду при условии, что яйцо, из которого имеющих приоритет и установленных систематиками появилась эта гусеница, получено от бабочки, которую прошлых времен. можно определить, является надежным критерием Для всех, кто знал Бориса Витальевича идентификации преимагинальных стадий. Кропотливая Страдомского, его друзей и коллег, эта утрата стала работа по выведению бабочек в лабораторных условиях личным горем. На короткое время судьба оказала от получения яиц, выращивание личинок и куколок нам щедрость работать вместе, спорить и рассуждать до выхода имаго была проделана Б.В. совместно с его над интересными вопросами, и я благодарен за это постоянным спутником жизни, соратником в полевых судьбе. Жаль лишь только, что времени было отпущено и лабораторных исследованиях, его супругой Еленой слишком мало.

Ю.Г. Арзанов 416 Борис Витальевич Страдомский

Список научных работ Б.В. Страдомского по энтомологии

1999 Страдомский Б.В., Арзанов Ю.Г. 1999. Polyommatus elena sp. n. и Polyommatus neglectus sp. n. – новые таксоны голубянок (Lepidoptera, Lycaenidae). Известия Харьковского энтомологического общества. 7(2): 17–21.

2001 Страдомский Б.В. 2001. Обнаружение популяции Lampides boeticus L. (Lepidoptera, Lycaenidae) в Ростовской области. В кн.: Материалы международной научно-практической конференция «Биосфера и человек» (Майкоп, 11–12 октября 2001 г.). Майкоп: изд-во АГУ: 224–225.

2003 Полтавский А.Н., Страдомский Б.В. 2003. Меловые склоны, каменистые степи и редкие бабочки. Степной бюллетень. 14: 40–43. Stradomsky В.V., Arzanov Yu.G. 2003. A new western subspecies of Plebeius maracandicus Erschoff, 1874 (Lepidoptera, Lycaenidae) from the Lower Don River. Евразиатский энтомологический журнал. 2(3): 195–196.

2004 Poltavsky A.N., Stradomsky B.V.2004. Hemaris croatica (Lepidoptera: Sphingidae) in the Rostov-on-Don Region (South Russia). Phegea. 32(2): 59–62. Страдомский Б.В., Арзанов Ю.Г. 2004. Бархатница Бризея Chasara briseis meridionalis (Staudinger, 1886). В кн.: Красная книга Ростовской области. Том 1. Ростов-на-Дону: Малыш: 141–142. Страдомский Б.В., Арзанов Ю.Г. 2004. Глазок ферульный Satyrus ferula virbius (Herrich-Schaffer, 1843). В кн.: Красная книга Ростовской области. Том 1. Ростов-на-Дону: Малыш: 142–143. Страдомский Б.В. 2004. Особенности фауны Lycaenidae, Hesperiidae и Satyridae (Lepidoptera: Rhopalocera). В кн.: Фауна Ставрополья. Вып. 12. Ставрополь: Изд-во СГУ: 126–130.

2005 Страдомский Б.В. 2005. Таксономия родственных видов Plebeius argyrognomon (Bergsträsser, 1779), P. maracandicus (Erschoff, 1874) и P. caspicus (Forster, 1936) stat. n. (Lepidoptera: Lycaenidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 1(1): 81–84. Страдомский Б.В. 2005. Новый подвид Callophrys chalybeitincta Sovinsky, 1905 (Lepidoptera: Lycaenidae) с нижнего течения р. Дон. Кавказский энтомологический бюллетень. 1(1): 85–86. Полумордвинов О.А., Страдомский Б.В., Арзанов Ю.Г. 2005. Идентификация и распространение Polyommatus elena Stradomsky, Arzanov, 1999 (Lepidoptera: Lycaenidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 1(1): 87–88. Stradomsky B.V., Shchurov V.I. 2005. Notes on the status of the Caucasian taxa of the group Lysandra corydon (sensu de Lesse) with the description of a new species from high-mountain area of West Caucasia. Phegea. 33(2): 69–75. Страдомский Б.В. 2005. Новый подвид Polyommatus elena Stradomsky, Arzanov, 1999 (Lepidoptera: Lycaenidae) из субальпийского пояса Западного Кавказа. Кавказский энтомологический бюллетень. 1(2): 151–152. Страдомский Б.В. 2005. Голубянки подсемейства Polyommatinae Европейской России, Центрального и Западного Кавказа. Атлас-определитель. Ростов-на-Дону: Русское энтомологическое общество. 148 с.

2006 Страдомский Б.В. 2006. Характеристика таксона Polyommatus elena Stradomsky et Arzanov, 1999 (Lepidoptera: Lycaenidae). Эверсманния. 5: 15–19. Страдомский Б.В., Тузов В.К., Полумордвинов О.А. 2006. Сравнительная характеристика некоторых таксонов группы Polyommatus eros (Lepidoptera: Lycaenidae) с описанием P. pacificus Stradomsky et Tuzov, sp. n. Кавказский энтомологический бюллетень. 2(1): 127–130. Страдомский Б.В. 2006. Polyommatus shchurovi sp. n. (Lepidoptera: Lycaenidae) с высокогорья Западного Кавказа. Кавказский энтомологический бюллетень. 2(2): 215–216. Страдомский Б.В., Арзанов Ю.Г. 2006. Преимагинальные стадии Plebeius caspicus (Forster, 1936) (Lepidoptera: Lycaenidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 2(2): 218.

2007 Полтавский А.Н., Страдомский Б.В., Щуров В.И. 2007. Реликтовые элементы в фауне чешуекрылых (Lepidoptera) степной зоны юга России. Сообщение I. Вестник Южного научного центра. 3(1): 54–60. Страдомский Б.В., Полумордвинов О.А. 2007. Сравнительный анализ гениталий Polyommatus boisduvalii (Herrich-Schäffer, 1844), P. erotides erotides (Staudinger, 1892) и P. erotides krulikowskyi (Gorbunov, 2001) (Lepidoptera: Lycaenidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 3(1): 71–74. Страдомский Б.В., Фомина Е.А. 2007. Преимагинальные стадии Polyommatus elena Stradomsky et Arzanov, 1999 и P. shchurovi Stradomsky, 2006 (Lepidoptera: Lycaenidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 3(2): 219–221. Полтавский А.Н., Страдомский Б.В., Щуров В.И. 2007. Реликтовые элементы в фауне чешуекрылых (Lepidoptera) степной зоны юга России. II. Кавказский энтомологический бюллетень. 3(2): 223–234.

2008 Водолажский Д.И., Страдомский Б.В. 2008. Исследование филогенеза подрода Polyommatus (s. str.) Latreille, 1804 (Lepidoptera: Lycaenidae) с использованием маркеров мтДНК. Часть I. Кавказский энтомологический бюллетень. 4(1): 123–130. Страдомский Б.В., Фомина Е.А. 2008. Межвидовые гибриды подрода Polyommatus (s. str.) Latreille, 1804 (Lepidoptera: Lycaenidae) из субальпийского пояса Западного Кавказа. Эверсманния. 13–14: 3–4. Водолажский Д.И., Страдомский Б.В. 2008. Исследование филогенеза подрода Polyommatus (s. str.) Latreille, 1804 (Lepidoptera: Lycaenidae) с использованием маркеров мтДНК. Часть II. Кавказский энтомологический бюллетень. 4(2): 237–242. Stradomsky B.V., Poltavsky A.N. 2008. New data on a population of Lampides boeticus (Lepidoptera: Lycaenidae) in the river Don delta (Russia). Phegea. 36(3): 87–90. Водолажский Д.И., Страдомский Б.В. 2008. Исследование голубянок группы Lysandra corydonius (Herrich-Schöffer, 1804) (Lepidoptera: Lycaenidae) с использованием маркеров мтДНК. Кавказский энтомологический бюллетень. 4(3): 353–355. Страдомский Б.В. 2008. Фауна Papilionoidea и Hesperioidea (Lepidoptera) междуречья рек Северский Донец и Калитва. Кавказский энтомологический бюллетень. 4(3): 349–352.

2009 Водолажский Д.И., Вимерс М., Страдомский Б.В. 2009. Сравнительный анализ последовательностей митохондриальной и ядерной ДНК голубянок подрода Polyommatus (s. str.) Latreille, 1804 (Lepidoptera: Lycaenidae: Polyommatus). Кавказский энтомологический бюллетень. 5(1): 115–120. Водолажский Д.И., Страдомский Б.В. 2009. Опыт использования маркеров мтДНК при исследовании бабочек-голубянок подрода Polyommatus (s. str.) Latreille, 1804 (Lepidoptera: Lycaenidae). Вестник Северо-Восточного научного центра ДВО РАН. 3: 86–90. Страдомский Б.В., Фомина Е.А. 2009. Стадии развития некоторых голубянок (Lepidoptera: Lycaenidae) юга России. Кавказский энтомологический бюллетень. 5(2): 269–272. Борис Витальевич Страдомский 417

2010 Vodolazhsky D.I., Stradomsky B.V. 2010. A molecular phylogeny of the subgenus Polyommatus (s. str.) based on mitochondrial COI sequence. In: Abstracts of II Moscow International Conference “Molecular Phylogenetics MolPhy-2” (Moscow, 18–21 May, 2010). Moscow: Moscow University: 183–184. Wiemers M., Stradomsky B.V.. Vodolazhsky D.I. 2010. A molecular phylogeny of Polyommatus s. str. and Plebicula based on mitochondrial COI and nuclear ITS2 sequences (Lepidoptera: Lycaenidae). European Journal of Entomology. 107(3): 325–336. Страдомский Б.В., Фомина Е.А. 2010. Стадии развития некоторых голубянок (Lepidoptera: Lycaenidae) юга России. Часть II. Кавказский энтомологический бюллетень. 6(1): 91–95. Водолажский Д.И., Страдомский Б.В., Кузнецов Г.В. 2010. Идентификация гибридного экземпляра Polyommatus (Lysandra) (Lepidoptera: Lycaenidae) с помощью генетических маркеров COI и ITS2. Кавказский энтомологический бюллетень. 6(1): 97–98. Страдомский Б.В. 2010. Чешуекрылые надсемейств Hesperioidea и Papilionoidea природного парка «Донской». В кн.: Флора, фауна и микобиота природного парка «Донской». Сборник научных трудов. Ростов-на-Дону: Наш регион: 111–112. Водолажский Д.И., Страдомский Б.В. 2010. Анализ последовательностей митохондриальной и ядерной ДНК некоторых представителей рода Plebejus Kluk, 1780 (Lepidoptera: Lycaenidae) юга России. Кавказский энтомологический бюллетень. 6(2): 191–192. Кузнецов Г.В., Страдомский Б.В. 2010. О нахождении Melitaea telona Fruhstorfer, 1908 (Lepidoptera: Nymphalidae) в Волгоградской области. Кавказский энтомологический бюллетень. 6(2): 193–194. Vodolazhsky D.I., Stradomsky B.V. 2010. Molecular phylogeny of the subgenus Polyommatus (s. str.) (Lepidoptera: Lycaenidae) based on the sequence of the COI mitochondrial gene. Moscow University Biological Sciences Bulletin. 65(4): 158–160.

2011 Stradomsky B.V., Vodolazhsky D.I. 2011. Callophrys rubi (Linnaeus, 1758) and C. chalybeitincta Sovynski, 1905 (Lepidoptera: Lycaenidae): a comparative analysis of mitochondrial and nuclear DNA sequences. Кавказский энтомологический бюллетень. 7(1): 79–80. Водолажский Д.И., Яковлев Р.В., Страдомский Б.В. 2011. Изучение таксономического статуса некоторых представителей подрода Agrodiaetus (Lepidoptera: Lycaenidae: Polyommatus) из Западной Монголии с применением маркеров мтДНК. Кавказский энтомологический бюллетень. 7(1): 81–82. Водолажский Д.И., Страдомский Б.В. 2011. Изучение комплекса видов Polyommatus eros (Lepidoptera: Lycaenidae) с применением молекулярно- генетических методов. В кн.: Актуальные проблемы биологии, нанотехнологий и медицины. Материалы IV Международной конференции (Ростов-на-Дону, 22–25 сентября 2011 г.). Ростов-на-Дону: ЮФУ: 47–48. Страдомский Б.В., Фомина Е.А. 2011. Стадии развития некоторых голубянок (Lepidoptera: Lycaenidae) юга России. Часть III. Кавказский энтомологический бюллетень. 7(2): 211–215. Водолажский Д.И., Страдомский Б.В., Плющ И.Г. 2011. Анализ последовательностей митохондриальной и ядерной ДНК некоторых представителей подрода Polyommatus (s. str.) Latreille, 1804 (Lepidoptera: Lycaenidae) Афганистана. Кавказский энтомологический бюллетень. 7(2): 217–218.

2012 Тихонов В.В., Водолажский Д.И., Страдомский Б.В. 2012. Satyrium acaciae abdominalis (Gerhard, 1850) (Lepidoptera: Lycaenidae): систематическое положение на основе биологических, морфологических и молекулярно-генетических исследований. Кавказский энтомологический бюллетень. 8(1): 149–151. Vodolazhsky D.I., Stradomsky B.V. 2012. Comparative genital and molecular genetic analysis of blue butterflies (Lepidoptera: Lycaenidae) of Rostov-on-Don area. In: Abstracts of III Moscow International Conference “Molecular Phylogenetics MolPhy-3” (Moscow, 31 July – 4 August, 2012). Moscow: Moscow University: 70–71. Vodolazhsky D.I., Stradomsky B.V., Yakovlev R.V. 2012. Investigation of mitochondrial COI and nuclear ITS2 sequences of mongolian specimens Polyommatus eros-group (Lepidoptera: Lycaenidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 8(2): 264–266. Страдомский Б.В., Фомина Е.А. 2012. Стадии развития некоторых голубянок (Lepidoptera: Lycaenidae) юга России. Часть IV. Кавказский энтомологический бюллетень. 8(2): 267–272.

2013 Страдомский Б.В., Водолажский Д.И. 2013. Значимость молекулярно-генетических исследований при изучении филогении систематики голубянок (Lycaenidae: Lepidoptera). В кн.: Молекулярно-генетические подходы в таксономии и экологии. Тезисы докладов научной конференции (Ростов-на-Дону, 25–29 марта 2013 г.). Ростов-на-Дону: изд-во ЮНЦ РАН: 94. Страдомский Б.В., Фомина Е.С. 2013. Сравнение таксонов Polyommatus yurinekrutenko Koçak, 1996 и P. shamil (Dantchenko, 2000) (Lepidoptera: Lycaenidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 9(1): 181–182. Кузнецов Г.В., Страдомский Б.В., Фомина Е.С. 2013. Обнаружение популяции Callophrys chalybeitincta Sovynski, 1905 (Lepidoptera: Lycaenidae) в Волгоградской области. Кавказский энтомологический бюллетень. 9(2): 293–294. Страдомский Б.В., Фомина Е.А. 2013. Стадии развития некоторых голубянок (Lepidoptera: Lycaenidae) юга России. Часть V. Кавказский энтомологический бюллетень. 9(2): 299–302. Страдомский Б.В. 2013. Голубянка алькон Phengaris alcon (Denis et Schiffermuller, 1775). В кн.: Красная книга Карачаево-Черкесской Республики. Черкесск: Нартиздат: 44. Страдомский Б.В. 2013. Голубянка арион Phengaris arion (Linnaeus, 1758) ssp. zara (Jachontov, 1935). В кн.: Красная книга Карачаево-Черкесской Республики. Черкесск: Нартиздат: 45. Страдомский Б.В. 2013. Голубянка антерос Aricia anteros (Freyer, 1839) ssp. dombaiensis (Alberti, 1969). В кн.: Красная книга Карачаево-Черкесской Республики. Черкесск: Нартиздат: 46. Страдомский Б.В. 2013. Голубянка тебердинская Aricia teberdina (Sheljuczko, 1934). В кн.: Красная книга Карачаево-Черкесской Республики. Черкесск: Нартиздат: 47. Страдомский Б.В. 2013. Голубянка дамон Polyommatus damon (Denis et Schiffermuller, 1775) ssp. zhicharovi (Sovinsky, 1915). В кн.: Красная книга Карачаево-Черкесской Республики. Черкесск: Нартиздат: 48. Страдомский Б.В. 2013. Голубянка коридониус Polyommatus corydonius (Herrich-Schaffer, 1851) ssp. arzanovi (Stradomsky et Shchurov, 2005). В кн.: Красная книга Карачаево-Черкесской Республики. Черкесск: Нартиздат: 49. Страдомский Б.В. 2013. Голубянка Лёви Plebejidea loewii (Zeller, 1847) ssp. dzhemagati (Sheljuczko, 1934). В кн.: Красная книга Карачаево-Черкесской Республики. Черкесск: Нартиздат: 50.

2014 Кузнецов Г.В., Страдомский Б.В., Фомина Е.С. 2014. Две формы Melitaea trivia (Denis et Schiffermüller, 1775) (Lepidoptera: Nymphalidae) с территории Волгоградской области России: систематическое положение на основе молекулярно-генетических исследований. Кавказский энтомологический бюллетень. 10(1): 119–120. Страдомский Б.В. 2014. Систематика Lycaenidae (Lepidoptera: Papilionoidea) юга России: молекулярно-генетические и морфологические аспекты. Кавказский энтомологический бюллетень. 10(1): 121–128. Страдомский Б.В., Фомина Е.А. 2014. Стадии развития некоторых голубянок (Lepidoptera: Lycaenidae) юга России. Часть VI. Кавказский энтомологический бюллетень. 10(2): 277–280. Страдомский Б.В. 2014. Мнемозина, или черный апполон – Parnassius mnemosyne (Linnaeus, 1758). В кн.: Красная книга Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на-Дону: Донской издательский дом: 101. 418 Борис Витальевич Страдомский

Страдомский Б.В. 2014. Колистин – Polyommatus coelestinus (Eversmann, 1843). В кн.: Красная книга Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на- Дону: Донской издательский дом: 102. Страдомский Б.В. 2014. Пилаон – Kretania pylaon (Fischer von Waldheim, 1832). В кн.: Красная книга Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов- на-Дону: Донской издательский дом: 103. Страдомский Б.В. 2014. Бавий – Pseudophilotes bavius (Eversmann, 1832). В кн.: Красная книга Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на-Дону: Донской издательский дом: 104. Страдомский Б.В. 2014. Дамоне – Polyommatus damone (Eversmann, 1841). В кн.: Красная книга Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на- Дону: Донской издательский дом: 105. Страдомский Б.В. 2014. Эрос – Polyommatus eros boisduvalii (Herrich-Schaffer, 1844). В кн.: Красная книга Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на-Дону: Донской издательский дом: 106. Страдомский Б.В. 2014. Голубянка римн – Neolycaena rhymnus (Eversmann, 1832). В кн.: Красная книга Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов- на-Дону: Донской издательский дом: 107. Страдомский Б.В. 2014. Зубчатокрылая голубянка, или мелеагр – Polyommatus daphnis (Denis et Schiffermuller, 1775). В кн.: Красная книга Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на-Дону: Донской издательский дом: 108. Страдомский Б.В. 2014. Крибрелла – Muschampia cribrellum (Eversmann, 1841). В кн.: Красная книга Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на- Дону: Донской издательский дом: 109. Страдомский Б.В. 2014. Цинара – Pyrgus cinarae (Rambur, 1839). В кн.: Красная книга Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на-Дону: Донской издательский дом: 110. Страдомский Б.В. 2014. Желтонизый зегрис, или зорька зегрис – Zegris eupheme (Esper, 1782). В кн.: Красная книгу Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на-Дону: Донской издательский дом: 111. Страдомский Б.В. 2014. Бризея бархатница – Chazara briseis (Linnaeus, 1764). В кн.: Красная книгу Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на- Дону: Донской издательский дом: 112. Страдомский Б.В. 2014. Ферульный глазок – Satyrus ferula (Fabricius, 1793). В кн.: Красная книгу Ростовской области. Т. 1. Животные. Ростов-на- Дону: Донской издательский дом: 113.

2015 Арзанов Ю.Г., Страдомский Б.В. 2015. Опыт реконструкции филогении долгоносиков подсемейства Lixinae (Coleoptera: Curculionidae) с использованием молекулярно-генетического анализа. Кавказский энтомологический бюллетень. 11(1): 63–70. Страдомский Б.В., Тихонов В.В. 2015. Молекулярно-генетическое исследование некоторых кавказских представителей рода Kretania Beuret, 1959 (Lepidoptera: Lycaenidae) с описанием нового вида. Кавказский энтомологический бюллетень. 11(1): 183–187. Корб С.К., Страдомский Б.В., Кузнецов Г.В. 2015. Два новых подвида Melitaea ornata Christiph, 1893 (Lepidoptera, Nymphalidae) из Европы и Средней Азии. Амурский зоологический журнал. 7(2): 140–145. Страдомский Б.В., Корб С.К. 2015. О статусе таксона Polygonia c-album var. interposita Staudinger, 1881 (Lepidoptera: Nymphalidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 11(2): 407–409.

2016 Stradomsky B.V. 2016. A molecular phylogeny of the subfamily Polyommatinae. Кавказский энтомологический бюллетень. 12(1): 145–156. Страдомский Б.В., Тихонов В.В., Фомина Е.С. 2016. Polyommatus cyaneus (Lepidoptera, Lycaenidae) и его кавказские подвиды. В кн.: Материалы VI международной конференции по кариосистематике беспозвоночных животных (Саратов, 27–30 августа 2016 г.). Саратов: СГМУ: 42. Korb S.K., Stradomsky B.V. 2016. On the finding of Polyommatus icadius (Groum-Grshimaïlo, 1890) (Lepidoptera: Lycaenidae) in the plains of the south-east of European Russia. Russian Entomological Journal. 23(3): 271–272. Schröder S., Stradomsky B.V. 2016. “Blues and fashion”: a case of polymorphism in females of Arhopala hercules herculina from West Papua, Indonesia (Lepidoptera: Lycaenidae). Nachrichten des Entomologischen Vereins Apollo. 37(2/3): 73–77. Schröder S., Stradomsky B.V. 2016. Resolving the taxonomic status of Hypochrysops hypocletus Oberthür, 1880 (Lepidoptera: Lycaenidae). Suara Serangga Papua (SUGAPA digital). 10(1): 30–35. Страдомский Б.В., Кузнецов Г.В., Тихонов В.В., Яковлев Р.В. 2016. Молекулярно-генетические исследования некоторых популяций и подвидов Hipparchia semele (Linnaeus, 1758) и Satyrus ferula (Fabricius, 1793) (Lepidoptera: Nymphalidae: Satyrinae). Кавказский энтомологический бюллетень. 12(2): 303–306. Страдомский Б.В., Фомина Е.А. 2016. Стадии развития некоторых голубянок (Lepidoptera: Lycaenidae) юга России. Часть VII. Кавказский энтомологический бюллетень. 12(2): 307–311.

2017 Страдомский Б.В. 2017. Стадии развития Plebejidea loewii (Zeller, 1847) (Lepidoptera: Lycaenidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 13(1): 125–126. Stradomsky B.V., Schröder S., Tikhonov V.V. 2017. Identification of an enigmatic lycaenid specimen (Lepidoptera: Lycaenidae) from Sumatra, Indonesia. Кавказский энтомологический бюллетень. 13(2): 247–248.

2018 Stradomsky B.V., Fomina E.S. 2018. Molecular-genetic data for the better knowledge of the identity of Polyommatus elena Stradomsky et Arzanov, 1999 (Lepidoptera: Lycaenidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 14(1): 91–93. Корб С.К., Страдомский Б.В. 2018. О среднеазиатских таксонах рода Melanargia Meigen, 1828 (Lepidoptera: Satyridae) с описанием нового вида и поддержкой последовательностей Cox1 мДНК. Кавказский энтомологический бюллетень. 14(2): 259–266.

2019 Stradomsky B.V., Yakovlev R.V., Fomina E.S. 2019. Molecular genetic confirmation of the subspecies status of blues Agriades orbitulus pheretimus (Staudinger, 1892) and A. orbitulus jugnei Churkin, 2004 (Lepidoptera: Lycaenidae: Polyommatinae). Russian Entomological Journal. 28(2): 186–188. Stradomsky B.V., Fomina E.S. 2019. Some nuances of molecular phylogeny of the genus Satyrium Scudder, 1876 (Lepidoptera: Lycaenidae). Кавказский энтомологический бюллетень. 15(1): 203–205.

Таксоны, описанные Б.В. Страдомским

Polyommatus elena Stradomsky et Arzanov, 1999 Polyommatus neglectus Stradomsky et Arzanov, 1999 Plebejus maracanticus sauromaticus Stradomsky et Arzanov, 2003 Polyommatus arzanovi Stradomsky et Shchurov, 2005 Борис Витальевич Страдомский 419

Callophrys chalybeitincta nigra Stradomsky, 2005 Polyommatus elena fominae Stradomsky, 2005 Polyommatus pacifinus Stradomsky et Tusov, 2006 Polyommatus shchurovi Stradomsky, 2006 Kretania stekolnikovi Stradomsky et Tikhonov, 2015 Melanargia repentina Korb et Stradomsky, 2018

Таксоны, для которых Б.В. Страдомским описаны преимагинальные стадии и установлены кормовые растения

Aricia agestis (Denis et Schiffermuller, 1775) Plebejus caspicus (Forster, 1936) Aricia anteros (Freyer, 1838) Plebejus idas (Linnaeus, 1761) Aricia artaxerxes (Fabricius, 1793) Plebejus maracandicus (Erschoff, 1874) Aricia teberdina (Scheljuzhko, 1934) Plebejus pylaon (Fischer de Waldheim, 1832) Callophrys chalybeitincta (Savinsky, 1905) Polyommatus amandus (Schneider, 1792) Callophrys rubi (Linnaeus, 1758) Polyommatus bellargus (Rottemburg, 1775) Celastrina argiolus (Linnaeus, 1758) Polyommatus bellargus polonus (Poda, 1761) Cupido agriades (Pallas, 1771) Polyommatus coelestinus (Eversmann, 1843) Cupido minimus (Fuessly, 1775) Polyommatus colidon (Poda, 1761) Cupido osiris (Meigen, 1829) Polyommatus colydonius (Herrich-Schӓffer, 1852) Cyaniris semiargus (Rottemburg, 1775) Polyommatus damon (Denis et Schiffermuller, 1775) Eumedonia eumedon (Esper, 1770) Polyommatus damone (Eversmann, 1841) Glaucopsyche alexis (Poda, 1761) Polyommatus daphnis (Denis et Schiffermuller, 1775) Kretania eurypilus (Freyer, 1851) Polyommatus elena Stradomsky et Arzanov, 1999 Kretania sephirus (Frivaldszky, 1832) Polyommatus eros (Ochsenheimer, 1808) Lampides boeticus (Linnaeus, 1767) Polyommatus icarus (Rottemburg, 1775) Lycaena candens (Herrich-Schӓffer, 1844) Polyommatus shchurovi Stradomsky, 2006 Lycaena dispar (Haworth, 1802) Polyommatus thersites (Cantener, 1835) Lycaena helle (Denis et Schiffermuller, 1775) Pseudophilotes bavius (Eversmann, 1832) Lycaena phlaeas (Linnaeus, 1761) Pseudophilotes vircana (Moore, 1865) Lycaena thersamon (Esper, 1784) Satyrius acacia (Fabricius, 1787) Lycaena tityrus (Poda, 1761) Satyrius ilicis (Esper, 1779) Lycaena virgaureae (Linnaeus, 1758) Satyrius pruni (Linnaeus, 1758) Phengaris arion (Linnaeus, 1758) Satyrius spini (Denis et Schiffermuller, 1775) Plebejidea loewii (Zeller, 1847) Scolitantides orion (Pallas, 1771) Plebejus argus (Linnaeus, 1758) ‚ecla betulae (Linnaeus, 1758) Plebejus argyrognomon (Bergstӓsser, 1779) Tomares callimachus (Eversmann, 1848) 420 Кавказский энтомологический бюллетень 15(2): 421–424 © Caucasian Entomological Bulletin 2019

Памяти Халида Али Ага оглы Алиева In memory of Khalid Ali Aga ogly Aliyev (7.02.1949–1.12.2019) Недавно в возрасте 70 лет скончался доктор биологических наук, заведующий отделом наземных позвоночных Института зоологии НАН Азербайджана, член редколлегии «Кавказского энтомологического бюллетеня» Халид Ага оглы Алиев (Х.А.). Халид, как его звали близкие коллеги и друзья, был известным знатоком пчелиных Кавказа, множество лет провел в экспедициях на Кавказе и в Средней Азии, собирая и анализируя богатую и своеобразную фауну пчел и шмелей этих регионов. Родился Х.А. в 1949 году в Баку, в поселке Амирджан, поступил в Азербайджанский институт нефти и химии им. М. Азизбекова, однако позже перевелся и в 1973 году окончил биологический факультет Азербайджанского государственного университета им. С.М. Кирова. С 1973 по 1975 год отслужил в армии, с 1975 года до самой смерти работал в Институте зоологии НАН Азербайджана. В 1977 году Х.А. поступил в аспирантуру этого института и в 1986 году защитил кандидатскую диссертацию на тему «Пчелы (Hymenoptera, Apoidea) биоценозов Малого Кавказа Азербайджана». С этого времени и до защиты докторской Х.А. прошел долгий путь от младшего научного сотрудника до ученого секретаря и заведующего отделом. В 2013 году Х.А. успешно защитил докторскую диссертацию «Пчелиные (Hymenoptera, Apoidea) Азербайджана». В последние годы он возглавлял лабораторию арахнологии, которую недавно переименовали в лабораторию наземных позвоночных. Х.А. был удивительным, светлым человеком. Коллеги, которые с ним впервые знакомились, нередко после этого рассказывали, что «Халид был самым лучшим, что случилось со мной в последнее время». Невероятное кавказское гостеприимство, широта его души, простота и море юмора с первых же часов общения окутывали любого человека. Через некоторое время ты уже понимаешь, что приобрел дорогого и близкого друга, а спустя несколько дней и новый дом, из которого не хочется уезжать. Совместные экспедиции с Х.А. были очень запоминающимися. Халида невозможно было вывести из душевного равновесия, поэтому в полевых условиях с ним уживались люди самых разных характеров. Неисчерпаемый источник знаний о природе Закавказья и истории своей страны, Х.А. был в некотором смысле ходячей энциклопедией Азербайджана. У многих в памяти стоит его образ: джинсы, бейсболка и неизменная трубка, которая вынимается, чтобы выдать очередную философскую восточную мудрость-от-Халида или занимательную историю из жизни местных зоологов. Его знаменитая дача в поселке Мардакяны на Апшероне запомнилась многим гостям: вечерние споры, дискуссии и байки, чай из самовара, обход светоловушек, рай для уставшего энтомолога. Он никогда не «облагораживал» ее до конца в попытке сохранить естественный ландшафт Апшерона. К примеру, на небольшой ее территории можно было собрать 8 видов жуков-чернотелок, в том числе и ранее считавшихся аллопатрическими. У Халида было много учеников, и не только в Азербайджане. Многие из них уже выросли в маститых ученых, специалистов по насекомым и паукообразным. Нет сомнений, что у всех сейчас пусто на душе, так как каждый из нас потерял не только учителя или друга, но и теплый луч света, который Халид дарил каждому. Редколлегия журнала приносит глубокие соболезнования семье, близким и друзьям. Мы скорбим вместе с вами.

М.В. Набоженко, главный редактор, Кавказский энтомологический бюллетень

Памятная статья / Memorial Article 422 Памяти Халида Али Ага оглы Алиева

Список основных научных публикаций Х.А. Алиева

(Включены только статьи в журналах, важные разделы в книгах и монографии. Полный список публикаций до 2015 года представлен на сайте азербайджанской версии Википедии: https://az.wikipedia.org/wiki/Xalid_%C6%8Fliyev)

1983 Алиев Х.А., Агасиев Ш.М., Мирзоева Н.Б., Мамедова Т.Г., Драполюк И.С. 1983. Энтомофауна Кубинского лесного массива. Лесное хозяйство. 1: 64–65. Aлиев X.A. 1983. Материалы по фауне и экологии пчелиных семейства Melittidae (Hymenoptera, Apoidea) Малого Кавказа Азербайджана. Известия Академии наук Азербайджанской ССР. 6: 61–63. Əliyev X.Ə., Əhmədova V.Ə. 1983. Zəhmətçinin kənd təqvimi. Bakı: Elm. 75 p.

1984 Aлиев X.A. 1984. К фауне и зоогеографии шмелей (Hymenoptera, Apoidea, Bombus) Малого Кавказа на территории Азербайджана. Бюллетень МОИП. 89(6): 35–40. Əliyev X.Ə., Salmanov A., Səmədov Q. 1984. Danadişi. Elm və həyat. 4: 12–14.

1985 Алиев Х.А. 1985. Первая находка Anthidium superbum Radoskowski, 1875 (Hymenoptera, Megachilidae). Вестник зоологии. 3: 88. Aliev H.A. 1985. Contribution the fauna of Colletes Latreille, 1802 (Hymenoptera, Apoidea, Colletidae) in Soviet Azerbaijan. Senckenbergiana biologica. 65(3/6): 205–210. Aliev H.A. 1985. ­e subgenus Micrandrena Ashmead, 1899 of Andrena Fabricius, 1775 in the Caucasus Minor of Soviet Azerbaijan (Hymenoptera, Apoidea, Andrenidae). Senckenbergiana biologica. 65(3/6): 211–213. Aлиев X.A. 1985. Фауна и экология пчелиных сем. Colletidae (Hymenoptera, Apoidea) Малого Кавказа на территории Азербайджана. Бюллетень МОИП. 90(5): 45–52.

1986 Aлиев X.A. 1986. Редкие виды пчелиных галиктид (Hymenoptera, Halictidae) фауны СССР. Вестник зоологии. 5: 86. Aliev H.A. 1986. On the fauna of the bee genus Anthidium Fabr. of the Azerbaidjan SSR, Caucasus (Hymenoptera, Apoidea, Megachilidae). Spixiana. 9(3): 271–274 Aliev H.A. 1986. A synopsis of the bee genus Hylaeus Fabricius 1793 of Soviet Azerbaijan (Insecta: Hymenoptera: Apoidea: Colletidae). Senckenbergiana biologica. 66(4/6): 261–269.

1989 Алиев Х.А. 1989. Зоогеографические комплексы пчелиных (Hymenoptera, Apoidea) Малого Кавказа в пределах Азербайджана. Известия Академии наук Азербайджана, серия биологических наук. 3: 54–61. Алиев Х.А. 1989. Шмель Порчинского. В кн.: Красная Книга Азербайджанcкой ССР. Животный мир. Баку: Ишыг: 173–174. Алиев Х.А. Шмель дагестанский. В кн.: Красная Книга Азербайджанcкой ССР. Животный мир. Баку: Ишыг: 175–176. Алиев Х.А. Шмель Млокосиевича. В кн.: Красная Книга Азербайджанcкой ССР. Животный мир. Баку: Ишыг: 177–178. Алиев Х.А. Шмель персидский. В кн.: Красная Книга Азербайджанcкой ССР. Животный мир. Баку: Ишыг: 179–180.

1993 Aлиев X.A. 1993. Материалы к фауне пчелиных рода Andrena (Hymenoptera, Apoidea, Andrenidae) Азербайджана. Известия Академии наук Азербайджана, серия биологических наук. 4–6: 92–96.

1996 Алиев Х.А. 1996. Жалящие перепончатокрылые. В кн.: Животный мир Азербайджана. T. 2. Баку: Элм: 315–328.

1998 Aliev H.A., Lelej A.S. 1998. ­e aculeate Hymenoptera in the collection of the Institute Zoology of the Academy of Sciences of Azerbaijan, Baku. Part 1: ­e mutillid wasps (Mutillidae). Russian Entomological Journal. 7(1–2): 43–50.

1999 Aлиев X.A., Аскерзаде Х.З. 1999. К фауне пчелиных рода Andrena (Hymenoptera, Andrenidae) Малого Кавказа Азербайджана. Известия Академии наук Азербайджана, серия биологических наук. 1–6: 43–46.

2000 Алиев Х.А., Гусейнзаде Г.А., Аскерзаде Х.З. 2000. Пчелиные рода Nomia Latreille, 1804 (Hymenoptera, Apoidea, Halictidae) в коллекции Института зоологии АН Азербайджана. Известия Академии наук Азербайджана, серия биологических наук. 1–3: 57–61.

2003 Алиев Х.А. 2003. Об уникальности наземных членистоногих Талыша. Журнал “Bilgi”. Серия химия, биология, медицина. 2: 105–108.

2004 Алиев Х.А., Алиев А.В. 2004. К познанию фауны пчелиного семейства Andrenidae (Insecta, Hymenoptera, Apoidea) Апшеронского полуострова. Журнал “Bilgi”. Серия химия, биология, медицина. 2: 39–44. Marusik Y.M., Guseynov E.F., Aliyev Kh.A. 2004. Spiders (Arachnida: Araneae) of Azerbaijan. 4. ­e fauna of Nahçivan. Arthropoda Selecta. 13(3): 135–139.

2005 Алиев Х.А., Гусейнзаде Г.А., Алиев А.В. 2005. К познанию фауны пчелинных семейства Halictidae (Hymenoptera, Apoidea) Апшеронского полуострова. Кавказский энтомологический бюллетень. 1(2): 26–37. Aлиев X.A., Камарли В.П. 2005. История изучения жалящих перепончатокрылых (Insecta, Hymenoptera, Aculeata) в Закавказье. “Bilgi”. Серия химия, биология, медицина. 2: 31–38. Алиев Х.А., Гусейнзаде Г.А., Камарли В.П. 2005. Пчелиные Пиркулинского заповедника. Известия Академии наук Азербайджана, серия биологических наук. 3–4: 69–78. Aliev H.A. 2005. On the ecology of bumble bees of Talysh Region, Azerbaijan (Hymenoptera, Apoidea, Bombus). Beiträge zur Entomologie. 55(2): 279–288. Памяти Халида Али Ага оглы Алиева 423

2006 Алиев Х.А., Камарли В.П., Гусейнзаде Г.А. 2006. Жалящие перепончатокрылые (Hymenoptera, Aculeata) Исмаиллинского заповедника. В кн.: AMEA Zoologiya institututun əsərləri, Vol. 28. Bakı: Elm: 77–87.

2007 Алиев Х.А., Гусейнзаде Г.А., Магеррамов М.М. 2007. К познанию фауны пчелиных семейства Halictidae (Hymenoptera, Apoidea) Нахичеванской Автономной Республики. Кавказский энтомологический бюллетень. 3(2): 251–256.

2008 Aлиев X.A. 2008. Пчелиные – опылители нектароносов в Азербайджане. In: Azərbaycan Zooloqlar Cəmiyyətinin əsərləri. Vol. I. Bakı: Elm: 198–203. Əliyev X.Ə., Məhərrəmov M.M. 2008. Naxçıvan Muxtar Respublikasında yayılmış Tetralonia və Amegilla cinslərinin (Hymenoptera, Apoidea, Anthophoridae) arıkimiləri. AMEA Naxçıvan Bəlməsinin Xəbərləri. Təbiət və texniki elmlər seriyası. 2: 71–76. Əliyev X.Ə., Məhərrəmov M.M. 2009. Naxçıvan Muxtar Respublikasında yayılmış Ammobatoides, Habropoda, Paramegilla, Heliophilla, Melecta və ‚yreus cinslərinin (Hymenoptera, Apoidea, Anthophoridae) arıkimiləri. AMEA Naxçıvan Bəlməsinin Xəbərləri. Təbiət və texniki elmlər seriyası. 2: 228–233.

2009 Əliyev X.Ə., Məhərrəmov M.M. 2009. Naxçıvan Muxtar Respublikasında yayılmış Ammobatoides, Habropoda, Paramegilla, Heliophilla, Melecta və ­yreus cinslərinin (Hymenoptera, Apoidea, Anthophoridae) arıkimiləri. AMEA Naxçıvan Bəlməsinin Xəbərləri. Təbiət və texniki elmlər seriyası. 2: 228–233.

2010 Алиев Х.А. 2010. Пчелы рода Colletes Latreille, 1809 (Hymenoptera, Apoidea, Megachilidae) Азербайджана. В кн.: Azərbaycan Zooloqlar Cəmiyyətinin əsərləri. Vol. I. Bakı: Elm: 432–437. Aliev H.A., Kirschey T. 2010. Beitrag zur Bienenfauna Azerbaidschans 1. Die Gattung Colletes Latreille, 1802. Insecta. 12: 33–36. Алиев Х.А. 2010. Пчелы родов Ceratina Latreille, 1802 и Xylocopa Latreille, 1802 (Hymenoptera, Apoidea, Anthophoridae) Азербайджана. Кавказский энтомологический бюллетень. 6(1): 109–111. Əliyev X.Ə., Məhərrəmov M.M. 2010. Naxçıvan Muxtar Respublikasında yayılmış Anthidinii tribasının arıkimiləri (Hymenoptera, Apoidea, Megachilidae). AMEA-nın Naxçıvan bölməsinin Xəbərləri. Təbiət və texniki elmlər seriyası. 2: 185–189.

2011 Aliyev Kh.A. ­e aculeate Hymenoptera in the collection of the Institute of Zoology of the National Academy of Sciences of Azerbaijan, Baku. Part 3. Bees of the genus Nomada Scopoli, 1770 (Hymenoptera: Anthophoridae). Кавказский энтомологический бюллетень. 7(2): 219–225. Алиев Х.А., Камарли В.П. 2011. Пчелиные (Apoidea) опылители плодово-ягодных и технических культур в Азербайджане. Известия Педагогического университета. 1: 57–60. Алиев Х.А., Камарли В.П. 2011. Пчелиные (Hymenoptera, Apoidea) эндемики Кавказа и Азербайджана. В кн.: Труды Института зоологии. Т. 29. Баку: Элм: 318–328.

2012 Əliyev X.Ə., Yunusov T.M. 2012. Torpaq arılarının (Hymenoptera, Andrenidae, Apidae) yaşayış yerlərinə təsiri. Sumqait Dövlət Universiteti “Elmi xəbərlər” təbiət və texniki elmlər bölməsi, cild. 12(2): 76–78. Əliyev X.Ə., Nəbiyeva X.Ə. 2012. Azərbaycanda “Məxməri qarışqalar” (Mutillidae) fəsiləsinə mənsub arıların öyrənilməsinə dair. Azərbaycan Zooloqlar Cəmiyyətinin əsərləri. 1(1): 182–186 Aлиев X.A., Камарли В.П. 2012. Трофические связи пчелиных семейства Colletidae (Hymenoptera, Apoidea) в Азербайджане. Azərbaycan Zooloqlar Cəmiyyətinin əsərləri. 1(2): 73–77. Əliyev X.Ə., Məhərrəmov M.M. 2012. Naxçıvan Muxtar Respublikası faunasında yayılmış Halictus Latreille,1804 (Hymenoptera, Apoidea, Halictus) cinsinə mənsub arı növlərinin öyrənilməsinə dair. AMEA-nın Naxçıvan bölməsinin Xəbərləri. Təbiət və texniki elmlər seriyası. 8(4): 239–235. Əliyev X.Ə., Musayeva Z.Y. 2012. Azərbaycanda yol arıları (Pompilidae) fəsiləsinə mənsub arıların öyrənilməsinə dair. In: Zoologiya institutunun əsərləri. Vol. 30. Iss. 1. Bakı: Elm: 192–195.

2013 Əliyev X.Ə., Hüseynzadə G.A., Qəmərli V.P. 2013. Azərbaycanın Andrenidae (Hymenoptera, Apoidea) fəsiləsi arıkimilərinin trofik əlaqələri və uçuş fenologiyası. Azərbaycan zoologlar cəmiyyətinin əsərləri. 5(2): 48–53. Əliyev X.Ə., Yunusov T.M. 2013. Azərbaycanın Böyuk Qafqaz biogeosenozlarında arıkimilərin (Hymenoptera, Apoidea) rolu. Azərbaycan zoologlar cəmiyyətinin əsərləri. 5(2): 126–129. Aлиев X.A., Камарли В.П., Гусейнзаде Г.А. 2013. Фенология летной активности пчелиных в Азербайджане. Azərbaycan zoologlar cəmiyyətinin əsərləri. 5(2): 153–163. Aлиев X.A. Камарли В.П. 2013. Распространение пчелиных (Hymenoptera, Apoidea) по природным областям Азербайджана. Azərbaycan zoologlar cəmiyyətinin ə sərləri. 5(2): 164–174.

2014 Магеррамов М.М., Алиев Х.А., Байрамов А.Б. 2014. Фауна и экология пчелиных семейства Megachilidae (Hymenoptera: Apoidea) Нахичеванской Автономной Республики Азербайджана. Кавказский энтомологический бюллетень. 10(1): 143–150. Рубцова Л.Е., Ханбекова Е.М., Асланов О.Х., Гусейнов Э.Ф., Снеговая Н.Ю., Aлиев X.A. 2014. Распространение и роль членистоногих – вредителей колоний Apis mellifera на пасеках Большого Кавказа в Азербайджане. Azərbaycan Zooloqlar Cəmiyyətinin əsərləri. 6(1): 210–219. Əliyev X.Ə., Maharramov M.M. 2014. Naxçıvan Muxtar Respublikasının Colletidae (Hymenoptera, Apoidea) fəsiləsinin arıkimilərinin taksonomiyası və ekologiyası. AMEA Naxçıvan Bölməsinin Xəbərləri. Təbiət və texniki elmlər seriyası. 10(2): 197–205.

2015 Aliyev Kh.A., Maharramov M.M. 2015. Contribution on the study of Eucera Scopoli (Hymenoptera: Apidae) from Nakhchivan Autonomous Republic (Azerbaijan). Stuttgarter Beiträge zur Naturkunde A, Neue Serie. 8: 247–250. Əliyev X.Ə., Hüseynzadə G.A., Qəmərli V.P. 2015. İsmayıllı rayonun İvanovka kolxozunun toxumluq yonca əkinlərində arıkimilərin (Hymenoptera, Apoidea) növ tərkibi və sayı. Azərbaycan Zoologlar cəmiyyətinin əsərləri. 7(2): 71–74. Aлиев X.A., Магеррамов М.М., Байрамов A. 2015. Таксономический спектр пчелиных (Hymenoptera: Apoidea) Нахчыванской Автономной Республики Азербайджана. Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 12: 77–84. Aliyev Kh.A. Allahverdi S., Nadimi A., Afshari A. 2015. A preliminary list of Andrena subgenera (Hymenoptera: Andrenidae) of Iran, with five new records. Journal of Insect Biodiversity and Systematics. 1(1): 61–75.

2017 Алиев Х.А., Прощалыкин М.Ю., Магеррамов М.М., Гусейнзаде Г.А. 2017. К познанию пчел рода Andrena Fabricius, 1775 (Hymenoptera: Apoidea: Andrenidae) Азербайджана. Кавказский энтомологический бюллетень. 13(1): 99–109. 424 Памяти Халида Али Ага оглы Алиева

2018 Maharramov M.M., Aliyev Kh.A., Bayramov A.B. 2018. ­e bees of the tribe Anthophorini Dahlbom, 1835 (Hymenoptera: Apoidea: Apidae) of Nakhchichivan Autonomous Republic of the Azerbaijan. Acta Biologica Sibirica. 4(2): 17–24 Maharramov M.M., Aliyev Kh.A., Bayramov A.B. 2018. ­e fauna and ecology of wasps of the genus Tachysphex Kohl, 1883 (Hymenoptera: Apoidea: Crabronidae) in Nakhchivan Autonomous Republic of Azerbaijan. Acta Biologica Sibirica. 4(4): 53–56. Maharramov M., Aliyev Kh., Mammadov A. 2018. ­e Wasp Genus Tachysphex Kohl, 1883 (Hymenoptera: Apoidea: Crabronidae) in Azerbaijan, Caucasus. Acta Zoologica Bulgarica. 70(4): 453–457. Алиев Х.А., Прощалыкин М.Ю., Магеррамов М.М., Гусейнзаде Г.А. 2018. Пчелы (Hymenoptera, Apiformes) Азербайджана: итоги и перспективы изучения. В кн.: Чтения памяти Алексея Ивановича Куренцова. Вып. 29. Владивосток: Федеральный научный центр биоразнообразия наземной биоты Восточной Азии ДВО РАН: 58–71.

2019 Fateryga A.V., Proshchalykin M.Yu., Aliyev Kh.A., Maharramov M.M. 2019. To the knowledge of eumenine wasps (Hymenoptera: Vespidae: Eumeninae) of Nakhchivan Autonomous Republic of Azerbaijan. Far Eastern Entomologist. 379: 25–32. Proshchalykin M.Yu., Maharramov M.M., Aliyev Kh.A. 2019. New data on the tribe Osmiini (Hymenoptera: Megachilidae) from Azerbaijan. Far Eastern Entomologist. 383: 12–20. Mokrousov M.V., Proshchalykin M.Yu., Aliyev Kh.A., Maharramov M.M. 2019. To the knowledge of digger wasps (Hymenoptera: Crabronidae) of Nakhchivan Autonomous Republic of Azerbaijan. Far Eastern Entomologist. 394: 1–24. Aliyev Kh.A., Maharramov M.M., Mammadov A.A. 2019. ­e aculeate Hymenoptera in the collection of the Institute of Zoology of the National Academy of Sciences of Azerbaijan, Baku. Part 4. Wasps of the family Vespidae (Hymenoptera: Vespoidea). Кавказский энтомологический бюллетень. 15(2): 327–334. Содержание * Contents 425

А.В. Пономарёв, Н.Ю. Снеговая, В.Ю. Шматко Synaphosus shirin Ovtsharenko, Levi et Platnik, 1994 (Gnaphosidae) и Holocnemus pluchei (Scopoli, 1763) (Pholcidae) – два новых вида пауков (Aranei) в фауне Кавказа A.V. Ponomarev, N.Yu. Snegovaya, V.Yu. Shmatko Synaphosus shirin Ovtsharenko, Levi et Platnik, 1994 (Gnaphosidae) and Holocnemus pluchei (Scopoli, 1763) (Pholcidae) – two new species of spiders (Aranei) in the fauna of the Caucasus ...... 233–235

J. Mulder, A.V. Gorochov ­e first record of the invasive cricket species Velarifictorus micado (Saussure, 1877) (Orthoptera: Gryllidae: Gryllinae) for Transcaucasia (Georgia) Дж. Малдер, А.В. Горохов Первое указание вселенца Velarifictorus micado (Saussure, 1877) (Orthoptera: Gryllidae: Gryllinae) для Закавказья (Грузия)...... 237–239

Д.А. Гапон Мраморный щитник Halyomorpha halys (Stål, 1855) (Heteroptera: Pentatomidae): расширение ареала в европейской части России, описание имаго, личиночных стадий и диагностика вида D.A. Gapon ­e brown marmorated stink bug Halyomorpha halys (Stål, 1855) (Heteroptera: Pentatomidae): expansion of its range in the European part of Russia, description of the imago and larvae, and the diagnostics of the species ...... 241–247

Э.А. Хачиков Новый вид рода Leptacinus Erichson, 1839 (Coleoptera: Staphylinidae: Xantholininae) из Ростовской области (Россия) E.A. Khachikov A new species of the genus Leptacinus Erichson, 1839 (Coleoptera: Staphylinidae: Xantholininae) from Rostov Region of Russia ...... 249–251

М.Ю. Гильденков Новый синоним Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 (Coleoptera: Staphylinidae: Oxytelinae) M.Yu. Gildenkov A new synonym for Coprophilus (Zonyptilus) solskyi Bernhauer, 1908 (Coleoptera: Staphylinidae: Oxytelinae) ...... 253–256

A.I. Miroshnikov ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. 8. New or little-known taxa from India, Indochina and Sumatra, with notes on the genus Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017 А.И. Мирошников Жуки-дровосеки трибы Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) фауны Азии. 8. Новые и малоизвестные таксоны из Индии, Индокитая и Суматры с заметками о роде Carinolesthes Vitali, Gouverneur et Chemin, 2017 ...... 257–272

A.I. Miroshnikov, X. Gouverneur ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. 9. A new species of the genus Dymasius J. ­omson, 1864 from Southern India А.И. Мирошников, К. Гувернью Жуки-дровосеки трибы Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) фауны Азии. 9. Новый вид рода Dymasius J. ­omson, 1864 из Южной Индии ...... 273–275

A.I. Miroshnikov, D.J. Heffern ­e longicorn beetle tribe Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) in the fauna of Asia. 10. A new species of the genus Mimimbrius Miroshnikov, 2017 from Borneo А.И. Мирошников, Д.Дж. Хефферн Жуки-дровосеки трибы Cerambycini Latreille, 1802 (Coleoptera: Cerambycidae: Cerambycinae) фауны Азии. 10. Новый вид рода Mimimbrius Miroshnikov, 2017 с Борнео ...... 277–281

Г.Э. Давидьян Новый вид подрода Parahanibotus Savitsky, 2019 рода Otiorhynchus Germar, 1822 (Coleoptera: Curculionidae) из Северо-Западного Ирана G.E. Davidian A new species of the subgenus Parahanibotus Savitsky, 2019 of the genus Otiorhynchus Germar, 1822 (Coleoptera: Curculionidae) from northwest Iran ...... 283–286

Ю.Г. Арзанов Морфология преимагинальных стадий долгоносика Plinthus caucasicus (Desbrochers des Loges, 1875) (Coleoptera: Curculionidae: Molytinae) Yu.G. Arzanov ­e morphology of immature stages of Plinthus caucasicus (Desbrochers des Loges, 1875) (Coleoptera: Curculionidae: Molytinae) ...... 287–291 426 Содержание * Contents

V.A. Krivokhatsky, G.H. Karagyan, T.L. Ghrejyan, M.Yu. Kalashian New faunistic records of Myrmeleontoid lacewings (Neuroptera: Myrmeleontidae, Ascalaphidae, Nemopteridae) in Armenia В.А. Кривохатский, Г.А. Карагян, Т.Л. Креджян, М.Ю. Калашян Новые фаунистические находки мирмелеонтоидных сетчатокрылых (Neuroptera: Myrmeleontidae, Ascalaphidae, Nemopteridae) в Армении ...... 293–298

В.Н. Макаркин, В.И. Щуров Сетчатокрылообразные (Neuropterida) и скорпионницы (Mecoptera) с Северо-Западного Кавказа V.N. Makarkin, V.I. Shchurov Neuropterida and Mecoptera from the North-Western Caucasus ...... 299–316

R.K.S. Dias, K.G.I. Udeshika Effects of a gel bait on the suppression of noxious Crematogaster rogenhoferi Mayr, 1879 (Formicidae: Myrmicinae) in Sri Lanka Р.К.С. Диас, К.Г.И. Удешика Воздействие гелевой приманки на ядовитых муравьев Crematogaster rogenhoferi Mayr, 1879 (Formicidae: Myrmicinae) в Шри-Ланке ...... 317–322

F. Ceccolini New records and distribution update of Polistes (Gyrostoma) wattii Cameron, 1900 (Hymenoptera: Vespidae: Polistinae) Ф. Чекколини Новые данные о находках и распространении Polistes (Gyrostoma) wattii Cameron, 1900 (Hymenoptera: Vespidae: Polistinae) ...... 323–326

Kh.A. Aliyev, M.M. Maharramov, A.A. Mammadov ­e aculeate Hymenoptera in the collection of the Institute of Zoology of the National Academy of Sciences of Azerbaijan, Baku. Part 4. Wasps of the family Vespidae (Hymenoptera: Vespoidea) Х.А. Алиев, М.М. Магеррамов, А.А. Мамедов Жалящие перепончатокрылые в коллекции Института зоологии Национальной Академии наук Азербайджана, Баку. Часть 4. Осы семейства Vespidae (Hymenoptera: Vespoidea) ...... 327–334

S.V. Dragan New records of caddisflies of the genus Plectrocnemia Stephens, 1836 (Trichoptera: Polycentropodidae) from Siberia (Russia) С.В. Драган Новые находки ручейников рода Plectrocnemia Stephens, 1836 (Trichoptera: Polycentropodidae) из Сибири (Россия) ...... 335–338

E.V. Tsvetkov Two new species of the subfamily Phycitinae (Lepidoptera: Pyralidae) from West Kazakhstan Е.В. Цветков Два новых вида из подсемейства Phycitinae (Lepidoptera: Pyralidae) из Западного Казахстана ...... 339–345

С.В. Василенко К познанию фауны пядениц (Lepidoptera: Geometridae) Таджикистана S.V. Vasilenko To the knowledge of the fauna of geometrid moths (Lepidoptera: Geometridae) of Tajikistan ...... 347–354

С.К. Корб, А.А. Шапошников Новый подвид Koramius hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888) (Lepidoptera: Papilionidae) с Заалайского хребта, Кыргызстан S.K. Korb, A.A. Shaposhnikov A new subspecies of Koramius hunza (Grum-Grshimaïlo, 1888) (Lepidoptera: Papilionidae) from the Trans-Alai Range, Kyrgyzstan ...... 355–358

D.V. Morgun Boloria eunomia (Esper, 1799) (Lepidoptera: Nymphalidae) revised in the Caucasus: taxonomy, life history, rediscovery and conservation in Armenia Д.В. Моргун Новые данные о Boloria eunomia (Esper, 1799) (Lepidoptera: Nymphalidae) на Кавказе: таксономия, биология, новое нахождение и охрана вида в Армении ...... 359–365

Zs. Bálint, G. Katona, K. Kertész Description of two new species of the groundstreak genus Arzecla Duarte et Robbins, 2010 (Lepidoptera: Lycaenidae: ­eclinae: Eumaeini) from Colombia Ж. Балинт, Г. Катона, К. Кертес Описание двух новых видов рода Arzecla Duarte et Robbins, 2010 (Lepidoptera: Lycaenidae: ­eclinae: Eumaeini) из Колумбии ...... 367–374 Содержание * Contents 427

G.N. Das, S. Gayen, A.K. Sanyal, V. Kumar, Zs. Bálint ­e lesser-known Kumaon Meadow Blue Polyommatus dux Riley, 1926 (Lepidoptera: Lycaenidae: Polyommatinae: Polyommatini) from Uttarakhand, Western Himalaya Г.Н. Дас, С. Гайен, А.К. Саньял, В. Кумар, Ж. Балинт Малоизученная голубянка Polyommatus dux Riley, 1926 (Lepidoptera: Lycaenidae: Polyommatinae: Polyommatini) из Уттаракханда, Западные Гималаи ...... 375–380

Р.В. Романчук, Э.А. Хачиков, С.В. Поушкова Материалы к фауне чешуекрылых (Lepidoptera) Цимлянских песков в Ростовской области (Россия). Сообщение I R.V. Romanchuk, E.A. Khachikov, S.V. Poushkova Materials to the Lepidoptera fauna of Tsimlyansk Sands in Rostov Region of Russia. Report I ...... 381–386

Т.А. Хлызова Обзор фауны кровососущих комаров (Diptera: Culicidae) Тюменской области России и сопредельных территорий T.A. Khlyzova A review of the mosquitoes fauna (Diptera: Culicidae) of Tyumen Region of Russia and adjacent territories ...... 387–399

О.П. Негробов, О.В. Селиванова, О.О. Маслова Новые данные по таксономии и фауне палеарктических видов рода ‚rypticus (Diptera: Dolichopodidae) O.P. Negrobov, O.V. Selivanova, O.O. Maslova New data on the taxonomy and fauna of Palaearctic species of the genus ‚rypticus (Diptera: Dolichopodidae) ...... 401–403

E.P. Nartshuk Leafminer flies (Diptera: Agromyzidae: Agromyzinae) of the fauna of Russia and other countries of the Palaearctic Э.П. Нарчук Минирующие мухи (Diptera: Agromyzidae: Agromyzinae) фауны России и других стран Палеарктики ...... 405–411

Борис Витальевич Страдомский Boris Vitalievich Stradomsky (29.11.1959–4.08.2019) ...... 413–419

Памяти Халида Али Ага оглы Алиева In memory of Khalid Ali Aga ogly Aliyev (7.02.1949–1.12.2019) ...... 421–424 Подписано в печать 27.12.2019. Формат 60х90/8. Бумага мелованная глянцевая. Печать цифровая. Усл. печ. л. 23,02. Заказ № . Тираж 100 экз. Подготовлено и отпечатано DSM. ИП Лункина Н.В. Св-во № 002418081. г. Ростов-на-Дону, ул. Седова, 9. Тел. (863) 263-57-66. E-mail: [email protected]