Regulation Der Genexpression in Halophilen Archaea

Regulation Der Genexpression in Halophilen Archaea

Regulation der Genexpression in halophilen Archaea Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Naturwissenschaften vorgelegt beim Fachbereich Biowissenschaften der Johann Wolfgang Goethe-Universität in Frankfurt am Main eingereicht von Michael Dambeck aus Wiesbaden Frankfurt am Main, 2010 (D30) vom Fachbereich Biowissenschaften (15) der Johann Wolfgang Goethe-Universität als Dissertation angenommen. Dekan: Prof. Dr. Volker Müller Gutachter: Prof. Dr. Jörg Soppa Prof. Dr. Beatrix Süß Datum der Disputation: Aus der Arbeit hervorgegangene Veröffentlichungen: Dambeck M, Soppa J. (2008). Characterization of a Haloferax volcanii member of the enolase superfamily: deletion mutant construction, expression analysis, and transcriptome comparison. Arch Microbiol. 190(3):341-53. Soppa J, Baumann A, Brenneis M, Dambeck M, Hering O, Lange C. (2008). Genomics and functional genomics with haloarchaea. Arch Microbiol. 190(3):197-215. Johnsen U, Dambeck M, Zaiss H, Fuhrer T, Soppa J, Sauer U, Schönheit P. (2009). D-xylose degradation pathway in the halophilic archaeon Haloferax volcanii. J Biol Chem. 284(40):27290-303. Inhaltsverzeichnis 1 Zusammenfassung ............................................................................................................ 1 2 Einleitung .......................................................................................................................... 3 2.1 Archaea – die dritte Domäne des Lebens .................................................................... 3 2.2 Modellorganismus Haloferax volcanii ........................................................................ 5 2.3 Die Enolase Superfamilie ............................................................................................ 6 2.3.1 iftA – Ein Mitglied der Familie .......................................................................... 6 2.3.2 „La superfamilia“ ............................................................................................... 7 2.4 Die DNA-Architektur .................................................................................................. 7 2.4.1 DNA Wrapper .................................................................................................... 9 2.4.2 Archaeale Histone .............................................................................................. 9 2.4.3 Posttranslationale Modifikation von Histonen ................................................. 10 2.4.4 Histon Acetyltransferasen (HATs) ................................................................... 11 2.4.5 Histon Deacetylasen (HDACs) ........................................................................ 12 2.4.6 Was bisher geschah… ...................................................................................... 13 2.5 Archaeale Motilität und Chemotaxis ......................................................................... 14 2.5.1 Archaeale Flagellen .......................................................................................... 14 2.5.2 Chemotaxis ....................................................................................................... 15 2.6 Zielsetzung ................................................................................................................. 17 3 Ergebnisse ....................................................................................................................... 18 3.1 Charakterisierung von iftA ......................................................................................... 18 3.1.1 In silico Analysen zur Funktionsaufklärung .................................................... 18 3.1.2 in frame Deletionsmutante von iftA ................................................................. 20 3.1.3 Medium- und Wachstumsphasen-abhängige Expression von iftA ................... 22 3.1.4 Untersuchung des Transkriptoms in Abhängigkeit von IftA ........................... 25 3.2 Genregulation durch Protein-Acetylierung/Deacetylierung ...................................... 27 3.2.1 Charakterisierung der Histonmutanten ............................................................. 27 3.2.2 Transkriptom abhängig von Histonacetylierungen .......................................... 28 3.2.2.1 Der Acetylierte Zustand ................................................................................... 28 3.2.2.2 Der Deacetylierte Zustand ................................................................................ 31 3.2.3 Transkriptom Analysen von Acetylase- und Deacetylasemutante ................... 31 3.2.3.1 Das Pat1-abhängige Transkriptom ................................................................... 32 3.2.3.2 Das Sir2-abhängige Transkriptom ................................................................... 33 3.2.4 Sir2 – eine Klasse III Histondeacetylase (HDAC) ........................................... 38 3.2.4.1 Transkription und Translation von Sir2 ........................................................... 38 Inhaltsverzeichnis 3.2.4.2 Charakterisierung der Deletionsmutante Δsir2 ................................................ 39 3.2.4.3 Das Flagellen Gencluster ................................................................................. 44 3.2.5 Unterssuchung der Chemotaxis in H. volcanii ................................................. 45 3.2.5.1 „Chemical-in-plug“ Assay ............................................................................... 45 3.2.5.2 Kapillar Assay .................................................................................................. 46 4 Diskussion ....................................................................................................................... 48 4.1.1 IftA und die Enolase Superfamilie ................................................................... 48 4.1.2 Proteinacetylierung/-deacetylierung und Histone ............................................ 53 4.1.2.1 Sir2, Motilität und Chemotaxis – Theorie... ..................................................... 58 4.1.2.2 Sir2, Motilität und Chemotaxis – ...und Praxis ................................................ 60 4.1.2.3 Regulation der Transkription – Pat1, Sir2 und das Histon ............................... 63 5 Material und Methoden ................................................................................................. 64 5.1 Materialien ................................................................................................................. 64 5.1.1 Laborgeräte ....................................................................................................... 64 5.1.2 Chemikalien ..................................................................................................... 65 5.1.3 Verbrauchsmaterialien ..................................................................................... 66 5.1.4 Enzyme ............................................................................................................. 66 5.1.5 Antikörper ........................................................................................................ 67 5.1.6 Größenstandards ............................................................................................... 67 5.1.7 System-Kits ...................................................................................................... 67 5.1.8 Plasmide ........................................................................................................... 68 5.1.9 Oligonukleotide ................................................................................................ 69 5.2 Organismen und Zellzucht ......................................................................................... 70 5.2.1 Organismen ...................................................................................................... 70 5.2.2 Nährmedien und Zellkultivierung .................................................................... 71 5.2.3 Stammhaltung ................................................................................................... 74 5.2.4 Bestimmung der Zelldichte .............................................................................. 75 5.2.5 Methoden zur Untersuchung der Chemotaxis .................................................. 75 5.2.5.1 Allgemeine Vorbereitungen ............................................................................. 75 5.2.5.2 „Chemical-in-Plug“ Methode ........................................................................... 76 5.2.5.3 Kapillar Assay .................................................................................................. 76 5.3 Molekularbiologische Methoden ............................................................................... 78 5.3.1 Isolierung von Plasmid-DNA aus E. coli ......................................................... 78 5.3.2 Isolierung von genomischer DNA aus H. volcanii .......................................... 79 5.3.3 Isolierung von Gesamt-RNA aus H. volcanii ................................................... 80 Inhaltsverzeichnis 5.3.4 Reinigung von Nukleinsäuren .......................................................................... 81 5.3.5 Phenol/Chloroform Extraktion ......................................................................... 81 5.3.6 Konzentrationsbestimmung von Nukleinsäurelösungen .................................. 82 5.3.7 Elektrophoretische Auftrennung von DNA-Lösungen..................................... 82 5.3.8 Elektrophoretische Auftrennung von RNA-Lösungen ....................................

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